KR102665664B1 - 황산화 다당류의 유도체 및 이의 제조 방법, 변형 방법 및 용도 - Google Patents

황산화 다당류의 유도체 및 이의 제조 방법, 변형 방법 및 용도 Download PDF

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Abstract

본 발명은 황산화 다당류 구조에서 α,β-불포화 알데하이드의 제조 방법 및 그 용도에 관한 것이다. 본 발명은 일반 구조식 I에 따라 6번 위치의 알데하이드와 또는 일반식 II에 따라 그 수화된 형태와 공액 관계로 갈락토피라노스의 4번 및 5번 위치에 이중결합을 포함하는 유도체에 관한 것이다. 이들 유도체의 제조 방법은 α(1→3) 또는 β(1→3) O-글리코시드 결합을 통해 폴리머 체인에 결합된, 4번 위치에서 황산화된 갈락토피라노스 고리를 포함하는 황산화 다당류로부터 유래된다. 본 방법에서, 황산화 다당류는 위치-선택적 및 화학-선택적으로 산화되어 C6-포화 알데하이드를 형성하며, 이는 설페이트 기의 직접 제거를 통해 일반식 I 또는 II에 따른 α,β-불포화 유도체로 제조된다. 본 방법은, 임의의 제거제, 고온 또는 합성 중에 중간산물의 분리 없이 바로 α,β-불포화 알데하이드를 제조하기 때문에, 기술적으로 유익하다. α,β-불포화 알데하이드 구조의 공액은 생리학적 조건에서 황산화 다당류의 구조에 매우 다양한 생체적합한 아민이 결합가능하게 한다. 제시된 본 방법은 pH-반응성 약물 전달 시스템에 적합한 물질 또는 조직 공학 또는 재생 의학에서 스캐폴드 제조에 적합한 물질을 제조할 수 있다.
Figure 112018008214918-pct00014

상기 식에서, R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-Ac임.

Description

황산화 다당류의 유도체 및 이의 제조 방법, 변형 방법 및 용도
본 발명은 6번 위치의 알데하이드에 대해 갈락토피라노스 고리의 4번 및 5번 위치에 공액된 이중 결합을 가지는 황산화 다당류의 유도체에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 이의 제조 방법, 변형 방법 및 용도에 관한 것이다.
글리코사미노글리칸은 케라틴 설페이트를 제외하고는 아미노헥소스와 우론산으로 구성된 선형 다당류이다. 이 화합물은 결합 조직, 특히, 연골, 인대 및 힘줄의 세포내 기질 대부분을 형성한다. 글루코사미노글리칸의 주요한 예로는, 히알루론산 외에도 황산화 다당류, 예를 들어, 콘드로이틴 설페이트 또는 더마탄 설페이트가 있다.
콘드로이틴 설페이트는, N-아세틸-D-갈락코사미노글리칸과 D-글루쿠론산으로 된 단량체 유닛이 β(1→3) 및 β(1→4) O-글리코시드 결합을 통해 반복적으로 결합된, 선형의, 황산화된, 음전하를 띠는 글리코사미노글리칸이다 (콘드로이틴 설페이트의 구조식은 아래와 같다).
Figure 112018008214918-pct00001
식에서,
R1은 H 또는 Na이고,
R2는 H, -SO2-OH, 또는 -SO2-ONa이다.
콘드로이틴 설페이트는 동물 결합 조직으로부터 유래되며, 결합 조직에서 단백질에 결합하여 프로테오글리칸의 일부를 구성한다. 콘드로이틴의 황산화는 다양한 위치에서 다양한 유형의 설포트랜스퍼라제에 의해 이루어진다. 폴리머 체인의 특정 위치에서의 독특한 황산화 패턴은 콘드로이틴 설페이트의 특이적인 생물학적 활성을 코딩한다. 콘드로이틴 설페이트는 관절내 연골의 중요한 구성 성분으로서, 압축 저항성을 부여하고, 관절 윤활제 조성의 균형성을 회복시킨다 (Baeurle S. A., Kiselev M. G., Makarova E. S., Nogovitsin E. A. 2009. Polymer 50: 1805). 콘드로이틴 설페이트는, 글루코사민과 더불어, 인간 또는 동물 (예, Gelorendog®, Contipro Pharma, Ltd.)에서 골관절염을 치료 또는 예방하기 위한 영양 보충제로서 사용된다 (예, Flextor®, Advance Nutraceutics, Ltd.). 제약학적 측면에서, 콘드로이틴 설페이트는 퇴행성 관절 질환에서 통증을 제어하기 위한 반응 지연성 약물로 고려되고 있다 (Aubry-Rozier B. 2012. Revue Medicale Suisse 14: 571).
더마탄 설페이트는, N-아세틸-D-갈락코사민과 L-이두론산으로 된 단량체 유닛이 β(1→3) 및 β(1→4) O-글리코시드 결합을 통해 반복적으로 결합된, 선형의, 황산화된, 음전하를 띠는 글리코사미노글리칸이다 (더마탄 설페이트의 구조식은 아래와 같다).
Figure 112018008214918-pct00002
상기 식에서,
R1은 H 또는 Na이고,
R2는 H, -SO2-OH, 또는 -SO2-ONa이다.
더마탄 설페이트는 D-글루쿠론산의 C5 에피머인 L-이두론산이 존재한다는 점에서 콘드로이틴 설페이트와 구별된다. 이두론산의 역 구조 (inverse configuration)는 더마탄 설페이트 체인에 우수한 유연성을 제공하며, 주변 영역에서 글리코사민-당단백질 간의 특이적인 상호작용을 보장해준다. 이러한 상호작용은 몇가지 세포 프로세스, 예를 들어, 이동, 증식, 분화 또는 혈관신생을 조절하는데 기여한다. 3가지 효소들에 의해 콘드로이틴 설페이트로부터 더마탄 설페이트로 변환된다: 더마탄 설페이트 에피머라제 1 (DS-epi1), 더마탄 설페이트 에피머라제 2 (DS-epi2) 및 더마탄 4-O-설포트랜스퍼라제 (D4ST1). 글루쿠론산에서 이두론산으로의 에피머화 반응은, 황산화 방식과 더불어, 무작위적이지 않고 효소에 의해 특이적으로 제어되며, 이로써 구축된 글리코사미노글리칸의 기능에 대한 정보를 가지게 된다 (Thelin M., et al. 2013. FEBS Journal 280: 2431).
카라기난은 홍조류 (red marine algae)의 추출에 의해 수득되는 일군의 선형의 황산화 다당류이다. α(1→3) 또는 β(1→4) O-글리코시드 결합을 통해 조합된, 갈락토스 및 이의 3,6-무수유도체 (anhydroderivative)가 카라기난의 기본 구성 단위이다. 카라기난에는 황산화 정도와 수용성 차이에 따라 주로 3가지 타입이 존재한다. κ-카나기난은 이량체 당 1개의 설페이트를 가지며, 수중에서 굳건한 겔을 형성한다. ι-카나기난은 2개의 설페이트를 포함하며, 소프트 겔을 형성하는 반면, λ-카라기난은 설페이트 3개를 포함하지만 겔 형성 특성이 없다. 카라기난은 채식주의자와 완전 채식주의자에게는 동물성 젤라틴의 대체품이다. 카라기난은 식품의 점도 증가 (thickening) 및 안정화를 목적으로 사용되며, 제약 및 직물 산업에서는 유화제로도 사용된다.
글리코사아미노글리칸의 산화
다당류는 기능적인 다양성으로 인해 다양한 위치들에서 산화될 수 있다 (Cumpstey I., 2013. ISRN Organic Chemistry, 1). 글리코사민글리칸의 경우, 3가지 방식으로 산화된다. 첫번째 방식은 1차 하이드록시를 산화하여 카르복시산을 제조하는 것이다. 산화에는 TEMPO/NaClO 조합이 가장 흔히 사용된다 (Jiang B., et al. 2000. Carbohydrate Research 327: 455; Huang L. et al. 2006. Chemistry, 12: 5264). 이 방법은, TEMPO의 입체 벌키성 (steric bulkiness)으로 인해, 1차 하이드록시에 대해서만 위치선택적이다.
이와는 대조적으로, 두번째 방식은 2차 하이드록시를 산화하여 다이케톤 화합물을 제조하는 것이다. 이 경우, 산화제로서 Cr(VI)계 전이금속 산화물 (Hassan R., et al. 2013. Carbohydrate Polymers, 92: 2321) 또는 Mn(VII)계 전이금속 산화물 (Gobouri A. A., et al. 2013. International Journal of Sciences, 2:1; Zaafarany I. A., et al. 2013. Journal of Materials Science Research, 2: 23)이 사용된다.
세번째 방식의 산화는 과요오도산염 (IO4 -) 산화에 기초한 방법으로, 2차 하이드록시 기를 공격하면서 동시에 피라노스 고리를 자른다 (Dawlee S. et al. 2005. Biomacromolecules, 6: 2040; Liang Y., et al. 2011. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 82: 1; Xu Y., et al. 2012. Carbohydrate Polymers, 87: 1589). 산화 중에, 다이알데하이드가 먼저 생성된 다음에 다이카르복시산으로 추가로 산화된다.
전술한 산화 방법들 모두 몇가지 문제점을 가지고 있다. TEMPO/NaClO를 이용한 산화의 경우, 원하는 C6-알데하이드가 아니라 폴리우론산의 형성이 선호된다. 히알루론산 사례에서 입증된 바와 같이, 알데하이드 수준에서의 반응 조건이 최적화되어야 한다 (Buffa R., et al., WO2011069475, Sedova P., et al., 2013. Carbohydrate Research, 371: 8). 또한, 폴리머내 카르복시 기의 높은 함량이 다당류와 생물학적 주변 환경과의 배좌 (conformation), 상호작용 및 인지에 상당한 영향을 미친다 (Zou X. H., et al. 2009. Acta Biomaterialia, 5: 1588).
과요오드산 산화는 화학선택적인 반응 경로를 통해 달성할 수 있지만, 이 방법은 다당류의 고유한 특징의 소실로 이어지는, 폴리머 분자량의 급격한 감소 및 피라노스 고리의 비가역적인 절단으로 인해, 바람직하지 않다.
전이 금속 산화물 유래의 산화제를 사용하는 경우, 산화된 다당류는 높은 독성으로 인해 생의학적 용도로 사용할 수 없다 (Normandin L., et al. 2002. Metabolic Brain Disease, 17: 375; Katz S. A., et al. 2006. Journal of Applied Toxicology, 13: 217).
다당류의 산화 유도체의 탈수 반응
다당류 구조에 알데하이드가 존재하면 인접한 α-위치의 수소 원자는 산 특성을 가지게 된다. 이 수소는 제거 반응을 위한 염기성 조건에서 쉽게 접근가능해져 카르보음이온 (carbanion)을 형성하게 되며, 이 카르보음이온은 인접 알데하이드와의 공액으로 안정화되며, 따라서 β-위치에서 이탈기가 해리된다 (반응식 1에서 방법 a). 제거 반응은 또한 산성 조건에서도 진행될 수 있는데, 이 경우 이탈기의 활성화가 먼저 발생하여 β-위치에서 카르보음이온이 형성된다 (반응식 1에서 방법 b). 반응 혼합물에서, 카르보음이온은 α-위치에서 자유 전자 쌍으로 중화된다. 3번째 가능성 있는 방식은 염기 또는 산 첨가 없이 동시적인 분자 제거를 이용해 수행될 수 있다 (반응식 1에서 방법 c).
Figure 112018008214918-pct00003
반응식 1. 알데하이드 구조에서의 제거 반응: (a) 염기 처리에 의한 카르보음이온 형성, 기전 E1cb (b) 산 처리에 의한 카르보음이온 형성, 기전 E1 (c) 동시 제거, 기전 E2.
히알루로난의 글루코사민 고리 6번 위치에서 알데하이드의 타겟 탈수 방법이 특허 문헌에 개시되어 있다 (Buffa et al.: CZ304512). 이건의 출원인은, 히알루로난의 α,β-불포화 알데하이드의 제조 방법과 이의 가교 용도를 언급하고 있다. 언급된 합성 방법은 입체적으로 큰 유기 염기 (예, 다이이소프로필아민, 트리메틸아민), 무기 염기, 예를 들어, Ca(OH)2를 DMSO, 설폴란 타입의 유기 용매와 물의 혼합물 중에 3/1 내지 1/2 비율로 50-60℃의 고온에서 사용하는 것을 포함한다. 또한, 탈수는 폴리머를 4-5일간 50-100℃로 가열함으로써 고체 상태에서 수행된다. 이 출원인은 2 단계로 구성된 히알루론산의 산화 및 탈수를 기술하고 있으며, 산화 단계 중의 직접 탈수에 대해서는 언급되어 있지 않다. 이 방법은, 2단계 합성 방법이며, 가성 (부식성) 제거 물질의 존재 하, 유기 용매의 존재 하에 부적절한 반응 조건을 이용하며, 고온 및 장기간의 반응 시간이 요구되는, 상당한 문제점이 있다. 이들 파라미터 모두 합성 단가를 높이고, 기술적인 관점에서 더 복잡하게 만든다 (예, 제조 장치의 부식, 생산물의 정제 곤란성, DMSO, 설폴란과 같은 고가의 이극성 비-양자성 용매, Et3N 및 DIPEA와 같은 고가의 제거 물질, 에너지 및 냉각수 다량 소모, 생산물내 위험 잔류물이 존재할 고 위험성, 위험한 수준의 생산물의 생체적합성, 염기성 환경 및 고온으로 인한 폴리머의 높은 분해성). CZ304512에 따른 HA의 α,β-불포화 알데하이드 합성 방법의 상기한 문제점들은, 본 발명에 따르면, 중간산물을 포화 C6-알데하이드 형태로 분리하지 않고, 제거 물질을 첨가하지 않고, 유기 물질을 사용하지 않고도, 실온에서 대략 수시간의 반응 시간 동안 하나의 포트에서 합성을 진행하기 때문에, 성공적으로 해결된다.
산화 다당류의 가교 반응
다당류 구조에 알데하이드가 도입되면, 폴리머 체인을 친핵성 첨가 반응을 통해 추가로 변형시킬 수 있다. 알데하이드에 아민을 결합시키는 방법이 언급된 수종의 특허 문헌들이 공지되어 있다. 글리코사미노글리칸에서의 전형적인 반응 예는, 생체적합한 하이드로겔을 제조하기 위해, 다양한 소분자 (아민, 하이드라지드, 알콕시아민, 세미카르바지드) 또는 폴리머성 N-친핵체 (젤라틴, 키토산), 또는 S-친핵체 (티올, 아미노티올)와의 과요오드산염을 이용한 산화를 통해 형성되는, 다이알데하이드 반응이다 (Dawlee S., et al. 2005. Biomacromolecules, 6: 2040; Weng L., et al. 2008. Journal of Biomedical Materiasl Research part A, 85: 352, Bergman K., et al.: WO2009/108100, Hilborn J., et al.: WO2010/138074). 데스-마틴 페리오디난을 이용하거나 또는 다양한 아민과 TEMPO/NaClO 조합을 이용해 제조된 히알루론산의 알데하이드를 가교하는 방법도 특허 문헌에 개시되어 있다 (Buffa R., et al.: WO2011069474; Buffa R., et al.: WO2011069475). N-아세틸-D-글루코사민 서브유닛의 C6-알데하이드 탈수를 통해, 히알루론산의 α,β-불포화 알데하이드를 제조하는 방법도 개시되어 있다 (Buffa R., et al: CZ304512). 이건 출원인은, 히알루론산의 산화된 유도체 외에도, N, S 또는 O 원자를 임의 함량으로 포함하는 지방족, 방향족 아민 화합물과의 반응에서의 이의 용도도 언급하고 있다. 그러나, 이들 화합물은 고온에서 부식성 제거 물질을 사용해 제조되므로, 변성 가능성 및 부산물 존재로 인해 생물학적 활성을 유지하는데 매우 부정적이다. 아울러, 형성되는 하이드로겔의 레올로지 특성에 영향을 미치는 다당류에의 알데하이드 공액 (conjugation) 이점을 설명하기 위해, 히알루론산의 α,β-불포화 알데하이드와 다관능성 아미노 링커로서 탈아세틸화 다당류의 가교 반응도 언급되어 있다. 그러나, 이런 방식으로 형성된 하이드로겔은 만족스러운 기계적 특성, 특히 하이드로겔 강도에 대해서는 만족스러운 기계적 특성을 나타내지 못한다.
본 발명의 과제는 온건한 반응 조건에서 짧은 시간 안에 부적절한 제거제 또는 유기 용매 불순물을 사용하지 않으면서 황산화 다당류를 제조하는 방법에 관한 것이다. 이 방법은, 조직공학, 재생 의학 또는 생의학적 용도에 있어 중요한, 황산화 다당류의 생물학적 특성 감소와 현저한 분해를 방지한다. 본 발명의 과제는 일반식 I 또는 II에 따라 폴리머 체인의 일부로서 변형된 하나 이상의 갈락토피라노스 고리를 가진 황산화 다당류의 유도체로 구성되며, 갈락토피라노스 고리는 4번 및 5번 위치에 이중 결합을 포함하며, 각각 공액된 알데하이드 또는 이의 수화된 형태 (일반식 II)를 가진다.
Figure 112018008214918-pct00004
Figure 112018008214918-pct00005
상기 식에서,
R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-C(O)-CH3이다.
필수 조건은 체인에 하나 이상의 갈락토피라노스 고리를 포함하는 황산화 다당류를 사용하는 것으로서, 이 고리는 일반 구조식 III에 따라 4번 위치에서 황산화되고, 동시에 α (1→3) 또는 β (1→3) O-글리코시드 결합을 통해 체인에 결합된다.
Figure 112018008214918-pct00006
상기 식에서,
R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-C(O)-CH3이고,
R1은 H 또는 Na이다.
다당류는 바람직하게는 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 카라기난 및 이들의 약제학적으로 허용가능한 유도체 및/또는 염을 포함하는 군으로부터 선택되며, 이의 분자량은 바람직하게는 1 x 103 내지 5 x 104 g.mol-1의 범위이고, 치환도는 1 내지 40%, 바람직하게는 10 내지 25%이다. 식 I 또는 II 각각에서, 용어 "치환도"는 각각 불포화 알데하이드 또는 이의 수화된 형태로 변형된 정도를 나타낸다.
본 방법은 알데하이드로로부터 유래된 다중 결합을 이용해 황산화 다당류와 아민의 공액을 안정시킬 수 있으며, 그래서 이런 방식 (반응식 2)으로 생리학적 조건에서 변형된 다당류에 실질적으로 보다 다양한 범위의 아민을 더욱 안정적으로 결합시킬 수 있다.
Figure 112018008214918-pct00007
상기 식에서,
R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-C(O)CH3이고,
R2은 알킬, 아릴 또는 헤타릴이다.
반응식 2. 황산화 다당류의 α,β-불포화 알데하이드에 아민의 결합.
또한, 본 발명은, 황산화 다당류를 먼저 6번 위치에서 알데하이드로 산화하는 단계 및 산화 직후에, 직접 제거를 통해 동일 반응 혼합에서 α,β-불포화 알데하이드를 형성하는 단계 (반응식 3)를 포함하는, 일반 구조식 I 또는 II의 유도체를 제조하는 방법에 관한 것으로서, 황산화 다당류는 본래 형태에서 수용성이며, 4번 위치에서 황산화된 하나 이상의 갈락토피라노스 유닛을 구조에 포함하며, 이 유닛은 α (1→3) 또는 β (1→3) O-글리코시드 결합을 통해 폴리머 체인로 결합된다.
Figure 112018008214918-pct00008
상기 식에서,
R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-C(O)CH3이고,
R1은 H 또는 Na이다.
반응식 3. 황산화 다당류의 구조에서 α,β-불포화 알데하이드를 제조하는 방법.
갈락토피라노스의 6번 위치에서 1차 하이드록시 기의 선택적인 산화는, 예를 들어, 물 또는 무기염 수용액 중에서 2,2,6,6-테트라메틸-1-피페리디닐옥실 라디칼 R3-TEMPO/NaClO 산화 시스템 (R3 = 수소 또는 N-아세틸)을 이용해 수행될 수 있다. 바람직하게는, 이 단계는 수중에서, 5-25℃의 온도 하에, 바람직하게는 5-10℃에서 진행되며, 황산화 다당류 이량체에 대해 NaClO의 몰 량은 0.1-2.0 당량 범위이고, R3 -TEMPO 몰 량은 0.01-0.2 당량 범위이다. 초기 황산화 다당류의 분자량은 1 x 104 내지 5 x 106 g.mol-1 범위이며, 4번 위치에 황산화된 갈락토피라노스를 포함하여야 하며, α (1→3) 또는 β (1→3) O-글리코시드 결합을 통해 폴리머 체인에 결합된다. 바람직하게는, 초기 황산화 다당류는 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 카라기난 또는 이들의 약제학적으로 허용가능한 유도체 및/또는 염이다. 염의 수용액은 예를 들어 알칼리 금속 염을 포함하는 수용액 및/또는 완충액, 예를 들어, PBS일 수 있다.
산화된 황산화 다당류에 대한 제거 반응은 동일 반응 혼합물에서 산화 단계 직후에 진행되며, 제거 물질, 특히 산 또는 염기, 유기 용매를 첨가할 필요가 없거나, 또는 반응 온도의 승온이 필요하지 않으며, 4번 위치에서 황산화된 포화된 C6-알데하이드의 갈락토피라노스 서브유닛을 분리할 필요가 없다. 제거 반응은 수중에서 또는 무기 염 (예, 알칼리 금속 염) 수용액 또는 완충액 (예, PBS) 중에, 5-25℃의 온도에서 진행되며, 추가적인 반응 시간이 요구되진 않는다. 아울러, 제거 단계는 반응 혼합물에서 달성되는 산화 단계에 비례한다. α,β-불포화 알데하이드의 제조 방법은 2가지 반응 단계 (산화 및 제거)를 하나의 포트에서 통합하며, 산화 단계로부터 수득되는 중간산물을 분리할 필요가 없다. 산화를 통해, 황산화 다당류의 구조에 포화된 C6-알데하이드가 아닌 α,β-불포화 알데하이드가 형성된다. 히알루론산의 α,β-불포화 알데하이드의 제조 방법 (Buffa R et al.: CZ304512)과 비교해, 본 발명의 방법은 표 1에 열거된 파라미터 측면에서 차이가 있으며, 명백하게 유익하다.
표 1: 선행 기술과 대비 α,β-불포화 알데하이드 제조 방법의 비교
파라미터 CZ304512 본 발명
다당류 타입 히알루론산 황산화 다당류
합성 단계 수 2 1
제거 물질 사용 (10-15당량) 사용하지 않음
용매 물-유기 용매 혼합물 물
반응 온도 50-100 ℃ 실온 - 5-25℃
반응 시간 2-5일 1-2시간
치환율 5-7% 20-25%
상기 표 1은, 본 발명에 따른 황산화 다당류의 유도체를 제조하는 방법이, 포화된 유도체가 아닌 α,β-불포화 알데하이드를 바로 제조한다는 것을 명백하게 보여준다. 본 발명에 따른 방법의 또 다른 차이는, 선행 기술에 언급된 다당류에는 적용가능하지 않다는 점인데, 그 이유는 설페이트의 존재가 제조 방법에 필수 요건이기 때문이다. 또 다른 이점은, 임의의 유기 용매 또는 임의의 제거 물질을 첨가하지 않고, 수중에서만 이루어지는 반응이라는 것이다. 아울러, 본 반응은 단시간 (1-2시간)내에 실온에서 (20-25℃)에서 진행되며, 포화된 C6-알데하이드를 분리할 필요가 없다. 전술한 방법으로 DS 20-25% 범위의 일반식 I 및/또는 II로 표시되는 황산화 다당류의 유도체가 제조된다. 본 발명의 제조 방법은 기술적으로 흥미로우며, 기존 방법과 비교해 시간 및 비용 관점에서 실질적으로 더 바람직하다.
화학적인 변형을 감안하면, 황산화 다당류의 α,β-불포화 알데하이드는 다양한 N-친핵체와의 축합 반응에 주로 이용될 수 있다. 알데하이드는, 반응성 친전자성 센터 역할로서, 수중에서 안정성 및 반응성을 유지하며, 따라서 바람직하게는 생체적합한 아민을 일반식 I 및 II의 유도체와 전술한 바와 같이 결합 (공액)시키는데 이용할 수 있다. 용어 "아민"은 당해 기술 분야의 당업자들에게 잘 알려져 있으며, 이러한 것으로는 알킬 아민, 아릴 아민, 헤타릴 아민, 아미노산, 펩타이드 또는 자유 아미노 기를 가진 폴리머가 있을 수 있지만, 이들로 한정되는 것은 아니다. 자유 아미노 기를 가진 폴리머는 폴리머에 직접 통합되거나, 또는 N, S 또는 O 원자를 선택적으로 포함하는 선형 또는 분지형일 수 있는 적절한 링커를 통해 결합될 수 있다. 용어 "아미노 기를 가진 폴리머"는 탈아세틸화 다당류, 단백질, 펩타이드 또는 기타 바이오폴리머 또는 생체적합한 합성 폴리머로 이해된다.
이에, 본 발명은, R2가 N, S 또는 O 원자를 선택적으로 포함하는 알킬, 아릴, 헤테로아릴, 선형 또는 분지형 C1 - C30 체인인 일반식 R2-NH2의 아민을 유도체와 반응시키는, 일반식 I 또는 II의 유도체의 변형 방법에 관한 것이다. 아민은, 바람직하게는. 폴리머에 아미노 기를 함유한, 생물학적 활성 아민, 구체적으로 아미노산 또는 펩타이드이거나 또는 자유 아미노기를 함유한 생물학적으로 허용가능한 폴리머이거나 (예, 젤라틴, 키토산, 탈아세틸 히알루론산, 탈아세틸 콘드로이틴 설페이트 등), 또는 아민은 아미노, 하이드라진, 하이드라지드, 아미노알콕시, 하이드록실, 카르복실, 티올 기 또는 이들의 임의의 조합을 함유한 링커를 통해 폴리머에 결합된다. 아민의 몰량은, 바람직하게는, 황산화 다당류의 다이머에 대해 0.05 내지 3당량의 범위일 수 있다. 아민의 결합은 수중, 포스페이트 완충액 중에 또는 물-유기 용매 시스템 중에서 20 내지 60℃ 범위의 온도에서 10분 내지 150시간 동안 진행될 수 있다. 적합한 유기 용매는 수 혼화성 알코올, 바람직하게는 이소프로판올 또는 에탄올, 및 수 혼화성 비-양성자성 용매, 바람직하게는 다이메틸 설폭사이드인 것으로 이해되며, 반응 혼합물내 이의 함량은 50% (v/v)를 넘지 않는다. 아민과의 반응은 바람직하게는 생리학적 조건 (pH = 7.4 및 T = 37℃) 하에서 수행될 수 있다. 아민 외에도, 반응은 구조에 아미노 기를 함유한 다른 N-친핵체, 예를 들어, 하이드라진, 하이드록실 아민, 하이드라지드, 세미카르바지드 또는 티오세미카르바지드와 함께 진행된다. 단관능성 N-친핵체와 반응에서는 이들이 폴리머에 결합하는데, 이때 이관능성 또는 다관능성 N-친핵체를 사용하면 폴리머 체인들의 가교가 형성되어, 즉, 하이드로겔이 형성된다. 사용되는 N-친핵체의 타입, 결합 부위의 비율에 대한 함량, 폴리머 구조, 용액 농도, 치환도 및 폴리머의 분자량에 따라, 광범위한 점탄성 및 기계적 특성을 가진 가교된 폴리머를 조직 공학 또는 재생 의학에서의 의도한 용도 요건에 따라 정밀하게 제조할 수 있다. 일부 특수 경우에, 본 발명에 따른 유도체와 아민의 반응은 pH 전 범위에서 진행할 수 있으며, 다른 경우, pH 값이 반응에 중요하다. 당해 기술 분야의 당업자라면 이를 사전에 인지하거나 또는 통상적인 측정 수단을 통해 확인할 수 있다.
의도한 용도는 주로 세포외 매트릭스를 모방하는 생활성 및 생분해성 지지체 물질로서의 스캐폴드를 제조하는 것이다. 이들 물질은 세포 또는 생물학적 활성 물질, 세포 유인제에 대한 담체로서, 조직 결함부에 세포를 전달하기 위한 담체 매질로서, 조직 충진물, 적절한 조직 치환물로서 또는 방어 장벽으로서 사용될 수 있다. 기능성 스캐폴드에 요구되는 요건은 세포 증식 및 분화, 세포 대사의 영양분 및 폐기물 수송에 적합한 화학적 및 생리학적 환경을 보장하는 것이다. 스캐폴드 활용 방식에 따라, 생체내에서 스캐폴드 및 새로운 조직을 형성하는 겔 형성 용액의 형태로 가교되는 황산화된 다당류 유래의 주사 스캐폴드를, 또는 시험관내에서 세포 배양 및 새로운 조직 형성 후 유기체에 이식하는 고체 스캐폴드를 제조하는 것도 가능하다. 또한, 가교 반응의 적절한 파라미터 (농도 및 결합부 비율) 선정을 통해 수초 수준 (실시예 30 참조)의 짧은 시간 안에 겔화를 달성할 수 있으며, 이는 생물학적 물질의 존재 하에 인 시추 겔화를 위해, 소위 세포 캡슐화 용도로 바람직하게 이용될 수 있다. 가교 반응은 반응식 4에 예시된다:
Figure 112018008214918-pct00009
상기 식에서,
R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-C(O)CH3이다.
반응식 4. α,β-불포화 알데하이드 및 다이아민을 이용한 황산화 다당류의 가교 형성.
기존의 포화 알데하이드와 비교해 α,β-불포화 알데하이드를 이용한 경우의 아민 결합의 높은 안정성은 알데하이드와 인접 이중 결합의 공액을 통해 부여된다. 즉, 히알루론산의 비-황산화 다당류의 예에서 확인된 바와 같이, 황산화 다당류에 기반한 보다 안정적이고 우수한 가교 물질을 제조할 수 있다 (Buffa R., et al: CZ304512).
가교는 알킬 아민, 아릴 아민, 헤테로알킬 아민, 헤타릴 아민, 아미노산, 펩타이드, 자유 아미노 기를 가진 폴리머, 하이드라진, 하이드록실 아민, 하이드라지드, 세미카르바지드 또는 티오세미카르바지드를 포함하는 군으로부터 선택되는 수용성의 생체적합한 이관능성 및 다관능성 N-친핵체를 유도체와 반응시켜 달성되며, 이때 유도체의 가교가 진행된다. 바람직한 친핵체로는 하이드라지드, 다이하이드라지드, 탈아세틸 다당류 또는 알콕시아민을 포함한다. 반응은 바람직하게는 포스페이트 완충액 중에서 진행될 수 있다.
그러나, 기계적 특성에 대한 비교 분석 (Young의 압축시 탄성 계수, 압축시 탄성 한계 및 가교된 겔의 변형률)에서, 산화된 히알루로난계 겔과 비교해, 산화된 콘드로이틴 설페이트로부터 제조된 겔 (본 발명의 실시예 31 참조)이 보다 우수한 강도를 가진 것으로 입증되었다. 겔 강성이 클수록 다당류 구조의 가교 밀도가 더 높다는 것을 의미하며, 즉 가교 물질의 높은 체적과 형태 안정성이 보장된다. 또한, 우수한 가교 물질은 시간 경과에 따라 기계적 특성 변화가 거의 없으며, 따라서 기능성 세포 스캐폴드에 요구되는 요건들에 부합한다. 이 경우, 황산화 다당류의 구조에 더 높은 α,β-불포화 알데하이드 치환도를 적용함으로써 보다 효과적인 가교를 달성할 수 있으며 (상기 표 1 참조), 이는 선행 기술과 비교해 본 발명의 중요한 장점들 중 하나이다.
보다 효과적으로 가교된 겔의 2번째 장점은 생리학적 매질에서 팽윤성이 낮다는 것이다. 이는, 바람직하게는, 조직과의 접촉시 살아있는 유기체내에서 물질의 성능 제어가 바람직한 조직 공학에서, 기계적 특성 또는 형태 또는 체적의 급격한 변화없이 스캐폴드로 사용될 수 있다.
황산화 다당류의 구조에서 높은 α,β-불포화 알데하이드 치환도가 가지는 3번째 이점은 예를 들어 더 많은 양의 생물학적 활성 아민을 결합시킬 수 있다는 것이다. 이런 방식으로, 본 발명이 또한 바람직하게 사용될 수 있는, 지지체 시스템을 적용하기에 효과적인 부위에서, 생물학적 활성 물질의 고 농도를 달성할 수 있다. 또한, 본 방법은 천연적인 (활성) 형태로 천연적으로 방출될 수 있는 보다 다양한 생물학적 활성 아민 (예, 아미노산, 펩타이드)을 결합시킬 수 있다. 이는, 아민 - α,β-불포화 알데하이드 결합이 더 낮은 pH에서는 덜 안정적이라는, 몇가지 실험들 (부틸아민, 라이신, RGD 펩타이드)에서 반복적으로 확인되었으므로, 제조된 공액체 (conjugate)는 바람직하게는 pH-반응성 생체적합물질 (biomaterial)에 기반한 약물 전달 시스템 용도로 사용될 수 있다.
Figure 112018008214918-pct00010
Figure 112018008214918-pct00011
반응식 5. 수중에서 RGD 펩타이드 (아미노헥산-Gly-Arg-Gly-Asp-NH2)를 이용한 α,β-불포화 알데하이드 콘드로이틴 설페이트의 이민 (DS = 20%)의 안정성.
보다 구체적으로, 알킬, 아릴 또는 헤타릴 아민에 기반한 이민 화합물의 수중 안정성은 다음과 같이 이용될 수 있다: 약간의 염기성 조건에서 안정적인 생물학적 활성 아민 (예, 약물, 소독제 제제, 펩타이드, 아미노산 등) 및 다당류 (담체)에 의해 제조된 공액체 (이민)는, pH가 다른 (중성 또는 약 산성) 유기체의 타겟 부위로 유입될 경우, 분해되어 생물학적 활성 물질을 그 부위에서 방출한다.
콘드로이딘 설페이트 구조에서 α,β-불포화 알데하이드 그 자체는 세포독성을 나타내지 않는 것으로 입증된 바 (본 발명의 실시예 32 참조), 식 I 또는 II의 α,β-불포화 알데하이드와 생체적합한 아민으로 된 공액체 및 가교 산물은 생의학 및 조직 공학에서 목표한 용도로 적합하다. 이들 물질은 세포 생존성에 부정적으로 작용하지 않으며, 유기체에서 면역 반응을 유도하지 않고, 효소적으로 분해가능한 것으로 추측되며, 이의 분해 산물들 역시 생체적합하다. 따라서, 식 I 또는 II의 유도체는 코스메틱 또는 제약 분야에서 생물학적 활성 물질에 대한 지지체의 제조에, 또는 pH 변화를 이용한 생물학적 활성 물질의 제어 방출형 지지체로서 사용될 수 있다. 반응이 생리학적 조건에서 원활하게 진행되며 초기 물질이 생체적합하다는 점을 감안하면, 황산화 다당류의 가교 산물은 조직 공학 또는 재생 의학에서 세포 스캐폴드로 유망한 물질로 간주될 수 있으며, 이는 바람직하게는 세포 및 이의 후속적인 배양물과의 통합에 사용될 수 있다. 본원에 기술된 방법은, 고가도 시간 소모적이지도 않기 때문에, 산업적으로 쉽게 구현할 수 있다. 이는, 2가지 단계를 하나의 포트에서 조합하고, 중간산물을 분리할 필요가 없기 때문이다. 또 다른 장점은 반응이 수중에서만 진행되기 때문에, 제거 물질로서 독성, 부식성 또는 고가의 화학제가 필요없을 뿐만 아니라 유기 용매도 필요 없다는 것이다. 반응 시간이 짧으며, 또한, 반응은 실온에서 진행된다. 최종 산물은 환경에 임의의 유해 영향없이 알코올 또는 무기 염 용액을 사용해 석출함으로써 분리된다. 또한, 상대적으로 높은 치환도 (20 - 25%)는 (Buffa R., et al: CZ304512, 상기 표 1 참조) 보다 실질적으로 온건한 조건에서 본 발명의 방법에 의해 달성된다.
본 발명에 언급된 방법에 의해 변형된 황산화 다당류는, 생의학적 용도, 조직 공학 및 재생 의학에 적합한 생체적합한 물질을 제조하는, 다양한 N-친핵체를 이용한 공액 또는 가교 반응의 전구체로서 적합하다. 보다 구체적으로, 본 발명의 방법에 의해 제조된 유도체는 코스메틱 및 제약 분야에서 pH 값 변화를 이용해 생물학적 활성 물질에 대한 제어 방출형 지지체로서 사용될 수 있다. 본 발명의 방법에 의해 변형된 유도체는 생의학적 용도 및 조직 공학용 또는 재생 의학용 스캐폴드 형성을 위한 생체적합한 재료로서 사용될 수 있다.
도 1은 아디픽 다이하이드라지드를 이용한 산화된 콘드로이틴 설페이트계 하이드로겔의 형성을 예시한 것이다 (실시예 21): (a) PBS 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 용액, (b) PBS 중의 아디픽 다이하이드라지드 용액 첨가 후 용액의 겔화, (c) PBS 중에서 1시간 후 하이드로겔 (pH = 7.4, c = 0.9% w/v), (d) 하이드로겔 제조시 예시된 사용 형태, (e) 하이드로겔 제조시 지정된 사용 형태, (f) 하이드로겔 세그먼트의 상세도.
도 2. 주사 전자 현미경으로 수득한 아디픽 다이하이드라지드를 이용한 산화된 콘드로이틴 설페이트계 동결건조된 하이드로겔의 사진: (a) 횡단면도, 200X 배율, 2차 전자 검출, (b) 측정된 직경을 가진 하이드로겔의 다공성 구조의 확대도.
도 3은 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에서 3T3 섬유모세포의 세포 생존 검사 결과를 나타낸 것이다 (Mw = 4 x 104 g/mol, DS = 20%). 시간 T = 0시간의 대조군 (100%) 대비 %로 나타낸 활성화 대 저해 그래프. MTT 방법으로 평가, 6회 반복.
도 4. 겔화점으로 측정한 (Tg = 97　s, T = 45 ℃), 실시예 30에서의 겔화 카이네틱스. 경시적인 탄성 계수 (G') 및 점성 계수 (G'') 그래프.
실시예 :
용어 "당량 (eq)"은 본원에서 달리 언급되지 않은 한 황산화 다당류의 이량체 유닛을 기준으로 한다. 퍼센트는 달리 언급되지 않은 한 중량%이다. 초기 콘드로이틴 설페이트 (공급처: Sigma Aldrich, Ltd., Prague, CZ)는 4 x 104 내지 5 x 104 g.mol-1 범위의 중량-평균 분자량을 가진다.
콘드로이틴-4-설페이트 (타입 A) 및 콘드로이틴-6-설페이트 (타입 C)의 비율은 3:2이었다. 이 물질은 동물 물질로부터 분리되었다.
수 용해성이 5 mg/ml인 더마탄 설페이트의 소듐 염 (콘드로이틴 설페이트 B 소듐 염)을 Sigma Aldrich 사에서 구입하였다. 이들 물질은 동물 물질로부터 분리되었다.
수 용해성이 10 mg/ml인 λ-카라기난을 Sigma Aldrich 사에서 구입하였으며, 이는 해조류에서 분리되었으며 천연 형태에서는 겔화 특성이 없다.
황산화된 다당류 구조에서 α,β-불포화 알데하이드의 치환도는 하기 식으로 계산하였다:
DS = α,β-불포화 알데하이드의 치환도 = 100% * (황산화 다당류의 변형된 이량체의 몰량) / (황산화 다당류의 이량체 전체의 몰량)
황산화 다당류 구조에서 아민화 반응의 치환도는 하기 식으로 계산하였다:
DS = 아민화 치환도 = 100% * (황산화 다당류의 변형된 이량체의 몰량) / (황산화 다당류의 이랑체 전체의 몰량)
스펙트로미터 Nicolet 6700 FTIR을 사용해 KBr에서 4000 - 400 cm-1 범위에서 FT-IR 스펙트럼을 측정하였다. UV-VIS 스펙트럼은 장치 Shimadzu UV-2401PC를 200-600 nm 범위에서 사용해 측정하고, UV Probe software, version 2,00을 사용해 처리하였다.
겔화 카이네틱스는 장치 AR-G2를 사용해 측정하였고, 평가 소프트웨어로 TA 분석을 이용하였다. 겔화점 (Tg)은 시간 의존적인 탄성 계수 및 점성 계수로부터 결정하였다.
선택한 겔의 기계적 특성은 장치 Instron 3433을 사용해 압축 검사를 통해 측정하였으며, Bluehill 소프트웨어로 평가하였다. 각 샘플에서 측정한 파라미터는 다음과 같다: 압축 영률, 압축 강도, 극한 강도에서의 변형 및 인성.
동결건조된 물질의 표면 형태 (surface morphology)는 전자 현미경 Zeiss Ultra Plus로 분석하였다.
탈아세틸화 히알루론산은 Buffa R., et al CZ304512에 따라 하이드라지드로 탈아세틸화하여 제조하였다.
아미노프로폭실 및 히알루론산의 하이드라진 유도체 Buffa R., et al.: WO2011069474에 따라 환원성 아민화를 통해 제조하였다.
약어 목록
TEMPO - 2,2,6,6-테트라메틸-1-피페리디닐옥시 라디칼
4-AcNH-TEMPO - 4번 위치에 아세트아미드 기를 가진 TEMPO
PBS - 포스페이트 완충화된 염수
RGD 펩타이드 - 아미노헥산-Gly-Arg-Gly-Asp-NH2 서열의 펩타이드
AMK - 아미노산
IPA - 이소프로필알코올
DMSO - 다이메틸설폭시드
실시예 1
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 제조
방법 1: 차아염소산나트륨 수용액 (0.8 eq, 11% 활성 염소)을, 다이소듐 포스페이트 도데카하이드레이트 (2.2 eq), 브롬화나트륨 (0.8 eq) 및 4-AcNH-TEMPO (0.01%)를 함유한 5℃로 냉각시킨 2% 콘드로이틴 설페이트 수용액 (200 mg, Mw = 4.5 x 104 g.mol-1)에 점차적으로 첨가하였다. 혼합물을 5℃에서 2시간 동안 교반하였다. 그런 다음, 에탄올 (10 eq)을 반응물에 첨가하여, 실온에서 추가로 1시간 동안 교반하였다.
생성물을 IPA로 석출시켜 분리하고, NMR로 분석하였다.
DS = 23% (NMR3에 의해 측정), Mw = 2.1 x 104 g.mol-1 (SEC MALLS에 의해 측정).
방법 2: 차아염소산나트륨 수용액 (0.8 eq, 11% 활성 염소)을, 브롬화나트륨 (0.8 wq)과 4-AcNH-TEMPO (0.01%)를 함유한 5℃로 냉각시킨 2% 콘드로이틴 설페이트 수용액 (200 mg, Mw = 4.5 x 104 g.mol-1)에 점진적으로 첨가하였다. 혼합물을 5℃에서 2시간 교반하였다. 그런 후, 에탄올 (10 eq)을 반응물에 첨가하여, 실온에서 한시간 더 교반하였다. 생성물을 IPA로 석출시켜 분리하고, NMR로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정).
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 스펙트럼 분석: NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 2.02 (3H, Ac-NH-, bs), 4.31 (1H, H2, bs), 4.49 (1H, H3, bs), 5.20 (1H, H1, bs), 6.34 (1H, H4, bs), 9.21 (1H, H6, bs);
NMR 1H-1H COSY (D2O), 교차 피크, δ ppm: 4.31-4.49, 4.31-5.20, 4.49-6.34;
NMR 1H-13C HSQC (D2O), 교차 피크, δ ppm: 2.02-25.1, 4.31-51.0, 4.49-73.1, 5.20-98.6, 6.34-122.0, 9.21- 189.0;
NMR DOSY (D2O), log D ((2.02, Ac-NH-), (4.31, H2), (4.49, H3), (5.20, H1), (6.34, H4), (9.21, H6)) ~ -10.3 m2s-1, log D (4.72, H2O) ~ -8.6 m2 s- 1;
IR (KBr, cm-1): 1725, 1650 (νC=O st), 1615, 1663 (νC=C st);
UV/Vis (0,1%, H2O); λmax1 ,2 (Cβ=Cα-C=O) = 254 nm (π->π*), 300-350 (n->π*).
실시예 2
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 제조
차아염소산나트륨 수용액 (0.4 eq, 11% 활성 염소)을, 다이소듐 포스페이트 도데카하이드레이트 (2.2 eq), 브롬화나트륨 (0.4 eq) 및 4-AcNH-TEMPO (0.01%)을 포함하는 5℃로 냉각시킨 2% 콘드로이틴 설페이트 수용액 (200 mg, Mw = 4.5 x 104 g.mol-1)에 점진적으로 첨가하였다. 혼합물을 5℃에서 2시간 교반하였다. 그런 후, 에탄올 (10 eq)을 반응물에 첨가하고, 실온에서 1시간 더 교반하였다. 생성물을 IPA로 석출시켜 분리하고, NMR로 분석하였다.
DS = 2% (NMR로 측정), Mw = 2.8 x 104 g.mol-1 (SEC MALLS로 측정). 생성물의 구조 분석은 실시예 1에 나타낸다.
실시예 3
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 제조
차아염소산나트륨 수용액 (1 eq, 11% 활성 염소)을, 다이소듐 포스페이트 도데카하이드레이트 (2.2 eq), 브롬화나트륨 (1 eq) 및 4-AcNH-TEMPO (0.01%)를 포함하는 5℃로 냉각시킨 2% 콘드로이틴 설페이트 수용액 (200 mg, Mw = 4.5 x 104 g.mol-1)에 점진적으로 첨가하였다. 혼합물을 5℃에서 2시간 동안 교반하였다. 그런 후, 에탄올 (10 eq)을 반응물에 첨가하고, 실온에서 1시간 더 교반하였다. 생성물을 IPA로 석출시켜 분리하고, NMR로 분석하였다.
DS = 21% (NMR로 측정), Mw = 2.0 x 104 g.mol-1 (SEC MALLS로 측정). 생성물의 구조 분석은 실시예 1에 나타낸다.
실시예 4
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 제조
차아염소산나트륨 수용액 (2 eq, 11% 활성 염소)을, 다이소듐 포스페이트 도데카하이드레이트 (2.2 eq), 브롬화나트륨 (2 eq) 및 4-AcNH-TEMPO (0.01%)를 포함하는 5℃로 냉각시킨 2% 콘드로이틴 설페이트 수용액 (200 mg, Mw = 4.5 x 104 g.mol-1)에 점진적으로 첨가하였다. 혼합물을 5℃에서 2시간 동안 교반하였다. 그런 후, 에탄올 (10 eq)을 반응물에 첨가하고, 실온에서 1시간 더 교반하였다. 생성물을 IPA로 석출시켜 분리하고, NMR로 분석하였다.
DS = 21% (NMR로 측정), Mw = 1.8 x 104 g.mol-1 (SEC MALLS로 측정). 생성물의 구조 분석은 실시예 1에 나타낸다.
실시예 5
더마탄 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 제조
차아염소산나트륨 수용액 (0.8 eq, 11% 활성 염소)을, 다이소듐 포스페이트 도데카하이드레이트 (2.2 eq), 브롬화나트륨 (0.8 eq) 및 4-AcNH-TEMPO (0.01%)를 포함하는 5℃로 냉각시킨 2% 더마탄 설페이트 수용액 (200 mg, 0.42 mol)에 점진적으로 첨가하였다. 혼합물을 5℃에서 2시간 동안 교반하였다. 그런 후, 에탄올 (10 eq)을 반응물에 첨가하고, 실온에서 1시간 더 교반하였다. 생성물을 IPA로 석출시켜 분리하고, NMR로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정).
더마탄 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 스펙트럼 분석: NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 2.01 (3H, Ac-NH-, bs), 6.30 (1H, H4, bs), 9.20 (1H, H6, bs).
실시예 6
카라기난의 α,β-불포화 알데하이드 제조
차아염소산나트륨 수용액 (0.8 eq, 11% 활성 염소)을, 다이소듐 포스페이트 도데카하이드레이트 (2.2 eq), 브롬화나트륨 (0.8 eq) 및 4-AcNH-TEMPO (0.01%)를 포함하는 10℃로 냉각시킨 1% 카라기난 수용액 (200 mg, 0.31 mol)에 점진적으로 첨가하였다. 혼합물을 10℃에서 2시간 동안 교반하였다. 그런 후, 에탄올 (10 eq)을 반응물에 첨가하고, 실온에서 1시간 더 교반하였다. 생성물을 IPA로 석출시켜 분리하고, NMR로 분석하였다.
DS = 10% (NMR로 측정).
카라기난의 α,β-불포화 알데하이드의 스펙트럼 분석: NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 6.30 (1H, H4, bs), 9.20 (1H, H6, bs).
실시예 7
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 하이드라진 결합
하이드라진 하이드레이트 (2 eq)를, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정).
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 5.40 (1H, -CH=C-CH=N-, bs), 7.38 (1H, -CH=C-CH=N-, bs).
실시예 8
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 부틸아민 결합
방법 1: 부틸아민 (0.2 eq)을, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 11.20에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정)
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 5.67 (1H, -CH=C-CH=N-, bs), 7.74 (1H, -CH=C-CH=N-, bs)
방법 2: 중수소화 아세트산 (14.5 ㎕)을 방법 1의 NMR 샘플에 첨가하였다. 측정된 pH는 4.10이었으며, 샘플을 NMR로 분석하였다.
DS = 0% (NMR로 측정)
실시예 9
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 부틸아민 결합
부틸아민 (0.2 eq)을, 중수소화 PBS 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 7.30에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 0% (NMR로 측정)
실시예 10
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 헥산-1,6-다이아민 결합
헥산-1,6-다이아민 (0.5 eq)을, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 11.60에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정)
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 5.68 (1H, -CH=C-CH=N-, bs), 7.74 (1H, -CH=C-CH=N-, bs).
실시예 11
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 프로폭시아민 결합
프로폭시아민 하이드로클로라이드 (0.5 eq)를, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 3.90에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정)
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 5.57 및 6,88 (1H, -CH=C-CH=N-, bs), 7.52 및 7.70 (1H, -CH=CCH=N-, bs).
실시예 12
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 라이신 결합
라이신 하이드로클로라이드 (0.5 eq)를, 중수소화 PBS 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 7.46에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 4% (NMR로 측정)
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 5,69-5,75 (1H, -CH=C-CH=N-, bs), 7,70-7,75 (1H, -CH=CCH=N-, bs).
실시예 13
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 라이신 결합
라이신 하이드로클로라이드 (0.5 eq)를, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물의 pH를 중탄산나트륨 (2 eq)을 첨가하여 8.40으로 적정하였다. 반응물을 실온에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 7% (NMR로 측정)
구조 분석은 실시예 12에 나타낸다.
실시예 14
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 RGD 펩타이드 결합
RGD 펩타이드 (0.2 eq, 서열 Ahx-Gly-Arg-GlyAsp-NH2)를, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 4.22에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 0% (NMR로 측정).
실시예 15
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 RGD 펩타이드 결합
RGD 펩타이드 (0.2 eq, 서열 Ahx-Gly-Arg-GlyAsp-NH2)를, 중수소화 PBS 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 7.22에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 4% (NMR로 측정).
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 5.68 (1H, -CH=C-CH=N-, bs), 7.74 (1H, -CH=C-CH=N-, bs).
실시예 16
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 RGD 펩타이드 결합
RGD 펩타이드 (0.2 eq, 서열 Ahx-Gly-Arg-GlyAsp-NH2)를, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 중탄산나트륨 (2 eq)을 첨가하여 반응물의 pH를 10.49로 적정하였다. 반응물을 실온에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정).
구조 분석은 실시예 15에 나타낸다.
실시예 17
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 아닐린 결합
아닐린 (0.3 eq)을, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 중수소화 아세트산 (8.8 ㎕)을 첨가하여 반응물의 pH를 4.22로 적정하였다. 반응물을 실온에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 0% (NMR로 측정).
실시예 18
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 아닐린 결합
아닐린 (0.3 eq)을, 중수소화 PBS 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 7.42에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 5% (NMR로 측정).
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 5.93 (1H, -CH=C-CH=N-, bs), 8.03 (1H, -CH=C-CH=N-, bs).
실시예 19
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 아닐린 결합
아닐린 (0.3 eq)을, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 탄산나트륨을 첨가하여 반응물의 pH를 10.73으로 적정하였다. 반응물을 실온에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 25% (NMR로 측정)
구조 분석은 실시예 18에 나타낸다.
실시예 20
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드에 다이하이드라지드 아디페이트 결합
다이하이드라지드 아디페이트 (3 eq)를, D2O 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 2% 용액에 첨가하였다. 반응물을 실온 및 pH = 7.50에서 24시간 교반하였다. 생성물을 조 반응 혼합물의 형태로 분석하였다.
DS = 20% (NMR로 측정).
NMR 1H (500 MHz, D2O, δ ppm): 1.64 (4H, DHA2 ,3, bs), 2.04 (3H, Ac-NH-, bs), 2,34 (4H, DHA1 ,4, bs), 4.28 (1H, H2, bs), 4.36 (1H, H3, bs), 5.20 (1H, H1, bs), 5.62 (1H, H4cis, bs), 5,68 (1H, H4trans, bs), 7.52-7.48 (1H, H6cis, bs), 7.61 (1H, H6trans, bs);
NMR 1H-1H COSY (D2O), 교차 피크, δ ppm: 1.64-2.34, 4.28-5.20, 4.36-5.68;
NMR 1H-13C HSQC (D2O), 교차 피크, δ ppm: 1.64-24.9, 2.34-34.1, 4.28-51.0, 4.36-73.6, 5.20-98.8, 5.68-111.3, 7,61148,5;
NMR DOSY (D2O), log D ((2,04, Ac-NH-), (4.28, H2), (4.36, H3), (5.20, H1), (5.62 및 5.68, H4cis/trans), (7.52 및 7.68, H6cis/trans)) ~ -10.4 m2s-1, log D (4.72, H2O) ~ -8.6 m2s-1;
IR (KBr, cm-1): 1640-1650 (ν-C=N- st);
UV/Vis (0.1%, H2O); λmax1 ,2 (-C=N-) = 280 nm (π->π*).
실시예 21
다이하이드라지드 아디페이트를 이용한 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교
PBS 중의 다이하이드라지드 아디페이트 (0.12 eq, 결합부 비율 1:1)를, PBS (pH = 7.40, c = 0.9% w/v) 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (40 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 8% 용액에 첨가하였다. 다이하이드라지드 아디페이트 용액을 첨가한 후, 겔화가 제시간에 이루어졌다 (Tg = 34 s). 탄성 겔의 사진을 촬영하고 (도 1), 동결건조한 다음 SEM으로 분석하였다 (도 2).
압축시 영의 탄성 계수 = 9 x 103 Pa
압축시 극한 강도 = 64 x 103 Pa
극한 강도에서 변형률 = 64%
인성 = 3668 J.m-3
실시예 22
다이하이드라지드 아디페이트를 이용한 더마탄 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교
PBS 중의 다이하이드라지드 아디페이트 (0.1 eq, 결합부 비율 1:1)를, PBS (pH = 7.40, c = 0.9% w/v) 중의 더마탄 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (40 mg, DS = 20%, Mw ≤ 40 kDa) 8% 용액에 첨가하였다. 다이하이드라지드 아디페이트 용액을 첨가한 후, 겔화가 진행되었다.
실시예 23
다이하이드라지드 아디페이트를 이용한 카라기난의 α,β-불포화 알데하이드의 가교
PBS 중의 다이하이드라지드 아디페이트 (0.05 eq) 40 ㎕를, PBS (pH = 7.40, c = 0.9% w/v) 중의 카라기난의 α,β-불포화 알데하이드 (40 mg, DS = 10%, Mw ≤ 50 kDa) 8% 용액에 첨가하였다. 다이하이드라지드 아디페이트 용액을 첨가한 후, 점도가 증가하였다.
실시예 24
히알루론산의 하이드라지드 유도체를 이용한 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교
PBS (pH = 7.4, c = 0.9% w/v) 중의 히알루론산의 하이드라지드 유도체 (9.2 mg, DS = 25%, Mw = 138 x 103 g.mol-1) 4% 용액을, PBS 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (10 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 4% 용액에 첨가하였다. 용액을 혼합한 후, 겔화가 제시간에 이루어졌다 (Tg = 109 s).
압축시 영의 탄성 계수 = 6 x 103 Pa
압축시 극한 강도 = 840 x 103 Pa
극한 강도에서 변형률 = 96%
인성 = 11978 J.m-3
실시예 25
탈아세틸화 히알루론산을 이용한 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교
PBS (pH = 7.4, c = 0.9% w/v) 중의 탈아세틸화 히알루론산 (2 eq, DS = 11%, Mw = 116 kDa, 결합부 비율 1:1) 2% 용액을, PBS (pH = 7.40, c = 0,9% w/v) 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (10 mg, DS = 23%, Mw = 2,1 x 104 g.mol-1) 4% 용액에 첨가하였다.
반응 혼합물을 실온에서 교반하였으며, 0.5 h 후 점성 증가가 관찰되었으며, 1 h 후 탄성 겔이 형성되었다.
압축시 영의 탄성 계수 = 3 x 103 Pa
압축시 극한 강도 = 395 x 103 Pa
극한 강도에서 변형률 = 95%
인성 = 14670 J.m-3
실시예 26
콘드로이틴 설페이트의 산 형태 제조
증류수 중의 1% 콘드로이틴 설페이트 용액 (500 mg, 1.1 mmol)을 준비하였다. 이 용액을 5℃까지 냉각시키고, Amberlite IR 120 Na (H+) catex 1.2 ml을 첨가하였다. 반응 혼합물을 5℃에서 24시간 동안 교반하였다. catex를 여과 분리하고, 생성물을 냉동시켜, 동결건조하였다. DMSO에서의 용해성을 검사하였으며, 만족스러운 수준임을 확인하였다.
실시예 27
탈아세틸화 콘드로이틴 설페이트의 제조
콘드로이틴 설페이트의 산 형태 1% 용액을 DMSO 중에 제조하였다 (200 mg, 0.44 mmol, Mw ≤ 40 kDa). 질소 스트림으로 용액을 탈기 처리하였다. 하이드라진 하이드레이트 10.6 mL 및 3 당량의 하이드라진 설페이트를 첨가하였다. 반응 혼합물을 질소 하에 60℃에서 24시간 동안 교반하였다. 그런 후, NaHCO3를 반응 혼합물에 첨가하였다. 생성물을 IPA로 석출시켜 분리하였다.
DS = 10% (NMR로 측정), Mw = 1,8 x 104 g.mol-1 (SEC MALLS로 측정)
NMR 1H (500 MHz, 1% NaOD v D2O, δ ppm): 3.01 (1H, -CH=C-CH=N-, bs) HSQC (500 MHz, D2O, δ ppm): 교차 피크: 3.42-52.2 ppm.
실시예 28
탈아세틸화 콘드로이틴 설페이트를 이용한 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교
PBS (pH = 7.4, c = 0.9% w/v) 중의 탈아세틸화 콘드로이틴 설페이트 (2 eq, DS = 10%, Mw = 1.8 x 104 g.mol-1, 결합부 비율 = 1/0.85) 8% 용액을, PBS (pH = 7.40, c = 0,9% w/v) 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (20 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 8% 용액에 첨가하였다. 반응 혼합물을 실온에서 교반하였으며, 0.5 h 후 점성 증가가 관찰되었으며, 3 h 후 탄성 겔이 형성되었다.
압축시 영의 탄성 계수 = 3 x 103 Pa
압축시 극한 강도 = 774 x 103 Pa
극한 강도에서 변형률 = 95%
인성 = 16489 J.m-3
실시예 29
프로폭시아민을 이용한 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교
프로폭시아민 하이드로클로라이드 (0.12 eq, 결합부 비율 = 1/1)의 PBS 용액을, PBS (pH = 7.40, c = 0,9% w/v) 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (50 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 8% 용액에 첨가하였으며, 제시간에 겔이 형성되었다 (Tg = 110 s).
압축시 영의 탄성 계수 = 8 x 103 Pa
압축시 극한 강도 = 74 x 103 Pa
극한 강도에서 변형률 = 65%
인성 = 3768 J.m-3
실시예 30
히알루론산의 아미노프로폭실 유도체를 이용한 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교 반응에서 겔화 카이네틱스 측정
PBS (pH = 7.40, c = 0.9% w/v) 중의 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (10 mg, DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1) 4% 샘플과 PBS (pH = 7.4, c = 0.9% w/v) 중의 히알루론산의 아미노프로폭실 유도체 (1 eq, DS = 25%, Mw = 66 kDa) 4% 용액을 사용해, 겔화 카이네틱스를 측정하였다. 겔화 시간, 즉 최초 거시적인 겔 네트워크가 형성된 시기를 확인하였다 (Tg = 97　s, 도 4).
실시예 31
히알루로난의 α,β-불포화 알데하이드를 이용한 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 가교를 통해 제조된 하이드로겔의 기계적 특성 비교
용액 1: PBS (pH = 7.40, c = 0.9% w/v) 중의, 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (DS = 23%, Mw = 2.1 x 104 g.mol-1, 실시예 1) 4% 용액.
용액 2: PBS (pH = 7.40, c = 0.9% w/v) 중의, 히알루론산의 α,β-불포화 알데하이드 (DS = 7%, Mw = 2.5 x 104 g.mol-1) 4% 용액.
용액 3: PBS (pH = 7.40, c = 0,9% w/v) 중의 히알루론산의 아미노프로폭실 유도체 (DS = 25%, Mw = 66 kDa) 4% 용액.
하기 조합을 하기 당량의 부피 비율로 혼합하여 상기 용액들로부터 하이드로겔을 제조하였다: 용액 1 + 용액 3 (샘플 A) 및 용액 2 + 용액 3 (샘플 B). 샘플 A와 B를 실온에서 3시간 동안 숙성시켰다. 그런 후, 물질들의 기계적 특성, 즉 압축시 영의 탄성 계수, 압축시 극한 강도 및 극한 강도에서 변형률을 측정하였다 (표 2).
표 2: 콘드로이틴 설페이트 유래의 α,β-불포화 알데하이드와 히알루론산의 가교를 통해 제조된 하이드로겔의 기계적 특성 비교
샘플 압축시 영의 탄성 계수 (kPa) 압축시 극한 강도 (kPa) 극한 강도에서 신장 (%)
A 11 30 52
B 7 58 76
측정 데이타는, 유도체 (샘플 A)로부터 형성된 하이드로겔이 히알루론산 유도체 (샘플 B)와 비교해 보다 높은 강성을 가지며 낮은 변형률을 나타내므로, 치환도가 더 높은 콘드로이틴 설페이트 유도체 (샘플 A)를 사용한 경우의 장점을 보여준다. 샘플들은 동일한 분자량을 가지며 동일 조건에서 분석하였기 때문에, 이런 사실은 더 높은 가교 밀도로 인한 것으로 보이며, 이는 직접적으로 상호 연관되어 있으며, 동일한 분자량을 유지하면서도 변형된 다당류의 구조내 α,β-불포화 알데하이드의 치환도는 더 높다.
실시예 32
콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드의 존재 하에 3T3 섬유모세포의 생존성 검사
테스트 물질, 콘드로이틴 설페이트의 α,β-불포화 알데하이드 (DS = 20%, Mw = 40　kDa)를 3T3 완전 배지에 용해하였다. 이 용액을 0.22 ㎛ 필터를 통해 여과하였다. 테스트 용액의 최종 검사 농도는 10, 100, 500 및 1000　㎍.mL-1이었다. 3T3 세포를 웰 당 세포 3000개의 밀도로 96웰 플레이트에 접종하였다. 처리하기 전에, 세포를 완전 배지에서 24시간 배양하였다. 0, 24, 48, 72시간 간격으로 3-[4,5-다이메틸티아졸-2-일]-2,5-다이페닐 테트라졸륨 브로마이드를 사용해 분광광도법 (MTT 방법)을 통해 세포 생존성을 평가하였다 (MTT 방법). 전 실험에 무처리 대조군과 블랭크 샘플 세트를 포함시켰다. 측정한 광학 강도 데이타를 시간 T0의 대조군에 대한 % 포뮬레이션으로 변환하고 (무처리 대조군 T0 광학 강도에 대한 처리 샘플의 광학 강도 비율 x 100), 평균 표준 오차 (SEM)을 계산하였다. 검사 결과는 도 3에 그래프로 표시한다.

Claims (22)

  1. 황산화 다당류의 유도체 (derivative of a sulfated polysaccharide)로서,
    일반식 I에 따라 6번 위치의 알데하이드 또는 일반식 II에 따라 그 수화된 형태와 공액 관계로 갈락토피라노스 고리의 4번 및 5번 위치에 이중 결합을 포함하는, 변형된, 황산화 다당류의 유도체:
    Figure 112024015413262-pct00012

    상기 식에서, R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-C(O)CH3 임.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 다당류가 콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 카라기난 및 이들의 약제학적으로 허용가능한 유도체 및/또는 염으로 이루어진 군으로부터 선택되는, 황산화 다당류의 유도체.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 다당류가 1 x 103 내지 5 x 104 g.mol-1 범위의 분자량, 및 1 내지 40% 또는 10 내지 25% 범위의 치환도를 가지는, 황산화 다당류의 유도체.
  4. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 따른 황산화 다당류의 유도체를 제조하는 방법으로서,
    황산화 다당류를 6번 위치에서 알데하이드로 산화하는 단계 및 산화 직후에 동일 반응 혼합물에서 제거 반응을 수행하여 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 따라 정의되는 황산화 다당류의 유도체를 제조하는 단계를 포함하며,
    상기 황산화 다당류는, 천연 형태에서 수용해성이며; 일반 구조식 (III)에 따라, α(1→3) 또는 β(1→3) O-글리코시드 결합을 통해 폴리머 체인에 결합된, 4번 위치에서 황산화된 하나 이상의 갈락토피라노스 유닛을 포함하는, 제조 방법:
    Figure 112024015413262-pct00013

    상기 식에서, R은 OH, O-SO2-OH, O-SO2-ONa 또는 NH-C(O)CH3이고, R1은 H 또는 Na임.
  5. 제4항에 있어서,
    분자량 1 x 104 내지 5 x 106 g.mol-1 범위의 황산화 다당류가 사용되는, 제조 방법.
  6. 제4항에 있어서,
    콘드로이틴 설페이트, 더마탄 설페이트, 카라기난 및 이들의 약제학적으로 허용가능한 유도체 및/또는 염으로 이루어진 군으로부터 선택되는 황산화 다당류가 사용되는, 제조 방법.
  7. 제4항에 있어서,
    상기 산화는 수중 또는 무기 염의 수용액 중에서 R3-TEMPO/NaClO 시스템을 이용해 5-25℃에서 수행되며, R3가 수소 또는 N-아세틸인, 제조 방법.
  8. 제7항에 있어서,
    상기 황산화 다당류의 이량체에 대해, R3-TEMPO의 몰량이 0.01 내지 0.2당량이고; NaClO의 몰량이 0.1 내지 2.0당량 범위인, 제조 방법.
  9. 제7항에 있어서,
    상기 무기 염의 수용액이 알칼리 금속 염을 포함하는 수용액, 및/또는 완충액 또는 포스페이트 완충액인, 제조 방법.
  10. 제4항에 있어서,
    상기 제거 반응이 5 내지 25℃에서 진행되며, 4번 위치에서 황산화되고 포화된 C6-알데하이드를 가진 갈락토피라노스 서브유닛을 분리하는 과정이 생략된, 제조 방법.
  11. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 따른 유도체의 변형 방법으로서,
    상기 유도체를 일반식 R2-NH2에 따른 아민과 반응시키는 단계를 포함하며,
    상기 식에서, R2가, 선택적으로 N, S 또는 O 원자를 포함하는, 알킬, 아릴, 헤타릴, 선형 또는 분지형의 C1 - C30 체인인, 변형 방법.
  12. 제11항에 있어서,
    상기 아민이 생리학적으로 활성인 아민, 아미노산 또는 펩타이드이거나, 또는 자유 아미노 기를 가진 생물학적으로 허용가능한 폴리머인, 변형 방법.
  13. 제12항에 있어서,
    상기 아미노 기가 젤라틴, 키토산, 탈아세틸화 히알루론산 및 탈아세틸화 콘드로이틴 설페이트로 이루어진 군으로부터 선택되는 폴리머의 직접적인 일부분인, 변형 방법.
  14. 제12항에 있어서,
    상기 아미노 기가 아미노, 하이드라진, 하이드라지드, 아미노알콕시, 하이드록실, 카르복실, 티올 기 또는 이들의 임의 조합을 포함하는 링커를 통해 상기 폴리머에 결합되는, 변형 방법.
  15. 제12항에 있어서,
    생리학적으로 활성인 아민, 아미노산, 펩타이드, 또는 폴리머의 자유 아미노 기의 양이 황산화된 다당류의 이량체에 대해 0.05 내지 3.0당량 범위인, 변형 방법.
  16. 제12항에 있어서,
    생리학적으로 활성인 아민, 아미노산, 펩타이드, 또는 자유 아미노 기를 가진 폴리머와의 반응이 물, 포스페이트 완충액 또는 물-유기 용매 시스템 중에서 20 내지 60℃ 범위의 온도에서 10분 내지 150시간 동안 진행되는, 변형 방법.
  17. 제16항에 있어서,
    상기 유기 용매가 수 혼화성 알코올 및 수 혼화성 극성 비양성자성 용매로 이루어진 군으로부터 선택되거나 상기 유기 용매가 프로판올, 에탄올 또는 다이메틸 설폭사이드이고, 혼합물의 함수율이 50% vol 이상인, 변형 방법.
  18. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 따른 유도체의 변형 방법으로서,
    상기 유도체를, 알킬 아민, 아릴 아민, 헤테로알킬 아민, 헤타릴 아민, 아미노산, 펩타이드, 자유 아미노 기를 가진 폴리머, 하이드라진, 하이드록실아민, 하이드라지드, 세미카르바지드 또는 티오세미카르바지드로 이루어진 군으로부터 선택되는 수용성의 생체적합한 이관능성 및 다관능성 N-친핵체와 반응시키는 단계를 포함하며, 이때 상기 유도체의 가교가 이루어지는, 변형 방법.
  19. 제18항에 있어서,
    상기 N-친핵체가 하이드라지드, 탈아세틸화 다당류 또는 알콕시아민이며, 반응이 포스페이트 완충액 중에서 진행되는, 변형 방법.
  20. 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 따른 유도체를 포함하는, 코스메틱 및 제약 분야에서 pH 변화를 이용해 생물학적 활성 물질을 제어 방출하는 담체.
  21. 제11항에 따른 방법에 의해 변형된 유도체를 포함하는, 생의학적 용도를 위한 또는 조직 공학용 또는 재생 의학용 스캐폴드 형성을 위한 생체적합성 재료.
  22. 제18항에 따른 방법에 의해 변형된 유도체를 포함하는, 생의학적 용도를 위한 또는 조직 공학용 또는 재생 의학용 스캐폴드 형성을 위한 생체적합성 재료.
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