WO1999006573A1 - Neue beta-glucanase aus bacillus - Google Patents

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WO1999006573A1
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glucanase
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Wolfgang Hillen
Karl-Heinz Maurer
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    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/07—Bacillus

Definitions

  • the present invention relates to an enzyme which can hydrolytically cleave mixed glucans, which are linked alternately in 1,3- and 1,4- ⁇ -glucosidic bonds, into oligosaccharides and to the microorganism which forms this enzyme.
  • Such enzymes belong to the class of endo-1, 3-l, 4-ß-D-glucan-4-glucanohydrolases (EC 3.2.1.73; lichenases) or endo-1, 3-ß-D-glucosidases (EC 3.2. 1.39; laminarinases).
  • ⁇ -glucanase or beta-glucanase.
  • Polymeric mixed glucans of the type mentioned above are present in different proportions in practically all cereal products. Enzymes which are able to cleave them are required above all in the food, beverage and animal feed industries, the textile industry and starch processing (R. Borriss, " ⁇ -glucan-cleaving enzymes", in H. Ruttloff, "Industrial Enzymes” , Chapter 11.5, Behr's Verlag, Hamburg, 1994).
  • ß-glucanases is in the beverage and brewing industry, where such enzymes are used to break down malt and barley ß-glucan.
  • the enzymes used for this purpose usually come from Bacillus subtilis, as described, for example, in German patent DD 226 012 AI, or Bacillus amyloliquefaciens, but also ⁇ -glucanases from other microorganisms, for example Achromobacter lunatus, Athrobacter luteus, Aspergillus aculeatus, Aspergillus niger, Disporotrichum dimorphosporum, Humicola insolens, Penicillium emersonii, Penicillium funiculosum or Trichoderma reesei.
  • a commercially available product is offered, for example, under the name Cereflo® (manufacturer: Novo Nordisk A / S) for use in the brewery industry.
  • ⁇ -glucanases have pH optima in the weakly acidic to neutral range, so that their use is limited to processes which are carried out at these pH values.
  • the applicant had set itself the goal of To expand the field of application of the ⁇ -glucanases and to develop a ⁇ -glucanase which, with a view to its use in technical processes which take place in an alkaline environment, has sufficient stability even under these conditions.
  • the present invention relates to an enzyme which can be obtained from Bacillus alkalophilus DSM 9956 and which has the abovementioned glucanolytic activity, which has a ⁇ -glucanase-producing microorganism Bacillus alkalophilus DSM 9956 and the gene which codes for the ⁇ -glucanase from Bacillus alkalophilus DSM 9956, the of the work leading to the present invention has been identified and sequenced (SEQ ID-NO.:2). If desired, this gene can be cloned in a manner known in principle in other bacteria and the ⁇ -glucanase can be expressed there.
  • the invention therefore furthermore relates to host organisms which can be obtained by essentially microbiological processes and which contain the gene mentioned.
  • the amino acid sequence derived from the sequence of the ⁇ -glucanase gene from Bacillus alkalophilus DSM 9956 of the ⁇ -glucanase according to the invention (SEQ ID-NO: 1) obtainable from this microorganism is shown in FIG. 1 in the one-letter code.
  • a ⁇ -glucanase according to the invention preferably has a homology of over 70%, in particular 75% to 99%, to the ⁇ -glucanase from Bacillus alkalophilus DSM 9956. The same applies to the underlying gene.
  • a preferred area of use for the enzyme according to the invention is in the food industry, in particular the beverage and brewery industry, and is in particular in particular the removal of glucan and / or lichenane when cleaning membranes and other devices in these industries.
  • Another object of the invention is a method for removing glucan and / or lichenan in the cleaning of membranes and other devices in the food industry, in particular the brewery industry, using a ⁇ -glucanase according to the invention.
  • the ⁇ -glucanase was purified from the cell supernatant of a clone in E. coli DH 5 ⁇ pmK4. After dialysis of the cell-free supernatant against 20 mM sodium phosphate buffer (pH 7.5), the dialysate was bound to Q-Sepharose (Pharmacia) and with a linear gradient of 0 - IM NaCl in 25 mM sodium phosphate buffer (pH 7.5 or pH 9.0 ) eluted.
  • glucanolytic activity is based on modifications by M. Lever in Anal. Biochem. 47 (1972), 273-279 and Anal. Biochem. 81 (1977), 21-27.
  • a 0.5% by weight solution of ⁇ -glucan (Sigma no. G6513) in 50 mM glycine buffer (pH 9.0) is used for this. 250 ⁇ l of this solution are added to 250 ⁇ l of a solution containing the agent to be tested for glucanolytic activity and incubated at 40 ° C. for 30 minutes.
  • PAHBAH p-hydroxybenzoic acid hydrazide
  • the specific activity of the enzyme thus obtained was 4390 mU per mg protein, whereas the starting solution had an activity which was 152 times lower.
  • the enzyme was stained as a homogeneous band in SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (silver staining).
  • the molecular weight of the ⁇ -glucanase from Bacillus alkalophilus DSM 9956 was estimated to be approximately 30,000 using SDS polyacrylamide gel electrophoresis.
  • the isoelectric point of the ⁇ -glucanase was determined by means of activity staining to pH 5.2.
  • the glucanolytic activity was determined at various pH values in a Davies universal buffer (21.01 g citric acid H 2 O, 13.61 g KH 2 PO 4 , 19.07 g Na 2 B 4 O 7 10 H 2 O, 12.11 g Tris and 7.46 g KCl in 1 l distilled water; 50 ml of this stock solution are adjusted to the desired pH with 0.4 N NaOH and made up to 200 ml with distilled water) at 40 ° C and 30 minute incubation.
  • the pH profile shown in FIG. 2 plot of the relative glucanolytic activity, relative to the pH value
  • the enzyme is most active in the range between pH 6 and pH 10.5.
  • the optimum is pH 9.
  • Example 3 Temperature profile
  • the temperature dependence of the glucanolytic activity of the ⁇ -glucanase obtained from Bacillus alkalophilus DSM 9956 was measured in glycine / NaOH at pH 9 with a 15 minute incubation. The pH of the test solution was adjusted because the buffer has a temperature dependence of approx. PH 0.033 per ° C. The maximum of the glucanolytic activity is 60 ° C., as can be seen from FIG. 3, in which the relative glucanolytic activity (rel. A.) of the enzyme is plotted as a function of the temperature (T).
  • MOLECULE TYPE Genomic DNA HYPOTHETICAL: NO

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Abstract

Das Anwendungsgebiet von β-Glucanasen, die üblicherweise im schwach sauren bis neutralen Bereich aktiv sind, sollte dahingehend erweitert werden, daß sie im Hinblick auf eine Verwendung in technischen Prozessen, die im alkalischen Milieu stattfinden, eine ausreichende Stabilität auch unter diesen Bedingungen aufweisen. Dies gelang durch ein aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 erhältliches Enzym, welches glucanolytische Aktivität aufweist.

Description

Neue Beta-Glucanase aus Bacillus
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Enzym, das Mischglucane, die alternierend in 1,3- und 1 ,4-ß-glucosidischer Bindung verknüpft sind, hydrolytisch in Oligosaccharide spalten kann sowie den Mikroorganismus, der dieses Enzym bildet.
Derartige Enzyme gehören zur Klasse der Endo-l,3-l,4-ß-D-glucan-4-glucanohydrolasen (EC 3.2.1.73; Lichenasen) oder der Endo-l,3-ß-D-glucosidasen (EC 3.2.1.39; Laminarinasen). Im Sinne der vorliegenden Erfindung wird ein solches Enzym hier als ß- Glucanase oder Beta-Glucanase bezeichnet.
Polymere Mischglucane der oben genannten Art sind in unterschiedlichen Anteilen in praktisch allen Getreideprodukten enthalten. Enzyme, welche diese zu spalten vermögen, werden vor allem in der Nahrungsmittel-, Getränke- und Futtermittelindustrie, der Textilindustrie und der Stärkeverarbeitung benötigt (R. Borriss, „ß-Glucan-spaltende Enzyme", in H. Ruttloff, „Industrielle Enzyme", Kapitel 11.5, Behr's Verlag, Hamburg, 1994). Eine der wichtigsten Anwendungen von ß-Glucanasen liegt im Bereich der Getränke- und Brauindustrie, wo derartige Enzyme zum Abbau von Malz- und Gersten-ß- Glucan eingesetzt werden. Die hierfür zum Einsatz kommenden Enzyme stammen üblicherweise aus Bacillus subtilis, wie zum Beispiel in der deutschen Patentschrift DD 226 012 AI beschrieben, oder Bacillus amyloliquefaciens, doch sind auch ß- Glucanasen aus anderen Mikroorganismen, beispielsweise Achromobacter lunatus, Athrobacter luteus, Aspergillus aculeatus, Aspergillus niger, Disporotrichum dimorphosporum, Humicola insolens, Penicillium emersonii, Penicillium funiculosum oder Trichoderma reesei, bekannt. Ein handelsübliches Produkt wird zum Beispiel unter der Bezeichnung Cereflo® (Hersteller: Novo Nordisk A/S) zum Einsatz in der Brauereiindustrie angeboten.
Bisher bekannte ß-Glucanasen weisen pH-Optima im schwach sauren bis neutralen Bereich auf, so daß ihre Verwendung auf Verfahren beschränkt ist, die bei diesen pH- Werten durchgeführt werden. Die Anmelderin hatte sich zum Ziel gesetzt, das Anwendungsgebiet der ß-Glucanasen zu erweitern und eine ß-Glucanase zu entwickeln, die im Hinblick auf eine Verwendung in technischen Prozessen, die im alkalischen Milieu stattfinden, eine ausreichende Stabilität auch unter diesen Bedingungen aufweist.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 erhältliches Enzym, welches die eingangsgenannte glucanolytische Aktivität aufweist, der eine ß-Glucanase erzeugende Mikroorganismus Bacillus alkalophilus DSM 9956 und das für die ß-Glucanase aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 kodierende Gen, das im Rahmen der Arbeiten, die zur vorliegenden Erfindung führten, identifiziert und sequenziert (SEQ ID-NO.:2) worden ist. Dieses Gen kann gewünschtenfalls in im Prinzip bekannter Weise in anderen Bakterien kloniert und dort die ß-Glucanase exprimiert werden. Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind daher auch durch im wesentlichen mikrobiologische Verfahren erhältliche Wirtsorganismen, welche das genannte Gen enthalten. Die aus der Sequenz des ß-Glucanase-Gens aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 abgeleitete Aminosäuresequenz der aus diesem Mikroorganismus erhältlichen erfindungsgemäßen ß-Glucanase (SEQ ID-NO:l) ist in Fig. 1 im Ein-Buchstaben-Code wiedergegeben. Die ß-Glucanase aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 einschließlich des Signaleptids, das nach dem Transport durch die Zellwand des Mikroorganismus durch eine Signalpeptidase abgespalten wird und das nach Vergleich mit literaturbekannten Daten [M.E. Louw, S.J. Reid, Watson, Appl. Microbiol. Biotech. 39 (1993), 507-513] vermutlich 31 Aminosäuren umfasst, besteht aus 308 Aminosäuren. Der entsprechende Mikroorganismus ist Gram-positiv, seine Zellform ist stäbchenförmig (Breite ca. 0,7 μm bis 0,9 μm, Länge ca. 2,5 μm bis 4,0 μm); er ist von der Patentanmelderin am 13.4.1995 bei der DSM-Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, Mascheroder Weg lb, 38124 Braunschweig hinterlegt worden und hat die Hinterlegungsnummer DSM 9956 erhalten.
Vorzugsweise weist eine erfindungsgemäße ß-Glucanase eine Homologie von über 70 %, insbesondere 75 % bis 99 % zur ß-Glucanase aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 auf. Entsprechendes gilt für das zugrundeliegende Gen.
Ein bevorzugtes Einsatzgebiet für das erfindungsgemäße Enzym liegt in der Lebensmittelindustrie, insbesondere der Getränke- und Brauereiindustrie und ist insbe- sondere die Entfernung von Glucan und/oder Lichenan bei der Reinigung von Membranen und sonstigen Vorrichtungen dieser Industriezweige.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Entfernung von Glucan und/oder Lichenan bei der Reinigung von Membranen und sonstigen Vorrichtungen der Lebensmittelindustrie, insbesondere der Brauereiindustrie unter Einsatz einer erfindungsgemäßen ß-Glucanase.
Beispiele
Beispiel 1
Chromosomale DNA aus Bacillus alkalophilus C/M2-3 wurde mit Sau3A partiell verdaut und eine Fraktion von 4 bis 8 kb großen Fragmenten gelelektrophoretisch isoliert. Nach Ligation in die 5αmHl-site des Plasmids pMK4, eines E. coli - Bacillus shuttle-Vektors [M.A. Sullivan et al., Gene 29 (1984), 21-26], wurde in kompetente E. coli DH5α - Zellen transformiert. Rekombinante Klone mit ß-Glucanaseaktivität wurden durch Congo-Rot- Färbung auf LB-Platten mit 0,2 % Lichenin (pH8.5) identifiziert.
Die ß-Glucanase wurde aus dem Zeilüberstand eines Klons in E. coli DH 5 α pmK4 aufgereinigt. Nach Dialyse des zellfreien Überstands gegen 20 mM Natriumphosphatpuffer (pH 7,5) wurde das Dialysat auf Q-Sepharose (Pharmacia) gebunden und mit einem linearen Gradienten von 0 - I M NaCl in 25 mM Natriumphosphatpuffer (pH 7,5 oder pH 9,0) eluiert.
Der Nachweis und die Bestimmung der glucanolytischen Aktivität beruht auf Modifizierungen des von M. Lever in Anal. Biochem. 47 (1972), 273-279 und Anal. Biochem. 81 (1977), 21-27 beschriebenen Verfahrens. Dazu wird eine 0,5 gewichtsprozentige Lösung von ß-Glucan (Sigma no. G6513) in 50 mM Glycinpuffer (pH 9,0) eingesetzt. 250 μl dieser Lösung werden zu 250 μl einer Lösung, die das auf glucanolytische Aktivität zu testende Mittel enthält, gegeben und 30 Minuten bei 40 °C inkubiert. Anschließend werden 1 ,5 ml einer 1 gewichtsprozentigen Lösung von p- Hydroxybenzoesäurehydrazid (PAHBAH) in 0,5 M NaOH, die 1 mM Bismutnitrat und 1 mM Kaliumnatriumtartrat enthält, zugegeben und die Lösung wird 10 Minuten auf 70 °C erwärmt. Nach Abkühlen (2 Minuten 0 °C) wird bei Raumtemperatur die Absorption bei 410 nm (zum Beispiel unter Verwendung eines Photometers Uvikon® 930) unter Verwendung einer Glukose-Eichkurve gegenüber einem Blindwert bestimmt. Als Blindwert wird eine Lösung herangezogen, die wie die Meßlösung vorbereitet wurde mit dem Unterschied, daß man die Glucan-Lösung erst nach der Zugabe der PAHBAH- Lösung zugibt. 1 U entspricht der Enzymmenge, die unter diesen Bedingungen 1 μmol Glucose pro Minute erzeugt.
Die spezifische Aktivität des so erhaltenen Enzyms lag bei 4390 mU pro mg Protein, wohingegen die Ausgangslösung eine um den Faktor 152 geringere Aktivität aufgewiesen hatte. Das Enzym wurde als homogene Bande in der SDS-Polyacrylamid- Gelelektrophorese angefärbt (Silberfärbung).
Mit Hilfe von Markerproteinen (Cytochrom c, Pferde-Myoglobin, Chymotrypsinogen, Ovalbumin, Rinderserumalbumin) als internem Standard wurde mittels SDS- Polyacrylamid-Gelelektrophorese das Molekulargewicht der ß-Glucanase aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 zu ca. 30 000 abgeschätzt.
In der isoelektronischen Fokussierung (pH 3 bis 9) wurde der isoelektrische Punkt der ß- Glucanase mittels Aktivitätsanfärbung zu pH 5,2 bestimmt.
Beispiel 2: pH-Profil
Die Bestimmung der glucanolytischen Aktivität bei verschiedenen pH- Werten erfolgte in einem Davies-Universalpuffer (21,01 g Zitronensäure H2O, 13,61 g KH2PO4, 19,07 g Na2B4O7 10 H2O, 12,11 g Tris und 7,46 g KCl in 1 1 dest. Wasser; 50 ml dieser Stammlösung werden mit 0,4 N NaOH auf den gewünschten pH eingestellt und mit dest. Wasser auf 200 ml aufgefüllt) bei 40 °C und 30 minütiger Inkubation. Wie aus dem in Fig. 2 wiedergegebenen pH-Profil (Auftragung der relativen glukanolytischen Aktivität, rel. A., gegen den pH-Wert) deutlich wird, ist das Enzym am aktivsten im Bereich zwischen pH 6 und pH 10,5. Das Optimum liegt bei pH 9. Beispiel 3: Temperatur-Profil
Die Temperaturabhängigkeit der glucanolytischen Aktivität der aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 gewonnenen ß-Glucanase wurde in Glycin/NaOH bei pH 9 mit 15 minütiger Inkubation gemessen. Der pH- Wert der Testlösung wurde angepasst, da der Puffer eine Temperaturabhängigkeit von ca. pH 0,033 pro °C aufweist. Das Maximum der glucanolytischen Aktivität liegt bei 60 °C, wie man aus Fig. 3 erkennt, in der die relative glukanolytische Aktivität (rel. A.) des Enzyms in Abhängigkeit von der Temperatur (T) aufgetragen ist.
SEQUENZPROTOKOLL
ALLGEMEINE ANGABEN:
ANMELDER:
NAME: Cognis Gesellschaft für Biotechnologie mbH
STRASSE: Henkelstraße 67, Gebäude Y 20
ORT: Düsseldorf
BUNDESLAND: Nordrhein-Westfalen
POSTLEITZAHL: 40589
TELEFON: 0211 - 7976763
TELEFAX: 0211 - 7987607
BEZEICHNUNG DER ERFINDUNG: Neue Beta-Glucanase aus Bacillus
ANZAHL DER SEQUENZEN: 2
BRIEF ADRESSE:
ADRESSAT Cognis Gesellschaft für Biotechnologie mbH
STRASSE: Henkelstraße 67, Gebäude Y 20
ORT: Düsseldorf
BUNDESLAND: Nordrhein-Westfalen POSTLEITZAHL: 40589
COMPUTERLESBARE FASSUNG: DATENTRÄGER: Diskette
COMPUTER: IBM PC-kompatibel
BETRIEBSSYSTEM: MS-WINDOWS SOFTWARE: MS WORD 97
ANGABEN ZU SEQ ID-NO:l:
SEQUENZ-CHARACTERISTIKA: LÄNGE: 308 Aminosäuren ART: Aminosäure TOPOLOGIE: unbekannt
ART DES MOLEKÜLS: Protein
HYPOTHETISCH: NEIN
SEQUENZBESCHREIBUNG: SEQ ID-NO:l: Met Lys Arg Lys Thr Phe Val Leu Phe Ser Leu Phe Thr Leu Leu Ile 1 5 10 15
Gly Met Phe Ser Thr Gly Phe Ala Asn Thr Gly Val Val Gin Ala Glu 20 25 30
Asp Gly Arg Pro Met Gly Ser Thr Phe His Glu Thr Phe Asp Thr Phe 35 40 45
Asn Thr Asp Arg Trp Ser Thr Ala Gly Val Trp Thr Asn Gly Ala Met 50 55 60
Phe Asn Ala Thr Trp Tyr Pro Glu Gin Val Thr Ile Ser Asp Gly Lys 65 70 75 80
Met Lys Leu Gin Ile Asp Lys Glu Asp Asp Glu Asp Ala Thr Pro Glu 85 90 95
Tyr Lys Ala Gly Glu Leu Arg Thr Asn Gin Phe Tyr Gin Tyr Gly Leu 100 105 110
Phe Glu Val Asn Met Lys Pro Ala Lys Ser Thr Gly Thr Val Ser Ser 115 120 125
Leu Phe Thr Tyr Thr Gly Pro Trp Asp Trp Asp Asn Asp Pro Trp Asp 130 135 140
Glu Ile Asp Ile Glu Phe Leu Gly Lys Asp Thr Thr Arg Val Gin Phe 145 150 155 160
Asn Tyr Phe Thr Asn Gly Val Gly Asn Asn Glu His Tyr His Glu Leu 165 170 175
Gly Phe Asp Ala Ser Glu Ser Phe Asn Thr Tyr Ala Phe Glu Trp Arg 180 185 190
Pro Glu Ser Ile Ser Trp Tyr Val Asn Gly Glu Leu Val Tyr Thr Ala 195 200 205
Thr Glu Asn Ile Pro Gin Thr Pro Gin Lys Ile Met Met Asn Leu Trp 210 215 220
Pro Gly Ile Gly Val Asp Gly Trp Thr Gly Val Phe Asp Gly Glu Asp 225 230 235 240
Thr Pro Val Val Thr Glu Tyr Asp Trp Val Arg Tyr Thr Pro Leu Glu 245 250 255
Glu Leu Asp Asn Asn Gly Glu Gin Pro Lys Pro Val Val Pro Gly Lys 260 265 270
Pro Glu Lys Pro Gly Lys Pro Gly Lys Asn Gin Lys Asn Gin Glu Asn 275 280 285
Gin Glu Asn Gin Lys Asn Gin Glu Asn Gin Lys Asn Gin Lys Ile Arg 290 295 300
Lys Thr Ser Ser 305 308
ANGABEN ZU SEQ ID-NO:2:
SEQUENZ-CHARACTERISTIKA: LÄNGE: 927 Basenpaare ART: Nukleinsäure STRANGFORM: Doppelt TOPOLOGIE: linear
ART DES MOLEKÜLS: Genom-DNA HYPOTHETISCH: NEIN
ANTI-SENSE: NEIN
URSPRÜNGLICHE HERKUNFT:
STAMM: Bacillus alkalophilus DSM 9956
SEQUENZBESCHREIBUNG: SEQ ID-NO:2:
ATG AAA AGG AAG ACA TTT GTA TTA TTT TCT TTA TTT ACG TTG TTA 45
ATT GGT ATG TTC TCA ACA GGG TTT GCA AAT ACA GGT GTG GTT CAG 90
GCA GAA GAT GGG AGA CCA ATG GGG TCG ACG TTT CAT GAA ACG TTT 135
GAT ACC TTT AAT ACG GAC CGC TGG TCA ACA GCT GGG GTA TGG ACA 180
AAT GGA GCA ATG TTT AAT GCG ACA TGG TAT CCA GAA CAG GTG ACC 225
ATT TCA GAT GGG AAA ATG AAG TTG CAA ATT GAC AAG GAA GAT GAT 270
GAA GAT GCA ACC CCA GAA TAT AAG GCT GGG GAA TTA AGA ACG AAT 315
CAG TTT TAT CAA TAC GGG TTG TTT GAA GTC AAT ATG AAG CCA GCG 360
AAA TCA ACA GGA ACC GTC TCT TCA CTC TTT ACA TAT ACG GGT CCA 405
TGG GAT TGG GAT AAT GAT CCT TGG GAT GAA ATC GAT ATT GAG TTC 450
CTT GGA AAG GAT ACA ACA AGA GTC CAA TTT AAC TAT TTT ACT AAC 495
GGA GTA GGA AAC AAT GAA CAT TAC CAC GAA TTA GGG TTC GAT GCA 540
TCA GAA TCT TTT AAT ACG TAT GCT TTT GAA TGG AGA CCA GAA TCA 585
ATT AGT TGG TAC GTA AAC GGA GAA TTA GTA TAT ACA GCA ACA GAA 630
AAT ATC CCG CAA ACA CCA CAA AAA ATT ATG ATG AAC TTA TGG CCT 675
GGA ATT GGA GTG GAT GGA TGG ACA GGC GTT TTT GAC GGA GAA GAC 720
ACT CCA GTT GTA ACG GAG TAT GAT TGG GTA AGG TAC ACT CCA CTA 765
GAG GAA TTA GAT AAT AAC GGA GAA CAA CCG AAA CCT GTA GTG CCA 810
GGA AAA CCA GAA AAA CCA GGA AAA CCA GGG AAA AAC CAG AAA AAC 855
CAG GAA AAC CAG GAA AAC CAG AAA AAC CAG GAA AAC CAG AAA AAC 900
CAA AAA ATC AGA AAA ACC AGT AGT TGA 927

Claims

Patentansprüche
1. ß-Glucanase erzeugender Mikroorganismus Bacillus alkalophilus DSM 9956.
2. Aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 erhältliches Enzym, welches ß-glucanolytische Aktivität aufweist.
3. Enzym nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß es die in Fig. 1 wiedergegebene Aminosäuresequenz aufweist oder eine Homologie von über 70 % zu der des Enzyms mit der in SEQ ID-NO:l wiedergegebenen Aminosäuresequenz aufweist.
4. Enzym nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß es eine Homologie von 75 % bis 99 % zu der des Enzyms mit der in SEQ ID-NO:l wiedergegebenen Aminosäuresequenz aufweist.
5. Gen, das für ein Enzym gemäß einem der Ansprüche 2 bis 4 kodiert.
6. Gen nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß es die in SEQ ID-NO.:2 wiedergegebene Sequenz oder eine Homologie von über 70 % zu dieser Sequenz aufweist.
7. Gen nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß es eine Homologie von 75 % bis 99 % zu der in SEQ ID-NO.:2 wiedergegebenen Sequenz aufweist.
8. Durch im wesentlichen mikrobiologische Verfahren erhältlicher Wirtsorganismus, welcher ein Gen gemäß einem der Ansprüche 5 bis 7 enthält.
9. Verwendung eines aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 erhältlichen Enzyms, welches ß-glucanolytische Aktivität aufweist, zur Entfernung von Glucan und/oder Lichenan bei der Reinigung von Membranen und Vorrichtungen der Lebensmittelindustrie, insbesondere der Brauereiindustrie.
10. Verwendung nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß das Enzym die in Fig. 1 wiedergegebene Aminosäuresequenz aufweist oder eine Homologie von über 70 %, insbesondere 75 % bis 99 % zu der des Enzyms mit der in SEQ ID-NO:l wiedergegebenen Aminosäuresequenz aufweist.
11. Verfahren zur Entfernung von Glucan und/oder Lichenan bei der Reinigung von Membranen und Vorrichtungen der Lebensmittelindustrie, insbesondere der Brauereiindustrie, dadurch gekennzeichnet, daß man ein aus Bacillus alkalophilus DSM 9956 erhältliches Enzym, welches ß-glucanolytische Aktivität aufweist, einsetzt.
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