JPH0819394A - 複数標的の同時増幅 - Google Patents
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Abstract
数標的核酸配列の同時増幅法を提供する。 【構成】 規定された配列を増幅反応物の一部として複
数の標的配列の末端に付加することにより、増幅以外の
工程が不要になる。付加された規定配列を含む標的は増
幅前に単離する必要がない。2つの標的配列の共増幅に
関するひとつの態様において、第1標的配列の末端セグ
メントに対応する配列を第2標的配列の一方の末端に付
加し、そして第2標的配列の末端セグメントに対応する
配列を第1標的配列の一方の末端に付加する。次に、2
つの標的の増幅はただ一対のプライマーのみを必要とす
る。別法としては、単一の規定された配列を選択された
必要とするの5’および3’末端に付加してよい。その
ような修飾されたすべての標的配列は、次に、規定され
た末端配列にハイブリダイズするただ一対のプライマー
を用いて増幅される。
Description
増幅に関し、特定すれば、複数標的配列の同時増幅に関
する。
の検出および分析のための強力な手段を提供してきた。
そのような方法の究極の感度は、感染性および遺伝的疾
患の診断、分析のための遺伝子の単離、および法医学に
おける特定の核酸の検出のためのそれらの開発の企画に
通じてきた。核酸増幅技術は、その方法における温度要
求性に従い分類されうる。ポリメラーゼチェインリアク
ション(PCR;R.K.Saiki,et al.1
985.Science,230,1350−135
4)、ライゲースチェインリアクション(LCR;D.
Y.Wu,et al.,1989,Genomic
s,4,560−569;K.Barringer,e
t al.,1990,Gene,89,117−12
2;F.Barany,1991,Proc.Nat
l.Acad.Sci.USA,88,189−19
3)および転写に基づく増幅(D.Y.Kwoh,et
al.,1989,Proc.Natl.Acad.
Sci.USA,86、1173−1177)は、温度
の循環を必要とする。対照的に、鎖置換増幅のような方
法(SDA;G.T.Walker,et al.,1
992,Proc.Natl.Acad.Sci.US
A,89,392−396;G.T.Walker,e
t al.,1992,Nuc.Acids.Re
s.,20,1691−1696)、自己維持配列増幅
(3SR;J.C.Guatelli,et al.,
1990,Proc.Natl.Acad.Sci.U
SA,87,1874−1878)およびQβレプリカ
ーゼシステム(P.M.Lizardi,etal.,
1988,BioTechnology,6,1197
−1202)は恒温反応である。さらに、国際公開第9
0/10064号および国際公開第91/03573号
は、核酸の恒温複製におけるバクテリオファージ、ファ
イ29の複製開始点の使用を記載している。
診断およびスクリーニングは、一度に一つの標的配列を
増幅する必然性により制限されてきた。複数の核酸配列
が存在する場合(例えば、感染性疾患の診断)、この方
法による複数の別々のアッセイの実施は煩わしく、か
つ、時間を消費する。米国特許第4,683,195
号、第4,683,202号および第4,800,15
9号はPCRを記載する。これらの発明者らは、複数の
配列が検出されると述べているが、同時に複数の標的配
列を増幅するための方法を何ら開示していない。複数の
標的配列を増幅する場合、それは、別々のPCRによる
単一の標的の連続的増幅による。事実、別々の標的配列
のための複数のプライマー対を単一のPCRに添加する
場合、その反応は受容不可能なほどの高いレベルの非特
異的増幅およびバックグラウンドを生じる。複数の標的
配列を同時に増幅することに関して報告されたPCRの
改良は、欧州特許出願第0364255号に記載されて
いる。これは、複数DNA増幅(multiplex
DNA amplification)と呼ばれる。こ
の方法においては、複数対のプライマーを、標的核酸を
含む核酸に添加する。各プライマー対は、別々の選択さ
れた標的配列にハイブリダイズし、PCRと同様の温度
循環反応において連続的に増幅される。
末端に対する規定された配列を付加してきた。米国特許
第5,104,792号は、配列が公知でない核酸断片
を増幅させるPCRの修飾法を記載している。該増幅反
応のためのプライマーは、それらの3’末端にランダム
な変成(degenerate)配列を、そして5’末
端に規定された配列を含む。プライマーの伸長により、
規定された配列を周囲に有する、未知の配列を含む断片
が生成される。次に、これらの断片は、公知のそれら周
辺配列にハイブリダイズするプライマーを用いて慣用的
PCRにより増幅される。公知の配列を周囲に有する未
知のDNAのPCR増幅に関する他の方法は、D.H.
JonesおよびS.C.Winistorfer(1
992,Nuc.Acids.Res.20,595−
600,「パンハンドルPCR」)により記載されてい
る。パンハンドルPCRにおいては、公知DNAの配列
に相補的な一本鎖オリゴヌクレオチドを、二本鎖断片の
3’末端に連結する。変成および鎖間のリアニーリング
により、相補鎖はハイブリダイズし、そして退行してい
る3’末端はポリメラーゼにより伸長され、公知配列を
周辺に有する未知配列が生成される。次に、公知配列を
用いて未知配列の増幅のためのプライマーを製造する。
ヘアピン構造の生成および単一プライマー増幅のための
同様な方法は、欧州特許出願第0379369号に記載
されている。国際公開第90/09457号は、全く知
られていないDNA配列の増幅のための、配列非依存性
方法を記載している。ユニバーサルオリゴヌクレオチド
プライマー対を平滑末端連結により標的DNAに連結し
て、これらの公知プライマーを用いてPCR増幅が開始
される。
配列増幅に関するいくつかの方法が知られている。A.
R.Shuldinerら(1990,Gene,9
1,139−142)は、唯一の配列を第1鎖の5’末
端に付加することによる逆転写PCRの修飾法を記載し
ている。第1鎖の合成は、3’末端においてRNA標的
に相補的であり、かつ、5’末端に上記唯一の配列を含
むハイブリッドプライマーにより開始される。次に、上
記唯一の配列に対するプライマーおよび標的特異的配列
に対するプライマーを用いて、cDNAを増幅する。こ
れは、記録的に持ち越し汚染物の増幅を低下させる。欧
州特許出願第0469755号は、隣接していない非相
補的2つのセグメントを有する一本鎖ポリヌクレオチド
の生産法を開示している。該ポリヌクレオチド中に存在
する配列に相補的な配列は、その3’末端において上記
ポリヌクレオチドにハイブリダイズし、かつ、その5’
末端において上記存在配列に相補的なプライマーの伸長
により導入される。プライマーの伸長後、ポリヌクレオ
チドは単一のプライマーを用いて増幅されうる。V.S
hyamalaおよびG.F.L.Ames(198
9、Gene,84,1−8)は、一方の末端の配列の
みが利用可能な場合のDNAのPCR増幅法(SSP−
PCR)を教示している。未知の末端は一般的ベクター
配列に連結され、そしてその断片は遺伝子特異的プライ
マーおよび一般的ベクタープライマーを用いて増幅され
る。同様な方法は、欧州特許出願第0350621号に
開示されている。国際公開第90/01064号は、配
列の公知部分に対する配列特異的プライマーを用いて合
成開始された相補鎖の合成による配列増幅法を記載して
いる。ホモポリマーを該相補体の3’末端に付加し、そ
して配列は、ホモポリマープライマーおよび配列特異的
プライマーの領域に相同なプライマーを用いて増幅され
る。フットプリンティングへのPCRの適用は、P.
R.MuellerおよびB.Wold(1989,S
cience,246,780−786)により教示さ
れている。フットプリンティングに関して、共通のオリ
ゴヌクレオチド配列をフットプリントのラダーの各断片
の唯一の末端に連結させる。断片は該共通配列に相補的
なプライマーおよび固定された末端の公知配列に相補的
なプライマーを用いて増幅される。
幅の前にあらゆる標的にあらゆるアダプター配列または
あらゆるアダプター配列対を付加するための手段を提供
する。アダプター配列は、単一プライマー伸長増幅反応
(本明細書中では複数化増幅(multiplex a
mplificationまたはmultiplexi
ng)と呼ぶ)において2つ以上の標的反応の同時増幅
に必要な特異的プライマーの数を減少させる。慣用的複
数増幅は、各標的配列の増幅に特異的な反応プライマー
を用いることを含み、即ち、各標的は特異的プライマー
またはプライマー対により増幅される。慣用的な複数増
幅は、特定の状況において満足のゆく結果を提供する
が、しかし、複数の特異的プライマーを各複数反応のた
めに調製しなければならない点で不利である。しばし
ば、しかしながら、複数配列は、高いレベルの非特異的
バックグラウンド増幅のために、慣用的複数増幅を用い
て容易に増幅および検出されない。本発明の複数増幅に
おけるアダプターは、特定の場合に改良された結果をも
たらす慣用的複数増幅に対して選択的である。前記文献
のうち、EPO第0364255号およびMuelle
rおよびWoldのみが、複数標的配列の同時増幅の問
題に立ち向かっている。両開示は、一部その温度循環に
より、SDAのような恒温増幅と比較した場合に顕著に
異なる反応条件を提供する同時PCR増幅を教示する。
前記文献の特定のものは、増幅前に断片のいずれかの末
端に規定された配列を付加することを記載しているが、
規定された末端の付加および増幅は別々の反応において
実施される。さらに、本発明は最初に、各標的に対する
別々の特異的プライマーの必要性なしに、SDAにより
複数の標的配列を同時に増幅する方法を提供する。本発
明の方法は、標的配列の末端への規定されたアダプター
配列の付加および増幅反応が単一反応混合物において生
じ、そして使用者にとって単一の工程ですむ点において
特に有利である。
のプライマーまたはプライマー対を用いることにより、
複数の標的核酸配列を共に増幅することができる。規定
されたアダプター配列は、増幅反応の関係において標的
配列の末端に付加され、それにより、アダプター配列に
付加するための付加的操作を含まない。即ち、付加的ア
ダプター配列を含む標的配列を増幅前に単離する必要が
ない。2つの標的配列を共に増幅するためのひとつの態
様において、第1標的配列の2つの鎖の一方の末端セグ
メントに対応する配列を第2標的配列の2つの鎖の一方
の5’末端に付加し、そして、第2標的配列の2つの鎖
の一方の末端セグメントに対応する配列を第1標的配列
の2つの鎖の一方の5’末端に付加する。次に、2つの
修飾された標的の増幅は、増幅プライマーたった一対の
みを必要とする。該対の一つの増幅プライマーは、第2
標的の対応する配列にハイブリダイズする。別法とし
て、一つの標的に由来する配列の一対は、あらゆる数の
標的の各鎖の5’および3’末端に付加してよい。他の
態様において、2つの任意の「ユニバーサル」アダプタ
ー配列は、あらゆる数の標的の末端に付加してよい。そ
のような修飾された標的配列のすべては、次に、付加さ
れた末端配列にハイブリダイズする一対のユニバーサル
プライマーを用いて増幅してよい。
に関して特に有利であるが、制限酵素認識部位を含む増
幅プライマー対の必要な数は、一対/標的から一対に減
り、あるいは、1増幅プライマーに減る。少ない数の増
幅プライマー対を用いるため、プライマーダイマーの形
成および非特異的バックグラウンド増幅が減る。本発明
の方法は、プライマーの濃度を低下させ、規定された配
列を含むアダプタープライマーは、置換されるべき増幅
プライマーに比較してはるかに低い濃度で存在する。
DA(複数化SDA)による複数の標的配列の同時増幅
法を提供する。該方法は、複数の標的配列を共に増幅す
るために、一対の増幅プライマーまたはひとつのSDA
増幅プライマーを用いる。これは、規定されたアダプタ
ー配列を標的に付加し、かつ、プライマー伸長により共
に増幅することにより達成される。本発明の方法は、本
明細書中で「アダプター介在複数化」と呼ばれる。この
言葉は、複数対の標的特異的プライマーを用いて、アダ
プターの付加なしに複数の標的を共に増幅する「慣用的
複数化」に対するものである。
る。
標的配列の増幅のためのプライマーである。SDAに関
して、増幅プライマーの3’末端(標的結合配列)は、
標的配列の3’末端にハイブリダイズし、かつ、その
5’末端付近に制限酵素の認識部位を含む。認識部位
は、半修飾(hemimodified)の場合に、D
NA二本鎖の一方の鎖にニックを入れる制限酵素のため
のものであり、Walkerら(1992,PNAS,
89,392−396)および米国特許出願第07/8
19,358号(1992年1月9日出願)に記載され
ており、これら文献の内容は引用により本明細書の一部
をなす。半修飾(hemimodified)認識部位
は、一方の鎖が制限酵素によるその鎖の切断を妨害する
少なくともひとつの誘導化ヌクレオチドを含む、制限酵
素のための二本鎖認識部位である。半修飾認識部位の他
方の鎖は、誘導化ヌクレオチドを含まず、かつ、制限酵
素によりニックを入れられる。好ましい半修飾認識部位
は、制限酵素、HincII,AvaI,NciIおよ
びFnu4HIの半ホスホロチオエート化認識部位であ
る。SDA反応の大部分に関して、増幅プライマーは標
的配列の対数的増幅に必須である。
ブリダイズする配列(標的結合配列)をその3’末端に
有する。アダプタープライマーの5’末端は、アダプタ
ー配列である。アダプター配列は、増幅プライマーの一
方の3’末端と実質的に同一の配列であるか、または、
相補的標的結合配列を有する増幅プライマーが調製され
うるためのあらゆる規定された配列を含む。
ーの伸長により下流のプライマーおよびその伸長産物が
置換されるような、アダプターまたは増幅プライマーの
いずれかの標的配列上流にアニールするプライマーであ
る。バンパープライマーの伸長は、アダプターおよび増
幅プライマーの伸長産物の置換のための一つの方法であ
るが、加熱も適切である。
列にハイブリダイズする。実質的に同一な配列は、同じ
ヌクレオチド配列にもハイブリダイズするそれらのヌク
レオチド配列に十分類似のものである。
核酸配列を意味する。これらは、増幅される起源核酸配
列およびその相補的第2鎖(アダプター配列の付加前
の)、上記起源配列のアダプター修飾コピーのいずれか
の鎖、および、アダプター配列が起源配列に付加された
場合の反応中間産物である起源配列のコピーのいずれか
の鎖を含む。
アダプター配列は、下記のアダプタープライマー手段お
よび伸長および鎖置換工程により標的配列の末端に付加
される。アダプタープライマーは、(i)その5’末端
にアダプター配列を、そして(ii)その3’末端に標
的結合配列を含むオリゴヌクレオチドである。5’アダ
プター配列は、適切な増幅プライマーが調製されうるた
めのあらゆる配列でありうる。アダプター配列は、任意
であるか、または標的配列のひとつのセグメントに相当
する。アダプタープライマーのアダプターおよび標的結
合領域は接続されるか、または、非関連配列のセグメン
トにより分断される。別々のアダプタープライマーは、
共通な5’アダプター配列を含んでも含まなくてもよい
が(下記)、さまざまな標的へのハイブリダイズを達成
するために異なる3’標的結合配列を有するのが一般的
である。唯一のアダプタープライマーは、したがって、
各標的末端がアダプター配列の付着により修飾されるた
めに通常必要である。標的配列の一方または両方の末端
は、アダプター配列の付着により修飾されていてよい。
標的配列の両方の末端を修飾する場合、2つの付加され
た配列は同一であるか、または異なっていてよく、アダ
プタープライマーの選択に依存する。
は、SDAによるプライマー伸長増幅に向けられる。当
業者には、これらの方法がポリメラーゼによるプライマ
ーの伸長に基づくあらゆるDNA増幅法に容易に適用可
能であることは明らかであろう。例えば、これらは、上
記の3SRおよびPCRを含む。本発明の方法をこれら
増幅法に適用するためには、SDA増幅プライマーは選
択されたプライマー伸長増幅反応に適切な増幅プライマ
ーで置換されるはずであることは、当業界において明ら
かである。アダプタープライマーは、選択されたプライ
マー伸長増幅法にかかわらず、本質的に変化しない。
標的配列の両方の末端の修飾のための好ましい方法を例
示する。第1アダプタープライマー(A1)は標的DN
A配列の3’末端において標的DNAにハイブリダイズ
する。A1の標的結合配列は3’末端にあり、そして選
択されたアダプター配列は5’末端にある。上記Wal
kerら(1992,Nuc.Acids Res.2
0,1691−1696)により記載された第1バンパ
ープライマー(B1)は、上記第1アダプタープライマ
ーの標的DNAの上流にハイブリダイズする。上流バン
パープライマーの伸長は第1バンパープライマーの伸長
産物を置換し(A1−ext)、その5’末端にアダプ
ター配列を含むが、その他の点では起源標的DNA配列
に相補的である。第2アダプタープライマー(A2)の
標的結合配列(3’末端)を次に、起源標的配列に相補
的な配列の3’末端に対応する位置において、第1アダ
プター伸長産物(A1−ext)にハイブリダイズさせ
る。A2の5’末端は第2アダプター配列からなり、A1
アダプター配列と同一であっても異なってもよい。前記
のような第2バンパープライマー(B2)の伸長による
重合および置換は、5’および3’末端に付加されたア
ダプター配列を有する起源標的配列の一本鎖コピーを生
成する。特定すれば、修飾された標的の5’末端は第2
アダプタープライマーに直接由来し、修飾された標的の
3’末端(間接的に第1プライマーに由来する)は第1
アダプター配列に相補的な配列からなる。
する2つの相補的標的鎖のただ一方のみからの標的生成
物を示す。第2鎖からの修飾された標的の生成は、第1
および第2アダプタープライマーの結合と伸長の順序が
逆になっている以外は、図1に示される第1鎖からの修
飾標的の生成と同一である。即ち、A2が結合して最初
に伸長し、そしてA1がA2の伸長生成物に結合して伸長
される。第1および第2バンパープライマーの結合およ
び伸長は同様に逆である。第2鎖に関して対応する伸長
および置換反応の正味の結果物は、その5’末端に第1
アダプター配列と同一の配列を有し、そしてその3’末
端に第2アダプター配列に相補的な配列を有する、修飾
された標的断片である。アダプター配列で末端が修飾さ
れた標的配列のすべての鎖は、次に、修飾された標的の
生成に用いられるアダプタープライマーの5’末端の第
1および第2アダプター配列に実質的に同一な標的結合
配列をその3’末端に有する増幅プライマーにより対数
的に増幅されうる。
混合物中で同時に複数の標的配列を修飾することができ
るが、その際、該混合物は修飾される各標的末端のため
の適切なアダプタープライマーを含む。さまざまなアダ
プタープライマーをデザインすることにより、生成され
るすべての修飾標的配列は同じ対の付加配列を含む。次
に、すべての末端修飾標的鎖を同じ対の増幅プライマー
により増幅する。別法として、すべてのアダプタープラ
イマーが同じ5’アダプター配列を含むならば、たった
ひとつの増幅プライマーのみがすべての修飾標的鎖の増
幅に必要なだけである。
つの標的配列の共増幅に関する、本発明の別の態様を示
す。再び、明確化のために、各標的配列の一方の鎖のみ
の修飾を例示する。この態様においては、各標的鎖の一
方の末端は、他の標的の末端セグメントに実質的に同一
な配列を付加することにより修飾される。各標的の他方
の末端は未修飾のままであり、増幅プライマー対の一方
のメンバーへの最初の相補性を残している。以下に詳細
に説明されるとおり、次に、その結果得られる、修飾さ
れた標的を一対の増幅プライマーにより増幅することが
できるが、その際、該対の一方のメンバーは2つの起源
標的配列の一方に相補的であり、かつ、該対の他方のメ
ンバーは2つの起源標的配列の一つに相補的である。第
1標的(A)に関して、A特異的増幅プライマー
(SA)を標的の3’末端にハイブリダイズさせ、そし
て、ポリメラーゼにより伸長合成する。増幅プライマー
のニッキング酵素認識部位は、図2において、プライマ
ーの持ち上がった部分として示される。その結果得られ
る伸長産物は、SAの上流において標的にハイブリダイ
ズするバンパープライマー(BA1)の伸長により置換さ
れる。置換されたSA伸長産物は、起源標的配列の相補
体の3’末端においてSA−extに結合するアダプタ
ープライマー(AA)にハイブリダイズする。AAの5’
末端はアダプター配列(太線部分)を含むが、該配列は
SBの3’末端の標的結合配列に実質的に同一であり、
増幅プライマーは第2標的(B)に特異的に結合する。
AAの伸長およびAA伸長産物(AA−ext)の置換
は、ニッキング酵素認識部位を有するA標的配列、およ
びその3’末端にA標的配列、およびその5’末端にS
B標的結合配列を有する一本鎖コピーを生成する。
B特異的増幅プライマー(SB)を結合および伸長さ
せ、次に、伸長産物(SB−ext)にアダプタープラ
イマー(AB)をハイブリダイズさせる。SBは、SBの
標的結合配列およびAAのアダプター配列の両者に相補
的なBの3’末端セグメントにおいてBにハイブリダイ
ズする。アダプタープライマーABの3’末端は起源標
的の相補的3’末端にハイブリダイズし、そして、AB
の5’末端(白枠部分)は、SAの標的結合配列に実質
的に同一である。AB伸長産物(AB−ext)の伸長お
よび置換は、ニッキング酵素認識部位を有する第2の標
的配列(持ち上がった部分)、およびその3’末端にB
標的配列、およびその5’末端にSA標的結合配列を有
するコピーを生成する。標的配列の2つのアダプター修
飾コピーは、通常反応に存在するSAおよびSB増幅プラ
イマーのみを用いて、SDAにより増幅可能である。S
DAを始めるために、AA−extおよびAB−extは
各々の増幅プライマーにハイブリダイズするが、該プラ
イマーは伸長されて、3’末端にアダプター配列の相補
部分を含む修飾鎖の物(即ち、A修飾鎖上でのSAの伸
長、およびB修飾鎖上でのSBの伸長)を生成する。ニ
ッキングおよび置換の後、次に、反対の標的の増幅プラ
イマーはこの伸長産物の3’末端に結合し(即ち、A由
来の鎖に対してSB、そしてB由来の鎖に対してSA)、
そして伸長により各末端にニッキング酵素認識部位を有
する断片を生成する。この断片は、Walkerら(前
記)に記載されているとおりに、慣用的SDAにより増
幅される。
生成された二本鎖反応産物は、AA−extおよびAB−
extの付加的コピーを生じる反応ループにも関与す
る。底の鎖の制限酵素認識部位にニックを入れ、ポリメ
ラーゼにより伸長し、そして、底の鎖の置換により、S
A−extおよびSB−extと類似しているが5’末端
に制限酵素の認識部位の半分を有する標的を生成する。
アダプタープライマーは図2に示されたこれら断片に結
合でき、かつ、伸長および置換されて、上記SDA反応
サイクルに入るAA−extおよびAB−ext(5’末
端に制限酵素の認識部位の半分を有する)の付加的コピ
ーを生成する。
相補的鎖の一方のみからの修飾標的の生成を示す。この
ように示された工程は、各標的の第2鎖から開始する。
第2鎖の場合、しかしながら、プライマーの結合および
伸長の順序は逆である。アダプタープライマーは、最初
に標的第2鎖に直接結合し、そしてその鋳型上を伸長す
る。その次の置換の後、その結果の伸長産物は増幅プラ
イマーに結合するが、その際、該プライマーはひるがえ
って伸長および置換されることにより、その5’末端に
ニッキング制限酵素の認識部位およびその3’末端にア
ダプター配列に相補的な配列を有する起源第2鎖の標的
配列を含む産物を生じる。この修飾された断片は、反対
の標的に特異的な増幅プライマーの結合および伸長によ
り慣用的SDA増幅にはいり(即ち、SBはA由来の鎖
に結合し、そしてSAはB由来の鎖に結合する)、各末
端にニッキング制限酵素部位を有する各標的第2鎖のた
めの断片を生成する。
幅することに関与するすべての反応工程は、単一反応混
合物中で同時に生じる。即ち、アダプター配列が標的配
列に付加されたならば、その標的分子の増幅は、存在す
る他のあらゆる標的分子にアダプター配列を付加する前
に同じ反応混合物中で、修飾標的の単離なしに生じう
る。本発明の方法の反応条件は、本質的には、SDAに
関してWalkerら(前記)により記載されたものに
いくつかの修飾を加えたものである。第1に、最初の反
応混合物は、増幅プライマーおよびアダプタープライマ
ーの両者、並びに標的DNAを含む。さらに、増幅プラ
イマーはアダプタープライマーの約10倍過剰に存在す
る。しかしながら、慣用的SDAのように、標的DNA
の加熱変成およびプライマーのアニーリングの後に、ニ
ッキング制限酵素およびexo-クレノーポリメラーゼ
を添加する。標的DNAの変成、プライマーのアニーリ
ングおよびポリメラーゼの添加の後に、アダプター配列
を付加して増幅する工程は、単一反応混合物中で、使用
者によるさらなる干渉なしに自動的に進行する。即ち、
アダプター配列を付加した後は、修飾された標的配列は
SDA反応サイクルに自動的にはいる。必要であれば、
ユニバーサルプライマーを3’末端に付加(cappe
d)してポリメラーゼによる伸長を阻害し、そしてプラ
イマーダイマーの形成によるバックグラウンド反応を減
少させてよい。
ター介在複数化により比較された。第1の標的は、マイ
コバクテリウムツベルクロシス(Mycobacter
ium tuberculosis)のIS6110イ
ンサーションエレメントであった(標的「A」、Thi
erry et al.,1990)。第2の標的は、
マイコバクテリウムツベルクロシス(Mycobact
erium tuberculosis)の16Sリボ
ソーマル遺伝子であった(標的「B」)。慣用的複数化
法は、各標的配列のための4つのプライマーのフルセッ
ト(S1,S2,B1およびB2、Walkerら、Nu
c.Acids Res.,前記)、即ち、2つの標的
配列のための合計8つのプライマーであった。アダプタ
ー介在複数化法に関しては、図2に示すとおり、各標的
配列のためのSプライマーのひとつをアダプタープライ
マーに代えたが、その際、アダプタープライマーは交換
されたSプライマーの濃度より10倍低い濃度で用い
た。
ids Res.(前記)に記載されたとおりに実施し
た。成分の最終濃度は、45mM KiPO4、pH7.
5、6mM MgCl2、0.5mM dUTP、0.
2mM dGTP、0.2mMdCTP、0.2mM
dATPαS、0.1mg/mlアセチル化BSA、1
2%(v/v)ヂメチルスルフォキシド、3%(v/
v)グリセロール(exo-クレノーおよびHincI
Iの保存溶液により供給)、250mgヒト胎盤DN
A、2.5ユニットexo-クレノー(New Eng
land Biolabs,Beverly,MA)、
および0、50、500または5,000マイコバクテ
リウムツベルクロシスゲノム(分子)であった。慣用的
複数化増幅法に関しては、サンプルは、以下のプライマ
ーを含んだ:各500nMの配列番号1(S2A)、配列
番号2(S1A)、配列番号3(S1B)、配列番号4(S
2B);および各25nMの配列番号5(B1A)、配列番
号6(B2A)、配列番号7(B1B)および配列番号8
(B2B)。アダプター介在複数化法に関しては、サンプ
ルは以下のプライマーを含んだ:各500nMの配列番
号2(図2のSA)および配列番号3(図2のSB);各
50nMの配列番号10(AA)および配列番号9
(AB);各25nMの配列番号5(B1A)、配列番号
6(B2A)、配列番号7(B1B)および配列番号8(B
2B)。
-クレノーおよびHincII以外のすべての試薬を各
試薬の10×濃縮溶液を用いて含ませた。MgCl
2は、すべての他の試薬(exo-クレノーおよびHin
cII以外)の添加および混合後に添加してKiPO4、
ジメチルスルフォキシドおよびMgCl2がそれぞれ4
5nM、12%(v/v)および6mM以上の濃度で混
合された場合に生じる沈殿が起きないようにした。次
に、サンプルを温浴バス中で2分間加熱し、マイコバク
テリウムツベルクロシスDNAを変成させた。温浴バス
から取り出した直後に沈殿が観察された。2分間、40
℃においてインキュベートしてから渦巻き撹拌すること
により、高温沈殿物の大半は溶解した。exo-クレノ
ー(2.5ユニット/μl保存溶液を1μl)およびH
incII(75ユニット/μl保存溶液を2μl)を
添加し、そしてサンプルを2時間40℃においてインキ
ュベートした。
cids Res.(前記)に記載されたとおり、プラ
イマー伸長により検出した。各サンプルの5μlのアリ
コートを5μlの45mM KiPO4、pH7.5,6
mM MgCl2、0.5mM dUTP、0.2mM
dGTP、0.2mM dCTP、0.2mM dA
TPαS、0.1mg/mlアセチル化BSAおよび2
μlの5’−32P検出用プローブ保存溶液(50mM
Tris−HCl、pH8、10mM MgCl2、1
μlの5’−32P検出用プローブ)と混合した。標的A
のための検出用プローブは配列番号11であり、そして
標的Bのための検出用プローブは配列番号12であっ
た。次に、12μlのサンプルを温浴バス中で1分間加
熱した。2分間、37℃においてインキュベートした
後、2μlの1ユニット/μlexo-クレノーを添加
し、そしてサンプルを15分間、37℃においてインキ
ュベートし、そして、0.5×TBE中の50%尿素を
14μl加えた。
し、8%変成ゲル電気泳動およびオートラジオグラフィ
ーにより分析した(Maniatis et al.,
1982,Molecular Cloning:A
Laboratory Manual Cold Sp
ring Harbor Laboratory,Co
ld Spring Harbor,NY)。結果を図
3に示す。レーン1〜8はIS6110のSDAを示
し、レーン9〜16は16S遺伝子配列のSDAを示
す。増幅されたIS6110(標的A)は、配列番号1
1の検出用プローブの伸長による、慣用的複数化法に関
する35マーおよび56マー(レーン5〜8)およびア
ダプター介在複数化法に関する44、47および68マ
ー(レーン1〜4)を示す。増幅されたI6S(標的
B)は、配列番号12の検出用プローブの伸長による、
慣用的複数化法に関する27マーおよび48マー(レー
ン13〜16)およびアダプター介在複数化法に関する
39、42および63マー(レーン9〜12)を示す。
6110および16S標的の両方の十分な増幅物を生成
した。例えば、両標的配列に関するマイコバクテリウム
ツベルクロシス50ゲノムのアダプター介在増幅(レー
ン3および11)と、慣用的複数化(レーン7および1
5)を比較されたい。
DAを用いて、単一対のSDAプライマーを用いて増幅
しうる2つの標的の生成を示す。第1標的配列(標的
「A」)は、実施例1において用いられたマイコバクテ
リウムツベルクロシスのIS6110インサーションエ
レメントのセグメントであった。第2標的配列(標的
「B」)は、プラスミドpMAv29(J.W.U.F
ries,et al.,1990,Molec.Ce
ll.Probes,4,87−105)に含まれるマ
イコバクテリウムアビウム(Mycobacteriu
m avium)由来の配列であった。増幅反応に供す
る前に、プラスミドpMAv29を制限酵素により切断
し、直鎖状にした。
ids Res.,前記により記載されたとおりに通常
どおりに実施した。67μlの増幅反応物中の成分の最
終濃度は:48.3mM KiPO4(pH7.5);
5.8mM MgCl2;0.96mM各dCTP,d
GTP,dTTP,dATPαS;0.09mg/ml
アセチル化BSA;3%(v/v)グリセロール(ex
o-クレノーおよびHincIIの保存溶液により供
給)、0.85ng/μlヒト胎盤DNA;5.2ユニ
ットexo-クレノー(United States
Biochemical,Cleveland,O
H);154ユニットHincII(New Engl
and Biolabs,Beverly,MA);
0,8,83,830または8300コピーのマイコバ
クテリウムツベルクロシスゲノミックDNAおよびプラ
スミドpMAv29DNAであった。すべての反応物に
おいて、ゲノミックマイコバクテリウムツベルクロシス
およびプラスミドpMAv29のDNAが等しい分子比
で存在した。反応混合物は、以下のプライマーも含ん
だ:各450nMの配列番号13(図2のSA)および
配列番号14(SB);各45nMの配列番号15
(AB)および配列番号16(AA);9nMの配列番号
5(BA1)、配列番号6(BA2)、配列番号17
(BB1)および配列番号18(BB2)。
のすべての反応成分を混合し、そして95℃において2
分間加熱し、そして37℃の温浴バス中に3−5分間お
いた。酵素HincIIおよびexo-を次に添加し、
そして増幅混合物を37℃において2時間インキュベー
トした。インキュベート後、サンプルを95℃において
2時間加熱することにより反応を停止した。
に、5’32−P標識プライマー伸長を用いたIS611
0またはpMAv29増幅産物の存在に関して分析し
た。各サンプルの15μlのアリコートを2μlのプロ
ーブ保存溶液(0.66μlの5’32−P標識検出用プ
ローブ、16mM Tris−HCl(pH8.0)お
よび3.3mM MgCl2)と混合した。IS611
0のための検出用プローブは配列番号11であり、そし
てマイコバクテリウムアビウムのためのプローブは配列
番号19であった。混合物を95℃において2分間加熱
し、そして次に、37℃の温浴バス中においた。3−5
分後、以下の成分を含む溶液3μlを各サンプルに加え
た:0.25ユニット/μl exo-クレノー;9m
M Tris−HCl(pH8.0);1.8mM M
gCl2;および0.9mMの各dCTP,dGTP,
dTTP,dATPαS。混合物を37℃において45
分間インキュベートし、30μlの50%尿素(0.5
×TBE)の添加により伸長反応を停止した。次に、サ
ンプルを95℃において2分間加熱し、そして20μl
のアリコートに関して、10%ポリアクリルアミドゲル
を用いた変成ゲル電気泳動、続くオートラジオグラフィ
ーにより分析した(Maniatisら、前記)。
5において35および56ntに示されたバンドは、I
S6110特異的検出用プライマー(配列番号11)の
伸長に対応する。これらのレーンは、アダプター介在複
数化SDAを用いたわずか8マイコバクテリウムツベル
クロシスゲノムコピーからの検出可能なレベルにIS6
110標的を増幅することを示す。レーン6〜10にお
いて、顕著な51および72ntのバンドはpMAv2
9特異的検出用プローブ(配列番号19)の伸長に対応
する。これらのレーンは、添加されたわずか83コピー
のpMAv29が検出可能なレベルに増幅されたことを
示す(レーン8の薄いバンドを参照されたい)。増幅反
応は等モル量のpMAv29およびゲノミックマイコバ
クテリウムツベルクロシスDNAを含んだが、各添加さ
れたゲノミックマイコバクテリウムツベルクロシスDN
Aから生じたシグナルは、各pMAv29分子から生じ
たシグナルより実質的に大きかった。それは、マイコバ
クテリウムツベルクロシスDNAがゲノムあたり約10
コピーのIS6110配列を含むのに対して、pMAv
29はプラスミド分子あたりただひとつの標的コピーを
含むからである。このことを考慮すると、レーン3およ
び8(同じ増幅混合物の別の分析)は、添加されたわず
か83コピーのpMAv29およびゲノミックマイコバ
クテリウムツベルクロシスDNAからの、標的のアダプ
ター介在共増幅の成功を示す。両方の標的は、レーン1
および6、および2および7に示すとおり、高いレベル
の添加標的DNAが存在した場合にも容易に共増幅され
た。慣用的SDA複数化法を用いたこれら同じ標的の共
増幅は、アダプター介在複数化SDAを用いた共増幅の
10倍以下の効率であった。
イマー(配列番号1および配列番号2)を用いた、図1
に示された方法による、pMAv29標的配列およびI
S6110セグメントの共増幅を示す。アダプタープラ
イマー(配列番号20および配列番号21)を用いて、
両末端にIS6110特異的配列を含むpMAv29標
的配列のコピーを生成した。これらの末端修飾pMAv
29標的は、次に、IS6110特異的プライマーを用
いてIS6110と共に共増幅された。
おりに通常どおりに実施した。50μlの増幅反応物中
の成分の最終濃度は、50mM KiPO4(pH7.
5)、6mM MgCl2、1mMの各dTTP,dC
TP,dGTPおよびdATPαS、0.1mg/ml
アセチル化BSA、3%(v/v)1−メチル−2−ピ
ロリジノン(NMP)、3%(v/v)グリセロール
(exo-クレノーおよびHincIIの保存溶液によ
り供給)、300ngヒト胎盤DNA、3.0ユニット
exo-クレノー(United States Bi
ochemical,Cleveland,OH);1
50ユニットHincII(New England
Biolabs,Beverly,MA);1,000
コピーのマイコバクテリウムツベルクロシスのゲノミッ
クDNAおよび100,000コピーのプラスミドpM
Av29DNAであった(実施例2のとおりに調製し
た)。反応混合物は、以下のプライマーも含んだ:各5
00nMの配列番号1(図1のS1)および配列番号2
(S2);各50nMの配列番号20(A1)および配列
番号21(A2)および各25nMの配列番号18
(B1)、配列番号17(B2)、配列番号5および配列
番号6。配列番号5および配列番号6は前記のとおり、
IS6110標的の生成のためのバンパープライマーと
して機能した。アダプタープライマー(配列番号20お
よび配列番号21)は、図5において「アダプター−」
と示された対照の反応から差し引かれた。
のすべての反応成分を混合し、そして95℃において2
分間加熱し、そして37℃の温浴バス中に3−5分間お
いた。酵素HincIIおよびexo-を添加した後、
増幅混合物を37℃において2時間インキュベートし
た。サンプルを95℃において2時間加熱することによ
り反応を停止した。
プライマー伸長による増幅産物の存在に関して分析し
た。各サンプルの5μlのアリコートを(i)42.5
mMのTris−HCl(pH8.0);8.5mMの
MgCl2;0.2mMの各dCTP,cGTP,dT
TPdATPαSを含む10μlの溶液;および(i
i)3μlの32P−標識検出用プローブ保存溶液(0.
66μM5’−32P−標識プローブ、16mMのTri
s−HCl(pH8.0)、および3.3mMのMgC
l2を含む)と混合した。IS6110のための検出用
プローブは配列番号11であり、そしてpMAv29特
異的プローブは配列番号19であった。これら混合物を
混合し、95℃の温浴バス中で加熱した。37℃温浴バ
ス中で3−5分間インキュベートした後、3μlの0.
34ユニット/μlのexo-クレノーを各混合物に添
加し、サンプルを37℃において15分間インキュベー
トした。伸長反応は、0.5×TBE中の50%尿素3
0μlの添加により停止した。
そして20μlのアリコートに関して、前記のとおり、
最初に10%ポリアクリルアミドゲルを用いた変成ゲル
電気泳動、そしてオートラジオグラフィーにより分析し
た。図5は、ゲルのオートラジオグラフィーを示す。レ
ーン1および2において35おおび56ntと示された
バンドは、IS6110特異的プローブ(配列番号1
1)の伸長に対応する。レーン3および4において51
および72ntと示されたバンドは、pMAv29特異
的検出用プローブ(配列番号19)の伸長に対応する。
レーン1および3は同じ(アダプター含有)増幅反応の
別の分析を示し、レーン2および4は同じ(アダプター
不含)増幅反応を示す。
両者の増幅反応混合物はIS6110標的配列の増幅に
必要なプライマーを含んだので、レーン1および2の両
方における強いIS6110特異的バンドの存在が期待
される。「アダプター−」レーン中の、生成物による強
いバンドは、アダプター配列がIS6110の増幅に不
要であることを示し、そして、「アダプター+」レーン
中のほぼ同じ強度の対応する生成物バンドは、アダプタ
ーの存在がIS6110の増幅を顕著に妨害しないこと
を示す。
29標的配列の増幅に必要であり、レーン4(「アダプ
ター−」)ではなく、レーン3(「アダプター+」)中
のpMAv29特異的生成物のバンドの存在により示さ
れる。このことは、IS6110に特異的な一対の増幅
プライマーを用いたpMAv29標的配列のアダプター
介在増幅を示す。さらに、レーン1と3を共に考察する
と、pMAv29とIS6110標的配列の共増幅が示
される。
列を付加するための本発明の方法を示す。
示す。
ジオグラフィーである。
ジオグラフィーである。
ジオグラフィーである。
Claims (10)
- 【請求項1】(a)第1増幅プライマーを第1標的配列
の3’末端にハイブリダイズさせ、ポリメラーゼにより
該第1増幅プライマーを伸長させて上記第1標的配列に
相補的な第1伸長産物を形成させ、そして該第1伸長産
物を置換するが、その際、上記第1増幅プライマーは
3’に標的結合配列を有し、かつ、5’に二本鎖のうち
の一方の鎖が修飾されている部位において一方の鎖にニ
ックを入れることができる制限酵素の認識部位を有する
ものであり; (b)上記第1標的配列に相補的な3’末端部分を有す
る第1アダプタープライマーをその3’部分において上
記第1伸長産物にハイブリダイズさせるが、その際、上
記第1アダプタープライマーの3’末端は、第1伸長産
物にハイブリダイズすることができる標的結合配列を含
み、そして上記第1アダプタープライマーの5’末端
は、第2標的配列にハイブリダイズすることができる第
2増幅プライマーの3’標的結合配列と実質的に同一で
あり; (c)ポリメラーゼにより上記第1アダプタープライマ
ーを伸長して第2伸長産物を形成し、そして第2伸長産
物を置換し; (d)第2増幅プライマーを第2標的配列の3’末端に
ハイブリダイズさせ、ポリメラーゼにより該第2増幅プ
ライマーを伸長させて上記第2標的配列に相補的な第3
伸長産物を形成させ、そして該第3伸長産物を置換する
が、その際、上記第2増幅プライマーは3’に標的結合
配列を有し、かつ、5’に二本鎖のうちの一方の鎖が修
飾されている部位において一方の鎖にニックを入れるこ
とができる制限酵素の認識部位を有するものであり; (e)上記第2標的配列に相補的な3’末端部分を有す
る第2アダプタープライマーをその3’部分において上
記第3伸長産物にハイブリダイズさせるが、その際、上
記第2アダプタープライマーの3’末端は、第3伸長産
物にハイブリダイズすることができる標的結合配列を含
み、そして上記第2アダプタープライマーの5’末端
は、上記第1増幅プライマーの標的結合配列と実質的に
同一であり; (f)ポリメラーゼにより上記第2アダプタープライマ
ーを伸長して第4伸長産物を形成し、そして第4伸長産
物を置換し;そして (g)上記第1および第2増幅プライマーを用いてSD
A(鎖置換反応)反応において上記第2および第4伸長
産物を同時に増幅する; 工程からなる、SDAによる2つの標的核酸配列の同時
増幅法。 - 【請求項2】第1、第2、第3および第4伸長産物がバ
ンパープライマーの伸長により置換される、請求項1記
載の方法。 - 【請求項3】さらに、 (a)第1アダプタープライマーを第1標的配列の第2
鎖の3’末端にハイブリダイズさせ、該第1プライマー
を伸長させて第1標的配列の第2鎖に相補的な第5伸長
産物を形成させ、そして該第5伸長産物を置換し; (b)第1標的配列の第2鎖の相補鎖の3’末端におい
て第1増幅プライマーを第5伸長産物にハイブリダイズ
させ、ポリメラーゼにより該第1増幅プライマーを伸長
させて第7伸長産物を形成させ、そして該第7伸長産物
を置換し; (c)第2標的配列の第2鎖の3’末端に第2アダプタ
ー配列をハイブリダイズさせ、該第2アダプタープライ
マーを伸長して第2標的配列の第2鎖に相補的な第6伸
長産物を置換し、そして該第6伸長産物を置換し; (d)第2標的配列の第2鎖に相補的な3’末端におい
て第2増幅プライマーを第6伸長産物にハイブリダイズ
させ、ポリメラーゼにより該第2増幅プライマーを伸長
して第8伸長産物を形成させ、そして該第8伸長産物を
置換し;そして (e)第1および第2増幅プライマーを用いてSDAに
より第7および第8伸長産物を同時に増幅する; 工程を含む、請求項1記載の方法。 - 【請求項4】(a)第1アダプタープライマーを各標的
配列の3’末端にハイブリダイズさせるが、その際、該
アダプタープライマーの3’末端は、標的配列にハイブ
リダイズすることができる標的結合配列を含み、そして
該アダプタープライマーの5’末端は、第1アダプター
配列を含み; (b)ポリメラーゼにより上記第1アダプタープライマ
ーを伸長して各標的配列に相補的な、各標的配列に関す
る第1伸長産物を生成し、そして該第1伸長産物を置換
し; (c)各標的配列に相補的な3’末端において第2アダ
プタープライマーを各標的配列の第1伸長産物にハイブ
リダイズさせるが、その際、該第2アダプタープライマ
ーの3’末端は、第1伸長産物にハイブリダイズするこ
とができる標的結合配列を含み、そして該第1アダプタ
ープライマーの5’末端は、第2アダプター配列を含
み; (d)ポリメラーゼにより上記第2アダプタープライマ
ーを伸長して各標的配列に関する第2伸長産物を生成
し、そして該第2伸長産物を置換し;そして (g)上記第1および第2アダプター配列に実質的に同
一の3’標的結合配列および制限酵素の認識部位の一方
の鎖が修飾されている二本鎖の一方の鎖にニックを入れ
ることができる制限酵素の5’認識部位を含む増幅プラ
イマーを用いて、SDA反応において標的配列の第2伸
長産物を同時に増幅する; 工程からなる、SDAによる複数の標的核酸配列の同時
増幅法。 - 【請求項5】第1および第2アダプター配列が実質的に
同一であり、かつ、各標的配列の第2伸長産物が単一の
増幅プライマーを用いて増幅される、請求項4記載の方
法。 - 【請求項6】第1および第2アダプター配列が実質的に
同一でなく、かつ、各標的配列の第2伸長産物が一対の
増幅プライマーを用いて増幅されるが、その際、標的結
合配列を有する上記プライマー対の一方が第1アダプタ
ー配列と実質的に同一であり、かつ、上記プライマー対
の他方が第2アダプター配列に実質的に同一な標的結合
配列を有する、請求項4記載の方法。 - 【請求項7】上記第1および第2伸長産物が、バンパー
プライマーの伸長により置換される、請求項5または6
記載の方法。 - 【請求項8】(a)第2アダプタープライマーを各標的
配列の第2鎖の3’末端にハイブリダイズさせ、第2ア
ダプタープライマーを伸長させて各標的ハイブリダイズ
の第2鎖に相補的な第3伸長産物を形成し、そして、該
第3伸長産物を置換し; (b)各標的ハイブリダイズに相補的な3’末端におい
て第1アダプタープライマーを各標的配列の第3伸長産
物にハイブリダイズさせ、第1アダプタープライマーを
伸長して第4伸長産物を形成し、そして該第4伸長産物
を置換し;そして (c)増幅プライマーを用いてSDA反応により標的配
列の第4伸長産物を同時に増幅する工程をさらに含む、
請求項4記載の方法。 - 【請求項9】(a)3’標的結合配列を含む第1増幅プ
ライマーを第1標的配列の3’末端にハイブリダイズさ
せ、ポリメラーゼにより該第1増幅プライマーを伸長さ
せて上記第1標的配列に相補的な第1伸長産物を形成さ
せ、そして該第1伸長産物を置換し; (b)上記第1標的配列に相補的な3’末端部分を有す
る第1アダプタープライマーをその3’部分において上
記第1伸長産物にハイブリダイズさせるが、その際、上
記第1アダプタープライマーの3’末端は、第1伸長産
物にハイブリダイズすることができる標的結合配列を含
み、そして上記第1アダプタープライマーの5’末端
は、第2標的配列にハイブリダイズすることができる第
2増幅プライマーの3’標的結合配列と実質的に同一で
あり; (c)ポリメラーゼにより上記第1アダプタープライマ
ーを伸長して第2伸長産物を形成し、そして第2伸長産
物を置換し; (d)第2増幅プライマーの3’標的結合配列を第2標
的配列の3’末端にハイブリダイズさせ、ポリメラーゼ
により該第2増幅プライマーを伸長させて上記第2標的
配列に相補的な第3伸長産物を形成させ、そして該第3
伸長産物を置換し; (e)上記第2標的配列に相補的な3’末端部分を有す
る第2アダプタープライマーをその3’部分において上
記第3伸長産物にハイブリダイズさせるが、その際、上
記第2アダプタープライマーの3’末端は、第3伸長産
物にハイブリダイズすることができる標的結合配列を含
み、そして上記第2アダプタープライマーの5’末端
は、上記第1増幅プライマーの標的結合配列と実質的に
同一であり; (f)ポリメラーゼにより上記第2アダプタープライマ
ーを伸長して第4伸長産物を形成し、そして第4伸長産
物を置換し;そして (g)上記第1および第2増幅プライマーを用いてプラ
イマー伸長増幅反応において上記第2および第4伸長産
物を同時に増幅する; 工程からなる、プライマー伸長増幅反応による2つの標
的核酸配列の同時増幅法。 - 【請求項10】(a)第1アダプタープライマーを各標
的配列の3’末端にハイブリダイズさせるが、その際、
アダプタープライマーの3’末端は、標的配列にハイブ
リダイズすることができる標的結合配列を含み、そして
アダプタープライマーの5’末端は第1アダプター配列
を含み; (b)ポリメラーゼにより上記第1アダプタープライマ
ーを伸長して各標的配列に相補的な、各標的配列に関す
る第1伸長産物を生成し、そして第1伸長産物を置換
し; (c)各標的配列に相補的な3’末端において第2アダ
プタープライマーを各標的配列の第1伸長産物にハイブ
リダイズさせるが、その際、第2アダプタープライマー
の3’末端は、第1伸長産物にハイブリダイズすること
ができる標的結合配列を含み、そして第2アダプタープ
ライマーの5’末端は、第2アダプター配列を含み; (d)ポリメラーゼにより該第2増幅プライマーを伸長
させて各標的配列に関する第2伸長産物を形成させ、そ
して該第2伸長産物を置換し;そして (e)上記第1および第2アダプター配列の実質的に同
一な3’標的結合配列を含む増幅プライマーを用いてプ
ライマー伸長増幅反応において上記標的配列の第2産物
を同時に増幅する; 工程からなる、プライマー伸長増幅反応による複数の標
的核酸配列の同時増幅法。
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