JP2010539977A - モナチン鏡像異性体の生成 - Google Patents
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Abstract
立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化された形態の高甘味度甘味料モナチンを生成するための方法および原料を開示する。例えば、モナチン誘導ラクトンエステルの立体選択的加水分解および分離を用いる方法を開示する。
Description
本発明は、有機的かつ生体触媒的合成の分野にある。
モナチンは高甘味度甘味料であって、下記の化学式:
様々な命名規則により、モナチンは以下の:2−ヒドロキシ−2−(インドル−3−イルメチル)−4−アミノグルタル酸;4−アミノ−2−ヒドロキシ−2−(1H−インドル−3−イルメチル)−ペンタン二酸;4−ヒドロキシ−4−(3−インドリルメチル)グルタミン酸;および、3−(1−アミノ−1,3−ジカルボキシ−3−ヒドロキシ−ブト−4−イル)インドールを含む多数の代替的な名称でも知られている。
モナチンは二つのキラル中心を含有して、4つの可能な立体異性配置を生じる。R,R配置(「R,R立体異性体」すなわち「(R,R)−モナチン」);S,S配置(「S,S立体異性体」すなわち「(S,S)−モナチン」);R,S配置(「R,S立体異性体」すなわち「(R,S)−モナチン」);および、S,R配置(「S,R立体異性体」すなわち「(S,R)−モナチン)」)である。異なる立体異性体のモナチンは異なる甘味特性を有する。
モナチンの特定の異性体は、主に南アフリカのリンポポ地域に生息するが、ムブマランガや北西部にも生息するシュレロチトン・イリシホリアス(Schlerochiton ilicifolius)植物の根皮内に見いだすことができる。しかしながら、乾燥皮内に存在するモナチンの濃度は、酸形態のインドール換算で、約0.007質量%であることが分かった。米国特許第4,975,298を参照せよ。モナチンが植物中で産生される正確な方法は、現在知られていない。
少なくとも部分的には、その甘味特性のため、モナチンの経済的な起源を有することが望ましい。さらに、異なる立体異性体の異なる甘味特性のため、R,R立体異性体のごときモナチンの単一の立体異性体の経済的な起源を有することが望ましい。かくして、立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化された形態のモナチンの生成方法を開発する必要性が継続している。
本発明は、高甘味甘味料モナチンの異性体を分割する方法、特に、モナチンのR,RおよびS,S立体異性体を分割する方法を提供する。本発明のいくつかの具体例において、モナチンのエステル誘導体が生成され、このモナチン誘導エステルの立体選択的加水分解が、最終的に、立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化されたモナチンを生じる。いくつかの具体例において、この立体選択的加水分解は、モナチン誘導エステルの一方の立体異性体(例えば、S,S)を、モナチン誘導エステルの他方の立体異性体(例えば、R,R)に対して優先的にモナチン誘導酸(例えば、S,S)転換する。ついで、モナチン誘導酸(例えば、S,S)およびモナチン誘導エステル(例えば、R,R)を分離でき、一旦分離されれば、各々は、モナチンに逆転換でき、立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化されたS,Sモナチンの組成物および立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化されたR,Rモナチンの組成物を生じる。いくつかの具体例において、モナチンのラクトンエステル誘導体が生成され、このラクトンエステル誘導体の1つの立体異性体を、酵素を用いて立体特異的に加水分解する。ついで、この反応の加水分解生成物は非加水分解エスエル誘導体から分離でき、加水分解および非加水分解誘導体の各々をモナチンに逆転換できる。
本明細書は、図面を含めて、本発明の特定の具体例を説明する。しかしながら、当業者ならば、それらの記載から、本発明は、本発明の概念および範囲を逸脱しない全ての様々な態様で修正することができると考えるであろう。したがって、明細書および図面は本質的に例示であって、制限的ではないと理解されるべきである。
この開示は、グルタミン酸誘導体、特にモナチンの(R,R)および(S,S)立体異性体を分割する方法を提供する。ここでキラル中心を含有する分子についての言及の各々は、特記がない限り、当該分子の全ての立体異性体を意味する。各立体異性体は別個の化合物であるが、実際は、立体異性体の混合物は、しばしば、例えば、「化合物(±)モナチン前駆体」または「モナチン前駆体」のごとき「化合物」のことを意味する。同様に、ここでキラル中心を含有する分子の構造描写の各々は、特記がない限り、その分子の全ての立体異性体を表し、例えば、くさび型表記の使用により三次元配座を示す。
また、特記がない限りまたは文脈から明らかでない限り、「R,Rモナチン」または「S,Sモナチン」は、モナチンの単一立体異性体または特定の立体異性体が豊富化された混合物を意味する。「豊富化」は、その混合物が、指定されていない立体異性体に対して指定された立体異性体を、それが分割された元のモナチン混合物と比較して高い比率で含むことを意味する。
単一立体異性体は、立体異性体的に豊富化された立体異性体の混合物から、前者を「単一立体異性体」と呼んで区別できる。かくして、例えば、特記がない限りまたは文脈から明らかでない限り、「(S,S)モナチンは各立体中心においてS配座を持つモナチンの単一立体異性体または、(S,S)モナチンがより多量に存在する、(S,S)−モナチンおよび(R,R)−モナチンの混合物を示す。
なお、小文字が後ろに付くローマ数字で示される各化合物の式は、ここでは、単一の立体異性体または、立体異性体が豊富化された混合物を示す。例えば、式IV:
特記ない限り、用語「含む」、「含む」「含んでいる」などはオープンエンドであることを意図している。かくして、例えば、「含む」は「限定されないが含む」を意味する。
断わりがあるときを除き、冠詞「a」、「an」および「the」は、「一以上」を意味する。
ここで用いるとき、用語「約」はいかなる測定でも発生する実験誤差の範囲を包含する。断りない限り、全ての測定値は、語「約」が明示的に用いられていなくても、それらの前に語「約」を有していると推定される。
用語「アルキル」は、それ自体でまたは別の基の一部としてここで用いられるとき、鎖長が限定されていない限り、10炭素までの直鎖および分枝鎖双方の飽和官能基を意味し、例えば、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、s−ブチル、t−ブチル、イソブチル、ペンチル、ヘキシル、イソヘキシル、へプチル、4,4−ジメチルペンチル、オクチル、2,2,4−トリメチルペンチル、ノニル、デシルなどである。
図面を参照すると、図1は、モナチンのR,RおよびS,S立体異性体対の混合物を分割する方法を例示する。具体例によれば、モナチン、特にR,RおよびS,Sモナチンのモナチン組成物は反応して、最終的に、モナチンの保護ラクトンエスエル誘導体、特にR,RおよびS,Sモナチン誘導ラクトンエステルの混合物を発生する。描写するように、このラクトンエステルモナチン誘導体は多段階工程において発生し、最初は、モナチンのジエステル誘導体およびモナチンのラクトンエステル誘導体が生成する。図2は、モナチンからのモナチンラクトンエステル誘導体の生成を実行するためのより特定の詳細な具体例を例示する。
エスエル化反応で生じた混合物(モナチンのラクトンエスエルおよびジエステル誘導体)を、ジエステル誘導体をラクトンエステル誘導体へ転換するのに適切な反応条件にさらすことができる。いくつかの具体例によれば、可能な限りのジエステル誘導体をラクトンエステル誘導体に転換することが好ましい。これは、特に、立体特異的加水分解を行うために選択された酵素がラクトン体に優先的にまたはそれのみに反応する場合である。
好ましくは、また、図1に示された具体例によれば、ラクトンエステルモナチン誘導体のアミン官能性は酵素加水分解を行う前に保護する。アミン官能性の保護は、当該分野で公知のいかなる手段、例えば、Cbz保護によって達成できる。実施例2は、モナチンアミン官能性のCbz保護のいくつかの方法の詳細を提供する。
ラクトン化反応は、例えば、実施例3aおよび3bに示されるような代替的な反応条件下で行える。他の条件もラクトン化を起こすのに適切である。例えば、いくつかの具体例において、トリフルオロ酢酸をトルエンスルホン酸に代えてまたは加えて用いることができる。好ましくは、ラクトン化は、およそ室温にて、すなわち、約23から約25℃までにて行う。理論に拘泥することなく、約65℃程度の高温は分解を生じ、それゆえ、所望の生成物を回収するためには、カラムクロマトグラフィーの使用のごときさらなる工程が必要であると確信される。
次に、モナチン誘導体立体異性体混合物は、立体特異的加水分解に付される。より詳しくは、モナチン誘導体のエステル官能性の酸官能性への加水分解は、一つの異性体に対して別の異性体に対してよりも優先的に生じる。理論に拘泥することなく、図1に示すように、アルキルエステルカルボキシ官能基が加水分解反応に関与している。この加水分解は、保護ラクトンカルボン酸誘導体の立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化されたS,S体および保護ラクトンカルボン酸エステル誘導体の立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化されたR,R体を生じ、次いで、それらは、例えば、実施例4および図3に示すように相分離によって分離できる。
分離後、S,S保護ラクトン誘導体を精製して、(立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化されたかのいずれかの)S,Sモナチンを再生でき、R,R保護ラクトン誘導体を精製して、(立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化されたかのいずれかの)R,Rモナチンを再生できる。精製は、誘導体を脱保護する水素化反応およびラクトン環を切断し、元の基質、この場合はモナチンを再生する加水分解の双方に関与する。いくつかの具体例において、特に、S,S配座が基質の場合、加水分解反応の前に水素化反応を行うことが好ましい(立体化学をスクランブルするエピ化を軽減または最小限化するためである)。いくつかの具体例において、特に、R,R体が関与する場合、加水分解を水素化前に行って、ラクタムの生成を回避または軽減する。図4および実施例5はS,Sラクトン誘導体をS,Sモナチンに転換する方法を例示する。図5および図6はR,Rラクトン誘導体をR,Rモナチンに転換する方法を例示する。
R,RおよびS,Sモナチン立体異性体の分割に向けた具体例を説明してきたが、本発明はそのように限定されない。当業者ならば、ここの教示から、この分離方法はモナチンに加えて他の化合物にも適用できることを認識するであろう。例えば、本発明は、式IV:
有用なR1は、C1−10アルキル、特別にはC1−6アルキル、より特別にはC1−4アルキルを含む。有用なR1の例は、メチル、エチル、プロピル、イソプロピルおよびブチル、特にメチルおよびエチルを含む。いくつかの具体例において、R1はエチルである。
有用な-N(H)Protは、(1)検討中の反応に採用する条件下で本質的に反応せず、(2)検討中の反応の進行を本質的に妨げず、かつ、(3)本質的に当該分子の結合性に影響を与えない条件下で除去できるいかなるアミノ基も含む。保護アミノ基は当業者に周知であり、例えば、[T.W. Greene and P.G.M. Wuts, Protective Groups in Organic Synthesis, 3rd ed., New York: John Wiley & Sons, Inc., 1999 ("Greene")、特に494−615頁]に記載されている。Protが一反応性基の場合、-N(H)Prot中のHが存在する。例えば、Protがベンジルの場合、-N(H)Protは -NHBn (Bn = ベンジル)である。Protが二反応性基の場合、例えば、Protがベンジリデンの場合、-N(H)Prot中のHは存在しない。
有用な-N(H)Protの例は、H2/cat.、例えば、H2/Raney (Ni); H2/Pt, pH 2-4; H2/Pd; H2/Lindlar; または H2/Rhによって開裂され得る基として保護されるアミノ基を含む。そのような保護アミノ基の例は、1,1−ジメチルプロピニル、1−メチル−1−フェニルエチル、1−メチル−1−(4−ビフェニル)エチル、t−ブチル、ビニル、アリル、シンナミル、N−ヒドロキシピペリジニル、4,5−ジフェニル−3−オキサゾリン−2−オン、ベンジル、p−ニトロベンジル、3,4−ジメトキシ−6−ニトロベンジル、2,4−ジクロロベンジル、5−ベンズイソオキサゾリルメチル、9−アントリルメチル、ジフェニルメチル、イソニコチニルまたはS−ベンジルカルバマートなどのカルバマートとして保護されるアミノ基;N−ホルミル、N−o−ニトロフェニルアセチル、N−2−メチル−2−(o−ニトロフェノキシ)プロピオニル、N−2−メチル−2−(o−フェニルアゾフェノキシ)プロピオニルまたはN−o−ニトロシンナモイルアミドなどのアミドとして保護されるアミノ基;および、Prot が、アリル、ベンジルオキシメチル、テトラヒドロピラニル、ベンジル、o−ニトロベンジル、ジ(p−メトキシフェニル)メチル、トリフェニルメチル、(p−メトキシフェニル)ジフェニルメチル、ジフェニル−4−ピリジルメチル、ベンジリデン、ニトロ、ベンジルスルホニルまたはフェナシルスルホニルである-N(H)Protを含む。いくつかの具体例において、-N(H)Prot は -NHCbz(Cbz = ベンジルオキシカルボニル、すなわち、アミノ基はカルバミン酸ベンジルとして保護されている)である。
いくつかの具体例において、式IVの化合物は式III:
の化合物を保護することによって生成することができる。この保護を達成するための有効な試薬は当業者に周知であり、例えば、[Greene,上掲、特に、494-615頁]に記載されている。いくつかの具体例において、式IIIの化合物はCbzClを用いて保護し、-N(H)Prot が -NHCbzである式IVの化合物を得る。
式IIIの化合物はいかなる適当な手段でも生成することができる。例えば、米国特許第5,994,559号は、エポキシド中間体の開環による式IIIの化合物の合成を報告する。あるいは、式IVの化合物(式中、R1 =メチルおよび Prot = Cbz)は、例えば、上記され、または、下のスキーム2に例示されるように、モナチンから生成することができるが、他の有用なR1およびProtを有する式IVの化合物を同様に生成することができる。
エステル化およびラクトン化転換を行うために上で例示した試薬に加えて、これらの転換を行うための他の有用な試薬および条件を用いることができ、例えば、[Greene, 上掲、特に 494-615頁(アミノ保護)];[M.B. Smith and J. March, March's Advanced Organic Chemistry, 5th ed., New York: John Wiley & Sons, Inc., 2001 ("March")、特に484-90頁(カルボン酸のエステル化、エステル交換)];および[R.C. Larock, Comprehensive Organic Transformations, 2d ed., John Wiley & Sons, Inc.: New York (1999) ("Larock")、特に、1861-1927頁(ラクトン生成)および1932-41 頁(カルボン酸のエステル化)]に記載されている。
式IVaの化合物が式IVの化合物から他の立体異性体の除去によって「生成される」ことは、当業者には明らかである。すなわち、式IVの化合物が式IVaの化合物および式IVbの化合物の混合物(例えば、式IVaの化合物および式IVbの化合物のラセミ混合物)であることが分かっていれば、Vbに対するIVbの優先転換が非水和立体異性体における出発ラセミ体の豊富化につながる。かくして、出発ラセミ体IVは、すでに説明した命名法を用いれば、「式IVaの化合物」となる。
当業者は、あるとしてもわずかな立体特異的反応しか立体異性体間を完全に区別しないことも理解している。かくして、式IVの化合物の加水分解が式Va:
式IVの化合物の加水分解は酵素的または非酵素的に達成することができる。酵素加水分解は、例えば、カルボキシルエステルを基質として(式IVで示されるカルボキシルエステルで例示される)および、生成物としてカルボシラート(式Vaで例示される)を生成するためのH2Oを用いる反応を触媒することができる加水分解酵素 (E.C. 3.-.-.-) のごとき酵素を用いて達成することができる。加水分解酵素の例は、エステラーゼ(EC 3.1.-.-)、リパーゼおよびプロテアーゼである。いくつかの具体例において、前記酵素は、ChiroCLEC-BL (Altus Biologics, Inc., Cambridge, MA)である。いくつかの具体例において、前記酵素は、スブチリシンプロテアーゼ活性(EC 3.4.21.62)を有し、式VIのエステルを選択的に加水分解できる酵素のごとき、セリンエンドペプチダーゼ(E.C. 3.4.21.-)である。
いくつかの具体例において、スブチリシンプロテアーゼ活性を有する酵素は、バシラス・リケニホルミス (Bacillus licheniformis) スブチリシン A (ABL) または スブチリシン・カールスベルグ (Carlsberg) 酵素であり得る。いくつかの具体例において、前記酵素は、遊離酵素、例えば、ABL 遊離酵素、ALCALASER (Novozymes A/S, Denmark)である。他の具体例において、実施例4に示すように、前記酵素は、商品名ChiroCLEC-BL (Altus Biologics, Inc., Cambridge, MA)で販売されている酵素のごとき、架橋ABL結晶である。さらに別の具体例において、前記酵素は、スブチリシン活性を有する酵素の混合物(例えば、ALCALASER と ChiroCLEC-BL)であり得る。スブチリシンプロテアーゼ活性を有する酵素は、配列番号:1に記載のアミノ酸配列を含み得る。いくつかの具体例において、配列番号:1の変異体を使用できる。適当な変異体は、配列番号:1と同様の基質特異性およびスブチリシンプロテアーゼ活性を保有するものである。スブチリシンプロテアーゼ活性を有する適当な酵素の他の例は、配列番号:2〜4を含む。
上記のように、式IVの立体特異的加水分解において式Vbの化合物を生成する意図にあって、式Vaの化合物も生成混合物中に存在することがある。好ましくは、式Vaの化合物は式Vbの化合物よりも少ない量で存在する。例えば、式Vbの化合物の生成量、すなわち、(S,S)立体異性体の生成量は、少なくとも、式VaおよびVbの化合物の全生成量の60%、70%、75%、80%、85%、90%、93%、95%、97%、98%、99%または99.5%を構成する。
いくつかの具体例において、本発明は、さらに、式Vbの化合物を式IVaの化合物から分離することを含む。カルボン酸のそれらに対応するエステルからのそのような分離は当該分野で周知であり、通常業務とみなされている。例えば、前記分離は、有機溶媒と水または水性溶液との間で分配することによるごとく、前記酸の水性溶液中のより高い溶解性を利用することができる。[D.L. Pavia et al., Introduction to Organic Laboratory Techniques, 3d ed., Saunders College Publishing: Philadelphia, PA (1988)、特に、427-32頁]を参照せよ。そのような分配(分離および抽出)に普通に用いる有機溶媒は当業者に周知であり、ペンタン、ヘキサン、ベンゼン、トルエン、石油エーテル、リグロイン、エーテル、塩化メチレン、クロロホルム、四塩化炭素、酢酸エチルなどが含まれる。
代替的に、カルボン酸とエステルとの異なる反応性を利用して([March and Larock, 上掲]を参照)、式Vbまたは式IVaの化合物のうちの1つを、他方から分離する前に、異なる化合物へと変換することができる。例えば、水素化ホウ素は、エステルよりも相当容易にカルボン酸を還元する(例えば、[Marchの1544−46頁]を参照)。かくして、式Vbの化合物を対応するアルコールに選択的に還元する水素化ホウ素を用いる還元条件に、その混合物を付すことができる。ついで、このアルコールを、クロマトグラフィーのごとき標準技術によって式IVaの化合物から分離できる。本発明は、式IVaの化合物またはそれから誘導された化合物を、式IVbの化合物またはそれから誘導された化合物から上記の選択的加水分解によって分離するそのようないかなる分離をも、立体異性体的に純粋なまたは立体異性体的に豊富化された(R,R)−または(S,S)−モナチンを得るための手段として、「式Vbの化合物を式IVaの化合物から分離すること」と考える。
いくつかの具体例において、本発明は、さらに、式IVaの化合物を式Ia:
いくつかの具体例において、式IVaの化合物の式Iaの化合物への転換は、
(a)式IVaの化合物を加水分解して、式VIa:
(a)式IVaの化合物を加水分解して、式VIa:
加水分解に有用な試薬は当業者に周知であり、例えば、[March, 上掲、 特に469-74頁];および[Larock, 上掲、特に1959-68頁]に記載されている。加水分解に有用な試薬の例は、LiOH、NaOH、KOHおよびBa(OH)2のごときIAおよびIIA族アルコキシドを含む。他の有用な試薬はSm/I2/MeOHおよびMgI2を含む。メチルエステルも、例えば、(Na2CO3 もしくは K2CO3)/MeOH/H2O、NaO2/DMSO、KSCN/DMF、EtSH/(AlCl3 もしくは AlBr3)、Me2S/(AlCl3 もしくは AlBr3)、(Li もしくは Na)SeCH3/DMF、NaCN/HMPA、(LiI もしくは LiBr)/DMF、LiI/(NaOAc もしくは NaCN)/DMF、BCl3、AlI3 または MeSiCl3で切断することができる。三級アルキルエステルは、例えば、2 KOtBu、Mg/MeOH または Me3SiCl/NaI/H2Oで切断することができる。ラクトンは、例えば、(Li もしくは Na)SMe、KSeO3K または NaSeCH2Phで切断することができる。いくつかの具体例において、加水分解はMeOHまたはEtOHのごときアルコール性溶媒中でKOHを用いて行う。
脱保護に有用な試薬は、保護基の特性に依存し、当業者に周知であり、例えば、[Greene, 上掲]に記載されている。例えば、上で列記した様々なアミノ保護基は以下:H2/Raney (Ni); H2/Pt、pH 2-4; H2/Pd; H2/Lindlar; および H2/Rhの一以上で除去することができる。いくつかの具体例において、Cbz−保護アミノ基の脱保護はPd/C上のH2を用いて達成する。
水素化によって切断される保護基に加えて、酸もしくは塩基によって加水分解的に切断できるか、または、還元によって切断できる窒素のためのいかなる保護基を採用できるであろう。酸化的方法で切断される保護基はあまり適当ではない、インドール核が酸化する疑いのためである。
代替的に、式IVaの化合物の式Iaの化合物への転換は
(a)式IVaの化合物を脱保護して式VIIIa:
(a)式IVaの化合物を脱保護して式VIIIa:
(b)式VIIIaの化合物を加水分解して、式Iaの化合物を生成する
ことによって達成することができる。加水分解および脱保護に有用な試薬は、加水分解が脱保護前に実行される転換について上記したものである。しかしながら、加水分解する前に脱保護することは望ましくないラクタム生成につながることがある。
いくつかの具体例において、本発明は、さらに、式Vbの化合物を式Ib:
いくつかの具体例において、式Vbの化合物の式Ibの化合物への転換は、
(a)式Vbの化合物を脱保護して、式VIIb:
(a)式Vbの化合物を脱保護して、式VIIb:
代替的に、式Vbの化合物の式Ibの化合物への転換は、
(a)式Vbの化合物を加水分解して式VIb:
(a)式Vbの化合物を加水分解して式VIb:
(b)式VIbの化合物を脱保護して、式Ibの化合物を生成する
ことによって達成することができる。加水分解および脱保護に有用な試薬は、加水分解が脱保護前に実行される転換について上記したものである。しかしながら、加水分解する前に脱保護することは、望ましくないエピ化を抑制する助けとなる。
ことによって達成することができる。加水分解および脱保護に有用な試薬は、加水分解が脱保護前に実行される転換について上記したものである。しかしながら、加水分解する前に脱保護することは、望ましくないエピ化を抑制する助けとなる。
本発明の特定の工程を以下の実施例に例示する。多数の具体例がここに開示されるが、本発明の他の具体例は、本明細書の全体の査読から当業者に明らかになるであろう。ここの記載から理解されるべきことは、本発明は、本発明の概念および範囲から逸脱することなく様々な局面において修正できることである。したがって、図面および記載の全体は本質的に例示的であって、限定的なものでないと見なされるべきである。
分析方法:以下の方法を下記実施例に用いた。
逆相HPLC:
カラム :Varian Microsorb-MVTM 100 Å C18 4.6 mm x 150 mm
移動相 :ACN:H2O (0.1% TFA) = 10:90、6 分間; 勾配 ACN 10% から 90% まで 25 分間
保持時間:モナチン (I) 10.6 分; モナチン ラクトン/メチル エスエル (III) 13.5分; Cbz-保護 モナチン ラクトン/メチル エスエル (IV) 18.5 分; (モナチン純品 8.3 分)
カラム :Varian Microsorb-MVTM 100 Å C18 4.6 mm x 150 mm
移動相 :ACN:H2O (0.1% TFA) = 10:90、6 分間; 勾配 ACN 10% から 90% まで 25 分間
保持時間:モナチン (I) 10.6 分; モナチン ラクトン/メチル エスエル (III) 13.5分; Cbz-保護 モナチン ラクトン/メチル エスエル (IV) 18.5 分; (モナチン純品 8.3 分)
全ての反応中間体についてのキラルHPLC:
カラム :ChiraPak AD, 4.6 mm x 250 mm
移動相 :Hexane:IPA (0.1% TFA) = 60:40; 1 mL/分, 220 および 273 nmにてモニター
カラム :ChiraPak AD, 4.6 mm x 250 mm
移動相 :Hexane:IPA (0.1% TFA) = 60:40; 1 mL/分, 220 および 273 nmにてモニター
モナチンについてのキラルHPLC:
カラム :Chirobiotic T カラム 4.6 x 250 mm
移動相 :メタノール:AcOH:NH4OH = 100:0.2:0.05; 1 mL/分, 220 および 279 nmにてモニター
カラム :Chirobiotic T カラム 4.6 x 250 mm
移動相 :メタノール:AcOH:NH4OH = 100:0.2:0.05; 1 mL/分, 220 および 279 nmにてモニター
実施例1:モナチンメチルエステル生成
1a.HClガスで飽和させたメタノール中室温にてメチル化を行った。100gモナチン(I)を1.6L無水メタノール中(すなわち、約6%(m/v)の濃度に)溶解した。混合物を室温にて22時間攪拌した。HPLCは、反応が完了したことを示した。HClおよび溶媒を室温にて蒸発させた。残渣を、引き続き実施例2において精製せずに用いた。生成物はジメチルエステル(II.1)およびラクトン/モノメチルエステル(III)の混合物であった。
1a.HClガスで飽和させたメタノール中室温にてメチル化を行った。100gモナチン(I)を1.6L無水メタノール中(すなわち、約6%(m/v)の濃度に)溶解した。混合物を室温にて22時間攪拌した。HPLCは、反応が完了したことを示した。HClおよび溶媒を室温にて蒸発させた。残渣を、引き続き実施例2において精製せずに用いた。生成物はジメチルエステル(II.1)およびラクトン/モノメチルエステル(III)の混合物であった。
1b.1aの工程を、約10%(m/v)の濃度にて2時間の反応時間でも行うことができる。
実施例2:カルボキシベンゾイル保護
2a.実施例1aからの粗生成物(II.1およびIIIの混合物)を1L酢酸エチルに溶解し、ついで、2.0L飽和NaHCO3を添加した。この混合物のpHを9.0に調節した。4℃にて、1当量のCbzCl (48.9mL)を30分間かけて滴下した。反応は3時間未満で行った。有機層を分離し、水層をEtOAc(2×500mL)で抽出した。合わせたEtOAc層を飽和NaHCO3で洗浄し、Na2SO4上で乾燥し、蒸発させて150gの生成物(II.2およびIVの混合物)を得た。
2a.実施例1aからの粗生成物(II.1およびIIIの混合物)を1L酢酸エチルに溶解し、ついで、2.0L飽和NaHCO3を添加した。この混合物のpHを9.0に調節した。4℃にて、1当量のCbzCl (48.9mL)を30分間かけて滴下した。反応は3時間未満で行った。有機層を分離し、水層をEtOAc(2×500mL)で抽出した。合わせたEtOAc層を飽和NaHCO3で洗浄し、Na2SO4上で乾燥し、蒸発させて150gの生成物(II.2およびIVの混合物)を得た。
2b.2aの工程を、約20%(m/v)の基質濃度にて1時間の反応時間でも行うことができる。
実施例3:ラクトン化
3a.実施例2aからの生成物を300mLメタノールおよび300mLトルエンに溶解した。7.0gのTsOHを添加した。この混合物を65℃にて3時間攪拌した。HPLCは、ラクトン化が完了したことを示した。溶媒を蒸発させ、残渣を、塩化メチレンおよび酢酸エチル(9:1)で溶出する1kgのシリカゲルカラムで3回精製した。85.9g(出発物質からの全収率58.8%、RP−HPLCによる純度89.0%)の(IV,R1はメチル)を得た。
3a.実施例2aからの生成物を300mLメタノールおよび300mLトルエンに溶解した。7.0gのTsOHを添加した。この混合物を65℃にて3時間攪拌した。HPLCは、ラクトン化が完了したことを示した。溶媒を蒸発させ、残渣を、塩化メチレンおよび酢酸エチル(9:1)で溶出する1kgのシリカゲルカラムで3回精製した。85.9g(出発物質からの全収率58.8%、RP−HPLCによる純度89.0%)の(IV,R1はメチル)を得た。
3b.3aの工程は、典型的に、約25%(m/v)の基質濃度にて、10%TsOHを添加した1:1メタノール:トルエン中で行う。この工程は、トルエン中、約10−20%(m/v)の基質濃度範囲にて1%TsOHを添加して行うこともでき、分解が少ない傾向にある。この工程の変形を用いて、反応を室温にて15時間行い、生成物をトルエンから沈殿させて、カラムクロマトグラフィーの必要を排除する。この工程の変形は、典型的に、70%の収率(モナチンから)を生じ、生成物は、HPCLにより98%純度である。
実施例4:酵素加水分解
実施例3a(IV、R1 はMeであり、 −N(H)Prot は −NHCbzである)を、640mLのACNおよび2.04Lのリン酸バッファー、0.3M、pH7.5に溶解した。60mLのCLEC-BL (lot: Bl03010A)を添加した。反応物を室温にて6.5時間攪拌した。HPLCは、加水分解が50%に近かったことを示した。
実施例3a(IV、R1 はMeであり、 −N(H)Prot は −NHCbzである)を、640mLのACNおよび2.04Lのリン酸バッファー、0.3M、pH7.5に溶解した。60mLのCLEC-BL (lot: Bl03010A)を添加した。反応物を室温にて6.5時間攪拌した。HPLCは、加水分解が50%に近かったことを示した。
溶液をpH2.0に酸性化し、ついで、塩化メチレンで抽出した(4×0.7L)。合わせた塩化メチレン層をNa2SO4上で乾燥した。溶液を蒸発させた。残渣を1.2L塩化メチレンおよび1.2L飽和NaHCO3に溶解した。
相分離は、Vbの凝集のため明確ではなかった。有機相を分離し、固−液相を塩化メチレンで洗浄した(2×200mL)。HPLCは、固相には依然として5%を超えるIVaを含有されていることを示した。液−固相をpH2.0に調節し、500mLの塩化メチレンを添加した。乳白濁の懸濁液が形成され、固体は再溶解できなかった。この乳白濁懸濁液を調節して10に戻した。有機相を分離した。合わせた有機相を200mLの飽和NaHCO3で洗浄し、蒸発させて、42gのIVa(R,R)を得た。固−液相をろ過した。固体を乾燥して、40.0gのVb(S,S)ナトリウム塩を得た。
4b.上記したように、4aの工程は85gの出発物質を用いて行った。この工程はより大規模、例えば、500gの出発物質を用いて、19時間の反応時間で行うこともできる。塩化メチレン(2.5L)を添加した後、ろ過によって酵素を除去する。水相と有機相とを分離し、水相を塩化メチレンで抽出する(3.25L)。合わせた有機相をさらなる加工をなにもせずに次の段階に用いる。代替的に、合わせた有機相を減圧濃縮して、粘稠な油を得る。その油をトルエンで処理して、純粋なIVa(R,R)の沈殿物を生じるが、ある程度の収率の損失がある。
塩化メチレン(2.5L)を水相に添加し、10%水性HCl(約1.5L)を用いてpHを2に調節した。生成物Vb(S,S)が沈殿し、ろ過で収集する。
本発明者のうちの何人かの者が実施例4aの結果を再現することができなかった点で、実施例4bの工程は、4aのものよりも好ましいと考えられる。
実施例5:式Ibへの加水分解および水素化
5a.実施例4aからの生成物Vbを150mLのエタノールに溶解し、ついで、400mLの2NのNaOHを添加した。混合物を室温にて3時間攪拌した。HPLCは、加水分解が完了したことを示した。この溶液のpHを1.5に調節し、塩化メチレンで抽出した(800mLおよび400mL)。塩化メチレン抽出物をNa2SO4上で乾燥し、蒸発させた。(ラクトン化を回避するために、化合物は完全に乾燥させなかった。)二酸VIaを11.6Lのメタノールに溶解した。溶液をN2ガスでパージし、ついで、3.2gの10%Pd/Cを添加した。混合物をH2ガスでパージし、ついで、大気圧H2下で3時間攪拌した。HPLCは、水素化が完了したことを示した。触媒をろ過除去した。溶液を400mLにまで濃縮し、ついで、1.6LのEtOAcを攪拌しながら添加した。白色沈殿が生成し、それをろ過し、乾燥して、22.4gのIb、すなわち、(S,S)−モナチンを得た。
5a.実施例4aからの生成物Vbを150mLのエタノールに溶解し、ついで、400mLの2NのNaOHを添加した。混合物を室温にて3時間攪拌した。HPLCは、加水分解が完了したことを示した。この溶液のpHを1.5に調節し、塩化メチレンで抽出した(800mLおよび400mL)。塩化メチレン抽出物をNa2SO4上で乾燥し、蒸発させた。(ラクトン化を回避するために、化合物は完全に乾燥させなかった。)二酸VIaを11.6Lのメタノールに溶解した。溶液をN2ガスでパージし、ついで、3.2gの10%Pd/Cを添加した。混合物をH2ガスでパージし、ついで、大気圧H2下で3時間攪拌した。HPLCは、水素化が完了したことを示した。触媒をろ過除去した。溶液を400mLにまで濃縮し、ついで、1.6LのEtOAcを攪拌しながら添加した。白色沈殿が生成し、それをろ過し、乾燥して、22.4gのIb、すなわち、(S,S)−モナチンを得た。
5b.実施例5aに記載された転換は、最初に脱保護し、ついで、加水分解することによって実行することもできる。生成物VbをMeOHに溶解し、基質濃度を約10%(m/v)にした。Pd/C(10% Pd/Cの50%湿潤ペーストの10%(m/m))を添加し、混合物を3バールH2および40℃にて1時間水素化した。混合物を25℃に冷却し、10%水性KOH(4当量)を添加し、混合物を30分間攪拌した。触媒をろ過によって除去し、pHをAcOHで7.5に調節した。混合物を減圧下で濃縮し、EtOHで処理した(EtOH中モナチンの10%溶液を作製した)。ゲルが生成し、それをヌッチェ加圧ろ過によりろ過し、真空オーブン中で乾燥した。残りの沈殿を3回EtOHで洗浄し、Ibをモノカリウム塩として回収した。
実施例6:式Iaの加水分解および水素化
6a.実施例5aに記載したのと同じ工程を用いて、実施例4aからの生成物IVaを20.4gのIa、すなわち、(R,R)−モナチンに転換した。
6a.実施例5aに記載したのと同じ工程を用いて、実施例4aからの生成物IVaを20.4gのIa、すなわち、(R,R)−モナチンに転換した。
6b.実施例5aに記載の転換(VbからIb)は、(IVaからIa)と同じように実行することができる。10%水性KOH(4当量)を塩化メチレン(5L)中の生成物IVa(酵素加水分解の後、実施例4bに記載するように、単離する)に添加し、基質濃度は約10%であり、二相混合物を生成する。反応混合物を30分間25℃にて攪拌する。液相を分離し、AcOHを用いて、pHを8−8.5に調節する。MeOH (2.5 L) およびPd/C(10% Pd/Cの50%湿潤ペーストの10% (m/m))を添加し、3バールH2および40℃にて1時間水素化した。触媒をろ過によって除去し、混合物を減圧下で濃縮し、EtOHで処理した(EtOH中モナチンの10%溶液を作製した)。ゲルが生成し、それをヌッチェ加圧ろ過によりろ過し、真空オーブン中で乾燥した。残りの沈殿を3回EtOHで洗浄し、Iaをモノカリウム塩として回収した。
本発明を今まで完全に説明してきたが、本発明の範囲やそのいかなる具体例にも影響を与えることなく、条件、組成および他のパラメータの広範かつ等価な範囲内で、同じことが行えることを当業者は理解するであろう。ここに引用される全ての特許および刊行物はここに出典明示して、それらの全てが完全に本明細書に含まれるものとみなされる。
Claims (25)
- 前記酵素が、ChiroCLEC-BL、ALCALASE、およびそれらの組合せから選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が配列番号:1に記載のアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の方法。
- R1がメチルである、請求項1に記載の方法。
- -N(H)Protが-NHCbzである、請求項1に記載の方法。
- (a)モナチンのS,SおよびR,R立体異性体を含むモナチン組成物を、前記モナチンのS,SおよびR,R立体異性体のエステル誘導体を生成するのに適当な条件下で反応させ;
(b)S,Sエステル誘導体またはR,Rエステル誘導体のいずれか1つを立体特異的に加水分解して、酸誘導体を生成し;ついで、
(c)前記エステル誘導体を前記酸誘導体から分離する
ことを含む方法。 - さらに、非ラクトン体の前記エステル誘導体をラクトン体の前記エステル誘導体へ転換するのに適切な条件下で前記エステル誘導体を反応させることを含む、請求項11に記載の方法。
- 前記S,Sエステル誘導体を、プロテアーゼ酵素を用いて立体特異的に加水分解する、請求項12に記載の方法。
- 前記プロテアーゼ酵素がスブチリシンプロテアーゼ活性を有する酵素である、請求項13に記載の方法。
- 前記プロテアーゼ酵素が、架橋バシラス・リケニホルミス (Bacillus licheniformis)スブチリシンA結晶、バシラス・リケニホルミス (Bacillus licheniformis)スブチリシンA遊離酵素、またはそれらの組合せである、請求項14に記載の方法。
- 前記酵素が、ChiroCLEC-BL、 ALCALASE、またはそれらの組合せである、請求項14に記載の方法。
- 前記酵素が、配列番号:1、配列番号:2、配列番号:3、または配列番号:4のアミノ酸配列を含む、請求項14に記載の方法。
- 前記プロテアーゼ酵素がChiroCLEC-BLである、請求項16に記載の方法。
- さらに、前記モナチン立体異性体上のアミン基を保護することを含む、請求項11に記載の方法。
- 前記分離したS,S誘導体または分離したR,R誘導体のうち少なくとも1つを水素化および加水分解する、請求項13に記載の方法。
- 前記R,R誘導体を水素化および加水分解し、前記R,R誘導体を加水分解前に水素化する、請求項20に記載の方法。
- 前記モナチン組成物が約6%(m/v)から約10%(m/v)の濃度範囲を有する、請求項11に記載の方法。
- 前記モナチン組成物が約10%(m/v)の濃度を有する、請求項22に記載の方法。
- 前記エステル誘導体を、トルエン、メタノールおよび10%トルエンスルホン酸を含む溶液中で反応させることを含む、請求項12に記載の方法。
- 前記エステル誘導体を、トルエンおよび1%トルエンスルホン酸を含む溶液中で反応させることを含む、請求項12に記載の方法。
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