发明领域
本发明涉及水解人参中含量较高的皂甙糖基以制备生理活性 高的稀有皂甙的人参皂甙糖苷酶。 本发明还涉及所述人参皂甙糖 苷酶的用途。
发明背景
人参是已有几千年历史的中草药材, 是滋补强壮的药材。 常 用的药用人参是人参( ^"a;c gz we«g C. A. Meyer)、美国参( panax quinquefolium L. ) ^ 三七参 (Panax natoginseng、 竹节参 (Panax japoniciis ) 禾口其他人参属 (Panax genus ) 植物。
人参植物中最重要的有效成分是人参皂甙, 已发现的人参皂 甙已有 30 余种。 人参皂甙可分为三种类型: 原人参二醇类皂甙 (Protopanaxdiol Type ginsenoside, PPD)、 原人参三醇类鸟武 (Protopanaxtriol Type ginsenoside, PPT)和齐壤果酸类皂甙。 人参 皂甙 Ra„ Ra2, Ra3, Rb„ Rb2, Rb3, Rc, Rd, F2, Rg3, Rg5, R 2, 和 Rh3 是原人参二醇类皂甙; 人参皂甙 Re, Rgl5 Rg2, Rg4, Rhl3 Rh4是原 人参三醇类皂甙; Ro 等皂甙是人参齐墩果酸类皂甙。 其中, 人 参皂甙 Ral 5 Ra2, Ra3, Rbl 5 Rb2, Rb3, Rc, Rd, F2, Re, Rg是达玛 20(S)-皂甙 ( Dammarane 20(S)-saponins),人参皂甙 Rg3、 Rg2、 Rg2、 Rh,具有 20(S)和 20(R)异构体。 主要的人参皂甙化学结构如下:
原人参二醇类皂甙 原人参三醇类皂甙
R. R2 R, R2
Rb, -glc2-glc -glc6-glc Re -glc2-rha -glc
Rb2 -glcj-glc -glc6-ara(pyr) Rg. -glc
R'」 gic:-gic -glc^-ar-^fur) Rg2 -glc2-rha H(20-S和 20-R)
Rd -glc Rh, -glc H(20-S和 20-R)
F2 -glc -glc
Rg3 -glc -glc H (20-S和 20-R)
Rh2 -glc H (20-S和 20-R)
C-K H -glc
在人参中含量较高的皂甙是 Ra、 Rb Rb2、 Rc、 Rd、 Re 和 !?^等皂甙, 而 Rg3、 Rg2、 Rg5、 Rh2、 Rhp Rh3和 4等皂甙是 只有在野山参和红参中存在的稀有皂甙。 这些稀有皂甙往往具有 较高的生理活性: 如 Rii2、 ^^和 Rg3皂甙具有很强的抗癌作用, 但无副作用。 R 和 Rg2等具有较好的软化血管的作用。 这些稀 有皂甙对现代医学和保健食品意义很大。 但是, 这些稀有皂甙从 红参和野山参中提取很困难的, 因为这些红参和野山.参原料贵 ; 稀有皂甙含量只有十万分之几, 因此, 从红参和野山参中提取稀 有皂甙是不大可能的。
曾经有人尝试过用化学方法合成人参稀有皂甙 Rh2, 但收率 很低 (刘维差等: 沈阳药学院学报, 1, 14(1988) ); 也有人提出 过酸碱处理人参皂甙制备稀有皂甙(N. Kondo et.al.: Chem. Pharm. Bull" 21, 2702 (1973)), 但其反应选择性差、 收率低。 日本学者 研究过人参皂甙在人体肠道内的代谢变化 (M.Kanaoka et.al.: J.Tradional medicinen, 11,241(1994))。
迄今为止, 大量制备稀有皂甙的种种尝试均未获得令人满意 的结果, 因此仍需要一种新的大量制备稀有皂甙的新措施。 而本
发明人从微生物、 人参植物、 麦麸、 杏仁、 麦芽和动物肝中发现 了能水解人参皂甙糖基的新酶类, 用这种人参皂甙酶处理人参中 含量较高的 Ra、 RbP Rb2、 Rc、 Rd,、 Re和 1¾等皂甙, 可大量 地制备各种稀有皂甙。
因此, 本发明的一个目的是提供一类新的能水解人参皂甙糖 基而制备稀有皂甙的酶, 本文中命名为人参皂甙糖苷酶 (Ginsenoside-glycosidases)。
本发明的再一目的是提供所述人参皂甙糖苷酶的用途。
发明概述
本发明涉及一种新的能水解人参皂甙糖基而制备稀有皂甙的 酶, 命名为人参皂甙糖苷酶 (Ginsenoside-glycosidases)。 本发明的 酶存在于微生物、 人参植物、 麦麸、 杏仁、 麦芽和动物肝中, 用 这种人参皂甙糖苷酶处理人参中含量较高的 Ra、 Rbp Rb2、 Rc、 Rd、 Re、 Rg^D其他容易得到的皂甙 1¾2和 1 §3等皂甙, 可制备 稀有皂甙 Rl Rh2、 C-K、 Rg2、 Rg3、 F2、 Rgl、 Rd 以及甙元和 其异构体皂甙, 从而能大量地得到红参和野山参的稀有皂甙成分 和其他稀有皂甙。 . 本发明的人参皂甙糖苷酶根据水解人参皂甙糖基反应的差别 共分为四种类型, 即人参皂甙糖苷酶 I、 人参皂甙糖苷酶 II、 人 参皂甙糖苷酶 III和人参皂甙 -a-鼠李糖苷酶, 其中:
人参皂甙糖苷酶 I 能水解人参皂甙 Ra、 Rbj. Rb2、 Rc,、 Rd 的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 α-阿拉伯糖苷键;
人参皂甙糖苷酶 II 能水解人参皂甙 Ra、 Rb Rb2、 Rc、 Rd 的第 20碳原子 20-C的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 α-阿拉伯糖 苷键生成 Rd皂甙;
人参皂甙糖苷酶 ΠΙ 能水解人参皂甙的第 3 碳原子上的双葡 萄糖基和皂甙元之间的糖苷键;
人参皂甙 -α-鼠李糖苷酶能水解人参皂甙 Re和 Rg2的第 碳
上的 α-鼠李糖苷键, 分别生成 Rg n R ,皂甙。
利用这四种酶的混合物或者单个酶来处理人参中含量较高的 Ra、 R Rb2、 Rc、 Rd、 Re和 Rgl等皂甙糖基, 可制备各种稀 有皂甙。
本发明还涉及所述本发明的人参皂甙糖苷酶的用途, 例如用 于处理人参中含量较高的皂甙和其他容易得到的人参皂甙等以制 备稀有、 有用的皂甙; 处理人参混合总皂甙, 制备稀有皂甙含量 较高的人参混合皂甙; 处理人参粉制备稀有皂甙含量较高的人参 制品。
本发明的人参皂甙糖苷酶与传统的以纤维素、 半纤维素等多 糖类基础的纤维素酶和半纤维素酶是不一样的: 纤维素酶和半纤 维素酶只能水解纤维素和半纤维素等多糖类的糖苷键, 而本发明 的人参皂甙糖苷酶能水解人参达玛皂甙元配糖体的糖苷键。 例 如, β-葡萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21)能水解纤维素和纤维二糖的 β-葡 萄糖苷键, 不能水解人参皂甙第三碳原子的 β-葡萄糖苷键。 其原 因是, 传统的纤维素和半纤维素酶水解糖类糖苷键; 但是本发明 的人参皂甙糖苷酶能水解具有 30 个碳原子的皂甙元配糖体的糖 苷键。
本发明的详细描述
本发明的人参皂甙糖苷酶类经过提纯酶蛋白、 特性研究之后 发现, 根据水解糖基反应至少有四种不同的酶类: 即人参皂甙糖 苷酶 I、 人参皂甙糖苷酶 II、 人参皂甙糖苷酶 III和人参皂甙 -C - 鼠李糖苷酶等: 人参皂甙糖苷酶 I能水解人参皂甙 Ra、 Rb、 Rb2、 Rc、 Rd 的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 α-阿拉伯糖苷键; 人参 皂甙糖苷酶 II 能水解人参皂甙 Ra、 Rb Rb2、 Rc、 Rd 的第 20 碳原子 20-C的 β-葡萄糖苷键、 β-木糖苷键、 ct-阿拉伯糖苷键生成 Rd皂甙; 人参皂甙糖苷酶 III能水解人参皂甙的第 3碳原子上的 双葡萄糖基和皂甙元之间的糖苷键, 使 Rd皂甙变成 C-K; 人参
皂甙 -a-鼠李糖苷酶能水解人参皂甙 Re和 Rg2的第 6碳上的 α-鼠 李糖苷键, 分别生成 Rg^n Rli,皂甙。
本发明的人参皂甙糖苷酶可以用于: 处理人参中含量较高的 皂甙 *其他容易得到的人参皂甙等, 制备稀有、 有用的皂甙; 处 理人参混合总皂甙, 制备稀有皂甙含量较高的人参混合皂甙; 处 理人参粉制备稀有皂甙含量较高的人参制品。
本发明的人参皂甙糖苷酶类可来源于微生物培养、 人参植 物、 杏仁、 麦麸、 杏仁、 麦芽和动物肝等。 所述的微生物包括细 菌、 链霉菌、 酵母、 曲霉和担子菌等。 微生物培养制备酶时, 可 以加入人参浸出物或者人参粉方法提高产酶量; 微生物可以液态 或者固态培养; 固态培养之后用缓冲液浸出、 离心除渣得酶液; 液态培养后、 离心除渣得酶液。 人参植物和动物肝破碎、 用缓冲 液浸出、 离心除渣得酶液。 麦麸、 麦芽和脱脂杏仁用缓冲液浸出、 离心除渣得酶液。 这些酶也可以加入硫酸铵或者酒精的方法沉淀 酶蛋白、 再用缓冲液溶解、 除渣得到皂甙糖苷酶得浓缩液。
根据酶的来源不同而本发明的人参皂甙糖苷酶所包括的四种 酶类含量不一样。
本发明的这些皂甙糖苷酶可直接处理皂甙, 制备稀有皂甙; 根据目的产物的不同、 可用提纯后的酶, 也可以用不提纯的酶。 这些酶的反应条件是 pH 2-11 , 温度 5~70 °C。 皂甙浓度为 0.001%〜20%。 酶反应底物是所有原人参二醇类和原人参三醇类 皂甙; 酶反应产物是包括所有部分或者全部皂甙糖基改变后生成 的皂甙次生产物, 如 Rhp Rh2、. C-K、 Rg2、 Rg3、 F2、 Rgl、 Rd 等皂甙、 以及甙元和酶反应过程中产生的异构体皂甙。
以下通过附图和实施例更详细地描述本发明, 其中: 图 1 示出本发明的人参皂甙糖苷酶 I水解原人参二醇类皂甙 的机理。
图 2示出本发明的人参皂甙糖苷酶 II水解原人参二醇类皂甙
的机理。
图 3示出本发明的人参皂甙糖苷酶 III水解人参皂甙的机理。 图 4示出本发明的人参皂甙 -ex-鼠李糖苷酶的水解机理。
图 5示出了 20(S)-和 20(R)-型人参皂甙的结构图。 实施例 1 微生物人参皂甙糖苷酶的制备
1、 黑曲霉的人参皂甙糖苷酶
菌种是黑曲霉 Aspergillus niger FFCCDL-48g (FFCCDL, 大连 轻工业学院菌种保藏所)。
1 -1、 酶的制备
将含 3% (重量) 麦麸水提取物和 1% (重量) 人参根水提取 物的液体培养基 220毫升放入于 1000毫升三角瓶中, 接种所述 黑曲霉菌种, 共接种 10个三角瓶。 在 30°C摇床培养 54小时, 离心除菌, 从 10个三角瓶中得到约 2000毫升上清液。 然后, 在 上清液中边搅拌加入硫酸铵的粉末到饱和度 65%, 在 4°C放置过 夜, 离心收集蛋白质沉淀。 沉淀中加入 80 毫升的蒸馏水装入到 透析袋中, 对 0.01 M和 pH 5 的醋酸缓冲液透析。 离心除去非溶 解物, 用 0.01 M和 pH 5 的醋酸缓冲液调整, 得到 200毫升粗酶 液, 用于人参皂甙糖基的水解和酶蛋白的提纯。酶液可重复制备。
1-2、 黑曲霉酶液对人参皂甙的水解
将 lOOmg人参皂甙 Rbp Rb2、 Rc、 Rd和 lOmg人参皂甙 Rg3 分别溶于 10ml的 0.01M和 pH5.0醋酸缓冲液中, 分别加入 10ml 粗酶液, 在 30°C反应 18小时, 然后加入 10ml 正丁醇终止反应, 产物皂甙转入正丁醇层。 用薄层层析 (TLC ) 法检测 (Merck, 60-F254硅胶板;展开剂为氯仿:甲醇:水 =70 : 30: 5 )。用 Shimadzu TLC扫描仪 CS-930检测的 TLC结果如下表 1所示。
表 1 表明: 黑曲霉所产的酶能水解原二醇类人参皂甙 (PPD, Protopanaxdiol type ginsenoside ) 的糖基, 水解程度高达 90%以
上; 1 等水解成 Rh2皂甙的转化率高达 50%以上; 酶反应主要 产物是人参皂甙 F2, C-K, Rh2和皂甙元。该酶对人参皂甙 Ra,, Ra2 和 Ra3的水解反应、 与 Rt^皂甙酶反应类似。
从上述试验得知, 黑曲霉的人参皂甙糖苷酶至少具有以下的 酶活性: 具有水解 PPD皂甙第三碳位上 β - ( 1—2) -D-葡萄糖基 的活性和水解皂甙元上的 β -D-葡萄糖苷键的活性; 具有水解第 二十碳位上 - ( 1 -6 ) -D-葡萄糖苷键、 a - ( 1→6 ) -L-阿拉伯 糖苷键和 6) 木糖苷键的活性。 表 ι、 黑曲霉的人参皂甙糖苷酶对不同原人参二醇类皂甙糖基的的水解
在 pH 5.0, 30°C酶反应 18小时; 酶对 Ra,、 Ra2、 1^3皂甙的水解结果 (未示出) 和 Rbl结果相似 这种人参皂甙糖苷酶的生成受到人参提取物或者人参皂甙的 诱导: 如果培养基中加诱导物 --人参提取物或者皂甙, 产酶增高; 如果不加诱导物, 人参皂甙糖苷酶的产量下降。
1-3、 黑曲霉人参皂甙糖苷酶的性质
为了弄清黑曲霉的人参皂甙糖苷酶酶性质, 试验了温度, pH 值, 金属离子以及反应时间对酶反应的影响。 温度对酶反应的影响:
温度对酶水解原人参二醇类人参皂甙糖基的影响, 用 100 毫
克 Rt^皂甙, 按 1-2的条件试验; 其结果如表 2所示: 表 2、 温度对黑曲霉的酶水解人参皂甙 Rb,的影响
反应条件: Rb 浓度, 0.5%; 在在 pH 5.0, 30°C酶反应 18小时 表 2表明: 在温度 30〜60Ό之间, 酶水解 皂甙较好; 在 温度 30~50°C之间,产物人参皂甙 F d C-K的产量较高;在 20〜50 °C内, 随着温度的升高, 水解产物人参皂甙 C-K 的产量也越高。 由表 2可知, 若想得到较多的 F2, 酶反应温度必须控制在 30〜40 °C。若想得到较多的人参皂甙 C-K,酶反应温度必须控制在 40〜50 °C。 当酶反应温度为 20和 60°C时, 会获得较多的人参皂甙 Rd。 而人参皂甙 1 §3,1¾12和皂甙元的产量较低。 温度对酶水解人参皂 甙 Ra, Rb2, Rc和 Rd的影响与水解人参皂甙 Rbi反应类似。
pH值对酶反应的影响: pH值对皂甙酶水解人参皂甙 Rbi的 影响见表 3 。
表 3、 pH对黑曲霉的酶水解人参皂甙 Rb,的影响
酶反应 R 浓度 0.5%, 在 30Ό酶反应 18小时
表 3的结果表明: 在 pH4〜7之间人参皂甙 F2的产量较高; 而且, pH 值越高人参皂甙 C-K, 1 112和皂甙元的产量越高。 pH 值对酶水解人参皂甙 Ra, Rb2, Rc和. Rd的影响与水解 Rb,类似。 反应时间的影响: 反应时间对酶水解原人参二醇类皂甙的影 响见表 4。
表 4、 反应时间对酶水解人参皂甙 Rb,的影响
酶反应 Rb,浓度 0.5% , 酶反应在 pH5和 30°C 由表 4可知: 在反应的初始阶段, 人参皂甙!?^第 20碳位 的葡萄糖基被水解, 转化为 Rd, 随着反应时间延长的逐渐增加, Rd的产量也越来越少, F2和 C-K含量增高;当反应时间达到 12-24 小时时, 人参皂甙?2的产量多; 人参皂甙 C-K、 Rh2和皂甙元的 产量随着反应时间的增加。 反应时间对酶水解人参皂甙 Ra、 Rb2、 Rc和 Rd的影响, 同水解 的结果类似。 金属离子对酶反应的影响: 金属离子对酶水解原二醇类人参 皂甙的影响见表 5。
表 5、 金属离子对酶水解人参皂甙 Rb,的影响
Rb,浓度, 0.5%; 酶反应在 pH5.0和 30°C反应 18小时 表 5 的实验结果表明: Ca++和 Mg^能轻微的加快酶水解人参 皂甙 Rb 的速度, Qi++和 Pb++等金属离子抑制酶反应。 金属离子 对酶水解人参皂甙 Ra, Rb2, Rc和 Rd的影响与 Rb,的结果类似。
1-4、 黑曲霉菌酶的提纯
由黑曲霉制得的上述酶液 10ml上 DEAE-纤维素 DE-52柱( Φ 1.5 X 6.7 cm, Pharmacia) 吸附酶蛋白。 然后用 0.02M的 NaCl和 pH5的醋酸缓冲液配成的梯度液 ( 0.06, 0.12, 0.18, 0.24, 0.3 , 0.4, 0.5, 0.6M) 梯度洗脱。
. DEAE-纤维素柱上洗脱的第 36和 54管流分在聚丙烯酰胺凝 胶 SDS 电泳 (李建武等: 生物化学试验原理和方法, 北京大学 出版社, p82-100(1997) ) 上呈现单点, 其酶对人参皂甙的水解作 用结果如表 6和 7所示。
第 36管的酶 (人参皂甙糖苷酶 I) 对人参皂甙的水解作用
Rb,, Rb,, Rc和 Rd的浓度, 0.5 %; Rg3, F,, Rh2, C-K 和 Rg2, 0.05%; 在 pH5.0、 30 °C 反应 18小时; Ra类皂甙反应与 Rb,结果相似。
DEAE-纤维素柱上洗脱的第 36管流分, 即用 0.12M NaCl梯 度洗脱的第 36管流分, 经过冻干, 作聚丙烯酰胺 SDS电泳为单 点, 其分子量为 51,000, 因此其酶是纯酶, 命名为人参皂甙糖苷 酶 I, 其酶活性, 如表 6所示。
从表 6中可以看出, 第 36管流分的酶 (即人参皂甙糖苷酶 I) 能水解 ,皂甙的第 20碳原子上的 20-C β -(1— 6)-D-葡萄糖苷 键, 也能水解 Rc和 Rb2皂甙的 20-C a -(l→6)-L-阿拉伯糖苷键, 能水解 Ra类皂甙的 20-C 的 β -(1— 6)-D-木糖苷键; 也能水解二 醇类皂甙、 如 Ra皂甙类、 Rb Rb2、 Rc、 Rd和 Rg3上第 3-C上 的 β -(1— 2)-D-葡萄糖苷键; 也对二醇类的 3-C皂甙元上的 β -D- 葡萄糖基和 20-C 的皂甙元 β葡萄糖基也有轻微的水解作用。 人 参皂甙糖苷酶 I的水解机理如图 1所示。 人参皂甙糖苷酶 I也能 水解对硝基苯酚基 -β-葡萄糖苷、 β-木糖苷、 ot-阿拉伯糖苷、 β-半 乳糖苷; 但不能水解硝基苯酚基 -a-鼠李糖苷。
人参皂甙糖苷酶 Π: DEAE-纤维素柱上洗脱的第 54管流分、 即 0.18 Μ的 NaCl洗脱的流分第 54管, 经过冻干, 作 SDS电泳
为单点, 其分子量为 90,000, 所对应的酶被命名为人参皂甙糖苷 酶 II, 它只能水解 Rb!的 20-C β -(1— 6)-葡萄糖苷键、 Ra类皂 甙 β -(1— 6)-木糖苷键和 Rb2,Rc 的 20-C α -(1→6)-阿拉伯糖苷 键, 并将它们转化为 Rd; 轻微水解 Rd皂甙生成 Rg3 ; 不水解人 参皂甙的原人参二醇类皂甙的 3-C 的 β -(1— 2)-葡萄糖苷键。 人 参皂甙糖苷酶 II反应机理, 如图 2所示。
人参皂甙糖苷酶 III是用高效液相蛋白制备色谱仪 (BioRad) 提纯的: 分离柱为 Bio-Scale Q; 每试管收集量为 2 毫升。 将上 述 1-1 方法制备的黑曲霉菌酶液 1 毫升上样, 然后用 25mM和 pH7.4的 Tri-HCl缓冲液、 含 0.5M的 NaCl的 25mM和 pH7.4的 Tri-HCl缓冲液梯度洗脱; 第 18管的酶液在 SDS 电泳上单点, 说明是纯酶, 命名为人参皂甙糖苷酶 III。 该酶能水解皂甙元 3-C 双葡萄糖基, 使 Rd和 R&皂甙各变成 C-K和皂甙元, 其反应机 理如图 3所示。
小结上述的黑曲霉菌的三种类型人参皂甙糖苷酶的性质如表 7所示。 表 7、 从黑曲霉菌制得三种人参葡萄糖苷酶性质
1-5、 人参皂甙糖苷酶与纤维素 β -葡萄糖苷酶的差异
为了观察本发明的人参皂甙糖苷酶和已知的外切纤维素酶之 间的差异, 人参皂甙糖苷酶和已知的纤维素 β -葡萄糖苷酶 (EC
3.2.1.21)相比较, 以 0.5%的人参皂甙 Rb D Rd为底物在 pH5.0、 30°C反应 18小时; 结果如表 8所示。
从梭菌属 Chlostridun thermocopiriae) 制得的纤维素 -β-葡 萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21), 以及从芽孢杆菌属 (Bacillus sp.AX) 制得的纤维素 葡萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21) 等三个纤维素 -β-葡 萄糖苷酶不能水解任何人参皂甙糖苷键;只有杏仁纤维素 - β -葡萄 糖苷酶 (EC 3.2.1.21)能轻微水解 Rl Rb2和 Rc上的第 20-C的糖 基生成 Rd皂甙, 不能水解第 3-C上的葡萄糖基, 这与人参皂甙 糖苷酶 II相似, 然而人参皂甙酶 II轻微地水解 Rd, 这是与杏仁 纤维素 -β-葡萄糖苷酶的区别点。 因此, 纤维素 -β-葡萄糖苷酶
(EC 3.2.1.21) 性质和人参皂甙糖苷酶 I有完全不一样的区别。
从梭菌属 ( Chlostridun thermocopiriae) 制得的外切纤维素酶
(纤维二糖生成酶), 以纤维二糖为单位切割纤维糊精, 但不能 水解皂甙 Rd的 3-C的二糖键, 与人参皂甙糖苷酶 III截然不同。 从而证明了: 本发明的人参皂甙糖苷酶类是与传统的纤维素- β - 葡萄糖苷酶和纤维二糖生成酶不同类型的酶。
表 8、 人参皂甙葡萄糖苷酶于其他类似酶的比较
Rb,和 Rd的浓度, 0.5 %; 在 pH5.0、 30°C酶反应 18小时,
2、 米曲霉菌的人参皂甙糖苷酶
2-1 酶的制备
在 1000毫升三角瓶中装入 220毫升 1% (重量) 人参水浸出 物和 3% (重量)麦麸浸出物的培养基,用米曲霉^^ ergzY/^ oryzae FFCCDL-39g (大连轻工业学院菌种保藏所) 接种 10个这样的三 角瓶, 在 30 °C摇床培养 64小时。 离心除菌, 从 10个三角瓶中 得到约 2000 毫升上清液。 然后, 在上清液中边搅拌加入硫酸铵 的粉末到饱和度 65%, 在 4°C放置过夜, 离心收集蛋白质沉淀。 沉淀中加入 80毫升的蒸馏水装入到透析袋中, 在 0.01 M和 pH 5 的醋酸缓冲液中透析, 离心除去非溶解物, 用 0.01 M和 pH 5 的 醋酸缓冲液调整, 得到 200毫升粗酶液, 可用于皂甙水解和酶的 提纯。 酶液可重复制备。
将 lOOmg的人参皂甙 RbP Rb2、 Rc、 Re、 Rd和 lOmg的人 参皂甙 Rg3和 ^^2与 10ml的 0.01M, pH5 的醋酸缓冲液混合后, 加入上述米曲霉菌的 10ml粗酶液在 30°C下反应 18 小时。 然后 加入 10ml正丁醇混合、 静置两小时, 用 TLC检测正丁醇层的成 分 (薄层层析: 60-F254硅胶板 (Merck) ; 溶剂为氯仿: 甲醇: 水 =70:30:5 ) , 用 TLC检测仪 CS-930 (日本岛津公司) 检测板上皂 甙含量如表 9所示:
表 9、 米曲霉菌的酶对不同人参皂甙的水解结果 (%)
在 pi- 1 5.0 和 30 °C ¾反应 18小吋
从表 9 中可以看到: 米曲霉的人参皂甙糖苷酶水解原人参二 醇类皂甙糖基的酶性质, 如反应 pH值, 温度和反应时间都与黑 曲霉的酶相似。 唯一不同的是, 从黑曲霉制得的酶不能水解皂甙 Re和 1¾的 6-C的 c l→2)-L-鼠李糖苷键, 而来自米曲霉菌的人 参皂甙糖苷酶能水解并生成 Rgl和 Rhi皂甙。 由此证明了米曲霉 的人参皂甙糖苷酶不仅含有黑曲霉的酶的人参皂甙糖苷酶 I、 人 参皂甙糖苷酶 II、 人参皂甙糖苷酶 III 等酶的活性, 又具有人参 皂甙 -a-(l— 2)-L-鼠李糖苷酶即人参皂甙 -α-鼠李糖苷酶的活性。
2-2、 人参皂甙 - α -鼠李糖苷酶的提纯及性质的研究
为了研究 A. oryzae 的人参皂甙 - α -鼠李糖苷酶的性质, 用 BioRad 蛋 白 层 析 制 备 仪 ( Biologic Medium Pressure Chromatography ) 从米曲霉的酶分离提纯了人参皂甙 - α -鼠李糖 苷酶。 分离柱 Bio-Scale Q2 ( BioRad) ; 酶液进样量为 1ml; 流 动相速度 1毫升 /分钟; 流动相为 25mM、 pH8.2 Tris-HCl缓冲液 和 25mM、 pH8.2 Tris-HCl +0.5M NaCl缓冲液梯度洗脱。 每管收 集量为 2毫升 /管。
所收集的洗脱液分别测定酶活, 结果在第 16 管流分有人参 皂甙 - α -鼠李糖苷酶活性, 其人参皂甙 - α -鼠李糖苷酶在 SDS 聚 丙烯酰胺凝胶电泳上为电泳单点, 其分子量是 53, 000, 说明第 16管流分酶是提纯的酶。
纯化后的人参皂甙- α -鼠李糖苷酶能水解人参皂甙 Re和 Rg2 的 6-C (第 6碳位上)的 a -L-鼠李糖苷键, 分别生成 Rgl Γ0ι1 0 其酶反应活力较高的 pH为 4〜7 (最适 pH为 5 ) ; 酶反应活力较 高的温度是 30~50°C (最适温度为 40°C )。 纯化的人参皂甙 - α -鼠 李糖苷酶只水解原人参三醇类皂甙 (PPT) 6-C中的 α -L-鼠李糖 苷键, 不水解人参皂甙中其它糖苷键。 人参皂甙 α -L-鼠李糖苷 酶水解 Re和 1^2皂甙的机理如图 4所示。
3、 细菌的人参皂甙糖苷酶
含 0.5% (重量) 人参水浸出物、 1 % (重量) 麦麸水浸出物 和 0.3% (重量)胰蛋白胨、 pH7.2的培养基中接高温好氧菌
^.JF(Fengxie Jin et al., J. Gen. Appl. Microbiol., 36, 415-434, 1990) ,在 60 °C下通风搅拌培养 36小时。离心除菌,取上清液 1000 毫升, 加 3000毫升 95%乙醇使酶沉淀, 4°C下保存过夜, 离心收 集沉淀。 然后, 将此酶蛋白沉淀溶于 50 毫升的 0.01M、 PH5 的 醋酸缓冲溶液, 离心除不溶性物, 即得到粗酶液。
取 10ml酶液与 10ml 0.5%Rd的醋酸缓冲溶液 (含 20%乙醇) 70°C下反应 16小时。 TLC检测结果表明: 60%的 Rd转化为人参 皂甙 F2,说明细菌人参皂甙糖苷酶能水解人参皂甙 Rd第三碳位上 β - ( 1—2 ) -葡萄糖苷键。 该酶也能水解人参皂甙 尺 的3 - ( 1 —2 ) -葡萄糖苷键, 变成 Rh2皂甙。
该酶的最适反应温度 70°C, 最适 pH6.0。
4、 来源于酵母的人参皂甙糖苷酶
在含 2% (重量) 人参水浸出物和 8% (重量) 麦芽汁的培养 基上, 30°C摇床培养假丝酵母 Candida sp. FFCCDL-2g (大连轻 工业学院菌种保藏所) 56小时, 离心取上清 500ml, 加 (NH4)2S04 粉末至饱和度为 65%, 4°C保存过夜,离心收集沉淀,在 0.01M pH5 的醋酸缓冲溶液中透析, 离心除去杂质, 得到 25毫升酶液。
取 10ml酶液与 10ml 0.5%Rd的醋酸缓冲溶液 60°C下反应 12 小时。 TLC检测结果表明: 73%的 Rd转化为人参皂甙 F2, 说明 该酶能水解人参皂甙 Rd 的 3-C (第三碳位)上的 β - ( 1—2 ) -葡萄 糖苷键。 该酶也能水解人参皂甙《^3的3 - ( 1—2 ) -葡萄糖苷键, 变成 Rh2皂甙。
该酶的最适反应温度为 45 °C, 最适 pH为 5.5。
5、 链霉菌的人参皂甙糖苷酶
含 1 % (重量) 人参水浸出物, 3% (重量) 麦麸水浸出物的 产酶培养基中接链霉菌 sp.FFCCDL-2g (大连轻工业 学院菌种保藏所),在 30°C下培养菌种 48小时,离心取上清液 300 毫升, 加 (NH4)2S04粉末至饱和度为 70%使酶沉淀, 4°C下保存过 夜, 离心收集沉淀。 在 0.01M、 pH5 的醋酸缓冲溶液中透析, 除 去杂质, 得到 15毫升酶液。
取 10ml酶液与 10毫升 l%Rd的醋酸缓冲溶液 (含 20%乙醇) 50°C下反应 20小时。 TLC检测结果表明: 50%的 Rd转化为人参 皂甙 F2, 说明链霉菌酶能水解人参皂甙 Rd第三碳位上 β - ( 1—2 ) -葡萄糖苷键。 该酶最适反应温度 50°C, 最适 pH5.5。
6、 担子菌的人参皂甙糖苷酶
将担子菌 Tremella sp.FFCCDL-12g 菌株 (大连轻工业学院 菌种保藏所) 在含有 125g人参粉, 374g麦麸和 500毫升水的固 体培养基中培养 5到 7天。 然后把 0.01M, pH5.0的醋酸缓冲溶液 2500毫升加入到固体培养基中静置 2 小时。 离心去除不溶物后, 得约 2000毫升浸出液; 加 (NH4)2S04粉末到浸出液中, 搅拌使硫 酸铵的饱和度达到 70%,在 4°C静置过夜,离心收集蛋白,在 0.01M 的 pH5的醋酸缓冲液下透析。 然后用 0.01M、 pH5醋酸缓冲液稀 释至 150毫升, 除去不溶物, 即得到酶液。
把从担子菌得到的酶液 10 毫升与 10 毫升 1%的 Rl^溶液 ( 0.01M、 pH5的醋酸缓冲溶含 20%乙醇) 混合, 在 40°C反应 20 小时。反应完毕后,用 TLC检测产物。人参皂甙 Rt^反应生成 25% 的 Rd, 40%的?2和 35%的 C-K。 这些结果证明: 这种酶可以酶 解 3碳位上的 β -葡萄糖苷键, 及 20碳位上的葡糖苷键。 反应的 最佳温度是 50Ό, 最佳 ρΗ值是 5.5。
从以上实验可得出如下结论: 微生物如细菌、 链霉菌、 酵母、 霉菌和担子菌等均产人参皂甙糖苷酶; 这些菌类生成人参皂甙糖 苷酶时, 加入人参提取物会提高产酶量。 本发明的人参皂甙糖苷 酶类与传统的纤维素酶 (纤维素 - β -葡萄糖苷酶 (EC 3.2.1.21)、 纤 维二糖生成酶) 在酶反应性质方面不同。 本发明的人参皂甙糖苷 酶根据酶水解皂甙糖基反应而至少分为四种类型: 即人参皂甙糖 苷酶 I, 人参皂甙糖苷酶 II, 人参皂甙糖苷酶 III和人参皂甙 - α - 鼠李糖苷酶。 实施例 2 人参植物的人参皂甙糖苷酶
2-1. 酶的提取和纯化
将 200g新鲜的人参根粉碎, 力 Π 600毫升 0.02M、 pH5 的醋 酸缓冲液, 在 40°C下浸 2 小时, 过滤得到上清液。 在上清液中 加入 (NH4)2S04缓慢加入至 70%饱和, 在 4°C下过夜, 离心收集 蛋白沉淀。 将蛋白沉淀溶于 15 毫升的蒸馏水中, 在 0.02M 的 Tris-HCl (pH7.4 ) 缓冲液中透析, 离心去除不溶物后, 将体积调 整到 20毫升。
将 5 毫升的酶液在 DEAE-纤维素 DE-25 柱 (Whatman, Φ 1.4 X 6.7cm)吸附后, 用 0.02M、 pH7.4的 Tris-HCl中含有 KC1浓度 0.06、 0.12、 0.18和 0.24M的溶液, 对吸附酶的柱进行梯度洗脱。 洗脱后检测各个流分对皂甙酶解, 结果第 37 管流分的酶可以水 解皂甙 Rd的第 3碳位上的双糖和皂甙元之间的葡萄糖苷键, 将 Rd转化为 C-K; 第 52管流分酶可以水解 Rd皂甙第 3碳位上的 β - ( 1—2) 葡萄糖苷键、 将 Rd转化为 F2, 也可以水解 Rb和 Rc 皂甙第 20碳位上的糖苷键, 将 Rb和 Rc转化为 F2。结果如表 10。
表 10、 从人参植物提纯的酶对人参皂甙的水解
皂甙底物浓度,0.5 %; 在 pH 5.0、 50°C反应 18小时。 从表 10 中可见, DEAE-纤维素柱洗脱得到的第 52管流分的 酶可以水解 Rl 1»2和 Rc皂甙第 20碳位上的糖苷键, 也可以 水解 3碳位上的 β - ( 1— 2)葡萄糖苷键。第 52管流分的酶在 SDS 聚丙烯酰胺电泳上为单点, 分子量为 59,000。 所以第 52 管流分 的酶是人参皂甙糖苷酶 I类型。 但是, 和从黑曲霉制得的人参皂 甙糖苷酶 I相比较, 人参植物的人参皂甙糖苷酶 I类型的分子量 略大, 不水解皂甙元直接结合的糖苷键。 提纯后的流分第 37 管 的酶可以水解皂甙 Rd第 3碳位的双糖与皂甙元之间的糖苷键, 生成 C-K皂甙,它属于人参皂甙糖苷酶 III类型。
钙离子对两种酶都有促进作用, 而铜离子对两种酶有抑制作 用, 提纯后酶的特性如下表 11所示-
3-1、 酶的提取
500g麦麸中加入 2500毫升 0.02M、 pH5的醋酸缓冲液, 在
40°C提取 2小时, 过滤得上清液约 2000毫升。 上清液缓慢搅拌 加入 (NH4) 2S04至 70%饱和度, 在 4°C下过夜, 离心收集蛋白 沉淀。 将其蛋白沉淀溶于 80ml蒸馏水中, 在 0.02M、 pH5.0的醋 酸缓冲液中透析。 离心去除不溶物后, 调整体积至 200ml, 即为 酶液。
3-2、 酶的性质
将 10毫升的上述酶液与 10毫升 1%皂甙底物的醋酸缓冲液混 合, 在 40°C下反应 20小时; 然后, TLC检测产物, 结果如表 12 所示: 表 12、 由麦麸皂甙糖苷酶对皂甙的水解作用
皂甙底物,0.5 %; 在 pH,5.0、 4(TC酶反应 20小时 从表中可以看出, 麦麸酶可以水解皂甙 Rd第 3碳位的葡萄糖 苷键, 变成 F2 ;. 也可以水解 Rbp 2和 Rc第 20碳、 第 3碳位 上的糖苷键, 生成 F2。
该酶最适 pH值是 5.0; 最佳反应温度是 40°C ; 二价铁离子和 镁离子可激活酶, 二价铜离子抑制酶活性。 实施例 4 其他来源的人参皂甙糖苷酶
4-1、 麦芽: 将 200克麦芽粉碎, 加入 1000毫升 0.01M、 pH5 的醋酸缓冲液常温下浸出 2小时, 过滤除渣, 上清液中加入 3倍 体积的乙醇, 静止过夜, 收集沉淀。 沉淀中加入 50毫升 0.01M、 pH5 的醋酸缓冲液, 除去不溶物, 得到酶液。 酶液 10毫升与 10
毫升 1%的 RT^溶液 (0.01M、 pH5 的醋酸缓冲溶含 20%乙醇) 混合, 在 40°C反应 20小时, 用 TLC检测产物。 结果, 95%以上 的人参皂甙 Rb,水结成 Rd, F2、 C-K和 Rg3等皂甙。 这些结果 证明:这种酶可以酶解人参皂甙第 3碳位上的 β -葡萄糖苷,及 20 碳位上的糖苷键。
4- 2、动物肝脏: 100克牛肝破碎, 加入 300毫升 0.01Μ、 ρΗ5 的醋酸缓冲液常温下浸出 2 小时, 离心除渣, 加 ( ¾ ^04粉末 至饱和度为 70%使酶沉淀, 4°C下保存过夜, 离心收集沉淀。 在 0.01M、 pH5的醋酸缓冲溶液中透析, 除去杂质, 得到 15毫升酶 液。 取 10ml酶液与 10毫升 Ι Ι Ι^的醋酸缓冲溶液 (含 20%乙 醇) 40°C下反应 20小时。 TLC检测结果表明: 50%的 Rt^转化 为低糖的人参皂甙, 说明动物肝中含有人参皂甙糖苷酶。
4-3、 植物种子-杏仁: 脱脂后的 100克杏仁粉碎, 加入 300 毫升 0.01M、 pH5的醋酸缓冲液常温下浸出 2小时, 离心除渣, 加 (NH4)2S04粉末至饱和度为 60%使酶沉淀, 4°C下保存过夜, 离 心收集沉淀。 在 0.01M、 pH5的醋酸缓冲溶液中透析, 除去杂质, 得到 30毫升酶液。 取 10ml酶液与 10毫升 /oRbi的醋酸缓冲溶 液(含 20%乙醇) 50Ό下反应 14小时。 TLC检测结果表明: 40% 的 Rb,转化为低糖的人参皂甙,说明杏仁中含有人参皂甙糖苷酶。 实施例 5 用人参皂甙糖苷酶制备稀有皂甙含量较高的人参混合 皂甙和人参制品
5- 1、 制备稀有皂甙含量较高的人参混合皂甙
人参叶混合皂甙 4克溶解在 100毫升的 0.01M、 pH5 的醋酸 缓冲液中, 再加入 100毫升实施例 1的 1-2部分制得的米曲霉酶 液, 在 30Ό反应 4小时, 用 100毫升水饱和正丁醇萃取两次, 合并正丁醇减压蒸干, 可得 3.3克皂甙。 用 TLC分析结果, 稀有 皂甙 Rg3、 Rg2、 Rh2、 的含量提高了几十倍。
5-2、 制备稀有皂甙含量较高的人参制品
人参粉 4克中加入 4毫升 20%乙醇, 再加入 4毫升实施例 1 的 1-2部分制得的米曲霉酶液; 在 30°C反应 12小时, 减压蒸干, 即得稀有皂甙含量较高的人参制品。 经过 TLC分析结果, Rg3、 Rg2、 R 2、 !^^的含量提高了几十倍。
5-3、 酶反应所得皂甙分子的化学结构
从原人参二醇类皂甙经酶反应产生的皂甙 Rd、 Rg3、 F2、 2、 C-K以及二醇皂甙元, 由原人参三醇类皂甙经酶反应产生的 Rgl、 Rg2、 R ,以及三醇皂甙元, 用硅胶柱不同比例的氯仿和甲醇洗脱 方法(张书臣主编: 中国人参, 上海科技教育出版社, 1992, P108-110), 分离制备皂甙产物的单体, 再经结晶方法, 制得纯净 的酶反应人参皂甙产物。
用高效液相色谱法,拆分人参皂甙 Rg3, Rg2, Rh2, Rh,的 20(S) 和 20(R)的异构体。高效液相色谱仪的型号是 Waters Model-520(来 源?), 检测波长为 203 nm, 柱为 C-18柱 (中国科学院大连化学 物理研究所生产); 流动相为乙腈: 乙醇 = 6: 4。
分离提纯得到酶反应产物的各皂甙单体的化学结构是用核磁 共振 (NMR)和质谱法测得的。 所使用核磁共振仪器为 Bruker DR X 400, 溶剂为吡啶 -d5。 质谱仪为 JEOL DX X 400, 方法为快速 原子冲击法 (FAB-MS)。
所测的得酶反应产物人参皂甙 Rd、 Rg3、 F2、 R 2、 C-K, Rg Rg2、 R !和皂甙元的质谱、 "H-NMIU 13C-NMR谱图和现有技术 中的文献 ( J.H. Park等: A new processed ginseng with fortified activity in Advances in Ginseng Research-Proceedings of the 7th International Symposium on Ginseng, Sep 22-25, 1998, pl46-159; Tanak 0·, Kasai R.: (1984), Saponins of ginseng and related plants in Progress in the Chemistry of Organic Natural Products (Herz W" Grisebach H,, Kirby G.W., Tamm Ch., eds), Vol.46, pi-
65. ) 上的谱图一样; 其 13C-NMR谱图的数据, 如表 12所示。 表 12 中所示的人参皂甙的结构说明, 酶反应产生的人参皂甙 Rd、 F2、 C-K和 Rgl皂甙都是 20(S)-构型皂甙;但是酶反应产生的 Rg3、 Rg2、 10¾和 Rhi皂甙有 20(S)-构型和 20 R)-构型。 以上结果都证 明:酶反应生成人参皂甙 Rd,F2,C-K和!§1的过程主要产生 20 (S) -人参皂甙。可是,对 Rg3,Rg2,R ;^n 的酶解生成 20( S )和 20(R)- 人参皂甙的混合物。 20(S)-和 20(R)-型人参皂甙的结构图见图 .5。