JP2018530998A6 - ライブラリー正規化のための方法および組成物 - Google Patents

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Abstract

本開示は、核酸ライブラリー、たとえばシーケンシングライブラリーを正規化するための方法、組成物、およびキットを提供する。本発明により、複数の核酸分子から高存在種を除去する方法が提供される。本発明により、正規化核酸ライブラリーの生成方法が提供される。いくつかの実施形態では、本願に開示される方法、組成物およびキットは、ライブラリー正規化におけるｓｓＤＮＡおよびｄｓＤＮＡ画分の物理的および酵素的分離の使用を回避することができる。

Description

関連出願
本出願は、２０１５年９月１１日出願の米国仮特許出願第６２／２１７，２２０号明細書に基づき、その米国特許法第１１９条（ｅ）の利益を主張する。関連出願の内容は、全ての目的のためにその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
多くの用途、特にシーケンシングおよびライブラリーのスクリーニングでは、研究者はサンプルまたはライブラリー内の核酸カタログ全体を評価したいと考える。しかしながら、サンプル（たとえば、ｃＤＮＡライブラリー）中の核酸は、しばしば、数桁に及ぶ広範な濃度範囲にある。これは、サンプルを完全に評価するのに必要なシーケンシングまたはスクリーニングの量を大幅に増加させる。これを克服するために、研究者はしばしば、新しい分子を調べるのに要する余分な労力が少なくなるよう、異なる核酸の濃度がすべて同様の濃度である正規化ライブラリーで作業したいと考える。
本明細書に開示されるいくつかの実施形態は、結合部分を含む複数の第１のオリゴヌクレオチドを、少なくとも１つの高存在種を含む第１の複数の核酸分子とハイブリダイズさせること、複数の第１のオリゴヌクレオチドを伸長させて、結合部分を含む、第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖を生成すること、第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖を含む、複数の二本鎖核酸分子を変性させること、第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖を部分的に再アニールすること、および１つ以上の固体担体上に固定された、結合部分に特異的に結合する捕捉分子によって、第１の複数の核酸分子に対する再アニールされた相補鎖を除去して第２の複数の核酸分子を生成すること、を含み、第２の複数の核酸分子における少なくとも１つの高存在種の含有量が、第１の複数の核酸分子における少なくとも１つの高存在種の含有量と比較して減少する、複数の核酸分子から高存在種を除去する方法を提供する。
いくつかの実施形態では、結合部分は、ビオチン、ストレプトアビジン、ヘパリン、アプタマー、クリックケミストリー部分、ジゴキシゲニン、第１級アミン、カルボキシル、ヒドロキシル、アルデヒド、ケトン、およびそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される官能基を含む。いくつかの実施形態では、結合部分はビオチンである。いくつかの実施形態では、捕捉分子はストレプトアビジンである。いくつかの実施形態では、方法は、第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖の少なくとも１つにつき第２の鎖を合成して、第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖を含む、１つ以上の複数の二本鎖核酸分子を生成することをさらに含む。いくつかの実施形態では、合成は、複数の第２のオリゴヌクレオチドを第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖にハイブリダイズさせ、複数の第２のオリゴヌクレオチドを伸長させることを含む。いくつかの実施形態では、複数の第１のオリゴヌクレオチドまたは複数の第２のオリゴヌクレオチドは、ユニバーサルプライマー結合部位を含む。いくつかの実施形態では、方法は、複数の二本鎖核酸分子を増幅することをさらに含む。いくつかの実施形態では、第１の複数の核酸分子は、複数の高存在種を含む。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの高存在種は、第１の複数の核酸分子の少なくとも５０％に相当する。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの高存在種は、第１の複数の核酸分子の少なくとも６０％に相当する。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの高存在種は、第１の複数の核酸分子の少なくとも７０％に相当する。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの高存在種の含有量の減少は、少なくとも８０％である。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの高存在種の含有量の減少は、少なくとも９０％である。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの高存在種の含有量の減少は、少なくとも９５％である。いくつかの実施形態では、少なくとも１つの高存在種の含有量の減少は、少なくとも９９％である。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子は、複数の高存在種を含む。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子中の複数の高存在種は、第２の複数の核酸分子の５０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子中の複数の高存在種は、第２の複数の核酸分子の４０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子中の複数の高存在種は、第２の複数の核酸分子の３０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、第１の複数の核酸分子は、複数の低存在種を含む。いくつかの実施形態では、複数の低存在種は、第１の複数の核酸分子の１０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、複数の低存在種は、第１の複数の核酸分子の５％未満に相当する。いくつかの実施形態では、複数の低存在種は、第１の複数の核酸分子の１％未満に相当する。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子は、複数の低存在種を含む。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子中の複数の低存在種は、第２の複数の核酸分子の少なくとも５％に相当する。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子中の複数の低存在種は、第２の複数の核酸分子の少なくとも１０％に相当する。いくつかの実施形態では、第２の複数の核酸分子中の複数の低存在種は、第２の複数の核酸分子の少なくとも２０％に相当する。いくつかの実施形態では、第１の複数の核酸分子のそれぞれまたは第２の複数の核酸分子のそれぞれは、確率バーコードを含む。いくつかの実施形態では、方法は、第２の複数の核酸分子をシーケンシングして複数のシーケンシングリードを生成することをさらに含む。いくつかの実施形態では、複数の高存在種のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの５０％未満である。いくつかの実施形態では、複数の高存在種のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの４０％未満である。いくつかの実施形態では、複数の高存在種のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの３０％未満である。いくつかの実施形態では、複数の低存在種のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの少なくとも５％である。いくつかの実施形態では、複数の低存在種のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの少なくとも１０％である。いくつかの実施形態では、複数の低存在種のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの少なくとも２０％である。いくつかの実施形態では、方法は、部分的な再アニーリング工程中に複数のブロッカーを追加することをさらに含む。いくつかの実施形態では、複数のブロッカーは、第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位にハイブリダイズする。いくつかの実施形態では、複数のブロッカーは、第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位とその相補配列とのハイブリダイゼーションを妨げる。
本明細書に開示されるいくつかの実施形態は、結合部分を含む複数の第１のオリゴヌクレオチドを、複数の標的核酸とハイブリダイズさせること、複数の第１のオリゴヌクレオチドを伸長させて、結合部分を含む、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を生成すること、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を含む、複数の二本鎖核酸分子を変性させること、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を部分的に再アニールすること、および１つ以上の固体担体上に固定された、結合部分に特異的に結合する捕捉分子によって、複数の標的核酸に対する再アニールされた相補鎖を除去すること、を含み、複数の標的核酸の正規化核酸ライブラリーが生成される、正規化核酸ライブラリーを生成する方法を提供する。
いくつかの実施形態では、結合部分は、ビオチン、ストレプトアビジン、ヘパリン、アプタマー、クリックケミストリー部分、ジゴキシゲニン、第１級アミン、カルボキシル、ヒドロキシル、アルデヒド、ケトン、およびそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される官能基を含む。いくつかの実施形態では、結合部分はビオチンである。いくつかの実施形態では、捕捉分子はストレプトアビジンである。いくつかの実施形態では、方法は、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖の１つ以上につき第２の鎖を合成して、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を含む、１つ以上の複数の二本鎖核酸分子を生成することをさらに含む。いくつかの実施形態では、合成は、複数の第２のオリゴヌクレオチドを複数の標的核酸の複数の相補鎖にハイブリダイズさせ、複数の第２のオリゴヌクレオチドを伸長させることを含む。いくつかの実施形態では、複数の第１のオリゴヌクレオチドまたは複数の第２のオリゴヌクレオチドは、ユニバーサルプライマー結合部位を含む。いくつかの実施形態では、方法は、複数の二本鎖核酸分子を増幅することをさらに含む。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸は、複数の低存在標的核酸を含む。いくつかの実施形態では、複数の低存在標的核酸は、複数の標的核酸の１０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、複数の低存在標的核酸は、複数の標的核酸の５％未満に相当する。いくつかの実施形態では、複数の低存在標的核酸は、複数の標的核酸の１％未満に相当する。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸の正規化核酸ライブラリーは、複数の低存在標的核酸を含む。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の低存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリー中の複数の標的核酸の少なくとも５％に相当する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の低存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリー中の複数の標的核酸の少なくとも１０％に相当する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の低存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリー中の複数の標的核酸の少なくとも２０％に相当する。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸は、複数の高存在標的核酸を含む。いくつかの実施形態では、複数の高存在標的核酸は、複数の標的核酸の少なくとも５０％に相当する。いくつかの実施形態では、複数の高存在標的核酸は、複数の標的核酸の少なくとも６０％に相当する。いくつかの実施形態では、複数の高存在標的核酸は、複数の標的核酸の少なくとも７０％に相当する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の高存在種の含有量は、少なくとも８０％減少する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の高存在種の含有量は、少なくとも９０％減少する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の高存在種の含有量は、少なくとも９５％減少する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の高存在種の含有量は、少なくとも９９％減少する。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸の正規化核酸ライブラリーは、複数の高存在標的核酸を含む。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の高存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリー中の複数の標的核酸の５０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の高存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリー中の複数の標的核酸の４０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の複数の高存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリー中の複数の標的核酸の３０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、複数の第１のオリゴヌクレオチドのそれぞれまたは複数の第２のオリゴヌクレオチドのそれぞれは、確率バーコードを含む。いくつかの実施形態では、方法は、正規化核酸ライブラリーをシーケンシングして複数のシーケンシングリードを生成することをさらに含む。いくつかの実施形態では、複数の高存在標的核酸のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの５０％未満である。いくつかの実施形態では、複数の高存在標的核酸のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの４０％未満である。いくつかの実施形態では、複数の高存在標的核酸のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの３０％未満である。いくつかの実施形態では、複数の低存在標的核酸のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの少なくとも５％である。いくつかの実施形態では、複数の低存在標的核酸のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの少なくとも１０％である。いくつかの実施形態では、複数の低存在標的核酸のシーケンシングリードは、全シーケンシングリードの少なくとも２０％である。いくつかの実施形態では、方法は、部分的な再アニーリング工程中に複数のブロッカーを追加することをさらに含む。いくつかの実施形態では、複数のブロッカーは、第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位にハイブリダイズする。いくつかの実施形態では、複数のブロッカーは、第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位とその相補配列との間のハイブリダイゼーションを妨げる。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸はｍＲＮＡを含む。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸はミトコンドリアｍＲＮＡを含む。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸はリボソームタンパク質ｍＲＮＡを含む。いくつかの実施形態では、低存在標的核酸は、転写物の数が最も少ない７，０００個の遺伝子を含む。いくつかの実施形態では、低存在標的核酸は、転写物の数が最も少ない４，０００個の遺伝子を含む。いくつかの実施形態では、低存在標的核酸は、転写物の数が最も少ない２，０００個の遺伝子を含む。いくつかの実施形態では、複数の第１のオリゴヌクレオチドは、標的特異的プライマーを含む。いくつかの実施形態では、複数の第１のオリゴヌクレオチドは、非標的特異的プライマーを含む。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸は、ｃＤＮＡを含む。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸は、ゲノムＤＮＡを含む。いくつかの実施形態では、高存在標的核酸は、短いタンデム反復配列を含む。いくつかの実施形態では、高存在標的核酸は、テロメア配列を含む。いくつかの実施形態では、高存在標的核酸は、セントロメア配列を含む。いくつかの実施形態では、複数の標的核酸は、単一細胞由来である。
本明細書に開示されるいくつかの実施形態は、非正規化核酸ライブラリーにおいて結合部分を含む複数の第１のオリゴヌクレオチドを、複数の標的核酸とハイブリダイズさせること、複数の第１のオリゴヌクレオチドを伸長させて、結合部分を含む、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を生成すること、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を含む、複数の二本鎖核酸分子を変性させること、複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を部分的に再アニールすること、および複数の標的核酸に対する再アニールされた相補鎖を除去すること、を含み、複数の標的核酸の正規化核酸ライブラリーが生成される、正規化核酸ライブラリーを生成する方法を提供する。
いくつかの実施形態では、非正規化核酸ライブラリーは、１つ以上の高存在標的核酸および１つ以上の低存在標的核酸を含む。いくつかの実施形態では、１つ以上の高存在標的核酸は、非正規化核酸ライブラリーの少なくとも５０％に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の高存在標的核酸は、非正規化核酸ライブラリーの少なくとも６０％に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の高存在標的核酸は、非正規化核酸ライブラリーの少なくとも７０％に相当する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の１つ以上の高存在標的核酸の含有量は、少なくとも８０％減少する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の１つ以上の高存在標的核酸の含有量は、少なくとも９０％減少する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の１つ以上の高存在標的核酸の含有量は、少なくとも９５％減少する。いくつかの実施形態では、正規化核酸ライブラリー中の１つ以上の高存在標的核酸の含有量は、少なくとも９９％減少する。いくつかの実施形態では、１つ以上の低存在標的核酸は、非正規化核酸ライブラリーの１０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の低存在標的核酸は、非正規化核酸ライブラリーの５％未満に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の低存在標的核酸は、非正規化核酸ライブラリーの１％未満に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の低存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリーの少なくとも５％に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の低存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリーの少なくとも１０％に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の低存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリーの少なくとも２０％に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の高存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリーの５０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の高存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリーの４０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、１つ以上の高存在標的核酸は、正規化核酸ライブラリーの３０％未満に相当する。いくつかの実施形態では、非正規化核酸ライブラリーはｃＤＮＡライブラリーである。いくつかの実施形態では、非正規化核酸ライブラリーはゲノムライブラリーである。いくつかの実施形態では、非標準化核酸ライブラリーは、単一細胞核酸ライブラリーである。
一態様では、本開示は、ｃＤＮＡライブラリーの二本鎖ｃＤＮＡの一方の鎖が結合部分を含む、非対称標識二本鎖ｃＤＮＡライブラリーを生成すること、ライブラリー中の二本鎖ｃＤＮＡの鎖を変性および部分的に再アニールして、それにより結合部分を含む再アニールされたｃＤＮＡ分子、結合部分を含む一本鎖分子、および結合部分を欠く一本鎖分子の混合物を生成すること、ならびに、結合部分を含む分子を除去し、前期結合部分を欠く一本鎖分子を残して、正規化ライブラリーを作製すること、を含む核酸ライブラリーの正規化方法を提供する。いくつかの実施形態では、生成は、結合部分を含むプライマーを用いてｍＲＮＡを第１のｃＤＮＡ鎖に逆転写することを含む。いくつかの実施形態では、プライマーは、確率バーコードを含む。いくつかの実施形態では、方法は、第１のｃＤＮＡ鎖に相補的な第２のｃＤＮＡ鎖を生成して、それにより二本鎖ｃＤＮＡを生成することをさらに含む。いくつかの実施形態では、生成は、結合部分を含むプライマーを用いてＤＮＡ分子上でプライマー伸長を実施し、それにより二本鎖ｃＤＮＡを生成することを含む。いくつかの実施形態では、結合部分は、ビオチンおよびストレプトアビジンからなる群から選択される。いくつかの実施形態では、結合部分は、二本鎖ｃＤＮＡのセンス鎖に結合される。いくつかの実施形態では、結合部分は、二本鎖ｃＤＮＡのアンチセンス鎖に結合される。いくつかの実施形態では、変性は、二本鎖ｃＤＮＡを加熱することを含む。いくつかの実施形態では、変性は、二本鎖ｃＤＮＡの少なくとも５０％を変性させることを含む。いくつかの実施形態では、変性は、二本鎖ｃＤＮＡの少なくとも９０％を変性させることを含む。いくつかの実施形態では、再アニールされたｃＤＮＡは、非常に高存在の核酸種に由来する。いくつかの実施形態では、再アニールされたｃＤＮＡの鎖は、より低存在の核酸種由来の二本鎖ｃＤＮＡライブラリーの鎖の少なくとも２倍の速さで再アニールする。いくつかの実施形態では、再アニールされたｃＤＮＡの鎖は、より低存在の核酸種由来の二本鎖ｃＤＮＡライブラリーの鎖の少なくとも５倍の速さで再アニールする。いくつかの実施形態では、再アニールされたｃＤＮＡの鎖は、より低存在の核酸種由来の二本鎖ｃＤＮＡライブラリーの鎖よりも高い存在量で再アニールする。いくつかの実施形態では、除去は、分子を固体担体と接触させることを含む。いくつかの実施形態では、固体担体は、結合部分に結合する捕捉部分を含む。いくつかの実施形態では、捕捉部分は、ビオチンおよびストレプトアビジンからなる群から選択される。いくつかの実施形態では、固体担体はビーズである。いくつかの実施形態では、固体担体は磁性である。いくつかの実施形態では、再アニールされたｃＤＮＡは二本鎖である。いくつかの実施形態では、結合部分を欠く一本鎖分子は、除去において除去された一本鎖の相補体である。いくつかの実施形態では、方法は、正規化ライブラリーを増幅することをさらに含む。いくつかの実施形態では、増幅は、正規化ライブラリー中の一本鎖核酸から二本鎖核酸を生成することを含む。いくつかの実施形態では、方法は、アダプターを二本鎖核酸に付加することをさらに含む。いくつかの実施形態では、アダプターの付加は、アダプターを二本鎖核酸に結合することを含む。いくつかの実施形態では、アダプターの付加は、アダプターを増幅により二本鎖核酸に導入することを含む。いくつかの実施形態では、アダプターはシーケンシングフローセル配列を含む。いくつかの実施形態では、方法は、二本鎖核酸をシーケンシングすることをさらに含む。いくつかの実施形態では、正規化ライブラリー中で最も高存在の種は、正規化ライブラリー中の最も低存在の種と比べ、多くとも２０倍存在量が高い。いくつかの実施形態では、正規化ライブラリー中で最も高存在の種は、正規化ライブラリー中の最も低存在の種と比べ、多くとも１０倍存在量が高い。いくつかの実施形態では、正規化ライブラリー中で最も高存在の種は、正規化ライブラリー中の最も低存在の種と比べ、多くとも５倍存在量が高い。
本発明の新規な特徴は、添付の特許請求の範囲に特定的に示される。本発明の原理が利用される例示的な実施形態を示す以下の詳細な説明および添付の図面を参照すれば、本発明の特徴および利点のよりよい理解が得られるであろう。
図１は、本開示のライブラリー正規化方法の例示的な実施形態を示す。 図１は、本開示のライブラリー正規化方法の例示的な実施形態を示す。 図１は、本開示のライブラリー正規化方法の例示的な実施形態を示す。 図２は、本開示の確率バーコード方法の例示的な実施形態を示す。 図３は、結合部分を有するアンプリコンを非対称的に標識するための、本開示の増幅方法の例示的な実施形態を示す。 図４は、本開示の方法におけるブロッカーの使用の例示的な実施形態を示す。 図５Ａおよび図５Ｂは、ユニバーサルアダプタープライマーを用いて確率バーコードを標的に付加する方法の例示的な実施形態を示す。
本明細書で言及した全ての刊行物、特許、および特許出願は、個々の刊行物、特許、または特許出願が、それぞれ参照により組み込まれることが具体的かつ個別に示されたのと同程度に、全ての目的のために参照により組み込まれる。
大多数のライブラリー正規化戦略は、２つの原理のうちの１つに基づいている。第１の原理は、ライブラリーを、供給源生物由来のゲノムＤＮＡなどの、配列が一様に表される別の核酸セットにハイブリダイズさせ、ハイブリダイズした画分を保持することである。他方の原理は、溶液ハイブリダイゼーションの濃度依存性に依存する。一組のｄｓＤＮＡ分子が変性すると、それらは元の濃度の二乗に比例した速度で再ハイブリダイズする。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法、組成物およびキットは、混合物を変性させ、部分的に再アニールすることのみを可能にすることによって、ライブラリー正規化にこの特性を利用する。比例的に、高濃度種の多くはｄｓＤＮＡに再ハイブリダイズし、存在量のより低い種は主に一本鎖のままとなる。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法、組成物およびキットは、ライブラリー正規化におけるｓｓＤＮＡおよびｄｓＤＮＡ画分の物理的および酵素的分離の使用を回避することができる。最初のライブラリーの調製中、ライブラリーは、結合部分を有する一方の末端で非対称に標識される（たとえば、１つの５’ビオチン化プライマーおよび他の非標識プライマーを用いたＰＣＲによって）。変性および部分的な再アニーリングの後、標識された鎖のすべてを常磁性ストレプトアビジンビーズなどの支持マトリックス上に捕捉し、結合および非結合画分を分離する。高存在の配列は、主に再ハイブリダイズされ、両方の鎖は結合画分中に除去される。しかしながら、低存在の配列は、再ハイブリダイズしにくいため、標識された鎖の相補体は非結合画分に存在する。非結合画分は、正規化ライブラリーに相当し、直接使用されうるか、または下流への適用のためにさらに増幅されうる。
定義
とくに定義がない限り、本明細書で用いられる技術用語はすべて、本開示が属する分野の当業者により一般に理解されているものと同一の意味を有する。本明細書および添付の特許請求の範囲で用いられる場合、とくに文脈上明確に規定されていない限り、単数形の「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」には、複数の参照語が包含される。本明細書での「ｏｒ（または）」の意味はいずれも、とくに明記されていない限り、「ａｎｄ／ｏｒ（および／または）」を包含することが意図される。
本明細書で用いられる場合、「関連付けられる」または「〜に関連付けられる」という用語は、ある時点で２つ以上の種が共配置されているとして同定可能であることを意味しうる。関連付けは、２つ以上の種が類似の容器内にあることを意味しうる。関連付けは、インフォマティクス的関連付けでありうる。この場合、たとえば、２つ以上の種に関するディジタル情報が記憶され、かつその情報を用いてこれらの種の１つ以上が共配置されたことを決定可能である。関連付けはまた、物理的関連付けでありうる。いくつかの場合には、２つ以上の関連付けられる種は、互いにまたは共通の固体もしくは半固体の表面に「テザー連結」、「結合」、または「固定」される。関連付けは、ビーズなどの固体または半固体の支持体に標識を結合するための共有結合手段または非共有結合手段を意味しうる。関連付けは、標的と標識とのハイブリダイゼーションを含みうる。
本明細書で用いられる場合、「相補的」という用語は、２つのヌクレオチド間の精密なペアリングの能力を意味しうる。たとえば、核酸の所与の位置のヌクレオチドが他の核酸のヌクレオチドと水素結合可能である場合、２つの核酸はその位置で互いに相補的であるとみなされる。２つの一本鎖核酸分子間の相補性は、ヌクレオチドの一部のみが結合する場合には「部分的」でありうるし、一本鎖分子間のすべてに相補性が存在する場合には完全でありうる。第１のヌクレオチド配列が第２のヌクレオチド配列に相補的である場合、第１のヌクレオチド配列は第２の配列の「相補体」であるといえる。第１のヌクレオチド配列が第２の配列の逆（すなわち、ヌクレオチドの順序が逆）の配列に相補的である場合、第１のヌクレオチド配列は第２の配列の「逆相補体」であるといえる。本明細書で用いられる場合、「相補体」、「相補的」、および「逆相補体」という用語は、同義的に用いることが可能である。ある分子が他の分子にハイブリダイズしうる場合、それはハイブリダイズしている分子の相補体でありうることが、本開示から理解される。
本明細書で用いられる場合、「ディジタルカウンティング」という用語は、サンプル中の標的分子の数を推定する方法を意味しうる。ディジタルカウンティングは、サンプル中の標的に関連付けられたユニーク標識の数を決定する工程を含みうる。この確率的方法は、分子をカウントする問題を、同一の分子の位置決定および同定の問題から、所定の標識のセットの検出に関する一連のあり／なしのディジタル問題に変換する。
本明細書で用いられる場合、「標識」という用語は、サンプル内の標的に関連付けられる核酸コードを意味しうる。標識は、たとえば、核酸標識でありうる。標識は、全体または一部が増幅可能な標識でありうる。標識は、全体または一部がシーケンス可能標識でありうる。標識は、個別に同定可能な天然核酸の一部でありうる。標識は、既知の配列でありうる。標識は、核酸配列の接合（たとえば、天然配列と非天然配列との接合）を含みうる。本明細書で用いられる場合、「標識」という用語は、「インデックス」、「タグ」、または「標識タグ」という用語と同義的に用いうる。標識は、情報を伝達可能である。たとえば、種々の実施形態では、標識は、サンプル同一性、サンプル源、細胞同一性、および／または標的を決定するために使用可能である。
本明細書で用いられる場合、「非枯渇リザーバー」という用語は、多種多様な標識から構成された確率バーコードのプールを意味しうる。非枯渇リザーバーは、非枯渇リザーバーが標的のプールに関連付けられる場合、各標的がユニーク確率バーコードに関連付けられる可能性が高くなるように、多数の異なる確率バーコードを含みうる。各標識標的分子のユニーク性は、ランダム選択の統計により決定可能であり、標識の多様性と比較してコレクション中の同一の標的分子のコピー数に依存する。得られる標識標的分子のセットのサイズは、バーコーディングプロセスの確率的性質により決定可能であり、次いで、検出された確率バーコードの数の解析は、元のコレクションまたはサンプル中に存在する標的分子の数の計算を可能にする。存在する標的分子のコピー数とユニーク確率バーコードの数との比が低い場合、標識標的分子はきわめてユニークである（すなわち、２つ以上の標的分子が１つの所与の標識で標識される確率は非常に低い）。
本明細書で用いられる場合、「核酸」とは一般的に、ポリヌクレオチド配列またはその断片を意味しうる。核酸はヌクレオチドを含みうる。核酸は細胞に対して外因性または内因性でありうる。核酸は細胞フリー環境中に存在しうる。核酸は遺伝子またはその断片でありうる。核酸はＤＮＡでありうる。核酸はＲＮＡでありうる。核酸は１つ以上のアナログ（たとえば、修飾された骨格、糖または核酸塩基）を含みうる。アナログのいくつかの例としては、限定されるものではないが、５−ブロモウラシル、ペプチド核酸、ゼノ核酸、モルホリノ体、ロックド核酸、グリコール核酸、トレオース核酸、ジデオキシヌクレオチド、コルジセピン、７−デアザ−ＧＴＰ、フルオロフォア（たとえば、糖に結合されたローダミンまたはフルオレセイン）、チオール含有ヌクレオチド、ビオチン結合ヌクレオチド、蛍光塩基アナログ、ＣｐＧアイランド、メチル−７−グアノシン、メチル化ヌクレオチド、イノシン、チオウリジン、プソイドウリジン、ジヒドロウリジン、キューオシン、およびワイオシンが挙げられる。「核酸」、「ポリヌクレオチド、「標的ポリヌクレオチド」、および「標的核酸」は、同義的に用いうる。
核酸は、新しいまたは向上した特徴（たとえば、向上した安定性）を有する核酸を提供するために１つ以上の修飾（たとえば、塩基修飾、骨格修飾）を含みうる。核酸は核酸アフィニティータグを含みうる。ヌクレオシドは塩基−糖の組合せでありうる。ヌクレオシドの塩基部分はヘテロ環塩基でありうる。かかるヘテロ環塩基の２つの最も一般的なクラスはプリンおよびピリミジンである。ヌクレオチドは、ヌクレオシドの糖部分に共有結合されたリン酸基をさらに含むヌクレオシドでありうる。ペントフラノシル糖を含むヌクレオシドでは、リン酸基は、糖の２’、３’、または５’ヒドロキシル部分に結合可能である。核酸を形成する際、リン酸基は、隣接ヌクレオシドを互いに共有結合して線状高分子化合物を形成可能である。ひいては、この線状高分子化合物のそれぞれの末端をさらに連結して環状化合物を形成可能である。しかしながら、線状化合物が一般に好適である。そのほかに、線状化合物は、内部ヌクレオチド塩基相補性を有しうるので、完全二本鎖または部分二本鎖の化合物を生成するようにフォールディングしうる。核酸内では、リン酸基は、通常、核酸のヌクレオシド間骨格を形成するものとして称されうる。核酸の結合または骨格は、３’→５’ホスホジエステル結合でありうる。
核酸は、修飾骨格および／または修飾ヌクレオシド間結合を含みうる。修飾骨格は、骨格中にリン原子を保持するものおよび骨格中にリン原子を有していないものを含みうる。リン原子を中に含有する好適な修飾核酸骨格は、たとえば、ホスホロチオエート、キラルホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホトリエステル、アミノアルキルホスホトリエステル、３’−アルキレンホスホネートや５’−アルキレンホスホネートなどのメチルや他のアルキルのホスホネート、キラルホスホネート、ホスフィネート、３’−アミノホスホルアミデートやアミノアルキルホスホルアミデートなどのホスホルアミデート、ホスホロジアミデート、チオノホスホルアミデート、チオノアルキルホスホネート、チオノアルキルホスホトリエステル、セレノホスフェート、および通常３’−５’結合、２’−５’結合アナログを有するボラノホスフェート、ならびに１つ以上のヌクレオチド間結合が３’→３’、５’→５’、または２’→２’結合である逆極性を有するものを含みうる。
核酸は、短鎖アルキルもしくはシクロアルキルのヌクレオシド間結合、混合ヘテロ原子およびアルキルもしくはシクロアルキルのヌクレオシド間結合、または１つ以上の短鎖ヘテロ原子もしくはヘテロ環のヌクレオシド間結合により形成されるポリヌクレオチド骨格を含みうる。これらは、モルホリノ結合（ヌクレオシドの糖部分から部分的に形成される）、シロキサン骨格、スルフィド、スルホキシド、およびスルホン骨格、ホルムアセチルおよびチオホルムアセチル骨格、メチレンホルムアセチルおよびチオホルムアセチル骨格、リボアセチル骨格、アルケン含有骨格、スルファメート骨格、メチレンイミノおよびメチレンヒドラジノ骨格、スルホネートおよびスルホンアミド骨格、アミド骨格を有するもの、ならびに混合Ｎ、Ｏ、Ｓ、およびＣＨ２構成部分を有する他のものを含みうる。
核酸は核酸ミメティックを含みうる。「ミメティック」という用語は、フラノース環のみまたはフラノース環とヌクレオチド間結合の両方が非フラノース基で置き換えられているポリヌクレオチドを含むことを意図することがあり、フラノース環のみの置換えは、糖サロゲートであるとして称されうる。ヘテロ環塩基部分または修飾ヘテロ環塩基部分は、適切な標的核酸とのハイブリダイゼーションのために保持可能である。かかる核酸の１つはペプチド核酸（ＰＮＡ）でありうる。ＰＮＡでは、ポリヌクレオチドの糖骨格は、アミド含有骨格とくにアミノエチルグリシン骨格で置換え可能である。ヌクレオチドは保持可能であり、かつ骨格のアミド部分のアザ窒素原子に直接的または間接的に結合される。ＰＮＡ化合物中の骨格は、ＰＮＡにアミド含有骨格を与える２つ以上の結合されたアミノエチルグリシン単位を含みうる。ヘテロ環塩基部分は、骨格のアミド部分のアザ窒素原子に直接的または間接的に結合可能である。
核酸はモルホリノ骨格構造を含みうる。たとえば、核酸は、リボース環の代わりに６員モルホリノ環を含みうる。これらの実施形態のいくつかでは、ホスホロジアミデートまたは他の非ホスホジエステルのヌクレオシド間結合によりホスホジエステル結合を置換え可能である。
核酸は、モルホリノ環に結合されたヘテロ環塩基を有する結合されたモルホリノ単位（すなわちモルホリノ核酸）を含みうる。結合基は、モルホリノ核酸中のモルホリノモノマー単位を結合可能である。非イオン性モルホリノ系オリゴマー化合物は、細胞タンパク質とのより少ない望ましくない相互作用を有しうる。モルホリノ系ポリヌクレオチドは、核酸の非イオン性ミミックでありうる。モルホリノクラス内のさまざまな化合物は、異なる結合基を用いて連結可能である。ポリヌクレオチドミメティックのさらなるクラスは、シクロヘキセニル核酸（ＣｅＮＡ）として称されうる。核酸分子中に通常存在するフラノース環は、シクロヘキセニル環で置換え可能である。ＣｅＮＡ ＤＭＴ保護ホスホロアミダイトモノマーは、ホスホロアミダイト化学を用いたオリゴマー化合物合成のために調製および使用が可能である。核酸鎖中へのＣｅＮＡモノマーの取込みは、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドの安定性を増加可能である。ＣｅＮＡオリゴアデニレートは、天然複合体に類似した安定性を有する核酸相補体との複合体を形成可能である。さらなる修飾は、２’−ヒドロキシル基が糖環の４’炭素原子に結合されて２’−Ｃ，４’−Ｃ−オキシメチレン結合を形成することにより二環式糖部分を形成するロックド核酸（ＬＮＡ）を含みうる。結合は、２’酸素原子と４’炭素原子とを架橋するメチレン（−ＣＨ２−），基（式中、ｎは１または２である）でありうる。ＬＮＡおよびＬＮＡアナログは、相補的核酸との非常に高い二本鎖熱安定性（Ｔｍ＝＋３〜＋１０℃）、３’−エキソヌクレアーゼ分解に対する安定性、および良好な溶解性を示しうる。
核酸はまた、核酸塩基（単に「塩基」ということが多い）の修飾または置換を含みうる。本明細書で用いられる場合、「非修飾」または「天然」の核酸塩基は、プリン塩基（たとえば、アデニン（Ａ）およびグアニン（Ｇ））ならびにピリミジン塩基（たとえば、チミン（Ｔ）、シトシン（Ｃ）、およびウラシル（Ｕ））を含みうる。修飾核酸塩基は、他の合成および天然の核酸塩基、たとえば、５−メチルシトシン（５−ｍｅ−Ｃ）、５−ヒドロキシメチルシトシン、キサンチン、ヒポキサンチン、２−アミノアデニン、アデニンおよびグアニンの６−メチルおよび他のアルキル誘導体、アデニンおよびグアニンの２−プロピルおよび他のアルキル誘導体、２−チオウラシル、２−チオチミン、および２−チオシトシン、５−ハロウラシルおよびシトシン、５−プロピニル（−Ｃ＝Ｃ−ＣＨ３）ウラシルおよびシトシン、ならびにピリミジン塩基の他のアルキニル誘導体、６−アゾウラシル、シトシン、およびチミン、５−ウラシル（プソイドウラシル）、４−チオウラシル、８−ハロ、８−アミノ、８−チオール、８−チオアルキル、８−ヒドロキシル、および他の８−置換アデニンおよびグアニン、５−ハロとくに５−ブロモ、５−トリフルオロメチルおよび他の５−置換ウラシルおよびシトシン、７−メチルグアニンおよび７−メチルアデニン、２−Ｆ−アデニン、２−アミノアデニン、８−アザグアニンおよび８−アザアデニン、７−デアザグアニンおよび７−デアザアデニン、ならびに３−デアザグアニンおよび３−デアアデニンを含みうる。修飾核酸塩基は、三環式ピリミジン、たとえば、フェノキサジンシチジン（１Ｈ−ピリミド（５，４−ｂ）（１，４）ベンゾオキサジン−２（３Ｈ）−オン）、フェノチアジンシチジン（１Ｈ−ピリミド（５，４−ｂ）（１，４）ベンゾチアジン−２（３Ｈ）−オン）、置換フェノキサジンシチジン（たとえば、９−（２−アミノエトキシ）−Ｈ−ピリミド（５，４−（ｂ）（１，４）ベンゾオキサジン−２（３Ｈ）−オン）などのＧ−クランプ、カルバゾールシチジン（２Ｈ−ピリミド（４，５−ｂ）インドール−２−オン）、ピリドインドールシチジン（Ｈピリド（３’，’：４，５）ピロロ［２，３−ｄ］ピリミジン−２−オン）を含みうる。
本明細書で用いられる場合、「準対称確率バーコード付き核酸」は、本開示の確率バーコード、および一緒にハイブリダイズしてパンハンドル構造（たとえば、サプレッションＰＣＲ用）を形成できる程度に対称であるが同一であるとは限らない末端、を含む分子を指しうる。準対称確率バーコード付き核酸は、対称核酸のように挙動しうるが、非対称配列を有する。
本明細書で用いられる場合、「サンプル」という用語は、標的を含む組成物を意味しうる。本開示の方法、デバイス、およびシステムによる分析に好適なサンプルとしては、細胞、単一細胞、組織、器官、または生物が挙げられる。
本明細書で用いられる場合、「サンプリングデバイス」または「デバイス」という用語は、サンプルのセクションの採取および／または基材上へのセクションの配置を行いうるデバイスを意味しうる。サンプルデバイスとは、たとえば、蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）機、セルソーター機、生検針、生検デバイス、組織切片化デバイス、マイクロ流体デバイス、ブレードグリッド、および／またはミクロトームを意味しうる。
本明細書で用いられる場合、「固体担体」という用語は、複数の確率バーコードを結合しうる離散した固体または半固体の表面を意味しうる。固体担体は、核酸を（たとえば共有結合または非共有結合で）固定しうるプラスチック、セラミック、金属、または高分子材料（たとえばヒドロゲル）で構成された任意のタイプの中実、多孔性、または中空のスフェア、ボール、ベアリング、シリンダー、または他の類似の構成体を包含しうる。固体担体は、球状（たとえばマイクロスフェア）でありうるかまたは非球状もしくは不規則形状、たとえば、立方体形、直方体形、角錐形、円柱形、円錐形、扁球形、ディスク形などを有しうる離散粒子を含みうる。アレイ状に離間して配置された複数の固体担体は、基材を含まないこともありうる。固体担体は、「ビーズ」という用語と同義的に用いうる。本明細書で用いられる場合、「固体担体」および「基材」は同義的に用いうる。
本明細書で用いられる場合、「確率バーコード」という用語は、本開示の標識を含むポリヌクレオチド配列を意味しうる。確率バーコードは、確率バーコーディングに使用可能なポリヌクレオチド配列でありうる。確率バーコードは、サンプル中の標的を定量可能である。確率バーコードは、標識を標的に関連付けた後に起こりうるエラーの制御に使用可能である。たとえば、確率バーコードは、増幅またはシーケンシングのエラーを評価可能である。標的に関連付けられた確率バーコードは、確率バーコード標的または確率バーコードタグ標的と呼ぶことが可能である。
本明細書で用いられる場合、「確率バーコーディング」という用語は、核酸のランダム標識化（たとえばバーコーディング）を意味しうる。確率バーコーディングは、標識を標的に関連付けて関連付けられた標識を定量するために再帰的ポアソンストラテジーを利用可能である。本明細書で用いられる場合、「確率バーコーディング」という用語は、「確率標識化」と同義的に用いうる。
本明細書で用いられる場合、「標的」という用語は、確率バーコードに関連付け可能な組成物を意味しうる。本開示の方法、デバイス、およびシステムによる分析に好適な例示的な標的としては、オリゴヌクレオチド、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ｍＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、ｔＲＮＡなどが挙げられる。標的は一本鎖または二本鎖でありうる。いくつかの実施形態では、標的はタンパク質でありうる。いくつかの実施形態では、標的は脂質である。本明細書で用いられる場合、「標的」は、「種」と同義的に用いうる。
「逆転写酵素」という用語は、逆転写酵素活性を有する（すなわち、ＲＮＡ鋳型からのＤＮＡの合成を触媒する）酵素のグループを意味しうる。一般的には、かかる酵素としては、限定されるものではないが、レトロウイルス逆転写酵素、レトロトランスポゾン逆転写酵素、レトロプラスミド逆転写酵素、レトロン逆転写酵素、細菌逆転写酵素、グループＩＩイントロン由来逆転写酵素、およびそれらの突然変異体、変異体、または誘導体が挙げられる。非レトロウイルス逆転写酵素としては、非ＬＴＲレトロトランスポゾン逆転写酵素、レトロプラスミド逆転写酵素、レトロン逆転写酵素、およびグループＩＩイントロン逆転写酵素が挙げられる。グループＩＩイントロン逆転写酵素の例としては、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ）Ｌｌ．ＬｔｒＢイントロン逆転写酵素、サーモシネココッカス・エロンガタス（Ｔｈｅｒｍｏｓｙｎｅｃｈｏｃｏｃｃｕｓ ｅｌｏｎｇａｔｕｓ）ＴｅＩ４ｃイントロン逆転写酵素、またはジオバチルス・ステアロサーモフィラス（Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）ＧｓＩ−ＩＩＣイントロン逆転写酵素が挙げられる。他のクラスの逆転写酵素としては、多くのクラスの非レトロウイルス逆転写酵素（すなわち、レトロン、グループＩＩイントロン、およびとくに多様性生成レトロエレメント）が挙げられうる。
高存在種を除去する方法
本明細書に開示されるいくつかの実施形態は、複数の核酸分子から高存在種を除去する方法を提供する。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法は、複数の核酸分子から低存在種または中存在種を有意に除去することなく、複数の核酸分子から高存在種の含有量を減少させることができる。本明細書で用いられる場合、「有意に除去する」とは、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％またはそれ以上の低存在種または中存在種を複数の核酸分子から除去することを示す。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法は、複数の核酸分子から低存在種を有意に除去することなく、複数の核酸分子から高存在種および中存在種を除去することができる。
本明細書で用いられる場合、「種」とは、互いに同一もしくは相補的であるか、互いにハイブリダイズすることができるか、同じ遺伝子座からの転写物であるか、または同じタンパク質もしくはその断片などをコードする、複数の核酸分子中のポリヌクレオチド（たとえば、一本鎖ポリヌクレオチド）を示す。いくつかの実施形態では、種のメンバーは、互いにまたはその相補体と、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、または１００％相同である。いくつかの実施形態では、種のメンバーは、高ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で互いにハイブリダイズすることができる。いくつかの実施形態では、種のメンバーは中程度のストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で互いにハイブリダイズすることができる。いくつかの実施形態では、種のメンバーは、低ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で互いにハイブリダイズすることができる。いくつかの実施形態では、種のメンバーは同じ遺伝子座に由来する転写物であり、転写物は同じまたは異なる長さでありうる。種は、いくつかの実施形態では、ｃＤＮＡまたはｍＲＮＡである。
本明細書で用いられる場合、「高存在種」は、複数の核酸中に高い存在量で存在する種を示し、たとえば、種は、少なくとも１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、またはそれ以上の複数の核酸分子に相当する。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、少なくとも１、少なくとも２、少なくとも３、少なくとも４、少なくとも５、少なくとも１０、少なくとも２０、少なくとも５０、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１，０００、またはそれ以上の高存在種でありうる。いくつかの実施形態では、全ての高存在種の合計は、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、またはそれ以上の複数の核酸分子に相当する。いくつかの実施形態では、高存在種は、１つ以上のリボソームタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含みうる。いくつかの実施形態では、高存在種は、１つ以上のミトコンドリアタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含みうる。いくつかの実施形態では、高存在種は、１つ以上のハウスキーピングタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含みうる。
本明細書で用いられる場合、「中存在種」は、複数の核酸の少なくとも１つの種よりも低く、複数の核酸の少なくとも１つの他の種よりも高い存在量で複数の核酸中に存在する種を示す。いくつかの実施形態では、中存在種は、約１０％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％、０．０１％、または上記の値のうち任意の２つの間の範囲の、複数の核酸分子に相当しうる。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、少なくとも１、少なくとも２、少なくとも３、少なくとも４、少なくとも５、少なくとも１０、少なくとも２０、少なくとも５０、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１，０００、またはそれ以上の中存在種でありうる。いくつかの実施形態では、全ての中存在種の合計は、約１％、約２％、約３％、約４％、約５％、約１０％、約２０％、約３０％、または上記の値のうち任意の２つの間の範囲の、複数の核酸分子に相当する。
本明細書で用いられる場合、「低存在種」は、複数の核酸中に低い存在量で存在する種を示し、たとえば、種は、１％、０．１％、０．０１％、０．００１％、０．０００１％未満、またはそれ以下の、複数の核酸分子に相当する。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、少なくとも１、少なくとも２、少なくとも３、少なくとも４、少なくとも５、少なくとも１０、少なくとも２０、少なくとも５０、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１，０００、またはそれ以上の低存在種でありうる。いくつかの実施形態では、全ての低存在種の合計は、２０％未満、１０％未満、５％未満、４％未満、３％未満、２％未満、１％未満、０．１％未満、またはそれ以下の複数の核酸分子に相当する。いくつかの実施形態では、低存在種は、１つ以上の転写因子をコードするポリヌクレオチドを含みうる。いくつかの実施形態では、高存在種は、１つ以上のＴ細胞レセプターをコードするポリヌクレオチドを含みうる。いくつかの実施形態では、高存在種は、１つ以上の抗体をコードするポリヌクレオチドを含みうる。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から、１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。たとえば、本明細書に開示される方法および組成物は、少なくとも１、少なくとも２、少なくとも３、少なくとも４、少なくとも５、少なくとも１０、少なくとも２０、少なくとも５０、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも５００、少なくとも１，０００、またはそれ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から、１つ以上の高存在種それぞれの含有量を、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から、１つ以上の高存在種のうち少なくとも１つの含有量を、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から、高存在種の合計の含有量を、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％減少させることができる。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から低存在種または中存在種を有意に除去することなく、複数の核酸分子から１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から低存在種または中存在種を有意に除去することなく、複数の核酸分子から、１つ以上の高存在種それぞれの含有量を、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から低存在種または中存在種を有意に除去することなく、複数の核酸分子から、高存在種の合計の含有量を、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、１つ以上の低存在種をそれぞれ、少なくとも、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％保持しつつ、複数の核酸分子から１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、１つ以上の低存在種のうち少なくとも１つを、少なくとも、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％保持しつつ、複数の核酸分子から１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、低存在種の合計を、少なくとも、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％保持しつつ、複数の核酸分子から１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、１つ以上の中存在種のうち少なくとも１つを、少なくとも、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％保持しつつ、複数の核酸分子から１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、中存在種の合計を、少なくとも、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％保持しつつ、複数の核酸分子から１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。いくつかの実施形態では、本明細書に開示される方法および組成物は、複数の核酸分子から中存在種をそれぞれ、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％保持しつつ、複数の核酸分子から１つ以上の高存在種の含有量を減少させることができる。
複数の核酸分子
本明細書に開示される複数の核酸分子は、様々な核酸分子を含みうる。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、ＤＮＡ分子、ＲＮＡ分子、ゲノムＤＮＡ分子、ｃＤＮＡ分子、ｍＲＮＡ分子、ｒＲＮＡ分子、ｓｉＲＮＡ分子、またはそれらの組み合わせを含むことができ、二本鎖または一本鎖でありうる。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、少なくとも１００、少なくとも１，０００、少なくとも１０，０００、少なくとも２０，０００、少なくとも３０，０００、少なくとも４０，０００、少なくとも５０，０００、少なくとも１００，０００、少なくとも１，０００，０００、またはそれ以上の種を含む。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、単一細胞または複数の細胞などのサンプル由来でありうる。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、複数の単一細胞などの複数のサンプルからプールすることができる。
いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、非正規化核酸ライブラリー、部分的に正規化核酸ライブラリー、または、ｃＤＮＡライブラリー、ゲノムＤＮＡライブラリーなどの他の方法によって正規化された核酸ライブラリーを含む。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、それぞれ単一細胞に相当する複数の非正規化核酸ライブラリーから構築された、プールされた非正規化核酸ライブラリーなどの、プールされた非正規化核酸ライブラリーを含みうる。いくつかの実施形態では、非正規化核酸ライブラリーはｃＤＮＡライブラリーである。いくつかの実施形態では、非正規化核酸ライブラリーはゲノムライブラリーである。いくつかの実施形態では、非標準化核酸ライブラリーは、単一細胞核酸ライブラリーである。本明細書で用いられる場合、「単一細胞核酸ライブラリー」は、単一細胞に由来するゲノムＤＮＡまたはｍＲＮＡ分子などの核酸分子の集合を意味する。いくつかの実施形態では、単一細胞核酸ライブラリーは、核酸分子が、当該核酸分子が由来する単一細胞を同定するための細胞標識を含む、複数の単一細胞に由来する核酸分子の集合を示しうる。
いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、高存在種を除去する前に増幅に供しうる。たとえば、複数の核酸分子は、増幅された核酸ライブラリーを含みうる。いくつかの実施形態では、複数の核酸分子は、各核酸分子の少なくとも２個、少なくとも４個、少なくとも８個、少なくとも１６個、少なくとも１００個、少なくとも１，０００個またはそれ以上の、各核酸分子のコピーを含みうる。
結合部分
いくつかの実施形態では、本明細書中に開示される方法は、結合部分を含む複数の第１のオリゴヌクレオチドを複数の核酸分子とハイブリダイズさせることを含む。様々な結合部分が、本明細書に開示される方法および組成物に使用されうる。たとえば、結合部分は、結合対の一部であってもよい。いくつかの実施形態では、結合部分は、オリゴヌクレオチドに付加される官能基でありうる。いくつかの実施形態では、結合部分は、ビオチン、ストレプトアビジン、ヘパリン、アプタマー、クリックケミストリー部分、ジゴキシゲニン、第１級アミン、カルボキシル、ヒドロキシル、アルデヒド、ケトン、またはそれらの任意の組み合わせでありうる。
本明細書に開示される結合部分は、捕捉分子などの捕捉部分に結合することができる。いくつかの実施形態では、結合部分および捕捉分子は、結合対のメンバー、たとえば、ビオチン／ストレプトアビジンでありうる。捕捉分子は、ビーズ、微粒子、またはナノ粒子などの固体担体上に固定しうる。
いくつかの実施形態では、第１のオリゴヌクレオチドは、結合部分を含む複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を生成するように、伸長することができる。いくつかの実施形態では、第２の鎖は、二本鎖核酸分子を生成するように、相補鎖上の結合部位に結合するプライマーを用いて合成することができる。
変性／部分的再アニーリングによる高存在種の含有量減少
いくつかの実施形態では、高存在種の含有量を減少させることは、後に二本鎖核酸分子の部分的な再アニーリングが続く、変性を含んでもよく、その後、１つ以上の固体担体上に固定された、結合部分に特異的に結合する捕捉分子によって、複数の標的核酸に対する再アニールされた相補鎖を除去することが続く。
変性は、二本鎖核酸分子を加熱すること、二本鎖核酸分子を有機溶媒（たとえば、ＤＭＳまたはホルムアミド）で処理すること、二本鎖核酸分子の塩濃度を変化させること、および／または二本鎖核酸分子のｐＨを変化させることを含む、様々な方法で行われる。
変性後、一本鎖核酸分子は部分的に再アニールすることができる。部分的な再アニーリングは、任意の方法で行うことができ、たとえば、氷上での急速冷却、塩濃度の変化（たとえば、塩濃度を変性に用いられる量から元に戻す）、および／またはｐＨの変化（たとえば、ｐＨを変性に用いられるレベルから元に戻す）などが挙げられる。
再アニーリングの程度は、様々な要因に応じて調整することができ、要因としては、除去される種のタイプ（たとえば、高存在種および／または中存在種）、除去される高存在種の望ましい割合、および／または保持される中存在種もしくは低存在種の割合が含まれるが、これらに限定されるものではない事が理解されうる。いずれかの特定の理論に拘束されるものではないが、同じアニール条件下では、より高存在の種（たとえば、高存在種）は、より低存在の種（たとえば、中存在種および低存在種）よりも速くアニールすると考えられる。たとえば、再アニーリング工程の温度、塩濃度、ｐＨ、および／または持続時間を変更することによって、除去される高存在種の割合および／または保持される中存在種または低存在種の割合が調整されうる。いくつかの実施形態では、再アニーリング工程の温度、塩濃度、ｐＨ、および／または持続時間は、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または少なくとも９９％の高存在種が再アニールされるように調整されうる。いくつかの実施形態では、再アニーリング工程の温度、塩濃度、ｐＨ、および／または持続時間は、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、または１００％の中存在種または低存在種が一本鎖のままであるように調整されうる。
図１は、本開示の方法の一実施形態を示す。サンプルは、複数の核酸を含みうる。核酸のいくつかは高存在１０６であってもよく、核酸のいくつかはより低存在１０５であってもよい。核酸は、結合部分１２０で非対称に標識された二本鎖ｃＤＮＡライブラリー１２５に変換することができる。たとえば、核酸１０５／１０６は、逆転写されたｍＲＮＡでありうる。第２の鎖の合成は、結合部分１２０を含むプライマー（たとえば、遺伝子特異的プライマーまたはランダムマルチマープライマー）を使用して実施することができ、それにより非対称標識二本鎖核酸ライブラリー１２５を生成する。別の例では、核酸１０５／１０６はＤＮＡであってもよい。ＤＮＡは、結合部分１２０を含むプライマーを用いて伸長することができ、それにより非対称標識二本鎖ｃＤＮＡライブラリー１２５を生成する。二本鎖ｃＤＮＡライブラリーは、高存在二本鎖ｃＤＮＡ種１１６および低存在二本鎖ｃＤＮＡ種１１５を含みうる。二本鎖ｃＤＮＡライブラリー１２５は、アダプター１３０／１３５にライゲートすることができ、それにより非正規化ライブラリー１２５を生成する。
二本鎖ｃＤＮＡライブラリー１２５は熱変性させることができ、それにより二本鎖ｃＤＮＡの鎖が分離される。熱変性されたライブラリーは、再アニール（たとえば、部分的な再アニール）１４０されうる。より高存在の核酸１０６は、より低存在の核酸１０５よりも速くアニールできる。変性および部分的な再アニーリングの結果、前記結合部分１４２を含む再アニールされた二本鎖ｃＤＮＡ、前記結合部分１４３を含む一本鎖分子、および前記結合部分１４４を欠く一本鎖分子、を含む種の混合物１４１が得られうる。
変性および再アニールされたライブラリーは、固体担体１４５に接触させうる。固体担体は、非対称標識二本鎖ｃＤＮＡ１１５／１１６の結合部分１２０に結合できる捕捉部分を含みうる。結合部分１２０を含む核酸は、固体担体によって結合されうる。これらの核酸は、前記結合部分１４２を含む再アニールされた二本鎖ｃＤＮＡ、前記結合部分１４３を含む一本鎖分子を含みうる。磁石は、核酸に結合した固体担体１４５を除去するのに用いられうる。
残留核酸１５０は、アニールしなかった種の相補物に相当する（たとえば、これは結合部分を含む一本鎖の相補物であり、固体担体によって除去されたが、濃度が低かったため、その一本鎖分子とアニールしなかった）。残留核酸１５０は、結合部分１２０を含まなくてもよい。残留核酸１５０は、シーケンシングのためのアダプターで増幅および／またはライゲートされうる。これらの核酸は、正規化ライブラリーに相当する。いくつかの場合には、ライブラリーの正規化は、当該ライブラリーを正規化するための酵素学の使用（たとえば、ヌクレアーゼ）を必要としなくてもよい。
ライブラリー正規化の方法
本開示は、ライブラリー正規化のための方法を提供する。本開示の方法は、核酸サンプルに対して行うことができる。核酸サンプルは、核酸を含みうる。サンプルは、本開示のサンプル由来であってもよい。サンプルは、単一細胞であってもよい（たとえば、核酸サンプルは単一細胞からの核酸であってもよい）。核酸サンプルは、ＲＮＡ、ＤＮＡ、またはＲＮＡおよびＤＮＡの両方を含みうる。サンプルの核酸は、一本鎖、二本鎖、または一本鎖および二本鎖の両方の混合物であってもよい。いくつかの場合には、サンプルの核酸の全てまたは大部分が一本鎖である。
核酸サンプルは、異なる存在量の標的核酸（すなわち、核酸種、本明細書では標的核酸と同義的に用いられる）を含みうる。たとえば、核酸サンプルは、高存在の標的（たとえば、アクチン、ＧａｐＤＨ、グロビン、ハウスキーピング遺伝子）を含みうる。核酸サンプルは、低存在の標的（たとえば、幹細胞もしくは循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）からの希少標的、または低発現遺伝子）を含みうる。核酸サンプルは、高存在および低存在の標的の混合物を含みうる。
サンプルの核酸は、結合部分を含むプライマーと接触させて二本鎖ｃＤＮＡを生成しうる。いくつかの実施形態では、核酸はＲＮＡであってもよく、プライマーは逆転写プライマーであってもよい。逆転写プライマーはＲＮＡを逆転写することができ、それによりＲＮＡ−ｃＤＮＡハイブリッドを生成する（たとえば、第１の鎖の合成）。第２の鎖は、標準的な第２の鎖の合成技術を用いて生成することができる。第１のｃＤＮＡ鎖は、結合部分を含みうる。第２の鎖は、第１の鎖の相補鎖であってもよい。第２の鎖は、結合部分を含まなくてもよい。このｃＤＮＡは、非対称標識ｃＤＮＡ（たとえば、ｃＤＮＡの一方の鎖が結合部分で標識されている）と称されうる。
サンプルの核酸がＤＮＡである場合、結合部分を含むプライマーを核酸に接触させて第１の鎖（たとえば、ＤＮＡテンプレートに対する相補鎖）を生成しうる。第１の鎖は、結合部分を含みうる。いくつかの場合には、プライマーは、第１の鎖に対して相補的な第２の鎖を生成しうる。第２の鎖は、結合部分を含まなくてもよい。
ＲＮＡまたはＤＮＡ開始テンプレートのいずれかを用いた場合、その結果として、鎖の一方が結合部分を含み、他方の鎖が相補体である、非対称標識二本鎖ｃＤＮＡ分子が生じうる。非対称に標識された二本鎖ｃＤＮＡ分子のグループは、非正規化ライブラリーと称されうる。
いくつかの実施形態では、結合部分は、ライブラリーの生成後に生じる増幅反応（たとえば、第１の鎖、第２の鎖、アダプターライゲーション）を介して加えられる。図３に示すように、核酸（たとえば、ｍＲＮＡ、ＤＮＡ）３０５は、分子標識（すなわち、分子インデックス）３１０、サンプル標識（すなわち、細胞標識、サンプルインデックス）３１５、およびユニバーサル標識（すなわち、ユニバーサルプライマー結合配列）３２０を含むプライマーを用いて、逆転写または伸長しうる。生成物は、ネステッド遺伝子特異的プライマー３３０およびユニバーサル標識３２０に結合するユニバーサルプライマー３３５を用いて当該生成物が増幅される、最初のネステッドＰＣＲ増幅反応３２５を受けることができ、それによりアンプリコンを生成する。いくつかの場合には、アンプリコンは、ネステッドＰＣＲプライマー３４５およびユニバーサル標識３２０に結合する結合部分３５５を含むユニバーサルプライマー３５０を使用して、２回目の増幅を受けうる。増幅反応は、結合部分で非対称に標識されたアンプリコン（たとえば、ネステッドＰＣＲアンプリコン）を生成しうる。図３は、結合部分を付加するための代表的な増幅スキームを示す。結合部分は、逆転写時、第２の鎖合成時、アダプターライゲーションの前、アダプターライゲーションの後、および／または任意のＰＣＲ増幅工程などの、任意の工程で加えられうる。結合部分を含むプライマーは、ライブラリー調製スキームの複数の工程で使用されうる。
結合部分は、結合パートナーを有する任意の小分子であってもよい。結合部分の例としては、ビオチン、ストレプトアビジン、ヘパリン、アプタマー、クリックケミストリー部分、タンパク質結合セグメントまたは構造、および核酸結合セグメントまたは構造などが含まれる。
本明細書に記載の方法および組成物は、ライブラリー正規化におけるｓｓＤＮＡおよびｄｓＤＮＡ画分の物理的および酵素的分離の課題に対処するものである。図５Ａおよび図５Ｂに示すように、非正規化ライブラリー５００は、高存在種５０５および低存在種５１０を含む。最初のライブラリーの調製において、当該ライブラリー、または当該ライブラリーの一部は、一つの末端において結合部分５１５（ビオチンなど）で非対称に標識される。標識された二本鎖核酸分子５２０は変性５３０され、高存在種５３５および低存在種５４０を含む一本鎖核酸分子を生成する。一本鎖核酸分子は、部分的に再アニール５５０され、高存在種の二本鎖分子５５５を形成するが、低存在種は一本鎖５６０のままである。変性および部分的再アニーリングの後、標識された鎖のすべてが、常磁性ストレプトアビジンビーズなどの支持マトリックス５６５上に捕捉され、結合および非結合画分が分離される５７０。高存在の配列は、主に再ハイブリダイズされ、両方の鎖は結合画分中に除去される。しかしながら、低存在の配列は、再ハイブリダイズされないため、標識された鎖の相補体は非結合画分に存在する。一本鎖高存在種５７５および一本鎖低存在種５８０を含む非結合画分は、正規化ライブラリー５８５に相当し、直接使用されうるか、または下流への適用のためにさらに増幅５９０されうる。
変性および部分的再アニーリング
非正規化ライブラリー（たとえば、標的核酸ｃＤＮＡを含む）は、変性されうる。変性は、サンプルを加熱すること、サンプルを有機溶媒（たとえば、ＤＭＳまたはホルムアミド）で処理すること、サンプルの塩濃度を変化させること、および／またはサンプルのｐＨを変化させることを含む、様々な方法で行われうる。
いくつかの場合には、変性はサンプルを加熱することによって行われる。変性は、少なくとも５０℃、６０℃、７０℃、８０℃、９０℃、もしくは９５℃またはそれ以上の温度で行うことができる。変性は、高くとも５０℃、６０℃、７０℃、８０℃、９０℃、もしくは９５℃、またはそれ以上の温度で行うことができる。変性は、少なくとも１分、２分、３分、４分、５分、６分、７分、８分、９分、１０分、またはそれ以上で行うことができる。変性は、長くとも１分、２分、３分、４分、５分、６分、７分、８分、９分、もしくは１０分、またはそれ以上で行うことができる。変性は、ｃＤＮＡの少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、または１００％の変性をもたらしうる。変性は、ｃＤＮＡの多くとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、または１００％の変性をもたらしうる。変性は、核酸の少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、または１００％を一本鎖形態としうる。
変性されたサンプルは、再アニールされうる。変性されたサンプルは、部分的に再アニールされうる。部分的な再アニーリングは、任意の方法で行うことができ、たとえば、氷上での急速冷却、塩濃度の変化（たとえば、塩濃度を変性に用いられる量から元に戻す）、および／またはｐＨの変化（たとえば、ｐＨを変性に用いられるレベルから元に戻す）などが挙げられる。いくつかの場合には、部分的な再アニーリングは、変性されたサンプルを（たとえば、氷上で）冷却することを含む。部分的な再アニーリングは、変性されたサンプルの鎖の少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％の再アニーリングを含みうる。部分的な再アニーリングは、変性されたサンプルの鎖の多くとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％の再アニーリングを含みうる。高存在核酸からの鎖の少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％は、部分的な再アニーリングの工程において再アニールされうる。高存在核酸からの鎖の多くとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％は、部分的な再アニーリングの工程において再アニールされうる。低存在核酸からの鎖の少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％は、部分的な再アニーリングの工程において再アニールされうる。低存在核酸からの鎖の多くとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％は、部分的な再アニーリングの工程において再アニールされうる。
より高存在の種からの鎖は、より低存在の種からの鎖より、少なくとも５０％、１００％、１５０％、２００％、２５０％、３００％、３５０％、４００％、４５０％、もしくは５００％またはそれ以上速く再アニールされうる。より高存在の種からの鎖は、より低存在の種からの鎖より、多くとも５０％、１００％、１５０％、２００％、２５０％、３００％、３５０％、４００％、４５０％、もしくは５００％またはそれ以上速く再アニールされうる。より高存在の種からの鎖は、より低存在の種からの鎖の少なくとも１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、６倍、７倍、８倍、９倍、もしくは１０倍またはそれ以上を再アニールしうる。より高存在の種からの鎖は、より低存在の種からの鎖の多くとも１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、６倍、７倍、８倍、９倍、もしくは１０倍またはそれ以上を再アニールしうる。
再アニーリングの後、サンプルは、複数の二本鎖分子、結合部分を含む複数の一本鎖分子、および結合部分を含まなくてもよい複数の一本鎖分子を含みうる。二本鎖分子は、結合部分を含みうる１つの鎖および結合部分を含まない１つの鎖を含みうる。
再アニールされたサンプルは、固体担体と接触させることができる。固体担体は、捕捉部分を含みうる。捕捉部分は、結合部分に結合しうる。たとえば、結合部分がビオチンである場合、捕捉部分はストレプトアビジンであってもよい。固体担体は、たとえば、樹脂、スラリー、ビーズ、樹脂、ヒドロゲル、半固体担体、不溶性担体、および／または半固体担体であってもよい。いくつかの場合には、固体担体は樹脂である。
固体担体は物理的性質を有してもよい。たとえば、固体担体は、特定のｐＨ条件、塩条件、および／または温度条件において可溶性であってもよい。固体担体は、磁性、強磁性、および／または常磁性であってもよい。
固体担体は、結合部分を含む再アニールしたサンプルの分子に結合しうる。固体担体は、二本鎖ｃＤＮＡ（たとえば、結合部分を含む）に結合しうる。固体担体は、一本鎖非アニール鎖（たとえば、結合部分を含む）に結合しうる。
固体担体は、サンプルの精製に用いることができる。固体担体は、サンプル（すなわち、上清）から（たとえば、遠心分離、磁性によって）分離されうる。残りのサンプル（すなわち、上清）は、正規化ライブラリーと称されうる。正規化ライブラリーは、結合部分を含まなくてもよい一本鎖核酸分子を含みうる。一本鎖核酸分子は、方法の部分的な再アニーリング工程においてアニールしなかった分子であってもよい。
正規化ライブラリーは、非正規化ライブラリーと比較して、相対的により等しい量の、より低存在の種およびより高存在の種を含みうる。たとえば、非正規化ライブラリーと比較して、正規化ライブラリーにおいて、より高存在の種は、より低存在の種の少なくとも１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、６倍、７倍、８倍、９倍、１０倍、１１倍、１２倍、１３倍、１４倍、１５倍、１６倍、１７倍、１８倍、１９倍、もしくは２０倍またはそれ以上多い。非正規化ライブラリーと比較して、正規化ライブラリーにおいて、より高存在の種は、より低存在の種の多くとも１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、６倍、７倍、８倍、９倍、１０倍、１１倍、１２倍、１３倍、１４倍、１５倍、１６倍、１７倍、１８倍、１９倍、もしくは２０倍またはそれ以上多い。非正規化ライブラリーと比較して、正規化ライブラリーにおいて、より低存在の種は、より高存在の種の少なくとも１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、６倍、７倍、８倍、９倍、１０倍、１１倍、１２倍、１３倍、１４倍、１５倍、１６倍、１７倍、１８倍、１９倍、もしくは２０倍またはそれ以上多い。非正規化ライブラリーと比較して、正規化ライブラリーにおいて、より低存在の種は、より高存在の種の多くとも１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、６倍、７倍、８倍、９倍、１０倍、１１倍、１２倍、１３倍、１４倍、１５倍、１６倍、１７倍、１８倍、１９倍、もしくは２０倍またはそれ以上多い。
ブロッカーの使用
いくつかの実施形態では、本開示の方法は、変性および部分的な再アニーリングにおけるブロッカーの使用を提供する。本明細書で用いられる場合、ブロッカーは、ライブラリーのユニバーサル配列（たとえば、ユニバーサルプライマー配列、ユニバーサルシーケンシングフローセル配列）にハイブリダイズしうるオリゴヌクレオチド配列を示す。ブロッカーは、遺伝子配列を考慮することなく、それらのユニバーサル領域を介した部分的な再アニーリングにおいて、標的／アンプリコンが異なる遺伝子と一緒にアニールするのを防ぐのに使用しうる。
ブロッカーの例示的な使用を図４に示す。第１の標的４０５および第２の標的４１０はそれぞれ、ユニバーサル配列４１５／４２０および結合部分４２１を含みうる。いくつかの場合には、変性および部分的な再アニーリングにおいて、異なる配列を有する標的４０５／４１０は、それぞれが含むユニバーサル配列４１５／４２０を介して、一緒にアニールしうる。ブロッカーは、これが発生するのを防ぐために使用することができる。サンプルは、ブロッカー４３０と接触４２５させることができる。ブロッカー４３０は、標的の１つ以上のユニバーサル配列にハイブリダイズしうる。１つ以上の異なるタイプのブロッカー４３０を使用しうる。ブロッカーは、鎖をそれらの遺伝子配列を介して関連付け（たとえば、ハイブリダイズ）させることによって部分的再アニーリングを助けうる。このようにして、本開示のライブラリー正規化方法を助けるためにブロッカーを使用することができる。
ブロッカーは、少なくとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、もしくは１０またはそれ以上のヌクレオチド長でありうる。ブロッカーは、長くとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、もしくは１０またはそれ以上のヌクレオチド長でありうる。ブロッカーは、少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０または１００％の相補性でその標的にハイブリダイズしうる。ブロッカーは、多くとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０または１００％の相補性でその標的にハイブリダイズしうる。
いくつかの実施形態では、本開示のライブラリー正規化方法は、固体担体上で実施されうる。たとえば、ライブラリーのアンプリコンが、クリックケミストリーに関与する分子の１つ（たとえば、アジド−アルキン環化付加のためのアジド、アルキン）で非対称に標識されたライブラリーを生成しうる。固体担体は、クリックケミストリーにおいて他の分子を含みうる。たとえば、アンプリコンはアルキンを含んでもよく、固体担体はアジドを含んでもよい。アンプリコンは、（たとえば、クリックケミストリーによって）固体担体に結合させることができる。固体担体は加熱されてもよく、それにより結合したアンプリコンの変性を誘導する。部分的な再アニーリングにおいて、より高存在のアンプリコンは、固体担体に結合した分子に再アニールしうる。より低存在のアンプリコンは、溶液中に残されうる（たとえば、遠心分離、磁性、クロマトグラフィーによって）。固体担体は、溶液から除去することができ、それにより正規化ライブラリーが残る。
増幅
核酸増幅反応は、正規化標的核酸分子の複数のコピーを生成するために１回以上行いうる。増幅は、複数の標的核酸配列が同時に増幅される条件で、多重方式で行いうる。増幅反応は、核酸分子にシーケンシングアダプターを付加するために使用しうる。増幅反応は、存在するのであればサンプル標識の少なくとも一部を増幅する工程を含みうる。増幅反応は、細胞および／または分子標識の少なくとも一部を増幅する工程を含みうる。増幅反応は、サンプルタグ、細胞標識、空間標識、分子標識、標的核酸、またはそれらの組合せの少なくとも一部を増幅する工程を含みうる。増幅反応は、複数の核酸の少なくとも１％、２％、３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、または１００％を増幅する工程を含みうる。本方法は、サンプル標識、細胞標識、空間標識、および／または分子標識を含む標的−バーコード分子のｃＤＮＡコピーを１つ以上生成するためにｃＤＮＡ合成反応を１回以上行う工程をさらに含みうる。
いくつかの実施形態では、増幅はポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を用いて行いうる。本明細書で用いられる場合、ＰＣＲとは、ＤＮＡの相補鎖の同時プライマー伸長により特定のＤＮＡ配列のｉｎ ｖｉｔｒｏ増幅を行う反応を意味しうる。本明細書で用いられる場合、ＰＣＲは、その反応の派生形、たとえば、限定されるものではないが、ＲＴ−ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、ネステッドＰＣＲ、定量ＰＣＲ、多重ＰＣＲ、ディジタルＰＣＲ、およびアセンブリーＰＣＲを包含しうる。
標識核酸の増幅は非ＰＣＲベースの方法をも含みうる。非ＰＣＲベースの方法の例としては、限定されるものではないが、多重置換増幅（ＭＤＡ）、転写媒介増幅（ＴＭＡ）、全トランスクリプトーム増幅（ＷＴＡ）、全ゲノム増幅（ＷＧＡ）、核酸配列ベースの増幅（ＮＡＳＢＡ）、鎖置換増幅（ＳＤＡ）、リアルタイムＳＤＡ、ローリングサークル増幅、またはサークル−サークル増幅が挙げられる。他の非ＰＣＲベースの増幅方法としては、ＤＮＡもしくはＲＮＡ標的を増幅するためのＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ駆動ＲＮＡ転写増幅またはＲＮＡ指向ＤＮＡ合成および転写の多重サイクル、リガーゼ連鎖反応（ＬＣＲ）、およびＱβレプリカーゼ（Ｑβ）法、パリンドロームプローブの使用、鎖置換増幅、制限エンドヌクレアーゼを用いたオリゴヌクレオチド駆動増幅、プライマーが核酸配列にハイブリダイズされかつ得られた二本鎖が伸長反応および増幅の前に切断される増幅方法、５’エキソヌクレアーゼ活性の欠如した核酸ポリメラーゼを用いた鎖置換増幅、ローリングサークル増幅、および分岐伸長増幅（ＲＡＭ）が挙げられる。いくつかの場合には、増幅は、環化転写物を生成しうる。
サプレッションＰＣＲは、本開示の増幅方法に使用可能である。サプレッションＰＣＲは、増幅に使用されるプライマーが全リピートまたはリピートの一部に対応する場合に非効率的増幅に起因して末端逆方向リピートがフランキングするある特定のサイズ未満の分子が選択的に排除されることを意味しうる。この理由は、断片の相補的末端の生産的ＰＣＲプライマーアニーリングおよび非生産的自己アニーリングとの間の平衡にありうる。一定サイズのフランキング末端逆方向リピートでは、インサートが短いほど、サプレッション効果が強くなり、その逆も成り立つ。同様に、一定インサートサイズでは、末端逆方向リピートが長いほど、サプレッション効果が強い。
サプレッションＰＣＲは、ＰＣＲ増幅の前にＤＮＡ断片の末端にライゲートされるアダプターを使用可能である。融解およびアニーリングの後、鎖の５’末端および３’末端に自己相補的アダプターを有する一本鎖ＤＮＡ断片は、ＰＣＲ時に断片の増幅を抑制する抑制的「テニスラケット」形構造を形成可能である。
いくつかの場合には、本明細書に開示される方法は、確率標識アンプリコンを生成するために標識核酸（たとえば、標識ＲＮＡ、標識ＤＮＡ、標識ｃＤＮＡ）上でポリメラーゼ連鎖反応を行う工程をさらに含む。確率標識アンプリコンは二本鎖分子であってもよい。二本鎖分子は、二本鎖ＲＮＡ分子、二本鎖ＤＮＡ分子、またはＤＮＡ分子にハイブリダイズされたＲＮＡ分子を含みうる、またはそれらの分子でありうる。二本鎖分子の一方または両方の鎖は、サンプル標識、空間標識、細胞標識、および／または分子標識を含みうる。確率標識アンプリコンは、一本鎖分子でありうる。一本鎖分子は、ＤＮＡ、ＲＮＡ、またはそれらの組合せを含みうる。本開示の核酸は、合成核酸または改変核酸を含みうる。
増幅は、１つ以上の非天然ヌクレオチドの使用を含みうる。非天然ヌクレオチドは、光不安定性またはトリガー性のヌクレオチドを含みうる。非天然ヌクレオチドの例としては、限定されるものではないが、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、モルホリノ核酸、およびロックド核酸（ＬＮＡ）、さらにはグリコール核酸（ＧＮＡ）およびトレオース核酸（ＴＮＡ）が挙げられうる。非天然ヌクレオチドは、増幅反応の１サイクル以上に添加しうる。非天然ヌクレオチドの添加は、増幅反応の特定のサイクルまたは時点で産物を同定するために使用しうる。
増幅反応を１回以上行う工程は、１つ以上のプライマーの使用を含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、もしくは１５ヌクレオチドまたはそれ以上を含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、もしくは１５ヌクレオチドまたはそれ以上を含みうる。１つ以上のプライマーは、１２〜１５ヌクレオチド未満を含みうる。１つ以上のプライマーは、複数の確率標識標的の少なくとも一部にアニールしうる。１つ以上のプライマーは、複数の確率標識標的の３’末端または５’末端にアニールしうる。１つ以上のプライマーは、複数の確率標識標的の内部領域にアニールしうる。内部領域は、複数の確率標識標的の３’末端から少なくとも約５０、１００、１５０、２００、２２０、２３０、２４０、２５０、２６０、２７０、２８０、２９０、３００、３１０、３２０、３３０、３４０、３５０、３６０、３７０、３８０、３９０、４００、４１０、４２０、４３０、４４０、４５０、４６０、４７０、４８０、４９０、５００、５１０、５２０、５３０、５４０、５５０、５６０、５７０、５８０、５９０、６００、６５０、７００、７５０、８００、８５０、９００、または１０００ヌクレオチドでありうる。１つ以上のプライマーは、プライマーの一定パネルを含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも１つ以上のカスタムプライマーを含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも１つ以上の対照プライマーを含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも１つ以上の遺伝子特異的プライマーを含みうる。
１つ以上のプライマーは、本開示の任意のユニバーサルプライマーを含みうる。ユニバーサルプライマーは、ユニバーサルプライマー結合部位にアニールしうる。１つ以上のカスタムプライマーは、第１のサンプル標識、第２のサンプル標識、空間標識、細胞標識、分子標識、標的、またはそれらの任意の組合せにアニールしうる。１つ以上のプライマーは、ユニバーサルプライマーおよびカスタムプライマーを含みうる。カスタムプライマーは、１つ以上の標的を増幅するように設計しうる。標的は、１つ以上のサンプル中の全核酸のサブセットを含みうる。標的は、１つ以上のサンプル中の全確率標識標的のサブセットを含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも９６カスタムプライマーまたはそれ以上を含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも９６０カスタムプライマーまたはそれ以上を含みうる。１つ以上のプライマーは、少なくとも９６００カスタムプライマーまたはそれ以上を含みうる。１つ以上のカスタムプライマーは、２つ以上の異なる標識核酸にアニールしうる。２つ以上の異なる標識核酸は、１つ以上の遺伝子に相当しうる。
任意の増幅スキームを本開示の方法に使用可能である。たとえば、１スキームでは、第１ラウンドのＰＣＲは、遺伝子特異的プライマーおよびユニバーサルＩｌｌｕｍｉｎａシーケンシングプライマー１配列に対するプライマーを用いて分子（たとえば、ビーズに結合されたもの）を増幅可能である。第２ラウンドのＰＣＲは、Ｉｌｌｕｍｉｎａシーケンシングプライマー２配列がフランキングするネステッド遺伝子特異的プライマーとユニバーサルＩｌｌｕｍｉｎａシーケンシングプライマー１配列に対するプライマーとを用いて第１のＰＣＲ産物を増幅可能である。第３ラウンドのＰＣＲは、Ｐ５とＰ７とサンプル指標インデックスとを付加してＰＣＲ産物をＩｌｌｕｍｉｎａシーケンシングライブラリーにする。１５０ｂｐ×２シーケンシングを用いたシーケンシングは、リード１上の細胞標識および分子インデックス、リード２上の遺伝子、ならびにインデックス１リード上のサンプルインデックスを明らかにしうる。
増幅は１ラウンド以上で実施可能である。いくつかの場合には、複数ラウンドの増幅が行われる。増幅は２ラウンド以上の増幅を含みうる。第１の増幅は遺伝子特異的領域を生成する伸長ｏｆｆ Ｘ’でありうる。第２の増幅は、新たに形成された鎖にサンプル核酸がハイブリダイズする場合に起こりうる。
いくつかの実施形態では、ハイブリダイゼーションは核酸分子の末端で行う必要はない。いくつかの実施形態では、より長い核酸のインタクト鎖内の標的核酸にハイブリダイズして増幅する。たとえば、ゲノムＤＮＡまたはｍＲＮＡのより長いセクション内の標的。標的は、ポリヌクレオチドの末端から５０ｎｔ超、１００ｎｔ超、または１０００ｎｔ超にありうる。
アダプターライゲーションを含むライブラリーの調製
非正規化ライブラリー（または正規化ライブラリー）の一本鎖分子は、たとえば、二本鎖分子の生成およびフローセルシーケンシングアダプターの組み込み（たとえば、ライゲーションおよび／またはハイブリダイゼーション、ならびにＰＣＲによって）を含みうる、シーケンシングのために調整されうる。
いくつかの実施形態では、アダプターは、二本鎖核酸にライゲートされうる。アダプターは、本開示の第１のユニバーサルプライマー配列、本開示の第２のユニバーサルプライマー配列、および制限エンドヌクレアーゼ結合部位、またはそれらの任意の組み合わせを含みうる。いくつかの場合には、アダプターは、本開示の第２のユニバーサルプライマー配列および制限エンドヌクレアーゼ結合部位を含む。
本明細書で使用される「アダプター」という用語は、核酸の末端に結合しうる、少なくとも１０、１５、２０または２５塩基の一本鎖または二本鎖オリゴヌクレオチドを示す。アダプター配列は、たとえば、プライミング部位、プライミング部位の相補体、ならびに、エンドヌクレアーゼ、共通配列およびプロモーターの認識部位を用いて合成されてもよい。アダプターは、完全にまたは実質的に二本鎖であってもよい。二本鎖アダプターは、少なくとも部分的に相補的な２つのオリゴヌクレオチドを含んでもよい。アダプターは、一方または両方の鎖でリン酸化されていても、またはリン酸化されていなくてもよい。アダプターは、オーバーハング（たとえば、制限酵素またはポリメラーゼ酵素によって生成される）と完全にまたは部分的に相補的な二本鎖部分および一本鎖オーバーハング部分を有することができる。アダプターにおけるオーバーハングは、たとえば、４〜８塩基であってもよい。たとえば、ＤＮＡが制限酵素ＥｃｏＲＩで消化される場合、得られる二本鎖フラグメントは、一本鎖オーバーハング５’−ＡＡＴＴ−３’にいずれかの末端で隣接し、一本鎖オーバーハング５’−ＡＡＴＴ−３’を有するアダプターは、オーバーハング領域間の相補性を介してフラグメントにハイブリダイズする。アダプターのフラグメントへのこの「粘着末端」ハイブリダイゼーションは、アダプターのフラグメントへのライゲーションを促進するが、平滑末端ライゲーションも可能である。平滑末端は、たとえば、クレノウフラグメントのエキソヌクレアーゼ活性を用いて、粘着末端に変換しうる。たとえば、ＤＮＡをＰｖｕＩＩで消化する場合、平滑末端は、ｄＴＴＰおよびｄＣＴＰの存在下でクレノウを有するフラグメントをインキュベートすることによって、２塩基対オーバーハングに変換しうる。オーバーハングはまた、オーバーハングを埋めるか、オーバーハングを除去することによって、平滑末端に変換されてもよい。
アダプターは、本開示の二本鎖ｃＤＮＡにライゲートされてもよい。ライゲーションの方法は、平滑末端および粘着末端を有する二本鎖ＤＮＡまたはＲＮＡにおいて、並置された５’リン酸末端と３’ヒドロキシル末端との間のホスホジエステル結合の形成を触媒する、Ｔ４ＤＮＡリガーゼの使用、相補的な標的ＤＮＡにハイブリダイズする２つの隣接するオリゴヌクレオチドの、並置された５’リン酸末端と３’ヒドロキシル末端との間のホスホジエステル結合の形成を触媒する、ＴａｑＤＮＡリガーゼの使用、付着末端を含有する二本鎖ＤＮＡにおいて、並置された５’−リン酸末端と３’−ヒドロキシル末端との間のホスホジエステル結合の形成を触媒する、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ＤＮＡリガーゼの使用、および３’から５’へのホスホジエステル結合の形成を介して、５’リン酸末端核酸ドナーの３’ヒドロキシル末端核酸アクセプターへのライゲーションを触媒する、基質が一本鎖ＲＮＡおよびＤＮＡならびにジヌクレオシドピロリン酸を含有するＴ４ＲＮＡリガーゼの使用、または当該技術分野で記載される任意の他の方法を含みうる。異なる酵素は異なるオーバーハングを生成し、アダプターのオーバーハングは、選択された制限酵素によって生成されたフラグメントにライゲートするよう標的化しうる。
いくつかの実施形態では、二本鎖アダプターが使用され、アダプターの１つの鎖のみが二本鎖ｃＤＮＡにライゲートされる。アダプターの１つの鎖のライゲーションは、選択的にブロックされうる。ライゲーションをブロックするために、たとえば、アダプターの１つの鎖は、アダプターのその鎖の５’末端と標的核酸の３’末端との間に、１つ以上のヌクレオチドのギャップを導入するように設計しうる。アダプターの５’末端からリン酸が存在しないことで、その５’末端の、利用可能な３’ＯＨへのライゲーションがブロックされうる。
シーケンシング
異なる確率標識核酸の数を決定する工程は、標識標的、空間標識、分子標識、サンプル標識、および細胞標識、または任意の産物（たとえば、標識アンプリコン、標識ｃＤＮＡ分子）の配列を決定する工程を含みうる。増幅標的はシーケンシングに供されてもよい。確率標識核酸またはその任意の産物の配列を決定する工程は、サンプル標識、空間標識、細胞標識、分子標識の少なくとも一部、および／または確率標識標的の少なくとも一部、それらの相補体、それらの逆相補体、またはそれらの任意の組合せの配列を決定するためにシーケンシング反応を行なう工程を含みうる。
核酸（たとえば、増幅核酸、標識核酸、標識核酸のｃＤＮＡコピーなど）の配列の決定は、限定されるものではないが、合成シーケンシング（ＳＢＳ）、ハイブリダイゼーションシーケンシング（ＳＢＨ）、ライゲーションシーケンシング（ＳＢＬ）、定量漸進蛍光ヌクレオチド付加シーケンシング（ＱＩＦＮＡＳ）、ステップワイズライゲーションおよび切断、蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）、分子ビーコン、ＴａｑＭａｎレポータープローブ消化、パイロシーケンシング、蛍光ｉｎ ｓｉｔｕシーケンシング（ＦＩＳＳＥＱ）、ＦＩＳＳＥＱビーズ、ウォッブルシーケンシング、多重シーケンシング、重合コロニー（ＰＯＬＯＮＹ）シーケンシング、ナノグリッドローリングサークルシーケンシング（ＲＯＬＯＮＹ）、対立遺伝子特異的オリゴライゲーションアッセイ（たとえば、オリゴライゲーションアッセイ（ＯＬＡ）、ライゲート線状プローブとローリングサークル増幅（ＲＣＡ）リードアウトとを用いた単一テンプレート分子ＯＬＡ、ライゲートパドロックプローブ、またはライゲート環状パドロックプローブとローリングサークル増幅（ＲＣＡ）リードアウトとを用いた単一テンプレート分子ＯＬＡ）などをはじめとするさまざまなシーケンシング法を用いて行ってもよい。
いくつかの場合には、標識核酸またはその任意の産物の配列を決定する工程は、ペアエンドシーケンシング、ナノ細孔シーケンシング、高スループットシーケンシング、ショットガンシーケンシング、色素ターミネーターシーケンシング、多重プライマーＤＮＡシーケンシング、プライマウォーキング、サンガージデオキシシーケンシング、マキサム・ギルバートシーケンシング、パイロシーケンシング、真単一分子シーケンシング、またはそれらの任意の組合せを含む。代替的に、標識核酸またはその任意の産物の配列は、電子顕微鏡法または化学増感電界効果トランジスター（ｃｈｅｍＦＥＴ）アレイにより決定しうる。
高スループットシーケンシング法、たとえば、Ｒｏｃｈｅ４５４、Ｉｌｌｕｍｉｎａ Ｓｏｌｅｘａ、ＡＢＩ−ＳＯＬｉＤ、ＩＯＮ Ｔｏｒｒｅｎｔ、Ｃｏｍｐｌｅｔｅ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ、Ｐａｃｉｆｉｃ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、Ｈｅｌｉｃｏｓ、Ｐｏｌｏｎａｔｏｒプラットフォームなどのプラットフォームを用いたサイクリックアレイシーケンシングを利用することも可能である。シーケンシングは、ＭｉＳｅｑシーケンシングを含みうる。シーケンシングは、ＨｉＳｅｑシーケンシングを含みうる。
確率標識標的は、生物のゲノムの遺伝子の約０．０１％から生物のゲノムの遺伝子の約１００％までに相当する核酸を含みうる。たとえば、サンプルの相補的配列を含有する遺伝子をキャプチャーすることにより、複数のマルチマーを含む標的相補的領域を用いて、生物のゲノムの遺伝子の約０．０１％から生物のゲノムの遺伝子の約１００％までをシーケンス可能である。いくつかの実施形態では、標識核酸は、生物のトランスクリプトームの転写物の約０．０１％から生物のトランスクリプトームの転写物の約１００％までに相当する核酸を含む。たとえば、サンプルのｍＲＮＡをキャプチャーすることにより、ポリＴテールを含む標的相補的領域を用いて、生物のトランスクリプトームの転写物の約０．５０１％から生物のトランスクリプトームの転写物の約１００％までをシーケンス可能である。
シーケンシングは、標識核酸および／または確率バーコードの少なくとも約１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００ヌクレオチドもしくは塩基対またはそれ以上のシーケンシングを含みうる。シーケンシングは、標識核酸および／または確率バーコードの多くとも約１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００ヌクレオチドもしくは塩基対またはそれ以上のシーケンシングを含みうる。シーケンシングは、標識核酸および／または確率バーコードの少なくとも約２００、３００、４００、５００、６００、７００、８００、９００、１，０００ヌクレオチドもしくは塩基対またはそれ以上のシーケンシングを含みうる。シーケンシングは、標識核酸および／または確率バーコードの多くとも約２００、３００、４００、５００、６００、７００、８００、９００、１，０００ヌクレオチドもしくは塩基対またはそれ以上のシーケンシングを含みうる。シーケンシングは、標識核酸および／または確率バーコードの少なくとも約１，５００、２，０００、３，０００、４，０００、５，０００、６，０００、７，０００、８，０００、９，０００、もしくは１０，０００ヌクレオチドまたは塩基対あるいはそれ以上のシーケンシングを含みうる。シーケンシングは、標識核酸および／または確率バーコードの多くとも約１，５００、２，０００、３，０００、４，０００、５，０００、６，０００、７，０００、８，０００、９，０００、もしくは１０，０００ヌクレオチドまたは塩基対あるいはそれ以上のシーケンシングを含みうる。
シーケンシングは、少なくとも約２００、３００、４００、５００、６００、７００、８００、９００、１，０００シーケンシングリード／ランまたはそれ以上のシーケンシングを含みうる。シーケンシングは、多くとも約２００、３００、４００、５００、６００、７００、８００、９００、１，０００シーケンシングリード／ランまたはそれ以上のシーケンシングを含みうる。いくつかの場合には、シーケンシングは、少なくとも約１，５００、２，０００、３，０００、４，０００、５，０００、６，０００、７，０００、８，０００、９，０００、もしくは１０，０００シーケンシングリード／ランまたはそれ以上を含みうる。いくつかの場合には、シーケンシングは、多くとも約１，５００、２，０００、３，０００、４，０００、５，０００、６，０００、７，０００、８，０００、９，０００、もしくは１０，０００シーケンシングリード／ランまたはそれ以上を含みうる。シーケンシングは、少なくとも０．１億、０．５億、１億、１．５億、２億、２．５億、３億、３．５億、４億、４．５億、５億、５．５億、６億、６．５億、７億、７．５億、８億、８．５億、９億、９．５億、もしくは１０億シーケンシングリード／ランまたはそれ以上を含みうる。シーケンシングは、多くとも０．１億、０．５億、１億、１．５億、２億、２．５億、３億、３．５億、４億、４．５億、５億、５．５億、６億、６．５億、７億、７．５億、８億、８．５億、９億、９．５億、もしくは１０億シーケンシングリード／ランまたはそれ以上を含みうる。シーケンシングは、全体として少なくとも１億、２億、３億、４億、５億、６億、７億、８億、９億、１０億、１１億、１２億、１３億、１４億、１５億、１６億、２０億、３０億、４０億、もしくは５０億シーケンシングリードまたはそれ以上を含みうる。シーケンシングは、全体として多くとも１億、２億、３億、４億、５億、６億、７億、８億、９億、１０億、１１億、１２億、１３億、１４億、１５億、１６億、２０億、３０億、４０億、もしくは５０億シーケンシングリードまたはそれ以上を含みうる。シーケンシングは、約１，６００，０００，０００シーケンシングリード／ラン以下を含みうる。シーケンシングは、約２００，０００，０００リード／ラン以下を含みうる。
本開示の方法によって作製された正規化ライブラリー中では、非正規化ライブラリー中よりも、より低存在の（たとえば、より希少な）転写物をより容易に同定することができる。正規化ライブラリー中の、より低存在の転写物のシーケンシングリードは、非正規化ライブラリー中よりも、より大部分の総リードを含みうる。正規化ライブラリー中の、より低存在の転写物のシーケンシングリードは、非正規化ライブラリー中の同じ転写物のリードと比較して、少なくとも５０％、１００％、１５０％、２００％、２５０％、３００％、３５０％、４００％、４５０％もしくは５００％またはそれ以上のリードを含みうる。正規化ライブラリー中の、より低存在の転写物のシーケンシングリードは、非正規化ライブラリー中の同じ転写物のシーケンシングリードの少なくとも１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、もしくは６倍またはそれ以上でありうる。
確率バーコード
本明細書に使用される確率バーコードは、標的に確率標識（たとえば、バーコード、タグ）を付けるために使用しうるポリヌクレオチド配列を示す。確率バーコードは１つ以上の標識を含みうる。例示的な標識としては、限定されるものではないが、ユニバーサル標識、細胞標識、分子標識、サンプル標識、プレート標識、空間標識、および／またはプレ空間標識が挙げられる。確率バーコードは、当該確率バーコードを固体担体に結合しうる５’アミンを含みうる。確率バーコードは、１つ以上のユニバーサル標識、１つ以上の次元標識、１つ以上の空間標識、１つ以上の細胞標識、および／または１つ以上の分子標識を含みうる。確率バーコード内のそれぞれの様々な標識の位置は異なりうる。たとえば、ユニバーサル標識は最も５’側の標識でありうる。分子標識は最も３’側の標識でありうる。空間標識、次元標識、および細胞標識は任意の順序でありうる。いくつかの実施形態では、ユニバーサル標識、空間標識、次元標識、細胞標識、および分子標識は任意の順序である。確率バーコードは標的結合領域を含みうる。標的結合領域は、サンプル中の標的（たとえば、標的核酸、ＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ＤＮＡ）と相互作用可能である。たとえば、標的結合領域は、ｍＲＮＡのポリＡテールと相互作用可能なオリゴｄＴ配列を含みうる。いくつかの場合には、確率バーコードの標識（たとえば、ユニバーサル標識、次元標識、空間標識、細胞標識、および分子標識）は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、もしくは２０ヌクレオチドまたはそれ以上分離しうる。
確率バーコードは１つ以上のユニバーサル標識を含みうる。１つ以上のユニバーサル標識は、確率バーコードのセット中のすべての確率バーコードで同一でありうる（たとえば、所与の固体担体に結合される）。いくつかの実施形態では、１つ以上のユニバーサル標識は、複数のビーズに結合されるすべての確率バーコードで同一でありうる。いくつかの実施形態では、ユニバーサル標識は、シーケンシングプライマーにハイブリダイズ可能な核酸配列を含みうる。シークエンシングプライマーは、ユニバーサル標識を含む確率バーコードをシーケンスするために使用可能である。シークエンシングプライマー（たとえば、ユニバーサルシークエンシングプライマー）は、高スループットシークエンシングプラットフォームに関連付けられるシークエンシングプライマーを含みうる。いくつかの実施形態では、ユニバーサル標識は、ＰＣＲプライマーにハイブリダイズ可能な核酸配列を含みうる。いくつかの実施形態では、ユニバーサル標識は、シークエンシングプライマーおよびＰＣＲプライマーにハイブリダイズ可能な核酸配列を含みうる。シーケンシングプライマーまたはＰＣＲプライマーにハイブリダイズ可能なユニバーサル標識の核酸配列は、プライマー結合部位として参照しうる。ユニバーサル標識は、確率バーコードの転写を開始するために使用しうる配列を含みうる。ユニバーサル標識は、確率バーコードまたは確率バーコード内の領域を伸長させるために使用しうる配列を含みうる。ユニバーサル標識は、１、２、３、４、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長もしくはそれ以上でありうる。ユニバーサル標識は、少なくとも約１０ヌクレオチドを含みうる。ユニバーサル標識は、多くとも約１、２、３、４、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。いくつかの実施形態では、切断可能なリンカーまたは修飾ヌクレオチドは、担体からの確率バーコードの切断除去を可能にするユニバーサル標識配列の一部である。本明細書で用いられる場合、ユニバーサル標識は、「ユニバーサルＰＣＲプライマー」と同義的に用いうる。
確率バーコードは次元標識を含みうる。次元標識は、確率標識化が行われた次元に関する情報を提供する核酸配列を含みうる。たとえば、次元標識は、標的に確率バーコードが付された時点に関する情報を提供可能である。次元標識は、サンプルの確率バーコーディングの時点に関連付け可能である。次元標識は、確率標識化の時点で活性化可能である。異なる時点で異なる次元標識を活性化可能である。次元標識は、標的、標的のグループ、および／またはサンプルに確率バーコードを付けた順序に関する情報を提供する。たとえば、細胞集団は、細胞周期のＧ０期に確率バーコードを付けることが可能である。細胞は、細胞周期のＧ１期に確率バーコードで再びパルスすることが可能である。細胞は、細胞周期のＳ期に確率バーコードで再びパルスすることが可能であり、他の時期も同様である。各パルス時（たとえば、細胞周期の各期）の確率バーコードは、異なる次元標識を含みうる。こうして、次元標識は、細胞周期のどの期に標的に標識したかに関する情報を提供する。次元標識は、多種多様な生物時間を精査することが可能である。例示的な生物時間としては、限定されるものではないが、細胞周期、転写（たとえば転写開始）、および転写物分解が挙げられうる。他の例として、薬剤治療および／または療法の前および／または後にサンプル（たとえば、細胞、細胞集団）に確率標識を付けることが可能である。識別可能な標的のコピー数の変化は、薬剤および／または療法に対するサンプルの反応の指標でありうる。
次元標識は活性化可能でありうる。活性化可能な次元標識は、特定の時点で活性化可能である。活性化可能な次元標識は、構成的に活性化可能である（たとえば、オフに切り替わらない）。活性化可能な次元標識は、可逆的に活性化可能である（たとえば、活性化可能な次元標識は、オン・オフの切替えが可能である）。次元標識は、少なくとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、もしくは１０回またはそれ以上可逆的に活性化可能である。次元標識は、少なくとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、もしくは１０回またはそれ以上可逆的に活性化可能である。次元標識は、蛍光、光、化学的イベント（たとえば、切断、他の分子のライゲーション、修飾（たとえば、ペグ化、ＳＵＭＯ化、アセチル化、メチル化、脱メチル化、脱アセチル化）の追加、光化学的イベント（たとえば、光ケージング）、および非天然ヌクレオチドの導入により活性化可能である。
次元標識は、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるすべての確率バーコードで同一でありうるが、異なる固体担体（たとえばビーズ）では異なりうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、９９％、または１００％は、同一の次元標識を含みうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも６０％は、同一の次元標識を含みうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも９５％は、同一の次元標識を含みうる。
複数の固体担体（たとえばビーズ）には、１０６程度またはそれ以上のユニーク次元標識配列が存在してもよい。次元標識は、少なくとも約１、２、３、４、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。次元標識は、多くとも約３００、２００、１００、９０、８０、７０、６０、５０、４０、３０、２０、１５、１２、１０、９、８、７、６、５、４ヌクレオチド長またはそれ以下もしくは以上であってもよい。次元標識は、約５〜約２００ヌクレオチドを含んでもよい。次元標識は、約１０〜約１５０ヌクレオチドを含んでもよい。次元標識は、約２０〜約１２５ヌクレオチド長を含んでもよい。
確率バーコードは空間標識を含みうる。空間標識は、確率バーコードに関連付けられる標的分子の空間配向に関する情報を提供する核酸配列を含みうる。空間標識は、サンプル中の座標に関連付け可能である。座標は固定座標でありうる。たとえば、座標は基材を基準にして固定可能である。空間標識は二次元または三次元のグリッドを基準にしうる。座標はランドマークを基準にして固定可能である。ランドマークは空間内で同定可能である。ランドマークはイメージング可能な構造体でありうる。ランドマークは生物学的構造体たとえば解剖学的ランドマークでありうる。ランドマークは細胞ランドマーク（たとえばオルガネラ）でありうる。ランドマークは、非天然ランドマーク、たとえば、色コード、バーコード、磁性、蛍光、放射能、またはユニークなサイズもしくは形状のような同定可能な識別子を有する構造体でありうる。空間標識は、物理的パーティション（たとえば、ウェル、容器、またはドロップレット）に関連付け可能である。いくつかの場合には、空間内の１つ以上の位置にコードを付けるために複数の空間標識が一緒に使用される。
空間標識は、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるすべての確率バーコードで同一でありうるが、異なる固体担体（たとえばビーズ）では異なりうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、９９％、または１００％は、同一の空間標識を含みうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも６０％は、同一の空間標識を含みうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも９５％は、同一の空間標識を含みうる。
複数の固体担体（たとえばビーズ）には、１０６程度またはそれ以上のユニーク空間標識配列が存在してもよい。空間標識は、少なくとも約１、２、３、４、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上であってもよい。空間標識は、多くとも約３００、２００、１００、９０、８０、７０、６０、５０、４０、３０、２０、１５、１２、１０、９、８、７、６、５、４ヌクレオチド長またはそれ以下もしくは以上であってもよい。空間標識は、約５〜約２００ヌクレオチドを含んでもよい。空間標識は、約１０〜約１５０ヌクレオチドを含んでもよい。空間標識は、約２０〜約１２５ヌクレオチド長を含んでもよい。
確率バーコードは細胞標識（すなわち、サンプル標識）を含んでもよい。本明細書で用いられる場合、用語「サンプル標識」および「細胞標識」は、同義的に用いてもよい。細胞標識は、どの標的核酸がどの細胞に由来したかを決定するための情報を提供する核酸配列を含んでもよい。いくつかの実施形態では、細胞標識は、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるすべての確率バーコードで同一であるが、異なる固体担体（たとえばビーズ）では異なる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、９９％、または１００％は、同一の細胞標識を含みうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも６０％は、同一の細胞標識を含みうる。いくつかの実施形態では、同一の固体担体上の確率バーコードの少なくとも９５％は、同一の細胞標識を含みうる。
複数の固体担体（たとえばビーズ）には、１０６程度またはそれ以上のユニーク細胞標識配列が存在可能である。細胞標識は、少なくとも約１、２、３、４、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。細胞標識は、多くとも約３００、２００、１００、９０、８０、７０、６０、５０、４０、３０、２０、１５、１２、１０、９、８、７、６、５、４ヌクレオチド長またはそれ以下もしくは以上でありうる。細胞標識は、約５〜約２００ヌクレオチドを含みうる。細胞標識は約１０〜約１５０ヌクレオチドを含みうる。細胞標識は、約２０〜約１２５ヌクレオチド長を含みうる長でありうる。
確率バーコードは分子標識を含みうる。分子標識は、確率バーコードにハイブリダイズされた標的核酸種の特定のタイプに関する情報の同定を提供する核酸配列を含みうる。分子標識は、確率バーコード（たとえば標的結合領域）にハイブリダイズされた標的核酸種の特定の存在に対するカウンターを提供する核酸配列を含みうる。いくつかの実施形態では、分子標識のさまざまなセットが所与の固体担体（たとえば、ビーズ）に結合される。いくつかの実施形態では、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるユニーク分子標識配列は１０６程度またはそれ以上存在可能である。いくつかの実施形態では、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるユニーク分子標識配列は１０５程度またはそれ以上存在可能である。いくつかの実施形態では、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるユニーク分子標識配列は１０４程度またはそれ以上存在可能である。いくつかの実施形態では、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるユニーク分子標識配列は１０３程度またはそれ以上存在可能である。いくつかの実施形態では、所与の固体担体（たとえばビーズ）に結合されるユニーク分子標識配列は１０２程度またはそれ以上存在可能である。分子標識は、少なくとも約１、２、３、４、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。分子標識は、多くとも約３００、２００、１００、９０、８０、７０、６０、５０、４０、３０、２０、１５、１２、１０、９、８、７、６、５、４ヌクレオチド長またはそれ以下でありうる。
確率バーコードは標的結合領域を含みうる。いくつかの実施形態では、標的結合領域は、標的（たとえば、標的核酸、標的分子、たとえば、分析される細胞核酸）、たとえば、特定の遺伝子配列に特異的にハイブリダイズする核酸配列を含みうる。いくつかの実施形態では、標的結合領域は、特定の標的核酸の特定の位置に結合（たとえばハイブリダイズ）しうる核酸配列を含みうる。いくつかの実施形態では、標的結合領域は、制限部位オーバーハング（たとえば、ＥｃｏＲＩ付着末端オーバーハング）への特異的なハイブリダイゼーションが可能な核酸配列を含みうる。次いで、確率バーコードは、制限部位オーバーハングに相補的な配列を含む任意の核酸分子にライゲートしうる。
確率バーコードは標的結合領域を含みうる。標的結合領域は、対象の標的にハイブリダイズ可能である。たとえば、標的結合領域は、ポリアデニル化末端を含むｍＲＮＡにハイブリダイズ可能なオリゴｄＴを含みうる。標的結合領域は遺伝子特異的でありうる。たとえば、標的結合領域は、標的の特定の領域にハイブリダイズするように構成可能である。標的結合領域は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、もしくは３０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。標的結合領域は、多くとも１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、もしくは３０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。標的結合領域は５〜３０ヌクレオチド長でありうる。確率バーコードが遺伝子特異的標的結合領域を含む場合、確率バーコードは遺伝子特異的確率バーコードとして参照可能である。
標的結合領域は非特異的標的核酸配列を含みうる。非特異的標的核酸配列は、標的核酸の特定の配列に依存せずに複数の標的核酸に結合しうる配列を意味しうる。たとえば、標的結合領域は、ランダムマルチマー配列を含みうるかまたはｍＲＮＡ分子のポリＡテールにハイブリダイズするオリゴｄＴ配列を含みうる。ランダムマルチマー配列は、たとえば、ランダムダイマー、ランダムトリマー、ランダムクアトラマー、ランダムペンタマー、ランダムヘキサマー、ランダムセプタマー、ランダムオクタマー、ランダムノナマー、ランダムデカマー、または任意の長さのより高次のランダムマルチマーの配列でありうる。いくつかの実施形態では、標的結合領域は、所与のビーズに結合されたすべての確率バーコードで同一である。いくつかの実施形態では、所与のビーズに結合された複数の確率バーコードの標的結合領域は、２つ以上の異なる標的結合配列を含みうる。標的結合領域は、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長もしくはそれ以上でありうる。標的結合領域は、多くとも約５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。
確率バーコードは、確率バーコードのオリエント（たとえばアライメント）のために使用可能なオリエント性を含みうる。確率バーコードは、等電点電気泳動用の部分を含みうる。異なる確率バーコードは、異なる等電点電気泳動点を含みうる。こうした確率バーコードをサンプルに導入した場合、サンプルは、確率バーコードを既知の形態にオリエントするために等電点電気泳動を行うことが可能である。こうして、オリエント性は、サンプルで確率バーコードの既知のマップを作成するために使用可能である。例示的なオリエント性としては、電気泳動移動度（たとえば、確率バーコードのサイズに基づく）、等電点、スピン、伝導率、および／またはセルフアセンブリーが挙げられうる。たとえば、確率バーコードは、セルフアセンブリーのオリエント性を含むことができ、または活性化時に特定のオリエンテーションにセルフアセンブル可能である（たとえば、核酸ナノ構造）。
確率バーコードは親和性を含みうる。空間標識は親和性を含みうる。親和性は、他のエンティティー（たとえば細胞レセプター）への確率バーコードの結合を促進可能な化学的および／または生物学的部分に含まれうる。たとえば、親和性は抗体を含みうる。抗体は、サンプル上の特定の部分（たとえばレセプター）に特異的でありうる。抗体は、確率バーコードを特定の細胞型または分子に案内可能である。特定の細胞型もしくは分子および／またはその近傍にある標的は、確率標識化が可能である。抗体は確率バーコードを特定の位置に案内可能であるので、親和性はまた、空間標識のヌクレオチド配列に加えて空間情報を提供可能である。抗体は治療用抗体でありうる。抗体はモノクローナル抗体でありうる。抗体はポリクローナル抗体でありうる。抗体はヒト化しうる。抗体はキメラでありうる。抗体はネイキッド抗体でありうる。抗体は融合抗体でありうる。
抗体は、全長（すなわち、天然に存在するかもしくは通常の免疫グロブリン遺伝子断片組換えプロセスにより形成される）免疫グロブリン分子（たとえばＩｇＧ抗体）または免疫グロブリン分子の免疫活性（すなわち特異的結合）部分たとえば抗体フラグメントを意味しうる。
抗体は抗体フラグメントでありうる。抗体フラグメントは、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ、ｓＦｖなどの抗体の一部でありうる。抗体フラグメントは、全長抗体により認識される同一の抗原に結合可能である。抗体フラグメントは、抗体の可変領域からなる単離された断片、たとえば、重鎖および軽鎖の可変領域からなる「Ｆｖ」フラグメントならびに軽鎖および重鎖の可変領域がペプチドリンカーにより接続された組換え一本鎖ポリペプチド分子（「ｓｃＦｖタンパク質」）を含みうる。例示的な抗体としては、限定されるものではないが、癌細胞に対する抗体、ウイルスに対する抗体、細胞表面レセプター（ＣＤ８、ＣＤ３４、ＣＤ４５）に結合する抗体、および治療用抗体が挙げられうる。
本開示の細胞標識および／または任意の標識は、エラー訂正能力を提供するように設計される規定の長さたとえばそれぞれ７ヌクレオチド（いくつかのハミングエラー訂正コードで使用されるビットの数と等価である）の核酸サブ配列のユニークセットをさらに含みうる。７ヌクレオチド配列を含むエラー訂正サブ配列のセットは、当該セット中の配列における任意の対の組み合わせが、定義された「遺伝的距離」（または不適正塩基の数）を示すように設計することができ、たとえば、エラー訂正サブ配列のセットは、３ヌクレオチドの遺伝的距離を示すように設計されてもよい。いくつかの実施形態では、エラー訂正コードの生成に使用される核酸サブ配列の長さはさまざまであってもよい。たとえば、少なくとも３ヌクレオチド長、少なくとも７ヌクレオチド長、少なくとも１５ヌクレオチド長、または少なくとも３１ヌクレオチド長であってもよい。いくつかの実施形態では、他の長さの核酸サブ配列をエラー訂正コードの生成に使用されてもよい。
本開示の確率バーコードは、エラー訂正のためにエラー訂正配列（たとえば、ハミングコード）をその中に含みうる。ハミングコードは、１ビットエラーの訂正が可能な固有冗長性に基づいてユニーク二進コードを同定する算術プロセスを意味しうる。たとえば、ハミングコードは、核酸増幅時に起こる単一ヌクレオチドエラーをスクリーニングするために核酸バーコードにマッチさせうる。それにより、ハミングコードを用いた単一ヌクレオチドエラーの同定は、核酸バーコードの訂正を可能にしうる。
確率バーコードが２つ以上のあるタイプの標識（たとえば、２つ以上の細胞標識または２つ以上の分子標識）を含む場合、標識はリンカー標識配列を散在させうる。リンカー標識配列は、少なくとも約５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。リンカー標識配列は、多くとも約５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０ヌクレオチド長またはそれ以上でありうる。いくつかの場合には、リンカー標識配列は１２ヌクレオチド長である。リンカー標識配列は、確率バーコードの合成を促進可能である。リンカー標識は、エラー訂正（たとえばハミング）コードを含みうる。
固体担体
本明細書に開示される確率バーコードは、固体担体（たとえば、ビーズ、基材）に結合されてもよい。本明細書で用いられる場合、「テザー連結」、「結合」、および「固定」という用語は、同義的に用いられて、確率バーコードを固体担体に結合するための共有結合または非共有結合の手段を意味しうる。さまざまな異なるいずれの固体担体も、プレ合成された確率バーコードを結合するためのまたは確率バーコードをｉｎ ｓｉｔｕ固相合成するための固体担体として使用しうる。
いくつかの場合には、固体担体はビーズである。ビーズは、核酸を（たとえば共有結合または非共有結合で）固定しうるプラスチック、セラミック、金属、または高分子材料で構成された任意のタイプの中実、多孔性、または中空のスフェア、ボール、ベアリング、シリンダー、または他の類似の構成体を包含しうる。ビーズは、球状（たとえばマイクロスフェア）でありうるかまたは非球状もしくは不規則形状、たとえば、立方体形、直方体形、角錐形、円柱形、円錐形、扁球形、ディスク形などを有しうる離散粒子を含みうる。ビーズは非球状の形状でありうる。
ビーズは、限定されるものではないが、常磁性材料（たとえば、マグネシウム、モリブデン、リチウム、およびタンタル）、超常磁性材料（たとえば、フェライト（Ｆｅ３Ｏ４、マグネタイト）ナノ粒子）、強磁性材料（たとえば、鉄、ニッケル、コバルト、それらのいくつかの合金、およびいくつかの希土類金属化合物）、セラミック、プラスチック、ガラス、ポリスチレン、シリカ、メチルスチレン、アクリルポリマー、チタン、ラテックス、セファロース、アガロース、ヒドロゲル、ポリマー、セルロース、ナイロン、ならびにそれらの任意の組合せなどのさまざまな材料を含みうる。
ビーズの直径は変化してもよく、たとえば、５μｍ、１０μｍ、２０μｍ、２５μｍ、３０μｍ、３５μｍ、４０μｍ、４５μｍ、もしくは５０μｍでありうる。ビーズの直径は、多くとも約５μｍ、１０μｍ、２０μｍ、２５μｍ、３０μｍ、３５μｍ、４０μｍ、４５μｍ、または５０μｍでありうる。ビーズの直径は、基材のウェルの直径に関連付け可能である。たとえば、ビーズの直径は、ウェルの直径よりも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、もしくは１００％長いもしくは短い長さでありうる。ビーズの直径は、ウェルの直径よりも多くとも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、もしくは１００％長いまたは短い長さでありうる。ビーズの直径は、細胞（たとえば、基材のウェルに閉じ込められた単一細胞）の直径に関連付けうる。ビーズの直径は、細胞の直径よりも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、２５０、もしくは３００％またはそれ以上長いまたは短い長さでありうる。ビーズの直径は、細胞の直径よりも多くとも１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、２５０、もしくは３００％またはそれ以上長いまたは短い長さでありうる。
ビーズは、本開示の基材への埋込みおよび／または結合が可能である。ビーズは、ゲル、ヒドロゲル、ポリマー、および／またはマトリックスへの埋込みおよび／または結合が可能である。基材（たとえば、ゲル、マトリックス、スキャフォールド、またはポリマー）内のビーズの空間位置は、位置アドレスとして機能可能なビーズ上の確率バーコードに存在する空間標識を用いて同定可能である。
ビーズの例としては、限定されるものではないが、ストレプトアビジンビーズ、アガロースビーズ、磁気ビーズ、Ｄｙｎａｂｅａｄ（登録商標）、ＭＡＣＳ（登録商標）マイクロビーズ、抗体コンジュゲートビーズ（たとえば、抗免疫グロブリンマイクロビーズ）、プロテインＡコンジュゲートビーズ、プロテインＧコンジュゲートビーズ、プロテインＡ／Ｇコンジュゲートビーズ、プロテインＬコンジュゲートビーズ、オリゴｄＴコンジュゲートビーズ、シリカビーズ、シリカ様ビーズ、抗ビオチンマイクロビーズ、抗蛍光色素マイクロビーズ、およびＢｃＭａｇ（商標）カルボキシ末端磁気ビーズが挙げられうる。
ビーズは、１つの蛍光光学チャネルまたは複数の光学チャネルで蛍光を発するように量子ドットまたは蛍光色素への関連付け（たとえばそれらによる含浸）が可能である。ビーズは、常磁性または強磁性にするために酸化鉄または酸化クロムへの関連付けが可能である。ビーズは同定可能でありうる。ビーズは、カメラを用いてイメージング可能である。ビーズは、ビーズに関連付けられた検出可能なコードを有しうる。たとえば、ビーズは、ＲＦＩＤタグを含みうる。ビーズは、任意の検出可能なタグ（たとえば、ＵＰＣコード、電子バーコード、エッチング識別子）を含みうる。ビーズは、たとえば、有機または無機の溶液中での膨潤に起因してサイズ変化しうる。ビーズは疎水性でありうる。ビーズは親水性でありうる。ビーズは生体適合性でありうる。
固体担体（たとえばビーズ）は可視化可能である。固体担体は可視化タグ（たとえば蛍光色素）を含みうる。固体担体（たとえばビーズ）は識別子（たとえば数）でエッチング可能である。識別子は固体担体（たとえばビーズ）のイメージングにより可視化可能である。
固体担体は、不溶性、半可溶性、または不溶性の材料を意味しうる。固体担体は、それに結合されたリンカー、スキャフォールド、ビルディングブロック、または他の反応性部分を含む場合、「官能基化」としても参照可能であり、一方、固体担体は、それに結合されたかかる反応性部分が欠如している場合、「非官能基化」でありうる。固体担体は、たとえば、マイクロタイターウェル方式、カラムなどのフロースルー方式、またはディップスティックの場、溶液中に遊離した状態で利用可能である。
固体担体は、メンブレン、ペーパー、プラスチック、被覆表面、フラット表面、ガラス、スライド、チップ、またはそれらの任意の組合せを含みうる。固体担体は、樹脂、ゲル、マイクロスフェア、または他の幾何学構成体の形態をとりうる。固体担体は、シリカチップ、マイクロ粒子、ナノ粒子、プレート、アレイ、キャピラリー、フラット担体、たとえば、ガラス繊維フィルター、ガラス表面、金属表面（鋼、金銀、アルミニウム、シリコン、および銅）、ガラス担体、プラスチック担体、シリコン担体、チップ、フィルター、メンブレン、マイクロウェルプレート、スライド、マルチウェルのプレートもしくはメンブレン（たとえば、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリアミド、ポリビニリデンジフルオリドで形成される）を含むプラスチック材料、および／またはウエハ、コーム、ウエハ（たとえばシリコンウエハ）などのフラット表面のピットもしくはナノリットルウェルのアレイのピンもしくはニードル（たとえば、コンビナトリアル合成もしくは分析に好適なピンのアレイ）もしくはビーズ、フィルターボトムを備えたもしくは備えていないピットを有するウエハを含みうる。
固体担体は、ポリマーマトリックス（たとえば、ゲル、ヒドロゲル）を含みうる。ポリマーマトリックスは、細胞内空間（たとえば、オルガネラの周り）を透過可能でありうる。ポリマーマトリックスは、循環システム全体にわたりポンプ操作可能でありうる。
いくつかの実施形態では、固体担体は生物学的分子でありうる。たとえば、固体担体は、核酸、タンパク質、抗体、ヒストン、細胞区画、脂質、炭水化物などでありうる。生物学的分子である固体担体は、増幅、翻訳、転写、分解、および／または修飾（たとえば、ペグ化、ＳＵＭＯ化、アセチル化、メチル化）が可能である。生物学的分子である固体担体は、生物学的分子に結合された空間標識に加えて空間および時間の情報を提供可能である。たとえば、生物学的分子は、非修飾である場合、第１のコンフォメーションを含みうるが、修飾された場合、第２のコンフォメーションに変化しうる。さまざまなコンフォメーションで本開示の確率バーコードを標的に露出可能である。たとえば、生物学的分子は、生物学的分子のフォールディングによってアクセス不能になる確率バーコードを含みうる。生物学的分子が修飾（たとえばアセチル化）されると、生物学的分子は、コンフォメーションを変化させて確率標識を露出可能である。修飾のタイミングは、本開示の確率バーコーディングの方法に他の時間次元を提供可能である。
別の実施例では、本開示の確立バーコードを含む生物学的分子は、細胞の細胞質に位置しうる。活性化時、生物学的分子は、核に移動可能であり、その後、確率バーコーディングを行うことが可能である。こうして、生物学的分子の修飾は、確率バーコードにより同定される標的に対して追加の空間−時間情報のコード付けを可能にする。
次元標識は、生物学的イベント（たとえば細胞分裂）の空間−時間に関する情報を提供可能である。たとえば、次元標識は第１の細胞に添加可能であり、第１の細胞は分裂して第２の娘細胞を生成可能であり、第２の娘細胞は次元標識のすべてもしくは一部を含みうるかまたはまったく含まないこともある。次元標識は原細胞および娘細胞で活性化可能である。こうして、次元標識は、識別可能な空間で確率バーコーディングの時間に関する情報を提供可能である。
サンプル
本明細書に記載のように、複数の核酸分子は、サンプル、たとえば細胞サンプルから得られうるか、またはそれ由来でありうる。本開示の方法に使用されるサンプルは１細胞以上を含みうる。サンプルとは１細胞以上を意味しうる。いくつかの実施形態では、細胞は、癌組織、たとえば、乳癌、肺癌、結腸癌、前立腺癌、卵巣癌、膵癌、脳癌、黒色腫、非黒色腫皮膚癌などから摘出された癌細胞である。いくつかの場合には、細胞は、癌に由来するが体液から採取される（たとえば循環腫瘍細胞）。癌の例としては、限定されるものではないが、腺腫、腺癌、扁平上皮細胞癌、基底細胞癌、小細胞癌、大細胞未分化癌、軟骨肉腫、および線維肉腫が挙げられる。
いくつかの実施形態では、細胞は、ウイルスに感染していてウイルスオリゴヌクレオチドを含有する細胞である。いくつかの実施形態では、ウイルス感染は、二本鎖ＤＮＡウイルス（たとえば、アデノウイルス、ヘルペスウイルス、ポックスウイルス）、一本鎖（＋鎖または「センス」）ＤＮＡウイルス（たとえば、パルボウイルス）、二本鎖ＲＮＡウイルス（たとえば、レオウイルス）、一本鎖（＋鎖またはセンス）ＲＮＡウイルス（たとえば、ピコルナウイルス、トガウイルス）、一本鎖（鎖またはアンチセンス）ＲＮＡウイルス（たとえば、オルトミクソウイルス、ラブドウイルス）、一本鎖（生活環でＤＮＡ中間体を有する（＋鎖またはセンス）ＲＮＡウイルス）ＲＮＡ−ＲＴウイルス（たとえば、レトロウイルス）、および二本鎖ＤＮＡ−ＲＴウイルス（たとえば、ヘパドナウイルス）からなる群から選択されるウイルスにより引き起こされうる。例示的なウイルスとしては、限定されるものではないが、ＳＡＲＳ、ＨＩＶ、コロナウイルス、エボラ、マラリア、デング熱、Ｃ型肝炎、Ｂ型肝炎、およびインフルエンザが挙げられる。
いくつかの実施形態では、細胞は細菌である。これらは、グラム陽性細菌またはグラム陰性細菌のいずれかを含みうる。本開示の方法、デバイス、およびシステムを用いて分析しうる細菌の例としては、限定されるものではないが、アクチノメズラエ属（Ａｃｔｉｎｏｍｅｄｕｒａｅ）、アクチノマイセス・イスラエリー（Ａｃｔｉｎｏｍｙｃｅｓ ｉｓｒａｅｌｉｉ）、バチルス・アントラシス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｎｔｈｒａｃｉｓ）、バチルス・セレウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ）、クロストリジウム・ボツリナム（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ）、クロストリジウム・ディフィシレ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｄｉｆｆｉｃｉｌｅ）、クロストリジウム・パーフリンジェンス（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｐｅｒｆｒｉｎｇｅｎｓ）、クロストリジウム・テタニ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｔｅｔａｎｉ）、コリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆａｅｃａｌｉｓ）、リステリア・モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）、ノカルディア属（Ｎｏｃａｒｄｉａ）、プロピオニバクテリウム・アクネス（Ｐｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｃｎｅｓ）、スタフィロコッカス・アウレウス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）、スタフィロコッカス・エピデルム（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｅｐｉｄｅｒｍ）、ストレプトコッカス・ミュータンス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｍｕｔａｎｓ）、ストレプトコッカス・ニューモニアエ（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）などが挙げられる。グラム陰性菌細として菌は、限定されるものではないが、アフピア・フェリス（Ａｆｉｐｉａ ｆｅｌｉｓ）、バクテリオデス属（Ｂａｃｔｅｒｉｏｄｅｓ）、バルトネラ・バチリホルミス（Ｂａｒｔｏｎｅｌｌａ ｂａｃｉｌｌｉｆｏｒｍｉｓ）、ボルタデラ・ペルツッシス（Ｂｏｒｔａｄｅｌｌａ ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）、ボレリア・ブルグドルフェリ（Ｂｏｒｒｅｌｉａ ｂｕｒｇｄｏｒｆｅｒｉ）、ボレリア・リカレンチス（Ｂｏｒｒｅｌｉａ ｒｅｃｕｒｒｅｎｔｉｓ）、ブルセラ（Ｂｒｕｃｅｌｌａ）、カリマトバクテリウム・グラヌロマチス（Ｃａｌｙｍｍａｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｒａｎｕｌｏｍａｔｉｓ）、カンピロバクター属（Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ）、エシェリキア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）、フランシセラ・ツラレンシス（Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｔｕｌａｒｅｎｓｉｓ）、ガードネレラ属（Ｇａｒｄｎｅｒｅｌｌａ）バギナリス（ｖａｇｉｎａｌｉｓ）、ヘモフィリウス・アエジプチウス（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｉｕｓ ａｅｇｙｐｔｉｕｓ）、ヘモフィルス・デュクレイ（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｉｕｓ ｄｕｃｒｅｙｉ）、ヘモフィラス・インフルエンジアエ（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｉｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚｉａｅ）、ヘリオバクター・ピロリ（Ｈｅｌｉｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ）、レジオネラ・ニューモフィラ（Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｐｈｉｌａ）、レプトスピラ・インテロガンス（Ｌｅｐｔｏｓｐｉｒａ ｉｎｔｅｒｒｏｇａｎｓ）、ナイセリア・メニンジティディア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉａ）、ポルフィロモナス・ジンジバリス（Ｐｏｒｐｈｙｒｏｍｏｎａｓ ｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ）、プロビデンシア・スツルチ（Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ ｓｔｕｒｔｉ）、シュードモナス・アエルギノサ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）、サルモネラ・エンテリディス（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｅｎｔｅｒｉｄｉｓ）、サルモネラ・チフィ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉ）、セラチア・マルセッセンス（Ｓｅｒｒａｔｉａ ｍａｒｃｅｓｃｅｎｓ）、シゲラ・ボイディイ（Ｓｈｉｇｅｌｌａ ｂｏｙｄｉｉ）、ストレプトバシラス・モニリフォルミス（Ｓｔｒｅｐｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｏｎｉｌｉｆｏｒｍｉｓ）、ストレプトコッカス・ピオゲネス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ）、トレポネーマ・パリダム（Ｔｒｅｐｏｎｅｍａ ｐａｌｌｉｄｕｍ）、ビブリオ・コレラエ（Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ）、エルシニア・エンテロコリティカ（Ｙｅｒｓｉｎｉａ ｅｎｔｅｒｏｃｏｌｉｔｉｃａ）、エルシニア・ペスチス（Ｙｅｒｓｉｎｉａ ｐｅｓｔｉｓ）などが挙げられる。他の細菌としては、マイコバクテリウム・アビウム（Ｍｙｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｖｉｕｍ）、ミオバクテリウム・レプレ（Ｍｙｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｅｐｒａｅ）、マイコバクテリウム・ツベルクローシス（Ｍｙｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、バルトネラ・ヘンセラエ（Ｂａｒｔｏｎｅｌｌａ ｈｅｎｓｅｉａｅ）、クラミジア・シッタシ（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｓｉｔｔａｃｉ）、クラミジア・トラコマチス（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ）、コクシエラ・バーネッティイ（Ｃｏｘｉｅｌｌａ ｂｕｒｎｅｔｉｉ）、マイコプラズマ・ニューモニアエ（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、リケッチア・アカリ（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ ａｋａｒｉ）、リケッチア・ロワゼキイ（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ ｐｒｏｗａｚｅｋｉｉ）、リケッチア・リケッチイ（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ ｒｉｃｋｅｔｔｓｉｉ）、リケッチア・ツツガムシ（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ ｔｓｕｔｓｕｇａｍｕｓｈｉ）、リケッチア・ティフィー（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ ｔｙｐｈｉ）、ウレアプラズマ・ウレアリティカム（Ｕｒｅａｐｌａｓｍａ ｕｒｅａｌｙｔｉｃｕｍ）、ディプロコッカス・ニューモニエ（Ｄｉｐｌｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、エールリキア・シャフィンシス（Ｅｈｒｌｉｃｈｉａ ｃｈａｆｅｎｓｉｓ）、エンテロコッカス・フェシウム（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆａｅｃｉｕｍ）、髄膜炎菌属（Ｍｅｎｉｎｇｏｃｏｃｃｉ）などが挙げられる。
いくつかの実施形態では、細胞は菌類である。本開示の方法、デバイス、およびシステムを用いて分析しうる限定されない菌類の例としては、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｉ）、カンジダエ属（Ｃａｎｄｉｄａｅ）、カンジダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ）、コクシジオイデス・イミティス（Ｃｏｃｃｉｄｉｏｉｄｅｓ ｉｍｍｉｔｉｓ）、クリプトコッカス属（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｉ）、およびそれらの組合せが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
いくつかの実施形態では、細胞は原生動物または他の寄生生物である。本開示の方法、デバイス、およびシステムを用いて分析される寄生生物の例としては、限定されるものではないが、バランチジウム・コリ（Ｂａｌａｎｔｉｄｉｕｍ ｃｏｌｉ）、クリプトスポリジウム・パルバム（Ｃｒｙｐｔｏｓｐｏｒｉｄｉｕｍ ｐａｒｖｕｍ）、シクロスポラ・カヤタネンシス（Ｃｙｃｌｏｓｐｏｒａ ｃａｙａｔａｎｅｎｓｉｓ）、エンセファリトゾア属（Ｅｎｃｅｐｈａｌｉｔｏｚｏａ）、エントアメーバ・ヒストリティカ（Ｅｎｔａｍｏｅｂａ ｈｉｓｔｏｌｙｔｉｃａ）、エンテロシトゾーン・ビネウシ（Ｅｎｔｅｒｏｃｙｔｏｚｏｏｎ ｂｉｅｎｅｕｓｉ）、ジアルジア・ランブリア（Ｇｉａｒｄｉａ ｌａｍｂｌｉａ）、リーシュマニア属（Ｌｅｉｓｈｍａｎｉａｅ）、プラスモジウム属（Ｐｌａｓｍｏｄｉｉ）、トキソプラズマ・ゴンディ（Ｔｏｘｏｐｌａｓｍａ ｇｏｎｄｉｉ）、トリパノソーマ属（Ｔｒｙｐａｎｏｓｏｍａｅ）、トラペゾイドアメーバ（ｔｒａｐｅｚｏｉｄａｌ ａｍｏｅｂａ）、ワーム（たとえば、蠕虫）、とくに、寄生虫、たとえば、限定されるものではないが、線形動物門（Ｎｅｍａｔｏｄａ）（回虫、たとえば、鞭虫、鉤虫、蟯虫、回虫、糸状虫など）、多節条虫亜綱（Ｃｅｓｔｏｄａ）（たとえば、サナダムシ））が挙げられる。
本明細書で用いられる場合、「細胞」という用語は、１細胞以上を意味しうる。いくつかの実施形態では、細胞は、正常細胞、たとえば、さまざまな発生段階のヒト細胞またはさまざまな器官もしくは組織型のヒト細胞（たとえば、白血球、赤血球、血小板、上皮細胞、内皮細胞、ニューロン、グリア細胞、線維芽細胞、骨格筋細胞、平滑筋細胞、配偶子、または心臓、肺、脳、肝臓、腎臓、脾臓、膵臓、胸腺、膀胱、胃、結腸、小腸の細胞）である。いくつかの実施形態では、細胞は、未分化ヒト幹細胞または分化誘導されたヒト幹細胞でありうる。いくつかの実施形態では、細胞は、胎児ヒト細胞でありうる。胎児ヒト細胞は、胎児を有する妊娠母体から得られうる。いくつかの実施形態では、細胞は希少細胞である。希少細胞は、たとえば、循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）、循環上皮細胞、循環内皮細胞、循環子宮内膜細胞、循環幹細胞、幹細胞、未分化幹細胞、癌幹細胞、骨髄細胞、前駆細胞、フォーム気泡、間葉細胞、栄養芽細胞、免疫系細胞（宿主またはグラフト）、細胞断片、細胞オルガネラ（たとえば、ミトコンドリアまたは核）、病原体感染細胞などでありうる。
いくつかの実施形態では、細胞は、非ヒト細胞、たとえば、他のタイプの哺乳動物細胞（たとえば、マウス、ラット、ブタ、イヌ、ウシ、またはウマ）である。いくつかの実施形態では、細胞は、他のタイプの動物または植物細胞である。他の実施形態では、細胞は、任意の原核細胞または真核細胞でありうる。
いくつかの実施形態では、第１の細胞サンプルは、疾患や病態を有していない人から得られ、第２の細胞サンプルは、疾患または病態を有する人から得られる。いくつかの実施形態では、人は異なる。いくつかの実施形態では、人は同一であるが、細胞サンプルは異なる時点で得られる。いくつかの実施形態では、人は患者であり、細胞サンプルは患者サンプルである。疾患または病態は、癌、細菌感染、ウイルス感染、炎症性疾患、神経変性疾患、菌類病、寄生虫性疾患、遺伝障害、またはそれらの任意の組合せでありうる。
いくつかの実施形態では、本開示の方法に使用するのに好適な細胞は、直径約２マイクロメートル〜約１００マイクロメートルのサイズ範囲内であってもよい。いくつかの実施形態では、細胞は、少なくとも２マイクロメートル、少なくとも５マイクロメートル、少なくとも１０マイクロメートル、少なくとも１５マイクロメートル、少なくとも２０マイクロメートル、少なくとも３０マイクロメートル、少なくとも４０マイクロメートル、少なくとも５０マイクロメートル、少なくとも６０マイクロメートル、少なくとも７０マイクロメートル、少なくとも８０マイクロメートル、少なくとも９０マイクロメートル、または少なくとも１００マイクロメートルの直径を有していてもよい。いくつかの実施形態では、細胞は、多くとも１００マイクロメートル、多くとも９０マイクロメートル、多くとも８０マイクロメートル、多くとも７０マイクロメートル、多くとも６０マイクロメートル、多くとも５０マイクロメートル、多くとも４０マイクロメートル、多くとも３０マイクロメートル、多くとも２０マイクロメートル、多くとも１５マイクロメートル、多くとも１０マイクロメートル、多くとも５マイクロメートル、または多くとも２マイクロメートルの直径を有していてもよい。細胞は、たとえば、約５マイクロメートル〜約８５マイクロメートルの範囲内の任意の値の直径を有していてもよい。いくつかの実施形態では、細胞は、約１０マイクロメートルの直径を有する。
いくつかの実施形態では、細胞は、細胞をビーズおよび／またはマイクロウェルに関連付ける前にソートされる。たとえば、細胞は、蛍光活性化細胞ソーティングまたは磁気活性化細胞ソーティングまたはたとえばフローサイトメトリーによりソート可能である。細胞はサイズによりフィルターされてもよい。いくつかの場合には、リテンテートは、ビーズに関連付けられる細胞を含有する。いくつかの場合には、フロースルーは、ビーズに関連付けられる細胞を含有する。
いくつかの実施形態では、サンプルは免疫細胞を含む。免疫細胞は、たとえば、Ｔ細胞、Ｂ細胞、リンパ系幹細胞、骨髄系前駆細胞、リンパ球、顆粒球、Ｂ細胞前駆体、Ｔ細胞前駆体、ナチュラルキラー細胞、Ｔｃ細胞、Ｔｈ細胞、プラズマ細胞、免疫記憶細胞、好中球、好酸球、好塩基球、マスト細胞、単球、樹状細胞および／またはマクロファージ、またはそれらの任意の組み合わせを含みうる。
Ｔ細胞は、Ｔ細胞クローンであってもよく、Ｔ細胞クローンは、単一のＴ細胞に由来するＴ細胞または同一のＴＣＲを有するＴ細胞を示しうる。Ｔ細胞は、Ｔ細胞クローン、および全てが同じ標的（たとえば、抗原、腫瘍、ウイルス）を認識しうる異なるＴＣＲを有するＴ細胞の混合集団、を含みうるＴ細胞株の一部であってもよい。Ｔ細胞は、末梢血単核細胞、骨髄、リンパ節組織、脾臓組織、および腫瘍を含む、多くの供給源から得ることができる。Ｔ細胞は、フィコール（Ｆｉｃｏｌｌ）分離を使用するなど、対象から採取した血液の単位から得ることができる。個体の循環血液由来の細胞は、アフェレーシスまたは白血球搬出によって得ることができる。アフェレーシスによる生成物は、Ｔ細胞、単球、顆粒球、Ｂ細胞、他の有核白血球、赤血球、および血小板を含む、リンパ球を含みうる。目的の細胞を単離するために、細胞を洗浄し、培地に再懸濁することができる。
Ｔ細胞は、赤血球を溶解し、単球を枯渇させることによって、たとえば、ＰＥＲＣＯＬＬ（商標）勾配による遠心分離によって、末梢血リンパ球から単離することができる。ＣＤ２８＋、ＣＤ４＋、ＣＤＣ、ＣＤ４５ＲＡ＋、およびＣＤ４５ＲＯ＋Ｔ細胞などのＴ細胞の特定の亜集団は、ポジティブまたはネガティブ選択技術によってさらに単離することができる。たとえば、Ｔ細胞は、所望のＴ細胞のポジティブ選択に十分な時間で、ＤＹＮＡＢＥＡＤＳ（登録商標）Ｍ−４５０ ＣＤ３／ＣＤ２８ Ｔ、またはＸＣＹＴＥ ＤＹＮＡＢＥＡＤＳ（商標）などの、抗ＣＤ３／抗ＣＤ２８（すなわち、３×２８）−コンジュゲートビーズを用いたインキュベーションによって単離されうる。免疫細胞（たとえば、Ｔ細胞およびＢ細胞）は、抗原特異的でありうる（たとえば、腫瘍特異的。
いくつかの実施形態では、細胞は、Ｂ細胞、リンパ節由来の活性化Ｂ細胞、リンパ芽球様細胞、休止Ｂ細胞、または、たとえばリンパ腫由来の、腫瘍Ｂ細胞などの、抗原提示細胞（ＡＰＣ）としうる。ＡＰＣは、Ｂ細胞または表面にＢＣＲＣタンパク質の少なくとも１つを発現する濾胞樹状細胞を示しうる。
確率バーコーディングおよびライブラリー正規化の方法
本開示は、サンプルのライブラリー正規化のための方法を提供する。ライブラリー正規化の方法は、任意のライブラリーサンプル調製方法と組み合わせることができる。ライブラリー正規化の方法は、本発明の確率バーコーディング方法と組み合わせることができる。確率バーコーディングは、特定の標的分子を追跡および／または計数することができるように、固有のバーコードを有する個々の核酸分子（たとえば、ｍＲＮＡ分子）をインデックスするために使用することができる。
確率バーコーディングの方法は、サンプルにごく近接して確率バーコードを配置する工程、サンプルを溶解する工程、識別可能な標的と確率バーコードとを関連付ける工程、標的を増幅する工程、および／または標的をディジタルカウントする工程を含みうる。図２は、本開示の確率バーコード方法の例示的な実施形態を示す。サンプル（たとえば、サンプル切片、薄いスライス、および／または細胞）は、確率バーコードを含む固体担体と接触可能である。サンプル中の標的は、確率バーコードに関連付け可能である。固体担体は捕集可能である。ｃＤＮＡ合成は固体担体上で実施可能である。ｃＤＮＡ合成は固体担体から離れて実施可能である。ｃＤＮＡ合成は、合成される新しいｃＤＮＡ標的分子中に標識情報を確率バーコード中の標識から組み込むことにより標的−バーコード分子を生成可能である。標的−バーコード分子はＰＣＲを用いて増幅可能である。標的−バーコード分子上の標的および確率バーコードの標識の配列は、シーケンシング法により決定可能である。
サンプルと確率バーコードとの接触
たとえば、細胞、器官、または組織薄片を含むサンプルは、確率バーコードに接触可能である。固体担体は浮動性でありうる。固体担体は半固体または固体のアレイに埋込み可能である。確率バーコードは固体担体に関連付け可能である。確率バーコードは個別のヌクレオチドでありうる。確率バーコードは基材に関連付け可能である。確率バーコードが標的にごく近接している場合、標的は確率バーコードにハイブリダイズ可能である。確率バーコードは、各識別可能な標的を本開示の識別可能な確率バーコードに関連付けできるように非枯渇比で接触可能である。標的と確率バーコードとの効率的関連付けを保証するために、標的は確率バーコードに架橋可能である。
サンプルの２つの識別可能な標的が同一のユニーク確率バーコードに接触可能である確率は、１０−６、１０−５、１０−４、１０−３、１０−２、もしくは１０−１またはそれ以上でありうる。サンプルの２つの識別可能な標的が同一のユニーク確率バーコードに接触可能である確率は、多くとも１０−６、１０−５、１０−４、１０−３、１０−２、もしくは１０−１またはそれ以上でありうる。同一の細胞の同一の遺伝子の２つの標的が同一の確率バーコードに接触可能である確率は、１０−６、１０−５、１０−４、１０−３、１０−２、もしくは１０−１またはそれ以上でありうる。同一の細胞の同一の遺伝子の２つの標的が同一の確率バーコードに接触可能である確率は、多くとも１０−６、１０−５、１０−４、１０−３、１０−２、もしくは１０−１またはそれ以上でありうる。
いくつかの場合には、細胞集団の細胞は、本開示の基材のウェル内に分離（たとえば単離）可能である。細胞集団は分離前に希釈可能である。細胞集団は、基材のウェルの少なくとも１、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、または１００％が単一細胞を収容するように希釈可能である。細胞集団は、基材のウェルの多くとも１、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、または１００％が単一細胞を収容するように希釈可能である。細胞集団は、希釈集団中の細胞の数が基材上のウェルの数の１、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、もしくは１００％になるように希釈可能である。細胞集団は、希釈集団中の細胞の数が基材上のウェルの数の１、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、もしくは１００％になるように希釈可能である。いくつかの場合には、細胞集団は、細胞の数が基材中のウェルの数の約１０％になるように希釈される。
基材のウェル中への単一細胞の分配はポアソン分布に従いうる。たとえば、基材のウェルが２細胞以上を有する確率は、少なくとも０．１、０．５、１、２、３、４、５、６、７、８、９、もしくは１０％またはそれ以上でありうる。基材のウェルが２細胞以上を有する確率は、少なくとも０．１、０．５、１、２、３、４、５、６、７、８、９、もしくは１０％またはそれ以上でありうる。基材のウェル内への単一細胞の分配はランダムでありうる。基材のウェル内への単一細胞の分配は非ランダムでありうる。細胞は、基材のウェルが１細胞のみを収容するように分離可能である。
細胞溶解
細胞および確率バーコードの分配後、細胞は標的分子を遊離するように溶解可能である。細胞溶解は、さまざまな手段のいずれかにより、化学的もしくは生化学的手段により、浸透圧ショックにより、または熱溶解、機械溶解、もしくは光学溶解により達成しうる。細胞は、界面活性剤（たとえば、ＳＤＳ、Ｌｉドデシルスルフェート、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、Ｔｗｅｅｎ−２０、もしくはＮＰ−４０）、有機溶媒（たとえば、メタノールもしくはアセトン）、または消化酵素（たとえば、プロテイナーゼＫ、ペプシンまたはトリプシン）、あるいはそれらの任意の組合せを含む細胞溶解緩衝液の添加により溶解しうる。標的と確率バーコードとの関連付けを向上させるために、たとえば、温度の低下および／またはライセートの粘度の増加により、標的分子の拡散速度を変化させることが可能である。
標的核酸分子への確率バーコードの結合
細胞の溶解およびそれからの核酸分子の放出の後、核酸分子は、共局在化された固体担体の確率バーコードにランダムに関連付けうる。関連付けは、たとえば、標的核酸分子の相補的部分への確率バーコードの標的認識領域のハイブリダイゼーションを含みうる（たとえば、確率バーコードのオリゴｄＴは、標的のポリＡテールと相互作用可能である）。ハイブリダイゼーションに使用されるアッセイ条件（たとえば、緩衝液ｐＨ、イオン強度、温度など）は、特定の安定なハイブリッドの形成を促進するように選択可能である。
結合は、確率バーコードの標的認識領域と標的核酸分子の一部とのライゲーションをさらに含みうる。たとえば、標的結合領域は、制限部位オーバーハング（たとえば、ＥｃｏＲＩ付着末端オーバーハング）への特異的ハイブリダイゼーションが可能でありうる核酸配列を含みうる。アッセイ手順は、制限部位オーバーハングを生成するために制限酵素（たとえばＥｃｏＲＩ）で標的核酸を処置する工程をさらに含みうる。次いで、確率バーコードは、制限部位オーバーハングに相補的な配列を含む任意の核酸分子にライゲートしうる。リガーゼ（たとえばＴ４ＤＮＡリガーゼ）は２つの断片を連結するために使用しうる。
複数の細胞（または複数のサンプル）の標識標的（たとえば、標的−バーコード分子）は、たとえば、確率バーコードおよび／または標的−バーコード分子が結合されたビーズを回収することにより後続的にプール可能である。結合された標的−バーコード分子の固体担体ベースのコレクションの回収は、磁気ビーズおよび外部印加磁界の使用により実現しうる。標的−バーコード分子をプールした後、すべてのさらなる処理を単一反応槽内で進行させうる。さらなる処理は、たとえば、逆転写反応、増幅反応、切断反応、解離反応、および／または核酸伸長反応を含みうる。さらなる処理反応は、マイクロウェル内で、すなわち、複数の細胞の標識標的核酸分子を最初にプールすることなく、行いうる。
逆転写
本開示は、逆転写を用いて確率標的−バーコードコンジュゲートを生成する方法を提供する。確率標的−バーコードコンジュゲートは、確率バーコードと標的核酸の全部または一部の相補的配列と（すなわち、確率バーコード付きｃＤＮＡ分子）を含みうる。関連付けられたＲＮＡ分子の逆転写は、逆転写酵素と共に逆転写プライマーを添加することにより行いうる。逆転写プライマーは、オリゴｄＴプライマー、ランダムヘキサヌクレオチドプライマー、または標的特異的オリゴヌクレオチドプライマーでありうる。オリゴｄＴプライマーは、たとえば、１２〜１８ヌクレオチド長でありうるとともに、哺乳動物ｍＲＮＡの３’末端の内因性ポリＡテールに結合可能である。ランダムヘキサヌクレオチドプライマーは、さまざまな相補的部位でｍＲＮＡと結合しうる。標的特異的オリゴヌクレオチドプライマーは、典型的には対象のｍＲＮＡを選択的にプライミングする。
確率バーコード付きｃＤＮＡ分子は、増幅（たとえば、ユニバーサルおよび／または遺伝子特異的プライマーによる）および本開示のライブラリー正規化方法などの下流方法に供されうる。
キット
本開示のライブラリー正規化方法を実施するためのキットが本明細書に開示される。キットは、結合部分を含む第２の鎖合成プライマーを含みうる。キットは、第２の鎖合成プライマー上の結合部分に結合できる捕捉部分を含む固体担体を含みうる。キットは、固体担体を捕捉する磁石を含みうる。キットは、増幅反応を浄化するための試薬（たとえば、ＡｍｐｕｒｅＸＰビーズおよび／または精製スピンカラム）を含みうる。キットは、シーケンシングフローセル配列を含むアダプターおよび／またはプライマーを含みうる。キットは、逆転写反応やプライマー伸長反応などの核酸伸長反応を行うために試薬（たとえば、酵素、プライマー、ｄＮＴＰ、ＮＴＰ、ＲＮアーゼ阻害剤、または緩衝液）をさらに含んでもよい。キットは、増幅反応によりシーケンシングライブラリーを調製するために試薬（たとえば、酵素、ユニバーサルプライマー、シークエンシングプライマー、標的特異的プライマー、または緩衝液）をさらに含んでもよい。
確率バーコードアッセイを実施するためのキットが本明細書に開示される。キットは、サスペンジョン内の個別の固体担体が本開示の複数の結合された確率バーコードを含む条件で、１つ以上の固体担体サスペンジョン剤を含みうる。キットは、固体担体に結合されていなくてもよい確率バーコードを含みうる。キットは、確率バーコーディングアッセイを行うために、たとえば、溶解緩衝液、濯ぎ緩衝液、またはハイブリダイゼーション緩衝液などの試薬をさらに含んでもよい。キットは、逆転写反応やプライマー伸長反応などの核酸伸長反応を行うために試薬（たとえば、酵素、プライマー、ｄＮＴＰ、ＮＴＰ、ＲＮアーゼ阻害剤、または緩衝液）をさらに含んでもよい。キットは、増幅反応によりシーケンシングライブラリーを調製するために試薬（たとえば、酵素、ユニバーサルプライマー、シークエンシングプライマー、標的特異的プライマー、または緩衝液）をさらに含んでもよい。
本開示のキットは、一般に、本明細書に記載の方法の１つ以上を行うための説明書を含みうる。キットに含まれる説明書は、パッケージング材料に固定可能であるか、または添付文書として含みうる。説明書は典型的には文書または印刷物であるが、そのように限定されるものではない。かかる説明書を保存してそれをエンドユーザーに伝達すること可能ないずれの媒体も、本開示により企図される。かかる媒体としては、限定されるものではないが、電子記憶媒体（たとえば、磁気ディスク、テープ、カートリッジ、チップ）、光学媒体（たとえば、ＣＤ ＲＯＭ）、ＲＦタグなどが挙げられる。本明細書で用いられる場合、「説明書」という用語は、説明書を提供するインターネットサイトのアドレスを含みうる。
本発明の好ましい実施形態が本明細書に示され説明されたが、そのような実施形態が単なる例示として提供されることは、当業者には明らかであろう。多数の変形、変更、および置換が、本発明から逸脱することなく当業者に想到されるであろう。本明細書に記載される本発明の実施形態に対する様々な代替が、本発明の実施において採用されうることを理解されたい。以下の特許請求の範囲は、本発明の範囲を定義し、これらの特許請求の範囲およびそれらの均等物の範囲内の方法および構造が特許請求の範囲に包含されることが意図される。
実施例１：ネステッドＰＣＲを用いたライブラリー正規化
本実施例は、ネステッドＰＣＲを用いたライブラリー正規化のための方法を提供する。オリゴｄＴ配列、分子標識、サンプル標識およびユニバーサル標識を含むプライマーを用いて、複数のｍＲＮＡが複数のｃＤＮＡに逆転写される。ｃＤＮＡは、遺伝子特異的リバースプライマーおよびユニバーサルプライマー（たとえば、ユニバーサル標識に結合するもの）を使用して第１の増幅反応で増幅され、それによりアンプリコンの第１のセットを生成する。ユニバーサルプライマーは、ビオチン部分を含みうる。アンプリコンの第１のセットは、第２の遺伝子特異的ネステッドＰＣＲプライマーおよびビオチン部分を含むユニバーサルプライマーを用いて、第２の増幅反応において増幅されうる。この反応は、一方の末端にビオチン部分を含む、非対称に標識されたアンプリコンを生成する。ライブラリーは熱変性される。ライブラリーを冷却して、部分的な再アニーリングを誘導する。部分的な再アニーリングにおいて、高存在のアンプリコンは、より低存在のアンプリコンより速く再アニールする。
部分的に再アニールされたライブラリーは、ストレプトアビジン部分を含む固体担体と接触させることができる。ストレプトアビジンは、ライブラリーの鎖上のビオチン部分に結合することができる。再アニールされたアンプリコンはビオチンを含み、ストレプトアビジンによって除去される。ビオチンを含む再アニールされなかった鎖もストレプトアビジンによって除去される。残りの鎖は、存在量がより低く、ビオチンを有する鎖の相補鎖である配列に相当する。これらの鎖は、正規化ライブラリーに相当する。
ライブラリーはＰＣＲプライマーで再生される。ＰＣＲプライマーは、シーケンシングフローセルプライマー配列を含みうる。正規化ライブラリーがシーケンスされる。
実施例２：全トランスクリプトーム増幅によるライブラリー正規化
ライブラリー正規化は、全トランスクリプトーム増幅から生成されたライブラリーで実施されうる。全トランスクリプトーム増幅は、アダプターライゲーション方法を用いて実施されうる。標的はポリＡテールを含む。標的はｍＲＮＡである。標的は確率バーコードにハイブリダイズする。確率バーコードは、多数の標識を含む。たとえば、確率バーコードは、標的特異的領域（たとえば、ｍＲＮＡのポリＡテールに結合するためのオリゴｄＴ）、分子標識、細胞標識、および第１のユニバーサル標識を含む。確率バーコードは、逆転写酵素を用いて逆転写され、それにより標識ｃＤＮＡ分子を生成する。過剰な確率バーコードは、分解酵素で処理される。分解酵素は、エキソヌクレアーゼである。
標識されたｃＤＮＡ分子は、第２の鎖の合成を起こし、それにより二本鎖の標識されたｃＤＮＡ分子を生成する。第２の鎖の合成は、標識されたｃＤＮＡ分子−ｍＲＮＡハイブリッドを、標識されたｃＤＮＡ分子にハイブリダイズしたｍＲＮＡをニックすることができるニッキング酵素（たとえばＲＮａｓｅＨ）と接触させることにより行われ、それによりニックの入ったｍＲＮＡを生成する。ニックの入ったｍＲＮＡをプライマーとして使用し、ポリメラーゼ（たとえば、ＤＮＡポリメラーゼＩ）を用いて伸長させ、それにより第１の鎖の配列を組み込む。ポリメラーゼは、５’−３’エキソヌクレアーゼ活性を含む。ポリメラーゼは、第２の鎖の合成のためのプライマーとして働く下流ｍＲＮＡニックを分解する。リガーゼを用いて伸長した配列を一緒にライゲートし、それにより第２の鎖（たとえば、二本鎖標識ｃＤＮＡ分子）を生成する。
二本鎖標識ｃＤＮＡ分子は、第１のユニバーサル標識に相補的な配列を含む。二本鎖標識ｃＤＮＡ分子をアダプターと接触させる。アダプターは二本鎖である。アダプターは、制限エンドヌクレアーゼ切断部位を含む。アダプターは、第２のユニバーサルプライマー配列（第１のものと同じもの）を含む。アダプターは、３’オーバーハングを含む。アダプターは、二本鎖標識ｃＤＮＡ分子の３’ヒドロキシルにライゲートしうる遊離５’リン酸（Ｐ）を含む。アダプターは、二本鎖標識ｃＤＮＡ分子１５５８の両方の鎖にライゲートする。
生成物は、１つ以上のＷＴＡ増幅プライマーを使用して増幅される。ＷＴＡ増幅プライマーの１つは、ビオチン部分を含む。ＷＴＡ増幅プライマーの１つは、ビオチン部分を含まない。生成物は、一方の鎖が線形増幅され、一方の鎖が指数関数的増幅されるように増幅される。線形増幅された鎖は、一方の末端に増幅可能なユニバーサル配列を含む。指数関数的増幅が可能な鎖は、両末端にユニバーサル配列を含み、その一方の末端はビオチン部分を含む。ＷＴＡ増幅による生成物は、実施例１に記載したようにライブラリー正規化プロトコルに供される。
実施例３：ライブラリー正規化におけるブロッカーの使用
本実施例は、ブロッカーを用いたライブラリー正規化のための方法を提供する。オリゴｄＴ配列、分子標識、サンプル標識およびユニバーサル標識を含むプライマーを用いて、複数のｍＲＮＡが複数のｃＤＮＡに逆転写される。ｃＤＮＡは、遺伝子特異的リバースプライマーおよびユニバーサルプライマー（たとえば、ユニバーサル標識に結合するもの）を使用して第１の増幅反応で増幅され、それによりアンプリコンの第１のセットを生成する。ユニバーサルプライマーは、ビオチン部分を含みうる。アンプリコンの第１のセットは、第２の遺伝子特異的ネステッドＰＣＲプライマーおよびビオチン部分を含むユニバーサルプライマーを用いて、第２の増幅反応において増幅される。この反応は、一方の末端にビオチン部分を含む、非対称に標識されたアンプリコンを生成する。ブロッカーがライブラリーに追加される。ライブラリーは熱変性される。ブロッカーは、アンプリコンのユニバーサル標識に結合する。ライブラリーを冷却して、部分的な再アニーリングを誘導する。部分的な再アニーリングにおいて、高存在のアンプリコンは、より低存在のアンプリコンより速く再アニールする。部分的な再アニーリングは、プライマー中の任意の配列（たとえば、分子、サンプル、ユニバーサル標識）よりも、標的配列によって、より多く進められる。
部分的に再アニールしたライブラリーを、ストレプトアビジン部分を含む固体担体と接触させる。ストレプトアビジンは、ライブラリーの鎖上のビオチン部分に結合することができる。再アニールされたアンプリコンはビオチンを含み、ストレプトアビジンによって除去される。ビオチンを含む再アニールされなかった鎖もストレプトアビジンによって除去される。残りの鎖は、存在量がより低く、ビオチンを有する鎖の相補鎖である配列に相当する。これらの鎖は、正規化ライブラリーに相当する。
ライブラリーはＰＣＲプライマーで再生される。ＰＣＲプライマーは、シーケンシングフローセルプライマー配列を含みうる。正規化ライブラリーがシーケンスされる。
実施例４：固体担体上のライブラリー正規化
本実施例は、固体担体を用いたライブラリー正規化のための方法を提供する。オリゴｄＴ配列、分子標識、サンプル標識およびユニバーサル標識を含むプライマーを用いて、複数のｍＲＮＡが複数のｃＤＮＡに逆転写される。ｃＤＮＡは、遺伝子特異的リバースプライマーおよびユニバーサルプライマー（たとえば、ユニバーサル標識に結合するもの）を使用して第１の増幅反応で増幅され、それによりアンプリコンの第１のセットを生成する。ユニバーサルプライマーは、アジドまたはアルキン部分を含みうる。アンプリコンの第１のセットは、第２の遺伝子特異的ネステッドＰＣＲプライマーおよびアジドまたはアルキン部分を含むユニバーサルプライマーを用いて、第２の増幅反応において増幅されうる。この反応は、一方の末端にアジドまたはアルキン部分を含む、非対称に標識されたアンプリコンを生成する。
ライブラリーは、クリックケミストリーを使用して固体担体に結合される。固体担体は、クリックケミストリーに関与する相補的分子を含む。たとえば、アンプリコンがアルキンを含む場合、固体担体はアジドを含む。ライブラリーは熱変性される。いくつかの場合には、ブロッカーが導入される。ライブラリーを冷却して、部分的な再アニーリングを誘導する。部分的な再アニーリングにおいて、高存在のアンプリコンは、より低存在のアンプリコンより速く再アニールする。
再アニールされたアンプリコンは、クリックケミストリーを介して固体担体に結合される。固体担体は（たとえば、遠心分離または磁気によって）除去される。残りの鎖（たとえば、再アニールされなかったもの）は、アジドまたはアルキン部分を含まない。残りの鎖は、存在量がより低く、アジドまたはアルキンを有する鎖の相補鎖である配列に相当する。これらの鎖は、正規化ライブラリーに相当する。
ライブラリーはＰＣＲプライマーで再生される。ＰＣＲプライマーは、シーケンシングフローセルプライマー配列を含みうる。正規化ライブラリーがシーケンスされる。
以上に記載の実施形態の少なくともいくつかでは、実施形態で使用される１つ以上のエレメントは、他の実施形態で互換的に使用可能である。ただし、かかる交換が技術的に実現可能である場合に限る。特許請求された主題の範囲から逸脱することなく、以上に記載の方法および構造に種々の他の省略、追加、および変更を行いうることは、当業者であれば分かるであろう。かかる変更および変化はすべて、添付の特許請求の範囲に規定される主題の範囲内に含まれることが意図される。
本明細書に記載の実質的に任意の複数形および／または単数形の用語の使用に関連して、文脈上および／または適用上適切であれば、当業者は複数形から単数形へおよび／または単数形から複数形への変換が可能である。明確にするために種々の単数形／複数形の入替えを本明細書に明示的に記述しうる。
一般的には、本明細書とくに添付の特許請求の範囲（たとえば添付の特許請求の範囲の本文）で用いられる用語は「オープン」用語であることが一般に意図されることは当業者であれば理解されよう（たとえば、「ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ（〜を含む）」という用語は「〜を含むがこれらに限定されるものではない」と解釈すべきであり、「ｈａｖｉｎｇ（〜を有する）」という用語は「少なくとも〜を有する」と解釈すべきであり、「ｉｎｃｌｕｄｅｓ（〜を含む）」という用語は「〜を含むがこれらに限定されるものではない」と解釈すべきであるなど）。さらに、導入クレームレシテーションの特定数が意図される場合、かかる意図は請求項で明示的にリサイトされ、かかるレシテーションの不在下ではかかる意図は存在しないことは当業者であれば理解されようたとえば、理解の一助として、以下の添付の特許請求の範囲は、クレームレシテーションを導入するために導入語句「ａｔ ｌｅａｓｔ ｏｎｅ（少なくとも１つ）」および「ｏｎｅ ｏｒ ｍｏｒｅ（１つ以上）」の使用を含みうる。しかしながら、かかる語句が用いられたとしても、不定冠詞「ａ」または「ａｎ」によるクレームレシテーションの導入が、かかる導入クレームレシテーションを含む任意の特定の請求項を、一方のかかるレシテーションを含む実施形態のみに限定することを意味するものと解釈すべきでない。たとえ同一の請求項が導入語句「ｏｎｅ ｏｒ ｍｏｒｅ（１つ以上）」または「ａｔ ｌｅａｓｔ ｏｎｅ（少なくとも１つ）」と不定冠詞たとえば「ａ」または「ａｎ」とを含む場合でさえも、そのように解釈すべきでない（たとえば、「ａ」および／または「ａｎ」は「ａｔ ｌｅａｓｔ ｏｎｅ（少なくとも１つ）」または「ｏｎｅ ｏｒ ｍｏｒｅ（１つ以上）」を意味するものと解釈すべきである）。定冠詞を用いてクレームレシテーションを導入する場合にも、同じことが当てはまる。そのほかに、たとえ特定数の導入クレームレシテーションが明示的にリサイトされたとしても、かかるレシテーションは少なくともリサイトされた数を意味すると解釈すべきであることは当業者であれば分かるであろう（たとえば、「２つのレシテーション」という他の修飾語を含まないベアのレシテーションは、少なくとも２つのレシテーションまたは２つ以上レシテーションを意味する）。さらに、「Ａ、Ｂ、およびＣの少なくとも１つ」に類似した条件が用いられる場合、一般的には、かかる構成は当業者がその条件を理解する意味であることが意図される（たとえば、「Ａ、Ｂ、およびＣの少なくとも１つを有する系」は、限定されるものではないが、Ａ単独、Ｂ単独、Ｃ単独、ＡとＢの両方、ＡとＣの両方、ＢとＣの両方、および／またはＡとＢとＣの全部などを有する系を含であろう）。「Ａ、Ｂ、またはＣの少なくとも１つなど」に類似した条件が用いられる場合、一般的には、かかる構成は当業者がその条件を理解する意味であることが意図される（たとえば、「Ａ、Ｂ、またはＣの少なくとも１つを有する系」は、限定されるものではないが、Ａ単独、Ｂ単独、Ｃ単独、ＡとＢの両方、ＡとＣの両方、ＢとＣの両方、および／またはＡとＢとＣの全部などを有する系を含であろう）。さらに、２つ以上の代替用語を表す実質上任意の選言的な語および／または語句は、明細書、請求項、または図面にかかわらず、用語の１つ、用語のいずれか、または用語の両方を含む可能性が企図されると理解すべきであることは当業者であれば理解されよう。たとえば、「ＡまたはＢ」という語句は「Ａ」または「Ｂ」または「ＡおよびＢ」の可能性を含むものと理解されよう。
そのほかに、本開示の特徴または態様がマーカッシュグループにより記述される場合、それにより、本開示は、マーカッシュグループの任意の個別のメンバーまたはメンバーのサブグループにより記述されることは当業者であれば分かるであろう。
当業者であれば理解されるであろうが、あらゆる目的で、たとえば、明細書の提供に関して、本明細書に開示された範囲はすべて、あらゆる可能なサブ範囲およびそのサブ範囲の組合せをも包含する。いずれの列挙された範囲も、十分に記述されたものとしてかつその範囲が少なくとも２等分、３等分、４等分、５等分、１０等分などされうるものとして容易に認識可能である。たとえば、限定されるものではないが、本明細書で考察した各範囲は、下３分の１、中３分の１、上３分の１に容易に分解可能である。同様に、当業者であれば理解されるであろうが、「〜まで」、「少なくとも〜」、「〜超」、「〜未満」などの表現はすべて、リサイトされた数を含み、以上で考察したように後続的にサブ範囲に分解可能な範囲を意味する。最終的に、当業者であれば理解されるであろうが、範囲は各個別のメンバーを含む。したがって、たとえば、１〜３個の物品を有するグループは、１、２、または３個の物品を有するグループを意味する。同様に、１〜５個の物品を有するグループは、１、２、３、４、または５個の物品を有するグループを意味し、他も同様である。

Claims (113)

  1. 結合部分を含む複数の第１のオリゴヌクレオチドを、少なくとも１つの高存在種を含む第１の複数の核酸分子とハイブリダイズさせること、
    前記複数の第１のオリゴヌクレオチドを伸長して結合部分を含む、前記第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖を生成すること、
    前記第１の複数の核酸分子に対する前記複数の相補鎖を含む、複数の二本鎖核酸分子を変性させること、
    前記第１の複数の核酸分子に対する前記複数の相補鎖を部分的に再アニールすること、および
    １つ以上の固体担体上に固定された、前記結合部分に特異的に結合する捕捉分子によって、前記第１の複数の核酸分子に対する前記再アニールされた相補鎖を除去して第２の複数の核酸分子を生成すること、を含み、
    第２の複数の核酸分子中の少なくとも１つの高存在種の含有量は、第１の複数の核酸分子中の少なくとも１つの高存在種の含有量と比較して減少する、
    複数の核酸分子から高存在種を除去する方法。
  2. 前記結合部分が、ビオチン、ストレプトアビジン、ヘパリン、アプタマー、クリックケミストリー部分、ジゴキシゲニン、第１級アミン、カルボキシル、ヒドロキシル、アルデヒド、ケトン、およびそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される官能基である、請求項１に記載の方法。
  3. 前記結合部分がビオチンである、請求項２に記載の方法。
  4. 前記捕捉分子がストレプトアビジンである、請求項３に記載の方法。
  5. 前記第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖の少なくとも１つにつき第２の鎖を合成して、前記第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖を含む、１つ以上の前記複数の二本鎖核酸分子を生成することをさらに含む、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
  6. 前記合成が、複数の第２のオリゴヌクレオチドを前記第１の複数の核酸分子に対する複数の相補鎖にハイブリダイズさせ、前記複数の第２のオリゴヌクレオチドを伸長させることを含む、請求項５に記載の方法。
  7. 前記複数の第１のオリゴヌクレオチドまたは前記複数の第２のオリゴヌクレオチドがユニバーサルプライマー結合部位を含む、請求項６に記載の方法。
  8. 前記複数の二本鎖核酸分子を増幅することをさらに含む、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
  9. 前記第１の複数の核酸分子が、複数の高存在種を含む、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
  10. 前記少なくとも１つの高存在種が、前記第１の複数の核酸分子の少なくとも５０％に相当する、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
  11. 前記少なくとも１つの高存在種が、前記第１の複数の核酸分子の少なくとも６０％に相当する、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
  12. 前記少なくとも１つの高存在種が、前記第１の複数の核酸分子の少なくとも７０％に相当する、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
  13. 前記少なくとも１つの高存在種の含有量の減少が、少なくとも８０％である、請求項１〜１２のいずれか一項に記載の方法。
  14. 前記少なくとも１つの高存在種の含有量の減少が、少なくとも９０％である、請求項１〜１２のいずれか一項に記載の方法。
  15. 前記少なくとも１つの高存在種の含有量の減少が、少なくとも９５％である、請求項１〜１２のいずれか一項に記載の方法。
  16. 前記少なくとも１つの高存在種の含有量の減少が、少なくとも９９％である、請求項１〜１２のいずれか一項に記載の方法。
  17. 前記第２の複数の核酸分子が、前記複数の高存在種を含む、請求項９〜１６のいずれか一項に記載の方法。
  18. 前記第２の複数の核酸分子中の前記複数の高存在種が、前記第２の複数の核酸分子の５０％未満に相当する、請求項１７に記載の方法。
  19. 前記第２の複数の核酸分子中の前記複数の高存在種が、前記第２の複数の核酸分子の４０％未満に相当する、請求項１７に記載の方法。
  20. 前記第２の複数の核酸分子中の前記複数の高存在種が、前記第２の複数の核酸分子の３０％未満に相当する、請求項１７に記載の方法。
  21. 前記第１の複数の核酸分子が、複数の低存在種を含む、請求項１〜２０のいずれか一項に記載の方法。
  22. 前記複数の低存在種が、前記第１の複数の核酸分子の１０％未満に相当する、請求項２１に記載の方法。
  23. 前記複数の低存在種が、前記第１の複数の核酸分子の５％未満に相当する、請求項２１に記載の方法。
  24. 前記複数の低存在種が、前記第１の複数の核酸分子の１％未満に相当する、請求項２１に記載の方法。
  25. 前記第２の複数の核酸分子が、前記複数の低存在種を含む、請求項２１〜２４のいずれか一項に記載の方法。
  26. 前記第２の複数の核酸分子中の前記複数の低存在種が、前記第２の複数の核酸分子の少なくとも５％に相当する、請求項２５に記載の方法。
  27. 前記第２の複数の核酸分子中の前記複数の低存在種が、前記第２の複数の核酸分子の少なくとも１０％に相当する、請求項２５に記載の方法。
  28. 前記第２の複数の核酸分子中の前記複数の低存在種が、前記第２の複数の核酸分子の少なくとも２０％に相当する、請求項２５に記載の方法。
  29. 前記第１の複数の核酸分子のそれぞれまたは前記第２の複数の核酸分子のそれぞれが、確率バーコードを含む、請求項１〜２８のいずれか一項に記載の方法。
  30. 前記第２の複数の核酸分子をシーケンシングして複数のシーケンシングリードを生成することをさらに含む、請求項１〜２９のいずれか一項に記載の方法。
  31. 前記複数の高存在種の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの５０％未満である、請求項３０に記載の方法。
  32. 前記複数の高存在種の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの４０％未満である、請求項３０に記載の方法。
  33. 前記複数の高存在種の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの３０％未満である、請求項３０に記載の方法。
  34. 前記複数の低存在種の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの少なくとも５％である、請求項３０〜３３のいずれか一項に記載の方法。
  35. 前記複数の低存在種の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの少なくとも１０％である、請求項３０〜３３のいずれか一項に記載の方法。
  36. 前記複数の低存在種の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの少なくとも２０％である、請求項３０〜３３のいずれか一項に記載の方法。
  37. 前記部分的な再アニーリング工程中に複数のブロッカーを追加することをさらに含む、請求項１〜３６のいずれか一項に記載の方法。
  38. 前記複数のブロッカーが、前記第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または前記第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位にハイブリダイズする、請求項３７に記載の方法。
  39. 前記複数のブロッカーが、前記第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または前記第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位とその相補配列との間のハイブリダイゼーションを妨げる、請求項３８に記載の方法。
  40. 結合部分を含む複数の第１のオリゴヌクレオチドを、複数の標的核酸とハイブリダイズさせること、
    前記複数の第１のオリゴヌクレオチドを伸長させて、前記結合部分を含む、前記複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を生成すること、
    前記複数の標的核酸に対する前記複数の相補鎖を含む、複数の二本鎖核酸分子を変性させること、
    前記複数の標的核酸に対する前記複数の相補鎖を部分的に再アニールすること、および
    １つ以上の固体担体上に固定された、前記結合部分に特異的に結合する捕捉分子によって、前記複数の標的核酸に対する前記再アニールされた相補鎖を除去すること、を含み、
    前記複数の標的核酸の正規化核酸ライブラリーが生成される、
    正規化核酸ライブラリーの生成方法。
  41. 前記結合部分が、ビオチン、ストレプトアビジン、ヘパリン、アプタマー、クリックケミストリー部分、ジゴキシゲニン、第１級アミン、カルボキシル、ヒドロキシル、アルデヒド、ケトン、およびそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される官能基である、請求項４０に記載の方法。
  42. 前記結合部分がビオチンである、請求項４１に記載の方法。
  43. 前記捕捉分子がストレプトアビジンである、請求項４２に記載の方法。
  44. 前記複数の標的核酸に対する前記複数の相補鎖の１つ以上につき第２の鎖を合成して、前記複数の標的核酸に対する前記複数の相補鎖を含む、１つ以上の前記複数の二本鎖核酸分子を生成することをさらに含む、請求項４０〜４３のいずれか一項に記載の方法。
  45. 前記合成が、複数の第２のオリゴヌクレオチドを前記複数の標的核酸の前記複数の相補鎖にハイブリダイズさせ、前記複数の第２のオリゴヌクレオチドを伸長させることを含む、請求項４４に記載の方法。
  46. 前記複数の第１のオリゴヌクレオチドまたは前記複数の第２のオリゴヌクレオチドがユニバーサルプライマー結合部位を含む、請求項４５に記載の方法。
  47. 前記複数の二本鎖核酸分子を増幅することをさらに含む、請求項４４〜４６のいずれか一項に記載の方法。
  48. 前記複数の標的核酸が、複数の低存在標的核酸を含む、請求項４０〜４７のいずれか一項に記載の方法。
  49. 前記複数の低存在標的核酸が、前記複数の標的核酸の１０％未満に相当する、請求項４８に記載の方法。
  50. 前記複数の低存在標的核酸が、前記複数の標的核酸の５％未満に相当する、請求項４８に記載の方法。
  51. 前記複数の低存在標的核酸が、前記複数の標的核酸の１％未満に相当する、請求項４８に記載の方法。
  52. 前記複数の標的核酸の前記正規化核酸ライブラリーが、前記複数の低存在標的核酸を含む、請求項４８〜５１のいずれか一項に記載の方法。
  53. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の低存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の標的核酸の少なくとも５％に相当する、請求項５２に記載の方法。
  54. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の低存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の標的核酸の少なくとも１０％に相当する、請求項５２に記載の方法。
  55. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の低存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の標的核酸の少なくとも２０％に相当する、請求項５２に記載の方法。
  56. 前記複数の標的核酸が、複数の高存在標的核酸を含む、請求項４０〜５５のいずれか一項に記載の方法。
  57. 前記複数の高存在標的核酸が、前記複数の標的核酸の少なくとも５０％に相当する、請求項５６に記載の方法。
  58. 前記複数の高存在標的核酸が、前記複数の標的核酸の少なくとも６０％に相当する、請求項５６に記載の方法。
  59. 前記複数の高存在標的核酸が、前記複数の標的核酸の少なくとも７０％に相当する、請求項５６に記載の方法。
  60. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の高存在種の含有量が、少なくとも８０％減少する、請求項５６〜５９に記載の方法。
  61. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の高存在種の含有量が、少なくとも９０％減少する、請求項５６〜５９に記載の方法。
  62. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の高存在種の含有量が、少なくとも９５％減少する、請求項５６〜５９に記載の方法。
  63. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の高存在種の含有量が、少なくとも９９％減少する、請求項５６〜５９に記載の方法。
  64. 前記複数の標的核酸の前記正規化核酸ライブラリーが、前記複数の高存在標的核酸を含む、請求項５６〜６３のいずれか一項に記載の方法。
  65. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の高存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の標的核酸の５０％未満に相当する、請求項６４に記載の方法。
  66. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の高存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の標的核酸の４０％未満に相当する、請求項６４に記載の方法。
  67. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の高存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリー中の前記複数の標的核酸の３０％未満に相当する、請求項６４に記載の方法。
  68. 前記複数の第１のオリゴヌクレオチドのそれぞれまたは前記複数の第２のオリゴヌクレオチドのそれぞれが、確率バーコードを含む、請求項４０〜６７に記載の方法。
  69. 前記正規化核酸ライブラリーをシーケンシングして複数のシーケンシングリードを生成することをさらに含む、請求項４０〜６８のいずれか一項に記載の方法。
  70. 前記複数の高存在標的核酸の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの５０％未満である、請求項６９に記載の方法。
  71. 前記複数の高存在標的核酸の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの４０％未満である、請求項６９に記載の方法。
  72. 前記複数の高存在標的核酸の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの３０％未満である、請求項６９に記載の方法。
  73. 前記複数の低存在標的核酸の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの少なくとも５％である、請求項６９〜７２のいずれか一項に記載の方法。
  74. 前記複数の低存在標的核酸の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの少なくとも１０％である、請求項６９〜７２のいずれか一項に記載の方法。
  75. 前記複数の低存在標的核酸の前記シーケンシングリードが、全シーケンシングリードの少なくとも２０％である、請求項６９〜７２のいずれか一項に記載の方法。
  76. 前記部分的な再アニーリング工程中に複数のブロッカーを追加することをさらに含む、請求項４０〜７５のいずれか一項に記載の方法。
  77. 前記複数のブロッカーが、前記第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または前記第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位にハイブリダイズする、請求項７６に記載の方法。
  78. 前記複数のブロッカーが、前記第１のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位または前記第２のオリゴヌクレオチドのユニバーサルプライマー結合部位とその相補配列との間のハイブリダイゼーションを妨げる、請求項７７に記載の方法。
  79. 前記複数の標的核酸が、ｍＲＮＡを含む、請求項４０〜７８のいずれか一項に記載の方法。
  80. 前記複数の標的核酸が、ミトコンドリアｍＲＮＡを含む、請求項７９に記載の方法。
  81. 前記複数の標的核酸が、リボソームタンパク質ｍＲＮＡを含む、請求項７９に記載の方法。
  82. 前記低存在標的核酸が、転写物の数が最も少ない７，０００個の遺伝子を含む、請求項７９〜８１のいずれか一項に記載の方法。
  83. 前記低存在標的核酸が、転写物の数が最も少ない４，０００個の遺伝子を含む、請求項７９〜８１のいずれか一項に記載の方法。
  84. 前記低存在標的核酸が、転写物の数が最も少ない２，０００個の遺伝子を含む、請求項７９〜８１のいずれか一項に記載の方法。
  85. 前記複数の第１のオリゴヌクレオチドが、標的特異的プライマーを含む、請求項４０〜８４のいずれか一項に記載の方法。
  86. 前記複数の第１のオリゴヌクレオチドが、標的非特異的プライマーを含む、請求項４０〜８４のいずれか一項に記載の方法。
  87. 前記複数の標的核酸が、ｃＤＮＡを含む、請求項４０〜７８のいずれか一項に記載の方法。
  88. 前記複数の標的核酸が、ゲノムＤＮＡを含む、請求項４０〜７８のいずれか一項に記載の方法。
  89. 前記高存在標的核酸が、短いタンデム反復配列を含む、請求項８８に記載の方法。
  90. 前記高存在標的核酸が、テロメア配列を含む、請求項８８に記載の方法。
  91. 前記高存在標的核酸が、セントロメア配列を含む、請求項８８に記載の方法。
  92. 前記複数の標的核酸が、単一細胞由来である、請求項４０〜９１のいずれか一項に記載の方法。
  93. 非正規化核酸ライブラリーにおいて、結合部分を含む複数の第１のオリゴヌクレオチドを複数の標的核酸とハイブリダイズさせること、
    前記複数の第１のオリゴヌクレオチドを伸長させて、前記結合部分を含む、前記複数の標的核酸に対する複数の相補鎖を生成すること、
    前記複数の標的核酸に対する前記複数の相補鎖を含む、複数の二本鎖核酸分子を変性させること、
    前記複数の標的核酸に対する前記複数の相補鎖を部分的に再アニールすること、および
    前記複数の標的核酸に対する前記再アニールされた相補鎖を除去すること、を含み、
    前記複数の標的核酸の正規化核酸ライブラリーが生成される、
    正規化核酸ライブラリーの生成方法。
  94. 前記非正規化核酸ライブラリーが、１つ以上の高存在標的核酸および１つ以上の低存在標的核酸を含む、請求項９３に記載の方法。
  95. 前記１つ以上の高存在標的核酸が、前記非正規化核酸ライブラリーの少なくとも５０％に相当する、請求項９４に記載の方法。
  96. 前記１つ以上の高存在標的核酸が、前記非正規化核酸ライブラリーの少なくとも６０％に相当する、請求項９４に記載の方法。
  97. 前記１つ以上の高存在標的核酸が、前記非正規化核酸ライブラリーの少なくとも７０％に相当する、請求項９４に記載の方法。
  98. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記１つ以上の高存在標的核酸の含有量が、少なくとも８０％減少する、請求項９４〜９７のいずれか一項に記載の方法。
  99. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記１つ以上の高存在標的核酸の含有量が、少なくとも９０％減少する、請求項９４〜９７のいずれか一項に記載の方法。
  100. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記１つ以上の高存在標的核酸の含有量が、少なくとも９５％減少する、請求項９４〜９７のいずれか一項に記載の方法。
  101. 前記正規化核酸ライブラリー中の前記１つ以上の高存在標的核酸の含有量が、少なくとも９９％減少する、請求項９４〜９７のいずれか一項に記載の方法。
  102. 前記１つ以上の低存在標的核酸が、前記非正規化核酸ライブラリーの１０％未満に相当する、請求項９４〜１０１のいずれか一項に記載の方法。
  103. 前記１つ以上の低存在標的核酸が、前記非正規化核酸ライブラリーの５％未満に相当する、請求項９４〜１０１のいずれか一項に記載の方法。
  104. 前記１つ以上の低存在標的核酸が、前記非正規化核酸ライブラリーの１％未満に相当する、請求項９４〜１０１のいずれか一項に記載の方法。
  105. 前記１つ以上の低存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリーの少なくとも５％に相当する、請求項９４〜１０４のいずれか一項に記載の方法。
  106. 前記１つ以上の低存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリーの少なくとも１０％に相当する、請求項９４〜１０４のいずれか一項に記載の方法。
  107. 前記１つ以上の低存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリーの少なくとも２０％に相当する、請求項９４〜１０４のいずれか一項に記載の方法。
  108. 前記１つ以上の高存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリーの５０％未満に相当する、請求項９４〜１０７のいずれか一項に記載の方法。
  109. 前記１つ以上の高存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリーの４０％未満に相当する、請求項９４〜１０７のいずれか一項に記載の方法。
  110. 前記１つ以上の高存在標的核酸が、前記正規化核酸ライブラリーの３０％未満に相当する、請求項９４〜１０７のいずれか一項に記載の方法。
  111. 前記非正規化核酸ライブラリーがｃＤＮＡライブラリーである、請求項９３〜１１０のいずれか一項に記載の方法。
  112. 前記非正規化核酸ライブラリーがゲノムライブラリーである、請求項９３〜１１０のいずれか一項に記載の方法。
  113. 前記非正規化核酸ライブラリーが単一細胞核酸ライブラリーである、請求項９３〜１１２のいずれか一項に記載の方法。
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Families Citing this family (48)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8835358B2 (en) 2009-12-15 2014-09-16 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse labels
SG11201405274WA (en) 2012-02-27 2014-10-30 Cellular Res Inc Compositions and kits for molecular counting
SG10201806890VA (en) 2013-08-28 2018-09-27 Cellular Res Inc Massively parallel single cell analysis
US9582877B2 (en) 2013-10-07 2017-02-28 Cellular Research, Inc. Methods and systems for digitally counting features on arrays
ES2824700T3 (es) 2015-02-19 2021-05-13 Becton Dickinson Co Análisis unicelular de alto rendimiento que combina información proteómica y genómica
US9727810B2 (en) 2015-02-27 2017-08-08 Cellular Research, Inc. Spatially addressable molecular barcoding
EP3277843A2 (en) 2015-03-30 2018-02-07 Cellular Research, Inc. Methods and compositions for combinatorial barcoding
CN107580632B (zh) 2015-04-23 2021-12-28 贝克顿迪金森公司 用于全转录组扩增的方法和组合物
WO2016196229A1 (en) 2015-06-01 2016-12-08 Cellular Research, Inc. Methods for rna quantification
WO2017044574A1 (en) 2015-09-11 2017-03-16 Cellular Research, Inc. Methods and compositions for nucleic acid library normalization
US10822643B2 (en) 2016-05-02 2020-11-03 Cellular Research, Inc. Accurate molecular barcoding
US10301677B2 (en) 2016-05-25 2019-05-28 Cellular Research, Inc. Normalization of nucleic acid libraries
CN109074430B (zh) 2016-05-26 2022-03-29 贝克顿迪金森公司 分子标记计数调整方法
US10202641B2 (en) 2016-05-31 2019-02-12 Cellular Research, Inc. Error correction in amplification of samples
US10640763B2 (en) 2016-05-31 2020-05-05 Cellular Research, Inc. Molecular indexing of internal sequences
WO2018058073A2 (en) 2016-09-26 2018-03-29 Cellular Research, Inc. Measurement of protein expression using reagents with barcoded oligonucleotide sequences
KR20190077061A (ko) 2016-11-08 2019-07-02 셀룰러 리서치, 인크. 세포 표지 분류 방법
EP3539035B1 (en) 2016-11-08 2024-04-17 Becton, Dickinson and Company Methods for expression profile classification
WO2018119399A1 (en) 2016-12-23 2018-06-28 Grail, Inc. Methods for high efficiency library preparation using double-stranded adapters
JP7104048B2 (ja) 2017-01-13 2022-07-20 セルラー リサーチ， インコーポレイテッド 流体チャネルの親水性コーティング
CN110382708A (zh) 2017-02-01 2019-10-25 赛卢拉研究公司 使用阻断性寡核苷酸进行选择性扩增
US11274344B2 (en) 2017-03-30 2022-03-15 Grail, Inc. Enhanced ligation in sequencing library preparation
US11118222B2 (en) 2017-03-31 2021-09-14 Grail, Inc. Higher target capture efficiency using probe extension
CA3059559A1 (en) 2017-06-05 2018-12-13 Becton, Dickinson And Company Sample indexing for single cells
CN111201323A (zh) * 2017-06-20 2020-05-26 普梭梅根公司 利用唯一分子标识符的文库制备的方法和系统
WO2019051319A1 (en) * 2017-09-08 2019-03-14 uBiome, Inc. STANDARDIZATION FOR SEQUENCING BANKS
US20190153438A1 (en) * 2017-11-15 2019-05-23 Viome, Inc. Methods and compositions for preparing polynucleotide libraries
US20210371853A1 (en) * 2017-12-09 2021-12-02 Viome, Inc. Methods for nucleic acid library creation
EP3728636A1 (en) 2017-12-19 2020-10-28 Becton, Dickinson and Company Particles associated with oligonucleotides
US11773441B2 (en) 2018-05-03 2023-10-03 Becton, Dickinson And Company High throughput multiomics sample analysis
JP7358388B2 (ja) 2018-05-03 2023-10-10 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー 反対側の転写物末端における分子バーコーディング
US11639517B2 (en) 2018-10-01 2023-05-02 Becton, Dickinson And Company Determining 5′ transcript sequences
US11932849B2 (en) 2018-11-08 2024-03-19 Becton, Dickinson And Company Whole transcriptome analysis of single cells using random priming
EP3894552A1 (en) 2018-12-13 2021-10-20 Becton, Dickinson and Company Selective extension in single cell whole transcriptome analysis
US11371076B2 (en) 2019-01-16 2022-06-28 Becton, Dickinson And Company Polymerase chain reaction normalization through primer titration
EP3914728B1 (en) 2019-01-23 2023-04-05 Becton, Dickinson and Company Oligonucleotides associated with antibodies
CN113454234A (zh) 2019-02-14 2021-09-28 贝克顿迪金森公司 杂合体靶向和全转录物组扩增
US11965208B2 (en) 2019-04-19 2024-04-23 Becton, Dickinson And Company Methods of associating phenotypical data and single cell sequencing data
US11939622B2 (en) 2019-07-22 2024-03-26 Becton, Dickinson And Company Single cell chromatin immunoprecipitation sequencing assay
CN114729350A (zh) 2019-11-08 2022-07-08 贝克顿迪金森公司 使用随机引发获得用于免疫组库测序的全长v(d)j信息
WO2021146207A1 (en) 2020-01-13 2021-07-22 Becton, Dickinson And Company Methods and compositions for quantitation of proteins and rna
WO2021231779A1 (en) 2020-05-14 2021-11-18 Becton, Dickinson And Company Primers for immune repertoire profiling
US11932901B2 (en) 2020-07-13 2024-03-19 Becton, Dickinson And Company Target enrichment using nucleic acid probes for scRNAseq
CN116635533A (zh) 2020-11-20 2023-08-22 贝克顿迪金森公司 高表达的蛋白和低表达的蛋白的谱分析
CN112680797B (zh) * 2021-02-04 2023-09-26 广州大学 一种去除高丰度rna的测序文库及其构建方法
WO2022248237A1 (en) * 2021-05-24 2022-12-01 F. Hoffmann-La Roche Ag Enhancer oligonucleotides for nucleic acid hybridization
WO2023115555A1 (zh) * 2021-12-24 2023-06-29 深圳华大生命科学研究院 提升芯片探针数量的dna文库序列及其应用
GB2621159A (en) * 2022-08-04 2024-02-07 Wobble Genomics Ltd Methods of preparing processed nucleic acid samples and detecting nucleic acids and devices therefor

Family Cites Families (499)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4510244A (en) 1980-04-17 1985-04-09 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Jr. University Cell labeling with antigen-coupled microspheres
US4725536A (en) 1985-09-19 1988-02-16 Genetics Institute, Inc. Reagent polynucleotide complex with multiple target binding regions, and kit and methods
US6150517A (en) 1986-11-24 2000-11-21 Gen-Probe Methods for making oligonucleotide probes for the detection and/or quantitation of non-viral organisms
WO1989001050A1 (en) 1987-07-31 1989-02-09 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Selective amplification of target polynucleotide sequences
US5149625A (en) 1987-08-11 1992-09-22 President And Fellows Of Harvard College Multiplex analysis of DNA
US5656731A (en) 1987-10-15 1997-08-12 Chiron Corporation Nucleic acid-amplified immunoassay probes
US5124246A (en) 1987-10-15 1992-06-23 Chiron Corporation Nucleic acid multimers and amplified nucleic acid hybridization assays using same
WO1990001065A1 (en) 1988-07-26 1990-02-08 Genelabs Incorporated Rna and dna amplification techniques
US5744101A (en) 1989-06-07 1998-04-28 Affymax Technologies N.V. Photolabile nucleoside protecting groups
US6309822B1 (en) 1989-06-07 2001-10-30 Affymetrix, Inc. Method for comparing copy number of nucleic acid sequences
US5143854A (en) 1989-06-07 1992-09-01 Affymax Technologies N.V. Large scale photolithographic solid phase synthesis of polypeptides and receptor binding screening thereof
US6551784B2 (en) 1989-06-07 2003-04-22 Affymetrix Inc Method of comparing nucleic acid sequences
US5871928A (en) 1989-06-07 1999-02-16 Fodor; Stephen P. A. Methods for nucleic acid analysis
US5800992A (en) 1989-06-07 1998-09-01 Fodor; Stephen P.A. Method of detecting nucleic acids
US5424186A (en) 1989-06-07 1995-06-13 Affymax Technologies N.V. Very large scale immobilized polymer synthesis
US6040138A (en) 1995-09-15 2000-03-21 Affymetrix, Inc. Expression monitoring by hybridization to high density oligonucleotide arrays
US5925525A (en) 1989-06-07 1999-07-20 Affymetrix, Inc. Method of identifying nucleotide differences
US5200314A (en) 1990-03-23 1993-04-06 Chiron Corporation Polynucleotide capture assay employing in vitro amplification
JP3164814B2 (ja) 1990-08-27 2001-05-14 科学技術振興事業団 均一化ｃＤＮＡライブラリーの作製法
DE69132843T2 (de) 1990-12-06 2002-09-12 Affymetrix Inc N D Ges D Staat Identifizierung von Nukleinsäuren in Proben
JPH04337446A (ja) 1991-05-15 1992-11-25 Hitachi Ltd 微粒子計測方法、定量方法および微粒子計測装置
US5981179A (en) 1991-11-14 1999-11-09 Digene Diagnostics, Inc. Continuous amplification reaction
US5424413A (en) 1992-01-22 1995-06-13 Gen-Probe Incorporated Branched nucleic acid probes
US5573905A (en) 1992-03-30 1996-11-12 The Scripps Research Institute Encoded combinatorial chemical libraries
US5981176A (en) 1992-06-17 1999-11-09 City Of Hope Method of detecting and discriminating between nucleic acid sequences
WO1995000530A1 (en) 1993-06-25 1995-01-05 Affymax Technologies N.V. Hybridization and sequencing of nucleic acids
US6087186A (en) 1993-07-16 2000-07-11 Irori Methods and apparatus for synthesizing labeled combinatorial chemistry libraries
US5500356A (en) 1993-08-10 1996-03-19 Life Technologies, Inc. Method of nucleic acid sequence selection
US6309823B1 (en) 1993-10-26 2001-10-30 Affymetrix, Inc. Arrays of nucleic acid probes for analyzing biotransformation genes and methods of using the same
US5681697A (en) 1993-12-08 1997-10-28 Chiron Corporation Solution phase nucleic acid sandwich assays having reduced background noise and kits therefor
US5714330A (en) 1994-04-04 1998-02-03 Lynx Therapeutics, Inc. DNA sequencing by stepwise ligation and cleavage
US6495518B1 (en) 1994-06-13 2002-12-17 Vanderbilt University Method for importing biologically active molecules into cells
GB2293238A (en) 1994-09-13 1996-03-20 Inceltec Ltd Primers for replication and/or amplification reactions
US6013445A (en) 1996-06-06 2000-01-11 Lynx Therapeutics, Inc. Massively parallel signature sequencing by ligation of encoded adaptors
US5846719A (en) 1994-10-13 1998-12-08 Lynx Therapeutics, Inc. Oligonucleotide tags for sorting and identification
US5604097A (en) 1994-10-13 1997-02-18 Spectragen, Inc. Methods for sorting polynucleotides using oligonucleotide tags
US5695934A (en) 1994-10-13 1997-12-09 Lynx Therapeutics, Inc. Massively parallel sequencing of sorted polynucleotides
US6600996B2 (en) 1994-10-21 2003-07-29 Affymetrix, Inc. Computer-aided techniques for analyzing biological sequences
ATE340866T1 (de) 1994-10-28 2006-10-15 Gen Probe Inc Zusammensetzungen und verfahren für die gleichzeitige detektion und quantifizierung von einer mehrheit spezifischer nuklein säure sequenzen
CN1181720A (zh) 1995-04-25 1998-05-13 伊萝莉公司 可远程编程的存储器材料及其应用
US5648245A (en) 1995-05-09 1997-07-15 Carnegie Institution Of Washington Method for constructing an oligonucleotide concatamer library by rolling circle replication
US5968740A (en) 1995-07-24 1999-10-19 Affymetrix, Inc. Method of Identifying a Base in a Nucleic Acid
US5763175A (en) 1995-11-17 1998-06-09 Lynx Therapeutics, Inc. Simultaneous sequencing of tagged polynucleotides
US5854033A (en) 1995-11-21 1998-12-29 Yale University Rolling circle replication reporter systems
US6613544B1 (en) 1995-12-22 2003-09-02 Amgen Inc. Osteoprotegerin
US5962271A (en) 1996-01-03 1999-10-05 Cloutech Laboratories, Inc. Methods and compositions for generating full-length cDNA having arbitrary nucleotide sequence at the 3'-end
US5830712A (en) 1996-02-06 1998-11-03 Allelix Biopharmaceuticals Inc. Selective template deletion method
US6458530B1 (en) 1996-04-04 2002-10-01 Affymetrix Inc. Selecting tag nucleic acids
WO1997045559A1 (en) 1996-05-29 1997-12-04 Cornell Research Foundation, Inc. Detection of nucleic acid sequence differences using coupled ligase detection and polymerase chain reactions
JPH1021373A (ja) 1996-07-05 1998-01-23 Fuji Photo Film Co Ltd 画像解析装置
US20020172953A1 (en) 1996-07-29 2002-11-21 Mirkin Chad A. Movement of biomolecule-coated nanoparticles in an electric field
US7169556B2 (en) 1996-07-29 2007-01-30 Nanosphere, Inc. Nanoparticles having oligonucleotides attached thereto and uses therefor
US6984491B2 (en) 1996-07-29 2006-01-10 Nanosphere, Inc. Nanoparticles having oligonucleotides attached thereto and uses therefor
US6100029A (en) 1996-08-14 2000-08-08 Exact Laboratories, Inc. Methods for the detection of chromosomal aberrations
US5935793A (en) 1996-09-27 1999-08-10 The Chinese University Of Hong Kong Parallel polynucleotide sequencing method using tagged primers
US6124092A (en) 1996-10-04 2000-09-26 The Perkin-Elmer Corporation Multiplex polynucleotide capture methods and compositions
US6117631A (en) 1996-10-29 2000-09-12 Polyprobe, Inc. Detection of antigens via oligonucleotide antibody conjugates
US6046005A (en) 1997-01-15 2000-04-04 Incyte Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid sequencing with solid phase capturable terminators comprising a cleavable linking group
EP0985142A4 (en) 1997-05-23 2006-09-13 Lynx Therapeutics Inc SYSTEM AND APPARATUS FOR THE SEQUENTIAL TREATMENT OF ANALYTES
US6974669B2 (en) 2000-03-28 2005-12-13 Nanosphere, Inc. Bio-barcodes based on oligonucleotide-modified nanoparticles
US6399334B1 (en) * 1997-09-24 2002-06-04 Invitrogen Corporation Normalized nucleic acid libraries and methods of production thereof
AU1603199A (en) 1997-12-03 1999-06-16 Curagen Corporation Methods and devices for measuring differential gene expression
US6265163B1 (en) 1998-01-09 2001-07-24 Lynx Therapeutics, Inc. Solid phase selection of differentially expressed genes
US6787308B2 (en) 1998-07-30 2004-09-07 Solexa Ltd. Arrayed biomolecules and their use in sequencing
WO2000014282A1 (en) 1998-09-04 2000-03-16 Lynx Therapeutics, Inc. Method of screening for genetic polymorphism
US6480791B1 (en) 1998-10-28 2002-11-12 Michael P. Strathmann Parallel methods for genomic analysis
US6197554B1 (en) * 1998-11-20 2001-03-06 Shi-Lung Lin Method for generating full-length cDNA library from single cells
US6436675B1 (en) 1999-09-28 2002-08-20 Maxygen, Inc. Use of codon-varied oligonucleotide synthesis for synthetic shuffling
US20020019005A1 (en) * 1999-02-18 2002-02-14 Arcaris, Inc. Process for identification of genes encoding proteins having cell proliferation-promoting activity
US6629040B1 (en) 1999-03-19 2003-09-30 University Of Washington Isotope distribution encoded tags for protein identification
EP1165839A2 (en) 1999-03-26 2002-01-02 Whitehead Institute For Biomedical Research Universal arrays
US6355431B1 (en) 1999-04-20 2002-03-12 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid amplification reactions using bead arrays
US6699661B1 (en) 1999-04-20 2004-03-02 Kankyo Engineering Co., Ltd. Method for determining a concentration of target nucleic acid molecules, nucleic acid probes for the method, and method for analyzing data obtained by the method
US6372813B1 (en) 1999-06-25 2002-04-16 Motorola Methods and compositions for attachment of biomolecules to solid supports, hydrogels, and hydrogel arrays
US6326148B1 (en) 1999-07-12 2001-12-04 The Regents Of The University Of California Detection of copy number changes in colon cancer
US6440706B1 (en) 1999-08-02 2002-08-27 Johns Hopkins University Digital amplification
JP2001078768A (ja) 1999-09-16 2001-03-27 Otsuka Pharmaceut Co Ltd 遺伝子発現の測定法
SE9903988D0 (sv) 1999-11-03 1999-11-03 Amersham Pharm Biotech Ab Method of analysis
US6489114B2 (en) 1999-12-17 2002-12-03 Bio Merieux Process for labeling a ribonucleic acid, and labeled RNA fragments which are obtained thereby
US6500620B2 (en) 1999-12-29 2002-12-31 Mergen Ltd. Methods for amplifying and detecting multiple polynucleotides on a solid phase support
WO2001053539A1 (en) 2000-01-24 2001-07-26 Phylos, Inc. Sensitive, multiplexed diagnostic assays for protein analysis
US7022479B2 (en) 2000-01-24 2006-04-04 Compound Therapeutics, Inc. Sensitive, multiplexed diagnostic assays for protein analysis
US6235483B1 (en) 2000-01-31 2001-05-22 Agilent Technologies, Inc. Methods and kits for indirect labeling of nucleic acids
US20020006617A1 (en) 2000-02-07 2002-01-17 Jian-Bing Fan Nucleic acid detection methods using universal priming
US20050214825A1 (en) 2000-02-07 2005-09-29 John Stuelpnagel Multiplex sample analysis on universal arrays
GB2364054B (en) 2000-03-24 2002-05-29 Smithkline Beecham Corp Method of amplifying quinolone-resistance-determining-regions and identifying polymorphic variants thereof
AU4263401A (en) * 2000-03-29 2001-10-08 Lgc Teddington Ltd Hybridisation beacon and method of rapid sequence detection and discrimination
DK2206791T3 (en) 2000-04-10 2016-10-24 Taxon Biosciences Inc Methods of study and genetic analysis of populations
US20030207300A1 (en) 2000-04-28 2003-11-06 Matray Tracy J. Multiplex analytical platform using molecular tags
US7630063B2 (en) 2000-08-02 2009-12-08 Honeywell International Inc. Miniaturized cytometer for detecting multiple species in a sample
US6511809B2 (en) 2000-06-13 2003-01-28 E. I. Du Pont De Nemours And Company Method for the detection of an analyte by means of a nucleic acid reporter
EP1368460B1 (en) 2000-07-07 2007-10-31 Visigen Biotechnologies, Inc. Real-time sequence determination
JP2004525607A (ja) 2000-08-11 2004-08-26 ナノスフェアー　インコーポレイテッド オリゴヌクレオチドを付着させたナノ粒子とその使用方法
ATE344834T1 (de) 2000-08-25 2006-11-15 Riken Methode zur herstellung von genormten und/oder subtrahierten cdna
US6934408B2 (en) 2000-08-25 2005-08-23 Amnis Corporation Method and apparatus for reading reporter labeled beads
EP1366192B8 (en) 2000-10-24 2008-10-29 The Board of Trustees of the Leland Stanford Junior University Direct multiplex characterization of genomic dna
AU2002230593A1 (en) 2000-12-08 2002-06-18 Nanosphere, Inc. Nanoparticles having oligonucleotides attached thereto and uses therefor
US20020142345A1 (en) 2000-12-22 2002-10-03 Nelsen Anita J. Methods for encoding and decoding complex mixtures in arrayed assays
US20030049616A1 (en) 2001-01-08 2003-03-13 Sydney Brenner Enzymatic synthesis of oligonucleotide tags
WO2002070684A2 (en) * 2001-01-11 2002-09-12 Lion Bioscience Ag Gene library for screening methods
WO2002059355A2 (en) 2001-01-25 2002-08-01 Tm Bioscience Corporation Polynucleotides for use as tags and tag complements, manufacture and use thereof
MXPA02012739A (es) 2001-03-09 2004-04-20 Nugen Technologies Inc Metodos y composiciones para amplificacion de secuencias de arn.
US7027932B2 (en) 2001-03-21 2006-04-11 Olympus Optical Co., Ltd. Biochemical examination method
JP2005233974A (ja) 2001-03-21 2005-09-02 Olympus Corp 生化学的検査方法
JP4146239B2 (ja) 2001-03-28 2008-09-10 ナノスフェアー インコーポレイテッド オリゴヌクレオチド修飾粒子をベースとするバイオバーコード
US20030170675A1 (en) 2001-04-11 2003-09-11 The Gov't Of The U.S Of America As Represented By The Secretary Of The Dept. Of Health & Human Serv. Methods of manipulating nucleic acids
WO2002083922A2 (en) 2001-04-11 2002-10-24 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health & Human Services Modified random primers for probe labeling
AUPR480901A0 (en) 2001-05-04 2001-05-31 Genomics Research Partners Pty Ltd Diagnostic method for assessing a condition of a performance animal
CA2344599C (en) 2001-05-07 2011-07-12 Bioneer Corporation Selective polymerase chain reaction of dna of which base sequence is completely unknown
US6905827B2 (en) 2001-06-08 2005-06-14 Expression Diagnostics, Inc. Methods and compositions for diagnosing or monitoring auto immune and chronic inflammatory diseases
WO2002101358A2 (en) 2001-06-11 2002-12-19 Illumina, Inc. Multiplexed detection methods
JP4244534B2 (ja) 2001-06-12 2009-03-25 横河電機株式会社 バイオチップ
US7473767B2 (en) 2001-07-03 2009-01-06 The Institute For Systems Biology Methods for detection and quantification of analytes in complex mixtures
US6830931B2 (en) 2001-07-12 2004-12-14 Automated Cell, Inc. Method and apparatus for monitoring of proteins and cells
AU2002363062B2 (en) 2001-10-09 2007-03-22 Nanosphere, Inc. Nanoparticles having oligonucleotides attached thereto and uses therefor
US20030077611A1 (en) 2001-10-24 2003-04-24 Sention Methods and systems for dynamic gene expression profiling
CN100360722C (zh) 2001-11-21 2008-01-09 艾普勒拉公司 数字化分析
US20030175749A1 (en) 2001-12-08 2003-09-18 Jong-Yoon Chun Annealing control primer and its uses
AU2003202026A1 (en) 2002-01-16 2003-09-02 Dynal Biotech Asa Method for isolating nucleic acids and protein from a single sample
AU2003206095A1 (en) 2002-01-29 2003-09-02 Global Genomics Ab Methods and means for amplifying nucleic acid
WO2003069421A2 (en) 2002-02-14 2003-08-21 Immunivest Corporation Methods and algorithms for cell enumeration in a low-cost cytometer
US20030186251A1 (en) 2002-04-01 2003-10-02 Brookhaven Science Associates, Llc Genome sequence tags
US20050175993A1 (en) * 2002-04-12 2005-08-11 Chia-Lin Wei Method for making full-length coding sequence cDNA libraries
US20070178478A1 (en) 2002-05-08 2007-08-02 Dhallan Ravinder S Methods for detection of genetic disorders
US6808906B2 (en) 2002-05-08 2004-10-26 Rigel Pharmaceuticals, Inc. Directionally cloned random cDNA expression vector libraries, compositions and methods of use
GB0212391D0 (en) 2002-05-29 2002-07-10 Axis Shield Asa Assay
US20050019776A1 (en) 2002-06-28 2005-01-27 Callow Matthew James Universal selective genome amplification and universal genotyping system
AU2003256285A1 (en) 2002-06-28 2004-01-19 Igen International, Inc. Improved assay systems and components
US7192700B2 (en) 2002-12-20 2007-03-20 Orchid Cellmark Inc. Methods and compositions for conducting primer extension and polymorphism detection reactions
EP1546723A4 (en) 2002-08-16 2007-03-07 Decision Biomarkers Inc READING FLUORESCENCE CARIES
ATE447040T1 (de) 2002-09-03 2009-11-15 Quanta Biosciences Inc Verbesserte zusammensetzungen und verfahren für die cdna-synthese
US7361821B2 (en) 2002-09-20 2008-04-22 Intel Corporation Controlled alignment of nanobarcodes encoding specific information for scanning probe microscopy (SPM) reading
JP4201203B2 (ja) 2002-09-30 2008-12-24 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲー チミジル酸シンターゼ遺伝子の遺伝子型判別のためのオリゴヌクレオチド
WO2004040001A2 (en) 2002-10-02 2004-05-13 California Institute Of Technology Microfluidic nucleic acid analysis
US7822555B2 (en) 2002-11-11 2010-10-26 Affymetrix, Inc. Methods for identifying DNA copy number changes
AU2003291481A1 (en) 2002-11-11 2004-06-03 Affymetrix, Inc. Methods for identifying dna copy number changes
US7704687B2 (en) 2002-11-15 2010-04-27 The Johns Hopkins University Digital karyotyping
EP1587940A4 (en) 2002-12-20 2006-06-07 Caliper Life Sciences Inc SINGLE MOLECULAR AMPLIFICATION AND DNA PROOF
DE602004015408D1 (de) 2003-01-23 2008-09-11 Us Genomics Inc Verfahren zur analyse von polymer-populationen
US7575865B2 (en) 2003-01-29 2009-08-18 454 Life Sciences Corporation Methods of amplifying and sequencing nucleic acids
US8206913B1 (en) 2003-03-07 2012-06-26 Rubicon Genomics, Inc. Amplification and analysis of whole genome and whole transcriptome libraries generated by a DNA polymerization process
DK2374900T3 (en) 2003-03-07 2016-10-17 Rubicon Genomics Inc Polynucleotides for amplification and analysis of the total genomic and total transcription libraries generated by a DNA polymerization
WO2006102264A1 (en) 2005-03-18 2006-09-28 Fluidigm Corporation Thermal reaction device and method for using the same
US7269518B2 (en) 2003-04-30 2007-09-11 Agilent Technologies, Inc. Chemical array reading
US20040259118A1 (en) 2003-06-23 2004-12-23 Macevicz Stephen C. Methods and compositions for nucleic acid sequence analysis
WO2005010145A2 (en) 2003-07-05 2005-02-03 The Johns Hopkins University Method and compositions for detection and enumeration of genetic variations
EP1651776A2 (de) 2003-07-24 2006-05-03 Qiagen GmbH Verfahren zur reversen transkription und/oder amplifikation von nukleinsäuren
JP2007502116A (ja) 2003-08-13 2007-02-08 アフィメトリックス インコーポレイテッド 核酸サンプルを調製するための方法およびキット
GB0319332D0 (en) 2003-08-16 2003-09-17 Astrazeneca Ab Amplification
US20050048498A1 (en) 2003-08-29 2005-03-03 Applera Corporation Compositions, methods, and kits for assembling probes
US7341837B2 (en) 2003-09-02 2008-03-11 Lawton Robert L Soluble analyte detection and amplification
US7354706B2 (en) 2003-09-09 2008-04-08 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Use of photopolymerization for amplification and detection of a molecular recognition event
CA2536565A1 (en) 2003-09-10 2005-05-12 Althea Technologies, Inc. Expression profiling using microarrays
JP2007512811A (ja) 2003-11-10 2007-05-24 インベスチゲン， インコーポレイテッド 検出のための核酸を調製する方法
CA2552858A1 (en) 2004-01-23 2005-08-04 Lingvitae As Improving polynucleotide ligation reactions
WO2005080604A2 (en) 2004-02-12 2005-09-01 Compass Genetics, Llc Genetic analysis by sequence-specific sorting
US20100216153A1 (en) 2004-02-27 2010-08-26 Helicos Biosciences Corporation Methods for detecting fetal nucleic acids and diagnosing fetal abnormalities
US7432055B2 (en) 2004-03-05 2008-10-07 Uchicago Argonne Llc Dual phase multiplex polymerase chain reaction
EP1745155B1 (en) 2004-05-07 2014-10-15 Cepheid Multiplexed detection of biological agents
US20050250147A1 (en) 2004-05-10 2005-11-10 Macevicz Stephen C Digital profiling of polynucleotide populations
US20060002824A1 (en) 2004-06-07 2006-01-05 Irm, Llc Dispensing systems, software, and related methods
US20060035258A1 (en) 2004-08-06 2006-02-16 Affymetrix, Inc. Methods for identifying DNA copy number changes
US20060041385A1 (en) 2004-08-18 2006-02-23 Bauer Kenneth D Method of quantitating proteins and genes in cells using a combination of immunohistochemistry and in situ hybridization
US7713697B2 (en) 2004-08-27 2010-05-11 Gen-Probe Incorporated Methods and kits for amplifying DNA
JP4980219B2 (ja) * 2004-09-10 2012-07-18 ヒューマン ジェネティック シグネチャーズ ピーティーワイ リミテッド インターカレート型擬似ヌクレオチド（ｉｐｎ）を含有するインターカレーティング核酸（ｉｎａ）を含む増幅ブロッカー
US20060073506A1 (en) 2004-09-17 2006-04-06 Affymetrix, Inc. Methods for identifying biological samples
US7435084B2 (en) 2004-12-14 2008-10-14 Align Technology, Inc. System and methods for casting physical tooth model
EP1842226B2 (en) 2004-11-03 2014-07-02 Iris International, Inc. Homogeneous analyte detection
DE602005020691D1 (de) 2004-12-23 2010-05-27 Ge Healthcare Bio Sciences Rna-amplifikation auf ligationsbasis
US8883487B2 (en) 2004-12-23 2014-11-11 Abbott Point Of Care Inc. Molecular diagnostics system and methods
US7407757B2 (en) 2005-02-10 2008-08-05 Population Genetics Technologies Genetic analysis by sequence-specific sorting
EP1845160A4 (en) 2005-02-10 2009-07-01 Riken NUCLEOTIDE-amplification
US7393665B2 (en) 2005-02-10 2008-07-01 Population Genetics Technologies Ltd Methods and compositions for tagging and identifying polynucleotides
EP1854882A4 (en) * 2005-03-01 2010-09-22 Wako Pure Chem Ind Ltd METHOD OF OBTAINING A SUBTRACTIVE POLYNUCLEOTIDE
EP1856293A2 (en) 2005-03-16 2007-11-21 Compass Genetics, Llc Methods and compositions for assay readouts on multiple analytical platforms
US20060263789A1 (en) 2005-05-19 2006-11-23 Robert Kincaid Unique identifiers for indicating properties associated with entities to which they are attached, and methods for using
US7695886B2 (en) 2005-05-19 2010-04-13 Fuji Xerox Co., Ltd. Process for producing resin particle liquid dispersion for electrostatic image developing toner, electrostatic image developing toner and production process thereof
US8407013B2 (en) 2005-06-07 2013-03-26 Peter K. Rogan AB initio generation of single copy genomic probes
US20070065844A1 (en) 2005-06-08 2007-03-22 Massachusetts Institute Of Technology Solution-based methods for RNA expression profiling
US7796815B2 (en) 2005-06-10 2010-09-14 The Cleveland Clinic Foundation Image analysis of biological objects
US20070020640A1 (en) 2005-07-21 2007-01-25 Mccloskey Megan L Molecular encoding of nucleic acid templates for PCR and other forms of sequence analysis
US8486621B2 (en) 2005-08-11 2013-07-16 Cornell Research Foundation, Inc. Nucleic acid-based matrixes
US20070117121A1 (en) 2005-09-16 2007-05-24 Hutchison Stephen K cDNA library preparation
WO2007044974A2 (en) 2005-10-12 2007-04-19 The Research Foundation Of State University Of New York Absolute pcr quantification
WO2007053692A1 (en) 2005-11-01 2007-05-10 Symyx Technologies, Inc. Liquid dispensing for high-throughput experimentation
US7375211B2 (en) 2005-11-18 2008-05-20 Kou Zhong C Method for detection and quantification of T-cell receptor Vβ repertoire
US20080070303A1 (en) 2005-11-21 2008-03-20 West Michael D Methods to accelerate the isolation of novel cell strains from pluripotent stem cells and cells obtained thereby
US7636465B2 (en) 2005-12-09 2009-12-22 Cytyc Corporation Cross-frame object reconstruction for image-based cytology applications
US7537897B2 (en) 2006-01-23 2009-05-26 Population Genetics Technologies, Ltd. Molecular counting
WO2007087310A2 (en) 2006-01-23 2007-08-02 Population Genetics Technologies Ltd. Nucleic acid analysis using sequence tokens
US8460878B2 (en) 2006-02-21 2013-06-11 The Trustees Of Tufts College Methods and arrays for detecting cells and cellular components in small defined volumes
US20080038727A1 (en) 2006-03-10 2008-02-14 Applera Corporation MicroRNA and Messenger RNA Detection on Arrays
EP2002246A1 (en) 2006-04-04 2008-12-17 Sidec Technologies AB Extended electron tomography
US20080194414A1 (en) 2006-04-24 2008-08-14 Albert Thomas J Enrichment and sequence analysis of genomic regions
WO2007136874A2 (en) 2006-05-18 2007-11-29 President And Fellows Of Harvard College Genomic library construction
US7833716B2 (en) 2006-06-06 2010-11-16 Gen-Probe Incorporated Tagged oligonucleotides and their use in nucleic acid amplification methods
EP4108780A1 (en) 2006-06-14 2022-12-28 Verinata Health, Inc. Rare cell analysis using sample splitting and dna tags
EP2077912B1 (en) 2006-08-07 2019-03-27 The President and Fellows of Harvard College Fluorocarbon emulsion stabilizing surfactants
CA2660286A1 (en) 2006-08-09 2008-02-21 Homestead Clinical Corporation Organ-specific proteins and methods of their use
US20100159590A1 (en) 2006-10-05 2010-06-24 Nanopoint, Inc. Systems and methods for active microfluidic cell handling
WO2008057163A2 (en) 2006-10-09 2008-05-15 Carnegie Mellon University Preparation of functional gel particles with a dual crosslink network
SK50302009A3 (sk) 2006-10-18 2010-03-08 Osaki Electric Co., Ltd. Elektronický watthodinový elektromer
US20100184152A1 (en) 2006-10-23 2010-07-22 Vladislav Sandler Target-oriented whole genome amplification of nucleic acids
DK2518162T3 (en) 2006-11-15 2018-06-18 Biospherex Llc Multi-tag sequencing and ecogenomic analysis
US8050476B2 (en) 2006-11-22 2011-11-01 General Electric Company Heart rate demodulation of periodic movement in ultrasound data for object identification
EP2677309B9 (en) 2006-12-14 2014-11-19 Life Technologies Corporation Methods for sequencing a nucleic acid using large scale FET arrays, configured to measure a limited pH range
EP2096429A4 (en) 2007-01-16 2009-12-16 Olympus Corp FLUORESCENT SIGNAL ANALYSIS APPARATUS AND FLUORESCENT SIGNAL ANALYSIS METHOD
WO2008109207A2 (en) 2007-01-30 2008-09-12 The Regents Of The University Of California Methods and devices for biomolecular arrays
US20080269068A1 (en) 2007-02-06 2008-10-30 President And Fellows Of Harvard College Multiplex decoding of sequence tags in barcodes
WO2008096318A2 (en) 2007-02-09 2008-08-14 Koninklijke Philips Electronics N.V. Identification system
US8003312B2 (en) 2007-02-16 2011-08-23 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Multiplex cellular assays using detectable cell barcodes
SI2472264T1 (sl) 2007-02-27 2016-06-30 SentoClone International AB Karolinska Institute Science Park Multipleksna detekcija tumorskih celic z uporabo plošč vezavnih sredstev na zunajcelične markerje
US9029085B2 (en) 2007-03-07 2015-05-12 President And Fellows Of Harvard College Assays and other reactions involving droplets
KR100882711B1 (ko) 2007-03-12 2009-02-06 성균관대학교산학협력단 사이크로박터 스피시스 ｈｊ147 균주 유래의 우라실-ｄｎａ글리코실라제 및 이의 용도
JP2008256428A (ja) 2007-04-03 2008-10-23 Intec Systems Institute Inc マイクロアレイ画像のブロック位置検出方法
US20080268508A1 (en) 2007-04-30 2008-10-30 Sowlay Mohankumar R Methods and kits for negative selection of desired nucleic acid sequences
US20080274458A1 (en) 2007-05-01 2008-11-06 Latham Gary J Nucleic acid quantitation methods
US20090061513A1 (en) 2007-05-15 2009-03-05 Picovitro Ab Cell sorting and cell cultivation methods
CN101720359A (zh) 2007-06-01 2010-06-02 454生命科学公司 从多重混合物中识别个别样本的系统和方法
EP2395113A1 (en) 2007-06-29 2011-12-14 Population Genetics Technologies Ltd. Methods and compositions for isolating nucleic acid sequence variants
EP2036989B1 (en) 2007-09-12 2012-07-25 Institut Pasteur Polynucleotide suitable for single cell based reporter assay to monitor gene expression patterns with high spatio-temporal resolution
US8114681B2 (en) 2007-10-05 2012-02-14 Affymetrix, Inc. Highly multiplexed particle-based assays
EP2294408A4 (en) 2008-02-21 2011-05-25 Gentel Biosciences Inc SUBSTRATES FOR MULTIPLEX TEST PROCEDURES AND USES THEREFOR
US8687189B2 (en) 2008-03-03 2014-04-01 Ajjer, Llc Analysis of arrays by laser induced breakdown spectroscopy
US8206925B2 (en) 2008-04-14 2012-06-26 Medical Diagnostic Laboratories, Llc Splice variants of human IL-23 receptor (IL-23R) mRNA and use of a delta 9 isoform in predicting inflammatory bowel diseases
US20090298709A1 (en) 2008-05-28 2009-12-03 Affymetrix, Inc. Assays for determining telomere length and repeated sequence copy number
DE102008025656B4 (de) 2008-05-28 2016-07-28 Genxpro Gmbh Verfahren zur quantitativen Analyse von Nukleinsäuren, Marker dafür und deren Verwendung
WO2009148560A2 (en) 2008-05-30 2009-12-10 Board Of Regents, The Universtiy Of Texas System Methods and compositions for nucleic acid sequencing
WO2010021936A1 (en) 2008-08-16 2010-02-25 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Digital pcr calibration for high throughput sequencing
US8476013B2 (en) 2008-09-16 2013-07-02 Sequenom, Inc. Processes and compositions for methylation-based acid enrichment of fetal nucleic acid from a maternal sample useful for non-invasive prenatal diagnoses
US9080211B2 (en) 2008-10-24 2015-07-14 Epicentre Technologies Corporation Transposon end compositions and methods for modifying nucleic acids
WO2010053980A2 (en) 2008-11-04 2010-05-14 The Johns Hopkins University Dna integrity assay (dia) for cancer diagnostics, using confocal fluorescence spectroscopy
WO2010059820A1 (en) 2008-11-21 2010-05-27 Saint Louis University Biosensor for detecting multiple epitopes on a target
US20100159533A1 (en) 2008-11-24 2010-06-24 Helicos Biosciences Corporation Simplified sample preparation for rna analysis
US8492096B2 (en) 2008-12-24 2013-07-23 Boris Pasche TGFBR1 expression modifies risk for colorectal cancer
AU2010206843B2 (en) 2009-01-20 2015-01-29 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Single cell gene expression for diagnosis, prognosis and identification of drug targets
US20100323348A1 (en) 2009-01-31 2010-12-23 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Methods and Compositions for Using Error-Detecting and/or Error-Correcting Barcodes in Nucleic Acid Amplification Process
JPWO2010101164A1 (ja) 2009-03-05 2012-09-10 第一三共株式会社 ピリジン誘導体
EP2230312A1 (en) 2009-03-19 2010-09-22 Helmholtz-Zentrum für Infektionsforschung GmbH Probe compound for detecting and isolating enzymes and means and methods using the same
US20120010091A1 (en) 2009-03-30 2012-01-12 Illumina, Inc. Gene expression analysis in single cells
AU2010232439C1 (en) 2009-04-02 2017-07-13 Fluidigm Corporation Multi-primer amplification method for barcoding of target nucleic acids
US9085798B2 (en) 2009-04-30 2015-07-21 Prognosys Biosciences, Inc. Nucleic acid constructs and methods of use
JPWO2010131645A1 (ja) 2009-05-14 2012-11-01 和光純薬工業株式会社 Ｒｎａに対応する二本鎖ｄｎａの合成方法及び増幅方法
FR2945545B1 (fr) 2009-05-14 2011-08-05 Univ Aix Marseille Ii Methode de detection d'adn procaryote extrait d'un echantillon de selles
US8673627B2 (en) 2009-05-29 2014-03-18 Life Technologies Corporation Apparatus and methods for performing electrochemical reactions
GB0909923D0 (en) 2009-06-09 2009-07-22 Oxford Gene Tech Ip Ltd Picowell capture devices for analysing single cells or other particles
US20120058902A1 (en) 2009-06-25 2012-03-08 Livingston Robert J Method of measuring adaptive immunity
EP2449104B1 (en) 2009-06-29 2014-06-04 Luminex Corporation Chimeric primers with hairpin conformations and methods of using same
US8330957B2 (en) 2009-06-29 2012-12-11 Hager Enviromental and Atmospheric Technologies, LLC Device and method for quantification of gases in plumes by remote sensing
WO2011021102A2 (en) 2009-08-20 2011-02-24 Population Genetics Technologies Ltd Compositions and methods for intramolecular nucleic acid rearrangement
WO2011028818A2 (en) 2009-09-01 2011-03-10 Trustees Of Boston University High throughput multichannel reader and uses thereof
BR112012004382A2 (pt) 2009-09-01 2016-03-22 Koninkl Philips Electronics Nv dispositivo para a seleção específica de moléculas-alvo, método para selecionar especificamente moléculas-alvo e uso de um dispositivo
US9625454B2 (en) 2009-09-04 2017-04-18 The Research Foundation For The State University Of New York Rapid and continuous analyte processing in droplet microfluidic devices
US9488656B2 (en) 2009-09-30 2016-11-08 Quest Diagnostics Investments Incorporated BCR-ABL truncation mutations
US8835358B2 (en) 2009-12-15 2014-09-16 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse labels
US9315857B2 (en) 2009-12-15 2016-04-19 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse label-tags
US10662474B2 (en) 2010-01-19 2020-05-26 Verinata Health, Inc. Identification of polymorphic sequences in mixtures of genomic DNA by whole genome sequencing
EP2366031B1 (en) 2010-01-19 2015-01-21 Verinata Health, Inc Sequencing methods in prenatal diagnoses
CN102725424B (zh) 2010-01-25 2014-07-09 Rd生物科技公司 靶核酸的自折叠扩增
EP2534267B1 (en) 2010-02-12 2018-04-11 Raindance Technologies, Inc. Digital analyte analysis
JP5901046B2 (ja) 2010-02-19 2016-04-06 国立大学法人 千葉大学 ＯＡＴＰ１Ｂ３ｍＲＮＡの新規な選択的スプライシングバリアント
WO2011106738A2 (en) 2010-02-25 2011-09-01 Fred Hutchinson Cancer Research Center Use of tcr clonotypes as biomarkers for disease
US8951940B2 (en) 2010-04-01 2015-02-10 Illumina, Inc. Solid-phase clonal amplification and related methods
PT2556171E (pt) 2010-04-05 2015-12-21 Prognosys Biosciences Inc Ensaios biológicos codificados espacialmente
EP2569453B1 (en) 2010-05-14 2015-12-16 Fluidigm Corporation Nucleic acid isolation methods
US8828688B2 (en) 2010-05-27 2014-09-09 Affymetrix, Inc. Multiplex amplification methods
CN102933721B (zh) 2010-06-09 2015-12-02 凯津公司 用于高通量筛选的组合序列条形码
US20120004132A1 (en) 2010-07-02 2012-01-05 Affymetrix, Inc. Detection of Nucleic Acids and Proteins
CN102971638B (zh) 2010-07-07 2015-08-19 株式会社爱德万测试 对半导体器件进行试验的试验装置及试验方法
EP2407242A1 (en) 2010-07-13 2012-01-18 Dublin City University Direct clone analysis and selection technology
US20120040843A1 (en) 2010-08-12 2012-02-16 Dublin City University Centrifugal capture system
ES2595433T3 (es) 2010-09-21 2016-12-30 Population Genetics Technologies Ltd. Aumento de la confianza en las identificaciones de alelos con el recuento molecular
EP2436766A1 (en) 2010-09-29 2012-04-04 Deutsches Krebsforschungszentrum Means and methods for improved protein interaction screening
WO2012042374A2 (en) 2010-10-01 2012-04-05 Anssi Jussi Nikolai Taipale Method of determining number or concentration of molecules
CA2814049C (en) 2010-10-08 2021-07-13 President And Fellows Of Harvard College High-throughput single cell barcoding
US20120088691A1 (en) 2010-10-08 2012-04-12 Gao Chen Highly multiplexed real-time pcr using encoded microbeads
US20130225623A1 (en) 2010-10-27 2013-08-29 Mount Sinai School Of Medicine Methods of Treating Psychiatric or Neurological Disorders with MGLUR Antagonists
EP2646795B1 (en) 2010-11-29 2019-02-20 Dako Denmark A/S Methods for analyzing images of specimens processed by a programmable quantitative assay
US9394511B2 (en) 2010-12-05 2016-07-19 Wenbin Jiang Rapid single cell based parallel biological cell sorter
CA2858608C (en) 2010-12-09 2020-03-10 Akonni Biosystems Sample analysis system
EP2652155B1 (en) 2010-12-16 2016-11-16 Gigagen, Inc. Methods for massively parallel analysis of nucleic acids in single cells
EP2656263B1 (en) 2010-12-22 2019-11-06 Natera, Inc. Methods for non-invasive prenatal paternity testing
WO2012092515A2 (en) 2010-12-30 2012-07-05 Life Technologies Corporation Methods, systems, and computer readable media for nucleic acid sequencing
ES2632768T3 (es) 2011-01-17 2017-09-15 Life Technologies Corporation Flujo de trabajo para la detección de ligandos empleando ácidos nucleicos
WO2012103154A1 (en) 2011-01-24 2012-08-02 Nugen Technologies, Inc. Stem-loop composite rna-dna adaptor-primers: compositions and methods for library generation, amplification and other downstream manipulations
US20120190020A1 (en) 2011-01-25 2012-07-26 Aria Diagnostics, Inc. Detection of genetic abnormalities
WO2016100976A2 (en) 2014-12-19 2016-06-23 Apprise Bio, Inc. Methods for identifying multiple epitopes in selected sub-populations of cells
US9365897B2 (en) * 2011-02-08 2016-06-14 Illumina, Inc. Selective enrichment of nucleic acids
EP2675819B1 (en) 2011-02-18 2020-04-08 Bio-Rad Laboratories, Inc. Compositions and methods for molecular labeling
JP6068365B2 (ja) 2011-02-23 2017-01-25 ボード・オブ・リージエンツ，ザ・ユニバーシテイ・オブ・テキサス・システム Ｄｎａ合成のためのテンプレートスイッチの使用
WO2012129363A2 (en) 2011-03-24 2012-09-27 President And Fellows Of Harvard College Single cell nucleic acid detection and analysis
KR20120110431A (ko) 2011-03-29 2012-10-10 에스케이하이닉스 주식회사 반도체 메모리 장치
GB201106254D0 (en) 2011-04-13 2011-05-25 Frisen Jonas Method and product
ES2625288T3 (es) 2011-04-15 2017-07-19 The Johns Hopkins University Sistema de secuenciación segura
EP2702175B1 (en) 2011-04-25 2018-08-08 Bio-Rad Laboratories, Inc. Methods and compositions for nucleic acid analysis
SI2702146T1 (sl) 2011-04-28 2019-06-28 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Identifikacija polinukleotidov, povezanih z vzorcem
GB201108259D0 (en) 2011-05-17 2011-06-29 Cambridge Entpr Ltd Gel beads in microfluidic droplets
WO2012162267A2 (en) 2011-05-20 2012-11-29 Fluidigm Corporation Nucleic acid encoding reactions
SG193553A1 (en) 2011-05-24 2013-10-30 Biontech Ag Individualized vaccines for cancer
WO2012162621A1 (en) 2011-05-26 2012-11-29 Brandeis University Methods for suppression pcr
US8841071B2 (en) 2011-06-02 2014-09-23 Raindance Technologies, Inc. Sample multiplexing
US9752176B2 (en) 2011-06-15 2017-09-05 Ginkgo Bioworks, Inc. Methods for preparative in vitro cloning
WO2012177639A2 (en) 2011-06-22 2012-12-27 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Bioprocessing and bioproduction using avian cell lines
WO2013003498A2 (en) 2011-06-27 2013-01-03 Life Technologies Corporation Acoustic cytometry methods and protocols
US9340826B2 (en) 2011-08-01 2016-05-17 Celemics, Inc. Method of preparing nucleic acid molecules
WO2013022961A1 (en) 2011-08-08 2013-02-14 3The Broad Institute Compositions and methods for co-amplifying subsequences of a nucleic acid fragment sequence
JP5816486B2 (ja) 2011-08-18 2015-11-18 オリンパス株式会社 蛍光観察装置および蛍光観察システム並びに蛍光観察装置の蛍光画像処理方法
KR102087062B1 (ko) 2011-09-16 2020-03-11 렉소겐 게엠베하 핵산 전사 방법
US9297047B2 (en) 2011-10-24 2016-03-29 Jennifer Furchak Molecular beacon based assay for the detection of biomarkers for breast cancer metastasis
US9777338B2 (en) 2011-11-11 2017-10-03 Meso Scale Technologies, Llc. Co-binder assisted assay methods
KR101337094B1 (ko) 2011-11-30 2013-12-05 삼성에스디에스 주식회사 염기 서열 정렬 장치 및 그 방법
US20150329855A1 (en) 2011-12-22 2015-11-19 Ibis Biosciences, Inc. Amplification primers and methods
WO2013117595A2 (en) * 2012-02-07 2013-08-15 Illumina Cambridge Limited Targeted enrichment and amplification of nucleic acids on a support
WO2013120089A1 (en) 2012-02-10 2013-08-15 Raindance Technologies, Inc. Molecular diagnostic screening assay
US10202628B2 (en) 2012-02-17 2019-02-12 President And Fellows Of Harvard College Assembly of nucleic acid sequences in emulsions
EP2817418B1 (en) 2012-02-24 2017-10-11 Raindance Technologies, Inc. Labeling and sample preparation for sequencing
ES2776673T3 (es) 2012-02-27 2020-07-31 Univ North Carolina Chapel Hill Métodos y usos para etiquetas moleculares
SG11201405274WA (en) * 2012-02-27 2014-10-30 Cellular Res Inc Compositions and kits for molecular counting
WO2013137737A1 (en) 2012-03-16 2013-09-19 Flexgen B.V. Methods of creating and screening of dna encoded combinatorial libraries of chemical antibodies
US9803239B2 (en) 2012-03-29 2017-10-31 Complete Genomics, Inc. Flow cells for high density array chips
EP2647426A1 (en) 2012-04-03 2013-10-09 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Replication of distributed nucleic acid molecules with preservation of their relative distribution through hybridization-based binding
ES2582554T3 (es) 2012-05-08 2016-09-13 Adaptive Biotechnologies Corporation Composiciones y método para medir y calibrar el sesgo de la amplificación en reacciones de PCR multiplexadas
CA2873585C (en) 2012-05-14 2021-11-09 Cb Biotechnologies, Inc. Method for increasing accuracy in quantitative detection of polynucleotides
SG11201407901PA (en) 2012-05-21 2015-01-29 Fluidigm Corp Single-particle analysis of particle populations
CN104508492B (zh) 2012-05-25 2018-07-27 北卡罗来纳-查佩尔山大学 微流体装置、用于试剂的固体支持体和相关方法
JP6558830B2 (ja) 2012-06-15 2019-08-14 ボード・オブ・リージエンツ，ザ・ユニバーシテイ・オブ・テキサス・システム 複数転写産物のハイスループットシークエンシング
EP2861761A1 (en) 2012-06-15 2015-04-22 Adaptive Biotechnologies Corporation Uniquely tagged rearranged adaptive immune receptor genes in a complex gene set
US9957549B2 (en) * 2012-06-18 2018-05-01 Nugen Technologies, Inc. Compositions and methods for negative selection of non-desired nucleic acid sequences
ES2637538T3 (es) 2012-07-17 2017-10-13 Counsyl, Inc. Sistema y métodos para la detección de una variación genética
US9695416B2 (en) * 2012-07-18 2017-07-04 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Method of normalizing biological samples
JP2015523087A (ja) 2012-07-24 2015-08-13 シーケンタ インコーポレイテッド 配列タグを用いる単一細胞分析
WO2014018093A1 (en) 2012-07-26 2014-01-30 Illumina, Inc. Compositions and methods for the amplification of nucleic acids
WO2014026032A2 (en) 2012-08-08 2014-02-13 Apprise Bio, Inc. Increasing dynamic range for identifying multiple epitopes in cells
US20150005200A1 (en) 2012-08-14 2015-01-01 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US9951386B2 (en) 2014-06-26 2018-04-24 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9701998B2 (en) 2012-12-14 2017-07-11 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US20150376609A1 (en) 2014-06-26 2015-12-31 10X Genomics, Inc. Methods of Analyzing Nucleic Acids from Individual Cells or Cell Populations
MX364957B (es) 2012-08-14 2019-05-15 10X Genomics Inc Composiciones y metodos para microcapsulas.
US20150005199A1 (en) 2012-08-14 2015-01-01 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US10273541B2 (en) 2012-08-14 2019-04-30 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US20140378322A1 (en) 2012-08-14 2014-12-25 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US20140378349A1 (en) 2012-08-14 2014-12-25 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US10221442B2 (en) 2012-08-14 2019-03-05 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US10752949B2 (en) 2012-08-14 2020-08-25 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10400280B2 (en) 2012-08-14 2019-09-03 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US20140378345A1 (en) 2012-08-14 2014-12-25 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
CN108267581A (zh) 2012-08-24 2018-07-10 耶鲁大学 用于高通量多重检测的系统、装置和方法
CA2886974C (en) 2012-10-17 2021-06-29 Spatial Transcriptomics Ab Methods and product for optimising localised or spatial detection of gene expression in a tissue sample
GB201218909D0 (en) 2012-10-22 2012-12-05 Univ Singapore Assay for the parallel detection of biological material based on PCR
CA2889862C (en) 2012-11-05 2021-02-16 Rubicon Genomics, Inc. Barcoding nucleic acids
CA2894694C (en) 2012-12-14 2023-04-25 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9683230B2 (en) 2013-01-09 2017-06-20 Illumina Cambridge Limited Sample preparation on a solid support
WO2014108850A2 (en) 2013-01-09 2014-07-17 Yeda Research And Development Co. Ltd. High throughput transcriptome analysis
US9562269B2 (en) 2013-01-22 2017-02-07 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Haplotying of HLA loci with ultra-deep shotgun sequencing
WO2014116979A1 (en) 2013-01-24 2014-07-31 Sabic Innovative Plastics Ip B.V. Microwell plate made from a polyester-polycarbonate
US10017761B2 (en) 2013-01-28 2018-07-10 Yale University Methods for preparing cDNA from low quantities of cells
ES2931314T3 (es) 2013-02-01 2022-12-28 Becton Dickinson Co Métodos y sistemas para evaluar el comportamiento de una muestra en un citómetro de flujo
CN105102696B (zh) 2013-02-08 2017-08-15 生物辐射实验室股份有限公司 用于目标分子检测的基于亲和力的划分试验
CA2900481A1 (en) 2013-02-08 2014-08-14 10X Genomics, Inc. Polynucleotide barcode generation
WO2014126937A1 (en) 2013-02-14 2014-08-21 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Suspension arrays and multiplexed assays based thereon
US9621600B2 (en) 2013-02-26 2017-04-11 PortAura Group Method and system for providing recommendations using location information
US20140274811A1 (en) 2013-03-14 2014-09-18 Lyle J. Arnold Methods for Amplifying a Complete Genome or Transcriptome
GB2525568B (en) 2013-03-15 2020-10-14 Abvitro Llc Single cell barcoding for antibody discovery
US9255265B2 (en) 2013-03-15 2016-02-09 Illumina, Inc. Methods for producing stranded cDNA libraries
US9938523B2 (en) 2013-03-15 2018-04-10 Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University Nucleic acid-tagged compositions and methods for multiplexed protein-protein interaction profiling
US9328382B2 (en) 2013-03-15 2016-05-03 Complete Genomics, Inc. Multiple tagging of individual long DNA fragments
CN114107458A (zh) 2013-03-15 2022-03-01 血统生物科学公司 测序免疫组库的方法
US20140303005A1 (en) 2013-04-05 2014-10-09 Raindance Technologies, Inc. Rare cell analysis after negative selection
JP6633514B2 (ja) 2013-04-25 2020-01-22 ファイアフライ バイオワークス， インコーポレイテッド 標的核酸の多重化分析
EP2805769A1 (en) 2013-05-24 2014-11-26 European Molecular Biology Laboratory Methods for nano-scale single cell analysis
WO2014201273A1 (en) 2013-06-12 2014-12-18 The Broad Institute, Inc. High-throughput rna-seq
CA2915033C (en) 2013-06-12 2023-08-29 The General Hospital Corporation Methods, kits, and systems for multiplexed detection of target molecules and uses thereof
US20150011398A1 (en) 2013-06-17 2015-01-08 Kim Lewis Methods for quantitative determination of protein-nucleic acid interactions in complex mixtures
WO2014210223A1 (en) 2013-06-25 2014-12-31 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially encoded biological assays using a microfluidic device
KR102436171B1 (ko) 2013-06-27 2022-08-24 10엑스 제노믹스, 인크. 샘플 처리를 위한 조성물 및 방법
US9708657B2 (en) 2013-07-01 2017-07-18 Adaptive Biotechnologies Corp. Method for generating clonotype profiles using sequence tags
SG10201806890VA (en) 2013-08-28 2018-09-27 Cellular Res Inc Massively parallel single cell analysis
US10395758B2 (en) 2013-08-30 2019-08-27 10X Genomics, Inc. Sequencing methods
CN105683397A (zh) 2013-09-04 2016-06-15 富鲁达公司 用于检测单细胞中的核酸和蛋白的邻近测定
ES2875998T3 (es) 2013-09-30 2021-11-11 Vesicode Ab Procedimientos de perfilado de complejos moleculares mediante el uso de códigos de barras dependientes de la proximidad
GB201317301D0 (en) 2013-09-30 2013-11-13 Linnarsson Sten Method for capturing and encoding nucleic acid from a plurality of single cells
US9582877B2 (en) 2013-10-07 2017-02-28 Cellular Research, Inc. Methods and systems for digitally counting features on arrays
DK3572527T3 (da) 2013-10-17 2021-08-23 Illumina Inc Fremgangsmåder og præparater til fremstilling af nukleinsyrebiblioteker
WO2015061844A1 (en) 2013-10-30 2015-05-07 The University Of Sydney Assay to stratify cancer patients
US10288608B2 (en) 2013-11-08 2019-05-14 Prognosys Biosciences, Inc. Polynucleotide conjugates and methods for analyte detection
ES2912183T3 (es) 2013-12-30 2022-05-24 Atreca Inc Análisis de ácidos nucleicos asociados a células individuales utilizando códigos de barras de ácidos nucleicos
CA2938080A1 (en) 2014-01-27 2015-07-30 The General Hospital Corporation Methods of preparing nucleic acids for sequencing
EP3102678A2 (en) 2014-02-03 2016-12-14 Integrated DNA Technologies Inc. Methods to capture and/or remove highly abundant rnas from a heterogeneous rna sample
CA2941612A1 (en) 2014-03-05 2015-09-11 Adaptive Biotechnologies Corporation Methods using randomer-containing synthetic molecules
ES2777529T3 (es) 2014-04-17 2020-08-05 Adaptive Biotechnologies Corp Cuantificación de genomas de células inmunitarias adaptativas en una mezcla compleja de células
US20150298091A1 (en) 2014-04-21 2015-10-22 President And Fellows Of Harvard College Systems and methods for barcoding nucleic acids
US10975371B2 (en) 2014-04-29 2021-04-13 Illumina, Inc. Nucleic acid sequence analysis from single cells
CA3060708A1 (en) 2014-04-29 2015-11-05 Illumina, Inc Multiplexed single cell gene expression analysis using template switch and tagmentation
EP3146080B1 (en) 2014-05-19 2021-01-06 William Marsh Rice University Allele-specific amplification using a composition of overlapping non-allele-specific primer and allele-specific blocker oligonucleotides
CN114214314A (zh) 2014-06-24 2022-03-22 生物辐射实验室股份有限公司 数字式pcr条码化
US20150376700A1 (en) 2014-06-26 2015-12-31 10X Genomics, Inc. Analysis of nucleic acid sequences
EP3626834B1 (en) 2014-07-15 2022-09-21 Qiagen Sciences, LLC Semi-random barcodes for nucleic acid analysis
WO2016040446A1 (en) 2014-09-10 2016-03-17 Good Start Genetics, Inc. Methods for selectively suppressing non-target sequences
AU2015318011B2 (en) 2014-09-15 2020-07-23 Abvitro Llc High-throughput nucleotide library sequencing
US9529672B2 (en) 2014-09-25 2016-12-27 Everspin Technologies Inc. ECC word configuration for system-level ECC compatibility
IL299976A (en) 2014-10-17 2023-03-01 Illumina Cambridge Ltd Continuity-preserving transposition
CN107407691B (zh) 2015-01-22 2021-07-27 贝克顿迪金森公司 用于单细胞中核酸靶标的分子条码化的装置和系统
EP3763825B1 (en) 2015-01-23 2023-10-04 Qiagen Sciences, LLC High multiplex pcr with molecular barcoding
US10854315B2 (en) 2015-02-09 2020-12-01 10X Genomics, Inc. Systems and methods for determining structural variation and phasing using variant call data
ES2824700T3 (es) 2015-02-19 2021-05-13 Becton Dickinson Co Análisis unicelular de alto rendimiento que combina información proteómica y genómica
EP3262189B1 (en) 2015-02-27 2021-12-08 Becton, Dickinson and Company Methods for barcoding nucleic acids for sequencing
US9727810B2 (en) 2015-02-27 2017-08-08 Cellular Research, Inc. Spatially addressable molecular barcoding
US11873483B2 (en) 2015-03-11 2024-01-16 The Broad Institute, Inc. Proteomic analysis with nucleic acid identifiers
US20180073073A1 (en) 2015-03-18 2018-03-15 Cellular Research, Inc. Methods and compositions for labeling targets and haplotype phasing
US10301660B2 (en) 2015-03-30 2019-05-28 Takara Bio Usa, Inc. Methods and compositions for repair of DNA ends by multiple enzymatic activities
EP3277843A2 (en) 2015-03-30 2018-02-07 Cellular Research, Inc. Methods and compositions for combinatorial barcoding
US20180057873A1 (en) 2015-04-17 2018-03-01 Centrillion Technology Holdings Corporation Methods for performing spatial profiling of biological materials
CN107580632B (zh) 2015-04-23 2021-12-28 贝克顿迪金森公司 用于全转录组扩增的方法和组合物
US9618871B2 (en) 2015-04-28 2017-04-11 Kyocera Document Solutions Inc. Image forming apparatus
US10988802B2 (en) 2015-05-22 2021-04-27 Sigma-Aldrich Co. Llc Methods for next generation genome walking and related compositions and kits
WO2016190795A1 (en) 2015-05-28 2016-12-01 Kaarel Krjutskov Blocking oligonucleotides
WO2016196229A1 (en) 2015-06-01 2016-12-08 Cellular Research, Inc. Methods for rna quantification
JP6886962B2 (ja) 2015-08-24 2021-06-16 キアゲン ゲーエムベーハー Ｒｎａシークエンシングライブラリーを生成する方法
CN115928221A (zh) 2015-08-28 2023-04-07 Illumina公司 单细胞核酸序列分析
WO2017044574A1 (en) 2015-09-11 2017-03-16 Cellular Research, Inc. Methods and compositions for nucleic acid library normalization
US11156611B2 (en) 2015-09-24 2021-10-26 Abvitro Llc Single cell characterization using affinity-oligonucleotide conjugates and vessel barcoded polynucleotides
WO2017075265A1 (en) 2015-10-28 2017-05-04 The Broad Institute, Inc. Multiplex analysis of single cell constituents
KR20180097536A (ko) 2015-11-04 2018-08-31 아트레카, 인크. 단일 세포와 연관된 핵산의 분석을 위한 핵산 바코드의 조합 세트
JP2019500856A (ja) 2015-11-18 2019-01-17 タカラ バイオ ユーエスエー， インコーポレイテッド マルチウェルデバイスから試料をプールするための装置及び方法
US20190040381A1 (en) 2015-12-04 2019-02-07 St. Jude Children's Research Hospital, Inc. Cloning and expression system for t-cell receptors
EP3263715B1 (en) 2016-06-28 2020-01-08 Hifibio Method for transcriptome analysis of single cells
US11965891B2 (en) 2015-12-30 2024-04-23 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital protein quantification
US20170205404A1 (en) 2016-01-19 2017-07-20 General Electric Company Multifunctional beads and methods of use for capturing rare cells
US20170260584A1 (en) 2016-02-11 2017-09-14 10X Genomics, Inc. Cell population analysis using single nucleotide polymorphisms from single cell transcriptomes
WO2017164936A1 (en) 2016-03-21 2017-09-28 The Broad Institute, Inc. Methods for determining spatial and temporal gene expression dynamics in single cells
CN109312331B (zh) 2016-04-01 2022-08-02 贝勒医学院 全转录组扩增的方法
US10822643B2 (en) 2016-05-02 2020-11-03 Cellular Research, Inc. Accurate molecular barcoding
US20190161743A1 (en) 2016-05-09 2019-05-30 President And Fellows Of Harvard College Self-Targeting Guide RNAs in CRISPR System
US10301677B2 (en) 2016-05-25 2019-05-28 Cellular Research, Inc. Normalization of nucleic acid libraries
CN109074430B (zh) 2016-05-26 2022-03-29 贝克顿迪金森公司 分子标记计数调整方法
TWI600309B (zh) 2016-05-28 2017-09-21 Hon Hai Prec Ind Co Ltd 角度調整機構
US10640763B2 (en) 2016-05-31 2020-05-05 Cellular Research, Inc. Molecular indexing of internal sequences
US10202641B2 (en) 2016-05-31 2019-02-12 Cellular Research, Inc. Error correction in amplification of samples
US10809266B2 (en) 2016-07-22 2020-10-20 Verily Life Sciences Llc Quantitative massively parallel proteomics
WO2018020489A1 (en) 2016-07-24 2018-02-01 Yeda Research And Development Co. Ltd. Methods and kits for analyzing dna binding moieties attached to dna
US20180037942A1 (en) 2016-08-03 2018-02-08 Cellular Research, Inc. Enzyme-independent molecular indexing
WO2018031631A1 (en) 2016-08-10 2018-02-15 President And Fellows Of Harvard College Methods of de novo assembly of barcoded genomic dna fragments
WO2018058073A2 (en) 2016-09-26 2018-03-29 Cellular Research, Inc. Measurement of protein expression using reagents with barcoded oligonucleotide sequences
CN109790537A (zh) 2016-09-29 2019-05-21 富士胶片株式会社 供多重pcr的引物的设计方法
CN109804079A (zh) 2016-09-29 2019-05-24 富士胶片株式会社 供多重pcr的引物的设计方法
CN110114520B (zh) 2016-10-01 2023-08-08 伯克利之光生命科技公司 Dna条形码组合物和在微流体装置中原位识别的方法
EP4026905B1 (en) 2016-10-19 2024-04-17 10X Genomics, Inc. Methods for barcoding nucleic acid molecules from individual cells or cell populations
WO2018111872A1 (en) 2016-12-12 2018-06-21 Grail, Inc. Methods for tagging and amplifying rna template molecules for preparing sequencing libraries
US10011872B1 (en) 2016-12-22 2018-07-03 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US20190177800A1 (en) 2017-12-08 2019-06-13 10X Genomics, Inc. Methods and compositions for labeling cells
US10550429B2 (en) 2016-12-22 2020-02-04 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
GB201622222D0 (en) 2016-12-23 2017-02-08 Cs Genetics Ltd Reagents and methods for molecular barcoding of nucleic acids of single cells
US20210087610A9 (en) 2017-01-12 2021-03-25 Massachusetts Institute Of Technology Methods for analyzing t cell receptors and b cell receptors
US20180208975A1 (en) 2017-01-20 2018-07-26 Merck Sharp & Dohme Corp. Assay for simultaneous genomic and proteomic analysis
EP4029939B1 (en) 2017-01-30 2023-06-28 10X Genomics, Inc. Methods and systems for droplet-based single cell barcoding
CN110382708A (zh) 2017-02-01 2019-10-25 赛卢拉研究公司 使用阻断性寡核苷酸进行选择性扩增
EP4324931A2 (en) 2017-02-02 2024-02-21 New York Genome Center, Inc. Methods and compositions for identifying or quantifying targets in a biological sample
KR20190133711A (ko) 2017-03-24 2019-12-03 싱가포르국립대학교 분자의 다중 검출 방법
EP3601606A2 (en) 2017-03-24 2020-02-05 Cellular Research, Inc. Synthetic multiplets for multiplets determination
US20200370105A1 (en) 2017-05-23 2020-11-26 Centrillion Technology Holdings Corporation Methods for performing spatial profiling of biological molecules
MA49352A (fr) 2017-05-26 2020-04-08 Abvitro Llc Séquençage de bibliothèque de polynucléotides à haut rendement et analyse de transcriptome
US10400235B2 (en) 2017-05-26 2019-09-03 10X Genomics, Inc. Single cell analysis of transposase accessible chromatin
JP2020521486A (ja) 2017-05-29 2020-07-27 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ シングルセルトランスクリプトームの増幅法
CA3059559A1 (en) 2017-06-05 2018-12-13 Becton, Dickinson And Company Sample indexing for single cells
US20200217850A1 (en) 2017-09-15 2020-07-09 Apton Biosystems, Inc. Heterogeneous single cell profiling using molecular barcoding
CN111247589A (zh) 2017-09-25 2020-06-05 贝克顿迪金森公司 免疫受体条形码错误校正
WO2019076768A1 (en) 2017-10-16 2019-04-25 Tervisetehnoloogiate Arenduskeskus As METHOD AND KIT FOR PREPARING DNA BANK
WO2019084046A1 (en) 2017-10-23 2019-05-02 The Broad Institute, Inc. ENRICHING SINGLE CELL CELLULAR CONSTITUENT OF BARCODE SEQUENCING LIBRARY
US20200354767A1 (en) 2017-11-16 2020-11-12 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Methods to measure functional heterogeneity among single cells
WO2019113506A1 (en) 2017-12-07 2019-06-13 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for multiplexing single cell and single nuclei sequencing
EP3720605A1 (en) 2017-12-07 2020-10-14 Massachusetts Institute Of Technology Single cell analyses
WO2019113499A1 (en) 2017-12-07 2019-06-13 The Broad Institute, Inc. High-throughput methods for identifying gene interactions and networks
SG11201907566TA (en) 2017-12-08 2019-09-27 10X Genomics Inc Methods and compositions for labeling cells
WO2019118355A1 (en) 2017-12-12 2019-06-20 10X Genomics, Inc. Systems and methods for single cell processing
CN111712579A (zh) 2017-12-22 2020-09-25 10X基因组学有限公司 用于处理来自一个或多个细胞的核酸分子的系统和方法
AU2018399524B2 (en) 2018-01-05 2022-05-26 Billiontoone, Inc. Quality control templates for ensuring validity of sequencing-based assays
WO2019157529A1 (en) 2018-02-12 2019-08-15 10X Genomics, Inc. Methods characterizing multiple analytes from individual cells or cell populations
WO2019178164A1 (en) 2018-03-12 2019-09-19 Silicon Valley Scientific, Inc. Method and apparatus for processing tissue and other samples encoding cellular spatial position information
WO2019210049A1 (en) 2018-04-27 2019-10-31 X Gen Us Co. Methods and compositions for preparing polynucleotides
US11773441B2 (en) 2018-05-03 2023-10-03 Becton, Dickinson And Company High throughput multiomics sample analysis
JP7358388B2 (ja) 2018-05-03 2023-10-10 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー 反対側の転写物末端における分子バーコーディング
JP7413351B2 (ja) 2018-08-03 2024-01-15 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー 単一細胞における核バーコード化および捕捉
EP3833976A4 (en) 2018-08-08 2022-04-27 Vanderbilt University SYSTEMS AND METHODS FOR SIMULTANEOUS DETECTION OF ANTIGENS AND ANTIGEN-SPECIFIC ANTIBODIES
EP3837378B1 (en) 2018-08-17 2023-04-05 Becton, Dickinson and Company Aptamer barcoding
WO2020046833A1 (en) 2018-08-28 2020-03-05 Cellular Research, Inc. Sample multiplexing using carbohydrate-binding and membrane-permeable reagents
US11639517B2 (en) 2018-10-01 2023-05-02 Becton, Dickinson And Company Determining 5′ transcript sequences
US11932849B2 (en) 2018-11-08 2024-03-19 Becton, Dickinson And Company Whole transcriptome analysis of single cells using random priming
EP3894552A1 (en) 2018-12-13 2021-10-20 Becton, Dickinson and Company Selective extension in single cell whole transcriptome analysis
EP3914728B1 (en) 2019-01-23 2023-04-05 Becton, Dickinson and Company Oligonucleotides associated with antibodies
CN113454234A (zh) 2019-02-14 2021-09-28 贝克顿迪金森公司 杂合体靶向和全转录物组扩增
US11965208B2 (en) 2019-04-19 2024-04-23 Becton, Dickinson And Company Methods of associating phenotypical data and single cell sequencing data
WO2021146207A1 (en) 2020-01-13 2021-07-22 Becton, Dickinson And Company Methods and compositions for quantitation of proteins and rna
WO2021146219A1 (en) 2020-01-13 2021-07-22 Becton, Dickinson And Company Cell capture using du-containing oligonucleotides
US20210222244A1 (en) 2020-01-17 2021-07-22 Becton, Dickinson And Company Methods and compositions for single cell secretomics
EP4097228A1 (en) 2020-01-29 2022-12-07 Becton, Dickinson and Company Barcoded wells for spatial mapping of single cells through sequencing
CN115427584A (zh) 2020-01-31 2022-12-02 贝克顿迪金森公司 嗜中温dna聚合酶延伸阻断物
CN115087746A (zh) 2020-02-12 2022-09-20 贝克顿迪金森公司 细胞内AbSeq
WO2021173719A1 (en) 2020-02-25 2021-09-02 Becton, Dickinson And Company Bi-specific probes to enable the use of single-cell samples as single color compensation control
WO2021231779A1 (en) 2020-05-14 2021-11-18 Becton, Dickinson And Company Primers for immune repertoire profiling

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