WO2009092291A1 - 一种给药系统及其制备方法和应用 - Google Patents

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WO2009092291A1
WO2009092291A1 PCT/CN2009/000063 CN2009000063W WO2009092291A1 WO 2009092291 A1 WO2009092291 A1 WO 2009092291A1 CN 2009000063 W CN2009000063 W CN 2009000063W WO 2009092291 A1 WO2009092291 A1 WO 2009092291A1
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WO
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acid
protein
oil
phospholipid
peg
Prior art date
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PCT/CN2009/000063
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English (en)
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Inventor
Yihui Deng
Xiaohui Dong
Li Shi
Yi Lu
Original Assignee
Shenyang Pharmaceutical University
Hangzhou Yuhong Pharmaceutical Science & Technology Co., Ltd.
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Publication date
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    • A61K9/19Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles lyophilised, i.e. freeze-dried, solutions or dispersions
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    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/107Emulsions ; Emulsion preconcentrates; Micelles
    • A61K9/1075Microemulsions or submicron emulsions; Preconcentrates or solids thereof; Micelles, e.g. made of phospholipids or block copolymers

Definitions

  • the present invention relates to the field of pharmaceutical preparations, and more particularly to a drug delivery system and a method of preparing the same. Background technique
  • DDS drug delivery system
  • Nanoparticles in pharmaceutics can be divided into two categories: nanocarriers and nanomedicines.
  • the nanocarrier refers to various nanoparticles in which a drug is dissolved or dispersed, such as a nanoliposome, a polymer nanocapsule, a nanosphere, a polymer micelle, or the like.
  • Nano-medicine refers to the direct processing of APIs into nanoparticles, which is the further development of micronization technology and ultra-fine powder technology.
  • NP nanoparticulates
  • NS nanospheres
  • NC nanocapsules
  • Nanomicel nanomicelles
  • Le NM
  • Nano- 1 i posomes NL
  • NE Nano-emulsion
  • NP is a solid colloidal particle made of natural or synthetic polymer material with a particle size of nanometer (1 ⁇ 100om)
  • NC is a nano-sized vesicle composed of polymer material, which is obvious. Capsule phase.
  • the preparation methods of NP and NC mainly include emulsion polymer method, cross-linking polymerization method and interfacial polycondensation method.
  • nano-solid micelles which are self-polymerized by amphiphilic polymer materials (called self-assembly) to form a "core-shell" structure are attracting attention.
  • the hydrophilic end of the micelles is outward and the lipophilic end is inward, in the nucleus. It can be loaded with a variety of drugs, enzymes and genes.
  • nanoparticle As early as the 1970s, humans used nanoparticle as a drug carrier, which has been widely promoted in the field of pharmacy for more than 30 years.
  • the protein has the advantages of no immunogenicity, biodegradability and good biocompatibility. Protein polymers are easy to metabolize and can embed drugs in a relatively non-specific form. Therefore, it can be used for the preparation of biodegradable nanoparticles.
  • a large number of functional groups (amino and carboxyl groups, etc.) in the protein molecule facilitate the specific attachment of the drug molecule to the surface of the nanoparticle and are suitable for the preparation of the conjugate.
  • Appropriate ligands are attached by surface modification to achieve receptor-mediated active targeting.
  • the protein nano preparation can achieve the purpose of targeted drug delivery, and can also reduce the toxic side effects of the drug.
  • nano preparations such as paclitaxel protein nanoparticles have been used.
  • ZL03108361.7 is all about protein nanoformulations.
  • the products and technologies involved in these inventions or inventions are only human serum albumin (HSA), and there are organic solvents used (such as Chloroform, methylene chloride, etc.) have the disadvantages of high toxicity, long preparation method and cumbersome process.
  • HSA human serum albumin
  • organic solvents used such as Chloroform, methylene chloride, etc.
  • Example 3 demonstrates that the addition of Tween 80 (1% to 10%) or other surfactants (F68 ⁇ F127, etc.) does not result in a good dispersion system in which the drug is very rapidly precipitated.
  • Example 4 demonstrates that the chloroform solution of the drug is emulsified by using Tween 80 alone, and a uniform dispersion system cannot be obtained, and the dispersion precipitates quickly;
  • Example 12 demonstrates that the use of a solvent compatible with water alone cannot be ideal.
  • the dispersion system with a very wide particle size distribution and a particle size of a few microns, emphasizes the exclusive exclusion of water-soluble solvents.
  • Liposomes are a targeted drug carrier and are a new formulation for the fourth generation of targeted drug delivery systems. Liposomes were originally discovered by British Sri Banghatn and Standi sh when they dispersed phospholipids in water for electron microscopy. Phospholipids are dispersed in water. Naturally, multilamellar vesicles are formed, each layer being a bilayer of lipids; the central and vesicles are separated by water, and the thickness of the bilayer is about 4 nm. It has a structure similar to a cell membrane in which the lipophilic hydrophilic head constituting the bilayer is formed on the inner surface of the membrane, and the lipophilic tail is in the middle of the membrane.
  • liposomes Because of this membrane-like structure of liposomes, it is capable of carrying a variety of hydrophilic, hydrophobic and amphiphilic substances, which can be entrapped in the aqueous phase of the liposome, inserted into the lipid bilayer or adsorbed.
  • liposome On the surface of liposomes.
  • Rahman et al. began to use liposome as a drug carrier to encapsulate amyloglucosidase for the first time in the treatment of glycogenosis. People have done a lot of research in liposome as a drug carrier, in the preparation of liposomes. Significant progress has been made in terms of stability and targeting.
  • liposomes are natural phospholipids (yolk lecithin, soy lecithin), semi-synthetic phospholipids (hydrogenated phospholipids) and synthetic phospholipids (eg dipalmitoylphosphatidylcholine, distearoylphosphatidylcholine). ) Wait.
  • the role of liposome is mainly manifested in the following aspects: 1 liposome has no toxicity or toxic side effects on the body, and its bilayer has great similarity with biofilm and tissue compatibility, and is easily absorbed by tissues.
  • the liposome encapsulated drug is a physical process, does not change the molecular structure of the drug, does not destroy the drug component, and the encapsulated drug can be prevented from being destroyed by the hydrolase in the body; 3 the drug can be wrapped Reduce the toxicity to specific parts of the body, reduce the amount of use, and have sustained release and controlled release; 4 Unlike viral vectors, liposomes can be biodegraded in the host, no immunogenicity; 5 easy to use in gene therapy Gene complex, with high targeting, can achieve specific cell treatment: 6 materials are cheap, easy to prepare in large quantities.
  • liposomes have their outstanding advantages, there are still some unresolved problems: (1) the stability of liposome drugs is not high; (2) the encapsulation efficiency and drug loading of liposomes are low, A specific drug to prepare a more ideal liposome, usually a large number of screening work; (3) drugs suitable for liposomes are also limited; (4) in the preparation process generally used a large number of Toxic solvents; (5) Ordinary liposomes are mainly concentrated in the organs rich in reticuloendothelial cells, unable to recognize the caveolin on the vascular endothelium.
  • the combination of several proteins and phospholipids is disclosed in the Chinese invention application CN200610037609.1, CN02129204.3 CN02160028.7 and the invention patents ZL94191101.2, ZL96190332.5, but the technical problems and the techniques provided by the application and the invention are solved.
  • the schemes are essentially different and different. They are mainly prepared by preparing liposome containing protein drugs or preparations containing phospholipids, that is, protein is an effective active ingredient, and in the preparation process, it is necessary to ensure the activity of the protein as much as possible. , not a system developed for the purpose of special purposes (such as targeting, increased absorption), the appearance of excipient ingredients.
  • Chinese invention application CN200610037609.1 removal of toxic organic solvents (chloroform) and layers by reverse phase evaporation
  • the layer adsorption technique has a phospholipid concentration and a protein concentration of 0.1 mg/ml to 1 mg /ml, and a particle size of more than 1000 nm (the particle size in Example 1 is 10 ⁇ m, and the particle size in Example 2 is 20 ⁇ m, in Example 3)
  • the particle size is 40 microns), the process is not homogeneous, the protein is only simple adsorption, the protein concentration is also very low, the protein is the main body of treatment;
  • Chinese patent ZL96190332.5 is the use of phospholipid protection protein drugs, also with the present invention
  • the purpose of the Chinese invention is CN02129204.3, which discloses the use of an oscillating bubble pressure method to prepare a protein and a phospholipid composite membrane for research drugs, but due to the complicated method, the prepared particle size is large, and the vein is not used as a drug carrier
  • the side effects during drug administration mainly include venous irritation, phlebitis, pain, myelosuppression, neurotoxicity, allergies, inflammation, skin irritation, etc., which must be considered when researching and developing new drug delivery systems. problem. Summary of the invention
  • an object of the present invention is to provide a drug delivery system. Further, the present invention also provides a method of preparing the drug delivery system.
  • the present invention provides the technical solution as described below.
  • a first aspect of the present invention provides a drug delivery system comprising a protein-phospholipid dispersion, wherein a weight ratio of protein to phospholipid in the protein-phospholipid dispersion is 1:300-300:1, the protein- The particle size of the phospholipid dispersion is between 5 nra and 100 nm.
  • a protein-phospholipid dispersion a phospholipid surface or a phospholipid surface and an inner coating (coating) protein layer or a liposome bilayer inner coating layer (coating) a protein, or forming a protein nanoparticle in an aqueous phase in the liposome grain.
  • the weight ratio of protein to phospholipid is 1: 300-300: 1, for example it can be 1:200 - 200: 1, or it can be 1: 100 - 100: 1, or it can be 1: 50 ⁇ 50: 1 and 1: 10- 10: 1 and so on.
  • the particle size of the protein-phospholipid is preferably between 20 n m and 500 nm.
  • Phospholipids can be dispersed in water to form liposomes, and lipid nanospheres can also be formed. Phospholipids can also form liposome/lipid nanospheres (including emulsions) with other lipid components.
  • the surface of the nanoparticle of the present invention is coated and/or internally coated (coated) with a protein layer which is subjected to ultrasonication and, more importantly, to a disulfide bond after homogenization (e.g., microfluidic treatment), Liposomes/lipid nanospheres (including emulsions) collectively constitute a stable drug carrier, thereby providing a novel drug delivery system.
  • the inventors have found through a large number of experimental studies that, based on the prior art protein nano preparations, the protein is combined with phospholipids (which may also include other lipid components), and a novel drug delivery system is pleasingly obtained. Based on the unique dispersing ability/properties of phospholipids, the long-lasting protein nanoformulation technology has become more feasible, reliable and, more importantly, the addition of phospholipids (including other lipid components) has greatly expanded protein nanoparticles. The scope of drug loading. Also because of the phospholipid surface or phospholipid surface and internal coating (coating) of the protein layer, the stability of the lipid nanospheres (including emulsions)/liposomes is greatly increased.
  • Phospholipids here have at least two functions, one is dispersion, and the other is dissolution (loading) of the drug. Phospholipids themselves are also surfactants. The addition of phospholipids allows for the addition of various other surfactants throughout the system, and because of the addition of other surfactants, the phospholipids are further greatly increased, assisting in the loading of phospholipids, further reducing Particle size, can also reduce the amount of phospholipids, reduce costs, and ensure the drug delivery system The preparation process is simple and applicable.
  • the drug delivery system of the present invention can dissolve and disperse the drug without using an organic solvent.
  • Drugs that do not use organic solvents include traditional Chinese medicines or volatile oils or oils of animal and plant, such as: Chuanxiong oil, Angelica oil, zedoary oil, Brucea javanica oil, ginger oil, forsythia oil, garlic oil, diesel oil, elemene, Ai Ye Oil, blue eucalyptus oil, eucalyptus oil, eucalyptus oil, benzoin oil, croton oil, white orchid oil, white orchid oil, white orchid oil, lime oil, ten times white lemon oil, five times white lemon oil, white Emu oil, thyme oil, cedar oil, peppermint oil, peppermint oil, menthol, atractylodes oil, tea tree oil, orange leaf oil, tea oil, neroli oil, agarwood oil, dried tangerine oil
  • Drugs that do not use organic solvents include protein/peptide drugs extracted or synthesized by natural or bioengineering techniques, such as insulin, thymosin, interleukin, interferon, thymopentin or erythropoietin; drugs that do not use organic solvents It includes drugs that have good solubility and interaction with phospholipids, such as silymarin (silibinin).
  • the protein-phospholipid dispersion described in the drug delivery system of the present invention is a nano liquid preparation or a nanosolid preparation.
  • the protein described in the drug delivery system of the present invention is selected from the group consisting of a natural protein, a synthetic protein, and derivatives thereof.
  • the protein is selected from the group consisting of, but not limited to, human albumin, bovine serum albumin, ovalbumin, zein, hemoglobin and its derivatives or related proteins, albumin derivatives (eg galactosylation) Albumin) and at least one of modified porcine albumin (such as PEG-modified porcine serum albumin).
  • the phospholipids described in the drug delivery system of the present invention are selected from natural, semi-synthetic, fully synthetic phospholipids and derivatives thereof. Things.
  • the phospholipid is selected from the group consisting of, but not limited to, soy lecithin, egg yolk lecithin, egg phosphatidylglycerol (EPG), polyene phosphatidylcholine, phosphatidic acid, cardiolipin, sphingomyelin, phosphatidic acid Serine, phosphatidylinositol, phosphatidylethanolamine, hydrogenated soy lecithin (HSPC:), hydrogenated egg yolk lecithin (HEPC), fully synthetic phospholipids, various synthetic phospholipids such as C3 to C30, such as distearoylphosphatidylcholine Base (DSPC), dipalmitoylphosphatidylcholine (DPPC), dioleoylphosphatidylcholine (D0PC), dimyristoy
  • the drug delivery system of the present invention may further comprise an organic solvent for better preparation of the phospholipid-containing phase or for increasing the amount of drug dissolved.
  • the organic solvent selected by the inventors is greatly reduced in toxicity, which is more favorable for reducing the toxicity of the drug, and is more environmentally friendly and more convenient for labor protection of workers in production; the organic solvent can also be It is a solvent that is compatible with water.
  • the organic solvent used in the preferred embodiment of the present invention is selected from the group consisting of ethanol, methanol, propanol, butanol (including n-butanol, tert-butanol), acetone, methylpyrrolidone (N-methylpyrrolidone or 1-methyl- At least one of 2-pyrrolidone), ethyl acetate and isopropyl ether; a more preferred embodiment is that the organic solvent is ethanol or tert-butanol.
  • the drug delivery system of the present invention may also be added with a suitable oil (fat) substance or other lipid substance, and its weight ratio to phospholipid is 1:0. . 1 ⁇ 1: 1 0.
  • the invention has an effect on the relative particle size of different oils and the freeze-thaw stability of nanoparticles prepared by different amounts of MCT.
  • the oily substance or other lipid substance is selected from the group consisting of medium chain triglyceride (MCT), structured oil (structured-triglyceride), tocopherol, tocopheryl acetate, oleic acid, oleic acid Ethyl ester, soybean oil, safflower oil, olive oil, octanoic acid and its esters, acid and its esters, lauric acid and its esters, palmitic acid and its esters, linoleic acid and its esters, linseed oil At least one of an acid and an ester thereof, docosahexaenoic acid and an ester thereof, deep sea fish oil, and plant volatile oil.
  • MCT medium chain triglyceride
  • structured oil structured-triglyceride
  • tocopherol tocopheryl acetate
  • oleic acid oleic acid Ethyl ester
  • soybean oil safflower oil
  • olive oil octanoic
  • an antioxidant including a water-soluble and oil-soluble antioxidant, and may further include an inert gas
  • the water-soluble antioxidant is selected from the group consisting of vitamin C and its esters, sodium sulfite, sodium hydrogen sulfite, sodium metabisulfite, sodium thiosulfate, lipoic acid, cystine, cysteine, histidine and glycine.
  • the oil-soluble antioxidant in the preferred embodiment is selected from the group consisting of BHA, BHT, tocopherol or lipoic acid.
  • the oil is selected from MCT, and the weight ratio of the phospholipid to the phospholipid is 1:1; in another preferred embodiment, the oil is selected from the structural oil, and the weight ratio to the phospholipid is 1:1. ⁇ 7.
  • the drug delivery system of the present invention may also include other lipids such as cholesterol and its derivatives (e.g., cholesterol hemisuccinate) and/or sitosterol.
  • cholesterol and its derivatives e.g., cholesterol hemisuccinate
  • sitosterol are added as an additional component of the liposome or emulsion which can be used to assist the phospholipid to carry the lipophilic material.
  • Cholesterol is added to a preferred embodiment of a particular embodiment of the invention.
  • the drug delivery system of the present invention may further comprise a ligand and/or an antibody, wherein the ligand is selected from the group consisting of a galactose derivative, a transferrin derivative, folic acid and derivatives thereof, a glucosamine derivative or various RGDs and Derivatives and the like; the antibodies are selected from various murine, human, recombinant murine or recombinant human antibodies.
  • Preferred ligands are selected from the group consisting of galactose ligand, transferrin, folic acid or RGD (tripeptide structure sperm-glycyrrhizic acid) and derivatives thereof. Since the drug delivery system of the present invention contains phospholipids or other lipids, these lipid components can be utilized to carry ligands, antibodies and derivatives thereof containing lipophilic groups for the purpose of active targeted drug delivery.
  • the galactose cholesterol derivative described in the inventor's application CN2 006 1 01 2 1 7 94. 2 is incorporated in a preferred embodiment of the present invention.
  • the drug delivery system of the present invention may further comprise a positively charged substance (cationic substance) such as fatty amine, polyamine, TC- Chol (polymer). Amine cationic lipid), DC- Cho cation cardiolipin, chitosan or octadecylamine (hydrogenated tallow primary amine).
  • a positively charged substance cationic substance
  • fatty amine such as fatty amine, polyamine, TC- Chol (polymer).
  • TC- Chol polymer
  • Amine cationic lipid such as DC- Cho cation cardiolipin, chitosan or octadecylamine (hydrogenated tallow primary amine).
  • the drug delivery system of the present invention may further comprise a pH adjusting agent.
  • the pH adjusting agent described therein is selected from the group consisting of organic acids, organic or inorganic acids, and inorganic bases.
  • a second aspect of the present invention provides a method for producing the above drug delivery system, which comprises the following steps: (1) Preparation of a phospholipid-containing phase (the preparation of a phospholipid phase includes the following cases: direct use of a component such as a phospholipid, a phospholipid, and an oil Mixing and dissolving, or dissolving phospholipids and other components in an organic solvent); (2) preparing a protein-containing aqueous phase; (3) mixing the phospholipid-containing phase with the protein-containing aqueous phase at a temperature of 0 to 60'C, a pressure of 400 - At 40000 psi (pounds per square inch), an optional extrusion step is performed followed by homogenization.
  • extrusion can be carried out using an extruder to obtain liposomes of the desired particle size, and the number of cycles can be reduced.
  • the extrusion step is particularly suitable for heat sensitive and pressure sensitive active substances. Load. After the extrusion step, homogenization is carried out.
  • a method in which a drug is directly mixed with a phospholipid or a fat or oil can be obtained without adding an organic solvent.
  • the present invention further describes the effect of the relative particle size of water containing 1 to 5% HSA (human serum albumin) and the freeze-thaw stability of nanoparticles prepared by different concentrations of H-SA. The results are shown in Figure 1 and corresponding examples.
  • the protein described in the preparation method of the present invention is selected from natural proteins or synthetic proteins and derivatives thereof.
  • the protein is selected from the group consisting of human serum albumin, bovine serum albumin, ovalbumin, hemoglobin and derivatives thereof, albumin derivatives (such as galactosylated albumin), and modified porcine albumin (such as PEG). At least one of the modified porcine albumin).
  • the phospholipids described in the preparation of the phospholipid-containing phase of the present invention are selected from the group consisting of natural, semi-synthetic, fully synthetic phospholipids and derivatives thereof.
  • the phospholipid is selected from the group consisting of, but not limited to, soybean lecithin, egg yolk lecithin, egg phosphatidylglycerol (EPG), phosphatidic acid, cardiolipin, sphingomyelin, phosphatidic acid serine, phosphatidylinositol, Phosphatidylethanolamine, hydrogenated soy lecithin, hydrogenated egg yolk lecithin, distearoylphosphatidylcholine, dipalmitoylphosphatidylcholine, dioleoylphosphatidylcholine, dimyristoylphosphatidylcholine, dilau Acylphosphatidylcholine, distearoylphosphatidylglycerol and its sodium salt,
  • PEG-THS PEG-CHS
  • PEG-CHM the structural formula of which is shown in Figure 2.
  • a preferred embodiment is high pressure homogenization or microfluidization homogenization.
  • the high pressure homogenization process is as follows: The crude emulsion is homogenized under high pressure at a pressure of 10,000 - 40, 000 psi and recycled for 1-20 cycles to form a desired emulsion. The preferred pressure is 2,000 ⁇
  • a more preferred pressure is 8, 000 to 16, 000 psi.
  • the crude emulsion is preferably recycled for 1-15 cycles, more preferably for 1 to 5 cycles.
  • a high pressure homogenization treatment or a microfluidization homogenization treatment is employed; it is also possible to carry out extrusion, control any desired particle size, and then carry out a homogenization treatment.
  • the preparation process of the present invention may further comprise freeze drying or spray drying, and the resulting cake or powder may be further prepared into other desired formulation types.
  • the excipients used for freeze drying or spray drying are selected from the group consisting of sucrose, lactose, glucose, mannitol, dextran, trehalose, xylitol, maltose, fructose, protein, chitosan, glycine, citric acid and chlorine. At least one of sodium.
  • lyoprotectant lyophilized excipient
  • Freeze drying is divided into two stages: sublimation drying (first stage drying) and analytical drying (second stage drying).
  • the length of time for sublimation drying is related to the variety of the product and the thickness of the package.
  • the first stage of drying removes about 95% of all water. When the first stage of drying is completed, it can be seen that the sublimation interface gradually advances to the bottom of the container and disappears.
  • the second stage of drying is mainly to remove part of the crystal water and the bound water adsorbed to the solid matter lattice gap or hydrogen bonding to some polar groups. This part combines with water to have high adsorption energy and must provide sufficient energy (sufficient The temperature and vacuum) can be desorbed.
  • the final freeze-drying process is as follows: - pre-freezing at 74 ° C for 8 hours - vacuuming at 35 ° C for 20 minutes, finally reaching a vacuum of about 15 Pa ⁇ increasing the temperature to - 20 ° C for 12 hours (This stage removes most of the water from the sample.) _ ⁇ The temperature is raised to 10 ° C for 2 to 3 hours (this stage removes residual moisture from the sample). +
  • the inventors have examined the use and combined use of lyoprotectants. The specific results are shown in the description of the corresponding embodiments.
  • freeze drying is employed, and sucrose, trehalose, lactose, xylitol, maltose, and the like are selected as lyophilized excipients.
  • the preparation method of the present invention may further comprise filtration sterilization.
  • the nanoparticles and emulsions obtained by the invention are very easy to be sterilized by filtration through a microporous membrane.
  • US2007082838A1 In the preparation of docetaxel albumin nanoparticles, since the prepared particle size is not uniform (the inventors have repeatedly proved that the method described in this patent application has this problem), it is necessary to use ⁇ ⁇ ⁇ 0.
  • a 0.2 ⁇ ⁇ m microporous membrane is used for filtration sterilization.
  • the drug delivery system provided by the present invention can be used to reduce at least one side effect of a drug, including venous irritation, phlebitis, pain, myelosuppression, neurotoxicity, allergy, inflammation, skin irritation, and the like.
  • the drug delivery system of the present invention can achieve injection (including intravenous, arterial, joint cavity, subcutaneous, intradermal, intramuscular, etc.), oral (including sublingual, oral mucosa), lumen (including eyes, nasal cavity, ear canal, trachea) , lung, rectum, vagina, urethra and other suppositories), skin and other routes of administration.
  • Formulations suitable for vaginal administration may be pessaries, tampons, creams, gels, pastes, foams or spray formulations containing, in addition to the active ingredient, a suitable carrier such as known in the art.
  • the drug (in a broad sense) which can be designed in the drug delivery system of the present invention includes a pharmacologically active substance and a pharmaceutically acceptable excipient thereof.
  • the pharmacologically active substance includes a drug (in a narrow sense), a diagnostic reagent and a nutrient, wherein the drug is selected from the group consisting of an anticancer drug, an anesthetic drug, a cardiovascular drug, an antihypertensive drug, an anti-inflammatory drug, and an anti-arthritis drug. , anti-asthmatics, analgesics, immunosuppressants, antifungals, antiarrhythmic drugs, antibiotics, hormonal drugs, etc.
  • the drug designed in the drug delivery system of the present invention is selected from the group consisting of the following: analgesic/antipyretic (e.g., aspirin, acetaminophen, ibuprofen, naproxen sodium, hydrochloric acid) Buprenorphine, propoxyphene hydrochloride, propofol naphthalene sulfonate, pethidine hydrochloride, hydromorphone hydrochloride, morphine sulfate, oxycodone hydrochloride, codeine phosphate, dihydrocodeine tartrate, hydrochloric acid analgesia New, hydrocodone bitartrate, levorolol tartrate, diflunisal, triethanolamine salicylate, nalbuphine hydrochloride, mefenamic acid, cyclobutanol tartrate, salicylate Alkali, butabuterol, benzalkonium citrate, diphenhydramine citrate, methoxyisobutyraz
  • thyroid hormones eg, levothyroxine sodium, etc.
  • hypoglycemic drugs eg, human insulin, purified bovine insulin, purified porcine insulin, glibenclamide, chlorsulfurin, glipizide, ⁇ Sulfonylurea, methotrexate, etc.
  • lipid-lowering drugs eg: clofibrate, dextrothyroxine sodium, probucol, lipid-lowering, niacin, etc.
  • proteins eg, deoxyribonuclease, alginic acid
  • Enzymes superoxide dismutase, lipase, etc.
  • nucleic acids eg, sense or antisense nucleic acids encoding any therapeutic protein, including any of the proteins mentioned herein
  • drugs used to stimulate erythropoiesis eg, erythropoiesis
  • Anti-ulcer/anti-reflux drugs eg: famotidine, ci
  • HSA has been used as an emulsifier to emulsifie an oil phase such as chloroform. Under high shear force, the protein of HSA is cross-linked by disulfide bonds to form protein nanoparticles. The prior art problem is difficult to prepare. Stable and small particle size nanoparticles.
  • cucurbitacin, docetaxel, 10-hydroxycamptothecin, amphotericin B, propofol, entecavir and paclitaxel are respectively selected.
  • the liposome structure present in the protein-phospholipid preparation can be used to load the drug by means of an ammonium sulfate gradient, a pH gradient, an ion gradient, etc.
  • the preferred drug can be selected from the group consisting of doxorubicin, epirubicin, and erythromycin. , topotecan, mitoxantrone, vincristine or vinorelbine.
  • the drug delivery system of the present invention can be used in the human body or in animals in any suitable manner.
  • a preferred embodiment is a pharmaceutical composition comprising the drug delivery system of the present invention by intravenous administration, intraarterial administration, intramuscular administration, oral administration, inhalation intrapulmonary administration, intratracheal administration, subcutaneous administration, Intraocular administration, intravesical administration or transdermal administration.
  • phospholipids or other lipids are added to the prescription, these lipid components can be utilized to carry ligands, antibodies and derivatives thereof containing lipophilic groups for active targeted delivery.
  • ligands antibodies and derivatives thereof containing lipophilic groups for active targeted delivery.
  • the stability of the prepared nano-preparations is greatly improved, the particle size can be adjusted at will, and more importantly, it can be determined by various methods.
  • An active recognition head group of various ligands, antibodies, and the like is inserted into the nano preparation to obtain a more valuable and meaningful drug delivery system.
  • HSA binds to the albumin receptor Gp60 on the vascular endothelial cell membrane, initiates caveolae-mediated albumin transport, and carries drugs through the vascular endothelium.
  • the expression of SPRAC is usually enhanced in tumor tissues.
  • SPRAC is a non-structural cytoskeletal protein involved in the interaction of cell matrix with tissue shaping and embryonic development as well as cancer cell invasion and metastasis.
  • SPRAC has homologous sequences with Gp60 and can also bind to albumin. This makes HSA nanoparticles easy to accumulate in tumor tissues and form drug reservoirs, which enhances the target of drugs to kill tumor cells. In vitro cell culture assays have also shown that HSA nanoparticles increase the affinity of the drug for tumor cells.
  • the drug delivery system of the present invention can be dispersed with the aqueous phase alone with the aid of phospholipids, and nanodispersion can be easily achieved without the addition of a solvent.
  • human serum albumin HSA
  • bovine serum albumin porcine blood protein
  • egg albumin egg albumin
  • zein zein
  • PEG pig blood protein PEG pig blood protein
  • egg yolk lecithin EPC
  • soy lecithin SPC
  • dimyristoyl phosphatidylcholine DMPC
  • dimyristoyl phosphatidylglycerol DMPG
  • HSPC and DSPG are used; in another preferred embodiment lecithin and DOPC are selected; in another preferred embodiment lecithin is selected; in another preferred embodiment, dimyristoyl is used.
  • Phosphatidylglycerol DMPG
  • TPGS, PEG-CHS, and the like are used.
  • ethanol is selected; in another preferred embodiment, a methylpyrrolidone or a methylpyrrolidone/methanol mixed solvent is selected; in another preferred embodiment, methanol is selected; In the examples, t-butanol was used; in another preferred embodiment, isopropyl ether was used.
  • the protein layer cross-linked by disulfide bonds is coated/coated on the surface of the liposome or on the surface of the liposome, and the stability of the liposome is greatly improved;
  • the dispersion cycle is many times, and the cycle is at least 5 times under high pressure (such as Chinese patent application CN2 0031 012 346 1. X ), and the maximum number is more than 15 times, so Increasing the chance of protein denaturation, increasing the cost, the technique of the invention reduces the number of dispersions, and the optimal prescription process only needs to cycle for 1 to 5 cycles;
  • a liquid type phospholipid-protein-containing drug delivery system can be prepared by utilizing the good dispersibility of phospholipids, and the stability is good, extending from several hours of the prior art to tens of hours, or even tens of days.
  • Phospholipids themselves are also surfactants.
  • the addition of phospholipids allows the addition of various other surfactants throughout the system, and because of the addition of other surfactants, the particle size is further reduced, the amount of phospholipids is reduced, and the cost is reduced. It also ensures that the preparation of the drug delivery system is simple and applicable.
  • phospholipids can be mixed with proteins, excipients, and drugs, and dispersed, especially by extrusion process, under mild conditions to the desired particle size, and finally dispersed at low pressure, preparation Protein nanoparticles (protein nanovesicles) are required (for example, hydration of phospholipids with aqueous phase containing proteins, extrusion, control of any desired particle size, followed by homogenization), which is ideal A drug that is sensitive to stress and/or heat.
  • Protein nanoparticles protein nanovesicles
  • Fig. 1 is a freeze-thaw investigation of the particle size of a CuB (cucurbitacin B) preparation of the present invention using different concentrations of HSA.
  • Figure 2 shows the structural formula of PEG-THS, PEG-CHS and PEG-CHM.
  • Fig. 3 is a graph showing the particle size distribution of the nano-formulation of "Example 12" of the present invention.
  • Fig. 4 is a graph showing the particle size distribution of the nano-preparation of "Example 12" of the present invention after 30 days of standing.
  • Fig. 5 is a photograph showing the nanoparticle size of "Example 25" of the present invention.
  • Fig. 6 is a photographic view of a liposome of "Example 32" of the present invention.
  • Fig. 7 is a view showing the effect of the cucurbitacin B solution of the present invention on the proliferation inhibition effect of Hep-2 cells (human laryngeal carcinoma epithelial cells).
  • Fig. 8 is a view showing the effect of CuB HSA nanoparticles and CuB/HSA solution of the present invention on the proliferation inhibition of Hep2 (human laryngeal epithelial cells) cells at different doses.
  • Fig. 9 is a graph showing the effect of CuB HSA nanoparticles and CuB/HSA solution on the proliferation inhibition of A549 (human lung adenocarcinoma cells) at different doses.
  • Fig. 10 is a view showing the effect of CuB HSA nanoparticles and CuB/HSA solution of the present invention on the proliferation inhibition of HepG2 (human liver cancer cells) at different doses.
  • Fig. 11 is a schematic view showing the comparison of the inhibitory effects of cucurbitacin B HSA nanoparticles and emulsions and liposomes on the growth of different tumor cells of the present invention. Specific planing method
  • the cucurbitacin B (purity greater than 98%) was dissolved in 1 ml of ethanol and used; the prescribed amount of HSA was dissolved in water to prepare a 4% (g/ml) solution.
  • the HSA solution was added to the cucurbitacin B ethanol solution, dispersed, and placed in an ultrasound system. After ultrasonic treatment with 200W, the emulsion was dispersed by ultrasonic wave at 600W for 5 minutes to obtain an emulsion.
  • the organic solvent was removed by rotary evaporation.
  • the obtained nanoparticles have an average particle diameter of 282.2 nm and a wide distribution. They cannot pass through a 0.45 ⁇ m microporous membrane, and precipitation occurs in 20 minutes, and the system is unstable. After lyophilization, the dispersibility is poor, and it is difficult to return to the state before lyophilization. After reconstitution, the particle size is greater than 400 nm.
  • the obtained nanoparticles have an average particle diameter of 156 nm and a narrow distribution, and can pass through a microporous membrane of 0.45 ⁇ , 0.3 ⁇ m, and no precipitation occurs after being left for 60 minutes, and the system stability is greatly improved. After lyophilization, the dispersibility is good, and it can be restored to the state before lyophilization.
  • the particle size after reconstitution is 166 nm.
  • Cucurbitacin B purity greater than 98%) and S100 (soy lecithin, SPC Germany LIPOID) were dissolved in 5 ml of tert-butanol for use; the prescribed amount of HSA was dissolved in water to prepare a 4% solution.
  • the HSA solution was added to the cucurbitacin B/phospholipid tert-butanol solution, dispersed, and placed in an ultrasound system. Ultrasonic treatment with 200W was carried out, followed by dispersion with 600W ultrasonic for 5 min to obtain an emulsion.
  • the obtained nanoparticles have an average particle diameter of 139 nm and a narrow distribution, and can pass through a microporous membrane of 0.45 ⁇ , 0.3 ⁇ m, and left for 60 minutes without precipitation, and the stability of the system is greatly improved. After lyophilization, the dispersibility is good, and it can be restored to the state before lyophilization, and the particle size after reconstitution is 157 nm.
  • Cucurbitacin B purity greater than 98%) and S100 (soy lecithin, SPC Germany LIPOID) were dissolved in 1 ml of ethanol for use; the prescribed amount of HSA was dissolved in water to prepare a 4% solution. The HSA solution was added to the cucurbitacin B/phospholipid ethanol solution, dispersed, and then homogenized in a microfluidizer to examine the effect of pressure and number of cycles on the particle size. The results are shown in Table 1.
  • Cucurbitacin B purity greater than 98%), oil and S75 (soy lecithin, SPC Germany LIPOID company) were heated and dissolved, dispersed in 30 ml of water, homogenized to obtain an average particle size of less than 200 nm, spare; prescription amount of HSA It was dissolved in water to prepare a 5% solution.
  • the HSA solution was added to the cucurbitacin B emulsion, and after mixing, it was further homogenized and dispersed in a microfluidizer (1 10000 psi cycle). The results are shown in Table 2 below.
  • Nanoparticles having an average particle size of less than 200 nm can be obtained. Nanoparticles prepared from MCT, oleic acid and structural oil have the smallest average particle size.
  • Example 7 Effect of different concentrations of aqueous phase HSA on the particle size of nano-formulation
  • the pressure was selected to be 12,000 psi and cycled three times.
  • the pressure was selected to be 12,000 psi and cycled three times.
  • the resulting nanoparticle liquid was lyophilized according to the following procedure.
  • the lyophilization process is as follows: - pre-freezing at 70 ° C for 6 hours, vacuuming, to a vacuum of 15 Pa or less (preferably below 5 Pa), - 35 evacuation for 6 hours, then under vacuum, from - 35 ° C to 1 ( The TC was linearly heated for 10 hours and stored at 10 ° C for 2 hours.
  • Trehalose, lactose, sucrose, mannitol and glucose were used as the frozen nourishing agents for cucurbitacin HSA nanoparticles.
  • the test results are shown in the table below, where:
  • the nano-particles added with the protective agent have better freeze-thaw stability than the unprotected agent.
  • the nano-particles obtained after the hydration of the product added with the protective agent can be stabilized within 24 hours, and the preparation with the added mannitol has the most appearance.
  • the preparation method of the nano preparation was the same as in Example 8. The results are shown in Table 5 below.
  • the combined application of the lyoprotectant further improves the freeze-thaw stability of the nanoparticles and is stable within 10 hours.
  • the particle size did not change within 48 hours.
  • Example 11 illustrates the problem of preparing protein nanoparticles using chloroform solvent
  • Preparation The prescribed amount of docetaxel was weighed and dissolved in 1 ml of chloroform, and the resulting solution was used.
  • the HSA injection human albumin injection
  • the docetaxel chloroform solution was emulsified with 2% HSA solution and dispersed at 20000 psi.
  • the obtained nanodispersion liquid recovered chloroform under reduced pressure, and the remaining dispersed liquid was difficult to pass through a 0.8 ⁇ m microporous membrane. Leave for about 3 hours to produce a precipitate.
  • Example 12 illustrates the importance of phospholipids
  • HSA 600mg Preparation: Weigh the prescribed amount of docetaxel, phospholipid, dissolved in 1.5 ml of absolute ethanol, and the resulting solution was used. Take HSA and mix with water to make a 2% concentration, ie 30 ml of 2% HSA solution. A 2% HSA solution was added to the drug/phospholipid ethanol solution, stirred, and dispersed at 20,000 psi to give a translucent dispersion. This dispersion is easily passed through a 0.22 ⁇ m microporous membrane for sterilization filtration. The measurement results showed that the particle size was 31.8 nm (see Fig. 3). It was left at room temperature for about 30 hours without precipitation, and there was no precipitation after being placed in a refrigerator at 6 ⁇ 2 °C for 30 days. The particle size measurement showed no change (see Figure 4), and the average particle size was 31.2 nm.
  • Example 13 Docetaxel nanoparticles containing phospholipid-protein
  • HSA Human serum albumin
  • the human serum albumin (20%, W/V (g/ml)) was diluted with sterile water for injection to a 4% solution, and the pH was adjusted to 4 with citric acid.
  • the aqueous phase is added to the lipid phase, and the mixture is stirred and dispersed to obtain a milky dispersion liquid.
  • the liquid was transferred to a microfluidizer and further homogenized 5 times at 400 ⁇ 12000 psi.
  • the preparation was stable, and the prepared liquid was left in the refrigerator (2-8 ° C) for one month without delamination and sedimentation, and the appearance was still clear and transparent.
  • sucrose can be added to the prescription as required, and lyophilized according to -8 (TC for 4 hours, vacuum for 10 hours, 3 (TC for 5 hours to obtain lyophilized preparation).
  • the lyophilized preparation obtained above was hydrated, it was returned to the state before lyophilization, and the average volume diameter was 166 nm.
  • Example 13-2 The formulation ratio was the same as in Example 13, and the specific operation was also the same as in Example 13, except that Lipoid E80 (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-2 Lipoid E80 (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-4 The formulation ratio was the same as in Example 13, and the specific operation was also the same as in Example 13, except that Lipoid EPG (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-4 Lipoid EPG (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-5 The formulation was the same as in Example 13, and the specific operation was also the same as in Example 13, except that Lipoid E DPPG (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-5 Lipoid E DPPG (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-6 The formulation ratio was the same as in Example 13, and the specific operation was also the same as in Example 13, except that Lipoid E DMPG (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-6 Lipoid E DMPG (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-7 The formulation ratio was the same as in Example 13, and the specific operation was also the same as in Example 13, except that Lipoid E DPPC (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-7 Lipoid E DPPC (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-8 The formulation ratio was the same as in Example 13, and the specific operation was also the same as in Example 13, except that Lipoid E DMPC (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13-8 Lipoid E DMPC (Lippon LIPOID) was used instead of egg yolk lecithin, and the test results were similar to those in Example 13.
  • Example 13 0. lg Tween 80 was added to the formulation of Example 13, and the specific operation was the same as in Example 13, and the test results were similar to those in Example 13.
  • OlgTPGS was added to the formulation of Example 13, and the specific operation was the same as that of Example 13, and the test results were similar to those of Example 13.
  • the dispersion can be further lyophilized to obtain a cake lyophilized preparation. Reconstituted into the original dispersion by adding sterile water or glucose injection or xylitol injection.
  • Example 14-1 the amounts, types, and ratios of the drugs, solvents, and proteins used in the present embodiment are not limited in any way.
  • Example 14-1 the amounts, types, and ratios of the drugs, solvents, and proteins used in the present embodiment are not limited in any way.
  • camptothecin drugs such as hydroxycamptothecin, camptothecin, 9-nitrocamptothecin, 7-ethyl-10 hydroxycamptothecin, etc.
  • alkaline substances any alkaline substances such as Sodium hydroxide, sodium carbonate, lysine, etc.
  • Simple pH adjustment so that the pH is greater than 7.4 to dissolve the drug, formulate the aqueous solution of the drug, and then mix it with the phospholipid, using a homogenizer or ultrasonic dispersion, reduce
  • the particle size is to any desired particle size (eg, less than 100 nm, or less than 50 ni n).
  • the acidic substance any acidic substance such as citric acid, lactic acid, fumaric acid, tartaric acid, acetic acid, gluconic acid, lactobionic acid, sorbic acid, ascorbic acid, oxalic acid, formic acid, benzenesulfonate
  • Acid glutamic acid, aspartic acid, etc.
  • adjust the pH to less than 7.4 and then mix with HSA, high-pressure or high-intensity ultrasonic dispersion once, to ensure that the protein forms a disulfide bond on the surface or inside the lipid nanoparticles, stable Distributed on the nanoparticles.
  • the resulting preparation can be administered by injection, orally, or externally.
  • a prescribed amount of amphotericin B, HSPC, DSPG, CH, and tocopherol are dissolved in a mixed solvent of methylpyrrolidone/methanol, and the organic solvent is removed under reduced pressure for use.
  • a 1% (w/v) solution of HSA was prepared by dissolving 400 mg of HSA in water for injection.
  • the amphotericin B mixture was dispersed in an HSA solution, and the resulting dispersion was subjected to an emulsification cycle at 8000 to 20,000 psi for at least 3 cycles to obtain a translucent dispersion having an average diameter of 110 nm. Freeze drying can be carried out by a conventional method.
  • the protein has a protective effect on the liposome, further ensuring long-term storage stability of the liposome.
  • concentration of calcitriol in this system is 1 mg/100 ml, ie 10 ⁇ g/lml.
  • water for injection can be added to 1000 ml at a drug concentration of 1 ⁇ g/lml.
  • 5% glycine (W/V) can be added to the formulation, that is, 50 g of glycine is added to 1000 ml of the drug liquid, and lyophilized according to a conventional method.
  • HSA calcitriol, citric acid, DLPC, heat and dissolve in a nitrogen atmosphere, and set aside; take a prescribed amount of HSA, dissolve it in water for injection, and prepare a 3% solution.
  • the HSA solution was hydrated to contain a lipid phase containing calcitriol, stirred, dispersed, and observed as an emulsion by a microscope.
  • the homogenizer is further dispersed to form a disulfide bond under the dispersion treatment of the homogenizer on the surface of the emulsion, and the crosslinked protein has a protective effect on the emulsion, further ensuring long-term storage stability of the emulsion.
  • the concentration of the drug is 1 ⁇ g/lmK. If you need to freeze-dry, you can add 10% sucrose (g/ml) to the prescription, that is, add 100g of sucrose to 1000 ml of the drug solution, according to the conventional method. Freeze to dry.
  • Preparation Take a prescribed amount of amphotericin B, DMPC, dioctanoylphosphatidylglycerol, dissolve with an appropriate amount of methanol, and recover methanol under reduced pressure.
  • Human serum albumin is prepared in distilled water to form a 4% solution, dissolved in citric acid, and the resulting solution is added to the amphotericin B phospholipid complex, hydrated, and passed through 0.8, 0.6, 0.4, 0.2 at 4 (TC temperature). , 0.1, 0.05 ⁇ m microporous membrane, the resulting dispersion liquid was placed in the ultrasound system for sonication (using 600W ultrasonic dispersion for 1min) to promote protein formation of disulfide bonds.
  • the citric acid in the prescription may be any other acid such as lactic acid, fumaric acid, tartaric acid, acetic acid, gluconic acid, lactobionic acid, sorbic acid, ascorbic acid, oxalic acid, formic acid, benzenesulfonic acid, glutamic acid, aspartic acid, etc. Instead, the same result was obtained.
  • Preparation method Weigh the prescribed amount of propofol lecithin D0PC, dissolved in a nitrogen atmosphere, Alternate; human serum albumin is prepared in distilled water to form a 4% solution, added to EDTA-2Na, dissolved, the resulting solution is added to propofol phospholipids, hydrated, passed through 0.8, 0.6, 0.4 at 40 ° C, 0.2, 0.1, 0.05 ⁇ microporous membrane, the resulting dispersion liquid was placed in the ultrasound system for sonication, first 200W ultrasonic treatment, followed by 600W ultrasonic dispersion for 5min, to obtain an emulsion.
  • the average particle size is 69 n m.
  • the preparation was stable, and the prepared liquid was left in the refrigerator (2-8 ° C) for one month without delamination and sedimentation, and the appearance was still clear and transparent.
  • PEG-coated protein nanoparticles were prepared by adding 0.2% to 20% (w/v) of DSPE-PEG and using an external insertion method.
  • HSA Human serum albumin
  • Preparation method Weigh the prescribed amount of propofol, SPC, MCT, heat and dissolve in a nitrogen atmosphere, and prepare; use the prescribed amount of human serum albumin (HSA) and EDTA-2Na in water for injection to prepare '5°/.
  • HSA solution was filtered through a filter (0.2 ⁇ m filter) to obtain an aqueous phase.
  • the aqueous phase was added to the oil phase and dispersed at 10,000 RPM for 2 minutes to obtain a crude milk.
  • the crude emulsion was homogenized at a high pressure of 28,000 psi and recirculated at 4 'C for 2 cycles to obtain a final emulsion.
  • Add water for injection to 100ml, mix, filter (0.2 ⁇ filter), dispense, fill with nitrogen, and seal.
  • the particle size is less than 200 nm.
  • PEG-coated protein nanoparticles were prepared by adding 0.2% to 20% (w/v) DPPE-PEG and using an external insertion method.
  • PEG-coated protein nanoparticles were prepared by adding 0.2% to 2% (w/v) of DSPE-PEG using an external insertion method. prescription:
  • Preparation The prescribed amount of entecavir and D0PG were dissolved in a small amount of methanol, and the resulting solution was used. Prepare 10% HSA, 20% sucrose solution, add to the above drug phospholipid solution, disperse, and homogenize from 4000 to 40,000 psi to obtain a liquid with a particle size of less than 100 nm, add water to lOO ral, and mix well. Solids can be prepared by freezing work or spray drying.
  • the preparation was stable, and the prepared liquid was left in the refrigerator (2-8 ° C) for one month without delamination and sedimentation, and the appearance was still translucent.
  • composition of the prescription (100ml, the concentration of cucurbitacin E is 0. lmg / ml)
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 74 ° C, 4 h; vacuuming for drying. Drying in the first stage: -3 (TC, 60 min; second stage drying: _20 ° C, 12 h; holding: 15 ° C, 5 h.
  • the other operation is the same as in the embodiment 24.
  • the difference is that a conventional amount of an antioxidant such as tocopherol, vitamin C or EDTA-2Na is added to the formulation.
  • the other operations are the same as in the embodiment 24-1.
  • the difference is that the cucurbitacin E in the prescription is replaced with the equivalent equivalent of cucurbitacin extract (including the sale of cucurbitacin BE raw material), cucurbitacin A, cucurbitacin B, isolisin 8 , cucurbitacin 8 , cucurbitacin (:, cucurbitacin D, isoliquirin D, dihydrocucurbitin D, isoliquican 6, dihydrocucurin E, cucurbitacin F, cucurbitacin I, tetrahydrocucurin I or cucurbitacin ( ⁇ .
  • composition of the prescription (100ml, the concentration of cucurbitacin I is 0. lmg/ml)
  • Preparation Dissolve the prescribed amount of cucurbitacin I, structural oil, S75 (Lipoid S 75, Shanghai Dongshang Industrial Co., Ltd.), tocopherol, and reserve; take the prescribed amount of trehalose, add 50ml of water for injection, dissolve, add a small amount of activated carbon. In addition to the pyrogen, after cooling, 25 ml of 20% HSA sold was added, mixed, and the resulting solution was filtered and sterilized. The resulting aqueous solution containing HSA was added to the oil phase, dispersed, and subjected to a high pressure homogenization cycle at 1000 - 20,000 psi for 3 cycles to obtain a final emulsion. Filtration (0.2 ⁇ m filter), dispensing, lyophilization, nitrogen filling, sealing. The average particle size is less than 200 nm. See Figure 5.
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 74 ° C, 4 h; vacuuming for drying. Drying in the first stage: - 30 ° C, 30rain; second stage drying: - 20 ° C, 12 h; heat preservation: 15 ° C, 5 h.
  • cucurbitacin E in the prescription is replaced with cucurbitacin extract (including cucurbitacin BE raw material), cucurbitacin A, cucurbitacin B, isolisin 8 , dihydrocucurbitin B, cucurbitacin C, gourd D, isolisin D, dihydrocucurin D, isolisin £, dihydrocucurbitin E, cucurbitacin F, cucurbitacin E, tetrahydrocucurin I or cucurbitacin 0.
  • cucurbitacin extract including cucurbitacin BE raw material
  • the other operation is the same as in the embodiment 25.
  • the difference is that a conventional amount of an antioxidant such as tocopherol, vitamin C or EDTA 2Na is added to the formulation.
  • the other operations are the same as those in the embodiment 25-1.
  • the difference is that the cucurbitacin I in the prescription is replaced with cucurbitacin extract, cucurbitacin A, cucurbitacin B, isolisin 8 , cucurbitacin B, cucurbitacin (:, cucurbitacin D, isolisin D, Dihydrocucurbitin D, isoliquidin 6, dihydrocucurin E, cucurbitacin F, cucurbitacin E, tetrahydrocucurin I or cucurbitacin Q.
  • composition of the prescription (100ml, the concentration of cucurbitacin Q is 0. lmg/ml)
  • Preparation The prescription amount of cucurbitacin Q, structural oil, MCT, S75 (Lipoid S 75, Shanghai Dongshang Industrial Co., Ltd.) is heated and dissolved, and used; the prescribed amount of trehalose and xylitol are added, and 50 ml of water for injection is dissolved. A small amount of activated carbon was added to remove the pyrogen. After cooling, 5 ml of 20% HSA was added and mixed, and the resulting solution was filtered and sterilized. Adding the obtained aqueous solution containing HSA to the oil phase, dispersing, and continuing The high pressure homogenization cycle is carried out for 2 cycles at 1000 - 20, 000 psi to obtain the final emulsion. Filtration (0.2 ⁇ m filter), dispensing, lyophilization, nitrogen filling, sealing. The average particle size is less than 200 nm.
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 74 ° C, 4 h; vacuuming for drying. Drying in the first stage: - 30'C, 90min; drying in the second stage: -20 ° C, 12 h; heat preservation: 20 ° C, 5 h.
  • the other operations are the same as those in the embodiment 26.
  • the difference is that a conventional amount of an antioxidant such as tocopherol, vitamin C or EDTA-2Na is added to the formulation.
  • the other operations are the same as those in the embodiment 26-1.
  • the difference is that the cucurbitacin Q in the prescription is replaced with cucurbitacin extract, cucurbitacin A, cucurbitacin B, isolisin, dihydrocucurbitin B, cucurbitacin (:, cucurbitacin D, isolisin D, double Hydrogen cucurbitin D, isoliquirin 6, dihydrocucurin E, cucurbitacin F, cucurbitacin I, tetrahydrocucurin I, cucurbitacin S or cucurbitacin E.
  • Preparation Dissolve a prescribed amount of dipalmitoylphosphatidylglycerol and tetralauryl cardiolipin with a small amount of t-butanol, add aqueous solution of desmopressin acetate, disperse and mix (microscopic observation as liposome), adjust pH with Tris To 7.4, a trehalose solution was added, and an extrusion film was sequentially used to extrude a film (Nucleopore) having a pore diameter of 800 nm, 300 nm, 200 nm, 100 nm, and 50 nm for use.
  • a 20% HSA 25 ml solution was taken, added to the above phospholipid dispersion system, mixed, dispersed at 28,000 psi, and cycled once to prepare nanoparticles of the desired particle size.
  • the average particle size is less than 100 nm.
  • the protein layer is coated on the outer layer of the liposome.
  • a solid can be obtained by lyophilization techniques.
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 4 (TC, 4h; vacuuming for drying.
  • Preparation Mix zedoary turmeric oil with phospholipid, add 50ml of water for injection to disperse, micro-fluidizer or homogenizer to further reduce the particle size to less than ⁇ , filter and sterilize; protein is prepared into 2% concentration with sterile water for injection, and preparation with the above step The emulsion is mixed and dispersed again using a microfluidizer or homogenizer. Disperse one cycle at 4000 psi. Add water to 100ml of water for injection, filter, dispense, and seal. The protein layer is coated on the outer layer. The average particle size is less than 150 nm.
  • Preparation Weigh the prescribed amount of tetraoleyl cardiolipin, DMPC, cholesterol hemisuccinate, add 10 ml of ethanol to dissolve, and set aside. Take 150 mM ammonium sulphate 100 ml, add 15 g of sucrose to dissolve, add 0.1 ml of 20% human serum albumin, mix well, add the mixture to the phospholipid ethanol solution, hydrate, the resulting liposome, at 50 °C was extruded through a double-layer 800 nm, 300 nm, 200 nm, 100 nm, 50 nm pore size film (Nucleopore) with an extruder (Lipex Biomembranes, Inc., Vancouver, BC, Canada), and finally with a pressure of 18000 ps i Disperse, cycle 2 times to prepare nanoparticles of the required particle size.
  • the ammonium sulfate in the aqueous phase of the lipid was removed by microcolumn centrifugation using Sephadex G-50 to obtain a protein-containing liposome.
  • Doxorubicin was dissolved in 0.9% sodium chloride injection to prepare 10 mg/ml.
  • the doxorubicin solution was mixed with the blank liposome, incubated in a 50 ° C water bath for 15 minutes, and continuously stirred to obtain a protein-containing liposome loaded with doxorubicin.
  • the encapsulation efficiency measurement showed that the encapsulation efficiency of the liposome prepared by the method was more than 90%.
  • the 0.22um filter is sterilized by filtration, dispensed, sealed, and stored at 2 ⁇ 8 ° C.
  • Solids can be obtained using lyophilization techniques.
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 80 ° C, 4 h; -60 ° C, vacuuming for drying. Freeze-drying curve: - 60 °C to -50 °C, 2h; -50 °C - -30 °C, 10h; - 30 °C ⁇ 0 °C, 6h; 0 °C ⁇ 20 °C, 4h; : 20. C, 2h.
  • the results of the irritant and toxicity tests indicate that the drug delivery system of the present invention can reduce venous irritation, phlebitis, venous thrombosis, extravasation and other drug-related side effects of the active drug.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 30.
  • the drug is selected from daunorubicin, epirubicin, and Changchun sulfate.
  • Neobase mitoxantrone, topotecan hydrochloride, vinorelbine tartaric acid or bleomycin.
  • the encapsulated rate of the prepared protein-containing liposomes was more than 85%.
  • the doxorubicin-containing protein-containing liposome was prepared by referring to "Example 30", and then 0.5 g of DSPE-PEG2000 was inserted into the prepared liposome by an external insertion method to obtain a PEG-coated doxorubicin-containing substance. Protein liposomes. The encapsulation efficiency measurement showed that the encapsulation efficiency of the liposome prepared by the method was more than 90%.
  • 0.22um filter membrane is sterilized, dispensed, sealed, and stored at 2 ⁇ 8° C.
  • Solids can be obtained using lyophilization techniques.
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 80 ° C, 4 h; -60 ° C, vacuuming for drying. Freeze-drying curve: -60 °C to -50 °C, lh; -50 °C - - 3 (TC, 8h; -30 °C - 0 °C, 6h; 0 °C ⁇ 20 °C, 2h; : 20 ° C, 2 h.
  • the drug delivery system of the present invention can reduce venous irritation, phlebitis, venous thrombosis, extravasation and other drug-related side effects of the active drug.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 31.
  • the drug is selected from daunorubicin, epirubicin, vincristine sulfate, mitoxantrone, topotecan hydrochloride, vinorelbine or bleomycin.
  • the encapsulation efficiency of the prepared protein-containing lipid bodies was more than 85%.
  • Preparation Weigh the prescribed amount of tetrapalmitoside, DMPC, add 1 ml of ethanol to dissolve, and set aside. Take 300 mM citric acid ( ⁇ 4 ⁇ 0) 10 ml, add 1 g of sucrose to dissolve, add 0. lml to sell 20% human serum albumin, mix, add to the phospholipid ethanol solution, hydrate, probe sonication, preparation Translucent liposome liquid.
  • Doxorubicin was dissolved in 0.9% sodium chloride injection to prepare 10 mg/ml.
  • the doxorubicin solution was mixed with blank liposomes, and 10mM of sodium hydroxide to adjust to pH 7.5, incubated at 50 ° C water bath for I 5 minutes. And stirring constantly, that is, the protein-containing liposome carrying doxorubicin.
  • the encapsulation efficiency measurement showed that the encapsulation efficiency of the liposome prepared by the method was greater than 90%.
  • the 0.22um filter is sterilized by filtration, dispensed, sealed, and stored at 2 ⁇ 8 ° C.
  • Solids can be obtained using lyophilization techniques.
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 80 ° C, 4 h; -60 ° C, vacuuming for drying. Freeze-drying curve: - 60 °C to - 50 °C, 8h; -50 °C - 30. C, 12h; -30°C - 0°C, 16h; 0 °C ⁇ 15 °C, 4h; heat preservation: 15°C, 4h.
  • the drug delivery system of the present invention can reduce venous irritation, phlebitis, venous thrombosis, extravasation and other drug-related side effects.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 32.
  • the drug is selected from daunorubicin, epirubicin, vincristine sulfate, mitoxantrone, topotecan hydrochloride, vinorelbine, gemcitabine, huperzine A, leucovorin or bleomycin.
  • the encapsulated rate of the prepared protein-containing liposomes was more than 85%.
  • Example 32 The specific procedure is the same as in Example 32, except that a PEG lipid derivative having a different PEG molecular weight can be inserted into the liposome by an external insertion method to prepare a protein-containing PEG-coated liposome.
  • Elemene is mixed with phospholipids and TPGS, and added to 50 ml of water for injection for dispersion.
  • the microfluidizer or homogenizer further reduces the particle size to less than 100 nra, 0.22 um filter filtration; the protein is prepared by using sterile water for injection.
  • 2% concentration mixed with the emulsion prepared in the previous step, again dispersed by a micro-jet or homogenizer, and dispersed at 2000 psi for one cycle.
  • the addition of surfactant TPGS reduces the pressure required to disperse and reduces costs.
  • the preparation was stable, and the prepared liquid was left in the refrigerator (2-8 ° C) for one month without delamination and sedimentation, and the appearance was still clear and transparent.
  • the drug delivery system of the present invention can reduce the irritation of the drug to the vein, the burning sensation and pain at the time of injection, phlebitis, venous thrombosis, extravasation and other side effects associated with administration.
  • the galactose cholesterol derivative of the inventor's patent application CN200610121794.2 may be inserted in an amount of 5% by mole of the phospholipid. It can also insert transferrin derivatives, folic acid and its derivatives, glucosamine derivatives, various RGD and its derivatives, and antibodies selected from various murine sources, humanized, recombinant mouse, and human sources to achieve active Target the purpose of delivery.
  • Preparation Weigh the prescribed amount of alprostadil and phospholipids, add 3ml of ethanol to dissolve, and set aside. Take the prescribed amount of trehalose, add 70ml of water for injection, dissolve it, add a small amount of activated carbon to remove the pyrogen, cool it, add it to the drug phospholipid solution, hydrate, disperse, and pass the 0.8, 0.6, 0.4, 0.2, 0.1, 0.05 ⁇ m micropores. The membrane was filtered to obtain a transparent dispersion.
  • the nanoparticles can be stored in a liquid form. If it needs to be stored in a solid form, it can be further lyophilized, filled with nitrogen, and sealed. After the lyophilized product is reconstituted with water, the average particle size is less than 100 nm.
  • Example 36-1 Alprostadil nanoparticles (50 ⁇ g/ml)
  • Preparation Weigh the prescribed amount of alprostadil, ethyl octanoate and phospholipid, add 3 ml of absolute ethanol to dissolve, and set aside. Take the prescribed amount of trehalose, add 70ml of water for injection, dissolve it, add a small amount of activated carbon to remove the pyrogen, cool it, add it to the drug phospholipid solution, hydrate it, and disperse it at 10,000 - 40, 000 si to obtain a dispersion with a particle diameter of less than 100 nm.
  • the cycle was homogenized for 1 cycle at a lower pressure, water for injection was added to 100 ml, and mixed to obtain final nanoparticles. Filtration (0.2 ⁇ m filter) sterilization, dispensing, nitrogen filling, sealing. The average particle size is less than 100 nm.
  • the nanoparticles can be stored in a liquid form. If it needs to be stored in a solid form, it can be further lyophilized, filled with nitrogen, and sealed. After the lyophilized product is reconstituted with water, the average particle size is less than 100 nm.
  • Entecavir capsules 100 dose units (0.5mg/capsule)
  • Entecavir entercavir
  • Preparation Take the prescribed amount of entecavir, SPC, dissolve with appropriate amount of ethanol, and set aside. Take the prescribed amount of egg albumin, add water to prepare 20% solution, add to entecavir/SPC solution, disperse, pass homogenizer (400 ⁇ 4000 psi), control particle size from 500nm ⁇ 100om, add lactose, spray dry To obtain protein nanoparticle particles containing entecavir, add 0.1% micronized silica gel, and mix and pack (0.5mg/capsule). Tableting can also be carried out using powder direct compression techniques.
  • the specific operation is the same as that in the embodiment 37.
  • Preparation Take the prescribed amount of vitamin E, carotenoids, EPC, dissolve with appropriate amount of absolute ethanol, and prepare. Take the prescribed amount of egg albumin, glycerin, add water to prepare 2% solution, add to vitamin E / carotene / EPC solution, disperse, pass homogenizer (4000 - 40000 psi), control particle size less than 500nm, add distilled water Up to 100ml, a protein nanodispersion containing vitamin E and carotene is obtained, which has a moisturizing and delicate skin effect for external use; after being added to the dispersion of the hazel, a topical mask can be obtained. Plant extracts such as ginseng, vitamin C palmitate, coenzyme Q, arbutin, hydroquinone, kojic acid, various protein hydrolyzates, various amino acids, etc. may be added as needed.
  • Preparation Take the prescribed amount of tocopherol, vitamin C palmitate, EPC, dissolve with an appropriate amount of absolute ethanol, and set aside. Take the prescribed amount of egg albumin, glycerin, add water to prepare 50% solution, add to tocopherol/vitamin C palmitate/EPC solution, disperse, pass homogenizer (4000 - 40,000 psi), control particle size less than lOOOnm Add distilled water to 50ml to obtain a protein nanodispersion containing tocopherol and vitamin C palmitate. It has a moisturizing and delicate skin effect for external use. After being added to the dispersion, the external mask can be obtained. Plant extracts such as ginseng, carotenoids, coenzyme Q, arbutin, hydroquinone, kojic acid, various protein hydrolyzates, various amino acids, etc. may be added as needed.
  • Preparation Weigh the prescribed amount of bFGF and add 2 ml of water to dissolve. The resulting solution is mixed with DMPG and 1,2-tetradecanoylphosphatidic acid, dispersed, and used. Take the prescribed amount of trehalose, add 30ml of water for injection, dissolve it, add a small amount of activated carbon to remove the pyrogen, cool it, add lOgHSA to stir and dissolve, mix with bFGF phospholipid liquid, and pass 0.8, 0.6, 0.4, 0.2, 0.1, 0.05 ⁇ m A pore filter was obtained to obtain a transparent dispersion.
  • Preparation Take a prescribed amount of thymopentin, tetramyristoyl cardiolipin, SPC, add to the appropriate amount of water, stir, disperse, and pass through a homogenizer (4000 - 24000 psi), and set aside. Take a prescribed amount of HSA, add water to prepare a 20% solution, add to the thymopentin dispersion liquid, disperse twice at 20000 psi, control the particle size from 100nm to 200nm, add lactose, and spray dry to obtain thymopentin. Protein nanoparticle particles. The nanoparticles can be further processed into capsules, tablets, granules; they can also be prepared directly into a powder and administered to the lungs.
  • Embodiment 39 the same as Embodiment 39. The difference is that after inserting, DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecule) The amount of 100 - 10000) is added to the above formulation.
  • DSPE-PEG PEG molecular weight 100 - 10000
  • PEG molecular weight 100 ⁇ 10000 PEG molecular weight 100 ⁇ 10000
  • DMPE-PEG PEG molecular weight 100 ⁇ 10000
  • DLPE-PEG PEG molecule
  • HSA Human serum albumin
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% maltose.
  • the prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 110 nm.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 40.
  • the difference is that DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) is added to the above preparation by post-insertion method.
  • HSA Human serum albumin
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose.
  • the prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 130 n m.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 41.
  • the difference is that the DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) is inserted into the above preparation by post-insertion method.
  • HSA Human serum albumin
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% lactose and 1% trehalose.
  • the prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 106 nm.
  • the specific example is the same as the embodiment 42.
  • the difference is that DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) is added to the above preparation by post-insertion.
  • HSA Human serum albumin
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose.
  • the prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 90 nm.
  • the specific operation is the same as in the embodiment 43.
  • the difference is that the post-injection method will be DSPE-PEG (PEG molecular weight).
  • DMPE-PEG PEG molecular weight 100 ⁇ 10000
  • DLPE-PEG PEG molecular weight 100 - 10000
  • HSA Human serum albumin
  • the specific operation is carried out with reference to "Example 13".
  • the prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 150 nm.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 44.
  • the difference is that the post-insertion method is 0.01% ⁇ 10% (w/v) DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) Into the above preparations.
  • HSA Human serum albumin
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose, 5°/. maltose.
  • the prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 170 nm.
  • the specific operation is the same as in the embodiment 45.
  • the difference is that the post-insertion method will be 0.01% ⁇ 10% (w/v) DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) Add to the above formulation.
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% maltose.
  • the prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 120 nm.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 46.
  • the difference is that the post-insertion method is 0.01% ⁇ 10% (w/v) DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) Add to the above formulation.
  • HSA Human serum albumin
  • Example 47-1 The specific operation is carried out with reference to "Example 1". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose. The prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 130 nm.
  • Example 47-1 The specific operation is carried out with reference to "Example 1". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose. The prepared protein nano preparation had an average volume particle diameter of 130 nm.
  • the post-insertion method is 0.01% ⁇ 10% (w/v) DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) Into the above preparations.
  • the specific operation is carried out with reference to "Example 13".
  • the prepared protein nano preparation has an average volume particle diameter of less than 30 nm.
  • the specific operation is the same as in the embodiment 48.
  • the difference is that the post-insertion method is 0.01% ⁇ 10% (w/v) DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) Add to the above formulation.
  • Bovine serum albumin 0. lg
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that human serum albumin is exchanged for bovine serum albumin, and 10% sucrose is exchanged for 20% trehalose.
  • the prepared protein nano preparation has an average volume particle diameter of less than 100 nm.
  • the specific example is the same as the embodiment 49.
  • the difference is that after the insertion method, 0.01% ⁇ 10% (w/v) DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) ) Forced into the above preparations.
  • Vitamin L 0. lg
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that human serum albumin is exchanged for bovine serum albumin, and 10% sucrose is exchanged for 10% trehalose and 5% xylitol.
  • the prepared protein nano preparation has an average volume particle diameter of less than 100 nm.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 50.
  • the difference is that the post-insertion method is 0.01% ⁇ 10% (w/v) DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) Into the above preparations.
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose.
  • the prepared protein nano preparation has an average volume particle diameter of less than 100 nm.
  • the specific operation is the same as in the embodiment 51.
  • the difference is that the post-insertion method uses DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), or PEG-THS, PEG - CHS, PEG-CHM was added to the above formulation.
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose.
  • the resulting protein nanoformulation was prepared to have an average volume particle size of less than 100 nm.
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 52.
  • the difference is the post-insertion method of DSPE-PEG (PEG molecular weight)
  • Example 53 DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DPPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) are added to the above preparation.
  • DMPE-PEG PEG molecular weight 100 ⁇ 10000
  • DPPE-PEG PEG molecular weight 100 ⁇ 10000
  • DLPE-PEG PEG molecular weight 100 ⁇ 10000
  • Ginsenoside Rg 2 0. lg 1-oleoyl 2-hydroxy lecithin 0. Olg
  • Example 13 The specific operation is carried out with reference to "Example 13". The difference is that 10% sucrose is replaced by 10% trehalose.
  • the prepared protein nano preparation has an average volume particle diameter of less than 100 nm.
  • the specific operation is the same as that in the embodiment 53.
  • the difference is that the post-insertion method uses DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), PEG-THS, PEG_CHS, PEG-CH, DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000), DPPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) was added to the above formulation.
  • Preparation method The prescription of sodium aescinate, 2-octadecylphosphatidic acid, 1,2-dipalmitoylphosphatidylglycerol, pig blood protein is dispersed in water, stirred, homogenized machine 800 psi, water is added to 50ml, mix well, that's it. External use can reduce swelling.
  • Example 54-1 The prescription of sodium aescinate, 2-octadecylphosphatidic acid, 1,2-dipalmitoylphosphatidylglycerol, pig blood protein is dispersed in water, stirred, homogenized machine 800 psi, water is added to 50ml, mix well, that's it. External use can reduce swelling.
  • Example 54 The specific operation is the same as in Example 54. The difference is that the post-insertion method will be DSPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), DPPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000), DMPE-PEG (PEG molecular weight 100 - 10000) or DLPE-PEG (PEG molecular weight 100 ⁇ 10000) Forced into the above preparations.
  • Example 55 Azithromycin Eye Drops (100ml)
  • Preparation method Azithromycin and DLPG are dissolved in ethanol to obtain a solution; EDTA-2Na and HSA are dissolved in water, and a 2% solution is prepared, added to the solution prepared in the above step, and stirred.
  • the pH of citric acid is adjusted to 6 ⁇ 8, the micro-jet is dispersed, and the treatment is carried out at 12000 psi for 2 cycles.
  • the mixture is added with chlorhexidine and water, adjusted to a volume of 100 ml, and mixed to obtain azithromycin eye drops.
  • Preparation method Mimethazole nitrate and diacetyl phosphatidylcholine are dissolved in an appropriate amount of ethanol, and ready for use; Chitosan is dissolved in an appropriate amount of acetic acid, and added with 20% HSA 5 ml and 50 ml of water, mixed, and added to the imiazole phospholipid In solution, disperse, treat 16000 ps i for 3 cycles, adjust pH 4 ⁇ 5, adjust the volume to 100ml, mix, and obtain the imidazole nitrate nanoparticle preparation. This preparation can be administered externally for vaginal administration.
  • Preparation method Take the prescribed amount of simvastatin, phospholipid, dissolve with appropriate amount of ethanol, and set aside. Take the prescribed amount of egg albumin, lactose, add water to prepare 5% solution, add to simvastatin / phospholipid solution, disperse, pass homogenizer (1 000 ⁇ 1 0000 ps i ), control particle size from 300nm ⁇ 500nm , lyophilization or spray drying to obtain simvastatin-containing protein nanoparticle particles, capsule or directly compressed, or prepared into granules.
  • the specific operation is the same as the embodiment 5 7.
  • the difference is in the preparation of a medicament for oral administration of "statin”, “hydrophyllin”, “melittin”, “insulin” or intra-articular injection or subcutaneous injection.
  • Preparation method Take silver nitrate, water is formulated into 0. lMol / L, added phospholipids, 20000 psi dispersion cycle 3 times, ready for use. Take PEG pig blood protein, prepare 5% solution in water, add to the above liposome dispersion, disperse once at 10,000 psi, remove ultra-filtered unencapsulated silver nitrate, and add hydrazine hydrate to the remaining liposome liquid. Stir, react for 6 hours, remove excess hydrazine hydrate by ultrafiltration, add water to 50 ml, adjust the pH of the acid to 6 ⁇ 7, and obtain nano-silver colloid. The average particle size is less than 100 nm. For external use (including vaginal, rectal, etc.), oral or injection.
  • the specific operation is the same as in the embodiment 60.
  • the difference is to prepare colloidal dispersion systems such as "nano gold” and “nano iron”.
  • Topical including vaginal, rectal, etc.), oral or injection or magnetic targeting.
  • composition of the prescription (100ml, the concentration of cucurbitacin I is 0. lmg/ml)
  • Preparation method The prescribed amount of cucurbitacin I and DMPC are dissolved in a small amount of ethanol, and used. Take the prescribed amount of trehalose, add 70ml of water for injection, dissolve it, add a small amount of activated carbon to remove the pyrogen, filter, and cool the filtrate, add the phospholipid solution of cucurbitacin I, disperse, and pass 0.8, 0.6, 0.4, 0.2, 0.1, A 0.05 ⁇ m microporous membrane was obtained to obtain a transparent dispersion, which was reserved; 25 ml of 20% HSA sold was added, mixed, and the resulting solution was filtered and sterilized.
  • the obtained aqueous solution containing HSA was added to the above dispersion system, and subjected to a high pressure homogenization cycle at 1000 to 20,000 psi for 2 cycles to obtain a dispersion system.
  • 0.2 g of DSPE-PEG 2 was applied by external insertion. . . Insert into the above dispersed nanoparticles, filter (0.2 ⁇ m filter) to remove bacteria, dispense, and seal.
  • Freeze drying techniques can be employed.
  • Freeze-drying process Pre-freezing: - 74, 4h; Vacuuming for drying. The first stage of drying: - 30 ° C,
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 61.
  • the difference is that a conventional amount of an antioxidant such as tocopherol, vitamin C or EDTA-2Na is added to the formulation.
  • Example 61-2 The specific operation is the same as that of the embodiment 61. The difference is that the cucurbitacin I in the prescription is replaced with cucurbitacin extract (including cucurbitacin BE sold), cucurbitacin A, cucurbitacin B, isolisin B, dihydrocucurin B, cucurbitacin C, gourd D, isolisin D, dihydrocucurin D, isolisin E, dihydrocucurbitin E, cucurbitacin F, cucurbitacin E, tetrahydrocucurin I, cucurbitacin Q.
  • cucurbitacin extract including cucurbitacin BE sold
  • the specific operation is the same as that of the embodiment 61.
  • the difference is that different PEG molecular weight DPPE-PEG, DMPE-PEG.
  • DLPE-PEG is inserted into the nanoparticles by external insertion.
  • Preparation method Take the prescribed amount of cucurbitacin Q, polyene phosphatidylcholine, tert-butanol, stir and dissolve, add 40 ml of 50% sucrose solution, mix well, add 5 ml of 20 SA solution, mix. 20000psi high pressure homogenization treatment 1 cycle, add water for injection to 100 ml, mix, 0.22 filter filter sterilization, the average particle size is less than 50 nm. Distillation, 1 ml each, freeze-drying according to the conventional method, and a high-concentration freeze-dried product of 1000 yg/ml/piece can be prepared.
  • the high-concentration preparation can be obtained by the technique of the present invention, thereby reducing the cost of production, transportation, storage and use.
  • Example 13 Taking the prescription of "Example 13" as an example (lyophilized preparation), an accelerated test at room temperature was carried out.
  • the particle size did not change significantly.
  • Example 13 formulation and docetaxel Tween 80 solution prepared according to the current prescription process for the sale of docetaxel (docetaxel).
  • mice Male mice were selected and the mice weighed between 18 g and 20 g. Dosage: 100 mg/kg.
  • mice The survival of the mice is shown in Table 7 below.
  • Example 13 the formulation of the present invention is much less toxic than the docetaxel Tween 80 solution prepared by the formulation process for the docetaxel (docetaxel) formulation.
  • the prepared dispersion can be easily passed through a 0.22 ⁇ m microporous membrane for sterilization filtration. It was left for about 30 hours without precipitation.
  • Example of Example 65 Description of the problem of preparing protein nanoparticles using chloroform solvent
  • Preparation method The prescribed amount of paclitaxel was weighed and dissolved in 1 ml of chloroform, and the resulting solution was used. The HSA injection was taken and diluted with water to prepare a 2% concentration, i.e., 30 ml of a 2% HSA solution. The paclitaxel chloroform solution was emulsified with 2% HSA solution and dispersed at 20000 psi. The resulting nanodispersion recovered chloroform under reduced pressure, and the remaining liquid was difficult to pass through a 0.8 ⁇ microporous membrane. A precipitate formed after about 1 hour of standing.
  • Example 65 A prepared paclitaxel solution prepared according to the formulation process of the currently marketed paclitaxel (using Creraophor RH40 polyethylene glycol castor oil) formulation.
  • mice Male mice were selected and weighed between 18 g and 20 g.
  • Dosage 50 mg/kg.
  • mice survival of the mice is shown in Table 8 below. Survival of different prescription mice The results of the three batches of data indicate that the formulation of the present invention (“Example 65") is much less toxic than the paclitaxel solution prepared by the formulation process for the paclitaxel formulation.
  • Microplate reader (Sunrise, Switzerland), 3 - ( 4, 5 - dimethylthiazole - 2 ) - 2, 5 - diphenyltetrazolium bromide (MTT) (Fluka, USA), DMSO (Sigma), RPMI 1640 Culture medium (GIBCO), fetal bovine serum (FBS) (Tianjin TBD Biotechnology Center).
  • the inhibitory effects of cucurbitacin B HSA nanoparticles on tumor cell growth in vitro were investigated in human laryngeal carcinoma epithelial cells (Hep-2), human hepatoma cells (He P G-2), and human lung adenocarcinoma cells (A549), respectively.
  • the inhibition of the same dose of cucurbitacin B emulsion and liposomes was compared in these cells.
  • the cells were cultured in RPMI 1640 medium containing 10% fetal bovine serum, placed in a 37 ° C, 5 % CO 2 incubator, and passaged once every 3 - 4 days. Cells in the logarithmic growth phase were selected for the experiment. Use 0 for adherent cells.
  • 25% trypsin (containing EDTAlmM) was digested and suspended in the culture medium.
  • the cell concentration was adjusted to 2.5 ⁇ 10 4 /ml, and 100 ⁇ L per well was seeded on a 96-well plate with 3 replicate wells per well. Blank control wells (b 1 ank ) plus culture medium. After culture for 18-24 h, the cells were added to different concentrations (0.5 ⁇ 1 ), and the other group was the control group (with no cells added). After continuing to culture for a certain period of time (such as 24 or 48 hours), add 5 ⁇ L of 5 mg/ml MTT reagent per well, continue to culture for 4 h, add 10% SDS (containing 1 OmM hydrochloric acid) ⁇ ⁇ 1, per well. overnight.
  • the 0D (optical density) value of each well was measured with a microplate reader (570 nm wavelength).
  • inhibition rate (%) 1- (0D experiment - 0D blank) / (0D comparison - 0D blank)
  • Cucurbitacin B (dissolved with DMS0) at a concentration of 0.1, 1, 10, ⁇ ⁇ ⁇ was added to the culture medium of Hep-2 cells to investigate the growth inhibition of cucurbitacin on Hep-2 cells after culture for different time. effect. It can be seen that the inhibitory effect of cucurbitacin B on the proliferation of Hep-2 cells increases with time and dose. This trend is especially pronounced when the duration of action is high and the dose is high. The results are shown in Figure 7.
  • the cucurbitacin B HSA nanoparticles containing 2% or 3% of HSA were prepared according to the "Example 4" (the CuB drug concentrations were the same, that is, both were 0.1 mg/ml).
  • the ratio of cucurbitacin B to HSA in the 2% HSA formulation was 1 / 200 (w/w), and the ratio of CuB to HSA in the 3% HSA formulation was 1 / 300 (w/w).
  • the concentration of HSA in the solution was 3%.
  • the inhibitory effects of CuB HSA nanoparticles and CuB/HSA solution on the growth of Hep-2, A549 and HepG-2 tumor cells were investigated. The results are shown in Figure 8, FIG. 9, FIG. 100
  • Example 68 Comparison of the inhibitory effects of cucurbitacin B HSA nanoparticles and emulsions and liposomes on different tumor cells. Comparison of different doses of CuB preparations (cucurbitacin B/HSA solution, CuB HSA nanoparticles, CuB liposome, CuB) Emulsion) Inhibition of Hep-2, A549, HepG-2 tumor cell growth. The result is shown in Figure 11.
  • the CuB nanoparticles of 3% HSA showed the strongest inhibitory effect on Hep-2, A549 and HepG-2 cells; the CuB nanoparticles of 2% HSA inhibited Hep-2 cells more strongly than lipids. Body and emulsion; inhibition in A549 cells is lower than in liposomes; in HepG-2 cells, the effect is similar to emulsions and liposomes.
  • the CuB HSA solution was less potent in each group, but stronger than the liposome in Hep-2 cells.
  • CuB HSA nanoparticles showed a strong inhibitory effect on tumor cell growth in vitro.
  • HSA binds to the albumin binding protein (ABP) on the tumor cell membrane, making it easy to be taken up by tumor cells.
  • ABSP albumin binding protein
  • CuB HSA nanoparticles most of the drug is encapsulated inside the particles formed by the protein, and the drug is transported to the inside of the cell through the binding of HSA on the surface of the particle to the cell surface receptor; for the CuB HSA solution, only a part of CuB and HSA are formed.
  • Molecular conjugates, as well as a large number of drugs and HSA, are present in solution in a free molecular state.
  • a liver cancer H22 transplantation model was established in nude mice. Randomly, 10 rats in each group were "blank control group” and "cyclophosphamide positive control group (CTX 20 mg kg” 1 )' ⁇ " treatment group (high, medium and low dose groups, 0, 20 mg. Kg-', 0. lOmg kg” 1 , 0. 05 mg kg"') ' ⁇ "solution group” (non-nano-particle preparation).
  • the model control group was given saline injection.
  • the tumor was treated on the fourth day after modeling. Dosing is started at a certain volume. Administration time: 5, 7, 9, 11 and 13 days of administration. On the 14th day, the animals were sacrificed by the neck-cut method, the body weight was weighed, the tumor was dissected, and the electron balance was called the tumor weight.
  • the following formula calculates the tumor inhibition rate.
  • Tumor inhibition rate ( ° / .) (1 - mean tumor weight of the administration group, mean tumor weight of the group) X 100%,

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Description

一种给药系统及其制备方法和应用 技术领域
本发明涉及药物制剂领域, 更具体地说涉及一种给药系统及其制备方法。 背景技术
近年来, 伴随着药物治疗的快速发展, "用药最适化" 这一概念逐渐成为人 们非常关注的问题, 这主要是为了让药物治疗价值合理体现, 保证治疗用药的 安全性。
通过利用新的技术和方法调控药物在体内的动态变化, 以获得最好治疗效 果, 这就是给药系统(drug delivery system, DDS)。 利用给药系统的作用, 可 以改善药物的吸收、 降低药物的毒副作用、 提高药物在病变组织的分布量, 实 现增效减毒目的。
药剂学领域里, 一般将纳米粒的尺寸度界定在 1 ~ lOOOnm, 该范围包括了大 小在 lOOnm以上的亚微米粒子。 药剂学中的纳米粒可分为两类: 纳米载体和纳米 药物。 纳米载体系指溶解或分散有药物的各种纳米粒子, 如纳米脂质体、 聚合 物纳米囊、 纳米球、 聚合物胶束等。 纳米药物则是指直接将原料药加工成纳米 粒, 其实质是微粉化技术、 超细粉技术的进一步发展。
将纳米技术和纳米材料应用于药学领域产生了纳米给药系统, 包括纳米粒 ( Nanopar t i c 1 es , NP ), 纳米球 ( Nanospheres , NS ), 纳米囊 ( Nanocapsules , NC ), 纳米胶束 ( Nanomicel le, NM), 纳米月旨质体 ( Nano- 1 i posomes , NL ) 和纳 米乳剂 ( Nano-emulsion, NE ) 等。 其中 NP—般是指由天然或合成的高分子材料 制成的、 粒度在纳米级的 ( 1 ~ lOOOnm) 固态胶体微粒; NC是用高分子材料包成 的纳米级的囊泡, 有明显的囊壳相。 NP和 NC的制备方法主要有乳化聚合物法、 交联聚合法和界面缩聚法等。 近来用二亲性聚合物材料自动聚合 (被称为 自组 装)形成 "核-壳" 结构的纳米固体胶束引人注目, 胶束的亲水端向外而亲脂端 向内, 核内可装载各种药物、 酶和基因等。
早在 20世纪 70年代, 人类就将纳米粒作为药物载体, 30多年来在药剂学领 域得到广泛推广。 目前关于蛋白纳米制剂的研究比较多, 蛋白质具有无免疫原 性、 可生物降解、 生物相容性好等优点, 蛋白质类高分子均易于代谢, 并能以 相对非专一的形式包埋药物, 因此, 可用于生物降解纳米颗粒的制备。 此外, 蛋白分子中的大量功能团 (氨基和羧基等) 有利于将药物分子专属性地连接到 纳米颗粒表面, 并且适于制备缀合物。 通过表面修饰连接适当配体以达到受体 介导的主动靶向。 蛋白纳米制剂可以实现靶向输送药物的目的, 同时还可以降 低药物的毒副作用, 目前已经上巿的纳米制剂有诸如紫杉醇蛋白纳米粒。 例如, 中国发明申请 CN200380109606.9、 CN97199720.9 , CN20031023461. X, CN028110 17. X、 CN03108361. 7 , CN200610077006.4及发明专利 ZL 01119258.5
ZL03108361.7都是关于蛋白纳米制剂的。 但是, 这些发明申请或发明专利涉及 的产品和技术仅仅是釆用人血清白蛋白( HSA ), 而且存在所使用的有机溶剂(如 氯仿、 二氯甲烷等) 毒性大、 制备方法周期长及工艺繁瑣等缺点。 在专利申请 CN20031023461. X中, 实施例 3证明加入吐温 80 (1% ~ 10%)或其它表面活性剂 (F68\F127等)不能获得良好的分散体系,该分散体系中很-快析出药物晶体.; _实施 例 4证明单独采用吐温 80对药物的氯仿溶液进行乳化, 不能得到均匀分散体系, 分散液很快析出沉淀; 实施例 12证明单独釆用与水相溶溶剂不能得到理想的分 散系统, 粒度分布非常宽, 粒径达到几个微米, 从而强调特别排除与水相溶溶 剂的单独使用。
脂质体(liposomes)是一种定向药物载体, 属于第四代靶向给药系统 (targeting drug delivery system)的一种新剂型。 脂质体最初是由英国学者 Banghatn和 Standi sh将磷脂分散在水中进行电镜观察时发现的。 磷脂分散在 水中 自然形成多层囊泡, 每层均为脂质的双分子层; 囊泡中央和各层之间被水 相隔开, 双分子层厚度约为 4纳米。 它具有类似于细胞膜的结构, 构成双分子 层的类脂亲水性的头部形成膜的内表面, 而亲脂性的尾部则处于膜的中间。 正 由于脂质体的这种类膜结构使其能够携带各种亲水的、 疏水的和两亲的物质, 这些物质可被包入脂质体内部水相, 插入类脂双分子层或吸附连接在脂质体的 表面。 1971年英国 Rahman等人开始将脂质体作为药物载体包埋淀粉葡萄糖苷 酶治疗糖原沉积病首次获得成功, 人们在脂质体作为药物载体方面进行了大量 的研究, 在脂质体的制备、 稳定性以及靶向性等方面取得了重大进展。
目前用以制备脂质体的材料有天然磷脂 (蛋黄卵磷脂、 大豆卵磷脂)、 半 合成磷脂 (氢化磷脂) 与合成磷脂 (如二棕榈酰磷脂酰胆碱、 二硬脂酰磷脂酰 胆碱) 等。 脂质体的作用主要表现在以下几个方面: ①脂质体对机体无毒或毒 副作用小, 其双分子层与生物膜有较大的相似性以及组织相溶性, 易于被组织 吸收, 从而提高了药物的吸收利用率; ②脂质体包裹药物为物理过程, 不改变 药物分子结构, 不会破坏药物成分, 而包裹的药物则可以避免被体内水解酶所 破坏; ③药物被包裹后可以降低对机体特定部位的毒性、 减小使用量, 并具有 缓释和控释作用; ④与病毒载体不同, 脂质体在宿主体内可以生物降解, 无 免疫原性; ⑤在基因治疗上易于与基因复合, 有较高的靶向性, 可实现特定细 胞的治疗: ⑥材料廉价, 便于大量制备。
脂质体虽然有其突出的优点, 但也存在一些尚未解决的问题: 如 ( 1 ) 脂质 体药物的稳定性不高; ( 2 ) 脂质体包封率和载药量较低, 针对一种特定的药物 要制备一种较为理想的脂质体, 通常都要做大量的筛选工作; ( 3 ) 适合于脂质 体的药物也有限; ( 4 ) 在制备过程中一般要用大量的有毒溶剂; ( 5 ) 普通脂质 体主要集中于网状内皮细胞丰富的器官, 不能识别血管内皮上的小窝蛋白。
中国发明申请 CN200610037609.1、 CN02129204.3 CN02160028.7和发明专 利 ZL94191101.2、 ZL96190332.5中揭示了几种蛋白质与磷脂的组合物, 但这些 申请与本发明所要解决的技术问题和提供的技术方案有本质上的不同和区别, 它们主要是制备含有蛋白类药物的脂质体或者含磷脂的制剂, 即蛋白质是有效 活性成分, 在制备过程中, 要尽可能保证蛋白的活性, 是治疗主体, 并非是为 了达到特殊目的 (如靶向、 增加吸收), 以辅料成分出现而研发的系统。 如: 中 国发明申请 CN200610037609.1釆用反相蒸发法除去有毒有机溶剂 (氯仿) 与层 层吸附技术, 磷脂浓度与蛋白浓度均为 0.1mg/ml ~ lmg/ml, 粒度大于 1000纳米 (实施例 1中的粒度为 10微米、 实施例 2中的粒度为 20微米、 实施例 3中的粒度为 40微米), 工艺中也未釆用均质, 蛋白仅是简单的吸附, 蛋白浓度也很低, 蛋白 是治疗主体; 中国专利 ZL96190332.5是利用磷脂保护蛋白药物, 也与本发明的 目的不同; 而中国发明申请 CN02129204.3揭示的是利用振荡气泡压方法, 曲面 制备蛋白质与磷脂复合膜用于研究药物, 但由于方法复杂, 所制备的粒度大, 不具有作为药物载体进行静脉注射、 口服、 肺部等途径给药的价值。 此外, 在 2007 4月 12日公开的美国发明专利申请 US2007082838A1中,公开了一种多西紫 杉醇 (doce xel ) 蛋白纳米制剂, 其在实施例 6中否定了磷脂的价值。
另外, 在给药过程中存在的副作用主要有静脉刺激、 静脉炎、 疼痛、 骨髓 抑制、 神经毒性、 过敏、 炎症、 皮肤刺激等, 是在研究开发新的给药系统时必 须要考虑解决的重要问题。 发明内容
综上所述, 为有效解决上述问题, 本发明的目的旨在提供一种给药系统。 此外, 本发明还提供该给药系统的制备方法。
为实现上述发明目的, 本发明提供如下所述的技术方案。
本发明第一方面是提供一种给药系统, 其包括蛋白质-磷脂分散体, 其中 所述蛋白质-磷脂分散体中的蛋白质与磷脂的重量比为 1: 300-300: 1, 所述 蛋白质-磷脂分散体的粒径在 5nra~ lOOOnm之间。 在蛋白质-磷脂分散体中, 磷 脂表面或磷脂表面与内部包被(包覆)蛋白质层或者脂质体双分子层内外层包 被 (包覆) 蛋白质, 或在脂质体内水相形成蛋白纳米粒。 如上所述, 蛋白质与 磷脂的重量比为 1: 300-300: 1, 例如可以是 1: 200 - 200: 1, 也可以是 1: 100 - 100: 1, 还可以是 1: 50 ~ 50: 1和 1: 10- 10: 1 等。 蛋白质 -磷脂的粒 径优选在 20nm~ 500nm之间。 磷脂在水中分散可以形成脂质体, 也可以形成脂 质纳米球, 磷脂还可以与其它脂质成分组成脂质体 /脂质纳米球 (包括乳剂 )。 本发明分散体的纳米粒子表面与 /或内部包被 (包覆) 蛋白质层, 此蛋白层是 在经过超声, 更为重要的是在均质 (如微射流) 处理后形成二硫键, 与脂质体 /脂质纳米球 (包括乳剂 ) 共同组成稳定的药物载体, 从而提供一种新的给药 系统。
本发明人通过大量实验研究发现, 在现有技术的蛋白质纳米制剂基础上, 将蛋白与磷脂 (还可包括其它脂质成分) 结合, 令人欣喜地获得了一个新型的 给药系统。 基于磷脂的独特分散能力 /性质, 使得应用已久的蛋白质纳米制剂 技术变得更为可行、 可靠, 更为重要的是, 磷脂 (包括其它脂质成分) 的加入, 极大地扩大了蛋白纳米粒的载药范围。 也因为磷脂表面或磷脂表面与内部包被 (包覆) 了蛋白质层, 大大增加了脂质纳米球 (包括乳剂 ) /脂质体的稳定性。 此处的磷脂至少有两种作用, 一是分散, 二是溶解 (承载) 药物。 磷脂本身也 属于表面活性剂, 磷脂的加入, 使得在整个系统中可以加入其它各种表面活性 剂, 并且因为其它表面活性剂的加入, 又进一步大大增加磷脂的作用, 协助磷 脂载药, 进一步降低粒度, 也可以减少磷脂用量, 降低成本, 并能确保给药系 统的制备工艺简单、 适用。
与以往的蛋白纳米粒技术 (需要加入或者釆用有毒有机溶剂 ) 不同, 本发 明的给药系统可以不用有机溶剂来溶解、 分散药物。 可不采用有机溶剂的药物 包括中药或动植物挥发油或油脂, 如: 川芎油 、 当归油、 莪术油、 鸦胆子油、 生姜油、 连翘油、 大蒜油、 柴胡油 ·、 榄香烯、 艾叶油、 蓝桉油、 桉叶油、 桉叶 素、. 安息香油 、 巴豆油、 白兰花油 、 白兰净油 、 白兰叶油、 白柠檬油、 十倍白柠檬油、 五倍白柠檬油 、 白樟油 、 百里香油 、 柏木油、 薄荷素油、 . 薄荷油 、 薄荷脑、 苍术油、 茶树油、 橙叶油 、 茶叶油、 橙花油 、 沉香油、 陈皮油、 玳玳花油 、 玳玳叶油、 当归油、 丁香罗勒油、 丁香油 、 丁香花蕾 油、 冬青油 、 冬柠檬油、 杜鹃花油 、 杜香油 、 大蒜油、 芳樟油 、 佛手油、 甘松油、 广藿香油、 桂花净油、 桂油、 橄榄油 、 葛缕子油、 黑胡椒油、 红花 籽油、 黄蒿油、 红紫苏油 、 黄柏果油、 黄樟油、 茴香油 .、 茴香脑、 胡萝 卜籽 油、 花椒油、 金合欢净油、 坚果油、 椒样薄荷油、 荆芥油、 姜黄油、 苦杏仁油 、 卡南加油、 赖百当净油 、 辣椒精油 、 生姜油 、 柠檬油 、 桔子油 、 红桔油、 薏苡仁油、 留兰香油 、 连翘油 、 灵芝孢子油、 芦荟油 、 罗马甘菊油、 甜罗 勒油、 龙蒿油 、 玫瑰油、 野玫瑰净油、 墨红净油、 牡荆油、 没药油 、 迷迭香 油、 马刺花净油、 柠檬桉油、 柠檬草油、 柠檬油 、 牛至油、 甜牛至油、 楠叶 油、 葡萄籽油、 芹菜籽油、 青蒿油、 肉豆蔻油、 沙田柚花净油、 沙田柚花油、 山苍子脚油、 山苍子油、 山秋油、 杉木油、 蛇床子油、 生姜油 、 鼠尾草油、 树兰净油 、 松节油、 松籽油、 松针油 、 松果油、 松球油、 丝柏油、 山茶油、 檀香油、 甜橙油、 甜橙萜、 甜橙醛、 十倍甜橙油、 五倍甜橙油 、 五味子油、 甜杏仁油、 香根油、 香茅油、 香柠檬薄荷油、 香叶油、 香紫苏油、 小豆蔻油、 香柏油、 小茴香油、 小花茉莉净油、 辛夷油 、 血柏木油、 薰衣草油、 缬草油、 香薷精油、 雪松油、 烟花净油 、 芫妥籽油 、 椰子油、 野玫瑰油、 野菊花净油、 茵陈草油、 柚皮油、 鱼腥草油 、 鸢尾精油 、 月桂油、 圆柚油、 伊兰油、 月见 草油、 杂樟油、 杂薰衣草油、 栀子花油、 脂檀油、 紫苏籽油、 樟脑油或麝香油; 或挥发油的精制品, 如由莪术油纯化的榄香烯或其它挥发油纯化的榄香烯、 川 芎油纯化的藁本内酯或其它挥发油纯化的藁本内酯, 芹菜籽油纯化的丁苯酞 (也可以合成而得); 或包括两者或两者以上的挥发油及其精制品按任意比例 混合的混合物。 优选为大蒜油、 莪术油或榄香烯。 不采用有机溶剂的药物尚包 括天然或者生物工程技术提取、 合成的蛋白 /肽类药物, 如胰岛素、 胸腺肽、 白介素、 干扰素、 胸腺五肽或促红细胞生长素等; 不采用有机溶剂的药物也包 括与磷脂有良好溶解性能、 相互作用的药物, 如水飞蓟素 (水飞蓟宾) 等。
本发明的给药系统中所述的蛋白质 -磷脂分散体为纳米液体制剂或纳米固 体制剂。
本发明的给药系统中所述的蛋白质选自天然蛋白、 人工合成蛋白及其衍生 物。优选的方案是所述蛋白质选自但并不限于下述的人血白蛋白、牛血清蛋白、 卵清蛋白、 玉米蛋白、 血红蛋白及其衍生物或相关蛋白、 白蛋白衍生物 (如半 乳糖化白蛋白 ) 和修饰猪血白蛋白 (如 P E G修饰猪血白蛋白 ) 中的至少一种。
本发明的给药系统中所述的磷脂选自天然、 半合成、 全合成磷脂及其衍生 物。 优选的方案是所述磷脂选自但并不限于下述的大豆卵磷脂、 蛋黄卵磷脂、 卵磷脂酰甘油 ( EPG)、 多烯磷脂酰胆碱、 磷脂酸、 心肌磷脂、 鞘磷脂、 磷脂酸 丝氨酸、 磷脂酰肌醇、 磷脂酰乙醇胺、 氢化大豆卵磷脂 ( HSPC:)、 氢化蛋黄卵 磷脂 ( HEPC )、 全合成磷脂, 如 C3至 C30的各种合成磷脂, 如二硬脂酰磷脂酰 胆碱 ( DSPC ), 二棕榈酰磷脂酰胆碱 ( DPPC)、 二油酰磷脂酰胆碱 ( D0PC)、 二 肉豆蔻酰磷脂酰胆碱 ( DMPC)、 二月桂酰磷脂酰胆碱 ( DLPC)、 二硬脂酰磷脂酰 甘油 (钠盐 DSPG ), 二棕榈酰磷脂酰甘油 (钠盐 DPPG ), L- ex -二肉豆蔻酰磷 脂酰甘油 (钠盐 DMPG ), 二月桂酰磷脂酰甘油 ( DLPG)、 二硬脂酰磷脂酰乙醇胺 (DSPE) , 二棕榈酰磷脂酰乙醇胺(DPPE)、 二油酰磷脂酰乙醇胺(DOPE) , 二肉豆 蔻酰磷脂酰乙醇胺(DMPE)、 二月桂酰磷脂酰乙醇胺(DLPE)、 双二硬脂酰磷脂酰 甘油 (钠盐)、 双二棕榈酰磷脂酰甘油 (纳盐)、 双二肉豆蔻酰磷脂酰甘油 (钠 盐)、 双二月桂酰磷脂酰甘油、 二硬脂酰磷脂酰肌醇、 二棕榈酰磷脂酰肌醇、 二油酰磷脂酰肌醇、 二肉豆蔻酰磷脂酰肌醇、 二月桂酰磷脂酰肌醇、 棕榈酰油 酰磷脂酰胆碱、 棕榈酰亚油酰磷脂酰胆碱、 硬脂酰亚油酰磷脂酰胆碱、 硬脂酰 油酰磷脂酰胆碱、 硬脂酰花生四烯酰磷脂酰胆碱、 1, 2-二己酰卵磷脂、 1, 2-二 月桂酰卵磷脂、 1, 2-二月桂酰磷脂酰乙醇胺、 1, 2-十四酰基卵磷脂、 1, 2-十 四酰基磷脂酰乙醇胺、 1,2-十四烷基卵磷脂、 1, 2-二十五酰基卵磷脂、 1, 2- 二棕榈酰基卵磷脂、 1-棕榈酰 -2-油酰-卵磷脂、 1, 2-棕榈酰磷脂酰乙醇胺、 1 -棕榈酰- 2-亚油酰 -卵磷脂、 1, 2-十六烷基卵磷脂、 1,2-十六烷基磷脂酰乙醇 胺、 1, 2-十六烷基磷脂酰甲基乙醇胺、 1, 2-十六垸基磷脂酰二甲基乙醇胺、 1,2- 十七酰基卵磷脂、 1, 2-二硬脂酰基卵磷脂、 1, 2-二油酰基卵磷脂、 1, 2-二亚油 酰基卵磷脂、 1, 2-二亚麻酰基卵磷脂、 1, 2-二硬脂酰基磷脂酰乙醇胺、 1, 2- 十九酰基卵磷脂、 1, 2-花生酰基卵磷脂、 1, 2-花生四烯酰卵磷脂、 溶血卵磷脂、 溶血脑磷脂、 溶血磷脂酰肌醇、 溶血磷脂酰甘油酯、 溶血磷脂酰丝胺酸、 1, 2 - 二十二烷基磷脂酸、 1-十四酰 -2-羟基卵磷脂、 1, 2-十四酰磷脂酸、 1-棕榈 酰- 2-羟基卵磷脂、 1, 2-二棕榈酰磷脂酸、 1-棕榈酰 -2-油酰磷脂酸、 1, 2-二 十六烷基磷脂酸( 钠盐)、 1-硬脂酰 -2-羟基卵磷脂、 1-油酰 -2-羟基卵磷脂、 1-亚油酰 -2-羟基卵磷脂、 1, 2-二硬脂酰磷脂酸、 1, 2-二油酰磷脂酸、 1, 2 - 二十八烷基磷脂酸 (钠盐)、 1, 2-十四酰磷脂酰甘油 (钠盐)、 1, 2-二棕榈酰磷 脂酰甘油 (纳盐)、 1,2-二硬脂酰磷脂酰甘油 (纳盐)、 二椋榈酰磷脂酰胆碱、 二棕榈酰磷脂酰乙醇胺、 二椋榈酰磷脂酰甘油、 四肉豆蔻酰心磷脂、 四月桂酰 心磷脂、 四棕榈酰心磷脂、 和四油酰心磷脂中的至少一种。
由于磷脂在水中或者油相中分散能力以及磷脂溶解药物能力有限, 为更好 地制备含磷脂相或增大药物的溶解量, 本发明的给药系统还可以包括有机溶 剂。 与以往公开的技术方案不同, 本发明人选用的有机溶剂毒性大大降低, 这 对药物毒性降低更为有利,也更利于环保、更便于做好生产中工人的劳动保护; 所述有机溶剂还可以是与水相溶的溶剂。 本发明优选的方案所釆用的有机溶剂 选自 乙醇、 甲醇、 丙醇、 丁醇 (包括正丁醇、 叔丁醇)、 丙酮、 甲基吡咯烷酮 ( N-甲基吡咯烷酮或 1-甲基 -2-吡咯垸酮)、 乙酸乙酯和异丙醚中的至少一种; 更优选的方案是所述有机溶剂为乙醇或叔丁醇。 为 了增加磷脂溶解药物的范围以及能够加快磷脂相的分散速度, 本发明的 给药系统也可以加入适宜的油(脂)类物质或者其它脂质类物质, 其与磷脂的重 量比为 1 : 0. 1 ~ 1: 1 0。 本发明对不同油相对粒度的影响和不同量 MCT所制备 纳米粒的冻融稳定性做了考察。 优选的方案是所述的油类物质或其它脂质类物 质选自 中链甘油三酯( MCT )、 结构油(结构脂肪, structured-triglyceride )、 生育酚、 醋酸生育酚、 油酸、 油酸乙酯、 大豆油、 红花油、 橄榄油、 辛酸及其酯类、 葵 酸及其酯类、 月桂酸及其酯类、 棕榈酸及其酯类、 亚油酸及其酯类、 亚麻油酸 及其酯类、 二十二碳六烯酸及其酯类、 深海鱼油及植物挥发油中的至少一种。 更优选的方案是油类物质选自 MCT、 油酸及其酯类或结构油 (结构脂肪)。
为 了提高制剂的稳定性, 在制剂中还可以加入抗氧剂 (包括水溶性与油溶 性抗氧剂, 还可进一步包括惰性气体)。 优选方案中水溶性抗氧剂选自维生素 C 及其酯类、 亚硫酸钠、 亚硫酸氢钠、 焦亚硫酸钠、 硫代硫酸钠、 硫辛酸、 胱氨 酸、 半胱氨酸、 组氨酸和甘氨酸中的至少一种; 优选方案中油溶性抗氧剂选自 BHA、 BHT、 生育酚或硫辛酸等。
在本发明具体实施方式中的一个优选实施例中油类选用了 MCT, 其与磷脂 的重量比为 1 : 1 ; 另一个优选实施例中油类选用了结构油, 其与磷脂重量比为 1: 1 · 7。
本发明的给药系统还可以包括胆固醇及其衍生物 (如胆固醇半琥珀酸酯) 和 /或谷甾醇等其它脂质。 制备磷脂相时, 加入胆固醇和 /或谷甾醇作为脂质体 或乳剂的附加剂成分, 这些脂质可以用来协助磷脂负载亲脂性物质。
在本发明具体实施方式的一个优选实施例中加入了胆固醇。
本发明的给药系统还可以包括配体和 /或抗体, 其中所述配体选自半乳糖 衍生物、 转铁蛋白衍生物、 叶酸及其衍生物、 氨基葡萄糖衍生物或各种 RGD及 其衍生物等; 所述的抗体选自各种鼠源、 人源、 重组鼠源或重组人源的抗体。 优选的配体选自半乳糖配体、 转铁蛋白、 叶酸或 RGD (三肽结构精 -甘-天冬氨 酸) 及其衍生物。 因为本发明的给药系统中含有磷脂或其它脂质, 从而可以利 用这些脂质成分来负载一些含有亲脂性基团的配体、 抗体及其衍生物, 实现主 动靶向递药的目的。
在本发明具体实施方式中的一个优选实施例中加入了发明人为本发明人 的申请 CN2 006 1 01 2 1 7 94. 2 中所述的半乳糖胆固醇衍生物。
为了实现特殊靶向或者实现细胞融合、 提高基因转染效率, 本发明的给药 系统还可以包括荷正电性物质(阳离子物质), 如脂肪胺、 多聚胺、 TC- Cho l (多 聚胺阳离子脂质)、 DC- Cho 阳离子心磷脂、 壳聚糖或十八胺 (氢化牛脂基 伯胺) 等。
为了增加药物或者化合物的稳定性, 保证制剂在合理的 PH 值范围内, 本 发明的给药系统还可以包括 pH调节剂。 其中所述的 pH调节剂选自有机酸、 有 机碱或无机酸、 无机碱。 如柠檬酸、 乳酸、 富马酸、 酒石酸、 乙酸、 葡萄糖酸、 乳糖酸、 山梨酸、 琥珀酸、 马来酸、 抗坏血酸、 草酸、 甲酸、 苯磺酸、 苯甲酸、 谷氨酸、 天冬氨酸、 盐酸、 硫酸、 磷酸、 硝酸、 氢氧化钠、 精氨酸、 赖氨酸等 中的至少一种。 在本发明具体实施方式中的一个优选实施例中加入了柠檬酸。
本发明第二方面是提供上述给药系统的制备方法, 其包括以下几个步骤: ( 1 ) 含磷脂相的制备 (磷脂相的获得包括以下几种情况: 直接使用磷脂、 磷 脂与油等成分混合溶解、 或磷脂与其它成分溶于有机溶剂中 ); ( 2 ) 含蛋白质 水相的制备;( 3 )将含磷脂相与含蛋白质水相混合,于温度 0 ~ 60'C、压力 400 - 40000 psi ( pound/square inch, 磅 /平方英寸) 条件下, 进行任选的挤出步 骤, 然后进行均质化处理。 当有必要进行挤出步骤时, 可采用挤出仪进行挤出, 以获得所需粒度的脂质体, 并能降低循环次数, 挤出步骤的采用尤其适用于热 敏性和压力敏感性活性物质的载入。 挤出步骤之后, 再进行均质处理。
与现有技术不同, 本发明的含磷脂相的制备中, 可不加入有机溶剂, 而釆 取直接将药物与磷脂、 油脂混合溶解的方法。
本发明制备方法中所述的含蛋白质水相选用 0. 005-50% ( w/v )的蛋白质水 溶液; 优选为 0. 05%~30%; 再优选为 0. 1%~10%。 本发明对含 1 ~ 5%HSA (人血 清白蛋白 )水相对粒径的影响及不同浓度 H-SA所制备纳米粒的冻融稳定性做了 进一步的阐述。 结果见附图 1和对应的实施例。 本发明制备方法中所述的蛋白 质选自天然蛋白质或人工合成蛋白质及其衍生物。 优选的方案是所述的蛋白质 选自人血白蛋白、 牛血清蛋白、 卵清蛋白、 血红蛋白及其衍生物、 白蛋白衍生 物 (如半乳糖化白蛋白 ) 和修饰猪血白蛋白 (如 PEG修饰猪血白蛋白 ) 中至少 一种。
本发明含磷脂相的制备中所述的磷脂选自天然、 半合成、 全合成磷脂及其 衍生物。 优选的方案是所述的磷脂选自但不限于下述的大豆卵磷脂、 蛋黄卵磷 脂、 卵磷脂酰甘油 ( EPG)、 磷脂酸、 心肌磷脂、 鞘磷脂、 磷脂酸丝氨酸、 磷脂 酰肌醇、 磷脂酰乙醇胺、 氢化大豆卵磷脂、 氢化蛋黄卵磷脂、 二硬脂酰磷脂酰 胆碱, 二棕榈酰磷脂酰胆碱、 二油酰磷脂酰胆碱、 二肉豆蔻酰磷脂酰胆碱、 二 月桂酰磷脂酰胆碱、 二硬脂酰磷脂酰甘油及其纳盐、 二棕榈酰磷脂酰甘油及其 钠盐、 L-cc -二肉豆蔻酰磷脂酰甘油及其钠盐、 二月桂酰磷脂酰甘油、 二硬脂 酰磷脂酰乙醇胺、 二棕榈酰磷脂酰乙醇胺、 二油酰磷脂酰乙醇胺、 二肉豆蔻酰 磷脂酰乙醇胺、 二月桂酰磷脂酰乙醇胺、 双二硬脂酰磷脂酰甘油及其钠盐、 双 二棕榈酰磷脂酰甘油及其钠盐、 双二肉豆蔻酰磷脂酰甘油及其钠盐、 双二月桂 酰磷脂酰甘油、 二硬脂酰磷脂酰肌醇、 二棕榈酰磷脂酰肌醇、 二油酰磷脂酰肌 醇、 二肉豆蔻酰磷脂酰肌醇、 二月桂酰磷脂酰肌醇、 棕榈酰油酰磷脂酰胆碱、 棕榈酰亚油酰磷脂酰胆碱、硬脂酰亚油酰磷脂酰胆碱、硬脂酰油酰磷脂酰胆碱、 硬脂酰花生四烯酰磷脂酰胆碱、 DSPE-PEG、 DPPE- PEG、 DMPE-PEG 和 DLPE-PEG 中至少一种, 其中所述 DSPE-PEG, DPPE - PEG、 DMPE_PEG、 DLPE-PEG 中 PEG 的 分子量为 100 - 10000。 也可包括其它类别的 PEG 衍生物, 如: PEG- THS、 PEG - CHS、 PEG-CHM, 其结构式如图 2所示。 本发明所述的均质化处理, 优选的方案是高压均质化或微射流均质化。 其中高压均质化处理过程为: 将粗制乳剂在 1, 000 - 40, 000 psi 的压力 下高压均化并再循环 1-20个周期以形成理想的乳剂。 优选的压力是 2, 000 ~
20, 000 psi , 更优选的压力为 8, 000 ~ 16, 000 psi。 粗制乳剂优选再循环 1-15 个周期, 更优选再循环 1 ~ 5个周期。
本发明人在实施例中指明了不采用探头超声法制备纳米粒制剂的原因, 同 时也验证了磷脂的重要性。 这与美国发明申请 US2007082838A1 中否定了磷脂 的作用是截然不同的。 也证明磷脂中加入其它表面活性剂或者脂质类物质的合 理性, 这与中国专利申请 CN20031023461. X中否定了表面活性剂的作用也是截 然不同的。
在本发明具体实施方式的优选实施例中采用 了高压均质化处理或微射流 均质化处理; 也可以先进行挤出, 控制任意所需粒度, 然后进行均质处理。
本发明的制备方法还可以包括冷冻干燥或喷雾干燥,所得到的块状物或粉 末可以进一步制备成其它所需的制剂类型。 其中冷冻干燥或者喷雾干燥使用的 赋形剂选自蔗糖、 乳糖、 葡萄糖、 甘露醇、 右旋糖苷、 海藻糖、 木糖醇、 麦芽 糖、 果糖、 蛋白、 壳聚糖、 甘氨酸、 枸橼酸和氯化钠中的至少一种。
在制剂的冷冻干燥过程中, 冻干保护剂 (冻干赋形剂 ) 的选择较为重要。 它不仅起到冻干制剂的骨架作用, 而且能促进微粒制剂再分散。
冷冻干燥分为两个阶段: 升华干燥 (第一阶段干燥) 和解析干燥 (第二阶 段干燥)。 升华干燥的时间长短与产品的品种及分装的厚度有关。 第一阶段干燥 除去全部水分的 95 %左右。 第一阶段干燥完成时可见到升华交界面逐步前进到 容器底部并消失。 第二阶段干燥主要是除去部分结晶水和吸附于固体物质晶格 间隙或以氢键方式结合在一些极性基团上的结合水, 这部分结合水吸附能高, 必须提供足够的能量 (足够的温度和真空度) 才能将其解吸出来。
实验发现, 如果第一阶段干燥时间太短, 冰晶升华不完全, 影响冻干产品 的外观。 升华干燥的时间达到 12 小时, 然后继续解析干燥 2-3小时, 即可得 到外观平整、 质地疏松的冻干制品, 加水后能迅速分散均匀。
经过上述考察, 最终确定的冻干工艺如下: - 74°C预冻 8小时 —— 35°C 抽真空 20分钟, 最后真空度达到约 15 Pa ► 温度升高至- 20°C , 保持 12小 时 ( 此阶段除去样品中的大部分水分) _►温度升高至 10°C , 保持 2 ~ 3小时 (此阶段除去样品中残留的水分)。 + 本发明人在优选的实施例中对冻干保护剂的使用及联合使用均做了考察。 具体结果见对应实施例的说明内容。
在本发明具体实施方式的一个优选实施例中包括冷冻干燥, 冷冻干燥选用 蔗糖、 海藻糖、 乳糖、 木糖醇、 麦芽糖等作为冻干赋形剂。
本发明的制备方法还可以包括过滤除菌。 本发明所得到的纳米粒、 乳剂, 非常容易经过微孔滤膜过滤除菌。 但是, 美国发明专利申请 US2007082838A1, 在制备多西他赛白蛋白纳米粒时, 由于制备的粒度不均匀(本发明人反复证明, 此专利申请所述的方法存在此问题), 需要釆用分别经过 Ι μ π 0. 8 μ πι、 0. 6 μ m , 0. 4 μ m , 0. 2 μ m微孔滤膜过滤, 逐步除去大粒子, 最终实现 0. 2 μ ηι除菌 过滤目的。 该美国专利申请工艺不仅存在操作复杂、 费时, 而且会造成药物含 量的损失, 不同生产批次之间的波动, 不重现等一系列问题。
在本发明具体实施方式的优选实施例中包括 0. 2 μ m微孔滤膜过滤除菌。 本发明提供的给药系统能用于降低药物至少一种副作用, 所述的副作用包 括静脉刺激、 静脉炎、 疼痛、 骨髓抑制、 神经毒性、 过敏、 炎症、 皮肤刺激等。
本发明的给药系统可以实现注射(包括静脉、 动脉、 关节腔、 皮下、 皮内、 肌肉注射等)、 口服 (包括舌下、 口腔粘膜)、 腔道 (包括眼睛、 鼻腔、 耳道、 气管、 肺部、 直肠、 阴道、 尿道等栓剂 )、 皮肤等途径给药。 适于阴道给药的 制剂可以为阴道栓剂、 棉塞、 乳膏剂、 凝胶剂、 糊剂、 泡沫或喷雾剂制剂, 其 除了活性成分以外还含有诸如本领域已知的适当载体。
本发明给药系统中可以设计的药物 (广义上的)包括药理活性物质及其药 学上可接受的赋形剂。 所述的药理活性物质包括药物 (狭义上的)、 诊断试剂 及营养物质, 其中药物选自抗癌药物、 麻醉类药物、 心血管类药物、 抗高血压 药、 抗炎药、 抗关节炎药、 抗喘药、 镇痛药、 免疫抑制剂、 抗真菌剂、 抗心率 失常药、 抗生素、 激素类药物等。
本发明给药系统中设计的药物选自并不限于下面所列举的物质: 镇痛剂 / 解热剂 (如: 阿斯匹林、 对乙酰氨基酚、 布洛芬、 萘普生钠、 盐酸叔丁啡、 盐 酸丙氧酚、 萘磺酸丙氧酚、 盐酸哌替啶、 盐酸二氢吗啡酮、 硫酸吗啡、 盐酸羟 考酮、 磷酸可待因、 酒石酸二氢可待因、 盐酸镇痛新、 重酒石酸二氢可待因酮、 酒石酸左啡诺、 二氟尼酸、 水杨酸三乙醇胺、 盐酸纳布啡、 甲芬那酸、 环丁吗 喃醇酒石酸盐、 水杨酸胆碱、 布他比妥、 柠檬酸苄苯醇胺、 柠檬酸苯海拉明、 甲氧异丁嗪、 盐酸桂麻黄碱、 眠尔通等); 麻醉剂 (如: 环丙烷、 恩氟烷、 氟 烷、 异氟垸、 甲氧氟烷、 一氧化氮、 普鲁泊福 (丙酚) 等); 平喘药 (如: 氮 卓司汀、 酮替芬、 Traxanox等); 抗生素 (如: 新霉素、 链霉素、 氯霉素、 头 孢菌素、 氨比西林、 青霉素、 四环素等); 抗抑郁药 (如: 甲苯噁唑辛、 奥昔 哌汀、 盐酸多虑平、 阿莫沙平、 盐酸曲唑酮、 盐酸阿米替林、 麦普替林盐酸盐、 硫酸苯乙肼、 盐酸去甲丙咪嗪、 盐酸去甲替林、 硫酸反苯环丙胺、 盐酸氟西汀、 盐酸多虑平、 盐酸米帕明、 双经水杨酸米帕明、 去甲替林、 盐酸阿米替林、 异 唑肼、 盐酸去甲丙咪嗪、 马来酸三甲丙咪嗪、 盐酸普罗替林等); 抗糖尿病药 (如: 双胍类、 激素、 硫酰脲衍生物类等); 抗真菌药 (如: 灰黄霉素、 酮康 唑、 两性霉素 B、 制霉菌素、 杀念菌素等); 抗高血压药 (如: 普萘洛尔、 普罗 帕酮、 烯丙氧心安、 硝苯吡啶、 利血平、 樟脑磺酸咪噻芬、 盐酸酚苄明、 帕吉 林盐酸盐、 脱甲氧利血平、 二氮嗪、 硫酸胍乙啶、 长压定、 萝芙木碱、 硝普钠、 缓脉灵、 蛇根混合碱、 甲磺酸酚妥拉明、 利血平等); 抗炎药 (如: [非甾体类] 消炎痛、 萘普生、 布洛芬、 r am i f e n a z o n e、 炎痛喜康; [类固醇类]皮质酮、 地 塞米松、 地塞米松棕榈酸酯、 氟噁米松、 氢化可的松、 强的松龙、 强的松等); 抗肿瘤药 (如: 蒽环类抗生素, 盐酸阿霉素、 环磷酰胺、 放线菌素、 博来霉素、 正定霉素、 阿霉素、 表阿霉素、 丝裂霉素、 甲氨喋呤、 5-氟尿嘧啶、 铂类药物, 如卡铂、 草酸铂、 依铂、 乙酸铂、 顺铂、 卡氮芥 ( BCNU)、 甲基 -CCNU、 鬼臼乙 叉甙、依托泊苷、干扰素、喜树碱及各种其衍生物、苯芥胆甾醇、紫杉酚( Taxo l ) 及其衍生物, 多西他赛及其衍生物, 长春碱、 长春新碱、 长春瑞宾及其衍生物、 三苯氧胺、 哌酰硫垸、 四环三萜类化合物、 等); 抗焦虑药 (如: 氯羟去甲安 定、 盐酸丁螺环酮、 环丙二氮卓、 盐酸利眠宁、 去甲羟安定、 安定羧酸钾盐、 安定、 双羟萘酸羟嗪、 盐酸羟嗪、 阿普唑仑、 氟哌利多、 哈拉西泮、 芬那露、 丹曲林等);免疫抑制剂(如:环孢菌素、硫唑嘌呤、咪唑立宾、 FK5 06 ( t a c ro l i mu s ) 等), 抗偏头痛药 (如: 酒石酸麦角胺、 盐酸萘心安、 半乳糖二酸异美汀、 二 氯醛安替比林等); 镇静剂 /催眠剂 (如: 巴比妥类 [如戊巴比妥、 戊巴比妥纳、 司 可 巴 比妥纳 ] ; 苯二氮卓类 [如氟西泮盐酸盐、 三唑仑、 托马 西泮 ( t oma zepa rm) , 咪达唑仑盐酸盐等] ); 抗心绞痛药 (如: β -肾上腺能拮抗剂; 钙通道阻滞剂 (如: 硝苯吡啶、 盐酸硫氮卓酮等); 硝酸盐类 〔如: 硝酸甘油、 硝酸异山梨醇酯、 硝酸戊四醇酯、 丁四硝酯等〕); 抗精神病药 (如: 氟哌啶醇、 琥珀酸洛沙平、 盐酸洛沙平、 硫利哒嗪、 盐酸甲硫哒嗪、 替沃噻吨、 盐酸氟奋 乃静、 氟奋乃静癸酸酯、 氟奋乃静庚酸酯、 盐酸三氟拉嗪、 盐酸氯丙嗪、 奋乃 静、 柠檬酸锂、 丙氯拉嗪等); 抗躁狂药 (如: 碳酸锂); 抗心律失常药 (如: 溴苄铵甲苯磺酸盐、 艾司洛尔盐酸盐、 盐酸维拉帕米、 乙胺碘呋酮、 恩卡胺盐 酸盐、 地高辛、 洋地黄毒甙、 盐酸美西律、 吡二丙胺磷酸盐、 盐酸普鲁卡因胺、 硫酸奎尼丁、 葡萄糖酸奎尼丁、 奎尼丁聚半乳糖醛酸盐、 醋酸氟卡胺、 盐酸妥 卡胺、 盐酸利多卡因等); 抗关节炎药 (如: 保泰松、 舒林酸、 青霉胺、 水杨 酰水杨酸、 炎痛喜康、 硫唑嘌呤、 消炎痛、 甲氯灭酸钠、 硫代苹果酸金钠、 苯 酮苯丙酸、 金诺芬、 硫代葡萄糖金、 痛灭定等); 抗痛风药 (如: 秋水仙碱、 别嘌醇等); 抗凝剂 (如: 肝素、 肝素钠、 华法令钠等); 血栓溶解剂 (如: 尿 激酶、 链激酶、 重组纤溶酶原激活剂等)、 阿加曲班; 抗纤溶剂 (如氨基己酸); 血液流变学药物 (如己酮可可碱); 抗血小板药物 (如: 阿斯匹林、 安匹林、 a s c r i p t i n等); 抗惊厥药 (如: 丙戊酸、 二丙戊酸钠、 苯妥英、 苯妥英钠、 氯 硝安定、 去氧苯比妥、 苯巴比妥、 苯巴比妥钠、 卡马西平、 异戊巴比妥钠、 甲 琥胺、 甲基巴比妥、 甲基苯巴比妥、 美芬妥英、 苯琥胺、 对甲双酮、 乙苯妥英、 苯乙酰脲、 司可巴比妥钠、 氯氣卓二钾、 三甲双酮等); 抗巴金森药物 (如: 乙酰胺等); 抗组胺药 /止痒剂 (如: 盐酸羟嗪、 盐酸苯海拉明、 扑尔敏、 马来 酸溴苯吡胺、 盐酸赛庚啶、 特非那丁、 富马酸氯苯苄咯、 盐酸吡咯胺、 马来酸 卡比沙明、 盐酸二苯拉林、 酒石酸苯茚胺、 马来酸哌吡庚啶、 苄吡二胺、 马来 酸右旋氯苯吡胺、 盐酸甲地嗪、 酒石酸异丁嗪等); 用于钙调节的药物 (如: 降血钙素、 甲状旁腺素等); 抗菌素 (如: 硫酸丁胺卡那霉素、 氨曲南、 氯霉 素、 棕搁酸氯霉素、 琥珀酸氯霉素钠、 盐酸环丙沙星、 盐酸克林霉素、 棕搁酸 克林霉素、 磷酸克林霉素、 甲硝唑、 盐酸甲硝唑、 硫酸庆大霉素、 盐酸林可霉 素、 硫酸妥布拉霉素、 盐酸万古霉素、 硫酸多粘菌素 B、 多粘菌素 E 甲磺酸钠、 硫酸多粘菌素 E等); 抗病毒药物 (如: Y干扰素、 叠氮胸苷、 盐酸金刚垸胺、 利巴韦林、 无环鸟苷、 恩替卡韦等); 抗微生物药物 (如: 头孢菌素 (如: 头 孢唑啉钠、 头孢拉定、 头孢克罗、 头孢匹林钠、 头孢唑肟钠、 头孢哌酮钠、 头 孢替坦二钠、 头饱呋肟酯、 头孢噻肟钠、 一水合头孢羟氨苄、 头孢他啶、 头孢 氨苄、 头孢噻吩钠、 盐酸一水合头孢氨苄、 头孢孟多钠、 头孢西丁钠、 头孢尼 西钠、 头孢雷特、 头孢三嗪钠、 头孢他啶、 头孢羟氨苄、 头孢拉定、 头孢呋新 钠等); 青霉素类 (如: 氨苄西林、 阿莫西林、 苄星青霉素 G、 邻氯青霉素、 氨 苄青霉素钠、 青霉素 G钾、 青霉素 V钾、 氧哌嗪青霉素钠、 苯唑青霉素钠、 盐 酸氨节青霉素碳酯、 邻氯青霉素钠、 替卡西林钠、 阿洛西林钠、 羧茚青霉素钠 卡茚西林、 青霉素 G钾、 普鲁卡因青霉素 0、 甲氧西林钠、 新青霉素 III钠等), 红霉素类 (如: 琥乙红霉素、 红霉素、 无味红霉素、 乳糖醛酸红霉素、 红霉素 硬脂酸酯、 琥乙红霉素等), 四环素类 (如: 盐酸四环素、 盐酸强力霉素、 盐 酸二甲胺四环素等), 等); 抗感染剂 (如: GM- CSF) ; 支气管扩张剂 (如: 拟 交感神经类 (如: 盐酸肾上腺素、 硫酸异丙喘宁、 硫酸特布他林、 乙基异丙肾 上腺素、 甲磺酸乙基异丙贤上腺素、 盐酸乙基异丙肾上腺素、 硫酸舒喘灵、 舒 喘灵、 甲磺酸双甲苯苄醇、 盐酸异丙肾上腺素、 硫酸特布他林、 酒石酸肾上腺 素、 硫酸异丙喘宁、 肾上腺素、 酒石酸肾上腺素); 抗胆碱能药 (如: 溴化异 丙托品 ); 黄嘌呤类 (如: 氨茶碱、 喘定、 硫酸异丙喘宁、 氨茶碱); 肥大细胞 稳定剂 (如: 色甘酸钠),; 吸入皮质激素类 (如: 氟尼缩松倍氯米松、 一水合 二丙酸倍氯米松), 舒喘灵, 二丙酸倍氯米松 ( BDP), 溴化异丙托品, 喘乐宁, 酮替芬, 沙米特罗, x i na f oa t e , 硫酸特布他林, 去炎松, 氨茶碱, 萘多罗米 钠, 硫酸异丙喘宁, 舒'喘灵, 氟尼缩松等); 激素 (如: 雄性激素类 (如: 达 那唑, 环戊丙酸睾酮, 氟甲睾酮, 乙基睾酮, 庚酸睾酮, 甲基睾酮, 氟甲睾酮, 环戊丙酸睾酮), 雌激素类 (如: 雌二醇, 雌酮, 结合雌激素), 孕酮类 (如: 醋酸甲氧孕酮, 醋炔诺酮), 皮质类固醇类 (如: 去炎松, 倍他米松, 磷酸倍 他米松钠, 地塞米松, 磷酸地塞米松纳, 醋酸地塞米松, 强的松, 甲基强的松 龙悬液, 去炎松缩酮, 甲基强的松龙, 磷酸强的松龙钠, 琥珀酸甲基强的松龙 钠, 琥珀酸氢化考的松钠, 琥珀酸甲基强的松龙钠, 六氯化曲安缩松, 氢化可 的松, 环戊丙酸氢化可的松, 强的松龙, 醋酸氟化可的松, 醋酸帕拉米松, 强 的松龙叔丁乙酯,强的松龙醋酸酯,强的松龙磷酸纳,琥珀酸氢化可的松钠等), 甲状腺激素类 (如: 左旋甲状腺素钠等) ,等); 降糖药物 (如: 人胰岛素, 纯 化牛胰岛素, 纯化猪胰岛素, 优降糖, 氯磺丙服, 格列吡嗪, 曱磺丁脲, 甲磺 氮卓脲等); 降脂药物 (如: 安妥明, 右旋甲状腺素钠, 丙丁酚, 美降脂, 烟 酸等); 蛋白质 (如: 脱氧核糖核酸酶, 藻酸酶, 超氧化歧化酶, 脂肪酶等); 核酸 (如: 编码任何治疗用蛋白质的正义或反义核酸, 包括这里提到的任何蛋 白质等); 用于刺激红细胞生成的药物 (如: 红细胞生成素); 抗溃疡 /抗返流 药物 (如: 法莫替丁, 甲氰咪呱, 盐酸雷尼替丁等); 抗恶心 /止吐药物 (如: 盐酸美克洛嗪, 大麻隆, 丙氯拉嗪, 承暈宁, 盐酸异丙嗪, 硫乙哌丙嗪, 东莨 菪碱等); 脂溶性维生素 (如: 维生素 A, D, E , K 等); 钙三醇; 还有其它药 物如: 米托坦, 亚硝脲盐, 甲基羟基玫瑰树碱等。 尚可以包括维替泊芬、 蟾酥 毒基、 蟾毒灵(buf a l i n)、 雷公藤内酯醇、 西多福韦、 双环醇及其衍生物、 联 苯双酯及其衍生物、 甘草酸、 苦参素、 氨氯地平、 左甲状腺素钠、 甲磺酸二氢 麦角碱、 硝酸布康唑、 美洛昔康、 鲁比特康、 培美曲塞、 单唾液酸四己糖神经 节苷脂 GM1、 葛根素、 吉西他滨、 石杉碱甲、 草乌甲素、 力达霉素、 海参提取 物、 哈士蟆等。
已有文献将 HSA 作为乳化剂, 对氯仿等油相进行乳化, 在高剪切力作用 下, 使得 HSA 的蛋白质通过二硫键交联而形成蛋白纳米粒, 现有技术的问题 是很难制备稳定且粒度较小的纳米粒。
在本发明具体实施方式的优选实施例中分别选用了葫芦素、多西他赛、 10- 羟基喜树碱、 两性霉素 B、 丙泊酚、 恩替卡维和紫杉醇等药物。
另外, 尚可以利用蛋白质-磷脂制剂中存在的脂质体结构而采用硫酸铵梯 度、 pH梯度、 离子梯度等手段装载药物, 优选的药物可选自阿霉素、 表阿霉素、 柔红霉素、 拓扑替康、 米托蒽醌、 长春新碱或长春瑞宾等。
本发明的给药系统可以以任何适当的方式用于人体或用于动物。 优选的方 案是将包含本发明给药系统的药物组合物通过静脉内给药、 动脉内给药、 肌内 给药、 口服给药、 吸入肺内给药、 气管内给药、 皮下给药、 眼内给药、 膀胱内 给药或经皮给药。
由于釆用中国专利申请 CN20031023461. X 中报道的方法存在问题, 我们以 最大的努力, 均不能制备出文献所指的蛋白纳米粒。 此外, 现有工艺中采用了 大量的有机溶媒一一氯仿、 二氯甲垸等, 其毒性大, 考虑到环境保护问题及工 作人员的劳保问题,本发明人建立的技术平台,可以大大减少有毒溶剂的使用, 甚至不采用有毒溶剂。 另外, 由于在发明中釆用了磷脂, 从而使得蛋白纳米粒 的载药范围大大扩大, 并且粒度也降低了, 可以采用微孔滤膜过滤除菌。 也因 为在处方中加入了磷脂或其它脂质, 从而可以利用这些脂质成分来负载一些含 有亲脂性基团的配体、 抗体及其衍生物, 实现主动靶向递药目的。 我们通过长 期的大量试验, 发现将磷脂与蛋白结合, 可以得到令人惊奇的结果, 所制备的 纳米制剂的稳定性大大提高, 粒度可以随意调整, 更为重要的是, 可以通过各 种方法将各种配体、 抗体等主动识别头基插入纳米制剂中, 得到更为有价值和 意义的药物递送系统。
特别是对于肿瘤, HSA能够与血管内皮细胞膜上的白蛋白受体 Gp60结合, 启动细胞窖 ( caveolae ) 介导的白蛋白转运, 携带药物透过血管内皮。 在肿瘤 组织中 SPRAC ( Secreted Protein Acidic and Rich in Cystein, 富含半胱氨 酸的酸性分泌蛋白 )表达通常会增强。 SPRAC是一种非结构性的细胞骨架蛋白, 在组织的塑造和胚胎发育以及癌细胞的入侵和转移过程中, 与细胞基质的相互 作用有关。 SPRAC与 Gp60具有同源序列, 也能够与白蛋白结合, 这样就使 HSA 纳米粒容易在肿瘤组织中蓄积, 形成药物储库, 提高了药物杀伤肿瘤细胞的靶 向性。 体外细胞培养试验也表明 HSA纳米粒提高了药物与肿瘤细胞的亲和力。
此外, 本发明给药系统在磷脂的帮助下, 可以单独使用与水相分散, 可以 不需要溶剂的加入, 很容易实现纳米分散。
在本发明具体实施方式的优选实施例中分别选用 了人血白蛋白 ( HSA)、 牛 血清蛋白、 猪血蛋白、 鸡蛋清蛋白、 玉米蛋白和 PEG猪血蛋白等。
在本发明具体实施方式中的一个优选实施例中选用了蛋黄卵磷脂 ( EPC ); 在另一个优选实施例中选用了大豆卵磷脂 ( SPC ); 在另一个优选实施例中选用 了二肉豆蔻酰磷脂酰胆碱 ( DMPC ) 和二肉豆蔻酰磷脂酰甘油 ( DMPG ); 在另一 个优选实施例中选用了 HSPC和 DSPG; 在另一个优选实施例中选用了卵磷脂和 D0PC ; 在另一个优选实施例中选用了卵磷脂; 在另一个优选实施例中选用 了二 肉豆蔻酰磷脂酰甘油 ( DMPG ); 在另一个优选实施例中选用 了 TPGS , PEG-CHS 等。
在本发明具体实施方式中的一个优选实施例中选用了乙醇; 另一个优选实 施例中选用 了 甲基吡咯烷酮或者甲基吡咯烷酮 /甲醇混合溶剂; 另一个优选实 施例中选用 了 甲醇; 另一个优选实施例中选用了叔丁醇; 另一个优选实施例中 选用 了异丙醚。
本发明与现有技术相比其优点主要体现在以下几个方面:
1、 通过将磷脂与蛋白质联合应用, 大大提高制剂生产的可行性, 特别是 不釆用有毒或者毒性大的有机溶剂, 而采用低毒的有机溶剂,甚至可以不釆用 有机溶剂; '
2、 由于与脂质体技术结合, 在脂质体表面或者脂质体表面与内部包被 /包 覆了 以二硫键交联的蛋白层, 大大提高脂质体的稳定性;
3、 利用脂质体的特点, 大大扩大现有的蛋白纳米粒载药范围, 如硫酸长 春新碱、 阿霉素、 拓扑替康、 胸腺五肽、 胰岛素、 bFGF等 (原有的专利中, 如 CN 031 08 361. 7A、 US 2007 0828 38 A 1仅可以适用于水难溶性药物);
4、 现有技术制备含有蛋白的纳米粒时, 分散循环数次多, 最少在高压下 循环 5次(如中国专利申请 CN2 0031 012 346 1. X ), 最多者达到 1 5次以上, 如此 会增加蛋白变性的机会, 加大成本, 本发明技术减少分散次数, 最优处方工艺 仅需要循环 1 ~ 5个周期;
5、 降低分散压力: 一般现有工艺需要大于 20000p s〖 的压力, 本发明的优 选工艺中小于 2 0000ps i 的压力就可以获得同样甚至更小粒径的分散系统;
6、 可以利用磷脂的良好分散能力制备液体型的含有磷脂-蛋白质的给药系 统, 而且稳定性能好, 由现有工艺的数小时延长至数十小时, 甚至数十天。
7、 磷脂本身也属于表面活性剂, 磷脂的加入, 使得在整个系统中可以加 入其它各种表面活性剂, 并且因为其它表面活性剂的加入, 又进一步大大降低 了粒度, 减少磷脂用量, 降低成本, 也确保给药系统的制备简单、 适用。
8、 由于合理利用磷脂的价值, 可以随意地采用外插入法将各种配体及其 衍生物、 抗体及其衍生物插入纳米粒中, 进一步提高靶向性。
9、 由于合理利用磷脂的价值, 可以先制备含油类的纳米粒, 或者将挤出 工艺技术结合起来, 即先在高压下或者采用挤出工艺降低粒度, 任意获得所需 要的粒度大小, 随后外加入蛋白, 高压下分散循环 1 - 2 次即可, 大大降低蛋 白变性的可能, 确保蛋白活性, 也大大降低蛋白的用量。
1 0、 由于合理利用磷脂的价值, 可以将磷脂与蛋白、 辅料、 药物混合, 分 散, 特别是采用挤出工艺, 在温和的条件下降低至所需粒度, 最后在低压下分 散处理, 制备所需蛋白纳米粒 (蛋白纳米囊泡)(例如, 采用含有蛋白质的水 相水化磷脂, 进行挤出, 控制任意所需粒度, 然后进行均质处理), 非常适合 对压力和 /或高热敏感的药物。 附图说明
图 1是本发明釆用不同浓度 HSA 的 CuB (葫芦素 B )制剂粒度的冻融考察。 图 2 示出 PEG-THS、 PEG - CHS和 PEG-CHM的结构式。
图 3是本发明 "实施例 12" 的纳米制剂粒径分布图。
图 4是本发明 "实施例 12" 的纳米制剂放置 30天后粒径分布图。
图 5是本发明 "实施例 25" 的纳米粒径照片图。
图 6是本发明 "实施例 32" 的脂质体照片图。
图 7是本发明葫芦素 B溶液对 Hep- 2 细胞 (人喉癌上皮细胞) 增殖抑制作 用影响的示意图。
图 8是本发明 CuB HSA纳米粒、 CuB /HSA溶液在不同剂量下对 Hep2 (人喉 癌上皮细胞) 细胞增殖抑制作用影响的示意图。
图 9是本发明 CuB HSA纳米粒、 CuB /HSA溶液在不同剂量下对 A549 (人肺 腺癌细胞) 增殖抑制作用的影响示意图。
图 10 是本发明 CuB HSA纳米粒、 CuB /HSA溶液在不同剂量下对 HepG2 (人 肝癌细胞) 增殖抑制作用影响的示意图。
图 11 是本发明葫芦素 B HSA 纳米粒与乳剂、 脂质体对不同肿瘤细胞生长 抑制作用的比较示意图。 具体实鉋方式
下面结合实施例更具体地说明本发明。 应当理解, 下面的实施例用于说明 本发明内容而非限定本发明内容, 任何形式上的变动和 /或变通只要符合本发 明精神都将落入本发明的保护范围之内。 实施例 1 探头超声法制备葫芦素 HSA 纳米粒的问题
葫芦素 B 0. Olg
HSA 4g
水 适量
将葫芦素 B (纯度大于 98%)用 1ml 乙醇溶解, 备用; 处方量的 HSA用水溶解 制备成 4% ( g/ml ) 的溶液。 将 HSA溶液加入到葫芦素 B 乙醇溶液中, 分散后, 置于超声仪中。先经 200W超声处理, 随后釆用 600W超声分散 5min,得乳状液。 旋转蒸发除去有机溶剂。 所得纳米粒的平均粒径为 282.2nm, 分布很宽, 不能 通过 0.45 μ m 的微孔滤膜, 放置 20分钟即有沉淀产生, 系统不稳定。 冻干后 再分散性差, 难以恢复到冻干前的状态, 复溶后的粒度大于 400 nm„
实施例 2 加入磷脂解决探头超声法制备葫芦素 HSA 纳米粒存在的问题
葫芦素 B 0. Olg
HSA 4g
S100 1.5g
水 适量 将葫芦素 B (纯度大于 98%)与 S100 (大豆卵磷脂, SPC, 德国 LIPOID公司 ) 用 1ml 乙醇溶解, 备用; 处方量的 HSA用水溶解制备成, 4%的溶液。 将 HSA溶液 加入到葫芦素 B/磷脂的乙醇溶液中, 分散后, 置于超声仪中。 先经 200W超声 处理, 随后采用 600W超声分散 5min, 得乳状液。 旋转蒸发除去有机溶剂。 所 得纳米粒的平均粒径为 156nm, 分布窄, 能通过 0.45 μ πι、 0. 3 μ ι 的微孔滤膜, 放置 60 分钟未产生沉淀, 系统稳定性大大提高。 冻干后再分散性好, 可以恢 复到冻干前的状态, 复溶后的粒度为 166 nm。
实施例 3 用叔丁醇溶解磷脂制备葫芦素 HSA 纳米粒
葫芦素 B O. Olg
HSA 4g
S100 1. 5g
水 适量
将葫芦素 B (纯度大于 98%)与 S100(大豆卵磷脂, SPC 德国 LIPOID )用 5ml 叔丁醇溶解, 备用; 处方量的 HSA用水溶解制备成 4%的溶液。 将 HSA溶液加入 到葫芦素 B/磷脂叔丁醇溶液中, 分散后, 置于超声仪中。 先经 200W超声处理, 随后釆用 600W超声分散 5min, 得乳状液。 所得纳米粒的平均粒径为 139nm, 分布窄, 能通过 0.45 μ ηι、 0. 3 μ ιη 的微孔滤膜, 放置 60分钟未产生沉淀, 系 统稳定性大大提高。 冻干后再分散性好, 可以恢复到冻干前的状态, 复溶后的 粒度为 157nm。
由于采用 了叔丁醇, 不需要减压除溶剂, 直接进行冷冻干燥即可, 工艺更 为简单。
实施例 4 微射流法制备 CuB HSA 纳米粒时压力对粒度的影响
葫芦素 B O. Olg
HSA 4g
S100 1.5g
水 适量
将葫芦素 B (纯度大于 98%)与 S100(大豆卵磷脂, SPC 德国 LIPOID )用 1ml 乙醇溶解, 备用; 处方量的 HSA用水溶解制备成 4%的溶液。 将 HSA溶液加入到 葫芦素 B/磷脂乙醇溶液中, 分散后, 置于微射流仪中进行均质化, 考察压力与 循环次数对粒度的影响。 结果见表 1。
表 1分散压力与循环次数对粒度的影响
Figure imgf000016_0001
由此可见, 分散压力从 800 psi提高到 8000 psi后, 纳米粒的粒径显著减 小, 循环 2次即可获得小于 100 nm的纳米粒, 但 8000 ps i 的循环次数增多并未 使粒径产生显著性的降低, 甚至在循环次数过多时略有增长。 实施例 5 不同油相的考察
基本处方:
葫芦素 B 0. 05g
HSA 4g
S75 2g
油 2g
水 适量
含有磷脂, 磷脂与油的比例为 1: 1。
将葫芦素 B (纯度大于 98%)、 油与 S75 (大豆卵磷脂, SPC 德国 LIPOID公 司 ) 加热溶解后, 以 30ml水分散, 均质机处理, 获得平均粒度小于 200nm, 备 用; 处方量的 HSA用水溶解制备成 5%的溶液。 将 HSA溶液加入到葫芦素 B乳液 中, 混匀后, 置于微射流仪 ( 10000 psi循环 1次) 中进一步均质分散。 结果 见下表 2。
表 2 不同油类物质对粒度的影响
Figure imgf000017_0001
可以获得平均粒径小于 200 nm的纳米粒。 MCT、 油酸与结构油所制备的纳 米粒的平均粒度最小。
实施例 6 不同量 MCT制备 CuB HSA纳米粒的冻融稳定性
按照 "实施例 5" 的处方与方法制备 MCT不同含量的 CuB HSA 纳米粒, 并 考察经过一次冻融 ( - 30°C冷冻一夜, 室温复融) 处理后, 测定其粒径变化。 结果见表 3。
表 3 冻融稳定性试验结果
Figure imgf000017_0002
可以看出, 随 MCT 用量的增加, 所制备的 CuB HSA 纳米粒冻融后粒径增 长幅度增大。 特别是 MCT在处方中的量达到 3%时, 纳米粒冻融后粒径增长更为 显著。 ( °/。的单位为 g/ml。 )
实施例 7 水相不同浓度 HSA对纳米制剂粒径的影响
基本处方:
葫芦素 B 0. Olg
HSA 适量
DLPC 2g
水 适量
按照 "实施例 4" 的基本工艺, 压力选择 12000psi, 循环 3次。
• ( 1 ) 水相中 1%HSA浓度: 平均体积经 84.4nm, 0.22 μ m过滤后 87 · 9 nm; 冻融后粒度长至 246 nm。
( 2 ) 水相中 2%HSA浓度: 平均体积经 91.5nm, 0.22 μ m过滤后 88.8 nm; 冻融后粒度变化成为 116 nm。
( 3 ) 水相中 3%HSA浓度: 平均体积经 90.3nm, 0.22 μ m过滤后 90.6 nm; 冻融后粒度变化成为 121 nm。
( 4 ) 水相中 4%HSA浓度: 平均体积经 91.8nm, 0.22 μ m过滤后 92.2nm。
( 5 ) 水相中 5%HSA浓度: 平均体积经 93.6nm, 0.22 μ m过滤后 93.8nm。 说明本发明中, HSA浓度对制剂的最终粒度没有显著性影响, 但冻融后有 影响。 1%、 Vk、 3%HSA的结果见图 1。
实施例 8 单一冻干保护剂的筛选
基本处方
葫芦素 B 0. Olg
Figure imgf000018_0001
按照 "实施例 4" 的基本工艺, 压力选择 12000psi, 循环 3次。 所得纳米 粒液体按照下列工艺进行冻干。
冻干工艺如下: - 70°C预冻 6小时, 抽真空, 至真空度达到 15Pa 以下 (优 选 5Pa 以下), - 35 抽真空 6小时, 随后在真空状态下, 由- 35 °C至 1 (TC线性 升温, 持续时间 10小时, 10°C保存 2小时, 即得。
分别选用海藻糖、 乳糖、 蔗糖、 甘露醇、 葡萄糖作为葫芦素 HSA纳米粒的 冻午保护剂。 试验结果见下表, 其中:
1 ) 冻干制剂的外观: 表面平整, 白色饼状, 饱满, 无结晶记为 ( - ); 表 面平整, 白色饼状, 饱满, 有细小的鳞状结晶记为 ( + ); 饱满但有较长的针 晶记为 ( + + ); 冻干产品脱离瓶壁, 整体呈针晶状记为 ( + + + )。
2 ) 冻干制剂水化后的透光性: 与冻干前 (半透明, 有明显的乳光) 相同 记为 ( - ) , 比冻干前澄明度略有下降, 但仍有明显的乳光记为 ( + ), 几乎不 透明, 略带乳光记为 ( + + )。 结果见表 4。
表 4. 单一冻干保护剂的筛选结果
Figure imgf000018_0002
很显然, 加入保护剂的纳米粒冻融稳定性优于不加保护剂, 加入保护剂的 产品在水化后所获得的纳米粒均可以在 24 小时内稳定, 其中加入甘露醇的制 剂外观最好, 水化时间: 海藻糖、 乳糖、 葡萄糖优于甘露醇、 蔗糖。 (%的单位 为 g/ml。) 实施例 9 冻干保护剂联合使用的考察
纳米制剂制备方法同实施例 8, 结果见下表 5。
Figure imgf000019_0001
可以看出, 冻干保护剂的联合应用对纳米粒冻融稳定性有进一步改善, 10 小时之内均可稳定。 其中 "6%甘露醇 + 3% 乳糖" 与 "7%甘露醇 + 3% 海藻糖" 作保护剂的冻干产品水化后, 粒度在 48小时内没有发生变化。
实施例 10 多西他赛脂质体
分别称取多西他赛与磷脂 ( EPCS, 德国 LIPOID公司 ;), 选择药脂重量比为 1: 15、 1: 20、 1: 25、 1: 30 和 1: 35 ( w/w), 按照经典薄膜法制备多西他赛脂质 体。 结果表明, 当药脂比为 1: 15 与 1: 20 时, 6 ± 2°C冰箱内放置过夜即有药 物晶体析出; 药脂比为 1: 25和 1: 30时, 6 ± 2°C冰箱内放置 5天略有脂质体聚 集现象, 产生沉淀, 而药脂比为 1: 35 时, 脂质体稳定性良好, 放置 15天未见 有沉淀。
研究表明多西他赛与磷脂用量直接关系到脂质体的稳定性, 药脂比过大, 会超出脂质体双分子层的承载能力, 导致药物析出, 甚至无法形成性质稳定的 脂质体。 即使采用冷冻干燥技术进行冻干处理, 所得冻干制剂也难以回复至冻 干前状态。
实施例 11 说明采用氯仿溶剂制备蛋白纳米粒存在的问题
处方:
多西他赛 60 mg
氯仿 lml
600mg
制备: 称取处方量的多西他赛, 用 1ml氯仿溶解, 所得溶液备用。 取巿售 HSA注射液(人血白蛋白注射液), 以水稀释配制成 2%的浓度, 即 30ml 的 2%HSA 溶液。 用 2%HSA 溶液对多西他赛氯仿溶液进行乳化, 并于 20000psi 下进行分 散。 所得纳米分散液于减压下回收氯仿, 余下分散液体难以通过 0.8 μ ιη微孔 滤膜。 放置约 3小时, 产生沉淀。
实施例 12 说明磷脂的重要性
处方:
多西他赛 60 mg
无水乙醇 1.5ml
大豆卵磷脂 ( SPC ) 1500 mg
HSA 600mg 制备: 称取处方量的多西他赛、 磷脂, 用 1.5ml 无水乙醇溶解, 所得溶液 备用。 取 HSA, 以水配制成 2%的浓度, 即 30ml 的 2%HSA溶液。 将 2%HSA溶液 加入药物 /磷脂乙醇溶液中, 搅拌, 并于 20000psi 下进行分散, 得到半透明分 散体。 此分散体轻松通过 0.22 μ m微孔滤膜, 实现除菌过滤目的。 测定结果表 明其粒度为 31.8nm (见图 3)。 将其室温放置约 30小时无沉淀产生, 6 ± 2 °C冰 箱放置 30天也无沉淀, 粒度测定结果表明未发生变化 (见图 4 ), 平均粒径为 31.2 nm。
实施例 13 含有磷脂-蛋白的多西他赛纳米粒
一、 处方: 100ml
人血清白蛋白 ( HSA ) 2g
蛋黄卵磷脂 ( EPC ) 4g
无水乙醇 3ml
多西他赛 ( Doc ) 0.2g
柠檬酸 适量
蒸馏水 加至 100 ml
二、 按如下步骤的方法制备:
1、 脂质相的制备
精密称取处方量的 EPC、 Doc, 置于烧杯中, 加入乙醇 (未特指的情况下, 其浓度为 95%, 下同 ) 4mi, 在氮气环境中溶解上述物质, 混匀, 得澄清溶液, 即脂质相。
2、 水相的制备
巿售人血清白蛋白( 20%, W/V(g/ml) )用灭菌注射用水稀释成为 4%的溶液, 以柠檬酸调节 PH至 4, 即得。
3、 分散
将水相加入至脂质相中, 搅拌分散, 即得乳状分散液体。
4、 均质化
将上述液体转移至微射流仪中,于 400 ~ 12000psi进一步均质 5遍, 即得。
5、 测定其 pH为 5 ~ 6。 通过 0.22 μ m微孔滤膜进行过滤除菌, 分装, 压盖, 即得。 测定粒度, 其平均体积粒径为 160nm。
制剂稳定性良好, 制备后的液体于冰箱 ( 2-8°C ) 放置一个月未见分层、 沉降, 外观仍呈澄清透明。
此外, 根据需要, 可在处方中加入 10%蔗糖, 按照 -8(TC预冻 4小时, 抽真 空 10小时, 3(TC保持 5小时即可得到冻干制剂。
将上述所得冻干制剂加水水化后, 可以回复到冻干前的状态, 平均体积粒 径为 166nm。
实施例 13-1
处方配比同实施例 13, 具体操作也与实施例 13相同, 不同之处在于采用 Lipoid E80(德国 LIPOID公司)代替蛋黄卵磷脂, 试验结果类似于实施例 13。 实施例 13-2
处方配比同实施例 13, 具体操作也与实施例 13相同, 不同之处在于采用 Lipoid S100 (德国 LIPOID公司)代替蛋黄卵磷脂, 试验结果类似于实施例 13。 实施例 13-3
处方配比同实施例 13, 具体操作也与实施例 13相同, 不同之处在于釆用 Lipoid EPG (德国 LIPOID公司)代替蛋黄卵磷脂, 试验结果类似于实施例 13。 实施例 13-4
处方配比同实施例 13, 具体操作也与实施例 13相同, 不同之处在于釆用 Lipoid E DPPG (德国 LIPOID公司)代替蛋黄卵磷脂,试验结果类似于实施例 13。 实施例 13-5
处方配比同实施例 13, 具体操作也与实施例 13相同, 不同之处在于采用 Lipoid E DMPG (德国 LIPOID公司)代替蛋黄卵磷脂,试验结果类似于实施例 13。 实施例 13-6
处方配比同实施例 13, 具体操作也与实施例 13相同, 不同之处在于采用 Lipoid E DPPC (德国 LIPOID公司)代替蛋黄卵磷脂,试验结果类似于实施例 13。 实施例 13-7
处方配比同实施例 13, 具体操作也与实施例 13相同, 不同之处在于采用 Lipoid E DMPC (德国 LIPOID公司)代替蛋黄卵磷脂,试验结果类似于实施例 13。 实施例 13-8
在实施例 13处方中加入 0. Olg吐温 80, 具体操作与实施例 13相同, 试验 结果类似于实施例 13。
实施例 13-9
在实施例 13处方中加入 0. lg吐温 80, 具体操作与实施例 13相同, 试验 结果类似于实施例 13。
实施例 13-10
在实施例 13处方中加入 0. OlgTPGS, 具体操作与实施例 13相同, 试验结 果类似于实施例 13。
实施例 14
处方:
10 -羟基喜树碱 10mg
DMPC lOOmg
DMPG 200mg
无水乙醇 适量
HSA 3000mg
称取处方量的 10-羟基喜树碱、 DMPC、 DMPG置于梨形瓶中, 加入适量乙醇, 加热溶解。 将所得溶液进行减压回收, 药物与磷脂在瓶底形成一膜状结构。 然 后加入 50 ml 人血清白蛋白溶液 ( 6% w/v ), 混合、 水化。 所得水化物于 9000-40, 000 psi 下进行乳化, 循环 5个周期。 所得制剂的平均粒度 116nm。
' 该分散体可以进一步冻干, 得到饼块冻干制剂。 通过加入无菌水或葡萄糖注射 液或木糖醇注射液, 重构为原有分散体。
应当认识到用于本实施例的药物、 溶剂、 蛋白质的量、 类型和比率不受任 何方式的限制。 实施例 14-1
针对喜树碱类药物, 如羟基喜树碱、 喜树碱、 9-硝基喜树碱、 7-乙基 -10 羟基喜树碱等, 尚可加入碱性物质 (任何碱性物质, 如氢氧化纳、 碳酸钠、 赖 氨酸等) 进行简单的 pH调节,使 pH值至大于 7.4 的方式来溶解药物, 配成药 物水溶液, 然后与磷脂混合, 釆用均质机或者超声分散, 降低粒径至任意所需 的粒径 (如小于 lOOnm, 或者小于 50 nin)。 在获得含有药物的磷脂分散体后, 重新加入酸性物质 (任何酸性物质, 如柠檬酸、 乳酸、 富马酸、 酒石酸、 乙酸、 葡萄糖酸、 乳糖酸、 山梨酸、 抗坏血酸、 草酸、 甲酸、 苯磺酸、 谷氨酸、 天冬 氨酸等)调节 pH值至小于 7.4, 再与 HSA混合, 高压或者高强度超声分散一次 即可, 确保蛋白在脂质纳米粒表面或内部形成二硫键, 稳定分布在纳米粒上。 所得制剂可以注射、 口服、 外用。
其他操作同实施例 14。
实施例 15
处方:
两性霉素 B 50 mg
HSPC 213 mg
DSPG 84 rag
胆固醇 ( CH ) 52 mg
甲基吡咯烷酮 /甲醇 适量
生育酚 0.64 mg
HSA 400 mg
制备工艺:
将处方量的两性霉素 B、 HSPC, DSPG, CH、 生育酚溶于甲基吡咯烷酮 /甲醇 混合溶剂中, 并减压除去有机溶剂, 备用。 将 400 mg HSA 溶于注射用水中, 制备 1% ( w/v ) 的 HSA溶液。 以 HSA溶液分散两性霉素 B混合物, 所得分散液 体在 8000- 20, 000 psi 下进行乳化循环至少 3 个周期, 获得半透明分散体, 平均直径为 110nm。 可以采用常规方法进行冷冻干燥。
测定 H 5.0-6. 0。
实施例 16
处方:
骨化三醇 0. OOlg
DPPC 0.1 g
胆固醇 0. 01g
HSA 1 g
取处方量的骨化三醇、 DPPC、 胆固醇, 加入 0.5ml 甲醇溶解, 备用; 取处 方量的 HSA,以注射用水溶解,配制成 1%溶液。将 HSA溶液加至骨化三醇与 DPPC、 胆固醇的甲醇溶液中, 搅拌, 分散, 显微镜观察为脂质体。 将此脂质体在 60 °C温度下以挤出仪进行整粒, 分别通过 0.4、 0.3、 0.22、 0.1、 0.05、 0.01 μ m 微孔滤膜三遍, 将分散体系中粒径降至 30nm以下。 过均质机进行进一步分散, 使得脂质体表面与内水相中的 HSA在均质机的分散处理下形成二硫键, 交联的 蛋白对脂质体具有保护作用, 进一步确保脂质体的长期储存稳定性。 此系统中 骨化三醇的浓度为 lmg/100ml,即 10 μ g/ lml。可以进一步加入注射用水至 1000 ml, 药物浓度为 1 μ g/lml。 如果需要冻干 可以在处方中加入 5%甘氨酸( W/V), 即 1000 ml 药物液体中加入 50g甘氨酸, 按照常规方法进行冻干即可。
实施例 17
处方:
骨化三醇 0. OOlg
癸酸 1 g
DLPC 1 g
HSA 10 g
取处方量的骨化三醇、 癸酸、 DLPC, 在氮气环境下, 加热溶解, 备用; 取 处方量的 HSA, 以注射用水溶解, 配制成 3%溶液。 将 HSA溶液水化含骨化三醇 的脂质相, 搅拌, 分散, 显微镜观察为乳剂。 过均质机进行进一步分散, 使得 乳剂表面的 HSA在均质机的分散处理下形成二硫键, 交联的蛋白对乳剂具有保 护作用, 进一步确保乳剂的长期储存稳定性。 可以进一步加入注射用水至 1000 ml, 药物浓度为 1 μ g/lmK 如果需要冻干, 可以在处方中加入 10%蔗糖( g/ml ), 即 1000 ml 药物液体中加入 100g蔗糖, 按照常规方法进行冻干即可。
实施例 18
处方:
两性霉素 B 50mg
二肉豆蔻酰磷脂酰胆碱(DMPC) 34 mg
二辛酰磷脂酰甘油 60 mg
柠檬酸 5 mg
人血清白蛋白 300 mg
制备: 取处方量的两性霉素 B、 DMPC、 二辛酰磷脂酰甘油, 用适量甲醇溶 解, 减压回收甲醇。 人血清白蛋白用蒸馏水配制而成为 4%的溶液,加入柠檬酸 溶解,所得溶液加入至两性霉素 B 磷脂复合物中,水化, 在 4(TC温度下依次通 过 0.8、 0.6、 0.4、 0.2、 0.1、 0.05 μ m微孔滤膜,所得分散液体置于超声仪中 进行超声处理 (釆用 600W超声分散 lmin) ,促使蛋白生成二硫键。
处方中的柠檬酸可以用其它任何酸, 如乳酸、 富马酸、 酒石酸、 乙酸、 葡 萄糖酸、 乳糖酸、 山梨酸、 抗坏血酸、 草酸、 甲酸、 苯磺酸、 谷氨酸、 天冬氨 酸等所代替, 亦得到相同的结果。
实施例 19
处方:
丙泊酚 lOOmg
卵磷脂 lOOmg
DOPC 300mg
EDTA-2Na 5mg
人血清白蛋白 300rag
制备方法: 称取处方量的丙泊酚 卵磷脂 D0PC, 氮气环境下, 加热溶解, 备用; 人血清白蛋白用蒸馏水配制而成为 4%的溶液,加入 EDTA-2Na, 溶解,所 得溶液加入至丙泊酚磷脂中,水化, 在 40°C温度下依次通过 0.8、 0.6、 0.4、 0.2、 0.1、 0.05 μ ίη微孔滤膜,所得分散液体置于超声仪中进行超声处理, 先经 200W超声处理, 随后釆用 600W超声分散 5min, 得乳状液。 平均粒径 69nm。
制剂稳定性良好, 制备后的液体于冰箱 ( 2-8°C ) 放置一个月未见分层、 沉降, 外观仍呈澄清透明。
此外, 加入 0.2% ~ 20% ( W/V ) 的 DSPE- PEG, 釆用外插入方法, 可制备 PEG 包衣的蛋白纳米粒。
实施例 20 丙泊酚纳米制剂 ( 100ml )
处方:
丙泊酚 lg
MCT 3g
SPC lg
EDTA-2Na 0.005g
人血清白蛋白 ( HSA ) 3g
制备方法: 称取处方量的丙泊酚、 SPC、 MCT, 氮气环境下, 加热溶解, 备 用; 将处方量的人血清清蛋白 ( HSA)、 EDTA- 2Na 以注射用水配制 ' 5°/。HSA溶液, 通过滤器( 0.2 μ m滤器)过滤除菌,得水相。将水相加入至油相中,并在 10, 000 RPM分散 2 分钟, 得到粗乳。 将粗乳剂在 28, 000 psi 下高压均化并在 4 'C再 循环 2个周期, 得到最终乳剂。 补加注射用水至 100ml, 混匀, 过滤 ( 0.2 μ ιη 滤器)、 分装, 充氮气, 封口。 粒径小于 200nm。
实施例 21
处方:
丙泊酚 lg
结构油 3g
DMPG 5g
人血清白蛋白 10g
制备方法同 "实施例 20"。
此外, 加入 0.2% ~ 20% ( W/V ) 的 DPPE- PEG, 采用外插入方法, 可制备 PEG 包衣的蛋白纳米粒。
实施例 22
处方:
丙泊酚 lg
结构油 lg
TPGS 5g
人血清白蛋白 3g
制备方法同 "实施例 20"。
此外, 加入 0.2%~ 2% ( W/V ) 的 DSPE- PEG, 采用外插入方法, 可制备 PEG 包衣的蛋白纳米粒。 处方:
恩替卡韦 0.5g
D0PG 5g
HSA 5g
蔗糖 10g
水 加至 100ml
制备: 将处方量的恩替卡韦、 D0PG用少量甲醇溶解, 所得溶液备用。 配制 10% HSA、 20%蔗糖溶液, 加入上述药物磷脂溶液中, 分散, 4000 ~ 40000psi 均质处理, 得到粒度小于 lOOnm的液体、 加水至 lOO ral, 混匀, 即得。 可采用 冷冻工作或者喷雾干燥制备固体。
制剂稳定性良好, 制备后的液体于冰箱 ( 2-8°C ) 放置一个月未见分层、 沉降, 外观仍呈半透明。
实施例 24 葫芦素 E (纯度大于 95% )
处方组成 ( 100ml, 葫芦素 E的浓度为 0. lmg/ml )
葫芦素 E 0.01g
油 ( MCT ) ig
0. lg
HSA 5g
甘露醇 6g
葡萄糖 1 g
水 适量
制备: 将处方量的葫芦素 E、 MCT、 S75 ( Lipoid S 75, 上海东尚实业有限 公司 ) 加热溶解, 备用; 取处方量的甘露醇、 葡萄糖, 加入注射用水 50ml 溶 解, 加入少量活性炭除热原, 冷却后, 加入 25ml 巿售的 20%HSA, 混匀, 所得 溶液过滤除菌。 将所得的含有 HSA 的水溶液加入油相, 分散, 继续在 1000 ~ 20, 000 psi 下高压均化循环 5个周期, 得到最终乳剂。 过滤 ( 0.2 μ ra滤器)、 分装, 冻干, 充氮气, 封口。 平均粒径小于 300nm。
冻干工艺: 预冻: - 74°C , 4h; 抽真空进行干燥。 第一阶段干燥: -3(TC , 60min; 第二阶段干燥: _20°C , 12h; 保温: 15 °C , 5h。
实施例 24-1
其他操作同实施例 24。 不同的是在处方中加入常规量的抗氧化剂, 如生育 酚、 维生素 C或者 EDTA-2Na。
实施例 24-2
其他操作同实施例 24-1。不同的是将处方中的葫芦素 E换成当量相当的葫 芦素提取物 (包括巿售葫芦素 BE原料)、 葫芦素 A、 葫芦素 B、 异葫芦素 8、 双 氢葫芦素 8、 葫芦素 (:、 葫芦素 D、 异葫芦素 D、 双氢葫芦素 D、 异葫芦素 6、 双氢葫芦素 E、 葫芦素 F、 葫芦素 I、 四氢葫芦素 I或葫芦素 (}。
实施例 25 葫芦素 I (纯度大于 95% )
处方组成 ( 100ml, 葫芦素 I的浓度为 0. lmg/ml )
葫芦素 I o. oig 结构油 lg
磷脂 ( S75 ) ig
生育酚 0. Olg
HSA 5g
海藻糖 10g
水 适量
制备: 将处方量的葫芦素 I、 结构油、 S75 ( Lipoid S 75, 上海东尚实业 有限公司 )、 生育酚加热溶解, 备用; 取处方量的海藻糖, 加入注射用水 50ml 溶解, 加入少量活性炭除热原, 冷却后, 加入 25ml 巿售的 20%HSA, 混匀, 所 得溶液过滤除菌。 将所得的含有 HSA的水溶液加入油相, 分散, 继续在 1000 - 20, 000 psi 下高压均化循环 3个周期, 得到最终乳剂。 过滤 ( 0.2 μ m滤器)、 分装, 冻干, 充氮气, 封口。 平均粒径小于 200nm。 见图 5。
冻干工艺: 预冻: - 74°C , 4h; 抽真空进行干燥。 第一阶段干燥: - 30°C, 30rain; 第二阶段干燥: - 20°C , 12h; 保温: 15°C , 5h。
其他操作同实施例 24- 1。不同的是将处方中的葫芦素 E换成葫芦素提取物 (包括巿售葫芦素 BE原料)、 葫芦素 A、 葫芦素 B、 异葫芦素 8、 双氢葫芦素 B、 葫芦素 C、 葫芦素 D、 异葫芦素 D、 双氢葫芦素 D、 异葫芦素 £、 双氢葫芦素 E、 葫芦素 F、 葫芦素 E、 四氢葫芦素 I或葫芦素 0。
实施例 25 - 1
其他操作同实施例 25。 不同的是在处方中加入常规量的抗氧化剂, 如生育 酚、 维生素 C或者 EDTA_2Na。
实施例 25-2
其他操作同实施例 25-1。 不同的是将处方中的葫芦素 I 换成葫芦素提取 物、 葫芦素 A、 葫芦素 B、 异葫芦素 8、 双氫葫芦素 B、 葫芦素 (:、 葫芦素 D、 异葫芦素 D、 双氢葫芦素 D、 异葫芦素 6、 双氢葫芦素 E、 葫芦素 F、 葫芦素 E、 四氢葫芦素 I或葫芦素 Q。
实施例 26 葫芦素 Q (纯度大于 95% )
处方组成 ( 100ml , 葫芦素 Q的浓度为 0. lmg/ml )
葫芦素 E 0. Olg
结构油 0. lg
MCT 0.4g
磷脂 ( S75 ) 5g
HSA lg
海藻糖 10g
木糖醇 2g
水 适量
制备: 将处方量的葫芦素 Q、 结构油、 MCT 、 S75 ( Lipoid S 75, 上海东 尚实业有限公司 ) 加热溶解, 备用; 取处方量的海藻糖、 木糖醇, 加入注射用 水 50ml 溶解, 加入少量活性炭除热原, 冷却后, 加入 5ml 巿售的 20%HSA, 混 匀, 所得溶液过滤除菌。 将所得的含有 HSA的水溶液加入油相, 分散, 继续在 1000 - 20, 000 psi 下高压均化循环 2 个周期, 得到最终乳剂。 过滤 ( 0. 2 μ m 滤器)、 分装, 冻干, 充氮气, 封口。 平均粒径小于 200nm。
冻干工艺: 预冻: - 74°C, 4h; 抽真空进行干燥。 第一阶段干燥: - 30'C , 90min; 第二阶段干燥: -20°C, 12h; 保温: 20°C, 5h。
实施例 26-1
其他操作同实施例 26。 不同的是在处方中加入常规量的抗氧化剂, 如生育 酚、 维生素 C或者 EDTA-2Na。
实施例 26-2
其他操作同实施例 26-1。 不同的是将处方中的葫芦素 Q 换成葫芦素提取 物、 葫芦素 A、 葫芦素 B、 异葫芦素 ^ 双氢葫芦素 B、 葫芦素 (:、 葫芦素 D、 异葫芦素 D、 双氢葫芦素 D、 异葫芦素 6、 双氢葫芦素 E、 葫芦素 F、 葫芦素 I、 四氢葫芦素 I、 葫芦素 S或葫芦素 E。
实施例 27 醋酸去氨加压素 (去氨加压素的等电点 10.9)
处方组成:
醋酸去氨加压素 400ug
二棕榈酰磷脂酰甘油 lg
四月桂酰心磷脂 0. lg
HSA 5g
海藻糖 10g
水 适量
制备: 将处方量的二棕榈酰磷脂酰甘油与四月桂酰心磷脂用少量叔丁醇溶 解, 加入醋酸去氨加压素水溶液, 分散、 混合(显微镜观察为脂质体), 用 Tris 调节 pH至 7.4, 加入海藻糖溶液, 采用挤出法, 依次挤压通过双层 800nm、 300 nm、 200nm、 100 nm、 50 nm孔径的薄膜 (Nucleopore) , 备用。 取巿售 20%HSA 25ml 溶液, 加入上述磷脂分散系统中, 混匀, 采用 28000psi压力进行分散, 循环 1 次, 制备所需粒度大小的纳米粒。 平均粒径小于 100nm。 蛋白层包覆在脂质体 的外层。
可以釆用冻干技术获得固体。
冻干工艺: 预冻: - 4(TC, 4h; 抽真空进行干燥。 第一阶段干燥: - 3(TC, 60min; 第二阶段干燥: - 20°C , 18h; 保温: 25°C, 6h。
实施例 28
处方:
奥曲肽 lOOOug
四棕榈酰心磷脂 lg
四油酰心磷脂 0. lg
HSA 5g
海藻糖 lOg
水 适量
制备: 将处方量的四棕榈酰心磷脂与四油酰心磷脂用少量叔丁醇溶解, 加 入醋酸去氨加压素水溶液, 分散、 混合, 用 Tris调节 pH至 7.4, 其他操作同 实施磷例处莪 29
术脂方
:油
lg
2g
lg
制备: 将莪术油与磷脂混合, 加入注射用水 50ml 进行分散, 微射流仪或 者均质机进一步降低粒度至小于 ΙΟΟηιη, 过滤除菌; 蛋白用灭菌注射用水制备 成 2%浓度, 与上步制备的乳剂混合, 再次采用微射流仪或者均质机分散, 4000psi 分散一个循环即可。 注射用水补加至 100ml, 过滤, 分装, 封口, 即 得。 蛋白层包覆在外层。 平均粒径小于 150nm。
实施例 30
处方:
阿霉素 0. lg
Figure imgf000028_0001
胆固醇半琥珀酸酯 0. lg
150mM硫酸铵 100ml
蔗糖 15 g
人血清白蛋白 0.02g
制备: 称取处方量的四油酰心磷脂、 DMPC、 胆固醇半琥珀酸酯, 加入 10ml 乙醇溶解, 备用。 取 150mM硫酸铵 100ml, 加入 15 g蔗糖 溶解后, 加入 0.1ml 巿售 20%人血清白蛋白, 混匀, 将此混合液加至磷脂乙醇溶液中, 进行水化, 所得脂质体, 于 50° C用挤压器(Lipex Biomembranes, Inc. , Vancouver, BC, Canada)依次挤压通过双层 800nm、 300 nm、 200nm、 100 nm、 50 nm 孔径的薄 膜(Nucleopore) , 最后采用 18000ps i 压力进行分散, 循环 2 次, 制备所需粒 度大小的纳米粒。 采用微柱离心法, 以 Sephadex G-50除去脂质体外水相的硫 酸铵,得到含有蛋白的脂质体。阿霉素以 0.9%氯化钠注射液溶解,配制 10mg/ml。 将阿霉素溶液与空白脂质体混合, 于 50° C水浴保温 15 分钟, 并不断搅拌, 即得载有阿霉素的含有蛋白的脂质体。 包封率测定结果表明, 该方法制备的脂 质体包封率大于 90%。 0.22um的滤膜过滤除菌, 分装, 封口即得, 2 ~ 8° C保 存。
可以采用冻干技术获得固体。
冻干工艺: 预冻: - 80°C , 4h; -60°C , 抽真空进行干燥。 冻干曲线: - 60 °C至 - 50°C, 2h; -50°C - -30°C , 10h; - 30°C ~ 0°C, 6h; 0 °C ~ 20 °C , 4h; 保温: 20。C , 2h。
刺激性及毒性试验结果表明, 本发明的给药系统可以减少活性药物对静脉 的刺激、 静脉炎、 静脉血栓形成、 外渗和其它与给药相关的副作用。
实施例 30-1
具体操作同实施例 30。 不同的是药物选用柔红霉素、 表阿霉素、 硫酸长春 新碱、 米托蒽醌、 盐酸拓扑替康、 重酒石酸长春瑞宾或博来霉素。 制备的含有 蛋白的脂质体包封率均大于 85%。
实施例 31
处方:
阿霉素 0.2g
胆固醇 0.2 g
四油酰心磷脂 lg
DMPC 5 g
DSPE - PEG2000 0.5 g
150mM硫酸铵 100ml
蔗糖 10 g
人血清白蛋白 0.02g
制备: 参照 "实施例 30" 制备载有阿霉素的含有蛋白的脂质体, 随后以外 插入法将 0.5 g DSPE-PEG2000插入所制备的脂质体中, 得到 PEG包衣的阿霉 素含有蛋白的脂质体。 包封率测定结果表明, 该方法制备的脂质体包封率大于 90%。
0.22um的滤膜过滤除菌, 分装, 封口即得, 2~8° C保存。
可以采用冻干技术获得固体。
冻干工艺: 预冻: - 80°C , 4h; -60°C , 抽真空进行干燥。 冻干曲线: -60 °C至- 50°C , lh; -50°C - - 3(TC, 8h; -30 °C - 0°C , 6h; 0 °C ~ 20 °C , 2h; 保温: 20°C , 2h。
研究表明, 本发明的给药系统可以减少活性药物对静脉的刺激、 静脉炎、 静脉血栓形成、 外渗和其它与给药相关的副作用。
实施例 31-1
具体操作同实施例 31。 不同的是药物选用柔红霉素、 表阿霉素、 硫酸长春 新碱、 米托蒽醌、 盐酸拓扑替康、 长春瑞宾或博来霉素。 制备的含有蛋白的脂 质体包封率均大于 85%。
实施例 32
处方:
阿霉素
四棕榈酰心磷月
DMPC
300raM柠檬酸
蔗糖
人血清白蛋白
制备: 称取处方量的四棕榈酰心磷脂、 DMPC, 加入 lml 乙醇溶解, 备用。 取 300mM柠檬酸 ( ρΗ4· 0 ) 10ml, 加入 1 g蔗糖 溶解后, 加入 0. lml 巿售 20%人血清白蛋白, 混匀, 加入至磷脂乙醇溶液中, 进行水化, 探头超声处理, 制备半透明的脂质体液体。
阿霉素以 0.9%氯化钠注射液溶解, 配制 10mg/ml。 将阿霉素溶液与空白脂 质体混合, 并用 10mM的氢氧化納调节 pH至 7.5, 于 50° C水浴保温 I5分钟, 并不断搅拌, 即得载有阿霉素的含有蛋白的脂质体。 包封率测定结果表明, 该 方法制备的脂质体包封率大于 90%。 0.22um的滤膜过滤除菌, 分装, 封口即得, 2 ~ 8° C保存。
可以采用冻干技术获得固体。
冻干工艺: 预冻: - 80°C , 4h; -60°C , 抽真空进行干燥。 冻干曲线: - 60 °C至— 50°C , 8h; -50°C - — 30。C, 12h; -30°C - 0°C , 16h; 0 °C ~ 15 °C , 4h; 保温: 15°C , 4h。
研究表明, 本发明的给药系统可以减少药物对静脉的刺激、 静脉炎、 静脉 血栓形成、 外渗和其它与给药相关的副作用。
脂质体照片见图 6。
小鼠体内药动研究结果表明, 阿霉素普通脂质体的 AUCnh 为 106mg/L * h, 蛋白包衣 阿霉素脂质体的
Figure imgf000030_0001
为 330mg/L · h。 与未用蛋白被覆的普通脂质体相比, 采用蛋白被覆 的脂质体, 其能增加药时曲线下的面积, 延长药物作用时间。
实施例 32-1
具体操作同实施例 32。 不同的是药物选用柔红霉素、 表阿霉素、 硫酸长春 新碱、 米托蒽醌、 盐酸拓扑替康、 长春瑞宾、 吉西他滨、 石杉碱甲、 草乌甲素 或博来霉素。 制备的含有蛋白的脂质体包封率均大于 85%。
实施例 32-2
具体操作同实施例 32, 不同的是可以采用外插入法将不同 PEG 分子量的 PEG脂质衍生物插入脂质体中, 制备含有蛋白的 PEG包衣脂质体。
实施例 33
处方:
榄香烯 lg
磷脂 2g
TPGS 0.5g
HSA lg
制备: 将榄香烯与磷脂、 TPGS混合, 加入注射用水 50ml进行分散, 微射 流仪或者均质机进一步降低粒度至小于 lOOnra, 0.22um的滤膜过滤除菌; 蛋白 用灭菌注射用水制备成 2%浓度, 与上步制备的乳剂混合, 再次采用微射流仪或 者均质机分散, 2000psi分散一个循环即可。 表面活性剂 TPGS 的加入, 降低了 分散所需压力, 减少成本。
制剂稳定性良好, 制备后的液体于冰箱 ( 2-8°C ) 放置一个月未见分层、 沉降, 外观仍呈澄清透明。
研究表明, 本发明的给药系统可以减少药物对静脉的刺激、 注射时的烧灼 感和疼痛、 静脉炎、 静脉血栓形成、 外渗和其它与给药相关的副作用。
实施例 34
处方:
尼莫地平 0. lg
SPC 10g
生育酚半琥珀酸酯 0. lg 叔丁醇 20ml
HSA 10g
蔗糖 15g
制备: 取处方量的尼莫地平、 SPC 、 生育酚半琥珀酸酯、 叔丁醇, 搅拌溶 解, 加入 50%蔗糖溶液 30 ml, 混匀, 加入 20%HSA溶液 20ml, 混匀。 20000psi 高压均质处理 2个循环, 补加余下的 30 ml20%HSA溶液与注射用水至 250 ml, 混匀, 0.22um的滤膜过滤除菌, 可以制备粒度小于 50纳米的脂质纳米粒。 实施例 35 在纳米粒中插入含有亲脂性基团的配体
釆用 "实施例 25" 的纳米粒, 将本发明人专利申请 CN200610121794.2 的半乳糖胆固醇衍生物按照占磷脂摩尔比 5%的量插入, 即可。 也可插入转铁蛋 白衍生物、 叶酸及其衍生物、 氨基葡萄糖衍生物、 各种 RGD及其衍生物、 选自 各种鼠源、 人源化、 重组鼠源、 人源的抗体, 实现主动靶向递药的目的。
实施例 36 前列地尔纳米粒 ( 5 μ g/ml )
处方:
前前列列地地尔尔 500 g
人血白蛋白 0.03g
磷脂 3g
海藻糖 10g
水 适量 (加至 100ml )
制备: 称取处方量的前列地尔与磷脂,加入 3ml 乙醇溶解, 备用。 取处方 量的海藻糖, 加入注射用水 70ml 溶解, 加入少量活性炭除热原, 冷却后加入 药物磷脂液中, 水化, 分散, 依次通过 0.8、 0.6、 0.4、 0.2、 0.1、 0.05 μ m 微孔滤膜,得到透明分散液。 加入 0.15ml 巿售的 20%HSA, 混匀, 继续在 1000 - 10, 000 psi 较低压力下均化循环 1 个周期, 注射用水加至 100ml, 混匀, 得 到最终纳米粒。 过滤 ( 0.2 μ ηι滤器) 除菌、 分装, 充氮气, 封口。 平均粒径小 于 100nm。 该纳米粒可以以液体方式保存。 如果需要以固体方式保存, 则可以 进一步进行冻干, 充氮气, 封口, 即得。 冻干产品加水复溶后, 其平均粒径小 于 100nm。
实施例 36-1 前列地尔纳米粒 ( 50 μ g/ml )
处方:
前列地尔 5000 μ g
人血白蛋白 0.3g
辛酸乙酯 lg
磷脂 3g
海海澡藻穉糖 10g
水 适量 (加至 100ml )
制备: 称取处方量的前列地尔、 辛酸乙酯与磷脂 ,加入 3ml 无水乙醇溶解, 备用。 取处方量的海藻糖, 加入注射用水 70ml溶解, 加入少量活性炭除热原, 冷却后加入药物磷脂液中, 水化, 10, 000 - 40, 000 si分散, 得到粒径小于 lOOnm的分散液。 加入 1.5ml巿售的 20%HSA, 混匀, 继续在 1000 ~ 10, 000 psi 较低压力下均化循环 1个周期, 注射用水加至 100ml, 混匀, 得到最终纳米粒。 过滤 ( 0.2 μ m滤器) 除菌、 分装, 充氮气, 封口。 平均粒径小于 100nm。 该纳 米粒可以以液体方式保存。如果需要以固体方式保存,则可以进一步进行冻干, 充氮气, 封口, 即得。 冻干产品加水复溶后, 其平均粒径小于 100nm。
实施例 37
恩替卡韦 ( entecavir ) 胶囊 100个剂量单位 ( 0.5mg/胶囊)
处方:
鸡蛋清蛋白 5g
SPC 0. lg
恩替卡韦 ( entecavir ) 0.05g
乳糖 20g
制备: 取处方量的恩替卡韦、 SPC , 用适量乙醇溶解, 备用。 取处方量的 鸡蛋清蛋白, 加入水制备 20%的溶液, 加入至恩替卡韦 /SPC溶液中, 分散, 过 均质机 ( 400 ~ 4000 psi ), 控制粒度在 500nm~ lOOOnm, 加入乳糖, 进行喷雾 干燥, 得到含有恩替卡韦的蛋白纳米粒颗粒, 加入 0.1%微粉硅胶, 混匀后装胶 囊 ( 0.5mg/胶囊)。 也可以采用粉末直接压片技术进行压片。
实施例 37-1
具体操作同实施例 37。不同的是药物恩替卡韦被以下药物替代: 苯丙醇(鸡 蛋清蛋白的浓度为 10¾; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =300: 1 )、 非布丙醇 (鸡蛋清蛋 白的浓度为 30%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 = 300: 1 )、 维生素 K1 (鸡蛋清蛋白的浓 度为 50%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =300: 1 )、辅酶 Q10(鸡蛋清蛋白的浓度为 50%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 = 300: 1 )、 黄杨宁 (鸡蛋清蛋白的浓度为 50%; 鸡蛋清蛋 白: 磷脂 =300: 1 )、 益心酮(鸡蛋清蛋白的浓度为 40%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 = 300: 1 )、 灯盏花素 (鸡蛋清蛋白的浓度为 40%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =200: 1 )、 醋柳黄酮 (鸡蛋清蛋白的浓度为 40%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =200: 1 )、 尼 莫地平(鸡蛋清蛋白的浓度为 30%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =200: 1 )、 维生素 D (鸡蛋清蛋白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =200: 1 )、 丹参酮 Π Α (鸡 蛋清蛋白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =100: 1 )、 丁苯酞 (鸡蛋清蛋 白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =100: 1 )、 藁本内酯 (鸡蛋清蛋白的 浓度为 5%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =100: 1 )、 胆维他 (茴三硫)(鸡蛋清蛋白 的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =100: 1 )、 马洛替酯 (鸡蛋清蛋白的浓 度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =100: 1 )、 去甲斑蝥酸 (鸡蛋清蛋白的浓度 为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =100: 1 )、 斑蝥素 (鸡蛋清蛋白的浓度为 0.1%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =50: 1 )、 冬凌草甲素 (鸡蛋清蛋白的浓度为 0.5%; 鸡 蛋清蛋白: 磷脂 =100: 1 )、 石杉碱甲 (鸡蛋清蛋白的浓度为 0.05%; 鸡蛋 清蛋白: 磷脂 =1: 1 )、 草乌甲素 (鸡蛋清蛋白的浓度为 1%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =50: 1 )、 他汀类降脂药 (鸡蛋清蛋白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷 脂 =100: 1 ), 如 "洛伐他订", "辛伐他汀"、 阿德福韦酯 (鸡蛋清蛋白的 浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =50: 1 )、 VE 烟酸酯 (鸡蛋清蛋白的浓度 为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =50: 1 )、 齐多夫定棕榈酸酯 (鸡蛋清蛋白的浓 度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =50: 1 )、 齐多夫定肉豆蔻酸酯 (鸡蛋清蛋白 胡维甘的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 = 150: 1 )、 齐多夫定棕胆固醇酯 (鸡蛋 清蛋萝生油白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =150: 1 )、 齐多夫定胆固醇酯 (鸡 蛋清蛋素卜白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =150: 1 )、 细辛醚 (脑) (鸡蛋 清蛋白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =150: 1 )、 非诺贝特 (鸡蛋清蛋 白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =150: 1 )、 熊果酸(鸡蛋清蛋白的浓度 为 5%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =150: 1 )、 23-羟基白桦酸(鸡蛋清蛋白的浓度为 1%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 = 150: 1 )、 2oc, 23-二羟基乌苏酸(鸡蛋清蛋白的浓 度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =150: 1 )、 伊曲康唑 (鸡蛋清蛋白的浓度为 10%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =150: 1 )、 骨化三醇(鸡蛋清蛋白的浓度为 0.005%; 鸡蛋清蛋白: 磷脂 =1: 1 )或坎地沙坦 (鸡蛋清蛋白的浓度为 10%; 鸡蛋清 蛋白: 磷脂 =150: 1 )。
实施例 37 - 2
具体操作同实施例 37。 不同的是将 "鸡蛋清蛋白" 置换为 "玉米蛋白", 药 物与 SPC、 玉米蛋白用适量乙醇溶解, 随后以乳糖溶液进行水化, 分散。 药物选 用恩替卡韦、 苯丙醇、 非布丙醇、 维生素 Π、 辅酶 Q10、 黄杨宁、 益心酮、 灯盏花素、 醋柳黄酮、 尼莫地平、 维生素 D、 丹参酮 Π Α、 丁苯酞、 藁本内酯、 胆维他 (茴三 硫)、 马洛替酯、 去甲斑蝥酸、 斑蝥素、 冬凌草甲素、 石杉碱甲、 草乌甲素、 海参提取物、 他汀类降脂药, 如 "洛伐他订", "辛伐他汀"、 阿德福韦酯、 VE 烟酸酯、 齐多夫定椋榈酸酯、 齐多夫定肉豆蔻酸酯、 齐多夫定棕胆固醇酯、 齐 多夫定胆固醇酯、 细辛醚 (脑)、 非诺贝特、 熊果酸、 23-羟基白桦酸、 la, 23 -二 羟基乌苏酸、 伊曲康唑或坎地沙坦。
实施例 37-3
鸡蛋清蛋白 lg
10g
0.05g
0.5g
3 g
制备: 取处方量的维生素 E、 胡萝 卜素、 EPC , 用适量无水乙醇溶解, 备 用。 取处方量的鸡蛋清蛋白、 甘油, 加入水制备 2%的溶液, 加入至维生素 E/ 胡萝 卜素 /EPC 溶液中, 分散, 过均质机 ( 4000 - 40000 psi ), 控制粒度小于 500nm,加入蒸馏水至 100ml ,得到含有维生素 E与胡萝 卜素的蛋白纳米分散液, 外用具有保湿、 细嫩皮肤作用; 加入哈士蟆分散后, 可得到外用面膜。 根据需 要尚可加入人参等植物提取物、 维生素 C棕榈酸酯、 辅酶 Q、 熊果苷、 氢醌、 曲酸、 各种蛋白水解物、 各种氨基酸等。
实施例 37-4
鸡蛋清蛋白 10g
EPC lg
维生素 C椋榈酸酯 0. lg
生育酚 O. lg 甘油 5 g
制备: 取处方量的生育酚、 维生素 C棕榈酸酯、 EPC , 用适量无水乙醇溶 解, 备用。 取处方量的鸡蛋清蛋白、 甘油, 加入水制备 50%的溶液, 加入至生 育酚 /维生素 C棕榈酸酯 /EPC溶液中, 分散, 过均质机 ( 4000 - 40000 psi ), 控制粒度小于 lOOOnm, 加入蒸馏水至 50ml, 得到含有生育酚与维生素 C棕榈 酸酯的蛋白纳米分散液, 外用具有保湿、 细嫩皮肤作用; 加入哈士蟆分散后, 可得到外用面膜。 根据需要尚可加入人参等植物提取物、 胡萝 卜素、 辅酶 Q、 熊果苷、 氢醌、 曲酸、 各种蛋白水解物、 各种氨基酸等。
实施例 38 碱性成纤维细胞因子(bFGF) (等电点 9.6 )
处方:
bFGF 500 μ g
人血白蛋白 10g
DMPG 0.07g
1,2-十四酰磷脂酸 0.03 g
海藻糖 10g
水 适量 (加至 100ml )
制备: 称取处方量的 bFGF加水 2ml 溶解, 将所得溶液与 DMPG、 1,2-十四酰 磷脂酸混合,分散, 备用。 取处方量的海藻糖, 加入注射用水 30ml 溶解, 加入 少量活性炭除热原, 冷却后加入 lOgHSA搅拌溶解, 与 bFGF的磷脂液体混合, 依次通过 0.8、 0.6、 0.4、 0.2、 0.1、 0.05 μ m微孔滤膜,得到透明分散液。 加 入 50ml 巿售的 20%人血白蛋白注射液, 混匀, 在 1000 ~ 10, 000 psi 较低压力 下均化循环 1个周期, 注射用水加至 100ml, 混匀, 得到最终分散液。 过滤( 0.2 μ ιη滤器)、 分装, 充氮气, 封口。 平均粒径小于 100nm。 也可以采用常规方法 进行冻干。
实施例 39
处方:
胸腺五肽 10mg
四肉豆蔻酰心磷脂 500mg
HSA lOOOmg
SPC lOOmg
乳糖 20g
制备: 取处方量的胸腺五肽、 四肉豆蔻酰心磷脂、 SPC , 加入适量水中, 搅拌、 分散, 过均质机 ( 4000 - 24000 psi ), 备用。 取处方量的 HSA, 加入水 制备 20%的溶液, 加入至胸腺五肽分散液体中, 20000 psi分散循环 2次, 控 制粒度在 100nm~ 200nm, 加入乳糖, 进行喷雾干燥, 得到含有胸腺五肽的蛋白 纳米粒颗粒。 此纳米粒可以进一步加工成为胶囊、 压片、 颗粒剂; 也可以直接 制备成粉雾剂, 肺部给药。
实施例 39-1
具体搡作同实施例 39。 不同的是釆用后插入法将 DSPE-PEG( PEG分子量 100 - 10000 )、 (PEG分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE- PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子 量 100 - 10000 )加入上述制剂中。
异海蒸马实施例 40
处馆丙藻蔺方:
糖水醚子
人血清白蛋白 ( HSA) 5g
心肌磷脂 5g
甲醇 3ml
冬凌草甲素 0.2g
麦芽糖 10g
蒸馏水 加至 100
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%麦芽糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径为 110nm。
实施例 40-1
具体操作同实施例 40。 不同的是采用后插入法将 DSPE-PEG ( PEG 分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )加入上述制剂中。
实施例 41
处方:
人血清白蛋白 ( HSA) 5g
心肌磷脂 5g
DPPE-PEG 10„o lg
3ml
0.2g
10g
加至
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%海藻糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径为 130 n m。
实施例 41-1
具体操作同实施例 41。 不同的是采用后插入法将 DSPE-PEG ( PEG 分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )力口入上述制剂中。
实施例 42
处方:
人血清白蛋白 ( HSA) 5g
心肌磷脂 5g
DLPG 5g
DPPE-PEG ,οοοο 0. lg
无水乙醇 3ml
高三尖酯碱 0.2g
海藻糖 lg
乳糖 10g 蒸馏水 加至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%乳糖、 1% 海藻糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径为 106nm。
实施例 42-1
具体搡作同实施例 42。 不同的是采用后插入法将 DSPE-PEG ( PEG 分子量 100 - 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )加入上述制剂中。
实施例 43
处方:
人血清白蛋白 ( HSA ) 3g
SPC 5g
1,2-二棕榈酰磷脂酸 lg
MCT lg
地塞米松棕榈酸酯 0.02g
海藻糖 10g
蒸馏水 加至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%海藻糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径为 90nm。
实施例 43-1
具体操作同实施例 43。 不同的是釆用后插入法将 DSPE-PEG ( PEG 分子量
100 ~ 10000 ) , DMPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )加入上述制剂中。
实施例 44
处方:
人血清白蛋白 ( HSA ) 3g
SPC 5g
1, 2-十六烷基磷脂酰乙醇胺 lg
MCT lg
氯霉素棕榈酸酯 0.02g
蒸馏水 力口至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒 径为 150nm。
实施例 44-1
具体操作同实施例 44。 不同的是采用后插入法将 0.01% ~ 10% ( w/v ) DSPE- PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )力口入上述制剂中。
实施例 45
处方:
人血清白蛋白 ( HSA) 3g
二棕榈酰磷脂酰甘油 5g 1,2-十六烷基磷脂酰乙醇胺 lg
海蒸麦 DMPE-PEG ig
乙餾醇芽藻 lg
藤黄酸 0.2g
5g
10g
加至 100
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%海藻糖、 5°/。麦芽糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径为 170nm。
实施例 45-1
具体操作同实施例 45。 不同的是采用后插入法将 0.01% ~ 10% ( w/v ) DSPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )加入上述制剂中。
实施例 46
处方:
人血清白蛋白 ( HSA ) 10g
1,2-二油酰基卵磷脂 3g
1, 2-二亚油酰基卵磷 lg
DMPE-PEG lg
乙醇 lg
二氢青蒿素 0.2g
麦芽糖 10g
蒸馏水 加至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%麦芽糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径为 120nm。
实施例 46-1
具体操作同实施例 46。 不同的是采用后插入法将 0.01% ~ 10% ( w/v ) DSPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )加入上述制剂中。
实施例 47
处方:
人血清白蛋白 (HSA) 10g
溶血磷脂酰肌醇 3g
1,2-二亚麻酰基卵磷脂 lg
乙醇 lg
二氢青蒿素 0.2g
海藻糖 10g
蒸馏水 加至 100 ml
具体操作参照 "实施例 1ϊ" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%海藻糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径为 130nm。 实施例 47-1
具体搡作同实施例 47。 不同的是采用后插入法将 0.01% ~ 10% ( w/v ) DSPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )力口入上述制剂中。
实施例 48
处方:
蟾蜍脂溶性提取物 0. lg
溶血磷脂酰甘油酯 0.02g
溶血磷脂酰丝胺酸 0.2g
1,2-二十二烷基磷脂酸 3g
猪血蛋白 PEG衍生物 lg
海藻糖 lOg
蒸馏水 加至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒 径小于 30nm。
实施例 48-1
具体操作同实施例 48。 不同的是采用后插入法将 0.01% ~ 10% ( w/v ) DSPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )加入上述制剂中。
实施例 49
处方:
辅酶 Q10 0. lg
四肉豆蔻酰心磷脂 10g
牛血清白蛋白 0. lg
海藻糖 20g
蒸馏水 加至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将人血清白蛋白换成牛血清白 蛋白, 10%蔗糖换成 20%海藻糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径小于 100nm。
实施例 49-1
具体搡作同实施例 49。 不同的是釆用后插入法将 0.01% ~ 10% ( w/v ) DSPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )力口入上述制剂中。
实施例 50
处方:
维生素 L 0. lg
1-椋榈酰 -2-油酰磷脂酸 2g
牛血清白蛋白 lg
海藻糖 10g
木糖醇 5g 蒸馏水 加至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将人血清白蛋白换成牛血清白 蛋白, 10%蔗糖换成 10%海藻糖与 5%木糖醇。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体 积粒径小于 100nm。
实施例 50-1
具体操作同实施例 50。 不同的是采用后插入法将 0.01% ~ 10% ( w/v ) DSPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )力口入上述制剂中。
实施例 51
处方:
20 (S)-原人参二醇 0. lg
1,2 -二十六烷基磷脂酸 ig
1- 十四酰 -2-羟基卵磷脂 lg
1- 亚油酰 -2-羟基卵磷脂 ig
1, 2-二油酰磷脂酸 lg
牛血清白蛋白 ig
海藻糖 lOg
蔗糖 5g
蒸馏水 力口至 100 ml
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%海藻糖与
5%蔗糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径小于 100nm。
实施例 51-1
具体操作同实施例 51。 不同的是采用后插入法将 DSPE-PEG ( PEG 分子量 100 - 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 ) , 或者 PEG-THS、 PEG - CHS, PEG-CHM加入上述制剂中。
实施例 52
处方:
20(1)-人参皂甙{^3
1-硬脂酰 -2-羟基卵磷脂
SPC HSA
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%海藻糖。 制备―得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径小于 100 n m。
实施例 52-1
具体操作同实施例 52。 不同的是采用后插入法将 DSPE- PEG ( PEG 分子量
100 - 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG 分子量 100~ 10000 ) 、 DPPE-PEG ( PEG 分子 量 100 ~ 10000 )或 DLPE- PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )加入上述制剂中。 实施例 53
处方:
人参皂甙 Rg2 0. lg 1-油酰- 2-羟基卵磷脂 0. Olg
EPG 1 g
EPC 10 g
1,2-二硬脂酰磷脂酸 0.1 g
1,2-十四酰磷脂酰甘油 0.1 g
1,2-二硬脂酰磷脂酰甘油 0.1 g
二棕榈酰磷脂酰胆碱 0.1 g
HSA 0.1 g
具体操作参照 "实施例 13" 进行。 不同的是将 10%蔗糖换成 10%海藻糖。 制备得到的蛋白纳米制剂其平均体积粒径小于 100nm。
实施例 53-1
具体操作同实施例 53。 不同的是采用后插入法将 DSPE-PEG ( PEG 分子量 100 ~ 10000 )、 PEG-THS, PEG _ CHS、 PEG-CH 、 DMPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 ) 、 DPPE-PEG ( PEG分子量 100 - 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )加入上述制剂中。
实施例 54
处方:
七叶皂苷钠 500mg
2 -二十八烷基磷脂酸 lg
1, 2-二棕榈酰磷脂酰甘油 2g
猪血蛋白 10g
水 适量
制备方法: 将处方中的七叶皂苷纳、 2-二十八垸基磷脂酸、 1, 2-二棕榈酰磷脂酰甘油、 猪血蛋白用水分散, 搅拌, 均质机 800psi处理, 水加至 50ml, 混匀, 即得。 外用可以消肿。 实施例 54-1
• 具体操作同实施例 54。 不同的是釆用后插入法将 DSPE-PEG ( PEG 分子量 100 - 10000 ) 、 DPPE-PEG ( PEG 分子量 100 - 10000 )、 DMPE-PEG ( PEG 分子 量 100 - 10000 )或 DLPE-PEG ( PEG分子量 100 ~ 10000 )力口入上述制剂中。 实施例 55 阿奇霉素滴眼液( 100ml )
处方:
阿奇霉素 lg
DLPG 2g
EDTA- 2Na 0.002g
洁尔灭 0.003g
HSA lg
水 适量
制备方法: 阿奇霉素、 DLPG用乙醇溶解, 得溶液; EDTA- 2Na 、 HSA溶解于水中, 配成 2%溶液, 加入上步制备的溶液中, 搅拌。 柠檬酸调 pH6~8, 微射流分散, 12000 psi处理 2 个循环, 加入洁尔灭与水, 调整体积至 100ml, 混匀, 得阿奇霉素滴眼液。
实施例 56 处方:
硝酸咪糠唑 lg
二癸酰磷脂酰胆碱 10g
HSA lg
壳聚糖 lg
水 适量
制备方法: 硝酸咪糠唑、 二癸酰磷脂酰胆碱用适量乙醇溶解, 备用; 壳聚糖用适量醋 酸溶解,加入巿售 20%HSA5ml与水 50ml ,混匀,加入至硝酸咪糠唑磷脂溶液中,分散, 16000 ps i处理 3个循环, 调 pH4 ~ 5 , 并调整体积至 100ml , 混匀, 得硝酸咪糠唑纳米粒制剂。 此 制剂可以外用于阴道给药。
可以将 "壳聚糖"换成 "十八胺"、 "脂肪胺"、 "多聚胺胆固醇阳离子脂质"、 "胆固醇阳离子脂质衍生物", 确保纳米粒荷正电荷, 实现阴道粘附给药目的。 实施例 57
处方:
辛伐他汀 lg
磷脂 2g
鸡蛋清蛋白 2 g
乳糖 10g
水 适量
制备方法: 取处方量的辛伐他汀、 磷脂, 用适量乙醇溶解, 备用。 取处方 量的鸡蛋清蛋白、 乳糖, 加入水制备 5%的溶液, 加入至辛伐他汀 /磷脂溶液中, 分散, 过均质机 ( 1 000 ~ 1 0000 ps i ), 控制粒度在 300nm ~ 500nm, 进行冷冻干 燥或者喷雾干燥, 得到含有辛伐他汀的蛋白纳米粒颗粒, 装胶囊或者直接压片, 或者制备成颗粒剂。
实施例 57-1
具体操作同实施例 5 7。不同的是用于 "他汀类药物"、 "水蛭素"、 "蜂毒肽"、 "胰岛素" 口服给药或者关节腔注射给药或者皮下注射给药的药剂制备。
实施例 58
处方:
降钙素 lg
磷脂 2g
蛋白 lg
海藻糖 2g
制备方法: 同 "实施例 57" 。 药剂注射给药或者鼻腔给药
实施例 59
处方:
蚓激酶 lg
磷脂 2g
蛋白 2g
甘露醇 10g 水 适量
制备: 同 "实施例 57"。 制剂口服给药。
实施例 60 纳米银
处方:
硝酸银 lg
水合肼 lg
磷脂 5g
PEG猪血蛋白 lg
水 加至 100ml
制备方法: 取硝酸银, 用水配制成 0. lMol/L, 加入磷脂, 20000psi分散循环 3次, 备 用。 取 PEG猪血蛋白, 以水配制成 5%溶液, 加入上述的脂质体分散液中, 10000 psi分散 循环 1次, 超滤除去未包封的硝酸银, 余下脂质体液体中加入水合肼, 搅拌, 反应 6小时, 超滤除去多余的水合肼, 水加至 50ml, 酸类物质调 pH至 6~7, 即得纳米银胶体。 平均粒 径小于 100nm。 外用 (包括阴道、 直肠等腔道给药)、 口服或者注射。
实施例 60-1
具体操作同实施例 60。 不同的是用于制备 "纳米金"、 "纳米铁" 等胶体分散系。 外用 (包括阴道、 直肠等腔道给药)、 口服或者注射或者磁靶向。
实施例 61 葫芦素 I (纯度大于 98%)
处方组成 ( 100ml, 葫芦素 I的浓度为 0. lmg/ml )
葫芦素 I 0. Olg
DMPC 5g
DSPE-PEG2000 0.2 g
HSA 0. lg
海藻糖 10g
水 适量
制备方法: 将处方量的葫芦素 I、 DMPC用少量乙醇溶解, 备用。 取处方量 的海藻糖, 加入注射用水 70ml 溶解, 加入少量活性炭除热原, 过滤, 滤液冷 却后, 加入葫芦素 I 的磷脂溶液中, 分散, 并依次通过 0.8、 0.6、 0.4、 0.2、 0.1、 0.05 μ m微孔滤膜,得到透明分散液, 备用; 加入 25ml 巿售的 20%HSA , 混匀, 所得溶液过滤除菌。 将所得的含有 HSA的水溶液加入上述分散体系中, 在 1000 ~ 20, 000 psi 下高压均化循环 2个周期, 得分散体系。 采用外插入法 将 0.2 g 的 DSPE- PEG2。。。插入上述分散纳米粒中, 过滤 ( 0.2 μ m滤器) 除菌、 分装, 封口即得。
可以采用冷冻干燥技术。
冻干工艺: 预冻: - 74 , 4h; 抽真空进行干燥。 第一阶段干燥: - 30°C ,
30min; 第二阶段干燥: - 20°C, 12h; 保温: 15°C , 5h。
实施例 61-1
具体操作同实施例 61。 不同的是在处方中加入常规量的抗氧化剂, 如生育 酚、 维生素 C或者 EDTA- 2Na。
实施例 61-2 具体操作同实施例 61。 不同的是将处方中的葫芦素 I 换成葫芦素提取物 (包括巿售的葫芦素 BE)、 葫芦素 A、 葫芦素 B、 异葫芦素 B、 双氢葫芦素 B、 葫芦素 C、 葫芦素 D、 异葫芦素 D、 双氢葫芦素 D、 异葫芦素 E、 双氢葫芦素 E、 葫芦素 F、 葫芦素 E、 四氢葫芦素 I、 葫芦素 Q。
实施例 61-3
具体操作同实施例 61。 不同的是釆用外插入法将不同 PEG 分子量的 DPPE-PEG, DMPE-PEG. DLPE- PEG插入纳米粒中。
实施例 62
处方:
葫芦素 Q 0. ig
多烯磷脂酰胆碱 10g
叔丁醇 20ml
蛋白 lg
蔗糖 20g
制备方法: 取处方量的葫芦素 Q、 多烯磷脂酰胆碱 、 叔丁醇, 搅拌溶解, 加入 50%蔗糖溶液 40 ml, 混匀, 加入 20 SA溶液 5ml, 混匀。 20000psi 高压 均质处理 1个循环, 补加注射用水至 100 ml, 混匀, 0.22 的滤膜过滤除菌, 平均粒度小于 50纳米。 分装, 每支 1 ml, 按照常规方法进行冷冻干燥, 可以 制备 1000 y g/ml/支的高浓度冻干产品。 由于葫芦素 Q的药理活性高, 一曰总 用量小于 1000 μ 8, 所以采用本发明的技术可以获得高浓度制剂, 这样就可减 少生产、 运输、 储存、 使用的成本。
实施例 63 加速实验考察多西紫杉醇纳米粒的化学稳定性
以 "实施例 13" 的处方为例 (冻干制剂 ), 进行室温加速试验考察。
测试条件:
色谱柱: Diamond 0DS 柱( 4.6 mm χ 200 mm, 5 μιη ); 流动相: 乙腈-水( 50 : 50, V: V); 柱温: 室温; 检测波长: 230 nm, 理论塔板数不低于 5000; 药物 浓度: 约为 20p g/ml; 进样量: 20 μΐ; 外标法。
测定结果见下表 6。 表 6 含量测定结果
Figure imgf000043_0001
粒径未发生明显变化。
实施例 64 不同多西紫杉醇制剂的急性毒性试验
药品: "实施例 13" 制剂与按照目前巿售多西他赛 (多西紫杉醇) 制剂的 处方工艺所制备的多西紫杉醇吐温 80溶液剂。
动物: 选择雄性小鼠, 小鼠体重在 18g- 20g。 给药剂量: 均为 100mg/kg。
给药途径: 静脉注射。
观察时间: 7天。
试验重复三次。
小鼠存活情况见下表 7。
不同处方小鼠存活情况
Figure imgf000044_0001
三批数据结果表明, 本发明的制剂 ( "实施例 13" )毒性远低于巿售多西他 赛 (多西紫杉醇) 制剂的处方工艺所制备的多西紫杉醇吐温 80溶液剂。
实施例 65 紫杉醇纳米粒
按照 "实施例 13" 的方法进行制备, 不同的是将药物 "多西紫杉醇" 换成 "紫杉醇" 即可。
制备得到的分散体很容易地通过 0.22 μ ιη微孔滤膜, 实现除菌过滤目的。 放置约 30小时无沉淀产生。
实施例 65 的对照例 说明釆用氯仿溶剂制备蛋白纳米粒的问题
紫杉醇 60 mg
氯仿 1ml
HSA 600mg
制备方法: 称取处方量的紫杉醇, 用 1ml氯仿溶解, 所得溶液备用。 取巿 售 HSA注射液, 以水稀释配制成 2%的浓度, 即 30ml 的 2%HSA溶液。 用 2%HSA 溶液对紫杉醇氯仿溶液进行乳化, 并于 20000psi 下进行分散。 所得纳米分散 液于减压下回收氯仿, 余下液体难以通过 0.8 μ ηι微孔滤膜。 放置约 1 小时即 产生沉淀。
实施例 66 紫杉醇纳米粒毒性试验
药品: "实施例 65" 制备的制剂与按照目前市售紫杉醇 (采用 Creraophor RH40聚乙二醇蓖麻油) 制剂的处方工艺所制备的紫杉醇溶液剂。
动物: 选择雄性小鼠, 小鼠体重在 18g- 20g。
给药剂量: 均为 50mg/kg。
给药途径: 静脉注射。
观察时间: 7天。
试验重复三次。
小鼠存活情况见下表 8。 不同处方小鼠存活情况
Figure imgf000044_0002
三批数据结果表明, 本发明的制剂 ( "实施例 65" )毒性远低于巿售紫杉醇 制剂的处方工艺所制备的紫杉醇溶液剂。
实施例 67 葫芦素 B磷脂蛋白纳米制剂药效试验
酶标仪 (瑞士 Sunrise)、 溴化 3 - ( 4, 5 - 二甲基噻唑 - 2 ) - 2, 5 - 二 苯基四氮唑 (MTT ) (美国 Fluka)、 DMSO (Sigma )、 RPMI 1640培养液(GIBCO)、 胎牛血清(FBS) (天津 TBD生物技术中心)。
分别以人喉癌上皮细胞 ( Hep-2 )、 人肝癌细胞 ( HePG-2 )、 人肺腺癌细胞 ( A549 ) 考察了葫芦素 B HSA纳米粒对体外肿瘤细胞生长的抑制作用, 并在这 些细胞中比较相同剂量的葫芦素 B乳剂和脂质体的抑制作用。
1、 试验方法
将细胞用含 10 %胎牛血清的 RPMI 1640 培养液培养, 置 37 °C、 5 %C02 培 养箱中, 每 3 - 4 天传代 1 次。 选对数生长期的细胞用于实验。 贴壁细胞用 0。
25%胰酶(含 EDTAlmM )消化后悬浮于培养液中, 调细胞浓度为 2.5 χ 104/ ml , 按每孔 100 μ L接种于 96 孔板上,每孔设 3 个复孔。 空白对照孔 ( b 1 ank ) 加 培养液。 培养 18-24h 待细胞贴壁后, 分组加入不同浓度药物 ( 0.5 μ 1 ), 余 一组为对照组(加细胞不加药)。 继续培养一定时间 (如 24或 48小时) 后, 每 孔加入 5 mg/ ml MTT试剂 10 μ L ,继续培养 4 h , 每孔加入 10%SDS (含 1 OmM 盐酸) ΙΟΟ μ 1, 培养箱内过夜。 用酶标仪(570nm 波长) 测每孔的 0D (optical density) 值。 根据 0D 值求出细胞抑制率,计算公式为抑制率 (inhibi t ion rate , IR) =[ (对照组 0D值均数 - b 1 ank组 OD值均数)- (实验组 0D 值均数 - blank组 0D值均数)] / (对照组 0D 值均数 -blank组 0D值均数)。
即: 抑制率(%) = 1- ( 0D实验- 0D空白) / ( 0D对照 - 0D空白 )
(一 ) 葫芦素 B溶液对 Hep-2细胞的生长抑制作用
在 Hep-2细胞的培养液中分别加入浓度为 0. 1、 1、 10、 ΙΟΟ μ Μ的葫芦素 B (用 DMS0溶解),考察培养不同时间后葫芦素 Β对 Hep-2细胞的生长抑制作用。 可见葫芦素 B对 Hep-2细胞增殖的抑制作用随时间延长和剂量提高而增强。 特 别是在作用时间长、 剂量高时这种趋势更为明显。 结果见图 7。
(二) 不同葫芦素 B/ HSA (人血清白蛋白 ) 比例制备的纳米粒对不同肿瘤 细胞生长的抑制作用
按照 "实施例 4" 制备了含 HSA 2%或 3%的葫芦素 B HSA纳米粒 ( CuB药物 浓度相同, 即均为 0. lmg/ml )。 在 2%HSA 的处方中葫芦素 B 与 HSA 的比例为 1 /200 ( w/w ) , 在 3%HSA 的处方中 CuB与 HSA的比例为 1 /300 ( w/w )。 为了阐 明制备纳米粒的重要性, 我们将 CuB用含 10%乙醇的注射液水溶解, 制备 CuB 溶液, 并按照 CuB/HSA为 1/300 ( w/w) 的比例加入 HSA, 使得 CuB/HAS溶液中 HSA 的浓度为 3%。 分别考察 CuB HSA 纳米粒、 CuB /HSA 溶液在不同剂量下对 Hep- 2、 A549、 HepG- 2 肿瘤细胞生长的抑制作用。 结果分别见图 8、 图 9、 图 100
从图中可以看出葫芦素 B纳米粒对 Hep-2、 A549、 HepG- 2细胞的生长抑制 作用均随剂量的升高而增强。 葫芦素 B 的 HSA 溶液仅在 Hep- 2 细胞中随剂量 升高表现出逐渐增强的抑制作用; 但在 HepG- 2细胞中剂量超过 ΙΟηΜ后抑制作 用没有明显增强; 在 A549细胞中剂量超过 ΙΟΟηΜ后抑制作用反而呈下降趋势。 葫芦素 B HSA 纳米粒在各细胞中剂量达到 Ι μ Μ后抑制作用明显强于溶液, 其 中 3%HSA的纳米粒抑制作用要明显强于 2%HSA的纳米粒。可以发现, CuB的 HSA 溶液对几种肿瘤细胞的抑制作用随剂量升高变化不如纳米粒明显, 在 A549 细 胞中剂量超过 ΙΟΟηΜ后抑制作用反而呈下降趋势, 很有可能是因为这种细胞的 摄取机制被大量不携带药物的 HSA所饱和, 反而阻碍了药物进入细胞。 对于普 通的脂质体和乳剂, 只能通过非特异性的融合或胞吞等途径通过细胞膜, 细胞 对其亲和力和摄取的选择性较 HSA纳米粒低。 当纳米粒中的 HSA达到 3%时, 这 一优势表现得更为明显。
实施例 68 葫芦素 B HSA纳米粒与乳剂、 脂质体对不同肿瘤细胞生长抑制作用的比较 比较同等剂量的 CuB不同制剂 (葫芦素 B/HSA溶液、 CuB HSA纳米粒、 CuB 脂质体、 CuB乳剂 ) 对 Hep-2、 A549、 HepG-2肿瘤细胞生长的抑制作用。 结果 见图 11。
由图 11 可见 3%HSA的 CuB纳米粒对 Hep-2、 A549、 HepG-2 细胞均表现出 最强的抑制作用; 2%HSA的 CuB纳米粒对 Hep-2细胞的抑制作用强于脂质体和 乳剂; 在 A549细胞中抑制作用低于脂质体; 在 HepG-2细胞中作用与乳剂和脂 质体相近。 CuB HSA溶液在各组中抑制作用都较弱, 但在 Hep-2细胞中强于脂 质体。
综合上述试验结果, CuB HSA纳米粒对体外的肿瘤细胞生长表现出较强的 抑制作用。 HSA 能结合肿瘤细胞膜上的白蛋白结合蛋白 ( albumin binding protein, ABP ), 使其携带的药物容易被肿瘤细胞所摄取。 在 CuB HSA 纳米粒 中, 药物大部分被包裹在蛋白形成的颗粒内部, 通过颗粒表面的 HSA与细胞表 面受体结合, 将药物转运至细胞内部; 对于 CuB HSA溶液, 其中只有 一部分 CuB与 HSA形成分子结合体, 还有大量药物和 HSA均以游离的分子状态存在于 溶液中。
实施例 69 葫芦素 B HSA纳米粒的体内抗肿瘤和升高白细胞作用
按照抗肿瘤药物实验方法进行, 建立裸鼠体内肝癌 H22移植模型。 随机分 组,每组 10只,分别为 "空白对照组"、 "环磷酰胺阳性对照组( CTX 20mg kg"1 )'\ "给药治疗组(高、 中、 低剂量组, 0, 20mg.kg-' 、 0. lOmg kg"1, 0. 05 mg kg"') '\ "溶液组" (非纳米粒制剂 )。 模型对照组给予生理盐水注射液。 造模后第四天 待肿瘤有一定体积时开始给药。 给药时间: 第 5、 7、 9、 11、 13天给药。 第 14 天时, 断颈法处死动物, 称体重, 解剖剥离瘤块, 电子天平称瘤重。 根据下面 公式计算抑瘤率。
抑瘤率 ( °/。) = (1 -给药组平均瘤重 照组平均瘤重) X 100%,
所有数据均釆用均值用标准差表示 土 SD),
小鼠尾静脉采血, 进行常规血白细胞计数。
结果见下表 9。 表 9 葫芦素 B纳米粒抗 H22实验结果 小鼠数 体重 (g)
量 瘤重 (g) 抑 瘤 组 给药剂量 起始 结束
(起始 ( 土 SD) 率(%) /终止)
对照组 - 10/8 19. 36 25. 86 2.82土 0. 71 -
CTX 20mg/kg 10/9 19. 77 21. 08 1.26 ± 0. 63 * * 55. 3 高剂量 0.2mg/kg 10/10 20. 06 24. 16 1. 18 ± 0. 58 * * 58. 2 中剂量 0. lmg/kg 10/10 19.62 25. 38 1.43 ± 0. 67 * * 49. 3 低剂量 0. 05mg/kg 10/10 19.88 25.66 1. 77 ± 0. 55 * 37. 2 药物溶液 0. lmg/kg 10/8 19.62 24. 71 1. 91 ± 0. 83 * 32. 3
* P<0. 01 * P<0. 05
葫芦素 B溶液组有两只小鼠死亡, 而纳米粒组无小鼠死亡, 毒性小于溶液 组; HSA 纳米粒制剂的抑瘤率大于溶液组。 HSA 纳米粒在剂量为溶液组的一半 时, 抑瘤率仍高于溶液; 在剂量高于溶液一倍时, 毒性仍然低于溶液组, 显示 出提高疗效, 降低毒性的作用。
"空白对照组"、 "环磷酰胺阳性对照组( CTX, 20mg.kg )"、"给药治疗组(高、 中、 低剂量组, 0.20mg kg"1 、 0. lOmg kg"1, 0. 05 rag-kg"1) "溶液组" 的白 细胞数分别为: 6.89、 3. 11、 8. 63. 8. 11、 8.21、 8.26 ( χ 10' - L"1) , 环磷酰胺 阳性对照组的白细胞数大大下降, 葫芦素各组的白细胞数均高于环磷酰胺阳性 对照组, 高于空白对照组。

Claims

杈利要求
1、 一种给药系统, 其特征在于, 所述给药系统包括蛋白质-磷脂分散体, 在蛋白质-磷脂分散体中, 蛋白质与磷脂的重量比为 1 : 300 - 300 : 1 , 蛋白质- 磷脂粒径在 5nm ~ 1 O O Onm之间。
2、 如权利要求 1所述的给药系统, 其特征在于, 在所述蛋白质 -磷脂分散 体中, 磷脂表面或磷脂表面与内部包被蛋白质层, 或者脂质体双分子层内外层 包被蛋白质, 或在脂质体内水相形成蛋白纳米粒。
3、 如权利要求 1 或 2 所述的给药系统, 其特征在于, 所述蛋白质选自人 血白蛋白、 牛血清白蛋白、 卵清蛋白、 玉米蛋白、 血红蛋白及其衍生物、 半乳 糖化白蛋白和修饰猪血白蛋白中的至少一种。
4、 如权利要求 1 ~ 3任一项所述的给药系统, 其特征在于, 所述磷脂选自 下列中的至少一种: 大豆卵磷脂、 蛋黄卵磷脂、 EPG、 磷脂酸、 心肌磷脂、 鞘 磷脂、 磷脂酸丝氨酸、 磷脂酰肌醇、 磷脂酰乙醇胺、 氢化大豆卵磷脂、 氢化蛋 黄卵磷脂、 二硬脂酰磷脂酰胆碱, 二棕榈酰磷脂酰胆碱、 二油酰磷脂酰胆碱、 二肉豆蔻酰磷脂酰胆碱、 二月桂酰磷脂酰胆碱、 二癸酰磷脂酰胆碱、 二辛酰磷 脂酰胆碱、 二己酰磷脂酰胆碱、 二硬脂酰磷脂酰甘油及其钠盐, 二棕榈酰磷脂 酰甘油及其钠盐, L- α -二肉豆蔻酰磷脂酰甘油及其钠盐, 二月桂酰磷脂酰甘 油、 二癸酰磷脂酰甘油、 二辛酰磷脂酰甘油、 二己酰磷脂酰甘油、 二硬脂酰磷 脂酰乙醇胺, 二棕榈酰磷脂酰乙醇胺、 二油酰磷脂酰乙醇胺, 二肉豆蔻酰磷脂 酰乙醇胺、 二月桂酰磷脂酰乙醇胺、 双二硬脂酰磷脂酰甘油及其钠盐、 双二棕 榈酰磷脂酰甘油及其钠盐、 双二肉豆蔻酰磷脂酰甘油及其钠盐、 双二月桂酰磷 脂酰甘油、 二硬脂酰磷脂酰肌醇、 二棕榈酰磷脂酰肌醇、 二油酰磷脂酰肌醇、 二肉豆蔻酰磷脂酰肌醇、 二月桂酰磷脂酰肌醇、 棕榈酰油酰磷脂酰胆碱、 棕榈 酰亚油酰磷脂酰胆碱、 硬脂酰亚油酰磷脂酰胆碱、 硬脂酰油酰磷脂酰胆碱、 硬 脂 酰花 生 四 烯酰磷脂酰胆碱 、 DSPE-PEG、 DPPE-PEG、 DMPE-PEG 和 DLPE-PEG , 其中所述 DSPE-PEG、 DPPE-PEG. DMPE-PEG . DLPE-PEG中 PEG 的分子量为 100 - 10000。
5、 如权利要求 1 ~ 4任一项所述的给药系统, 其特征在于, 还包括选自 乙 醇、 甲醇、 丙醇、 丙二醇、 甲基吡咯烷酮、 正丁醇、 叔丁醇、 丙酮、 乙酸乙酯 和异丙醚中至少一种的有机溶剂。
6、 如权利要求 1 ~ 5任一项所述的给药系统, 其特征在于, 还包括与磷脂 重量比为 1: 0.1 - 1: 10的油类物质, 所述油类物质选自 MCT、 结构油、 生育 酚、 醋酸生育酚、 油酸、 油酸乙酯、 大豆油、 红花油、 橄榄油、 椰子油、 辛酸、 葵酸、 月桂酸、 棕榈酸、 亚油酸、 亚麻油酸、 二十二碳六烯酸、 深海鱼油及植 物挥发油中的至少一种。
7、 如权利要求 1 ~ 6任一项所述的给药系统, 其特征在于, 还包括配体、 抗体, 所述配体选自半乳糖衍生物、 转铁蛋白衍生物、 叶酸及其衍生物、 氨基 葡萄糖衍生物或 RGD及其衍生物; 所述的抗体选自 鼠源、 人源、 重组鼠源或重 组人源的抗体。
8、 如权利要求 1 ~ 7任一项所述的给药系统, 其特征在于, 还包括胆固醇 和 /或谷 醇。
9、 如权利要求 1 - 8任一项所述的给药系统, 其特征在于, 还包括选自壳 聚糖、 十八胺、 脂肪胺、 多聚胺胆固醇阳离子脂质或胆固醇阳离子脂质衍生物 的荷正电物质。
10、 如杈利要求 1 ~ 9任一项所述的给药系统, 其特征在于, 还包括 pH调 节剂。
11、 如权利要求 10所述的给药系统, 其特征在于, 所述的 PH调节剂为有 机酸碱或无机酸碱, 其选自柠檬酸、 乳酸、 富马酸、 酒石酸、 乙酸、 葡萄糖酸、 乳糖酸、 山梨酸、 琥珀酸、 马来酸、 抗坏血酸、 草酸、 甲酸、 苯磺酸、 苯甲酸、 谷氨酸、 天冬氨酸、 盐酸、 硫酸、 磷酸、 硝酸、 氢氧化钠、 精氨酸和赖氨酸中 的至少一种。
12、 权利要求 1-11 中任何一项所述的给药系统的制备方法, 其特征在于, 该方法包括以下步骤:
( 1 ) 含磷脂相的制备;
( 2 ) 含蛋白质水相的制备; 和
( 3 )将含磷脂相与含蛋白质水相混合, 于温度 0 ~ 6(TC、 压力 400 - 40000 psi条件下, 进行任选的挤出步骤, 然后进行均质化处理。
13、 如权利要求 12 所述的制备方法, 其特征在于, 所述含蛋白质水相为 0.005 - 50% ( g/ml ) 的蛋白质水溶液。
14、 如权利要求 12或 13所述的制备方法, 其特征在于, 所述均质化处理 为高压均质化或微射流均质化。
15、 如权利要求 12- 14 中任一项所述的制备方法, 其特征在于, 还包括冷 冻干燥或喷雾干燥。
16、 如权利要求 15 所述的制备方法, 其特征在于, 冷冻干燥或喷雾干燥 中使用的添加剂为蔗糖、 乳糖、 葡萄糖、 甘露醇、 右旋糖苷、 海藻糖、 木糖醇、 麦芽糖、 果糖、 蛋白、 壳聚糖、 甘氨酸、 枸櫞酸和氯化钠中的至少一种。
17、 如权利要求 12-16 中任一项所述的制备方法, 其特征在于, 还包括过 滤除菌。
18、 蛋白质 -磷脂分散体在药物给药系统中的应用。
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