PL193352B1 - Koniugat poliol-interferon ß, sposób jego wytwarzania i jego zastosowanie oraz kompozycja farmaceutyczna - Google Patents

Koniugat poliol-interferon ß, sposób jego wytwarzania i jego zastosowanie oraz kompozycja farmaceutyczna

Info

Publication number
PL193352B1
PL193352B1 PL344490A PL34449099A PL193352B1 PL 193352 B1 PL193352 B1 PL 193352B1 PL 344490 A PL344490 A PL 344490A PL 34449099 A PL34449099 A PL 34449099A PL 193352 B1 PL193352 B1 PL 193352B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
polyol
peg
ifn
interferon
conjugate
Prior art date
Application number
PL344490A
Other languages
English (en)
Other versions
PL344490A1 (en
Inventor
Tayar Nabil El
Michael J. Roberts
Milton Harris
Wayne Sawlivich
Original Assignee
Applied Research Systems
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Applied Research Systems filed Critical Applied Research Systems
Publication of PL344490A1 publication Critical patent/PL344490A1/xx
Publication of PL193352B1 publication Critical patent/PL193352B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/02Drugs for skeletal disorders for joint disorders, e.g. arthritis, arthrosis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/18Antivirals for RNA viruses for HIV
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/06Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P39/00General protective or antinoxious agents

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • AIDS & HIV (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Pain & Pain Management (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

1. Koniugat poliol-interferon ß, znamienny tym, ze zawiera ugrupowanie poliolu kowalen- cyjnie zwi azane z Cys 17 ludzkiego interferonu ß. 6. Sposób wytwarzania koniugatu poliol-interferon ß okre slonego w zastrz. 1, znamienny tym, ze - poddaje si e interferon ß reakcji ze srodkiem stanowi acym poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej, b ed acy pochodn a poliolu zawieraj ac a grup e funkcyjn a wybran a z grupy obejmuj acej ugrupowanie disulfidu o-pirydylowego, sulfonu winylowego, maleimidu i jodoacetamidu; - wyodr ebnia si e wytworzony koniugat poliol-interferon ß. 12. Kompozycja farmaceutyczna, znamienna tym, ze zawiera koniugat poliol-interferon ß okre slony w zastrz. 1 jako sk ladnik aktywny oraz farmaceutycznie dozwolony no snik, zaróbk e lub srodek pomocniczy. 13. Zastosowanie koniugatu poliol-interferon ß okre slonego w zastrz. 1 do wytwarzania kom- pozycji farmaceutycznej do leczenia zaka ze n, nowotworów oraz chorób autoimmunizacyjnych i za- palnych. PL PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest koniugat poliol-interferon β, sposób jego wytwarzania i jego zastosowanie oraz kompozycja farmaceutyczna. Opisano takie koniugaty PEG-IFN-β, w których poliol jest kowalencyjnie związany z Cys17 oraz sposób, specyficznego względem miejsca, wytwarzania tych koniugatów i ich użycie w leczeniu, prognozowaniu lub diagnozowaniu zakażeń bakteryjnych, zakażeń wirusowych, chorób autoimmunizacyjnych i chorób zapalnych.
Ludzki interferon fibroblastowy (IFN-β) wykazuje aktywność przeciwwirusową i może także stymulować aktywność naturalnych komórek-zabójców (komórek K) skierowaną przeciw komórkom nowotworowym. Jest to polipeptyd o około 20000 Da, indukowany przez wirusy i dwuniciowy DNA. Z sekwencji nukleotydów genu dla interferonu fibroblastowego, po sklonowaniu metodą rekombinacji DNA, Derynk i in. [Nature, 285, 542-547 (1980)] wydedukowali pełną sekwencję aminokwasów tego białka. Jej długość wynosi 166 aminokwasów.
Shepard i in. [Nature, 294, 563-565 (1981)] opisali mutację przy zasadzie 842 (Cys > Tyr w pozycji 141) niweczącą aktywność przeciwwirusową oraz klon wariantowy z delecją nukleotydów 1119-1121.
Mark i in [Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 81 (18), 5662 -5666 (1984)] dokonali wstawienia sztucznej mutacji za pomocą zastąpienia zasady 469 (T) przez (A), powodując w ten sposób przestawienie aminokwasów z Cys > Ser w pozycji 17. Doniesiono, że otrzymany IFN-β był tak samo aktywny, jak IFN-β „natywny”, a także wykazywał stabilność w warunkach długotrwałego przechowywania (w temperaturze -70°C).
Kowalencyjne przyłączenie do cząsteczek polimeru hydrofilowego, a mianowicie poli(glikolu etylenowego) (PEG), znanego także jako poli(tlenek etylenu) (PEO), znajduje ważne zastosowanie w biotechnologii i medycynie. W swej najbardziej typowej postaci PEG jest liniowym polimerem z grupami hydroksylowymi na obu końcach:
HO-CH2-CH2O (CH2CH2O)nCH2CH2-OH
Wzór ten można w skróceniu przedstawić jako HO-PEG-OH, przy czym rozumie się, że -PEGoznacza szkielet polimeru bez grup końcowych:
„-PEG”- oznacza -CH2CH2O(CH2CH2O)nCH2CH2PEG stosowany jest zwykle jako metoksy-PEG-OH (m-PEG), w którym jeden koniec stanowi względnie obojętna grupa metoksylowa, a drugi grupa hydroksylowa, podlegająca modyfikacji chemicznej:
CH3O-(CH2CH2O)n-CH2CH2-OH
Powszechnie stosowane są także PEG rozgałęzione. PEG rozgałęzione można przedstawić wzorem:
R(-PEH-OH)m w którym R oznacza centralne ugrupowanie rdzeniowe, takie jak pentaerytrytol lub glicerol, a m oznacza liczbę rozgałęzionych ramion. Ilość rozgałęzionych ramion (m) może mieścić się w zakresie od 3 do 100 lub więcej. Grupy hydroksylowe poddaje się modyfikacji chemicznej.
Inna rozgałęziona postać PEG, taka, jaką ujawniono w dokumencie WO 96/21469, posiada pojedynczy koniec podlegający modyfikacji chemicznej. PEG tego typu można przedstawić wzorem:
(CH3O-PEG-)PR-X w którym p oznacza 2 lub 3, R oznacza centralny rdzeń, taki jak lizyna lub glicerol, a X oznacza grupę funkcyjną, taką jak grupa karboksylowa, która podlega modyfikacji chemicznej. Jeszcze inna postać rozgałęziona, a mianowicie „PEG z grupami bocznymi” zawiera grupy funkcyjne, takie jak grupa karboksylowa, rozmieszczone raczej wzdłuż szkieletu PEG niż na końcu łańcuchów PEG.
PL 193 352 B1
Oprócz tych postaci PEG, polimer ten można wytworzyć także w postaci zawierającej słabe lub ulegające rozkładowi wiązania w szkielecie. I tak, na przykład, Harris (dokument US nr 6 214 966) wykazał, że można wytworzyć PEG z ulegającymi hydrolizie wiązaniami estrowymi w szkielecie polimeru. Hydroliza taka prowadzi do rozszczepienia polimeru na fragmenty o mniejszej masie cząsteczkowej, zgodnie z poniższym schematem reakcji:
-PEG-CO2-PEG- + H2O -PEG-CO2H + HO-PEGRozumie się, że stosowany w niniejszym opisie termin „poli(glikol etylenowy)” lub „PEG” obejmuje swym zakresem wszystkie pochodne wyżej opisane.
Z PEG są ściśle spokrewnione, pod względem chemicznym, kopolimery tlenku etylenu i tlenku propylenu i można ich używać zamiast PEG w wielu zastosowaniach. Mają one wzór następujący:
HO-CH2CHRO(CH2CHRO)nCH2CHR-OH w którym R oznacza H lub CH3.
PEG jest użytecznym polimerem odznaczającym się właściwością dobrej rozpuszczalności w wodzie, jak również dobrą rozpuszczalnością w szeregu rozpuszczalników organicznych. PEG jest także nietoksyczny i nieimmunogenny. W przypadku przyłączania PEG metodą chemiczną (ang. PEGylation, w dalszym ciągu niniejszego opisu „PEG-ilowanie”) do związku nierozpuszczalnego w wodzie, powstały tak koniugat jest na ogół rozpuszczalny w wodzie, a także rozpuszczalny w wielu rozpuszczalnikach organicznych.
Obecnie, koniugatu PEG-białko używa się w metodach leczenia obejmujących zastępowanie białka i w innych sposobach leczenia. I tak, na przykład, PEG-ilowana deaminaza adenozynowa (ADAGEN®) stosowana jest do leczenia ostrego złożonego upośledzenia odporności (SCIDS), PEG-ilowanej L-asparaginazy (ONCAPSPAR®) używa się do leczenia ostrej białaczki limfoblastycznej (ALL), a PEG-ilowany interferon α [INTRON(R) A] znajduje się w III fazie prób leczenia zapalenia wątroby C.
Jeśli chodzi o ogólny przegląd klinicznie skutecznych koniugatów PEG-białko - patrz: N. L.
Burnham, Am. Chem. Hosp. Pharm., 15, 210 - 218 (1994).
Opracowano szereg różnych metod PEG-ilowania białek. Typowo, przyłączenia PEG do reaktywnych grup znajdujących się na białku dokonuje się z wykorzystaniem elektronofilowo zaktywowanych pochodnych PEG. Przyłączenie PEG do grup aminowych α i ε znajdujących się na resztach lizyny i N-końcu prowadzi do otrzymania koniugatu złożonego z mieszaniny produktów.
Ogólnie, koniugaty tego rodzaju złożone są populacji szeregu cząsteczek PEG przyłączonych do jednej cząsteczki białka („PEGmery”) w ilości mieszczącej się w zakresie od 0 do liczby grup aminowych w tym białku. W przypadku pojedynczo zmodyfikowanej cząsteczki białka, jednostka PEG może być przyłączona w aktualnej ilości różnych miejsc o charakterze aminowym.
Ten typ niespecyficznego PEG-ilowania prowadzi do powstania szeregu koniugatów, które stają się prawie pozbawione aktywności. Typowo, to zmniejszenie się aktywności spowodowane jest przez ekranowanie aktywnej wiążącej domeny białka, jak to się zdarza w przypadku wielu cytokin i przeciwciał. I tak, na przykład, Katre i in., w opisach patentowych US 4 766 106 i US 4 917 888, ujawniają PEG-ilowanie IFN-β i IL-2 użytym w dużym nadmiarze glutaranem metoksy-polietylenoglikolilo-N-sukcynoimidylu i bursztynianem metoksy-polietylenoglikolilo-N-sukcynoimidylu. Oba te białka wytworzono w drobnoustrojowych komórkach-gospodarzach, co umożliwiło specyficzną względem miejsca mutację wolnej cysteiny do seryny. Mutacja była potrzebna w mikrobiologicznej ekspresji IFN-β dla ułatwienia sfałdowania białka. W szczególności, jako IFN-β stosowanego w tych eksperymentach użyto produktu handlowego Betaseron®, w którym reszta Cys17 zastąpiona jest seryną. Oprócz tego, brak glikozylacji doprowadził do zmniejszenia jego rozpuszczalności w roztworze wodnym. Niespecyficzna PEG-ilacja doprowadziła do zwiększenia rozpuszczalności, ale głównym problemem pozostał obniżony poziom aktywności, a także wydajności.
W europejskim zgłoszeniu patentowym EP 593868, zatytułowanym „Koniugaty PEG-interferon”, opisano wytwarzanie koniugatów PEG-IFN-α. Jednakże, reakcja PEG-ilowania nie jest specyficzna względem miejsca, w wyniku czego otrzymuje się mieszaninę pozycyjnych izomerów koniugatów PEG-IFN-α [patrz także: Monkarsh i in., ACS Symp. Ser., 680, 207-216 (1997)].
PL 193 352 B1
Kinstler i in. w europejskim zgłoszeniu patentowym EP 675 201 zademonstrowali selektywną modyfikację N-końcowej reszty megakariocytowego czynnika wzrostu i rozwoju (MGDF) przy użyciu m-PEG-propionoaldehydu. Postępowanie takie umożliwiło dokonywanie w powtarzalny sposób PEG-ilowania i uzyskiwania odtwarzalnej farmakokinetyki z serii (produkcyjnej) na serię.
Gilbert i in., w opisie patentowym US 5 711 944 wykazali, że możliwe jest PEG-ilowanie IFN-α z osiągnięciem optymalnego poziomu aktywności. W ich przypadku potrzebne okazało się wprowadzenie pracochłonnego etapu oczyszczania w celu uzyskania koniugatu o optymalnych właściwościach.
Większość cytokin, tak jak i innych białek, nie posiada specyficznego miejsca przyłączania PEG i (poza wymienionymi powyżej przykładami) jest wysoce prawdopodobne, że niektóre izomery wytworzone na drodze reakcji PEG-ilowania są częściowo lub całkowicie nieaktywne. Prowadzi to do utraty aktywności końcowej mieszaniny.
Tak więc, pożądanym celem wytwarzania koniugatów białkowych tego rodzaju jest mono-PEG-ilowanie specyficzne względem miejsca.
Woghiren i in. [Bioconjugate Chem., 4 (5), 314-318 (1993)] zsyntetyzowali specyficzną względem grupy tiolowej pochodną PEG w celu wykorzystania jej w PEG-acylowaniu specyficznym względem miejsca. Wykazali oni, że trwała, z zabezpieczoną grupą tiolową pochodna PEG w postaci reaktywnej grupy disulfidu p-pirydylowego, tworzy w sposób specyficzny koniugat z wolną cysteiną obecną w białku, a mianowicie papainie. Nowo utworzone wiązanie disulfidowe między papainą a PEG można było rozszczepić w łagodnych warunkach redukujących, ze zregenerowaniem białka natywnego.
W dokumencie WO 87/00056 ujawniono sposób solubilizacji kompozycji farmaceutycznych nierozpuszczalnych w wodzie białek wybranych z interferonu β, interleukiny-2, immunotoksyny. Białka są sprzężone z rozpuszczalnym w wodzie polimerem wybranym z homopolimerów glikolu polietylenowego lub polioksyetylowanych polioli.
W dokumencie US 5 206 344 ujawniono koniugat interleukina-2-muteina z PEG. Połączenie zostało utworzone z zastosowaniem reagenta PEG-imid maleinowy.
W dokumencie US 5 166 322 opisano odmianę interleukiny-3 z dodaną cysteiną, mającą jedną lub więcej reszt cysteinowych. Muteiny są modyfikowane przez sprzęganie reaktywnych tiolowych polimerów z wprowadzonym resztami cysterny, w jednym etapie.
Koniugat poliol-interferon β, zgodnie z wynalazkiem charakteryzuje się tym, że zawiera ugrupowanie poliolu kowalencyjnie związane z Cys17 ludzkiego interferonu β.
Korzystnie, wspomnianym ugrupowaniem poliolu jest ugrupowanie glikolu polialkilenowego.
Bardziej korzystnie, wspomnianym ugrupowaniem glikolu polialkilenowego jest ugrupowanie glikolu polietylenowego (PEG).
Korzystnie, koniugat poliol-interferon β wykazuje aktywność taką samą, jak aktywność natywnego ludzkiego interferonu β lub wyższą.
Koniugat poliol-interferon β określony w zastrz. 1, zgodnie z wynalazkiem stosuje się jako lek.
Sposób wytwarzania koniugatu poliol-interferon β określonego w zastrz. 1, zgodnie z wynalazkiem charakteryzuje się tym, że:
- poddaje się interferon β reakcji ze środkiem stanowiącym poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej, będący pochodną poliolu zawierającą grupę funkcyjną wybraną z grupy obejmującej ugrupowanie disulfidu o-pirydylowego, sulfonu winylowego, maleimidu i jodoacetamidu;
- wyodrębnia się wytworzony koniugat poliol-interferon β.
Korzystnie, jako środek stanowiący poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej stosuje się reaktywny w stosunku do grupy tiolowej środek PEG-ilujący.
Korzystnie, środek stanowiący poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej jest monometoksylowany.
Korzystnie, środek stanowiący poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej jest dwufunkcyjny.
Korzystnie, jako środek reaktywny w stosunku do grupy tiolowej stosuje się pochodną monometoksylowanego poliolu utworzoną z disulfidem o-pirydylowym.
Korzystnie, etap reakcji przeprowadza się w kwasowym zakresie wartości pH, w którym interferon β jest trwały.
Kompozycja farmaceutyczna, zgodnie z wynalazkiem charakteryzuje się tym, że zawiera koniugat poliol-interferon β określony w zastrz. 1 jako składnik aktywny oraz farmaceutycznie dozwolony nośnik, zaróbkę lub środek pomocniczy.
PL 193 352 B1
Zastosowanie koniugatu poliol-interferon β określonego w zastrz. 1, zgodnie z wynalazkiem charakteryzuje się tym, że stosuje się go do wytwarzania kompozycji farmaceutycznej do leczenia zakażeń, nowotworów oraz chorób autoimmunizacyjnych i zapalnych.
Korzystnie, kompozycję stosuje się do leczenia choroby wybranej z grupy obejmującej wstrząs septyczny, AIDS, zapalenie stawów reumatoidalne, liszaj rumieniowaty i stwardnienie rozsiane.
Przedmiotowy wynalazek dotyczy koniugatów poliol-IFN-β, a w szczególności koniugatów PEG-lFN-β, w których jednostka poliolu jest kowalencyjnie związana z Cys17. Specyficzność koniugowania uzyskuje się przez poddanie środka stanowiącego poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej, reakcji z resztą Cys17 w IFN-β. Oczekuje się, że koniugaty takie wykażą zwiększoną skuteczność działania in vivo. Celem jest tu uzyskanie wzmożonej rozpuszczalności przy pH obojętnym, zwiększonej trwałości (redukcji agregowania), zmniejszonej immunogenności i braku strat aktywności w stosunku do „natywnego” IFN-β. Wyniki takiego koniugowania będą prowadzić do zmniejszenia dawek leku dla uzyskania zamierzonego skutku, do uproszczenia i ustabilizowania formułowania kompozycji farmaceutycznej i, prawdopodobnie, do podwyższenia długoterminowej skuteczności.
Przedmiotowy wynalazek dotyczy także sposobu stopniowego przyłączania ugrupowań PEG szeregowo do polipeptydu.
Krótki opis rysunków
Figura 1 przedstawia wykres elektroforezy kapilarnej (CE) koniugatu PEG-IFN-β przed oczyszczeniem.
Figury fig. 2A-2C przedstawiają oczyszczanie koniugatu PEG-lFN-β przeprowadzane metodą chromatografii ekskluzyjnej (Superose 12): fig. 2A - pierwsze przejście; fig. 2B - drugie przejście; fig, 2C - trzecie przejście;
Figura 3 przedstawia chromatografię SDS-PAGE oczyszczonego koniugatu PEG- IFN-β z trzeciego przejścia chromatografii. Ścieżki 1 i 4 są to wzorce masy cząsteczkowej białka, ścieżka 2 jest to „natywny” IFN-β, a ścieżka 3 jest to koniugat PEG-IFN-β.
Figura 4 przedstawia wykres elektroforezy kapilarnej (CE) oczyszczonego koniugatu PEG-IFN-β, w którym IFN-β został PEG-ilowany przy użyciu mPEG-OPSS5k.
Figura 5 przedstawia widmo MALDI MS oczyszczonego koniugatu PEG-IFN-β.
Figura 6 przedstawia porównanie przeciwwirusowej aktywności „natywnego” IFN-β i koniugatu PEG-IFN-β. Komórki WISH inkubowano ze wskazanymi stężeniami próbek IFN-β w ciągu 24 godzin, po czym poddano je prowokacji cytopatycznymi dawkami wirusa pryszczycy. Efekt cytopatyczny oznaczano po upływie dalszych 48 godzin na podstawie konwersji MTT.
Figura 7 przedstawia profil wiązania IFN-β i PEG-IFN-β w komórkach Daudi.
Figura 8 przedstawia profil farmakokinetyczny IFN-β i PEG-IFN-β u myszy po podaniu dożylnym. Linie kropkowane pokazują LOQ testu dla każdej krzywej wzorcowej.
Figura 9 przedstawia profil farmakokinetyczny IFN-β i PEG-IFN-β u myszy po podaniu podskórnym. Linie kropkowane pokazują LOQ testu dla każdej krzywej wzorcowej.
Szczegółowy opis wynalazku
Wynalazek niniejszy oparty jest na odkryciu, że przyłączenie ugrupowania poliolu, a bardziej szczegółowo ugrupowania PEG, do reszty Cys17 ludzkiego IFN-β, nieoczekiwanie wzmagało biologiczną aktywność IFN-β wykazywaną przez natywny ludzki interferon-β (a co najmniej utrzymywało ją i nie prowadziło do jej osłabienia). I tak, IFN-β z ugrupowaniem poliolu przyłączonym do reszty Cys17 wykazuje taką samą lub zwiększoną aktywność biologiczną IFN-β, jednakże tego rodzaju koniugat poliol-IFN-β zapewnia także pożądane właściwości nadawane przez ugrupowanie poliolu, takie jak lepsza rozpuszczalność.
Stosowany w niniejszym opisie termin „IFN-β” oznacza ludzki interferon fibroblastowy, otrzymany przez wyodrębnienie z płynów fizjologicznych lub metodami rekombinacji DNA z prokariotycznych lub eukariotycznych komórek-gospodarzy, jak również jego sole, funkcjonalne pochodne, prekursory i frakcje aktywne, z tym, że zawierają one resztę cysteiny obecną w pozycji 17 formy naturalnej.
Ugrupowaniem poliolu w koniugacie poliol- IFN-β według niniejszego wynalazku może być dowolny, rozpuszczalny w wodzie jedno- lub dwufunkcyjny poli(tlenek alkilenu) o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym. Typowo, poliolem jest poli(glikol alkilenowy), taki jak poli(glikol etylenowy) (PEG). Jednakże, specjaliści w tej dziedzinie wiedzy zdadzą sobie sprawę z tego, że można tu stosownie użyć także innych polioli, takich jak na przykład poli(glikol propylenowy) oraz kopolimery poli(glikolu etylenowego) i poli(glikolu propylenowego).
PL 193 352 B1
Stosowany w niniejszym opisie termin „ugrupowanie PEG” w zamierzeniu obejmuje swym zakresem PEG o łańcuchu prostym i rozgałęzionym, metoksy-PEG, PEG ulegający rozkładowi hydrolitycznemu lub enzymatycznemu, PEG z grupami bocznymi, dendrymeryczny PEG, kopolimery PEG i jednego lub wię cej niż jednego poliolu oraz kopolimery PEG i PLGA [poli(kwas mlekowy/kwas glikolowy)].
Stosowany w niniejszym opisie termin „sole” oznacza sole utworzone z udziałem obecnych w związku zarówno grup karboksylowych, jak i funkcyjnych grup aminowych, które to sole moż na otrzymać znanymi metodami.
Do soli grup karboksylowych należą sole nieorganiczne, takie jak na przykład sole sodowe, potasowe, wapniowe oraz sole utworzone z zasadami organicznymi, takie jak na przykład sole utworzone z aminami i trietanoloaminą, argininą i lizyną. Do soli grup aminowych należą, na przykład, sole utworzone z kwasami nieorganicznymi, takimi jak kwas chlorowodorowy oraz z kwasami organicznymi, takimi jak kwas octowy.
Stosowany w niniejszym opisie termin „pochodne funkcjonalne” odnosi się do pochodnych, które można wytworzyć z wykorzystaniem grup funkcyjnych obecnych w bocznych łańcuchach ugrupowań aminokwasowych lub w N- lub C-końcowych grupach, zgodnie ze znanymi sposobami postępowania i które objęte są zakresem niniejszego wynalazku wtedy, gdy są farmaceutycznie dozwolone, to znaczy wtedy, gdy nie niszczą aktywności białka lub gdy nie nadają właściwości toksycznych zawierającym je kompozycjom farmaceutycznym.
Do pochodnych takich należą, przykładowo, estry lub alifatyczne amidy grup karboksylowych, a takż e pochodne N-acylowe wolnych grup aminowych lub pochodne O-acylowe wolnych grup hydroksylowych. Są one utworzone z udziałem grup acylowych, jak na przykład w przypadku grup alkanoilowych lub aroilowych.
Stosowany w niniejszym opisie termin „prekursory” oznacza związki, które są przekształcane w IFN-β w organizmie ludzkim lub zwierzęcym.
Stosowany w niniejszym opisie termin „frakcje aktywne” białka odnosi się do jakiegokolwiek fragmentu lub prekursora łańcucha polipeptydowego związku jako takiego, samego lub w kombinacji z pokrewnymi cząsteczkami lub resztami z nim związanymi, na przykład resztami cukrowymi lub fosforanowymi albo agregatami cząsteczki polipeptydu, jeżeli tylko te fragmenty lub prekursory wykazują, jako lek, taką samą aktywność, jaką przejawia IFN-β.
Koniugaty według niniejszego wynalazku można wytworzyć którąkolwiek spośród stosownych metod znanych w tej dziedzinie techniki. Zgodnie z jednym ze sposobów wykonania niniejszego wynalazku IFN-β poddaje się reakcji ze środkiem PEG-ilującym w środowisku odpowiedniego rozpuszczalnika, po czym pożądany koniugat wyodrębnia się i oczyszcza, na przykład z zastosowaniem jednej lub więcej niż jednej metody chromatograficznej.
Stosowany w niniejszym opisie termin „metoda chromatograficzna” oznacza jakąkolwiek technikę stosowaną do wydzielania poszczególnych składników mieszaniny przez naniesienie jej na nośnik (faza stacjonarna), przez który przepływa rozpuszczalnik (faza ruchoma).
Zasady rozdziału chromatograficznego oparte są na odmiennym fizycznym charakterze fazy stacjonarnej i fazy ruchomej.
Do niektórych konkretnych typów metod chromatograficznych, dobrze znanych z piśmiennictwa, należą: chromatografia cieczowa, chromatografia cieczowa wysokosprawna, chromatografia jonowymienna, chromatografia absorpcyjna, chromatografia powinowactwa, chromatografia podziałowa, chromatografia hydrofobowa, chromatografia z odwróconymi fazami, chromatografia ekskluzyjna, ultrafiltracja lub chromatografia cienkowarstwowa.
Stosowany w niniejszym opisie termin „środek PEG-ilujący reaktywny w stosunku do grupy tiolowej” oznacza dowolną pochodną PEG zdolną do reagowania z grupą tiolową reszty cysteiny. Może to być, na przykład, PEG zawierający grupę funkcyjną, taką jak ugrupowanie disulfidu o-pirydylowego, sulfonu winylowego, maleimidu, jodoacetimidu i inne. Zgodnie z korzystnym sposobem wykonania niniejszego wynalazku, środkiem PEG-ilującym reaktywnym w stosunku do grupy tiolowej jest pochodna PEG w postaci jego disulfidu o-pirydylowego (OPSS).
Środka PEG-ilującego używa się w formie monometoksylowanej, w przypadku której tylko jeden koniec jest dostępny dla koniugowania albo w formie dwufunkcyjnej, w przypadku której oba końce są dostępne dla tej reakcji, jak na przykład przy tworzeniu koniugatu z dwoma lFN-β kowalencyjnie przyłączonymi do jednego ugrupowania PEG. Jego masa cząsteczkowa korzystnie mieści się w zakresie od 500 do 100000.
PL 193 352 B1
Poniżej pokazany jest typowy schemat reakcji prowadzących do wytworzenia koniugatów według wynalazku:
Drugi wiersz powyższego schematu przedstawia sposób rozszczepienia wiązania PEG-białko.
Pochodna mPEG-OPSS jest wysoce selektywna w stosunku do grup tiolowych i szybko reaguje w warunkach kwasowego zakresu wartości pH, podczas gdy IFN-β zachowuje stabilność. Tę wysoką selektywność można zademonstrować przez sprowadzenie koniugatu do natywnej postaci IFN-β i PEG.
Wykazano, że wiązanie disulfidowe utworzone między ugrupowaniami białka a PEG jest trwałe w krążeniu, ale że może ulec likwidacji po wniknięciu do środowiska komórki. Stąd też oczekuje się, że koniugat ten, w przypadku nie wniknięcia do komórki będzie trwały w krążeniu, aż do usunięcia.
Należy zauważyć, że powyższa reakcja jest specyficzna względem miejsca, ponieważ dwie inne reszty Cys obecne w pozycjach 31 i 141 w występującej naturalnie postaci ludzkiego IFN-β nie reagują ze środkiem PEG-ilującym, tworząc mostek disulfidowy.
Wynalazek niniejszy ukierunkowany jest również na sposób stopniowego przyłączania do polipeptydu dwóch lub więcej niż dwóch ugrupowań PEG. Sposób ten oparty jest na rozpoznaniu, że zaktywowany PEG o małej masie cząsteczkowej reaguje z ograniczanym zawadą przestrzenną miejscem reakcji na białku w sposób bardziej całościowy niż zaktywowany PEG o dużej masie cząsteczkowej. Modyfikacja drogich białek leczniczych przy użyciu PEG musi być kosztowo efektywna, aby wytwarzanie koniugatu PEG było praktycznie możliwe. Oprócz tego, w celu zmniejszenia filtracji kłębuszkowej i dla zoptymalizowania właściwości farmakologicznych koniugatu PEG-białko, koniugat ten powinien wykazywać efektywną wielkość równoważną wielkości białka o masie cząsteczkowej wynoszącej 70 kDa. Oznacza to, że w przypadku dokonywania specyficznej względem miejsca modyfikacji polegającej na przyłączeniu jednego ugrupowania PEG, korzystnie używa się pochodnej PEG o masie cząsteczkowej większej od 20 kDa. Jeżeli miejsce modyfikacji jest przestrzennie ciasne, to grupa reaktywna na dużym ugrupowaniu PEG może mieć trudności z osiągnięciem tego miejsca, co będzie prowadzić do niskiej wydajności. Korzystny sposób PEG-ilowania polipeptydu według niniejszego wynalazku podwyższa wydajność PEG-ilowanią specyficznego względem miejsca przez przyłączenie wpierw małego hetero- lub homodwufunkcyjnego ugrupowania PEG, dzięki czemu, w wyniku względnie niewielkich rozmiarów tego ugrupowania, może ono reagować z przestrzennie ciasnymi miejscami. Następnie, dokonuje się przyłączenia pochodnej PEG o dużej masie cząsteczkowej do małego ugrupowania PEG, czego wynikiem jest wysoka wydajność pożądanego białka PEG-ilowanego.
Sposób stopniowego przyłączania dwóch lub więcej niż dwóch ugrupowań PEG szeregowo do polipeptydu według niniejszego wynalazku polega na tym, że wpierw przyłącza się do polipeptydu heterodwufunkcyjne lub homodwufunkcyjne ugrupowanie PEG o małej masie cząsteczkowej, a następnie do wolnego końca tego ugrupowania PEG o małej masie cząsteczkowej (już przyłączonego do polipeptydu) dołącza się jednofunkcyjne lub dwufunkcyjne ugrupowanie PEG. Po stopniowym przyłączeniu dwóch lub więcej niż dwóch ugrupowań PEG szeregowo do polipeptydu (przy czym polipeptydem tym korzystnie jest IFN-β, w którym Cys17, chociaż znajdująca się w miejscu przestrzennie ciasnym, stanowi korzystne miejsce przyłączania PEG), otrzymany koniugat PEG-polipeptyd można poddać oczyszczaniu z zastosowaniem jednej lub więcej niż jednej metody oczyszczania, takiej jak chromatografia jonowymienna, chromatografia ekskluzyjna, chromatografia z interakcją hydrofobową, chromatografia powinowactwa i chromatografia z odwróconymi fazami.
Ugrupowanie PEG o małej masie cząsteczkowej ma następujący wzór:
W-CH2CH2O(CH2CH2O)nCH2CH2-X, w którym W i X oznaczają grupy niezależnie reagujące z funkcyjną grupą aminową, tiolową, karboksylową lub hydroksylową, z przyłączeniem do polipeptydu ugrupowania PEG o małej masie cząsteczkowej. Korzystnie, grupy o symbolach W i X wybiera się, niezależnie, spośród takich substancji, jak:
PL 193 352 B1 disulfid o-pirydylowy, maleimidy, sulfony winylowe, jodoacetamidy, aminy, tiole, związki karboksylowe, estry aktywne, pochodne węglanowe benzotriazolu, pochodne węglanowe p-nitrofenolu, izocyjaniany i biotyna. Korzystnie, ugrupowanie PEG o małej masie cząsteczkowej ma masę cząsteczkową mieszczącą się w zakresie od około 100 do 5000 daltonów.
Korzystnie, masa cząsteczkowa jednofunkcyjnego lub dwufunkcyjnego ugrupowania PEG przeznaczonego do przyłączenia do wolnego końca ugrupowania PEG o małej masie cząsteczkowej już przyłączonego do polipeptydu, mieści się w zakresie od około 100 daltonów do 200 kDa i stanowi, korzystnie, metoksy-PEG, rozgałęziony PEG, PEG ulegający rozkładowi hydrolitycznemu lub enzymatycznemu, PEG z grupami bocznymi lub dendrymerowy PEG. Jednofunkcyjny lub dwufunkcyjny PEG ma wzór:
Y-CH2CH2O(CH2CH2O)mCH2CH2-Z, w którym Y oznacza grupę reaktywną w stosunku do końcowej grupy na wolnym końcu ugrupowania PEG o małej masie cząsteczkowej, już przyłączonego do polipeptydu, a Z oznacza -OCH3 lub grupę reaktywną w stosunku do niej, z tworzeniem koniugatu dwufunkcyjnego.
Koniugatu PEG-polipeptyd, wytworzonego powyższym sposobem stopniowego przyłączania dwóch lub większej ilości ugrupowań PEG można używać do wytworzenia leku lub kompozycji farmaceutycznej przeznaczonej do leczenia chorób lub zaburzeń, w przypadku których polipeptyd okazuje się skuteczny jako składnik aktywny.
Innym celem niniejszego wynalazku są koniugaty otrzymane w zasadniczo czystej postaci, a to dla nadania im przydatności do wykorzystania, jako składnik aktywny, w składzie kompozycji farmaceutycznych, przeznaczonych do leczenia, diagnozowania lub prognozowania zakażeń bakteryjnych i wirusowych, jak również chorób autoimmunizacyjnych, zapalnych i nowotworów. Takie kompozycje farmaceutyczne stanowią dalszy cel niniejszego wynalazku.
Do przykładowych, wyżej wspomnianych chorób należą (bez ograniczania zakresu niniejszego wynalazku): wstrząs septyczny, AIDS, zapalenie stawów reumatoidalne, liszaj rumieniowaty i stwardnienie rozsiane.
Dalsze wykonania i korzyści odnoszone z wynalazku staną się oczywiste na podstawie poniższego opisu.
Jednym z wykonań niniejszego wynalazku jest podawanie, w ilości farmakologicznie skutecznej, koniugatów według wynalazku osobom z ryzykiem rozwoju jednej z przytoczonych powyżej chorób lub chorym już dotkniętym tymi patologiami.
Można tu wykorzystać dowolną drogę podawania, zgodną z charakterem aktywnego czynnika leku. Korzystne jest stosowanie pozajelitowe, takie jak podawanie drogą podskórną, domięśniową lub dożylną. Dawka składnika aktywnego, którą należy podać, zależy od przepisu lekarskiego opartego na takich danych, jak wiek, masa ciała i indywidualna odpowiedź pacjenta na lek.
Dawka może mieścić się w zakresie od 10 μg do 1 mg/dzień/średnia masa ciała 75 kg, korzystnie w zakresie od 20 μg do 200 μg.
Kompozycję farmaceutyczną przeznaczoną do stosowania pozajelitowego można sformułować w postać nadającą się do wstrzykiwań, zawierającą składnik czynny leku i właściwe vehiculum. Vehicula stosowane w postaciach leku przeznaczonych do podawania drogą pozajelitową są dobrze znane w tej dziedzinie techniki i należą do nich, na przykład: woda, fizjologiczny roztwór soli, roztwór Ringera i/lub glukoza. Vehiculum może zawierać niewielką ilość zarobek w celu utrzymania stabilności i izotoniczności preparatu farmaceutycznego. Sporządzenia roztworów dokonać można zgodnie z typowymi sposobami postępowania.
Wynalazek został opisany z odniesieniem się do konkretnych jego wykonań, ale treść opisu obejmuje swym zakresem wszystkie modyfikacje i zastępcze rozwiązania, które może wnieść specjalista w tej dziedzinie wiedzy bez rozszerzania zakresu wynalazku poza znaczenie i cel zastrzeżeń patentowych.
Wynalazek został zilustrowany przez następujące przykłady, których nie należy interpretować jako ograniczających zakres ochrony.
Znaczenia mPEG i OPSS są takie, jak podano we wcześniejszej części opisu. Oznaczenie podane w indeksie dolnym skrótu PEG (np. PEG5k) oznacza wartość masy cząsteczkowej PEG, mierzoną w kilodaltonach (patrz także opis str.17, akapit 1).
PL 193 352 B1
P r z y k ł a d 1. Wytwarzanie koniugatu PEG-IFN-β
Modyfikacja IFN-β przy użyciu mPEG5k-OPSS.
Do wytworzenia koniugatu PEG-IFN-β użyto zrekombinowanego ludzkiego IFN-β, stabilnego w stężeniu 0,37 mg/ml w buforze z 50 mM octanu sodu, pH 3,6. Około 1,0 ml 6 M mocznika wprowadzono do 2 ml IFN-β w stężeniu 0,37 mg/ml (0,74 mg, 3,7 x 10-8 mola). Następnie dodano mPEGsK-OPSS użyty w nadmiarze molowym wynoszącym 50 moli na 1 mol IFN-β i całość poddawano reakcji we fiolce z polipropylenu w ciągu albo 2 godzin w temperaturze 37° C, albo w ciągu 1 godziny w temperaturze 50° C. Następnie mieszaninę reakcyjną poddano analizie z wykorzystaniem wykresu elektroforezy kapilarnej (CE) w celu oznaczenia, jeszcze przed etapem oczyszczania, rozmiarów tworzenia się koniugatu PEG-IFN-β w reakcji PEG-ilowania (fig. 1). Typową wydajnością w takiej reakcji jest 50% PEG-IFN-β. Produkty reakcji wydzielono z mieszaniny reakcyjnej za pomocą odsączenia na 0,22 mm filtrze strzykawkowym i przesącz wprowadzono do kolumny do chromatografii ekskluzyjnej (albo Superose 12, albo Superdex 75, Pharmacia) i przeprowadzono elucję przy użyciu buforu z 50 mM fosforanu sodu, 150 mM NaCl, pH 7,0. Na fig. 2A pokazano profil elucji w etapie oczyszczania koniugatu PEG IFN-β na kolumnie do chromatografii ekskluzyjnej Superose 12. Zebrano frakcje szczytowe i poddano je analizie metodą SDS-PAGE (fig. 3). Frakcje zawierające koniugat PEG-IFN-β połączono ze sobą, po czym otrzymany koncentrat powtórnie wprowadzono na kolumnę do chromatografii ekskluzyjnej jak poprzednio w celu dalszego oczyszczania koniugatu PEG-IFN-β p z uwagi na ścisłą bliskość piku „natywnego” IFN-β (fig. 2B). Postępowanie to powtórzono (trzecie przejście) dla zapewnienia czystości produktu (fig. 2C). Na fig. fig. 4 i 5 przedstawiono odpowiednio, wykresy elektroforezy kapilarnej i widma MALDI MS dla oczyszczonego koniugatu PEG-IFN-β.
Modyfikacja IFN-β przy użyciu mPEG30K-OPSS.
Użyto zrekombinowanego ludzkiego IFN-β stabilnego w roztworze o stężeniu 0,36 mg/ml w buforze z 50 mM octanu sodu, pH 3,6. Około 36 mg mPEG30K-OPSS w 3 ml wody dejonizowanej wprowadzono do 3 ml IFN-β w stężeniu 0,36 mg/ml (1,08 mg, 4,9 x 10-8 mola) i całość poddawano reakcji we fiolce z polipropylenu w ciągu 2 godzin w temperaturze 50°C. Następnie mieszaninę reakcyjną poddano analizie metodą elektroforezy kapilarnej w celu oznaczenia rozmiarów modyfikacji. Typowa wydajność dla takiej reakcji wynosi < 30%. Następnie roztwór wprowadzono na kolumnę do chromatografii ekskluzyjnej (Superose 12, Pharmacia) i poddano elucji przy użyciu buforu z 50 mM fosforanu sodu, 150 mM NaCl, pH 7,0. Frakcje szczytowe zebrano i poddano analizie metodą SDS-PAGE pod względem zawartości.
P r z y k ł a d 2. Aktywność biologiczna koniugatu PEG-IFN-β
W celu oznaczenia skutków wpływu PEG-ilowania na aktywność przeciwwirusową ludzkiego rekombinantowego IFN-β, ludzkie owodniowe komórki WISH wstępnie inkubowano albo ze świeżo otrzymanym IFN-β (ta sama partia, jakiej użyto do PEG-ilowania), albo z koniugatem PEG-IFN-β. Aktywność przeciwwirusową, w której pośredniczy IFN-β, według pomiaru w teście cytopatyczności WISH-VSV, oznaczano zgodnie z przeciwwirusowym testem biologicznym WISH, opracowanym w oparciu o protokół Novicka i in [J. Immunol., 129, 2244 -2247 (1982)]. W tym teście WISH użyto następujących materiałów:
- komórki WISH (ATCC CCL 25);
- szczepy wirusa pęcherzykowego zapalenia jamy ustnej (ATCC V-520-001-522), przechowywane w temperaturze -70°C;
- IFN-β, ludzki, zrekombinowany, InterPharm Laboratories LTD (typ 32,075, seria # 205035), 82 x 106 IU/ml, aktywność właściwa: 222 x 106 IU/mg);
- koniugat PEG-IFN-β, wytworzony sposobem opisanym w powyższym przykładzie 1 i przetrzymywany w PBS, pH 7,4;
- podłoże wzrostowe WISH [„MEM high glucose” z solami Earle'a + 10% FBS + 1,0% L-glutaminy + penicylina/streptomycyna (100 U/ml, 100 μg/ml)];
podłoże testowe WISH [MEM high glucose z solami Earle'a + 5% FBS + 1,0% L-glutaminy + penicylina/streptomycyna (100 U/ml, 100 μg/ml)];
- MTT w stężeniu 5 mg/ml w PBS, przechowywany w temperaturze -70°C.
Protokół dla testu WISH przedstawia się następująco:
- rozcieńczyć próbki IFN-β do 2 x stężenia wyjściowego w podłożu testowym WISH;
- sporządzić 3-krotne rozcieńczenia próbek IFN-β w podłożu testowym WISH na płaskodennej płytce o 96 studzienkach tak, że każda studzienka zawiera 50 μl rozcieńczonej próbki IFN-β (pewna ilość studzienek kontrolnych otrzymuje 50 μl samego tylko podłoża wzrostowego WISH);
PL 193 352 B1
- zebrać komórki WISH w logarytmicznej fazie wzrostu przy użyciu roztworu trypsyna/EDTA, przemyć w podłożu testowym WISH i doprowadzić do końcowego stężenia 0,8 x 106 komórek/ml;
- dodać do każdej studzienki po 50 μl zawiesiny komórek WISH (4 x 104 komórek/studzienkę); końcowe stężenie INF-β eksponowanego na komórki wynosi obecnie 1X.
Po inkubacji w ciągu 24 godzin w nawilżanym inkubatorze (5% CO2), do wszystkich studzienek wprowadza się 1:10 rozcieńczenie (w podłożu testowym WISH) szczepu VSV (wstępnie ustalona dawka doprowadzająca do lizy 100% komórek WISH w ciągu 48 godzin), z wyjątkiem studzienek kontrolnych, nie zawierających wirusa (wprowadza się do nich jedynie taką samą objętość samego podłoża testowego).
Po upływie dalszych 48 godzin, do wszystkich studzienek dodaje się 25 μl roztworu MTT i płytki inkubuje jeszcze w ciągu 2 godzin w inkubatorze.
Zawartość studzienek usuwa się przez odwrócenie płytki, po czym do studzienek wprowadza się po 200 μl 100% etanolu.
Po upływie godziny, płytki odczytuje się przy 595 nm przy użyciu pakietu programowego Soft max Pro i układu spektrofotometru Spektramax (Molecular Devices).
T a b e l a 1
Aktywność przeciwwirusowa próbek PEG-ilowanego IFN-β i Mock-PEG-ilowanego IFN-β
Próbka IFN-β* EC50**
Koniugat PEG-IFN-β 3,9 ± 0,7 pg/ml
IFN-β 16,4 ± 1,0 pg/ml
* Stężenie wyjściowe IFN-β w próbkach oznaczono metodą analizy aminokwasów (AAA) ** EC50 (± S.D.) oznaczono z użyciem oprogramowania Microcal Origin 4.1
Jak to pokazano na fig 6 i w powyższej tabeli 1 koniugat PEG-IFN-β utrzymywał poziom aktywności przeciwwirusowej wyższy od poziomu świeżo otrzymanej serii macierzystego IFN-β.
Zaobserwowane zjawisko wykazywania przez koniugat PEG-IFN-β poziomu aktywności biologicznej w przybliżeniu 4 razy wyższego od poziomu aktywności świeżo otrzymanego IFN-β, może także być następstwem zwiększonej trwałości koniugatu PEG-IFN-β p w porównaniu z „natywnym” IFN-β po dodaniu podłoża testowego dla komórek WISH.
P r z y k ł a d 3
Względną aktywność biologiczną PEG[30 kDHFN-β i PEG[2 x 20 kDHFN-β oznaczono w teście WISH z zastosowaniem standardowego protokołu opisanego w powyższym przykładzie 2 (tabela 2). Trzy różne osoby przeprowadziły trzy niezależne testy w różnym czasie.
T a b e l a 2
Przeciwwirusowa aktywność względna PEG-IFN-β
Aktywność względna interferonu* (z trzech badań)
Próbka Test 1 Test 2 Test 3 Średnia (S. D.)
PEG[30 kD^FN-β 3,2 x większa 3,1 x większa 1,8 x większa 3,0 x (0,78) większa
PEG[2 x 20 kD]- IFN-β 4,2 x większa 1,3 x większa 0,85 x większa 2,1 x (1,8) większa
* Dawki EC50 w porównaniu ze wzorcem IFN-β włączonym do każdego badania ** Porównanie oparto na stężeniu IFN-β wynoszącym 330 pg/ml. Stężenie wyjściowe PEG[30 kD]- IFN-β (5,41 pg/ml) i PEG-[2 x 20 kDpIFN-β (6,86 pg/ml) oznaczono metodą AaA
Wiązanie się PEG- IFN-β z jego receptorem na komórkach oceniano w obecności ustalonej ilości 125J-IFN-a2a. IFN-a2a oznakowano radioaktywnie przy użyciu 125J metodą opartą na użyciu chloraminy T. Związany z 125J IFN-a2a oddzielono od wolnego jodu za pomocą przepuszczenia substratów reakcji przez kolumnę Sephadex G25 i połączenia ze sobą frakcji zawierających białko (Pharmacia). 125J-IFN-a2a skwantyfikowano w teście „IFN-a2a ELISA” (Biosource, USA), po czym oznaczono aktywność właściwą. Komórki Daudi znajdujące się w fazie logarytmicznej wzrostu zebrano i 2 x 106 komórek inkubowano z 0,5 nM 125J-IFN-a2a w ciągu 3 godzin, w temperaturze pokojowej, w obecności
PL 193 352 B1 rozmaitych stężeń PEG-IFN-β lub IFN-a2a rozcieńczonego w buforze testowym, stanowiącym RPMI 1640 z zawartością 2% płodowej surowicy bydlęcej i 0,1% azydku sodu. Po zakończeniu inkubacji, komórki odwirowano przez warstwę oleju ftalanowego i związaną z komórkami radioaktywność zliczono w liczniku gamma. Okazało się, że aktywność wiązania się PEG[30 kD]-IFN-e i PEG[2 x 20 kD]-IFN-β z receptorem była bardzo podobna lub zbliżona do aktywności wiązania IFN-β, jak to przedstawiono na fig 7.
Oprócz tego, aktywność względną oznaczono w teście antyproliferacyjnym z komórkami Daudi (ludzki chłoniak z grupy limfocytów B) (tabela 3). Wszystkie próbki IFN sporządzono w stężeniu 2 x 200 ng/ml. Próbki rozcieńczono 3-krotnie w dół długości płytki przy końcowej objętości 100 pl. Do każdej studzienki wprowadzono 1 x 105 komórek/studzienkę (100 μΓ> i inkubowano w ciągu ogółem 72 godzin, w temperaturze 37°C w nawilżanym inkubatorze (5% CO2). Po upływie 48 godzin, dodano trytowaną (3H) tymidynę w ilości 1 μC/studzienkę, w objętości 20 pl. Po zakończeniu 72-godzinnej inkubacji zebrano materiał z płytki przy użyciu urządzenia Tomtek Plate Harvester. Wyniki zamieszczone w poniższej tabeli 3 wskazują, że w rezultacie PEG-ilowania nie stwierdzono żadnej wykrywalnej utraty aktywności IFN. W rzeczywistości stwierdzono, że aktywność była nieco wyższa od aktywności wolnego IFN-β. Może to być spowodowane tworzeniem się w wolnym IFN nieaktywnych agregatów, albo różnicami w metodach kwantyfikowania (analiza aminokwasów w przypadku próbek PEG-IFN i metoda RP-HPLC w przypadku IFN-β).
T a b e l a 3
Test antyproliferacyjny z komórkami Daudi
Dawka IC50* Krotność wzrostu w stosunku do IFN
IFN-β (płytka 1) 1153,1 -
PEG[30 kD]-IFN (71 A) 695,6 1,6 x
IFN-β (płytka 2) 1005,8 -
PEG[40 kD]-IFN (71 B) 629,4 1,7 x
* pg/ml
P r z y k ł a d 4. Badania farmakokinetyczne na myszach
Podawanie dożylne
Myszom wstrzyknięto 100 ng IFN-β, PEG[30 kD^IFN-β lub PEG[2 x 20 kD^IFN-β i po upływie wskazanego czasu pobrano z nich krew. Oznaczono stężenie IFN-β w surowicy metodą „IFN-β-specific ELISA” (Toray Industries) i otrzymane wyniki przedstawiono na fig. 8. Myszy (samice ze szczepu B6D2F1, w wieku 6-8 tygodni, po około 20 g każda) w ilości 28 sztuk podzielono na cztery grupy w sposób następujący:
- grupa 1 liczyła 9 myszy, którym wstrzyknięto po 200 μl jako pojedynczy bolus 500 ng/ml ludzkiego IFN-β (dawka końcowa 100 ng/mysz);
- grupa 2 (dziewięć myszy) otrzymała po 200 μl równoważnej masy PEG 30 kD-IFN-β;
- grupa 3 otrzymała po 200 μl równoważnej masy PEG [2 x 20 kD^IFN-β; oraz
- grupa 4, licząca 3 myszy, którym niczego nie wstrzyknięto, służyła jako kontrola negatywna.
Próbki krwi (w przybliżeniu 200 μl/próbkę) pobierano w dziewięciu wskazanych momentach za pomocą rozerwania splotu żylnego pozaoczodołowego przy użyciu kapilary. Próbki krwi pozostawiono do utworzenia skrzepu w ciągu godziny, w temperaturze pokojowej, obwiedziono i wirowano w mikrowirówce. Po wyjęciu, surowice przetrzymywano w temperaturze -70°C, aż do zgromadzenia wszystkich próbek. Surowice badano pod względem obecności aktywnego biologicznie IFN-β w teście Toray. Otrzymane wyniki pokazują, że pole pod krzywą (AUC) jest znacznie powiększone w przypadku próbek PEG-IFN w porównaniu z polem dla wolnego IFN-β i że próbki PEG-IFN przewyższają wolny IFN-β, a próbki PEG[2 x 20 kDJ-IFN-β przewyższają PEG[30 kDJ-IFN-β.
Podawanie podskórne
Myszom wstrzyknięto podskórnie IFN-β i PEG-IFN (po 100 ng/mysz). Fig. 9 pokazuje, że całkowite pole pod krzywą (AUC) jest w sposób drastyczny powiększone w przypadku próbek PEG-IFN
PL 193 352 B1 w porównaniu z polem dla wolnego IFN-β. Badania farmakokinetyczne są zgodne z próbkami PEG-IFN o dłuższym okresie półtrwania i zwiększonym AUC.
P r z y k ł a d 5. Przyłączenie ugrupowania PEG o małej masie cząsteczkowej do polipeptydu Dołączenie OPSS-PEG2k-hydrazydu do interferonu β
Użyto zrekombinowanego ludzkiego interferonu β w roztworze o stężeniu 0,33 mg/ml w 50 mM buforze z octanem sodu, pH 3,8. Do 3 ml IFN-β w stężeniu 0,33 mg/ml (0,99 mg) dodano w przybliżeniu 3,6 mg (nadmiar molowy wynoszący 40 moli na mol białka) odczynnika w postaci heterodwufunkcyjnego PEG, a mianowicie OPSS-PEG2k-hydrazydu w 2 ml wody dejonizowanej i całość poddawano reakcji we fiolce z polipropylenu w ciągu godziny, w temperaturze 45°C. Następnie mieszaninę reakcyjną poddano analizie metodą elektroforezy kapilarnej w celu ustalenia rozmiarów modyfikacji. Typowe wydajności mieściły się w zakresie od 90 do 97%, w zależności od stopnia czystości interferonu β i odczynnika PEG. Następnie, roztwór wprowadzono do kolumny do chromatografii ekskluzyjnej (Superdex 75, Pharmacia) i eluowano buforem z 5 mM fosforanu sodu, 150 mM NaCl, pH 7,0. Frakcje szczytowe zebrano i poddano analizie metodą SDS-PAGE. Frakcje zawierające monoPEG-ilowany interferon-β połączono ze sobą i użyto w dalszym etapie modyfikacji z udziałem PEG o dużej masie cząsteczkowej.
Dołączenie (OPSS)2-PEG3400 do interferonu β
Użyto zrekombinowanego ludzkiego interferonu β w roztworze o stężeniu 0,33 mg/ml w buforze z 50 mM octanu sodu, pH 3,8. Do 3 ml interferonu β w stężeniu 0,33 mg/ml (0,99 mg) dodano w przybliżeniu 6,1 mg (nadmiar molowy wynoszący 40 moli na mol białka) odczynnika w postaci homodwufunkcyjnego PEG, a mianowicie (OPSS)2-PEG3400-hydrazydu w 2 ml wody dejonizowanej i całość poddawano reakcji w fiolce z polipropylenu w ciągu 2 godzin, w temperaturze 50°C. Postęp reakcji monitorowano nie redukującą metodą SDS-PAGE i końcową mieszaninę reakcyjną poddano analizie metodą elektroforezy kapilarnej w celu ustalenia rozmiarów modyfikacji. Typowe wydajności modyfikacji w przypadku tej reakcji z udziałem interferonu β wynosiły > 95%. Następnie roztwór wprowadzono do kolumny do chromatografii ekskluzywnej (Superdex 75, Pharmacia) i eluowano buforem z 50 mM fosforanu sodu, 150 mM NaCl, pH 7,0. Frakcje szczytowe zebrano i poddano analizie metoda SDS-PAGE pod względem zawartości. Frakcje zawierające monoPEG-ilowany interferon β połączono ze sobą.
P r z y k ł a d 6. Przyłączenie drugiego ugrupowania PEG do polipeptydu z PEG-ilowania ugrupowaniem o małej masie cząsteczkowej
Modyfikacja IFN-S-S-PEG2k-hydrazydu przy użyciu mPEG30k-aldehydu (ALD)
Białko-S-S-PEG2K-C-NH-NH2 θ + ΕΞΞΞ^> Białko-S-S-PEG2K-C-NH-N=CH-mPEG30K.
ίϊ mPEG30K CH2CH2CH
PL 193 352 B1
Do połączonych frakcji IFN-S-S-PEG2k-hydrazydu z przykładu 5 dodano mPEG30k-ALD w 20 molowym nadmiarze w stosunku do białka. Reakcję prowadzono w temperaturze pokojowej (25°C) przez 4 godziny, po czym pobrano próbkę i wprowadzono ją do kolumny do chromatografii ekskluzyjnej (Superose 6, Pharmacia) w celu ustalenia wydajności modyfikacji. Wydajność takiej modyfikacji w omawianej reakcji wynosiła typowo > 80% w zależności od czystości odczynnika PEG i warunków prowadzenia reakcji.
Na podstawie tak przedstawionego pełnego opisu niniejszego wynalazku, specjaliści w tej dziedzinie wiedzy zdadzą sobie sprawę z tego, że to samo można wykonać z przyjęciem szerokiego zakresu równoważnych parametrów, stężeń i warunków, bez odchodzenia od istoty i zakresu wynalazku i bez zbytniego eksperymentowania.
Aczkolwiek wynalazek niniejszy został opisany w nawiązaniu do konkretnych jego wykonań, to jednak należy rozumieć, że może on ulegać dalszym modyfikacjom. Zgłoszenie niniejsze w zamiarze obejmuje swym zakresem jakiekolwiek odmiany, sposoby użycia lub adaptacje wynalazku zgodne ogólnie z zasadami wynalazku i obejmujące takie odchylenia od niniejszego ujawnienia, jakie wchodzą w zakres znanej i zwyczajowej praktyki w tej dziedzinie wiedzy, której wynalazek dotyczy i jakie mogą znaleźć zastosowanie w istotnych aspektach przedstawionych w powyższej części niniejszego opisu, zgodnie z zakresem załączonych zastrzeżeń.
Wszystkie przytaczane w niniejszym opisie odnośniki, włączając w to publikacje lub streszczenia w czasopismach, opublikowane lub nie opublikowane zgłoszenia patentowe Stanów Zjednoczonych Ameryki i zagraniczne, lub jakiekolwiek inne odnośniki, są w całości włączone do niniejszego opisu jako odnośniki, włącznie ze wszystkimi danymi, tabelami, figurami i tekstami, zawartymi w przytoczonych odnośnikach. Poza tym, cała zawartość odnośników cytowanych w odnośnikach tu przytoczonych, także jest włączona do niniejszego opisu jako odnośnik.
Odniesienie się do etapów metod znanych, etapów metod typowych, metod znanych lub metod typowych nie stanowi w żadnym przypadku uznania, że jakikolwiek aspekt, opis lub wykonanie niniejszego wynalazku jest ujawnione, podane jako pouczenie lub zasugerowane w odnośnej dziedzinie techniki.
Powyższy opis konkretnych wykonań ujawnia ogólny charakter wynalazku w tak pełnym zakresie, że inni mogą, z wykorzystaniem wiedzy posiadanej przez specjalistów w tej dziedzinie techniki (włączając w to treść odnośników przytoczonych w niniejszym opisie), w łatwy sposób zmodyfikować i/lub adaptować wynalazek do rozmaitych zastosowań tych konkretnych wykonań, bez zbędnego eksperymentowania i bez odchodzenia od ogólnej koncepcji niniejszego wynalazku. Dlatego też przewiduje się, że równoważne rozwiązania ujawnionych wykonań obejmują swym znaczeniem i zakresem takie właśnie adaptacje i modyfikacje, w oparciu o zaprezentowane w niniejszym opisie pouczenia i wskazówki. Należy rozumieć, że frazeologii lub terminologii używa się tu w celu opisania, a nie ograniczania, tak, że terminologię lub frazeologię niniejszego opisu wyszkolony pracownik techniczny powinien interpretować w świetle pouczenia i wskazania przedstawionego tu sposobu postępowania, w połączeniu z wiedzą przeciętnego specjalisty w tej dziedzinie.

Claims (14)

1. Koniugat poliol-interferon β, znamienny tym, że zawiera ugrupowanie poliolu kowalencyjnie związane z Cys17 ludzkiego interferonu β.
2. Koniugat poliol-interferon β według zastrz. 1, znamienny tym, że ugrupowaniem poliolu jest ugrupowanie glikolu polialkilenowego.
3. Koniugat poliol-interferon β według zastrz. 2, znamienny tym, że ugrupowaniem glikolu polialkilenowego jest ugrupowanie glikolu polietylenowego (PEG).
4. Koniugat poliol-interferon β według zastrz. 1, znamienny tym, że koniugat poliol-interferon β wykazuje aktywność taką samą, jak aktywność natywnego ludzkiego interferonu β lub wyższą.
5. Koniugat poliol-interferon β określony w zastrz. 1, do stosowania jako lek.
6. Sposób wytwarzania koniugatu poliol-interferon β określonego w zastrz. 1, znamienny tym, że
- poddaje się interferon β reakcji ze środkiem stanowiącym poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej, będący pochodną poliolu zawierającą grupę funkcyjną wybraną z grupy obejmującej ugrupowanie disulfidu o-pirydylowego, sulfonu winylowego, maleimidu i jodoacetamidu;
- wyodrębnia się wytworzony koniugat poliol-interferon β.
PL 193 352 B1
7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że jako środek stanowiący poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej stosuje się reaktywny w stosunku do grupy tiolowej środek PEG-ilujący.
8. Sposób według zastrz. 6 albo 7, znamienny tym, że środek stanowiący poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej jest monometoksylowany.
9. Sposób według zastrz. 6 albo 7, znamienny tym, że środek stanowiący poliol reaktywny w stosunku do grupy tiolowej jest dwufunkcyjny.
10. Sposób według zastrz. 6 albo 7, znamienny tym, że jako środek reaktywny w stosunku do grupy tiolowej stosuje się pochodną monometoksylowanego poliolu utworzoną z disulfidem o-pirydylowym.
11. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że etap reakcji przeprowadza się w kwasowym zakresie wartości pH, w którym interferon β jest trwały.
12. Kompozycja farmaceutyczna, znamienna tym, że zawiera koniugat poliol-interferon β określony w zastrz. 1 jako składnik aktywny oraz farmaceutycznie dozwolony nośnik, zaróbkę lub środek pomocniczy.
13. Zastosowanie koniugatu poliol-interferon β określonego w zastrz. 1 do wytwarzania kompozycji farmaceutycznej do leczenia zakażeń, nowotworów oraz chorób autoimmunizacyjnych i zapalnych.
14. Zastosowanie według zastrz. 13, znamienne tym, że kompozycję stosuje się do leczenia choroby wybranej z grupy obejmującej wstrząs septyczny, AIDS, zapalenie stawów reumatoidalne, liszaj rumieniowaty i stwardnienie rozsiane.
PL344490A 1998-04-28 1999-04-28 Koniugat poliol-interferon ß, sposób jego wytwarzania i jego zastosowanie oraz kompozycja farmaceutyczna PL193352B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US8333998P 1998-04-28 1998-04-28
PCT/US1999/009161 WO1999055377A2 (en) 1998-04-28 1999-04-28 Polyol-ifn-beta conjugates

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL344490A1 PL344490A1 (en) 2001-11-05
PL193352B1 true PL193352B1 (pl) 2007-02-28

Family

ID=22177687

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL344490A PL193352B1 (pl) 1998-04-28 1999-04-28 Koniugat poliol-interferon ß, sposób jego wytwarzania i jego zastosowanie oraz kompozycja farmaceutyczna
PL378728A PL196533B1 (pl) 1998-04-28 1999-04-28 Sposób stopniowego przyłączania ugrupowań poli (glikolu etylenowego) (PEG) szeregowo do polipeptydu

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL378728A PL196533B1 (pl) 1998-04-28 1999-04-28 Sposób stopniowego przyłączania ugrupowań poli (glikolu etylenowego) (PEG) szeregowo do polipeptydu

Country Status (30)

Country Link
US (3) US6638500B1 (pl)
EP (2) EP1421956B1 (pl)
JP (2) JP4574007B2 (pl)
KR (1) KR100622796B1 (pl)
CN (2) CN1187094C (pl)
AR (1) AR020070A1 (pl)
AT (2) ATE365563T1 (pl)
AU (1) AU762621B2 (pl)
BG (2) BG65046B1 (pl)
BR (1) BR9910023A (pl)
CA (2) CA2565375A1 (pl)
CY (1) CY1108022T1 (pl)
CZ (2) CZ298597B6 (pl)
DE (2) DE69920002T2 (pl)
DK (2) DK1075281T3 (pl)
EA (2) EA003789B1 (pl)
EE (1) EE05214B1 (pl)
ES (2) ES2285286T3 (pl)
HU (1) HUP0300548A3 (pl)
IL (1) IL139286A (pl)
NO (2) NO329749B1 (pl)
NZ (1) NZ507456A (pl)
PL (2) PL193352B1 (pl)
PT (2) PT1421956E (pl)
SI (2) SI1075281T1 (pl)
SK (2) SK286217B6 (pl)
TR (2) TR200101751T2 (pl)
TW (2) TWI266800B (pl)
UA (2) UA79430C2 (pl)
WO (1) WO1999055377A2 (pl)

Families Citing this family (82)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5932462A (en) 1995-01-10 1999-08-03 Shearwater Polymers, Inc. Multiarmed, monofunctional, polymer for coupling to molecules and surfaces
US7220717B2 (en) 1997-08-14 2007-05-22 Yeda Research And Development Company Ltd. Interleukin-18 binding proteins, their preparation and use
US7704944B2 (en) 1997-08-14 2010-04-27 Yeda Research And Development Company Ltd. Interleukin-18 binding proteins, their preparation and use for the treatment of sepsis
IL121860A0 (en) 1997-08-14 1998-02-22 Yeda Res & Dev Interleukin-18 binding proteins their preparation and use
IL142350A0 (en) * 1998-10-16 2002-03-10 Biogen Inc Interferon-beta fusion proteins and pharmaceutical compositions containing the same
EP1121156B1 (en) * 1998-10-16 2006-02-22 Biogen Idec MA Inc. Polymer conjugates of interferon beta- 1a and their uses
US6342244B1 (en) * 1999-04-23 2002-01-29 Alza Corporation Releasable linkage and compositions containing same
US7303760B2 (en) * 1999-04-23 2007-12-04 Alza Corporation Method for treating multi-drug resistant tumors
US7238368B2 (en) * 1999-04-23 2007-07-03 Alza Corporation Releasable linkage and compositions containing same
US7144574B2 (en) 1999-08-27 2006-12-05 Maxygen Aps Interferon β variants and conjugates
US6531122B1 (en) 1999-08-27 2003-03-11 Maxygen Aps Interferon-β variants and conjugates
US7431921B2 (en) 1999-08-27 2008-10-07 Maxygen Aps Interferon beta-like molecules
TR200101086A3 (pl) * 1999-10-15 2001-08-21
AU2223401A (en) * 1999-12-24 2001-07-09 Kyowa Hakko Kogyo Co. Ltd. Branched polyalkylene glycols
WO2001051510A2 (en) 2000-01-10 2001-07-19 Maxygen Holdings Ltd G-csf conjugates
NZ521257A (en) 2000-02-11 2004-10-29 Maxygen Aps Factor VII or VIIa-like molecules
JP4152187B2 (ja) 2001-01-30 2008-09-17 協和醗酵工業株式会社 分岐型ポリアルキレングリコール類
EP1234583A1 (en) 2001-02-23 2002-08-28 F. Hoffmann-La Roche Ag PEG-conjugates of HGF-NK4
CZ20032526A3 (cs) 2001-02-27 2003-12-17 Maxygen Aps Nové molekuly podobné interferonu beta
CA2452582C (en) 2001-07-11 2013-01-22 Maxygen, Inc. G-csf conjugates
EE05509B1 (et) 2002-01-18 2012-02-15 Biogen@Idec@Ma@Inc Aktiveeritud polalkleenglkoolpolmeer ja seda sisaldavad kompositsioonid
TWI334785B (en) 2002-06-03 2010-12-21 Serono Lab Use of recombinant ifn-β1a and pharmaceutical composition comprising recombinant ifn-β1a for the treatment of hcv infection in patients of asian race
AU2003254641A1 (en) * 2002-08-28 2004-03-19 Maxygen Aps Interferon beta-like molecules for treatment of cancer
US8129330B2 (en) * 2002-09-30 2012-03-06 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. Polymer conjugates with decreased antigenicity, methods of preparation and uses thereof
PL396711A1 (pl) * 2002-12-26 2011-12-19 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. Koniugaty polimerów z cytokinami, chemokinami, czynnikami wzrostu, hormonami polipeptydowymi i ich antagonistami, kompozycja farmaceutyczna i sposób zapobiegania, diagnozowania lub leczenia
EP1667708B9 (en) * 2002-12-26 2012-10-31 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. POLYETHYLENE GLYCOL CONJUGATES OF INTERFERON-BETA-1b WITH ENHANCED IN VITRO BIOLOGICAL POTENCY
DK2085470T3 (da) 2003-03-20 2012-08-06 Bayer Healthcare Llc FVII- eller FVIIa-varianter
TWI272948B (en) 2003-05-01 2007-02-11 Ares Trading Sa HSA-free stabilized interferon liquid formulations
GB0316294D0 (en) 2003-07-11 2003-08-13 Polytherics Ltd Conjugated biological molecules and their preparation
EP2633866A3 (en) 2003-10-17 2013-12-18 Novo Nordisk A/S Combination therapy
MXPA06008496A (es) * 2004-02-02 2007-01-30 Ambrx Inc Polipeptidos de interferon humano modificados y sus usos.
AU2008201682B2 (en) * 2004-02-02 2011-02-24 Ambrx, Inc. Modified human interferon polypeptides and their uses
EP1586334A1 (en) * 2004-04-15 2005-10-19 TRASTEC scpa G-CSF conjugates with peg
WO2005110466A1 (en) 2004-05-17 2005-11-24 Ares Trading S.A. Hydrogel interferon formulations
JP4988562B2 (ja) 2004-06-01 2012-08-01 アレス トレーディング ソシエテ アノニム 安定化したインターフェロン液体製剤
EP1750750B1 (en) 2004-06-01 2012-02-01 Ares Trading S.A. Method of stabilizing proteins
TW200633718A (en) * 2004-12-16 2006-10-01 Applied Research Systems Treatment of hepatitis c in the asian population
CA2591233C (en) 2004-12-21 2014-10-07 Nektar Therapeutics Al, Corporation Stabilized polymeric thiol reagents
CA2594557C (en) 2004-12-22 2016-04-26 Ambrx, Inc. Modified human growth hormone
EP1833993A4 (en) 2004-12-22 2009-07-22 Ambrx Inc HUMAN GROWTH HORMONE FORMULATIONS COMPRISING AN AMINO ACID CODED NON-NATURALLY
EP1836316A4 (en) 2004-12-22 2009-07-22 Ambrx Inc PROCESS FOR EXPRESSION AND CLEANING OF RECOMBINANT HUMAN GROWTH HORMONE
US8633300B2 (en) 2005-06-17 2014-01-21 Novo Nordisk Healthcare Ag Selective reduction and derivatization of engineered proteins comprising at least one non-native cysteine
JP2009503111A (ja) * 2005-08-04 2009-01-29 ネクター セラピューティックス エイエル,コーポレイション G−csf部分および重合体の複合体
EP1917276B1 (en) 2005-08-26 2018-03-21 Ares Trading S.A. Process for the preparation of glycosylated interferon beta
WO2007025991A2 (en) 2005-09-01 2007-03-08 Ares Trading S.A. Treatment of optic neuritis
US20070238656A1 (en) * 2006-04-10 2007-10-11 Eastman Kodak Company Functionalized poly(ethylene glycol)
US20080096819A1 (en) * 2006-05-02 2008-04-24 Allozyne, Inc. Amino acid substituted molecules
US7632492B2 (en) * 2006-05-02 2009-12-15 Allozyne, Inc. Modified human interferon-β polypeptides
US9925151B2 (en) 2006-05-24 2018-03-27 Merck Serono Sa Cladribine regimen for treating multiple sclerosis
KR20090013816A (ko) 2006-05-24 2009-02-05 노보 노르디스크 헬스 케어 악티엔게젤샤프트 연장된 생체내 반감기를 갖는 인자 ⅸ 유사체
CN103965347B (zh) 2007-05-02 2017-07-18 Ambrx公司 经修饰干扰素β多肽和其用途
CA2707840A1 (en) * 2007-08-20 2009-02-26 Allozyne, Inc. Amino acid substituted molecules
BRPI0821029A2 (pt) * 2007-12-20 2015-06-16 Merck Serono Sa Fomulações de peg-interferon-beta
EP2247743B1 (en) 2008-02-08 2016-04-06 Ambrx, Inc. Modified leptin polypeptides and their uses
CN101525381B (zh) * 2008-03-04 2012-04-18 北京百川飞虹生物科技有限公司 一种重组复合干扰素及其表达载体的构建和表达
WO2009155102A2 (en) * 2008-05-30 2009-12-23 Barofold, Inc. Method for derivatization of proteins using hydrostatic pressure
US20110124614A1 (en) * 2008-10-25 2011-05-26 Halina Offner Methods And Compositions For The Treatment of Autoimmune Disorders
DE102009032179A1 (de) * 2009-07-07 2011-01-13 Biogenerix Ag Verfahren zur Reinigung von Interferon beta
ES2365343B1 (es) 2009-11-19 2012-07-10 Fundación Centro Nacional De Investigaciones Cardiovasculares Carlos Iii Uso de cd98 como marcador de receptividad endometrial.
US20130040888A1 (en) 2010-02-16 2013-02-14 Novo Nordisk A/S Factor VIII Molecules With Reduced VWF Binding
AR080993A1 (es) 2010-04-02 2012-05-30 Hanmi Holdings Co Ltd Formulacion de accion prolongada de interferon beta donde se usa un fragmento de inmunoglobulina
EP2552967A4 (en) 2010-04-02 2014-10-08 Amunix Operating Inc BINDING FUSION PROTEINS, BINDING FUSION PROTEIN MEDICINAL CONJUGATES, XTEN MEDICAMENT CONJUGATES, AND METHOD FOR THEIR PREPARATION AND USE
US20120135912A1 (en) 2010-05-10 2012-05-31 Perseid Therapeutics Llc Polypeptide inhibitors of vla4
US20130183280A1 (en) 2010-07-15 2013-07-18 Novo Nordisk A/S Stabilized factor viii variants
CN103209992A (zh) 2010-09-15 2013-07-17 诺沃—诺迪斯克有限公司 具有减少的细胞摄取的因子viii变体
KR101451357B1 (ko) * 2011-02-18 2014-10-15 주식회사 스템디알 Sirt1 발현 유도 물질을 포함하는 패혈증 또는 패혈증 쇼크의 예방 또는 치료용 조성물
MX2014000031A (es) 2011-07-01 2014-07-09 Bayer Ip Gmbh Polipeptidos de fusion de relaxina y usos de los mismos.
DK2762489T3 (en) * 2011-10-01 2018-07-02 Glytech Inc GLYCOSYLED POLYPEPTIDE AND PHARMACEUTICAL COMPOSITION CONTAINING SAME
SG10201700340WA (en) 2012-02-27 2017-03-30 Amunix Operating Inc Xten conjugate compositions and methods of making same
AU2013226944B2 (en) 2012-02-29 2017-03-23 Toray Industries, Inc. Inhibitory agent for body cavity fluid accumulation
BR112015024423B1 (pt) 2013-03-29 2023-04-25 Glytech, Inc Polipeptídeo glicosilado tendo atividade de interferon ?, composição farmacêutica e uso de um polipeptídeo glicosilado
US11759500B2 (en) 2014-07-24 2023-09-19 Abion Inc. PEGylated interferon-beta variant
WO2016013697A1 (ko) * 2014-07-24 2016-01-28 에이비온 주식회사 인터페론-베타 변이체의 폴리에틸렌글리콜 배합체
HRP20201725T1 (hr) 2014-08-19 2021-03-05 Biogen Ma Inc. Postupak pegilacije
JP7245649B2 (ja) 2015-05-01 2023-03-24 アリスタ ファーマスーティカルス インク. 眼疾患を治療するためのアディポネクチンペプチド模倣薬(関連出願の相互参照)
US10273310B2 (en) * 2015-06-19 2019-04-30 Eisai R&D Management Co., Ltd. CYS80 conjugated immunoglobulins
LT3998067T (lt) 2015-11-09 2024-11-25 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Kompozicijos ir būdai, skirti homocistinurijos gydymui
AU2018254410B2 (en) * 2017-04-17 2025-02-06 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Optimization of enzyme replacement therapy for treatment of homocystinuria
SG11202004772RA (en) 2017-11-24 2020-06-29 Merck Patent Gmbh Cladribine regimen for use intreating progressive forms of multiple sclerosis
US20220118050A1 (en) 2019-01-28 2022-04-21 Toray Industries, Inc. Polyethylene glycol-modified form of hepatocyte growth factor or active fragment thereof
EP3919128A4 (en) 2019-01-28 2023-01-11 Toray Industries, Inc. POLYETHYLENE GLYCOL MODIFIED BODY FOR HEPATORYTE GROWTH FACTOR OR ACTIVE FRAGMENT THEREOF
WO2022053608A1 (en) 2020-09-10 2022-03-17 Merck Patent Gmbh Novel treatment regimen for the treatment of autoimmune disorders

Family Cites Families (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4766106A (en) 1985-06-26 1988-08-23 Cetus Corporation Solubilization of proteins for pharmaceutical compositions using polymer conjugation
US4917888A (en) 1985-06-26 1990-04-17 Cetus Corporation Solubilization of immunotoxins for pharmaceutical compositions using polymer conjugation
US5206344A (en) * 1985-06-26 1993-04-27 Cetus Oncology Corporation Interleukin-2 muteins and polymer conjugation thereof
WO1987000056A1 (en) * 1985-06-26 1987-01-15 Cetus Corporation Solubilization of proteins for pharmaceutical compositions using polymer conjugation
US5208344A (en) * 1987-07-31 1993-05-04 American Home Products Corporation Naphthalenepropionic acid derivatives as anti-inflammatory/antiallergic agents
US5166322A (en) * 1989-04-21 1992-11-24 Genetics Institute Cysteine added variants of interleukin-3 and chemical modifications thereof
US5595732A (en) * 1991-03-25 1997-01-21 Hoffmann-La Roche Inc. Polyethylene-protein conjugates
US5382657A (en) * 1992-08-26 1995-01-17 Hoffmann-La Roche Inc. Peg-interferon conjugates
HUT75533A (en) 1993-11-10 1997-05-28 Schering Corp Improved interferon polymer conjugates
KR100203824B1 (ko) * 1994-03-31 1999-06-15 스티븐 엠. 오드리 거핵구 성장 및 분화를 자극하기 위한 조성물 및방법
NZ285664A (en) * 1994-05-18 1998-07-28 Inhale Therapeutic Syst Dry powder interferon composition adapted for pulmonary delivery
US5824784A (en) * 1994-10-12 1998-10-20 Amgen Inc. N-terminally chemically modified protein compositions and methods
US5932462A (en) 1995-01-10 1999-08-03 Shearwater Polymers, Inc. Multiarmed, monofunctional, polymer for coupling to molecules and surfaces
SE9503380D0 (sv) * 1995-09-29 1995-09-29 Pharmacia Ab Protein derivatives
TW517067B (en) * 1996-05-31 2003-01-11 Hoffmann La Roche Interferon conjugates
US5851984A (en) * 1996-08-16 1998-12-22 Genentech, Inc. Method of enhancing proliferation or differentiation of hematopoietic stem cells using Wnt polypeptides
KR0176625B1 (ko) 1996-11-05 1999-04-01 삼성전자주식회사 적외선 물체검출장치
JP2001508783A (ja) * 1997-01-29 2001-07-03 ポリマスク・ファーマシューティカルズ・パブリック・リミテッド・カンパニー Peg化法
ATE375363T1 (de) * 1997-07-14 2007-10-15 Bolder Biotechnology Inc Derivate des wachstumshormons und verwandte proteine
US6307024B1 (en) * 1999-03-09 2001-10-23 Zymogenetics, Inc. Cytokine zalpha11 Ligand
US6531122B1 (en) * 1999-08-27 2003-03-11 Maxygen Aps Interferon-β variants and conjugates

Also Published As

Publication number Publication date
EA200300382A1 (ru) 2005-02-24
ATE275422T1 (de) 2004-09-15
NO20005337L (no) 2000-12-28
CN1302209A (zh) 2001-07-04
CN1637020A (zh) 2005-07-13
SI1421956T1 (sl) 2007-10-31
HUP0300548A3 (en) 2005-07-28
EA005495B1 (ru) 2005-02-24
US7700314B2 (en) 2010-04-20
AU762621B2 (en) 2003-07-03
BG109291A (en) 2006-04-28
BG65046B1 (bg) 2007-01-31
JP2010184929A (ja) 2010-08-26
NO329749B1 (no) 2010-12-13
SK16222000A3 (sk) 2001-04-09
CN100335503C (zh) 2007-09-05
CA2565375A1 (en) 1999-11-04
US20070141620A1 (en) 2007-06-21
WO1999055377A9 (en) 2000-03-02
ES2285286T3 (es) 2007-11-16
BG64694B1 (bg) 2005-12-30
NO20100324L (no) 2000-12-28
EA003789B1 (ru) 2003-10-30
PL344490A1 (en) 2001-11-05
IL139286A0 (en) 2001-11-25
EE200000614A (et) 2002-04-15
PT1075281E (pt) 2004-11-30
US7357925B2 (en) 2008-04-15
PT1421956E (pt) 2007-07-13
TR200003161T2 (tr) 2001-01-22
DK1075281T3 (da) 2005-01-03
UA66857C2 (uk) 2004-06-15
AR020070A1 (es) 2002-04-10
TWI266800B (en) 2006-11-21
WO1999055377A2 (en) 1999-11-04
DE69920002D1 (de) 2004-10-14
CY1108022T1 (el) 2013-09-04
NO20005337D0 (no) 2000-10-23
EP1421956A1 (en) 2004-05-26
DE69920002T2 (de) 2005-09-22
PL196533B1 (pl) 2008-01-31
SK286654B6 (sk) 2009-03-05
TWI232882B (en) 2005-05-21
DE69936409D1 (de) 2007-08-09
EA200001111A1 (ru) 2001-04-23
JP2002512983A (ja) 2002-05-08
WO1999055377A3 (en) 1999-12-29
SI1075281T1 (en) 2005-02-28
KR20010071158A (ko) 2001-07-28
CZ298597B6 (cs) 2007-11-21
EP1075281A2 (en) 2001-02-14
UA79430C2 (en) 2007-06-25
HUP0300548A2 (hu) 2003-06-28
HK1076115A1 (en) 2006-01-06
BR9910023A (pt) 2000-12-26
EE05214B1 (et) 2009-10-15
EP1075281B1 (en) 2004-09-08
JP4574007B2 (ja) 2010-11-04
SK286217B6 (sk) 2008-05-06
CZ20003995A3 (en) 2001-06-13
TR200101751T2 (tr) 2002-05-21
HK1038194A1 (en) 2002-03-08
EP1421956B1 (en) 2007-06-27
NO332224B1 (no) 2012-07-30
US20040043002A1 (en) 2004-03-04
BG104871A (en) 2001-07-31
CZ298579B6 (cs) 2007-11-14
AU3767499A (en) 1999-11-16
CA2330451A1 (en) 1999-11-04
CN1187094C (zh) 2005-02-02
KR100622796B1 (ko) 2006-09-13
DK1421956T3 (da) 2007-10-01
DE69936409T2 (de) 2008-04-17
IL139286A (en) 2005-12-18
US6638500B1 (en) 2003-10-28
ATE365563T1 (de) 2007-07-15
ES2224649T3 (es) 2005-03-01
NZ507456A (en) 2003-10-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL193352B1 (pl) Koniugat poliol-interferon ß, sposób jego wytwarzania i jego zastosowanie oraz kompozycja farmaceutyczna
US6552170B1 (en) PEGylation reagents and compounds formed therewith
MXPA00010223A (en) Polyol-ifn-beta conjugates
HK1076115B (en) Polyol-ifn-beta conjugates
HK1038194B (en) Polyol-ifn-beta conjugates

Legal Events

Date Code Title Description
RECP Rectifications of patent specification
RECP Rectifications of patent specification
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20130428