RU2046140C1 - Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток - Google Patents

Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток Download PDF

Info

Publication number
RU2046140C1
RU2046140C1 SU5056097A RU2046140C1 RU 2046140 C1 RU2046140 C1 RU 2046140C1 SU 5056097 A SU5056097 A SU 5056097A RU 2046140 C1 RU2046140 C1 RU 2046140C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
activity
protein
sod
complex
enzyme
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Л.И. Слепян
Т.Ф. Рахманина
Д.Г. Александрович
Original Assignee
Акционерное общество закрытого типа - Химико-биологическое объединение при РАН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Акционерное общество закрытого типа - Химико-биологическое объединение при РАН filed Critical Акционерное общество закрытого типа - Химико-биологическое объединение при РАН
Priority to SU5056097 priority Critical patent/RU2046140C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2046140C1 publication Critical patent/RU2046140C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Использование: в биотехнологии, медицине, пищевой промышленности и косметологии. Сущность изобретения: способ выделения активного ферментного комплекса предусматривает водно-спиртовую экстракцию культивируемых растительных клеток женьшеня или полисциола, деалкоголизацию полученной растворимой фракции гель-фильтрацию деалкоголизированного экстракта на сефадексе (Г 50, Г -75), элюцию комплекса фосфатным буфером рН 6,8 9. Полученный ферментный комплекс может найти широкое применение в медицинской практике в качестве противовоспалительного, радиотерапевтического средства, в онкологии, трансплантологии, а также в пищевой промышленности и ветеринарии. 2 табл.

Description

Изобретение относится к биотехнологии. Выделенный ферментный комплекс может найти применение как в медицинской практике, так и в косметологии и пищевой промышленности.
Известно, что в растительном сырье содержатся различные ферменты, в том числе каталаза, пероксидаза и супероксиддисмутаза (СОД). Известны способы выделения СОД [1] пероксидазы [2] Эти способы основаны на гомогенизации сырья, экстракции белков и тонкой очистке на полисахаридных сорбентах.
Эти способы позволяют выделить один индивидуальный ферментный препарат.
Известен способ выделения пероксидазы из растительной ткани полыни, согласно которому листья полыни гомогенизируют в дистиллированной воде в присутствии аскорбата натрия, осаждают белки сульфатом аммония, отделяют осадок фильтрацией и очищают хроматографией на сефадексе G-50 и элюируют фермент [3]
Однако этот способ достаточно сложен и позволяет выделить только пероксидазу.
Цель изобретения простыми приемами выделить из биомассы культуры растительных клеток с высоким выходом стабильный комплексный ферментный препарат с высокой биологической активностью.
Цель достигается тем, что из биомассы культуры растительных клеток путем экстракции, центрифугирования, гель-фильтрации выделяют стабильный комплексный ферментный препарат. Причем экстракцию проводят водно-спиртовым раствором с последующей гель-фильтрацией деалкоголизированного экстракта с отбором наиболее активных фракций, полученные фракции объединяют и лиофилизируют. Лиофилизированный препарат оценивают по биологической активности, содержанию белка и иммунотоксичности в сравнении с коммерческим препаратом "Пероксинорм".
Способ осуществляется следующим образом.
П р и м е р 1. К 500 г биомассы женьшеня (штамм ИФРЖ-1) приливают 500 мл, например, 70% -ного пропилового спирта. Смесь гомогенизируют при 6000 об/мин в течение 3 мин, гомогенизат центрифугируют 30 мин при 3000 об/мин и температуре 20оС. Надосадочную жидкость деалкоголизируют до полного удаления спирта в пробе.
За процессом выделения ферментного комплекса следят по активности первого фермента CОД и концентрации белка. Активность СОД в деалкоголизированном экстракте составила 50 усл.опт.ед. Д460/мл, концентрация белка 4 мг/мл.
20 мл полученного экстракта вносят на колонку (450 x 25 мм) сефадексом Г-75. Элюцию ведут 0,01 М фосфатным буфером рН 8,8. Фракции со средней активностью 18 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрацией белка 0,7 мг/мл объединяют и лиофилизируют.
Потеря антиоксидантной активности фермента составляет около 25% Лиофилизированную пробу анализируют на активность СОД, каталазы и пероксидазы, а также концентрацию белка. Выход белков составляет около 57% от внесенного на колонку. Удельная активность СОД 21,8 усл.опт.ед. Д460/мг белка, каталазы 0,16 мМ H2О2/мин˙мг белка, пероксидазы 0,63 усл.опт.ед. Д435/мг белка. Концентрация белка 0,7 мг/мл.
П р и м е р 2. К 400 г биомассы культуры ткани полисциаса папоротниколистного Polyscias filicifolia Bailey (ВСКККВР N 24) добавляют 700 г 80%-ного, например, изопропилового спирта. Смесь гомогенизируют при 6000 об/мин в течение 3 мин при комнатной температуре. Затем для отделения растворимой фракции центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин при температуре 20оС. Осадок отбрасывают. Проводят диалкоголизацию растворимой фракции до полного отсутствия спирта в пробе.
За процессом выделения комплексного препарата по стадиям судят по активности первого фермента CОД и концентрации белка. Активность СОД в деалкоголизированном экстракте составляет 60 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрация белка 4,5 мг/мл.
18 мл этого экстракта вносят на колонку (450x25 мм) с сефадексом Г-50, элюцию ведут 0,01 М фосфатным буфером при рН 7,0.
Фракции со средней активностью СОД 16,5 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрацией белка 0,6 мг/мл объединяют и лиофилизируют. Потеря активности ферментов составляет около 23% Лиофильно высушенную пробу анализируют на активность трех ферментов: CОД, каталазы, пероксидазы. Удельная активность СОД 18,2 усл. опт.ед. Д460/мг белка, каталазы 0,12 мМ H2О2/мин ˙мг белка, пероксидазы 0,57 усл.опт.ед. Д435/мг белка. Концентрация белка 0,55 мг/мл.
Выход белков суммарно составляет около 58% от внесенного на колонку.
П р и м е р 3. К 500 г биомассы культуры ткани селективного штамма женьшеня 1. Х 13 (ВСКККBР N 26) добавляют 800 г 80%-ного этилового спирта, гомогенизируют при 6000 об/мин в течение 3 мин при комнатной температуре, центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин при температуре 20оC, отбрасывая осадок. Растворимую фракцию деалкоголизируют до полного отсутствия спирта.
За процессом выделения комплексного препарата по стадиям судят по активности первого фермента СОД и концентрации белка. Активность СОД в деалкоголизированном экстракте составляет 80 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрация белка 6 мг/мл.
20 мл этого экстракта вносят на колонку (450x25 мм) с сефадексом Г-75 и элюируют 0,01 М фосфатным буфером рН 7,2. Фракции со средней активностью СОД 20 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрацией белка 0,7 мг/мл объединяют и лиофилизируют.
Потеря активности ферментов составляет около 25% Лиофильно высушенную пробу анализируют на активность трех ферментов комплекса: СОД, каталазы и пероксидазы. Удельная активность СОД 20 усл.опт.ед. Д460/мг белка, каталазы 0,143 мМ Н2О2/мин˙мг белка, пероксидазы 0,6 усл.опт.ед. Д435/мг белка. Концентрация белка 0,57 мг/мл.
Выход белков суммарно составляет около 57% от внесенного на колонку экстракта.
П р и м е р 4. К 500 г шрота от биомассы культивируемых клеток штамма женьшеня ИФРЖ-1 добавляют 500 г 96%-ного, например, этилового спирта, гомогенизируют при 6000 об/мин в течение 3 мин при комнатной температуре. Гомогенизат центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин при температуре 20оС, отбрасывая осадок. Растворимую фракцию деалкоголизируют до полного отсутствия спирта.
За процессом выделения комплексного препарата по стадиям судят по активности первого фермента СОД и концентрации белка. Активность СОД в деалкоголизированном экстракте составляет 30 усл.опт.ед. Д460/мл, концентрация белка 3 мг/мл.
20 мл этого экстракта вносят на колонку с сефадексом Г-50. Размер колонки 450x25 мм. Элюцию ведут 0,01 М фосфатным буфером рН 6,8.
Фракции со средней активностью СОД 7 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрацией белка 0,4 мг/мл объединяют и лиофилизируют. Потеря активности ферментов составляет около 30%
Лиофильно высушенную пробу анализируют на активность трех ферментов комплекса. Удельная активность СОД 10 усл.опт.ед. Д460/мг белка, каталазы 0,1 мМ Н2О2/мин˙мг белка, пероксидазы 0,3 усл.опт.ед. Д435/мг белка. Концентрация белка 0,23 мг/мл.
Выход белков суммарно составляет около 57% от внесенного на колонку экстракта шрота.
П р и м е р 5. К 300 г продукта сырой биомассы штамма женьшеня (ИФРЖ-5) добавляют, например, 80% -ного этилового спирта, гомогенизируют при 6000 об/мин в течение 3 мин при комнатной температуре. Гомогенизат центрифугируют при 3000 об/мин в течение 15 мин при температуре 20оС, отбрасывая осадок. Растворимую фракцию деалкоголизируют до полного отсутствия спирта.
За процессом выделения комплексного препарата по стадиям судят по активности первого ферменте-CОД и концентрации белка. Активность СОД в деалкоголизированном экстракте составляет 68 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрация белка 7,2 мг/мл.
20 мл этого экстракта вносят на колонку (420x25 мм) с сефадексом Г-75, элюируют 0,01 М фосфатным буфером рН 9. Фракции со средней активность СОД 18,5 усл.опт.ед. Д460/мл и концентрацией белка 0,68 мг/мл объединяют и лиофилизурют.
Потеря активности ферментов составляет около 27% Лиофильно высушенную пробу анализируют на активность трех ферментов комплекса CОД, каталазу, пероксидазу.
Удельная активность СОД 20,9 усл.опт.ед. Д460/мг белка, каталазы 0,15 мМ H2О2/мин˙мг белка, пероксидазы 0,58 усл.опт.ед. Д435/мг белка. Концентрация белка 0,59 мг/мл.
Выход белков суммарно составляет около 54% от внесенного на колонку экстракта.
В табл.1 приведено сравнение известного метода выделения СОД и комплексного ферментного препарата. В табл.2 приведены данные СОД, комплексного ферментного препарата "Пероксинорм" и ферментного комплекса, выделенного и культивируемых клеток растений.
Таким образом, предложенная совокупность признаков позволила достаточно просто и быстро выделить комплексный ферментный препарат, который оказался гораздо эффективней и стабильней индивидуального ферментного препарата.
Предложенный способ позволяет получить стабильный ферментный комплекс с определенной биологической активностью, не обладающий иммунотоксичностью, сократить время всех операций на 30% снизить трудоемкость и материалоемкость процесса, повысить в сотни раз выход продукта, который не требует включения других ферментов и может быть использован в качестве субстанции для разработки новых лекарственных форм, косметических препаратов и продуктов лечебного питания.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ ФЕРМЕНТНОГО КОМПЛЕКСА ИЗ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ РАСТИТЕЛЬНЫХ КЛЕТОК, предусматривающий гомогенизацию, отделение балластных белков с получением растворимой фракции ферментов, последующую хроматографию на сефадексе и элюцию, отличающийся тем, что гомогенизации подвергают культивируемые растительные клетки женьшеня или полисциаса после проведения экстракции 70-80% водно-спиртовым раствором, полученную растворимую фракцию деалколизируют, а элюцию комплекса ведут 0,01 М фосфатным буфером pH 6,8 - 9,0, при этом наиболее активные фракции объединяют и лиофильно высушивают.
SU5056097 1992-07-08 1992-07-08 Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток RU2046140C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5056097 RU2046140C1 (ru) 1992-07-08 1992-07-08 Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5056097 RU2046140C1 (ru) 1992-07-08 1992-07-08 Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2046140C1 true RU2046140C1 (ru) 1995-10-20

Family

ID=21610292

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5056097 RU2046140C1 (ru) 1992-07-08 1992-07-08 Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2046140C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1997038095A1 (fr) * 1996-04-03 1997-10-16 Coletica Produit complexe a base de superoxyde dismutase
WO2002053722A1 (fr) * 2000-12-29 2002-07-11 Fengxie Jin Ginsenoside glycosidase hydrolisant le ginsenoside glycosyle et son utilisation

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Авторское свидетельство НРБ N 38722, кл. C 12N 9/04, 1987. *
2. Авторское свидетельство ПНР N 258436, кл. C 12N 1/10, 1989. *
3. Авторское свидетельство СССР N 1108102, кл. C 12N 9/08, 1984. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1997038095A1 (fr) * 1996-04-03 1997-10-16 Coletica Produit complexe a base de superoxyde dismutase
WO2002053722A1 (fr) * 2000-12-29 2002-07-11 Fengxie Jin Ginsenoside glycosidase hydrolisant le ginsenoside glycosyle et son utilisation
US7759101B2 (en) 2000-12-29 2010-07-20 Fengxie Jin Ginsenoside glycosidases hydrolyzing ginsenoside sugar moieties and uses thereof

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Eisen et al. Human skin collagenase. The role of serum alpha-globulins in the control of activity in vivo and in vitro
Galzigna et al. Physical and biochemical changes of thermal mud after maturation
Brew et al. Studies on the biosynthesis of protein by lactating guinea-pig mammary gland: Characteristics of the synthesis of α-lactalbumin and total protein by slices and cell-free systems
KR950014592B1 (ko) 화장료용 유산균제재
Groves et al. Polymorphism in the red protein isolated from milk of individual cows
US4468460A (en) Method of human cell culture
US4349540A (en) Process for preparing vaccines based on antigenic ribosomal fractions
Tavares et al. Schistosoma mansoni: evidence for a role of serum factors in protecting artificially transformed schistosomula against antibody-mediated killing in vitro
EP0101063A2 (de) Neues Polypeptid mit Wirkung auf das Immunsystem, Verfahren zu seiner Isolierung und Reinigung, seine Verwendung und dieses enthaltende Mittel
RU2046140C1 (ru) Способ выделения ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток
Zerner et al. Acetoacetate decarboxylase. Preparation of the enzyme
OSMUNDSVAG et al. Cellulases from Sporocytophaga myxococcoides: Purification and properties
US20210393501A1 (en) Preparation method and application of recombinant mutant collagenase
CN114989248B (zh) 一种具有抗炎抗氧化活性的忧遁草多肽及其制备方法和应用
RU2148636C1 (ru) Способ получения дрожжевого низкомолекулярного экстракта и вещество, получаемое этим способом
RU2230325C2 (ru) Способ приготовления очищенного препарата ботулинического токсина типа а
CA1165707A (en) Method of tissue culture
RU2102478C1 (ru) Способ выделения и очистки ферментного комплекса из культивируемых растительных клеток
Fiddler et al. Enzyme therapy: Differential in vivo retention of bovine hepatic, renal, and splenic β-glucuronidases and evidence for enzyme stabilization by intermolecular exchange
RU2236460C1 (ru) Способ получения препарата коллагеназы
CN111004305B (zh) 姬松茸小肽及其制备方法和应用
Hager et al. [67] The preparation and properties of cytochrome b562 from Escherichia coli
KR100374307B1 (ko) 재조합효모로부터발현된감마인터페론의정제방법
CN108623669B (zh) 一种发酵乳中免疫活性肽及其富集方法和应用
Kilpatrick Datura stramonium lectin: Agglutinating and mitogenic activities of a purified preparation