CN103215253A - 一种采用磁珠法提取病毒dna或rna的试剂盒及其使用方法 - Google Patents
一种采用磁珠法提取病毒dna或rna的试剂盒及其使用方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103215253A CN103215253A CN2013101054574A CN201310105457A CN103215253A CN 103215253 A CN103215253 A CN 103215253A CN 2013101054574 A CN2013101054574 A CN 2013101054574A CN 201310105457 A CN201310105457 A CN 201310105457A CN 103215253 A CN103215253 A CN 103215253A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- magnetic
- rna
- kit
- magnetic bead
- centrifuge tube
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 67
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 title claims abstract description 30
- 241000700605 Viruses Species 0.000 title claims abstract description 13
- 239000002245 particle Substances 0.000 title claims description 12
- 230000005298 paramagnetic effect Effects 0.000 title claims description 6
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 title abstract description 9
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 title abstract 5
- 229920002477 rna polymer Polymers 0.000 title abstract 5
- 230000005291 magnetic effect Effects 0.000 claims abstract description 164
- 239000011324 bead Substances 0.000 claims abstract description 100
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 33
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 23
- 239000003480 eluent Substances 0.000 claims abstract description 21
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims abstract description 8
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 64
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 claims description 42
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 32
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 claims description 25
- 229910021641 deionized water Inorganic materials 0.000 claims description 25
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 23
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 18
- 108020000999 Viral RNA Proteins 0.000 claims description 17
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 claims description 17
- 108020005202 Viral DNA Proteins 0.000 claims description 16
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 claims description 14
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 14
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 14
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 claims description 13
- PJJJBBJSCAKJQF-UHFFFAOYSA-N guanidinium chloride Chemical compound [Cl-].NC(N)=[NH2+] PJJJBBJSCAKJQF-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 claims description 8
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims description 8
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 claims description 6
- ZJYYHGLJYGJLLN-UHFFFAOYSA-N guanidinium thiocyanate Chemical compound SC#N.NC(N)=N ZJYYHGLJYGJLLN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- -1 Acryl Chemical group 0.000 claims description 5
- ZGTMUACCHSMWAC-UHFFFAOYSA-L EDTA disodium salt (anhydrous) Chemical compound [Na+].[Na+].OC(=O)CN(CC([O-])=O)CCN(CC(O)=O)CC([O-])=O ZGTMUACCHSMWAC-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 5
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 claims description 5
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 claims description 5
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 5
- 229960000789 guanidine hydrochloride Drugs 0.000 claims description 5
- 238000005303 weighing Methods 0.000 claims description 5
- 238000010828 elution Methods 0.000 claims description 4
- YQOKLYTXVFAUCW-UHFFFAOYSA-N guanidine;isothiocyanic acid Chemical compound N=C=S.NC(N)=N YQOKLYTXVFAUCW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 abstract description 8
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 abstract description 8
- 239000012535 impurity Substances 0.000 abstract description 7
- 239000006166 lysate Substances 0.000 abstract description 6
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 abstract description 3
- 239000000049 pigment Substances 0.000 abstract description 3
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 abstract description 2
- 239000012634 fragment Substances 0.000 abstract description 2
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 39
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 39
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 39
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 13
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 12
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 12
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 9
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 9
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 9
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 7
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 6
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 6
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 6
- 239000000741 silica gel Substances 0.000 description 6
- 229910002027 silica gel Inorganic materials 0.000 description 6
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 4
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 4
- 101710163270 Nuclease Proteins 0.000 description 3
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000003146 anticoagulant agent Substances 0.000 description 3
- 229940127219 anticoagulant drug Drugs 0.000 description 3
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 3
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 3
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 3
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 239000011325 microbead Substances 0.000 description 3
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 3
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 3
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 3
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000711549 Hepacivirus C Species 0.000 description 2
- 241000700721 Hepatitis B virus Species 0.000 description 2
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 2
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 2
- 210000000234 capsid Anatomy 0.000 description 2
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 2
- 230000003196 chaotropic effect Effects 0.000 description 2
- 229960001484 edetic acid Drugs 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 210000000633 nuclear envelope Anatomy 0.000 description 2
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 2
- 208000005623 Carcinogenesis Diseases 0.000 description 1
- 208000026350 Inborn Genetic disease Diseases 0.000 description 1
- 108010052285 Membrane Proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000018697 Membrane Proteins Human genes 0.000 description 1
- 238000012408 PCR amplification Methods 0.000 description 1
- 108010003533 Viral Envelope Proteins Proteins 0.000 description 1
- 230000005856 abnormality Effects 0.000 description 1
- 230000036952 cancer formation Effects 0.000 description 1
- 231100000504 carcinogenesis Toxicity 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 description 1
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 1
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 1
- 239000013065 commercial product Substances 0.000 description 1
- 238000012864 cross contamination Methods 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 239000003398 denaturant Substances 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 230000004907 flux Effects 0.000 description 1
- 239000006260 foam Substances 0.000 description 1
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 description 1
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 1
- 208000016361 genetic disease Diseases 0.000 description 1
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 1
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 1
- 231100000086 high toxicity Toxicity 0.000 description 1
- 230000000415 inactivating effect Effects 0.000 description 1
- 238000007885 magnetic separation Methods 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 238000001821 nucleic acid purification Methods 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 150000004713 phosphodiesters Chemical group 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 239000012264 purified product Substances 0.000 description 1
- 239000008213 purified water Substances 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 1
- 229910052710 silicon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010703 silicon Substances 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明属于分子生物学技术领域,尤其涉及一种采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒及其使用方法。试剂盒包括裂解液、清洗液1、清洗液2、清洗液3、洗脱液和磁珠悬浮液。本发明试剂盒的缓冲液体系配合特制的纳米级磁珠,可最大限度地去除样本的蛋白质、色素、脂类及其他抑制性杂质污染,从而使提取的DNA或RNA片段完整、产量高、纯度高、稳定可靠、成本低。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学技术领域,尤其涉及一种采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒及其使用方法。
背景技术
核酸研究是现代生物学、医学研究中的重要课题。核酸作为遗传信息的携带者,是基因表达的物质基础,除了在生物体正常的生长、发育、和繁殖等生命活动中具有十分重要的作用外,它与生命的异常情况,如肿瘤发生、放射损伤、遗传疾病等也有密切关系。因此核酸是现代生物学、医学研究中的重要课题。无论是进行核酸结构与功能的研究,还是进行基因工程、蛋白质工程等的研究,首先都需要对核酸进行分离纯化。
在分子生物学研究的初期,核酸分离技术包含沉淀,离心等过程,这些纯化方法的步骤繁杂,费时长,接触有毒试剂,产物纯度和回收率难于满足实验要求,而且难以实现自动化和大规模运用。
目前核酸分离技术虽然得到了很大的发展,但均存在一些缺点:例如,
有机法:有机法提取核酸一般是指用平衡酚、氯仿等按不同比例混合,提取核酸。有机法提取核酸应用范围广,适合各种生物样本,对富含蛋白质、多脂的生物样本更为有效。但是有机法应用有毒有机试剂,对人体有害,污染环境;多次换管,容易引起样本交叉污染。
NaOH法:NaOH法提取DNA是通过强碱溶解、变性蛋白质,使细胞膜及核膜破坏,核酸酶变性,释放DNA。NaOH法提取DNA的主要缺点是DNA保存于碱中不稳定,4℃放置24h后PCR扩增不易成功,且不能用于提取RNA。
硅胶膜离心柱法:硅胶膜离心柱法提取核酸是通过异硫氰酸胍或盐酸胍等强烈蛋白变性剂的离液盐,破坏细胞膜及核膜蛋白,使核酸酶失活,释放核酸;然后硅胶膜可以特异性吸附核酸;通过离心和清洗液洗涤,在吸附核酸的硅胶膜上加入洗脱液,核酸释放于洗脱液中,经离心后,获得核酸溶液。其中,裂解液配方和用量、硅胶膜种类、洗脱液用量都会影响核酸纯化效果。硅胶膜离心柱法虽然是一种很好的核酸提取方法,但对试剂配制要求很严格,仍需多次离心,难于实现自动化。
磁珠法提取核酸是近几年才发展起来的核酸提取方法,其采用纳米级磁珠微珠,这种磁珠微珠的表面标记了一种官能团,能同核酸发生吸附反应。该提取方法不需要苯酚和氯仿等毒性大的有机溶剂,提取的核酸纯度高、产量高。磁珠微珠在磁场条件下可以发生聚集或分散,从而可彻底摆脱离心等所需的手工操作流程,方法操作简单,不需要特殊的分离设备,实现自动化提取核酸。
目前已有不少公司根据磁珠法的原理开发出了应用于核酸纯化的试剂盒,如Promega、Roche、Merck、Invitrogen等公司。这些试剂盒针对不同的材料来源设计了不同的提取方法,操作简单、高效,核酸质量较高,但价格昂贵。
因此目前还需要开发一些操作简单、成本低、高效地提取DNA或RNA的核酸提取试剂盒。
发明内容
为了克服现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种专门用于从血清或血浆等液体样本中快速地分离纯化微量病毒DNA或RNA,且环保、大通量、操作简单、成本低、提取的DNA或RNA质量好的采用磁珠法提取病毒核酸的试剂盒及其使用方法。
本发明的技术方案为:一种采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,所述试剂盒包括裂解液、清洗液1、清洗液2、清洗液3、洗脱液和磁珠悬浮液;其中,
清洗液2:体积分数为75%的乙醇水溶液;
清洗液3: 0.01-0.03 mol/L的Tris水溶液,pH值为4.0~5.0;
洗脱液:去离子水;
磁珠悬浮液:磁珠含量为40-60mg/ml,磁珠颗粒直径为1.5-2.5μm。
所述裂解液的配置方法为:称取472.6~768.0g异硫氰酸胍或477.7~716.5g盐酸胍、12.1~6.1g Tris或29.4~14.7g柠檬酸钠,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入70~150ml Triton X-100、20ml 0.5M EDTA-2Na和50ml Acryl Carrier,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
所述清洗液1的配置方法为:称取472.6~590.1g异硫氰酸胍或382.2~573.2g盐酸胍、12.1~6.1g Tris或29.4~14.7g柠檬酸钠,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入350~600ml的无水乙醇,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
本发明所述采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法,按照如下步骤进行:
1)在1.5ml的离心管中加入200ul血清/血浆样本和400-500ul的裂解液,迅速震荡混匀2min,再加入30-40ul磁珠悬浮液,55-60℃恒温干浴10min;
2)将步骤1)中的离心管置于磁力架上,磁吸附1-2min,使磁珠完全吸附于离心管壁,吸弃除磁珠外的液体;
3)将经步骤2)处理的离心管从磁力架上取下,加入450-600ul清洗液1,涡旋混匀2min,将离心管置于磁力架上,磁吸附1-3min,吸弃除磁珠外的液体;
4)将经步骤3)处理的离心管从磁力架上取下,加入450-600ul清洗液2,涡旋混匀2min,将剩余的杂质溶解在清洗液2中,将离心管置于磁力架上,磁吸附1-3min,吸弃除磁珠外的液体;
5)将经步骤4)处理的离心管置于磁力架上,加入500-600ul清洗液3,进一步清洗剩余的杂质,吸弃除磁珠外的液体;
6)将经步骤5)处理的离心管从磁力架上取下,打开管盖,在室温下放置2min后,加入50-100ul洗脱液,室温或75-80℃震荡洗脱10min,使吸附在磁珠上的核酸解吸,进入洗脱液中;
7)将经步骤6)处理的离心管置于磁力架上,磁吸附1-3min,吸取收集除磁珠外的液体,并置于-20℃保存备用。
步骤1)中,将血清/血浆样本和裂解液迅速震荡混匀,可快速裂解病毒包膜和衣壳,同时灭活核酸酶,释放内部的核酸;然后再加入磁珠悬浮液进行恒温干浴,使核酸被磁珠吸附,而蛋白质等其他杂质不被吸附。
步骤3)中,加入清洗液1涡旋混匀,可使DNA/RNA分子中的磷酸二酯骨架脱水,彻底暴露出DNA/RNA分子。
本发明所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法中,所述步骤1)中的磁珠悬浮液使用前震荡混匀。
所述步骤2)中吸弃除磁珠外的液体的操作在磁力架上完成。
所述步骤5)中吸弃除磁珠外的液体的操作在磁力架上完成。
所述步骤6)中,当单独提取病毒RNA时,洗脱温度为室温。
所述步骤6)中,当单独提取病毒DNA,洗脱温度为75-80℃。
本发明中,所述的磁珠悬浮液为市售产品,磁珠含量为40-60mg/ml,磁珠颗粒直径为1.5-2.5μm,磁珠固体由磁性核心和硅羟基涂层组成,悬浮于纯化水或20%乙醇溶液中,贮存在2-8℃;其采购于德国Gerlinde Kisker公司、德国Chemagen公司、上海奥润微纳新材料科技有限公司或其他符合技术要求的公司。
所述Tris为三羟甲基氨基甲烷。
本发明采用独特的裂解液配方(其内含有离液盐和表面活性剂),快速地裂解病毒包膜和衣壳,释放内部的核酸,在合适的缓冲体系中,通过特制的微米级磁珠,吸附游离的病毒核酸;再经磁分离和清洗液清洗,清除样本中的蛋白质、色素、脂类及其他抑制性杂质;最后使用洗脱液将核酸从磁珠表面洗脱下来。
采用本发明的技术方案,具有如下的优点:
1、本发明的试剂盒可采用常温运输,2-8℃保存。
2、本发明的试剂盒采用独特的清洗液体系,特别是清洗液1专门用于从血清或血浆等液体样本中快速地分离纯化微量病毒核酸。本发明试剂盒的清洗液体系配合特制的微米级磁珠,可最大限度地去除样本的蛋白质、色素、脂类及其他抑制性杂质污染,从而使提取的DNA或RNA片段完整、产量高、纯度高、稳定可靠、成本低。
3、本发明的试剂盒避免使用苯酚、氯仿等有毒溶剂,具有高效、环保的特点。
4、本发明的试剂盒还可搭载合适的核酸提取仪,实现核酸提取自动化。
附图说明 下面结合附图和具体实施方式对本发明作进一步详细的说明:
图1为采用本发明的试剂盒纯化的HBV DNA荧光定量PCR检测图。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明作进一步详细的说明。
血清或血浆液体样本的制备及保存:
血清制备:用一次性无菌注射器抽取受检者静脉血2ml,注入无菌的干燥玻璃管,室温放置30-60分钟,但不超过4小时,血标本可自凝析出血清,或1500rpm离心5-10分钟,吸取上层血清并转移至无菌离心管中;
血浆制备:用一次性无菌注射器抽取受检者静脉血2ml,注入含乙二胺四乙酸二钠(EDTA)或枸橼酸钠抗凝剂的玻璃管,立即轻轻颠倒玻璃管使静脉血与抗凝剂充分混匀,室温放置5-10分钟,1500rpm离心5-10分钟,吸取上层血浆并转移至无菌离心管中。
制备好的血清或血浆室温放置不超过2小时,4℃保存不超过48小时,-20℃保存不超过半年。运输时需用0℃冰壶或泡沫箱加冰袋密封,在途时限不宜超过48小时。
实施例1、采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,其包括裂解液、清洗液1、清洗液2、清洗液3、洗脱液和磁珠悬浮液;其中,
裂解液的制备方法为:称取472.6g异硫氰酸胍、12.1gTris,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入70ml Triton X-100、20ml 0.5M EDTA-2Na和50ml Acryl Carrier,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
清洗液1的配置方法为:称取382.2g盐酸胍、29.4g柠檬酸钠,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入350ml的无水乙醇,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
清洗液2:体积分数为75%的乙醇水溶液;
清洗液3: 0.01 mol/L的Tris水溶液,pH值为4.0~5.0;
洗脱液:去离子水;
磁珠悬浮液:磁珠含量为40mg/ml,磁珠颗粒直径为1.5μm。
实施例2、采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,其包括裂解液、清洗液1、清洗液2、清洗液3、洗脱液和磁珠悬浮液;其中,
裂解液的制备方法为:称取716.5g盐酸胍、14.7g柠檬酸钠,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入150ml Triton X-100、20ml 0.5M EDTA-2Na和50ml Acryl Carrier,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
清洗液1的配置方法为:称取590.1g异硫氰酸胍、6.1g Tris,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入600ml的无水乙醇,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
清洗液2:体积分数为75%的乙醇水溶液;
清洗液3: 0.03 mol/L的Tris水溶液,pH值为4.0~5.0;
洗脱液:去离子水;
磁珠悬浮液:磁珠含量为60mg/ml,磁珠颗粒直径为2.5μm。
实施例3、采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,其包括裂解液、清洗液1、清洗液2、清洗液3、洗脱液和磁珠悬浮液;其中,
裂解液的制备方法为:称取590.5g异硫氰酸胍、23.5g柠檬酸钠,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入100ml Triton X-100、20ml 0.5M EDTA-2Na和50ml Acryl Carrier,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
清洗液1的配置方法为:称取447.6g盐酸胍、9.7g Tris,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入500ml的无水乙醇,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
清洗液2:体积分数为75%的乙醇水溶液;
清洗液3: 0.02 mol/L的Tris水溶液,pH值为4.0~5.0;
洗脱液:去离子水;
磁珠悬浮液:磁珠含量为50mg/ml,磁珠颗粒直径为2.0μm。
方法实施例1、采用实施例1所得的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,进行提取RNA,依次进行以下步骤:
1)在1.5ml的离心管中加入以上制备的200ul血清样本和450ul的裂解液,迅速震荡混匀2min,再加入35ul磁珠悬浮液(磁珠悬浮液使用前充分震荡混匀),55℃恒温干浴10min;
2)将步骤1)中的离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸弃除磁珠外的液体(磁珠分离操作在磁力架上完成,以避免吸掉磁珠);
3)将经步骤2)处理的离心管从磁力架上取下,加入500ul清洗液1,涡旋混匀2min(保证磁珠分散均匀,避免杂质残留),将离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸弃除磁珠外的液体;
4)将经步骤3)处理的离心管从磁力架上取下,加入500ul清洗液2,涡旋混匀2min,将离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸弃除磁珠外的液体;
5)将经步骤4)处理的离心管置于磁力架上,加入550ul清洗液3,吸弃除磁珠外的液体(磁珠分离操作在磁力架上完成,以避免吸掉磁珠);
6)将经步骤5)处理的离心管从磁力架上取下,打开管盖,在室温下放置2min后,加入50-100ul洗脱液,室温下震荡洗脱10min;
7)将经步骤6)处理的离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸取收集除磁珠外的液体,并置于-20℃保存备用。
方法实施例2、采用实施例2所得的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,进行提取RNA,依次进行以下步骤:
1)在1.5ml的离心管中加入以上制备的200ul血浆样本和450ul的裂解液,迅速震荡混匀2min,再加入35ul磁珠悬浮液(磁珠悬浮液使用前充分震荡混匀),57℃恒温干浴10min;
2)将步骤1)中的离心管置于磁力架上,磁吸附2min,吸弃除磁珠外的液体(磁珠分离操作在磁力架上完成,以避免吸掉磁珠);
3)将经步骤2)处理的离心管从磁力架上取下,加入450ul清洗液1,涡旋混匀2min(保证磁珠分散均匀,避免杂质残留),将离心管置于磁力架上,磁吸附3min,吸弃除磁珠外的液体;
4)将经步骤3)处理的离心管从磁力架上取下,加入600ul清洗液2,涡旋混匀2min,将离心管置于磁力架上,磁吸附3min,吸弃除磁珠外的液体;
5)将经步骤4)处理的离心管置于磁力架上,加入550ul清洗液3,吸弃除磁珠外的液体(磁珠分离操作在磁力架上完成,以避免吸掉磁珠);
6)将经步骤5)处理的离心管从磁力架上取下,打开管盖,在室温下放置2min后,加入100ul洗脱液,室温震荡洗脱10min;
7)将经步骤6)处理的离心管置于磁力架上,磁吸附3min,吸取收集除磁珠外的液体,并置于-20℃保存备用。
方法实施例3、采用实施例3所得的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,进行提取DNA,依次进行以下步骤:
1)在1.5ml的离心管中加入以上制备的200ul血清样本和400ul的裂解液,迅速震荡混匀2min,再加入30ul磁珠悬浮液(磁珠悬浮液使用前充分震荡混匀),60℃恒温干浴10min;
2)将步骤1)中的离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸弃除磁珠外的液体(磁珠分离操作在磁力架上完成,以避免吸掉磁珠);
3)将经步骤2)处理的离心管从磁力架上取下,加入600ul清洗液1,涡旋混匀2min(保证磁珠分散均匀,避免杂质残留),将离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸弃除磁珠外的液体;
4)将经步骤3)处理的离心管从磁力架上取下,加入450ul清洗液2,涡旋混匀2min,将离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸弃除磁珠外的液体;
5)将经步骤4)处理的离心管置于磁力架上,加入500ul清洗液3,吸弃除磁珠外的液体(磁珠分离操作在磁力架上完成,以避免吸掉磁珠);
6)将经步骤5)处理的离心管从磁力架上取下,打开管盖,在室温下放置2min后,加入50ul洗脱液,75-80℃震荡洗脱10min;
7)将经步骤6)处理的离心管置于磁力架上,磁吸附1min,吸取收集除磁珠外的液体,并置于-20℃保存备用。
按实施例1和方法实施例3的使用方法,将提取结果进行分析:
1、DNA的回收量(范围)检测
收集不同浓度的HBV血清样本,按方法实施例3的操作,纯化后的产物使用乙型肝炎病毒核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)进行荧光PCR检测。检测结果表明:本发明的试剂盒可以回收20-1.0x107copies/ml的HBV DNA。
2、DNA回收率检测
以1.0x105copies/ml的HBV DNA为样本,按方法实施例3的操作,纯化后的产物使用乙型肝炎病毒核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)进行荧光PCR检测。检测结果如图1所示, PCR 特异性曲线明显,纯化的HBV DNA为样本可以很好地应用于荧光PCR检测,本发明的试剂盒平均的DNA回收率为93.8%。
3、RNA的回收量(范围)检测
收集不同浓度的HCV血清样本,按方法实施例1的操作,纯化后的产物使用丙型肝炎病毒核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)进行荧光PCR检测。检测结果表明:本发明的试剂盒可以回收100-1.0x107copies/ml的HBV RNA。
4、RNA回收率检测
以1.0x105copies/ml的HCV RNA为样本,按方法实施例1的操作,纯化后的产物使用丙型肝炎病毒核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法)进行荧光PCR检测。检测结果表明,PCR 特异性曲线明显,纯化的HCV RNA为样本可以很好地应用于荧光PCR检测,本发明的试剂盒平均的DNA回收率为90.3%。
Claims (9)
1.一种采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括裂解液、清洗液1、清洗液2、清洗液3、洗脱液和磁珠悬浮液;其中,
清洗液2:体积分数为75%的乙醇水溶液;
清洗液3: 0.01-0.03 mol/L的Tris水溶液,pH值为4.0~5.0;
洗脱液:去离子水;
磁珠悬浮液:磁珠含量为40-60mg/ml,磁珠颗粒直径为1.5-2.5μm。
2.根据权利要求1所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,其特征在于,所述裂解液的配置方法为:称取472.6~768.0g异硫氰酸胍或477.7~716.5g盐酸胍、12.1~6.1g Tris或29.4~14.7g柠檬酸钠,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入70~150ml Triton X-100、20ml 0.5M EDTA-2Na和50ml Acryl Carrier,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
3.根据权利要求1所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒,其特征在于,所述清洗液1的配置方法为:称取472.6~590.1g异硫氰酸胍或382.2~573.2g盐酸胍、12.1~6.1g Tris或29.4~14.7g柠檬酸钠,用去离子水溶解后,调整pH至6.0~6.8,加入350~600ml的无水乙醇,混匀后,用去离子水定容至1000ml。
4.权利要求1所述采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法,其特征在于,按照如下步骤进行:
1)在1.5ml的离心管中加入200ul血清/血浆样本和400-500ul的裂解液,迅速震荡混匀2min,再加入30-40ul磁珠悬浮液,55-60℃恒温干浴10min;
2)将步骤1)中的离心管置于磁力架上,磁吸附1-2min,吸弃除磁珠外的液体;
3)将经步骤2)处理的离心管从磁力架上取下,加入450-600ul清洗液1,涡旋混匀2min,将离心管置于磁力架上,磁吸附1-3min,吸弃除磁珠外的液体;
4)将经步骤3)处理的离心管从磁力架上取下,加入450-600ul清洗液2,涡旋混匀2min,将离心管置于磁力架上,磁吸附1-3min,吸弃除磁珠外的液体;
5)将经步骤4)处理的离心管置于磁力架上,加入500-600ul清洗液3,吸弃除磁珠外的液体;
6)将经步骤5)处理的离心管从磁力架上取下,打开管盖,在室温下放置2min后,加入50-100ul洗脱液,室温或75-80℃震荡洗脱10min;
7)将经步骤6)处理的离心管置于磁力架上,磁吸附1-3min,吸取收集除磁珠外的液体,并置于-20℃保存备用。
5.根据权利要求4所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法,其特征在于,所述步骤1)中的磁珠悬浮液使用前震荡混匀。
6.根据权利要求4所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法,其特征在于,所述步骤2)中吸弃除磁珠外的液体的操作在磁力架上完成。
7.根据权利要求4所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法,其特征在于,所述步骤5)中吸弃除磁珠外的液体的操作在磁力架上完成。
8.根据权利要求4所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法,其特征在于,所述步骤6)中,当单独提取病毒RNA时,洗脱温度为室温。
9.根据权利要求4所述的采用磁珠法提取病毒DNA或RNA的试剂盒的使用方法,其特征在于,所述步骤6)中,当单独提取病毒DNA,洗脱温度为75-80℃。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2013101054574A CN103215253A (zh) | 2012-11-26 | 2013-03-29 | 一种采用磁珠法提取病毒dna或rna的试剂盒及其使用方法 |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210484419.X | 2012-11-26 | ||
CN201210484419 | 2012-11-26 | ||
CN2013101054574A CN103215253A (zh) | 2012-11-26 | 2013-03-29 | 一种采用磁珠法提取病毒dna或rna的试剂盒及其使用方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103215253A true CN103215253A (zh) | 2013-07-24 |
Family
ID=48813412
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2013101054574A Pending CN103215253A (zh) | 2012-11-26 | 2013-03-29 | 一种采用磁珠法提取病毒dna或rna的试剂盒及其使用方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103215253A (zh) |
Cited By (25)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104560948A (zh) * | 2013-10-09 | 2015-04-29 | 精工爱普生株式会社 | 核酸扩增方法、核酸提取用设备、核酸扩增反应用筒以及核酸扩增反应用试剂盒 |
CN104673783A (zh) * | 2015-01-19 | 2015-06-03 | 宝瑞源生物技术(北京)有限公司 | 磁珠法提取病毒dna/rna的试剂盒以及使用方法 |
CN104805073A (zh) * | 2015-04-21 | 2015-07-29 | 益百尚(北京)生物技术有限责任公司 | 一种用于病毒基因组核酸提取试剂盒及其方法 |
CN104877989A (zh) * | 2014-02-27 | 2015-09-02 | 精工爱普生株式会社 | 核酸扩增方法、核酸提取用设备、核酸扩增反应用盒、以及核酸扩增反应用套件 |
CN105925568A (zh) * | 2016-06-20 | 2016-09-07 | 杭州市第人民医院 | 一种共提取dna/rna病毒核酸的方法 |
CN106906207A (zh) * | 2017-04-19 | 2017-06-30 | 遵义医学院 | 核酸快速提取试剂盒及其使用方法 |
CN106916812A (zh) * | 2015-12-28 | 2017-07-04 | 苏州英芮诚生化科技有限公司 | 一种磁珠法琼脂糖凝胶dna提取试剂盒及其提取方法 |
CN107043766A (zh) * | 2017-02-08 | 2017-08-15 | 上海纽思格生物科技有限公司 | 一种即用型的核酸磁珠提取试剂 |
CN107058292A (zh) * | 2017-05-18 | 2017-08-18 | 厦门美因生物科技有限公司 | 一种磁珠法分离纯化dna的方法 |
CN107254463A (zh) * | 2017-06-20 | 2017-10-17 | 迈克生物股份有限公司 | 用于提取丙型肝炎病毒rna的试剂盒 |
CN107460190A (zh) * | 2017-09-06 | 2017-12-12 | 成都晟博源生物工程有限公司 | 一种细菌rna的提取方法 |
CN107523565A (zh) * | 2017-10-27 | 2017-12-29 | 河南牧业经济学院 | 基于纳米磁珠的多酚类植物rna的简化提取方法 |
CN108642044A (zh) * | 2018-04-28 | 2018-10-12 | 广州奕昕生物科技有限公司 | 用于提取病毒核酸的试剂盒和方法 |
CN108866042A (zh) * | 2018-07-17 | 2018-11-23 | 厦门生命互联科技有限公司 | 一种微量rna的提取方法 |
CN109613234A (zh) * | 2018-12-29 | 2019-04-12 | 郑州安图生物工程股份有限公司 | 磁微粒凝集解离剂 |
CN109722431A (zh) * | 2019-01-21 | 2019-05-07 | 上海科华生物工程股份有限公司 | 一种基于磁珠法的无醇病毒核酸提取试剂盒 |
CN109913447A (zh) * | 2019-04-04 | 2019-06-21 | 深圳市南科征途有限公司 | 游离dna提取富集试剂盒及游离dna提取方法 |
CN112080492A (zh) * | 2020-09-07 | 2020-12-15 | 麦凯(上海)生物科技有限公司 | 一种高得率的游离dna和rna共抽提试剂盒及使用方法 |
CN112795623A (zh) * | 2021-03-22 | 2021-05-14 | 武汉纳磁生物科技有限公司 | 一种病毒核酸提取裂解液、试剂盒及方法 |
CN113151397A (zh) * | 2021-02-03 | 2021-07-23 | 广东粤港澳大湾区国家纳米科技创新研究院 | 一种基于磁珠法提取病毒样本的核酸提取试剂盒 |
CN113667664A (zh) * | 2021-08-25 | 2021-11-19 | 上海纳米技术及应用国家工程研究中心有限公司 | 一种用纳米磁珠提取核酸的试剂盒及提取方法 |
CN114457069A (zh) * | 2022-03-07 | 2022-05-10 | 江苏迅睿生物技术有限公司 | 一种磁珠法病原体核酸提取试剂盒及使用方法 |
CN114517196A (zh) * | 2022-02-25 | 2022-05-20 | 杭州诺辉健康科技有限公司 | 一种血浆游离miRNA提取方法及其应用 |
CN114573483A (zh) * | 2022-03-16 | 2022-06-03 | 湖南师范大学 | 一种疏水的磁性离子液体及其制备方法和应用 |
CN116891849A (zh) * | 2023-09-11 | 2023-10-17 | 成都斯马特科技有限公司 | 一种快速从鼻咽拭子中提取核酸的试剂盒及提取方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101613697A (zh) * | 2009-08-05 | 2009-12-30 | 公安部物证鉴定中心 | 一种提取纯化dna的方法 |
CN101851617A (zh) * | 2010-04-28 | 2010-10-06 | 长春市博坤生物科技有限公司 | 可用于高通量全自动化提取的磁珠法病毒核酸提取方法 |
CN102071186A (zh) * | 2009-11-19 | 2011-05-25 | 北京金麦格生物技术有限公司 | 一种从生物样品中快速分离病毒核酸的试剂盒及方法 |
-
2013
- 2013-03-29 CN CN2013101054574A patent/CN103215253A/zh active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101613697A (zh) * | 2009-08-05 | 2009-12-30 | 公安部物证鉴定中心 | 一种提取纯化dna的方法 |
CN102071186A (zh) * | 2009-11-19 | 2011-05-25 | 北京金麦格生物技术有限公司 | 一种从生物样品中快速分离病毒核酸的试剂盒及方法 |
CN101851617A (zh) * | 2010-04-28 | 2010-10-06 | 长春市博坤生物科技有限公司 | 可用于高通量全自动化提取的磁珠法病毒核酸提取方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
叶贤林 等: "PCR-微流芯片在血液HBV DNA HCV HIV RNA筛查中的初步应用", 《中国现代医学杂志》, 31 December 2007 (2007-12-31) * |
Cited By (31)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104560948A (zh) * | 2013-10-09 | 2015-04-29 | 精工爱普生株式会社 | 核酸扩增方法、核酸提取用设备、核酸扩增反应用筒以及核酸扩增反应用试剂盒 |
CN104877989A (zh) * | 2014-02-27 | 2015-09-02 | 精工爱普生株式会社 | 核酸扩增方法、核酸提取用设备、核酸扩增反应用盒、以及核酸扩增反应用套件 |
CN104673783A (zh) * | 2015-01-19 | 2015-06-03 | 宝瑞源生物技术(北京)有限公司 | 磁珠法提取病毒dna/rna的试剂盒以及使用方法 |
CN104805073A (zh) * | 2015-04-21 | 2015-07-29 | 益百尚(北京)生物技术有限责任公司 | 一种用于病毒基因组核酸提取试剂盒及其方法 |
CN106916812A (zh) * | 2015-12-28 | 2017-07-04 | 苏州英芮诚生化科技有限公司 | 一种磁珠法琼脂糖凝胶dna提取试剂盒及其提取方法 |
CN105925568A (zh) * | 2016-06-20 | 2016-09-07 | 杭州市第人民医院 | 一种共提取dna/rna病毒核酸的方法 |
CN107043766A (zh) * | 2017-02-08 | 2017-08-15 | 上海纽思格生物科技有限公司 | 一种即用型的核酸磁珠提取试剂 |
CN106906207A (zh) * | 2017-04-19 | 2017-06-30 | 遵义医学院 | 核酸快速提取试剂盒及其使用方法 |
CN107058292A (zh) * | 2017-05-18 | 2017-08-18 | 厦门美因生物科技有限公司 | 一种磁珠法分离纯化dna的方法 |
CN107254463A (zh) * | 2017-06-20 | 2017-10-17 | 迈克生物股份有限公司 | 用于提取丙型肝炎病毒rna的试剂盒 |
CN107254463B (zh) * | 2017-06-20 | 2018-11-20 | 迈克生物股份有限公司 | 用于提取丙型肝炎病毒rna的试剂盒 |
CN107460190A (zh) * | 2017-09-06 | 2017-12-12 | 成都晟博源生物工程有限公司 | 一种细菌rna的提取方法 |
CN107523565B (zh) * | 2017-10-27 | 2020-07-24 | 河南牧业经济学院 | 基于纳米磁珠的多酚类植物rna的简化提取方法 |
CN107523565A (zh) * | 2017-10-27 | 2017-12-29 | 河南牧业经济学院 | 基于纳米磁珠的多酚类植物rna的简化提取方法 |
CN108642044A (zh) * | 2018-04-28 | 2018-10-12 | 广州奕昕生物科技有限公司 | 用于提取病毒核酸的试剂盒和方法 |
CN108866042A (zh) * | 2018-07-17 | 2018-11-23 | 厦门生命互联科技有限公司 | 一种微量rna的提取方法 |
CN108866042B (zh) * | 2018-07-17 | 2021-02-09 | 厦门生命互联科技有限公司 | 一种微量rna的提取方法 |
CN109613234A (zh) * | 2018-12-29 | 2019-04-12 | 郑州安图生物工程股份有限公司 | 磁微粒凝集解离剂 |
CN109722431A (zh) * | 2019-01-21 | 2019-05-07 | 上海科华生物工程股份有限公司 | 一种基于磁珠法的无醇病毒核酸提取试剂盒 |
CN109722431B (zh) * | 2019-01-21 | 2024-01-23 | 上海科华生物工程股份有限公司 | 一种基于磁珠法的无醇病毒核酸提取试剂盒 |
CN109913447A (zh) * | 2019-04-04 | 2019-06-21 | 深圳市南科征途有限公司 | 游离dna提取富集试剂盒及游离dna提取方法 |
CN112080492A (zh) * | 2020-09-07 | 2020-12-15 | 麦凯(上海)生物科技有限公司 | 一种高得率的游离dna和rna共抽提试剂盒及使用方法 |
CN113151397A (zh) * | 2021-02-03 | 2021-07-23 | 广东粤港澳大湾区国家纳米科技创新研究院 | 一种基于磁珠法提取病毒样本的核酸提取试剂盒 |
CN112795623A (zh) * | 2021-03-22 | 2021-05-14 | 武汉纳磁生物科技有限公司 | 一种病毒核酸提取裂解液、试剂盒及方法 |
CN113667664A (zh) * | 2021-08-25 | 2021-11-19 | 上海纳米技术及应用国家工程研究中心有限公司 | 一种用纳米磁珠提取核酸的试剂盒及提取方法 |
CN114517196A (zh) * | 2022-02-25 | 2022-05-20 | 杭州诺辉健康科技有限公司 | 一种血浆游离miRNA提取方法及其应用 |
CN114457069A (zh) * | 2022-03-07 | 2022-05-10 | 江苏迅睿生物技术有限公司 | 一种磁珠法病原体核酸提取试剂盒及使用方法 |
CN114573483A (zh) * | 2022-03-16 | 2022-06-03 | 湖南师范大学 | 一种疏水的磁性离子液体及其制备方法和应用 |
CN114573483B (zh) * | 2022-03-16 | 2022-11-01 | 湖南师范大学 | 一种疏水的磁性离子液体及其制备方法和应用 |
CN116891849A (zh) * | 2023-09-11 | 2023-10-17 | 成都斯马特科技有限公司 | 一种快速从鼻咽拭子中提取核酸的试剂盒及提取方法 |
CN116891849B (zh) * | 2023-09-11 | 2023-11-17 | 成都斯马特科技有限公司 | 一种快速从鼻咽拭子中提取核酸的试剂盒及提取方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103215253A (zh) | 一种采用磁珠法提取病毒dna或rna的试剂盒及其使用方法 | |
CN103820431B (zh) | 基于纳米磁珠的核酸提取纯化方法及试剂盒 | |
CN109722431B (zh) | 一种基于磁珠法的无醇病毒核酸提取试剂盒 | |
CN102533724B (zh) | 一种用于生物样品中核酸提取纯化的细胞裂解试剂 | |
CN102071186A (zh) | 一种从生物样品中快速分离病毒核酸的试剂盒及方法 | |
CN108624586B (zh) | 一种核酸提取试剂盒及其应用方法 | |
CN103952397A (zh) | 一种使用磁珠从血清或血浆样品中分离游离核酸的方法 | |
JP2005118041A (ja) | 核酸を単離する方法 | |
US8969044B2 (en) | Method for recovering sperm nucleic acid from a forensic sample | |
CN104673783A (zh) | 磁珠法提取病毒dna/rna的试剂盒以及使用方法 | |
CN102041255A (zh) | 无仪器核酸提取装置及微量核酸的提取方法 | |
CN112899266A (zh) | 一种核酸提取用裂解结合液及其试剂盒和应用 | |
CN106754890B (zh) | 一种病毒rna的提取试剂盒和提取方法 | |
CN111187769A (zh) | 一步快速高效提取病毒核酸的方法 | |
CN112553193A (zh) | 一种磁珠法提取全血dna的试剂盒及其使用方法 | |
CN112646803B (zh) | 一种病毒基因组核酸提取试剂盒、方法及应用 | |
CN112226432A (zh) | 一种磁珠法快速核酸提取试剂盒及其应用 | |
CN112195175A (zh) | 基于氧化石墨烯的核酸提取方法 | |
CN112501162A (zh) | 一种用纳米磁珠提取新冠病毒rna的试剂盒及提取方法 | |
CN113462683A (zh) | 适用于多种样本核酸提取的无醇清洗液及核酸提取试剂盒 | |
CN110628762A (zh) | 一种基于纳米磁珠的核酸提取方法及应用 | |
CN111808852B (zh) | 用于2019新型冠状病毒核酸提取的组合物、试剂盒、用途及其方法 | |
CN112941067A (zh) | 一种全血核酸提取用裂解结合液及其试剂盒和应用 | |
Xie et al. | Rapid enrichment of leucocytes and genomic DNA from blood based on bifunctional core–shell magnetic nanoparticles | |
CN113913494A (zh) | 快速便捷提取体液中病毒dna的试剂盒及提取方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20130724 |