JP2018519842A - 免疫細胞の有効性および増大を改善する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2015年7月21日出願の米国出願62/195,056号に基づく優先権を主張し、その内容全体を引用により本明細書に包含させる。
本出願は配列表を含み、それはASCII形式で提出されており、その全体を引用することによりここに包含させる。2016年7月18日に作成した該ASCIIコピーは、N2067-7081WO_SL.txtなる名称であり、サイズ2,053,055バイトである。
約10年前まで、インビトロでのT細胞活性化は、主にフィトヘマグルチニン(PHA)およびコンカナバリンA(Con A)のような分裂促進的レクチン類の使用により実施されていた。これらの分裂促進的分子は、細胞表面の糖タンパク質に結合する。T細胞受容体(TCR)複合体特異的刺激を達成するために、CD2、CD3、CD28およびCD45を含む表面分子特異的抗体が使用されている。これらの抗体は、培養におけるT細胞の完全活性化および増殖を起させるための必要な共刺激シグナルを提供した(Frauwirth and Thompson J Clin Invest (2002) Feb;109(3):295-9)。この分野は、Tリンパ球の強い増大(expansion)のためにこれらの抗体をアクセサリー細胞、ビーズまたは固体表面に固定する方向へ進んできた(Trickett and Kwan J Immunol Methods (2003) Apr 1;275(1-2):251-5)。
本発明は、少なくとも一部、免疫細胞(例えば、免疫エフェクター細胞)の増大および/または活性化(例えば、インビトロ増大および/または活性化)を改善する方法に関する。ここに記載するある実施態様は、キメラ抗原受容体(CAR)分子を一過性に発現させることによる免疫細胞の増大および/または活性化を提供する。該CAR発現免疫細胞は、CAR分子のリガンド、例えば、CAR抗原結合ドメインのリガンド(例えば、同族抗原分子または抗イディオタイプ抗体分子)を介して活性化され得る。ある実施態様において、ここに開示する方法は、機能的T細胞受容体の存在を必要とすることなくおよび/または免疫細胞の表現型を実質的に変えることなく、免疫細胞の増大を可能とする。例えば、アネルギー化T細胞、造血幹細胞、NK細胞およびB細胞を含む免疫エフェクター細胞を、ここに記載する方法を使用して増大できる。さらに、免疫細胞は、未分化表現型を実質的に変えることなくおよび/またはT細胞受容体の長期、反復刺激なく、増大させ得る。ある実施態様において、ここに記載する方法は、慣用のTCR刺激増大と比較して、優れた増殖および細胞数収量を可能とする。それ故に、ここに開示する改善された方法および組成物(例えば、修飾免疫細胞集団、反応混合物)は、細胞療法、例えば、免疫療法に重大な利益を提供できる。
ある実施態様において、ここに開示する方法は、免疫細胞、例えば、免疫エフェクター細胞の集団の増大および/または活性化を含む。方法は、免疫細胞の集団を獲得し、該細胞とCAR分子をコードする核酸を、CAR分子の発現(例えば、一過性発現)に適当な条件下接触させ(ここで、CAR分子はリガンド、例えば、同族抗原分子(例えば、組み換え抗原)またはCAR分子の抗原結合ドメインに対する抗イディオタイプ抗体に結合する)、そして免疫細胞の集団を同族抗原分子または抗イディオタイプ抗体存在下で培養することを含む。
ここに記載する方法、調製物および反応混合物によって、例えば、ここに記載する方法により得た、免疫エフェクター細胞を1以上の癌関連抗原を標的とするCAR分子(ここでは“CAR”とも称する)を含むように改変できる。ある実施態様において、腫瘍抗原は、引用により全体を本明細書に包含させる2015年3月13日出願の国際出願WO2015/142675号に記載の腫瘍抗原である。
他の態様において、本発明は、癌を有する対象を処置するまたは抗腫瘍免疫を提供する方法に関する。方法は、免疫エフェクター細胞集団の有効量を対象に投与することを含み、ここで、免疫エフェクター細胞集団は、CARの一過性発現に適当な条件下、免疫エフェクター細胞集団とCARをコードする核酸と接触させ(ここで、CARは同族抗原分子を標的とする)、そして免疫エフェクター細胞の集団をリガンド、例えば、同族抗原分子または抗イディオタイプ抗体分子存在下で培養することにより増大させるかまたは予め増大させられている。ある実施態様において、核酸はRNA、例えば、インビトロ転写RNAである。他の実施態様において、同族抗原分子は癌関連抗原分子である。ある実施態様において、同族抗原分子または抗イディオタイプ抗体分子は基質、例えば、ビーズに結合されている。
ある実施態様において、対象、例えば、免疫細胞を獲得した対象および/または処置する対象はヒト、例えば、癌患者である。
処置および/またはここに記載する調製物および反応混合物の製造(例えば、増大および/または活性化)の方法によって、ある実施態様において、方法は、さらに、T制御性細胞、例えば、CD25+ T細胞を免疫細胞集団から除去し、例えば、それによりCARの発現に適するT制御性枯渇細胞、例えば、CD25+枯渇細胞の集団を提供することをさらに含む。
ある実施態様において、ここに記載する免疫エフェクター細胞調製物(例えば、反応混合物または免疫エフェクター細胞の集団)はここに記載する方法により製造される。
ここに記載する方法は、少なくとも一部、免疫エフェクター細胞表面に発現される(例えば、一過性に発現される)CARの活性化が、免疫エフェクター細胞の集団の増大および/または活性化の有効な手段を提供するとの発見に基づく。ここに記載するとおり同族抗原または抗イディオタイプ抗体による免疫エフェクター細胞の表面のCARの活性化は細胞増大をもたらし得る。ある実施態様において、このような細胞増大は、CARの一過性発現(例えば、インビトロ転写RNAによる)による細胞の遺伝子型または表現型を実質的に変えることなく達成できる。ここに記載する方法は、免疫エフェクター細胞増大について先に使用されていた方法を越える顕著な利点を提供する。
特に断らない限り、ここで使用する全ての技術的および科学的用語は、本発明が属する分野の当業者に共通して理解されているのと同じ意味を有する。
CAR、例えば、ここに記載するCARならびにこのような細胞を含む反応混合物および組成物を用いて改変できる、免疫エフェクター細胞を製造する方法がここに提供される。
ある実施態様において、増大および遺伝子修飾または他の修飾前に、細胞、例えば、免疫エフェクター細胞、例えば、免疫エフェクター細胞の細胞集団の供給源を対象から獲得、例えば、入手できる。ある実施態様において、免疫エフェクター細胞はT細胞を含む。ある実施態様において、T細胞はCD4 T細胞を含む。他の実施態様において、T細胞はCD8 T細胞を含む。他の実施態様において、T細胞は制御性T細胞を含む。さらなる実施態様において、T細胞はナイーブT細胞を含む。ある実施態様において、免疫エフェクター細胞は、造血幹細胞(例えば、臍帯血細胞)を含む。他の実施態様において、免疫エフェクター細胞はB細胞を含む。さらなる実施態様において、免疫エフェクター細胞はNK細胞を含む。他の実施態様において、免疫エフェクター細胞はNKT細胞を含む。他の実施態様において、免疫エフェクター細胞はTh−17細胞を含む。ある実施態様において、免疫エフェクター細胞はT細胞受容体を有しない。他の実施態様において、免疫エフェクター細胞非機能的なまたは実質的に障害されたT細胞受容体を有する。
ここに記載するある実施態様において、免疫エフェクター細胞は、同種免疫エフェクター細胞、例えば、T細胞またはNK細胞であり得る。例えば、細胞は、同種T細胞、例えば、機能的T細胞受容体(TCR)および/またはヒト白血球抗原(HLA)、例えば、HLAクラスIおよび/またはHLAクラスIIの発現を欠く同種T細胞であり得る。
ある実施態様において、TCR発現および/またはHLA発現を、細胞、例えば、T細胞において、TCRおよび/またはHLAおよび/またはここに記載する阻害分子(例えば、PD1、PD−L1、PD−L2、CTLA4、TIM3、CEACAM(例えば、CEACAM−1、CEACAM−3および/またはCEACAM−5)、LAG3、VISTA、BTLA、TIGIT、LAIR1、CD160、2B4、CD80、CD86、B7−H3(CD276)、B7−H4(VTCN1)、HVEM(TNFRSF14またはCD270)、KIR、A2aR、MHCクラスI、MHCクラスII、GAL9、アデノシンおよびTGFベータ)をコードする核酸を標的とするsiRNAまたはshRNAを使用して、阻害できる。
ここで使用する“CRISPR”または“TCRおよび/またはHLAに対するCRISPR”または“TCRおよび/またはHLAを阻害するためのCRISPR”は、一連のクラスター化して規則的な配置の短い回文配列リピートまたはこのような反復のセットを含む系をいう。ここで使用する“Cas”は、CRISPR関連タンパク質をいう。“CRISPR/Cas”系は、細胞、例えば、T細胞においてTCRおよび/またはHLA遺伝子および/またはここに記載する阻害分子(例えば、PD1、PD−L1、PD−L2、CTLA4、TIM3、CEACAM(例えば、CEACAM−1、CEACAM−3および/またはCEACAM−5)、LAG3、VISTA、BTLA、TIGIT、LAIR1、CD160、2B4、CD80、CD86、B7−H3(CD276)、B7−H4(VTCN1)、HVEM(TNFRSF14またはCD270)、KIR、A2aR、MHCクラスI、MHCクラスII、GAL9、アデノシンおよびTGFベータ)を沈黙または変異できるCRISPRおよびCas由来の系をいう。
“TALEN”または“HLAおよび/またはTCRに対するTALEN”または“HLAおよび/またはTCRを阻害するためのTALEN”は、細胞、例えば、T細胞においてHLAおよび/またはTCR遺伝子および/またはここに記載する阻害分子(例えば、PD1、PD−L1、PD−L2、CTLA4、TIM3、CEACAM(例えば、CEACAM−1、CEACAM−3および/またはCEACAM−5)、LAG3、VISTA、BTLA、TIGIT、LAIR1、CD160、2B4、CD80、CD86、B7−H3(CD276)、B7−H4(VTCN1)、HVEM(TNFRSF14またはCD270)、KIR、A2aR、MHCクラスI、MHCクラスII、GAL9、アデノシンおよびTGFベータ)の編集に使用できる、人工ヌクレアーゼである転写アクティベーター様エフェクターヌクレアーゼをいう。
“ZFN”または“亜鉛フィンガーヌクレアーゼ”または“HLAおよび/またはTCRに対するZFN”または“HLAおよび/またはTCRを阻害するためのZFN”は、細胞、例えば、T細胞において、HLAおよび/またはTCR遺伝子および/またはここに記載する阻害分子(例えば、PD1、PD−L1、PD−L2、CTLA4、TIM3、CEACAM(例えば、CEACAM−1、CEACAM−3および/またはCEACAM−5)、LAG3、VISTA、BTLA、TIGIT、LAIR1、CD160、2B4、CD80、CD86、B7−H3(CD276)、B7−H4(VTCN1)、HVEM(TNFRSF14またはCD270)、KIR、A2aR、MHCクラスI、MHCクラスII、GAL9、アデノシンおよびTGFベータ)の編集に使用できる、人工ヌクレアーゼである亜鉛フィンガーヌクレアーゼをいう。
テロメアは、体細胞残留性に有用な役割を有し、その長さはテロメラーゼ(TERT)により維持される。CLL細胞におけるテロメア長は極めて短いかもしれず(Roth et al., “Significantly shorter telomeres in T-cells of patients with ZAP-70+/CD38 chronic lymphocytic leukaemia” British Journal of Haematology, 143, 383-386., August 28 2008)、製造されたCAR発現細胞、例えば、CART19細胞ではさらに短く、患者への養子伝達後、増大する能力を制限し得る。テロメラーゼ発現は、複製的消耗からCAR発現細胞を助け得る。
ここに開示するのは、インビトロ転写RNA CARを産生する方法である。ここに記載する方法は、細胞に直接トランスフェクトできるCARコード化RNA構築物の導入を含み得る。トランスフェクションに使用するmRNAを産生する方法は、特別に設計されたプライマーの鋳型のインビトロ転写(IVT)、続くポリA付加を含み、一般に50〜2000塩基長の、3’および5’非翻訳配列(“UTR”)、5’キャップおよび/または配列内リボソーム進入部位(IRES)、発現する核酸およびポリAテイルを含む構築物を産生する(例えば、配列番号30)。このように産生されたRNAは、種々の細胞で効率的にトランスフェクトされ得る。ある態様において、鋳型は、CARのための配列を含む。RNA CARおよびそれを用いる方法は、例えば、引用により全体を本明細書に包含させる2015年3月13日出願の国際出願WO2015/142675号のパラグラフ553〜570に記載される。
ある実施態様において、本発明は、CARの発現、例えば、一過性発現に適当な条件下、免疫エフェクター細胞の集団とCARをコードする核酸を接触させ(ここで、CARは同族抗原分子を標的とする)、免疫エフェクター細胞の集団をリガンド、例えば、同族抗原分子存在下で培養することによる、免疫エフェクター細胞の集団を増大する方法を提供する。ある実施態様において、核酸はRNA、例えば、インビトロ転写RNAである。他の実施態様において、同族抗原分子は癌関連抗原分子である。
(T細胞事象数/ビーズ事象数)×使用したビーズ数
を使用して決定できる。
本発明は、免疫エフェクター細胞を癌に向かわせる1以上のCARを含むように改変した免疫エフェクター細胞を提供する。これは、癌関連抗原特異的であるCARの抗原結合ドメインにより達成される。ここに記載するCARにより標的とされ得る2群の癌関連抗原(腫瘍抗原)がある。(1)癌細胞表面に発現される癌関連抗原および(2)それ自体は細胞内であるが、抗原のフラグメント(ペプチド)がMHC(主要組織適合性複合体)により癌細胞表面に提示される癌関連抗原。
ある実施態様において、多特異的抗体分子は二特異的抗体分子である。二特異的抗体は、2を超えない抗原に特異性を有する。二特異的抗体分子は、第一エピトープに結合特異性を有する第一免疫グロブリン可変ドメイン配列および第二エピトープに結合特異性を有する第二免疫グロブリン可変ドメイン配列により特徴付けられる。ある実施態様において、第一および第二エピトープは、同じ抗原、例えば、同じタンパク質(または多量体タンパク質のサブユニット)にある。ある実施態様において、第一および第二エピトープは重複する。ある実施態様において、第一および第二エピトープは重複しない。ある実施態様において、第一および第二エピトープは異なる抗原、例えば、異なるタンパク質(または多量体タンパク質の異なるサブユニット)にある。ある実施態様において、二特異的抗体分子は、第一エピトープに結合特異性を有する重鎖可変ドメイン配列および軽鎖可変ドメイン配列ならびに第二エピトープに結合特異性を有する重鎖可変ドメイン配列および軽鎖可変ドメイン配列を含む。ある実施態様において、二特異的抗体分子は、第一エピトープに結合特異性を有する半抗体および第二エピトープに結合特異性を有する半抗体を含む。ある実施態様において、二特異的抗体分子は、第一エピトープに結合特異性を有する半抗体またはそのフラグメントおよび第二エピトープに結合特異性を有する半抗体またはそのフラグメントを含む。ある実施態様において、二特異的抗体分子は、第一エピトープに結合特異性を有するscFvまたはそのフラグメントおよび第二エピトープに結合特異性を有するscFvまたはそのフラグメントを含む。
ある態様において、本発明の抗体および抗体フラグメント(例えば、CD19抗体およびフラグメント)は、キメラTCRを作製するために、T細胞受容体(“TCR”)鎖、例えば、TCRアルファまたはTCRベータ鎖の1以上の定常ドメインに移植できる。理論に縛られないが、キメラTCRは、抗原結合によりTCR複合体を介してシグナル伝達すると考えられる。例えば、ここに開示するscFvを、定常ドメイン、例えば、TCR鎖、例えば、TCRアルファ鎖および/またはTCRベータ鎖の細胞外定常ドメイン、膜貫通ドメインおよび細胞質および細胞ドメインの少なくとも一部に移植できる。他の例として、抗体フラグメント、例えばここに記載するVLドメインを、TCRアルファ鎖の定常ドメインに移植でき、抗体フラグメント、例えばここに記載するVHドメインを、TCRベータ鎖の定常ドメインに移植できる(または、これに替えて、VLドメインをTCRベータ鎖の定常ドメインに移植してよく、VHドメインをTCRアルファ鎖に移植してよい)。他の例として、抗体または抗体フラグメントのCDRを、キメラTCRを作製するために、TCRアルファおよび/またはベータ鎖に移植できる。例えば、ここに開示するLCDRを、TCRアルファ鎖の可変ドメインに移植してよく、ここに開示するHCDRをTCRベータ鎖の可変ドメインに移植してよく、または逆も可能である。このようなキメラTCRは、例えば、当分野で知られる方法により産生できる(例えば、Willemsen RA et al, Gene Therapy 2000; 7: 1369-1377; Zhang T et al, Cancer Gene Ther 2004; 11: 487-496; Aggen et al, Gene Ther. 2012 Apr;19(4):365-74)。
ある実施態様において、抗原結合ドメインは、非抗体足場、例えば、フィブロネクチン、アンキリン、ドメイン抗体、リポカリン、小モジュラー免疫医薬、マキシボディ、プロテインAまたはアフィリンを含む。非抗体足場は、細胞上の標的抗原に結合する能力を有する。ある実施態様において、抗原結合ドメインは、細胞に発現される天然に存在するタンパク質のポリペプチドまたはそのフラグメントである。ある実施態様において、抗原結合ドメインは非抗体足場を含む。得られたポリペプチドが、標的細胞の標的抗原に特異的に結合する少なくとも一つの結合領域を含む限り、多種多様な非抗体足場を使用できる。
ある態様において、複数の免疫エフェクター細胞、例えば、T制御性枯渇細胞の集団は、抗原結合ドメインとも称する標的特異的結合要素を含むCARをコードする核酸を含む。結合要素の選択は、標的細胞の表面を規定するリガンドのタイプおよび数による。例えば、抗原結合ドメインは、標的細胞上の特定の疾患状態と関係する細胞表面マーカーとして作用するリガンドを認識するように選択され得る。それ故に、ここに記載するCARにおける抗原結合ドメインのリガンドとして作用し得る細胞表面マーカーの例は、ウイルス、細菌および寄生虫感染症、自己免疫性疾患および癌細胞と関連するものを含む。
引用により本明細書に包含させるWO2016/028896号の表2、6および9によるCAR分子(例えば、CAR123−1〜CAR123−4およびhzCAR123−1〜hzCAR123−32のいずれか)または抗原結合ドメインを含み得る。WO2016/028896号に明記のCD123 CAR分子および抗原結合ドメインのアミノ酸およびコード化ヌクレオチド配列(例えば、KabatまたはChothiaによる1、2、3VH CDRおよび1、2、3VL CDRを含む)を、ここに添付する配列表に提供する。配列表に提供される前記配列と同一および実質的に同一のアミノおよびヌクレオチド配列を本明細書に特に包含させる。
、5または全)を含む。ある実施態様において、CAR分子または抗原結合ドメインは、配列番号570(例えば、配列番号570のアミノ酸残基26〜35、50〜66、99〜110、165〜176、192〜198および/または231〜240)の重および/または軽CDR配列の1以上(例えば、2、3、4、5または全)を含む。ある実施態様において、CAR分子または抗原結合ドメインは、配列番号571(例えば、配列番号571のアミノ酸残基47〜56、71〜87、120〜131、186〜197、213〜219および/または252〜261)の重および/または軽CDR配列の1以上(例えば、2、3、4、5または全)を含む。ある実施態様において、CAR分子または抗原結合ドメインは、配列番号572(例えば、配列番号572のアミノ酸残基26〜35、50〜66、99〜111、166〜176、192〜198および/または231〜239)の重および/または軽CDR配列の1以上(例えば、2、3、4、5または全)を含む。ある実施態様において、CAR分子または抗原結合ドメインは、配列番号573(例えば、配列番号573のアミノ酸残基47〜56、71〜87、120〜132、187〜197、213〜219および/または252〜260)の重および/または軽CDR配列の1以上(例えば、2、3、4、5または全)を含む。ある実施態様において、CAR分子または抗原結合ドメインは、配列番号574(例えば、配列番号574のアミノ酸残基26〜35、50〜66、99〜108、158〜167、183〜190および/または222〜230)の重および/または軽CDR配列の1以上(例えば、2、3、4、5または全)を含む。ある実施態様において、CAR分子または抗原結合ドメインは、配列番号575(例えば、配列番号575のアミノ酸残基47〜56、71〜86、120〜129、179〜188、204〜210および/または243〜251)の重および/または軽CDR配列の1以上(例えば、2、3、4、5または全)を含む。
膜貫通ドメインに関して、種々の実施態様において、CARは、CARの細胞外ドメインに結合した膜貫通ドメインを含むように、設計できる。膜貫通ドメインは、膜貫通領域に隣接した1以上のさらなるアミノ酸、例えば、膜貫通が由来したタンパク質の細胞外領域と関連する1以上のアミノ酸(例えば、細胞外領域の1、2、3、4、5、6、7、8、9、10から最大15アミノ酸)および/または膜貫通タンパク質が由来したタンパク質の細胞内領域と関連する1以上のアミノ酸(例えば、細胞内領域の1、2、3、4、5、6、7、8、9、10から最大15アミノ酸)を含み得る。ある態様において、膜貫通ドメインは、CARの他のドメインの一つと関連するものである。ある場合には、膜貫通ドメインは、アミノ酸置換により選択または修飾して、例えば、受容体複合体の他のメンバーとの相互作用を最小化するため、このようなドメインの同じまたは異なる表面膜タンパク質の膜貫通ドメインへの結合を避けることができる。ある態様において、膜貫通ドメインは、CAR発現細胞の細胞表面の他のCARとホモ二量体化できる。異なる態様において、膜貫通ドメインのアミノ酸配列を、同じCARTに存在する天然結合パートナーの結合ドメインとの相互作用を最小化するように修飾または置換してよい。
CARの細胞質ドメインまたは領域は、細胞内シグナル伝達ドメインを含む。細胞内シグナル伝達ドメインは、一般にCARが導入されている免疫細胞の正常エフェクター機能の少なくとも一つの活性化を担う。
CARの細胞内シグナル伝達ドメインは、CD3−ゼータシグナル伝達ドメインをそれ自体で含んでよくまたは本発明のCARの設定において有用な任意の他の所望の細胞内シグナル伝達ドメインと組み合わせてよい。例えば、CARの細胞内シグナル伝達ドメインは、CD3ゼータ鎖部分および共刺激シグナル伝達ドメインを含み得る。共刺激シグナル伝達ドメインは、共刺激分子の細胞内ドメインを含むCARの部分をいう。ある実施態様において、細胞内ドメインを、CD3−ゼータのシグナル伝達ドメインおよびCD28のシグナル伝達ドメインを含むように設計する。ある態様において、細胞内ドメインを、CD3−ゼータのシグナル伝達ドメインおよびICOSのシグナル伝達ドメインを含むように設計する。
抗CD19結合ドメインの配列を上の表1に提供する。完全CAR構築物は、表1に記載する抗原結合ドメインのいずれかと下に提供する1以上のさらなるCAR要素を使用して産生できる。
MALPVTALLLPLALLLHAARP
・ リーダー(核酸配列)(配列番号12)
ATGGCCCTGCCTGTGACAGCCCTGCTGCTGCCTCTGGCTCTGCTGCTGCATGCCGCTAGACCC
TTTPAPRPPTPAPTIASQPLSLRPEACRPAAGGAVHTRGLDFACD
・ CD8ヒンジ(核酸配列)(配列番号13)
ACCACGACGCCAGCGCCGCGACCACCAACACCGGCGCCCACCATCGCGTCGCAGCCCCTGTCCCTGCGCCCAGAGGCGTGCCGGCCAGCGGCGGGGGGCGCAGTGCACACGAGGGGGCTGGACTTCGCCTGTGAT
IYIWAPLAGTCGVLLLSLVITLYC
・ 膜貫通(核酸配列)(配列番号17)
ATCTACATCTGGGCGCCCTTGGCCGGGACTTGTGGGGTCCTTCTCCTGTCACTGGTTATCACCCTTTACTGC
KRGRKKLLYIFKQPFMRPVQTTQEEDGCSCRFPEEEEGGCEL
・ 4−1BB細胞内ドメイン(核酸配列)(配列番号18)
AAACGGGGCAGAAAGAAACTCCTGTATATATTCAAACAACCATTTATGAGACCAGTACAAACTACTCAAGAGGAAGATGGCTGTAGCTGCCGATTTCCAGAAGAAGAAGAAGGAGGATGTGAACTG
RVKFSRSADAPAYKQGQNQLYNELNLGRREEYDVLDKRRGRDPEMGGKPRRKNPQEGLYNELQKDKMAEAYSEIGMKGERRRGKGHDGLYQGLSTATKDTYDALHMQALPPR
・ CD3ゼータ(核酸配列)(配列番号20)
AGAGTGAAGTTCAGCAGGAGCGCAGACGCCCCCGCGTACAAGCAGGGCCAGAACCAGCTCTATAACGAGCTCAATCTAGGACGAAGAGAGGAGTACGATGTTTTGGACAAGAGACGTGGCCGGGACCCTGAGATGGGGGGAAAGCCGAGAAGGAAGAACCCTCAGGAAGGCCTGTACAATGAACTGCAGAAAGATAAGATGGCGGAGGCCTACAGTGAGATTGGGATGAAAGGCGAGCGCCGGAGGGGCAAGGGGCACGATGGCCTTTACCAGGGTCTCAGTACAGCCACCAAGGACACCTACGACGCCCTTCACATGCAGGCCCTGCCCCCTCGC
RVKFSRSADAPAYQQGQNQLYNELNLGRREEYDVLDKRRGRDPEMGGKPRRKNPQEGLYNELQKDKMAEAYSEIGMKGERRRGKGHDGLYQGLSTATKDTYDALHMQALPPR
・ CD3ゼータ(核酸配列;NCBI Reference Sequence NM_000734.3);(配列番号21)
AGAGTGAAGTTCAGCAGGAGCGCAGACGCCCCCGCGTACCAGCAGGGCCAG
AACCAGCTCTATAACGAGCTCAATCTAGGACGAAGAGAGGAGTACGATGTTT
TGGACAAGAGACGTGGCCGGGACCCTGAGATGGGGGGAAAGCCGAGAAGGA
AGAACCCTCAGGAAGGCCTGTACAATGAACTGCAGAAAGATAAGATGGCGG
AGGCCTACAGTGAGATTGGGATGAAAGGCGAGCGCCGGAGGGGCAAGGGGC
ACGATGGCCTTTACCAGGGTCTCAGTACAGCCACCAAGGACACCTACGACGC
CCTTCACATGCAGGCCCTGCCCCCTCGC
ESKYGPPCPPCPAPEFLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSQEDPEVQFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQFNSTYRVVSVLTVLHQDWLNG主要KCKVSNKGLPSSIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSQEEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSRLTVDKSRWQEGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSLGKM
GAGAGCAAGTACGGCCCTCCCTGCCCCCCTTGCCCTGCCCCCGAGTTCCTGGGCGGACCCAGCGTGTTCCTGTTCCCCCCCAAGCCCAAGGACACCCTGATGATCAGCCGGACCCCCGAGGTGACCTGTGTGGTGGTGGACGTGTCCCAGGAGGACCCCGAGGTCCAGTTCAACTGGTACGTGGACGGCGTGGAGGTGCACAACGCCAAGACCAAGCCCCGGGAGGAGCAGTTCAATAGCACCTACCGGGTGGTGTCCGTGCTGACCGTGCTGCACCAGGACTGGCTGAACGGCAAGGAATACAAGTGTAAGGTGTCCAACAAGGGCCTGCCCAGCAGCATCGAGAAAACCATCAGCAAGGCCAAGGGCCAGCCTCGGGAGCCCCAGGTGTACACCCTGCCCCCTAGCCAAGAGGAGATGACCAAGAACCAGGTGTCCCTGACCTGCCTGGTGAAGGGCTTCTACCCCAGCGACATCGCCGTGGAGTGGGAGAGCAACGGCCAGCCCGAGAACAACTACAAGACCACCCCCCCTGTGCTGGACAGCGACGGCAGCTTCTTCCTGTACAGCCGGCTGACCGTGGACAAGAGCCGGTGGCAGGAGGGCAACGTCTTTAGCTGCTCCGTGATGCACGAGGCCCTGCACAACCACTACACCCAGAAGAGCCTGAGCCTGTCCCTGGGCAAGATG
CGTGAGGCTCCGGTGCCCGTCAGTGGGCAGAGCGCACATCGCCCACAGTCCCCGAGAAGTTGGGGGGAGGGGTCGGCAATTGAACCGGTGCCTAGAGAAGGTGGCGCGGGGTAAACTGGGAAAGTGATGTCGTGTACTGGCTCCGCCTTTTTCCCGAGGGTGGGGGAGAACCGTATATAAGTGCAGTAGTCGCCGTGAACGTTCTTTTTCGCAACGGGTTTGCCGCCAGAACACAGGTAAGTGCCGTGTGTGGTTCCCGCGGGCCTGGCCTCTTTACGGGTTATGGCCCTTGCGTGCCTTGAATTACTTCCACCTGGCTGCAGTACGTGATTCTTGATCCCGAGCTTCGGGTTGGAAGTGGGTGGGAGAGTTCGAGGCCTTGCGCTTAAGGAGCCCCTTCGCCTCGTGCTTGAGTTGAGGCCTGGCCTGGGCGCTGGGGCCGCCGCGTGCGAATCTGGTGGCACCTTCGCGCCTGTCTCGCTGCTTTCGATAAGTCTCTAGCCATTTAAAATTTTTGATGACCTGCTGCGACGCTTTTTTTCTGGCAAGATAGTCTTGTAAATGCGGGCCAAGATCTGCACACTGGTATTTCGGTTTTTGGGGCCGCGGGCGGCGACGGGGCCCGTGCGTCCCAGCGCACATGTTCGGCGAGGCGGGGCCTGCGAGCGCGGCCACCGAGAATCGGACGGGGGTAGTCTCAAGCTGGCCGGCCTGCTCTGGTGCCTGGCCTCGCGCCGCCGTGTATCGCCCCGCCCTGGGCGGCAAGGCTGGCCCGGTCGGCACCAGTTGCGTGAGCGGAAAGATGGCCGCTTCCCGGCCCTGCTGCAGGGAGCTCAAAATGGAGGACGCGGCGCTCGGGAGAGCGGGCGGGTGAGTCACCCACACAAAGGAAAAGGGCCTTTCCGTCCTCAGCCGTCGCTTCATGTGACTCCACGGAGTACCGGGCGCCGTCCAGGCACCTCGATTAGTTCTCGAGCTTTTGGAGTACGTCGTCTTTAGGTTGGGGGGAGGGGTTTTATGCGATGGAGTTTCCCCACACTGAGTGGGTGGAGACTGAAGTTAGGCCAGCTTGGCACTTGATGTAATTCTCCTTGGAATTTGCCCTTTTTGAGTTTGGATCTTGGTTCATTCTCAAGCCTCAGACAGTGGTTCAAAGTTTTTTTCTTCCATTTCAGGTGTCGTGA(配列番号11)。
GGGGS
Gly/Ser(配列番号26):この配列は1〜6“Gly Gly Gly Gly Ser”反復単位を含み得る
GGGGSGGGGS GGGGSGGGGS GGGGSGGGGS
Gly/Ser(配列番号27)
GGGGSGGGGS GGGGSGGGGS
Gly/Ser(配列番号28)
GGGGSGGGGS GGGGS
Gly/Ser(配列番号29)
GGGS
ポリA(配列番号31)、ポリT 1−100
ポリA(配列番号32)、ポリT 1−5000
ポリA(配列番号33)、ポリA 1−5000
ポリA(配列番号34)、ポリA 1−400
ポリA(配列番号35)、ポリA 1−2000
GGGSGGGSGG GSGGGSGGGS GGGSGGGSGG GSGGGSGGGS
第二CARの共発現
ある態様において、ここに記載するCAR発現細胞は、さらに第二CAR、例えば、同じ標的(例えば、CD19)または異なる標的(例えば、CD19以外の標的、例えば、ここに記載する標的)に対する異なる抗原結合ドメインを含む、例えば、第二CARを含み得る。ある実施態様において、CAR発現細胞は第一抗原を標的とし、共刺激シグナル伝達ドメインを有するが、一次シグナル伝達ドメインを有しない細胞内シグナル伝達ドメインを含む第一CARおよび第二の、異なる、抗原を標的とし、一次シグナル伝達ドメインを有するが、共刺激シグナル伝達ドメインを有しない細胞内シグナル伝達ドメインを含む第二CARを含む。共刺激シグナル伝達ドメイン、例えば、4−1BB、CD28、CD27、OX−40またはICOSの第一CARおよび一次シグナル伝達ドメイン、例えば、CD3ゼータの第二CARへの配置は、両標的が発現される細胞にCAR活性を制限できる。ある実施態様において、CAR発現細胞は、抗原結合ドメイン、膜貫通ドメインおよび共刺激ドメインを含む第一CARおよび他の抗原を標的とし、抗原結合ドメイン、膜貫通ドメインおよび一次シグナル伝達ドメインを含む第二CARを含む。他の実施態様において、CAR発現細胞は、抗原結合ドメイン、膜貫通ドメインおよび一次シグナル伝達ドメインを含む第一CARおよび他の抗原を標的とし、該抗原に対する抗原結合ドメイン、膜貫通ドメインおよび共刺激シグナル伝達ドメインを含む第二CARを含む。
他の態様において、ここに記載するCAR発現細胞は、さらに他の薬剤、例えば、CAR発現細胞の活性または適応度を増強する薬剤を発現できる。
Malpvtalllplalllhaarppgwfldspdrpwnpptfspallvvtegdnatftcsfsntsesfvlnwyrmspsnqtdklaafpedrsqpgqdcrfrvtqlpngrdfhmsvvrarrndsgtylcgaislapkaqikeslraelrvterraevptahpspsprpagqfqtlvtttpaprpptpaptiasqplslrpeacrpaaggavhtrgldfacdiyiwaplagtcgvlllslvitlyckrgrkkllyifkqpfmrpvqttqeedgcscrfpeeeeggcelrvkfsrsadapaykqgqnqlynelnlgrreeydvldkrrgrdpemggkprrknpqeglynelqkdkmaeayseigmkgerrrgkghdglyqglstatkdtydalhmqalppr(配列番号105)。
pgwfldspdrpwnpptfspallvvtegdnatftcsfsntsesfvlnwyrmspsnqtdklaafpedrsqpgqdcrfrvtqlpngrdfhmsvvrarrndsgtylcgaislapkaqikeslraelrvterraevptahpspsprpagqfqtlvtttpaprpptpaptiasqplslrpeacrpaaggavhtrgldfacdiyiwaplagtcgvlllslvitlyckrgrkkllyifkqpfmrpvqttqeedgcscrfpeeeeggcelrvkfsrsadapaykqgqnqlynelnlgrreeydvldkrrgrdpemggkprrknpqeglynelqkdkmaeayseigmkgerrrgkghdglyqglstatkdtydalhmqalppr(配列番号106)。
atggccctccctgtcactgccctgcttctccccctcgcactcctgctccacgccgctagaccacccggatggtttctggactctccggatcgcccgtggaatcccccaaccttctcaccggcactcttggttgtgactgagggcgataatgcgaccttcacgtgctcgttctccaacacctccgaatcattcgtgctgaactggtaccgcatgagcccgtcaaaccagaccgacaagctcgccgcgtttccggaagatcggtcgcaaccgggacaggattgtcggttccgcgtgactcaactgccgaatggcagagacttccacatgagcgtggtccgcgctaggcgaaacgactccgggacctacctgtgcggagccatctcgctggcgcctaaggcccaaatcaaagagagcttgagggccgaactgagagtgaccgagcgcagagctgaggtgccaactgcacatccatccccatcgcctcggcctgcggggcagtttcagaccctggtcacgaccactccggcgccgcgcccaccgactccggccccaactatcgcgagccagcccctgtcgctgaggccggaagcatgccgccctgccgccggaggtgctgtgcatacccggggattggacttcgcatgcgacatctacatttgggctcctctcgccggaacttgtggcgtgctccttctgtccctggtcatcaccctgtactgcaagcggggtcggaaaaagcttctgtacattttcaagcagcccttcatgaggcccgtgcaaaccacccaggaggaggacggttgctcctgccggttccccgaagaggaagaaggaggttgcgagctgcgcgtgaagttctcccggagcgccgacgcccccgcctataagcagggccagaaccagctgtacaacgaactgaacctgggacggcgggaagagtacgatgtgctggacaagcggcgcggccgggaccccgaaatgggcgggaagcctagaagaaagaaccctcaggaaggcctgtataacgagctgcagaaggacaagatggccgaggcctactccgaaattgggatgaagggagagcggcggaggggaaaggggcacgacggcctgtaccaaggactgtccaccgccaccaaggacacatacgatgccctgcacatgcaggcccttccccctcgc(配列番号103)。
ある実施態様において、ここに記載するCAR発現細胞、例えば、CD19 CAR発現細胞は、さらにケモカイン受容体分子を含む。T細胞におけるケモカイン受容体CCR2bまたはCXCR2のトランスジェニック発現は、黒色腫および神経芽腫(を含むCCL2またはCXCL1分泌固形腫瘍への輸送を増強する(Craddock et al., J Immunother. 2010 Oct; 33(8):780-8およびKershaw et al., Hum Gene Ther. 2002 Nov 1; 13(16):1971-80)。それ故に、理論に縛られることを望まないが、腫瘍、例えば、固形腫瘍により発現されるケモカインを認識するCAR発現細胞で発現されるケモカイン受容体は、腫瘍へのCAR発現細胞のホーミングを改善し、腫瘍へのCAR発現細胞の浸潤を促進し、CAR発現細胞の抗腫瘍有効性を増強することができると考えられる。ケモカイン受容体分子は、天然に存在するまたは組み換えケモカイン受容体またはそのケモカイン結合フラグメントを含み得る。ここに記載するCAR発現細胞(例えば、CAR−Tx)での発現に適するケモカイン受容体分子は、CXCケモカイン受容体(例えば、CXCR1、CXCR2、CXCR3、CXCR4、CXCR5、CXCR6またはCXCR7)、CCケモカイン受容体(例えば、CCR1、CCR2、CCR3、CCR4、CCR5、CCR6、CCR7、CCR8、CCR9、CCR10またはCCR11)、CX3Cケモカイン受容体(例えば、CX3CR1)、XCケモカイン受容体(例えば、XCR1)またはそのケモカイン結合フラグメントを含む。ある実施態様において、ここに記載するCARと共に発現されるケモカイン受容体分子は、腫瘍により分泌されるケモカインに基づき選択する。ある実施態様において、ここに記載するCAR発現細胞は、さらに、CCR2b受容体またはCXCR2受容体を含む、例えば、発現する。ある実施態様において、ここに記載するCARおよびケモカイン受容体分子は同じベクターにあるかまたは2種の異なるベクターにある。ある実施態様において、ここに記載するCARおよびケモカイン受容体分子が同じベクターにあるとき、CARおよびケモカイン受容体分子は各々2種の異なるプロモーターの制御下にあるかまたは同じプロモーターの制御下にある。
本発明はまた、ここに記載する1以上のCAR構築物をコードする核酸分子を含む、例えば、ここに記載する方法により製造された、免疫エフェクター細胞も提供する。ある面において、核酸分子はメッセンジャーRNAトランスクリプトとして提供される。ある面において、核酸分子はDNA構築物として提供される。
ACCCCTCTCTCCAGCCACTAAGCCAGTTGCTCCCTCGGCTGACGGCTGCACGCGAGGCCTCCGAACGTCTTACGCCTTGTGGCGCGCCCGTCCTTGTCCCGGGTGTGATGGCGGGGTGTGGGGCGGAGGGCGTGGCGGGGAAGGGCCGGCGACGAGAGCCGCGCGGGACGACTCGTCGGCGATAACCGGTGTCGGGTAGCGCCAGCCGCGCGACGGTAACGAGGGACCGCGACAGGCAGACGCTCCCATGATCACTCTGCACGCCGAAGGCAAATAGTGCAGGCCGTGCGGCGCTTGGCGTTCCTTGGAAGGGCTGAATCCCCGCCTCGTCCTTCGCAGCGGCCCCCCGGGTGTTCCCATCGCCGCTTCTAGGCCCACTGCGACGCTTGCCTGCACTTCTTACACGCTCTGGGTCCCAGCCGCGGCGACGCAAAGGGCCTTGGTGCGGGTCTCGTCGGCGCAGGGACGCGTTTGGGTCCCGACGGAACCTTTTCCGCGTTGGGGTTGGGGCACCATAAGCT(配列番号982)。
PGK100:
ACCCCTCTCTCCAGCCACTAAGCCAGTTGCTCCCTCGGCTGACGGCTGCACGCGAGGCCTCCGAACGTCTTACGCCTTGTGGCGCGCCCGTCCTTGTCCCGGGTGTGATGGCGGGGTG(配列番号983)。
PGK200:
ACCCCTCTCTCCAGCCACTAAGCCAGTTGCTCCCTCGGCTGACGGCTGCACGCGAGGCCTCCGAACGTCTTACGCCTTGTGGCGCGCCCGTCCTTGTCCCGGGTGTGATGGCGGGGTGTGGGGCGGAGGGCGTGGCGGGGAAGGGCCGGCGACGAGAGCCGCGCGGGACGACTCGTCGGCGATAACCGGTGTCGGGTAGCGCCAGCCGCGCGACGGTAACG(配列番号984)。
PGK300:
ACCCCTCTCTCCAGCCACTAAGCCAGTTGCTCCCTCGGCTGACGGCTGCACGCGAGGCCTCCGAACGTCTTACGCCTTGTGGCGCGCCCGTCCTTGTCCCGGGTGTGATGGCGGGGTGTGGGGCGGAGGGCGTGGCGGGGAAGGGCCGGCGACGAGAGCCGCGCGGGACGACTCGTCGGCGATAACCGGTGTCGGGTAGCGCCAGCCGCGCGACGGTAACGAGGGACCGCGACAGGCAGACGCTCCCATGATCACTCTGCACGCCGAAGGCAAATAGTGCAGGCCGTGCGGCGCTTGGCGTTCCTTGGAAGGGCTGAATCCCCG(配列番号985)。
PGK400:
ACCCCTCTCTCCAGCCACTAAGCCAGTTGCTCCCTCGGCTGACGGCTGCACGCGAGGCCTCCGAACGTCTTACGCCTTGTGGCGCGCCCGTCCTTGTCCCGGGTGTGATGGCGGGGTGTGGGGCGGAGGGCGTGGCGGGGAAGGGCCGGCGACGAGAGCCGCGCGGGACGACTCGTCGGCGATAACCGGTGTCGGGTAGCGCCAGCCGCGCGACGGTAACGAGGGACCGCGACAGGCAGACGCTCCCATGATCACTCTGCACGCCGAAGGCAAATAGTGCAGGCCGTGCGGCGCTTGGCGTTCCTTGGAAGGGCTGAATCCCCGCCTCGTCCTTCGCAGCGGCCCCCCGGGTGTTCCCATCGCCGCTTCTAGGCCCACTGCGACGCTTGCCTGCACTTCTTACACGCTCTGGGTCCCAGCCG(配列番号986)。
CAR活性が制御され得る多くの方法がある。例えば、二量体化ドメインに融合したカスパーゼ(例えば、Di Stasa et al., N Engl. J. Med. 2011 Nov. 3; 365(18):1673-1683参照)を使用する、例えば、誘導性アポトーシスを、本発明のCAR治療における安全性スイッチとして使用できる。ある実施態様において、本発明のCARを発現する細胞(例えば、T細胞またはNK細胞)はさらに誘導性アポトーシススイッチを含み、ここで、ヒトカスパーゼ(例えば、カスパーゼ9)または修飾バージョンが、条件的二量体化を可能にするヒトFKBタンパク質の修飾に融合する。ラパログ(例えば、AP1903、AP20187)のような小分子存在下、誘導性カスパーゼ(例えば、カスパーゼ9)が活性化され、本発明のCARを発現する細胞(例えば、T細胞またはNK細胞)の迅速なアポトーシスおよび死を生じる。カスパーゼベースの誘導性アポトーシススイッチ(またはこのようなスイッチ1以上の局態様)の例は、例えば、US2004040047号;US20110286980号;US20140255360号;WO1997031899号;WO2014151960号;WO2014164348号;WO2014197638号;WO2014197638号に記載されており;これら全てを引用により本明細書に包含させる。
他の実施態様において、CAR活性が制御され得る制御可能CAR(RCAR)が、CAR治療の安全性および有効性の最適化のために望まれることがある。RCARは、1組の、一般に最も単純な実施態様においては2ポリペプチドを含むことができ、ここで、ここに記載する標準的CARの要素、例えば、抗原結合ドメインおよび細胞内シグナル伝達ドメインが、別々のポリペプチドまたはメンバーに配置される。ある実施態様において、1組のポリペプチドは、二量体化分子存在下、互いにポリペプチドに結合し、例えば、抗原結合ドメインを細胞内シグナル伝達ドメインに連結させ得る、二量体化スイッチを含む。ある実施態様において、本発明のCARは、例えば、引用により本明細書に包含させるWO2014127261号に記載の二量体化スイッチを含む。
二量体化スイッチは非共有でも共有でもよい。非共有二量体化スイッチにおいて、二量体化分子は、スイッチドメイン間の非共有相互作用を促進する。共有二量体化スイッチにおいて、二量体化分子は、スイッチドメイン間の共有相互作用を促進する。
D V P D Y A S L G G P S S P K K K R K V S R G V Q V E T I S P G D G R T F P K R G Q T C V V H Y T G M L E D G K K F D S S R D R N K P F K F M L G K Q E V I R G W E E G V A Q M S V G Q R A K L T I S P D Y A Y G A T G H P G I I P P H A T L V F D V E L L K L E T S Y(配列番号131)
V Q V E T I S P G D G R T F P K R G Q T C V V H Y T G M L E D G K K F D S S R D R N K P F K F M L G K Q E V I R G W E E G V A Q M S V G Q R A K L T I S P D Y A Y G A T G H P G I I P P H A T L V F D V E L L K L E T S(配列番号132)
ILWHEMWHEG LEEASRLYFG ERNVKGMFEV LEPLHAMMER GPQTLKETSF NQAYGRDLME AQEWCRKYMK SGNVKDLTQA WDLYYHVFRR ISK(配列番号133)
スイッチドメイン間の結合は、二量体化分子により促進される。二量体化分子存在下、スイッチドメイン間の相互作用または結合は、第一スイッチドメインに結合、例えば融合しているポリペプチドと、第二スイッチドメインに結合、例えば融合しているポリペプチドの間のシグナル伝達を可能にする。非律速レベルの二量体化分子存在下、シグナル伝達は、例えば、ここに記載する系で測定して、1.1倍、1.2倍、1.3倍、1.4倍、1.5倍、1.6倍、1.7倍、1.8倍、1.9倍、2倍、5倍、10倍、50倍、100倍増加する。
ある実施態様において、ここに記載するCAR分子は、ナチュラルキラー細胞受容体(NKR)の1以上の要素を含み、それによりNKR−CARを形成する。NKR要素は、次のナチュラルキラー細胞受容体の何れかからの膜貫通ドメイン、ヒンジドメインまたは細胞質ドメインであり得る:キラー細胞免疫グロブリン様受容体(KIR)、例えば、KIR2DL1、KIR2DL2/L3、KIR2DL4、KIR2DL5A、KIR2DL5B、KIR2DS1、KIR2DS2、KIR2DS3、KIR2DS4、DIR2DS5、KIR3DL1/S1、KIR3DL2、KIR3DL3、KIR2DP1およびKIR3DP1;天然細胞毒性受容体(NCR)、例えば、NKp30、NKp44、NKp46;免疫細胞受容体のシグナル伝達リンパ球活性化分子(SLAM)ファミリー、例えば、CD48、CD229、2B4、CD84、NTB−A、CRACC、BLAMEおよびCD2F−10;Fc受容体(FcR)、例えば、CD16およびCD64;およびLy49受容体、例えば、LY49A、LY49C。ここに記載するNKR−CAR分子は、アダプター分子または細胞内シグナル伝達ドメイン、例えば、DAP12と相互作用し得る。NKR要素を含むCAR分子の例示的配置および配列は、内容を引用により本明細書に包含させる国際公開WO2014/145252号に記載されている。
ある実施態様において、CAR発現細胞はスプリットCARを含む。スプリットCAR手法は、公報WO2014/055442号およびWO2014/055657号により詳細に記載される。簡潔にいうと、スプリットCAR系は、第一抗原結合ドメインおよび共刺激性ドメイン(例えば、41BB)を有する第一CARを発現する細胞を含み、該細胞はまた第二抗原結合ドメインおよび細胞内シグナル伝達ドメイン(例えば、CD3ゼータ)を有する第二CARも発現する。細胞が第一抗原に遭遇したとき、共刺激性ドメインは活性化され、細胞が増殖する。細胞が第二抗原に遭遇したとき、細胞内シグナル伝達ドメインは活性化され、細胞−死滅活性が開始される。それゆえに、CAR発現細胞は、両抗原の存在下でのみ完全活性化される。
ここに開示する方法とは別にまたはこれと組み合わせて、CAR発現細胞の検出および/または定量化(例えば、インビトロまたはインビボ(例えば、臨床的モニタリング));免疫細胞増大および/または活性化;および/またはCARリガンドの使用を含むCAR特異的選択の1以上のための方法および組成物が開示される。ある例示的実施態様において、CARリガンドは、CAR分子に結合する、例えば、CARの細胞外抗原結合ドメインに結合する抗体(例えば、抗原結合ドメインに結合する抗体、例えば、抗イディオタイプ抗体;または細胞外結合ドメインの定常領域に結合する抗体)である。他の実施態様において、CARリガンドは、CAR抗原分子(例えば、ここに記載するCAR抗原分子)である。
CARリガンド(所望により、標識CARリガンド、例えば、タグ、ビーズ、放射性または蛍光標識を含むCARリガンド)を提供し;
CAR発現細胞を獲得し(例えば、製造サンプルまたは臨床的サンプルのようなCAR発現細胞含有サンプルを獲得し);
結合が生じる条件下でCAR発現細胞とCARリガンドを接触させ、それにより存在するCAR発現細胞のレベル(例えば、量)を検出する
ことを含む。CAR発現細胞とCARリガンドの結合は、FACS、ELISAなどのような標準技術を使用して検出できる。
CAR発現細胞(例えば、第一CAR発現細胞または一過性に発現するCAR細胞)を提供し;
該CAR発現細胞とCARリガンド、例えば、ここに記載するCARリガンド)を、免疫細胞増大および/または増殖が生じる条件下で接触させ、それにより活性化および/または増大された細胞集団を産生する
ことを含む。
1)
抗原結合ドメイン、例えば、ここに記載する抗原結合ドメイン;
膜貫通ドメイン;および
細胞内シグナル伝達ドメイン、例えば、第一共刺激ドメイン、例えば、ICOSドメイン
を含むCARを含むCD4+ T細胞(CARCD4+);および
2)
抗原結合ドメイン、例えば、ここに記載する抗原結合ドメイン;
膜貫通ドメイン;および
細胞内シグナル伝達ドメイン、例えば、第二共刺激ドメイン、例えば、4−1BBドメイン、CD28ドメインまたはICOSドメイン以外の他の共刺激ドメイン
を含むCARを含むCD8+ T細胞(CARCD8+);
を投与することを含み、ここで、CARCD4+とCARCD8+は互いに異なる。
3)抗原結合ドメイン、例えば、ここに記載する抗原結合ドメイン;
膜貫通ドメイン;および
細胞内シグナル伝達ドメインを含む
CARを含む第二CD8+T細胞(第二CARCD8+)の投与を含み、ここで、第二CARCD8+は、CARCD8+に存在しない細胞内シグナル伝達ドメイン、例えば、共刺激性シグナル伝達ドメインを含み、所望により、ICOSシグナル伝達ドメインを含まない。
ある態様において、非ウイルス方法を使用して、ここに記載するCARをコードする核酸を細胞または組織または対象に送達できる。
ある実施態様において、1以上のここに開示するCAR発現細胞を、バイオポリマースキャフォールド、例えば、バイオポリマーインプラントを経て対象に投与または送達できる。バイオポリマースキャフォールドは、ここに記載するCAR発現細胞の送達、増大および/または分散を支持または増強できる。バイオポリマースキャフォールドは、天然に存在するまたは合成であり得る生体適合性(例えば、実質的に炎症性または免疫応答を誘発しない)および/または生分解性ポリマーを含む。例示的バイオポリマーは、例えば、引用により全体を本明細書に包含させる2015年3月13日出願の国際出願WO2015/142675号のパラグラフ1004〜1006に記載される。
ある態様において、本発明は、ここに記載するように産生したCAR発現細胞を、所望により1以上の他の治療と組み合わせて投与することを含む、患者を処置する方法を提供する。ある態様において、本発明は、ここに記載するCAR発現細胞を、所望により1以上の他の治療と組み合わせて含む反応混合物を投与することを含む、患者を処置する方法を提供する。ある態様において、本発明は、ここに記載するCAR発現細胞を含む反応混合物を輸送または受容する方法を提供する。ある態様において、本発明は、ここに記載するように産生したCAR発現細胞を受容し、さらに該CAR発現細胞を、患者に、所望により1以上の他の治療と組み合わせて投与することを含む、患者を処置する方法を提供する。ある態様において、本発明は、ここに記載するCAR発現細胞を産生し、さらに該CAR発現細胞を、患者に、所望により1以上の他の治療と組み合わせて投与することを含む、患者を処置する方法を提供する。他の治療は、例えば、化学療法のような癌治療であり得る。
1.0〜2.5×108生存可能CAR発現細胞の用量を投与することを含み、ここで、対象は少なくとも50kgの体重を有する。
ある実施態様において、用量を連日投与し、例えば、第一用量を1日目に投与し、第二用量を2日目に投与し、そして任意の第三用量(投与するならば)を3日目に投与する。
ある実施態様において、第四、第五または第六用量またはそれ以上の用量が投与される。
a)第一用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数は、第二用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数の1/3を超えない;
b)第一用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数は、投与されるCAR発現、生存可能細胞の総数の1/Xを超えず、ここで、Xは2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40または50である;
c)第一用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数は、1×107、2×107、3×107、4×107、5×107、6×107、7×107、8×107、9×107、1×108、2×108、3×108、4×108または5×108 CAR発現、生存可能細胞を超えず、第二用量は第一用量より多い;
d)第二用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数は第三用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数の1/2を超えない;
e)第二用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数は投与されるCAR発現、生存可能細胞の総数の1/Yを超えず、ここで、Yは2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40または50である;
f)第二用量で投与されるCAR発現、生存可能細胞数は1×107、2×107、3×107、4×107、5×107、6×107、7×107、8×107、9×107、1×108、2×108、3×108、4×108または5×108 CAR発現、生存可能細胞を超えず、第三用量は第二用量より多い;
h)第一、第二および選択された用法により第三用量の投与の用量および時間は、対象が4、3、2または1を超えないレベルでCRSを経験するように選択する。
ある態様において、本発明は、ここに記載する腫瘍抗原の発現と関連する疾患を処置する方法を提供する。
他の実施態様において、本発明は、ALLの処置法を提供する。
他の実施態様において、本発明は、B細胞ALLの処置法を提供する。
血液癌状態は、血液、骨髄およびリンパ系に影響する白血病および悪性リンパ増殖性状態のようなある種の癌である。
CD19を発現する癌細胞の集団の増殖を阻害するまたは低減する方法を低児湯する。ある態様において、本発明は、CD19発現癌細胞集団と、CD19発現細胞に結合するここに記載するCD19 CAR発現細胞(例えば、T細胞、NK細胞)を接触させることを含む、CD19を発現する癌細胞の集団の増殖を阻害するまたは低減する方法を提供する。ある態様において、抗CD19 CAR発現細胞(例えば、T細胞、NK細胞)は、細胞および/または癌細胞の含量、数、量またはパーセンテージを、陰性対照と比較して、骨髄白血病または他のCD19発現と関連する癌細胞を有する対象またはそのための動物モデルにおいて、少なくとも25%、少なくとも30%、少なくとも40%、少なくとも50%、少なくとも65%、少なくとも75%、少なくとも85%、少なくとも95%または少なくとも99%減少させる。ある態様において、対象はヒトである。
上に、およびここに記載するあらゆる癌治療は、ここに記載する癌の症状の処置および/または軽減のための1以上のさらなる治療剤と組み合わせて投与できることは認められる。医薬組成物を、1以上の他のさらなる治療剤または治療剤と同時に、前にまたは後に投与できる。ある実施態様において、ここに記載するCAR発現細胞を、他の既知薬剤および治療と組み合わせて使用し得る。ここで使用する“組み合わせて”投与するは2(またはそれ以上)の異なる処置を、対象が障害に苦しんでいる過程の間に対象に送達することを意味し、例えば、2以上の処置を、対象が障害と診断された後にかつ障害が治癒または撲滅される前にまたは処置が他の理由で中止される前に送達される。ある実施態様において、投与期間の重複があるように、一方の処置の送達は、第二の処置の送達開始時にまだ行われている。これは、ここでは“同時の”または“一緒の送達”ということがある。他の実施態様において、他の実施態様において、一方の処置の送達は、他の処置の送達が始まる前に終わる。何れかの場合のある実施態様において、処置は、組み合わせ投与のためにより有効である。例えば、第二処置剤はより有効である、例えば、等しい効果が少ない第二処置剤で見られるまたは第二処置剤が、第二処置剤を第一処置剤非存在下で投与したときに見られるよりも大きな程度で症状を軽減するまたは第一処置剤で同様な状況が見られる。ある実施態様において、送達、障害と関係する症状または他のパラメータの減少が、他方の処置剤の非存在下で一方の処置剤の送達で観察されるより大きい。2処置の効果は一部相加的、完全相加的または相加的より大きいものであり得る。送達は、送達した第一処置の効果が、第二剤の送達時になお検出可能であるようなものであり得る。
(a)配列番号4のVHCDR1アミノ酸配列、配列番号5のVHCDR2アミノ酸配列および配列番号3のVHCDR3アミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH);および配列番号13のVLCDR1アミノ酸配列、配列番号14のVLCDR2アミノ酸配列および配列番号33のVLCDR3アミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)(各々US2015/0210769号の表1に記載);
(b)配列番号1から選択されるVHCDR1アミノ酸配列;配列番号2のVHCDR2アミノ酸配列;および配列番号3のVHCDR3アミノ酸配列を含むVH;および配列番号10のVLCDR1アミノ酸配列、配列番号11のVLCDR2アミノ酸配列および配列番号32のVLCDR3アミノ酸配列を含むVL(各々US2015/0210769号の表1に記載);
(c)配列番号224のVHCDR1アミノ酸配列、配列番号5のVHCDR2アミノ酸配列および配列番号3のVHCDR3アミノ酸配列を含むVH;および配列番号13のVLCDR1アミノ酸配列、配列番号14のVLCDR2アミノ酸配列および配列番号33のVLCDR3アミノ酸配列を含むVL(各々US2015/0210769号の表1に記載);または
(d)配列番号224のVHCDR1アミノ酸配列;配列番号2のVHCDR2アミノ酸配列;および配列番号3のVHCDR3アミノ酸配列を含むVH;および配列番号10のVLCDR1アミノ酸配列、配列番号11のVLCDR2アミノ酸配列および配列番号32のVLCDR3アミノ酸配列を含むVL(各々US2015/0210769号の表1に記載)
を含む。
(i)配列番号1から選択されるVHCDR1アミノ酸配列、配列番号4または配列番号195;配列番号2のVHCDR2アミノ酸配列;および配列番号3のVHCDR3アミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH)(各々USSN14/881,888号の表1に記載);および
(ii)配列番号9のVLCDR1アミノ酸配列、配列番号10のVLCDR2アミノ酸配列および配列番号11のVLCDR3アミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)(各々US−2016/0108123号の表1に記載)
を含む。
(i)配列番号1から選択されるVHCDR1アミノ酸配列、配列番号4または配列番号195;配列番号5のVHCDR2アミノ酸配列および配列番号3のVHCDR3アミノ酸配列を含む重鎖可変領域(VH)(各々US−2016/0108123号の表1に記載);および
(ii)配列番号12のVLCDR1アミノ酸配列、配列番号13のVLCDR2アミノ酸配列および配列番号14のVLCDR3アミノ酸配列を含む軽鎖可変領域(VL)(各々US−2016/0108123号の表1に記載)
を含む。
ROR1阻害剤および組み合わせ治療、例えば、ここに記載するCAR発現細胞とROR1阻害剤の組み合わせもここで提供される。ROR1阻害剤は、例えば、小分子、抗体またはそのフラグメント(例えば、単特異的または二特異的抗体またはそのフラグメント);ROR1に結合する組み換えタンパク質、例えば、融合タンパク質;阻害性核酸;またはROR1 CARを発現する細胞、例えば、ROR1 CAR発現T細胞またはNK細胞である。ある実施態様において、ROR1阻害剤は抗ROR1発現細胞、例えば、ROR1 CARTまたはROR1発現NK細胞である。ROR1阻害剤の例を下にさらに詳述する。
ここに提供されるのは、CD20阻害剤および組み合わせ治療、例えば、ここに記載するCAR発現細胞とCD20阻害剤の組み合わせである。CD20阻害剤は、例えば、小分子、抗体またはそのフラグメント(例えば、単特異的または二特異的抗体またはそのフラグメント);CD20に結合する組み換えタンパク質、例えば、融合タンパク質;阻害性核酸;またはCD20 CARを発現する細胞、例えば、CD20 CAR発現T細胞またはNK細胞であり得る。ある実施態様において、CD20阻害剤は抗CD20 CAR発現細胞、例えば、CD20 CARTまたはCD20 CAR発現NK細胞である。CD20阻害剤の例を下にさらに詳述する。
ここに提供されるのは、CD19阻害剤および組み合わせ治療、例えば、1以上のCD19阻害剤である。ある実施態様において、ここに記載する方法および組成物(例えば、CD19 CAR発現細胞)は、さらに第二CD19阻害剤を含む。例えば、ここに記載するCD19 CAR発現細胞を第二CD19阻害剤と組み合わせて投与する。CD19阻害剤は、CD19 CAR発現細胞、例えば、CD19 CART細胞、CD19 CAR発現NK細胞または抗CD19抗体(例えば、抗CD19単または二特異的抗体)またはそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。
ここに提供されるのは、CD123阻害剤および組み合わせ治療である。CD123阻害剤は、小分子、組み換えタンパク質、抗CD123 CAR発現細胞、例えばCARTおよび抗CD123抗体(例えば、抗CD123単または二特異的抗体)およびそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。ある実施態様において、抗CD123阻害剤は、ここに記載するB細胞悪性腫瘍の処置に使用できる。ある実施態様において、CD123阻害剤を、CD19阻害剤、例えば、CD19 CAR発現細胞、例えば、ここに記載するCAR発現細胞、例えば、マウス、ヒトまたはヒト化である抗体結合ドメインを含むCARを発現する細胞と組み合わせて投与する。
またここに提供されるのは、CD10阻害剤および組み合わせ治療である。CD10阻害剤は、小分子、組み換えタンパク質、抗CD10 CAR発現細胞、例えばCARTおよび抗CD10抗体(例えば、抗CD10単または二特異的抗体)およびそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。ある実施態様において、抗CD10阻害剤は、ここに記載するB細胞悪性腫瘍の処置に使用できる。ある実施態様において、CD10阻害剤を、CD19阻害剤、例えば、CD19 CAR発現細胞、例えば、ここに記載するCAR発現細胞、例えば、マウス、ヒトまたはヒト化である抗体結合ドメインを含むCARを発現する細胞とともに投与する。
またここに提供されるのは、CD34阻害剤および組み合わせ治療である。CD34阻害剤は、小分子、組み換えタンパク質、抗CD34 CAR発現細胞、例えばCARTおよび抗CD34抗体(例えば、抗CD34単または二特異的抗体)およびそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。ある実施態様において、抗CD34阻害剤は、ここに記載するB細胞悪性腫瘍の処置に使用できる。ある実施態様において、CD34阻害剤は、CD19阻害剤、例えば、CD19 CAR発現細胞、例えば、ここに記載するCAR発現細胞、例えば、マウス、ヒトまたはヒト化である抗体結合ドメインを含むCARを発現する細胞と組み合わせて投与される。
Fms様チロシンキナーゼ3(FLT−3)は、表面抗原分類135(CD135)、受容体型チロシン−タンパク質キナーゼFLT3または胎児肝臓キナーゼ−2(Flk2)とも称され、受容体チロシンキナーゼである。FLT−3は、リガンドである、サイトカインFlt3リガンド(FLT3L)のためのサイトカイン受容体である。FLT−3は、多くの造血前駆細胞表面に発現され、リンパ球発達に重要である。FLT3遺伝子は、白血病、例えば、急性骨髄白血病(AML)で一般に変異している。
ここに提供されるのは、CD79b阻害剤および組み合わせ治療である。CD79b阻害剤は、小分子、組み換えタンパク質、抗CD79b CAR発現細胞、例えばCARTおよび抗CD79b抗体(例えば、抗CD79b単または二特異的抗体)およびそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。ある実施態様において、抗CD79b阻害剤は、ここに記載するB細胞悪性腫瘍の処置に使用できる。ある実施態様において、CD79b阻害剤を、CD19阻害剤、例えば、CD19 CAR発現細胞、例えば、ここに記載するCAR発現細胞、例えば、マウス、ヒトまたはヒト化である抗体結合ドメインを含むCARを発現する細胞と組み合わせて投与する。
ここに提供されるのは、CD79a阻害剤および組み合わせ治療である。CD79a阻害剤は、小分子、組み換えタンパク質、抗CD79a CAR発現細胞、例えばCARTおよび抗CD79a抗体(例えば、抗CD79a単または二特異的抗体)およびそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。ある実施態様において、抗CD79a阻害剤は、ここに記載するB細胞悪性腫瘍の処置に使用できる。ある実施態様において、CD79a阻害剤を、CD19阻害剤、例えば、CD19 CAR発現細胞、例えば、ここに記載するCAR発現細胞、例えば、マウス、ヒトまたはヒト化である抗体結合ドメインを含むCARを発現する細胞と組み合わせて投与する。
ここに提供されるのは、CD179b阻害剤および組み合わせ治療である。CD179b阻害剤は、小分子、組み換えタンパク質、抗CD179b CAR発現細胞、例えばCARTおよび抗CD179b抗体(例えば、抗CD179b単または二特異的抗体)およびそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。
ここに提供されるのは、CD22阻害剤および組み合わせ治療である。CD22阻害剤は、小分子、組み換えタンパク質、抗CD22 CAR発現細胞、例えばCARTおよび抗CD22抗体(例えば、抗CD22単または二特異的抗体)およびそのフラグメントを含むが、これらに限定されない。ある実施態様において、抗CD22阻害剤は、ここに記載するB細胞悪性腫瘍の処置に使用できる。ある実施態様において、CD22阻害剤を、CD19阻害剤、例えば、CD19 CAR発現細胞、例えば、ここに記載するCAR発現細胞、例えば、マウス、ヒトまたはヒト化である抗体結合ドメインを含むCARを発現する細胞と組み合わせて投与する。
選択 from 抗CD19/CD22二特異的リガンド配向毒素(例えば、ジフテリア毒素(DT)の最初の389アミノ酸、DT 390に連結した、ヒトCD19およびCD22を認識する2scFvリガンド、例えば、DT2219ARL);抗CD22モノクローナル抗体−MMAEコンジュゲート(例えば、DCDT2980S);シュードモナス外毒素−Aのフラグメントに融合した抗CD22抗体RFB4のscFv(例えば、BL22);脱グリコシル化リシンA鎖コンジュゲート抗CD19/抗CD22(例えば、Combotox);ヒト化抗CD22モノクローナル抗体(例えば、エピラツズマブ);またはシュードモナス外毒素−Aの38KDaフラグメントに共有結合性に融合した抗CD22抗体のFv部分(例えば、モキセツモマブシュードトクス)から選択される。
ある実施態様において、ここに記載するCAR発現細胞を、キナーゼ阻害剤、例えば、CDK4阻害剤、BTK阻害剤、MNK阻害剤、mTOR阻害剤、ITK阻害剤などと組み合わせて処置レジメンで使用し得る。ある実施態様において、対象は完全レスポンダーであり、対象は、例えば、ここに記載する用量または投与スケジュールで、ここに記載するCAR発現細胞とキナーゼ阻害剤、例えば、ここに記載するキナーゼ阻害剤の組み合わせの投与を含む処置レジメンで投与される。ある実施態様において、対象は、部分的レスポンダーまたは非レスポンダーであり、対象は、例えば、ここに記載する用量または投与スケジュールで、ここに記載するCAR発現細胞とキナーゼ阻害剤、例えば、ここに記載するキナーゼ阻害剤の組み合わせの投与を含む処置レジメンで投与される。
ある実施態様において、CAR分子、例えば、ここに記載するCAR分子を発現する細胞を、低い、免疫増強用量のmTOR阻害剤と組み合わせて投与する。
ここで使用する用語“mTOR阻害剤”は、細胞におけるmTORキナーゼを阻害する、化合物またはそのリガンドもしくは薬学的に許容される塩をいう。ある実施態様において、mTOR阻害剤はアロステリック阻害剤である。ある実施態様において、mTOR阻害剤は触媒阻害剤である。
サイトカインは、T細胞増大、分化、生存およびホメオスタシスに関する重要な機能を有する。臨床使用のための最も重要なサイトカインファミリーの一つは、共通γ鎖(γc)ファミリーサイトカインであり、これは、インターロイキン(IL)−2、IL−4、IL−7、IL−9、IL−15およびIL−21を含む(Liao et al., 2013, Immunity, 38:13-25)。IL−2は、癌の免疫治療剤として広く研究されている。IL−2の補充は、臨床試験における抗CD19 CAR−T細胞の抗腫瘍能を増強する(Xu et al., 2013, Lymphoma, 54:255-60)。しかしながら、IL−2の投与は、副作用および調節性T細胞を増大する傾向および誘発細胞死(AICD)の活性化効果により制限される(Malek et al., 2010, Immunity, 33:153-65;およびLenardo et al., 1999, Annu Rev Immunol, 17:221-53)。IL−7、IL−15およびIL−21は、各々、養子免疫治療の有効性を増強でき、IL−2と比較して、毒性が低いようである(Alves et al., 2007, Immunol Lett, 108:113-20)。上記サイトカインの役割に関する広範な前臨床および臨床研究にもかかわらず、CAR−T細胞養子治療に対する種々の外来γcサイトカインの役割の多数値比較研究はない。
次の物質および方法を、本実施例に記載する実験で使用した。
pELNS−C4−27z CARベクターを、先に記載のように構築した(原稿審査中)。要約すれば、tggtggagtctgggggaggc-3’(配列番号3)および5’-atagctagcacctaggacggtcagcttggtccc-3’(配列番号5)(BamHIおよびNheIを下線で示す)をプライマーとするC4フラグメントのPCR増幅用鋳型として、抗FRαC4/scFvを含むpHEN2プラスミドを使用した。PCR生産物および第三世代自己不活性化レンチウイルス発現ベクターpELNSをBamHIおよびNheIで消化した。消化PCR生産物を、次いで導入遺伝子発現が伸長因子1α(EF−1α)プロモーターにより駆動される、CD27−CD3z T細胞シグナル伝達ドメイン含有pELNSベクターに挿入した。
高力価複製欠損レンチウイルスを、先に記載のようなExpress In(Open Biosystems)の使用により、4プラスミド(pVSV−G、pRSV.REV、pMDLg/p.RREおよびpELNS−C4−27z CAR)を伴うヒト胚性腎臓細胞株293T(293T)細胞の遺伝子導入により産生した。上清を遺伝子導入24時間および48時間後に採取し、超遠心分離により濃縮した。ウイルス力価を、限外希釈方法の使用により、レンチウイルスのSupT1細胞への形質導入効率に基づき決定した。
末梢血リンパ球を、インフォームドコンセント後University Institutional Review Board at the University of Pennsylvaniaにより承認されたプロトコール下、健常ドナーから得た。一次T細胞を、陰性選択後、Human Immunology Coreから購入した。T細胞を完全培地(10%FBS、100U/mL ペニシリン、100μg/mL硫酸ストレプトマイシン添加RPMI 1640)培養し、抗CD3および抗CD28 mAbs被覆ビーズ(Invitrogen)で、指示に従い1:1比で刺激した。活性化24時間後、細胞を、レンチウイルスで5のMOIで形質導入した。記載するサイトカインを、10ng/mLの最終濃度で翌日から形質導入T細胞に添加した。サイトカインを3日毎に取り替えた。
レンチウイルスパッケージングに使用した293T細胞およびレンチウイルス力価測定に使用したSupT1細胞をATCCから得た。確立された卵巣癌細胞株SKOV3(FRα+)およびC30(FRα−)を、サイトカイン分泌および細胞毒性アッセイのための標的細胞として使用した。生物発光アッセイのために、SKOV3を、ホタルルシフェラーゼ(fLuc)を発現するようにレンチウイルスで形質導入した。
フローサイトメトリーを、BD FACSCantoで実施した。抗ヒトCD45(HI30)、CD3(HIT3a)、CD8(HIT8a)、CD45RA(HI100)、CD62L(DREG−56)、CCR7(G043H7)、IL−7Rα(A019D5)、CD27(M−T271)、CD28(CD28.2)、CD95(DX2)、TNF−α(MAb11)、IFN−γ(4S.B3)、IL−2(MQ1−17H12)、パーフォリン(B−D48)、グランザイム−B(GB11)をBiolegendから得た。ビオチン−SPコンジュゲートウサギ抗ヒトIgG(H+L)をJackson Immunoresearchから購入し、APCコンジュゲートストレプトアビジンをBiolegandから購入した。抗ヒトBcl−xl(7B2.5)をSouhernBiotechから購入した。アポトーシスキットおよびTruCountチューブをBD Bioscienceから購入した。末梢血T細胞計数のために、血液を後眼窩採血により得て、ヒトCD45、CD3、CD4およびCD8 T細胞の存在について染色した。ヒトCD45+ゲート化、CD3+、CD4+およびCD8+サブセットを、製造業者の指示に従いTruCountチューブで定量した。
雌非肥満糖尿病性/重症複合型免疫不全/γ鎖−/−(NSG)マウス8〜12週齢を、Stem Cell and Xenograft Core of the Abramson Cancer Center, University of Pennsylvaniaから得た。マウスに、3×106 fLuc+SKOV3細胞を脇腹に0日目に皮下接種した。群あたり4匹または5匹のマウスを無作為化し、処置した。腫瘍が触診可能となったとき、ヒト一次T細胞を、先に記載のように活性化および形質導入した。T細胞を、約2週間、IL−2(5ng/mL)の存在下増大させた。腫瘍負荷が約250〜300mm3となったとき、マウスに5×106 CAR−T細胞または100μl食塩水を静脈内注射し、次いで連日7日間IL−2、IL−7、IL−15、IL−18、IL−21またはリン酸緩衝液(PBS)5μgの腹腔内注射を受けた。腫瘍寸法をカリパスで測定し、腫瘍容積を次の式により計算した:腫瘍容積=(長さ×幅2)/2。レシピエントマウス血液における導入T細胞の数および表現型を、後眼窩採血後フローサイトメトリーで決定した。腫瘍容積が2000mm3を超えたときマウスを屠殺し、腫瘍をさらなる分析のためにすぐに摘出した。
統計的分析をPrism 5(GraphPad software)およびIBM SPSS Statistics 20.0 softwareで実施した。データを、明記しない限り平均±SEMで示した。対応サンプルt検定またはノンパラメトリックウィルコクソン順位検定を2群の比較に使用し、反復測定ANOVAまたはフリードマン検定を、3以上の群の統計的有意差の検定に試験した。P値が0.05未満であるとき、測定値を統計的有意とした。
1. 抗FRαC4 CARの構築および発現
pELNS−C4−27z CARは、CD8αヒンジおよび膜貫通領域に連結した抗FRαC4、続くCD3ζシグナル伝達部分をCD27細胞内シグナル伝達モチーフとタンデムで含んだ(図1A)。一次ヒトT細胞は、形質導入48時間後検出したとき、43%〜65%の形質導入効率で、C4 CARレンチウイルスベクターで効率的に形質導入された。CAR発現レベルはCD4+およびCD8+T細胞で同等であった(52.6±10.2%対49.5±17.1%、P=0.713)。
種々のγcサイトカインおよびIL−18存在下のCAR−T細胞の発現および蓄積を試験した。培養で種々のサイトカイン曝露3週後、IL−2、IL−7またはIL−5存在下で培養されたCAR−T細胞は、1000〜2000倍増大した。IL−18、IL−21存在下またはNC(対照、無サイトカイン)で培養したCAR−T細胞は、200倍未満の増大を示した(図1B)。
CAR−T細胞の高い蓄積に寄与する理由を分析し、特に、T細胞の増殖およびアポトーシスを評価した。増殖性応答を、7日培養したCFSE標識T細胞の細胞分裂のモニタリングにより測定した。図1Cに示すように、IL−2およびIL−15と培養したT細胞が最高増殖性能を示し、続いてIL−7であった;一方IL−21およびIL−18は、あまり強力ではない分裂促進的刺激剤であった。種々のサイトカイン中で培養したT細胞のアポトーシスを、Annexin-V染色を使用して試験した。結果は、NC、IL−18およびIL−21群と比較して、IL−2、IL−7およびIL−15中で培養したT細胞の受けたアポトーシスが少ないことを示した(図1D)。これらの結果は、サイトカイン、例えば、IL−2、IL−7またはIL−15存在下増大されたT細胞の蓄積増加は、Bcl−xl抗アポトーシス経路の、例えば、活性化による増殖増加およびアポトーシス減少の両者により引き起こされ得る。
次に、外来サイトカイン存在下増大させたCAR−T細胞の表現型を試験した。健常ドナーからの新鮮T細胞を、一般にCD45RAおよびCD62L発現に基づき4サブセットに分けた:1)ナイーブT細胞(CD45RA+CD62L+、Tnと称する)、2)中枢記憶T細胞(CD45RA−CD62L+、Tcmと称する)、3)エフェクター記憶T細胞(CD45RA−CD62L−、Temと称する)および4)CD45R陽性エフェクターT細胞(CD45RA+CD62L−、Temraと称する)。次いでCCR7、CD27、CD28およびCD95の発現を、さらに各サブセットで評価した。CD95発現は、レンチウイルス形質導入により顕著に上昇した。後3者のT細胞サブセットはCD95に陽性であったが、Tnはわずかな部分しかCD95を発現しなかった(CD4+において3.6±1.4%およびCD8+T細胞において3.7±1.3%)。この小集団はまたCD27、CD28およびCCR7を共発現し、記憶幹T細胞(Tscm)と考えられた。しかしながら、CARを有するレンチウイルス形質導入前後の抗CD3/CD28ビーズでの刺激後、CD95はこの集団で100%近くまで大きく上方制御された(図2A)。CD45RA+CD62L+CD95+T細胞のパーセンテージは、新鮮T細胞と比較したとき、CD4+およびCD8+TおよびCAR−T細胞の両者で抗CD3/CD28ビーズ刺激後大きく増加した(図2Bおよび2C)。この集団は、CD27、CD28およびCCR7を同時に高度に発現し、Tscmとして定義され得ることを示した。さらに、CD8+CAR−T細胞は、最初のCD8+T細胞におけるTnの高い比率と関係し得るであろう、Tscm細胞の高いパーセンテージを有した(図2D)。
CAR−T細胞エフェクター機能に対するサイトカインの影響を試験するために、FRα発現SKOV3細胞で刺激後のCAR−T細胞のサイトカイン産生能を評価した。5時間刺激後、TNF−α、IFN−γおよびIL−2はCAR−T細胞の細胞質で検出可能であり、CAR−T細胞の41.5〜54.0%がTNF−αを産生し、CAR−T細胞の12.4〜15.3%がIFN−γを産生し、CAR−T細胞の4.3〜6.5%がIL−2を産生した(図5A−5C)。増大中のIL−2、IL−7およびIL−15曝露は、CAR−T細胞のTNF−α産生を促進したが、IFN−γおよびIL−2産生CAR−T細胞数は、全サイトカイン群で同等であった(図5A、5Bおよび5C)。次に、応答性CAR−T細胞の画分およびその多機能性を比較した。増大中のIL−2への曝露と比較して、増大中のIL−18、IL−21への暴露または無サイトカイン曝露は、標的細胞で刺激したとき、誘発されたサイトカイン産生CAR−T細胞が少なく、多サイトカインを産生する能力を有するCAR−T細胞が少なかった。これらの結果は、IL−18、IL−21およびNC群におけるCAR−T細胞が、IL−2暴露群より低分化型である表現型と一致する。
特異的抗原負荷下のCAR−T細胞増大に対するサイトカインの影響を調べるために、2週間IL−2に曝したCAR−T細胞をSKOV3(FRα+)またはC30(FRα−)細胞と、記載するサイトカイン存在下、7日共培養した。無抗原状況に類似して、IL−2、IL−7およびIL−15に曝したCAR−T細胞提示は、他のサイトカインに曝露したCAR−T細胞より高倍率の増大を示した。増大中にIL−21に曝したCAR−T細胞は、アポトーシスをより受けやすい可能性がある。しかしながら、2週間記載するサイトカインに曝露したCAR−T細胞を、さらにサイトカイン補充することなく7日SKOV3またはC30細胞と共培養したとき、CAR−T細胞の蓄積は全群で同等であり、IL−15およびIL−18に曝露したものが、最小量のアポトーシスを受けた(図7A)。CAR−T細胞の表現型も分析した。記憶T細胞の4サブセットに関して、結果は無抗原試験と異なった:Tscmは稀であり、Temは無サイトカイン、IL−18およびIL−21全群で50%を超えた。サイトカインは記憶Tサブセットの組成に顕著な影響を有さず、IL−7曝露はTscmの増加を支えなかった(図7B)。
インビボでのCAR−T細胞の有効性に対するCAR−T細胞のエクスビボ増大中の種々のサイトカインの効果を評価するために、CAR−T細胞の残留性および成果を、卵巣癌のNSGマウス異種移植モデルを使用して試験した。皮下SKOV3腫瘍担持マウスに、エクスビボで予め記載するサイトカインに2週されている2用量の5×106 C4−27z CAR−T細胞を静脈内注射した。C4−27z CAR−T細胞注入を受けた全マウスは、非形質導入T細胞および抗CD19 CAR−T細胞を注射されたものと比較して、腫瘍負荷が低かった(図8A)。種々のサイトカイン群で、先のIL−2曝露と共にCAR−T細胞を注射されたマウスが、最高腫瘍負荷を示し、これらのマウスにおける循環ヒトT細胞の最小量と矛盾しなかった。NC、IL−7、IL−15、IL−18およびIL−21群の腫瘍は、全て顕著に抑制され、または消失しており、腫瘍サイズの統計的差異はいずれもなかった。末梢血における導入T細胞の残留性を、養子移入15日および32日後に決定した。IL−7およびIL−21処理CAR−T細胞を受けたマウスは、+15日目に末梢血において他の群より高量のヒトT細胞を揺するように見えたが、IL−2処理CAR−T細胞を受けたマウスは、ヒトT細胞が最小数であった(図8Bー8C)。種々のCAR−T細胞集団のパーセンテージに関して、NC、IL−15、IL−18およびIL−21暴露群は全てIL−2群と比較したとき高いCD4+CAR−T細胞を示し、一方CD8+CAR−T細胞のパーセンテージは全群で同等であった。T細胞表現型で、CD62L、CD27およびCD28は、T細胞の約5〜10%にしか発現されず、IL−2およびNC群より高いCD28を発現したIL−21群におけるCD8+T細胞を除いて、全群で同等であった(両方P<0.05)。+32日目に、全CAR−T細胞群における循環ヒトT細胞は、IL−2群以外顕著に増大され、平均T細胞数14907/μl〜19651/μlであった(そして、IL−2群はわずか242/μl)。2匹のマウスが死亡したが、腫瘍は退行していた。
IL−2は、養子免疫治療用リンパ球産生に最もしばしば使用されるサイトカインである。これはT細胞生存および増大を促進し、T細胞の腫瘍死滅能を増強する。しかしながら、IL−2の作用は、T細胞の活性化誘発細胞死(AICD)および調節性T細胞発達をもたらすため、限定されている(Malek et al., Immunity, 2010, 33:153-65;およびLenardo et al., Annu Rev Immunol, 1999, 17:221-53)。本実施例において、IL−2はCAR−T細胞蓄積およびその細胞毒性能を顕著に増加させたが、IL−2曝露CAR−T細胞は養子移入後インビボで優れた抗腫瘍免疫を示した。この発見は、インビトロ腫瘍溶解とインビボ腫瘍根絶の逆の関係を示す。IL−2曝露CAR−T細胞は、CD62L、CCR7、CD27およびCD28の発現が低く、比較的成熟表現型を示し、インビボで永続性が低い(Yang et al., Cancer Immunol Immunother, 2013, 62:727-36)。最近の研究は、あまり分化されていないT細胞の養子移入は優れた腫瘍後退と相関し、これは、IL−2曝露CAR−T細胞が他の群より有効ではないとの発見を支持する(Gattinoni et al., Nat Med, 2011, 17:1290-7;およびMarkley et al., Blood, 2010, 115:3508-19)。
CD25としても知られるインターロイキン−2a鎖は、調節性T細胞(Treg)により発現されるが、慢性B細胞白血病(CLL)細胞でも見られる(85%を超えるCLL患者で)。Tregは、免疫抑制性機能を有し、例えば、T細胞増殖阻害により、免疫治療の有効性を妨害し得る。アフェレーシスによるCLL患者からのT細胞の現在の単離または富化は、通常、顕著に増加した割合でTregならびにCLL細胞を含む。CD25枯渇方法による出発物質におけるTregおよびCLL細胞の枯渇が、エフェクターT細胞の純度を顕著に改善し、それによりCAR19発現T細胞、例えば、CART19細胞の効力を増加させる。
検証実験を実施して、CliniMACS SystemにおけるMiltenyiからのCD25 Reagentを使用して、2患者のアフェレーシスからのCD25枯渇について最適条件を同定した。CD25枯渇剤を、同じ枯渇効率が少ない試薬の使用で得られるか否かを毒亭するために、製造業者の推奨量の100%、70%および30%で使用した。Miltenyiからの異なる2つのチューブセットも試験した。枯渇を製造業者の指示に従い実施した。実験結果を下表に示す。対照として、抗CD3/CD28免疫磁気ビーズを使用する選択を実施した。
次に、CD25枯渇後のT細胞生産物の品質を、CD4+およびCD8+T細胞の割合および増殖能の決定により評価した。
特異的T細胞集団の割合を決定するために、細胞を、上記のとおり抗CD3/CD28またはCD25枯渇による選択後9日にフローサイトメトリーにより分析した。結果は、CD3/CD28−選択T細胞が、CD25枯渇細胞と比較してCD4+T細胞で大きな割合を有することを示す(84.6%対46.8%CD4+T細胞)。逆に、CD25枯渇細胞は、CD3/CD28−選択細胞と比較して、CD8+T細胞の大きな割合を有した(47.2%対11.5%CD8+T細胞)。それゆえに、CD25枯渇は、CD8+Tエフェクター細胞の割合が大きいT細胞をもたらす。
増殖能および細胞生存能を、対照(CD3/CD28選択細胞)およびCD25枯渇細胞でも評価した。対照およびCD25枯渇細胞からの1.6×107細胞を播種し、細胞数および生存能を10〜13日にわたり測定した。図10Aは、経時的総細胞数を示し、図10Bは、計算集団倍加を示す(細胞総数から計算)。結果は、CD25枯渇細胞が、対照細胞と類似の成長特徴を示すことを示す。図10Cは、生存可能細胞のパーセンテージを示し、結果は、生存能も対照とCD25枯渇細胞で類似することを示す。
レンチウイルス形質導入効率に対するCD25枯渇の効果を、形質導入後CARの発現の決定により評価した。患者アフェレーシスは、上記のとおりCD25細胞が枯渇した。CD25枯渇の効率を、CD25枯渇前(アフェレーシスサンプル)および後(CD25枯渇フラクション)のCD25発現集団を比較するフローサイトメトリー分析プロットで示す。CD25枯渇後、CD25枯渇フラクションは約59.2%のCD25陰性細胞およびわずか10.3%CD25陽性細胞を含んだ。
CD25枯渇フラクションをレンチウイルス構築物コード化CAR19で形質導入した。11日の培養後、CAR発現をフローサイトメトリーで評価した。形質導入していない細胞および形質導入CD3選択細胞を対照として使用した。CAR19発現は、CD3選択細胞と比較して、CD25枯渇細胞が有意に高かった(51.4%対12.8%)。この結果は、CD25枯渇細胞のレンチウイルス形質導入効率が改善されていることを示し、これは、CART治療の治療効果改善に重要であり得る。
本実施例において、増大培養においてサイトカイン補充するCD25枯渇の効果を試験した。末梢血単核細胞(PBMC)を患者から単離し、未操作のままであるか、または実施例2に記載のようにCD25発現細胞を枯渇した。T細胞富化を、抗CD3およびCD28被覆ビーズでの刺激により達成した。T細胞を、10ng/ml IL−7、10ng/ml IL−15または10ng/ml IL−7と10ng/ml IL−15の組み合わせを補充した培地ですぐに培養した。3日目、培地を同じサイトカインを添加して交換した。5日目、100IU IL−2/ml含有培地を添加し、細胞を計10日増殖させた。
フローサイトメトリー分析は、未操作のPBMC(標準CD3/CD28選択)と比較して、IL−7、IL−15またはIL−7およびIL−15存在下での培養後のCD25枯渇細胞におけるCD3およびCD19細胞の分布の変化を示した。出発集団(例えば、CD25枯渇前およびサイトカイン補充培養前)におけるCD3、CD19およびCD25発現細胞の分布を評価した。出発集団は、CD3−CD19+細胞の割合が高く(〜97.2%)、CD25発現細胞の割合が高かった(〜94.5%CD25+CD3−;および〜93.8%CD25+CD19+)。操作(CD25枯渇)およびサイトカインと培養後、分布は図11に示すように変化した。CD25枯渇細胞は、全体的に未操作細胞と比較して、CD19発現細胞の大きな減少を示した。
CD4またはCD8 T細胞を末梢または臍帯血から得る。エレクトロポレーションの手段により、インビトロ転写RNAを細胞に導入する。最大CAR表面発現を可能にするための一夜インキュベーション後、細胞を、サイトカイン添加培地においてトシル活性化磁気ビーズ(Invitrogen Cat 14013)に固定化された同族抗原とインキュベートする。細胞を、48時間毎の新鮮培地の定期的供給を用いてインビトロで増大させる(図22)。
培養を、CD4およびCD8 T細胞の50:50混合物で開始した。細胞を、偽電気穿孔またはSS1−BBz RNAで電気穿孔した。8時間後、細胞をメソセリンコンジュゲートビーズ(培養に残すかまたは1日)または培養に残すCD3/CD28ビーズに曝した。翌日、細胞を偽トランスフェクトまたはレンチウイルスでトランスフェクトした(図23)。増殖速度および細胞サイズを測定した。CD3/28ビーズで刺激した細胞は最高集団倍加を示した。しかしながら、レンチウイルスでの形質導入は、集団を2まで減少させる(深赤色)(図24A)。SS1−BBz RNAで前電気穿孔した細胞は、メソビーズで1日以上刺激しようが、レンチウイルスでの形質導入がなかろうが、集団倍加および細胞サイズに差を示さなかった(図24Aおよび24B)。CD3/28ビーズで刺激した細胞およびメソセリン被覆ビーズで刺激したSS1−BBz CART細胞は、類似の形質導入効率を示した(図25Aおよび25B)。
腫瘍標的タンパク質に対する抗体特異的の重鎖および軽鎖の一本鎖可変フラグメント(scFv)からなるメソセリンCARを図26Aに示す。本発明は何らかの個々のscFvに制限されないが、ここで示す結果は、一部、メソセリン特異的scFvの使用により得られている。これらのCARは、CD8zヒンジによりタンデムで結合した共刺激ドメインおよび膜貫通ドメインを有する(模式的図26Aに示す)。ヒトCD4またはCD8 T細胞上のメソセリンCARの表面発現レベルを図26Bに示す。
メソセリンCAR刺激による培養における末梢血CD8 T細胞(図27A)、CD4 T細胞(図27B)および臍帯血CD8 T細胞(図27C)の増大を試験した。示すメソセリンCAR発現CD4またはCD8 T細胞は、サイトカイン存在下、磁気ビーズ上に固定化したメソセリンと共培養した。CD4 T細胞はIL2(30単位/mL)受けた。CD8 T細胞は、IL2(100単位/mL)またはIL7+IL15(各10ng/mL)存在下で培養した。細胞数を48時間毎にカウントし(Multisizer 3 Coulter counter使用)、新鮮培地(対応するサイトカイン添加)に0.75e6/mLで再播種した。CARを有する全T細胞はCAR特異的刺激を受け、培養で増大した。異なるCAR共刺激ドメインは、培養におけるT細胞増大に異なる効果を有しており、最良の組み合わせは、CD8 T細胞におけるBBz CAR構築物である。これらの数は、CD3/28刺激条件を使用して見られる増大と同等である。
図28は、T細胞表面上の一過性に発現されたキメラ抗原受容体(CAR)の、その同族抗原による刺激のための方法の模式図を示す。CD4またはCD8 T細胞を末梢または臍帯血から得る。エレクトロポレーションの手段により、インビトロ転写RNAを細胞に導入する。最大CAR表面発現を可能にするための一夜インキュベーション後、細胞をサイトカイン添加培地においてトシル活性化磁気ビーズ(Invitrogen Cat 14013)に固定化された同族抗原とインキュベートする。細胞を、48時間毎の新鮮培地の定期的供給を用いてインビトロで増大させる(図29)。
メソセリン被覆ビーズへの曝露後のメソセリンCAR発現細胞の集団倍加(図30A)および細胞サイズ(図30B)ならびに培養におけるメソセリンCAR(図31A)またはCD19 CARで刺激した末梢血T細胞(図31B)およびメソセリンCARで刺激した臍帯血CD8 T細胞(図31C)の増大を測定した。CAR発現T細胞をサイトカイン存在下、磁気ビーズに固定化したCAR特異的抗原と共培養した。CD8 T細胞を、IL7+IL15(各10ng/mL)存在下培養した。細胞数を48時間毎にカウントし(Multisizer 3 Coulter counter使用)、新鮮培地に0.75e6/mLで再播種した(対応するサイトカイン添加)。
CARを有する全T細胞はCAR特異的刺激を受け、培養で増大した。異なるCAR共刺激ドメインは、培養におけるT細胞増大に異なる効果を有しており、最良の組み合わせは、CD8 T細胞におけるBBz CAR構築物である。これらの数は、CD3/28刺激条件を使用して見られる増大と同等(およびある場合高い)である。
キメラ抗原受容体(CAR)は、癌細胞に対するT細胞の細胞毒性を再指示し、癌免疫療法への有望な新規手法を提供する。広範な臨床使用にも関わらず、CAR−T細胞の残留性および機能(例えば、消耗に対する耐性)に影響するCAR共刺激ドメインの特質は大部分不明確なままである。この実施例は、CAR移植ヒトT細胞の増殖、細胞長命、記憶分化および代謝特徴に対する共受容体CD28および4−1BBのシグナル伝達ドメインの影響を報告する。CARアーキテクチャにおける、TNF受容体ファミリーのメンバーである4−1BBの包含は、顕著な呼吸器能増強、脂肪酸酸化増加およびミトコンドリア新生増強を有するCD8中央記憶T細胞への帰結を促進する。対照的に、CD28ドメインを有するCAR T細胞は、解糖増大と一致する遺伝子シグネチャーを有するエフェクター記憶細胞を生じた。これらの結果は、少なくとも一部、臨床試験における4−1BBまたはCD28シグナル伝達ドメインを発現するCAR−T細胞の差次的残留性の推定機構および将来のCAR T細胞治療剤の設計の情報を提供する。
遺伝的再指向自己T細胞注入に基づく養子免疫療法は、血液系腫瘍および固形腫瘍両方の処置について有望であることが示されている。従って、T細胞受容体(TCR)またはキメラ抗原受容体(CAR)に基づき、T細胞に所望の抗原受容体を授ける複数機能獲得型ストラテジーが記載されている(June et al., Sci. Transl. Med. 7, 280ps7, 2015)。多数のストラテジーが提案されている中で、CARの使用は、癌、特にB細胞悪性腫瘍に対する免疫応答増強における強力な効果が示されている(Brentjens et al., Sci. Transl. Med. 5, 177ra38, 2013; Grupp et al., N. Engl. J. Med. 368, 1509-1518, 2013; Kalos et al., Sci. Transl. Med. 3, 95ra73, 2011)。CAR T細胞治療は疾患クリアランスに顕著な影響を有しているが、CARが臨床的に成功するための必須要素およびそれらがどのように治療有効性に影響するかは大部分不明確なままである(Kalos and June, Immunity 39, 49-60, 2013)。
CD19特異的CAR T細胞は、慢性リンパ性白血病(CLL)、急性リンパ芽球性白血病(ALL)および汎発性大B細胞リンパ腫を含む種々の血液系腫瘍に対する臨床応答の促進が示されている。しかしながら、成功率は、研究デザインにおける数変動ならびに、とりわけ、一本鎖可変抗体フラグメント(scFv)、共刺激ドメイン、遺伝子−伝達プロトコールおよびCAR T細胞注入後の差異のため、比較が困難である。CD28または4−1BB共刺激ドメインが組み込まれたCARで実施された治験は、ALLを有する患者で類似の初期応答率を示している(Brentjens et al., Sci. Transl. Med. 5, 177ra38, 2013; Lee et al., Lancet 385, 517-528, 2015; Maude et al. N. Engl. J. Med. 371, 1507-1517, 2014)。しかしながら、CLLでは、4−1BB共刺激ドメイン(Porter et al., Sci. Transl. Med. 7, 303ra139, 2015)を有するCAR T細胞の臨床的有効性は、CD28ドメインを有するものより優れるように見える(Brentjens et al., Blood 118, 4817-4828, 2011Porter et al., Sci. Transl. Med. 7, 303ra139, 2015)。CD28ベースのCAR T細胞インビボの残留性は約30日と報告され(Brentjens et al., Sci. Transl. Med. 5, 177ra38, 2013; Lee et al., Lancet 385, 517-528, 2015)、4年を超える患者もいる4−1BB CAR T細胞の持続発現およびエフェクター機能と対照的である(Porter et al., Sci. Transl. Med. 7, 303ra139, 2015)。さらに、あるCARへの4−1BBシグナル伝達ドメインの取り込みは消耗を軽減する(Long et al., 2015)。他の重要な考察は、内因性CD28および4−1BBのような腫瘍壊死因子受容体ファミリー(TNFR)のメンバーが、T細胞で種々のシグナル伝達カスケードを誘発することである。CD28は、グルコース代謝への下流効果を伴うP13K−Akt経路の活性化および解糖増加に至る(Frauwirth et al., Immunity 16, 769-777, 2002)。対照的に、内因性4−1BBシグナル伝達は、T細胞への長期生存利益付与と関連付けられており(Sabbagh et al., J. Immunol. 180, 8093-8101, 2008)、4−1BBにより使用されるシグナル伝達経路はCD28と異なる(Martinez-Forero et al., J. Immunol. 190, 6694-6706, 2013)。それ故に、CARの分子シグナル伝達効果の徹底的な理解は、CLLについての臨床的有効性の観察される差異を一部説明するであろう。
本実施例に記載するとおり、共受容体の種々のシグナル伝達は、CAR T細胞における特定の代謝経路を制御し、記憶発達に影響を与えることができる。
インビトロ転写(IVT)RNAをコードするCARのCAR構築物および産生
これらの試験のために、ヒトCD19またはメソセリン抗原に特異的なCARを使用した。図32Aは、本試験に使用したCARの模式図を示す。全てのCARは、ヒトCD19(クローンFMC−63)に対する一本鎖可変フラグメント(scFv)またはヒトメソセリンタンパク質に対するSS1 scFvの、示すほうを含んだ(Hassan et al., Clin. Cancer Res. 8, 3520-3526, 2002; Nicholson et al., Mol. Immunol. 34, 1157-1165, 1997)。メソセリンCARは先に記載された(Carpenito et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 106, 3360-3365, 2009)。CD28z CARは、先に記載のとおり、CD8aヒンジによりCD28およびCD3zの細胞内ドメインにcisで連結されたscFvおよびCD28膜貫通ドメインを含んだ(Milone et al., Mol. Ther. 17, 1453-1464, 2009)。同様に、BBz CARは、CD8aヒンジにより4−1BB細胞内部分およびCD3zドメインに連結されたscFvおよび膜貫通ドメインを含んだ(Milone et al., Mol. Ther. 17, 1453-1464, 2009)。インビトロ転写(IVT)RNAの調製物について、CARコード化遺伝子構築物を、先に記載のとおりpGEM.64Aベースのベクターにサブクローン化した(Zhao et al., Cancer Res. 70, 9053-9061, 2010)。
インビトロ転写(IVT)RNAについて、T7 mScriptTM RNA系(Cellscript, Madison WI)を製造業者の指示に従い、かつ先に記載のとおり使用した(Zhao et al., Cancer Res. 70, 9053-9061, 2010)。IVT生産物をRNeasy Mini Kit(Qiagen Inc., Valencia, CA)で精製し、精製RNAを無RNase水に1μg/μLで溶出させた。
初代ヒトTリンパ球University of Pennsylvania Apheresis Unitで匿名健常ドナーから得た。BTX CM380(Harvard Apparatus BTX)エレクトロポレーション装置を使用して、IVT RNAを、1μg RNA/106細胞の比率でT細胞に導入した。この技術は、細胞表面上の均一CAR発現の促進のために最適化された(図32B)。T細胞を、組み換え抗CD19イディオタイプまたはメソセリン−Fcで被覆された磁気ビーズで刺激した。
CAR T細胞のインビトロ刺激のために、組み換え抗CD19イディオタイプ抗体またはメソセリン−Fc融合タンパク質をダイナビーズM−450トシル活性化(Invitrogen, USA)とカップリングさせた。カップリングについて、全ての4×108ビーズを1回洗浄し、1mLの無菌ホウ酸溶液(0.1Mホウ酸、pH9.5)に再懸濁させた。このために、1mLのホウ酸溶液中の150μgのタンパク質を添加し、規則的混合しながら、37℃で一夜(16〜24時間)インキュベートした。磁気ビーズ捕捉後、溶液を傾捨し、ビーズをビーズ洗浄溶液(3%ヒトアルブミン、0.1%ナトリウムアジドおよび0.4%0.5M EDTAのPBS溶液)で、各10分、3回洗浄し、さらに一夜、新鮮ビーズ洗浄溶液で連続的振盪により洗浄した。被覆ビーズをR10(10%FCS、100U/mlペニシリン、100μg/ml硫酸ストレプトマイシン添加RPMI)で3回洗浄後、インビトロ刺激に使用した。刺激のために、CAR RNA電気穿孔細胞を、ビーズ:細胞比3:1でビーズと共培養した。
細胞を、R10で37℃に、培養全体を維持し、新鮮培地を48時間毎に供給した。細胞をCoulter Multisizer III粒子カウンターを使用してカウントした。各時点での集団倍加を、その日の総細胞対前測定時点の比として測定した。累積的集団倍加をプロットした。培地に、CD4+T細胞について30U/mLヒトIL2(Chiron)およびD8+T細胞についてC10ng/mL IL7+10ng/mL IL15(R&D systems)のとおり、サイトカインを添加した。
細胞生存能を、Live/Dead Fixable Aqua amine反応性生存能色素(Life Technologies)で、15分、室温での染色により測定した。次の蛍光プローブコンジュゲート抗体をBD Biosciencesから購入した。αCD4−BV711、αCD8−APCH7、αCD45RO−PE、αCD69−PECF594、αCCR7−PE−Cy7、αCD25−PE−Cy7、αCD127−FITCおよびαCD215−PE。表面染色を、4℃で30分、3%ウシ胎児血清添加リン酸緩衝化食塩水(PBS)中で行った。CARの表面発現を、細胞とビオチン標識ポリクローナルヤギ抗マウスF(ab)2抗体(Jackson Immunoresearch, West Grove, PA)を、4℃で30分インキュベートし、FACs緩衝液(PBS+3%BSA)で2回洗浄し、フィコエリトリン標識ストレプトアビジン(BD Pharmingen, San Diego, CA)で検出することにより試験した。サンプルデータをLSRII Fortessa(BD Biosciences)に集め、FlowJoソフトウェア(Treestar)で分析した。
生存細胞を、Live/Dead Aqua陰性でゲーティングし、次いでCD3−、CD4−およびCD8陽性事象についてゲーティングした。記憶、CCR7およびCD45ROのマーカーを使用して、我々は、培養における細胞を分析し、次いで、BD FACSCaliburアナライザーを使用して3つの異なる記憶表現型についてソートした。絶対T細胞数を、CountBright Absolute Countingビーズ(Life Technologies)の助けを借りて、次の式(T細胞事象数/ビーズ事象数)×使用したビーズ数
を使用して決定した。
ミトコンドリア機能を、細胞外流動アナライザー(Seahorse Bioscience)で評価した。XF24(図34B−34Cおよび34F−34G)またはXF96(図34H−34K)細胞培養マイクロプレートの個々のウェルを、製造業者の指示に従いCellTakで被覆した。マトリックスを一夜、37℃で吸着させ、吸引し、空気乾燥させ、使用するまで4℃で保存した。ミトコンドリア機能を0日、7日および21日に評価した。ミトコンドリア機能アッセイのために、T細胞を、1200×gで5分遠心分離した。細胞ペレットを、5.5mMグルコース、2mM L−グルタミン、1mM ピルビン酸ナトリウム含有XFアッセイ培地(非緩衝化RPMI 1640)に再懸濁し、ウェルあたり1×106細胞で播種した。マイクロプレートを、1000×gで5分遠心分離し、標準培養条件で60分インキュベートした。装置較正中(30分)、細胞を無CO2(37℃)インキュベーターに移した。XF24およびXF96アッセイカートリッジを、製造業者の指示に従い較正した。細胞性酸素消費速度(OCR)を基底条件および1mMアンチマイシンAを伴う、5mMオリゴマイシン、5mMフルオロ−カルボニルフェニルヒドラゾン(FCCP)および40nMロテノンでの処理後、測定した(XF Cell Mito Stress kit、Seahorse Bioscience)。
定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(qRT−PCR)を使用して、ある候補遺伝子の発現レベルを定量した。細胞からの総RNAを、High Capacity RNA-to-cDNA Kit(Applied Biosystems)でcDNAを合成するための鋳型として髭右した。qRT−PCRを、ViiA 7 Real Time PCR System上のTaqman Universal Master Mixで、製造業者の指示に従いトリプリケートで実施した。PCR系で定量された各候補遺伝子のmRNAレベルを、ハウスキーピング遺伝子であるGADPHに対して正規化した。使用した全プローブは市販されている(Applied Biosystems)。
刺激7日後の細胞を、室温で30分、PBSで飢餓状態にし、続いて、37℃で通常の11mMグルコース、10%FCS、100U/mlペニシリン、100mg/ml硫酸ストレプトマイシンおよび2mM glutamax添加RPMI培養培地でインキュベートした。細胞培養の500μL量を意図した時点で採取し、遠沈させ、上清を、Nova BioProfile Analyzer(Nova Biomedical)でグルコースおよび乳酸濃度について分析した。
[13C16]パルミチン酸をSigma-Aldrichから購入した。液体クロマトグラフィーマススペクトロメトリー用の全溶媒はOptimaグレードであり、Fisher Scientificから購入した。パルミチン酸標識同位体実験について、細胞を、D−グルコースまたはL−グルタミン非存在下(Biological Industries)、10%活性炭処理済みFBS(GIBCO)、2mM Lグルタミン(Life Technologies)、5.0mMグルコースおよび100mM [13C16]パルミチン酸を添加したRPMI 1,640で一夜培養した。
抽出を、先に記載のとおり実施した(Basu and Blair, Nat. Protoc. 7, 1-12, 2012; Worth et al., J. Biol. Chem. 289, 26895-26903, 2014)。簡潔に言うと、リンパ球を、1,200rcfで5分遠心分離した。細胞ペレットを、750mlの氷冷10%トリクロロ酢酸に再懸濁し、超音波ディスメンブレータ(Fisher Scientific)でパルス音波処理した。サンプルを15,000rcfで15分遠心分離し、上清を固相伸長により精製した。簡潔に言うと、Oasis HLB 1ml(30mg)固相伸長カラムを1ml メタノール、続いて1mlのH2Oでコンディショニングした。上清をカラムに適用し、1mlのH2Oで洗浄した。検体を、25mM 酢酸アンモニウム含有メタノールで流し、一夜、N2ガスで乾燥させ、50mlの5%5−スルホサリチル酸に再懸濁した。LC/ESI/MS/MS分析で10ml注入を適用した。
アシル−CoAを、先に記載されたとおり、Phenomenex Luna C18逆相高速液体クロマトグラフィーカラム(2.0 3 150mm、5mm孔径)を用い、5mM酢酸アンモニウムの水溶液を溶媒A、5mM酢酸アンモニウムのアセトニトリル(ACN)/水(95:5、v/v)溶液を溶媒B、ACN/水/ギ酸(80:20:0.1、v/v)を溶媒Cとして用いて、分離した(Basu et al., Anal. Chem. 83, 1363-1369, 2011; Worth et al., J. Biol. Chem. 289, 26895-26903, 2014)。直線状勾配を次のとおり流した。2%溶媒Bを1.5分、25%まで3.5分かけて上昇、100%まで0.5分かけて上昇、8.5分維持および100%溶媒Cで5分洗浄後、平衡化を5分。流速は200ml/分であった。サンプルをAPI 4000三連四重極型質量分析計(Applied Biosystems)で、正のエレクトロスプレーイオン化(ESI)モードで分析した。サンプル(10ml)をLEAPオートサンプラー(CTC Analytics AG)で注入し、4℃に維持した。データをAnalyst Version 1.4.1ソフトウェア(AB SCIEX)で分析した。カラム流出を、8〜23分質量分析計に転用し、流した残りを廃棄した。質量分析計操作条件は次のとおりであった。イオンスプレー電位(5.0kV)、カーテンガスとしての窒素(15U)、イオン源ガス1(8U)、イオン源ガス2(15U)および衝突誘起解離ガス(5U)。ESIプローブ温度は450℃であり、デクラスタリング電位は105Vであり、エントランス電位は10Vであり、衝突エネルギーは45Vであり、衝突出口電位は15Vであった。507Daの喪失が、各アシル−CoAでモニターされた。
異なる時点での細胞をDiI、Mitotracker緑およびDAPI(Life Technologies)で染色し、4%PFAで固定し、その後Leica TSC SP8共焦点顕微鏡で撮像した。捕捉画像をFiji(ImageJ)で分析し、蛍光発光を平均蛍光強度(MFI)として定量した。透過型電子顕微鏡について、細胞は、Penn’s Electron Microscopy Resource Laboratoryにより調製され、Jeol-1010顕微鏡を使用して撮像された。
示す限り、全ての結果は平均±平均値の標準誤差(SEM)または標準偏差(SD)として表す。統計比較をスチューデントのt検定または二元配置ANOVAモデルで、CAR群およびサンプル採取時点を因子として、Prism(GraphPadソフトウェア)を使用して実施した。ウィルコクソン符号順位検定(両側)を、2CAR T細胞群間の集団倍加で実施した。
BBz CAR T細胞は、増大および生存エクスビボの増加を示した
この実験は、まずCD19またはメソセリンに特異的なCD19 CARデザイン(図32A)を比較した。CARは、CD28(Kochenderfer et al., J. Immunother. 32, 689-702, 2009)または4−1BB(Milone et al., Mol. Ther. 17, 1453-1464, 2009)の何れかを含むシグナル伝達ドメインを含んだ。これらのCARを、臨床試験で広範に試験されているため、選択した(Beatty et al., Cancer Immunol. Res. 2, 112-120, 2014; Kochenderfer et al., Blood 119, 2709-2720, 2012; Lee et al., Lancet 385, 517-528, 2015; Maude et al., N. Engl. J. Med. 371, 1507-1517, 2014; Maus et al., Cancer Immunol. Res. 1, 26-31, 2013; Porter et al., Sci. Transl. Med. 7, 303ra139, 2015)。CAR構築物の両方とも>90%のCD4+およびCD8+T細胞を、同等な平均蛍光強度(MFI)で発現した(図32B)。試験デザインの模式図を図32Cに示す。T細胞の分化および代謝運命に対するCD28および4−1BB(28zおよびBBzと称する)シグナル伝達ドメインの影響。CD4+T細胞を、30U/mlのヒトIL2添加培地で培養した。CD8+T細胞を、実験方法に示すとおり、100U/mlのヒトIL2または10ng/ml IL7および10ng/ml IL15添加培地で培養した。エレクトロポレーション約24時間後、CAR−T細胞を同族CD19抗原のサロゲートとして役立つFMC−63 scFvに対するビーズ結合抗イディオタイプ−Fcで刺激した。CAR T細胞が均一な刺激を受けることを確実にするために、活性化分子CD69の表面発現を活性化後1日目に分析した。CD69は、リンパ系活性化の高感度指標である誘導性細胞表面糖タンパク質である(Hara et al., J. Exp. Med. 164, 1988-2005, 1986)。CAR特異的刺激を受けた細胞は、1日目にCD69発現増加を示し、これは28zおよびBBz CAR T細胞で類似した(図33A)。しかしながら、BBz CARを担持するCD4およびCD8 T細胞療法の増殖能は、少なくとも20日を超えて延長した。対照的に、28z CAR T細胞の増殖期は14日が限度であった(図33Bおよび37、p<0.01)。CAR表面発現は、同族抗原での刺激後、急速に減少した(図41)。重要なことに、サイトカイン受容体発現は両CAR群で同等であり(図41)、異なるCAR T細胞間の増殖性差異はサイトカイン受容体発現差異によるものではないことを示す。あるドナーにおいて、4週未満で、出発培養4×106細胞から5×109を超える計算収量の増大である、BBz CAR T細胞培養における10を超える集団倍加が観察された(表5)。BBz CAR T細胞は、単一刺激後、サイトカイン添加培地で4週を超えて培養が持続した。対照的に、28z CAR T細胞の増殖および/または生存は低かった。増殖能はドナー間で異なったが、BBz CAR T細胞が28z CAR T細胞と比較して増殖能および残留性が高いという、傾向は同じままであった(図40、p<0.01)。類似の結果が、メソセリンに対するCARでも示された(図33C、図38、表5および7)。この実施例の残りは、主に、CD8+T細胞におけるCARデザインの高価に商店を搾る。
BBz T細胞の残留性増強は、より広範な増殖能を有する細胞の相対的保存によるものであると仮説立てられた。BBzおよび28z CAR−T細胞の分化状態を試験するために、T細胞分化関連細胞表面マーカーの標準パネルを使用した。Tcm細胞と関連するCD45ROおよびCCR7の発現を評価した。全培養は、同じ異種性T細胞の集団サブセットを0日目に含んだ。CARによる刺激後、CD45RO+CCR7+細胞の割合が進行性に富化された(図33D)。顕著なことに、このTcm細胞集団の富化は、28z群よりBBz CAR群で高く(p<0.01)、培養の最後まで持続した(図33E)。対照的に、28z CAR培養は、 CD45RO+CCR7細胞として同定される、高い割合のエフェクター−記憶表現型(Tem)を一貫して産生した。細胞の記憶表現型プールへの分配/分化は、BBz CAR対28z CARで刺激された細胞の長命の差に起因する可能性がある。
刺激により、CD8+T細胞は、増殖およびエフェクターおよび記憶細胞への分化を含む、秩序あるプロセスを受ける。活性化は、T細胞増殖および機能を支持するのに必要な生合成および生体エネルギー流動と関連する(Pearce and Pearce, Immunity 38, 633-643, 2013; Wang and Green, Nat. Immunol. 13, 907-915, 2012)。例えば、ナイーブおよび記憶T細胞は、発達および残留性について、主に遊離脂肪酸のミトコンドリア酸化に医師恩する(Pearce et al., Nature 460, 103-107, 2009; van der Windt et al., Immunity 36, 68-78, 2012)。対照的に、活性化エフェクターT細胞は解糖(または同時の酸化的リン酸化および好気性解糖上方制御)にシフトして、増殖の代謝要求を満たす(van der Windt et al., Immunity 36, 68-78, 2012)。T細胞分化および生存を制御するシグナル伝達事象、細胞死および免疫学的機能を含む数ある他の因子の中で、本実施例は、上に観察される細胞性代謝の相互接続を試験する。
基底OCR in CAR T細胞の差異が、これらの細胞が生体エネルギー食欲を満たす燃料源を変えるか否かを調査するために、グルコース取り込みおよび脂肪酸利用速度をCAR T細胞で試験した。刺激7日後、細胞を新鮮培地に再播種した。異なる時点で(図34Lに示す)、培地の残存グルコースおよび産生された乳酸の量を測定した。28z CAR T細胞は、グルコースを乳酸産生と共に比較的速い速度で消費した。これは、我々が28z CAR T細胞で観察した大きなECARと一致する(図34Gおよび34K)。
ミトコンドリア予備呼吸器能(SRC)は、細胞性またはミトコンドリアストレスにより、どのように効率的にプロトンがミトコンドリア膜間腔に往復され得るかの指標である(Mookerjee et al., Mech. Ageing Dev. 131, 463-472, 2010; Nicholls, Biochem. Soc. Trans. 37, 1385-1388, 2009)。SRCは、栄養素枯渇、酸素欠乏または細胞活動条件下を含む、代謝ストレスに曝された細胞の偶発的源を提供することにより記憶T細胞の生存および機能を増強させる。SRC増加は、敵対腫瘍環境におけるT細胞機能を支持する可能性がある(Ferrick et al., Drug Discov. Today 13, 268-274, 2008; Nicholls, Biochem. Soc. Trans. 37, 1385-1388, 2009; Yadava and Nicholls, J. Neurosci. 27, 7310-7317, 2007)。記憶CD8 T細胞は、エフェクターと異なり、実質的SRCを維持する(van der Windt et al., Immunity 36, 68-78, 2012)。2CAR群のSRCを比較したとき、BBz CAR T細胞は、刺激後7日目および21日目に28z CAR T細胞と比較して高レベルのSRCを維持することが観察された(図35A)。これは、長期生存CD8+記憶細胞の代謝特徴と一致し、BBzシグナルが長期生存記憶様T細胞に貢献する代謝再プログラミングを支持との仮説をさらに支持する。
CAR構造における4−1BBシグナル伝達ドメインからの特定のシグナルがミトコンドリア新生を支持し、それ故にこれらの細胞がミトコンドリア質量を増加させると考えられた。しかしながら、ミトコンドリア含量の定量的差異に加えて、ミトコンドリアの質的差異がこれらのCAR細胞間の代謝プロファイルの差異に貢献するか否かを試験した。核およびミトコンドリアゲノムでコードされるあるミトコンドリア遺伝子、すなわち、それぞれミトコンドリア転写因子A(TFAM)およびMTCO−1のレベルを試験した。顕著なことに、BBz細胞は、ミトコンドリアTFAMおよびシトクロムcオキシダーゼ複合体の主サブユニットであるミトコンドリアコードシトクロムcオキシダーゼ1のmRNA発現が有意に増加した(図36C)。
これらの試験は、CD28または4−1BBシグナル伝達ドメインを使用するCAR T細胞の分化および代謝プロファイルの有意な差を明らかにする。28z CAR T細胞における支配的代謝プログラムは好気性解糖であり、BBz CAR T細胞では、脂肪酸の酸化的分解である。本試験は、T細胞代謝再プログラミングにおける可塑性、さらに、CARシグナル伝達ドメインの選択がその後のT細胞の運命に影響し得ることの証拠を提供する。本試験で観察された28z CAR T細胞を超えるBBzの増殖および残留性増強は、臨床試験で観察されたCAR残留性の結果を反映する(Brentjens et al., Sci. Transl. Med. 5, 177ra38, 2013; Brentjens et al., Blood 118, 4817-4828, 2011; Lee et al., Lancet 385, 517-528, 2015; Porter et al., Sci. Transl. Med. 7, 303ra139, 2015)。本試験は、差次的残留性の機序の一つが、記憶細胞の特徴である酸化的リン酸化またはエフェクター細胞の特徴である好気性解糖を増強するCART細胞の代謝再プログラミングであり得る(MacIver et al., Annu. Rev. Immunol. 31, 259-283, 2013; van der Windt et al., Immunity 36, 68-78, 2012)。
本プロトコールにおいて、T細胞の完全活性化および強い増大が細胞表面の一過性に発現されたキメラ抗原受容体(CAR)の刺激により達成される。刺激は、抗体の使用ではなく、抗原組み換えタンパク質により行われる。CARの抗原特異性は、一本鎖可変フラグメント(scFv)としても知られる抗体フラグメントにより付与される。このscFvは、ヒンジによりT細胞表面に連結され、膜貫通ドメインを介してシグナル伝達ドメインに連結される。シグナル伝達ドメインは、CD3zシグナル伝達尾(第一世代CAR)またはCD3zに加えてCD28、4−1BBおよび/またはICOSzの細胞内セグメントであり得る。これは、TCRが細胞を刺激する必要性を除く。組み換えタンパク質は研究室で製造でき、培養プレート上に被覆されるかまたはマイクロビーズに架橋されて、リンパ球を刺激する。また、CARが細胞表面に一過性に発現され、その後単一抗原結合後に内在化されるため、細胞は反復刺激を受けない。このプロトコールは、あらゆるCARモデルにカスタマイズできる。CAR表面密度ならびにscFvドメインの親和性を調節することにより、刺激強度を所望のレベルに微調整できる。慣用のTCR刺激増大プロトコールの警告の切り込みとして、この新規プロトコールは、同等なそして多くの場合、より優れた増殖プロファイルおよび細胞数収量を示す。
CARのためのインビトロ転写(IVT)RNコーディングは、製造業者の指示に従い、先に記載のとおりT7 mScriptTM RNA系(Cellscript, Madison WI)を使用して社内で製造する(Zhao et al., Cancer Res. 70, 9053-9061, 2010)。IVT生産物をRNeasy(登録商標)Mini Kit(Qiagen Inc, Valencia, CA)を使用して精製し、精製RNAを無RNase水に溶出する。
細胞表面へのCARの高発現を得るために、IVT RNAを初代ヒトT細胞に電気穿孔する(Zhao et al., Cancer Res. 70, 9053-9061, 2010)。細胞を一夜休息させ、CARタンパク質翻訳を可能とした後、CARの表面発現をフローサイトメトリーにより試験する。エレクトロポレーションベースの遺伝子伝達技術は95%+CAR陽性T細胞を可能にする。
CAR発現確認後、T細胞をダイナビーズM−450(Invitrogen, USA)にカップリングした組み換え抗原タンパク質で刺激する。タンパク質−ビーズカップリングは製造業者のプロトコールに従い実施する。簡潔には、1mLあたり400e6ビーズを150μgのタンパク質と、一夜無菌ホウ酸溶液(0.1Mホウ酸、pH9.5)中でインキュベートする。少なくとも3回洗浄後、これらのビーズを最後にR10培地(10%FCS、100U/mL ペニシリン、100μg/mL硫酸ストレプトマイシン添加RPMI)に再懸濁する。これらのビーズを、次いでビーズ対細胞比3:1で培地中のCAR T細胞刺激に使用する。
細胞培養を、IL2(100 単位/mL)またはIL7およびIL15(各10ng/mL)を添加した、R10培地中7.5×105細胞/mLの濃度で開始する。細胞数を48時間毎に計数し、そのとき新鮮培地を供給し、7.5×105細胞/mLで再播種する。この培養を、細胞集団倍加の2連続下降が観察されるまで維持する。
同族抗原とインキュベートされたCAR T細胞は、培養においてT細胞活性化および増殖のための初期刺激を受ける。異なるCAR共刺激ドメインの使用は、培養において増大するとき、T細胞の増殖プロファイルおよび分化に異なる効果を有する。最大9総集団倍加が記録されており、これは、全細胞が500細胞を超えて複製することに対応する。これらの収量は、伝統的CD3/28ベースの刺激系で得られるものと同等であり、ある場合、優れる。
ここに引用する各々のおよび全ての特許、特許出願および刊行物の発明は、その全体を引用により本明細書に包含させる。本発明は具体的面を参照して開示しているが、本発明の他の面および改変が、本発明の真の精神および範囲を逸脱することなく、当業者により考案され得る。添付する特許請求の範囲は、このような面および等価な改変物を含むことを意図する。
Claims (72)
- 第一キメラ抗原受容体(CAR)分子をコードする核酸を、CAR分子の一過性発現に適する条件下で免疫細胞集団に導入し、それにより第一CAR発現細胞集団を産生し、ここで、CAR分子は抗体分子の抗原結合ドメインを含んでおり;そして
第一CAR発現細胞集団と同族抗原分子(例えば、組み換え抗原分子)または抗抗原イディオタイプ抗体分子から選択されるCAR抗原結合ドメインのリガンドを、免疫細胞増大および/または活性化が生じるような条件下で接触させ、それにより増大および/または活性化免疫細胞集団を産生する
ことを含む、免疫細胞、例えば、免疫エフェクター細胞の集団を増大および/または活性化する方法。 - 第一CAR発現細胞集団を提供し、該第一CAR発現細胞集団は一過性に発現された第一CAR分子を含み、該CAR分子は抗体分子の抗原結合ドメインを含み;そして
該CAR発現細胞集団と同族抗原分子(例えば、組み換え抗原分子)または抗抗原イディオタイプ抗体分子から選択されるCAR分子のリガンドを、免疫細胞増大および/または活性化が生じるような条件下接触させ、それにより増大および/または活性化免疫細胞集団を産生する
ことを含む、免疫細胞、例えば、免疫エフェクター細胞の集団を増大および/または活性化する方法。 - 免疫細胞の集団の増大および/または活性化がインビトロ、エクスビボまたはインビボで実施される、請求項1または2に記載の方法。
- 免疫細胞の集団を、対象(例えば、癌患者)からの血液サンプルから、例えば、アフェレーシスにより獲得する、例えば得る、請求項1〜3の何れかに記載の方法。
- 免疫細胞の集団がT細胞(例えば、アルファ/ベータT細胞およびガンマ/デルタT細胞)、B細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞、ナチュラルキラーT(NKT)細胞、肥満細胞、骨髄由来貪食細胞またはこれらの組み合わせから選択される免疫エフェクター細胞を含む、請求項1〜4の何れかに記載の方法。
- 免疫細胞の集団が、初代T細胞またはアネルギー化T細胞、ナイーブT細胞、T制御性細胞、Th−17細胞、幹T細胞またはこれらの組み合わせから選択されるリンパ球のサブセットを含む、請求項1〜4の何れかに記載の方法。
- 免疫細胞の集団が末梢血単核細胞(PBMC)、臍帯血細胞またはこれらの組み合わせを含む、請求項1〜4の何れかに記載の方法。
- 免疫細胞の集団が、低レベルの機能的T細胞受容体を発現するか、実質的に障害された機能的T細胞受容体を発現するかまたは機能的T細胞受容体を有しない細胞を含む、請求項1〜8の何れかに記載の方法。
- リガンドが同族抗原分子である、請求項1〜8の何れかに記載の方法。
- リガンドが抗抗原イディオタイプ抗体分子である、請求項1〜8の何れかに記載の方法。
- CAR分子のリガンドが天然に存在しない基質、例えば、基質表面に、固定化または結合される、請求項1〜10の何れかに記載の方法。
- 天然に存在しない基質がプレート、膜、マトリックス、チップまたはビーズ(例えば、磁気ビーズ)から選択される固形支持体である、請求項11に記載の方法。
- CAR分子のリガンドが、細胞の表面、例えば、その表面に異種同族抗原を発現する細胞の表面に存在する、請求項1〜10の何れかに記載の方法。
- T細胞が、例えば、リンパ節注射または腫瘍への腫瘍浸潤リンパ球(TIL)の注射によりインビボで増大される、請求項13に記載の方法。
- 第一CARをコードする核酸分子がRNA分子、例えば、インビトロ転写(IVT)RNAである、請求項1〜14の何れかに記載の方法。
- 第一CAR分子が、限られた時間または細胞複製数、例えば、50日未満(例えば、40日、30日、25日、20日、15日、10日、5日以下)で免疫細胞集団に一過性に発現される、請求項1〜15の何れかに記載の方法。
- 第一CAR分子が単一リガンド(例えば、抗原)刺激後内在化される、請求項1〜16の何れかに記載の方法。
- 免疫細胞がリガンド(例えば、抗原)の反復刺激を受けない、請求項1〜16の何れかに記載の方法。
- 免疫細胞刺激の強度が、第一CAR表面密度またはリガンドに対するCAR抗原結合ドメインの親和性の一方または両方の調節により所望のレベルにカスタマイズされる、請求項1〜16の何れかに記載の方法。
- 第一CAR発現免疫細胞が、CAR分子のリガンド存在下、約1時間、2時間、3時間、4時間、5時間、6時間、7時間、8時間、9時間、10時間、15時間、18時間、21時間、22時間、23時間または24時間または約1日、5日、10日、15日、20日、25日、30日、35日、40日、45日または50日間、培養される、請求項1〜19の何れかに記載の方法。
- 第一CAR発現細胞が、8日以下、例えば、7日、6日または5日の期間、培養される、請求項20に記載の方法。
- CAR発現細胞が少なくとも3、4、5、6、7、8、9、10、11または12またはそれ以上の集団倍加(例えば、計8〜10または約9集団倍加)を示す、請求項1〜21の何れかに記載の方法。
- 第一CAR発現免疫細胞集団が計400〜600または約500細胞まで増大し、ここで、細胞増大をリガンド刺激の10〜25日後に測定する、請求項1〜21の何れかに記載の方法。
- 増大および/または活性化免疫細胞集団があまり分化していない表現型を有する免疫エフェクター細胞、例えば、より若い細胞、例えば、より若いT細胞を含む、請求項1〜23の何れかに記載の方法。
- より若いT細胞がナイーブT細胞(TN)、記憶幹細胞(TSCM)、中央記憶T細胞(TCM)またはこれらの組み合わせから選択される、請求項24に記載の方法。
- 増大および/または活性化免疫細胞集団と第二CAR分子をコードする核酸をさらに接触させ、それにより第二CAR発現細胞集団を産生する、請求項1〜25の何れかに記載の方法。
- 第二CAR分子をコードする核酸がDNA、RNA、プラスミド、レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクターまたはレトロウイルスベクターからなる群から選択される、請求項26に記載の方法。
- 第一CARと第二CAR分子が同じ抗原、例えば、同じ癌関連抗原または異なる抗原、例えば、異なる癌関連抗原に指向される、請求項1〜27の何れかに記載の方法。
- 癌関連抗原がCD19、CD123、CD22、CD30、CD171、CS−1、CLL−1(CLECL1)、CD33、EGFRvIII、GD2、GD3、BCMA、Tn Ag、PSMA、ROR1、FLT3、TAG72、CD38、CD44v6、CEA、EPCAM、B7H3、KIT、IL−13Ra2、メソセリン、IL−11Ra、PSCA、PRSS21、VEGFR2、ルイスY、CD24、PDGFR−ベータ、SSEA〜4、CD20、葉酸受容体アルファ、ERBB2(Her2/neu)、MUC1、EGFR、NCAM、プロスターゼ、PAP、ELF2M、エフリンB2、FAP、IGF−I受容体、CAIX、LMP2、gp100、bcr−abl、チロシナーゼ、EphA2、フコシルGM1、sLe、GM3、TGS5、HMWMAA、o−アセチル−GD2、葉酸受容体ベータ、TEM1/CD248、TEM7R、CLDN6、TSHR、GPRC5D、CXORF61、CD97、CD179a、ALK、ポリシアル酸、PLAC1、GloboH、NY−BR−1、UPK2、HAVCR1、ADRB3、PANX3、GPR20、LY6K、OR51E2、TARP、WT1、NY−ESO−1、LAGE−1a、MAGE−A1、MAGE A1、ETV6−AML、精子タンパク質17、XAGE1、Tie 2、MAD−CT−1、MAD−CT−2、Fos関連抗原1、p53、p53変異体、プロステイン、サバイビンおよびテロメラーゼ、PCTA〜1/ガレクチン8、MelanA/MART1、Ras変異体、hTERT、肉腫転座切断点、ML−IAP、ERG(TMPRSS2 ETS融合遺伝子)、NA17、PAX3、アンドロゲン受容体、サイクリンB1、MYCN、RhoC、TRP−2、CYP1B1、BORIS、SART3、PAX5、OY−TES1、LCK、AKAP−4、SSX2、RAGE−1、ヒトテロメラーゼ逆転写酵素、RU1、RU2、レグマイン、HPV E6、E7、腸カルボキシルエステラーゼ、mut hsp70−2、CD79a、CD79b、CD72、LAIR1、FCAR、LILRA2、CD300LF、CLEC12A、BST2、EMR2、LY75、GPC3、FCRL5またはIGLL1から選択される、請求項28に記載の方法。
- 癌関連抗原がCD19である、請求項28に記載の方法。
- 第一CARと第二CAR分子が同じまたは異なるCAR分子である、請求項1〜30の何れかに記載の方法。
- 第一CARと第二CAR分子が互いに独立してCD19 CAR、BCMA CAR、CD33 CAR、CLL−1 CAR、EGFRvIII CAR、GFRアルファ4 CAR、ROR1 CAR、CD20 CAR、CD22 CAR、CD123 CAR、CD10 CAR、CD34 CAR、FLT−3 CAR、CD79b CAR、CD179b CAR、メソセリンCARまたはCD79a CARまたはこれらの何れかの組み合わせである、請求項1〜31の何れかに記載の方法。
- 第一CARを一過性に発現する免疫細胞集団がインビトロまたはエクスビボで増大および/または活性化され、第二CARを発現する免疫細胞集団が治療プロトコールの一部として対象に投与される、請求項1〜32の何れかに記載の方法。
- 第一CARを一過性に発現する免疫細胞集団が、該免疫細胞集団を、癌関連抗原またはCAR結合抗体分子(例えば、ここに記載する非細胞性または細胞性基質に固定化されたCD19抗原または抗CD19イディオタイプ抗体)に対する抗抗原イディオタイプ抗体と接触させることによりインビトロまたはエクスビボで増大および/または活性化される、請求項33に記載の方法。
- 増大および/または活性化免疫細胞集団を適切な増大期間の後保存する、例えば、増大および/または活性化免疫細胞集団を凍結保存することをさらに含む、請求項1〜34の何れかに記載の方法。
- 対象に請求項1〜35の何れかに記載の増大および/または活性化免疫細胞集団を、単独でまたはさらなる治療と組み合わせて投与し、それにより対象における抗腫瘍免疫を処理または提供することを含む、対象における癌を処置するまたは抗腫瘍免疫を該対象に提供する、方法。
- 癌を有する対象を処置するまたは抗腫瘍免疫を該対象に提供する方法において使用するための請求項1〜35の何れかに記載の方法により産生された第一および/または第二CAR分子を発現する増大および/または活性化免疫細胞集団であって、該該増大および/または活性化免疫細胞集団を対象に単独でまたはさらなる治療と組み合わせて投与する、細胞集団。
- 対象に第一CAR分子および第二CAR分子を発現する免疫細胞集団の有効量を同時にまたは逐次的に投与することを含み、ここで、第一CAR分子が一過性に発現され、第二CAR分子が安定して発現される、
癌を有する対象を処置するまたは抗腫瘍免疫を該対象に提供する方法。 - 対象に第二CAR分子を発現する免疫細胞集団の有効量を投与することを含み、ここで、免疫細胞集団は予め第一CAR分子を一過性に発現する免疫細胞集団のインビトロまたはエクスビボでの増大および/または活性化により得られており、該第一CAR分子は抗体分子の抗原結合ドメイン、例えば、ここに記載する抗原結合ドメインを含む、
癌を有する対象を処置するまたは抗腫瘍免疫を該対象に提供する方法。 - インビトロまたはエクスビボ免疫細胞集団の増大および/または活性化が、該免疫細胞集団と、第一CAR分子により認識される癌関連抗原または第一CAR結合ドメインに対する抗抗原イディオタイプ抗体の接触を含む、請求項39に記載の方法。
- 癌関連抗原またはCAR分子の結合ドメインに対する抗抗原イディオタイプ抗体が非細胞性、例えば、ビーズ(例えば、磁気ビーズ)に固定化される、請求項40に記載の方法。
- 第二CAR発現細胞集団がDNA、RNA、プラスミド、レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクターまたはレトロウイルスベクターからなる群から選択される第二CAR分子をコードする核酸を含む、請求項36〜41の何れかに記載の方法。
- 第一CARと第二CAR分子が同じまたは異なる癌関連抗原に指向される、請求項36〜42の何れかに記載の方法。
- 癌関連抗原がCD19、CD123、CD22、CD30、CD171、CS−1、CLL−1(CLECL1)、CD33、EGFRvIII、GD2、GD3、BCMA、Tn Ag、PSMA、ROR1、FLT3、TAG72、CD38、CD44v6、CEA、EPCAM、B7H3、KIT、IL−13Ra2、メソセリン、IL−11Ra、PSCA、PRSS21、VEGFR2、ルイスY、CD24、PDGFR−ベータ、SSEA〜4、CD20、葉酸受容体アルファ、ERBB2(Her2/neu)、MUC1、EGFR、NCAM、プロスターゼ、PAP、ELF2M、エフリンB2、FAP、IGF−I受容体、CAIX、LMP2、gp100、bcr−abl、チロシナーゼ、EphA2、フコシルGM1、sLe、GM3、TGS5、HMWMAA、o−アセチル−GD2、葉酸受容体ベータ、TEM1/CD248、TEM7R、CLDN6、TSHR、GPRC5D、CXORF61、CD97、CD179a、ALK、ポリシアル酸、PLAC1、GloboH、NY−BR−1、UPK2、HAVCR1、ADRB3、PANX3、GPR20、LY6K、OR51E2、TARP、WT1、NY−ESO−1、LAGE−1a、MAGE−A1、MAGE A1、ETV6−AML、精子タンパク質17、XAGE1、Tie 2、MAD−CT−1、MAD−CT−2、Fos関連抗原1、p53、p53変異体、プロステイン、サバイビンおよびテロメラーゼ、PCTA〜1/ガレクチン8、MelanA/MART1、Ras変異体、hTERT、肉腫転座切断点、ML−IAP、ERG(TMPRSS2 ETS融合遺伝子)、NA17、PAX3、アンドロゲン受容体、サイクリンB1、MYCN、RhoC、TRP−2、CYP1B1、BORIS、SART3、PAX5、OY−TES1、LCK、AKAP−4、SSX2、RAGE−1、ヒトテロメラーゼ逆転写酵素、RU1、RU2、レグマイン、HPV E6、E7、腸カルボキシルエステラーゼ、mut hsp70−2、CD79a、CD79b、CD72、LAIR1、FCAR、LILRA2、CD300LF、CLEC12A、BST2、EMR2、LY75、GPC3、FCRL5またはIGLL1から選択される、請求項43に記載の方法。
- 第一CARと第二CAR分子が同じCAR分子であるまたは異なるCAR分子である、請求項36〜44の何れかに記載の方法。
- 第一および/または第二CAR分子が各々独立してCD19 CAR、BCMA CAR、CD33 CAR、CLL−1 CAR、EGFRvIII CAR、GFRアルファ4 CAR、ROR1 CAR、CD20 CAR、CD22 CAR、CD123 CAR、CD10 CAR、CD34 CAR、FLT−3 CAR、CD79b CAR、CD179b CAR、メソセリンCARまたはCD79a CARから選択されるまたはこれらの何れかの組み合わせである、請求項45に記載の方法。
- 第一CARと第二CAR分子がそれぞれメソセリンCARおよびCD19 CAR分子である、請求項45に記載の方法。
- 第一および/または第二CAR発現免疫エフェクター細胞がCD19 CAR、BCMA CAR、CD33 CAR、CLL−1 CAR、EGFRvIII CAR、GFRアルファ4 CAR、ROR1 CAR、CD19 CAR、CD20 CAR、CD22 CAR、CD123 CAR、CD10 CAR、CD34 CAR、FLT−3 CAR、CD79b CAR、CD179b CAR、メソセリンCARまたはCD79a CARを含む、請求項1〜47に記載の方法。
- 第一および/または第二CAR発現免疫エフェクター細胞がCD19 CARを含む、請求項1〜48の何れかに記載の方法。
- CD19 CARが表1または表4の配列を含む、請求項1〜49の何れかに記載の方法。
- CD19 CARがCTL019の抗原結合ドメインのアミノ酸配列、例えば、配列番号51またはそれに実質的に同一であるアミノ酸配列を含む、請求項1〜50の何れかに記載の方法。
- CD19 CARがCTL019のアミノ酸配列、例えば、配列番号89(シグナル配列を含む)またはシグナル配列がない配列またはそれらに実質的に同一であるアミノ酸配列を含む、請求項1〜51の何れかに記載の方法。
- 免疫エフェクター細胞集団における免疫エフェクター細胞の少なくとも80%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%または100%が細胞表面に第一および/または第二CAR分子を発現する、請求項1〜52の何れかに記載の方法。
- 免疫エフェクター細胞が取得された対象および/または処置する対象がヒト癌患者である、請求項1〜53の何れかに記載の方法。
- 癌がB細胞急性リンパ性白血病(B−ALL)、T細胞急性リンパ性白血病(T−ALL)、急性リンパ性白血病(ALL)、慢性骨髄性白血病(CML)、慢性リンパ性白血病(CLL)、B細胞前骨髄球性白血病、芽細胞性形質細胞様樹状細胞新生物、バーキットリンパ腫、汎発性大B細胞リンパ腫、濾胞性リンパ腫、ヘアリー細胞白血病、小細胞もしくは大細胞濾胞性リンパ腫、悪性リンパ増殖性状態、MALTリンパ腫、マントル細胞リンパ腫(MCL)、辺縁帯リンパ腫、多発性骨髄腫、脊髄形成異常症および骨髄異形成症候群、非ホジキンリンパ腫(NHL)、ホジキンリンパ腫(HL)、形質芽細胞性リンパ腫、形質細胞様樹状細胞新生物およびワルデンストレーム高ガンマグロブリン血症の1以上から選択される血液癌である、請求項1〜54の何れかに記載の方法。
- 免疫エフェクター細胞の集団が白血病、例えば、慢性リンパ性白血病(CLL)、急性リンパ性白血病(ALL)またはリンパ腫、例えば、マントル細胞リンパ腫(MCL)から選択される血液癌を有する対象に由来する、請求項1〜55の何れかに記載の方法。
- 細胞の集団がサイトカイン、例えば、IL2またはIL−15およびIL−7の存在下で増大される、請求項1〜56の何れかに記載の方法。
- さらにT制御性細胞、例えば、CD25+T細胞を免疫細胞集団から除去し、それによりT制御性枯渇細胞の集団、例えば、CD25+枯渇細胞を提供することを含む、請求項1〜57の何れかに記載の方法。
- T制御性枯渇細胞の集団がCD25+細胞を30%、25%、20%、15%、10%、5%、4%、3%、2%、1%未満含む、請求項58に記載の方法。
- 取得された免疫エフェクター細胞集団が癌を有する対象、例えば、慢性リンパ性白血病(CLL)のような、例えば、CD25発現癌を有する対象の細胞である、請求項1〜59の何れかに記載の方法。
- T制御性枯渇細胞の集団が、30%、25%、20%、15%、10%、5%、4%、3%、2%、1%未満の白血病細胞、例えば、CLL細胞、ALL細胞またはリンパ腫細胞、例えば、MCL細胞、HL細胞を含む、請求項59に記載の方法。
- さらに免疫エフェクター細胞集団から腫瘍抗原、例えば、CD25を含まない腫瘍抗原、例えば、CD19、CD30、CD38、CD123、CD20、CD14またはCD11bを発現する細胞を除去し、それによりCAR、例えば、ここに記載するCARの発現に適するT制御性枯渇、例えば、CD25+枯渇および腫瘍抗原枯渇細胞の集団を提供することを含む、請求項1〜61の何れかに記載の方法。
- さらに獲得免疫エフェクター細胞集団からチェックポイント阻害剤、例えば、ここに記載するチェックポイント阻害剤、例えば、PD1+細胞、LAG3+細胞およびTIM3+細胞の1以上を発現する細胞を除去し、それによりT制御性枯渇、例えば、CD25+枯渇細胞およびチェックポイント阻害剤枯渇細胞、例えば、PD1+、LAG3+および/またはTIM3+枯渇細胞の集団を提供することを含む、請求項1〜62の何れかに記載の方法。
- 取得した免疫エフェクター細胞集団が1以上のマーカー、例えば、CD3、CD28、CD4、CD8、CD45RAおよびCD45ROの発現に基づき選択される、例えば、提供される免疫エフェクター細胞(例えば、T細胞)の集団がCD3+および/またはCD28+である、請求項1〜62の何れかに記載の方法。
- さらにT制御性枯渇細胞の集団、例えば、CD25+枯渇細胞を、例えば、ここに記載する方法で活性化することを含む、請求項1〜64の何れかに記載の方法。
- さらにT制御性枯渇細胞の集団、例えば、CD25+枯渇細胞の集団からの細胞にCAR、例えば、ここに記載するCAR、例えば、ここに記載するCD19 CARをコードする核酸を含むベクターを形質導入することを含む、請求項1〜65の何れかに記載の方法。
- さらに、例えば、CAR、ここに記載するCAR、例えば、ここに記載するCD19 CARを発現するように改変された、T制御性枯渇細胞の集団を、例えば、ここに記載する方法により増大することを含む、請求項66に記載の方法。
- 細胞の集団が8日以下、例えば、7日、6日または5日の期間増大される、請求項67に記載の方法。
- 免疫細胞の集団が適切な増大期間後凍結保存される、請求項1〜68の何れかに記載の方法。
- さらに免疫エフェクター細胞の集団とテロメラーゼサブユニット、例えば、hTERTをコードする核酸の接触を含む、請求項1〜69の何れかに記載の方法。
- ここに記載する方法の何れかにより製造した免疫エフェクター細胞の集団を含む、免疫細胞調製物または反応混合物。
- 第一CARと第二CAR分子を、同時にまたは逐次的に発現し、ここで、第一CAR分子が一過性に発現され、第二CAR分子が安定して発現される、免疫エフェクター細胞調製物または反応混合物。
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