UA75411C2 - Recombinant virus of mva - Google Patents

Recombinant virus of mva Download PDF

Info

Publication number
UA75411C2
UA75411C2 UA20031212892A UA20031212892A UA75411C2 UA 75411 C2 UA75411 C2 UA 75411C2 UA 20031212892 A UA20031212892 A UA 20031212892A UA 20031212892 A UA20031212892 A UA 20031212892A UA 75411 C2 UA75411 C2 UA 75411C2
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
mma
virus
recombinant
gene
dna
Prior art date
Application number
UA20031212892A
Other languages
English (en)
Original Assignee
Gsf Forschungszentrum Fur Unwe
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=8097499&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=UA75411(C2) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Gsf Forschungszentrum Fur Unwe filed Critical Gsf Forschungszentrum Fur Unwe
Publication of UA75411C2 publication Critical patent/UA75411C2/uk

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • A61K48/0091Purification or manufacturing processes for gene therapy compositions
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/16Antivirals for RNA viruses for influenza or rhinoviruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/18Antivirals for RNA viruses for HIV
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/20Antivirals for DNA viruses
    • A61P31/22Antivirals for DNA viruses for herpes viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/04Immunostimulants
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0055Oxidoreductases (1.) acting on diphenols and related substances as donors (1.10)
    • C12N9/0057Oxidoreductases (1.) acting on diphenols and related substances as donors (1.10) with oxygen as acceptor (1.10.3)
    • C12N9/0059Catechol oxidase (1.10.3.1), i.e. tyrosinase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/12Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)
    • C12N9/1241Nucleotidyltransferases (2.7.7)
    • C12N9/1247DNA-directed RNA polymerase (2.7.7.6)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5256Virus expressing foreign proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/24011Poxviridae
    • C12N2710/24111Orthopoxvirus, e.g. vaccinia virus, variola
    • C12N2710/24141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/24143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/16011Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16311Human Immunodeficiency Virus, HIV concerning HIV regulatory proteins
    • C12N2740/16322New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Manufacturing & Machinery (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • AIDS & HIV (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Опис винаходу
Даний винахід відноситься до рекомбінантного вірусу коров'ячої віспи, що походить від модифікованого 2 вірусу коров'ячої віспи Анкара (ММА), а також містить та здатний експресувати сторонні гени, що вбудовані до сайту природної делеції у геномі ММА; до використання таких рекомбінантних вірусів ММА для продукування поліпептидів, наприклад, антигенів або терапевтичних агентів, або вірусних векторів для генної терапії; та до використання вказаних рекомбінантних вірусів ММА, що кодують антигени, у якості вакцин.
Метою даного винаходу є отримання рекомбінантного вірусу ММА, який може бути використаний у якості 70 ефективного та абсолютно безпечного експресійного вектору.
Іншою метою даного винаходу є розробка простого, ефективного та безпечного способу продукування поліпептидів, наприклад, антигенів або терапевтичних агентів, а також отримання рекомбінантних вірусів для виготовлення вакцин, та вірусних векторів для використання у генній терапії.
Ще однією метою даного винаходу є отримання експресійної системи на основі рекомбінантного вірусу ММА, 12 що експресує пеї ВІЛ антиген; та розробка способів продукування поліпептидів, наприклад, антигенів або терапевтичних агентів, або генерування вірусних векторів для використання у генній терапії, або виготовлення вакцин на основі вказаної експресійної системи.
Вірус коров'ячої віспи, що належить до роду Ортопоксвірусів родини Поксвірусів, був використаний у якості живої вакцини для імунізації людини у цілях продукування в нього імунітету проти натуральної віспи. Успішна всесвітня вакцинація вірусом віспи завершилася викориненням врусу віспи, який є агентом, що спричинює захворювання на віспу |Пйе діора! егадісайоп ої взтаїйЙрох. Ріпа! герогі ої (Ше діора! соттівзвіоп ог Ше сегійісайоп ої звтаїрох егадісайоп. Нівіогу ої Рибрієс Неакй, Мо4, Сепема: МУУопа Неай Огдапігайоп, 1980). З часу підписання декларації ВОЗ (Всесвітня організація охорони здоров'я, М/НО) загальна вакцинація с 22 була зупинена, за виключенням людей з високим ризиком зараження поксовірусом (наприклад, лаборантів). Го)
Пізніше віруси коров'ячої віспи були також використані для конструювання вірусних векторів, що були призначені для експресії рекомбінантних генів та для можливого їх застосування в якості живих вакцин
ІМасКек, М., тій, О.ЇГ., Мозв, В., 1982, Р.М.А.5., ОБА 79, 7415-7419; Зтій, о.Ї., Маскеї, М. Мозгв, В., 1984,
ВіоФесппоіїоду 5 Сепеїйїіс Епдіпеегіпуд Кемієемув, 2, 383-407). Це дає можливість отримати ДНК-послідовності -- (гени), що кодують чужорідні антигени та вбудовані, за допомогою техніки рекомбінантних ДНК, до геному вірусу -" че коров'ячої віспи. Якщо ген інтегрується в сайт вірусної ДНК, що не має вирішального значення для життєвого циклу вірусу, тоді знову рекомбінантний вірус коров'ячої віспи, що продукується, може бути інфекційним, тобто З він може інфікувати чужорідні клітини, в результаті чого буде експресуватися інтегрована ДНК-послідовність ою
ІЄвропейські патентні заявки МоМо83286 та 110385). Отримані таким чином рекомбінантні віруси коров'ячої віспи 3о можуть бути використані, з однієї сторони, в якості живих вакцин для профілактики інфекційних захворювань, в та, з іншої сторони, в якості матеріалу для продукування гетерологічних білків в еукаріотичних клітинах.
Продукування рекомбінантного вірусу коров'ячої віспи, що експресує ген РНК-полімерази бактеріофагу 17, дозволяє отримати експресійну систему, яка може широко використовуватися для синтезу рекомбінантних білків «4, у клітинах ссавців (Мовзв, В., ЕІгоу-біеіп, О., Мігикаті, Т., АІехападег, МУ.А., Ецегві, Т.К., 1990, Маїшге 348, З 50 91-92. Всі методи експресії рекомбінантного гену передбачають синтез РНК-полімерази 77 у цитоплазмі с еукаріотичних клітин. При цьому, найбільш часто використовується схема тимчасової експресії (Рцегві, Т.К.,
Із» Міез, Е.б., зіцаїег, Б.МУ. 5 Мовв, В., (1986) Ргос.Майн.Асайд.5сі. ОБА, 83, 8122-8126, та заявка на патент США
Мо7648971|. Спочатку потрібний чужорідний ген вбудовують до плазміди під контроль промотору гену
РНК-полімерази 17. Потім, використовуючи стандартну техніку трансфекції, цю плазміду вводять до цитоплазми клітин, інфікованих рекомбінантним вірусом коров'ячої віспи, що продукує РНК-полімеразу 17. і Ця схема трансфекції є досить простою, оскільки вона не потребує створення нових рекомбінантних вірусів, 4! та до того ж є дуже ефективною, оскільки вона дозволяє отримати більше 8095 клітин, що експресують потрібний ген ІЕіІгоу-5іеіп, О. 5 Мозвз, В. (1990) Ргос.Май.Асайд.Зсі. ОБА, 87, 6743-6747)Ї. Перевагу "вірус коров'ячої шк віспи//7-РНК-полімераза" - гібридної системи, у порівнянні з іншими системами з тимчасовою експресією, - 70 полягає, вірогідно, в її незалежності від транспорту плазмід до ядра клітини. Раніше цю систему щ використовували виключно в аналітичних цілях у вірусології та мікробіології |І Внопосоге, Ї. 5: Козе, У.К. (1990) т Майте 345, 625-628, РайцпаїК, А.К. апа УУегіг, С.МУ. (1991) Ргос.Ман.Асайд.бЗсі. ОБА, 88, 1379-1383, Каїепіп,
А., Аїуаг, 9У., Соціп, А., Юамідзоп, М. апа Іевіег, Н.А. (1991) РЕВ5 Гей, 278, 229-233, Но, В.У., КаїезпПіп,
А., Каутопа, .)., Вгапспек, Т., І евіег, Н.А. апа Оамідзоп, М. (1992) РЕВ5 Їей, 301, 303-306, Висппоїг, С.)., 22 Веїлег С, Нотапп, Н.Е. апа Мешбегі, МУ.) (1994) Мігоіоду, 204, 770-776). Однак у майбутньому можливі важливі
ГФ) зміни гібридної системи "вірус коров'ячої віспи/3РНК-полімераза 17", наприклад для продукування рекомбінантних білків або рекомбінантних вірусних частинок у цілях розробки нових терапевтичних або профілактичних методів о у медицині, можуть зіштовхнутись з певними труднощами, що зумовлені продуктивною реплікацією рекомбінантного вектору, отриманого на основі вірусу коров'ячої віспи. 60 Вірус коров'ячої віспи є інфекційним для людини, та іноді, після вакцинації, що проводилась у якості профілактичної міри по боротьбі з натуральною віспою, у вакцинованих людей спостерігались серйозні ускладнення. Найбільш повний опис випадків ускладнень після вакцинації людей приводиться у Національному звіті США, що висвітлює спостереження за вакцинацією близько 12 мільйонів людей, що була проведена з використанням вакцини, отриманої на основі штаму Нью-Йоркського місцевого департаменту охорони здоров'я бо (Мем ЖМогк Спйу Воага ої Неакй) вірусу коров'ячої віспи (апе, 9)., Киреп, Р., Мей, У. апа МіМПаг, 9. (1969)
Мем Епа!/.).Меа., 281, 1201-1208). Тому, багатообіцяюча можливість використання вірусу коров'ячої віспи в якості вектору для виготовлення живих вакцин зіштовхується з проблемою безпеки та регламентації застосування цього вірусу. Окрім того, більшість рекомбінантних вірусів коров'ячої віспи, що описані у літературі були отримані на основі штаму УУезіегп Кезегме вірусу коров'ячої віспи. З іншої сторони, відомо, що цей штам має високий ступінь нейровірулентності, а тому він є малопридатним для введення людині та тваринам |Могіга еї аї, Массіпе 5, 65-70 (1987)).
Ризик для здоров'я людини або тварин, пов'язаний із застосуванням вказаного вірусу в якості вектору, може бути знижений шляхом використання у високому ступені атенуйованого (послабленого) штаму вірусу коров'ячої 7/0 Віспи. Декілька таких штамів вірусу коров'ячої віспи були спеціально розроблені для знищення небажаних побічних ефектів, що з'являлись у результаті вакцинації проти віспи. Так, наприклад, модифікований вірус коров'ячої віспи Анкара (ММА) був отриманий шляхом тривалого серійного ласування штаму Анкара вірусу коров'ячої віспи (СМА) на фібробластах куриних ембріонів |див. огляд Мауг, А., Носпвіеіп-Міпігеї, М. апа
ЗІСКІ, Н.(1975) Іптесіоп 3, 6-14; патент Швейцарії Мо5683921. Вірус ММА був депонований, у відповідності з 7/5 Вимогами Будапештського договору, в СМСМ (Інститут Пастера, Національна колекція мікроорганізмів, 25 ге ам
ВБосіециг Коих, 75724 Рагіз Седех 15, 15 грудня 1987р. під номером допуску Мо1-721)|. Модифікований вірус ММА відрізняється своїм високим ступенем послабленості, тобто він має знижену вірулентність або інфекційність, зберігаючи при цьому гарну імуногенність. Вірус ММА був проаналізований для того, щоб визначити, які саме зміни є в його геномі у порівнянні з вірусом дикого типу СМА. В результаті цього аналізу були ідентифіковані шість головних делецій у генній ДНК (делеції !, І, Ш, ІМ, М та МІ), всього 31000 пар основ |Меуег, Н.,
ЗцЧег, б. апа Мауг А. (1991) у).Сзеп. МігоіЇ., 72, 1031-1038). У своєму колі хазяїв вірус, що був отриманий, чітко обмежений лише клітинами птахів. Окрім того, ММА відрізняється своєю крайньою послабленістю.
Дослідження на різних тваринах показали, що вірус ММА є авірулентним навіть у тварин з послабленим імунітетом. Та ще важливіше, що штам ММА має чудові властивості, які були продемонстровані у сч широкомасштабних клінічних іспитах (Мауг еї аї., 7БІ.ВаккНуа.ї, АрСОго., В 167, 375-390 (1987), З(сКІ еї аІ.,, Оівсп. тей. МУзснг., 99, 2386-2392 (1974)). Обстеження вище 120000 чоловік, вакцинованих вірусом ММА, і) показали, що у цих пацієнтів, включаючи пацієнтів з підвищеним ризиком зараження, були відсутні будь-які побічні ефекти.
Було винайдено, що реплікація ММА у клітинах людини блокується на пізній стадії інфікування, що сприяє «- зо попередженню зборки зрілих інфекційних віріонів. Однак ММА здатний експресувати вірусні та рекомбінантні гени на високому рівні навіть у непермесивних клітинах, в результаті чого було запропоновано, що вірус ММА (7 може служити в якості ефективного та безпечного вектору експресії генів (ЗиНег, с. апа Мозв, В. (1992) «г
Ргос.Май.Асайд.Зсі. О5А, 89, 10847-10851). Нещодавно були розроблені нові системи векторів на основі вірусу
ММА, що має чужорідні ДНК-послідовності, які вбудовані до сайту делеції І в геномі ММА або в гені ТК Щео,
ІзиНег, 0. та Мозз, В (1995) Юеу.Віо!. (апа.Вазе!, Кагдег, 84, 195-200 та патент США Мо51851461. М
Для подальшого більш перспективного використання ММА, були проведені дослідження для розробки нових можливих шляхів введення чужорідних генів до штаму ММА вірусу коров'ячої віспи з використанням техніки рекомбінантних ДНК. Оскільки зміна геному вірусу ММА не була метою цих досліджень, то необхідно було використати цей метод, який відповідав би цим цілям. У відповідності з даним винаходом, була здійснена « рекомбінація шляхом вбудовування чужорідної ДНК-послідовності до вірусної ДНК точно в сайт натуральної з с делеції, що є в геномі ММА.
Даний винахід включає, іпіег аа, до свого об'єму (окремо або в комбінації): ;» рекомбінантний вірус ММА, що містить та здатний експресувати пеї ВІЛ антиген; вищевказаний рекомбінантний вірус ММА, в якому пеї ВІЛ антиген знаходиться під транскрипційним
Контролем раннього/пізнього промотору р7.5 вірусу коров'ячої віспи; -І вищевказаний рекомбінантний вірус ММА, не здатний реплікуватися у клітинах людини; еукаріотична клітина, інфікована іп міго або ех мімо вищевказаним рекомбінантним вірусом ММА; о вакцина, що містить вищевказаний рекомбінантний вірус ММА у фізіологічно прийнятному носії; ї5» використання вищевказаного рекомбінантного вірусу ММА для приготування вакцини; вищевказаний рекомбінантний вірус ММА або вищевказана вакцина для імунізації живого організму тварини і - людини; ке вищевказаний рекомбінантний вірус ММА або вакцина для попередження або лікування ВІЛ інфекції або
СНІДУ; використання вищевказаного рекомбінантного вірусу ММА для продукування рекомбінантного пеї ВІЛ ов протеїну.
Термін "ген" означає ДНК-послідовність, яка кодує білок або пептид. (Ф) Термін "сторонній ген" означає ген, вбудований до ДНК-послідовності, в якій цей ген звичайно відсутній. ка Модифікований вірус коров'ячої віспи Анкара (ММА), що має обмежене коло хазяїв та є у вищому ступені атенуйованим штамом вірусу коров'ячої віспи, не здатний розмножуватись у клітинах людини та в досліджених бо Клітинних лініях більшості інших ссавців. Однак, оскільки експресія вірусного гену не порушується в непермесивних клітинах, то у відповідності з даним винаходом, рекомбінантні віруси ММА можуть бути використані в якості абсолютно безпечних та ефективних експресійних векторів.
Рекомбінантні віруси ММА
В одному з варіантів здійснення даний винахід відноситься до рекомбінантного вірусу ММА коров'ячої віспи, 65 що містить ген, який кодує чужорідний антиген, переважно патогенний агент; та до вакцин, що містять вказаний вірус у фізіологічно прийнятній формі. Даний винахід також відноситься до способів отримання вказаного рекомбінантного вірусу коров'ячої віспи ММА або вакцин на основі цього вірусу та до використання цих вакцин для профілактики інфекційних захворювань, викликаних вказаними патогенними агентами.
У переважному варіанті даного винаходу, чужорідним геном, що вбудований до вірусу ММА, є ген, що кодує пеї ВІЛ.
Авторами даної заявки були сконструйовані рекомбінантні віруси ММА, які дозволяють здійснити експресію гену пеї ВІЛ-1 під контролем раннього/пізнього промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи. Регуляторний білок Меї лентивірусів приматів синтезується на ранній стадії реплікативного циклу вірусу; при цьому було показано, що цей білок грає важливу роль в реплікації вірусу з високим титром та індукуванні захворювань іп мімо. Це 7/0 дозволяє передбачити, що пеї ВІЛ може грати вирішальну роль у патогенезі СНІДу. Молекулярні механізми, завдяки яким пеї сприяє збільшенню інфекційності та патогенності вірусу ВІЛ, потребують додаткового дослідження. Однак очевидно, що пеї є імуногенним, та пеї-специфічний антиген може бути використаний у якості вакцини проти ВІЛ-інфекції та СНІДУ.
У відповідності з цим очевидно, що, з однієї сторони, рекомбінантний вірус ММА, що експресує ген пеї ВІЛ, у/5 Може бути використаний у якості профілактичної вакцини проти ВІЛ для імунізації людини, а з іншої сторони, він може бути використаний для імунотерапії ВІЛ-інфікованих пацієнтів або хворих на СНІД. Окрім того, рекомбінантний вірус ММА, що експресує ген пеї ВІЛ, може бути використаний для продукування рекомбінантного білка ВІЛ.
В іншому переважному варіанті здійснення даного винаходу чужорідним геном, вбудованим до вірусу ММА, є 2о Тен, що кодує тирозиназу людини.
Авторами даної заявки були сконструйовані рекомбінантні віруси ММА, які дозволяють здійснити експресію гену тирозинази людини під контролем раннього/пізнього промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи. Нещодавно тирозиназа людини була ідентифікована як меланомо-специфічний пухлинний антиген, який сприяє генеруванню протипухлинних цитолітичних Т-лімфоцитів (|Вгіснага, М., еї аї., (1993) 9О.Ехр.Мед., 178, 489-495). Оскільки сч
Серед нормальних клітин, вірогідно, лише меланоцити експресують ген тирозинази, то очевидно, що тирозиназа є цінним антигеном-мішенню для імунотерапії меланоми. Тому рекомбінантний вірус ММА, що експресує ген і) тирозинази людини, може бути використаний для продукування у пацієнтів, що страждають меланомою, імунної відповіді, яка стимулює відторгнення пухлини або попереджуючої появи метастазів. Рекомбінантний вірус ММА, що експресує ген тирозинази людини, може бути використаний безпосередньо в якості вакцини проти меланоми, - де зо Чи цей вірус може бути використаний для продукування рекомбінантного білка тирозинази, який може служити в якості антигену у вакцинних препаратах. В іншому прикладі, клітини, що взяті з пухлини пацієнта, можуть бути -- модифіковані іп мійго з використанням у якості вектору рекомбінантного вірусу ММА, що експресує ген «г тирозинази людини, а потім модифіковані клітини, що експресують тирозиназу, переносять зворотно в організм пацієнта для індукування у нього протипухлинної імунної відповіді. Вакцина, отримана на основі о з5 рекомбінантного ММА, що експресує ген тирозинази людини, може бути використана або парентерально, або М місцеве шляхом введення безпосередньо в область пухлини. Для попередження появи метастазів або для фенотипічної зміни пухлини, наприклад зміни її розмірів, форми, консистенції, васкуляризації або інших ознак, вакцина, отримана на основі рекомбінантного вірусу ММА, що експресує ген тирозинази людини, може бути введена до, під час або після хірургічного видалення пухлини. «
Для виготовлення вакцин у відповідності з даним винаходом віруси коров'ячої віспи ММА готують у з с відповідній фізіологічне прийнятній формі. Це може бути зроблено, виходячи з досвіду отримання ММА-вакцин, . призначених для противіспяної вакцинації (як описано їсКІ, Н. еї аї., (1974) Оівсп.теа.М/вспг., 99, "» 2386-2392). Для цього близько 105-108 частинок рекомбінантного ММА ліофілізують у 100мл забуференого фосфатом фізіологічного розчину (РВ5З) у присутності 295 пептону та 195 альбуміну людини в ампулі, переважно 5 у скляній ампулі. Ліофілізат може містити наповнювачі (такі як маніт, декстран, цукор, гліцин, лактоза або -І полівінілпіролідон) або інші добавки (такі як антиоксиданти, стабілізатори т.ін.), які підходять для парентерального введення. Потім скляну ампулу герметично запаюють, та ця ампула може бути залишена на і-й зберігання протягом декількох місяців при температурі переважно -20296. г» Для вакцинації або терапії ліофілізат може бути розчинений у 0,1-0,5мл водного розчину, переважно шу 20 фізіологічного розчину, та введений або парентерально, наприклад шляхом внутрішньом'язової інокуляції або локально, наприклад шляхом інокуляції у саму пухлину або в область локалізації пухлини. Вакцини або - М терапевтичні засоби даного винаходу переважно вводять шляхом внутрішньом'язової ін'єкції (Мауг, А. ейаї., (1978) 2БІ.ВакуНуа., ІАБіОгід. В, 167, 375-390). Спосіб, доза та схема введення можуть бути оптимізовані власне фахівцем відомими способами. Для того щоб отримати відповідну імунну відповідь проти чужорідного антигену, бажано вводити вакцину декілька разів протягом тривалого періоду часу.
У відповідності з даним винаходом рекомбінантні віруси коров'ячої віспи ММА можуть бути також використані
ІФ) для продукування гетерологічних поліпептидів в еукаріотичних клітинах. Для цього клітини інфікують ко рекомбінантними вірусами коров'ячої віспи. В інфікованих клітинах експресуються гени, що кодують чужорідний поліпептид, в результаті чого продукується гетерологічний поліпептид, який потім виділяють. Методи, що 60 використовуються для продукування таких гетерологічних поліпептидів, добре відомі фахівцям (ЕР-А-206920 та
ЕР-А-205939). Поліпептиди, продуковані за допомогою рекомбінантних вірусів ММА, більше підходять, виходячи з конкретних властивостей вірусів ММА, для використання у якості лікарських засобів для введення людині та тваринам.
В іншому варіанті здійснення даного винаходу авторами винаходу були сконструйовані рекомбінантні віруси 65 ММА, що дозволяють експресувати ген РНК-полімерази бактеріофага Т7 під контролем раннього/пізнього промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи. Ефективність рекомбінантних вірусів ММА-рої! 17 у якості експресуючих систем оцінювали за допомогою аналізу методом короткочасної трансфекції для індукування експресії рекомбінантних генів під контролем промотору РНК-полімерази 17. Використовуючи в якості гена-репортера ген хлорамфеніколацетилтрансферази (САТ) Е.соїї, автори винайшли, що ММА-рої! Т7-індукована експресія гену САТ б такою ж ефективною, як і експресія, індукована вірусом коров'ячої віспи/рої Т7/, що походить від компетентного по відношенню до реплікації штаму МУК вірусу коров'ячої віспи.
Таким чином, гібридна система ММА-роЇ! Т7 даного винаходу може бути використана в якості простої, ефективної та безпечної експресійної системи для продукування поліпептидів у клітинах ссавців при відсутності вірусу коров'ячої віспи. 70 Ця експресійна система може бути також використана в цілях генерування рекомбінантних вірусних частинок для вакцинації або генної терапії шляхом трансформації клітинних ліній, які інфіковані рекомбінантним вірусом
ММА, що експресує РНК-полімеразу 17, тобто інфікованих ДНК-конструкцією, що містить усі або деякі гени, та геном або рекомбінантний геном, які необхідні для генерування вірусних частинок, наприклад, ММА-частинок або ретровірусних частинок під транскрипційним контролем промотору РНК-полімерази 17.
Векторні системи на основі ретровірусів складаються з двох компонентів: 1) першим компонентом є власне ретровірусний вектор, що представляє собою модифікований ретровірус (векторну плазміду), в якому гени, що кодують вірусні білки, були замінені терапевтичними генами та маркерними генами, які необхідні для введення у клітину-мішень, оскільки така заміна генів, що кодують вірусні білки, приводить до значного пошкодження вірусу, то цей вірус може бути "врятований" за допомогою другого компоненту в системі, який доповнює відсутність вірусних білків у модифікованому ретровірусі; 2) другим компонентом є клітинна лінія, яка продукує великі кількості вірусних білків, але при цьому не має здатності продукувати компетентний по реплікації вірус. Така клітинна лінія відома як лінія клітин з дефектом упаковки та представляє собою клітинну лінію, трансфіковану однією або декількома плазмідами, що несуть гени (гени дад, рої та епу, що кодують поліпептиди), які забезпечують упаковку модифікованого сч ов ретровірусного вектора.
Для генерування запакованого вектору, векторну плазміду трансфікують у лінію клітин з дефектом упаковки. і)
В цих умовах модифікований ретровірусний геном, що включає вбудовані терапевтичні та маркерні гени, транскрибується з векторної плазміди та упаковується в модифіковані ретровірусні частинки (рекомбінантні вірусні частинки). Потім цей рекомбінантний вірус використовують для інфікування клітин-мішеней, у ДНК яких «- зо Можуть інтегруватися геном вектора та будь-які присутні в ньому маркерні або терапевтичні гени. Клітина, що інфікована такою рекомбінантною вірусною частинкою, не може продукувати новий векторний вірус, оскільки в. 0/7 цих клітинах відсутні вірусні білки. Однак ДНК вектор, що несе терапевтичні та маркерні гени, інтегрується в «г
ДНК клітини, та може експресуватися в інфікованих клітинах.
У відповідності з даним винаходом, рекомбінантний вірус ММА, що експресує РНК-полімеразу 17, може бути о використаний для продукування білків, які необхідні для упаковки ретровірусних векторів. Для цього гени дад, ї- рої, епм ретровірусу (наприклад, вірус лейкоза мишей (МІМ)) вміщують в один або декілька експресійних векторів (наприклад, плазмід) під транскрипційний контроль промотору РНК-полімерази Т7, разом з експресійним вектором, що несе ретровірусну векторну конструкцію, можливо під транскрипційним контролем промотору РНК-полімерази 17. «
ІВ УУО 94/29437, МО 89/11539 та МО 96/07748) описані різні типи ретровірусних векторних конструкцій, які тв) с можуть бути упаковані з використанням системи для упаковки, яка описана вище. . Окрім того, рекомбінантний вірус ММА, що експресує РНК-полімеразу Т7, може бути використаний для и?» продукування рекомбінантних білків, неінфікованих вірусних частинок, або інфекційних мутантних вірусних частинок у цілях виготовлення вакцин або терапевтичних засобів |Висної еї аї., Мігоїоду, 204, 770-776 (1994) ла ЕР-В 1-356695). Для цього вірусні гени (наприклад, гени дад-рої та епм вірусу ВІЛ-1) вміщували під -І транскрипційний контроль промотору 17 в експресійний вектор (наприклад, у плазміду або інший рекомбінантний вірус ММА). Потім цю конструкцію вводили до клітин, що інфіковані рекомбінантним вірусом ММА, який експресує о РНК-полімеразу Т7. Гени рекомбінантного вірусу транскрибуються з високим ступенем ефективності, в їх результаті чого можуть бути отримані та очищені білки у великих кількостях. Окрім того, експресовані рекомбінантні вірусні білки (наприклад, епу, дад ВІЛ-1) можуть збиратися у вірусні псевдочастинки, які - реплікуються та відділяються від клітини, після чого вони можуть бути виділені з середовища з тканинною як культурою. В іншому варіанті здійснення винаходу, вірусні білки (наприклад, вірусів ВІЛ, 5ІМ та вірусу кору), що експресуються ММА-рої! Т7 системою, можуть спасати додатково введений мутантний вірус (який походить, наприклад від ВІЛ, 5ІМ, вірусу кору) шляхом подолання дефекту інтеграції; а також інфікування, декапсидація, ов реплікація нуклеїнової кислоти, експресія вірусного гена, збирання, баддінг або інша стадія розмноження вірусу дозволяють виконувати продукування і очищення вищезгаданого мутантного вірусу.
Ф) Вірус ММА-рої! Т7 може бути також використано разом з ДНК-послідовностями, що несуть ген потрібного ка антигена (наприклад, ген ВІЛ, пеї, Фаї, рої, дад, епм або інші гени), необхідний для імунізації. Спочатку кодуючу послідовність даного антигена (наприклад ВІЛ, НСМ, НРМ, НОМ, вірусу кору, вірусу грипу або ін.) бо Клонують під контролем промотора РНК-полімерази Т7 переважно в плазмідний вектор, а отриману
ДНК-конструкцію ампліфікують та очищують з використанням стандартних лабораторних процедур. Потім векторну ДНК інокулюють одночасно або з деяким інтервалом часу разом з ММА-ро! 77. В місці інокуляції потрібний рекомбінантний ген піддається тимчасовій експресії в клітинах, які містять векторну ДНК і ММА-рої
Т7, і відповідний антиген презентується імунній системі хазяїна, стимулюючи антиген-специфічну імунну 65 відповідь. Ця схема, що передбачає використання вектора ММА-рої! 17, що не реплікується, на основі вірусу коров'ячої віспи, є багатообіцяючим новим способом вакцинації нуклеїновою кислотою, що забезпечує ефективну часову експресію даного антигена, але при цьому дозволяє уникнути потенціального ризику конститутивної експресії гена.
Рекомбінантні віруси ММА, що походять від вірусу коров'ячої віспи, можуть бути отримані, як описано нижче.
ДНК-конструкцію, яка містить ДНК-послідовність, що кодує чужорідний поліпептид, ірланковану ММА-ДНК послідовностями, суміжними з природною делецією, наприклад делецією ІІ в геномі ММА, вводять в клітини, інфіковані вірусом ММА, в результаті чого відбувається гомологічна рекомбінація.
Після введення ДНК-конструкції в еукаріотичні клітини і після рекомбінації із заміною вірусної ДНК на чужорідну ДНК, рекомбінантний вірус коров'ячої віспи може бути виділено відомими способами, переважно за 7/0 допомогою маркера (|пор. МаКапо сеї аїЇ., Ргос.МаЧЦ.Асад.Зс. ОЗА.79, 1593-1596 (1982), Ргапке еї аї).,
Мо1!.СТІ.Віої, 1918-1924 (1985), Спакгабагії еї аї!., Мої.СТІ.Віо!, 3403-3409 (1985), Раі еї аї. Мігоїоді 97-105 (1986)).
ДНК-конструкція, що вводиться, може бути лінійною або кільцевою. Більш бажаною є кільцева ДНК, зокрема - плазміда. ДНК-конструкція містить послідовності що фланкують лівий і правий краї природної делеції, наприклад делеції ІЇ в геномі ММА |АМепригдег МУ. Зщіег СР., АМепригдег 4). (1989) Агсп. Мігої, 105,15-27). 7/5 Чужорідну ДНК-послідовність вбудовують між послідовностями, що фланкують природну делецію. Такою чужорідною ДНК-послідовністю може бути ген, що кодує терапевтичний поліпептид, наприклад, ЕРА або інтерферон, або антигенну детермінанту патогенного агенту. Такими патогенними агентами можуть бути віруси, бактерії і паразити, які можуть викликати захворювання, а також пухлинні клітини, які безконтрольно розмножуються в організмі і можуть приводити до утворення і зростання пухлини. Приклади таких патогенних го агентів описані Оаміз В.О. ей а. (Місгоріоїюду, Зга ей, Нагрег Іпіеглайопа! Едйоп). Більш бажаними антигенами патогенних агентів є віруси імунодефіциту людини (наприклад, ВІЛ-1 і ВІЛ-2), мікобактерії, що викликають туберкульоз, паразит Ріазтоадаіцт ТаЇІсірагит і клітини меланоми.
Для експресії ДНК-прослідовності або гена потрібна присутність регуляторних послідовностей, які необхідні для транскрипції генів, що присутні на ДНК-послідовності. Такі регуляторні послідовності (що називаються сч г промоторами) добре відомі спеціалістам, та прикладом таких послідовностей може служити промотор гену вірусу коров'ячої віспи, що кодує поліпептид 11кДа (описано в ЕР-А-1983281), і промотор гена, що кодує 7,5кДа і) (описано в ЕРА-110385).
ДНК-конструкцію може бути введено в ММА-інфіковані клітини шляхом трансфекції, наприклад шляхом преципітації фосфатом кальцію |Сгапат еї аї. Мігої,, 52,456-467 (1973); МУідіег еї аї.,Се, 777-785 (1979)); «- зр шляхом електропорації |Меитапп еї аі., ЕМВО У., 1, 841-845, (1982)); шляхом мікроїін'єкції |Сгаєзтапп еї а).,
Мей. Еплутоїіоду, 101, 482-492 (1983); шляхом використання ліпосом |Зігашріпдег еї аї.,, Меїйодавз іп --
Епгутоіоду, 101, 512-527 (1983)); за допомогою сферопластів (Зспайпег, Ргос.Май.Асай.Зсі. ОЗА,77, 2163-2167 «у (1980)), або якимось іншими відомими методами. При цьому більш бажаним методом трансфекції є осаджування фосфатом кальцію. о
Для кращого розуміння суті цього винаходу нижче наводяться докладні приклади його втілення. Однак ці ї- приклади не повинні розглядатися як деяке обмеження об'єму винаходу.
Фіг1: Схематична карта генома ММА і плазміди для інсерції чужорідної ДНК шляхом гомологічної рекомбінації: НіпапПІ-рестрикційні сайти в геномі ММА вказані зверху. Вказана також Ніпай-Ніпаці
М-фрагмент (900п.0.), який перекриває область делеції ІІ в геномі ММА. ДНК-послідовності ММА, що примикають « до делеції І! (край 1 (Папк 1)) та край 2 (Папк 2)) були ампліфіковані за допомогою полімеразної ланцюгової пт») с реакції (РОК) та використані для конструювання інсерційної плазміди рос ПІ 7. . Фіг2: рус І 17 Р7.5: плазмідний вектор ММА, що призначений для інсерції в делецію ІІ та містить и?» експресуючий Р111-І ас/-кластер та ранній/пізній промотор Р7.5 вірусу коров'ячої віспи, для експресії потрібних генів, які можуть бути клоновані у Зтаї!-сайт плазміди.
Фіг.3: рус І 1 7де! Р7.5: ММА-плазмідний вектор для інсерції чужорідних генів в сайт делеції ІІ у геномі -І ММА, що містить експресійний Р111-Ї ас7-кластер, що самоделетуючий, та ранній/пізній промотор Р7.5 вірусу коров'ячої віспи для експресії потрібних генів, які можуть бути клоновані в ЗтаМой1-сайт клонування плазміди. о Фіг.4: Конструювання рекомбінантного вірусу ММА-ро! Т7: схематичні карти геному ММА (рестрикційні їх Ніпапі-сайти ендонуклеази) та векторна плазміда рус ІІ 17 Т7рої, за допомогою якої здійснюють інсерцію ген 5р о /РНЕ-полімерази 17 в сайт делеції ІІ в НіпаПП-фрагменті М геному ММА. - Фіг.5: Саузерн-блот-аналіз ДНК вірусу ММА-рої! 17. - М Фіг.6: Метаболічне мічення білків з використанням | 2551 метіоніну. Аналіз за допомогою електрофорезу в
ПААГ з ДСН. Смуга 1: ММА-рої!Т7; смуга 2: ММА; смуга З: клітини СМ-1.
Фіг.7: САТ-аналіз: клітини СМ-1 трансфікували плазмідою, що містить ген САТ під контролем промотору
РНК-полімерази 776 та інфікували вірусом ММА-Т/роЇ або МУК-роІ17. Лізати тестували на САТ-активність "С" означає хлорамфенікол, та 1-АсС та 3-АсС означають моно- та триацетильовані форми хлорамфеніколу.
Ф, САТ-активність виражали як процент ацетильованого продукта, утвореного за 60 хвилин. ко Фіг.8: Конструювання ММА-Г АїІпе/: схематичні карти геному ММА (рестрикційні НіпапППІ-сайти ендонуклеази) та векторної плазміди рис І І 7аеї р7.5-І АІпеї, за допомогою якої здійснюють інсерцію гену пеї ВІЛ-1 І АЇ в сайт бо делеції ІІ в Ніпай -фрагмент М геному ММА.
Фіг.9: Конструювання ММА-пТУК: схематичні карти геному ММА (рестрикційні НіпапПІ-сайти ендонуклеази) та векторної плазміди рос ІІ І 7ае! Р7.5-ТУК, за допомогою якої здійснюють інсерцію гену тирозинкінази в сайт делеції ІІ в Ніпай -фрагметі М геному ММА.
Приклади 1. 65 Культивування та очистка вірусів 1.1. Культивування вірусів ММА
Вірус ММА є у високому ступені ослабленим вірусом коров'ячої віспи, отриманим від штаму вірусу коров'ячої віспи Анкара (СМА) в результаті довготривалого серійного ласування на культурі первинних фібробластів курячого ембріону (СЕР). Із загальним оглядом історії продукування, властивостей та використання штаму ММА можна ознайомитись |у коротких публікаціях Мауг еї аї., іп Іптесіоп, 3, 6-14 (1975)). Завдяки атенуації в
СЕР, в цій пташиній клітині-хазяїні вірус ММА реплікується з високим титром. Однак у клітинах ссавця ріст ММА сильно обмежений, та звичайне утворення бляшек під дією вірусу не виявляється. Тому вірус ММА був культивований на клітинах СЕР. У цілях отримання клітин СЕРЕ 11-денні ембріони виділяли з інкубованих курячих яєць, кінцівки видаляли, та ембріони подрібнювали та дисоціювали в розчині, що містить 0,2595 трипсину, за 7/0 температури 372С протягом 20 хвилин.
Отриману клітинну суспензію фільтрували та клітини осаджували шляхом центрифугування при 2000об./хв. у центрифузі Зогмаі! КС-3ЗВ за кімнатної температури протягом 5 хвилин, а потім ресуспендували в 10 об'ємах середовища А (середовище Ігла (ОМЕМ), що отримується, наприклад, від І Ше Тесппоіодіез стрН, Еддепвіевїп,
Септапу), після чого знову осаджували шляхом центрифугування при 2000об./хв. у центрифузі Зогмаї! КС-З3В за 7/5 кімнатної температури протягом 5 хвилин. Після центрифугування клітинний осад переносили в середовище А, що містить 1095 фетальну сироватку теляти (ЕС), пеніцилін (10бодиниць/мл), стрептоміцин (1ООмг/мл) та 2М0М глутамін, у результаті чого отримували клітинну суспензію, що містить 50000Оклітин/мл. Клітини СЕРЕ, отримані у такий самий спосіб, наносили шляхом розпилення на чашки для культивування клітин. Ці клітини культивували в середовищі А в інкубаторі з СО» за 372С протягом 1-2 днів залежно від потрібної щільності клітин та використовували для інфікування або відразу, або після одного клітинного пересіву. Детальний опис отримання первинних культур може бути знайдено |в роботі К.І.Ргезппеу, "СиМйиге ої апіта! сеї", Аіап К. І ізв Мепад
Мем Хогк 1983. Спаріег ІЇ, стор.99).
Віруси ММА інфікували наступним чином. Клітини СЕРЕ культивували в 175см флаконах для культивування клітин. При 90-10095 суцільності середовище видаляли, та клітини інкубували протягом однієї години з Га ор; суспензією вірусу ММА (0,01 одиниць інфекції (МЕ) на клітину, О,02мл/см) в середовищі А. Потім додавали додатково кількість середовища А (0,2мл/см) та флакони інкубували за температури 372С протягом 2-3 днів і) (доки 90905 клітин не починали проявляти цитопатогенний ефект). Неочищений вірусний вихідний матеріал був отриманий шляхом зскрібання клітинних моношарів у середовищі та осадження клітинного матеріалу шляхом центрифугування при З000об./хв. у центрифузі Зогуаї! КОС-3ЗВ за температури 49С протягом п'яти хвилин. -- Неочищений вірусний препарат зберігали за температури -209С перед подальшою обробкою (наприклад, - очисткою вірусу). 1.2. Очистка вірусів «
Для того щоб отримати по можливості чистий вірусний препарат, який не містить компонентів, специфічних ю для цієї хазяйської клітини, проводили стадії очистки способом, аналогічним описаному «Чокіїк |Мігоіоду, 18, 9-18 (1962)). Неочищений вірусний вихідний матеріал витримували за температури -202С, а потім відтаювали та ї- один раз суспендували в РВ5 (10-20-кратний об'єм осаду), після чого суспензію центрифугували, як описано вище. Щойно отриманий осад суспендували в десяти об'ємах буферу Трис 1 (10мМ Трис-НСІ, рН-9,0), та суспензію швидко обробляли ультразвуком (І арзопіс І.., В.Вгашп Віоїесі Іпіегпайопаї!, МеіІзипдеп, Септапу; 2х10 « секунд при бОВат та при кімнатній температурі) в цілях подальшого дезінтегрування клітинного дебрису та вивільнення вірусних часток з клітинного матеріалу. Ядра клітин та більшу частину клітинного дебрісу видаляли З с шляхом швидкого центрифугування суспензії (роторна центрифуга Зогмаї! С5А від ЮиРопі Со., ЮО-6353 Вай "з Мам/івїт, ЕКО; З хвилини при З00Ооб./хв. та температурі 1022). Осад знову один раз суспендували в буфері Трис " 1, обробляли ультразвуком та центрифугували, як описано вище. Зібрані супернатанти, що містять вільні вірусні частки, об'єднували та покривали градієнтом 1Омл 3695 сахарози в 10мМ Трис-НСІ з рН-9,0, а потім центрифугували в центрифузі Весктап ЗМУ 27/5МУ 28 при 13500о06./хв. протягом 80 хвилин за температури 426. і Потім супернатант відкидали, а осад, що містить вірусні частки, розчиняли в ТОмл їмММ Трис-НСІ з рН-9,0, с гомогенізували шляхом швидкої обробки ультразвуком (2 х10 секунд за кімнатної температури з використанням ї» пристрою, описаного вище) та наносили на градієнт 20-4095 сахарози (сахароза в їмл Трис-НСІ, рН-9,0) для подальшої очистки. Градієнт центрифугували в роторній центрифузі Весктапп ЗМУ41 при 13000о6./хв. протягом - 70 50 хвилин за температури 42С. Після центрифугування дискретні смуги, що містять вірусні частки, збирали щ шляхом піпетування після зменшення об'єму вищевказаної смуги. Отриманий розчин сахарози розводили трьома об'ємами РВ5 та вірусні частки знову осаджували шляхом центрифугування (Весктапп ЗМУ27/28, 60 хвилин при 13500об./хв., температура 42С). Осад, який складався головним чином з чистих вірусних часток, ов ресуспендували в РВЗ та врівноважували до середніх концентрацій вірусу, що складає в середньому 1-5Х109МЕ/мл. Розчин очищеного вірусного вихідного матеріалу зберігали при -809С та використовували або і) відразу, або розводили фосфатно-буферним фізіологічним розчином для проведення подальших експериментів. ко 1.3. Клонування вірусу ММА
Для генерування гомогенних вихідних вірусних препаратів вірус ММА, отриманий від Ргої. Апіоп Мауг, 60 клонували шляхом лімітуючого розведення протягом трьох подальших пересівів у клітини СЕРЕ, культивовані на 9б-лункових планшетах для культивування тканини. Клон б ММА відбирали та ампліфікували в СЕЕ з отриманням маточних розчинів вірусу, які служать у якості вихідного матеріалу для генерування рекомбінантних вірусів ММА, описаних у даній патентній заявці, а також для генерування рекомбінантних вірусів ММА, описаних раніше |ЗиНег, б. та Мозе, В., (1992) Ргос. Май.Асайд.5сі ОБА 89, 10847-10851; БиЧег, О., МУуан, Г., ЕоіІеу, 65 Р., ВеппіпК, У. та Мовв, В., (1994), Массіпе 12, 1032-1040; Нігесп, М., Ецегві, Т., ЗщЦег, с., Саїтої|Ї, М,.,
Мапа, Г., Соідвівіп, 5., Ріайак, М., ЕїКіпв, МУ., АїЇмога, б., Мопіейогі, О., Мовзв, В. апа і йвоп, ., (1986)
У. Мігої., 70 3741-3752). 2. Конструювання та характеристика рекомбінантних вірусів ММА 2.1. Конструювання векторних плазмід
У цілях генерування рекомбінантих вірусів ММА були сконструйовані нові векторні плазміди. Вбудовування чужорідних генів у геном ММА здійснювали точно в сайт природної делеції І в геномі ММА. Послідовності
ММА-ДНК, фланкуючи сайт 2500п.о.-делеції у НіпапІ-фрагменті М геномі ММА (АМепригдег, МУ. Зціег, СР. та
АКМепригдег, 9.(19891), У.Агсй. МігоІЇ., 105, 15-27), були ампліфіковані за допомогою полімеразної ланцюгової реакції та клоновані в сайт множинного клонування плазміди рОС18. Праймерами для лівого б00п.о.-ДНК-краю є: /0 З-САС САС СТ АСС СТО АТС СТА САС АС ТТ СТО-3 та 5-САС САС ССС соб ТАТ ТО АТО АТТ АТТ
ТТТ ААС ААА АТА АСА-3' (сайти для рестриктуючих ферментів Крпі та Зтаї! підкреслені). Праймерами для правого 550п.0.--ДНК-краю є: 5-САС САС СТО САС БАА ТСА ТСС АТТ ССА СТО ЛАТ АСОС-3 та 5-САО
САС ОСА ТОС СОА СОА АСА ДОС ААС ТОТ АОС АСА-3' (сайти для рестриктуючих ферментів Рай! та р! підкреслені). Між цими краями ММА ДНК, вставленій в руС18, вбудовували ген Іас/ ЕзспПегіспіа соїї під 7/5 Контролем пізнього промотору РІ11 вірусу коров'ячої віспи (отриманого шляхом гідролізу ферментом рії! 17,
З,МЧег, С. апа Мовз, В. (1992) РМАБ ЗА 89, 10847-10851) з використанням ВатнНі-сайта, в результаті чого отримували інсерційний ММА-вектор рисі! 17 (Фіг.1). Після цього 289п.о.-фрагмент, що містить ранній/пізній промотор Р7.5 вірусу коров'ячої віспи разом з ЗтаІ-сайтом для клонування (отриманим шляхом рестрикції ферментами ЕсокіІ та Хвраї! з плазмідного вектору рзсІЇ |СНпакКгавагії та ін., 1985, МоїІесцшіаг та СеїІшаг Віоіоду
З, З3403-3409)), вставляли Зтаї!-сайт росі! з отриманням ММА-вектора рисі! 17 Р7.5 (Фіг.2). Для конструювання векторної плазміди, яка дозволяє виділяти рекомбінантні віруси ММА шляхом часового синтезу репортерного ферменту-В-галактозидази, З3ЗОп.о.-ДНК-фрагмент від 3-кінця відкритої рамки зчитування іасл. БЕ. сої ампліфікували за допомогою РСК (праймери 5-САС САС ТС ЗАС ССС БАС СОС СТІ АСТ ОСС ОСо-3 та 5-56565 6050 СТО САС АТО СТА Со АС ООС ОСТ САО-3)) та клонували в зЗаї! та Раі-сайти РСО 117 Р 7.5 з с дв отриманням ММА-вектору рис 1 І7аеї! Р 7.5 (Фіг.3). З використанням Зтаї!-сайту, ця векторна плазміда може бути використана для вставки ДНК-послідовностей, кодуючих чужорідний ген під транскрипційним контролем і) промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи, в геном ММА. Після цього потрібний рекомбінантний вірус виділяли шляхом скринінгу на експресію В-галактозидазної активності та подальше його культивування призводило до самоделеції знову сконструйованого Р11-| ас7-експресуючого кластера в результаті гомологічної рекомбінації. «- зо 2.2. Конструювання та характеристика рекомбінантного вірусу ММА-рої!17 3,1 КкЬр-ДНК-фрагмент, що містить повний ген РНК-полімерази бактеріофагу 77 під контролем "7 раннього/пізнього промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи, вирізали ферментом ЕсокіІ з плазміди рТЕ7-3 (Егиеві, «г
Т.Р., МіПевз, Е.б., еіцаїег, Б.МУ. апа Мозз, В., (1986), Р»М»А»52И5А, 83, 8122-8126), модифікували шляхом інкубування ДНК-полімерази фрагментом Кленова для продукування тупих кінців та клонували в унікальний о
Зтаї!-сайт рестрикції /7 рисі з утворенням плазмідного вектору переносу рисІІ-І 7-ро! Т7 (Фіг.4). В якості ї- транскрипційного регулятору для експресії гену РНК-полімерази 77 був вибраний ранній/пізній промотор Р7.5 вірусу коров'ячої віспи. У протилежність до більш сильного пізнього промотора вірусу віспи (наприклад, Р11) ця промоторна система дозволяє експресувати рекомбінантні гени безпосередньо після інфікування клітин-мішеней. І 72-ро! Т7-плазміда рисСІІ, яка забезпечує введення чужорідних генів у сайт делеції ІЇ геному «
ММА, була використана для генерування вірусу ММА-ро! 17. з с Клітини СЕБЕ інфікували вірусом ММА при множинності інфекції ТСІО50-0,05 на клітину та трансфікували ДНК . плаз-І 2-рої Т/-плазміди рОСІІ, як описано раніше ІЗщшШег, сб., УУуац, ІЇ., РоІеу, Р., ВеппіпК, У. та Мозз, В., и?» (1994), Массіпе 12, 1032-1040). Рекомбінантний вірус ММА, експресуючий РНК-полімеразу Т7 та сумісно експресуючий Р-галактозидазу (Р7.5-роЇ! Т7 ММА), відбирали в результаті проведення п'яти послідовних циклів очистки методом бляшек у клітинах СЕРЕ, пофарбованих 5-бром-4-хлор-3-індоліл-В-О-галактозидом (ЗО0Омкг/мл). -І Рекомбінантні віруси ампліфікували шляхом інфікування моношарів СЕРЕ, та ДНК аналізували за допомогою РОК для підтвердження генетичної однорідності вірусного штаму. Саузерн-блот-аналіз вірусної ДНК ММА-рої! Т7 о продемонстрував стабільну інтеграцію рекомбінантних генів у сайт делеції І в геномі ММА (Фіг.5). Для їх спостереження за експресією РНК-полімерази Т7 шляхом рекомбінантного ММА-роЇ! Т7 були проаналізовані
Ммічені ІЇ3981 метіоніном поліпептиди від вірус-інфікованої культури тканини. Моношари клітинної лінії нирок - мавпи СМ-1, культивовані в 12-лункових планшетах, інфікували вірусом при множинності інфекції ТСІОво-20 на - М клітину. Через 3-5 годин після інфікування середовище видаляли, та культури один раз промивали Імл середовища, що не містить метіоніну. В кожну лунку додавали 0,2мл середовища, що не містить метіоніну, разом з БомкКи (228) метіоніном та середовище інкубували протягом 30 хвилин за 372С. Цитоплазматичні екстракти інфікованих клітин отримували шляхом інкубування кожної лунки в 0,2мл 0,595 буферу для лізису Мопіаеї Р-40 о протягом 10 хвилин при 372С, та зразки аналізували шляхом електрофорезу в ПААГ з ДСН. Метаболічне мічення клітин СМ-1 вірусом ММА-рої 17 виявило синтез двох додаткових поліпептидів (ї) білку розміром біля 116000Да, о що представляє собою сумісно експресовану В-галактозидазу Е.соїї, яка дозволяє проводити скринінг на рекомбінантний вірус; та (ії) білка з очікуваним розміром 98000Да, що відповідає РНК-полімеразі бактеріофагу 60 77 (Фіг.6). При цьому було відмічено, що ММА-Т7рої! продукує велику кількість В-галактозидази. Експерименти з іп мімо-міченням продемонстрували дуже високий рівень експресії Р11-І| ас7-ген-вмісній конструкції, введеній у геном ММА в сайт делеції 11, що свідчить про те, що рекомбінантні гени у векторному вірусі ММА можуть бути експресовані з великою ефективністю в тому випадку, якщо вони вбудовані саме в цій локус геному ММА.
Ефективність рекомбінантних вірусів ММА-рої 77 як експресуючих систем у порівнянні з рекомбінантним б5 МукК-Т7рої! вірусом мТЕ7-3 (Рцегві та ін., 1986) оцінювали шляхом котрасфекції ДНК плазмідного вектору, що походить від РТМІ (Мозв, В., ЕІгоу-5іеіп, О., Мігикаті, Т., АІехападег, МУ.А., ЕРцегеї Т.К. (1990) Майшге, 348,
91-921), та містить ген (клонований у МсоІ- та ВатНіІ-сайти множинного клонування ртМіІ) хлорамфеніколацетилтрансферази (САТ) Е.соїї під контролем промотору РНК-полімерази 77 (РІ?)
Трансфіковані та інфіковані клітини СМ-1 суспендували в 0,2мл 0,25М Трис-НСІ (рН-7,5). Після трьох циклів заморожування-відтаювання лізати освітлювали шляхом центрифугування, а потім визначали вміст білка в супернатантах, та зразки, що містять 0,5; 0,25; 0,1мкг повного білку, аналізували на ферментну активність методом, (описаним Маскей, М., Зтійй, с... Мозгз, В., (1984), 9.Мігої, 49, 857-864). Після авторадіографії кількість мічених плям оцінювали з використанням візуалізуючої аналітичної системи Еціі. Отримані результати проілюстрували, що шляхом використання у високому ступені атенуйованого вектору ММА на основі вірусу 7/0 Коров'ячої віспи може бути отримана система "вірус коров'ячої віспи-РНК-полімераза 17", яка являється такою ж ефективною, як і при використанні досить компетентного по реплікації рекомбінанта на основі вірусу коров'ячої віспи (Фіг.7). 2.3. Конструювання та характеристика рекомбінантного вірусу ММА-І АІпеї 648п.0о.-ДНК-фрагмент, що містить повний ген пеї ГАЇ ВІЛ-1, отримували за допомогою РСК з плазмідною 7/5 ДНК (рго1166, люб'язно наданою М.-Р. Кіепу, Тгапздепе 5.А., Зігазроиго; для РОК використовували наступні праймери: 5-САС САС ОА ТСС АТО ОСТ ОС АдОо ТО ТСА АДАА АСТ АСТ-3 та 5-САО САС ОбБА ТСС АТО
ТСА ОСА СТ СТТ БАА ОТА СТО Соо-3), гідролізували рестриктуючою ендонуклеазою ВатнНі, модифікували шляхом інкубування з ДНК-полімеразою Кленова для "затупіння кінців", та клонували в ЗтаїІ-сайт рис І І 2-ае!
Р7.5, в результаті чого отримували вектор рис ІІ І 7ае! Р7.5-І АІпеї (Фіг.8). Ця плазміда може бути використана 2о для конструювання рекомбінантного вірусу ММА, який експресує ген пеї ВІЛ-1--АЇ під контролем раннього/пізнього промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи.
Клітини СЕРЕ, інфіковані вірусом ММА при множинності зараження ТСІОв5о-0,05 (ТСІЮ - середня цитопатогенна доза) на клітину, трансфікували ДНК плазміди рис Ії І 7аеІ-Р7.5-І АІпеї, як описано раніше (З!иЦег, б., УУуай,
Ї, Боіеу, Р., ВеппіпК, 9., Мозз, В. (1994) Массіпе, 12, 1032-1040). Рекомбінантні віруси ММА, що містять ген сч ов пеї та сумісно маркерний ген І ас7 Е.соїї, що сумісно експресується з часовою регуляцією, відбирали шляхом проведення послідовних циклів очистки методом бляшек у клітинах СЕР, пофарбованих і) 5-бром-4-хлор-3-індоліл-В-О-галактозидом (З0Омкг/мл). Після цього рекомбінантні віруси, що містять ген пеї та мають делетований маркерний ген І ас7, виділяли шляхом проведення ще трьох додаткових послідовних циклів очистки методом бляшек, здійснюючи скринінг на непофарбовані фокуси вірусу у клітинах СЕРЕ у присутності «- зо 5-бром-4-хлор-3-індоліл-В-О-галактозида (ЗООмкг/мл). Потім рекомбінантні віруси ампліфікували шляхом інфікування моношарів, та ММА-І АІпеї-вірусну ДНК аналізували за допомогою РОК для того, щоб упевнитись у -- генетичній гомогенності вірусного штаму. Саузерн-блот-аналіз вірусної ДНК підтвердив генетичну стабільність «г
ММА-І АІпеї та явно продемонстрував інтеграцію гену пеї та делецію маркерного гену ас Е. соїїЇ в сайті делеції 11 у вірусному геномі. о
Ефективна експресія рекомбінантного білку Меї була підтверджена за допомогою Вестерн-блот-аналізу ї- білок-продукуючих лізатів клітин СЕРЕ, інфікованих вірусом ММА-Г АІпеї з використанням мишачих тАВ проти Меї
ВІЛ-1 люб'язно наданих К.Кгопп та використаних |як описано Омод, У., І адегзіеді, А., Капкі, А., ботрбенпй, Р., зЗропп, К., Тапііпеп, М., Чипо, О., Кгопп, К. (1992) АІЮ5, 6, 25-34). 2.4. Конструювання та характеристика рекомбінантного вірусу ММА-І АІпеї « 1,9п.о. -ДНК-фрагмент, що містить повний ген, кодуючий тирозиназу людини (КДНК-клон тирозинази 123.82 пл») с виділяли з клітинної лінії меланоми 5К29-МЕГ. пацієнта 5К29 (АМ), СепВапк Мо допуску ОО1873; Вгіснага, М., Мап . Реї, А., МуоМеі, Т., МУоМеі), С, Ое Ріаеп, Е., Ге(Ше, В., Соціе, Р. та Вооп, В. (1993), 9У.Ехр.Медй., 178, и? 489-495 отримували з плазміди рсОМААтр-ТГуг |МУоМеі), Т., Мап Реї, А., Вгіснага, М., 5сНппеїдег, 5.,
Зеїїдег, В., Меуег 20т Визспепіеіде, К., та Вооп, Т. (1994) Еипг.9.ІттипоЇ, 24, 759-764| шляхом гідролізу ферментом Есокі, а потім модифікували шляхом інкубування з ДНК-полімеразою Кленова для "затуплення -І кінців" та клонували у ЗітаІ-самг рос Ії І 2ае! Р7.5, в результаті чого отримували вектор рус І І 7аєї Р7.5-ТУК (Фіг.9). Ця плазміда може бути використана для конструювання рекомбінантного вірусу ММА, який експресує ген о тирозинази людини під контролем раннього/пізнього промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи. їх Клітини СЕР, інфіковані вірусом ММА при множинності зараження ТСІЮО»50-0,5 на клітину, трансфікували ДНК плазміди рОсС Ії 17аеі Р7.5-ТУК, як описано в літературі |(ЗиЧег, б., МУуай, Ї., ЕРоЇІеу, Р., ВеппіпК, 9., Мозв, - В., (1994) Массіпе 12,1032-1040). Рекомбінантний вірус ММА, стабільно експресуючий ген тирозинази людини та як сумісно експресуючий, з часовою регулюцією, ген І ас7 Е соїї, відбирали шляхом проведення послідовних циклів методом бляшек у клітинах СЕРЕ, пофарбованих 5-бром-4-хлор-3-індоліл-В-О-галактозидом (З0Омкг/мл). Після цього рекомбінантні віруси, які експресують ген, що кодує тирозиназу людини та має делетований маркерний ген вв їасй, виділяли шляхом проведення ще трьох додаткових послідовних циклів очистки методом бляшек, здійснюючи скринінг на непофарбовані фокуси вірусу в клітинах СЕБЕ у присутності
Ф) 5-бром-4-хлор-3-індоліл-В-О-галактозида (ЗООмкг/мл). Потім рекомбінантні віруси ампліфікували шляхом ка інфікування моношарів СЕР, та ММА-йТУК-вірусну ДНК аналізували за допомогою РСК для того, щоб упевнитися в генетичній гомогенності вірусного штаму. Саузерн-блот-аналіз вірусної ДНК підтвердив генетичну во стабільність ММА-НЙТУК та явно продемонстрував інтеграцію рекомбінантного гену тирозинази та делецію маркерного гену І ас Е сої в сайт делеції ІІ у вірусному геномі.
Ефективна експресія рекомбінантної тирозинази людини була підтверджена за допомогою
Вестерн-блот-аналізу білок-продукуючих лізатів клітин СЕР, інфікованих вірусом ММА-пТУК з використанням кролячих поліклональних антитіл, люб'язно наданих М.Неаптао, та використаних, (як описано, дітепе?., М., 65 Катеуата, К., Маїсу, Ї., Тотійа, МУ., Неагіпо, М. (1988) Р.М.А.5. ИОБА 85, 3830-3834| або мишачих моноклональних антитіл, люб'язно представлених І. Ой та використаних, |як описано, Спеп, У., 5іоскКегі, Е.,
Твапа, 5., Соріап, К. Ой, Г. (1995) Р.М.А.5. ОБА 92, 8125-8129), направлених проти тирозинази.
Перелік послідовностей (1) Загальна інформація: (І) Заявник: (А) Назва: О5Е-Рогеспипдзгепігит їшег Ютуей ипа Севипаепівї СтрНн (В) Вулиця: Іпдоівіаедег І апавіг. 1, Меипегрега (С) Місто: Орегзспіеіззпеїт (Е) Країна: Німеччина 70 (Р) Поштовий індекс: 85764 (ї) Назва винаходу: Рекомбінантний вірус ММА та його використання (ії) Кількість послідовностей: 8 (м) Тип комп'ютерного зчитування: (А) Тип носія: гнучкий диск (В) Комп'ютер: РС сумісний з ІВМ (С) Операційна система: РО-ЮОБ/М5-БО5 (Ю) Програмне забезпечення: РаїепіІп Кеїеазе я 1,0 Мегзіоп 2 1,30 (ЕРО) (мі) Данні попередньої заявки: (А) Номер заявки: ОК 0782/95 (В) Дата подання: 04 липня 1995р. (2) Данні послідовності БЕО ІЮ Мо1: (Ї) Характеристика послідовності: (А) Довжина: 33 пари основ (В) Тип: нуклеіновокислотна сч (С) Ланцюговість: одноланцюгова о (О) Топологія: лінійна (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота (А) Опис: /опис.- "ДНК-праймер" (хі) Опис послідовності БЕО ІЮ Мо1: - зо САССАСОСТА СССТСАТСОТ АСАСОСАСОТТ СТО - (2) Данні послідовності БЗЕО ІЮО Мо2: ч;Е (Ї) Характеристика послідовності: (А) Довжина: 42 пари основ юю (В) Тип: нуклеіновокислотна - (С) Ланцюговість: одноланцюгова (ОБ) Топологія: лінійна (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота « (А) Опис/опис.- "ДНК-праймер" (хі) Опис послідовності БЕО ІЮ Мо2: - с СсСАССАОСССОо ОСТАТТССАТ САТТАТТТТТ ААСАДААДАТАА СА :з» (2) Данні послідовності БЗЕО ІЮ Моз: (Ї) Характеристика послідовності: (А) Довжина: 36 пар основ -І (В) Тип: нуклеіновокислотна (С) Ланцюговість: одноланцюгова о (ОБ) Топологія: лінійна їз (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота (А) Опис/опис.- "ДНК-праймер" - (хі) Опис послідовності ЗЕО ІЮ Мо: т САССАССТОС АОСААТСАТС САТТССАСТО ААТАСОС (2) Данні послідовності БЗЕО ІЮО Мод: (Ї) Характеристика послідовності: о (А) Довжина: 36 пар основ (В) Тип: нуклеіновокислотна іме) (С) Ланцюговість: одноланцюгова (ОБ) Топологія: лінійна 60 (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота (А) Опис/опис.- "ДНК-праймер" (хі) Опис послідовності БЕО ІЮ Мо4;:
СсСАССАСОССАТ СССАСОСААС ААДОСААСТОТ АОСАСА б5 й й й (2) Данні послідовності БЗЕО ІЮО Моб:
(Ї) Характеристика послідовності: (А) Довжина: 33 пари основ (В) Тип: нуклеіновокислотна (С) Ланцюговість: одноланцюгова (ОБ) Топологія: лінійна (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота (А) Опис.7опис.- "ДНК-праймер" (хі) Опис послідовності БЕО ІЮ Моб: 7. САССАССТОСО АСССССАССо ССТТАСТОоСС ССС (2) Данні послідовності БЗЕО ІЮ Моб: (Ї) Характеристика послідовності: 75 (А) Довжина: 33 пари основ (В) Тип: нуклеіновокислотна (С) Ланцюговість: одноланцюгова (ОБ) Топологія: лінійна (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота (А) Опис/опис.- "ДНК-праймер" (хі) Опис послідовності ЗЕО ІЮ Моб:
ССОССОоСТОоС АСАТОСТАОС САССООСОСТ САС (2) Данні послідовності БЗЕО ІЮО Мо7: с (Ї) Характеристика послідовності: о (А) Довжина: 39 пар основ (В) Тип: нуклеіновокислотна (С) Ланцюговість: одноланцюгова (ОБ) Топологія: лінійна -- (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота «- (А) Опис/опис.- "ДНК-праймер" (хі) Опис послідовності БЕО ІЮ Мо7: «
САССАСОСОСАТ ССАТОСОТОО СААСТОСТСА ААААСТАСТ о (2) Данні послідовності ЗЕО ІЮ Мов: - (Ї) Характеристика послідовності: (А) Довжина: 39 пар основ (В) Тип: нуклеіновокислотна « (С) Ланцюговість: одноланцюгова (р) Топологія: лінійна - с (ії) Тип молекули: інша нуклеїнова кислота ц (А) Опис/опис.- "ДНК-праймер" "» (хі) Опис послідовності 5ЕО ІЮ Мов:

Claims (1)

  1. - 15 Формула винаходу і-й 1. Рекомбінантний вірус ММА, що містить та здатний експресувати антиген пеї ВІЛ. їз 2. Рекомбінантний вірус ММА за п. 1, який відрізняється тим, що ген пеї ВІЛ знаходиться під 5р транскрипційним контролем раннього/пізнього промотору Р7.5 вірусу коров'ячої віспи.
    - 3. Рекомбінантний вірус ММА за п. 1 або 2, який відрізняється тим, що по суті не включає віруси, здатні до -М реплікації в клітинах людини.
    4. Еукаріотична клітина, інфікована іп міїго або ех мімо рекомбінантним вірусом ММА за будь-яким з пп. 1-3.
    5. Вакцина, що містить рекомбінантний вірус ММА за будь-яким з пп. 1-3 у фізіологічно прийнятному носії.
    6. Застосування рекомбінантного вірусу ММА за будь-яким з пп. 1-3 для приготування вакцини.
    7. Рекомбінантний вірус ММА за будь-яким з пп. 1-3, який відрізняється тим, що використовується для (Ф, імунізації тварини і людини. ка 8. Рекомбінантний вірус ММА за п. 7, який відрізняється тим, що використовується для запобігання або лікування ВІЛ-інфекції або СНІДУ. 60 9. Вакцина за п.5, яка відрізняється тим, що використовується для імунізації тварини і людини.
    10. Вакцина за п. 9, яка відрізняється тим, що використовується для запобігання або лікування ВІЛ-інфекції або СНІДУ.
    11. Застосування рекомбінантного вірусу ММА за будь-яким з пп. 1-3 для одержання іп міго рекомбінантного пеї ВІЛ-протеїну. б5
UA20031212892A 1995-07-04 1996-07-03 Recombinant virus of mva UA75411C2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK78295 1995-07-04

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA75411C2 true UA75411C2 (en) 2006-04-17

Family

ID=8097499

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UA97126424A UA68327C2 (en) 1995-07-04 1996-03-07 A recombinant mva virus, an isolated eukaryotic cell, infected with recombinant mva virus, a method for production in vitro of polypeptides with use of said cell, a method for production in vitro of virus parts (variants), vaccine containing the recombinant mva virus, a method for immunization of animals
UA20031212890A UA75410C2 (en) 1995-07-04 1996-07-03 Recombinant virus mva and use thereof
UA20031212892A UA75411C2 (en) 1995-07-04 1996-07-03 Recombinant virus of mva

Family Applications Before (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UA97126424A UA68327C2 (en) 1995-07-04 1996-03-07 A recombinant mva virus, an isolated eukaryotic cell, infected with recombinant mva virus, a method for production in vitro of polypeptides with use of said cell, a method for production in vitro of virus parts (variants), vaccine containing the recombinant mva virus, a method for immunization of animals
UA20031212890A UA75410C2 (en) 1995-07-04 1996-07-03 Recombinant virus mva and use thereof

Country Status (27)

Country Link
US (6) US6440422B1 (uk)
EP (3) EP1312678B1 (uk)
JP (3) JP4312260B2 (uk)
KR (1) KR19990028617A (uk)
CN (3) CN1554764B (uk)
AT (3) ATE304057T1 (uk)
AU (1) AU721735B2 (uk)
BR (1) BR9609303B8 (uk)
CA (3) CA2225278C (uk)
CZ (1) CZ292460B6 (uk)
DE (3) DE69635173T2 (uk)
DK (3) DK1312679T3 (uk)
EE (3) EE04199B1 (uk)
ES (3) ES2249647T3 (uk)
HK (2) HK1009830A1 (uk)
HU (2) HU229261B1 (uk)
IL (5) IL122120A (uk)
MX (1) MX9800025A (uk)
NO (1) NO322476B1 (uk)
NZ (1) NZ313597A (uk)
PL (1) PL186857B1 (uk)
PT (1) PT836648E (uk)
RU (1) RU2198217C2 (uk)
SI (3) SI1312678T1 (uk)
TW (2) TW575664B (uk)
UA (3) UA68327C2 (uk)
WO (1) WO1997002355A1 (uk)

Families Citing this family (120)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
UA68327C2 (en) * 1995-07-04 2004-08-16 Gsf Forschungszentrum Fur Unwe A recombinant mva virus, an isolated eukaryotic cell, infected with recombinant mva virus, a method for production in vitro of polypeptides with use of said cell, a method for production in vitro of virus parts (variants), vaccine containing the recombinant mva virus, a method for immunization of animals
US7118754B1 (en) * 1996-07-30 2006-10-10 Transgene S.A. Pharmaceutical composition for treating papillomavirus tumors and infection
EP0951555A2 (en) * 1996-09-24 1999-10-27 Bavarian Nordic Research Institute A/S Recombinant mva virus expressing dengue virus antigens, and the use thereof in vaccines
MY119381A (en) * 1996-12-24 2005-05-31 Gsf Forschungszentrum Umwelt Recombinant mva virus, and the use thereof
US6969609B1 (en) * 1998-12-09 2005-11-29 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Serivces Recombinant vector expressing multiple costimulatory molecules and uses thereof
FR2784997A1 (fr) * 1998-10-22 2000-04-28 Transgene Sa Materiel biologique pour la preparation de compositions pharmaceutiques destinees au traitement de mammiferes
US20040265324A1 (en) * 1999-03-23 2004-12-30 Cardosa Mary Jane Recombinant MVA virus expressing dengue virus antigens, and the use thereof in vaccines
US6682742B1 (en) 1999-05-28 2004-01-27 Gsf Forschungszentrum Fur Unwelt Und Gesundheit Gmbh Vector for integration of heterologous sequences into poxviral genomes
US20150231227A1 (en) * 2000-03-02 2015-08-20 Emory University Compositions and methods for generating an immune response
SI1263936T1 (sl) 2000-03-14 2006-06-30 Bavarian Nordic As Spremenjen sev modificiranega virusa vakcinacije Ankara (MVA)
DE10042598A1 (de) * 2000-08-30 2002-03-28 Gsf Forschungszentrum Umwelt Rekombinantes MVA mit der Fähigkeit zur Expression des HER-2/Neu-GENS
WO2002031168A2 (en) * 2000-10-10 2002-04-18 Genstar Therapeutics Minimal adenoviral vector and recombinant vaccines based thereon
US7445924B2 (en) 2000-11-23 2008-11-04 Bavarian Nordic A/S Modified Vaccinia Ankara virus variant and cultivation method
US7628980B2 (en) 2000-11-23 2009-12-08 Bavarian Nordic A/S Modified vaccinia virus ankara for the vaccination of neonates
CN101676389A (zh) 2000-11-23 2010-03-24 巴法里安诺迪克有限公司 改良安卡拉痘苗病毒变体
US7740863B2 (en) 2001-04-06 2010-06-22 Merial Recombinant vaccine against West Nile Virus
DE10143490C2 (de) * 2001-09-05 2003-12-11 Gsf Forschungszentrum Umwelt Rekombinantes MVA mit der Fähigkeit zur Expression von HCV Struktur-Antigenen
DE10144664B4 (de) * 2001-09-11 2005-06-09 GSF-Forschungszentrum für Umwelt und Gesundheit GmbH Vacciniavirus MVA-E3L-Knock-Out-Mutanten und Verwendung hiervon
EP2345665A3 (en) 2001-12-04 2012-02-15 Bavarian Nordic A/S Flavivirus NS1 subunit vaccine
CN1289663C (zh) * 2001-12-20 2006-12-13 巴法里安诺迪克有限公司 从感染细胞中回收和纯化痘病毒的方法
DE60314823T3 (de) 2002-04-19 2017-11-16 Bavarian Nordic A/S Modifizierte variante des vaccinia ankara virus als impfstoff für neugeborene
US7501127B2 (en) 2002-05-16 2009-03-10 Bavarian Nordic A/S Intergenic regions as novel sites for insertion of HIV DNA sequences in the genome of Modified Vaccinia virus Ankara
AU2003236646B2 (en) 2002-05-16 2009-01-15 Bavarian Nordic A/S Recombinant poxvirus expressing homologous genes inserted into the poxviral genome
PL372091A1 (en) * 2002-05-16 2005-07-11 Bavarian Nordic A/S Expression of genes in modified vaccinia virus ankara by using the cowpox ati promoter
DK1434858T4 (en) 2002-09-05 2019-04-01 Bavarian Nordic As PROCEDURE FOR AMPLIFICATION OF A POXVIRUS UNDER SERUM-FREE CONDITIONS
DE10249390A1 (de) * 2002-10-23 2004-05-13 Ruprecht-Karls-Universität Heidelberg Rekombinante MVA-Stämme als potentielle Impfstoffe gegen P.falciparum-Malaria
CN1717488A (zh) 2002-11-25 2006-01-04 巴法里安诺迪克有限公司 包含至少两个牛痘ati启动子的重组痘病毒
DK1594970T3 (da) * 2003-02-18 2008-11-17 Helmholtz Zentrum Muenchen Fremgangsmåde til generering af rekombinant MVA
US7638134B2 (en) * 2003-02-20 2009-12-29 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Insertion sites in fowlpox vectors
ES2319424T3 (es) 2003-03-27 2009-05-07 Ottawa Health Research Institute Virus mutantes de la estomatitis vesivular y sus usos.
US7731974B2 (en) * 2003-03-27 2010-06-08 Ottawa Hospital Research Institute Mutant vesicular stomatitis viruses and uses thereof
WO2004093905A1 (en) * 2003-04-16 2004-11-04 City Of Hope Human cytomegalovirus antigens expressed in mva and methods of use
GB2402391A (en) * 2003-06-04 2004-12-08 Oxxon Pharmaccines Ltd Fowlpox recombinant genome
AU2004263274B2 (en) 2003-07-21 2009-11-05 Transgene S.A. Novel multifunctional cytokines
US20100189747A1 (en) * 2003-07-31 2010-07-29 Raymond Weinstein Compositions and methods for treating or preventing hiv infection
EP1518932A1 (en) * 2003-09-29 2005-03-30 GSF-Forschungszentrum für Umwelt und Gesundheit GmbH Modified vaccinia virus Ankara (MVA) mutant and use thereof
DE602004027767D1 (de) 2003-11-24 2010-07-29 Bavarian Nordic As Promotoren zur Expression in modifiziertem Vaccinia Virus Ankara
US7638132B2 (en) 2003-12-05 2009-12-29 National University Corporation Hokkaido University Highly safe smallpox vaccine virus and vaccinia virus vector
EP1683870A1 (en) * 2005-01-24 2006-07-26 GSF-Forschungszentrum für Umwelt und Gesundheit GmbH Vaccines based on the use of MVA
US20090269365A1 (en) * 2005-04-20 2009-10-29 University Of Washington Immunogenic vaccinia peptides and methods of using same
US20090060947A1 (en) * 2006-05-19 2009-03-05 Sanofi Pasteur, Inc. Immunological compositions
RU2489486C2 (ru) * 2006-06-20 2013-08-10 Трансжене С.А. Процесс получения поксвирусов и композиции поксвирусов
US7972605B2 (en) * 2006-09-08 2011-07-05 Duke University Modified vaccinia ankara virus vaccine
JP5606067B2 (ja) 2006-09-15 2014-10-15 オタワ ホスピタル リサーチ インスティテュート 腫瘍崩壊性ラブドウイルス
EP2073837B1 (en) 2006-10-06 2014-06-25 Bavarian Nordic Inc. Recombinant modified vaccinia ankara virus encoding a her-2 antigen in combination with a taxane for use in treating cancer
US20080241139A1 (en) * 2006-10-31 2008-10-02 Regents Of The University Of Colorado Adjuvant combinations comprising a microbial tlr agonist, a cd40 or 4-1bb agonist, and optionally an antigen and the use thereof for inducing a synergistic enhancement in cellular immunity
JP2010516772A (ja) * 2007-01-26 2010-05-20 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ コロラド 免疫機能を調節する方法
EP2152736B1 (en) 2007-05-03 2017-07-05 Lysomab GmbH Complement factor h-derived short consensus repeat-antibody constructs
JP2010526546A (ja) * 2007-05-14 2010-08-05 バヴァリアン・ノルディック・アクティーゼルスカブ ワクシニアウイルス系及び組換えワクシニアウイルス系ワクチンの精製
US8003363B2 (en) 2007-05-14 2011-08-23 Bavarian Nordic A/S Purification of vaccinia virus- and recombinant vaccinia virus-based vaccines
US8003364B2 (en) 2007-05-14 2011-08-23 Bavarian Nordic A/S Purification of vaccinia viruses using hydrophobic interaction chromatography
US20100285050A1 (en) * 2007-10-05 2010-11-11 Isis Innovation Limited Compositions and Methods
BRPI0800485B8 (pt) * 2008-01-17 2021-05-25 Univ Minas Gerais vetores virais recombinantes, composição vacinal para leishmaniose e método de vacinação para leishmaniose
EP2240573A4 (en) 2008-02-12 2011-08-31 Sanofi Pasteur Ltd METHOD USING ION EXCHANGE AND GELFILTRATION CHROMATOGRAPHY FOR POXVIRUS CLEANING
EP2303322A1 (en) * 2008-06-20 2011-04-06 Bavarian Nordic A/S Recombinant modified vaccinia virus measles vaccine
US8691502B2 (en) 2008-10-31 2014-04-08 Tremrx, Inc. T-cell vaccination with viral vectors via mechanical epidermal disruption
WO2010127115A1 (en) 2009-04-30 2010-11-04 Centre Hospitalier Universitaire Vaudois Lausanne (Chuv) Modified immunization vectors
NZ598000A (en) 2009-08-07 2013-10-25 Transgene Sa Composition for treating hbv infection
WO2011063359A1 (en) * 2009-11-20 2011-05-26 Inviragen, Inc. Compositions, methods and uses for poxvirus elements in vaccine constructs
US9005632B2 (en) 2009-11-20 2015-04-14 Takeda Vaccines, Inc. Compositions, methods and uses for poxvirus elements in vaccine constructs against influenza virus subtypes or strains
WO2011119920A2 (en) 2010-03-25 2011-09-29 Oregon Health & Science University Cmv glycoproteins and recombinant vectors
GB201006405D0 (en) * 2010-04-16 2010-06-02 Isis Innovation Poxvirus expression system
US20110262965A1 (en) * 2010-04-23 2011-10-27 Life Technologies Corporation Cell culture medium comprising small peptides
EP2668201A2 (en) 2011-01-28 2013-12-04 Sanofi Pasteur SA Immunological compositions comprising hiv gp41 polypeptide derivatives
WO2012151272A2 (en) 2011-05-02 2012-11-08 Tremrx, Inc. T-cell vaccination with viral vectors via mechanical epidermal disruption
HUE037408T2 (hu) 2011-06-10 2018-08-28 Univ Oregon Health & Science CMV glikoproteinek és rekombináns vektorok
DK2739293T3 (da) * 2011-08-05 2020-08-24 Sillajen Biotherapeutics Inc Fremgangsmåder og sammensætninger til frembringelse af vaccinavirus
US20130189754A1 (en) 2011-09-12 2013-07-25 International Aids Vaccine Initiative Immunoselection of recombinant vesicular stomatitis virus expressing hiv-1 proteins by broadly neutralizing antibodies
EP2761011B1 (en) * 2011-09-26 2018-05-23 Theravectys Use of non-subtype b gag proteins for lentiviral packaging
EP2586461A1 (en) 2011-10-27 2013-05-01 Christopher L. Parks Viral particles derived from an enveloped virus
DK2788021T3 (en) 2011-12-09 2017-04-10 Bavarian Nordic As POXVIRUS VECTOR FOR EXPRESSION OF BACTERIAL ANTIGENES CONNECTED TO TETANANOX INFRAGMENT C
EP2620446A1 (en) 2012-01-27 2013-07-31 Laboratorios Del Dr. Esteve, S.A. Immunogens for HIV vaccination
ES2631608T3 (es) 2012-06-27 2017-09-01 International Aids Vaccine Initiative Variante de la glicoproteína Env del VIH-1
SG11201500171YA (en) 2012-07-10 2015-02-27 Transgene Sa Mycobacterial antigen vaccine
WO2014009433A1 (en) 2012-07-10 2014-01-16 Transgene Sa Mycobacterium resuscitation promoting factor for use as adjuvant
WO2014043535A1 (en) 2012-09-14 2014-03-20 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Compositions for the treatment of cancer
WO2014066443A1 (en) 2012-10-23 2014-05-01 Emory University Gm-csf and il-4 conjugates, compositions, and methods related thereto
US20140286981A1 (en) * 2013-03-14 2014-09-25 Wisconsin Alumni Research Foundation Broadly reactive mosaic peptide for influenza vaccine
DE102013004595A1 (de) 2013-03-15 2014-09-18 Emergent Product Development Germany Gmbh RSV-Impfstoffe
EP2848937A1 (en) 2013-09-05 2015-03-18 International Aids Vaccine Initiative Methods of identifying novel HIV-1 immunogens
US10058604B2 (en) 2013-10-07 2018-08-28 International Aids Vaccine Initiative Soluble HIV-1 envelope glycoprotein trimers
CA2936131A1 (en) 2014-01-09 2015-07-16 Transgene Sa Fusion of heterooligomeric mycobacterial antigens
GB201412494D0 (en) 2014-07-14 2014-08-27 Ospedale San Raffaele And Fond Telethon Vector production
KR102159626B1 (ko) 2014-09-26 2020-09-25 베쓰 이스라엘 디코니스 메디칼 센터 인크 인간 면역 결핍 바이러스 감염에 대한 방어 면역을 유도하기 위한 방법 및 조성물
WO2016115116A1 (en) 2015-01-12 2016-07-21 Geovax, Inc. Compositions and methods for generating an immune response to a hemorrhagic fever virus
WO2016131945A1 (en) 2015-02-20 2016-08-25 Transgene Sa Combination product with autophagy modulator
US10174292B2 (en) 2015-03-20 2019-01-08 International Aids Vaccine Initiative Soluble HIV-1 envelope glycoprotein trimers
US9931394B2 (en) 2015-03-23 2018-04-03 International Aids Vaccine Initiative Soluble HIV-1 envelope glycoprotein trimers
DK3390430T3 (da) 2015-12-15 2019-11-18 Janssen Vaccines & Prevention Bv Human immundefektvirus-antigener, vektorer, sammensætninger og fremgangsmåder til anvendelse deraf
US11278607B2 (en) 2016-01-08 2022-03-22 Geovax, Inc. Compositions and methods for generating an immune response to a tumor associated antigen
WO2017136419A1 (en) 2016-02-03 2017-08-10 Geovax Inc. Compositions and methods for generating an immune response to a flavivirus
JP7034080B2 (ja) * 2016-02-25 2022-03-11 メモリアル スローン ケタリング キャンサー センター ヒトflt3lを発現する組換えmvaまたはmvaδe3lおよび固形腫瘍に対する免疫療法薬としてのそれらの使用
CA3023022A1 (en) 2016-05-04 2017-11-09 Transgene Sa Combination therapy with cpg tlr9 ligand
AU2017286375B2 (en) 2016-06-16 2019-04-18 Janssen Vaccines & Prevention B.V. HIV vaccine formulation
AU2017318689A1 (en) 2016-09-02 2019-04-11 Beth Israel Deaconess Medical Center, Inc. Methods for inducing an immune response against human immunodeficiency virus infection in subjects undergoing antiretroviral treatment
IL265186B (en) 2016-09-15 2022-09-01 Janssen Vaccines Prevention B V HIV envelope proteins with trimer-stabilizing mutations
WO2018069316A2 (en) 2016-10-10 2018-04-19 Transgene Sa Immunotherapeutic product and mdsc modulator combination therapy
CN110958887B (zh) 2017-06-15 2023-10-31 扬森疫苗与预防公司 编码hiv抗原的痘病毒载体及其使用方法
SG11201912429RA (en) 2017-06-21 2020-01-30 Transgene Sa Personalized vaccine
CN110891601A (zh) 2017-07-19 2020-03-17 扬森疫苗与预防公司 三聚体稳定性hiv包膜蛋白突变
US20190022212A1 (en) 2017-07-21 2019-01-24 Beth Israel Deaconess Medical Center, Inc. Methods for safe induction of cross-clade immunity against human immunodeficiency virus infection in human
US20190083620A1 (en) 2017-09-18 2019-03-21 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Methods for inducing an immune response against human immunodeficiency virus infection in subjects undergoing antiretroviral treatment
US11311612B2 (en) 2017-09-19 2022-04-26 Geovax, Inc. Compositions and methods for generating an immune response to treat or prevent malaria
CA3081436A1 (en) 2017-10-31 2019-05-09 Western Oncolytics Ltd. Platform oncolytic vector for systemic delivery
JP7320601B2 (ja) 2018-09-11 2023-08-03 上▲海▼市公共▲衛▼生▲臨▼床中心 広域スペクトルな抗インフルエンザワクチン免疫原及びその使用
WO2020237052A1 (en) 2019-05-22 2020-11-26 Janssen Vaccines & Prevention B.V. Methods for inducing an immune response against human immunodeficiency virus infection in subjects undergoing antiretroviral treatment
AU2020366460A1 (en) * 2019-10-16 2022-03-24 Kalivir Immunotherapeutics, Inc. Producer viruses for generation of retroviruses in SITU
EP4058058A1 (en) 2019-11-14 2022-09-21 Aelix Therapeutics S.L. Dosage regimens for vaccines
EP3842065A1 (en) 2019-12-23 2021-06-30 Transgene Process for designing a recombinant poxvirus for a therapeutic vaccine
EP3928789A1 (en) 2020-06-24 2021-12-29 Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC) Mva-based vaccine against covid-19 expressing sars-cov-2 antigens
WO2021260065A1 (en) 2020-06-24 2021-12-30 Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) Mva-based vaccine against covid-19 expressing sars-cov-2 antigens
JP2024516400A (ja) 2021-04-30 2024-04-15 カリヴィル イムノセラピューティクス, インコーポレイテッド 修飾されたmhc発現のための腫瘍溶解性ウイルス
WO2022269003A1 (en) 2021-06-23 2022-12-29 Consejo Superior De Investigaciones Cientificas MVA-BASED VACCINE EXPRESSING A PREFUSION-STABILIZED SARS-CoV-2 S PROTEIN
EP4108257A1 (en) 2021-06-23 2022-12-28 Consejo Superior De Investigaciones Científicas Mva-based vaccine against covid-19 expressing a prefusion-stabilized sars-cov-2 s protein
WO2023077147A2 (en) 2021-11-01 2023-05-04 Pellis Therapeutics, Inc. T-cell vaccines for patients with reduced humoral immunity
WO2023213764A1 (en) 2022-05-02 2023-11-09 Transgene Fusion polypeptide comprising an anti-pd-l1 sdab and a member of the tnfsf
WO2023213763A1 (en) 2022-05-02 2023-11-09 Transgene Poxvirus encoding a binding agent comprising an anti- pd-l1 sdab
US20230364227A1 (en) 2022-05-12 2023-11-16 Pellis Therapeutics, Inc. Poxvirus adjuvant for t-cell vaccination
EP4316514A1 (en) 2022-08-03 2024-02-07 Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC) Mva-based vectors and their use as vaccine against sars-cov-2
WO2024193905A1 (en) 2023-03-17 2024-09-26 Helmholtz Zentrum München - Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) Hbv antigen formulation for treating hepatitis b

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BE787901A (fr) 1971-09-11 1972-12-18 Freistaat Bayern Represente Pa Vaccin antivariolique
AU570940B2 (en) 1982-11-30 1988-03-31 United States of America, as represented by the Secretary, U.S. Department of Commerce, The Process for producing poxvirus recombinants for expression offoreign genes
US5679511A (en) * 1986-10-06 1997-10-21 Donald Guthrie Foundation For Medical Research, Inc. CDNA clones for a regulatory protein in the melanin-production pathway
CA1341245C (en) 1988-01-12 2001-06-05 F. Hoffmann-La Roche Ag Recombinant vaccinia virus mva
US5221610A (en) * 1988-05-26 1993-06-22 Institut Pasteur Diagnostic method and composition for early detection of HIV infection
CN1042564A (zh) * 1988-11-11 1990-05-30 中国科学院上海生物化学研究所 乙肝疫苗的制备方法及其制品
JPH03271233A (ja) * 1990-03-19 1991-12-03 Inst Pasteur ウイルスエンベロープ糖タンパク質及びその糖タンパク質の中和エピトープに対応するペプチドの間の相乗作用による、ウイルス性感染に対する防御の誘発
AU2800392A (en) * 1991-10-28 1993-06-07 Institut Pasteur Induction of protection against viral infection by synergy between viral proteins and viral peptides
PT1025849E (pt) * 1992-12-22 2002-09-30 Ludwig Inst Cancer Res Metodos para deteccao e tratamento de individuos tendo celulas anormais que expressam antigenios do peptideo hla-a2/tirosinase
US5620886A (en) * 1993-03-18 1997-04-15 Ludwig Institute For Cancer Research Isolated nucleic acid sequence coding for a tumor rejection antigen precursor processed to at least one tumor rejection antigen presented by HLA-A2
WO1995011255A1 (fr) * 1993-10-19 1995-04-27 Ajinomoto Co., Inc. Peptide pouvant induire une reponse immune contre vih et agent contenant ce peptide pour la prevention ou le traitement du sida
US5676950A (en) * 1994-10-28 1997-10-14 University Of Florida Enterically administered recombinant poxvirus vaccines
UA68327C2 (en) 1995-07-04 2004-08-16 Gsf Forschungszentrum Fur Unwe A recombinant mva virus, an isolated eukaryotic cell, infected with recombinant mva virus, a method for production in vitro of polypeptides with use of said cell, a method for production in vitro of virus parts (variants), vaccine containing the recombinant mva virus, a method for immunization of animals

Also Published As

Publication number Publication date
ES2249647T3 (es) 2006-04-01
JPH11509091A (ja) 1999-08-17
BR9609303B1 (pt) 2014-04-08
US8153138B2 (en) 2012-04-10
US8197825B2 (en) 2012-06-12
IL122120A (en) 2005-07-25
MX9800025A (es) 1998-03-31
HUP9802217A2 (hu) 1999-01-28
HK1068015A1 (en) 2005-04-22
EE200300331A (et) 2003-10-15
EP1312678A1 (en) 2003-05-21
EE04753B1 (et) 2006-12-15
IL219528A0 (en) 2012-06-28
EE200300332A (et) 2003-10-15
HU224061B1 (hu) 2005-05-30
US20100291139A1 (en) 2010-11-18
US20100266630A1 (en) 2010-10-21
EP1312678B1 (en) 2005-09-07
US7198934B2 (en) 2007-04-03
CZ424197A3 (cs) 1998-03-18
WO1997002355A1 (en) 1997-01-23
SI1312678T1 (sl) 2006-02-28
IL202448A0 (en) 2011-07-31
UA68327C2 (en) 2004-08-16
IL212933A0 (en) 2011-07-31
US20030035792A1 (en) 2003-02-20
JP4764367B2 (ja) 2011-08-31
HU0402350D0 (en) 2005-01-28
EP0836648A1 (en) 1998-04-22
CA2608864C (en) 2010-09-07
CA2225278A1 (en) 1997-01-23
JP2007252374A (ja) 2007-10-04
ATE304057T1 (de) 2005-09-15
CN1154742C (zh) 2004-06-23
IL122120A0 (en) 1998-04-05
ATE239796T1 (de) 2003-05-15
CN1782071A (zh) 2006-06-07
AU721735B2 (en) 2000-07-13
EP0836648B1 (en) 2003-05-07
UA75410C2 (en) 2006-04-17
ES2249648T3 (es) 2006-04-01
ES2199294T3 (es) 2004-02-16
DK1312679T3 (da) 2006-01-09
DE69635173T2 (de) 2006-07-13
DE69635173D1 (de) 2005-10-13
DE69635172T2 (de) 2006-06-22
US20070071770A1 (en) 2007-03-29
DK0836648T3 (da) 2003-08-25
BR9609303A (pt) 1999-05-25
NZ313597A (en) 1999-01-28
JP4764366B2 (ja) 2011-08-31
EP1312679B1 (en) 2005-09-07
RU2198217C2 (ru) 2003-02-10
IL164318A (en) 2013-08-29
TW575664B (en) 2004-02-11
DE69635172D1 (de) 2005-10-13
IL164318A0 (en) 2005-12-18
ATE304058T1 (de) 2005-09-15
EE05138B1 (et) 2009-02-16
JP4312260B2 (ja) 2009-08-12
CN1554764A (zh) 2004-12-15
NO980026L (no) 1998-01-02
CZ292460B6 (cs) 2003-09-17
EE9700344A (et) 1998-06-15
TW200305646A (en) 2003-11-01
NO322476B1 (no) 2006-10-09
TWI245075B (en) 2005-12-11
EP1312679A1 (en) 2003-05-21
SI0836648T1 (en) 2003-12-31
DK1312678T3 (da) 2005-12-19
US20070071769A1 (en) 2007-03-29
DE69628011D1 (de) 2003-06-12
CA2225278C (en) 2009-01-27
JP2007244382A (ja) 2007-09-27
CA2608864A1 (en) 1997-01-23
HU229261B1 (en) 2013-10-28
PL324347A1 (en) 1998-05-25
EE04199B1 (et) 2003-12-15
EP1312679B8 (en) 2005-11-23
HUP9802217A3 (en) 1999-09-28
CN1189857A (zh) 1998-08-05
KR19990028617A (ko) 1999-04-15
SI1312679T1 (sl) 2006-02-28
DE69628011T2 (de) 2004-03-18
HK1009830A1 (en) 1999-06-11
NO980026D0 (no) 1998-01-02
US6440422B1 (en) 2002-08-27
CA2596274C (en) 2010-09-07
CN1554764B (zh) 2012-03-21
AU6611096A (en) 1997-02-05
PT836648E (pt) 2003-09-30
BR9609303B8 (pt) 2014-05-06
PL186857B1 (pl) 2004-03-31
CA2596274A1 (en) 1997-01-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
UA75411C2 (en) Recombinant virus of mva
CA1341245C (en) Recombinant vaccinia virus mva