JP6177127B2 - ステビオールグリコシドの組換え生成 - Google Patents
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Description
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本開示は、ステビオール及びステビオールグリコシドの組換え生成に関する。具体的には本開示は、組換え微生物、植物、又は植物細胞などのホストによる、ルブソシド及び/又はレバウディオサイドAなどのステビオール及びステビオールグリコシドの生成に関する。更に本開示は、ステビオールグリコシドを含有する組成物も提供する。
甘味料は、食品業、飲料業、又は製菓業において最も普通に用いられる成分として公知である。甘味料は製造中に最終的な食品に取り込まれてもよく、又は、適当に希釈された場合には卓上用甘味料としてスタンドアローン型の使用に向けても、又は、製パン時の糖類の家庭用代替品としてもよい。甘味料には、ショ糖、高果糖コーンシロップ、糖蜜、メープルシロップ、及び蜂蜜などの天然の甘味料や、アスパルテーム、サッカリン及びスクラロースなどの人工甘味料がある。ステビア抽出物は、多年生の低木、ステビア-レバウジアナ(原語:Stevia
rebaudiana)から単離及び抽出することのできる天然の甘味料である。ステビアは通常、南アメリカ及びアジアで、ステビア抽出物の商業生産用に育てられている。多様な程度に精製されるステビア抽出物は、通常、卓上用甘味料として、混合又は単独で食品中の高濃度甘味料として用いられる。
ここでは、発現させるとステビオール生成される一種以上の生合成遺伝子を含む、微生物などの組換えホストを提供する。このような遺伝子には、コパリルジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子、カウレンシンターゼをコードする遺伝子、カウレンオキシダーゼをコードする遺伝子;及びステビオールシンターゼをコードする遺伝子がある。組換えホストには、コパリルジホスフェートシンターゼ及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子の代わりに、二官能性のコパリルジホスフェートシンターゼ及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子を含めることができる。遺伝子のうちの少なくとも一つは組換え遺伝子である。いくつかの実施態様では、前記組換えホストは更に、ゲラニルゲラニルジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子を含む。組換えホストは更に、切断型HMG-CoA レダクターゼをコードする遺伝子 及び/又は CPRをコードする遺伝子を含むことができる。前記遺伝子のうちの一つ以上の発現は誘導性であってもよい。
ポリペプチド(例えばUGT91D2e 又は UGT91D2m ポリペプチド)をコードする組換え遺伝子を含む組換えホストを特徴とする。UGT91D2 ポリペプチドは、SEQ ID
NO:5に示すアミノ酸配列に対して少なくとも90%の同一性(例えば 95% 又は99% の同一性)を有することができる。UGT91D2 ポリペプチドは、少なくとも一つのアミノ酸置換を、SEQ ID NO:5の残基1-19、27-38、44-87、96-120、125-141、159-184、199-202、215-380、又は387-473に含むことができる。例えば、UGT91D2 ポリペプチドは、アミノ酸置換をSEQ ID NO:5の残基 30、93、99、122、140、142、148、153、156、195、196、199、206、207、211、221、286、343、427、及び 438 から成る群より選択される一個以上の残基に含むことができる。ある実施態様では、UGT91D2 ポリペプチドは、SEQ ID
NO:5においてアルギニンを残基206に、システインを残基207に、そしてアルギニンを残基343 に含む。ある実施態様では、UGT91D2
ポリペプチドは、SEQ ID NO:5においてフェニルアラニンを残基30に、 グルタミンを残基 93に、バリンを残基99に、フェニルアラニンを残基 122に、チロシンを残基140に、システインを残基 142に、スレオニンを残基148に、アラニンを残基 153に、セリンを残基 156に、メチオニンを残基195に、グルタミン酸を残基 196に、グルタミン酸を残基199に、メチオニンを残基 211に、フェニルアラニンを残基221に、アラニンを残基 286に、アスパラギンを残基 427に、又はアラニンを残基438に含む。当該ポリペプチドはSEQ ID NO:5 又はSEQ ID NO:95のアミノ酸配列を有することができる。
SEQ ID NO:3に示すアミノ酸配列に対して少なくとも90%の同一性を有するUGT85C ポリペプチドをコードする組換え遺伝子を含むことができる。 例えば、UGT85C ポリペプチドは、一箇所以上のアミノ酸置換を、SEQ ID NO:3の 残基9、10、13、15、21、27、60、65、71、87、91、220、243、270、289、298、334、336、350、368、389、394、397、418、420、440、441、444、及び 471 に含むことができる。
ID NO:7に示すアミノ酸配列に対して少なくとも90%の同一性を有するUGT76Gポリペプチドをコードする組換え遺伝子を含むことができる。例えば、UGT76G ポリペプチドは、一箇所以上のアミノ酸置換を、SEQ ID NO:7の残基 29、74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び 346 に含むことができる。
NO:3に示すアミノ酸配列に対して少なくとも90%の同一性を有すると共に、一箇所以上のアミノ酸置換をSEQ ID NO:3の残基9、10、13、15、21、27、60、65、71、87、91、220、243、270、289、298、334、336、350、368、389、394、397、418、420、440、441、444、及び471 に有するUGT85Gポリペプチドをコードする組換え遺伝子を含む組換えホストを特徴とする。例えば該UGT85C ポリペプチド は、置換をSEQ ID NO:3の残基 13、15、60、270、289、及び 418 に含むことができる。例えば該UGT85C
ポリペプチドはa)置換をSEQ ID NO:3の残基 13、60、及び 270に;b)置換をSEQ ID NO:3の残基 60 及び 87に;c)置換をSEQ ID
NO:3の残基 65、71、220、243、及び270 に;d)置換をSEQ ID NO:3の残基 65、71、220、243、270、及び 441 に; e)置換をSEQ ID NO:3の残基 65、71、220、389、及び394 に;f)置換をSEQ ID NO:3の残基 65、71、270、及び 289 に;g)置換をSEQ ID NO:3の残基15 及び65 に;h)置換をSEQ ID
NO:3の残基 65 及び 270 に;i)置換をSEQ ID NO:3の残基 65 及び440 に;j)置換をSEQ ID NO:3の残基 65 及び 441に;k)置換をSEQ ID NO:3の残基 65 及び 418 に;l)置換をSEQ ID NO:3の残基 220、243、270、及び334 に;又はm)置換をSEQ ID NO:3の残基 270 及び 289 に含むことができる。
ID NO:7に示すアミノ酸配列に対して少なくとも90%の同一性を有すると共に、一箇所以上のアミノ酸を残基29、74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び346に有するUGT76Gポリペプチドをコードする組換え遺伝子を含む組換えホストを特徴とする。例えば該UGT76G ポリペプチドは、a)置換をアミノ酸残基 74 、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、及び 291に;b)置換を残基 74 、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、及び 291に;又はc)置換を残基74 、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び 346に有することができる。
二官能性のコパリルジホスフェートシンターゼ及びカウレン シンターゼをコードする遺伝子、又はコパリルジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子;(iii)
カウレンオキシダーゼをコードする遺伝子; (iv)ステビオールシンセターゼをコードする遺伝子;(v)
切断型HMG-CoAをコードする遺伝子;(vi)CPRをコードする遺伝子;(vii)ラムノースシンセターゼをコードする遺伝子;(viii)UDP-グルコースデヒドロゲナーゼをコードする遺伝子;及び(ix)UDP-グルクロン酸デカルボキシラーゼをコードする遺伝子、のうちの一つ以上を含むことができる。
(i)、(ii)、(iii)、(iv)、(v)、(vi)、(vii)、(viii)、又は(ix) のうちの少なくとも一つは組換え遺伝子であってよい。いくつかの実施態様では、(i)、(ii)、(iii)、及び(iv)の遺伝子のそれぞれは組換え遺伝子である。
NO:5に示すアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば少なくとも95%又は99%の配列同一性)を有するポリペプチドをコードする単離核酸も特徴とする。該ポリペプチドは、少なくとも一箇所のアミノ酸置換を、SEQ ID NO:5の残基1-19、27-38、44-87、96-120、125-141、159-184、199-202、215-380、又は 387-473に含むことができる。該ポリペプチドは、アミノ酸置換を、SEQ ID NO:5の残基30、93、99、122、140、142、148、153、156、195、196、199、206、207、211、221、286、343、427、及び438 から成る群より選択される一つ以上の残基に含むことができる。該ポリペプチドは、SEQ ID NO:5においてアルギニンを残基206に、システインを残基207に、そしてアルギニンを残基343 に含むことができる。いくつかの実施態様では、該ポリペプチドは、SEQ ID NO:5においてフェニルアラニンを残基30に、グルタミンを残基 93に、バリンを残基 99に、フェニルアラニンを残基
122に、チロシンを残基 140に、システインを残基 142に、スレオニン
を残基 148に、アラニンを 残基 153に、セリンを残基 156に、メチオニンを残基 195に、グルタミン酸を残基 196に、グルタミン酸を残基 199に、メチオニンを残基 211に、フェニルアラニンを残基 221に、アラニンを残基 286に、アスパラギンを残基 427に、又はアラニンを残基 438に含む。
ID NO:5のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の同一性を持つアミノ酸配列を有する単離ポリペプチドを特徴とする。
ジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子;(iii)カウレンオキシダーゼをコードする遺伝子;及び(iv)ステビオールシンセターゼをコードする遺伝子;(但しこの場合、前記遺伝子のうちの少なくとも一つ)を含む組換えホストも特徴とする。該ホストは、遺伝子のそれぞれが発現するような条件下で培養されたときにステビオールを産生することができ、また培養基中で少なくとも1mg/Lまで蓄積することができる。該ゲラニルゲラニルジホスフェートシンターゼは、SEQ ID NO:121-128に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有することができる。コパリルジホスフェートシンターゼは、SEQ ID NO:129-131に示すアミノ酸配列のうちの一つに対して90%を超える配列同一性を有することができる。カウレンシンターゼは、132-135に示すアミノ酸配列のうちの一つに対して90%を超える配列同一性を有することができる。カウレンオキシダーゼは、138-141に示すアミノ酸配列のうちの一つに対して90%4を超える配列同一性を有することができる。ステビオールシンセターゼは、 SEQ ID NO:142-146に示すアミノ酸配列のうちの一つに対して90%を超える配列同一性を有することができる。該ホストは更に、切断型HMG-CoA をコードする遺伝子及び/又はCPRをコードする遺伝子を含むことができる。
10 mg/リットル又は20 mg/リットル) まで蓄積させることができる。組換えホストのいずれも更に、i)デオキシキシルロース 5-ホスフェート シンターゼ (DXS)をコードする遺伝子;ii)D-1-デオキシキシルロース 5-ホスフェート
レダクトイソメラーゼ (DXR)をコードする遺伝子;iii)4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトールシンターゼ (CMS)をコードする遺伝子;iv)4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトール キナーゼ (CMK)をコードする遺伝子;v)4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトール 2,4-シクロジホスフェート シンターゼ (MCS)をコードする遺伝子;vi)1-ヒドロキシ-2-メチル-2(E)-ブテニル 4-ジホスフェート シンターゼ (HDS)をコードする遺伝子;又はvii)1-ヒドロキシ-2-メチル-2(E)-ブテニル 4-ジホスフェートレダクターゼ
(HDR)をコードする遺伝子のうちの一つ以上を含むことができる。
デカルボキシラーゼをコードする遺伝子のうちの一つを含むことができる。
rebaudiana)などのステビア、フィスコミトレラ(原語;Physcomitrella)、又はタバコ植物もしくは植物細胞)であってよい。
F、及びダルコシドAから成る群より選択される。
シンターゼ、カウレン シンターゼ、カウレンオキシダーゼ、カウレン酸 13-ヒドロキシラーゼ、UGT74G1及びUGT85C2 遺伝子のうちの一つ以上の発現を誘導するステップを含む。いくつかの実施態様では、前記の回収するステップは、HPLCによってステビオール又はステビオールグリコシドを培養基から精製するステップを含む。当該のステビオール又はステビオール
グリコシドはステビオール、ルブソシド、レバウディオサイドC、レバウディオサイド F、又はダルコシドAであってよい。
ID NO: 18-25、34-36、4-43、48、49、52-55、60-64、70-72、77、又は 79に示すヌクレオチド配列の一つに対して90%を超える配列同一性(例えば 95% 又は 99% を超える配列同一性)を有する単離された核酸を特徴とする。
ジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子、を含むことができる。当該のステビオールグリコシドはレバウディオサイドA、レバウディオサイドD又はレバウディオサイド
Eであってよい。本書類は更に、このようなホストによって産生されるステビオールグリコシド組成物も特徴とする。該組成物は、総ステビオールグリコシドの重量で4%を超えるレバウディオサイドDと、ステビア抽出物に比較して低いレベルのステビア植物由来混入物質を有することができる。本組成物は、総ステビオールグリコシドの重量で4%を超えるレバウディオサイドEと、ステビア抽出物に比較して低いレベルのステビア植物由来混入物質を有することができる。
UGT91D2e 又は UGT91D2mのアミノ酸配列に対して90%を超える配列同一性を有する単離されたポリペプチドをコードする単離された核酸を、ここでは特徴とする。
グリコシドを産生する。該ホストは更に、(a)二官能性の コパリルジホスフェートシンターゼ及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子、又はコパリル
ジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子;(b)カウレン オキシダーゼをコードする遺伝子;(c)ステビオールシンセターゼをコードする遺伝子;及び(d)ゲラニルゲラニルジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子、を含むことができる。該ステビオールグリコシドはレバウディオサイドC又はダルコシドAであってよい。本書類は更に、このようなホストによって産生されるステビオールグリコシド組成物も特徴とする。本組成物は、総ステビオールグリコシドの重量で15%を超えるレバウディオサイドCと、ステビア抽出物に比較して低いレベルのステビア植物由来混入物質を有することができる。このようなホストによって産生されたステビオールグリコシド組成物も特徴とする。本組成物は、重量で総ステビオール
グリコシドの15%を超えるダルコシドと、ステビア抽出物に比較して低いレベルのステビア植物由来混入物質を有することができる。
及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子、又はコパリルジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子;(b)カウレンオキシダーゼをコードする遺伝子;(c)ステビオールシンセターゼをコードする遺伝子;及び(d)ゲラニルゲラニルジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子、を含むことができる。該ステビオール
グリコシドはレバウディオサイドFであってよい。 本書類は更に、このようなホストによって産生されたステビオールグリコシド組成物も特徴とする。本組成物は、総ステビオールグリコシドの重量で4%を超えるレバウディオサイドFと、ステビア抽出物に比較して低いレベルのステビア植物由来混入物質を有することができる。
グリコシド 組成物を回収するステップとを含み、但しこの場合、該回収された組成物は、レバウディオサイドA、レバウディオサイドC、レバウディオサイドD、レバウディオサイドE、レバウディオサイドF又はダルコシド
Aについて、野生型のステビア植物のステビオールグリコシド組成物に比較して濃縮される。該ホスト(例えば微生物)によって産生されるステビオールグリコシド組成物は、ステビア抽出物に比較して低いレベルのステビア植物由来混入物質を有することができる。
NO:5に示すアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性(例えば少なくとも95%又は99%)を有することができる。該UGT91D2 ポリペプチドは、少なくとも一つのアミノ酸置換をSEQ ID NO:5の残基 1-19、27-38、44-87、96-120、125-141、159-184、199-202、215-380、又は387-473 に含むことができる。該UGT91D2
ポリペプチドはアミノ酸置換を、SEQ ID
NO:5の 残基 30、93、99、122、140、142、148、153、156、195、196、199、206、207、211、221、286、343、427、及び438から成る群より選択される一つ以上の残基に含むことができる。該ステビオールグリコシドはステビオール-13-O-グルコシド、ルブソシド、ステビオシド、及びレバウディオサイドAから成る群より選択することができる。該ステビオールグリコシドはルブソシドでよく、そして前記第二の糖部分はグルコースであり、そしてステビオシドは、前記第二の糖部分が移動したときに生成される。該ステビオールグリコシドはステビオシドであってよく、そして前記第二の糖部分はグルコースであってよく、そしてレバウディオサイドEは、前記第二のグルコース部分が移動したときに生成される。該ステビオールグリコシドはステビオシドであってよく、但しこの場合、ステビオシドは、レバウディオサイドDを生成するのに適した反応条件下で UGT91D2 ポリペプチド及びUGT76G1 ポリペプチドに接触させる。該ステビオールグリコシドはステビオール-13-O-グルコシドであってよく、そして前記第二のグルコース部分の移動したときにステビオール-1,2 ビオシドが生成される。該ステビオールグリコシドはステビオール-13-O-グルコシドであってよく、そして前記第二の糖部分が移動したときにステビオール-1,2-キシロビオシドが生成される。該ステビオールグリコシドはステビオール-13-O-グルコシドであってよく、そして前記第二の糖部分が移動したときにステビオール-1,2-ラムノビオシドを生成させることができる。該ステビオールグリコシドはレバウディオサイドAであってよく、そして第二のグルコース部分が移動したときにレバウディオサイド
Dが生成される。
NO: 5、SEQ ID NO: 1、SEQ ID NO: 3 又は SEQ ID NO:7 に対して少なくとも90%の配列同一性を有する、ステップと、前記ポリヌクレオチドが前記植物中に存在するかどうかを判定するステップとを含む。
ID NO: 5、SEQ ID NO: 1、SEQ ID NO: 3 又は SEQ ID NO:7に対して少なくとも90%の配列同一性を有するUGTポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特異的に増幅するプライマー・ペア、又は、同ポリヌクレオチドに特異的にハイブリダイズするプローブ、を含む。
ジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子、コパリルジホスフェートシンターゼをコードする遺伝子及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子、カウレンオキシダーゼをコードする遺伝子、ステビオールシンセターゼをコードする遺伝子、並びにUGT74G1 及び/又はUGT85C2をコードする遺伝子を含む。前記遺伝子のうちの少なくとも一つは組換え遺伝子である。該微生物は、二官能性のコパリルジホスフェートシンターゼ及び
カウレンシンターゼをコードする遺伝子を、コパリルジホスフェートシンターゼ及びカウレンシンターゼをコードする遺伝子の代わりに含むことができる。
ルブソシド、レバウディオサイドC、 レバウディオサイド F、ダルコシドB、又はダルコシドAであってよい。
EXG2 グリコシドヒドロラーゼ活性を、遺伝子改変のないコントロール微生物に比較して減らす一つ以上の遺伝子改変を有することができ、そしてエルゴステロール生合成を、遺伝子改変のないコントロール微生物に比較して減らす一つ以上の遺伝子改変を有することができる。該サッカロミセス属は、該遺伝子のそれぞれが発現するような条件下で培養されたときに
ルブソシドを産生する。該ルブソシドは、少なくとも10 mg/l培養基1リットルまで蓄積することができる。該サッカロミセス属は、CEY171、CEY191、又はCEY213と指名されたサッカロミセス-セレビジエ株であってよい。
A又はレバウディオサイドBなどのステビオールグリコシドを産生することができる。レバウディオサイドA又はレバウディオサイドBは培養基中で少なくとも 15 mg/L まで蓄積することができる。
レダクトイソメラーゼ (DXR)をコードする遺伝子、及び/又は4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトール シンターゼ (CMS)をコードする遺伝子、及び/又は4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトール キナーゼ (CMK)をコードする遺伝子、及び/又は4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトール 2,4-シクロジホスフェートシンターゼ
(MCS)をコードする遺伝子、及び/又は1-ヒドロキシ-2-メチル-2(E)-ブテニル 4-ジホスフェート シンターゼ (HDS)をコードする遺伝子、及び/又は1-ヒドロキシ-2-メチル-2(E)-ブテニル 4-ジホスフェートレダクターゼ (HDR)をコードする遺伝子を含むことができる。
二種のグリコシド、ステビオシド及びレバウディオサイドAが、市販のステビア抽出物中の主な化合物である。ステビオシドA はレバウディオサイドAよりも苦く、甘みが少ないと報告されているため、抽出物製剤中では レバウディオサイドAが高率であることが好ましい。しかしながら、ステビア抽出物の組成はロット毎に、植物が成長した土壌及び気候に応じて様々である。原料となった植物、気候条件、及び抽出プロセスに応じて、市販の製品中のレバウディオサイドAの量は、総ステビオール グリコシド含有量の 20乃至97%、典型的には50−80%であり、ときには総ステビオールグリコシドの95−97%を超えると報告されている。更に、他のステビオールグリコシドが、量は様々ではあるがステビア抽出物中に存在しており、これが、ステビア抽出物からの抽出及び精製により一貫した食味プロファイルを持つ甘味料を製造できるかどうかを更に複雑にしている。例えばレバウディオサイドBは典型的には1−2%未満、存在するが、他方、レバウディオサイドCは、7−15%という高いレベルで存在する。レバウディオサイドDは典型的には、総ステビオールグリコシドの2%未満のレベルで存在し、そしてレバウディオサイドFは典型的には3.5%未満、組成物中に存在する。更に微量の副次的なステビオールグリコシドが、ステビア抽出物の香味プロファイルに影響することが報告鎖rている。加えて、ステビア植物の混入物質の中には、大変低濃度であっても、市販の植物抽出物のいくつかに異風味を提供しかねないものがあると考えられる。
A. ステビオール生合成ポリペプチド
ジテルペンステビオール及び多様なステビオールグリコシドを含め、ステビア抽出物に見られる化合物のいくつかの化学構造を図3に示し、CAS番号を下の表Aに示す。更にHarriet Wallin, Food Agric. Org. (2007)によって作製されたステビオールグリコシド化学及的及び技術的評価 69th JECFAも参照されたい。
いくつかの実施態様では、ここで解説する組換えホストは、ステビオールをステビオール
グリコシドに転化させることができる。このようなホスト(例えば微生物)は、UGTとしても知られる一つ以上のUDP グリコシルトランスフェラーゼをコードする遺伝子を含有する。UGTは単糖単位を活性化したヌクレオチドの糖が受容部分、この場合はステビオール又はステビオール誘導体上の−OH 又は−COOH部分に移動させる。UGTは、 配列ホモロジーに基づいてファミリー及びサブファミリーに分類されている。Li et al. J. Biol. Chem. 276:4338-4343
(2001).
ルブソシドの生合成は ステビオールの13-OH及び19-COOHのグリコシル化を含む。図2Aを参照されたい。微生物などの組換えホストにおけるステビオールのルブソシドへの転化は、グルコース単位をそれぞれステビオールの13-OH 又は19-COOHに移動させる、UGT 85C2 及び74G1をコードする遺伝子の発現によって達成し得ることが発見された。
19-O-モノグルコシド) を産生することができる。このような遺伝子の一つ以上が、ホスト内に天然で存在するであろう。しかしながら典型的には、このような遺伝子は、天然ではそれらを持たないホスト(例えば微生物)内に導入された組換え遺伝子である。
clavuligerus)、スルフロブス-アシドカルダリウス(原語:Sulfulobus
acidocaldarius)、シネココッカス(原語:Synechococcus )種及びアラビドプシス-サリアナ(原語:Arabidopsis thaliana)が産生するものがある。 SEQ ID NO: 121-128を参照されたい。これらのポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を以下により詳述する。表1及びSEQ ID NO:18-33を参照されたい。いくつかの実施態様では、組換え微生物は更に、例えば以下に論じるメチルエリスリトール 4-ホスフェート (MEP) 経路の遺伝子又はメバロネート (MEV) 経路の遺伝子など、ジテルペンの生合成又はテルペノイド前駆体の産生に関与する組換え遺伝子を発現する。
レバウディオサイドAの生合成には、 アグリコンステビオールのグルコシル化が関与する。具体的には、レバウディオサイドAは、13-O-ステビオールモノシドを形成する、ステビオーモノシドの13-OHのグルコシル化、ステビオール-1,2-ビオシドを形成する、ステビオールモノシドの13-O-グルコース のC-2’のグルコシル化、ステビオシドを形成する、ステビオール-1,2-ビオシドのC-19カルボキシルのグルコシル化、及びステビオシドのC-13-O-グルコースのC-3’のグルコシル化によって形成することができる。各グルコシル化反応を行わせる順序は様々であってよい。図2Aを参照されたい。
1,2 グリコシドのC-13-O-グルコースのC-3'部分に加える。このように、UGT76G1 は、例えばウリジン 5’-ジホスホグルコシル: ステビオール 13-O-1,2
グルコシド C-3’ グルコシルトランスフェラーゼ 及びウリジン5’-ジホスホグルコシル: ステビオール-19-O-グルコース、13-O-1,2
ビオシドC-3’ グルコシルトランスフェラーゼなどとして機能する。機能的なUGT76G1 ポリペプチドはまた、例えばステビオールラムノシド及びステビオールキシロシドなど、グルコース以外の糖を含有する ステビオールグリコシド基質を利用するグルコシルトランスフェラーゼ反応も触媒するであろう。図2A、2B、2C及び2Dを参照されたい。適したUGT76G1 ポリペプチドには、S.レバウディアナによって産生され、 Richman, et al. Plant J. 41: 56-67 (2005)に報告されたものがある。S.レバウディアナ UGT76G1 ポリペプチドのアミノ酸配列をSEQ ID NO:7に示す。SEQ ID NO:7のUGT76G1 ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列は、酵母での発現に向けて至適化されており、 SEQ ID NO:8に示されている。更に実施例18に示す
UGT76G1 バリアントも参照されたい。
purpurea )(日本の朝顔)が産生する、 Morita et al. Plant J. 42, 353-363
(2005)に記載されたものがある。I.パープレラ IP3GGT ポリペプチドをコードするアミノ酸配列をSEQ ID NO:76に示す。SEQ ID NO:77 は、酵母での発現に向けてコドン至適化されたSEQ ID NO:76 のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列である。もう一つの適した SM12UGT ポリペプチドは、R25S変異を有する Bp94B1 ポリペプチドである。Osmani et al. Plant Phys. 148: 1295-1308
(2008) 及びSawada et al. J. Biol. Chem. 280:899-906 (2005)を参照されたい。ベリス-ペレニス(原語:Bellis perennis )赤色デージー)UGT94B1 ポリペプチドをコードするアミノ酸配列をSEQ ID NO:78に示す。SEQ ID NO:79 は、酵母での発現に向けてコドン至適化されたSEQ ID NO:78のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列である。
レバウディオサイドC及び/又はダルコシドA の生合成には、アグリコンステビオールのグルコシル化及びラムノシル化が関与する。具体的には、ダルコシドAは、ステビオール-13-O-グルコシドを形成する、ステビオールの13-OHのグルコシル化と、1,2-ラムノビオシドを形成する、ステビオール-13-O-グルコシドの13-O-グルコースのC-2’のラムノシル化と、 1,2 ラムノビオシドのC-19カルボキシルのグルコシル化によって形成することができる。レバウディオサイドCは、ダルコシドAのC-13-O-グルコースのC-3’のグルコシル化によって形成することができる。各グリコシル化反応を起こさせる順序は様々であってよい。図2Bを参照されたい。
thaliana)が産生するものがある。
thaliana)が産生するものがある。A.サリアナ UGT79B3 はグルコシル化化合物をラムノシル化して1,2-ラムノシドを形成することができる。アラビドプシス-サリアナ(原語: Arabidopsis thaliana )UGT79B3 のアミノ酸配列をSEQ ID NO:150に示す。SEQ ID NO:150 のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列をSEQ ID NO:151に示す。
Swartz JR in Molecular Systems Biology,
4, article 220 (2008) による“An integrated cell-free metabolic platform for protein
production and synthetic biology” を参照されたい。反応は一緒に行われても、段階的に行われてもよい。例えば、レバウディオサイドCは、ルブソシドから、 化学量論的量のUDP-ラムノース及びUGT91d2eを添加した後、UGT76G1 及び過剰もしくは化学量論的量のUDP-グルコースを添加することで生成できよう。いくつかの実施態様では、ホスファターゼを用いて二次的産物を除去し、反応収率を向上させる。
レバウディオサイドE及び/又はレバウディオサイドD の生合成には、アグリコンステビオールのグルコシル化が関与する。具体的には、レバウディオサイドEは、ステビオール-13-O-グルコシドを形成する、ステビオールの13-OHのグルコシル化、ステビオール-1,2-ビオシドを形成する、ステビオール-13-O-グルコシドの13-O-グルコースのC-2'のグルコシル化、 1,2-ステビオシドを形成する、1,2-ビオシドのC-19カルボキシルのグルコシル化、及び、レバウディオサイドEを形成するために、1,2-ステビオシドの19-O-グルコースのC-2’ のグルコシル化によって形成することができる。レバウディオサイドDは、レバウディオサイドEのC-13-O-グルコースのC-3’のグルコシル化によって形成することができる。各グルコシル化反応を行う順序は様々であってよい。例えば、19-O-グルコースのC-2’のグルコシル化は経路の最後のステップであってよく、この場合レバウディオサイド Aは経路の中間産物である。図2Cを参照されたい。
vitro 反応の場合、当業者であれば、異なるレベルのUGTを組み合わせて、又は、様々なUGTSを組み合わせたときの相対的活性に影響を与える条件下で添加すると、各ステビオールグリコシドの所望の比率に向けて合成が指向されることを認識されよう。当業者であれば、13-O-グルコシド反応(基質レバウディオサイドA及びステビオシド)と比較したときに、19-O-グルコシド反応に対してより高い活性を有するジグリコシル化酵素を用いれば、より高率のレバウディオサイドD又はEあるいはより効率的なレバウディオサイドD又はEへの転化を得ることができることを認識されよう。
遺伝子、KO 遺伝子及び/又はKAH遺伝子など、ステビオール生合成に関与する一つ以上の遺伝子を発現する。このように、例えば、CDPS 遺伝子、KS 遺伝子、KO 遺伝子及びKAH 遺伝子を、UGT85C2、UGT74G1、UGT91D2 遺伝子及びUGT76G1 遺伝子に加えて含有する微生物は、培養基にステビオールを含める必要なく、レバウディオサイドE及びDを産生することができる。
vitroで生成されたレバウディオサイドA、F、又はCに配合することができる。
レバウディオサイドFの生合成には、アグリコンステビオールのグルコシル化及びキシロシル化が関与する。具体的には、レバウディオサイドFは、ステビオール-13-O-グルコシドを形成する、ステビオールの13-OHのグルコシル化、 ステビオール-1,2-キシロビオシドを形成する、ステビオール-13-O-グルコシドの13-O-グルコースのC-2’のキシロシル化、 1,2-ステビオキシルオシドを形成するための、1,2-キシロビオシドのC-19カルボキシルのグルコシル化、及び、レバウディオサイドFを形成するための、1,2-ステビオキシルオシドのC-13-O-グルコースのC-3’のグルコシル化によって形成することができる。各グリコシル化反応を行わせる順序は様々であってよい。図2Dを参照されたい。
neoformans) が産生するものがある。例えば、適したUDP-グルコースデヒドロゲナーゼ及びUDP-グルクロン酸デカルボキシラーゼポリペプチドは、それぞれA.サリアナUGD1 遺伝子及びUXS3 遺伝子にコードさせることができる。Oka and Jigami, FEBS J. 273:2645-2657 (2006)を参照されたい。
Systems Biology, Vol. 4, article 220 (2008)を参照されたい。反応は一緒に行われても、又は段階的に行われてもよい。例えばレバウディオサイドFは、化学量論量の UDP-キシロース及びUGT91D2eを添加した後、UGT76G1及び過剰又は化学量論量のUDP-グルコースを添加することによってルブソシドから生成されよう。 いくつかの実施態様では、ホスファターゼを用いて二次的産物を除去し、反応収率を高める。
neoformans)が産生するものがある。例えば、適したUDP-グルコースデヒドロゲナーゼ及びUDP-グルクロン酸デカルボキシラーゼポリペプチドを、それぞれA.サリアナUGD1 遺伝子 及びUXS3 遺伝子にコードさせることができる。 Oka and
Jigami, FEBS J. 273:2645-2657 (2006)を参照されたい。
その発現が、ステビオール又はステビオールグリコシドのより効率的な又は大規模な生成を容易にする更なるポリペプチドの遺伝子も組換えホストに導入することができる。例えば、組換え微生物、植物、又は植物細胞に、ゲラニルゲラニルジホスフェートシンターゼ(GGPPS、GGDPSとも言及される)をコードする一つ以上の遺伝子を含有させることができる。別の例として、該組換えホストはラムノースシンセターゼをコードする一つ以上の遺伝子、又は、UDP-グルコースデヒドロゲナーゼ及び/又はUDP-グルクロン酸デカルボキシラーゼをコードする一つ以上の遺伝子を含有することができる。別の例として、組換えホストは更に、 チトクロームP450 レダクターゼ (CPR)をコードする一つ以上の遺伝子を含有することもできる。組換えCPRを発現させると、NADPHを再生するNADP+ の循環を促すが、このNADPHはテルペノイド生合成のためのコファクターとして用いられる。他の方法を用いてNADHP レベルを再生することもできる。NADPH に制限ができる状況では、株を更に改変して、外因性のトランスデヒドロゲナーゼ遺伝子を含めることができる。例えば Sauer et al., J. Biol. Chem. 279: 6613−6619 (2004)を参照されたい。所望のコファクターレベルが増加するようにNADH/NADPH の比を減少させる又は改変するための他の方法が当業者に公知である。
いくつかの実施態様では、組換えホストは、イソプレノイド生合成のためのメチルエリスリトール4-ホスフェート (MEP) 経路に関与する酵素をコードする一つ以上の遺伝子を含有する。MEP 経路の酵素には、デオキシキシルロース 5-ホスフェートシンターゼ
(DXS)、D-1-デオキシキシルロース5-ホスフェートレダクトイソメラーゼ (DXR)、4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトールシンターゼ
(CMS)、4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトール キナーゼ (CMK)、4-ジホスホシチジル-2-C-メチル-D-エリスリトール 2,4-シクロジホスフェート シンターゼ (MCS)、1-ヒドロキシ-2-メチル-2(E)-ブテニル 4-ジホスフェートシンターゼ (HDS) 及び1-ヒドロキシ-2-メチル-2(E)-ブテニル 4-ジホスフェート レダクターゼ (HDR)がある。一つ以上のDXS 遺伝子、DXR 遺伝子、CMS 遺伝子、CMK 遺伝子、MCS 遺伝子、HDS 遺伝子、及び/又はHDR 遺伝子を組換え微生物に導入することができる。Rodriguez−Concepcion and
Boronat, Plant Phys. 130: 1079-1089 (2002)を参照されたい。
leopoliensis)が産生するものがある。DXR ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列は、例えば米国特許第7,335,815号に解説されている。
いくつかの実施態様では、組換えホストは、イソプレノイド生合成のためのメバロネート経路に関与する酵素をコードする一つ以上の遺伝子を含有する。ホスト内に導入するのに適した遺伝子は、切断型3-ヒドロキシ-3-メチル-グルタリル (HMG)-CoA レダクターゼ (tHMG)など、メバロネート経路中の酵素をコードする、 及び/又は メバロネート キナーゼ (MK)をコードする遺伝子、及び/又は ホスホメバロネート キナーゼ (PMK)をコードする遺伝子、及び/又は メバロネートピロホスフェート デカルボキシラーゼ (MPPD)をコードする遺伝子などである。このように、一つ以上のHMG-CoA レダクターゼ遺伝子、MK遺伝子、PMK遺伝子、及び/又は MPPD 遺伝子を、微生物などの組換えホストに導入することができる。
cerevisiae)、アラビドプシス-サリアナ(原語:Arabidopsis thaliana)、キタサトスポラ-グリセオーラ(原語:Kitasatospora griseola)、ホモ-サピエンス(原語:Homo sapiens)、ドゥロソフィラ-メラノガスター(原語:Drosophila
melanogaster)、ガルス-ガルス(原語:Gallus gallus)、ストレプトミセス種、KO-3988、ニコチアナ-アテヌアータ(原語: Nicotiana attenuata)、キタサトスポラ-グリセオーラ(原語:Kitasatospora griseola)、ヘヴェア-ブラジリエンシス(原語:Hevea brasiliensis)、エンテロコッカス-ファーシウム(原語:Enterococcus faecium )及びハエモトコッカス-プルヴィアリス(原語:Haematococcus
pluvialis)が産生するものがある。例えば米国特許第7,183,089号、第5,460,949号、及び第5,306,862号を参照されたい。
上述したポリペプチドの機能的ホモログは、ステビオール又はステビオールグリコシドを組換えホストで産生させる使用にも適している。機能的ホモログとは、基準ポリペプチドに対して配列類似性を有すると共に、基準ポリペプチドの生化学的もしくは生理的機能のうちの一つ以上を持つポリペプチドである。機能的ホモログ及び基準ポリペプチドは天然発生型のポリペプチドであってよく、当該の配列類似性は収束又は発散進化事象を原因としてよい。従って、機能的ホモログは時には文献中ではホモログ又はオーソログ、又はパラログとして指名される。野生型コーディング配列の変異体にコードされたポリペプチドなど、天然発生型の機能的ホモログのバリアントはそれら自体、機能的なホモログである場合がある。機能的ホモログはまた、あるポリペプチドのコーディング配列の部位指定変異誘発法によって作ることも、又は、異なる天然発生型ポリペプチドのコーディング配列を由来とするドメインを組み合わせる(「ドメイン・スワッピング」)ことで作ることもできる。ここに解説する機能的UGTポリペプチドをコードする遺伝子を改変する技術は公知であり、その中には、とりわけ、指定進化技術、部位指定変異誘発技術及びランダム変異誘発技術があり、所望の態様でポリペプチドの特異性を増すため、基質特異性を変えるため、発現レベルを変えるため、細胞レベル化位置を変えるため、又はポリペプチド:ポリペプチド相互作用を修飾するために有用であろう。このような改変されたポリペプチドは機能的なホモログと見なされる。「機能的ホモログ」という用語は、時には、機能的に相同なポリペプチドをコードする核酸に適用される。
pfam.janelia.org/. で参照されたい。Pfam データベースに含まれた情報は、Sonnhammer et al., Nucl. Acids Res.,
26:320-322 (1998); Sonnhammer et al.,
Proteins, 28:405-420 (1997); 及びBateman et al., Nucl. Acids Res.,
27:260-262 (1999)に解説されている。保存領域は更に、環系の近い主を由来とする同じ又は関連するポリペプチドの配列をアライメントすることでも決定することができる。関係の近い種とは好ましくは、同じファミリーを起源とするとよい。いくつかの実施態様では、二つの異なる種を由来とする配列のアライメントが充分である。
ID NO:10)、UGT85C (SEQ ID NO:3)、又はUGT76G (SEQ ID NO:7)のアミノ酸配列に対して90%を超える(例えば95%又は99%)配列同一性を有する。UGT91D2、UGT85C、及びUGT76G ポリペプチドのバリアントは、典型的には、例えば7か所以下のアミノ酸置換、5か所の又は保存的なアミノ酸置換、又は1乃至5か所の置換など、10か所以下のアミノ酸置換を一次アミノ酸配列内に有する。しかしながら、いくつかの実施態様では、UGT91D2、UGT85C、及びUGT76G ポリペプチドのバリアントは、10か所以上のアミノ酸置換(例えば10、15、20、25、30、35、10−20、10−35、20−30、又は25−35か所のアミノ酸置換など)を有することができる。該置換は保存的であってよく、あるいはいくつかの実施態様では、非保存的置換であってもよい。UGT91D2e ポリペプチドの非保存的変更の非限定的な例には、グリシンのアルギニンへの変更、及びトリプトファンのアルギニンへの変更がある。UGT76G ポリペプチドの非保存的置換の非限定的な例には、バリンのグルタミン酸への置換、グリシンのグルタミン酸への置換、
グルタミンのアラニンへの置換、及びセリンのプロリンへの置換がある。UGT85C ポリペプチドへの変更の非限定的な例には、ヒスチジンのアスパラギン酸への変更、プロリンのセリンへの変更、リジンのスレオニンへの変更、及びスレオニンのアルギニンへの変更がある。
ID NO:5の、例えば残基206のアルギニン、残基207のシステイン、及び残基343のアルギニンなど、残基206、207、及び343のうちの一つ以上に有することができる。SEQ ID NO:95を参照されたい。 UGT91D2 の他の機能的なホモログは、SEQ ID NO:5の以下:残基30のチロシン又はフェニルアラニン、残基93のプロリン又はグルタミン、残基99のセリン又はバリン、残基122のチロシン又はフェニルアラニン、残基140のヒスチジン又はチロシン、残基142のセリン又はシステイン、残基148のアラニン又はスレオニン、残基152のメチオニン、残基153のアラニン、残基156のアラニン又はセリン、残基162のグリシン、残基195のロイシン又はメチオニン、残基162のグルタミン酸、残基199のリジン又はグルタミン酸、残基211のロイシン又はメチオニン、残基213のロイシン、残基221のセリン又はフェニルアラニン、残基253のバリン又はイソロイシン、残基286のバリン又はアラニン、残基427のリジン又はアスパラギン、残基438のアラニン、残基462のアラニン又はスレオニンのいずれか のうちの一つ以上を有することができる。実施例11及び16、並びに表12及び14を参照されたい。有用なバリアントUGT91D2 ポリペプチドは、図8に示す通りのアライメントに基づいて構築することもできる。
ホモログの非限定的な例には、残基65に;残基 15、270、418、440、又は 441と組み合わせて残基65に; 残基 13、15、60、270、289、及び418に; 残基 13、60、及び270の置換; 残基 60 及び87の置換; 残基 65、71、220、243、及び270の置換; 残基 65、71、220、243、270、及び441の置換;残基 65、71、220、389、及び394の置換;残基 65、71、270、及び289の置換;残基 220、243、270、及び334の置換;又は残基 270 及び289の置換(SEQ ID NO:3に対して)を有するポリペプチドがある。実施例17及び表5を参照されたい。
残基 74 、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、及び291に;残基 74 、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、及び291に;又は 残基 74 、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び346に、置換を有するポリペプチドがある。実施例18及び表16を参照されたい。
70 (2009) 325−347を参照されたい。
et al., Nucleic Acids Res., 31(13):3497-500 (2003)。
例えば、UGT91D2 ポリペプチドには、アミノ又はカルボキシ末端に加えられた精製タグ、葉緑体通過ペプチド、ミトコンドリア通過ペプチド、アミロプラストペプチド、シグナルペプチド、又は分泌タグを含めることができる。いくつかの実施態様では、UGT91D2 ポリペプチドには、例えば緑色蛍光タンパク質又は黄色蛍光タンパク質など、レポーターとして機能するアミノ酸配列が含まれる。
ここで解説するポリペプチドをコードする組換え遺伝子は、当該ポリペプチドのコーディング配列を、このポリペプチドを発現させるのに適した一つ以上の調節領域に、センス方向で作動可能に連結させて含む。数多くの微生物が、ポリシストロンmRNA由来の複数の遺伝子産物を発現することができるため、複数のポリペプチドを、必要であればそれらの微生物の単一の調節領域の制御下で発現させることができる。当該配列の転写又は翻訳の調節にとって調節領域が有効であるような位置に調節領域及びコーディング配列があるときに、コーディング配列及び調節領域は作動可能に連結しているとみなされる。典型的には、モノシストロン遺伝子の場合、コーディング配列の翻訳読み取り枠の翻訳開始部位は、調節領域の1ヌクレオチド下流と約50ヌクレオチド下流との間に位置する。
A. 微生物
例えばグラム陰性細菌、酵母及び真菌など、数多くの原核生物及び真核生物が、ここで解説する組換え微生物を構築する際の使用に適している。ステビオール又はステビオール グリコシド産生株としての使用に選抜された種及び株をまず分析して、どの生成遺伝子がその株にとって内因性であり、どの遺伝子が存在しないかを判断する。内因性の相対物が当該株中に存在しない遺伝子を一つ以上の組換えコンストラクトで集合させた後、欠失している機能を提供するために、該コンストラクトを株に導入する。
Kluyveromyces)、レーティポルス(原語:Laetiporus)、レンティヌス(原語:Lentinus)、ファッフィア(原語:Phaffia)、ファネロカエテ(原語:Phanerochaete)、ピチア(原語:Pichia)、フィスコミトレラ(原語:Physcomitrella)、ロードツルラ(原語:Rhodoturula)、サッカロミセス(原語:Saccharomyces)、スキゾサッカロミセス(原語:
Schizosaccharomyces)、スファセロマ(原語:Sphaceloma)、キサントフィロミセス(原語:Xanthophyllomyces)及びヤロウィア(原語:Yarrowia)から選択される属であろう。このような属からの種の例には、レンチヌス-チグリヌス(原語:Lentinus tigrinus)、レーティポルス-スルフレウス(原語:Laetiporus
sulphureus)、ファネロカエテ-クリソスポリウム(原語:Phanerochaete chrysosporium)、ピチア-パストリス(原語:Pichia
pastoris)、フィスコミトレラ-パテンス(原語:Physcomitrella patens)、ロードツルラ-グルティニス32(原語:Rhodoturula
glutinis 32)、ロードツルラ-ムチラギノサ(原語:Rhodoturula mucilaginosa)、ファフィア-ロードジマUBV-AX(原語;Phaffia
rhodozyma UBV-AX)、キサントフィロミセス-デンドローホウス(原語:Xanthophyllomyces dendrorhous)、フサリウム-フジクロイ/ジベレラ-フジクロイ(原語:Fusarium
fujikuroi/Gibberella fujikuroi)、カンジダ-ユティリス(原語:Candida utilis )及びヤロウィア-リポリティカ(原語:Yarrowia
lipolytica)から成る群より選択される属の中にあるであろう。 いくつかの実施態様では、微生物はジベレラ-フジクロイ、クルイベロミセス-ラクティス(原語:Kluyveromyces
lactis)、スキゾサッカロミセス-ポンベ(原語:Schizosaccharomyces pombe)、アスペルギルス-ニゲール(原語:Aspergillus niger)、又はサッカロミセス-セレビジエ(原語:Saccharomyces cerevisiae)などのアスコミセートであってよい。いくつかの実施態様では、微生物はエシェリヒア-コリ(原語:Escherichia coli)、ロードバクター-スファロイデス(原語:Rhodobacter
sphaeroides)、又はロードバクター-カプスラトゥス(原語:Rhodobacter capsulatus)などの原核生物であってよい。特定の微生物を用いると目的の遺伝子を高スループットでスクリーニング及び検査することができ、他方、所望の生産性又は成長上の特徴を持つ他の微生物をステビオールグリコシドの大規模生産に用いることができることは理解されよう。
サッカロミセス-セレビジエは、合成生物学で幅広く用いられているシャシー生物であり、組換え微生物のプラットフォームとして用いることができる。S.セレビジエについて利用可能な変異体のライブラリー、プラスミド、代謝の詳細なコンピュータ・モデル、及び他の情報があるため、生成物の収率を高めるために多様なモジュールの合理的にデザインすることができる。組換え微生物を作製する方法は公知である。
A.オリゼー(原語:A. oryzae)、A.ニジェール(原語:A. niger )及びA.ソジェー(原語:A. sojae )などのアスペルギルス種は食品生産において幅広く用いられている微生物であり、組換え微生物プラットフォームとして用いることができる。ヌクレオチド配列はA.ニドゥランス(原語:A.
nidulans)、A.フミガトゥス(原語:A. fumigatus)、A.オリザ(原語:A. oryzae)、A.クラバトゥス(原語:A.
clavatus)、A.フラヴス(原語:A. flavus)、A.ニジェール(原語:A. niger)及びA.テレウス(原語:A. terreus) のゲノムについて入手可能であり、フラックスを高め、生成物の収率を増加させるべく内因性経路の合理的なデザイン及び改変が可能である。アスペルギルスについては代謝モデルや、転写研究及びプロテオミクス研究が進んでいる。A.ニジェールは、クエン酸及びグルコン酸などの数多くの食物成分の工業生産に向けて培養されており、従ってA.ニジェールなどの種は、ステビオール及びステビオールグリコシドなどの食物成分の生産にとって概して適している。実施例23は、アスペルギルス-ニドゥランスでのステビオール グリコシドの産生に関するクローニング法を解説している。
合成生物学で幅広く用いられているもう一つのプラットフォーム生物であるエシェリヒア-コリも、組換え微生物プラットフォームとして用いることができる。サッカロミセスと同様に、E.コリでも利用可能な変異体のライブラリー、プラスミド、代謝についての詳細なコンピュータ・モデル及び他の情報があるため、生成物収率を高めるために多様なモジュールを合理的にデザインすることができる。サッカロミセスについて上述したものと同様な方法を用いて、組換えE.コリ微生物を作ることができる。
アガリクス、ジベレラ、及びファネロケーテ種は、培養で大量のジベレリンを産生することが知られているため、有用である。従って、大量のステビオール及びステビオールグリコシドを産生させるためのテルペン前駆体は、内因性遺伝子によって既に産生されている。このように、ステビオール又はステビオールグリコシド生合成ポリペプチドの組換え遺伝子を含有するモジュールを、このような属の種に、メバロネート又はMEP経路遺伝子を導入する必要なく、導入することができる。
ロードバクターを、組換え微生物プラットフォームとして用いることができる。E.コリと同様に、利用可能な変異体ライブラリーや適したプラスミド・ベクターがあるため、生成物の収率を高めるべく多様なモジュールを合理的にデザインすることができる。イソプレノイド経路は、カロテノイド及びCoQ10の産生増加のために、膜性細菌種のロードバクターに操作により導入されてきた。米国特許公報第20050003474 号及び第20040078846号を参照されたい。E.コリについて解説したのと同様な方法を用いて組換えロードバクター微生物を作ることができる。
フィスコミトレラコケは、懸濁培養で成長させたときに酵母又は他の真菌培養株に似た特徴を有する。この属は、他の細胞種では産生させるのが難しい植物二次代謝産物の産生のために重要な細胞種になりつつある。実施例22は、P.パテンス(原語:P. patens)での、ステビオールグリコシド経路中の活性UGT酵素の産生を解説する。
いくつかの実施態様では、ここで解説する核酸及びポリペプチドを、全体的ステビオールグリコシド産生を増加させる、あるいは、他のものに対して特定のステビオールグリコシドの産生の比率を濃縮するために、植物又は植物細胞に導入する。従って、ホストは、ここで解説した少なくとも一つの組換え遺伝子を含む植物又は植物細胞であってよい。植物又は植物細胞は、そのゲノムに組換え遺伝子を組み込ませることにより形質転換させることができ、即ち安定に形質転換させることができる。安定に形質転換した細胞は典型的には、導入された核酸を各細胞分裂で保持する。植物又は植物細胞はまた、組換え遺伝子がそのゲノムに組み込まれないように、一過性に形質転換させることもできる。一過性で形質転換した細胞は典型的には、導入された核酸の全部又は一部を各細胞分裂で失うため、導入された核酸は、充分な回数の細胞分裂後には娘細胞では検出され得ない。一過性で形質転換したトランスジェニック植物及び植物細胞と、安定に形質転換したトランスジェニック植物及び植物細胞は両者とも、ここで解説する方法において有用であろう。
増幅;ポリペプチド及びポリヌクレオチドの酵素又はリボザイム活性を検出するための酵素検定;及びペプチドを検出するためのタンパク質ゲル電気泳動法、ウェスタンブロット、免疫沈降法、及び酵素結合免疫検定法がある。インシツー・ハイブリダイゼーション、酵素染色法、及び免疫染色法などの他の技術も、ポリペプチド及び/又は核酸の存在又は発現を検出するために用いることができる。参照した技術の全てを行う方法は公知である。代替法としては、独立した形質転換事象を含む植物集団を、ステビオールグリコシドの産生、又はステビオール
グリコシドの修飾された生合成など、所望の形質を有する植物を求めて、スクリーニングすることができる。選抜及び/又はスクリーニングは、一世代以上にわたって、及び/又は
二か所以上の地理的位置にわたって行うことができる。場合によっては、トランスジェニック植物を、トランスジェニック植物で所望の表現型を誘導する条件下、あるいは、所望の表現型を生じさせるのに必要な条件下で、成長させ、選抜することができる。加えて、選抜及び/又はスクリーニングは、当該植物によって当該表現型が呈されると予測される特定の発生段階で応用することができる。選抜及び/又はスクリーニングを行って、導入遺伝子のないコントロール植物に比べてステビオールグリコシドレベルに統計上有意な違いを有するトランスジェニック植物を選抜することができる。
Biosci. 28 637−646]。当業者であれば、ステビオールグリコシド生合成が植物細胞の所望の位置で起きるように、リーダ配列を用いてステビオールグリコシド
生合成ポリペプチドの発現を適したオルガネルに標的設定できよう。当業者であれば、例えば必要であれば植物の葉に向けてなど、合成を命令するために適したプロモータを用いるであろう。発現は、所望であればカルス培養又は毛根培養などの組織培養で起こさせてもよい。
アグロバクテリウム媒介性形質転換;プロトプラストへのエレクトロポレーション媒介性遺伝子移動;又は微粒子銃により導入することができる。例えば Singh, et al., Compendium of Transgenic Crop Plants: Transgenic
Sugar, Tuber and Fiber, Edited by Chittaranjan Kole and Timothy C. Hall,
Blackwell Publishing Ltd. (2008), pp. 97-115を参照されたい。ステビア葉由来の微粒子銃の場合、パラメータは以下の通りであってよい:6 cm の距離、1100 psi Heの圧力、金粒子、及び一個の銃撃。
ここで解説する組換えホストを、ステビオール又はステビオールグリコシドの生成法で用いることができる。例えば、組換えホストが微生物である場合、当該方法には、ステビオール及び/又はステビオールグリコシド生合成遺伝子が発現するような条件下で組換え微生物を培養基中で成長させるステップを含めることができる。当該組換え微生物を、供給バッチ又は連続プロセスで成長させてもよい。典型的には、組換え微生物を所望の温度で所望の時間、発酵槽内で成長させる。当該方法で用いられる特定の微生物に応じ、イソペンテニル生合成遺伝子及びテルペンシンターゼ及びシクラーゼ遺伝子などの他の組換え遺伝子も存在してよく、発現させてもよい。基質や、例えばイソペンテニルジホスフェート、ジメチルアリルジホスフェート、ゲラニルゲラニルジホスフェート、カウレン及びカウレン酸などの中間生成物のレベルは、公開された方法に従って、培養基から分子起用の試料を抽出することにより、判定することができる。
ここで開示する方法で得られるステビオール及びステビオールグリコシドを用いて、食品製品、ダイエット補助食品、及び甘味料組成物を作製することができる。例えば、レバウディオサイドAなどの実質的に純粋なステビオール又はステビオールグリコシドを、例えばアイスクリーム、炭酸飲料、果汁ジュース、ヨーグルト、焼成品、チューイングガム、硬質及び軟質キャンディー、及びソースなどの食品に含めることができる。実質的に純粋なステビオール又はステビオールグリコシドを、医薬製品、薬品、ダイエット補助食品及び栄養補助食品などの非食品製品にも含めることができる。実質的に純粋なステビオール又はステビオールグリコシドを、農業及びペット業の両方のための動物飼料にも含められよう。代替的には、ステビオール及び/又はステビオールグリコシドの混合物は、組換え微生物を別々に培養する、あるいは、それぞれが特異的ステビオール又はステビオール グリコシドを産生する異なる植物/植物細胞を成長させるステップと、各微生物又は植物/植物細胞から実質的に純粋な形でステビオール又はステビオール グリコシドを回収した後、該化合物を配合して、各化合物を所望の比率で含有する混合物を得るステップとにより、作製することができる。ここで解説する組換え微生物、植物、及び植物細胞により、現在のステビア製品に比較して、より精確かつ一貫した混合物を得ることができる。別の代替案では、実質的に純粋なステビオール又はステビオールグリコシドを、例えばサッカリン、デキストロース、スクロース、フルクトース、エリスリトール、アスパルテーム、スクラロース、モナチン、又はアセスルファムカリウムなどの他の甘味料と一緒に食品に取り入れることができる。他の甘味料に対するステビオール又はステビオールグリコシドの重量比は、最終的な食品中で満足な食味を達成できるように必要に応じて変えることができる。例えば米国特許公報第 2007/0128311号を参照されたい。いくつかの実施態様では、該ステビオール又はステビオールグリコシドに、甘味修飾剤などの甘味(例えば柑橘系)を提供してもよい。例えば、食品中の糖分量を減少させられるように、特に糖質ベースの甘味料用に、レバウディオサイドCを甘味促進剤又は甘味修飾剤として用いることができる。
mg/kg、50-500 mg/kg 又は 500-1000 mg/kg など、25-1600mg/kgを食品に取り入れることができる。
mg/kg、50-500 mg/kg 又は500-1000 mg/kg など、25-1600 mg/kgであるように食品に取り入れることができる。典型的には、当該のレバウディオサイドB濃縮組成物は、検出不能な量のステビア植物由来混入物質を有する。
など、20-600 mg/kgであるように食品に取り入れることができる。典型的には、当該のレバウディオサイドC濃縮組成物は、検出不能な量のステビア植物由来混入物質を有する。
mg/kg、50-500 mg/kg 又は500-1000 mg/kg など、25-1600 mg/kgであるように食品に取り入れることができる。典型的には、当該のレバウディオサイドD濃縮組成物は、検出不能な量のステビア植物由来混入物質を有する。
mg/kg、50-500 mg/kg 又は500-1000 mg/kg など、25-1600 mg/kgであるように食品に取り入れることができる。典型的には、当該のレバウディオサイドE濃縮組成物は、検出不能な量のステビア植物由来混入物質を有する。
mg/kgであるように食品に取り入れることができる。典型的には、当該のレバウディオサイドF濃縮組成物は、検出不能な量のステビア植物由来混入物質を有する。
mg/kgであるように食品に取り入れることができる。典型的には、当該のダルコシドA濃縮組成物は、検出不能な量のステビア植物由来混入物質を有する。
卓上用甘味料又は「カップ−フォー−カップ」製品中に取り入れる。このような製品は典型的には、例えばマルトデキストリンなど、とうぎょうしゃに公知の一種以上の増量剤で適した甘味レベルまで希釈される。レバウディオサイドA、レバウディオサイドC、レバウディオサイドD、レバウディオサイドE、レバウディオサイドF、又はダルコシドについて濃縮されたステビオールグリコシド組成物は、卓上用に例えば乾燥重量ベースで製品1kg当り10,000を30,000 mgのステビオールグリコシドなどにして、小袋中に梱包することができる。
A. 多型
ここで解説する核酸(例えばUGT91D2 核酸)間の多型を、植物遺伝子マッピング及び植物育種プログラムのマーカーとしてステビアで用いることができる。例えば Yao et al., Genome, 1999, 42:657-661を参照されたい。従って、ここで解説する多型を、その多型が形質変化に関係するかどうかを明らかにする方法で用いることができる。当該方法は、ステビア株又は集団中の形質変化と、それらの植物中の一つ以上の遺伝子多型との間の相関関係を測定することにより、その遺伝子多型が形質変化に関係するかどうかを明らかにするステップを含む。典型的には、当該の形質は、植物中に存在するステビオールグリコシドの総量であるが、当該の形質は特定のステビオール
グリコシド、例えばレバウディオサイドA、レバウディオサイドB、レバウディオサイドC、レバウディオサイドD、 レバウディオサイドE、レバウディオサイドF、又はダルコシド Aの量であってもよい。
いくつかの実施態様では、該形質はステビオールの量、又はイソプレノイド前駆体の量である。形質と、多型マーカーの存在との間の統計上有意な相関関係は、例えばChi-平方検定、スチューデントのt検定法、マン-ホイットニー検定、又はF-検定などの適したパラメーター又は非パラメータ統計学を用いて判定される。例えばある植物中のレバウディオサイドAの量と、多型マーカーの存在との間の統計上有意な相関関係は、当該マーカーが、変化したレバウディオサイドAレベルの選抜のためのマーカー支援育種プログラムにおいて有用かも知れないことの指標となる。
Genotyping. The DNA Fingerprinting of Plants Wallingford: CABI Publishing; and
Phillips and Vasil, eds. (2001) DNA-based Markers in Plants Dordrecht: Kluwer
Academic Publishersを参照されたい。例えば、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:9、又は SEQ ID NO:96に示す核酸配列又はその相補配列を由来とするプライマー又はプローブを用いて、所望のステビオールグリコシド組成物に相関する多型アレルを持つ一種以上の独立した植物を同定することができる。次にこれらの植物を、所望のステビオールグリコシド組成物に相関する他の位置で、多型アレルと複数の他のアレルとを組み合わせる育種プログラムで用いることができる。当業者にとっては明らかであるように、必要なマーカーの数及び種類は、選抜する形質や、各マーカーの相関の程度に応じて異なる。従って本方法は、いくつかの実施態様では、植物のゲノム中に複数の多型を検出することを含む。本方法は、前記の複数の多型を検出するステップの結果を、コンピュータで読み取り可能な媒体上に記憶するステップを更に含むであろうことは理解されよう。
ステビアは典型的には外部交雑種であるが、自家受粉も時に観察される。従って、ステビア植物の育種プログラムは、典型的には、反復的選抜大量選抜、バルク選抜、及び異種交雑:のうちの一つ以上の使用を含む。これらの技術を育種プログラムで単独で用いることも、あるいは、一つ以上の他の技術と組み合わせて用いることもできる。Yadav et al., Can. J. Plant Sci. 91: 1-27 (2011)を参照されたい。それぞれ同定された植物を異なる植物に交雑して種子を作ることができ、この種子をその後、発芽させて後代植物を形成する。所望の表現型及び所望の多型を持つ一つ以上の後代植物から採った種子を合わせた後、無作為に交配させて、次に後代世代を形成する。多型アレルの残った結果的な植物集団で所望の安定性を達成するために、育種プログラムはこれらのステップを適宜0乃至5世代、繰り返すことができる。大半の育種プログラムにおいては、特定の多型アレルに関する解析を各世代で行うことになるであろうが、解析は、必要に応じて交互の世代で行うこともできる。後代植物の自家受粉は、自家受粉が実現可能なステビア株や集団で行ってよい。
実施例1. カウレン生合成経路遺伝子の構築
切断型パン酵母HMG CoA レダクターゼをコードするヌクレオチド配列を、酵母高コピー数エピソーム性プラスミド・ベクターに、コーディング配列が、アミノ酸メチオニンによって抑制され得るプロモーターに作動可能に連結すると共に、同プロモーターの転写制御下にあるようにクローニングした。米国特許第 5,460,949 号及び第5,306,862号を参照されたい。
表8に挙げたUGT85C2及びUGT74G1酵素をコードするヌクレオチド配列を含有する組込みベクターを酵母中に形質転換した。ゲノムにUGT85C2、又はUGT85C2 及びUGT74G1が組み込まれた形質転換体が得られた。
R25S ヌクレオチド配列を含有する高コピー数のエピソーム・ベクターを pEF1156と示した。
EFSC301
と指名された酵母株を内因性 ERG9 プロモーターを銅誘導性CUP1 プロモーターと置換することで改変した。株EFSC301 はEUROSCARF 収集酵母株 BY4742の誘導株である。ワールド・ワイド・ウェブuni-frankfurt.de/fb15/mikro/euroscarf/data/by.htmlを参照されたい。標準的な酵母成長培地においては、ERG9 遺伝子は大変低いレベルでしか転写されないが、それは、このような培地での銅の濃度が低いからである。この株でエルゴステロール生成が減少すると、ステビオール生合成のために利用できるイソプレン単位量が増加する。該酵母株を更に、それぞれ強力な構成的GPD1プロモータの転写制御下に置かれたステビア UGT85C2 及びUGT74G1 遺伝子をゲノム組込みすることで改変した。表8を参照されたい。該株は、ステビアUGT85C2 及びUGT74G1 遺伝子のそれぞれ一つのコピーを
MUS1241 株ゲノムに組み込んだ状態で有する。
酵母でのステビオール グリコシド 生合成を調べるために、表1−7及び実施例1の36種の進入ベクターの発現カセットを連結反応で無作為に連鎖状にして、人工的な酵母染色体(「eYACs」)を作った。このプロセスを概略的に図5に示す。
のスフェロプラスト中に形質転換した。形質転換後、酵母スフェロプラストを、細胞壁の再生が起き得る不活性の寒天ベースの固体培養基に包埋した。コロニーは接種から4乃至8日後に現れた。再生培地はアミノ酸ロイシン及びトリプトファンに欠けたため、酵母細胞中の二重武装eYACの存在について選択された。
ルブソシド (ステビオール-(13-β-D-グルコピラノシルオキシ)-β-D-グルコピラノシルエステル)である。
A組の更なる95クローンと、B組の95クローンとをメチオニンなしで1mlのSC培地を入れた96深皿ウェル・トレイで成長させた。これらの培養株のそれぞれから採った上清を二つのクローンのプールに配合し、LC-MSで解析し、MS シグナル/ノイズ比を判定した。MS s/n 比は、相対的ルブソシド含有量の大体の尺度である。2種のCEYのプールがルブソシドを生成すると見出されたら、そのプールの各クローンを別々に解析した。その結果は、B組のCEYはいずれもルブソシドを生成せず、他方、A組の 少なくとも 28 種のCEYが検出可能なレベルのルブソシドを生成したことを示した。
eYACの遺伝子含有量とルブソシド生成とを相関づけるために、全ての可能なeYAC生成遺伝子の同様な大きさの断片(0.5kb)を増幅することができるPCRプロトコルを開発した。20-25ntの内側プライマーを、同様なアニーリング温度を用いて全ての遺伝子を増幅できるように配置した。eYAC DNAを含むゲノムDNAが、ルブソシド生成なし、ルブソシド生成率の低い、及びルブソシド生成率が高い乃至大変高いという、4種類のCEYから調製された。等モル量のこれらの14 DNA プレパラートを用いて、分析的PCR
を全ての37種の遺伝子について、これら14 種のCEYや陽性及び陰性のコントロールに対して行った。全ての遺伝子が増幅されたが、例外として一つは、明らかにプライマーの失敗のために増幅されなかった。
最大のルブソシド生成を誘導する培養条件を判定するために、株CEY213で実験を行った。開始材料は、CEY213のグリセロール冷凍ストック (-80℃) だった。凍結細胞をまず、SC酵母培地をトリプトファン、ロイシン及びヒスチジン(SC-TLH)なしで含有すると共に2mMのメチオニンを含有する寒天プレートから採った。2mMのメチオニンを含有する5mlの液体SC-TLH 培地2 mM メチオニンに、CEY213酵母細胞の凍結ストックをループ・フルに播種した。CEY213でのeYAC発現をこれらの条件下で抑制した。細胞を30℃で一晩、ゆっくりと振盪 (170 rpm) しながら成長させ、「予備培養株」と指名した。
CEY213予備培養株を、50μMのバトクプロインジスルホン酸を加えたSC 培地で成長させた。バトクプロインジスルホン酸は成長培地中で銅をキレートする。CEY213中のERG9遺伝子は、発現がCUP1プロモーターによって制御されるように改変されている。培地中で銅レベルが減少すると、ERG9活性が更に低下することで、ステビオール生合成に利用できるイソプレン単位量が増加するであろう。
利用可能なグルコースを2から4%に二倍にすると、ルブソシド生成に効果があり、ルブソシド生成が約5乃至10%、増加した。
CEY213予備培養株を、利用可能な窒素を制限した条件下で成長させた。培養酵母株の成長中の窒素を制限すると、エルゴステロールの生成が増加することが知られている。NH4SO4 の濃度を4g/l から2、又は0.4 g/lに減少させると、CEY213 の成長速度は窒素量に比例して減少した。ルブソシド生成は成長の低下に比例して減少した。
CEY213をバッフル有又は無しのエルレンマイヤー・フラスコ内で成長させた。その結果は、バッフルを用いて曝気を増加させたときでもせいぜい周辺的な効果しかなかったことを示していた。あったとしても、バッフルなしの曝気なしで生成が増加したことだった。
培養は、予備培養株CEY213を OD600=0.1 又はOD600=1.0 にした二種の異なる光学密度で開始した。次に発酵を24、48、72 又は144 時間、 20、25 又は30℃の温度で行わせた。図6に示すように、発酵開始時のバッチ培養の密度、発酵における、培養温度及び時間的長さは、組合せとなって、CEY213により生成されるルブソシドの量に著しい影響を与えた。このように、OD600=1.0の開始密度で30℃で144時間、培養株を成長させたところ、8.5 mgs/リットル以上のルブソシドが生成された。
CEY213を用いた一連の実験を、播種密度を様々にし、eYAC遺伝子カセット発現のタイミングを変えながら、3種類の酵母培地(リッチ培地及び二種類の合成培地)を用いて行った。
バッチ発酵を、CEY213 予備培養株を遠心分離し、上清を廃棄し、 100μM メチオニン及び4% グルコースを含有する6リットルのSC-TLH培地中に細胞を再懸濁させることにより、行った。OD600 を 1.0 にバッフルなしの100 ml エルレンマイヤー・フラスコ内で調節し、細胞をゆっくり振盪しながら30℃
で144時間、成長させた。
発酵後、培養株を遠心分離し、上清を等量のメタノールと混合し、完全に振盪し、遠心分離して沈殿した物質を取り除いた。その結果の上清を、メタノールを溶出剤としたフラッシュC18-シリカ・カラム・クロマトグラフィで精製した後、調整用HPLCを行って、一つの主要な化合物を得、他方、更に一種の重要ではない化合物を検出した。
1. In vitroでのイポメア-パープレア3GGT グリコシルトランスフェラーゼ の酵素活性
イポメア-パープレア3GGT グリコシルトランスフェラーゼ
(IP3GGT) の、ステビオールを基質として用いたときの酵素活性をin vitroで判定した。ステビア-レバウディアナUGT85C2 及びIP3GGT グリコシルトランスフェラーゼの遺伝子をそれぞれ E. coli で発現させ、各酵素を精製した。
(HSQC)-NMR 及び異核多重結合相関関係 (HMBC)-NMR 解析にかけると、当該化合物がステビオール-13-O-1,2-ビオシドであることが確認された。
IP3GGT が酵母で活性かどうかを判定するために、2μの高コピー数(エピソーム性)プラスミド、未改変のIP3GGT コーディング配列を強力なGPD1 プロモータに作動可能に連結して含有するpMUS10を酵母株MUS1245中に導入した。MUS1245 はUGT85C2 発現カセットをゲノムに組み込ませて含有する。その結果の酵母株をヒスチジンなしの SC 培地で成長させて、開始密度をOD600=0.2として、IP3GGT発現プラスミドの継続的な存在について選抜した。ステビオール又はステビオールモノシドを培地に 3 mM、加えた。72時間、30°Cで成長させた後、培養上清をステビオール及びステビオールグルコシドの存在についてHPLCで検定した。
EXG1 及びEXG2
S. セレビジエはステビオール 1,2- 及びステビオール 1,3-ビオシド中の1,2又は1,3糖結合を分解する酵素を含有していると考えられる。この可能性を検査するために、酵母株
CEY213 を3日間、30° Cで、二種のビオシドのそれぞれを0.1 mM 含有する培地上で成長させた。培養株のLC-MS分析では、1,2-ビオシドのレベルは安定しており、他方、1,3-ビオシド中の1,3-結合は検定の検出限界内では完全に加水分解しているように見えた。
各酵母変異株の培養株を上に記載した通りに、ステビオール 1,3-ビオシドを含有する培地上で成長させ、LC-MSで分析した。EXG1 (エキソ-1,3-β-グルカナーゼ)遺伝子に変異を持つ酵母株は、1,3-ビオシド加水分解活性の大半を失っていることが見出された。酵母EXG1 遺伝子のヌクレオチド配列はVazquez
de Aldana et al. Gene 97:173-182 (1991)で報告されている。EXG2 遺伝子 (別のエキソ-1,3-β-グルカナーゼ)に変異を持つ酵母株は加水分解活性に小さな減少を示していた。Correa, et
al., Current Genetics 22:283-288 (1992)。
実施例4(及び表11)で検査された異なる酵素クラスのそれぞれから採った個々のクローンをeYAC技術を用いて調べて、イソペンテニルピロホスフェート及びファルネシルピロホスフェートからのステビオールの最大の生成を示した特定のクローンを同定した。GGPPS、KO 及びKAH 酵素は、eYACs上で個別に、又はGGPPS 酵素の場合、個別又は二種のプール中(例えばシネココッカス種 + S.アシドカルダリウス GGPPS 又はアスペルギルス-ニドゥランス GGPPS のみ)で、S.セレビジエ株にステビオール経路中の残った酵素ステップの全てを発現させた状態で検査した。その結果は、シネココッカス種 GGPPS クローン MM-7 (SEQ ID NO:24にコードされている)が最も効率的であったことを示した。アスペルギルス-ニドゥランス及びスルフロブス-アシドカルダリウスからのGGPPSクローンもまた大変活性であった。その結果は更に、KO 及びKAHクローンの中では、ステビアKO クローン MM-18 (SEQ ID NO:52にコードされている)
及びA.サリアナKAH クローン MM-24 (SEQ ID NO:62にコードされている) でステビオール生成が最大であったことを示していた。
CEY213に比較して増加することが示された。該実験では更に、ステビア-レバウディアナ KO (KO-1、SEQ ID NO:52にコードされている) は検査された二種では最も活性なKOであることが示された。
NO:62) を含有する発現カセットをS.セレビジエ株CEN.PK 111-61Aのゲノムに安定に組み込んだ。これらのカセットの発現を構成的 GPD1 及びTPI1 プロモータで惹起した。加えて、 KS-1 (SEQ ID NO:40)、CDPS-1 (SEQ
ID NO:34) 及び UGT74G1 (SEQ ID NO:2) を含有する発現カセットを該ゲノムに安定に組み込んだ。しかし、その結果できた酵母株EFSC1751は、実施例6で解説した条件下で研究室規模で成長させたときにはいずれのステビオール-19-O-モノシドも生成しなかった。
KAH 及び/又は KO ポリペプチドと一緒に作用できるように思われる。
(SEQ ID NO:24にコードされている)を更に個別に、機能的ステビオールグリコシド経路(UGT74G1を含む)を有するがGGPPS遺伝子を持たないS.セレビジエ株で調べた。次に形質転換体を19-SMG の生成について、50% DMSO で5分間沸騰させ、16000 相対遠心分離力 (RCF) で5分間遠心分離した培養株試料のLC-MS分析で分析した。GGPPS-6-発現プラスミドを含有する数多くの形質転換体が19-SMGを生成していなかったことが見出された。
ID NO:52にコードされている)及び KAH-1 (S.レバウディアナ)又は KAH-3 (アラビドプシス-サリアナ、SEQ ID NO:62にコードされている) はステビオール経路にとって最良の組合せであるようである。GGPPS-7 (シネココッカス種)はこのステップで最高量の活性を示すようであるが、下流のボトルネックが起きれば、過剰発現の結果、更に毒性にもつながり、ステビオール グリコシドの全体的な更なる低レベルにもつながり得る。CDPS 及びCPR 遺伝子アナログの全ての組合せを検査したところ、表11の3つのCPR全てが活性であったこと、そしてCPR-1 (S.レバウディアナ、SEQ ID NO:70にコードされている) 又は CPR-3 (ジベレラ-フジクロイ、SEQ ID
NO:72にコードされている) と CDPS-5 (ゼア-メイス) 又は CDPS-4 (A.サリアナ) との組合せが特に有用であることが見出された。CDPS-5 は、経路中で最適なCDPSであるようである。ステロール経路へのフラックスを減少させたレポータ株で組合せを更に検査することができる。
(SEQ ID NO:2) をゲノムに組み込んで有する安定なルブソシド・プロデューサ株 (EFSC1859) に導入し、強力な構成的 GPD 及びTPI プロモーターから発現させた。更に、株EFSC1859において、ERG9にコードされたスクアレンシンターゼの発現を、内因性プロモーターをCUP1誘導性プロモーターに置換することにより下方調節した。これらの遺伝子に加え、株EFSC1859は、2ミクロンの複数コピーベクター由来のUGT85C2 (SEQ ID NO:3)を GPD1 プロモータを用いて発現する。ルブソシド 及び19-SMG の生成を、LC-MS で測定して生成レベルを推定した。プラスチド・リーダー配列を除去してもステビオール グリコシド生成は野生型配列に比較して増加しなかった。しかしながら、この研究ではリーダー配列はステビオール経路機能を失わせることなく除去することができることが実証されている。
ステビアEST分析
ステビア(ステビア-レバウディアナ)葉 EST (発現配列タグ) データベース (Brandle et al., Plant Mol.
Biol. 50:613-622, 2002)のtBLASTN 検索を、完全イポメア(イポメア-パープレア) UGT79 タイプ UGT (IP3GGT)、ベリス (ベリス-ペレニス) UGT94B1、ステビア UGT79A2、ステビア UGT76G1 及びステビア UGT91D1 アミノ酸配列をクエリーとすることで、グリコシルトランスフェラーゼを主に含有することが公知の全てのファミリー1グリコシルトランスフェラーゼ・サブファミリ由来のUGTを表させるように用いて行った。以前には未解説のUGT遺伝子のための部分配列を同定した。該部分配列の一つはUGT 79サブファミリー (「79-EV1」)由来であり、一つはUGT 76 サブファミリー (「76-EV1」) 由来であり、そして二つは UGT 91 サブファミリー (「91-EV-1」及び「91-EV2」)由来、そしてUGT 71、72、78、84 及び 88 サブファミリーのメンバーである。部分配列のうちの7つをステビア cDNA 又は cDNA ライブラリーを単離用のPCRテンプレートとして用いて単離した。加えて、UGT 76 サブファミリー の二つのステビア・メンバーである GenBank 受託番号ACT33422.1 の、76G1 サブファミリー (Mohankumar)のメンバーと、GenBank 受託番号 ACM47734.1 の、76G2 (Yang) サブファミリーのメンバーとを単離した。
更なるUGTクローンを同定し、ステビアcDNA を以下の通りに用いてピロ配列決定を行うことで単離した。ステビアmRNA をステビアの葉からAmbion(登録商標) Micro Poly Purist(登録商標) mRNA 調製キットを用いて調製した。各配列の5’及び3’-末端にある21ヌクレオチドに同一なオリゴヌクレオチド・プライマーによる分析的PCRを利用することで、品質コントロールとして逆転写 mRNA をステビアレバウディオサイドA経路UGT 遺伝子 85C2、74G1 及び 76G1の存在について検査した。その後、増幅後の完全長mRNA をピロ配列決定及びコンティグ検定 (米国ミズーリ州、セントルイス、MOgene社製)に用いた。平均長393ヌクレオチドの 約 3.4 百万読み取りを行い、その結果の生配列を用いて25907配列コンティグを得た。合計ほぼ1,500UGTの公共で入手可能なアミノ酸配列を含有するデータベースを構築した。配列決定されたUGTのうちの約150は、多種のサブファミリーから完全にアノテートされたUGTであった。残りの配列決定済みUGTは、これらのうちの部分的にアノテートされたホモログであった。BLASTX 検索を (ドイツ、ミュールタール、CLC Genomics社)、作製されたUGT データベース (遺伝子コード = 1、低複雑度 = Yes、予測値 = 10.0、ワード・サイズ = 3、プロセッサーのNo = 2、マトリックス =
BLOSUM62、ギャップ・コスト (開放) = 11、ギャップ・コスト (伸長)= 1)に対するクエリーとして25907ステビアEST コンティグを用いて行った。その結果は、ステビア由来の90を超える未知のUGTの配列が、ピロ配列決定データベース中に存在することを示唆していた。
サブファミリーのいずれもピロ配列決定データベース中で同定されなかった。しかし、当該分析では、UGT 76 及び91 サブファミリーの新しいメンバーが示された。当該遺伝子のうちの1、2に関して、完全長配列データじゃピロ配列決定ESTデータからすぐに入手できた。以前に構築されたステビア・プラスミドcDNA ライブラリーを用いて、部分的配列データを得ていたメンバーの完全長配列を得た。各特異的部分UGT配列に同一なオリゴヌクレオチド・プライマーを、ライブラリ・プラスミド・ベクター配列に同一なオリゴヌクレオチド・プライマーに組み合わせた。これらのプライマーをPCRで用いて完全長生成物を得、この生成物をその後、配列決定した。該完全長配列に基づき、反応のテンプレートとしてステビアcDNAライブラリー由来の完全長UGT遺伝子を増幅するためにプルーフ・リーディングPCRポリメラーゼ酵素を用いて第二のPCRを用いて行った。この戦略を用い、UGT 76
サブファミリーの5つのメンバー、UGT 91 サブファミリーの6つのメンバーや、他のUGT サブファミリーの10のメンバーが単離された。
pET30A+ 又は pETDuet (精製目的には HIS-tag を利用した) 内にクローニングして、自己分解プローンE.coli株 XjA 及び XjBで発現させた。これらのUGtの多数については、UGTタンパク質の発現の結果、封入体の形成が起きた。これらの封入体の形成を克服するために、これらのUGTのいくつかを低温発現株「アークティック・エキスプレス」(Agilent
Technologies社)で発現させた。この系の発現に失敗したものについては、PCR生成物の共役 in vitro 転写−翻訳(PCR
DNA キット用のTNT(登録商標)T7 Quick、Promega社) を試みて、残ったUGTを成功裏に発現できた。反応の効率は、35S-メチオニンで標識付け、SDS-PAGE上での分離、及び、問題のUGTタンパク質の予測されるサイズのタンパク質バンドをホスホイメージング検出することで確認された。
vitro で転写/翻訳されたタンパク質が in vitro 反応で、0.5 mM ステビオール-13-O-モノグルコシド (SMG)
を基質として、反応緩衝液(1 mM UDP-グルコース、100 mM Tris-HCl (pH 8.0)、5 mM MgCl2、1 mM KCl, 0.1 U/μlのウシ小腸ホスファターゼを含有する)中で用いられた。反応混合液は30℃で20時間、インキュベートされた。次に反応混合液をLC-MS 分析でステビオール-1,2-ビオシドの存在について分析した。LC-MS 分析は、Phenomenex(登録商標)
Synergy Hydro-RP カラム(250 x 3 mm, 3μm粒子、80 Åのポア・サイズ) を取り付け、電子スプレー電離によりTSQ クオンタム(ThermoFisher
Scientific社) トリプル四極子質量分析計でハイフン付(原語:hyphenated)された
Agilent 1100 Series HPLC system (Agilent Technologies社) を用いて行われた。溶離は、MeCN
(0.01% ギ酸) 及びH2O (0.01% ギ酸) を含有する移動相(30℃)を用い、 0.6→0.4 ml/分、5%
MeCN を4分間;0.4 ml/分、5→40% MeCN
を2分間;0.4 ml/分、40→55% MeCN
を11分間;0.4→1.0 ml/分、55→100% MeCNを3分間から成る勾配を印加することで行われた。 ステビオールビオシドは SIM (Single Ion Monitoring) を Mw
665.2 [M+Na+]で用いて検出された。検査された30 UGT 酵素のいずれも検出可能なステビオール-13-O-モノグルコシドグリコシル化活性を示さなかった。
Genbank 受託番号No. AY345980のステビアUGT91D1配列と比較した。ピロ配列決定で同定された6つの配列に比較して、このGenBank
配列は12個の更なるアミノ酸をN末端にコードしているように見えた。UGT91D1ファミリーメンバーを活性について再検査するために、UGT91D1
配列をステビア葉cDNAのPCR増幅により再単離した。その結果のPCR産物をプラスミド・ベクター内にクローニングし、各産物の酵素活性を上述した通り、:E.coli内でのGST-タグ付け発現、共役 in
vitro 転写/翻訳、及び/又は 酵母でのin vivo 発現により測定した。ステビオール 1,2-グルコシル化活性は、三つの方法のすべてにより一つのクローンから検出された。このクローンはUGT91D2eと指名された。UGT91D2e
のアミノ酸配列を SEQ ID NO:5に挙げる。対照的に1,2-グルコシル化活性は、受託番号
AY345980 (タンパク質受託番号 AAR06918)と同じ配列を有するが、アミノ末端の12個のアミノ酸を欠くクローンからは検出されなかった。
UGT91D2eの配列バリアント
図19Bに証左されるように、僅かな数のアミノ酸修飾が活性 (91D2e) バリアントと、最も近い不活性のホモログ (91D1)との間には存在する。Ma et
al., Shi Yan Sheng Wu Xue Bao. 2003 36(2):123-9 (タンパク質受託番号 AAM53963、GI:21435782 ) 及び Brandle et al., 上記 (タンパク質受託番号 AAR06918、GI:37993665) がクローニングした91D1遺伝子は、RebA 生合成に必要な1,2-グリコシル化活性を示さなかった。どのアミノ酸が活性に必要なのかを確認するために、21 個の単一部位指定変異体を、UGT91D2e
(SEQ ID NO:5)中のアミノ酸が不活性なホモログ中の対応するアミノ酸に変化しているように、作製した。表12を参照されたい。加えて、位置 364 (S→P) も変化しているように部位指定変異を作製した。変異体は QuikChange(登録商標) II 部位指定変異誘発キットをメーカーのプロトコル(カリフォルニア州サンタクララ、Agilent Technologies社)に従って用いて作製され、pGEX-4TI ベクターを XJb 自己分解E.coli株(カリフォルニア州オレンジ、ZymoResearch社)中に導入した。ある変異体は、残基 162 がグリシンからアスパラギン酸には変化しないように作られた。
IPTGで誘導し、更に20℃でインキュベートした。in
vitro 検定については、細胞を一晩、20℃で誘導し、凍結/解凍サイクルで溶解させ、粗細胞抽出物を、基質が 5 mM ステビオール-13-O-グルコシド 及び 0.5 mM ルブソシドである酵素反応で用いた。
Quick、 Promega社) 。簡単に説明すると、5個の単一変異体のPCR増幅で得た2μLのDNA と野生型酵素を90分間、30℃で、キットのマスター混合液及び1μLのL-[35S]-メチオニンと一緒にして合計25μLの反応液にしてインキュベートした。各試料については、体積2μLの最終反応液をSDS-PAGE ゲルで泳動させた。SDS-PAGEゲルの視覚的観察で判断したところ、6種のタンパク質すべてが同様なレベルの可溶性組換えタンパク質を示した。in vitro-翻訳タンパク質に関する結果は表12の右側に示されている。この表のパーセンテージは、基質及び生成物の相対的ピーク面積に基づく、基質から生成物への大体の転化量を示す。
et al (2009) Phytochemistry 70, 325-347)と呼ばれるタンパク質とアライメントし、予想される三次構造(アルファ-へリックス、ベータ-シート、及びコイル領域)を分析することにより、変異の結果、ジグリコシル化活性が失われる可能性が高い領域を特定することができる。有害な最初の三つの変異は、ループであると考えられる領域にあるN末端ドメインに見られる。このN末端ドメイン(アミノ酸残基 1-240)、特にN末端ドメインの予測されるループ領域(アミノ酸20-26、39-43、88-95、121-124、142-158、185-198、及び203-214)は、グルコース受容体分子基質の結合を主に担うと考えられている。活性にとって有害だと思われる4番目の変異は(アミノ酸381-386に相当する)C5ループと考えられる領域であるC末端ドメインに見られる。このループもまた、グルコース受容体基質特異性にとって重要だと考えられる。不活性、対、活性なルブソシドジグリコシラーゼ酵素を分かつ22個の変異の19個が、91D2eの予測される受容体基質結合領域の5つのアミノ酸内に位置する。従って、公開された91D1 酵素は、UDP-グルコースと代替的な受容体基質との間のグリコシルトランスフェラーゼ反応を触媒している可能性が高い。
ステビオール供給酵母におけるレバウディオサイドAの生成
ステビア UGTs 91D2e (SEQ ID NO:5)、85C2 (SEQ ID NO:3)、及び76G1 (SEQ ID NO:7)の同時発現に向けて、ゲノム組込みされたUGT74G1 発現カセットを含有する酵母株EFSC1580を3つの異なる2μ高コピー(エピソーム)プラスミドに導入した。pMUS44、pMUS7 及びpMUS9と指名された、この3つのプラスミドは、それぞれUGT91D2e、UGT85C2 及びUGT76G1のコーディング配列を、強力なGPD1プロモーターに作動可能に連結させて含有する。その結果の酵母株を SC培地でウラシル、ヒスチジン、及びロイシンなしで成長させて、pMUS44、pMUS7 及びpMUS9 発現プラスミドの継続的な存在について選抜した。ステビオールを培地に最終濃度250μMまで加え、 この株を30℃で培養した。培養の18時間目及び72時間目に数アリクォートの上清及び細胞ペレットを、レバウディオサイドAの存在についてLC-MSで分析した。LC-MS 分析は、Phenomenex(登録商標)
Synergy Hydro-RPカラム (250 x 3 mm、3μm粒子、80オングストロームのポア・サイズ) を取り付け、電子スプレー電離によりTSQ
Quantum (ThermoFisher Scientific) トリプル4極子質量分析計にハイフン化したAgilent 1100 シリーズ HPLC システム(米国デラウェア州、ウィルミントン、Agilent
Technologies社)を用いて行われた。溶離は、MeCN(0.01% ギ酸)及び H2O (0.01% ギ酸)を含有する移動相 (30℃) を用い、0.6→0.4 ml/分、5% MeCN を4分;0.4 ml/分、40% MeCN
を2分;0.4 ml/分、40→55% MeCN
を11分; 0.4→1.0 ml/分、55→100% MeCN を3分、から成る勾配を印加することで行われた。ステビオールビオシドは SIM (Single Ion Monitoring)を用いて検出された。
実施例4で解説した酵母株CEY213は、eYACから発現するステビオール生合成経路や、ゲノムに組み込まれたUGT74G1 及びUGT85C2発現カセットを含有する。株
CEY213 は実施例6で解説した通り、ルブソシドを生成する。
NO:7)の同時発現に向けて、株CEY213を2μ高コピー(エピソーム性)二重発現プラスミドのpMUS47で形質転換した。pMUS47プラスミドは、一つは UGT91D2e のコーディング配列を有し、他方は UGT76G1のコーディング配列を有する、2つの発現カセットを含有する。両方のコーディング配列は、強力な構成的GPD1 プロモーターに作動可能に連結している。その結果の酵母株を、eYACの存在に関する選抜を維持するためにヒスチジン、ロイシン及びトリプトファンなしの、pMUS47の存在に関する選抜を維持するためにはウラシルなしの、そして最後にeYAC上に存在するプロモーターを抑制するためにメチオニン (2mM) 有りの、SC培地上で30℃で一晩、予備培養した。
翌日、細胞を洗浄し、eYACプロモーターの同様のために、同一ではあるがメチオニンなしの培地に移した。24時間及び99時間のインキュベーション後に試料を採集し、上清及び細胞ペレットを、レバウディオサイドA及び レバウディオサイドDの存在についてLC-MS を上述した通りに用いて分析した。
はレバウディオサイドEを基質として受容することで、 レバウディオサイドDを生成し得ることができることを示唆している。図2Cを参照されたい。
GeneArt (ドイツ、ローゼンブルグ) (それぞれSEQ ID
NO: 6、2、8、及び4) 又は DNA 2.0 (カリフォルニア州メンローパーク) (それぞれSEQ ID
NO: 84、83、85、及び 82)により提供された2つの方法を用いて、UGT 91d2e、74G1、76G1、及び85C2 の最適コーディング配列をデザインし、 酵母での発現用に合成した。UGT 91d2e、74G1、76G1、及び85C2 (それぞれSEQ ID NO: 5、1、7、及び3) のアミノ酸配列は変えなかった。
P423-GPD、P424-GPD、P425-GPD、及びP426-GPD)から発現させた。一晩成長させ、OD600
が0.25になるように新鮮な培地に再播種した後、培養基(SC -leu-trp-ura-his) に25μMのステビオール (最終濃度)を添加し、ルブソシド (Rub), 19-SMG (19SMG) 及びRebA (RebA)
の生成を培地中で24時間後に測定した。この実験を繰り返したが、それは部分的には、 19-SMG が一番目の試料の一つでは検出不能だったからである。
小型ペプチド又はタンパク質結合ドメインと UGT タンパク質 85C2、91D2e、74G1、及び76G1との融合により、UGT間の相互作用を促進し(チャネリング)又は、UGTを酵母細胞の特異的成分にターゲティング/アンカリングする助けとすることができる。
et al., J Mol Biol. 2010, 398(2):200-13を参照されたい)。DNA 2.0 コドン最適化UGT 85C2、91D2e、74G1 及び 76G1 (それぞれSEQ ID NO: 82、84、83、及び85) をインフレームでヒトタンパク質MDM2(遺伝子受託番号
ABT17086)の最初の158アミノ酸に融合した。小型のGS-リッチなリンカー領域もUGTのN末端メチオニンの直前に融合した。未融合の、PMI/MDM2 結合の親和性は、高親和結合を表す低nM 範囲にある。上記のコンストラクトで形質転換させた酵母細胞は、N末端で85C2タンパク質に融合された4
X PMI (P53様) ペプチド反復配列近傍にUGTタンパク質(85C2_P53と指定)スカフォールドを生成することが期待される
(Mumberg et al, Gene, 156
(1995), 119-122)で形質転換した。 85C2、74G1、91D2e、及び 76G1 融合タンパク質のアミノ酸配列については、それぞれ SEQ ID NO: 88、90、92、及び 94 を参照されたい。該融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列については、SEQ ID NO: 89、92、93、及び 95 を参照されたい。この酵母株及びコントロール株(いずれの融合もなしで4種のUGTを発現する)を一晩、プラスミドの存在について選抜する合成酵母培地で成長させ、その翌日、合成酵母培地を含有する96深皿トレイに細胞密度が OD600 で1になるように移した。最終濃度100μMのステビオールを加えた。72時間後、試料を採取し、実施例12で解説したようにLC-MSで分析した。図10A及び10Bに示すように、多様な融合タグと一緒に発現させた場合、UGTは酵母で活性であった。
活性
更なるサブファミリー 91 UGT を、遺伝子バックグラウンドの異なる3種類のステビア源から作製したcDNA/ライブラリー製剤を用いてクローニングした。
UGT91D1/91D2e に同一なオリゴヌクレオチド・プライマーをcDNA 製剤のPCR増幅に用い、その結果得られた、サイズの正しいPCR 産物を、適したプラスミド・ベクター内にクローニングした。各実験から得た多くのクローンを配列決定すると、その配列決定の結果は、配列に僅かな変更を持つUGT91D核酸も増幅可能であろうことを示していた。UGT91D2eに対して配列の違いが最も大きい20種のUGT91Dバリアントを in
vitro 転写−翻訳で発現させた後、ステビオール-13-O-モノグルコシド-1,2-グルコシル化活性について酵素検査した。バリアントのうちの一つが弱い1,2-ビオシドグルコシル化活性を示し、残りのものは何の検出可能なグルコシル化活性も示さなかった。従って、UGT91D2
ポリペプチドはステビアにおいて主なステビオール-13-O-モノグルコシド-1,2-グルコシル化酵素であるようである。
共役in
vitro転写−翻訳で作製されたUGT91D2e (SEQ ID NO:5)をin
vitro酵素検定でステビオール-13-O-モノグルコシドのキシロシル化及びラムノシル化能について、UDP-キシロース又はUDP-ラムノースをUDP-グルコースではなく糖供与体として用いて検査した。
UDP-グルクロン酸をほぼ1μgのアラビドプシス-サリアナにコードされたUDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ UXS3
(E.coliで産生された後、精製)、100 mM Tris-HCl (pH 8.0)、1 mM
DTT、6μg BSA、1 mM MgCl2、及び1% ウシ小腸ホスファターゼと混合した。この反応混合液を30分間、30℃でインキュベートして、UDP-グルクロン酸がUDP-キシロースに転化するようにした。その後、1.5 mM
ステビオール-13-O-モノグルコシド基質及びほぼ0.5μgの、実施例9に解説した通りに作製された
UGT91D2e 酵素を混合液に添加し、この混合液を30℃で更に20時間、インキュベートした。
UDP-グルコース を、それぞれ0.6 μgの、アラビドプシス-サリアナにコードされたRHM2 ラムノース シンセターゼ (E.coliで産生された後、精製)のN末端及びC末端部分、 100
mM Tris-HCl (pH 8.0)、1 mM DTT、1.5 mM NADPH、1.5 mM NAD+、6μgのBSA、1 mM MgCl2、及び1% ウシ小腸ホスファターゼと混合した。この反応混合液を30分間、30℃でインキュベートして、 UDP-グルコースが UDP-ラムノースに転化するようにした。次に、1.5 mM
のステビオール-13-O-モノグルコシド基質及びほぼ0.5μgのUGT91D2e
酵素を混合液に添加し、この混合液を30℃で更に20時間、インキュベートした。
はステビオール-13-O-モノグルコシド基質のキシロシル化をUDP-グルコースで観察される速度の約半分から3分の1の速度で行うことができ、こうしてレバウディオサイドFの前駆体である1,2-キシロシル化ステビオール-13-O-モノシドを形成することができることを示していた。UGT91D2e
は ステビオール-13-O-モノグルコシド基質のラムノシル化を、 UDP-グルコースで観察されるのとほぼ同じ速度で行うことができ、こうしてレバウディオサイドC(ダルコシドB)の前駆体である1,2-ラムノシル化ステビオール-13-O-モノシドを形成することができた。これらの結果は、適した前駆体分子の合成され、そして適したUGTがin
vivoで発現されれば、レバウディオサイド F及びCがin vivoで生成されるはずであることを示している。図2B及び2Dを参照されたい。
を更に、ステビオール-13-O-モノグルコシド以外の基質、即ちルブソシド, ステビオール-1,3-ビオシド及び1,3-ステビオシドの1,2-グルコシル化能についてin
vitroで検査した。その結果は、 UGT 91D2e は、1,3-結合グルコースが存在するとき(例えば ステビオール 1,3-ビオシド及び1,3-ステビオシド)には活性ではなかったが、 UGT
91D2e は19-O 位置の一次グルコシル化に関係なく活性であることを示していた。これらの結果は、ステビオール 1,3-ビオシド及び1,3-ステビオシド はrebA形成のためにin
vivoステビア経路に存在している訳ではない可能性が高いことを示唆している。図2A及び3を参照されたい。
様々な生態型のS.レバウディアナは遺伝的に多様である。様々なステビアRNA 受託株から採った91Dの96クローンを調査すると、SEQ ID NO:9に示した91D2eのヌクレオチド配列を参照して番号付けすると、調査された6つの生態型間で多くのアミノ酸変化が判明した(例えばヌクレオチド 74 (アミノ酸がG からDに変わる)、89 (Y から Fに)、131 (V からAに)、137 (F から S)、278 (PからQに)、295 (S から V 又は Pに)、331 (E からQに)、365 (Y からFに)、395 (A から Vに)、418 (H からYに)、425 (S から Gに)、431 (T からIに)、442 (A から Tに)、454 (M から Lに)、458 (G から Aに)、466 (A から Sに)、485 (G からDに)、583 (Lから Mに)、587 (V からEに)、595 (K から Eに)、614 (D からGに)、616 (G から Rに)、631 (L から Mに)、637 (L から Fに)、662 (S からFに)、664 (K から Eに)、671 (Yから Cに)、857 (V からAに)、867 (S から Rに)、919 (F から Lに)、989 (V から Aに)、1000 (R からCに)、1090 (S から Pに)、1150 (G から Cに)、1232 (L からSに)、1281 (K から Nに)、1313 (E から Aに)、1354 (Q からRに)、そして1369 (V からIに))。これらの多型からのいくつかの更なる変化が認められたが、それらは配列決定又はPCRエラーが原因である可能性が高く、特に多型が一回しか見られなかった場合はそうである。20種類のコーディング領域を更なる分析に向けて選んだ。単離されたクローンの解説については表14を参照されたい。表14のアミノ酸の番号付けはSEQ ID NO:5に記載したUGT91D2eのアミノ酸配列に基づく。
6つの異なるS.レバウディアナ生態型由来のUGT85C の遺伝的多様性を調べて、ステビオール グリコシド生成経路において同じ又は亢進した活性を有するホモログを同定した。UGT85C遺伝子に特異的なPCRプライマーをデザインし、PCR反応をcDNA (いくつかはcDNA ライブラリーに対してなされ、いくつかはcDNA 製剤に対してなされた)に対して行った。その結果得られたPCR 産物をクローニングし、96個のクローンを配列決定した。アミノ酸多型をマッピングし、多様な共通の多型表示を持つ16個の UGT 85C クローンを選んだ。表15を参照されたい。更なる改変がいくつかのクローンでは認められたが、PCRエラーが原因かも知れず、あるいは共通の多型ではないかも知れない。多型は、受託番号
AY345978.1 (表8を参照されたい)に記載された野生型S.レバウディアナUGT85Cヌクレオチド配列のヌクレオチド及びアミノ酸番号付けで解説されている。
vitro 転写−翻訳 (PCR DNA キット用TNT(登録商標)T7 Quick 、Promega社) を通じて発現させ、基質ステビオール及びステビオール-19-O-グルコシド (0.5 mM)に対しるグリコシル化能について、前の実施例で解説した通りに検定した。クローン1、4、16、17、19、20、21、26、29、30、31、37、及び39 から生まれたUGT85Cは可溶性であり、90分検定で19-SMG
をルブソシドに転化させることができた。 クローン27から生じたUGT85Cは不溶性とみなされた。クローン2及び33から生じたUGT85Cは不溶性とみなされたが、微量のルブソシドが、タンパク質バンドが見えなかったにも関わらず、生成された。これらの実験は個別に3回、行われた。この実験では、以下のアミノ酸変異では活性消失につながらなかったことを示している:V13F、F15L、H60D、A65S、E71Q、I87F、K220T、R243W、T270M、T270R、Q289H、L334S、A389V、I394V、P397S、E418V、G440D、及びH441N。活性なクローンで見られた更なる変異には、クローン37のK9E、クローン26のK10R、クローン2のQ21H、クローン30のM27V 、クローン4のL91P、クローン31のY298C、クローン37のK350T、クローン1のH368R、クローン19のG420R、クローン4のL431P 、クローン16のR444G、及びクローン30のM471T がある。
6つの異なるS.レバウディアナ生態型由来のUGT76G の遺伝的多様性を調べて、ステビオール グリコシド生成経路において同じ又は亢進した活性を有するホモログを同定した。UGT76G遺伝子に特異的なPCRプライマーをデザインし、PCR反応をcDNA (いくつかはcDNA ライブラリー又はDNA 製剤)に対して行った。その結果得られたPCR フラグメントをクローニングし、96個のクローンを配列決定した。共通のアミノ酸多型をマッピングし、, (アミノ酸番号で): R10S、I16L、F22V、M29I、K52S、V74K/E、P80S、L85A、V87S/G、L91P、I92F、I93F、H96Y、G97R、L108V、E113D、G116E、A123T、Q125A、I126L、Y128H、T130A、L142I、V145M、S147N、N151T、F152I、H153L、H155Y、V156D、Q160L、E163D、L167F、P169L、K188N、K191Q、C192S/F、S193G/A、F194Y、M196N、K198Q、K199(I、V、Q)、Y200(L、A、G)、Y203I、F204L、E205G、N206K、I207M、T208I、V217I/F、E226Q、S228P、L230V、V233I、I234T、E236D、I237F、S253P、P266Q、S273P、R274S、G284T/A、T285S、287-3 bp 欠失、R298H、P326A、L330V、G331A、P341L、L346I、S376L、D377A、G379A、L380F、S438P、及び K441Nを含め、多様な共通の多型表示を持つ16個の UGT 76G クローンを選んだ。概して、76G間には大変高い多様性があった。
約 7% の違いとなる。SEQ ID NO: 98、100、及び102 はそれぞれアミノ酸配列で76G_C4、76G_G7、及び76G_H12と記載されている。 SEQ ID NO: 97、99、及び101 はそれぞれ76G_C4、76G_G7、及び76G_H12をコードするヌクレオチド配列を記載したものである。
SEQ ID NO: 98、100、及び102 はそれぞれ76G_C4、76G_G7、及び76G_H12のアミノ酸配列を記載したものである。SEQ ID NO: 97、99、及び101 は、それぞれ76G_C4、76G_G7、及び76G_H12をコードするヌクレオチド配列を記載したものである。
S.セレビジエにおいては、メバロネート経路は、例えば 酵素3-ヒドロキシ-3-メチルグルタリル−コエンザイムA (HMG-CoA) レダクターゼのレベルなどで大きな調節を受けている。切断型HMG-CoA レダクターゼ (tHMG1、分解から安定させた酵素をコードしている) を発現させることは、PPP生成に向かうフラックスを酵母で増加させることのできる方法の一つである。例えば、酵母でtHMG1を発現させるとβ-カロテンの劇的な過剰産生が起きた。Verwaal et al., 2007, Appl. Environ. Microbiol. 73:4342を参照されたい。興味深いことに、このような酵母は、予測されたような固体成長培地上での暗いオレンジ色の着色は示さず、おそらくは中間生成物のフィトエンが更に高い過剰産生したために、強い黄色を示した。
YP004204141)パントテン酸塩キナーゼ(アセチル-CoA
生成を増加させることが公知)の過剰発現後で見られた。
を安定な19-SMGプロデューサー株で発現させた。これらのコンストラクトのいずれも、検査条件下では19-SMG 又はルブソシド生成
(UGT85C2 同時発現) の増加をもたらさないようだった。 メバロネートを酵母レポータ株に供給しても、ルブソシド生成は増加しなかった。 しかし、ルブソシドレポーター株はERG9-にコードされた、エルゴステロール生合成に向かうフラックスを減らすようには遺伝子改変されていなかった。ベータ-カロテン生成にとって有益であることが見出されたHMGレダクターゼ遺伝子及び他のメバロネート経路遺伝子を用いてエルゴステロール生成に向かうフラックスを制御すると、ステビオールグリコシド生成が増加するであろうと予測される。
前駆体分子からのレバウディオサイドC、ステビオール-13-O-グルコピラノシル-1,2-ラムノシドへの合成はin vitro で実施例15で示された。この実施例では、ステビオール-13-O-モノグルコシドを UDP-グルコース及びアラビドプシス-サリアナRHM2 酵素(位置タグ
AT1G53500) 及びUGT91D2eと一緒に、基質として用いた。図2Bに示す経路を更に実証するために、ステビオールからのレバウディオサイドCの生成を in vivoで達成した。
al., Microb Cell Fact. 8:45 (2009)によって解説済みである。4種類のUGT全て (91D2d、76G1、74G1、及び 85C2) GPDプロモーターを持つiin プラスミドで構成的に発現させた。この種類の株は Naesby et. Al, Microb Cell Fact.
8:45 (2009)によって解説済みである。UGT85C2
をプラスミドP423 GPD
(ATCC#87355)に挿入し、UGT74G1を P424 GPD (ATCC#87357) 中にクローニングし、 UGT91D2e 及びUGT76G1 の両者を P425-GPD (ATCC#87359) 中にクローニングしたが、91D2e は元の多重クローニング部位
(MCS)に配置し、 76G1 は更なるGPD プロモーター及びCYC ターミネーターと一緒に挿入した。その結果の株を、CPDプロモーターから発現するRHM2遺伝子を含有するプラスミドP426 GPD (ATCC#87361) で形質転換した。この株を、ヒスチジン、ロイシン、トリプトファン及びウラシルを各SC培地上で24時間、成長させた。次に、培養株をOD600 が0.4 になるように、25μMのステビオールを含有する新鮮な培地上に再播種し、酵母を更に72時間、成長させてから、レバウディオサイドCが上清及び細胞ペレット上に存在するかどうかを検出した。レバウディオサイドCは本物のレバウディオサイドC標準 (カリフォルニア州アーヴィン、Chromadex社)を用いて定量された。合計で1.27μM ± 0.36μMのRebC を上清中に検出した。同様に、3.17μM ± 1.09μMの RebA を細胞ペレット中に検出した。当業者であれば、RebC 対 RebA の様々な比を、RHM2酵素の活性の調節 及び/又は UDP-ラムノース反応にとってより高い活性を持つUGT91D2e又はUGT76G1-様酵素の使用によって得ることができることを認識されよう。代替的なUGTは野生型酵素の変異誘発型であっても、又は、発見イニシアティブを通じて得られた特有の酵素であってもよい。
グラム陰性細菌でのUGT酵素の活性
UGTs 91D2e、74G1、76G1、及び85C2 の野生型遺伝子を、E.coli XjB-自己分解BL21(DE3)
細胞に、Novagen社のpET30 ベクター系 (ウィスコンシン州マジソン、EMD4
バイオサイエンセズ社)を用いて個々にクローニングし、例外としては UGT91D2eは pGEX 4T-1 (スウェーデン、ウプサラ、GE
Healthcare社)ベクター内にクローニングされた。同様なクローニングを実施例7及び10に記載する。ベクターは全て、IPTG-誘導性プロモーターを用いている。プラスミドDNAを業者の解説通りに化学的コンピテント細胞内に導入した。
vivo 供給については、5つの培養株を成長させた:UGT 91d2e、74G1、76G1、及び85C2を個別に、そして4種クローンのすべての混合物である。翌日、培養株を誘導して最終濃度を 0.3 mM IPTG 及び3 mM アラビノースにし、2日間、20℃で、50μMのステビオール (UGT74G1、UGT85C2 及び4つの混合物) 又は50μM ルブソシド (UGT91D2e 及び UGT76G1)の存在下で成長させた。温度を30℃まで上昇させ、細胞を更に1日、成長させた。次に細胞を4000 rpm で5分間の遠心分離で採集し、上清をLC-MS 分析に向けて取り除いた。細胞を 50% DMSO中に再懸濁させ、80℃で5分間、溶解させ、そのライセートをLC-MSで分析した。
Tris、20mM MgCl2、4mM KCl)、0.3μLのFermentas社製FastAPTM (1u/μL) 、0.45μLの 100 mM ストックのUDP-グルコース、0.6μLの基質(ステビオール又はルブソシド)及び6μLの上記の粗酵素製剤を加えることで酵素検定を行った。UGT74G1、UGT85C2や、全4種のUGT混合物をステビオールと一緒にインキュベートした。UGT 76G1及び85C2 をルブソシドと一緒にインキュベートした。該酵素検定を一晩、37℃でインキュベートした。4000 rpm で5分間、遠心分離した後、30μLの試料を、新鮮な96 ウェル・プレートに移し、30μLの DMSO を添加した。次に試料を LC-MS 分析にかけた。同様な
in vitro 実験を、更にステビオール 1,2-ビオシド(UGT76G1 及びUGT74G1に)又はレバウディオサイドB(UGT74G1に) を基質として用いて行った。
コケ類細胞での供給実験
UGT 91d2e、74G1、76G1、及び 85C2 の遺伝子をフィスコミトレラ-パテンスに、米国特許公報No. 20100297722 に解説された pTHUbi:Gateway ベクター系を用いてクローニングした。このベクターは強力なトウモロコシユビキチンプロモーターを用いている。PCrプライマーは、開始コドンの上流に「CACC」を付加して、前記の例(天然配列)中のコーディング領域を増幅するようにデザインされた。プラスミドDNAを SwaI で消化し、プロトプラストへの導入に用いた(一般的にはほぼ0.5x106
のプロトプラスト)。所望の耐性を示す形質転換体を1日、10 mL の培養株にして成長させた後、ステビオール、ルブソシド、又は緩衝液 + DMSO のいずれかを、表19に示すように供給した。基質を含有する緩衝液を0.5 mL、10 mL の培養株毎に加え、最終濃度 0.1% のDMSO、50μMのステビオール又は ルブソシド、及び0.125 mM
のホスフェート緩衝液を培養株に加えた。陽性コントロールでは、e YFP (黄色蛍光タンパク質) をステビオール 又は緩衝液のみ及び DMSOの存在下で発現させた。培養株を更に2日間、成長させてから細胞を分離し、更なる分析まで液体窒素中で凍結させた。いくつかの場合では複数のUGT-含有プラスミドを同じプロトプラスト細胞中に導入して、コケ細胞内で複数のステップの転化を描き出した。
供給
In vitro 供給実験を試料1、3、4、5、6、11、13 及び 17)で行った。ガラス製ビーズ
(425-600 ミクロン) を残った75μLの元の再懸濁液に加え、プロトプラストを、それぞれ2分間の3回、摂氏4度で過流させ、過流間な氷上に保存することで機械的に溶解させた。試料を過流 (15,700 相対遠心力、10分間、摂氏4度)
し、6μLの結果的な上清を in vitro 酵素反応で用いた。酵素反応については、FastAPTM ホスファターゼ(Fermentas社)を用い(0.3 U/反応)、UDP-グルコース:基質比は5だった。試料にステビオール又はルブソシドを表20に従って供給した。
グリコシドはどれも、検出不能だった。UGTの可溶性の発現がフィスコミトレラで起きたかどうかは不明である。一つのUGT がコケ細胞で活性であれば、発現が起きれば、他も活性であろうと予測される。加えて、クローニングを一過性の態様で行った。遺伝子が安定に組み込まれれば、検査した場合にUGT活性について活性な更なるクローンが生じるであろうと期待される。
真菌細胞におけるUGT酵素の活性
UGT 91D2e、74G1、76G1、及び85C2 の天然遺伝子をアスペルギルス-ニドゥランス中に、PCR-作成発現カセット及びUSERベクター系を用いてクローニングした。クローニング法は Hansen et al.、Appl. Environ. Microbiol. 77: 3044-3051 (2011)に解説されている。簡単に説明すると、各UGTをコードするヌクレオチド配列を、構成的PgpdAプロモーターとTtrpCターミネーターとの間に、ゲノム組込みのために付加的な二つの標的決定配列と、選択マーカーとしてのargBとを含有するベクターに入れて挿入した。プラスミドDNAをA.ニドゥランス・プロトプラスト内に Nielsen et al., Fungal Genet.
Biol. 43:54−64 (2006) 及び Johnstone et al., EMBO J. 4:1307-1311
(1985)に従って導入した。所望の耐性を示す形質転換体を48時間、最小培地(1% グルコース; 10 mM
NaNO3; 鉱物混合物).を用いた150 mL 培養株にして成長させた。
0.5 mM ステビオールと一緒にインキュベートし、 76G1
及び91D2e を発現する株を0.5 mM ステビオール-13-O-グルコシド と一緒に24時間、インキュベートし、その上清を更に LC/MSを用いて分析した。ステビオール グリコシドは全く検出されなかった。
本発明をその詳細な説明と併せて解説してきたが、前述の記載は本発明の描写するものであって、限定するものとは意図されておらず、本発明の範囲は付属の請求項の範囲によって規定される。他の態様、長所、及び改変は以下の請求項の範囲内にある。
Claims (25)
- 細胞培養基中でステビオールグリコシド組成物を生成可能な組換えホスト細胞であって、
(a)SEQ ID NO:5に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び一つ以上の;
(b)SEQ ID NO:3に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するポリペプチドを含む、ステビオールまたはステビオールグリコシドをそのC-13ヒドロキシル基においてグリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び/又は
(c)SEQ ID NO:7に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するポリペプチドを含む、ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び/又は
(d)SEQ ID NO:1に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するポリペプチドを含む、ステビオールまたはステビオールグリコシドをそのC-19カルボキシル基においてグリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
を含み、
(e)SEQ ID NO:121-128に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ファルネシルジホスフェート(FPP)及びイソペンテニルジホスフェート(IPP)からゲラニルゲラニルジホスフェート(GGPP)を合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(f)SEQ ID NO: 129-131に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、GGPPからent-コパリルジホスフェートを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(g)SEQ ID NO: 132-135に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-コパリルジホスフェートからent-カウレンを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(h)SEQ ID NO: 138-141に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-カウレンからent-カウレン酸を合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(i)SEQ ID NO: 142-146に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-カウレン酸からステビオールを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び
(j)SEQ ID NO: 147-149に示すアミノ酸配列の一つを有するポリペプチドを含む、NADPHをNADP+に変換可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
を含み、前記遺伝子のうちの少なくとも一つが組換え遺伝子であり、
前記ステビオールグリコシドがステビオール-13-O-グルコシド、ステビオール-19-O-グルコシド、ルブソシド、ステビオシド、1,2-ビオシド、レバウディオサイドA、レバウディオサイドB又はレバウディオサイドEを含み;及び
前記ステビオールグリコシド組成物がステビオール-13-O-グルコシド、ステビオール-19-O-グルコシド、ルブソシド、レバウディオサイドA、レバウディオサイドB、レバウディオサイドC,レバウディオサイドD、レバウディオサイドE、レバウディオサイドF又はダルコシドAを含む、組換えホスト細胞。 - (a)前記ステビオールまたはステビオールグリコシドをそのC-13ヒドロキシル基においてグリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:3の残基9、10、13、15、21、27、60、65、71、87、91、220、243、270、289、298、334、336、350、368、389、394、397、418、420、440、441、444、及び471に一つ以上のアミノ酸置換を含むか、または
(b)前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又は前記ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:7の残基29、74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び346に一つ以上のアミノ酸置換を含むか、または
(c)前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:5に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも95%又は少なくとも99%の配列同一性を有する、
請求項1に記載の組換えホスト細胞。 - 前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドが:
(a)SEQ ID NO:5の残基1-19、27-38、44-87、96-120、125-141、159-184、199-202、215-380、又は387-473に少なくとも一つのアミノ酸置換;
(b)SEQ ID NO:5の残基30、93、99、122、140、142、144、148、152、153、156、195、196、199、206、207、211、213、221、286、343、364、384、427、及び438から成る群より選択される一つ以上の残基にアミノ酸置換;
(c)SEQ ID NO:5の残基206にアルギニン、残基207にシステイン、及び残基343にアルギニン;
(d)SEQ ID NO:5の残基30にフェニルアラニン、残基93にグルタミン、残基99にバリン、残基122にフェニルアラニン、残基140にチロシン、残基142にシステイン、残基144にイソロイシン、残基148にスレオニン、残基152にロイシン、残基153にアラニン、残基156にセリン、残基195にメチオニン、残基196にグルタミン酸、残基199にグルタミン酸、残基211にメチオニン、残基213にフェニルアラニン、残基221にフェニルアラニン、残基286にアラニン、残基364にプロリン、残基384にシステイン、残基427にアスパラギン、又は残基438にアラニン;
(e)SEQ ID NO:95のアミノ酸配列;
(f)SEQ ID NO:5のアミノ酸配列;又は
(g)SEQ ID NO:10のアミノ酸配列
を備えたポリペプチドを含む、請求項1または2に記載の組換えホスト細胞。 - 前記ステビオールまたはステビオールグリコシドをそのC-13ヒドロキシル基においてグリコシル化可能なポリペプチドが:
(a)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基13、60、及び270のうちの一つ以上に置換;
(b)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基60及び87のうちの一つ以上に置換;
(c)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65、71、220、243、及び270のうちの一つ以上に置換;
(d)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65、71、220、243、270、及び441のうちの一つ以上に置換;
(e)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65、71、220、389、及び394のうちの一つ以上に置換;
(f)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65、71、270、及び289のうちの一つ以上に置換;
(g)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基15及び65のうちの一つ以上に置換;
(h)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65及び270のうちの一つ以上に置換;
(i)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65及び440のうちの一つ以上に置換;
(j)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65及び441のうちの一つ以上に置換;
(k)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基65及び418のうちの一つ以上に置換;
(l)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基220、243、270、及び334のうちの一つ以上に置換;
(m)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基270及び289のうちの一つ以上に置換;又は
(n)SEQ ID NO:3の以下のアミノ酸残基13、15、60、270、289、及び418のうちの一つ以上に置換
を含む、請求項1に記載の組換えホスト細胞。 - 前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又は前記ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドが:
(a)SEQ ID NO:7の以下のアミノ酸残基74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、及び291のうちの一つ以上に置換;
(b)SEQ ID NO:7の以下のアミノ酸残基74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、及び291のうちの一つ以上に置換;又は
(c)SEQ ID NO:7の以下のアミノ酸残基74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び346のうちの一つ以上に置換;
を含む、請求項1に記載の組換えホスト細胞。 - 前記ホスト細胞が更に以下:
(a)GGPPからent-コパリルジホスフェートを合成可能及びent-コパリルジホスフェートからent-カウレンを合成可能な二官能性のポリペプチドをコードする遺伝子;
(b)切断型HMG-CoAポリペプチドをコードする遺伝子;
(c)ラムノースシンセターゼポリペプチドをコードする遺伝子;
(d)UDP-グルコースデヒドロゲナーゼポリペプチドをコードする遺伝子;及び
(e)UDP-グルクロン酸デカルボキシラーゼポリペプチドをコードする遺伝子
を含む、請求項1乃至5のいずれか一つに記載の組換えホスト細胞。 - (a)、(b)、(c)、又は(d)の遺伝子のうちの少なくとも一つが組換え遺伝子である、請求項6に記載の組換えホスト細胞。
- 請求項1−7のいずれか一つに記載の組換えホスト細胞を使用する、ステビオールグリコシド組成物を製造する方法であって、前記組成物が、
(a)重量で総ステビオールグリコシドの4%を超えるレバウディオサイドDと、植物由来ステビア抽出物に比べて減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分;
(b)重量で総ステビオールグリコシドの4%を超えるレバウディオサイドEと、植物由来ステビア抽出物に比べて減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分;
(c)重量で総ステビオールグリコシドの15%を超えるレバウディオサイドCと、植物由来ステビア抽出物に比べて減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分;
(d)重量で総ステビオールグリコシドの15%を超えるダルコシドAと、植物由来ステビア抽出物に比べて減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分;
(e)重量で総ステビオールグリコシドの4%を超えるレバウディオサイドFと、植物由来ステビア抽出物に比べて減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分;又は
(f)重量で総ステビオールグリコシドの3%を超えるレバウディオサイドBと、植物由来ステビア抽出物に比べて減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分;
を含む方法。 - (a)一つ以上の遺伝子が発現する条件下で請求項1乃至7のいずれか一つに記載の組換えホスト細胞を培養基中で成長させるステップであって、該成長が前記遺伝子の発現を誘導することができる、ステップと;
(b)(i)前記組換えホスト細胞が産生したステビオール又はステビオールグリコシドを回収するステップであって、前記ステビオールグリコシドが、ステビオール-13-O-グルコシド、ステビオール-19-Oグルコシド、ルブソシド、レバウディオサイドA、レバウディオサイドB、レバウディオサイドC、レバウディオサイドD、レバウディオサイドE、レバウディオサイドF、又はダルコシドAを含む、ステップ;又は
(b)(ii)前記組換えホスト細胞が産生したステビオール又はステビオールグリコシド組成物を回収するステップであって、前記組成物が、野生型ステビア植物のステビオールグリコシド組成物に比べてレバウディオサイドA、レバウディオサイドB、レバウディオサイドC、レバウディオサイドD、レバウディオサイドE、レバウディオサイドF、又はダルコシドAを濃縮されており、植物由来ステビア抽出物に対して減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分を有する、ステップ;
を含む、ステビオール、ステビオールグリコシド、又はステビオールグリコシド組成物を調製する方法。 - 細胞培養基中でステビオールグリコシド組成物を生成可能な組換えホスト細胞であって、
(a)ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドであって、前記ステビオールグリコシドで第二の糖部分をグルコースのC-2’に移すポリペプチドをコードする遺伝子;
(b)ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドであって、前記ステビオールグリコシドで第二の糖部分をグルコースのC-2’に移すポリペプチドをコードする遺伝子;
(c)ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び/又は
(d)ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
を含み、
(e)SEQ ID NO:121-128に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ファルネシルジホスフェート(FPP)及びイソペンテニルジホスフェート(IPP)からゲラニルゲラニルジホスフェート(GGPP)を合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(f)SEQ ID NO: 129-131に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、GGPPからent-コパリルジホスフェートを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(g)SEQ ID NO: 132-135に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-コパリルジホスフェートからent-カウレンを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(h)SEQ ID NO: 138-141に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-カウレンからent-カウレン酸を合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(i)SEQ ID NO: 142-146に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-カウレン酸からステビオールを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び
(j)SEQ ID NO: 147-149に示すアミノ酸配列の一つを有するポリペプチドを含む、NADPHをNADP+に変換可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
を含み、前記遺伝子のうちの少なくとも一つが組換え遺伝子であり、
前記ステビオールグリコシドがステビオール-13-O-グルコシド、ルブソシド、ステビオシド、又はレバウディオサイドAを含み;及び
前記ステビオールグリコシド組成物がステビオシド、レバウディオサイドE、レバウディオサイドD、ステビオール-1,2ビオシド、ステビオール-1,2-キシロビオシド、及び/又はステビオール-1,2-ラムノビオシドを含む、組換えホスト細胞。 - (a)前記ステビオールグリコシドがルブソシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにステビオシドが生成され、
(b)前記ステビオールグリコシドがステビオシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにレバウディオサイドEが生成され、
(c)前記ステビオールグリコシドがステビオシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、前記ステビオシドがステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及びステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドに接触され、そして第二のグルコース部分が移動するときにレバウディオサイドDが生成され、
(d)前記ステビオールグリコシドがステビオール13-O-グルコシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにステビオール-1,2ビオシドが生成され、
(e)前記ステビオールグリコシドがステビオール13-O-グルコシドであり、前記第二の糖部分がキシロースであり、そして第二の糖部分が移動するときにステビオール-1,2-キシロビオシドが生成され、
(f)前記ステビオールグリコシドがステビオール13-O-グルコシドであり、前記第二の糖部分がラムノースであり、そして第二の糖部分が移動するときにステビオール-1,2-ラムノビオシドが生成され、又は、
(g)前記ステビオールグリコシドがレバウディオサイドAであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにレバウディオサイドDが生成される、請求項10に記載の組換えホスト細胞。 - (a)前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:5,76,78又は150に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するポリペプチドを含むか、または
(b)前記ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:7に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するポリペプチドを含むか、または
(c)前記ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:7の残基29、74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び346に一つ以上のアミノ酸置換を含む、
請求項10に記載の組換えホスト細胞。 - 前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドが、
(a)SEQ ID NO:5の残基1-19、27-38、44-87、96-120、125-141、159-184、199-202、215-380、又は 387-473に少なくとも一つのアミノ酸置換;
(b)SEQ ID NO:5の残基30、93、99、122、140、142、144、148、152、153、156、195、196、199、206、207、211、213、221、286、343、364、384、427、及び438から成る群より選択される一つ以上の残基にアミノ酸置換;
(c)SEQ ID NO:5の残基206にアルギニン、残基207にシステイン、及び残基343にアルギニン;
(d)SEQ ID NO:5の残基30にフェニルアラニン、残基93にプロリン又はグルタミン、残基99にセリン又はバリン、残基122にチロシン又はフェニルアラニン、残基140にヒスチジン又はチロシン、残基142にセリン又はシステイン、残基148にアラニン又はスレオニン、残基152にメチオニン、残基153にアラニン、残基156にアラニン又はセリン、残基162にグリシン、残基195にロイシン又はメチオニン、残基196にグルタミン酸、残基199にリシン又はグルタミン酸、残基211にロイシン又はメチオニン、残基213にロイシン、残基221にセリン又はフェニルアラニン、残基253にバリン又はイソロイシン、残基286にバリン又はアラニン、残基427にアスパラギン又はリシン、又は残基438にアラニン、及び残基462にアラニン又はスレオニン;
(e)SEQ ID NO:95のアミノ酸配列;
(f)SEQ ID NO:5のアミノ酸配列;又は
(g)SEQ ID NO:10のアミノ酸配列
を含む、請求項10に記載の組換えホスト細胞。 - 前記細胞培養基が、
(a)前記組換えホスト細胞により生成された前記ステビオールグリコシド組成物であって、ステビオシド、レバウディオサイドE、レバウディオサイドD、ステビオール-1,2ビオシド、ステビオール-1,2-キシロビオシド、及び/又はステビオール-1,2-ラムノビオシドを含むステビオールグリコシド組成物;
(b)グルコース、ウリジンジホスフェート(UDP)-グルコース、UDPラムノース、UDP-キシロース、及び/又はN-アセチル-グルコサミン;及び/又は
(c)微量金属、ビタミン、塩、酵母窒素原基礎培地(YNB)及び/又はアミノ酸を含む補助栄養素
を含む、請求項10に記載の組換えホスト細胞。 - 細胞培養基中でステビオールグリコシド組成物を生成する方法であって、組換えホスト細胞を成長させる段階を含み、前記組換えホスト細胞が、
(a)ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドであって、前記ステビオールグリコシドで第二の糖部分をグルコースのC-2’に移すポリペプチドをコードする遺伝子;
(b)ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドであって、前記ステビオールグリコシドで第二の糖部分をグルコースのC-2’に移すポリペプチドをコードする遺伝子;
(c)ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び/又は
(d)ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
を含み、
(e)SEQ ID NO:121-128に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ファルネシルジホスフェート(FPP)及びイソペンテニルジホスフェート(IPP)からゲラニルゲラニルジホスフェート(GGPP)を合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(f)SEQ ID NO: 129-131に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、GGPPからent-コパリルジホスフェートを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(g)SEQ ID NO: 132-135に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-コパリルジホスフェートからent-カウレンを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(h)SEQ ID NO: 138-141に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-カウレンからent-カウレン酸を合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
(i)SEQ ID NO: 142-146に示すアミノ酸配列の一つに対して90%を超える配列同一性を有するポリペプチドを含む、ent-カウレン酸からステビオールを合成することが可能なポリペプチドをコードする遺伝子;及び
(j)SEQ ID NO: 147-149に示すアミノ酸配列の一つを有するポリペプチドを含む、NADPHをNADP+に変換可能なポリペプチドをコードする遺伝子;
を含み、前記遺伝子のうちの少なくとも一つが組換え遺伝子であり、
一つ以上の遺伝子(a)〜(d)およびすべての遺伝子(e)〜(j)が発現される条件の下で、前記ステビオールグリコシド組成物が前記ホスト細胞によって生成され、
前記ステビオールグリコシドがステビオール-13-O-グルコシド、ルブソシド、ステビオシド、又はレバウディオサイドAを含み;及び
前記ステビオールグリコシド組成物がステビオシド、レバウディオサイドE、レバウディオサイドD、ステビオール-1,2ビオシド、ステビオール-1,2-キシロビオシド、及び/又はステビオール-1,2-ラムノビオシドを含む、方法。 - 前記組換えホスト細胞を成長させる段階が、一つ以上の遺伝子の発現を誘導すること、又は一つ以上の遺伝子を恒常的に発現させることを含む、請求項15に記載の方法。
- (a)前記ステビオールグリコシドがルブソシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにステビオシドが生成され、
(b)前記ステビオールグリコシドがステビオシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにレバウディオサイドEが生成され、
(c)前記ステビオールグリコシドがステビオシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、前記ステビオシドがステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及びステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドに接触され、そして第二のグルコース部分が移動するときにレバウディオサイドDが生成され、
(d)前記ステビオールグリコシドがステビオール13-O-グルコシドであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにステビオール-1,2ビオシドが生成され、
(e)前記ステビオールグリコシドがステビオール13-O-グルコシドであり、前記第二の糖部分がキシロースであり、そして第二の糖部分が移動するときにステビオール-1,2-キシロビオシドが生成され、
(f)前記ステビオールグリコシドがステビオール13-O-グルコシドであり、前記第二の糖部分がラムノースであり、そして第二の糖部分が移動するときにステビオール-1,2-ラムノビオシドが生成され、又は、
(g)前記ステビオールグリコシドがレバウディオサイドAであり、前記第二の糖部分がグルコースであり、そして第二のグルコース部分が移動するときにレバウディオサイドDが生成される、請求項15に記載の方法。 - (a)前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:5,76,78又は150に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するポリペプチドを含むか、または
(b)前記ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:7に記載のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有するポリペプチドを含むか、または
(c)前記ステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC3’のベータ1,3グリコシル化可能なポリペプチドが、SEQ ID NO:7の残基29、74、87、91、116、123、125、126、130、145、192、193、194、196、198、199、200、203、204、205、206、207、208、266、273、274、284、285、291、330、331、及び346に一つ以上のアミノ酸置換を含む、
請求項15に記載の方法。 - 前記ステビオールグリコシドの13-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチド及び/又はステビオールグリコシドの19-O-グルコースのC2’のベータ1,2グリコシル化可能なポリペプチドが、
(a)SEQ ID NO:5の残基1-19、27-38、44-87、96-120、125-141、159-184、199-202、215-380、又は387-473に少なくとも一つのアミノ酸置換;
(b)SEQ ID NO:5の残基30、93、99、122、140、142、144、148、152、153、156、195、196、199、206、207、211、213、221、286、343、364、384、427、及び438から成る群より選択される一つ以上の残基にアミノ酸置換;
(c)SEQ ID NO:5の残基206にアルギニン、残基207にシステイン、及び残基343にアルギニン;
(d)SEQ ID NO:5の残基30にフェニルアラニン、残基93にプロリン又はグルタミン、残基99にセリン又はバリン、残基122にチロシン又はフェニルアラニン、残基140にヒスチジン又はチロシン、残基142にセリン又はシステイン、残基148にアラニン又はスレオニン、残基152にメチオニン、残基153にアラニン、残基156にアラニン又はセリン、残基162にグリシン、残基195にロイシン又はメチオニン、残基196にグルタミン酸、残基199にリシン又はグルタミン酸、残基211にロイシン又はメチオニン、残基213にロイシン、残基221にセリン又はフェニルアラニン、残基253にバリン又はイソロイシン、残基286にバリン又はアラニン、残基427にアスパラギン又はリシン、又は残基438にアラニン、及び残基462にアラニン又はスレオニン;
(e)SEQ ID NO:95のアミノ酸配列;
(f)SEQ ID NO:5のアミノ酸配列;又は
(g)SEQ ID NO:10のアミノ酸配列
を含む、請求項15に記載の方法。 - 前記レバウディオサイドDを単独又は少なくとも一つの他の前記ステビオールグリコシドと一緒に前記細胞培養基から分離する段階をさらに含み、
前記分離する段階が、
(a)前記レバウディオサイドDを単独又は少なくとも一つの他のステビオールグリコシドと一緒に含む細胞培養基を用意するステップ;
(b)固相の細胞培養基から液相の細胞培養基を分離し、レバウディオサイドDを単独又は少なくとも一つの他のステビオールグリコシドと一緒に含む上清を取得するステップ;
(c)充填塔内の吸収性樹脂の提供を含む、一つ以上の吸収性樹脂を提供するステップ;及び
(d)レバウディオサイドDの少なくとも一部を単独又は少なくとも一つの他のステビオールグリコシドと一緒に取得するために、ステップ(b)の前記上清を前記一つ以上の吸収性樹脂に接触させることによって、レバウディオサイドDを単独又は少なくとも一つの他のステビオールグリコシドと一緒に分離するステップ;
を含む、請求項15に記載の方法。 - レバウディオサイドDを含む前記ステビオールグリコシドを単独又は少なくとも一つの他のステビオールグリコシドと一緒に前記細胞培養基から回収する段階をさらに含む、請求項15に記載の方法。
- 前記ステビオールグリコシド組成物が、レバウディオサイドDのためにステビア植物のステビオールグリコシド組成物に比べて濃縮されるとともに、植物由来のステビア抽出物に比べて減少したレベルの非ステビオールグリコシドステビア植物由来成分を有する、請求項8、9および15〜21のいずれか一つに記載の方法。
- 前記細胞培養基が、
(a)組換えホスト細胞により生成されたステビオールグリコシド組成物であって、ステビオシド、レバウディオサイドE、レバウディオサイドD、ステビオール-1,2ビオシド、ステビオール-1,2-キシロビオシド、及び/又はステビオール-1,2-ラムノビオシドを含むステビオールグリコシド組成物;
(b)グルコース、フルクトース、及び/又はスクロース;及び/又は
(c)微量金属、ビタミン、塩、酵母窒素原基礎培地(YNB)及び/又はアミノ酸を含む補助栄養素;
を含む、請求項9および15〜21のいずれか一つに記載の方法。 - 前記組換えホスト細胞が酵母細胞であり、ここで、
前記酵母細胞が、サッカロミセス-セレビジエ、スキゾサッカロミセス-ポンベ、ヤロウィア-リポリティカ、カンジダ-グラブラタ、アシュビア-ゴシピー、サイバリンドネレラ-ジャディニー、ピチア-パストリス、クルイベロミセス-ラクティス、ハンセニュラ-ポリモルファ、カンジダ-ボイディニー、アクスラ-アデニニボランス、キサントフィロミセス-デンドローホウス、又はカンジダ-アルビカンス種から選択される酵母細胞であるか、または
前記酵母細胞が、サッカロミセス属であるか、または
前記酵母細胞が、サッカロミセス-セレビジエ種から選択される細胞である、
請求項9および15〜21のいずれか一つに記載の方法。 - 前記組換えホスト細胞を所望の温度で所望の時間、発酵槽内で成長させ、前記温度及び時間がステビオールグリコシド組成物の生成を促進する、請求項8、9および15〜21のいずれか一つに記載の方法。
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