JPH03236794A - ヒトモノクローン抗体の製造法 - Google Patents
ヒトモノクローン抗体の製造法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/10—Cells modified by introduction of foreign genetic material
- C12N5/12—Fused cells, e.g. hybridomas
- C12N5/16—Animal cells
- C12N5/166—Animal cells resulting from interspecies fusion
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/08—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses
- C07K16/10—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses from RNA viruses
- C07K16/1018—Orthomyxoviridae, e.g. influenza virus
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はハイブリドーマ細胞系(セルライン)、その製
造法および特定物質、例えば抗体を製造するためのその
用途に関する。
造法および特定物質、例えば抗体を製造するためのその
用途に関する。
ハイブリドーマは、雑種を形成するために、「不死化」
細胞(特に骨髄腫細胞)を、特定物質を産生ずる能力に
より通常選択した「正常」非形質変換細胞(例、抗体を
産生ずるリンパ球細胞)と融合させることによって形成
される細胞に適用する用語である。これらの雑種は、単
一の構造および/または性質を有する物質を産生ずる細
胞系を得るために選択し、クローン化することができる
。特に、リンパ球で形成されるかかるハイブリドーマは
、モノクローン抗体を製造するのに使用することができ
る。
細胞(特に骨髄腫細胞)を、特定物質を産生ずる能力に
より通常選択した「正常」非形質変換細胞(例、抗体を
産生ずるリンパ球細胞)と融合させることによって形成
される細胞に適用する用語である。これらの雑種は、単
一の構造および/または性質を有する物質を産生ずる細
胞系を得るために選択し、クローン化することができる
。特に、リンパ球で形成されるかかるハイブリドーマは
、モノクローン抗体を製造するのに使用することができ
る。
最近ハイブリドーマ技術の開発は、安定で、取得希望の
特定物質を高収率かつ特異的に産生ずる細胞系を得るこ
とに向けられていた。この問題について各種のアプロー
チがなされたが、歴史的理由により、免疫グロブリン/
抗体の分野に大きく集中していた。
特定物質を高収率かつ特異的に産生ずる細胞系を得るこ
とに向けられていた。この問題について各種のアプロー
チがなされたが、歴史的理由により、免疫グロブリン/
抗体の分野に大きく集中していた。
この分野での従前の活動を研究すると、直面した問題の
類別の大要と、今までに試みられた各種の解決法が出て
くる。
類別の大要と、今までに試みられた各種の解決法が出て
くる。
モノクローン生産物を製造する雑種セルラインの研究の
最初の衝動は、生産物がモノクローン抗体である免疫生
物学の分野から発生した。
最初の衝動は、生産物がモノクローン抗体である免疫生
物学の分野から発生した。
通常の抗血清は、抗原結合部位において構造的には異な
るがそれぞれ大または小なる持続性および/または特異
性でもって同じ抗原に結合する非常に多数の抗体を一般
に含有している。加えてまた、通常の抗血清は、他の抗
原に対するもので、抗血清が得られる宿主個体の以前の
防御反応を反映する多数の抗体を含有している。はとん
どの目的には、かかる広範な抗血清で充分であるが、よ
りすぐれた特異性や再現性を与えることが特に診断と療
法の分野において重大な前進をもたらし、すばらしい能
力をもつ科学的手段を付与することになるであろうと考
えられていた。
るがそれぞれ大または小なる持続性および/または特異
性でもって同じ抗原に結合する非常に多数の抗体を一般
に含有している。加えてまた、通常の抗血清は、他の抗
原に対するもので、抗血清が得られる宿主個体の以前の
防御反応を反映する多数の抗体を含有している。はとん
どの目的には、かかる広範な抗血清で充分であるが、よ
りすぐれた特異性や再現性を与えることが特に診断と療
法の分野において重大な前進をもたらし、すばらしい能
力をもつ科学的手段を付与することになるであろうと考
えられていた。
最初であり且つ現在では古典的な解決性は、Kohle
rとMilsteinがNature、 256.49
5〜497(1975)に報告したが、彼らは前免疫化
マウス牌臓細胞を薬物感受性マウス骨髄腫細胞に融合さ
せることに成功した。こうして不死化した融合細胞はイ
ンビトロで生育しそして単一細胞レベルからクローン化
して、均質な抗体集団(モノクローン抗体)を産出する
均質な細胞集団を製造することができた。多くのユニー
クな細胞から選択し、且つ選択的な再クローニングによ
って、所望の抗原特異性をもつ抗体を産生ずる細胞を取
得し、生育することが可能となった。
rとMilsteinがNature、 256.49
5〜497(1975)に報告したが、彼らは前免疫化
マウス牌臓細胞を薬物感受性マウス骨髄腫細胞に融合さ
せることに成功した。こうして不死化した融合細胞はイ
ンビトロで生育しそして単一細胞レベルからクローン化
して、均質な抗体集団(モノクローン抗体)を産出する
均質な細胞集団を製造することができた。多くのユニー
クな細胞から選択し、且つ選択的な再クローニングによ
って、所望の抗原特異性をもつ抗体を産生ずる細胞を取
得し、生育することが可能となった。
このような方法で製造されたマウス抗体は、研究や診断
の目的には有用であることが証明されており、またある
ものはヒトの治療にさえ用いられていた。しかし、同様
な特異性と再現性のヒト抗体がこの方法で得ることがで
きるのであれば、ヒトの免疫グロブリン療法において大
きな前進となるであろう。またこのことは感作の危険性
を減少するであろう。
の目的には有用であることが証明されており、またある
ものはヒトの治療にさえ用いられていた。しかし、同様
な特異性と再現性のヒト抗体がこの方法で得ることがで
きるのであれば、ヒトの免疫グロブリン療法において大
きな前進となるであろう。またこのことは感作の危険性
を減少するであろう。
インビトロでかかるヒト抗体を製造する問題へのアプロ
ーチがいくつか試みられたが、それらは現在のところ大
きく成功していない。これらには以下のことが挙げられ
る。
ーチがいくつか試みられたが、それらは現在のところ大
きく成功していない。これらには以下のことが挙げられ
る。
(i )Epstein −Barrウィルス(EBV
)による正常なヒトリンパ球の形質転換。このタイプの
細胞は樹立されるには長くて冗長な工程を必要とし、ま
たクローンおよび選択することが非常に困難であるので
、この方法はほとんど成功しなかった。
)による正常なヒトリンパ球の形質転換。このタイプの
細胞は樹立されるには長くて冗長な工程を必要とし、ま
たクローンおよび選択することが非常に困難であるので
、この方法はほとんど成功しなかった。
(ii)ヒト骨髄腫細胞との正常な(ヒト)リンパ球の
融合。この方法はマウス−マウスハイブリドーマの法に
明らかに類似していることを表わしているが、ヒト系で
はただ一つの骨髄腫細胞系のみしか容易に入手できない
という問題に直面し、またこの系は融合の成功を妨害す
るマイクブラスマでもって汚染されていることが判明し
た。
融合。この方法はマウス−マウスハイブリドーマの法に
明らかに類似していることを表わしているが、ヒト系で
はただ一つの骨髄腫細胞系のみしか容易に入手できない
という問題に直面し、またこの系は融合の成功を妨害す
るマイクブラスマでもって汚染されていることが判明し
た。
(iii)EBV−形質転換ヒトリンパ芽球様のB細胞
系への正常なヒトリンパ球の融合。おそらくこれはすで
に報告されたものでは最も確実で再現性ある方法である
が、リンパ芽球様細胞が出会う基本的なインビトロの欠
点をもつ。上記細胞はクローン化することが非常に困難
である。
系への正常なヒトリンパ球の融合。おそらくこれはすで
に報告されたものでは最も確実で再現性ある方法である
が、リンパ芽球様細胞が出会う基本的なインビトロの欠
点をもつ。上記細胞はクローン化することが非常に困難
である。
またB細胞分化系統の早期段階に該当するので、それら
の抗体を産生し分泌する能力が真性骨髄腫のそれより約
10倍低い。
の抗体を産生し分泌する能力が真性骨髄腫のそれより約
10倍低い。
(iv)マウス骨髄腫へのヒトリンパ球の融合。この方
法はマウス−マウスハイブリドーマと同様に優れたイン
ビトロ特性を有する細胞を製造し得るが、それははるか
に雑種が固有の遺伝学的不安定性を有するという大きな
欠点を備えている。これから生ずる厄介な結果の1つは
、免疫グロブリンの軽カッパー鎖を形成するためのゲノ
ムが位置するヒト染色体を上記細胞が追放するというこ
とである。
法はマウス−マウスハイブリドーマと同様に優れたイン
ビトロ特性を有する細胞を製造し得るが、それははるか
に雑種が固有の遺伝学的不安定性を有するという大きな
欠点を備えている。これから生ずる厄介な結果の1つは
、免疫グロブリンの軽カッパー鎖を形成するためのゲノ
ムが位置するヒト染色体を上記細胞が追放するというこ
とである。
従って、要約すれば、方法(i)は実施するにはあまり
にも冗長で非能率的である。方法(11)は未だ実用的
意義を有していない。方法(iii )は現在利用可能
なものでは最良である。方法(iv)は実行可能である
が、細心の注意を払うクローニング手段でもってしても
生産性を維持できない。
にも冗長で非能率的である。方法(11)は未だ実用的
意義を有していない。方法(iii )は現在利用可能
なものでは最良である。方法(iv)は実行可能である
が、細心の注意を払うクローニング手段でもってしても
生産性を維持できない。
以上の検討も現在までのほとんどの研究も抗体製造に集
中しているが、生産性ある細胞パートナ−を、取得希望
の特定物質の分泌に関して選択し、また不死化セルライ
ンに融合できるということが明らかである。
中しているが、生産性ある細胞パートナ−を、取得希望
の特定物質の分泌に関して選択し、また不死化セルライ
ンに融合できるということが明らかである。
今回、他の細胞に更に融合させるために親として異種間
ハイブリドーマ細胞を使用することにより、安定性を大
きく改良されたハイブリドーマを得ることができるとい
うことが判明した。
ハイブリドーマ細胞を使用することにより、安定性を大
きく改良されたハイブリドーマを得ることができるとい
うことが判明した。
従って、本発明は、不死化細胞が異種間ノ1イプリドー
マ細胞であり、予定された物質を産生ずる細胞が異種間
ハイブリドーマの非形質変換パートナ−と遺伝学的に適
合できることを特徴とする。
マ細胞であり、予定された物質を産生ずる細胞が異種間
ハイブリドーマの非形質変換パートナ−と遺伝学的に適
合できることを特徴とする。
上記予定物質産生細胞に融合された不死化細胞を含むハ
イブリドーマセルラインに関する。
イブリドーマセルラインに関する。
かかる細胞の安定性は、正しく培養される場合に抗体の
如き予定された物質の産生を維持する能力にかかってい
る。
如き予定された物質の産生を維持する能力にかかってい
る。
ある具体例においては、不死化細胞として選択された異
種間ハイブリドーマは、免疫グロブリンを産生ずるそれ
自体の能力を失った骨髄腫雑種である。かかる異種間ハ
イブリドーマの具体例は、骨髄腫細胞とリンパ球細胞の
間のものであると思われる。適切な骨髄腫細胞の具体例
は、マウスとラットから得られたものであり、免疫グロ
ブリンは産生じないものが好ましい。これらの骨髄腫は
それ自体、実際上骨髄腫の性質をもつ雑種(例、マウス
骨髄腫/マウスリンパ球)であり得る。かかる細胞は例
えばマウス5P−2骨髄種セルラインである。次いでこ
れを例えば、他の種から得られるリンパ球(例、ヒトリ
ンパ球細胞)に融合させる。
種間ハイブリドーマは、免疫グロブリンを産生ずるそれ
自体の能力を失った骨髄腫雑種である。かかる異種間ハ
イブリドーマの具体例は、骨髄腫細胞とリンパ球細胞の
間のものであると思われる。適切な骨髄腫細胞の具体例
は、マウスとラットから得られたものであり、免疫グロ
ブリンは産生じないものが好ましい。これらの骨髄腫は
それ自体、実際上骨髄腫の性質をもつ雑種(例、マウス
骨髄腫/マウスリンパ球)であり得る。かかる細胞は例
えばマウス5P−2骨髄種セルラインである。次いでこ
れを例えば、他の種から得られるリンパ球(例、ヒトリ
ンパ球細胞)に融合させる。
好ましい実施態様では、免疫グロブリンをもはや産生じ
ないかかる融合で生ずる異種間ハイブリドーマを、物質
産生細胞に更に融合させるために選択する。
ないかかる融合で生ずる異種間ハイブリドーマを、物質
産生細胞に更に融合させるために選択する。
これらの異種間ハイブリドーマは、染色体喪失の点です
ぐれた安定性を得るため、より一層好適な環境を与える
。
ぐれた安定性を得るため、より一層好適な環境を与える
。
不死化に使用する異種間ハイブリドーマは、通常の方性
で更に融合する以前に薬剤耐性にする。
で更に融合する以前に薬剤耐性にする。
方法の例は8−アザグアニン耐性に関する選択である。
このようにして得られるハイブリドーマは、更に融合す
るための安定な親を与える。他の融合パートナ−は、予
定物質を産生ずる能力で選択しく例えば抗体の産生の場
合リンパ球の選択である)、異種間ハイブリドーマの非
形質変換パートナ−と遺伝学的に適合するものである。
るための安定な親を与える。他の融合パートナ−は、予
定物質を産生ずる能力で選択しく例えば抗体の産生の場
合リンパ球の選択である)、異種間ハイブリドーマの非
形質変換パートナ−と遺伝学的に適合するものである。
必要度の特異性を得るには、選択細胞を前感作して所望
物質産生性にすることが望ましい。このことは例えば抗
体の場合には、特定抗原でもって宿主を免疫化し次いで
対応する抗体を製造する免疫細胞(即ち、免疫適格細胞
)を採集することによって達成できる。
物質産生性にすることが望ましい。このことは例えば抗
体の場合には、特定抗原でもって宿主を免疫化し次いで
対応する抗体を製造する免疫細胞(即ち、免疫適格細胞
)を採集することによって達成できる。
これらは例えば牌臓、リンパ節または血球であり得る。
異種間ハイブリドーマ細胞である親の物質産生細胞への
融合は、通常の方法で行なう。これには通常、融合を促
進する物質(例、PEG 1500)と共に適当な培地
で同等量の各細胞をインキュベートすることが含まれる
。所望の雑種の選択も、通常の方法でよく、選択培地(
例、不死化細胞がヒボキサンチンホスホリボシル転移酵
素を含有しない場合にはHAT(ヒポキサンチン/アミ
ノプテリン/チミジン))で実施することができる。
融合は、通常の方法で行なう。これには通常、融合を促
進する物質(例、PEG 1500)と共に適当な培地
で同等量の各細胞をインキュベートすることが含まれる
。所望の雑種の選択も、通常の方法でよく、選択培地(
例、不死化細胞がヒボキサンチンホスホリボシル転移酵
素を含有しない場合にはHAT(ヒポキサンチン/アミ
ノプテリン/チミジン))で実施することができる。
得られるセルラインは安定で、抗体を高収率で産生ずる
。
。
これらはクローン化することもでき、また要すれば再選
択することもできる。
択することもできる。
従って、本発明は安定なハイブリドーマセルラインの製
造法にも関し、該方法は異種間ハイブリドーマ細胞であ
る親を薬剤耐性にし、これを異種間ハイブリドーマの非
形質変換パートナ−と遺伝学的に適合する物質産生細胞
に融合させ、そして所望の雑種を選択することから成る
。
造法にも関し、該方法は異種間ハイブリドーマ細胞であ
る親を薬剤耐性にし、これを異種間ハイブリドーマの非
形質変換パートナ−と遺伝学的に適合する物質産生細胞
に融合させ、そして所望の雑種を選択することから成る
。
これら細胞を使用する抗体製造は、適当な培地(例、希
釈牛胎児血清を含むもの)でインビトロでまたは宿主(
例、ヌードまたは無胸線のマウスまたはラット)への注
入および腹水液の収穫によってインビボで、通常の方法
によって実施することができる。方法の選択により、一
つまたはそれ以上の精製工程が必要となり得る。
釈牛胎児血清を含むもの)でインビトロでまたは宿主(
例、ヌードまたは無胸線のマウスまたはラット)への注
入および腹水液の収穫によってインビボで、通常の方法
によって実施することができる。方法の選択により、一
つまたはそれ以上の精製工程が必要となり得る。
本発明はまた、かかる細胞系を使用する抗体の製造に関
する。
する。
所望の性質を有する単純ハイブリドーマセルラ・インが
経済的理由により好ましいことは明らかであるが、所望
または必要であれば、かかるセルラインを更に融合する
ことも可能である。
経済的理由により好ましいことは明らかであるが、所望
または必要であれば、かかるセルラインを更に融合する
ことも可能である。
本発明による典型的な抗体産生ハイブリドーマは、親と
してのヒトリンパ球と融合したマウス骨髄種を抗体産生
者としての前感作ヒトリンパ球と融合させて形成される
ものである。適当な場合には、骨髄種細胞自体が(例え
ばマウス/マウス雑種自体である5P−2マウス細胞系
のように)雑種であり得る。
してのヒトリンパ球と融合したマウス骨髄種を抗体産生
者としての前感作ヒトリンパ球と融合させて形成される
ものである。適当な場合には、骨髄種細胞自体が(例え
ばマウス/マウス雑種自体である5P−2マウス細胞系
のように)雑種であり得る。
通常の技術と従前の研究を述べている文献の例は以下の
通りである。
通りである。
(1) Kohler、 G 、およびMilste
in、 C、Nature、256,495−497(
1975)(2) Nadler、L、M、等Can
cer Re5earch、40.3147−3154
(1980) (3) Co51m1.A、B、等N、Engl j
、Med、。
in、 C、Nature、256,495−497(
1975)(2) Nadler、L、M、等Can
cer Re5earch、40.3147−3154
(1980) (3) Co51m1.A、B、等N、Engl j
、Med、。
305.305−314(+ 981)(4) Zu
ravski、V、R,等S cience、 199
、1439−1441(1978) (5) Koskimies、S、、5cand、J
、Immunol、。
ravski、V、R,等S cience、 199
、1439−1441(1978) (5) Koskimies、S、、5cand、J
、Immunol、。
11.73−77C1980)
(6) 5teinitz、M、等Nature、2
87,443−445(1980) (7) 01sson、L、およびKaplan、H
,S、、Pr。
87,443−445(1980) (7) 01sson、L、およびKaplan、H
,S、、Pr。
c、Natl、Acad、sci、U、S、A、、 7
7 、54295431(1980) (8) Croce、C,M、等Nature、28
8,488−489(1980) (9) Nowinski、R,等5cience、
210 、537−539(1980) (10) Croce、C,M、等Proc、Nat
1.Acad、Sci、U、S、A、、76.3416
−3419(1979)(11) Ga1rre、G
、等Nature266,550(1977) (12) Miller、R,A、等N、Eng1.
J 、Med、 306.517(1982) (13) S 1kora K 、 、等Lance
t、i 11 (1982)および 例えば米国特許第4172124号、EP出願公開第0
043718号と0044722号。
7 、54295431(1980) (8) Croce、C,M、等Nature、28
8,488−489(1980) (9) Nowinski、R,等5cience、
210 、537−539(1980) (10) Croce、C,M、等Proc、Nat
1.Acad、Sci、U、S、A、、76.3416
−3419(1979)(11) Ga1rre、G
、等Nature266,550(1977) (12) Miller、R,A、等N、Eng1.
J 、Med、 306.517(1982) (13) S 1kora K 、 、等Lance
t、i 11 (1982)および 例えば米国特許第4172124号、EP出願公開第0
043718号と0044722号。
また、Mclntyreによってモノクローン抗体に関
する書籍が最近発行されている。
する書籍が最近発行されている。
異種間融合の親(これは予定物質製造能力を喪失してい
る)を使用することによって、本発明は、安定、急速な
成長、クローン容易であり、所望物質(例、ヒト抗体)
の高産生率を有するハイブリドーマの取得を可能にする
。
る)を使用することによって、本発明は、安定、急速な
成長、クローン容易であり、所望物質(例、ヒト抗体)
の高産生率を有するハイブリドーマの取得を可能にする
。
本発明に従って製造されるヒト抗体は、通常の如く抗体
に使用できる。かかる使用分野の例は以下の通りである
。
に使用できる。かかる使用分野の例は以下の通りである
。
感染症:ウィルス(サイトロメガロウイルス、帯状痘疹
ウィルス、単純ヘルプスウイルス、肝炎AおよびBウィ
ルス、風疹ウィルス等)、バクテリア(抗毒素、抗細胞
壁)、真菌(カンジダ)悪性疾患:毒素の抱合ありおよ
びなしにかかわらずあらゆる種類の悪性腫瘍に対する抗
体中毒:抗毒物抗体(解毒薬、ジギタリス、オピエート
剤、三環性抗うつ剤、パルピッレート剤等) 抗イディオタイプ:抗・抗膵臓β細胞、抗・抗アセチル
コリンレセプタ、抗リウマチ様因子血液型抗原:抗Rh 移植:拒絶を抑制する抗T細胞、移植片の刺激能力を減
少する強化抗体 アレルギー:アレルゲンに対するIgG抗体、感受性減
退化の住換物 ホルモン:避妊薬として使用する絨毛性性腺刺激ホルモ
ン抗体 ハイブリドーマ細胞自体は、免疫グロブリン遺伝子のク
ローニングを試みる場合には−RNA源としても使用で
きる。
ウィルス、単純ヘルプスウイルス、肝炎AおよびBウィ
ルス、風疹ウィルス等)、バクテリア(抗毒素、抗細胞
壁)、真菌(カンジダ)悪性疾患:毒素の抱合ありおよ
びなしにかかわらずあらゆる種類の悪性腫瘍に対する抗
体中毒:抗毒物抗体(解毒薬、ジギタリス、オピエート
剤、三環性抗うつ剤、パルピッレート剤等) 抗イディオタイプ:抗・抗膵臓β細胞、抗・抗アセチル
コリンレセプタ、抗リウマチ様因子血液型抗原:抗Rh 移植:拒絶を抑制する抗T細胞、移植片の刺激能力を減
少する強化抗体 アレルギー:アレルゲンに対するIgG抗体、感受性減
退化の住換物 ホルモン:避妊薬として使用する絨毛性性腺刺激ホルモ
ン抗体 ハイブリドーマ細胞自体は、免疫グロブリン遺伝子のク
ローニングを試みる場合には−RNA源としても使用で
きる。
本発明の特定の実施態様においては、元来P3X63−
Agg系と羊の赤血球細胞に対する抗体を産生するマウ
ス牌臓細胞のハイブリドーマ自体であった5P−2細胞
系であって抗体産生能力を喪失したものが使用される(
C,F、M、5hulIIlann等、Nature、
276,269(197B))。
Agg系と羊の赤血球細胞に対する抗体を産生するマウ
ス牌臓細胞のハイブリドーマ自体であった5P−2細胞
系であって抗体産生能力を喪失したものが使用される(
C,F、M、5hulIIlann等、Nature、
276,269(197B))。
これは例えばN I GMS Human Gene
tic Mutant Ce1l Repositor
y Re「、0M35669 Aから人手できる(US
DHH8l 982 Catalog of Ce
1l Lines参照)。
tic Mutant Ce1l Repositor
y Re「、0M35669 Aから人手できる(US
DHH8l 982 Catalog of Ce
1l Lines参照)。
このセルラインは、通常の技術によって薬剤耐性にされ
次いで正常なヒト抹消リンパ球と融合されている(C,
F、G、Ga1rre等、Nature、 266 。
次いで正常なヒト抹消リンパ球と融合されている(C,
F、G、Ga1rre等、Nature、 266 。
550(1977)およびR,Nowinski等S
cience210.537(1980))。
cience210.537(1980))。
多数の雑種を得、約5週間後に急速な成長を示し且つ抗
体を産生しない5クローンを選択する。
体を産生しない5クローンを選択する。
これらの細胞を8−アザグアニン耐性に関して選択し、
かかる系の3つでもって、20μg/mQの8−アザグ
アニンに耐性の変異体を得ることが可能である。これら
の細胞は同時にヒポキサンチンアミノプテリン−チミジ
ン(HAT)培地に感受性であり、これらがヒボキサン
チンホスホリボシル転移酵素を産生ずる能力を喪失して
いることを示す。
かかる系の3つでもって、20μg/mQの8−アザグ
アニンに耐性の変異体を得ることが可能である。これら
の細胞は同時にヒポキサンチンアミノプテリン−チミジ
ン(HAT)培地に感受性であり、これらがヒボキサン
チンホスホリボシル転移酵素を産生ずる能力を喪失して
いることを示す。
これらのセルライン(SPAZ−4)の一つを、次いで
2xl 07SPAZ−4細胞と10@扁桃腺細胞を使
用して、ヒト扁桃腺リンパ球とインビトロで融合させる
。融合は標準法に従って実施する。
2xl 07SPAZ−4細胞と10@扁桃腺細胞を使
用して、ヒト扁桃腺リンパ球とインビトロで融合させる
。融合は標準法に従って実施する。
比較のために、SP/2セルラインも融合させる。
得られる細胞集団を、必要な雑種を回収するために)[
A T培地で選択する。非融合対照培養物の全細胞が死
滅すると直ちに、HAT培地を正常な非選択性生育培地
と置きかえる。
A T培地で選択する。非融合対照培養物の全細胞が死
滅すると直ちに、HAT培地を正常な非選択性生育培地
と置きかえる。
生育2週間後に抗体産生について最初の試験を行い、各
融合からの47培養体の全部がヒト抗体を産生したこと
が判明する。更に4週間後に再試験すると、SP/2ハ
イブリドーマの55%に対して5PAZ−4ハイブリド
ーマの83%が未だに抗体を産生じていることが認めら
れる。SP/2ラインのわずか3%に対して5PAZ−
4の28%において、高い産生率が認められる。
融合からの47培養体の全部がヒト抗体を産生したこと
が判明する。更に4週間後に再試験すると、SP/2ハ
イブリドーマの55%に対して5PAZ−4ハイブリド
ーマの83%が未だに抗体を産生じていることが認めら
れる。SP/2ラインのわずか3%に対して5PAZ−
4の28%において、高い産生率が認められる。
抗体産生喪失の主たるファクターがL鎖ゲノムの喪失で
あるという事実にかんがみ、軽鎖産生の特異的試験を行
う。5PAZ−4ラインの67%がカッパー鎖、その8
8%がラムグー鎖を生産することか認められる。SP/
2の対応する値はそれぞれ39%と61%である(勿論
、これらのパーセント値は特定の試験と使用免疫グロブ
リン(1g)についてのみ比較可能である)。結果は第
1表に示す。すべての場合において、5PAZ−4がS
P/2より優れており、特に実用的見地からして最も重
要である強力な生産性に関して優れている。これらのす
べての実験を、安定なりローンに対する圧力を最大にす
るために、非クローン細胞について行う(安定なりロー
ンは多くの遺伝物質を有し、彼らに不必要な染色体の追
放に成功した細胞よりも常に成長が悪い)。
あるという事実にかんがみ、軽鎖産生の特異的試験を行
う。5PAZ−4ラインの67%がカッパー鎖、その8
8%がラムグー鎖を生産することか認められる。SP/
2の対応する値はそれぞれ39%と61%である(勿論
、これらのパーセント値は特定の試験と使用免疫グロブ
リン(1g)についてのみ比較可能である)。結果は第
1表に示す。すべての場合において、5PAZ−4がS
P/2より優れており、特に実用的見地からして最も重
要である強力な生産性に関して優れている。これらのす
べての実験を、安定なりローンに対する圧力を最大にす
るために、非クローン細胞について行う(安定なりロー
ンは多くの遺伝物質を有し、彼らに不必要な染色体の追
放に成功した細胞よりも常に成長が悪い)。
しかし、細胞をクローンするために実験を行った。現在
までに得られた結果では、安定で生産性のSP/2雑種
はただ1つも得られなかったことを示す(即ち、すべて
の生育細胞が抗体を産生ずるセルラインはない)が得ら
れることを示す。他方、5PAZ−4雑種ではかかるク
ローンを誘導することが可能である。
までに得られた結果では、安定で生産性のSP/2雑種
はただ1つも得られなかったことを示す(即ち、すべて
の生育細胞が抗体を産生ずるセルラインはない)が得ら
れることを示す。他方、5PAZ−4雑種ではかかるク
ローンを誘導することが可能である。
本発明は、不安定性問題の解決により、従来の公知方法
よりも実質的に良好な結果を得ることを可能にする。古
典的なマウス−マウスハイブリドーマが不安定であり、
そしてわずられしいサブクローニングが常に必要である
としても、それが実用に供し得ることは一言の価値があ
る。5PAZ−4ハイブリドーマの示す不安定度はマウ
ス−マウスハイブリドーマのそれよりも低いので、後者
はより一層実用的でさえある。
よりも実質的に良好な結果を得ることを可能にする。古
典的なマウス−マウスハイブリドーマが不安定であり、
そしてわずられしいサブクローニングが常に必要である
としても、それが実用に供し得ることは一言の価値があ
る。5PAZ−4ハイブリドーマの示す不安定度はマウ
ス−マウスハイブリドーマのそれよりも低いので、後者
はより一層実用的でさえある。
次に実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。
実施例1: 5PAZ−4系の製造
P 1coll −15opaque遠心分離によって
、健康な提供者のヘパリン化血液から末梢血液リンパ球
(PI3Ls)を単離する。洗浄後、pH8,0に調節
したDulbeccos H21培地50−Q中の5X
10’SP/2細胞とto’PBLsを混合する。細胞
を60QXgで5分間ベレット化し、その後上澄液を注
意深く除去する。細胞を37℃に保ちながら、50%P
EG4000/H21の1m&を1分で徐々に加える。
、健康な提供者のヘパリン化血液から末梢血液リンパ球
(PI3Ls)を単離する。洗浄後、pH8,0に調節
したDulbeccos H21培地50−Q中の5X
10’SP/2細胞とto’PBLsを混合する。細胞
を60QXgで5分間ベレット化し、その後上澄液を注
意深く除去する。細胞を37℃に保ちながら、50%P
EG4000/H21の1m&を1分で徐々に加える。
更に10mffのH21を2分で加える。
細胞を遠心分離によって集め(ペレット化)、55ll
112のHAT培地に懸濁しくHAT培地:20%胎児
牛血清10%NCTC109,1%非必須アミノ酸、0
.5%ピルビン酸塩、0.2U/m(インスリン、1m
Mオキサル酢酸、10−’ヒポキサンチン、4 X 1
0−’Mアミノプテリンおよび1.6×10−’Mチミ
ジンを含むDulbeccos H21)、平底組織培
養マイクロプレート中の0.1−培養物528個に播種
する。2週間毎3〜5日で新しいHAT培地を培養物に
与え、その後培地をHT培地(目0%FC9,10−’
ヒボキサンチンおよびt、exto−3チミジンを含む
Dulbeccos H21)に変える。15日後ヒト
抗体試験のために試料を取る。良好な成長を示し抗体産
生を示さない5個の培養物を選択する。次いでこれらを
8−アザグアニン耐性サプラインの製造に選択する。
112のHAT培地に懸濁しくHAT培地:20%胎児
牛血清10%NCTC109,1%非必須アミノ酸、0
.5%ピルビン酸塩、0.2U/m(インスリン、1m
Mオキサル酢酸、10−’ヒポキサンチン、4 X 1
0−’Mアミノプテリンおよび1.6×10−’Mチミ
ジンを含むDulbeccos H21)、平底組織培
養マイクロプレート中の0.1−培養物528個に播種
する。2週間毎3〜5日で新しいHAT培地を培養物に
与え、その後培地をHT培地(目0%FC9,10−’
ヒボキサンチンおよびt、exto−3チミジンを含む
Dulbeccos H21)に変える。15日後ヒト
抗体試験のために試料を取る。良好な成長を示し抗体産
生を示さない5個の培養物を選択する。次いでこれらを
8−アザグアニン耐性サプラインの製造に選択する。
10%FCSおよび20μg/mQ8−アザグアニンを
含むDulbeccos H21に5個のセルラインを
2X10’細胞/m(lで播種する。これらの培養物の
3個から、二、三週間後に生育成長する細胞を回収する
ことができる。これらの1個はHATに感性の5PAZ
−4であり、更に試験するのに使用する。
含むDulbeccos H21に5個のセルラインを
2X10’細胞/m(lで播種する。これらの培養物の
3個から、二、三週間後に生育成長する細胞を回収する
ことができる。これらの1個はHATに感性の5PAZ
−4であり、更に試験するのに使用する。
実施例2:扁桃腺リンパ球との融合
小児から扁桃腺を結合組織部で切り取り、微細金属網を
通過させて、単一細胞プレパラートを得る。赤血球の数
を減するために、全細胞をF 1co11− I 5O
paqueで分画する。得られる細胞集団の108の細
胞を、実施例!で述べたのと同じ方法でちって2XlO
’の5PAZ−4またはSP/2細胞に融合させる。そ
の後細胞をHAT培地の培養物0.5n+I2の47個
に播種し、この時にンクロスボリンAO05μg/m(
lを補給する。1日後にンクロスボリンAを含まないH
AT培地0 、5 m(lを加える。3日目にすでに培
地の50%がHT培地に変化する。この後毎3〜5日の
経過でもって細胞をHT培地に維持する。
通過させて、単一細胞プレパラートを得る。赤血球の数
を減するために、全細胞をF 1co11− I 5O
paqueで分画する。得られる細胞集団の108の細
胞を、実施例!で述べたのと同じ方法でちって2XlO
’の5PAZ−4またはSP/2細胞に融合させる。そ
の後細胞をHAT培地の培養物0.5n+I2の47個
に播種し、この時にンクロスボリンAO05μg/m(
lを補給する。1日後にンクロスボリンAを含まないH
AT培地0 、5 m(lを加える。3日目にすでに培
地の50%がHT培地に変化する。この後毎3〜5日の
経過でもって細胞をHT培地に維持する。
免疫グロブリン製造試験
伝統的なELISA(固相酵素免疫検定)システムを使
用する。p)19.6の重炭酸塩緩衝剤中l:400の
希釈でウサギ抗ヒト免疫グロブリンをNunc E T
Aプレートに浦捉させる。該プレートを洗浄後、培養
上清を37℃で30分インキュベートする。再度洗浄後
、1 :400の希釈でペルオキシダーゼ抱合ウサギ抗
ヒトIgGS IgM、IgA試剤(M i Ies
−Y eda)でインキュベーシゴン物を処理する。洗
浄後酵素反応物を1.2−フェニレンジアミンニ塩酸塩
とHt Otで発色させる。
用する。p)19.6の重炭酸塩緩衝剤中l:400の
希釈でウサギ抗ヒト免疫グロブリンをNunc E T
Aプレートに浦捉させる。該プレートを洗浄後、培養
上清を37℃で30分インキュベートする。再度洗浄後
、1 :400の希釈でペルオキシダーゼ抱合ウサギ抗
ヒトIgGS IgM、IgA試剤(M i Ies
−Y eda)でインキュベーシゴン物を処理する。洗
浄後酵素反応物を1.2−フェニレンジアミンニ塩酸塩
とHt Otで発色させる。
ヤギ抗ヒトラムダ−またはヤギ抗ヒトカッパー試剤(T
ago)を1:3000の希釈でウサギ抗ヒトIgG
、EgM、IgAの代わりに使用する以外は同じ方法で
、軽鎖産生試験を行う。
ago)を1:3000の希釈でウサギ抗ヒトIgG
、EgM、IgAの代わりに使用する以外は同じ方法で
、軽鎖産生試験を行う。
結果をTitertek Multiscan Eli
sa光度計で評価し、第1表の「4」と「7」の値をこ
の光度計からの低い読みと高い読みとしてそれぞれ表示
する。
sa光度計で評価し、第1表の「4」と「7」の値をこ
の光度計からの低い読みと高い読みとしてそれぞれ表示
する。
実施例3:インフルエンザAおよびB型に対するモノク
ローン抗体の製造(インビボ免疫後)使用したインフル
エンザワクチンは、A/パンコック、A/ブラジルおよ
びB/シンガポールからの赤血球凝集素とノイラミニダ
ーゼを含む商品名5ANDOVACである。3人の健康
な志願者を免疫化し、3.7.10.14および17日
に採血する。各回50〜60−の血液をひじ静脈からヘ
パリン含有注射器へ抜く。リンパ球をFicoll−P
aque(Phariacia)上の遠心分離によって
単離し、使用前に塩水で2回洗う。
ローン抗体の製造(インビボ免疫後)使用したインフル
エンザワクチンは、A/パンコック、A/ブラジルおよ
びB/シンガポールからの赤血球凝集素とノイラミニダ
ーゼを含む商品名5ANDOVACである。3人の健康
な志願者を免疫化し、3.7.10.14および17日
に採血する。各回50〜60−の血液をひじ静脈からヘ
パリン含有注射器へ抜く。リンパ球をFicoll−P
aque(Phariacia)上の遠心分離によって
単離し、使用前に塩水で2回洗う。
融合の親は
a) S P A Z −4(実施例1参照)b)
SP/2(上記参照) c)WISTARlN5TITUTEで8−アザグアニ
ン耐性にしたGM 1500ヒトリンパ芽球様細胞(
ヒトIgG2カツパーを産生する)である。
SP/2(上記参照) c)WISTARlN5TITUTEで8−アザグアニ
ン耐性にしたGM 1500ヒトリンパ芽球様細胞(
ヒトIgG2カツパーを産生する)である。
5PAZ−4とSP/2は全く同じに融合する。骨髄腫
(10’細胞)とヒトリンパ球(約aXt07細胞)を
、pH8,0でDMEM無血清培地の存在下試験管で混
合する。細胞を600 Xgで5分遠心分離にかける。
(10’細胞)とヒトリンパ球(約aXt07細胞)を
、pH8,0でDMEM無血清培地の存在下試験管で混
合する。細胞を600 Xgで5分遠心分離にかける。
得られるベレットを50%PEG4000で1分処理し
、その後PEGを培地で徐々に希釈する。1回洗浄後、
20%胎児牛血清を含むDMEM−HAT培地の100
μQ培養物176個に細胞を播種する。細胞を湿気のあ
る10%CO2−大気で37℃で培養する。
、その後PEGを培地で徐々に希釈する。1回洗浄後、
20%胎児牛血清を含むDMEM−HAT培地の100
μQ培養物176個に細胞を播種する。細胞を湿気のあ
る10%CO2−大気で37℃で培養する。
GM 1500細胞(10’細胞)をpH8、0の無
血清DMEM中でヒトリンパ球(約3X10’細胞)と
泥合し、600Xgで5分遠心分離する。ベレットを5
0%PEG6000で5分処理し、その間に細胞を60
0 Xgで遠心分離する。この後PEGを培地で徐々に
希釈する。1回洗浄後、20%胎児牛血清を含むRPM
I 1640−HAT培地の100μg培養物176
個に細胞を播種する。細胞を湿気のある5%CO,−大
気で37℃で培養する。
血清DMEM中でヒトリンパ球(約3X10’細胞)と
泥合し、600Xgで5分遠心分離する。ベレットを5
0%PEG6000で5分処理し、その間に細胞を60
0 Xgで遠心分離する。この後PEGを培地で徐々に
希釈する。1回洗浄後、20%胎児牛血清を含むRPM
I 1640−HAT培地の100μg培養物176
個に細胞を播種する。細胞を湿気のある5%CO,−大
気で37℃で培養する。
6160個の培養物(0M1500により2640体、
5PAZ−4により2464体、SP/2により105
6体)を行ない全体で35個の融合(0M+500に1
5体、5PAZ−4に14体、SP/2に6体)を得る
。
5PAZ−4により2464体、SP/2により105
6体)を行ない全体で35個の融合(0M+500に1
5体、5PAZ−4に14体、SP/2に6体)を得る
。
一般に毎3〜5日間で、細胞増殖が必要とするときはい
つでも、培地を培養物に変える。上澄液に抗インフルエ
ンザ抗体が存在することをELISA法で検定する。関
連インフルエンザ抗原をマイクロプレートウェル(N
unc)に捕捉し、上澄液を加え、抗原と相互作用させ
る。洗浄後ベルオキンダーゼ抱合ウサギ抗ヒトIgG、
[gAS IgM(Miles)をウェルに加える。イ
ンキュベーション後非結合ペルオキシダーゼ抱合体を洗
浄除去し、酵素発色物質をウェルに加える。反応を視覚
で評価し、T 1tertekマイクロプレ一ト光度計
で証明する。陽性結果を示す培養物を、マウス脚線細胞
供給細胞と共に100μgのDMEM+20%胎児牛血
清中に(SPAZ−4およびSP/2由来細胞)、また
はMl(C−5供給細胞のRPMI l640+20
%胎児牛血清中にGM 1500由来細胞)、l細胞
/培養物で細胞を播種する88個の新しいウェルに限界
希釈条件でクローン化する。生産性細胞は大スケールで
生育させ、液体N、中に凍結する。
つでも、培地を培養物に変える。上澄液に抗インフルエ
ンザ抗体が存在することをELISA法で検定する。関
連インフルエンザ抗原をマイクロプレートウェル(N
unc)に捕捉し、上澄液を加え、抗原と相互作用させ
る。洗浄後ベルオキンダーゼ抱合ウサギ抗ヒトIgG、
[gAS IgM(Miles)をウェルに加える。イ
ンキュベーション後非結合ペルオキシダーゼ抱合体を洗
浄除去し、酵素発色物質をウェルに加える。反応を視覚
で評価し、T 1tertekマイクロプレ一ト光度計
で証明する。陽性結果を示す培養物を、マウス脚線細胞
供給細胞と共に100μgのDMEM+20%胎児牛血
清中に(SPAZ−4およびSP/2由来細胞)、また
はMl(C−5供給細胞のRPMI l640+20
%胎児牛血清中にGM 1500由来細胞)、l細胞
/培養物で細胞を播種する88個の新しいウェルに限界
希釈条件でクローン化する。生産性細胞は大スケールで
生育させ、液体N、中に凍結する。
合計86個の培養物をクローン化した(0M1500か
ら58体、5PAZ−4から26体、SP/2から2体
)。細胞をクローン化すべきであるか否かについては、
その決定に全く自由な基準を適用するがこれはクローン
化後に真に陽性の細胞の収率が低い結果を招き得る。。
ら58体、5PAZ−4から26体、SP/2から2体
)。細胞をクローン化すべきであるか否かについては、
その決定に全く自由な基準を適用するがこれはクローン
化後に真に陽性の細胞の収率が低い結果を招き得る。。
例えば0M1500は高産生細胞を製造しないのでこの
決定が必要となる。5PAZ−4細胞からは4個の陽性
クローンが確認され、SP/2からは1個が確認される
が、しかし後者は雑種ではなく、自然に起生したEBウ
ィルス形質変換細胞であった。
決定が必要となる。5PAZ−4細胞からは4個の陽性
クローンが確認され、SP/2からは1個が確認される
が、しかし後者は雑種ではなく、自然に起生したEBウ
ィルス形質変換細胞であった。
産生細胞はGM 1500からは誘導されない。
融合の結果を下記表に要約して示す。
5個の陽性セルラインを数回再クローンし、大スケール
で成長させる。これはEBV系の消滅をもたらす(かか
る細胞コロニーが低密度クローニングを生存させないこ
とはよく知られている)。
で成長させる。これはEBV系の消滅をもたらす(かか
る細胞コロニーが低密度クローニングを生存させないこ
とはよく知られている)。
4個の陽性5PAZ−4ハイブリドーマセルラインをC
15、C2B、C29およびC75として確認した。
15、C2B、C29およびC75として確認した。
実施例4:抗インフルエンザハイブリドーマの製造(イ
ンビトロ免疫後) ヒト牌臓細胞をFalcon2051チユーブ中の2−
に10”/l112で播種し、全体で34℃106の細
胞を使用する。最適量の蔗糖濃度勾配精製A/パンコッ
クウィルスを加え、培養物を5%ヒト熱不活化血漿を含
むRPM11640培地で空気中5%CO1の雰囲気下
37℃で101時間維持する。回収した9X10@細胞
を実施例3に述べたのと同様にして同数の5PAZ−4
細胞に融合する。細胞を176個の培養物に播種し、2
0%胎児牛血清、HATおよび1μg/lllI2シク
ロスポリンAを含むD ulbeacosのMEMで成
長させる。28後HAT培地をHT培地で次第に置換し
、その後4〜5日の間隔で変える。融合後12日と19
日回心培養物を抗インフルエンザ抗体についてスクリー
ニングし、陽性培養物をクローン化する。
ンビトロ免疫後) ヒト牌臓細胞をFalcon2051チユーブ中の2−
に10”/l112で播種し、全体で34℃106の細
胞を使用する。最適量の蔗糖濃度勾配精製A/パンコッ
クウィルスを加え、培養物を5%ヒト熱不活化血漿を含
むRPM11640培地で空気中5%CO1の雰囲気下
37℃で101時間維持する。回収した9X10@細胞
を実施例3に述べたのと同様にして同数の5PAZ−4
細胞に融合する。細胞を176個の培養物に播種し、2
0%胎児牛血清、HATおよび1μg/lllI2シク
ロスポリンAを含むD ulbeacosのMEMで成
長させる。28後HAT培地をHT培地で次第に置換し
、その後4〜5日の間隔で変える。融合後12日と19
日回心培養物を抗インフルエンザ抗体についてスクリー
ニングし、陽性培養物をクローン化する。
陽性クローン(B、として確認)を得、これは大スケー
ルで成長させることができ、また薬剤用の純粋抗体をイ
ンビトロで製造するのに使用することができる。
ルで成長させることができ、また薬剤用の純粋抗体をイ
ンビトロで製造するのに使用することができる。
実施例5:ヒト抗インフルエンザモノクローン抗体の特
性づけ a)抗体/C15 この抗体はIgG1クラスのものであり、カッパー軽鎖
を有する。抗体は試験したすべてのインフルエンザA型
ウィルス(HI N l、H2N2、H3N 2 )に
反応し、それは恐らくウィルスの核タンパクに向けられ
ている。抗体はインビトロで中和活性を有せず、またイ
ンビボで保護効果を有していない。
性づけ a)抗体/C15 この抗体はIgG1クラスのものであり、カッパー軽鎖
を有する。抗体は試験したすべてのインフルエンザA型
ウィルス(HI N l、H2N2、H3N 2 )に
反応し、それは恐らくウィルスの核タンパクに向けられ
ている。抗体はインビトロで中和活性を有せず、またイ
ンビボで保護効果を有していない。
b)抗体/C28
この抗体はIgG1クラスのものであり、ラムダ−軽鎖
を有している。抗体は83N2型のインフルエンザウィ
ルスに反応するのみであり、それは恐らくウィルスの赤
血球凝集素に向けられている。抗体はインビトロで強い
中和効果を有し、またインビボで劇的な保護活性を有し
ている。それは試験したすべてのH3N2ウイスル(即
ち、1968.1969.1973.1974.197
5.1977.1979および1980からのウィルス
)を中和することができる。
を有している。抗体は83N2型のインフルエンザウィ
ルスに反応するのみであり、それは恐らくウィルスの赤
血球凝集素に向けられている。抗体はインビトロで強い
中和効果を有し、またインビボで劇的な保護活性を有し
ている。それは試験したすべてのH3N2ウイスル(即
ち、1968.1969.1973.1974.197
5.1977.1979および1980からのウィルス
)を中和することができる。
MDCK細胞上の1973A/ボートチヤーマーズで試
験すると、純粋抗体1 、5 xg/1a(lを含む抗
体製品は、中和価12800を有することが認められる
。同一実験において、標準ヒト免疫グロブリン製剤(S
andoglobulin)は濃度60wv/mI2
で中和価50を有することが認められる。このことは、
モノクローン抗体C28がタンパク質当量レベルで正常
な免疫グロブリンよりも10240倍高い能力を有して
いることを意味している。これに関連して、抗インフル
エンザ抗体が正常な免疫グロブリン製剤の鮎釣成分−つ
であるということを指摘したい。このことは、C28と
同じ中和能力を有し、例えばサイドメガロウウィルスま
たは帯状痘疹ウィルス(この場合正常な免疫グロブリン
製剤の抗体レベルはかなり低い)に対する抗体は、相対
的能力がより一層高い値に達することを意味する。
験すると、純粋抗体1 、5 xg/1a(lを含む抗
体製品は、中和価12800を有することが認められる
。同一実験において、標準ヒト免疫グロブリン製剤(S
andoglobulin)は濃度60wv/mI2
で中和価50を有することが認められる。このことは、
モノクローン抗体C28がタンパク質当量レベルで正常
な免疫グロブリンよりも10240倍高い能力を有して
いることを意味している。これに関連して、抗インフル
エンザ抗体が正常な免疫グロブリン製剤の鮎釣成分−つ
であるということを指摘したい。このことは、C28と
同じ中和能力を有し、例えばサイドメガロウウィルスま
たは帯状痘疹ウィルス(この場合正常な免疫グロブリン
製剤の抗体レベルはかなり低い)に対する抗体は、相対
的能力がより一層高い値に達することを意味する。
C)抗体/C29
この抗体はIgG1クラスのものであり、ラムダ−軽鎖
を有している。抗体はB/シンガポール型インフルエン
ザに反応する。他のB型ウィルスに対する試験は行わな
かった。A型ウィルスに対しては活性を有していない。
を有している。抗体はB/シンガポール型インフルエン
ザに反応する。他のB型ウィルスに対する試験は行わな
かった。A型ウィルスに対しては活性を有していない。
d)抗体/C75
この抗体は1gG3クラスのものであり、カッパー軽鎖
を有している。これは83N2型ウイルスに反応するの
みであり、恐らくはウィルスの赤血球凝集素に向けられ
ている。これはインビトロで中和活性を有せず、インビ
ボで保護効果を有しない。
を有している。これは83N2型ウイルスに反応するの
みであり、恐らくはウィルスの赤血球凝集素に向けられ
ている。これはインビトロで中和活性を有せず、インビ
ボで保護効果を有しない。
e)抗体/B2
この抗体はIgG1クラスのものであり、カッパー軽鎖
を有している。これはH3N2型ウィルスに反応するま
みであり、恐らくはウィルスの赤血球凝集素に向けられ
ている。抗体はインビトロで中和効果を有せず、インビ
ボ保護試験は行わなかった。
を有している。これはH3N2型ウィルスに反応するま
みであり、恐らくはウィルスの赤血球凝集素に向けられ
ている。抗体はインビトロで中和効果を有せず、インビ
ボ保護試験は行わなかった。
第1表
本発明の実施態様を列挙すると次の通りである。
■、不死化細胞が異種間ハイブリドーマ細胞であり、予
定物質産生細胞が異種間ハイブリドーマの非形質転換パ
ートナ−と遺伝学的に適合することを特徴とする、上記
予定物質産生細胞に融合した不死化細胞を含むハイブリ
ドーマセルライン。
定物質産生細胞が異種間ハイブリドーマの非形質転換パ
ートナ−と遺伝学的に適合することを特徴とする、上記
予定物質産生細胞に融合した不死化細胞を含むハイブリ
ドーマセルライン。
2、物質産生細胞が異種間ハイブリドーマ細胞母体の非
形質転換パートナ−と同一種のものである上記第1項記
載のハイブリドーマセルライン。
形質転換パートナ−と同一種のものである上記第1項記
載のハイブリドーマセルライン。
3、物質産生細胞パートナ−と、異種間ハイブリドーマ
細胞母体の非形質転換パートナ−がヒト起源のである上
記第2項記載のバイブリドーマセルライン。
細胞母体の非形質転換パートナ−がヒト起源のである上
記第2項記載のバイブリドーマセルライン。
4、産生物質が抗体である上記第1〜3項のいずれか1
項記載のハイブリドーマセルライン。
項記載のハイブリドーマセルライン。
5、物質産生細胞が予定物質を産生ずるようにインビト
ロまたはインビボで前感作されている上記第4項記載の
ハイブリドーマセルライン。
ロまたはインビボで前感作されている上記第4項記載の
ハイブリドーマセルライン。
6、物質産生細胞がリンパ球である上記第1〜5項のい
ずれか1項記載のハイブリドーマセルライン。
ずれか1項記載のハイブリドーマセルライン。
7、リンパ球がヒト起源のものである上記第6項記載の
ハイブリドーマセルライン。
ハイブリドーマセルライン。
8、リンパ球が抗体を産生ずるようにインビボまたはイ
ンビトロで前感作されている上記第6または第7項記載
のハイブリドーマセルライン。
ンビトロで前感作されている上記第6または第7項記載
のハイブリドーマセルライン。
9、異種間ハイブリドーマ細胞の骨髄腫パートナ−が免
疫グロブリンを産生じないネズミ骨髄腫である上記第1
〜8項のいずれか1項記載のハイブリドーマセルライン
。
疫グロブリンを産生じないネズミ骨髄腫である上記第1
〜8項のいずれか1項記載のハイブリドーマセルライン
。
lO,ネズミ骨髄腫がマウス骨髄腫である上記第9項記
載のハイブリドーマセルライン。
載のハイブリドーマセルライン。
11、マウス骨髄腫が5P−2細胞系によってもたらさ
れる上記第1O項記載のハイブリドーマセルライン。
れる上記第1O項記載のハイブリドーマセルライン。
12、異種間ハイブリドーマ細胞母体が予定物質を産生
ずる能力を失っているかまたは他の理由で産生ずること
ができない上記第1〜11項のいずれか1項記載のハイ
ブリドーマセルライン。
ずる能力を失っているかまたは他の理由で産生ずること
ができない上記第1〜11項のいずれか1項記載のハイ
ブリドーマセルライン。
13、マウス骨髄腫細胞と親細胞としてのヒトリンパ球
の融合による異種間ハイブリドーマ細胞および物質産生
細胞としてのあらかじめ感作された抗体産生ヒトリンパ
球を含む上記第1−12項のいずれかのハイブリドーマ
セルライン。
の融合による異種間ハイブリドーマ細胞および物質産生
細胞としてのあらかじめ感作された抗体産生ヒトリンパ
球を含む上記第1−12項のいずれかのハイブリドーマ
セルライン。
14、異種間ハイブリドーマ細胞を薬剤耐性にし、これ
を異種間ハイブリドーマの非形質転換パートナ−と遺伝
学的に適合する物質産生細胞に融合させ、そして所望の
雑種を選択することを特徴とする安定なハイブリドーマ
セルラインの製造法。
を異種間ハイブリドーマの非形質転換パートナ−と遺伝
学的に適合する物質産生細胞に融合させ、そして所望の
雑種を選択することを特徴とする安定なハイブリドーマ
セルラインの製造法。
15、使用する融合パートナ−を上記第1−13項のい
ずれかに述べたものから選択する上記第14項記載の方
法。
ずれかに述べたものから選択する上記第14項記載の方
法。
16、薬剤耐性を8−アザグアニンに耐性の細胞から選
択することによって達成する上記第14または15項記
載の方法。
択することによって達成する上記第14または15項記
載の方法。
17、融合をこれを促進する物質の存在下に行う上記第
14〜16項のいずれか1項記載の方法。
14〜16項のいずれか1項記載の方法。
18、促進物質がポリエチレングリコールである上記第
17項記載の方法。
17項記載の方法。
19、所望雑種の選択を、HAT感受性の欠如と予定物
質産生能力の検定を基礎として行う上記第14〜!8項
のいずれか1項記載の方法。
質産生能力の検定を基礎として行う上記第14〜!8項
のいずれか1項記載の方法。
20゜異種間ハイブリドーマ細胞である親と物質産生細
胞を、これら細胞の融合促進剤と共に栄養培養培地に含
むことから成る細胞融合システム。
胞を、これら細胞の融合促進剤と共に栄養培養培地に含
むことから成る細胞融合システム。
21.細胞パートナ−が上記第1〜13項のいずれかに
述べられているものである上記第20項記載の細胞融合
システム。
述べられているものである上記第20項記載の細胞融合
システム。
22、融合促進剤がポリエチレングリコールである上記
第20または21項記載の細胞融合システム。
第20または21項記載の細胞融合システム。
23、上記第1−13項のいずれかのまたは上記第14
〜19項のいずれかに従って製造されたハイブリドーマ
セルラインをそのためのインビトロまたはインビボ培養
培地で培養し、その後該培地から予定物質を単離するこ
とを特徴とする該物質の製造法。
〜19項のいずれかに従って製造されたハイブリドーマ
セルラインをそのためのインビトロまたはインビボ培養
培地で培養し、その後該培地から予定物質を単離するこ
とを特徴とする該物質の製造法。
24、得られる物質が抗体である上記第23項記載の方
法。
法。
25、インビボ培養を無胸線(ヌード)マウスまたはラ
ット中で行う上記第23または24項記載の方法。
ット中で行う上記第23または24項記載の方法。
26、ハイブリドーマセルラインを製造するために細胞
融合においてパートナ−として使用するものである上記
第9〜13項のいずれか1項記載の異種発生性ハイブリ
ドーマセルライン。
融合においてパートナ−として使用するものである上記
第9〜13項のいずれか1項記載の異種発生性ハイブリ
ドーマセルライン。
27、マウス/ヒト/ヒトハイブリドーマセルライン。
28、予定の特異性を有するヒト抗体を産生可能な安定
なマウス/ヒト/ヒトハイブリドーマセルライン。
なマウス/ヒト/ヒトハイブリドーマセルライン。
29、マウス細胞がマウス/マウスハイブリドーマ自体
である上記第27または28項のハイブリドーマセルラ
イン。
である上記第27または28項のハイブリドーマセルラ
イン。
30、抗体産生能力を喪失している薬剤耐性のマウス/
ヒトハイブリドーマを製造し、別のヒト染色体に好都合
な環境を与え且つ抗体産生維持に高安定性を示すヒト化
マウス骨髄腫細胞を達成することを特徴とする、長期間
にわたってヒト抗体を産生ずるセルラインの製造法。
ヒトハイブリドーマを製造し、別のヒト染色体に好都合
な環境を与え且つ抗体産生維持に高安定性を示すヒト化
マウス骨髄腫細胞を達成することを特徴とする、長期間
にわたってヒト抗体を産生ずるセルラインの製造法。
31、通常の方法で5P−2セルラインを正常なヒトリ
ンパ球と融合させ、抗体産生なしに急速成長を示す取得
雑種からクローンを選択し、これを更に8−アザグアニ
ン耐性に関して選択し、これを再びヒトリンパ球と融合
させ、モしてHAT培地中で得られた細胞集団を選択す
ることを特徴とする上記第30項記載の方法。
ンパ球と融合させ、抗体産生なしに急速成長を示す取得
雑種からクローンを選択し、これを更に8−アザグアニ
ン耐性に関して選択し、これを再びヒトリンパ球と融合
させ、モしてHAT培地中で得られた細胞集団を選択す
ることを特徴とする上記第30項記載の方法。
■、不死化細胞が異種間ハイブリドーマ細胞であり、予
定物質産生細胞が異種間ハイブリドーマの非形質転換パ
ートナ−と遺伝学的に適合することを特徴とする、上記
予定物質産生細胞に融合した不死化細胞を含むハイブリ
ドーマセルライン。
定物質産生細胞が異種間ハイブリドーマの非形質転換パ
ートナ−と遺伝学的に適合することを特徴とする、上記
予定物質産生細胞に融合した不死化細胞を含むハイブリ
ドーマセルライン。
2、マウス骨髄腫細胞と親細胞としてのヒトリンパ球の
融合による異種間ハイブリドーマ細胞および物質産生細
胞としてのあらかじめ感作された抗体産生ヒトリンパ球
を含む特許請求の範囲第1項記載のハイブリドーマセル
ライン。
融合による異種間ハイブリドーマ細胞および物質産生細
胞としてのあらかじめ感作された抗体産生ヒトリンパ球
を含む特許請求の範囲第1項記載のハイブリドーマセル
ライン。
3、異種間ハイブリドーマ細胞を薬剤耐性にし、これを
異種間ハイブリドーマの非形質転換パートナ−と遺伝学
的に適合する物質産生細胞に融合させ、そして所望の雑
種を選択することを特徴とする安定なハイブリドーマセ
ルラインの製造法。
異種間ハイブリドーマの非形質転換パートナ−と遺伝学
的に適合する物質産生細胞に融合させ、そして所望の雑
種を選択することを特徴とする安定なハイブリドーマセ
ルラインの製造法。
4、異種間バイブリドーマ細胞である親と物質産生細胞
を、これら細胞の融合促進剤と共に栄養培養培地に含む
ことから成る細胞融合システム。
を、これら細胞の融合促進剤と共に栄養培養培地に含む
ことから成る細胞融合システム。
5、不死化細胞か異種間ハイブリドーマ細胞であり、予
定物質産生細胞が異種間ハイブリドーマの非形質転換パ
ートナ−と遺伝学的に適合することを特徴とする上記予
定物質産生細胞に融合した不死化細胞を含むハイブリド
ーマセルラインを、そのためのインビトロまたはインビ
ボ培養培地で培養し、その後該培地から予定物質を単離
することを特徴とする該物質の製造法。
定物質産生細胞が異種間ハイブリドーマの非形質転換パ
ートナ−と遺伝学的に適合することを特徴とする上記予
定物質産生細胞に融合した不死化細胞を含むハイブリド
ーマセルラインを、そのためのインビトロまたはインビ
ボ培養培地で培養し、その後該培地から予定物質を単離
することを特徴とする該物質の製造法。
6、得られる物質が抗体である特許請求の範囲第5項記
載の方法。
載の方法。
7、マウス/ヒト/ヒトハイプリドーマセルライン。
8、予定の特異性を有するヒト抗体を産生可能な安定な
マウス/ヒト/ヒトハイブリドーマセルライン。
マウス/ヒト/ヒトハイブリドーマセルライン。
Claims (1)
- 1、不死化細胞が異種間ハイブリドーマ細胞であること
、および抗体産生細胞が異種間ハイブリドーマの元とな
った形質転換されていないパートナー細胞と遺伝学的に
適合することを特徴とする目的抗体産生リンパ球に融合
した不死化細胞を含むハイブリドーマセルラインを、そ
のためのインビトロまたはインビボ培養培地で培養し、
その後該培地から抗体を単離することを特徴とする目的
とする抗体の製造法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CH409/82 | 1982-01-22 | ||
CH409/82A CH652145A5 (de) | 1982-01-22 | 1982-01-22 | Verfahren zur in vitro-herstellung von hybridomen welche humane monoklonale antikoerper erzeugen. |
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58009241A Division JPS58128323A (ja) | 1982-01-22 | 1983-01-21 | ヒトモノクロ−ン抗体の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03236794A true JPH03236794A (ja) | 1991-10-22 |
JPH0471520B2 JPH0471520B2 (ja) | 1992-11-13 |
Family
ID=4186382
Family Applications (3)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58009241A Granted JPS58128323A (ja) | 1982-01-22 | 1983-01-21 | ヒトモノクロ−ン抗体の製造法 |
JP2267500A Granted JPH03236794A (ja) | 1982-01-22 | 1990-10-03 | ヒトモノクローン抗体の製造法 |
JP3157731A Expired - Lifetime JPH0789909B2 (ja) | 1982-01-22 | 1991-05-30 | ハイブリドーマセルラインの製造法 |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58009241A Granted JPS58128323A (ja) | 1982-01-22 | 1983-01-21 | ヒトモノクロ−ン抗体の製造法 |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP3157731A Expired - Lifetime JPH0789909B2 (ja) | 1982-01-22 | 1991-05-30 | ハイブリドーマセルラインの製造法 |
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---|---|
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DK (1) | DK23183A (ja) |
FI (1) | FI83538C (ja) |
FR (1) | FR2522679B1 (ja) |
GB (1) | GB2113715B (ja) |
HK (1) | HK52589A (ja) |
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SE (1) | SE502344C2 (ja) |
SG (1) | SG28189G (ja) |
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---|---|---|---|---|
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