DE60031921T2 - Verfahren zu Herstellung von Epigallocatechin Gallate - Google Patents

Verfahren zu Herstellung von Epigallocatechin Gallate Download PDF

Info

Publication number
DE60031921T2
DE60031921T2 DE60031921T DE60031921T DE60031921T2 DE 60031921 T2 DE60031921 T2 DE 60031921T2 DE 60031921 T DE60031921 T DE 60031921T DE 60031921 T DE60031921 T DE 60031921T DE 60031921 T2 DE60031921 T2 DE 60031921T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
egcg
water
resin
volume
catechins
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE60031921T
Other languages
English (en)
Other versions
DE60031921D1 (de
Inventor
David Carl Burdick
Heinz Egger
Andrew George Gum
Ingo Koschinski
Elena Muelchi
Isabelle Prevot-Halter
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
DSM IP Assets BV
Original Assignee
DSM IP Assets BV
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by DSM IP Assets BV filed Critical DSM IP Assets BV
Publication of DE60031921D1 publication Critical patent/DE60031921D1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE60031921T2 publication Critical patent/DE60031921T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D311/00Heterocyclic compounds containing six-membered rings having one oxygen atom as the only hetero atom, condensed with other rings
    • C07D311/02Heterocyclic compounds containing six-membered rings having one oxygen atom as the only hetero atom, condensed with other rings ortho- or peri-condensed with carbocyclic rings or ring systems
    • C07D311/04Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring
    • C07D311/58Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring other than with oxygen or sulphur atoms in position 2 or 4
    • C07D311/60Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring other than with oxygen or sulphur atoms in position 2 or 4 with aryl radicals attached in position 2
    • C07D311/62Benzo[b]pyrans, not hydrogenated in the carbocyclic ring other than with oxygen or sulphur atoms in position 2 or 4 with aryl radicals attached in position 2 with oxygen atoms directly attached in position 3, e.g. anthocyanidins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23FCOFFEE; TEA; THEIR SUBSTITUTES; MANUFACTURE, PREPARATION, OR INFUSION THEREOF
    • A23F3/00Tea; Tea substitutes; Preparations thereof
    • A23F3/16Tea extraction; Tea extracts; Treating tea extract; Making instant tea
    • A23F3/20Removing unwanted substances
    • A23F3/205Using flocculating or adsorbing agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H17/00Compounds containing heterocyclic radicals directly attached to hetero atoms of saccharide radicals

Description

  • Die vorliegende Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung von (–)-Epigallocatechin-Gallat (EGCG). Die Erfindung bezieht sich insbesondere auf ein Verfahren zur Herstellung von EGCG durch Trennung von Teecatechinen, was die Behandlung mit einem makroporösen polaren Harz involviert.
  • Blätter der Grünteepflanze camellia sinensis enthalten bis zu 36 % Polyphenole auf Trockengewichtsbasis, jedoch variiert ihre Zusammensetzung mit dem Klima, der Jahreszeit, der Vielfalt und dem Zustand der Reife. Grünteecatechine sind die vorherrschende Gruppe der Grünteepolyphenole. Beispiele von Catechinen sind (–)-Epicatechin (EC), (–)-Epigallocatechin-Gallat (EGCG), Epigallocatechin (EGC) und Epicatechin-Gallat (ECG).
  • EGCG ist die interessanteste Verbindung unter den oben erwähnten Catechinen, da es eine starke oxidationshemmende Wirkung zeigt. Außerdem ist demonstriert worden, daß EGCG eine antimutagene Wirkung, eine antibakterielle Wirkung und ebenso eine vorteilhafte Wirkung auf den Cholesterinspiegel im Blut aufweist. Die anderen Catechine, die im Tee vorliegen, sind weniger wirksam. Grüntee enthält ebenso andere Komponenten, wie Koffein, Proteine, Pektine und/oder Metallionen, die nicht wünschenswert sein können.
  • Es gibt daher eine Notwendigkeit, EGCG in reiner Form in hoher Ausbeute durch ein einfaches und ökonomisches Verfahren zu isolieren. Jedoch machen die strukturellen Ähnlichkeiten der verschiedenen Teecatechine die Trennung der einzelnen Catechine schwierig. Außerdem werden die Catechine im Tee normalerweise von Koffein begleitet, das in einer Menge von bis zu 4 % der Trockenmasse der Grünteeblätter vorliegt. Koffein ist für die Assoziation mit den Catechinen bekannt, und es ist nicht einfach zu entfernen.
  • Die Herstellung von Grünteeextrakten ist in der Technik allgemein bekannt. US-Patent Nr. 5,879,733 beschreibt die Herstellung eines Grünteeextraktes mit verbesserter Klarheit und Farbe. Der Teeextrakt wird durch Behandeln des Grünteeextraktes bei einer Temperatur zwischen 25°C und 60°C mit einer Menge eines Kationenaustauschharzes mit Lebensmittelqualität, das zur Entfernung von Metallkationen, die in dem Extrakt vorliegen, wirksam ist, erhalten. Der behandelte Extrakt wird dann mit einer Nanofiltrationsmembran kontaktiert. Jedoch ist das Verfahren, das in US 5,879,733 beschrieben wird, nicht geeignet, EGCG aus einem Gemisch aus Teecatechinen zu trennen.
  • US-Patent Nr. 4,613,672 beschreibt ein Verfahren zur Herstellung von reinem EGCG, wobei das Verfahren folgende Schritte umfaßt: Teeblätter werden mit heißem Wasser oder mit wässerigen Lösungen aus 40 bis 75 % Methanol, 40 bis 75 % Ethanol oder 30 bis 80 % Aceton extrahiert. Der erhaltene Extrakt wird mit Chloroform gewaschen und der gewaschene Extrakt wird in einem organischen Lösungsmittel gelöst. Das organische Lösungsmittel wird abdestilliert und die konzentrierte Extraktkomponente wird der Hochgeschwindigkeitsflüssigchromatographie unter Verwendung einer Umkehrphasen-Verteilungstrennsäule mit einem Entwickler aus Aceton/Tetrahydrofuran/Wasser (0 bis 25 : 0 bis 35 : 65 bis 85 Vol-%) unterzogen, wobei jedes von (–)Epicatechin, (–)Epigallocatechin, (–)Epicatechin-Gallat und (–)Epigallocatechin-Gallat voneinander isoliert wird. Das Verfahren, das in US-Patent Nr. 4,613,672 beschrieben wird, ermöglicht keine ökonomische Herstellung von EGCG in einem technischen Maßstab aufgrund der Verwendung von teuren Säulenfüllungen. Außerdem ermöglicht das Verfahren, das in US-Patent Nr. 4,613,672 beschrieben wird, keine Herstellung von EGCG, das zu Lebensmittelprodukten zugegeben werden kann, da die verwendeten Lösungsmittelgemische (Aceton/Tetrahydrofuran/Chloroform) nicht lebensmittelgeprüft sind.
  • Chemical Abstracts, Bd. 111, Nr. 17, 1989, Abstract Nr. 6208f offenbart eine präparative chromatographische Trennung von Grünteecatechinen unter Verwendung einer Sephadex-LH-20-Säule.
  • Ein chromatographisches Verfahren zur Trennung einzelner Catechine aus Grüntee unter Verwendung einer Sephadex-LH-20-Säule wird ebenso in R. Amarowicz et al., Food Research Int., Bd. 29, Nr. 1, S. 71 bis 76, 1996 offenbart.
  • Während die Technik die Herstellung von Catechinen als Gemische beschreibt, besteht noch eine Notwendigkeit für ein einfaches, sicheres und ökonomisches Verfahren zur Herstellung von EGCG in gereinigter Form zur Einbringung als ein Inhaltsstoff in Ergänzungen und Nahrungsmitteln.
  • Es ist nun herausgefunden worden, daß EGCG aus einem Gemisch aus Teecatechinen und/oder Koffein mit verbesserter Selektivität abgetrennt werden kann, wenn die Trennung unter Verwendung eines makroporösen polaren Harzes und eines geeigneten polaren Elutionslösungsmittels durchgeführ wird.
  • Daher ist die vorliegende Erfindung auf ein Verfahren zur Herstellung von Epigallocatechin-Gallat (EGCG) gerichtet, welches die Schritte umfaßt:
    • a) Bereitstellen eines Grünteeextraktes;
    • b) Unterziehen des Grünteeextraktes einer Chromatographie auf einem makroporösen polaren Harz, das allgemein zur Adsorption oder Chromatographie bei einer Temperatur zwischen etwa 10 °C und etwa 80 °C verwendet wird, wobei das makroporöse polare Harz aus der Gruppe, bestehend aus Acrylharzen, Polyamiden, Polyvinylpyrrolidon P 6755 und aromatischen Polyamiden und Polyestern, ausgewählt wird;
    • c) Eluieren von EGCG aus dem makroporösen polaren Harz mit einem polaren Elutionslösungsmittel bei einer Temperatur zwischen etwa 10°C und etwa 80°C und bei einem Druck zwischen etwa 0,1 bar und etwa 50 bar;
    • d) gegebenenfalls Konzentrieren des Eluats von Schritt c);
    • e) gegebenenfalls Regenerieren des makroporösen polaren Harzes durch Desorbieren der übrigen Catechine; und
    • f) gegebenenfalls Konzentrieren der desorbierten Catechine von Schritt e).
  • Die Herstellung des Grünteeextraktes, das als Ausgangsmaterial verwendet wird, ist in der Technik allgemein bekannt. Beispielsweise werden Grünteeblätter typischerweise mit heißem oder kaltem Wasser extrahiert, um eine Lösung zu bilden, die Teecatechine und Koffein enthält. Diese Grünteelösung kann außerdem konzentriert werden, um entweder eine konzentrierte Extraktlösung oder ein Trockenpulver zu bilden. Die Extraktlösung oder das Pulver kann Stabilisatoren, wie lebensmittelgeprüfte Säuren, beispielsweise Zitronensäure, Ascorbinsäure, Isoascorbinsäure und dergleichen, enthalten.
  • Teeextraktpulver sind ebenso kommerziell erhältlich, beispielsweise von Guizhou Highyin Biological Product Co., Guiyang, P. R. China oder Zhejang Zhongke Plant Technical Co. Ltd., Hangzhou, Zhejang, P. R. China.
  • Die Trennung von EGCG wird typischerweise durch Unterziehen des Grünteeextraktes einer Säule, die mit makroporösem polarem Harz gefüllt ist, durchgeführt.
  • Wie hierin verwendet, bezieht sich „makroporöse polare Harze" auf Acrylharze, wie Polyacrylate, beispielsweise AMBERLITE®XAD-7, erhältlich von Rohm and Haas, Philadelphia, Pa., oder Polymethacrylate, wie beispielsweise AMBERCHROM®CG-71, erhältlich von Toso Haas, oder DIAION HP 2MG, erhältlich von Mitsubishi Chem. Corp., Philadelphia, Pa; oder Polyamide, wie Polyamide 11, erhältlich von Merck, Darmstadt, Deutschland, Polyamide 6 und Nylon 6,6, erhältlich von Fluka, Buchs, Schweiz (Katalog Nr. 02395 bzw. 74712); Polyamide 12 (Grilamid L 25 Natur), erhältlich von EMS Chemie, Domat, Schweiz; oder Polyvinylpyrrolidon P 6755, erhältlich von Sigma; oder aromatische Polyamide und Polyester.
  • Das Harz wird vorzugsweise entgast und mit dem Elutionslösungsmittel äquilibriert verwendet.
  • Das Verfahren gemäß der Erfindung wird bei Temperaturen zwischen etwa 10 °C und etwa 80 °C, vorzugsweise etwa 40 °C und etwa 60 °C durchgeführt. Die Thermostatregelung kann beispielsweise durch das Plazieren der Säule in einen thermostatgesteuerten Bereich, beispielsweise einen Heizmantel, stattfinden.
  • Der hydraulische Druck, unter dem die mobile Phase durch die Säule durchgeleitet wird, kann innerhalb weiter Grenzen variieren. Die mobile Phase wird vorzugsweise durch die Säule bei einen Druck von etwa 0,1 bar bis etwa 50 bar, vorzugsweise bei etwa 0,1 bar bis etwa 20 bar, stärker bevorzugt bei etwa 0,1 bar bis etwa 10 bar gepumpt.
  • Die mobile Phase umfaßt ein polares Elutionslösungsmittel, welches ein Gemisch aus Wasser und einem organischen Lösungsmittel ist. Wie hierin verwendet, bezieht sich das „organische Lösungsmittel" auf Alkohole, wie Methanol, Ethanol, Isopropanol und dergleichen, und Ketone, wie beispielsweise Aceton oder Ester, wie Ethylacetat oder Gemische davon. Die Verwendung von Alkoholen mit Lebensmittelqualität, wie Ethanol und Isopropanol, ist bevorzugt. Besonders gute Ergebnisse werden erhalten, wenn eine mobile Phase, die ein Gemisch aus etwa 70 bis etwa 95 Vol-%, vorzugsweise etwa 90 Vol-%, Wasser und etwa 5 bis etwa 30 Vol-%, vorzugsweise etwa 10 Vol-%, organischen Lösungsmittel umfaßt, verwendet wird. Es ist vorteilhaft, die mobile Phase zu entgasen und sie unter einer inerten Atmosphäre, wie beispielsweise Stickstoff oder Argon, zu halten.
  • Die Säule wird mit der mobilen Phase konditioniert. Die Fließgeschwindigkeit der mobilen Phase durch die Säule kann innerhalb weiter Grenzen variieren. Die Fließgeschwindigkeit liegt zwischen etwa 0,5 und etwa 20 Bettvolumen/h, vorzugsweise etwa 0,5 und etwa 10 Bettvolumen/h, stärker bevorzugt etwa 0,8 und etwa 5 Bettvolumen/h. (1 Bettvolumen entspricht 1 m3 Lösung oder Lösungsmittel pro m3 Harz).
  • Nachdem das Gleichgewicht zwischen den stationären und mobilen Phasen hergestellt worden ist, wird die Teeextraktlösung in die mobile Phase eingebracht, wodurch der Grünteeextrakt einer Chromatographie auf dem makroporösen polaren Harz unterzogen wird. Wenn ein Grünteeextraktpulver als das Ausgangsmaterial verwendet wird, wird das Pulver in der mobilen Phase gelöst. Wenn ein wässeriger Grünteeextrakt verwendet wird, ist es vorteilhaft, das Verhältnis von Wasser zu dem organischen Lösungsmittel in dem Extrakt zu dem der mobilen Phase durch Zugeben von organischem Lösungsmittel einzustellen.
  • Ein Schlüsselaspekt der vorliegenden Erfindung ist, den Grünteeextrakt mit einem makroporösen polaren Harz bei Temperaturen zwischen etwa 10 °C und etwa 80 °C, vorzugsweise bei etwa 40 °C und etwa 60 °C zu behandeln und EGCG mit einem polaren Elutionslösungsmittel zu eluieren. Dieses spezielle Wechselspiel der drei Merkmale von Harz, Elutionsmittel und Temperatur bildet einen wichtigen Aspekt der vorliegenden Erfindung und führt zu einer speziellen Trennung von EGCG aus einem Gemisch aus Teecatechinen und/oder Koffein, wodurch nach der Elution eine EGCG-Fraktion erhalten wird, die mindestens 75 %, vorzugsweise mehr als 85 %, stärker bevorzugt etwa 90 % bis etwa 97 %, EGCG enthält, berechnet in bezug auf die Gesamtmenge der Catechine, die in dem Extrakt oder Konzentrat vorliegen.
  • Die Fähigkeit des makroporösen polaren Harzes, Koffein, EGCG und die übrigen Catechine zu absorbieren, ist ebenso in Abhängigkeit des verwendeten Elutionsmittels und der Temperatur unterschiedlich. Die Affinität für Koffein ist geringer als die von EGCG, wodurch Koffein, wenn vorhanden, zunächst eluiert wird, und abgetrennt werden kann. Wenn geeignet, ist es ebenso möglich, dadurch Koffein in einer gereinigten Form zurückzuführen, was ebenso ein ökonomischer Vorteil sein könnte. Eine zweite Fraktion wird isoliert, in der das EGCG vorliegt. Die übrigen Teecatechine zeigen eine stärkere Affinität als die von EGCG, wodurch sie absorbiert bleiben, bis das Harz unter Verwendung eines Lösungsmittels, das zur Desorbierung der übrigen Catechine fähig ist, regeneriert wird. Beispielsweise können die übrigen Catechine durch Eluieren mit einem reinen organischen Lösungsmittel oder durch Verändern des Verhält nisses von Wasser zu organischem Lösungsmittel in der mobilen Phase desorbiert werden. Ein geeignetes Regenerierungslösungsmittel ist beispielsweise ein reines organisches Lösungsmittel oder ein Gemisch aus etwa 10 Vol-% bis etwa 60 Vol-% Wasser und etwa 40 Vol-% bis etwa 90 Vol-% organischen Lösungsmittel, vorzugsweise etwa 40 Vol-% Wasser und etwa 60 Vol-% organisches Lösungsmittel.
  • Die Konzentration des EGCGs in dem Eluat kann durch in der Technik allgemein bekannten Verfahren, beispielsweise durch Verdampfen, durchgeführt werden. Das EGCG-Eluat kann zur Trockne eingedampft werden, um ein Pulver zu bilden, das EGCG in hoher Reinheit enthält, oder konzentriert werden, um die Kristallisierung zu ermöglichen. Die Konzentration kann durch Zugeben eines Stabilisators zu dem Eluat, wie eine lebensmittelgeprüfte Säure, beispielsweise Zitronensäure, Ascorbinsäure, Isoascorbinsäure und dergleichen, durchgeführt werden. Die Säure wird vorzugsweise in einer Menge von etwa 0,1 bis etwa 2,5 % in bezug auf EGCG zugegeben.
  • Die Vorfraktion, die Koffein enthält, und die Fraktion von Schritt e), die die übrigen Catechine enthält, können, wie oben beschrieben, konzentriert werden.
  • Das Verfahren kann unter Verwendung einer einzelnen Säule oder einem System von mehreren Chromatographiesäulen durchgeführ werden. Das Verfahren kann ebenso unter Verwendung von Technologien, auf die man sich in der Technik als „simulierte Bewegtbettchromatographie" oder „Ringchromatographie" bezieht, durchgeführ werden.
  • Das Verfahren der vorliegenden Erfindung kann mit einfachen und ökonomischen Betriebsweisen durchgeführt werden und ist daher auf eine Großproduktion in bezug auf die Ausbeute und Handhabung anwendbar.
  • EGCG, das, wie oben beschrieben, hergestellt wurde, verfügt über eine starke oxidationshemmende Aktivität und kann daher als ein Antioxidationsmittel für verschiedene Nahrungsmittel, Kosmetika, Öle und so weiter verwendet werden. Außerdem weist EGCG eine antimutagene Wirkung, eine antibakterielle Wirkung und ebenso eine vorteilhafte Wirkung auf den Cholesterinspiegel im Blut auf. Daher sind Konzentrate oder reines EGCG in Gesundheitspräparaten von Nutzen.
  • Die vorliegende Erfindung wird in bezug auf die folgenden Beispiele ausführlicher dargestellt.
  • Beispiel 1: Trennung von EGCG
  • Ein Grünteeextrakt, der die unterschiedlichen Catechine und Koffein enthält (hergestellt von Guizhou Highyin Biological Products Co., Guiyang, China als „Grünteeextrakt, min. 95 % Polyphenole"), wurde als Ausgangsmaterial verwendet. Die Konzentration der Teekomponenten wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% ausgedrückt. Der Gehalt an EGCG, Koffein, anderen Catechinen sowie Gallussäure wird in Tabelle 1 gezeigt.
  • Tabelle 1 Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial
    Figure 00050001
  • 33,5 l(26 kg) Amberlite®XAD-7-Harz mit einer Teilchengröße von 0,3 bis 1,2 mm wurden in eine Säule im halbtechnischen Maßstab mit einem Innendurchmesser von 150 mm, einer Länge von 2 m und einem Volumen von 35,4 l gefüllt. Die Säule wurde mit einem Heizmantel ausgestattet. Das Harz wurde gründlich mit Wasser gewaschen und mit einem Gemisch aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) äquilibriert. Das Gerät und die Lösungsmittel, die verwendet wurden, wurden entgast und unter einer Atmosphäre von inertem Stickstoff vor der Verwendung gehalten.
  • Die gefüllte Säule wurde auf 60 °C thermostatiert. 0,4 kg des obigen Grünteeextraktes (Tabelle 1), das 152,5 g reines EGCG enthält, wurden in 1,8 kg eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) gelöst und auf die Spitze der Säule aufgebracht. EGCG wurde aus der Säule mittels einer Pumpe unter einem Druck von 0,5 bar und einer Temperatur von 60 °C mit einem Gemisch aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) bei einer konstanten Fließgeschwindigkeit von 50 kg/h eluiert. Nach einem anfänglichen Eluat von 144 kg (Vorfraktion) wurde ein Haupteluat von 174 kg gesammelt, das 112 g EGCG als die Hauptpolyphenolkkomponente enthält. Die EGCG-Konzentration in dem Haupteluat betrug 0,064 %. Die Ausbeute des abgetrennten EGCG, ausgehend von 152,5 g EGCG, in dem Teeextrakt betrug 73,5 %.
  • Um das Harz zu regenerieren, wurden die übrigen Catechine durch Eluieren mit 78,3 kg eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 4 : 6, bezogen auf das Volumen) desorbiert. Vor der nächsten Trennung wurde die Säule mit 86 kg eines Gemische aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) in Rückspülweise bei einer Fließgeschwindigkeit von 120 kg/h konditioniert.
  • Tabelle 2 stellt die Trennungswirkung dar, wie durch den relativen Prozentsatz von EGCG gezeigt. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Haupteluat wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% oder ppm ausgedrückt.
  • Tabelle 2 Konzentration der Teekomponenten in dem Haupteluat
    Figure 00060001
  • Beispiel 2
  • Beispiel 1 wurde unter Verwendung einer anderen Charge des „Grünteeextrakts, min. 95 % Polyphenol" von Guizhou Highyin Biological Products Co., der zusammengesetzt, wie in Tabelle 3 gezeigt, war, wiederholt.
  • Tabelle 3 Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial
    Figure 00060002
  • Die gewaschene Säule von Beispiel 1 wurde auf 60 °C thermostatiert und verwendet, um die Trennung durchzuführen. 0,4 kg des obigen Grünteeextraktes (Tabelle 3), der 140,5 g reines EGCG enthält, wurden in 1,8 kg eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) gelöst und auf die Spitze der Säule aufgebracht. Die Säule wurde dann eluiert, wie in Beispiel 1 beschrieben. Nach einem anfänglichen Eluat von 200 kg (Vorfraktion) wurde ein Haupteluat von 117 kg gesammelt, das 72,8 g EGCG als die Hauptpolyphenolkomponente enthält. Die EGCG-Konzentration in dem Haupteluat betrug 0,062 %. Die Ausbeute des getrennten EGCG, ausgehend von 140,5 g EGCG, in dem Teeextrakt betrug 51,8 %.
  • Um das Harz zu regenerieren, wurden die übrigen Catechine durch Eluieren mit 100 kg eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 4 : 6, bezogen auf das Volumen) desorbiert. Vor dem nächsten Trennungsschritt wurde die Säule mit 100 kg eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) in Rückspülweise bei einer Fließgeschwindigkeit von 120 kg/h konditioniert.
  • Tabelle 4 stellt die Trennungswirkung dar, wie durch den relativen Prozentsatz von EGCG gezeigt. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Haupteluat wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in ppm ausgedrückt. Im Vergleich zu Beispiel 1 wurde EGCG in einem höheren Prozentsatz erhalten.
  • Tabelle 4 Konzentration von Teekomponenten in dem Haupteluat
    Figure 00070001
  • Beispiel 3: Konzentration des Eluats
  • 9008 kg des Eluats der Adsorptions/Desorptions-Säule, hergestellt durch wiederholte Durchläufe, wie in Beispiel 2 beschrieben, wurden durch die Zugabe von 2 % Zitronensäure stabilisiert, berechnet in bezug auf die EGCG-Menge. Das Eluat wurde bei einer Temperatur von 40 °C und einem Druck von 55 mbar unter Verwendung eines Fallfilmverdampfers aus Edelstahl mit einer Wärmeaustauschoberfläche von 1,1 m2 konzentriert. Die Menge an Catechinen und Koffein der Beschickungslösung, die der Verdampfungseinheit unterzogen wird, wird in Tabelle 5 angegeben.
  • Tabelle 5 Konzentration der Teekomponenten in der gereinigten EGCG-Lösung, die der Verdampfung unterzogen wird
    Figure 00080001
  • Der Beschickungsfluß zu dem Verdampfer wurde zu einer Fließgeschwindigkeit zwischen 120 kg/h und 130 kg/h bei einer Kreislauffließgeschwindigkeit von 300 kg/h reguliert. Dadurch betrug die Destillatfließgeschwindigkeit 123,5 kg/h bei einer Bodenproduktentfernungsrate von 0,52 kg/h. Während des Konzentrationsverfahrens wurde einer ersten Fraktion eine Probe entnommen und analysiert, gefolgt von einer zweiten Fraktion, die ebenso analysiert wurde. Die zwei Fraktionen von EGCG-Konzentraten wiesen eine Gesamtmasse von 63,5 kg auf.
  • Tabelle 6 zeigt die Konzentration der Teekomponenten in den Bodenprodukten. Die Rückgewinnung von EGCG betrug 95,9 %. Das Analyseergebnis zeigt deutlich, daß die hohe Reinheit des abgetrennten EGCG während der Konzentration der Lösung aufrechterhalten werden konnte.
  • EGCG kann aus der konzentrierten Lösung in einer festen Form entweder durch Sprühtrocknen oder durch Kristallisation isoliert werden.
  • Tabelle 6 Konzentration der Teekomponenten in dem EGCG-Konzentrat aus dem Fallfilmverdampfer
    Figure 00090001
  • Beispiel 4
  • 450 ml AMBERCHROM®CG-71c mit einem mittleren Teilchendurchmesser von 120 μm wurden in eine Laborchromatographiesäule aus Edelstahl mit einem Innendurchmesser von 2,2 cm und einer Länge von 103 cm gefüllt. Die Säule wurde mit einem Heizmantel ausgestattet. Das Harz wurde gewaschen und mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) äquilibriert.
  • 20 g eines konzentrierten Catechinpulvers „Grünteeextrakt, min. 95 % Polyphenole" von Guizhou Highyin Biological Products Co. (Ausgangsmaterial) wurden in 20 ml eines Gemisches aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) gelöst. Danach wurden 14 g dieser Lösung (entspricht 2,99 g EGCG) auf die Spitze der Säule aufgebracht. EGCG wurde mittels einer Chromatographiepumpe unter einem Druck von 2 bis 3 bar bei einer Temperatur von 60 °C mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) unter einer konstanten Fließgeschwindigkeit von 16 ml/min eluiert. Das Elutionsmittel wurde entgast und unter einer Stickstoffatmosphäre vor der Verwendung gehalten. Nach einem anfänglichen Eluat von 2,48 l (Vorfraktion) wurde die Fließgeschwindigkeit auf 25,5 ml/min geändert und das Haupteluat von 5,40 l wurde gesammelt, das EGCG in einer Konzentration von 0,627 g/l enthält. In bezug auf andere Catechine und Koffein betrug die Reinheit des EGCG in dem Haupteluat, bestimmt durch HPLC und ausgedrückt als relativer Prozentsatz, 97,13 %. Während des Experiments veränderte sich der Druck in dem System von 2 auf 3 bar in Abhängigkeit der angewendeten Fließgeschwindigkeit. Tabelle 7 vergleicht die Konzentration der Teekomponenten in dem Eluat und in dem Ausgangsmaterial, wodurch die Trennungswirkung dargestellt wird, wie durch den relativen Prozentsatz von EGCG gezeigt. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial und in der Hauptfraktion wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% oder ppm ausgedrückt.
  • Tabelle 7 Trennung von AMBERCHROM CG-71c, 60 °C, Lösungsmittelsystem: Wasser/Ethanol
    Figure 00100001
  • Beispiel 5
  • 450 ml Amberlite®XAD-7 mit einem Teilchendurchmesser von 0,3 bis 1,2 mm wurde in eine Laborchromatographiesäule aus Glas mit einem Innendurchmesser von 2,4 cm und einer Länge von 100 cm gepackt. Die Säule wurde mit einem Heizmantel und am Boden mit einer Glassinterfritte P3 ausgestattet. Das Harz wurde gründlich mit entsalztem Wasser gewaschen und mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol (Verhältnis (9 : 1, bezogen auf das Volumen) vor der Verwendung äquilibriert.
  • 20 g eines konzentrierten Catechinpulvers „Grünteeextrakt, min. 95 % Polyphenole" von Guizhou Highyin Biological Products Co. (Ausgangsmaterial) wurden in 20 ml eines Gemisches aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) gelöst. Danach wurden 14 g dieser Lösung (entspricht 2,91 g EGCG) auf die Spitze der Säule aufgebracht. EGCG wurde mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) mit einer konstanten Fließgeschwindigkeit von 16,9 ml/min bei einer Temperatur von 60 °C und einem Druck von 0,5 bis 1 bar eluiert. Das Elutionsmittel wurde entgast und unter einer Stickstoffatmosphäre vor der Verwendung gehalten. Nach einem anfänglichen Eluat von 2,48 l (Vorfraktion) wurde die Fließgeschwindigkeit auf 23,6 ml/min geändert und das Haupteluat von 4,95 l wurde gesammelt, das EGCG in einer Konzentration von 0,470 g/l enthielt. In bezug auf andere Hauptcatechine und Koffein betrug die Reinheit des EGCG in der Hauptfraktion, bestimmt durch HPLC, 86,1 (siehe Tabelle 8). Die Ausbeute, basierend auf EGCG, betrug 79,8 %. Während des Experiments veränderte sich der Druck in dem System von 0,5 auf 1 bar in Abhängigkeit der angewendeten Fließgeschwindigkeit.
  • Um das Harz zu regenerieren, wurden die übrigen Catechine durch Eluieren mit 1,35 l eines Gemisches aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 4 : 6, bezogen auf das Volumen) bei einer Fließgeschwindigkeit von 22,5 ml/min desorbiert. Diese Fraktion kann ebenso zur weiteren Reinigung oder Trennung der desorbierten Catechine verwendet werden. Tabelle 8 vergleicht die Konzentration der Teekomponenten in dem Eluat und in dem Ausgangsmaterial, wodurch die Trennungswirkung dargestellt wird, wie durch den relativen Prozentsatz von EGCG gezeigt. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial und in der Hauptfraktion wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% oder ppm ausgedrückt.
  • Tabelle 8 Trennung auf Amberlite XAD-7. 60 °C, Lösungsmittelsystem: Wasser/Ethanol
    Figure 00110001
  • Beispiel 6
  • Das regenerierte Harz von Beispiel 5 wurde in der Laborsäule, die in Beispiel 5 beschrieben wird, durch Pumpen eines Gemisches aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) durch das Harz äquilibriert.
  • 20 g eines konzentrierten Catechinpulvers „Grünteeextrakt, min. 95 % Polyphenole" von Guizhou Highyin Biological Products Co. (Ausgangsmaterial) wurden in 20 ml eines Gemisches aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) gelöst. Danach wurden 14 g dieser Lösung (entspricht 3,04 g EGCG) auf die Spitze der Säule aufgebracht. EGCG wurde mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) mit einer konstanten Fließgeschwindigkeit von 22,5 ml/min bei einer Säulentemperatur von 40 °C und einem Druck von 1 bis 2 bar eluiert. Das Elutionsmittel wurde entgast und unter einer Stickstoffatmosphäre vor der Verwendung gehalten. Nach einem anfänglichen Eluat von 3,60 l (Vorfraktion) wurde die Fließgeschwindigkeit auf eine Fließgeschwindigkeit von 26,3 ml/min geändert und das Haupteluat von 4,73 l wurde gesammelt. Die EGCG-Konzentration in dem Haupteluat betrug 0,278 g/l. In bezug auf andere Hauptcatechine und Koffein betrug die Reinheit des Epigallocatechin-Gallats in dem Haupteluat, bestimmt durch HPLC, 93,2 %. Die Ausbeute, basierend auf EGCG, betrug 42,8 %. Während des Experimentes veränderte sich der Druck in dem System von 1 auf 2 bar in Abhängigkeit der angewendeten Fließgeschwindigkeit.
  • Um das Harz zu regenerieren, wurden die übrigen Catechine durch Eluieren mit 1,98 l eines Gemisches aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 4 : 6, bezogen auf das Volumen) bei einer Fließgeschwindigkeit von 26,3 ml/min und einer Temperatur von 40 °C desorbiert. Diese Fraktion kann ebenso zur weiteren Reinigung oder Trennung der desorbierten Catechine verwendet werden. Tabelle 9 vergleicht die Konzentration der Teekomponenten in dem Eluat und in dem Ausgangsmaterial, wodurch die Trennungswirkung dargestellt wird, wie durch den relativen Prozentsatz von EGCG gezeigt. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial und in der Hauptfraktion wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% oder ppm ausgedrückt.
  • Tabelle 9 Trennung auf Amberlite XAD-7. 40 °C. Lösungsmittelsystem: Wasser/Ethanol
    Figure 00120001
  • Beispiel 7
  • Das regenerierte Harz von Beispiel 6 wurde mit einem Gemisch aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) äquilibriert.
  • 20 g eines konzentrierten Catechinpulvers „Grünteeextrakt, min. 95 % Polyphenole" von Guizhou Highyin Biological Products Co. (Ausgangsmaterial) wurden in 20 ml eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) gelöst. Danach wurden 14 g dieser Lösung (entspricht 3,21 g EGCG) auf die Spitze der Säule aufgebracht, und mit einem Gemisch aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) mit einer konstanten Fließgeschwindigkeit von 18 ml/min bei einer Säulentemperatur von 60 °C eluiert. Das Elutionsmittel wurde entgast und unter einer Stickstoffatmosphäre vor der Verwendung gehalten. Nach einem anfänglichen Eluat von 1,35 l (Vorfraktion) wurde die Fließgeschwindigkeit auf 16,5 ml/min geändert und das Haupteluat von 2,03 l wurde gesammelt. Die EGCG-Konzentration in dem Haupteluat betrug 0,998 g/l. In bezug auf andere Hauptcatechine und Koffein betrug die Reinheit des Epigallocatechin-Gallats in dem Haupteluat, bestimmt durch HPLC, 85,7 %. Die Ausbeute, basierend auf EGCG, betrug 62,8 %. Während des Experimentes veränderte sich der Druck in dem System von 1 auf 2 bar in Abhängigkeit der angewendeten Fließgeschwindigkeit.
  • Um das Harz zu regenerieren, wurden die übrigen Catechine durch Eluieren mit 2,03 l eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 4 : 6, bezogen auf das Volumen) bei einer Fließgeschwindigkeit von 16,5 ml/min und einer Temperatur von 40 °C desorbiert. Diese Fraktion kann ebenso zur weiteren Reinigung oder Trennung der desorbierten Catechine verwendet werden. Tabelle 10 vergleicht die Konzentration der Teekomponenten in dem Eluat und in dem Ausgangsmaterial, wodurch die Trennungswirkung dargestellt wird, wie durch den relativen Prozentsatz von EGCG gezeigt. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial und in der Hauptfraktion wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% oder ppm ausgedrückt.
  • Tabelle 10 Trennung auf Amberlite XAD-7, 60 °C, Lösungsmittelsystem: Wasser/Isopropanol
    Figure 00130001
  • Beispiel 8
  • Das regenerierte Harz von Beispiel 7 wurde mit einem Gemisch aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) äquilibriert.
  • 20 g eines konzentrierten Catechinpulvers „Grünteeextrakt, min. 95 % Polyphenole" von Guizhou Highyin Biological Products Co. (Ausgangsmaterial) wurden in 20 ml eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) gelöst. Danach wurden 14 g dieser Lösung (entspricht 3,10 g EGCG) auf die Spitze der Säule aufgebracht. EGCG wurde mit einem Gemisch aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) mit einer konstanten Fließgeschwindigkeit von 16,9 ml/min bei einer Säulentemperatur von 40 °C eluiert. Das Elutionsmittel wurde entgast und unter einer Stickstoffatmosphäre vor der Verwendung gehalten. Nach einem anfänglichen Eluat von 2,48 l (Vorfraktion) wurde die Fließgeschwindigkeit auf 23,66 ml/min geändert und das Haupteluat von 4,95 l wurde gesammelt. Die EGCG-Konzentration in dem Haupteluat betrug 0,370 g/l. In bezug auf andere Hauptcatechine und Koffein betrug die Reinheit des EGCG in der Hauptfraktion, bestimmt durch HPLC, 86,4 %. Die Ausbeute, basierend auf EGCG, betrug 59,2 %. Während des Experimentes veränderte sich der Druck in dem System von 1 auf 2 bar in Abhängigkeit der angewendeten Fließgeschwindigkeit.
  • Um das Harz zu regenerieren, wurden die übrigen Catechine durch Eluieren mit 2,03 l eines Gemisches aus Wasser/Isopropanol (Verhältnis 4 : 6, bezogen auf das Volumen) bei einer Fließgeschwindigkeit von 16,5 ml/min und einer Temperatur von 40 °C desorbiert. Diese Fraktion kann ebenso zur weiteren Reinigung oder Trennung der desorbierten Catechine verwendet werden. Tabelle 11 vergleicht die Konzentration der Teekomponenten in dem Eluat und in dem Ausgangsmaterial, wodurch die Trennungswirkung dargestellt wird, wie durch den relativen Prozentsatz von EGCG gezeigt. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial und in der Hauptfraktion wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% oder ppm ausgedrückt.
  • Tabelle 11 Trennung auf Amberlite XAD-7. 40 °C Lösungsmittelsystem: Wasser/Isopropanol
    Figure 00140001
  • Beispiel 9 Trennung von EGCG über Polyamide 11 unter Verwendung von organischen Lösungsmitteln Ein kommerziell erhältlicher Grünteeextrakt („Grünteeextrakt, min. 95% Polyphenole", Charge#960328 von Guizhou Highyin Biological Product Co., Guiyang, China), der Catechine und Koffein in einer in Tabelle 12 gezeigten Menge enthält, wurde als das Ausgangsmaterial verwendet. Die Konzentration der Teekomponenten wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt.
  • Tabelle 12 Konzentration der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial
    Figure 00140002
  • 250 g eines kommerziell erhältlichen Polyamide 11 (Kat. Nr. 1.07435.0100, Ursprung Merck, Darmstadt, Deutschland) mit einer Teilchengröße von 5 bis 40 μm wurden in 300 ml Ethylacetat suspendiert und in eine Säule mit einem Innendurchmesser von 5 cm und einer Länge von 36 cm übertragen. Die Säule war mit einem Heizmantel und einem Thermostat auf 40 °C ausgestattet. 3 g des Grünteeausgangsextraktes, charakterisiert in Tabelle 12, der 1,11 g reines EGCG enthält, wurden in 153 ml Ethylacetat gelöst und auf die Spitze der Säule aufgebracht. Eine Ethylacetat/Ethanol-Gradientelution (500 ml Ethylacetat, 1000 ml Ethylacetat/Ethanol (8,5 : 1,5 Volumen/Volumen), 1000 ml Ethylacetat/Ethanol (7 : 3 Volumen/Volumen), 2000 ml Ethylacetat/Ethanol (1 : 1 Volumen/Volumen)) unter einem Druck von 0,3 bar ergab eine Hauptfraktion von 550 ml, die nach der Verdampfung der Lösungsmittel 1,12 g Feststoff ergab, der 0,87 g EGCG als die Hauptcatechinkomponente enthält. Die EGCG-Konzentration in dem Haupteluat betrug 0,186 %. Die Ausbeute des getrennten EGCG, berechnet aus 1,106 g EGCG, das in dem Ausgangsteeextrakt vorliegt, betrug 76 %.
  • Um das Harz zu regenerieren, desorbierte die Elution mit 500 ml Ethanol die übrigen Catechine. Vor der nächsten Trennung wurde die Säule mit 500 ml Ethylacetat konditioniert.
  • Tabelle 13 stellt die Trennungswirkung dar. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Haupteluat wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt.
  • Tabelle 13 Konzentration der Teekomponenten in dem Rest des Haupteluats (nach der Lösungsmittelverdampfung)
    Figure 00150001
  • Beispiel 10 Trennung von EGCG über Polyamide 11 unter Verwendung eines wässerigen Lösungsmittelgemisches Eine wässerige Grünteeextraktlösung, die Catechine und Koffein in einer in Tabelle 14 gezeigten Menge enthält, wurde als Ausgangsmaterial verwendet. Die Konzentration der Teekomponenten wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% ausgedrückt.
  • Tabelle 14 Konzentration der Teekomponenten in dem Rest der Ausgangsteeextraktlösung (nach der Lösungsmittelverdampfung)
    Figure 00160001
  • 25 g Polyamide 11 (Kat. Nr. 1.07435.0100, Ursprung Merck, Darmstadt, Deutschland) mit einer Teilchengröße von 5 bis 40 μm wurden in 100 ml Wasser suspendiert und der pH auf 6,5 eingestellt. Diese Suspension wurde in eine Säule mit einem Innendurchmesser von 3 cm und einer Länge von 8 cm übertragen. 10 ml des obigen Grünteeextraktes (Tabelle 14), der 0,078 g reines EGCG enthält, wurden auf die Spitze der Säule aufgebracht. Eine Wasser/Ethanol-Gradientelution (500 ml Wasser, 600 ml Wasser/Ethanol (7 : 3 Volumen/Volumen), 350 ml Wasser/Ethanol (6 : 4 Volumen/Volumen), 500 ml Wasser/Ethanol (1 : 1 Volumen/Volumen)) mit einer Fließgeschwindigkeit von 5 ml/min ergab eine Hauptfraktion von 110 ml (0,072 g), die 0,046 g EGCG enthält. Die EGCG-Konzentration in dem Haupteluat betrug 0,06 %. Die Ausbeute des getrennten EGCG, ausgehend von 0,078 g EGCG, in dem Teeextrakt betrug 59 %.
  • Um das Harz zu regenerieren, desorbierte die Elution mit 500 ml Ethanol die übrigen Catechine. Vor der nächsten Trennung wurde die Säule mit 500 ml Wasser konditioniert.
  • Tabelle 15 stellt die Trennungswirkung dar. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Haupteluat wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt.
  • Tabelle 15 Konzentration der Teekomponenten in dem Rest der Hauptfraktion (nach der Lösungsmittelverdampfung
    Figure 00170001
  • Beispiel 11 Trennung von EGCG über Amberlite XAD-7, Lösungsmittelsystem: Wasser/Ethanol
  • 416 ml Amberlite XAD-7-Harz mit einem mittleren Teilchendurchmesser zwischen 0,3 und 1,2 mm wurden in eine Laborchromatographiesäule aus Glas (ECO 25/999 M3V-K von Stagroma AG, Wallisellen, Schweiz) mit einem Innendurchmesser von 2,5 cm und einer Länge von 100 cm gefüllt. Die Säule wurde mit einem Heizmantel ausgestattet und auf 60 °C thermostatiert. Das Harz wurde gewaschen und mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) äquilibriert.
  • Ein kommerziell erhältlicher Grünteeextrakt („Tea-polyphenole TP-80" von Zhejang Zhongke Plant Technical Co. Ltd., Hangzhou, Zhejang, P. R. China), der Catechine und Koffein in der in Tabelle 16 gezeigten Menge enthält, wurde als Ausgangsmaterial verwendet. Die Konzentation der Teekomponenten wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% ausgedrückt.
  • Tabelle 16 Konzentation der Teekomponenten in dem Ausgangsmaterial
    Figure 00180001
  • 11,2 g des Grünteeausgangsextraktes, charakterisiert in Tabelle 16, der 4,5 g reines EGCG enthält, wurden in 112,5 ml entsalztem Wasser gelöst und auf die Spitze der Säule aufgebracht. Die Catechine wurden mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol (Verhältnis 9 : 1, bezogen auf das Volumen) mit einer konstanten Fließgeschwindigkeit von 0,6 l/Stunde bei einer Säulentemperatur von 60 °C eluiert. Das Elutionsmittel wurde entgast und unter einer Stickstoffatmosphäre vor der Verwendung gehalten.
  • Nach einen anfänglichen Eluat von 1,2 l wurde die Zusammensetzung des Elutionsmittels auf Wasser/Ethanol 8 : 2, bezogen auf das Volumen, geändert. Diese Elution mit einer Gesamtmenge von 1,5 l ergab eine Hauptfraktion von 900 ml, die 2,115 g EGCG enthält. Die EGCG-Konzentration in der Hauptfraktion betrug 0,245 %. Die Ausbeute des getrennten EGCG, ausgehend von 4,5 g EGCG, in dem Teeextrakt betrug 47 %. Während des Experiments veränderte sich der Druck in dem System von 0,8 auf 1,5 bar.
  • Um das Harz zu regenerieren, wurde die Elution mit einem Gemisch aus Wasser/Ethanol 4 : 6, bezogen auf das Volumen, fortgesetzt, wodurch Ethanol die übrigen Catechine desorbiert. Vor der nächsten Trennung wurde die Säule mit Wasser/Ethanol 9 : 1, bezogen auf das Volumen, konditioniert.
  • Tabelle 17 stellt die Trennungswirkung dar. Die Konzentration der Teekomponenten in dem Rest der Hauptfraktion (nach der Verdampfung des Lösungsmittels) wurde durch HPLC unter Verwendung der UV-Extinktion bestimmt und in Gew.-% ausgedrückt.
  • Tabelle 17 Konzentration der Teekomponenten in dem Rest der Hauptfraktion (nach der Lösungsmittelverdampfung
    Figure 00190001

Claims (13)

  1. Verfahren zur Herstellung von Epigallocatechin-Gallat (EGCG), welches die Schritte umfaßt a) Bereitstellen eines Grünteeextraktes; b) Unterziehen des Grünteeextraktes einer Chromatographie auf einem makroporösen polaren Harz, das allgemein zur Adsorption oder Chromatographie bei einer Temperatur zwischen 10 °C und 80 °C verwendet wird, wobei das makroporöse polare Harz aus der Gruppe, bestehend aus Acrylharzen, Polyamiden, Polyvinylpyrrolidon P 6755 und aromatischen Polyamiden und Polyestern, ausgewählt wird; c) Eluieren von EGCG aus dem makroporösen polaren Harz mit einem polaren Elutionslösungsmittel bei einer Temperatur zwischen 10 °C und 80 °C und bei einem Druck zwischen 0,1 bar und 50 bar; d) gegebenenfalls Konzentrieren des Eluats von Schritt c); e) gegebenenfalls Regenerieren des makroporösen polaren Harzes durch Desorbieren der übrigen Catechine; und f) gegebenenfalls Konzentrieren der desorbierten Catechine von Schritt e).
  2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Acrylharz AMBERLITE®XAD-7 ist.
  3. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Acrylharz AMBERCHROM®CG-71 ist.
  4. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Polyamidharz Polyamide 11 ist.
  5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, wobei die Schritte b) und c) bei einer Temperatur zwischen 20 °C und 60 °C durchgeführt werden.
  6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, wobei der Schritt c) unter einem Druck von 0,1 bar bis 20 bar, vorzugsweise 0,1 bar bis 10 bar durchgeführt wird.
  7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 6, wobei das polare Elutionslösungsmittel ein Gemisch aus Wasser und einem organischen Lösungsmittel ist.
  8. Verfahren nach Anspruch 7, wobei das Elutionslösungsmittel ein Gemisch aus 70 Vol-% bis 95 Vol-%, vorzugsweise 90 Vol-%, Wasser und 5 Vol-% bis 35 Vol-%, vorzugsweise 10 Vol-%, eines organischen Lösungsmittels ist.
  9. Verfahren nach Anspruch 7 oder 8, wobei das organische Lösungsmittel Ethanol, Isopropanol, Ethylacetat oder Aceton ist.
  10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 9, wobei die Fließgeschwindigkeit des Elutionslösungsmittels zwischen 0,5 und 20 Bettvolumen/h, vorzugsweise 0,5 und 10 Bettvolumen/h, stärker bevorzugt 0,8 und 5 Bettvolumen/h beträgt.
  11. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10, wobei Schritt d) durch Zugeben von Zitronensäure, Ascorbinsäure oder Isoascorbinsäure durchgeführt wird.
  12. Verfahren nach Anspruch 11, wobei die Säure in einer Menge von 0,1 bis 2,5 % in bezug auf EGCG zugegeben wird.
  13. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 12, wobei Schritt e) unter Verwendung eines reinen organischen Lösungsmittels oder einem Gemisch aus 10 bis 60 Vol-% Wasser und 40 bis 90 Vol-% organischen Lösungsmittel, vorzugsweise 40 Vol-% Wasser und 60 Vol-% organisches Lösungsmittel, durchgeführt wird.
DE60031921T 1999-08-16 2000-08-11 Verfahren zu Herstellung von Epigallocatechin Gallate Expired - Lifetime DE60031921T2 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP99116032 1999-08-16
EP99116032 1999-08-16

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE60031921D1 DE60031921D1 (de) 2007-01-04
DE60031921T2 true DE60031921T2 (de) 2007-09-20

Family

ID=8238779

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE60031921T Expired - Lifetime DE60031921T2 (de) 1999-08-16 2000-08-11 Verfahren zu Herstellung von Epigallocatechin Gallate

Country Status (11)

Country Link
US (2) US7012149B2 (de)
EP (2) EP1077211B1 (de)
JP (1) JP4643808B2 (de)
KR (2) KR100847171B1 (de)
CN (1) CN1166661C (de)
AT (1) ATE346059T1 (de)
BR (1) BRPI0003578C1 (de)
CA (1) CA2315886C (de)
DE (1) DE60031921T2 (de)
ES (1) ES2275463T3 (de)
IN (1) IN190860B (de)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BE1026780B1 (de) * 2019-12-16 2021-02-26 Tea Res Institute Chinese Academy Of Agricultural Sciences Verfahren zur chargenweisen Abscheidung und Reinigung eines Polyester-Catechins mittels Gelchromatographie

Families Citing this family (54)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1077211B1 (de) * 1999-08-16 2006-11-22 DSM IP Assets B.V. Verfahren zu Herstellung von Epigallocatechin Gallate
KR20030010011A (ko) * 2001-07-25 2003-02-05 (주)엔바이오솔루션 녹차로부터 얻어진 에피갈로카테킨 갈레이트의 추출방법
KR100497003B1 (ko) * 2002-08-30 2005-06-23 주식회사 바이오랜드 안구표면 질환 치료용 양막을 보존하기 위한 양막보존액 조성물
US20050008712A1 (en) * 2003-07-08 2005-01-13 Debasis Bagchi Compositions incorporating high-caffeine green tea extract and related methods for promoting healthy body weight
JP2007505064A (ja) 2003-09-09 2007-03-08 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. 1種以上の酸化に感受性のある物質を含む、経口活性を持つ、本質的に無水の局所薬
US7303773B2 (en) 2003-10-21 2007-12-04 The Procter & Gamble Company Process for enriching extracts of natural theanine
KR101202565B1 (ko) * 2003-12-02 2012-11-19 가오 가부시키가이샤 용기포장음료
US7935478B2 (en) * 2004-02-02 2011-05-03 Core Dynamics Limited Biological material and methods and solutions for preservation thereof
WO2005117608A1 (en) 2004-06-04 2005-12-15 Horizon Science Pty Ltd Natural sweetener
JP5775656B2 (ja) * 2005-06-03 2015-09-09 ホリズン サイエンス ピーティーワイ リミテッド ボディマス再分布性を有する物質
WO2006131326A2 (en) * 2005-06-07 2006-12-14 Dsm Ip Assets B.V. Novel use of (-)-epigallocatechin gallate
KR100659138B1 (ko) * 2005-09-16 2006-12-19 (주)아모레퍼시픽 유효성분으로 갈로카테킨 갈레이트를 함유하는 보습용피부외용제 조성물
DE102005056652A1 (de) * 2005-11-25 2007-05-31 Südzucker AG Mannheim/Ochsenfurt Präparat enthaltend eine polyphenolhaltige Zusammensetzung und Isomaltulose
JP4807563B2 (ja) 2005-12-06 2011-11-02 株式会社 伊藤園 容器詰め飲料及びその製造方法
ES2280141B1 (es) * 2006-02-27 2008-10-01 Natraceutical, S.A. "proceso para la obtencion de polvo de cacao rico en polifenoles y bajo contenido en materia grasa y polvo de cacao obtenido".
EP1989943B1 (de) 2006-03-02 2011-06-01 Kao Corporation Verfahren zur herstellung von gereinigtem teeextrakt
EP2064352B1 (de) * 2006-09-19 2019-12-04 The Product Makers (Australia) Pty Ltd Aus zuckerrohr gewonnene extrakte und verfahren zu ihrer herstellung
US8465782B2 (en) 2006-09-21 2013-06-18 Immune Guard, LLC Methods and materials for reducing risk of cold and/or flu
US8518458B2 (en) 2006-09-21 2013-08-27 Immune Guard, LLC Tea-derived compositions and methods of using same for cardiovascular health
CN101134941B (zh) * 2007-07-27 2013-03-06 东华大学 米曲霉高效制备egcg水解酶及生产egc和没食子酸的方法
JP4866815B2 (ja) * 2007-09-05 2012-02-01 花王株式会社 精製緑茶抽出物の製造法
CN101492440B (zh) * 2008-01-24 2012-10-03 上海新康制药厂 茶多酚中主要儿茶素成分分离纯化方法及其糖苷酶活性
US8260144B2 (en) * 2008-03-12 2012-09-04 Hypres Inc. Digital radio frequency tranceiver system and method
JP5307649B2 (ja) * 2009-02-20 2013-10-02 花王株式会社 精製茶抽出物の製造方法
TR200907338A1 (tr) * 2009-09-28 2011-04-21 Yedi̇tepe Üni̇versi̇tesi̇ Doğal bileşenler içeren bir film şeridi.
CN101703130B (zh) * 2009-12-03 2012-05-02 应维强 绿茶提取物的生产工艺
CN102558129B (zh) * 2010-12-15 2015-02-18 奥加诺株式会社 没食子酸酯型儿茶素的提纯方法以及提纯装置
JP5858697B2 (ja) * 2010-12-15 2016-02-10 オルガノ株式会社 ガレート型カテキンの精製方法及び精製装置
WO2012106761A1 (en) 2011-02-08 2012-08-16 Horizon Science Pty Ltd Sugar extracts
FR2973249B1 (fr) 2011-03-28 2014-02-07 Centre Nat Rech Scient Utilisation de l'epigallocatechine gallate comme agent antiviral contre les infections par le virus de l'hepatite c
JP2012217356A (ja) * 2011-04-05 2012-11-12 Coca-Cola Co 容器詰飲料
CN102276570B (zh) * 2011-06-23 2013-10-16 辽宁科技大学 一种提纯表没食子儿茶素没食子酸酯(egcg)的方法
CN102432577B (zh) * 2011-11-10 2013-03-20 湖南农业大学 表儿茶素没食子酸酯(ecg)单体的分离纯化方法
CN102603699A (zh) * 2012-02-29 2012-07-25 桂林三宝药业有限公司 从油茶饼中提取表没食子儿茶素没食子酸酯的方法
SG11201501044RA (en) 2012-08-28 2015-05-28 Product Makers Australia Pty Ltd Extraction method
CN104273521B (zh) * 2013-07-03 2016-08-24 江南大学 一种基于糖基化酪蛋白的茶多酚纳米胶囊及其制备方法
CN105451728A (zh) 2013-08-09 2016-03-30 三得利控股株式会社 羟基酪醇及其衍生物的体内吸收促进剂及其利用
US10350259B2 (en) 2013-08-16 2019-07-16 The Product Makers (Australia) Pty Ltd Sugar cane derived extracts and methods of treatment
CN103613575B (zh) * 2013-11-29 2016-05-25 桂林莱茵生物科技股份有限公司 一种高含量egcg的提纯方法
CN103772339B (zh) * 2014-01-01 2016-01-13 恩施职业技术学院 一种从茶叶下脚料中提取表没食子儿茶素没食子酸酯的方法
CN103910705B (zh) * 2014-03-20 2015-10-28 苏州市职业大学 从绿茶的下脚料中快速提取分离纯化表没食子儿茶素没食子酸酯的方法
CN104016958B (zh) * 2014-05-14 2016-01-20 芜湖天远科技开发有限责任公司 一种高纯度表没食子儿茶素没食子酸酯的制备方法
CN104311522B (zh) * 2014-09-09 2016-08-24 湖南农业大学 一种从茶叶中分离制备egcg的方法
CN104447668A (zh) * 2014-12-12 2015-03-25 中国医科大学 一种用氢键型大孔树脂制备高纯度egcg的方法
CN104820059B (zh) * 2015-04-22 2016-07-06 湖南农业大学 一种快速筛选含有EGCG3"Me茶树资源的方法
US11318110B2 (en) 2015-08-28 2022-05-03 Caliway Biopharmaceuticals Co., Ltd. Pharmaceutical composition for reducing local fat and uses thereof
SG11201801111RA (en) * 2015-08-28 2018-03-28 Caliway Biopharmaceuticals Co Ltd Pharmaceutical composition used for reducing localised fat and use of pharmaceutical composition
CN106168608A (zh) * 2016-08-25 2016-11-30 江苏天晟药业股份有限公司 一种茶多酚中egcg含量的检测方法
EP3560346B1 (de) 2016-12-21 2021-09-22 Suntory Holdings Limited Nahrungsmittel und getränke mit epigallocatechingallat und cyclo(prolyl-threonin)
KR102428987B1 (ko) * 2017-05-16 2022-08-04 (주)아모레퍼시픽 차나무의 추출물을 함유하는 조성물
CN107897427A (zh) * 2017-10-31 2018-04-13 中华全国供销合作总社杭州茶叶研究所 一种茶叶多产物同步模块化分离的方法
CN111601794A (zh) 2017-12-05 2020-08-28 克里斯托莫菲克斯技术私人有限公司 从绿茶提取物或绿茶粉中分离没食子酸化的表儿茶素(egcg和ecg)的方法
CN115850228A (zh) * 2018-11-21 2023-03-28 云南农业大学 Egcg晶型i的制备方法
CN110663788A (zh) * 2019-10-06 2020-01-10 杏辉天力(杭州)药业有限公司 一种茶叶提取物及其工业化制备方法和用途

Family Cites Families (34)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5721975B2 (de) 1975-03-10 1982-05-11
JPS6013780A (ja) * 1983-07-05 1985-01-24 Mitsui Norin Kk 茶カテキン類の製造方法
EP0167399A3 (de) 1984-07-06 1987-08-26 General Foods Corporation Entkoffeinierung von fermentiertem nichtgetrocknetem Tee
JPS6261569A (ja) 1985-09-12 1987-03-18 Morinaga & Co Ltd 無色又は淡い色をした飲料の製造法
JPS63214183A (ja) * 1987-03-03 1988-09-06 Mitsui Norin Kk アンジオテンシン1変換酵素阻害剤
US4806379A (en) 1987-06-05 1989-02-21 General Foods Corporation Process for producing a green leaf essence
US5043100A (en) 1987-07-23 1991-08-27 Rutgers, The State University Of New Jersey Process for manufacture of natural antioxidant products from tea and spent tea
JPH02311474A (ja) * 1989-05-29 1990-12-27 Itouen:Kk 茶カテキン類の製造方法
JP2727471B2 (ja) * 1989-09-14 1998-03-11 三井農林株式会社 インフルエンザウィルス感染予防剤
US5021253A (en) 1989-12-13 1991-06-04 The Dow Chemical Company Decaffeination of liquid medium
JPH0725670B2 (ja) 1990-07-18 1995-03-22 株式会社ロッテ 抗歯周病剤
CN1067359A (zh) 1991-06-01 1992-12-30 中国医学科学院药物研究所 绿茶茶素的生产方法
JP3002919B2 (ja) * 1991-11-25 2000-01-24 太陽化学株式会社 胃炎,胃または十二指腸潰瘍防止組成物
EP0547370B1 (de) 1991-12-19 1996-08-07 Societe Des Produits Nestle S.A. Antioxidantienherstellung
JP3052172B2 (ja) 1992-04-07 2000-06-12 株式会社 伊藤園 茶カテキン類の製造方法
US5391568A (en) * 1992-07-10 1995-02-21 American Health Foundation Inhibition of lung tumorigenesis by administration of a polyphenol
US5306486A (en) * 1993-03-01 1994-04-26 Elizabeth Arden Co., Division Of Conopco, Inc. Cosmetic sunscreen composition containing green tea and a sunscreen
JP3052174B2 (ja) * 1993-08-26 2000-06-12 株式会社 伊藤園 茶カテキン類の製造方法
CA2128293C (en) * 1993-12-06 2002-09-03 Masayuki Tanabe Fruit polyphenols and medicinal compositions containing them
IT1275905B1 (it) 1995-03-14 1997-10-24 Indena Spa Frazioni polifenoliche di te', loro uso e formulazioni che le contengono
US6063428A (en) * 1996-02-26 2000-05-16 The Procter & Gamble Company Green tea extract subjected to cation exchange treatment and nanofiltration to improve clarity and color
JPH09227374A (ja) * 1996-02-28 1997-09-02 Taiyo Kagaku Co Ltd ストレスタンパク質産生抑制組成物
US5804567A (en) 1996-07-18 1998-09-08 Cancer Institute (Hospital), Chinese Academy Of Medical Sciences Method of increasing the effectiveness of anti-metabolites
JPH1067771A (ja) 1996-08-26 1998-03-10 Nippon Youriyokuso Kk カフェイン低含有のカテキン類の製造方法
US5968973A (en) * 1996-11-18 1999-10-19 Cancer Institute (Hospital), Chinese Academy Of Medical Sciences Method for treating hyperplasia
US6210679B1 (en) 1999-01-07 2001-04-03 Hauser, Inc. Method for isolation of caffeine-free catechins from green tea
US6576275B1 (en) * 1999-02-02 2003-06-10 Archer-Daniels-Midland Company Process for extracting polyphenolic antioxidants from purine-containing plants
US6410052B1 (en) * 1999-03-30 2002-06-25 Purdue Research Foundation Tea catechins in sustained release formulations as cancer specific proliferation inhibitors
US6428818B1 (en) * 1999-03-30 2002-08-06 Purdue Research Foundation Tea catechin formulations and processes for making same
EP1077211B1 (de) * 1999-08-16 2006-11-22 DSM IP Assets B.V. Verfahren zu Herstellung von Epigallocatechin Gallate
KR100379323B1 (ko) 2000-02-29 2003-04-08 삼아약품 주식회사 카테킨을 포함하는 관상동맥 재협착 예방 및 치료용 약학조성물
US6254898B1 (en) 2000-05-25 2001-07-03 Protective Factors, Inc. Nutraceutical composition for protection against solar radiation
US6713096B2 (en) * 2002-01-04 2004-03-30 Melaleuca, Inc. Dietary supplements and methods for treating pain and inflammation
US7122573B2 (en) * 2002-12-06 2006-10-17 Sri International Analogs of green tea polyphenols as chemotherapeutic and chemopreventive agents

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BE1026780B1 (de) * 2019-12-16 2021-02-26 Tea Res Institute Chinese Academy Of Agricultural Sciences Verfahren zur chargenweisen Abscheidung und Reinigung eines Polyester-Catechins mittels Gelchromatographie

Also Published As

Publication number Publication date
CA2315886A1 (en) 2001-02-16
CA2315886C (en) 2010-05-25
CN1166661C (zh) 2004-09-15
US7312199B2 (en) 2007-12-25
KR20010050080A (ko) 2001-06-15
KR100847171B1 (ko) 2008-07-17
IN190860B (de) 2003-08-30
ATE346059T1 (de) 2006-12-15
BR0003578A (pt) 2002-06-18
DE60031921D1 (de) 2007-01-04
BR0003578B1 (pt) 2014-04-08
KR20080059115A (ko) 2008-06-26
EP1767097A3 (de) 2007-04-04
BRPI0003578B8 (pt) 2016-05-10
JP4643808B2 (ja) 2011-03-02
EP1767097A2 (de) 2007-03-28
ES2275463T3 (es) 2007-06-16
EP1077211A2 (de) 2001-02-21
US20030083270A1 (en) 2003-05-01
JP2001097968A (ja) 2001-04-10
US20060069046A1 (en) 2006-03-30
CN1286252A (zh) 2001-03-07
EP1077211A3 (de) 2001-03-28
BRPI0003578C1 (pt) 2021-05-25
EP1077211B1 (de) 2006-11-22
US7012149B2 (en) 2006-03-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE60031921T2 (de) Verfahren zu Herstellung von Epigallocatechin Gallate
DE60030276T2 (de) Verfahren zur reinigung von proanthocyanidin-oligomeren
EP0610742B1 (de) Verfahren zur Gewinnung von Tocopherolen und Sterolen aus natürlichen Quellen
DE60002952T2 (de) Verfahren zur selektiven Abtrennung und Reinigung von Eicosapentaensäure und Decosohexaensäure und deren Estern
DE2639066C2 (de)
JP2800040B2 (ja) いちょうの新規抽出物およびその製法
DE2719912B2 (de) Verfahren zur Isolierung von 0- |4,6-Dideoxy-4- [JJl S-(l,4,6/5)-4,5,6-trihydroxy-3-hydroxymethyl-2cyclohexen-l-ylj -amino] - a -D-glucopyranosyl) -(I Pfeil nach rechts 4M>- a D-glucopyranosyHl Pfeil nach rechts 4)-D-glucopyranose aus Kulturbriihen
EP0402925B1 (de) Verfahren zur Gewinnung von Ginkgoliden aus Ginkgoblättern und ihre Reinigung
EP0692257A1 (de) Verfahren zur Herstellung von pestizidarmen Wirkstoffkonzentraten aus Pflanzen
DE69928131T2 (de) Verfahren zur extraktion organischer salze aus pflanzen, das salz und ähnliche salze
DE3806372C2 (de)
DE60204078T2 (de) Konzentrat von Triterpenen
JPH02311474A (ja) 茶カテキン類の製造方法
KR100690928B1 (ko) 에피갈로카테킨 갈레이트의 분리정제방법
KR100418605B1 (ko) 녹차 추출물 유래의 고순도 EGCg 분리 방법
EP3097788A1 (de) Verfahren zur gewinnung von lactoferrin aus milch
DE60214142T2 (de) Flavonoidverbindung und herstellungsverfahren dafür
EP4000422A1 (de) Anthocyanhaltiges extraktpulver und verfahren zur herstellung
DE4318235A1 (de) Verfahren zur Herstellung von hochreinen Deferoxamin-Salzen
KR0134641B1 (ko) 4-히드록시-5-메틸-3[2h]-퓨라논의 제조방법
DE953643C (de) Verfahren zur Abtrennung und Gewinnung von Vitamin B aus einem Verunreinigungen enthaltenden Vitamin-B-aktiven Konzentrat
RU1779379C (ru) Способ получени препарата желчегонного действи
DE961565C (de) Verfahren zur Gewinnung von Vitamin B
DE1026484B (de) Verfahren zur Gewinnung von Bacitracin
DEM0014406MA (de)

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition