HU215538B - Eljárás heterológ proteinek előállítására új élesztő kifejező rendszerrel - Google Patents

Eljárás heterológ proteinek előállítására új élesztő kifejező rendszerrel Download PDF

Info

Publication number
HU215538B
HU215538B HU902376A HU237690A HU215538B HU 215538 B HU215538 B HU 215538B HU 902376 A HU902376 A HU 902376A HU 237690 A HU237690 A HU 237690A HU 215538 B HU215538 B HU 215538B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
glu
ala
asp
polypeptide
leu
Prior art date
Application number
HU902376A
Other languages
English (en)
Other versions
HU902376D0 (en
HUT58370A (en
Inventor
Soren Bjorn
Fanny Norris
Kjeld Norris
Original Assignee
Novo-Nordisk A/S
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=26065137&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=HU215538(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Priority claimed from DK494189A external-priority patent/DK494189D0/da
Application filed by Novo-Nordisk A/S filed Critical Novo-Nordisk A/S
Publication of HU902376D0 publication Critical patent/HU902376D0/hu
Publication of HUT58370A publication Critical patent/HUT58370A/hu
Publication of HU215538B publication Critical patent/HU215538B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C12N15/81Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/62DNA sequences coding for fusion proteins
    • C12N15/625DNA sequences coding for fusion proteins containing a sequence coding for a signal sequence
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/62Insulins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/81Protease inhibitors
    • C07K14/8107Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
    • C07K14/811Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
    • C07K14/8114Kunitz type inhibitors
    • C07K14/8117Bovine/basic pancreatic trypsin inhibitor (BPTI, aprotinin)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16Yeasts; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/62DNA sequences coding for fusion proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/033Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a motif for targeting to the internal surface of the plasma membrane, e.g. containing a myristoylation motif
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/036Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif targeting to the medium outside of the cell, e.g. type III secretion
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/04Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing an ER retention signal such as a C-terminal HDEL motif
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/61Fusion polypeptide containing an enzyme fusion for detection (lacZ, luciferase)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/70Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction
    • C07K2319/74Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction containing a fusion for binding to a cell surface receptor
    • C07K2319/75Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction containing a fusion for binding to a cell surface receptor containing a fusion for activation of a cell surface receptor, e.g. thrombopoeitin, NPY and other peptide hormones

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Silver Salt Photography Or Processing Solution Therefor (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Processing Of Solid Wastes (AREA)
  • Chemical Or Physical Treatment Of Fibers (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
  • Particle Accelerators (AREA)
  • Thermotherapy And Cooling Therapy Devices (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

A találmány tárgya eljárás heterőlóg prőtein vagy pőlipeptidelőállítására élesztőben, azzal jellemezve, hőgy valamely, a jelpeptid – vezető peptid – X1–X2–X3–X4 – heterőló prőteinszerkezettelrendelkező pőlipeptidet – ahőlX1 peptidkötés, vagy egy vagy több,azőnős vagy különböző aminősav,X2 és X3 azőnős vagy különböző bázikűsaminősav, és jelentésük Lys vagy Arg, és együttesen egy élesztőgőmba-feldőlgőzási helyet határőznak meg, és X4 peptidkötés, vagy egy vagytöbb, azőnős vagy különböző aminősav,azzal a feltétellel, hőgy X1és/vagy X4 egalább egy aminősav, és ezen aminősavak legalább egyikenegatív töltésű aminősav, így Glű és/vagy Asp, tővábbá azzal afeltétellel, hőgy ha X1 peptidkötés, X4 Glű-Ala-Glű-Ala, Glű-Ala-Glű-Ala- lű-Ala, Glű-Ala-Glű-Ala-Ser-Leű-Asp-Lys-Arg vagy Glű-Ala-Glű-Ala-Ser-Leű-Asp-peptidtől eltérő, és X4 peptidkötés, akkőr X1 Ser-Leű-Asppeptidtől eltérő, tővábbá azzal a feltétellel, hőgy a jel eptid –vezető peptid – X1 peptid jelentése az alábbi szekvenciáktól eltérő:a-faktőr jel és vezető (1–85)-Glű-Ala-Glű-Ala-Ser-Leű-Asp,a-faktőr jelés vezető (1–85)-Prő-Leű-Asp,a-faktőr jel és vezető (1–85)-Gln-Leű-Leű-Asp,Met-Lys-Trp-Val-Ser-Phe-Ile-Ser-Leű-Leű-Phe-Leű-Phe-Ser-Ser-Ala-Tyr-Ser-Arg-Ser-Leű-Asp, kódőló DNS-szerkezetet tartalmazó vektőrral transzfőrmált élesztőt aheterőlóg prőtein vagy pőlipeptid kifejezésének megfelelő körülményekközött alkalmas tápközegben tenyésztik, majd a kapő t prőteint vagypőlipeptidet kinyerik a tápközegből. ŕ

Description

A jelen találmány élesztőgombákban való heterológ proteinek termelési folyamatával kapcsolatos.
Az élesztőgombák számos intracellulárisan szintetizált fehérjét termelnek, melyeknek azonban sejten kívüli funkciójuk van. Az ilyen extracelluláris proteinekre mint kiválasztott proteinekre utalunk. Ezek a kiválasztott proteinek kezdetben a sejten belül expresszálódnak egy az expresszált termék endoplazmás retikulum (ER) membránon keresztül történő hatékony áthaladását biztosító előszekvenciát tartalmazó formájában. A preszekvencia, melyet rendes körülmények között jel pepiidnek neveznek, általában lehasad a kívánt termékről a transzlokáció alatt. Amikor belép a kiválasztási reakcióútba, a protein a Golgi-apparátushoz szállítódik. A Golgi-apparátusból a protein különböző útvonalakat követhet, melyek olyan részekhez vezetnek, mint amilyen a sejtvakuolum vagy a sejtmembrán, vagy kivezetődhetnek a sejtből, hogy a külső tápközegbe választódjanak ki (Pfeffer, S. R. and Rothman, J. E. Ann. Rév. Biochem. 56 (1987), 829-852).
Számos megközelítést javasoltak az élesztőgombák heterológ proteinjeinek élesztőgombákban való expresszálásához. A 0088632A számú európai közzétételi irat leír egy eljárást, mellyel az élesztőgombák heterológ proteinjei kerülnek expresszálásra, előállításra és kiválasztásra oly módon, hogy egy élesztőgombát transzformáinak egy a kívánt proteint és egy jel pepiidet kódoló DNS-t tartalmazó expressziós vektorral, a transzformált mikroszervezetből tenyészetet készítenek, a tenyészetet elszaporítják és a tenyésztápközegből kinyerik a fehérjét. A jel peptid lehet a kívánt proteinek saját jel peptidje, egy heterológ jel peptid vagy az eredeti és heterológ jel peptid egy hibridje.
Az élesztőgombával heterológ jel peptidek használatakor felmerülő probléma lehet, hogy a heterológ jel peptid nem biztosít hatékony transzlokációt és/vagy hasítást a jel peptid után.
AS. cerevisiae MFal (a=faktor) 165 aminosav preproformájaként szintetizálódik, mely aminosav tartalmaz egy 19 aminosav hosszúságú jel vagy prepeptidet, melyet egy 64 aminosav hosszúságú „vezető” vagy propeptid követ, körülvéve 3 N-kötésű glikozilációs helyet, melyet a [Lys Arg(Asp/Glu, Ala)23 a-faktor]4 követ (Kurjan, J. and Herskowitz, I. Cell.30 (1982), 933-943). A prepro MFal jel vezető részét széleskörűen alkalmazzák a heterológ proteinek S. cerevisiaeben való szintézisének és szekréciójának elérése céljából.
Az élesztőgombákkal homológ jel/vezető peptidek használata ismert a 4546082 számú USA szabadalmi leírásból, a 0116201A, 0123294A, 0123544A, 0163529A és 0123289A számú európai közzétételi iratokból és a 2484/84 és 3614/83 számú dán szabadalmi leírásokból.
Az EP 0123289A a S. cerevisiae a-faktor prekurzor hasznosítása került leírásra, míg a DK 2484/84 számú szabadalmi leírás a Saccharomyces cerevisiae invertáz jel peptid hasznosítását írja le és a DK 3614/83 számú szabadalom a Saccharomyces cerevisiae PH05 jel peptid hasznosítását az idegen proteinek kiválasztása céljából.
A 4546082 számú USA szabadalmi leírás és az EP 016201A, 0123294A, 0123544A és 0163529A olyan eljárásokat írnak le, melyekkel a Saccharomyces cerevisiaeből származó α-faktor jelvezető (MFal, vagy MFa2) kerül alkalmazásra az élesztőgombákban expresszált heterológ proteinek szekréciós folyamatában. A kívánt protein szekréciójához szükséges gén 5’ végén levő S. cerevisiae MFal jel/vezető szekvenciát kódoló DNS-szekvencia fuzionálása és a kívánt protein előállítása került bemutatásra.
Az EP 206783 leír egy a 5. cerevisiaeből történő polipeptidek szekréciójához való rendszert, amiből az α-faktor vezető szekvenciát megcsonkították az eredeti vezető szekvencián jelen levő négy α-faktor peptid eliminálása céljából, azért, hogy a vezető pepiidet magát hagyják a heterológ polipeptidhez fuzionálni a LysArgGluAlaGluAla α-faktor előállítási helyen keresztül. Ez a szerkezet hivatott vezetni a kisebb peptidek (kevesebb mint 50 aminosav) hatékony előállítását. A nagyobb polipeptidek szekréciójához és előállításához az eredeti α-faktor vezető szekvenciát megcsonkították, hogy csupán egy vagy két α-faktor pepiidet hagyjanak a vezető peptid és a polipeptid között.
Számos szekretált proteint úgy irányítanak, hogy ki legyen téve egy proteolitikus előállítási rendszernek, mely fel tudja hasítani a peptidkötést két egymás után levő bázikus aminosav karboxil végén. Ezt az enzimatikus aktivitást a S. cerevisiaeben a KEX2 gén kódolja [Julius, D. A. et al., Cell, 37 (1984 b), 1075], A termék KEX2 géntermék által történő feldolgozása szükséges az aktív S. cerevisiae al párosodási faktor (MFal vagy α-faktor) szekréciójához, de nem tartozik bele az aktív S. cerevisiae a párosodási faktor szekréciójába.
A szekretálásra szánt polipeptid szekrécióját és helyes előállítását néhány olyan esetben lehet elérni, amikor a fent megadott irodalomban jelölt módon megszerkesztett vektorral transzformált élesztőgombát szaporítunk. Számos esetben azonban a szekréció szintje nagyon alacsony vagy nincs szekréció, vagy a proteolitikus előállítás nem megfelelő vagy nem teljes. A jelen találmány leírói jelenleg úgy gondolják, hogy ez bizonyos mértékig a vezető peptid C-terminális vége és a heterológ protein N-terminális vége között levő feldolgozó hely nem megfelelő kitevésének tudható be úgy, hogy az nem hozzáférhető vagy legalábbis kevésbé hozzáférhető a proteolitikus hasításhoz.
A következőkben megadjuk a találmány összegzését.
Meglepően azt találtuk, hogy bizonyos módosításokat biztosítva a vezető peptid C-terminális végénél és/vagy a vezető peptid C-terminális végénél és/vagy a vezető pepiidhez fuzionált heterológ polipeptid N-terminális végénél levő feldolgozó helyhez közel nagyobb hozamot lehet elérni a megfelelően előállított proteinből, mint a módosítás nélküli vezető peptid - heterológ polipeptidszerkezettel.
Ennek megfelelően a jelen találmány egy polipeptiddel kapcsolatos, mely polipeptid tartalmazza egy jel peptid, egy vezető peptid és egy heterológ protein vagy
HU 215 538 Β polipeptid fúzióját, mely polipeptidet úgy módosítottuk, a vezető peptid C-terminális vége és a heterológ protein N-terminális vége között pozícionált élesztőgomba feldolgozó hellyel szomszédos aminosav szekvenciáját, hogy úgy biztosítsuk a feldolgozó hely beállítását, hogy hozzáférhető legyen a proteolitikus hasításhoz. A polipeptid szerkezete a következő:
jel peptid - vezető peptid - Xl-X2-X3-X4-heterológ protein ahol X* egy peptidkötés vagy egy vagy több aminosavat képvisel, melyek lehetnek azonosak vagy eltérőek, X2 és X3 azonosak vagy különbözők és egy a Lys-t és Arg-t tartalmazó csoportból szelektált bázikus aminosavat képviselnek,
X2 és X3 együttesen meghatároznak egy élesztőgombaelőállítási helyet és
X4 egy peptidkötés vagy egy vagy több aminosavat képvisel, melyek lehetnek azonosak vagy különbözők, azzal a feltétellel, hogy X1 és/vagy X4 egy vagy több aminosavat képviselnek és hogy az X1 és/vagy X4 által képviselt aminosavak közül legalább egy a Glu-t és Asp-t tartalmazó csoportból szelektált negatív töltésű aminosav.
A jelen összefüggésben a , jel pepiidet” úgy kell értelmezni, mint egy előszekvenciát, mely túlnyomóan hidrofób természetű és egy élesztőgombában expresszált extracelluláris protein prekurzor formáján N-terminális szekvenciaként van jelen. A jel peptid funkciója, hogy lehetővé tegye a szekretálandó heterológ protein számára, hogy belépjen az endoplazmás retikulumba. A jel peptid rendes körülmények között ezen folyamat során lehasad. A jel peptid lehet heterológ vagy homológ a proteint termelő élesztőszervezettel, de mint azt fent magyaráztuk, a jel peptiddel sokkal hatékonyabb hasítást lehet elérni, ha az homológ a kérdéses élesztőszervezettel.
A „vezető peptid” kifejezést úgy kell értelmezni, hogy egy túlnyomórészt hidrofil pepiidet jelöl, melynek az a funkciója, hogy lehetővé tegye a szekretálandó heterológ protein számára, hogy az endoplazmás retikulumból a Golgi-apparátushoz irányítódjon, majd tovább egy szekréciós vezikulumba, a tápközegbe való kiválasztódás céljából (azaz egy expreszszált protein vagy polipeptid exportálását a sejtfalon keresztül vagy legalább a sejtmembránon át a sejt periplazmás terébe).
A „heterológ protein vagy polipeptid” kifejezés egy olyan proteint vagy polipeptidet hivatott jelölni, mely a természetben nem termelődik a gazda-élesztőszervezetben. A „protein” és „polipeptid” fogalmakat alapjában véve egymással kicserélhető fogalmakként használjuk a következő leírásban.
A polipeptid feldolgozó helynél levő módosítása (az a hely, ahol a vezető peptidet a heterológ proteinből élesztőgomba proteolitikus enzimekkel végzett proteolitikus hasítással távolítottuk el), mely módosítást az X1 és/vagy X4 képviseli, lehet a vezető peptid C-terminális végén és/vagy a heterológ protein N-terminális végén levő egy vagy több aminosav extenziójának, helyettesítésének vagy deléciójának formájában.
A találmány értelmében meglepően azt találtuk, hogy sokkal hatékonyabb és helyesebb heterológ proteinelőállítást lehet elérni, ha legalább egy azon aminosavak közül, melyekkel a polipeptid szekvenciáját kibővítettük vagy melyekkel a szekvenciában levő eredeti aminosavak közül egyet vagy többet helyettesítettünk, negatív töltésű aminosav, mint azok, melyeket fent jelöltünk. Hasonló hatás figyelhető meg, amikor negatív töltésű aminosavat biztosítottunk delécióval az előállító hely közelében, azaz eltávolítottunk egy vagy több aminosavat a vezető peptid C-terminális végéből vagy a protein szekvencia N-terminális végéből, míg egy negatív töltésű aminosav van jelen az előállítási hely közelében.
Bármely adott elméletre való korlátozódás óhaja nélkül az a feltételezés, hogy ez a hatás az előállítási hely szomszédságában levő negatív töltésű aminosavak által adott megnövekedett hidrofilitásnak tudható be, ami a vizes intracelluláris környezetben az előállítási helynél levő polipeptid tercier szerkezetének megnövekedett kitettségét eredményezi, így sokkal hozzáférhetőbb az előállító enzim által történő proteolitikus hasításhoz. A negatív töltésű aminosavak előnyös hatása a pozitív töltésű vagy semleges aminosavakkal szemben az ezen aminosavak negatív töltésű oldalláncainak tulajdonítható, mely a feldolgozó hely tercier szerkezetének hidrofilitásához járul hozzá anélkül, hogy az előállító enzimet bármilyen lehetséges módon gátolná.
Az is lehetséges, hogy a negatív töltésű aminosavak hozzájárulnak a feldolgozó hely tercier szerkezetének létrehozásához és fenntartásához (például fordulók, hajtűk vagy hurokszerkezetek) máshogy, mint például a polipeptidekben levő más aminosavmaradékokkal való kölcsönhatás révén. Továbbá létrejöhet közvetlen kölcsönhatás a negatív töltésű aminosavak és a feldolgozó enzim között. így, úgy gondoljuk, hogy a feldolgozó hely két bázikus aminosavjával szomszédos elhelyezkedésű negatív töltésű aminosavak irányíthatják a feldolgozó enzimet, hogy egy megfelelő és hatékony hasítást végezzen a proteinek közötti és/vagy a protein és oldószer közötti töltés kölcsönhatások révén.
Más szempontból a jelen találmány a fent meghatározott polipeptidet kódoló DNS-szekvenciát tartalmazó DNS-szerkezettel kapcsolatos.
Egy további szempontból a jelen találmány egy rekombináns expressziós vektorral kapcsolatos, mely képes élesztőgombában replikálódni és mely a fent meghatározott peptidet kódoló DNS-szerkezetet hordoz, kapcsolatos egy élesztőgombatörzzsel is, mely képes expresszálni a heterológ proteint vagy polipeptidet és melyet ezzel a vektorral transzformáltunk.
Egy még további szempontból a jelen találmány kapcsolatos egy az élesztőgombában való heterológ protein vagy polipeptid termelésére való eljárással, mely tartalmazza a transzformált élesztőgombatörzs egy megfelelő tápközegben való szaporítását a heterológ protein vagy polipeptid expressziójának és szekréciójának elérése céljából, mely után a proteint vagy polipeptidet izoláljuk a tápközegből.
A következőkben megadjuk a találmány részletes leírását.
HU 215 538 Β
A fent megadott magyarázattal összhangban, ha X1 egy magányos aminosav, akkor Glu vagy Asp.
X1 és/vagy X4 megfelelően 1-6 aminosavat képvisel.
X1 két aminosav szekvenciáját képviseli, akkor BAszerkezete lehet, ahol A Glu vagy Asp és B Glu, Asp, Val, Gly vagy Leu, például LeuGlu.
Ha X* három aminosav szekvenciáját képviseli, CBA-szerkezete lehet, ahol A és B a fenti meghatározás szerinti és C Glu, Asp, Pro, Gly, Val, Leu, Arg vagy Lys, például AspLeuGlu.
Ha X1 kettőnél több aminosav szekvenciáját képviseli, a további aminosavak egyike megfelelően lehet Pro vagy Gly, minthogy ezek az aminosavak úgy ismertek, hogy fordulók, hajtűk és hurokszerkezeteket vezetnek be és/vagy ezek részét képezik, valószínűleg elősegítik az előállítási hely hozzáférhetőségét a proteolitikus enzim számára.
Ha X1 négy aminosav szekvenciáját képviseli, DCBA-szerkezete lehet, ahol A, B és C olyan, amilyennek fent meghatároztuk, és D-nek ugyanolyan jelentései vannak, mint C-nek, például GluArgLeuGlu, LysGluLeuGlu vagy LeuAspLeuGlu.
Ha X* öt aminosav szekvenciáját képviseli, szerkezete EDCBA lehet, ahol A, B, C és D olyan, amilyennek fent meghatároztuk és E-nek ugyanolyan jelentései vannak mint C-nek, például LeuGluArgLeuGlu.
Ha X1 hat aminosav szekvenciáját képviseli, szerkezete FEDCBA lehet, ahol A, B, C, D és E olyan, amilyennek fent meghatároztuk és F-nek ugyanolyan jelentései vannak, mint C-nek, például V alLeuGluArgLeuGlu.
Érthető, hogy az aminosavak más kombinációi is lehetségesek, mint X1 jelentései, a találmány elméletétől való eltávolodás nélkül, azt biztosítva, hogy a szekvenciában az aminosavak közül legalább egy negatív töltésű aminosav, mint azt fent meghatároztuk.
Az X4 megfelelő jelentései lehetnek az X1 esetében bemutatottak, bár az aminosav sorrendje tipikusan fordított (például ABC CBA helyett stb.).
A találmány polipeptidjeinek megtestesülésében, ahol a heterológ proteint egy vagy több pozitív töltésű aminosav vagy hidrofób aminosav iniciál, X4 előnyösen egy vagy több aminosavat képvisel a peptidkötések helyett, mivel azt gondoljuk, hogy ez a proteolitikus enzimek számára nagyobb hozzáférhetőséget biztosít.
Olyan esetekben, ahol X4 1-6 aminosavnak egy N-terminális extenzióját képviseli, megfelelő lehet egy további előállítási hely biztosítása az X4 és a heterológ protein N-terminális vége által képviselt aminosav vagy aminosavak között. Ez különösen akkor fontos, amikor a proteint olyan célokra kívánjuk felhasználni, ahol N-terminális extenzióval nem rendelkező protein jelenléte a kívánatos. A további N-terminális aminosavakat in vitro proteolitikus hasítással el lehet távolítani megfelelő proteolitikus enzimet alkalmazva, mint például egy tripszinszerű proteázt vagy egy vegyszert, mint például a cianogén bromidot alkalmazva. A további előállítási helynél levő hasítást befolyásolni lehet gazda-élesztőszervezettel egy másik élesztőproteolitikus enzimre specifikus előállítási helyet szelektálva.
Néhány célból azonban előnyös lehet az N-terminális extenziót úgy tervezni, hogy speciális célhoz legyen megfelelő. így az extenzió markerként szolgálhat a protein detektálásához, mint a protein tisztításánál segítségként, vagy egy gyógyszer hatásának in vivő szabályozására, például egy szer felezési idejének megnyújtására vagy a testben való speciális elhelyezés tervezésénél.
A jelen találmány polipeptidjének előnyben részesített megtestesítésében X1 és/vagy X4 1 -4 aminosavak aminosavszekvenciáját képviselik. Ebben a megtestesítésben az X2-vel közvetlenül szomszédos aminosav előnyösen Glu vagy Asp, az X3-mal közvetlenül szomszédos aminosav előnyösen Glu vagy Asp, vagy mindkettő Glu vagy Asp, mivel ez az előállítási hely kedvező elhelyezkedését biztosítja ezen aminosavak hidrofil tulajdonságának köszönhetően, ahogy azt a fentiekben bővebben részleteztük. Az X1 vagy X4 által képviselt aminosavszekvencia megfelelően tartalmazhat egynél több Glu-t vagy Asp-t.
A találmány polipeptidjének egy másik érdekes megtestesítésében X1 és X4 mind egy vagy több aminosavat képvisel, más szóval a polipeptid módosított mind a vezető peptid C-terminális végénél, mind a heterológ protein N-terminális végénél. Ebben a megtestesítésben X1 és X4 szimmetrikusan azonos lehet, azaz az X1 és X4 által képviselt aminosav vagy aminosavak ugyanazok sorrendben az X2-ből és X3-ból kinyúlva.
A találmány polipeptidjének jel peptid szekvenciája bármely jel peptid lehet, mely biztosítja az expresszált polipeptid sejtben való kiválasztási reakcióútjára való hatékony irányítását. A jel peptid lehet egy a természetben előforduló jel peptid vagy annak funkcionális részei, vagy lehet egy szintetikus peptid. Az α-faktor jel peptidet, az egémyál amiláz jel peptidet, a módosított karboxipeptidáz jel peptidet vagy az élesztőgomba BARI jel peptidet megfelelő jel peptideknek találtuk. Az egémyál amiláz jel szekvenciát O. Hagenbüchle et al., írták le, Natúré 289, 1981, pp. 643-646. A karboxipeptidáz jel szekvenciát L. A. Valis et al. írták le Cell 48, 1987, pp. 887-897. A BARI jel peptidet a WO 87/02670 számú szabadalomban írták le.
A találmány polipeptidjének vezető peptidszekvenciája lehet bármely olyan vezető peptid, mely részt vesz az expresszált polipeptid endoplazmás retikulumhoz való irányításában és tovább a kiválasztási útvonalon. Lehetséges vezető szekvenciák, melyek erre a célra megfelelőek, élesztőgombákból vagy más szervezetekből származó természetes vezető szekvenciák, mint amilyen az α-faktor vezető vagy annak egy funkcionális analógja. A vezető peptid lehet egy szintetikus vezető peptid is, például az egyik szintetikus vezetőt a WO 89/02463 számú közzétételi iratban írták le a következő aminosavszekvenciával:
A. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-GluIle-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Gly-Phe-Leu-AspLeu-Ala-Gly-Glu-Glu-Ile-Ala-Glu-Asn-Thr-ThrLeu-Ala
HU 215 538 Β
B. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-GluIle-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Ile-Ala-Glu-Asn-Thr-.
Thr-Leu-Ala
C. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-GluIle-Pro-Ile-Ala-Glu-Asn-Thr-Thr-Leu-Ala
D. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-GluIle-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Ile-Ala-Glu-Asn-ThrThr-Leu-Ala-Asn-Val-Ala-Met-Ala és
E. Gln-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-GluIle-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Ile-Ala-Glu-Asn-ThrThr-Leu-Ala-Asn-Val-Ala-Met-Ala vagy ezek egy származékával.
A találmány módszerével létrehozott heterológ protein lehet bármely olyan protein, melyet előnyösen lehet termelni élesztőgombában. Az ilyen proteinekre példák az aprotinin vagy más proteáz inhibitorok, az inzulin (ide értve az inzulin prekurzorokat), a humán vagy szarvasmarha növekedési hormon, az interleukin, a glukagon, a szöveti plazminogén aktivátor, a VII Faktor, a VIII Faktor, a XIII Faktor, a trombocita eredetű növekedési faktor, az enzimek és így tovább vagy ezek egy funkcionális analógja. A jelen összefüggésben a „funkcionális analóg” fogalom egy a természetes proteinnel hasonló funkciójú polipeptidet hivatott jelölni (ezt úgy kell értelmezni, hogy inkább a természetes protein természetére, mintsem a biológiai aktivitás szintjére vonatkozik). A polipeptid szerkezetileg lehet hasonló a természetes proteinhez és származhat a természetes proteinből a természetes protein C- és N-terminális végeinek egyikéhez vagy mindkettőhöz való egy vagy több aminosav hozzáadásával, a természetes aminosavszekvencia egy vagy több különböző helyén, vagy egy vagy több aminosav helyettesítésével, a természetes protein egyik vagy mindkét végén vagy az aminosavszekvencia egy vagy több helyén, vagy egy vagy több aminosav deléciójával, vagy a természetes aminosavszekvenciában egy vagy több helyen egy vagy több aminosav inzertálásával. Jól ismertek ilyen módosítások számos fent említett protein esetében.
A találmánynak megfelelően, meglepően azt tapasztaltuk, hogy a vezető peptid C-terminális végén vagy a heterológ protein N-terminális végén levő módosítások, ahogy fent leírtuk, lehetővé teszik a helyesen előállított aprotinin (vagy ahogy fent meghatároztuk, egy funkcionális analógjának) magas hozamú termelését. Az aprotinin egy proteázgátló protein, melyet tulajdonságai hasznossá tesznek számos orvosi célra (például a pancreatitis kezelésében, a szeptikus sokk szindrómában, a hiperfibrinolitikus vérzésben és a szívinfarktus esetén). Az aprotininadagolás nagy dózisban csökkenti a vérveszteséget szívsebészeti vagy más nagyobb sebészeti beavatkozás esetében. Az aprotinin hasznos mint tenyésztápközeg-adalék, mivel gátolja a gazdasejt proteázokat, melyek máskülönben az expresszált proteinek nemkívánatos proteolitikus hasítását okozzák. Élesztőgombákban helyesen előállított aprotinin magas hozamának elérése nehézségekbe ütközött ismert természetes vezető szekvenciákat - mint például amilyen az α-faktor vezető - használva. A természetes aprotinint az N-végnél egy bázikus aminosav (Arg) iniciálja és ezen oknál fogva az előző előállítási hely kevésbé megfelelő lehet a proteolitikus hasításhoz (mint azt fent magyaráztuk), ha az ismert vezető peptidek (például az α-faktor vezető) egyikét a jelen találmánynak megfelelő módosítás nélkül alkalmazzuk, a helyesen előállított aprotinin alacsony hozamát eredményezve, ha van egyáltalán hozam.
A jelen találmánynak megfelelően különösen jó eredményeket értünk el az aprotinintermelést figyelembe véve, ha X1 GluArgLeuGlu-t képvisel, vagy ha X4 GluLeu vagy GluLeuAspLeu (lásd a következő példákat), bár azt várjuk, hogy kedvező aprotininhozamokat lehet elérni X1 és X4 más jelentéseivel, feltéve, ha legalább egy aminosav - és legelőnyösebben az előállítási helyhez legközelebb levő - egy negatív töltésű aminosav, ahogy azt fent magyaráztuk.
Szintén a találmánynak megfelelően azt találtuk, hogy a fent leírtak szerint a vezető peptid C-terminális végén vagy a heterológ polipeptid N-terminális végén levő módosítások lehetővé teszik a helyesen előállított inzulin prekurzor, vagy ahogy fent meghatároztuk, ennek egy funkcionális analógja magas hozamú termelését. A találmány ezen megtestesítésében η X1 Glu-ArgLeu-Glu-t vagy Lys-Glu-Leu-Glu-t képviselhet, mely esetben X4 általában egy peptidkötést képvisel.
Másik lehetőségként X4 a Glu-t képviselheti, mely esetben X1 általában egy peptidkötést képvisel. Különösen előnyös eredményeket értünk el a találmánynak megfelelően a B(l-29)-AlaAlaLys-A(l-29) inzulin analóg prekurzor expresszióját tekintve, ha X1 LysGluLeu-Glu-t képvisel, vagy ha X4 a Phe Glu-val való helyettesítését képviseli - mint az inzulin prekurzor első aminosavját - (lásd a következő példákat). A B(l-29)Ser-AspAspAlaLys-A(l-29) inzulin analóg prekurzorból is elfogadható mennyiséget lehetett elérni, ha X1 Lys-Glu-Leu-Glu-t képviselt. Továbbá azt várjuk, hogy az inzulin prekurzorból magas hozamot lehet elérni az X1 és X4 más jelentéseivel, feltételezve, hogy legalább egy aminosav és legelőnyösebben az, amelyik az előállítási helyhez legközelebb van, egy negatív töltésű aminosav, amint azt korábban magyaráztuk.
A találmány polipeptidját kódoló DNS-szerkezet előállítható szintetikusan, megalapozott standard módszerekkel például az S. L. Beaucage and Μ. H. Caruthers, Tetrahedron Letters 22, 1981, pp. 1859-1869 által leírt foszforamidit-módszerrcl vagy a Matthis et al., EMBO Journal 3, 1984 pp. 801-805 által leírt módszerrel. A foszforamidit-módszemek megfelelően oligonukleotidokat szintetizálunk például egy automata DNS-szintetizálón, tisztítjuk őket, duplexeket képezünk és ligáljuk a szintetikus DNS-szerkezet létrehozása céljából.
A találmány DNS-szerkezete lehet genom vagy cDNS eredetű, például egy genom vagy cDNS könyvtár preparálásával és a találmány polipeptidjének egészét vagy részét kódoló DNS-szekvencia standard technikáknak megfelelően (lásd T. Maniatis et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, 1982) szintetikus oligonukleotid pró5
HU 215 538 Β bákkal végzett hibridizációjával való szkrineléssel lehet kinyerni. Ebben az esetben egy a jel és a vezető peptidet kódoló genom vagy cDNS szekvencia kapcsolódhat egy a heterológ proteint kódoló genom vagy cDNS szekvenciával, mely után a DNS-szekvenciát módosítani lehet a polipeptid X'-X2-X3-X4 aminosavszekvenciának megfelelő helynél, például hely-irányított mutagenezissel, a homológ rekombinációhoz szükséges kívánt aminosavszekvenciát kódoló szintetikus oligonukleotidokat használva, a jól ismert eljárásokkal egyező módon.
Végül a DNS-szerkezet lehet kevert szintetikus és genomiális DNS, kevert szintetikus és cDNS vagy kevert genomiális és cDNS, melyeket a szintetikus genomiális vagy cDNS eredetű fragmentek - mely fragmentek megfelelnek a teljes DNS-szerkezet különböző részeinek - kétszálúvá tételével készítettünk (megfelelően), standard technikáknak megfelelően. így előre látható, hogy a heterológ proteint kódoló DNS-szekvencia genom eredetű, míg a vezető peptidet kódoló szekvencia szintetikusan állítható elő.
Az aprotinint kódoló előnyben részesített DNSszerkezetek olyanok, mint amilyenek a 4., 7., 9., 11. és
12. csatolt ábrákban láthatók, vagy ezek aprotinint kódoló megfelelő módosításai vagy ezek funkcionális analógjai. A DNS-szekvenciák megfelelő módosításaira példák a nukleotid helyettesítések, melyek nem változtatják meg a protein aminosavszekvenciáját, de amely egyezik az élesztőszervezet kódon használatával, melybe a DNS-szerkezetet inzertáltuk, vagy nukleotid helyettesítések, melyek hozzájárulnak egy eltérő aminosavszekvencia kialakulásához és ezért feltehetően egy eltérő proteinszerkezethez, anélkül azonban, hogy káros hatással lennének az eredeti aprotinin antiproteáz tulajdonságaira. A lehetséges módosításokra más példák a szekvenciába való egy vagy több nukleotid inzertálása, a szekvencia bármely végére való egy vagy több nukleotid hozzáadása és egy vagy több nukleotid deléciója a szekvencia bármely végén vagy a szekvencián belül. A specifikus aprotinin analógokra példák az EP 39942A iratban kerültek leírásra.
Az inzulin prekurzorokat kódoló előnyben részesített DNS-szerkezetek azok, amelyeket a 16. és 17. csatolt ábrákban mutattunk be, vagy azok megfelelő módosításai, ahogy fent meghatároztuk.
A találmány polipeptidjét kódoló DNS-szekvenciát hordozó rekombináns expressziós vektor bármely vektor lehet, mely képes élesztőszervezetekben replikálódni. A vektorban a találmány polipeptidjét kódoló DNS-szekvencia működőképesen kell kapcsolódjon egy megfelelő promoter szekvenciához. A promoter lehet bármely DNS-szekvencia, mely transzkripciós aktivitást mutat élesztőgombában és származhat az élesztőgombákkal akár homológ proteineket kódoló génekből. A promoter előnyösen származhat egy az élesztőgombával homológ proteint kódoló génből. A megfelelő promoterekre példák a Saccharomyces cerevisiaeMai, TPI-, ADH- vagy PGK-promoterek.
A találmány polipeptidjét kódoló DNS-szekvencia működőképesen kell kapcsolódjon egy megfelelő terminátorhoz is, például a TPI-terminátorhoz (lásd T. Alber and G. Kawasaki, J. Mól. Appl. Génét. 1, 1982, pp. 419-434).
A találmány rekombináns expressziós vektora továbbá tartalmaz egy DNS-szekvenciát, mely képessé teszi a vektort az élesztőgombában való replikálódásra. Az ilyen szekvenciákra példák az élesztőgomba plazmid REP 1-32 μ-os replikációs génjei és a replikációs origó. A vektor tartalmazhat egy szelektálható markert is, például Schizosaccharomyces pombe TPI-gént, amint azt P. R. Russell Gene 40, 1985, pp. 125-130 leírta.
A találmány polipeptidjét kódoló DNS-szekvenciák sorrendben a promoter és a terminátor ligálásához használt eljárások és ezek az élesztőgombában való replikációhoz szükséges információt hordozó megfelelő élesztőgomba vektorokba való inzertálásához használt eljárások jól ismertek a tudomány e területén képzett szakember számára (lásd például Maniatis et al., op. cit). Érthető, hogy a vektor megszerkeszthető úgy, hogy vagy először a találmány polipeptidjét kódoló teljes DNS-szekvenciát tartalmazó DNS-szerkezetet hozzuk létre, és ezt követően ezt a ffagmentet egy alkalmas expressziós vektorba inzertáljuk, vagy folyamatosan inzertáljuk az egyes elemek (mint például a jel - vezető vagy heterológ protein) genetikai információit tartalmazó DNS-fragmenteket a ligálást megelőzően.
A találmány eljárásában használt élesztőszervezet lehet bármely alkalmas élesztőszervezet, mely a tenyésztés során nagy mennyiségben termeli a kérdéses heterológ proteint vagy polipeptidet. Az alkalmas élesztőszervezetekre példák lehetnek a Saccharomyces cerevisiae, a Saccharomyces kuyveri, Schizosaccharomyces pombe vagy a Saccharomyces uvarum élesztőfajok törzsei. Az élesztőgomba-sejtek transzformációját protoplaszt-képzéssel lehet befolyásolni (például lásd később az 1. példát), melyet a per se ismert módon végzett transzformáció követ. A sejtek szaporításához használt tápközeg bármely hagyományos tápközeg lehet, mely alkalmas élesztőszervezetek szaporítására. A szelektált heterológ proteint, melynek egy jelentős része a tápközegben lesz jelen, megfelelően előállított formában, hagyományos eljárásokkal lehet a tápközegből kinyerni. Ezen eljárások magukba foglalják az élesztőgombasejtek szeparálását a tápközegből centrifugálással vagy szűréssel, a felülúszó vagy szűrlet proteines tartalmának egy sóval, például ammónium-szulfáttal való kicsapatását, melyet számos kromatográfiás eljárással, például ioncserés kromatográfiával, affinitáskromatográfiával vagy hasonlókkal végzett tisztítás követ.
További szempontból a találmány kapcsolatos az általános formájú X4-aprotinin (1-58) egy új aprotinin analógjával, ahol X4 egy vagy több aminosavból álló N-terminális extenziót képvisel, mely aminosavak közül legalább egy a Glu-t és Asp-t tartalmazó csoportból szelektált negatív töltésű aminosav. Az X4 egy 1-6 aminosavból álló szekvenciát képvisel, előnyösen 1 -4 aminosavból állót, és a fent leírt jelentések vala6
HU 215 538 Β melyikét tartalmazhatja. A különösen előnyben részesített X4 jelentés a Glu-Leu és Glu-Leu-Asp-Leu.
A következőkben megadjuk a találmány ábráinak rövid ismertetését.
A találmányt a továbbiakban a következő példákban írjuk le a csatolt rajzokra hivatkozva, melyekben:
1. ábra: az aprotinin (1-58) DNS- és aminosavsorrendjét szemlélteti. A DNS-szekvenciában látható lépcsőzetes vonalak azokat a helyeket jelölik, ahová a szintetikus oligonukleotidokból képzett duplexeket ligái tűk.
2. ábra: A pKFN-802 és a pKFN-803 plazmid szerkezetét mutatja.
3. ábra: a pKFN-849 és a pKFN-855 plazmid szerkezetét mutatja.
4. ábra: a pKFN-849 és a pKFN-855 plazmidokból való 406 bpár hosszúságú EcoRl-Xbal fragment DNS-szekvenciáját mutatja. A nyíl azt a helyet jelöli, ahol a szekréció során a proteolitikus hasítás lezajlik.
5A és 5B ábra: a tripszin és plazmin aprotinin általi gátlását mutatja, · a szarvasmarha pankreatikus aprotinint jelöli, x a GluLeu aprotinint jelöli és Δ a GluLeuAspLeu aprotinint jelöli.
6. ábra: a pKFN-852 és pKFN-858 plazmidok szerkezetét mutatja.
7. ábra: a pKFN-852 és a pKFN-858 plazmidokból való 412 bázispár hosszúságú EcoRÍ-Xbal fragment DNS-szekvenciáját mutatja. A nyíl azt a helyet jelöli, ahol a szekréció során a proteolitikus hasítás lezajlik.
8. ábra: A pKFN-995 és a pKFN-998 plazmidok szerkezetét mutatja.
9. ábra: A pKFN-995 és a pKFN-998 plazmidokból való 412 bázispár hosszúságú EcoRl-Xbal fragment DNS-szekvenciáját mutatja. A nyíl azt a helyet jelöli, ahol a szekréció során a proteolitikus hasítás lezajlik.
NOR-760
NOR-754
NOR-354
NOR-355
NOR-356
NOR-357
NOR-358
NOR-359
NOR-360
NOR-361
CATGGCCAAAAGAAGGCCTGATTTCTGTTTGGAACCTCCATACACTGGTCC TTACATGGACCAGTGTATGGAGGT TCCAAACAGAAATCAGGCCTTCTTTTGGC ATGTAAAGCTAGAATCATCAGATACTTCTACAACG
CTTGGCGTTGTAGAAGTATCTGATGATTCTAGCT
CCAAGGCTGGTTTGTGTCAAACTT TCGTTTACGGTGGCT
CTCTGCAGCCACCGTAAACGAAAGTTTGACACAAACCAGC
GC AGAGCTA AGAG AAAC AAC TTC AAGT
AGCAGACTTGAAGTTGTTTCTCTTAG
CTGCTGAAGACTGCATGAGAACT TGTGGTGGTGCCTAAT
CTAGATTAGGCACCACCACAAGTTCTCATGCAGTCTTC
10. ábra: A pKFN-1000 és a pKFN-1003 plazmidok szerkezetét mutatja.
11. ábra: a pKFN-1000 és a pKFN-1003 plazmidokból való 412 bázispár hosszúságú EcoRl-Xbal fragment DNS-szekvenciáját mutatja. A nyíl azt a helyet jelöli, ahol a szekréció alatt a proteolitikus hasítás történik.
12. ábra: A szintetikus aprotinin (3-58) gén DNSszekvenciáját mutatja. A lépcsőzetes vonal azt a helyet jelöli a szekvencián belül, ahová a 10 szintetizált oligonukleotidból képzett 5 duplexet ligáltuk.
13. ábra: A pKFN-305 és pKFN-374/375 plazmidok szerkezetét mutatja.
14. ábra: A pMT636 plazmid szerkezetét mutatja.
15. ábra: A pLaC240 plazmid szerkezetét mutatja.
16. ábra: A pLaC240-ből való módosított vezető inzulin prekurzor gén DNS-szekvenciáját mutatja.
17. ábra: A pKFN-458 plazmidból való 508 bázispár hosszúságú £coRT-A7wjI fragment DNS-szekvencíáját mutatja, mely az MFal-jel-vezető(l—85)-öt és az inzulin analóg prekurzor B(l-29, lGlu+27Glu)AlaAlaLys-A(l — 21 )-et kódolja.
A következőkben példákkal szemléltetjük a találmányt.
7. példa
A KFN-837 élesztőgombatörzsből való
Glu-Leu-aprotinin(l-58) termelés
a) A pKFN-802 plazmid megszerkesztése
Ligálással 10 oligonukleotidból szerkesztettünk meg egy az aprotinin(l -58)-at kódoló szintetikus gént.
Az oligonukleotidokat automata DNS-szintetizálón szintetizáltuk foszforamidit kémiát alkalmazva szabályozott pórusos üveg segítségével (Beaucage, S. L. and Caruthers, Μ. H., Tetrahedron Letters 22 (1981) 1859-1869).
A következő 10 oligonukleotidot szintetizáltuk:
Öt duplexet A-E hoztunk létre a fenti 10 oligonukleotidból, melyek az 1. ábrán láthatók.
pmol-t képeztünk a duplexek mindegyikéből A-E, 5’ foszforilált oligonukleotidok megfelelő párjaiból 5 percig tartó hevítéssel 90 °C hőmérsékleten, melyet szobahőmérsékletre való hűtés követett 75 perces időtartam alatt. Az 5 duplexet összekevertük és T4 DNS-ligázzal kezeltük. A szintetikus gént a ligációs keverék 2%os agarózgélen való elektroforézisét követően izoláltuk, mint egy 191 bázispár hosszúságú sávot. A nyert szintetikus gént az 1. ábra mutatja.
A szintetikus gént ligáltuk egy a pLaC212spx3 plazmidból származó 209 bázispár hosszúságú EcoRl-NcoI fragmenthez és a pUC19 plazmid 2,7 kbázisú EcoRl-Xbal fragmentjéhez (Yanisch-Perron, C., Vieira, J. and Messing, J., Gene 33. (1985), 103-119).
A pLaC 212spx3 plazmid a WO 89/02463 számú közzétételi irat 3. példájában került leírásra.
A pLaC212spx3 plazmid 209 bpár hosszúságú TscoRI-TVcoI fragmentje egy szintetikus élesztőgomba vezető peptidet kódol.
HU 215 538 Β
A lígációs elegyet kompetens E. coli(r , m+) törzsek transzformálására használtuk és ampicillin rezisztenciára szelektáltuk. Egy 32R-Xbal-EcoRA fragment szekvenálásra (Maxam, A. and Gilbert, W., Methods Enzymol, 65 (1980) 499-560) azt mutatta, hogy a kapott telepekből származó plazmidok tartalmazzák az aprotinin (1-58) helyes DNS-szekvenciáját.
Egy pKFN-802 plazmidot izoláltunk további használat céljából. A 2. ábra mutatja a pKFN-802 plazmid szerkezetét.
b) A pKFN-849, pKFN-855 plazmidok és a KFN-837 élesztőgombatörzs megszerkesztése.
A pKFN-802 3,0 kbázisú Ncol-Stul fragmentjét ligáltuk a NOR-790/791 szintetikus ffagmentjéhez T4 DNS-ligázzal:
Μ A K R E L R
CATGGCTAAGAGAGAAT T GAGA CGATTC T C TC T TAACTCT
A ligációs elegyet a Stul restrikciós enzimmel emésztettük, hogy csökkentsük a pKFN-802 bármilyen hátterét és a nyert elegyet kompetens E. coli (ra, m+) törzsek transzformálására használtuk, ampicillin rezisztenciára való szelektálással. A nyert telepek egyikéből származó pKFN-849 plazmidról DNS-szekvenálással mutattuk ki [Sanger, F., Micklen, S., and Coulson, A. R., Proc. Natl. Acad Sci. USA 74 (1977) 5463-5467], hogy a szintetikus élesztőgomba vezető génhez helyesen fuzionálva tartalmazza a Glu-Leu-Aprotinin(l-58) DNSszekvenciát. A pKFN-849 plazmid szerkezetét a 3. ábra illusztrálja.
A pKFN-849 plazmidot vágtuk az £coRI-gyel és Xbal-gyel és a 406 bpár hosszúságú ffagmentet ligáltuk a pMT636-ból való 9,5 kbázisú Ncol-Xbal fragmenthez és a pMT636-ból való 1,4 kbázisú Ncol—EcoRI ffagmenthez, mely a pKFN-855 plazmidot eredményezte, lásd a 3. ábrát. A pMT636 plazmid a PCT/DK88/00138 számú bejelentésben került leírásra.
A pMT636 egy E. coli - S. cerevisiae hordozó vektor, mely tartalmazza a Schizosaccharomyces pombe TPI-gént (PÓT) (Russell, P. R„ Gene 40 (1985), 125-130), a
S. cerevisiae trióz-foszfát izomeráz promotert és terminátort, a TPI-t és TPIT-t (Alber, T., and Kawasaki, G., J. Mól. Appl. Gén. 1 (1982), 419-434). A pKFN-855 plazmid a következő szekvenciát tartalmazza:
TPIp- LaC212spx3 j el-vezető-Glu-Leu-aprotinin (1—58)-TPIT, ahol LaC212spx3 jel-vezető az a szintetikus élesztőgomba vezető, ami a WO 89/02463 számú közzétételi iratban került leírásra. A pKFN-849 és a pKFN-855 plazmidokból származó 406 bázispár hosszúságú EcoRI-Xbal fragment DNS-szekvenciáját a 4. ábra mutatja.
A S. cerevisiae MT663 (E2-7B XE11 -36 a/, tpi tpi, pép 4-3/pep 4-3) törzset YPGal-on (1% Bacto élesztőkivonat, 2% Bacto pepton, 2% galaktóz, 1% laktát) szaporítottuk 600 nm hullámhosszon mért 0,6 O. D. értékig.
100 ml tenyészetből gyűjtöttük össze a sejteket centrifugálással, 10 ml vízzel mostuk, újra centrifugáltuk és 1,2 M szorbitot, 25 mM Na2EDTA-t pH = 8,0 és 6,7 mg/ml ditiotreitolt tartalmazó 10 ml oldatban szuszpendáltuk. A szuszpenziót 30 °C hőmérsékleten 15 percig inkubáltuk, centrifugáltuk és a sejteket 10 ml 1,2M szorbit 10 mM Na2EDTA-t 10,1 M Na-citrátot, pH=5,8 és 2mg NovozymR-234-et tartalmazó elegyben reszuszpendáltuk. Az elegyet 30 °C hőmérsékleten 30 percig inkubáltuk, a sejteket centrifugálással összegyűjtöttük 10 ml 1,2 M szorbitot és 10 ml CAS-t (1,2 M szorbit, 10 mM CaCl2, 10 mM Tris-HCl [Tris=Tris (hidroximetil)aminometán pH=7,5] tartalmazó elegyben mostuk és 2 ml CAS-ben reszuszpendáltuk. A transzformáláshoz 0,1 ml CAS-ben reszuszpendált sejtet kevertünk megközelítően 1 pg pKFN-855 plazmiddal és a keveréket 15 percig szobahőmérsékleten hagytuk. 1 ml 20%-os polietilén glikol 4000-ret, 20 mM CaCl2-t, 10 mM CaCl2, 10 mM Tris-HCl-ot, pH=7,5 tartalmazó elegyet adtunk hozzá és a keveréket további 30 percig szobahőmérsékleten hagytuk. A keveréket centrifugáltuk és a pelletet 0,1 ml SOS-ben (1,2 M szorbit, 33% v/v YPD, 6,7 mM CaCl2, 14 pg/ml leucin) reszuszpendáltuk és 2 órán át 30 °C hőmérsékleten inkubáltuk. A szuszpenziót ezután centrifugáltuk és a pelletet 0,5 ml 1,2 M-os szorbitban reszuszpendáltuk. Ezután 52 °C hőmérsékleten 6 ml fedő agart [Sherman etal., SC tápközege, Methods in Yeast Genetics, Cold Spring Harbor Laboratory (1981), mely 1,2 M szorbitot +2,5% agart tartalmaz, adtunk hozzá, majd a szuszpenziót ugyanezen agarral szilárdított szorbittartalmú tápközeget tartalmazó lemezek tetejére öntöttük. A transzformáns telepeket 30 °C hőmérsékleten való 3 napig tartó inkubálás után újra izoláltuk és folyékony tenyészetek inokulálásához használtuk. Egy ilyen KFN-837 transzformánst szelektáltunk a további jellemzéshez.
A KFN-837 élesztőgomba-törzset YPD tápközegen [1% élesztőkivonat, 2% pepton (Difco Laboratoriestól) és 6% glükóz] szaporítottuk. A törzs tenyészetének 200 ml mennyiségét rázattuk 250 rpm fordulaton 30 °C hőmérsékleten 3 napig 600 nm hullámhosszon mért 20 O. D. értékig (a száraz élesztőgomba biomassza 18,8 g/liter). Centrifugálás után a felülúszót analizáltuk FPLC ioncserés kromatográfiával. Az élesztőgomba felülúszót 0,22 pm Millex GV szűrőegységen szűrtük keresztül és 1 ml-t 20 mM Bicine-nel (pH=8,7) equlibrált MonoS kationcserés oszlopra (0,5 χ 5,0 cm) helyeztük. Az equlibrációs pufferrel való mosás után az oszlopot equlibrációs pufferben lineáris NaCl-grádienssel (0-1 M) eluáltuk. A tripszin inhibitor aktivitást spektrofotometriás vizsgálattal [Kassel, B., Methods Enzymol. 19 (1970), 844-852) határoztuk meg az eluált frakcióban, majd a továbbiakban a 280 nm hullámhosszon mért abszorpció integrálásával a következő egyenletből:
1%
E2g()(aprotmin)=8,3
A hozam 120 mg/liter Glu-Leu-aprotinin(l -58) volt.
Az aminosavanalízishez és az N-terminális szekvenáláshoz a gradiens eluált Glu-Leu-aprotinin(l-58)at koncentráltuk és fordított fázisú oszlopon (Vydac C4 4,6x250 mm) végzett HPLC-vel tisztítottuk. Az eluálást 0,1%-os TFA-ban CHjCN-grádienssel végeztük. Az összegyűjtött frakciókat 100 pl-re koncentráltuk
HU 215 538 Β be vákuumcentrifugálással és a mintákat N-terminális szekvenáláshoz és aminosavanalízishez használtuk.
Az N-terminális szekvenálással a következő szekvenciát találtuk:
Glu-Leu-Arg-Pro-Asp-Phe-X-Leu-Glu-Pro-Pro-TyrThr-Gly-Pro-X-Lys-Ala-Arg-Ile-Ile-Arg-Tyr-Phe-TyrAsn-Ala-Lys-Ala megerősítve, hogy az N-terminális vég helyes. A félcisztein maradékokat nem határoztuk meg ezzel a módszerrel, melyeket a vak ciklusokkal (X) megegyezően a 7-es és 16-os számú maradékokra kaptunk.
Az aminosavanalízist az 1. táblázat mutatja. Ebből a táblázatból kitűnik, hogy a terméknek a várt aminosavösszetétele van, például több Glu és Leu. A kicsit alacsonyabb Ile-tartalom legvalószínűbben az Ile (18)-Ile(19) nem teljes hidrolízisének tulajdonítható (ez jól ismert a tudomány számára). Az Arg szintén egy kevéssel több, mint vártuk. Ez azonban a természetes aprotinin esetén is látható (lásd táblázat, 3. oszlop).
Ha Kassel fent említett módszerével összehasonlítjuk, a Glu-Leu-aprotinin(l-58) specifikus aktivitása megegyezik a kísérleti hibán belül a természetes aprotinin aspecifikus aktivitásával. A Glu-Leu-aprotinin (1-58) tipszin és plazmin gátlása a később leírtak szerint meghatározott titrálási görbe szempontjából elkülöníthetetlen volt a szarvasmarha pankreáz aprotininétől (Aprotinin Novo). Az enzim aprotininnel vagy annak analógjával való 30 percig tartó inkubálása után 0,6 mM S 2251-et (KabiVitrum) adtunk és az aktivitást mint a nitroanilin-termelés arányát határoztuk meg. Az aktivitást az aprotininkoncentráció függvényeként ábrázoltuk az 5A és 5B ábrákban. Mind a 3 inhibitorral mindkét enzim teljes gátlását figyeltük meg.
2. példa
A Glu-Leu-Asp-Leu-aprotinin(l -58)
KFN-840 élesztőgombatörzsben való termelése
Egy a Glu-Leu-Asp-Leu-aprotinin(l-58)-at kódoló szintetikus gént az 1. példában leírtak szerint szerkesztettük meg. A NOR.793/794 szintetikus fragmentet használtuk a NOR-790/791 helyett:
MAKRELDLR
CATGGCTAAGAGAGAATTGGACTTGAGA CGATTC TC T CT TAACC TGAACTCT
A pUC19 eredetű pKFN-852 plazmidot a pKFN-849 plazmidhoz hasonló módon szerkesztettük meg.
Az 1. példa eljárását követve egy pKFN-858 plazmidot nyertünk, mely a következő szerkezetet tartalmazza: TPIp-La C212spx3-jel-vezető-GluLeuAspLeu-aprotinin(l-58)-TPIT.
A pKFN-852 és pKFN-858 plazmidok megszerkesztését a 6. ábra illusztrálja. A pKFN-852 és pKFN-858 plazmidokból való 412 bázispár hosszúságú EcoRI- Xbal fragment DNS-szekvenciáját a 7. ábrában adtuk meg.
A pKFN-858 plazmidot az MT663 élesztőgombatörzsbe transzformáltuk, mely a KFN-840 élesztőgomba-törzset eredményezte. A KFN-840 200 ml tenyészetét YPD-tápközegben rázattuk 250 rpm fordulaton 30 °C hőmérsékleten, 3 napig 600 nm hullámhosszon mért 18 O. D. értékig (a száraz biomassza 16,7 mg/liter). A felülúszó FPLC ionkromatográfiája, ahogy fent leírtuk, 90 mg/liter Glu-Leu-Asp-Leu-aptotinin(l-58) hozamot eredményezett.
Az aminosav savanalízis az 1. táblázatban látható és megerősíti a várt aminosav-összetételt.
A Glu-Leu-Asp-Leu-aprotinin(l-58) tripszin és plazmin gátlási titrációs görbéi elkülöníthetetlenek voltak a szarvasmarha pankreáz aprotininétől (Aprotinin Novo), lásd az 5A és 5B ábrákat.
3. példa
A KFN-1006 élesztőgomba-törzsből való aprotinin(l-58) termelése
A pKFN-995 plazmidot a pKFN-802 plazmidból szerkesztettük meg, a 3,0 kbázis hosszúságú Ncől-Stul fragment NOR—848/849 szintetikus fragmenthez való ligálásával:
MA KE LEKRR
CATGGCTAAGGAATTGGAGAAGAGAAGG CGATTC C T TAACC TCTTCTCTTCC
A ligációs elegyet a Ball restrikciós enzimmel emésztettük, hogy csökkentsük a pKFN-802 bármilyen hátterét.
A pKFN-998 élesztőgomba expressziós plazmidot alapjában véve az 1. példában leírtak szerint szerkesztettük meg, amint azt a 8. ábra mutatja:
TPIP-LaC212spx3 jel-vezető(l-47) Lys-Glu-LeuGlu (Lys-Arg)-Aprotinin(l -58)-ΤΡΙγ
A pKFN-995 és pKFN-998 plazmidokból való 412 bázispár hosszúságú EcoBl-Xbal fragment DNSszekvenciáját a 9. ábrán adtuk meg.
A pKFN-998 plazmidot az MT663 élesztőgombatörzsbe transzformáltuk az 1. példában leírtak szerint, mely a KFN-1006 élesztőgombatörzset eredményezte. A transzformált kKFN-1006 törzs YPD tápközegben való tenyésztését és az aprotinin(l-58) felülúszóban való analízisét a fent leírtak szerint végeztük.
Az aporintin(l-58)-hozam 30 mg/liter volt.
A tisztított anyag aminosavanalízise megerősítette a várt aminosav-összetételt.
4. példa
A KFN-1008 élesztőgomba-törzsből való aprotinin(l-58)-termelés
A pUC eredetű pKFN-1000 plazmidot az 1. példában leírtak szerint szerkesztettük meg a pKFN-802 plazmid 3,0 kbázisú Ncől-Stul fragment NOR-850/851 szintetikus fragmenthez való ligálásával:
MAERLE K RR
CATGGCTGAGAGATTGGAGAAGAGAAGG
CGACTCTCTAACCTCTTCTCTTCC
Az 1. és 3. példa eljárását követve egy pKFN-1003 élesztőgomba expressziós plazmidot nyertünk, mely a következő szerkezetet tartalmazta:
TPIP-LaC212spx3-jel-vezető(l -47)-GluArgLeu Glu (Lys-Arg)-aprotinin(l-58)-TPIT.
HU 215 538 Β
A pKFN-1000 és pKFN-1003 plazmidok szerkezetét a 10. ábra illusztrálja. A pKFN-1000 és pKFN-1003 plazmidokból való 412 bázispár hosszúságú EcoRI-Xbal fragment DNS-szekvenciáját all. ábrán adtuk meg.
A pKFN-1003 plazmidot az MT663 élesztőgombatörzsbe transzformáltuk a fent leírtak szerint, mely a KFN-1008 élesztőgomba-törzset eredményezte.
A transzformált KFN-1008 törzs YPD-tápközegben való tenyésztését és az aprotinin (1-58) felülúszóban való analízisét a fent leírtak szerint végeztük. Az aprotinin(l -58)-hozam 020 mg/liter volt.
A tisztított anyag aminosavanalízise igazolta a várt aminosav-összetételt. Továbbá a teljes elsődleges szerkezet igazolását a redukált piridiletilált polipeptid gáz fázisú szekvenálásával nyertük.
Továbbá a rekombináns aprotinin(l-58)tripszinnel szembeni specifikus gátló aktivitása megkülönböztethetetlen volt a szarvasmarha pankresz aprotininétól.
5. példa
A KFN- 783 élesztőgomba-törzsből való aprotinin(1 - 58)-termelés
A pKFN-802 plazmidot (lásd az 1. példát) £coRIgyel és ΑόαΙ-gyel vágtuk és a 400 bázispár hosszúságú ífagmentet a pMT636 plazmidból származó 9,5 kbázisú Ncől-Xbal fragmenthez és a pMT636 plazmidból származó 1,4 kbázisú Ncol-EcoRl fragmenthez ligáltuk, mely a pKFN-803 plazmidot eredményezte, lásd a 2. ábrát. A pKFN-803 a következő szerkezetet tartal15 mázzá:
TPIP-LaC212spx3 jel-vezető-aprotinin(l -58)-TPIT.
1. táblázat Aminosav-összetétel
Aminosav Aprotinin Elméleti Aprotinin Mért KFN-83 7 Mért KFN-840 Mért
Asp 5 5,00 4,95 5,93 (+1)
Thr 3 2,86 2,84 2,85
Ser 1 0,94 0,92 0,93
Glu 3 3,04 3,97(+1) 3,99(+1)
Pro 4 4,18 3,90 3,86
Gly 6 5,95 5,91 5,94
Alá 6 5,85 5,92 5,94
Cys 6 5,20 5,21 5,22
Val 1 0,99 1,00 1,01
Met 1 0,83 0,65 0,67
He 2 1,39 1,58 1,58
Leu 2 1,97 3,00(+1) 4,00(+2)
Tyr 4 3,84 3,74 3,71
Phe 4 3,98 3,94 3,92
Lys 4 3,92 3,99 3,99
Arg 6 6,39 6,35 6,34
Összesen 58 56,33 57,87 59,88
A fent leírtak szerint transzformáltuk az MT663 élesztőgomba-törzsbe a pKFN-803 plazmidot. A fent le- 50 írtak szerint tenyésztettük a transzformált KFN-783 törzset YPD-tápközegben és a felülúszó FPLC ionkromatográfiáját a fent leírtak szerint végezzük. Az aprotinin (1-58) mennyiségi meghatározását a szarvasmarha pankreázból tisztított autentikus aprotinin standardizált 55 oldatának kromatográfiájával való összehasonlítással végeztük. Az aprotinin(l-58) hozama 1 mg/liter alatt volt.
6. példa
Az aprotinin(3—58) termelése
Az aprotinin(3-58) szintetikus génjét ligálással szerkesztettük meg, számos oligonukleotidból.
HU 215 538 Β
Az 1. példában leírtak szerint szintetizáltuk a következő 10 oligonukleotidot:
I: AAAGAGATTTCTGTTTGGAACCTCCAT ACACTGGTCC 35-mer II: TTACATGGACCAGTGTATGGAGGTTCCA AACAGAAACT 38-mer III: ATGTAAAGCTAGAATCATCAGATACTTCTACAACG 35-mer IV: CTTGGCGTTGTAGAAGTATCTGATGATT CTAGC 34-mer V: CCAAGGCTGGTTTGTGTCAAACTTTCG TTTACGGTGGCT 39-mer VI: CTCTGCAGCCACCGTAAACGAAAGTTTGACACAAACCAGC 40-mer VII: GCAGAGCTAAGAGAAACAACTTCAAGT 27-mer VIII: AGCAGACTTGAAGTTGTTTCTCTTAG 26-mer IX: CTGCTGAAGACTGCATGAGAACTTGTGG TGGTGCCTAAT 39-mer X: CTAGATTAAGGCACCACCACAAGTTCT CATGCAGTCTTC 38-mer
Öt duplexet A-E hoztunk létre a fenti oligonukleotidokból, amint azt a 12. ábra mutatja.
A duplexek A-E mindegyikéből 20 pmol mennyiséget hoztunk létre az 5’-foszforilált oligonukleotidok I-X megfelelő párjaiból 5 percig tartó 90 °C hőmérsékleten való hevítéssel, melyet 75 percig tartó szobahőmérsékletre való hűtés követett. Az 5 duplexet összekevertük és T4 ligázzal kezeltük. A szintetikus gént mint egy 176 bázispár hosszúságú sávot izoláltuk a ligációs keverék 2%-os agarózgélen való elektroforézise után. A nyert szintetikus gént a 12. ábrán mutatjuk.
A szintetikus 176 bázispár hosszúságú gént ligáitok egy a S. cerevisiae al párosodási faktor jelvezető (1-85) szekvenciát [Markussen, J. et al., ProteinEngineering 1. (1987), 215-223] kódoló pKFN-9 plazmidból származó 330 bázispár hosszúságú EcoRI-Hgal ffagmenthez és a pUC19 (Yanisch-perron, C., Vieira, J. and Messing, J., Gene 33 103-119) plazmidból származó 2,7 kbázisú EcoRl-Xbal ffagmenthez. Az MFal vezető szekvencia után közvetlenül egy Hga\ helyet tartalmazó pKFN-9 szerkezete az EP 214826 számú szabadalomban került leírásra.
A ligációs keveréket egy kompetens E. coli (r~, m+) törzs transzformálására használtuk ampicillin rezisztenciára való szelektálással. A 32Ρ-Λ2>αΙ fragment szelektálása [Maxam, A., and Gilbert, W., Methods Enzymol 65 (1980), 499-560) azt mutatta, hogy a nyert telepekből származó plazmidok az aprotinin(3-58) helyes DNS-szekvenciáját tartalmazzák.
Egy plazmidot, a pKFN305 plazmidot, szelektáltok további használat céljából. A pKFN305 plazmid szerkezetét a 13. ábrán illusztráltok.
A pKFN305 plazmidot £coRI-gyel és Xbál-gyel vágtuk és a 0,5 kbázisú fragmentet ligáitok a pMT636 plazmidból származó 9,5 kbázisú Ncol-Xbal fragmenthez és a pMT636 plazmidból származó 1,4 kbázisú Ncol-EcoRl ffagmenthez, mely a pKFN374 plazmidot eredményezte, lásd a 13. ábrát. A pMT636 plazmidot a pMT608 plazmidból a LEU-2 gén deléciója után és a pMT479 plazmidból szerkesztettük meg, lásd a 14. ábrát. A pMT608 plazmid az EP 195691 számú szabadalomban került leírásra. A pMT479 plazmid az EP 163529 számú szabadalomban került leírásra. A pMT479 plazmid tartalmazza a Schizosaccharomyces pombe TPI-gént (PÓT), a S. cerevisiae triózfoszfát izomeráz promotert és terminátort, a TPIP-t és a TPIT-t [Alber, T. and Kawasaki, G., J. Mól. Appl. Gén. 1 (1982), 419-434], A pKFN374 plazmid a következő TPIp-MF 1 -j el-vezető( 1 - 85)-aprotinin(3 - 5 8)-TPIT, ahol MFal a 5. cerevisiae 1 párosodási faktort kódoló szekvencia [Kuijan, J. and Herskowitz, I., Cell 30 (1982), 933-943), ajel-vezető(l-85) azt jelenti, hogy a szekvencia tartalmazza az MFal jel vezető szekvencia első 85 aminosavmaradékát és az aprotinin(3-58) egy az első két aminosavmaradékkal nem rendelkező aprotininszármazékot kódoló szintetikus szekvencia.
A S. cerevisiae MT663 törzsét (E2-7B XE11 -36 a/α Δ tpiAtpi, pep4-3/pep4-3) YPD-tápközegen (1% Bacto élesztőkivonat, 2% Bacto pepton, 2% glaktóz, 1% laktát) szaporítottuk 600 nm hullámhosszon mért 0,6 O. D. értékig.
A nyert tenyészet 100 ml mennyiségéből a sejteket centrifugálással összegyűjtöttük, 10 ml vízzel mostok, újra centrifugáltuk és 10 ml 1,2 M szorbitot, 25 mM Na2EDTA-t (pH=8,0) és 6,7 mg/ml ditiotreitolt tartalmazó oldatban reszuszpendáltuk. A szuszpenziót 15 percig 30 °C hőmérsékleten inkubáltok, centrifugáltuk, és a sejteket 10 ml 1,2 M szorbitot, 10 mM Na2EDTA-t, 0,1 M nátrium-citrátot (pH=5,8) és 2 mg NovozymR 234-et tartalmazó oldatban reszuszpendáltok. A szuszpenziót 30 percig 30 °C hőmérsékleten inkubáltok, a sejteket centrifugálással összegyűjtöttük 10 ml 1,2 ml 1,2 M szorbit és 10 ml CAS {1,2 M szorbit, 10 mM CaCl2, 10 mM Tris-HCl [Tris - Tris(hidroximetil)aminometán]pH=7,5} elegyében mostok és 2 ml CAS-ben reszuszpendáltuk. A transzformációhoz a 0,1 ml CAS-ben reszuszpendált sejteket összekevertük megközelítően 1 pg pKFN 374 plazmiddal és 15 percig szobahőmérsékleten hagytok. Egy ml 20% polietilén glikol 4000, 10 mM CaCl2, 10 mM Tris HC1 (pH=7,5) elegyét adtuk hozzá, és a keveréket további 30 percig szobahőmérsékleten hagytok. A keveréket centrifugáltok és a pelletet 0,1 ml SOS-ben (1,2 M szorbit, 33% v/v YPD, 6,7 mM CaCl2, 14 pg/ml leucin) reszuszpendáltuk és 2 órán keresztül 30 °C hőmérsékleten inkubáltok. A szuszpenziót ekkor centrifugáltuk és a pelletet reszuszpendáltuk 0,5 ml 1,2 M-os szorbitban. Ezután 6 ml fedő agart (Sherman et al. -féle SC-tápközeg (Methods in Yeast Genetics, Cold Spring Harbor Laboratories, 1981), mely 1,2 M szorbitot +2,5% agart tartalmaz, adtunk 52 °C hőmérsékleten hozzá, és a szuszpenziót ugyanezen agarral szi11
HU 215 538 Β szorbittartalmú tápközeget tartalmazó lemezek felületére öntöttük. A transzformáns telepeket 30 °C hőmérsékleten 3 nap után újra izoláltuk és folyadéktenyészetek indításához használtuk őket. Egy ilyen KFN-322 transzformánst szelektáltunk további jellemzés céljából.
A KFN-322 élesztőgomba-törzset YPD-tápközegen szaporítottuk [1% élesztőkivonat, 2% pepton (a Difco Laboratoriestól) és 2% glükóz], A törzs 10 ml tenyészetét 30 °C hőmérsékleten rázattuk, 600 nm hullámhosszon mért 32 O. D. értékig. Centriíugálás után a felülúszót FPLC ioncserés kromatográfiával vizsgáltuk. Az élesztőgomba felülúszót 0,22 pm-es MillexR GV szűrőegységen szűrtük át és 1 ml-t adtunk egy MonoS kationcserés oszlopra (0,5x5 cm), melyet 20 mM-os Bicine-nel (pH=8,7) equlibráltunk. Az equlibrációs pufferrel való mosás után az oszlopot equlibrációs pufferben levő lineáris NaCl-grádienssel (0-1 M) eluáltuk.
A tripszin inhibitor-aktivitás mennyiségi meghatározását az eluált frakciókban spektrofotometriás vizsgálattal végeztük, majd a továbbiakban a 280 nm hullámhosszon mért abszorpció integrálásával a következő egyenletből:
10/ E280 (aProt'n'n) = 83
A hozam körülbelül 3 mg/liter aprotinin(3-58) volt.
7. példa
Az inzulin prekurzor B(l-29)-AlaAlaLys-A(l—21) termelése a LaCl667 élesztőgomba- törzsből
A WO 89/02463 számú iratban leírt pLac 212spx3 plazmidból izoláltuk az 589 bpár hosszúságú
Sphl-Ncol és a 172 bpár hosszúságú Hpal-Xbal fragmenteket. Ezeket a fragmenteket kapcsoltuk a szintetikus adapterhoz:
MA KE LE KRFV NOR-962 CATGGCTAAGGAATTGGAAAAGAGATT CGTT NOR-964 CGATTCCTTAACCTTTTCTCTAAGCAA és a pMT-743 plazmidból való a WO 89/02463 számú iratban leírt 10 kbázisú Xbal-Sphl ffagmenthez, mely a pLaC240 plazmidot eredményezte (lásd a 15. ábrát). A pLaC240 plazmidból való módosított vezető inzulin prekurzor gén DNS-szekvenciáját a 16. ábra mutatja.
Az MT 663 élesztőgomba-törzs pLaC240 plazmiddal való transzformálása egy inzulin prekurzort szekretáló törzshöz, a LaC1667-hez (MT663/PlaC240) vezetett, melynek produktivitása 165%-a a WO 89/02463 számú iratban leírt módosítás nélküli vezető inzulin prekurzort kódoló gént tartalmazó LaC1414 (MT663/pLaC212spx3) törzshöz viszonyítva.
A következő 10 oligonukleotidot szintetizáltuk:
8. példa
Az inzulin analóg prekurzor B(l-29, lGlu + 27Glu)-AlaAlaLys-A(l-21) termelése a KFN—470 élesztőgomba-törzsből
Tíz oligonukleotid ligálásával egy az inzulin analóg prekurzor B(l—29, lGlu+27Glu)-AlaAlaLys-A (1—21)-et kódoló szintetikus gént szerkesztettünk meg.
A B(l-29, 1G1u+27G1u) a humán inzulin B láncának (melyben Glu maradékokkal helyettesítették a BIPhe és a B27Thr maradékokat) első 29 aminosav-maradékát tartalmazó polipeptidet juttatja kifejezésre. Az A (1-21) a humán inzulin A lánca. Az AlaAlaLys tripeptid a
B29Lys maradékot kapcsolja az AlGly maradékhoz.
NOR-542: AAAGAGAAGTTAACCAACACTTGTGCGGTTCCCAC NOR-543: AACCAAGTGGGAACCGCACAAGTGTTGGTTAACTTC NOR- 69: TTGGTTG AAGCTTTGTACTTGGTTTGCGGTGAAAGAGGTTTCT NOR-73: GTAGAAGAAACCTCTTTCACCGCAAACCAAGTACAAAGCTTC NOR-315: TCTACGAACCTAAGGCTGCTAAGGGTATTGCT NOR-316: ATTGTTCGACAATACCCTTAGCAGCCTTACGTTC
NOR-70: GAACAATGCTGTACCTCCATCTGCTCCTTGTACCAAT NOR-71: TTTTCCAATTGGTACAAGGAGCAGATGGAGGTACAGC NOR-78: TGGAAAACTACTGCAACTAGACGCAGCCCGCAGGCT NOR- 72: CT AGAGCCTGCGGGCTGCGTCTAGTTGC AGTAG
Öt duplexet képeztünk a fenti 10 oligonukleotidból és a duplexeket az 1. példában leírtakhoz hasonló módon ligái tűk.
A szintetikus 175 bázispár hosszúságú gént ligáltuk a S. cerevisiae 1 párosodási faktor jel-vezető (1-85) szekvenciát. [Markussen, J. et al., Protein Engineering 1 (1987), 215-223] kódoló pKFN-9 plazmidból való 330 bázispár hosszúságú EcoBA-Hgal ffagmenthez és a pUC19 plazmid [Yanisch-Perron, C., Vieira, J. and Messing, J., Gene 33 (1985), 103-119] 2,7 kbázisú EcoRI-Xbal fragmentjéhez.
A ligációs keveréket egy kompetens E. coli (r~m+) törzs transzformálására használtuk, ampicillin-rezisztenciára szelektálva. A32 P-YfeaI-£coRI fragment szekvenálása [Maxam, A. and Gilbert, W., Methods Enzymol, 65 (1980) 499-560] azt mutatta, hogy a ka55 pott telepekből származó plazmidok tartalmazták az inzulin analóg prekurzor helyes DNS-szekvenciáját.
Egy plazmidot, a pKFN-456 plazmidot szelektáltuk további használatra.
Az 1. példa eljárását követve egy élesztőgomba 60 expressziós plazmidot, a pKFN-458 plazmidot nyer12
HU 215 538 Β tűk, mely a következő expressziós kazettát tartalmazza: TPIp-MF 1-jel-vezető (l-85)-B (1-29, 1G1u+27G1u)AlaAlaLys-A (1-21)-TPIT.
A pKFN-456 és pKFN-458 plazmidokból származó 508 bázispár hosszúságú EcoRI-Xbal fragment DNS-szekvenciáját a 17. ábrában adtuk meg.
A pKFN-458 plazmidot az MT663 élesztőgombatörzsbe transzformáltuk a fent leírtak szerint, mely a KFN-470 élesztőgomba-törzset eredményezte.
A KFN-470 transzformált törzs YPD-tápközegen való tenyésztését a fent leírtak szerint végeztük. A felülúszóban levő inzulin analóg prekurzor hozamot a leírtak szerint [L. Snel et al., Chromatographia 24 (1987), 329-332) HPLC-vel határoztuk meg.
A 2. táblázatban az inzulin analóg prekurzorok a B (1-29, lGlu+27Glu)-AlaAlaLys-A(l-21) ésB(l-29, 27Glu)-AlaAlaLys-A(l-21) és az inzulin prekurzor B(l-29)-AlaAlaLys-A(l-21) expressziós szintjeit hasonlítottuk össze. Mind a három prekurzort ugyanabban a gazdatörzsben, az MT663-ban expreszszáltuk és az expressziós kazettát tartalmazó plazmidokat tartalmazó
S. pombe TPI-génnel transzformáltuk. Az expressziós kazetta:
TPIp-MF 1-jel-vezető (l-85)-prekurzor-TPIT.
2. táblázat
Élesztőgomba transzformánsokban lévő inzulin és inzulin analóg prekurzorok expressziós szintjei
Prekurzor Expressziós szint*
B(1 -29)-AlaAlaLys-A(l -21) 100%
B(1 -29), 27Glu)-AlaAlaLys-A(l-21) 148%
B( 1 -29,1 Glu+27Glu)-AlaAlaLys-A( 1-21) 479%
*Az expressziós szinteket az inzulin prekurzor B(l-29)-AlaAlaLysA( 1 -21) expressziós szintjének százalékában adtuk meg, melyet önkényesen 100%-nak vettünk.

Claims (10)

SZABADALMI IGÉNYPONTOK
1. Eljárás heterológ protein vagy polipeptid előállítására élesztőben, azzal jellemezve, hogy valamely, a jel peptid - vezető peptid -X1 -X2 -X3 -X4 - heterológ proteinszerkezettel rendelkező polipeptidet - ahol X1 peptidkötés, vagy egy vagy több, azonos vagy különböző aminosav,
X2 és X3 azonos vagy különböző bázikus aminosav, és jelentésük Lys vagy Arg, és együttesen egy élesztőgomba-feldolgozási helyet határoznak meg, és
X4 peptidkötés, vagy egy vagy több, azonos vagy különböző aminosav, azzal a feltétellel, hogy X1 és/vagy X4 legalább egy aminosav, és ezen aminosavak legalább egyike negatív töltésű aminosav, így Glu vagy Asp, továbbá azzal a feltétellel, hogy ha X1 peptidkötés, akkor X4 Glu-Ala-Glu-Ala, Glu-Ala-Glu-Ala-Glu-Ala, Glu-AlaGlu-Ala-Ser-Leu-Asp-Lys-Arg és Glu-Ala-Glu-AlaSer-Leu-Asp peptidtől eltérő, és ha X4 peptidkötés, akkor X1 Ser-Leu-Asp peptidtől eltérő, továbbá azzal a feltétellel, hogy a jel peptid - vezető peptid -X1 peptid jelentése az alábbi szekvenciáktól eltérő: α-faktor jel és vezető (l-85)-Glu-Ala-Glu-Ala-SerLeu-Asp, α-faktor jel és vezető (l-85)-Pro-Leu-Asp, α-faktor jel és vezető (l-85)-Gln-Leu-Asp, Met-Lys-Trp-Val-Ser-Phe-Ile-Ser-Leu-Leu-Phe-LeuPhe-Ser-Ser-Ala-Tyr-Ser-Arg-Ser-Leu-Asp, kódoló DNS-szerkezetet tartalmazó vektorral transzformáit élesztőt a heterológ protein vagy polipeptid kifejezésének megfelelő körülmények között alkalmas tápközegben tenyésztünk, majd a kapott proteint vagy polipeptidet kinyerjük a tápközegből.
(Elsőbbsége: 1989.03. 03.)
2. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X1 helyén Glu vagy Asp aminosavat tartalmazó polipeptidet kódol.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
3. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X1 helyén BA aminosavakat tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A Glu vagy Asp, és B Glu, Asp, Val, Gly vagy Leu.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
4. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X1 helyén CBA aminosavakat tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A Glu vagy Asp, B Glu, Asp, Val, Gly vagy Leu, és C Glu, Asp, Pro, Gly, Val, Leu, Arg vagy Lys.
(Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
5. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X1 helyén DCBA négy aminosavból álló szekvenciát tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A, B és C a 4. igénypontban megadott, és D jelentése valamely, a 4. igénypontban C-ként megadott aminosav.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
6. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X1 helyén EDCBA öt aminosavból álló szekvenciát tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A, B, C és D az 5. igénypontban megadott, és E jelentése valamely, a 4. igénypontban C-ként megadott aminosav.
(Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
7. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X1 helyén FEDCBA hat aminosavból álló szekvenciát tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A, B, C, D és E a 6. igénypontban megadott, és F jelentése valamely, a 4. igénypontban C-ként megadott aminosav. (Elsőbbsége: 1989.03.03.)
8. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X4 helyén Glu vagy Asp aminosavat tartalmazó polipeptidet kódol.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
HU215 538 B
9. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X4 helyén AB aminosavakat tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A Glu vagy Asp, és B Glu, Asp, Val, Gly vagy Leu.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
10. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzaljellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X4 helyén ABC aminosavakat tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A Glu vagy Asp, B Glu, Asp, Val, Gly vagy Leu, és C Glu, Asp, Pro, Gly, Val, Leu, Arg vagy Lys.
(Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
11. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X4 helyén ABCD négy aminosavból álló szekvenciát tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A, B és C a 10. igénypontban megadott, és D jelentése valamely, a 10. igénypontban C-ként megadott aminosav.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
12. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X4 helyén ABCDE öt aminosavból álló szekvenciát tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A, B, C és D a 11. igénypontban megadott, és E jelentése valamely, a 10. igénypontban C-ként megadott aminosav. (Elsőbbsége: 1989. 03.03.)
13. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely X4 helyén ABCDEF hat aminosavból álló szekvenciát tartalmazó polipeptidet kódol, ahol A, B, C, D és E a 12. igénypontban megadott, és F jelentése valamely, a 10. igénypontban C-ként megadott aminosav.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
14. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol X1 és/vagy X4 egynél több aminosavat jelent, a közvetlenül X2 mellett álló aminosav Glu vagy Asp, a közvetlenül X3 mellett álló aminosav Glu vagy Asp, vagy mindkettő Glu vagy Asp. (Elsőbbsége: 1989.03.03.)
15. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol ha X1 és/vagy X4 egynél több aminosavat jelent, vagy X1 vagy X4, vagy mindkettő egynél több Glu-t vagy Asp-t tartalmaz.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
16. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol X1 és X4 egyaránt egy vagy egynél több aminosavat jelent.
(Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
17. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol X1 és X4 szimmetrikusan azonos.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
18. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol X4 egy vagy több aminosavat jelent, és X4 és a heterológ protein N-terminálisa között még egy további feldolgozási hely van.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
19. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol a jel peptid az afaktor jel peptid, az egémyál amiláz, a karboxipeptidáz vagy az élesztő BARI szignál peptidje.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
20. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol a vezető peptid valamely természetes vezető peptid, előnyösen az afaktor vezető peptid.
(Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
21. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan DNS-t tartalmazó élesztőt tenyésztünk, mely olyan polipeptidet kódol, ahol a vezető peptid valamely szintetikus vezető peptid, előnyösen az
A. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-Glu-Ile-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Gly-Phe-Leu-Asp-Leu-Ala-Gly-GluGly-Ile-Ala-Glu-Asn-Thr-Thr-Leu-Ala,
B. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-Glu-Ile-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Ile-Ala-Glu-AsnThr-Thr-Leu-Ala,
C. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-Glu-Ile-Pro-Ile-Ala-Glu-Asn-Thr-Thr-Leu-Ala,
D. Ala-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-Glu-Ile-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Ile-Ala-Glu-AsnThr-Thr-Leu-AIa-Asn-Val-Ala-Met-Ala vagy
E. Gln-Pro-Val-Thr-Gly-Asp-Glu-Ser-Ser-Val-Glu-Ile-Pro-Glu-Glu-Ser-Leu-Ile-Ile-Ala-Glu-AsnThr-Thr-Leu-Ala-Asn-Val-Ala-Met-Ala.
(Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
22. Az 1. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy polipeptidként vagy heterológ proteinként aprotinint vagy más proteáz inhibitort, inzulint vagy inzulin prekurzort, humán vagy szarvasmarha növekedési hormont, interleukint, szövet plazminogén aktivátort, glükagont, VII, VIII vagy XIII faktort, vérlemezkéből származó növekedési faktort, enzimeket, vagy ezen proteinek valamely funkcionális analógját 55 állítjuk elő.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
23. A 22. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy polipeptidként aprotinint vagy valamely funkcionális analógját állítjuk elő.
60 (Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
HU 215 538 Β
24. A 22. igénypont szerinti eljárás azzaljellemezve, hogy olyan polipeptidet állítunk elő, ahol X1 Glu-ArgLeu-Glu vagy Lys-Glu-Leu-Glu.
(Elsőbbsége: 1989. 03. 03.)
25. A 22. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan polipeptidet állítunk elő, ahol X4 Glu-Leu vagy Glu-Leu-Asp-Leu.
(Elsőbbsége: 1989. 10.06.)
26. A 22. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy polipeptidként vagy heterológ proteinként inzulint vagy inzulin prekurzort vagy funkcionális analógjait állítjuk elő.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
27. A 26. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan polipeptidet állítunk elő, ahol X1 Glu-ArgLeu-Glu vagy Lys-Glu-Leu-Glu.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
28. A 26. igénypont szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy olyan polipeptidet állítunk elő, ahol X4 Glu. (Elsőbbsége: 1989.03.03.)
29. A 26-28. igénypontok bármelyike szerinti eljá5 rás azzal jellemezve, hogy polipeptidként vagy heterológ proteinként az inzulin analóg prekurzor B (l-29)-Ala-Ala-Lys-A(l-29)-t állítjuk elő, ahol X1 Lys-Glu-Leu-Glu.
(Elsőbbsége: 1989.03.03.)
10 30. A 26-28. igénypontok bármelyike szerinti eljárás azzal jellemezve, hogy polipeptidként vagy heterológ proteinként az inzulin analóg prekurzor B (l-29)-Ser-Asp-Asp-Ala-Lys-A(l-29)-t állítjuk elő, ahol X1 Lys-Glu-Leu-Glu.
HU902376A 1989-03-03 1990-03-01 Eljárás heterológ proteinek előállítására új élesztő kifejező rendszerrel HU215538B (hu)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK105489A DK105489D0 (da) 1989-03-03 1989-03-03 Polypeptid
DK494189A DK494189D0 (da) 1989-10-06 1989-10-06 Polypeptid

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU902376D0 HU902376D0 (en) 1991-11-28
HUT58370A HUT58370A (en) 1992-02-28
HU215538B true HU215538B (hu) 1999-01-28

Family

ID=26065137

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU902376A HU215538B (hu) 1989-03-03 1990-03-01 Eljárás heterológ proteinek előállítására új élesztő kifejező rendszerrel
HU95P/P00592P HU211600A9 (en) 1989-03-03 1995-06-29 Yeast expressing system

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU95P/P00592P HU211600A9 (en) 1989-03-03 1995-06-29 Yeast expressing system

Country Status (23)

Country Link
US (3) US5395922A (hu)
EP (1) EP0461165B2 (hu)
JP (1) JP2609367B2 (hu)
KR (1) KR970005928B1 (hu)
AT (1) ATE110414T1 (hu)
AU (1) AU624694B2 (hu)
CA (1) CA2050336C (hu)
CZ (1) CZ285239B6 (hu)
DD (1) DD296965A5 (hu)
DE (1) DE69011853T3 (hu)
DK (2) DK105489D0 (hu)
ES (1) ES2062514T5 (hu)
FI (1) FI104985B (hu)
HU (2) HU215538B (hu)
IE (1) IE66469B1 (hu)
IL (1) IL93609A (hu)
NO (2) NO304236B1 (hu)
NZ (1) NZ232742A (hu)
PL (1) PL163532B1 (hu)
RU (1) RU2194758C2 (hu)
UA (1) UA27706C2 (hu)
WO (1) WO1990010075A1 (hu)
ZA (1) ZA901476B (hu)

Families Citing this family (72)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5591603A (en) * 1987-08-28 1997-01-07 Novo Nordisk A/S Process for preparing aprotinin and aprotinin analogs in yeast cells
DK105489D0 (da) * 1989-03-03 1989-03-03 Novo Nordisk As Polypeptid
JPH04507341A (ja) * 1989-05-19 1992-12-24 バイオテクノロジー リサーチ アンド ディヴェロプメント コーポレーション in vivo翻訳後修飾部位を有する融合タンパク質及び製造及び精製方法
GB9015825D0 (en) * 1990-07-18 1990-09-05 Ciba Geigy Ag In vitro processing of fusion proteins
DK300090D0 (da) * 1990-12-19 1990-12-19 Novo Nordisk As Fremgangsmaade til fremstilling af leadersekvenser
GB9106185D0 (en) * 1991-03-22 1991-05-08 Wellcome Found Biological control agents
FR2686899B1 (fr) * 1992-01-31 1995-09-01 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveaux polypeptides biologiquement actifs, leur preparation et compositions pharmaceutiques les contenant.
FI92601C (fi) * 1992-03-11 1994-12-12 Marja Makarow Menetelmä hyötyproteiinien erittämiseksi hiivoista
US5521086A (en) * 1993-09-16 1996-05-28 Cephalon, Inc. Secretion sequence for the production of a heterologous protein in yeast
DE4417353A1 (de) * 1994-05-18 1996-01-25 Bayer Ag Verfahren zur Herstellung von rekombinantem Aprotinin und rekombinanten Aprotinin Varianten mit der natürlichen N-terminlaen Sequenz
US6500645B1 (en) 1994-06-17 2002-12-31 Novo Nordisk A/S N-terminally extended proteins expressed in yeast
ZA954983B (en) * 1994-06-17 1996-02-14 Novo Nordisk As N-terminally extended proteins expressed in yeast
US5861267A (en) * 1995-05-01 1999-01-19 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Methods, nucleotide sequences and host cells for assaying exogenous and endogenous protease activity
ZA9610456B (en) * 1995-12-20 1997-06-20 Novo Nordisk As N-terminally extended proteins expressed in yeast
US5851800A (en) * 1996-05-14 1998-12-22 Pharmacia & Upjohn Ab Process for producing a protein
DE19629982A1 (de) 1996-07-25 1998-01-29 Bayer Ag Aprotinin-Varianten mit verbesserten Eigenschaften
EP1365028B1 (en) * 1996-12-13 2009-03-18 Novartis Vaccines and Diagnostics, Inc. Method for expression of PDGF or IGF proteins in yeast
EP0946735B1 (en) * 1996-12-20 2006-02-08 Novo Nordisk A/S N-terminally extended proteins expressed in yeast
AU5549998A (en) * 1997-01-24 1998-08-18 Novo Nordisk A/S Synthetic leader peptide sequences
US6046000A (en) 1997-11-07 2000-04-04 Millennium Biotherapeutics, Inc. Method for identifying genes encoding signal sequences
JP2003525570A (ja) 1998-01-23 2003-09-02 ノボ ノルディスク アクティーゼルスカブ 酵母において所望のポリペプチドを産生する方法
PL356005A1 (en) 1999-12-29 2004-05-31 Novo Nordisk A/S Method for making insulin precursors and insulin precursor analogues having improved fermentation yield in yeast
EP1278544A4 (en) 2000-04-12 2004-08-18 Human Genome Sciences Inc ALBUMIN FUSION PROTEINS
US20050100991A1 (en) * 2001-04-12 2005-05-12 Human Genome Sciences, Inc. Albumin fusion proteins
US20050054051A1 (en) * 2001-04-12 2005-03-10 Human Genome Sciences, Inc. Albumin fusion proteins
US7507413B2 (en) * 2001-04-12 2009-03-24 Human Genome Sciences, Inc. Albumin fusion proteins
US7595172B2 (en) 2001-07-24 2009-09-29 Novo Nordisk A/S Method for making acylated polypeptides
EP1463752A4 (en) * 2001-12-21 2005-07-13 Human Genome Sciences Inc ALBUMIN FUSION PROTEINS
EP2277910A1 (en) 2001-12-21 2011-01-26 Human Genome Sciences, Inc. Albumin fusion proteins
WO2005003296A2 (en) 2003-01-22 2005-01-13 Human Genome Sciences, Inc. Albumin fusion proteins
ATE492631T1 (de) 2002-09-13 2011-01-15 Cornell Res Foundation Inc Verwendung von mutationen zur verbesserung von aspergillus-phytasen
EP1687428A1 (en) 2003-11-14 2006-08-09 Novo Nordisk A/S Processes for making acylated insulin
ATE517119T1 (de) 2003-12-03 2011-08-15 Novo Nordisk As Einzelketteninsulin
WO2007020256A1 (en) 2005-08-16 2007-02-22 Novo Nordisk A/S Method for making mature insulin polypeptides
ATE557037T1 (de) 2006-02-27 2012-05-15 Novo Nordisk As Insulin derivate
US20080026376A1 (en) * 2006-07-11 2008-01-31 Huaming Wang KEX2 cleavage regions of recombinant fusion proteins
US8198046B2 (en) 2006-07-11 2012-06-12 Danisco Us Inc. KEX2 cleavage regions of recombinant fusion proteins
CN101541830A (zh) 2006-09-22 2009-09-23 诺沃-诺迪斯克有限公司 蛋白酶抗性的胰岛素类似物
WO2008037735A1 (en) 2006-09-27 2008-04-03 Novo Nordisk A/S Method for making maturated insulin polypeptides
ES2425413T3 (es) 2006-11-22 2013-10-15 Novo Nordisk A/S Método para preparar carboxipeptidasa activada
EP2170945A1 (en) 2007-07-16 2010-04-07 Novo Nordisk A/S Protease stabilized, pegylated insulin analogues
EP2178909B1 (en) 2007-08-13 2015-10-21 Novo Nordisk A/S Rapid acting insulin analogues
WO2009022006A1 (en) 2007-08-15 2009-02-19 Novo Nordisk A/S Insulins with an acyl moiety comprising repeating units of alkylene glycol containing amino acids
CN101784562B (zh) 2007-08-15 2016-07-13 诺沃-诺迪斯克有限公司 具有酰基和亚烷基二醇部分的胰岛素类似物
US8501449B2 (en) 2007-12-04 2013-08-06 Proteon Therapeutics, Inc. Recombinant elastase proteins and methods of manufacturing and use thereof
EP2910571B1 (en) 2008-03-18 2016-10-05 Novo Nordisk A/S Protease stabilized, acylated insulin analogues
JP5818681B2 (ja) 2008-04-01 2015-11-18 ノボ・ノルデイスク・エー/エス インスリンアルブミンコンジュゲート
WO2011089170A2 (en) 2010-01-22 2011-07-28 Novo Nordisk A/S Process for preparing fgf-21 with low degree of o-glycosylation
KR101702342B1 (ko) * 2009-03-12 2017-02-03 빅텍 프라이빗 리미티드 폴리뉴클레오타이드 및 폴리펩타이드 서열 및 이의 방법
PL2340033T3 (pl) 2009-06-26 2014-03-31 Novo Nordisk As Preparat zawierający insulinę, nikotynamid i argininę
ES2550761T3 (es) 2009-11-25 2015-11-12 Novo Nordisk A/S Método para producción de polipéptidos
JP5973427B2 (ja) 2010-06-23 2016-08-23 ノヴォ ノルディスク アー/エス 追加のジスルフィド結合を含有するインスリン類似体
WO2011161083A1 (en) 2010-06-23 2011-12-29 Novo Nordisk A/S Human insulin containing additional disulfide bonds
BR112012033107A2 (pt) 2010-06-23 2016-10-11 Novo Nordisk As derivados de insulina contendo ligações dissulfeto adicionais.
KR20140030125A (ko) 2010-12-14 2014-03-11 노보 노르디스크 에이/에스 인슐린, 니코틴아미드 및 아미노산을 포함하는 제제
US20130331320A1 (en) 2010-12-14 2013-12-12 Novo Nordisk A/S Fast-acting insulin in combination with long-acting insulin
WO2012171994A1 (en) 2011-06-15 2012-12-20 Novo Nordisk A/S Multi substituted insulins
RU2460795C1 (ru) * 2011-07-06 2012-09-10 Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") Способ микробиологического синтеза секретируемого соматотропина человека и штамм дрожжей saccharomyces cerevisiae - продуцент секретируемого соматотропина человека
WO2013186138A1 (en) 2012-06-14 2013-12-19 Novo Nordisk A/S Preparation comprising insulin, nicotinamide and arginine
EP2925345B1 (en) 2012-12-03 2018-09-05 Merck Sharp & Dohme Corp. Method for making o-glycosylated carboxy terminal portion (ctp) peptide-based insulin and insulin analogues
CN103254277B (zh) 2013-05-03 2017-02-08 南京工业大学 强分泌性信号肽增强小肽模序及其应用
WO2014195452A1 (en) 2013-06-07 2014-12-11 Novo Nordisk A/S Method for making mature insulin polypeptides
PL233560B1 (pl) 2014-12-05 2019-10-31 Mabion Spolka Akcyjna Sposób otrzymywania insuliny lub analogu insuliny z prekursora rekombinowanego białka
EP3268384B1 (en) 2015-03-10 2021-11-03 Merck Sharp & Dohme Corp. Process for preparing recombinant insulin using microfiltration
EP3303380B1 (en) 2015-06-02 2020-01-15 Novo Nordisk A/S Insulins with polar recombinant extensions
US20180244743A1 (en) 2015-08-25 2018-08-30 Novo Nordisk A/S Novel Insulin Derivatives and the Medical Uses Hereof
JP2018531900A (ja) 2015-08-25 2018-11-01 ノヴォ ノルディスク アー/エス 新規インスリン誘導体及びその医学的使用
EP3341401A1 (en) 2015-08-25 2018-07-04 Novo Nordisk A/S Novel insulin derivatives and the medical uses hereof
KR102043067B1 (ko) * 2017-08-08 2019-11-11 엘지전자 주식회사 차량용 사이드 미러 및 차량
EP3668892A1 (en) 2017-08-17 2020-06-24 Novo Nordisk A/S Novel acylated insulin analogues and uses thereof
BR112022009510A2 (pt) 2019-12-11 2022-08-16 Novo Nordisk As Análogo de insulina, composição farmacêutica, e, método de tratamento, prevenção ou alívio de uma doença ou distúrbio ou condição
WO2023144240A1 (en) 2022-01-26 2023-08-03 Novo Nordisk Research Centre Oxford Limited Glucose sensitive insulin derivatives and uses thereof

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU5712580A (en) * 1979-04-05 1980-10-09 James Joseph Connell Engine charging and scavenging
US4546082A (en) * 1982-06-17 1985-10-08 Regents Of The Univ. Of California E. coli/Saccharomyces cerevisiae plasmid cloning vector containing the alpha-factor gene for secretion and processing of hybrid proteins
WO1984004330A1 (en) * 1983-04-22 1984-11-08 Amgen Secretion of exogenous polypeptides from yeast
US4588684A (en) * 1983-04-26 1986-05-13 Chiron Corporation a-Factor and its processing signals
DK58285D0 (da) * 1984-05-30 1985-02-08 Novo Industri As Peptider samt fremstilling og anvendelse deraf
JPS61264000A (ja) * 1985-03-21 1986-11-21 イミユネツクス コ−ポレイシヨン 標識ペプチドによるタンパク質の合成
JPS6236183A (ja) * 1985-06-20 1987-02-17 ザ・サルク・インステイチユ−ト・バイオテクノロジ−/インダストリアル・アソシエイツ・インコ−ポレ−テツド サツカロミセス・セレビシエからのポリペプチドの発現および分泌
MC1834A1 (fr) * 1986-07-10 1988-06-03 Transgene Sa Bloc fonctionnel d'adn et plasmide codant pour l'hirudine,levure transformee,procede de preparation de l'hirudine,hirudine obtenue et son utilisation
DK175535B1 (da) * 1987-03-04 2004-11-29 Daiichi Suntory Pharma Co Ltd Fremgangsmåde til fremstilling af et fysiologisk aktivt cysteinholdigt peptid
AU1987088A (en) * 1987-06-24 1989-01-19 Novo Nordisk A/S A process for preparing a protein or polypeptide, a dna sequence coding for the polypeptide, a microorganism containing the dna sequence as well as the polypeptide and its use as a pharmaceutical preparation
DK450187D0 (da) * 1987-08-28 1987-08-28 Novo Industri As Fremgangsmaade til fremstilling af proteiner
DK463887D0 (da) * 1987-09-07 1987-09-07 Novo Industri As Gaerleader
JPH01240191A (ja) * 1988-02-16 1989-09-25 Green Cross Corp:The 酵母で機能する新規シグナルペプチドおよびこれを用いた異種蛋白質の分泌発現
DK336188D0 (da) * 1988-06-20 1988-06-20 Nordisk Gentofte Propeptider
JP3092811B2 (ja) * 1988-07-23 2000-09-25 デルタ バイオテクノロジー リミテッド ペプチドおよびdna配列
DK105489D0 (da) * 1989-03-03 1989-03-03 Novo Nordisk As Polypeptid

Also Published As

Publication number Publication date
CA2050336C (en) 2000-01-18
ES2062514T5 (es) 1998-06-01
KR920701452A (ko) 1992-08-11
WO1990010075A1 (en) 1990-09-07
IL93609A0 (en) 1990-12-23
US5514585A (en) 1996-05-07
JP2609367B2 (ja) 1997-05-14
DK0461165T3 (da) 1994-11-21
DE69011853T2 (de) 1994-12-15
ATE110414T1 (de) 1994-09-15
UA27706C2 (uk) 2000-10-16
NO304236B1 (no) 1998-11-16
HU902376D0 (en) 1991-11-28
CZ103990A3 (cs) 1999-03-17
IL93609A (en) 2001-11-25
NO913427D0 (no) 1991-09-02
AU624694B2 (en) 1992-06-18
EP0461165B2 (en) 1998-03-25
DK105489D0 (da) 1989-03-03
US5395922A (en) 1995-03-07
NO974899L (no) 1997-10-23
JPH04504846A (ja) 1992-08-27
EP0461165A1 (en) 1991-12-18
DE69011853D1 (de) 1994-09-29
IE66469B1 (en) 1995-12-27
NO913427L (no) 1991-11-01
AU5261290A (en) 1990-09-26
DD296965A5 (de) 1991-12-19
NZ232742A (en) 1991-10-25
ZA901476B (en) 1990-11-28
PL163532B1 (pl) 1994-04-29
IE900749L (en) 1990-09-03
DE69011853T3 (de) 1998-06-25
KR970005928B1 (ko) 1997-04-22
HU211600A9 (en) 1995-12-28
RU2194758C2 (ru) 2002-12-20
HUT58370A (en) 1992-02-28
FI104985B (fi) 2000-05-15
US5510249A (en) 1996-04-23
ES2062514T3 (es) 1994-12-16
NO974899D0 (no) 1997-10-23
EP0461165B1 (en) 1994-08-24
FI914125A0 (fi) 1991-09-02
CA2050336A1 (en) 1990-09-04
CZ285239B6 (cs) 1999-06-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU215538B (hu) Eljárás heterológ proteinek előállítására új élesztő kifejező rendszerrel
JP3730255B2 (ja) イーストにおいて発現されたn末端に伸長した蛋白質
US5631144A (en) Application of novel DNA fragments as a coding sequence for a signal peptide for the secretion of mature proteins by recombinant yeast, expression cassettes, transformed yeast and corresponding process for the preparation of proteins
US5162498A (en) Synthetic yeast leader peptides
RU2143495C1 (ru) Способ получения гетерологичного белка
US5639642A (en) Synthetic leader peptide sequences
JP2001527387A (ja) 合成リーダーペプチド配列
EP0946735B1 (en) N-terminally extended proteins expressed in yeast
EP0868523B1 (en) Vector for expression of n-terminally extended proteins in yeast cell
EP1097228B1 (en) Method of making proteins in transformed yeast cells

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees