CZ249596A3 - Amplification method of nucleic acids - Google Patents

Amplification method of nucleic acids Download PDF

Info

Publication number
CZ249596A3
CZ249596A3 CZ962495A CZ249596A CZ249596A3 CZ 249596 A3 CZ249596 A3 CZ 249596A3 CZ 962495 A CZ962495 A CZ 962495A CZ 249596 A CZ249596 A CZ 249596A CZ 249596 A3 CZ249596 A3 CZ 249596A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
enzyme
thermostable
reaction
amplification
dna polymerase
Prior art date
Application number
CZ962495A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ289237B6 (cs
Inventor
David Edward Birch
Walter Joseph Laird
Michael Anthony Drive Zoccoli
Original Assignee
Hoffmann La Roche
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hoffmann La Roche filed Critical Hoffmann La Roche
Publication of CZ249596A3 publication Critical patent/CZ249596A3/cs
Publication of CZ289237B6 publication Critical patent/CZ289237B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/99Enzyme inactivation by chemical treatment
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/12Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)
    • C12N9/1241Nucleotidyltransferases (2.7.7)
    • C12N9/1252DNA-directed DNA polymerase (2.7.7.7), i.e. DNA replicase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/88Lyases (4.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/6848Nucleic acid amplification reactions characterised by the means for preventing contamination or increasing the specificity or sensitivity of an amplification reaction
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686Polymerase chain reaction [PCR]
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/81Packaged device or kit

Description

Oblast techniky
Předložený vynález se týká oblasti chemie nukleových kyselin. Specifičtěji se týká způsobů amplifikace sekvencí nukleové kyseliny a způsobů redukce nespecifické amplifikace.
Dosavadní stav techniky
Proces polymerasové řetězové reakce (PCR) pro amplifikaci sekvencí nukleové kyseliny je dobře nám v oboru a je popsán v US patentech č. 4683202, 4683195 a 4965188. Komerční prodejci jako je Perkin Elmer, Norwalk, CT, prodávají PCR činidla a publikují PCR protokoly.
V každém cyklu PCR amplifikace je dvojřetězcová cílová sekvence denaturována, ke každému řetězci denaturovaného cíle jsou tepelně hybridizovány primery a primery jsou prodlouženy působením DNA polymerasy. Specifičnost amplifikace závisí na specifitě primerové hybridizace. Primery jsou vybrány tak, aby byly komplementární k nebo v podstatě komplementární k sekvencím, vyskytujícím se na 3' konci každého řetězce cílové nukleokyselinové sekvence. Za zvýšených teplot používaných typicky v PCR hybridizují primery pouze k zamýšlené cílové sekvenci. Avšak amplifikace reakčních směsí jsou typicky prováděny při teplotě místnosti, tedy pod teplotou potřebnou k zajištění specifičnosti primerové hybridizace. Za takových méně přísných podmínek, se primery mohou vázat nespecificky k jiné pouze parciálně komplementární nukleokyselinové sekvenci (nebo i k jiným primerům) a iniciovat syntézu nežádoucích prodloužených produktů, které mohou být amplifikovány spolu s cílovou sekvencí. Amplifikace nespecifických příměrových prodloužených produktů může soutěžit s amplifikaci požadovaných cílových sekvencí a může významně snižovat účinnost amplifikace požadované sekvence. Problémy vyvolané nespecifickou amplifikaci jsou dále diskutovány v Chou a spol., 1992, Nucleic Acids Research 29 (7):1717 -1723.
Nespecifická amplifikace muže být redukována redukcí tvorby prodloužených produktů z primerů navázaných k necílovým sekvencím před startem reakce. V jedné metodě označené jako horký-start protokol (hot-start) se jedno nebo více podstatných činidel neuvádí do reakční směsi, dokud teplota není dostatečně vysoká pro poskytnutí nezbytné hybridizační specifity. Tímto způsobem nemůže reakční směs podporovat primerové prodloužení během doby, kdy reakční podmínky nezaručují specifickou primerovou hybridizaci.
Metody horkého startu mohou být prováděny ručně při otevření reakční zkumavky po počátečním vysokoteplotním inkubačním stupni a přidáním chybějících činidel. Nicméně jsou ruční metody s horkým startem pracovně náročné a zvyšují riziko kontaminace reakční směsi. Metody s horkým startem, které používají tepelně labilní materiál jako je vosk pro oddělení nebo zachycení reakčních složek jsou popsány v US patentu č. 5411876 a Chou a spol., 1992, supra. V těchto metodách taví vysokoteplotní předreakční inkubace tepelně labilní materiál čímž umožňuje, aby se činidla promísila.
Další metoda redukce tvorby prodloužených produktů z primerů navázaných k necílovým sekvencím před začátkem reakce zmírňuje inhibic DNA polymerasy za použití sloučeniny, která se nekovalentně váže k DNA polymerase tepelně reverzibilním způsobem. US patent č. 5338671 popisuje použití protilátek specifických pro termostabilní DNA polymerasu pro inhibici DNA polymerasové aktivity. Protilátky musí být inkubovány s DNA polymerasou v pufru při teplotě místnosti pro sestavení reakční směsi za účelem umožnění tvorby komplexu protilátkaDNA polymerasa. Protilátková inhibice DNA polymerasové aktivity je inaktivována vysokoteplotní předreakČní inkubací. Nevýhodou této metody je, že produkce protilátek specifických k DNA polymerase je nákladná a časově náročná, zejména ve velkých množstvích. Navíc přídavek protilátek k reakční směsi může vyžadovat přepracování amplifikační reakce.
Tvorba prodloužených produktů může být také inhibována přídavkem sloučeniny, která se nekovalentně váže k primerúm tepelně reverzibilním způsobem, čímž brání primerúm před hybridizací k jakékoliv sekvenci, cílové nebo jiné. Například jednořetězcový vazebný protein přidaný k reakční směsi bude vázat primery a tím bránit primerové hybridizaci a inhibici příměrového prodloužení. Zlepšení výtěžku PCR produktů za použití genového 32 proteinu jsou popsána Schwarzem a spol., 1990, Nucleic Acids Research 18(4):10.
Nespecifická amplifikace může být redukována degradací prodloužených produktů vytvořených z primerů navázaných k necílovým sekvencím před startem reakce, jako je použití metod popsaných v US patentu č. 5418149 a ve WO 92/01814. Degradace nově syntetizovaných prodloužených produktů se dosáhne inkorporací dUTP a UNG do reakční směsi a inkubací reakční směsi při 45 až 60 °C pro provedení amplifikační reakce. Nevýhodou této metody je, že degradace prodlouženého produktu soutěží se tvorbou prodlouženého produktu a eliminace nespecifického příměrového prodlouženého produktu je pravděpodobně méně úplná.
Běžné techniky molekulární biologie, proteinové chemie a nukleokyselinové chemie, které jsou známé odborníkům v oboru, jsou plně vysvětleny v literatuře. Viz např. Molecular
Cloning -A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory,
Cold Spring Harbor, New York (Sambrook a spol., 1989); Oligonucleotide Synthesis (M.J.Gait, vyd., 1984); Nucleic Acid Habridization (B.D.Hames a S.J.Higgins vyd. 1984) ; Chemical Reagents for Protein Modification (CRC Press) a serie Methods in Enzymology (Academie Press, lne.). Všechny patenty, patentové přihlášky a publikace zde uváděné, jak dříve tak dále, jsou zde zahrnuty jako odkaz.
Podstata vynálezu
Předložený vynález poskytuje způsoby a činidla pro amplifikaci nukleové kyseliny za použití amplifikační reakce na bázi primerů jak jsou specifikovány v připojených nárocích. Tyto metody a činidla poskytují jednoduché a ekonomické řešení problému nespecifické amplifikace. Metody používají reverzibilně inaktivovaný tepelně stabilní enzym, který může být reaktivován inkubací v aplifikační reakční směsi při zvýšené teplotě. Nespecifická amplifikace je většinou redukována, protože reakční směs neposkytuje podporu primerového prodloužení dokud teplota reakční směsi nebyla zvýšena na teplotu, která umožňuje primerovou hybridizační specifičnost.
Jeden aspekt předloženého vynálezu se týká reverzibilně inaktivovaných tepelně stabilních enzymů, které jsou produkovány reakcí mezi termostabilním enzymem, který katalyzuje primerovou prodlužovací reakci a modifikačním činidlem. Reakce vede k významné, výhodně v podstatě kompletní redukci enzymové aktivity. Inkubace modifikovaného enzymu ve vodném pufru při alkalickém pH při teplotě, která je menší než asi 25 °C nevede v podstatě ke zvýšení enzymové aktivity za méně než asi 20 minut. Inkubace modifikovaného enzymu ve vodném pufru, upraveném na pH 8-9 při 25 °C, při teplotě vyšší než asi 50 °C poskytne alespoň dvojnásobné zvýšení v aktivitě příměrového prodloužení za méně než asi 20 minut. Reverzibilně inaktivované termostabilní enzymy podle vynálezu, ve svém aktivním stavu, buď katalýzují primerové prodloužení nebo jsou nezbytné pro to, aby došlo k příměrovému prodloužení. Preferované enzymy zahrnují termostabilní DNA polymerasy a ligasy.
Preferovaná modifikovaná činidla jsou anhydridy dikarboxylových kyselin obecného vzorce
kde Rj_ a R2 jsou vodík nebo organické radikály, které mohou být spojeny, nebo obecného vzorce
kde Ri a R2 jsou organické radikály, které mohou být spojeny a vodíky jsou cis. Organický radikál může být přímo připojen ke kruhu vazbou uhlík-uhlík nebo přes vazbu uhlík-heteroatom, jako je vazba uhlík-kyslík, uhlík-dusík nebo uhlík-síra. Organické radikály mohou být také vzájemně spojeny za vzniku kruhové struktury jako je například v 3,4,5,6tetrahydroftalanhydridu.
Preferovaná činidla zahrnují maleinanhydrid; substituované maleinanhydridy jako je citrakonový anhydrid, cis-akonitový anhydrid a 2,3-dimethylmaleinanhydrid; anhydrid kyseliny exo-cis-3,6-endoxo-A4-tetrahydroftalové; a 3,4,5,6tetrahydroftalanhydrid. Zejména jsou preferovány anhydrid kyseliny citrakonové a anhydrid kyseliny cis-akonitové pro přípravu reverzibilně inaktivovaných DNA polymeras pro použití v PCR amplifikacích.
Jiný aspekt předloženého vynálezu se týká metod pro provedení reakcí amplifikace nukleová kyseliny za použití reverzibilně inaktivovaného terraostabilního enzymu podle předloženého vynálezu. Předložený vynález poskytuje metody amplifikace cílové nukleová kyseliny obsažené ve vzorku, zahrnující stupně:
(a) kontaktu vzorku s amplifikační reakční směsí, obsahující primer komplementární k cílové nukleová kyselině a modifikovaný termostabilní enzym, kde modifikovaný termostabilní enzym je produkován reakcí směsi termostabilního enzymu, který katalyzuje primerovou prodlužovací reakci a modifikačního činidla, přičemž se reakce provádí v alkalickém pH při teplotě, která je menší než asi 25 °C, přičemž reakce vede k chemické modifikaci enzymu, která vede v podstatě k úplné inaktivaci enzymové aktivity a přičemž inkubace modifikovaného enzymu ve vodném pufru upraveném na pH 8-9 při 25 °C, při teplotě vyšší než asi 50 °C vede k alespoň dvjnásobnému zvýšení enzymové aktivity během méně než 20 minut a (b) inkubace výsledné směsi ze stupně (a) při teplotě, která je větší než asi 50 °C po dobu dostačující k reaktivaci enzymu a vytvoření produktu příměrového prodloužení.
Preferovanou metodou podle vynálezu je metoda amplifikace cílové nukleové kyseliny obsažené ve vzorku, zahrnuj ící:
(a) kontakt vzorku s amplifikační reakční směsí, obsahující primer komplementární k cílové nukleové kyselině a modifikovaný termostabilní enzym, kde modifikovaný termostabilní enzym je produkován reakcí směsi termostabilního enzymu anhydridu dikarboxylové kyseliny obecného vzorce
kde R-£ a R2 jsou vodík nebo organické radikály, které mohou být spojeny, nebo obecného vzorce
kde R^ a R2 jsou organické radikály, které mohou být spojeny a vodíky jsou cis, přičemž reakce poskytuje v podstatě kompletní inaktivaci enzymové aktivity a
(b) inkubaci výsledné směsi ze stupně (a) při teplotě, která je větší než asi 50 °C po dobu dostačující k reaktivaci enzymu a vytvoření produktů příměrového prodloužení.
Preferovaná provedení metod používají reverzibilně modifikované enzymy modifikované použitím preferovaných modifikačních činidel. V některých provedeních vynálezu se inkubační stupeň, stupeň (b) provádí před startem amplifikační reakce. V jiných provedeních je inkubace, která vede k reaktivaci enzymu, integrálním stupněm v amplifikačním procesu. Například denaturační stupeň prováděný v každém PCR cyklu může současně působit reaktivaci modifikované DNA polymerasy.
V preferovaném provedení vynálezu je amplifikační reakcí polymerasová řetězová reakce (PCR) a používá se reverzibilně inaktivovaná termostabilní DNA polymerasa. Reakční směs se inkubuje před provedením amplifikační reakce při teplotě, která je vyšší než teplota teplotní hybridizace amplifikační reakce. DNA polymerasa je tak inaktivována dokud je teplota nad teplotou, která umožňuje specifitu amplifikační reakce, čímž snižuje nespecifickou amplifikaci.
Jiný aspekt vynálezu se týká amplifikačních reakčních směsí, které obsahují reverzibilně inaktivovaný termostabilní enzym podle předloženého vynálezu spolu s činidly pro provedení amplifikační reakce. V preferovaném provedení obsahuje amplifikační reakční směs oligonukleotidové primery pro provedení PCR.
Další aspekt vynálezu se týká kitú, které obsahují reverzibilně inaktivovaný termostabilní enzym podle vynálezu a jedno nebo více amplifikačních činidel.
Popis obrázků na připojených výkresech
Obr. 1 představuje vzorce anhydridu kyseliny citrakonové, anhydridu kyseliny cis-akonitové a anhydridu kyseliny 2,3dimethylmaleinové a reakci mezi anhydridem kyseliny citrakonové a lysinem.
Obr. 2 představuje výsledky apmlifikací provedených za použití citrakonylatované Taq DNA polymerasy jak je popsáno v příkladu 4
Obr. 3 představuje výsledky amplifikací provedených za použití citrakonylatovaných DNA polyraeras jak je popsáno v příkladu 6
Obr. 4 představuje výsledky při měnící se době předinkubace v amplifikacích prováděných za použití citrakonylatovaných a cis-akonitylatovaných DNA polymeras jak jsou popsány v příkladu 9
Obr. 5 představuje výsledky při měnících se počtech amplifikačních cyklů v amplifikacích prováděných za použití citrakonylatovaných a cis-akonitylatovaných DNA polymeras jak jsou popsány v příkladu 10.
Pro výklad vynálezu jsou dále definovány některé výrazy.
Výrazy nukleová kyselina a oligonukleotid označují primery, sondy a oligomerní fragmenty, které jsou detegovány a měly by to genericky být polydeoxyribonukleotidy (obsahující 2-deoxy-D-ribosu), polyribonukleotidy (obsahující D-ribosu) a mnoho jiných typů polynukleotidú, které jsou Nglykosidy purinové nebo pyrimidinové báze, nebo modifikované purinové nebo pyrimidinové báze. Není zde rozdíl v délce mezi výrazy nukleová kyselina a oligonukleotid a tyto výrazy budou používány zaměnitelně. Tyto výrazy se týkají pouze primární struktury molekuly. Tyto výrazy tak zahrnují dvoj- a jednořetězcové DNA jakož i dvoj- a jednořetězcové RNA.
Oligonukleotidy mohou být připraveny jakoukoliv vhodnou metodou. Přehled metod syntézy je uveden v práci Goodchilda, 1990, Bioconjugate Chemistry 1(3): 165-137.
Výraz hybridizace označuje tvorbu dvoušroubovicové struktury ze dvou jednořetězcových nukleových kyselin způsobenou párováním komplementárních bází. Hybridizace se může objevit mezi plně komplementárními nukleokyselínovými řetězci nebo mezi v podstatě komplementárními nukleokyselínovými řetězci, které obsahují malé regiony chybného párování. Podmínky, za kterých budou hybridizovat pouze plně ěkomplementární nukleokyselinové řetězce jsou označovány jako přísné hybridizačni podmínky nebo sekvenčně-specifické hybridizační podmínky. Stabilní dvušroubovice v podstatě komplementárních sekvencí mohou být dosaženy za méně přísných hybridizačních podmínek. Odborník v oboru technologie nukleových kyselin může stanovit stabilitu dvoušroubovice empiricky při zvážení mnoha proměnných, zahrnujících například délku a koncentraci bázových párů oligonukleotidů, iontovou sílu a výskyt chybného párování bází, podle návodů známých v oboru (viz např. Sambrook a spol., 1989, supra).
Obecně jsou přísné hybridizační podmínky zvoleny asi 5 °C pod bodem tepelného tání (thermal melting point - Tm) pro specifickou sekvenci při definované iontové síle a pH. Tm je teplota (při definované iontové síle a pH), při které 50 % bázových párů je disociováno. Uvolněním přísnosti hybridizačních podmínek umožní toleranci sekvenčního chybného párování; stupeň tolerovaného chybného párování může být kontrolován úpravou hybridizačních podmínek.
Výraz primer se týká oligonukleotidů, jak přírodního tak syntetického, schopného působit jako počáteční bod DNA syntézy za podmínek, ve kterých je syntéza produktu příměrového prodloužení komplementárního k řetězci nukleové kyseliny vyvolána, tj. za přítomnosti čtyř rozdílných nukleosid trifosfátů a činidla pro polymerizaci (tj. DNA polymerasy nebo reverzní transkriptasy) ve vhodndém pufru a při vhodné teplotě. Oligonukleotidová analogy jako jsou peptidové nukleové kyseliny, mohou působit jako primery a jsou zahrnuty ve výrazu primer jak je zde použit. Primer je výhodně jednořetězcový oligodeoxyribonukleotid. Vhodná délka primeru závisí na zamýšleném použití primeru, ale typicky je v rozmezí od 6 do 50 nukleotidů. Krátké primerové molekuly obecně vyžadují chladničkové teploty pro tvorbu dostatečně stabilních hybridních komplexů s templátem. Primer nemusí odrážet přesnou sekvenci templátu nukleové kyseliny, ale musí být dostatečně komplementární k hybridizaci s templátem.
Výraz primerové prodloužení jak je zde použit , se týká jak syntézy DNA vzniklé z polymerizace jednotlivých nukleosidtrifosfátů za použití primeru jako počátečního bodu a k připojení dalších oligonukleotidů k primeru k prodloužení primeru. Jak je zde použit je výraz primerové prodloužení zamýšlen jako zahrnující ligaci dvou oligonukleotidů za vzniku delšího produktu, který může sloužit jako cíl v budoucích amplifikačních cyklech. Jak je zde použit, je výraz primer míněn jako zahrnující oligonukleotidy použité v ligaci zprostředkovaných amplifikačních procesech, které jsou prodlouženy ligaci druhého oligonukleotidů, který hybridizuje v sousední poloze.
Primery mohou zahrnovat další rysy, které umožňují detekci nebo imobilizaci primeru, ale nemění základní vlastnost primeru, působení jako počáteční bod iniciace DNA syntézy. Například mohou primery obsahovat další nukleokyselinovou sekvenci na 5' konci, která nehybridizuje k cílové nukleové kyselině, ale která usnadňuje klonování amplifikovaného produktu. Region primeru, který je dostatečně komplementární k templátu k hybridizaci, je zde označován jako hybridizující region.
Výraz cílový region a cílová nukleová kyselina se týká regionu nebo subsekvence nukleové kyseliny, který je amplifikován. Místo primerové hybridizace se může označit jako cílový region pro primerovou hybridizaci.
Jak je zde použito, je oligonukleotidový primer specifický pro cílovou sekvenci, je-li počet chybných párování přítomných mezi oligonukleotidem a cílovou sekvencí menší než počet chybných párování přítomných mezi oligonukleotidem a necílovými sekvencemi, které mohou být přítomny ve vzorku. Hybridizační podmínky ymohou být zvoleny tak, že se za nich vytváření stabilní dvoušroubovice pouze není-li počet přítomných chybných párování větší než počet chybných párování přítomných mezi oligonukleotidem a cílovou sekvencí. Za takových podmínek může oligonukleotid tvořit stabilní dvoušroubovici pouze s cílovou sekvencí. Použití cílově specifických primerů za vhodných přísných amplifikačních podmínek umožňuje specifickou amplifikaci těch cílových sekvencí, které obsahují cílová vazebná místa. Použití sekvenčně specifických amplifikačních podmínek umožňuje specifickou amplifikaci těch cílových sekvencí, které obsahují exaktně komplementární primerová vazebná místa.
Výraz nespecifická amplifikace označuje amplifikaci nukleokyselinových sekvencí jiných než cílových sekvencí, které vznikají z hybridizace primerů k sekvencím jiným než je cílová sekvence a pak slouží jako substrát pro primerové prodloužení. Hybridizace primeru k necílové sekvenci je označena jako nespecifická hybridizace a muže se objevovat během nižší teploty, redukovaných přísných předreakčních podmínek.
Výraz termostabilní enzym označuje enzym, který je relativně stabilní k teplu. Termostabilní enzymy mohou odolávat vyšší teplotní inkubaci použité pro odstranění modifikovaných skupin, typicky větší než 50 °C, aniž by byly postiženy nevratnou ztrátou aktivity. Modifikované termostabilní enzymy použitelné v metodách podle předloženého vynálezu zahrnují termostabilní DNA polymerasy a termostabilní ligasy.
Výraz termostabilní DNA polymerasa označuje enzym, který je relativně stabilní k teplu a katalyzuje polymerizaci nukleosid trifosfátů za vzniku produktů příměrového prodloužení, které jsou komplementární k jednomu z nukleokyselínových řetězců cílové sekvence. Enzym iniciuje syntézu na 3' konci primeru a postupuje ve směsu.k 5* konci templátů do ukončení syntézy. Čištěné termostabilní DNA polymerasy jsou popsány v US patentu č. 4889818; US patentu č. 5352600, US patentu č. 5079352; WO 91/09950; WO 92/03556; WO 92/06200; WO 92/06202; US patentu č. 5491086, WO 92/09689 a US patentu č. 5210036.
Enzym získaný z organismu zde označuje enzym, který je čištěn z organismu nebo rekombinantní verzi enzymu, který je čištěn z organismu a zahrnuje enzymy, ve kterých byly aminokyselinové sekvence modifikovány použitím technik molekulární biologie.
Výraz reverzibilně inaktivovaný jaka je zde použit se týká enzymu, který byl inaktivován reakcí se sloučeninou, která vede ke kovalentní modifikaci (označované také jako chemická modifikace) enzymu, kde modifikující sloučenina je odstranitelná za vhodných podmínek. Reakce, která vede k odstranění modifikující sloučeniny nesmí být reverzní modifikační reakce. Pokud je to reakce, která vede k odstranění modifikující sloučeniny a obnovení funkce enzymu, je enzym považován za reverzně inaktivovaný.
Výraz reakční směs označuje roztok, obsahující činidla nezbytná k provedení dané reakce. Amplifikační reakční směs označuje roztok, obsahující nezbytná činidla pro provedení amplifikační reakce, typicky obsahující oligonukleotidové primery a DNA polymerasu nebo ligasu ve vhodném pufru. PCR reakční směs typicky obsahuje oligonukleotidové primery, termostabilní DNA polymerasu, dNTP, a dvojvazný kovový kationt ve vhodném pufru. Reakční směs je označována jako kompletní, jestliže obsahuje všechna činidla nezbytná k provedení reakce a nekompletní, jestliže obsahuje pouze část nezbytných činidel. Odborníkovi v oboru bude zřejmé, že reakční složky jsou rutinně uchovávány jako oddělené roztoky, obsahující každý část všech složek, z důvodů výhodnosti, skladovací stability a pro umožnění nezávislé úpravy koncentracaí složek podle aplikace a dále že se reakční složky spojí před reakcí pro vytvoření kompletní reakční směsi.
Metody podle předloženého vynálezu zahrnují provedení amplifikační reakce za použití reverzibilně inaktivovaného termostabilního enzymu, kde je aktivní enzym vyžadovát pro primerové prodloužení. Před vysokoteplotní inkubací, která aktivuje enzym, amplifikační reakční směs nepodporuje primerové prodloužení a nevznikají žádné prodloužené produkty, nespecifické ani jiné. Po vysokoteplotní inkubaci, která reaktivuje enzym se amplifikační reakce udržuje při zvýšených teplotách, které zajištují reakční spefičnost.
Produkty příměrového prodloužení jsou vytvářeny pouze za podmínek, které zajiščují amplifikační specifitu.
V metodách podle předloženého vynálezu teplem inaktivovaný enzym, ve svém aktivním stavu, katalyzuje reakci primerového prodloužení. Pro použití v typické amplifikační reakci, např. PCR, vykazuje reverzibilně inaktivovaný termostabilní enzym, ve svém aktivním stavu, DNA polymerasovou aktivitu. Pro použití v ligasou zprostředkovaných amplifikačních systémech vykazuje reverzibilně inaktivovaný termostabilní enzym ve svém aktivním stavu aktivitu DNA ligasy.
V ligasou zprostředkovaném amplifikačním systému se vytvoří “produkt prodloužení ligací prvního oligonukleotidů (zahrnut do výrazu primer) ke druhému oligonukleotidů, který hybridizuje přiléhající ke 3' konci prvního oligonukleotidů. Druhý oligonukleotid může hybridizovat bezprostředně přiléhající k priméru a v tomto případě je pouze vyžadována ligace, nebo může hybridizovat jedna nebo více bází vzdálených od priméru a v tomto případě je vyžadována polymerasová akativita pro prodloužení priméru před ligací. V každém případě je zde spojení dvou oligonukleotidů, které hybridizují k přiléhajícím regionům cílové DNA označeno výrazem primerové prodloužení.
Reverzibilně inaktivované termostabilní enzymem podle vynálezu jsou produkovány reakcí mezi enzymem a modifikačním činidlem, která vede k reverzibilní chemické reakci enzymu, která vede k úplné ztrátě nebo téměř úplné, enzymové aktivity. Modifikace zahrnuje kovalentní připojení modifukátorové skupiny k proteinu. Modifikátorová skupina se volí tak, že modifikace je reverzní při inkubaci při zvýšené teplotě v amplifikačním reakčním pufru. Vhodné enzymy a modifikátorové skupiny jsou popsány dále.
Reverzibilně inaktivované enzymy, které vykazují ve svém aktivním stavu DNA polymerasovou aktivitu, se připraví z termostabilních DNA polymeras. Termostabilní DNA polymerasy použitelné v amplifikačních reakcích jsou dobře známé v oboru a mohou být získány z mnoha zdrojů jako jsou termofilní eubakterie nebo archaebakterie ze druků rodu Thermus, Thermotoga, Thermococcus, Pyrodictium, Pyrococcus a Thermosipho. Představiteli rodů, ze kterých byly získány termostabilní DNA polymerasy použitelné v PCR amplifikacích zahrnují Thermus aguaticus, Thermus thermophilus, Thermotoga maritima, Pyrodictium occultum, Pyrodictium abyssi a Thermosipho africanus. Termostabilní DNA polymerasy jsou popsány v US patentu č. 4889318, US patentu č. 5352600, US patentu č. 5079352, WO 91/09950, WO 92/03556, WO 92/06200, WO 92/06202, US patentu č. 5491086, WO 92/09689 a US patentu č. 5210036. Termostabilní DNA polymerasy jsou obchodně dostupné od Perkin Elmer, Norwalk, CT.
Reverzibilně inaktivované termostabilní enzymy vhodné pro použití v jiných amplifikačních postupech, jako jsou ligasou zprostředkované amplifikace, jsou připraveny z termostabilních enzymů popsaných v odkazech citovaných dále, které popisují různé amplifikační metody.
Metody podle předloženého vynálezu nejsou omezeny na použití enzymů uvedených jako příklady. Například jakákoliv termostabilní DNA polymerasa popsaná v literatuře pro použití v amplifikačních reakcích může být modifikována jak je zde popsáno pro vprodukci reverzibilně inaktivovaného enzymu vhodného pro použití v předložených metodách. Obecně může být v předložené metodě použit jakýkoliv enzym, který katalyzuje primerové prodloužení nebo je vyžadován pro k tomu, aby došlo k příměrovému prodloužení a je dostatečně termostabilní, aby odolal vysokoteplotní reaktivační inkubaci aniž by byl nevratně inaktivován a může být modifikován jak je zde popsáno pro produkci reverzibilně inaktivovaného enzymu. Odborník v oboru bude schopen optimalizovat modifikaci reakce a podmínky amplifikační reakce pro jakýkoliv daný enzym na bázi uvedených poznatků.
V preferovaných provedeních vynálezu se reverzibilní inaktivace termostabilního enzymu provádí reverzibilním blokováním lysinových zbytků chemickou modifikací εaminoskupiny lysinových zbytků. Modifikace lysinů v aktivním regionu proteinu vede k inaktivaci proteinu. Dále modifikace lysinů mimo aktivní region může přispívat k inaktivaci proteinu sterickou interakcí nebo konformačními změnami. V literatuře bylo popsáno množství sloučenin, které reagují s aminoskupinami reverzibilním způsobem. Například aminoskupiny byly reverzibilně modifikovány trifluoracetylácí (viz Goldnerg a Anfinsen, 1962, Biochemistry 1:410), amidinací (viz Hunter a Ludwig, 1962, J.Amer.Chem.Soc. 84:3491), maleylací (viz Butler a spol., 1967, Biochem.J. 103:78), acetoacetylací (viz Marzotto a spol., 1967, Biochem.
Biophys.Res.Commun. 26:517 a Marzotto a spol., 1968, Biochim.Biophys.Acta 154:450), tetrafluorsukcinylácí (viz Braunitzer a spol., 1968, Hoppe-Seyler's Z.Physiol.Chem. 349:265) a citrakonylácí (viz Dixon a Perham, 1968,
Biochem.J. 109:312-314; a Habbeb a Atassi, 1970, Biochemistry 9 (25) :4939-4944) .
Preferovaná činidla pro chemickou modifikaci saminoskupiny lysinových zbytků jsou anhydridy dikarboxylových kyselin obecného vzorce kde Rtl a R2 jsou vodík nebo organické radikály, které mohou být spojeny, nebo obecného vzorce kde R]_ a R2 Ísou organické radikály, které mohou být spojeny a vodíky jsou cis. Organický radikál muže být přímo připojen ke kruhu vazbou uhlík-uhlík nebo přes vazbu uhlík-heteroatom, jako je vazba uhlík-kyslík, uhlík-dusík nebo uhlík-síra. Organické radikály mohou být také vzájemně spojeny za vzniku kruhové struktury jako je například v 3,4,5,6tetrahydroftalanhydridu.
Anhydridy dikarboxylových kyselin reagují s aminoskupinami proteinů za získání odpovídajících acylovaných produktů jak je ukázáno pro citrakonový anhydrid na obr. 1. Reverzibilita výše uvedených anhydridů dikarboxylových kyselin se předpokládá být zvýšená přítomností bud dvojné vazby cis-uhlík-uhlík nebo cis vodíky, která udržuje terminální karboxylovou skupinu acylovaného zbytku v prostorové orientaci vhodné pro interakci s amidovou skupinou a následnou deacylaci. Viz Palacian a spol., 1990,
Mol.Cell.Biochem. 97:101-111 pro popisy pravděpodobných mechanismů jak acylačních tak deacylačních reakcí. Jiné substituenty mohou podobně omezovat rotaci kolem vazby 2,3 acylové skupiny v acylovaném produktu a o takových sloučeninách se předpokládá, že budou působit v metodách podle předloženého vynálezu.
Preferovaná činidla zahrnují maleinanhydrid; substituované maleinanhydridy jako je citrakonový anhydrid, cis-akonitový anhydrid a 2,3-dimethylmaleinanhydrid; anhydrid kyseliny exo-cis-3,6-endoxo-Δ4-tetrahydroftalové; a 3,4,5,6tetrahydroftalanhydrid. Činidla jsou obchodně dostupná od např. Aldrich Chemical Co. (Milwaukee, WI), Sigma Chemical Co. (St.Louis, MO) nebo Spectrum Chemical Mfg. Corp.
(Gardena, CA). Modifikace termostabilních DNA polymeras použitím substituovaných maleinanhydridových činidel, citrakonanhydridu a cis-akonitové anhydridu jsou popsána v příkladech.
Relativní stability aminoskupin acylovaných za použití výše uvedených činidel se snižují v následujícím pořadí: maleinanhydrid; anhydrid kyseliny exo-cis-3,6-endoxo-Δ4tetrahydroftalové; 3,4,5,6-tetrahydroftalanhydrid, cisakonitový anhydrid a 2,3-dimethylmaleinanhydrid (viz Palacian a spol-., supra) . Optimální aktivační inkubační podmínky pro enzymy modifikované jednotlivým činidlem jsou stanoveny empiricky jak je popsáno v příkladech.
US patent č. 5262525 popisuje metody pro chemickou modifikaci proteinů, které používají sloučeniny, které jsou anhydridy dikarboxylových kyselin připravené Diels-Alderovou reakcí maleinanhydridu a dienu. Sloučeniny popsané v tomto patentu, které mají zde specifikovanou stabilitu mohou být vhodné v předloženém vynálezu.
Metody podle předloženého vynálezu nejsou omezney na uváděné příklady modifikátorových sloučenin nebo modifikací proteinu chemickou modifikací lysinových zbytku. Jakákoliv ze sloučenin popsaných v literatuře, která reaguje s proteiny za vzniku reverzibilní ztráty veškeré nebo téměř veškeré enzymové aktivity, kde modifikace je reverzibilní při inkubaci při zvýšené teplotě v amplifikačním reakčním pufru, je vhodná pro přípravu reverzibilně inaktivovaného enzymu.
Jak se stávají dostupnými nové sloučeniny, které reverzibilně modifikují protein, budou tyto také vhodné pro použití v předloženém vynálezu. Sloučeniny pro přípravu modifikovaných termostabilních enzymů podle předloženého vynálezu zahrnují sloučeniny, které zabezpečují následující vlastnosti:
(1) reakce s termostabilním enzymem, který katalyzuje primerové prodloužení vede k významné inaktivaci enzymu;
(2) inkubace výsledného modifikovaného enzymu ve vodném pufru při pH kolem 8-9 při teplotě při nebo pod teplotou místnosti (25 °C) nevede k žádnému významnému zvýšení enzymové aktivity za méně než asi 20 minut; a (3) inkubace výsledného modifikovaného termostabilního enzymu v amplifikačním pufru, upraveném na pH asi 8-9 při teplotě místnosti, při zvýšené teplotě větší než asi 50 °C vede k alespoň dvojnásobnému zvýšení enzymové aktivity za méně než asi 20 minut.
Vhodnost určité modifikátorové sloučeniny může být empiricky rutinně stanovena podle zde uvedeného návodu.
Eperimentální postupy pro měření výše uvedených vlastností, stupeň zeslabení enzymové aktivity vzniklá z modifikace proteinu a stupeň obnovení enzymové aktivity po inkubaci při zvýšených teplotách, jsou popsány v příkladech.
Příprava reverzibilně inaktivovaných termostabilních enzymu
Chemická modifikace lysinových zbytků v proteinech je založena na schopnosti ε-aminoskupiny tohoto zbytku reagovat jako nukleofil. Neprotonovaná aminoskupina je reaktivní forma, která je výhodná při alkalickém pH. Modifikační reakce se provádí při pH 8,0 až 9,0 ve vodném pufru při teplotě při nebo teplotě pod teplotou místnosti (25 °C. Reakce je v podstatě kompletní po 12 až 24 hodinách inkubace. Vhodné reakční podmínky jsou v oboru známé a jsou popsány dále v příkladech.
Anhydridy dikarboxylových kyselin reagují snadněji s vodou za vzniku odpovídajících kyselin. Proto velká část činidla je hydrolyzována během modifikace proteinových aminoskupin. Rychlost hydrolýzy stoupá s pH. Zvýšení hydrolýzy, které se objevuje při pH větším než asi 9 může být výsledkem suboptimální acylace proteinu.
Obecně se v acylační reakci použije molární přebytek modifikátorového činidla vzhledem k proteinu. Optimální molární poměr modifikátorového činidla k enzymu závisí na použitém činidle a stanoví se empiricky. Například TaqDNA polymerasa je v podstatě kompletně inaktivována (< 5 % původní aktivity) reakcí se 20-násobkem nebo i vyššího molárního přebytku anhydridu kyseliny citrakonové. Minimální molární poměr modifikátoru, který vede v podstatě ke kompletní inatktivaci enzymu může být stanoven provedením inaktivačních reakcí s postupnými ředěními modifikátorového činidla jak je popsáno v příkladech.
V metodách podle předloženého vynálezu není nezbytné, aby byl enzym plně inaktivován, pouze enzym musí být významně inaktivován. Enzym je významně inaktivován, jestliže aktivita enzymu po reakci s modifikátorem je menší než asi 50 % původní aktivity. Redukce v nespecifické amplifikaci může být dosažena za použití významně inaktivovaného enzymu. Molární poměr modifikátoru k enzymu v reakci může být empiricky zvolen tak, že povede bud k úplné inaktivaci nebo významné inaktivaci enzymu po provedení postupu. Vhodné molární poměry jsou poskytnuty v příkladech. Vhodné reakční podmínky pro inaktivaci enzymů, které nejsou uvedeny příklady, mohou být stanoveny rutinními pokusy podle návodů.
Důležitým aspektem tepelně inaktivovaných enzymů podle předloženého vynálezu je jejich skladovací stabilita. Obecně jsou zde popsané sloučeniny stabilní po prodloužená časová období, což odstraňuje nutnost přípravy bezprostředně před použitím. Například citrakonylátovaná Taq DNA polymerasa byla zjištěna jako zůstávající neaktivovaná alespoň po čtyři týdny, je-li uchovávána při 25 °C. Doporučované podmínky skladování se mění v závislosti na použitém modifikátoru, ale obecně by měl být přípravek inaktivovaného enzymu uchováván při nebo pod teplotou místnosti (25 °C), výhodně v chladničce. Zejména by měly být uchovávány nestabilnější modifikované enzymy, jako jsou ty, které byly modifikovány
2,3-dimethyImaleinanhydr idem.
Způsoby podle předloženého vynálezu zahrnují reakci směsi, obsahující reversibilně inaktivovaný termostabilní enzym a podrobení reakční směsi vysokoteplotní inkubací před nebo jako integrální část amplifikační reakce. Vysokoteplotní inkubace vede k deacylaci aminoskupin a obnovení enzymové aktivity.
Deacylace modifikovaných aminoskupin vzniká jak ze zvýšení teploty tak z průvodního snížení pH. Amplifikační reakce jsou typicky prováděny v Tris-HCl pufru upraveném na pH 8,0 až 9,0 při teplotě místnosti. Při teplotě místnosti upřednostňují alkalické podmínky reakčního pufru acylovanou formu aminoskupiny. Ačkoliv je pH reakčního pufru upraveno na pH 8,0 až 9,0 při teplotě místnosti, snižuje se pH Tris-HCl reakčního pufru se zvyšující se teplotou. pH reakčního pufru se snižuje při zvýšených teplotách, při kterých se provádí amplifikace a, zejména, při kterých se provádí aktivační inkubace. Snížení pH reakčního pufru napomáhá deacylaci aminoskupin.
Změna v pH, ke které dochází za vysoko teplotních reakčních podmínek, závisí na použitém pufru. Teplotní závislost na pH pro různé pufry používané v biologických reakcích je uvedena v práci Gooda a spol., 1966, Biochemistry 5 (2).-467 -477. Pro Tris-pufry změna pKa, tj . pH při středu pufrovacího rozmezí, se týká teploty následovně: ApKa/°C= 0,031. Například Tris-HCl pufr sestavený při 25 °C prochází poklesem v pKa na 2,17, jestliže se zahřeje na 95 °C pro aktivační inkubaci.
Ačkoliv se amplifikační reakce typicky provádějí v TrisHCl pufru, mohou být amplifikační reakce provedeny v pofrech, které vykazují menší nebo větší změnu pH s teplotou. V závislosti na použitém pufru může být žádoucí více nebo méně stabilně modifikovaný enzym. Například použití modifikačního činidla, které vede k méně stabilně modifikovanému enzymu umožňuje obnovení dostatečné enzymové aktivity za menších změn pufrového pH. Empirické porovnání relativních stabilit enzymů modifikovaných různými činidly, jak jsou uvedena výše, naznačuje výběr modifikovaného enzymu vhodného pro použití v konkrétních pufrech.
V metodách podle předloženého vynálezu je dosaženo aktivace modifikovaného enzymu inkubací provedenou při teplotě, která je rovna nebo je vyšší než teplota primerové hybridizace (teplotní hybridizace) použitá v amplifikační reakci pro zajištění amplifikační specifičnosti. Délka inkubace vyžadovaná pro obnovení enzymové aktivity závisí na teplotě a pH reakční směsi a na stabilitě acylovaných aminoskupin enzymu, která závisí na modifikátorových činidlech použitých při přípravě modifikovaného enzymu. Je možno použít široké rozmezí inkubačních podmínek; optimální podmínky se stanoví empiricky pro každou reakci. Obecně se inkubace provádí v amplifikačním reakčním pufru při teplotě větší než asi 50 °C po dobu mezi asi 10 sekundami a asi 20 minutami. Optimalizace inkubačních podmínek pro reaktivaci enzymů není uvedena v příkladech ani nejsou uvedeny příklady reakční směsi, ale je možno tyto stanovit rutinními pokusy podle zde uvedených návodů.
V preferovaném provedení se PCR amplifikace provádí za použití reverzně inaktivované termostabilní DNA polymerasy. Teplota tepelné hybridizace použitá v PCR amplifikaci je typicky asi 55 až 75 °C a předreakční inkubace se provádí při teplotě rovné nebo vyšší než je teplota teplotní hybridizace, výhodně při teplotě vyšší než asi 90 °C. Amplifikační reakční směs se výhodně inkubuje při asi 90 až 100 °C po asi 12 minut pro reaktivaci DNA polymerasy před teplotní cyklizací. Vhodné před reakční inkubační podmínky pro typické PCR amplifikace jsou popsány v příkladech spolu s vlivem měnících se před reakčních inkubačních podmínek na amplifikaci.
První stupeň v typické PCR amplifikaci zahrnuje tepelnou denaturaci dvouřetězcové cílové nukleové kyseliny. Přesné podmínky vyžadované pro denaturaci vzorku nukleové kyseliny závisí na dálce a složení vzorku nukleové kysliny. Typicky je inkubace při 90 až 100 °C po asi 10 sekund až asi 4 minuty účinná pro úplnou denaturaci vzorku nukleové kyseliny.
Počáteční denaturační stupeň může sloužit jako před reakční inkubace k reaktivaci DNA polymerasy. Nicméně v závislosti na dílce a teplotě počárečního denaturačního stupně a modifikátoru použitém pro inaktivaci DNA polymerasy, obnovení DNA polymerasové aktivity může být kompletní. Je-li požadováno maximální obnovení enzymové aktivity může být před reakční inkubace prodloužena nebo alternativně může být zvýšen počet amplifikačních cyklů.
V preferovaném provedení vynálezu jsou modifikovaný enzym a počáteční denaturační podmínky zvoleny tak, že pouze frakce obnovitelné enzymové aktivity je obnovena během počátečního inkubačního stupně. Následné cykly PCR, který každý zahrnuje vysokoteplotní denaturační stupeň, vedou k dalšímu obnovení enzymové aktivity. Aktivace enzymové aktivity je tak opožděna proti počátečnímu cyklování amplifikace. Toto časové uvolňování DNA polymerasové aktivity bylo pozorováno k dalšímu snížení nespecifické amplifikace. Je známo, že přebytek DNA polymerasy se podílí na nespecifické amplifikaci. V předložených metodách je přítomné množství DNA polymerasové aktivity nízké během počátečních stupňů amplifikace, je-li počet cílových sekvencí nízký, což redukuje množství vytvořených nespecifických prodloužených produktů. Maximální DNA polymerasové aktivita je přítomna během posledních stupňů amplifikace, kdy je počet cílových sekvencí vysoký a kdy jsou možné vysoké amplifikační výtěžky. Je-li to nezbytné může být počet amplifikačních cyklů zvýšen pro kompenzaci nižšího množství DNA polymerasové aktivity přítomné v počátečních cyklech. Vliv měnících se počtů amplifikačních cyklů na amplifikaci je uveden v příkladech.
Výhoda metod podle předloženého vynálezu je v tom, že metody nevyžadují žádnou manipulaci reakční směsi po počáteční přípravě reakční směsi. Metody jsou ideální pro použití v automatizovaných amplifikačních systémech a v in šitu amplifikačních metodách, kde přídavek činidel po počátečním denaturačním stupni nebo použití voskových barier je nevýhodné nebo nepraktické.
Metody podle předloženého vynálezu jsou zvláště vhodné pro redukci nespecifické amplifikace v PCR. Nicméně vynález není omezen na jakýkoliv určitý amplifikační systém. Reverzibilně inaktivované enzymy podle předloženého vynálezu mohou být použity v jakémkoliv amplifikačním systému na bázi primerů, který používá termostabilní enzymy a zmírňuje reakční teplotu pro dosažení amplifikační specifičnosti. Předložené metody mohou být aplikovány na isotermální amplifikační systémy, které používají termostabilní enzymy. Pouze přechodná inkubace při zvýšené teplotě je vyžadována pro obnovení enzymové aktivity. Po té, co se reakční směs podrobí vysokoteplotní inkubaci za účelem obnovení enzymové aktivity, provádí se reakce při vhodné reakční teplotě.
Jiné amplifikační metody navíc k PCR (US patenty č. 4683195; 4683202 a 4965188) zahrnují, ale nejsou tak omezeny, následující: Ligase Chain Reaction (LCR, Wu a Wallace, 1989, Genomics 4:560-569 a Barany, 1991, Proč. Nati.Acad.Sci. USA 88:189-193); Polymerase Ligase Chain Reaction (Barany, 1991, PCR Methods and Applic. 1:5-16); Gap-LCR (PCT patentová publikace č. WO 90/01069); Repair Chain Reaction (evropská patentová přihláška č. 439182 A2), 3SR (Kwoh a spol. 1989, Proč.Nati.Acad.SCI. USA 86:1173-1177; Guatelli a spol. 1990, Proč.Nati.Acad.Sci. USA 87:1874-1878; PCT patentová publikace WO 92/08800) a NASBA (US patent č. 5130238) . Tento vynález není omezen na jakýkoliv určitý amplifikační systém. Pokud jsou vyvíjeny jiné systémy, mohou tyto systémy být přínosem pro provedení tohoto vynálezu. Poslední přehled amplifikačních systémů byl publikován v práci Abramsona a Myerse, 1993, Current Opinion in Biotechnology 4:41-47.
Ukázky metod přípravy vhodných pro každou amplifikační reakci jsou popsány v oboru (viz například Sambrook a spol., supra a odkazy popisující amplifikační metody citované výše). Jednoduché a rychlé metody přípravy vzorků pro PCR amplifikace cílových sekvencí jsou popsány v Higuchi, 1989, v PCR Technology (Erlich ed., Stockton Press, New York) a v PCR Protocols, kapitoly 18-20 (Innis a spol., vyd. Academie Press, 1990). Odborník v oboru bude schopen vybrat a empiricky optimalizovat vhodný protokol.
Metody pro detekci amplifikovaných produktů byly popsány v literatuře. Standardní metody zahrnují analýzu gelovou elektroforézou nebo hybridizací oligonukleotidovými sondami. Detekce hybridů vytvořených mezi sondami a amplifikovanými nukleovými kyselinami může být provedena mnoha formami, zahrnujícími dot-blot esejový formát a reverzní dor-blot esejový formát, (viz Saiki a spol., 1986, Nátuře 324:163-166; Saiki a spol. 1989, Proč.Nati.Acad.Sci. USA 86:6230; PCT patentová publikace č. WO 89/11548; US patenty č. 5008182 a 5176775; PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications (vyd.Innis a spol., Academie Press, San Diego, CA): 337-347. Reverzní dot-blot metody využívající mikrojamkových destiček jsou popsány v související US Seriál No. 141355 (odpovídá EPA 420260); US patent č. 5232829; Loeffelholz a spol., 1992,
J. Clin.Microbiol. 30(ll):2847-2851; Mulder a spol., 1994, J.Clin.Microbiol. 32 (2) :292 - 300; a Jackson a spol., 1991,
AIDS 5:1463-1467.
Další vhodná esejová metoda, označovaná jako 5'nukleasová esej, je popsána v US patentu č. 5210015 a práci
Hollanda a spol.,1991, Proč.Nati.Acad.Sci. USA 88:7276-7280.
V 5'-nukleasové eseji jsou značené sondy degradovány současně s příměrovým prodloužením při 5' ke 3' exonukleasové aktivitě DNA plymerasy, např. Taq DNA polymerasy. Detekce produktu rozpadu sondy indikuje jak objevení se hybridizace mezi sondou a cílovou DNA tak výskyt amplifikační reakce. US patent č. 5491063 (odpovídá EP-A 699763) a EP-A 713921 popisuje zlepšené metody pro detekci degradace sondy, která se vyskytuje současně s amplifikací.
Alternativní metoda pro detekci amplifikace nukleové kyseliny moitorováním zvýšení celkového množství dvoušroubovicové DNA v reakční směsi je popsána v práci, jejímž autorem je Higuchi a spol., 1992, Bio/Technology 10:413-417' Higuchi a spol, 1993, Bio/Technology 11:10261030' a evropské patentové přihlášce č. 487218 a 512334. Detekce dvoušroubovicové cílové DNA je založena na zvýšené fluorescenci, kterou ethidiniumbromid (EtBr) a jiné DNA vazebné značky vykazují, jsou-li navázány na dvoušroubovicovou DNA. Zvýšení dvoušroubovicové DNA vzniklé ze syntézy cílových sekvencí vede k detegovatelnému zvýšení fluorescence. Problémem této metody je, že syntéza necílové sekvence, tj. nespecifická amplifikace, vede ke zvýšení fluorescence, které interferuje s měřením zvýšení fluorescence vzniklé ze syntézy cílových sekvencí. Metody podle předloženého vynálezu jsou proto zvláště vhodné, že snižují nespecifickou amplifikaci a tím minimalizují zvýšení fluorescence vzniklé z amplifikace necílových sekvencí.
Předložený vynález se také týká kitů, multikontejnerových jednotek, obsahujících vhodné složky pro uskutečnění předložené metody. Vhodný kit obsahuje reverzibilně inaktivovaný termostabilní enzym a jedno nebo více činidel pro provedení aplifikační reakce jako jsou oligonukleotidové primery, substrátové nukleosidové trifosfáty, kofaktory a vhodný pufr.
Příklady předloženého vynálezu uvedené dále jsou poskytnuty pouze pro ilustrativní účely a neomezují rozsah vynálezu. Různá provedení vynálezu v rozsahu nároků, které následují za příklady, budou zřejmá odborníkům v oboru po studiu předcházejícího textu a následujících příkladů.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Esej polymerasové aktivity
Všechna měření DNA polymerasové aktivity popsaná v příkladech dále byla provedena za použití následující eseje DNA polymerasové aktivity. Tato esej je v podstatě popsána v práci Lawyera a spol., 1989, J.Biol.Chem. 264:6427-6437 a v AmpliTaqR DNA polymerase product insert (Perkin Elmer, Norwalk, CT), obě práce jsou zde uvedeny jako odkazy.
Jedna jednotka enzymové aktivity je definována jako množství, které inkorporuje 10 nmol dTNP do kyselinového nerozpustného materiálu za 30 minut v 10 min inkubci při 74 °C. Pro labilitu modifikovaných enzymů byly aktivity měřeny při 50 °C a normalizovány na standardní Taq DNA polymerasový roztok, který byl také zkoušen při 74 °C. Reakce byly provedeny v 50 μΐ objemu, obsahujícím následující činidla:
mM TAPS (tris-hydroxymethyl) -methyl-amino-propansulfonová kyselina, sodná sůl), pH 9,3 (při teplotě místnosti);
mM KCl;
mM MgCl2;
mM β-merkaptoethanol;
0 /iM každého z dATP, dGTP a dTTP;
100 /iM [ot-32P]-dCTP (0,05-0,1 Ci/mmol) ;
DNA aktivovaného lososího sperma.
Příklad 2
Tento příklad popisuje modifikaci Taq DNA polymerasy za použití anhydridu kyseliny citrakonové. Měření aktivity citrakonylatované Taq DNA polymerasy, která indikují molární poměr modifikátoru k enzymu v inaktivační reakci vyžadovaný pro dosažení kompletní inaktivace DNA polymerasová aktivity jsou popsány v příkladu 3 dále.
Taq DNA polymerasa (AmpliTaqR, Perkin Elmer, Norwalk CT) byla použita v počáteční koncentraci 1,3 mg/ml. V počátečním pokusu byla Taq DNA polymerasa nejprve dialyzována proti 1000-násobnému přebytku v objemu 0,1 boritanu sodného při pH 8,63. Tento stupeň byl shledán jako nepodstatný a v dalších pokusech byla TaqDNA polymerasa použita v Tris pufru (50 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA, 65 mM KCl, pH 7,5) přímo bez dialýzy proti boritanu sodnému.
Anhydrid kyseliny citrakonové (11,06 M) je obchodně dostupný (Aldrich, Milwaukee, WI). Výchozí roztok anhydridu kyseliny citrakonové se vytvoří ředěním ll,06M anhydridu kyseliny citrakonové 100-násobně v DMA (N,Ndimethylformamid).
Pro jednu sadu reakcí bylo vytvořeno postupné ředění roztoku anhydridu kyseliny citrakonové opakovaným 2-násobným ředěním v DMF. Pro každý roztok v sérii byly přidány 4 μΐ zředěného roztoku anhydridu kyseliny citrakonové ke 400 μΐ TaqDNA polymerasového roztoku (s dialýzou s boritanem sodným), za vzniku roztoků, obsahujících molární poměry anhydridů kyseliny citrakonové k TaqDNA polymerase přibližně 80/1, 40/1, 20/1 a 10/1. Roztoky byly inkubovány přes noc při 4 °C pro inaktivaci TaqDNA polymerasy. Enzym, který byl modifikován v reakci s N-molárním přebytkem modifikátoru je zde označován jako NX enzym. Výsledné citrakonylatované TaqDNA polymerasy jsou zde označovány jako 80X, 40X, 20X a 10X TaqDNA polymerasy.
Další modifikační reakce byly prováděny za použití 80, 160X a 240x molárních poměrů anhydridů kyseliny citrakonové k TaqDNA polymerase (bez dialýzy proti boritanu sodnému). 160X a 240X poměry byly vytvořeny vhodnou úpravou výchozího ředění 11,OSM anhydridů kyseliny citrakonové v DMF (N,Ndimethylformamid). Například pro konečný 160X poměr se ll,06M anhydrid kyseliny citrakonové zředí 1/50 v DMF, a 4 μΐ výsledného výchozího roztoku anhydridů kyseliny citrakonové se přidají ke 400 μΐ TaqDNA polymerasového roztoku. Výsledné TaqDNA polymerasy jsou označovány zde jako 240X, 160X a 80X TaqDNA polymerasy.
Příklad 3
Inaktivace a tepelné obnovení DNA polymerasové aktivity za použití anhydridů kyseliny citrakonové
Tento příklad popisuje měření citrakonylatovaných TaqDNA polymeras z příkladu 2 jak před tak po reaktivaci citrakonylatované TaqDNA polymerasy tepelnou inkubací. Byl měřen vliv pH na množství aktivity získané po tepelné reakcivaci citrakonylatovaných TaqDNA polymeras.
Vzorky citrakonylatovaných TaqDNA polymeras byly zředěny
1/200 v pufru, obsahujícím 10 mM Tris-HCl, 100 mM KCl, 2 mM
MgCl2, 0,5 % Tweenu 20, 0,5 % NP-40, 16 % glycerinu. pH pufru bylo 8,25 při teplotě místnosti. Zředěné vzorky citrakonylatované TaqDNA polymerasy byly inkubovány při 90 °C po 20 minut nebo udržovány při teplotě místnosti jako kontrola. Po zpracování byly vzorky zředěny 1/5 v enzymovém ředícím pufru ( 25 mM TRis-HCl, 50 mM KCl, 1 mM βmetkaptoethanolu, 0,5 % Tween™20, 0,5 % NP-40, 0,1 % želatiny) a aktivita byla sledována jak je popsáno v příkladu
1. DNA polymerasové aktivity po zpracování jsou uvedeny dále. Molární poměr se týká molárního poměru anhydridu kyseliny citrakonové k TaqDNA polymerase za použití modifikační reakce. Každá z aktivit je průměrem ze dvou aktivit naměřených v duplikátu vzorků.
Aktivita (% kontroly) molární poměr nezahříváno kontrola 100
80X 0
0X 0
20x 3,7
10X 38 °C inkubace
Kompletní inaktivace TaqDNA polymerasy byla získána za apoužití více než 20-násobného molárního přebytku anhydridu kyseliny citrakonové. Po inkubaci plně inaktivované TaqDNA polymerasy při 9 0 °C po 2 0 minut bylo obnoveno minimálně 16 % aktivity.
I když byla obnovena vyšší enzymová aktivita za použití 40X citrakonylatované TaqDNA polymerasy než za použití 80X citrakonylatované TaqDNA polymerasy , je mnohem praktičtější použít 80X )nebo vyšší) citrakonylatovanou TaqDNA polymerasu v komerčním kitu pro umožnění větších výrobních tolerancí.
Podobné pokusy byly provedeny za použití pufru upraveného na pH 7,75 při teplotě místnosti. Výsledky jsou uvedeny dále.
Aktivita (% kontroly) molární poměr nezahříváno °C inkubace kontrola 100
80X 0
40X 0
20X 3,5
10X 35
Množství obnovené DNA polymerasové aktivity bylo větší při nižším pH.
Aktivity 80X a 160X TaqDNA polymerasy (bez dialýzy boritanem sodným) byly měřeny před a po reaktivaci tepelnou inkubací v podstatě jak popsáno výše. pH pufru použitého pro inkubace bylo 8,0 při teplotě místnosti. Výsledky jsou uvedeny dále. Každá z aktivit je průměr ze dvou aktivit naměřených z duplikátních vzorků.
Aktivita (% kontroly) molární poměr nezahříváno °C inkubace kontrola 100
0X 0
80X 0
Vliv pH na reaktivaci je možno zjistit ze srovnání aktivity obnovené za použití 80X TaqDNA polymeras ze tří reaktivací při různém pH. Výše uvedené údaje naznačují, že se enzymová aktivita obnoví i při vysokém molárním přebytku modifikátoiu použitého v modifikační reakci.
Příklad 4
PCR amplifikace za použití citrakonylatovaných TaqDNA polymerasy
Tento příklad popisuje použití citrakonylatované Taq termostabilní DNA polymerasy popsané v příkladu 2 v PCR amplifikaci.
PCR protokol
Amplifikace byly prováděny za použití 1/20, 1/40 a 1/80 ředění 240X modifikované TaqDNA polymerasy popsané v příkladu 2. Ředění byla prováděna v pufru složeném ze 20 mM Tris-HCl, pH 8,0 (při teplotě místnosti), 100 mM KCl, 0,1 mM EDTA (kyselina ethylendiamintetraoctová), 1 mM DTT (dithiothteitol), 50 % glycerinu, 0,5 % Tweenu 20, 0,5 % Nonidetu P40 (AmpliTaqR uchovávací pufr, Perkin Elmer, Norwalk, CT). Pro porovnání byly amplifikace také provedeny za použití 1/10, 1/20, 1/40 a 1/80 ředění nemodifikované TaqDNA polymerasy.
Klonovaná HTLV-I genomická sekvence byla amplifikována za použití primerů SK432 a SK111. Primerové sekvence jsou uvedeny v US patentu č. 5418149, zahrnutém zde jako odkaz.
PCR byla provedena ve 100 μΐ reakčním objemu za následujících reakčních podmínek.
Reakční směs:
kopií HTLV-IDNA templátu mM Tris, pH 8,3 mM KCl
0,5 μΜ každého primerů 200 fžM dATP, dCTP a dGTP 4 00 μΜ. dUTP
0,5 /il roztoku citrakonylatované TaqDNA polymerasy
2,5 mM MgCl2 1 ng hpDNA jednotka UNG (Perkin Elmer, Norwalk, CT)
Profil tepelného cyklování:
Před reakční podmínky: (90 °C za 10 minut) cykly denaturace 9 8 °C 1 minuta teplotní hybridizace/ prodloužení 60 °C 2 minuty cyklů denaturace 94 °C 1 minuta teplotní hybridizace/ prodloužení 60 °C 1 minuta konečná inkubace 60 °C 7 minut
Amplifikované produkty byly analyzovány pomocí elektrofořezy na 4% agarosovém gelu za použití Ix TBE (0,089 M Tris, 0,089 M kyseliny borité, 0,0025 M dvojsodného EDTA) vyvíjecího pufru. Elektroforeza byla provedena při 100 voltech po přibližně 2 hodiny. Ethidium bromid (0,5 μΙ/ml) byl přidán po elektroforéze pro vybarvení jakékoliv přítomné DNA. Gel byl odbarven v IX TBE a pruhy DNA vybarvené ethidiumbromidem byly vizualizovány použití UV ozařování.
Výsledky
Výsledky jsou uvedeny na obr. 2. Pruh, odpovídající amplifikované cílové sekvenci je označen. Pruky, objevující se na gelu jiné než pruh, který odpovídá amplifikované cílové sekvenci odpovídají produktům vzniklým nespecifickou amplifikaci necílových sekvencí. Vliv použití citrakonylatované TaqDNA polymerasy (značená Taq, HS) na amlifikaci je možno zjistit z porovnání tvaru pruhu a intenzity v každé z drah. Protože amplifikace nespecifických produktů soutěží s amplifikaci cílové sekvence, zvýšení amplifikace cílové sekvence dále indikuje velikost redukce nespecifické amplifikace. Proto změna v relativním množství produktů v každé dráze bej lépe indikuje vliv před reakčních zpracování na nespecifickou amplifikaci.
Amplifikace za použití nemodifikované TaqDNA polymerasy vedou k převážně nespecifickým amplifikačním produktů.
Použití citrakonylatované TaqDNA polymerasy vede k významnému zvýšení intenzity pruhu, odpovídajícího amplifikované cílové sekvenci a významnému snížení v intenzitě pruhů odpovídajících nespecifickým amplifikačním produktům. Údaje znamenají, že PCR amplifikace za použití reverzibilně inaktivované DNA polymerasy významně redukuje nespecifickou amplifikaci a významně zvyšuje množství ,, požadované amplifikované cílové sekvence.
Příklad 5
Jiné citrakonylatované termostabilní DNA polymerasy
Tento příklad popisuje citrakonylaci několija jiných termostabilních DNA polymeras navíc k TaqDNA polymerase popsané výše. Byly modifikovány následující termostabilní DNA polymerasy:
1) termostabilní DNA polymerasa z Thermus thermophilus (rTth, Perkin Elmer, Norwalk, CT) jak je popsána ve WO 91/09950, zahrnutém zde jako odkaz.
2) mutant termostabilní DNA polymerasy z Thermatoga maritima (UITma™, Perkin Elmer, Norwalk, CT) jak je popsána ve WO 92/03556, zahrnutém zde jako odkaz.
3) mutantní forma termostabilní DNA polymerasy z Thermus aquaticus, který postrádá 3' k 5' exonukleasovou aktivitu, jak je popsána ve WO 92/06200, zahrnutém zde jako odkaz. Tento enzym je zde označován jako Taq CS nebo AmpliTaqRCS.
Pro každou z výše uvedených tří DNA polymeras byl připraven počáteční roztok o přibližné koncentraci 200 200 jednotek//íl. Pro srovnání 1,3 mg/ml TaqDNA polymerasy , jak je použita v předchozích příkladech, je přibližně ekvivalentní 260 jednctkám/μΐ. Každá z DNA polymeras byla modifikována v podstatě jak je popsáno v příkladu 2 výše. Deset fil anhydridu kyseliny citrakonové bylo zředěno v 500 μ£ DMF. Potom bylo 10 μΐ zředěného anhydridu kyseliny citrakaonové kombinováno s 1000 μΐ každého z enzy,ových roztoků. Výsledné roztoky byly inkubovány přes noc při 4 °C.
Příklad 6
PCR amplifikace za použití citrakonylatovaných DNA polymeras
Tento příklad popisuje použití citrakonylatovaných termostabilních DNA polymeras popsané v příkladech 2 a 5 v PCR amplifikacích.
PCR protokol
Amplifikace byly prováděny za použití ředění DNA polymeras. Ředění byla prováděna v pufru složeném ze 20 mM
Tris-HCl, pH 8,0 (při teplotě místnosti), 100 mM KCl, 0,1 mM
EDTA (kyselina ethylendiamintetraoctová), 1 mM DTT (dithiothteitol), 50 % glycerinu, 0,5 % Tweenu 20, 0,5 % Nonidetu P40 (AmpliTaqR uchovávací pufr, Perkin Elmer, Norwalk, CT).
HIV-1 genomická sekvence byla amplifikována za použití primeru SK145 a SK431 (Perkin Elmer, Norwalk, CT). Primery SK 145 a SK 431 jsou popsány v US patentu č. 5431149 a v následujících vědeckých publikacích: SK 145 je popsán v práci Kwoka a spol., 1990, Nucleic Acids Res. 13:999-1005; SK 431 je popsán v práci Jacksona a spol., 1991, AIDS 5:1463-1467. PCR byla provedena ve 100 /il reakčním objemu za následujících reakčních podmínek.
Reakční směs:
kopií HTLV-IDNA templátu mM Tris, pH 8,3 mM KCl
0,5 /iM každého primeru
200 /iM dATP, dCTP a dGTP
400 /iM dUTP
0,5 /il roztoku DNA polymerasového roztoku
2,5 mM MgCl2 ng hpDNA jednotka UNG (Perkin Elmer, Norwalk, CT)
Profil tepelného cyklování:
Před reakční podmínky: (95 °C za 12 minut) cyklů denaturace 94 °C 1 minuta teplotní hybridizace/ prodloužení konečná inkubace °C 1 minutu 60 °C 7 minut
Před reakční stupeň slouží také jako počáteční denaturační stupeň. Počáteční denaturační stupeň se rutinně používá v typická amplifikační reakci pro zajištění kompletní denaturace dvoušroubovicového cíle. Každý cyklus PCR začíná denaturačním stupněm při 94 °C po 1 minutu. Potom bezprostředně následuje před reakční inkubace prováděná při 95 °C po 12 minut, reakční směs se inkubuje při 94 °C 1 minutu během denaturačního stupně prvního cyklu.
Amplifikované produkty byly analyzovány pomocí elektroforezy na agarosovém gelu (100 ml 3% NuSieve^ a 0?5% SeaChemR) za použití lx TBE (0,089 M Tris, 0,089 M kyseliny borité, 0,0025 M dvojsodněho EDTA) vyvíjecího pufru. Elektroforeza byla provedena při 100 voltech po přibližně 2 hodiny. Ethidium bromid (0,5 μΐ/ml) byl přidán po elektroforéze pro vybarvení jakékoliv přítomné DNA. Gel byl odbarven v IX TBE a pruhy DNA vybarvené ethidiumbromidera byly vizualizovány použití UV ozařování.
Amplifikace za použití citrakonylátovaných DNA polymeras
Ředění (1/10, 1/20, 1/40 a 1/80) citrakonylatovanýcn DNA polymeras popsaná v příkladu 5 a 240X citrakonylatované TaqDNA polymerasy popsané v příkladu 1 byla použita pro amplifikace HIV-1 nukleové kyseliny a amplifikované produkty byly analyzovány elektroforezou na agarosovém gelu. Pro srovnání byly amplifikace provedeny za použití ředěněí nepodifikované TaqDNA polymerasy.
Výsledky jsou uvedeny na obr. 3. Pruh, odpovídající amplifikované cílové sekvenci je označen. Pruhy, objevující se na gelu jiné než pruh, který odpovídá amplifikované cílové sekvenci, odpovídají produktům vzniklým nespecifickou amplifikací necílových sekvencí. Vliv použití citrakonylátované DNA polymerasy na amlifikaci je možno zjistit z porovnání tvaru pruhů a intenzity v každé z drah.
Protože amplifikace nespecifických produktů soutěží s amplifikaci cílové sekvence, zvýšení amplifikace cílové sekvence dále indikuje velikost redukce nespecifické amplifikace. Proto změna v relativním množství produktů v každé dráze bej lépe indikuje vliv před reakčních zpracování na nespecifickou amplifikaci.
Amplifikace za použití nemodifikované TaqDNA polymerasy vedou k převážně nespecifickým amplifikačním produktů. Použití citrakonylatované TaqDNA polymerasy vede k významnému zvýšení intenzity pruhu, odpovídajícího amplifikované cílové sekvenci u téměř 1/30 ředění a významnému snížení v intenzitě pruhů odpovídajících nespecifickým amplifikačním produktům. Údaje znamenají, že PCR amplifikace za použití reverzibilně inaktivované DNA polymerasy významně redukuje nespecifickou amplifikaci a významně zvyšuje množství požadované amplifikované cílqvé sekvence.
Použití citrakonylátovaných UITma, Taq CS a rTth DNA polymeras také vede k větší produkci specifického amplifikačního produktu, než tomu je v amplifikacích za použití nemodifikované TaqDNA polymerasy, spolu se současnou redukcí množství nespecifického amplifikačního produktu. Výsledky demonstrují, že metody podle předloženého vynálezu jsou aplikovatelné na termostabilní DNA polymerasy obecně.
Je třeba uvést, že ačkoliv výsledky demonstrují funkčnost předloženého vynálezu, výsledky získané s citrakonylátovanými Taq, UITma, Taq CS a rTth DNA polymerasami nejsou přímo srovnatelné, protože modifikační podmínky byly nesrovnatelně optimalizovány pro každou DNA polymerasu. Ačkoliv každý počáteční roztok DNA polymerasy obsahuje stejně jednotek/ml, molarita roztoku nebyla stanovena a proto nebyl stanoven molární přebytek anhydridu kyseliny citrakonové v každé modifikační reakci. Odborník v oboru bude schopen zjistit empiricky optimální modifikační podmínky za použití zde popsaných protokolů.
Příklad 7
Cis-Akonitylovaná DNA polymerasa
Tento příklad popisuje použití modifikace TaqDNA polymerasy za použití anhydridu kyseliny cis-akonitové.
Byly provedeny modifikace za použití anhydridu kyseliny cis-akotinové jak je popsáno v příkladu 2 s tím hlavním rozdílem, že anhydrid kyseliny cis-akonitové je dostupný jako prášek a ne jako kapalina. TaqDNA polymerasa (AmpliTaqR, Perkin Elmer, Norwalk CT) v Tris pufru (50 Mm Tris-HCl, 1 mM EDTA, 68 mM HCl, pH 7,5) byl použit za výchozí koncentrace
1,3 mg/ml. Výchozí roztok anhydridu kyseliny cis-akonitové (Aldrich, Milwaukee, WI) byl vytvořen rozpuštěním anhydridu kyseliny cis-akonitové v 1 ml 100% EtOH.
K roztoku 1000 fil TaqDNA polymerasy bylo přidáno bud 10 nebo 20 fil roztoku anhydridu kyseliny cis-akonitové a získány tak roztoky, obsahující molární poměry anhydridu kyseliny cis-akonitové k TaqDNA polymerase přibližně 90/1 a 180/1. Roztoky byly inkubovány přes noc při 4 °C pro inaktivaci TaqDNA polymerasy.
Porovnání amplifikací za použití cis-akonitylatované
TaqDNA polymerasy a amplifikací za použití citrakonylátované
TaqDNA polymerasy jsou popsána dále.
Příklad 8
Inaktivace a tepelná obnova DNA polymerasové aktivity za použití anhydridu kyseliny cis-akonitové
Aktivity 90X a 180X cis-akonitylovaných TaqDNA polymeras připravených v příkladu 7 byly měřeny před a po reaktivaci tepelnou inkubací v podstatě jak je popsáno v příkladu 3 výše. pH pufru během inkubací bylo 8,0. Výsledky jsou uvedeny dále. Každá z aktivit je průměr ze dvou aktivit naměřených v duplikátních vzorcích.
Aktivita (% kontroly) molární poměr kontrola 180X 9 0X nezahříváno
100 °C inkubace
113
Porovnání výsledků s výsledky z příkladu 3 znamená, že cis-akonitylace je snadněji reverzní než citrakonylace. Vyšší molární přebytek anhydridu kyseliny cis-akonitové je nezbytný ke kompletní inaktivaci DNA polymerasy a je obnovena větší aktivita po vysokotepelné inkubaci. Důvod pro naměření aktivity větší než 100 % po modifikaci 90-násobným molárním přebytkem anhydridu kyseliny cis-akonitové s následnou tepelnou reaktivací je neznámý, ale může být přičten nepřesnosti v aktivitní eseji nebo může odrážet aktuální modifikaci DNA polymerasy.
Příklad 9
Vliv předreakční inkubační doby
Tento příklad popisuje vliv předreakční inkubační doby na množství získaného produktu.
Amplifikace byly provedeny za použití citrakonylátovaných a cis-akonitylovaných TaqDNA polymeras připravených jak popsáno výše. Pro každou sadu byly použity amplifikační podmíky, TaqDNA polymerasy modifikované použitím 80-násobného a 160-násobného molárního přebytku anhydridu kyseliny citrakonové a 90-násobného a 180-násobného molárního přebytku anhydridu kyseliny cis-akonitové. Amplifikace byly provedeny za použití HIV-1 modelového systému popsaného v příkladu 6 výše s tím rozdílem, že počáteční předreakční podmínky byly měněny. Pro každý enzymový přípravek byly prováděny amplifikace za použití předreakčních inkubací 12, 6, 3 a 0 minut.
Jak je uvedeno výše, slouží také předreakční inkubační stupeň jako počáteční denaturační stupeň. Každý cyklus PCR začíná denaturačním stupněm. Bezprostředně po počáteční předreakční inkubaci provedené při 95 °C po 12, 6,3 nebo Ominut, se každá reakční směs inkubuje při 94 °C po 1 minutu během denaturačního stupně prvního cyklu. Tak i když není použita žádné předreakční inkubace, je enzymová aktivita obnovena během denaturačního stupně počátečního cyklu.
Amplifikační produkty byly analyzovány elektroforézou na agarozovém gelu. Výsledky jsou uvedeny na obr. 4. Pruh, odpovídající amplifikované cílové sekvenci je označen. Pruhy, objevující se na gelu, jiné než pruh, který odpovídá amplifikované cílové sekvenci, odpovídají produktům generovaným nespecifickou amplifikácí necílových sekvencí.
Výsledky ukazují, že použitím cis-akonitylovaných DNA polymeras, všechny předreakční inkubační doby vedou k silnému pruhu, odpovídajícímu amplifikovanému produktu. Amplifikace prováděné bez předreakční inkubace nevedou k takovému množství produktu jako amplifikace za použití prodloužených předreakčních inkubací.
Naopak výsledky ukazují, že při použití citrakonylatované DNA polymerasy, předreakční inkubace alespoň 3 minuty byla vyžadována pro získání maximálního množství amplifikovaného produktu. Amplifikace prováděné bez předreakční inkubace vedly k výzmně menšímu množství amolifikovaného produktu. Výsledky indikují, že aktivita cis-akonytylátovaných DNA polymeras je obnovena mnohem rychleji než u citrakonylatovaných DNA polymeras.
Příklad 10
Vliv počtu cyklů
Tento příklad popisuje vliv zvýšení počtu amplifikačních cyklů na kompenzování krátké předreakční inkubační doby.
Byly provedeny amplifikace za použití TaqDNA polymeras modifikovaných použitím 80-násobného a 160-násobného molárního přebytku anhydridu kyseliny citrakonové a 90násobného a 180-násobného molárního přebytku anhydridu kyseliny cis-akonitové. Amplifikace byly provedeny v podstatě jak je popsáno výše za použití HIV-1 modelového systému popsaného v příkladu 6 s tím rozdílem, že byly měněny počty počátečních předreakčních inkubací a cyklů. Pro každý enzymový přípravek byly provedeny amplifikace za použití následujících podmínek:
předreakční inkubace 12 minut, 80 °C amplifikační cykly
Amplifikační produkty byly analyzovány elektroforézou na agarosovém gelu. Výsledky jsou uvedeny na obr. 5. Výsledky ukazují, že zvýšení počtu amplifikačních cyklů může kompenzovat ztrátu účinnosti vzniklou z nekompletní reaktivace DNA polymerasové aktivity, jestliže nebyla použita předreakční inkubace.
Pro každou DNA polymerasu vede zvýšení počtu amplifikačních cyklů ke zvýšení amplifikovaného produktu. Vliv byl nejmenší při použití cis akonitylátované TaqDNA polymerasy, jak je uvedeno na obr. 9 při potřebě malé, pokud vůbec nějaké, předreakční inkubace.
!

Claims (14)

  1. PATENTOVÉ
    NÁROKY
    1. Termostabilní enzym, který je reverzibilně inaktivován chemickou modifikací, vyznačující se t 'í m, že inkubace modifikovaného enzymu ve vodném pufru při alkalickém pH při teplotě, která je menší než asi 25 °C nevede v podstatě ke zvýšení enzymové aktivity za méně než asi 20 minut a že inkubace uvedeného chemicky modifikovaného enzymu ve vodném pufru, upraveném na pH asi 8-9 při 25 °C, při teplotě vyšší než asi 50 °C poskytne alespoň dvojnásobné zvýšení enzymové aktivity za méně než asi 20 minut.
  2. 2. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle nároku 1, kde uvedená enzymová aktivita je termostabilní DNA polymerasové aktivita nebo termostabilní ligasová aktivita.
  3. 3. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle nároku 1, kde uvedená enzymová aktivita je termostabilní DNA polymerasové aktivita a kde uvedená termostabilní DNA polymerasa je získána ze druhů vybraných ze skupiny rodů, zahrnujících Thermus aquaticus, Thermus thermohilus a Thermotoga maritima.
  4. 4. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků l až 3,který je produkován.reakcí směsi termostabilního enzymu s modifikačním činidlem.
  5. 5. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 3,který je produkován reakcí směsi termostabilního enzymu s modifikačním činidlem, kde se uvedená reakce provádí v alkalickém pH při teplotě, která je menší než asi 25 °C, kde uvedené Činidlo je anhydrid dikarboxylové kyseliny obecného vzorce kde R]_ a R2 jsou vodík nebo organické radikály, které mohou být spojeny, nebo obecného vzorce kde R]_ a R2 jsou organické radikály, které mohou být spojeny a vodíky jsou cis a kde uvedená reakce vede v podstatě k úplné inaktivaci enzymové aktivity.
  6. 6. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 3,který je produkován reakcí směsi termostabilního enzymu s modifikačním činidlem, kde uvedené modifikační činidlo je vybráno ze skupiny, zahrnující maleinanhydridy, anhydrid kyseliny exo-cis-3,6-endoxo-Δ4tetrahydroftalové; anhydrid kyseliny citrakonové, 3,4,5,6tetrahydroftalanhydrid, anhydrid kyseliny cis-akonitové a anhydrid kyseliny 2,3-dimelhylmaleinové.
  7. 7. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 6, který je produkován reakcí směsi termostabilního enzymu s modifikačním činidlem, kde uvedené modifikační činidlo je ve více než 20-násobném přebytku k uvedenému termostabilnímu enzymu.
  8. 8. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 7, který je produkován reakcí směsi termostabilního enzymu s modifikačním činidlem, kde uvedeným termostabilním enzymem je termostabilní DNA polymerasa získaná z Thermus aquaticus a kde uvedeným modifikačním činidlem je anhydrid kyseliny citrakonové.
  9. 9. Chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 7, který je produkován reakcí směsi termostabilního enzymu s modifikačním činidlem, kde uvedený termostabilní enzym je termostabilní DNA polymerasa získaná z Thermus thermophillus a kde uvedeným modifikačním činidlem je anhydrid kyseliny cis-akonitové.
  10. 10. Způsob přípravy chemicky modifikovaného termostabilního enzymu, který je reverzibilně inaktivován, vyznačuj íc í se t í m, že uvedený způsob zahrnuje reakci směsi termostabilního enzymu a modifikačním činidlem, kde uvedená reakce se provádí v alkalickém pH při teplotěě, která je menší než asi 25 °C, přičemž uvedeným činidlem je anhydrid dikarboxylové kyseliny obecného vzorce kde a R2 jsou vodík nebo organické radikály, které mohou být spojeny, nebo obecného vzorce kde Ri a R2 jsou organické radikály, které mohou být spojeny a vodíky jsou cis a kde uvedená reakce vede v podstatě k úplné inaktivaci enzymové aktivity.
  11. 11. Způsob amplifikace cílové nukleové kyseliny ve vzorku, vyznačující se tím, že zahrnuje stupně (a) kontaktu uvedeného vzorku s amplifikační reakční směsí, obsahující primer komplementární k uvedené cílové nukleové kyselině a chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 9 a (b) inkubaci výsledné směsi ze stupně (a) při teplotě, která je větší než asi 50 °C po dobu dostačující k reaktivaci uvedeného chemicky modifikovaného termostabilního enzymu a umožnění tvorby produktů primerového prodloužení.
  12. 12. Amplifikační směs polymerasové řetězové reakce, v y z n a-č ující se tím, že obsahuje pár primerů a chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 9.
  13. 13. Kit pro provedení polymerasové řetězové reakce, obsahující chemicky modifikovaný termostabilní enzym podle kteréhokoliv z nároků 1 až 9.
  14. 14. Vynález jak byl zde dříve popsán.
CZ19962495A 1995-08-25 1996-08-23 Chemicky modifikovaný termostabilní enzym, způsob jeho přípravy, způsob amplifikace cílové nukleové kyseliny a amplifikační směs a kit pro polymerázové řetězové reakce CZ289237B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US267395P 1995-08-25 1995-08-25

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ249596A3 true CZ249596A3 (en) 1997-06-11
CZ289237B6 CZ289237B6 (cs) 2001-12-12

Family

ID=21701916

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19962495A CZ289237B6 (cs) 1995-08-25 1996-08-23 Chemicky modifikovaný termostabilní enzym, způsob jeho přípravy, způsob amplifikace cílové nukleové kyseliny a amplifikační směs a kit pro polymerázové řetězové reakce

Country Status (19)

Country Link
US (2) US5773258A (cs)
EP (1) EP0771870B1 (cs)
JP (1) JP3026554B2 (cs)
KR (1) KR100221097B1 (cs)
CN (1) CN1282741C (cs)
AT (1) ATE176499T1 (cs)
AU (1) AU689047B2 (cs)
BR (1) BR9603563A (cs)
CA (1) CA2184105C (cs)
CZ (1) CZ289237B6 (cs)
DE (2) DE69601488T2 (cs)
DK (1) DK0771870T3 (cs)
ES (1) ES2101668T3 (cs)
HU (1) HU221750B1 (cs)
IL (1) IL119088A (cs)
MX (1) MX9603608A (cs)
NO (1) NO323552B1 (cs)
PL (1) PL185711B1 (cs)
RU (1) RU2174556C2 (cs)

Families Citing this family (272)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6096499A (en) * 1996-03-22 2000-08-01 Geron Corporation Mammalian DNA primase screen and activity modulating agents
US6399304B1 (en) * 1996-12-20 2002-06-04 Roche Diagnostics Gmbh Sequential activation of one or more enzymatic activities within a thermocycling reaction for synthesizing DNA molecules
US6605428B2 (en) * 1996-12-20 2003-08-12 Roche Diagnostics Gmbh Method for the direct, exponential amplification and sequencing of DNA molecules and its application
US6828094B2 (en) * 1996-12-20 2004-12-07 Roche Diagnostics Gmbh Method for the uncoupled, direct, exponential amplification and sequencing of DNA molecules with the addition of a second thermostable DNA polymerase and its application
US6482590B1 (en) 1996-12-20 2002-11-19 Aventis Behring Gmbh Method for polynucleotide amplification
US20030215857A1 (en) * 1996-12-20 2003-11-20 Roche Diagnostics Gmbh Method for the direct, exponential amplification and sequencing of DNA molecules and its application
JPH10276776A (ja) * 1997-04-07 1998-10-20 Toyobo Co Ltd 可逆的に不活化された耐熱性dnaポリメラーゼ
US6183998B1 (en) * 1998-05-29 2001-02-06 Qiagen Gmbh Max-Volmer-Strasse 4 Method for reversible modification of thermostable enzymes
US6132416A (en) * 1998-09-01 2000-10-17 Broselow; James B. Universal medication dosing system
US6440706B1 (en) 1999-08-02 2002-08-27 Johns Hopkins University Digital amplification
GB9920194D0 (en) * 1999-08-27 1999-10-27 Advanced Biotech Ltd A heat-stable thermostable DNA polymerase for use in nucleic acid amplification
WO2001075139A1 (en) * 2000-04-03 2001-10-11 Biolink Partners, Inc. Reversible chemical modification of nucleic acids and improved method for nucleic acid hybridization
US7923205B2 (en) * 2000-08-25 2011-04-12 Toshikazu Shiba Method for protecting personal information
EP1334113A4 (en) * 2000-10-20 2007-08-08 Expression Diagnostics Inc EVALUATION OF LEUCOCYTAIRE EXPRESSION LEVEL
JP2002199877A (ja) * 2000-11-30 2002-07-16 Advanced Biotechnologies Ltd 酵素の可逆的な不活性化およびその酵素を含むキット
GB0110501D0 (en) * 2001-04-30 2001-06-20 Secr Defence Brit Amplification process
US7235358B2 (en) 2001-06-08 2007-06-26 Expression Diagnostics, Inc. Methods and compositions for diagnosing and monitoring transplant rejection
US6905827B2 (en) * 2001-06-08 2005-06-14 Expression Diagnostics, Inc. Methods and compositions for diagnosing or monitoring auto immune and chronic inflammatory diseases
US7026121B1 (en) 2001-06-08 2006-04-11 Expression Diagnostics, Inc. Methods and compositions for diagnosing and monitoring transplant rejection
EP1275735A1 (en) * 2001-07-11 2003-01-15 Roche Diagnostics GmbH Composition and method for hot start nucleic acid amplification
EP1452593B1 (en) * 2001-11-14 2009-04-08 Toyo Boseki Kabushiki Kaisha Dna synthesis promoters, dna polymerase-associated factors and utilization thereof
CA2409775C (en) * 2001-12-03 2010-07-13 F. Hoffmann-La Roche Ag Reversibly modified thermostable enzymes for dna synthesis and amplification in vitro
CN100429307C (zh) * 2002-01-09 2008-10-29 希森美康株式会社 核酸检测方法及其系统
US20050221349A1 (en) * 2002-05-30 2005-10-06 Stuart Wilson Methods of detecting target molecules and molecular interactions
US6896727B2 (en) * 2002-06-28 2005-05-24 Seh America, Inc. Method of determining nitrogen concentration within a wafer
EP1403379A1 (en) * 2002-09-24 2004-03-31 QIAGEN GmbH Enhanced coamplification of nucleic acids
CA2519309A1 (en) 2003-03-25 2004-10-14 Stratagene California Dna polymerase fusions and uses thereof
DE10315640A1 (de) * 2003-04-04 2004-10-14 Ignatov, Konstantin Verfahren zur kontrollierten Freisetzung von Komponenten in eine Lösung
US7892745B2 (en) * 2003-04-24 2011-02-22 Xdx, Inc. Methods and compositions for diagnosing and monitoring transplant rejection
AU2004203649B2 (en) 2003-08-12 2006-01-12 F. Hoffmann-La Roche Ag Thermostable Taq polymerase fragment
EP2208797A3 (en) 2004-03-01 2010-11-24 Applied Biosystems, LLC Methods, compositions and kits for use in polynucleotide amplification
KR100624490B1 (ko) 2004-05-27 2006-09-20 바이오퀘스트(주) 화학변형 열안정성 dna 중합효소
EP1758981A4 (en) 2004-05-28 2013-01-16 Wafergen Inc APPARATUS AND METHODS FOR PERFORMING MULTIPLEX ANALYZES
US20060019366A1 (en) * 2004-06-09 2006-01-26 Wanli Bi Reversibly modified thermostable enzyme compositions and methods of making and using the same
JP2008502352A (ja) * 2004-06-30 2008-01-31 アプレラ コーポレイション ポリヌクレオチドをライゲーションするための、方法、反応混合物およびキット
US7700281B2 (en) * 2004-06-30 2010-04-20 Usb Corporation Hot start nucleic acid amplification
WO2006029184A2 (en) * 2004-09-08 2006-03-16 Expression Diagnostics, Inc. Genes useful for diagnosing and monitoring inflammation related disorders
EP1634965B1 (en) 2004-09-09 2010-01-20 Roche Diagnostics GmbH Real time PCR with the addition of pyrophosphatase
US20060051796A1 (en) * 2004-09-09 2006-03-09 Inga Boell Real time PCR with the addition of pyrophosphatase
JP2008513028A (ja) 2004-09-21 2008-05-01 アプレラ コーポレイション マイクロRNA(miRNA)の二色リアルタイム/エンドポイント定量化
CA2584576C (en) * 2004-10-18 2015-12-08 Brandeis University Reagents and methods for improving reproducibility and reducing mispriming in pcr amplification
EP2208796B1 (en) * 2005-01-06 2014-06-18 Applied Biosystems, LLC Polypeptides having nucleic acid binding activity and compositions and methods for nucleic acid amplification
WO2006076650A2 (en) * 2005-01-12 2006-07-20 Applera Corporation Compositions, methods, and kits for selective amplification of nucleic acids
WO2006122295A2 (en) * 2005-05-11 2006-11-16 Expression Diagnostics, Inc. Methods of monitoring functional status of transplants using gene panels
EP2308990B1 (en) 2005-07-15 2012-09-26 Life Technologies Corporation Analyzing messenger RNA and micro RNA in the same reaction mixture
EP1910397A4 (en) 2005-07-15 2009-07-01 Applera Corp DESIGNED A HOT START TRANSFER THROUGH PRIMER
US20070059713A1 (en) 2005-09-09 2007-03-15 Lee Jun E SSB-DNA polymerase fusion proteins
CA2624634A1 (en) 2005-10-03 2007-04-12 Applera Corporation Compositions, methods, and kits for amplifying nucleic acids
DE102005047617A1 (de) * 2005-10-05 2007-04-19 Qiagen Gmbh Polymerase-Kettenreaktions-Verfahren unter Einsatz einer DNA-Polymerase mit Proofreading-Eigenschaft
GB0600228D0 (en) 2006-01-06 2006-02-15 Fermentas Uab Inactivation method
EP1989324B1 (en) * 2006-02-27 2011-05-18 Roche Diagnostics GmbH Pcr hot start by magnesium sequestration
DE102006015960A1 (de) * 2006-04-04 2007-10-11 Qiagen Gmbh Gemisch reversibel inhibierter Enzyme
CA2648580A1 (en) * 2006-04-07 2008-05-02 Xdx, Inc. Steroid responsive nucleic acid expression and prediction of disease activity
US8232091B2 (en) 2006-05-17 2012-07-31 California Institute Of Technology Thermal cycling system
EP2032714B1 (en) * 2006-06-01 2011-03-16 TriLink BioTechnologies Chemically modified oligonucleotide primers for nucleic acid amplification
US11001881B2 (en) 2006-08-24 2021-05-11 California Institute Of Technology Methods for detecting analytes
US8435774B2 (en) * 2006-06-28 2013-05-07 Qiagen Gmbh Enhancing reactivation of thermostable reversibly inactivated enzymes
EP2546364A1 (en) * 2006-07-17 2013-01-16 Brandeis University Specialized oligonucleotides and their use in nucleic acid amplification and detection
US11525156B2 (en) 2006-07-28 2022-12-13 California Institute Of Technology Multiplex Q-PCR arrays
US8048626B2 (en) 2006-07-28 2011-11-01 California Institute Of Technology Multiplex Q-PCR arrays
ATE538216T1 (de) * 2006-07-31 2012-01-15 Wanli Bi Nukleinsäureverstärkung mithilfe eines reversibel modifizierten oligonukleotids
US9045522B2 (en) 2006-07-31 2015-06-02 Wanli Bi Nucleic acid amplification using a reversibly modified oligonucleotide
US7993832B2 (en) * 2006-08-14 2011-08-09 Xdx, Inc. Methods and compositions for diagnosing and monitoring the status of transplant rejection and immune disorders
US11560588B2 (en) 2006-08-24 2023-01-24 California Institute Of Technology Multiplex Q-PCR arrays
WO2008140484A2 (en) * 2006-11-09 2008-11-20 Xdx, Inc. Methods for diagnosing and monitoring the status of systemic lupus erythematosus
KR100825279B1 (ko) * 2006-11-30 2008-04-25 한국해양연구원 Dnα 중합효소 활성 증가 단백질 및 이를 암호화 하는유전자
US7902345B2 (en) 2006-12-05 2011-03-08 Sequenom, Inc. Detection and quantification of biomolecules using mass spectrometry
CA2677833C (en) 2007-01-22 2016-05-03 Wafergen, Inc. Apparatus for high throughput chemical reactions
US20090036325A1 (en) * 2007-05-25 2009-02-05 Applera Corporation Directed assembly of amplicons to enhance read pairing signature with massively parallel short read sequencers
GB0711683D0 (en) * 2007-06-16 2007-07-25 Enigma Diagnostics Ltd Compositions
JP2010529850A (ja) * 2007-06-16 2010-09-02 エニグマ ディアグノスティックス リミテッド 組成物
EP2183380B1 (en) * 2007-08-27 2014-11-26 Life Technologies Corporation Methods and compositions for pcr
ATE549419T1 (de) 2007-08-29 2012-03-15 Sequenom Inc Verfahren und zusammensetzungen für die universelle grössenspezifische polymerasekettenreaktion
WO2009087394A1 (en) * 2008-01-11 2009-07-16 Genesys Ltd Cren7 chimeric protein
GB0803628D0 (en) * 2008-02-28 2008-04-02 Genesys Ltd Enzyme
GB0804721D0 (en) * 2008-03-14 2008-04-16 Genesys Ltd Enzyme
GB0804722D0 (en) * 2008-03-14 2008-04-16 Genesys Ltd Enzyme
CA2658520C (en) 2008-03-19 2016-11-08 F. Hoffmann-La Roche Ag Nucleic acid amplification in the presence of modified randomers
EP2113574A1 (en) 2008-04-28 2009-11-04 Biotype AG Substances and methods for a DNA based profiling assay
EP2644707B1 (en) * 2008-04-30 2015-06-03 Integrated Dna Technologies, Inc. RNase-H-based assays utilizing modified RNA monomers
US8911948B2 (en) * 2008-04-30 2014-12-16 Integrated Dna Technologies, Inc. RNase H-based assays utilizing modified RNA monomers
US10227641B2 (en) 2008-04-30 2019-03-12 Integrated Dna Technologies, Inc. RNase H-based assays utilizing modified RNA monomers
US8133669B2 (en) 2008-05-27 2012-03-13 Trilink Biotechnologies Chemically modified nucleoside 5′-triphosphates for thermally initiated amplification of nucleic acid
WO2009155464A2 (en) * 2008-06-18 2009-12-23 Life Technologies Corporation Mutated and chemically modified thermally stable dna polymerases
BRPI0915886A2 (pt) 2008-06-30 2015-11-03 Life Technologies Corp método para amplificação direta a partir de amostras brutas de ácido nucléico
EP2307558A4 (en) * 2008-07-03 2012-08-08 Allelogic Biosciences Corp COMPOSITIONS AND PROCEDURES FOR THE PROTECTION OF NUCLEOPHILER GROUPS
US8583380B2 (en) 2008-09-05 2013-11-12 Aueon, Inc. Methods for stratifying and annotating cancer drug treatment options
US7910720B2 (en) 2008-09-09 2011-03-22 Roche Diagnostics Operations, Inc. Polyanion for improved nucleic acid amplification
US8206929B2 (en) 2009-01-07 2012-06-26 Roche Molecular Systems, Inc. Nucleic acid amplification with allele-specific suppression of sequence variants
EP2382321A4 (en) 2009-01-08 2012-12-19 Bio Rad Laboratories METHODS AND COMPOSITIONS FOR ENHANCING THE EFFICACY OF NUCLEIC ACID AMPLIFICATION REACTIONS
US9347092B2 (en) * 2009-02-25 2016-05-24 Roche Molecular System, Inc. Solid support for high-throughput nucleic acid analysis
JP5457222B2 (ja) * 2009-02-25 2014-04-02 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲー 小型化ハイスループット核酸分析
DE102009010639B4 (de) * 2009-02-26 2020-07-02 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh Verfahren und Anordnung zur Inhibierung einer chemischen Reaktion von Substanzen in einer Flüssigkeit vor einer Messung
US8039215B2 (en) 2009-03-10 2011-10-18 Roche Molecular Systems, Inc. Multiplex quantitative nucleic acid amplification and melting assay
EP2406394B1 (en) 2009-03-12 2014-01-08 Brandeis University Reagents and methods for pcr
US9464319B2 (en) 2009-03-24 2016-10-11 California Institute Of Technology Multivolume devices, kits and related methods for quantification of nucleic acids and other analytes
US9447461B2 (en) 2009-03-24 2016-09-20 California Institute Of Technology Analysis devices, kits, and related methods for digital quantification of nucleic acids and other analytes
EP2412020B1 (en) 2009-03-24 2020-09-30 University Of Chicago Slip chip device and methods
US10196700B2 (en) 2009-03-24 2019-02-05 University Of Chicago Multivolume devices, kits and related methods for quantification and detection of nucleic acids and other analytes
EP2411539B1 (en) 2009-03-25 2018-10-03 Life Technologies Corporation Discriminatory positive/extraction control dna
CN202830041U (zh) * 2009-04-03 2013-03-27 Illumina公司 用于加热生物样本的设备
US8987685B2 (en) * 2009-09-09 2015-03-24 Pcr Max Limited Optical system for multiple reactions
WO2011044444A2 (en) * 2009-10-09 2011-04-14 Life Technologies Corporation cDNA SYNTHESIS USING A REVERSIBLY INACTIVATED REVERSE TRANSCRIPTASE
WO2011060014A1 (en) * 2009-11-13 2011-05-19 Integrated Dna Technologies, Inc. Small rna detection assays
IN2012DN05145A (cs) 2009-11-19 2015-10-23 Solis Biodyne
WO2011068569A1 (en) 2009-12-04 2011-06-09 Biotium, Inc. Heterocycle-substituted xanthene dyes
US9238832B2 (en) 2009-12-11 2016-01-19 Roche Molecular Systems, Inc. Allele-specific amplification of nucleic acids
US8614071B2 (en) 2009-12-11 2013-12-24 Roche Molecular Systems, Inc. Preferential amplification of mRNA over DNA using chemically modified primers
WO2011119934A2 (en) 2010-03-26 2011-09-29 Mayo Foundation For Medical Education And Research Methods and materials for detecting colorectal neoplasm
US9068017B2 (en) 2010-04-08 2015-06-30 Ibis Biosciences, Inc. Compositions and methods for inhibiting terminal transferase activity
US20110250598A1 (en) 2010-04-12 2011-10-13 Ulrike Fischer Detergent free polymerases
WO2011143611A2 (en) 2010-05-14 2011-11-17 Life Technologies Corporation Karyotyping assay
US8618253B2 (en) * 2010-05-25 2013-12-31 Samsung Techwin Co., Ltd. Modified RNAse H and detection of nucleic acid amplification
US8658776B2 (en) 2010-05-28 2014-02-25 Life Technologies Corporation Synthesis of 2′,3′-dideoxynucleosides for automated DNA synthesis and pyrophosphorolysis activated polymerization
JP5876478B2 (ja) 2010-06-18 2016-03-02 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft 増大した3’末端ミスマッチ識別能を有するdnaポリメラーゼ
CN103025870B (zh) 2010-06-18 2015-07-01 霍夫曼-拉罗奇有限公司 具有增强的3’-错配辨别力的dna聚合酶
WO2011157433A1 (en) 2010-06-18 2011-12-22 Roche Diagnostics Gmbh Dna polymerases with increased 3'-mismatch discrimination
US8735121B2 (en) 2010-06-18 2014-05-27 Roche Molecular Systems, Inc. DNA polymerases with increased 3′-match discrimination
EP2582807B1 (en) 2010-06-18 2015-03-18 Roche Diagnostics GmbH Dna polymerases with increased 3'-mismatch discrimination
US8722378B2 (en) 2010-06-18 2014-05-13 Roche Molecular Systems, Inc. DNA polymerases with increased 3′-mismatch discrimination
WO2011157438A1 (en) 2010-06-18 2011-12-22 Roche Diagnostics Gmbh Dna polymerases with increasesed 3'-mismatch discrimination
CN103025869B (zh) 2010-06-18 2015-07-01 霍夫曼-拉罗奇有限公司 具有增强的3’-错配辨别力的dna聚合酶
EP3502272A1 (en) 2010-06-21 2019-06-26 Life Technologies Corporation Compositions, kits, and methods for synthesis and/or detection of nucleic acids
WO2012038049A2 (en) 2010-09-22 2012-03-29 Roche Diagnostics Gmbh Amplification of distant nucleic acid targets using engineered primers
US9309556B2 (en) 2010-09-24 2016-04-12 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Direct capture, amplification and sequencing of target DNA using immobilized primers
WO2012045670A1 (en) 2010-10-04 2012-04-12 Roche Diagnostics Gmbh Method for cell lysis in a pcr reaction buffer
JP5798631B2 (ja) 2010-10-04 2015-10-21 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft Rt−pcr反応緩衝液中での細胞溶解のための方法
CN103124797B (zh) 2010-10-04 2015-04-22 霍夫曼-拉罗奇有限公司 用于在相同反应容器内的细胞裂解和pcr的方法
US9677128B2 (en) 2010-10-22 2017-06-13 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and kits for detection of 5-hydroxymethylcytosine
JP5907990B2 (ja) * 2010-12-17 2016-05-11 ライフ テクノロジーズ コーポレーション 核酸増幅のための方法、組成物、システム、装置およびキット
WO2012125220A2 (en) 2011-01-14 2012-09-20 Life Technologies Corporation Methods for isolation, identification, and quantification of mirnas
ES2728743T3 (es) 2011-01-17 2019-10-28 Life Technologies Corp Flujo de trabajo para la detección de ligandos utilizando ácidos nucleicos
CA2826696C (en) 2011-02-02 2019-12-03 Exact Sciences Corporation Digital sequence analysis of dna methylation
WO2012110061A1 (en) 2011-02-15 2012-08-23 Roche Diagnostics Gmbh Dna polymerases with increased 3'-mismatch discrimination
US20140031257A1 (en) 2011-03-10 2014-01-30 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and biomarkers for detection of gastrointestinal cancers
WO2012135053A2 (en) 2011-03-25 2012-10-04 Integrated Dna Technologies, Inc. Rnase h-based assays utilizing modified rna monomers
ES2561885T3 (es) 2011-04-11 2016-03-01 F. Hoffmann-La Roche Ag ADN polimerasas de actividad mejorada
US8993341B2 (en) 2011-05-12 2015-03-31 Exact Sciences Corporation Removal of PCR inhibitors
WO2012155072A2 (en) 2011-05-12 2012-11-15 Exact Sciences Corporation Isolation of nucleic acids
US8808990B2 (en) 2011-05-12 2014-08-19 Exact Sciences Corporation Serial isolation of multiple DNA targets from stool
US9567628B2 (en) 2011-06-08 2017-02-14 Life Technologies Corporation Polymerization of nucleic acids using proteins having low isoelectric points
ES2692894T3 (es) 2011-06-08 2018-12-05 Life Technologies Corporation Diseño y desarrollo de nuevos detergentes para su uso en sistemas de PCR
WO2013013822A1 (en) 2011-07-28 2013-01-31 Roche Diagnostics Gmbh Dna polymerases with improved activity
US9758837B2 (en) 2011-08-02 2017-09-12 The United States Of America, As Represented By The Secretary Of Agriculture Sensitive and rapid method for Candidatus Liberibacter species detection
SG11201400724SA (en) 2011-09-19 2014-04-28 Genentech Inc Combination treatments comprising c-met antagonists and b-raf antagonists
EP2758546B1 (en) 2011-09-23 2017-11-22 Roche Diagnostics GmbH Use of g-clamp for improved allele-specific pcr
JP2014533100A (ja) 2011-11-04 2014-12-11 オスロ ウニヴェルスィテーツスィーケフース ハーエフOslo Universitetssykehus Hf 結腸直腸癌の分析のための方法およびバイオマーカー
US9260714B2 (en) * 2011-12-02 2016-02-16 Roche Molecular Systems, Inc. Suppression of non-specific amplification with high-homology oligonucleotides
JP6224613B2 (ja) 2011-12-08 2017-11-01 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft 改善された活性を有するdnaポリメラーゼ
JP6144697B2 (ja) 2011-12-08 2017-06-07 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft 改善された活性を有するdnaポリメラーゼ
EP2788479B1 (en) 2011-12-08 2016-02-10 Roche Diagnostics GmbH Dna polymerases with improved activity
ES2669214T3 (es) 2011-12-13 2018-05-24 Oslo Universitetssykehus Hf Procedimientos y kits para la detección de estado de metilación
US9115394B2 (en) 2011-12-22 2015-08-25 Roche Molecular Systems, Inc. Methods and reagents for reducing non-specific amplification
JP2015503923A (ja) 2012-01-09 2015-02-05 オスロ ウニヴェルスィテーツスィーケフース ハーエフOslo Universitetssykehus Hf 結腸直腸癌の解析のための方法およびバイオマーカー
GB201201547D0 (en) * 2012-01-30 2012-03-14 Olink Ab Method and product
EP2809377A4 (en) 2012-02-01 2015-08-19 Certa Dose Inc DRUG DELIVERY SYSTEM
US11617835B2 (en) 2012-02-01 2023-04-04 Cd Acquisitions, Llc Apparatuses, methods, and systems for delivering measured doses of medication
EP4361606A2 (en) 2012-02-03 2024-05-01 California Institute of Technology Signal encoding and decoding in multiplexed biochemical assays
CN104220876A (zh) 2012-02-21 2014-12-17 奥斯陆大学医院 用于宫颈癌的检测和预后的方法和生物标志物
US9085761B1 (en) 2012-06-14 2015-07-21 Affymetrix, Inc. Methods and compositions for amplification of nucleic acids
CN110343673B (zh) 2012-06-14 2024-04-05 生命技术公司 用于聚合酶链式反应(pcr)的新型组合物、方法和试剂盒
IN2015DN01609A (cs) 2012-08-03 2015-07-03 California Inst Of Techn
US9212392B2 (en) 2012-09-25 2015-12-15 Exact Sciences Corporation Normalization of polymerase activity
GB201217405D0 (en) * 2012-09-28 2012-11-14 Fermentas Uab Protein removal agent
CN111793621A (zh) 2012-11-02 2020-10-20 生命技术公司 用于增强pcr特异性的新颖组合物、方法和试剂盒
US9710596B2 (en) 2012-11-21 2017-07-18 Exact Sciences Corporation Methods for quantifying nucleic acid variations
US20140178911A1 (en) * 2012-12-20 2014-06-26 Roche Molecular Systems, Inc. Characterization of thermostable dna polymerase
GB201301457D0 (en) 2013-01-28 2013-03-13 Fluorogenics Ltd Freeze-dried composition
CN105339505B (zh) 2013-03-12 2021-08-10 生命技术公司 基于通用报告体的基因分型方法和材料
ES2859645T3 (es) 2013-03-14 2021-10-04 Mayo Found Medical Education & Res Detección de neoplasia
CN105378109B (zh) 2013-03-14 2019-06-14 雅培分子公司 使用尿嘧啶-dna-n-糖基化酶使错误最小化
WO2014184684A2 (en) 2013-05-16 2014-11-20 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and biomarkers for detection of hematological cancers
US9163284B2 (en) 2013-08-09 2015-10-20 President And Fellows Of Harvard College Methods for identifying a target site of a Cas9 nuclease
US9228207B2 (en) 2013-09-06 2016-01-05 President And Fellows Of Harvard College Switchable gRNAs comprising aptamers
US20150232931A1 (en) 2013-09-20 2015-08-20 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for the analysis of radiosensitivity
EP3063129B1 (en) 2013-10-25 2019-04-17 Life Technologies Corporation Novel compounds for use in pcr systems and applications thereof
WO2015066695A1 (en) 2013-11-04 2015-05-07 Exact Sciences Corporation Multiple-control calibrators for dna quantitation
KR101488110B1 (ko) 2013-11-29 2015-01-29 성균관대학교산학협력단 나노아케움 이퀴탄스 유래의 Neq HS DNA 중합효소의 돌연변이체 제조 및 이를 이용한 hot-start PCR 응용
WO2015085230A1 (en) 2013-12-06 2015-06-11 Bio-Rad Laboratories, Inc. Fusion polymerases
WO2015095689A1 (en) 2013-12-19 2015-06-25 Exact Sciences Corporation Synthetic nucleic acid control molecules
WO2015107430A2 (en) 2014-01-16 2015-07-23 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and biomarkers for detection and prognosis of cervical cancer
EP3097190A2 (en) 2014-01-22 2016-11-30 Life Technologies Corporation Novel reverse transcriptases for use in high temperature nucleic acid synthesis
EP4234722A3 (en) 2014-03-31 2023-09-20 Mayo Foundation for Medical Education and Research Detecting colorectal neoplasm
US10077453B2 (en) 2014-07-30 2018-09-18 President And Fellows Of Harvard College CAS9 proteins including ligand-dependent inteins
WO2016061111A1 (en) 2014-10-13 2016-04-21 Life Technologies Corporation Methods, kits & compositions for determining gene copy numbers
CN113981057A (zh) 2014-12-12 2022-01-28 精密科学公司 用于进行甲基化检测测定的组合物和方法
WO2016094839A2 (en) 2014-12-12 2016-06-16 Exact Sciences Corporation Compositions and methods for performing methylation detection assays
CN107208074B (zh) 2014-12-16 2021-06-15 生命技术公司 聚合酶组合物和制造与使用其的方法
US9909169B2 (en) 2014-12-17 2018-03-06 Roche Molecular Systems, Inc. Allele-specific amplification of nucleic acids using blocking oligonucleotides for wild type suppression
DK3259602T3 (da) 2015-02-20 2021-02-15 Takara Bio Usa Inc Fremgangsmåde til hurtig nøjagtig dispensering, visualisering og analyse af enkeltceller
WO2016149021A1 (en) 2015-03-13 2016-09-22 Life Technologies Corporation Methods, compositions and kits for small rna capture, detection and quantification
EP3274440A4 (en) 2015-03-27 2019-03-06 Exact Sciences Corporation PROOF OF DISEASES OF THE DISHES
CN104845967B (zh) 2015-04-15 2020-12-11 苏州新海生物科技股份有限公司 寡聚核苷酸片段及使用其的选择性扩增目标核酸序列变异体的方法及应用
ES2961374T3 (es) 2015-04-24 2024-03-11 Atila Biosystems Incorporated Amplificación con cebadores de composición de nucleótidos limitada
ES2759477T3 (es) 2015-05-29 2020-05-11 Hoffmann La Roche Un procedimiento de inactivación de microbios por anhídrido citracónico
USD938023S1 (en) 2015-09-02 2021-12-07 Certa Dose, Inc. Drug delivery syringe
GB201518655D0 (en) 2015-10-21 2015-12-02 Olink Ab Method for generating proximity probes
EP3365357B1 (en) 2015-10-23 2024-02-14 President and Fellows of Harvard College Evolved cas9 proteins for gene editing
AU2016343937B2 (en) 2015-10-30 2023-01-19 Exact Sciences Corporation Multiplex amplification detection assay and isolation and detection of DNA from plasma
CN116144626A (zh) 2016-01-13 2023-05-23 新英格兰生物实验室公司 T7 rna聚合酶的热稳定变体
LT3402880T (lt) 2016-01-15 2024-03-12 Thermo Fisher Scientific Baltics Uab Termofiliniai dnr polimerazės mutantai
PL3408408T3 (pl) 2016-01-27 2019-09-30 Devyser Holding Ab Selektywna amplifikacja pożądanych regionów kwasów nukleinowych w sekwencji stanowiącej cel
WO2017155858A1 (en) 2016-03-07 2017-09-14 Insilixa, Inc. Nucleic acid sequence identification using solid-phase cyclic single base extension
EP3440221A1 (en) 2016-04-06 2019-02-13 Life Technologies Corporation Compositions, methods, and kits for synthesis and detection of nucleic acids
CA3022911A1 (en) 2016-05-05 2017-11-09 Exact Sciences Development Company, Llc Detection of lung neoplasia by analysis of methylated dna
US20170321286A1 (en) 2016-05-05 2017-11-09 Exact Sciences Corporation Detection of lung neoplasia by amplification of rna sequences
EP3454924A4 (en) 2016-05-11 2020-04-15 Certa Dose, Inc. RADIOLOGICAL DOSING SYSTEM AND METHOD
EP3464596A1 (en) 2016-06-07 2019-04-10 Cepheid Thermostable polymerase inhibitor compositions and methods
WO2017218938A1 (en) 2016-06-16 2017-12-21 Life Technologies Corporation Novel compositions, methods and kits for microorganism detection
WO2017218777A1 (en) 2016-06-17 2017-12-21 California Institute Of Technology Nucleic acid reactions and related methods and compositions
CN109328235A (zh) * 2016-06-23 2019-02-12 国立研究开发法人理化学研究所 一步逆转录模板转换pcr
FR3053968A1 (fr) * 2016-07-13 2018-01-19 Biomerieux Reactifs pour la protection reversible de molecules biologiques
US11208680B2 (en) 2016-07-19 2021-12-28 Exact Sciences Development Company, Llc Nucleic acid control molecules from non-human organisms
EP3978624A1 (en) 2016-07-19 2022-04-06 Exact Sciences Corporation Methylated control dna
US11460405B2 (en) 2016-07-21 2022-10-04 Takara Bio Usa, Inc. Multi-Z imaging and dispensing with multi-well devices
AU2017306676B2 (en) 2016-08-03 2024-02-22 President And Fellows Of Harvard College Adenosine nucleobase editors and uses thereof
AU2017308889B2 (en) 2016-08-09 2023-11-09 President And Fellows Of Harvard College Programmable Cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof
US11542509B2 (en) 2016-08-24 2023-01-03 President And Fellows Of Harvard College Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing
US11613777B2 (en) 2016-08-26 2023-03-28 Life Technologies Corporation Nucleic acid extraction and amplification controls and methods of use thereof
US10858699B2 (en) 2016-08-30 2020-12-08 Integrated Dna Technologies, Inc. Cleavable hairpin primers
CN116064795A (zh) 2016-09-02 2023-05-05 梅约医学教育与研究基金会 确定差异甲基化区域的甲基化状态的方法和试剂盒
SG11201903089RA (en) 2016-10-14 2019-05-30 Harvard College Aav delivery of nucleobase editors
WO2018119359A1 (en) 2016-12-23 2018-06-28 President And Fellows Of Harvard College Editing of ccr5 receptor gene to protect against hiv infection
WO2018127786A1 (en) 2017-01-06 2018-07-12 Oslo Universitetssykehus Hf Compositions and methods for determining a treatment course of action
EP3574110A4 (en) 2017-01-27 2021-01-13 Exact Sciences Development Company, LLC DETECTION OF COLUMN NEOPLASIA BY ANALYSIS OF METHYLATED DNA
WO2018148511A1 (en) 2017-02-10 2018-08-16 Zymergen Inc. A modular universal plasmid design strategy for the assembly and editing of multiple dna constructs for multiple hosts
WO2018162516A1 (en) 2017-03-08 2018-09-13 Etablissement Francais Du Sang Rhd gene allele associated with a weak d phenotype and its uses
WO2018165504A1 (en) 2017-03-09 2018-09-13 President And Fellows Of Harvard College Suppression of pain by gene editing
US11542496B2 (en) 2017-03-10 2023-01-03 President And Fellows Of Harvard College Cytosine to guanine base editor
IL306092A (en) 2017-03-23 2023-11-01 Harvard College Nucleic base editors that include nucleic acid programmable DNA binding proteins
WO2018209320A1 (en) 2017-05-12 2018-11-15 President And Fellows Of Harvard College Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation
CN107312762B (zh) * 2017-06-23 2020-08-11 苏州点晶生物科技有限公司 一种化学修饰ung酶及其修饰方法和应用
WO2019002178A1 (en) 2017-06-26 2019-01-03 Thermo Fisher Scientific Baltics Uab DNA MUTANTS THERMOPHILIC POLYMERASES
JP2020534795A (ja) 2017-07-28 2020-12-03 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ ファージによって支援される連続的進化(pace)を用いて塩基編集因子を進化させるための方法および組成物
USD846383S1 (en) 2017-08-10 2019-04-23 Certa Dose, Inc. Carton
WO2019139645A2 (en) 2017-08-30 2019-07-18 President And Fellows Of Harvard College High efficiency base editors comprising gam
US11795443B2 (en) 2017-10-16 2023-10-24 The Broad Institute, Inc. Uses of adenosine base editors
JP2021502825A (ja) 2017-11-13 2021-02-04 ライフ テクノロジーズ コーポレイション 尿路微生物検出のための組成物、方法、およびキット
US10648025B2 (en) 2017-12-13 2020-05-12 Exact Sciences Development Company, Llc Multiplex amplification detection assay II
EP3768832B1 (en) 2018-03-21 2023-11-29 F. Hoffmann-La Roche AG Dna polymerases for efficient and effective incorporation of methylated-dntps
US11712522B2 (en) 2018-05-01 2023-08-01 CD Acquistions, LLC System and method for sequential delivery of measured doses of medication
US11679204B2 (en) 2018-05-17 2023-06-20 Cd Acquisitions, Llc Syringe holder for medication dosing
JP2021533773A (ja) 2018-08-15 2021-12-09 ザイマージェン インコーポレイテッド ハイスループット代謝操作におけるCRISPRiの適用
US11408030B2 (en) 2018-09-10 2022-08-09 Andy Madrid Test for detecting Alzheimer's disease
WO2020053327A1 (en) 2018-09-13 2020-03-19 F. Hoffmann-La Roche Ag Mutant dna polymerase(s) with improved strand displacement ability
US20220017966A1 (en) 2018-11-16 2022-01-20 Oslo Universitetssykehus Hf Methods and compositions for characterizing bladder cancer
USD943737S1 (en) 2019-01-22 2022-02-15 Certa Dose, Inc. Overdose resistant drug delivery syringe
EP3937780A4 (en) 2019-03-14 2022-12-07 InSilixa, Inc. METHODS AND SYSTEMS FOR TIMED FLUORESCENCE-BASED DETECTION
JP2022526908A (ja) 2019-03-19 2022-05-27 ザ ブロード インスティテュート,インコーポレーテッド 編集ヌクレオチド配列を編集するための方法および組成物
CN110283801A (zh) * 2019-07-16 2019-09-27 遵义医科大学珠海校区 一种dna聚合酶的化学修饰方法
JP2022553575A (ja) 2019-10-31 2022-12-23 マヨ ファウンデーション フォア メディカル エデュケーション アンド リサーチ 卵巣癌の検出
US20220389497A1 (en) 2019-11-04 2022-12-08 Mirnax Biosens, S.L. Bivalent reverse primer
EP3901286A1 (en) 2020-04-24 2021-10-27 Mirnax Biosens, S.L. Bivalent reverse primer
BR112022016493A2 (pt) 2020-02-18 2022-10-25 Life Technologies Corp Composições, kits e métodos para detecção de sequências virais
AU2021267940A1 (en) 2020-05-08 2022-12-08 President And Fellows Of Harvard College Methods and compositions for simultaneous editing of both strands of a target double-stranded nucleotide sequence
EP4157856A2 (en) 2020-05-26 2023-04-05 Qiagen Beverly, LLC Polymerase enzyme
JP2023539128A (ja) 2020-08-19 2023-09-13 マヨ ファウンデーション フォア メディカル エデュケーション アンド リサーチ 非ホジキンリンパ腫の検出
JP2023543803A (ja) 2020-09-24 2023-10-18 ザ ブロード インスティテュート,インコーポレーテッド プライム編集ガイドrna、その組成物、及びその使用方法
CN112359031A (zh) * 2020-11-16 2021-02-12 北京丹大生物技术有限公司 一种热启动dna聚合酶及其制备方法和应用
JP2024503437A (ja) 2021-01-11 2024-01-25 ザ ブロード インスティテュート,インコーポレーテッド プライム編集効率及び精度を向上させるためのプライム編集因子バリアント、構築物、及び方法
EP4278002A2 (en) 2021-01-18 2023-11-22 Life Technologies Corporation Compositions, kits and methods for direct amplification from crude biological samples
WO2022159874A1 (en) 2021-01-25 2022-07-28 Life Technologies Corporation Compositions, kits and methods for detection of viral variant sequences
WO2022203748A1 (en) 2021-03-23 2022-09-29 Life Technologies Corporation Compositions, kits, and methods for variant-resistant detection of target viral sequences
WO2023014729A1 (en) 2021-08-02 2023-02-09 Life Technologies Corporation Compositions, kits, and methods for detection of nucleic acid sequence loads
WO2023021330A1 (en) 2021-08-16 2023-02-23 University Of Oslo Compositions and methods for determining a treatment course of action
WO2023069604A1 (en) 2021-10-20 2023-04-27 Life Technologies Corporation Compositions, kits, and methods for quantification of nucleic acid sequences using an internal quantitative standard
WO2023076898A1 (en) 2021-10-25 2023-05-04 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for editing a genome with prime editing and a recombinase
CN116410951A (zh) * 2021-12-30 2023-07-11 广州达安基因股份有限公司 一种提高化学修饰的Taq酶的活性的方法和经该方法处理的Taq酶
WO2024006927A1 (en) 2022-06-29 2024-01-04 Life Technologies Corporation Compositions, kits, and methods for detecting nucleic acids using intra-channel multiplexing
WO2024006924A1 (en) 2022-06-29 2024-01-04 Life Technologies Corporation Systems and methods for analyte detection from multiplexed assays
CN116024320A (zh) * 2022-07-13 2023-04-28 上海翔琼生物技术有限公司 一种用于检测核酸的荧光定量pcr方法
WO2024054925A1 (en) 2022-09-09 2024-03-14 Life Technologies Corporation Compositions, kits and methods for detection of viral variant sequences

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5374553A (en) * 1986-08-22 1994-12-20 Hoffmann-La Roche Inc. DNA encoding a thermostable nucleic acid polymerase enzyme from thermotoga maritima
WO1989002916A1 (en) * 1987-09-28 1989-04-06 Novo-Nordisk A/S Method for immobilizing lipase
US5108892A (en) * 1989-08-03 1992-04-28 Promega Corporation Method of using a taq dna polymerase without 5'-3'-exonuclease activity
AU646430B2 (en) * 1989-12-22 1994-02-24 F. Hoffmann-La Roche Ag Recombinant expression vectors and purification methods for thermus thermophilus DNA polymerase
JP2709311B2 (ja) * 1990-09-28 1998-02-04 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アクチェンゲゼルシャフト 熱安定性dnaポリメラーゼの5→3′のエキソヌクレアーゼ突然変異
FR2674248B1 (fr) * 1991-03-19 1993-06-11 Elf Aquitaine Procede de modification chimique des proteines.
US5338671A (en) * 1992-10-07 1994-08-16 Eastman Kodak Company DNA amplification with thermostable DNA polymerase and polymerase inhibiting antibody
EP0655506B1 (en) * 1994-10-17 1996-09-18 President And Fellows Of Harvard College DNA polymerases having modified nucleotide binding site for DNA sequencing

Also Published As

Publication number Publication date
HUP9602289A2 (en) 1997-05-28
HUP9602289A3 (en) 2000-07-28
CA2184105C (en) 1999-07-20
NO963541D0 (no) 1996-08-23
JP3026554B2 (ja) 2000-03-27
HU9602289D0 (en) 1996-10-28
DK0771870T3 (da) 1999-09-20
US5677152A (en) 1997-10-14
CN1282741C (zh) 2006-11-01
DE69601488D1 (de) 1999-03-18
HU221750B1 (hu) 2002-12-28
PL185711B1 (pl) 2003-07-31
EP0771870A1 (en) 1997-05-07
CZ289237B6 (cs) 2001-12-12
ATE176499T1 (de) 1999-02-15
NO963541L (no) 1997-02-26
CN1151437A (zh) 1997-06-11
AU689047B2 (en) 1998-03-19
CA2184105A1 (en) 1997-02-26
EP0771870B1 (en) 1999-02-03
PL315803A1 (en) 1997-03-03
US5773258A (en) 1998-06-30
AU6217996A (en) 1997-03-13
ES2101668T3 (es) 1999-07-01
BR9603563A (pt) 1998-05-19
DE771870T1 (de) 1997-10-09
DE69601488T2 (de) 1999-09-30
IL119088A (en) 2000-07-16
RU2174556C2 (ru) 2001-10-10
NO323552B1 (no) 2007-06-11
KR100221097B1 (ko) 1999-10-01
MX9603608A (es) 1997-03-29
IL119088A0 (en) 1996-11-14
ES2101668T1 (es) 1997-07-16
KR970010965A (ko) 1997-03-27
JPH09103292A (ja) 1997-04-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ249596A3 (en) Amplification method of nucleic acids
JP3969581B2 (ja) インビトロdna合成および増幅のための可逆的に修飾された熱安定酵素
US6183998B1 (en) Method for reversible modification of thermostable enzymes
EP2069487B1 (en) Zwitterionic detergents for the storage and use of dna polymerases
JP3535812B2 (ja) Dna分子合成を目的とした熱サイクル反応における1種類以上の酵素活性の連続的活性化
JP5022383B2 (ja) マグネシウム封鎖によるpcrホットスタート
WO2007123742A2 (en) Methods and compositions for increasing the fidelity of multiplex nucleic acid assembly
US20160264950A1 (en) Reversibly inactivated thermostable reverse transcriptases, compositions and methods for use
US9353311B2 (en) Composite visible colorant and method for quantitative amplification
US6399304B1 (en) Sequential activation of one or more enzymatic activities within a thermocycling reaction for synthesizing DNA molecules
Gill et al. Interaction of the family-B DNA polymerase from the archaeon Pyrococcus furiosus with deaminated bases
US8129150B2 (en) Mixture of reversibly inhibited enzymes
JP2002528121A5 (ja) 高忠実度の熱安定性リガーゼおよびその使用
US20160032262A1 (en) Methods and Compositions for PCR
KR20230124946A (ko) 고-충실도 DNA 폴리머라아제를 이용한 rhPCR 기반 앰플리콘시퀀싱에서 프라이머 이량체 및 오프-타겟 증폭을 감소시키는 RNAse H2 돌연변이체

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MK4A Patent expired

Effective date: 20160823