JPH0684372B2 - 酸開裂性架橋試薬 - Google Patents

酸開裂性架橋試薬

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JPH0684372B2
JPH0684372B2 JP3211453A JP21145391A JPH0684372B2 JP H0684372 B2 JPH0684372 B2 JP H0684372B2 JP 3211453 A JP3211453 A JP 3211453A JP 21145391 A JP21145391 A JP 21145391A JP H0684372 B2 JPH0684372 B2 JP H0684372B2
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Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の背景】本発明はアミノ基を有する物質の液体媒
質への制御された放出及びかかる放出において用いる架
橋試薬に関する。
【０００２】アミノ含有物質の液体媒質への放出を制御
することが望ましい状態が多数有る。例として、細胞集
団或は細胞集団の内の特定部分へのアミノ基含有薬剤又
は細胞毒素の放出を制御するのが望ましいことがあろ
う。また、例えば、ペプチド或はタンパク質等の大きな
アミノ基含有分子の複合体における空間的関係を分析す
る際に、種々の架橋タンパク質或はペプチドの開裂を制
御するのが望ましいこともあろう。［「ペプチド」なる
用語は、本出願中、タンパク質を、いかに大きいもので
あっても、並びに短い鎖のペプチドを含むのに用い
る。］
【０００３】制御した放出が望ましい特定の状態の１つ
は、生物学的に活性な化合物を細胞膜を通して内細胞構
造に送達し、例えば、そこで化合物は細胞膜の外側媒質
中に捕えられるならば低い又は減じた作用を有するが、
細胞内で一担放出されれば一層効力が出る。
【０００４】また、生物学的に活性な化合物を異種細胞
集団中の選択細胞に送達することも望ましい。例えば、
ウィルス感染細胞或は変化した細胞或は悪性細胞等の病
気にかかった或は感染した細胞を治療する際に、細胞毒
素を病気にかかった細胞或は悪性の細胞に送達すること
が望ましく、正常の細胞に送達することは望ましくな
い。
【０００５】悪性細胞を生物学的に活性な化合物の目標
にするのに開示される１つのアプローチは、抗体−毒素
結合体（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）を用いる。抗体は悪性細
胞に対して特異でありかつ毒素を悪性細胞に送達する。
このような系は、有効であるためには、標的細胞への選
択性の高い毒素を、活性物質の効能を不必要に低減させ
ないで送達すべきである。これらの問題は、目標が生体
内で正常の細胞を害しないで感染した或は病気にかかっ
た細胞を破壊することである場合に特に重要である。
【０００６】種々の開裂性二官能価の架橋剤が知られて
いる。ランバート（Ｌａｍｂｅｒｔ）等（１９８１年）
のＪ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１４９巻、４５１〜４７６頁
及びワング（Ｗａｎｇ）等（１９７４年）のＩｓｒ．
Ｊ．Ｃｈｅｍ．１２巻、３７５〜３８９頁は、開裂性ジ
スルフィド結合を含有する二官能価架橋試薬を開示して
いる。この試薬は生化学系の特性を示すのに用いられ
る。ルッター（Ｌｕｔｔｅｒ）等（１９７４年）のＦＥ
ＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ ４８巻、２８８〜２９２頁は、
過ヨウ素酸塩酸化によって開裂することのできるｖｉｃ
−グリコール結合を有する二官能価架橋試薬を開示して
いる。
【０００７】カールソン（Ｃａｒｌｓｓｏｎ）等（１９
７８年）のＢｉｏｃｈｅｍ Ｊ．１７３巻、７２３〜７
３７頁は、二官能価試薬Ｎ−スクシンイミジル−３−
（２−ピリジルジチオ）プロピオネートを用いて２つの
異るタンパク質間にジスルフィド結合を形成する手順に
ついて開示している。
【０００８】より詳細には、ある種のモノクローナル抗
体、毒素及びそれらの結合体が知られている。ビテッタ
（Ｖｉｔｅｔｔａ）等（１９８３年）、サイエンス、２
１９巻、６４４〜６５０頁及びエドワーズ（Ｅｄｗａｒ
ｄｓ）（１９８３年）、Ｐｈａｒｍａｃｏｌ、Ｔｈｅ
ｒ． ２３巻、１４７〜１７７頁は、細胞−表面構造に
特異な毒素とモノクロナール抗体とのジスルフィド結合
した結合体を開示している。これらの結合体を用いて毒
素を抗体が認識する表面構造を有する特異細胞を標的に
している。
【０００９】ラマクリシュナン（Ｒａｍａｋｒｉｓｈｎ
ａｎ）等（１９８４年）キャンサーリサーチ、４４巻、
１３９８〜１４０４頁は、アメリカヤマゴボウ（ｐｏｋ
ｅｗｏｏｄ）抗ウィルス性タンパク質（ＰＡＰ）をモノ
クローナル抗体である抗チミン（Ｔｈｙ）１．１に接合
させることを開示している。この結合体を用いてチミン
１．１−陽性標的白血病細胞におけるタンパク質合成を
選択的に抑制している。この結合体を形成するのに用い
るリンカーはＮ−スクシンイミジル−３−（２−ピリジ
ルジチオ）プロピオネートである。ジスルフィド結合を
開裂すれば、遊離のＰＡＰ毒素を産生する。
【００１０】リッツ（Ｒｉｔｚ）等（１９８０年）、ネ
ーチャー、２８３巻、５８３〜５８５頁は、通常の急性
リンパ芽球白血病抗原に特異なモノクローナル抗体（Ｊ
５）を開示している。
【００１１】バービエリ（Ｂａｉｂｉｅｒｉ）等（１９
８２年）バイオケミストリージャーナル、２０３巻、５
５〜５９頁はアメリカヤマゴボウ抗ウィルスタンパク質
−Ｓ（「ＰＡＰ−Ｓ」）として知られる抗ウィルスタン
パク質の精製及び部分特性表示について開示している。
【００１２】スターペ（Ｓｔｉｒｐｅ）等（１９８０
年）、ジャーナルオブバイオロジカルケミストリー
（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．），２５５巻、６９４７〜
６９５３頁はタンパク質毒素であるゲロニン（ｇｅｌｏ
ｎｉｎ）の製造法について開示している。
【００１３】ネビル（Ｎｅｖｉｌｌｅ）等の米国特許
４，３５９，４５７号は抗チミン１．２モノクローナル
抗体とリシン（ｒｉｃｉｎ）との結合体をリンパ腫に対
する腫瘍抑制組成物として使用することを開示してい
る。使用する結合剤はｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−
ヒドロキシスクシンイミドである。
【００１４】上記のアプローチは抗体−毒素結合体の毒
性に依存するか、或は毒素の放出を標的細胞に送達する
前に一時的に制御し及び空間的に回避するのが困難であ
り得る現象であるジスルフィド結合開裂に依存する。
【００１５】カービィ（Ｋｉｒｂｙ）等（１９７０
年）、Ｐｒｏｃ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｓｙｍｐ．
３１巻、９９〜１０３頁は、マレイン酸アミドがｐＨ３
より低い所で急速に加水分解され、かつマレインアミド
酸の置換がその速度を増大させ、ｔ−ブチル置換基が最
大の増加を与え、メチル置換基が最小の増加を与えるこ
とを開示している。
【００１６】ジクソン（Ｄｉｘｏｎ）等（１９６８
年）、Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．１０９巻、３１２〜３１４
頁は無水２−メチルマレイン酸（「シトラコン酸」）を
ブロッキング剤として使用するアミノ基の可逆ブロッキ
ングについて開示している。シトラコニル残基とインシ
ュリンのリジン残基との間のアミド基はｐＨ６．５にお
いて開裂されなかった。ｐＨを３．５に下げ一晩中２０
℃においた場合にブロッキング基の全放出があり、イン
シュリンは変わらないままであった。
【００１７】
【発明の要約】温和な酸性条件下でアミノ基含有物質の
制御された放出を可能にする一群の架橋剤を見出した。
発明は、一面において、アミノ基含有物質のアミノ窒素
と第二化合物のスルフヒドリル機能との間の酸開裂性結
合を形成するのに適した架橋試薬を特徴とする。架橋試
薬は下記の単位：
【００１８】
【化１１】 （式中、Ｒ１及びＲ２は独立に、Ｈ，Ｃ５又はそれ以下
のアルキル基から選び、Ａは橋（ブリッジ）単位を含
む）を含む。或は、架橋試薬は下記の単位：
【００１９】
【化１２】 （式中、Ｒ２はＨ，Ｃ５又はそれ以下のアルキル基から
選び、Ａはブリッジ単位を含み、ｓ＝２〜５である）を
含む。
【００２０】発明は、第２の面において、アミノ基含有
化合物をスルフヒドリル基含有化合物と架橋させて生じ
る架橋ヘテロダイマー複合体を特徴とする。アミノ基含
有化合物は複合体から、アミド結合を加水分解してアミ
ノ基含有化合物を再生する程に媒質のｐＨを下げること
によって放出される。発明の初めの２つの面の好ましい
実施態様において、ブリッジは下記の単位Ａ：
【００２１】
【化１３】 （ここで、Ｒ３−Ｒ６は独立にＨ、ハロゲン、Ｃ５又は
それ以下のアルコキシ及びアルキル基、第三アミンから
選び；Ｂはマレイミド機能へのリンカーであり、アミド
結合及びフェニレン基又は（ＣＨ２）ｑ（ｑ＝１〜５）
を含む）を含む。Ｒ３−Ｒ６及びＢは、単位Ａの環に結
合されたイオウが対応するチオフェノール化合物におい
て、Ａにおいてスルフィド基を形成する間にＯＨ−によ
って引き起こされる競争副反応を回避するような十分に
低いｐＫａを有するように選ぶ。例えば、チオフェノー
ルのｐＫａは１０．０より低い。
【００２２】また、好ましい実施態様において、Ａにお
ける芳香族環のスルフィド機能を（ＣＨ２）ｋ（ｋは１
〜５である）を含む基によってマレイン酸機能に結合さ
せる。最も好ましくは、Ｂはアミド機能であってその窒
素をＡの芳香族環にスルフィド機能に対しパラに結合さ
せかつそのカルボニル機能を（ＣＨ２）ｑ（ｑ＝１〜５
である）或はアリール基［最も好ましくは、マレイミド
結合がカルボニル結合に対しメタ或はパラである未置換
アリール基］によってマレイミド基の窒素に結合させた
ものを含む。
【００２３】また、生成した架橋複合体の好ましい実施
態様において、アミノ基含有物質は選択細胞に送達され
るべき生物学的に活性な物質であり、かつスルフヒドリ
ル基含有化合物はそれらの細胞について選択性の結合物
を含む。化合物は、発明の第４の面に関連して下記に一
層完全に説明する通りの活性物質を選択細胞に送達する
方法で用いる。
【００２４】発明は、第３の面において、チオフェノー
ル含有機能を含む化合物に活性化置換マレイン酸誘導体
を結合させる置換反応によって架橋剤を合成する方法を
特徴とする。反応はチオフェノールのスルフヒドリル基
をイオン化し、それによって競争ＳＮ２’置換反応を回
避する程に高くかつＯＨ−の競争反応を回避する程に低
いｐＨにおいて行う。次いで、生成した中間体をマレイ
ミド機能に結合させる。合成方法の好適な実施態様にお
いて、置換反応をｐＨ約９．５〜１１．５において行
い、最も好ましくはｐＨは１０．５〜１１．５、又は約
１１．０である。また、好適な実施態様において、チオ
フェノール含有機能はアミン窒素を含むアミド結合によ
ってマレイミド機能に結合されるアミンを含む。
【００２５】発明は、第４の面において、活性物質を選
択細胞の細胞−表面受容体に特異なスルフヒドリル−機
能化細胞−結合物に架橋させて形成した複合体に細胞を
露呈させることによって、生物学的に活性なアミノ基含
有物質を異質細胞集団の選択部分に送達する方法を特徴
とする。化合物は選択的にそれらの細胞に結合し、かつ
活性物質と架橋のマレイン酸機能との間のアミド結合を
開裂する程に低いｐＨに暴露されて活性物質を複合体か
ら放出する。
【００２６】第４の面の好適な実施態様において、生物
学的に活性な物質はペプチド又はタンパク質であり、最
も好ましくはリボソームを不活性化してタンパク質合成
を不活性化する細胞毒性物質である。細胞結合物はＪ５
抗体或はＴ３，Ｔ４，Ｔ１１又はＴ１２のＴ細胞表面抗
原に対する抗体等の細胞−表面抗原を認識する抗体、例
えばモノクローナル抗体である。
【００２７】また、好適な送達方法において、抗体は表
面抗原を含有する細胞の膜を横断して輸送されるもので
あり、そのため架橋複合体が細胞内に移送される。複合
体は一担細胞の中に入れば活性物質、例えばリボソーム
不活性化毒素を放出するのに十分な酸性度を自然に示す
特異な細胞画分に暴露され、こうして活性物質を有効か
つ選択的に放出する。
【００２８】発明はアミノ基含有物質か或は液体媒質系
の他の成分のどちらかを変質させ得る酸化又は還元条件
又は極端なｐＨ値を必要としない点で温和な注意深く制
御する条件下でアミノ基含有物質を液体媒質に送達する
ことを可能にする。その上、開裂は生体内系と一致する
程に温和であるだけでなく実際天然に起きる細胞内現象
によってもたらされるｐＨにおいて起きる。有利なこと
に、アミノ含有物質はそのｐＨにおいて確実に放出され
るが、より高いｐＨ値において安定に結合される。好ま
しくは、アミノ置換基の放出はｐＨ３．５〜５．５にお
いて、最も好ましくはｐＨ４．０〜５．０、又は約４．
５において達成される。その上、架橋及び放出プロセス
はユニットをアミノ基含有物質に付加したり、或はアミ
ノ基含有物質からユニットを減じたりしない。
【００２９】その他の特徴及び利点は下記の好適な実施
態様の説明及び請求の範囲の記載から明らかになるもの
と思う。
【００３０】
【好適な実施態様の説明】今、発明の好適な実施態様の
説明にとりかかり、初めに図面を簡潔に説明する。
【００３１】発明の特に好ましい２つの実施態様があ
る。１つは上述した通りに生物学的に活性なタンパク質
又はペプチドを細胞に送達する細胞送出（ｃｅｌｌ−ｄ
ｅｌｉｖｅｒｙ）剤である。他方はリボソーム複合体又
は多ユニット酵素等の大きなアミノ基含有分子を１個又
はそれ以上含む複合体を評価する道具である。複合体の
架橋部材によって、架橋成分を切り離し、次いで架橋成
分を分析するためにそれらの構造を変更しないで架橋成
分の結合を断つ（ｄｅｃｏｕｐｌｅ）ことが可能であ
る。複合体の部材及び架橋物質の出現及び消失を分析す
ることは、生命系の成分を評価し、かつそれによりこれ
らの系の治療の効果及びこれらの系における異常を追跡
する道具を提供する。
【００３２】
【細胞送出実施態様】細胞に送達されるべき好ましい生
物学的に活性な物質はタンパク質又はペプチド薬剤又は
酵素である。特に好適な実施態様において、活性物質は
選択細胞に送達されるべき細胞毒素である。このような
毒素は上述しかつアービン（Ｉｒｖｉｎ）（１９７５
年）、Ｐｈａｒｍａｃ．Ｔｈｅｒ． ２１巻、３７１〜
３８７頁におけるアメリカヤマゴボウ抗ウィルスタンパ
ク質ＰＡＰ、ＰＡＰＩＩ及びＰＡＰ−Ｓを含む。その他
のペプチド細胞毒素はリシンＡ鎖、アブリンＡ鎖、モデ
シン（ｍｏｄｅｃｃｉｎ）Ａ鎖並びにゲロニン及びバー
ビエリ（Ｂａｒｂｉｅｒｉ）等（１９８２年）、Ｃａｎ
ｃｅｒ Ｓｕｒｖ １巻、４８９〜５２０頁に記載され
ているようなその他の単一鎖リボソーム不活性化タンパ
ク質を含む。
【００３３】ペプチド毒素は試薬に容易に結合されかつ
細胞内に極めて微小な量で存在すれば細胞タンパク質合
成を抑制する極めて効力のある毒素であるが故に好まし
い。しかしながら、ペプチドでないその他のアミノ基含
有細胞毒素もまた発明の範囲内にある。かかる細胞毒素
又は細胞毒性薬剤の例はメルファラン、ブレオマイシ
ン、アドリアマイシン、ダウノマイシンである。
【００３４】上述した活性物質は、結合物を細胞表面の
特徴に結合させることによって選択細胞に送達する。好
適な結合物は細胞表面抗原に対する抗体である。特に好
適なものは、病気にかかった、感染した、トランスホー
ムした或は悪性の細胞に特異であるが正常の細胞に特異
でない細胞表面抗原に対するモノクローナル抗体であ
る。特に、しかし排除するものでなく、それらは細胞に
よって取り上げられる抗体である。細胞による活性物質
のかなりの取り上げを可能にする十分な数の抗原が正常
細胞に存在しないならば、正常な（すなわち、非標的）
細胞が特異的な抗原を完全に欠くことは必要でない。
【００３５】かかる抗体の１つは、ハイアリアフロリ
ダ、コウルターイミュノロジー（Ｃｏｕｌｔｅｒ Ｉｍ
ｍｕｎｏｌｏｇｙ）から入手し得る上述したＪ５であ
る。その他の例はイマイ等（１９８３年）、Ｃａｎｃｅ
ｒ Ｉｍｍ、１５巻、２０６頁以降に記載されているよ
うなメラノーマ表面抗原に対する抗体である。コウルタ
ーイミュノロジーから入手し得るその他の適当な抗体は
Ｔ細胞、Ｔ３，Ｔ４，Ｔ１１，Ｔ１２等のＴ細胞リンパ
腫に見られる表面抗原に対する抗体を含む。本実施態様
におけるその他の結合物はトランスフェリン等の非抗体
細胞膜輸送因子及びインシュリン等のタンパク質ホルモ
ンを含む。
【００３６】生物学系評価 架橋によって評価すべき好適な系はリボソーム、膜等の
細胞構造及び複合タンパク質を含む。系の１つの成分を
スルフヒドリル基で機能化し、かつ上述した架橋剤を用
いてその成分をスルフヒドリル基に隣接したアミノ基含
有物質に架橋させる。例えば、機能化した酵素基質を用
いて酵素触媒反応の進行の間に架橋することにより酵素
の結合領域を確立することができる。
【００３７】架橋剤 上に挙げた２つの実施態様の内のいずれかにおいて、ア
ミノ基含有物質とスルフヒドリル基とを連結させるリン
カーが極めて重要である。アミノ基含有物質は、その活
性を変えないで、好ましくはその構造を変えないでリン
カーに連結されかつリンカーから開放されるべきであ
る。
【００３８】こうして、アミノ結合はタンパク質構造に
影響を与えない温和な条件下で形成されるべきである。
同時に、結合は早過ぎて開裂されず、しかも生物学的系
の繊細な成分に適合し得る温和な条件下で開裂される強
いものであるべきである。開裂部位はアミノ基含有物質
のアミノ基とリンカーとの結合位置になるべきであり、
それによりこの物質は付加成分を伴わずかつ何らの切除
を受けることなくそのまま開放される。
【００３９】上述したように、アミノ基含有物質の窒素
への開裂性アミド結合を形成するのに無水マレイン酸機
能が適当である。また、複合体の第２化合物のスルフヒ
ドリル機能への安定な結合を形成するのにマレイミド構
成要素（ｅｎｔｉｔｙ）が適している。
【００４０】上記のマレイミド構成要素と無水マレイン
酸構成要素との間のブリッジが自然のプロセスにより
（すなわち、生体内系における酵素により）望ましくな
い時又は場所において開裂されるならば、結合物の選択
性が失われ、かつ毒素又は潜在的毒性活性を有する化合
物が細胞の外の媒質中に標的細胞を選択する手段を持た
ないで存在することになるから、該ブリッジは重要であ
る。ブリッジに関するその他の制約は複合体の他の成分
に関する適合性及び不活性でありかつそれらの成分を害
しない条件下での形成の容易性である。
【００４１】好適なブリッジについては、上記「発明の
要約」において詳細に説明している。
【００４２】
【実施例】実施例１ 今、例示のために、次式：
【化１４】 を有する下記の好適な架橋試薬の２つの特定の代表例の
合成及び使用について説明する。
【００４３】本実施例中、第１の例においてＷは（ＣＨ
２）５であり、第２の例においてＷは
【化１５】 である。
【００４４】架橋試薬の合成 第１例の合成を第１図に示す。かいつまんで言えば、架
橋試薬６は下記の主工程によって合成することができ
る： １．２−ブロモメチルマレイン酸無水物（化合物２）を
加水分解する； ２．生成したマレイン酸誘導体（化合物３）に４−アミ
ノチオフェノールを反応させて化合物４とする； ３．化合物４に６−マレイミド−カプロン酸のアシルク
ロリドを反応させて二酸を作り、これを脱水させて化合
物６を生成する。 無水物（２）を希薄水溶液中で加水分解しかつ完全に加
水分解した後すぐに二酸（３）を中和して２−（ブロモ
メチル）マレイン酸（３）の対応するフマレート類似体
への異性化を回避する工程を採用する。生成したブロモ
メチルフマル酸誘導体はすべて下記に一層詳細に説明す
る通りに化合物（４）を精製する際に除く。
【００４５】反応混合物のｐＨを、ｐ−アミノチオフェ
ノールを対応するチオフェノレートアニオンに転化させ
る程に上げてブロモメチルマレイン酸の（望ましいＳＮ
２置換よりもむしろ）望ましくないＳＮ２’置換反応を
抑制する。上述した合成の特定の詳細は次の通りであ
る。
【００４６】 １．２［２−（４−アミノフェニル−２−チアエチル］
−マレイン酸（４） ローセン（Ｌａｕｒｓｅｎ）等（１９７１年）、Ｊ．Ｍ
ｅｄ．Ｃｈｅｍ．１４巻、６１９〜６２１頁の方法のグ
リーンリー（Ｇｒｅｅｎｌｅｅ）及びウッドワード（Ｗ
ｏｏｄｗａｒｄ）（１９８０年）、テトラヘドロン、３
６巻、３３６７〜３３７５頁による変法に従って、化合
物１から２−（ブロモメチル）−マレイン酸無水物
（２）を作る。この物質（２ｇ）を水（２０ｍｌ）中室
温において約１時間加水分解して２−（ブロモメチル）
−マレイン酸（３）とし、かつ溶液を１Ｎ ＮａＯＨ
（２１．２ｍＬ）で中和し、ガス抜きし、Ｎ２下に保
つ。溶液を、脱気した１Ｎ ＮａＯＨ（１１．６ｍＬ）
中にＮ２下穏やかに加熱しながら溶解しかつろ過して不
溶性二量体を除いておいたあらかじめ調製しておいた４
−アミノチオフェノール（１．５１ｇ）の溶液に加え
る。ろ液を脱気水（１２ｍＬ）で希釈した後に上記化合
物３の溶液に加える。最終反応溶液を１Ｎ ＮａＯＨで
約ｐＨ１１．０にもたらしかつＮ２下室温において一晩
中撹拌する。次いで、溶液をろ過して少量のビス−（４
−アミノフェニル）−ジスルフィドを除き、氷冷し、１
Ｎ ＨＣｌで酸性にして黄色沈殿を与える。ｎ−ブタノ
ールを加え（４０ｍＬ）かつ混合物を氷上５分間激しく
撹拌する。これは化合物４のフマル酸類似体を除く。次
いで、固体をろ過によって集め、０．１Ｎ ＨＣｌ及び
水で続けて洗浄し、最後に真空デシケーター中Ｐ２Ｏ５
で乾燥して中和化合物４を生じる。
【００４７】 ２．マレイミド−二酸５． ケラー（Ｋｅｌｌｅｒ）及びルディンガー（Ｒｕｄｉｎ
ｇｅｒ）（１９７４年）、Ｈｅｌｖ．Ｃｈｉｍ．Ａｃｔ
ａ，５８巻、５３１〜５４１頁の方法に従って６−マレ
イミド−カプロン酸を作り、かつ塩化チオニルでその酸
塩化物に変える。６−マレイミド−カプロン酸（１．０
６ｇ）を乾燥ＴＨＦ（１０ｍＬ）中に溶解し、ＳＯＣｌ
２（０．５１ｍＬ）で処理し、溶液を水分を除外して
１．５時間還流する。溶液を真空で蒸発乾固させ、かつ
残留油を乾燥ＴＨＦ（５ｍｌ）中に溶解する。この溶液
を乾燥ＴＨＦ（１５ｍｌ）及びＮ−エチルモルホリン
（２．１６ｍＬ）中化合物４（１．１６ｇ）の溶液に１
０分かけて滴下する。２時間後、溶液を減圧下で蒸発乾
固させ、残留油を取り上げて酢酸エチルに入れかつ溶液
を冷０．１Ｎ ＨＣｌで、次いで水で洗浄する。酢酸エ
チル溶液を乾燥させかつ溶媒を蒸発によって除く。次い
で、溶離液として酢酸２％を含有するＣＨＣｌ３−Ｍｅ
ＯＨ（９５：５、ｖ／ｖ）を有するシリカゲルのフラッ
シュクロマトグラフィーによって粗生成物を精製する。
最後に純生成物をＭｅＯＨ−Ｈ２Ｏ（１：２、ｖ／ｖ）
中Ｄｏｗｅｘ ５０（Ｈ＋形）のカラムの中に通す。溶
媒を蒸発しかつ油状残留物を高真空下で乾燥して脆性固
形フォームを収率５５％（９７６ｍｇ）で与える。
【００４８】 ３．架橋用試薬６． 乾燥ＴＨＦ（３ｍｌ）中の化合物５（２００ｍｇ）を乾
燥ＴＨＦ（２ｍＬ）中ジシクロヘキシルカルボジイミド
（１１０ｍｇ）の溶液で０℃において処理する。反応混
合物を室温において４５分間撹拌し、次いでろ過して沈
降ジシクロヘキシル尿素をなくす。ろ液を真空で濃縮し
て乾固させ、生成した油を乾燥ジオキサン（２ｍＬ）中
に溶解しかつ再度ろ過する。最後に、ジオキサンを凍結
乾燥して除き、茶色がかつた固体が残った。１ＨＮＭＲ
（Ｍｅ２ＳＯ−ｄ６）δ１．１−１．９（ｍ，６Ｈ），
２．３０（ｔ，Ｊ＝６Ｈｚ，２Ｈ），３．１５−３．５
５（ｍ，４Ｈ），６．９７（ｓ，２Ｈ），７．４６及び
７．６８（Ａ’Ｂ’，ｄ，Ｊ＝９Ｈｚ，４Ｈ），及び
７．７６（ｔ，Ｊ＝１．５Ｈｚ，１Ｈ）。架橋用試薬の
第２例は、上記工程２の６−マレイミドカプロン酸クロ
リドの代りにｐ−マレイミドベンゾイルクロリドを用い
上述した化合物６と同じ方法で作った。
【００４９】実施例２ 次に、例示のために、次式：
【化１６】 （式中、Ａはブリッジ単位を含む）を有する好適な２つ
の特定の代表例（化合物９’及び１８’）について説明
するが、その前に、先ず、化合物Ａ’の合成について説
明する。
【００５０】化合物Ａ ’ 図３において、化合物Ａ’は下記のようにして合成され
る。１，４−シクロヘキサジエニル−１，２−ジカルボ
ン酸ジ−ｔ−ブチルエステル（１’）をブタジエン及び
アセチレンジカルボン酸ジ−ｔ−ブチルエステルからＷ
ｅｂｅｒら（１９８０）Ｃｈｅｍ．Ｂｅｒ．１１３：５
３１に記載されたようにして製造し、次いで、テトラヒ
ドロフラン中のジボランによる標準ハイドロボレーショ
ン反応にかけた。手短に記せば、ジエン１’（９．８２
ｇ、３５ミリモル）を乾燥テトラヒドロフラン（１００
ｍＬ）に溶かし、０℃で等モル量のボラン−ＴＨＦ複合
体で処理した。０．５時間０℃に置いた後、水（７ｍ
Ｌ）を加え、次いで、３Ｎ ＮａＯＨ（７ｍＬ）及び３
０％過酸化水素（７ｍＬ）を加えた。その溶液を室温で
２時間撹拌し、次いで、減圧下で濃縮した。残留物をエ
ーテルで３回抽出し、合わせたエーテル溶液を水で洗
い、乾燥し、粘性油へと濃縮した。この粗生成物を、更
に、シリカゲル上のフラッシュクロマトグラフィーによ
り石油エーテル−酢酸エチル（７：３ｖ／ｖ）を溶出液
として精製し、純粋なアルコール４−ヒドロキシ−１−
シクロヘキセニル−１，２−ジカルボン酸ジ−ｔ−ブチ
ルエステル２’を与えた。
【００５１】アミン ４−アミノ−１−シクロヘキセニ
ル−１，２−ジカルボン酸ジ−ｔ−ブチルエステル３’
は、中間体の精製なしで、妥当な収率（約５５％）で、
アルコール２’から３段階で調製出来た。アルコール
２’（７．１４ｇ、２３．９ミリモル）及びｐ−トルエ
ンスルホニルクロリド（６．４９ｇ、３３．５ミリモ
ル）を乾燥ピリジン（４３ｍＬ）に溶かし、その溶液を
一晩周囲の温度で撹拌した。水を、それから、加え
（０．６６ｍＬ）、撹拌を更に０．５時間続けた。その
溶液を、次いで、減圧下で冷却して濃縮し、残留物をエ
ーテルに加え、冷１Ｍ硫酸、１Ｍ重炭酸ナトリウム溶液
及び水で洗った。乾燥及びエーテルの除去の後、粗トシ
レートを高真空の下で４時間乾燥し、次いで、乾燥アセ
トニトリル（９０ｍＬ）中に溶解した。アジ化ナトリウ
ム（１．９４ｇ、２００ミリモル）及び１５−クラウン
−５（０．９５ｇ、４．３ミリモル）を加え、その溶液
をＮ２（ｇ）の下で一晩還流した。冷却した溶液を、次
いで、濾過し、油へと濃縮し、それを乾燥エーテル（１
００ｍＬ）に溶かし、第２の濾過にかけた。エーテルの
除去は、黄色味を帯びた油を与えたが、アジド基を還元
するためにそれを乾燥メタノール（７５ｍＬ）に溶かし
た。１，３−プロパンジチオール（６．４９ｇ、６０ミ
リモル）及びトリエチルアミン（６．０７ｇ、６０ミリ
モル、１−ナフチルイソシアネートから蒸留）を加え、
その溶液を４０時間Ｎ２（ｇ）下で室温で撹拌した。反
応混合物を、次いで、濾過し、濾液を穏やかに加熱して
アスピレーターで濃縮して橙色の油を生成し、それをフ
ラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製
した。カラム（２００ｍＬ）は、先ず、ＣＨＣｌ３（５
００ｍＬ）及びＣＨＣｌ３−ＭｅＯＨ（９５：５ｖ／
ｖ，３００ｍＬ）で洗い、次ぎに、ＣＨＣｌ３−ＭｅＯ
Ｈ（８０：２０ｖ／ｖ）で溶出した。純粋なアミン３’
を無色の油として回収した。
【００５２】分析のためにアジド中間体４−アジド−１
−シクロヘキセニル−１，２−ジカルボン酸ジ−ｔ−ブ
チルエステルを、シリカゲル（石油エーテル−酢酸エチ
ル９５：５ｖ／ｖ）上のフラッシュクロマトグラフィー
により小規模の反応から精製し、無色の油として得た。
【００５３】ジ−ｔ−ブチルエステル３’（０．１２２
ｇ、０．４１ミリモル）をトリフルオロ酢酸（１ｍＬ）
に溶かし、その均質な溶液を、１時間周囲の温度で撹拌
した。その溶液を、次いで、蒸発し、油性の残留物を乾
燥エーテルで処理し、白色の固体を与えた。１Ｈ−ＮＭ
Ｒ分析は、エステルは完全に開裂されたが試料がエーテ
ルを含むことを示し、それは高真空において長時間乾燥
しても除去されなかった。それ故、試料を水（３ｍＬ）
に溶かし、その溶液を濾過し、凍結乾燥して、４−アミ
ノ−１−シクロヘキセニル−１，２−ジカルボン酸トリ
フルオロ酢酸塩４’を白色の固体として生成した。
【００５４】化合物４’は、活性化された酸基（普通に
用いられるＮ−ヒドロキシスクシンイミドエステル又は
ｐ−ニトロフェノールエステル等）を有する高分子キャ
リアーに結合されて、化合物４Ａ’を形成し得る。化合
物４Ａ’は保存可能な二酸である。化合物Ａ’の合成を
所望するときは、下記のように、二酸を対応する無水物
（４Ｂ’）に変換するが、それは、下記のように、アミ
ノ基含有化合物を架橋するのに用いて化合物Ａ’を生成
することができる。
【００５５】特に、化合物４Ａ’等の二酸を化合物４
Ｂ’等の無水物に変換するために、典型的には、乾燥Ｄ
ＭＳＯ中の二酸の１％溶液（ｗ／ｖ）を、１時間、室温
で、１．２モル当量のジシクロヘキシルカルボジイミド
で処理する。その溶液を、次いで、濾過し、生成物を乾
燥エーテルで沈殿させる。反応をマイクロリットル規模
で行なうときは、濾過は遠心分離で置き換え、その上清
は、直接蛋白質の修飾に用いるか又は１０容の乾燥エー
テル中に滴下した。反応の定量的性質は、シリカゲル
（ガラス板）上の薄層クロマトグラフィーにより、溶媒
系トルエン−ジオキサン−酢酸（９：９：２）において
判定する事が出来る。
【００５６】化合物４Ａ’（２０ｍｇ）を乾燥ジメチル
スルホキシド（０．４ｍＬ）に溶かし、Ｎ，Ｎ’ジシク
ロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ、８ｍｇ）で１時間
室温で処理して化合物４Ｂ’を製造するが、それは乾燥
エーテル（５ｍＬ）で沈殿させる事により回収する。次
いで、４Ｂ’をジメチルスルホキシド（０．４ｍＬ）に
再溶解させ、アドリアマイシン塩酸塩（１７ｍｇ）及び
トリエチルアミン（０．００５ｍＬ）を加えた。１時間
後、高分子薬剤キャリアーＡ’をジエチルエーテル（５
ｍＬ）で沈殿させた。
【００５７】化合物９ ’ 化合物３’（その合成は上述してある）から出発して、
化合物９’（本実施例において合成される架橋試薬の第
１の例）を図４に示すようにして合成する。６−マレイ
ミドカプロン酸をＫｅｌｌｅｒとＲｕｄｉｎｇｅｒ（１
９７４）の方法によって製造した。６−マレイミドカプ
ロン酸（１．５３ｇ、７．２６ミリモル）及びＮ−エチ
ルモルホリン（８３６ｍｇ、７．２６ミリモル）の乾燥
ＴＨＦ（１５ｍＬ）中の溶液を−１５℃でイソ−ブチル
クロロホルメート（９９２ｍｇ、７．２６ミリモル）で
処理し、−１５℃で０．５時間撹拌した。冷ＴＨＦ（１
０ｍＬ）中のアミン３’（１．９６ｇ、６．６ミリモ
ル）を、次いで、加え、そしてその反応混合物をゆっく
りと周囲の温度にまで暖めた。２時間後、その溶液を濾
過し、ＴＨＦを蒸発させ、そして残留物を酢酸エチルに
溶かして、冷０．１Ｍ塩酸、０．１Ｍ重炭酸ナトリウム
溶液及び水で洗った。乾燥及び濃縮の後、粘性油が得ら
れ、それは、更に、シリカゲル上のフラッシュクロマト
グラフィーにより石油エーテル−酢酸エチル（５０：５
０、ｖ／ｖ）で精製されて純粋なジエステルＮ−（６−
マレイミドカプロニル）−４−アミノ−１−シクロヘキ
セニル−１，２−ジカルボン酸ジ−ｔ−ブチルエステル
５’を粘性油として与えた。
【００５８】一般的に、５’等のジエステルは、化合物
４’を形成するために上述した技術を用いて、二酸７’
へ変換し得る。これらの二酸は保存可能であり、４Ａ’
を４Ｂ’に変換するために上述したようにして、無水物
９’へ、新鮮に、変換し得る。同様に、二酸１６’は、
同様の工程により無水物１８’へ変換し得る。
【００５９】それ故、ジ−ｔ−ブチルエステル５’
（１．２７ｇ、２．５９ミリモル）をトリフルオロ酢酸
（１２ｍＬ）で、４’の製造のために記載したようにし
て処理した。得られた白色の固体を細かくすり砕いて高
真空下で４８時間乾燥して、化合物Ｎ−（６−マレイミ
ドカプロニル）−４−アミノ−１−シクロヘキセニル−
１，２−ジカルボン酸７’を与えた。
【００６０】化合物７’は、安定な二酸化合物であり、
そのままで保存され、そして、下記のように、化合物
Ｂ’の直接製造に用いる場合は、対応する無水物化合物
９’へ変換される。
【００６１】化合物１８ ’ 化合物１８’（本実施例において合成される架橋試薬の
第２の例）を図５に示すようにして合成する。 ｔ−ブ
チル−１，３−ブタジエン−１−カルバメート（１
１’）（１０ｇ、５９．１ミリモル）をＯｖｅｒｍａｎ
ら（１９７８）の手順に従って製造し、等モル量のジメ
チルアセチレンジカルボキシレート（８．４ｇ）と沸騰
ベンゼン中で４時間反応させた。次に、溶媒を蒸発さ
せ、残留物をシリカゲル上のフラッシュクロマトグラフ
ィー（石油エーテル−酢酸エチル、８０：２０ｖ／ｖ）
により精製してジエステルＮ−ｔ−ブチルオキシカルボ
ニル−３−アミノ−１，４−シクロヘキサジエニル−
１，２−ジカルボン酸ジメチルエステル１２’を与え
た。
【００６２】酢酸エチル（７０ｍＬ）中のジエン１２’
（６．７ｇ、２１．６ミリモル）をＨ２で、パラジウム
触媒（炭素上１０％、３４７ｍｇ）上で、１気圧の下で
水素化した。その反応を追跡して異なる時点で１ＨＮＭ
Ｒ分析用に試料を回収し、１時間後に完全であることが
判明した。触媒を濾過により除去し、純枠なジエステル
Ｎ−ｔ−ブチルオキシカルボニル−３−アミノ−１−シ
クロヘキセニル−１，２−ジカルボン酸ジメチルエステ
ル１３’を溶媒の蒸発の後に得た。
【００６３】ジメチルエステル１３’（６．６ｇ、２
１．１ミリモル）をエタノール（６５ｍＬ）中の１０％
水酸化カリウムに溶かし、その溶液をＮ２（ｇ）の下で
０．５時間還流させた。その冷溶液を、それから、冷１
Ｎ塩酸上に注ぎ、生成物を酢酸エチルで抽出した。抽出
物を水で洗い、乾燥し、そして濃縮して黄色みを帯びた
油を与えたが、それは、更に、シリカゲル上のフラッシ
ュクロマトグラフィーにより１％酢酸を含むＣＨＣｌ３
−ＭｅＯＨ（９：１ｖ／ｖ）を溶出液として精製され
た。純粋な生成物Ｎ−ｔ−ブチルオキシカルボニル−３
−アミノ−１−シクロヘキセニル−１，２−ジカルボン
酸１４’を、高真空の下で乾燥することにより凝固した
泡として得た（３．２ｇ、１２．６ミリモル、５８
％）。
【００６４】二酸１４’（１３５ｍｇ、０．５３ミリモ
ル）をジオキサン（０．５ｍＬ）中の４ＮＨＣｌ中に室
温で２０分間保った。その溶液を、次に、濃縮して乾燥
し、残留物を乾燥エーテルで洗った。最後に、その固体
を水（１０ｍＬ）中に溶かし、その溶液を濾過し、凍結
乾燥して純粋な３−アミノ−１−シクロヘキセニル−
１，２−ジカルボン酸塩酸塩１５’を与えた。
【００６５】化合物１５’は、上記の化合物５’の合成
において一般的に記したようにして、６−マレイミドカ
プロン酸で濃縮することにより化合物１６’に変換する
ことが出来る。他の二酸の様に、化合物１６’は、化合
物Ｄ’を形成するための架橋試薬として用いられるヘテ
ロ二官能性の無水物１８’へ変換することが出来る。
【００６６】実施例３ 架橋 実施例１で合成した架橋試薬を用いて下記に説明する通
りにペプチド薬剤又は毒素を細胞−特異抗体に架橋させ
ることができる。説明する特定例は上述した毒素ゲロニ
ン及びモノクローナル抗体Ｊ５を利用する。第２図はこ
れらの工程を図解する。
【００６７】ゲロニンは、上に挙げたスターペ等（１９
８０年）が記載する通りにゲロニウムムルチフロラム
（Ｇｅｌｏｎｉｕｍｍｕｌｔｉｆｌｏｒｕｍ）（トウダ
イグサ科（Ｅｕｐｈｏｒｂｉａｃｅａｅ）からの種子か
ら得られる。種子はインド、カルカッター１、クライブ
ロウ１０、ユナイティッドケミカルアンドアライドプロ
ダクツからニュージャージー、ノースバーゲン、ミア
（Ｍｅｅｒ）コーポレーションから入手し得る。ｐＨ
７．２のリン酸ナトリウム緩衝液１００ｍＭ中のゲロニ
ン（１．４７ｍｇ／ｍＬ）の試料を、ＤＭＳＯ中の１２
倍過剰量の化合物６で２０℃において３０分間処理す
る。次いで、ＥＤＴＡ（１ｍＭ）を含有するｐＨ７．０
のリン酸ナトリウム緩衝液１００ｍＭで平衡にさせた４
℃のセファデックス（Ｓｅｐｈａｄｅｘ）Ｇ−２５（超
微細（ｓｕｐｅｒｆｉｎｅ））のカラムに試料をかけて
新しく生成された化合物７から過剰の化合物６を除く。
【００６８】次いで、化合物７を用いて、抗体１モル当
り２．０モルのスルフヒドリル基を導入するために下記
に説明する通りに２−イミノチオランで改質しておいた
モノクローナル抗体Ｊ５への架橋結合を形成する。
【００６９】リン酸カリウム（７ｍＭ）と、ＮａＣｌ
（１００ｍＭ）と、ＥＤＴＡ（１ｍＭ）とを含有するｐ
Ｈ８．０のトリエタノールアミン−ＨＣｌ緩衝液６０ｍ
Ｍ中のＪ５抗体（２ｍｇ／ｍｌ）をガス抜きし、次いで
２−イミノチオラン（ｍＭ）で窒素下０℃において９０
分間処理する。２−イミノチオラン塩酸塩（０．５Ｍ）
の原液を先に説明した［ランバート等（１９７８年）、
バイオケミストリー、１７巻、５４０６〜５４１６頁］
通りにして作る。反応はＮａＣｌ（５０ｍＭ）及びＥＤ
ＴＡ（１ｍＭ）を含有するｐＨ５．８のビストリス−ア
セテート緩衝液５ｍＭで平衡にさせたセファデックスＧ
−２５（微細）のカラムに４℃で通すゲルろ過によって
終了させる。この方法で抗体に導入したスルフヒドリル
基をエルマン（Ｅｌｌｍａｎ）、Ａｒｃｈ．Ｂｉｏｃｈ
ｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．３８２巻、７０〜７７頁の方法
によりスペクトル光度測定法により定量する。
【００７０】下記に説明する通りに、この誘導化抗体
を、ゲロニン１モル当り０．７基のマレイミド置換基の
レベルを有する化合物７の５倍モル過剰量と混合する。
Ｊ５の置換基のレベルが高くなれば抗体に対する収率を
増大させ、他方、ゲロニンの置換基の低いレベルは架橋
反応混合部中に生成される高分子量の凝集物の量を減少
させる。ゲルろ過及びカルボキシメチルセルロース精製
した後の結合体の最終収率はＪ５に対して３７％であ
る。
【００７１】ＮａＣｌ（５０ｍＭ）及びＥＤＴＡ（１ｍ
Ｍ）を含有するｐＨ５．８のビストリス−アセテート緩
衝液５ｍＭ中の改質Ｊ５（８ｍｇ、０．０５μモル）に
０℃においてＥＤＴＡ（１ｍＭ）を含有するｐＨ７．０
のリン酸ナトリウム緩衝液１００ｍＭ（１１ｍＬ）中５
倍モル過剰量の化合物７（８ｍｇのゲロニン）を混合
し、次いでｐＨ８．０の０．５Ｍトリエタノールアミン
−ＨＣｌ緩衝液（０．１５ｍＭ）を混合して最終のｐＨ
を７．０にする。混合物を０℃において２時間培養し、
次いで新しく作ったエタノール（０．２６ｍＬ）中Ｎ−
エチルマレイミド（１ｍＭ）を加えて全ての残留遊離ス
ルフヒドリル基をブロックする。０℃において３０分し
た後に、不混和性の限外ろ過ユニット（ミリポアコーポ
レーション、ＣＸ−１０フィルター）を使用して溶液を
１３ｍＬに濃縮しながら氷上に保つ。次いで、ＮａＣｌ
（１５ｍＭ）及びＮａＮ３（０．４ｍＭ）を含有するｐ
Ｈ７．０のリン酸ナトリウム緩衝液５ｍＭで４℃におい
て平衡にさせたセファクリル（Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ）Ｓ
−３００のカラム（９５ｃｍ×２．６ｃｍ）に混合物を
かける。ゲルろ過は結合体及び天然のＪ５（Ｍｖ＝１６
０，０００）と非架橋ゲロニン［Ｍｖ＝３０，５００；
ソープ（Ｔｈｏｒｐｅ）等（１９８１年）、Ｅｕｒｏ．
Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１１６巻、４４７〜４５４頁］及
びいくつかの高分子量凝集物とを分離する。分子量範囲
１６０，０００〜２２０，０００に相当しかつポリアク
リルアミド／ドデシル硫酸ナトリウムゲル電気泳動によ
り天然のＪ５と架橋結合体８の両方を含有することが示
される主ピークをプールしかつ同じ緩衝液中で平衡にさ
せたカルボキシメチルセルロース（ワットマン（Ｗｈａ
ｔｍａｎ）ＣＭ−５２）のカラム（５ｍＬの床容積）の
中に通す。カラムを１カラム容積の緩衝液で洗浄しかつ
溶離液を一緒にする。これらのイオン強度及びｐＨの精
確な条件下で、天然のＪ５はカラムによって留められ、
他方タイプ８の架橋複合体は保持されないで通過する。
電荷に関してモノクローナル抗体は不均一である［コワ
ン（Ｃｏｗａｎ）等（１９７３年）、ＦＥＢＳ Ｌｅｔ
ｔ．３４３〜３４６頁］。これらの実験で用いるＪ５の
試料を変質する前に同じ条件下でカルボキシメチルセル
ロースカラムの中に通す。カラムに留められたＪ５のみ
を架橋実験において用いる。Ｊ５は１．０ＭのＮａＣｌ
を含有する緩衝液でカラムから溶出される（収率６６
％）。
【００７２】不混和性の限外ろ過膜（ミリポア、ＣＸ−
３０）を用い、非架橋のモノマータンパク質から分離し
た精製複合体８を含有する溶液を、トリエタノールアミ
ン（０．５ｍＭ）及びＮａＣｌ（１４５ｍＭ）を含有す
るｐＨ７．８のリン酸ナトリウム緩衝液１０ｍＭに対し
て透析し、最終的にミレックス（Ｍｉｌｌｅｘ）−ＧＶ
ろ過膜（０．２２μｍ、ミリポア）に通して無菌ろ過し
た後に４℃において貯蔵する。
【００７３】酸開裂 正常な細胞及びＪ５抗体によって認識される表面抗原を
示す通常の急性リンパ芽球白血病細胞を含む細胞集団
に、精製複合体８又は上述した第２架橋剤例を用いて作
った対応する複合体を施すことができる。複合体中のＪ
５成分は、リッツ等（１９８０年）、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏ
ｌ．１２５巻、１５０６〜１５１４頁に記載されている
通りにナマルワ（Ｎａｍａｌｗａ）細胞における間接免
疫蛍光法によって判断されるように、表面抗原を有する
細胞に選択的に結合する能力を保持する。複合体８のゲ
ロニン成分は、ニューイングランドニュークリアカンパ
ニーから入手し得る系のようなウサギ網状赤血球溶解産
物系によって求められる通りに、本来の非架橋ゲロニン
に比べてタンパク質合成を停止する能力が低いことを示
す。
【００７４】このように、複合体は細胞認識能力を有
し、一担、抗体が細胞に結合すれば、複合体が細胞区画
の中に吸収され、そこで開裂が起きる。特に、受容体−
介在エンドサイト−シスにより吸収される受容体はエン
ドソーム又はリセプトソームとして知られる酸性化区画
を通過する［ｄｅ Ｄｕｖｅ（１９８３年）、Ｅｕｒ．
Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１３７巻、３９１〜３９７頁］。
こうして、複合体を短時間活性アミノ基含有物質を開裂
するのに十分な酸性ｐＨに暴露させる。
【００７５】複合体８からの本来のゲロニンの開裂は、
およそｐＨ５より低いところで相対的に速く収率が良好
である。例えば、３７℃及びｐＨ４において、全ゲロニ
ンの３０％以上が５時間までに開裂され、かつ５０％以
上が１０時間後に開裂される。ｐＨ５において、およそ
１５％が５時間後に開裂され、かつおよそ２５％が１０
時間後に開裂される。ｐＨ６より高い所では、ゲロニン
へのアミド結合は比較的に安定である。
【００７６】所定の薬剤−抗体複合体について、当業者
は収率及び放出速度を放出環境において経験するｐＨ及
び温度条件について測定することができかつそれを基に
して標的細胞に十分な活性物質を付与するのに必要な複
合体の量を決めることができる。例えば、薬剤放出はポ
リアクリルアミド／ドデシル硫酸ナトリウムゲル電気泳
動を使用して求めることができる。
【００７７】変動するｐＨ条件下でゲロニンの放出速度
を試験する方法は下記の手順により例示される。８の試
料（０．５４ｍｇ／ｍＬ）をクエン酸−ホスフェート緩
衝液１００ｍＭで１：２（ｖ／ｖ）に希釈して最終のｐ
Ｈ値４．０，５．０，６．０，にする。溶液を３７℃に
おいて培養し、かつ試料を異る時間で抜き出してゲロニ
ン活性を分析し、かつポリアクリルアミド／ドデシル硫
酸ナトリウムゲル電気泳動により分析する。前者用の試
料はリン酸ナトリウム（９ｍＭ）と、ＮａＣｌ（１８ｍ
Ｍ）と、牛の血清アルブミン（０．２ｍｇ／ｍＬ）とを
含有するｐＨ８．８のトリス−ＨＣｌ緩衝液１５０ｍＭ
に１０倍に希釈し、次いで検定する前に４℃において保
存する。最終のｐＨは８．５である。ポリアクリルアミ
ドゲル分折用の試料（５０μＬ）は、リン酸カリウム
（５ｍＭ）及びＮａＣｌ（７０ｍＭ）を含有するｐＨ
７．８のトリエタノールアミン−ＨＣｌ緩衝液５ｍＭの
上に浮かぶＶＳＷＰ−０２５透析膜（ミリポア）の上に
置き、かつ４℃において２時間透析し、その後の試料の
ｐＨは７．８である。
【００７８】タンパク質複合体を特性表示する 最後に、架橋試料６をランバート等（１９８１年）Ｊ．
Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１４９巻、４５１〜４７６頁；ワン
グ（Ｗａｎｇ）等（１９７４年）、Ｉｓｒ．Ｊ．Ｃｈｅ
ｍ．１２巻、３７５〜３８９頁；ロマン（Ｌｏｍａｎ
ｔ）等（１９７６年）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１０４
巻、２４３〜２６１頁；ルッター（Ｌｕｔｔｅｒ）等
（１９７４年）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ４８巻、２８
８〜２９２頁；又はコギンズ（Ｃｏｇｇｉｎｓ）等（１
９７６年）バイオケミストリー１５巻、２５２７〜２５
３２頁に記載されている通りに用いて多数のポリペプチ
ド鎖を含有する複合構造を分析することができる。
【００７９】関心のある鎖をスルフヒドリル基で機能化
しかつ架橋試薬６に暴露させる。隣接する鎖のアミノ基
はｐＨ７又はそれ以上において開裂性アミド結合を形成
する。鎖を変性させないｐＨ（例えば、ｐＨ４〜５）に
おけるアミド結合の加水分解は、例えばＳＤＳゲル電気
泳動によって追跡し、関心のある鎖に隣接する鎖を同定
することができる。非変性条件、非酸化及び非還元条件
下で加水分解を制御し得ることが特に重要である。ま
た、架橋結合を任意のアミノ含有鎖部位に形成すること
ができ、かつ単に分子内にある遊離スルフヒドリル基の
有効性に依存しないことも重要である。
【００８０】実施例４ 架橋 架橋剤９’及び１８’は、無水物機能を含み、下記のよ
うにアミノ基含有薬剤との反応に用いられ得る（無水物
４Ｂ’はアミノ基含有薬剤と同様にして結合され得
る）。記載した特定の実施例は蛋白質毒素ゲロニンを利
用する。
【００８１】ゲロニンは、実施例３に記載のように、Ｇ
ｅｌｏｎｉｕｍ ｍｕｌｔｉｆｌｏｒｕｍ（トウダイグ
サ科）の種子から得られる。リン酸ナトリウム緩衝液、
ｐＨ７．０中のゲロニン試料を１２倍の過剰量のＤＭＳ
Ｏ中の無水物架橋剤と２０℃で３０分間処理する。その
試料を、次いで、過剰の無水物架橋剤を除去するために
ＥＤＴＡ（１ｍＭ）を含む１００ｍＭリン酸ナトリウム
緩衝液、ｐＨ７．０で平衡化したセファデックスＧ−２
５（超微細）のカラムに４℃でかける。
【００８２】この方法で、化合物９Ａ’及び１８Ａ’を
形成する。化合物９Ａ’及び１８Ａ’に対して、機能化
した抗体を、次に、代表的抗体、Ｊ５に対して下に記す
ようにして化合物に結合することが出来る。
【００８３】先ず、Ｊ５抗体を、抗体１モル当り２．０
モルのスルフヒドリル基を導入するために下記のように
して２−イミノチオランで修飾する。リン酸カリウム
（７ｍＭ）、ＮａＣｌ（１００ｍＭ）、ＥＤＴＡ（１ｍ
Ｍ）を含む６０ｍＭトリエタノールアミンＨＣｌ中のＪ
５抗体（２ｍｇ／ｍＬ）を脱気し、次いで、２−イミノ
チオラン（１ｍＭ）で９０分間０℃で窒素下で処理す
る。２−イミノチオラン塩酸塩（０．５Ｍ）の原液は、
以前に記載された（Ｌａｍｂｅｒｔら（１９７８）Ｂｉ
ｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ１７：５４０６−５４１６）よう
にして調製する。反応は、ＮａＣｌ（５０ｍＭ）及びＥ
ＤＴＡ（１ｍＭ）を含む５ｍＭビストリスアセテート緩
衝液、ｐＨ５．８で平衡化したセファデックスＧ−２５
（微細）のカラムを通して４℃でゲル濾過することによ
り停止する。この方法で抗体に導入されたスルフヒドリ
ル基は、Ｅｌｌｍａｎ（１９５９）Ａｒｃｈ．Ｂｉｏｃ
ｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．８２：７０−７７の方法によ
り分光測光的に定量される。
【００８４】生じた誘導体化されたＪ５抗体は、下記の
ように、過剰（例えば、５倍モル）の化合物９Ａ’又は
１８Ａ’（ゲロニン１モル当り０．７基のマレイミド置
換の水準を有する）と混合される。Ｊ５のより高い置換
の水準は抗体についての収率を上げるが、他方で、ゲロ
ニンの低水準の置換が、架橋反応混合物中で形成される
高分子量凝集物の量を減らす。
【００８５】特定的には、緩衝液（ｐＨ５．８）中の修
飾されたＪ５を、ＥＤＴＡを含む燐酸ナトリウム緩衝液
中の５倍過剰の薬剤結合化合物（９Ａ’又は１８Ａ’）
と混合し、次いで、トリエタノールアミン−ＨＣｌ緩衝
液（ｐＨ８．０）と混合して最終ｐＨを７．０にする。
０℃で３０分置いた後、溶液のｐＨを、１．５Ｍトリス
塩基を加えることにより８．５に高め、その溶液を不混
和性の限外濾過ユニット（Ｍｉｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐ
ｏｒａｔｉｏｎ、ＣＸ−１０フィルター）を用いて少量
（＝６ｍＬ）に濃縮した。その混合物を、次いで、５ｍ
Ｍ燐酸カリウム、ｐＨ７．５を含む１００ｍＭトリス−
塩酸塩で４℃で平衡化したセファクリルＳ−３００のカ
ラム（９５ｃｍ×２．６ｃｍ）にかけた。ゲル濾過は、
この結合物及び自然のＪ５（Ｍｒ＝１６０，０００）を
非架橋ゲロニン（Ｍｒ＝３０，５００Ｔｈｏｒｐｅら
（１９８１）Ｅｕｒｏ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１１６：
４４７−４５４）から、及び幾つかの高分子量の凝集物
から分離する。分子量範囲１６０，０００〜２２０，０
００に対応し、ポリアクリルアミド／ドデシル硫酸ナト
リウムゲル電気泳動により自然のＪ５及び架橋した化合
物（例えば、Ｂ’又はＤ’）の両方を含む事が示された
主要ピークをプールし、同緩衝液で平衡化したヒドロキ
シルアパタイト（Ｂｉｏ−ＧｅｌＨＴＰ）のカラム（６
ｍＬベッドボリューム）を通す。このカラムを５カラム
容の緩衝液で洗い、次いで、結合した蛋白質を、上記緩
衝液中の５〜２００ｍＭの燐酸カリウム線形勾配で溶出
した。このカラムから溶出された結合体は非結合性抗体
を含まない。精製した結合体を、最後に、後の使用のた
めに、燐酸緩衝塩溶液、ｐＨ８．２に対して透析し、保
存した。
【００８６】酸開裂 複合体Ｂ’及びＤ’について、実施例３におけるのと同
様にして、酸開裂をなうことが出来る。ただし、複合体
Ｂ’及びＤ’からの本来のゲロニンの開裂は、およそｐ
Ｈ６．５より低いところで相対的に速く収率が良好であ
る。
【００８７】所定の薬剤−抗体複合体について、当業者
は収率及び放出速度を放出環境において経験するｐＨ及
び温度条件について測定することができかつそれを基に
して標的細胞に十分な活性物質を付与するのに必要な複
合体の量を決めることができる。例えば、薬剤放出はポ
リアクリルアミド／ドデシル硫酸ナトリウムゲル電気泳
動を使用して求めることができる。
【００８８】関心あるポリペプチド鎖をスルフヒドリル
基で機能化しかつ架橋試薬９’及び１８’に暴露させ
る。隣接する鎖のアミノ基はｐＨ７又はそれ以上におい
て開裂性アミド結合を形成する。鎖を変性させないｐＨ
（例えば、ｐＨ４〜５）におけるアミド結合の加水分解
は、例えばポリアクリルアミド／ＳＤＳゲル電気泳動に
よって追跡し、関心のある鎖に隣接する鎖を同定するこ
とができる。非変性条件、非酸化及び非還元条件下で加
水分解を制御し得ることが特に重要である。また、架橋
結合を任意のアミノ含有鎖部位に形成することができ、
かつ単に分子内にある遊離スルフヒドリル基の有効性に
依存しないことも重要である。
【００８９】その他の実施態様 その他の実施態様は次の請求の範囲内にある。例えば、
その他の薬剤送達複合体及びタンパク質評価架橋剤は請
求の範囲内にある。
【図面の簡単な説明】
【図１】一群の架橋試薬を調製するフローダイヤグラム
である。
【図２】第１図において調製した試薬によって架橋した
特定の複合体を調製するフローダイヤグラムである。
【図３】化合物Ａ’の合成におけるステップを示すフロ
ーダイヤグラムである。
【図４】化合物９’及びＢ’の合成におけるステップを
示すフローダイヤグラムである。
【図５】化合物１８’及びＤ’の合成におけるステップ
を示すフローダイヤグラムである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ラムバート，ジョン エム. アメリカ合衆国 02146 マサチューセッ ツ，ブルックライン，リンデン プレイス 21 (72)発明者 センター，ピーター ディー. アメリカ合衆国 02130 マサチューセッ ツ，ジャメイカ プレイン，ワン リージ ェント サークル （番地なし)

Claims (7)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 下記の化合物： 【化１】 ［式中、Ｒ１及びＲ２は独立にＨ，Ｃ５又はそれ以下の
    アルキル基から選び、Ａは下記の単位からなる 【化２】 （式中、Ｒ３、Ｒ４、Ｒ５及びＲ６は独立にＨ、ハロゲ
    ン、Ｃ５又はそれ以下のアルコキシ及びアルキル基、及
    び第三アミンから選び、Ｂはアミド結合及びフェニレン
    基又は（ＣＨ ２ ） ｑ （ｑ＝１〜５）からなるリンカーで
    ある）］、及び 【化３】 ［式中、Ｒ ２ は上に定義した通りであり、ｓ＝２〜５で
    あり、Ａは上に定義したもの又は下記の単位からなる 【化４】 （式中、ｎ＝１〜５）］の内の１つを含む架橋試薬。
  2. 【請求項２】 下記の単位： 【化５】 ［式中、ｎ＝１〜５であり、Ｒ１及びＲ２は独立にＨ，
    Ｃ５又はそれ以下のアルキル基から選び、Ｗは（Ｃ
    Ｈ２）ｑ（ｑ＝１〜５）であるか或は下記の単位： 【化６】 の内の１つである］を含む請求項１記載の試薬。
  3. 【請求項３】 ｎ＝１であり、かつＷ＝（ＣＨ２）５で
    ある請求項２記載の架橋試薬。
  4. 【請求項４】 アミノ基含有物質のアミノ窒素とスルフ
    ヒドリル機能を含有する物質との間の酸開裂性架橋を形
    成するのに適した架橋試薬を製造する方法であって、前
    記架橋試薬が下記の単位： 【化７】 ［式中、Ｒ１及びＲ２は独立にＨ，Ｃ５又はそれ以下の
    アルキル基から選び、Ａは下記の単位からなる 【化８】 （式中、Ｒ ３ 、Ｒ ４ 、Ｒ ５ 及びＲ ６ は独立にＨ、ハロゲ
    ン、Ｃ ５ 又はそれ以下のアルコキシ及びアルキル基、及
    び第三アミンから選び、Ｂはアミド結合及びフェニレン
    基又は（ＣＨ ２ ） ｑ （ｑ＝１〜５）からなるリンカーで
    ある）］、及び 【化９】 ［式中、Ｒ ２ は上に定義した通りであり、ｓ＝２〜５で
    あり、Ａは上に定義したもの又は下記の単位からなる 【化１０】 （式中、ｎ＝１〜５）］の内の１つを含み、活性化置換
    マレイン酸機能を与え、該活性化置換マレイン酸機能を
    チオフェノール含有機能を含む複合体に、該チオフェノ
    ールのスルフヒドリル基をイオン化させる程に高いｐＨ
    において行なう置換反応によって結合させ、該チオフェ
    ノール含有機能をマレイミド窒素に結合させることを含
    む、前記架橋試薬の製造方法。
  5. 【請求項５】 前記ｐＨが９．５〜１１．５である請求
    項４記載の方法。
  6. 【請求項６】 前記マレイン酸機能をカルボキシル基に
    アルファの炭素におけるハロゲン化アルキル機能によっ
    て活性化させる請求項４記載の方法。
  7. 【請求項７】 前記チオフェノール含有機能がアミンを
    含み、かつ前記マレイミド機能をアミノ窒素に窒素との
    アミド結合を形成することによって結合させる請求項４
    記載の方法。
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