JPS58128323A - ヒトモノクロ−ン抗体の製造法 - Google Patents
ヒトモノクロ−ン抗体の製造法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/10—Cells modified by introduction of foreign genetic material
- C12N5/12—Fused cells, e.g. hybridomas
- C12N5/16—Animal cells
- C12N5/166—Animal cells resulting from interspecies fusion
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/08—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses
- C07K16/10—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses from RNA viruses
- C07K16/1018—Orthomyxoviridae, e.g. influenza virus
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はハイブリドーマ細胞系(セルライン)、その製
造法および特定物質、例えば抗体を製造するためのその
用途に関する。
造法および特定物質、例えば抗体を製造するためのその
用途に関する。
ハイブリドーマは、雑種を形成するために、不滅細胞(
特に骨髄腫細胞)を、特定物質を製造する能力により通
常選択した正常な非形質変換細胞(例、抗体を製造する
ためのリンパ球細胞)と融合させることによって形成さ
れる細胞に適用する用語である。これらの雑種は、単一
の構造および/または性質を有する物質を製造する細胞
系を得るために選択し、クローンすることができる。特
に、リンパ球で形成されるかかるノへイブリドーマは、
モノクローン抗体を製造するのに使用することができる
。
特に骨髄腫細胞)を、特定物質を製造する能力により通
常選択した正常な非形質変換細胞(例、抗体を製造する
ためのリンパ球細胞)と融合させることによって形成さ
れる細胞に適用する用語である。これらの雑種は、単一
の構造および/または性質を有する物質を製造する細胞
系を得るために選択し、クローンすることができる。特
に、リンパ球で形成されるかかるノへイブリドーマは、
モノクローン抗体を製造するのに使用することができる
。
最近のハイブリドーマ技術の開発は、安定で、取得希望
の特定物質の高くて一定した製造を備えた細胞系を得る
ことに向けられていた。この問題について各種のアプロ
ーチがなされたが、歴史的起源により、免疫グロブリン
/抗体の分野に太きく集中していた。
の特定物質の高くて一定した製造を備えた細胞系を得る
ことに向けられていた。この問題について各種のアプロ
ーチがなされたが、歴史的起源により、免疫グロブリン
/抗体の分野に太きく集中していた。
この分野での従前の活動を研究すると、直面した問題の
型式の大要と、今までに試みられた各種の解決法が出て
くる。
型式の大要と、今までに試みられた各種の解決法が出て
くる。
モノクローン産品を製造する雑種細胞系への研究の最初
の衝動は、産品がモノクローン抗体である免疫生物学の
分野から発生した。
の衝動は、産品がモノクローン抗体である免疫生物学の
分野から発生した。
通常の抗血清は、抗原結合位置において構造的には異な
るが各々がある程度の結合特性および/または特異性で
もって同じ抗原に結合している非常に多数の抗体を一般
に含有している。加えてまた、通常の抗血清は、他の抗
原に向かい、且つ抗血清が得られる宿主個体の以前の防
御反応を反映する多数の抗体を含有している。はとんど
の目的には、かかる広範な抗血清で充分であるが、より
多くの特異性や再現性を与えることが重大な前進を記し
、また特に診断と療法の分野において大きな力の科学的
道具を付与することになるであろうと感知されていた。
るが各々がある程度の結合特性および/または特異性で
もって同じ抗原に結合している非常に多数の抗体を一般
に含有している。加えてまた、通常の抗血清は、他の抗
原に向かい、且つ抗血清が得られる宿主個体の以前の防
御反応を反映する多数の抗体を含有している。はとんど
の目的には、かかる広範な抗血清で充分であるが、より
多くの特異性や再現性を与えることが重大な前進を記し
、また特に診断と療法の分野において大きな力の科学的
道具を付与することになるであろうと感知されていた。
最初であり且つ現在では古典的な解決法は、Kδ旧er
とMilsteinによってNature、256 。
とMilsteinによってNature、256 。
495〜497(1975)に述べられており、前免疫
化マウス牌臓細胞を薬物感性マウス骨髄1厘細胞に融合
させることに成功した。従って、不滅融合細胞をインビ
トロで生育しそして単一細胞レベルからクローンして、
均質な抗体混光(モノクローン抗体)を産出する均質な
細胞混光を製造することができた。多くのユニークな細
胞間を選択し、且つ選択的な再クローニングによって、
所望の抗原特異性の抗体を製造する細胞を取得し、生育
することが可能となった。
化マウス牌臓細胞を薬物感性マウス骨髄1厘細胞に融合
させることに成功した。従って、不滅融合細胞をインビ
トロで生育しそして単一細胞レベルからクローンして、
均質な抗体混光(モノクローン抗体)を産出する均質な
細胞混光を製造することができた。多くのユニークな細
胞間を選択し、且つ選択的な再クローニングによって、
所望の抗原特異性の抗体を製造する細胞を取得し、生育
することが可能となった。
このような方法で製造されたマウス抗体は、研究や診断
の目的には有用であることが証明されており、またある
ものはヒトの治療にさえ用いられていた。しかし、同様
な特異性と再現性のヒト抗体がこの方法で得ることがで
きるのであれば、ヒトの免疫グロブリン療法において大
きな前進となるであろう。またこのことは感作の危険性
を減少するであろう。
の目的には有用であることが証明されており、またある
ものはヒトの治療にさえ用いられていた。しかし、同様
な特異性と再現性のヒト抗体がこの方法で得ることがで
きるのであれば、ヒトの免疫グロブリン療法において大
きな前進となるであろう。またこのことは感作の危険性
を減少するであろう。
インビトロでかかるヒト抗体を製造する問題へのアプロ
ーチがいくつか試みられたが、それらは現在のところ大
きく成功していない。これらには以下のことが挙げられ
る。
ーチがいくつか試みられたが、それらは現在のところ大
きく成功していない。これらには以下のことが挙げられ
る。
(ilEpstein−Barrウィ/l/ス(EBV
)による正常なヒトリンパ球の形質変換。このタイプの
細胞は確立されるには長くて冗長な工程を必要とし、ま
たクローンおよび選択することが非常に困難であるので
、この方法はほとんど成功しなかった。
)による正常なヒトリンパ球の形質変換。このタイプの
細胞は確立されるには長くて冗長な工程を必要とし、ま
たクローンおよび選択することが非常に困難であるので
、この方法はほとんど成功しなかった。
(11)ヒト骨髄腫細胞による正常な(ヒト)リンパ球
の融合。この方法はマウス−マウスハイブリドーマのア
プローチに明らかに類似していることを表わしているが
、ヒト系ではただ一つ骨髄腫細胞系のみが広く利用でき
たという問題に直面し、またこれは融合の成功を妨害す
るマイコプラスマでもって汚染されていることが判明し
た。
の融合。この方法はマウス−マウスハイブリドーマのア
プローチに明らかに類似していることを表わしているが
、ヒト系ではただ一つ骨髄腫細胞系のみが広く利用でき
たという問題に直面し、またこれは融合の成功を妨害す
るマイコプラスマでもって汚染されていることが判明し
た。
(iill E B y−形質変換ヒl−IJンパ芽球
様のB細胞系への正常なヒトリンパ球の融合。多分にこ
れはすでに述べられたものでは最も確実で再現性ある方
法であるが、リンパ芽球様細胞と出会う基本的なインビ
トロ欠点に悩まされる。上記細胞はクローンすることが
非常に困難である。また】3細胞分別系統の早期段階を
表わすので、それらの抗体を製造し分泌する能力が真性
骨髄腫のそれより約10倍低い。
様のB細胞系への正常なヒトリンパ球の融合。多分にこ
れはすでに述べられたものでは最も確実で再現性ある方
法であるが、リンパ芽球様細胞と出会う基本的なインビ
トロ欠点に悩まされる。上記細胞はクローンすることが
非常に困難である。また】3細胞分別系統の早期段階を
表わすので、それらの抗体を製造し分泌する能力が真性
骨髄腫のそれより約10倍低い。
0ψマウス骨髄腫へのヒトリンパ球の融合、1この方法
はマウス−マウスハイブリドーマと同様に優れたインビ
トロ特性を有する細胞を製造するが、それはかかる雑種
が固有の遺伝学的不安定性を有するという大きな不(り
点を備えている。
はマウス−マウスハイブリドーマと同様に優れたインビ
トロ特性を有する細胞を製造するが、それはかかる雑種
が固有の遺伝学的不安定性を有するという大きな不(り
点を備えている。
この特にめんどうな結果は、免疫グロブリンの軽カッパ
ー鎖を形成するためのゲノムが位置するヒト染色体を」
二記細胞が追放するということである。
ー鎖を形成するためのゲノムが位置するヒト染色体を」
二記細胞が追放するということである。
従って、要約すれば、方法(1)は実施するにはあまり
にも冗長で非能率的である。方法(11)は未だ実用的
意義を有していない。方法(11旧よ現在利用可能なも
のでは最良である。方法11V)は実行可能であるが、
非常に気むずかしいクローニング手段テモってしても生
産性を維持できない。
にも冗長で非能率的である。方法(11)は未だ実用的
意義を有していない。方法(11旧よ現在利用可能なも
のでは最良である。方法11V)は実行可能であるが、
非常に気むずかしいクローニング手段テモってしても生
産性を維持できない。
以上の検討と現在までのほとんどの研究が抗体製造に集
中していたが、生産性ある細胞パートナ−を、取得希望
の特定物質の分泌のために選択し。
中していたが、生産性ある細胞パートナ−を、取得希望
の特定物質の分泌のために選択し。
また不滅細胞系に融合できるということが明らかである
。
。
今回、他の細胞に更に融合させるために母体として異種
発生性ハイブリドーマ細胞を使用することにより、安定
性を大きく改良されたハイブリドーマを得ることができ
るということが判明した。
発生性ハイブリドーマ細胞を使用することにより、安定
性を大きく改良されたハイブリドーマを得ることができ
るということが判明した。
従って、本発明は、不滅細胞が異種発生性ハイブリドー
マ細胞であり、予定された物質を製造する細胞が異種発
生性ハイブリドーマの非形質変換パートナ−と遺伝学的
に適合できることを特徴とする、上記予定物質製造細胞
に融合された不滅細胞を含むハイブリドーマ細胞系に関
する。
マ細胞であり、予定された物質を製造する細胞が異種発
生性ハイブリドーマの非形質変換パートナ−と遺伝学的
に適合できることを特徴とする、上記予定物質製造細胞
に融合された不滅細胞を含むハイブリドーマ細胞系に関
する。
かかる細胞の安定性は、正しく培養される場合には、抗
体の如き予定された物質の製造を維持するその能力に存
する。
体の如き予定された物質の製造を維持するその能力に存
する。
ある観点においては、不滅細胞として選択された異種発
生性ハイブリドーマは、免疫グロブリンを製造するそれ
自体の能力を失った骨髄腫雑種である。かかる異種発生
性ハイブリドーマの具体例は、骨髄腫細胞とリンパ球細
胞の間のものであると思われる。適切な骨髄腫細胞の具
体例は、マウスとラットから得られるものであり、免疫
グロブリンはむしろ製造しないであろう。これらの骨髄
腫はそれ自体、事実上骨髄腫である雑種0例、マウス骨
髄腫/マウスリンパ球)であり得る。かかる細胞は例え
ばマウス5P−2骨髄腫細胞系である。次いでこれを例
えば、他の種から得られるリンパ球C例、ヒトリンパ球
細胞)に融合させる。
生性ハイブリドーマは、免疫グロブリンを製造するそれ
自体の能力を失った骨髄腫雑種である。かかる異種発生
性ハイブリドーマの具体例は、骨髄腫細胞とリンパ球細
胞の間のものであると思われる。適切な骨髄腫細胞の具
体例は、マウスとラットから得られるものであり、免疫
グロブリンはむしろ製造しないであろう。これらの骨髄
腫はそれ自体、事実上骨髄腫である雑種0例、マウス骨
髄腫/マウスリンパ球)であり得る。かかる細胞は例え
ばマウス5P−2骨髄腫細胞系である。次いでこれを例
えば、他の種から得られるリンパ球C例、ヒトリンパ球
細胞)に融合させる。
好ましい実施態様では、免疫グロブリンをもはや製造し
ないかかる融合で生ずる異種発生性ハイブリドーマを、
物質製造細胞に更に融合させるために選択する。
ないかかる融合で生ずる異種発生性ハイブリドーマを、
物質製造細胞に更に融合させるために選択する。
これらの異種発生性ハイブリドーマは、染色体喪失によ
って更に安定のためのより一層温和な環境を与える。
って更に安定のためのより一層温和な環境を与える。
不滅化に使用する異種発生性ハイブリドーマは、通常の
方法で更に融合する以前に薬剤耐性にする。特定な方法
は8−アザグアニン耐性の選択である。
方法で更に融合する以前に薬剤耐性にする。特定な方法
は8−アザグアニン耐性の選択である。
このようにして得られるハイブリドーマは、更に融合す
るための安定な母体を与える。他の融合ハードナーは、
予定物質を製造するその能力で選択しく例えば抗体を製
造するのにリンパ球を選択してもよい)、異種発生性ハ
イブリドーマの非形質変換パートナ−と遺伝学的に適合
する。
るための安定な母体を与える。他の融合ハードナーは、
予定物質を製造するその能力で選択しく例えば抗体を製
造するのにリンパ球を選択してもよい)、異種発生性ハ
イブリドーマの非形質変換パートナ−と遺伝学的に適合
する。
必要度の特異性を得るには、選択細胞を前感作して所望
物質を製造することが望ましい。このことは例えば抗体
の場合には、特定抗原でもって宿主を免疫化し次いで対
応する抗体を製造する免疫細胞(即ち、免疫適格細胞)
を採集することによって達成できる。
物質を製造することが望ましい。このことは例えば抗体
の場合には、特定抗原でもって宿主を免疫化し次いで対
応する抗体を製造する免疫細胞(即ち、免疫適格細胞)
を採集することによって達成できる。
これらは例えば牌臓、リンパ節または血球であり得る。
異種発生性ハイブリドーマ細胞母体の物質製造細胞への
融合は、通常の方法で起生ずる。これには通常、融合を
促進する物質0例、PEG 1500 )と共に適当な
培地で同等量の各細胞をインキュベートすることが含ま
れる。所望の雑種の選択は、再度通常の方法でよく、選
択培地C例、不滅細胞がヒボキサンチンホスホリボシル
転移酵素を含有しない場合にはLI A T (ヒボキ
サンチン/アミノプテリン/チミジン))で実施するこ
とができる。
融合は、通常の方法で起生ずる。これには通常、融合を
促進する物質0例、PEG 1500 )と共に適当な
培地で同等量の各細胞をインキュベートすることが含ま
れる。所望の雑種の選択は、再度通常の方法でよく、選
択培地C例、不滅細胞がヒボキサンチンホスホリボシル
転移酵素を含有しない場合にはLI A T (ヒボキ
サンチン/アミノプテリン/チミジン))で実施するこ
とができる。
得られる細胞系は安定で、抗体を高収率で製造する。
これらはクローンすることもでき、また要すれば再選択
することもできる。
することもできる。
従って、本発明は安定なハイブリドーマ細胞系の製造法
にも関し、該方法は異種発生性ノ1イブリドーマ細胞母
体を薬剤耐性にし、これを異種発生性ハイブリドーマの
非形質変換パートナ−と遺伝学的に適合する物質製造細
胞に融合させ、そして所望の雑種を選択することから成
る。
にも関し、該方法は異種発生性ノ1イブリドーマ細胞母
体を薬剤耐性にし、これを異種発生性ハイブリドーマの
非形質変換パートナ−と遺伝学的に適合する物質製造細
胞に融合させ、そして所望の雑種を選択することから成
る。
これら細胞を使用する抗体製造は、適当な培地C例、希
釈胎児牛血清を含むもの)でインビトロでまたは宿主6
例、ヌードまたは無胸線のマウスまたはラット)への注
入および腹水液の収穫によってインビボで、通常の系統
に沿って実施することができる。方法の選択により、一
つまたはそれ以上の精製工程が必要であってよい。
釈胎児牛血清を含むもの)でインビトロでまたは宿主6
例、ヌードまたは無胸線のマウスまたはラット)への注
入および腹水液の収穫によってインビボで、通常の系統
に沿って実施することができる。方法の選択により、一
つまたはそれ以上の精製工程が必要であってよい。
本発明はまた、かかる細胞系を使用する抗体の製造に関
する。
する。
所望性質を有する弔−ハイブリドーマ細胞系が経済的理
由により好ましいであろうことは明らかであるが、所望
または必要であれば、かかる細胞系を更に融合すること
も可能であろう。
由により好ましいであろうことは明らかであるが、所望
または必要であれば、かかる細胞系を更に融合すること
も可能であろう。
本発明による典型的な抗体製造ハイブリドーマは、母9
体としてのヒトリンパ球と融合させ次いで抗体製造者と
しての前感作ヒトリンパ球と融合させたマウス骨髄腫か
ら形成されるものでよい。適当な場合には、骨髄腫細胞
自体が(例えばマウス/マウス雑種自体である5p−2
マウス細胞系におけると同様に)雑種であり得る。
体としてのヒトリンパ球と融合させ次いで抗体製造者と
しての前感作ヒトリンパ球と融合させたマウス骨髄腫か
ら形成されるものでよい。適当な場合には、骨髄腫細胞
自体が(例えばマウス/マウス雑種自体である5p−2
マウス細胞系におけると同様に)雑種であり得る。
通常の技術と従前の研究を述べている文献の例は以下の
通りである。
通りである。
(1) K8hler、G、およびMilstein
、 C,Nature。
、 C,Nature。
256.495−497 (1975)(21Nadl
er、 L、 M、等Cancer Re5earch
、4Q。
er、 L、 M、等Cancer Re5earch
、4Q。
3147−3154 (1980)
i31 Cos imi 、 A、B 、等N、En
gl 、 J 、 Med、 、 305308−31
4 (1981) (4) Zurawski、 V、R0等5cien
ce、 199.1439−1441 (1978) (51Koskimies、S、、5cand、J、I
mmunol、。
gl 、 J 、 Med、 、 305308−31
4 (1981) (4) Zurawski、 V、R0等5cien
ce、 199.1439−1441 (1978) (51Koskimies、S、、5cand、J、I
mmunol、。
11 73−77 (1980)
i(315teinitz、 M、等Nature、
287.443−445(1980) (7101s son、 I、およびKaplan、
l−T、S、、 Proc。
287.443−445(1980) (7101s son、 I、およびKaplan、
l−T、S、、 Proc。
Natl、 AcaJ Sci、U、S、A、、 77
.5429−5431(1980) (81Croce、 C,M、等Nature、 28
8,488−489(1980) (91Nowinski、 R,等5cience、
210.537−539 (1980) (IQI Croce 、 C0M、等Proc、N
a1l、Acadjci。
.5429−5431(1980) (81Croce、 C,M、等Nature、 28
8,488−489(1980) (91Nowinski、 R,等5cience、
210.537−539 (1980) (IQI Croce 、 C0M、等Proc、N
a1l、Acadjci。
U、S、A、、 76、3416−3419 (197
9)Qll Ga1fre、 G、等Nature
266、550 (1977)Q2+ Miller
、R人等N、Engl、 J、 Med、 30’6,
517(1982) (13! 5ikora K、、等Lancet、
i 11(1982)および 例えば米国特許第4172124号、EP出願公開第0
043718号と0044722号。
9)Qll Ga1fre、 G、等Nature
266、550 (1977)Q2+ Miller
、R人等N、Engl、 J、 Med、 30’6,
517(1982) (13! 5ikora K、、等Lancet、
i 11(1982)および 例えば米国特許第4172124号、EP出願公開第0
043718号と0044722号。
また、Mclntyreによってモノクローン抗体に関
する書籍が最近発行されている。
する書籍が最近発行されている。
異種発生性融合N体(これは予定物質製造能力を喪失し
ている)を使用することによって本発明は、安定、速成
長、クローン容易であり、所望物質c例、ヒト抗体〕の
高製造速度を有するハイブリドーマの取得を可能にする
。
ている)を使用することによって本発明は、安定、速成
長、クローン容易であり、所望物質c例、ヒト抗体〕の
高製造速度を有するハイブリドーマの取得を可能にする
。
本発明に従って製造されるヒト抗体は、通常の如く抗体
に使用できる。かかる使用分野の例は以下の通りである
。
に使用できる。かかる使用分野の例は以下の通りである
。
感染症:ウィルス(サイトロメガ口、水痘帯、単純ヘル
ブス、肝炎AおよびB、風疹等)、バクテリア(抗毒素
、抗細胞壁)、真菌(カンジダ) 悪性疾患:毒素の共同ありおよびなしに全種類の悪性腫
瘍に対する抗体 中毒:抗毒物抗体(解毒素、ジギタリス、アヘン剤、三
環抗うつ剤、バルビタール酸塩等)抗イデイオタイプ:
拮抗膵臓β細胞、拮抗アセチルコリンレセプタ、抗リウ
マチ様因子血液型抗原:抗Rh 移植:拒絶を抑制する抗1゛細胞、移植片の刺激容量を
減少する強化抗体 アレルギー:アレルゲンのTgG抗体、過敏性減退化の
代換物 ホルモン:避妊薬として使用する絨毛性性腺刺激ホルモ
ン抗体 ハイブリドーマ細胞自体は免疫グロブリン遺伝子のクロ
ーニングを試みる場合には、mRNA源としても使用で
きる。
ブス、肝炎AおよびB、風疹等)、バクテリア(抗毒素
、抗細胞壁)、真菌(カンジダ) 悪性疾患:毒素の共同ありおよびなしに全種類の悪性腫
瘍に対する抗体 中毒:抗毒物抗体(解毒素、ジギタリス、アヘン剤、三
環抗うつ剤、バルビタール酸塩等)抗イデイオタイプ:
拮抗膵臓β細胞、拮抗アセチルコリンレセプタ、抗リウ
マチ様因子血液型抗原:抗Rh 移植:拒絶を抑制する抗1゛細胞、移植片の刺激容量を
減少する強化抗体 アレルギー:アレルゲンのTgG抗体、過敏性減退化の
代換物 ホルモン:避妊薬として使用する絨毛性性腺刺激ホルモ
ン抗体 ハイブリドーマ細胞自体は免疫グロブリン遺伝子のクロ
ーニングを試みる場合には、mRNA源としても使用で
きる。
本発明の特定の実施態様においては、羊の赤血球細胞に
抗体を製造する、元来1’3−X63−Ag3系とマウ
ス牌臓細胞のハ・イブリドーマ自体であった5p−2細
胞系が使用され、これは抗体製造能力を喪失しティる(
C,FoM、Shulmann等、 Nature。
抗体を製造する、元来1’3−X63−Ag3系とマウ
ス牌臓細胞のハ・イブリドーマ自体であった5p−2細
胞系が使用され、これは抗体製造能力を喪失しティる(
C,FoM、Shulmann等、 Nature。
276.269(1978))。
これは例えばN IGMS Huma n Genet
icMucant Ce1l Repository
Ref、GM 35569Aから入手できる( U
S DHI(S 1982 Catalogof C
e1l Lines参照〕。
icMucant Ce1l Repository
Ref、GM 35569Aから入手できる( U
S DHI(S 1982 Catalogof C
e1l Lines参照〕。
参照綿胞系は、通常の技術によって薬剤耐性にされ次い
で正常なヒト末梢リンパ球と融合されている( (、F
、G、Gal fre等 Nature、 266、5
50(1977)およびR,Nowi n s k i
等5cience、 210゜537(1980))。
で正常なヒト末梢リンパ球と融合されている( (、F
、G、Gal fre等 Nature、 266、5
50(1977)およびR,Nowi n s k i
等5cience、 210゜537(1980))。
多数の雑種を得、約5週間後に速成長を示し且つ抗体を
製造しない5クローンを選択する。これらの細胞を8−
アザグアニン耐性に選択し、かかる系の3つでもって、
20μ7/rnlの8−アザグアニンに耐性の変異体を
得ることが可能である。これらの細胞は同時に、これら
がヒポキサンチンホスホリボシル転移酵素を製造する能
力を喪失していることを示すヒボキサンチン−アミノプ
テリン−チミジン(1−IAT)培地に感性である。
製造しない5クローンを選択する。これらの細胞を8−
アザグアニン耐性に選択し、かかる系の3つでもって、
20μ7/rnlの8−アザグアニンに耐性の変異体を
得ることが可能である。これらの細胞は同時に、これら
がヒポキサンチンホスホリボシル転移酵素を製造する能
力を喪失していることを示すヒボキサンチン−アミノプ
テリン−チミジン(1−IAT)培地に感性である。
これらの系(SPAZ−4)の一つを次いで、 2X1
07SPAZ−4細胞を有する108扁桃細胞を使用し
て、ヒト扁桃リンパ球とインビトロで融合させる。融合
は標準法に従って実施する。比較のために、sp/2細
胞系も融合させる。得られる細胞混光を、必要な雑種を
回復させるためにHAT培地で選択する。非融合対照培
養物の全細胞が死滅すると直ちに、HAT培地を正常な
非選択性成長培地と置きかえる。
07SPAZ−4細胞を有する108扁桃細胞を使用し
て、ヒト扁桃リンパ球とインビトロで融合させる。融合
は標準法に従って実施する。比較のために、sp/2細
胞系も融合させる。得られる細胞混光を、必要な雑種を
回復させるためにHAT培地で選択する。非融合対照培
養物の全細胞が死滅すると直ちに、HAT培地を正常な
非選択性成長培地と置きかえる。
成長2週間後に抗体製造の最初の試験を行い。
各融合からの47培養体の全部がヒト抗体を製造したこ
とが判明する。更に4週間後に再試験すると、5p72
ハイブリドーマの55%に比較して5PAZ−4ハイブ
リドーマの83%が今だに抗体を製造していることが認
められる。5p72系のわずか3%に比較して5PAZ
−4の28%において、高い製造率が認められる。
とが判明する。更に4週間後に再試験すると、5p72
ハイブリドーマの55%に比較して5PAZ−4ハイブ
リドーマの83%が今だに抗体を製造していることが認
められる。5p72系のわずか3%に比較して5PAZ
−4の28%において、高い製造率が認められる。
抗体製造喪失の主たるファクターがL鎖ゲノムの喪失で
あるという事実からして、軽鎖製造の特定試験を行う。
あるという事実からして、軽鎖製造の特定試験を行う。
5PAZ−4系の67%がカッパー鎖、その88%がラ
ムグー鎖を製造することが認められる。5p72の対応
する値はそれぞれ39%と61%である(勿論、特定試
験と使用免疫グロブリン(Ig)の比較割合)。結果は
第1表に示す。すべての場合において、5PAZ−4が
SP/2に優れており、特に実用的見地からして最も重
要である強力な製造値に関して優れている。これらのす
べての実験を、安定なりローンに対する圧力を最大にす
るために、非クローン細胞について行う(安定なりロー
ンは多くの遺伝物質を有し、不必要な染色体の追放に成
功した細胞よりも常に良好に成長しない〕。
ムグー鎖を製造することが認められる。5p72の対応
する値はそれぞれ39%と61%である(勿論、特定試
験と使用免疫グロブリン(Ig)の比較割合)。結果は
第1表に示す。すべての場合において、5PAZ−4が
SP/2に優れており、特に実用的見地からして最も重
要である強力な製造値に関して優れている。これらのす
べての実験を、安定なりローンに対する圧力を最大にす
るために、非クローン細胞について行う(安定なりロー
ンは多くの遺伝物質を有し、不必要な染色体の追放に成
功した細胞よりも常に良好に成長しない〕。
しかし、実験を細胞をクローンするのに行った。現在ま
でに得られた結果では、単一でなく安定で生産性のSP
/2雑種(即ち、すべての成長細胞が抗体を製造した系
でないもの)が得られることを示す。他方、5PAZ−
4雑種ではかかるクローンを誘導することが可能である
。
でに得られた結果では、単一でなく安定で生産性のSP
/2雑種(即ち、すべての成長細胞が抗体を製造した系
でないもの)が得られることを示す。他方、5PAZ−
4雑種ではかかるクローンを誘導することが可能である
。
本発明は、従来の公知方法よりも実質的に良好な結果を
得ることを可能にする。それは、古典的なマウス−マウ
スハイブリドーマさえ不安定であり(これを研究するこ
とは実用的である)そして気むずかしいサブクローニン
グが常に必要であるということを述べる価値がある不安
定性の問題を解決したからである。5PAZ−4/Sイ
ブリドーマの示す不安定度はマウス−マウスハイブリド
ーマのそれより低いので、後者は研究することはより一
層実用的でさえある。
得ることを可能にする。それは、古典的なマウス−マウ
スハイブリドーマさえ不安定であり(これを研究するこ
とは実用的である)そして気むずかしいサブクローニン
グが常に必要であるということを述べる価値がある不安
定性の問題を解決したからである。5PAZ−4/Sイ
ブリドーマの示す不安定度はマウス−マウスハイブリド
ーマのそれより低いので、後者は研究することはより一
層実用的でさえある。
次に実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。
実施例1 : 5PA−Z −4系の製造Ficoll
−Lsopaque遠心分離によって、健康な提供者の
ヘパリン化面液から末梢面液リンパ球〔P B I4.
)を単離する。洗浄後、pH8,Qに調節したDulb
eccos 821培地50rnl中の5 x 107
8P/2細胞と108PBL5を混合する。細胞を60
0X!−で5分間ペレット化し、その後上澄液を注意深
く除去する。細胞を37℃に保ちながら、50%I’
F、G4000のH21の1 mlを1分で徐々にjJ
口える。史に10m1のH21を2分で加える。細胞を
遠心分離によって集め(ペレット化)、55mIVのl
−I A T培地に再懸濁しく 1.−I A T培地
:20%胎児牛血清、10%NCTC109,1%非必
須アミノ酸、0.5%ピルビン酸塩、Q、2U/m/イ
ンスリン、1mMオキサル酢酸、 10 ’ヒポキサン
チン、4X10−7Mアミノプテリンおよび1.6X1
0 ”Mチミジンを含むDul beccos [21
) 、平底組織培養マイクロプレートの0.1 ml培
養物の528体に播種する。2週間毎3〜5日で新しい
HAT培地を培養物に与え、その後培地をl(T培地(
1’O%FC3,10−4ヒポキサンチンおよび1.6
X10−3チミジンを含むDul bcccos H2
1)に変える。15日後ヒト抗体試験のために試料を取
る。良好な成長を示し抗体製造を示さない5体の培養物
を選択する。次いでこれらを8−アザグアニン耐性サプ
ラインの製造に選択する。
−Lsopaque遠心分離によって、健康な提供者の
ヘパリン化面液から末梢面液リンパ球〔P B I4.
)を単離する。洗浄後、pH8,Qに調節したDulb
eccos 821培地50rnl中の5 x 107
8P/2細胞と108PBL5を混合する。細胞を60
0X!−で5分間ペレット化し、その後上澄液を注意深
く除去する。細胞を37℃に保ちながら、50%I’
F、G4000のH21の1 mlを1分で徐々にjJ
口える。史に10m1のH21を2分で加える。細胞を
遠心分離によって集め(ペレット化)、55mIVのl
−I A T培地に再懸濁しく 1.−I A T培地
:20%胎児牛血清、10%NCTC109,1%非必
須アミノ酸、0.5%ピルビン酸塩、Q、2U/m/イ
ンスリン、1mMオキサル酢酸、 10 ’ヒポキサン
チン、4X10−7Mアミノプテリンおよび1.6X1
0 ”Mチミジンを含むDul beccos [21
) 、平底組織培養マイクロプレートの0.1 ml培
養物の528体に播種する。2週間毎3〜5日で新しい
HAT培地を培養物に与え、その後培地をl(T培地(
1’O%FC3,10−4ヒポキサンチンおよび1.6
X10−3チミジンを含むDul bcccos H2
1)に変える。15日後ヒト抗体試験のために試料を取
る。良好な成長を示し抗体製造を示さない5体の培養物
を選択する。次いでこれらを8−アザグアニン耐性サプ
ラインの製造に選択する。
104Fcsおよび20μg / ml 8−アザグア
ニンを含むDulbec、cos l−121に5体の
細胞系を2×105細胞/mlで播種する。これらの培
養物の3体から、二、三週間後に生育成長する細胞を回
収することができる。これらの1体はHATに感性であ
り、更に試験するのに使用する。
ニンを含むDulbec、cos l−121に5体の
細胞系を2×105細胞/mlで播種する。これらの培
養物の3体から、二、三週間後に生育成長する細胞を回
収することができる。これらの1体はHATに感性であ
り、更に試験するのに使用する。
実施例2:扁桃リンパ球との融合
小児から扁桃を結合組織で切り取り、微細金属網を通過
させて、単一細胞プレパラートを得る。
させて、単一細胞プレパラートを得る。
赤血球の数を減するために、全細胞をFicoll −
Isopaqueに分別する。得られる細胞混光のlO
8の細胞を、実施例1に述べたのと同じ方法でもって2
×107の5PAZ −4またはS I’/2細胞に融
合させる。その後細胞を1−I A T培地の培養物0
.5 mlの47体に播種し、この時にシクロスポリン
AO15μg/−を補給する。1日後にシクロスポリン
Aを含まないHAT培地0.5 mlを加える。3日日
にすでに培地の50%がl−I T培地に変化する。こ
の後毎3〜5日の経過でもって細胞を1−JT培地に維
持する。
Isopaqueに分別する。得られる細胞混光のlO
8の細胞を、実施例1に述べたのと同じ方法でもって2
×107の5PAZ −4またはS I’/2細胞に融
合させる。その後細胞を1−I A T培地の培養物0
.5 mlの47体に播種し、この時にシクロスポリン
AO15μg/−を補給する。1日後にシクロスポリン
Aを含まないHAT培地0.5 mlを加える。3日日
にすでに培地の50%がl−I T培地に変化する。こ
の後毎3〜5日の経過でもって細胞を1−JT培地に維
持する。
免疫グロブリン製造試験
伝統的なELISA(酵素結合免疫吸着剤検定〕システ
ムを使用する。p#−19−6の重炭酸塩緩衝剤中1:
400の希釈でウサギ抗ヒト免疫グロブリンをNunc
EIAプレートに捕捉させる。該プレートを洗浄後、
培養上層部を37℃で30分インキュベートする。再度
洗浄後、1:400の希釈でペルオキシダーゼ接合ウサ
ギ抗ヒ) IgG、 IgM、 IgA試剤(Mi I
es −Yeda)でインキュベーションを処理する。
ムを使用する。p#−19−6の重炭酸塩緩衝剤中1:
400の希釈でウサギ抗ヒト免疫グロブリンをNunc
EIAプレートに捕捉させる。該プレートを洗浄後、
培養上層部を37℃で30分インキュベートする。再度
洗浄後、1:400の希釈でペルオキシダーゼ接合ウサ
ギ抗ヒ) IgG、 IgM、 IgA試剤(Mi I
es −Yeda)でインキュベーションを処理する。
洗浄後酵素反応を1,2−フエニレンジアミンニ塩酸塩
と14202で展開させる。
と14202で展開させる。
ヤギ抗ヒトラムダ−またはヤギ抗ヒトカッパー試剤(T
ago)を1 : 3000の希釈でウサギ抗ヒトIg
G、 IgM%IgA の代わりに使用する以外は同じ
方法で、軽鎖製造試験を正確に行う。
ago)を1 : 3000の希釈でウサギ抗ヒトIg
G、 IgM%IgA の代わりに使用する以外は同じ
方法で、軽鎖製造試験を正確に行う。
結果をTitertek Multiscan Eli
sa光度計で評価し、第1表の「4」と17」の値をこ
の光度計からの低い読みと高い続みとしてそれぞれ参照
できる。
sa光度計で評価し、第1表の「4」と17」の値をこ
の光度計からの低い読みと高い続みとしてそれぞれ参照
できる。
実施例3:インフルエンザAおよびB型に対す使用した
インフルエンザワクチンは、A/パンコック、A/ブラ
ジルおよびB/シンガポールからの赤血球凝集素とノイ
ラミニダーゼを含む商品名5ANDOVACである。3
人の健康な志願者を免疫化し、3.7.10.14およ
び17日に裸面する。
インフルエンザワクチンは、A/パンコック、A/ブラ
ジルおよびB/シンガポールからの赤血球凝集素とノイ
ラミニダーゼを含む商品名5ANDOVACである。3
人の健康な志願者を免疫化し、3.7.10.14およ
び17日に裸面する。
各回50〜60m1の血液をひじ静脈からヘパリン含有
注射器へ抜く。リンパ球をFicoll −r’a甲1
e(Pbarmacia)に遠心分離によって単離し、
使用前に塩水で2回洗う。
注射器へ抜く。リンパ球をFicoll −r’a甲1
e(Pbarmacia)に遠心分離によって単離し、
使用前に塩水で2回洗う。
融合は体は
a) 5PAZ −4(実施例1参照)b) SP/2
(上記参照) すWISTARlN5TITUTEで8−アザグアニン
耐性にしたGM 1500ヒトリンパ芽球様細胞(ヒト
IgG2カツパーを製造する) である。
(上記参照) すWISTARlN5TITUTEで8−アザグアニン
耐性にしたGM 1500ヒトリンパ芽球様細胞(ヒト
IgG2カツパーを製造する) である。
5PAZ−4とSP/2は全く同じに融合する。骨髄腫
(107細胞)とヒトリンパ球(約3×lo7細胞)を
、pH8,0でDMEM 無血清培地の存在下試験管で
混合する。細胞を600X!i’で5分遠心分離にかけ
る。得られるペレットを50%P F、 G 4 Qo
oで1分処理し、その後PF、Gを培地で徐々に希釈す
る。1回洗浄後、20%胎児牛血清を含むDMEM−H
AT培地の100μノ培養物176体に細胞を播種する
。細胞を湿気のある10%co2−大気で37℃で培養
する。
(107細胞)とヒトリンパ球(約3×lo7細胞)を
、pH8,0でDMEM 無血清培地の存在下試験管で
混合する。細胞を600X!i’で5分遠心分離にかけ
る。得られるペレットを50%P F、 G 4 Qo
oで1分処理し、その後PF、Gを培地で徐々に希釈す
る。1回洗浄後、20%胎児牛血清を含むDMEM−H
AT培地の100μノ培養物176体に細胞を播種する
。細胞を湿気のある10%co2−大気で37℃で培養
する。
GM1500細胞(107細胞) ヲpi(8,O)m
血清DMEM中でヒトリンパ球(約3×107細胞)と
混合し、600X!i’で5分遠心分離する。ペレット
を50%PEG6000 で5分処理し、その間に細胞
を600Xlで遠心分離する。この後PEGを培地で徐
々に希釈する。1回洗浄後、20%胎児牛血清を含むR
PMI 1(54Q−HAT培地の1ooμ)培養物
176体に細胞を播種する。細胞を湿気のある5%CO
2−大気で37℃で培養する。
血清DMEM中でヒトリンパ球(約3×107細胞)と
混合し、600X!i’で5分遠心分離する。ペレット
を50%PEG6000 で5分処理し、その間に細胞
を600Xlで遠心分離する。この後PEGを培地で徐
々に希釈する。1回洗浄後、20%胎児牛血清を含むR
PMI 1(54Q−HAT培地の1ooμ)培養物
176体に細胞を播種する。細胞を湿気のある5%CO
2−大気で37℃で培養する。
6160体の培養物(0M1500により2640体、
5PAZ−4によl1l)2464体、SP/2により
1056体)を含む全体で35体の融合IM1500に
15体、5pAz−4ニ14体、SP/2に6体〕を行
う。
5PAZ−4によl1l)2464体、SP/2により
1056体)を含む全体で35体の融合IM1500に
15体、5pAz−4ニ14体、SP/2に6体〕を行
う。
一般に毎3〜5日間で細胞増殖が必要とするときは、培
地を培養物に変える。上澄液に抗インフルエンザ抗体が
存在することをELISA法で検定する。関連インフル
エンザ抗原をマイクロプレート穴(Nunc)に捕捉し
、上澄液を加え、抗原と相互作用させる。洗浄後ペルオ
キシダーゼ接合ウサギ抗ヒトIgG、 IgA、 Ig
M (Mi Ies )を該穴に加える。インキュベー
ション後非結合ペルオキシダーゼ接合体を洗浄除去し、
酵素着色物質を該穴に加える。反応を視覚で評価し、T
itertekマイクロプレート光度計で証明する。陽
性結果を示す培養物を、マウス脚線細胞供給細胞と共に
100μノのDMEM + 20%胎児牛血清において
(SPAZ−4およびSP/2誘導細胞)、またはMR
C−5供給細胞のRPMI 154Q+20%胎児牛
血清において(GM 1500誘導細胞)、1細胞/培
養物で細胞を播種する88個の新しい穴において限界希
釈条件でクローンする。生産性細胞は大きく成長し、液
体N2 に凍結する。
地を培養物に変える。上澄液に抗インフルエンザ抗体が
存在することをELISA法で検定する。関連インフル
エンザ抗原をマイクロプレート穴(Nunc)に捕捉し
、上澄液を加え、抗原と相互作用させる。洗浄後ペルオ
キシダーゼ接合ウサギ抗ヒトIgG、 IgA、 Ig
M (Mi Ies )を該穴に加える。インキュベー
ション後非結合ペルオキシダーゼ接合体を洗浄除去し、
酵素着色物質を該穴に加える。反応を視覚で評価し、T
itertekマイクロプレート光度計で証明する。陽
性結果を示す培養物を、マウス脚線細胞供給細胞と共に
100μノのDMEM + 20%胎児牛血清において
(SPAZ−4およびSP/2誘導細胞)、またはMR
C−5供給細胞のRPMI 154Q+20%胎児牛
血清において(GM 1500誘導細胞)、1細胞/培
養物で細胞を播種する88個の新しい穴において限界希
釈条件でクローンする。生産性細胞は大きく成長し、液
体N2 に凍結する。
86体の培養物全体をクローンした(0M1500から
58体、5PAZ−4から26体、SP/2から2体)
。クローン後に真に陽性の細胞の収率が低いと思われる
細胞をクローンすべきであるか否かについては、その決
定に全く自由な基準を適用する。例えばCM 1500
は高製造細胞を製造しないので、このことをなすべきで
ある。5PAZ−4細胞からは4体の陽性クローンが確
認され、S P/2からは1体が確認されるが、しがし
これは雑種ではなく、むしろ天然に起生ずるEBウィル
スを形質変換した細胞であった。製造細胞は0M150
0からは誘導されない。
58体、5PAZ−4から26体、SP/2から2体)
。クローン後に真に陽性の細胞の収率が低いと思われる
細胞をクローンすべきであるか否かについては、その決
定に全く自由な基準を適用する。例えばCM 1500
は高製造細胞を製造しないので、このことをなすべきで
ある。5PAZ−4細胞からは4体の陽性クローンが確
認され、S P/2からは1体が確認されるが、しがし
これは雑種ではなく、むしろ天然に起生ずるEBウィル
スを形質変換した細胞であった。製造細胞は0M150
0からは誘導されない。
融合の結果を下記表に要約して示す。
5体の陽性細胞系を数回再クローンし、大きく成長させ
る。これはEBV系の消滅をもたらす(かかる細胞コロ
ニーが低密度クローニングを生存させないことはよく知
られている)。
る。これはEBV系の消滅をもたらす(かかる細胞コロ
ニーが低密度クローニングを生存させないことはよく知
られている)。
4体の陽性5PAZ−4ハイブリドーマ細胞系をC15
、C28、C29およびC75として確J忍した。
、C28、C29およびC75として確J忍した。
実施例4:抗インフルエンザハイブリドーマの製造(イ
ンビトロ免疫後) ヒト牌臓細胞をFalcon 2051チユーブの部分
標本2mlに106/mlで播種し、全体で34刈06
の細胞を使用する。最適量の蔗糖濃度傾斜精製A/パン
コックウィルスを加え、培養物を5%ヒト加熱非活性化
プラスマを含むRPMI 1640培地で空気中5%C
O2の雰囲気下37℃で101時間維持する。回収した
9 X 106細胞を実施例3に述べたのと同様にして
同数の5PAZ−4細胞に融合する。細胞を176体の
培養物に播種し、20%胎児牛血清、HA TおよびI
P9/ml9/ロスポリンAを含むDulbccco
のMEMで成長させる。2日C9力 後HAT培地をHT培地で次第に置換し、その後4〜5
日の間隔で変える。融合後12日と19日日日培養物を
抗インフルエンザ抗体についてスクリーニングし、陽性
培養物をクローンする。陽性クローン(B2として確認
)を得、これは大きく成長させることができ、また薬剤
量の純粋抗体をインビトロ製剤するのに使用することが
できる。
ンビトロ免疫後) ヒト牌臓細胞をFalcon 2051チユーブの部分
標本2mlに106/mlで播種し、全体で34刈06
の細胞を使用する。最適量の蔗糖濃度傾斜精製A/パン
コックウィルスを加え、培養物を5%ヒト加熱非活性化
プラスマを含むRPMI 1640培地で空気中5%C
O2の雰囲気下37℃で101時間維持する。回収した
9 X 106細胞を実施例3に述べたのと同様にして
同数の5PAZ−4細胞に融合する。細胞を176体の
培養物に播種し、20%胎児牛血清、HA TおよびI
P9/ml9/ロスポリンAを含むDulbccco
のMEMで成長させる。2日C9力 後HAT培地をHT培地で次第に置換し、その後4〜5
日の間隔で変える。融合後12日と19日日日培養物を
抗インフルエンザ抗体についてスクリーニングし、陽性
培養物をクローンする。陽性クローン(B2として確認
)を得、これは大きく成長させることができ、また薬剤
量の純粋抗体をインビトロ製剤するのに使用することが
できる。
実施例5:ヒト抗インフルエンザモノクローン抗体の特
性うけ a)抗体/C15 この抗体はIgG1クラスのものであり、カッパー軽鎖
を有する。抗体は試験したすべてのインフルエンザA型
ウィルス(HINl、H2N2、H3N2)に反応し、
それは恐らくほとんどウィルスの核タンパクに向けられ
ている。抗体はインビトロで中和活性を有せず、またイ
ンビボで保護効果を有していない。
性うけ a)抗体/C15 この抗体はIgG1クラスのものであり、カッパー軽鎖
を有する。抗体は試験したすべてのインフルエンザA型
ウィルス(HINl、H2N2、H3N2)に反応し、
それは恐らくほとんどウィルスの核タンパクに向けられ
ている。抗体はインビトロで中和活性を有せず、またイ
ンビボで保護効果を有していない。
b)抗体/C28
この抗体はIgG1クラスのものであり、ラムダ−軽鎖
を有している。抗体はH3N2型のインフルエンザウィ
ルスに反応するのみであり、それは恐らくほとんどウィ
ルスの赤血球凝集素に向けられている。抗体はインビト
ロで強い中和効果を有し、またインビボで劇的な保護活
性を有している。それは試験したすべてのH3N2ウィ
ルス(即ち、1968.1969.1973.1974
.1975.1977.1979および1980からの
ウィルス)を中和することができる。
を有している。抗体はH3N2型のインフルエンザウィ
ルスに反応するのみであり、それは恐らくほとんどウィ
ルスの赤血球凝集素に向けられている。抗体はインビト
ロで強い中和効果を有し、またインビボで劇的な保護活
性を有している。それは試験したすべてのH3N2ウィ
ルス(即ち、1968.1969.1973.1974
.1975.1977.1979および1980からの
ウィルス)を中和することができる。
MDCK細胞の1973A/ポートチヤーマーズで処理
すると、純粋抗体1.5■/−を含む抗体製剤は、中和
価12800を有することが認められる。同一実験にお
いて、標準ヒト免疫グロブリン製剤(Sandoglo
bul in)は濃度60m1i’/m/で中和価50
を有することが認められる。このことは、モノクローン
抗体C28がタンパク賛同−レベルで正常な免疫グロブ
リンよりも10240倍高い能力を有していることを意
味している。これに関連して、抗インフルエンザ抗体が
正常な免疫グロブリン製剤の前優性成分の一つであると
いうことを指摘することが妥当である。該製剤は、C2
8と同じ中和能力を有するが例えはサイトメガロウィル
スまたは水痘帯ウィルスに向けられた抗体を意味する。
すると、純粋抗体1.5■/−を含む抗体製剤は、中和
価12800を有することが認められる。同一実験にお
いて、標準ヒト免疫グロブリン製剤(Sandoglo
bul in)は濃度60m1i’/m/で中和価50
を有することが認められる。このことは、モノクローン
抗体C28がタンパク賛同−レベルで正常な免疫グロブ
リンよりも10240倍高い能力を有していることを意
味している。これに関連して、抗インフルエンザ抗体が
正常な免疫グロブリン製剤の前優性成分の一つであると
いうことを指摘することが妥当である。該製剤は、C2
8と同じ中和能力を有するが例えはサイトメガロウィル
スまたは水痘帯ウィルスに向けられた抗体を意味する。
正常な免疫グロブリン製剤の抗体レベルはかなり低いの
で、相対的能力がより一層高い値に達するのであろう。
で、相対的能力がより一層高い値に達するのであろう。
C)抗体/C29
この抗体はIgG1クラスのものであり、ラムダ−軽鎖
を有している。抗体はB/シンガポール型インフルエン
ザに反応する。他のB型ウィルスに対する試験は行わな
かった。A型ウィルスに対しては活性を有していない。
を有している。抗体はB/シンガポール型インフルエン
ザに反応する。他のB型ウィルスに対する試験は行わな
かった。A型ウィルスに対しては活性を有していない。
d)抗体/C75
この抗体はI g G 3クラスのものであり、カッパ
ー軽鎖を有している。これはH3N2型ウィルスに反応
するのみであり、恐らくはほとんどウィルスの赤血球凝
集素に向けられている。これはインビトロで中和活性を
有せず、インビボで保護効果を有しない。
ー軽鎖を有している。これはH3N2型ウィルスに反応
するのみであり、恐らくはほとんどウィルスの赤血球凝
集素に向けられている。これはインビトロで中和活性を
有せず、インビボで保護効果を有しない。
e)抗体/B2
この抗体はIgG Iクラスのものであり、カッパー軽
鎖を有している。これは)(3N 2型ウイルスに反応
するのみであり、恐らくはほとんどウィルスの赤血球凝
集素に向けられている。抗体はインビトロで中和効果を
有せず、インビボ保護試験は行わなかった。
鎖を有している。これは)(3N 2型ウイルスに反応
するのみであり、恐らくはほとんどウィルスの赤血球凝
集素に向けられている。抗体はインビトロで中和効果を
有せず、インビボ保護試験は行わなかった。
第1表
特許出願人 サンド・アクチェンゲゼルシャフト代理人
弁理士青山 葆 外1名 204
弁理士青山 葆 外1名 204
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、不滅細胞が異種発生性ハイブリドーマ細胞であり、
予定物質製造細胞が異種発生性ハイブリドーマの非形質
変換パートナ−と遺伝学的に適合することを特徴とする
、−上記予定物質製造細胞に融合した不滅細胞を含むハ
イブリドーマ細胞系。 2、物質製造細胞が異種発生性ハイブリドーマ細胞m体
の非形質変換パートナ−と同種のものである上記第1項
のハイブリドーマ細胞系。 3、物質製造細胞パートナ−と、異種発生性ハイブリド
ーマ細胞母体の非形質変換パートナ−がヒト起源のもの
である−1−配給2項のハイブリドーマ細胞系。 4、製造物質が抗体であるに配給1〜3項のいずれかの
ハイブリドーマ細胞系。 5、物質製造細胞が予定物質を製造するのにインビトロ
またはインビボで前感作されている−に記第4項のハイ
ブリドーマ細胞系。 6、物質製造細胞がリンパ球である」−記第1へ5項の
いずれかのハイブリドーマ細胞系。 7、リンパ球がヒト起源のものである」二配給6項のハ
イブリドーマ細胞系。 Σ3.リンパ球か抗体を製造するのにインビボまたはイ
ンビトロでl1ir感作されている1・記第6または°
7頂のハイブリドーマ細胞系。 9、異種発生性ハイブリドーマ細胞の骨髄腫パートナ−
が免疫グロブリンを製造しないネズミ骨髄腫である−1
−記第1−8項のいずれかのハイブリドーマ細胞系。 10、ネズミ骨髄腫がマウス骨髄腫である1−記第9項
のハイブリドーマ細胞系。 11、マウス骨髄腫がSF’−2細胞系によって与えら
れる一1―記第10項のハイブリドーマ細胞系。 12、異種発生性ハイブリドーマ細胞m体が予定物質を
製造する能力を失っているかまたは製造することか゛で
トない1−記第1 ・−+ 1項のいずれかのハイプリ
ドーマ細1泡系。 1:(、マウス骨髄腫細胞と、fiJ細胞としてのヒ)
・リンパ球および物質形成細胞としての前感作された異
種発生性ハイブリドーマ細胞を含む−に記載1〜12項
のいずれかのハイブリドーマ細胞系、。 14、異種発生性ハイブリドーマ細胞を薬剤耐性にし、
これを異種発生性ハイブリドーマの:Jl形質変換パー
トナ−と遺伝学的に適合する物質製造細胞に融合させ、
そして所望の雑種を選択する。ことを特徴とする安定な
ハイブリドーマ細胞系の製造法。 15、使用する融合パートナ−を上記第1・〜13項の
いずれかに述べたものから選択する−1−記載14項の
方法。 16、薬剤耐性を8−7ザグアニンに耐性の細胞から選
択することに、]二って達成する」−記載1・1または
15項の方法。 17、融合をこれを促進する物質の存在下に行う上記第
1・1〜16項のいずれかの方法。 18、促進物質がポリエチレングリフールである上記第
17項の方法。 3− 19、所望雑種の選択を、I−(A T感性の欠乏と予
定物質製造能力の検定を基礎として行う」−記載14〜
18項のいずれかの方法。 20、異種発生性ハイブリドーマ細胞母体と物質製造細
胞を、これら細胞の融合促進剤と共に栄養培養培地に含
むことがら成る細胞融合システム。 21、細胞パートナ−が上記第1〜13項のいずれかに
述べられているものである」−記載2 C1項の細胞融
合システム。 22、融合促進剤がポリエチレングリフールである」二
記載20または21項の細胞融合システム。 23、」ユ記第1〜13項のいずれかのまたは−に記載
14〜1!3項のいずれかに従って製造されたハイブリ
ドーマ細胞系をそのためのインビトロまたはインビボ培
養培地で培養し、その後肢培地から予定物質を単離する
ことを特徴とする該物質の製造法。 24、得られる物質が抗体である」二記載23項の方法
。 25、インビボ培養を無胸線(ヌード)マウスよ4− たはラッ)で行う上記第23または2・・1項のツノ法
。 2〔;、ハイブリドーマ細胞系を製造するのに細胞融合
においてパートナ−として使用する」二記載53〜13
項のいずれかに記載の異種発生性ハイブリドーマ細胞系
。 27、マウス/ヒト/ヒトハイブリドーマ細胞系。 28、予定の特異性を有するヒト抗体を製造可能な安定
なマウス/ヒト/ヒトハイブリドーマ細胞系。 29、マウス細胞かマ・クス/マウスバイブリド=7自
体である上記第27または28項のハイブリドーマ細胞
系。 3()、抗体製造能力を喪失している薬剤耐性のマウス
/ヒトハイブリドーマを製造し、ヒト染色体に一層友好
的な環境を、りえ且っ抗体製造能力に高安定性を示すヒ
ト化マウス骨髄腫細胞を構成することを特徴とする、長
期間にわたってヒト抗体を製造する細胞系の製造法。 31、通常の方法でS P −2細胞系を正常なヒトリ
ンパ球と融合させ、抗体製造なしに急速な成長を示す取
得雑種からクローンを選択し、これを更に8−アザグア
ニン耐性に選択し、これを再びヒトリンパ球と融合させ
、そしてl−I A T培地で得られる細胞混光を選択
することを特徴とする上記第3()項の方法。
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