PL205149B1 - Sposób przygotowania rekombinowanej hCG - Google Patents

Sposób przygotowania rekombinowanej hCG

Info

Publication number
PL205149B1
PL205149B1 PL357508A PL35750801A PL205149B1 PL 205149 B1 PL205149 B1 PL 205149B1 PL 357508 A PL357508 A PL 357508A PL 35750801 A PL35750801 A PL 35750801A PL 205149 B1 PL205149 B1 PL 205149B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
hcg
column
eluting
sample
ion exchange
Prior art date
Application number
PL357508A
Other languages
English (en)
Other versions
PL357508A1 (pl
Inventor
Gianfranco Paradisi
Mara Rossi
Laura Scaglia
Original Assignee
Serono Lab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Serono Lab filed Critical Serono Lab
Publication of PL357508A1 publication Critical patent/PL357508A1/pl
Publication of PL205149B1 publication Critical patent/PL205149B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/36Extraction; Separation; Purification by a combination of two or more processes of different types
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/59Follicle-stimulating hormone [FSH]; Chorionic gonadotropins, e.g.hCG [human chorionic gonadotropin]; Luteinising hormone [LH]; Thyroid-stimulating hormone [TSH]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P15/00Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P15/00Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
    • A61P15/08Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives for gonadal disorders or for enhancing fertility, e.g. inducers of ovulation or of spermatogenesis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00Drugs for disorders of the endocrine system

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Pregnancy & Childbirth (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Detergent Compositions (AREA)

Description

Opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy sposobu przygotowania rekombinowanej ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCG) z próbek surowej rekombinowanej hCG. Sposób obejmuje wykorzystanie chromatografii jonowymiennej oraz HPLC w odwróconym układzie faz.
Gonadotropina kosmówkowa jest hormonem wydzielanym przez łożysko, tradycyjnie otrzymywanym z moczu ciężarnych kobiet.
Hormon ten jest heterodimerem składającym się ze związanych ze sobą niekonwalenyjnie dwóch podjednostek α i β. Pełni on zasadniczo taką samą rolę, co luteinizujący hormon gonadotropowy.
Gonadotropina kosmówkowa jest podawana kobietom w leczeniu czynnościowej niepłodności jajnikowej, wynikającej z braku lub niskiego stężenia gonadotropin, w celu wywołania owulacji po wywołaniu rozwoju pęcherzyków hormonem folikulotropowym, lub ludzką gonadotropiną menopauzalną. Pojedyncza dawka od 5000 do 10000 jednostek jest podawana w postaci domięśniowego zastrzyku tak, aby naśladować wyrzut hormonu luteinizującego w środku cyklu miesiączkowego naturalnie stymulującego jajeczkowanie. Gonadotropina kosmówkowa podawana jest również wraz z menotropin, a czasami także z cytrynianem klomifenu, jako środkiem wspomagającym właściwe zapłodnienie pozaustrojowe (in vitro) oraz wraz z innymi procedurami wspomaganego zapłodnienia obejmującymi jajeczkowanie mnogie i pobranie komórki jajowej. U mężczyzn wykorzystywana jest w leczeniu przedpokwitaniowego wnętrostwa. Zakres dawek jest bardzo szeroki, zazwyczaj jednak dawki wynoszą od 500 do 4000 jednostek podawanych w zastrzyku domięśniowym trzy razy w tygodniu.
Jest ona podawana także w leczeniu bezpłodności u mężczyzn związanej z hipogonadyzmem hipogonadotropowym. I tu ponownie istnieje istotne zróżnicowanie w trybie dawkowania, dawki wahają się od 500 do 4000 jednostek podawanych dwa lub trzy razy w tygodniu. Często dodawany jest lek o aktywnoś ci folikulotropowej taki, jak menotropina, w celu zapewnienia prawidł owej spermatogenezy. W oligospermii dawki gonadotropiny kosmówkowej przekraczające 3000 jednostek na tydzień mogą być stosowane wraz z menotropiną lub innym folikulotropowym preparatem. W leczeniu opóźnionego dojrzewania płciowego chłopców związanego z hipogonadyzmem dawka od 500 do 1500 jednostek jest podawana dwa razy w tygodniu; dawka powinna być dostosowana do stężenia testosteronu w osoczu.
W procesie izolacji i oczyszczania hCG z próbek surowego moczu wykorzystywane były różne sposoby (Birken et al., Endocrinology, 133(3): 1390-7, 1993; Sakakibara et al., Chem. Pharm. Bull., 35(5): 1414-6, 1990; Donini et al., Acta Endocrinol., 73(1): 133-45, 1973). Ostatnio opracowano odmienną metodę chromatografii powinowactwa, określaną jako filtracyjna chromatografia powinowactwa, którą stosowano do oczyszczania hCG z moczu (Xu et al., Protein expression and purification, 16: 221-3, 1999). Sposób ten pozwala uniknąć wykorzystania aktywowanej BrCN kolumny Sepharose jako fazy stałej w kolumnie chromatografii powinowactwa i stanowi wariant tradycyjnie wykorzystywanych metod oczyszczania hCG z próbek moczu przez chromatografię powinowactwa. Aktywność immunologiczna oczyszczonej tym sposobem hCG wynosi 8554 IU/mg.
Rekombinowana hCG posiada tę przewagę, że jest wolna od innych hormonów gonadotropowych i zanieczyszczeń pochodzenia ludzkiego, w szczególności tych obecnych w ludzkim moczu. Surowy preparat rekombinowanej hCG zawiera jednak wszystkie inne białka i zanieczyszczenia pochodzące z komórek wykorzystywanych podczas rekombinacyjengo procesu wytwarzania, wobec czego sposób prowadzący do uzyskania absolutnej czystości rekombinowanej gonadotropiny kosmówkowej jest szczególnie pożądany.
Twórcy wynalazku ujawnili, że surowy preparat hCG pochodzący z próbki pożywki hodowli otrzymanej po procesie rekombinacji lub z surowego koncentratu moczu ciężarnych kobiet może być oczyszczony w takim stopniu, iż otrzymana hCG jest praktycznie wolna od innych białek lub innych zanieczyszczeń zawartych w surowym preparacie hCG.
Sposób oczyszczania jest oparty na wykorzystaniu chromatografii jonowymiennej i HPLC w odwróconym układzie faz. Możliwość dalszego wykorzystania kolumny do chromatografii wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek pozwala na usunięcie wszelkich pozostałych śladowych zanieczyszczeń. Optymalne rezultaty uzyskano, gdy przeprowadzono minimum dwa etapy oczyszczania z wykorzystaniem chromatografii jonowymiennej.
Sposób przygotowania z próbki rekombinowanej hCG według wynalazku obejmuje etapy:
(a) wymywania próbki z kolumny chromatograficznej wypełnionej żelem krzemionkowym;
(b) wymywania próbki z jonowymiennej kolumny chromatograficznej;
(c) wymywania z drugiej jonowymiennej kolumny chromatograficznej;
PL 205 149 B1 (d) wymywania z kolumny HPLC w odwróconym układzie faz; i (e) poddania eluatu chromatografii wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek, przy czym otrzymywany rekombinowany hCG wykazuje swoistą bioaktywność w zakresie 23000-28000 IU/mg.
Korzystnie sposób według wynalazku obejmuje etapy:
(a) wymywania próbki z kolumny chromatograficznej wypełnionej żelem krzemionkowym;
(b) wymywania próbki z jonowymiennej kolumny chromatograficznej DEAE Sepharose;
(c) wymywania z jonowymiennej kolumny chromatograficznej CM-Sepharose;
(d) wymywania z kolumny HPLC Silica C18 w odwróconym układzie faz; i (e) poddania eluatu chromatografii wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek na kolumnie Sephacryl.
Korzystnie wymywanie z jonowymiennej żywicy DEAE Sepharose prowadzi się stosując roztwór buforowy fosforanu sodu o pH 7,5. Również korzystnie wymywanie z jonowymiennej żywicy CM-Sepharose prowadzi się stosując roztwór buforowy fosforanu sodu o pH 6.
Ponadto korzystnie etap (d) sposobu według wynalazku - HPLC w odwróconym układzie faz prowadzi się stosując jako fazę ruchomą układ 2-propanol/roztwór buforowy tris-fosforanowy. Również korzystnie etap (e) - chromatografia wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek - prowadzi się stosując jako fazę ruchomą roztwór buforowy wodorowęglanu amonu.
Najkorzystniej próbką stosowaną w sposobie według wynalazku jest pożywka hodowlana komórek CHO.
Sposób według wynalazku może być zatem wykorzystany do oczyszczania rekombinowanej hCG z próbek pochodzących z pożywki hodowlanej, otrzymanych po procesie rekombinacji. Otrzymana r-hCG o wysokim stopniu czystości i wysokim stopniu bioaktywności (w przedziale od 23000-28000 IU/mg) jest praktycznie wolna od białek płodowej surowicy bydlęcej (FBS), jeżeli jest ona obecna w pożywce hodowli, od kwasów nukleinowych oraz od innych zanieczyszczeń obecnych w komórkach gospodarza wykorzystanych w procesie rekombinacyjnym.
Sposób według wynalazku może być też wykorzystywany do oczyszczania zarówno moczowego hCG, pochodzącego z surowego koncentratu moczu ciężarnych, jak też do oczyszczania CG pochodzącego od innych gatunków ssaków, obejmujących na przykład krowy, konie, świnie, owce i małpy.
Niniejszym opisano także kompozycję farmaceutyczną zawierającą terapeutycznie skuteczną ilość oczyszczonej rekombinowanej hCG, otrzymanej w procesie rekombinacji, jak opisano powyżej, wraz z odpowiednimi zaróbkami. Przykładem takiej zaróbki jest sacharoza wspomagająca stabilizację liofilizowanego produktu. Kompozycja farmaceutyczna rekombinowanej hCG jest szczególnie odpowiednia do podawania podskórnego.
Szczegółowy opis wynalazku
Wynalazek dostarcza sposobu przygotowania rekombinowanej hCG (r-hCG) z surowego preparatu pochodzącego z pożywki hodowlanej procesu rekombinacyjnego. Otrzymana r-hCG charakteryzuje się wysokim stopniem czystości i wysoką bioaktywnością właściwą (w zakresie od 23000-28000 IU/mg). Jest ona praktycznie wolna od białek płodowej surowicy bydlęcej (FBS), które są obecne w pożywce hodowlanej, i od kwasów nukleinowych oraz innych zanieczyszczeń znajdujących się w komórkach gospodarza wykorzystywanych w procesie rekombinacji.
Wynalazek jest przeznaczony do stosowania z materiałami biologicznymi, w szczególności z surowymi mieszaninami zawierającymi hCG oraz inne zanieczyszczające białka, określanymi tutaj jako próbki substancji wyjściowej. Szczegółowo opisane poniżej przykłady wykorzystują próbki substancji wyjściowej zawierające r-hCG otrzymane ze stanowiącego pożywkę supernatantu hodowli komórkowej z bioreaktora. Alternatywnie, próbką może być surowy koncentrat moczu kobiet ciężarnych.
Próbkę stanowi świeżo zebrany supernatant hodowli komórkowej poddawany przez dwa dni perfuzji w bioreaktorze. Korzystnie supernatant jest klarowany przez filtrację. Jeśli jest to konieczne nieoczyszczony roztwór jest zatężany i poddawany chromatografii na żelu krzemionkowym C4, w celu usunięcia zanieczyszczeń pochodzących z hodowli komórkowej.
Półoczyszczony zbiór, po ultrafiltracji, jest następnie poddawany chromatografii jonowymiennej, która jest korzystnie przeprowadzana dwukrotnie i korzystnie prowadzona w różnych warunkach, oraz chromatografii HPLC w odwróconym układzie faz. Pierwszy może być prowadzony etap wymiany jonowej na kolumnie DEAE Sepharose, zasadniczo jako etap „przepływu hCG, w którym znaczna większość białek niebędących hCG i DNA zostaje wyeliminowana. Drugi etap wymiany jonowej, korzystnie prowadzony z wykorzystaniem kolumny CM-Sepharose, działa jako etap wiązania hCG i eliminuje resztkowe DNA oraz komórki gospodarza lub zanieczyszczenia białkowe średniej wielkości.
PL 205 149 B1
W korzystnym wykonaniu etap ten jest prowadzony w temperaturze 5°C z wykorzystaniem roztworu buforowego fosforanu sodu o pH 6 jako eluentu.
Etap HPLC w odwróconym układzie faz na kolumnie Silica C18 jest skuteczny w usuwaniu śladowych ilości kwasów nukleinowych oraz zanieczyszczeń pochodzących z hodowli komórkowej. Kolumna jest korzystnie eluowana układem 2-propanol/roztwór buforowy Tris-fosforanowy, jako fazą ruchomą. Korzystnie, retentat jest wówczas poddawany ultrafiltracji o wartości odcięcia 10kD, zatężaniu i może być odzyskiwany wodorowęglanem amonu o pH 8. Korzystnie, zatężony produkt jest poddawany chromatografii wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek na kolumnie Sephacryl S200 HR. W tym etapie, rozdział oparty na różnicy rozmiarów cząsteczek uzyskiwany na skutek wymywania wodorowęglanem amonu o pH 8 prowadzi do usunięcia śladowych ilości zanieczyszczeń pochodzących z hodowli komórkowej, oraz ewentualnych agregatów i wolnych podjednostek hCG. Eluat może wówczas zostać poddany dializie przez ultrafiltrację na membranie o wartości odcięcia wynoszącej 10 kD, korzystnie w roztworze buforowym fosforanu sodu o pH 7. Korzystnie, po przefiltrowaniu hCG jest przechowywana w jałowych butelkach w niskiej temperaturze.
P r z y k ł a d 1
Odczynniki:
Amoniak, czystość analityczna
Wodorowęglan amonu, czystość analityczna (B.P.)
Wodorfosforan dwusodowy, czystość analityczna
Skażony etanol absolutny,
Kwas fosforowy, czystość analityczna (Ph.Eur.)
2-propanol, czystość analityczna (Ph.Eur.)
Chlorek sodu, czystość analityczna (Ph.Eur.)
Dwuwodorofosforan sodu, czystość analityczna
Pastylki wodorotlenku sodu, czystość analityczna (Ph.Eur.)
Kwas trifluorooctowy (TFA), czystość HPLC
Tris-(hydroksymetylo)aminometan, czystość analityczna
Schemat technologiczny podsumowujący proces oczyszczania
Zebrany materiał pochodzący z procesu hodowli komórkowej jest oczyszczany i zatężany w serii pięciu etapów chromatograficznych.
Następujący schemat technologiczny (Tabela 1) podsumowuje korzystne wykonanie oczyszczania r-hCG przedstawiając w zarysie zasady postępowania oraz żywice wykorzystywane w każdym z etapów poś rednich.
T a b e l a 1
Schemat technologiczny podsumowujący proces oczyszczania r-hCG
Etap I POŻYWKA HODOWLANA Z BIOREAKTORA | chromatografia na kolumnie C4 Silica (Eluat zawiera r-hCG) | Ultrafiltracja na membranie o przepuszczalności do 10 kDa (Retentat zawiera r-hCG) | Zbiór zatężonego surowego r-hCG |
1 2
Etap II DEAE SEPHAROSE FF (Niezwiązana frakcja zawiera r-hCG |
Etap III CM SEPHAROSE FF (Eluat zawiera r-hCG) |
Etap IV RP-HPLC na kolumnie SILICA C18 (Eluat zawiera r-hCG) | Ultrafiltracja (10 kD)
PL 205 149 B1
c.d. tabeli 1
1 2
Etap V SEPHACRYL S-200 HR (Eluat zawiera r-hCG) | roztwór r-hCG
Szczegółowy schemat technologiczny oraz opis sposobu dostarczono poniżej. Podane warunki prowadzenia etapu wychwytu (etap I) są takie same, jak te stosowane zazwyczaj, gdy surowy materiał pochodzi z procesu rekombinacji.
Etap I (Etap wychwytu)
W tym etapie (Etap I) dokonano wstępnego zatężania oraz zmiany roztworu buforowego na roztwór o kontrolowanym składzie. Etap ten rozpoczęto w temperaturze pokojowej (chromatografia na kolumnie Silica C4) i kontynuowano następnie w temperaturze około +5°C. Korzystnym zakresem temperatur jest 5 ± 3°C. Etap ten powtórzono oddzielnie dla każdego zbioru cyklu produkcyjnego z bioreaktora.
(i) Klarowanie zbiorów
Świeżo zebrany z hodowli komórkowej z bioreaktora materiał jest zazwyczaj klarowany przez filtrację.
(ii) Chromatografia na kolumnie Silica C4
Po sklarowaniu zbiór umieszczono na kolumnie chromatograficznej wypełnionej żelem krzemionkowym C4, uprzednio skalibrowanym 25 mM fosforanem sodu o pH 7. Korzystnym zakresem pH jest zakres od 6,6 do 7,7. Kolumnę przemywano 25 mM fosforanem sodu do czasu, gdy sygnał na monitorze UV wrócił do wartości linii podstawowej. Wówczas produkt wymywano 34,2% (w/w) 2-propanolem w 25 mM fosforanie sodu.
(iii) Traktowanie amoniakiem
Wówczas do roztworu dodano roztwór amoniaku do momentu osiągnięcia końcowego stężenia wynoszącego 1M. Mieszaninę tę inkubowano przez 6 godzin. Następnie roztwór rozcieńczono wodą, a pH doprowadzono do pH 7,5 z zastosowaniem 85% kwasu fosforowego. Korzystnym zakresem pH jest 7,5 ± 0,2.
(iv) Zatężanie i dializa
Membrany o wartości odcięcia wynoszącej 10 kD, przechowywane pomiędzy partiami w 0,05 M wodorotlenku sodu, płukano czystą wodą do czasu obniżenia wartości pH do około pH 8.
Produkt zatężono i poddano dializie (przez ultrafiltrację na membranie 10 kD), aby usunąć substancje o ciężarze cząsteczkowym mniejszym niż 10 kD i śladowe ilości 2-propanolu, oraz zastąpić roztwór amoniaku 40 mM roztworem fosforanu sodu o pH 7,5. Korzystnie pH jest w zakresie 7,5 ± 0,2.
Końcowy retentat odzyskano z membran 40 mM fosforanem sodu w celu uzyskania pożądanego stężenia docelowego białka wynoszącego od 3 do 15 mg/ml.
Roztwór wówczas przesączono i przechowywano w temperaturze około -15°C.
Etap II (Sączenie i chromatografia jonowymienna na DECE Sepharose FF)
Ten etap chromatograficzny jest etapem „przepływowym dla r-hCG, w którym znaczna część białek niebędących r-hCG i kwasów nukleinowych zostaje usunięta. Podczas, gdy sączenie jest prowadzone w temperaturze pokojowej, etapy chromatografii, podczas których produkt przepływa przez kolumnę prowadzono w zimnym pokoju.
(i) Rozmrażanie i łączenie zatężonych surowych zbiorów r-hCG.
Zamrożone koncentraty rozmrożono i połączono. Porcja oczyszczonego r-hCG jest otrzymywana z różnej liczby połączonych surowych koncentratów r-hCG wytworzonych z tego samego banku wykorzystywanych komórek. Kryterium łączenia różnej liczby surowych koncentratów r-hCG jest oparte na maksymalnej zdolności wiążącej białka w następnym etapie chromatograficznym procesu oczyszczania (4 mg całkowitego białka/mg żywicy).
(ii) Klarownie przez sączenie
Korzystnie, roztwór r-hCG jest przepuszczany przez urządzenie filtrujące, a filtry przemywane 40 mM fosforanem sodu o pH 7,5.
Przefiltrowany roztwór jest łączony z porcjami przemywającymi.
(iii) Chromatografia jonowymienna na DEAE Sepharose FF
Kolumnę upakowano słabo naładowaną żywicą anionowymienną, DEAE(dietyloamionetano)Sepharose Fast Flow, i skalibrowano 40 mM fosforanem sodu (pH 7,5).
Roztwór zawierający r-hCG naniesiono na kolumnę.
PL 205 149 B1
Kolumnę zasilano 40 mM fosforanem sodu o pH 7,5. Proces chromatograficzny monitorowano z wykorzystaniem spektrofotometru przy d ł ugoś ci fali 280 nm. Gł ówny wyciek odrzucano do momentu pojawienia się piku. Wówczas zbierano niezwiązaną frakcję zawierającą r-hCG.
Etap III (Chromatografia na kolumnie CM Sepharose FF)
W tym etapie chromatograficznym usunię ta zostaje znaczna większość zanieczyszczeń pochodzących z komórek gospodarza. Ten etap chromatograficzny prowadzono w temperaturze około +5°C. Korzystnym zakresem temperatur jest 5 ± 3°C.
(i) Rozcieńczanie eluatu z kolumny DEAE Sepharose FF
Do eluatu z kolumny DEAE Sepharose FF dodano wodę do zastrzyków, a pH doprowadzono do 6 stosując 85% roztwór kwasu fosforanowego. Korzystny zakres pH wynosi 6 ± 0,1.
(ii) Chromatografia jonowymienna na kolumnie CM Sepharose FF
Kolumnę, upakowaną słabo naładowaną żywicą kationowymienną, CM (karboksymetylo) Sepharose Fast Flow, skalibrowano 20 mM roztworem buforowym fosforanu sodu (pH 6). Korzystnym zakresem pH jest 6 ± 0,1.
Roztwór zawierający r-hCG naniesiono na kolumnę.
Kolumnę przemyto 20 mM roztworem buforowym fosforanu sodu o pH 6. Proces chromatograficzny monitorowano z wykorzystaniem spektrofotometrii przy długości fali 280 nm.
Produkt wymywano 130 mM roztworem buforowym fosforanu sodu o pH 6. Główny wyciek odrzucano do momentu pojawienia się piku. Zbierano całą frakcję piku zawierającą r-hCG. Produkt ten może być ewentualnie w tym etapie przesączony, w celu usunięcia zanieczyszczeń wirusowych.
Etap IV (RP-HPLC na Silica C18)
Ten etap chromatografii RP-HPLC jest skuteczny w usuwaniu śladowych ilości zanieczyszczeń hodowli komórkowych, pozostałości kwasów nukleinowych oraz endotoksyn. Następnie prowadzono ultrafiltrację na membranach o wartości odcięcia wynoszącej 10 kD i ewentualnie sączenie, (i) Przygotowanie porcji pH poszczególnych porcji doprowadzono do 5 oraz dodano 2-propanol do nomentu osiągnięcia stężenia 15% (v/v).
(ii) Chromatografia RP-HPLC na żelu Silica C18
Kolumnę upakowaną żywicą Silica C18 skalibrowano najpierw 15% (v/v) 2-propanolem, a następnie 0,5 M roztworem buforowym Tris-fosforanu.
Pierwszą porcję naniesiono na kolumnę, a proces chromatograficzny monitorowano wykorzystując spektroskopię UV.
Kolumnę wymywano tym samym roztworem buforowym, jaki wykorzystano w procesie kalibracji.
Następnie prowadzono wymywanie r-hCG w gradiencie liniowym fazy ruchomej 2-propanol/0,5 M roztwór buforowy Tris-fosforanu w zakresie od 15% do 25% (v/v).
Frakcję zawierającą r-hCG zbierano wówczas, gdy metodą spektrofotometrii zarejestrowano odpowiadający pik (A280). Łączono frakcje, których absorbancja w fazie wzrostowej była wyższa niż 65% maksymalnej wysokości piku oraz wyższa niż 20% maksymalnej wysokości piku w fazie malejącej.
Cztery zawierające r-hCG frakcje połączono i rozcieńczono równoważną objętością wody do zastrzyków (WFI).
Następnie produkt zatężono i poddano dializie (przez ultrafiltrację na membranach 10 kD) wobec WFI, w celu usunięcia materiału o ciężarze cząsteczkowym mniejszym niż 10 kD oraz wyeliminowania 2-propanolu.
Wówczas produkt poddano dializie przez ultrafiltrację wobec roztworu buforowego 0,1 M wodorowęglanu amonu o pH 8.
Otrzymany produkt pośredni przechowywano w temperaturze około +5°C albo, jeśli to wymagane, mrożono. Korzystnymi temperaturami przechowywania są 5 ± 3°C, bądź temperatury odpowiednio równe lub niższe niż -15°C.
Etap V (Chromatografia wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek na kolumnie Sephacryl S-200 HR)
Chromatografia wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek jest skuteczna w usuwaniu śladowych ilości zanieczyszczeń pochodzących z hodowli komórkowej, ewentualnych agregatów i/lub wolnych podjednostek. Następnie prowadzona jest ultrafiltracja na membranie o wartości odcięcia 10 kD. Etapy chromatografii na kolumnie Sephacryl S-200 HR oraz ultrafiltracji na membranie o wartości odcięcia wynoszącej 10 kD prowadzono w temperaturze +5°C. Korzystnym zakresem temperatur jest 5 ± 3°C.
(i) Chromatografia wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek na kolumnie Sephacryl S-200 HR.
PL 205 149 B1
Kolumnę upakowaną żywicą Sephacryl S-200 HR skalibrowano 0,5 M wodorowęglanem amonu (pH 8). Korzystne pH jest w zakresie 8 ± 0,2.
Roztwór r-hCG naniesiono na kolumnę i rozpoczęto wymywanie 0,5 M wodorowęglanem amonu, pH 8. Korzystne pH jest w zakresie 8 ± 0,2.
Zbieranie frakcji zapoczątkowano na początku piku i kontynuowano do wartości 50% maksymalnej wysokości piku na jego malejącym odcinku.
(ii) ultrafiltracja przy wartości odcięcia wynoszącej 10 kD
Membrany o wartości odcięcia wynoszącej 10 kD przechowywane w 0,05 M wodorotlenku sodu są przemywane WFI do momentu zmniejszenia pH do około 8.
Produkt zatężono i poddano dializie (przez ultrafiltrację) wobec WFI.
Wówczas produkt poddano dializie (przez ultrafiltrację) wobec roztworu buforowego 0,01 M foforanu sodu, pH 7, i ostatecznie stężenie białka doprowadzono do końcowego stężenia produktu wynoszącego 3,5 mg/ml.
Końcowy roztwór zawierający r-hCG jest korzystnie przechowywany zamrożony w temperaturze około -15°C.
Żywice chromatograficzne
Przedstawione niżej żywice mogą być wykorzystane w procesie oczyszczania:
Etap I: Silica C4, 250 angstremów - 50 μm
Etap II: DEAE Sepharose FF
Etap III: CM Sepharose FF
Etap IV: Silica C18, 300 angstremów - 15 - 20 μm
Etap V: Sephacryl S-200 HR
Obecnie dostawcami są:
Amersham Pharmacia Biotech,
Bjorkgatan 30
S-751 84, Uppsala
Sweden
Vydac, The Separations Group,
17434 Mojave St.
Hesperia, CA 92345
USA
Mogą być także wykorzystane odpowiedniki żywic. Wyniki
Masa cząsteczkowa i rozmiar
SDS-PAGE (Matrex®, Millipore) (Pharmacia) (Pharmacia) (Vydac) (Pharmacia)
Millipore Corporation 17 Cherry Hill Drive Danvers, MA 01923
USA
Względną masę cząsteczkową r-hCG otrzymanego sposobem według niniejszego wynalazku określono metodą SDS-PAGE wobec standardowych białek o znanej masie cząsteczkowej.
Po nieredukującym SDS-PAGE barwnik Coomassie Brilliant Blue ujawnił pojedyncze szerokie pasmo heterodimeru r-hCG o masie cząsteczkowej wynoszącej w przybliżeniu 70 kD (w przedziale między 65-75 kD). Charakter pasma potwierdzono metodą Western blot.
Aktywność biologiczna
Aktywność biologiczną różnych partii r-hCG oczyszczonych zgodnie ze sposobem według niniejszego wynalazku przedstawiono w Tabeli 2. Stężenie białka określono metodą spektrofotometryczną przy długości fali 276,5 nm, a=0,616.
Średnia aktywność właściwa preparatu r-hCG jest szczególnie wysoka i wynosi około 25000 IU/mg.
T a b e l a 2
partia r-hCG Bioaktywność właściwa (IU/mg)
BCEA 9901 24427
BCEA 9902 26868
BCEA 9903 25636
BCEA 9904 27152
BCEA 9905 23729
PL 205 149 B1
Preparaty
Otrzymano zarówno ciekłe, jak i liofilizowane preparaty zawierające wysoce oczyszczoną rekombinowaną hCG uzyskaną sposobem według niniejszego wynalazku.
Preparat ciekły
Przygotowano dwa ciekłe preparaty zawierające 10000 IU/ml w fiolkach DIN 2R wykorzystując jako zaróbki mannitol i sacharozę i poddano testowi trwałości w temperaturach 50, 40, 25 i 4°C.
Skład zaprezentowano w Tabelach 3 i 4.
T a b e l a 3
Składniki jednostki
r-hCG IU/ml 10000
Sacharoza mg/ml 102,6
Kwas o-fosforowy mg/ml 0,98
Wodorotlenek sodu dodano do pH 7,0
objętość dopełniona do 0,5 ml
T a b e l a 4
Składniki jednostki
r-hCG IU/ml 10000
mannitol mg/ml 54,6
Kwas o-fosforowy mg/ml 0,98
Wodorotlenek sodu dodano do pH 7,0
objętość dopełniona do 0,5 ml
Wyniki testu trwałości, prowadzonego metodami testu biologicznego, SE/HPLC oraz RP-HPLC ukazują, że preparat zawierający mannitol jest trwalszy niż preparat zawierający sacharozę. Przechowywanie próbek w lodówce jest korzystnie wymagane, w celu zminimalizowania utleniania białek oraz powstawania wolnych podjednostek. Preparat liofilizowany
Liofilizowany preparat o mocy 5000 IU przygotowano w fiolkach DIN 2R wykorzystując jako zaróbkę sacharozę i poddano testowi trwałości w temperaturach 50, 40, 25 oraz 4°C.
Skład przedstawiono w Tabeli 5.
T a b e l a 5
Składniki jednostki
r-hCG IU 5000
sacharoza mg 30
Kwas o-fosforowy mg 0,98
Wodorotlenek sodu dodano do pH 7,0
Wyniki testu trwałości, przeprowadzonego metodami testu biologicznego, SE/HPLC oraz RP-HPLC, wykazują, że liofilizowany preparat jest trwały w temperaturze 40 oraz 50°C przez minimum 19 tygodni.
Testy trwałości przeprowadzone w temperaturach 25 oraz 4°C po okresie 6 miesięcy wykazują niewystępowanie degradacji substancji czynnej.

Claims (7)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób przygotowania rekombinowanej hCG z próbki, znamienny tym, że obejmuje etapy:
    (a) wymywania próbki z kolumny chromatograficznej wypełnionej żelem krzemionkowym;
    (b) wymywania próbki z jonowymiennej kolumny chromatograficznej;
    (c) wymywania z drugiej jonowymiennej kolumny chromatograficznej;
    (d) wymywania z kolumny HPLC w odwróconym układzie faz; i
    PL 205 149 B1 (e) poddania eluatu chromatografii wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek, przy czym otrzymywany rekombinowany hCG wykazuje swoistą bioaktywność w zakresie 23000-28000 IU/mg.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że obejmuje etapy:
    (a) wymywania próbki z kolumny chromatograficznej wypełnionej żelem krzemionkowym;
    (b) wymywania próbki z jonowymiennej kolumny chromatograficznej DEAE Sepharose;
    (c) wymywania z jonowymiennej kolumny chromatograficznej CM-Sepharose;
    (d) wymywania z kolumny HPLC Silica C18 w odwróconym układzie faz; i (e) poddania eluatu chromatografii wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek na kolumnie Sephacryl.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że wymywanie z jonowymiennej żywicy DEAE Sepharose prowadzi się stosując roztwór buforowy fosforanu sodu o pH 7,5.
  4. 4. Sposób według zastrz. 2 albo 3, znamienny tym, że wymywanie z jonowymiennej żywicy CM-Sepharose prowadzi się stosując roztwór buforowy fosforanu sodu o pH 6.
  5. 5. Sposób według zastrz. 1-4, znamienny tym, że etap (d) HPLC w odwróconym układzie faz prowadzi się stosując jako fazę ruchomą układ 2-propanol/roztwór buforowy tris-fosforanowy.
  6. 6. Sposób według zastrz. 1-5, znamienny tym, że etap (e) chromatografii wykluczania zależnego od wielkości cząsteczek prowadzi się stosując jako fazę ruchomą roztwór buforowy wodorowęglanu amonu.
  7. 7. Sposób według zastrz. 1-6, znamienny tym, że próbka jest pożywką hodowlaną komórek CHO.
PL357508A 2000-02-22 2001-01-22 Sposób przygotowania rekombinowanej hCG PL205149B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP00103690 2000-02-22

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL357508A1 PL357508A1 (pl) 2004-07-26
PL205149B1 true PL205149B1 (pl) 2010-03-31

Family

ID=8167925

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL357508A PL205149B1 (pl) 2000-02-22 2001-01-22 Sposób przygotowania rekombinowanej hCG

Country Status (32)

Country Link
US (2) US7297777B2 (pl)
EP (2) EP1752466A3 (pl)
JP (1) JP4588960B2 (pl)
KR (1) KR100806911B1 (pl)
CN (1) CN100482679C (pl)
AT (1) ATE406378T1 (pl)
AU (2) AU783320B2 (pl)
BG (1) BG65807B1 (pl)
BR (1) BRPI0108556B8 (pl)
CA (1) CA2399020A1 (pl)
CY (1) CY1108460T1 (pl)
CZ (1) CZ303144B6 (pl)
DE (1) DE60135541D1 (pl)
DK (1) DK1257564T3 (pl)
EA (1) EA006605B1 (pl)
EE (1) EE05644B1 (pl)
ES (1) ES2307585T3 (pl)
HK (1) HK1052016A1 (pl)
HR (1) HRP20020650B1 (pl)
HU (2) HU228935B1 (pl)
IL (2) IL151308A0 (pl)
ME (1) ME00296B (pl)
MX (1) MXPA02007871A (pl)
NO (1) NO328694B1 (pl)
PL (1) PL205149B1 (pl)
PT (1) PT1257564E (pl)
RS (1) RS50741B (pl)
SI (1) SI1257564T1 (pl)
SK (1) SK287146B6 (pl)
UA (2) UA78488C2 (pl)
WO (1) WO2001062773A1 (pl)
ZA (1) ZA200206109B (pl)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA006605B1 (ru) * 2000-02-22 2006-02-24 Апплайд Резеч Системз Арс Холдинг Н.В. СПОСОБ ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО чХГ
CA2582083A1 (en) * 2004-10-04 2006-04-20 Novetide, Ltd. A counterion exchange process for peptides
CN1958603B (zh) * 2005-11-04 2010-05-05 上海天伟生物制药有限公司 一种人绒毛膜促性腺素的纯化方法
EA200802426A1 (ru) * 2006-07-11 2009-04-28 Коваль, Антон Александрович Применение хорионического или лютеинизирующего гормона для профилактики или лечения возрастного гипогонадизма
CN101397339B (zh) * 2008-09-24 2012-07-25 上海天伟生物制药有限公司 糖蛋白中去除/灭活病毒的方法
TWI532495B (zh) 2009-10-05 2016-05-11 菲瑞茵國際中心股份有限公司 藥學製劑
CN101792481B (zh) * 2010-03-12 2012-05-30 丽珠医药集团股份有限公司 一种绒毛膜促性腺激素的纯化方法
WO2012120535A2 (en) * 2011-02-03 2012-09-13 Sanzyme Limited A composition comprising highly purified chorionic gonadotropin, it's formulation and uses of the same
EP2691119B1 (en) 2011-03-31 2018-08-01 Ferring B.V. Pharmaceutical preparation
WO2013102921A2 (en) * 2011-11-17 2013-07-11 Sanzyme Limited Hcg - newer treatment modality for type 2 diabetes mellitus (t2dm)
CN103288950A (zh) * 2012-12-28 2013-09-11 青岛九龙生物医药有限公司 改进柱分离工序洗涤液和洗脱液配比去除杂质的方法
CN104101656A (zh) * 2013-04-01 2014-10-15 上海天伟生物制药有限公司 一种促性腺激素的纯度测定方法
US20150065426A1 (en) * 2013-08-27 2015-03-05 Professional Compounding Centers Of America Testosterone Booster Transdermal Compositions
CN105968185A (zh) * 2016-07-20 2016-09-28 宁波人健药业集团股份有限公司 一种绒促性素纯化方法
CN111233999B (zh) * 2020-03-21 2024-02-23 上海浦东明炎生物技术有限公司 一种从人尿中提取人绒毛膜促性腺激素的方法
CN113398251B (zh) * 2021-07-30 2022-08-05 宁波人健药业集团股份有限公司 一种重组人绒毛膜促性腺激素冻干粉针剂及其制备方法

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP3045539B2 (ja) * 1989-02-21 2000-05-29 ワシントン ユニバーシティ 改変型生殖ホルモン
IT1250075B (it) * 1991-12-18 1995-03-30 Serono Cesare Ist Ricerca Composizioni farmaceutiche contenenti gonadotropine.
IT1254370B (it) * 1992-05-22 1995-09-14 Sorin Biomedica Spa Procedimento per la purificazione di proteine da sistemi cellulari.
EP0814841B1 (en) 1995-03-21 2001-12-05 Applied Research Systems ARS Holding N.V. Hcg liquid formulations
HUP9900619A3 (en) * 1996-02-20 2001-11-28 Applied Research Systems Hybrid proteins which form heterodimers
IT1287138B1 (it) * 1996-11-07 1998-08-04 Ibsa Inst Biochimique Sa Procedimento per la separazione e purificazione di fsh e lh
AU8142198A (en) 1997-06-12 1998-12-30 Regents Of The University Of California, The A transcription factor coactivator protein, p/cip
CA2289665C (en) * 1997-06-13 2005-08-09 Genentech, Inc. Protein recovery by chromatography followed by filtration upon a charged layer
US6583109B1 (en) * 1997-06-24 2003-06-24 Robert C. Gallo Therapeutic polypeptides from β-hCG and derivatives
EA006605B1 (ru) * 2000-02-22 2006-02-24 Апплайд Резеч Системз Арс Холдинг Н.В. СПОСОБ ОЧИСТКИ РЕКОМБИНАНТНОГО чХГ

Also Published As

Publication number Publication date
EE200200469A (et) 2004-04-15
NO20023985D0 (no) 2002-08-21
MEP38908A (en) 2011-02-10
RS50741B (sr) 2010-08-31
NO20023985L (no) 2002-08-21
UA86938C2 (uk) 2009-06-10
DK1257564T3 (da) 2008-10-06
CY1108460T1 (el) 2014-04-09
MXPA02007871A (es) 2003-02-10
KR20030001359A (ko) 2003-01-06
BRPI0108556B8 (pt) 2021-05-25
SK287146B6 (sk) 2010-01-07
EP1752466A2 (en) 2007-02-14
WO2001062773A1 (en) 2001-08-30
YU60202A (sh) 2005-09-19
AU2680401A (en) 2001-09-03
HUP0204231A2 (hu) 2003-03-28
HU228935B1 (en) 2013-06-28
AU2006200059A1 (en) 2006-02-02
SK12062002A3 (sk) 2002-12-03
HRP20020650A2 (en) 2004-12-31
US20070299001A1 (en) 2007-12-27
CN100482679C (zh) 2009-04-29
BG65807B1 (bg) 2009-12-31
HK1052016A1 (en) 2003-08-29
DE60135541D1 (de) 2008-10-09
BRPI0108556B1 (pt) 2015-04-14
BR0108556A (pt) 2003-01-28
JP4588960B2 (ja) 2010-12-01
UA78488C2 (en) 2007-04-10
HRP20020650B1 (en) 2011-02-28
EE05644B1 (et) 2013-04-15
IL151308A0 (en) 2003-04-10
KR100806911B1 (ko) 2008-02-22
CZ303144B6 (cs) 2012-05-02
NO328694B1 (no) 2010-04-26
HUP0204231A3 (en) 2005-09-28
HU1300063D0 (hu) 2003-03-28
ES2307585T3 (es) 2008-12-01
ZA200206109B (en) 2003-07-31
US7297777B2 (en) 2007-11-20
US20030104553A1 (en) 2003-06-05
EP1752466A3 (en) 2012-10-10
PT1257564E (pt) 2008-09-10
EA006605B1 (ru) 2006-02-24
IL151308A (en) 2009-11-18
EP1257564B1 (en) 2008-08-27
EA200200892A1 (ru) 2003-02-27
JP2003524015A (ja) 2003-08-12
ME00296B (me) 2011-05-10
BG107000A (en) 2003-04-30
SI1257564T1 (sl) 2008-12-31
CZ20022855A3 (cs) 2002-11-13
EP1257564A1 (en) 2002-11-20
CA2399020A1 (en) 2001-08-30
ATE406378T1 (de) 2008-09-15
PL357508A1 (pl) 2004-07-26
AU783320B2 (en) 2005-10-13
CN1404485A (zh) 2003-03-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20070299001A1 (en) PURIFIED hCG
KR101173717B1 (ko) Fsh를 정제하는 방법
US20060079460A1 (en) Purified LH