JP3565714B2 - ヒト組織因子抑制因子 - Google Patents
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Description
【０００１】
【発明の背景】
本発明は、組織因子抑制因子（ＴＦＩ）あるいはリポタンパク質関連凝固抑制因子（ＬＡＣＩ）として知られる凝固抑制因子に関する。更に詳細には、本発明は全長ＴＦＩを本質的に表現しているｃＤＮＡクローンに関する。
【０００２】
哺乳動物の血液での凝固カスケードには、２つの異なるシステム、即ち内因性システムと外因性システムとがある。後者の外因性システムは、血液が組織スロンボプラステイン（第ＩＩＩ因子）（以後、組織因子（ＴＦ）と言う）にさらされることによって活性化される。この組織因子は、各種の細胞のプラズマメンブレン中で生じるリポタンパク質であり、特に脳及び肺において多く存在する。プラズマ第ＶＩＩ因子あるいはその活性体である第ＶＩＩａ因子がＴＦと接触すると、ＴＦとともにカルシウム依存性複合体を形成し、これがタンパク加水分解作用を発揮して第Ｘ因子を第Ｘａ因子にまた第ＩＸ因子を第ＩＸａ因子に活性化する。
【０００３】
ＴＦによりイニシエイトされる凝固系の制御に関するこれまでの研究により、ＴＦを血清とともにインキュベーション（粗組織スロンボプラステイン調製物中で）すると、その活性がｉｎ ｖｉｔｒｏで抑制されまたＴＦをマウスに注入した時の致死効果が阻止されることが明らかにされている。Ｈｊｏｒｔの精力的な研究によって、この分野におけるそれまでの研究成果が確認され更に研究が進められて、血清中の抑制成分が第ＶＩＩ−ＴＦ複合因子を認識することが結論として示された〔Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｌａｂ．Ｉｎｖｅｓｔ．９，ｓｕｐｐｌ．２７，７６〜９７（１９５７）〕。この結論は、プラズマ中で生じるＴＦの抑制にはＣａ２＋の存在が必要であり（第ＶＩＩ／ＶＩＩａ因子がＴＦに結合する際にもＣａ２＋の存在が必要）ＴＦの抑制はＥＤＴＡによる２価のカチオンのキレート化によって阻止され及び／又は逆転されるという事実と符合している。
【０００４】
最近の研究によって、プラズマあるいは血清中でＴＦを抑制するには第ＶＩＩａ因子だけではなく触媒的に活性な第Ｘａ因子と更に他の因子が必要であることが明らかにされている〔ＢｒｏｚｅとＭｉｌｅｔｉｃｈ、Ｂｌｏｏｄ６９，１５０〜１５５（１９８７）；Ｓａｎｄｅｒｓら、Ｉｂｉｄ．，６６，２０４〜２１２（１９８５）〕。この他の因子は組織因子抑制因子（ＴＦＩ）あるいはリポタンパク質関連凝固抑制因子（ＬＡＣＩ）と定義されるものであり、バリウム吸着プラズマ中に存在している。また血清を遠心して密度１．２１ｇ／ｃｍ３とした時の浮遊液中のリポタンパク質フラクションとともにＴＦＩ活性が分離されることから、この因子はリポタンパク質と関連しているものと考えられる。
【０００５】
ＢｒｏｚｅとＭｉｌｅｔｉｃｈ、Ｂｌｏｏｄ６９，１５０〜１５５（１９８７）及びＰｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８４、１８８６〜１８９０（１９８７）によればＨｅｐＧ２細胞（ヒトヘパトーマセルライン）が、プラズマ中に存在するＴＦＩと同様の特性を有する抑制成分を分泌することが示されている。
【０００６】
米国同時係属出顧Ｓｅｒ．Ｎｏ．７７，３６６号明細書（出願日：１９８７年７月２３日）には、ＨｅｐＧ２細胞から分泌された精製組織因子抑制因子が記戴されている。この組織因子抑制因子には２つの形態、即ちナトリウムドデシルスルフェートポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）で測定した時に約３７，０００〜４０，０００ダルトンの位置に現われるＴＦＩ１と約２５，０００〜２６，０００ダルトンの位置に現われるＴＦＩ２との２つの形態が存在することが見出されている。ＴＦＩのアミノ酸配列のＮ−末端部分が以下のように決定されている。
【化１】
（Ｘ−Ｘは未決定である）
上記米国出願明細書の記載は本明細書に引用する。
【０００７】
発明の要旨
本発明によれば、本質的に組織因子抑制因子の全長を表現するｃＤＮＡクローンの完全コード配列が見出された。
最初に、ヒト胎盤及び胎児肝λｇｔ１１ ｃＤＮＡライブラリーを、精製ＴＦＩに対するラビットポリクローナル血清でスクリーニングした。免疫学的にポジティブなクローンについて、更に１２５Ｉ−第Ｘａ因子結合活性をスクリーニングした。免疫学的にかつ機能的に活性な７個のクローンが得られた。最も長いクローンは胎盤由来λＰ９であって１．４キロベース（ｋｂ）であり、他の６個のクローンは１．０ｋｂであった。部分的ＤＮＡ配列決定により、１．０ｋｂクローンは１．４ｋｂクローンの１部分と同じ配列を有することが明らかになった。ヌクレオチド配列分析により、λＰ９は、１３３ｂｐの５′非コード領域、９１２ｂｐのオープン・リーディング・フレーム、ストップコドン及び３８４ｂｐの３′非コード領域を含む１４３２塩基対（ｂｐ）のｃＤＮＡインサート配列からなることが明らかにされた。
【０００８】
このｃＤＮＡ配列は、１８個のシステイン及び７個のメチオニンを含む２７６個のアミノ酸からなる３１，９５０ダルトンの蛋白質をコードしている。翻訳されたアミノ配列により、成熟ＴＦＩ蛋白の先には約２８個のアミノ酸からなるシグナルペプチドが存在することが明らかにされた。ここで言う“成熟”ＴＦＩとは、本明細書において記載するλＰ９クローンのＡＴＧ翻訳コドンによってＴＦＩとメチオニルＴＦＩとの両者を含むように定義されるものであり、このことは以下の記載から理解することができよう。
ＴＦＩ蛋白には、Ａｓｎ−Ｘ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ（Ｘは普通の２０個のアミノ酸のうちのいずれでもよい）の配列を有する３個のＮ−結合グリコシル化部位が存在する。これらの部位は、５′非コード領域の後の最初のメチオニンの位置をアミノ酸の位置＋１とした時、Ａｓｎ１４５，Ａｓｎ１９５及びＡｓｎ２５６の位置にある。
【０００９】
ＴＦＩの翻訳されたアミノ酸配列により、該アミノ酸配列は、高度にマイナスに荷電したＮ末端部分、高度にプラスに荷電したカルボキシ末端部分、及びＫｕｎｉｔｚ型酵素抑制因子の典型的配列を有する３個の相同ドメインからなる介在配列部分などのいくつかの識別可能な領域を有していることが明らかにされた。相同性についての研究から、ＴＦＩは塩基性プロテアーゼ抑制因子遺伝子スーパーファミリーに属するものと考えられる。
【００１０】
ｃＤＮＡクローンλＰ９を開発するために用いた蛋白材料はヒト胎盤組織であり、この組織は通常の外科的手法による分娩後に広く入手することができる。本発明において用いられているλｇｔ１１（１ａｃ５ ｎｉｎ５ ｃ１８５７ ｓ１００）はよく知られたものであって、普通に入手することのできるラムダファージ発現ベクターである。その構成及び制限酵素地図は、ＹｏｕｎｇとＤａｖｉｓ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８０，１１９４〜１１９８（１９８３）に記載されている。
ノーザン・ブロット分析により、肝由来セルライン、即ちＣｈａｎｇリバー、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ及びＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマは、ＴＦＩ ｃＤＮＡとハイブリダイズする２つの主要なｍＲＮＡ（１．４ｋｂと４．４ｋｂ）を有していることが明らかにされた。
【００１１】
本明細書に記載した如き、ＴＦＩのためのｃＤＮＡのクローニング及びその全蛋白配列及び構造の解明により、詳細な構造一機能分析が可能となり、またその生合成的レギュレーションの研究のための基本的知識が得られる。
しかして本発明は、第Ｘａ因子及び第ＶＩＩａ／ＴＦ酵素複合因子を抑制することのできる試薬についての血液凝固カスケード研究にとって重要なものである。
【００１２】
図面の詳細な記述
本明細書においては、特許請求の範囲の記載によって本発明を形成すると考えられる対象が特に指摘され明白にクレームされているが、以下に記述する図面についての説明とともに本発明の好ましい態様についての記載により本発明がよりよく理解されるものと考える。
【００１３】
図１は、１２５Ｉ−第Ｘａ因子を用いたλｇｔ１１クローンのスクリーニングを示したものである。
クローン化ファージの溶解物（０．１ｍｌ）を、ドット・プロット装置を用いたサクションによりニトロセルロースペーパー上にスポットし、次いでニトロセルロースペーパーを１２５Ｉ−第Ｘａ因子でプローブし、以後に記述するようにしてオートラジオグラフィーに付した。黒いスポットとして現われているクローンが１２５Ｉ−第Ｘａ因子と結合したポジティブ・クローンである。コントロールλｇｔ１１（下の右側のコーナー）及び他のクローンは１２５Ｉ−第Ｘａ因子と結合しなかった。
【００１４】
図２は、部分的制限酵素地図及びλＰ９のインサート配列の配列決定に用いた技法を示している。下に示したスケールはヌクレオチドの位置を示している。太い棒線はコード領域を示しており、細い棒線は５′及び３′非コード領域を示している。制限酵素部位は消化により確認した。矢印はｃＤＮＡの配列決走に用いたオーバーラッピングＭ１３クローンを示している。
【００１５】
図３および４はヒトＴＦＩ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列及び翻訳されたアミノ酸配列を示している。ヌクレオチドの番号は左側に示されており、アミノ酸の番号は右側に示されている。下線を引いた配列は、精製したＴＦＩ蛋白と、Ｖ８プロテアーゼとトリプシンで消化したペプチドとを用いたアミノ酸配列分析によって独立に確認された配列である。＋１のアミノ酸は、５′非コード領域のストップコドンの後にある最初のメチオニンである。Ｎ−結合グリコシル化部位は星印で示されている。
【００１６】
図５は、ＴＦＩのアミノ酸配列における電荷分布を示すグラフである。電荷は最初のアミノ酸残基からｉ番目のアミノ酸残基までを計算したものであり、その電荷の値がｉ番目の残基に示されている。従って、ｉ番目の位置の値は、最初のアミノ酸残基からｉ番目のアミノ酸残基までの全ての電荷を合計したものであり、ｉ番目とｊ番目（ｊ＞ｉ）のアミノ酸残基における値の差は、ｉ番目からｊ番目までのアミノ酸残基の合計電荷を示すものである。
【００１７】
図６は、ＴＦＩの疎水性プロファイルを示すグラフである。アミノ酸残基の疎水性の指数をアミノ酸残基が蛋白内に埋没された深さ（Ｘ線による結晶学的データから得られる）として定義するコンピュータープログラムによって、疎水性プロファイルを分析した〔Ｋｉｎｄｅｒａら、Ｊ．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｈｅｍ．４，２３〜５５（１９８５）〕。アミノ酸配列に沿った疎水性プロファイルは、ＩＭＳＬ ＬＩｂｒａｒｙのプログラムＩＣＳＳＣＵを用いることによって、滑らかになった〔ＩＭＳＬ Ｌｉｂｒａｒｙ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ Ｍａｎｕａｌ，９ｔｈ ｅｄ．，Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｆｏｒ Ｍａｔｈｅｍａｔｉｃａｌ ａｎｄ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ Ｓｕｂｒｏｕｔｉｎｅ Ｌｉｂｒａｒｙ，Ｈｏｕｓｔｏｎ，Ｔｅｘａｓ（１９８２）〕。
【００１８】
図７は、ＴＦＩの塩基性プロテアーゼ抑制因子ドメインと他の塩基性プロテアーゼ抑制因子とのアラインメントを示す。ＴＦＩ以外の他の全ての配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎの蛋白配列データベース（Ｇｅｏｇｅｔｏｗｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．，レリース１３，Ｊｕｎｅ１９８７）から得たものである。
１：牛塩基性プロテアーゼ抑制因子前駆体；
２：牛初乳トリプシン抑制因子；
３：牛血清塩基性プロテアーゼ抑制因子；
４：食用カタツムリ・イソ抑制因子；
５：紅海ウミガメ塩基性プロテアーゼ抑制因子
（１〜７９のアミノ酸のみ）；
６：ウエスタン・サンド毒ヘビ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｉ；
７：リンガルス毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩ；
８：ケープ・コブラ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩ；
９：ルッセル毒ヘビ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩ；
１０：サンド毒ヘビ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩＩ；
１１：イースタン・グリーン・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｉホモローグ；
１２：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｂ；
１３：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｅ；
１４：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｉ；
１５：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｋ；
１６：β−１−ブンガロトキシンＢ鎖（マイナー）；
１７：β−１−ブンガロトキシンＢ鎖（メジャー）；
１８：β−２−ブンガロトキシンＢ鎖；
１９：ウマ・インターα−トリプシン抑制因子〔アミノ酸１〜５７（１）；５８〜１２３（２）〕；
２０：ブタ・インター−α−トリプシン抑制因子〔アミノ酸１〜５７（１）；５８〜１２３（２）〕；
２１：ウシ・インター−α−トリプシン抑制因子〔アミノ酸１〜５７（１）；５８〜１２３（２）〕；
２２：ヒト・α−１−マイクログロブリン／インター−α−トリプシン抑制因子前駆体〔アミノ酸２２７〜２８３（１）；２８４〜３５２（２）〕；
２３：ＴＦＩ〔アミノ酸４７〜１１７（１）；１１８〜１８８（２）；２１０〜２８０（３）〕。
最良のアラインメントを達成するためには１６，１７，１８にギャップが含まれていた。
アミノ酸を示す標準的１文字コードを用いた。
【００１９】
図８は、３個の肝由来セルラインから得たＲＮＡのノーザン・ブロット分析を示す。１レーン当り１０μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡを用いた。
レーン１：ｃｈａｎｇリバー細胞、
レーン２：ＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマ細胞、
レーン３：ＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞．
本明細書においては、標準的生化学命名法を用いており、ヌクレオチド塩基は、アデニン（Ａ）；チミン（Ｔ）；グアニン（Ｇ）；シトシン（Ｃ）として表わされている。対応するヌクレオチドは、例えばデオキシグアノシン−５′−トリホスフェート（ｄＧＴＰ）である。ＤＮＡヌクレオチド配列は、便宜上慣用的に１本鎖のみで示されており、１本鎖におけるＡはその相補性塩基としてＴを内包しており、ＧはＣを内包している。アミノ酸は、以下の表に示すように１文字あるいは３文字で示されている。
【００２０】
【表１】
【００２１】
本明細書において記載される普通に入手し得る制限酵素は、以下に示す制限配列及び開裂パターン（矢印で示した）を有している。
【化２】
【００２２】
本発明の好ましい態様を更に詳細に説明するために、以下に記述する実験を実施した。
【００２３】
例１
材料
ヒト胎盤及び胎児肝ｃＤＮＡライブラリーをＣｌｏｎｅｔｅｃｈから得た。プロトブロット（Ｐｒｏｔｏｂｌｏｔ）・イムノスクリーニング・キットはＰｒｏｍｅｇａ Ｂｉｏｔｅｃｈから講入した。制限酵素はＮｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓから講入した。牛腸アルカリ・ホスファターゼ、Ｔ４ＤＮＡリガーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ（クレノー）、エキソヌクレアーゼＩＩＩ及びＳｌヌクレアーゼは、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍから購入した。ｄＮＴＰはＰ．Ｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓから購入した。５′−〔α−３５Ｓ〕−チオ−ｄＡＴＰ（６００Ｃｉ／ｍ ｍｏｌ）はＡｍｅｒｓｈａｍから購入した。配列決定用キット（Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ）はＵｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓから購入した。Ｃｈａｎｇリバー細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ１３）及びＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞（ＡＴＣＣ ＨＢ８０６５）は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションから得た。ＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマ細胞は、Ｓｌｏａｎ−Ｋｅｔｔｅｒｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｆｏｒ Ｃａｎｃｅｒ ＲｅｓｅａｒｃｈのＧ．Ｔｒｅｍｐｅによって１９７１年に肝アデノカルシノーマから誘導されたものであり、現在で広く容易に入手可能である。
【００２４】
１２５Ｉ−第Ｘａ因子は、ヨード源を用いて放射標識することにより調製した。この比活性は２０００ｄｐｍ／ｎｇであった。放射活性の９７％以上は１０％トリクロロ酢酸（ＴＣＡ）により沈澱可能であった。ヨード化蛋白は、ＳｅｐｅｃｔｒｏｚｙｍｅＸａ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ製）に対してその触媒活性を８０％以上保持していた。
【００２５】
抗−ＴＦＩ−ＩｇセファロースＴＭ４Ｂカラムは以下のようにして調製した。即ち、成熟ＴＦＩのアミノ酸３−２５の配列に相当する配列を含むペプチド（ＴＦＩ−ペプチド）を、Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍの固相ペプチド合成システムを用いて合成した。ＴＦＩ−ペプチド（５ｍｇ）を、グルタルアルデヒドによりキーホール（Ｋｅｙｈｏｌｅ）・リンペット（ｌｙｍｐｅｔ）・ヘモシアニン１０ｍｇに結合させてコンジュゲートを調製した。２匹のＮｅｗ Ｚｅａｌａｎｄホワイト・ラビットに、フロイント・完全・アジュバンド１ｍｌと、上記コンジュゲート１ｍｌ（ＴＦＩ−ペプチド２００μｇ）を含むホモジェネートを皮内注射して、それぞれ免疫化した。１ケ月後に、フロイント・不完全・アジュバント１ｍｌとコンジュゲート１ｍｌ（ＴＦＩ−ペプチド１００μｇ）を含むホモジェネートで、２匹のラビットをそれぞれブースターした。３ケ月の間、１週間毎に抗血清を採取し、１ケ月毎にブースター注射を行なった。ＴＦＩ−ペプチドに対する特異的抗体を単離するために、抗血清をＴＦＩ−ペプチドセファロース４Ｂカラムを用いたクロマトグラフィーに付した。カラムを、１０倍量のＰＢＳ（０．４Ｍ Ｎａｃ１−０．１Ｍベンズアミジン−１％トリトンＴＭＸ−１００）及びトリトンＸ−１００を含まない同様の溶液で洗った。０．１Ｍグリシン／ＨＣｌ、ｐＨ２．２で抗体を溶出させ、直ちに１／１０倍量の１Ｍトリス−ＯＨを加えて中和し、次いで食塩水に対して透析した。単離された抗体を、シアノゲン・ブロマイドで活性化させたセファロース４Ｂに製造業者（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）の指針に従って結合させ、これを細胞培養培地からのＴＦＩの単離に用いた。
【００２６】
Ｃｈａｎｇリバー細胞を、ＢｒｏｚｅとＭｉｌｅｔｉｃｈ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ１．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８４，１８８６〜１８９０（１９８７）に記載された方法に従って培養した。ならし培地を、抗−ＴＦＩ−Ｉｇセファロース４Ｂカラムを用いたクロマトグラフィーに付した。次いでカラムを、１０倍量のＰＢＳ−１％トリトンＸ−１００とＰＢＳで洗った。結合したＴＦＩを０．１Ｍグリシン／ＨＣ１、ｐＨ２．２で溶出した。イムノ・アフィニティーにより単離したＴＦＩを更に分離用ナトリウム・ドデシルスルフェート・ポリアクリルアミドゲル電気泳動（Ｓａｖａｎｔ ａｐｐａｒａｔｕｓ）により精製した。最終取得物のアミノ酸を分析した所、米国同時係属出願Ｓｅｒ．Ｎｏ．７７，３６６号明細書（出願日：１９８７年７月２３日）に記載されたＨｅＰＧ２細胞から単離したＴＦＩと同様のＮ末端アミノ酸配列を有していた。単離したＣｈａｎｇリバーＴＦＩを用いて、上記したと同じ免疫化プロトコールによりラビットを免疫化した。得られた抗血清は、２重免疫拡散法テストで約１００μｇ／ｍｌの力価を示した。この抗血清を用いてλｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーのイムノ・スクリーニングを行なった。
【００２７】
方法
ｃＤＮＡクローンの単離
抗体を用いた胎盤及び胎児肝ｃＤＮＡのスクリーニング法、プラーク精製法及びλ−ファージ溶解物とＤＮＡの調製法はＷｕｎとＫｒｅｔｚｍｅｒ，ＦＥＢＳＬＥＴＴ．１，１１〜１６（１９８７）に記載されている。抗血清にあらかじめＢＮＮ９７λｇｔ１１溶解物を吸着させ、ライブラリーのスクリーニング用に１／５００に希釈した。
【００２８】
第Ｘａ因子結合活性のスクリーニング
イソプロピル−β−チオガラクトシドによってイムノ・ポジティブλ−ファージ溶解物あるいはコントロールλｇｔ１１から誘導される組換え蛋白について、その第Ｘａ因子結合活性をスクリーニングした。λ−ファージ溶解物（０．１ｍｌ）は、ドットーブロット装置（Ｂｉｏ Ｒａｄ）を用いてニトロセルロースペーパーで濾過した。次いでニトロセルロースペーパーを、５ｍｇ／ｍｌ牛血清アルブミン及び２．５ｍｇ／ｍｌ牛ガンマグロブリンを含むリン酸緩衝化食塩水に浸し、室温で１時間激しく撹拌した。次いで、０．１ｍｇ／ｍｌヘパリンを添加した同様の溶液に更に１２５Ｉ−第Ｘａ因子（１．０×１０６ｃｍｐ／ｍｌ）を溶解した溶液で置換し、更に１時間激しく撹拌した。次いでニトロセルロースペーパーを、０．０５％ＴｗｅｅｎＴＭ２０を含むリン酸緩衝化食塩水で洗った。洗浄緩衝液を５分毎に４回交換した。次いでニトロセルロースペーパーを空気中で乾燥し、Ｋｏｄａｋ ＸＲ５ｎフィルムを用いてオートラジオグラフィー用に調製した。フィルムを１週間さらした後に現像した。
【００２９】
ポリ（Ａ） ＋ ＲＮＡの調製及びノーザン・ブロッティング
ＬｉｚａｒｄｉとＥｎｇｅｌｂｅｒｇのナトリウム・パークロレート抽出法〔Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．９８，１１６〜１２２，（１９７９）〕により、培養したｃｈａｎｇリバー細胞、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞及びＳＫ−ＨＥＰ−ｌヘパトーマ細胞から全ＲＮＡを調製した。製造業者の指針に従い、オリゴ（ｄＴ）−セルロース（Ｐ−Ｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ，タイプ７７Ｆ）へのバッチ吸着によりポリ（Ａ）＋ＲＮＡを単離した。ノーザン・ブロット分析用に、それぞれのポリ（Ａ）＋ＲＮＡ１０μｇをグリオキサールで処理し〔Ｔｈｏｍａｓ，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１００，２５５〜２６６（１９８３）〕、１０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７．０を含む緩衝液でアガロースゲル電気泳動に付した。Ｂｅｔｈｅｓｄａ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ＬａｂｏｒａｔｏｒｙのＲＮＡラダー（ｌａｄｄｅｒ）を分子量マーカーとして用いた。ＲＮＡをニトロセルロースペーパー上にブロットし、次いで８０℃で２時間焼いた。λＰ９クローンのインサートＤＮＡを、ニックトランスレーションにより３２Ｐで放射標識化し、プローブとして用いた〔Ｍａｎｉａｔｉｓら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍｏｄｅｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，（１９８２）〕。５０％ホルムアミド、５Ｘ ＳＳＣ，５０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７．０、２５０μｇ／ｍｌ変性サケスペルマＤＮＡ及び１Ｘ Ｄｅｎｈａｒｄ溶液を含む溶液５ｍｌ中のプローブ（５×１０６ｃｐｍ）で４２℃で１６時間ハイブリダイズさせた。フィルターを、０．１％ナトリウムドデシルスルフェート（ＳＤＳ）、２Ｘ ＳＳＳで室温で３回、それぞれ５分間洗った。次いでニトロセルロースペーパーを空気中で乾燥し、Ｋｏｄａｋ ＸＡＲ−５フィルム及び増感板を用いて−７０℃で３日間オートラジオグラフィーに付した。
【００３０】
他の組操えＤＮＡ法
クローン化λｇｔ１１ＤＮＡの調製、ｐＵＣ１９プラスミド及びＭ１３ｍｐ１８ベクターでのサブクローニング、エキソヌクレアーゼＩＩＩを用いた消化による欠失、及びジデオキ法によるＤＮＡ配列決定〔Ｓａｎｇｅｒら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８３，６７７６〜６７８０（１９７７）〕は、ＷｕｎとＫｒｅｔｚｍｅｒ，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．１，１１−１６（１９８７）に記載された方法に従って実施した。
ＬｉｐｍａｍとＰｅａｒｓｏｎによって書かれたプログラムＦＡＳＴＰ〔ｓｃｉｅｎｃｅ，２２７，１４３５〜１４４１（１９８５）〕を用いて、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎの配列データバンク（レリース１３，１９８７年６月）から相同性を示す蛋白のファミリーを同定し、該ファミリー内で配列のアラインメントを行なった。
【００３１】
結果 ｃＤＮＡライブラリーのスクリーニング
多数のセルラインについて、そのならし培地中にＴＦＩが存在するか否かをスクリーニングした。いくつかの肝由来セルライン、即ちＣｈａｎｇリバー、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ及びＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマが培地中にＴＦＩを分泌することが見出された。初めに、ＴＦＩに対する抗血清を用いてヒト胎児肝λｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリー（１０６プラーク・フォーミング・ユニット）をスクリーニングし、１５個の免疫学的にポジティブなクローンが得られた。次いで同様の方法により胎盤λｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。１０６プラーク・フォーミング・ユニットのうち１０個の免疫学的にポジティブなクローンが得られた。これらのクローンをプラーク精製し、精製クローンの溶解物についてＴＦＩの機能活性をテストした。イソプロピルチオガラクトシドで誘導したファージの溶解物をニトロセルロースペーパーに吸着せしめ、１２５Ｉ−第Ｘａ因子結合活性をスクリーニングした。上記の免疫学的にポジティブなクローンのいくつかは、ニトロセルロースペーパー上の１２５Ｉ−第Ｘａ因子と結合する能力を示したことが、図１により証明されている。免疫学的にポジティブな胎児肝クローン１５個のうち３個、及び免疫学的にポジティブな胎盤クローン１０個のうち４個のクローンが１２５Ｉ−第Ｘａ因子結合活性を示した。これらの免疫学的に且つ機能的にポジティブなクローンをＥｃｏＲＩで消化し、インサート配列のサイズをゲル電気泳動により調べた。胎盤ライブラリー（λＰ９）から得た１つのクローンは約１．４ｋｂのインサート配列を有しており、他のすべてのクローンは約１．０ｋｂのインサート配列を有していた。部分的ＤＮＡ配列決定により、１．０ｋｂクローンはより長い１．４ｋｂ胎盤クローンの１部分の配列と同じ配列を有していることが判った。従って、完全なＤＮＡ配列決定を行なうためにλＰ９を選択した。
【００３２】
ＴＦＩ ｃＤＮＡ単離物のヌクレオチド配列及びその予想蛋白配列
λＰ９クローンについて、制限酵素地図の作成、Ｍ１３サブクローニング及び図２に示した技法を用いた配列決定を実施した。エキソヌクレアーゼＩＩＩ欠失法〔Ｈｅｎｉｋｏｆｆ，Ｇｅｎｅ２８，３５１〜３５９（１９８４）〕により、２本のストランドの両者について全配列を決定し、１４３２個の塩基からなることが見出された。その配列は図３および４に示した通りである。該配列には、１３３塩基の５′非コード領域、９１２ヌクレオチドのオープン・リーディング・フレーム及び３８７ヌクレオチドの３′非コード領域が含まれている。最初のＡＴＧはＴＡＧＡＴＧＡ配列中のヌクレオチド１３４にあり、その直ぐ後のＡＣＡＡＴＧＡ配列中のヌクレオチド１４６に第２のＡＴＧがある。真核細胞のリボゾームによってイニシエートされるためのコンセンサス配列として提案された配列、ＡＣＣＡＴＧＧ〔Ｋｏｚａｋ，Ｃｅ１１，４４，２８３〜２９２（１９８２）〕とは、上記の配列は異なるが、これらはイニシエーション配列と考えられる。成熟蛋白のＮ末端に相当する配列の前に２８個のアミノ酸配列がある。これら２８個のアミノ酸からなる疎水性セグメントの組成及び長さは、シグナルペプチドに典型的なものである〔Ｖｏｎ Ｈｅｉｊｎｅ，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１３３，１７〜２１（１９８３）；Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ，１８４，９９〜１０５（１９８５）〕。シグナルペプチドはＡｌａ２８−Ａｓｐ２９で開裂し、成熟蛋白を与えると考えられる。成熟ＴＦＩとして予想されるアミノ酸配列は、１８個のシスティン残基及び７個のメチオニンを含む２７６個のアミノ酸からなる。成熟ＴＦＩの推定蛋白配列に基いて計算される分子量３１，９５０ダルトンは、単離して得た蛋白についてナトリウムドデシルスルフェートポリアクリルアミドゲル電気泳動で調べた分子量３７−４０ｋＤａよりもいく分小さい。この分子量の相違は、天然蛋白でのグリコシル化の移動性を反映したものと考えられる。成熟蛋白に相当する推定蛋白配列は、Ａｓｎ−Ｘ−Ｔｈｒ／Ｓｅｒの構成を有する３ケのＮ−結合グリコシル化部位（アミノ酸の位置１４５，１９５及び２５６）を有している。精製した全長ＴＦＩ及び加水分解された２つの単離体のアミノ酸分析の結果は、ｃＤＮＡ配列から推定される蛋白配列（図３および４の下線を引いた部分）と正確にマッチする。このことは、単離したｃＤＮＡクローンはＴＦＩをコードしていることを示している。３′非コード領域はＡ＋Ｔを豊富に含んでいる（７０％Ａ＋Ｔ）。このクローンには、コンセンサス・ポリアデニル化シグナル、ＡＡＴＡＡＡ〔ＰｒｏｕｄｆｏｏｔとＢｒｏｗｎｌｅｅ，Ｎａｔｕｒｅ，２５２，３５９〜３６２（１９８１）〕も、ポリＡテイルも見出されなかった。これは、ライブラリー構築の間に３′末端部分の１部分が失なわれたためと考えられる。
【００３３】
電荷分布、疎水性／親水性及び内部相同性
ＴＦＩの翻訳されたアミノ酸配列には、２７リシン、１７アルギニン、１１アスパラギン酸及び２５グルタミン酸が含まれている。蛋白にそった電荷分布は図５に示したようにかなり高低のあるものである。シグナルペプチド領域には、２６個の中性残基とともに２個のプラスに荷電したリシンが含まれていた。成熟蛋白のアミノ末端領域には、高度にマイナスに荷電した配列が含まれていた。最初の７個の残基のうち６個はアスパラギン酸あるいはグルタミン酸であり、この後に更に高度にマイナスに荷電した２個のアミノ酸のダウンストリームがあり、その後にプラスに荷電したリシン残基がある。中心部分は一般的にマイナスに荷電している。カルボキシ末端には高度にプラスに荷電したセグメントがある。ＴＦＩのアミノ酸２６５〜２９３には、６−共役アルギニン＋リシン残基を含むプラスに荷電した１４個のアミノ酸がある。
【００３４】
ＴＦＩ蛋白の予想疎水性／親水性プロファイルは図６に示した通りである。シグナルペプチドには、予想されたように高度に疎水性の領域が含まれている。残りの部分はむしろ親水性である。
ＴＦＩの翻訳されたアミノ酸配列には、いくつかの区別し得るドメインが含まれている。高度にマイナスに荷電したＮ末端ドメイン及び高度にプラスに荷電したＣ末端ドメインに加えて、Ｋｕｎｉｔｚ型抑制因子の典型的配列（下記参照）を有する３個の相同ドメインからなる中心部分がある。
【００３５】
他の蛋白との相同性
Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎの配列データベースを調べた所、ＴＦＩのＮ末端ドメインとＣ末端ドメインとは、他の公知蛋白と有意な相同性を有していないことが見出された。しかしながら、３個の内部相同ドメインは、牛膵臓塩基性プロテアーゼ抑制因子（アプロチニン）、毒塩基性プロテアーゼ抑制因子、インター−α−トリプシン抑制因子（図７）などの他の塩基性プロテアーゼ抑制因子の配列とそれぞれ相同性を示した。これらすべての抑制因子にはジスルフィド結合溝造が高度に保持されており、これは注目すべき事実である。これらの相同性から明らかなように、ＴＦＩは塩基性プロテアーゼ抑制因子遺伝子スーパーファミリーに属する。
【００３６】
ノーザン・ブロッテング
ＴＦＩ産生肝由来セルライン、即ちＣｈａｎｇリバー、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ及びＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマ細胞からポリ（Ａ）＋ＲＮＡを精製した。変性アガロースゲル電気泳動によりポリ（Ａ）＋ＲＮＡを溶解し、ニトロセルロースペーパー上にブロットし、３２Ｐ−標識化ＴＦＩ ｃＤＮＡ（λＰ９）をプローブとして用いて調べた。図８に示したように、２つの主要なハイブリダイゼーションバンドが観察された。これらはテストした３つの全てのセルラインに見られる１．４ｋｂ ｍＲＮＡ及び４．４ｋｂ ｍＲＮＡに対応するものである。検出し得る量のＴＦＩを産生しない他のセルラィンについてテストしたが、プローブとのハイブリダイゼーションは観察されなかった（データを示していない）。
本明細書の記載から、当業者にとっては本発明の思想及び範囲内にある他の各種の例が自明であろう。これらの例の全ては本明細書のクレームの範囲内のものである。
【図面の簡単な説明】
【図１】１２５Ｉ−第Ｘａ因子を用いたλｇｔ１１クローンのスクリ−ニングを示した写真である。
【図２】部分的制限酵素地図及びλＰ９のインサート配列の配列決定に用いた技法を示している。
【図３】ヒトＴＦＩ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列及び翻訳されたアミノ酸配列を示している。
【図４】ヒトＴＦＩ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列および翻訳されたアミノ酸配列。
【図５】ＴＦＩのアミノ酸配列における電荷分布を示すグラフである。
【図６】ＴＦＩの疎水性プロファイルを示すグラフである。
【図７】ＴＦＩの塩基性プロテアーゼ抑制因子ドメインと他の塩基性プロテアーゼ抑制因子とのアラインメントを示す。
【図８】３個の肝由来セルラインから得たＲＮＡのノーザン・ブロット分析を示す写真である。
【発明の背景】
本発明は、組織因子抑制因子（ＴＦＩ）あるいはリポタンパク質関連凝固抑制因子（ＬＡＣＩ）として知られる凝固抑制因子に関する。更に詳細には、本発明は全長ＴＦＩを本質的に表現しているｃＤＮＡクローンに関する。
【０００２】
哺乳動物の血液での凝固カスケードには、２つの異なるシステム、即ち内因性システムと外因性システムとがある。後者の外因性システムは、血液が組織スロンボプラステイン（第ＩＩＩ因子）（以後、組織因子（ＴＦ）と言う）にさらされることによって活性化される。この組織因子は、各種の細胞のプラズマメンブレン中で生じるリポタンパク質であり、特に脳及び肺において多く存在する。プラズマ第ＶＩＩ因子あるいはその活性体である第ＶＩＩａ因子がＴＦと接触すると、ＴＦとともにカルシウム依存性複合体を形成し、これがタンパク加水分解作用を発揮して第Ｘ因子を第Ｘａ因子にまた第ＩＸ因子を第ＩＸａ因子に活性化する。
【０００３】
ＴＦによりイニシエイトされる凝固系の制御に関するこれまでの研究により、ＴＦを血清とともにインキュベーション（粗組織スロンボプラステイン調製物中で）すると、その活性がｉｎ ｖｉｔｒｏで抑制されまたＴＦをマウスに注入した時の致死効果が阻止されることが明らかにされている。Ｈｊｏｒｔの精力的な研究によって、この分野におけるそれまでの研究成果が確認され更に研究が進められて、血清中の抑制成分が第ＶＩＩ−ＴＦ複合因子を認識することが結論として示された〔Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｌａｂ．Ｉｎｖｅｓｔ．９，ｓｕｐｐｌ．２７，７６〜９７（１９５７）〕。この結論は、プラズマ中で生じるＴＦの抑制にはＣａ２＋の存在が必要であり（第ＶＩＩ／ＶＩＩａ因子がＴＦに結合する際にもＣａ２＋の存在が必要）ＴＦの抑制はＥＤＴＡによる２価のカチオンのキレート化によって阻止され及び／又は逆転されるという事実と符合している。
【０００４】
最近の研究によって、プラズマあるいは血清中でＴＦを抑制するには第ＶＩＩａ因子だけではなく触媒的に活性な第Ｘａ因子と更に他の因子が必要であることが明らかにされている〔ＢｒｏｚｅとＭｉｌｅｔｉｃｈ、Ｂｌｏｏｄ６９，１５０〜１５５（１９８７）；Ｓａｎｄｅｒｓら、Ｉｂｉｄ．，６６，２０４〜２１２（１９８５）〕。この他の因子は組織因子抑制因子（ＴＦＩ）あるいはリポタンパク質関連凝固抑制因子（ＬＡＣＩ）と定義されるものであり、バリウム吸着プラズマ中に存在している。また血清を遠心して密度１．２１ｇ／ｃｍ３とした時の浮遊液中のリポタンパク質フラクションとともにＴＦＩ活性が分離されることから、この因子はリポタンパク質と関連しているものと考えられる。
【０００５】
ＢｒｏｚｅとＭｉｌｅｔｉｃｈ、Ｂｌｏｏｄ６９，１５０〜１５５（１９８７）及びＰｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８４、１８８６〜１８９０（１９８７）によればＨｅｐＧ２細胞（ヒトヘパトーマセルライン）が、プラズマ中に存在するＴＦＩと同様の特性を有する抑制成分を分泌することが示されている。
【０００６】
米国同時係属出顧Ｓｅｒ．Ｎｏ．７７，３６６号明細書（出願日：１９８７年７月２３日）には、ＨｅｐＧ２細胞から分泌された精製組織因子抑制因子が記戴されている。この組織因子抑制因子には２つの形態、即ちナトリウムドデシルスルフェートポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）で測定した時に約３７，０００〜４０，０００ダルトンの位置に現われるＴＦＩ１と約２５，０００〜２６，０００ダルトンの位置に現われるＴＦＩ２との２つの形態が存在することが見出されている。ＴＦＩのアミノ酸配列のＮ−末端部分が以下のように決定されている。
【化１】
上記米国出願明細書の記載は本明細書に引用する。
【０００７】
発明の要旨
本発明によれば、本質的に組織因子抑制因子の全長を表現するｃＤＮＡクローンの完全コード配列が見出された。
最初に、ヒト胎盤及び胎児肝λｇｔ１１ ｃＤＮＡライブラリーを、精製ＴＦＩに対するラビットポリクローナル血清でスクリーニングした。免疫学的にポジティブなクローンについて、更に１２５Ｉ−第Ｘａ因子結合活性をスクリーニングした。免疫学的にかつ機能的に活性な７個のクローンが得られた。最も長いクローンは胎盤由来λＰ９であって１．４キロベース（ｋｂ）であり、他の６個のクローンは１．０ｋｂであった。部分的ＤＮＡ配列決定により、１．０ｋｂクローンは１．４ｋｂクローンの１部分と同じ配列を有することが明らかになった。ヌクレオチド配列分析により、λＰ９は、１３３ｂｐの５′非コード領域、９１２ｂｐのオープン・リーディング・フレーム、ストップコドン及び３８４ｂｐの３′非コード領域を含む１４３２塩基対（ｂｐ）のｃＤＮＡインサート配列からなることが明らかにされた。
【０００８】
このｃＤＮＡ配列は、１８個のシステイン及び７個のメチオニンを含む２７６個のアミノ酸からなる３１，９５０ダルトンの蛋白質をコードしている。翻訳されたアミノ配列により、成熟ＴＦＩ蛋白の先には約２８個のアミノ酸からなるシグナルペプチドが存在することが明らかにされた。ここで言う“成熟”ＴＦＩとは、本明細書において記載するλＰ９クローンのＡＴＧ翻訳コドンによってＴＦＩとメチオニルＴＦＩとの両者を含むように定義されるものであり、このことは以下の記載から理解することができよう。
ＴＦＩ蛋白には、Ａｓｎ−Ｘ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ（Ｘは普通の２０個のアミノ酸のうちのいずれでもよい）の配列を有する３個のＮ−結合グリコシル化部位が存在する。これらの部位は、５′非コード領域の後の最初のメチオニンの位置をアミノ酸の位置＋１とした時、Ａｓｎ１４５，Ａｓｎ１９５及びＡｓｎ２５６の位置にある。
【０００９】
ＴＦＩの翻訳されたアミノ酸配列により、該アミノ酸配列は、高度にマイナスに荷電したＮ末端部分、高度にプラスに荷電したカルボキシ末端部分、及びＫｕｎｉｔｚ型酵素抑制因子の典型的配列を有する３個の相同ドメインからなる介在配列部分などのいくつかの識別可能な領域を有していることが明らかにされた。相同性についての研究から、ＴＦＩは塩基性プロテアーゼ抑制因子遺伝子スーパーファミリーに属するものと考えられる。
【００１０】
ｃＤＮＡクローンλＰ９を開発するために用いた蛋白材料はヒト胎盤組織であり、この組織は通常の外科的手法による分娩後に広く入手することができる。本発明において用いられているλｇｔ１１（１ａｃ５ ｎｉｎ５ ｃ１８５７ ｓ１００）はよく知られたものであって、普通に入手することのできるラムダファージ発現ベクターである。その構成及び制限酵素地図は、ＹｏｕｎｇとＤａｖｉｓ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８０，１１９４〜１１９８（１９８３）に記載されている。
ノーザン・ブロット分析により、肝由来セルライン、即ちＣｈａｎｇリバー、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ及びＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマは、ＴＦＩ ｃＤＮＡとハイブリダイズする２つの主要なｍＲＮＡ（１．４ｋｂと４．４ｋｂ）を有していることが明らかにされた。
【００１１】
本明細書に記載した如き、ＴＦＩのためのｃＤＮＡのクローニング及びその全蛋白配列及び構造の解明により、詳細な構造一機能分析が可能となり、またその生合成的レギュレーションの研究のための基本的知識が得られる。
しかして本発明は、第Ｘａ因子及び第ＶＩＩａ／ＴＦ酵素複合因子を抑制することのできる試薬についての血液凝固カスケード研究にとって重要なものである。
【００１２】
図面の詳細な記述
本明細書においては、特許請求の範囲の記載によって本発明を形成すると考えられる対象が特に指摘され明白にクレームされているが、以下に記述する図面についての説明とともに本発明の好ましい態様についての記載により本発明がよりよく理解されるものと考える。
【００１３】
図１は、１２５Ｉ−第Ｘａ因子を用いたλｇｔ１１クローンのスクリーニングを示したものである。
クローン化ファージの溶解物（０．１ｍｌ）を、ドット・プロット装置を用いたサクションによりニトロセルロースペーパー上にスポットし、次いでニトロセルロースペーパーを１２５Ｉ−第Ｘａ因子でプローブし、以後に記述するようにしてオートラジオグラフィーに付した。黒いスポットとして現われているクローンが１２５Ｉ−第Ｘａ因子と結合したポジティブ・クローンである。コントロールλｇｔ１１（下の右側のコーナー）及び他のクローンは１２５Ｉ−第Ｘａ因子と結合しなかった。
【００１４】
図２は、部分的制限酵素地図及びλＰ９のインサート配列の配列決定に用いた技法を示している。下に示したスケールはヌクレオチドの位置を示している。太い棒線はコード領域を示しており、細い棒線は５′及び３′非コード領域を示している。制限酵素部位は消化により確認した。矢印はｃＤＮＡの配列決走に用いたオーバーラッピングＭ１３クローンを示している。
【００１５】
図３および４はヒトＴＦＩ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列及び翻訳されたアミノ酸配列を示している。ヌクレオチドの番号は左側に示されており、アミノ酸の番号は右側に示されている。下線を引いた配列は、精製したＴＦＩ蛋白と、Ｖ８プロテアーゼとトリプシンで消化したペプチドとを用いたアミノ酸配列分析によって独立に確認された配列である。＋１のアミノ酸は、５′非コード領域のストップコドンの後にある最初のメチオニンである。Ｎ−結合グリコシル化部位は星印で示されている。
【００１６】
図５は、ＴＦＩのアミノ酸配列における電荷分布を示すグラフである。電荷は最初のアミノ酸残基からｉ番目のアミノ酸残基までを計算したものであり、その電荷の値がｉ番目の残基に示されている。従って、ｉ番目の位置の値は、最初のアミノ酸残基からｉ番目のアミノ酸残基までの全ての電荷を合計したものであり、ｉ番目とｊ番目（ｊ＞ｉ）のアミノ酸残基における値の差は、ｉ番目からｊ番目までのアミノ酸残基の合計電荷を示すものである。
【００１７】
図６は、ＴＦＩの疎水性プロファイルを示すグラフである。アミノ酸残基の疎水性の指数をアミノ酸残基が蛋白内に埋没された深さ（Ｘ線による結晶学的データから得られる）として定義するコンピュータープログラムによって、疎水性プロファイルを分析した〔Ｋｉｎｄｅｒａら、Ｊ．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｈｅｍ．４，２３〜５５（１９８５）〕。アミノ酸配列に沿った疎水性プロファイルは、ＩＭＳＬ ＬＩｂｒａｒｙのプログラムＩＣＳＳＣＵを用いることによって、滑らかになった〔ＩＭＳＬ Ｌｉｂｒａｒｙ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ Ｍａｎｕａｌ，９ｔｈ ｅｄ．，Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｆｏｒ Ｍａｔｈｅｍａｔｉｃａｌ ａｎｄ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ Ｓｕｂｒｏｕｔｉｎｅ Ｌｉｂｒａｒｙ，Ｈｏｕｓｔｏｎ，Ｔｅｘａｓ（１９８２）〕。
【００１８】
図７は、ＴＦＩの塩基性プロテアーゼ抑制因子ドメインと他の塩基性プロテアーゼ抑制因子とのアラインメントを示す。ＴＦＩ以外の他の全ての配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎの蛋白配列データベース（Ｇｅｏｇｅｔｏｗｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．，レリース１３，Ｊｕｎｅ１９８７）から得たものである。
１：牛塩基性プロテアーゼ抑制因子前駆体；
２：牛初乳トリプシン抑制因子；
３：牛血清塩基性プロテアーゼ抑制因子；
４：食用カタツムリ・イソ抑制因子；
５：紅海ウミガメ塩基性プロテアーゼ抑制因子
（１〜７９のアミノ酸のみ）；
６：ウエスタン・サンド毒ヘビ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｉ；
７：リンガルス毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩ；
８：ケープ・コブラ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩ；
９：ルッセル毒ヘビ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩ；
１０：サンド毒ヘビ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子ＩＩＩ；
１１：イースタン・グリーン・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｉホモローグ；
１２：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｂ；
１３：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｅ；
１４：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｉ；
１５：ブラック・マーンバ毒の塩基性プロテアーゼ抑制因子Ｋ；
１６：β−１−ブンガロトキシンＢ鎖（マイナー）；
１７：β−１−ブンガロトキシンＢ鎖（メジャー）；
１８：β−２−ブンガロトキシンＢ鎖；
１９：ウマ・インターα−トリプシン抑制因子〔アミノ酸１〜５７（１）；５８〜１２３（２）〕；
２０：ブタ・インター−α−トリプシン抑制因子〔アミノ酸１〜５７（１）；５８〜１２３（２）〕；
２１：ウシ・インター−α−トリプシン抑制因子〔アミノ酸１〜５７（１）；５８〜１２３（２）〕；
２２：ヒト・α−１−マイクログロブリン／インター−α−トリプシン抑制因子前駆体〔アミノ酸２２７〜２８３（１）；２８４〜３５２（２）〕；
２３：ＴＦＩ〔アミノ酸４７〜１１７（１）；１１８〜１８８（２）；２１０〜２８０（３）〕。
最良のアラインメントを達成するためには１６，１７，１８にギャップが含まれていた。
アミノ酸を示す標準的１文字コードを用いた。
【００１９】
図８は、３個の肝由来セルラインから得たＲＮＡのノーザン・ブロット分析を示す。１レーン当り１０μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡを用いた。
レーン１：ｃｈａｎｇリバー細胞、
レーン２：ＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマ細胞、
レーン３：ＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞．
本明細書においては、標準的生化学命名法を用いており、ヌクレオチド塩基は、アデニン（Ａ）；チミン（Ｔ）；グアニン（Ｇ）；シトシン（Ｃ）として表わされている。対応するヌクレオチドは、例えばデオキシグアノシン−５′−トリホスフェート（ｄＧＴＰ）である。ＤＮＡヌクレオチド配列は、便宜上慣用的に１本鎖のみで示されており、１本鎖におけるＡはその相補性塩基としてＴを内包しており、ＧはＣを内包している。アミノ酸は、以下の表に示すように１文字あるいは３文字で示されている。
【００２０】
【表１】
本明細書において記載される普通に入手し得る制限酵素は、以下に示す制限配列及び開裂パターン（矢印で示した）を有している。
【化２】
本発明の好ましい態様を更に詳細に説明するために、以下に記述する実験を実施した。
【００２３】
例１
材料
ヒト胎盤及び胎児肝ｃＤＮＡライブラリーをＣｌｏｎｅｔｅｃｈから得た。プロトブロット（Ｐｒｏｔｏｂｌｏｔ）・イムノスクリーニング・キットはＰｒｏｍｅｇａ Ｂｉｏｔｅｃｈから講入した。制限酵素はＮｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓから講入した。牛腸アルカリ・ホスファターゼ、Ｔ４ＤＮＡリガーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ（クレノー）、エキソヌクレアーゼＩＩＩ及びＳｌヌクレアーゼは、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍから購入した。ｄＮＴＰはＰ．Ｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓから購入した。５′−〔α−３５Ｓ〕−チオ−ｄＡＴＰ（６００Ｃｉ／ｍ ｍｏｌ）はＡｍｅｒｓｈａｍから購入した。配列決定用キット（Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ）はＵｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓから購入した。Ｃｈａｎｇリバー細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ１３）及びＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞（ＡＴＣＣ ＨＢ８０６５）は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションから得た。ＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマ細胞は、Ｓｌｏａｎ−Ｋｅｔｔｅｒｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｆｏｒ Ｃａｎｃｅｒ ＲｅｓｅａｒｃｈのＧ．Ｔｒｅｍｐｅによって１９７１年に肝アデノカルシノーマから誘導されたものであり、現在で広く容易に入手可能である。
【００２４】
１２５Ｉ−第Ｘａ因子は、ヨード源を用いて放射標識することにより調製した。この比活性は２０００ｄｐｍ／ｎｇであった。放射活性の９７％以上は１０％トリクロロ酢酸（ＴＣＡ）により沈澱可能であった。ヨード化蛋白は、ＳｅｐｅｃｔｒｏｚｙｍｅＸａ（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ製）に対してその触媒活性を８０％以上保持していた。
【００２５】
抗−ＴＦＩ−ＩｇセファロースＴＭ４Ｂカラムは以下のようにして調製した。即ち、成熟ＴＦＩのアミノ酸３−２５の配列に相当する配列を含むペプチド（ＴＦＩ−ペプチド）を、Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍの固相ペプチド合成システムを用いて合成した。ＴＦＩ−ペプチド（５ｍｇ）を、グルタルアルデヒドによりキーホール（Ｋｅｙｈｏｌｅ）・リンペット（ｌｙｍｐｅｔ）・ヘモシアニン１０ｍｇに結合させてコンジュゲートを調製した。２匹のＮｅｗ Ｚｅａｌａｎｄホワイト・ラビットに、フロイント・完全・アジュバンド１ｍｌと、上記コンジュゲート１ｍｌ（ＴＦＩ−ペプチド２００μｇ）を含むホモジェネートを皮内注射して、それぞれ免疫化した。１ケ月後に、フロイント・不完全・アジュバント１ｍｌとコンジュゲート１ｍｌ（ＴＦＩ−ペプチド１００μｇ）を含むホモジェネートで、２匹のラビットをそれぞれブースターした。３ケ月の間、１週間毎に抗血清を採取し、１ケ月毎にブースター注射を行なった。ＴＦＩ−ペプチドに対する特異的抗体を単離するために、抗血清をＴＦＩ−ペプチドセファロース４Ｂカラムを用いたクロマトグラフィーに付した。カラムを、１０倍量のＰＢＳ（０．４Ｍ Ｎａｃ１−０．１Ｍベンズアミジン−１％トリトンＴＭＸ−１００）及びトリトンＸ−１００を含まない同様の溶液で洗った。０．１Ｍグリシン／ＨＣｌ、ｐＨ２．２で抗体を溶出させ、直ちに１／１０倍量の１Ｍトリス−ＯＨを加えて中和し、次いで食塩水に対して透析した。単離された抗体を、シアノゲン・ブロマイドで活性化させたセファロース４Ｂに製造業者（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）の指針に従って結合させ、これを細胞培養培地からのＴＦＩの単離に用いた。
【００２６】
Ｃｈａｎｇリバー細胞を、ＢｒｏｚｅとＭｉｌｅｔｉｃｈ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ１．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８４，１８８６〜１８９０（１９８７）に記載された方法に従って培養した。ならし培地を、抗−ＴＦＩ−Ｉｇセファロース４Ｂカラムを用いたクロマトグラフィーに付した。次いでカラムを、１０倍量のＰＢＳ−１％トリトンＸ−１００とＰＢＳで洗った。結合したＴＦＩを０．１Ｍグリシン／ＨＣ１、ｐＨ２．２で溶出した。イムノ・アフィニティーにより単離したＴＦＩを更に分離用ナトリウム・ドデシルスルフェート・ポリアクリルアミドゲル電気泳動（Ｓａｖａｎｔ ａｐｐａｒａｔｕｓ）により精製した。最終取得物のアミノ酸を分析した所、米国同時係属出願Ｓｅｒ．Ｎｏ．７７，３６６号明細書（出願日：１９８７年７月２３日）に記載されたＨｅＰＧ２細胞から単離したＴＦＩと同様のＮ末端アミノ酸配列を有していた。単離したＣｈａｎｇリバーＴＦＩを用いて、上記したと同じ免疫化プロトコールによりラビットを免疫化した。得られた抗血清は、２重免疫拡散法テストで約１００μｇ／ｍｌの力価を示した。この抗血清を用いてλｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーのイムノ・スクリーニングを行なった。
【００２７】
方法
ｃＤＮＡクローンの単離
抗体を用いた胎盤及び胎児肝ｃＤＮＡのスクリーニング法、プラーク精製法及びλ−ファージ溶解物とＤＮＡの調製法はＷｕｎとＫｒｅｔｚｍｅｒ，ＦＥＢＳＬＥＴＴ．１，１１〜１６（１９８７）に記載されている。抗血清にあらかじめＢＮＮ９７λｇｔ１１溶解物を吸着させ、ライブラリーのスクリーニング用に１／５００に希釈した。
【００２８】
第Ｘａ因子結合活性のスクリーニング
イソプロピル−β−チオガラクトシドによってイムノ・ポジティブλ−ファージ溶解物あるいはコントロールλｇｔ１１から誘導される組換え蛋白について、その第Ｘａ因子結合活性をスクリーニングした。λ−ファージ溶解物（０．１ｍｌ）は、ドットーブロット装置（Ｂｉｏ Ｒａｄ）を用いてニトロセルロースペーパーで濾過した。次いでニトロセルロースペーパーを、５ｍｇ／ｍｌ牛血清アルブミン及び２．５ｍｇ／ｍｌ牛ガンマグロブリンを含むリン酸緩衝化食塩水に浸し、室温で１時間激しく撹拌した。次いで、０．１ｍｇ／ｍｌヘパリンを添加した同様の溶液に更に１２５Ｉ−第Ｘａ因子（１．０×１０６ｃｍｐ／ｍｌ）を溶解した溶液で置換し、更に１時間激しく撹拌した。次いでニトロセルロースペーパーを、０．０５％ＴｗｅｅｎＴＭ２０を含むリン酸緩衝化食塩水で洗った。洗浄緩衝液を５分毎に４回交換した。次いでニトロセルロースペーパーを空気中で乾燥し、Ｋｏｄａｋ ＸＲ５ｎフィルムを用いてオートラジオグラフィー用に調製した。フィルムを１週間さらした後に現像した。
【００２９】
ポリ（Ａ） ＋ ＲＮＡの調製及びノーザン・ブロッティング
ＬｉｚａｒｄｉとＥｎｇｅｌｂｅｒｇのナトリウム・パークロレート抽出法〔Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．９８，１１６〜１２２，（１９７９）〕により、培養したｃｈａｎｇリバー細胞、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞及びＳＫ−ＨＥＰ−ｌヘパトーマ細胞から全ＲＮＡを調製した。製造業者の指針に従い、オリゴ（ｄＴ）−セルロース（Ｐ−Ｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ，タイプ７７Ｆ）へのバッチ吸着によりポリ（Ａ）＋ＲＮＡを単離した。ノーザン・ブロット分析用に、それぞれのポリ（Ａ）＋ＲＮＡ１０μｇをグリオキサールで処理し〔Ｔｈｏｍａｓ，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１００，２５５〜２６６（１９８３）〕、１０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７．０を含む緩衝液でアガロースゲル電気泳動に付した。Ｂｅｔｈｅｓｄａ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ＬａｂｏｒａｔｏｒｙのＲＮＡラダー（ｌａｄｄｅｒ）を分子量マーカーとして用いた。ＲＮＡをニトロセルロースペーパー上にブロットし、次いで８０℃で２時間焼いた。λＰ９クローンのインサートＤＮＡを、ニックトランスレーションにより３２Ｐで放射標識化し、プローブとして用いた〔Ｍａｎｉａｔｉｓら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍｏｄｅｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．，（１９８２）〕。５０％ホルムアミド、５Ｘ ＳＳＣ，５０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ７．０、２５０μｇ／ｍｌ変性サケスペルマＤＮＡ及び１Ｘ Ｄｅｎｈａｒｄ溶液を含む溶液５ｍｌ中のプローブ（５×１０６ｃｐｍ）で４２℃で１６時間ハイブリダイズさせた。フィルターを、０．１％ナトリウムドデシルスルフェート（ＳＤＳ）、２Ｘ ＳＳＳで室温で３回、それぞれ５分間洗った。次いでニトロセルロースペーパーを空気中で乾燥し、Ｋｏｄａｋ ＸＡＲ−５フィルム及び増感板を用いて−７０℃で３日間オートラジオグラフィーに付した。
【００３０】
他の組操えＤＮＡ法
クローン化λｇｔ１１ＤＮＡの調製、ｐＵＣ１９プラスミド及びＭ１３ｍｐ１８ベクターでのサブクローニング、エキソヌクレアーゼＩＩＩを用いた消化による欠失、及びジデオキ法によるＤＮＡ配列決定〔Ｓａｎｇｅｒら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８３，６７７６〜６７８０（１９７７）〕は、ＷｕｎとＫｒｅｔｚｍｅｒ，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．１，１１−１６（１９８７）に記載された方法に従って実施した。
ＬｉｐｍａｍとＰｅａｒｓｏｎによって書かれたプログラムＦＡＳＴＰ〔ｓｃｉｅｎｃｅ，２２７，１４３５〜１４４１（１９８５）〕を用いて、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎの配列データバンク（レリース１３，１９８７年６月）から相同性を示す蛋白のファミリーを同定し、該ファミリー内で配列のアラインメントを行なった。
【００３１】
結果 ｃＤＮＡライブラリーのスクリーニング
多数のセルラインについて、そのならし培地中にＴＦＩが存在するか否かをスクリーニングした。いくつかの肝由来セルライン、即ちＣｈａｎｇリバー、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ及びＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマが培地中にＴＦＩを分泌することが見出された。初めに、ＴＦＩに対する抗血清を用いてヒト胎児肝λｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリー（１０６プラーク・フォーミング・ユニット）をスクリーニングし、１５個の免疫学的にポジティブなクローンが得られた。次いで同様の方法により胎盤λｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。１０６プラーク・フォーミング・ユニットのうち１０個の免疫学的にポジティブなクローンが得られた。これらのクローンをプラーク精製し、精製クローンの溶解物についてＴＦＩの機能活性をテストした。イソプロピルチオガラクトシドで誘導したファージの溶解物をニトロセルロースペーパーに吸着せしめ、１２５Ｉ−第Ｘａ因子結合活性をスクリーニングした。上記の免疫学的にポジティブなクローンのいくつかは、ニトロセルロースペーパー上の１２５Ｉ−第Ｘａ因子と結合する能力を示したことが、図１により証明されている。免疫学的にポジティブな胎児肝クローン１５個のうち３個、及び免疫学的にポジティブな胎盤クローン１０個のうち４個のクローンが１２５Ｉ−第Ｘａ因子結合活性を示した。これらの免疫学的に且つ機能的にポジティブなクローンをＥｃｏＲＩで消化し、インサート配列のサイズをゲル電気泳動により調べた。胎盤ライブラリー（λＰ９）から得た１つのクローンは約１．４ｋｂのインサート配列を有しており、他のすべてのクローンは約１．０ｋｂのインサート配列を有していた。部分的ＤＮＡ配列決定により、１．０ｋｂクローンはより長い１．４ｋｂ胎盤クローンの１部分の配列と同じ配列を有していることが判った。従って、完全なＤＮＡ配列決定を行なうためにλＰ９を選択した。
【００３２】
ＴＦＩ ｃＤＮＡ単離物のヌクレオチド配列及びその予想蛋白配列
λＰ９クローンについて、制限酵素地図の作成、Ｍ１３サブクローニング及び図２に示した技法を用いた配列決定を実施した。エキソヌクレアーゼＩＩＩ欠失法〔Ｈｅｎｉｋｏｆｆ，Ｇｅｎｅ２８，３５１〜３５９（１９８４）〕により、２本のストランドの両者について全配列を決定し、１４３２個の塩基からなることが見出された。その配列は図３および４に示した通りである。該配列には、１３３塩基の５′非コード領域、９１２ヌクレオチドのオープン・リーディング・フレーム及び３８７ヌクレオチドの３′非コード領域が含まれている。最初のＡＴＧはＴＡＧＡＴＧＡ配列中のヌクレオチド１３４にあり、その直ぐ後のＡＣＡＡＴＧＡ配列中のヌクレオチド１４６に第２のＡＴＧがある。真核細胞のリボゾームによってイニシエートされるためのコンセンサス配列として提案された配列、ＡＣＣＡＴＧＧ〔Ｋｏｚａｋ，Ｃｅ１１，４４，２８３〜２９２（１９８２）〕とは、上記の配列は異なるが、これらはイニシエーション配列と考えられる。成熟蛋白のＮ末端に相当する配列の前に２８個のアミノ酸配列がある。これら２８個のアミノ酸からなる疎水性セグメントの組成及び長さは、シグナルペプチドに典型的なものである〔Ｖｏｎ Ｈｅｉｊｎｅ，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１３３，１７〜２１（１９８３）；Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ，１８４，９９〜１０５（１９８５）〕。シグナルペプチドはＡｌａ２８−Ａｓｐ２９で開裂し、成熟蛋白を与えると考えられる。成熟ＴＦＩとして予想されるアミノ酸配列は、１８個のシスティン残基及び７個のメチオニンを含む２７６個のアミノ酸からなる。成熟ＴＦＩの推定蛋白配列に基いて計算される分子量３１，９５０ダルトンは、単離して得た蛋白についてナトリウムドデシルスルフェートポリアクリルアミドゲル電気泳動で調べた分子量３７−４０ｋＤａよりもいく分小さい。この分子量の相違は、天然蛋白でのグリコシル化の移動性を反映したものと考えられる。成熟蛋白に相当する推定蛋白配列は、Ａｓｎ−Ｘ−Ｔｈｒ／Ｓｅｒの構成を有する３ケのＮ−結合グリコシル化部位（アミノ酸の位置１４５，１９５及び２５６）を有している。精製した全長ＴＦＩ及び加水分解された２つの単離体のアミノ酸分析の結果は、ｃＤＮＡ配列から推定される蛋白配列（図３および４の下線を引いた部分）と正確にマッチする。このことは、単離したｃＤＮＡクローンはＴＦＩをコードしていることを示している。３′非コード領域はＡ＋Ｔを豊富に含んでいる（７０％Ａ＋Ｔ）。このクローンには、コンセンサス・ポリアデニル化シグナル、ＡＡＴＡＡＡ〔ＰｒｏｕｄｆｏｏｔとＢｒｏｗｎｌｅｅ，Ｎａｔｕｒｅ，２５２，３５９〜３６２（１９８１）〕も、ポリＡテイルも見出されなかった。これは、ライブラリー構築の間に３′末端部分の１部分が失なわれたためと考えられる。
【００３３】
電荷分布、疎水性／親水性及び内部相同性
ＴＦＩの翻訳されたアミノ酸配列には、２７リシン、１７アルギニン、１１アスパラギン酸及び２５グルタミン酸が含まれている。蛋白にそった電荷分布は図５に示したようにかなり高低のあるものである。シグナルペプチド領域には、２６個の中性残基とともに２個のプラスに荷電したリシンが含まれていた。成熟蛋白のアミノ末端領域には、高度にマイナスに荷電した配列が含まれていた。最初の７個の残基のうち６個はアスパラギン酸あるいはグルタミン酸であり、この後に更に高度にマイナスに荷電した２個のアミノ酸のダウンストリームがあり、その後にプラスに荷電したリシン残基がある。中心部分は一般的にマイナスに荷電している。カルボキシ末端には高度にプラスに荷電したセグメントがある。ＴＦＩのアミノ酸２６５〜２９３には、６−共役アルギニン＋リシン残基を含むプラスに荷電した１４個のアミノ酸がある。
【００３４】
ＴＦＩ蛋白の予想疎水性／親水性プロファイルは図６に示した通りである。シグナルペプチドには、予想されたように高度に疎水性の領域が含まれている。残りの部分はむしろ親水性である。
ＴＦＩの翻訳されたアミノ酸配列には、いくつかの区別し得るドメインが含まれている。高度にマイナスに荷電したＮ末端ドメイン及び高度にプラスに荷電したＣ末端ドメインに加えて、Ｋｕｎｉｔｚ型抑制因子の典型的配列（下記参照）を有する３個の相同ドメインからなる中心部分がある。
【００３５】
他の蛋白との相同性
Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎの配列データベースを調べた所、ＴＦＩのＮ末端ドメインとＣ末端ドメインとは、他の公知蛋白と有意な相同性を有していないことが見出された。しかしながら、３個の内部相同ドメインは、牛膵臓塩基性プロテアーゼ抑制因子（アプロチニン）、毒塩基性プロテアーゼ抑制因子、インター−α−トリプシン抑制因子（図７）などの他の塩基性プロテアーゼ抑制因子の配列とそれぞれ相同性を示した。これらすべての抑制因子にはジスルフィド結合溝造が高度に保持されており、これは注目すべき事実である。これらの相同性から明らかなように、ＴＦＩは塩基性プロテアーゼ抑制因子遺伝子スーパーファミリーに属する。
【００３６】
ノーザン・ブロッテング
ＴＦＩ産生肝由来セルライン、即ちＣｈａｎｇリバー、ＨｅｐＧ２ヘパトーマ及びＳＫ−ＨＥＰ−１ヘパトーマ細胞からポリ（Ａ）＋ＲＮＡを精製した。変性アガロースゲル電気泳動によりポリ（Ａ）＋ＲＮＡを溶解し、ニトロセルロースペーパー上にブロットし、３２Ｐ−標識化ＴＦＩ ｃＤＮＡ（λＰ９）をプローブとして用いて調べた。図８に示したように、２つの主要なハイブリダイゼーションバンドが観察された。これらはテストした３つの全てのセルラインに見られる１．４ｋｂ ｍＲＮＡ及び４．４ｋｂ ｍＲＮＡに対応するものである。検出し得る量のＴＦＩを産生しない他のセルラィンについてテストしたが、プローブとのハイブリダイゼーションは観察されなかった（データを示していない）。
本明細書の記載から、当業者にとっては本発明の思想及び範囲内にある他の各種の例が自明であろう。これらの例の全ては本明細書のクレームの範囲内のものである。
【図面の簡単な説明】
【図１】１２５Ｉ−第Ｘａ因子を用いたλｇｔ１１クローンのスクリ−ニングを示した写真である。
【図２】部分的制限酵素地図及びλＰ９のインサート配列の配列決定に用いた技法を示している。
【図３】ヒトＴＦＩ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列及び翻訳されたアミノ酸配列を示している。
【図４】ヒトＴＦＩ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列および翻訳されたアミノ酸配列。
【図５】ＴＦＩのアミノ酸配列における電荷分布を示すグラフである。
【図６】ＴＦＩの疎水性プロファイルを示すグラフである。
【図７】ＴＦＩの塩基性プロテアーゼ抑制因子ドメインと他の塩基性プロテアーゼ抑制因子とのアラインメントを示す。
【図８】３個の肝由来セルラインから得たＲＮＡのノーザン・ブロット分析を示す写真である。
Claims (12)
- ＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞ではない宿主細胞において遺伝子工学的に製造された、自然に生じる混合物とは別の本質的に純粋な形態で、図３および図４で示される２９番目から３０４番目のアミノ酸残基からなるヒト成熟組織因子抑制因子。
- グリコシル化されていない請求項１の抑制因子。
- ＨｅｐＧ２ヘパトーマ細胞ではない宿主細胞において製造された組換えポリペプチドであって、図３および図４で示される２９番目から３０４番目のアミノ酸残基を含む、ヒト成熟組織因子抑制因子活性を有する組換えポリペプチド。
- グリコシル化されていない請求項３の組換えポリペプチド。
- 図３および図４で示される２９番目から３０４番目のアミノ酸残基からなるヒト成熟組織因子抑制因子（ＴＦＩ）をコードする精製単離されたＤＮＡを含む発現ベクター。
- 請求項５の発現ベクターで形質転換またはトランスフェクションされた宿主細胞。
- （ａ）請求項６の形質転換またはトランスフェクションされた宿主細胞を適当な栄養条件下にヒト成熟組織因子抑制因子ポリペプチドの発現を可能にする方法で成育させ、（ｂ）同ポリペプチドを単離することからなるヒト成熟組織因子抑制因子ポリペプチドの製造方法。
- 宿主細胞がＥ．ｃｏｌｉである請求項１のヒト組織因子抑制因子。
- 宿主細胞がＥ．ｃｏｌｉである請求項３のポリペプチド。
- 図３および図４で示される２９番目から３０４番目のアミノ酸残基を含むポリペプチドであってヒト成熟組織因子抑制因子活性を有するポリペプチドをコードする精製単離されたＤＮＡを含む発現ベクター。
- 請求項１０の発現ベクターで形質転換もしくはトランスフェクションされた宿主細胞。
- （ａ）請求項１１の形質転換されたもしくはトランスフェクションされた宿主細胞を適当な栄養条件下に該ポリペプチドの発現を可能にする方法で成育させ、（ｂ）該ポリペプチドを単離することからなる、ポリペプチドの製造方法。
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