WO2002053722A1 - Ginsenoside glycosidase hydrolisant le ginsenoside glycosyle et son utilisation - Google Patents

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Fengxie Jin
Hongshan Yu
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Fengxie Jin
Hongshan Yu
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    • C12N9/14Hydrolases (3)
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    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
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    • C12N9/2434Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
    • C12N9/2445Beta-glucosidase (3.2.1.21)
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    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01021Beta-glucosidase (3.2.1.21)

Definitions

  • the present invention relates to ginsenoside glycosidase that hydrolyzes the saponin glycosyl group with high content in ginseng to prepare rare saponins with high physiological activity.
  • the invention also relates to the use of the ginsenoside glycosidase.
  • Ginseng is a Chinese herbal medicine with a history of thousands of years. It is a nourishing and strong medicinal material. Commonly used medicinal ginseng is ginseng ( ⁇ "a; c gz we « g CA Meyer), American ginseng (panax quinquefolium L.) ⁇ Panax natoginseng, bamboo ginseng (Panax japoniciis) and other ginseng genus ( Panax genus) plant.
  • Ginsenosides can be divided into three types: Protopanaxdiol Type ginsenoside (PPD), Protopanaxtriol Type ginsenoside (PPT), and oligosaccharide fruit saponins.
  • PPD Protopanaxdiol Type ginsenoside
  • PPT Protopanaxtriol Type ginsenoside
  • oligosaccharide fruit saponins oligosaccharide fruit saponins.
  • Ginsenosides RaUFRa 2 , Ra 3 , Rb credit Rb 2 , Rb 3 , Rc, Rd, F 2 , Rg 3 , Rg 5 , R 2 , and Rh 3 are protopanaxadiol saponins; ginsenosides Re, Rg l5 Rg 2 , Rg 4 , Rh l3 Rh 4 are protopanaxatriol saponins; Ro and other saponins are ginseng oleanolic acid saponins.
  • ginsenosides Ra l 5 Ra 2 , Ra 3 , Rb l 5 Rb 2 , Rb 3 , Rc, Rd, F 2 , Re, Rg are Dammarane 20 (S) -saponins Ginsenosides Rg 3 , Rg 2 , Rg 2 , Rh, have 20 (S) and 20 (R) isomers.
  • the main chemical structures of ginsenosides are as follows: Protopanaxadiol saponins
  • R ''gic -gic -glc ⁇ -ar- ⁇ fur)
  • the higher saponins in ginseng are Ra, Rb, Rb 2 , Rc, Rd, Re and! ? ⁇ And other saponins, and Rg 3 , Rg 2 , Rg 5 , Rh 2 , Rhp Rh 3 and 4 and other saponins are rare saponins only found in wild ginseng and red ginseng. These rare saponins often have higher physiological activities: such as Rii 2 , ⁇ and R g3 saponins have strong anti-cancer effects, but no side effects. R and Rg 2 have a better softening effect on blood vessels. These rare saponins are of great significance to modern medicine and health food.
  • an object of the present invention is to provide a new class of enzymes capable of hydrolyzing ginsenoside glycosyl to prepare rare saponins, which are named herein as ginsenoside-glycosidases.
  • Another object of the present invention is to provide the use of the ginsenoside glycosidase.
  • the invention relates to a new enzyme capable of hydrolyzing ginsenoside glycosyl to prepare rare saponins, and is named as ginsenoside-glycosidases.
  • the enzyme of the present invention is present in microorganisms, ginseng plants, wheat bran, almonds, malt and animal liver, and this kind of ginsenoside glycosidase is used to treat Ra, Rbp Rb 2 , Rc, Rd, Re, Rg ⁇ with higher content in ginseng. D.
  • saponins 13 ⁇ 4 2 and 1 ⁇ 3 can prepare rare saponins Rl Rh 2 , CK, Rg 2 , Rg 3 , F 2 , R gl , Rd, and aglycones and their isomer saponins, so that The rare saponin components and other rare saponins of red ginseng and wild ginseng are obtained in large quantities.
  • the ginsenoside glycosidase of the present invention is divided into four types according to the difference of the hydrolyzed ginsenoside glycosyl reaction, namely ginsenoside glycosidase I, ginsenoside glycosidase II, ginsenoside glycosidase III, and ginsenoside-a-rhamnolide.
  • Glycosidase wherein:
  • Ginsenoside glycosidase I can hydrolyze ⁇ -glucoside bonds, ⁇ -xylosyl bonds, ⁇ -arabinosyl bonds of ginsenosides Ra, Rbj. Rb 2 , Rc, and Rd;
  • Ginsenoside glycosidase II can hydrolyze the ⁇ -glucoside bond, ⁇ -xylosyl bond, and ⁇ -arabinoside bond of the 20th carbon atom 20-C of ginsenoside Ra, Rb Rb 2 , Rc, Rd to form Rd saponin;
  • Ginsenoside glycosidase II can hydrolyze the glycosidic bond between the diglucosyl group and saponin on the third carbon atom of ginsenoside;
  • Ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase can hydrolyze the first carbon of ginsenoside Re and Rg 2
  • the ⁇ -rhamnoside bond on the surface can generate Rg n R and saponin, respectively.
  • a mixture of these four enzymes or a single enzyme is used to treat higher saponin glycosyl groups such as Ra, R Rb 2 , Rc, Rd, Re, and R gl in ginseng to prepare various rare saponins.
  • the present invention also relates to the use of the ginsenoside glycosidase of the present invention, for example, to process saponins with high content in ginseng and other readily available ginsenosides to prepare rare and useful saponins; to process ginseng mixed total saponins to prepare Mixed ginseng saponins with high content of rare saponins; processed ginseng powder to prepare ginseng products with high content of rare saponins.
  • the ginsenoside glycosidase of the present invention is different from traditional cellulase and hemicellulase based on polysaccharides such as cellulose and hemicellulose: Cellulase and hemicellulase can only hydrolyze cellulose and The glycosidic bonds of polysaccharides such as hemicellulose, and the ginsenoside glycosidase of the present invention can hydrolyze the glycosidic bonds of ginsenoside glycosides.
  • ⁇ -glucosidase (EC 3.2.1.21) is capable of hydrolyzing the ⁇ -glucoside bonds of cellulose and cellobiose, and is not capable of hydrolyzing the ⁇ -glucoside bonds of the third carbon atom of ginsenoside.
  • the reason is that conventional cellulose and hemicellulase hydrolyze glycosidic bonds; however, the ginsenoside glycosidase of the present invention is capable of hydrolyzing glycosidic bonds of saponin glycosides having 30 carbon atoms.
  • the ginsenoside glycosidases of the present invention have been purified after purifying the enzyme protein and their properties. It is found that there are at least four different enzymes according to the hydrolyzed glycosyl reaction: namely ginsenoside glycosidase I, ginsenoside glycosidase II, and ginsenoside glycosidase III And ginsenoside-C-rhamnosidase, etc .: Ginsenoside glycosidase I can hydrolyze ⁇ -glucoside bonds, ⁇ -xylosyl bonds, ⁇ -arabinosyl bonds of ginsenosides Ra, Rb, Rb 2 , Rc, Rd; Ginsenoside glycosidase II can hydrolyze the ⁇ -glucoside bond, ⁇ -xylosyl bond, ct-arabinoside bond of ginsenoside Ra, Rb, Rb 2 , Rc, Rd at the 20th carbon atom of 20-C
  • the ginsenoside glycosidase of the present invention can be used to: process saponins with high content in ginseng * and other easily available ginsenosides, etc., to prepare rare and useful saponins; process ginseng mixed total saponins, and prepare ginseng mixtures with high saponin content Saponin; Treatment of ginseng powder to prepare rare ginseng products with high saponin content.
  • the ginsenoside glycosidases of the present invention can be derived from microbial cultures, ginseng plants, almonds, wheat bran, almonds, malt, animal liver, and the like.
  • the microorganisms include bacteria, streptomyces, yeast, Aspergillus and Basidiomycetes.
  • ginseng extract or ginseng powder can be added to increase enzyme production; microorganisms can be cultivated in liquid or solid state; after solid culture, buffer solution is leached and centrifuged to remove enzymes to obtain enzyme solution; after liquid culture, centrifuged to remove enzymes to obtain Enzyme solution.
  • the ginseng plant and animal livers were broken, leached with buffer solution, and centrifuged to remove residues to obtain enzyme solution.
  • the wheat bran, malt and defatted almonds are leached with a buffer solution and centrifuged to remove the residue to obtain an enzyme solution.
  • These enzymes can also be added to ammonium sulfate or alcohol to precipitate the enzyme protein, and then dissolved in a buffer solution, and desalted to obtain a concentrated solution of saponin glycosidase.
  • the content of the four enzymes included in the ginsenoside glycosidase of the present invention is different according to the source of the enzyme.
  • the saponin glycosidases of the present invention can directly process saponins to prepare rare saponins; depending on the target product, purified enzymes can be used or unpurified enzymes can be used.
  • the reaction conditions of these enzymes are pH 2-11 and temperature 5 ⁇ 70 ° C.
  • the saponin concentration is 0.001% to 20%.
  • Enzyme reaction substrates are all protopanaxadiols and protopanaxatriol saponins; enzymatic reaction products are saponin by-products that include all or part of the saponin glycosyl group, such as Rhp Rh 2 , .CK, Rg 2 , Rg 3 , F 2 , R gl , Rd and other saponins, as well as the isomer saponins produced during the reaction of aglycones and enzymes.
  • FIG. 1 shows the mechanism of ginsenoside glycosidase I of the present invention for hydrolyzing protopanaxadiol saponins.
  • Figure 2 shows the ginsenoside glycosidase II of the present invention hydrolyzes protopanaxadiol saponins Mechanism.
  • Fig. 3 shows the mechanism of ginsenoside glycosidase III hydrolysis of ginsenosides by the present invention.
  • Fig. 4 shows the hydrolysis mechanism of ginsenoside-ex-rhamnosidase of the present invention.
  • Fig. 5 shows a structure diagram of 20 (S)-and 20 (R) -type ginsenosides.
  • Example 1 Preparation of microbial ginsenoside glycosidase
  • the strain is Aspergillus niger FFCCDL-48g (FFCCDL, Dalian Light Industry Institute Strain Collection).
  • Table 1 shows that: The enzyme produced by Aspergillus niger can hydrolyze the glycosyl groups of protopanaxdiol type ginsenoside (PPD), and the degree of hydrolysis is as high as 90%.
  • the conversion rate of first-class hydrolysis to Rh 2 saponin is as high as more than 50%; the main products of the enzyme reaction are ginsenoside F 2 , CK, Rh 2 and saponin.
  • the hydrolysis reaction of ginsenosides Ra ,, Ra 2 and Ra 3 by this enzyme is similar to that of Rt ⁇ saponinase.
  • the ginsenoside glycosidase of Aspergillus niger has at least the following enzymatic activities: it has the activity of hydrolyzing ⁇ -(1-2) -D-glucosyl group at the third carbon position of PPD saponin and hydrolyzing ⁇ at saponin -D-glucosidic bond activity; has the ability to hydrolyze-(1-6) -D-glucosidic bond, a- (1 ⁇ 6) -L-arabinosidic bond and 6) xylosyl bond on the twentieth carbon position active.
  • Table ⁇ Hydrolysis of different ginsenoside glycosides by ginsenoside glycosidase from Aspergillus niger
  • ginsenoside glycosidase is affected by ginseng extract or ginseng Induction of saponin: If an inducer-ginseng extract or saponin is added to the medium, the enzyme production is increased; if no inducer is added, the yield of ginsenoside glycosidase is decreased.
  • Enzyme reaction Rb concentration 0.5%, enzymatic reaction at pH 5 and 30 ° C It can be known from Table 4: In the initial stage of the reaction, ginsenosides! ? ⁇ The glucosyl group at the 20th carbon position is hydrolyzed and converted to Rd. As the reaction time gradually increases, the output of Rd also decreases, and the content of F 2 and CK increases. When the reaction time reaches 12-24 hours, Ginsenoside? The yield of 2 was large; the yield of ginsenoside CK, Rh 2 and saponin increased with the reaction time. The effect of reaction time on the enzymatic hydrolysis of ginsenosides Ra, Rb 2 , Rc and Rd is similar to the result of hydrolysis.
  • Rb ,, Rb ,, Rc and Rd concentration 0.5%
  • reaction pH5.0, 30 ° C 18 hours Ra of the class of saponins reacted with Rb The results are similar.
  • the 36th tube fraction eluted on the DEAE-cellulose column that is, the 36th tube fraction eluted with a 0.12M NaCl gradient, was lyophilized and used as a single point for polyacrylamide SDS electrophoresis, and its molecular weight was 51,000.
  • Its enzyme is a pure enzyme, named ginsenoside glycosidase I, and its enzyme activity is shown in Table 6.
  • the enzyme of the 36th tube fraction ie, ginsenoside glycosidase I
  • the 20-C ⁇ -(1-6) -D-glucoside bond on the 20th carbon atom of saponin It can also hydrolyze the 20-C a-(l ⁇ 6) -L-arabinoside of Rc and Rb 2 saponins, and can hydrolyze the ⁇ - (1-6) -D-xylosyl bond of 20-C of Ra saponins.
  • Ginsenoside glycosidase I is also capable of hydrolyzing p-nitrophenol- ⁇ -glucoside, ⁇ -xylosyl, ot-arabinoside, ⁇ -galactoside; but it cannot hydrolyze nitrophenol-a-rhamnoside.
  • Ginsenoside glycosidase ⁇ 54th tube fraction eluted on a DEAE-cellulose column, ie, 54th tube fraction eluted with 0.18 M NaCl, was lyophilized and subjected to SDS electrophoresis It is a single point with a molecular weight of 90,000, and the corresponding enzyme is named ginsenoside glycosidase II, which can only hydrolyze the 20-C ⁇ -(1-6) -glucoside bonds of Rab !, Ra-type saponin ⁇ -(1-6) -xyloside bond and 20-C ⁇ - (1 ⁇ 6) -arabinoside bond of Rb 2 and Rc, and convert them to Rd ; slightly hydrolyze Rd saponin to Rg 3; do not hydrolyze ginsenoside The ⁇ - (1-2) -glucosidic bond of 3-C of protopanaxadiol saponins.
  • Ginsenoside glycosidase III was purified using high performance liquid protein preparative chromatography (BioRad): The separation column was Bio-Scale Q; the collection volume per test tube was 2 ml. Load 1 ml of Aspergillus niger enzyme solution prepared by the above 1-1 method, and then use a gradient of 25 mM Tri-HCl buffer at pH 7.4, 25 mM NaCl at 25 mM and pH 7.4 gradient Elution; the single point of the enzyme solution in the 18th tube was SDS electrophoresis, indicating that it was a pure enzyme, named ginsenoside glycosidase III. This enzyme can hydrolyze the saponin 3-C diglucosyl group, making Rd and R & saponin into C-K and saponin, respectively.
  • the reaction mechanism is shown in Figure 3.
  • ginsenoside glycosidase In order to observe the difference between the ginsenoside glycosidase and the known exocellulase of the present invention, ginsenoside glycosidase and the known cellulose ⁇ -glucosidase (EC 3.2.1.21) In comparison, 0.5% ginsenoside Rb D Rd was used as a substrate to react at pH 5.0 and 30 ° C. for 18 hours; the results are shown in Table 8.
  • the ginsenoside glycosidases of the present invention are different types of enzymes from the traditional cellulose- ⁇ -glucosidase and cellobiose producing enzymes.
  • a 1000 ml triangle bottle was filled with 220 ml of a 1% by weight ginseng water extract and 3% by weight wheat bran extract culture medium.
  • Aspergillus oryzae ⁇ ergzY / ⁇ oryzae FFCCDL-39g (Dalian Institute of Light Industry) (Species depository) Inoculate 10 such Erlenmeyer flasks and incubate in a shaker at 30 ° C for 64 hours. After centrifugation, about 2000 ml of supernatant was obtained from 10 flasks.
  • the ginsenoside glycosidases of Aspergillus oryzae hydrolyze the protopanaxadiol saponin glycosyl, such as the reaction pH, temperature and reaction time, which are similar to those of Aspergillus niger.
  • the enzyme made from Aspergillus niger cannot hydrolyze the saponin Re and 13 ⁇ 4 of 6-C cl ⁇ 2) -L-rhamnoside, while the ginsenoside glycosidase from Aspergillus oryzae can hydrolyze and generate R gl and Rhi saponins.
  • the ginsenoside glycosidase of Aspergillus oryzae contains not only the activities of ginsenoside glycosidase I, ginsenoside glycosidase II, ginsenoside glycosidase III and other enzymes of Aspergillus niger, but also has ginsenoside-a- (l- 2) The activity of -L-rhamnosidase, that is, ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase.
  • BioRad proteomic analysis equipment (Biologic Medium Pressure Chromatography) was used to isolate and purify ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase from Aspergillus oryzae. Separation Column Bio-Scale Q2 (BioRad); Enzyme solution injection volume is 1ml; Mobile phase speed is 1ml / min; Mobile phase is 25mM, pH8.2 Tris-HCl buffer and 25mM, pH8.2 Tris-HCl +0.5 M NaCl buffer gradient elution. The collection volume was 2 ml / tube.
  • the collected eluate was measured for enzyme activity. The results showed that the ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase activity was fractionated in the 16th tube.
  • the ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase was analyzed by SDS polyacrylamide gel electrophoresis. The single point of electrophoresis has a molecular weight of 53,000, indicating that the 16th tube fractionating enzyme is a purified enzyme.
  • the purified ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase can hydrolyze the a-L-rhamnoside bonds of 6-C (at the 6th carbon position) of ginsenoside Re and Rg 2 to generate R gl ⁇ 0 ⁇ 1 0 enzymes
  • the pH of the higher reaction activity is 4 ⁇ 7 (the optimal pH is 5); the temperature of the higher enzyme activity is 30 ⁇ 50 ° C (the optimal temperature is 40 ° C).
  • the purified ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase only hydrolyzes the ⁇ -L-rhamnoside bonds in protopanaxatriol saponins (PPT) 6-C, and does not hydrolyze other glycoside bonds in ginsenosides.
  • PPT protopanaxatriol saponins
  • the optimum reaction temperature of this enzyme is 70 ° C and the optimum pH is 6.0.
  • Candida sp. FFCCDL-2g (Dalian Institute of Light Industry Strains) was cultured in a shaker at 30 ° C on a medium containing 2% by weight of ginseng water extract and 8% by weight of wort for 56 hours. Take 500ml of the supernatant by centrifugation, add (NH 4 ) 2 S0 4 powder to a saturation of 65%, store at 4 ° C overnight, collect the precipitate by centrifugation, dialyze in 0.01M pH5 acetic acid buffer solution, and remove impurities by centrifugation to obtain 25 Ml of enzyme solution.
  • Streptomyces sp.FFCCDL-2g (Dalian Institute of Light Industry Strains) in an enzyme-producing medium containing 1% (weight) ginseng water extract and 3% (weight) wheat bran water extract, at 30 ° C Culture the bacteria for 48 hours. Centrifuge 300 ml of the supernatant, add (NH 4 ) 2 S0 4 powder to a saturation of 70% to precipitate the enzyme, store at 4 ° C overnight, and collect the pellet by centrifugation. Dialysis was performed in a 0.01 M, pH 5 acetic acid buffer solution to remove impurities to obtain 15 ml of enzyme solution.
  • the Basidiomycete Tremella sp. FFCCDL-12g strain (Dalian Institute of Light Industry) was cultured in a solid medium containing 125 g of ginseng powder, 374 g of wheat bran and 500 ml of water for 5 to 7 days. Then, 2500 ml of a 0.01 M, pH 5.0 acetate buffer solution was added to the solid medium and allowed to stand for 2 hours. After the insoluble matter was removed by centrifugation, about 2000 ml of leaching solution was obtained; (NH 4 ) 2 S0 4 powder was added to the leaching solution, and the saturation degree of ammonium sulfate was 70%. Stir at 4 ° C overnight. Dialyze under pH 5 acetate buffer. Then, it was diluted to 150 ml with 0.01 M, pH 5 acetic acid buffer, and the insoluble matter was removed to obtain an enzyme solution.
  • Microbes such as bacteria, streptomyces, yeast, mold, and basidiomycetes all produce ginsenoside glycosidase; when these fungi produce ginsenoside glycosidase, adding ginseng extract will increase the enzyme production.
  • the ginsenoside glycosidases of the present invention are different from conventional cellulases (cellulose- ⁇ -glucosidase (EC 3.2.1.21), cellobiose-generating enzymes) in terms of enzyme reaction properties.
  • the ginsenoside glycosidases of the present invention are divided into at least four types according to the enzymatic hydrolysis of saponin glycosyl reactions: namely ginsenoside glycosidase I, ginsenoside glycosidase II, ginsenoside glycosidase III, and ginsenoside- ⁇ -rhamnosidase .
  • Example 2 Ginsenoside glycosidase from a ginseng plant
  • Tris-HCl containing 0.02M and pH7.4 contained KC1 concentrations of 0.06, 0.12, 0.18, and 0.24M.
  • the solution was subjected to gradient elution on a column with adsorbed enzyme. After the elution, each fraction was tested for saponin digestion.
  • the enzyme in the 37th tube fraction could hydrolyze the glucosidic bond between the disaccharide at the 3rd carbon position of saponin Rd and saponin to convert Rd to CK;
  • the 52-tube fractionase can hydrolyze the ⁇ -(1-2) glucosidic bond at the third carbon position of Rd saponin, convert Rd to F 2 , and also hydrolyze the glycosidic bond at the 20th carbon position of Rb and Rc saponin. Rb and Rc are converted to F 2 .
  • Table 10 Hydrolysis of ginsenosides by enzymes purified from ginseng plants
  • Saponin substrate concentration 0.5%; reaction at pH 5.0, 50 ° C for 18 hours. It can be seen from Table 10 that the enzyme from the 52th tube fraction eluted from the DEAE-cellulose column can hydrolyze the glycosidic bond at the 20th carbon position of Rl 1 » 2 and Rc saponin, and can also hydrolyze the ⁇ -at the 3 carbon position. (1-2) glucosidic bond.
  • the enzyme from the 52nd tube fraction was a single spot on SDS polyacrylamide electrophoresis with a molecular weight of 59,000. So the enzyme in the 52nd tube fraction is ginsenoside glycosidase I type.
  • the molecular weight of the ginsenoside glycosidase I type of the ginseng plant is slightly larger, and it does not hydrolyze the glycoside bonds directly bound by saponin.
  • the purified enzyme from the 37th tube of the fraction can hydrolyze the glycosidic bond between the disaccharide at the 3rd carbon position of saponin Rd and saponin to form CK saponin, which belongs to the type of ginsenoside glycosidase III.
  • Saponin substrate 0.5%; At pH, 5.0, 4 (TC enzyme reaction for 20 hours, it can be seen from the table that wheat branase can hydrolyze the glucosidic bond at the third carbon position of the saponin Rd to F 2;. Hydrolyze the glycosidic bonds at the 20th and 3rd carbon positions of Rbp 2 and Rc to generate F 2 .
  • the optimum pH value of this enzyme is 5.0; the optimal reaction temperature is 40 ° C; the ferrous and magnesium ions can activate the enzyme, and the divalent copper ions inhibit the enzyme activity.
  • ginsenoside Rb formed water, such as Rd, F 2 , CK and Rg3.
  • Plant seeds-almonds crush 100 g of almonds after degreasing, add 300 ml of 0.01 M, pH 5 acetic acid buffer solution for 2 hours at room temperature, centrifuge to remove residue, add (NH 4 ) 2 S0 4 powder to saturation The enzyme was precipitated at 60%, stored at 4 ° C overnight, and the pellet was collected by centrifugation. Dialysis was performed in a 0.01 M, pH 5 acetic acid buffer solution to remove impurities to obtain 30 ml of an enzyme solution. Take 10ml of enzyme solution and 10ml / oRbi acetic acid buffer solution (containing 20% ethanol) for 50 hours to react for 14 hours.
  • each saponin monomer obtained by separation and purification of the enzyme reaction product was measured by nuclear magnetic resonance (NMR) and mass spectrometry.
  • NMR nuclear magnetic resonance
  • the mass spectrometer was JEOL DX X 400, and the method was fast atomic impact method (FAB-MS).

Description

发明领域
本发明涉及水解人参中含量较高的皂甙糖基以制备生理活性 高的稀有皂甙的人参皂甙糖苷酶。 本发明还涉及所述人参皂甙糖 苷酶的用途。
发明背景
人参是已有几千年历史的中草药材, 是滋补强壮的药材。 常 用的药用人参是人参( ^"a;c gz we«g C. A. Meyer)、美国参( panax quinquefolium L. ) ^ 三七参 (Panax natoginseng、 竹节参 (Panax japoniciis ) 禾口其他人参属 (Panax genus ) 植物。
人参植物中最重要的有效成分是人参皂甙, 已发现的人参皂 甙已有 30 余种。 人参皂甙可分为三种类型: 原人参二醇类皂甙 (Protopanaxdiol Type ginsenoside, PPD)、 原人参三醇类鸟武 (Protopanaxtriol Type ginsenoside, PPT)和齐壤果酸类皂甙。 人参 皂甙 Ra„ Ra2, Ra3, Rb„ Rb2, Rb3, Rc, Rd, F2, Rg3, Rg5, R 2, 和 Rh3 是原人参二醇类皂甙; 人参皂甙 Re, Rgl5 Rg2, Rg4, Rhl3 Rh4是原 人参三醇类皂甙; Ro 等皂甙是人参齐墩果酸类皂甙。 其中, 人 参皂甙 Ral 5 Ra2, Ra3, Rbl 5 Rb2, Rb3, Rc, Rd, F2, Re, Rg是达玛 20(S)-皂甙 ( Dammarane 20(S)-saponins),人参皂甙 Rg3、 Rg2、 Rg2、 Rh,具有 20(S)和 20(R)异构体。 主要的人参皂甙化学结构如下: 原人参二醇类皂甙 原人参三醇类皂甙
Figure imgf000003_0001
R. R2 R, R2
Rb, -glc2-glc -glc6-glc Re -glc2-rha -glc
Rb2 -glcj-glc -glc6-ara(pyr) Rg. -glc
R'」 gic:-gic -glc^-ar-^fur) Rg2 -glc2-rha H(20-S和 20-R)
Rd -glc Rh, -glc H(20-S和 20-R)
F2 -glc -glc
Rg3 -glc -glc H (20-S和 20-R)
Rh2 -glc H (20-S和 20-R)
C-K H -glc
在人参中含量较高的皂甙是 Ra、 Rb Rb2、 Rc、 Rd、 Re 和 !?^等皂甙, 而 Rg3、 Rg2、 Rg5、 Rh2、 Rhp Rh34等皂甙是 只有在野山参和红参中存在的稀有皂甙。 这些稀有皂甙往往具有 较高的生理活性: 如 Rii2、 ^^和 Rg3皂甙具有很强的抗癌作用, 但无副作用。 R 和 Rg2等具有较好的软化血管的作用。 这些稀 有皂甙对现代医学和保健食品意义很大。 但是, 这些稀有皂甙从 红参和野山参中提取很困难的, 因为这些红参和野山.参原料贵 ; 稀有皂甙含量只有十万分之几, 因此, 从红参和野山参中提取稀 有皂甙是不大可能的。
曾经有人尝试过用化学方法合成人参稀有皂甙 Rh2, 但收率 很低 (刘维差等: 沈阳药学院学报, 1, 14(1988) ); 也有人提出 过酸碱处理人参皂甙制备稀有皂甙(N. Kondo et.al.: Chem. Pharm. Bull" 21, 2702 (1973)), 但其反应选择性差、 收率低。 日本学者 研究过人参皂甙在人体肠道内的代谢变化 (M.Kanaoka et.al.: J.Tradional medicinen, 11,241(1994))。
迄今为止, 大量制备稀有皂甙的种种尝试均未获得令人满意 的结果, 因此仍需要一种新的大量制备稀有皂甙的新措施。 而本 发明人从微生物、 人参植物、 麦麸、 杏仁、 麦芽和动物肝中发现 了能水解人参皂甙糖基的新酶类, 用这种人参皂甙酶处理人参中 含量较高的 Ra、 RbP Rb2、 Rc、 Rd,、 Re和 1¾等皂甙, 可大量 地制备各种稀有皂甙。
因此, 本发明的一个目的是提供一类新的能水解人参皂甙糖 基而制备稀有皂甙的酶, 本文中命名为人参皂甙糖苷酶 (Ginsenoside-glycosidases)。
本发明的再一目的是提供所述人参皂甙糖苷酶的用途。
发明概述
本发明涉及一种新的能水解人参皂甙糖基而制备稀有皂甙的 酶, 命名为人参皂甙糖苷酶 (Ginsenoside-glycosidases)。 本发明的 酶存在于微生物、 人参植物、 麦麸、 杏仁、 麦芽和动物肝中, 用 这种人参皂甙糖苷酶处理人参中含量较高的 Ra、 Rbp Rb2、 Rc、 Rd、 Re、 Rg^D其他容易得到的皂甙 1¾2和 1 §3等皂甙, 可制备 稀有皂甙 Rl Rh2、 C-K、 Rg2、 Rg3、 F2、 Rgl、 Rd 以及甙元和 其异构体皂甙, 从而能大量地得到红参和野山参的稀有皂甙成分 和其他稀有皂甙。 . 本发明的人参皂甙糖苷酶根据水解人参皂甙糖基反应的差别 共分为四种类型, 即人参皂甙糖苷酶 I、 人参皂甙糖苷酶 II、 人 参皂甙糖苷酶 III和人参皂甙 -a-鼠李糖苷酶, 其中:
人参皂甙糖苷酶 I 能水解人参皂甙 Ra、 Rbj. Rb2、 Rc,、 Rd 的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 α-阿拉伯糖苷键;
人参皂甙糖苷酶 II 能水解人参皂甙 Ra、 Rb Rb2、 Rc、 Rd 的第 20碳原子 20-C的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 α-阿拉伯糖 苷键生成 Rd皂甙;
人参皂甙糖苷酶 ΠΙ 能水解人参皂甙的第 3 碳原子上的双葡 萄糖基和皂甙元之间的糖苷键;
人参皂甙 -α-鼠李糖苷酶能水解人参皂甙 Re和 Rg2的第 碳 上的 α-鼠李糖苷键, 分别生成 Rg n R ,皂甙。
利用这四种酶的混合物或者单个酶来处理人参中含量较高的 Ra、 R Rb2、 Rc、 Rd、 Re和 Rgl等皂甙糖基, 可制备各种稀 有皂甙。
本发明还涉及所述本发明的人参皂甙糖苷酶的用途, 例如用 于处理人参中含量较高的皂甙和其他容易得到的人参皂甙等以制 备稀有、 有用的皂甙; 处理人参混合总皂甙, 制备稀有皂甙含量 较高的人参混合皂甙; 处理人参粉制备稀有皂甙含量较高的人参 制品。
本发明的人参皂甙糖苷酶与传统的以纤维素、 半纤维素等多 糖类基础的纤维素酶和半纤维素酶是不一样的: 纤维素酶和半纤 维素酶只能水解纤维素和半纤维素等多糖类的糖苷键, 而本发明 的人参皂甙糖苷酶能水解人参达玛皂甙元配糖体的糖苷键。 例 如, β-葡萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21)能水解纤维素和纤维二糖的 β-葡 萄糖苷键, 不能水解人参皂甙第三碳原子的 β-葡萄糖苷键。 其原 因是, 传统的纤维素和半纤维素酶水解糖类糖苷键; 但是本发明 的人参皂甙糖苷酶能水解具有 30 个碳原子的皂甙元配糖体的糖 苷键。
本发明的详细描述
本发明的人参皂甙糖苷酶类经过提纯酶蛋白、 特性研究之后 发现, 根据水解糖基反应至少有四种不同的酶类: 即人参皂甙糖 苷酶 I、 人参皂甙糖苷酶 II、 人参皂甙糖苷酶 III和人参皂甙 -C - 鼠李糖苷酶等: 人参皂甙糖苷酶 I能水解人参皂甙 Ra、 Rb、 Rb2、 Rc、 Rd 的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 α-阿拉伯糖苷键; 人参 皂甙糖苷酶 II 能水解人参皂甙 Ra、 Rb Rb2、 Rc、 Rd 的第 20 碳原子 20-C的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 ct-阿拉伯糖苷键生成 Rd皂甙; 人参皂甙糖苷酶 III能水解人参皂甙的第 3碳原子上的 双葡萄糖基和皂甙元之间的糖苷键, 使 Rd皂甙变成 C-K; 人参 皂甙 -a-鼠李糖苷酶能水解人参皂甙 Re和 Rg2的第 6碳上的 α-鼠 李糖苷键, 分别生成 Rg^n Rli,皂甙。
本发明的人参皂甙糖苷酶可以用于: 处理人参中含量较高的 皂甙 *其他容易得到的人参皂甙等, 制备稀有、 有用的皂甙; 处 理人参混合总皂甙, 制备稀有皂甙含量较高的人参混合皂甙; 处 理人参粉制备稀有皂甙含量较高的人参制品。
本发明的人参皂甙糖苷酶类可来源于微生物培养、 人参植 物、 杏仁、 麦麸、 杏仁、 麦芽和动物肝等。 所述的微生物包括细 菌、 链霉菌、 酵母、 曲霉和担子菌等。 微生物培养制备酶时, 可 以加入人参浸出物或者人参粉方法提高产酶量; 微生物可以液态 或者固态培养; 固态培养之后用缓冲液浸出、 离心除渣得酶液; 液态培养后、 离心除渣得酶液。 人参植物和动物肝破碎、 用缓冲 液浸出、 离心除渣得酶液。 麦麸、 麦芽和脱脂杏仁用缓冲液浸出、 离心除渣得酶液。 这些酶也可以加入硫酸铵或者酒精的方法沉淀 酶蛋白、 再用缓冲液溶解、 除渣得到皂甙糖苷酶得浓缩液。
根据酶的来源不同而本发明的人参皂甙糖苷酶所包括的四种 酶类含量不一样。
本发明的这些皂甙糖苷酶可直接处理皂甙, 制备稀有皂甙; 根据目的产物的不同、 可用提纯后的酶, 也可以用不提纯的酶。 这些酶的反应条件是 pH 2-11 , 温度 5~70 °C。 皂甙浓度为 0.001%〜20%。 酶反应底物是所有原人参二醇类和原人参三醇类 皂甙; 酶反应产物是包括所有部分或者全部皂甙糖基改变后生成 的皂甙次生产物, 如 Rhp Rh2、. C-K、 Rg2、 Rg3、 F2、 Rgl、 Rd 等皂甙、 以及甙元和酶反应过程中产生的异构体皂甙。
以下通过附图和实施例更详细地描述本发明, 其中: 图 1 示出本发明的人参皂甙糖苷酶 I水解原人参二醇类皂甙 的机理。
图 2示出本发明的人参皂甙糖苷酶 II水解原人参二醇类皂甙 的机理。
图 3示出本发明的人参皂甙糖苷酶 III水解人参皂甙的机理。 图 4示出本发明的人参皂甙 -ex-鼠李糖苷酶的水解机理。
图 5示出了 20(S)-和 20(R)-型人参皂甙的结构图。 实施例 1 微生物人参皂甙糖苷酶的制备
1、 黑曲霉的人参皂甙糖苷酶
菌种是黑曲霉 Aspergillus niger FFCCDL-48g (FFCCDL, 大连 轻工业学院菌种保藏所)。
1 -1、 酶的制备
将含 3% (重量) 麦麸水提取物和 1% (重量) 人参根水提取 物的液体培养基 220毫升放入于 1000毫升三角瓶中, 接种所述 黑曲霉菌种, 共接种 10个三角瓶。 在 30°C摇床培养 54小时, 离心除菌, 从 10个三角瓶中得到约 2000毫升上清液。 然后, 在 上清液中边搅拌加入硫酸铵的粉末到饱和度 65%, 在 4°C放置过 夜, 离心收集蛋白质沉淀。 沉淀中加入 80 毫升的蒸馏水装入到 透析袋中, 对 0.01 M和 pH 5 的醋酸缓冲液透析。 离心除去非溶 解物, 用 0.01 M和 pH 5 的醋酸缓冲液调整, 得到 200毫升粗酶 液, 用于人参皂甙糖基的水解和酶蛋白的提纯。酶液可重复制备。
1-2、 黑曲霉酶液对人参皂甙的水解
将 lOOmg人参皂甙 Rbp Rb2、 Rc、 Rd和 lOmg人参皂甙 Rg3 分别溶于 10ml的 0.01M和 pH5.0醋酸缓冲液中, 分别加入 10ml 粗酶液, 在 30°C反应 18小时, 然后加入 10ml 正丁醇终止反应, 产物皂甙转入正丁醇层。 用薄层层析 (TLC ) 法检测 (Merck, 60-F254硅胶板;展开剂为氯仿:甲醇:水 =70 : 30: 5 )。用 Shimadzu TLC扫描仪 CS-930检测的 TLC结果如下表 1所示。
表 1 表明: 黑曲霉所产的酶能水解原二醇类人参皂甙 (PPD, Protopanaxdiol type ginsenoside ) 的糖基, 水解程度高达 90%以 上; 1 等水解成 Rh2皂甙的转化率高达 50%以上; 酶反应主要 产物是人参皂甙 F2, C-K, Rh2和皂甙元。该酶对人参皂甙 Ra,, Ra2 和 Ra3的水解反应、 与 Rt^皂甙酶反应类似。
从上述试验得知, 黑曲霉的人参皂甙糖苷酶至少具有以下的 酶活性: 具有水解 PPD皂甙第三碳位上 β - ( 1—2) -D-葡萄糖基 的活性和水解皂甙元上的 β -D-葡萄糖苷键的活性; 具有水解第 二十碳位上 - ( 1 -6 ) -D-葡萄糖苷键、 a - ( 1→6 ) -L-阿拉伯 糖苷键和 6) 木糖苷键的活性。 表 ι、 黑曲霉的人参皂甙糖苷酶对不同原人参二醇类皂甙糖基的的水解
Figure imgf000008_0001
在 pH 5.0, 30°C酶反应 18小时; 酶对 Ra,、 Ra2、 1^3皂甙的水解结果 (未示出) 和 Rbl结果相似 这种人参皂甙糖苷酶的生成受到人参提取物或者人参皂甙的 诱导: 如果培养基中加诱导物 --人参提取物或者皂甙, 产酶增高; 如果不加诱导物, 人参皂甙糖苷酶的产量下降。
1-3、 黑曲霉人参皂甙糖苷酶的性质
为了弄清黑曲霉的人参皂甙糖苷酶酶性质, 试验了温度, pH 值, 金属离子以及反应时间对酶反应的影响。 温度对酶反应的影响:
温度对酶水解原人参二醇类人参皂甙糖基的影响, 用 100 毫 克 Rt^皂甙, 按 1-2的条件试验; 其结果如表 2所示: 表 2、 温度对黑曲霉的酶水解人参皂甙 Rb,的影响
Figure imgf000009_0001
反应条件: Rb 浓度, 0.5%; 在在 pH 5.0, 30°C酶反应 18小时 表 2表明: 在温度 30〜60Ό之间, 酶水解 皂甙较好; 在 温度 30~50°C之间,产物人参皂甙 F d C-K的产量较高;在 20〜50 °C内, 随着温度的升高, 水解产物人参皂甙 C-K 的产量也越高。 由表 2可知, 若想得到较多的 F2, 酶反应温度必须控制在 30〜40 °C。若想得到较多的人参皂甙 C-K,酶反应温度必须控制在 40〜50 °C。 当酶反应温度为 20和 60°C时, 会获得较多的人参皂甙 Rd。 而人参皂甙 1 §3,1¾12和皂甙元的产量较低。 温度对酶水解人参皂 甙 Ra, Rb2, Rc和 Rd的影响与水解人参皂甙 Rbi反应类似。
pH值对酶反应的影响: pH值对皂甙酶水解人参皂甙 Rbi的 影响见表 3 。
表 3、 pH对黑曲霉的酶水解人参皂甙 Rb,的影响
Figure imgf000009_0002
酶反应 R 浓度 0.5%, 在 30Ό酶反应 18小时 表 3的结果表明: 在 pH4〜7之间人参皂甙 F2的产量较高; 而且, pH 值越高人参皂甙 C-K, 1 112和皂甙元的产量越高。 pH 值对酶水解人参皂甙 Ra, Rb2, Rc和. Rd的影响与水解 Rb,类似。 反应时间的影响: 反应时间对酶水解原人参二醇类皂甙的影 响见表 4。
表 4、 反应时间对酶水解人参皂甙 Rb,的影响
Figure imgf000010_0001
酶反应 Rb,浓度 0.5% , 酶反应在 pH5和 30°C 由表 4可知: 在反应的初始阶段, 人参皂甙!?^第 20碳位 的葡萄糖基被水解, 转化为 Rd, 随着反应时间延长的逐渐增加, Rd的产量也越来越少, F2和 C-K含量增高;当反应时间达到 12-24 小时时, 人参皂甙?2的产量多; 人参皂甙 C-K、 Rh2和皂甙元的 产量随着反应时间的增加。 反应时间对酶水解人参皂甙 Ra、 Rb2、 Rc和 Rd的影响, 同水解 的结果类似。 金属离子对酶反应的影响: 金属离子对酶水解原二醇类人参 皂甙的影响见表 5。 表 5、 金属离子对酶水解人参皂甙 Rb,的影响
Figure imgf000011_0001
Rb,浓度, 0.5%; 酶反应在 pH5.0和 30°C反应 18小时 表 5 的实验结果表明: Ca++和 Mg^能轻微的加快酶水解人参 皂甙 Rb 的速度, Qi++和 Pb++等金属离子抑制酶反应。 金属离子 对酶水解人参皂甙 Ra, Rb2, Rc和 Rd的影响与 Rb,的结果类似。
1-4、 黑曲霉菌酶的提纯
由黑曲霉制得的上述酶液 10ml上 DEAE-纤维素 DE-52柱( Φ 1.5 X 6.7 cm, Pharmacia) 吸附酶蛋白。 然后用 0.02M的 NaCl和 pH5的醋酸缓冲液配成的梯度液 ( 0.06, 0.12, 0.18, 0.24, 0.3 , 0.4, 0.5, 0.6M) 梯度洗脱。
. DEAE-纤维素柱上洗脱的第 36和 54管流分在聚丙烯酰胺凝 胶 SDS 电泳 (李建武等: 生物化学试验原理和方法, 北京大学 出版社, p82-100(1997) ) 上呈现单点, 其酶对人参皂甙的水解作 用结果如表 6和 7所示。 第 36管的酶 (人参皂甙糖苷酶 I) 对人参皂甙的水解作用
Figure imgf000012_0001
Rb,, Rb,, Rc和 Rd的浓度, 0.5 %; Rg3, F,, Rh2, C-K 和 Rg2, 0.05%; 在 pH5.0、 30 °C 反应 18小时; Ra类皂甙反应与 Rb,结果相似。
DEAE-纤维素柱上洗脱的第 36管流分, 即用 0.12M NaCl梯 度洗脱的第 36管流分, 经过冻干, 作聚丙烯酰胺 SDS电泳为单 点, 其分子量为 51,000, 因此其酶是纯酶, 命名为人参皂甙糖苷 酶 I, 其酶活性, 如表 6所示。
从表 6中可以看出, 第 36管流分的酶 (即人参皂甙糖苷酶 I) 能水解 ,皂甙的第 20碳原子上的 20-C β -(1— 6)-D-葡萄糖苷 键, 也能水解 Rc和 Rb2皂甙的 20-C a -(l→6)-L-阿拉伯糖苷键, 能水解 Ra类皂甙的 20-C 的 β -(1— 6)-D-木糖苷键; 也能水解二 醇类皂甙、 如 Ra皂甙类、 Rb Rb2、 Rc、 Rd和 Rg3上第 3-C上 的 β -(1— 2)-D-葡萄糖苷键; 也对二醇类的 3-C皂甙元上的 β -D- 葡萄糖基和 20-C 的皂甙元 β葡萄糖基也有轻微的水解作用。 人 参皂甙糖苷酶 I的水解机理如图 1所示。 人参皂甙糖苷酶 I也能 水解对硝基苯酚基 -β-葡萄糖苷、 β-木糖苷、 ot-阿拉伯糖苷、 β-半 乳糖苷; 但不能水解硝基苯酚基 -a-鼠李糖苷。
人参皂甙糖苷酶 Π: DEAE-纤维素柱上洗脱的第 54管流分、 即 0.18 Μ的 NaCl洗脱的流分第 54管, 经过冻干, 作 SDS电泳 为单点, 其分子量为 90,000, 所对应的酶被命名为人参皂甙糖苷 酶 II, 它只能水解 Rb!的 20-C β -(1— 6)-葡萄糖苷键、 Ra类皂 甙 β -(1— 6)-木糖苷键和 Rb2,Rc 的 20-C α -(1→6)-阿拉伯糖苷 键, 并将它们转化为 Rd; 轻微水解 Rd皂甙生成 Rg3 ; 不水解人 参皂甙的原人参二醇类皂甙的 3-C 的 β -(1— 2)-葡萄糖苷键。 人 参皂甙糖苷酶 II反应机理, 如图 2所示。
人参皂甙糖苷酶 III是用高效液相蛋白制备色谱仪 (BioRad) 提纯的: 分离柱为 Bio-Scale Q; 每试管收集量为 2 毫升。 将上 述 1-1 方法制备的黑曲霉菌酶液 1 毫升上样, 然后用 25mM和 pH7.4的 Tri-HCl缓冲液、 含 0.5M的 NaCl的 25mM和 pH7.4的 Tri-HCl缓冲液梯度洗脱; 第 18管的酶液在 SDS 电泳上单点, 说明是纯酶, 命名为人参皂甙糖苷酶 III。 该酶能水解皂甙元 3-C 双葡萄糖基, 使 Rd和 R&皂甙各变成 C-K和皂甙元, 其反应机 理如图 3所示。
小结上述的黑曲霉菌的三种类型人参皂甙糖苷酶的性质如表 7所示。 表 7、 从黑曲霉菌制得三种人参葡萄糖苷酶性质
Figure imgf000013_0001
1-5、 人参皂甙糖苷酶与纤维素 β -葡萄糖苷酶的差异
为了观察本发明的人参皂甙糖苷酶和已知的外切纤维素酶之 间的差异, 人参皂甙糖苷酶和已知的纤维素 β -葡萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21)相比较, 以 0.5%的人参皂甙 Rb D Rd为底物在 pH5.0、 30°C反应 18小时; 结果如表 8所示。
从梭菌属 Chlostridun thermocopiriae) 制得的纤维素 -β-葡 萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21), 以及从芽孢杆菌属 (Bacillus sp.AX) 制得的纤维素 葡萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21) 等三个纤维素 -β-葡 萄糖苷酶不能水解任何人参皂甙糖苷键;只有杏仁纤维素 - β -葡萄 糖苷酶 (EC 3.2.1.21)能轻微水解 Rl Rb2和 Rc上的第 20-C的糖 基生成 Rd皂甙, 不能水解第 3-C上的葡萄糖基, 这与人参皂甙 糖苷酶 II相似, 然而人参皂甙酶 II轻微地水解 Rd, 这是与杏仁 纤维素 -β-葡萄糖苷酶的区别点。 因此, 纤维素 -β-葡萄糖苷酶
(EC 3.2.1.21) 性质和人参皂甙糖苷酶 I有完全不一样的区别。
从梭菌属 ( Chlostridun thermocopiriae) 制得的外切纤维素酶
(纤维二糖生成酶), 以纤维二糖为单位切割纤维糊精, 但不能 水解皂甙 Rd的 3-C的二糖键, 与人参皂甙糖苷酶 III截然不同。 从而证明了: 本发明的人参皂甙糖苷酶类是与传统的纤维素- β - 葡萄糖苷酶和纤维二糖生成酶不同类型的酶。
表 8、 人参皂甙葡萄糖苷酶于其他类似酶的比较
Figure imgf000015_0001
Rb,和 Rd的浓度, 0.5 %; 在 pH5.0、 30°C酶反应 18小时,
2、 米曲霉菌的人参皂甙糖苷酶
2-1 酶的制备
在 1000毫升三角瓶中装入 220毫升 1% (重量) 人参水浸出 物和 3% (重量)麦麸浸出物的培养基,用米曲霉^^ ergzY/^ oryzae FFCCDL-39g (大连轻工业学院菌种保藏所) 接种 10个这样的三 角瓶, 在 30 °C摇床培养 64小时。 离心除菌, 从 10个三角瓶中 得到约 2000 毫升上清液。 然后, 在上清液中边搅拌加入硫酸铵 的粉末到饱和度 65%, 在 4°C放置过夜, 离心收集蛋白质沉淀。 沉淀中加入 80毫升的蒸馏水装入到透析袋中, 在 0.01 M和 pH 5 的醋酸缓冲液中透析, 离心除去非溶解物, 用 0.01 M和 pH 5 的 醋酸缓冲液调整, 得到 200毫升粗酶液, 可用于皂甙水解和酶的 提纯。 酶液可重复制备。
将 lOOmg的人参皂甙 RbP Rb2、 Rc、 Re、 Rd和 lOmg的人 参皂甙 Rg3和 ^^2与 10ml的 0.01M, pH5 的醋酸缓冲液混合后, 加入上述米曲霉菌的 10ml粗酶液在 30°C下反应 18 小时。 然后 加入 10ml正丁醇混合、 静置两小时, 用 TLC检测正丁醇层的成 分 (薄层层析: 60-F254硅胶板 (Merck) ; 溶剂为氯仿: 甲醇: 水 =70:30:5 ) , 用 TLC检测仪 CS-930 (日本岛津公司) 检测板上皂 甙含量如表 9所示:
表 9、 米曲霉菌的酶对不同人参皂甙的水解结果 (%)
Figure imgf000017_0001
在 pi- 1 5.0 和 30 °C ¾反应 18小吋
从表 9 中可以看到: 米曲霉的人参皂甙糖苷酶水解原人参二 醇类皂甙糖基的酶性质, 如反应 pH值, 温度和反应时间都与黑 曲霉的酶相似。 唯一不同的是, 从黑曲霉制得的酶不能水解皂甙 Re和 1¾的 6-C的 c l→2)-L-鼠李糖苷键, 而来自米曲霉菌的人 参皂甙糖苷酶能水解并生成 Rgl和 Rhi皂甙。 由此证明了米曲霉 的人参皂甙糖苷酶不仅含有黑曲霉的酶的人参皂甙糖苷酶 I、 人 参皂甙糖苷酶 II、 人参皂甙糖苷酶 III 等酶的活性, 又具有人参 皂甙 -a-(l— 2)-L-鼠李糖苷酶即人参皂甙 -α-鼠李糖苷酶的活性。
2-2、 人参皂甙 - α -鼠李糖苷酶的提纯及性质的研究
为了研究 A. oryzae 的人参皂甙 - α -鼠李糖苷酶的性质, 用 BioRad 蛋 白 层 析 制 备 仪 ( Biologic Medium Pressure Chromatography ) 从米曲霉的酶分离提纯了人参皂甙 - α -鼠李糖 苷酶。 分离柱 Bio-Scale Q2 ( BioRad) ; 酶液进样量为 1ml; 流 动相速度 1毫升 /分钟; 流动相为 25mM、 pH8.2 Tris-HCl缓冲液 和 25mM、 pH8.2 Tris-HCl +0.5M NaCl缓冲液梯度洗脱。 每管收 集量为 2毫升 /管。
所收集的洗脱液分别测定酶活, 结果在第 16 管流分有人参 皂甙 - α -鼠李糖苷酶活性, 其人参皂甙 - α -鼠李糖苷酶在 SDS 聚 丙烯酰胺凝胶电泳上为电泳单点, 其分子量是 53, 000, 说明第 16管流分酶是提纯的酶。
纯化后的人参皂甙- α -鼠李糖苷酶能水解人参皂甙 Re和 Rg2 的 6-C (第 6碳位上)的 a -L-鼠李糖苷键, 分别生成 Rgl Γ0ι1 0 其酶反应活力较高的 pH为 4〜7 (最适 pH为 5 ) ; 酶反应活力较 高的温度是 30~50°C (最适温度为 40°C )。 纯化的人参皂甙 - α -鼠 李糖苷酶只水解原人参三醇类皂甙 (PPT) 6-C中的 α -L-鼠李糖 苷键, 不水解人参皂甙中其它糖苷键。 人参皂甙 α -L-鼠李糖苷 酶水解 Re和 1^2皂甙的机理如图 4所示。 3、 细菌的人参皂甙糖苷酶
含 0.5% (重量) 人参水浸出物、 1 % (重量) 麦麸水浸出物 和 0.3% (重量)胰蛋白胨、 pH7.2的培养基中接高温好氧菌
^.JF(Fengxie Jin et al., J. Gen. Appl. Microbiol., 36, 415-434, 1990) ,在 60 °C下通风搅拌培养 36小时。离心除菌,取上清液 1000 毫升, 加 3000毫升 95%乙醇使酶沉淀, 4°C下保存过夜, 离心收 集沉淀。 然后, 将此酶蛋白沉淀溶于 50 毫升的 0.01M、 PH5 的 醋酸缓冲溶液, 离心除不溶性物, 即得到粗酶液。
取 10ml酶液与 10ml 0.5%Rd的醋酸缓冲溶液 (含 20%乙醇) 70°C下反应 16小时。 TLC检测结果表明: 60%的 Rd转化为人参 皂甙 F2,说明细菌人参皂甙糖苷酶能水解人参皂甙 Rd第三碳位上 β - ( 1—2 ) -葡萄糖苷键。 该酶也能水解人参皂甙 尺 的3 - ( 1 —2 ) -葡萄糖苷键, 变成 Rh2皂甙。
该酶的最适反应温度 70°C, 最适 pH6.0。
4、 来源于酵母的人参皂甙糖苷酶
在含 2% (重量) 人参水浸出物和 8% (重量) 麦芽汁的培养 基上, 30°C摇床培养假丝酵母 Candida sp. FFCCDL-2g (大连轻 工业学院菌种保藏所) 56小时, 离心取上清 500ml, 加 (NH4)2S04 粉末至饱和度为 65%, 4°C保存过夜,离心收集沉淀,在 0.01M pH5 的醋酸缓冲溶液中透析, 离心除去杂质, 得到 25毫升酶液。
取 10ml酶液与 10ml 0.5%Rd的醋酸缓冲溶液 60°C下反应 12 小时。 TLC检测结果表明: 73%的 Rd转化为人参皂甙 F2, 说明 该酶能水解人参皂甙 Rd 的 3-C (第三碳位)上的 β - ( 1—2 ) -葡萄 糖苷键。 该酶也能水解人参皂甙《^3的3 - ( 1—2 ) -葡萄糖苷键, 变成 Rh2皂甙。
该酶的最适反应温度为 45 °C, 最适 pH为 5.5。 5、 链霉菌的人参皂甙糖苷酶
含 1 % (重量) 人参水浸出物, 3% (重量) 麦麸水浸出物的 产酶培养基中接链霉菌 sp.FFCCDL-2g (大连轻工业 学院菌种保藏所),在 30°C下培养菌种 48小时,离心取上清液 300 毫升, 加 (NH4)2S04粉末至饱和度为 70%使酶沉淀, 4°C下保存过 夜, 离心收集沉淀。 在 0.01M、 pH5 的醋酸缓冲溶液中透析, 除 去杂质, 得到 15毫升酶液。
取 10ml酶液与 10毫升 l%Rd的醋酸缓冲溶液 (含 20%乙醇) 50°C下反应 20小时。 TLC检测结果表明: 50%的 Rd转化为人参 皂甙 F2, 说明链霉菌酶能水解人参皂甙 Rd第三碳位上 β - ( 1—2 ) -葡萄糖苷键。 该酶最适反应温度 50°C, 最适 pH5.5。
6、 担子菌的人参皂甙糖苷酶
将担子菌 Tremella sp.FFCCDL-12g 菌株 (大连轻工业学院 菌种保藏所) 在含有 125g人参粉, 374g麦麸和 500毫升水的固 体培养基中培养 5到 7天。 然后把 0.01M, pH5.0的醋酸缓冲溶液 2500毫升加入到固体培养基中静置 2 小时。 离心去除不溶物后, 得约 2000毫升浸出液; 加 (NH4)2S04粉末到浸出液中, 搅拌使硫 酸铵的饱和度达到 70%,在 4°C静置过夜,离心收集蛋白,在 0.01M 的 pH5的醋酸缓冲液下透析。 然后用 0.01M、 pH5醋酸缓冲液稀 释至 150毫升, 除去不溶物, 即得到酶液。
把从担子菌得到的酶液 10 毫升与 10 毫升 1%的 Rl^溶液 ( 0.01M、 pH5的醋酸缓冲溶含 20%乙醇) 混合, 在 40°C反应 20 小时。反应完毕后,用 TLC检测产物。人参皂甙 Rt^反应生成 25% 的 Rd, 40%的?2和 35%的 C-K。 这些结果证明: 这种酶可以酶 解 3碳位上的 β -葡萄糖苷键, 及 20碳位上的葡糖苷键。 反应的 最佳温度是 50Ό, 最佳 ρΗ值是 5.5。 从以上实验可得出如下结论: 微生物如细菌、 链霉菌、 酵母、 霉菌和担子菌等均产人参皂甙糖苷酶; 这些菌类生成人参皂甙糖 苷酶时, 加入人参提取物会提高产酶量。 本发明的人参皂甙糖苷 酶类与传统的纤维素酶 (纤维素 - β -葡萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21)、 纤 维二糖生成酶) 在酶反应性质方面不同。 本发明的人参皂甙糖苷 酶根据酶水解皂甙糖基反应而至少分为四种类型: 即人参皂甙糖 苷酶 I, 人参皂甙糖苷酶 II, 人参皂甙糖苷酶 III和人参皂甙 - α - 鼠李糖苷酶。 实施例 2 人参植物的人参皂甙糖苷酶
2-1. 酶的提取和纯化
将 200g新鲜的人参根粉碎, 力 Π 600毫升 0.02M、 pH5 的醋 酸缓冲液, 在 40°C下浸 2 小时, 过滤得到上清液。 在上清液中 加入 (NH4)2S04缓慢加入至 70%饱和, 在 4°C下过夜, 离心收集 蛋白沉淀。 将蛋白沉淀溶于 15 毫升的蒸馏水中, 在 0.02M 的 Tris-HCl (pH7.4 ) 缓冲液中透析, 离心去除不溶物后, 将体积调 整到 20毫升。
将 5 毫升的酶液在 DEAE-纤维素 DE-25 柱 (Whatman, Φ 1.4 X 6.7cm)吸附后, 用 0.02M、 pH7.4的 Tris-HCl中含有 KC1浓度 0.06、 0.12、 0.18和 0.24M的溶液, 对吸附酶的柱进行梯度洗脱。 洗脱后检测各个流分对皂甙酶解, 结果第 37 管流分的酶可以水 解皂甙 Rd的第 3碳位上的双糖和皂甙元之间的葡萄糖苷键, 将 Rd转化为 C-K; 第 52管流分酶可以水解 Rd皂甙第 3碳位上的 β - ( 1—2) 葡萄糖苷键、 将 Rd转化为 F2, 也可以水解 Rb和 Rc 皂甙第 20碳位上的糖苷键, 将 Rb和 Rc转化为 F2。结果如表 10。 表 10、 从人参植物提纯的酶对人参皂甙的水解
Figure imgf000022_0001
皂甙底物浓度,0.5 %; 在 pH 5.0、 50°C反应 18小时。 从表 10 中可见, DEAE-纤维素柱洗脱得到的第 52管流分的 酶可以水解 Rl 1»2和 Rc皂甙第 20碳位上的糖苷键, 也可以 水解 3碳位上的 β - ( 1— 2)葡萄糖苷键。第 52管流分的酶在 SDS 聚丙烯酰胺电泳上为单点, 分子量为 59,000。 所以第 52 管流分 的酶是人参皂甙糖苷酶 I类型。 但是, 和从黑曲霉制得的人参皂 甙糖苷酶 I相比较, 人参植物的人参皂甙糖苷酶 I类型的分子量 略大, 不水解皂甙元直接结合的糖苷键。 提纯后的流分第 37 管 的酶可以水解皂甙 Rd第 3碳位的双糖与皂甙元之间的糖苷键, 生成 C-K皂甙,它属于人参皂甙糖苷酶 III类型。
钙离子对两种酶都有促进作用, 而铜离子对两种酶有抑制作 用, 提纯后酶的特性如下表 11所示-
Figure imgf000022_0002
实施例 3 从麦麸提取的人参皂甙糖苷酶
3-1、 酶的提取
500g麦麸中加入 2500毫升 0.02M、 pH5的醋酸缓冲液, 在 40°C提取 2小时, 过滤得上清液约 2000毫升。 上清液缓慢搅拌 加入 (NH4) 2S04至 70%饱和度, 在 4°C下过夜, 离心收集蛋白 沉淀。 将其蛋白沉淀溶于 80ml蒸馏水中, 在 0.02M、 pH5.0的醋 酸缓冲液中透析。 离心去除不溶物后, 调整体积至 200ml, 即为 酶液。
3-2、 酶的性质
将 10毫升的上述酶液与 10毫升 1%皂甙底物的醋酸缓冲液混 合, 在 40°C下反应 20小时; 然后, TLC检测产物, 结果如表 12 所示: 表 12、 由麦麸皂甙糖苷酶对皂甙的水解作用
Figure imgf000023_0001
皂甙底物,0.5 %; 在 pH,5.0、 4(TC酶反应 20小时 从表中可以看出, 麦麸酶可以水解皂甙 Rd第 3碳位的葡萄糖 苷键, 变成 F2 ;. 也可以水解 Rbp 2和 Rc第 20碳、 第 3碳位 上的糖苷键, 生成 F2
该酶最适 pH值是 5.0; 最佳反应温度是 40°C ; 二价铁离子和 镁离子可激活酶, 二价铜离子抑制酶活性。 实施例 4 其他来源的人参皂甙糖苷酶
4-1、 麦芽: 将 200克麦芽粉碎, 加入 1000毫升 0.01M、 pH5 的醋酸缓冲液常温下浸出 2小时, 过滤除渣, 上清液中加入 3倍 体积的乙醇, 静止过夜, 收集沉淀。 沉淀中加入 50毫升 0.01M、 pH5 的醋酸缓冲液, 除去不溶物, 得到酶液。 酶液 10毫升与 10 毫升 1%的 RT^溶液 (0.01M、 pH5 的醋酸缓冲溶含 20%乙醇) 混合, 在 40°C反应 20小时, 用 TLC检测产物。 结果, 95%以上 的人参皂甙 Rb,水结成 Rd, F2、 C-K和 Rg3等皂甙。 这些结果 证明:这种酶可以酶解人参皂甙第 3碳位上的 β -葡萄糖苷,及 20 碳位上的糖苷键。
4- 2、动物肝脏: 100克牛肝破碎, 加入 300毫升 0.01Μ、 ρΗ5 的醋酸缓冲液常温下浸出 2 小时, 离心除渣, 加 ( ¾ ^04粉末 至饱和度为 70%使酶沉淀, 4°C下保存过夜, 离心收集沉淀。 在 0.01M、 pH5的醋酸缓冲溶液中透析, 除去杂质, 得到 15毫升酶 液。 取 10ml酶液与 10毫升 Ι Ι Ι^的醋酸缓冲溶液 (含 20%乙 醇) 40°C下反应 20小时。 TLC检测结果表明: 50%的 Rt^转化 为低糖的人参皂甙, 说明动物肝中含有人参皂甙糖苷酶。
4-3、 植物种子-杏仁: 脱脂后的 100克杏仁粉碎, 加入 300 毫升 0.01M、 pH5的醋酸缓冲液常温下浸出 2小时, 离心除渣, 加 (NH4)2S04粉末至饱和度为 60%使酶沉淀, 4°C下保存过夜, 离 心收集沉淀。 在 0.01M、 pH5的醋酸缓冲溶液中透析, 除去杂质, 得到 30毫升酶液。 取 10ml酶液与 10毫升 /oRbi的醋酸缓冲溶 液(含 20%乙醇) 50Ό下反应 14小时。 TLC检测结果表明: 40% 的 Rb,转化为低糖的人参皂甙,说明杏仁中含有人参皂甙糖苷酶。 实施例 5 用人参皂甙糖苷酶制备稀有皂甙含量较高的人参混合 皂甙和人参制品
5- 1、 制备稀有皂甙含量较高的人参混合皂甙
人参叶混合皂甙 4克溶解在 100毫升的 0.01M、 pH5 的醋酸 缓冲液中, 再加入 100毫升实施例 1的 1-2部分制得的米曲霉酶 液, 在 30Ό反应 4小时, 用 100毫升水饱和正丁醇萃取两次, 合并正丁醇减压蒸干, 可得 3.3克皂甙。 用 TLC分析结果, 稀有 皂甙 Rg3、 Rg2、 Rh2、 的含量提高了几十倍。 5-2、 制备稀有皂甙含量较高的人参制品
人参粉 4克中加入 4毫升 20%乙醇, 再加入 4毫升实施例 1 的 1-2部分制得的米曲霉酶液; 在 30°C反应 12小时, 减压蒸干, 即得稀有皂甙含量较高的人参制品。 经过 TLC分析结果, Rg3、 Rg2、 R 2、 !^^的含量提高了几十倍。
5-3、 酶反应所得皂甙分子的化学结构
从原人参二醇类皂甙经酶反应产生的皂甙 Rd、 Rg3、 F22、 C-K以及二醇皂甙元, 由原人参三醇类皂甙经酶反应产生的 Rgl、 Rg2、 R ,以及三醇皂甙元, 用硅胶柱不同比例的氯仿和甲醇洗脱 方法(张书臣主编: 中国人参, 上海科技教育出版社, 1992, P108-110), 分离制备皂甙产物的单体, 再经结晶方法, 制得纯净 的酶反应人参皂甙产物。
用高效液相色谱法,拆分人参皂甙 Rg3, Rg2, Rh2, Rh,的 20(S) 和 20(R)的异构体。高效液相色谱仪的型号是 Waters Model-520(来 源?), 检测波长为 203 nm, 柱为 C-18柱 (中国科学院大连化学 物理研究所生产); 流动相为乙腈: 乙醇 = 6: 4。
分离提纯得到酶反应产物的各皂甙单体的化学结构是用核磁 共振 (NMR)和质谱法测得的。 所使用核磁共振仪器为 Bruker DR X 400, 溶剂为吡啶 -d5。 质谱仪为 JEOL DX X 400, 方法为快速 原子冲击法 (FAB-MS)。
所测的得酶反应产物人参皂甙 Rd、 Rg3、 F2、 R 2、 C-K, Rg Rg2、 R !和皂甙元的质谱、 "H-NMIU 13C-NMR谱图和现有技术 中的文献 ( J.H. Park等: A new processed ginseng with fortified activity in Advances in Ginseng Research-Proceedings of the 7th International Symposium on Ginseng, Sep 22-25, 1998, pl46-159; Tanak 0·, Kasai R.: (1984), Saponins of ginseng and related plants in Progress in the Chemistry of Organic Natural Products (Herz W" Grisebach H,, Kirby G.W., Tamm Ch., eds), Vol.46, pi- 65. ) 上的谱图一样; 其 13C-NMR谱图的数据, 如表 12所示。 表 12 中所示的人参皂甙的结构说明, 酶反应产生的人参皂甙 Rd、 F2、 C-K和 Rgl皂甙都是 20(S)-构型皂甙;但是酶反应产生的 Rg3、 Rg2、 10¾和 Rhi皂甙有 20(S)-构型和 20 R)-构型。 以上结果都证 明:酶反应生成人参皂甙 Rd,F2,C-K和!§1的过程主要产生 20 (S) -人参皂甙。可是,对 Rg3,Rg2,R ;^n 的酶解生成 20( S )和 20(R)- 人参皂甙的混合物。 20(S)-和 20(R)-型人参皂甙的结构图见图 .5。
Figure imgf000027_0001

Claims

权利要求
1、 人参皂甙糖苷酶类, 其反应底物是所有原人参二醇类皂 甙和原人参三醇类皂甙, 酶反应产物是包括所有部分或者全部皂 甙糖基改变后生成的皂甙次生产物,如 Rhp R 2、 C-K、 Rg2、 Rg3、 F2、 RgP Rd 等皂甙、 以及甙元和酶反应过程中产生的异构体皂 甙, 所述的人参皂甙糖苷酶来源于微生物培养物包括霉菌、 细菌、 酵母、 担子菌, 人参植物, 杏仁, 麦麸, 麦芽和动物肝, 其通过 如下方法制得:
以液态或者固态培养所述微生物, 其中固态培养之后用缓冲 液浸出、 离心除渣得酶液; 液态培养后, 离心除渣得酶液; 或者 将人参植物或动物肝破碎, 用缓冲液浸出, 离心除渣得酶液; 或者
将麦麸、 麦芽和杏仁用缓冲液浸出, 离心除渣得酶液; 其中任选地包括加入硫酸铵或者乙醇而沉淀酶蛋白, 再用缓 冲液溶解, 除渣得到所述人参皂甙糖 ¾^酶的浓缩液,
其中所述缓冲液为醋酸、 磷酸、 Tris、 NaCl 等缓冲液, 缓冲 液浓度为 0.001-1M, pH为 2—11。
2、 如权利要求 1 所述的人参皂甙糖苷酶类, 其包括四种类 型的酶:
人参皂甙糖苷酶 I, 反应温度为 5— 70°C , 反应 pH为 2— 11, 能水解人参皂甙 Ra、 Rb Rb2、 Rc,、 Rd 的 β-葡萄糖苷键、 β-木 糖苷键、 C -阿拉伯糖苷键;
人参皂甙糖苷酶 II, 反应温度为 5— 70°C, 反应 pH为 2—11, 能水解人参皂甙 Ra、 Rb^ Rb2、 Rc、 Rd的第 20碳原子 20-C的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 α-阿拉伯糖苷键生成 Rd皂甙;
人参皂甙糖苷酶 III,反应温度为 5— 70°C,反应 pH为 2— 11, 能水解人参皂甙的第 3碳原子上的双葡萄糖基和皂甙元之间的糖 苷键;
人参皂甙 -α-鼠李糖苷酶, 反应温度为 5— 70°C , 反应 pH 为 2- 11 , 能水解人参皂甙 Re和 Rg2的第 6碳上的 a-鼠李糖苷键, 分别生成 ^^和!^^皂甙。
3、 如权利要求 1所述的人参皂甙糖苷酶, 其来自黑曲霉。
4、 如权利要求 1所述的人参皂甙糖苷酶, 其来自米曲霉。
5、 如权利要求 1一 4 所述的人参皂甙糖苷酶在制备人参稀 有皂甙中的应用。
6、 如权利要求 1一 4 所述的人参皂甙糖苷酶在处理人参混 合总皂甙以制备稀有皂甙含量较高的人参混合皂甙中的应用。
7、 如权利要求 1一 4 所述的人参皂甙糖苷酶在处理人参粉 制备稀有皂甙含量较高的人参制品中的应用。
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Cited By (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100496731B1 (ko) * 2002-09-26 2005-06-22 (주)휴먼사이언스 파피아 로도지마 균주를 이용한 항산화 활성향상과진세노사이드의 생산방법
CN102080049A (zh) * 2010-12-03 2011-06-01 大连民族学院 人参内生莫勒接霉菌及利用其制备人参皂苷Rd的方法
CN102759597A (zh) * 2011-04-29 2012-10-31 天津药物研究院 一种七叶皂苷类成分的快速检测方法
CN101570746B (zh) * 2008-04-29 2013-07-10 天士力制药集团股份有限公司 一种新型柴胡皂苷糖苷酶及其制备方法和应用
CN103360442A (zh) * 2012-03-30 2013-10-23 中国科学院上海有机化学研究所 一种原人参三醇类人参皂苷的制备方法
CN103966105A (zh) * 2013-11-28 2014-08-06 河南科技学院 一种转化人参皂苷Rg3生产Rh2的米曲霉、生产方法及应用
CN107308195A (zh) * 2017-06-30 2017-11-03 肖永坤 一种通过固体动态发酵技术制备高活性人参皂苷的方法
CN107338280A (zh) * 2017-06-30 2017-11-10 肖永坤 一种高活性低糖基人参次苷群及其苷元的制备方法
CN108836969A (zh) * 2018-06-01 2018-11-20 肖永坤 一种抗癌红参及其制备方法和用途
CN114767737A (zh) * 2022-06-21 2022-07-22 上海中医药大学 一种秦皮提取物、其制备方法及应用

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN100337636C (zh) * 2005-07-14 2007-09-19 中国医药研究开发中心有限公司 一种人参总次苷药物组合物及其制备方法和应用
EP1913950A1 (en) * 2006-10-18 2008-04-23 In-Hwan Seong Method for producing ginseng fruit and ginseng flower stalk with high content of ginsenoside
CN101264096B (zh) * 2007-03-12 2011-11-09 中国医学科学院药物研究所 人参皂苷Rg1在制备生精产品中的应用
KR101011028B1 (ko) * 2009-01-19 2011-01-26 주식회사 알앤엘바이오 차가버섯 추출물, 영지버섯 추출물 및 상황버섯 추출물을 함유하는 조혈모세포 증식 촉진용 조성물
KR101098027B1 (ko) 2009-09-18 2011-12-27 한국과학기술원 로다노박터 진세노시디뮤탄스 kctc22231t 유래의 진세노시드 글리코시다제 및 이의 용도
KR101139508B1 (ko) 2009-11-06 2012-05-02 농업회사법인주식회사 청산녹수 생물전환된 화합물 k를 함유하는 인삼 발효물 및 이의 제조방법, 그리고 이를 이용한 기능성 인삼 막걸리
KR100992800B1 (ko) 2010-05-14 2010-11-08 주식회사 지씨에이치앤피 미량의 진세노사이드 성분이 증가된 신규한 가공인삼 또는 가공인삼추출물의 제조방법
US20130084601A1 (en) 2010-06-14 2013-04-04 Amorepacific Corporation Novel soil microorganism, novel oxidoreductase separated from the soil microorganism, gene encoding the oxidoreductase, and method for producing aglycones using the microorganism, the oxidoreductase and the gene
JP2015082970A (ja) * 2012-02-02 2015-04-30 星野科学株式会社 高麗人参薬効成分の製造方法
JP6163359B2 (ja) * 2012-06-19 2017-07-12 花王株式会社 Cgrp応答性促進剤
CN103146592B (zh) * 2013-01-31 2014-06-25 河南科技学院 一种转化人参皂苷Rb1生成Rd的酵母菌及其应用
CN105073122A (zh) * 2013-03-01 2015-11-18 金氏高丽人参株式会社 人参皂苷组合物
WO2015029134A1 (ja) * 2013-08-27 2015-03-05 金氏高麗人参株式会社 ジンセノサイド組成物
WO2015030283A1 (ko) 2013-08-30 2015-03-05 주식회사 녹십자에이치에스 진세노사이드 성분이 증가된 가공인삼분말 또는 가공인삼추출물을 함유하는 암 관련 피로의 예방 및 치료용 조성물
CN104561219A (zh) * 2014-12-16 2015-04-29 江南大学 一种酶促合成人参皂苷Rh2的方法
KR101785809B1 (ko) * 2015-12-18 2017-10-18 재단법인 지능형 바이오 시스템 설계 및 합성 연구단 진세노사이드 글리코시다제를 이용한 마이너 진세노사이드의 제조방법
CN106319017A (zh) * 2016-08-29 2017-01-11 珀莱雅化妆品股份有限公司 一种富含人参皂苷rh2的发酵物的制备方法
CN109182439B (zh) * 2018-09-15 2021-11-09 东北林业大学 人参稀有皂苷Rg3的生物转化方法
KR102092839B1 (ko) * 2019-05-10 2020-03-24 농업회사법인 비센 바이오 주식회사 염증성 질환의 치료, 개선 또는 예방용 진세노사이드 조성물 및 그의 제조방법
JP7021752B2 (ja) * 2020-02-25 2022-02-17 株式会社機能性食品開発研究所 高麗人参の発酵物の製造方法
CN112273655A (zh) * 2020-10-29 2021-01-29 光亚生物科技(广州)有限公司 一种具有抗衰老功效的小分子人参膏及其制备方法
MX2023006769A (es) * 2020-12-09 2023-08-18 Glaxosmithkline Biologicals Sa Modificacion de saponinas.
CN113481274A (zh) * 2021-07-05 2021-10-08 东北师范大学 一种酶法制备人参皂苷f1的方法及其应用
CN115670964B (zh) * 2023-01-03 2023-03-28 北京国科本草生物科技有限公司 一种舒缓修护作用的水解人参皂草苷类组合物的制备方法、组合物和应用
CN117535372A (zh) * 2023-10-23 2024-02-09 镇江市德尔生物制品研究所有限公司 一种β-葡萄糖苷酶及其在制备人参皂苷中的应用

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2179049A (en) 1985-08-10 1987-02-25 Nissan Motor Vehicular instrument panel
GB2179042A (en) * 1985-07-22 1987-02-25 Takeda Chemical Industries Ltd Ginsenoside-Rd
RU2046140C1 (ru) * 1992-07-08 1995-10-20 Акционерное общество закрытого типа - Химико-биологическое объединение при РАН Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток
CN1144847A (zh) * 1996-03-12 1997-03-12 金凤燮 酶处理提取中药材中皂甙成分的方法
CN1229086A (zh) * 1999-03-17 1999-09-22 金凤燮 酶法改变人参皂甙糖基制备稀有人参皂甙的方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1380253A (en) * 1971-01-21 1975-01-08 Inverni Della Beffa Spa Prosapogenins
JPS59118053A (ja) * 1982-12-24 1984-07-07 Hayashibara Biochem Lab Inc 飲食物とその製造方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2179042A (en) * 1985-07-22 1987-02-25 Takeda Chemical Industries Ltd Ginsenoside-Rd
GB2179049A (en) 1985-08-10 1987-02-25 Nissan Motor Vehicular instrument panel
RU2046140C1 (ru) * 1992-07-08 1995-10-20 Акционерное общество закрытого типа - Химико-биологическое объединение при РАН Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток
CN1144847A (zh) * 1996-03-12 1997-03-12 金凤燮 酶处理提取中药材中皂甙成分的方法
CN1229086A (zh) * 1999-03-17 1999-09-22 金凤燮 酶法改变人参皂甙糖基制备稀有人参皂甙的方法

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BAC ET AL., BIOL AND CHEM. PHARM. BULL, 2000, pages 1481
KARIKURA ET AL., CHEM. PHARM. BULL., 1991, pages 2397
LIU WEICHA ET AL., JOURNAL OF SHENYANG MEDICAL COLLEGE, vol. 1, 1988, pages 14
M. KANAOKA ET AL., J. TRADITIONAL MEDICINE, vol. 11, 1994, pages 241
N. KONDO ET AL., CHEM. PHARM. BULL., vol. 21, 1973, pages 2702

Cited By (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100496731B1 (ko) * 2002-09-26 2005-06-22 (주)휴먼사이언스 파피아 로도지마 균주를 이용한 항산화 활성향상과진세노사이드의 생산방법
CN101570746B (zh) * 2008-04-29 2013-07-10 天士力制药集团股份有限公司 一种新型柴胡皂苷糖苷酶及其制备方法和应用
CN102080049A (zh) * 2010-12-03 2011-06-01 大连民族学院 人参内生莫勒接霉菌及利用其制备人参皂苷Rd的方法
CN102080049B (zh) * 2010-12-03 2013-01-09 大连民族学院 人参内生莫勒接霉菌及利用其制备人参皂苷Rd的方法
CN102759597A (zh) * 2011-04-29 2012-10-31 天津药物研究院 一种七叶皂苷类成分的快速检测方法
CN103360442B (zh) * 2012-03-30 2016-03-30 中国科学院上海有机化学研究所 一种原人参三醇类人参皂苷的制备方法
CN103360442A (zh) * 2012-03-30 2013-10-23 中国科学院上海有机化学研究所 一种原人参三醇类人参皂苷的制备方法
CN103966105A (zh) * 2013-11-28 2014-08-06 河南科技学院 一种转化人参皂苷Rg3生产Rh2的米曲霉、生产方法及应用
CN107308195A (zh) * 2017-06-30 2017-11-03 肖永坤 一种通过固体动态发酵技术制备高活性人参皂苷的方法
CN107338280A (zh) * 2017-06-30 2017-11-10 肖永坤 一种高活性低糖基人参次苷群及其苷元的制备方法
CN107338280B (zh) * 2017-06-30 2021-07-27 肖永坤 一种低糖基人参次苷群及其苷元的制备方法
CN108836969A (zh) * 2018-06-01 2018-11-20 肖永坤 一种抗癌红参及其制备方法和用途
CN114767737A (zh) * 2022-06-21 2022-07-22 上海中医药大学 一种秦皮提取物、其制备方法及应用
CN114767737B (zh) * 2022-06-21 2022-11-29 上海中医药大学 一种秦皮提取物、其制备方法及应用

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