WO2016024549A1 - リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び製造の簡略化方法 - Google Patents

リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び製造の簡略化方法 Download PDF

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activity measurement
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直美 飯塚
篤 引地
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    • C12Q1/44Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving esterase
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    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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    • C12Y301/01Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
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    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
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    • G01N2333/916Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1), e.g. phosphatases (3.1.3), phospholipases C or phospholipases D (3.1.4)
    • G01N2333/918Carboxylic ester hydrolases (3.1.1)
    • G01N2333/92Triglyceride splitting, e.g. by means of lipase

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a substrate solution for use in measurement of lipase activity in a sample, and relates to a method for producing the substrate solution more easily than conventional methods.
  • the present invention also relates to a method for producing a substrate solution for use in measuring a lipase activity in a sample, which can simplify the production of the substrate solution.
  • the present invention is useful in the life science field such as clinical examination and the chemical field such as analytical chemistry.
  • lipase activity in serum or plasma increases in pancreatic diseases such as acute pancreatitis, chronic pancreatitis or pancreatic cancer, it is useful as a marker for these pancreatitis and the like.
  • This lipase hydrolyzes the ester bond at the ⁇ -position (position 1 and position 3) of triglyceride (TG), in which three molecules of long-chain fatty acids are ester-bonded to glycerol, to thereby yield two molecules of fatty acid and one molecule of ⁇ -.
  • TG triglyceride
  • This molecule of ⁇ -monoglyceride is isomerized into ⁇ -form, which is hydrolyzed to glycerol and fatty acid by the action of lipase.
  • Non-Patent Document 1 and Non-Patent Document 2 The following methods have been known as methods for measuring lipase activity in serum or plasma (see Non-Patent Document 1 and Non-Patent Document 2).
  • an olive oil emulsion is used as a lipase substrate, this olive oil emulsion is brought into contact with a serum sample and the like, reacted at 37 ° C. for 24 hours, and then the fatty acid produced by the hydrolysis reaction with lipase is titrated with alkali. Crandall's method was known. However, this method is a method in which the reaction time is long and the inactivation of the lipase to be measured and the reaction inhibition are remarkable.
  • the emulsion of triolein or olive oil is used as a lipase substrate, and the emulsion of triolein or olive oil is brought into contact with a serum sample and reacted to cause turbidity of the reaction solution caused by the hydrolysis reaction of the emulsion micelle by lipase.
  • the Vogel-Zieve method for measuring lipase activity from a decrease in degree and this variant were known. However, these methods are disadvantageous in that it is difficult to produce a uniform and stable emulsion due to inhibition by serum proteins and interference of aggregates due to rheumatoid factors, and poor reproducibility.
  • BALB 2,3-dimercapto-1-propanol tributyric acid
  • BALB is used as a lipase substrate, and this BALB is brought into contact with a serum sample or the like and reacted to produce BAL (2,3 produced by a hydrolysis reaction with lipase).
  • a method for measuring lipase activity by reacting -dimercapto-1-propanol) with DTNB (5,5'-dithiobis-2-nitrobenzoic acid) and measuring the yellow color of the resulting TNB anion at 412 nm. It was known.
  • this method is subject to interference in the presence of a high concentration of liver esterase, it is affected by the liver esterase mixed in from the measurement reagent of other measurement items via the reaction cell or nozzle (probe).
  • This method has a disadvantage that an error occurs in the measured value.
  • 1,2-dilinoleoylglycerol which is a natural substrate, is used as a lipase substrate, and this 1,2-dilinoleoylglycerol is brought into contact with a serum sample and reacted to produce a lipase hydrolysis reaction.
  • Linoleic acid is a cofactor of acyl-CoA synthetase, acyl-CoA oxidase, enoyl-CoA hydratase-3-hydroxyacyl-CoA dehydrogenase-3-ketoacyl-CoA thiolase complex enzyme in the presence of coenzyme A, NAD + and ATP
  • a method for measuring lipase activity by measuring the rate of formation of NADH that occurs upon undergoing ⁇ -oxidation by action.
  • this method is also subject to interference in the presence of a high concentration of liver esterase, and is therefore affected by liver esterase mixed from the measurement reagent of other measurement items via the reaction cell or nozzle (probe).
  • This method has a disadvantage that an error occurs in the measured value.
  • 1,2-o-dilauryl-rac-glycerol and glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester are produced by a hydrolysis reaction catalyzed by lipase.
  • This glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is unstable and readily hydrolyzes to yield 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6′-methylresorufin produced is measured by measuring the absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample can be determined.
  • This method of measuring lipase activity using DGGMR as a lipase substrate is a simple method in which the measurement proceeds in a series of reactions, and the influence of esterase mixed in from other measurement reagents via a reaction cell or nozzle (probe) is considered. This method has the advantage of being difficult to receive.
  • the lipase contained in serum or plasma acts most efficiently at the water-oil interface of the emulsified triglyceride substrate, and the reaction rate of this lipase is related to the surface area of the dispersed substrate.
  • Preparation of a substrate composed of stable and uniform micelle particles is considered to be important for activity measurement (see Non-Patent Document 2). Therefore, conventionally, when producing a substrate solution for use in measuring lipase activity (substrate solution for measuring lipase activity), it becomes an emulsified (emulsified) substrate solution composed of stable and uniform micelle particles.
  • the substrate is mixed with an aqueous solution containing a surfactant, the substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol, or the substrate-containing solution is dropped dropwise. It is cumbersome or skillful, such as mixing into a solution, spraying and injecting a substrate-containing solution into the solution, stirring the substrate solution at a high speed with a powerful mixer, or applying ultrasonic waves to the substrate solution. Special treatment such as, or the like, or a special device or instrument.
  • a non-water-soluble substance such as triglyceride as a lipase substrate
  • a non-ionic surfactant heat it with stirring, and once raise it to a temperature higher than the cloud point of the non-ionic surfactant.
  • a method for producing a transparent solubilized aqueous solution of a water-insoluble substance, which is cooled to below the cloud point while continuing stirring, has been disclosed (see Patent Document 2).
  • an aqueous solution containing a nonionic surfactant is heated above the cloud point of the nonionic surfactant, and triglyceride is added thereto and dissolved while stirring to make the triglyceride uniform and soluble (transparent).
  • a transparent triglyceride substrate solution for lipase measurement characterized in that an aqueous solution is prepared and used as a lipase substrate and, if necessary, a lipase function promoting substance, is disclosed (see Patent Document 3).
  • a method for producing a substrate solution for use in measurement of lipase activity in a specimen wherein a substrate such as triglyceride and a surfactant such as a nonionic surfactant having an HLB of 10 to 16 are mixed.
  • the geometric average diameter of the micelle diameter of the substrate solution is 0.17 ⁇ m to 0.38 ⁇ m, characterized in that a water-soluble organic solvent such as methanol or ethanol is mixed at the same time, and vibration such as ultrasonic waves is applied as a mixing method
  • a method for producing a substrate solution or the like having a micelle diameter distribution with a geometric standard deviation of 0.25 ⁇ m or less has been disclosed (see Patent Document 4).
  • Example 29 of Patent Document 1 or "Reagent 2: 0.6 g of lipase chromogenic substrate (for example, 1,2-o-dilauryl-rac-) Glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) ester) was dissolved in 9 ml of an appropriate alcohol (eg ethanol). An emulsifier (eg, Brij 35 or Triton X-114) was added to the solution, and the resulting oil phase was sucked into a syringe needle and thin cannula (inner diameter 0.15-1.0 mm under high pressure). ) And extruded into an aqueous solution under stirring.] [Example 3 of Patent Document 5] and alcohol as an organic solvent, and a substrate-containing liquid was injected into the solution (injection under high pressure). It needed to be processed.
  • lipase chromogenic substrate for example, 1,2-o-dilauryl-rac-) Glycero-3-glutaric acid- (6′-methylre
  • a lipase analysis substrate solution containing a lipase substrate such as DGGMR and at least one lipase substrate solubilizing agent selected from an anionic surfactant, lecithin and cholesterol ester has an activity against the substrate. It was disclosed as having an effect that it can be highly solubilized with almost no decrease (see Patent Document 6).
  • a lipase substrate solubilizing agent described above when 0.1% by weight of a nonionic surfactant is added and used, “there is turbidity, which hinders measurement. It is described that the result was “Yes”.
  • a lipase substrate solution for enzyme activity measurement characterized by containing at least a lipase substrate such as DGGMR and 1,2-diphthalanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine as a lipase substrate solubilizing agent, Therefore, it has been disclosed that the lipase activity can be measured with high accuracy and the storage stability is high (see Patent Document 7).
  • the manufacture of the lipase activity measurement substrate solution requires a special treatment such as complicated or skill, or requires a special device or instrument. there were.
  • the subject of the present invention is a special treatment such as complicated or skill required in a method for producing a lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR as a lipase activity measurement substrate, or a special device or instrument. It is an object of the present invention to provide a method for producing a substrate solution for lipase activity measurement that does not require the above-mentioned substances. Another object of the present invention is to provide a special treatment, such as complicated or skillful, or a special apparatus or instrument in a method for producing a lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR as a lipase activity measurement substrate. It is an object of the present invention to provide a simplified method for producing a substrate solution for lipase activity measurement that does not require the above-mentioned materials.
  • the inventors of the present invention have repeatedly studied a method for producing a lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR as a lipase activity measurement substrate.
  • DGGMR and a non-reactive polyether-modified type modified silicone oil of a side chain type have been studied.
  • the polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate [hereinafter sometimes referred to as “the present polymer compound”] is mixed, and all or part of the mixture is mixed with water or an aqueous solution. The inventors have found that this can be solved, and have completed the present invention.
  • the gist of the present invention is as follows. [1] To be used for measurement of lipase activity in a sample containing 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester as a lipase activity measurement substrate A method for producing a substrate solution of (1) A step of preparing a mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and a side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil or polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate; and (2) A method for producing a substrate solution for measuring lipase activity, comprising the step of mixing all or part of the mixture of (1) with water or an aqueous solution.
  • the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity according to the present invention uses DGGMR as a substrate for measuring lipase activity, without requiring special treatment such as complicated or skillful, or special equipment or instruments. It is a method which can manufacture the substrate solution for lipase activity measurement containing. Further, the simplified method for producing the substrate solution for measuring lipase activity according to the present invention does not require any special treatment such as complicated or skill required, or special equipment or equipment, etc. This is a method that can simplify the production of a lipase activity measurement substrate solution to be included as an activity measurement substrate.
  • DGGMR can be used for lipase activity measurement in a simple, short time and low cost. It became possible to produce a substrate solution for lipase activity measurement containing as a substrate.
  • the method for producing the lipase activity measurement substrate solution and the method for simplifying the production of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention no special treatment such as complicated or skill is required, and thus the production was performed.
  • the possibility that the substrate solution for lipase activity measurement will become a non-standard defective product is reduced, and the substrate solution for lipase activity measurement that can obtain accurate measurement results (measured values) can be reliably and inexpensively provided to medical institutions, etc. Can now be offered.
  • Method for producing substrate solution for lipase activity measurement General
  • the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity according to the present invention comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR].
  • a method for producing a substrate solution for use in measurement of lipase activity in a sample, which is contained as a lipase activity measurement substrate (1) A step of preparing a mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and a side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil or polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate; and (2) A step of mixing all or part of the mixture of (1) with water or an aqueous solution.
  • the manufacturing method of the substrate solution for lipase activity measurement of this invention includes this process of (1) and (2), it is a special process such as complicated or requiring skill, or a special apparatus or instrument.
  • a substrate solution for measuring lipase activity containing DGGMR as a substrate for measuring lipase activity can be produced without the need for such a substance.
  • Embodiment using side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil comprises a side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil. It includes the following embodiments using silicone oil.
  • Substrate for use in measurement of lipase activity in a sample comprising “1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester as a lipase activity measurement substrate”
  • a method for producing a solution comprising: (1) A step of preparing a mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and a side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil; and (2) All or one of the mixture of (1)
  • the method for producing a lipase activity measurement substrate solution of the present invention includes the following aspects using a polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate.
  • Substrate for use in measurement of lipase activity in a sample comprising “1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester as a lipase activity measurement substrate”
  • a method for producing a solution comprising: (1) A step of preparing a mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and a polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate; and (2) all or a part of the mixture of (1) above with water or an aqueous solution.
  • a method for producing a substrate solution for lipase activity measurement which comprises the step of mixing.
  • the lipase is not particularly limited as long as it has an activity as a lipase, that is, a lipase activity.
  • the lipase for example, two molecules of fatty acid are obtained by hydrolyzing the ester bond at the ⁇ -position (position 1 and position 3) of triglyceride (TG) in which three molecules of long-chain fatty acid are ester-bonded to glycerol.
  • pancreatic lipase [EC 3.1.1.3], which catalyzes a reaction for producing one molecule of ⁇ -monoglyceride.
  • the present invention is suitable for measuring the activity of lipase present in body fluid, organ or tissue, more suitable for measuring the activity of lipase present in body fluid, and more suitable for measuring the activity of lipase present in blood, serum or plasma. And is particularly suitable for measuring the activity of lipase present in serum or plasma.
  • the present invention is also suitable for measuring pancreatic lipase activity.
  • the sample for measuring the activity of lipase is not particularly limited as long as it is a sample that may contain the lipase, and may contain the lipase.
  • the sample include a sample derived from a human, an animal, or a plant.
  • the sample derived from a human or animal is not particularly limited, for example, body fluid such as blood, serum, plasma, urine, semen, spinal fluid, saliva, sweat, tears, ascites, or amniotic fluid of human or animal; Excrements such as: organs such as pancreas, liver or stomach; tissues such as hair, skin, nails, muscles or nerves; or cells.
  • body fluid such as blood, serum, plasma, urine, semen, spinal fluid, saliva, sweat, tears, ascites, or amniotic fluid of human or animal
  • Excrements such as: organs such as pancreas, liver or stomach; tissues such as hair, skin, nails, muscles or nerves; or cells.
  • the present invention is suitable when a sample derived from a human or an animal is used as a sample, and particularly suitable when a sample derived from a human is used as a sample.
  • the present invention is suitable when a body fluid, organ or tissue is used as a sample, more preferably when a body fluid is used as a sample, and more preferable when blood, serum or plasma is used as a sample. This is particularly suitable when plasma is used as a sample.
  • the sample since it is suitable when it is a liquid, if the sample is not a liquid, pretreatment such as extraction or solubilization may be performed according to a known method to obtain a liquid sample. Good. Further, the sample may be diluted or concentrated as necessary.
  • a lipase substrate for use in measuring the activity of lipase contained in a sample that is, a substrate for measuring lipase activity is 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3- Glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR].
  • DGGMR which is a substrate for measuring lipase activity
  • DGGMR which is a substrate for measuring lipase activity
  • 1,2-o-dilauryl-- is obtained from DGGMR by a hydrolysis reaction catalyzed by the lipase.
  • rac-glycerol and glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester are formed.
  • This glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is unstable and readily hydrolyzes to yield 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6′-methylresorufin produced can be measured by measuring the absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample can be determined.
  • DGGMR is commercially available from Roche Diagnostics Inc. [Japan] or Sigma Aldrich Japan LLC [Japan].
  • a lipase activity measurement substrate [DGGMR] and a side chain non-reactive polyether-modified type are used.
  • the silicone compound is a polymer compound in which a siloxane bond [—Si—O—Si—] is a main chain and an organic group such as a methyl group [CH 3 —] is bonded to a silicon atom as a side chain.
  • the linear silicone compound is silicone oil.
  • the modified silicone oil is composed of a part of silicon atoms of a linear dimethyl silicone compound [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—] m—Si (CH 3 ) 3 ]. It is a compound in which an organic group is introduced.
  • This modified silicone oil includes various kinds of organic compounds on a part of polysiloxane side chain, one end of polysiloxane, both ends of polysiloxane, or part of polysiloxane side chain and both ends. There are silicone oils with introduced groups.
  • a silicone oil in which various organic groups are introduced into a part of the side chain of polysiloxane is a side chain type modified silicone oil [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—. ] M- [Si (CH 3 ) (organic group) -O-] n-Si (CH 3 ) 3 ].
  • the modified silicone oil is classified into a reactive silicone oil and a non-reactive silicone oil depending on the nature of the organic group to be introduced.
  • non-reactive modified silicone oil polyether modified type, aralkyl modified type, fluoroalkyl modified type, long chain alkyl modified type, higher fatty acid ester modified type, higher fatty acid amide modified type, depending on the introduced organic group
  • polyether / long-chain alkyl / aralkyl-modified type, long-chain alkyl / aralkyl-modified type, and phenyl-modified type as non-reactive modified silicone oil, polyether modified type, aralkyl modified type, fluoroalkyl modified type, long chain alkyl modified type, higher fatty acid ester modified type, higher fatty acid amide modified type, depending on the introduced organic group
  • polyether / long-chain alkyl / aralkyl-modified type, long-chain alkyl / aralkyl-modified type, and phenyl-modified type as non-reactive modified silicone oil.
  • a side-chain non-reactive modified silicone oil [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—] m- [Si (CH 3 ) (organic group) —O—] n-Si (CH 3 ) 3 ] is, for example, a polyether-modified type [organic group: —R (C 2 H 4 O) a (C 3 H 6 O) b R ′] , Polyether, long chain alkyl, aralkyl-modified type [organic group: —R (C 2 H 4 O) a (C 3 H 6 O) b R ′, —C a H 2a + 1 , —CH 2 —CH ( CH 3 ) —C 6 H 5 ], aralkyl-modified type [organic group: —CH 2 —CH (CH 3 ) —C 6 H 5 ], fluoroalkyl-modified type [organic group: —CH 2 CH
  • this side-chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—] m- [Si (CH 3 ) (Organic group) -O-] n-Si (CH 3 ) 3 ] [organic group: —R (C 2 H 4 O) a (C 3 H 6 O) b R ′] is used. (Or use a polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate.)
  • a polyoxyethylene-polyoxypropylene condensate [HO (C 2 H 4 O) a- (C 3 H 6 O) b- (C 2 H 4 O) c H] is used.
  • a side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil is used.
  • this polyoxyethylene-polyoxypropylene condensate (this POE / POP condensate), for example, polyoxyethylene (16) polyoxypropylene glycol (17) [quasi-drug raw material standard name: polyoxyethylene polyoxy Propylene glycol (16E.O.) (17P.O.)], or polyoxyethylene (20) polyoxypropylene glycol (20) [quasi-drug raw material standard name: polyoxyethylene polyoxypropylene glycol (20E.O.) .) (20P.O.)] and the like.
  • polyoxyethylene (16) polyoxypropylene glycol (17) [quasi-drug raw material standard name: polyoxyethylene polyoxy Propylene glycol (16E.O.) (17P.O.)
  • polyoxyethylene (20) polyoxypropylene glycol (20) [quasi-drug raw material standard name: polyoxyethylene polyoxypropylene glycol (20E.O.) .) (20P.O.)] and the like.
  • Examples of the POE / POP condensate include polyoxyethylene (16) polyoxypropylene glycol (17) [product name: “Pluronic L-34”, distributor: ADEKA (Japan)], or poly Oxyethylene (20) polyoxypropylene glycol (20) [Product name: “Pluronic L-44”, distributor: ADEKA Corporation (Japan)], etc. are commercially available.
  • Step of preparing a mixture by mixing a substrate for measuring lipase activity and the present polymer compound (1)
  • the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention comprises a substrate for measuring lipase activity [DGGMR], a side chain type And a step of preparing a mixture by mixing a non-reactive polyether-modified type modified silicone oil or a polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate (the present polymer compound).
  • the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is as described in “4. Lipase activity measurement substrate”.
  • the “side-chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil or polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate” (present polymer compound) is described in “5. Present polymer compound”. That's right.
  • the lipase activity measurement substrate DGGMR and the present polymer compound are mixed. Mix the coalesced compound. That is, the substrate for measuring lipase activity [DGGMR] and the present polymer compound are directly mixed.
  • the surfactant to be used was mixed with water or an aqueous solution, and then this was mixed with a substrate for measuring lipase activity.
  • the present invention is a method having a characteristic process of directly mixing DGGMR, which is a substrate for measuring lipase activity, and the present polymer compound, unlike such conventional methods.
  • one type of the polymer compound may be mixed with a lipase activity measurement substrate, or a plurality of types may be mixed with a lipase activity measurement substrate.
  • the amount of mixing the lipase activity measurement substrate is particularly It is not limited.
  • the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the present invention is the above-mentioned “step of mixing all or part of the mixture of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] and the present polymer compound with water or an aqueous solution”.
  • the substrate for measuring lipase activity After mixing with water or an aqueous solution (hereinafter sometimes referred to as “second mixing”), the substrate for measuring lipase activity in the form of emulsion consisting of stable and uniform micelle particles having a concentration of 0.05 mM or more. From the viewpoint of producing a solution of
  • the preferable concentration of the substrate for measuring lipase activity is more preferably 0.1 mM or more, particularly preferably 0.2 mM or more, for the above purpose. is there.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate is preferably 2 mM or less after the second mixing for the above purpose.
  • the preferable concentration of the lipase activity measurement substrate is more preferably 1 mM or less, and particularly preferably 0.8 mM or less, for the above purpose.
  • the preferred concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the present invention after the second mixing is as described above.
  • the mixture of the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound in the above-mentioned “step of mixing the lipase activity measurement substrate [DGGMR] and the present polymer compound to prepare a mixture” hereinafter referred to as “the lipase activity measurement substrate [DGGMR]”.
  • the amount of each of the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound in the case of “first mixing” may be determined so that the concentration of the lipase activity measurement substrate after the second mixing is as described above. It is preferable from the viewpoint of the manufacturing procedure.
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate to be mixed at the first mixing is Ws [unit: grams].
  • Vf volume after mixing water or an aqueous solution at the time of mixing
  • MWs molecular weight of the lipase activity measurement substrate
  • the mixing amount Ws [unit: grams] of the lipase activity measurement substrate to be mixed in the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate mixed at the first mixing is Ws [unit: grams]
  • the final volume after mixing water or aqueous solution at the time of 2 mixing (volume after volume-up, etc.) is Vf [unit: mL]
  • the molecular weight of the lipase activity measurement substrate is MWs
  • the concentration Cs [unit: mM] of the lipase activity measurement substrate after the second mixing can be expressed by the following formula.
  • the mixing amount Ws [unit: grams] of the lipase activity measurement substrate to be mixed in the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • the amount of mixing the present polymer compound is not particularly limited. .
  • this polymer compound in the present invention includes the water or aqueous solution in the above “step of mixing all or part of the mixture of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] and the polymer compound with water or an aqueous solution”.
  • the purpose of producing an emulsified lipase activity measuring substrate solution consisting of stable and uniform micelle particles after the mixing (second mixing) of the mixture is 0.01% (w / v) or higher Preferred from above.
  • the preferable concentration of the present polymer compound is more preferably 0.05% (w / v) or more, particularly preferably for the above purpose. It is 0.1% (w / v) or more.
  • the concentration of the present polymer compound is preferably 20% (w / v) or less after the second mixing for the above purpose.
  • the preferred concentration of the present polymer compound is more preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less, for the above purpose. is there.
  • the preferable concentration of the polymer compound in the present invention after the second mixing is as described above.
  • the mixture of the lipase activity measurement substrate and the polymer compound in the above-mentioned “step of mixing the lipase activity measurement substrate [DGGMR] and the polymer compound to prepare a mixture” (first mixing) ) may be determined in consideration of the concentration of the present polymer compound as described above after the second mixing. It is preferable in view of the manufacturing procedure.
  • the mixing amount Wp [unit: grams] of the present polymer compound to be mixed during the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • the mixing amount of the present polymer compound to be mixed at the first mixing is Wp [unit: grams]
  • the second The final volume after mixing water or aqueous solution at the time of mixing (volume after volume-up, etc.) is Vf [unit: mL]
  • A% (weight or volume) of the mixture at the first mixing is the second mixing
  • the concentration Cp [unit:% (w / v)] of the present polymer compound after the second mixing can be expressed by the following formula.
  • the mixing amount Wp (unit: gram) of the present polymer compound to be mixed during the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • the method of mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound in the present invention is: Any method may be used as long as the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound are mixed, and there is no particular limitation.
  • the lipase activity measurement substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol, the lipase activity measurement substrate-containing solution is dropped dropwise and mixed with the solution, or the lipase is mixed.
  • a solution containing a substrate for activity measurement into the solution stirring the substrate solution for measuring lipase activity at a high speed with a powerful mixer, or applying ultrasonic waves to the substrate solution for measuring lipase activity
  • No special treatment or special equipment that requires special skills or skill is required, and it may be mixed by a normal method such as stirring at a general speed using a general mixer.
  • a mixture of the substrate and the polymer compound can be prepared.
  • the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound in the present invention are mixed.
  • the temperature is not particularly limited, it is possible to carry out this step at a temperature in the vicinity of the cloud point of the present polymer compound to be used or at a temperature not higher than the temperature in the vicinity of the cloud point. This is preferable for the purpose of producing a measurement substrate solution.
  • the cloud point is a temperature at which micelles such as a surfactant cannot be formed when the temperature of an aqueous solution such as a nonionic surfactant is raised, and the aqueous solution becomes cloudy, It is different for each surfactant.
  • the temperature near the cloud point of the present polymer compound means a range of plus or minus ( ⁇ ) 25 ° C. of the cloud point temperature of the present polymer compound.
  • the temperature in the vicinity of the cloud point of the present polymer compound is preferably in the range of plus or minus ( ⁇ ) 15 ° C., more preferably in the range of plus or minus ( ⁇ ) 10 ° C.
  • a range of plus or minus ( ⁇ ) 5 ° C. is particularly preferable.
  • the modified silicone oil KF-351A has a cloud point of 52 ° C. (self-measured value)
  • KF-355A has a cloud point of 67 ° C. (self-measured value)
  • KF-6011 The cloud point of 64F (self-measured value) is KF-354L.
  • the cloud point was not reached even at 77 ° C, the upper limit of the set temperature of the constant temperature water tank used for cloud point measurement. The point is above 77 ° C.
  • the cloud point of Pluronic L-34 which is the POE / POP condensate, is 65 ° C. (self-measured value), and the cloud point of Pluronic L-44 is 67 ° C. (self-measured value). .
  • the step of preparing the mixture by mixing the substrate for measuring lipase activity and the present polymer compound is carried out in the range of plus or minus 25 ° C. of the cloud point temperature of the present polymer compound to be used from the above purpose. It is preferably carried out at a temperature below the range temperature, more preferably at a temperature in the range of plus or minus 15 ° C. of the cloud point temperature of the polymer compound used or at a temperature below this range, and the polymer used. More preferably, it is carried out at a temperature in the range of plus or minus 10 ° C. of the cloud point temperature of the compound or at a temperature below this range, and in the range of plus or minus 5 ° C. of the cloud point temperature of the polymer compound used. It is particularly preferable to carry out at a temperature or a temperature below this range.
  • this is the temperature at which the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound are mixed.
  • DDGGMR Lipase activity measurement substrate
  • the polymer compound used for the purpose of producing an emulsified lipase activity measurement substrate solution consisting of stable and uniform micelle particles Preferred from above.
  • the step of mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound to prepare a mixture is more preferably performed at 2 ° C. or more, and more preferably at 5 ° C. or more, for the above purpose. It is particularly preferable to carry out at 10 ° C or higher.
  • the time for mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound is not particularly limited, and may be mixed, for example, for several hours. Usually, it may be performed within 10 minutes.
  • Step of Mixing Lipase Activity Measurement Substrate and Polymer Compound Mixture with Water or Aqueous Solution includes a “lipase activity measurement substrate (DGGMR) and a side All or part of the mixture prepared in “Step of preparing mixture by mixing chain-type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil or polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate (this polymer compound)” Mixing with water or an aqueous solution.
  • DDGGMR lipase activity measurement substrate
  • the lipase activity measurement substrate is as described in “4. Lipase activity measurement substrate”.
  • the polymer compound is as described in the above section “5. Polymer compound”.
  • the preparation of the mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound is as described in “6. Step of preparing the mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound”. It is.
  • the water is not particularly limited, and examples thereof include pure water, distilled water, and purified water.
  • the aqueous solution is not particularly limited as long as water is used as a solvent.
  • a lipase activator for example, at least one selected from the group consisting of a lipase activator, a lipase activator, a colipase, and a buffer.
  • examples thereof include aqueous solutions containing the like.
  • the lipase activator that can be contained in the aqueous solution is not particularly limited as long as it is a substance capable of activating lipase.
  • bile Examples thereof include acids or salts thereof.
  • bile acids examples include deoxycholic acid, taurodeoxycholic acid, glycodeoxycholic acid, cholic acid, lithocholic acid, glycocholic acid, taurocholic acid, chenodeoxycholic acid, ursodeoxycholic acid, 7-oxolithocholic acid, 12 -Oxolithocholic acid, 12-oxochenodeoxycholic acid, 7-oxodeoxycholic acid, hyocholic acid, hyodeoxycholic acid, dehydrocholic acid, or cholic acid derivatives.
  • Examples of the bile acid salt include salts of bile acids and alkali metals or alkaline earth metals, ammonium salts, and the like.
  • Examples of the alkali metal include potassium, sodium, and lithium, and examples of the alkaline earth metal include magnesium and calcium.
  • bile acid or a salt thereof is preferable from the viewpoint of its lipase activation ability, ability to form an interface comprising a substrate for measuring lipase activity, water solubility, and cost.
  • taurodeoxycholic acid is preferable in that the lipase activity measurement substrate can be dissolved in a stable acidic region, and deoxycholic acid is preferable from the viewpoint of cost.
  • this bile acid taurodeoxycholic acid is particularly preferable.
  • the bile acid salt is preferably a bile acid and alkali metal salt, more preferably a bile acid potassium salt or sodium salt, and particularly preferably a bile acid sodium salt.
  • the salt of bile acid is preferably a salt of an alkali metal (such as potassium or sodium) of deoxycholic acid or taurodeoxycholic acid, more preferably a salt of an alkali metal (such as potassium or sodium) of taurodeoxycholic acid,
  • an alkali metal such as potassium or sodium
  • taurodeoxycholic acid is particularly preferred.
  • the lipase activator is the above-mentioned “mixing of all or part of the mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution” (second mixing) ),
  • the concentration is preferably 0.2% (w / v) or more.
  • the preferable concentration of the lipase activator is more preferably 0.4% (w / v) or more, and particularly preferably 1% (w / v) or more.
  • the concentration of the lipase activator is preferably 20% (w / v) or less after the second mixing.
  • the preferable concentration of the lipase activator is more preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less.
  • the preferred concentration of the lipase activator after the second mixing in the present invention is as described above.
  • the mixing ratio of the above-mentioned “mixture of the lipase activity measuring substrate and the present polymer compound” and the aqueous solution is considered so that the concentration of the lipase activator after the second mixing becomes the above-mentioned concentration.
  • the lipase activator that can be contained in the aqueous solution is not particularly limited as long as it is a substance capable of activating lipase.
  • An earth metal ion or a salt thereof can be used.
  • alkaline earth metal ion or salt thereof examples include beryllium ion or beryllium salt, magnesium ion or magnesium salt, or calcium ion or calcium salt.
  • Examples of the calcium salt include a water-soluble calcium salt, and more specifically, a salt made of a monovalent or divalent anion and calcium ion and water-soluble. Can be mentioned.
  • anion examples include halogen ions, acid groups made of organic compounds, and acid groups made of other inorganic compounds.
  • halogen ion a fluorine ion, a chlorine ion, etc. can be mentioned, for example.
  • Examples of the acid group made of an organic compound include acetate ion, citrate ion, or gluconate ion.
  • Examples of acid groups made of other inorganic compounds include sulfate ions, phosphate ions, or carbonate ions.
  • the lipase activator is preferably an alkaline earth metal ion or a salt thereof.
  • a calcium ion or a calcium salt is preferable from the point of following (i) and (ii).
  • (I) Activation ability of lipase ii) Fatty acid released from the lipase activity measurement substrate by catalyzing lipase breaks the interface formed by the lipase activity measurement substrate, but calcium ions or calcium salts are released The captured fatty acid can be captured to prevent the interface from being broken.
  • the salt which consists of an anion and calcium ion and is water-soluble is preferable.
  • the acid group which consists of a halogen ion or an organic compound is preferable. More specifically, chlorine ion or acetate ion is particularly preferable.
  • the calcium salt a calcium salt with a halogen ion or an acid group calcium salt made of an organic compound is preferable, and more specifically, calcium chloride or calcium acetate is particularly preferable.
  • the lipase activator is the above-mentioned “mixing of all or part of the mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution” (second mixing) ),
  • the concentration is preferably 0.1 mM or more.
  • the preferable concentration of this lipase activator after the second mixing is more preferably 1 mM or more, and particularly preferably 5 mM or more.
  • the concentration of the lipase activator is preferably 100 mM or less after the second mixing.
  • the preferred concentration of the lipase activator is more preferably 50 mM or less, and particularly preferably 25 mM or less.
  • the preferable concentration of the lipase activator after the second mixing in the present invention is as described above.
  • the mixing ratio of the above-mentioned “mixture of the lipase activity measuring substrate and the present polymer compound” and the aqueous solution is considered so that the concentration of the lipase activator after the second mixing is the above-mentioned concentration.
  • the colipase that can be contained in the aqueous solution is not particularly limited as long as it has the action, function, or activity of colipase. And a colipase prepared, modified or modified using genetic engineering or the like.
  • a colipase derived from a mammal such as a pig is preferable, and a colipase derived from a pancreas of a mammal such as a pig is more preferable.
  • the colipase is a substance after the “mixing of all or part of the mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution” (second mixing).
  • the activity value is preferably 15K units / L (15K Unit / L) or more.
  • the preferable activity value of this colipase after the second mixing is more preferably 150 K units / L or more, and particularly preferably 750 K units / L or more.
  • the activity value of this colipase is preferably 7,500 K units / L or less after the second mixing.
  • the preferable activity value of this colipase after the second mixing is more preferably 3,750 K units / L or less, and particularly preferably 2,250 K units / L or less.
  • the preferable activity value of the colipase after the second mixing in the present invention is as described above.
  • the mixing ratio of the above-mentioned “mixture of the lipase activity measuring substrate and the present polymer compound” and the aqueous solution is considered so that the activity value of the colipase after the second mixing becomes the above-mentioned activity value.
  • the aqueous solution contains colipase at an appropriate activity value.
  • Colipase is commercially available from Roche Diagnostics Inc. [Japan] or Sigma Aldrich Japan LLC [Japan].
  • the substrate for measuring lipase activity [DGGMR] in the present invention is stable at pH 4 or a pH in the vicinity thereof. Therefore, after the above-mentioned “mixing all or part of the mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution” (second mixing), the pH is centered on pH 4. It is preferable to be within a certain range.
  • the pH after the second mixing is preferably in the range of pH 2 to pH 7, and preferably in the range of pH 3 to pH 5, from the viewpoint of the stability of the lipase activity measurement substrate [DGGMR]. More preferably, it is particularly preferably in the range of pH 3.5 to pH 4.5. (The above pH values are all values at 20 ° C.)
  • the pH after the second mixing in the present invention is as described above.
  • (E) Buffering agent in the present invention, the “mixing of all or part of the mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution” (second mixing).
  • a buffering agent having a buffering ability in the above pH range may be appropriately contained in the aqueous solution.
  • the buffer that can be contained in the aqueous solution is not particularly limited.
  • an organic acid such as tartaric acid, succinic acid, malonic acid, or citric acid, glycine, phosphoric acid, or These salts can be mentioned.
  • the concentration of the buffering agent in the aqueous solution containing the buffering agent is not particularly limited as long as the buffering ability can be exhibited within the set pH range. .
  • the concentration of the buffer is preferably 5 mM or more, more preferably 10 mM or more, and particularly preferably 30 mM or more.
  • this buffering agent is preferably 500 mM or less, more preferably 100 mM or less, and particularly preferably 50 mM or less after the second mixing.
  • the preferred concentration of the buffer after the second mixing is as described above.
  • the surfactant to be used was mixed with water or an aqueous solution, and then this was mixed with a substrate for measuring lipase activity.
  • the present invention differs from such conventional methods in that the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound are directly mixed, and the lipase activity measurement substrate and the mixture of the present polymer compound thus prepared are all or It is a method having a characteristic step of mixing a part with water or an aqueous solution.
  • the present invention it is a step of mixing all or part of the mixture prepared by mixing the substrate for measuring lipase activity and the present polymer compound with water or an aqueous solution, but there is no particular limitation.
  • the mixture may be added to all or part of the “mixture prepared by mixing the substrate for use and the present polymer compound” and mixed, or other embodiments may be employed.
  • the mixing ratio of the mixture of the lipase activity measuring substrate and the polymer compound and the water or the aqueous solution is not particularly limited and may be appropriately determined.
  • the mixing of the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution can be considered, for example, as in the following (i) and (ii).
  • the preferred concentration of the lipase activity measurement substrate after the second mixing is preferably from the above-mentioned purpose. It is 0.05 mM or more, more preferably 0.1 mM or more, and particularly preferably 0.2 mM or more.
  • the preferred concentration of the lipase activity measurement substrate is preferably 2 mM or less, more preferably 1 mM, for the above purpose. And particularly preferably 0.8 mM or less.
  • the relationship between the preferred concentration of the substrate for measuring lipase activity and the final volume after mixing water or an aqueous solution at the time of the second mixing is considered, for example, as in (a) or (b) below. be able to.
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate to be mixed at the first mixing is Ws [unit: grams].
  • Vf volume after mixing water or an aqueous solution at the time of mixing
  • MWs molecular weight of the lipase activity measurement substrate
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Ws ⁇ 10 6 ) ⁇ (Cs ⁇ MWs)
  • Vf (Ws ⁇ 10 6 ) ⁇ (Cs ⁇ 752.05)
  • a lipase activity measurement substrate having a desired lipase activity measurement substrate [DGGMR] concentration is obtained.
  • a solution can be obtained.
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate mixed at the first mixing is Ws [unit: grams]
  • the final volume after mixing water or aqueous solution at the time of 2 mixing (volume after volume-up, etc.) is Vf [unit: mL]
  • the molecular weight of the lipase activity measurement substrate is MWs
  • the concentration Cs [unit: mM] of the lipase activity measurement substrate after the second mixing can be expressed by the following formula.
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Ws ⁇ A ⁇ 10 4 ) ⁇ (Cs ⁇ MWs)
  • Vf (Ws ⁇ A ⁇ 10 4 ) ⁇ (Cs ⁇ 752.05)
  • a lipase activity measurement substrate having a desired lipase activity measurement substrate [DGGMR] concentration is obtained.
  • a solution can be obtained.
  • the preferable concentration of the present polymer compound is preferably 0. It is 01% (w / v) or more, more preferably 0.05% (w / v) or more, and particularly preferably 0.1% (w / v) or more.
  • the preferable concentration of the polymer compound is preferably 20% (w / v) or less for the above purpose. , More preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less.
  • the relationship between the preferred concentration of the present polymer compound and the final capacity after mixing water or an aqueous solution during the second mixing should be considered as, for example, (a) or (b) below. Can do.
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Wp ⁇ 100) ⁇ Cp
  • a substrate solution for measuring lipase activity having a desired concentration of the present polymer compound can be obtained. Can do.
  • the mixing amount of the present polymer compound to be mixed at the first mixing is Wp [unit: grams]
  • the second The final volume after mixing water or aqueous solution at the time of mixing (volume after volume-up, etc.) is Vf [unit: mL]
  • A% (weight or volume) of the mixture at the first mixing is the second mixing
  • the concentration Cp [unit:% (w / v)] of the present polymer compound after the second mixing can be expressed by the following formula.
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Wp ⁇ A) ⁇ Cp
  • a substrate solution for measuring lipase activity having a desired concentration of the present polymer compound can be obtained. Can do.
  • the step of mixing all or part of the mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution is performed in a plurality of steps (steps) of two or more steps. You may go. In this way, it is preferable to carry out this step in a plurality of steps for the purpose of producing an emulsified lipase activity measuring substrate solution comprising stable and uniform micelle particles.
  • this process is a method of performing in a plurality of stages, this is not particularly limited as long as the process is performed in a plurality of stages.
  • the process is performed in the following stages [A] and [B]. The thing etc. can be mentioned.
  • [A] A step of mixing all or part of a mixture prepared by mixing the substrate for measuring lipase activity and the present polymer compound with a certain amount of water or an aqueous solution
  • [B] The mixture in the step [A] ( Mixing a mixture of lipase activity measurement substrate and the present polymer compound) with water or an aqueous solution, further mixing a certain amount of water or an aqueous solution.
  • Va [unit: mL] and the final volume after mixing “a further fixed amount of water or aqueous solution” into the mixed solution in the step [B] [that is, water or aqueous solution during the second mixing described above]
  • Vf [unit: mL] is defined as the final volume after mixing (volume, etc.)
  • the ratio value (Vf / Va) obtained by dividing Vf by Va is a stable and uniform micelle.
  • it is preferably in the range of 1 to 500.
  • the ratio value (Vf / Va) obtained by dividing Vf by Va is more preferably in the range of 2 to 200, and particularly in the range of 5 to 100. preferable.
  • the values of Va and Vf (capacities) may be selected so that the ratio value (Vf / Va) obtained by dividing Vf by Va is in the range of 2 to 200. More preferably, the values (capacities) of Va and Vf are particularly preferably selected so as to be in the range of 5 to 100.
  • the above-mentioned [A] is a step of mixing all or part of the mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with a certain amount of water or an aqueous solution, but there is no particular limitation.
  • all or a part of the “mixture prepared by mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound” may be added to a certain amount of “water or aqueous solution” and mixed.
  • the amount of “water or aqueous solution” may be added to all or part of the “mixture prepared by mixing the substrate for measuring lipase activity and the present polymer compound” and mixed, or other embodiments may be employed.
  • a certain amount of water is added to the mixture after mixing the mixture (mixture of the lipase activity measuring substrate and the present polymer compound) with water or an aqueous solution in the step [A] of [B].
  • a step of mixing an aqueous solution “, but is not particularly limited. For example,” mixing of the mixture in the step [A] (a mixture of a lipase activity measurement substrate and the present polymer compound) with water or an aqueous solution. It may be an embodiment in which a “later mixed solution” is added to a certain amount of “water or aqueous solution” and mixed.
  • the mixture of the substrate and the present polymer compound) and water or a mixed solution after mixing with an aqueous solution may be added and mixed, or other embodiments may be employed.
  • the lipase activity measurement substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol, the lipase activity measurement substrate-containing solution is dropped dropwise and mixed with the solution, or the lipase is mixed.
  • Injecting and injecting a solution containing a substrate for activity measurement into the solution, stirring the substrate solution for measuring lipase activity at a high speed with a powerful mixer, or applying ultrasonic waves to the substrate solution for measuring lipase activity No special treatment or special equipment that requires special skills or skill is required, and mixing may be performed by a normal method such as stirring at a general speed using a general mixer, thereby measuring lipase activity. All or part of the mixture of the substrate for use and the present polymer compound can be mixed with water or an aqueous solution.
  • the step of mixing all or part of the mixture prepared by mixing the substrate for measuring lipase activity and the present polymer compound with water or an aqueous solution is, for the above purpose, clouding of the used polymer compound. It is more preferable to carry out at a temperature 10 ° C. or lower than the point, and it is particularly preferred to carry out at 25 ° C. or lower.
  • the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound in the present invention are mixed.
  • the temperature at which all or part of the mixture is mixed with water or an aqueous solution is the temperature at which the lipase activity measurement substrate [DGGMR], the polymer compound used, and the water or aqueous solution used are each melted. It is preferable to carry out at the above temperature for the purpose of producing an emulsified lipase activity measurement substrate solution comprising stable and uniform micelle particles.
  • this mixing is preferably performed for 5 minutes or more for the purpose of producing an emulsified lipase activity measurement substrate solution composed of stable and uniform micelle particles. In general, 5 minutes is sufficient.
  • the time for mixing the lipase activity measurement substrate and the mixture of the present polymer compound with water or an aqueous solution is not particularly limited, and may be mixed for several hours, for example, but time is also cost. From this point of view, even if it is performed carefully, it usually takes 10 minutes or less.
  • the solution of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] has a high reaction rate with the lipase when the micelle size (particle size) of the emulsion is in the range of 60 to 1,500 nm. Is preferable, and this substrate solution for measuring lipase activity can be stored and used for a long period of time.
  • the lipase activity measurement substrate solution in the present invention preferably has a micelle diameter (particle diameter) in the range of 70 to 1,000 nm, and more preferably in the range of 80 to 600 nm. It is particularly preferable that it is in the range of 100 to 200 nm.
  • a simplified method for producing a substrate solution for lipase activity measurement comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [ DGGMR] as a substrate for measuring lipase activity, a method for producing a substrate solution for use in measuring lipase activity in a sample, (1) A mixture is prepared by mixing the substrate for measuring lipase activity and a non-reactive polyether-modified type modified silicone oil or polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate (this polymer compound). And (2) a step of mixing all or part of the mixture of (1) with water or an aqueous solution.
  • the simplification method of manufacturing the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention includes the steps (1) and (2), it is complicated or requires special processing such as requiring skill or special processing.
  • the production of a lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR as a lipase activity measurement substrate can be simplified without requiring an apparatus or an instrument.
  • Embodiment using side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil is a side chain type non-reactive polyether modified type. It includes the following embodiments using a type of modified silicone oil.
  • Substrate for use in measurement of lipase activity in a sample comprising “1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester as a lipase activity measurement substrate”
  • a method for producing a solution (1) A step of preparing a mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and a side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil; and (2) All or one of the mixture of (1)
  • the simplified method for producing a lipase activity measurement substrate solution of the present invention includes the following aspect using a polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate.
  • Substrate for use in measurement of lipase activity in a sample comprising “1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester as a lipase activity measurement substrate”
  • a method for producing a solution comprising: (1) A step of preparing a mixture by mixing the lipase activity measurement substrate and a polyoxyethylene / polyoxypropylene condensate; and (2) all or a part of the mixture of (1) above with water or an aqueous solution.
  • a method for simplifying the production of a lipase activity measurement substrate solution is simplified.
  • Lipase in the method for simplifying the production of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention is as described in “2. Lipase” of [1] above.
  • sample In the method for simplifying the production of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention, the sample is as described in “3. Sample” in [1] above.
  • Substrate for measuring lipase activity The substrate for measuring lipase activity in the simplified method for producing the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is as described in “4. Substrate for measuring lipase activity” in [1] above. .
  • the step of mixing the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound to prepare a mixture In the simplified method for producing the lipase activity measurement substrate solution of the present invention, the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound are mixed and the mixture is prepared.
  • the step of preparing is as described in “6. Step of preparing a mixture by mixing the substrate for measuring lipase activity and the present polymer compound” in [1] above.
  • a step of mixing a mixture of a lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution In the simplified method for producing a lipase activity measurement substrate solution of the present invention, a mixture of the lipase activity measurement substrate and the present polymer compound is prepared. The step of mixing with water or an aqueous solution is as described in “7. Step of mixing a mixture of a lipase activity measurement substrate and the present polymer compound with water or an aqueous solution” in [1] above.
  • the micelle diameter of the emulsion of the substrate solution for measuring lipase activity In the simplified method for producing the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention, the micelle diameter of the emulsion of the substrate solution for measuring lipase activity is described in “8. As described in “Micellar diameter of emulsion of substrate solution for lipase activity measurement”.
  • Lipase activity measuring reagent in sample (1) Configuration of lipase activity measuring reagent in sample, etc.
  • the lipase activity measuring reagent in the sample may consist only of the lipase activity measuring substrate solution in the present invention, or this It may be composed of a substrate solution for measuring lipase activity in the invention and other constituent reagents (reagent kit).
  • the lipase activity measuring reagent in the sample is preferably a reagent kit comprising the lipase activity measuring substrate solution and other constituent reagents in the present invention.
  • the substrate for measuring lipase activity [DGGMR] in the present invention is stable at pH 4 or a pH around it, whereas lipase has an optimum activity at pH 8 or a pH near it, and each has a suitable pH. The area is different.
  • a reagent kit comprising the lipase activity measurement substrate solution and other constituent reagents in the present invention is preferable.
  • the pH of the reagent containing the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the present invention is pH 4 or its vicinity.
  • the pH of at least one of the other constituent reagents combined with this is preferably pH 8 or higher, and the lipase activity measurement substrate [DGGMR], colipase, and lipase activation in the present invention It is preferable that bile acid or a salt thereof as an agent does not coexist in one reagent.
  • the lipase activity measurement reagent in this sample is preferably a two-reagent reagent kit comprising the lipase activity measurement substrate solution of the present invention and one other component reagent.
  • the other component reagent is the first reagent and the lipase activity measurement substrate solution of the present invention is used as the second reagent.
  • the pH of the other constituent reagent is preferably pH 8 or higher, and the pH of the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is more preferably pH 4 or the vicinity thereof.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention does not contain both colipase and bile acid or its salt as lipase activator, but bile acid or its salt as colipase and lipase activator. More preferably, at least one of the above is contained in the other constituent reagent.
  • the reagent for measuring lipase activity in a sample containing the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention may be one that measures by the end point method (end point method), or the reaction rate method (rate method). It may be carried out and may be appropriately selected, but the reaction rate method (rate method) is preferred.
  • the lipase is catalyzed by contacting the sample with the substrate for measuring lipase activity [DGGMR] in the present invention and reacting it.
  • the hydrolysis reaction produces 1,2-o-dilauryl-rac-glycerol and glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester, which glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is It is unstable and readily hydrolyzes spontaneously to produce 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6'-methylresorufin produced may be measured by measuring absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample may be obtained.
  • a single wavelength method or a dual wavelength method may be used.
  • the temperature during the measurement reaction is 30 ° C. or 37 ° C., and the reaction such as an enzyme involved in the measurement reaction proceeds. What is necessary is just to set the temperature within the range which a component does not deactivate, modify
  • the measurement reaction is started by adding the substrate for measuring lipase activity of the present invention, or adding the sample. Any method may be used.
  • the measurement may be performed by a method or using an apparatus such as an automatic analyzer. It may be.
  • the lipase activity measuring reagent in the sample containing the lipase activity measuring substrate solution of the present invention may be all or part of its constituent reagents.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention can be sold alone or used for measuring lipase activity in a sample.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention can be sold in combination with the above-mentioned other constituent reagents or other reagents or used for measuring lipase activity in a sample.
  • the other constituent reagents or other reagents include, for example, a buffer solution, a sample diluent, a reagent diluent, a reagent containing a substance for performing calibration (calibration), or for performing quality control.
  • examples include reagents containing substances.
  • Example 1 (A) First Reagent [Aqueous solution containing the following reagent components at the indicated concentrations; pH 8.3 (20 ° C.)] Sodium deoxycholate [Lipase activator] 2% (w / v) Calcium chloride [Lipase activator] 5 mM Colipase (derived from porcine pancreas; Roche Diagnostics Inc. [Japan]) 375K units / L (5mg / L) Bicine [Buffer] 40 mM
  • Second reagent (substrate solution for measuring lipase activity in the present invention) [Aqueous solution containing the following reagent components at the indicated concentrations; pH 4.0 (20 ° C.)] 1,2-o-Dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR] (Roche Diagnostics Inc. [Japan]) [Lipase activity measurement substrate ] 0.3 mM Side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil 0.3% (w / v) L-tartaric acid [buffer] 40 mM
  • Example 2 (A) First Reagent [Aqueous solution containing the following reagent components at the indicated concentrations; pH 8.4 (20 ° C.)] Sodium taurodeoxycholate [lipase activator] 2% (w / v) Sodium deoxycholate [Lipase activator] 0.2% (w / v) Calcium chloride [Lipase activator] 5 mM Colipase (derived from porcine pancreas; Roche Diagnostics Inc. [Japan]) 150K units / L (2mg / L) Tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris] [Buffer] 40 mM
  • Second reagent (substrate solution for measuring lipase activity in the present invention) [Aqueous solution containing the following reagent components at the indicated concentrations] 1,2-o-Dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR] (Roche Diagnostics Inc. [Japan]) [Lipase activity measurement substrate ] 0.6 mM Polyoxyethylene-polyoxypropylene condensate 2% (w / v) Sodium taurodeoxycholate [lipase activator] 2% (w / v)
  • Method for measuring lipase activity in sample When measuring by the method for measuring lipase activity in a sample using the lipase activity measuring substrate solution in the present invention, the measurement is performed by the end point method ( Measurement may be performed by the endpoint method), or may be measured by the reaction rate method (rate method), and may be selected as appropriate, but by the reaction rate method (rate method) Is preferred.
  • the measurement is the one step method performed by one step, or two steps or more multisteps
  • the measurement may be performed by appropriately selecting a multi-step method performed by the above steps.
  • the measurement reagent used for measuring the lipase activity in the sample is composed of the first reagent, the second reagent, and another reagent (one or two or more reagents), that is, composed of three or more reagents. If the measurement reaction is performed through the number of steps necessary to perform the measurement using these reagents (two steps or three or more steps as required), and the lipase activity in the sample is measured, Good.
  • the lipase activity is measured by bringing the sample into contact with the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the present invention and reacting.
  • Catalyzed hydrolysis reaction produces 1,2-o-dilauryl-rac-glycerol and glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester, which glutaric acid- (6′-methylresorufin)
  • the ester is unstable and readily hydrolyzes to yield 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6'-methylresorufin produced may be measured by measuring absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample may be obtained.
  • a single wavelength method or a dual wavelength method may be used.
  • the activity value of the lipase contained in the sample is calculated from the measured absorbance (or transmittance) or the amount of change in absorbance (or transmittance) based on the molar extinction coefficient of 6′-methylresorufin.
  • the method of calculating from the absorbance (or transmittance) measured in the above, or the method of calculating by comparing with the absorbance (or transmittance) of a standard substance (standard solution, standard serum, etc.) whose lipase activity value is known May be selected as appropriate.
  • the activity value of lipase contained in the sample by subtracting the reagent blind test (reagent blank) from the absorbance (or transmittance) obtained by measuring the sample.
  • the temperature during the measurement reaction is such that the measurement reaction such as 30 ° C. or 37 ° C. proceeds and is related to the measurement reaction What is necessary is just to set the temperature within the range in which reaction components, such as an enzyme, do not deactivate, modify
  • the method for starting the measurement reaction is a method performed by adding the substrate for measuring lipase activity in the present invention, Alternatively, any method such as a method performed by adding a sample may be used.
  • the measurement when measurement is performed by the method for measuring lipase activity in a sample using the substrate solution for measuring lipase activity in the present invention, the measurement may be performed by a method, or an apparatus such as an automatic analyzer may be used. May be used.
  • the amounts of the sample and the first reagent to be mixed may be appropriately determined according to the amount of the second reagent, the activity value of the lipase contained in the sample, and other conditions.
  • the amount of the sample is preferably 0.5 to 100 ⁇ L
  • the amount of the first reagent is preferably in the range of 20 to 1,000 ⁇ L.
  • the incubation time is not particularly limited, but is usually preferably within 20 minutes, more preferably within 10 minutes, and particularly preferably within 5 minutes.
  • the temperature at the time of incubation should just be the temperature above the temperature which the said liquid mixture freezes. In general, the higher the temperature during the measurement reaction, the higher the reaction rate. However, if the temperature is too high, components such as enzymes involved in the measurement reaction will be denatured and inactivated, so the temperature during incubation is below the temperature at which the components such as enzymes involved in the measurement reaction are denatured and deactivated. It is necessary to.
  • the incubation temperature is usually 2 to 70 ° C., preferably 20 to 37 ° C., more preferably 30 to 37 ° C.
  • the component such as an enzyme involved in the measurement reaction is a heat-resistant component such as a heat-resistant enzyme, the temperature may be higher.
  • the lipase contained in the sample comes into contact with the reagent components contained in the first reagent, and activation or activation of the lipase by these components is performed. Done.
  • the amount of the second reagent to be mixed may be appropriately determined according to the amount of the sample, the amount of the first reagent, the activity value of the lipase contained in the sample, the specifications of the analyzer to be used, and other conditions.
  • the amount of the second reagent is preferably in the range of 10 to 1,000 ⁇ L.
  • the incubation time is not particularly limited, but is usually preferably within 20 minutes, more preferably within 10 minutes, and particularly preferably within 5 minutes.
  • the temperature at the time of incubation should just be the temperature above the temperature which freezes the said last reaction liquid. In general, the higher the temperature during the measurement reaction, the higher the reaction rate. However, if the temperature is too high, components such as enzymes involved in the measurement reaction will be denatured and inactivated, so the temperature during incubation is below the temperature at which the components such as enzymes involved in the measurement reaction are denatured and deactivated. It is necessary to.
  • the incubation temperature is usually 2 to 70 ° C., preferably 20 to 37 ° C., more preferably 30 to 37 ° C.
  • the component such as an enzyme involved in the measurement reaction is a heat-resistant component such as a heat-resistant enzyme, the temperature may be higher.
  • the measurement reaction in the second stage is started following the activation and activation of the lipase in the first stage, and the activity measurement reaction of the lipase contained in the sample is started. It is advanced.
  • the second reagent (substrate solution for measuring lipase activity in the present invention), which is an emulsified substrate solution composed of stable and uniform micelle particles, is produced by the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention.
  • 1,2-o-dilauryl-rac-glycerol and lipase activity-measuring substrate [DGGMR] in the present invention are subjected to a hydrolysis reaction catalyzed by the lipase.
  • Glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is formed. Since this glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is unstable, it is easily hydrolyzed naturally to produce 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the absorbance (or transmittance) of the final reaction solution derived from this 6′-methylresorufin is 580 nm or near that. It is measured by measuring the absorbance (or transmittance) of the wavelength.
  • the lipase activity value contained in the sample is calculated from the measured absorbance (or transmittance) or the amount of change in absorbance (or transmittance).
  • This is a method of calculating from the absorbance (or transmittance) measured based on the molar extinction coefficient of 6′-methylresorufin, or a standard substance (standard solution, standard serum, etc.) whose lipase activity value is known.
  • a method such as a method of calculating by comparing with the absorbance (or transmittance) of is suitably selected.
  • the activity value of the lipase contained in the above sample was calculated by subtracting the reagent blindness (reagent blank) from the absorbance (or transmittance) of the final reaction solution obtained by measuring the sample. ( ⁇ Abs.) Is preferably used.
  • Example 1 Preparation of substrate solution for measuring lipase activity-1) The cloud point of the present polymer compound was measured, the lipase activity measurement substrate solution was prepared by the method of the present invention, and the micelle diameter of the emulsion of the lipase activity measurement substrate solution was measured.
  • test tubes were placed in a constant temperature water tank (model: BK-33, distributor: Yamato Scientific Co., Ltd. [Japan]), and the temperature of the water tank was raised by 1 ° C. The temperature of the water tank was measured with a mercury thermometer.
  • a substrate solution for measuring lipase activity was produced by the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention and the method for simplifying the production of the substrate solution.
  • each beaker is placed in a constant temperature water tank (model: BK-33, distributor: Yamato Scientific Co., Ltd. [Japan]) set at a temperature of 67 ° C., and this is stirred. Then, the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the beaker and the polymer compound were mixed at 67 ° C. In addition, the temperature of the water tank was measured and confirmed with a mercury thermometer.
  • a constant temperature water tank model: BK-33, distributor: Yamato Scientific Co., Ltd. [Japan]
  • stirrer remote drive electromagnetic stirrer, model: HP40107, distributor: Sansho [Japan]
  • the inner rotor was rotated by rotating the scale “3” of the control unit of this stirrer.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the temperature of “a fixed amount (4.0 mL) of pure water” in the beaker was 20 ° C. by measuring with a mercury thermometer.
  • the following six types of lipase activity measurement substrate solutions (a) to (f) below were produced by the production method of the present invention and the production simplification method.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] was 0.6 mM, and the concentration of this polymer compound was 2.0% (w / V).
  • no concentration gradient or strong turbidity was observed, and it was visually confirmed that they were uniformly mixed.
  • Table 1 shows the micelle diameters (particle diameters) of the emulsions of the six types of substrate solutions for measuring lipase activity measured in (1).
  • Table 1 also shows the results of visual observation of these six types of lipase activity measurement substrate solutions. Further, Table 1 also shows the measurement results in 1 for the cloud point of the present polymer compound used in the six types of substrate solutions for measuring lipase activity.
  • the column of “cloud point of the used polymer compound” in this table shows the measured value of the cloud point of the polymer compound used in the lipase activity measurement substrate solution. Those that did not become cloudy even when they were raised to a cloud point were expressed as “over 77 ° C.”.
  • the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion is in the range of 100 nm to 1,100 nm.
  • each of these six types of lipase activity measurement substrate solutions has a high rate of reaction with lipase, the emulsion is stable, and the lipase activity measurement substrate solution can be stored and used for a long period of time from 60 nm to 1,500 nm. It can be seen that the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion is in the range of.
  • the method for producing the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention the method for simplifying the production of the substrate solution for measuring lipase activity, and the substrate solution for measuring lipase activity produced according to these methods are the following (i ) To (iii) were confirmed.
  • the lipase activity measurement substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol as in the conventional method, or the lipase activity measurement substrate-containing solution is added dropwise to the solution, or the lipase activity is mixed. Injecting and injecting a substrate-containing solution for measurement into the solution, stirring the substrate solution for measuring lipase activity at a high speed with a powerful mixer, or performing ultrasonic treatment on the substrate solution for measuring lipase activity Or special processing such as skill required or special equipment is not necessary.
  • a substrate solution for measuring lipase activity can be produced easily, in a short time and at low cost, such as stirring at a general speed using a general mixer. It should be possible to simplify the manufacturing.
  • the manufactured lipase activity measurement substrate solution is suitable for the measurement of lipase activity in a sample.
  • Example 2 Production of the substrate solution for lipase activity measurement by the method of the present invention and the method of the control example, and measurement of the micelle diameter of the emulsion of the substrate solution for lipase activity measurement were performed.
  • a substrate solution for measuring lipase activity was produced by the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention and the simplified method for producing the substrate solution. Moreover, the substrate solution for lipase activity measurement was manufactured by the method of the control example.
  • each beaker was stirred at room temperature (25 ° C.), and the substrate for lipase activity measurement [DGGMR] and the present polymer compound in the beaker were mixed.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a certain amount of 2% (w / v) sodium taurodeoxycholate aqueous solution was further mixed with the “mixed solution after mixing” to make a final volume of 200 mL.
  • the following five types of lipase activity measurement substrate solutions (A) to (E) were produced by the production method of the present invention and the production simplification method.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] was 0.6 mM, and the concentration of this polymer compound was 2.0% (w / V).
  • no concentration gradient or strong turbidity was observed, and it was visually confirmed that they were uniformly mixed.
  • each beaker was stirred at room temperature (25 ° C.), and the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the beaker and each of the surfactants were mixed.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • Table 2 shows the micelle diameters (particle diameters) of the emulsions of the 9 types of substrate solutions for measuring lipase activity measured in (1).
  • the values of the micelle diameter (particle diameter) of the total 9 types of substrate solutions for measuring lipase activity are average values.
  • Table 2 shows the lipase activity measurement substrate solutions [5 types] prepared in [1] above according to the method of the present invention and the lipase prepared in [1] above according to the method of the control example. The results of visual observation of the substrate solutions for activity measurement [5 types in total] were also shown.
  • lipase activity measurement substrate solutions have a high rate of reaction with lipase, a stable emulsion, and a lipase activity measurement substrate solution that can be stored and used for a long period of time from 60 nm to 1,500 nm. It can be seen that the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion is in the range of.
  • the production method of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention the simplified production method of the lipase activity measurement substrate solution, and the lipase activity measurement substrate solution produced in accordance with these methods are as follows ( It was confirmed that it has the characteristics of i) to (iii).
  • the lipase activity measurement substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol as in the conventional method, or the lipase activity measurement substrate-containing solution is added dropwise to the solution, or the lipase activity is mixed. Injecting and injecting a substrate-containing solution for measurement into the solution, stirring the substrate solution for measuring lipase activity at a high speed with a powerful mixer, or performing ultrasonic treatment on the substrate solution for measuring lipase activity Or special processing such as skill required or special equipment is not necessary.
  • a substrate solution for measuring lipase activity can be produced easily, in a short time and at low cost, such as stirring at a general speed using a general mixer. It should be possible to simplify the manufacturing.
  • the manufactured lipase activity measurement substrate solution is suitable for the measurement of lipase activity in a sample.
  • the lipase activity measurement substrate solutions [total 3 types] produced by these control methods have a micelle size (particle size) of the emulsion, a high reaction rate with the lipase, and a stable emulsion. It can be seen that the substrate solution for measuring lipase activity is not in the range of 60 nm to 1,500 nm which can be stored and used for a long time.
  • Example 3 (Preparation of substrate solution for measuring lipase activity-3) Production of the substrate solution for lipase activity measurement by the method of the present invention and the method of the control example, and measurement of the micelle diameter of the emulsion of the substrate solution for lipase activity measurement were performed.
  • a substrate solution for measuring lipase activity was produced by the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention and the simplified method for producing the substrate solution. Moreover, the substrate solution for lipase activity measurement was manufactured by the method of the control example.
  • KF-351A (Seller: Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. [Japan])
  • B KF-6011 (Seller: Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. [Japan])
  • each beaker was stirred at room temperature (25 ° C.), and the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the beaker was mixed with the present polymer compound.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is 0.6 mM.
  • the concentration of this polymer compound was 1.0% (w / v) in the lipase activity measurement substrate solution although 2.0 g of this polymer compound was weighed out in (2) and added to the beaker. Yes, and 4.0% (w / v) in the lipase activity measurement substrate solution obtained by weighing 4.0 g of this polymer compound and adding it to a beaker.
  • Substrate solution for lipase activity measurement-1 (Lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present polymer compound: KF-351A [concentration: 1.0% [w / v]])
  • Lipase activity measurement substrate solution-2 (Lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present polymer compound: KF-351A [concentration: 2.0% [w / v]])
  • Lipase activity measurement substrate solution-3 (Lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present polymer compound: KF-6011 [concentration: 1.0% [w / v]])
  • Lipase activity measurement substrate solution-4 (Lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present polymer compound: KF-6011 [concentration: 2.0% [w / v]])
  • NIKKOL BT-7 Polyoxyethylene (7) secondary alkyl ether] (Distributor: Nikko Chemicals [Japan])
  • D) NIKKOL NP-7.5 Polyoxyethylene (7.5) nonylphenyl ether] (Distributor: Nikko Chemicals [Japan])
  • F Triton X-100 [Polyoxyethylene (10) octylphenyl ether] (Distributor: Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
  • each beaker was stirred at room temperature (25 ° C.), and the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the beaker and each of the surfactants were mixed.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is 0.6 mM.
  • the concentration of each surfactant was 1.0% (w / v) in the lipase activity measurement substrate solution although 2.0 grams of the surfactant was weighed out in (2) and added to the beaker. Then, 4.0 grams of a surfactant was weighed out and added to a beaker, but 2.0% (w / v) in the lipase activity measurement substrate solution.
  • Substrate solution for measuring lipase activity-5 (Lipase activity measuring substrate: DGGMR, surfactant: NIKKOL BT-7 [concentration: 1.0% [w / v]])
  • Substrate solution for measuring lipase activity-6 (Lipase activity measuring substrate: DGGMR, surfactant: NIKKOL BT-7 [concentration: 2.0% [w / v]])
  • Substrate solution for measuring lipase activity-7 (Lipase activity measuring substrate: DGGMR, surfactant: NIKKOL NP-7.5 [concentration: 1.0% [w / v]])
  • Substrate solution for measuring lipase activity-8 (Lipase activity measuring substrate: DGGMR, surfactant: NIKKOL NP-7.5 [concentration: 2.0% [w / v]])
  • Substrate solution for measuring lipase activity-9 (Lipase activity measuring substrate: DGGMR, surfactant: NIKKOL NP
  • Table 3 also shows the micelle diameter (particle diameter) of each emulsion of the lipase activity measurement substrate solution measured in (1).
  • the value of the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion of each of these lipase activity measurement substrate solutions represents an average value.
  • the column of “emulsion micelle diameter (particle diameter)” in this table shows the measured value of the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion of the substrate solution for measuring lipase activity. Since the measurement lower limit of the micelle diameter (particle diameter) in the light scattering particle size distribution measuring apparatus (model: Nanotrac UPA-EX250) is 10 nm, the measurement results indicate that the measurement lower limit is less than this measurement lower limit. Less than 10 nm ".
  • Lipase activity measurement substrate solutions produced by the method of the present invention From Table 3, four types of lipase activity measurement substrate solutions (lipase activity measurement substrates) produced according to the production method and simplified production method of the present invention. In any of Solution-1 to Substrate Solution-4) for measuring lipase activity, no concentration gradient, strong turbidity, or color development is observed, indicating that there is no such problem.
  • the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion is in the range of 100 nm to 200 nm.
  • Each of these four types of lipase activity measurement substrate solutions has a high reaction rate with lipase, a stable emulsion, and the lipase activity measurement substrate solution can be stored and used for a long period of time from 60 nm to 1,500 nm. It can be seen that the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion is in the range of.
  • the production method of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention the simplified production method of the lipase activity measurement substrate solution, and the lipase activity measurement substrate solution produced in accordance with these methods are as follows ( It was confirmed once again that it has the characteristics of i) to (iii).
  • the lipase activity measurement substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol as in the conventional method, or the lipase activity measurement substrate-containing solution is added dropwise to the solution, or the lipase activity is mixed. Injecting and injecting a substrate-containing solution for measurement into the solution, stirring the substrate solution for measuring lipase activity at a high speed with a powerful mixer, or performing ultrasonic treatment on the substrate solution for measuring lipase activity Or special processing such as skill required or special equipment is not necessary.
  • a substrate solution for measuring lipase activity can be produced easily, in a short time and at low cost, such as stirring at a general speed using a general mixer. It should be possible to simplify the manufacturing.
  • the manufactured lipase activity measurement substrate solution is suitable for the measurement of lipase activity in a sample.
  • Substrate solution for measuring lipase activity produced by the method of the control example From Table 3, [15], [16], [21], (7) of (1) above (2) produced by the method of the control example All of the six types of substrate solutions for measuring lipase activity [22], [27] and [28] are “non-homogeneous (the lipase activity measuring substrate and the surfactant are separated, or the oil layer It is understood that this is unsuitable for the measurement of lipase activity.
  • Example 4 Measurement of lipase activity in samples. Using the lipase activity measurement substrate solution produced by the method of the present invention, the lipase activity in the sample was measured.
  • Measuring reagent containing substrate solution for measuring lipase activity manufactured by the method of the present invention Measuring method of lipase activity manufactured by the method for manufacturing the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention and the simplified method for manufacturing the substrate solution
  • a lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit) consisting of a second reagent comprising a substrate solution and a first reagent corresponding to the second reagent was produced.
  • Control commercially available reagent “Liquitec Lipase Color II” (distributor: Roche Diagnostics Inc. [Japan]), which is a commercially available lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit), was used as a control.
  • This “Liquitech Lipase Color II” (hereinafter sometimes referred to as “control commercial reagent”) is a “buffer solution” as a first reagent and a “substrate solution” (DGGMR as a lipase activity measurement). As a substrate for use).
  • Standard substance “Commercial reference standard substance JSCC common enzyme (JCCLS CRM-001)” (manufacturing number: 001b, distributor: Japan Society for Laboratory Medicine Standards [Japan]), which is a commercially available standard substance, Used as “standard substance”.
  • Control serum-1 “Aalto Control IG” (distributor: Sinotest Inc. [Japan]), which is a commercially available control serum for quality control, was used as “control serum-1”.
  • Control serum-2 “Prototype” (Sinotest Co., Ltd. [Japan]) of “Aalto Control II”, which is a control serum for quality control, was used as “control serum-2”.
  • Control serum-3 “Aalto Control CRPII U” (distributor: Sinotest Inc. [Japan]), which is a commercially available control serum for quality control, was used as “control serum-3”.
  • a second reagent comprising a lipase activity measurement substrate solution produced by the method of the present invention, and a second reagent corresponding to the second reagent
  • lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit) consisting of one reagent, the lipase activity of each of the above 2 samples by a 7180 general-purpose automatic analyzer (distributor: Hitachi High-Technologies Corporation [Japan]) was measured.
  • each of the two samples (“(1) Standard substance”, “(2 ) Control Serum-1 ”,“ (3) Control Serum-2 ”and“ (4) Control Serum-3 ”) to 2.6 ⁇ L of these samples, respectively, in 1 of (1) (1) above 160 ⁇ L of the “first reagent” was added as the first reagent and reacted at 37 ° C.
  • the absorbance change amount between the points obtained in the step (e) is subtracted from the change amount in absorbance between the points for the calibration substance (a lipase activity value is known) obtained in the step (d). “The value of the difference in absorbance change of the calibration substance” was determined.
  • the first reagent in (1) (a) of [1] is changed from “first reagent” to “buffer solution” [1 [2]] of “control commercial reagent”;
  • the second reagent in (b) of (1) is changed from the substrate solution for measuring lipase activity-a to the “substrate solution” [1] [2]] of “control commercial reagent”, and the above [1]
  • the point (between points) for measuring the amount of change in absorbance in (c) of (1) is from “30 points to 34 points” to “21 points (358.354 seconds after addition of the first reagent) to 25 points (first reagent).
  • the unit of the lipase activity value of each sample shown in Table 4 is unit / L (Unit / L).
  • the measurement result (measurement value) of the lipase activity value in the sample obtained using the lipase activity measurement substrate solution produced by the method of the present invention is six kinds of lipase activity measurement substrate solutions (lipase).
  • the activity measurement substrate solution-a to the lipase activity measurement substrate solution-f) are almost the same as the measurement results (measurement values) of the lipase activity values obtained using the control commercial reagent. It turns out that it is the value of.
  • the lipase activity measurement substrate solution produced by the method for producing the lipase activity measurement substrate solution and the simplified production method of the present invention is capable of accurately measuring the lipase activity in the sample. Was confirmed.
  • the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity and the method for simplifying production according to the present invention it becomes possible to produce a substrate solution for measuring lipase activity easily, in a short time and at low cost, and the substrate solution. Thus, it was confirmed that an accurate measurement result (measurement value) of the lipase activity in the sample can be provided.
  • Example 5 Correlation of measurement of lipase activity in sample
  • the lipase activity in the sample was measured using the lipase activity measurement substrate solution produced by the method of the present invention, and the lipase activity of the same sample was measured using a control commercial reagent. confirmed.
  • Measuring reagent containing substrate solution for measuring lipase activity manufactured by the method of the present invention Measuring method of lipase activity manufactured by the method for manufacturing the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention and the simplified method for manufacturing the substrate solution
  • a lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit) consisting of a second reagent comprising a substrate solution and a first reagent corresponding to the second reagent was used.
  • a lipase activity measurement substrate solution was produced by the production method of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention and the production method of the substrate solution.
  • each beaker is placed in a constant temperature water tank (model: BK-33, distributor: Yamato Scientific Co., Ltd. [Japan]) set at a temperature of 67 ° C., and this is stirred. Then, the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the beaker and the polymer compound were mixed at 67 ° C. In addition, the temperature of the water tank was measured and confirmed with a mercury thermometer.
  • a constant temperature water tank model: BK-33, distributor: Yamato Scientific Co., Ltd. [Japan]
  • stirrer remote drive electromagnetic stirrer, model: HP40107, distributor: Sansho [Japan]
  • the inner rotor was rotated by rotating the scale “3” of the control unit of this stirrer.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the temperature of “a fixed amount (4.0 mL) of pure water” in the beaker was 20 ° C. by measuring with a mercury thermometer.
  • the following five types of lipase activity measurement substrate solutions (i) to (v) were produced by the production method of the present invention and the production simplification method.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] was 0.6 mM, and the concentration of this polymer compound was 2.0% (w / V).
  • no concentration gradient or strong turbidity was observed, and it was visually confirmed that they were uniformly mixed.
  • Control commercially available reagent As a control commercially available reagent, the commercially available reagent for measuring lipase activity “Liquitec Lipase Color II” in [2] of Example 4 above (distributor: Roche Diagnostics Inc. [Japan] ])It was used.
  • Standard substance “Commercial reference standard substance JSCC common enzyme (JCCLS CRM-001)” (manufacturing number: 001b, distributor: Japan Society for Laboratory Medicine Standards [Japan]), which is a commercially available standard substance, Used as “standard substance”.
  • Control serum-1 “Aalto Control IG” (distributor: Sinotest Inc. [Japan]), which is a commercially available control serum for quality control, was used as “control serum-1”.
  • Control serum-2 “Prototype” (Sinotest Co., Ltd. [Japan]) of “Aalto Control II”, which is a control serum for quality control, was used as “control serum-2”.
  • Control serum-3 “Aalto Control CRPII U” (distributor: Sinotest Inc. [Japan]), which is a commercially available control serum for quality control, was used as “control serum-3”.
  • Human serum Human serum (a total of 50 samples) was used as “human serum”.
  • a second reagent comprising a lipase activity measurement substrate solution produced by the method of the present invention, and a second reagent corresponding to the second reagent
  • lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit) consisting of one reagent, the lipase activity of each of the above 2 samples by a 7180 general-purpose automatic analyzer (distributor: Hitachi High-Technologies Corporation [Japan]) was measured.
  • the absorbance change amount between the points obtained in the step (e) is subtracted from the change amount in absorbance between the points for the calibration substance (a lipase activity value is known) obtained in the step (d). “The value of the difference in absorbance change of the calibration substance” was determined.
  • the measurement of the lipase activity of each of the samples (1) to (6) in 2 above was carried out using the “buffer solution” (first reagent) and the “substrate solution” (the “commercial control reagent” in the above [2]) Using the second reagent, the lipase activity value of each sample was obtained by performing the operation according to the method described in 3 [2] of Example 4.
  • FIG. 1 shows a correlation diagram when using lipase activity measurement substrate solution-i
  • FIG. 1 shows a correlation diagram when using lipase
  • FIG. 1 [3] shows a correlation diagram when lipase activity measurement substrate solution-iii is used.
  • FIG. 1 shows a correlation diagram in the case of using lipase [4]
  • FIG. 1 shows a correlation diagram in the case of using lipase activity measurement substrate solution-v.
  • the horizontal axis (x) represents the measurement result (measurement value) of the lipase activity value of each sample with the control commercial reagent in [2] in 3 above.
  • the unit of this measured value is unit / L (Unit / L).
  • the vertical axis (y) represents each of the “measurement reagents containing a lipase activity measurement substrate solution produced by the method of the present invention” in [1] of 3 above.
  • the measurement result (measurement value) of the lipase activity value of a sample is represented.
  • the unit of this measured value is unit / L (Unit / L).
  • the “standard substance” sample is indicated by “ ⁇ ”
  • the “control serum-1” sample is indicated by “ ⁇ ”
  • the “control serum-2” is indicated.
  • “ ⁇ ” “Control Serum-3” sample “ ⁇ ”
  • “Pool Serum” sample “ ⁇ ” “Human Serum” (total 50 samples) Is indicated by “ ⁇ ”.
  • the substrate solution for measuring lipase activity produced by the method of the present invention was used.
  • the measurement result (measurement value) of the lipase activity value in the sample obtained in this way is the lipase activity value obtained using the control commercial reagent, regardless of which of the five types of lipase activity measurement substrate solutions is used. It can be seen that this shows a good correlation with the measurement results (measured values).
  • the lipase activity measurement substrate solution produced by the method for producing the lipase activity measurement substrate solution and the simplified production method of the present invention is capable of accurately measuring the lipase activity in the sample. Was confirmed.
  • the method for producing a substrate solution for measuring lipase activity and the method for simplifying production according to the present invention it becomes possible to produce a substrate solution for measuring lipase activity easily, in a short time and at low cost, and the substrate solution. Thus, it was confirmed that an accurate measurement result (measurement value) of the lipase activity in the sample can be provided.

Abstract

1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6'-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法において、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要としない、製造方法を提供する。当該製造方法は、(1) 前記リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び(2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法である。

Description

リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び製造の簡略化方法
 本発明は、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造するための方法であって、従来方法よりも簡便に当該基質溶液を製造することができる方法に関するものである。
 また、本発明は、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造するための方法において、当該基質溶液の製造を簡略化することができる方法に関するものである。
 本発明は、臨床検査などの生命科学分野、並びに分析化学などの化学分野等において有用なものである。
 血清又は血漿中のリパーゼ活性は、急性膵炎、慢性膵炎又は膵臓癌等の膵疾患において上昇することから、これらの膵炎等のマーカーとして有用なものである。
 このリパーゼは、長鎖脂肪酸の3分子がそれぞれグリセロールにエステル結合したトリグリセライド(TG)のα位(1位、3位)のエステル結合を加水分解して、2分子の脂肪酸及び1分子のβ-モノグリセライドを生成する反応を触媒する酵素である。
 この1分子のβ-モノグリセライドは、α型に異性化され、これがリパーゼの作用を受けて加水分解されてグリセロールと脂肪酸とになる。
 血清又は血漿中のリパーゼ活性の測定方法としては、次のような方法が知られていた(非特許文献1及び非特許文献2参照。)。
 例えば、オリーブ油のエマルジョンをリパーゼの基質として用い、このオリーブ油のエマルジョンを血清試料等と接触させ、37℃で24時間反応させた後、リパーゼによる加水分解反応により生成した脂肪酸をアルカリで滴定するCherry-Crandallの方法が知られていた。
 しかし、この方法は反応時間が長く、測定しようとするリパーゼの不活性化や反応阻害が著しい方法であった。
 また、トリオレイン又はオリーブ油のエマルジョンをリパーゼの基質として用い、このトリオレイン又はオリーブ油のエマルジョンを血清試料等と接触させ、反応させて、リパーゼによる乳化ミセルの加水分解反応にともなって起こる反応液の濁度の減少からリパーゼ活性を測定するVogel-Zieve法及びこの変法が知られていた。
 しかし、これらの方法は、血清蛋白による阻害やリウマチ因子による凝集塊の干渉を受け、均一かつ安定なエマルジョンを作るのが難しく、再現性に乏しいという短所を有する方法であった。
 また、BALB(2,3-ジメルカプト-1-プロパノール 三酪酸)をリパーゼの基質として用い、このBALBを血清試料等と接触させ、反応させて、リパーゼによる加水分解反応により生成したBAL(2,3-ジメルカプト-1-プロパノール)をDTNB(5,5’-ジチオビス-2-ニトロ安息香酸)と反応させて、生じたTNBアニオンの黄色の発色を412nmで測定することによってリパーゼ活性を測定する方法が知られていた。
 しかし、この方法は、高濃度の肝エステラーゼの存在下でその干渉を受けてしまうため、他の測定項目の測定試薬から反応セル又はノズル(プローブ)を介して混入する肝エステラーゼの影響を受けて測定値に誤差が生じるという短所を有する方法であった。
 また、天然型基質である1,2-ジリノレオイルグリセロールをリパーゼの基質として用い、この1,2-ジリノレオイルグリセロールを血清試料等と接触させ、反応させて、リパーゼによる加水分解反応により生成したリノール酸が、コエンザイムA、NAD及びATPの存在下で、アシル-CoAシンセターゼ、アシル-CoAオキシダーゼ、エノイル-CoAヒドラターゼ-3-ヒドロキシアシル-CoAデヒドロゲナーゼ-3-ケトアシル-CoAチオラーゼ複合酵素の共同作用によってβ-酸化を受ける際に起こるNADHの生成速度を測定することによってリパーゼ活性を測定する方法が知られていた。
 しかし、この方法も、高濃度の肝エステラーゼの存在下でその干渉を受けてしまうため、他の測定項目の測定試薬から反応セル又はノズル(プローブ)を介して混入する肝エステラーゼの影響を受けて測定値に誤差が生じるという短所を有する方法であった。
 前記の各測定方法に加えて、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル〔DGGMR〕をリパーゼの基質として用いる血清又は血漿中のリパーゼ活性の測定方法が開発された(特許文献1及び非特許文献2参照。)。
 この方法では、この1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[以下、「DGGMR」ということがある]を血清試料等と接触させ、反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成する。
 このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めることができる。
 このDGGMRをリパーゼの基質として用いるリパーゼ活性の測定方法は、測定が一連の反応で進むシンプルなものであり、かつ他の測定試薬から反応セル又はノズル(プローブ)を介して混入するエステラーゼの影響を受けにくいという長所を有する方法である。
 ところで、血清又は血漿等に含まれるリパーゼは、エマルジョン化したトリグリセライド基質の水と油との界面で最も効率よく作用し、このリパーゼの反応速度は分散した基質の表面積に関係するので、このリパーゼの活性測定には安定で均一なミセル粒子からなる基質の調製が重要であるとされている(非特許文献2参照。)。
 このため、従来、リパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液(リパーゼ活性測定用基質溶液)を製造するに当っては、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化(乳化)した基質溶液となるよう、種々の方法が考えられてきたが、基質を界面活性剤を含む水溶液に混合したり、基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、基質含有液を溶液に噴射注入したり、基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又は基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理が必要であったり、又は特別な装置若しくは器具などの物等が必要であった。
 例えば、リパーゼの基質となるトリグリセライド等の非水溶性物質を非イオン性界面活性剤を含む水溶液に加え、撹拌しながら加熱し、一度非イオン性界面活性剤の曇点より高い温度に上げ、更に撹拌を続けながら曇点以下に冷却することを特徴とする、非水溶性物質の透明な可溶化水溶液の製造方法が開示された(特許文献2参照。)。
 また、非イオン性界面活性剤を含む水溶液を当該非イオン性界面活性剤の曇点以上に加熱し、これにトリグリセライドを加え撹拌を続けながら溶解して、トリグリセライドの均一かつ可溶(透明)化水溶液を調製し、これをリパーゼの基質とし、必要に応じてこれにリパーゼ機能促進物質を含有することを特徴とする透明なリパーゼ測定用トリグリセライド基質溶液が開示された(特許文献3参照。)。
 また、検体中のリパーゼ活性の測定に用いるための基質溶液を製造するための方法であって、トリグリセライド等の基質とHLBが10~16の非イオン性界面活性剤等の界面活性剤を混合する際に、メタノール又はエタノール等の水溶性有機溶媒を同時に混合し、混合方法として超音波などの振動を与えることを特徴とする、基質溶液のミセル径の幾何平均径が0.17μm~0.38μmであり、かつ、ミセル径分布の幾何標準偏差が0.25μm以下である基質溶液等を製造する方法が開示された(特許文献4参照。)。
 そして、前記のDGGMRをリパーゼの基質として用いるリパーゼ活性の測定方法においても、その基質溶液の製造においては、「b)蒸留水60ml中に撹拌下にタウロデソキシコール酸ナトリウム0.9g及びコリパーゼ(豚から)0.3gを撹拌下に溶解する。良好な撹拌下に、n-プロパノール1.7ml中の1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6-メチル-レゾルフィン-)エステル70mgの溶液を前記溶液中に噴射注入する。」[特許文献1の例29]、又は「試薬2: 0.6gのリパーゼ発色基質(例えば、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)エステル)を、9mlの適切なアルコール(例えば、エタノール)に溶解した。1gの乳化剤(emulgator)(例えば、Brij 35またはTriton X-114)を溶液に添加した。得られた油相(oelic phase)を注射針に吸い取り、高圧下で細いカニューレ(内径0.15~1.0mm)に通して撹拌中の水溶液中へ押出した。」[特許文献5の実施例3]と、有機溶媒であるアルコールを用い、かつ基質含有液を溶液に噴射注入(高圧下での注入)する処理を必要とするものであった。
 なお、また、DGGMR等のリパーゼの基質と共に、陰イオン界面活性剤、レシチン及びコレステロールエステルから選ばれた少なくとも一種のリパーゼ基質可溶化剤を含むリパーゼ分析用基質溶液が、当該基質に対してその活性をほとんど低下させることなく、高度に可溶化することが可能であるとの効果を奏するものとして開示された(特許文献6参照。)。
 そして、この文献には、前記のリパーゼ基質可溶化剤に替えて、0.1重量%の非イオン性界面活性剤を添加して用いた場合には、「濁りが有って、測定に支障あり」という結果になったことが記載されている。
 また、DGGMR等のリパーゼの基質と、リパーゼ基質可溶化剤としての1,2-ジフタノイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンとを少なくとも含有することを特徴とする酵素活性測定用リパーゼ基質溶液が、溶液の透明度が高く、このため精度よくリパーゼ活性の測定が可能であり、かつ保存安定性が大きい等の効果を奏するものとして開示された(特許文献7参照。)。
特開昭61-254197号公報 特開昭58-156330号公報 特開昭63-188398号公報 特開2006-180741号公報 特表平11-504529号公報 特開平9-215500号公報 特開平11-318494号公報
臨床検査法提要,第30版,第670頁~第674頁,金井正光編著,金原出版,1993年8月20日発行 臨床検査法提要,第33版,第545頁~第547頁,金井正光監修,金原出版,2010年4月1日発行
 前記の通り、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造に当っては、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理が必要であったり、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要とするものであった。
 これに対して、本発明の課題は、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法において、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要としない、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法を提供することである。
 また、本発明の課題は、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液を製造するための方法において、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要としない、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法を提供することである。
 本発明者らは、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法について検討を重ねたところ、DGGMRと、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物[以下、「本重合体化合物」ということがある]とを混合し、その混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合することにより、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
 本発明の要旨は以下の通りである。
〔1〕 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法であって、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法。
〔2〕 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法において、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法。
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法は、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要とせずに、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液を製造することができる方法である。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法は、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要とせずに、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液の製造を簡略化することができる方法である。
 従って、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法、及びリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法を用いた場合は、簡便、短時間、かつ低コストにより、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液を製造することが可能となった。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法、及びリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法においては、煩雑な又は熟練を要する等の特別な処理が必要でなくなったため、製造したリパーゼ活性測定用基質溶液が規格を外れた不良品となる可能性が小さくなり、正確な測定結果(測定値)を得ることができるリパーゼ活性測定用基質溶液を低コストかつ確実に医療機関等に提供することができるようになった。
本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を含む測定試薬による測定値と、対照市販試薬による測定値との相関を示した図である。
〔1〕リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法
1.総論
(A)総論
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル〔DGGMR〕をリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造するための方法であって、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とするものである。
 そして、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法は、この(1)及び(2)の工程を含むものであることより、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要とせずに、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液を製造することができる。
(B)側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを用いる態様
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法は、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを用いる次の態様を含むものである。
 「1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法であって、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法。」
(C)ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を用いる態様
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法は、ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を用いる次の態様を含むものである。
 「1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法であって、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法。」
2.リパーゼ
 本発明において、リパーゼは、リパーゼとしての活性、すなわちリパーゼ活性を有するものであればよく、このリパーゼ活性を有するものであれば特に限定はない。
 本発明において、リパーゼとしては、例えば、長鎖脂肪酸の3分子がそれぞれグリセロールにエステル結合したトリグリセライド(TG)のα位(1位、3位)のエステル結合を加水分解して、2分子の脂肪酸及び1分子のβ-モノグリセライドを生成する反応を触媒する膵リパーゼ[EC 3.1.1.3]等を挙げることができる。
 本発明は、体液、臓器又は組織に存在するリパーゼの活性測定にとって好適であり、体液に存在するリパーゼの活性測定にとってより好適であり、血液、血清又は血漿に存在するリパーゼの活性測定にとって更に好適であり、血清又は血漿に存在するリパーゼの活性測定にとって特に好適である。
 また、本発明は、膵リパーゼの活性測定にとって好適である。
3.試料
 本発明において、リパーゼの活性を測定する試料は、前記のリパーゼを含む可能性がある試料であればよく、前記のリパーゼを含む可能性があるものであれば特に限定されない。
 この試料としては、例えば、ヒト若しくは動物又は植物に由来する試料等を挙げることができる。
 ヒト若しくは動物に由来する試料としては、特に限定されず、例えば、ヒト或いは動物の、血液、血清、血漿、尿、精液、髄液、唾液、汗、涙、腹水、若しくは羊水などの体液;大便などの排泄物;膵臓、肝臓、若しくは胃などの臓器;毛髪、皮膚、爪、筋肉、若しくは神経などの組織;又は細胞等を挙げることができる。
 本発明は、ヒト又は動物に由来する試料を試料とする場合に好適であり、ヒトに由来する試料を試料とする場合に特に好適である。
 また、本発明は、体液、臓器又は組織を試料とする場合に好適であり、体液を試料とする場合により好適であり、血液、血清又は血漿を試料とする場合に更に好適であり、血清又は血漿を試料とする場合に特に好適である。
 なお、本発明において、試料は、液体である場合に好適であるので、もし試料が液体でない場合には、抽出処理又は可溶化処理等の前処理を既知の方法に従って行い、液体試料とすればよい。
 また、試料は、必要に応じて、希釈又は濃縮処理等を行ってもよい。
4.リパーゼ活性測定用基質
 本発明において、試料中に含まれるリパーゼの活性の測定に使用するためのリパーゼの基質、すなわちリパーゼ活性測定用基質は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル〔DGGMR〕である。
 本発明においては、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRを試料と接触させ、試料中に含まれるリパーゼと反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、DGGMRより1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成する。
 このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 本発明においては、この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めることができる。
 なお、DGGMRは、ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]、又はシグマ アルドリッチ ジャパン合同会社[日本国]等より市販されている。
5.本重合体化合物
(1)総論
 前記の通り、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法においては、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物(本重合体化合物)を混合し混合物を調製する工程、及びこの混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含む。
(2)側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル
 本発明において用いる、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル[以下、「本変性シリコーンオイル」ということがある]について、以下説明する。
 シリコーン化合物は、シロキサン結合〔-Si-O-Si-〕が主鎖であって、側鎖としてメチル基〔CH-〕等の有機基がケイ素原子に結合した重合体化合物である。
 そして、直鎖状のシリコーン化合物がシリコーンオイルである。
 なお、変性シリコーンオイルは、直鎖状のジメチルシリコーン化合物〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-Si(CH〕の一部のケイ素原子に有機基を導入した化合物である。
 この変性シリコーンオイルとしては、ポリシロキサンの側鎖の一部、ポリシロキサンのどちらか片方の末端、ポリシロキサンの両方の末端、又はポリシロキサンの側鎖の一部と両方の末端に、各種の有機基を導入したシリコーンオイルが存在する。
 この内、ポリシロキサンの側鎖の一部に各種の有機基を導入したシリコーンオイルが、側鎖型の変性シリコーンオイル〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-[Si(CH)(有機基)-O-]n-Si(CH〕である。
 なお、この導入する有機基の性質によって、変性シリコーンオイルは、反応性シリコーンオイルと非反応性シリコーンオイルに分類される。
 この内、非反応性の変性シリコーンオイルとしては、その導入有機基により、ポリエーテル変性タイプ、アラルキル変性タイプ、フロロアルキル変性タイプ、長鎖アルキル変性タイプ、高級脂肪酸エステル変性タイプ、高級脂肪酸アミド変性タイプ、ポリエーテル・長鎖アルキル・アラルキル変性タイプ、長鎖アルキル・アラルキル変性タイプ、又はフェニル変性タイプ等を挙げることができる。
 そして、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-[Si(CH)(有機基)-O-]n-Si(CH〕としては、その変性タイプが、例えば、ポリエーテル変性タイプのもの〔有機基:-R(CO)(CO)R’〕、ポリエーテル・長鎖アルキル・アラルキル変性タイプのもの〔有機基:-R(CO)(CO)R’、-C2a+1、-CH-CH(CH)-C〕、アラルキル変性タイプのもの〔有機基:-CH-CH(CH)-C〕、フロロアルキル変性タイプのもの〔有機基:-CHCHCF〕、長鎖アルキル変性タイプのもの〔有機基:-C2a+1〕、長鎖アルキル・アラルキル変性タイプのもの〔有機基:-C2a+1、-CH-CH(CH)-C〕、高級脂肪酸エステル変性タイプのもの〔有機基:-OCOR〕、高級脂肪酸アミド変性タイプのもの〔有機基:-RNHCOR’〕、又はフェニル変性タイプのもの〔有機基:-C〕等を挙げることができる。
 本発明においては、この側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-[Si(CH)(有機基)-O-]n-Si(CH〕[有機基:-R(CO)(CO)R’]を用いる。(又は、ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を用いる。)
 この側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルとしては、例えば、「KF-351A」、「KF-354L」、「KF-355A」、又は「KF-6011」[販売元はいずれの製品も信越化学工業株式会社(日本国)]等が市販されている。
(3)ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物
 本発明において用いる、ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物[以下、「本POE・POP縮合物」ということがある]について、以下説明する。
 本発明においては、ポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン縮合物〔HO(CO)-(CO)-(CO)H〕を用いる。(又は、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを用いる。)
 このポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン縮合物(本POE・POP縮合物)としては、例えば、ポリオキシエチレン(16)ポリオキシプロピレングリコール(17)〔医薬部外品原料規格名:ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール(16E.O.)(17P.O.)〕、又はポリオキシエチレン(20)ポリオキシプロピレングリコール(20)〔医薬部外品原料規格名:ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール(20E.O.)(20P.O.)〕等を挙げることができる。
 この本POE・POP縮合物としては、例えば、ポリオキシエチレン(16)ポリオキシプロピレングリコール(17)[製品名:「プルロニック L-34」、販売元:株式会社ADEKA(日本国)]、又はポリオキシエチレン(20)ポリオキシプロピレングリコール(20)[製品名:「プルロニック L-44」、販売元:株式会社ADEKA(日本国)]等が市販されている。
6.リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程
(1)総論
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法は、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物(本重合体化合物)を混合し混合物を調製する工程を含む。
 なお、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕については、前記「4.リパーゼ活性測定用基質」において記載した通りである。
 また、「側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物」(本重合体化合物)については、前記「5.本重合体化合物」において記載した通りである。
(2)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程においては、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRと本重合体化合物を混合する。
 すなわち、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と、本重合体化合物とを、直接混合する。
 従来は、使用する界面活性剤を水又は水溶液と混合し、その後、これとリパーゼ活性測定用基質を混合していた。
 しかしながら、本発明は、このような従来の方法とは異なり、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRと本重合体化合物を直接混合するという特徴的な工程を有する方法である。
 なお、本発明において、本重合体化合物は、1種類のものをリパーゼ活性測定用基質と混合してもよく、又は複数種類のものをリパーゼ活性測定用基質と混合してもよい。
(3)リパーゼ活性測定用基質の混合量
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程において、このリパーゼ活性測定用基質を混合する量は、特に限定されない。
 なお、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕は、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程」における当該水又は水溶液との混合(以下、「第2混合」ということがある)の後に、その濃度が0.05mM以上であることが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から好ましい。
 なお、第2混合の後(第2混合後)、このリパーゼ活性測定用基質の好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは0.1mM以上であり、特に好ましくは0.2mM以上である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質の濃度であるが、第2混合後、前記の目的の上から、2mM以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ活性測定用基質の好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは1mM以下であり、特に好ましくは0.8mM以下である。
 第2混合後の本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 本発明においては、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と、本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程」における当該リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物との混合(以下、「第1混合」ということがある)の時の当該リパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物それぞれの混合量を、第2混合後にリパーゼ活性測定用基質の濃度が上記の通りになるように、考慮の上決めてもよく、このようにすることが、その製造手順の上から好ましい。
 なお、このリパーゼ活性測定用基質の混合量及び濃度であるが、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そしてリパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとした場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量Ws[単位:グラム]は次のように表すことができる。
  Ws=(Cs×Vf×MWs)÷10
  すなわち、Ws=(Cs×Vf×752.05)÷10
(b)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、リパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)×(A÷100)÷(Vf×MWs)=(Ws×A×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×A×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量Ws[単位:グラム]は次のように表すことができる。
  Ws=(Cs×Vf×MWs)÷(A×10
  すなわち、Ws=(Cs×Vf×752.05)÷(A×10
(4)本重合体化合物の混合量
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程において、この本重合体化合物を混合する量は、特に限定されない。
 なお、本発明における本重合体化合物は、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程」における当該水又は水溶液との混合(第2混合)の後に、その濃度が0.01%(w/v)以上であることが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から好ましい。
 なお、第2混合の後(第2混合後)、この本重合体化合物の好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは0.05%(w/v)以上であり、特に好ましくは0.1%(w/v)以上である。
 また、この本重合体化合物の濃度であるが、第2混合後、前記の目的の上から、20%(w/v)以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、この本重合体化合物の好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは10%(w/v)以下であり、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
 第2混合後の本発明における本重合体化合物の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 本発明においては、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と、本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程」における当該リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物との混合(第1混合)の時の当該リパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物それぞれの混合量を、第2混合後に本重合体化合物の濃度が上記の通りになるように、考慮の上決めてもよく、このようにすることが、その製造手順の上から好ましい。
 なお、この本重合体化合物の混合量及び濃度であるが、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本重合体化合物の混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とした場合、第2混合後の本重合体化合物の濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)÷Vf
 よって、この場合の第1混合時に混合させる本重合体化合物の混合量Wp[単位:グラム]は次のように表すことができる。
  Wp=(Cp×Vf)÷100
(b)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本重合体化合物の混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後の本重合体化合物の濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)×(A÷100)÷Vf=(Wp×A)÷Vf
 よって、この場合の第1混合時に混合させる本重合体化合物の混合量Wp(単位:グラム)は次のように表すことができる。
  Wp=(Cp×Vf)÷A
(5)混合の方法
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程において、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物とを混合する方法は、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物が混合するのであればいずれの方法でもよく、特に限定はない。
 なお、本発明における当該混合においては、リパーゼ活性測定用基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を溶液に噴射注入したり、リパーゼ活性測定用基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又はリパーゼ活性測定用基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理や特別な装置等は必要なく、一般的なミキサーを用いて一般的な速度で撹拌する等、通常の方法で混合すればよく、これによりリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物を調製することができる。
(6)混合時の温度
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程において、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物とを混合する時の温度は、特に限定されないが、用いる本重合体化合物の曇点付近の温度又はこの曇点付近の温度以下の温度においてこの工程を行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から好ましい。
 なお、曇点は、非イオン性の界面活性剤等の水溶液の温度を上げていった場合にその界面活性剤等のミセルが形成できなくなる温度であり、その水溶液が白濁する温度であって、その界面活性剤等毎に異なるものである。
 また、本発明において、本重合体化合物の曇点付近の温度としては、その本重合体化合物の曇点の温度のプラスマイナス(±)25℃の範囲を意味する。
 この本重合体化合物の曇点付近の温度としては、その本重合体化合物の曇点の温度のプラスマイナス(±)15℃の範囲が好ましく、プラスマイナス(±)10℃の範囲がより好ましく、プラスマイナス(±)5℃の範囲が特に好ましい。
 そして、本発明においては、上記の本重合体化合物の曇点付近の温度以下の温度において、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程を行うことも好ましい。
 なお、例えば、本変性シリコーンオイルである、KF-351Aの曇点は52℃(自己実測値)であり、KF-355Aの曇点は67℃(自己実測値)であり、そして、KF-6011の曇点は64℃(自己実測値)である
 なお、KF-354Lは、曇点の測定に使用した恒温水槽の設定温度の上限の77℃においても曇点に至らなかったので、これの曇点は77℃超である。
 また、例えば、本POE・POP縮合物である、プルロニック L-34の曇点は65℃(自己実測値)であり、そして、プルロニック L-44の曇点は67℃(自己実測値)である。
 前記のリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程は、前記の目的の上から、用いる本重合体化合物の曇点の温度のプラスマイナス25℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことが好ましく、用いる本重合体化合物の曇点の温度のプラスマイナス15℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことがより好ましく、用いる本重合体化合物の曇点の温度のプラスマイナス10℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことが更に好ましく、そして、用いる本重合体化合物の曇点の温度のプラスマイナス5℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことが特に好ましい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程において、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物とを混合する時の温度であるが、この工程を、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕、及び用いる本重合体化合物それぞれの融点以上の温度において行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から好ましい。
 そして、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程は、前記の目的の上から、2℃以上で行うことがより好ましく、5℃以上で行うことが更に好ましく、10℃以上で行うことが特に好ましい。
(7)混合の時間
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程において、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物とを混合する時間であるが、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物とが均質に混合されればよく、特に限定されない。
 通常は、この混合を、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から、この混合を5分間又はそれ以上行うことが好ましい。なお、一般的には、5分間で十分である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物とを混合する時間は、特に上限はなく、例えば数時間混合しても構わないのであるが、時間もコストであるという観点から考えると、念入りに行うとしても通常は10分間以内でよい。
7.リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物を水又は水溶液と混合する工程
(1)総論
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法は、「リパーゼ活性測定用基質(DGGMR)と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物(本重合体化合物)を混合し混合物を調製する工程」において調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程を含む。
 なお、リパーゼ活性測定用基質については、前記「4.リパーゼ活性測定用基質」において記載した通りである。
 また、本重合体化合物については、前記「5.本重合体化合物」において記載した通りである。
 そして、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製することについては、前記「6.リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程」において記載した通りである。
(2)水又は水溶液
 本発明の、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、この水又は水溶液については、特に限定はない。
 この水としては、特に限定はないが、例えば、純水、蒸留水又は精製水等を挙げることができる。
 また、この水溶液としては、水を溶媒とするものであればよく、特に限定はないが、例えば、リパーゼ賦活化剤、リパーゼ活性化剤、コリパーゼ、及び緩衝剤からなる群から選ばれる少なくとも一つのもの等を含有する水溶液等を挙げることができる。
(a)リパーゼ賦活化剤
 本発明において、前記の水溶液に含有させることができるリパーゼ賦活化剤としては、リパーゼを賦活化することができる物質であればよく、特に限定はないが、例えば、胆汁酸若しくはその塩等を挙げることができる。
 この胆汁酸としては、例えば、デオキシコール酸、タウロデオキシコール酸、グリコデオキシコール酸、コール酸、リトコール酸、グリココール酸、タウロコール酸、ケノデオキシコール酸、ウルソデオキシコール酸、7-オキソリトコール酸、12-オキソリトコール酸、12-オキソケノデオキシコール酸、7-オキソデオキシコール酸、ヒオコール酸、ヒオデオキシコール酸、デヒドロコール酸、又はコール酸誘導体等を挙げることができる。
 また、この胆汁酸の塩としては、例えば、胆汁酸とアルカリ金属若しくはアルカリ土類金属との塩又はアンモニウム塩等を挙げることができる。
 このアルカリ金属としては、例えば、カリウム、ナトリウム又はリチウム等を挙げることができ、また、このアルカリ土類金属としては、例えば、マグネシウム又はカルシウム等を挙げることができる。
 本発明において、リパーゼ賦活化剤としては、そのリパーゼ賦活化能、リパーゼ活性測定用基質よりなる界面の形成能力、水溶性、及びコストの点から、胆汁酸又はその塩が好ましい。
 そして、胆汁酸としては、リパーゼ活性測定用基質が安定な酸性域において溶解可能な点でタウロデオキシコール酸が好ましく、また、コストの点からデオキシコール酸が好ましい。
 この胆汁酸としては、タウロデオキシコール酸が特に好ましい。
 そして、胆汁酸の塩としては、胆汁酸とアルカリ金属の塩が好ましく、胆汁酸のカリウム塩又はナトリウム塩がより好ましく、胆汁酸のナトリウム塩が特に好ましい。
 よって、胆汁酸の塩としては、デオキシコール酸又はタウロデオキシコール酸のアルカリ金属(カリウム若しくはナトリウム等)の塩が好ましく、タウロデオキシコール酸のアルカリ金属(カリウム又はナトリウム等)の塩がより好ましく、タウロデオキシコール酸のナトリウム塩が特に好ましい。
 なお、本発明において、リパーゼ賦活化剤は、前記の「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部と、水又は水溶液との混合」(第2混合)の後、その濃度が0.2%(w/v)以上であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、より好ましくは0.4%(w/v)以上であり、特に好ましくは1%(w/v)以上である。
 また、このリパーゼ賦活化剤の濃度であるが、第2混合後、20%(w/v)以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、より好ましくは10%(w/v)以下であり、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
 本発明における、第2混合後のリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 本発明においては、第2混合後のリパーゼ賦活化剤の濃度が上記の濃度となるよう、前記の「リパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物の混合物」と前記水溶液との混合比率等を勘案した上で、当該水溶液にリパーゼ賦活化剤を適当な濃度で含有させることが好ましい。
(b)リパーゼ活性化剤
 本発明において、前記の水溶液に含有させることができるリパーゼ活性化剤としては、リパーゼを活性化することができる物質であればよく、特に限定はないが、例えば、アルカリ土類金属イオン若しくはその塩等を挙げることができる。
 このアルカリ土類金属イオン又はその塩としては、例えば、ベリリウムイオン若しくはベリリウム塩、マグネシウムイオン若しくはマグネシウム塩、又はカルシウムイオン若しくはカルシウム塩等を挙げることができる。
 このカルシウム塩としては、例えば、水溶性のカルシウム塩等を挙げることができ、より具体的には、1価又は2価以上の陰イオンとカルシウムイオンよりなる塩であって水溶性であるもの等を挙げることができる。
 なお、この陰イオンとしては、例えば、ハロゲンイオン、有機化合物よりなる酸基、又はその他の無機化合物よりなる酸基等を挙げることができる。
 そして、ハロゲンイオンとしては、例えば、フッ素イオン、又は塩素イオン等を挙げることができる。
 有機化合物よりなる酸基としては、例えば、酢酸イオン、クエン酸イオン、又はグルコン酸イオン等を挙げることができる。
 その他の無機化合物よりなる酸基としては、例えば、硫酸イオン、リン酸イオン、又は炭酸イオン、等を挙げることができる。
 本発明において、リパーゼ活性化剤としては、アルカリ土類金属イオン又はその塩が好ましい。
 なお、アルカリ土類金属イオン又はその塩としては、次の(i)及び(ii)の点から、カルシウムイオン又はカルシウム塩が好ましい。
 (i) リパーゼの活性化能
 (ii) リパーゼの触媒作用を受けることによりリパーゼ活性測定用基質から遊離した脂肪酸は、リパーゼ活性測定用基質よりなる界面を壊すが、カルシウムイオン又はカルシウム塩はこの遊離した脂肪酸を捕捉し、当該界面が壊れるのを抑制することができる。
 そして、このカルシウム塩としては、陰イオンとカルシウムイオンよりなる塩であって水溶性であるものが好ましい。
 そして、この陰イオンとしては、ハロゲンイオン又は有機化合物よりなる酸基が好ましい。より具体的には、塩素イオン又は酢酸イオンが特に好ましい。
 よって、カルシウム塩としては、ハロゲンイオンとのカルシウム塩又は有機化合物よりなる酸基のカルシウム塩が好ましく、より具体的には、塩化カルシウム又は酢酸カルシウムが特に好ましい。
 なお、本発明において、リパーゼ活性化剤は、前記の「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部と、水又は水溶液との混合」(第2混合)の後、その濃度が0.1mM以上であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、より好ましくは1mM以上であり、特に好ましくは5mM以上である。
 また、このリパーゼ活性化剤の濃度であるが、第2混合後、100mM以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、より好ましくは50mM以下であり、特に好ましくは25mM以下である。
 本発明における、第2混合後のリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 本発明においては、第2混合後のリパーゼ活性化剤の濃度が上記の濃度となるよう、前記の「リパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物の混合物」と前記水溶液との混合比率等を勘案した上で、当該水溶液にリパーゼ活性化剤を適当な濃度で含有させることが好ましい。
(c)コリパーゼ
 本発明において、水溶液に含有させることができるコリパーゼとしては、コリパーゼの作用、機能又は活性を有しているものであればよく、特に限定はないが、例えば、ヒト、若しくはブタなどの哺乳類由来のコリパーゼ又は遺伝子工学等を用いて調製、修飾若しくは改変されたコリパーゼ等を挙げることができる。
 本発明において、コリパーゼとしては、ブタなどの哺乳類由来のコリパーゼが好ましく、ブタなどの哺乳類の膵臓由来のコリパーゼがより好ましい。
 なお、本発明において、コリパーゼは、前記の「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部と、水又は水溶液との混合」(第2混合)の後、その活性値が15K単位/L(15K Unit/L)以上であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このコリパーゼの好ましい活性値は、より好ましくは150K単位/L以上であり、特に好ましくは750K単位/L以上である。
 また、このコリパーゼの活性値であるが、第2混合後、7,500K単位/L以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このコリパーゼの好ましい活性値は、より好ましくは3,750K単位/L以下であり、特に好ましくは2,250K単位/L以下である。
 本発明における、第2混合後のコリパーゼの好ましい活性値は、以上述べた通りである。
 本発明においては、第2混合後のコリパーゼの活性値が上記の活性値となるよう、前記の「リパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物の混合物」と前記水溶液との混合比率等を勘案した上で、当該水溶液にコリパーゼを適当な活性値で含有させることが好ましい。
 なお、上記のコリパーゼの各活性値(単位/L)は、ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]のブタ膵臓由来のコリパーゼの活性値の表示に基づくものである。[1mg/L=75K単位/L]
 なお、コリパーゼは、ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]、又はシグマ アルドリッチ ジャパン合同会社[日本国]等より市販されている。
(d)pH
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕は、pH4又はその付近のpHにおいて安定である。
 よって、前記の「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部と、水又は水溶液との混合」(第2混合)の後、そのpHはpH4を中心とする一定の範囲内のものであることが好ましい。
 具体的には、第2混合後のpHは、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の安定性の点から、pH2~pH7の範囲内にあることが好ましく、pH3~pH5の範囲内にあることがより好ましく、そして、pH3.5~pH4.5の範囲内にあることが特に好ましい。(前記のpH値はいずれも20℃での値である。)
 本発明における、第2混合後のpHは、以上述べた通りである。
 本発明においては、第2混合後のpHが上記のpHとなるよう、前記水溶液のpHを適当なpHにすることが好ましい。
(e)緩衝剤
 本発明においては、前記の「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部と、水又は水溶液との混合」(第2混合)の後のpHを、前記(d)に記載のpH範囲に保つため、前記のpH範囲に緩衝能を有する緩衝剤を前記水溶液に適宜含有させてもよい。
 本発明において、前記の水溶液に含有させることができる緩衝剤としては、特に限定はないが、例えば、酒石酸、コハク酸、マロン酸、若しくはクエン酸などの有機酸、又はグリシン、若しくはリン酸、或いはこれらの塩等を挙げることができる。
 そして、本発明において、この緩衝剤を含有する水溶液(すなわち、緩衝液)における緩衝剤の濃度は、特に限定はなく、設定するpHの範囲において緩衝能を発揮することができる濃度であればよい。
 例えば、第2混合後、この緩衝剤の濃度は、好ましくは5mM以上であり、より好ましくは10mM以上であり、特に好ましくは30mM以上である。
 また、この緩衝剤の濃度は、第2混合後、好ましくは500mM以下であり、より好ましくは100mM以下であり、特に好ましくは50mM以下である。
 本発明における、第2混合後の緩衝剤の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 本発明においては、第2混合後の緩衝剤の濃度が上記の濃度となるよう、前記の水溶液に緩衝剤を適当な濃度で含有させることが好ましい。
(3)リパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物の混合物の水又は水溶液との混合
 本発明における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程においては、当該混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する。
 従来は、使用する界面活性剤を水又は水溶液と混合し、その後、これとリパーゼ活性測定用基質を混合していた。
 しかしながら、本発明は、このような従来の方法とは異なり、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を直接混合し、これにより調製したリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合するという特徴的な工程を有する方法である。
 ところで、本発明における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程であるが、特に限定はなく、例えば、「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物」の全部又は一部を「水又は水溶液」へ添加し、混合するという態様でもよく、又は「水又は水溶液」を「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物」の全部又は一部へ添加し、混合するという態様でもよく、或いはその他の態様でもよい。
 なお、本発明において、前記のリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物と、前記の水又は水溶液との混合の比率は、特に限定はなく適宜定めればよい。
 なお、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物と、水又は水溶液との混合については、例えば、次の(i)及び(ii)のように考えることができる。
(i)リパーゼ活性測定用基質の濃度の面から
 前記の6の(3)に詳述した通り、第2混合後、リパーゼ活性測定用基質の好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは0.05mM以上であり、より好ましくは0.1mM以上であり、そして、特に好ましくは0.2mM以上である。
 また、これも前記の6の(3)に詳述した通り、第2混合後、リパーゼ活性測定用基質の好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは2mM以下であり、より好ましくは1mM以下であり、そして、特に好ましくは0.8mM以下である。
 そして、このリパーゼ活性測定用基質の好ましい濃度と、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量との関係は、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そしてリパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとした場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Ws×10)÷(Cs×MWs)
  すなわち、Vf=(Ws×10)÷(Cs×752.05)
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望するリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
(b)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、リパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)×(A÷100)÷(Vf×MWs)=(Ws×A×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×A×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Ws×A×10)÷(Cs×MWs)
  すなわち、Vf=(Ws×A×10)÷(Cs×752.05)
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望するリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
(ii)本重合体化合物の濃度の面から
 前記の6の(4)に詳述した通り、第2混合後、本重合体化合物の好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは0.01%(w/v)以上であり、より好ましくは0.05%(w/v)以上であり、そして、特に好ましくは0.1%(w/v)以上である。
 また、これも前記の6の(4)に詳述した通り、第2混合後、本重合体化合物の好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは20%(w/v)以下であり、より好ましくは10%(w/v)以下であり、そして、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
 そして、この本重合体化合物の好ましい濃度と、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量との関係は、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本重合体化合物の混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とした場合、第2混合後の本重合体化合物の濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)÷Vf
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Wp×100)÷Cp
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望する本重合体化合物の濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
(b)リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本重合体化合物の混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後の本重合体化合物の濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)×(A÷100)÷Vf=(Wp×A)÷Vf
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Wp×A)÷Cp
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望する本重合体化合物の濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
 なお、本発明における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程は、二段階以上の複数の段階(ステップ)によって行ってもよい。
 なお、このように、この工程を複数の段階(ステップ)によって行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から好ましい。
 この工程を複数の段階によって行う方法であるが、これは当該工程を複数の段階によって行うものであればよく、特に限定はないが、例えば、次の〔A〕及び〔B〕の段階によって行うもの等を挙げることができる。
〔A〕 リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、一定量の水又は水溶液と混合する段階
〔B〕 前記〔A〕の段階における当該混合物(リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物との混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液に、更に一定量の水又は水溶液を混合する段階
 なお、この場合、前記〔A〕の段階において「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部」と混合する「水又は水溶液」の容量(一定量)をVa[単位:mL]とし、前記〔B〕の段階において当該混合液に「更に一定量の水又は水溶液」を混合した後の最終的な容量[すなわち、前記の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量](メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]としたとき、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)は、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から、1~500の範囲にあることが好ましい。
 すなわち、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)が1~500の範囲内になるように、前記のVa及びVfの値(容量)を選択することが、前記の目的の上から好ましい。
 なお、同様に、前記の目的の上から、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)は、2~200の範囲にあることがより好ましく、5~100の範囲にあることが特に好ましい。
 すなわち、前記の目的の上から、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)が、2~200の範囲内になるように前記のVa及びVfの値(容量)を選択することがより好ましく、5~100の範囲内になるように前記のVa及びVfの値(容量)を選択することが特に好ましい。
 なお、前記〔A〕の「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、一定量の水又は水溶液と混合する段階」であるが、特に限定はなく、例えば、「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物」の全部又は一部を一定量の「水又は水溶液」へ添加し、混合するという態様でもよく、又は一定量の「水又は水溶液」を「リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物」の全部又は一部へ添加し、混合するという態様でもよく、或いはその他の態様でもよい。
 また、前記〔B〕の「前記〔A〕の段階における当該混合物(リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物との混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液に、更に一定量の水又は水溶液を混合する段階」であるが、特に限定はなく、例えば、「前記〔A〕の段階における当該混合物(リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物との混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液」を一定量の「水又は水溶液」へ添加し、混合するという態様でもよく、又は一定量の「水又は水溶液」を「前記〔A〕の段階における当該混合物(リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物との混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液」へ添加し、混合するという態様でもよく、或いはその他の態様でもよい。
(4)混合の方法
 本発明における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、当該混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する方法は、当該混合物と、当該水又は水溶液が混合するのであればいずれの方法でもよく、特に限定はない。
 なお、本発明における当該混合においては、リパーゼ活性測定用基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を溶液に噴射注入したり、リパーゼ活性測定用基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又はリパーゼ活性測定用基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理や特別な装置等は必要なく、一般的なミキサーを用いて一般的な速度で撹拌する等、通常の方法で混合すればよく、これにより、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合することができる。
(5)混合時の温度
 本発明における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、当該混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する時の温度は、特に限定されないが、用いる本重合体化合物の曇点以下の温度においてこの工程を行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から好ましい。
 そして、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程は、前記の目的の上から、用いる本重合体化合物の曇点より10℃低い温度以下で行うことがより好ましく、25℃以下で行うことが特に好ましい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液とを混合する時の温度であるが、この工程を、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕、用いる本重合体化合物、及び使用する水又は水溶液それぞれの融点以上の温度において行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から好ましい。
 そして、このリパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程は、前記の目的の上から、10℃以上で行うことがより好ましく、15℃以上で行うことが特に好ましい。
(6)混合の時間
 本発明における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、当該混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する時間であるが、このリパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物の混合物と、この水又は水溶液とが、均質に混合されればよく、特に限定されない。
 通常は、この混合を、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から、この混合を5分間又はそれ以上行うことが好ましい。なお、一般的には、5分間で十分である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質及び本重合体化合物の混合物と、水又は水溶液とを混合する時間は、特に上限はなく、例えば数時間混合しても構わないのであるが、時間もコストであるという観点から考えると、念入りに行うとしても通常は10分間以内でよい。
8.リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径
 先に記載した通り、リパーゼは、エマルジョン化したトリグリセライド基質の水と油との界面で最も効率よく作用し、このリパーゼの反応速度は分散した基質の表面積に関係するので、このリパーゼの活性測定には安定で均一なミセル粒子からなる基質の調製が重要であるとされている(非特許文献2参照。)。
 本発明において、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の溶液は、そのエマルジョンのミセル径(粒子径)が60~1,500nmの範囲にあると、リパーゼとの反応の速度が高く、また、このエマルジョンが安定であり、このリパーゼ活性測定用基質溶液を長期間保存・使用できるので好ましい。
 この理由により、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質の溶液は、そのエマルジョンのミセル径(粒子径)が70~1,000nmの範囲にあることがより好ましく、80~600nmの範囲にあることが更に好ましく、そして、100~200nmの範囲にあることが特に好ましい。
〔2〕リパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法
1.総論
(A)総論
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル〔DGGMR〕をリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法において、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物(本重合体化合物)を混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とするものである。
 そして、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法は、この(1)及び(2)の工程を含むものであることより、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要とせずに、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含むリパーゼ活性測定用基質溶液の製造を簡略化することができる。
(B)側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを用いる態様
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法は、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを用いる次の態様を含むものである。
 「1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法において、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法。」
(C)ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を用いる態様
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法は、ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を用いる次の態様を含むものである。
 「1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法であって、
 (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、ポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び
 (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法。」
2.リパーゼ
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法における、リパーゼについては、前記〔1〕の「2.リパーゼ」において記載した通りである。
3.試料
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法における、試料については、前記〔1〕の「3.試料」において記載した通りである。
4.リパーゼ活性測定用基質
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法における、リパーゼ活性測定用基質については、前記〔1〕の「4.リパーゼ活性測定用基質」において記載した通りである。
5.本重合体化合物
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法における、「側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物」(本重合体化合物)については、前記〔1〕の「5.本重合体化合物」において記載した通りである。
6.リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程については、前記〔1〕の「6.リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物を混合し混合物を調製する工程」において記載した通りである。
7.リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物を水又は水溶液と混合する工程
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法における、リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物を、水又は水溶液と混合する工程については、前記〔1〕の「7.リパーゼ活性測定用基質と本重合体化合物の混合物を水又は水溶液と混合する工程」において記載した通りである。
8.リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法における、リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径については、前記〔1〕の「8.リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径」において記載した通りである。
〔3〕試料中のリパーゼ活性の測定試薬及び測定方法
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬、及び本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法等について、以下説明を行う。
1.試料中のリパーゼ活性測定試薬
(1)試料中のリパーゼ活性測定試薬の構成等
 試料中のリパーゼ活性測定試薬は、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液のみからなるものであってもよく、又は本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液と他の構成試薬からなるもの(試薬キット)であってもよい。
 なお、次の(a)及び(b)の理由から、試料中のリパーゼ活性測定試薬としては、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液と他の構成試薬からなる試薬キットであることが好ましい。
(a) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕はpH4又はその付近のpHにおいて安定であるのに対して、リパーゼはpH8又はその付近のpHにおいてその活性は至適であり、それぞれ適するpH域が異なっている。
(b) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕、コリパーゼ、及びリパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩を、一つの試薬に共存させると、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の安定性がよくなくなる。
 よって、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液と他の構成試薬からなる試薬キットであることが好ましく、この場合、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕を含む試薬のpHはpH4又はその付近のpHとし、これと組み合わせる他の構成試薬のうち少なくとも一つの試薬のpHはpH8又はそれ以上とすることが好ましく、また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕、コリパーゼ、及びリパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩を、一つの試薬に共存させないことが好ましい。
 この試料中のリパーゼ活性測定試薬としては、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液と一つの他の構成試薬からなる2試薬系の試薬キットであることが好ましい。
 この場合、当該他の構成試薬を第1試薬とし、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を第2試薬として用いるものであることがより好ましい。
 そして、この場合に、当該他の構成試薬のpHはpH8又はそれ以上とし、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のpHはpH4又はその付近のpHとすることが更に好ましい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液にコリパーゼ、及びリパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩の両方を含有させることはせず、コリパーゼ、及びリパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩の少なくとも一方は当該他の構成試薬に含有させることが更に好ましい。
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬は、終点法(エンドポイント法)により測定を行うものであってもよく、又は反応速度法(レート法)により測定を行うものであってもよく、適宜選択すればよいが、反応速度法(レート法)によるものが好ましい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬においては、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と試料を接触させ、反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成するが、このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 よって、この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度等を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めればよい。なお、この場合、一波長法でもよく、又は二波長法でもよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬において、測定反応時の温度は、30℃又は37℃等測定反応が進行しかつ測定反応に係わる酵素等の反応成分が熱により失活、変性又は変質しない範囲内の温度を設定すればよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬において、測定反応の開始方法は、本発明のリパーゼ活性測定用基質等を加えることにより行う方法、又は試料を加えることにより行う方法等のいずれの方法のものでもよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬において、その測定は、用手法により行うものであってもよく、又は自動分析装置等の装置を用いて行うものであってもよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬は、その構成試薬の全て又は一部が液状試薬であってよい。
 なお、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、そのもの単独にて、販売し、又は試料中のリパーゼ活性の測定に使用することができる。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、前記の他の構成試薬又はそれ以外の試薬と組み合わせて、販売し、又は試料中のリパーゼ活性の測定に使用することもできる。
 前記の他の構成試薬、又はそれ以外の試薬としては、例えば、緩衝液、試料希釈液、試薬希釈液、校正(キャリブレーション)を行うための物質を含有する試薬、又は精度管理を行うための物質を含有する試薬等を挙げることができる。
(2)試料中のリパーゼ活性の測定試薬の具体例
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を含む試料中のリパーゼ活性の測定試薬の具体例を以下挙げる。
(I)例1
(a)第1試薬 [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液;pH8.3(20℃)]
 デオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
 塩化カルシウム [リパーゼ活性化剤] 5mM
 コリパーゼ (ブタ膵臓由来;ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) 375K単位/L(5mg/L)
 Bicine [緩衝剤] 40mM
(b)第2試薬(本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液) [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液;pH4.0(20℃)]
 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕 (ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) [リパーゼ活性測定用基質] 0.3mM
 側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル 0.3%(w/v)
 L-酒石酸 [緩衝剤] 40mM
(II)例2
(a)第1試薬 [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液;pH8.4(20℃)]
 タウロデオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
 デオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 0.2%(w/v)
 塩化カルシウム [リパーゼ活性化剤] 5mM
 コリパーゼ (ブタ膵臓由来;ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) 150K単位/L(2mg/L)
 トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン 〔Tris〕 [緩衝剤] 40mM
(b)第2試薬(本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液) [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液]
 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕 (ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) [リパーゼ活性測定用基質] 0.6mM
 ポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン縮合物 2%(w/v)
 タウロデオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
2.試料中のリパーゼ活性測定方法
(1)試料中のリパーゼ活性の測定の方法
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法により測定を行う場合、当該測定は終点法(エンドポイント法)により測定を行うものであってもよく、又は反応速度法(レート法)により測定を行うものであってもよく、適宜選択すればよいが、反応速度法(レート法)によるものが好ましい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法により測定を行う場合、その測定は、一段階のステップにより行う1ステップ法、又は二段階若しくはそれ以上の多段階のステップにより行う多ステップ法を適宜選択して測定を行えばよい。
 なお、試料中のリパーゼ活性の測定に使用する測定試薬が、第1試薬、第2試薬、及び他の試薬(一つ又は二つ以上の試薬)よりなる場合、すなわち3以上の試薬よりなる場合は、これらの試薬を使用して測定を行うのに必要な数の段階(必要に応じ二段階又は三段階以上の段階)を経て測定反応を行わせ、試料中のリパーゼ活性の測定を行えばよい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法により測定を行う場合、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と試料を接触させ、反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成するが、このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 よって、この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度等を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めればよい。なお、この場合、一波長法でもよく、又は二波長法でもよい。
 なお、測定した吸光度(若しくは透過率)又は吸光度(若しくは透過率)の変化量より、試料に含まれていたリパーゼの活性値を算出することは、6’-メチルレゾルフィンのモル吸光係数を基に測定した吸光度(若しくは透過率)より算出する方法、又はリパーゼ活性値が分かっている標準物質(標準液、若しくは標準血清等)の吸光度(若しくは透過率)と対比して算出する方法等の方法を適宜選択して行えばよい。
 また、試料を測定して得た吸光度(若しくは透過率)より試薬盲検(試薬ブランク)を差し引いて、試料に含まれていたリパーゼの活性値を算出することが好ましい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法により測定を行う場合、測定反応時の温度は、30℃又は37℃等測定反応が進行しかつ測定反応に係わる酵素等の反応成分が熱により失活、変性又は変質しない範囲内の温度を設定すればよい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法により測定を行う場合、測定反応の開始方法は、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質等を加えることにより行う方法、又は試料を加えることにより行う方法等のいずれの方法のものでもよい。
 また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法により測定を行う場合、その測定は、用手法により行うものであってもよく、又は自動分析装置等の装置を用いて行うものであってもよい。
(2)試料中のリパーゼ活性の測定方法の具体例
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法の具体例を以下挙げる。
(a)測定試薬
(i)第1試薬
 前記の1の(2)の(I)の(a)の第1試薬を、この測定方法の具体例における第1試薬として用いた。
(ii)第2試薬
 前記の1の(2)の(I)の(b)の第2試薬を、この測定方法の具体例における第2試薬として用いた。
(b)試料
 ヒトの血清を試料として用いた。
(c)測定
(i)第1段階
 前記の試料と前記の第1試薬を混合して、混合液を調製する。
 この混合する試料及び第1試薬それぞれの量は、第2試薬の量、試料に含まれるリパーゼの活性値、及び他の条件に応じて適宜決めればよい。
 なお、一般的には、例えば、試料の量は0.5~100μL、第1試薬の量は20~1,000μLの範囲のもの等とすることが好ましい。
 この混合液の調製後、インキュベートを行う。
 このインキュベートの時間は、特に制限はないのであるが、通常は20分以内であることが好ましく、10分以内であることがより好ましく、5分以内であることが特に好ましい。
 また、インキュベートする際の温度は、前記の混合液が凍結する温度より上の温度であればよい。
 なお、一般的に測定反応時の温度は、高い程、反応速度が高くなるので好ましい。
 しかし、温度が高すぎると測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活してしまうので、インキュベートする際の温度は、測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活する温度未満の温度とする必要がある。
 このインキュベートする際の温度は、通常は2~70℃であるが、20~37℃が好ましく、30~37℃がより好ましい。
 なお、測定反応に係わる酵素等の成分が耐熱性酵素など耐熱性の成分であれば更に高温でもよい。
 この試料と第1試薬の混合液の調製及びインキュベートにより、試料に含まれていたリパーゼと、第1試薬に含まれる試薬成分とが接触し、これらの成分によるリパーゼの賦活化や活性化等が行われる。
(ii)第2段階
 前記の第1段階で調製した「試料と第1試薬の混合液」に、第2試薬を混合する。これを最終反応液とする。
 この混合する第2試薬の量は、試料の量、第1試薬の量、試料に含まれるリパーゼの活性値、使用する分析装置の仕様等、及び他の条件に応じて適宜決めればよい。
 なお、一般的には、例えば、第2試薬の量は10~1,000μLの範囲のもの等とすることが好ましい。
 この最終反応液の調製後、インキュベートを行う。
 このインキュベートの時間は、特に制限はないのであるが、通常は20分以内であることが好ましく、10分以内であることがより好ましく、5分以内であることが特に好ましい。
 また、インキュベートする際の温度は、前記の最終反応液が凍結する温度より上の温度であればよい。
 なお、一般的に測定反応時の温度は、高い程、反応速度が高くなるので好ましい。
 しかし、温度が高すぎると測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活してしまうので、インキュベートする際の温度は、測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活する温度未満の温度とする必要がある。
 このインキュベートする際の温度は、通常は2~70℃であるが、20~37℃が好ましく、30~37℃がより好ましい。
 なお、測定反応に係わる酵素等の成分が耐熱性酵素など耐熱性の成分であれば更に高温でもよい。
 この最終反応液の調製及びインキュベートにより、前記の第1段階におけるリパーゼの賦活化や活性化等に引き続き、この第2段階における測定反応が開始し、試料に含まれていたリパーゼの活性測定反応が進められる。
 すなわち、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法により、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化した基質溶液となっている第2試薬(本発明におけるリパーゼ活性測定用基質溶液)が、この第2段階において試料に含まれていたリパーゼと接触することにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕より1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成する。
 そして、このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であるので、容易に自然に加水分解されて、6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 この生成した6’-メチルレゾルフィンは、その極大吸収波長(λmax)が580nmであるので、この6’-メチルレゾルフィンに由来する最終反応液の吸光度(又は透過率)を580nm又はその近辺の波長の吸光度(又は透過率)を測ることによって測定する。
 次に、測定した吸光度(若しくは透過率)又は吸光度(若しくは透過率)の変化量より、試料に含まれていたリパーゼの活性値を算出する。
 なお、これは、6’-メチルレゾルフィンのモル吸光係数を基に測定した吸光度(若しくは透過率)より算出する方法、又はリパーゼ活性値が分かっている標準物質(標準液、若しくは標準血清等)の吸光度(若しくは透過率)と対比して算出する方法等の方法を適宜選択して行う。
 なお、上記の試料に含まれていたリパーゼの活性値の算出は、試料を測定して得た最終反応液の吸光度(若しくは透過率)より試薬盲検(試薬ブランク)を差し引いて求めた吸光度差(ΔAbs.)を用いて行うことが好ましい。
 以下、実施例により本発明をより具体的に詳述するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
〔実施例1〕(リパーゼ活性測定用基質溶液の製造-1)
 本重合体化合物の曇点の測定、本発明の方法によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造、及び当該リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径の測定を行った。
1.曇点の測定
(1)本重合体化合物水溶液の調製
 下記の(a)~(d)の4種類の側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)、及び下記の(e)~(f)の2種類のポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン縮合物について、それぞれ0.1%(w/v)となるよう純水と混合し、本重合体化合物水溶液を調製した。
 (a) KF-351A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (b) KF-354L (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (c) KF-355A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (d) KF-6011 (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (e) プルロニック L-34 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
 (f) プルロニック L-44 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
(2)本重合体化合物の曇点の測定
(i) 前記(1)で調製した前記(a)~(f)の6種類の本重合体化合物水溶液[濃度:0.1%(w/v)]それぞれの1mLを各々別個の試験管に入れた。
(ii) 次に、これらの試験管を恒温水槽(型式:BK-33、販売元:ヤマト科学株式会社[日本国])に入れ、水槽の温度を1℃ずつ上昇させた。なお、水槽の温度は水銀温度計で測定を行った。
(iii) そして、前記の恒温水槽に入れた試験管内の本重合体化合物水溶液を観察して、この水溶液が白く濁った時の温度をその本重合体化合物の曇点として記録した。
 なお、この曇点の測定に使用した恒温水槽(BK-33)は、加温した水槽の温度の上限が77℃であるので、水槽の温度を77℃まで上昇させても白濁せず曇点に至らなかった場合は、「77℃超」と記録した。
(3)測定結果
 前記(2)において測定し、記録したそれぞれの本重合体化合物の曇点を、以下に示した。
 (a) KF-351A:52℃
 (b) KF-354L:77℃超
 (c) KF-355A:67℃
 (d) KF-6011:64℃
 (e) プルロニック L-34:65℃
 (f) プルロニック L-44:67℃
2.本発明によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び当該基質溶液の製造の簡略化方法により、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を行った。
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、6個のビーカー(容量:10mL)のそれぞれに、0.09グラム[g]ずつ量り取った。
(2) 次に、下記の(a)~(d)の4種類の側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)、及び下記の(e)~(f)の2種類のポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン縮合物をそれぞれ4.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。
 (a) KF-351A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (b) KF-354L (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (c) KF-355A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (d) KF-6011 (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (e) プルロニック L-34 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
 (f) プルロニック L-44 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
(3) 前記(2)の添加後、各々のビーカーを、67℃の温度に設定した恒温水槽(型式:BK-33、販売元:ヤマト科学株式会社[日本国])に入れ、これを撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を67℃で混合した。なお、水槽の温度は水銀温度計で測定し、確認した。
 この67℃での混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーを前記の67℃の温度の水槽中でスターラー(リモートドライブ電磁スターラー、型式:HP40107、販売元:株式会社三商[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのスターラーのコントロールユニットの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」の全部をビーカー内よりマイクロピペットにより吸い取り、別のビーカー(容量:10mL)中で予め20℃としておいた「一定量(4.0mL)の純水」に、撹拌しながら当該混合物の全部(全量)をこのマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の純水」との混合を行った。
 なお、この撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
 また、前記のビーカー中の「一定量(4.0mL)の純水」の温度は水銀温度計で測定することにより20℃であることを確認しておいた。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物)と一定量の純水との混合後の混合液」に、更に一定量の純水を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、下記の(a)~(f)の計6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液を、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法によって製造した。
 なお、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計6種類)において、いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMであり、本重合体化合物の濃度は2.0%(w/v)である。
 また、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計6種類)のいずれにも、濃度勾配や強い濁り等は見られず、それぞれ均質に混合されていることを目視にて確認した。
 (a) リパーゼ活性測定用基質溶液-a(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-351A)
 (b) リパーゼ活性測定用基質溶液-b(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-354L)
 (c) リパーゼ活性測定用基質溶液-c(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-355A)
 (d) リパーゼ活性測定用基質溶液-d(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-6011)
 (e) リパーゼ活性測定用基質溶液-e(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-34)
 (f) リパーゼ活性測定用基質溶液-f(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-44)
3.リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径の測定
 前記2において製造したリパーゼ活性測定用基質溶液(計6種類)のエマルジョンのミセル径を測定した。
(1)エマルジョンのミセル径の測定
(i) 前記2で製造した前記2の(7)の(a)~(f)の6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液[いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕濃度:0.6mM、本重合体化合物濃度:2.0%(w/v)]それぞれの2.5mLを各々別個のプラスチックセルに入れた。
(ii) 次に、これらのプラスチックセルを順に動的光散乱式粒径分布測定装置(型式:LB-550、販売元:株式会社堀場製作所[日本国])に入れ、それぞれのプラスチックセル中の各リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の測定を行った。なお、この測定は室温(25℃)にて行った。
(2)測定結果
 前記(1)において測定した前記の6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)を表1に示した。
 なお、この表1において、この6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の値は平均値の値を示す。
 また、この表1には、この6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液の目視での観察結果も示した。更に、この表1には、この6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液で用いた本重合体化合物の曇点についての前記1における測定結果も示した。
 なお、この表の「観察結果」の欄において、「○」は「濃度勾配、強い濁り及び発色のいずれも見られなかったもの」を示す。
 また、この表の「用いた本重合体化合物の曇点」の欄には、リパーゼ活性測定用基質溶液で用いた本重合体化合物の曇点の測定値を示すが、水槽の温度を77℃まで上昇させても白濁せず曇点に至らなかったものについては「77℃超」と表した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
(3)考察
 表1より、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法に従って製造した6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質溶液-a~リパーゼ活性測定用基質溶液-f)においては、いずれもそのエマルジョンのミセル径(粒子径)が100nm~1,100nmの範囲にあることが分かる。
 すなわち、前記の通り、ミセル径(粒子径)が測定されたことより、これらの6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液はいずれも、ミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質溶液を形成していることが分かる。
 そして、これらの6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液はいずれも、リパーゼとの反応の速度が高く、エマルジョンが安定であり、リパーゼ活性測定用基質溶液を長期間保存・使用できる60nm~1,500nmの範囲にそのエマルジョンのミセル径(粒子径)があることが分かる。
 また、この表1より、これらの6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液のいずれにおいても、濃度勾配や強い濁りや発色は見られず、このような問題のないことが分かる。
 以上のことより、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及びリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法、並びにこれらの方法に従って製造したリパーゼ活性測定用基質溶液は、次の(i)~(iii)の特徴を有するものであることが確かめられた。
(i) 従来の方法のようにリパーゼ活性測定用基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を溶液に噴射注入したり、リパーゼ活性測定用基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又はリパーゼ活性測定用基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理や特別な装置等が必要ないものであること。
(ii) 一般的なミキサーを用いて一般的な速度で撹拌する等、簡便、短時間、かつ低コストにより、リパーゼ活性測定用基質溶液を製造することが可能であり、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を簡略化することができるものであること。
(iii) 製造されるリパーゼ活性測定用基質溶液が、試料中のリパーゼ活性の測定に適したものであること。
〔実施例2〕(リパーゼ活性測定用基質溶液の製造-2)
 本発明の方法及び対照例の方法によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造、並びに当該リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径の測定を行った。
1.リパーゼ活性測定用基質溶液の製造
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び当該基質溶液の製造の簡略化方法により、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を行った。
 また、対照例の方法により、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を行った。
〔1〕本発明の方法によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、5個のビーカー(容量:10mL)のそれぞれに、0.09グラム[g]ずつ量り取った。
(2) 次に、下記の(a)~(c)の3種類の側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)、及び下記の(d)~(e)の2種類のポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン縮合物をそれぞれ4.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。
 (a) KF-351A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (b) KF-355A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (c) KF-6011 (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (d) プルロニック L-34 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
 (e) プルロニック L-44 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
(3) 前記(2)の添加後、各々のビーカーを室温(25℃)において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の2%(w/v)の濃度のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の2%(w/v)のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物)と一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液との混合後の混合液」に、更に一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、下記の(A)~(E)の計5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液を、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法によって製造した。
 なお、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計5種類)において、いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMであり、本重合体化合物の濃度は2.0%(w/v)である。
 また、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計5種類)のいずれにも、濃度勾配や強い濁り等は見られず、それぞれ均質に混合されていることを目視にて確認した。
(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-351A)
(B) リパーゼ活性測定用基質溶液-B(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-355A)
(C) リパーゼ活性測定用基質溶液-C(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-6011)
(D) リパーゼ活性測定用基質溶液-D(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-34)
(E) リパーゼ活性測定用基質溶液-E(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-44)
〔2〕対照例の方法によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造
(1) リパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、5個のビーカー(容量:10mL)のそれぞれに、0.09グラム[g]ずつ量り取った。
(2) 次に、下記の(f)~(j)の界面活性剤(いずれも非イオン性界面活性剤)をそれぞれ4.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。
 (f) Tween80 [ポリオキシエチレンソルビタンモノオレアート] (販売元:東京化成工業株式会社[日本国])
 (g) NIKKOL GO-460V [テトラオレイン酸ポリオキシエチレン(60)ソルビット] (販売元:日光ケミカルズ株式会社[日本国])
 (h) NIKKOL TL-10 [モノヤシ油脂肪酸ポリオキシエチレン(20)ソルビタン] (販売元:日光ケミカルズ株式会社[日本国])
 (i) サンニックス GP-1000 [ポリオキシプロピレングリセリルエーテル] (販売元:三洋化成工業株式会社[日本国])
 (j) NIKKOL TMGO-15 [モノオレイン酸ポリオキシエチレン(15)グリセリル] (販売元:日光ケミカルズ株式会社[日本国])
(3) 前記(2)の添加後、各々のビーカーを室温(25℃)において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と前記の各界面活性剤を混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の2%(w/v)の濃度のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤を混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の2%(w/v)のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物)と一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液との混合後の混合液」に、更に一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、下記の(F)~(J)の計5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液を、対照例の方法によって製造した。
 なお、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計5種類)において、いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMであり、各界面活性剤の濃度は2.0%(w/v)である。
(F) リパーゼ活性測定用基質溶液-F(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Tween80)
(G) リパーゼ活性測定用基質溶液-G(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL GO-460V)
(H) リパーゼ活性測定用基質溶液-H(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL TL-10)
(I) リパーゼ活性測定用基質溶液-I(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:サンニックス GP-1000)
(J) リパーゼ活性測定用基質溶液-J(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL TMGO-15)
 なお、上記の「(F)リパーゼ活性測定用基質溶液-F」、「(G) リパーゼ活性測定用基質溶液-G」及び「(H) リパーゼ活性測定用基質溶液-H」については、これらのいずれにも、濃度勾配や強い濁り等は見られず、それぞれ均質に混合されていることを目視にて確認した。
 しかしながら、上記の「(I)リパーゼ活性測定用基質溶液-I」は強度の濁りが生じていた。また、上記の「(J)リパーゼ活性測定用基質溶液-J」は発色が生じてしまっていた。
2.リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径の測定
 本発明の方法により製造した前記1の〔1〕の(7)の(A)~(E)の5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液、及び対照例の方法により製造した前記1の〔2〕の(7)の(F)~(I)の4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液について、それぞれのエマルジョンのミセル径を測定した。(なお、「(J)リパーゼ活性測定用基質溶液-J」は発色が生じてしまった為、そのエマルジョンのミセル径の測定は行わなかった。)
(1)エマルジョンのミセル径の測定
(i) 前記1の〔1〕で製造した前記1の〔1〕の(7)の(A)~(E)の5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液[いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕濃度:0.6mM、本重合体化合物濃度:2.0%(w/v)]、及び前記1の〔2〕で製造した前記1の〔2〕の(7)の(F)~(I)の4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液[いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕濃度:0.6mM、界面活性剤濃度:2.0%(w/v)]それぞれの2mLを各々別個のプラスチックセルに入れた。
(ii) 次に、これらのプラスチックセルについて順に動的光散乱式粒子径分布測定装置(型式:Nanotrac UPA-EX250、販売元:日機装株式会社[日本国])の光学プローブ(光ファイバー)を中に入れ、それぞれのプラスチックセル中の各リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の測定を行った。なお、この測定は室温(25℃)にて行った。
(2)測定結果
 前記(1)において測定した前記の計9種類のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)を表2に示した。
 なお、この表2において、これらの計9種類のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の値は平均値の値を示す。
 また、この表2には、本発明の方法により前記1の〔1〕で製造したリパーゼ活性測定用基質溶液[計5種類]、及び対照例の方法により前記1の〔2〕で製造したリパーゼ活性測定用基質溶液[計5種類]の目視での観察結果も示した。
 なお、この表の「観察結果」の欄において、「○」は「濃度勾配、強い濁り及び発色のいずれも見られなかったもの」を示し、「×(※1)」は「強度の濁りが生じたもの」そして、「×(※2)」は「発色が生じたもの」を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
(3)考察
(I)本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液
 表2より、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法に従って製造した5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質溶液-A~リパーゼ活性測定用基質溶液-E)においては、いずれもそのエマルジョンのミセル径(粒子径)が80nm~200nmの範囲にあることが分かる。
 すなわち、前記の通り、ミセル径(粒子径)が測定されたことより、これらの6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液はいずれも、ミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質溶液を形成していることが分かる。
 そして、これらの5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液はいずれも、リパーゼとの反応の速度が高く、エマルジョンが安定であり、リパーゼ活性測定用基質溶液を長期間保存・使用できる60nm~1,500nmの範囲にそのエマルジョンのミセル径(粒子径)があることが分かる。
 また、この表2より、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法に従って製造した5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液のいずれにおいても、濃度勾配や強い濁りや発色は見られず、このような問題のないことが分かる。
 以上のことからも、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及びリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法、並びにこれらの方法に従って製造したリパーゼ活性測定用基質溶液は、次の(i)~(iii)の特徴を有するものであることが確かめられた。
(i) 従来の方法のようにリパーゼ活性測定用基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を溶液に噴射注入したり、リパーゼ活性測定用基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又はリパーゼ活性測定用基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理や特別な装置等が必要ないものであること。
(ii) 一般的なミキサーを用いて一般的な速度で撹拌する等、簡便、短時間、かつ低コストにより、リパーゼ活性測定用基質溶液を製造することが可能であり、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を簡略化することができるものであること。
(iii) 製造されるリパーゼ活性測定用基質溶液が、試料中のリパーゼ活性の測定に適したものであること。
(II)対照例の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液
(a) 表2より、対照例の方法により製造した「(F)リパーゼ活性測定用基質溶液-F」、「(G) リパーゼ活性測定用基質溶液-G」及び「(H) リパーゼ活性測定用基質溶液-H」は、いずれもそのエマルジョンのミセル径(粒子径)が、60nm未満であることが分かる。
 すなわち、これらの対照例の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液[計3種類]はいずれも、ミセル径(粒子径)が測定されたことより、いずれもミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質溶液を形成していることが分かる。
 しかしながら、これらの対照例の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液[計3種類]はいずれも、そのエマルジョンのミセル径(粒子径)が、リパーゼとの反応の速度が高く、エマルジョンが安定であり、リパーゼ活性測定用基質溶液を長期間保存・使用できる60nm~1,500nmの範囲にはないことが分かる。
 つまり、これらの対照例の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液[計3種類]はいずれも、試料中のリパーゼ活性の測定に適したものでないことが分かる。
(b) また、表2に記載されている通り、対照例の方法により製造した「(I)リパーゼ活性測定用基質溶液-I」は強度の濁りが生じ、「(J)リパーゼ活性測定用基質溶液-J」は発色が生じた。
 すなわち、これらの対照例の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液[計2種類]はいずれも、試料中のリパーゼ活性の測定に適したものでないことが分かる。
〔実施例3〕(リパーゼ活性測定用基質溶液の製造-3)
 本発明の方法及び対照例の方法によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造、並びに当該リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径の測定を行った。
1.リパーゼ活性測定用基質溶液の製造
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び当該基質溶液の製造の簡略化方法により、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を行った。
 また、対照例の方法により、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を行った。
〔1〕本発明の方法によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、4個のビーカー(容量:10mL)のそれぞれに、0.09グラム[g]ずつ量り取った。
(2) 次に、下記の(a)~(b)の2種類の側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)をそれぞれ2.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。また、下記の(a)~(b)の2種類の側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)をそれぞれ4.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。(すなわち、本重合体化合物の種類毎に、2.0グラム量り取り添加したビーカー1個と4.0グラム量り取り添加したビーカー1個を用意した。)
 (a) KF-351A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (b) KF-6011 (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
(3) 前記(2)の添加後、各々のビーカーを室温(25℃)において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と前記の本重合体化合物を混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の純水」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の純水」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物)と一定量の純水との混合後の混合液」に、更に一定量の純水を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、下記の[1]~[4]の計4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液を、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法に従って製造した。
 なお、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計4種類)において、いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMである。
 また、本重合体化合物の濃度は、前記(2)において本重合体化合物を2.0グラム量り取ってビーカーに添加したもののリパーゼ活性測定用基質溶液においては1.0%(w/v)であり、そして、本重合体化合物を4.0グラム量り取ってビーカーに添加したもののリパーゼ活性測定用基質溶液においては2.0%(w/v)である。
[1] リパーゼ活性測定用基質溶液-1(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-351A〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[2] リパーゼ活性測定用基質溶液-2(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-351A〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[3] リパーゼ活性測定用基質溶液-3(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-6011〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[4] リパーゼ活性測定用基質溶液-4(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-6011〔濃度:2.0%[w/v]〕)
〔2〕対照例の方法によるリパーゼ活性測定用基質溶液の製造
(1) リパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、24個のビーカー(容量:10mL)のそれぞれに、0.09グラム[g]ずつ量り取った。
(2) 次に、下記の(c)~(n)の12種類の界面活性剤(いずれも非イオン性界面活性剤)をそれぞれ2.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。また、下記の(c)~(n)の12種類の界面活性剤(いずれも非イオン性界面活性剤)をそれぞれ4.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。
 (c) NIKKOL BT-7 [ポリオキシエチレン(7)2級アルキルエーテル] (販売元:日光ケミカルズ株式会社[日本国])
 (d) NIKKOL NP-7.5 [ポリオキシエチレン(7.5)ノニルフェニルエーテル] (販売元:日光ケミカルズ株式会社[日本国])
 (e) エマルゲン 1108 [ポリオキシエチレン(8)アルキルエーテル] (販売元:花王株式会社[日本国])
 (f) Triton X-100 [ポリオキシエチレン(10)オクチルフェニルエーテル] (販売元:和光純薬工業株式会社[日本国])
 (g) Brij35 [ポリオキシエチレン(23)ラウリルエーテル] (販売元:和光純薬工業株式会社[日本国])
 (h) Triton X-405 [ポリオキシエチレン(40)イソオクチルフェニルエーテル] (販売元:シグマ アルドリッチ ジャパン合同会社[日本国])
 (i) Tween20 [ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノラウレート] (販売元:和光純薬工業株式会社[日本国])
 (j) NIKKOL NP-15 [ポリオキシエチレン(15)ノニルフェニルエーテル] (販売元:日光ケミカルズ株式会社[日本国])
 (k) エマルゲン B-66 [ポリオキシエチレントリベンジルフェニルエーテル] (販売元:花王株式会社[日本国])
 (l) エマルゲン A-60 [ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル] (販売元:花王株式会社[日本国])
 (m) Triton X-114 [ポリオキシエチレン(8)オクチルフェニルエーテル] (販売元:和光純薬工業株式会社[日本国])
 (n) サンニックス GP-440 [ポリオキシプロピレングリセリルエーテル] (製造元:三洋化成工業株式会社[日本国])
(3) 前記(2)の添加後、各々のビーカーを室温(25℃)において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と前記の各界面活性剤を混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の純水」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤を混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の純水」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物)と一定量の純水との混合後の混合液」に、更に一定量の純水を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、下記の[5]~[28]の計24種類のリパーゼ活性測定用基質溶液を、対照例の方法によって製造した。
 なお、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計24種類)において、いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMである。
 また、各界面活性剤の濃度は、前記(2)において界面活性剤を2.0グラム量り取ってビーカーに添加したもののリパーゼ活性測定用基質溶液においては1.0%(w/v)であり、そして、界面活性剤を4.0グラム量り取ってビーカーに添加したもののリパーゼ活性測定用基質溶液においては2.0%(w/v)である。
[5] リパーゼ活性測定用基質溶液-5(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL BT-7〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[6] リパーゼ活性測定用基質溶液-6(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL BT-7〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[7] リパーゼ活性測定用基質溶液-7(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL NP-7.5〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[8] リパーゼ活性測定用基質溶液-8(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL NP-7.5〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[9] リパーゼ活性測定用基質溶液-9(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:エマルゲン 1108〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[10] リパーゼ活性測定用基質溶液-10(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:エマルゲン 1108〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[11] リパーゼ活性測定用基質溶液-11(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Triton X-100〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[12] リパーゼ活性測定用基質溶液-12(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Triton X-100〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[13] リパーゼ活性測定用基質溶液-13(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Brij35〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[14] リパーゼ活性測定用基質溶液-14(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Brij35〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[15] リパーゼ活性測定用基質溶液-15(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Triton X-405〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[16] リパーゼ活性測定用基質溶液-16(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Triton X-405〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[17] リパーゼ活性測定用基質溶液-17(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Tween20〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[18] リパーゼ活性測定用基質溶液-18(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Tween20〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[19] リパーゼ活性測定用基質溶液-19(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL NP-15〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[20] リパーゼ活性測定用基質溶液-20(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL NP-15〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[21] リパーゼ活性測定用基質溶液-21(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:エマルゲン B-66〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[22] リパーゼ活性測定用基質溶液-22(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:エマルゲン B-66〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[23] リパーゼ活性測定用基質溶液-23(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:エマルゲン A-60〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[24] リパーゼ活性測定用基質溶液-24(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:エマルゲン A-60〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[25] リパーゼ活性測定用基質溶液-25(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Triton X-114〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[26] リパーゼ活性測定用基質溶液-26(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:Triton X-114〔濃度:2.0%[w/v]〕)
[27] リパーゼ活性測定用基質溶液-27(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:サンニックス GP-440〔濃度:1.0%[w/v]〕)
[28] リパーゼ活性測定用基質溶液-28(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:サンニックス GP-440〔濃度:2.0%[w/v]〕)
2.リパーゼ活性測定用基質溶液の観察及びエマルジョンのミセル径の測定
〔1〕リパーゼ活性測定用基質溶液の観察
(1)観察
 本発明の方法により製造した前記1の〔1〕の(7)の[1]~[4]の4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液、及び対照例の方法により製造した前記1の〔2〕の(7)の[5]~[28]の24種類のリパーゼ活性測定用基質溶液について、それぞれ目視で観察を行った。
(2)観察結果
 前記(1)において目視により観察を行ったリパーゼ活性測定用基質溶液の観察結果を表3に示した。
 なお、この表の「観察結果」の欄において、「○」は「濃度勾配、強い濁り及び発色のいずれも見られなかったもの」を示し、そして、「×(※3)」は「均質でないもの(リパーゼ活性測定用基質と界面活性剤が分離してしまっている、又は油層と水層とに分離してしまっている)」を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
〔2〕リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径の測定
 本発明の方法により製造した前記1の〔1〕の(7)の[1]~[4]の4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液、並びに対照例の方法により製造した前記1の〔2〕の(7)の[5]~[14]、[17]~[20]及び[23]~[26]の18種類のリパーゼ活性測定用基質溶液について、それぞれのエマルジョンのミセル径を測定した。
 なお、対照例の方法により製造した前記1の〔2〕の(7)の[15]、[16]、[21]、[22]、[27]及び[28]の6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液は、観察結果を示した表3より分かるように、いずれも、「均質でないもの(リパーゼ活性測定用基質と界面活性剤が分離してしまっている、又は油層と水層とに分離してしまっている)」であり、リパーゼ活性の測定に適さないことが明白であるので、エマルジョンのミセル径の測定は行わなかった。
(1)エマルジョンのミセル径の測定
 本発明の方法により製造した前記1の〔1〕の(7)の[1]~[4]の4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液、並びに対照例の方法により製造した前記1の〔2〕の(7)の[5]~[14]、[17]~[20]及び[23]~[26]の18種類のリパーゼ活性測定用基質溶液について、前記実施例2の2の(1)の(i)~(ii)の記載の通りに操作を行い、各リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の測定を行った。
(2)測定結果
 前記(1)において測定した各リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)も前記の表3に示した。
 なお、この表3において、これらの各リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の値は平均値の値を示す。
 また、この表の「エマルジョンのミセル径(粒子径)」の欄には、リパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の測定値を示すが、測定に使用した前記の動的光散乱式粒子径分布測定装置(型式:Nanotrac UPA-EX250)におけるミセル径(粒子径)の測定下限が10nmであるので、測定の結果この測定下限未満であることが表示されたものについては「10nm未満」と示した。
3.考察
〔1〕本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液
 表3より、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法に従って製造した4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質溶液-1~リパーゼ活性測定用基質溶液-4)のいずれにおいても、濃度勾配や強い濁りや発色は見られず、このような問題のないことが分かる。
 また、この表3より、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法に従って製造した4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質溶液-1~リパーゼ活性測定用基質溶液-4)においては、いずれもそのエマルジョンのミセル径(粒子径)が100nm~200nmの範囲にあることが分かる。
 すなわち、前記の通り、ミセル径(粒子径)が測定されたことより、これらの4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液はいずれも、ミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質溶液を形成していることが分かる。
 そして、これらの4種類のリパーゼ活性測定用基質溶液はいずれも、リパーゼとの反応の速度が高く、エマルジョンが安定であり、リパーゼ活性測定用基質溶液を長期間保存・使用できる60nm~1,500nmの範囲にそのエマルジョンのミセル径(粒子径)があることが分かる。
 以上のことからも、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及びリパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法、並びにこれらの方法に従って製造したリパーゼ活性測定用基質溶液は、次の(i)~(iii)の特徴を有するものであることが再度確かめられた。
(i) 従来の方法のようにリパーゼ活性測定用基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を溶液に噴射注入したり、リパーゼ活性測定用基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又はリパーゼ活性測定用基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理や特別な装置等が必要ないものであること。
(ii) 一般的なミキサーを用いて一般的な速度で撹拌する等、簡便、短時間、かつ低コストにより、リパーゼ活性測定用基質溶液を製造することが可能であり、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を簡略化することができるものであること。
(iii) 製造されるリパーゼ活性測定用基質溶液が、試料中のリパーゼ活性の測定に適したものであること。
〔2〕対照例の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液
 表3より、対照例の方法により製造した前記1の〔2〕の(7)の[15]、[16]、[21]、[22]、[27]及び[28]の6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液は、いずれも、「均質でないもの(リパーゼ活性測定用基質と界面活性剤が分離してしまっている、又は油層と水層とに分離してしまっている)」であり、リパーゼ活性の測定に不適であることが分かる。
 また、この表3より、対照例の方法により製造した前記1の〔2〕の(7)の[5]~[14]、[17]~[20]及び[23]~[26]の18種類のリパーゼ活性測定用基質溶液は、いずれも、そのエマルジョンのミセル径(粒子径)の測定結果が測定下限未満、すなわち「10nm未満」であったので、ミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質溶液を形成していないことが分かる。
 よって、これらの対照例の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液[計24種類]はいずれも、試料中のリパーゼ活性の測定に適したものでないことが分かる。
〔実施例4〕
(試料中のリパーゼ活性の測定)
 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を使用して、試料中のリパーゼ活性の測定を行った。
1.測定試薬
〔1〕本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を含む測定試薬
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び当該基質溶液の製造の簡略化方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液からなる第2試薬、及び当該第2試薬に対応する第1試薬よりなるリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)を製造した。
(1)第1試薬
 下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度になるように純水に溶解し、pHをpH8.4(20℃)に調整して、第1試薬を調製した。
 デオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
 塩化カルシウム [リパーゼ活性化剤] 5mM
 コリパーゼ (ブタ膵臓由来、販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) 375K単位/L(5mg/L)
 Bicine [緩衝剤] 40mM
(2)第2試薬
 本発明の方法により製造した、前記の実施例1の2の(7)の(a)~(f)の6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液[いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕濃度:0.6mM、本重合体化合物濃度:2.0%(w/v)](下に記載)を、それぞれ第2試薬として使用した。
 (a) リパーゼ活性測定用基質溶液-a(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-351A)
 (b) リパーゼ活性測定用基質溶液-b(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-354L)
 (c) リパーゼ活性測定用基質溶液-c(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-355A)
 (d) リパーゼ活性測定用基質溶液-d(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-6011)
 (e) リパーゼ活性測定用基質溶液-e(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-34)
 (f) リパーゼ活性測定用基質溶液-f(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-44)
〔2〕対照市販試薬
 市販のリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)である「リキテック リパーゼ カラー II」(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、対照として用いた。
 なお、この「リキテック リパーゼ カラー II」[以下、「対照市販試薬」ということがある]は、第1試薬である「緩衝液」、及び第2試薬である「基質液」(DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含む)よりなるものである。
2.試料
 下の「(1)標準物質」、「(2)管理血清-1」、「(3)管理血清-2」及び「(4)管理血清-3」をそれぞれ試料として用いた。
(1)標準物質
 市販の標準物質である「常用参照標準物質 JSCC常用酵素 (JCCLS CRM-001)」(製造番号:001b、販売元:一般社団法人検査医学標準物質機構[日本国])を、「標準物質」として用いた。
(2)管理血清-1
 市販の精度管理用管理血清である「Aalto Control I G」(販売元:株式会社シノテスト[日本国])を、「管理血清-1」として用いた。
(3)管理血清-2
 精度管理用管理血清である「Aalto Control II」の「試作品」(株式会社シノテスト[日本国])を、「管理血清-2」として用いた。
(4)管理血清-3
 市販の精度管理用管理血清である「Aalto Control CRPII U」(販売元:株式会社シノテスト[日本国])を、「管理血清-3」として用いた。
3.試料中のリパーゼ活性の測定
 前記2の各試料のリパーゼ活性の測定を、それぞれ下記の通り行った。
〔1〕本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を含む測定試薬による測定
 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液からなる第2試薬、及び当該第2試薬に対応する第1試薬よりなるリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)を使用して、7180形汎用自動分析装置(販売元:株式会社日立ハイテクノロジーズ[日本国])により、前記2の各試料のリパーゼ活性の測定を行った。
(1)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-aを用いた場合
(a) 前記の7180形汎用自動分析装置において、前記2のそれぞれの試料(「(1)標準物質」、「(2)管理血清-1」、「(3)管理血清-2」及び「(4)管理血清-3」)について、これらの試料の2.6μLに、それぞれ前記1の〔1〕の(1)の「第1試薬」の160μLを第1試薬として添加し、37℃で反応させた。
(b) 次に、16ポイント(第1試薬添加後270.093秒)から17ポイント(第1試薬添加後286.977秒)の間に、前記1の〔1〕の(2)の(a)の「リパーゼ活性測定用基質溶液-a」の96μLを第2試薬として添加し、37℃で反応させた。
(c) 次に、30ポイント(第1試薬添加後516.049秒)から34ポイント(第1試薬添加後587.426秒)に掛けての吸光度変化量を主波長570nm、副波長700nmにて測定した。(試料中に含まれていたリパーゼの活性値に応じて生成する6’-メチルレゾルフィンの濃度増加に基づく吸光度変化量の測定)
(d) なお、較正(キャリブレーション)のための較正物質(キャリブレーター)として、「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」(製造番号:158688、販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を用いた。
 この「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」を試料とすること以外は、前記(a)~(c)の記載の通りに操作を行い、較正物質である「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」を測定したときの吸光度変化量を測定した。(当該較正物質に含まれているリパーゼの活性値[既知値]に応じて生成する6’-メチルレゾルフィンの濃度増加に基づく吸光度変化量の測定)
(e) また、試薬盲検(試薬ブランク)の測定のため、生理食塩水を用いた。
 この生理食塩水を試料とすること以外は、前記(a)~(c)の記載の通りに操作を行い、生理食塩水を測定したときの吸光度変化量を測定した。(試薬盲検の吸光度変化量の測定)
(f) 次に、前記(c)において求めた前記2のそれぞれの試料についての当該ポイント間の吸光度変化量から、前記(e)において求めた当該ポイント間の試薬盲検の吸光度変化量を差し引いて、「試料の吸光度変化量差の値」を求めた。
 また、前記(d)において求めた較正物質(リパーゼ活性値が既知)についての当該ポイント間の吸光度変化量から、前記(e)において求めた当該ポイント間の試薬盲検の吸光度変化量を差し引いて、「較正物質の吸光度変化量差の値」を求めた。
 次に、前記の「試料の吸光度変化量差の値」と、「較正物質の吸光度変化量差の値」と、既知である「較正物質のリパーゼ活性値」とを対比し、比例計算を行うことにより、前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(2)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-bを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-aからリパーゼ活性測定用基質溶液-b[前記1の〔1〕の(2)の(b)]に替えること、及び前記(1)の(c)における吸光度変化量を測定するポイント(ポイント間)を「30ポイントから34ポイント」より「24ポイント(第1試薬添加後411.887秒)から28ポイント(第1試薬添加後480.360秒)」に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-bを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(3)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-cを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-aからリパーゼ活性測定用基質溶液-c[前記1の〔1〕の(2)の(c)]に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-cを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(4)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-dを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-aからリパーゼ活性測定用基質溶液-d[前記1の〔1〕の(2)の(d)]に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-dを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(5)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-eを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-aからリパーゼ活性測定用基質溶液-e[前記1の〔1〕の(2)の(e)]に替えること、及び前記(1)の(c)における吸光度変化量を測定するポイント(ポイント間)を「30ポイントから34ポイント」より「23ポイント(第1試薬添加後394.043秒)から27ポイント(第1試薬添加後462.516秒)」に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-eを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(6)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-fを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-aからリパーゼ活性測定用基質溶液-f[前記1の〔1〕の(2)の(f)]に替えること、及び前記(1)の(c)における吸光度変化量を測定するポイント(ポイント間)を「30ポイントから34ポイント」より「19ポイント(第1試薬添加後322.665秒)から23ポイント(第1試薬添加後394.043秒)」に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-fを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
〔2〕対照市販試薬による測定
 対照市販試薬を使用して、7180形汎用自動分析装置(販売元:株式会社日立ハイテクノロジーズ[日本国])により、前記2の各試料のリパーゼ活性の測定を行った。
 すなわち、前記〔1〕の(1)の(a)における第1試薬を「第1試薬」から「対照市販試薬」の「緩衝液」[前記1の〔2〕]に替えること、前記〔1〕の(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-aから「対照市販試薬」の「基質液」[前記1の〔2〕]に替えること、及び前記〔1〕の(1)の(c)における吸光度変化量を測定するポイント(ポイント間)を「30ポイントから34ポイント」より「21ポイント(第1試薬添加後358.354秒)から25ポイント(第1試薬添加後429.732秒)」に替えること以外は、前記〔1〕の(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、対照市販試薬を使用した場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
4.測定結果
 前記3の〔1〕及び〔2〕において測定し、求めた前記2の各試料のリパーゼ活性値を表4に示した。
 なお、この表4において示した各試料のリパーゼ活性値の単位は、単位/L(Unit/L)である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
5.考察
 表4より、本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を使用して求めた試料中のリパーゼ活性値の測定結果(測定値)は、6種類のリパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質溶液-a~リパーゼ活性測定用基質溶液-f)のいずれを用いた場合であっても、対照市販試薬を使用して求めたリパーゼ活性値の測定結果(測定値)とほぼ同様の値であることが分かる。
 このことより、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び製造の簡略化方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液は、試料中のリパーゼ活性を正確に測定することができるものであることが確かめられた。
 すなわち、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び製造の簡略化方法においては、簡便、短時間かつ低コストによりリパーゼ活性測定用基質溶液を製造することが可能になるとともに、当該基質溶液により試料中のリパーゼ活性の正確な測定結果(測定値)を提供することができることが確かめられた。
〔実施例5〕
(試料中のリパーゼ活性の測定の相関)
 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を使用して試料中のリパーゼ活性の測定を行い、また、対照市販試薬を使用して同一試料のリパーゼ活性の測定を行い、これらの相関を確認した。
1.測定試薬
〔1〕本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を含む測定試薬
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び当該基質溶液の製造の簡略化方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液からなる第2試薬、及び当該第2試薬に対応する第1試薬よりなるリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)を使用した。
[1]第1試薬
 第1試薬として、前記の実施例4の1の〔1〕の(1)の「第1試薬」を使用した。
[2]第2試薬
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び当該基質溶液の製造の簡略化方法により、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造を行った。
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、5個のビーカー(容量:10mL)のそれぞれに、0.09グラム[g]ずつ量り取った。
(2) 次に、下記の(a)~(c)の3種類の側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)、及び下記の(d)~(e)の2種類のポリオキシエチレン-ポリオキシプロピレン縮合物をそれぞれ4.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。
 (a) KF-351A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (b) KF-354L (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (c) KF-355A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (d) プルロニック L-34 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
 (e) プルロニック L-44 (販売元:株式会社ADEKA[日本国])
(3) 前記(2)の添加後、各々のビーカーを、67℃の温度に設定した恒温水槽(型式:BK-33、販売元:ヤマト科学株式会社[日本国])に入れ、これを撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を67℃で混合した。なお、水槽の温度は水銀温度計で測定し、確認した。
 この67℃での混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーを前記の67℃の温度の水槽中でスターラー(リモートドライブ電磁スターラー、型式:HP40107、販売元:株式会社三商[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのスターラーのコントロールユニットの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物」の全部をビーカー内よりマイクロピペットにより吸い取り、別のビーカー(容量:10mL)中で予め20℃としておいた「一定量(4.0mL)の純水」に、撹拌しながら当該混合物の全部(全量)をこのマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物を混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の純水」との混合を行った。
 なお、この撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
 また、前記のビーカー中の「一定量(4.0mL)の純水」の温度は水銀温度計で測定することにより20℃であることを確認しておいた。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本重合体化合物の混合物)と一定量の純水との混合後の混合液」に、更に一定量の純水を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、下記の(i)~(v)の計5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液を、本発明の製造方法及び製造の簡略化方法によって製造した。
 なお、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計5種類)において、いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMであり、本重合体化合物の濃度は2.0%(w/v)である。
 また、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計5種類)のいずれにも、濃度勾配や強い濁り等は見られず、それぞれ均質に混合されていることを目視にて確認した。
 (i) リパーゼ活性測定用基質溶液-i(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-351A)
 (ii) リパーゼ活性測定用基質溶液-ii(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-354L)
 (iii) リパーゼ活性測定用基質溶液-iii(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:KF-355A)
 (iv) リパーゼ活性測定用基質溶液-iv(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-34)
 (v) リパーゼ活性測定用基質溶液-v(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本重合体化合物:プルロニック L-44)
〔2〕対照市販試薬
 対照市販試薬として、前記の実施例4の1の〔2〕における市販のリパーゼ活性測定試薬「リキテック リパーゼ カラー II」(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を使用した。
2.試料
 下の「(1)標準物質」、「(2)管理血清-1」、「(3)管理血清-2」、「(4)管理血清-3」、「(5)プール血清」、及び「(6)ヒト血清」をそれぞれ試料として用いた。
(1)標準物質
 市販の標準物質である「常用参照標準物質 JSCC常用酵素 (JCCLS CRM-001)」(製造番号:001b、販売元:一般社団法人検査医学標準物質機構[日本国])を、「標準物質」として用いた。
(2)管理血清-1
 市販の精度管理用管理血清である「Aalto Control I G」(販売元:株式会社シノテスト[日本国])を、「管理血清-1」として用いた。
(3)管理血清-2
 精度管理用管理血清である「Aalto Control II」の「試作品」(株式会社シノテスト[日本国])を、「管理血清-2」として用いた。
(4)管理血清-3
 市販の精度管理用管理血清である「Aalto Control CRPII U」(販売元:株式会社シノテスト[日本国])を、「管理血清-3」として用いた。
(5)プール血清
 複数のヒト血清を混合したものを、「プール血清」として用いた。
(6)ヒト血清
 ヒト血清(計50検体)を、「ヒト血清」として用いた。
3.試料中のリパーゼ活性の測定
 前記2の各試料のリパーゼ活性の測定を、それぞれ下記の通り行った。
〔1〕本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を含む測定試薬による測定
 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液からなる第2試薬、及び当該第2試薬に対応する第1試薬よりなるリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)を使用して、7180形汎用自動分析装置(販売元:株式会社日立ハイテクノロジーズ[日本国])により、前記2の各試料のリパーゼ活性の測定を行った。
(1)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-iを用いた場合
(a) 前記の7180形汎用自動分析装置において、前記2のそれぞれの試料(「(1)標準物質」、「(2)管理血清-1」、「(3)管理血清-2」、「(4)管理血清-3」、「(5)プール血清」、及び「(6)ヒト血清」)について、これらの試料の2.6μLに、それぞれ前記1の〔1〕の[1]の「第1試薬」の160μLを第1試薬として添加し、37℃で反応させた。
(b) 次に、16ポイント(第1試薬添加後270.093秒)から17ポイント(第1試薬添加後286.977秒)の間に、前記1の〔1〕の[2]の(7)の(i)の「リパーゼ活性測定用基質溶液-i」の96μLを第2試薬として添加し、37℃で反応させた。
(c) 次に、30ポイント(第1試薬添加後516.049秒)から34ポイント(第1試薬添加後587.426秒)に掛けての吸光度変化量を主波長570nm、副波長700nmにて測定した。(試料中に含まれていたリパーゼの活性値に応じて生成する6’-メチルレゾルフィンの濃度増加に基づく吸光度変化量の測定)
(d) なお、較正(キャリブレーション)のための較正物質(キャリブレーター)として、「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」(製造番号:158688、販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を用いた。
 この「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」を試料とすること以外は、前記(a)~(c)の記載の通りに操作を行い、較正物質である「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」を測定したときの吸光度変化量を測定した。(当該較正物質に含まれているリパーゼの活性値[既知値]に応じて生成する6’-メチルレゾルフィンの濃度増加に基づく吸光度変化量の測定)
(e) また、試薬盲検(試薬ブランク)の測定のため、生理食塩水を用いた。
 この生理食塩水を試料とすること以外は、前記(a)~(c)の記載の通りに操作を行い、生理食塩水を測定したときの吸光度変化量を測定した。(試薬盲検の吸光度変化量の測定)
(f) 次に、前記(c)において求めた前記2のそれぞれの試料についての当該ポイント間の吸光度変化量から、前記(e)において求めた当該ポイント間の試薬盲検の吸光度変化量を差し引いて、「試料の吸光度変化量差の値」を求めた。
 また、前記(d)において求めた較正物質(リパーゼ活性値が既知)についての当該ポイント間の吸光度変化量から、前記(e)において求めた当該ポイント間の試薬盲検の吸光度変化量を差し引いて、「較正物質の吸光度変化量差の値」を求めた。
 次に、前記の「試料の吸光度変化量差の値」と、「較正物質の吸光度変化量差の値」と、既知である「較正物質のリパーゼ活性値」とを対比し、比例計算を行うことにより、前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(2)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-iiを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-iからリパーゼ活性測定用基質溶液-ii[前記1の〔1〕の[2]の(7)の(ii)]に替えること、及び前記(1)の(c)における吸光度変化量を測定するポイント(ポイント間)を「30ポイントから34ポイント」より「24ポイント(第1試薬添加後411.887秒)から28ポイント(第1試薬添加後480.360秒)」に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-iiを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(3)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-iiiを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-iからリパーゼ活性測定用基質溶液-iii[前記1の〔1〕の[2]の(7)の(iii)]に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-iiiを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(4)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-ivを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-iからリパーゼ活性測定用基質溶液-iv[前記1の〔1〕の[2]の(7)の(iv)]に替えること、及び前記(1)の(c)における吸光度変化量を測定するポイント(ポイント間)を「30ポイントから34ポイント」より「23ポイント(第1試薬添加後394.043秒)から27ポイント(第1試薬添加後462.516秒)」に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-ivを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(5)第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-vを用いた場合
 前記(1)の(b)における第2試薬をリパーゼ活性測定用基質溶液-iからリパーゼ活性測定用基質溶液-v[前記1の〔1〕の[2]の(7)の(v)]に替えること、及び前記(1)の(c)における吸光度変化量を測定するポイント(ポイント間)を「30ポイントから34ポイント」より「19ポイント(第1試薬添加後322.665秒)から23ポイント(第1試薬添加後394.043秒)」に替えること以外は、前記(1)の(a)~(f)の記載の通りに操作を行い、第2試薬にリパーゼ活性測定用基質溶液-vを用いた場合の前記2の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
〔2〕対照市販試薬による測定
 対照市販試薬を使用して、7180形汎用自動分析装置(販売元:株式会社日立ハイテクノロジーズ[日本国])により、前記2の各試料のリパーゼ活性の測定を行った。
 すなわち、前記2の(1)~(6)の各試料のリパーゼ活性の測定を、前記1の〔2〕の「対照市販試薬」の「緩衝液」(第1試薬)及び「基質液」(第2試薬)を使用して、前記の実施例4の3の〔2〕に記載の方法に従って操作を行い、当該各試料のリパーゼ活性値を求めた。
4.測定結果
(1)相関の図
 前記3の〔1〕における各試料のリパーゼ活性値の測定結果(測定値)と、前記3の〔2〕における各試料のリパーゼ活性値の測定結果(測定値)とを、これらの相関の図として図1に示した。
 なお、本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液として、リパーゼ活性測定用基質溶液-iを用いた場合の相関の図を図1の[1]として、リパーゼ活性測定用基質溶液-iiを用いた場合の相関の図を図1の[2]として、リパーゼ活性測定用基質溶液-iiiを用いた場合の相関の図を図1の[3]として、リパーゼ活性測定用基質溶液-ivを用いた場合の相関の図を図1の[4]として、そして、リパーゼ活性測定用基質溶液-vを用いた場合の相関の図を図1の[5]として示した。
 なお、これらの図1の[1]~[5]において、横軸(x)は前記3の〔2〕における対照市販試薬による各試料のリパーゼ活性値の測定結果(測定値)を表す。この測定値の単位は、単位/L(Unit/L)である。
 また、これらの図1の[1]~[5]において、縦軸(y)は前記3の〔1〕における「本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を含む測定試薬」による各試料のリパーゼ活性値の測定結果(測定値)を表す。この測定値の単位は、単位/L(Unit/L)である。
 そして、これらの図1の[1]~[5]において、「標準物質」の試料を「△」で示し、「管理血清-1」の試料を「○」で示し、「管理血清-2」の試料を「□」で示し、「管理血清-3」の試料を「●」で示し、「プール血清」の試料を「◇」で示し、そして、「ヒト血清」(計50検体)の試料をそれぞれ「◆」で示した。
(2)相関の回帰式
 前記3の〔1〕における「本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を含む測定試薬」による測定結果(測定値)と、前記3の〔2〕における対照市販試薬による測定結果(測定値)との相関の回帰式及び相関係数を以下に示す。[なお、これらの相関の回帰式における「x」及び「y」は前記(1)に記載した通りである。]
[1] 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液として、リパーゼ活性測定用基質溶液-iを用いた場合 相関の回帰式:y=1.205x-7.999、相関係数R:0.9795
[2] 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液として、リパーゼ活性測定用基質溶液-iiを用いた場合 相関の回帰式:y=1.136x-10.04、相関係数R:0.9892
[3] 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液として、リパーゼ活性測定用基質溶液-iiiを用いた場合 相関の回帰式:y=1.041x+1.756、相関係数R:0.9953
[4] 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液として、リパーゼ活性測定用基質溶液-ivを用いた場合 相関の回帰式:y=1.1739x-11.93、相関係数R:0.9861
[5] 本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液として、リパーゼ活性測定用基質溶液-vを用いた場合 相関の回帰式:y=1.1065x-5.760、相関係数R:0.9980
5.考察
 図1の[1]~[5]、並びに前記4の(2)に記載した相関の回帰式及び相関係数の値より、本発明の方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液を使用して求めた試料中のリパーゼ活性値の測定結果(測定値)は、5種類のリパーゼ活性測定用基質溶液のいずれを用いた場合であっても、対照市販試薬を使用して求めたリパーゼ活性値の測定結果(測定値)と良好な相関性を示すことが分かる。
 このことより、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び製造の簡略化方法により製造したリパーゼ活性測定用基質溶液は、試料中のリパーゼ活性を正確に測定することができるものであることが確かめられた。
 すなわち、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法及び製造の簡略化方法においては、簡便、短時間かつ低コストによりリパーゼ活性測定用基質溶液を製造することが可能になるとともに、当該基質溶液により試料中のリパーゼ活性の正確な測定結果(測定値)を提供することができることが確かめられた。

Claims (2)

  1.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法であって、
     (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び
     (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造方法。
  2.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として含む、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液を製造する方法において、
     (1) 当該リパーゼ活性測定用基質と、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル又はポリオキシエチレン・ポリオキシプロピレン縮合物を混合し混合物を調製する工程;及び
     (2) 前記(1)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程、を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液の製造の簡略化方法。
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