ES2230084T3 - Peptidos macrociclicos que inhiben la proteasa ns3 del virus de la hepatitis c. - Google Patents
Peptidos macrociclicos que inhiben la proteasa ns3 del virus de la hepatitis c.Info
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- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Abstract
Un compuesto de **fórmula** en la que W es CH o N, R21 es H, halo, alquilo C1-6, cicloalquilo C3-6, haloalquilo C1-6, alcoxi C1-6, cicloalcoxi C3-6, hidroxi o N(R23)2, en donde cada R23 es, independientemente, H, alquilo C1-6 o cicloalquilo C3-6; R22 es H, halo, alquilo C1-6, cicloalquilo C3-6, haloalquilo C1-6, tioalquilo C1-6, alcoxi C1-6, cicloalcoxi C3-6, alcoxi C2-7-alquilo, cicloalquilo C3-6, arilo C6 ó 10 o Het, en donde Het es un heterociclo de cinco, seis o siete miembros, saturado o insaturado, que contiene de uno a cuatro heteroátomos elegidos entre nitrógeno, oxígeno y azufre; estando dichos cicloalquilo, arilo o Het sustituidos con R24, en donde R24 es H, halo, alquilo C1-6, cicloalquilo C3-6, alcoxi C1-6, cicloalcoxi C3-6, NO2, N(R25)2; NH-C(O)-R25; o NH-C(O)-NH-R25, en donde cada R25 es, independientemente: H, alquilo C1-6 o cicloalquilo C3-6; o R24 es NH-C(O)-OR26, en donde R26 es alquilo C1-6 o cicloalquilo C3-6.
Description
Péptidos macrocíclicos que inhiben la proteasa
NS3 del virus de la hepatitis C.
La presente invención se refiere a compuestos y
composiciones, a la preparación de tales compuestos y a métodos
para el tratamiento de la infección por el virus de la hepatitis C
(HCV). En particular, la presente invención proporciona nuevos
análogos de péptidos, composiciones farmacéuticas que contienen
tales análogos, y métodos para usar estos análogos en el
tratamiento de una infección por HCV.
El virus de la hepatitis C (HCV) es el principal
agente etiológico de la hepatitis no-A
no-B, de adquisición
post-transfusional y comunitaria en el mundo
entero. Se estima que más de 170 millones de personas están
infectadas por el virus en todo el mundo. Un elevado porcentaje de
portadores llegan a estar infectados crónicamente y muchos
prosiguen hasta una enfermedad hepática crónica, la llamada
hepatitis C crónica. Este grupo es a su vez de alto riesgo para
enfermedades hepáticas graves tales como cirrosis hepática,
carcinoma hepatocelular y enfermedades hepáticas terminales que
llevan a la muerte.
El mecanismo por el cual el HCV establece
persistencia viral y produce una elevada tasa de enfermedades
hepáticas crónicas no ha sido aún dilucidado del todo. No se sabe
cómo interacciona el HCV con el sistema inmunitario del hospedador
y lo evade. Además, quedan aún por establecer los papeles de las
respuestas inmunes celulares y humorales en la protección frente a
la infección por HCV y la enfermedad. Se han publicado
inmunoglobulinas para la profilaxis de la hepatitis viral asociada
a transfusiones, pero el Centro para el Control de Enfermedades no
recomienda actualmente el tratamiento con inmunoglobulinas con esta
finalidad. La falta de una respuesta inmune protectora eficaz está
estorbando el desarrollo de una vacuna o de adecuadas medidas
profilácticas post-exposición, por lo que a corto
plazo las esperanzas están firmemente articuladas en intervenciones
antivirales.
Se han llevado a cabo diversos estudios clínicos
con el objeto de identificar agentes farmacéuticos capaces de
tratar eficazmente la infección por HCV en pacientes afectados de
hepatitis C crónica. Estos estudios han implicado el uso de
interferón-alfa, solo o en combinación con otros
agentes antivirales. Tales estudios han indicado que un número
sustancial de los participantes no responden a estas terapias, y,
entre los que sí responden favorablemente, se encontró que una gran
proporción recaía después de la terminación del tratamiento.
Hasta hace pocos años, el interferón (IFN) era la
única terapia disponible de provecho confirmado, aprobada
clínicamente para pacientes con hepatitis C crónica. Sin embargo,
la tasa de respuesta mantenida es baja y el tratamiento con
interferón induce también graves efectos secundarios (p. ej.
retinopatía, tiroiditis, pancreatitis aguda, depresión) que reducen
la calidad de vida de los pacientes tratados. El interferón, en
combinación con ribavirina, fue aprobado originalmente para
pacientes que no responden al IFN solo. Ahora ha sido aprobado para
pacientes simples y actualmente constituye el "patrón oro" en
la terapia del HCV. Sin embargo, los efectos secundarios provocados
por el IFN no se ven aliviados con esta terapia de combinación.
Por consiguiente, existe la necesidad de
desarrollar agentes antivirales eficaces para el tratamiento de la
infección por HCV que superen las limitaciones de las terapias
farmacéuticas existentes.
El HCV es un virus de RNA de cadena positiva
envuelto, de la familia de los Flaviviridae. El genoma de
RNA del HCV de cadena simple tiene una longitud de aproximadamente
9500 nucleótidos y tiene un único marco de lectura abierto (ORF)
que codifica una única y gran poliproteína de aproximadamente 3000
aminoácidos. En las células infectadas, esta poliproteína es
segmentada en múltiples sitios por proteasas celulares y virales
para producir las proteínas estructurales y no estructurales (NS).
En el caso del HCV, la generación de proteínas no estructurales
maduras (NS2, NS3, NS4A, NS4B, NS5A y NS5B) es realizada por dos
proteasas virales. La primera, hasta ahora escasamente
caracterizada, segmenta en el empalme NS2-NS3; la
segunda es una proteasa de serina contenida dentro de la región
N-terminal de NS3 (denominada por ello proteasa NS3)
y media todas las segmentaciones subsiguientes corriente abajo de
NS3, tanto en cis, en el sitio de segmentación
NS3-NS4A, como en trans, para los sitios
restantes NS4A-NS4B, NS4B-NS5A,
NS5A-NS5B. La proteína NS4A parece servir para
múltiples funciones, actuando como cofactor para la proteasa NS3 y
posiblemente asistiendo en la localización de la membrana de NS3 y
otros componentes de la replicasa viral. La formación del complejo
de la proteína NS3 con NS4A parece necesaria para los eventos de
procesamiento, mejorando la eficiencia proteolítica en la totalidad
de los sitios. La proteína NS3 muestra también actividades de
nucleósido trifosfatasa y RNA helicasa. La NS5B es una RNA
polimerasa dependiente del RNA que está implicada en la replicación
del HCV.
La solicitud de patente WO 97/06804 describe el
enantiómero (-) del análogo de nucleósido
citosina-1,3-oxatiolano (también
conocido como 3TC) como activo frente a HCV. Este compuesto, aunque
calificado como seguro en ensayos clínicos previos frente al HIV y
al HBV, ha de ser aún clínicamente probado como activo contra el
HCV y su mecanismo de acción contra el virus no ha sido aún
publicado.
Una estrategia general para el desarrollo de
agentes antivirales es desactivar enzimas codificadas viralmente
que son esenciales para la replicación del virus. En esta
disposición, los intensos esfuerzos para descubrir compuestos que
inhiben la proteasa NS3 o la RNA helicasa del HCV han llevado a las
siguientes descripciones:
La patente de EE.UU. 5.633.388 describe
carboxamidas sustituidas con heterociclos y análogos como activas
frente al HCV. Estos compuestos están dirigidos contra la actividad
de helicasa de la proteína NS3 del virus, pero aún no se han
publicado pruebas clínicas.
Chu et al. (Tet. Lett. (1996),
7229-7232) han publicado que una fenantrenoquinona
tiene actividad contra la proteasa NS3 de HCV in vitro. No
se ha publicado ningún desarrollo posterior acerca de este
compuesto.
Un trabajo publicado en la Novena Conferencia
Internacional sobre Investigación Antiviral, Urabandai, Fukyshima,
Japón (1996) (Antiviral Research (1996) 30, 1, A23 (resumen
19)) informa acerca de derivados de tiazolidina que son inhibidores
de la proteasa del HCV.
Varios estudios han informado acerca de
compuestos inhibidores para otras proteasas de serina, tales como
la elastasa leucocitaria humana. Una familia de estos compuestos se
publica en el documento WO 95/33764 (Hoechst Marion Roussel, 1995).
Los péptidos descritos en esa solicitud son análogos del
morfolinilcarbonil-benzoil-péptido
que son estructuralmente diferentes de los péptidos de la presente
invención.
El documento WO 98/17679 de Vertex
Pharmaceuticals Inc. describe inhibidores de proteasa de serina, en
particular la proteasa NS3 del virus de la hepatitis C.
Hoffman La Roche (documento WO 98/22496; patente
de EE. UU. 5.866.684 y patente de EE.UU. 6.018.020) ha publicado
también hexapéptidos que son inhibidores de proteinasa útiles como
agentes antivirales para el tratamiento de la infección por
HCV.
Steinkühler et al. e Ingallinella et
al. han publicado acerca de la inhibición de producto
NS4A-4B (Biochemistry (1998) 37,
8899-8905 y 8906- 8914).
El documento WO 97/43310 de Schering Corporation
describe secuencias peptídicas de 20 y 21 aminoácidos activas
contra la proteasa NS3 del HCV.
El documento WO 98/46597 de Emory University
describe péptidos y simulaciones de péptidos activos in
vitro contra proteasas de serina.
El documento WO 98/46630 de Peptide Therapeutics
Limited describe sustrato depsipeptídico que inhibe la proteasa NS3
del HCV.
Finalmente, la patente de EE.UU. 5.869.253
describe moléculas de RNA enzimáticas que inhiben la proteasa NS3
del HCV.
Ninguna de las anteriores solicitudes de patente
descritas antes describe o sugiere péptidos cíclicos activos y
selectivos contra la proteasa NS3 del virus de la hepatitis C.
Los documentos WO 99/07733, WO 99/07734, WO
00/09543 y WO 00/09558 describen de hexa- a
tetra-péptidos y análogos de tripéptidos que inhiben
la proteasa NS3. Sin embargo, estas descripciones no sugieren ni
llevan al diseño de análogos macrocíclicos de la presente
invención.
El documento WO 99/38888, publicado el 5 de
agosto de 1999 por el Institute de Richerche di Biologia Moleculare
(IRBM), describe inhibidores de péptidos pequeños de la proteasa
NS3 del HCV. No hay nada en esta descripción que sugiera o indique
la naturaleza cíclica de los péptidos de la presente invención.
Además, esta solicitud PCT fue publicada después de la fecha de
prioridad de la presente solicitud.
El documento WO 99/64442 del IRBM, también
publicado después de la fecha de prioridad de esta solicitud,
describe oligopéptidos con cetoácidos en P1.
El documento WO 99/50230 de Vertex
Pharmaceuticals (publicado el 7 de octubre de 1999) fue también
publicado después de la fecha de prioridad de la presente
solicitud. Incluso así, la publicación no sugiere ni remotamente
ningunos de los péptidos cíclicos de la presente invención.
El documento WO 00/09543 de Boehringer Ingelheim
(Canada) Ltd. (publicado el 24 de febrero de 2000) también se
publicó después de la fecha prioritaria de la presente solicitud.
Incluso así, la publicación no sugiere ni remotamente ningunos de
los péptidos cíclicos de la presente invención.
Una ventaja de la presente invención es que
proporciona péptidos macrocíclicos que son inhibidores para la
proteasa NS3 del virus de la hepatitis C.
Una ventaja adicional de un aspecto de la
invención reside en el hecho de que estos péptidos inhiben
específicamente la proteasa NS3 y no muestran una actividad
inhibidora significativa contra otras proteasas de serina tales como
la elastasa leucocitaria humana (HLE), elastasa pancreática porcina
(PPE), o quimiotripsina pancreática bovina, o proteasas de cisteína
tales como la catepsina B hepática humana (Cat B).
Una ventaja adicional de la presente invención es
que proporciona péptidos pequeños de bajo peso molecular que son
capaces de atravesar las membranas de las células e inhiben la
actividad de la proteasa NS3 en cultivos de células.
Todavía, una ventaja adicional de los compuestos
de la presente invención reside en el hecho de que son activos en
ambos genotipos principales encontrados en aislados clínicos (1a y
1b), sugiriendo fuertemente que este compuesto será activo contra
todos los genotipos del HCV conocidos actualmente.
Se incluyen en el alcance de la invención
compuestos de fórmula (I):
en la que W es CH o
N,
R^{21} es H, halo, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6},
haloalquilo C_{1-6}, alcoxi
C_{1-6}, cicloalcoxi C_{3-6},
hidroxi o N(R^{23})_{2}, en donde cada R^{23}
es independientemente H, alquilo C_{1-6} o
cicloalquilo C_{3-6}; y
R^{22} es H, halo, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6},
haloalquilo C_{1-6}, tioalquilo
C_{1-6}, alcoxi C_{1-6},
cicloalcoxi C_{3-6}, alcoxi
C_{2-7}-alquilo, cicloalquilo
C_{3-6}, arilo C_{6 \ ó \ 10} o Het, en donde
Het es un heterociclo de cinco, seis o siete miembros, saturado o
insaturado, que contiene de uno a cuatro heteroátomos elegidos entre
nitrógeno, oxígeno y azufre; estando dichos cicloalquilo, arilo o
Het sustituidos con R^{24},
en donde R^{24} es H, halo, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6},
alcoxi C_{1-6}, cicloalcoxi
C_{3-6}, NO_{2},
N(R^{25})_{2};
NH-C(O)-R^{25}, o
NH-C(O)-NH-R^{25},
en donde cada R^{25} es, independientemente: H,
alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
o R^{24} es
NH-C(O)-OR^{26} en donde
R^{26} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
R^{3} es hidroxi, NH_{2}, o un grupo de
fórmula -NH-R^{31}, en donde R^{31} es arilo
C_{6 \ ó \ 10}, heteroarilo,
-C(O)-R^{32},
-C(O)-OR^{32} o
-C(O)-NHR^{32},
en donde R^{32} es alquilo
C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
D es una cadena de alquileno de 5 a 10 átomos
saturada o insaturada, que opcionalmente contiene uno a tres
heteroátomos independientemente elegidos entre: O, S o
N-R^{41}, en donde R^{41} es H, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6} o
-C(O)-R^{42}, en donde R^{42} es alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6} o
arilo C_{6 \ ó \ 10};
R^{4} es H o de uno a tres sustituyentes en
cualquier átomo de carbono de dicha cadena D, dicho sustituyente
elegido independientemente entre el grupo formado por: alquilo
C_{1-6}, haloalquilo C_{1-6},
alcoxi C_{1-6}, hidroxi, halo, amino, oxo, tio o
tioalquilo C_{1-6}, y
A es una amida de fórmula
-C(O)-NH-R^{5}, en donde
R^{5} se elige entre el grupo formado por: alquilo
C_{1-8}, cicloalquilo C_{3-6},
arilo C_{6 \ ó \ 10} o aralquilo C_{7-16};
o A es un ácido carboxílico o una sal o éster del
mismo farmacéuticamente aceptable.
Se incluye dentro del alcance de esta invención
una composición farmacéutica que comprende una cantidad eficaz como
anti-virus de la hepatitis C de un compuesto de
fórmula I, o una sal o éster del mismo aceptables terapéuticamente,
mezclado con un medio vehículo o un agente auxiliar aceptables
farmacéuticamente.
Un aspecto importante de la invención implica el
uso del compuesto de fórmula I, según se describe antes, para la
preparación de un medicamento para inhibir la replicación del virus
de la hepatitis C.
Otro aspecto importante implica el uso del
compuesto de fórmula I, según se describe antes, para la
preparación de un medicamento para el tratamiento o la prevención
de una infección por virus de la hepatitis C.
De acuerdo con una realización, las composiciones
farmacéuticas de esta invención comprenden un agente
inmunomodulador adicional. Ejemplos de agentes inmunomoduladores
adicionales incluyen, pero no se limitan a \alpha-, \beta- y
\delta-interferones.
De acuerdo con una realización alternativa, las
composiciones farmacéuticas de esta invención pueden comprender
adicionalmente un agente antiviral. Ejemplos de agentes antivirales
incluyen ribavirina y amantadina.
De acuerdo con otra realización alternativa, las
composiciones farmacéuticas de esta invención pueden comprender
adicionalmente otros inhibidores de la proteasa del HCV.
De acuerdo con otra realización alternativa más,
las composiciones farmacéuticas de esta invención pueden comprender
adicionalmente un inhibidor de otras dianas en el ciclo vital del
HCV tales como helicasa, polimerasa, metaloproteasa o IRES.
Como se usa en el presente texto, las
definiciones que siguen son válidas a menos que se indique otra
cosa:
Con referencia a los casos en los que se usan
(R) o (S) para designar la configuración absoluta de
un sustituyente, p. ej. R^{4}, del compuesto de fórmula I, la
designación se hace en el contexto del compuesto completo y no en
el contexto de solamente el sustituyente.
La designación "P1, P2 y P", como se usa en
el presente texto, se refiere a la posición de los restos de
aminoácidos partiendo del extremo del término C de los análogos de
péptido y prolongándose hacia el término N (es decir, P1 se refiere
a la posición 1 a partir del término C, P2: segunda posición a
partir del término C, etc.) (véase Berger A. y Schechter I.,
Transactions of the Royal Society London series B257,
249-264 (1970)).
Como se usa en el presente texto, la expresión
"ácido
1-aminociclopropil-carboxílico"
(ACCA) se refiere a un compuesto de fórmula:
Como se usa en el presente texto, la expresión
"vinil-ACCA" se refiere a un compuesto de
fórmula:
Como se usa en el presente texto, la expresión
"homoalil-ACCA" se refiere a un compuesto de
fórmula:
El término "halo", como se usa en el
presente texto, significa un sustituyente de halógeno elegido entre
bromo, cloro, flúor o yodo.
La expresión "haloalquilo
C_{1-6}", como se usa en el presente texto,
bien sea sola o en combinación con otro sustituyente, significa
sustituyentes de alquilo acíclico, de cadena lineal o ramificada,
que contienen de 1 a seis átomos de carbono que tienen uno o más
hidrógenos sustituidos con un halógeno elegido entre bromo, cloro,
flúor o yodo.
La expresión "tioalquilo
C_{1-6}", como se usa en el presente texto,
bien sea sola o en combinación con otro sustituyente, significa
sustituyentes de alquilo acíclico, de cadena lineal o ramificada,
que contienen un grupo tiol, tal como un tiopropilo.
La expresión "alquilo
C_{1-6}" o "alquilo inferior", como se usa
en el presente texto, bien sea sola o en combinación con otro
sustituyente, significa sustituyentes de alquilo acíclico, de
cadena lineal o ramificada, que contienen de 1 a seis átomos de
carbono, e incluye, por ejemplo, metilo, etilo, propilo, butilo,
hexilo, 1-metiletilo,
1-metilpropilo, 2-metilpropilo,
1,1-dimetiletilo.
La expresión "cicloalquilo
C_{3-6}", como se usa en el presente texto,
bien sea sola o en combinación con otro sustituyente, significa un
sustituyente de cicloalquilo que contiene de tres a seis átomos de
carbono, e incluye ciclopropilo, ciclobutilo, ciclopentilo y
ciclohexilo. La expresión "cicloalquilo insaturado" incluye,
por ejemplo, el sustituyente ciclohexenilo:
La expresión "alquileno saturado o
insaturado", como se usa en el presente texto, significa un
sustituyente de alquilo divalente derivado de la eliminación de un
átomo de hidrógeno de cada extremo de un hidrocarburo alifático de
cadena lineal o ramificada, saturado o insaturado, e incluye, por
ejemplo:
-CH_{2}CH_{2}C(CH_{3})_{2}CH_{2}CH_{2}-,
\hskip0,5cm-CH_{2}CH_{2}CH=CHCH_{2}CH_{2}-
\hskip0,5cmo
\hskip0,5cm-CH_{2}C\equivCCH_{2}CH_{2}-.
Esta cadena de alquilo puede contener
opcionalmente un heteroátomo tal como oxígeno (por ejemplo:
CH_{3}-CH_{2}-O-CH_{2}-).
La expresión "alcoxi
C_{1-6}", como se usa en el presente texto,
bien sea sola o en combinación con otro sustituyente, significa el
sustituyente -O-alquilo C_{1-6},
en donde alquilo es como se definió antes, que contiene hasta seis
átomos de carbono. Alcoxi incluye metoxi, etoxi, propoxi,
1-metiletoxi, butoxi y
1,1-dimetiletoxi. Este último sustituyente es
conocido comúnmente como terc-butoxi.
La expresión "cicloalquilo
C_{3-6}", como se usa en el presente texto,
bien sea sola o en combinación con otro sustituyente, significa el
sustituyente -O-cicloalquilo
C_{3-6} que contiene de tres a 6 átomos de
carbono.
La expresión "alcoxi
C_{1-6}-alquilo", como se usa
en el presente texto, significa el sustituyente alquil
C_{1-6}-O-alquilo
C_{1-6}, en la que alquilo es como se definió
anteriormente, que contiene hasta seis átomos de carbono. Por
ejemplo, metoximetilo significa
-CH_{2}-O-CH_{3}.
La expresión "acilo
C_{2-7}", como se usa en el presente texto,
bien sea sola o en combinación con otro sustituyente, significa un
grupo alquilo C_{1-6} unido a través de un grupo
carbonilo tal como -C(O)-alquilo
C_{1-6}.
La expresión "arilo C_{6} o C_{10}",
como se usa en el presente texto, bien sea sola o en combinación
con otro sustituyente, significa un sistema monocíclico aromático
que contiene 6 átomos de carbono o bien un sistema bicíclico
aromático que contiene 10 átomos de carbono. Por ejemplo, arilo
incluye un sistema de anillo de fenilo o de naftilo.
La expresión "aralquilo
C_{7-16}", como se usa en el presente texto,
bien sea sola o en combinación con otro sustituyente, significa un
arilo como se definió anteriormente unido a través de un grupo
alquilo, en donde el alquilo es como se definió anteriormente que
contiene de 1 a 6 átomos de carbono. Aralquilo incluye, por
ejemplo, bencilo y butilfenilo.
El término "Het" como se usa en el presente
texto, bien sea solo o en combinación con otro sustituyente,
significa un sustituyente monovalente derivado por eliminación de
un hidrógeno de un heterociclo de cinco, seis o siete miembros,
saturado o insaturado (incluyendo aromático), que contiene de uno a
cuatro heteroátomos elegidos entre nitrógeno, oxígeno y azufre. Los
ejemplos de heterociclos adecuados incluyen: tetrahidrofurano,
tiofeno, diazepina, isoxazol, piperidina, dioxano, morfolina,
pirimidina o
El término "Het" incluye también un
heterociclo como se definió anteriormente fusionado con uno o más
de otros ciclos, sea un heterociclo o cualquier otro ciclo. Un
ejemplo de estos incluye
tiazolo[4,5-b]-piridina.
Aunque generalmente se encuentra bajo el término
"Het", el término "heteroarilo", como se usa en el
presente texto, define con precisión un heterociclo insaturado para
el cual los dobles enlaces forman un sistema aromático. Ejemplos
adecuados de sistema heteroaromático incluyen: quinolina, indol,
piridina,
La expresión "éster aceptable
farmacéuticamente", como se usa en el presente texto, bien sea
sola o en combinación con otro sustituyente, significa ésteres del
compuesto de fórmula I en los que cualquiera de las funciones
carboxilo de la molécula, pero preferentemente el término carboxi,
está reemplazado por una función alcoxicarbonilo:
en la que el resto R del éster se
elige entre alquilo (p. ej. metilo, etilo,
n-propilo, t-butilo,
n-butilo); alcoxialquilo (p. ej. metoximetilo);
alcoxiacilo (p. ej. acetoximetilo); aralquilo (p. ej. bencilo);
ariloxialquilo (p. ej. fenoximetilo); arilo (p. ej. fenilo),
opcionalmente sustituido con halógeno, alquilo
C_{1-4} o alcoxi C_{1-4}. Otros
ésteres profármacos adecuados se encuentran en Design of Prodrugs,
Bundgaard, H. comp. Elsevier (1985), que se incorpora al presente
texto como referencia. Tales ésteres aceptables farmacéuticamente
se hidrolizan normalmente in vivo cuando son inyectados en
un mamífero, y se transforman en la forma ácido del compuesto de
fórmula
I.
Con relación a los ésteres descritos
anteriormente, a menos que se especifique otra cosa, cualquier
resto alquilo presente contendrá ventajosamente de 1 a 16 átomos de
carbono, en particular de 1 a 6 átomos de carbono. Cualquier resto
arilo presente en tales ésteres comprende ventajosamente un grupo
fenilo.
En particular los ésteres pueden ser un éster de
alquilo C_{1-16}, un éster de bencilo no
sustituido o un éster de bencilo sustituido con al menos un
halógeno, alquilo C_{1-6}, alcoxi
C_{1-6}, nitro o trifluorometilo.
La expresión "sal aceptable
farmacéuticamente", como se usa en el presente texto, incluye
las sales derivadas de bases aceptables farmacéuticamente. Ejemplos
de bases adecuadas incluyen colina, etanolamina y etilendiamina. Las
sales de Na^{+}, K^{+} y Ca^{++} se consideran también dentro
del alcance de la invención (véase también Pharmaceutical Salts,
Birge, S.M. et al., J. Pharm. Sci. (1977), 66,
1-19, incorporada al presente texto como
referencia).
Realizaciones preferidas de la presente invención
incluyen compuestos de fórmula I como se describió anteriormente,
en la que el centro del carbono 1 tiene la configuración R y
D está unido en la configuración syn respecto a A como se
representa por las estructuras (i) y (ii):
Más preferentemente, el enlazador D está unido en
la configuración syn respecto a A como se representa por la
estructura (ii).
Realizaciones preferidas de la presente invención
incluyen compuestos de fórmula I como se describió anteriormente,
en la que el resto de fórmula
en donde W es preferentemente
N.
Preferentemente, R^{21} es H, alquilo
C_{1-6}, alcoxi C_{1-6},
hidroxi, cloro o N(R^{23})_{2}, en donde R^{23}
es preferentemente H o alquilo C_{1-6}. Más
preferentemente, R^{21} es H o alcoxi C_{1-6}.
Lo más preferentemente R^{21} es metoxi.
Preferentemente R^{22} es H, tioalquilo
C_{1-6}, alcoxi C_{1-6}, fenilo
o Het elegido entre el grupo formado por:
Preferentemente, R^{24} es H, alquilo
C_{1-6}, NH-R^{25},
NH-C(O)-R^{25}; o
NH-C(O)-NH-R^{25}
o NH-C(O)-OR^{26}.
Más preferentemente, R^{22} es alcoxi
C_{1-4}, fenilo o Het elegido entre el grupo
formado por:
Más preferentemente, R^{24} es H, alquilo
C_{1-6}, NH-R^{25},
NH-C(O)-R^{25}; o
NH-C(O)-OR^{26}.
Lo más preferentemente, R^{22} es etoxi, o Het
elegido entre el grupo formado por:
Lo más preferentemente, R^{24a} es
NH-R^{25},
NH-C(O)-R^{25} o
NH-C(O)-OR^{26}. Lo más
preferentemente, R^{24b} es H o alquilo
C_{1-6}.
Preferentemente, cada R^{25} es
independientemente H, alquilo C_{1-6} o
cicloalquilo C_{3-6}. Más preferentemente,
R^{25} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6}. Más preferentemente, R^{25} es alquilo
C_{1-6}.
Preferentemente, R^{26} es alquilo
C_{1-6}.
R^{3}:
Realizaciones preferidas de la presente invención
incluyen compuestos de fórmula I como se describió anteriormente,
en la que el resto R^{3} es preferentemente una amida de fórmula
NH-C(O)-R^{32}, una urea de
fórmula
NH-C(O)-NH-R^{32},
o un carbamato de fórmula
NH-C(O)-OR^{32}. Más
preferentemente, R^{3} es un carbamato o una urea. Lo más
preferentemente, R^{3} es un carbamato.
Preferentemente, R^{32} es alquilo
C_{1-6} o cicloalquilo C_{3-6}.
Más preferentemente, R^{32} es alquilo C_{1-6}
o cicloalquilo C_{4-6}. Lo más preferentemente,
R^{32} es terc-butilo, ciclobutilo o
ciclo-pentilo.
D:
Realizaciones preferidas de la presente invención
incluyen compuestos de fórmula I, en la que el enlazador D es una
cadena de alquileno de 6 a 8 átomos, saturada o insaturada. Más
preferentemente, el enlazador D es una cadena de 7 átomos.
Preferentemente, la cadena D contiene uno o dos
heteroátomos elegidos entre: O, S, NH, N-alquilo
C_{1-6} o N-acilo
C_{2-7}. Más preferentemente, la cadena D
contiene opcionalmente un heteroátomo elegido entre: NH o
N-acilo C_{2-7}, lo más
preferentemente N(Ac), y está situado en el átomo 10 de la
cadena. Lo más preferentemente, la cadena que contiene un átomo de
nitrógeno está saturada.
Alternativamente, D contiene un heteroátomo
elegido entre O ó S. Preferentemente, cuando D tiene una longitud
de 7 átomos, el átomo O ó S está en la posición 9 de la cadena.
Preferentemente, esta cadena está sustituida con R^{4}, en donde
R^{4} es H o alquilo C_{1-6}. Más
preferentemente, R^{4} es H o metilo. Lo más preferentemente,
R^{4} es H u 8-(S)-Me. Aún más
preferentemente, D está saturado. Alternativamente, D contiene un
doble enlace en posición 11,12. Preferentemente, este doble enlace
es trans.
Alternativamente, D es una cadena todo carbono de
alquileno saturada o insaturada. En este caso, D está
preferentemente saturado y es de una longitud de 7 átomos. Más
preferentemente, D está sustituido con R^{4}, en donde R^{4} es
oxo, tio, hidroxi, tioalquilo, alcoxi o alquilo. Más
preferentemente, R^{4} es H o alquilo C_{1-6}.
Lo más preferentemente, R^{4} es H o metilo. Lo más
preferentemente, R^{4} es H ó
10-(S)-Me.
Alternativamente, D es una cadena todo carbono de
alquileno que contiene preferentemente un doble enlace y es de una
longitud de 7 átomos. Más preferentemente, este doble enlace está
en posición 13,14 de la cadena. Lo más preferentemente, este doble
enlace es cis. Preferentemente, esta cadena D está
sustituida con R^{4}, en donde R^{4} es H, oxo, hidroxi, alcoxi
o alquilo. Más preferentemente, R^{4} es H o alquilo
C_{1-6}. Incluso más preferentemente, R^{4} es
H o metilo. Lo más preferentemente, R^{4} es H ó
10-(S)-Me.
A:
Realizaciones preferidas de la presente invención
incluyen compuestos de fórmula I como se describió anteriormente,
en la que A es un ácido carboxílico.
Realizaciones preferidas de la presente invención
incluyen compuestos de fórmula I como se describió anteriormente,
en la que R^{2} es un sustituyente de quinolina (es decir W es
N);
R^{3} es un grupo de fórmula
-NH-C(O)-NHR^{32} o
-NH-C(O)-OR^{32}, en donde
R^{32} es alquilo C_{1-4} o cicloalquilo
C_{4-6};
D es una cadena de alquileno de 6 a 8 átomos
saturada o insaturada unida a R^{1} en configuración syn
respecto a A, que opcionalmente contiene uno o dos heteroátomos
independientemente elegidos entre: O, S ó
N-R^{41}, en donde R^{41} es acilo
C_{2-7};
R^{4} es H, o de uno a tres sustituyentes
elegidos independientemente entre hidroxi o alquilo
C_{1-6}; y
A es un ácido carboxílico, o una sal o éster del
mismo aceptable farmacéuticamente.
Más preferentemente son compuestos de fórmula I,
en la que R^{1} es como se definió anteriormente; R^{21} es H o
metoxi;
R^{22} es alcoxi C_{1-6}, o
Het elegido entre el grupo formado por:
en donde R^{24a} es H, alquilo
C_{1-6}, NH-R^{25},
-NH-C(O)-R^{25},
-NH-C(O)-NH-R^{25},
en donde R^{25} es H, alquilo
C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
o R^{24a} es
-NH-C(O)-OR^{26}, en donde
R^{26} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
y R^{24b} es H o alquilo
C_{1-6};
R^{3} es una urea de fórmula
-NH-C(O)-NHR^{32} o un
carbamato de fórmula
-NH-C(O)-OR^{32}, en la que
R^{32} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
D es una cadena de alquileno de 7 átomos de C
saturada o insaturada, que opcionalmente contiene un doble enlace
en posición 11,12 ó 13,14;
conteniendo opcionalmente dicha cadena D un
heteroátomo elegido independientemente entre: O, S, NH,
N(Me) o N(Ac); y
R^{4} es H o alquilo
C_{1-6}.
Lo más preferentemente, son compuestos de fórmula
I, en la que R^{21} es metoxi, y R^{22} es etoxi o:
en donde R^{24a} es NH-(alquilo
C_{1-4}), NH-C(O)-(alquilo
C_{1-4}) o
NH-C(O)-O-(alquilo
C_{1-4});
y
D está saturado o contiene un doble enlace
cis en posición 13,14.
Finalmente, están incluidos en el alcance de esta
invención todos los compuestos de fórmula I que se presentan en las
Tablas 1 a 9.
Las composiciones farmacéuticas de esta invención
pueden ser administradas oralmente, parenteralmente o mediante un
reservorio implantado. Se prefieren la administración oral o la
administración mediante inyección. Las composiciones farmacéuticas
de esta invención pueden contener cualesquiera soportes,
coadyuvantes o vehículos convencionales, no tóxicos y
farmacéuticamente aceptables. En algunos casos, el pH de la
formulación puede ajustarse con ácidos, bases o tampones aceptables
farmacéuticamente para mejorar la estabilidad del compuesto
formulado o su forma de suministro. El término parenteral, como se
usa en el presente texto, incluye las técnicas de infusión o
inyección subcutánea, intracutánea, intravenosa, intramuscular,
intra-articular, intrasinovial, intrasternal,
intratecal e intralesional.
Las composiciones farmacéuticas pueden estar en
forma de preparado inyectable estéril, por ejemplo como suspensión
acuosa u oleosa inyectable estéril. Esta suspensión puede ser
formulada de acuerdo con métodos conocidos en la técnica usando
agentes dispersantes o humectantes adecuados (tales como, por
ejemplo, Tween 80) y agentes de suspensión.
Las composiciones farmacéuticas de esta invención
pueden administrarse oralmente en cualquier forma de dosificación
aceptable oralmente incluyendo, pero sin limitarse a ellas,
cápsulas, comprimidos y suspensiones y soluciones acuosas. En el
caso de los comprimidos para uso oral, los soportes que se usan
comúnmente incluyen lactosa y almidón de maíz. También se añaden
típicamente agentes lubricantes tales como estearato de magnesio.
Para administración oral en forma de cápsula, los diluyentes útiles
incluyen lactosa y almidón de maíz seco. Cuando se administran
oralmente suspensiones acuosas, el ingrediente activo se combina
con agentes emulsionantes y de suspensión. Si se desea, pueden
añadirse ciertos agentes edulcorantes y/o saborizantes y/o
colorantes.
Otros vehículos o soportes adecuados para las
formulaciones y composiciones anteriormente indicadas pueden
encontrarse en textos farmacéuticos convencionales, p. ej. en
"Remington's Pharmaceutical Sciences", 19ª ed., Mack
Publishing Company, Easton, Penn., 1995. Niveles de dosificación
entre aproximadamente 0,01 y aproximadamente 100 mg/kg de peso
corporal por día, preferentemente entre aproximadamente 0,5 y
aproximadamente 75 mg/kg de peso corporal por día, de los
compuestos inhibidores de proteasa descritos en el presente texto,
son útiles en una monoterapia para la prevención y el tratamiento
de enfermedades mediadas por el HCV. Típicamente, las composiciones
farmacéuticas de esta invención serán administradas entre
aproximadamente 1 y aproximadamente 5 veces al día o,
alternativamente, como infusión continua. Tal administración puede
usarse como terapia crónica o aguda. La cantidad de ingrediente
activo que puede combinarse con los materiales de soporte para
producir un forma de dosificación individual variará dependiendo del
hospedador tratado y del modo de administración particular. Un
preparado típico contendrá de aproximadamente 5% a aproximadamente
95% de compuesto activo (p/p). Preferentemente, tales preparados
contienen de aproximadamente 20% a aproximadamente 80% de compuesto
activo.
Como apreciará el profesional experto, pueden
requerirse dosis más bajas o más altas que las citadas antes. La
dosificación específica y los regímenes de tratamiento para
cualquier paciente particular dependen de diversos factores,
incluyendo la actividad del compuesto específico empleado, la edad,
el peso corporal, el estado general de salud, el sexo, la dieta, el
tiempo de administración, la velocidad de excreción, la combinación
de fármacos, la gravedad y el curso de la infección, la disposición
del paciente hacia la infección y el criterio del médico
responsable del caso. En general, el tratamiento se inicia con
pequeñas dosificaciones sustancialmente menores que la dosis de
péptido óptima. A continuación, la dosificación se aumenta en
pequeños incrementos hasta que se alcanza el efecto óptimo bajo las
circunstancias dadas. En general, lo más deseable es administrar el
compuesto a un nivel de concentración que generalmente proporcione
resultados eficaces antiviralmente sin provocar ningún efecto
secundario nocivo ni perjudicial.
Cuando las composiciones de esta invención
comprenden una combinación de un compuesto de fórmula I y uno o más
agentes terapéuticos o profilácticos adicionales, tanto el
compuesto como el agente adicional deben estar presentes en un
nivel de dosificación entre aproximadamente 10 y 100%, y más
preferentemente entre aproximadamente 10 y 80% de la dosificación
normalmente administrada en un régimen de monoterapia.
Cuando estos compuestos o sus sales aceptables
farmacéuticamente se formulan junto con un vehículo aceptable
farmacéuticamente, la composición resultante puede ser administrada
in vivo a mamíferos, tales como el hombre, para inhibir la
NS3 proteasa del HCV o para tratar o prevenir la infección por el
virus HCV. Tal tratamiento puede también conseguirse usando los
compuestos de esta invención en combinación con agentes que
incluyen, pero sin limitarse a ellos: agentes inmunomoduladores
tales como \alpha-, \beta- o
\gamma-interferones; otros agentes antivirales
tales como ribavirina, amantadina; otros inhibidores de la proteasa
NS3 del HCV; inhibidores de otras dianas del ciclo vital del HCV
tales como helicasa, polimerasa, metaloproteasa o sitio de entrada
al ribosoma interno (IRES); o combinaciones de los mismos. Los
agentes adicionales pueden combinarse con los compuestos de esta
invención para crear una forma de dosificación individual.
Alternativamente, estos agentes adicionales pueden ser
administrados separadamente a un mamífero como parte de una forma
de dosificación múltiple. En consecuencia, otra realización de esta
invención proporciona métodos para inhibir la actividad de la
proteasa NS3 del HCV en mamíferos administrando un compuesto de
fórmula I, en la que los sustituyentes son como se definió
anteriormente.
En una realización preferida, estos métodos son
útiles para reducir la actividad de la proteasa NS3 del HCV en un
mamífero. Si la composición farmacéutica comprende solamente un
compuesto de esta invención como componente activo, tales métodos
pueden comprender adicionalmente la etapa de administrar a dicho
mamífero un agente elegido entre un agente inmunomodulador, un
agente antiviral, un inhibidor de la proteasa del HCV, o un
inhibidor de otras dianas en el ciclo vital del HCV tales como
helicasa, polimerasa o metaloproteasa. Tal agente adicional puede
ser administrado al mamífero antes de, o al mismo tiempo que la
administración de las composiciones de esta invención.
En una realización preferida alternativa, estos
métodos son útiles para inhibir la replicación viral en un
mamífero. Tales métodos son útiles para tratar o prevenir
enfermedades por el HCV. Si la composición farmacéutica comprende
solamente un compuesto de esta invención como componente activo,
tales métodos pueden comprender adicionalmente la etapa de
administrar a dicho mamífero un agente elegido entre un agente
inmunomodulador, un agente antiviral, un inhibidor de la proteasa
del HCV, o un inhibidor de otras dianas en el ciclo vital del HCV.
Tal agente adicional puede ser administrado al mamífero antes, al
mismo tiempo, o después de la administración de la composición de
acuerdo con esta invención.
Los compuestos expuestos en el presente texto
pueden ser usados también como reactivos de laboratorio. La
solicitante proporciona por primera vez compuestos con un bajo peso
molecular, que soy muy activos y específicos frente a la proteasa
NS3 del HCV. Algunos de los presentes compuesto pueden ser
instrumentales para proporcionar herramientas de investigación para
diseñar ensayos de replicación viral, validación de sistemas de
ensayo con animales y estudios estructurales de biología para
incrementar los conocimientos del mecanismo de las enfermedades por
el HCV.
Los compuestos de esta invención pueden usarse
también para tratar o prevenir la contaminación viral de
materiales, y por tanto para reducir el riesgo de infección viral
del personal médico o de laboratorio, o de pacientes que entran en
contacto con tales materiales (p. ej. sangre, tejidos, instrumentos
e indumentaria quirúrgicos, instrumentos e indumentaria de
laboratorio, y aparatos y materiales para obtención de sangre o
para transfusiones).
En los documentos WO 00/09543 y WO 00/09558 se
describen varias formas de llevar a cabo la síntesis de intermedios
acíclicos de compuestos de fórmula I.
Los compuestos de la presente invención se
sintetizan de acuerdo con el procedimiento general ilustrado en los
Esquemas I, II y III (en los que PG es un grupo protector
apropiado). [En todos los esquemas presentados a continuación, D'
tiene la misma definición que D, pero es de 2 a 5 átomos más
corto].
Cuando la invención cubre compuestos de fórmula
I, en la que A es una amida N-sustituida,
vinil-ACCA o
homo-alil-ACCA es acoplado a una
amina apropiada antes del acoplamiento con P2. Tal acoplamiento
será fácilmente reconocido por los expertos en la técnica. Como
reconocerán los expertos en la técnica, tal amida (A) no está
protegida, sino que lleva cualquier sustituyente relevante R^{5}
como se definió antes.
La reacción de cierre de anillo
(macrociclización) se lleva a cabo por metátesis de olefina
(Esquema I), o cuando el enlazador contiene un átomo de nitrógeno,
por aminación reductora (Esquema II) o por formación de enlace
peptídico (Esquema III). Los detalles de estos procedimientos se
presentan a continuación:
\newpage
Esquema
I
La invención también se refiere a productos
intermedios de las fórmulas (A), (D), (E) y (G):
en donde X es PG o
R^{2};
cada PG es, independientemente, un grupo
protector;
R^{2} es un grupo de fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
en donde R^{21}, R^{22} y W son
como se definen en la reivindicación
1;
A' es un ácido carboxílico protegido;
y n es 2;
en donde X, A' y PG son como se
definen para las fórmulas (A) y (B); n es 1 ó
2;
D' es como se define para D, pero siendo 2 a 5
átomos más corta; y
D se define como para la fórmula (I);
en donde R^{2} es como se define
para las fórmulas (A) y (B), R^{3} y D son como se definen para
la fórmula
(I);
y
A' es un ácido carboxílico protegido.
Esquema
I
Hay varias formas por las que puede llevarse a
cabo la secuencia de acoplamiento, que pueden ser fácilmente
reconocidas por los expertos en la técnica. Partiendo de
4-(S)-hidroxiprolina, el sustituyente en el
4-hidroxi puede ser incorporado mediante una
reacción de Mitsunobu (como se describe en Mitsunobu,
Synthesis 1981, enero, 1-28; Rano
et al. Tet. Lett. 1994, 36,
3779-3792; Krchnak et al. Tet. Lett.
1995, 36, 6193-6196) antes o después de la
macrociclización. Alternativamente, el conjunto puede hacerse con
la prolina 4-(R)-hidroxi-sustituida
requerida, como se describe en los procedimientos generales de los
documentos WO 00/09543 y WO 00/09558 (véase más adelante para
ejemplos específicos de estos fragmentos).
Etapas A, B,
C
Brevemente, los restos P1, P2 y P3 pueden ser
unidos por técnicas de acoplamiento de péptidos bien conocidas y
descritas de un modo general en los documentos WO 00/09543 y WO
00/09558.
Etapa
D
La formación del macrociclo puede llevarse a cabo
mediante una metátesis de olefina usando un catalizador basado en
Ru tal como el publicado por Miller, S.J.; Blackwell, H.E.; Grubbs,
R.H. J. Am. Chem. Soc. 1996, 118, 9606-9614
(a); Kingsbury, J.S.; Harrity, J.P.A.; Bonitatebus, P.J.; Hoveyda,
A.H.; J. Am. Chem. Soc. 1999, 121, 791-799
(b) y Huang, J.; Stevens, E.D.; Nolan, S.P.; Petersen, J.L.; J.
Am. Chem. Soc. 1999, 121, 2674-2678 (c). Se
reconocerá también que pueden usarse para esta reacción
catalizadores que contienen otros metales de transición tales como
Mo.
Etapa
E
Opcionalmente, el doble enlace se reduce por
métodos de hidrogenación estándar bien conocidos en la técnica.
Cuando A' es un ácido carboxílico protegido, también se le
desprotege apropiadamente.
Cuando el enlazador contiene un átomo de
nitrógeno, la macrociclización se logra por aminación reductora
como se muestra en el Esquema II para obtener inhibidores de
estructura general II.
Esquema
II
Etapa
A
La hidroboración del doble enlace según el
procedimiento de Brown (H.C. Brown y B.C. Subba Rao, J. Am.
Chem. Soc. 1959, 81, 6434-6437), seguida
por la oxidación del alcohol resultante (por ejemplo mediante el
peryodinato de Dess-Martin, J. Am. Chem.
Soc. 1991, 113, 7277-7287) proporciona el
correspondiente aldehído.
Etapa
B
La hidrogenación en presencia de ácido conduce a
la eliminación del grupo protector de amino, seguida por
macrociclización mediante aminación reductora. La unidad P3 usada
en esta síntesis se obtiene fácilmente a partir de una variedad de
aminoácidos tales como lisina, ornitina, glutamina (después de una
reacción de Hofmann: Ber. 1881, 14, 2725) y otros;
estas modificaciones de síntesis son métodos bien conocidos en la
técnica.
Etapa
C
Opcionalmente, la amina secundaria en el
enlazador D (formada después de la etapa D) es alquilada con
haluros de alquilo o acetilada con cloruros de ácido de arilo o
alquilo usando metodologías bien conocidas en la técnica para
obtener inhibidores de estructura general II. Cuando A' es un ácido
carboxílico protegido, también se le desprotege apropiadamente.
La invención se refiere, además, a los productos
intermedios de las fórmulas (J), (K) y (L):
en donde R^{2} es como se define
para las fórmulas (A) y (B) y R^{3} es como se define para la
fórmula
(I);
m es 1 a 5;
n es 1 a 5;
A' es un ácido carboxílico protegido;
y Cbz es benciloxicarbonilo.
Alternativamente, se entiende que estos
compuestos macrocíclicos con estructura general I y II pueden ser
sintetizados por otros caminos. Por ejemplo, P1 y P3 pueden ser
primero conectados al enlazador D, después acoplados a P2, y la
reacción de macrociclización puede ser una formación de lactama de
dos formas posibles, como será reconocido por los expertos en la
técnica, y como se muestra en el Esquema III.
Esquema
III
La síntesis de inhibidores con estructura general
I y II requiere los mismos fragmentos P1:
a) vinil ACCA, cuya síntesis y resolución se
describen en los documentos WO 00/09543 y WO 00/09558, o
b) homoalil ACCA (Ejemplo 1, compuesto 1f).
Algunos de los fragmentos de P2 usados para la
síntesis de compuestos de fórmula I se describen en los documentos
WO 00/09543 y WO 00/09558.
Otros fragmentos de P2 se sintetizan como
sigue:
Esquema
IV
La síntesis se lleva a cabo de acuerdo con un
procedimiento modificado descrito en Li et al. J. Med.
Chem. 1994, 34, 3400-3407. El producto
intermedio IVa, en el que R^{21} = OMe (Ejemplo 7, compuesto 7b)
se prepara como se describe en Brown et al. J. Med.
Chem. 1989, 32, 807-826.
Etapa
A
El producto intermedio IVa es acoplado con ácidos
carboxílicos heterocíclicos IVb bajo condiciones básicas con
POCl_{3} para activar el grupo carboxilato. Se usan diversos
ácidos carboxílicos con la estructura general IVb para la
preparación de inhibidores; éstos están disponibles comercialmente o
bien se sintetizan como se indica en los esquemas V, VI y VII, o se
sintetizan individualmente usando métodos descritos en los ejemplos
específicos.
Etapa
B
El cierre del anillo, seguido por deshidratación,
se consigue bajo condiciones básicas para obtener quinolinas de
estructura general IVd.
Se usa el procedimiento modificado descrito por
Berdikhina et al. Chem. Heterocycl. Compd. (Traduc.
inglesa) 1991, 4, 427-433.
Esquema
V
Se preparan diversos ácidos
2-alquilaminotiazolil-4-carboxílicos,
compuestos de estructura general Vc, usando la metodología general
de síntesis señalada en el Esquema V usando tioureas (Va) con
diferentes sustituyentes de alquilo (R^{25}: grupo alquilo) y
ácido 3-bromopirúvico. Este tipo de reacción de
condensación en bien conocido en la técnica. Alternativamente, el
fragmento P2 que contiene los derivados de
2-amino-sustituido-tiazol
son sintetizados a partir del correspondiente derivado
2-carboxilo como se muestra en el esquema VI de
acuerdo con el procedimiento de: Unangst, P.C.; Connor, D.T. J.
Heterocyc. Chem. 29, 5, 1992,
1097-1100.
\newpage
Esquema
VI
Ejemplos de este procedimiento se describen en
los documentos WO 00/09543 y WO 00/09558.
Se preparan diversos ácidos
4-alquiltiazol-2-carboxílicos,
compuestos estructura general VIId, usando la metodología de
síntesis general que se señala en el Esquema VII.
Esquema
VII
El procedimiento descrito por Janusz et
al. J. Med. Chem. 1998, 41,
3515-3529 se usa con modificaciones como se
describen a continuación: se hace reaccionar tiooxamato de etilo
(VIIa) con diferentes \beta-bromocetonas de
estructura general VIIb (R^{24} = grupo alquilo) para formar
ácidos tiazolil-carboxílicos de estructura general
VIId. Este tipo de reacción de condensación es bien conocido en la
técnica.
Se preparan diversos ácidos
alquilimidazolil-2-carboxílicos,
compuestos de estructura general VIIIb, usando la metodología
general de síntesis señalada en el Esquema VIII.
Esquema
VIII
Se usó el procedimiento descrito por Baird et
al. J. Amer. Chem. Soc. 1996, 118,
6141-6146: se desprotoniza un
alquil-imidazol con una base fuerte (p. ej.
n-BuLi) y después se hace reaccionar con CO_{2}
para formar el ácido carboxílico VIIIb. Este tipo de reacción de
condensación es bien conocido en la técnica.
Las
4-hidroxi-7-R^{21}-quinolinas
que tienen un resto imidazolilo o pirazolilo en C2 se preparan
generalmente usando la metodología señalada en el Esquema IX.
Esquema
IX
\vskip1.000000\baselineskip
La síntesis del producto intermedio clave (en el
que R^{21} = OMe)
4-benciloxi-2-cloro-7-metoxiquinolina
IXa, se describe con detalle en el Ejemplo 6 (compuesto 6e).
Etapa
A
A temperaturas elevadas, pueden usarse diversos
imidazoles, imidazoles sustituidos con alquilo, pirazoles o
pirazoles sustituidos con alquilo para desplazar el resto 2 -cloro
del compuesto IXa dando compuestos de estructura general IXb.
Etapa
B
Al eliminar el grupo protector de bencilo del
resto 4-hidroxi de la quinolina por métodos de
hidrogenación estándar, se obtienen derivados de quinolina de
estructura general IXc.
Se sintetizan diversos fragmentos P3 que
contienen la prolongación del enlazador D apropiada para
macrociclización por metátesis de olefina. En general, las unidades
P3 que contienen una olefina terminal para metátesis se sintetizan
siguiendo los esquemas generales que se muestran a continuación
(Esquemas X, XI y XII).
Esta síntesis general se usa para preparar
enlazadores que están basados en todo carbono (sin heteroátomos)
(Esquema X).
\newpage
Esquema
X
La síntesis se realiza de acuerdo con el
procedimiento de Evans et al. J. Am. Chem. Soc.
1990, 112, 4011-4030.
Los ácidos carboxílicos de partida (Xa) están
disponibles comercialmente o se preparan por procedimientos
conocidos de la bibliografía, familiares para los expertos en la
técnica.
Etapa
A
El ácido carboxílico Xa se activa con cloruro de
pivaloílo y después se hace reaccionar con el anión del auxiliar
quiral de Evans
4(S)-4-(fenilmetil)-2-oxazolidinona
siguiendo una química bien conocida (revisión: D.J. Ager et
al., Aldrichimica Acta 1997, 30, 3-11, y
referencias contenidas en la misma) para obtener compuestos de
estructura general Xb.
Etapa
B
La \alpha-azidación
estereoselectiva con triazilazida de un enolato de imida quiral tal
como el que se formaría a partir de compuestos con estructura
general Xb en presencia de una base como KHMDS, es también bien
conocida en la técnica (revisión: D.J. Ager et al.,
Aldrichimica Acta 1997, 30, 3-11, y
referencias contenidas en la misma).
Etapa
C
La reducción de la
\alpha-azida, catalizada por SnCl_{2} es seguida
por la protección de la amina formada como su carbamato de
t-butilo da productos intermedios de estructura
general Xc. Estas reacciones son también bien conocidas en la
técnica.
Etapa
D
Finalmente, el auxiliar quiral es hidrolizado
bajo condiciones básicas, tales como las de una mezcla de
H_{2}O_{2} con LiOH, para producir los enlazadores de tipo
amionoácido de estructura general Xe.
Alternativamente, se sintetizan restos P3 que
tienen la misma estructura general Xe siguiendo el procedimiento
descrito por M.J. Burk et al. J. Am. Chem. Soc.
1998, 120, 657-663 ilustrado en el esquema
XI. Estos compuestos variaban en el número de unidades de metileno
(-CH_{2}-) a lo largo del enlazador (m = 1 a 5) y la sustitución
de grupos alquilo en R_{4}, pero no contenían ningún
heteroátomo.
Esquema
XI
Etapa
A
El compuesto monoácido XIb se prepara a partir de
2-acetamidomalonato de dietilo disponible
comercialmente por hidrólisis de ésteres estándar bajo condiciones
básicas.
Etapa
B
La condensación del tipo de Knoevenagel entre un
aldehído de estructura general XIc y compuesto XIb en presencia de
una base, tal como piridina, y anhídrido acético, conduce a la
formación del producto intermedio de enamida XId que tiene la
estereoquímica Z alrededor del doble enlace recién formado, como se
muestra.
Etapa
C
La hidrogenación catalítica regioselectiva y
enantioselectiva del producto intermedio de enamida XId para dar el
producto intermedio de aminoácido XIe se realiza usando el método
de Burk.
Etapa
D
El nitrógeno del derivado acetamido XIe es
después di-protegido con la adición de un
sustituyente de carbamato de t-butilo antes de que
el grupo acetato así como el éster etílico, sean hidrolizados bajo
condiciones básicas estándar para obtener restos P3 de la
estructura general XIf.
Esta síntesis general se usa para preparar
enlazadores que contienen oxígeno o azufre.
Esquema
XII
Etapa
A
Aminoácidos adecuadamente protegidos, tales como
éster metílico de Boc-(L)-serina, éster metílico de
Boc-(L)-treonina o éster metílico de
Boc-(L)-alotreonina, son alquilados con yoduro de
alilo en presencia de Ag_{2}O para dar el éster metílico
XIIb.
Etapa
B
La hidrólisis del éster metílico bajo condiciones
básicas estándar da los enlazadores de tipo éter de estructura
general XIIc (X=O).
Etapa
C
El análogo de azufre se prepara a partir del
mismo aminoácido de partida XIIa (apropiadamente protegido como
antes) y su grupo hidroxilo es convertido en un buen grupo lábil
(tal como el intermedio de tosilato XIId) usando una metodología
estándar bien conocida en la técnica.
Etapa
D
El resto tosilo fue subsiguientemente desplazado
con el anión de tioacetato, lo que lleva a la formación del
producto intermedio de tioéster XIIe por inversión del centro
quiral en el carbono \beta.
Etapa
E
La hidrólisis del resto tioéster bajo condiciones
básicas suaves da el tiol libre XIIf.
Etapa
F
La alquilación del resto tiol se consigue
fácilmente bajo condiciones básicas con yoduro de alilo.
Etapa
G
Finalmente, el análogo de sulfuro XIIc (X=S) se
obtiene después de la hidrólisis del éster metílico usando
procedimientos estándar.
Ejemplos de síntesis de fragmentos en los que
R^{3} es NH-R^{31} se describen en el documento
WO 00/09543.
La presente invención se ilustra con más detalle
mediante los siguientes ejemplos no limitantes. Otras formas
específicas de síntesis o resolución pueden encontrarse en los
documentos WO 00/09543 y WO 00/09558.
Las temperaturas se indican en grados Celsius.
Los porcentajes de las soluciones expresan una relación de peso a
volumen, y las relaciones de las soluciones expresan una relación
de volumen a volumen, a menos que se indique otra cosa. Los
espectros de resonancia nuclear magnética (NMR) fueron obtenidos en
un espectrómetro Bruker de 400 MHz; los desplazamientos químicos
(\delta) se expresan en partes por millón y se refieren al
disolvente deuterado interno, a menos que se indique otra cosa. Los
espectros de NMR de todos los compuestos finales (inhibidores) se
obtuvieron en DMSO-d_{6} de su sal de TFA a menos
que se indique otra cosa. La cromatografía en columna de resolución
rápida se llevó a cabo sobre gel de sílice (SiO_{2}) de acuerdo
con la técnica de cromatografía de resolución rápida de Still (W.C.
Still et al., J. Org. Chem., 1978, 43, 2923). Las
abreviaturas usadas en los ejemplos incluyen Bn: bencilo; Boc:
terc-butiloxicarbonilo [Me_{3}COC(O)]; BSA:
albúmina de suero bovino; Cbz: benciloxicarbonilo; CHAPS:
3-[(3-colamidopropil)-dimetilamonio]-1-propanosulfonato;
DBU:
1,8-diazabiciclo[5.4.0]undec-7-eno;
CH_{2}CH_{2}=DCM cloruro de metileno; DEAD:
dietilazodicarboxilato; DIAD: diisopropilazodicarboxilato; DIPEA:
diisopropiletilamina; DMAP: dimetilaminopiridina; DCC:
1,3-diciclohexilcarbodiimida; DME:
1,2-dimetoxietano; DMF: dimetilformamida; DMSO:
dimetilsulfóxido; DTT: titiotreitol o
treo-1,4-dimercapto-2,3-butanodiol;
DPPA: difenilfosforil-azida; EDTA: ácido
etilendiaminatetraacético; Et: etilo; EtOH: etanol; EtOAc: acetato
de etilo; Et_{2}O: dietil-éter; ESMS: espectrometría de masas por
electropulverización; HATU: hexafluorofosfato de
O-(7-azabenzotriazol-1-il)-1,1,3,3-tetrametiluronio;
HPLC: cromatografía de líquidos de alto rendimiento; MS:
espectrometría de masas; MALDI-TOF: tiempo de vuelo
de ionización por láser asistida por matriz; FAB: bombardeo con
átomos rápidos; LAH: hidruro de litio y aluminio; Me: metilo; MeOH:
metanol; MES: ácido
2-[N-morfolino]etanosulfónico; NaHDMS:
bis(trimetilsilil)amida sódica; NMM:
N-metilmorfolina; NMMO: óxido de
N-metilmorfolina; NMP:
N-metilpirrolidina; Pr: propilo; Succ:
3-carboxipropanoílo; PNA:
4-nitrofenilamino o p-nitroanilida;
TBAF: fluoruro de
tetra-n-butilamonio; TBME:
terc-butil-metil-éter; tBuOK:
terc-butóxido potásico; TBTU: tetrafluoroborato de
2-(1H-benzotriazol-1-il)-1,1,3,3-tetrametiluronio;
TCEP: hidrocloruro de
tris(2-carboxietil)fosfina; TFA: ácido
trifluoroacético; THF: tetrahidrofurano; TIS: triisopropilsilano;
TLC: cromatografía en capa fina; TMSE: trimetilsililetilo;
Tris/HCl: hidrocloruro de
tris(hidroximetil)aminometano.
A. A una suspensión de cloruro de
benciltrietilamonio (5,08 g, 22,3 mmol) en solución acuosa de NaOH
al 50% (50 mL), se añadieron sucesivamente
1,2-dibromo-5-hexeno
(1b, 8,10 g, 33,46 mmol) y malonato de
di-t-butilo (1a, 4,82 g, 22,30
mmol). La mezcla se agitó vigorosamente a temperatura ambiente (TA)
durante 16 h, después se diluyó con H_{2}O y se extrajo con
CH_{2}Cl_{2} (3 x 50 mL). La capa orgánica se siguió lavando con
H_{2}O (2 x 50 mL) y salmuera/H_{2}O (2/1,2 x 50 mL), se secó
sobre MgSO_{4} y se evaporó. El residuo crudo se purificó
mediante cromatografía de resolución rápida en columna sobre gel de
sílice, usando EtOAc al 3 a 5% en hexano como eluyente, para
obtener el compuesto 1c con un 38% de rendimiento (2,48 g).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 1,19
(bd, J = 7,9 Hz, 2H); 1,25-1,33 (m, 1H); 1,46 (s,
9H); 1,48 (s, 9H); 1,47-1,60 (m, 1H);
1,75-1,82 (m, 1H), 2,14-2,22 (m,
2H); 4,93-5,50 (m, 2H); 4,96 (dm, J = 10,2 Hz, 1H),
5,18 (dm, J = 17,2 Hz, 1H). ES(+)MS m/z 297
(M+H)^{+}.
B. A una suspensión de t-butóxido
potásico (5,75 g, 51,25 mmol) en dietil- éter anhidro (150 mL) a
0ºC, se añadió H_{2}O (203 \muL, 11,27 mmol) y la mezcla de
reacción se agitó a 0º durante 10 min. Se añadió una solución etérea
de compuesto 1c (2,48 g en 10 mL de dietil-éter, 10,25 mmol) y la
mezcla se agitó a TA durante 5 h. La mezcla se diluyó con H_{2}O
enfriada con hielo y se extrajo con dietil-éter (3 x 200 mL). La
capa acuosa se acidificó a pH 3,5-4 con ácido
cítrico acuoso al 10% enfriado con hielo y se
re-extrajo con EtOAc (3 x 200 mL). La capa de EtOAc
se lavó con H_{2}O (2 x 100 mL) y con salmuera (100 mL), se secó
sobre MgSO_{4} y se evaporó para dar el compuesto 1d con un
rendimiento del 85% basado en la cantidad de material de partida
recuperado.
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 1,51
(s, 9H); 1,64-1,68 (m, 1H);
1,68-1,75 (m, 1H); 1,77-1,88 (m,
1H); 1,96-2,01 (m, 1H); 2,03-2,22
(m, 3H); 5,01 (dm, J = 6,4 Hz, 1H); 5,03 (dm, J = 14,9 Hz, 1H);
5,72-5,83 (m, 1H).
ES(+)MS m/z 241 (M+H)^{+}.
C. A una solución del ácido 1d en benceno anhidro
(1,14 g en 25 mL de benceno, 4,74 mmol) se añadió Et_{3}N (800
\muL, 5,68 mmol), seguido por la adición de
difenilfosforil-azida (1,13 mL, 5,21 mmol) y la
mezcla se calentó a reflujo durante 3,5 h. Subsiguientemente se
añadió trimetilsililetanol (1,36 mL, 9,48 mmol) y se siguió
agitando a reflujo durante 4 h adicionales. Después se enfrió la
mezcla a TA, se evaporó hasta la mitad de su volumen original, se
diluyó con dietil-éter (30 mL) y se lavó con solución acuosa de
NaHCO_{3} al 5% (2 x 30 mL) y salmuera (50 mL), se secó sobre
MgSO_{4} y se evaporó. El aceite residual se cromatografió sobre
gel de sílice usando EtOAc al 10% en hexano como eluyente para
obtener el compuesto 1e puro con un rendimiento del 88% (1,49
g).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 0,03
(s, 9H); 0,91-0,99 (m, 2H);
1,18-1,29 (m, 2H); 1,45 (bs, 11H);
1,56-1,72 (m, 2H); 2,02-2,18 (m,
2H); 4,12 (t, J = 8,3 Hz, 2H); 4,93 (dm, J = 10,2 Hz, 1H); 4,98
(dm, J = 17,2 Hz, 1H); 5,07 (bs, 1H), 5,71-5,83 (m,
1H).
D. A una solución del derivado de ciclopropilo 1e
(1,19 g, 3,35 mmol, en 30 mL de THF), se añadió
t-Bu_{4}NF (6,7 mL de 1M en THF, 6,7 mmol) y la
mezcla se agitó primero a TA durante 16 h y a continuación se
calentó a reflujo durante 15 min. El disolvente fue evaporado
cuidadosamente a baja presión (debido a la alta volatilidad de la
amina libre 1f, se ha de tener cuidado durante la evaporación del
disolvente). El residuo crudo se redisolvió en EtOAc (100 mL) y se
lavó con H_{2}O (2 x 50 mL) y con salmuera (50 mL), se secó sobre
MgSO_{4} y el disolvente se evaporó de nuevo con cuidado. El
producto crudo 1f (como mezcla de dos enantiómeros 1f' y 1f'') se
usó para acoplamiento con los derivados de prolina P2 sin más
purificación. El aislamiento del fragmento P1P2 que tiene la
estereoquímica deseada en P1 se logró fácilmente en esta etapa
usando cromatografía de resolución rápida (ejemplo 21, fragmento
21b).
\vskip1.000000\baselineskip
Se preparó
4-hidroxi-7-metoxiquinolina
(2b) de acuerdo con el método descrito por Chun, M.W.; Olmstead,
K.K.; Choi, Y.S.; Lee, C.O.; Lee, C.-K.; Kim, J.H.; Lee, J.
Bioorg. Med. Chem. Lett. 1997, 7, 789. Una solución de
compuesto 2b (1,88 g, 10,73 mmol) y DEAD (3,4 ml, 21,46 mmol) en
THF anhidro se añadió a una solución agitada de
cis-hidroxiprolina protegida 2a (2,63 g, 10,73 mmol)
y trifenilfosfina (5,63 g, 21,46 mmol) en THF anhidro (160 ml) a
0ºC bajo N_{2}. Se dejó calentar la mezcla de reacción a TA y se
agitó durante 14 h. Después, el THF se evaporó y se aisló el
producto puro 2c después de cromatografía en columna de resolución
rápida usando MeOH al 5% en EtOAc como eluyente, con un rendimiento
del 35% (1,5 g).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 1,44
(s, 9H); 1,65 (bs, 1H); 2,34-2,43 (m, 1H);
2,63-2,76 (m, 1H); 3,78 (s, 3H);
3,75-3,85 y 3,89-3,99 (2m, 1H, 2
rotámeros); 3,95 (s, 3H), 4,51 y 4,60 (2t, J = 8 Hz, 1H, 2
rotámeros), 5,15 (bs, 1H); 6,53-6,59 (m, 1H);
7,12-7,18 (dd, J = 8,9 y 2,2 Hz, 1H); 7,36 (d, J =
2,6 Hz, 1H); 8,03 (bd, J = 9,2 Hz, 1H); 8,65 (bd, J = 5,1 Hz,
1H).
\vskip1.000000\baselineskip
La síntesis de
p-metoxiantranilato de metilo 3a se hizo como se
describe en Katz et al. J. Org. Chem. 1953,
18, 1380-1400.
La síntesis general para el derivado de quinolina
es una modificación del procedimiento de Baccar et al.,
Indian Journal of Chemistry, 1995, Sat. B,
330-332.
A. Se disolvió
p-metoxiantranilato de metilo 3a (3,069 g, 16,96
mmol) en ortoacetato de trietilo (4,7 ml, 25,4 mmol), y después se
añadió una solución de HCl anhidro (4N/dioxano, 50 \mul, 0,6
mmol). La mezcla resultante se calentó a reflujo durante 19 horas.
Después se evaporaron las sustancias volátiles bajo vacío para dar
el producto 3b (4,92 g, aceite ámbar, rendimiento cuantitativo) que
se usó tal cual para la siguiente etapa.
B. A una solución del sustrato 3b (supuestos
16,96 mmol) en THF (34 ml) a -78ºC bajo nitrógeno, se añadió LiHMDS
(1M/THF, 22 ml, 1,3 eq.). Al poco de la adición, se retiró el baño
a baja temperatura y la mezcla se dejó agitando a temperatura
ambiente durante 1 hora, al cabo de la cual se añadió otra porción
de LiHMDS (16 ml). La mezcla resultante se agitó hasta la
desaparición completa del material de partida (1 hora) por TLC
(EtOAc al 100%, R_{f} imidato = 0,7; R_{f} producto = 0,2).
Después se añadió HCl (4N/dioxano, 10 ml) y la mezcla se concentró
bajo vacío. La pasta resultante se trituró en una mezcla de EtOAc
(10 ml) y solución acuosa de NaH_{2}PO_{4} (1M, 10 ml) y se
sometió a ultrasonidos. Se formó un precipitado abundante, se
recogió por filtración, se lavó con agua y se secó para dar el
producto deseado 3c en forma de un sólido color beige (3,177 g, 84%
de rendimiento para las 2 etapas, > 99% de pureza por HPLC).
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO-d):
\delta (ppm): 7,88 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 6,98 (br s, 1H), 6,89 (br
d, J = 8,6 Hz, 1H), 5,94 (br s, 1H), 4,30 (br s, 2H), 3,84 (s, 3H),
1,34 (t, J = 7,0 Hz, 3H).
\vskip1.000000\baselineskip
A. A una solución de
2-carbometoxi-4-hidroxi-7-metoxiquinolina
4a (cuya preparación se describe en los documentos WO 00/09543 y WO
00/09558 (1 g, 4,29 mmol) en DMF (10 ml) bajo nitrógeno, se añadió
NaH (al 60% en aceite mineral, 190 mg, 4,98 mmol). La mezcla
resultante se agitó a temperatura ambiente durante 1 hora, después
se añadió gota a gota cloruro de MEM (455 \mul, 4,98 mmol) y la
mezcla resultante se agitó a temperatura ambiente durante 19,5 horas
más. La mezcla de reacción se diluyó con EtOAc (100 ml), se lavó
con H_{2}O (50 ml) y con salmuera (50 ml), se secó con MgSO_{4}
y se concentró bajo vacío para dar el material de reacción aislado
crudo (1,37 g). Éste fue purificado mediante cromatografía en
columna de resolución rápida para dar el producto 4b (1,04 g,
rendimiento 75%) en forma de un aceite incoloro.
B. A una mezcla de tamiz molecular de 4 A recién
activado (500 mg) y acetamidoxima (248 mg, 3,35 mmol) se añadió THF
(3 ml). La mezcla resultante se agitó durante 15 min bajo nitrógeno
a temperatura ambiente, y después se añadió NaH (al 60% en aceite
mineral, 124 mg, 3,24 mmol) en porciones. La suspensión resultante
se agitó a temperatura ambiente durante 1 hora, y después se añadió
éster 4b (500 mg, 1,56 mmol) en solución en THF (5 ml). La mezcla
resultante se calentó a reflujo durante 1 hora, después se filtró
sobre celite, aclarando EtOAc (3 porciones de 20 ml) y se concentró
bajo vacío. La mezcla cruda resultante se purificó mediante
cromatografía en columna de resolución rápida (100% EtOAc) para dar
el producto 4c (352 mg, 65% de rendimiento) en forma de un sólido
blanco.
C. Al éter MEM 4c (170 g, 0,493 mmol) en THF (4
ml) se añadió HCl acuoso (1N, 1 ml). La mezcla resultante se agitó
a temperatura ambiente durante 1 hora, y después se diluyó con
solución acuosa de NaH_{2}PO_{4} (1M, 50 ml). El sólido formado
se filtró, se trituró con EtOAc, se filtró y se secó para dar el
producto deseado (4d) (90 mg, 71% de rendimiento) en forma de un
sólido blanco. MS (ES+) 258 (M+1), (ES-) 256
(M-1).
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO-d):
\delta (ppm): 8,03 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,38 (d, J = 2,2 Hz, 1H),
7,06 (d, J = 8,6 Hz, 1H), 6,85 (br s, 1H), 3,88 (s, 3H), 2,64 (s,
3H).
A. Al sustrato 4b (465 mg, 1,45 mmol) en etanol
(5 ml) se añadió hidrazina anhidra (57 \mul, 1,8 mmol). La
solución resultante se calentó a reflujo durante 4 h, después se
concentró bajo vacío para dar el producto 5a (704 mg, rendimiento
en crudo cuantitativo) en forma de un sólido amarillo, que se usó en
la etapa siguiente tal cual.
B. El compuesto 5a (supuestos 1,45 mmol) en
ortoacetato de trietilo (5 ml) se calentó a
100-110ºC bajo nitrógeno. La mezcla resultante se
diluyó después con EtOAc (100 ml), se lavó con solución acuosa
saturada de NaHCO_{3} (50 ml) y con salmuera (50 ml), se secó con
MgSO_{4}, se concentró bajo vacío y se purificó mediante
cromatografía en columna de resolución rápida (EtOAc al 100%). El
compuesto 5b (359 mg, 61% de rendimiento para las dos etapas) se
obtuvo en forma de un aceite amarillo. MS (ES+) 392 (m+1), (ES-)
390 (m-1).
C. El compuesto 5b (333 mg, 0,852 mmol) se
calentó a 140ºC en alto vacío durante 8,5 h, y se purificó mediante
cromatografía en columna de resolución rápida (100% de EtOAc) para
dar una mezcla de 5b (116 mg, 35%, R_{f} 0,5) y compuesto 5c (138
mg, 72% de rendimiento corregido, R_{f} 0,3). A una solución en
THF (4 ml) de compuesto 5c (138 mg, 0,4 mmol) se añadió solución
acuosa de HCl (1N, 1 ml) y la mezcla resultante se agitó hasta la
compleción (30 min). El THF fue evaporado bajo vacío y se añadió
NaH_{2}PO_{4} acuosa (1M, 2 ml). La suspensión resultante se
sometió a ultrasonidos y se filtró, y el sólido se secó en alto
vacío para dar el producto deseado 5d (75 mg, 73% de rendimiento) en
forma de un sólido beige. MS (ES+) 258 (m+1), (ES-) 256
(m-1).
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO-d):
\delta 8,03 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,39 (d, J = 2,2 Hz, 1H), 7,06
(br d, J = 8,6 Hz, 1H), 6,85 (br s, 1H), 3,88 (s, 3H), 2,64 (s,
3H).
A. Meta-anisidina disponible
comercialmente (25 g, 0,20 mol) en dioxano (80 ml) se enfrió a 0ºC
y se añadió HCl anhidro (4N/dioxano, 75 ml, 0,30 mol). Después se
añadió Et_{2}O (500 ml) y se mantuvo la agitación durante 1 hora.
Después se filtró el sólido beige y se secó bajo vacío para dar la
sal 6a (31,88 g, 98% de rendimiento).
B. A esta sal se añadió cianoacetato de etilo
(21,3 ml, 0,20 mol) y la mezcla, en un matraz equipado con cabeza
de destilación y un matraz colector, se calentó a
280-300ºC. El etanol producido se recogió para
controlar la evolución de la reacción. A los 9 ml de etanol
recogido (cantidad teórica 11,7 ml), se dejó de calentar, se enfrió
la mezcla de reacción a TA, se diluyó con agua (200
ml)-EtOAc (200 ml) y después se agitó y se añadió
solución acuosa de NaH_{2}PO_{4} (300 ml). Después de una
agitación adicional durante 1 h, filtración y secado, se obtuvo 6b
(19,06 g, 84,5% de pureza, aprox. 50% de rendimiento) en forma de
un sólido amarillo, y se usó tal cual en la siguiente reacción.
C. El compuesto 6b (11,0 g, 57,8 mmol) en DMF
(100 ml) a 0ºC se añadió a NaH (60% en aceite mineral, 2,78 g,
115,6 mmol). Después se retiró el baño de hielo y la mezcla se
agitó a temperatura ambiente durante 1 h, después se añadió bromuro
de bencilo (7,6 ml, 63,6 mmol) y la mezcla de reacción se agitó
durante 16 horas. Después se diluyó la solución con EtOAc (220
ml)-hexano (220 ml) y el sólido formado se filtró,
se trituró con solución acuosa saturada de NaHCO_{3} (110 ml), se
lavó con agua, hexano-EtOAc (relación 1:1, 100 ml) y
se secó bajo vacío elevado. El producto 6c (5,6 g, 91% de pureza,
35% de rendimiento) se obtuvo entonces en forma de un sólido
amarillo. Al compuesto 6c (2,67 g, 9,52 mmol) en ácido acético (21
ml) se añadió nitrito de iso-amilo (3,8 ml, 28,6
mmol) y la mezcla resultante se agitó a temperatura ambiente y se
controló mediante HPLC. Se añadió más nitrito de
iso-amilo (1,3 ml, 9,52 mmol) al cabo de 2 horas, y
la mezcla se dejó agitando durante 90 horas (HPLC 81% de producto,
3% de sustrato). Se añadió agua (100 ml) a la suspensión
resultante, que después se filtró. El sólido pardo recogido se secó
bajo vacío elevado dando el producto 6d (2,35 g, 92% de pureza, 72%
de rendimiento).
D. Al compuesto 6d (1,5 g, 4,39 mmol) se añadió
oxicloruro de fósforo (13 ml, 141 mmol) y la mezcla resultante se
calentó a reflujo durante 1 hora y después se diluyó con EtOAc (150
ml) y se apagó a 0ºC lentamente con solución acuosa de NaOH (1N,
150 ml) a pH 9. Las dos capas se separaron y la capa orgánica se
secó con MgSO_{4} y se concentró bajo vacío para dar un sólido de
color pardo que se purificó mediante cromatografía en columna de
resolución rápida (15% EtOAc/hexano). El producto 6e (819 mg,
pureza > del 99%, 62% de rendimiento) fue obtenido en forma de
un sólido amarillo.
^{1}H NMR (400 MHz, CDCl_{3}): \delta 8,07
(d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,50-7,40 (m, 5H), 7,29 (d, J
= 2,5 Hz, 1H), 7,12 (dd, J = 9,2, 2,5 Hz, 1H), 6,73 (s, 1H), 5,26
(s, 2H), 3,92 (s, 3H).
\vskip1.000000\baselineskip
A. El compuesto 6e (423 mg, 1,41 mmol) e imidazol
(400 mg, 5,88 mmol) se calentaron a 110ºC durante 20 h. Después se
diluyó la mezcla con EtOAc y se lavó con agua y salmuera, se secó
con MgSO_{4}, se concentró bajo presión reducida para dar el
compuesto 7a (422 mg, 96% de pureza, 90% de rendimiento) en forma de
un sólido amarillo. El compuesto 7a (319 mg, 0,963 mmol) con Pd
(5%/C, 64 mg) en una mezcla de etanol (5 ml) y THF (5 ml) fue
purgado y puesto bajo una atmósfera de hidrógeno. Después de 7,5 h
de agitación a temperatura ambiente, la mezcla de reacción se
filtró, se aclaró con una mezcla de
cloroformo-metanol y se concentró para dar 7b (130
mg, 97,7% de pureza, 56% de rendimiento) en forma de un sólido
amarillo. MS (ES+) 242 (m+1), (ES-) 240 (m-1).
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO-d):
\delta 8,51 (s, 1H), 8,03 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 7,93 (s, 1H), 7,23
(d, J = 1,9 Hz, 1H), 7,15 (s, 1H), 7,12 (dd, J = 9,2, 2,2 Hz, 1H),
6,92 (br s, 1H), 3,91 (s, 3H).
B. El compuesto 6e (251 mg, 0,837 mmol) y
4-metilimidazol (344 mg, 4,19 mmol) se calentaron a
110ºC durante 20 h. Después se diluyó la mezcla con EtOAc, se lavó
con agua y salmuera, se secó con MgSO_{4} y se concentró bajo
presión reducida para dar un producto en crudo que contenía una
mezcla 10:1 de isómero 4-metil y
5-metil-imidazolilo,
respectivamente. El principal isómero deseado 11c, un sólido blanco
(166 mg, 99% de pureza, 57% de rendimiento) fue separado de una
segunda fracción más polar (76 mg, 23% de rendimiento) que contiene
una mezcla de isómero 4-metil y
5-metil-imidazolilo mediante
cromatografía en columna de resolución rápida (100% de EtOAc). El
compuesto 7c (163 mg, 0,472 mmol) con Pd (5%/C, 33 mg) en una
mezcla de etanol (2,4 ml) y THF (5 ml) fue purgado y puesto bajo
una atmósfera de hidrógeno. Después de 18 h de agitación a
temperatura ambiente, la mezcla de reacción se filtró, se aclaró con
una mezcla de cloroformo-metanol y se concentró
para dar 7d (118 mg, 99% de pureza, 98% de rendimiento) en forma de
un sólido blanco.
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO-d):
\delta 8,42 (br s, 1H), 8,01 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,64 (br s,
1H), 7,21 (br s, 1H), 7,10 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 6,89 (br s, 1H),
3,90 (s, 3H); 2,20 (s, 3H).
C. El compuesto 6e (184 mg, 0,614 mmol) y pirazol
(209 mg, 3,07 mmol) se calentaron a 110ºC durante 17 h. Después se
diluyó la mezcla con EtOAc, se lavó con solución acuosa de NaOH
(1N) y salmuera, se secó con MgSO_{4} y se concentró bajo presión
reducida para dar un producto en crudo que fue purificado mediante
cromatografía en columna de resolución rápida (2:1
hexano-EtOAc) para dar 7e (103 mg, 50% de
rendimiento) en forma de sólido amarillo pálido. El compuesto 7e
(103 mg, 0,311 mmol) con Pd (5%/C, 20 mg) en una mezcla de etanol
(2 ml) y THF (2 ml) fue purgado y puesto bajo una atmósfera de
hidrógeno. Después de 5,5 h de agitación a temperatura ambiente, la
mezcla de reacción se filtró, se aclaró con una mezcla de
cloroformo-metanol y se concentró para dar 7f (77
mg, 99% de pureza, 99% de rendimiento) en forma de un sólido
amarillo. MS (ES+) 242 (m+1), (ES-) 240 (m-1).
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO-d):
\delta 8,72 (d, J = 2,5 Hz, 1H), 8,31 (s, 1H), 8,00 (d, J = 8,9
Hz, 1H), 7,83 (br s, 1H), 7,43 (br s, 1H), 7,24 (br s, 1H), 7,10
(d, J = 8,6 Hz, 1H), 6,59 (br s, 1H), 3,90 (s, 3H).
D. Se calentaron compuesto 6e (217 mg, 0,724
mmol) y 4-metilpirazol (594 mg, 7,24 mmol) a 110ºC
durante 23 h. La mezcla, mostrando una mezcla 1:1 de compuesto
desbencilado 7h y producto bencilado 7g, fue después diluida con
EtOAc (2-3 ml) y filtrada para dar el producto
desbencilado 7h puro (111 mg, 95% de pureza, 54% de rendimiento) en
forma de un sólido blanco.
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO-d):
\delta 8,58 (d, J = 2,6 Hz, 1H), 7,98 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,25
(br s, 1H), 7,20 (s, 1H), 7,04 (br d, J = 9,2 Hz, 1H), 6,38 (s,
1H), 3,89 (s, 3H), 2,30 (s, 3H).
Nota: [Se prepararon diversos sustituyentes de
2-alquilaminotiazolilo usando el mismo esquema de
síntesis en los que el compuesto 8b fue reemplazado por otras
alquil-tioureas].
A. El protocolo usado para la conversión de
m-anisidina en 8a fue idéntico al descrito en la
bibliografía: F.J. Brown et al. J. Med. Chem.
1989, 32, 807-826. Sin embargo, el
procedimiento de purificación fue modificado para evitar la
purificación por cromatografía. La fase de EtOAc que contenía el
producto deseado fue tratada con una mezcla de MgSO_{4}, carbón
vegetal y 5% p/p (basado en la masa esperada) de gel de sílice.
Después de filtrar por celite, el producto fue triturado con éter.
El compuesto 8a se obtuvo como un sólido pardo pálido con una
pureza > 99% (confirmada por HPLC).
B. Una suspensión de
isopropil-tiourea (8b, 3,55 g, 30 mmol) y ácido
3-bromopirúvico (8c, 5 g, 1 eq.) en dioxano (300 ml,
0,1 M) se calentó a 80ºC. Al alcanzar los 80ºC, la solución se
volvió transparente y poco después el producto precipitó como un
sólido blanco. Después de 2 horas de calentamiento, la solución se
enfrió a temperatura ambiente y el precipitado blanco se filtró
para obtener el compuesto 8d con alta pureza (pureza > 98%,
confirmada por NMR) y 94% de rendimiento (7,51 g).
C. Una mezcla del ácido carboxílico 8d (4,85 g,
18,2 mmol) y el derivado de anilina 8a (3 g, 1 eq.) en piridina
(150 ml, 0,12 M) fue enfriada a -30ºC (al enfriar, la solución
transparente se volvió parcialmente una suspensión). Después se
añadió lentamente oxicloruro de fósforo (3,56 ml, 2,1 eq.) durante
un periodo de 5 min. La mezcla de reacción se agitó a -30ºC durante
1 h, se retiró el baño y se dejó calentar la mezcla de reacción a
TA. Después de 1,5 h, la mezcla de reacción se vertió en hielo, se
ajustó el pH en 11 con solución acuosa de NaOH 3N, se extrajo con
CH_{2}Cl_{2}, se secó sobre MgSO_{4} anhidro, se filtró y se
concentró bajo vacío. El sólido de color beige se purificó después
mediante cromatografía de resolución rápida (45% de EtOAc en hexano)
para dar el compuesto 8e en forma de un sólido amarillo pálido con
un 73% de rendimiento (6,07 g).
D. Se calentó a reflujo una solución de
t-BuOK (2,42 g, 21,6 mmol) en t-BuOH
anhidro (40 ml, 0,14 M, destilado en Mg metálico). Se añadió el
compuesto 8e (1,8 g, 5,4 mmol) en porciones durante 5 min y la
solución de color rojo oscuro formada se agitó a reflujo durante 20
min adicionales (la terminación de la reacción se controló mediante
HPLC). La mezcla se enfrió a TA y se añadió HCl (4 N en dioxano,
1,5 eq.). Después se concentró la mezcla bajo vacío con el fin de
asegurar que todo el HCl y el dioxano eran eliminados, el producto
se redisolvió dos veces en CH_{2}Cl_{2} y se secó bajo vacío
para obtener finalmente la sal de HCl del compuesto 8f en forma de
un sólido de color beige (1,62 g, 93% de pureza por HPLC). Después
se vertió el producto en un tampón fosfato (NaH_{2}PO_{4} 1N,
pH aprox. 4,5), y se trató con ultrasonidos. El sólido beige
formado se filtró y se secó bajo vacío para dar el compuesto 8f
(1,38 g, 81% de rendimiento) en forma de un sólido beige (91% de
pureza por HPLC).
^{1}H NMR (400 MHz, DMSO): \delta 8,27 (s,
1H), 8,12 (d, 1H, J = 9,2 Hz), 7,97 (br s, 1H), 7,94 (s, 1H), 7,43
(s, 1H), 7,24 (dd, 1H, J = 9,2, 2,2 Hz), 3,97 (m, 1H), 3,94 (s,
3H), 1,24 (d, 2H, J = 6,4 Hz).
Nota: Se prepararon diversos sustituyentes de
2-(4-alquil)-tiazolilo usando el
mismo esquema de síntesis en el que el compuesto 9b era reemplazado
por otras \alpha-bromocetonas.
A. A una solución de
3-metil-butan-2-ona
(8 g, 93 mmol) en MeOH (100 ml) a -30ºC se añadió gota a gota
Br_{2} (4,79 ml, 93 mmol, 1 eq.) durante un periodo de 45 min. La
mezcla resultante se agitó después a TA durante 90 min. Se añadió
pentano y la solución se lavó con solución acuosa de NaHCO_{3} al
5%, la capa orgánica se secó sobre Na_{2}SO_{4} anhidro, se
filtró y se concentró bajo vacío. El aceite amarillo crudo
resultante, compuesto 9b, se usó sin más purificación. Una solución
de tiooxamato de etilo (9a, 1,8 g, 13,5 mmol) y derivado de
bromocetona 9b (13,5 mmol) se agitó a 70ºC durante 15 h. La mezcla
se concentró después bajo vacío y a continuación se purificó
mediante cromatografía en columna de resolución rápida, usando
EtOAc al 15% en hexano como eluyente, para obtener el compuesto 9c
(740 mg, 28% de rendimiento).
B. Una solución de compuesto 9c (700 mg, 3,5
mmol) en THF/MeOH/H_{2}O (relación 3:1:1, 13 ml) fue tratada con
LiOH\cdotH_{2}O (148 mg, 3,5 mmol, 1 eq.) a TA durante 5 h.
Después se ajustó el pH a 6 con HCl 0,1N y la mezcla se concentró a
sequedad bajo vacío para obtener el ácido 13d, que se usó
directamente en la siguiente etapa sin más purificación.
C. Una solución de
4-metoxi-2-amino-acetofenona
(intermedio 8a, 570 mg, 3,45 mmol) y derivado de ácido carboxílico
9d (590 mg, 3,45 mmol, 1 eq.) en piridina (30 ml), se enfrió a
-20ºC. Después se añadió POCl_{3} (0,35 ml, 3,379 mmol, 1,1 eq.)
gota a gota durante un periodo de 5 min. La solución resultante se
agitó a -10ºC durante 2 h. La reacción se apagó con la adición de
H_{2}O y la mezcla se concentró bajo vacío. El residuo se vertió
en una solución acuosa saturada de NaHCO_{3} y se extrajo con
EtOAc. La capa orgánica se secó sobre MgSO_{4} anhidro, se filtró
y se concentró bajo vacío. El producto crudo fue purificado mediante
cromatografía en columna de resolución rápida usando EtOAc al 25%
en hexano como eluyente, para dar el compuesto 9e en forma de un
sólido blanco (740 mg, 67% de rendimiento).
D. Se añadió t-BuOK (518 mg, 2,1
eq.) a una suspensión de compuesto 9e (700 mg, 2,2 mmol) en
t-BuOH anhidro (11 ml). La mezcla resultante se
calentó a 75ºC durante 7,5 h, después se enfrió la solución a
temperatura ambiente y se acidificó mediante la adición de HCl (HCl
4N en dioxano, 2,5 ml). La mezcla se concentró bajo vacío y el
residuo obtenido se vertió en una solución de NaH_{2}PO_{4} 1N
y se filtró. Después se trituró el material sólido con una pequeña
cantidad de EtOAc, se filtró y se secó bajo vacío para obtener
compuesto 9f como un sólido de color beige pálido (270 mg, 41% de
rendimiento).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,00 (br s, 1H), 7,60 (br s,
1H), 7,51 (br s, 1H), 7,43 (br s, 1H), 7,29 (br s, 1H), 7,14 (br s,
1H), 6,95 (br a, 1H), 3,90 (s, 3H), 3,15 (m, 1H), 1,33 (d, J = 5,4
Hz, 6H).
A. Una solución de
N-metilimidazol 10a (5 g, 61 mmol) en 100 ml de THF
se enfrió a -78ºC. Se añadió solución de n-BuLi
(24,4 ml de una solución 2,5M/Et_{2}O, 1 eq.) gota a gota durante
15 min. La mezcla resultante se agitó durante 90 min a -78ºC y
después se vertió en porciones sobre CO_{2} sólido en exceso. La
mezcla heterogénea se agitó durante 2 h y se dejó que alcanzase la
TA. Se añadió HCl 1N hasta pH 5 y la capa acuosa se separó y se
liofilizó. El residuo así obtenido se extrajo con EtOAc (para
eliminar las sales), se secó (Na_{2}SO_{4}), se filtró y se
concentró bajo presión reducida. Se obtuvieron 6,2 g (80% de
rendimiento) de un sólido blanco 10b.
B. Una solución de
4-metoxi-2-amino-acetofenona
8a (394 mg, 2,39 mmol) y el derivado de ácido carboxílico 10b (301
mg, 1 eq.) en piridina (10 ml) se enfrió a -20ºC. Después se añadió
gota a gota POCl_{3} (244 \mul, 1,1 eq.) durante 5 min. La
solución resultante se agitó a -10ºC durante 2,5 h. Después se
añadió agua y la mezcla se concentró bajo presión reducida. El
residuo se vertió en una solución saturada de NaHCO_{3} y se
extrajo con EtOAc. La fase orgánica se secó (MgSO_{4}), se filtró
y se concentró bajo presión reducida. El producto se purificó
mediante cromatografía usando gel de sílice (25% de EtOAc/Hex) dando
530 mg (81% de rendimiento) de un sólido de color amarillo pálido
10c.
C. Se añadió t-BuOK (431 mg, 2,1
eq.) a una suspensión del sustrato 10c (500 mg, 1,8 mmol) en 8 ml
de t-BuOH. Después se calentó la mezcla resultante a
75ºC durante 7 h. Se dejó que la solución llegase a la temperatura
ambiente durante la noche y se añadieron 2,5 ml de HCl
(4N/dioxano). La mezcla se concentró bajo presión reducida y el
residuo obtenido se diluyó con EtOAc. Se añadió NaOH 1N hasta que
se obtuvo un pH de 7. La fase orgánica se separó y se secó
(MgSO_{4}), se filtró, y se concentró bajo presión reducida para
dar 145 mg de 10d (31% de rendimiento) en forma de un sólido de
color beige pálido. ^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 7,99 (d, J = 8,9 Hz, 1H),
7,49 (s, 1H), 7,37 (s, 1H), 7,18 (s, 1H), 6,92 (d, J = 8,9 Hz, 1H),
6,31 (s, 1H), 3,87 (s, 3H), 3,84 (s, 3H).
A. Una solución del sustrato 11a (obtenido a
partir del compuesto 6c después de hidrogenolisis del grupo bencilo
con Pd/C al 5% en etanol-THF) (1 g, 5,25 mmol) y
2,5-dimetoxitetrahidrofurano (0,68 ml, 1 eq.) en
ácido acético glacial se calentó a reflujo durante 4,5 h y se dejó
que alcanzase la TA. Después se concentró la mezcla bajo presión
reducida. El residuo se diluyó con metanol y se añadió solución
acuosa de NaOH 1N hasta alcanzar el pH 7. El producto se purificó
mediante cromatografía usando gel de sílice (3% de MeOH/
CH_{2}Cl_{2}, el residuo estaba pre-adsorbido
sobre gel de sílice). Se obtuvieron 140 mg (13% de rendimiento) de
11b en forma de un sólido blanco.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 7,98 (d, J = 9,2 Hz, 1H),
7,64 (s, 2H), 7,18 (d, J = 2,5 Hz, 1H), 7,50 (br d, J = 7,9 Hz,
1H), 6,88 (br s, 1H), 6,32 (s, 2H), 3,90 (s, 3H).
A. Se calentaron a reflujo ácido
6-metilpicolínico 12a (411 mg, 3,0 mmol) y
SOCl_{2} (0,520 ml, 7,2 mmol, 2,4 eq.) en benceno (5 ml) durante 2
h. El disolvente y el SO_{2} en exceso se eliminaron de la mezcla
de reacción bajo vacío, y el residuo se trituró con pentano. El
material sólido formado se separó por filtración y el filtrado se
concentró para dar el cloruro de ácido 12b (500 mg, 2,6 mmol).
B. A una solución del cloruro de ácido 12b crudo
en CH_{2}Cl_{2} (5 ml) a 0ºC se añadieron una solución de la
anilina 8a (344 mg, 2,08 mmol), DIPEA (1,45 ml, 8,35 mmol) y DMAP
(61 mg, 0,5 mmol) en CH_{2}Cl_{2} (10 ml). La mezcla de
reacción se agitó a TA durante 16 h. Los componentes volátiles se
eliminaron bajo vacío, el residuo se disolvió en EtOAc y la solución
se lavó con solución de NaHCO_{3} al 5% (2x), H_{2}O y
salmuera. La capa orgánica se secó después sobre MgSO_{4} y se
concentró bajo vacío. La mezcla se purificó mediante cromatografía
en columna de resolución rápida, usando EtOAc/hexano (1:2) como
eluyente para obtener la amida 12c (490 mg, 82%).
C. A una suspensión de amida 12c (490 mg, 1,71
mmol) en t-BuOH (10 ml), se añadió
t-BuOK (410 mg, 3,43 mmol) y la mezcla se agitó a
75ºC durante 6 h y después a TA durante 16 h. La mezcla se vertió
entonces sobre tampón fosfato (175 ml, pH = 7) y se agitó durante
30 min. El sólido se trituró dos veces con acetato de etilo. La
fase orgánica se lavó con salmuera, se secó sobre MgSO_{4} y se
concentró bajo vacío. El sólido obtenido fue triturado con EtOAc
para dar el derivado de quinolina 12d (263 mg, 58%). ^{1}H NMR
(CDCl_{3},400 MHz): \delta 2,68 (s, 3H), 3,94 (s, 3H),
6,85-6,88 (2d, J = 8,68 y 9,5 Hz, 2H), 6,94 (dd, J
= 8,9 y 2,2 Hz, 1H), 7,27 (dd, J = 6,7 y 1,9 Hz, 1H),
7,73-7,79 (m, 2H), 8,28 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 10,3
(br s, 1H).
A. A una solución de compuesto 13a (623 mg, 3,73
mmol) en MeOH, se añadió NaOH (2M, 4,70 ml) y la mezcla de reacción
se agitó a TA durante 2 h. Después se acidificó la solución con HCl
(6N, 2,2 ml) y se concentró para obtener el compuesto 13b, que se
usó en la siguiente etapa sin purificar.
B. A una solución del compuesto crudo 13b (aprox.
3,73 mmol) en piridina (25 ml) se añadió la anilina 8a (500 mg,
3,03 mmol) y la solución se enfrió a -25ºC antes de añadir
POCl_{3} (0,35 ml, 3,73 mmol). La mezcla de reacción se agitó a
-10ºC durante 1 h y después a 0ºC durante 2 h. Después se vertió la
mezcla sobre H_{2}O y se extrajo con EtOAc
(2-3x). Las capas orgánicas reunidas se lavaron con
NaHCO_{3} al 5% y salmuera, se secaron sobre MgSO_{4} y se
concentraron bajo vacío. El material crudo fue purificado mediante
cromatografía en columna de resolución rápida usando EtOAc/hexano
(1:2) como eluyente, para dar la amida 13c (617 mg, 55%).
C. A una suspensión de la amida 13c (617 mg, 2,05
mmol) en t-BuOH anhidro (10 ml), se añadió
t-BuOK (490 mg, 4,11 mmol) y la mezcla se agitó a
75ºC durante 6 h y después a TA durante 16 h. La mezcla de reacción
se vertió en tampón fosfato (175 ml, pH = 7) y se agitó durante 30
min. El material sólido formado se filtró y se trituró con EtOAc
para dar el derivado de quinolina 13d (250 mg, 43%). ^{1}H NMR
(DMSO, 400 MHz): \delta 3,86 (s, 3H), 3,94 (s, 3H), 6,72 (b s,
1H), 6,91 (dd, J = 8,9 y 1,9 Hz, 1H), 7,54 (d, J = 1,9, 1H), 7,60
(dd, J = 8,9 y 2,9 Hz, 1H), 7,97 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 8,21 (d, J =
8,6 Hz, 1H), 8,48 (d, J = 1,9 Hz, 1H).
A. El derivado de quinolina protegido 4b del
Ejemplo 4 (3,8 g, 11,8 mmol) se disolvió en CH_{2}Cl_{2} (60
ml) y se enfrió a -78ºC antes de añadir hidruro de
diisobutil-aluminio (7,9 ml, 1 eq., 1,5M en tolueno)
muy lentamente a lo largo de 15 min. Después de agitar durante 80
min, se añadió una cantidad adicional de DIBAL (5,5 ml, 0,7 eq.,
1,5 M en tolueno). Después de agitar a -78ºC durante 2 h más, la
reacción fue apagada cuidadosamente con metanol (4 ml) a -78ºC y
después se vertió en una solución acuosa de sal de Rochelle
(tartrato de Na-K 1N). La pasta espesa se agitó con
CH_{2}Cl_{2} (300 ml) durante 2 h hasta quedar transparente. Se
separaron las fases y la fase orgánica se secó (MgSO_{4}), se
filtró y se concentró para dar un sólido blanco. La purificación
mediante cromatografía de resolución rápida (SiO_{2}, malla
230-400) con EtOAc al 50%/ hexano dio el aldehído
14a en forma de un sólido blanco (2,5 g, 73%).
B. A una suspensión agitada de K_{2}CO_{3}
(48 mg, 0,34 mmol) en MeOH (7 ml) se añadió isocianuro de
toluenosulfonilmetilo (66 mg, 0,34 mmol). La mezcla de reacción se
calentó a 45ºC y se añadió aldehído 14a (0,10 g, 0,34 mmol). La
mezcla de reacción se calentó a 80ºC durante 16 h y después se
concentró a sequedad bajo vacío. La purificación se realizó
mediante cromatografía de resolución rápida (SiO_{2}, malla
230-400) para dar el oxazol deseado 14b (0,089 g,
80%). MS: 331,0 (M+H)^{+}.
C. La hidroxiquinolina protegida MEM 14b se
disolvió en THF (3 ml) y se trató con HCl acuoso (1N, 1 ml). La
mezcla de reacción se agitó durante 30 min a TA antes de ser
concentrada a sequedad bajo vacío. El residuo se trató con tampón
fosfato (3 ml, solución 1N, pH 4,5) y se agitó antes de filtrar el
producto, se lavó con agua destilada y se secó durante la noche bajo
vacío elevado (60ºC, 16 h). La hidroxiquinolina deseada 14c se
obtuvo en forma de un sólido de color canela (0,065 g, 100%). MS:
242,9 (M+H)^{+}.
^{1}H NMR (DMSO-d_{6}):
\delta 8,65 (s, 1H), 8,02 (bs, 1H), 7,97 (d, J = 8,9 Hz, 1H),
7,19 (s, 1H), 6,39 (d, J = 7,9 Hz, 1H), 6,42 (b s, 1H), 3,87 (s,
3H), ES (+) MS: m/z 242,9 (M+H)^{+}.
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(Esquema pasa a página
siguiente)
A. A una solución de
2-acetamidomalonato de dietilo 15a disponible
comercialmente (100 g, 0,46 mol) en dioxano (500 ml) se añadió
solución acuosa de hidróxido sódico (1 M, 1 eq. 460 ml) gota a gota
durante 30 a 45 min. La mezcla resultante se dejó agitando durante
16,5 h y luego se evaporó el dioxano bajo vacío, la solución acuosa
se extrajo con tres porciones de 300 ml de acetato de etilo y se
acidificó a pH 1 con HCl concentrado. Esta solución se dejó
cristalizar en un baño de hielo fundente. Después de aparecer
algunos cristales, la mezcla se sometió a ultrasonidos y apareció
un abundante precipitado. La filtración y el secado bajo vacío
dieron el compuesto 15b (62,52 g, 72% de rendimiento) en forma de
un sólido blanco.
B. A una emulsión agitada magnéticamente de
7-octeno-1,2-diol
15c (25 g, 0,173 mol) comercialmente disponible y H_{2}O (100
ml), en un matraz de fondo redondo de 1 l, se añadió una solución
acuosa de peryodato sódico (40,7 g, 0,190 mol, 1,1 eq., en 475 ml
de H_{2}O) durante un periodo de 20 min (ligeramente exotérmica).
La mezcla resultante se agitó a temperatura ambiente durante 1 h
más (la terminación de la reacción se confirma mediante TLC).
Después se decantó la mezcla en un embudo de separación y la capa
acuosa se separó de la capa orgánica. La solución acuosa se saturó
con NaCl, se decantó y se separó de la fracción orgánica una vez
más. Las dos fracciones orgánicas se reunieron, se secaron sobre
sulfato sódico y se filtraron sobre un tapón de algodón (en una
pipeta Pasteur) para dar el compuesto 15d (15,135 g, aceite
incoloro, 78% de rendimiento). La solución acuosa se extrajo con
CH_{2}Cl_{2}, se secó con MgSO_{4} anhidro y se concentró
bajo vacío (sin calentamiento, heptanal p. eb. 153ºC) para obtener
una cantidad adicional de compuesto 15d (1,957 g, aceite incoloro,
10% de rendimiento). Rendimiento total 88%.
C. A 2-acetamidomalonato de etilo
sólido 15b (7,57 g, 40 mmol) se añadió 6-heptenal
15d (4,48 g, 40 mmol) en solución en piridina (32 ml, 10 eq.)
durante 1 min. La solución resultante se enfrió en un baño a 10ºC y
se añadió anhídrido acético (12 ml, 3,2 eq.) durante 4 min. La
solución de color naranja resultante se agitó durante 3 h a TA, y
se añadió otra porción de 2-acetamidomalonato de
etilo 15b (2,27 g). La mezcla resultante se agitó a temperatura
ambiente durante 11 h más. Después se añadió hielo (60 ml) y la
solución se agitó durante 1,5 h, después la mezcla se diluyó con
250 ml de agua y se extrajo con dos porciones de éter. La solución
etérea se lavó con HCl 1N y solución saturada de NaHCO_{3}, se
secó con Na_{2}SO_{4}, se concentró y se purificó mediante
cromatografía de resolución rápida (EtOAc 40%/hexano) para dar el
compuesto 15e (4,8 g, 50% de rendimiento) en forma de un aceite
amarillo pálido.
D. A una solución desgasificada (burbujeo de
argón durante 30 min) de
2-acetamido-2,8-nonadienoato
de Z-etilo 15e (8,38 g, 35 mmol) en etanol seco (70
ml) se añadió (S,S)-Et-DUPHOS
Rh(COD)OTf (51 mg, S/C=496). La mezcla se puso bajo
2,1 atmósferas de hidrógeno (después de 4 ciclos de
vacío-H_{2}) y se agitó en un agitador Parr
durante 2 h. La mezcla resultante se evaporó a sequedad para
obtener el compuesto crudo 15f, que se usó en la subsiguiente etapa
sin purificar.
E. A una solución de
2-acetamido-8-nonenoato
de (S)-etilo crudo 15f (7,3 g, 30,3 mmol) en THF
(100 ml), se añadieron Boc_{2}O (13,2 g, 2 eq.) y DMAP (740 mg,
0,2 eq.), y la mezcla de reacción se calentó a reflujo durante 2,5
h. Subsiguientemente, la mayoría del disolvente THF fue evaporado,
se diluyó la mezcla cruda con CH_{2}Cl_{2} y se lavó con HCl 1N
con el fin de eliminar el DMAP. La capa orgánica se extrajo más
intensamente con solución acuosa saturada de NaHCO_{3}, se secó
con Na_{2}SO_{4} anhidro y se concentró bajo vacío. El producto
se diluyó después con THF (50 ml) y agua (30 ml), se añadió
LiOH\cdotH_{2}O (2,54 g, 2 eq.) y la mezcla resultante se agitó
a TA durante 25 h (la terminación de la hidrólisis se confirmó
mediante TLC). La mezcla de reacción se concentró bajo vacío para
eliminar la mayor parte del disolvente THF y se diluyó con
CH_{2}Cl_{2}. La solución resultante se lavó con HCl 1N, se
secó con Na_{2}SO_{4} anhidro y se concentró bajo vacío. Para
eliminar impurezas menores y el Boc_{2}O en exceso, el producto
crudo fue purificado mediante cromatografía de resolución rápida
(usando un gradiente de disolvente de 100% de hexano - 100% de
EtOAc como eluyente). El compuesto del título 15g se obtuvo con una
elevada pureza en forma de un aceite amarillo pálido (5,82 g, 71%
de rendimiento). ^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz): \delta 7,01 (d, J =
8 Hz, 1H), 5,79 (tdd, Jt = 6,7 Hz, Jd = 17,0, 10,2 Hz, 1H), 5,00
(md, Jd = 17,0 Hz, 1H), 4,93 (md, Jd = 10,2 Hz, 1H), 3,83 (m, 1H),
2,00 (q, J = 6,9 Hz, 2H), 1,65-1,5 (m, 2H), 1,38
(s, 9H), 1,35-1,21 (m, 6H).
A. A una suspensión agitada de tiras de Mg
cortadas finamente (0,55 g, 22,5 mmol) en THF seco (30 ml) que
contiene dibromoetano (0,1 ml), se añadió gota a gota
8-bromo-1-octeno (15
h, 2,52 ml, 15 mmol) a lo largo de un periodo de 15 min [la
reacción es ligeramente exotérmica]. Después de 30 min, la mezcla se
calentó a 38ºC durante 1 h y después se enfrió a -78ºC antes de
añadirla mediante una cánula sobre una cantidad en exceso de
CO_{2} sólido. La mezcla se diluyó con dietil-éter (100 ml) y la
solución se lavó con salmuera (2 x 50 ml), se secó sobre MgSO_{4}
y se evaporó. Se obtuvo un aceite crudo que se purificó mediante
cromatografía en gel de sílice usando EtOAc al 15% en hexanos como
eluyente para dar el compuesto 15i con un 62% de rendimiento (1,44
g).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz):
\delta1,31-1,42 (m, 6H), 1,60-1,69
(m, 2H), 2,02-2,09 (m, 2H), 2,35 (t, J = 8,3 Hz,
2H), 4,99 (dm, J = 10,0 Hz, 1H), 5,04 (dm, J = 17,0 Hz, 1H),
5,75-5,86 (m, 1H).
B. A una solución vigorosamente agitada del ácido
carboxílico 15i (1,36 g, 8,7 mmol) en THF anhidro (70 ml) a -78ºC,
se añadieron Et_{3}N recién destilado (1,6 ml; 11,3 mmol) y
cloruro de pivaloílo (1,18 ml, 9,58 mmol) mediante una jeringa bajo
condiciones anhidras. La mezcla se agitó a -78ºC durante 15 min y
después a 0ºC durante 45 min. La mezcla se enfrió de nuevo a -78ºC
y después se transfirió mediante una cánula a una solución anhidra
de sal de litio de
4(S)-4-(fenilmetil)-2-oxazolidinona
en THF a -78ºC; la sal de litio del reactivo de oxazolidinona había
sido preparada previamente mediante la adición lenta de
n-BuLi (2,00 M en hexanos, 7,85 ml, 15,7 mmol) a una
solución en THF (20 ml) de la oxazolidinona (2,78 g, 15,7 mmol) en
THF a -78ºC.
La mezcla de reacción se agitó a -78ºC durante 15
min y después a TA durante 1,5 h. Finalmente, fue apagada con una
solución acuosa de bisulfato sódico (100 ml de 1M) y el THF se
evaporó a los 3/4 de su volumen inicial. El residuo se extrajo con
EtOAc (2 x 150 ml) y las capas orgánicas mezcladas se lavaron con
solución de NaHCO_{3} al 5% (3 x 50 ml) y salmuera (2 x 50 ml), se
secaron sobre MgSO_{4} y se evaporaron. El aceite crudo
resultante se cromatografió en gel de sílice usando EtOAc al 15% en
hexanos para obtener el compuesto 15j con un 68% de rendimiento
(1,88 g).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta
1,35-1,47 (m, 6H), 1,67-1,74 (m,
2H), 2,02-2,09 (m, 2H), 2,65 (dd, J = 13,4 y 9,9 Hz,
1H), 2,84-3,02 (m, 2H), 3,31 (dd, J = 13,4 y 3,2
Hz, 1H), 4,13-4,22 (m, 2H),
4,62-4,71 (m, 1H), 4,93 (d, J = 10,2 Hz, 1H), 5,00
(dd, J = 17,2 y 1,6 Hz, 1H), 5,75-5,84 (m, 1H),
7,18-7,38 (m, 5H).
C. A una solución agitada de KHMDS (0,8 M THF, 22
ml, 17,5 mmol) en THF seco (50 ml) a -78ºC se añadió por medio de
una cánula una solución del derivado de ácido 15j (3,25 g, 10,30
mmol) en THF seco (40 ml) a -78ºC. La mezcla se agitó a -78ºC
durante 45 min. A esta mezcla se añadió una solución de trizilazida
(3,67 g, 11,85 mmol) en THF seco (40 ml) a -78ºC. La mezcla se
agitó a -78ºC durante 3 min y después se apagó con ácido acético (5
ml). Subsiguientemente, se agitó a TA durante 1 h y 45 min y
finalmente a 40ºC durante 15 min. La mayor parte del THF se
evaporó. El residuo se recogió en EtOAc (100 ml) y la solución
orgánica se lavó con H_{2}O (50 ml), NaHCO_{3} al 5% (3 x 50
ml) y salmuera (50 ml), se secó con MgSO_{4} y se evaporó. El
aceite obtenido se cromatografió sobre gel de sílice usando
hexano/CH_{2}Cl_{2} (1/1) como eluyente para dar el compuesto
15k (2,47 g, rendimiento 67%).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta
1,32-1,45 (m, 6H), 1,45-1,6 (m, 1H),
1,75-1,88 (2, 2H, rotámeros),
2,01-2,11 (m, 2H), 2,82-2,87 (m,
1H), 3,33 (dd, J = 13,4 y 3,2 Hz, 1H), 4,10-4,28
(m, 2H), 4,62-4,72 (m, 1H),
4,90-5,05 (m, 3H), 5,73-5,88 (m,
1H), 7,17-7,38 (m, 5H).
D. A una solución agitada de SnCl_{2} anhidro
(2,61 g, 13,8 mmol) en MeOH anhidro (80 ml) se añadió mediante
cánula una solución de la azida 15k (2,45 g, 6,9 mmol) a 0ºC en
MeOH anhidro (20 ml). La mezcla se agitó a TA durante 4 h. El MeOH
fue evaporado y el material espumoso obtenido se recogió en
dioxano/H_{2}O (100 \muL/20 \muL) y se trató con Boc_{2}O
(3,0 g, 13,8 mmol) y NaHCO_{3} (2,89 g, 34,5 mmol) (el pH se
ajusta en 8 con más NaHCO_{3} si es necesario) y la mezcla se
agitó a TA durante 16 h. Parte del dioxano se evaporó (aprox. 50%)
y el residuo se extrajo dos veces con EtOAc. La solución orgánica
se lavó con salmuera (2 x 50 ml), se secó y se evaporó. El residuo
obtenido fue cromatografiado sobre gel de sílice usando
20-25% de EtOAc en hexano como eluyente para dar el
compuesto 15l (1,75 g, rendimiento 60%).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta
1,27-1,53 (m, 6H), 1,46 (s, 9H), 1,80 (m, 1H),
2,00-2,08 (m, 1H), 2,80 (t, J = 12,1 Hz, 1H), 3,34
(d, 14,3 Hz, 1H), 4,17-4,23 (m, 2H),
4,60-4,66 (m, 1H), 4,93 (d, J = 10,2 Hz, 1H), 5,05
(dd, J = 17,2 y 1,9 Hz, 1H), 5,13 (bs, 1H),
5,38-5,43 (m, 1H), 5,74-5,84 (m,
1H), 7,22-7,36 (m, 5H).
E. A una solución agitada a 90º del derivado
N-Boc 15l (1,74 g, 4,04 mmol) en THF/H_{2}O (75
ml/15 ml) se añadieron H_{2}O_{2} (30% v/p, 2,05 ml, 16,2 mmol)
y LiOH\cdotH_{2}O (0,34 g, 8,1 mmol) y la solución se agitó a 0º
durante 1 h. La reacción fue apagada con Na_{2}SO_{3} (2,24 g
en H_{2}O, 15 ml, 17,8 mmol). El pH se ajustó en
4-5 con solución acuosa de ácido cítrico al 10% y
la mezcla se diluyó con EtOAc. La fracción acuosa se extrajo una vez
más con EtOAc y la solución orgánica se lavó dos veces con
salmuera, se secó y se evaporó. El residuo se sometió a
cromatografía sobre gel de sílice usando 20% de hexano en EtOAc
como eluyente, para dar el ácido carboxílico libre 15g (0,76 g,
rendimiento 70%). Este compuesto era idéntico en todos sus aspectos
al obtenido en el Ejemplo 15.
Esta síntesis se basa en la metodología de T.
Tsuda et al., J. Am. Chem. Soc., 1980, 102,
6381-6384.
A. A una solución bien agitada del éster
monoalílico del ácido malónico (1,50 g, 10,4 mmol) en THF seco bajo
N_{2} (20 ml) a -78ºC, se añadió gota a gota
n-Bu_{2}Mg (0,9M/hexano, 5,8 ml, 5,2 mmol) durante
un periodo de 5 min. La suspensión pesada se agitó después a TA
durante 1 h y se evaporó a sequedad (liberación de vacío bajo
N_{2}). La sal sólida de Mg 16b fue secada bajo vacío durante 1
h.
El derivado de ácido glutámico 16a se mezcló
primero con
1,1'-carbonil-diimidazol (1,65 g,
10,21 mmol) en THF anhidro, y la mezcla se agitó a TA durante 1 h
para activar el resto ácido libre. Subsiguientemente, el derivado
de ácido glutámico activado fue canulado en una solución de la sal
de Mg 16b y la mezcla de reacción obtenida se agitó a TA durante 16
h. Después se diluyó con EtOAc y la solución orgánica fue lavada
con HCl 0,5N enfriado en hielo, se trató con salmuera, se secó y se
evaporó. El residuo obtenido fue cromatografiado sobre gel de
sílice usando 35-40% de EtOAc en hexano como
eluyente para dar el compuesto 16c (1,85 g, rendimiento 53%).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz) \delta 1,44
(s, 9H), 1,85-1,95 (m, 1H),
2,12-2,22 (m, 1H), 2,58-2,74 (m,
2H), 3,48 (s, 2H), 3,74 (s, 3H), 4,24-4,34 (m, 1H),
4,52 (dm, J = 5,7 Hz, 2H), 5,09 (m, 1H), 5,25 (dm, J = 10,2 Hz, 1H),
5,34 (dm, J = 17,2 Hz, 1H), 5,91 (m, 1H).
B. A una solución agitada de
tetraquis(trifenilfosfina) Pd(0) (0,116 g, 5% en
moles, 0,1 mmol) en DMF seca (7 ml) se añadió (mediante jeringuilla
y bajo una atmósfera de N_{2}) el diéster 16c (0,687 g, 2 mmol)
en DMF seca (3 ml). La mezcla se agitó a TA durante 3,5 h. La DMF
fue evaporada bajo presión reducida y el residuo se diluyó con
EtOAc (20 ml). La solución en EtOAc se lavó con HCl 0,5N enfriado
con hielo (5 ml), y con salmuera (10 ml), se secó y se evaporó. El
residuo fue cromatografiado sobre gel de sílice usando
15-20% de EtOAc en hexano como eluyente para dar el
compuesto 16d (0,253 g, rendimiento 42%).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz) \delta 1,44
(s, 9H), 1,84-1,94 (m, 1H),
2,08-2,22 (m, 1H), 2,33 (dd, J = 14,0 y 7,3 Hz, 2H),
2,45-2,55 (m, 4H), 3,74 (s, 3H), 4,28 (bm, 1H),
4,98 (dm, J = 10,2 Hz, 1H), 5,03 (dm, J = 17,2 Hz, 1H),
5,00-5,10 (m, 1H), 5,74-5,85 (m,
1H).
A,B,C,D. (R)-(+)-citronelal 17a
disponible comercialmente fue convertido primero en el derivado de
aminoácido 17b siguiendo las mismas etapas de síntesis que las
descritas anteriormente en el Ejemplo 15 para la conversión de
aldehído 15d en el producto intermedio de aminoácido 15f.
E. El compuesto 17b (0,675 g, 5,6 mmol) se
disolvió en una mezcla de t-BuOH/acetona/H_{2}O
(1:1:1, 18 ml) y se puso en un baño de hielo (0ºC). Se añadieron
consecutivamente NMMO (0,789 g, 6,74 mmol, 1,2 eq.) y OsO_{4}
(2,5% p/p en t-BuOH, 0,7 ml, 0,067 mmol, 0,012 eq.)
y la mezcla de reacción se agitó a TA durante 4 h. La mayor parte
de la acetona se eliminó por evaporación bajo vacío y después se
extrajo la mezcla con EtOAc. La capa orgánica se lavó más con
H_{2}O y salmuera, se secó sobre MgSO_{4} anhidro y se evaporó a
sequedad. El diol 17c se obtuvo con alta pureza después de
cromatografía en columna de resolución rápida usando 1% de EtOH en
EtOAc como eluyente, con un 77% de rendimiento (0,575 g).
F. A una solución de diol 17c (0,575 g, 1,73
mmol) en THF/H_{2}O (1:1, 20 ml) a 0ºC se añadió NaIO_{4} (0,48
g, 2,25 mmol, 1,3 eq.) y la mezcla de reacción se agitó a TA
durante 3,5 h. La mayor parte del disolvente de THF fue
subsiguientemente eliminado por evaporación bajo vacío y la mezcla
restante se extrajo con EtOAc (2x100 ml). Las capas orgánicas
combinadas se lavaron adicionalmente con solución acuosa de ácido
cítrico al 5% (2x20 ml), solución acuosa de NaHCO_{3} al 5% (20
ml) y con salmuera (2x50 ml), y después la solución en EtOAc se
secó bajo MgSO_{4} anhidro y se evaporó a sequedad bajo vacío. El
producto intermedio de aldehído 17d (0,47 g de producto crudo) fue
usado en la etapa siguiente sin más purificación.
G. A una solución de Ph_{3}PCH_{3}Br (925 mg,
2,6 mmol) en tolueno anhidro (15 ml), se añadió KHMDS (0,5 M en
tolueno, 5,2 ml, 2,6 mmol) y la suspensión amarilla formada se
agitó a TA durante 30 min bajo N_{2}. Después de ese periodo, la
suspensión fue primero enfriada a 0ºC, se añadió una solución del
aldehído 17d (0,47 g, 1,73 mmol, disuelto en 15 ml de THF anhidro)
mediante una jeringa, y se dejó calentar la mezcla a TA. Después de
agitar a TA durante 1 h, la mayor parte del THF se eliminó por
evaporación bajo vacío, se añadió a la mezcla EtOAc (100 ml), y la
capa orgánica se lavó con H_{2}O (30 ml), solución acuosa de
NaHCO_{3} al 5% (30 ml) y salmuera (30 ml). La solución en EtOAc
se secó después sobre MgSO_{4} anhidro y se evaporó a sequedad
bajo vacío. El compuesto puro 17e fue aislado después de
purificación por cromatografía en columna de resolución rápida
sobre gel de sílice usando hexano:EtOAc (3:2) como eluyente, con un
rendimiento del 63% (0,29 g) para las dos últimas etapas.
La hidrólisis del éster etílico y el intercambio
simultáneo del grupo protector de N-acetilo por un
Boc en el intermedio 17e para obtener el compuesto 17f se llevó a
cabo usando el mismo procedimiento que se indicó para la conversión
de compuesto 15f en 15g (17f, 310 mg, cuantitativo).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz) \delta 0,88
(d, J = 6,4 Hz, 3H), 1,18-1,28 (m, 2H),
1,35-1,48 (m, 3H), 1,45 (s, 9H),
1,64-1,74 (m, 1H), 1,81-1,89 (m,
1H), 1,94-2,12 (m, 2H), 4,28 (bd, J = \sim3,2 Hz,
1H), 4,93 (dm, J = 11,1 Hz, 1H), 5,00 (dm, J = 16,8 Hz, 1H),
5,74-5,84 (m, 1H).
A. Se disolvió parcialmente
Boc-(L)-treonina 18a (500 mg, 2,28 mmol) en
CH_{2}Cl_{2}/MeOH (8 ml/0,5 ml, respectivamente) a 0ºC. Se
añadió lentamente una solución de diazometano en dietil-éter hasta
que persistió el color amarillo, indicando la presencia de
diazometano en exceso. Al evaporar los disolventes, se obtuvo éster
metílico 18b crudo en forma de un aceite blanco turbio (0,534
g).
B. El producto intermedio 18b (311 mg, 1,33 mmol)
se disolvió después en dietil-éter anhidro (8 ml), se añadió
Ag_{2}O (341 mg, 1,47 mmol) y tamices moleculares de 4A recién
activados (1 g). Finalmente, se añadió yoduro de alilo (134 \mul,
1,47 mmol) al matraz de reacción, y la mezcla se agitó a reflujo.
Se añadieron dos porciones más de yoduro de alilo (45 \mul, 0,50
mmol, cada vez) después de un periodo de 20 h y 30 h, y se siguió
agitando durante un total de 36 horas. Después, la mezcla se filtró
a través de celite y se purificó mediante cromatografía en columna
rápida sobre gel de sílice, usando EtOAc/hexano (1:4) como
eluyente, para dar 73 mg (27% de rendimiento) de compuesto 18c como
un aceite transparente.
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz) \delta 1,21
(d, J = 6,0 Hz, 3H), 1,45 (s, 9H), 3,75 (s, 3H),
3,82-3,87 (m, 1H), 3,99-4,07 (m,
2H), 4,29 (dd, J = 9,5 y 2,5 Hz, 1H), 5,14 (dm, J = 10,5 Hz, 1H),
5,21 (dm, J = 17,2 Hz, 1H), 5,75-5,84 (m, 1H).
C. El compuesto éster 18c (99 mg, 0,362 mmol) se
disolvió en una mezcla de THF/MeOH/H_{2}O (2:1:1,4 ml) y se
añadió LiOH\cdotH_{2}O (61 mg, 1,45 mmol). La solución se agitó
a TA durante 2 h y después se acidificó con HCl 1N a pH aprox. 3
antes de eliminar los disolventes bajo vacío. El aceite resultante,
compuesto 18d, se usó tal cual para la síntesis de inhibidores
macrocíclicos.
A. El compuesto 19a (9,1 mmol) se disolvió en
piridina (5 ml) y la solución se enfrió a 0ºC en un baño de hielo,
se añadió cloruro de tosilo (2,3 g, 11,8 mmol, 1,3 eq.) en pequeñas
porciones, y la mezcla de reacción se agitó a TA durante 24 h.
Después de ese periodo, la mezcla de reacción se repartió entre
dietil-éter (300 ml) y H_{2}O (100 ml). La capa etérea se siguió
lavando con HCl 0,2 N (6x100 ml) y salmuera (100 ml), se secó sobre
MgSO_{4} anhidro, se filtró y se concentró a sequedad bajo vacío.
La purificación del material crudo mediante cromatografía en
columna de resolución rápida usando hexano/EtOAc (gradiente de
relación 8:2 a 7:3) como eluyente, condujo al aislamiento de
derivado de tosilo 19b con un 85% de rendimiento (3,05 g).
B. A una solución de producto intermedio 19b (775
mg, 2 mmol) en DMF anhidra (2,5 ml) se añadió tioacetato potásico
(365 mg, 3,2 mmol, 1,6 eq.) y la mezcla de reacción se agitó a TA
durante 24 h. La mayor parte de la DMF fue después evaporada bajo
vacío y la mezcla que quedaba se repartió entre EtOAc y H_{2}O.
La capa acuosa se reextrajo con EtOAc, las capas orgánicas
combinadas se lavaron con salmuera, se secaron sobre MgSO_{4}
anhidro y se evaporaron a sequedad. La purificación del material
crudo mediante cromatografía en columna de resolución rápida usando
hexano/EtOAc (relación 4:1) como eluyente, condujo al aislamiento
del compuesto 19c con un rendimiento del 80% (465 mg).
C. A una solución de tioéster 19c (465 mg) en
H_{2}O/EtOH (relación 3:5, 8 ml), se añadió una solución acuosa
de NaOH 0,2 M (2,4 ml) y la mezcla se agitó a TA durante 1,5 h.
Después se añadió yoduro de alilo (0,292 ml, 3,2 mmol, 2 eq.) y se
siguió agitando a TA durante 30 min adicionales. La mezcla de
reacción se concentró a la mitad de su volumen original y después
se extrajo con EtOAc. La capa acuosa se acidificó a pH aprox. 3 con
HCl acuoso 0,5N frío y se re-extrajo con EtOAc. Las
capas orgánicas combinadas se lavaron con salmuera, se secaron
sobre MgSO_{4} anhidro y se evaporaron a sequedad bajo vacío. La
mezcla de reacción en crudo contenía al menos cuatro productos;
todos los productos fueron aislados después de cromatografía en
columna de resolución rápida sobre gel de sílice, usando
hexano/EtOAc (gradiente de relación 9:1 a 3:1). La estructura del
compuesto menos polar (TLC R_{f} = 0,68 en hex/EtOAc 4:1)
correspondía a la del producto deseado 19d (83 mg, 18% de
rendimiento).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 1,24
(d, J = 7,0 Hz, 3H), 1,46 (s, 9H), 3,13-3,19 (m,
2H), 3,24-3,29 (m, 1H), 3,77 (s, 3H), 4,50 (dd, J =
8,6 y 3,8 Hz, 1H), 5,12 (d, J = 12,4 Hz, 1H), 5,15 (dd, J = 18,4 y
1,3 Hz, 1H), 5,22 (bd, J = 7,6 Hz, 1H), 5,75-5,85
(m, 1H).
D. Una solución del éster metílico 19d (83 mg,
0,287 mmol) en MeOH/H_{2}O (3:1,4 ml) se mezcló con solución
acuosa de NaOH (0,2N, 1,3 ml, 0,26 mmol) durante 24 h a TA y
durante 1 h a 40ºC. La mezcla de reacción fue acidificada con HCl
acuoso frío (HCl 0,5 N, a 0ºC, pH = 4-5), el MeOH se
eliminó bajo vacío y la mezcla acuosa restante se extrajo con
EtOAc. La solución orgánica se secó sobre MgSO_{4} y se evaporó a
sequedad para obtener el compuesto 19e. El compuesto 19e se usó
para la síntesis final de inhibidores sin más purificación
posterior.
A. Se disolvió N-penicilamina 20a
(448 mg, 3 mmol) en DMF/DMSO (relación 5:1, 6 ml), se añadieron
4-bromopenteno (0,46 ml, 4,5 mmol, 1,5 eq.) y
CsOH\cdotH_{2}O (1,0 g, 6 ml, 2 eq.), y la mezcla de reacción se
agitó a TA. Después de 24 h, se añadió Boc_{2}O (820 mg, 3,75
mmol, 1,25 eq.) a la mezcla y se siguió agitando durante 12 h
adicionales. La DMF se eliminó posteriormente bajo vacío, la mezcla
restante se diluyó con HCl acuoso 0,5N frío ajustando el pH en
aprox. 4-5, y después se extrajo con EtOAc (2x50
ml). La capa orgánica se lavó con salmuera (2x), se secó sobre
MgSO_{4} anhidro y se evaporó a sequedad para dar el ácido
carboxílico crudo 20b.
B. La purificación de 20b resultó ser difícil,
por lo que el producto crudo se trató primero con diazometano para
formar el correspondiente éster metílico 20c, y después se purificó
mediante cromatografía en columna de resolución rápida, usando
hexano/EtOAc (9:1) como eluyente, para obtener 190 mg (20% de
rendimiento) del éster metílico 20c puro.
^{1}H NMR (400 MHz, CDCl_{3}): \delta 1,35
(s, 3H), 1,37 (s, 3H), 1,44 (s, 9H), 1,59-1,67 (m,
2H), 2,11-2,17 (m, 2H), 2,51-2,60
(m, 2H), 3,74 (s, 3H), 4,29 (d, J = 8,6 Hz, 1H), 4,98 (dm, J = 10,5
Hz, 1H), 5,03 (dm, J = 19 Hz, 1H), 5,35 (bd, J = 7 Hz, 1H),
5,72-5,83 (m, 1H).
C. El éster se disolvió posteriormente en
THF/MeOH/H_{2}O (2:2:1,5 ml), se añadió LiOH\cdotH_{2}O (50
mg, 2,0 mmol, 2 eq.) y la mezcla de reacción se agitó a 40ºC
durante 4 h para hidrolizar el éster 20c, para dar de nuevo el
ácido 20b. La mezcla de reacción se acidificó con HCl 0,5N a
pH=4-5, el THF y el MeOH se evaporaron a sequedad y
la solución acuosa restante se extrajo con EtOAc. La capa de EtOAc
se secó sobre MgSO_{4} anhidro y se evaporó a sequedad para dar
el compuesto 20b, que se usó en la subsiguiente síntesis de
inhibidores macrocíclicos sin más purificación.
El procedimiento general para reacciones de
acoplamiento hechas en solución, y ejemplos específicos de las
mismas, se describen en los documentos WO 00/09543 y WO
00/09558.
Estos procedimientos han sido utilizados para la
síntesis de los dipéptidos intermedios 26c, 30a y los tripéptidos
23a, 24a, 31a, 32a y 33a.
A. A una solución del derivado de prolina 21a
(preparado a partir de
Boc-4(R)-hidroxiprolina
disponible comercialmente y
4-cloro-quinolina como se describe
en los documentos WO 00/05543 y WO 00/09558) (1,38 g, 3,68 mmol) y
el homoalil-ACCA 1f crudo (aprox. 3,35 mmol) en
CH_{2}Cl_{2} (10 ml), se añadieron sucesivamente NMM (1,21 ml,
10,05 mmol) y HATU (1,53 g, 4,02 mmol) y la suspensión se agitó a
TA durante 18 h. Después de ese tiempo, el disolvente fue evaporado
y la mezcla de reacción cruda se redisolvió en EtOAc (30 ml). La
solución se lavó con solución acuosa de NaHCO_{3} al 5% (2 x 10
ml) y salmuera (10 ml), y se secó sobre MgSO_{4} y se evaporó. El
producto crudo fue purificado mediante cromatografía sobre gel de
sílice usando dietil-éter al 8% en EtOAc como eluyente para obtener
el diastereoisómero del compuesto 21b con un 20% de rendimiento (no
se ha determinado la estereoquímica absoluta).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz) \delta 0,93 y
1,01 (t, J = 8,3 Hz, 1H, rotámeros en relación 3:7),
1,14-1,35 (m, 2H), 1,44 (s, 9H), 1,45 (s, 9H),
1,50-1,82 (m, 4H), 2,08-2,24 (m,
2H), 2,32 (b s, 0,7H), 2,63 (b s, 0,75 H), 2,93 (b s, 0,75H), 3,16
(m, 0,25H), 3,77 (b s, 1,5H), 3,88 (b s, 0,5H),
4,4-4,55 (m, 1H), 4,98 (d, J = 10,2 Hz, 1H), 5,03
(dd, J = 17,2 y 1,6 Hz, 1H), 5,24 (b s, 1H),
5,75-5,88 (m, 1H), 6,57 y 6,78 (2 b s, 1H, 2
rotámeros), 7,42-7,58 (m, 3H),
7,63-7,73 (m, 2H), 8,04 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 8,11
(d, J = 8,3 Hz, 1H), 8,74 (d, J = 5,1 Hz, 1H).
B. A una solución del dipéptido 21b (137 mg,
0,248 mmol) en CH_{2}Cl_{2} seco se añadió una solución de HCl
en dioxano (4M, 4 ml) y la mezcla se agitó a TA durante 1,5 h.
Después se evaporó el disolvente y el residuo se secó bajo vacío
elevado para dar el aminoácido libre. La mezcla se disolvió en
dietil-éter/MeOH (3 \mul/2 \mul) y se trató con un ligero exceso
de diazometano disuelto en dietil-éter. Después de 30 min, el
diazometano en exceso se destruyó con la adición de HCl (4M en
dioxano) y la mezcla se evaporó a sequedad para obtener la sal HCl
del compuesto 21c, que se usó en la siguiente etapa sin
purificar.
C. A una suspensión agitada del dipéptido crudo
21c (0,23 g, 0,48 mmol) en CH_{2}Cl_{2} (25 ml) se añadió
sucesivamente el ácido
(2S)-N-Boc-amino-hept-6-enoico
21d (0,151 g, 0,62 mmol), NMM (210 \mul, 1,91 mmol) y HATU (0,236
g, 0,62 mmol) y la mezcla se agitó a TA durante 16 h (el pH se
ajustó aprox. en 8 con NNM después de 1 h en caso necesario). El
CH_{2}Cl_{2} se evaporó, el residuo se recogió en EtOAc (50 ml)
y la solución orgánica se lavó con solución de NaHCO_{3} al 5% (2
x 20 ml) y salmuera (2 x 20 ml), se secó y se evaporó. El compuesto
crudo obtenido fue cromatografiado en gel de sílice (50 ml, EtOH al
2%/EtOAc) para dar el compuesto 21e (0,319 g, rendimiento 46%).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz, rotámeros en
relación 1:6) desplazamientos químicos del rotámero principal
\delta 1,21-1,27 (m, 1H), 1,36 (s, 9H),
1,45-1,81 (4m, 7H), 2,20-2,22 (m,
4H), 2,28-2,37 (m, 1H), 2,90-2,99
(m, 1H), 3,66 (s, 3H), 3,94-3,98 (m, 1H), 4,29 (b
d, J = 9,9 Hz, 1H), 4,46-4,50 (m, 1H), 4,81 (dd, J
= 8,3 y 5,4 Hz, 1H), 4,92-5,06 (m, 4H), 5,16 (d, J =
8,3 Hz, 1H), 5,37 (m, 1H), 5,70-5,84 (m, 2H), 6,82
(d, J = 5,1 Hz, 1H), 7,47-7,55 (m, 2H), 7,71 (dt, J
= 7,0 y 1,3 Hz, 1H), 8,03 (d, J = 8,6 Hz, 1H), 8,17 (d, J = 8,0 Hz,
1H), 8,78 (d, J = 5,1 Hz, 1H).
En todos los casos, el
tri-péptido dieno se disolvió en CH_{2}Cl_{2} a
una concentración de 0,01 M, y la solución fue desoxigenada
borboteando argón (aprox. 1 h para un volumen de 500 ml). Se añade
una solución de catalizador (5-30% en moles
disuelto en una pequeña cantidad de CH_{2}Cl_{2} desgasificado)
y la mezcla de reacción se somete a reflujo hasta que todo el
material de partida se convirtió en el producto o los productos,
según se indica por TLC y HPLC. Las mezclas de reacción crudas
fueron concentradas a continuación casi a sequedad y se filtraron a
través de una corta almohadilla de gel de sílice, eluyendo primero
con CH_{2}Cl_{2} para eliminar la mayor parte del catalizador,
y después con EtOAc para eluir todos los productos macrocíclicos
(la mayor parte del tiempo como un único diastereoisómero). El
producto o los productos crudos de cada reacción se analizan
mediante HPLC quiral en una columna CHIRALCEL OJ-R
(adquirida de Chiral Technologies Inc., 0,46 \varphi x 15 cm)
usando una mezcla de disolventes isocrática de 70% de H_{2}O +
0,06% de TFA - 30% de CG_{3}CN + 0,06% de TFA a 205 nm. El o los
productos macrocíclicos principales fueron caracterizados totalmente
por los datos de: ^{1}H, COSY, TOCSY y ROESY NMR con el fin de
confirmar su estructura y estereoquímica.
Una solución de dieno 23a (4,0 g, 7,88 mmol) en
CH_{2}Cl_{2} seco (800 ml, Aldrich, anhidro) fue desoxigenada
burbujeando Ar durante 2 h. Después se añadió catalizador de
Hoveyda (262 mg, 0,434 mmol, 5,5% en moles) en forma de un sólido,
y la mezcla de reacción se calentó a reflujo bajo un balón de Ar.
Después de 28 h, la solución de color rojo-naranja
se evaporó para dar un sólido amorfo y después se purificó mediante
cromatografía en columna de resolución rápida sobre gel de sílice.
El sistema inicial de disolventes fue 10% de EtOAc en
CH_{2}Cl_{2}. Una vez eluido el catalizador de la columna, el
disolvente se cambió por EtOAc puro. La elución del catalizador de
la columna se evidenció por su color. El producto macrocíclico 23b
fue aislado en forma de espuma incolora que se redisolvió en
CH_{2}Cl_{2}/hexano (aprox. 1:2). La evaporación del disolvente
proporcionó un polvo blanco (3,362 g, 89% de rendimiento).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta
1,20-1,50 (m, 6H), 1,43 (s, 9H), 1,53 (dd, J = 9,5
y 5,4 Hz, 1H), 1,61-1,70 (m, 1H),
1,76-1,90 (m, 2H), 2,05-2,26 (m,
4H), 2,45 (d, J = 14,3 Hz, 1H), 3,67 (s, 3H), 3,71 (d, J = 11,1 Hz,
1H), 3,90 (dd, J = 11,1 y 4,3 Hz, 1H), 4,43-4,53
(m, 2H), 4,76 (d, J = 8,6 Hz, 1H), 4,86 (b d, J = 9,8 Hz, 1H),
5,20-5,23 (m, 2H), 5,57 (dt, J = 7,0 y 9,8 Hz, 1H),
7,32 (b s, 1H).
Una solución de dieno 24a (2,76 g, 3,82 mmol) en
CH_{2}Cl_{2} anhidro (600 ml, anhidro) fue desoxigenada
burbujeando Ar durante 1,5 h. Se añadió mediante una cánula una
solución de catalizador de Hoveyda (117 mg, 0,19 mmol, 0,05 eq.) en
CH_{2}Cl_{2} anhidro y desgasificado (8 ml), y la mezcla de
reacción se agitó a reflujo bajo un balón de Ar. Después de 20 h,
la mezcla de reacción estaba completa aproximadamente al 50%,
momento en el cual se añadió una segunda porción de catalizador
(117 mg), y se siguió agitando durante 16 h más. Después se
concentró la solución a aproximadamente 100 ml, se aplicó a la parte
superior de una almohadilla de gel de sílice (6 x 10 cm) y el
catalizador se recuperó primero eluyendo con CH_{2}Cl_{2}. El
compuesto 24b se retiró por lavado de la almohadilla de sílice con
MeOH al 3% en EtOAc y se volvió a purificar mediante cromatografía
en columna de resolución rápida usando EtOAc/hexano (2:1) para
obtener un 70% de rendimiento de un sólido blanco con un ligero tono
oliva (1,85 g, 94% de pureza por HPLC).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 8,69
(s, 1H), 8,13 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,50-7,44 (m,
2H), 7,17 (dd, J = 9,2, 2,2 Hz, 1H), 7,04 (d, J = 6,4 Hz, 1H),
5,60-5,56 (m, 1H), 5,52 (dd, J = 9,2 Hz, 1H), 5,25
(dd, J = 9,2 Hz, 1H), 4,59 (d, J = 11 Hz, 1H), 4,44 (dd, J = 9,2
Hz, 1H), 4,05-3,98 (m, 1H), 3,94 (s, 3H), 3,92 (s,
3H), 3,89-3,82 (m, 1H), 3,55 (s, 3H),
2,64-2,53 (m, 1H), 2,46 (d, J = 7,3 Hz, 1H),
2,40-2,31 (m, 1H), 2,21 (dd, J = 8,9 Hz, 1H),
1,78-1,65 (m, 2H), 1,55 (dd, J = 4,8 Hz, 1H), 1,485
(dd, J = 4,8 Hz, 1H), 1,41-1,30 (m, 7H), 1,16 (s,
9H). MS; es^{+}: 795,4 (M+H)^{+}.
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(Esquema pasa a página
siguiente)
A. El compuesto de dieno 21e (0,130 g, 0,205
mmol) fue ciclizado usando cantidades catalíticas de dicloruro de
bis-(triciclohexilfosfina)bencilideno-rutenio
IV (catalizador de Grubb, supra) (52 mg, 0,064 mmol) en
CH_{2}Cl_{2} (60 ml) bajo reflujo durante 2 h, para dar,
después de cromatografía en gel de sílice (50 ml, 3% de
EtOH/EtOAc), el compuesto 25a (60,1 mg, rendimiento 48%).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta
1,22-1,30 (m, 2H), 1,35 (s, 9H),
1,44-2,35 (m, 13H), 3,07-3,14 y
3,16-3,24 (2m, 1H, rotámeros en relación 1:3), 3,69
(s, 3H), 3,96-4,04 (m, 1H),
4,42-4,50 (m, 1H), 4,95-5,04 (m,
1H), 5,05-5,15 (m, 1H), 5,20-5,30
(m, 1H), 5,55-5,65 (m, 1H),
6,75-6,79 (2d, J = 5,4 Hz, 1H, rotámeros en
relación 1:3), 7,36 (s, 1H), 7,46-7,50 (m, 1H), 8,03
(d, J = 8,3 Hz, 1H), 8,13 y 8,17 (2d, J = 8,0 Hz, 1H, rotámeros en
relación 1:3), 8,77 (d, J = 5,1 Hz, 1H).
B. El resto éster del compuesto macrocíclico 25a
(0,0156 g, 0,026 mmol) se hidrolizó con LiOH\cdotH_{2}O (8,7
mg, 0,206 mmol) en THF/MeOH/H_{2}O (4 ml/2 ml/2 ml). El producto
crudo fue purificado mediante HPLC en fase inversa C18 en una
columna Whatman (Partisil 10,0DS3) 50/2,4 cm usando un gradiente de
disolvente de 5% de CH_{3}CN acuoso a 100% de CH_{3}CN, para
obtener el compuesto puro 202 en forma de sólido blanco amorfo
(11,8 mg).
^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz): \delta 1,12 (s,
9H), 1,20-1,24 (m, 2H), 1,32-1,40
(m, 3H), 1,58-1,62 (m, 2H),
1,68-1,78 (m, 3H), 1,95-2,02 (m,
1H), 2,08-2,18 (m, 2H), 2,42-2,59
(m, 2H), 3,97-4,00 (b d, J = 9,8 Hz, 2H), 4,47 (t, J
= 8,6 Hz, 1H), 4,58 (d, J = 11,8 Hz, 1H), 5,22-5,29
(m, 1H), 5,46-5,54 (m, 1H), 5,66 (s, 1H), 7,12 (d,
J = 6,0 Hz, 1H), 7,49 (d, J = 3,5 Hz, 1H), 7,68 (dd, J = 7,3 Hz,
1H), 7,98 (dd, J = 7,0 Hz, 1H), 8,08 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 8,21 (s,
1H), 8,35 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 9,08 (d, J = 5 Hz, 1H).
C. El compuesto macrocíclico 25a (20 mg, 0,033
mmol) en CH_{2}Cl_{2} seco (1 ml) se agitó en presencia de HCl
4M/dioxano (5 ml) durante 1 h. La mezcla se evaporó y se secó
cuidadosamente. El residuo se redisolvió en
CH_{2}Cl_{2}/
DMF (3 ml/1 ml) y se trató con NMM (14,5 \mul, 0,132 mmol) y anhídrido acético (7,0 \mul, 0,073 mmol) y se agitó a TA durante 14 h. La mezcla se evaporó y se secó en alto vacío. El residuo se disolvió después en una mezcla de THF/MeOH/H_{2}O (4 ml/2 ml/2 ml) y se agitó durante la noche con LiOH\cdot2H_{2}O (11 mg, 0,264 mmol). El residuo aislado después de acidificar a pH = 3 con HCl 1N enfriado en hielo fue purificado mediante HPLC en fase inversa C18 usando un gradiente de disolvente de 0-40% de CH_{3}CN acuoso (0,06% de TFA) con el fin de aislar el compuesto puro 203 como un sólido blanco amorfo (12 mg).
DMF (3 ml/1 ml) y se trató con NMM (14,5 \mul, 0,132 mmol) y anhídrido acético (7,0 \mul, 0,073 mmol) y se agitó a TA durante 14 h. La mezcla se evaporó y se secó en alto vacío. El residuo se disolvió después en una mezcla de THF/MeOH/H_{2}O (4 ml/2 ml/2 ml) y se agitó durante la noche con LiOH\cdot2H_{2}O (11 mg, 0,264 mmol). El residuo aislado después de acidificar a pH = 3 con HCl 1N enfriado en hielo fue purificado mediante HPLC en fase inversa C18 usando un gradiente de disolvente de 0-40% de CH_{3}CN acuoso (0,06% de TFA) con el fin de aislar el compuesto puro 203 como un sólido blanco amorfo (12 mg).
^{1}H NMR (tampón de Na_{2}PO_{4} 50 mM, pH
= 6,0, 600 MHz): \delta 1,22-1,27 (m, 2H),
1,38-1,43 (m, 2H), 1,58-1,64 (m,
2H), 1,67-1,76 (m, 2H), 1,77-1,84
(m, 1H), 1,92-1,99 (m, 1H),
2,22-2,08 (m, 1H), 2,12-2,27 (m,
1H), 2,22-2,27 (m, 1H), 2,60-2,67
(m, 1H, Pro-\beta'), 2,83-2,89 (m,
1H, Pro-\beta), 4,32 (dd, J = 12,1 y 3,5 Hz, 1H,
Pro-\delta'), 4,41 (dd, J = 12,1 y 7,3 Hz, 1H),
4,56 (b d, J = 8,0 Hz, 1H, Pro-\delta), 4,62 (dd,
J = 8,9 Hz, 1H, Pro-\alpha),
5,40-5,46 (m, 1H), 5,55-5,61 (m,
1H), 5,73 (b s, 1H, Pro-\gamma), 7,41 (d, J = 6,3
Hz, 1H), 7,64 (b s, 1H, Acca-NH), 7,80 (dd, J = 7,9
Hz, 1H), 8,03 (dd, J = 8,0 Hz, 1H), 8,07 (d, J = 9,5 Hz, 1H), 8,16
(d, J = 7 Hz, 1H, AcNH), 8,36 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 8,90 (d, J = 6,0
Hz, 1H).
A. Una solución de L-glutamina
protegida con Boc 26a (4,93 g, 20 mmol) y diacetato de yodobenceno
(7,73 g, 24 mmol, 1,2 eq.) en EtOAc/CH_{3}CN/H_{2}O (2:2:1, 60
ml) se agitó a 16ºC durante 1 h y a 20ºC durante 3 h. La mezcla de
reacción se diluyó después con H_{2}O (20 ml), los disolventes
EtOAc y CH_{3}CN se eliminaron bajo vacío, y la mezcla acuosa
restante se extrajo con dietil-éter (3 x 50 ml) y EtOAc (50 ml) con
el fin de eliminar la mayor parte de las impurezas. La capa acuosa
(que contenía el producto intermedio de amina) se concentró después
a sequedad, el material restante se redisolvió en Na_{2}CO_{3}
al 10% (30 ml), se enfrió a 0ºC en un baño de hielo y se añadió
lentamente una solución de cloroformiato de bencilo (3,3 ml, 20,4
mmol, 1,02 eq.), dioxano (40 ml) (aprox. 10 min). La mezcla de
reacción se agitó a 0ºC durante 1 h y a TA durante 2 h. Después se
diluyó la mezcla con H_{2}O (50 ml), se extrajo con dietil-éter
frío (aprox. 5ºC) (3 x 50 ml), se acidificó con HCl 4M a pH =
3-4 y se extrajo con EtOAc (3 x 50 ml). Las capas
orgánicas reunidas se secaron sobre MgSO_{4} anhidro y se
evaporaron a sequedad bajo vacío. El material crudo se purificó
mediante cromatografía en columna de resolución rápida, usando
EtOAc/hexano/AcOH (7:2,9:0,1) para obtener el compuesto 26b con un
43% de rendimiento global (3,04 g).
B. El producto intermedio de dipéptido 26c (250
mg, 0,41 mmol), el compuesto 26b (171 mg, 0,49 mmol, 1,2 eq.) y
HATU (185 mg, 0,49 mmol, 1,2 eq.) se disolvieron en
CH_{2}Cl_{2} (6 ml) y se añadió DIPEA (0,29 ml, 1,62 mmol, 4
eq.). La mezcla de reacción se agitó a TA durante 14 h, después se
evaporó bajo vacío el CH_{2}Cl_{2} y el material crudo se
redisolvió en EtOAc. La solución en EtOAc se lavó con solución
acuosa de NaHCO_{3} al 5% y con salmuera, se secó sobre
MgSO_{4} anhidro y se evaporó a sequedad. El compuesto 26d fue
obtenido después de purificar el material crudo mediante
cromatografía en columna de resolución rápida, usando EtOAc/hexano
(4:1) como eluyente, con un 98% de rendimiento (338 mg).
C. Una solución de compuesto 26d (335 mg, 0,394
mmol) en THF (5 ml) se enfrió a 0ºC y se añadió una solución de
BH_{3} en sulfuro de dimetilo (0,12 ml de solución 10 M, 1,2
mmol, 3 eq.). La mezcla de reacción se dejó calentar a TA y se
agitó durante 1 h. Después se enfrió de nuevo a 0ºC antes de añadir
lentamente una solución acuosa de NaOH (0,8 ml de solución 2,5 M,
1,97 mmol, 5 eq.) a lo largo de un periodo de 15 min, seguido por
la adición lenta (aprox. 15 min) de una solución acuosa de
H_{2}O_{2} (0,8 ml de una solución 8,8 M, 6,9 mmol, 17,5 eq.).
La mezcla de reacción se dejó calentar a TA y se agitó durante 1 h.
Después de ese tiempo, la mezcla de reacción se acidificó a pH
aprox. 4 con el fin de apagar el BH_{3} en exceso, después se
añadió solución acuosa de NaHCO_{3} para ajustar el pH en aprox.
9-10, se eliminó el THF bajo vacío, y el material
crudo se repartió entre H_{2}O y EtOAc. La capa acuosa se volvió a
extraer con EtOAc, las capas orgánicas reunidas se lavaron con
salmuera, se secaron sobre MgSO_{4} anhidro y se evaporaron a
sequedad bajo vacío. El material crudo se purificó mediante
cromatografía en columna de resolución rápida usando
EtOAc/hexano/NH_{4}OH (8:2:0,5) como eluyente, para obtener
compuesto puro 26e con un rendimiento del 57% (192 mg).
D. A una solución de compuesto 26e en
CH_{2}Cl_{2} (8 ml) se añadió peryodinato de
Dess-Martin (195 mg, 97%, 0,33 mmol, 1,5 eq.) y la
mezcla de reacción se agitó a TA durante 1,5 h. La reacción se
apagó añadiendo solución acuosa de Na_{2}S_{2}O_{3} (3 ml de
solución al 5%), después se añadió solución acuosa saturada de
NaHCO_{3} (5 ml) y la mezcla se agitó a TA durante 15 min.
Finalmente, la mezcla de reacción cruda se extrajo con EtOAc, la
capa orgánica se lavó con solución acuosa de NaHCO_{3} al 5% y
salmuera, se secó sobre MgSO_{4} anhidro y se evaporó bajo vacío
para dar 188 mg de aldehído 28f que se usó en la siguiente etapa
sin más purificación.
E. Una solución de compuesto 26f (188 mg, 0,22
mmol), CH_{3}CO_{2}H (38 \mul) y Pd(OH)_{2}
(25 mg) en etanol (5 ml) se agitó a TA bajo H_{2} a presión
atmosférica durante 16 h. Después de ese periodo se añadieron al
matraz más H_{2} gas, Pd(OH)_{2} (180 mg) y
CH_{3}CO_{2}H (154 \mul) y se siguió agitando durante 24 h
más. Después se filtró la mezcla y el disolvente se evaporó a
sequedad, y el producto macrocíclico crudo se purificó mediante
cromatografía en columna de resolución rápida usando
CHCl_{3}/MeOH/AcOH (10:2:1) para obtener el compuesto 26g con un
rendimiento de aprox. 30% (48 mg).
F. Una mezcla de compuesto 26g (22 mg, 0,031
mmol), DIPEA (27 \mul, 0,155 mmol, 5 eq.) y anhídrido acético
(8,7 \mul, 0,093 mmol, 3 eq.) en CH_{2}Cl_{2} (5 ml) se agitó
a TA durante 16 h. El CH_{2}Cl_{2} se eliminó después bajo
vacío, se añadió una mezcla de THF/MeOH/H_{2}O (2:2:1,5 ml) y
LiOH\cdot2H_{2}O (13 mg, 0,31 mmol, 10 eq.), y se dejó que
tuviese lugar la reacción de hidrólisis durante 68 h a TA y durante
2 h a 50ºC. Después se acidificó la mezcla de reacción (pH aprox.
4) y se purificó mediante HPLC en fase inversa para obtener el
compuesto final 508 (aprox. 6 mg, aprox. 26% de rendimiento para
las 2 últimas etapas).
^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz) de 508 (mezcla de
rotámeros confirmada por datos de COSY, TOCSY y ROESY NMR):
\delta 1,18 (s, 9H), 1,09-1,85 (m solap., 11H),
1,95 (s, 3H), 2,30 (m, 1H), 2,63 (m, 1H), 3,18-4,14
(m solap., 6H), 3,96 (s, 3H), 4,44 (m, 1H), 4,62 y 4,69 (2d, J =
11,8 Hz, 1H, rotámeros), 5,82 (b s, 1H), 7,20 (m, 2H), 7,53 (b s,
1H), 7,67 (b s, 4H), 8,19 (b s, 3H), 8,61 (s, 1H).
A. El producto intermedio macrocíclico insaturado
23b (3,50 g, 7,30 mmol) se disolvió en EtOAc (30 ml) y se añadieron
700 mg (20% p/p) de Rh al 5% sobre alúmina. La mezcla se agitó bajo
gas H_{2} a presión atmosférica y a TA durante 1,5 h. Después de
ese tiempo, el análisis por HPLC confirmó la completa conversión
del material de partida en dos productos, el producto deseado 27a y
un producto minoritario (8% de la masa total) que fue identificado
más tarde como el compuesto 27b, formado a partir de la apertura
del anillo de ciclopropano. La mezcla de reacción se filtró y se
concentró para dar un sólido de color verde claro (3,47 g). El
sólido se evaporó conjuntamente dos veces con EtOH para eliminar
todo el EtOAc (la presencia de EtOAc interfiere en la etapa
siguiente). La separación de compuesto 27a del 27b por cromatografía
mostró ser muy difícil, por lo que se ideó un método alternativo
basado en las velocidades relativas de hidrólisis de sus
correspondientes restos éster metílico.
B. La mezcla cruda de compuestos 27a y 27b (3,47
g) se disolvió en THF:MeOH (1:1, 20 ml), se añadió una solución
acuosa de LiOH\cdotOH (24 mg en 5 ml de H_{2}O, 8% eq.) y la
mezcla de reacción se agitó a TA durante 16 h (la hidrólisis
completa del producto secundario 27b para dar su ácido
correspondiente 27c fue confirmada por HPLC). La mezcla de reacción
se concentró bajo vacío para eliminar la mayor parte del THF y el
MeOH y se repartió entre H_{2}O (100 ml) y EtOAc (300 ml). La
capa orgánica se lavó con NaOH 0,5 N (3 x 100 ml), salmuera (100
ml), solución acuosa de ácido cítrico al 10% (2 x 100 ml) y
salmuera (100 ml), se secó sobre MgSO_{4} anhidro, se filtró y se
concentró a sequedad. El producto deseado 27a se obtuvo con una
pureza elevada (> 90% por HPLC) en forma de una espuma de color
verde claro y con un 93% de rendimiento global (3,28 g) para las
dos etapas.
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta
1,1-1,38 (m, 13H), 1,42 (s, 9H),
1,51-1,57 (m, 1H), 1,63-1,67 (dd, J
= 8,0 y 5,1 Hz, 1H), 1,81-1,87 (m, 1H),
1,92-1,99 (m, 1H), 2,02-2,08 (m,
1H), 2,62 (d, J = 14 Hz, 1H), 3,4 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 3,65 (s,
3H), 4,01 (dd, J = 10,8 y 4,1 Hz, 1H), 4,42-4,48 (m,
1H), 4,51-4,55 (m, 1H), 4,87 (d, J = 8,6 Hz, 1H),
5,14 (d, J = 8,6 Hz, 1H), 7,97 (br s, 1H).
El derivado de quinolina 8f fue unido al
compuesto macrocíclico preformado 23b mediante una reacción de
Mitsunobu. El derivado de quinolina 8f (30 mg, 0,095 mmol) se
disolvió en THF y después se añadieron el macrociclo 23b (45,6 mg, 1
eq.) y PPh_{3} (49,8 mg, 2 eq.). La mezcla resultante se enfrió a
0ºC. Después se añadió gota a gota DIAD (37,4 \mul, 2 eq.). La
solución se agitó durante 1 hora a 0ºC y después se agitó durante
la noche a temperatura ambiente. Después se diluyó la mezcla con
EtOAc (15 ml), se lavó con una solución saturada de NaHCO_{3} (15
ml), seguido de salmuera. La solución se secó con MgSO_{4}, se
filtró y se concentró bajo vacío. Se obtuvieron 202 mg de un aceite
amarillo. El producto se purificó mediante cromatografía de
resolución rápida sobre gel de sílice (100% de EtOAc). El producto
contenía aún subproductos de DIAD después de la purificación. El
producto resultante que se obtuvo contenía 55% p/p del producto
deseado, por lo que el rendimiento se declaró el 62%.
El producto intermedio de éster (46 mg, 0,06
mmol) se disolvió en una mezcla de THF/MeOH/H_{2}O (relación
2:1:1, 2 ml), se añadió LiOH\cdotH_{2}O (20 mg, 0,48 mmol) y la
solución se agitó a TA. Después de un periodo de 16 h, el análisis
de la mezcla de reacción por HPLC indicó que la hidrólisis era
completa. Los disolventes orgánicos se eliminaron bajo vacío y el
material crudo resultante disuelto en DMSO se purificó mediante
HPLC en fase inversa C18 para dar el inhibidor puro 741.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,67 (s, 1H),
8,29-8,14 (m, 2H), 8,08-7,97 (m,
1H), 7,91-7,78 (m, 1H), 7,74 (s, 1H),
7,31-7,20 (m, 1H), 7,10 (d, J = 5,7 Hz, 1H),
5,82-5,71 (m, 1H), 5,58-5,47 (m,
1H), 5,32-5,23 (m, 1H), 4,74-4,64
(m, 1H), 4,55-4,47 (m, 1H),
4,23-4,06 (m, 1H), 4,04-3,94 (m,
1H), 3,97 (s, 3H), 3,92-3,85 (m, 1H),
2,70-2,55 (m, 2H), 2,53-2,36 (m,
2H), 2,20-2,09 (m, 1H), 1,80-1,62
(m, 2H), 1,56-1,43 (m, 2H),
1,42-1,29 (m, 6H), 1,27 (d, J = 3,2 Hz, 3H), 1,25
(d, J = 2,9 Hz, 3H), 1,12 (s, 9H).
MS: 763,1 (M+1), 761,1 (M-1).
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(Esquema pasa a página
siguiente)
A una solución del compuesto macrocíclico 25a (21
mg, 0,035 mmol) en t-butanol/H_{2}O) (1,5 ml/1,5
ml) a 0º, se añadió una solución de OsO_{4} en
t-butanol (0,36 ml de 35% p/v, 0,035 mmol) y la
mezcla se agitó a TA durante 1 h. La mezcla se diluyó con EtOAc (20
ml) y la solución orgánica se lavó con NaHCO_{3} al 5% (2 x 10
ml) y salmuera (2 x 10 ml), se secó y se evaporó a sequedad. El
compuesto crudo se recogió en THF/MeOH/H_{2}O (3 ml/1,5 ml/1,5
ml) y se agitó en presencia de LiOH\cdotH_{2}O (13 mg, 0,28
mmol) durante 16 h. La mezcla se acidificó a pH 4 con HCl 0,5N
enfriado con hielo, se evaporó y se purificó mediante HPLC en fase
inversa C18 usando un gradiente de disolvente de H_{2}O (0,06% de
TFA) a 40% de CH_{3}CN acuoso (0,06% de TFA). El diol syn 205 fue
aislado con alta pureza en forma de un sólido blanco amorfo.
Compuesto nº 205: ^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz):
\delta 1,01 (s, 9H), 1,06-1,30 (m, 9H),
1,48-1,68 (m, 3H), 1,78-1,88 (m,
1H), 2,2-2,5 (2m, 2H), 3,78-3,82 (m,
1H), 3,86-3,90 (m, 1H), 4,39 (t, J = 8,9 Hz, 1H),
4,61 (d, J = 11,4 Hz, 1H), 5,60 (b s, 1H,
Pro-\gamma), 7,03 (d, J = 6,0 Hz, 1H), 7,40 (b s,
1H), 7,58-7,62 (m, 1H), 7,87-7,91
(m, 1H), 8,00 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 8,24 (d, J = 8,6 Hz, 1H), 8,60
(s, 1H), 8,99 (b s, 1H).
EMS (modo de ionización negativa): m/z 625
(M-H)^{-}.
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(Esquema pasa a página
siguiente)
A. Una solución del éster
ceto-nonenoato 16d (0,180 g, 0,6 mmol) en
MeOH/H_{2}O (5 ml/2 ml) se agitó a TA en presencia de
LiOH\cdotH_{2}O (50 mg, 1,2 mmol) durante 1 h. La solución se
acidificó a pH 6 con HCl 0,5 N enfriado con hielo y se evaporó la
mayor parte del MeOH. Después se disolvió el residuo en EtOAc (30
ml) y la solución se lavó con HCl 0,5 N enfriado con hielo (10 ml),
se trató con salmuera (10 ml), se secó y se evaporó. Después se
redisolvió el residuo crudo en CH_{2}Cl_{2} (10 ml) y se hizo
reaccionar con el fragmento P1-P2 30a (0,337 g, 0,6
mmol) en presencia de HATU (233 mg, 0,612 mmol) y DIPEA (420
\mul, 2,4 mmol) durante un periodo de 16 h a TA. La mezcla de
reacción se cromatografió sobre gel de sílice usando EtOAc/hexano
(1/1) como eluyente para aislar el compuesto puro 30b (0,370 g, 83%
de rendimiento, pureza > 95% por HPLC).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 1,41
(s, 9H), 1,45-1,54 (m, 1H),
1,58-1,62 (m, 1H), 1,73-1,77 (m,
1H), 1,86-1,91 (m, 1H), 2,16 (dd, J = 17,8 y 8,6
Hz, 1H), 2,26 - 2,43 (2m, 2H), 2,46-2,58 (m, 2H),
2,64-2,81 (m, 1H), 2,85-2,92 y
2,95-3,03 (2m, 1H, rotámeros en relación 1:3), 3,67
(s, 3H), 3,95 (s, 3H), 4,10-4,18 (m, 1H),
4,20-4,30 (m, 1H), 4,40-4,55 (m,
1H), 4,80-4,88 (m, 1H), 4,92-5,10
(m, 2H), 5,14 (dd, J = 10,2 y 1,6 Hz, 1H), 5,24-5,38
(m, 4H), 5,42-5,54 (m, 1H),
5,68-5,86 (m, 2H), 7,04-7,14 (m,
2H), 7,42-7,64 (m, 5H), 7,92-8,12
(m, 3H).
B. El dieno 30b (0,370 g, 0,49 mmol) fue
ciclizado en presencia del catalizador dicloruro de
bis(triciclohexilfosfina) bencilideno-rutenio
IV (0,125 mg, 0,15 mmol) en CH_{2}Cl_{2} (destilado en
CaH_{2} y desgasificado con argón durante 30 min) durante un
periodo de 2 h a reflujo. El compuesto se obtuvo en forma de una
mezcla de estereoisómeros (30c y 30d en la relación 1:1) después de
cromatografía en columna de resolución rápida en gel de sílice
usando EtOAc/hexano (3/1) con un rendimiento del 35% (0,124 g).
^{1}H NMR de la mezcla de 30c y 30d
(CDCl_{3}, 400 MHz): \delta 1,44 (s, 4H), 1,37 (s, 4H), 1,60
(m, 2H), 1,83 (m, 0,5H), 2,01 (m, 1H), 2,09 (m, 1H), 2,42 (m, 5H),
2,73 (m, 2H), 3,26 (m, 0,5H), 3,69 (s, 1,5H), 3,76 (s, 1,5H), 3,96
(s, 3H), 4,10 (m, 1H), 4,24 (m, 0,5H), 4,10 (m, 0,5H), 4,58 (m, 1H),
4,73 (m, 1H), 4,89 (m, 0,5H), 4,97 (m, 05H), 5,30 (m, 0,5H), 5,44
(m, 2H), 5,64 (m, 1H), 7,1-7,0 (m, 3H), 7,47 (m,
4H), 8,08-7,98 (m, 3H).
C,D. Se llevó a cabo la hidrólisis de los ésteres
metílicos 30c y 30d (24 mg, 0,033 mmol) en THF/MeOH/H_{2}O (1
ml/0,5 ml/0,5 ml) con LiOH\cdotH_{2}O (11 mg, 0,246 mmol)
durante un periodo de 16 h a TA. Al cabo de ese tiempo, la mezcla
de reacción se acidificó a pH 4-5 y se cromatografió
en una columna de HPLC de fase inversa C18 usando un gradiente de
disolvente de H_{2}O (0,06% de TFA) a solución acuosa al 50% de
CH_{3}CN (0,06% de TFA). Los compuestos deseados 214 y 218 fueron
aislados de la mezcla de los dos compuestos con alta pureza (94% de
pureza por HPLC) con un 15% de rendimiento (3 mg).
Compuesto 214: ^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz):
\delta 1,15 (s, 9H), 1,48-1,54 (m, 2H),
1,65-1,74 (m, 1H), 1,77-1,85 (m,
1H), 2,12-2,25 (m, 4H), 2,27-2,34
(m, 1H), 2,61-2,68 (m, 1H), 2,87 (b t, J = 11,5 Hz,
1H), 3,92 (dd, J = 9,2 y 1,5 Hz, 1H, Pro-\delta),
3,97 (s, 3H, -OCH_{3}), 4,14-4,20 (m, 1H), 4,52
(t, J = 7,8 Hz, 1H, Pro-\alpha), 4,66 (d, J =
11,8 Hz, 1H, Pro-\delta), 5,45 (t, J = 9,9 Hz,
1H), 5,51-5,58 (m, 1H), 5,82 (b s, 1H,
Pro-\gamma), 7,09 (d, J = 6,0 Hz, 1H, BocNH),
7,26 (b s, 1H), 7,53 (s, 1H), 7,67 (b s, 3H), 8,16 (d, J = 2 Hz,
1H), 8,18 (s, 1H), 8,83 (s, 1H, ACCA-NH).
Compuesto 218: ^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz):
\delta 1,06-1,10 (m, 1H), 1,18 (s, 9H),
1,52-1,55 (m, 1H), 1,62-1,80 (m,
1H), 2,10-2,68 (solapamiento, 9H), 3,90 (b d, J =
8,3 Hz, 1H), 3,96 (s, 3H, OCH_{3}), 4,20-4,27 (m,
1H), 4,58-4,63 (m, 1H,
Pro-\delta), 4,66 (dd, J = 8,3 Hz, 1H,
Pro-\alpha), 4,88 (dd, J = 10,2 Hz, 1H),
5,18-5,26 (m, 1H), 5,73-5,79 (m, 1H,
Pro-\gamma), 7,01 (d, J = 6,4 Hz, 1H), 7,23 (b s,
1H), 7,50 (b s, 1H), 7,66 (b s, 3H), 8,20 (b s, 2H), 8,53 (s,
1H).
A. El dieno 31a (249 mg, 0,330 mmol) se disolvió
en 30 ml de CH_{2}Cl_{2} anhidro y la solución fue
desgasificada con argón durante 15 min. El catalizador dicloruro de
bis(triciclohexilfosfina) bencilideno-rutenio
IV (82 mg, 0,100 mmol) se disolvió en 3 ml de CH_{2}Cl_{2}
anhidro y desgasificado, y se añadió a la solución de dieno. La
mezcla de reacción se calentó a reflujo durante 2 h bajo N_{2}.
La solución se concentró y se purificó mediante cromatografía en
columna de resolución rápida para obtener el compuesto 31b en forma
de un sólido de color pardo con un rendimiento del 71% (171
mg).
^{1}H NMR (CDCl_{3}, 400 MHz): \delta
1,22-1,44 (m, 10H), 1,42 (s, 9H),
1,66-1,74 (m, 1H), 1,87-1,97 (m,
2H), 2,13-2,28 (m, 3H), 2,32-2,39
(m, 1H), 3,08-3,16 (m, 1H), 3,41 (s, 3H),
4,07-4,22 (m, 3H), 4,28-4,34 (m,
1H), 4,58-4,64 (m, 1H), 4,95-4,99
(m, 1H), 5,22-5,29 (m, 2H),
5,38-5,43 (m, 1H), 5,48-5,56 (m,
1H), 7,00-7,12 (m, 3H), 7,43-7,55
(m, 4H), 7,97-8,11 (m, 3H).
ES(+) MS: m/z 727,4 (M+H)^{+}.
B. El compuesto 31b (0,117 mmol) se agitó en una
solución de HCl (1 ml de solución 4N en dioxano) durante 30 min y
se concentró a sequedad. El sólido se recogió en CH_{2}Cl_{2}
(2 ml) y se añadieron sucesivamente Et_{3}N (82 \mul, 0,585
mmol) e isotiocianato de t-butilo (35 mg, 0,351
mmol). Después de agitar a TA durante 20 h, la mezcla se concentró
a sequedad y el compuesto crudo 31c se usó en la etapa de
hidrólisis final sin más purificación.
D. El compuesto 31c (85 mg, 0,117 mmol) se
disolvió en THF/MeOH/H_{2}O (2 ml/1 ml/1 ml), se añadió
LiOH\cdotH_{2}O (39 mg, 0,936 mmol), y la solución se agitó
durante 20 h a TA. Después de ese tiempo, se añadió ácido acético (1
ml) y la solución se concentró para eliminar el MeOH y el THF. El
compuesto puro 209 fue aislado después de purificar el producto
crudo mediante HPLC en fase inversa C18 (25 mg, aprox. 31% de
rendimiento).
^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz): \delta 1,04 (s,
9H), 1,15-1,24 (m, 2H), 1,30-1,40
(m, 5H), 1,44-1,51 (m, 2H),
1,54-1,68 (m, 1H), 1,75-1,88 (m,
1H), 2,18 (dd, J = 17,2 y 8,5 Hz, 1H), 2,32-2,45
(m, 1H, Pro-\beta), 2,54-2,62 (m,
1H), 2,65-2,68 (m, 1H,
Pro-\beta), 3,91 (dd, J = 11,1 y 3,5 Hz, 1H,
Pro-\delta), 3,96 (s, 3H, -OCH_{3}),
4,17-4,23 (m, 1H), 4,47 (dd, J = 8,6 Hz, 1H,
Pro-\alpha), 4,67 (b d, J = 7,9 Hz, 1H,
Pro-\delta), 5,30 (dd, J = 9,5 Hz, 1H), 5,52 (b
dd, J = 19 y 8,3 Hz, 1H), 5,68 (s, 1H), 5,78 (b s, 1H,
Pro-\gamma), 5,94 (b s, 1H), 7,21 (b s, 1H), 7,51
(b s, 1H), 7,66 (b s, 4H), 8,19 (s, 2H), 8,40 (d, J = 7 Hz, 1H),
8,61 (s, 1H, ACCA-NH).
ES(+) MS: m/z 698,3 (M+H)^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Esquema pasa a página
siguiente)
\vskip1.000000\baselineskip
A. El dieno 32a (84 mg, 0,11 mmol) se disolvió en
CH_{2}Cl_{2} anhidro (11 ml) y la solución se desgasificó
durante un periodo de 15 min con un flujo de argón. El catalizador
de dicloruro de bis(triciclohexilfosfina)
bencilideno-rutenio IV (19 mg, 0,023 mmol) se
disolvió primero en 1 ml de CH_{2}Cl_{2} desgasificado y
después se pasó al matraz de reacción mediante una cánula. La
mezcla de reacción se agitó durante 2 h a reflujo. Después se
eliminó el disolvente bajo vacío y la mezcla de reacción se purificó
mediante cromatografía en columna de resolución rápida en gel de
sílice, usando EtOAc/hexano (1:1) como eluyente, para dar el
compuesto macrocíclico 32b en forma de un aceite amarillo (33 mg,
41% de rendimiento).
B. El producto intermedio éster 32b (33 mg, 0,045
mmol) se disolvió en una mezcla de THF/MeOH/H_{2}O (relación
2:1:1, 2 ml), se añadió LiOH\cdotH_{2}O (8 mg, 0,18 mmol) y la
solución se agitó a TA. Después de un periodo de 16 h, el análisis
de la mezcla de reacción mediante HPLC indicó que la hidrólisis era
incompleta. Así, se añadió una cantidad adicional de
LiOH\cdotH_{2}O (4 mg, 0,09 mmol) y la solución se agitó a TA
durante un total de 36 h. Finalmente, la solución se acidificó con
una pequeña alícuota de ácido acético, los disolventes orgánicos se
eliminaron bajo vacío y el material crudo que quedaba se purificó
mediante HPLC en fase inversa C18 para dar inhibidor 404
puro.
puro.
^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz): \delta 1,21 (d, J
= 6,0 Hz, 3H, Me), 1,36 (s, 9H, Boc), 1,1-1,4 (3m,
3H), 1,66 (m, 1H), 1,80 (m, 1H), 2,10 (m, 2H), 2,57 (m, 2H), 3,90
(m, 4H), 4,47 (b d, J = 12,7 Hz, 1H), 4,58 (b d, J = 7,3 Hz, 1H),
4,66 (dd, J = 8,0 Hz, 1H), 5,57 (m, 1H), 5,66 (m, 1H), 5,83 (b s,
1H), 6,18 (bd, J = 6,9 Hz, 1H), 7,25 (b d, J = 7,3 Hz, 1H), 7,56 (b
s, 1H), 7,70 (m, 4H), 8,22 (b d, J = 2,9 Hz, 2H), 8,29 (b s, J =
9,2 Hz, 1H).
C. Se disolvió inhibidor 404 (15 mg, 0,021 mmol)
en etanol (2 ml) y se añadió Pd al 10%/C (2 mg). La mezcla se agitó
bajo hidrógeno a TA durante 16 h. Después de filtrar, la mezcla se
purificó mediante HPLC en fase inversa C18 para dar el inhibidor
407 en forma de un sólido blanco (10 mg, 66% de rendimiento).
^{1}H NMR (DMSO, 400 MHz): \delta 1,04 (m,
1H), 1,17 (d, J = 6,0 Hz, 3H), 1,35 (s, 9H),
1,25-1,75 (m, 12H), 2,32-2,45 (m,
1H), 3,40-3,50 (m, 2H), 3,74-3,83
(m, 1H), 3,85-3,93 (m, 1H), 3,97 (s, 3H),
4,27-4,36 (dd, J = 21,1 y 8,6 Hz, 1H), 4,54 (dd, J
= 7,95 y 7,95 Hz, 1H), 5,64 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 5,82 (br s, 1H),
7,27-7,33 (m, 1H), 7,53-7,57 (b s,
1H), 7,60-7,74 (m, 4H), 8,13-8,27
(m, 3H), 8,30-8,35 (br s, 1H).
\vskip1.000000\baselineskip
A. El compuesto 33a (aprox. 0,55 mmol) se
disolvió en CH_{2}Cl_{2} (100 ml) y la solución fue
desgasificada cuidadosamente antes de añadir una muestra de
catalizador de Hoveyda (17 mg, 0,028 mmol, 0,05 eq.). Después se
agitó la solución bajo reflujo durante 5 h. La mezcla de reacción
se concentró y se purificó mediante cromatografía en columna de
resolución rápida, usando un gradiente de disolvente de
CH_{2}Cl_{2}/EtOAc (relación de 3:2 a 2:3), para dar el
compuesto 33b con un 72% de rendimiento (194 mg).
B. A una solución de compuesto 33b (70 mg, 0,142
mmol) se añadieron lentamente, a lo largo de un periodo de 20 min,
2-etoxi-4-hidroxi-7-metoxiquinolina
3c (63 mg, 0,284 mmol, 2 eq.) y Ph_{3}P (186 mg, 0,71 mmol, 5
eq.) en THF anhidro (15 ml) a 0ºC, y DIAD (140 \mul, 0,71 mmol, 5
eq.). La mezcla de reacción se dejó calentar a TA y se agitó a TA
durante 2,5 h. Subsiguientemente, el THF fue evaporado bajo vacío y
el producto crudo se purificó mediante cromatografía en columna de
resolución rápida, usando un gradiente de disolvente de
hexano/EtOAc (relación de 7:3 a 1:1). El compuesto puro 33c fue
aislado con un rendimiento del 73% (72 mg).
C. El compuesto 33c (72 mg, 0,104 mmol) se mezcló
con CH_{2}Cl_{2} (5 ml) y HCl 4M en dioxano (5 ml), y la mezcla
se dejó agitando a TA durante 1,5 h para segmentar el grupo
protector Boc y obtener la sal de HCl del compuesto intermedio 33d.
La mezcla de reacción cruda se evaporó a sequedad bajo vacío, se
secó bajo vacío para asegurar la eliminación de todo el HCl y se usó
en la etapa siguiente sin purificar.
D. A una solución de ciclopentanol (29 \mul,
0,32 mmol) en THF (10 ml), se añadió gota a gota una solución de
fosgeno en tolueno (1,93 M, 274 \mul, 0,528 mmol) y la mezcla se
agitó a TA durante 2 h para formar el reactivo cloroformiato de
ciclopentilo. Después de ese periodo, se eliminó aproximadamente la
mitad del disolvente por evaporación bajo vacío, la solución de
color amarillo claro restante se diluyó mediante la adición de
CH_{2}Cl_{2} (5 ml) y se volvió a concentrar a la mitad de su
volumen original, con el fin de asegurar la eliminación de todo el
fosgeno en exceso. La anterior solución del reactivo de
cloroformiato de ciclopentilo se diluyó adicionalmente con THF (10
ml), se enfrió a 0ºC y se añadió al compuesto sólido 33d (0,104
mmol) a 0ºC. Se añadió Et_{3}N (75 \mul, 0,534 mmol, 5,2 eq.) a
la mezcla de reacción y se siguió agitando a 0ºC durante 1,5 h. Los
disolventes se eliminaron bajo vacío y el material crudo se
purificó mediante cromatografía en columna de resolución rápida
usando EtOAc/hexano (1:1) como eluyente, para obtener el compuesto
33e con rendimiento casi cuantitativo (75 mg).
E. La hidrólisis del éster metílico se logró
haciendo reaccionar el compuesto 33e (75 mg, 0,11 mmol) con
LiOH\cdotH_{2}O (35 mg, 0,84 mmol, 8 eq.) en una mezcla de disolventes de THF/MeOH/H_{2}O (relación 2:2:1, 7,5 ml) a 50ºC durante 2,5 h. Al terminar la hidrólisis, la mezcla se acidificó a pH = 4,5 y los disolventes se evaporaron a sequedad bajo vacío. El producto crudo se purificó mediante HPLC preparativa en fase inversa C18, usando un gradiente de disolvente de H_{2}O a solución acuosa de CH_{3}CN al 58% (con 0,06% de TFA), para obtener el inhibidor nº 824 en forma de un sólido amorfo de color blanco (45 mg, 65% de rendimiento).
LiOH\cdotH_{2}O (35 mg, 0,84 mmol, 8 eq.) en una mezcla de disolventes de THF/MeOH/H_{2}O (relación 2:2:1, 7,5 ml) a 50ºC durante 2,5 h. Al terminar la hidrólisis, la mezcla se acidificó a pH = 4,5 y los disolventes se evaporaron a sequedad bajo vacío. El producto crudo se purificó mediante HPLC preparativa en fase inversa C18, usando un gradiente de disolvente de H_{2}O a solución acuosa de CH_{3}CN al 58% (con 0,06% de TFA), para obtener el inhibidor nº 824 en forma de un sólido amorfo de color blanco (45 mg, 65% de rendimiento).
^{1}H NMR de la sal Na^{+} del nº 824 (DMSO,
400 MHz): \delta 0,88 (d, J = 6,7 Hz, 3H),
0,95-1,70 (resonancias solapantes, 17H), 1,37 (t, J
= 7 Hz, 3H), 2,00-2,10 (m, 1H),
2,10-2,33 (m, 3H), 2,38-2,44 (m,
1H), 3,80-3,85 (m, 1H), 3,85 (s, 3H),
4,02-4,08 (m, 1H), 4,42 (q, J = 7 Hz, 2H),
4,35-4,44 (m, 1H), 4,50 (d, J = 10,8 Hz, 1H), 4,63
(b s, 1H), 5,28 (dd, J = 9,5 Hz, 1H), 5,38 (b s, 1H),
5,42-5,49 (m, 1H), 6,37 (s, 1H), 6,87 (dd, J = 8,9 y
2,2 Hz, 1H), 7,07 (d, J = 2,2 Hz, 1H), 7,28 (d, J = 7,0 Hz, 1H),
7,90 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 8,57 (s, 1H).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Esquema pasa a página
siguiente)
A. A una solución del compuesto intermedio
macrocíclico 23b (13,05 g, 27,2 mmol, 1,0 eq.), Ph_{3}P (14,28 g,
54,4 mmol, 2,0 eq.) y
2-carboximetoxi-4-hidroxi-7-metoxiquinolina
(documentos WO 00/09543 y WO 00/09558) (6,67 g, 28,6 mmol, 1,05
eq.) en THF (450 ml) a 0ºC, se añadió DIAD (10,75 ml, 54,6 mmol,
2,0 eq.) gota a gota durante un periodo de 15 min. Después se
retiró el baño de hielo y la mezcla de reacción se agitó a TA
durante 3 h. Después de la conversión completa del material de
partida en los productos, el disolvente se evaporó bajo vacío, la
mezcla restante se diluyó con EtOAc, se lavó con solución acuosa
saturada de NaHCO_{3} (2x) y salmuera (1x), y la capa orgánica se
secó sobre MgSO_{4} anhidro, se filtró y se evaporó a sequedad. Se
obtuvo el compuesto puro 34a después de cromatografía de resolución
rápida; la columna se eluyó primero con hexano/EtOAc (50:50),
seguido por CHCl_{3}/EtOAc (95:5) para eliminar los subproductos
Ph_{3}PO y DIAD, y la elución de la impurezas se controló
mediante TLC. Finalmente, el producto 34a deseado se eluyó de la
columna con CHCl_{3}/EtOAc (70:30). Normalmente, la etapa de
cromatografía hubo de repetirse 2-3 veces antes de
poder ser aislado el compuesto 34a con pureza elevada en forma de
un sólido blanco con un rendimiento global del 68% (12,8 g, 99,5%
de pureza por HPLC).
B. A una solución del producto intermedio 34a
protegido con Boc (1,567 g) en CH_{2}Cl_{2} (15 ml), se añadió
HCl 4N en dioxano (12 ml) y la mezcla de reacción se agitó a TA
durante 1 h. [En caso de formarse un gel espeso en medio del
periodo de reacción, se añaden 10 ml más de CH_{2}Cl_{2}]. Al
terminar la desprotección, los disolventes se evaporaron a sequedad
para obtener un sólido amarillo y un material similar a una pasta.
La mezcla se redisolvió en MeOH aproximadamente al 5% en
CH_{2}Cl_{2} y se volvió a evaporar a sequedad bajo vacío para
obtener el compuesto 34b en forma de un sólido amarillo, que se usó
en la etapa siguiente sin más purificación.
C. A una solución de ciclopentanol (614 \mul,
6,76 mmol) en THF (15 ml), se añadió gota a gota una solución de
fosgeno en tolueno (1,93 M, 5,96 ml, 11,502 mmol) y la mezcla se
agitó a TA durante 2 h para formar el reactivo cloroformiato de
ciclopentilo (z). Al cabo de ese tiempo, se eliminó aproximadamente
la mitad del disolvente mediante evaporación bajo vacío, la
solución de color amarillo claro restante se diluyó mediante la
adición de CH_{2}Cl_{2} (5 ml) y se concentró a la mitad de su
volumen original para asegurar la eliminación de todo el fosgeno en
exceso. La anterior solución de reactivo de cloroformiato de
ciclopentilo se diluyó más con THF (15 ml) y se añadió a la sal
amina-2HCl 34b. La mezcla se enfrió a 0ºC en un baño
de hielo, el pH se ajustó a aproximadamente 8,5-9
mediante la adición de Et_{3}N (añadido gota a gota) y la mezcla
de reacción se agitó a 0ºC durante 1 h. Después de ese periodo, la
mezcla se diluyó con EtOAc, se lavó con agua (1x), solución
saturada de NaHCO_{3} (2x), H_{2}O (2x) y salmuera (1x). La capa
orgánica se secó sobre MgSO_{4} anhidro, se filtró y se evaporó
bajo vacío para obtener una espuma de color amarillo-ámbar. El
compuesto 34c se obtuvo en forma de una espuma blanca después de
purificar mediante cromatografía en columna de resolución rápida
(usando un gradiente de disolvente de 30% de hexano a 20% hexano en
EtOAc como eluyente) con 80% de rendimiento (1,27 g) y una pureza
> 93%.
D. El éster dimetílico 34c (1,17 g) se disolvió
en una mezcla de THF/MeOH/H_{2}O (20 ml; relación 2:1:1) y se
añadió una solución acuosa de NaOH (1,8 ml, 1N, 1 eq.). La mezcla
de reacción se agitó a TA durante 1 h antes de ser evaporada a
sequedad, para obtener la sal sódica 34d en forma de un sólido
blanco (aprox. 1,66 mmol). El compuesto 34d fue usado en la etapa
siguiente sin purificar.
E. La sal sódica cruda 34d (1,66 mmol) se
disolvió en THF (17 ml), se añadió Et_{3}N y la mezcla se enfrió
a 0ºC en un baño de hielo. Se añadió gota a gota cloroformiato de
isobutilo (322 \mul, 2,5 mmol) y la mezcla se agitó a 0ºC durante
75 min. Después de ese periodo se añadió diazometano (15 ml) y se
siguió agitando a 0ºC durante 30 min y después a temperatura
ambiente durante 1 h más. La mayor parte del disolvente se evaporó
a sequedad bajo vacío, la mezcla restante se diluyó con EtOAc, se
lavó con solución saturada de NaHCO_{3} (2x), H_{2}O (2x) y
salmuera (1x), se secó sobre MgSO_{4} anhidro, se filtró y se
evaporó a sequedad para obtener el compuesto 34e en forma de una
espuma de color amarillo claro (1,2 g, aprox. 1,66 mmol). El
producto intermedio diazocetona 34e se usó en la etapa siguiente
sin purificar.
F. La diazocetona 34e (1,2 g, 1,66 mmol) disuelta
en THF (17 ml) se enfrió a 0ºC en un baño de hielo. Se añadió gota
a gota una solución acuosa de HBr (48%, 1,24 mL) y la mezcla de
reacción se agitó a 0ºC durante 1h. Después se diluyó la mezcla con
EtOAc, se lavó con solución saturada de NaHCO_{3} (2x), H_{2}O
(2x) y salmuera (1x), la capa orgánica se secó sobre MgSO_{4}
anhidro, se filtró y se evaporó a sequedad para obtener el producto
intermedio de \beta-bromocetona 34f en forma de
una espuma de color amarillo claro (aprox. 1,657 mmol).
G. A una solución de la bromocetona 34f (600 mg,
0,779 mmol) en isopropanol (5 ml) se añadió tiourea (118 mg, 1,55
mmol) y la mezcla de reacción se puso en un baño de aceite
precalentado a 75ºC en el que se dejó agitando durante 1 h. Después
se eliminó bajo vacío el isopropanol, y el producto se disolvió en
EtOAc (100 ml). La solución se lavó con solución saturada de
NaHCO_{3} y salmuera, la capa orgánica se secó sobre
Na_{2}SO_{4} anhidro, se filtró y se evaporó para dar el
producto crudo 34g (522 mg) en forma de un sólido de color
pardo-rojizo. Este material se usó en la etapa final
sin más purificación.
H. El éster metílico crudo 34g (122 mg, 0,163
mmol) se disolvió en una solución de THF/MeOH/H_{2}O (relación
2:1:1, 4 ml) y se saponificó usando LiOH\cdotH_{2}O (89 mg,
2,14 mmol). La reacción de hidrólisis se llevó a cabo durante un
periodo de 12-15 h a TA. Después se eliminaron los
disolventes bajo vacío y el producto crudo se purificó mediante
HPLC C18 de fase inversa usando un gradiente de disolvente de 10%
de CH_{3}CN en H_{2}O a 100% de CH_{3}CN, para dar el
inhibidor de proteasa del HCV nº 812 en forma de un sólido de color
amarillo (24 mg, 20% de rendimiento global para la conversión del
producto intermedio 34f en el inhibidor nº 812).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,63 (s, 1H),
8,26-8,15 (m, 2H), 7,79 (b s, 1H), 7,72 (b s, 1H),
7,50 (b s, 2H), 7,33-7,25 (m, 2H), 5,77 (b s, 1H),
5,52 (dd, J = 8,3 Hz, 1H), 5,27 (dd, J = 9,2 Hz, 1H), 4,64 (d, J =
10,8 Hz, 1H), 4,50 (dd, J = 8,3 Hz, 1H), 4,39-4,31
(m, 1H), 4,08-3,99 (m, 2H), 3,94 (s, 3H), 3,87 (d,
J = 9,5 Hz, 2H), 2,65-2,53 (m, 2H),
2,46-2,36 (m, 2H), 2,20-2,12 (dd, J
= 8,6 Hz, 1H), 1,80-1,64 (m, 2H),
1,63-1,06 (m, 14H). MS; es^{+}: 733,2
(M+H)^{+}, es^{-}: 731,2
(M-H)^{-}.
Usando el mismo procedimiento que se describe en
el ejemplo 34, pero haciendo reaccionar la bromocetona 34f con
N-metiltiourea disponible comercialmente se obtuvo
el nº 811 (Tabla 8).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,63 (s, 1H), 8,20 (s, 1H),
8,18 (s, 1H), 8,12-7,93 (m, 1H),
7,88-7,69 (m, 2H), 7,32-7,24 (m,
2H), 5,82-5,75 (m, 1H), 5,52 (ddd, J = 8,1 Hz, 1H),
5,28 (dd, J = 9,9 Hz, 1H), 4,67-4,61 (m, 1H), 4,51
(dd, J = 8,8 Hz, 1H), 4,44-4,37 (m, 1H),
4,08-4,00 (m, 1H), 3,96 (s, 3H), 3,89 (m, 1H), 3,04
(d, J = 4,1 Hz, 3H), 2,65-2,37 (m, 3H), 2,16 (m,
1H), 1,77- 1,65 (m, 2H), 1,63-1,11 (m, 17H). MS;
es^{+}: 747,2 (M+H)^{+}, es^{-}: 745,3
(M-H)^{-}.
Usando el mismo procedimiento que se describe en
el ejemplo 34, pero haciendo reaccionar la bromocetona 34f con
N-etiltiourea disponible comercialmente se obtuvo
el nº 810 (Tabla 8).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,63 (b s, 1H), 8,27 (b s,
1H), 8,20 (d, J = 9,0 Hz, 1H), 8,13-8,07 (m, 1H),
7,86 (b s, 1H), 7,78 (s, 1H), 7,33-7,25 (m, 2H),
5,81 (b s, 1H), 5,54 (dd, J = 8,8 Hz, 1H), 5,28 (dd, J = 9,7 Hz,
1H), 4,65 (d, J = 12,4 Hz, 1H), 4,51 (dd, J = 8,8 Hz, 1H), 4,38 (b
s, 1H), 4,03 (m, 1H), 3,97 (s, 3H), 3,92-3,87 (m,
1H), 3,54-3,46 (m, 2H), 2,68-2,65
(m, 2H), 2,47-2,38 (m, 1H), 2,15 (dd, J = 8,6 Hz,
1H), 1,78-1,65 (m, 2H), 1,60-1,12
(m, 17H), 1,25 (t, J = 7,3 Hz, 3H). MS; es^{+}: 783,2
(M+Na)^{+}, es^{-}: 761,2 (M+H)^{+}.
Usando el mismo procedimiento que se describe en
el ejemplo 34, pero haciendo reaccionar la bromocetona 34f con
N-isopropiltiourea disponible comercialmente se
obtuvo el nº 822.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,63 (s, 1H),
8,33-8,23 (b s, 1H), 8,21 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 8,04
(d, J = 8,3 Hz, 1H), 7,86 (bs, 1H), 7,77 (s, 1H),
7,35-7,23 (m, 2H), 5,81 (b s, 1H), 5,52 (dd, J = 8,5
Hz, 1H), 5,27 (dd, J = 9,2 Hz, 1H), 4,65 (d, J = 11,8 Hz, 1H), 4,51
(dd, J = 7,6 Hz, 1H), 4,37 (b s, 1H), 4,15 (b s, 1H),
4,07-3,98 (m, 2H), 3,97 (s, 3H), 3,88 (d, J = 8,9
Hz, 1H), 2,60- 2,53 (m, 2H), 2,47-2,37 (m, 2H),
2,19-2,10 (dd, J = 9,2 Hz, 1H),
1,80-1,64 (m, 2H), 1,63-1,29 (m,
13H), 1,27 y 1,25 (2 x d, J = 6,5 Hz, 6H), 1,23-1,09
(m, 2H). MS; es^{+}: 775,0 (M+H)^{+}, es^{-}: 772,9
(M-H)^{-}.
Usando el mismo procedimiento que se describe en
el ejemplo 34, pero haciendo reaccionar la bromocetona 34f con
N-acetiltiourea disponible comercialmente se obtuvo
el nº 809.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,62 (s, 1H), 8,30 (b s,
1H), 8,17 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 7,62 (b s, 1H), 7,52 (b s, 1H), 7,28
(d, J = 6,4 Hz, 1H), 7,21 (bs, 1H), 5,63 (b s, 1H), 5,54 (dd, J =
8,1 Hz, 1H), 5,28 (dd, J = 9,5 Hz, 1H), 4,62 (d, J = 12,1 Hz, 1H),
4,56-4,46 (m, 2H), 4,11-4,04 (m,
1H), 3,95 (s, 3H), 3,93-3,88 (m, 1H),
2,62-2,54 (m, 1H), 2,45-2,36 (m,
1H), 2,22 (s, 3H), 2,21-2,13 (m, 1H),
1,79-1,69 (m, 2H), 1,65-1,30 (m,
16H), 1,26-1,12 (m, 2H). MS; es^{+}: 775,3
(M+Na)^{+}, es^{-}: 773,3
(M-H)^{-}.
A una solución agitada del producto intermedio
2-amino-4-tiazolilo
34g (0,24 g, 0,32 mmol) en CH_{2}Cl_{2} (5 ml) a TA se añadió
DIPEA (0,55 ml, 3,18 mmol, 10 eq.) y cloroformiato de metilo (0,13
ml, 1,6 mmol, 5 eq.). La mezcla de reacción se agitó durante 6,5 h
antes de ser concentrada bajo vacío. El material aislado crudo se
hidrolizó después para dar el ácido carboxílico deseado como se
describe en el Ejemplo 34 para dar el compuesto nº 818.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,61 (s, 1H),
8,21-8,07 (m, 2H), 7,61-7,38 (m,
2H), 7,26 (d, J = 6,4 Hz, 1H), 7,19-7,10 (m, 1H),
5,60-5,47 (m, 2H), 5,27 (dd, J = 9,2 Hz, 1H),
4,63-4,53 (m, 1H), 4,47 (d, J = 7,9 Hz, 1H),
4,13-4,04 (m, 1H), 3,93 (s, 3H),
3,92-3,87 (m, 2H), 3,79 (s, 3H),
2,42-2,30 (m, 2H), 2,17 (dd, J = 9,2 Hz, 1H),
1,81-1,68 (m, 2H), 1,63-1,29 (m,
16H), 1,23-1,10 (m, 2H). MS; es^{+}: 791,1
(M+H)^{+}, es^{-}: 789,1
(M-H)^{-}.
Siguiendo las condiciones descritas anteriormnete
en el ejemplo 34E, pero usando cloroformiato de isobutilo, se
obtuvo el producto intermedio análogo de carbamato sustituido. El
material aislado crudo fue después hidrolizado para dar el
compuesto deseado nº 819.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,62 (s, 1H),
8,47-8,27 (b s, 1H), 8,18 (d, J = 8,6 Hz, 1H),
7,69-7,60 (m, 1H), 7,60-7,51 (m,
1H), 7,28 (d, J = 6,7 Hz, 1H), 7,28-7,19 (m, 1H),
5,70-5,60 (m, 1H), 5,52 (dd, J = 8,3 Hz, 1H), 5,27
(dd, J = 9,8 Hz, 1H), 4,63 (d, J = 11,8 Hz, 1H),
4,53-4,44 (m, 2H), 4,10-3,99 (m,
1H), 4,04 (d, J = 6,7 Hz, 2H), 3,95 (s, 3H),
3,94-3,87 (m, 1H), 2,65-2.53 (m,
1H), 2,46-2,34 (m, 1H), 2,16 (dd, J = 8,1 Hz, 1H),
2,03-1,91 (m, 1H), 1,79-1,09 (m,
20H), 0,95 (d, J = 6,7 Hz, 6H). MS; es^{+}: 833,2
(M+H)^{+}, es^{-}: 831,2
(M-H)^{-}.
Partiendo del derivado 27a y usando la misma
química que se describió en el ejemplo 34, se obtuvo el siguiente
macrociclo saturado, compuesto nº 908 (Tabla 9).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,47 (s, 1H), 8,16 (d, J =
10 Hz, 1H), 8,15-8,07 (m, 1H),
7,82-7,63 (m, 2H), 7,53-7,43 (m,
2H), 7,33-7,22 (m, 1H), 7,13 (d, J = 7 Hz, 1H),
5,77-5,65 (m, 1H), 4,62-4,52 (m,
2H), 4,50-4,4 (m, 1H), 4,20-4,10
(m, 1H), 3,94 (s, 3H), 3,89-3,83 (m, 1H),
2,59-2,53 (m, 1H), 2,48-2,40 (m,
1H), 1,79-1,0 (m, 25H). MS; es^{+}: 735,2
(M+H)^{+}, es^{-}: 733,2
(M-H)^{-}.
Usando el mismo procedimiento que se describió en
el ejemplo 35 pero usando N-acetiltiourea
disponible comercialmente se obtuvo el compuesto nº 909 (Tabla
9).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,53-8,41
(m, 2H), 8,20 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,68 (b s, 1H), 7,68 (b s, 1H),
7,27 (dd, J = 9,2 Hz, 1H), 7,15 (d, J = 6,4 Hz, 1H), 5,67 (b s,
1H), 4,65-4,50 (m, 3H), 4,44-4,37
(m, 1H), 4,21-4,13 (m, 1H), 3,96 (s, 3H),
3,99-3,86 (m, 1H), 2,62-2,39 (m,
2H), 2,24 (s, 3H), 1,78-1,67 (m, 3H),
1,67-1,01 (m, 22H). MS; es^{+}: 798,0
(M+Na)^{+}, es^{-}: 777,0 (M+H)^{+}.
Usando el mismo procedimiento que se describió en
el ejemplo 35 pero usando N-etiltiourea disponible
comercialmente se obtuvo el compuesto nº 910 (Tabla 9).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,47 (s, 1H), 8,29 (b s,
1H), 8,20 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 8,09 (b s, 1H), 7,87 (s, 1H), 7,77
(s, 1H), 7,32 (dd, J = 9,2 Hz, 1H), 7,14 (dd, J = 6,7 Hz, 1H), 5,78
(b s, 1H), 4,58 (dd, J = 8,1 Hz, 2H), 4,43 (b s, 1H), 3,97 (s, 3H),
3,87 (d, J = 8,9 Hz, 1H), 3,55-3,46 (m, 2H),
2,63-2,53 (m, 1H), 2,47-2,41 (m,
1H), 1,78-1,00 (m, 25H), 1,25 (t, J = 7,3 Hz, 3H).
MS; es^{+}: 763,1 (M+H)^{+}, es^{-}: 761,1
(M-H)^{-}.
Usando el mismo procedimiento que se describió en
el ejemplo 35 pero usando N-isopropiltiourea
disponible se obtuvo el compuesto nº 911 (Tabla 9).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta 8,47 (s, 1H),
8,29-8,19 (m, 1H), 8,19 (d, J = 9,2 Hz, 1H),
8,09-8,0 (m, 1H), 7,83 (b s, 1H), 7,74 (b s, 1H),
7,31 (d, J = 8 Hz, 1H), 7,14 (d, J = 6,4 Hz, 1H), 5,76 (b s, 1H),
4,64-4,53 (m, 2H), 4,44 (b s, 1H),
4,22-4,09 (m, 3H), 3,97 (s, 3H), 3,87 (d, J = 8,6
Hz, 1H), 2,63-2,58 (m, 1H),
2,46-2,41 (m, 1H), 1,79-1,10 (m,
24H), 1,27 y 1,26 (2 x d, J = 6,5 Hz, 6H). MS; es^{+}: 777,0
(M+H)^{+}, es^{-}: 775,0
(M-H)^{-}.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm) 8,62 (s, 1H), 8,13 (d,
J = 9,2 Hz, 1H), 7,64-7,54 (m, 2H), 7,47 (d, J =
2,6 Hz, 1H), 7,16 (dd, J = 9,2, 2,2 Hz, 1H), 7,03 (d, J = 6,0 Hz,
1H), 5,63 (s, 1H), 5,52 (q, J = 9,9 Hz, 1H), 5,26 (t, J = 8,9 Hz,
1H), 4,62 (d, J = 11,45 Hz, 1H), 4,45 (dd, J = 9,2, 8,27 Hz, 1H),
4,02 (m, 1H), 3,93 (s, 3H), 3,7 (dd, J = 7,6, 1,0 Hz, 1H), 2,66 (s,
3H), 2,55-2,65 (m, 1H), 2,35-2,45
(m, 1H), 2,17 (q, J = 8,6 Hz, 1H), 1,65-1,75 (m,
2H), 1,5-1,35 (m, 7H), 1,15 (s, 9H).
MS: 705 (M+1), 703 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,62 (s, 1H), 8,15
(d, J = 8,9 Hz, 1H), 7,62 (s, 1H), 7,49 (s, 1H), 7,19 (dd, J = 9,2,
2,2 Hz, 1H), 7,02 (d, J = 5,4 Hz, 1H), 5,64 (s, 1H), 5,52 (q, J =
9,9 Hz, 1H), 5,26 (t, J = 9,2 Hz, 1H), 4,63 (d, J = 11,44 Hz, 1H),
4,45 (t, J = 9,2 Hz, 1H), 3,94 (s, 3H), 3,9-3,8 (m,
1H), 2,7-2,55 (m, 1H), 2,4-2,3 (m,
1H), 2,18 (q, J = 8,9 Hz, 1H), 1,75-1,65 (m, 2H),
1,5-1,2 (m, 7H), 1,14 (s, 9H).
MS: 705 (M+1), 703 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 9,55 (s, 1H), 8,63
(s, 1H), 8,43 (s, 1H), 8,13 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,66 (s, 1H), 7,46
(s, 1H), 7,32 (d, J = 2,6 Hz, 1H), 7,10-7,07 (m,
2H), 5,64-5,54 (m, 1H), 5,59-5,48
(m, 1H), 5,33-5,23 (m, 1H),
4,73-4,61 (m, 1H), 4,45 (dd, J = 7,5, 9,1 Hz, 1H),
4,09-4,00 (m, 1H), 3,92 (s, 3H),
3,93-3,83 (m, 1H), 2,67-2,55 (m,
2H), 2,53-2,43 (m, 1H), 2,42-2,31
(m, 1H), 2,23-2,12 (m, 1H),
1,81-1,66 (m, 2H), 1,52-1,42 (m,
2H), 1,42-1,25 (m, 6H), 1,21 (s, 9H).
MS: 689,3 (M+1), 687,3 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 9,70 (s, 1H), 8,64
(s, 1H), 8,26 (s, 1H), 8,14 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,45 (s, 1H), 7,30
(d, J = 2,5 Hz, 1H), 7,14-7,06 (m, 2H),
5,60-5,54 (m, 1H), 5,58-5,48 (m,
1H), 5,31-5,23 (m, 1H), 4,71-4,62
(m, 1H), 4,49-4,40 (m, 1H),
4,08-3,99 (m, 1H), 3,92-3,84 (m,
1H), 2,69-2,54 (m, 2H), 2,53-2,46
(m, 1H), 2,42-2,31 (m, 1H), 2,37 (s, 3H),
2,22-2,13 (m, 1H), 1,81-1,64 (m,
2H), 1,54-1,42 (m, 2H), 1,42-1,27
(m, 6H), 1,22 (s, 9H).
MS: 703,3 (M+1), 701,3 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,75 (m, 1H), 8,62
(s, 1H), 8,06 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,88-7,87 (m,
1H), 7,48 (s, 1H), 7,28 (d, J = 2,6 Hz, 1H),
7,05-7,00 (m, 2H), 6,64-6,63 (m,
1H), 5,62-5,58 (m, 1H), 5,55-5,49
(m, 1H), 5,28-5,24 (m, 1H),
4,64-4,61 (m, 1H), 4,48-4,44 (m,
1H), 4,07-4,03 (m, 1H), 3,91 (s, 3H),
3,92-3,85 (m, 1H), 2,67-2,54 (m,
2H), 2,53-2,45 (m, 1H), 2,41-2,34
(m, 1H), 2,20-2,14 (m, 1H),
1,75-1,69 (m, 2H), 1,50-1,43 (m,
2H), 1,41-1,32 (m, 6H), 1,17 (s, 9H).
MS: 689,3 (M+1), 687,2 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta: 8,50 (s, 1H), 8,19 (s, 1H),
8,17 (s, 1H), 8,11-8,00 (m, 1H),
7,88-7,77 (m, 1H), 7,73 (s, 1H), 7,25 (d, J = 8,6
Hz, 1H), 6,93 (d, J = 6 Hz, 1H), 5,89-5,68 (m, 1H),
4,62 (d, J = 11 Hz, 1H), 4,53 (dd, J = 8,3 Hz, 1H),
4,16-4,07 (m, 1H), 3,96 (s, 3H), 3,88 (b d, J = 9,5
Hz, 1H), 3,53-3,43 (m, 2H),
2,63-2,51 (m, 1H), 2,46-2,36 (m,
1H), 1,81-1,62 (m, 2H), 1,60-1,01
(m, 15H), 1,24 (t, J = 7,4 Hz, 3H), 1,17 (s, 9H).
MS; es^{+}: 751,1 (M+H)^{+}, es^{-}:
749,1 (M-H)^{-}.
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,62 (s, 1H), 8,54
(s, 1H), 8,04 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,70 (s, 1H), 7,43 (s, 1H), 7,24
(d, J = 2,6 Hz, 1H), 7,05-6,98 (m, 2H),
5,57-5,54 (m, 1H), 5,55-5,48 (m,
1H), 5,28-5,24 (m, 1H), 4,63-4,59
(m, 1H), 4,47-4,43 (m, 1H),
4,13-3,99 (m, 1H), 3,90 (s, 3H),
3,92-3,83 (m, 1H), 2,67-2,55 (m,
2H), 2,53-2,46 (m, 1H), 2,43-2,31
(m, 1H), 2,22-2,15 (m, 1H), 2,15 (3H),
1,75-1,70 (m, 2H), 1,51-1,42 (m,
2H), 1,41-1,28 (m, 6H), 1,17 (s, 9H).
MS:703,2 (M+1), 701,3 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,64 (d, J = 2,5 Hz,
1H), 8,62 (s, 1H), 8,04 (d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,39 (s, 1H), 7,24 (d,
J = 2,5 Hz, 1H), 7,04 (d, J = 6,0 Hz, 1H), 6,99 (dd, J = 2,2, 9,2
Hz, 1H), 6,43 (d, J = 2,2 Hz, 1H), 5,62-5,57 (m,
1H), 5,56-5,47 (m, 1H), 5,31-5,22
(m, 1H), 4,65-4,56 (m, 1H), 4,45 (dd, J = 7,6, 8,9
Hz, 1H), 4,07-4,00 (m, 1H), 3,90 (s, 3H),
3,88-3,84 (m, 1H), 2,68-2,56 (m,
2H), 2,54-2,43 (m, 1H), 2,42-2,31
(m, 1H), 2,34 (s, 3H), 2,24-2,14 (m, 1H),
1,80-1,64 (m, 2H), 1,52-1,43 (m,
2H), 1,43-1,27 (m, 6H), 1,18 (s, 9H).
MS:703,2 (M+1), 701,2 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,62 (s, 1H), 8,10
(d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,57 (s, 1H); 7,49 (s, 1H), 7,35 (d, J = 2,2
Hz, 1H), 7,09-7,03 (m, 2H),
5,65-5,61 (m, 1H), 5,55-5,49 (m,
1H), 5,28-5,24 (m, 1H), 4,62-4,57
(m, 1H), 4,49-4,45 (m, 1H),
4,08-4,01 (m, 1H), 3,93 (s, 3H),
3,92-3,86 (m, 1H), 3,20-3,14 (m,
1H), 2,65-2,56 (s, 1H), 2,53-2,47
(m, 1H), 2,42-2,35 (m, 1H),
2,22-2,15 (m, 1H), 1,79-1,68 (m,
2H), 1,50-1,43 (m, 2H), 1,41-1,28
(m, 12H), 1,18 (s, 9H).
MS:748,2 (M+1), 746,2 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,64 (s, 1H), 8,10
(d, J = 9,5 Hz, 1H), 7,83-7,76 (m, 2H), 7,60 (s,
1H), 7,44-7,42 (m, 1H), 7,18-7,01
(m, 2H), 5,56-5,49 (m, 2H),
5,29-5,24 (m, 1H), 4,66-4,63 (m,
1H), 4,47-4,42 (m, 1H), 4,28 (s, 3H),
4,06-4,02 (m, 2H), 3,94 (s, 3H),
3,93-3,86 (m, 1H), 2,66-2,55 (m,
2H), 2,42-2,31 (m, 2H), 2,22-2,14
(m, 1H), 1,79-1,65 (m, 2H),
1,52-1,27 (m, 7H), 1,22 (s, 9H).
MS:703,2 (M+1), 701,3 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,46 (s, 1H), 8,06
(d, J = 9,2 Hz, 1H), 7,57 (s, 1H), 7,49 (s, 1H), 7,34 (m, 1H),
7,14-7,05 (m, 2H), 5,63- 5,58 (m, 1H),
4,66-4,61 (m, 1H), 4,54-4,44 (m,
2H), 4,23-4,18 (m, 1H), 3,93 (s, 3H),
3,92-3,88 (m, 1H), 3,21-3,14 (m,
1H), 2,44-2,33 (m, 1H), 1,35 (d, J = 7 Hz, 6H),
1,73-1,01 (m, 26H).
MS:762,0 (M+1), 759,9 (M-1).
^{1}H NMR (400 MHz,
DMSO-d_{6}): \delta (ppm): 8,46 (s, 1H), 7,98
(d, J = 8,9 Hz, 1H), 7,91-7,89 (m, 2H),
7,23-7,21 (m, 2H), 7,07-7,00 (m,
2H), 6,35-6,32 (m, 2H), 5,64-5,58
(m, 1H), 4,65-4,61 (m, 1H),
4,53-4,47 (m, 2H), 4,24-4,19 (m,
1H), 3,90 (s, 3H), 3,86-3,84 (m, 1H),
2,40-2,33 (m, 1H), 1,73-1,01 (m,
26H).
MS:702,0 (M+1), 699,9 (M-1).
La región no codificadora
NS2-NS5B-3' fue clonada mediante
RT-PCR en el vector pCR®3 (Invitrogen) usando RNA
extraído de suero de un individuo infectado por el HCV genotipo 1b
(proporcionado por el Dr. Bernard Willems, H\hat{o}pital
St-Luc, Montreal, Quebec, Canadá). La región
NS3-NS4A (NS3-NS4AFL) fue después
subclonada por PCR en el vector de expresión de baculovirus
pFastBac™HTa (Gibco/BRL). La secuencia del vector incluye una
región que codifica una secuencia N-terminal de 28
restos que contiene una etiqueta de hexahistidina. Se usó el
sistema de expresión de baculovirus
Bac-to-Bac™ (Gibco/BRL) para
producir el baculovirus recombinante.
His-NS3-NS4AFL se expresó infectando
10^{6} células Sf21/ml con el baculovirus recombinante a una
multiplicidad de infección de 0,1-0,2 a 27º.
Durante la expresión ocurre auténtica
auto-proteolisis para producir un complejo de
proteína NS3-NS4A no covalente y estable (denominado
de longitud completa "FL" [Full Lenght]). El cultivo infectado
se recolectó 48 a 64 h después mediante centrifugación a 4º. El
sedimento celular fue homogeneizado en NaPO_{4} 50 mM, pH 7,5,
40% de glicerol (p/v), \beta-mercaptoetanol 2 mM,
en presencia de un cóctel de inhibidores de proteasa. Después se
extrajo la His-NS3-NS4AFL del
lisado celular con 1,5% de NP-40, 0,5% de Triton
X-100, NaCl 0,5 M y un tratamiento con DNasa.
Después de ultracentrifugación, el extracto soluble se diluyó 4
veces y se unió en una columna quelante de Ni
Hi-Trap Pharmacia. La
His-NS3-NS4AFL se eluyó en forma
pura en > 90% (según se juzgó por SDS-PAGE),
usando un gradiente de imidazol de 50 a 400 mM. La
His-NS3-NS4AFL se almacenó a -80º
en fosfato sódico 50 mM, pH 7,5, 10% (p/v) de glicerol, NaCl 0,5 M,
imidazol 0,25 M, 0,1% de NP-40. Se descongeló en
hielo y se diluyó justo antes de su uso.
La actividad de proteasa de
His-NS3-NS4AFL se ensayó en
Tris-HCl 50 mM, pH 8,0, citrato sódico 0,25 M,
0,01% (p/v) de
n-dodecil-\beta-D-maltósido,
TCEP 1 mM. Cinco (5) \muM del sustrato apagado internamente
antranil-DDIVPAbu[C(O)-O]-AMY(3-NO_{2})TW-OH
en presencia de varias concentraciones de inhibidor fueron
incubados con 1,5 nM de
His-NS3-NS4AFL durante 45 min a
23º. La concentración final de DMSO no sobrepasó 5,25%. La reacción
se terminó mediante la adición de MES 1M, pH 5,8. La fluorescencia
del producto N-terminal se controló en un
fluorómetro Perkin-Elmer LS-50B
equipado con un lector de placas de 96 pocillos (longitud de onda
de excitación: 325 nm; longitud de onda de emisión: 423 nm).
El % de inhibición se calculó con la ecuación
siguiente:
100 -
[(fluo_{inh}-fluo_{blanco})/(fluo_{ctl}-fluo_{blanco}) x
100]
Se aplicó un ajuste no lineal con el modelo de
Hill a los datos de inhibición-concentración, y se
calculó la concentración eficaz al 50% (IC_{50}) usando el
software SAS (Statistical Software Systems; SAS Institute,
Inc. Cary, N.C.).
El sustrato usado para el ensayo radiométrico de
la proteasa NS3 de HCV recombinante, DDIVPC-SMSYTW,
es segmentado entre los restos cisteína y serina por la enzima. La
secuencia DDIVPC-SMSYTW corresponde al sitio de
segmentación natural NS5A/NS5B en el que una prolina ha sido
sustituida por el resto cisteína en P2. El sustrato peptídico
DDIVPC-SMSYTW y el trazador
biotina-DDIVPC-SMS[^{125}I-Y]TW
se incubaron con la proteasa NS3 recombinante en ausencia o en
presencia de inhibidores. La separación del sustrato de los
productos se llevó a cabo añadiendo a la mezcla de ensayo esferas de
agarosa recubiertas con avidina, y filtrando a continuación. La
cantidad de producto
SMS[^{125}I-Y]TW encontrado en el
filtrado (con o sin inhibidor) permitió el cálculo del porcentaje
de conversión del sustrato y del porcentaje de inhibición.
El Tris y Tris-HCl (UltraPure)
fueron obtenidos de Life Technologies. El glicerol (UltraPure), MES
y BSA fueron adquiridos de Sigma®. El TCEP se obtuvo de Pierce, el
DMSO de Aldrich® y el NaOH de Anachemia®.
Tampón de ensayo: Tris-HCl 50 mM,
pH 7,5, glicerol al 30% (p/v), CHAPS al 2% (p/v), 1 mg/ml de BSA,
TCEP 1 mM (TCEP se añade inmediatamente antes de usarlo a partir de
una solución madre 1M en agua).
Sustrato: DDIVPC-SMSYTW, 25
\muM de concentración final (desde una solución madre 2 mM en
DMSO almacenada a -20ºC para evitar la oxidación).
Trazador: Sustrato monoyodado reducido
(biotina-DDIVPC-SMS[^{125}I-Y]TW)
(aprox. 1 nM de concentración final).
Proteasa NS3 de HCV tipo 1b, 25 nM de
concentración final (desde una solución madre en fosfato sódico 50
mM, pH 7,5, 10% de glicerol, NaCl 300 mM, DTT 5 mM, 0,01% de
NP-40).
El ensayo se realizó en una placa de
polipropileno de 96 pocillos. Cada pocillo contenía:
20 \mul de sustrato/trazador en tampón para
ensayo;
10 \mul \pm de inhibidor en 20% de
DMSO/tampón para ensayo;
10 \mul de proteasa NS3 1b.
El blanco (sin inhibidor y sin enzima) y el
testigo (o control) (sin inhibidor) fueron también preparados en la
misma placa de ensayo.
La reacción enzimática se inició mediante la
adición de la solución de enzima y la mezcla de ensayo se incubó
durante 60 min a 23ºC con agitación suave. Se añadieron veinte (20)
\mul de NaOH 0,025 N para apagar la reacción enzimática.
Se añadieron veinte (20) \mul de esferas de
agarosa recubiertas con avidina (adquiridas de Pierce®) en una
placa de filtración Millipore® MADP N65. La mezcla de ensayo
apagada se transfirió a la placa de filtración y se incubó durante
60 min a 23ºC con agitación suave.
Las placas se filtraron usando un aparato
Millipore® MultiScreen Vaccuum Manifold Filtration, y 40 \mul del
filtrado se pasaron a una placa opaca de 96 pocillos que contenía
60 \mul de fluido de centelleo por pocillo.
Los filtrados se sometieron a recuento en un
instrumento Packard® TopCount usando un protocolo de ^{125}I
durante 1 minuto.
El % de inhibición se calculó con la ecuación
siguiente:
100 -
[(\text{cuentas}_{inh}-
\text{cuentas}_{blanco})/(\text{cuentas}_{ctl}-\text{cuentas}_{blanco})
x
100]
Se aplicó un ajuste no lineal con el modelo de
Hill a los datos de inhibición-concentración, y se
calculó la concentración eficaz al 50% (IC_{50}) usando el
software SAS (Statistical Software Systems; SAS Institute,
Inc. Cary, N.C.).
La especificidad de los compuestos se determinó
frente a diversas proteasas de serina: elastasa leucocitaria
humana, elastasa pancreática bovina y
\alpha-quimotripsina pancreática bovina y una
proteasa de cisteína: catepsina B hepática humana. En todos los
casos se utilizó un protocolo de formato de placa de 96 pocillos
usando un sustrato cromogénico específico para cada enzima. Cada
ensayo incluyó 1 h de preincubación de
enzima-inhibidor a TA, seguida por la adición de
sustrato e hidrólisis a aprox. 30% de conversión, determinada en un
lector de microplacas UV Thermomax® o un lector de placas
Perkin-Elmer® LS50B de fluorescencia. Las
concentraciones de sustrato se mantuvieron lo más bajas posible en
comparación con K_{M} para reducir la competición del sustrato.
Las concentraciones de compuesto variaron de 300 a 0,06 \muM,
dependiendo de su potencia.
Las condiciones finales para cada ensayo fueron
las siguientes:
Tris-HCl 50 mM pH 8,
Na_{2}SO_{4} 0,5 M, NaCl 50 mM, EDTA 0,1 mM, 3% DMSO, 0,01%
Tween-20 con
[100 \muM de
Succ-AAPF-pNA y 250 pM de
\alpha-quimotripsina], [133 \muM de
Succ-AAA-pNA y 8 nM de elastasa
porcina], [133 \muM de
Succ-AAV-pNA y 8 nM de elastasa
leucocitaria];
o
[NaHPO_{4} 100 mM, pH 6, EDTA 1 mM, DMSO al 3%,
TCEP 1 mM, 0,01% de Tween-20,
Z-FR-AMC
(7-amino-4-metilcumarina)
4 \muM y catepsina B 0,5 nM (la enzima de partida fue activada en
tampón que contenía TCEP 20 mM antes de usarla)].
Un ejemplo representativo se resume a
continuación para elastasa pancreática porcina: a una placa de 96
pocillos de poliestireno de fondo plano (Cellwells, Corning) se
añadió, usando un manipulador de líquidos Biomek (Beckman):
40 \mul de tampón para ensayo
(Tris-HCl 50 mM pH 8, Na_{2}SO_{4} 1 M, NaCl 50
mM, EDTA 0,1 mM);
20 \mul de solución de enzima (Tris HCl 50 mM
pH 8, NaCl 50 mM, EDTA 0,1 mM, 0,02% Tween-20,
elastasa pancreática porcina 40 nM); y
20 \mul de solución de inhibidor (Tris HCl 50
mM pH 8, NaCl 50 mM, EDTA 0,1 mM, 0,02% Tween-20,
inhibidor 1,5 mM-0,3 \muM, 15% v/v DMSO).
Después de 60 minutos de preincubación a TA, se
añadieron a cada pocillo 20 \mul de solución de sustrato
(Tris-HCl 50 mM pH 8, Na_{2}SO_{4} 0,5 M, NaCl
50 mM, EDTA 0,1 mM, Succ-AAA-pNA 665
\muM), y la mezcla de reacción se siguió incubando a TA durante
60 min, al cabo de los cuales se leyó la absorbancia en el lector
de placas UV Thermomax®. Filas de pocillos fueron asignadas para
testigos o controles (sin inhibidor) y para blancos (sin inhibidor
y sin enzima).
Las diluciones dobles secuenciales de la solución
de inhibidor fueron realizadas por el manipulador de líquido en una
placa separada, usando Tris-HCl 50 mM pH 8, NaCl 50
mM, EDTA 0,1 mM, 0,02% Tween-20, 15% DMSO (v/v).
Todos los demás ensayos de especificidad se realizaron de manera
similar.
El porcentaje de inhibición se calculó usando la
fórmula:
[1-((UV_{inh}-UV_{blanco})/(UV_{ctl}-UV_{blanco}))]
x
100
Se aplicó un ajuste no lineal con el modelo de
Hill a los datos de inhibición-concentración, y se
calculó la concentración eficaz al 50% (IC_{50}) usando el
software SAS (Statistical Software Systems; SAS Institute,
Inc. Cary, N.C.).
Este ensayo se hace con células
Huh-7, una línea celular humana derivada de un
hepatoma, cotransfectadas con 2 construcciones de DNA:
una (llamada NS3) que expresa parte de la
poliproteína no estructural del HCV fusionada con la proteína tTA a
través de un sitio de segmentación NS5A-NS5B por el
orden siguiente:
NS3-NS4A-NS4B-NS5A-(NS5B)tTA,
en donde (NS5B) representa los 6 primeros aminoácidos de NS5B. Esta
poliproteína se expresa bajo el control del promotor CMV,
la otra (llamada SEAP) que expresa la proteína
informadora, fosfatasa alcalina secretada (SEAP), bajo la
regulación de un promotor respondedor a tTA.
La primera construcción conduce a la expresión de
una poliproteína a partir de la cual las diferentes proteínas
maduras se liberan por segmentación por la proteasa NS3. Se cree
que las proteínas virales maduras forman un complejo en la membrana
del retículo endoplasmático. La tTA es una proteína de fusión,
descrita por Gossen y Bujard (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89
(1992): 5547-5551), que contiene un dominio de
unión de DNA y un activador transcripcional. La liberación de la
proteína tTA requiere una segmentación dependiente de NS3 en el
sitio de segmentación NS5A-NS5B entre NS5A y ella
misma. Esta última segmentación permite que la tTA migre al núcleo
y transactive el gen de la SEAP. Por consiguiente, la reducción de
la actividad proteolítica de NS3 conduce al confinamiento de tTA en
el citoplasma y al concomitante descenso de la actividad de
SEAP.
Para controlar actividades celulares distintas de
la inhibición de la NS3 proteasa que son debidas al compuesto, se
hace una co-transfección paralela con una
construcción que expresa tTA sola y la misma construcción
informadora, de forma que la actividad de SEAP es independiente de
la proteasa NS3.
Protocolo del ensayo: células
Huh-7, desarrolladas en CHO-SFMII
(Life Technologies) + 10% de FCS (suero de ternera fetal) fueron
co-transfectadas con las dos construcciones de DNA
en las proporciones siguientes:
7 \mug de NS3 + 500 ng de SEAP + 800 \mul de
FuGENE (Boehringer Mannheim) por 4 x 10^{6} células
Huh-7. Después de 5 horas a 37ºC, las células se
lavaron, se tripsinaron y se extendieron en placas (a razón de
80.000 células/pocillo) en placas de 96 pocillos que contenían una
gama de concentraciones de los compuestos a ensayar. Después de un
periodo de incubación de 24 h, se midió la actividad de SEAP en el
medio con el kit Phospha-Light (Tropix).
El análisis del porcentaje de inhibición de la
actividad de SEAP con respecto a la concentración de compuesto se
realizó con el software SAS para obtener el valor de
EC_{50}.
Las tablas que siguen recogen compuestos
representativos de la invención. Se encontró que todos los
compuestos expuestos en las Tablas 1 a 9 eran activos en el ensayo
enzimático presentado en el Ejemplo 48. Un número acompañado por un
asterisco (*) representa actividad enzimática obtenida con el ensayo
radiométrico presentado en el Ejemplo 49 con valores de IC_{50}
por debajo de 50 \muM. En estos ensayos enzimáticos, se usó la
escala siguiente:
A \geq 1 \muM; 1 \muM > B > 0,1
\muM; y C \leq 0,1 \muM.
Se ensayaron varios compuestos en los ensayos de
especificidad presentados en el Ejemplo 50, y se encontró que eran
específicos para la proteasa NS3. En general, los resultados de los
diferentes ensayos de especificidad son los siguientes: HLE >
300 \muM; PPE > 300 \muM; \alpha-Chym. >
300 \muM; Cat. B > 300 \muM, lo que indica que estos
compuestos son altamente específicos hacia la proteasa NS3 del CHV
y no es de esperar que muestren efectos secundarios graves. Además,
algunos de estos compuestos fueron analizados en el ensayo basado en
células descrito en el Ejemplo 51, y se encontró que tenían
actividad con un valor de EC_{50} inferior a 10 \muM, lo cual
es una firme indicación de que estos compuestos pueden atravesar la
membrana de la célula. En particular, se han evaluado compuestos de
las Tablas 7, 8 y 9 en el ensayo celular y el resultado se ha
indicado en la última columna. En este ensayo celular, se usó la
codificación siguiente: A > 1 \muM; B \leq 1 \muM.
Las abreviaturas siguientes se usan en las tablas
que siguen a continuación:
MS: datos espectrales de masas por
electroproyección; m/z MH^{+}, excepto cuando se indique de otra
forma mediante un asterisco* = m/z MH^{-}; Ac: acetilo; Bn:
bencilo; Boc: terc-butiloxicarbonilo; Ph: fenilo;
Pr: propilo.
Estereoisómero simple en
R^{1}
Estereoisómero simple en
R^{1}
\newpage
Estereoisómero simple en
R^{1}
Enlace D-R^{1}
syn resp. al
ácido
\newpage
Enlace D-R^{1}
syn resp. al
ácido
Enlace D-R^{1}
syn resp. al
ácido
\newpage
Enlace D-R^{1}
syn resp. al
ácido
Enlace D-R^{1}
syn resp. al ácido; doble enlace 13,14:
cis
\newpage
Enlace D-R^{1}
syn resp. al
ácido
Claims (81)
1. Un compuesto de fórmula (I):
en la que W es CH o
N,
R^{21} es H, halo, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6},
haloalquilo C_{1-6}, alcoxi
C_{1-6}, cicloalcoxi C_{3-6},
hidroxi o N(R^{23})_{2},
en donde cada R^{23} es, independientemente, H,
alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
R^{22} es H, halo, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6},
haloalquilo C_{1-6}, tioalquilo
C_{1-6}, alcoxi C_{1-6},
cicloalcoxi C_{3-6}, alcoxi
C_{2-7}-alquilo, cicloalquilo
C_{3-6}, arilo C_{6 ó 10} o Het, en donde Het
es un heterociclo de cinco, seis o siete miembros, saturado o
insaturado, que contiene de uno a cuatro heteroátomos elegidos
entre nitrógeno, oxígeno y azufre;
estando dichos cicloalquilo, arilo o Het
sustituidos con R^{24},
en donde R^{24} es H, halo, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6},
alcoxi C_{1-6}, cicloalcoxi
C_{3-6}, NO_{2},
N(R^{25})_{2}; NH-C(O)-
R^{25}; o
NH-C(O)-NH-R^{25},
en donde cada R^{25} es, independientemente: H, alquilo
C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
o R^{24} es
NH-C(O)-OR^{26}, en donde
R^{26} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
R^{3} es hidroxi, NH_{2}, o un grupo de
fórmula -NH-R^{31}, en donde R^{31} es arilo
C_{6 ó 10}, heteroarilo, -C(O)-R^{32},
-C(O)-NHR^{32}, o
-C(O)-OR^{32},
en donde R^{32} es alquilo
C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
D es una cadena de alquileno de 5 a 10 átomos
saturada o insaturada, que contiene opcionalmente uno a tres
heteroátomos independientemente elegidos entre O, S o
N-R^{41}, en donde R^{41} es H, alquilo
C_{1-6}, cicloalquilo C_{3-6},
o -C(O)-R^{42}, en donde R^{42} es
alquilo C_{1-6}, cicloalquilo
C_{3-6} o arilo C_{6 \ ó \ 10};
R^{4} es H o de uno a tres sustituyentes en
cualquier átomo de carbono de dicha cadena D, siendo dicho
sustituyente elegido independientemente entre el grupo formado por:
alquilo C_{1-6}, haloalquilo
C_{1-6}, alcoxi C_{1-6},
hidroxi, halo, amino, oxo, tio o tioalquilo
C_{1-6},
y
A es una amida de fórmula
-C(O)-NH-R^{5}, en donde
R^{5} se elige entre el grupo formado por: alquilo
C_{1-8}, cicloalquilo C_{3-6},
arilo C_{6 ó 10} o aralquilo C_{7-16};
o A es un ácido carboxílico o una sal o éster
farmacéuticamente aceptable del mismo.
2. Un compuesto de fórmula I según la
reivindicación 1, en donde el centro de carbono 1 tiene la
configuración (R) y D está unido syn respecto a la amida, o está
unido syn respecto a A, según se representa por las estructuras (i)
y (ii):
3. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 1 ó 2, en la que D está unido syn respecto a
A como se representa por la fórmula (ii).
4. El compuesto de fórmula I según una de las
reivindicaciones 1 a 3, en donde W es N;
R^{21} es H, alquilo C_{1-6},
alcoxi C_{1-6}, hidroxi, cloro o
N(R^{23})_{2}, en donde R^{23} es H o alquilo
C_{1-6};
R^{22} es H, tioalquilo
C_{1-6}, alcoxi C_{1-6}, fenilo
o Het elegido entre el grupo formado por:
en donde R^{24} es H, alquilo
C_{1-6}, NH-R^{25},
NH-C(O)-R^{25};
NH-C(O)-
NH-R^{25},
en donde cada R^{25} es, independientemente: H,
alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
o
NH-C(O)-OR^{26}, en donde
R^{26} es alquilo C_{1-6}.
5. Un compuesto de fórmula I según la
reivindicación 4, en donde R^{21} es H o alcoxi
C_{1-6}.
6. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 4, en donde R^{22} es alcoxi
C_{1-4}, fenilo o Het elegido entre el grupo
formado por:
en donde R^{24} es H, alquilo
C_{1-6}, NH-R^{25} o
NH-C(O)-R^{25};
en donde cada R^{25} es alquilo
C_{1-6} o cicloalquilo C_{3-6};
o NH-C(O)-OR^{26}, en
donde R^{26} es como se definió en la reivindicación 4.
7. Un compuesto de fórmula I según la
reivindicación 6, en donde R^{21} es metoxi.
8. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 7, en donde R^{22} es etoxi, o Het elegido entre
el grupo formado por:
en donde R^{24a} es
NH-R^{25} o
NH-C(O)-R^{25}, en donde
R^{25} es alquilo
C_{1-6};
o R^{24a} es
NH-C(O)-OR^{26}, en donde
R^{26} es alquilo C_{1-6}, y R^{24b} es H o
alquilo C_{1-6}.
9. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 1, en donde R^{3} es una amida de fórmula
NH-C(O)R^{32} o una urea de fórmula
NH-C(O)-NH-R^{32}
o un carbamato de fórmula
NH-C(O)-OR^{32}, en donde
R^{32} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6}.
10. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 9, en donde R^{3} es una urea o un carbamato, en
donde R^{32} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{4-6}.
11. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 10, en donde R^{3} es un carbamato y R^{32} es
terc-butilo, ciclobutilo o ciclopentilo.
12. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 1, en donde D es una cadena de alquileno saturada o
insaturada, de 6 a 8 átomos de carbono, que contiene opcionalmente
uno o dos heteroátomos elegidos independientemente entre: O, S o
N-R^{41}, en donde R^{41} es H, alquilo
C_{1-6} o acilo C_{2-7}.
13. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 12, en donde D contiene opcionalmente un heteroátomo
elegido entre NH ó N-acilo
C_{2-7}.
14. El compuesto según la reivindicación 13, en
donde dicho heteroátomo se elige entre NH ó N(Ac).
15. El compuesto según la reivindicación 13, en
donde dicha cadena D contiene 7 átomos.
16. El compuesto según la reivindicación 15, en
donde dicho heteroátomo está en la posición 10 de dicha cadena
D.
17. El compuesto según la reivindicación 13, en
donde dicha cadena D es saturada.
18. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 12, en donde D es una cadena de alquileno saturada o
insaturada, de 6 a 8 átomos, que contiene opcionalmente un
heteroátomo elegido entre: O ó S.
19. El compuesto según la reivindicación 18, en
donde dicha cadena D contiene 7 átomos.
20. El compuesto según la reivindicación 19, en
donde dicho heteroátomo está en la posición 9 de dicha cadena
D.
21. El compuesto según la reivindicación 20, en
donde dicha cadena D está sustituida en posición 8 con R^{4}, en
donde R^{4} es H o alquilo C_{1-6}.
22. El compuesto según la reivindicación 21, en
donde dicho R^{4} es H o metilo.
23. El compuesto según la reivindicación 22, en
donde dicho R^{4} es H u 8-(S)-Me.
24. El compuesto según la reivindicación 23, en
donde dicha cadena D es saturada.
25. El compuesto según la reivindicación 19, en
donde dicha cadena D contiene un doble enlace en posición
11,12.
26. El compuesto según la reivindicación 25, en
donde dicho doble enlace es trans.
27. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 12, en donde D es una cadena de alquileno todo
carbono de 6 a 8 átomos, saturada o insaturada.
28. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 27, en donde D es una cadena de 7 átomos.
29. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 28, en donde D es saturada.
30. El compuesto según la reivindicación 29, en
donde dicha cadena D está sustituida con R^{4}, en donde R^{4}
es H, oxo, hidroxi, alcoxi o alquilo.
31. El compuesto según la reivindicación 30, en
donde dicho R^{4} es H o alquilo C_{1-6}.
32. El compuesto según la reivindicación 31, en
donde dicho R^{4} es H o metilo.
33. El compuesto según la reivindicación 32, en
donde dicho R^{4} es H ó 10-(S)-Me.
34. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 28, en donde D contiene un doble enlace.
35. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 34, en donde dicho doble enlace está en posición
13,14 de dicha cadena D.
36. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 35, en donde dicho doble enlace es cis.
37. El compuesto según la reivindicación 36, en
donde dicha cadena D está sustituida con R^{4}, en donde R^{4}
es H, oxo, hidroxi, alcoxi C_{1-6} o alquilo
C_{1-6}.
38. El compuesto según la reivindicación 37, en
donde dicho R^{4} es H o alquilo C_{1-6}.
39. El compuesto según la reivindicación 38, en
donde dicho R^{4} es H o metilo.
40. El compuesto según la reivindicación 39, en
donde dicho R^{4} es H ó 10-(S)-Me.
41. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 1, en donde A es un ácido carboxílico.
42. Un compuesto según la reivindicación 1, en
donde W es N;
R^{3} es un grupo de fórmula o
-NH-C(O)-NHR^{32} ó
-NH-C(O)-OR^{32}, en donde
R^{32} es alquilo C_{1-4} o cicloalquilo
C_{4-6};
D es una cadena de alquileno de 6 a 8 átomos,
saturada o insaturada, unida al resto ciclopropilo del compuesto de
fórmula I syn respecto a A, que contiene opcionalmente uno o
dos heteroátomos elegidos independientemente entre: O, S ó
N-R^{41}, en donde R^{41} es H o acilo
C_{2-7};
R^{4} es H, o de uno a tres sustituyentes
elegidos independientemente entre hidroxi, o alquilo
C_{1-6}; y
A es un ácido carboxílico, o una sal o éster del
mismo aceptable farmacéuticamente.
43. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 42, en donde R^{21} es H o metoxi;
R^{22} es alcoxi C_{1-6} o
Het elegido entre el grupo formado por:
en donde R^{24a} es H, alquilo
C_{1-6}, NH-R^{25},
NH-C(O)-R^{25} o
NH-C(O)-NH-R^{25},
en donde R^{25} es: H, alquilo
C_{1-6} o cicloalquilo C_{3-6};
o R^{24a} es
NH-C(O)-OR^{26}, en donde
R^{26} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
y R^{24b} es H o alquilo
C_{1-6};
R^{3} es urea de fórmula
N-C(O)-NHR^{32} o un
carbamato de fórmula
N-C(O)-OR^{32}, en donde
R^{32} es alquilo C_{1-6} o cicloalquilo
C_{3-6};
D es una cadena de alquileno de 7 átomos que
contiene opcionalmente un doble enlace en posición 11,12 ó 13,14;
conteniendo dicha cadena D opcionalmente un heteroátomo elegido
independientemente entre: O, S, NH, N(Me) o N(Ac);
y
R^{4} es H o alquilo
C_{1-6}.
44. El compuesto de fórmula I según la
reivindicación 43, en donde R^{21} es metoxi y R^{22} es etoxi
o
en donde R^{24a} es NH-(alquilo
C_{1-4}), NH-C(O)-(alquilo
C_{1-4}),
NH-C(O)-O-(alquilo
C_{1-4}); o
NH-C(O)-NH-(alquilo
C_{1-4});
D es una cadena C7 todo carbono, saturada o que
contiene un doble enlace cis en posición 13,14.
45. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
que comprende un estereoisómero
sencillo en el centro de carbono 1, en donde dicho doble enlace, la
estereoquímica de D y R^{22} se definen como
sigue:
46. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
que comprende un estereoisómero
sencillo en el centro de carbono 1, en donde R^{3}, R^{4},
dicha posición del doble enlace, la estereoquímica de D, R^{21} y
R^{22} se definen como
sigue:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
\newpage
47. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
que comprende un estereoisómero
sencillo en el centro de carbono 1, en donde R^{3}, D, la
estereoquímica de D, R^{21} y R^{22} se definen como
sigue:
\newpage
48. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
en donde dicho D está en syn
respecto al ácido carboxílico -COOH, R^{4}, X_{9} y dicho doble
enlace 11,12 se definen como
sigue:
49. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
en donde dicho D está en syn
respecto al ácido carboxílico -COOH, X_{10}, X_{11} y X_{12}
se definen como
sigue:
50. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
en donde dicho D está en syn
respecto al ácido carboxílico -COOH, R^{21} y R^{22} se definen
como
sigue:
51. Un compuesto de fórmula:
en donde dicho D está en syn
respecto al ácido carboxílico -COOH, R^{4}, X_{9}, X_{10},
X_{11}, dicho doble enlace 13,14 y R^{22} se definen como
sigue:
52. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
en donde dicho D está en syn
respecto al ácido carboxílico -COOH, dicho doble enlace 13,14 está
en cis, R^{32}, R^{4} y R^{22} se definen como
sigue:
53. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
1 de fórmula:
en donde dicho D está en syn
respecto al ácido carboxílico -COOH, R^{32}, R^{4} y R^{22}
se definen como
sigue:
54. Un compuesto de fórmula I de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 53 como medicamento.
55. Uso de un compuesto de fórmula I de acuerdo
con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 53 como una
herramienta de investigación para diseñar ensayos de replicación
viral.
56. El uso del compuesto de la fórmula I de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 53 para la
preparación de un medicamento para inhibir la replicación del virus
de la hepatitis C.
57. El uso del compuesto de la fórmula I de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 53 para la
preparación de un medicamento para el tratamiento o la prevención
de una infección por el virus de la hepatitis C.
58. Una composición farmacéutica que comprende
una cantidad viralmente eficaz anti-hepatitis C de
un compuesto de fórmula I de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 53, o una sal o éster del mismo
terapéuticamente aceptable, mezclada con un medio vehículo o agente
auxiliar aceptable farmacéuticamente.
59. La composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 58, que comprende, además, un agente inmunomodulador
adicional.
60. La composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 59, en donde dicho agente inmunomodulador adicional
se selecciona del grupo que consiste en \alpha-, \beta- y
\delta-interferones.
61. La composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 58, que comprende, además, un agente antiviral.
62. La composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 61, en donde dicho agente antiviral se selecciona
del grupo que consiste en: ribavirina y amantadina.
63. La composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 58, que comprende, además, otro inhibidor de
proteasa del HCV.
64. La composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 58, que comprende, además, un inhibidor de otras
dianas en el ciclo vital del HCV.
65. La composición farmacéutica de acuerdo con la
reivindicación 64, en donde el inhibidor de las otras dianas en el
ciclo vital del HCV se selecciona del grupo que consiste en
helicasa, polimerasa y metaloproteasa.
66. Uso de una composición farmacéutica de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 58 a 65 para la
fabricación de un medicamento para tratar o prevenir una infección
por virus de la hepatitis C en un mamífero.
67. Un compuesto que tiene la siguiente fórmula
(A):
en donde X es PG o
R^{2};
cada PG es, independientemente, un grupo
protector;
R^{2} es un grupo de fórmula
en donde R^{21}, R^{22} y W son
como se definen en la reivindicación
1;
A' es un ácido carboxílico protegido;
y n es 2.
68. Un procedimiento para preparar un compuesto
de fórmula (A) de acuerdo con la reivindicación 67, comprendiendo
dicho procedimiento hacer reaccionar un compuesto de fórmula (B)
con un compuesto de fórmula (C):
en donde PG, X, A' y n son como se
definen en la reivindicación
67.
69. Un compuesto que tiene la siguiente fórmula
(D):
en donde X es PG o
R^{2};
PG es un grupo protector;
R^{2} es como se define en la reivindicación
67;
A' es un ácido carboxílico protegido;
y n es 2.
70. Un procedimiento para preparar un compuesto
de la fórmula (D) de acuerdo con la reivindicación 69,
comprendiendo dicho procedimiento escindir el grupo protector PG en
el anillo de pirrolidina en el compuesto de fórmula (A):
en donde X es PG o
R^{2};
cada PG es, independientemente, un grupo
protector;
R^{2}, A' y n son como se definen en la
reivindicación 69.
71. Un compuesto que tiene la siguiente fórmula
(E):
en donde X es PG o
R^{2};
PG es un grupo protector;
R^{2} es como se define en la reivindicación
67;
A' es un ácido carboxílico protegido;
R^{3} es como se define en reivindicación
1;
N es 0 ó 2;
D' es como se define para D, pero siendo 2 a 5
átomos más corto; y
D es como se define en la reivindicación 1.
72. Un procedimiento para preparar un compuesto
de fórmula (E) de acuerdo con la reivindicación 71, comprendiendo
dicho procedimiento hacer reaccionar un compuesto de fórmula (D)
con compuesto de fórmula (F):
en donde X, A', n, R^{3}, y D son
como se definen en la reivindicación
71.
73. Un compuesto que tiene la siguiente fórmula
(G):
en donde R^{2} es como se define
en la reivindicación 67, R^{3} y D son como se definen en la
reivindicación 1;
y
A' es un ácido carboxílico protegido.
74. Un procedimiento para preparar un compuesto
de fórmula (G'), el cual corresponde al compuesto de fórmula (G) de
acuerdo con la reivindicación 73, en donde D es un grupo insaturado
según se define en la reivindicación 1, comprendiendo dicho
procedimiento provocar un cierre del anillo del compuesto de
fórmula (E) haciendo reaccionar el compuesto de fórmula (E) en
presencia de un catalizador basado en un metal de transición, para
obtener un compuesto de fórmula (G'):
en
donde
R^{2} es como se define en la reivindicación
67, R^{3}, n y A' son como se definen en la reivindicación 1.
75. Un procedimiento para preparar un compuesto
de la fórmula (G) de acuerdo con la reivindicación 73, en donde D
representa un grupo saturado según se define en la reivindicación
1, comprendiendo dicho procedimiento someter a hidrogenación el
compuesto de fórmula (G') de acuerdo con la reivindicación 74.
76. Un compuesto que tiene la siguiente fórmula
(J):
en donde R^{2} es como se define
en la reivindicación 67, y R^{3} es como se define en la
reivindicación
1;
m es 1 a 5;
n es 1 a 5;
A' es un ácido carboxílico protegido;
y Cbz es benciloxicarbonilo.
77. Un compuesto de la siguiente fórmula (K):
en donde R^{2} es como se define
en la reivindicación 67, y R^{3} es como se define en la
reivindicación
1;
m es 1 a 5;
n es 1 a 5;
A' es un ácido carboxílico protegido;
y Cbz es benciloxicarbonilo.
78. Un procedimiento para preparar un compuesto
de fórmula (K) de acuerdo con la reivindicación 77, comprendiendo
dicho procedimiento someter a hidroboración y luego a oxidación un
compuesto de fórmula (J):
en donde R^{2}, R^{3}, m, n, A'
y Cbz son como se definen en la reivindicación
76.
79. Un compuesto que tiene la siguiente fórmula
(L):
en donde R^{2} es como se define
en la reivindicación 67, y R^{3} es como se define en la
reivindicación
1;
m es 1 a 5;
n es 1 a 5;
y A' es un ácido carboxílico protegido.
80. Un procedimiento para preparar un compuesto
de fórmula (L) de acuerdo con la reivindicación 79, comprendiendo
dicho procedimiento someter a hidrogenación, en presencia de ácido,
el compuesto de fórmula (K):
en donde R^{2} y R^{3}, m, n y
A' son como se definen en la reivindicación 79; y Cbz es
benciloxicarbonilo.
81. Uso de un compuesto de fórmula I de acuerdo
con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 53 para el tratamiento o
la prevención de la contaminación viral de materiales.
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