JPS62244393A - Htlv−3gag/env遺伝子蛋白質の発現と精製 - Google Patents
Htlv−3gag/env遺伝子蛋白質の発現と精製Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は後人性免疫不全症候群<AIDS>の病因物7
+jである)1丁+、−V −[I[ウィルスの核蛋白
質(〔1a CJ ) J3 cl:びエンベロープ蛋
白質(env)から成るgag/envと命名した蛋白
質に関するものである。本蛋白質は有機合成法により、
または必要な遺伝子配列を適当なりNAベクターを介し
て適合した単細胞生物に挿入する紺jりえ1) N A
技術を利用することにより生成される。
+jである)1丁+、−V −[I[ウィルスの核蛋白
質(〔1a CJ ) J3 cl:びエンベロープ蛋
白質(env)から成るgag/envと命名した蛋白
質に関するものである。本蛋白質は有機合成法により、
または必要な遺伝子配列を適当なりNAベクターを介し
て適合した単細胞生物に挿入する紺jりえ1) N A
技術を利用することにより生成される。
本発明はさらにgag/e「)v蛋白質の単離J3よび
精製そして本蛋白質を利用してヒト面清或いは他の生体
試料中のAIDS抗体またはウィルスの検出−1及びに
AIDSに対して人類を免疫予防防り11する方法に関
する。
精製そして本蛋白質を利用してヒト面清或いは他の生体
試料中のAIDS抗体またはウィルスの検出−1及びに
AIDSに対して人類を免疫予防防り11する方法に関
する。
1985年にほとんど8.000人の人がAIDSを有
すると診断され、その数は4実に1狩している。198
6年にはさらに15.000人の人が新たにA I D
Sと診断されると考えられ、1987年にはその数は
さらに2倍となるであろう[New Yrok Tim
es Magazine 、 1986年3月2日、4
2頁]。AI D Sは体の免疫系にス・1ilる影響
の二次作用として重度の日和見感染が始まることが特色
である[Gottliebう、New [ng、 J。
すると診断され、その数は4実に1狩している。198
6年にはさらに15.000人の人が新たにA I D
Sと診断されると考えられ、1987年にはその数は
さらに2倍となるであろう[New Yrok Tim
es Magazine 、 1986年3月2日、4
2頁]。AI D Sは体の免疫系にス・1ilる影響
の二次作用として重度の日和見感染が始まることが特色
である[Gottliebう、New [ng、 J。
Hed、 305巻、1425頁(1981年)本疾患
は男性同性愛者、血液製品を注射した患者、薬物静注常
用各およびハイチおよび中央アノリカ出身となどに兇つ
かっている[ Piotら、 La1lCOj。
は男性同性愛者、血液製品を注射した患者、薬物静注常
用各およびハイチおよび中央アノリカ出身となどに兇つ
かっている[ Piotら、 La1lCOj。
11巻、65頁(198/1年)」。
原因物質はAIDSの疫学パターンが伝染病のパターン
と一致することよりウィルス性であるととえられた。少
<E くとも3種のレトロウィルスが何人からのAID
S患者の培養T−細胞またはへ11〕Sの危険性のある
人の白血球細胞がら単離されている。リンパ腺症関連ウ
ィルス(LΔV)と呼ばれる新しいヒトし[・ロウィル
スが発売され、そのf’l状はAlr)Sの病因的役割
と一致していた。
と一致することよりウィルス性であるととえられた。少
<E くとも3種のレトロウィルスが何人からのAID
S患者の培養T−細胞またはへ11〕Sの危険性のある
人の白血球細胞がら単離されている。リンパ腺症関連ウ
ィルス(LΔV)と呼ばれる新しいヒトし[・ロウィル
スが発売され、そのf’l状はAlr)Sの病因的役割
と一致していた。
このウィルス1よりンパ腺症患者がら単離され、従って
そのように命名されたi Hontaguierら。
そのように命名されたi Hontaguierら。
111Jmall l’−cell LQtlkOII
Ila / 1.ymphoma Virus、 R。
Ila / 1.ymphoma Virus、 R。
C,Ga1lo ら&、ffi 、 (二old S
pring 1larl)orLaboratory
、 363−370u、C(1984年)他のヒトレト
ロウィルス、具体的にはヒトT−細胞白血病/リンパ腫
/リンパ趨向性ウィルスの丁型I Po1eszら、
Proc Natl ^cad Sci、 11
.s、八、。
pring 1larl)orLaboratory
、 363−370u、C(1984年)他のヒトレト
ロウィルス、具体的にはヒトT−細胞白血病/リンパ腫
/リンパ趨向性ウィルスの丁型I Po1eszら、
Proc Natl ^cad Sci、 11
.s、八、。
77さ、7415貞(1980年)]および■型[Pf
liO3Zら、 5cience 224巻、49
7頁 (1984年)]の二つの1ノ゛ブグループ、も
単離されている。またもう一つのAIDS−関連レトロ
ウィルス(△RV)と呼ばれるウィルスも原因物質とし
て提案されでいる(+−cvyら、 5cience
225巻。
liO3Zら、 5cience 224巻、49
7頁 (1984年)]の二つの1ノ゛ブグループ、も
単離されている。またもう一つのAIDS−関連レトロ
ウィルス(△RV)と呼ばれるウィルスも原因物質とし
て提案されでいる(+−cvyら、 5cience
225巻。
840頁(1984年)]。HT L V −ff[お
よびΔRVレトロウィルスの両者共1− A Vと類似
した生物学的および血清疫学的性質を示す[L(!vy
ら。
よびΔRVレトロウィルスの両者共1− A Vと類似
した生物学的および血清疫学的性質を示す[L(!vy
ら。
上述HPopovicら、ト述]。従って少なくとも三
種のレトロウィルスがAIDSの病因物質として考えら
れてきた:lAV、ARVおよびl−1−r I−V−
III ’r−ある。本明細用ではこれらのウィルスを
まとめ−(A I D Sウィルスと呼ぶ。トI T
l−V−1ががこのグループの原型であるので、r I
」T L V −]ウィルスの蛋白質の配列に対応する
穴原決定囚子」という表現は実際には全のAIDSウィ
ルスの蛋白質の配列を意味することになる。
種のレトロウィルスがAIDSの病因物質として考えら
れてきた:lAV、ARVおよびl−1−r I−V−
III ’r−ある。本明細用ではこれらのウィルスを
まとめ−(A I D Sウィルスと呼ぶ。トI T
l−V−1ががこのグループの原型であるので、r I
」T L V −]ウィルスの蛋白質の配列に対応する
穴原決定囚子」という表現は実際には全のAIDSウィ
ルスの蛋白質の配列を意味することになる。
AIDSの真の病因物質を決めるのが難しい一つの理由
はいろいろなし1−ロウィルス抗原がAlO3患者の血
清試料と交叉反応を示すためであった。例えば、AID
S患者の血清試料は1−1 ’l’ l V −1[:
Fssexら、 5cience 220巻、8ミ5
9貞(1983年)]J3よびl−1−1’ l−V−
III(5arnCIadllaranら、 5ci
ence 、 224i、 506j’+ (1
’:) F3 /1年)Jの両名の抗原と反応すること
が示されCいる。I−I T L Vの1ンベローブ遺
伝子産物は成人ニー細胞白血病患者の血γ^の抗体と交
叉反応する抗原性を示した[ Kiyokawaら、P
rocMall 八cad、 Sci、lI
S A 、 8 1 巻、 6202 負
(’+ 984年)]。成人「−細胞白血病(△1−L
)と後人性免疫不全症候群(AIDS)とはHr L
V−Iが「細胞の非制御増殖を特徴とするT細胞悪性を
起j点にある。 A I D Sでは細胞増殖の代りに
細胞死滅が起る。事実、このI−1’r L V−■の
細胞変性特質はこの疾患特有のし1−〇ウィルス起源を
最終的に決定りるのに重要であった。
はいろいろなし1−ロウィルス抗原がAlO3患者の血
清試料と交叉反応を示すためであった。例えば、AID
S患者の血清試料は1−1 ’l’ l V −1[:
Fssexら、 5cience 220巻、8ミ5
9貞(1983年)]J3よびl−1−1’ l−V−
III(5arnCIadllaranら、 5ci
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’:) F3 /1年)Jの両名の抗原と反応すること
が示されCいる。I−I T L Vの1ンベローブ遺
伝子産物は成人ニー細胞白血病患者の血γ^の抗体と交
叉反応する抗原性を示した[ Kiyokawaら、P
rocMall 八cad、 Sci、lI
S A 、 8 1 巻、 6202 負
(’+ 984年)]。成人「−細胞白血病(△1−L
)と後人性免疫不全症候群(AIDS)とはHr L
V−Iが「細胞の非制御増殖を特徴とするT細胞悪性を
起j点にある。 A I D Sでは細胞増殖の代りに
細胞死滅が起る。事実、このI−1’r L V−■の
細胞変性特質はこの疾患特有のし1−〇ウィルス起源を
最終的に決定りるのに重要であった。
AIDSの病因物質はΔ1[)Sに悩む患者からIn
1IiIlされたAIDSに特有イ5細胞変性し]・ロ
ウイルスに感染した耐性ヒト肝瘍T−・細胞株(Hl)
を使用することにより単離された。このウィルスを用い
て血清疫学的測定づるとAir)Sと1−111− v
−mウィルス抗原に対する抗体の存在との間に完全な相
関があることがわかった[ H(Inta(J(Ii(
!rら、上述: Sarngadtlarilnら、上
述;5chupbachら、 5cience 224
%、 503 ’+:1(19844:)]。さらに
リンパ腺症候群の患者のおよそ85%およびA I D
S流行地域の無症候性男性同性愛者のかなりの割合が
HT I V−I[Iに対する抗体を血液中にn1るこ
とbわかった。この事よりこれらのデータは11 T
L V −■がAIDSの主要/Z病囚物′aであるこ
とを示ず。
1IiIlされたAIDSに特有イ5細胞変性し]・ロ
ウイルスに感染した耐性ヒト肝瘍T−・細胞株(Hl)
を使用することにより単離された。このウィルスを用い
て血清疫学的測定づるとAir)Sと1−111− v
−mウィルス抗原に対する抗体の存在との間に完全な相
関があることがわかった[ H(Inta(J(Ii(
!rら、上述: Sarngadtlarilnら、上
述;5chupbachら、 5cience 224
%、 503 ’+:1(19844:)]。さらに
リンパ腺症候群の患者のおよそ85%およびA I D
S流行地域の無症候性男性同性愛者のかなりの割合が
HT I V−I[Iに対する抗体を血液中にn1るこ
とbわかった。この事よりこれらのデータは11 T
L V −■がAIDSの主要/Z病囚物′aであるこ
とを示ず。
)−1−9III胞株を用いてAIDSウィルスの18
養に成功するまでAIDSウィルスの011 VAID
S蛋白質は甲離され、特徴づけられ、或いは合成されて
なかった。これは主としてウィルスが細胞変性性で従っ
てウィルスを単1IilIすることが可能でなかったた
めであるi Popovicら、上述]。
養に成功するまでAIDSウィルスの011 VAID
S蛋白質は甲離され、特徴づけられ、或いは合成されて
なかった。これは主としてウィルスが細胞変性性で従っ
てウィルスを単1IilIすることが可能でなかったた
めであるi Popovicら、上述]。
しかしこのウィルスの細胞変性効果に耐性なヒトT−細
胞株が発見されると、AIDSプロウィルスDNAの分
子クローニングも行なうことが出来た。
胞株が発見されると、AIDSプロウィルスDNAの分
子クローニングも行なうことが出来た。
ヒト血aおよび伯の生体試料のAIDS診断のための迅
速かつ高感度な方法およびワクチンによる本疾患の予防
法の必要性は非常に大さい。実際には現6−使用できる
アッセイおよびテストは全て誤りが多い。事実Cent
er for Disease Control(CI
) C)は現在使用されているテストはHT I−V
−IIIに対する抗体の存在の有無のための血液検索に
のみ使用すべぎと古う。CDCはざらに現在使用できる
酵素結合免疫アッセイ(LLISA)7−スi〜は危険
度の高い住民の一般検索のためまたはAIDSの診断テ
ストとして使1111べさ・でないとまで古っている[
FecleralRagistcr50巻(4B):9
909頁、1985年3月12日 今:Lで用いられてきたAIDSテストの誤りはへ11
〕Sの病因物質の特異的抗原蛋白質を用いてい4jいこ
とに依る。従来用いられた蛋白質はウィルス溶解物に起
因した。溶解物はウィルスに感染したヒト劃り即ち、ウ
ィルスを増殖させるのに用いた細胞、から調製している
ため、溶解物はウィルス蛋白質と共にヒト蛋白質を含有
している。
速かつ高感度な方法およびワクチンによる本疾患の予防
法の必要性は非常に大さい。実際には現6−使用できる
アッセイおよびテストは全て誤りが多い。事実Cent
er for Disease Control(CI
) C)は現在使用されているテストはHT I−V
−IIIに対する抗体の存在の有無のための血液検索に
のみ使用すべぎと古う。CDCはざらに現在使用できる
酵素結合免疫アッセイ(LLISA)7−スi〜は危険
度の高い住民の一般検索のためまたはAIDSの診断テ
ストとして使1111べさ・でないとまで古っている[
FecleralRagistcr50巻(4B):9
909頁、1985年3月12日 今:Lで用いられてきたAIDSテストの誤りはへ11
〕Sの病因物質の特異的抗原蛋白質を用いてい4jいこ
とに依る。従来用いられた蛋白質はウィルス溶解物に起
因した。溶解物はウィルスに感染したヒト劃り即ち、ウ
ィルスを増殖させるのに用いた細胞、から調製している
ため、溶解物はウィルス蛋白質と共にヒト蛋白質を含有
している。
従ってウィルス蛋白質の純粋な抗原を調製するのは困難
であった。今まで使用された抗原はVA陽性および偽隙
性の両方を誘導した[ Bud 1ansky。
であった。今まで使用された抗原はVA陽性および偽隙
性の両方を誘導した[ Bud 1ansky。
Nature、 312巻、583頁(1984年)]
。
。
このような溶解物蛋白質/ペプチドの使用に起因する誤
りはΔ11つS抗体結合のためにAIDS特異蛋白質以
外の蛋白質を実11含まない成分を使用することにより
避けられる。実質的に純粋なAIDSエンベロープおよ
びコア蛋白質を抗原としC使用できる。
りはΔ11つS抗体結合のためにAIDS特異蛋白質以
外の蛋白質を実11含まない成分を使用することにより
避けられる。実質的に純粋なAIDSエンベロープおよ
びコア蛋白質を抗原としC使用できる。
HT L V −1[1のエンベI]−ブおよびコア蛋
白質の両方共保存された抗原決定因子を有し、そのため
AIDSウィルスの検索、診断および/またはワクチン
による予防を可能とする。そしてトI T L V−I
IIに接触し、従ってAIDSに感染している危険性の
高い人またはかかつている人をその血液中のウィルス核
(コア)蛋白S1 (a a g)および/またはエン
ベロープ蛋白質(env)に対り゛る抗体の(j−r上
により11)1定できる[ Sarngadl+ar、
inら、 5cience 22 /I巻、506頁(
19B/1年) 血液また1、1他の生体試料中のAir)Sウィルス自
身3またはその粒子の存在を検出する信頼できる敏感な
デス1〜が手に入る事〜bまた重要である。
白質の両方共保存された抗原決定因子を有し、そのため
AIDSウィルスの検索、診断および/またはワクチン
による予防を可能とする。そしてトI T L V−I
IIに接触し、従ってAIDSに感染している危険性の
高い人またはかかつている人をその血液中のウィルス核
(コア)蛋白S1 (a a g)および/またはエン
ベロープ蛋白質(env)に対り゛る抗体の(j−r上
により11)1定できる[ Sarngadl+ar、
inら、 5cience 22 /I巻、506頁(
19B/1年) 血液また1、1他の生体試料中のAir)Sウィルス自
身3またはその粒子の存在を検出する信頼できる敏感な
デス1〜が手に入る事〜bまた重要である。
G rOOJl m il nら[Bfood、66巻
、742頁(1985汀)JはAIDSウィルスに対す
る抗体はA11)S患者の血液中に必ず存在するとは限
らないと報告している。Groopmanらは一人のA
IDSl、1.! Mとbう一人の関連疾患(△17C
)を検査し、抗(A K2 性テjJ6 ルカl−l
−r l−V−In カtrs r1テe tc面液試
斜をi!f /、:。
、742頁(1985汀)JはAIDSウィルスに対す
る抗体はA11)S患者の血液中に必ず存在するとは限
らないと報告している。Groopmanらは一人のA
IDSl、1.! Mとbう一人の関連疾患(△17C
)を検査し、抗(A K2 性テjJ6 ルカl−l
−r l−V−In カtrs r1テe tc面液試
斜をi!f /、:。
最近、AIDS問題にも紺換えDNA技術が応用されて
きた。ト1 ’l’ L V−IIIからのenv逍伝
子の分子り自−ニングおJ:び発現が報告されているl
Crowl ら、 Ce1l、 41巻、9791 (
1985年) ; CC11anら、 Biotech
nology 、 3巻、905+:r < 19a
5年) ] 。Dowbenkoら[Proc Na
tlAcad sci Il、S、A、 82巻、77
48頁(1985年)] は1−ITI v−mの]ア
蛋白質(!−r’ 。
きた。ト1 ’l’ L V−IIIからのenv逍伝
子の分子り自−ニングおJ:び発現が報告されているl
Crowl ら、 Ce1l、 41巻、9791 (
1985年) ; CC11anら、 Biotech
nology 、 3巻、905+:r < 19a
5年) ] 。Dowbenkoら[Proc Na
tlAcad sci Il、S、A、 82巻、77
48頁(1985年)] は1−ITI v−mの]ア
蛋白質(!−r’ 。
C011中で発現した。
そのような瑣伝子操作実験により、安全で信頼性があり
生産コストの低い精製ウィルス抗原が入手可能である。
生産コストの低い精製ウィルス抗原が入手可能である。
しかし、ざらにイj利なことはenvおよびgaQの両
(Ji白′ビ丁に存在す°る抗原決定因子を右するウィ
ルス蛋白質を入手できる点である。そのようへ蛋白質は
△lO8抗体の検出に非常に強力な道具であり、高感度
の各種診断テストおよびAIDSウィルスに対するワク
チンの可能性の基礎となり桿る。
(Ji白′ビ丁に存在す°る抗原決定因子を右するウィ
ルス蛋白質を入手できる点である。そのようへ蛋白質は
△lO8抗体の検出に非常に強力な道具であり、高感度
の各種診断テストおよびAIDSウィルスに対するワク
チンの可能性の基礎となり桿る。
そこrqaQ/cnvと命名し、HT l−V −1[
[のqaci蛋白質およびl−1−r I−V −If
f e n v蛋白質の少なくとb夫々一つの抗原決定
因子を有する新規蛋白質を提供し、AIDSウィルスの
検索、診断および/またはAIDSウィルスに対するワ
クチンによる予防が可能となる。新規なQaG/env
蛋白質は第2図に示すアミノ酸配列の全てまたは一部分
、或いは機能的にそれと同等なもので示される。
[のqaci蛋白質およびl−1−r I−V −If
f e n v蛋白質の少なくとb夫々一つの抗原決定
因子を有する新規蛋白質を提供し、AIDSウィルスの
検索、診断および/またはAIDSウィルスに対するワ
クチンによる予防が可能となる。新規なQaG/env
蛋白質は第2図に示すアミノ酸配列の全てまたは一部分
、或いは機能的にそれと同等なもので示される。
本発明はさらに本発明の(JacJ/envボリベブブ
ドをコードづ゛る必須I)NA、そのようなりNAを含
む紺換えベクターおよび本発明のQaQ/env蛋白質
を組換えDNA技術にJ:り生産するのに有用な単細胞
生物、さらにそのようなりNA配列、紺換えベクターお
よび111綱胞生物の調製方法をも提供1”る。さらに
、本発明のりaQ / e n V蛋白質の発現および
単離のための方法も記載している。このようにして生産
した(J Q C’) / e n V蛋白質は本発明
による方法により多くの・pな免疫手法に利用される。
ドをコードづ゛る必須I)NA、そのようなりNAを含
む紺換えベクターおよび本発明のQaQ/env蛋白質
を組換えDNA技術にJ:り生産するのに有用な単細胞
生物、さらにそのようなりNA配列、紺換えベクターお
よび111綱胞生物の調製方法をも提供1”る。さらに
、本発明のりaQ / e n V蛋白質の発現および
単離のための方法も記載している。このようにして生産
した(J Q C’) / e n V蛋白質は本発明
による方法により多くの・pな免疫手法に利用される。
診p7i桑としての使用により、gag/env蛋白質
はヒ]・血清または涙、精液、膣分泌液および唾液のよ
うな4体液中のAIDSウィルスに対する抗体の存在を
検出するのに利用できる。本漬白負は均r:1に得られ
るため過去における比較的不純なN ’l’ l V−
1[[ウィルス蛋白質に基づく診断藁を使用した時に悩
む非特異的反応の問題は除去できる。
はヒ]・血清または涙、精液、膣分泌液および唾液のよ
うな4体液中のAIDSウィルスに対する抗体の存在を
検出するのに利用できる。本漬白負は均r:1に得られ
るため過去における比較的不純なN ’l’ l V−
1[[ウィルス蛋白質に基づく診断藁を使用した時に悩
む非特異的反応の問題は除去できる。
(J f−1(Jlo n V蛋白質を免疫原として用
いるとそこに含まれる抗原性決定因子に対する抗体を初
物中で生産する。そのにうな抗体は適当に標識したg
a g7e n v蛋白質と結合り−ることにより、ヒ
ト血清中または涙、精液、膣分泌液および唾液のような
他の生体液中の)I T L V −Illウィルスの
存在を検出するための放射免疫アツセーr(RIA>ま
たは酵素免疫アッセイ(ELISA)に使用される。こ
れらの方法により検出される粒子(または断片)はウィ
ルスコアまたはエンベ[]−ブ蛋白質の断片である。
いるとそこに含まれる抗原性決定因子に対する抗体を初
物中で生産する。そのにうな抗体は適当に標識したg
a g7e n v蛋白質と結合り−ることにより、ヒ
ト血清中または涙、精液、膣分泌液および唾液のような
他の生体液中の)I T L V −Illウィルスの
存在を検出するための放射免疫アツセーr(RIA>ま
たは酵素免疫アッセイ(ELISA)に使用される。こ
れらの方法により検出される粒子(または断片)はウィ
ルスコアまたはエンベ[]−ブ蛋白質の断片である。
適当なワクチン製剤への混合により、本発明のQ a
Q / e n v蛋白質は予防免疫処置によるAID
Sの蔓延にうち勝つため使用される。
Q / e n v蛋白質は予防免疫処置によるAID
Sの蔓延にうち勝つため使用される。
g a g tj3よびenv蛋白質を別々に使用する
のと比較してGap/env蛋白質を使用するのに!O
要な利点がある。env蛋白′d自体は非常に不溶性で
そのため精製が困難である。二つの蛋白質を組合せるこ
とによりより容易に可溶化され、従って容易に精製でき
る蛋白質が得られる。勿論大規模生産および精製も一つ
の化合物を単離するだ【ノであるから簡単になる。その
他、QaU/Cn v蛋白に」;り別々のgaOおよび
env蛋白質の場合より5良く動く抗原サンドウイップ
ーアツセイの診断キラ1〜の開発が可能になる。
のと比較してGap/env蛋白質を使用するのに!O
要な利点がある。env蛋白′d自体は非常に不溶性で
そのため精製が困難である。二つの蛋白質を組合せるこ
とによりより容易に可溶化され、従って容易に精製でき
る蛋白質が得られる。勿論大規模生産および精製も一つ
の化合物を単離するだ【ノであるから簡単になる。その
他、QaU/Cn v蛋白に」;り別々のgaOおよび
env蛋白質の場合より5良く動く抗原サンドウイップ
ーアツセイの診断キラ1〜の開発が可能になる。
すaQ / Q n V 蛋白′ζ1はH1−1−V
、−[1i、:由来するが、不明t#書に記載する診断
用および免疫予防法はリンパ腺症関連ウィルス(LAV
)およびAIDS関連レトロウィルス(△RV)のよう
なΔ11)Sに係わる或いは関連している他のどのウィ
ルスの検出にも応用できる。これはCr0WIら[Cc
l141巻、979頁(1985年)1がこれらのウィ
ルスは免疫学的にHTLV−Illウィルスと関連し、
共通のアミノ酸配列を右することを示したからである。
、−[1i、:由来するが、不明t#書に記載する診断
用および免疫予防法はリンパ腺症関連ウィルス(LAV
)およびAIDS関連レトロウィルス(△RV)のよう
なΔ11)Sに係わる或いは関連している他のどのウィ
ルスの検出にも応用できる。これはCr0WIら[Cc
l141巻、979頁(1985年)1がこれらのウィ
ルスは免疫学的にHTLV−Illウィルスと関連し、
共通のアミノ酸配列を右することを示したからである。
木ブを明は以下に示づ詳細な記載を基に次の図面と01
μ(とえるとより容易に理解される。
μ(とえるとより容易に理解される。
411図はQEIQ (上図)およびQF3Q/enV
(下図)蛋白質の合成を指示する発現ベクターの図示で
ある。gaqおよびenvl伝子のfl、IJ限エンド
ヌクレアーげ切断部位を示し、斜線の部分はQ a Q
/ e n V l4ij合遺伝子のenv部分を表
わす。
(下図)蛋白質の合成を指示する発現ベクターの図示で
ある。gaqおよびenvl伝子のfl、IJ限エンド
ヌクレアーげ切断部位を示し、斜線の部分はQ a Q
/ e n V l4ij合遺伝子のenv部分を表
わす。
両プラスミド共転写はλP1プロモーターの制御下にあ
り、翻訳tRI始シグナルはプラスミド[)[V−vr
f2からのものである。
り、翻訳tRI始シグナルはプラスミド[)[V−vr
f2からのものである。
第2図はgaにJ/env融合遺伝子の核酸配列(位置
番号および制限エンドヌクレアーピ部位を示す)および
それから予想されるQaQ/env蛋白質のアミノ酸配
列を示1.。
番号および制限エンドヌクレアーピ部位を示す)および
それから予想されるQaQ/env蛋白質のアミノ酸配
列を示1.。
第3図はE、coli中で生産されたqd()/env
蛋白質の5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動分析
の結果を示す。写真1はQa(J/env融合遺伝子を
有する組換えプラスミドを侍つ[l胞および対照lIl
胞からの全蛋白のクマシーブルー染色を示す。写真2お
よび3は細胞全蛋白をenvペプチド500−511に
対するつ4ツギ抗体(写真2)または(Ja(J p
2/Iに対す゛る羊抗体(写真3)のウェスタンプロッ
トである。7f貞2および写真3の免疫複合体は西洋ワ
ザビのベル第4;シダーゼで標識した第二の抗体で検出
した。
蛋白質の5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動分析
の結果を示す。写真1はQa(J/env融合遺伝子を
有する組換えプラスミドを侍つ[l胞および対照lIl
胞からの全蛋白のクマシーブルー染色を示す。写真2お
よび3は細胞全蛋白をenvペプチド500−511に
対するつ4ツギ抗体(写真2)または(Ja(J p
2/Iに対す゛る羊抗体(写真3)のウェスタンプロッ
トである。7f貞2および写真3の免疫複合体は西洋ワ
ザビのベル第4;シダーゼで標識した第二の抗体で検出
した。
いずれの写真でもg/eはQ a g/e n V蛋白
′ζ1を表わし、Cは特異性を示すため用いた陰性対照
試料を表わす。分子量マーカーの移動度(KD)を示し
、ゲル中で(l a Q/e n V蛋白質バンドの位
置を矢印で示した。
′ζ1を表わし、Cは特異性を示すため用いた陰性対照
試料を表わす。分子量マーカーの移動度(KD)を示し
、ゲル中で(l a Q/e n V蛋白質バンドの位
置を矢印で示した。
本発明の方法は数多くのステップを伴ない、それは理論
的には、11) rr a oおよびenv蛋白質をコ
ードする遺伝子またはその断片の同定と単離、(2)こ
れらの遺伝子または遺伝子断片を適当なりローニングベ
クターに挿入してGap/env融合遺伝子を含む組換
えベクターの構築、(3)組換えクローニングベクター
の適合性の単細胞宿主生物への移動、(4)適当に修飾
した複製可能で挿入遺伝子配列を発現でき宿主の選)R
および培養、(5)遺伝子産物の同定および精製、(6
)遺伝子産物のHT L V−■または関連ウィルスに
対する抗体検出のため、或いはと1〜血清または他の生
体液中のウィルス自体またはその断片検出のため使用で
きる抗体産生のための免疫原としての使用、そして(7
)AIDSに対する免疫予防防御のための(J a g
/ e n v蛋白質の使用より成る。
的には、11) rr a oおよびenv蛋白質をコ
ードする遺伝子またはその断片の同定と単離、(2)こ
れらの遺伝子または遺伝子断片を適当なりローニングベ
クターに挿入してGap/env融合遺伝子を含む組換
えベクターの構築、(3)組換えクローニングベクター
の適合性の単細胞宿主生物への移動、(4)適当に修飾
した複製可能で挿入遺伝子配列を発現でき宿主の選)R
および培養、(5)遺伝子産物の同定および精製、(6
)遺伝子産物のHT L V−■または関連ウィルスに
対する抗体検出のため、或いはと1〜血清または他の生
体液中のウィルス自体またはその断片検出のため使用で
きる抗体産生のための免疫原としての使用、そして(7
)AIDSに対する免疫予防防御のための(J a g
/ e n v蛋白質の使用より成る。
lII!!liシた)l T L、 V −IIIウィ
ルス粒子は本発明のgaQおよびenvIiI4遺伝子
の源として使用できる。例えばDowbenkoら[P
roc、 Natl Acad Sci。
ルス粒子は本発明のgaQおよびenvIiI4遺伝子
の源として使用できる。例えばDowbenkoら[P
roc、 Natl Acad Sci。
U、S、^、82巻、77481(1985年)] は
gag遺伝子の原料としてウィルス遺伝子の5′−領域
から2.2キロベース(kb)断片を用いた。他の方法
として、HTLV−1[1のプロウィルス遺伝子を組込
んだiB胞からの遺伝子ON△を遺伝子の原料として使
用することもできる[ Shawら。
gag遺伝子の原料としてウィルス遺伝子の5′−領域
から2.2キロベース(kb)断片を用いた。他の方法
として、HTLV−1[1のプロウィルス遺伝子を組込
んだiB胞からの遺伝子ON△を遺伝子の原料として使
用することもできる[ Shawら。
5cience 226巻、1165頁(1984年)
]。
]。
Crowlら[Ce1141巻、979頁(1985年
)1はenv遺伝子を得るために1−(T L V −
II[の感染したH9細胞からの遺伝子DNAを使用し
た。
)1はenv遺伝子を得るために1−(T L V −
II[の感染したH9細胞からの遺伝子DNAを使用し
た。
gagおよびenv遺伝子の単離の他の方法として遺伝
子配列の化学合成および遺伝子から生産するメツセンジ
ャーRNAに相補的なりNAの合成があるが、これらに
限定されるものではない。
子配列の化学合成および遺伝子から生産するメツセンジ
ャーRNAに相補的なりNAの合成があるが、これらに
限定されるものではない。
原料には関係なく、gagおよびenv蛋白質をコード
するDNAはバクテリアにりL]−ンでき、リaりおよ
びe r)v ’14伝子を含有するり[1−ンは木技
術でJ:<知られる方法により同定できる。例えば、遺
伝子の相補DNA (cDNA)プローブを調製し、ハ
イブリダイゼーション技術を用いて本遺伝子を右するク
ローンの検出に使用できる。
するDNAはバクテリアにりL]−ンでき、リaりおよ
びe r)v ’14伝子を含有するり[1−ンは木技
術でJ:<知られる方法により同定できる。例えば、遺
伝子の相補DNA (cDNA)プローブを調製し、ハ
イブリダイゼーション技術を用いて本遺伝子を右するク
ローンの検出に使用できる。
本発明の好ましい態様として、上述のHTLV−■−感
染H9細胞のDNAをXbaI消化してmRした遺伝子
ライブラリーをλフアージベクターを用いてクローニン
グし、I−I T L V −IIIのプロウィルス遺
伝子を有するクローンをHTLV−IIICl) NA
とハイブリダイゼーションして同定する。
染H9細胞のDNAをXbaI消化してmRした遺伝子
ライブラリーをλフアージベクターを用いてクローニン
グし、I−I T L V −IIIのプロウィルス遺
伝子を有するクローンをHTLV−IIICl) NA
とハイブリダイゼーションして同定する。
そのようなりローンの一つをλトIXB−3と命名し、
このり1コーンのDNAをC1aI/l−1inc■消
化してgag前駆体蛋白質の大部分をコードする170
0塩基対断片を単離した。
このり1コーンのDNAをC1aI/l−1inc■消
化してgag前駆体蛋白質の大部分をコードする170
0塩基対断片を単離した。
本発明の好ましい態様としてはenv遺伝子配列の1内
接の原料はenv蛋白質の514−524残りに対応す
るenvコドンを欠損するプラスミドpEV3/env
44−64(b)のvrl体である。
接の原料はenv蛋白質の514−524残りに対応す
るenvコドンを欠損するプラスミドpEV3/env
44−64(b)のvrl体である。
驚くべきことに、この欠損によりenv3g伝子の発現
が有意に増加する。プラスミドpEV3/env44−
64(b)のBQj211/l−1i ndI[If;
7J所によりコドン467から640を含むenv配列
を得た。
が有意に増加する。プラスミドpEV3/env44−
64(b)のBQj211/l−1i ndI[If;
7J所によりコドン467から640を含むenv配列
を得た。
1−11’ L V−IIIのenvおよびgall子
を−・たび同定して単離したら、挿入遺伝子配タリの転
写J3よび翻訳に必要な要素を含む適当な発現ベクター
中にそれを挿入する。有用なりローニングベクターは種
々の既知バクテリアプラスミド、ファージDNA、ファ
ージDNAを利用するために改良したプラスミドのよう
なプラスミドおよびファージDNAの組合せ、或いは酵
母プラスミド等のクロモシーム由来、非クロモシーム性
および合成りNAの断片より成る。使用できる特異的ク
ローニングベクターとしては、pEV−vrl“プラス
ミド(pEV−vr f’ 1、−2オJ=ヒ−3)、
SV40、アデノウィルス、酵母、ラムダgt−WES
−ラムダB1シャーロン4Aおよび28、ラムダ−Qt
−1−ラムダB1pUC8,9,18および19のよう
なM13−由来ベクター、p13R313,322およ
び325、pAc105 、 F)VA5 1 、
p ACY 1 7 7 、 p K )
I 4 7 、pACYC184、pUBllo、
l)MB9、COI E 1 、pSCI 01、Dm
l 21、R8F2124、ρCR7またはRρ4など
があるがこれらに限定されるものではない。
を−・たび同定して単離したら、挿入遺伝子配タリの転
写J3よび翻訳に必要な要素を含む適当な発現ベクター
中にそれを挿入する。有用なりローニングベクターは種
々の既知バクテリアプラスミド、ファージDNA、ファ
ージDNAを利用するために改良したプラスミドのよう
なプラスミドおよびファージDNAの組合せ、或いは酵
母プラスミド等のクロモシーム由来、非クロモシーム性
および合成りNAの断片より成る。使用できる特異的ク
ローニングベクターとしては、pEV−vrl“プラス
ミド(pEV−vr f’ 1、−2オJ=ヒ−3)、
SV40、アデノウィルス、酵母、ラムダgt−WES
−ラムダB1シャーロン4Aおよび28、ラムダ−Qt
−1−ラムダB1pUC8,9,18および19のよう
なM13−由来ベクター、p13R313,322およ
び325、pAc105 、 F)VA5 1 、
p ACY 1 7 7 、 p K )
I 4 7 、pACYC184、pUBllo、
l)MB9、COI E 1 、pSCI 01、Dm
l 21、R8F2124、ρCR7またはRρ4など
があるがこれらに限定されるものではない。
Q a gおよびenvl伝子のクローニングベクター
への挿入は、両遺伝子および目的のクローニングベクタ
ーを同じυ1限酵素で切断して相補末端を作成すること
により容易に行なうことができる。
への挿入は、両遺伝子および目的のクローニングベクタ
ーを同じυ1限酵素で切断して相補末端を作成すること
により容易に行なうことができる。
らしこれが出来ない時には消化により生成した切筋末端
を一木1tJDN△を消化することにより平滑末端を作
り、或いは適当なりNAポリメラーぜにより一本鎖DN
Aをうめることにより同じように甲8゛1末端を作って
改良する。こうすることによりT4 DNへりガーゼの
ような酵素により平滑末端ライゲーションを行なう。ま
た別の方法として、DNA末端にヌクレオチド配列(リ
ンカ−)を連結することにより目的部位を作ることもで
きる。
を一木1tJDN△を消化することにより平滑末端を作
り、或いは適当なりNAポリメラーぜにより一本鎖DN
Aをうめることにより同じように甲8゛1末端を作って
改良する。こうすることによりT4 DNへりガーゼの
ような酵素により平滑末端ライゲーションを行なう。ま
た別の方法として、DNA末端にヌクレオチド配列(リ
ンカ−)を連結することにより目的部位を作ることもで
きる。
リンカ−はυ1服部位認識配列をコードする特有のオリ
ゴヌクリオチド配列より成る。切断ベクターおよびqa
qとenv遺伝子断片もHorrowにより記載される
[Hethods in Enzymology 68
巻、3頁(1979年)]ように同ヌクレAチドテイリ
ングにより修飾する。
ゴヌクリオチド配列より成る。切断ベクターおよびqa
qとenv遺伝子断片もHorrowにより記載される
[Hethods in Enzymology 68
巻、3頁(1979年)]ように同ヌクレAチドテイリ
ングにより修飾する。
QaQまたはenvi伝子或いはその断片を適当なりロ
ーニングベクターに挿入した侵、もう一つの遺伝子また
は逍1云子断片は正しい制限エンドヌクレアーゼ切断に
より最初の遺伝子と並列に二番目の遺伝子または遺伝子
断片を挿入して融合遺伝子を創成する。勿論Oa9およ
びenv3ri伝子を化学合成する場合には融合遺伝子
を直接合成してクローニングベクターに一木のDNA断
片として挿入できる。
ーニングベクターに挿入した侵、もう一つの遺伝子また
は逍1云子断片は正しい制限エンドヌクレアーゼ切断に
より最初の遺伝子と並列に二番目の遺伝子または遺伝子
断片を挿入して融合遺伝子を創成する。勿論Oa9およ
びenv3ri伝子を化学合成する場合には融合遺伝子
を直接合成してクローニングベクターに一木のDNA断
片として挿入できる。
本発明の好ましい態様として、上述のλHXB−3から
のqaq遺伝子含有C1aI/l−1i n c M断
片をC1a工およびPvuITで切断したpEV−vr
f2プラスミドに結合して、gag残基15−512よ
り成る56にd蛋白4ノ合成を指示する組換え発現プラ
スミド1)EV2/(コa gl 5−512 (第1
図、1−図)を得る。残基437に近いP、QIT1部
位の下流のaach配列をト述のプラスミドル1三V3
/env44−64(b)の誘導体(残基514−52
/I欠損)からのcnv配列B(’JI I/II !
nd [1IF7i片C置き換え、Q a Q/e
n V融合遺伝子を含むプラスミドpEV2/QaQ1
5−436/env467−640Δ514−524
(第1図、下図)を1【する。
のqaq遺伝子含有C1aI/l−1i n c M断
片をC1a工およびPvuITで切断したpEV−vr
f2プラスミドに結合して、gag残基15−512よ
り成る56にd蛋白4ノ合成を指示する組換え発現プラ
スミド1)EV2/(コa gl 5−512 (第1
図、1−図)を得る。残基437に近いP、QIT1部
位の下流のaach配列をト述のプラスミドル1三V3
/env44−64(b)の誘導体(残基514−52
/I欠損)からのcnv配列B(’JI I/II !
nd [1IF7i片C置き換え、Q a Q/e
n V融合遺伝子を含むプラスミドpEV2/QaQ1
5−436/env467−640Δ514−524
(第1図、下図)を1【する。
この構築の詳細は以下の実施例の段落中、特にBからF
に示した。好ましい態様のQaO/env遺伝子の核酸
塩基配列(Haxamの化学切断法、Hetbods
in EIIZylolo(165巻、 499頁
(1980年)、により決定] J3よびそれから推定
される(J a g/ e n V蛋白質のアミノ酸配
列を第2図に示ザ。
に示した。好ましい態様のQaO/env遺伝子の核酸
塩基配列(Haxamの化学切断法、Hetbods
in EIIZylolo(165巻、 499頁
(1980年)、により決定] J3よびそれから推定
される(J a g/ e n V蛋白質のアミノ酸配
列を第2図に示ザ。
本発明で用いるり[1−ニングベクターの多くは目的の
形質転換株を選択するのに用いる一つまたはそれ以]−
のマーカー活性、例えばpBR322でのアンピシリン
およびテ1−ラザイクリン耐性、D (J C8のアン
ピシリン耐性およびβ−ガラクトシダーゼ活性およびI
)EV−vrj2のアンピシリン耐性などを右する。そ
のにうなベクターがhIi人された宿主の選択はベクタ
ーがない場合に右しでいない活性がベクターにより発現
することで非常に簡単に行なうことが出来る。
形質転換株を選択するのに用いる一つまたはそれ以]−
のマーカー活性、例えばpBR322でのアンピシリン
およびテ1−ラザイクリン耐性、D (J C8のアン
ピシリン耐性およびβ−ガラクトシダーゼ活性およびI
)EV−vrj2のアンピシリン耐性などを右する。そ
のにうなベクターがhIi人された宿主の選択はベクタ
ーがない場合に右しでいない活性がベクターにより発現
することで非常に簡単に行なうことが出来る。
クローニングベクターの選択した部位に1.lj人する
gagおよびenv311伝子断片のヌクレオブト配列
は真の構造遺伝子部分でないヌクレオチドを含む場合が
あることは即解すべさ゛である。また逆に、遺伝子断片
が完全遺伝子の一部分のみを有することもできる。必要
な点はり1コーニングベクターに挿入した遺伝子断片が
適当な宿主生物中でG a gl3よびenv蛋白質の
配列に対応する少なくと5一つの抗原決定囚rをイIJ
−るポリペプチドまたは蛋白質の生産を指示することが
出来ることである。
gagおよびenv311伝子断片のヌクレオブト配列
は真の構造遺伝子部分でないヌクレオチドを含む場合が
あることは即解すべさ゛である。また逆に、遺伝子断片
が完全遺伝子の一部分のみを有することもできる。必要
な点はり1コーニングベクターに挿入した遺伝子断片が
適当な宿主生物中でG a gl3よびenv蛋白質の
配列に対応する少なくと5一つの抗原決定囚rをイIJ
−るポリペプチドまたは蛋白質の生産を指示することが
出来ることである。
適当な宿主生物の選択はこの技術で知られる多くの要囚
により影響される。要因としては例えば、選んだベクタ
ーとの適合性、ハイブリッドプラスミドによりコードさ
れるm性、目的蛋白の回収の容易さ、発現特質、生物安
全性およびコストなどである。これらの要囚のバランス
をとらねばならず、ある組換えDNA分子の発現に対し
て必ずしも令での宿主が同等に効果ある訳ではない事を
理解すべきである。
により影響される。要因としては例えば、選んだベクタ
ーとの適合性、ハイブリッドプラスミドによりコードさ
れるm性、目的蛋白の回収の容易さ、発現特質、生物安
全性およびコストなどである。これらの要囚のバランス
をとらねばならず、ある組換えDNA分子の発現に対し
て必ずしも令での宿主が同等に効果ある訳ではない事を
理解すべきである。
本発明で使用できる適した宿主単細胞生物どしては植物
、動物または酵母m胞および [sct+erichia coli、 Bacill
us 5ubtilis 。
、動物または酵母m胞および [sct+erichia coli、 Bacill
us 5ubtilis 。
Bacillus stearothcrmophil
usおよび放線菌などがあるがこれらに限定されるもの
ではない。
usおよび放線菌などがあるがこれらに限定されるもの
ではない。
Ca5adabanら[J、 Mo1. Biol、
138巻、179頁(19804f)]にJ:り報告さ
れたEschcrichia coli He 106
1株は伯のpRK248 c I 1: sプラスミド
を含むF、coli K−12株と同様使用できる。
138巻、179頁(19804f)]にJ:り報告さ
れたEschcrichia coli He 106
1株は伯のpRK248 c I 1: sプラスミド
を含むF、coli K−12株と同様使用できる。
他のl:、coliK−12株に使用するためのプラス
ミドpRK248c I Ls は八n+eri
can 丁ype Cu1tureCollcc目
on(Al−CC)から自由に入手でき、A rcc3
3766(7)番号/fi ライT イル。E。
ミドpRK248c I Ls は八n+eri
can 丁ype Cu1tureCollcc目
on(Al−CC)から自由に入手でき、A rcc3
3766(7)番号/fi ライT イル。E。
coli MC1061株もATCCk:寄託され(
ATCC−53338)依頼により自由に人手できる。
ATCC−53338)依頼により自由に人手できる。
組換えクローニングベクターの宿主細胞への移入はいろ
いろな方法で実行できる。選んだそのベクター/宿主細
胞系によって形質転換、形質導入または]・ランスフエ
クションにより行なえる。そのような修籐宿主細胞が得
られると、細胞を培養して培養物より蛋白質発現産物を
単離する。
いろな方法で実行できる。選んだそのベクター/宿主細
胞系によって形質転換、形質導入または]・ランスフエ
クションにより行なえる。そのような修籐宿主細胞が得
られると、細胞を培養して培養物より蛋白質発現産物を
単離する。
E、coli中で生産されるとCJ a Q / e
n v蛋白質は大部分相Ki質のバクテリア封入体(不
溶性蛋白凝集物)に閏じ込められ、この事は蛋白質の精
製を非常に容易にする。本発明のgaす/env蛋白産
物を単離するには、細菌細胞を好ましくは破砕または溶
菌し、不溶性蛋白を遠心分離により回収する。実質的精
製はヤノられる沈でん物を徐々に高い濃度の尿素で何口
か洗い、続いて標準蛋白質1/ri製法により行なう。
n v蛋白質は大部分相Ki質のバクテリア封入体(不
溶性蛋白凝集物)に閏じ込められ、この事は蛋白質の精
製を非常に容易にする。本発明のgaす/env蛋白産
物を単離するには、細菌細胞を好ましくは破砕または溶
菌し、不溶性蛋白を遠心分離により回収する。実質的精
製はヤノられる沈でん物を徐々に高い濃度の尿素で何口
か洗い、続いて標準蛋白質1/ri製法により行なう。
ポリアクリルアミドゲル゛心気泳動分析のための試料の
ように少量の蛋白質の時には、細胞はドデシル硫酸ナト
リウム(SO8>などの界面活性剤処理により破砕する
。多idの蛋白質は超呂波処理或いはフレンチプレスの
ような他の物理的破砕にJ:り回収η゛るのがJ:い。
ように少量の蛋白質の時には、細胞はドデシル硫酸ナト
リウム(SO8>などの界面活性剤処理により破砕する
。多idの蛋白質は超呂波処理或いはフレンチプレスの
ような他の物理的破砕にJ:り回収η゛るのがJ:い。
細胞破砕はまた化学的或いは酵木的方法によっでb t
jなう巾かできる。細胞膜構成にはしばしば二価陽イオ
ンが必要であるため、EDTAまたはEGI−Aのよう
な適当なキレート剤による処理により細胞から蛋白質を
漏出するのに十分な破砕がでさ゛ることかできた。同様
にリゾチームのようなM素す同じ結果を得た。この酵素
はIII胞檗のペプチドグリカン骨格を加水分解する。
jなう巾かできる。細胞膜構成にはしばしば二価陽イオ
ンが必要であるため、EDTAまたはEGI−Aのよう
な適当なキレート剤による処理により細胞から蛋白質を
漏出するのに十分な破砕がでさ゛ることかできた。同様
にリゾチームのようなM素す同じ結果を得た。この酵素
はIII胞檗のペプチドグリカン骨格を加水分解する。
リゾチーム処理と合わせて凍結と融解のくり返えし処理
も採用′Cきる。
も採用′Cきる。
1114から出したQ a g/e n V蛋白質【よ
この技術ぐ知られる方法によってu合物から同定できる
。
この技術ぐ知られる方法によってu合物から同定できる
。
例えば、本蛋白質に対する抗体を用いた放射免疫アッセ
イまたは酵素免疫アッセイが使用できる。
イまたは酵素免疫アッセイが使用できる。
好ましくは蛋白質はSDSポリアクリルアミドゲル電気
電気上動くウェスタンプロットまたは類似の分析により
同定する。
電気上動くウェスタンプロットまたは類似の分析により
同定する。
本発明のQag/cnv蛋白質は硫酸す1〜す′クムま
たは硫酸アン上ニウムのような塩による沈澱、または限
外濾過、或いはこの技術でよく知られる他の方法を用い
てa縮される。その後の精製はゲル濾過、イオン交換ク
ロマトグラフィー、精製用ディスクゲルまたは、カーテ
ン・4気泳動、等電点分画電気泳動、低温有機溶媒分画
成いは向流分配などの通常の蛋白精製技術により行なう
。
たは硫酸アン上ニウムのような塩による沈澱、または限
外濾過、或いはこの技術でよく知られる他の方法を用い
てa縮される。その後の精製はゲル濾過、イオン交換ク
ロマトグラフィー、精製用ディスクゲルまたは、カーテ
ン・4気泳動、等電点分画電気泳動、低温有機溶媒分画
成いは向流分配などの通常の蛋白精製技術により行なう
。
(Ja(J/enV蛋白質はHT L V −illウ
ィルスの二つの主要成分の抗原性決定因子を含み°、こ
のウィルスがAIDSの主たる病因であってAIDSま
たはARCと掛わるまたは関連しているとされる他のウ
ィルスと免疫学的に関連しているため、本蛋白質はヒト
血清中のA l l) Sウィルスに対する抗体の検出
のための有力な診断の道具である。この目的のためにこ
の技術で知られる多くの方法により融合蛋白質を使用で
きる。
ィルスの二つの主要成分の抗原性決定因子を含み°、こ
のウィルスがAIDSの主たる病因であってAIDSま
たはARCと掛わるまたは関連しているとされる他のウ
ィルスと免疫学的に関連しているため、本蛋白質はヒト
血清中のA l l) Sウィルスに対する抗体の検出
のための有力な診断の道具である。この目的のためにこ
の技術で知られる多くの方法により融合蛋白質を使用で
きる。
例えば、Q a g、”c n V蛋白質を多くの方法
のいずれかで標識し、標識蛋白質をAIDSウィルスに
対する抗体を含むと疑われるヒト血清試料に添加して標
識用台蛋白−抗体複合体を形成させ、生成した複合体を
適当な方法により検出する。他の例としで、本蛋白質を
固体担体に固定してヒト血i1試料と接触さけることも
できる。試料中のA I l) Sウィルスに対する抗
体は固定化蛋白質と結合し、生成する複合体は未反応の
蛋白質や抗体を洗′a除去した後5taphy+oco
ccus aurcusプロチンA(例えば沃素125
で標識)または第二の抗に1・100抗体(例えば放射
同位元素または西洋ワナビやラクトペルオキシダーゼで
標識)などの試薬を用いて検出できる。これらの問題に
関しては本技術熟練者には明白な多くの異なる方法があ
り、そのいくつかは以下に明示しである。
のいずれかで標識し、標識蛋白質をAIDSウィルスに
対する抗体を含むと疑われるヒト血清試料に添加して標
識用台蛋白−抗体複合体を形成させ、生成した複合体を
適当な方法により検出する。他の例としで、本蛋白質を
固体担体に固定してヒト血i1試料と接触さけることも
できる。試料中のA I l) Sウィルスに対する抗
体は固定化蛋白質と結合し、生成する複合体は未反応の
蛋白質や抗体を洗′a除去した後5taphy+oco
ccus aurcusプロチンA(例えば沃素125
で標識)または第二の抗に1・100抗体(例えば放射
同位元素または西洋ワナビやラクトペルオキシダーゼで
標識)などの試薬を用いて検出できる。これらの問題に
関しては本技術熟練者には明白な多くの異なる方法があ
り、そのいくつかは以下に明示しである。
QaQ/env蛋白質に対する抗体の利用によりヒト血
清または他の生体試料中のA l l) Sウィルス或
いはそれ由来の粒子の存在のための多種の診断テストを
開発できる。そのための抗体は本蛋白質とそれに対する
抗体産生を誘導する適合した医薬担体より成るワクチン
製剤のT分宿を哺乳動物やニワトリに注割して1産でき
る。必要な適当な蛋白量はこの技術の熟練者は知ってい
るが、決まった実験により決定できる。本発明の関連で
使用する際には、「医薬担体」という用語はヒトへの投
与に適した標準組成物または動物の種痘に使用される典
型的なアジュバントを意味する。
清または他の生体試料中のA l l) Sウィルス或
いはそれ由来の粒子の存在のための多種の診断テストを
開発できる。そのための抗体は本蛋白質とそれに対する
抗体産生を誘導する適合した医薬担体より成るワクチン
製剤のT分宿を哺乳動物やニワトリに注割して1産でき
る。必要な適当な蛋白量はこの技術の熟練者は知ってい
るが、決まった実験により決定できる。本発明の関連で
使用する際には、「医薬担体」という用語はヒトへの投
与に適した標準組成物または動物の種痘に使用される典
型的なアジュバントを意味する。
動物の種痘に適したアジュバントとしてはフロイント完
全または不完全アジュバント(ヒ1−または家畜には適
さない)、アジュバント65(落花生油、マンニド−オ
レインFlltt(よび−ステアリン酸アルミニウムを
含有)および水酸化アルミニウム、りん酸アルミニ1ク
ムおよびミョウバンのような金属ゲル;へキナデシルア
ミン、オクタデシルアミン、リゾレシチン、ジメチルジ
オクタデシル臭化アンモニウム、N1−N−ジオタデシ
ルグリセロールJ3よびプルロニック多価アルコールな
どのような界面活性剤;ビラン、硫酸デキストラン、ボ
リエC1ポリアクリル酸、カルボボール多価陰イオン:
ムラミルジペプチド、ジメチルグリシン、タフトシンな
どペプチド類:および油性エマルジョンなどがあるがこ
れらに限定されるものではない。gap/(3nV蛋白
質はリポソームや他のマイクロキャリア中に封入して投
与し、或いは寥糖類、他の蛋白質または他のポリマーと
結合してから投与することもできる。典型的には最初の
接種の何週間か後に一回かそれ以上の追加免疫接種をし
、これらの総合効果にJ:すQaq/e n V蛋白質
に対する抗体の高力価産生ができ、通常の方法により回
収できる。
全または不完全アジュバント(ヒ1−または家畜には適
さない)、アジュバント65(落花生油、マンニド−オ
レインFlltt(よび−ステアリン酸アルミニウムを
含有)および水酸化アルミニウム、りん酸アルミニ1ク
ムおよびミョウバンのような金属ゲル;へキナデシルア
ミン、オクタデシルアミン、リゾレシチン、ジメチルジ
オクタデシル臭化アンモニウム、N1−N−ジオタデシ
ルグリセロールJ3よびプルロニック多価アルコールな
どのような界面活性剤;ビラン、硫酸デキストラン、ボ
リエC1ポリアクリル酸、カルボボール多価陰イオン:
ムラミルジペプチド、ジメチルグリシン、タフトシンな
どペプチド類:および油性エマルジョンなどがあるがこ
れらに限定されるものではない。gap/(3nV蛋白
質はリポソームや他のマイクロキャリア中に封入して投
与し、或いは寥糖類、他の蛋白質または他のポリマーと
結合してから投与することもできる。典型的には最初の
接種の何週間か後に一回かそれ以上の追加免疫接種をし
、これらの総合効果にJ:すQaq/e n V蛋白質
に対する抗体の高力価産生ができ、通常の方法により回
収できる。
勿論本蛋白質に対するモノクローナル抗体も現(f知ら
れる技術により産生でき、同じ結果が得られる。RII
Ilaのように抗体産生能を有する体細胞を骨髄腫細
胞株と融合してハイブリドーマ細胞を得る1、これらの
細胞を試験管内で、或いは腹水癌として培養して特異抗
体を多植に生産させる。ハイブリドーマ細胞は容易にク
ローン化できるので多数の細胞を♀く生産づ゛ることが
可能であり、それらは全て共通の抗原性決定因子に指示
される同じ特異抗体分子を生産する。この例外的に統一
された抗体産生は抗体を特異診断テストに使用する際(
j利である。
れる技術により産生でき、同じ結果が得られる。RII
Ilaのように抗体産生能を有する体細胞を骨髄腫細
胞株と融合してハイブリドーマ細胞を得る1、これらの
細胞を試験管内で、或いは腹水癌として培養して特異抗
体を多植に生産させる。ハイブリドーマ細胞は容易にク
ローン化できるので多数の細胞を♀く生産づ゛ることが
可能であり、それらは全て共通の抗原性決定因子に指示
される同じ特異抗体分子を生産する。この例外的に統一
された抗体産生は抗体を特異診断テストに使用する際(
j利である。
抗原の注射により初回抗原刺激を受けた動物のリンパ腺
およびi’smはB細胞の便利な材料であるが、これら
細胞を初回免疫していない動物より単離してから試験管
内で初回抗原刺激を行なうのも同様に効果ある。
およびi’smはB細胞の便利な材料であるが、これら
細胞を初回免疫していない動物より単離してから試験管
内で初回抗原刺激を行なうのも同様に効果ある。
マウスおよびラップBリンパ球が最も頻繁にハイブリド
ーマ生産に用いられているが、その代りにウサギ、人間
、虹または他の動物からの細胞も使用できる。
ーマ生産に用いられているが、その代りにウサギ、人間
、虹または他の動物からの細胞も使用できる。
ハイブリドーマ生産のため使用する多くの特有のfl
IIIIII: 1l胞株がリンパ球性腫瘍から開発さ
れている[に0tllOr およびHilstcin
、 European J。
IIIIII: 1l胞株がリンパ球性腫瘍から開発さ
れている[に0tllOr およびHilstcin
、 European J。
lm5uno1.6 @、 5111i (1976年
);Shulgianら、Nature、 276巻、
269頁(1978年)]。開発された多くの細胞株の
中でp3/X63−Au8.p3/NSI/1−Au4
−1.5l)210−八Q14および519415゜X
X0.8LJ、1が頻繁に利用されている。
);Shulgianら、Nature、 276巻、
269頁(1978年)]。開発された多くの細胞株の
中でp3/X63−Au8.p3/NSI/1−Au4
−1.5l)210−八Q14および519415゜X
X0.8LJ、1が頻繁に利用されている。
ハイブリドーマ生産のための抗体産生融合細胞またはリ
ンパ腺細砲と骨髄腫細胞との融合は骨髄肝a胞に対する
牌細胞またはリンパ球細胞の割合を過剰とし、その比は
20:1と6なり得るが、通常はもつと低い比率が用い
られる。融合はU■−不活センダイウィルスまたはポリ
エヂレングリ]−ル(PEG)のような融合促進剤を用
いて行なう。GCrterら[Somatic Ce1
l Genet3巻;231頁(1977年)]はジメ
チルスルホキシドとPEGを組合せるとさらに細胞融合
を高めると報告し゛【いる。極度に高い効率で細胞を融
合することの出来る電気的装置ら開発されている。
ンパ腺細砲と骨髄腫細胞との融合は骨髄肝a胞に対する
牌細胞またはリンパ球細胞の割合を過剰とし、その比は
20:1と6なり得るが、通常はもつと低い比率が用い
られる。融合はU■−不活センダイウィルスまたはポリ
エヂレングリ]−ル(PEG)のような融合促進剤を用
いて行なう。GCrterら[Somatic Ce1
l Genet3巻;231頁(1977年)]はジメ
チルスルホキシドとPEGを組合せるとさらに細胞融合
を高めると報告し゛【いる。極度に高い効率で細胞を融
合することの出来る電気的装置ら開発されている。
融合が起ると未融合の親細胞からハイブリドーマ細胞を
選択する必要がある。この選択はハイブリドーマ細胞は
増殖できるがta細胞は生育できない培地中で細胞を培
養することにより容易に達成でさる。融合に使用される
8体細胞は培養寿命が限られCいてそのため培養中に失
なわれるが、骨r&f1M重#細胞は培養中で無限の寿
命を有するので特別の技術により除去しなければならな
い。
選択する必要がある。この選択はハイブリドーマ細胞は
増殖できるがta細胞は生育できない培地中で細胞を培
養することにより容易に達成でさる。融合に使用される
8体細胞は培養寿命が限られCいてそのため培養中に失
なわれるが、骨r&f1M重#細胞は培養中で無限の寿
命を有するので特別の技術により除去しなければならな
い。
通常用いる方法では、ヒボキサンチン、フオスフオリボ
シルトランスフエラーゼ欠損 (HPRT−)の骨髄na胞を使用する。これらの細胞
はヒポキサンチンの遊離塩基を再利用する除去経路を欠
くためアミノプテリンのような阻害剤を用いてプリンの
初めからの合成経路をブロックすると生存できない、、
親骨髄腫[l砲は融合混合物をヒボキサンチン/アミノ
プテリン/チミジン(HAT)培地で培養することによ
り選択的に除去され、ハイブリドーマ細胞は抗体産生融
合細胞によるHPRTの作用のため生存する。
シルトランスフエラーゼ欠損 (HPRT−)の骨髄na胞を使用する。これらの細胞
はヒポキサンチンの遊離塩基を再利用する除去経路を欠
くためアミノプテリンのような阻害剤を用いてプリンの
初めからの合成経路をブロックすると生存できない、、
親骨髄腫[l砲は融合混合物をヒボキサンチン/アミノ
プテリン/チミジン(HAT)培地で培養することによ
り選択的に除去され、ハイブリドーマ細胞は抗体産生融
合細胞によるHPRTの作用のため生存する。
選択培養の後、生存するハイブリドーマ細胞をクローン
化し、種細胞を通常の標準細胞培養法により培養し、目
的の特異免疫グロビンを生産するりO−ンを酵素免疫ア
ッセイ(ELISA)また他のテストを用い、抗体を誘
導した抗原の使用に基づいて検出する。
化し、種細胞を通常の標準細胞培養法により培養し、目
的の特異免疫グロビンを生産するりO−ンを酵素免疫ア
ッセイ(ELISA)また他のテストを用い、抗体を誘
導した抗原の使用に基づいて検出する。
本発明の使用法に基づいて得られる抗−gag/enV
蛋白質抗体はさらにAIDSウィルスまたはそれ由来の
粒子の各種診断試験の調製に利用できる。診断システム
としては遊離溶液または固体での放射免疫アッセイの形
態である。その他、M;+1免疫アツレイJ3よび免疫
プロットに基づくアッセイがある。これらのアッセイは
直接法或いは抗ga Q / e n V蛋白抗体に対
する第二抗体を応用した間接法である。数多くのM索活
性を抗体に結合でき、ペルオキシダーゼ、グルコースオ
キシダーげ、β−ガラク]・シダーげおよびアルカリフ
Aスファターゼはそのほんの一例である。
蛋白質抗体はさらにAIDSウィルスまたはそれ由来の
粒子の各種診断試験の調製に利用できる。診断システム
としては遊離溶液または固体での放射免疫アッセイの形
態である。その他、M;+1免疫アツレイJ3よび免疫
プロットに基づくアッセイがある。これらのアッセイは
直接法或いは抗ga Q / e n V蛋白抗体に対
する第二抗体を応用した間接法である。数多くのM索活
性を抗体に結合でき、ペルオキシダーゼ、グルコースオ
キシダーげ、β−ガラク]・シダーげおよびアルカリフ
Aスファターゼはそのほんの一例である。
これらの試験法の多くにある基本的な原理は、Δ11〕
Sウィルスまたはその断片を含む疑いのあるヒト血清或
いは他の生体試料をQaQ/env蛋白質に対する抗体
の既知力価間と反応させて抗原−抗体複合体を形成する
。このようにして形成した複合体を適当な方法によって
検出するものである。
Sウィルスまたはその断片を含む疑いのあるヒト血清或
いは他の生体試料をQaQ/env蛋白質に対する抗体
の既知力価間と反応させて抗原−抗体複合体を形成する
。このようにして形成した複合体を適当な方法によって
検出するものである。
本技術の熟練者は抗−(JaQ/enV蛋白質高而清は
他にム面ろいろな方法で診斯に利用でき、例えば凝集反
応試験などが例であることがわかる。
他にム面ろいろな方法で診斯に利用でき、例えば凝集反
応試験などが例であることがわかる。
凝集反応アッセイでは、抗体とAIDSウィルスまたは
ウィルス断片との相互反応を粒子を抗−Q a <J
/ e n V蛋白質抗体でコートした系を用いて検出
できる。粒子としてはラテックスビーズ、リポソーム、
赤血球、ポリアクリルアミドゲルまたは適当なポリマー
類などがある。
ウィルス断片との相互反応を粒子を抗−Q a <J
/ e n V蛋白質抗体でコートした系を用いて検出
できる。粒子としてはラテックスビーズ、リポソーム、
赤血球、ポリアクリルアミドゲルまたは適当なポリマー
類などがある。
上に述べたAIDSウィルスまたはAIDSウィルスに
対する抗体の測定方法は容器中に本発明のgag/cn
v蛋白質或いは本発明のC18g/env蛋白質で誘導
したAIDSウィルスに対する抗体を含有した適当なデ
ス1−キットで実施できる。
対する抗体の測定方法は容器中に本発明のgag/cn
v蛋白質或いは本発明のC18g/env蛋白質で誘導
したAIDSウィルスに対する抗体を含有した適当なデ
ス1−キットで実施できる。
Cr0WIらは[Ce1f41巻、979−986頁(
1985年)150人のAIDS@者の血清を遺伝子操
作で生産したenv蛋白質と試験した結果、全てがこの
蛋白質と反応性を示したと報告している。これらの患者
の半分は合衆国西海岸出身、半分は東海岸出身前であっ
たにも拘らず真実であった。試験した全ての血清がen
v蛋白質に反応したという事実は、地理的に離れていて
遺伝的にも疑いなくいくらか異なる、このように反応し
た抗体を産生するウィルスがそのエンベロープ蛋白質中
に少なくとも一つの共通の或いは保存された抗原決定因
子を右していた事を示す。
1985年)150人のAIDS@者の血清を遺伝子操
作で生産したenv蛋白質と試験した結果、全てがこの
蛋白質と反応性を示したと報告している。これらの患者
の半分は合衆国西海岸出身、半分は東海岸出身前であっ
たにも拘らず真実であった。試験した全ての血清がen
v蛋白質に反応したという事実は、地理的に離れていて
遺伝的にも疑いなくいくらか異なる、このように反応し
た抗体を産生するウィルスがそのエンベロープ蛋白質中
に少なくとも一つの共通の或いは保存された抗原決定因
子を右していた事を示す。
Δ11)SレトロウィルスのQagコア蛋白質は以前に
このウィルスに感染したことのある人の多くに抗体産生
を誘導することが見つかっている[ Hontagni
erら、上述: 5ChUpbaChら、上述:5ar
n(Jadharanら、上述]。
このウィルスに感染したことのある人の多くに抗体産生
を誘導することが見つかっている[ Hontagni
erら、上述: 5ChUpbaChら、上述:5ar
n(Jadharanら、上述]。
以十の事を考え合わせると、構成成分であるりaりおよ
びenv蛋白質の配列に対応する少なくとも一つの抗原
決定因子を有する本発明のQ a Q / e n v
蛋白質は人類に対して免疫原性を有し、AIDSワクチ
ンとして有用である。
びenv蛋白質の配列に対応する少なくとも一つの抗原
決定因子を有する本発明のQ a Q / e n v
蛋白質は人類に対して免疫原性を有し、AIDSワクチ
ンとして有用である。
従って、gag/env蛋白質(水用m害の記載により
、または化学合成により生産)は本蛋白質および適合す
る医薬担体より成るワクチン製剤どし−C使用できる。
、または化学合成により生産)は本蛋白質および適合す
る医薬担体より成るワクチン製剤どし−C使用できる。
そのような製剤には精製蛋白質として使用できるが、ま
たこの技術で知られる改良によってさらに免疫原性を高
めることもできる。例えば、本蛋白′dを1,3−ジシ
クロへキシルカルボジイミドのような架橋剤との反応に
より高免疫原性マl〜リツクスへと変換することができ
る。また、本蛋白質を直接または適当なリンカ−分子を
介して高免疫原性蛋白担体分子と共有結合で連結できる
。使用できる担体分子としては、例えばスカシガイヘモ
シアニンおよびジフテリア毒素のような種々のwJV4
毒素(不活化毒素)がある。
たこの技術で知られる改良によってさらに免疫原性を高
めることもできる。例えば、本蛋白′dを1,3−ジシ
クロへキシルカルボジイミドのような架橋剤との反応に
より高免疫原性マl〜リツクスへと変換することができ
る。また、本蛋白質を直接または適当なリンカ−分子を
介して高免疫原性蛋白担体分子と共有結合で連結できる
。使用できる担体分子としては、例えばスカシガイヘモ
シアニンおよびジフテリア毒素のような種々のwJV4
毒素(不活化毒素)がある。
にJ a (j/e n V蛋白質を細菌毒素と結合す
る場合には、AlDsとその毒素の起源細菌との両方の
予防が出来る二価性ワクチン製剤を調製できる。
る場合には、AlDsとその毒素の起源細菌との両方の
予防が出来る二価性ワクチン製剤を調製できる。
投与経路、抗原間、注射の頻度などは全てこの技術での
通常の熟練範囲のものである。
通常の熟練範囲のものである。
〈実施例〉
以下の実施例で1−1 r’ L V −11[ウィル
スのgag/enV蛋白質をコードする組換えベクター
の構築法を示すが、これに限定されるものではない。
スのgag/enV蛋白質をコードする組換えベクター
の構築法を示すが、これに限定されるものではない。
本実施例では次のステップを行なうが、各ステップはさ
らに詳細に後に述べる。
らに詳細に後に述べる。
(1)組換えファージクローンλHXB−3より08g
遺伝子のアミノ酸残括15−512(最初の14残基以
外の全て)をコードするDNA配列を切り出し、E、c
oli発現プラスミドDEV−vrf2に連結してプラ
スミドp += v2/QaQ 15−512を10; (2) 発現プラスミドpEV3/env44−64
0J:すenvアミノ酸残基319−331に対応する
DNA配列をブライマー指示変異により削除し、プラス
ミド1)EV3/env44−640Δ319−331
を1!11 f31 pE V 3 / e n v 44−64
0Δ319−339についてブライマー指示変異を行な
い、アミノ耐外1!514−524をコードするヌクレ
オチドの削除をしてプラスミドpEV3/e n v
44−640Δ319−331Δ514−524を得、 (4) プラスミドpEV3/env44−640Δ
319−331Δ514−524からのenv残基/1
67−640Δ514−524をコードするenv遺伝
子の制限酵素断片を切断したプラスミドpEV2/ga
(Jl 5−512に連結し、すag残115−436
およびenv残基467−640Δ514−524を]
−ドする融合遺伝子を作成してプラスミドE)EV2/
gaQ15−436/env467−640Δ514−
52/1を得る。
遺伝子のアミノ酸残括15−512(最初の14残基以
外の全て)をコードするDNA配列を切り出し、E、c
oli発現プラスミドDEV−vrf2に連結してプラ
スミドp += v2/QaQ 15−512を10; (2) 発現プラスミドpEV3/env44−64
0J:すenvアミノ酸残基319−331に対応する
DNA配列をブライマー指示変異により削除し、プラス
ミド1)EV3/env44−640Δ319−331
を1!11 f31 pE V 3 / e n v 44−64
0Δ319−339についてブライマー指示変異を行な
い、アミノ耐外1!514−524をコードするヌクレ
オチドの削除をしてプラスミドpEV3/e n v
44−640Δ319−331Δ514−524を得、 (4) プラスミドpEV3/env44−640Δ
319−331Δ514−524からのenv残基/1
67−640Δ514−524をコードするenv遺伝
子の制限酵素断片を切断したプラスミドpEV2/ga
(Jl 5−512に連結し、すag残115−436
およびenv残基467−640Δ514−524を]
−ドする融合遺伝子を作成してプラスミドE)EV2/
gaQ15−436/env467−640Δ514−
52/1を得る。
構築の各段階でプラスミドは[、CO1iMCC01i
株(1)RK248clts)に形質転換して再生した
。
株(1)RK248clts)に形質転換して再生した
。
△1組換えベクターvA製の一般手順
<ON八へI〉
111の一晩培養物からのプラスミドDNAの小規模単
離はBirnboimらの手法[Nuclcic Ac
1dsResearch 7巻、1513貞(1979
年)〕によって行なった。水沫は分析を目的にバクテリ
アのコロニーより少量のDNAを単離できる。多聞のプ
ラスミドDNAは1リツ[・ルの培養物を用い、塩化セ
シウムでの遠心分離による標準法で調製できる。
離はBirnboimらの手法[Nuclcic Ac
1dsResearch 7巻、1513貞(1979
年)〕によって行なった。水沫は分析を目的にバクテリ
アのコロニーより少量のDNAを単離できる。多聞のプ
ラスミドDNAは1リツ[・ルの培養物を用い、塩化セ
シウムでの遠心分離による標準法で調製できる。
く酵素反応の条件〉
使用した全ての制限酵素および14DNAリガーゼはマ
サチュセツツ州バーバリーのニューイングランドバイオ
ラボズ(New [noland Bio Labs)
の製品である。これらの酵素の使用法および使用条件は
製造元による指示どおりである。
サチュセツツ州バーバリーのニューイングランドバイオ
ラボズ(New [noland Bio Labs)
の製品である。これらの酵素の使用法および使用条件は
製造元による指示どおりである。
制限エンドヌクレアーゼの1単位の活性は、反応液Fa
0.05m、37℃、60分の消化で1.0μびのDN
Aを完全消化するのに必要な酵素11(と定捏する。消
化反応液は分解するDNAの他、100μg/I11の
ウシ血清アルブミンおよび以下に示す緩衝液成分を含む
: 13QJIf:10018 NaCj!、101Hト
リス−塩M (Dt17.4 ) 、10sMMoC!
、、およびl□n+HメルカプトTタノール(2−ME
) C1aT:50sHNaCj!、61Mトリス−塩酸(
p117 、9 ) J3よび6 mHM Q C12
Hi ncTI : 100Il18 NaCj!、
10sH1−リスー塩酎 (DII7 、 4 )
、718MgC12およびi mHジヂオスライトール
(DTT) Hi ndDI : 501HNaG1.50a+H
t−リス−塩酸(pH8,0)および10aH qC12 HDaI:6mM KCj!、101Hトリス−塩酸
(7,4)、10sHMgCl2およ び1+11)HTLVD’1−T PstI : 100+HNaC1,10mMトリス−
J!!酸(t+l17.5)およびl0IIH9C12 PvuI[:60m?4 NaCj!、5mHトリス
ーtBH(E1117 、5 > 、6mM M (
J C12および6mN2−ME StuT:100+eHNaC1,10Illリス−塩
M (+)118.0> 、10o+HMqC12およ
び6mM 2−ME T4DNAライゲーションはDNAおよび50IIHト
リス−塩酸(pH7,8)、10mMMgCj! 、
20sHDTT、1.OeHATPおよび50μび/d
の「ウシ血清アルブミンを含む反応液中で16℃にて行
なう。1単位のT4DNAリガーゼ活性は20μlの反
応液中でDNAの5′末端濃度として0.12μM(3
00119/m1.>のラムダDNAのl−1i n
d [1断片を50%ライゲーションするのに必要な量
と定義する。
0.05m、37℃、60分の消化で1.0μびのDN
Aを完全消化するのに必要な酵素11(と定捏する。消
化反応液は分解するDNAの他、100μg/I11の
ウシ血清アルブミンおよび以下に示す緩衝液成分を含む
: 13QJIf:10018 NaCj!、101Hト
リス−塩M (Dt17.4 ) 、10sMMoC!
、、およびl□n+HメルカプトTタノール(2−ME
) C1aT:50sHNaCj!、61Mトリス−塩酸(
p117 、9 ) J3よび6 mHM Q C12
Hi ncTI : 100Il18 NaCj!、
10sH1−リスー塩酎 (DII7 、 4 )
、718MgC12およびi mHジヂオスライトール
(DTT) Hi ndDI : 501HNaG1.50a+H
t−リス−塩酸(pH8,0)および10aH qC12 HDaI:6mM KCj!、101Hトリス−塩酸
(7,4)、10sHMgCl2およ び1+11)HTLVD’1−T PstI : 100+HNaC1,10mMトリス−
J!!酸(t+l17.5)およびl0IIH9C12 PvuI[:60m?4 NaCj!、5mHトリス
ーtBH(E1117 、5 > 、6mM M (
J C12および6mN2−ME StuT:100+eHNaC1,10Illリス−塩
M (+)118.0> 、10o+HMqC12およ
び6mM 2−ME T4DNAライゲーションはDNAおよび50IIHト
リス−塩酸(pH7,8)、10mMMgCj! 、
20sHDTT、1.OeHATPおよび50μび/d
の「ウシ血清アルブミンを含む反応液中で16℃にて行
なう。1単位のT4DNAリガーゼ活性は20μlの反
応液中でDNAの5′末端濃度として0.12μM(3
00119/m1.>のラムダDNAのl−1i n
d [1断片を50%ライゲーションするのに必要な量
と定義する。
<DNA断片のアガロースによるli’j 製>制限酵
素切断の後、クローニング用のDNA断片を1%アガl
ll−ス電気泳動により単離する。1μ!J / ml
lの臭化エチジウムにJ:り検出した後、目的のDNA
断片を含むゲル切片を21ゲージの針で10m14トリ
ス−mFa (pH7、4) 、1 mHE l) T
A イ13よび300mHNa(1!を含有する溶液
中に押し出す。これを−80℃、3時間凍結し、37℃
、30分間融解して10.OOOXgで30分間遠心分
離する。上澄液を0845μのマイレックスフィルター
で濾過し、5ec−7タノールで0.25mに濃縮した
後E、colit RNA(転位1でNA)10μびを
担体としてエタノール沈でんを3回行なう。
素切断の後、クローニング用のDNA断片を1%アガl
ll−ス電気泳動により単離する。1μ!J / ml
lの臭化エチジウムにJ:り検出した後、目的のDNA
断片を含むゲル切片を21ゲージの針で10m14トリ
ス−mFa (pH7、4) 、1 mHE l) T
A イ13よび300mHNa(1!を含有する溶液
中に押し出す。これを−80℃、3時間凍結し、37℃
、30分間融解して10.OOOXgで30分間遠心分
離する。上澄液を0845μのマイレックスフィルター
で濾過し、5ec−7タノールで0.25mに濃縮した
後E、colit RNA(転位1でNA)10μびを
担体としてエタノール沈でんを3回行なう。
く培養培地〉
M9CA培地は1リットル当り10びのNa 1−I
Po 、3gのKHPO,0,5gのNaC1および
1qのN+−1,Cj2を含有し、1mHMQSO,0
,5%グルコースおよび0.5%カザミノ酸を添加して
pH7,4に調整する。
Po 、3gのKHPO,0,5gのNaC1および
1qのN+−1,Cj2を含有し、1mHMQSO,0
,5%グルコースおよび0.5%カザミノ酸を添加して
pH7,4に調整する。
ルリアブロス< L B >は1リットル当り5Jバク
トー7188エキス、10gバクトートリプトンJ:び
1 0gNa(1!を合有し、pH7、5に:調整する
。
トー7188エキス、10gバクトートリプトンJ:び
1 0gNa(1!を合有し、pH7、5に:調整する
。
指示しである場合にはテトラザイクリン(6よびアンピ
シリンをそれぞれ15および50μg/cdの終11度
で添加する。
シリンをそれぞれ15および50μg/cdの終11度
で添加する。
く形1 および組換え体の単離〉
(H,COli MC1061株( p R K 2
4 8clts>の形質転換はKUSlInOrのプ
ロトコール[ aoyarら編集、Genetic E
ngineering。
4 8clts>の形質転換はKUSlInOrのプ
ロトコール[ aoyarら編集、Genetic E
ngineering。
E lscvier/ North−11o1 lan
d, 八mstcrda+n, 1 7 頁(1
978年)]の改良法を用い、木質的には以下のとおり
行なった。
d, 八mstcrda+n, 1 7 頁(1
978年)]の改良法を用い、木質的には以下のとおり
行なった。
細菌細胞を200m!のLB中30℃で0.0.6o。
が0.5から1.(b)の間まで増殖させた後、細胞を
6,OOOXg4℃で5分間遠心分離して集め、10+
f4モルitーリノプロパンスルホン酸(MOPS :
pH7.0)および10mH RbCJ!含有の溶液
50 tnllに再けん濁する。細胞を再び遠心分離で
集め、1 0mfl MOPS (pH16. 5)
、50mMC a C j! 2 J) J:び10
+++H Rb(1!含有の溶液30dに再びけん濁
する。0℃で30分間インキュベー1・した後細胞を集
め、5 0 mH C a C 1 27)1 0m
it< b C 1および15%グリセロール含有10
mHMOPS (pH6、 5 ) 6dに再けん濁し
、40本のエツペンドルフ管に分注して一80℃で凍結
する。
6,OOOXg4℃で5分間遠心分離して集め、10+
f4モルitーリノプロパンスルホン酸(MOPS :
pH7.0)および10mH RbCJ!含有の溶液
50 tnllに再けん濁する。細胞を再び遠心分離で
集め、1 0mfl MOPS (pH16. 5)
、50mMC a C j! 2 J) J:び10
+++H Rb(1!含有の溶液30dに再びけん濁
する。0℃で30分間インキュベー1・した後細胞を集
め、5 0 mH C a C 1 27)1 0m
it< b C 1および15%グリセロール含有10
mHMOPS (pH6、 5 ) 6dに再けん濁し
、40本のエツペンドルフ管に分注して一80℃で凍結
する。
形質転換には100μオのIgI胞を融解し、0°、3
7°および0℃でそれぞれ30分、2分【15よび2分
間およそ1 0 0 n gのDNAを含有するライグ
ー2812反応液サンプル10μl存在F、6管に0.
1〜0.5mgのl− 8を添加してインキュベ−1−
する。続いて22℃60分間各管をインヤニベートした
後、200dの細胞けん濁液をアンピシリン含有LB平
板上にまいて30℃20時間インキュベートする。
7°および0℃でそれぞれ30分、2分【15よび2分
間およそ1 0 0 n gのDNAを含有するライグ
ー2812反応液サンプル10μl存在F、6管に0.
1〜0.5mgのl− 8を添加してインキュベ−1−
する。続いて22℃60分間各管をインヤニベートした
後、200dの細胞けん濁液をアンピシリン含有LB平
板上にまいて30℃20時間インキュベートする。
く細胞増殖および 伝子発現の・ 、〉プラスミドpR
K2/18CItsを保有するE.coli MC1
061株の細胞と発現プラスミドをM9CA培地中30
℃で中期対数増殖まで培養してからλP tリプレッサ
ーを失活させるために42℃にシフトする。42℃で2
時間インキュベート後、誘導培養物1Miからの細胞を
遠心分離で集め、分析のため10111Nトリス−塩酸
(p117、4)および10%グリセロール含有のTG
!衝液に再けん濁する。
K2/18CItsを保有するE.coli MC1
061株の細胞と発現プラスミドをM9CA培地中30
℃で中期対数増殖まで培養してからλP tリプレッサ
ーを失活させるために42℃にシフトする。42℃で2
時間インキュベート後、誘導培養物1Miからの細胞を
遠心分離で集め、分析のため10111Nトリス−塩酸
(p117、4)および10%グリセロール含有のTG
!衝液に再けん濁する。
トリス−グリシン(TG)緩衝液に【ノん濁した誘導細
胞を等橙の2倍濃度試料緩衝液[ 1.aemm I
I 。
胞を等橙の2倍濃度試料緩衝液[ 1.aemm I
I 。
Nature2 2 7巻、680頁(1970年)]
と混合し、9℃で5分間インキュベート後Lacmm
l iにより記載されるJ:うに12.5%ゲルのSD
Sポリアクリルアミドゲル電気泳リノすか(プる。電気
泳動の優、ゲルの蛋白質を20%メタノールおよび0.
01SDS含イj12.5mHt−リスおよび96mM
グリシン中p117,5.95ポル1〜で6時間0.1
ミク[1ンのニトロヒルロースメンブレン上に電気10
ツ1〜する。ウェスタンプロット分析はfowbinら
[Proc、 Natl、 八cad、 Sc
i、 11.s、八、 76巻、4350頁(197
9年)]により記載されている通り行なった。
と混合し、9℃で5分間インキュベート後Lacmm
l iにより記載されるJ:うに12.5%ゲルのSD
Sポリアクリルアミドゲル電気泳リノすか(プる。電気
泳動の優、ゲルの蛋白質を20%メタノールおよび0.
01SDS含イj12.5mHt−リスおよび96mM
グリシン中p117,5.95ポル1〜で6時間0.1
ミク[1ンのニトロヒルロースメンブレン上に電気10
ツ1〜する。ウェスタンプロット分析はfowbinら
[Proc、 Natl、 八cad、 Sc
i、 11.s、八、 76巻、4350頁(197
9年)]により記載されている通り行なった。
〈プライマー指示部位特異変異処理〉
ブライマー指示の部位特lJ′4変異処理はHorin
agaらL Biotcchnolou 2巻、636
頁(1984年)1により記載された方法によって行な
った。
agaらL Biotcchnolou 2巻、636
頁(1984年)1により記載された方法によって行な
った。
変We処Jllを行なうために使用する合成オリゴヌク
レオチドは仙り/υ耐酸法 aoaucaoeら。
レオチドは仙り/υ耐酸法 aoaucaoeら。
Ietral+ydron Latt、 22巻、1
859貞(1981年) : Hajteucci
ら、 J、 Am、 Chcm、 Sac、 103
巻、3185頁(1981年)]により自動合成装UJ
を用いて調製し、uaxamら[8ettlOdS i
ncnzymo+ogy65巻、499頁(1980年
)]の方法によるポリアクリルアミドゲル電気泳動によ
り精製する。
859貞(1981年) : Hajteucci
ら、 J、 Am、 Chcm、 Sac、 103
巻、3185頁(1981年)]により自動合成装UJ
を用いて調製し、uaxamら[8ettlOdS i
ncnzymo+ogy65巻、499頁(1980年
)]の方法によるポリアクリルアミドゲル電気泳動によ
り精製する。
〈コロニーハイブリダイピージョン〉
コロニーハイブリダイゼーションはGrunstein
ら [Proc、 Natl、 八cad、 S
ci、、Il、S、^、 72 巻、 3961 、
fj (1975年)]の方法により行なった。
ら [Proc、 Natl、 八cad、 S
ci、、Il、S、^、 72 巻、 3961 、
fj (1975年)]の方法により行なった。
プライマー指示部位特異変異処理に用いたと同じオリゴ
ヌクレオチドをManiatisら[Ce1l 15
’5゜687頁(1978年)コの記4Xするポリヌク
レオヂドキナーゼを用いて5′末端を32P−ATPで
標識してハイブリダイゼーションのプローブとした。
ヌクレオチドをManiatisら[Ce1l 15
’5゜687頁(1978年)コの記4Xするポリヌク
レオヂドキナーゼを用いて5′末端を32P−ATPで
標識してハイブリダイゼーションのプローブとした。
B、プラスミドpEV210ag15−512(7)構
築 上に示したように、gag/enVFIA合蛋白質を発
現する最後の発現プラスミドの構築は先ず最初の14個
のアミン末端残塁以外の全てをコードするヌクレオチド
を含むプラスミド(pEV2/gag15−512>の
構築に始まる。次にgagのカルボキシ末端の残塁をコ
ードするヌクレオチドのいくつかをenv配列で置換し
て最後の融合産物を得る。
築 上に示したように、gag/enVFIA合蛋白質を発
現する最後の発現プラスミドの構築は先ず最初の14個
のアミン末端残塁以外の全てをコードするヌクレオチド
を含むプラスミド(pEV2/gag15−512>の
構築に始まる。次にgagのカルボキシ末端の残塁をコ
ードするヌクレオチドのいくつかをenv配列で置換し
て最後の融合産物を得る。
プラスミドI)EV2/C1aQ15−512を作成す
るため9ag蛋白質の15−512残基をコードするD
NA配列をH丁L V −IIIプロウィルスを含む組
換えファージラムダクローンλHX B −3の50μ
りより50中位のCj!aIおよび50中位のHi n
c Ifを用いて37℃120分間消化して1700
bp断片を得る。このDNAff1片を分離用アガロー
スゲル電気泳動により単離し、0.148+1!度のT
E Il kW液[1a+14トリス−塩酸(D11
7.4)および0.1mHED−rA]に再けん濁しで
終濃度を0.03μmole /Illとする。
るため9ag蛋白質の15−512残基をコードするD
NA配列をH丁L V −IIIプロウィルスを含む組
換えファージラムダクローンλHX B −3の50μ
りより50中位のCj!aIおよび50中位のHi n
c Ifを用いて37℃120分間消化して1700
bp断片を得る。このDNAff1片を分離用アガロー
スゲル電気泳動により単離し、0.148+1!度のT
E Il kW液[1a+14トリス−塩酸(D11
7.4)および0.1mHED−rA]に再けん濁しで
終濃度を0.03μmole /Illとする。
!J a gI) NΔ断片を挿入するためにE。
coliの発現プラスミドDEV−vrf’2を5単イ
QのC1a Iおよび5単位のP V LJ IFで3
7℃60分間消化し、λP、プロモーターを含む170
011所片を1%7ガロースゲルの電気泳動で単離して
エタノール沈でん後回けん濁して終濃度0、03DIl
+010 /μlとする。
QのC1a Iおよび5単位のP V LJ IFで3
7℃60分間消化し、λP、プロモーターを含む170
011所片を1%7ガロースゲルの電気泳動で単離して
エタノール沈でん後回けん濁して終濃度0、03DIl
+010 /μlとする。
この構築に用いるプラスミドpEV−vrf2は容易に
入手できるプラスミドo f3 R322[ATCC3
1344]の誘導体である。1ラスミドOE V −V
r f 2の構築はCrawlらしGcnc38巻、
31頁(1985年)]により詳細に記載されている。
入手できるプラスミドo f3 R322[ATCC3
1344]の誘導体である。1ラスミドOE V −V
r f 2の構築はCrawlらしGcnc38巻、
31頁(1985年)]により詳細に記載されている。
本構築に用いる組換えファージラムダクローンλI−I
X B −3はShawらし5cience 226
巻、1165頁(1984年)1により記載されている
。本クローンは上述のとおり14王LV−■に感染した
l−1−9I11111株より標準の組換えDNA技術
を用いて得られる。本発明の使用に適したH 9 /
HT L V −III B 、!:命名り、 タH−
r L V −1[1%染ヒトm胞はΔmcrican
Type culture Co11ectionに
寄託番号C1で18543として寄託されている。
X B −3はShawらし5cience 226
巻、1165頁(1984年)1により記載されている
。本クローンは上述のとおり14王LV−■に感染した
l−1−9I11111株より標準の組換えDNA技術
を用いて得られる。本発明の使用に適したH 9 /
HT L V −III B 、!:命名り、 タH−
r L V −1[1%染ヒトm胞はΔmcrican
Type culture Co11ectionに
寄託番号C1で18543として寄託されている。
shawらはHTLV−[[[1伝子の配列を報告して
いるので、それらのデータを用いてONへプローブを容
易に合成でき、そのプローブを用いて1」−9またはウ
ィルスを増殖できる他の細胞株の遺伝子を単離すること
ができる。
いるので、それらのデータを用いてONへプローブを容
易に合成でき、そのプローブを用いて1」−9またはウ
ィルスを増殖できる他の細胞株の遺伝子を単離すること
ができる。
300 paroleのga(J/C1aT−Hi n
cI[断片を0.03 pmoleのpEV−vrt’
2/C1aI−PvuU断片と混ぜ、200単位の1’
4 D N△リガーゼを用いて反応液10μβ中で1
5℃18時間ライゲージコンを行なう。その生成物をE
、coli MC1061株(pRK248 c [
t s )に形′d転換し、転換株をアンピシリン白石
LB寒天平板で30℃18時間インキコベーションして
選択した。組換えプラスミドDNAはBQJI、pst
Tまたはl−1i n d mで切断後、制限断片の大
きさを分析し−C確認した。
cI[断片を0.03 pmoleのpEV−vrt’
2/C1aI−PvuU断片と混ぜ、200単位の1’
4 D N△リガーゼを用いて反応液10μβ中で1
5℃18時間ライゲージコンを行なう。その生成物をE
、coli MC1061株(pRK248 c [
t s )に形′d転換し、転換株をアンピシリン白石
LB寒天平板で30℃18時間インキコベーションして
選択した。組換えプラスミドDNAはBQJI、pst
Tまたはl−1i n d mで切断後、制限断片の大
きさを分析し−C確認した。
DNAの大ぎさの分析で正しかったものについて<)
a gi前駆ポリペプチドの合成をSOSポリアクリル
アミドゲル電気泳動おJ:びウニタンプロット分析でj
’F Idli シた。
a gi前駆ポリペプチドの合成をSOSポリアクリル
アミドゲル電気泳動おJ:びウニタンプロット分析でj
’F Idli シた。
プラスミドDEV2/(Jagl 5−512を保心す
る細菌を40℃で誘々し、その試料を二連でSOSポリ
アクリルアミドゲル雷気泳動による分析の調製をした。
る細菌を40℃で誘々し、その試料を二連でSOSポリ
アクリルアミドゲル雷気泳動による分析の調製をした。
電気波faJ後ゲルを分けて半分をウマシーブリリアン
1−ブルーで染色し、ゲルの残りの半分を電気プロット
及び抗−〇aQ抗体を用いてウェスタンプロット分析に
かけた。
1−ブルーで染色し、ゲルの残りの半分を電気プロット
及び抗−〇aQ抗体を用いてウェスタンプロット分析に
かけた。
分析の結果、誘導細胞はゲル中で見かけの分子量がおよ
そ56および53にdの二つの主要バンドで移v)する
蛋白質を生産することがわかった。完全なgag15−
512蛋白質の大きさは約56Kdである。両方の主要
蛋白質とも抗−9ag抗体と反応した。抗体と反応性の
ある多くの低分子蛋白質も観察された。
そ56および53にdの二つの主要バンドで移v)する
蛋白質を生産することがわかった。完全なgag15−
512蛋白質の大きさは約56Kdである。両方の主要
蛋白質とも抗−9ag抗体と反応した。抗体と反応性の
ある多くの低分子蛋白質も観察された。
本発明の最終典型的プラスミドに存在するenv配列は
二つのステップ(このセクションおよび次のセクション
Dに記載)で導入され、各ステップともプライマー指示
部位特異変りマによる特異短鎖ヌクレオチド配列の欠員
を包含する。これらのはじめの欠損(このセクションに
記載)はプラスミド0EV3/env44−640Δ3
19−331Δ514−524を生成するのに(セクシ
ョンD)必要である。
二つのステップ(このセクションおよび次のセクション
Dに記載)で導入され、各ステップともプライマー指示
部位特異変りマによる特異短鎖ヌクレオチド配列の欠員
を包含する。これらのはじめの欠損(このセクションに
記載)はプラスミド0EV3/env44−640Δ3
19−331Δ514−524を生成するのに(セクシ
ョンD)必要である。
λHXB−3およびpEv−vrfプラスミドからの発
現プラスミドpEV3/env44−64(b)の構築
はcrowtら[Ce1141巻、979頁(1985
年)Jにより記載されており、それは[:、coli中
で68にd HTLV−[[[env特異蛋白質の合
成を指示する。envアミノ酸残基319−331に対
応するDNA配列をブライマー指示変異により、187
−合成オリゴヌクレオチド3 ’ GCA TTT G
TT AACATT AGT 3 ’ を用いて削除し
た。このオリゴヌクレオチドはenv配列を補足して第
318残基をコードするヌクレオチドと第332残基を
コードするヌクレオチドとを結合するように設計されて
いる。これらの配列を合わせた結果、プラスミドDNA
中に新たに独特なI−1pa 1:部位が導入され、3
9bpが削除される。
現プラスミドpEV3/env44−64(b)の構築
はcrowtら[Ce1141巻、979頁(1985
年)Jにより記載されており、それは[:、coli中
で68にd HTLV−[[[env特異蛋白質の合
成を指示する。envアミノ酸残基319−331に対
応するDNA配列をブライマー指示変異により、187
−合成オリゴヌクレオチド3 ’ GCA TTT G
TT AACATT AGT 3 ’ を用いて削除し
た。このオリゴヌクレオチドはenv配列を補足して第
318残基をコードするヌクレオチドと第332残基を
コードするヌクレオチドとを結合するように設計されて
いる。これらの配列を合わせた結果、プラスミドDNA
中に新たに独特なI−1pa 1:部位が導入され、3
9bpが削除される。
プラスミドpEV3/env44.−640中の3 t
LJ IおよびHi n d m部位はヘテ1」二重
鎖分子のギVツブをつくるのに利用する。
LJ IおよびHi n d m部位はヘテ1」二重
鎖分子のギVツブをつくるのに利用する。
コ自ニー検索で32p−標識合成オリゴヌクレオチドと
のハイブリダイぜ−シコン陽性であったコ[に−から単
1lII したDNAでMC1061(l(K248c
I ts)を形質転換し、新しい独特のHpaI部位
の存在を分析する。
のハイブリダイぜ−シコン陽性であったコ[に−から単
1lII したDNAでMC1061(l(K248c
I ts)を形質転換し、新しい独特のHpaI部位
の存在を分析する。
D、プラスミ゛DEV3/env44−640△env
をコードする配列内の第二番目の欠1日は配列5’ A
GA GCA GTG GCA GCA GGA 3’
ヲtiT ル合成オリゴヌクレオチドを用いてブライ
マー指示変異により実施した。このオリゴヌクレオチド
はenv蛋白質の第513残基をコードする配列を第5
25番目の残塁をコードする配列に隣接して配趙し、従
って514−524残基をコードするヌクレオチドの欠
損が達成できる。この欠損はプラスミド中でト1paI
および)l i n d m制限部位を用いてenv領
域内に一重鎖のギャップを形成する。
をコードする配列内の第二番目の欠1日は配列5’ A
GA GCA GTG GCA GCA GGA 3’
ヲtiT ル合成オリゴヌクレオチドを用いてブライ
マー指示変異により実施した。このオリゴヌクレオチド
はenv蛋白質の第513残基をコードする配列を第5
25番目の残塁をコードする配列に隣接して配趙し、従
って514−524残基をコードするヌクレオチドの欠
損が達成できる。この欠損はプラスミド中でト1paI
および)l i n d m制限部位を用いてenv領
域内に一重鎖のギャップを形成する。
再び形質転換した後、32P−標識オリゴヌクレオチド
プローブにより陽性と同定されたもののDNAにつき、
l−1p a Iおよび1lindlllにより制限部
ω1および続く1%アガロースでの雷気泳初により33
bpの欠損を分析する。この欠間はまたHaXallお
よびG11bert [Hethods in Fn
zymology65巻、499頁(1980年)]の
方法による化学切断でのl) N A配列決定によって
も確認された。
プローブにより陽性と同定されたもののDNAにつき、
l−1p a Iおよび1lindlllにより制限部
ω1および続く1%アガロースでの雷気泳初により33
bpの欠損を分析する。この欠間はまたHaXallお
よびG11bert [Hethods in Fn
zymology65巻、499頁(1980年)]の
方法による化学切断でのl) N A配列決定によって
も確認された。
前述のとJメリ、Δ514−524欠10はenvの発
現を0意に増加させた。
現を0意に増加させた。
築
2μりのpEV2/gaol 5−512を5単位の(
、”; 1 a 、[および4単位の13qlI[で二
重消化してgag残基15−436をコードする130
0h断片、または1015.1ff、のPstIおよび
5単4(b)のC1a■でλP1プロモーターを含むお
よそ1 Kl)f9i P’+を得る。0.3μyのp
EV3/env’l 4−−640Δ31 9−33
1 Δ514−524を゛10100PstIおよび
4単位のBQj!nでIJ)断しrenv残t;< 4
67−640Δ511−524を=1−ドするおよそ/
lKbの断片を得る。
、”; 1 a 、[および4単位の13qlI[で二
重消化してgag残基15−436をコードする130
0h断片、または1015.1ff、のPstIおよび
5単4(b)のC1a■でλP1プロモーターを含むお
よそ1 Kl)f9i P’+を得る。0.3μyのp
EV3/env’l 4−−640Δ31 9−33
1 Δ514−524を゛10100PstIおよび
4単位のBQj!nでIJ)断しrenv残t;< 4
67−640Δ511−524を=1−ドするおよそ/
lKbの断片を得る。
このようにしC調製した種々のDNA断片を前述のとお
り1%アガロースで分離し、回収する。
り1%アガロースで分離し、回収する。
単離した夫々のDNA断片を0.031)1010ずつ
混合し、200 C1i位のT4リガーピの存在下で1
5°C118時間ライゲーションする。次に結合反応生
成物でMC,1061(pRK248CItS)を形質
転換し、形質転換株をアンピシリン含有L B寒天平板
上で選択する。特有のコロニーからプラスミドDNAを
調製し、PvuII消化後の制限断片ナイスの分析によ
りJJv認した。
混合し、200 C1i位のT4リガーピの存在下で1
5°C118時間ライゲーションする。次に結合反応生
成物でMC,1061(pRK248CItS)を形質
転換し、形質転換株をアンピシリン含有L B寒天平板
上で選択する。特有のコロニーからプラスミドDNAを
調製し、PvuII消化後の制限断片ナイスの分析によ
りJJv認した。
甲離株12個のうち11株が予想通り3505および2
882bp17)PvulIIFi片を杓する正シイD
NA分析結果を示した6陽性株のうらの2株につきga
Q/enVFi&合蛋白質の合成を評価した。
882bp17)PvulIIFi片を杓する正シイD
NA分析結果を示した6陽性株のうらの2株につきga
Q/enVFi&合蛋白質の合成を評価した。
これらの株を誘導し、細胞試料をとってSDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動、電気ブロワ1−およびウェス
タンプロットによる分析を行ない、その結果を第3図に
示す。
リルアミドゲル電気泳動、電気ブロワ1−およびウェス
タンプロットによる分析を行ない、その結果を第3図に
示す。
第3図の写真1はCJaCJ/enV@合遺伝子を含む
組換えプラスミド保有細胞から(’J / e ) j
3よび対照細胞から(C)の細胞全蛋白質のクマシーブ
ルー染色である。写真2および3は同じ試料のウェスタ
ンプロット分析で、env残基500=511に相当す
る合成ペプチドに対するウリ“ギボリクローナル抗体を
用いた場合(写L’& 2 ) J3よび市販されてい
るgag蛋白質p24に対する羊ポリクローナル抗体[
写真3、p24蛋白質についてはDowbcnkoら、
Proc、 Natl、八cad、 Sci。
組換えプラスミド保有細胞から(’J / e ) j
3よび対照細胞から(C)の細胞全蛋白質のクマシーブ
ルー染色である。写真2および3は同じ試料のウェスタ
ンプロット分析で、env残基500=511に相当す
る合成ペプチドに対するウリ“ギボリクローナル抗体を
用いた場合(写L’& 2 ) J3よび市販されてい
るgag蛋白質p24に対する羊ポリクローナル抗体[
写真3、p24蛋白質についてはDowbcnkoら、
Proc、 Natl、八cad、 Sci。
U、S、A、82巻、7748頁(1985年)参照の
こと」を用いた場合を示しである。第3図で写真2 お
よび3の免疫複合体は西洋ワサビベル第1ニジダーゼで
標識した第二の抗体により検出し、分子i1マーカーの
移動度ら示しである(にdで表示)。
こと」を用いた場合を示しである。第3図で写真2 お
よび3の免疫複合体は西洋ワサビベル第1ニジダーゼで
標識した第二の抗体により検出し、分子i1マーカーの
移動度ら示しである(にdで表示)。
ゲル中でのOF3 CJ / e rl V 蛋白質の
バンドは矢印で示した。
バンドは矢印で示した。
本発明の精神およびその範囲から逸脱することイ1く教
多くの変更および変形を行なうことが出来ることは当業
者にとって明らかなことである。例えば、本発明のg
a C:J7e n v蛋白質をコードする迫仏子に塩
M置換を行ない(本明細山に参8資料として慣げた配列
データを用いて)、それからいくらか異なる融合蛋白質
(しかし機能的に同等)を生成で・きる。そのような改
良蛋白質も、HT L V −I[1ウイルスのgag
およびenv蛋白質の配列に対応する少なくとも一つの
抗原性決定因子を有する限り、本発明に包含される。同
様に、本発明の蛋白質のアミノ配列自体も直接変化させ
ることができ、同じ結果である。木明11[1iJに記
載される具体的な態様は例示としてのみであり、本発明
は特許請求の範囲の項によってのみ制限されるものであ
る。
多くの変更および変形を行なうことが出来ることは当業
者にとって明らかなことである。例えば、本発明のg
a C:J7e n v蛋白質をコードする迫仏子に塩
M置換を行ない(本明細山に参8資料として慣げた配列
データを用いて)、それからいくらか異なる融合蛋白質
(しかし機能的に同等)を生成で・きる。そのような改
良蛋白質も、HT L V −I[1ウイルスのgag
およびenv蛋白質の配列に対応する少なくとも一つの
抗原性決定因子を有する限り、本発明に包含される。同
様に、本発明の蛋白質のアミノ配列自体も直接変化させ
ることができ、同じ結果である。木明11[1iJに記
載される具体的な態様は例示としてのみであり、本発明
は特許請求の範囲の項によってのみ制限されるものであ
る。
第1図はgaO蛋白質および(JaQ/env蛋白質の
合成のための発現プラスミドの模式図である。第2図は
(J a g/ e n v融合遺伝子の塩基配列およ
びそれより予想される(] a g/(3n v/3白
質のアミノ酸配列を示す構造図である。第3図は1:、
coli中で生成されるQ a Q/e n V蛋白質
のSDSポリアクリルアミドゲル電気泳動分析の結果を
示ヂ電気泳動図である。
合成のための発現プラスミドの模式図である。第2図は
(J a g/ e n v融合遺伝子の塩基配列およ
びそれより予想される(] a g/(3n v/3白
質のアミノ酸配列を示す構造図である。第3図は1:、
coli中で生成されるQ a Q/e n V蛋白質
のSDSポリアクリルアミドゲル電気泳動分析の結果を
示ヂ電気泳動図である。
Claims (40)
- (1)HTLV−IIIgag蛋白質またはHTLV−II
Ienv蛋白質の少なくとも一つの抗原性決定因子に対
応するアミノ酸配列を有する蛋白質。 - (2)以下に示すアミノ酸配列またはそれに同等な機能
的な部分。 【アミノ酸配列があります】 - (3)本質的に純粋な形の特許請求の範囲第(1)項ま
たは第(2)項のいずれか一つに記載の蛋白質。 - (4)特許請求の範囲第(1)項から(3)項のいずれ
か一つに記載の蛋白質をコードするDNA配列。 - (5)次式で示す核酸配列の全てまたは一部よりなるD
NA配列である特許請求の範囲第(4)項記載のDNA
配列または機能的にそれと同等なもの。 【DNA配列があります】 - (6)特許請求の範囲第(4)項または(5)項のいず
れか一つに記載のDNAを含み、適合性単細胞宿主中で
該DNAの発現を行なうことのできる組換えベクター。 - (7)プラスミドpEV2/gag15−436/en
v467−640Δ514−524である特許請求の範
囲第(6)項記載の組換えベクター。 - (8)特許請求の範囲第(6)項または(7)項のいず
れか一つに記載の組換えベクターを含む単細胞生物。 - (9)原核細胞である特許請求の範囲第(8)項記載の
単細胞生物。 - (10)Escherichia coli細胞である
特許請求の範囲第(9)項記載の単細胞生物。 - (11)Escherichia coli MC10
61細胞である特許請求の範囲第(10)項記載の単細
胞生物。 - (12)真核細胞である特許請求の範囲第(8)項記載
の単細胞生物。 - (13)ワクチンの成分としての特許請求の範囲第(1
)項から(3)項のいずれか一つに記載の蛋白質。 - (14)抗原としての特許請求の範囲第(1)項から(
3)項のいずれか一つに記載の蛋白質。 - (15)次のステップより成る特許請求の範囲第(1)
項から(3)項のいずれか一つに記載の蛋白質を生産す
る方法。 (a)特許請求の範囲第(6)項または(7)項のいず
れか一つに記載の組換えベクターを含む単細胞生物を該
蛋白質が発現するような適当な生育条件下で培養し、 (b)培養物より該蛋白質を単離し、必要ならそれを精
製する。 - (16)単細胞生物がE.coli細胞である特許請求
の範囲第(15)項記載の方法。 - (17)組換えベクターがプラスミドpEV2/gag
15−436/env467−640Δ514−524
である特許請求の範囲第(16)項記載の方法。 - (18)特許請求の範囲第(6)項または(7)項のい
ずれか一つに記載の組換えベクターを単細胞生物に導入
することを特徴とする特許請求の範囲第(8)項から(
12)項のいずれか一つに記載の単細胞生物を調製する
方法。 - (19)組換えベクターを形質転換により単細胞生物に
導入する特許請求の範囲第(18)項記載の方法。 - (20)組換えベクターを形質導入により単細胞生物に
導入する特許請求の範囲第(18)項記載の方法。 - (21)組換えベクターをトランスフエクシヨンにより
単細胞生物に導入する特許請求の範囲第(18)項記載
の方法。 - (22)ヒト血清中のAIDSウィルスに対する抗体の
存在を検出する次のステップより成る方法。 (a)特許請求の範囲第(1)項から(3)項のいずれ
か一つに記載の蛋白質を標識し、 (b)ステップ(a)の標識蛋白質をヒト血清試料と反
応させ、反応液中で標識蛋白質−抗体複合体を形成させ
、 (c)ステップ(b)の標識蛋白質−抗体複合体を測定
する。 - (23)ヒト血清中のAIDSウィルスに対する抗体の
存在を検出する以下のステップより成る方法。 (a)特許請求の範囲第(1)項〜(3)項のいずれか
一つに記載の蛋白質を固体担体に固定化し、(b)ヒト
血清試料をステップ(a)の固定蛋白質と接触して固定
化蛋白質−抗体複合体を形成させ、(c)未反応の蛋白
質および抗体をステップ(b)の複合体から洗い除き、 (d)その複合体を標識したスタフイロコツカス・アウ
レウスのプロテインおよび標識した第二の抗ヒトIgG
抗体から成るグループから選択される試薬を添加するこ
とにより測定する。 - (24)ヒト血清または他の生体試料中のAIDSウィ
ルスまたはその断片の存在を検出する以下のステップよ
り成る方法。 (a)ヒト血清または生体試料を特許請求の範囲第(1
)項から(3)項のいずれか一つに記載の蛋白質に対し
て生成した抗体の既知力価と反応させ、 (b)抗体と試料を反応させて反応液中で抗原−抗体複
合体を形成させ、 (c)ステップ(b)の抗原−抗体複合体を検出する。 - (25)抗体を酵素標識し、反応液中に形成した抗原−
抗体複合体を酵素結合免疫吸着アツセイにより検出する
特許請求の範囲第(24)項記載の方法。 - (26)放射活性標識した特許請求の範囲第(1)項か
ら第(3)項のいずれか一つに記載の蛋白質の既知量を
血清または他の生体試料に添加し、反応液中に形成する
抗原−抗体複合体を放射免疫アツセイにより検出する特
許請求の範囲第(24)項記載の方法。 - (27)特許請求の範囲第(1)項から第(3)項のい
ずれか一つに記載の蛋白質を生理的に使用できる担体と
混合して成るワクチンの調製方法。 - (28)哺乳動物またはニワトリに十分量の特許請求の
範囲第(1)項から(3)項のいずれか一つに記載の蛋
白質を注射して該蛋白質に対する抗体生産を誘導し、該
動物の血清から該抗体を回収することより成るAIDS
ウィルスに対する抗体の調製方法。 - (29)特許請求の範囲第(1)項から(3)項のいず
れか一つに記載の蛋白質および適合した医薬担体から成
るワクチン製剤。 - (30)特許請求の範囲第(1)項〜(3)項のいずれ
か一つに記載の蛋白質に対して生成した抗体。 - (31)モノクローナル抗体である特許請求の範囲第(
30)項記載の抗体。 - (32)特許請求の範囲第(1)項から第(3)項のい
ずれか一つに記載の蛋白質の予防免疫ワクチンとしての
使用。 - (33)特許請求の範囲第(1)項から第(3)項のい
ずれか一つに記載の蛋白質のAIDSウィルスに対する
抗体調製への使用。 - (34)特許請求の範囲第(1)項から第(3)項のい
ずれか一つに記載の蛋白質のヒト血清中におけるAID
Sウィルスに対する抗体の存在検出への使用。 - (35)特許請求の範囲第(15)項記載の方法により
調製した特許請求の範囲第(1)項から(3)項のいず
れか一つに記載の蛋白質。 - (36)特許請求の範囲第(18)項から(21)項の
いずれか一つに記載の方法により調製した特許請求の範
囲第(8)項から(12)項のいずれか一つに記載の単
細胞生物。 - (37)特許請求の範囲第(28)項記載の方法により
調製した特許請求の範囲第(30)項または(31)項
のいずれか一つに記載の抗体。 - (38)特許請求の範囲第(27)項記載の方法により
調製した特許請求の範囲第(29)項記載のワクチン。 - (39)容器中に特許請求の範囲第(1)項−(3)項
のいずれか一つに記載の蛋白質を含むAIDSウィルス
に対する抗体測定のためのテストキット。 - (40)特許請求の範囲第(1)項−(3)項のいずれ
か一つに記載の蛋白質により誘導されたAIDSウィル
スに対する抗体を容器中に含むAIDSウィルス測定の
ためのテストキット。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US06/848,671 US4925784A (en) | 1986-04-04 | 1986-04-04 | Expression and purification of an HTLV-III gag/env gene protein |
US848671 | 1986-04-04 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62244393A true JPS62244393A (ja) | 1987-10-24 |
JP2625118B2 JP2625118B2 (ja) | 1997-07-02 |
Family
ID=25303966
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62082197A Expired - Lifetime JP2625118B2 (ja) | 1986-04-04 | 1987-04-02 | Htlv−▲iii▼gag/env遺伝子蛋白質の発現と精製 |
Country Status (23)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4925784A (ja) |
JP (1) | JP2625118B2 (ja) |
KR (1) | KR930001118B1 (ja) |
AT (1) | AT400442B (ja) |
AU (1) | AU599091B2 (ja) |
BE (1) | BE1001973A5 (ja) |
BR (1) | BR8701528A (ja) |
CA (1) | CA1341249C (ja) |
CH (1) | CH676004A5 (ja) |
DE (3) | DE3711016A1 (ja) |
DK (1) | DK172274B1 (ja) |
ES (3) | ES2004133A6 (ja) |
FR (1) | FR2606422B1 (ja) |
GB (1) | GB2188639B (ja) |
IL (1) | IL82088A (ja) |
IT (1) | IT1203851B (ja) |
NL (1) | NL192275C (ja) |
NO (1) | NO871409L (ja) |
NZ (1) | NZ219837A (ja) |
SE (1) | SE8701413L (ja) |
SG (1) | SG102792G (ja) |
SU (1) | SU1644720A3 (ja) |
ZA (1) | ZA871724B (ja) |
Cited By (5)
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