PL192687B1 - Plazmid i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie - Google Patents

Plazmid i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie

Info

Publication number
PL192687B1
PL192687B1 PL336156A PL33615698A PL192687B1 PL 192687 B1 PL192687 B1 PL 192687B1 PL 336156 A PL336156 A PL 336156A PL 33615698 A PL33615698 A PL 33615698A PL 192687 B1 PL192687 B1 PL 192687B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
dna
plasmid
plasmids
bacterial
dna sequence
Prior art date
Application number
PL336156A
Other languages
English (en)
Other versions
PL336156A1 (en
Inventor
Jörg Hacker
Ulrich Sonnenborn
Jürgen Schulze
Gabrielle Blum-Oehler
Jürgen Malinka
Hans Proppert
Original Assignee
Pharma Zentrale Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pharma Zentrale Gmbh filed Critical Pharma Zentrale Gmbh
Publication of PL336156A1 publication Critical patent/PL336156A1/xx
Publication of PL192687B1 publication Critical patent/PL192687B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

1. Plazmid, znamienny tym, ze ma sekwencj e DNA przedstawion a na fig. 1 i jej odmia- ny alleliczne. PL PL PL

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest plazmid bakteryjny i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie.
Plazmidy są małymi, pozachromosomalnymi, najczęściej kolistymi i samodzielnie replikującymi się cząsteczkami DNA, które występują u prawie wszystkich bakterii, jak również pewnych eukariotów oraz w mitochondriach. Wielkość plazmidów oscyluje do 1,5 do 300 kpz.
Plazmidy bakteryjne są w zasadzie koliste, kowalencyjnie zamknięte i superskręcone. Często niosą one geny oporności przeciwko antybiotykom lub metalom ciężkim, geny metabolizmu nietypowych substratów lub geny ustalające charakterystykę rodzajową, takie jak właściwości metaboliczne lub czynniki wirulencji. Pewne plazmidy mogą być przenoszone z jednej komórki do drugiej. Ponieważ patogenność bakterii zgodnie z dzisiejszym poglądem jest warunkowana również przez właściwości plazmidów, zwiększa się zainteresowanie wyjaśnieniem właściwości plazmidowego DNA.
Rodzina Enterobacteriaceae, do której należy 14 głównych rodzajów i 6 dalszych, jest znana z tego, że jej przedstawiciele mogą posiadać różnorakie właściwości. Typowym przykładem są Escherichia, Salmonella i Klebsiella. Escherichia coli (E. coli) jest klasycznym obiektem genetyki bakteryjnej. Dopiero odkrycie i scharakteryzowanie różnych czynników wirulencji z E. coli umożliwiło znalezienie zadowalającego wyjaśnienia faktu, że szczepy tego gatunku należą do skrajnie różnych patogenów ludzkich i zwierzęcych, które wykazują wirulencję od znikomej do wysokiej, jak w przypadku ostatnio rozprzestrzeniających się wariantów określanych jako EHEC.
Opisano wiele czynników wirulencji pochodzących zarówno z pozajelitowych jak i jelitowych szczepów E. coli, których część jest dobrze scharakteryzowana. W przypadku szczepów E. coli należących do grupy serologicznej O6:K5 znaleziono czynniki wirulencji takie jak przykładowo haemolizyna i adhezyna P-fimbrii, które przy utracie patogenności w tej grupie serologicznej nie są spotykane.
Geny wirulencji u enterobakterii znajdują się z reguły na dużych plazmidach (ok. 60 kpz). Istnieją jednak także enterobakterie z małymi, tak zwanymi kryptowymi plazmidami, których funkcja nie została dotychczas dokładnie określona.
Ponieważ wiadomo, że w przypadku czynników wirulencji z E. coli przynajmniej częściowo mamy do czynienia z genami plazmidowymi, rodzi się potrzeba dalszych badań mających na celu znalezienie i scharakteryzowanie plazmidów enterobakterii, a w szczególności Escherichia, aby np.: polepszyć możliwości diagnozowania i terapii w przypadku zachorowań następujących w wyniku infekcji enterobakteryjnych. Plazmidy, względnie ich bakteryjni gospodarze lub odpowiednie syntetyzowane DNA mogą znaleźć zastosowanie w analityce i diagnostyce mikrobiologicznej, zastosowanie medyczne w terapii lub profilaktyce, jak również w zastosowaniach probiotycznych i związanych z fizjologią odżywiania. Ponadto plazmidy, szczególnie takie z E.coli, są znanymi wektorami ekspresyjnymi w inżynierii genetycznej, dzięki czemu powstaje także z tych powodów zainteresowanie do pogłębiania poznania właściwości tego rodzaju plazmidów.
W tym celu przeprowadzono badania genetyczno-molekularne szczepu E.coli DSM 6601. Otrzymane z tego szczepu sekwencje DNA zostały poddane analizie sekwencyjnej za pomocą programów do obsługi baz danych i porównane z będącymi do dyspozycji sekwencjami DNA pochodzącymi z innych bakterii.
Szczep DSM 6601 posiada dwa małe plazmidy o wielkości 3177 pz ewentualnie 5552 pz, które zostały oznaczone jako pMUT1 i pMUT2.
DNA mniejszego plazmidu pMUT1 został po cięciu restrykcyjnym enzymem Hind III subklonowany jako liniowy fragment w wektorze pUC18, a następnie zsekwencjonowany. Zostało to przedstawione na załączonej figurze 1. Uzyskana w ten sposób sekwencja DNA została poddana porównaniom homologii z bazą danych GenEMBL, a wyniki tych porównań zostały zaprezentowane na figurze 2.
W porównaniach tych miejsce cię cia Hind III zostało przyję te jako pozycja 1. Od pozycji 200 do 800 pz DNA plazmidu pMUT1 wykazuje znaczącą homologię z różnymi miejscami startu replikacji (origins of replication) z innych plazmidów enterobakteryjnych, zwłaszcza z plazmidów NTP1, NTP16 i CloDF13. W obszarze od pozycji 950 pz rozpoczyna się region homologiczny z plazmidem NTP16 o wielkości 570 pz, który uprzednio został wyizolowany z Salmonella typhimurium.
Ten region homologiczny obejmuje gen mobA, który jest potrzebny do mobilizacji plazmidu NTP16 mK oraz region oriT (origin of transfer). Ponadto w pozycjach od 1790 pz do 1920 pz odkryto wysoką homologię do genów parA i cer, które mają znaczenie dla stabilności i ciągłości przekazywania i rozmnażania cząsteczek plazmidowych podczas podziałów komórkowych.
PL 192 687 B1
Ponadto z sekwencji DNA plazmidu pMUT1 została odczytana sekwencja aminokwasowa i poddana analizie mają cej na celu znalezienie otwartych ramek odczytu. Analizowano 6 moż liwych ramek odczytu. Odnaleziono w sumie 5 otwartych ramek odczytu o wielkości 143, 62, 56, 49 i 48 aminokwasów.
Graficzna ilustracja tych badań została zaprezentowana na figurze 3.
Obok nieznanych do tej pory plazmidów pMUT1 i pMUT2 odkryto także ich kombinację nie znaną dotychczas z żadnego szczepu E.coli.
Występowanie plazmidów wiąże się prawdopodobnie z użytkowymi właściwościami metabolicznymi i medycznymi i/lub związanymi z fizjologią odżywiania ewentualnie probiotycznością, charakterystycznymi dla szczepu DSM 6601.
Zbadanie plazmidów umożliwiło dokładniejsze określenie i analizę enterobakterii, a w szczególności grupy Escherichia. Ponadto plazmidy te są niewątpliwie użytecznymi wektorami ekspresyjnymi do stosowania w inżynierii genetycznej.
Przedmiotem wynalazku jest plazmid charakteryzujący się tym, że ma sekwencję DNA przedstawioną na fig. 1 i jej odmiany alleliczne.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie plazmidu określonego powyżej w mikrobiologicznej analityce i/lub diagnostyce in vitro.
Przedmiotem wynalazku jest również zastosowanie plazmidu określonego powyżej jako plazmidu ekspresyjnego.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest sekwencja DNA charakteryzująca się tym, że ma sekwencję nukleotydową przedstawioną na fig. 1.
Przedmiotem wynalazku jest także zastosowanie sekwencji DNA określonej powyżej w mikrobiologicznej analityce i/lub diagnostyce in vitro.
Poniżej wyjaśniono bliżej wynalazek za pomocą przykładów:
P r z y k ł a d 1
Izolacja plazmidów
Izolacja plazmidowego DNA przebiega w oparciu o sposób wg. Birnboim i wsp. (Birnboim, A.C. i Doly, J. (1979) Nucl.Acids Res. 7:1513-1523 Szybka procedura ekstrakcji alkalicznej sł u żąca do skriningu rekombinowanego DNA plazmidowego).
ml poż ywki LB zaszczepiano jedną kolonią bakteryjną i wytrząsano przez noc przy 37°C.
Hodowla ta była odwirowywana w ependorfówkach, roztwór znad osadu był oddzielany za pomocą pipety. Osad komórkowy roztwarzano ponownie w 100 μΐ roztworu 1 (50 mM glukoza; 10 mm EDTA, pH 8; 25 mM Tris-HCl, pH 8). Po 5 minutowej inkubacji w temperaturze pokojowej dodawano 200 μl roztworu II (0,2 N NaOH; 1% SDS), mieszano do sklarowania i odstawiano ependorfówki na lód na następne 5 minut. Następnie dodawano 150 μΐ roztworu III (3 M octan sodu, pH 4,8), krótko wstrząsano do wytrącenia DNA chromosomalnego i pozostawiano osad przez kolejne 5 minut na lodzie. Wytrącone chromosomalne DNA i resztki komórkowe oddzielano poprzez 5 minutowe odwirowywanie, a roztwór znad osadu zawierający DNA plazmidowe przenoszono do nowej probówki. W celu oczyszczenia plazmidowego DNA dodawano 50 μl fenolu i 150 μl mieszaniny chloroform / alkohol izoamylowy (24:1) i po krótkim wytrząsaniu odwirowywano przez 2 min. Fazę wodną przepipetowywano do nowych probówek. Plazmidowe DNA wytrącano 2 objętościami lodowatego etanolu i odwirowywano 10 minut. Osad przemywano 70% etanolem i suszono w Speedvac. Plazmidowe DNA rozpuszczano ponownie w 20 μl H2Obidest i przechowywano w -20°C.
P r z y k ł a d 2
Sekwencjonowanie DNA
Izolacja plazmidowego DNA przebiega w oparciu o sposób wg. F. Sanger i wsp. (Sanger, F., Nicklen, S. i Coulson, A. R. (1977) Proc.Natl. Acad. Sci. USA 74: 5463-5467 Sekwencjonowanie DNA z inhibitorami terminacji łańcucha).
Sekwencjonowanie DNA prowadzono przy użyciu zestawu do sekwencjonowania T7-Sequenzier-Kit oferowanego przez Pharmacia LKB.
W etapie denaturowania mieszano 8 μl (1,5 do 2 μg) plazmidowego DNA z 2 μl 2 N NaOH, krótko odwirowywano i inkubowano 10 minut w temperaturze pokojowej. DNA wytrącano przez 15 minut w -70°C za pomocą 3 μl 3 M octanu sodu, pH 4,8 oraz 7 μl H2Obidest i 60 μl lodowatego etanolu absolutnego. Wytrącone DNA odwirowywano przez 10 min, przemywano 70% etanolem i suszono.
PL 192 687 B1
Przygotowując do reakcji hybrydyzacji starterów mieszano DNA rozpuszczony w 10 μΐ H2Obidest z 2 μl buforu do hybrydyzacji starterów oraz 2 μl starterów (40 ng). Inkubowano 20 minut w 37°C, dzięki czemu mogło dojść do związania się starterów z matrycowym DNA. Mieszaninę reakcyjną schładzano przez 10 minut w temperaturze pokojowej i następnie poddawano bądź to reakcji znakowania bądź mrożono w -20°C. W reakcji znakowania do mieszaniny reakcyjnej po hybrydyzacji starterów dodawano pipetą 3 μΐ Labeling-Mix, 1 μΐ [a-P32]dATP i 2 μΐ polimerazy T7 (polimeraza T7 była rozcieńczana 1:5 przy użyciu buforu do rozcieńczeń enzymu). Podczas tego podgrzewano do 37°C świeżo przygotowane do reakcji terminacji mieszaniny sekwencjonujące (po 1 naczyniu z 2,5 μΐ G'-, A'-, T'- i C'- Mix short). Po zakończeniu reakcji znakowania dodawano po 4 μΐ mieszaniny reakcyjnej do każdej z czterech mieszanin sekwencjonujących i mieszano krótko za pomocą pipety. Reakcyjne mieszaniny terminacyjne inkubowano przez 5 min w 37°C.
W ce^ zakończenia reakcji terminacyjnej dodawano po 5 μΐ roztworu stopującego. Mieszaniny reakcyjne przenoszono następnie do inkubatora o temperaturze 95°C, denaturowano przez 2 minuty i odstawiano na tód. Po 2,5 μΐ mieszanin reakcyjnych nanoszono w kotejności 'G', 'A', 'T', 'C' na żel sekwencyjny [ 25,2 g mocznika, 22 md H2Obidest, 6 md 10 x TBE, 10 md poliakrylamidu (40%), 2 md nadsiarczanu amonu (16 mg/md), 60 μΐ TEMED]. Elektroforezę prowadzono przez 4,5 godz. przy 40 W i 1500 V.

Claims (6)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Ptezmid, znamienny tym, że ma sekwencję DNA przedstawioną na fig. 1 i jej odmiany aNeNczne.
  2. 2. Zastosowanie ptazmidu okreśtonego w zastrz. 1 w mikrobiologicznej anaNtyce k^ub diagnostyce in vitro.
  3. 3. Zastosowanie ptazmidu okreśtonego w zastrz. 1 jako ptezmidu ekspresyjnego.
  4. 4. Sekwencja DNA, znamienna tym, że ma sekwencję nukteotydową przedstawioną na fig. 1.
  5. 5. Zastosowanie sekwencji DNA okreśtonej w zastrz. 4 w mikrobiologicznej anaNtyce i^ub diagnostyce in vitro.
  6. 6. Zastosowanie sekwencji DNA okreśtonej w zastrz. 4 jako ptazmidu ekspresyjnego
PL336156A 1997-04-02 1998-04-01 Plazmid i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie PL192687B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19713543A DE19713543B4 (de) 1997-04-02 1997-04-02 Bakterielle Plasmide
PCT/EP1998/001720 WO1998044134A2 (de) 1997-04-02 1998-04-01 Bakterielle plasmide

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL336156A1 PL336156A1 (en) 2000-06-05
PL192687B1 true PL192687B1 (pl) 2006-11-30

Family

ID=7825193

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL336156A PL192687B1 (pl) 1997-04-02 1998-04-01 Plazmid i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie
PL373720A PL192699B1 (pl) 1997-04-02 1998-04-01 Plazmid i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL373720A PL192699B1 (pl) 1997-04-02 1998-04-01 Plazmid i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie

Country Status (32)

Country Link
US (1) US6391631B1 (pl)
EP (1) EP0975774B1 (pl)
JP (2) JP2000514661A (pl)
KR (1) KR100398558B1 (pl)
CN (2) CN100429313C (pl)
AR (1) AR010140A1 (pl)
AT (1) ATE277190T1 (pl)
AU (1) AU739941B2 (pl)
BR (1) BR9808458A (pl)
CA (1) CA2285633C (pl)
CO (1) CO4790114A1 (pl)
CZ (2) CZ294686B6 (pl)
DE (2) DE19713543B4 (pl)
DK (1) DK0975774T3 (pl)
DZ (1) DZ2454A1 (pl)
EA (2) EA003700B1 (pl)
EE (1) EE04944B1 (pl)
ES (1) ES2229492T3 (pl)
HK (2) HK1026233A1 (pl)
HU (1) HU228182B1 (pl)
IL (2) IL132101A0 (pl)
NZ (1) NZ338000A (pl)
PE (1) PE96799A1 (pl)
PL (2) PL192687B1 (pl)
PT (1) PT975774E (pl)
SI (1) SI0975774T1 (pl)
SK (2) SK284928B6 (pl)
TR (1) TR199902434T2 (pl)
TW (1) TW567225B (pl)
UA (1) UA73072C2 (pl)
WO (1) WO1998044134A2 (pl)
ZA (1) ZA982733B (pl)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19751242C2 (de) 1997-11-19 2001-02-08 Pharma Zentrale Gmbh DNA-Sequenzen aus Fimbriengenen von Escherichia coli Stamm DSM 6601
HUP0004409A3 (en) * 1997-11-19 2001-09-28 Pharma Zentrale Gmbh Method for identifying escherichia coli strain dsm 6601
DE19915772C2 (de) * 1998-11-18 2001-08-30 Pharma Zentrale Gmbh Verfahren zur Identifizierung von Escherichia coli Stamm DSM 6601
DE10155928A1 (de) * 2001-11-15 2003-06-12 Degussa recA-negativer und rhaB-negativer Mikroorganismus
US7648886B2 (en) * 2003-01-14 2010-01-19 Globalfoundries Inc. Shallow trench isolation process
DE10328669B4 (de) * 2003-06-26 2005-12-01 Pharma-Zentrale Gmbh Plasmidfreier Klon des E. coli Stammes DSM 6601
CN100368549C (zh) * 2006-03-29 2008-02-13 北京未名凯拓作物设计中心有限公司 一种细菌质粒及其衍生质粒与应用
EP2466678B1 (en) 2009-08-10 2017-11-22 LG Chem, Ltd. Lithium secondary battery

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5843882A (en) * 1995-04-27 1998-12-01 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Antiviral proteins and peptides
CN1060807C (zh) * 1995-05-25 2001-01-17 中国科学院微生物所 大肠杆菌中表达外源基因的质粒和牛凝乳酶原的生产方法

Also Published As

Publication number Publication date
ATE277190T1 (de) 2004-10-15
DE19713543B4 (de) 2007-01-11
AR010140A1 (es) 2000-05-17
AU739941B2 (en) 2001-10-25
KR100398558B1 (ko) 2003-09-19
PE96799A1 (es) 1999-10-18
IL132101A (en) 2006-10-31
PT975774E (pt) 2005-01-31
PL336156A1 (en) 2000-06-05
CN1194093C (zh) 2005-03-23
SK284929B6 (sk) 2006-02-02
CA2285633A1 (en) 1998-10-08
CN100429313C (zh) 2008-10-29
AU7209598A (en) 1998-10-22
CN1253590A (zh) 2000-05-17
TW567225B (en) 2003-12-21
HK1026233A1 (en) 2000-12-08
JP2000514661A (ja) 2000-11-07
EP0975774A2 (de) 2000-02-02
DZ2454A1 (fr) 2003-01-18
HU228182B1 (en) 2013-01-28
DE19713543A1 (de) 1998-10-08
UA73072C2 (en) 2005-06-15
DK0975774T3 (da) 2005-01-31
SK284928B6 (sk) 2006-02-02
KR20010005924A (ko) 2001-01-15
SK133899A3 (en) 2000-05-16
CO4790114A1 (es) 1999-05-31
CZ294867B6 (cs) 2005-04-13
IL132101A0 (en) 2001-03-19
HUP0001857A2 (hu) 2000-10-28
DE59812000D1 (de) 2004-10-28
HK1086596A1 (en) 2006-09-22
SI0975774T1 (en) 2005-02-28
US6391631B1 (en) 2002-05-21
EA199900893A1 (ru) 2001-04-23
EA003738B1 (ru) 2003-08-28
PL192699B1 (pl) 2006-12-29
BR9808458A (pt) 2000-05-02
EA003700B1 (ru) 2003-08-28
HUP0001857A3 (en) 2003-07-28
WO1998044134A3 (de) 1999-04-29
ZA982733B (en) 1998-09-21
CN1727489A (zh) 2006-02-01
EP0975774B1 (de) 2004-09-22
CZ348299A3 (cs) 2000-05-17
EA200000567A1 (ru) 2001-02-26
EE9900445A (et) 2000-04-17
NZ338000A (en) 2001-09-28
JP2003000245A (ja) 2003-01-07
ES2229492T3 (es) 2005-04-16
CA2285633C (en) 2005-10-18
TR199902434T2 (xx) 2000-01-21
CZ294686B6 (cs) 2005-02-16
EE04944B1 (et) 2007-12-17
WO1998044134A2 (de) 1998-10-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
LeBlanc et al. Cloning and nucleotide base sequence analysis of a spectinomycin adenyltransferase AAD (9) determinant from Enterococcus faecalis
Vester et al. The importance of highly conserved nucleotides in the binding region of chloramphenicol at the peptidyl transfer centre of Escherichia coli 23S ribosomal RNA.
Poolman et al. Carbohydrate utilization in Streptococcus thermophilus: characterization of the genes for aldose 1-epimerase (mutarotase) and UDPglucose 4-epimerase
JPH11137259A (ja) 細菌同定のためのオリゴヌクレオチドおよびそれを用いた細菌の同定方法
McGovern et al. H-NS over-expression induces an artificial stationary phase by silencing global transcription
Petersohn et al. Identification and transcriptional analysis of new members of the σB regulon in Bacillus subtilis
PL192687B1 (pl) Plazmid i jego zastosowanie oraz sekwencja DNA i jej zastosowanie
JP5977678B2 (ja) Tlr4/md−2の外膜アゴニストを欠く生存可能なグラム陰性細菌
Bechhofer et al. Analysis of mRNA decay in Bacillus subtilis
Hesman et al. Cloning, characterization, and nucleotide sequence analysis of a Zymomonas mobilis phosphoglucose isomerase gene that is subject to carbon source-dependent regulation
Pour-El et al. Construction of mini-Tn4001tet and its use in Mycoplasma gallisepticum
EP0586112A2 (en) Control of PCR mediated detection of micro-organisms
Kime et al. Identifying and characterizing substrates of the RNase E/G family of enzymes
Hartley et al. Use of plasmid pTV1 in transposon mutagenesis and gene cloning in Bacillus amyloliquefaciens
JP2002517260A (ja) 制限酵素遺伝子発見法
Dalrymple et al. Evidence for two genetically distinct DNA primase activities specified by plasmids of the B and I incompatibility groups
JP2903611B2 (ja) 魚類病原性菌種の決定遺伝子dnaおよびその用途
Rohde et al. Plasmid isolation from bacteria
JP2570652B2 (ja) パスツレラ・ピシシーダ種の決定遺伝子dna
Tovkach Isolation and preliminary characterization of cryptic plasmids from Erwinia carotovora
Valdelvira et al. Lactococcus lactis
JP2991200B2 (ja) 魚類病原性菌種の決定遺伝子dnaおよびその用途
Swanson Cloning and expression of the genes encoding bacteriophage T7 & SP6 RNA polymerase
JPH044882A (ja) ヌクレオシド・ホスホリラーゼをコードするdna断片
Sharma Genetic basis of the activation of the cryptic dct genes in Mesorhizobium loti

Legal Events

Date Code Title Description
RECP Rectifications of patent specification