JP2012167120A - 抗ctla−4抗体組成物 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明は、少なくとも1つのキレート剤と、ヒトCTLA-4に結合する少なくとも1つの抗体とを含む組成物に関する。
【選択図】なし
Description
本出願は、2005年3月8日に出願されたアメリカ合衆国仮特許出願シリアル番号第60/659,766号;2005年10月19日に出願されたアメリカ合衆国仮特許出願シリアル番号第60/728,165号;2005年12月20日に出願されたアメリカ合衆国仮特許出願シリアル番号第60/752,712号;2006年1月26日に出願されたアメリカ合衆国仮特許出願シリアル番号第60/762,456号の恩恵を主張する。なおこれらの仮特許出願はすべて、参考としてその全体がこの明細書に組み込まれているものとする。
読者にとって以下の詳細な説明が理解しやすくなるようにするため、以下のように定義する。
その場合のヌクレオチドは、リボヌクレオチドまたはデオキシヌクレオチドであるか、このどちらかのヌクレオチドが修飾された形態である。この用語には、一本鎖の形態と二本鎖の形態が含まれる。特に断わらない限り、“ポリヌクレオチド”配列または“核酸”配列にはその相補体も含まれる。したがって特定の配列を有する核酸について言及する場合、それと相補的な配列を有する相補鎖も含まれると理解すべきである。
本発明により、この明細書に記載した所定の抗CTLA-4抗体の安定性を、その抗CTLA-4抗体を薬理学的に許容可能なキレート剤(例えばエチレンジアミン四酢酸(“EDTA”)と混合することによって向上させうることが見いだされた。
抗CTLA-4抗体は、一般に、対象に非経口投与するために医薬組成物として製剤化される。一実施態様では、この医薬組成物は液体組成物である。別の一実施態様では、この医薬組成物は液体組成物である。
本発明の別の一実施態様は、抗CTLA-4抗体と、EDTAと、トレハロースとを含む組成物に関する。本発明の別の一実施態様は、抗CTLA-4抗体と、DTPAと、トレハロースとを含む組成物に関する。
キレート剤は、一般に、選択された液体組成物で安定剤として使用され、不安定化を促進する可能性のある種と錯体を形成することのできる多価リガンドである。キレート剤として作用することのできる化合物は、電子が豊富な官能基を持つことがしばしばある。電子が豊富な適切な官能基としては、カルボン酸基、ヒドロキシ基、アミノ基などがある。これらの基がアミノポリカルボン酸、ヒドロキシポリカルボン酸、ヒドロキシアミノカルボン酸などの中に配置されると、金属と結合できる部分が生まれる。
本発明の抗体は、トランスジェニック・マウスを用いて調製することができる。このトランスジェニック・マウスは、挿入したヒト抗体産生ゲノムの重要な部分を含んでいるが、内部でマウスの抗体は産生しないようにされている。そのためこのようなマウスは、ヒトの免疫グロブリン分子と抗体を産生することができる一方で、マウスの免疫グロブリン分子と抗体は産生しない。そのための技術に関して以下に説明する。
Ausbel, F.他編、『分子生物学の最新プロトコル』、グリーン・パブリッシング&ワイリー・インターサイエンス社、ニューヨーク、1987年を参照のこと。
本発明の組成物は溶液にすることができる(例えば注射用や輸液用の溶液)。好ましい形態は、予定する投与形態と何を治療するかに応じて異なる。典型的な好ましい組成物は、注射用または輸液用の溶液の形態(例えばヒトの受動免疫に用いるのと同様の組成物)になっている。好ましい投与形態は、殺菌注射液または油性懸濁液の形態での非経口投与(例えば静脈内投与、皮下投与、腹腔内投与、筋肉内投与、胸骨内投与)または輸液である。当業者であればわかるように、投与経路および/または形態は、どのような結果を望むかに応じて異なることになろう。好ましい一実施態様では、抗体を静脈内に輸液または注射して投与する。別の好ましい一実施態様では、抗体を筋肉内または皮下に注射する。
一般に、分散液は、活性化合物を、基本的な分散媒体と、上記の成分の中から選択した必要な他の成分とを含む殺菌ビヒクルの中に組み込んで調製する。このような懸濁液は、適切な湿潤剤や懸濁剤、または他の許容可能な基剤を従来技術で知られている方法で適切に分散させて製剤にすることができる。殺菌注射製剤は、毒性のない非経口の許容可能な希釈液または溶媒を用いた殺菌注射溶液、殺菌注射懸濁液(例えば1,3-ブタンジオールを用いた溶液)にすることができる。使用できる許容可能なビヒクルや溶媒としては、水、リンゲル液、等張塩化ナトリウム溶液などがある。さらに、溶媒または懸濁媒体として、殺菌不揮発性油が一般に用いられている。この目的では、不活性な不揮発性油(例えば合成したモノグリセリドやジグリセリド)を使用することができる。さらに、n-3ポリ不飽和脂肪酸も注射液の調製に用いることができる。
本発明による単位用量の形態の仕様は、(a)抗CTLA-4抗体またはその一部の独自の特性と、実現すべき特定の治療効果または予防効果、ならびに(b)個人の感受性に対処するためにそのような抗体を化合物にする際の従来技術に固有の制約によって決まる。
本発明には、この明細書に記載した抗CTLA-4抗体と、薬理学的に許容可能なキレート剤とを含む安定な医薬組成物が含まれる。安定な組成物は、例えば製品の外観および安定性を維持すること、または製品の外観および安定性の変化(例えば物理的・化学的に分解して生物活性が低下する可能性)に対する抵抗力があることが望ましい。タンパク質の安定性を測定するためのさまざまな分析法や指標が文献に報告されており、そのような多数の方法や指標が、Vincent Lee編、『ペプチドとタンパク質のドラッグ・デリバリー』(マルセル・デッカー社、ニューヨーク、ニューヨーク州、1991年)、247-301ページと、Jones, A.、Drug Delivery Rev.、第10巻、29-90ページ、1993年にまとめられている。一般に、本発明の液体組成物は、低温である期間保管したときの安定性、および/または1回以上の凍結/解凍サイクルを経たときの安定性が向上している。
(a)組成物は、約2℃〜約8℃の温度で少なくとも12ヶ月間、好ましくは少なくとも約18ヶ月間、より好ましくは少なくとも約24ヶ月間にわたって保管したとき、キレート剤が含まれていないこと以外は同じ組成物を同じ条件下で同じ期間保管したものよりも安定である;
(b)組成物は、約25℃〜約30℃の温度で少なくとも3ヶ月間、好ましくは少なくとも約6ヶ月間、より好ましくは少なくとも約12ヶ月間にわたって保管したとき、キレート剤が含まれていないこと以外は同じ組成物を同じ条件下で同じ期間保管したものよりも安定である;
(c)組成物は、約40℃の温度で少なくとも1ヶ月間、好ましくは少なくとも約2ヶ月間、より好ましくは少なくとも約3ヶ月間にわたって保管したとき、キレート剤が含まれていないこと以外は同じ組成物を同じ条件下で同じ期間保管したものよりも安定である;
(d)組成物は、少なくとも1回の凍結/解凍サイクル、好ましくは少なくとも2回の凍結/解凍サイクル、より好ましくは少なくとも3回の凍結/解凍サイクル、さらに好ましくは少なくとも4回の凍結/解凍サイクル、より一層好ましくは少なくとも5回の凍結/解凍サイクル、それ以上に好ましくは少なくとも6回の凍結/解凍サイクルを経たとき、キレート剤が含まれていないこと以外は同じ組成物を同じ凍結/解凍条件にしたものよりも安定である。
(a)組成物を、約2℃〜約8℃の温度で少なくとも12ヶ月間、好ましくは少なくとも約18ヶ月間、より好ましくは少なくとも約24ヶ月間にわたって保管する;
(b)組成物を、約25℃〜約30℃の温度で少なくとも3ヶ月間、好ましくは少なくとも約6ヶ月間、より好ましくは少なくとも約12ヶ月間にわたって保管する;
(c)組成物を、約40℃の温度で少なくとも1ヶ月間、好ましくは少なくとも約2ヶ月間、より好ましくは少なくとも約3ヶ月間にわたって保管する;
(d)組成物に、少なくとも1回の凍結/解凍サイクル、好ましくは少なくとも2回の凍結/解凍サイクル、より好ましくは少なくとも3回の凍結/解凍サイクル、さらに好ましくは少なくとも4回の凍結/解凍サイクル、より一層好ましくは少なくとも5回の凍結/解凍サイクル、それ以上に好ましくは少なくとも6回の凍結/解凍サイクルを経験させる。
次に、凝集した抗体をクロマトグラフィでモノマーから分離し(例えばHPLCを利用する)、得られたクロマトグラムから凝集の程度を明らかにする。本発明の安定な液体医薬組成物でのクロマトグラム上の凝集体のピークの面積は、一般に、クロマトグラム上の全ピーク面積の約6%未満、約5%未満、約4%未満、約3%未満、約2%未満、約1.5%未満である。凝集を測定するこの方法の特別な一例では、組成物を40℃で24週間にわたって保管した後、SE-HPLCを利用したクロマトグラフィにより分離を行ない、214ナノメートルでの紫外検出を実施する。この方法を利用し、実施例11で抗体の凝集を測定した。実施例11では、例えば製剤番号37(キレート剤を含む)は、クロマトグラム上の凝集体のピークの面積が約1.1%であったのに対し、製剤番号26(キレート剤を含まない)は、クロマトグラム上の凝集体のピークの面積が約6.4%であった。
(a)組成物を、約2℃〜約8℃の温度で少なくとも約12ヶ月間、好ましくは少なくとも約18ヶ月間、より好ましくは少なくとも約24ヶ月間にわたって保管する;
(b)組成物を、約25℃〜約30℃の温度で少なくとも約3ヶ月間、好ましくは少なくとも約6ヶ月間、より好ましくは少なくとも約12ヶ月間にわたって保管する;
(c)組成物を、約40℃の温度で少なくとも約1ヶ月間、好ましくは少なくとも約2ヶ月間、より好ましくは少なくとも約3ヶ月間にわたって保管する;
(d)組成物に、少なくとも1回の凍結/解凍サイクル、好ましくは少なくとも2回の凍結/解凍サイクル、より好ましくは少なくとも3回の凍結/解凍サイクル、さらに好ましくは少なくとも4回の凍結/解凍サイクル、より一層好ましくは少なくとも5回の凍結/解凍サイクル、それ以上に好ましくは少なくとも6回の凍結/解凍サイクルを経験させる。
次に、抗体フラグメントをクロマトグラフィによって組成物から分離し(例えばゲル濾過を利用する)、得られたクロマトグラムから断片化の程度を明らかにする。本発明の安定な液体医薬組成物でのクロマトグラム上の断片のバンドの体積は、一般に、クロマトグラム上のバンドの全体積の約9%未満、約8%未満、約7%未満、約6%未満、約5%未満、約4.5%未満のいずれかである。断片化を測定するこの方法の特別な一例では、組成物を40℃で24週間にわたって保管した後に還元SDS-PAGE(rSDS-PAGE)を利用して分離し、モレキュラー・ダイナミクス・パーソナル・PDQC-90写真濃度計またはバイオ-ラドGS800イメージング写真濃度計で走査することによってバンドの体積を明らかにする。この方法を利用し、実施例11で抗体の断片化を測定した。実施例11では、例えば製剤番号37(キレート剤を含む)は、クロマトグラム上の断片バンドの体積が約4.5%であったのに対し、製剤番号26(キレート剤を含まない)は、クロマトグラム上の断片バンドの体積が約10.1%であった。
この明細書に記載したどのタイプの抗体を治療に用いてもよい。好ましい一実施態様では、抗CTLA-4抗体はヒト抗体である。別の好ましい一実施態様では、CTLA-4はヒトのものであり、対象はヒト患者である。好ましいさらに別の一実施態様では、抗CTLA-4抗体はヒトIgG2抗体である。あるいは対象は、抗CTLA-4抗体が交差反応するCTLA-4タンパク質を発現する哺乳動物にすることができる。獣医学のため、またはヒト疾患のモデル動物にするため、抗体は、その抗体が交差反応するCTLA-4を発現する非ヒト哺乳動物(例えば霊長類)に投与するとよい。このようなモデル動物は、本発明による抗体の治療効果を評価するのに役立つ。
本発明の別の一実施態様では、製造装置が提供される。この製造装置は、キレート剤のみ、またはキレート剤と薬理学的に許容可能な他の賦形剤の組み合わせを含む製剤の中に本発明の少なくとも1つのモノクローナル抗CTLA-4抗体が含まれた液体医薬製剤を収容する容器を備えている。適切な容器としては、例えば瓶、バイアル、袋、注射器などがある。容器は、いろいろな材料(ガラスやプラスチック)で作ることができる。容器の一例は、3〜20ccの使い捨てガラス製バイアルである。あるいは複数用量の製剤の場合には、容器を3〜100ccのガラス製バイアルにするとよい。容器には製剤が収容され、その容器の表面に貼り付けるかその容器に添付したラベルに使用法を記載することができる。製造装置はさらに、商品の観点、使用者の観点から望ましい他の材料(例えば他の緩衝液、希釈剤、フィルタ、針、注射器、使用法を記載したパッケージ添付物、禁忌、起こりうる副作用)も備えることができる。
この実施例では、抗CTLA-4抗体を産生するハイブリドーマ細胞系の作製について説明する。その際、Hansonらに付与されたアメリカ合衆国特許第6,682,736号に記載されているようにする。
発現ベクターの構成
公開されている配列(Eur. J. Immunol.、第18巻、1901-1905ページ、1988年)に従って設計したプライマーを用い、ヒト胸腺のcDNAライブラリ(クロンテック社)から、CTLA-4の細胞外ドメインをコードしているcDNAをPCRで増幅した。断片のディレクショナル・サブクローニングを行なってpSR5(シンドビス・ウイルス発現プラスミド(インヴィトロジェン社))の中のヒト・オンコスタチンMシグナル・ペプチドとヒトIgGγ1(IgG1)CH1/CH2/CH3ドメインの間に入れた。この融合タンパク質はヒンジ領域を含んでいないが、CTLA-4の細胞外ドメインにシステイン120を含んでいて共有結合した二量体を形成している。得られたベクターをCTLA-4-IgG1/pSR5と名づけた。ベクター内の完全なCTLA-4-IgG1 cDNAの配列を両方の鎖について確認した。CTLA-4-Igタンパク質のアミノ酸配列を以下に示す。CD44の成熟した細胞外ドメインをヒト・リンパ球ライブラリ(クロンテック社)からPCRで増幅し、サブクローニングしてpSinRep5に入れ、IgG1と尾部が同じ対照タンパク質を産生させた。
ベビー・ハムスター腎臓細胞(ギブコ社)に、インヴィトロジェン社が記載しているようにして試験管内で転写したSP6のCTLA-4-IgG1/pSR5 mRNAとDH-26SヘルパーmRNAを電気穿孔(ギブコ社)することにより、組み換えシンドビス・ウイルスを作った。48時間後、組み換えウイルスを回収し、チャイニーズ・ハムスター卵巣細胞(CHO-K1)におけるタンパク質の発現を最適にするために滴定した。CHO-K1細胞の培養を、熱で不活性化した10%ウシ胎仔血清(ギブコ社)と、非必須アミノ酸(ギブコ社)と、4mMのグルタミン(ギブコ社)と、ペニシリン/ストレプトマイシン(ギブコ社)と、10mMのヘペス(pH7.5)(ギブコ社)とを含むDMEM/F12(ギブコ社)の中に懸濁させて行なった。CTLA-4-IgGを産生させるため、CHO-K1細胞を1mlにつき細胞1×107個の割合でDMEM/F12の中に再び懸濁させ、シンドビス・ウイルスとともに室温にて1時間にわたってインキュベートした。次に、プロテインAセファロース(ファルマシア社)を用いてウシIgGを欠如させた1%ウシ胎仔血清と、非必須アミノ酸と、4mMのグルタミンと、12.5mMのヘペス(pH7.5)と、ペニシリン/ストレプトマイシンとを含むDMEM/F12の中でCHO-K1細胞を1mlにつき細胞1×106個に希釈した。感染してから48時間後の細胞をペレット化し、ならし培地を回収し、ならし培地プロテアーゼ阻害剤の錠剤(ベーリンガー・マンハイム社)を補足し、pHを7.5に調節し、0.2μmの膜(ナルジーン社)で濾過し、5mlのプロテインAハイトラップ・カラム(ファルマシア社)を用いたFPLC(ファルマシア社)を利用して10ml/分の流速で融合タンパク質をアフィニティ精製した。このカラムを床の30倍の容積のPBSで洗浄し、0.1Mグリシン/HCl(pH2.8)を用いて1ml/分で溶離させた。トリス(pH9)を用いて分画(1ml)を直ちに中和してpHを7.5にした。CTLA-4-IgG1を含む分画をSDS-PAGEによって同定し、次いでセントリプラス50(アミコン社)を用いて濃縮した後、溶媒としてPBSを用いてセファロース200カラム(ファルマシア社)に1ml/分で充填した。CTLA-4-IgG1を含む分画をプールし、0.2μmの膜(ミリポア社)で殺菌濾過し、アリコートにし、-80℃で凍結させた。同じ方法でCD44-IgG1を発現させ、精製した。一過性のトランスフェクションを行なったCos7細胞からのならし培地からCD28-IgG1を精製した。
精製したCTLA-4-IgG1を、コロイド状クーマシー染料(ノヴェックス社)を用いたSDS-PAGEで単一のバンドとして移動させた。非還元条件下では、CTLA-4-IgG1は二量体(100kDa)であった。それを50mMのDTTで処理すると還元されて50kDaの単量体になった。精製したCTLA-4-IgG1の溶液のアミノ酸シークエンシングによりCTLA-4のアミノ末端が確認され(MHVAQPAVVLAS)、成熟した融合タンパク質からオンコスタチンMシグナル・ペプチドが開裂した。CTLA-4-IgG1は固定化したB7.1-IgG1に濃度に依存して結合し、その結合は、ハムスター抗ヒト抗CTLA-4抗体(BNI3:ファーミンジェン社)によって阻止された。殺菌CTLA-4-IgG1は内毒素を含んでいないため、消衰定数を1.4としたOD280によって定量化した。精製したCTLA-4-IgG1の収率は、CHO-K1細胞1リットルにつき0.5〜3mgの範囲であった。
NMP:N-メチルピロリドン;TFE:2,2,2-トリフルオロエタノール;DCM:ジクロロメタン;FMOC:フルオレニルメトキシカルボニル。TFE(オールドリッチ・ケミカル社);FMOC-PAL-PEG樹脂(パーセプティブ・バイオシステムズ社)以外のすべての試薬はパーキン・エルマー社から供給された。側鎖保護基を必要とするアミノ酸に関しては、Fmoc-Arg(PMC)-OH;Fmoc-Asn(Trt)-OH、Fmoc-Asp(tBu)-OH、Fmoc-Cys(Trt)-OH、Fmoc-Glu(tBu)-OH、Fmoc-Gln(Trt)-OH、Fmoc-His(Boc)-OH、Fmoc-Lys(BOC)-OH、Fmoc-Ser(tBu)-OH、Fmoc-Thr(tBu)-OH、Fmoc-Tyr(tBu)-OHを用いた。
301nmでのUV吸光度(パーキン-エルマー社のモデル759A検出器)を通じたフィードバック・モニタリングができるように改造したパーキン-エルマー431Aでペプチドを合成した。条件付け二重カップリング・サイクルを利用してペプチド配列をFMOC-PAL-PEG樹脂上で組み立てた。強制的二重カップリングを10サイクル、11サイクル、18サイクル、19サイクル、20サイクル、28〜33サイクル実施した。各アシル化サイクルが終了したときに樹脂をDCMとTFEが50%ずつの混合物で洗浄した後、反応しなかったアミノ基にNMPの中で無水酢酸のキャップを付けた。第49サイクルが終了した後に樹脂を反応装置から除去し、残りを最後まで反応させた。試薬K(King他、International Journal of Protein and Peptide Research、第36巻、255-266ページ、1990年)を用いて6時間にわたって415mgの樹脂からペプチドを開裂させると、粗CTLA-4ペプチドが186mg得られた。
粗CTLA-4ペプチドのアリコート25mgを6MグアニジンHCl/100mMのK2PO3(pH6.4)5mlの中に溶かし、2MのグアニジンHCl/100mMのK2PO3(pH6.4)を用いて2ml/分にてファルマシア・ハイ・ロード・スーパーデックス75 16/60カラム(16mm×600mm、床の体積120ml)で180分にわたって溶離させると、分画が5ml回収された。この分画1.7μlをMESランニング・バッファを流しながらNuPAGE層状ゲルの上に載せ、ダイイチ銀染色プロトコルで可視化することにより、この分画を分析した。この分画は、分子量の基準と比較することで分子量が12kDaであることがわかった。分画を1つにまとめ、4℃で保管した。1つにまとめた分画をUVとゲル電気泳動で分析した。サンプル100μlをプロソーブ・カートリッジに吸収させ(PVDF膜に吸収させ)、洗浄して緩衝液の塩を除去することにより、アミノ酸配列のシークエンシングを行なった。アプライド・バイオシステムズ420シークエンサでシークエンシングを行なった。予想されたN末端配列(MHVAQPAVVLA)が観察された。免疫ブロッティングにより、このペプチドがBNI3抗ヒトCTLA-4抗体(ファーミンジェン社)によって認識されることがわかった。塩を除去するため、648μgの材料を含むアリコートを3500Da MWCO透析管の中に入れ、撹拌しながら0.1%TFA/H20に対して4℃で9日間にわたって透析した。透析袋の全内容物を凍結乾燥させて粉末にした。
完全長CTLA-4 cDNAをヒト胸腺cDNAライブラリ(ストラタジーン社)からPCRで増幅し、サブクローニングしてpIRESneo(クロンテック社)に入れた。マッチメーカー突然変異誘発系(プロメガ社)を用い、細胞表面で構成的に発現するCTLA-4の突然変異を導入した。チロシンY201をバリンにする突然変異は、CTLA-4が迅速に内部化される上で重要なアダプチン・タンパク質AP50の結合を阻止する(Chuang他、J. Immunol.、第159巻、144-151ページ、1997年)。マイコプラズマを含まない300.19マウス・リンパ腫細胞を、10%ウシ胎仔血清と、非必須アミノ酸と、ペニシリン/ストレプトマイシンと、2mMのグルタミンと、12.5mMのヘペス(pH7.5)と、25μMのβ-メルカプトエタノールとを含むRPMI-1640の中で培養した。1mlのチェンバーの中で、200V/1180μF(ギブコ社のセルポレータ)を用いて細胞に20μgのCTLA-4-Y201V/pIRESneoを電気穿孔した。細胞を10分間放置した後、あらかじめ温めた完全RPMI培地を8ml添加した。48時間経過したとき、1mg/mlのG418(ギブコ社)を含む完全RPMI培地の中で細胞を0.5×106/mlに希釈した。抵抗力のある細胞を増殖させ、フィコエリトリンと共役したBNI3抗体を用いて細胞表面にCTLA-4を発現させた。発現の多い細胞を無菌ソーティングによって単離した。
ゼノマウス(登録商標)(8〜10週齢)を免疫化した。そのためには、(i)上記のようにトランスフェクションによってCTLA-4を発現するようにした1×107個の300.19細胞を完全フロイント・アジュバントを含むリン酸緩衝化生理食塩水(PBS)に再び懸濁させ、尾の付け根に皮下投与するか、(ii)(a)10μgのCTLA-4融合タンパク質、または(b)10μgのCTLA-4ペプチドと完全フロイント・アジュバントのエマルジョンを尾の付け根に皮下投与した。それぞれの場合に不完全フロイント・アジュバントを用いた投与を3回または4回繰り返した。融合の4日前、免疫原、すなわち細胞を含むPBSの最終回の注射をマウスに行なった。免疫化したマウスからの脾臓および/またはリンパ節をマウス非分泌性骨髄腫P3細胞系と融合させ、以前に報告されているようにしてHAT選択した(Galfre, G.とMilstein, C.、「モノクローナル抗体の調製:戦略と手続き」、Methods Enzymol.、第73巻、3-46ページ、1981年)。大量のハイブリドーマがすべてCTLA-4特異的ヒトIgG2K抗体を分泌し、そのハイブリドーマを回収した。
11.2.1 11.2.1.4 PTA-5169
4.1.1 4.1.1.1 PTA-5166
この実施例では、抗CTLA-4抗体を産生する組み換え哺乳動物細胞系の作製について説明する。
異なる4種類の緩衝液が抗体の凝集と断片化に及ぼす効果を調べる実験を行なった。
特に、抗CTLA-4抗体11.2.1を含んでいて、緩衝液が酢酸塩、コハク酸塩、ヒスチジン、EDTAのいずれかである4種類の液体製剤を調製した。次にこれらの製剤を40℃で保管し、0週間、2週間、5週間、7週間の時点で抗体の凝集と断片化を測定した。
4種類の緩衝溶液を表3に記載したようにして調製した。各溶液は、まず最初にある量の緩衝用化学物質(表3に記載)を水に溶かすことによって調製した(目標値の約80%)。表3に示した酸性溶液または塩基性溶液を十分な量添加することにより、各緩衝溶液のpHを5.5に調節した。pHを調節した後、水をさらに追加して溶液の最終濃度を20mMにした。緩衝液の濃度を20mMにしたのは、選択したpH5.5でpHが十分に安定するようにするためである。次に、緩衝液を殺菌濾過し(ポアのサイズ0.22ミクロン)、殺菌済みの容器に入れ、あとで使用した。
調べた抗体製剤を以下の表4に挙げてある。各製剤を調製するため、ある量の張性剤(表4にはmg/mlを単位として示してある)を、表に示した緩衝溶液にまず最初に添加し、張性剤が溶けるまでこの溶液を撹拌した。実施例2に記載した精製プロセスから、20mMの酢酸ナトリウム緩衝液(pH5.5)+140mMの塩化ナトリウムにバルクの抗体が13.2mg/ml含まれた溶液を取得した。このバルク溶液の緩衝液を交換して上記の製剤溶液にしたが、その際、ベックマン・コールター・アレグラ21R遠心分離装置に取り付けたアミコン・ウルトラ15MWCO10K(UFC901024)遠心分離濃縮装置を5℃で6500rpmで使用した。約8体積分を交換し、抗体溶液を27〜30mg/mlに濃縮した。約3〜4mlの製剤1〜18を調製した。抗体の濃度は、紫外-可視光分光(UV-Vis)法により、280nmでの消衰係数が1.43(mg/ml)-1cm-1という値を利用して決定した。
表4の抗体製剤を40℃の温度で保管した。0週間、2週間、5週間、7週間の時点でサイズ排除クロマトグラフィ(SEC)を利用して各製剤の凝集を分析した。サイズ排除クロマトグラフィは、TSKゲルG3000SWXL-G2000SWXLカラムと、0.2Mのリン酸ナトリウム(pH7.0)移動相を利用して流速1ml/分で実施し、214nmでUV検出した。図1に、各製剤について、記載した時点で測定した溶離した高分子量種(すなわちモノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1の凝集体)の割合を示してある。各製剤のクロマトグラムについてピークよりも下の面積を積分することによって凝集のレベルを計算し、高分子量種のピークよりも下にある面積の積分値を全ピーク面積に対するパーセントとして表示した(図1を参照のこと)。図1からわかるように、緩衝液がEDTAである組成物で凝集レベルが最も低く、その後は低いほうから順番に、緩衝液がヒスチジン、酢酸塩、コハク酸塩の場合になっていた。
上に指摘したように、表4の抗体製剤を40℃の温度で保管した。0週間、2週間、5週間、7週間の時点でrSDS-PAGEを利用して各製剤の断片化も分析した。rSDS-PAGEによる分析は、NuPAGE 4〜12%ビス-トリス・ゲルとコロイド状の青い染料(クーマシー)を用いて実施した。還元されたゲル(rSDS-PAGE)に関しては、NuPAGE(登録商標)還元剤を用いて還元した。加水分解する不純物(すなわちモノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1の断片)の合計量は、モレキュラー・ダイナミクス・パーソナル・PDQC-90写真濃度計またはバイオ-ラドGS800イメージング写真濃度計で走査することによって推定した。図2には、各製剤について、記載した時点で測定した断片化の割合を示してある。断片化のレベルは、バンドの全体積に対する割合として計算した(図2を参照のこと)。図2からわかるように、緩衝液がEDTAである組成物で断片化レベルが最も低く、その後は低いほうから順番に、緩衝液がヒスチジン、酢酸塩、コハク酸塩の場合になっていた。
モノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1を含むさまざまな液体製剤が多数回の凍結/解凍サイクルに耐える能力を調べる実験を行なった。
さらに、連続して6回の凍結/解凍サイクルを経た後の各製剤について、可溶性粒子の増加率をサイズ排除クロマトグラフィを利用して測定した。
EDTA、メチオニン、酸素欠乏状態が、モノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1を含む液体製剤の変色と凝集に及ぼす効果を調べる実験を行なった。このような液体製剤における変色と凝集は、一般に、製品の美しさと製品の完全性の一方または両方の観点からして望ましくない。
各製剤について、粒子形成、色の変化、濁度の変化を、0週間(初期状態)、2週間、4週間、6週間、8週間、10週間、14週間、16週間、18週間の時点で目で見て評価した。目による観察結果を表9に示してある。
表8に従って処理した抗体製剤を40℃の温度で保管した。0週間、2週間、6週間、8週間、10週間、14週間、16週間、18週間の時点で各製剤の凝集をサイズ排除クロマトグラフィを利用して分析した。排除クロマトグラフィは、TSKゲルG3000SWXL-G2000SWXLカラムと、0.2Mのリン酸ナトリウム(pH7.0)移動相を利用して流速1ml/分で実施し、214nmでUV検出した。表10に、それぞれの処理をした製剤について、記載した時点で測定した溶離した高分子量種(すなわちモノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1の凝集体)の割合を示してある。
各製剤のクロマトグラムについてピークよりも下の面積を積分することによって凝集のレベルを計算し、高分子量種のピークよりも下にある面積の積分値を全ピーク面積に対するパーセントとして表示した(表10を参照のこと)。
メチオニンとEDTAが、液体製剤として保管したときの抗CTLA-4抗体11.2.1中のいくつかのメチオニン残基に及ぼす効果を調べる実験を行なった。
40℃で8週間保管した後の抗CTLA-4抗体11.2.1のアミノ酸位置256と432におけるメチオニン残基の酸化レベルを、リシン-Cマッピング法で測定した。
抗CTLA-4抗体11.2.1中のいくつかのトリプトファン残基とチロシン残基の酸化を調べる実験を行なった。
濾過された溶離液(例えば水と賦形剤)は無色透明であったが、回収した分画(例えば抗体11.2.1)はピンク色のままだった。したがってこの濾過実験から、ピンク色への変色は、製剤の賦形剤によって生じるのではなく、抗体11.2.1そのものに関係していることがわかった。
EDTAとDTPAが抗CTLA-4抗体11.2.1の変色、凝集、断片化に及ぼす効果を調べる実験を行なった。
各製剤について、粒子形成、色の変化、濁度の変化を、0週間(初期状態)、2週間、4週間、6週間、8週間、10週間の時点で目で見て評価した。目による観察結果を表12に示してある。
表12に従って処理した抗体製剤を40℃の温度で保管した。0週間、2週間、6週間、8週間、10週間の時点で、各製剤の凝集をサイズ排除クロマトグラフィを利用して分析した。サイズ排除クロマトグラフィは、TSKゲルG3000SWXL-G2000SWXLカラムと、0.2Mのリン酸ナトリウム(pH7.0)移動相を利用して流速1ml/分で実施し、214nmでUV検出した。表13に、それぞれの処理をした製剤について、記載した時点で測定した溶離した高分子量種(すなわちモノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1の凝集体)の割合を示してある。各製剤のクロマトグラムについてピークよりも下の面積を積分することによって凝集のレベルを計算し、高分子量種のピークよりも下にある面積の積分値を全ピーク面積に対するパーセントとして表示した(表13を参照のこと)。
EDTAと窒素ガスが抗CTLA-4抗体11.2.1の安定性に及ぼす効果を調べる実験を行なった。
各製剤について、粒子形成、色の変化、濁度の変化を、0週間(初期状態)、4週間、8週間、12週間、24週間の時点で目で見て評価した。目による観察結果を表14に示してある。
表13に従って調製した抗体製剤を40℃で保管した。0週間、4週間、8週間、12週間、24週間の時点で、各製剤の凝集をサイズ排除クロマトグラフィを利用して分析した。それぞれの時点で、製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングした。サイズ排除クロマトグラフィは、TSKゲルG3000SWXL-G2000SWXLカラムと、0.2Mのリン酸ナトリウム(pH7.0)移動相を利用して流速1ml/分で実施し、214nmでUV検出した。表15に、それぞれの処理をした製剤について、記載した時点で測定した溶離した高分子量種(すなわちモノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1の凝集体)の割合を示してある。各製剤のクロマトグラムについてピークよりも下の面積を積分することによって凝集のレベルを計算し、高分子量種のピークよりも下にある面積の積分値を全ピーク面積に対するパーセントとして表示した(表15を参照のこと)。
表13に従って調製した抗体製剤を40℃で保管した。0週間、4週間、8週間、12週間、24週間の時点で、還元SDS-PAGE(rSDS-PAGE)を利用して各製剤の全加水分解不純物(すなわち断片化)を分析した。それぞれの時点で製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングし、NuPAGE 4〜12%ビス-トリス・ゲルの上に載せてコロイド状の青い染料(クーマシー)で染色した。ゲルの還元には、NuPAGE(登録商標)還元剤を用いた。還元されたゲル中の各サンプルのバンドの不純物(すなわち断片化)の割合は、モレキュラー・ダイナミクス・パーソナル・PDQC-90写真濃度計またはバイオ-ラドGS800イメージング写真濃度計で走査することによって推定した。断片化のレベルは、バンドの全体積に対する割合として計算した(表16を参照のこと)。
表13に従って調製した抗体製剤を40℃で保管した。0週間、4週間、12週間、24週間の時点で、イメージング・キャピラリー電気泳動(iCE)を利用し、各製剤について酸性種と塩基性種の形成を分析した。イメージング・キャピラリー電気泳動は、電荷の不均一性を評価するためのコンバージェント・バイオサイエンシーズiCE280分析装置を用いて実施した。コンバージェントiCE280は、イメージング・キャピラリー等電点電気泳動(IEF)装置であり、この装置によってユーザーは、キャピラリーに含まれている分離されたサンプルの画像を得ることができる。
40℃で12週間保管した後の抗CTLA-4抗体11.2.1のアミノ酸位置256と432におけるメチオニン残基の酸化レベルを、リシン-Cマッピング法で測定した。
酢酸ナトリウム緩衝液と、塩化ナトリウム(すなわち塩素イオン)とを含む抗CTLA-4抗体11.2.1製剤と、ヒスチジン緩衝液とトレハロースとを含む製剤が安定性に及ぼす効果を比較する実験を行なった。
1)製剤を最初に混合した後、2)製剤を4週間にわたって-20℃で凍結させた後、3)凍結/解凍サイクル(実施例4に記載したように、水を満たしたバイアルとともに箱の中で-70℃から5℃へ)を4回経験させた後に、各製剤を目で評価した。各製剤について、粒子形成、色の変化、濁度の変化を、0週間(初期状態)、8週間、12週間、24週間の時点で目で見て評価した。粒子形成、色の変化、濁度の変化を各製剤で評価し、表20(凍結/解凍)、表21(25℃で保管)、表22(40℃で保管)に記載してある。
表19に従って調製した抗体製剤を25℃と40℃で保管した。0週間(初期状態)、4週間、8週間、12週間、24週間、36週間の時点で、25℃で保管した製剤の凝集をサイズ排除クロマトグラフィを利用して分析した。4週間、8週間、12週間、24週間の時点で、40℃で保管した製剤の凝集をサイズ排除クロマトグラフィを利用して分析した。それぞれの時点で製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングした。サイズ排除クロマトグラフィは、TSKゲルG3000SWXL-G2000SWXLカラムと、0.2Mのリン酸ナトリウム(pH7.0)移動相を利用して流速1ml/分で実施し、214nmでUV検出した。表23(a)と表23(b)に、それぞれの処理をした製剤について、記載した時点で測定した溶離した高分子量種(すなわちモノクローナル抗CTLA-4抗体11.2.1の凝集体)の割合を示してある。各製剤のクロマトグラムについてピークよりも下の面積を積分することによって凝集のレベルを計算し、高分子量種のピークよりも下にある面積の積分値を全ピーク面積に対するパーセントとして表示した(表23(a)と表23(b)を参照のこと)。
表19に従って調製した抗体製剤を25℃と40℃で保管した。0週間(初期状態)、4週間、8週間、12週間、18週間、36週間の時点で、還元SDS-PAGE(rSDS-PAGE)を利用して各製剤の全加水分解不純物(すなわち断片化)を分析した。それぞれの時点で製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングし、NuPAGE 4〜12%ビス-トリス・ゲルの上に載せてコロイド状の青い染料(クーマシー)で染色した。ゲルの還元には、NuPAGE(登録商標)還元剤を用いた。還元されたゲル中の各サンプルのバンドの不純物(すなわち断片化)の割合は、モレキュラー・ダイナミクス・パーソナル・PDQC-90写真濃度計またはバイオ-ラドGS800イメージング写真濃度計で走査することによって推定した。断片化のレベルは、バンドの全体積に対する割合として計算した(表24(a)と表24(b)を参照のこと)。
さまざまな濃度のEDTAが抗CTLA-4抗体11.2.1製剤の安定性に及ぼす効果を比較する実験を行なった。ヒスチジン緩衝液とトレハロースを含む製剤でトレハロースの一部をマンニトールで置換したものもテストした。
1)製剤を最初に混合した後、2)凍結/解凍サイクルを4回経験させた後、3)25℃と40℃にて4週間、8週間、13週間、18週間、24週間にわたって保管した後に、各製剤を目で評価した。粒子形成、色の変化、濁度の変化を各製剤で評価し、表26〜表28に記載してある。
表25に従って調製した抗体製剤を25℃と40℃で保管した。0週間(初期状態)、4週間、8週間、13週間、18週間、24週間の時点で、サイズ排除クロマトグラフィを利用し、25℃と40℃で保管した製剤の凝集を分析した。それぞれの時点で、製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングした。サイズ排除クロマトグラフィは、TSKゲルG3000SWXL-G2000SWXLカラムと、0.2Mのリン酸ナトリウム(pH7.0)移動相を利用して流速1ml/分で実施し、214nmでUV検出した。表29(a)に、それぞれの製剤について、25℃で保管した後に記載した時点で測定した抗体11.2.1の凝集体の割合を示してある。表29(b)には、40℃で保管した後に測定した抗体11.2.1の凝集体の割合を示してある。各製剤のクロマトグラムについてピークよりも下の面積を積分することによって凝集のレベルを計算し、高分子量種のピークよりも下にある面積の積分値を全ピーク面積に対するパーセントとして表示した(表29(a)と表29(b)を参照のこと)。
表25に従って調製した抗体製剤を25℃と40℃で保管した。0週間(初期状態)、4週間、8週間、13週間、18週間、24週間の時点で、還元SDS-PAGE(rSDS-PAGE)を利用して各製剤の全加水分解不純物(すなわち断片化)を分析した。それぞれの時点で製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングし、NuPAGE 4〜12%ビス-トリス・ゲルの上に載せてコロイド状の青い染料(クーマシー)で染色した。ゲルの還元には、NuPAGE(登録商標)還元剤を用いた。還元されたゲル中の各サンプルのバンドの不純物(すなわち断片化)の割合は、モレキュラー・ダイナミクス・パーソナル・PDQC-90写真濃度計またはバイオ-ラドGS800イメージング写真濃度計で走査することによって推定した。断片化のレベルは、バンドの全体積に対する割合として計算した(表30(a)と表30(b)を参照のこと)。
抗CTLA-4抗体11.2.1のアミノ酸位置256と432におけるいくつかのメチオニン残基の酸化レベルを、リシン-Cマッピング法で測定した。表25からの製剤を収容したバイアルを18週間と24週間の時点で無菌サンプリングした。次にサンプルを、標準的な条件下でリシル・エンドペプチダーゼ(Lys-C)酵素トリス緩衝液(pH8.0)を用いて消化させ、逆相高性能液体クロマトグラフィで分析した。グレース・ヴィダック・プロテインC4分析カラムを用い、0.1%のTFAを含む水と0.085%のTFAを含むアセトニトリルという勾配溶離によって分離を行なった。表31に結果を示してある。
マンニトールとソルビトールが抗CTLA-4抗体11.2.1製剤の安定性に及ぼす効果を比較する実験を行なった。この実施例では、ヒスチジン-トレハロース製剤でトレハロースの一部をさまざまな濃度のマンニトールおよび/またはソルビトールで置換したものをテストした(表32)。(Na2EDTA・2H2Oとしての)EDTAの濃度を調べると0〜0.1mg/mlの範囲であった。
1)製剤を最初に混合した後、2)凍結/解凍サイクル(実施例4に記載したように、水を満たしたバイアルとともに箱の中で-70℃から5℃へ)を4回経験させた後、3)25℃と40℃にて8週間、13週間、24週間にわたって保管した後に、各製剤を目で評価した。粒子形成、色の変化、濁度の変化を各製剤で評価し、表33〜表35に記載してある。
表32に従って調製した抗体製剤を25℃と40℃で保管した。0週間(初期状態)、4週間、8週間、13週間、18週間、24週間の時点で、サイズ排除クロマトグラフィを利用し、25℃と40℃で保管した製剤の凝集を分析した。それぞれの時点で、製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングした。サイズ排除クロマトグラフィは、TSKゲルG3000SWXL-G2000SWXLカラムと、0.2Mのリン酸ナトリウム(pH7.0)移動相を利用して流速1ml/分で実施し、214nmでUV検出した。表36(a)に、それぞれの製剤について、25℃で保管した後に記載した時点で測定した抗体11.2.1の凝集体の割合を示してある。表36(b)には、40℃で保管した後に測定した抗体11.2.1の凝集体の割合を示してある。各製剤のクロマトグラムについてピークよりも下の面積を積分することによって凝集のレベルを計算し、高分子量種のピークよりも下にある面積の積分値を全ピーク面積に対するパーセントとして表示した(表36(a)と表36(b)を参照のこと)。
表32に従って調製した抗体製剤を25℃と40℃で保管した。0週間(初期状態)、4週間、8週間、13週間、18週間、24週間の時点で、還元SDS-PAGE(rSDS-PAGE)を利用し、25℃と40℃で保管した製剤の全加水分解不純物(すなわち断片化)を分析した。それぞれの時点で製剤を収容したバイアルから無菌サンプリングし、NuPAGE 4〜12%ビス-トリス・ゲルの上に載せてコロイド状の青い染料(クーマシー)で染色した。ゲルの還元には、NuPAGE(登録商標)還元剤を用いた。還元されたゲル中の各サンプルのバンドの不純物(すなわち断片化)の割合は、モレキュラー・ダイナミクス・パーソナル・PDQC-90写真濃度計またはバイオ-ラドGS800イメージング写真濃度計で走査することによって推定した。断片化のレベルは、バンドの全体積に対する割合として計算した(表37(a)と表37(b)を参照のこと)。
この実施例では、抗CTLA-4抗体チシリムマブと、L-ヒスチジンモノヒドロクロリド一水和物と、エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム二水和物と、αα-トレハロース二水和物と、ポリソルベート80とを含む液体医薬組成物の製造法について説明する。
この実施例では、抗CTLA-4抗体チシリムマブと、L-ヒスチジンモノヒドロクロリド一水和物と、エチレンジアミン四酢酸カルシウム二ナトリウムと、αα-トレハロース二水和物と、ポリソルベート80とを含む液体医薬組成物の有望な製造法について説明する。
この実施例では、抗CTLA-4抗体チシリムマブと、L-ヒスチジンモノヒドロクロリド一水和物と、エチレンジアミン四酢酸三ナトリウムと、αα-トレハロース二水和物と、ポリソルベート80とを含む液体医薬組成物の有望な製造法について説明する。
Claims (1)
- 少なくとも1つのキレート剤と、
ヒトCTLA-4に結合する少なくとも1つの抗体と
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