KR100811295B1 - 인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법 - Google Patents

인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법 Download PDF

Info

Publication number
KR100811295B1
KR100811295B1 KR1020050031523A KR20050031523A KR100811295B1 KR 100811295 B1 KR100811295 B1 KR 100811295B1 KR 1020050031523 A KR1020050031523 A KR 1020050031523A KR 20050031523 A KR20050031523 A KR 20050031523A KR 100811295 B1 KR100811295 B1 KR 100811295B1
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
ginseng
glc
ginsenoside
ginsenosides
microorganisms
Prior art date
Application number
KR1020050031523A
Other languages
English (en)
Other versions
KR20060109189A (ko
Inventor
지현
박명수
지근억
Original Assignee
재단법인서울대학교산학협력재단
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 재단법인서울대학교산학협력재단 filed Critical 재단법인서울대학교산학협력재단
Priority to KR1020050031523A priority Critical patent/KR100811295B1/ko
Publication of KR20060109189A publication Critical patent/KR20060109189A/ko
Application granted granted Critical
Publication of KR100811295B1 publication Critical patent/KR100811295B1/ko

Links

Images

Classifications

    • EFIXED CONSTRUCTIONS
    • E03WATER SUPPLY; SEWERAGE
    • E03BINSTALLATIONS OR METHODS FOR OBTAINING, COLLECTING, OR DISTRIBUTING WATER
    • E03B7/00Water main or service pipe systems
    • E03B7/07Arrangement of devices, e.g. filters, flow controls, measuring devices, siphons or valves, in the pipe systems
    • E03B7/08Arrangement of draining devices, e.g. manual shut-off valves
    • EFIXED CONSTRUCTIONS
    • E03WATER SUPPLY; SEWERAGE
    • E03BINSTALLATIONS OR METHODS FOR OBTAINING, COLLECTING, OR DISTRIBUTING WATER
    • E03B1/00Methods or layout of installations for water supply
    • E03B1/04Methods or layout of installations for water supply for domestic or like local supply
    • EFIXED CONSTRUCTIONS
    • E03WATER SUPPLY; SEWERAGE
    • E03BINSTALLATIONS OR METHODS FOR OBTAINING, COLLECTING, OR DISTRIBUTING WATER
    • E03B7/00Water main or service pipe systems
    • E03B7/07Arrangement of devices, e.g. filters, flow controls, measuring devices, siphons or valves, in the pipe systems

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Hydrology & Water Resources (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Water Supply & Treatment (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)

Abstract

본 발명은 인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 인삼 추출물을 루코노스톡(Leuconostoc) 속의 미생물과 반응시킴으로써 인삼의 대사산물인 활성형의 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F2를 생산하는 방법에 관한 것이다. 본 발명의 방법에 따르면 다양한 식품 미생물들이 특정한 진세노사이드 산물을 생산한다는 사실로부터 식용이 가능한 루코노스톡 속의 미생물을 이용하여 인삼의 대사산물인 활성형의 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F2를 효과적으로 생산할 수 있으며, 또한 식품 미생물에 의한 인삼 사포닌의 전환 경로를 밝힘으로써 진세노사이드 기질과 특정 미생물 효소를 적절히 조합하여 원하는 기능에 맞는 생산물을 얻을 수 있으므로, 본 발명의 방법은 활성형의 진세노사이드를 포함하는 다양한 식품의 제조에 유용하게 사용될 수 있다.

Description

인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법{Method of Producing Active Ginsenoside from Ginseng}
도 1은 루코노스톡 파라메센테로이데스(Leuconostoc paramesenteroides)에 의해 전환된 진세노사이드(ginsenoside)의 TLC 프로필(profile)을 보여주는 사진으로, 화살표는 Rb1 아래에 존재하는 스팟(spot)을 가리킨다.
도 2는 조(crude) 루코노스톡 파라메센테로이데스 효소에 의해 전환된 진세노사이드의 TLC 프로필을 보여주는 사진으로, 화살표는 Rb1 아래에 존재하는 스팟을 가리킨다.
도 3은 조 루코노스톡 파라메센테로이데스 효소에 의해 Rh2와 F2가 생성되는 것을 보여주는 TLC 프로필 사진이다.
도 4는 루코노스톡 파라메센테로이데스에 의한 Rb1의 전환 경로를 보여주는 흐름도이다.
도 5는 루코노스톡 파라메센테로이데스에 의한 Rb2의 전환 경로를 보여주는 흐름도이다.
도 6은 루코노스톡 파라메센테로이데스에 의한 Rc의 전환 경로를 보여주는 흐름도로서, 실선 화살표는 주(main) 경로를 가리키고, 점선 화살표는 부(minor) 경로를 가리킨다.
도 7은 루코노스톡 파라메센테로이데스에 의한 Re의 전환 경로를 보여주는 흐름도로서, 실선 화살표는 주 경로를 가리키고, 점선 화살표는 부 경로를 가리킨다.
본 발명은 인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 인삼 추출물을 루코노스톡 속의 미생물과 반응시킴으로써 인삼의 대사산물인 활성형의 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F1을 생산하는 방법에 관한 것이다.
인삼(the root of Panax ginseng C.A. Meyer. Araliaceae)은 중국, 한국, 일본 등의 아시아 국가에서 전통적으로 각종 질병의 치료에 사용되어 온 약재 중 하나이다. 이러한 인삼의 주요 활성 성분인 인삼 사포닌(saponin)(진세노사이드)은 항노화, 항염증, 중추 신경계와 심혈관계 및 면역계에서의 항산화 활성(Wu JY, et al., J. Immunol., 148:1519-25, 1992; Lee FC., Facts about ginseng, the elixir of life. Hollyn International. New Jersey, 1992; Huang KC., The pharmacology of Chinese herbs. CRC Press. Florida, 1999), 항당뇨 활성(Chang HM., Pharmacology and application of Chinese material medica. Vol1. World Scientific. Singapore, 1986) 및 항종양 활성(Sato K, et al., Biol. Pharm. Bull. 17:635-9, 1994; Mochizuki M, et al., Biol. Pharm. Bull. 18:1197-1202, 1995) 등과 같은 다양한 생리활성을 가지는 것으로 알려져 있다.
현재까지 30여 종이 넘는 진세노사이드가 인삼 사포닌으로부터 분리·동정되었으며, 담마란(dammarane) 골격을 가진 아글리콘(aglycone)을 포함하는 글리코사이드(glycoside)인 진세노사이드에는 프로토파낙사디올(protopanaxadiol)계 사포닌에 속하는 진세노사이드 Rb1, Rb2, Rc, Rd와 프로토파낙사트리올(protopanaxatriol)계 사포닌에 속하는 진세노사이드 Re와 Rg1이 대부분을 차지하고 있다(화학식 1 참조).
Figure 112005019759190-pat00001
화합물 R1 R2 R3
20(S)-프로토파낙사디올 형
진세노사이드 Rb1 O-Glc(2-1)Glc H O-Glc(6-1)Glc
Rb2 O-Glc(2-1)Glc H O-Glc(6-1)Arap
Rc O-Glc(2-1)Glc H O-Glc(6-1)Araf
Rd O-Glc(2-1)Glc H O-Glc
F2 O-Glc H O-Glc
Rh2 O-Glc H OH
화합물 K OH H O-Glc
O (Ⅰ) O-Glc H O-Glc(6-1)Arap
Y (Ⅱ) OH H O-Glc(6-1)Arap
Mc (Ⅲ) OH H O-Glc(6-1)Araf
Mc1 (Ⅳ) O-Glc H O-Glc(6-1)Araf
20(S)-프로토파낙사트리올 형
진세노사이드 Re OH O-Glc(2-1)Rha O-Glc
Rf OH O-Glc(2-1)Glc OH
Rg1 OH O-Glc O-Glc
Rg2 OH O-Glc(2-1)Rha OH
F1 OH OH O-Glc
Rh1 OH O-Glc OH
한편, 진세노사이드는 섭취 후 사람의 장내 미생물에 의해 대사되어 그 대사산물이 다양한 생리활성을 가지는 것으로 알려져 있다(Karikura M, et al., Chem. Pharm. Bull, 39:2357-61, 1991; Kanaoda M, et al., J. Tradit. Med. 11:241-5, 1994; Akao T, et al., Biol. Pharm. Bull. 21:245-9, 1998). 예를 들어, 프로토파낙사디올계 사포닌인 Rb1, Rb2, Rc는 사람의 장내 세균에 의해 20-O-β-D-글루코피라노실(glucopyranosyl)-20(S)-프로토파낙사디올(IH-901, 화합물 K)로 대사되고(Hasegawa H, et al., Planta Medica 63:463-40, 1997; Tawab MA, et al., Drug Metab. Dispos. 31:1065-71, 2003), 프로토파낙사트리올계 사포닌인 Re와 Rg1은 장내세균에 의해 진세노사이드 Rh1이나 진세노사이드 F1으로 대사되며(Hasegawa H, et al., Planta Medica 62:453-7, 1996; Tawab MA, et al., Drug Metab. Dispos. 31:1065-71, 2003), 이렇게 전환된 화합물 K, Rh1 및 F1은 다양한 생리활성을 나타 낸다. 구체적으로, 화합물 K는 종양의 침입을 막거나 염색체 변형과 종양형성을 예방함으로써 항전이 또는 항암 효과를 유도한다고 알려져 있으며(Wakabayashi C, et al., Oncol. Res. 9:411-7, 1998; Lee SJ, et al., Cancer Lett. 144:39-43, 1999), Rh1은 각종 암세포의 성장에 대한 세포독성 효과(Odashima S, et al., Cancer Res. 45:2781-4, 1985; Ota T, et al., Cancer Res. 47:3863-7, 1987; Lee HY, et al., Differentiation mechanism of ginsenosides in cultured murine F9 teratocarcinoma stem cells. Proc. 6th Int. Ginseng symp. Seoul 127-31, 1993) 및 항알레르기, 항염증 활성(Park EK, et al., Int. Arch. Allergy Immunol. 133:113-120, 2004)을 가진다. 또한, F1은 자외선-B-유도성 세포의 죽음을 상당히 감소시키며, 자외선 B의 조사에 의한 아폽토시스(apoptosis)로부터 Bcl-2와 Brn-3a의 발현을 하부-조절(down-regulation)시킴으로써 인간 HaCaT 각질세포를 보호할 수 있음이 알려져 있다(Lee EH, et al., J. Invest. Dermatol. 121:607-13, 2003).
이러한 이유로 진세노사이드를 그의 대사산물로 전환시키려는 노력들이 광범위하게 시도되었다. 일부 연구자들은 화학적 합성, 약산 가수분해, 알칼리 분해 등으로 진성 프로사포제닌(genuine prosapogenin) 또는 사포제닌을 생산하려 하였다(Han BH, et al., Planta Medica 44:146-9, 1982; Chen Y, et al., Chem. Pharm. Bull. 35: 1653-5, 1987; Elyakov GB, Atopkina LN, Uvarova NI. Synthesis of the ginseng glycosides and their analogs. Proc. 6th Int. Ginseng Symp. Seoul 74-83, 1993). 그러나, 이러한 방법들은 에피머화(epimerization), 수화(hydration), 히드록실화(hydroxylation) 등과 같은 여러 가지 부반응을 야기시키므로, 최근에는 효소(Ko SR, et al., Biosci. Biotechnol. Biochem. 64:2739-43, 2000; Ko SR, et al., Planta Med. 69:285-6, 2003)와 장내세균(Hasegawa H, et al., Planta Medica 63:463-40, 1997; Bae EA, et al., J. Microbial. Biotechnol. 13:9-14, 2003) 등을 이용한 온화한 조건에서 진세노사이드를 전환시키는 방법들이 다양하게 연구되고 있다. 그러나, 이러한 분야에 대한 연구는 아직 부족한 상태이고, 현재 몇몇 생물 전환체가 보고되어 있기는 하지만 모두 일부 미생물에 국한된 전환 경로가 연구되어 있을 뿐이다. 또한, 인삼 사포닌을 전환하기 위해 사용된 미생물들은 대부분 식용가능하지 않은 유박테리움 종(Eubacterium sp.), 푸소박테리움 종(Fusobacterium sp.) 또는 박테로이데스 종(Bacteroides sp.) 등으로서, 이로부터 생산된 대사산물들을 실생활에 이용하기 어렵다는 문제점이 있었다.
본 발명은 상기와 같은 종래 인삼 진세노사이드 대사산물 제조 방법상의 문제점을 해결하기 위하여 안출된 것으로서, 식용이 가능한 루코노스톡 속의 미생물을 이용하여 활성형의 인삼 대사산물인 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F2를 효과적으로 생산하는 방법을 제공하는 것을 그 목적으로 한다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 인삼 추출물을 루코노스톡 속의 미생물과 반응시킴으로써 인삼의 대사산물인 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F2를 생산하 는 방법을 제공한다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
본 발명의 방법에 있어서, 인삼 추출물은 인삼을 물 또는 메탄올, 에탄올, 프로판올 등의 저급 알코올을 이용하여 추출함으로써 제조될 수 있다. 또한, 루코노스톡 속의 미생물로는 루코노스톡 파라메센테로이데스(Leuconostoc paramesenteroides)를 사용할 수 있다. 상기 미생물은 2005년 3월 17일자로 한국미생물보존센터에 기탁되었다 (기탁번호 : KFCC11351P). 상기 미생물은 미생물의 배양액 형태로 사용되어도 무방하지만, 상기 미생물을 파쇄하여 제조되는 조 미생물 효소의 형태로 사용하는 것이 더욱 바람직하다. 또한, 활성형의 진세노사이드 제조에 사용되는 인삼 진세노사이드는 진세노사이드 Rb1, Rb2, Rc, Rd, Re, 또는 Rg1인 것이 바람직하지만, 반드시 여기에 한정되는 것은 아니다.
또한, 활성형의 진세노사이드 제조에 사용되는 원료인 상기 인삼 추출물은 물이나 완충용액과 같은 수성용매 및/또는 유기용매를 추가로 포함할 수 있다. 상기 수성용매로는 pH 3 내지 8, 바람직하게는 pH 4 내지 6 범위의 포스페이트 완충용액, 구연산 완충용액을 사용할 수 있고, 상기 유기용매로는 메탄올, 에탄올, 프로판올 등의 저급 알코올과 톨루엔, 에틸아세테이트, 클로로포름 등의 화합물을 사용할 수 있으나, 반드시 여기에 한정되는 것은 아니다. 상기 유기용매는 수성용매에 0 내지 50 중량% 정도 혼합되는 것이 좋으나, 유기용매의 혼합 비율은 반응에 사용되는 고농도의 인삼 진세노사이드 원료 물질을 용해시킬 수 있고, 효소의 활성을 저하시키지 않는 범위에서 사용한다. 최적의 용매조건을 얻기 위해서는 수성 완충용액만 사용하는 것보다 유기용매를 적절히 혼합하여 사용하는 것이 바람직하다. 이와 같이 유기용매를 혼합하여 사용하는 것은 효소 반응에 의해 생성되는 중간 반응물의 용해도를 증가시킴으로써 최종 산물인 진세노사이드 Rh1의 수율을 향상시키기 위한 것이다.
아글리콘(aglycone) 형태의 진세노사이드는 혈류를 통해 더 쉽게 흡수되어 활성형의 화합물로 작용한다고 알려져 있으며(Tawab MA, et al., Drug Metab. Dispos. 31:1065-71, 2003), 장내 미생물은 섭취된 진세노사이드를 더 활성있는 형태로 전환시킬 수 있다(Bae EA, et al., Biol. Pharm. Bull. 23:1481-5, 2000). 따라서, 특정한 미생물을 사용하여 인삼 사포닌을 대사시킴으로써 목적하는 기능에 맞는 특정한 진세노사이드 전환체를 얻을 수 있게 된다.
본 발명에서는 루코노스톡 파라메센테로이데스를 이용하여 인삼 사포닌을 활성형인 형태로 전환시키고자 하였으며, 미생물 배양액을 이용한 실험에서 인삼추출물을 루코노스톡 파라메센테로이데스와 함께 MRS 배지에서 배양한 결과, 진세노사이드의 전환이 일어나지 않았다. 그러나, Rb1 아래에서 종래에 보고되지 않은 스팟이 발견되었다(도 1 참조).
본 발명의 바람직한 실시예에 있어서, 미생물 세포를 파쇄한 후 조 미생물 효소의 형태로 사용한 경우 루코노스톡 파라메센테로이데스는 비교적 약한 진세노사이드 전환 활성을 보였다(도 2 참조). 루코노스톡 파라메센테로이데스의 효소를 2배 넣었을 때에는 Rb1이 F2와 Rh2로 전환되었다(도 3 참조). 진세노사이드의 화합물 K로의 전환능을 알아보기 위해 HPLC 분석을 통해 화합물 K를 정량한 결과, 루코노스톡 파라메센테로이데스는 전혀 활성을 보이지 않았다. 이것은 미생물 배양액에서 살아있는 미생물을 이용하여 진세노사이드를 전환시키는 것보다는 미생물 효소를 이용하여 전환시키는 것이 더 효과적이라는 것을 보여준다.
식품 미생물에 의한 인삼 사포닌인 진세노사이드의 전환 경로를 조사한 결과, 루코노스톡 파라메센테로이데스는 Rb1을 Rd 와 F2를 거쳐 Rh2로 전환시켰다(도 4 참조). 본 발명은 루코노스톡 파라메센테로이데스에 의해 Rb1으로부터 Rh2를 생산한 첫번째 보고이다. 종래에 곰팡이 리조푸스 스톨로니퍼(Rhizopus stolonifer)를 이용하여 Rd와 Rg3를 거쳐 Rb1을 Rh2로 생물전환한 보고가 있었는데(Aling D, et al., Biotechnology Letters, 25:339-44, 2003), 이와 비교해볼 때 루코노스톡 파라메센테로이데스는 Rb1를 가지고 Rd로 전환시켰으며, Rg3이 아닌 F2를 거쳐 Rh2를 생산하였다. Bae 등은 Rb1과 Rb2가 사람의 장내미생물에 의해서는 Rh2로 전환되지 않는다고 보고한 바 있다(Bae EA, et al., Biol. Pharm. Bull. 25:58-63, 2000). Rb1과 Rb2는 위에서 Rg3으로 전환된 후 장에서 Rh2의 형태로 흡수되는데 이것은 박테로이드(Bacteroide) spp., 푸소박테리움(Fusobacterium) spp. 및 비피도박테리움 spp.의 미생물들이 Rg3를 Rh2로 전환시키기 때문에 가능하다고 하였다. 그렇지 않다면, Rb1과 Rb2는 사람의 장에서 화합물 K로 전환되어야 할 것이다. 루코노스톡 파라메센테로이데스는 Rb1의 C-20에 결합되어 있는 젠티바이오스(gentiobiose)의 글루코스(glucose)를 가수분해한 후 C-3에 결합되어 있는 소포로즈(sophorose)의 글루코스를 가수분해하였는데, 이러한 결과는 푸소박테리움 K-60과 박테로이드 spp.가 전환의 첫번째 단계에서 C-3에 결합되어 있는 소포로즈의 글루코스를 가수분해하여 지페노시드(gypenoside) ⅩⅦ을 생산한 것과는 다른 결과이다(Bae EA, et al., Biol. Pharm. Bull. 25:58-63, 2000). 상기 결과는 다양한 식품 미생물의 글루코시다제(glucosidase)가 진세노사이드의 전환경로에서 다른 특이성을 보여준다는 것을 의미한다.
Rb2의 전환의 경우, 루코노스톡 파라메센테로이데스는 다른 공지된 미생물과는 상당히 다른 전환경로를 보였다. Rb2의 C-3 또는 C-20 위치의 안쪽의 결합을 가수분해하여 Ⅱ (compound Y) 와 Rh2를 생산하였다. 1, 2, 24, 48, 72 시간 반응시킨 것을 분석한 결과 중간물질은 생성되지 않았다(도 5 참조).
Rc의 전환경로를 연구한 결과, 루코노스톡 파라메센테로이데스는 특징적으로 처음단계에서 C-3-O-β-D-글루코시드 결합을 가수분해함으로써 product III (화합물 Mc)을 생산하였다(도 6 참조). p-nitrophenyl- α-L-arabinofuranosidase의 α-아라비노퓨라노시다제 활성과 Rc의 α-아라비노퓨라노즈 활성이 일치하였다.
Re의 전환에서는 특이적인 경로를 보여주었는데, p-nitrophenyl- α-L-rhamnosidase의 α-람노시다제 활성을 보이지 않았던 루코노스톡 파라메센테로이데스는 Re의 C-6에 있는 -O-β-D-글루코스(2-1)-α-L-람노스에 대한 α-람노시다제 활성을 보이지 않았다(도 7 참조). 상기 결과는 p-nitrophenyl- α-L-rhamnosidase의 α-람노시다제 활성이 Re의 α-활성과 일치한다는 것을 의미한다.
흥미로운 사실은, 사포닌 골격에 하나의 당을 가지고 있는 진세노사이드는 미생물 효소에 의해 더 이상 분해되지 않는다는 것이다. 예를 들어, 루코노스톡 파라메센테로이데스에 의해 Rb1, Rb2, Rc로부터 생산된 Rh2에 결합되어 있는 하나의 글루코스 및 Re로부터 생산된 product IV (F1)는 더 이상 분해되지 않았다. 따라서, 최종 전환 산물을 결정하는 중요한 단계는 중간기질에 대한 효소의 입체특이적 친화도가 될 수도 있다.
본 발명에서는 다양한 식품 미생물들이 특정한 진세노사이드 산물을 생산한다는 사실로부터 진세노사이드 기질과 특정 미생물 효소를 적절히 조합함으로써 콤원하는 기능에 맞는 생산물을 얻을 수 있는 생물전환 프로세스를 개발할 수 있음을 확인하였다.
이하, 실시예에 의해 본 발명을 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<실시예 1> 미생물 및 효소에 의한 인삼 추출물과 진세노사이드의 전환 효율 측정
<1-1> 재료
표준 진세노사이드 Rb1, Rc, Re는 시그마(Sigma Chemical, St. Louis, MO., USA)에서 구입하였고, 진세노사이드 Rb2, F2, Rg2, Rh1, Rh2는 LKT 래버러토리(Laboratories Inc., St. Paul, Minnesota, USA)에서 구입하였다. 또한, 진세노사이드 Rg1은 와코 퓨어 화학회사(Wako Pure Chemical Industries Ltd., Osaka, Japan)로부터 구입하였고, 진세노사이드 Rd, Rg3는 비티진(BTGin, Chungnam, Korea)에서 구입하였다. 아울러, 진세노사이드 Rf는 한국과학기술연구원(KIST)의 분자신경물리생의학연구소(Molecular Neurophysiology Biomedical Research Center, Seoul, Korea)로부터 입수하였고, 화합물 K는 경희대 약대(Seoul, Korea)로부터 입수한 것을 사용하였다. 6년근 미삼은 서울의 경동시장에서 구입하였다.
<1-2> 미생물의 종류와 생장 조건
실험에는 루코노스톡 속 미생물로서 칡즙에서 분리된 루코노스톡 파라메센테로이데스를 사용하였다(Choi EK, Hydrolysis of Isoflavones in fermented Puerariae Radix extract using various microorganisms. Graduate school, Seoul National University, 2004) (기탁번호 KFCC 11351P). 상기 미생물은 0.05% (w/v) L-시스테인-HCl이 포함된 MRS 배지(Hardy, Santa Maria, CA., USA)(표 1 참조)에서 혐기적인 조건으로 37℃에서 하루동안 배양하였고, 이것을 다시 MRS 배지에 계대배 양한 후 인삼 추출물과 배양하거나 미생물 추출물을 만드는데 사용하였다.
성분 리터당 함량
효모 추출물 쇠고기 추출물 고기 펩톤 아세트산 나트륨 제2인산나트륨 구연산 암모늄 황산 마그네슘 막레익산 활산 망간 덱스트로즈 트윈 80 10.0 g 10.0 g 10.0 g 5.0 g 2.0 g 2.0 g 1.0 ㎎ 0.1 ㎎ 0.05 ㎎ 20.0 g 10.0 ㎎
<1-3> 조 미생물 효소의 제조
배양한 세포를 원심분리로 수거한 후(4℃, 3,000 x g에서 30분) 50 mM 포스페이트 버퍼(pH 6.0)로 두 번 세척하였다. 상기 세포를 50 ㎖의 50 mM 포스페이트 버퍼로 현탁시킨 후 세포 파쇄기(Stansted fluid power, Essex, UK)로 파쇄하여 조 미생물 효소를 제조하였다.
<1-4> 인삼 추출물의 제조
5 g의 인삼분말에 30배의 80% 메탄올을 넣고 80℃에서 1시간 동안 추출한 후 여과하였다. 여과하고 남은 분말에 다시 20배의 80% 메탄올을 넣고 추출한 후 다시 여과하였다. 동일한 방법으로 한번 더 반복 추출한 후 메탄올을 모두 제거하였고(evaporator, Lab. Companion; Jeiotech, Kimpo, Korea), 여기에 10배의 물을 가하여 인삼 추출물을 제조하였다.
<1-5> 미생물의 효소활성 측정
효소활성은 p-니트로페닐(nitrophenyl)-α-D-글루코피라노시드(glucopyranoside), p-니트로페닐-β-D-글루코피라노시드, p-니트로페닐-α-D-갈락토피라노시드(galactopyranoside), p-니트로페닐-β-D-갈락토피라노시드, p-니트로페닐-α-D-만노피라노시드(mannopyranoside), p-니트로페닐-β-D-만노피라노시드, p-니트로페닐-α-L-람노피라노시드(rhamnopyranoside), p-니트로페닐-β-D-글루쿠로나이드(glucuronide), p-니트로페닐-β-D-셀로바이오사이드(cellobioside), p-니트로페닐-α-D-자일로피라노시드(xylopyranoside), p-니트로페닐-β-D-자일로피라노시드, p-니트로페닐-α-L-아라비노퓨라노시드(arabinofuranoside), p-니트로페닐-α-L-아라비노피라노시드(arabinopyranoside), p-니트로페닐-β-L-아라비노피라노시드(Sigma Chemical, St. Louis, MO., USA) 등의 기질을 가수분해하여 p-니트로페놀(nitrophenol, pNP)이 떨어져 나와 반응동안 생성된 양으로 측정하였다. 구체적으로, 80 ㎕의 조 미생물 효소를 20 ㎕의 5 mM 기질에 넣고 37℃에서 30분 동안 반응시켰으며, 100 ㎕의 0.5 M Na2CO3 을 넣어 반응을 종결시켰다. 떨어져 나온 pNP는 450 nm 파장에서 마이크로플레이트 판독기(Bio-RadModel Benchmark, Tokyo, Japan)로 측정하였으며, 효소 활성도는 다음과 같이 표기하였다(++++, 매우 높음; +++, 높음; ++, 보통; +, 낮음; /, 매우 낮음; -, 검출 안됨). 효소 활성의 1 유니트(unit)는 1분에 기질 1 μmol 을 가수분해시키는 효소의 양으로 정의하였다.
그 결과, 루코노스톡 파라메센테로이데스은 β-셀로바이오시다제 활성을 나타냈으며, 또한 다소 약한 α-아라비노퓨라노시다제 및 α-아라비노피라노시다제 활성을 나타냈으나 β-아라비노피라노시다제 활성은 보이지 않았다(표 2).
효소의 활성 루코노스톡 파라메센테로이데스
α-글루코시다제 +++
β-글루코시다제 ++++
α-갈락토시다제 +++
β-갈락토시다제 +
α-만노시다제 -
β-만노시다제 -
α-람노시다제 -
β-글루쿠로니다제 -
β-셀로바이오시다제 ++
α-자일로시다제 -
β-자일로시다제 +++
α-아라비노퓨라노시다제 +
α-아라비노피라노시다제 +
β-아라비노피라노시다제 _
<1-6> 미생물 배양액에서의 인삼 추출물의 전환 측정
7 ㎖의 MRS 배지에 상기 실시예 <1-4>에서 제조한 1 ㎖의 인삼 추출물을 넣은 후 500 ㎕의 세포 현탁액을 접종하고 혐기적으로 37℃에서 72시간동안 배양하였다. 그 후, 1 ㎖의 배지를 200 ㎕의 n-BuOH로 추출하였고, 이것을 TLC (thin layer chromatography)와 HPLC (high performance liquid chromatography)로 분석하였다.
<1-6-1> TLC에 의한 진세노사이드의 분석
TLC는 실리카 겔 60F254 플레이트(Merck, Darmstadt, Germany)에서 하기의 전개용매를 사용하여 수행하였다: CHCl3-MeOH-H2O (63:35:10, v/v, lower phase). 용매를 전개한 후 10% H2SO4를 뿌리고 건조시켰다(110℃, 10분). 진세노사이드와 변환된 진세노사이드는 공지된 진세노사이드 표준물질(standard)을 이용하여 확인 및 분석하였다.
<1-6-2> HPLC에 의한 진세노사이드의 분석
HPLC 급의 아세토니트릴, 이소프로판올 및 물은 J.T. 베이커(Phillipsburg, Lopatcong Township, N.J., USA)에서 구입하였다. HPLC 분석에는 Alltech Model 526 HPLC pump (Alltech Associates, Inc., Waukegan Road, Deerfield, I.L., U.S.A.), 표준-상(normal-phase) 칼럼(Prevail Carbohydrate ES, 5 ㎛, 250 ㎜ X 4.6 ㎜, Alltech), Alltech ELSD (Evaporative Light Scattering Detector) 800, Allchrom™ 및 Allchrom™ Plus 소프트웨어(software)를 사용하였다. 이동상의 유속은 0.8 ㎖/분 으로 하였고, 농도구배(gradient)를 걸어 (A) 아세토니트릴-이소프로판올-물(80:15:5)과 (B) 아세토니트릴-이소프로판올-물(67:12:21) 용매를 하기와 같은 프로그램에 의해 실시하였다: 0-28분, 75% A - 25% B에서 15% A - 85% B의 선형 농도구배; 28-35분, 15% A - 85% B에서 20% A - 80% B의 선형 농도구배; 35-45분, 20% A - 80% B에서 25% A - 75% B의 선형 농도구배; 45-50분, 25% A - 75% B에서 10% A - 90% B의 선형 농도구배; 50-51분, 10% A - 90% B에서 0% A - 100% B의 선형 농도구배; 51-57분, 0% A - 100%B 에서 75% A - 25% B의 선형 농도구배. 반응물의 n-BuOH 분획은 진공(Speed vacuum concentrator 4080 C, Biotron, Inc., Bucheon, Korea) 상태에서 모두 건조시켰고, 메탄올에 녹여 필터(Millex SLLHR04NL, 0.45㎛ PTFE, 4㎜-LH; Millipore, Bedford, Mass., USA)한 후 사용하였다. 이후, ELSD 검출기로 성분을 분석하였으며, 정량적인 데이터는 공지된 진세노사이드 표준물질과 비교함으로써 확인하였다. 모든 실험은 세 번 반복적으로 실시하였다.
그 결과, 인삼추출물로부터 활성형 진세노사이드로의 전환이 일어나지 않았으며, 흥미롭게도 TLC 상에서 Rb1 아래에 새로운 스팟이 발견되었다(도 1).
<1-7> 조 미생물 효소에 의한 인삼 추출물과 진세노사이드의 전환
50 ㎕의 20 mM 아세테이트 버퍼(pH 5.0)에 0.05 ㎎의 진세노사이드가 포함된 반응액과 50 내지 2,000 ㎕의 조 미생물 효소가 포함된 반응액(100 내지 2,050 ㎕)을 37℃에서 24 내지 72시간동안 반응시켰다. 인삼 추출물 50 ㎕와 500 ㎕의 조 미생물 효소의 반응물(550 ㎕)은 37℃에서 72시간동안 반응시켰다. 반응물은 200 ㎕의 n-BuOH로 추출하였고, 상기 실시예 <1-6>과 동일한 방법으로 TLC와 HPLC로 분석하였다.
그 결과, 루코노스톡 파라메센테로이데스( KFCC 11351P)는 약한 진세노사이드 전환 활성을 보였다. Rb1이 Rd 로 전환되었고, Re로부터 Rg2이 생성되었다(도 2). 진세노사이드를 더 많이 전환시키기 위해 2배의 루코노스톡 파라메센테로이데스 ( KFCC 11351P)효소를 첨가한 결과, Rb1이 F2와 Rh2로 전환되었다(도 3).
또한, 미생물이 진세노사이드를 화합물 K로 전환시키는 능력을 알아보기 위해 HPLC 분석을 통해 화합물 K를 정량한 결과, 루코노스톡 파라메센테로이데스 ( KFCC 11351P)는 전혀 활성을 보이지 않았다.
<실시예 2> 식품 미생물에 의한 프로토파낙사디올계 사포닌의 전환 경로 조사
<2-1> 식품 미생물에 의한 Rb1의 전환 경로
다양한 진세노사이드 전환체들을 TLC와 HPLC 분석에 의해 확인하였으며, 이때 가열된 효소에 의해서는 진세노사이드의 전환이 일어나지 않았다. 진세노사이드 Rb1의 경우 루코노스톡 파라메센테로이데스는 Rb1을 Rd 와 F2를 거쳐 Rh2로 전환시켰다. F2의 경우, 루코노스톡 파라메센테로이데스는 C-20 결합을 선택적으로 가수분해하였다. 상기 미생물은 처음단계에서 젠티바이오스(gentibiose) 단위로부터 글루코스를 가수분해하였다(도 4).
<2-2> 식품 미생물에 의한 Rb2의 전환 경로
루코노스톡 파라메센테로이데스는 상당히 다른 Rb2 전환경로를 보였다. Rb2의 C-3 또는 C-20 위치의 안쪽의 결합을 가수분해하여 Ⅱ (compound Y) 와 Rh2를 생산하였다. 1, 2, 24, 48, 72 시간 반응시킨 것을 분석한 결과 중간물질은 생성되지 않았다. 루코노스톡 파라메센테로이데스는 Rb2의 C-3에 있는 하이드록실 그룹에 결합되어 있는 β-D-글루코스(1-2)-β-D-글루코스-O-, C-20-O-β-D-글루코시드 결합, C-3-O-β-D-글루코시드 결합에 대해 β-글루코시다제 활성을 가지고 있었다. 특히, C-3에 있는 하이드록실 그룹에 결합되어 있는 β-D-글루코스(1-2)-β-D-글루코스-O- C-20-O-β-D-글루코시드 결합에는 거의 동시에 작용하였다(도 5).
<2-3> 식품 미생물에 의한 Rc의 전환 경로
루코노스톡 파라메센테로이데스는 두 가지 Rc 전환경로를 보였다. Ⅲ (compound Mc) 혹은 Rd와 F2를 거쳐 Rh2를 생성했다. pNPAf의 α-아라비노퓨라노시다제 활성과 Rc의 α-아라비노퓨라노즈 활성이 일치하였다(도 6).
<실시예 3> 식품 미생물에 의한 프로토파낙사트리올계 사포닌 Re의 전환 경로 조사
루코노스톡 파라메센테로이데스는 아글리콘의 C-20에 있는 하이드록실 그룹에 결합된 β-글루코스를 끊어서 Rg2를 생산하거나, 아글리콘의 C-6에 있는 하이드록실 그룹에 결합된 -O-β-D-글루코스(2-1)-α-L-람노스 결합을 끊어서 Ⅴ를 생산하였다(도 7). Ⅴ는 Rf 수치(0.61)와 Rt (6.24 min)로 볼 때 F1이라고 추정된다.
상기에서 살펴본 바와 같이, 본 발명의 방법은 식용이 가능한 루코노스톡 속의 미생물을 이용하여 인삼의 대사산물인 활성형의 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F2를 효과적으로 생산할 수 있으며, 또한 식품 미생물에 의한 인삼 사포닌의 전환 경로를 밝힘으로써 진세노사이드 기질과 특정 미생물 효소를 적절히 조합하여 원하는 기능에 맞는 생산물을 얻을 수 있다.

Claims (7)

  1. 삭제
  2. 삭제
  3. 삭제
  4. 인삼 추출물을 루코노스톡 파라메센테로이스(Leuconostoc paramesenteroides)(기탁번호 KFCC 11351P)와 반응시킴으로써 화학식 1로 표시되는 인삼의 대사산물인 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F2를 생산하는 방법에 있어서, 상기 미생물은 미생물을 파쇄하여 제조되는 조(crude) 미생물 효소의 형태로 사용되는 것을 특징으로 하는 방법.
    [화학식 1]
    Figure 112007064964415-pat00010
    화합물 R1 R2 R3 Rh2 O-Glc H OH Rg2 OH O-Glc(2-1)Rha OH F2 O-Glc H O-Glc
    상기 표에서 Glc는 Glucose 이며, Rha는 Rhamnose 임
  5. 삭제
  6. 삭제
  7. 인삼 추출물을 기탁번호 KFCC 11351P 인 루코노스톡 파라메센테로이데스(Leuconostoc paramesenteroides) 와 반응시킴으로써 화학식 1로 표시되는 인삼의 대사산물인 진세노사이드 Rh2, Rg2 및 F2를 생산하는 방법에 있어서, 상기 미생물은 미생물을 파쇄하여 제조되는 조(crude) 미생물 효소의 형태로 사용되는 것을 특징으로 하는 방법.
    [화학식 1]
    Figure 112007064964415-pat00012
    화합물 R1 R2 R3 Rh2 O-Glc H OH Rg2 OH O-Glc(2-1)Rha OH F2 O-Glc H O-Glc
    상기 표에서 Glc는 Glucose 이며, Rha는 Rhamnose 임
KR1020050031523A 2005-04-15 2005-04-15 인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법 KR100811295B1 (ko)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020050031523A KR100811295B1 (ko) 2005-04-15 2005-04-15 인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020050031523A KR100811295B1 (ko) 2005-04-15 2005-04-15 인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20060109189A KR20060109189A (ko) 2006-10-19
KR100811295B1 true KR100811295B1 (ko) 2008-03-07

Family

ID=37615587

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020050031523A KR100811295B1 (ko) 2005-04-15 2005-04-15 인삼으로부터 활성형의 진세노사이드를 생산하는 방법

Country Status (1)

Country Link
KR (1) KR100811295B1 (ko)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013114650A1 (ja) * 2012-02-02 2013-08-08 星野科学株式会社 高麗人参薬効成分の製造方法

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020036308A1 (ko) * 2018-08-13 2020-02-20 ㈜아모레퍼시픽 신규 진세노사이드, 및 이를 포함하는 항염 조성물

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20000045694A (ko) * 1998-12-30 2000-07-25 박명규 20(에스)-진세노사이드 알에이취투의 제조방법
KR20020058153A (ko) * 2000-12-29 2002-07-12 박명규 효소적 방법에 의한 진세노사이드 f₂의 제조방법
KR20030094757A (ko) * 2002-06-07 2003-12-18 주식회사 비티진 베타글리코시다제를 이용한 진세노사이드 f₂또는 컴파운드 케이의 제조방법

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20000045694A (ko) * 1998-12-30 2000-07-25 박명규 20(에스)-진세노사이드 알에이취투의 제조방법
KR20020058153A (ko) * 2000-12-29 2002-07-12 박명규 효소적 방법에 의한 진세노사이드 f₂의 제조방법
KR20030094757A (ko) * 2002-06-07 2003-12-18 주식회사 비티진 베타글리코시다제를 이용한 진세노사이드 f₂또는 컴파운드 케이의 제조방법

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Chem. Pharm. Bull. (Tokyo) vol.51(4):404-8

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013114650A1 (ja) * 2012-02-02 2013-08-08 星野科学株式会社 高麗人参薬効成分の製造方法

Also Published As

Publication number Publication date
KR20060109189A (ko) 2006-10-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4953547B2 (ja) ジンセノサイド糖基を加水分解するジンセノサイドグリコシダーゼ及びその使用
Chi et al. Transformation of ginsenosides Rb1 and Re from Panax ginseng by food microorganisms
Chi et al. Transformation of ginsenosides Rb2 and Rc from Panax ginseng by food microorganisms
Park et al. Biotransformation of major ginsenosides in ginsenoside model culture by lactic acid bacteria
CN105648021B (zh) 人参稀有皂苷c-k、f1及四种异构体人参皂苷元的制备方法
Kim et al. Highly regioselective biotransformation of ginsenoside Rb2 into compound Y and compound K by β-glycosidase purified from Armillaria mellea mycelia
Upadhyaya et al. Enzymatic formation of compound-K from ginsenoside Rb1 by enzyme preparation from cultured mycelia of Armillaria mellea
Liu et al. Enzymatic preparation of 20 (S, R)-protopanaxadiol by transformation of 20 (S, R)-Rg3 from black ginseng
CA2223234C (en) A process for the preparation of metabolites of ginseng saponins
Cheng et al. Microbial Conversion of Ginsenoside $ Rb_1 $ to Minor Ginsenoside $ F_2 $ and Gypenoside XVII by Intrasporangium sp. GS603 Isolated from Soil
Kim et al. Enzymatic transformation of ginsenoside Rb1 by Lactobacillus pentosus strain 6105 from kimchi
CN104232498B (zh) 一种纤维化纤维微细菌菌株及其应用
Yu et al. Purification and characterization of gypenoside-α-l-rhamnosidase hydrolyzing gypenoside-5 into ginsenoside Rd
KR100877489B1 (ko) 진세노사이드의 효소전환
Tan et al. Fermentation of protopanaxadiol type ginsenosides (PD) with probiotic Bifidobacterium lactis and Lactobacillus rhamnosus
Zhang et al. Purification and characterization of ginsenoside-α-arabinofuranase hydrolyzing ginsenoside Rc into Rd from the fresh root of Panax ginseng
Duckstein et al. LC–MSn characterization of steroidal saponins in Helleborus niger L. roots and their conversion products during fermentation
Liu et al. Biotransformation pathway and kinetics of the hydrolysis of the 3-O-and 20-O-multi-glucosides of PPD-type ginsenosides by ginsenosidase type I
Wang et al. Enzyme kinetics of ginsenosidase type IV hydrolyzing 6-O-multi-glycosides of protopanaxatriol type ginsenosides
Wang et al. A novel ginsenosidase from an Aspergillus strain hydrolyzing 6-O-multi-glycosides of protopanaxatriol-type ginsenosides, named ginsenosidase type IV
Xiao et al. Dynamic changes of multi-notoginseng stem-leaf ginsenosides in reaction with ginsenosidase type-I
Yu et al. A new ginsenosidase from Aspergillus strain hydrolyzing 20-O-multi-glycoside of PPD ginsenoside
Liu et al. Preparation of minor ginsenosides C-Mx and CK from notoginseng leaf ginsenosides by a special ginsenosidase type-I
Quan et al. Bioconversion of ginsenoside Rd into compound K by Lactobacillus pentosus DC101 isolated from Kimchi
KR20080028266A (ko) 펙티네스 또는 비스코자임을 이용하여 인삼 사포닌으로부터장내 진세노사이드 대사물질인 화합물 케이, 화합물와이, 진세노사이드 에프 1 및 화합물 피지-2를 제조하는방법

Legal Events

Date Code Title Description
A201 Request for examination
E902 Notification of reason for refusal
E902 Notification of reason for refusal
E701 Decision to grant or registration of patent right
GRNT Written decision to grant
FPAY Annual fee payment

Payment date: 20130401

Year of fee payment: 6

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20140212

Year of fee payment: 7

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20150224

Year of fee payment: 8

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20151208

Year of fee payment: 9

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20161229

Year of fee payment: 10

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20181213

Year of fee payment: 12

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20200226

Year of fee payment: 13