JP2010246551A

JP2010246551A - 方法

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Publication number: JP2010246551A
Application number: JP2010121914A
Authority: JP
Inventors: Urk Hendrik Van; ヘンドリック、バン、アーク; David John Mead; デビッド、ジョン、ミード; Philip Harvey Morton; フィリップ、ハーベイ、モートン; Andrew John Cartwright; アンドリュー、ジョン、カートライト; Jason Cameron; ジェイソン、キャメロン; David James Ballance; デビッド、ジェームズ、バランス; Michel Gaston Joseph Grandgeorge; ミシェル、ガストン、ジョーゼフ、グランジョルジュ; Stephen Berezenko; スティーブン、ベレツェンコ; John Rodney Woodrow; ジョン、ロドニー、ウッドロー; Darrell Sleep; ダレル、スリープ
Original assignee: Novozymes Biopharma UK Ltd
Current assignee: Albumedix Ltd
Priority date: 1999-01-30
Filing date: 2010-05-27
Publication date: 2010-11-04
Anticipated expiration: 2020-01-31
Also published as: AU763899B2; WO2000044772A3; ATE416254T1; EP2048234A1; KR20020008114A; SG119194A1; EP2048234B1; US20150056654A1; WO2000044772A2; KR20050061612A; HK1042521B; JP5474661B2; US20090171070A1; KR100577493B1; EP1149163A2; AU2120700A; CA2359705A1; CN1810834A; DK2048234T3; CN1339065A

Abstract

【課題】高純度アルブミンの精製法であって、アルブミン（好ましくは、形質転換酵母によって発現され分泌されたもの）に一連のクロマトグラフィー段階を施してなる方法を提供する。
【解決手段】カチオン交換クロマトグラフィー、アニオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィーの段階を含む方法。アルブミン溶液中のニッケルの濃度を減少させる方法も、組換えアルブミンコード配列と同様であり、組換えアルブミンコード配列を発現する真菌細胞を培養することを含んでなり、この細胞の組換え発現アルブミンのマンノシル化能力が減少していることを特徴とする方法。
【選択図】なし

Description

発明の背景

発明の分野
本発明は、血清または血漿から抽出されたタンパク質であるヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、またはヒト血清アルブミンのアミノ酸配列をコードするヌクレオチドコード配列で生体を形質転換またはトランスフェクションすることによって産生した組換えヒトアルブミン（ｒＨＡ）、例えばトランスジェニック動物または植物を用いて産生したｒＨＡの精製法に関する。本明細書において、「アルブミン」という用語は、包括的にＨＳＡおよび／またはｒＨＡを指す。

背景技術
アルブミンは、重篤な火傷、ショックまたは失血の患者の治療に用いられる。これはまた、高等な真核細胞を生長させるのに用いられる培地を補足する目的でも、また薬理活性化合物であって、これらの多くは安定化する必要があるものの賦形剤としても用いられる。現在のところ、この産物の需要は、ヒト血液から抽出したアルブミンによって満足されている。抽出および分離技術の例としては、カチオン交換体の使用についてＪＰ０３／２５８７２８号明細書、アニオン交換体の使用についてＥＰ４２８７５８号明細書、および加熱、塩添加および透析濾過の使用についてＥＰ４５２７５３号明細書に開示されているものが挙げられる。

微生物におけるｒＨＡの産生は、ＥＰ３３０４５１号明細書およびＥＰ３６１９９１号明細書に開示されている。ｒＨＡについての精製法は、マトリックス由来線量の除去であるＷＯ９２／０４３６７号公報、酵母由来着色物質の除去であるＥＰ４６４５９０号明細書、ｒＨＡのアルカリ沈澱およびその後の親油性相への応用であるＥＰ３１９０６７号明細書、および数種類の完全な精製法を含むＷＯ９６／３７５１５号公報に開示されている。

本発明は、ＷＯ９６／３７５１５号公報に記載の方法およびＵＳ５７２８５５３号明細書に記載の方法の集中的開発の結果を表しており、上記特許明細書の内容は、その開示の一部として本明細書に引用される。

本発明の第一の態様は、アルブミン溶液の精製法であって、ｐＨが８．０〜９．５でありかつ導電率が１〜７５mS・cm^-1の範囲である第一のアルブミン溶液に、アルブミンに関してネガティブモードで行いかつ固定化ジヒドロキシボリル基を含んでなるアフィニティーマトリックスを用いるアフィニティークロマトグラフィー段階を施すことによって、精製アルブミン溶液を得る段階を含んでなる方法を提供する。

発明の具体的説明

好ましくは、第一のアルブミン溶液のｐＨは、ｐＨ８．０〜９．０であり、更に好ましくはｐＨ８．３〜ｐＨ８．６である。第一のアルブミン溶液を上記ｐＨ範囲内のｐＨを有する緩衝液で緩衝するのが好ましい。

好ましくは、緩衝液は、濃度が１０〜５００mM、好ましくは２５〜２００mM、更に好ましくは５０〜１５０mMのアミノ酸を含んでなる。好ましくは、アミノ酸はグリシンである。

好ましくは、緩衝液は、濃度が０〜５００mM、好ましくは２５〜２００mM、更に好ましくは５０〜１５０mMの一価カチオンを含んでなる。好ましくは、一価カチオンはナトリウムであり、好ましくはＮａＣｌの形態である。従って、好ましい態様では、緩衝液は、濃度が０〜５００mM、好ましくは２５〜２００mM、更に好ましくは５０〜１５０mMのＮａＣｌを含んでなる。

好ましくは、緩衝液は、濃度が５〜２５０mM、好ましくは１０〜１００mMの二価カチオンを含んでなる。好ましくは、二価カチオンはカルシウムであり、好ましくはＣａＣｌ_２の形態である。従って、好ましい態様では、緩衝液は、濃度が５〜２５０mM、好ましい０〜１００mMのＣａＣｌ_２を含んでなる。

特に好ましい態様では、第一のアルブミン溶液および／または緩衝液は、約１００mMのグリシン、約１００mMのＮａＣｌおよび約５０mMのＣａＣｌ_２を含んでなる。

好ましくは、第一のアルブミン溶液および／または緩衝液の導電率は５０mS・cm^-1であり、更に好ましくは１８〜２２mS・cm^-1である。

有利には、第一のアルブミン溶液のアルブミンの濃度は２０〜１２０g・L^-1の範囲、好ましくは７０〜１２０g・L^-1、更に好ましくは１００±１０g・L^-1である。好ましくは、アルブミンは０．５カラム容積未満で、更に好ましくは０．３５カラム容積未満で装填される。

マトリックスはボロン酸を含んでなるのが適当である。本明細書で用いられる「酸」という用語は、その塩を包含する。ボロン酸は、トリアジンまたは置換トリアジンによって例えばモノボロトリアジンまたはジボロトリアジンを形成して、アガロースのような支持体に結合するのが有利である。好ましくは、ボロン酸は、アミノフェニルボロン酸である。

脂肪族および置換芳香族リガンドのようなフェニルボロネートの代替物を記載している公表文献としては、Adamek, V. et al., (1992), J. Chrom., 625, 91-99、Singhal, R.P. et al., (1991), J. Chrom., 543, 17-38、およびLiu, X. et al., (1994), 687, 61-69が挙げられる。

アフィニティークロマトグラフィー段階の後に、精製アルブミン溶液に更に精製、好ましくは更にクロマトグラフィー精製を施すのが適当である。好ましくは、アルブミンは、カチオン交換クロマトグラフィーおよび／またはアニオン交換クロマトグラフィーを用いて更に精製される。カチオンおよびアニオン交換段階の順序は、それらの精製目的を実行しながら入れ換えることができる。作業上の観点からは、一層良好な組合せ法は、カチオン交換クロマトグラフィーの後にアニオン交換クロマトグラフィーを行う方法である。

本発明の第一の態様の方法によって製造された精製アルブミン溶液に、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整（好ましくはｐＨ２．０またはｐＨ４．０より大きいｐＨ、および好ましくはｐＨ１０．０未満のｐＨへ）、還元剤処理（例えば、ＥＰ５７０９１６号明細書に記載の処理）、脱色処理（例えば、木炭による処理）、加熱（殺菌など）、冷却、またはコンディショニング、ヒトへの非経口投与のための処方、または最終容器へ入れることの１つ以上を行うのが適当である。

非経口投与としては、静脈内投与、皮下投与、および筋肉内投与が挙げられる。アルブミンは、薬理活性タンパク質の賦形剤として働くことができ、これは非経口投与することができる。

「最終容器」とは、製造業者の下から出て、病院および薬局のような取引先に配送される容器である。

本発明の第二の態様は、アルブミン溶液の精製法であって、カチオン交換クロマトグラフィーおよびアニオン交換クロマトグラフィーを含んでなり、場合によっては、このようにして精製したアルブミン溶液に、最終容器に入れる前に、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整（好ましくはｐＨ２．０またはｐＨ４．０より大きいｐＨ、および好ましくはｐＨ１０．０未満のｐＨへ）、還元剤の添加、脱色処理（例えば、木炭による処理）、加熱（殺菌など）、冷却、またはコンディショニングの１つ以上を行うが、更に精製、特に更にクロマトグラフィー精製を行わない、方法を提供する。

カチオン交換クロマトグラフィー段階はアニオン交換クロマトグラフィーの後であっても、またはその逆であってもよい。カチオン交換クロマトグラフィー段階の後にアニオン交換クロマトグラフィー段階を行うのが好ましい。

アニオンおよびカチオン交換段階の間には、他の精製段階はないのが好ましいが、アルブミンに上記のように緩衝液交換を施すことができる。

コンディショニングとは、工程の次段階または最終使用のためのアルブミンの環境または条件を改良する任意の非精製処理を意味する。コンディショニングとしては、オクタノエートおよび／または他の脂肪酸、例えば、Ｃ_６またはＣ_１０脂肪酸、またはアセチルトリプトファン酸またはマンデル酸ナトリウムのようなアルブミン安定剤の添加を挙げることができる。コンディショニングとしては、塩の添加などを挙げることもでき、アルブミンよの導電率の調整を包含することができる。

本発明の第一および第二の態様のカチオン交換段階は、アルブミンに関してネガティブまたはポジティブモードで行うことができる。好ましい態様では、カチオン交換段階はアルブミンに関してネガティブモードで行われる。条件は、グリコシル化アルブミンが非グリコシル化アルブミンより強力にカチオン交換材料に結合するように選択するのが有利である。

本発明の第一および第二の態様のカチオン交換クロマトグラフィー段階は、SP-Sepharose FF、SP-Spherosil、CM-Sepharose FF、CM-Cellulose、SE-Cellulose、またはS-Spheradexのような市販のカチオン交換マトリックスを用いることができる。カチオン交換段階では、固定化スルホプロピル置換基をカチオン交換体として含んでなるマトリックスを用いるのが好ましい。

カチオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のｐＨは好ましくは４．５〜６．０であり、更に好ましくはｐＨが５．０〜５．６であり、更に一層好ましくはｐＨが５．２〜５．４である。

カチオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のアルブミン濃度は、好ましくは１０〜２５０g・L^-1であり、好ましくは２０〜７０g・L^-1であり、更に好ましくは５０±１０g・L^-1である。

カチオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のオクタノエートイオン濃度は、好ましくは２〜１５mMであり、好ましくは５〜１０mMであり、更に好ましくは６〜９mMである。

カチオン交換段階の前に、アルブミン溶液に、(i)ｐＨ調整（好ましくはｐＨ２．０またはｐＨ４．０より大きいｐＨ、および好ましくはｐＨ１０．０未満のｐＨへ）、(ii)濃縮、(iii)透析濾過、または(iv)オクタノエートおよび／または他の脂肪酸、例えばＣ６またはＣ１０脂肪酸、またはアセチルトリプトファン酸またはマンデル酸ナトリウムのような安定剤を添加することによるコンディショニングの行程の１つ以上を行うのが好都合である。あるいは、または更に、アルブミン溶液に、緩衝液交換、希釈、透析、透析濾過、還元剤による処理、脱色処理（例えば、木炭による処理）、加熱、冷却、またはコンディショニングの１つ以上を行うのが適当である。

一般に、あらゆる改質は、除去ではなく添加を包含する。好ましくは、アルブミン溶液のｐＨは、酢酸を添加することによって調整される。好ましくは、アルブミン溶液は、限外濾過によって濃縮される。

本発明の第一および第二の態様のアニオン交換クロマトグラフィー段階では、Q Sepharose-FF、QMA-Spherosil、DEAE-Spherodex、Q-Hyper D、DEAE-セルロース、QAE-セルロース、またはTMAE、DMAEまたはDEAE Fractogelのような市販のアニオン交換マトリックスを用いることができる。好ましくは、アニオン交換段階では、固定化ジアルキルアミノアルキル（例えば、ジエチルアミノエチル）置換基をアニオン交換体として含んでなるマトリックスが用いられる。

好ましい態様では、本発明の第一および第二の態様のアニオン交換クロマトグラフィー段階は、アルブミンに関してネガティブモードで行われる。

好ましくは、ネガティブモードのアニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液は、ｐＨが４．０〜５．２であり、更に好ましくはｐＨが４．２〜４．９であり、更に一層好ましくはｐＨが４．５〜４．７である。

好ましくは、アニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液は、導電率が４．０mS・cm^-1未満であり、更に好ましくは導電率が１．０±０．５mS・cm^-1であり、更に一層好ましくは１．０５±０．１mS・cm^-1である。

アニオン交換段階の前に、アルブミン溶液にｐＨ調整および／または水による希釈を行うのが好都合である。アルブミン溶液のｐＨを酢酸で調整するのが好ましい。

もう一つの好ましい態様では、本発明の第一および第二のアニオン交換クロマトグラフィー段階は、アルブミンに関してポジティブモードで行われる。

ポジティブモードのアニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液は、ｐＨが６．０〜８．０であるのが適当であり、好ましくはｐＨが６．５〜７．５であり、更に一層好ましくはｐＨが６．８〜７．２である。アルブミン溶液は、オルトリン酸イオンを用いてｐＨ調整するのが好ましい。

好ましい態様では、アルブミン濃度は１０〜１００g・L^-1であり、好ましくは２５〜８０g・L^-1であり、最も好ましくは３０〜６０g・L^-1である。好ましくは、アルブミン溶液の導電率は１．０〜２．０mS・cm^-1であり、好ましくは１．２〜１．６mS・cm^-1である。

アルブミンは、リン酸塩、例えばリン酸ナトリウム２０〜９０mM、好ましくは３０〜７０mM、更に好ましくは３５〜６５mM含んでなる緩衝液でアニオン交換体から溶出するのが適当である。好ましくは、アルブミンは、ｐＨ６．０〜８．０、好ましくはｐＨ６．５〜７．５の緩衝液を用いてアニオン交換体から溶出される。

本発明の第一および第二の態様の方法では、醗酵、一次分離、セントレートコンディショニング(centrate conditioning)、カチオン交換クロマトグラフィー、好ましくはスルホプロピル置換基をカチオン交換体として用いるカチオン交換クロマトグラフィー、アニオン交換クロマトグラフィー、好ましくはジエチルアミノアルキル置換基をアニオン交換体として用いるアニオン交換クロマトグラフィー、またはアフィニティークロマトグラフィー、好ましくは固定化アルブミン特異的色素、好ましくはCibacron Blue型の色素を含んでなるアフィニティーマトリックスを用いるアフィニティークロマトグラフィーの段階の１つ以上を先に行うのが特に好ましい。

本発明の好ましい態様では、アルブミンの精製法であって、
(a)アルブミン溶液に、アルブミンに関してポジティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(b)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集め、
(c)カチオン交換溶出物にアルブミンに関してポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(d)アルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、
(e)アニオン交換溶出物にアルブミンに関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィーを施し、
(f)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(g)アフィニティークロマトグラフィー溶出物に、アルブミンに関してネガティブモードでかつ糖包合体(glycoconjugates)（グリコシル化アルブミンおよび／または糖タンパク質）に関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィー段階を施し、
(h)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(i)アフィニティークロマトグラフィー溶出物に、アルブミンに関してネガティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(j)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集め、
(k)カチオン交換溶出物に、ネガティブモードまたはポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(l)アニオン交換段階をネガティブモードで行う場合にはアルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、またはアニオン交換段階をポジティブモードで行う場合にはアニオン交換溶出物をアニオン交換マトリックスから溶出させる
段階を含んでなり、
必要に応じて、それぞれの精製段階のいずれかを行う前または後に、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整（好ましくはｐＨ２．０またはｐＨ４．０より大きいｐＨ、および好ましくはｐＨ１０．０未満のｐＨへ）、還元剤による処理、脱色処理（例えば、木炭による処理）、加熱（殺菌など）、冷却、またはコンディショニングの１つ以上を行うことを特徴とする、方法が提供される。

従って、精製段階は、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整、還元剤による処理、脱色処理、加熱、冷却、またはコンディショニングによって分離されまたは分離されないことがある。

任意の段階をアルブミンについてネガティブモードで行うときには、洗浄液を溶出物と共に集めることができる。

本発明のもう一つの好ましい態様では、アルブミンの精製法であって、
(a)アルブミン溶液に、アルブミンに関してポジティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(b)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集め、
(c)カチオン交換溶出物に、アルブミンに関してポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(d)アルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、
(e)アニオン交換溶出物に、アルブミンに関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィー段階を施し、
(f)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(g)アフィニティークロマトグラフィー溶出物に、アルブミンに関してネガティブモードでかつ糖包合体(glycoconjugates)に関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィー段階を施し、
(h)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(i)アフィニティーマトリックス溶出物に、アルブミンに関してネガティブまたはポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(j)アニオン交換段階をネガティブモードで行う場合にはアルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、またはアニオン交換段階をポジティブモードで行う場合には、アニオン交換マトリックスからアニオン交換溶出物を溶出させ、
(k)アニオン交換クロマトグラフィー段階によって精製したアルブミン溶液に、アルブミンに関してネガティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(l)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集める
段階を含んでなり、
必要に応じて、それぞれの精製段階のいずれかを行う前または後に、緩衝液交
換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整（好ましくはｐＨ２．０またはｐＨ４．０より大きいｐＨ、および好ましくはｐＨ１０．０未満のｐＨへ）、還元剤による処理、脱色処理（例えば、木炭による処理）、加熱（殺菌など）、冷却、またはコンディショニングの１つ以上を行うことを特徴とする、方法が提供される。

本発明のポジティブモードでのカチオン交換段階の前に、アルブミン溶液を上記のようにコンディショニングするのが好ましい。オクタノエートを、最終濃度が約１〜１０mMとなるまで加え、ｐＨを約４．０〜５．０に調整するのが好ましい。

陽イオン交換段階で保持されたアルブミンは、高塩溶液（例えば、１０〜１００mM、好ましくは０〜４０mM、例えば２５〜３０mMの酢酸ナトリウムでｐＨ３．０〜４．５、好ましくはｐＨ約４．０で緩衝した０．５〜３．０MのＮａＣｌ）で洗浄した後、溶出するのが有利である。

アルブミンは、アルブミンに特異的親和性を有する化合物、特に酸、例えばオクタノエートまたは別の脂肪酸、例えばＣ_６またはＣ_１０を含む緩衝液を用いてカチオン交換段階で溶出するのが好ましい。

アルブミンは、第一のアニオン交換段階では、高濃度（例えば、少なくとも５０mM、好ましくは５０〜２００mM、例えば８０〜１５０mM）のホウ酸塩、例えば四ホウ酸ナトリウムまたはカリウムを含む緩衝液でアニオン交換体から溶出するのが適当である。

ポジティブモードのアフィニティークロマトグラフィー段階では、固定化アルブミン特異的色素、例えばCibacron Blue型の色素であって、好ましくは１，４−ジアミノブタンのようなスペーサー、またはＣ_１〜８、好ましくはＣ_１〜６、例えばＣ_１〜５、最も好ましくはＣ_４の長さであり、好ましくはα，ω−ジアミノ置換を有するもう一つのスペーサーを介して樹脂上に固定されているものを含んでなる樹脂を用いるのが好ましい。マトリックスは、ＷＯ９６／３７５１５号公報に記載の方法で調製した「Delta Blue Matrix」（ＤＢＡ）であるのが好ましい。

本発明の第三の態様では、アルブミン溶液のニッケルイオンの濃度を減少させる方法であって、アルブミン溶液をｐＨ２．５〜７．５、好ましくは２．５〜６．０とし、ニッケルイオンを除去することを含んでなる方法が提供される。アルブミン溶液を、ｐＨ４．０〜７．５、好ましくは４．０〜６．０、更に好ましくはｐＨ４．０〜５．５、更に一層好ましくはｐＨ４．０〜ｐＨ５．０、最も好ましくはｐＨ４．０〜４．５とするのが好ましい。

本発明の第三の態様の方法は、ｐＨ２．５〜６．０の緩衝液に対する、または上記ｐＨ範囲の１つの範囲内のｐＨを有する緩衝液に対する透析濾過を含んでなることが好ましい。あるいは、ニッケルの除去は、上記ｐＨ範囲の１つの範囲内のｐＨを有する緩衝液によるゲル浸透クロマトグラフィーを用いて行うことができる。ゲル浸透クロマトグラフィーは、Sephacryl S200 HRを用いて行うことができる。緩衝液は、酢酸および／またはリンゴ酸イオンを含んでなるのが好ましい。あるいは、ｐＨを調整し、水で透析濾過／ゲル浸透クロマトグラフィーを行うのに、十分なアルブミンからの緩衝容量がある。

ニッケルイオンは、キレート化してアルブミンから除去することもでき縷々これは、低ｐＨ、好ましくはｐＨ４．０〜６．０、更に好ましくはｐＨ４．０〜４．５でSepharose (Chelating Sepharose, Pharmacia)または別のポリマー（例えば、Chelex, Bio Rad Laboratories）上で固定化されたイミノ二酢酸のようなキレート化剤を用いて行うことができる。

本発明の第三の態様の方法からの産物に陰イオン交換クロマトグラフィーを施すときには、本発明の第三の態様は、アルブミン溶液をｐＨ５．０〜５．６とすることを含んでなるのが好ましい。反対に、本発明の第三の態様の方法からの産物に陰イオン交換クロマトグラフィーを直接施さないときには、本発明の第三の態様はアルブミン溶液をｐＨ４．３〜４．９とすることを含んでなるのが好ましい。

本発明の第一、第二および第三の態様の好ましい態様では、初期アルブミン溶液を、醗酵培地知勇でアルブミンコードヌクレオチド配列で形質転換した真菌を培養することによって、上記真菌がアルブミンを発現し、これを培地に分泌することによって得た真菌培地から誘導される。真菌は、Aspergillus種のような糸状菌でよい。真菌は、酵母であるのが好ましい。更に好ましくは、真菌はSaccharomyces属（例えば、Saccharomyces cerevisiae）、Kluyveromyces属（例えば、Kluyveromyces lactis）、またはPichia属（例えば、Pichia pastoris）である。

本発明の第一、第二または第三の態様に従って精製したアルブミンの少なくともいくらかは、本発明の第五の態様による細胞または本発明の第六の態様による方法によって産生される。

本発明の第四の態様では、本発明の上記態様のいずれか１つによる方法によって得られるアルブミン溶液が提供される。好ましくは、アルブミン溶液は、
(1)０．５％（w/w）未満、好ましくは０．２％または０．１５％未満がConcanavalin Aに結合し、下記の特性
(2)グリシル化濃度が０．６モルヘキソース／１モルタンパク質未満であり、好ましくは０．１０、０．０７５または０．０５モルヘキソース／１モルタンパク質未満
の１つ以上を示す組換えアルブミンを含んでなる。

本発明の方法によって調製した精製アルブミン溶液は、目的とする用途に従って更に加工することができる。例えば、これは限外濾過膜を介して限外濾過を行い、アルブミン濃度が少なくとも約１０g、好ましくは少なくとも４０g、更に好ましくは約８０gアルブミン／リットルである限外濾過保持物(ultrafiltration retentate)を得て、この限外濾過保持物は少なくとも５保持物相当の水に対して透析濾過することができる。

本発明の第五の態様では、組換えアルブミンコード配列を含んでなるＤＮＡ配列、プラスミドまたは細胞であって、組換えアルブミンコード配列の３′末端が２個以上のインフレーム翻訳停止コドン、好ましくは３個のインフレーム翻訳停止コドンを含んでなるものが提供される。

本発明の第四の態様の組換え細胞は、真核または原核細胞でよい。組換え細胞は、細菌（例えば、E. coliまたはBacillus subtilis）、酵母（例えば、Saccharomyces属（例えば、S. cerevisiae）、Kluyveromyces属（例えば、K. lactis）またはPichia属（例えば、P. pastoris）の酵母）、糸状菌（例えば、Aspergillus）、植物または植物細胞、動物または動物細胞（トランスジェニックであることがある）、または昆虫細胞であることがある。

本発明の第六の態様では、組換えアルブミンコード配列を発現する真菌細胞を培養して、アルブミンを得ることを含んでなる組換えアルブミンの製造法であって、細胞の組換え発現したアルブミンのマンノシル化能を少なくとも減少させるようにする遺伝子修飾を細胞が有し、かつ培地が少なくとも１，０００ＬでありかつｐＨ６．０〜６．８であることを特徴とする、方法が提供される。

本発明の意味において、遺伝子修飾は、好ましくは１個以上の塩基または真菌細胞ＤＮＡ配列の断片の任意の抑制、置換、欠失または付加を意味する。このような遺伝子修飾は、例えば遺伝子工学技術によりまたは真菌細胞を突然変異誘発剤に暴露することによってイン・ビトロ（単離ＤＮＡ上で直接）またはインシテューで得ることができる。突然変異誘発剤としては、例えば強力な線（Ｘ線、γ線、ＵＶなど）のような物理的作用因子、またはＤＮＡの様々な完納期と反応することができる化学薬剤、例えばアルキル化剤（ＥＭＳ、ＮＱＯなど）、ビスアルキル化剤、インターカレーティング剤(intercalating agents)などが挙げられる。遺伝子修飾は、例えばRothstein et al. [Meth. Enzymol., 194 (1991), 281-301]によって開示された方法に準じる遺伝子破壊によって得ることもできる。この方法によれば、遺伝子の一部または全部は、騒動組換えを介してイン・ビトロでの修飾バージョンによって置換される。遺伝子修飾は、トランスポゾン、ファージなどのようなＤＮＡ配列上の任意の突然変異による挿入によって得ることもできる。

点突然変異のようなある種の修飾は、細胞機構によって逆転させたりまたは減水させることができることが知られている。このような修飾では、その表現型特性はきわめて安定ではないことがあるので、本発明の修飾した真菌細胞の最も有用な形態は提供されないことがある。従って、（複数の）遺伝子修飾が安定に小計され、および／または非復帰性および／または非漏出性であるのが好ましい。このような（複数の）修飾は、一般に欠失または遺伝子破壊によって得られる。

「漏出性突然変異体」（leaky mutant）およびその文法上の変形により、野生型機能の完全な不活性化よりも部分的不活性化から生じる突然変異体が挙げられる。

本発明の真菌細胞によって行われる（複数の）遺伝子修飾は、細胞のＤＮＡ配列のコード領域および／または遺伝子の発現に影響を与える領域に配置することができる。更に具体的には、上記（複数の）修飾は、一般にコード領域、または発現産物がマンノシル化に関与した酵素である１個以上の遺伝子の発現に重要なまたは関与している領域に影響を与える。

従って、本発明の真菌細胞のタンパク質をマンノシル化する能力の減少は、構造および／またはコンホメーション変化による不活性酵素の産生、生物学的特性が変化した酵素の産生、上記酵素の産生の非存在、または低濃度の上記酵素の産生から生じることがある。

真菌細胞のマンノシル化経路は、タンパク質またはペプチドのセリルおよび／またはトレオニルアミノ酸のヒドロキシル基へのマンノシル残基の結合と、次いでマンノシル残基の引き続く付加によるＯ−結合二およびオリゴ糖への伸張を含んでいる。第一のマンノシル残基は、ドリコールモノホスフェートマンノース（Dol-P-Man）から小胞体のタンパク質へ導入され、追加のマンノシル残基はゴルジ体のGPD-Manから導入される。

本発明の好ましい態様では、修飾した真菌細胞は、少なくとも１個の遺伝子に（複数の）遺伝子修飾を有し、その発現産物はマンノシル残基のセリルまたはトレオニルアミノ酸のヒドロキシル基への結合に関与している。

本発明のもう一つの好ましい態様では、修飾した真菌細胞は、少なくとも１個の遺伝子に複数の遺伝子修飾を有し、その発現産物はDol-P-Man前駆体からセリルまたはトレオニルアミノ酸のヒドロキシル基へのマンノシル残基の導入に関与している。更に一層好ましくは、これらの遺伝子一つはPMT遺伝子（例えば、PMT1、PMT2、PMT3、PMT4、PMT5、PMT6またはPMT7）である。PMT遺伝子はPMT1、PMT5、またはPMT7であるのが好ましい。

ＷＯ９４／０４６８７号公報（この特許明細書の内容は、その開示の一部として本明細書に引用される）には、Ｏ−マンノシル化活性を欠いているS. cerevisiaeの調製が記載されている。Ｏ−マンノシル化活性を欠いているS. cerevisiae細胞は、PMT1 ORFのHindIII制限部位へのURA3遺伝子の挿入による遺伝子破壊によって調製した。生成する突然変異体は、YEPD（約ｐＨ６．９５）上または最小培地＋Ade，＋Leu（約ｐＨ４．７５、酵母の生長と共に低下）上で生育した。予想外なことには、ＷＯ９４／０４６８７号公報で用いた生長培地のｐＨは分泌アルブミンを産生するためのPMT突然変異体の大規模培養には最適ではないことを見いだした。本発明者らは、ｐＨ６．０〜６．８の生長培地が大規模発行の際の宿主細胞の完全性に関して有益であることを見いだした。

セリルまたはトレオニルアミノ酸のヒドロキシル基へのマンノシル残基の結合に関与した遺伝子の修飾の他に、本発明の真菌細胞は二またはオリゴ糖を生じるマンノシル残基の次の付加またはマンノシル残基ドナー(Dol-P-Man)の合成に関与した遺伝子に修飾を有することもある。

好ましくは、真菌細胞はPMT遺伝子またはPMT遺伝子の発現または産物に影響を与える遺伝子内に遺伝子修飾を有する。PMT遺伝子の発現に影響を与える遺伝子は、例えばｍＲＮＡ転写体濃度またはPMT産物濃度に影響を与えることがある。

本発明の第六の態様の真菌細胞は、糸状菌および酵母から選択することができる。細胞は、酵母、例えばSaccharomyces属（例えば、S. cerevisiae）、Kluyveromyces属（例えば、K. lactis）、またはPichia属（例えば、P. pastoris）の酵母であるのが好ましい。

組換えアルブミンコード配列を発現する真菌細胞は、少なくとも５，０００Ｌの培地で培養するのが好ましく、少なくとも７，５００Ｌの培地で培養するのが更に好ましい。

好ましくは、組換えアルブミンコード配列を発現する真菌細胞は、ｐＨ６．２〜６．７、更に好ましくはｐＨ６．３〜６．５の範囲に保持される培地で培養される。好ましくは、培地のｐＨは、ｐＨ６．３〜ｐＨ６．５の間のｐＨ、好ましくは６．３５〜６．４５のｐＨ、更に好ましくは約６．４のｐＨに設定されたｐＨコントローラーを用いて保持される。好ましくは、ｐＨコントローラーは、上記ｐＨ範囲のいずれか１つの中の任意のｐＨ値の０．２０または０．１０ｐＨ単位内、またはｐＨ６．４の０．２０または０．１０ｐＨ単位内に制御される。

別態様では、真菌細胞は、ｐＨ５．３０〜ｐＨ５．９０、好ましくはｐＨ５．５０〜ｐＨ５．９０、ｐＨ５．４０〜ｐＨ５．９０、またはｐＨ５．４０〜５．６０の範囲に保持されている培地で培養される。好ましくは、低コントロール設定点はｐＨ５．４０〜ｐＨ５．６０であり、好ましくはｐＨ５．４５〜ｐＨ５．５５であり、好ましくは低コントロール設定点はｐＨが約５．５０である。

本発明は、高精製アルブミンの調整法を提供する。アルブミンは、着色物質の濃度がきわめて低いことを特徴とする。本明細書で用いられる「着色物質」（colorant）という用語は、アルブミンを着色する任意の化合物を意味する。例えば、色素は、組換えアルブミンを調製するのに用いられる酵母のような生物から生じる着色物質であり、色素は、アルブミンを精製するためのクロマトグラフィー段階から生じる着色物質である。

アルブミンはまた、アルミニウム、乳酸塩、クエン酸塩、金属、非アルブミン性のヒトタンパク質、例えば、免疫グロブリン、プレカリクレイン活性化因子、トランスフェリン、α１−酸性糖タンパク質、ヘモグロビン、および血液凝固因子、原核性タンパク質、アルブミンの断片、アルブミン凝集体またはポリマー、または内毒素、ビリルビン、ヘム、酵母タンパク質、動物タンパク質、およびウイルスの濃度がきわめて低いか、または本質的に含まないことを特徴とする。本質的に含まないとは、検出可能濃度を下回ることを意味する。

本発明のアルブミンは、少なくとも９９．５％が単量体および二量体性であり、好ましくは本質的に１００％が単量体および二量体性である。０．５％まで、好ましくは０．２％のトリマーが許容可能であるが、それ以上の形態のアルブミンは通常は存在しない。アルブミンは、下記の特徴の１個以上を特徴とすることもある。これは、アルブミン１gに対してニッケルイオン濃度が１００ng未満であり、グリケーションレベルがAmadori生成物分析法で測定するとき０．６未満、好ましくは０．１０、０．０７５または０．０５モルヘキソース／モルタンパク質未満であり、Ｃ末端が完全、すなわち均質であり、conA結合アルブミンの含量が０．５％（w/w）未満、好ましくは０．２％または０．１５％未満であり、遊離チオール含量が少なくとも０．８５モルSH／モルタンパク質であり、Ｃ１８またはＣ２０脂肪酸を実質的に含まない。本発明の方法によって精製したアルブミン製剤のタンパク質の少なくとも９９重量％、好ましくは少なくとも９９．９重量％は、アルブミンである。このような高純度アルブミンは、有害な副作用を引起こすとはあまり考えられない。

本発明によって精製したrHAは、血清由来の汚染物質が出発物質には含まれていないので、この汚染物質を一般に全く含まない。

本発明によれば、高純度アルブミンは、不純なアルブミン溶液から得られる。この方法は、醗酵培地でヒトアルブミンのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列で形質転換した微生物を培養し、好ましくは微生物を発酵培地から分離し、必要ならば、更に精製を行うために培地をコンディショニングし、コンディショニングした培地を３個の連続的クロマトグラフィー段階を通過させ、生成物を限外濾過／透析濾過し、限外濾過した生成物を更にクロマトグラフィー段階を通過させ、２個の追加のクロマトグラフィー段階による精製の前に、限外濾過／透析濾過を行い、最終的限外濾過／透析濾過を行う段階の１つ以上を含んでなる。

あるいは、醗酵培地の代わりに、不純なアルブミン溶液は、過去５０年にわたって開発されたおびただしい数の抽出および精製技術のいずれか、例えば、Stoltz et al., (1991), Pharmaceut. Tech. Int., June 1991, 60-65およびMore & Harvey, (1991)「血液の分離および血漿の分画化(Blood Separation and Plasma Fractionation)」, Harris監修, Wiley-Liss, 261-306に開示されている手法によって血清から得られた溶液であることができる。

もう一つの代替法では、アルブミンは、ヤギ、ヒツジまたはウシのようなトランスジェニック動物から、例えば、動物の乳または血液から、またはトランスジェニックニワトリの場合には、卵白から得ることができる。

更にもう一つの代替法では、アルブミンは、タバコ、ジャガイモまたはトウモロコシ（メイズ）のようなトランスジェニック植物から得ることができる。

アルブミンを血漿以外の供給源から精製する場合には、従来の技術による精製法は、比較的高濃度のニッケルイオンを生じる。アルブミンは、分子のＮ末端に銅、ニッケルおよび亜鉛に対する高親和性結合部位を有することが知られている。従って、アルブミン分子は、培養および／または精製に用いた培地からニッケルイオンを効果的に濃縮する。本発明によって精製したアルブミンは、ニッケルイオン濃度が意外なほど低い。

本発明の手続きのいずれかの前または後に、アルブミン溶液は、緩衝液交換、濃縮、希釈、加熱（殺菌など）、冷却を行うことができ、または例えば溶液のｐＨを調節または調整することができる塩などをアルブミンに加えることができる。場合によっては、アルブミンは還元剤で処理することができ、または脱色段階を行うことができる。

最終産物は、安定性が加えられるように処方することができ、目的とする用途に従って処方することができ、例えばこれは、非経口投与、好ましくはヒトへの非経口投与用に処方することができる。アルブミンを殺菌するのが適当である。

好ましくは、本発明の高純度アルブミン産物は少なくとも１００g、更に好ましくは１kgまたは１０kgのアルブミンを含み、これを複数のバイアルに分けることができる。

本発明のアルブミンは、火傷、ショックまたは失血の治療における治療用途の他に様々な役割を行う。例えば、これは、（例えば、液体処方物、凍結乾燥処方物または吸入用処方物における）最終産物賦形剤として、細胞培養、ウイルス産生、遺伝子治療、イン・ビトロでの施肥培地における精製の際に他のタンパク質の安定化のため、およびカニューレ、カテーテルおよび血管プロテーゼのような医療装置のコーティングに用いることができる。

本発明のそれぞれの態様は、本発明の１つ以上の他の態様と組み合わせることができることを理解すべきである。

発明の好ましい態様の詳しい説明
本発明の方法を用いて、血清のような多数の供給源からの不純なアルブミン溶液から高純度アルブミンを得ることができるが、本発明の方法は組換えヒトアルブミン（rHA）の精製に特に応用することができる。本発明によって製造したアルブミンは、ラット、ウシまたはヒツジアルブミンのような任意の哺乳類のアルブミンであることができるが、好ましくはヒトアルブミンである。

アルブミンをコードするＤＮＡは、適当な宿主で発現させてアルブミンを産生させることができる。従って、ＤＮＡを既知の手法によって用い、本明細書に含まれる教示を考慮して適当に修飾し、発現ベクターを構築した後、これを用いて適当な宿主細胞を形質転換し、アルブミンを発現させ，産生することができる。

アルブミンをコードするＤＮＡは、多種多様な他のＤＮＡ配列と結合させて、適当な宿主に導入することができる。伴ＤＮＡは、宿主の性質、ＤＮＡの宿主への導入法、およびエピソーム保持または組込みが所望であるかどうかによって変化する。

一般に、ＤＮＡは、適正な配向および発現のための正確なリーディングフレームで、プラスミドのような発現ベクターに挿入される。必要ならば、ＤＮＡを所望な宿主によって認識される適当な転写および翻訳調節コントロールヌクレオチド配列に結合することができるが、このようなコントロールは一般に発現ベクターで利用可能である。UAA、UAGまたはUGAのような翻訳停止コドンをコードする二個以上のＤＮＡ配列を組込み、翻訳読み過しを最小限にし、伸張した非天然の融合タンパク質の産生を回避するのが好ましい。翻訳停止コドンUAAをコードするＤＮＡ配列が好ましい。次に、ベクターを標準的手法によって宿主に導入した後、形質転換宿主細胞を選択する。次いで、このようにして形質転換した宿主細胞を十分な時間および当業者に知られている適当な条件下で培養し、本明細書に開示された教示を考慮してアルブミンを発現させた後、これを回収することができる。

細菌（例えば、E. coliおよびBacillus subtilis）、酵母（例えば、Saccharomyces cerevisiae、Pichia pastorisおよびKluyveromyces lactis）、糸状菌（例えば、Aspergillus）、植物細胞、動物細胞、および昆虫細胞など多くの発現系が知られている。好ましい微生物は、酵母Saccharomyces cerevisiae、Kluyveromyces lactisおよびPichia pastorisである。例えば、遺伝子コード配列の破壊によってタンパク質のＯ−グリコシル化に関与する１個以上のタンパク質マンノシルトランスフェラーゼを欠いている酵母を用いるのが特に有利である。

アルブミンタンパク質配列はＮに結合したグリコシルかの部位を全く含まず、またＯ結合グリコシル化によって性質が改質されることは報告されていない。しかしながら、多数の酵母種で産生されたrHAは、マンノシル含むＯ結合グリコシル化によって改質することができることを見いだした。マンノシル化アルブミンは、レクチンConcanavalin Aに結合することができる。酵母によって産生されたマンノシル化アルブミンの量は、１個以上のPMT遺伝子を欠いている酵母株を用いることによって減少させることができる（ＷＯ９４／０４６８７号公報）。

これを行うのに最も好都合な方法は、ゲノムに欠陥を有する酵母を作成し、Pmtタンパク質の一つの産生レベルを減少させることである。例えば、コード配列または調節領域（またはPMT遺伝子の一つの発現を調節する別の遺伝子）に欠失、挿入または転位があれば、Pmtタンパク質がほとんどまたは全く産生されないようにすることができる。あるいは、酵母を形質転換して、アンチPmt抗体のようなアンチPmt作用因子を産生させることができた。

PMT遺伝子の一つを修飾してPmtタンパク質の産生レベルを減少させるには、位置指定突然変異誘発または他の既知の手法を用いて、BotsteinおよびShortle,「イン・ビトロでの突然変異誘発の方法および応用(Strategies and Applications of In Vitro Mutagenesis)」, Science, 229: 193-210 (1985) に記載されているように置換、挿入、欠失、および転位のような単一または多重突然変異を作成することができ、上記文献の内容は、その開示の一部として本明細書に引用される。適当な突然変異としては、連鎖停止突然変異（３′末端付近に導入された停止コドンは、明らかに遺伝子産物に対する効果が有益とするには不十分であり、当業者であればコード配列の５′の４分の３に容易に突然変異を作成することができるであろう）、コード配列の小さなものから大きな欠失へのリーディングフレームを変化させる点突然変異、遺伝子発現に影響を与えるプロモーターまたはターミネーターの突然変異、およびｍＲＮＡを不安定化する突然変異が挙げられる。特定の突然変異は、遺伝子トランスプレースメント(gene transplacement)として知られる遺伝子破壊技術の拡張によって導入することができる(Winston, F. et al., (1983), Methods Enzymol., 101, 211-228)。

一般に、遺伝子配列を破壊するには選択可能マーカーを用いるが、特に破壊事象を表現型により検出することができる場合には、これは問題とする必要がない。多くの場合に、介在配列は、停止コドンがPmt配列とインフレームで存在し、挿入されたコード配列が翻訳されないように挿入される。あるいは、挿入された配列は、Pmtに対して異なるリーディングフレームにあってもよい。

遺伝子は、摘出または転位した１個以上の部分（場合によっては、全遺伝子までの調節領域を含む）を有することができ、またはこれは挿入された部分を有し、PMT座の一つからのタンパク質の産生を減少させ、および／または活性レベルの減少したPMT座の一つからのタンパク質を産生することができる。

Saccharomyces cerevisiaeのPMT遺伝子は、特異性が変化する７種類の（PMT1〜PMT7）タンパク質Ｏ−マンノシルトランスフェラーゼの科をコードする。これらのタンパク質は、ドリコールホスフェート−Ｄ−マンノース：タンパク質トランスフェラーゼ、ドリキル−ホスフェート−Ｄ−マンノース：タンパク質Ｏ−Ｄ−マンノシルトランスフェラーゼまたはホスホマンノーストランスフェラーゼ（Gentzsch and Tanner, EMBO, 15, 5752-5757, 1996、およびそこに記載されている文献）としても知られている。この一体化した膜酵素の科は、下記の反応によって記載されるドリキルホスフェートマンノースの形態でのマンノースのポリペプチド鎖中のセリンまたはトレオニンのヒドロキシル基への導入を触媒する。

有効な証拠は、ドリキルホスフェートマンノースの合成と次のマンノースのタンパク質への導入が小胞体で起こることを示唆している。

この科の酵素は異なる基質（タンパク質）特異性を有することは明らかである(Gentzsch and Tanner, (1997), Glycobiology, 7, 481-486)。７種類の試験タンパク質の５つは、pmt1またはpmt2突然変異体Saccharomyces cerevisiae株でのアンダーグリコシル化によって示されるように、それぞれPMT1およびPMT2遺伝子の産物であるPmt1pおよびPmt2pに対する基質であった。別の２種類の試験タンパク質はPMT1またはPMT2突然変異によっては影響されないと思われたが、pmt4突然変異体株ではアンダーグリコシル化された。

９２kDのPmt1pタンパク質Ｏ−マンノシルトランスフェラーゼ酵素は、可溶化したSaccharomyces cerevisiae膜から均質になるまで精製した(Strahl-Bolsinger and Tanner, (1991), Eur. J. Biochem., 196, 185-190)。Pmt1pをコードする遺伝子(PMT1)をクローニングして、配列決定した。遺伝子をIV染色体上に配置し、８１７のアミノ酸の一次配列を有する単一ポリペプチドをコードする(Strahl-Bolsinger et al., (1993), P.N.A.S. USA, 90, 8164-8168)。PMT1（および他のPMT遺伝子）の配列情報を用いて、Saccharomyces cerevisiaeの遺伝子をコードする関連マンノシルトランスフェラーゼを同定することができる。

図１０および１１に示される配列は、領域Saccharomyces cerevisiae PMT1をコードするタンパク質と相同性であり、図１２〜１５に示される配列は領域Saccharomyces cerevisiae PMT7をコードするタンパク質と相同性であり、図１６〜１７に示される配列はSaccharomyces cerevisiae PMT5をコードするタンパク質と相同性である。当業者であれば、これらの配列のいずれか一つを用いて、Saccharomyces cerevisiaeマンノシルトランスフェラーゼ遺伝子を同定することができることを理解するであろう。図１０〜１７に示される配列およびそれらの断片と相同性である配列として、図１０〜１７に示される配列の断片も同様に用いることができることが理解されるであろう。相同配列を生成させる手法は、当該技術分野で周知である。

相同配列とは、図１０〜１７のいずれか一つに示される配列または図１０〜１７のいずれか一つに示される配列の断片と少なくとも７０％、８０％、９０％、９５％または９８％相同性を有する配列を包含する。

相同率(per cent-homology)は、例えば、Devereux et al. (Nucl. Acids res., 12:387, 1984)によって報告され、University of Wisconsin Genetics Computer Group (UWGCG)から発売されているGAPコンピュータープログラムを用いて配列情報を比較することによって決定することができる。GAPプログラムは、Neddleman and Wunsch (J. Mol. Biol., 48:443, 1970)の配列法であって、Smith and Waterman (Adv. Appl. Math., 2.482. 1981)によって改訂されたものを用いる。GAPプログラムの好ましいデフォルトパラメーターとしては、(1)ヌクレオチドの単一要素比較マトリックス（一致について１および不一致について０の値を含む）、およびSchwarts and Dayhoff監修,「タンパク質配列および構造のアトラス(Atlas of Protein Sequence and Structure)」, National Biomedical Research Foundation, pp 353-358, 1979によって記載されているBribskov and Burgess, Nucl. Acids Res., 14:6745, 1986の重み付き比較マトリックス、(2)それぞれのギャップについてペナルティー３．０、およびそれぞれのギャップ中のそれぞれの記号について更に０．１０のペナルティー、(3)末端ギャップについてはペナルティーなしが挙げられる。

S. cerevisiae以外の酵母を用いる場合には、例えば、Pichia pastorisまたはKluyveromyces lactisにおけるS. cerevisiaeのPMT遺伝子に相当する１個以上の遺伝子の破壊も有効である。S. cerevisiaeから単離したPMT1（または任意の他のPMT遺伝子）の配列を用いて、他の真菌種における同様な酵素活性をコードする遺伝子の同定または破壊を行うことができる。Kluyveromyces lactisのPMT1同族体のクローニングは、ＷＯ９４／０４６８７号公報に記載されている。

S. cerevisiae以外の酵母を用いる場合には、図１０〜１７に示される配列を用いてS. cerevisiae PMT遺伝子に相当する遺伝子を同定（または破壊）することもできる。当業者であれば、図１０〜１７に示される配列およびそれらの断片と相同性である配列として、図１０〜１７に示される配列の断片も同様に用いることができることが理解されるであろう。

遺伝子破壊を行う方法は文献に記載されており、その一例はBoehm et al. (Boehm, T., Pirie-Shepherd, S., Trinh, L., Shiloach, J. and Folkman, J., (1999), Yeast, 15, 563-572)によって記載されており、これには、Saccharomyces cerevisiae SUC2遺伝子を標的遺伝子に特異的なPichia pastorisＤＮＡによってフランキングされているマーカーとして使用することが記載されている。

酵母は、有利なことにはＷＯ９５／３３８３３号公報およびＷＯ９５／２３８５７号公報にそれぞれ教示されているHSP150および／またはYAP3遺伝子の欠失を有する。

好ましい態様では、酵母はSaccharomyces cerevisiaeの２μmプラスミドに基づいた発現プラスミドで形質転換される。酵母を形質転換するときには、プラスミドは細菌複製と選択配列を含み、これは形質転換の後に、ＥＰ２８６４２４号明細書の教示による内部組換え事象によって削除される。プラスミドは、ＥＰ４３１８８０号明細書に教示されている酵母プロモーター（例えば、Saccharomyces cerevisiae PRB1プロモーター）、例えば、ＷＯ９０／０１０６３号公報に教示されているように天然のHSA分泌リーダーのほとんどとS. cerevisiae α−接合因子分泌リーダーの小部分を含んでなる分泌リーダーをコードする配列、ヒト遺伝子に相当するｃＤＮＡを単離するための既知の方法によって得ることができかつＥＰ７３６４６号明細書およびＥＰ２８６４２４号明細書にも開示されているHSAコード配列、および転写ターミネーター、好ましくはＥＰ６００５７号明細書に教示されているようなSaccharomyces ADH1由来のターミネーターを含んでなる発現カセットも含んでいる。好ましくは、ベクターは、少なくとも２個の翻訳停止コドンを組込む。

上記のプラスミドの様々な要素は産物の収率向上に寄与することがあるが、これらの要素の選択は得られるアルブミン産物の純度に直接関連しているとは考えられない。醗酵および精製法の好ましい態様を、例１で説明する。

例１
アルブミン産生微生物の構築のためのクローニング法は、アルブミンコード配列の３′末端およびADH1転写集結配列とのその連結を変更して、下記のようにADHコード配列が除去され、２個の連続したインフレーム翻訳停止コドンが存在し、第三の停止コドンが下流に続くようにすることを除き、ＥＰ４３１８８０号明細書に開示されている通りである。

これは、ＥＰ４３１８８０号明細書に記載のプラスミドpAYE309由来のADH1ターミネーターを、下記の配列を有する２個の一本鎖オリゴヌクレオチドを用いるＰＣＲ突然変異誘発による修飾によって行った。

ＰＣＲ条件は、９４℃６０秒間、３７℃１２０秒間、および７２℃１８０秒間の２５サイクルであった。０．４８kbのＰＣＲ産物をHindIIIおよびBamHIで消化し、ＷＯ９７／２４４４５号公報に記載され、同様にHindIIIおよびBamHIで消化したプラスミドpBST+に連結し、プラスミドpAYE440を作成した（図２）。ADH1ターミネーターを、下記の配列を有する２個の一本鎖オリゴヌクレオチドAT19Rおよびユニバーサル-40プライマーを用いるＰＣＲ突然変異誘発によって更に修飾した。

ＰＣＲ条件は、鋳型としてpAYE440（図２）においてADH1ターミネーターを用いて、９４℃３０秒間、５０℃４０秒間、および７２℃５０秒間の２５サイクル、および７２℃１０秒間の１サイクルであった。使用した装置は、Perkin Elmer GeneAmp PCR System 9600であった。正確な大きさが約０．３３kbの生成物を得て、HindIIIおよびBamHIで消化した。ＥＰ４３１８８０号明細書に記載のプラスミドpAYE309をNotIおよびHindIIIで消化し、PRBIプロモーター断片と成熟HSAの分泌の指示に用いるHSA/MFα-1リーダー配列（ＷＯ９０／０１０６３号公報）の一部を含む０．８４kbＤＮＡ断片を、ＷＯ９７／２４４４５号公報に記載のNotIおよびHindIIIで消化したpBST+に連結して、プラスミドpAYE438（図３）を生成させた。レシピエントプラスミドpAYE438をHindIIIとBandHIで消化し、修飾したADHIターミネーターを良好にこのベクターにクローニングしてプラスミドpDB2241（図４）を得た。このプラスミドはpBST+（ＷＯ９７／２４４４５号公報）主鎖、PRBIプロモーターおよび修飾したADHIターミネーターを含む。

HSAコード領域の末端での２個の翻訳停止コドンの導入を促進し、必要なHindIII部位を作成するため、HSAコード領域の３′末端を変更した。

二本鎖オリゴヌクレオチドリンカーAT21/AT22をAflII/HindIIIで切断したpDB2241に連結し、５′末端にAflII部位、スタッファー領域(stuffer region)、次いでHSAコードＤＮＡのHindIII配列へのBsu361を含んでなり、追加のTAA翻訳停止コドンを追加していた。挿入したリンカーを有するクローンはＤＮＡシークエンシングによってチェックし、正確なプラスミドをpDB2242と命名した（図５）。

最終的rHA発現カセットを作成するため、pAYE309のAflII/Bsu36I断片（図１）をAflII/Bsu361で消化したpDB2242に連結し、プラスミドpDB2243（図６）を作成した。最後に、rHA発現崩壊ベクター(rHA expression disintegration vector)を、pDB2243由来のNotI発現カセットをNotIで切断したpSAC35(Sleep et al., 1991, Bio/Technology, 9, 183-187およびＥＰ４３１８８０号明細書)に連結し、rHA転写の方向がLEU2遺伝子と同一は以降であるプラスミドpDB2244（図７）を得た。

従って、プラスミドpDB2244は、崩壊ベクターpSAC3(Chinery and Hinchliffe (1989), Current Genetics, 16, 21-25)から誘導され、２μmプラスミド、宿主leu2の成熟を補足するためのLEU2遺伝子、PRB1プロモーターがHSA配列を発現させる発現カセット、および細菌プラスミドpUC9を含んでなる。後者は、S. cerevisiae ２μmのFLPリコンビナーゼ系によってプラスミドから削除され、rHAの産生に用いた生体には細菌ＤＮＡが存在しないようにする(Chinery and Hinchliffe, 上記引用)。

発現ベクターは、発現を制御するためのS. cerevisiaeのPRB1プロモーターとADH1転写ターミネーター、および成熟HSAの分泌を指示するためのHSA/MFα-1リーダー配列（ＷＯ９０／０１０６３号公報）を用いる。

プラスミドpDB2244を、Hinnen et al., (1978), P.N.A.S., 75, 1929に記載の方法によってSaccharomyces cerevisiae株leu2、yap3、hsp150、pmt1 [cir°]に導入した。pmt1突然変異は、ＷＯ９４／０４６８７号公報の方法によって行うことができる。形質転換体を、ロイシンを欠いている緩衝した最小培地（アミノ酸および硫酸アンモニウムを含まない０．１５（w/v）酵母窒素塩基(Difco)、０．５（w/v）硫酸アンモニウム、０．１Mクエン酸／Ｎａ_２ＨＰＯ_４・１２Ｈ_２Ｏ，ｐＨ６．５、２％（w/v）スクロース）上で選択した。形質転換体を複合体（YEP、１％（w/v）酵母エキス、２％（w/v）バクトペプトン、および２％（w/v）スクロース）または緩衝した最小培地液体培地を含む５０mlフラスコで３０℃、２００rpmで７２時間生育したとき、rHAをＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動および／またはロケットゲル免疫電気泳動によって無細胞培養上清で検出することができた。

緩衝最小培地中のストックマスター細胞培養物を用いて、２０％（w/v）トレハロースの存在下にて培養物の一部を凍結することによって振盪フラスコ培養物の調製に適するプロセス酵母(process yeast)の運転ストック（作業細胞バンク）を調製する。

醗酵は、下記の相違点を除きＷＯ９６／３７５１５号公報およびＵＳ５７２８５５３号明細書に記載されているのと本質的に同じであり、上記特許明細書の内容は、その開示の一部として本明細書に引用される。

種子醗酵
rHA産生用の培地を種子醗酵容器に加えた後、走査温度を３０℃に設定し、最小攪拌機速度を均一性が得られ、酸素または炭素のような栄養に勾配がつかないように設定する。初期ｐＨを、６．４０に設定したｐＨコントローラーを用いてアンモニア溶液（比重０．９０１）で調整し、６．４０±０．１０に制御した。

あるいは、ｐＨを、低制御設定点を５．５０として５．５０〜５．９０の範囲に保持する。初期ｐＨは、アンモニア（例えば、比重が０．８８０のアンモニア水溶液）で調整することができる。この低醗酵ｐＨにより、rHAの質量スペクトル法プロフィールが向上する。

ｐＨの減少はオンライン装置によって検出可能な生長の最初の兆候であるので、初期ｐＨを上記範囲の最大値付近とし、初期代謝の観察を容易にするのが好ましい。

特に、PMT遺伝子の１個以上に欠失を有する株については、通常必要であるより高いｐＨで醗酵を行うのが有利であることを見いだした。従って、ｐＨを約５．５で制御するよりは、制御設定点をｐＨ６．２０〜ｐＨ６．７０、好ましくはｐＨ６．３〜６．５とするのが有利である。このような高ｐＨでは、セントレート(centrate)の品質は、細胞リーシスが減少するため、著しく改良される。細胞リーシスは、総ての全細胞を上清から除去するだけに十分である醗酵の遠心分離段階後に懸濁液中に残っている細胞破片を生じる。これは表１に示されており、ｐＨ５．５と比較して６．３〜６．５のｐＨ範囲で酵母を培養するときに培養上清の湿時重量含量の有意な減少が示される。

２M Ｈ_２ＳＯ_４も、ｐＨ調整剤として用いる。スクロースを２０g・L^-1、MW10バッチビタミン、およびBreox FMT30消泡剤を０．０４g・L^-1まで容器に加えた。

滅菌濾過空気を０．５v/v/m（すなわち、培地１リットル当たり１分あたり０．５リットルの非圧縮空気）で容器に導入し、培地を無菌振盪フラスコ培養物からの＞１０mg細胞乾燥重量L^-1に接種し、コンピューター制御系による監視を開始する。予想されたバッチ相は、１２mg・L^-1の接種濃度から６２±１０ｈである。MW10供給を、バッチ相が終了する前に（バッチ容積と同じ容積）連結しなければならない。

醗酵制御アルゴリズムの特徴としては、バッチ相の終了が３０分で溶存酸素張力(DOT)が＞１５％増加することによって表示され、供給は、１リットルバッチ培地当たり０．０５mlで開始され、基質供給速度は式ＳＦ＝ＳＦ_０ｅ^μkによって決定され（但し、ＳＦは基質供給速度（mL・分^-1）であり、ＳＦ_０は初期基質供給速度（mL・分^-1）であり、μは比成長速度（例えば、０．０６時^-1）であり、kは、総ての条件が満たされる場合には、０から出発し１分毎に０．０１６７ずつ増加する対向変数である）、基質供給速度（ｋの操作による）はDOT＜１５％および／または呼吸商（RQ）≧１．２に応じて減少することが挙げられる。

供給は、ｐＨ＜６．２または温度が＜２９．０℃または＞３１．０℃となる場合に停止する。これは、制御アルゴリズムにより自動的に行うこともできる。２時間にわたって平均RQ＞１．１３である場合、またはエタノールまたはアセテートの蓄積の証拠がある場合には、SFを減少させる。

攪拌を増加して、DOT＞２０％空気飽和を保持する。供給を開始すると、Breox FMT30の濃度が０．３g・L^-1（最終容積で計算）まで増加する。予想供給相期間は６５±１７時間であり、容器の導入限界によって変化する。

気流を醗酵中に増加して、酸素摂取速度（OUR）および二酸化炭素発生速度（CER）の値を正確なガス分析を行うのに十分なレベルに保持する。醗酵の気流速度は、名目上は１v/v/mである。毎日チェックを行い、培養物およびCDWの純度を決定する。適当な試料を確保する。供給の終了時に、培養物を製造容器に移す。

製造醗酵
製造発酵槽に０．２５〜１．００g・L^-1を接種する。初期ｐＨを、ｐＨ６．４０に設定したｐＨ制御装置を用いてアンモニア溶液（比重０．９０１）で調整し、６．４０±０．１０に制御する。

あるいは、ｐＨを５．５０〜５．９０の範囲に保持し、低制御設定点を５．５０とする。初期ｐＨは、アンモニア（例えば、アンモニア水溶液、比重０．８８０）で調整することができる。この低醗酵ｐＨにより、rHAの質量スペクトル法プロフィールが向上する。

特に、PMT遺伝子の１個以上に欠失を有する株については、通常必要であるより高いｐＨで醗酵を行うのが有利であることを見いだした。従って、ｐＨを約５．５で制御するよりは、制御設定点をｐＨ６．２０〜ｐＨ６．７０、好ましくはｐＨ６．３〜６．５とするのが有利である。このような高ｐＨでは、セントレート(centrate)の品質は、細胞リーシスが減少するため、著しく改良される。細胞リーシスは、総ての全細胞を上清から除去するだけに十分である醗酵の遠心分離段階後に懸濁液中に残っている細胞破片を生じる。これは表２に示されており、ｐＨ５．５と比較してｐＨ６．５で酵母を培養するときに培養上清の湿時重量含量の有意な減少が示される。

２M Ｈ_２ＳＯ_４も、ｐＨ調整剤として用いる。スクロースを２０g・L^-1、MW10バッチビタミン、およびBreox FMT30消泡剤を０．０４g・L^-1まで容器に加える。

初期基質供給速度は、式：

て決定され（但し、ＳＦ_０は初期基質供給速度であり、μは比成長速度（例えば、０．０６時^-1）であり、Ｖ_バッチはバッチ容積（L）であり、Ｙ_ｘ／ｓは細胞収率（g・L^-1）であり、［スクロース］はスクロース濃度（g・L^-1）であり、［CDW］は細胞乾燥重量濃度（g・L^-1）である。基質供給速度は、式ＳＦ＝ＳＦ_０ｅ^μk（但し、SFは基質供給速度（mL・分^-1）であり、ＳＦ_０は初期基質供給速度（mL・分^-1）であり、μは比成長速度（時^-1）（例えば、０．０６時^-1）であり、ｋは、総ての条件が満たされる場合には、０から出発し１分毎に０．０１６７ずつ増加する対向変数である）によって決定される。多数の条件を醗酵中に常に再検討し、ｋの操作によりＳＦを調整するのに用い、ＳＦはDOT＜１５％および／または呼吸商（RQ）≧１．２に応じて減少する。供給は、ｐＨ＜６．２または温度が＜２９．０℃または＞３１．０℃となる場合に停止する。これは、制御アルゴリズムにより自動的に行うこともできる。２時間にわたって平均RQ＞１．１３である場合、またはエタノールまたはアセテートの蓄積の証拠がある場合には、ＳＦを減少させる。

攪拌を増加して、DOT≧２０％空気飽和を保持し、達成された最大値に保持し、混合を容易にする。供給を開始し、培養を炭素制限下で行うと、Breox FMT30の濃度が０．２〜０．３２g・L^-1（最終容積で計算）まで増加する。予想供給相期間は容器の導入限界によって変化し、典型的には８，０００Ｌの規模で９０〜１２０時間である。

気流を醗酵中に増加して、酸素摂取速度（OUR）および二酸化炭素発生速度（CER）の値を正確なガス分析を行うのに十分なレベルに保持する。容器を必要に応じて過圧にし、OTRを高める。醗酵の気流速度は、名目上は１v/v/mである。毎日チェックを行い、培養物およびCDWの純度を決定し、適当な試料を確保する。

供給の終了時に、培養物を下流での加工のために保管する。

製造培養物の保管
製造培養物は、適当な条件下で保管し、培養物をバッチ加工することができる。保管時間はできるだけ短時間にすべきであるが、４８時間までおよび必要ならばそれ以上（例えば、５日まで）延長することができる。バッチ加工の条件下では、本明細書で表される保管時間の拘束は加工を行う培養物の最終部分に適用されることが理解されるであろう。

醗酵からのセントレート(centrate)、または任意の他の供給源（血漿など）からの不純なアルブミン溶液からのセントレート(centrate)を調製しまたはコンディショニングし、rHAを重合およびプロテアーゼ活性から保護しながらカチオン交換マトリックス上でクロマトグラフィーを行う。好ましくは、オクタン酸ナトリウムを加え（クロマトグラフィー溶液１４（CS14）、表３）、最終濃度１〜１０mM、例えば約５mMとする。ｐＨを酢酸で調製して、ｐＨ４．３〜４．８、好ましくは４．５０±０．１（最も好ましくは、±０．０５）とし、導電率をチェックして＜５．５mScm^-1とする。

クロマトグラフィー
総ての操作は、周囲温度（２０±５℃）で行うことができる。クロマトグラフィーカラムのアルブミン装填物（g／L）は、SDS-PAGE（第一段階）またはGP-HPLC（他の総てのカラム）によってアルブミンの力価から測定する（g／L）。それぞれの段階の進行は、オンラインで、例えば２５４または２８０nmでのUV吸光度を測定することによって観察する。

本発明の特に好ましい態様では、精製段階は、カチオン交換クロマトグラフィー（SP-FF）、アニオン交換クロマトグラフィー（DE-FF）、アフィニティークロマトグラフィー（DBA）、限外濾過および透析濾過、第二のアフィニティークロマトグラフィー段階（PBA）、限外濾過および透析濾過、第二のカチオン交換クロマトグラフィー段階（SP-FF2）、および第二のアニオン交換クロマトグラフィー段階（DE-FF2）の段階を含んでなる。好ましくは、これらの精製工程の後に、最終的限外濾過／透析濾過を行った後、処方段階をおこないおよび／または溶液を最終容器に入れる。

本明細書に記載のクロマトグラフィー段階の配列は新規であり、かつ多数の態様において発明性を有する。本明細書に記載されているように、緩衝液が改良され装填容積が小さいアミノフェニルボロネート（PBA）マトリックスを使用すると、ＥＬＩＳＡによって測定したところ、酵母抗原クリアランスが増加する（約４〜２０倍）ことが示された。アミノフェニルボロネートマトリックスと共に使用した緩衝液は、予想外にも特に有効であることが見いだされ、これは広汎な成分および特性のおびただしい数の緩衝液の集中的試験の結果を表している。緩衝液では、ＷＯ９６／３７５１５号公報のPBAクロマトグラフィー段階で用いた緩衝液と比較すると、酵母抗原のクリアランスが著しく増加する。

アミノフェニルボロネートマトリックスを例えば１００±１０g・L^-1の高濃縮アルブミン溶液と共に装填することは、装填容積が小さいのでrHAおよび酵母抗原の分割を向上させることができることを意味する。

ＷＯ９６／３７５１５号公報には、第一のアフィニティークロマトグラフィー段階の後にS200ゲル浸透段階が包含されている。ゲル濾過段階では、酵母抗原、色素および二量体化アルブミンに関してアルブミンが精製された。この段階は、アミノフェニルボロネートアフィニティー段階および追加のカチオンおよびアニオン交換段階の導入に対して行った改良により、最早必要でないことを見いだした。

アミノフェニルボロネートアフィニティー段階の後に、アルブミンを濃縮し、透析濾過するのがネガティブモードカチオン交換段階に好ましい。本発明者らは、この透析濾過段階およびカチオン交換段階を組み合わせることにより、ニッケルイオンの相対濃度が実質的に減少することを見いだした。特に、rHAを低ｐＨに暴露することは、ニッケルイオン濃度を減少させる上で有効である。従って、本発明によって精製されたアルブミンのニッケルイオン含量は意外なほど低い（１００ng／gアルブミン未満）。

本明細書に記載のネガティブモードでのカチオン交換段階を用いて、少量の修飾rHAであってグリコシル化されていると考えられるConcanavalin A結合材料（cbm）を除去する。ネガティブモードでのカチオン交換段階は、組換えpmt1突然変異体Saccharomyces cerevisiaeによって産生されたcbm含量を約１．３倍だけ減少させることを見いだした。更に大きな効果は、非pmt1突然変異体由来のrHAで得られる（２〜３倍のクリアランス）。

他の市販酵母と比較して、Saccharomyces cerevisiaeは比較的低濃度の修飾rHAを産生する。従って、ネガティブモードのカチオン交換段階および１個以上ののPMT遺伝子の欠失した細胞の使用は、rHAがSaccharomyces cerevisiae以外の組換え宿主によって産生される場合には、更に一層重要なことがある。

アルブミンの精製の際に使用したクロマトグラフィー溶液は、表３に詳説する。アルブミンの製造規模がきわめて大きく、生成物の比較的低価格であるため、これらの緩衝液塩は、工業的規模で高純度形態で得られ、かつTris、HEPESまたはMOPSのような他のふつうに用いられる緩衝液と比較して低価格であるので、これらはこの方法に最も適している。代替緩衝液を表３で用いるもの（例えば、同じｐＫａの緩衝液（例えば、リンゴ酸塩／酢酸塩））の代わりに用いることができたが、ほとんどの場合に、大規模での価格および入手可能性により使用することができない。代替塩形態は、それらが可溶性であり、工業的規模で入手可能であり、低価格である場合には、用いることができる。

緩衝液は下記の濃度で調製することができ、または濃縮した保存溶液を調製して、オンラインで混合または希釈して直ちに使用することができる。

カチオン交換クロマトグラフィー
アルブミンを、少なくとも酵母タンパク質（アルブミンが酵母発酵からのrHAである場合）および他の抗原、低分子量汚染物質、および着色化合物に関して、カチオン交換クロマトグラフィーによって濃縮し、精製する。この方法では、SP-Sepharose FF、SP-Spherosil、CM-Sepharose FF、CM-Cellulose、SE-Cellulose、またはS-Spheradexのような市販のカチオン交換マトリックスを用いる。好ましくは、マトリックスはSP-Sepharose FF (Pharmacia)であり、軸流カラムで用いる場合には、ベッド高さが５〜２５cmであり、好ましくは１０〜１５cmであり、例えば１２．５cmであることができる。半径流型カラムを用いるときには、適当なベッド流路長は１１．０±１．０cmである。１０〜５０gアルブミン／L、好ましくは４０±１０gアルブミン／Lのマトリックスが適当である。このマトリックスを緩衝液で平衡にして、アルカリ保存溶液を除去し、好ましくは、緩衝液はｐＨを約６．０のｐＨまで減少させるのに十分な強さ野茂のであるべきである。CS01のような緩衝液を用いて、カラムから保存溶液CS07を除去するが、ｐＨ＜６．０である任意の緩衝液を用いることもできる。平衡は、カラム溶出液のｐＨが約ｐＨ６．０であるときに完全であると判断される。

醗酵からのセントレート(centrate)を調製しまたはコンディショニングし、rHAを重合およびプロテアーゼ活性から保護しながら、カチオン交換マトリックス上でクロマトグラフィーを行う。しかしながら、酵母株がrHAを精製するのに必要なｐＨでrHAを分解するプロテアーゼを欠いていない場合には、培養液上清をＷＯ９４／０３６３６号公報に詳説されているように、例えば５０〜７０℃３０分間の熱処理によって殺菌すべきである。典型的には、１〜１０mMのオクタン酸ナトリウムが、熱変性からrHAを保護するのに十分であり、６０〜８０℃の温度で３０秒〜１０分がバッチまたはフロースルー処理でプロテアーゼを不活性化するのに十分である。HSAを用いる場合には、低温殺菌が望ましいこともある。

次に、コンディショニングしたセントレート(centrate)を、例えば０．０７〜０．７５ベッド容積／分、好ましくは０．３〜０．６ベッド容積／分、この例では０．５ベッド容積／分の流速でカラムに装填した後、カラムを１種類以上の溶液で洗浄して、残留汚染物質を除去する。カラムを最初に、例えば８容の１０〜１００mM、好ましくは３０〜７０mM、例えば５０mMのアセテート，ｐＨ３．９〜４．１，０．６〜０．８mS・cm^-1（CS02）で洗浄する。次に、カラムを、酢酸ナトリウム緩衝液（例えば、１０〜５０mM酢酸ナトリウム、好ましくは２７mM，ｐＨ３．５〜４．５、好ましくはｐＨ４．０（CS03））中１〜３MＮａＣｌ、好ましくは２MＮａＣｌの４容で洗浄した後、１０容のCS01で洗浄する。アルブミンを、アセテート／オクタノエート緩衝液（例えば、CS04の場合には、４０〜１２０、好ましくは６０〜１００、例えば８５mMアセテート、および２〜５０mM、好ましくは２〜２０mM、例えば５mMオクタノエート）で溶出して、集める。UV信号が０．６A₂₅₄/cmより大きくなったときに、アルブミンの回収を開始し、UV信号が０．３６A₂₅₄/cmより小さくなるまで回収を継続する。次に、カラムを０．２５〜３．０MＮａＣｌおよび０．０５〜２％洗剤（CS05）、次いで０．１〜１．０MＮａＣｌ（CS06）を用いて洗浄した後、希釈した（１０〜５０mM）ＮａＣｌ（CS07）中に保管する。この例では、平衡、装填および洗浄段階の流速は０．５ベッド容積／分である。アルブミンの溶出には、０．０４〜０．６ベッド容積／分、好ましくは０．１５〜０．３５、この例では０．２５ベッド容積／分の流速を用いる。

アニオン交換クロマトグラフィー
カチオン交換体からの溶出物を、次に１０mS・cm^-1以下、好ましくは５mS・cm^-1未満、特に２．５mS・cm^-1以下まで希釈した後、QMA-Spherosil、DEAE-Spherodex、Q-Hyper D、DEAE-セルロース、QAE-セルロース、またはTMAE、DMAEまたはDEAE Fractogelのようなアニオン交換樹脂に装填する。好ましくは市販のアニオン交換マトリックスDEAE Sepharose-FF (Pharmacia)であって、ベッド流路長が１１．０±１０cmであり、カチオン溶出緩衝液（CS04）で予備平衡化した後、３カラム容積のCS01で平衡にする。アルブミンを３０±１０gモノマー性アルブミン／１Lマトリッスでマトリックス上に装填した後、マトリックスを、ｐＨを約９．２まで上昇させる効果を有する希テトラボレート緩衝液、例えば１５〜２５mMテトラホウ酸カリウムまたはテトラホウ酸ナトリウム（CS08）で洗浄し、次いで、アルブミンを更に濃縮したテトラボレート緩衝液（例えば、８０〜１５０mMテトラホウ酸カリウム、好ましくは１１０mMテトラホウ酸カリウム（CS09））で溶出する。マトリックスを塩／洗剤（CS05）で洗浄し、次にＮａＣｌ（CS06）で洗浄した後、希ＮａＯＨ（CS07）中に保存する。次いで、アニオン交換マトリックスからの溶出液を、アフィニティーマトリックスに装填する。

アフィニティークロマトグラフィー
この段階では、４５kDaのＮ−末端アルブミン断片、酵母抗原および色素に関してrHAを更に精製する。アフィニティーマトリックスは、アルブミンに結合する任意のCibacron Blue型の色素、例えばReactive Blue 2、Procion Blue HB、Blue Sepharose、Blue Trisacryl、および他のアントラキノン型化合物を含んでなることができる。好ましくは、このマトリックスは、ＷＯ９６／３７５１５号公報に記載の方法で調製した「Delta Blue」マトリックス（DBA）である。

この方法は、ベッド流路長が１１．０±１．０cmのDBAを用いる。このDBAを酢酸アンモニウム緩衝液（CS10の場合には、１００〜３００mM、好ましくは２００〜２７５mM、例えば２５０mM）で平衡にし、アルブミンを７．０〜１４．０g／L、好ましくは８．０〜１２．０g／L、この例では１０．０±１．０g／Lで適用する。平衡化、装填および洗浄段階は、０．０５〜０．３０ベッド容積／分、好ましくは０．１５〜０．２７、この例では０．２５ベッド容積／分の流速で行う。他の総ての段階は、０．２０ベッド容積／分で行う。装填が完了したならば、カラムを酢酸アンモニウム緩衝液１０〜３０mS・cm^-1、好ましくは１５〜２５mS・cm^-1、例えばCS10の１〜５容、好ましくは５カラム容積で洗浄し、汚染物質を除去する。アルブミンを強塩およびリン酸塩溶液（CS11の場合には、１．０〜３．０MＮａＣｌ、例えば１．５〜２．５MＮａＣｌ、または２．０MＮａＣｌ、および５〜１００mM、例えば５０mMのリン酸塩）で溶出する。次いで、カラムをCS06を用いて洗浄し、CS07中に保存する。

次に、DBAカラムからの溶出物を濃縮および透析濾過し、フェニルボロネートアガロース（PBA）クロマトグラフィーを用いて精製を行う。DBA限外濾過は、名目分子量カットオフが３０，０００以下であるタンパク質濃縮に用いる任意の限外濾過膜、好ましくは名目分子量カットオフが１０，０００であるポリエーテルスルホン型膜（例えば、Filtron Omegaシリーズ）で行うことができる。DBA溶出物を濃縮した後、少なくとも５容の水に続いて少なくとも５容のCS20に対して約１００gのrHA・L^-1で透析濾過する。透析濾過が終了したならば、必要ならば保持物を更に濃縮し、装置をCS20で洗浄して段階回収率を増加させることができる。最終保持物の濃度は２０〜１２０g rHA・L^-1の範囲とし、好ましくは７０〜１２０g・L^-1、またはこの例では１００±１０g rHA・L^-1とすべきである。使用後に、残留タンパク質を水で流し、CS06で洗浄し、CS07に保存することによって、膜を処理する。

PBAは、糖タンパク質、糖脂質および多、オリゴおよび単糖類のような糖複合体を除去するためのアフィニティー段階であり、固定化アミノフェニルボロネートリガンドとして用いる。アミノフェニルボロン酸は、スペーサーを介してポリアクリルアミド、アガロース、セルロースまたは有機ポリマーのような不溶性マトリックスに共有結合している。米国特許第４，５６２，２５１号明細書（この内容は、その開示の一部として本明細書に引用される）には、ジボロトリアジンまたはモノボロトリアジンアガロースを作成するための適当な方法が記載されている：(1)トリアジンを最初にアガロースにＯ−結合した後、第二の反応で３−アミノフェニルボロン酸（APBA）と結合する。(2)トリアジンを最初にAPBAと反応させて、モノまたはジボロトリアジンを生成させる。次に、これらを、トリアジン上の遊離塩素を介して−ＯＮａ活性化アガロースにＯ−結合し、一または二置換アガロースを生成する。

従前の特許であるＵＳ４，２６９，６０５号明細書では、本明細書で好ましいアガロースのエピクロルヒドリン活性化などの様々な活性化法が考えられている。市販のマトリックスとしては、Amicon製 PBA30およびSigma製アクリル酸ビーズ入りアミノフェニルボロネートが挙げられる。

グリシン（１０〜５００mM、例えば２５〜２００mM、好ましくは５０〜１５０mM、この例では１００mM）、ＮａＣｌ（０〜５００mM、例えば２５〜２００mM、好ましくは５０〜１５０mM、この例では１００mM）およびＣａＣｌ_２（５〜２５０mM、好ましくは１０〜１００mM、この例では５０mM）、ｐＨ８．０〜９．５、好ましくはｐＨ８．０〜９．０、この例ではｐＨ８．５（CS20）を含む緩衝液を用いるのが特に有益であることを見いだした。

PBAカラムでは、１１．０±１．０cmの流路長を用い、上記のような緩衝液、例えばCS20で予備平衡する。カラムを１カラム容積未満、好ましくは０．５カラム容積未満、この場合には≦０．３５カラム容積で装填する。PBAはネガティブ段階として行うので、アルブミンをフロースルーで回収し、カラムから洗浄する。総てのクロマトグラフィー段階は、０．００５〜０．３ベッド容積／分の流速で行うことができる。好ましくは、カラムの平衡および洗浄は、好ましくは０．０１〜０．０５、好ましくは０．０２５ベッド容積／分の流速で行われるアルブミン溶液の装填および回収より高い流速、例えば０．１９ベッド容積／分で行う。次に、カラムを、塩（CS03）、ボレート緩衝液（CS09）、ＮａＯＨ（CS06）で洗浄した後、希ＮａＯＨ（CS07）中に保存する。

PBAクロマトグラフィーの後、アルブミン溶液を濃縮および透析濾過して、ネガティブモードカチオン交換段階の準備を行う。この透析濾過段階およびネガティブモードカチオン交換クロマトグラフィーを組み合わせることによって、ニッケルイオンの相対濃度が実質的に減少する。

ＰＢＡ限外濾過は、名目分子量カットオフが３０，０００以下であるタンパク質濃縮に用いる任意の限外濾過膜、好ましくは名目分子量カットオフが１０，０００であるポリエーテルスルホン型膜（例えば、Filtron Omegaシリーズ）で行うことができる。回収したPBAフロースルーをCS21でｐＨ５．３±０．５に調製し、濃縮した後、少なくとも７容のCS19に対して約１００gのrHA・L^-1で透析濾過する。透析濾過が終了したならば、装置をCS19で洗浄し、必要ならば更にCS19を加え、５０±１０g rHA・L^-1の保持物を濃縮したものを得る。最後に、オクタン酸ナトリウムを加えて、最終濃度を約２〜１５、好ましくは５〜１０、更に好ましくは６〜９、この例では６mMとし、例えばCS14を３mL・L^-1まで加える。使用後、膜を残留タンパク質を水で洗浄することによって処理し、CS06で洗浄し、CS07に保存する。

アルブミン溶液を次に、例えばSP-FF Sepharose(Pharmacia)を今回はアルブミンが保持されるよりはマトリックス中を通過するネガティブモードで用いて、第二のカチオン交換段階を施す。条件は、マンノシル化アルブミンがマトリックスに結合するようにする。緩衝液は、好ましくは酢酸ナトリウム緩衝液（５〜１１０mM、好ましくは１０〜５０mM、この場合には３０mM），ｐＨ５．２〜５．４，CS19）である。適当な範囲で緩衝することができる他の緩衝液、例えばシトレートホスフェート緩衝液を用いることができる。緩衝液の導電率が約２mS・cm-1であるのが適当である。カラムの流路長は１１．０±１．０cmであり、アルブミンは１０〜２５０g・L^-1の、好ましくは２０〜７０g・L^-1の、この例では５０±１５g・L^-1または５０±１０g・L^-1マトリックスまで装填される。これはネガティブ段階であるので、アルブミンはフロースルーおよび洗浄液に回収される。

このカチオン交換段階の後、アルブミンにネガティブモードアニオン交換クロマトグラフィーを施す。この段階で、ＥＬＩＳＡおよびウェスタンブロットによって測定すると、酵素抗原が除去される。第二のカチオン交換段階から回収したフロースルーおよび洗浄液をCS21でｐＨ４．６０±０．１０に調整し、水で１．０５±０．１mS・cm^-1まで希釈し、rHAを下記の条件を用いて精製する。この段階では、１１．０±１．０cmの流路長でDE-FF Sepharose (Pharmacia)のようなアニオン交換マトリックスを用いて、アルブミンを５０〜２５０g・L^-1、好ましくは１５０±５０g・L^-1マトリックスまで装填する。これはネガティブ段階であるので、アルブミンはフロースルーおよび洗浄液に回収される。フロースルーおよび洗浄液のｐＨを、次にCS22で７．０±０．１に調整する。

あるいは、例９に記載したように、ｐＨは、DEAEフロースルーおよび洗浄液について行う代わりに最終UF供給容器で調整することができる。

例１をpmt1突然変異体に関して説明してきたが、本発明の精製法はこの遺伝子座の突然変異体ではないまたは実際に任意の他のpmt座の突然変異体でない宿主細胞にも同様に適用できることを理解すべきである。

例２
二種類の分析法を用いて、セントレートの品質を検討した。セントレート品質が低下すれば、酵母細胞の「強壮性(robustness)」が悪化する。

二種類の分析法は、
１．６００nmにおけるセントレートの吸光度の測定（A₆₀₀）
２．セントレート中の粒子の湿時重量の測定（WW）
である。

いずれの分析法でも、値が高くなれば、セントレート品質は低下する。

流加醗酵で生育した二種類の異なるｐＨ条件下での三種類の異なる酵母株のセントレート品質を比較した。

上記の表から、ｐＨ５．５では、多重遺伝子欠失株はあまりよくないセントレートを生成するが、ｐＨ６．４または６．５では、これらの追加の遺伝子欠失の有害な効果は回避されると結論することができる。

例３
この例は、pmt1突然変異体でない株を用いることを除き、例１に記載したのと同じ方法で行った。この株を二種類の異なるｐＨ制御値でも生育させ、セントレートの湿時重量含量を例１に記載の方法で測定した。高ｐＨ制御点での生育の効果はこの酵母株についても見られ、表５に示されており、酵母をｐＨ５．５と比較して６．３〜６．５のｐＨ範囲で培養するときには、培養物上清の湿時重量含量の有意な減少が示されている。

従って、ｐＨを約５．５で制御するよりは、ｐＨ６．２０〜ｐＨ６．７０、好ましくはｐＨ６．３〜６．５の制御設定点を有するのが好ましい。このような高ｐＨでは、セントレートの品質は、細胞リーシスが減少するため有意に改良される。

例４
この例は、下記の差異を除き例１に記載したのと同様な方法で行った。酵母Pichia pastoris GS115株(Invitrogen)を、５．９０に設定し、５．９０±０．２０で制御したｐＨコントローラーを用い、炭素源としてグルコースを用い、比成長速度を０．１０時^-1とすることを除き、上記と同じ条件および培地を用いて生育した。バッチ相期間は２８時間であり、供給相期間は４２時間であった。供給相が開始したならば、組換えヒトアルブミンを加え、醗酵の終了時における最終濃度を３．８g rHA・L^-1とした。Pichia 培養物をスパイクするのに用いたを精製したが、本発明の精製法にはよらなかった。

次に、Pichia流加培地からのrHAを、例１に記載の精製法に従って精製した。

例５
この例は、例４に記載した方法でPichia培地から精製したrHAの分析を記載する。

イムノアッセイデーター
イムノアッセイは、(i)Pichia培地から精製したrHA、(ii)培地のスパイクに用いたrHA、および(iii)本発明に従って精製したSaccharomyces cerevisiaeによって産生したアルブミンについて行った。

ウェスタンブロットの概要
抗体バッチ数 Ig9601
ゲルの種類４〜１２％SDSNR NOVEX CELS
乳の種類 UHT
暴露時間２０秒。

Ig9601は非アルブミン産生Saccharomyce cerevisiae株に対して産生させたので、酵母抗原を検出するのに用いることができる。

ウェスタンブロットでは、Pichia培地由来のアルブミンの酵母抗原プロフィールは、Pichia醗酵のスパイクに用いた材料より少なくかつ強くないバンドを含むことを示した。Pichia由来のアルブミン酵母抗原プロフィールは、Saccharomyces 由来のプロフィールにきわめて類似していた。

ＥＬＩＳＡブロットの概要
Pichia培地から精製したアルブミン中およびPichia培地をスパイクするのに用いたアルブミンについての酵母抗原不純物を、Ig9601を用いてＥＬＩＳＡによって定量した。

Pichia培地から精製したアルブミンの酵母抗原含量はこの分析法の検出限界（約０．００４μg・g^-1）以下であり、Pichia培地をスパイクするのに用いたアルブミンについての抗原含量はμg・g^-1であった。

Con A結合材料
例９に記載のCon A分析法を、Pichia培地から精製したアルブミンおよびPichia培地をスパイクするのに用いたアルブミンについて行った。前者についてのCon A結合材料の含量は０．２２％（w/w）であり、後者ついては０．５７％（w/w）であった。

Pichia培地から精製したアルブミンでのCon A結合材料の濃度は本発明によりSaccharomyces cerevisiaeから精製したアルブミンの濃度と同様であるが（表６参照）、後者はpmt1突然変異体からは産生されない。

この純度分析により、本発明の方法はSaccharomyces cerevisiae（例えば、Pichia)以外の酵母からのアルブミンの精製に良好に用いることができ、Saccharomyces cerevisiaeから精製したのと同様な純度のアルブミンを得ることができることが確かめられる。

例６
例１では、ネガティブモードアニオン交換クロマトグラフィー段階（DE-FF2）は、第二のカチオン交換クロマトグラフィー段階（SP-FF2）の後に行われる。別の精製法では、第二のカチオン交換クロマトグラフィー段階の後にポジティブモードアニオン交換クロマトグラフィー段階が行われることがある。

ｐＨが約５．３のSP-FF2溶出物から、ｐＨをｐＨ７に増加する必要がある。下記に詳説するｐＨ調整および透析濾過の二つの手段がある。後者は、一層良好な品質の生成物を生じると思われる。

DE-FF2 (A)
SP-FF2フロースルーおよび洗浄液を、０．５Mオルトリン酸水素二ナトリウムでｐＨ７．０にｐＨ調整した。この材料を標準的ポジティブ条件下でDEAEに装填し、マトリックス装填量４０g rHA・L^-1マトリックスを得て、装填物のｐＨおよび導電率はそれぞれ７．０および１．２９mS・cm^-1であった。

DE-FF2 (B)
SP-FF2フロースルーおよび洗浄液を１０容の１０mMリン酸ナトリウム，ｐＨ７．０に対して透析濾過し、濃縮して、緩衝液で５０g・L-1まで希釈し、標準的ポジティブ条件下でDEAEに装填した。装填物のｐＨおよび導電率は、それぞれ７．０および１．４３mS・cm^-1であった。

DE-FF2A／DE-FF2Bからのアルブミンは、４５〜５５mMリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）によって公的に溶出される。

例７
低ｐＨで処理することによるrHAからのニッケル除去の動態を検討した（図９参照）。結果は、ｐＨ４〜ｐＨ４．５では、ニッケル除去の速度および程度はいずれもｐＨから独立であるが、ｐＨ５では除去速度は若干低下することを示していた。ニッケル除去の速度および程度はいずれも、５〜６．５の増加ｐＨでは減少し、ｐＨ６．５以上ではほとんどまたは全く除去されなかった。

例８
クリオ−プア血漿ペースト(cryo-poor plasma paste)(Centeon Pharma GmbH)の試料からのヒト血清アルブミンの精製は、例１に記載した精製法を用いて行った。

それぞれのクロマトグラフィー段階でのHSAの回収率は、PBAカラムを除き、同じ段階での予想されたrHAの回収率とほとんどが同様であった。ここで、回収率は、グリコアルブミンが除去されるため予想したものよりずっと低かった。

例９
この例では、高純度rHAの濃縮、透析濾過および適当な生成物への処方、この場合には２０％（w/v）アルブミンを説明する。この手続きは、二段階、すなわち限外濾過（UF）および処方で行う。

最終UFは低ｐＨでの透析濾過によるニッケル濃度を減少させ、適当な等級の水を用いる確定された水性環境でrHAを提供する。

最終UFは、DEAEフロースルーおよび洗浄液の最終UF供給容器への導入と共に開始する。下記のように、アルブミンを次に濃縮し、透析濾過したｐＨをｐＨ７．０に調整し、更に濃縮する。

DE-FF2をポジティブモードで行う場合には、DE-FF2溶出物をDEAEフロースルーおよび洗浄液の代わりにまたはに加えて用いることができる。

DE-FF2フロースルーおよび洗浄液（またはDD-FF2をポジティブモードで行う場合には、溶出物）を導入した後、rHAを含む工程流に、名目分子量カットオフ限界が１０，０００のセルロース膜を備えた限外濾過装置中で、順次一次濃縮、透析濾過および二次濃縮相を施す。初期濃縮段階ではrHA濃度が約１００g・L-1まで増加し、直ちに連続透析濾過相を行い、rHAを少なくとも５、好ましくは少なくとも７保持物容積相当の注射用水、好ましくは５０mMの塩溶液に対して透析濾過し、アンモニアを除去する。透析濾過の後、ｐＨを７．０に調整し、二次濃縮相ではrHA濃度が２７５〜３２５g・L-1まで更に増加する。UFが終了したならば、保持物をバルク生成物処方容器に移す。

DEAEフロースルーおよび洗浄液について行ったｐＨ調整の代わりに、ｐＨ調整を最終UF供給容器中で、好ましくは透析濾過工程と二次濃縮相との間で行うことができる。好ましくは、透析濾過保持物を、EX04でｐＨ７±０．１に調整する。ｐＨが７．１を上回るが≦８．５に留まっているときには、ｐＨをEX05で減少させることができる。

処方段階は、適当な化学的環境およびバルク生成物の滅菌濾過および充填に適当な適当な濃度でrHAを生成する。導入された最終UF保持物を分析して、アルブミン、ナトリウムおよびオクタノエートの濃度を測定する。これらの量を考慮し、保存塩化ナトリウムおよびオクタン酸ナトリウム賦形剤溶液の任意の必要な追加量および適当な等級の水を加えてバルク処方明細を得る。最終アルブミン濃度は１５０〜２５０g・L^-1または２３５〜２６５g・L^-1であることができ、ナトリウム濃度は１３０〜１６０mMである。しかしながら、どのような他の入手可能なアルブミン濃度、例えば少なくとも４％（w/v）、好ましくは４〜２５％（w/v）の最小濃度を作成することもできる。処方は、適当な通常の薬学上許容可能な賦形剤、例えばポリソルベート８０、またはヒトアルブミンについて米国薬局方に記載されているもの、および希釈用水を加えた後に終了する。

最終濃度は、０．０８ミリモルのオクタン酸ナトリウム／gアルブミンであるのが望ましい。生成物は殺菌されており、発熱性物質を含まない。１％までの二量体性アルブミンが合ってもよいが、これより大きなポリマーまたは凝集体は検出されない。

例１０
この例は、本発明により精製したアルブミンの純度を確定する目的で行う分析を説明する。特に断らない限り、この分析法の総ては例１によって精製し、例９によって処方したアルブミンについて行う。

rHAのグリケーション
グリコタンパク質の微量分析では、本発明によって精製したrHAは非酵素性グリコシル化（グリケーション）によって実質的に修飾されないことが示された。微量分析では、グリコタンパク質の安定なAmadori生成物（AP）形態をAPのＣ−１のヒドロキシル基の過ヨウ素酸塩で酸化することによって測定する。過ヨウ素酸塩酸化によって放出されたホルムアルデヒドを、アンモニア中アセチルアセトンと反応させることによって発色団ジアセチルジヒドロルチジン（DDL）に転換することによって定量する。DDLを次に比色法によって検出する。試料を、Pharmacia PD-10 (G25 Sephadex)カラムを用いて脱塩した後に分析し、次いで試料中のアルブミンをBradford法によって再定量し、１０mgアルブミンを分析した。フルクトースポジティブコントロールが包含され、吸光度をShimadzu UV 2101分光光度計で４１２nmで読取った。ヘキソースの１モル毎について、Amadori生成物が形成される。

試料A-Qは、米国、欧州および日本製の市販のHSA生成物である（平均＝０．４９±０．２０）。試料Rは、本発明によって精製したrHAである。

Ｃ末端の分析
組換えタンパク質の品質管理の重要な態様は、予備測定した一次構造のコンホメーションおよび安定性である。Ｎ末端シークエンシングおよびFAB質量スペクトル分析法による、市販HSAおよび本発明によって精製したrHAにおけるＣ末端トリプシンペプチドの分析は、HSAにおいてＣ末端のロイシンを欠いている切断ペプチドの存在を示していた。Des-LueＣ末端トリプシンペプチドは、市販のHSAでは約５〜１０％（定量的ではない）で検出されたが、本発明のrHAでは３０℃６ヶ月後でも検出することができなかった。Des-Leuペプチドは３０℃１２ヶ月のHSAでは検出されず、完全長Ｃ末端ペプチドのピークは他の試料と比較して非常に減少しており、このことはＣ末端が更に分解したであろうことを示している。

これらの結果は、本発明によって精製したrHAは安定で完全長のカルボキシ末端を有し、一方以前に商業的供給源から入手可能なHSAは比較すると不均一性であることを示している。

本発明によって調製したrHAのニッケルイオン含量
測定装置：
SIMAA 6000, Perkin Elmer Furnace: ２３２nm，２４７０℃での検出を用いるCTT（定温チューブ）。

較正：
この方法は三点較正に基づいている（１８／３０／６０μg/L標準溶液、Perkin Elmer製）。較正の後、純水のブランクを測定する。対照標準を、ブランクおよびそれぞれの試験シリーズの終了時に測定する（Ｎｉ−標準２０μg/L、Perkin Elmer製保証付き標準）。

試料調製：
それぞれの分析は二回の測定の結果であり、これは較正および対照標準についても当てはまる。予想したＮｉ濃度によっては、試料を、較正範囲内のＮｉ濃度で作用する適当な比に希釈する。１０％以上のタンパク質濃度を有する試料は、いずれの場合にも少なくとも１：５に希釈しなければならない。希釈は純水を用いて行う。

試料毛管についての洗浄溶液：
２Lの純水を０．５mLのTriton X100と混合した。それぞれの試験シリーズは、系適合性試験を包含する。

要件：
１．較正の相関係数は少なくとも０．９９０００である。相でない場合には、較正を１回反復しなければならない。較正が二回目に要件に合わないときには、エラー分析を行わなければならない。

２．３０μg/L標準で測定した特徴的質量は、２０％以上だけ２０pg／０．００４４A-sの理論値を上回ってはならない。

特徴的質量 m0：
１％の吸収に寄与するピコグラム（pg）での分析質の量。１％の吸収は、０．００４A-s（アンペア秒）に相当する。

３．対照標準の測定濃度は、信頼範囲（２ｓ／３ｓ基準）内になければならない。

計算:
測定装置は、下記の項目によって結果を計算する。

Ａ：吸収
slope：較正曲線の傾き（直線回帰）
Ｖ：希釈。

モディファイアーは用いない。

中および長鎖脂肪酸の分析
本発明によるアルブミンおよび市販のHSAの脂肪酸プロフィールを、酸性溶媒抽出およびC17:0内部標準を用いる遊離脂肪酸のガスクロマトグラフィーによって分析した。rHAおよびHSAのプロフィールは有意な差を示したが、本発明のアルブミンでは異常脂肪酸は検出されなかった。予想したように、いずれも多量の安定剤、オクタノエート（Ｃ８：０）の添加を示した。これとは別に、市販のHSAは主としてＣ１６：０、Ｃ１６：１、Ｃ１８：０、Ｃ１８：１およびＣ１８：２を特徴とし、本発明のアルブミンは主としてＣ１０：０およびＣ１２：０および時にはＣ１４：０を含んでいた。更に実験を行ったところ、rHA最終生成物におけるＣ１０：０および１２：０の濃度は、精製工程の後段階に用いるオクタノエートにおけるこれらの汚染物質の濃度と相関することを示した。

好ましくは、Ｃ１８脂肪酸の総濃度はオクタノエートの濃度の１．０％（モル／モル）を超過せず、好ましくはこの濃度の０．５％を超過しない。更に、本発明のアルブミンでは、Ｃ１８：２、Ｃ１８：３およびＣ２０脂肪酸の濃度は一般には検出されない。市販HSAでは、典型的には約０．４モルＣ１８脂肪酸／１モルアルブミンがあることがある。本発明の生成物では、典型的にはＣ２０脂肪酸は検出されず、約０．０２モルのC18脂肪酸／１モルアルブミンのみが検出される。

ＳＤＳ還元性ポリアクリルアミドゲル電気泳動
この分析は、ＷＯ９６／３７５１５号公報に記載の方法で行った。この分析では、本発明のrHAが一本鎖ポリペプチドからなり、還元剤（β−メルカプトエタノール）で処理すると、SDS還元性ポリアクリルアミドゲル電気泳動（PAGE）で単一バンド（モノマー）として移動し、モノマーとして存在するアルブミンの比率は少なくとも９９．９％であることを示唆していた。

ゲル浸透高圧液体クロマトグラフィー
２５％（w/v）まで処方された本発明によって精製したアルブミンの１０mg/mlの２５μlを、Shimadzu LC6A HPLC上のTSK3000SWXLカラムに注入し、ポリマー性アルブミンが０．１％未満であることを見いだした。この結果は、本明細書に記載の処方は、精製アルブミンのポリマー／凝集体含量に有害な影響を与えないことを示している。

二次元ゲル電気泳動
本発明の方法によって調製したアルブミンの２μgのrHAに、Millipore Investigator装置を用いて二次元電気泳動を施した。一次元での分離はｐＨ３〜１０の等電点電気泳動ゲルであり、次いで二次元では１０％ポリアクリルアミド／SDSを行った。ゲルをCoomassie Blueで染色したところ、一点のみが見られ、一種類のタンパク質のみが存在することを示していた。

マンノシル化アルブミン／Con A分析
コンカナバリンA（Con A）は、α−Ｄ−マンノピラノシル、α−Ｄ−グルコピラノシルおよび立体的に関連した残基を含む分子に結合する。Con A分析では、組換えヒトアルブミン（rHA）および／またはヒト血清アルブミン（HSA）のCon A Sepharose (Pharmacia, Cat. No. 17-0440-01)アフィニティークロマトグラフィーを用いて、マンノシル化アルブミンの含量を測定した。

組換えヒトアルブミン（rHA）を、１４５mM塩化ナトリウムで５％（w/v）rHAまで希釈した後、Con A希釈緩衝液（２００mM酢酸ナトリウム、８５mM塩化ナトリウム、２mM塩化マグネシウム、２mM塩化マンガン、２mM塩化カルシウム，ｐＨ５．５）で１：１に希釈する。次に、１００mg rHAを平衡にした２mLのCon A Sepharoseカラムに装填した後、Con A平衡緩衝液（１００mM酢酸ナトリウム、１００mM塩化ナトリウム、１mM塩化マグネシウム、１mM塩化マンガン、１mM塩化カルシウム，ｐＨ５．５）で洗浄する（５×４mL）。カラムを６mLのCon A溶出緩衝液（１００mM酢酸ナトリウム、１００mM塩化ナトリウム、０．５mMメチル−α−Ｄ−マンノピラノシド，ｐＨ５．５）で溶出する。

Con A装填物（約０．１mg・mL-1まで希釈）および溶出物（分析したニート）中のモノマー性アルブミンを、０〜０．２mg・mL-1 rHA標準曲線を用いてGP-HPLCによって定量し、溶出物中に回収されたCon A結合アルブミンモノマーを装填物の百分率として表す。

Con A結合rHAを、エレクトロスプレー質量スペクトル分析法（図８）によって更に分析した。これは、con A結合rHAの量の減少の他に、con A結合rHAの修飾の程度が減少したことを示していた。

カラー分析
１cmセル中の最終生成物の５％（w/v）溶液の吸光度を３５０nm、４０３nm、および５００nmで測定し、１cm光路長当たりの１gアルブミン／L当たりの吸光度（すなわち、ABS・L・g^-1・cm^-1）について計算した。本発明のアルブミンは、下記の値を有する。
波長平均吸光度（ｎ＝４バッチ）
（nm）（L・g^-1・cm^-1）
３５０５．７５×１０^−３
４０３１．７×１０^−３
５０００．４×１０ ^−３

一般に、本発明のアルブミンは、上記の３つの波長において８．０×１０^−３、３．０×１０^−３、および０．７５×１０^−３のそれぞれの吸光度を超過しない。

多数の市販HSA製剤の分析から、これらの波長では吸光度が高いことが明らかになった（表７参照）。

内毒素
薬剤生成物の溶液を、自動内毒素検出装置（例えば、LAL 5000E)を用いて、３４０nmにて３６．５〜３７．５℃の温度で速度論的濁度測定法によりLimulus変形細胞溶解生成物を用いて分析する。標準緒曲線を標準内毒素製剤の既知濃度から構築し、ネガティブコントロールおよび既知量の標準内毒素でスパイクした試験材料溶液も分析に包含される。反応混合物の濁度の変化を、時間および対数−対数回帰について測定した。薬剤生成物中の任意の内毒素を標準曲線に対して定量し、内毒素スパイクの回収率を確かめる。内毒素は検出されなかった。

遊離チオール
Ellman試薬５，５′−ジチオビス−（２−ニトロベンゾエート）（DTNB）は、cys-SH（rHAの場合には、Cys-残基３４）のような遊離スルフィドリル基を検出する特異的な手段である。反応により、４１２nmに最大吸収を有する５−チオ−２−ニトロベンゾエートイオンTNB^2-が放出される。４１２nmでの吸光度の増加を測定し、４１２nmにおけるTNB^2-イオンのモル急行計数によって割ることにより、rHAの遊離スルフィドリル含量を計算することができる。

プラスミドpAYE309の構築。プラスミドpAYE440の構築。プラスミドpAYE438の構築。プラスミドpDB2241の構築。プラスミドpDB2242の構築。プラスミドpDB2243の構築。プラスミドpDB2244の構築。本発明によって調製したrHAからのcon A結合rHA断片のエレクトロスプレー質量スペクトル分析法。 Chelex商標によるrHAからのニッケルの除去に対するｐＨおよび時間の効果。領域Saccharomyces cerevisiae PMT1をコードするタンパク質に相同性の二種類のＤＮＡ配列。領域Saccharomyces cerevisiae PMT1をコードするタンパク質に相同性の二種類のＤＮＡ配列。領域Saccharomyces cerevisiae PMT7をコードするタンパク質に相同性の四種類のＤＮＡ配列。領域Saccharomyces cerevisiae PMT7をコードするタンパク質に相同性の四種類のＤＮＡ配列。領域Saccharomyces cerevisiae PMT7をコードするタンパク質に相同性の四種類のＤＮＡ配列。領域Saccharomyces cerevisiae PMT7をコードするタンパク質に相同性の四種類のＤＮＡ配列。領域Saccharomyces cerevisiae PMT5をコードするタンパク質に相同性の二種類のＤＮＡ配列。領域Saccharomyces cerevisiae PMT5をコードするタンパク質に相同性の二種類のＤＮＡ配列。

Claims

組換えアルブミンコード配列を発現する真菌細胞を培養して、該アルブミンを得ることを含んでなる、組換えアルブミンの製造方法であって、
前記細胞が組換え発現したアルブミンのマンノシル化能を少なくとも減少させる遺伝子修飾を有し、かつ、培地が少なくとも１，０００ＬであってｐＨ５．３〜６．８である、方法。
前記修飾が、抑制、置換、欠失、付加、破壊、および／または突然変異による挿入を含んでなる、請求項１に記載の方法。
前記修飾が、安定的に承継され、および／または非復帰性であり、および／または非漏出性である、請求項２に記載の方法。
前記修飾が、遺伝子のコード領域または遺伝学の発現に関与する領域に配置されている、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
該遺伝子がPMT遺伝子、好ましくはPMT1である、請求項４に記載の方法。
真菌細胞を少なくとも５，０００Ｌ、好ましくは少なくとも７，５００Ｌの培地において培養する、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
真菌細胞をｐＨ６．２〜６．７、好ましくはｐＨ６．３〜６．５で培養する、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
ｐＨ８．０〜９．５であって導電率が１〜７５mS・cm^-1の範囲の第一のアルブミン溶液を、アルブミンに関してネガティブモードで行われ、かつ固定化したジヒドロキシボリル基を含んでなるアフィニティーマトリックスを用いるアフィニティークロマトグラフィー段階に付して、それによって精製アルブミン溶液を得る段階を含んでなる、アルブミン溶液の精製方法。
第一のアルブミン溶液のｐＨがｐＨ８．０〜９．０、好ましくはｐＨ８．３〜ｐＨ８．６である、請求項８に記載の方法。
第一のアルブミン溶液が、１０〜５００mM、好ましくは２５〜２００mM、更に好ましくは５０〜１５０mMの濃度のグリシンと、０〜５００mM、好ましくは２５〜２００mM、更に好ましくは５０〜１５０mMの濃度のＮａＣｌと、５〜２５０mM、好ましくは１０〜１００mMの濃度のＣａＣｌ_２とを含んでなる緩衝液で緩衝されている、請求項８または９に記載の方法。
第一のアルブミン溶液が、約１００mMのグリシンと、約１００mMのＮａＣｌと、約５０mMのＣａＣｌ_２とを含んでなる緩衝液で緩衝されている、請求項１０に記載の方法。
緩衝液の導電率が１０〜５０mS・cm^-1、好ましくは１８〜２２mS・cm^-1である、請求項１０または１１に記載の方法。
第一のアルブミン溶液が少なくとも７０g・L^-1の濃度のアルブミンを含んでなる、請求項８〜１２のいずれか一項に記載の方法。
アルブミンを０．５カラム容積未満、更に好ましくは０．３５カラム容積未満で装填する、請求項８〜１３のいずれか一項に記載の方法。
マトリックスが固定化したボロン酸、好ましくはアミノフェニルボロン酸を含んでなる、請求項８〜１４のいずれか一項に記載の方法。
精製したアルブミン溶液を、カチオン交換クロマトグラフィーを用いて更に精製し、カチオン交換によって精製したアルブミン溶液を得る、請求項８〜１５のいずれか一項に記載の方法。
精製したアルブミン溶液を、アニオン交換クロマトグラフィーを用いて更に精製し、アニオン交換によって精製したアルブミン溶液を得る、請求項８〜１６のいずれか一項に記載の方法。
請求項８〜１５のいずれかに従うとき、アニオン交換によって精製したアルブミン溶液を、カチオン交換クロマトグラフィーを用いて更に精製し、カチオン交換によって精製したアルブミン溶液を得る、請求項１７に記載の方法。
精製したアルブミン溶液に、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整、還元剤処理、脱色処理、加熱、冷却、またはコンディショニングの１つ以上を行う、請求項８〜１８のいずれか一項に記載の方法。
カチオン交換クロマトグラフィーの後にアニオン交換クロマトグラフィー、またはアニオン交換クロマトグラフィーの後にカチオン交換クロマトグラフィーを含んでなるアルブミン溶液の精製法であって、第二のクロマトグラフィー段階からのアルブミン溶液を最終容器に入れる前に更に精製を行わないことを特徴とする、方法。
カチオン交換段階を、アルブミンに関してネガティブモードで行う、請求項１６、１８または２０のいずれか一項に記載の方法。
グリコシル化アルブミンがカチオン交換材料に結合する、請求項２１に記載の方法。
カチオン交換段階が、カチオン交換体として固定化したスルホプロピル置換基を含んでなるマトリックスを利用する、請求項１６、１８、２０、２１または２２に記載の方法。
カチオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のｐＨが４．５〜６．０、更に好ましくはｐＨが５．０〜５．６、更に一層好ましくはｐＨが５．２〜５．４である、請求項１６、１８、２０、および２１〜２３のいずれか一項に記載の方法。
カチオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のアルブミン濃度が１０〜２５０g・L^-1、好ましくは２０〜７０g・L^-1、更に好ましくは５０±１０である、請求項１６、１８、２０、および２１〜２４のいずれか一項に記載の方法。
カチオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のオクタノエートイオン濃度が２〜１５mM、好ましくは５〜１０mM、更に好ましくは６〜９mMである、請求項１６、１８、２０、および２１〜２５のいずれか一項に記載の方法。
カチオン交換段階の前に、アルブミン溶液が(i)ｐＨ調整、(ii)濃縮、(iii)透析濾過、または(iv)オクタノエートおよび／または他の脂肪酸を添加することによるコンディショニングの行程の１つ以上を行う、請求項１６、１８、２０、および２１〜２６のいずれか一項に記載の方法。
アニオン交換段階が、アニオン交換体として固定化ジアルキルアミノアルキル置換基を含んでなるマトリックスを用いる、請求項１７または２０に記載の方法。
アニオン交換段階を、アルブミンに関してネガティブモードで行う、請求項１７、２０または２８のいずれか一項に記載の方法。
アニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のｐＨが４．０〜５．２、更に好ましくはｐＨ４．２〜４．９、更に一層好ましくはｐＨ４．５〜４．７である、請求項２９に記載の方法。
アニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液の導電率が４．０mS・cm^-1未満、好ましくは導電率が１．０±０．５mS・cm^-1、更に好ましくは導電率が１．０５±０．１mS・cm^-1である、請求項２９に記載の方法。
アニオン交換段階をアルブミンに関してポジティブモードで行う、請求項１７、２０または２８に記載の方法。
ポジティブモードのアニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のｐＨが６．０〜８．０、好ましくはｐＨが６．５〜７．５、更に一層好ましくはｐＨが６．８〜７．２である、請求項３２に記載の方法。
ポジティブモードのアニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のアルブミンの濃度が１０〜１００g・L^-1、更に好ましくは２５〜７０g・L^-1、最も好ましくは３０〜５０g・L^-1である、請求項３２または３３に記載の方法。
ポジティブモードのアニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液の導電率が１．０〜１．５mS・cm^-1、好ましくは１．２〜１．４mS・cm^-1である、請求項３２〜３４のいずれか一項に記載の方法。
ポジティブモードのアニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液のアルブミンの濃度が１０〜１００g・L^-1、更に好ましくは２５〜８０g・L^-1、最も好ましくは４０〜６０g・L^-1である、請求項３２または３３に記載の方法。
ポジティブモードのアニオン交換クロマトグラフィーを行うアルブミン溶液の導電率が１．０〜２．０mS・cm^-1、好ましくは１．２〜１．６mS・cm^-1、更に好ましくは１．３〜１．５mS・cm^-1である、請求項３２、３３または３６のいずれか一項に記載の方法。
アルブミンに対して特異的親和性を有する化合物、好ましくは酸を含んでなる緩衝液を用いて、アルブミンをアニオン交換体から溶出する、請求項３２〜３７のいずれか一項に記載の方法。
緩衝液が、リン酸塩、好ましくはリン酸ナトリウムを２０〜９０mM、好ましくは３０〜７０mM、更に好ましくは３５〜６５mM含んでなる、請求項３８に記載の方法。
アルブミンを、ｐＨ６．０〜８．０、好ましくはｐＨ６．５〜７．５の緩衝液を用いてアニオン交換体から溶出する、請求項３８または３９に記載の方法。
アニオン交換段階の前に、アルブミン溶液に、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整、還元剤による処理、脱色処理、加熱、冷却またはコンディショニングの１つ以上を施す、請求項２９または３２のいずれか一項に記載の方法。
醗酵、一次分離、セントレートコンディショニング(centrate conditioning)、カチオン交換クロマトグラフィー、好ましくはスルホプロピル置換基をカチオン交換体として用いるカチオン交換クロマトグラフィー、アニオン交換クロマトグラフィー、好ましくはジエチルアミノアルキル置換基をアニオン交換体として用いるアニオン交換クロマトグラフィー、またはアフィニティークロマトグラフィー、好ましくは固定化アルブミン特異的色素、好ましくはCibacron Blue型の色素を含んでなるアフィニティーマトリックスを用いるアフィニティークロマトグラフィーの段階の１つ以上を先に行う、請求項８〜４１のいずれか一項に記載の方法。
アルブミン溶液の精製法であって、
(a)アルブミン溶液に、アルブミンに関してポジティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(b)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集め、
(c)カチオン交換溶出物にアルブミンに関してポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(d)アルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、
(e)アニオン交換溶出物にアルブミンに関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィーを施し、
(f)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(g)アフィニティークロマトグラフィー溶出物に、アルブミンに関してネガティブモードでかつ糖包合体に関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィー段階を施し、
(h)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(i)アフィニティークロマトグラフィー溶出物に、アルブミンに関してネガティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(j)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集め、
(k)カチオン交換溶出物に、ネガティブモードまたはポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(l)アニオン交換段階をネガティブモードで行う場合にはアルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、またはアニオン交換段階をポジティブモードで行う場合にはアニオン交換溶出物をアニオン交換マトリックスから溶出させる、
段階を含んでなり、
必要に応じて、それぞれの精製段階のいずれかを行う前または後に、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整、還元剤による処理、脱色処理、加熱、冷却またはコンディショニングの１つ以上を行う、方法。
アルブミン溶液の精製法であって、
(a)アルブミン溶液に、アルブミンに関してポジティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(b)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集め、
(c)カチオン交換溶出物に、アルブミンに関してポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(d)アルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、
(e)アニオン交換溶出物に、アルブミンに関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィー段階を施し、
(f)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(g)アフィニティークロマトグラフィー溶出物に、アルブミンに関してネガティブモードでかつ糖包合体に関してポジティブモードで行うアフィニティークロマトグラフィー段階を施し、
(h)アルブミンを含むアフィニティークロマトグラフィー溶出物を集め、
(i)アフィニティーマトリックス溶出物に、アルブミンに関してネガティブまたはポジティブモードで行うアニオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(j)アニオン交換段階をネガティブモードで行う場合にはアルブミンを含むアニオン交換溶出物を集め、またはアニオン交換段階をポジティブモードで行う場合には、アニオン交換マトリックスからアニオン交換溶出物を溶出させ、
(k)アニオン交換クロマトグラフィー段階によって精製したアルブミン溶液に、アルブミンに関してネガティブモードで行うカチオン交換クロマトグラフィー段階を施し、
(l)アルブミンを含むカチオン交換溶出物を集める
段階を含んでなり、
必要に応じて、それぞれの精製段階のいずれかを行う前または後に、緩衝液交換、濃縮、希釈、透析、透析濾過、ｐＨ調整、還元剤の添加、脱色処理、加熱、冷却またはコンディショニングの１つ以上を行う、方法。
アルブミン溶液中のニッケルイオンの濃度を減少させる方法であって、アルブミン溶液をｐＨ２．５〜７．５、好ましくはｐＨ４．０〜ｐＨ６．０とし、ニッケルイオンを除去することを含んでなる、方法。
透析濾過またはゲル浸透クロマトグラフィーを含んでなる、請求項４５に記載の方法。
アルブミンが組換えアルブミンである、請求項８〜４６のいずれか一項に記載の方法。
初期アルブミン溶液が、醗酵培地中で、アルブミンコードヌクレオチド配列で形質転換した酵母を培養することによって得られた酵母培養培地に由来し、これにより上記酵母がアルブミンを発現し、これを培地に分泌する、請求項８〜４７のいずれか一項に記載の方法。
酵母がSaccharomyces属、好ましくはSaccharomyces cerevisiaeである、請求項４８に記載の方法。
酵母がPichiaまたはKluyveromyces属である、請求項４８に記載の方法。
アルブミンの少なくとも幾つかが請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法によってまたは請求項５３に記載の細胞によって産生される、請求項８〜５０のいずれか一項に記載の方法。
アルブミン産物をヒトの非経口投与用に処方して、滅菌し、または最終容器に入れる、請求項１〜５１のいずれか一項に記載の方法。
組換えアルブミンコード配列を含んでなるＤＮＡ配列、プラスミドまたは細胞であって、組換えアルブミンコード配列の３′末端が２個以上のインフレーム翻訳停止コドン、好ましくは３個のインフレーム翻訳停止コドンを含んでなることを特徴とする、ＤＮＡ配列、プラスミドまたは細胞。