LU86556A1 - Methylendioxyphenanthren- und stilbenderivate,verfahren zur herstellung derselben und arzneimittel,die diese enthalten - Google Patents
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Description
- 11 - * <
Die erfindungsgemäßen Verbindungen wurden u. a. hinsichtlich ihrer makrophagenaktivierenden Wirkung untersucht. Als Parameter wurde die Stimulation von Monozyten und Makrophagen in der Bauchhöhle von Mäusen herangezogen.
n Zur Darstellung einer gesteigerten chemotaktischen Einwanderung ^ von Monozyten in die Bauchhöhle und die Differenzierung der Mono- ï zyten zu Makrophagen mit gesteigerter Fähigkeit zur Phagozytose ist eine intraperitoneale Applikation der Testsubstanz zweckmäßig .
'
Die Stimulation ist ein Prozeß, der eine bestimmte Zeit erfordert. Die Prüfung der Phagozytoseaktivität wurde daher als übliches pharmakologisches Modell nach einer dreitägigen Vorbehandlung der Mäuse mit den erfindungsgemäßen Verbindungen vorgenommen, In einigen Testgruppen wurde unmittelbar nach Substanzgabe die intraperitoneale Zellpopulation entnommen, um zu zeigen, daß die beobachtete Stimulation erst nach einer gewissen Inkubationszeit auftrat.
Substanzen und Materialien I .
Die zu prüfenden Substanzen wurden wäßrig gelöst 0,5 mg/ml und nach Bedarf verdünnt NH.Cl-Tris-Puffer NH4C1 : 8,3 g/1
Tris (jris-(hydroximethyl)- : 4,119 g/200ml pH = 7,65 ? aminomethanj
Mischung : 1 Teil Tns + 9 Teile NH^Cl , v auf pH 7.2 einstellen mit 2N HCl t * - 12 -
PBS/BSA
40,0 g ‘ NaCl 1.0 g KCl auf 51 mit H20 auffüllen, 7,2 g Na2HP04 x 2H20 pH = 7;4 1.0 g KH2P04
+ 0,2 g B5A = Albumin, Bovine (Sigma, No. A-9647) auf ί· 100 ml PBS
DMEM
^ - Dulbecco's modified Eagle medium with L-Glutamine ohne Phenolrot (Gibco, Cat No. 041-1885)
+ 5 % FCS
bzw. + 5 % FCS + 0.2 % Heparin FCS
= Foetales Kälberserum (Gibco, Cat No. 011-6290) -'Ma-y-Gfühwald-Lösung modifiziert (Merck, Art. 1424)
Hammelblut
Nr. 5, 30.08.84, MPI Freiburg Antiserum
Anti-Hammelerythozyten-Serum von Kaninchen Nr. 308, IKA 468/6-11 Tage; 18.07.78, MPI Freiburg ; Versuchstiere
Die Untersuchungen wurden mit 18 Wochen alten weiblichen Hybridmäusen (Balb/c x C57B16) Fl durchgeführt. Die Tiere wurden vor - 13 -
Beginn der Experimente 5 Tage lang an die Laborbedingungen angepaßt. Sie erhielten pelletiertes Standardfuttex für Ratten und Mäuse (Altromin Nr. 1324) und Leitungswasser ad libitum. Sie wurden mit einem Thioglycolat-Standard auf drei Makrophagenstimulierbarkeit geprüft und zeigten dabei gute Positiv-Reaktionen.
*3 V.
ô Dosierung und Applikation
Die Substanzen wurden in wäßriger Lösung (0.5 mg/ml) in den VJi. ; " , folgenden Dosen appliziert: intraperitoneal: 20 mcg/kg 500 mcg/kg 5 mg/kg
Die Verdünnung der Mutterlösung für die Applikation der verschiedenen Dosen betrug bei '20 mcg/kg 1 mcg/ml 500 mcg/kg 25 mcg/ml 5 mg/kg 250 mcg/ml ; davon jeweils 0,4 ml
Applikationsschema 1 Gruppe = 5 Mäuse
Vorbehandlung: a) 3 Applikationen an 3 aufeinanderfolgenden Tagen; am 4. Tag Gewinnung , der Makrophagen.
b) Eine Applikation unmittelbar vor der
Makrophagengewinnung.
- 14 -
Gewinnung der Makrophagen-Zellsuspension und Phagozytose Testgrinzi[>
Nach Applikation von immunologisch aktivierenden Substanzen f,- werden in den Versuchstieren Makrophagen stimuliert und Mono zyten zur Differenzierung in Makrophagen veranlaßt. Die ausdifferenzierten, stimulierten Makrophagen sind auch nach Isolierung in der Lage, mit entsprechenden Antikörpern opsonier-te Antigenstrukturen, in diesem Fall Hammelerythrozyten, in vitro zu phagozytieren. Die phagozytierten Erythrozyten sind mikroskopisch erkennbar.
Durchführung
Nach entsprechender Vorbehandlung werden die Mäuse durch Halswirbelfraktur getötet. Das Peritoneum wird freigelegt und 4 ml DMEM (5 % foetales Kälberserum, 0,2 % Heparin) werden intraperitoneal appliziert. Nach ca. 30 sec Massage werden 3 ml Zellsuspension mit einer Spritze abgezogen und in einem Polypropylenröhrchen in ein Kältebad (0° C) gebracht. Aus jeder Testgruppe wurde eine Maus zur Ermittlung der Zellkonzentration im Exsudat herangezogen; es wurde näherungsweise eine Konzentration um 4 x 10^ Zellen/ml eingestellt.
V. '
Isolierung adhärenter Makrophagen:
Makrophagen und Monozyten werden aus der isolierten Zellpopulation dadurch selektiert, daß man sie auf Deckgläschen inkubiert; Makrophagen und Monozyten adhärieren hierbei, andere Zellen ^ nicht. In Gewebekulturschalen mit 24 Näpfchen (Polystyrol, Fa.
Costar) werden runde Deckgläschen gelegt und mit 0^,25 ml DMEM (mit 5 % foetalem Kälberserum) überschichtet. Zur gleichmäßigen Verteilung der Zellen werden die Schalen auf einen Schüttler gebracht, und in jeden Einsatz werden unter Schütteln (5 min, ca. 200 UPM) 0,25 ml Zellsuspension pipettiert. Anschließend werden die Gewebekulturschalen 1 Stunde bei 37° C und 8 % Οθ£ im Brut- J < « ; i : ' « ’« * .
‘ k » - 15 - schrank inkubiert. Nach der Inkubation werden die nicht adhä-renten Zellen abgesaugt, danach zweimal mit 0,25 ml DMEM (plus 5 % foetales Kälberserum) gewaschen.
Opsonieren der Hammelerythrozyten! 1 ml Hammelblut wird zweimal mit 4 ml PBS/BSA gewaschen (Zentri— fugieren, 10 min^ bei ca. 500xg). Das gewaschene Blut wird 1: 50 mit PBS/BSA verdünnt.Das Antiserum gegen Hammelerythrozyten wird mit PBS/BSA 1 : 200 verdünnt. Verdünntes Hammelblut und verdünntes Antiserum wird 1 : 1 zusammengegeben und 1,5 Stunden rv,, w unter schonendem Schütteln (ca, 80 UPM) inkubiert.
Phagozytose :
In jedes Näpfchen der Gewebekulturschalen mit ad5arenten Makrophagen auf den Deckgläschen wird 0,5 ml opsonierte'Erythrozytensuspension pipettiert. Die Schalen werden 20 min. bei 37° C und 8 % CO2 inkubiert. Danach werden die überschüssigen Erythrozyten abgesaugt und die Deckgläschen zweimal mit DMEM (0,5 % FCS) gewaschen.
Zur Lyse nicht phagozytierter Erythrozyten werden diese mit jeweils 1 ml NH^Cl-Tris-Puffer behandelt (es wurde eine Einwirkzeit von 3,75 min als geeignet ermittelt). Nach Absaugen des L... Puffers wurden die Deckgläschen zweimal mit PBS/BSA gewaschen.
Phagozytosedarstellung (Färbetechniken) ^ Nach Phagozytose werden Makrophagen nach Pappenheim nach einer kombinierten May-Grünwald-Giemsa-Methode angefärbt. Die Färbung wird in den Näpfchen der Gewebekulturschalen ausgeführt.
5 min May-Grünwald konz., absaugen 3 min H2O bidest., mit H^PO^ min 85 % auf pH 7,0 eingestellt; absaugen - 16 - - 9 min . Giemsa-Lösung 1 : 40 verdünnt und vor Gebrauch filtriert; absaugen t - mit H20 dest. aus der Spritzflasche nachspülen
Die Zellkerne sind nach der Färbung rotviolett, das Zytoplasma hellblau. Die phagozytierten Erythrozyten sind blaßrosa erkennbar. Nach Lufttrocknung werden die Mikroskop-Präparate mit "Eu-kitt" auf Objektträgern festgeklebt (3 Präparate/Maus).
Mikroskopische Auswertung
Von den drei Mikroskop-Präparaten einer Maus wurden zwei ausgezählt. Es wurde ein Zeiss-Mikroskop bei lOOOfacher Vergrößerung und Ölimmersion verwendet. Das dritte Präparat wurde herangezogen, wenn das Ergebnis aus zwei Präparaten nicht eindeutig war. Pro Präparat wurden 300 Zellen gezählt und in Abhängigkeit von de-r Phagozytoseaktivität unterteilt in Klassen mit steigender Anzahl Erythrozyten/Makrophage.
Klasse Erythrozyten/Makrophage 1 0 2 1.
3 2 4 3 5 4 6 5 7 6 8 7 9 8 10 9 11 10 12 11 - 20+ +
v Für Berechnungen wurde angenommen, daß bei ^ 11 Erythrozyten/MPH
die Verteilung in der Klasse 12 einen Schwerpunkt um 12 Erythrozyten/Makrophage aufweist. Makrophagen der 12. Klasse traten relativ selten auf.
- 17 - m
Datenverarbeitung und graphische Darstellungen
Die Auszählung der mikroskopischen Präparate wurde an einer Rechenanlage WANG LVP 2200 mit einem speziellen Eingabeprogramm ausgeführt, das die separate Erfassung der Zählklassen erlaubte. Die Mittelung von Einzeldateien wurde mit dem Pro-gramm "MA 1", die graphischen Darstellungen mit dem Programm ~ "NPL" ausgeführt.
,v Der Stimulationseffekt wurde für jede Testsubstanz und Dosis ^ auf zwei Arten dargestellt: 1. Verteilung der Makrophagen auf die Klassen (Erythro-zyten/Makrophage) in %, bezogen auf 300 Zellen als 100 %. Hierbei geht auch die Anzahl der Makrophagen in die graphische Darstellung ein, die keinen Erythrozyten phagozytiert hatten.
2. Verteilung der phagozytierten Erythrozyten (Anzahl der NPH in einer Klasse x Anzahl der Erythrozyten/MPH) auf die Klassen in %, bezogen auf die Gesamtzahl der phagozytierten Erythrozyten als 100 %, Hierbei bleibt die Zahl der Makrophagen, die keinen Erythrozyten phagozytiert hatten, unberücksichtigt.
Parameter
Als Parameter der Makrophagenstimulation wurde die Steigerung w der Phagozytoseaktivität, ausgedrückt als Anzahl phagozytierter
Erythrozyten pro Makrophage (= Klasse), betrachtet. Eine Stimulation zeigt sich in einer Abnahme der Makrophagen, die keine i. oder wenige Erythrozyten phagozytiert hatten und in einer Zunahme der Makrophagen mit mehreren Erythrozyten.
- 18 - ' Ergebnisse MPH-Stimulation durch l-Carboxy-3,4-methylendioxy-8-methoxy-phenanthren (i. p.):
Abb. 1: 3 x 20 mcg/kg i. p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen (x + SEM) a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in % V H 100 η zr.
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ITLftSSE
b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in % I K 100 1
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Ils, ^ kb v v ui £ ' .
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0 H—t i-1-1—.—r-rl—T—r^T
0 2 H 8 8 10 12 -19-
Tabelle; 3 x 20 mcg/kg i. p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in %
Kl. Haus Haus Haus Haus
n 1 2 3 4 x-quer SD SE HD
1 1.00 75.67 71.33 66.50 72.17. 71.417 3.777 1.889 71.750 2 2.00 12.67 17.00 20.00 15.50 15.292 3.056 1.528 16.250 3 3.00 ' 6.83 6.17 8.67 7.67 7.333 1.080 0.540 7.250 fK.T.. 4 4.00 2.17 3.33 3.50 2.50 2.875 0.644 0.322 2.917 5 5.0Ö 0.67 1.6? 1.17 1.17 1.167 0.408 0.204 1.167 5 6.00 1.33 0.17 0.17 0.1? 0.458 0.583 0.292 0.167 7 7.00 0.17 0.33 0.00 0.50 0.250 0.215 0.108 0.250 8 8.00 0.00 0.00 0.00 0.17 0.042 0.083 0.042 0.000 9 9.00 0.17 0.00 0.00 0.00 0.042 0.083 0.042 0.000 10 10.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.000 0.000 0.000 0.000 11 11.00 0.33 0.00 0.00 0.17 0.125 0.160 0.080 0.083 12 12.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.000 0.000 0.000 0.000 b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in %
Kl. Haus Haus Haus Haus
n 1 2 3 4 x-quer SD SE HD
^ 1 1.00 0.0 0.0 0.0 0.0 0.00 0.00 0.00 0.00 2 2.00 26.5 34.8 37.5 31.2 32.50 4.77 2.38 33.01 3 3.00 28.6 25.3 32.5 30.9 29.30 3.14 1.57 29.72 4 4.00 13.6 20.5 19.7 15.1 17.21 3.39 1.69 17.39 5 5.00 5.6 13.7 8.8 9.4 9.34 3.32 1.66 9.07 ~ 6 6.00 13.9 1.7 1.6 1.7 4.72 6.14 3.07 1.69 7 7.00 2.1 4.1 0.0 6.0 3.06 2.60 1.30 3.09 8 8.00 0.0 0.0 0.0 2.3 0.59 1.17 0.59 0.00 9 9.00 2.8 0.0 0.0 0.0 0.70 1.39 0.70 0.00 10 10.00 0.0 0.0 0.0 0.0 0.00 0.00 0.00 0.00 11 11.00 7.0 0.0 0.0 3,4 2.58 3.33 ' 1.66 1.68 12 12.00 0.0 0.0 0.0 0.0 0.00 0.00 0.00 0.00 - 20 - -¾ * '
Abb. 2: 3 x 500 mcg/kg i. p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen (x + SEM) a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in % h 100 Ί c g · I 80 - z M ·
UJ
ω 60 - <Λ ψ « i £ M - \ r \
20 - V
0 i 1—I 1 i—I—t T t T
0 2 H 8 8 10 12
KLASSE
b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in % . H 100 η i·'·· £ ui
K S
a 2 «ο -
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I- w ω BO - " v> : £ Œ
*· >*. I
g ü O v ! 3 w - ^ 5:
A O
20 - ο /—I I I 1 I I I 1 0 2 f e 8 10 12
KLASSE
Tabelle: 3 x 500 mcg/kg i. p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen 4 - 21 - a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in %
Kl. Haus Haus Haus Haus Haus
η 1 2 3 4 5 x-quer SO SE HD
1 1.00 53.00 52.83 53.à3 47.33 51.33 53.657 5.775 2.583 52.833 2 2.00 13.00 19.67 20.50 17.83 15.57 17.333 3.053 1.355 17.833 3 3.00 8.00 11.83 13.33 15.00 12.17 12.267 2.893 1.294 12.167 *4’ 4.00 5.00 6.00 5.83 7.83 8.67 6.557 1.523 0.681 6.000 5 5.00 4.33 3.83 3.00 5.00 5.50 4.333 0.979 0.438 4.333 6 6.00 2.83 2.83 1.33 2.50 2.67 2.433 0.630 0.282 2.667 ^ 7 7.00 1.17 1.33 0.83 1.17 2.17 1.333 0.500 0.224 1.167 8 8.00 0.83 0.50 0.50 0.83 0.50 0.533 0.183 0.082 0.500 9 9.00 1.17 0.57 0.17 1.00 0.57 0.733 0.384 0.172 0.667 10 10.00 0.00 0.17 0.33 0.00 0.00 0.100 0.149 0.067 0.000 11 11.00 0.67 0.33 0.17 0.50 0.50 0.433 0.190 0.08S 0.500 12 12.00 0.00 0.00 0.17 0.00 0.17 0.067 0.091 0.04 1 0.000 b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in %
Kl. Haus Haus Haus Haus Haus
n 1 2 3 4 5 x-quer SO SE MO
1 1.00 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0 0.00 0.00 0.00 0.00 - 2 2.00 12.5 17.5 20.3 13.5 11.9 15.13 3.60 1.61 13.54 3 3.00 15.3 21.0 26.4 24.3 18.5 21.11 4.41 1.97 21.04 4 4.00 14.4 16.0 17.3 17.8 19.8 17.06 2.02 0.90 17.30 5 5.00 ' 16.6 13.6 11.9 15.2 16.7 14.80 2.07 0.93 15.19 6 6.00 13.6 12.6 6.6 9.5 10.1 10.48 2.75 1.23 10.14 - 7 7.00 6.7 7.1 4.9 5.3 9.9 6.79 1.95 0.87 6.71 8 8.00 5.6 3.1 3.5 4.4 2.7 3.85 1.17 0.52 3.46 9 9.00 8.9 4.7 1.3 6.1 4.1 5.03 2.79 1.25 4.74 10 10.00 0.0 1.3 3.0 0.0 0.0 0.86 1.31 0.59 0.00 11 11.00 6.4 3.0 1.6 3.8 3.8 3.72 1.73 0.77 3.80 12 12.00 0.0 0.0 3.3 0.0 2.5 1.17 1.62 0.72 0.00 - 22 - *
Abb, 3: 3x3 mg/kg i. p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen (x + SEM.) a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in % - 100 η - z LÜ
•Λ NI
I 80 - H4 " o 60- - 3 - \ ! w' 1»- \ ' Ά 0 --1—|—i—T t Î * f 0 2 Η β 8 10 12 KLASSE __ _ b) Verteilung der phagorytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in % , H 100 η a z “ ω
= N
Sr = ^ “ 30 -
ÜJ
£ 5 H « so -r v> t * i 2 - 0 _|-,-,-1-1-1-1-,-,-1-1-1 0 2 f 5 8 10 12
KLASSE
Tabelle: 3x5 mg/kg i, p.
MPH-Stimulation nach 3 Tagen - 23 - « a) Verteilung von 300 Zellen auf die Klassen 1 bis 12 in %
Kl. Haus Haus Haus Haus Haus
n 1 2 3 4 5 x-quer SO SE HD
1 1.00 69.33 50.33 52.17 49.50 56.17 55.500 8.149 3.644 52.167 2 2.00 9.83 16.17 18.00 23.33 22.17 17.900 5.381 2.406 18.000 3 3.00 8.00 12.17 11.50 14.67 11.17 11.500 2.389 1.068 11.500 4 4.00 4.83 7.17 5.83 6.50 5.33 5.933 0.925 0.414 5.833 5 5.00 2.83 6.00 5.17 2.67 3.00 3.933 1.539 0.688 3.000 6 6.00 2.00 2.33 4.17 1.83 1.67 2.400 1.018 0.455 2.000 : ^ 7 7.00 0.67 2.57 1.33 0.50 0.17 1.067 0.990 0.443 0.667 8 8.00 0.67 1.00 0.00 0.33 0.00 0.400 0.435 0.194 0.333 9 9.00 0.67 1.17 0.83 0.17 0.17 0.600 0.43S 0.194 0.667 10 10.00 0.33 0.17 0.50 0.17 0.17 0.267 0.149 0.067 0.167 , 11 11.00 0.17 0.67 0.17 0.17 0.00 0.233 0.253 0.113 0.167 12 12.00 0.67 0.17 0.33 0.17 0.00 0.267 0.253 0.113 0.167 b) Verteilung der phagozytierten Erythrozyten auf die Klassen 1 bis 12 in %
Kl. Haus Haus Haus Haus Haus
n 1 2 3 4 5 x-quer SO SE HD
1 1.00 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0 0.00 0.00 0.00 0.00 2 2.00 10.5 11.4 14.1 22.2 26.2 16.88 6.94 3.10 14.12 3 3.00 17.1 17.2 18.0 27.9 26.4 21.32 5.35 2.39 18.04 4 4.00 15.5 15.2 13.7 18.5 18.9 16.37 2.25 1.01 15.48 5 5.00 12.1 17.0 16.2 10.1 14.2 13.92 2.83 1.27 14.17 6 6.00 10.7 8.2 16.3 8.7 9.8 10.76 3.26 1.46 9.84 7 7.00 4.3 11.3 6.3 2.9 1.2 5.18 3.90 1.75 4.27 8 8.00 5.0 4.9 0.0 2.2 0.0 2.43 2.49 1.11 2.22 " 9 9.00 5.7 6.6 5.2 1.3 1.6 4.07 2;47 1.11 5.23 v 10 10.00 3.2 1.1 3.5 1.4 1.8 2.20 1.10 0.49 1.77 11 11.00 . 1.8 4.7 1.3 1.6 0.0 1.88 1.73 0.77 1.58 12 12.00 14.2 2.4 5.2 3.2 0.0 5.00 5.49 2.46 3.17 - 24 -
Dosisabhängigkeit des Stimulationseffekts
Die Kontrollgruppen nach i. p. bzw. p. o. Gabe von phys. NaCl-Lösung zeigen, daß die i. p. Applikation selbst bereits eine schwache Makrophagenaktivierung bewirkt. Ein v. hoher Anteil Makrophagen hat zwei Erythrozyten phagozytiert.
Ein Ansteigen der Makrophagen mit mehr als zwei Erythrozyten ist demnach als Substanzeffekt zu interpretieren. Die ?i-Summe der Erythrozyten ab der 4. Klasse (Makrophagen mit 3 Erythro-/ zyten und mehr) wurde daher zur Dosis in Relation gesetzt.
;
Abb. 4: Abhängigkeit der %-Summe der Erythrozyten ab der 4. Klasse und darüber von der Dosis nach i. p. Gabe von 20 mcg/kg, 500 mcg/kg und 5 mg/kg. Die Kontrolle liegt bei 45 % + 6 % (x + SEM). In der Abbildung ist der Bereich + SEM um den Mittelwert durch die unterbrochene Linie angegeben.
80 1
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£ tu / 1 □ w y ÛC / E 50 - ‘ t LJ yr fo - ____’------♦ 30 - " ii i i mi| ι r t tt 1111 ί ι tttttti IO I00 1000 10000 DDSIS (HCß/Κβϊ I.P.) - 25 -
Tabelle: Dosisabhängigkeit der Makrophagen-Stimulation nach i. p. Gabe x = Dosis (mcg/kg) y = %-Summe der phagozytierten Erythrozyten SEM = Standarderror of the means
V
Nr. x-Werte y-üerte SE-tierte N
1 20.0000 38.2000 2.7800 4 2 500.0000 63.7600 3.3200 5 3 5000.0000 61.8000 5.4200 5 —,
Bewertung
Die Substanz bewirKt eine Steigerung der Makrophagenaktivierung von 38 % bei 20 mcg/kg auf 64 Ä bei 500 mcg/kg. Eine .weitere Steigerung der Dosis auf 5 mg/kg führt zu einer geringfügigen Abschwächung der Stimulation. Die Makrophagenaktivierung verläuft i.m gewählten Dosisbereich nicht linear.
Die Testgruppe, die unmittelbar vor Makrophagengewinnung einmalig intraperitoneal appliziert wurde, demonstrierte, daß die beobachteten Effekte nur nach einer Inkubationszeit auftreten. Dieser Befund deutet darauf hin, daß die Substanz in vivo die für die Phagozytosesteigerung verantwortlichen Mechanismen in Makrophagen induzierte .
Dieses.deutet auf die folgenden Effekte: i- 1. Stimulation der Membraninternalisierungsrate 2. Steigerung der Fc-Rezeptorendichte und/oder 3. Erhöhung der Mobilität der C3b-Rezeptoren.
Die anderen erfindungsgemäßen Verbindungen zeigen eine vergleichbare pharmakologische Wirkung. Die Wirkung konnte mit anderen pharmakologischen Modellen und klinischrbestätigt werden.
_26-
Die folgenden Beispiele erläutern die Herstellung der erfindungsgemäßen Verbindungen.
! , Beispiel 1: Herstellung von 1-Carboxy-3,4-methylendioxy-2'- methoxy-stilben ; :v a) Darstellung von 6-Brompiperonylbromid ;,· . HOAc ’ ^O-r^i . +Br2 ur'°7\ Ί 1Br ___ ....
(MG =152) . (MGa29 4 )
Chemikalien: Piperonylalkohol (EGA-Chemie bzw. Aldrich) = 120 g
Brom 48 ml in 120 ml Essigsäure Essigsäure 240 ml
In einem 1 1 3-Halsrundkolben, versehen mit Tropftrichter, Trockenrohr und Innenthermometer, wird Piperonylalkohol in Essigsäure vorgelegt und im Eisbad gekühlt. Zu dieser Lösung tropft man unter Rühren Brom, gelöst in Essigsäure, langsam zu, so daß die Temperatur zwischen 15 -25 °C bleibt. Das Reaktionsgemisch wird über Nacht stehengelassen, und;, die ausgefallenen Kristalle werden abgenutscht, mit Wasser gewaschen und aus Methanol umkristallisiert.
Fp. ; 92 - 93 °C Ausb, : 174-g, 75 % - 27 - . _______ . \ b) Darstellung des Triphenylphosphoniumsalzes ” H2CCo30CcH2P,PM3Br·.
(MG=294) .. :{MG=556)
Chemikalien: 6-Brompiperonylbromid 294 g iC.· Triphenylphosphin 262 g
Siée,"
Toluol
In einem 3 1 3-Halsrundkolben, versehen mit Rückflußkühler und KPG-Rührer, werden 6-Brompiperonylbromid und Triphenylphosphin vorgelegt und in absolutem Toluol unter Rühren gelöst. Das Reaktionsgemisch wird unter Rühren 2 Stunden erhitzt und 24 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Das gebildete Triphenylphosphoniumsalz wird abgenutscht, mit wenig Toluol gewaschen und im Exsikkator getrocknet.
Ausbeute: 500 g, 95 % III, Darstellung des Stilbenderivates H9cC^~Îf^r^r + , ' . CH30-rf^i /0—Br 2 ^oA^-CHzPiPhisBr ♦ OHC-l^J -► H2C-0
(MG=556) I
(MG* 136) ^^-och3‘ (MG =333) - 28 - t* . .
Chemikalien: Lithium (Draht)
Methanol (absolut)
Triphenylphosphoniumsalz o-Anisaldehyd
Dimethylformamid (absolut)
Reaktionsvorschrift:
Kleingeschnittenes Lithium (0,98 g, 0,14 g atom) wird zu unter Stickstoff vorgelegtem·absoluten Methanol (30 ml) zugegeben. Nach ^ Beendigung der Reaktion tropft man diese Lösung innnerhalb von 2,5 Stunden in eine bei 90° C gerührte Lösung aus Triphenylphos-phoniumsalz {16,96 g, 0,14 mol) und o-Anisaldehyd (17,68, g, 0,13 mol), gelöst in absolutem Dimethylformamid (200 ml). Die Reaktionslösung wird eine weitere Stunde bei 90° C gerührt. Nach Abkühlung auf Raumtemperatur wird das Reaktionsgemisch in Wasser (700 ml) eingegossen und der Niederschlag abfiltriert und getrocknet.
Das getrocknete Produkt wird im Soxhlett mit Petrolether (30 bis 50° C) extrahiert, bis der Rückstand in der Hülse kein Stilben mehr enthält (DC; Kieselgel; CH2CI2)· Der Petrolether wird unter r Vakuum eingeengt und der Rückstand (64,82 g Gemisch) aus Etha nol umkristallisiert (hierdurch wird der größte Teil der Verunreinigung bzw. des nicht umgesetzten Produktes abgetrennt). Der ausgefallene Niederschlag (31,13 g) wird in Ether (300 ml) aufge->· schlämmt und 2 Stunden gekocht (= Trennung des cis- und trans-
Gemisches). Nach Abkühlung wird der Feststoff abfiltriert und getrocknet.
Ausbeute: 23,87 g (52 %)
reine Cis-Verbindung - geprüft durch DC, NMR
Schmelzpunkt: 112° C
- 29 - d) Herstellung von l-Cyano-3,4-methylendioxy-2'-methoxy-stilben
2 vo4^#I ^04I
|] Cu(CN)/DMF/^ ) | CCoch3 QCch3 (MG= 331) (MG= 277)
Chemikalien: _ _ xli:
Kupfer(II)cyanid N,N-Dimethylformamid
Eine Mischung aus dem vorgetrockneten Stilbenbromid (3 g), Kupfer (II)-cyanid (4 g) und Dimethylformamid (30 ml) wird für 8 - 12 h unter Rückfluß gekocht, bis kein Bromid im DC (Dichlormethan-Petrolether (1:2)) mehr nachweisbar ist. Nach Abkühlung wird das Reaktionsqemisch in eine Lösung von Eisen (III)chlorid (4 g), HCl (1 ml) und Wasser (10 ml) gegeben und das Reaktionsgemisch auf 70 °C für 20 Minuten gehalten. (AbzugSHCN-Entwicklung!). Danach wird das abgekühlte Reaktionsgemisch mit Chloroform (5 x 40 ml) extrahiert, mit Wasser (2 x 20 ml) gewaschen und über Calciumchlorid getrocknet. Nach Entfernung des Lösungsmittels wird der Rückstand aus Ethanol umkristallisiert,
Ausbeute: 2,0 g (70 %) - 30 - e) Hydrolyse des Nitrils zum Endprodukt , 0/vcn .0 Y=YC00H ^ h2cC J 7Γ · 0—NaOH * jj 0Cch3 ÎAqch, (MG= 277) (MG= 296) K-
Chemikalien:.; stilbensäurenitril qemäß Formel —-NaOH
Stilbensäurepitril (1 g) wird in möglichst wenig Ethanol.(30 bis 50 ml) unter Erwärmen gelöst und mit Natriumhydroxidlösung versetzt (10 g in 15 ml H2O). Das Reaktionsgemisch wird unter kräftigem Rückfluß gekocht, bis das DC (Ether) kein Cyanid mehr nachweist (18 - 20 h). Das Ethanol wird unter Vakuum abgezogen und zu dem Rückstand Wasser (50 - 100 ml) zugegeben. Die wäßrige Phase wird mit Ether (2 x 30 ml) extrahiert und mit 6N HCl neutralisiert. Der ausfallende flockige Niederschlag bleibt meist als Kolloid in der Lösung. Die Lösung wird kurz erwärmt und 24 Stunden stehen-gelassen.
Der koagulierte Niederschlag wird abgenutscht und aus Ethanol umkristallisiert.
Ausbeute: 0,53 g (50 %) - 31 -
Beispiel 2:
Herstellung von l-Carboxy-3,4-methylendioxy-2'-methoxy-stilben durch Umwandlung des Stilbenbromids in die Stilbensäure 1. n-BuLi/Ether ΗΟ/0“ϊΓ^Γ 2. C02 H2cCnJ l Z 3. HCl_„ 2 0—1 v·, Îi^-OCHa k^OCHa V,üv‘ | · -< » !
Chemikalien: Stilbenbromid gemäß Formel 17,44 g (0,05 mol) n-Buli (1,55 molar) 40 ml (0,061 mol)
Ether 180 ml
Das Stilbenbromid wird in absolutem Ether gelöst und unter Stickstoff auf -72 °C gekühlt. In diese Reaktionslösung wird vorsichtig n-Buli eingespritzt und nach Zugabe innerhalb von 1 h auf Raumtemperatur erwärmt.
Die Lösung wird dann sofort auf festes CQ2 gegeben, über Nacht reagie- -:7 ren lassen. Nach Zugabe von Wasser und der Phasentrennung wird die wäßrige Phase mit Ether (2 x 100 ml) extrahiert. Die vereinigten wäßrigen Phasen werden im Eisbad gekühlt und mit konzentrierter HCl angesäuert.
Der ausgefallene Niederschlag wird abgenutscht und mit viel Wasser neu-’ tralgewaschen.
r Nach 2- bis 3maligem Aufkochen mit Wasser (zur Entfernung von Buttersäure, die aus n-Buli stammt) wird das Rohprodukt aus EtOH / H20 umkristallisiert.
Ausbeute: 9,16 g (58,7 %)
Fp. : 199,5 °C
Das entsprechende Stilbenbromid kann gemäß Beispiel 1, Stufen a bis c, erhalten werden.
- 32 - <p * ·
Beispiel 3: Herstellung von l-Carboxy-3,4-methylendioxy-8- methoxy-phenanthren a) Photochemische Umwandlung des Stilbenderivates in das ent- V* " 1 " - " 1 1 1 - - Π " sprechende Phenanthrenderivat
• V
Γτ il k^0CH3 \^OCH3 (MG —333) (MG = 331)
Chemikalien: Stilbenbromid (cis-Verbindung) l,2,3,4-Tetrahydro-9-fluorenon Cyclohexan Jod cis-Stilbenbromid (3,3 g, 0,01 mol) y/ird in absolutem 1,2,3,4-Tetra-hydro-9-fluorenon (100 ml) gelöst. Diese Lösung wird mit absolutem v Cyclohexan (1 200 ml) verdünnt und mit Jod (1,7 g) versetzt. Die Lösung wird unter Stickstoffeinleitung mit einer Labortauchlampe mit Kühlrohr des Typs TQ 150 (Hanau) 12 bis 14 Tage beleuchtet.
Die Reaktion wird mit DC (CH2CI2/PE 30 bis 50° C 1:2) kontrolliert. Die organische Phase mit wäßriger Thiosulfat-Lösung ( 3 x 300 ml) - 33 - ·- ausschütteln, um das überschüssige Jod zu entfernen. Nach dem
Trocknen über MgSO^ wird die organische Phase einrotiert. Das Rohprodukt wird aus Petrolether bei 60 bis 90° C umkristallisiert.
Ausbeute: 1/55 g (47 % der Theorie) b) Herstellung von l-Cyano-3,4-methylendioxy-8-methoxy-phen-anthren aus dem Phenanthrenbromid iV.* j,1 .....“
Umwandlung des Phenanthrenbromids zum Nitril
n_/\_ ' ,0-|f^Ÿ-CN
WZJ I
Cü(CN)/DMF/A J N
| ' .. 2 ' . 1^1 \^^OCH3 0CH3 (MG =331) t (MG = 277)
Chemikalien: Phenanthrenbromid gemäß Formel
Kupfer(II)cyanid N,N-Dimethylformamid - 34 -
Eine Mischung aus dem vorgetrockneten Phenanthrenbromid (3 g), Kupfer(II)-cyanid (4 g) und Dimethylformamid (30 ml) wird für 8 bis 12 Stunden unter Rückfluß gekocht, bis kein Bromid im DC (Dichlormethan-Petrolether (1:2)) nachweisbar ist. Nach Abkühlung wird das Reaktionsgemisch in eine Lösung von Eisen(III)-chlorid (4 g), HCl (1 ml) und Wasser (10 ml) gegeben und das
^ Q
Reaktionsgemisch auf 70 C für 20 min gehalten (Abzug: HCN-Ent-wicklung!). Danach wird das abgekühlte Reaktionsgemisch mit Chloroform (5 x 40 ml) extrahiert, mit Wasser (2 x 20 ml) gewaschen und über Calciumchlorid getrocknet. Nach Entfernung des Lösungsmittels wird der Rückstand aus Ethanol umkristalli-' siert.
Ausbeute: 2,0 g (70 %); Fp: 215° C
• c) Hydrolyse des Phenanthrensäurenitrils zur Phenanthrensäure * Λ" .
H2<0Hi P- Na0H ''."-y
~X) ' aJ
\?^och3 \^och3 (MG = 277) (MG = 296) - 35 -
Chemikalien: Phenanthrensäurenitril gemäß Formel
NaOH
1 Phenanthrensäurenitril (1 g) wird in möglichst wenig Ethanol (30 bis 50 ml) unter Erwärmen gelöst und mit Natriumhydroxidlösung versetzt (10 g in 15 ml h^O). Das Reaktionsgemisch wird unter kräftigem Rückfluß gekocht, bis das DC (Ether) kein Cyanid mehr nachweist (18 bis 20 Stunden), Das Ethanol wird unter Vakuum abgezogen und zu dem Rückstand Wasser (50 bis 100 ml) zugegeben.
: ^'.v; Die wäßrige Phase wird mit Ether (2 x 30 ml) extrahiert und mit 6N .HCl neutralisiert. Der ausfallende flockige Niederschlag bleibt meist als Kolloid in der Lösung. Die Lösung wird kurz erwärmt und 24 Stunden stehengelassen.
Der koagulierte Niederschlag wird abgenutscht und aus Ethanol umkristallisiert.
Ausbeute: 0,53 g (50 %) v c - 36 -
Beispiel 4: Herstellung von l-Carboxy-3,4-methylendioxy-8- hydroxy-phenanthren 1,0 g l-Carboxy-3,4-methylendioxy-8-methoxy-phenanthren wurde ^ mit 2,0. g Pyridin-hydrochlorid im Ölbad bei 170° C zum Schmelzen gebracht und unter Begasung mit Stickstoff 1 Stunde auf dieser Temperatur gehalten. Nach dem Abkühlen wurde die erstarrte Masse mit 10 1 5prozentiger HCl aufgenommen und 3 x mit je 10 1 Chloroform extrahiert. Man vereinigte die Extrakte, wusch mit Wasser neutral und filtrierte zur Trocknung über silanisiertes Filterpapier (WHATMAN 1 PS). Nach Abdampfen des Lösungsmittels bei 30° C am Rotationsverdampfer wurde das Gemisch aus Ausgangsmaterial und Hydrolysat zur Trennung verestert, indem mit einem Gemisch aus 2,5 1 Methanol und 0,1 1 konzentrierter ^SO^ 3 Stunden unter Rückfluß destilliert wurde. Dann wurde in 10 1 Wasser eingegossen und die wäßrig-methanolische Phase 3 x mit je 10 1 Di-isopropylether ausgeschüttelt. Das organische Lösungsmittel wurde, nachdem mehrfach mit Wasser gewaschen worden war, mit 10 1 NaOH extrahiert, wobei der Methylester der 8-Methoxy-Verbindung in der organischen Schicht verblieb und die 8-Hydroxy-Verbindung unter gleichzeitiger Esterhydrolyse in die wäßrige Phase überführt wurde. Nach Auswaschen mit frischem Diisopropylether wurde die alkalische Phase angesäuert und mehrfach mit Chloroform ausgeschüttelt, über Phasentrennpapier WHATMAN 1 PS getrocknet und das Lösungsmittel am Rotationsverdampfer abgezogen. 1-Carboxy-t 3,4-methylendioxy-8-hydroxy-phenanthren blieb als dünnschicht chromatographisch einheitliche Verbindung in fester Form zurück.
Fluoreszenz: (Me0H;A v5 nm): Anregung: 261, 302, 318, 329, (Ω3Χ 358, 377
Emission: 386, 402
Ausbeute: 0,714 g (75 %) - 37
Beispiel 5:
Herstellung von l-Carboxy-3,4-methylendioxy-8-methoxy-phenanthren durch Reduktion der Nitrogruppe 5 g Aristolochiasäure I werden in 1500 ml lprozentiger wäßriger Natriumcarbonat-Lösung gelöst und an- «5-r schließend in einen 5 1-Kolben filtriert.
Zu dieser klaren Salzlösung fügt man 1500 ml ' käufliche Ammoniumpolysulfid-Lösung hinzu. Das Reaktionsgemisch wird 2 Stunden bei Raumtemperatur (Abzug!) gerührt und verschlos- ·(·'. sen über Nacht auf bewahrt. Im Anschluß daran gibt man ] Ό- a ' 1500 ml demin. Wasser hinzu und säuert tropfenweise unter Rühren mit ca.
550 ml konzentrierter Salzsäure das Reaktionsgemisch an. Das dabei entstehende Fällprodukt wird abfiltriert und mit Wasser nachgewaschen. Die wäßrige Phase wird mit 1500 ml Ethylacetat extrahiert. Diese Ethylacetatphase setzt man zum Ausrühren des Fällproduktes ein und wiederholt anschließend zweimal die Ausrührung mit je 1500 ml Ethylacetat. Die organischen Phasen werden vereinigt und zweimal mit je 500 ml Wasser gewaschen. Anschließend extrahiert man die Ethylacetat-Lö-sung viermal mit je 750 ml 2prozentiger wäßriger Natronlauge. Die organische Phase wird : . verworfen, die alkalisch-wäßrige Lösung mit konzentrierter Salz säure auf pH 4 - 3 eingestellt und dann wiederum viermal mit je 1000 ml Ethylacetat ausgeschüttelt. Die vereinigten organischen Phasen werden dreimal mit je ’’ 750 ml Wasser gewaschen. Die gewaschene organische Phase wird über Na triumsulfat getrocknet und anschließend nach Filtration im Vakuum
v O
zur Trockne gezogen (Badtemperatur ca. 30 C).
Ausbeute: 3,1 g
Fp. : 285 °C (Zers.)
Zur Reinigung wird die Substanz aus Ethylacetat umkristallisiert.
Claims (6)
1. Verbindungen der Formel (I): •’te. ^o-rT^cooH mX I] (D a, ' worin R^ ein H-Atom, Methoxy oder Ethoxy bedeuten und R£> Rj jeweils ein H-Atom bedeuten oder zusammen eine aromatische C-C-Bindung bilden und R-^ dann für ein H-Atom, Hydroxyl oder Ethoxy steht, und deren pharmazeutisch verträgliche Salze.
2, Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der allgemeinen Formel (I): ^0-fr^C00H HîS4l 5 j) (I) - Z - in der ein H-Atom, Methoxy oder Ethoxy bedeutet und R2> R^ für H-Atome stehen oder zusammen eine aromatische C-C-Bindung bilden, wobei in diesem Falle R^ auch.Hydroxyl bedeuten kann, und deren pharmazeutisch verträgliche Salze, dadurch gekennzeichnet, daß man 6 Brom-piperonylbromid der Formel w H2<°I 0-ilN^L-CH2Br mit Triphemylphosphin in einem wasserfreien Lösungsmittel zu einem Phosphoniumsalz der Formel η^^ίΤτ^ ----------- O-k^ÿ^J-CHaPtPh^Br umsetzt, Γ letztere Verbindung mit Benzaldehyd, O-Methoxy-benzaldehyd oder ortho-Ethoxybenzaldehyd in Anwesenheit einer starken v Base zu einem Stilben der Formel ^XRl 0 - 3 - umsetzt, u/orin R^ für H, OCH^ oder steht, dieses Stilbenbromid entweder mit einem Metallcyanid, insbesondere Kupfercyanid, in einem polaren aprotischen Lösungsmittel, insbesondere in Dimethylformamid, in das entsprechende Nitril umwandelt und ^ dieses durch Hydrolyse in eine Säure der Formel (I) über führt oder obiges Stilbenbromid mit n-Butyllithium und Kohlendioxid in eine Säure der Formel (I) überführt oder obiges Stilbenbromid durch UV-Bestrahlung in das Ph'enanthren-derivat der Formel : δ, überführt und diese Verbindung mit einem Metallcyanid oder mit n-Butyllithium und Kohlensäure in der oben erwähnten Weise in eine Säure der Formel (I) überführt und gewünschten-falls eine Verbindung der Formel (I), bei der eine OCH^-Gruppe bedeutet durch Ether-Spaltung in eine Verbindung um-r wandelt, bei der R^ Hydroxyl bedeutet oder ^ eine Nitroverbindung der Formel; -4 _ v ! «S» . . o-r^^/COOH HzC-o4 / . °^γί\/Ν02 J -Λ, worin * ^ i .·* für H oder OCH^ steht, mit einem Polysulfid zu einer Verbindung der Formel (I) denitriert und falls R^ für OCH^ steht, die OCH^-Gruppe gewünschten-falls durch Ether-Spaltung in eine OH-Gruppe umwandelt.
3, Arzneimittel enthaltend mindestens eine Verbindung der allgemeinen Formel (I) n-jf'V'COOn <u 3 i] (i) cc, v v in der Wasserstoff, Methoxy oder Ethoxy be deutet und R2, R^ jeweils für ein H-Atom stehen oder zusammen eine aromatische C-C-Bindung bilden, wobei in diesem Fall R^ auch Hydroxyl bedeuten kann, oder ^ deren pharmazeutisch verträgliche. Salze,gegebenen falls in einem pharmazeutisch verträglichen Träger.
4 * V
- 5 - Gegenstand der Erfindung sind Methylendioxyphenanthren- und Stilbenderivate, ein Verfahren zu ihrer Herstellung und Arznei-„ mittel, die diese Verbindungen enthalten. w Als immunostimulierende Mittel bei Prophylaxe und Therapie von Infektionskrankheiten sind Aristolochia-säuren der Formel (II) t (I) H2C-o4 X °^\^γΝο2 R=h,och3 bekannt, die eine phagozytosesteigernde und antivirale • Wirkung entfalten und die Heilerfolge bei Allgemein infektionen erhöhen und auch erfolgreich zur Behandlung von Eiterungen und Geschwüren appliziert werden können. Bei pharmakologischen Untersuchungen in höheren Dosisbereichen wurde jedoch, kürzlich eine zelluläre Entartung am Vormagen bei der Ratte festgestellt, so daß in der Verabreichung dieser für die Behandlung an sich sehr - wertvollen Wirkstoffe Zurückhaltung notwendig erscheint. überraschenderweise wurde nun jedoch gefunden, daß die Verbindungen der allgemeinen Formel (I) - 6 - - 4 ε- ft-^VC00H "“ΑΧ b I (I) α, .worin R ein H-Atom, Methoxy oder Ethoxy bedeutet., und und für je ein H-Atom stehen oder zusammen eine aromatische C-C-Bindung symbolisieren, wobei in diesem Falle R^ auch Hydroxyl bedeuten kann, selbst bei sehr hoher Dosierung (gegenüber der in der Humantherapie üblichen Dosis von 1-10 jig/kg) bei Ratten (10 mg/kg) weder makroskopisch noch histologisch Anzeichen einer Plattenepithelhyperplasie ergaben. Desgleichen wurden keine mutagenen Effekte festgestellt. Sie eignen sich sehr gut zur Prophylaxe und Therapie von Infektionskrankheiten, da sie eine phagozytose- v., steigernde und antivirale Wirkung entfalten. Von diesen Verbindungen ist zwar das 1-Carboxy-3,4-methylen-dioxy-8-methoxy-phenanthren aus J. Nat. Products 46 (1983) 507 ff., bekannt, von dem berichtet wird, daß es in Dosen von 9U mg/kg (beim Kaninchen; abortiv und von 60 mg/kg (bei der Maus) implantationshemmend wirkt. Eine immunstimulierende Wirkung desselben war danach nicht zu vermuten. ^ Die Verbindungen der allgemeinen Formel (I) können herge- stellt u/erden, indem man 4 · - 7 -
6-Brom-piperonylbromid der Formel ^O-r^X-Br HoCC | O-—CH2Br _ mit Triphenylphosphin in einem wasserfreien Lösungsmittel zu einem Phosphoniumsalz der Formel η2<ιΓϊβγ + O-k^-CHzPiPhJaBr umsetzt, letztere Verbindung mit Benzaldehyd, O-Methoxy-benzaldehyd oder 'v\ ortho-Ethoxybenzaldehyd in Anwesenheit einer starken Base -zu einem Stilben der Formel H2C-0^3(j^r (X, i Λ a S- - B - umsetzt/ worin R,, für H, OCH^ oder OC2H^ steht, dieses Stilbenbromid entweder mit einem Metallcyanid, insbesondere Kupfercyanid, in einem polaren aprotischen Lösungsmittel, insbesondere in Dimethylformamid, in das entsprechende Nitril umv/andelt und dieses b durch Hydrolyse in eine Säure der Formel (I) über führt oder obiges Stilbenbromid mit n-Butyllithium und ^ Kohlendioxid in eine Säure der Formel (I) überführt oder obiges Stilbenbromid durch UV-Bestrahlung in das Phenanthrenderivat der Formel HjC»^ I „ v- ·' " \ -·’ überführt und diese Verbindung mit einem Metallcyanid oder mit n-Butyllithium und Kohlensäure in der oben erwähnten Weise in eine Säure der Formel (I) überführt, und gewünschtenfalls eine Verbindung der Formel (I) ,bei der R.j eine OCH^-Gruppe bedeutet durch Ether-Spaltung T. in eine Verbindung umwandelt, bei der R1 Hydroxyl be- iw. deutet oder eine Nitroverbindung der Formel: ï * - 9 - ,,0-/%^C00H , H2% J A •s. worin R^ für H oder OCHj steht, mit einem Polysulfid zu einer Ver-X; bindung der Formel (I) denitriert und falls für OCH^ steht, die OCH-j-Gruppe gewünschtenfalls durch Ether-Spaltung in eine OH-Gruppe umwandelt. Bei der Bromierung des Piperonylalkohols verwendet man als Niedrigalkylcarbonsäure vorzugsweise Essigsäure. Bei der Herstellung des Phosphoniumsalzes verwendet man als wasserfreies Lösungsmittel z.B. Benzol oder ein Alkylbenzol, vorzugsweise Toluol oder Xylol. Bei der Kondensation des Phosphoniumsalzes verwendet man als starke Base z.B. ein Alkalimetallalkoholat, vorzugsweise Lithium-Methylat. Das dadurch erhältliche Stilben liegt zu 85 % in der Z-Form und zu 15 % in der E-Form vor. Die beiden Isomeren sind durch Behandlung mit Diethylether zu trennen, r Die trans-Verbindung geht in das Ether über; die gewünschte cis-Verbindung bleibt ungelöst. Bei der UV-Bestrahlung des Stilbenbromids arbeitet man z.B. in einem Lösungsmittelgemisch aus absolutem THF und absolutem ; Cyclohexan im Mischungsverhältnis z.B. 1 : 12 unter Zusatz von Jod und Zufuhr von Stickstoff. < · - 10 - Für die Denitrierung verwendet man als Polysulfid vorzugsweise Ammoniumpolysulfid in schwach alkalischer wäßriger Lösung. Die 8-Methoxy- bzw. 8-Ethoxyphenanthrenverbindung (F^ und bilden zusammen eine aromatische C-C-Bindung; R^ steht für * Methoxy oder Ethoxy) können durch Ether-Spaltung in die ent- sprechenden 8-HydroxyVerbindungen überführt werden, beispiels-r weise durch Hydrolyse mit Pyridinhydrochlorid. Die erfindungsgemäßen Mittel dienen zur Steigerung der Infektabwehr. So bewirken sie eine signifikante Aktivierung der Phagozytose von Leukozyten, Die erfindungsgemäßen Mittel sind deshalb zur Behandlung von Allgemeininfektionen, z.B. durch Mykobakterien oder Pneumokokken, und zur Behandlung von lokalen Infektionen brauchbar. Die erfindungsgemäßen Mittel sind auch anwendbar, wenn eine Depression der Phagozytose vorliegt, beispielsweise nach Anwendung von Corticosteroiden oder Zytostatika. Durch Anwendung der erfindungsgemäßen Mittel ist die Phagozytosedepression wieder normalisierbar. Darüber hinaus wurde eine antivirale Wirkung der erfindungsge- - · mäßen Mittel gefunden. ’ ; r t-n %
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