JP6086894B2 - 癌の治療のためのクローディン１８に対するモノクローナル抗体 - Google Patents

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Description

癌のための抗体に基づく治療は、従来の薬剤と比較してより高い特異性とより低い副作用プロフィールの潜在的可能性を有する。
その理由は、抗体による正常細胞と新生物細胞の厳密な区別、およびそれらの作用機構が、補体の活性化および細胞傷害性免疫細胞の動員などの毒性の低い免疫学的抗腫瘍機構に基づくという事実である。
抗体に基づく治療の標的は、正常細胞と新生物細胞の正しい識別のための基礎を形成する、特殊な性質を備える必要がある。
明らかに、腫瘍細胞に排他的に制限され、正常組織では全く検出不能である標的は、効率的で安全な抗体療法の開発のために理想的である。
もう１つの態様では、高レベルの過剰発現は、遺伝子増幅の結果として抗体トラスツズマブ（Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ）のための良好な標的である、ヒト上皮増殖因子受容体２型（ＨＥＲ−２）によって例示される治療ウインドウと低い副作用のための基礎であり得る。
腫瘍治療のために既に承認されているかまたは臨床開発中である抗体療法のための他の標的は、腫瘍細胞上の標的分子の数的過剰発現に基づかない、異なる特性を有する。
プロテオグリカンＭＵＣ−１に対する抗体の場合は、標的のバックボーン内のペプチド反復エピトープが腫瘍細胞では低グリコシル化されており、それゆえその正常対応物(normal counterpart)へと変化する。
ＣＤ２０（リツキシマブ）、ＣＤ５２（Ｃａｍｐａｔｈ−１Ｈ）およびＣＤ２２（エプラツズマブ）に対する抗体の場合、抗体標的は腫瘍細胞と正常リンパ球上で同等の発現レベルを有する。この場合、標的陰性幹細胞が正常リンパ球レパートリーを回復するので、抗体による正常細胞の除去は耐容される。
抗体標的の区別的アクセス可能性の他の例は、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）およびカルボアンヒドラーゼＩＸ（ＣＡ９）である。どちらの抗原も、それぞれ結腸および腎臓の正常上皮で発現される。しかし、放射性標識イメージング抗体は腫瘍組織と正常組織を良好に識別し、細胞傷害性抗体は良好に耐容される。
これは、ＩｇＧ抗体がアクセスできない正常上皮組織の管腔側でのＣＡ９とＣＥＡの制限発現による可能性が最も高い。抗原上皮細胞接着分子（Ｅｐ−ＣＡＭ）もこの分類に属する。
上皮細胞についての同型細胞接着分子として、Ｅｐ−ＣＡＭは、細胞間空隙に局在する。興味深いことに、高親和性抗Ｅｐ−ＣＡＭ抗体は極めて毒性であるが、中間親和性抗体は良好に耐容される。
これは、正常細胞上のＥｐ−ＣＡＭ標的のアクセス可能性を示唆するが、同時に抗体結合の動態（ｋｉｎｅｔｉｃｓ）が治療ウインドウを広げ得ることを指示する。
１つの可能性は、細胞間接着に関与する他の上皮細胞特異的タンパク質も、それらが良好に構築された上皮では抗体にほとんどアクセスできないが、腫瘍細胞上では露出されると考えられるので、抗体アプローチのために魅力的であり得ることである。
本発明者らはそれゆえ、上皮組織構造を構築することに関与するタンパク質を治療抗体のための標的としての適合性に関して分析した。特に本発明者らが注目したタンパク質はクローディン１８である。
クローディン１８（ＣＬＤ１８）分子（Ｇｅｎｂａｎｋアクセッション番号：スプライス変異体１（ＣＬＤ１８Ａ１）：ＮＰ＿０５７４５３、ＮＭ＿０１６３６９、およびスプライス変異体２（ＣＬＤ１８Ａ２）：ＮＭ＿００１００２０２６，ＮＰ＿００１００２０２６）は、約２７．９／２７．７２ｋＤの分子量を有する内在性膜貫通タンパク質である。
クローディンは、上皮と内皮の密着結合（タイトジャンクション）内に位置する内在性膜タンパク質である。
密着結合は、隣接する細胞間の膜内粒子の相互に連結されたストランドのネットワークを構成する。密着結合では、オクルディンとクローディンが最も著明な膜貫通タンパク質成分である。
それらの強力な細胞間接着特性のゆえに、それらは、溶質の傍細胞輸送を予防し、制御する一次バリアを創造し、細胞の極性を維持するために膜脂質とタンパク質の側方拡散を制限する。密着結合を形成するタンパク質は上皮組織構造の構築に強く関与する。
本発明者らは、そのようなタンパク質は良好に構築された上皮では抗体にほとんどアクセスできないが、腫瘍細胞上では露出され得ると推測した。
ＣＬＤ１８はテトラスパニンであり、それ自体で４つの疎水性領域を有する。本発明者らは、ＣＬＤ１８が、抗体によって選択的に指定され得るいくつかの異なる立体配座を示すことを指示するデータを生成した。
１つの立体配座（ＣＬＤ１８−コンフォメーション１）は、４つの疎水性領域全てが正規の膜貫通ドメイン（ＴＭ）として働き、クローディンファミリーメンバーはの大部分について記述されているように、２つの細胞外ループ（疎水性領域１と疎水性領域２によって包含されるループ１；疎水性領域３および４によって包含されるループ２）が形成されることを示唆する。
２番目の立体配座（ＣＬＤ１８−コンフォメーション２）は、テトラスパニンファミリーのもう１つのメンバーはであるＰＭＰ２２について述べられているように（Ｔａｙｌｏｒ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃ．Ｒｅｓ．６２：１５−２７，２０００）、２番目と３番目の疎水性ドメインが形質膜を完全には横切っていないので、１番目と４番目の膜貫通ドメインの間の部分（ループＤ３）は細胞外であることを示唆する。
３番目の立体配座（ＣＬＤ１８−コンフォメーション３）は、正規膜貫通ドメインとして働く、１番目と４番目の疎水性領域によって包含される２つの内部疎水性領域を有する大きな細胞外ドメインを示唆する。
ループＤ３内の古典的Ｎ−グリコシル化部位の存在のゆえに、クローディン１８のトポロジー変異体であるＣＬＤ１８トポロジー２およびＣＬＤ１８トポロジー３は、付加的な細胞外Ｎ−グリコシル化部位を内包する。
マウスおよびヒトにおいて記述されている（Ｎｉｉｍｉ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．２１：７３８０−９０，２００１）、２つの異なるスプライス変異体の存在により、もう１つのレベルの複雑性がＣＬＤ１８分子に追加される。
スプライス変異体ＣＬＤ１８Ａ１とＣＬＤ１８Ａ２は、１番目のＴＭとループ１を含む、最初の２１Ｎ末端アミノ酸において異なるが、Ｃ末端の一次タンパク質配列は同じである。
ＣＬＤ１８Ａ１は正常肺および胃上皮で選択的に発現されるが、ＣＬＤ１８Ａ２は胃細胞上でのみ発現される（Ｎｉｉｍｉ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．２１：７３８０−９０，２００１）。最も重要な点として、ＣＬＤ１８Ａ２は、胃上皮の分化した短命細胞に限定されるが、胃の幹細胞領域には存在しない。
感受性ＲＴ−ＰＣＲを使用して、本発明者らは、両方の変異体が他の正常ヒト器官では全く検出不能であるが、胃、食道、膵臓および肺腫瘍を含むいくつかの型の癌ならびにヒト癌細胞系において確実に発現されることを示した。発現は、これらの指標の腺癌亜型において最も著明である。
タンパク質の分子量は、一部の癌と隣接正常組織において異なる。健常組織で認められるより高分子量のタンパク質は、組織溶解産物を脱グリコシル化化合物ＰＮＧアーゼＦで処理することによって癌で認められるのと同じ分子量に移行させることができる。
これは、ＣＬＤ１８が癌では、その正常組織対応物と比較してよりＮグリコシル化されていないことを示唆する。この構造的相違が変化したエピトープを生じさせると考えられる。古典的Ｎグリコシル化モチーフは、分子のループＤ３ドメイン内の１１６位のアミノ酸に存在する。
本発明に従った「ＣＬＤ１８」および「ＣＬＤ１８変異体」という用語は、（ｉ）ＣＬＤ１８スプライス変異体、（ｉｉ）ＣＬＤ１８−Ｎグリコシル化変異体、（ｉｉｉ）ＣＬＤ１８立体配座変異体、（ｉｖ）細胞内密着帯に局在するＣＬＤ１８フリーおよび同型／異型結合変異体および（ｖ）ＣＬＤ１８癌関連およびＣＬＤ１８非癌細胞関連変異体を包含する。
ＣＬＤ１８の分子および機能特性のゆえに、この分子は抗体ベースの癌治療のための極めて興味深い標的である。
これらは特に、（ｉ）大部分の毒性関連正常組織におけるＣＬＤ１８の不在、（ｉｉ）ＣＬＤ１８Ａ２変異体発現が、胃の標的陰性幹細胞によって補充され得る、分化した胃細胞のような可欠細胞集団に限定されること、（ｉｉｉ）正常細胞と新生物細胞の間の区別的グリコシル化の潜在的可能性への暗示、および（ｉｖ）異なる立体配座トポロジーの存在である。
さらに、密着結合タンパク質としてのＣＬＤ１８の役割は、良好な治療ウインドウにさらに寄与し得る。
腫瘍細胞はクローディンを発現するが、しばしば正常上皮組織で認められるクローディンの同型および異型接合による古典的密着結合を形成しないので、腫瘍細胞は、細胞外抗体結合および免疫治療に適合させやすい遊離クローディンのかなりのプールを有すると考えられる。
健常上皮におけるクローディンの結合エピトープは、密着結合内でそのような抗体によるアクセスから保護することが可能である。
本発明の目的は、腫瘍疾患などの、ＣＬＤ１８が発現される疾患の治療のために有用な抗体を提供することである。ここで述べる抗体はまた、そのような疾患を診断する上で有用性を有する。
本発明は一般に、胃癌、食道癌、膵癌、肺癌、卵巣癌、結腸癌、肝癌、頭頸部癌、および胆嚢の癌などの腫瘍関連疾患を含む、ＣＬＤ１８を発現する細胞に関連する疾患を治療するおよび／または予防するための治療薬として有用な抗体を提供する。
１つの態様では、本発明は、ＣＬＤ１８に結合する能力を有し、およびＣＬＤ１８を発現する細胞の死を媒介する抗体に関する。
好ましくは、抗体はＣＬＤ１８Ａ１およびＣＬＤ１８Ａ２に結合し、より好ましくはＣＬＤ１８Ａ２に結合するが、ＣＬＤ１８Ａ１には結合しない。
好ましくは、本発明の抗体は、ＣＬＤ−コンフォメーション１のループ１またはループ２に結合し、それらに特異的である。
さらなる好ましい実施形態では、本発明の抗体は、ＣＬＤ−コンフォメーション２のループＤ３に結合し、それに特異的であり、特にループＤ３内の１１６位の潜在的Ｎ−グリコシル化部位またはその周囲で結合する。
さらなる実施形態では、本発明の抗体は、ループＤ３内の１１６位の潜在的Ｎ−グリコシル化部位の非グリコシル化形態に特異的である。
本発明の抗体による細胞の死滅は、好ましくは前記細胞によって発現されるＣＬＤ１８への抗体の結合によって、より好ましくは前記細胞によって発現されるＣＬＤ１８Ａ２への抗体の結合によって誘導される。
１つの実施形態では、前記細胞によって発現されるＣＬＤ１８Ａ１への本発明の抗体の結合は前記細胞の死を誘導しない。
ＣＬＤ１８を発現する細胞は、好ましくは癌細胞であり、特に腫瘍形成性胃、食道、膵臓、肺、卵巣、結腸、肝臓、頭頸部および胆嚢癌細胞から成る群より選択される。
好ましくは、本発明の抗体は、補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）媒介性溶解、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）媒介性溶解、アポトーシス、同型接着、および／または食作用を誘導することによって、好ましくはＣＤＣ媒介性溶解および／またはＡＤＣＣ媒介性溶解を誘導することによって細胞の死を媒介する。
１つの実施形態では、本発明の抗体は細胞のＣＤＣ媒介性溶解を誘導しない。
好ましくは、細胞のＡＤＣＣ媒介性溶解はエフェクター細胞の存在下で起こり、特定実施形態では単球、単核細胞、ＮＫ細胞およびＰＭＮから成る群より選択されるエフェクター細胞の存在下で起こり、および食作用はマクロファージによる。
本発明の抗体は、モノクローナル、キメラ、ヒト、またはヒト化抗体、または抗体のフラグメントであり得、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、好ましくはＩｇＧ２ａおよびＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＭ、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２、分泌性ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥ抗体から成る群より選択され得る。
本発明のすべての態様によれば、ＣＬＤ１８は、好ましくはヒトＣＬＤ１８、好ましくはヒトＣＬＤ１８Ａ２であり、ＣＬＤ１８Ａ２は、好ましくは配列番号２に従ったアミノ酸配列を有し、およびＣＬＤ１８Ａ１は、好ましくは配列番号８に従ったアミノ酸配列を有する。
特に好ましい実施形態では、本発明の抗体は、生細胞の表面に存在するＣＬＤ１８の天然エピトープに結合する。さらなる好ましい実施形態では、本発明の抗体は、癌細胞、特に胃癌細胞に特異的である。
本発明のある実施形態では、ＣＬＤ１８は細胞の表面で発現される。
本発明の抗体は、配列番号２、４、６、１６、１８、２０、２１〜２３および２６〜３１から成る群より選択されるアミノ酸配列を有するタンパク質またはペプチド、またはその免疫原性フラグメント、または前記タンパク質またはペプチド、またはその免疫原性フラグメントを発現する核酸または宿主細胞で動物を免疫する工程を含む方法によって得られ得る
好ましくは、本発明の抗体は、前記タンパク質、ペプチドまたはその免疫原性フラグメントに特異的である。
特に好ましい実施形態では、本発明の抗体は、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７３７（１８２−Ｄ１１０６−０５５）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３８（１８２−Ｄ１１０６−０５６）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３９（１８２−Ｄ１１０６−０５７）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４０（１８２−Ｄ１１０６−０５８）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４１（１８２−Ｄ１１０６−０５９）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４２（１８２−Ｄ１１０６−０６２）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４３（１８２−Ｄ１１０６−０６７）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４５（１８２−Ｄ７５８−０３５）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４６（１８２−Ｄ７５８−０３６）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４７（１８２−Ｄ７５８−０４０）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４８（１８２−Ｄ１１０６−０６１）、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０８（１８２−Ｄ１１０６−２７９）、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０９（１８２−Ｄ１ １０６−２９４）またはＤＳＭ ＡＣＣ２８１０（１８２−Ｄ１１０６−３６２）を有するクローンによって産生される。
１つの実施形態では、本発明の抗体は、毒素、放射性同位体、薬剤または細胞傷害性物質などの治療薬に結合している。
さらなる態様では、本発明は、本発明の抗体を産生することができるハイブリドーマに関する。好ましいハイブリドーマは、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７３７（１８２−Ｄ１１０６−０５５）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３８（１８２−Ｄ１１０６−０５６）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３９（１８２−Ｄ１１０６−０５７）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４０（１８２−Ｄ１１０６−０５８）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４１（１８２−Ｄ１１０６−０５９）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４２（１８２−Ｄ１１０６−０６２）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４３（１８２−Ｄ１１０６−０６７）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４５（１８２−Ｄ７５８−０３５）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４６（１８２−Ｄ７５８−０３６）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４７（１８２−Ｄ７５８−０４０）、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４８（１８２−Ｄ１１０６−０６１）、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０８（１８２−Ｄ１１０６−２７９）、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０９（１８２−Ｄ１１０６−２９４）またはＤＳＭ ＡＣＣ２８１０（１８２−Ｄ１１０６−３６２）を有するものである。
本発明の抗体は、ここでは抗体の名称、たとえば１８２−Ｄ７５８−０３５に言及することによって、および／または抗体を産生するクローン、たとえば２６Ｄ１２に言及することによって指定される。
本発明はまた、本発明の抗体および／または治療薬とのその複合体、および医薬的に許容される担体を含有する医薬組成物に関する。
さらなる態様では、本発明は、細胞を本発明の抗体および／または治療薬とのその複合体の有効量と接触させることを含む、ＣＬＤ１８、好ましくはＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞の増殖を阻害するおよび／または細胞を死滅させる方法に関する。ＣＬＤ１８は、好ましくは前記細胞の表面で発現される。
さらなる態様では、本発明は、本発明の抗体、治療薬とのその複合体、または本発明の抗体または治療薬とのその複合体を含有する医薬組成物を被験者に投与することを含む、ＣＬＤ１８、好ましくはＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞に関わる疾患または障害を治療するまたは予防する方法に関する。
好ましくは、疾患または障害は腫瘍関連疾患であり、特定実施形態では、胃癌、食道癌、膵癌、肺癌、卵巣癌、結腸癌、肝癌、頭頸部癌、および胆嚢の癌から成る群より選択される。ＣＬＤ１８は、好ましくは前記細胞の表面で発現される。
好ましくは、本発明の抗体は、癌細胞および非悪性細胞を含む種々の細胞型によって発現されるＣＬＤ１８変異体を識別する能力を有する。
特に好ましい実施形態では、本発明の抗体は、ＣＬＤ１８Ａ２に結合する能力を有するが、ＣＬＤ１８Ａ１には結合しない、またはＣＬＤ１８Ａ２に対する結合特異性に比べてより低い特異性でＣＬＤ１８Ａ１に結合する。
本発明に従った「結合」という用語は、好ましくは特異的結合に関する。「特異的結合」は、抗体などの物質が、それが特異的であるエピトープなどの標的に対して、もう１つ別の標的への結合に比べてより強く結合することを意味する。
物質は、第二標的についての解離定数より低い解離定数（ＫＤ）で第一標的に結合する場合、第二標的に比べて第一標的により強く結合する。
好ましくは、物質が特異的に結合する標的についての解離定数（ＫＤ）は、その物質が特異的に結合しない標的についての解離定数（ＫＤ）よりも１０倍以上、好ましくは２０倍以上、より好ましくは５０倍以上、さらに一層好ましくは１００倍、２００倍、５００倍または１０００倍以上低い。
本発明の抗体は、ＣＬＤ１８、好ましくはＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞の死滅を、好ましくは前記細胞の表面で発現される、ＣＬＤ１８に結合することによって媒介する。
１つの実施形態では、本発明の抗体は、ＣＬＤ１８を発現する細胞の補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）、たとえば少なくとも約２０〜４０％のＣＤＣ媒介性溶解、好ましくは約４０〜５０％のＣＤＣ媒介性溶解、より好ましくは５０％を超えるＣＤＣ媒介性溶解を誘導する。
そのような抗体は、ここでは以下の抗体：３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、６１Ｃ２、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、１６３Ｅ１２、１７５Ｄ１０、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、ｃｈ−１６３Ｅ１２およびｃｈ−１７５Ｄ１０によって例示される。あるいはまたはＣＤＣを誘導することに加えて、本発明の抗体は、エフェクター細胞（たとえば単球、単核細胞、ＮＫ細胞およびＰＭＮ）の存在下でＣＬＤ１８を発現する細胞の抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を誘導し得る。
そのような抗体は、ここでは以下の抗体：３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４３Ａ１１、６１Ｃ２、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、４２Ｅ１２、１６３Ｅ１２、１７５Ｄ１０、４５Ｃ１および１２５Ｅ１によって例示される。
本発明の抗体は、ＣＬＤ１８を発現する細胞のアポトーシスを誘導する、ＣＬＤ１８を発現する細胞の同型接着を誘導するおよび／またはマクロファージの存在下でＣＬＤ１８を発現する細胞の食作用を誘導する能力を有し得る。
本発明の抗体は、上述した機能特性の１またはそれ以上を有し得る。好ましくは、本発明の抗体は、ＣＬＤ１８を発現する細胞のＣＤＣ媒介性溶解およびＡＤＣＣ媒介性溶解を誘導し、より好ましくはＣＬＤ１８を発現する細胞のＡＤＣＣ媒介性溶解を誘導するが、前記細胞のＣＤＣ媒介性溶解を誘導しない。
本発明の抗体についての標的細胞の例は、腫瘍形成性胃、膵臓、食道および肺癌細胞などの、ＣＬＤ１８、好ましくはＣＬＤ１８Ａ２を発現する癌細胞を含むが、これらに限定されない。
特に好ましい実施形態では、本発明の抗体によって媒介される細胞の死はＣＬＤ１８Ａ２特異的である、すなわち本発明の抗体は、ＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞の死、好ましくは前記細胞のＣＤＣおよび／またはＡＤＣＣ媒介性溶解を媒介するが、ＣＬＤ１８Ａ１を発現するがＣＬＤ１８Ａ２を発現しない細胞の死を媒介しない。
上述した抗体は、胃癌、食道癌、膵癌、肺癌、卵巣癌、結腸癌、肝癌、頭頸部癌、および胆嚢の癌などの癌の治療または予防において腫瘍細胞の死を媒介するために使用され得る。
本発明の抗体は、それらの結合特性およびＣＬＤ１８を発現する細胞へのエフェクター機能を媒介するそれらの能力に従って異なるクラスに分類され得る。
本発明の抗体は、以下に従って分類され得る：
・ ＣＬＤ１８Ａ１またはＣＬＤ１８Ａ２のいずれかを発現する細胞への結合特性および／または前記細胞上で媒介されるエフェクター機能（ＣＬＤ１８スプライス変異体の識別）、
・ グリコシル化または非グリコシル化ＣＬＤ１８変異体のいずれかを発現する細胞への結合特性および／または前記細胞上で媒介されるエフェクター機能（Ｎ−グリコシル化を含むＣＬＤ１８変異体とＮ−グリコシル化を含まないＣＬＤ１８変異体の識別）、
・ 癌細胞または正常細胞型のいずれかへの結合特性および／または前記細胞上で媒介されるエフェクター機能（腫瘍細胞または正常非悪性細胞によって発現されるＣＬＤ１８変異体の識別）、
・ 密着結合の形成によって隠されたＣＬＤ１８エピトープへの結合特性、
・ 生細胞でのＣＬＤ１８の凝集体形成を誘導する能力、および
・ 非ヒトＣＬＤ１８変異体、特にマウス、ラット、ウサギおよび霊長動物からのＣＬＤ１８変異体に結合する能力。
本発明の抗体は、以下の性質の１またはそれ以上を有することができ、それによってここで述べる本発明の抗体の特定例（２４Ｈ５、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２、６１Ｃ２、７５Ｂ８、８５Ａ３、９Ｅ８、１９Ｂ９、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２、１７５Ｄ１０、ｃｈ−４３Ａ１１、ｃｈ−４５Ｃ１、ｃｈ−１２５Ｅ１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１６６Ｅ２、ｃｈ−１７５Ｄ１０）が参照される：
ａ）ＣＬＤ１８Ａ２ならびにＣＬＤ１８Ａ１への結合（たとえば２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｈ８、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、６１Ｃ２および４１Ｃ６）
ｂ）ＣＬＤ１８Ａ２に結合するがＣＬＤ１８Ａ１には結合しないこと（たとえば２６Ｂ５、３７Ｇ１１、３８Ｇ５、４２Ｅ１２および４３Ａ１１、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２、１７５Ｄ１０、ｃｈ−４３Ａ１１、ｃｈ−４５Ｃ１、ｃｈ−１２５Ｅ１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１６６Ｅ２、ｃｈ−１７５Ｄ１０）
ｃ）腫瘍細胞によって天然に発現されるＣＬＤ１８に結合するが、胃および肺の細胞などの非癌細胞または組織によって天然に発現されるＣＬＤ１８には結合しないこと（たとえば２６Ｂ５、７５Ｂ８、２４Ｈ５、３９Ｆ１１、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２、１７５Ｄ１０）
ｄ）ＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞のＣＤＣ誘導性死滅を媒介するが、ＣＬＤ１８Ａ１を発現する細胞のＣＤＣ誘導性死滅は媒介しないこと（たとえば２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｈ８および３９Ｆ１１、１６３Ｅ１２、ｃｈ−１２５Ｅ１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１７５Ｄ１０）
ｅ）ＣＬＤ１８を発現する細胞のＡＤＣＣ誘導性死滅を媒介すること（たとえば２６Ｂ５、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４３Ａ１１、４７Ｄ１２および６１Ｃ２、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１７５Ｄ１０）
ｆ）ＣＬＤ１８を発現する細胞のＡＤＣＣ誘導性死滅を媒介するが、ＣＤＣ媒介性死滅は媒介しないこと（たとえば３７Ｇ１１、４２Ｅ１２および４３Ａ１１）
ｇ）ＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞のＡＤＣＣ誘導性死滅およびＣＤＣ誘導性死滅を媒介すること（たとえば３７Ｈ８、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１７５Ｄ１０）。
ここで例示するように、本発明の抗体は、
ａ）正常な胃の分化した細胞に結合するが、胃の幹細胞には結合しない（たとえば３９Ｆ１１）
ｂ）正常胃組織ならびに他の正常器官には結合せず、もっぱら癌細胞にのみ結合する（たとえば２６Ｂ５）
ｃ）ＣＬＤ１８の１１６位の非グリコシル化Ａｓｎを含むエピトープに結合する
ｄ）ヒトならびにマウスＣＬＤ１８に結合し、マウスにおいて前臨床毒性試験を実施することを十分に許容する、
分子をさらに包含する。
本発明の抗体は、マウス、ラット、ウサギ、モルモットおよびヒトを含むがこれらに限定されない、種々の種に由来し得る。
本発明の抗体はまた、１つの種、好ましくはヒトに由来する抗体定常領域がもう１つ別の種に由来する抗原結合部位と組み合わされているキメラ分子を含む。
さらに本発明の抗体は、非ヒト種に由来する抗体の抗原結合部位がヒト起源の定常およびフレームワーク領域と組み合わされているヒト化分子を含む。
本発明の抗体は、ポリクローナルおよびモノクローナル抗体を含み、およびＩｇＧ２ａ （たとえばＩｇＧ２ａ、κ、λ）、ＩｇＧ２ｂ（たとえばＩｇＧ２ｂ、κ、λ）、ＩｇＧ３（たとえばＩｇＧ３、κ、λ）およびＩｇＭ抗体を含む。
しかし、ＩｇＧ１、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２、分泌性ＩｇＡ、ＩｇＤおよびＩｇＥ抗体を含む、他の抗体アイソタイプも本発明に包含される。
抗体は、全長抗体または、たとえばＦａｂ、Ｆ（ａｂ'）２、Ｆｖ、一本鎖Ｆｖフラグメントまたは二重特異性抗体を含むその抗原結合フラグメントであり得る。
さらに、抗原結合フラグメントは、（ｉ）免疫グロブリンヒンジ領域ポリペプチドに融合した結合ドメインポリペプチド（重鎖可変領域または軽鎖可変領域など）、（ｉｉ）ヒンジ領域に融合した免疫グロブリン重鎖ＣＨ２定常領域、および（ｉｉｉ）ＣＨ２定常領域に融合した免疫グロブリン重鎖ＣＨ３定常領域を含む、結合ドメイン免疫グロブリン融合タンパク質を含む。
そのような結合ドメイン免疫グロブリン融合タンパク質はさらに、米国特許願第ＵＳ２００３／０１１８５９２号および同第ＵＳ２００３／０１３３９３９号に開示されている。
本発明の抗体は、好ましくは約１〜１００ｎＭ以下の解離平衡定数（ＫＤ）でＣＬＤ１８から解離する。好ましくは、本発明の抗体は関連する細胞表面抗原と交差反応せず、それゆえそれらの機能を阻害しない。
好ましい実施形態では、本発明の抗体は以下の性質の１またはそれ以上に特徴づけることができる：
ａ）ＣＬＤ１８に対する特異性、特にＣＬＤ１８Ａ２に対する特異性；
ｂ）約１００ｎＭ以下、好ましくは約５〜１０ｎＭ以下、より好ましくは約１〜３ｎＭ以下の、ＣＬＤ１８、特にＣＬＤ１８Ａ２に対する結合親和性；
ｃ）ＣＤ５５／５９陰性またはＣＤ５５／５９陽性細胞のいずれかに対して高レベルのＣＤＣを媒介する能力；
ｄ）ＣＬＤ１８を発現する細胞の増殖を阻害する能力；
ｅ）ＣＬＤ１８を発現する細胞のアポトーシスを誘導する能力；
ｆ）ＣＬＤ１８を発現する細胞の同型接着を誘導する能力；
ｇ）エフェクター細胞の存在下でＣＬＤ１８を発現する細胞のＡＤＣＣを誘導する能力；
ｈ）ＣＬＤ１８を発現する腫瘍細胞を有する被験者の生存を延長させる能力；
ｉ）ＣＬＤ１８を発現する細胞を激減させる能力；
ｊ）低レベルのＣＬＤ１８を発現する細胞を激減させる能力および／または
ｋ）生細胞の表面でＣＬＤ１８を凝集させる能力。
本発明の抗ＣＬＤ１８抗体は、他の結合特異性に誘導体化させ、連結させまたは共発現させることができる。
特定実施形態では、本発明は、少なくとも１つのＣＬＤ１８に対する第一結合特性（たとえば抗ＣＬＤ１８抗体またはそのミメティック）、およびＦｃ受容体（たとえばＦｃγＲＩなどのＦｃγ受容体、または他の何らかのＦｃ受容体）またはＴ細胞受容体、たとえばＣＤ３に対する結合特異性などの、エフェクター細胞に対する第二結合特異性を含む二重特異性または多重特異性分子を提供する。
従って、本発明は、ＣＬＤ１８およびＦｃ受容体またはＴ細胞受容体、たとえばＣＤ３の両方に結合する二重特異性および多重特異性分子を含む。
Ｆｃ受容体の例は、ＩｇＧ受容体、ＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）、ＦｃγＲＩＩ（ＣＤ３２）およびＦｃγＲＩＩＩ（ＣＤ１６）などのＦｃγ受容体（ＦｃγＲ）である。ＩｇＡ受容体（たとえばＦｃαＲＩ）などの他のＦｃ受容体も標的することができる。
Ｆｃ受容体は、好ましくはエフェクター細胞、たとえば単球、マクロファージまたは活性化単核細胞の表面上に位置する。好ましい実施形態では、二重特異性および多重特異性分子は、受容体の免疫グロブリンＦｃ（たとえばＩｇＧまたはＩｇＡ）結合部位とは異なる部位でＦｃ受容体に結合する。
それゆえ、二重特異性および多重特異性分子の結合は免疫グロブリンの生理的レベルによってブロックされない。
さらにもう１つの態様では、本発明の抗ＣＬＤ１８抗体は、もう１つ別の機能性分子、たとえば別のペプチド又はタンパク質（たとえばＦａｂ'フラグメント）で誘導体化される、それに連結されるまたはそれと共発現される。
たとえば本発明の抗体は、別の抗体（たとえば二重特異性または多重特異性抗体を作製するため）、細胞毒、細胞リガンドまたは抗原（たとえば免疫毒素などの免疫複合体を作製するため）などの、１またはそれ以上の他の分子実体に機能的に連結することができる（たとえば化学結合、遺伝子融合、非共有結合等によって）。
本発明の抗体は、他の治療成分、たとえば放射性同位体、低分子抗癌剤、組換えサイトカインまたはケモカインに連結することができる。
従って本発明は、極めて多様な抗体複合体、二重特異性および多重特異性分子、および融合タンパク質を包含し、そのすべてがＣＬＤ１８発現細胞に結合し、他の分子をそのような細胞に標的するために使用できる。
さらにもう１つの態様では、本発明は、本発明の抗体の１つまたは組合せと共に製剤された医薬的に許容される担体を含有する組成物、たとえば医薬および診断組成物／キットを提供する。
特定実施形態では、組成物は、異なるエピトープに結合するまたは、ＣＤＣおよび／またはＡＤＣＣの誘導およびアポトーシスの誘導などの、異なる機能的特徴を有する抗体の組合せを含む。本発明のこの実施形態では、抗体は、組み合わせて、たとえば２またはそれ以上の抗ＣＬＤ１８モノクローナル抗体を含む医薬組成物として使用し得る。
たとえば異なるが相補的な活性を有する抗ＣＬＤ１８抗体を、所望治療効果を達成するために１つの治療において組み合わせることができる。
好ましい実施形態では、組成物は、アポトーシスを誘導する別の抗ＣＬＤ１８抗体と組み合わせた、ＣＤＣを媒介する抗ＣＬＤ１８抗体を含む。
もう１つの実施形態では、組成物は、ＣＬＤ１８を発現する細胞の増殖を阻害する別の抗ＣＬＤ１８抗体と組み合わせた、エフェクター細胞の存在下で極めて有効な標的細胞の死滅を媒介する抗ＣＬＤ１８抗体を含む。
本発明はまた、本発明の２またはそれ以上の抗ＣＬＤ１８抗体の同時または連続投与を含み、前記投与では、前記抗体の少なくとも１つがキメラ抗ＣＬＤ１８抗体であり、少なくとも１つのさらなる抗体がヒト抗ＣＬＤ１８抗体であり、前記抗体はＣＬＤ１８の同じかまたは異なるエピトープに結合する。
好ましくは、本発明のキメラＣＬＤ１８抗体を最初に投与し、次いで本発明のヒト抗ＣＬＤ１８抗体を投与するが、ヒト抗ＣＬＤ１８抗体は、好ましくは長期間、すなわち維持療法として投与される。
本発明の抗体、免疫複合体、二重特異性および多重特異性分子および組成物は、細胞の増殖が阻害されるおよび／または細胞が死滅するように、抗体、免疫複合体、二重特異性／多重特異性分子または組成物の有効量を細胞と接触させることを含む、ＣＬＤ１８、特にＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞の増殖を阻害するためおよび／またはＣＬＤ１８、特にＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞を選択的に死滅させるための様々な方法において使用できる。
１つの実施形態では、上記方法は、たとえばＣＤＣ、アポトーシス、ＡＤＣＣ、食作用によって、またはこれらの機構の２またはそれ以上の組合せによって、任意にエフェクター細胞の存在下で、ＣＬＤ１８を発現する細胞を死滅させることを含む。
本発明の抗体を用いて阻害または死滅され得る、ＣＬＤ１８を発現する細胞は、腫瘍形成性胃、膵臓、食道、肺、卵巣、結腸、肝臓、頭頸部および胆嚢細胞などの癌細胞を含む。
従って、本発明の抗体は、そのような疾患に罹患している患者に抗体を投与することを含む、ＣＬＤ１８を発現する細胞に関わる様々な疾患を治療するおよび／または予防するために使用できる。
治療（たとえば改善）または予防できる疾患の例は、腫瘍形成性疾患を含むが、これらに限定されない。治療および／または予防できる腫瘍形成性疾患の例は、胃癌、膵癌、食道癌、肺癌、卵巣癌、結腸癌、肝癌、頭頸部癌、および胆嚢の癌を含む。
本発明の特定実施形態では、抗体を投与される被験者は、化学療法剤、放射線、またはサイトカインなどの、Ｆｃ受容体、たとえばＦｃγ受容体の発現または活性を調節する、たとえば増強または抑制する物質で付加的に治療される。
治療における投与のための典型的なサイトカインは、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、インターフェロンγ（ＩＦＮ−γ）、および腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）を含む。
典型的な治療薬は、数ある中で、ドキソルビシン、シスプラチン、タキソテール、５−フルオロウラシル、メトトレキサート、ゲンシタビンおよびシクロフォスファミドなどの抗腫瘍薬を含む。
さらにもう１つの態様では、本発明は、抗体を得るためにマウスなどの非ヒト動物をヒトＣＬＤ１８またはそのペプチドフラグメント、好ましくはＣＬＤ１８Ａ２またはそのペプチドフラグメントで免疫する免疫戦略に関する。
免疫のための好ましいペプチドは、配列番号２、４、６、１６、１８、２０〜２３および２６〜３１から成る群より選択されるものである。
従って、好ましい実施形態では、本発明の抗体は、配列番号２、４、６、１６、１８、２０〜２３および２６〜３１から成る群より選択されるペプチドを使用した免疫によって得られるものである。
同様に、ＣＬＤ１８に対する抗体は、トランスジェニックマウスなどの、トランスジェニック非ヒト動物において作製することができる。
トランスジェニック非ヒト動物は、抗体の全部または一部をコードする重鎖導入遺伝子と軽鎖導入遺伝子を含むゲノムを有するトランスジェニックマウスであり得る。
野生型ならびにトランスジェニック非ヒト動物は、ＣＬＤ１８抗原および／またはＣＬＤ１８を発現する核酸および／または細胞またはそのペプチドフラグメントの精製または濃縮製剤で免疫することができる。
好ましくは、非ヒト動物は、Ｖ−Ｄ−Ｊ組換えおよびアイソタイプスイッチを行うことによってＣＬＤ１８に対するヒトモノクローナル抗体の多数のアイソタイプ（たとえばＩｇＧ、ＩｇＡおよび／またはＩｇＭ）を産生することができる。
アイソタイプスイッチは、たとえば古典的または非古典的アイソタイプスイッチによって起こり得る。
従って、さらにもう１つの態様では、本発明は、上述した非ヒト動物からの単離Ｂ細胞を提供する。
単離Ｂ細胞は、その後、本発明の抗体の供給源（たとえばハイブリドーマ）を提供するために不死化細胞への融合によって不死化することができる。そのようなハイブリドーマ（すなわち本発明の抗体を産生する）も本発明の範囲内に含まれる。
ここで例示するように、本発明の抗体は、抗体を発現するハイブリドーマから直接入手できるか、またはクローニングして、宿主細胞（たとえばＣＨＯ細胞またはリンパ球細胞）において組換え発現させることができる。
宿主細胞のさらなる例は、大腸菌などの微生物、および酵母などの真菌である。あるいは、トランスジェニック非ヒト動物または植物において本発明の抗体を組換え産生することができる。
本発明の抗体を産生するための好ましいハイブリドーマ細胞は、以下の名称およびアクセッション番号を有する、ＤＳＭＺ（Ｍａｓｃｈｅｒｏｄｅｒ Ｗｅｇ １ｂ，３１８２４ Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ；新住所：Ｉｎｈｏｆｆｅｎｓｔｒ．７Ｂ，３１８２４ Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）において配列決定されたまたはＤＳＭＺに寄託されたものである：
ａ．２００５年１０月１９日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０５５、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７３７
ｂ．２００５年１０月１９日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０５６、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７３８
ｃ．２００５年１０月１９日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０５７、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７３９
ｄ．２００５年１０月１９日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０５８、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４０
ｅ．２００５年１０月１９日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０５９、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４１
ｆ．２００５年１０月１９日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０６２、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４２
ｇ．２００５年１０月１９日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０６７、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４３
ｈ．２００５年１１月１７日に寄託された、１８２−Ｄ７５８−０３５、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４５
ｉ．２００５年１１月１７日に寄託された、１８２−Ｄ７５８−０３６、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４６
ｊ．２００５年１１月１７日に寄託された、１８２−Ｄ７５８−０４０、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４７
ｋ．２００５年１１月１７日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−０６１、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７４８
ｌ．２００６年１０月２６日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−２７９、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２８０８
ｍ．２００６年１０月２６日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−２９４、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２８０９
ｎ．２００６年１０月２６日に寄託された、１８２−Ｄ１１０６−３６２、アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２８１０。
本発明の好ましい抗体は、上述したハイブリドーマによって産生され、上記ハイブリドーマから入手できるもの、すなわち１８２−Ｄ１１０６−０５５の場合は３７Ｇ１１、１８２−Ｄ１１０６−０５６の場合は３７Ｈ８、１８２−Ｄ１１０６−０５７の場合３８Ｇ５、１８２−Ｄ１１０６−０５８の場合は３８Ｈ３、１８２−Ｄ１１０６−０５９の場合は３９Ｆ１１、１８２−Ｄ１１０６−０６２の場合は４３Ａ１１、１８２−Ｄ１１０６−０６７の場合は６１Ｃ２、１８２−Ｄ７５８−０３５の場合は２６Ｂ５、１８２−Ｄ７５８−０３６の場合は２６Ｄ１２、１８２−Ｄ７５８−０４０の場合は２８Ｄ１０、１８２−Ｄ１１０６−０６１の場合は４２Ｅ１２、１８２−Ｄ１１０６−２７９の場合は１２５Ｅ１、１８２−Ｄ１１０６−２９４の場合は１６３Ｅ１２、１８２−Ｄ１１０６−３６２の場合は１７５Ｄ１０；およびそれらのキメラ化およびヒト化形態である。
好ましい実施形態では、抗体、特に本発明に従ったキメラ化形態の抗体は、配列番号４６または１５０によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントなどのヒト重鎖定常領域に由来するアミノ酸配列を含有する重鎖定常領域（ＣＨ）を含む抗体を包含する。
さらなる好ましい実施形態では、抗体、特に本発明に従ったキメラ化形態の抗体は、配列番号４１または１４８によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントなどのヒト軽鎖定常領域に由来するアミノ酸配列を含有する軽鎖定常領域（ＣＬ）を含む抗体を包含する。
特に好ましい実施形態では、抗体、特に本発明に従ったキメラ化形態の抗体は、配列番号４６または１５０によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントなどのヒトＣＨに由来するアミノ酸配列を含有するＣＨを含み、および配列番号４１または１４８によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントなどのヒトＣＬに由来するアミノ酸配列を含有するＣＬを含む抗体を包含する。
配列番号４６によって表わされるアミノ酸配列を含むＣＨは、配列番号４５によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１５０によって表わされるアミノ酸配列を含むＣＨは、配列番号１４９によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号４１によって表わされるアミノ酸配列を含むＣＬは、配列番号４０によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１４８によって表わされるアミノ酸配列を含むＣＬは、配列番号１４７によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
ある好ましい実施形態では、キメラ化形態の抗体は、配列番号１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、およびそのフラグメントから成る群より選択されるアミノ酸配列を含む重鎖を含有し、および／または配列番号：１２１、１２２、１２３、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、およびそのフラグメントから成る群より選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖を含有する抗体を包含する。
ある好ましい実施形態では、キメラ化形態の抗体は、以下の（ｉ）〜（ｉｘ）の可能性から選択される重鎖と軽鎖の組合せを含む抗体を包含する：
（ｉ）重鎖は配列番号１１５によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２２によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｉｉ）重鎖は配列番号１１６によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２１によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｉｉｉ）重鎖は配列番号１１７によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２３によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｉｖ）重鎖は配列番号１１９によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２６によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖ）重鎖は配列番号１１８によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２５によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖｉ）重鎖は配列番号１２０によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２４によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖｉｉ）重鎖は配列番号１２０によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２７によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖｉｉｉ）重鎖は配列番号１２０によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２８によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、および
（ｉｘ）重鎖は配列番号１２０によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、および軽鎖は配列番号１２９によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む。
上記で使用される「フラグメント」または「アミノ酸配列のフラグメント」は、抗体配列の部分、すなわちＮおよび／またはＣ末端で短縮された抗体配列であり、抗体において前記抗体配列に置き換わったとき、ＣＬＤ１８に対する前記抗体の結合および好ましくはここで述べる前記抗体の機能、たとえばＣＤＣ媒介性溶解またはＡＤＣＣ媒介性溶解を保持する配列に関する。
好ましくは、アミノ酸配列のフラグメントは、前記アミノ酸配列からのアミノ酸残基の少なくとも８０％、好ましくは少なくとも９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％を含む。
配列番号１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２、１２３、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８および１２９から成る群より選択されるアミノ酸配列のフラグメントは、好ましくはＮ末端の１７、１８、１９、２０、２１、２２または２３アミノ酸が除去された前記配列に関する。
ここで述べるアミノ酸配列のフラグメントは、前記アミノ酸配列をコードする核酸配列のそれぞれのフラグメントによってコードされ得る。
配列番号１１５によって表わされるアミノ酸配列を含む重鎖は、配列番号１００によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１１６によって表わされるアミノ酸配列を含む重鎖は、配列番号１０１によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１１７によって表わされるアミノ酸配列を含む重鎖は、配列番号１０２によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１１９によって表わされるアミノ酸配列を含む重鎖は、配列番号１０４によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１１８によって表わされるアミノ酸配列を含む重鎖は、配列番号１０３によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２０によって表わされるアミノ酸配列を含む重鎖は、配列番号１０５によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２２によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１０７によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２１によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１０６によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２３によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１０８によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２６によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１１１によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２５によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１１０によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２４によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１０９によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２７によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１１２によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２８によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１１３によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１２９によって表わされるアミノ酸配列を含む軽鎖は、配列番号１１４によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
好ましい実施形態では、本発明の抗体は、配列番号１３２、１３３、１３４、１３５、１３６、１３７、およびそのフラグメントから成る群より選択されるアミノ酸配列を含有する重鎖可変領域（ＶＨ）を含む。
好ましい実施形態では、本発明の抗体は、配列番号１３８、１３９、１４０、１４１、１４２、１４３、１４４、１４５、１４６、およびそのフラグメントから成る群より選択されるアミノ酸配列を含有する軽鎖可変領域（ＶＬ）を含む。
ある好ましい実施形態では、本発明の抗体は、以下の（ｉ）〜（ｉｘ）の可能性から選択される重鎖可変領域（ＶＨ）と軽鎖可変領域（ＶＬ）の組合せを含む：
（ｉ）ＶＨは配列番号１３２によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１３９によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｉｉ）ＶＨは配列番号１３３によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１３８によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｉｉｉ）ＶＨは配列番号１３４によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１４０によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｉｖ）ＶＨは配列番号１３６によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１４３によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖ）ＶＨは配列番号１３５によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１４２によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖｉ）ＶＨは配列番号１３７によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１４１によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖｉｉ）ＶＨは配列番号１３７によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１４４によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｖｉｉｉ）ＶＨは配列番号１３７によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１４５によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む、
（ｉｘ）ＶＨは配列番号１３７によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含み、およびＶＬは配列番号１４６によって表わされるアミノ酸配列またはそのフラグメントを含む。
配列番号１３２によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＨは、配列番号５５によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１３３によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＨは、配列番号５６によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１３４によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＨは、配列番号５７によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１３６によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＨは、配列番号５９によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１３５によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＨは、配列番号５８によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１３７によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＨは、配列番号６０によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１３９によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６２によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１３８によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６１によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１４０によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６３によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１４３によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６６によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１４２によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６５によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１４１によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６４によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１４４によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６７によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
配列番号１４５によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６８によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。配列番号１４６によって表わされるアミノ酸配列を含むＶＬは、配列番号６９によって表わされる核酸配列を含む核酸によってコードされ得る。
好ましい実施形態では、本発明の抗体は、以下の実施形態（ｉ）〜（ｖｉ）から選択される相補性決定領域ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３のセットを含有するＶＨを含む：
（ｉ）ＣＤＲ１：配列番号１１５の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１５の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１５の１１６−１２５位、
（ｉｉ）ＣＤＲ１：配列番号１１６の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１６の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１６の１１６−１２６位、
（ｉｉｉ）ＣＤＲ１：配列番号１１７の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１７の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１７の１１６−１２４位、
（ｉｖ）ＣＤＲ１：配列番号１１８の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１８の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１８の１１６−１２６位、
（ｖ）ＣＤＲ１：配列番号１１９の４４−５１位、ＣＤＲ２：配列番号１１９の６９−７６位、ＣＤＲ３：配列番号１１９の１１５−１２５位、および
（ｖｉ）ＣＤＲ１：配列番号１２０の４５−５３位、ＣＤＲ２：配列番号１２０の７１−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２０の１１７−１２８位。
好ましい実施形態では、本発明の抗体は、以下の実施形態（ｉ）−（ｉｘ）から選択される相補性決定領域ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３のセットを含有するＶＬを含む：
（ｉ）ＣＤＲ１：配列番号１２１の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２１の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２１の１１５−１２３位、
（ｉｉ）ＣＤＲ１：配列番号１２２の４９−５３位、ＣＤＲ２：配列番号１２２の７１−７３位、ＣＤＲ３：配列番号１２２の１１０−１１８位、
（ｉｉｉ）ＣＤＲ１：配列番号１２３の４７−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１２３の７０−７２位、ＣＤＲ３：配列番号１２３の１０９−１１７位、
（ｉｖ）ＣＤＲ１：配列番号１２４の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２４の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２４の１１５−１２３位、
（ｖ）ＣＤＲ１：配列番号１２５の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２５の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２５の１１５−１２３位、
（ｖｉ）ＣＤＲ１：配列番号１２６の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２６の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２６の１１５−１２２位、
（ｖｉｉ）ＣＤＲ１：配列番号１２７の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２７の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２７の１１５−１２３位、
（ｖｉｉｉ）ＣＤＲ１：配列番号１２８の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２８の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２８の１１５−１２３位、および
（ｉｘ）ＣＤＲ１：配列番号１２９の４７−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１２９の７０−７２位、ＣＤＲ３：配列番号１２９の１０９−１１７位。
好ましい実施形態では、本発明の抗体は、以下の実施形態（ｉ）−（ｉｘ）から選択される相補性決定領域ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３のセットを各々含有するＶＨとＶＬの組合せを含む：
（ｉ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１１５の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１５の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１５の１１６−１２５位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２２の４９−５３位、ＣＤＲ２：配列番号１２２の７１−７３位、ＣＤＲ３：配列番号１２２の１１０−１１８位、
（ｉｉ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１１６の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１６の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１６の１１６−１２６位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２１の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２１の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２１の１１５−１２３位、
（ｉｉｉ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１１７の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１７の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１７の１１６−１２４位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２３の４７−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１２３の７０−７２位、ＣＤＲ３：配列番号１２３の１０９−１１７位、
（ｉｖ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１１９の４４−５１位、ＣＤＲ２：配列番号１１９の６９−７６位、ＣＤＲ３：配列番号１１９の１１５−１２５位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２６の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２６の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２６の１１５−１２２位、
（ｖ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１１８の４５−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１１８の７０−７７位、ＣＤＲ３：配列番号１１８の１１６−１２６位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２５の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２５の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２５の１１５−１２３位、
（ｖｉ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１２０の４５−５３位、ＣＤＲ２：配列番号１２０の７１−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２０の１１７−１２８位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２４の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２４の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２４の１１５−１２３位、
（ｖｉｉ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１２０の４５−５３位、ＣＤＲ２：配列番号１２０の７１−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２０の１１７−１２８位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２７の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２７の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２７の１１５−１２３位、
（ｖｉｉｉ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１２０の４５−５３位、ＣＤＲ２：配列番号１２０の７１−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２０の１１７−１２８位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２８の４７−５８位、ＣＤＲ２：配列番号１２８の７６−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２８の１１５−１２３位、および
（ｉｘ）ＶＨ：ＣＤＲ１：配列番号１２０の４５−５３位、ＣＤＲ２：配列番号１２０の７１−７８位、ＣＤＲ３：配列番号１２０の１１７−１２８位、ＶＬ：ＣＤＲ１：配列番号１２９の４７−５２位、ＣＤＲ２：配列番号１２９の７０−７２位、ＣＤＲ３：配列番号１２９の１０９−１１７位。
さらなる好ましい実施形態では、本発明の抗体は、好ましくは、ＣＬＤ１８に対するモノクローナル抗体、好ましくはここで述べるＣＬＤ１８に対するモノクローナル抗体の重鎖可変領域（ＶＨ）および／または軽鎖可変領域（ＶＬ）の相補性決定領域（ＣＤＲ）の１またはそれ以上、好ましくは少なくともＣＤＲ３可変領域を含み、および好ましくは、ここで述べる重鎖可変領域（ＶＨ）および／または軽鎖可変領域（ＶＬ）の相補性決定領域（ＣＤＲ）の１またはそれ以上、好ましくは少なくともＣＤＲ３可変領域を含む。
１つの実施形態では、前記相補性決定領域（ＣＤＲ）の１またはそれ以上は、ここで述べる相補性決定領域ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３のセットから選択される。
特に好ましい実施形態では、本発明の抗体は、好ましくは、ＣＬＤ１８に対するモノクローナル抗体、好ましくはここで述べるＣＬＤ１８に対するモノクローナル抗体の重鎖可変領域（ＶＨ）および／または軽鎖可変領域（ＶＬ）の相補性決定領域ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３を含み、および好ましくは、ここで述べる重鎖可変領域（ＶＨ）および／または軽鎖可変領域（ＶＬ）の相補性決定領域ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３を含む。
１つの実施形態では、ここで述べる１またはそれ以上のＣＤＲ、ＣＤＲのセット、またはＣＤＲのセットの組合せを含む本発明の抗体は、それらの介在フレームワーク領域と共に前記ＣＤＲを含む。
好ましくは、その部分はまた、１番目と４番目のフレームワーク領域のいずれかまたは両方の少なくとも約５０％を含み、その５０％は、１番目のフレームワーク領域のＣ末端の５０％および４番目のフレームワーク領域のＮ末端の５０％である。
組換えＤＮＡ手法によって行われる本発明の抗体の構築により、本発明の可変領域を免疫グロブリン重鎖、他の可変ドメイン（たとえばダイアボディの作製において）またはタンパク質標識を含むさらなるタンパク質配列に連結するためのリンカーの導入を含む、導入されるリンカーによってコードされる可変領域へのＮまたはＣ末端残基を導入することになり、クローニングまたは他の操作工程が容易となる。
１つの実施形態では、ここで述べる１またはそれ以上のＣＤＲ、ＣＤＲのセット、またはＣＤＲのセットの組合せを含む本発明の抗体は、ヒト抗体フレームワーク内に前記ＣＤＲを含む。
抗体の重鎖に関して特定鎖、または特定領域または配列を含む抗体へのここでの言及は、好ましくは前記抗体のすべての重鎖が前記特定鎖、領域または配列を含む場合に関する。これは抗体の軽鎖にも準用される。
本発明はまた、ここで述べるような、抗体またはその部分、たとえば抗体鎖をコードする遺伝子または核酸配列を含む核酸に関する。
核酸は、ベクター、たとえばプラスミド、コスミド、ウイルス、バクテリオファージまたは、たとえば遺伝子工学において慣例的に使用される別のベクターに含まれ得る。ベクターは、適切な宿主細胞においておよび適切な条件下でベクターの選択を可能にするマーカー遺伝子などのさらなる遺伝子を含み得る。
さらに、ベクターは、適切な宿主におけるコード領域の適切な発現を可能にする発現制御エレメントを含み得る。そのような制御エレメントは当業者に公知であり、プロモーター、スプライスカセット、および翻訳開始コドンを含み得る。
好ましくは、本発明の核酸は、真核または原核細胞における発現を可能にする上記発現制御配列に作動可能に連結される。真核または原核細胞における発現を確実にする制御エレメントは当業者に周知である。
本発明に従った核酸分子の構築のため、上記核酸分子を含むベクターの構築のため、適切に選択された宿主細胞へのベクターの導入のため、発現を生じさせるまたは達成するための方法は、当技術分野において周知である。
本発明のさらなる態様は、ここで開示する核酸またはベクターを含む宿主細胞に関する。
本発明の他の特徴および利点は、以下の詳細な説明および特許請求の範囲から明白である。
図１は、緑色蛍光色素に結合し、ヘルパーエピトープに融合した配列番号１５によるＤＮＡ免疫後にマウス血清と反応させたＣＬＤ１８Ａ２でトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞の免疫蛍光分析を示す。 図２は、ＣＬＤ１８Ａ２−ｍｙｃ（配列番号３）でトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞とトランスフェクトしていないＨＥＫ２９３細胞のモノクローナルマウス抗ｃ−ｍｙｃ抗体９Ｅ１１（Ｓｅｒｏｔｅｃ，ＣＲＬ ＭＣＡ２２００）によるウエスタンブロット分析を示す。 図３は、ＣＬＤ１８Ａ２およびポリクローナルウサギ抗ＣＬＤ１８抗体（Ｚｙｍｅｄ，ＣＲＬ ３８−８０００）でトランスフェクトしたＣＨＯ細胞を用いた免疫蛍光分析を示す。 図４ＡおよびＢは、フローサイトメトリーによって測定した、ヒトＣＬＤ１８Ａ２および蛍光マーカーで一過性にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞へのハイブリドーマ上清２４Ｈ５および８５Ａ３の結合を示す。 図４Ｃは、ヒトＣＬＤ１８Ａ２で安定にトランスフェクトし、ヨウ化プロピジウムで対非染色したＨＥＫ２９３細胞へのハイブリドーマ上清４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０の結合を示す。 図５は、フローサイトメトリーによって分析した、蛍光マーカーおよびヒトＣＬＤ１８Ａ２またはＣＬＤ１８Ａ２−ＭｙｃまたはＣＬＤ１８Ａ２−ＨＡのいずれかで一過性にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞へのハイブリドーマ上清２４Ｈ５（Ａ）、９Ｅ８（Ｂ）の結合を示す。 図５は、フローサイトメトリーによって分析した、蛍光マーカーおよびヒトＣＬＤ１８Ａ２またはＣＬＤ１８Ａ２−ＭｙｃまたはＣＬＤ１８Ａ２−ＨＡのいずれかで一過性にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞へのハイブリドーマ上清２６Ｂ５（Ｃ）および１９Ｂ９（Ｄ）の結合を示す。 図６Ａは、フローサイトメトリーによって測定した、ヒトＣＬＤ１８Ａ２またはＣＬＤ１８Ａ１のいずれかで安定にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞へのハイブリドーマ上清３７Ｈ８、４３Ａ１１、４５Ｃ１および１６３Ｅ１２の結合を示す。 図６Ｂは、フローサイトメトリーによって測定した、ヒトＣＬＤ１８Ａ２またはＣＬＤ１８Ａ１のいずれかで安定にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞へのハイブリドーマ上清３７Ｈ８、４３Ａ１１、４５Ｃ１および１６３Ｅ１２の結合を示す。 図７は、未変性（Ａ、Ｂ）条件下にて、それぞれＣＬＤ１８Ａ２（Ａ）およびＣＬＤ１８Ａ１（Ｂ）でトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を染色することによる、ＣＬＤ１８Ａ２アイソフォーム特異的モノクローナル抗体３７Ｇ１１の免疫蛍光分析を示す。 図７は、パラホルムアルデヒド固定（Ｃ、Ｄ）条件下にて、それぞれＣＬＤ１８Ａ２（Ｃ）およびＣＬＤ１８Ａ１（Ｄ）でトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を染色することによる、ＣＬＤ１８Ａ２アイソフォーム特異的モノクローナル抗体３７Ｇ１１の免疫蛍光分析を示す。 図８は、未変性（Ａ、Ｂ）条件下にて、それぞれＣＬＤ１８Ａ２（Ａ）およびＣＬＤ１８Ａ１（Ｂ）でトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を染色することによる、ＣＬＤ１８モノクローナル抗体２６Ｂ５の免疫蛍光分析を示す。 図８は、パラホルムアルデヒド固定（Ｃ、Ｄ）条件下にて、それぞれＣＬＤ１８Ａ２（Ｃ）およびＣＬＤ１８Ａ１（Ｄ）でトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を染色することによる、ＣＬＤ１８モノクローナル抗体２６Ｂ５の免疫蛍光分析を示す。 細胞系統ＲＴ−ＰＣＲ。 ＣＬＤ１８Ａ２特異的プライマーによるＲＴ−ＰＣＲ分析は、試験した５つの細胞系統のうち４系統において明らかな発現を示した。 図１０は、ＤＡＮ−Ｇ細胞（サブクローンＦ２）とポリクローナルウサギ抗ＣＬＤ１８抗体（Ｚｙｍｅｄ，ＣＲＬ ３８−８０００）の免疫蛍光分析を示す。 図１１は、ＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞（サブクローン３Ｂ９ ４Ｄ５）とポリクローナルウサギ抗ＣＬＤ１８抗体（Ｚｙｍｅｄ，ＣＲＬ ３８−８０００）の免疫蛍光分析を示す。 図１２Ａは、ポリクローナルウサギ抗ＣＬＤ１８抗体（Ｚｙｍｅｄ，ＣＲＬ ３８−８０００）でのＳＮＵ−１６細胞（サブクローンＧ５）の免疫蛍光分析を示す。 図１２Ｂは、本発明のモノクローナル抗体でのＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞の免疫蛍光分析を示す。 図１３は、モノクローナル抗体６１Ｃ２および１６３Ｅ１２による細胞の染色、次いでフローサイトメトリー分析によって分析した、ＫＡＴＯ−ＩＩＩおよびＮＵＧＣ−４細胞でのＣＬＤ１８の表面発現を示す。 ヒトＣＬＤ１８Ａ１（ＮＰ＿０５７４５３）、ヒトＣＬＤ１８Ａ２（ＮＰ＿００１００２０２６）、マウスＣＬＤ１８Ａ１（ＮＰ＿０６２７８９）およびマウスＣＬＤ１８Ａ２（ＡＡＬ１５６３６）のタンパク質アラインメント。 図１５Ａは、フローサイトメトリーによって分析した、蛍光マーカーおよびマウスＣＬＤ１８Ａ１またはマウスＣＬＤ１８Ａ２のいずれかで一過性にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞への、ハイブリドーマ上清３８Ｇ５、３８Ｈ３、３７Ｇ１１、４５Ｃ１および１６３Ｅ１２それぞれの結合を示す。 図１５Ｂは、フローサイトメトリーによって分析した、蛍光マーカーおよびマウスＣＬＤ１８Ａ１またはマウスＣＬＤ１８Ａ２のいずれかで一過性にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞への、ハイブリドーマ上清３８Ｇ５、３８Ｈ３、３７Ｇ１１、４５Ｃ１および１６３Ｅ１２それぞれの結合を示す。 ポリクローナル抗体ｐ１０５での免疫組織化学分析。正常組織（胃、肺、骨髄および前立腺）のサブセットに関する免疫組織化学染色により、胃組織の特異性が確認された（Ａ）。胃癌（上の列）および肺癌（Ｂ）における発現も検出された。分化した細胞だけがＣＬＤ１８Ａ２を発現し、幹細胞はＣＬＤ１８Ａ２を発現しない（Ｃ）。 ポリクローナル抗体ｐ１０５での免疫組織化学分析。正常組織（胃、肺、骨髄および前立腺）のサブセットに関する免疫組織化学染色により、胃組織の特異性が確認された（Ａ）。胃癌（上の列）および肺癌（Ｂ）における発現も検出された。分化した細胞だけがＣＬＤ１８Ａ２を発現し、幹細胞はＣＬＤ１８Ａ２を発現しない（Ｃ）。 ポリクローナル抗体ｐ１０５での免疫組織化学分析。正常組織（胃、肺、骨髄および前立腺）のサブセットに関する免疫組織化学染色により、胃組織の特異性が確認された（Ａ）。胃癌（上の列）および肺癌（Ｂ）における発現も検出された。分化した細胞だけがＣＬＤ１８Ａ２を発現し、幹細胞はＣＬＤ１８Ａ２を発現しない（Ｃ）。 モノクローナル抗体３９Ｆ１１Ｄ７での免疫組織化学分析。（Ａ）正常胃粘膜において特異的タンパク質発現が検出されたが、試験した他のすべての正常組織は陰性であった。 モノクローナル抗体３９Ｆ１１Ｄ７での免疫組織化学分析。（Ｂ）胃および肺癌において強いＣＬＤ１８Ａ２発現が認められた。 モノクローナル抗体２６Ｂ５（Ａ）での免疫組織化学分析。すべての抗体が、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２異種移植腫瘍および胃癌標本の強い染色を示すが、ＨＥＫ２９３−Ｍｏｃｋ対照トランスフェクト腫瘍の染色を示さない。 モノクローナル抗体１７５Ｄ１０（Ｂ）での免疫組織化学分析。すべての抗体が、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２異種移植腫瘍および胃癌標本の強い染色を示すが、ＨＥＫ２９３−Ｍｏｃｋ対照トランスフェクト腫瘍の染色を示さない。 モノクローナル抗体４３Ａ１１（Ｃ）での免疫組織化学分析。すべての抗体が、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２異種移植腫瘍および胃癌標本の強い染色を示すが、ＨＥＫ２９３−Ｍｏｃｋ対照トランスフェクト腫瘍の染色を示さない。 モノクローナル抗体１６３Ｅ１２（Ｄ）での免疫組織化学分析。すべての抗体が、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２異種移植腫瘍および胃癌標本の強い染色を示すが、ＨＥＫ２９３−Ｍｏｃｋ対照トランスフェクト腫瘍の染色を示さない。 ４５Ｃ１（Ｅ）での免疫組織化学分析。すべての抗体が、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２異種移植腫瘍および胃癌標本の強い染色を示すが、ＨＥＫ２９３−Ｍｏｃｋ対照トランスフェクト腫瘍の染色を示さない。 図１９は、フローサイトメトリーを使用して、ヒトＣＬＤ１８Ａ２で安定にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞に対する８５Ａ３、２８Ｄ１０、２４Ｈ５または２６Ｄ１２によるＣＤＣの誘導後の死細胞のパーセンテージを比較したグラフである。 図２０は、蛍光測定によって決定した、ヒトＣＬＤ１８Ａ２またはヒトＣＬＤ１８Ａ１のいずれかで安定にトランスフェクトした接着性ＣＨＯ細胞に対する２４Ｈ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２または６１Ｃ２によるＣＤＣの誘導後の特異的細胞溶解のパーセンテージを比較したグラフである。 図２１は、蛍光測定によって決定した、７５Ｂ８（Ａ）、２８Ｄ１０（Ｂ）による、ヒトＣＬＤ１８Ａ２で安定にトランスフェクトしたＣＨＯ細胞に対するＣＤＣの濃度依存的誘導を示す。 図２１は、蛍光測定によって決定した、３７Ｈ８（Ｃ）による、ヒトＣＬＤ１８Ａ２で安定にトランスフェクトしたＣＨＯ細胞に対するＣＤＣの濃度依存的誘導を示す。 図２２は、ＭＮＣの存在下での、それぞれ２６Ｂ５、３７Ｈ８、３８Ｇ５、４７Ｄ１２および６１Ｃ２によるＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞の溶解を示す。 図２３は、ＭＮＣの存在下での、それぞれ２６Ｂ５、３７Ｈ８、３８Ｇ５、４７Ｄ１２および６１Ｃ２によるＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ１細胞の溶解を示す。 図２４は、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞での早期治療異種移植モデルにおける本発明の抗体による腫瘍増殖阻害を示す。 図２５Ａは、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞での２つの早期治療異種移植モデルにおける本発明の抗体での治療による生存延長を示す。 図２５Ｂは、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞での２つの早期治療異種移植モデルにおける本発明の抗体での治療による生存延長を示す。 図２６は、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞での進行した治療異種移植モデルにおける本発明の抗体による生存延長を示す。 図２７Ａは、早期治療異種移植モデルでの本発明の抗体による腫瘍増殖阻害を示す。内因性にＣＬＤ１８Ａ２を発現するＤＡＮ−Ｇ細胞を使用した。 図２７Ｂは、早期治療異種移植モデルでの本発明の抗体による生存延長を示す。内因性にＣＬＤ１８Ａ２を発現するＤＡＮ−Ｇ細胞を使用した。 図２８は、マウス組織におけるＣＬＤ１８Ａ２ ｍＲＮＡ発現を示す。ＣＬＤ１８Ａ２特異的プライマーでのＲＴ−ＰＣＲ検査は、胃を除く、試験したすべての正常組織において有意の発現を示さなかった。以下の正常組織を分析した：１：小腸、２：脾臓、３：皮膚、４：胃、５：肺、６：膵臓、７：リンパ節、８：胸腺、９：陰性対照。 図２９は、正常な胃におけるＣＬＤ１８発現を示す。マウス胃のＣＬＤ１８特異的抗体での免疫組織化学分析は、保存された発現パターンを明らかにする。表面上皮および深部陰窩はそれらの細胞表面でＣＬＤ１８を発現するが、中心頸部領域はＣＬＤ１８陰性である。 図３０は、マウス胃組織のヘマトキシリンおよびエオシン染色を示す。ＰＢＳだけで処置した対照マウス（ＣおよびＤ）と比較した３７Ｇ１１処置マウスの胃を概観的（Ａ）および詳細に（Ｂ）示す。 図３１Ａは、それぞれヒトＣＬＤ１８Ａ１およびＡ２で安定にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞、ならびに内因性発現ＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞の、本発明の抗体（４３Ａ１１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０）によるフローサイトメトリー染色を示す。 図３１Ｂは、それぞれヒトＣＬＤ１８Ａ１およびＡ２で安定にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞、ならびに内因性発現ＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞の、本発明の抗体（４３Ａ１１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０）によるフローサイトメトリー染色を示す。 図３２は、本発明のキメラ抗体によって媒介されるＣＬＤ１８Ａ２発現細胞へのＣＤＣを示す。 図３３は、本発明のキメラ抗体によって媒介されるＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞へのＡＤＣＣを示す。
ここで述べる抗体は、ＣＬＤ１８上に存在するエピトープに特異的に結合する単離モノクローナル抗体であり得る。本発明に包含される単離モノクローナル抗体は、ＩｇＡ、ＩｇＧ１〜４、ＩｇＥ、ＩｇＭおよびＩｇＤ抗体を含む。
１つの実施形態では、抗体はＩｇＧ１抗体であり、より特定するとＩｇＧ１κまたはＩｇＧ１λアイソタイプである。もう１つの実施形態では、抗体はＩｇＧ３抗体であり、より特定するとＩｇＧ３κまたはＩｇＧ３λアイソタイプである。
さらにもう１つの実施形態では、抗体はＩｇＧ４抗体であり、より特定するとＩｇＧ４κまたはＩｇＧ４λアイソタイプである。さらにもう１つの実施形態では、抗体はＩｇＡ１またはＩｇＡ２抗体である。
さらにもう１つの実施形態では、抗体はＩｇＭ抗体である。
１つの実施形態では、本発明は、ＣＬＤ１８を発現する細胞に特異的に結合する抗体、好ましくは（ｉ）ＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞に結合し、および（ｉｉ）ＣＬＤ１８Ａ２を発現しないがＣＬＤ１８Ａ１を発現する細胞には結合しない抗体に関する。本発明の抗体は、好ましくは（ｉ）ＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞の死滅を媒介し、および（ｉｉ）ＣＬＤ１８Ａ２を発現しないがＣＬＤ１８Ａ１を発現する細胞の死滅を媒介しない。
もう１つの実施形態では、本発明は、（ｉ）ＣＬＤ１８を発現する腫瘍細胞に結合し、（ｉｉ）正常胃粘膜のＣＬＤ１８発現細胞に結合せず、および／または（ｉｉｉ）非癌性肺組織のＣＬＤ１８発現細胞に結合しない抗体に関する。
本発明はまた、（ｉ）ＣＬＤ１８を発現する腫瘍細胞の死滅を媒介し、（ｉｉ）正常胃粘膜のＣＬＤ１８発現細胞の死滅を媒介せず、および／または（ｉｉｉ）非癌性肺組織のＣＬＤ１８発現細胞の死滅を媒介しない抗体を含む。
特定実施形態では、本発明の抗体は、（ｉ）ＣＬＤ１８Ａ１上に存在しないＣＬＤ１８Ａ２上のエピトープ、好ましくは配列番号２１、２２および２３に結合する、（ｉｉ）ＣＬＤ１８Ａ２−ループ１に局在するエピトープ、好ましくは配列番号２８に結合する、（ｉｉｉ）ＣＬＤ１８Ａ２−ループ２に局在するエピトープ、好ましくは配列番号３０に結合する、（ｉｖ）ＣＬＤ１８Ａ２−ループＤ３に局在するエピトープ、好ましくは配列番号３１に結合する、（ｖ）ＣＬＤ１８Ａ２−ループ１およびＣＬＤ１８Ａ２−ループＤ３を含むエピトープに結合する、（ｖｉ）ＣＬＤ１８Ａ２−ループＤ３に局在する非グリコシル化エピトープ、好ましくは配列番号２９に結合する、または（ｖｉｉ）ヒトおよびマウスＣＬＤ１８内に存在するエピトープ（それぞれ配列番号２、配列番号８および配列番号３５、配列番号３７）に結合する。
特に好ましい実施形態では、本発明の抗体は、ＣＬＤ１８Ａ１上に存在しないＣＬＤ１８Ａ２上のエピトープに結合する。
本発明の抗体は完全ヒト抗体を含む。そのような抗体は、Ｖ−Ｄ−Ｊ組換えおよびアイソタイプスイッチを行うことによってＣＬＤ１８に対するヒトモノクローナル抗体の多数のアイソタイプを産生することができる非ヒトトランスジェニック動物、たとえばトランスジェニックマウスにおいて作製し得る。
そのようなトランスジェニック動物はまた、米国特許願第ＵＳ２００３／００１７５３４号に開示されているようなポリクローナル抗体を産生するためのトランスジェニックウサギであり得る。
ＣＬＤ１８抗原への本発明の抗体の結合は、たとえば補体系の活性化によって、ＣＬＤ１８を発現する細胞（たとえば腫瘍細胞）の死滅を媒介し得る。
ＣＬＤ１８を発現する細胞の死滅は以下の機構の１またはそれ以上によって起こり得る：ＣＬＤ１８を発現する細胞の補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）；ＣＬＤ１８を発現する細胞のアポトーシス；ＣＬＤ１８を発現する細胞のエフェクター細胞食作用；またはＣＬＤ１８を発現する細胞のエフェクター細胞抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）。
本発明がより容易に理解され得るために、一部の用語を最初に定義する。付加的な定義は詳細な説明全体を通して述べる。
(用語の定義)
「ＣＬＤ１８」という用語は、クローディン１８に関し、細胞によって天然に発現されるまたはＣＬＤ１８遺伝子でトランスフェクトされた細胞によって発現されるＣＬＤ１８Ａ１およびＣＬＤ１８Ａ２、ＣＬＤ１８の立体配座、アイソフォームおよび種ホモログを含む全ての変異体も包含する。好ましくは、「ＣＬＤ１８」は、ヒトＣＬＤ１８、特にＣＬＤ１８Ａ２（配列番号１、２）および／またはＣＬＤ１８Ａ１（配列番号７、８）、より好ましくはＣＬＤ１８Ａ２に関する。
「ＣＬＤ１８Ａ１」という用語は、細胞によって天然に発現されるまたはＣＬＤ１８Ａ１遺伝子でトランスフェクトされた細胞で発現されるヒトＣＬＤ１８Ａ１の翻訳後修飾変異体、アイソフォームおよび種ホモログを含む。
「ＣＬＤ１８Ａ２」という用語は、細胞によって天然に発現されるまたはＣＬＤ１８Ａ２遺伝子でトランスフェクトされた細胞で発現されるヒトＣＬＤ１８Ａ２の翻訳後修飾変異体、アイソフォームおよび種ホモログを含む。
「ＣＬＤ１８変異体」という用語は、（ｉ）ＣＬＤ１８スプライス変異体、（ｉｉ）特に異なるＮグリコシル化状態を有する変異体を含む、ＣＬＤ１８翻訳後修飾変異体、（ｉｉｉ）特にＣＬＤ１８−コンフォメーション１、ＣＬＤ１８−コンフォメーション２およびＣＬＤ１８−コンフォメーション３を含む、ＣＬＤ１８立体配座変異体、（ｉｖ）細胞間密着結合に局在するＣＬＤ１８フリーおよび同型／異型結合変異体、（ｖ）ＣＬＤ１８癌関連およびＣＬＤ１８非癌関連変異体を包含する。
「ラフト（ｒａｆｔ）」という用語は、細胞の形質膜の外葉領域に位置する、スフィンゴ脂質とコレステロールに富む膜ミクロドメインを指す。そのようなドメイン内で結合するある種のタンパク質の能力および「凝集体」または「フォーカルアグリゲート（ｆｏｃａｌ ａｇｇｒｅｇａｔｅ）」を形成するそれらの能力は、タンパク質の機能に影響を及ぼし得る。
たとえばそのような構造内にＣＬＤ１８分子が移行することで、本発明の抗体が結合した後、形質膜において高密度なＣＬＤ１８抗原−抗体複合体が形成される。そのようにＣＬＤ１８抗原−抗体複合体が高密度化することで、ＣＤＣにおける補体系が効率的に活性化し得る。
「立体配座」および「トポロジー」という用語は、内在性膜分子が細胞表面膜においてどのように位置するか、特にその領域のいずれが細胞外であり、それゆえ抗体に対して適格であるかを表わす。
ＣＬＤ１８は、たとえば、おそらくそれがホモマーまたはヘテロマーとして優勢であるかどうかおよび超分子密着結合構造に組み込まれているかまたは「フリー」であるかに依存する、３つの異なる立体配座で存在し得る。これらの異なる状態は、抗体に対して適格な異なるエピトープを生じさせる。
本発明によれば、「疾患」という用語は、癌、特にここで述べる形態の癌を含む、何らかの病的状態を指す。
「腫瘍」とは、迅速で制御できない細胞増殖によって成長し、新たな増殖を開始させた刺激が停止した後も成長し続ける細胞または組織の異常な群を意味する。
腫瘍は、構造組織および正常組織との機能的協調の部分的または完全な欠如を示し、通常、良性または悪性であり得る明確な組織塊を形成する。
「転移」とは、その最初の部位から身体の別の部分への癌細胞の拡大を意味する。転移の形成は非常に複雑な過程であり、一次腫瘍からの悪性細胞の分離、細胞外マトリックスへの浸潤、内皮基底膜に侵入して体腔および脈管に入り込むこと、およびその後、血液によって運搬された後、標的器官への浸潤に依存する。
最後に、標的部位での新しい腫瘍の増殖は血管新生に依存する。腫瘍転移はしばしば一次腫瘍の除去後にも起こり、これは、腫瘍細胞または成分が残存し、転移の潜在的可能性を発現し得るからである。
１つの実施形態では、本発明に従った「転移」という用語は、一次腫瘍および局所リンパ節系から遠い転移に関する「遠隔転移」に関する。
「疾患の治療」という用語は、疾患またはその症状を治癒する、その期間を短縮する、改善する、予防する、進行または悪化を緩慢化するまたは抑制する、または発症を予防するまたは遅延させることを含む。
本発明によれば、試料は、本発明に従って有用な何らかの試料、特に体液および／または細胞試料を含む、組織試料などの生物学的試料であり得、パンチ生検を含む組織生検、血液、気管支吸引液、痰、尿、便または他の体液を採取することなどの従来の方法で入手し得る。
本発明によれば、「生物学的試料」という用語はまた、生物学的試料の画分を包含する。
「抗体」という用語は、ジスルフィド結合、またはその抗原結合部分によって相互に連結された少なくとも２本の重（Ｈ）鎖と２本の軽（Ｌ）鎖を含む糖タンパク質を指す。
「抗体」という用語はまた、すべての組換え形態の抗体、特にここで述べる抗体、たとえば原核生物において発現される抗体、非グリコシル化抗体、および以下で述べる何らかの抗原結合抗体フラグメントおよび誘導体を包含する。
各々の重鎖は重鎖可変領域（ここではＶＨと略す）と重鎖定常領域から成る。各々の軽鎖は軽鎖可変領域（ここではＶＬと略す）と軽鎖定常領域から成る。
ＶＨおよびＶＬ領域は、フレームワーク領域（ＦＲ）と称されるより保存された領域が間に組み入れられた、相補性決定領域（ＣＤＲ）と称される超可変領域にさらに細分することができる。
各々のＶＨとＶＬは、アミノ末端からカルボキシ末端に以下の順序：ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４で配置された、３つのＣＤＲと４つのＦＲから成る。重鎖および軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含む。
抗体の定常領域は、免疫系の様々な細胞（たとえばエフェクター細胞）および古典的補体系の第一成分（Ｃ１ｑ）を含む、宿主組織または因子への免疫グロブリンの結合を媒介し得る。
「ヒト化抗体」という用語は、非ヒト種からの免疫グロブリンに実質的に由来する抗原結合部位を有する分子であって、分子の残りの免疫グロブリン構造はヒト免疫グロブリンの構造および／または配列に基づく分子を指す。
抗原結合部位は、定常ドメインに融合した完全な可変ドメインを含むか、または可変ドメイン内の適切なフレームワーク領域に移植された相補性決定領域（ＣＤＲ）だけを含み得る。抗原結合部位は、野生型であるかまたは１またはそれ以上のアミノ酸置換によって修飾され得る、たとえばヒト免疫グロブリンにより密接に類似するように修飾され得る。
ヒト化抗体の一部の形態はすべてのＣＤＲ配列を保存する（たとえばマウス抗体からの６つのＣＤＲすべてを含むヒト化マウス抗体）。他の形態は、もとの抗体に比べて変化した１またはそれ以上のＣＤＲを有する。
「キメラ抗体」という用語は、重鎖および軽鎖の各々のアミノ酸配列の一部は、特定種に由来するまたは特定クラスに属する抗体内の対応配列に相同であるが、鎖の残りのセグメントは別の種またはクラスの抗体内の対応配列に相同である抗体を指す。
典型的には、軽鎖と重鎖の両方の可変領域は哺乳動物の１つの種に由来する抗体の可変領域を模倣するが、定常部分は別の種に由来する抗体の配列に相同である。
そのようなキメラ形態の１つの明らかな利点は、たとえばヒト細胞試料に由来する定常領域と組み合わせて、可変領域が、非ヒト宿主生物から容易に入手可能なＢ細胞またはハイブリドーマを使用して現在公知のソースから好都合に誘導できることである。
可変領域は作製の容易さという利点を有し、特異性がソースによって影響されないが、定常領域がヒトである場合、抗体を注射したとき非ヒトソースからの定常領域の場合よりもヒト被験者から免疫応答を惹起する可能性が低い。しかし前記の定義はこの特定例に限定されない。
抗体の「抗原結合部分」（または単に「結合部分」）という用語は、ここで使用するとき、抗原に特異的に結合する能力を保持する、抗体の１またはそれ以上のフラグメントを指す。抗体の抗原結合機能は完全長抗体のフラグメントによって実行され得ることが示されている。
抗体の「抗原結合部分」という用語に包含される結合フラグメントの例は、（ｉ）ＶＬ、ＶＨ、ＣＬおよびＣＨドメインから成る一価フラグメントである、Ｆａｂフラグメント；（ｉｉ）ヒンジ領域でジスルフィド架橋によって連結された２個のＦａｂフラグメントを含む二価フラグメントである、Ｆ（ａｂ'２）フラグメント；（ｉｉｉ）ＶＨおよびＣＨドメインから成るＦｄフラグメント；（ｉｖ）抗体の１本の腕のＶＬおよびＶＨドメインから成るＦｖフラグメント；（ｖ）ＶＨドメインから成るｄＡｂフラグメント（Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ．，（１９８９）Ｎａｔｕｒｅ ３４１：５４４−５４６）；（ｖｉ）単離相補性決定領域（ＣＤＲ）；および（ｖｉｉ）合成リンカーによって任意に連結され得る２またはそれ以上の単離ＣＤＲの組合せを含む。
さらに、Ｆｖフラグメントの２つのドメイン、ＶＬおよびＶＨは、別々の遺伝子によってコードされるが、それらを、ＶＬとＶＨ領域が対合して一価分子を形成する一本鎖タンパク質（一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）として知られる；たとえばＢｉｒｄ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２：４２３−４２６；およびＨｕｓｔｏｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：５８７９−５８８３参照）にすることができる合成リンカーにより、組換え法を用いて連結することができる。
そのような一本鎖抗体も、抗体の「抗原結合部分」という用語に包含されることが意図されている。さらなる例は、（ｉ）免疫グロブリンヒンジ領域ポリペプチドに融合した結合ドメインポリペプチド、（ｉｉ）ヒンジ領域に融合した免疫グロブリン重鎖ＣＨ２定常領域、および（ｉｉｉ）ＣＨ２定常領域に融合した免疫グロブリン重鎖ＣＨ３定常領域を含む、結合ドメイン免疫グロブリン融合タンパク質である。
結合ドメインポリペプチドは、重鎖可変領域または軽鎖可変領域であり得る。結合ドメイン免疫グロブリン融合タンパク質は、さらに米国特許願第ＵＳ２００３／０１１８５９２号および同第ＵＳ２００３／０１３３９３９号に開示されている。
これらの抗体フラグメントは当業者に公知の従来の手法を用いて得られ、無傷抗体と同じ方法で有用性に関してスクリーニングされる。
「エピトープ」という用語は、抗体に結合することができるタンパク質決定基を意味し、「結合」という用語は、ここでは、好ましくは特異的結合に関する。エピトープは通常、アミノ酸または糖側鎖などの分子の化学的に活性な表面基群から成り、一般に特異的な三次元構造上の特徴、ならびに特異的な荷電特性を有する。
立体配座および非立体配座エピトープは、変性溶媒の存在下で、前者への結合は失われないが後者への結合は失われることによって区別される。
ここで使用する「不連続エピトープ」という用語は、タンパク質の一次配列内の少なくとも２つの別々の領域から形成される、タンパク質抗原上の立体配座エピトープを意味する。
「二重特異性分子」という用語は、２つの異なる結合特異性を有する何らかの物質、たとえばタンパク質、ペプチド、またはタンパク質またはペプチド複合体を含むことが意図されている。たとえば前記分子は、（ａ）細胞表面抗原、および（ｂ）エフェクター細胞の表面のＦｃ受容体に結合し得るまたはそれらと相互作用し得る。
「多重特異性分子」または「ヘテロ特異性（ｈｅｔｅｒｏｓｐｅｃｉｆｉｃ）分子」という用語は、３以上の異なる結合特異性を有する何らかの物質、たとえばタンパク質、ペプチド、またはタンパク質またはペプチド複合体を含むことが意図されている。
たとえば前記分子は、（ａ）細胞表面抗原、（ｂ）エフェクター細胞の表面のＦｃ受容体、および（ｃ）少なくとも１つの他の成分に結合し得るまたはそれらと相互作用し得る。
従って、本発明は、ＣＬＤ１８に対する、およびエフェクター細胞上のＦｃ受容体などの他の標的に対する、二重特異性、三重特異性、四重特異性、および他の多重特異性分子を含むが、これらに限定されない。
「二重特異性抗体」という用語はダイアボディも包含する。ダイアボディは、ＶＨとＶＬドメインが一本のポリペプチド鎖上で発現されるが、同じ鎖上の２つのドメイン間の対合を許容しないほど短いリンカーを使用し、それによってそれらのドメインをもう１本の鎖の相補的ドメインと対合させ、２つの抗原結合部位を作り出す、二価の二重特異性抗体である（たとえばＨｏｌｌｉｇｅｒ，Ｐ．，ｅｔ ａｌ．（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：６４４４−６４４８；Ｐｏｌｊａｋ，Ｒ．Ｊ．，ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ２：１１２１−１１２３参照）。
本発明はまた、ここで述べる抗体の誘導体を包含する。「抗体誘導体」という用語は、何らかの修飾形態の抗体、たとえば抗体ともう１つ別の物質または抗体の複合体を指す。ここで使用するとき、抗体が動物を免疫することによってまたは免疫グロブリン遺伝子ライブラリーをスクリーニングすることによって系から得られ、選択された抗体が、生殖細胞系免疫グロブリン遺伝子によってコードされるアミノ酸配列に対し、アミノ酸配列において少なくとも９０％、より好ましくは少なくとも９５％、さらに一層好ましくは少なくとも９６％、９７％、９８％または９９％同一である場合、その抗体は特定生殖細胞系配列に「由来する」。
典型的には、特定生殖細胞系配列に由来する抗体は、生殖細胞系免疫グロブリン遺伝子によってコードされるアミノ酸配列と１０以下のアミノ酸相違、より好ましくは５以下、さらに一層好ましくは４、３、２または１以下のアミノ酸相違を示す。
ここで使用するとき、「ヘテロ抗体」という用語は、そのうちの少なくとも２つが異なる特異性を有する、２またはそれ以上の抗体、その誘導体、または互いに連結された抗原結合領域を指す。
これらの異なる特異性は、エフェクター細胞上のＦｃ受容体に対する結合特異性、および標的細胞、たとえば腫瘍細胞上の抗原またはエピトープに対する結合特異性を含む。
ここで述べる抗体はヒト抗体であり得る。「ヒト抗体」という用語は、ここで使用するとき、ヒト生殖細胞系免疫グロブリン配列に由来する可変および定常領域を有する抗体を含むことが意図されている。
本発明のヒト抗体は、ヒト生殖細胞系免疫グロブリン配列によってコードされないアミノ酸残基（たとえばインビトロでのランダムまたは部位特異的突然変異誘発またはインビボでの体細胞突然変異によって導入される突然変異）を含み得る。
ここで使用する「モノクローナル抗体」という用語は、単一分子組成物の抗体分子の製剤を指す。モノクローナル抗体は、特定エピトープに対する単一結合特異性および親和性を示す。
１つの実施形態では、モノクローナル抗体は、不死化細胞に融合した、非ヒト動物、たとえばマウスから得られるＢ細胞を含むハイブリドーマによって産生される。
「組換え抗体」という用語は、ここで使用するとき、（ａ）免疫グロブリン遺伝子に関してトランスジェニックまたは染色体導入である動物（たとえばマウス）から単離された抗体またはそれから作製されたハイブリドーマ、（ｂ）抗体を発現するように形質転換された宿主細胞から、たとえばトランスフェクトーマから単離された抗体、（ｃ）組換えコンビナトリアル抗体ライブラリーから単離された抗体、および（ｄ）免疫グロブリン遺伝子配列の他のＤＮＡ配列へのスプライシングを含む何らかの他の手段によって作製された、発現された、創造されたまたは単離された抗体などの、組換え手段によって作製される、発現される、創造されるまたは単離されるすべての抗体を包含する。
「トランスフェクトーマ」という用語は、ここで使用するとき、ＣＨＯ細胞、ＮＳ／０細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞、植物細胞、または酵母細胞を含む真菌などの、抗体を発現する組換え真核生物宿主細胞を包含する。
ここで使用するとき、「異種抗体」は、そのような抗体を産生するトランスジェニック生物に関して定義される。この用語は、トランスジェニック生物から構成されず、一般にトランスジェニック生物以外の種に由来する生物において認められるものに対応するアミノ酸配列またはコード核酸配列を有する抗体を指す。
ここで使用するとき、「ヘテロハイブリッド抗体」は、異なる生物起源の軽鎖と重鎖を有する抗体を指す。たとえばマウス軽鎖と結合したヒト重鎖を有する抗体はヘテロハイブリッド抗体である。
ここで述べる抗体は、好ましくは単離されている。ここで使用する「単離抗体」は、異なる抗原特異性を有する他の抗体を実質的に含まない抗体を指すことが意図されている（たとえばＣＬＤ１８に特異的に結合する単離抗体は、ＣＬＤ１８以外の抗原に特異的に結合する抗体を実質的に含まない）。
ヒトＣＬＤ１８のエピトープ、アイソフォームまたは変異体に特異的に結合する単離抗体は、しかし、他の関連抗原、たとえば他の種からの関連抗原（たとえばＣＬＤ１８種ホモログ）に交差反応性を有し得る。
さらに、単離抗体は、実質的に他の細胞物質および／または化学物質を含まなくてもよい。本発明の１つの実施形態では、「単離」モノクローナル抗体の組み合わせは、異なる特異性を有し、十分に定義された組成物において組み合わされる抗体に関する。
本発明によれば、「結合」という用語は、好ましくは「特異的結合」に関する。ここで使用するとき、「特異的結合」は、あらかじめ定められた抗原への抗体結合を指す。典型的には、抗体は、約１×１０−７Ｍ以下のＫＤに相当する親和性で結合し、およびあらかじめ定められた抗原または密接に関連する抗原以外の非特異的抗原（たとえばＢＳＡ、カゼイン）への結合に関するその親和性より少なくとも２桁低いＫＤに相当する親和性であらかじめ定められた抗原に結合する。
「ＫＤ」（Ｍ）という用語は、ここで使用するとき、特定の抗体−抗原相互作用の解離平衡定数を指すことが意図されている。
ここで使用するとき、「アイソタイプ」は、重鎖定常領域遺伝子によってコードされる抗体クラス（たとえばＩｇＭまたはＩｇＧ１）を指す。
ここで使用するとき、「アイソタイプスイッチ」は、それによって抗体のクラスまたはアイソタイプがある１つのＩｇクラスからその他のＩｇクラスの１つに変化する現象を指す。
物体に対して適用される、ここで使用する「天然に生じる」という用語は、物体が自然界で認められ得るという事実を指す。たとえば自然界でソースから単離できる生物（ウイルスを含む）中に存在し、研究室においてヒトによって意図的に改変されなかったポリペプチドまたはポリヌクレオチド配列は、天然に生じる。
ここで使用する「再編成された」という用語は、実質的にそれぞれ完全なＶＨまたはＶＬドメインをコードする立体配座においてＶセグメントがＤ−ＪまたはＪセグメントに直接隣接して位置する、重鎖または軽鎖免疫グロブリン遺伝子座の立体配置を指す。
再編成された免疫グロブリン（抗体）遺伝子座は、生殖細胞系ＤＮＡとの比較によって同定できる；再編成された遺伝子座は、少なくとも１つの組換え７量体／９量体相同性エレメントを有する。
Ｖセグメントに関してここで使用する「再編成されていない」または「生殖細胞系立体配置」という用語は、ＶセグメントがＤまたはＪセグメントに直接隣接するように組み換えられていない立体配座を指す。
「核酸分子」という用語は、ここで使用するとき、ＤＮＡ分子およびＲＮＡ分子を含むことが意図されている。核酸分子は一本鎖または二本鎖であり得るが、好ましくは二本鎖ＤＮＡである。
本発明に従って述べる核酸は、好ましくは単離されている。「単離核酸」という用語は、本発明によれば、核酸が、（ｉ）インビトロで、たとえばポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって増幅された、（ｉｉ）クローニングによって組換え生産された、（ｉｉｉ）たとえば切断とゲル電気泳動分画によって精製された、または（ｖｉ）たとえば化学合成によって合成されたことを意味する。単離核酸は、組換えＤＮＡ手法による操作のために使用可能な核酸である。
核酸は、本発明によれば、単独でまたは、相同または異種であり得る、他の核酸と組み合わせて存在し得る。好ましい実施形態では、核酸は、前記核酸に関して相同または異種であり得る発現制御配列に機能的に連結されている。
「相同」という用語は、核酸が天然でも発現制御配列に機能的に連結されていることを意味し、「異種」という用語は、核酸が天然では発現制御配列に機能的に連結されていないことを意味する。
ＲＮＡおよび／またはタンパク質またはペプチドを発現する核酸などの核酸と発現制御配列は、それらが、前記核酸の発現または転写が前記発現制御配列の制御下または影響下にあるように互いに共有結合されている場合、互いに「機能的に」連結されている。
核酸が、その後、コード配列に機能的に連結された発現制御配列により機能的タンパク質へと翻訳されるはずである場合、前記発現制御配列の誘導は、コード配列内のフレームシフトを引き起こさずにまたは前記コード配列が所望タンパク質またはペプチドへと翻訳されることができない事態を引き起こさずに、前記核酸の転写を生じさせる。
「発現制御配列」という用語は、本発明によれば、プロモーター、リボソーム結合部位、エンハンサー、および遺伝子の転写またはｍＲＮＡの翻訳を調節する他の制御エレメントを含む。
本発明の特定実施形態では、発現制御配列は調節され得る。発現制御配列の正確な構造は、種または細胞型に応じて異なり得るが、一般に、ＴＡＴＡボックス、キャップ配列、ＣＡＡＴ配列等のような、それぞれ転写および翻訳の開始に関与する５'非転写および５'および３'非翻訳配列を含む。
より詳細には、５'非転写発現制御配列は、機能的に連結された核酸の転写制御のためのプロモーター配列を含有するプロモーター領域を含む。発現制御配列はまた、エンハンサー配列または上流活性化配列を含み得る。
本発明によれば、「プロモーター」または「プロモーター領域」という用語は、発現される核酸配列に対して上流（５'側）に位置し、ＲＮＡポリメラーゼのための認識および結合部位を提供することによって配列の発現を制御する核酸配列に関する。
「プロモーター領域」はさらに、遺伝子の転写の調節に関わるさらなる因子のための認識および結合部位を含み得る。プロモーターは、原核または真核生物遺伝子の転写を制御し得る。
さらに、プロモーターは「誘導性」であり得、誘導物質に応答して転写を開始させ得るか、または転写が誘導物質によって制御されない場合は「構成的」であり得る。誘導性プロモーターの制御下にある遺伝子は、誘導物質が存在しない場合は発現されないかまたはわずかだけ発現される。
誘導物質の存在下では、遺伝子のスイッチが入るかまたは転写のレベルが上昇する。これは、一般に、特異的転写因子の結合によって媒介される。
本発明に従って好ましいプロモーターは、ＳＰ６、Ｔ３およびＴ７ポリメラーゼのためのプロモーター、ヒトＵ６ ＲＮＡプロモーター、ＣＭＶプロモーター、およびある部分または複数の部分が、たとえばヒトＧＡＰＤＨ（グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ）などの他の細胞タンパク質の遺伝子のプロモーターのある部分または複数の部分に融合しており、付加的なイントロンを含むかまたは含まない、それらの人工ハイブリッドプロモーター（たとえばＣＭＶ）を包含する。
本発明によれば、「発現」という用語は、その最も一般的な意味で使用され、ＲＮＡまたはＲＮＡおよびタンパク質／ペプチドの生産を含む。これはまた、核酸の部分的発現を包含する。さらに、発現は一過性または安定に実施され得る。
好ましい実施形態では、核酸分子は、適切な場合はプロモーターと共に、核酸の発現を制御するベクター内に本発明に従って存在する。
「ベクター」という用語は、ここではその最も一般的な意味で使用され、前記核酸が、たとえば原核および／または真核細胞に導入され、適切な場合は、ゲノム内に組み込まれることを可能にする、核酸のための全ての中間媒体を包含する。
この種のベクターは、好ましくは細胞において複製および／または発現される。ベクターは、プラスミド、ファージミド、バクテリオファージまたはウイルスゲノムを含む。
ここで使用する「プラスミド」という用語は、一般に染色体ＤＮＡと独立して複製することができる染色体外遺伝物質の構築物、通常は環状ＤＮＡ二重鎖に関する。
抗体の発現のためのベクターとして、抗体重鎖と軽鎖が異なるベクター内に存在するベクター型または重鎖と軽鎖が同じベクター内に存在するベクター型のいずれかが使用できる。
特定核酸およびアミノ酸配列、たとえば配列表に示すものに関してここで与える教示は、前記特定配列と機能的に等価の配列を生じさせる、たとえば特定アミノ酸配列の性質と同一または類似の性質を示すアミノ酸配列および特定核酸配列によってコードされるアミノ酸配列の性質と同一または類似の性質を示すアミノ酸配列をコードする核酸配列を生じさせる、前記特定配列の修飾に関しても該当するように解釈できる。
１つの重要な性質は、その標的への抗体の結合を保持することまたは抗体のエフェクター機能を維持することである。
好ましくは、特定配列に関して修飾された配列は、抗体内のその特定配列を置換するとき、ＣＬＤ１８への前記抗体の結合、および好ましくはここで述べる前記抗体の機能、たとえばＣＤＣ媒介性溶解またはＡＤＣＣ媒介性溶解を保持する。
特にＣＤＲ、超可変および可変領域の配列が、ＣＬＤ１８に結合する能力を失わずに修飾できることは当業者に認識される。
たとえばＣＤＲ領域は、ここで規定する領域に同一であるかまたは高度に相同である。「高度に相同」により、１〜５、好ましくは１〜４、たとえば１〜３または１または２の置換がＣＤＲ内で行われ得ることが想定される。加えて、超可変および可変領域は、ここで特定して開示する領域と実質的な相同性を示すように修飾し得る。
ここで述べる特定核酸はまた、特定宿主細胞または生物においてコドン使用頻度を最適化するために修飾された核酸を包含することができる。生物間でのコドン使用頻度の相違は、異種遺伝子発現に関する様々な問題を導き得る。
もとの配列の１またはそれ以上のヌクレオチドを変化させることによるコドン最適化は、前記核酸が発現される同種または異種宿主における核酸の発現の最適化、特に翻訳効率の最適化をもたらすことができる。
たとえばヒトに由来し、抗体の定常領域および／またはフレームワーク領域をコードする核酸を、たとえばキメラまたはヒト化抗体を作製するために、本発明に従って使用しようとする場合、特に、場合によりここで述べるような他の生物に由来する核酸などの異種核酸に融合した、前記核酸を、マウスまたはハムスターなどのヒトとは異なる生物からの細胞において発現させようとする場合は、コドン使用頻度を最適化するために前記核酸を修飾することが好ましいと考えられる。
たとえばヒト軽鎖および重鎖定常領域をコードする核酸配列、たとえばそれぞれ配列番号４０および４５に従った配列は、最適化コドン使用頻度を生じさせるが、アミノ酸配列の変化は生じさせない、１またはそれ以上、好ましくは少なくとも１、２、３、４、５、１０、１５、２０および好ましくは１０、１５、２０、２５、３０、５０、７０または１００またはそれ以上までのヌクレオチド置換を含むように修飾することができる。
そのようなヌクレオチド置換は、好ましくは、それらの修飾された対応物による、およびコードされるアミノ酸配列の変化を生じさせない、それぞれ配列番号４０および４５の以下のアラインメントに示す置換から選択される、それぞれ配列番号４０および４５内のヌクレオチドの置換に関するか、またはそれぞれヒト軽鎖および重鎖定常領域をコードする他の核酸配列内の対応位置での対応する置換に関する。
好ましくは、コードされるアミノ酸配列の変化を生じさせないそれらの修飾された対応物による、それぞれ配列番号４０および４５の以下のアラインメント表に示す置換はすべて、それぞれヒト軽鎖および重鎖定常領域をコードする核酸配列内で実施され得る。
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 さらに、本発明によれば、所望アロタイプ、たとえばコーカサス人において認められるアロタイプに配列を適合させるためにここで述べるアミノ酸配列、特にヒト重鎖定常領域のアミノ酸配列を修飾することは望ましいと考えられる。
そのような修飾は、好ましくは配列番号４６内でのまたは他のヒト重鎖定常領域内の対応位置での以下のアミノ酸置換から成る群より選択される：Ｋ９３Ｒ、Ｄ２３５ＥおよびＬ２３７Ｍ。
好ましくは、これらの修飾すべてがヒト重鎖定常領域のアミノ酸配列に含まれる。
本発明によれば、「対応位置」という用語は、２個の核酸またはタンパク質配列の配列アラインメントにおいて互いに整列されるヌクレオチドまたはアミノ酸残基に関する。
好ましくは、ここで述べる特定核酸配列と前記特定核酸配列に関して修飾された核酸配列の間の同一性の程度は、少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、より好ましくは少なくとも８０％、さらに一層好ましくは少なくとも９０％、または最も好ましくは少なくとも９５％、９６％、９７％、９８％または９９％である。
好ましくは、２つの配列は互いにハイブリダイズして、安定な二重鎖を形成することができ、ハイブリダイゼーションは、好ましくはポリヌクレオチド間の特異的ハイブリダイゼーションを可能にする条件（ストリンジェント条件）下で実施される。
ストリンジェント条件は、たとえばＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｅｄｉｔｏｒｓ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８９またはＣｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｅｄｉｔｏｒｓ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋに述べられており、たとえばハイブリダイゼーション緩衝液（３．５×ＳＳＣ、０．０２％フィコール、０．０２％ポリビニルピロリドン、０．０２％ウシ血清アルブミン、２．５ｍＭ ＮａＨ２ＰＯ４（ｐＨ７）、０．５％ＳＤＳ、２ｍＭ ＥＤＴＡ）中６５℃でのハイブリダイゼーションが参照できる。
ＳＳＣは、０．１５Ｍ塩化ナトリウム／０．１５Ｍクエン酸ナトリウム、ｐＨ７である。ハイブリダイゼーション後、ＤＮＡが移入された膜を、たとえば２×ＳＳＣ中室温で洗浄し、次に０．１〜０．５×ＳＳＣ／０．１×ＳＳＣ中６８℃までの温度で洗浄する。
好ましくは、ここで述べる特定アミノ酸配列と前記特定アミノ酸配列に関して修飾されたアミノ酸配列の間の、たとえば実質的な相同性を示すアミノ酸配列の間の、類似性、好ましくは同一性の程度は、少なくとも７０％、好ましくは少なくとも８０％、さらに一層好ましくは少なくとも９０％、または最も好ましくは少なくとも９５％、９６％、９７％、９８％または９９％である。
上述した修飾配列はすべて本発明の範囲内である。
「配列類似性」は、同一であるまたは保存的アミノ酸置換を示すアミノ酸のパーセンテージを指示する。２つのポリペプチドまたは核酸配列の間の「配列同一性」は、それらの配列の間で同一であるアミノ酸またはヌクレオチドのパーセンテージを指示する。
「同一性パーセンテージ」は最良アラインメント後に得られ、このパーセンテージは純粋に統計的であって、２つの配列の間の相違はランダムにおよびそれらの長さ全体にわたって分布する。
２つのヌクレオチドまたはアミノ酸配列の間の配列比較は、それらを最適に整列した後これらの配列を比較することによって慣例的に実施され、前記比較は、配列類似性の局所領域を同定し、比較するためのセグメントによってまたは「比較のウインドウ」によって実施される。
比較のための配列の最適アラインメントは、手動操作に加えて、Ｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｗａｔｅｒｍａｎ，１９８１，Ａｄｓ Ａｐｐ．Ｍａｔｈ．２，４８２のローカルホモロジーアルゴリズムによって、Ｎｅｄｄｌｅｍａｎ ａｎｄ Ｗｕｎｓｃｈ，１９７０，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４８，４４３のローカルホモロジーアルゴリズムによって、Ｐｅａｒｓｏｎ ａｎｄ Ｌｉｐｍａｎ，１９８８，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５，２４４４の類似性検索法によって、またはこれらのアルゴリズムを使用するコンピュータプログラムによって（Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｐａｃｋａｇｅ，Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ，５７５ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｄｒｉｖｅ，Ｍａｄｉｓｏｎ，Ｗｉｓ．のＧＡＰ、ＢＥＳＴＦＩＴ、ＦＡＳＴＡ、ＢＬＡＳＴ Ｐ、ＢＬＡＳＴ ＮおよびＴＦＡＳＴＡ）作成し得る。
同一性パーセンテージは、比較する２つの配列の間の同一位置の数を測定し、この数を比較した位置の数で除して、これら２つの配列の間の同一性パーセンテージを得るために、得られた結果に１００を乗じることによって算定される。
「保存的置換」は、たとえば、関与する残基の極性、電荷、溶解度、疎水性、親水性、および／または両親媒性の類似度に基づいて作製し得る。
たとえば：（ａ）非極性（疎水性）アミノ酸は、アラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファンおよびメチオニンを含む；（ｂ）極性中性アミノ酸は、グリシン、セリン、トレオニン、システイン、チロシン、アスパラギンおよびグルタミンを含む；（ｃ）正に荷電した（塩基性）アミノ酸は、アルギニン、リシンおよびヒスチジンを含む；および（ｄ）負に荷電した（酸性）アミノ酸は、アスパラギン酸およびグルタミン酸を含む。
置換は、典型的には（ａ）〜（ｄ）の群内で実施し得る。加えて、グリシンとプロリンは、αへリックスを破壊するそれらの能力に基づいて互いに置換され得る。
一部の好ましい置換は以下の群の間で実施され得る：（ｉ）ＳとＴ；（ｉｉ）ＰとＧ；および（ｉｉｉ）Ａ、Ｖ、ＬおよびＩ。公知の遺伝暗号、および組換えおよび合成ＤＮＡ手法を考慮して、当業者は保存的アミノ酸変異体をコードするＤＮＡを容易に構築することができる。
本発明は、抗体の機能的または薬物動態学的性質を変化させるためにＦｃ領域内に変化が作製された抗体を包含する。そのような変化は、Ｃ１ｑ結合およびＣＤＣまたはＦｃγＲ結合およびＡＤＣＣの低下または上昇を生じさせ得る。
置換は、たとえば重鎖定常領域のアミノ酸残基の１またはそれ以上において作製することができ、それにより、修飾抗体と比較して、抗原に結合する能力を保持しながらエフェクター機能の変化を生じさせる。米国特許第５，６２４，８２１号および同第５，６４８，２６０号参照。
抗体のインビボ半減期は、分子が無傷ＣＨ２ドメインまたは無傷Ｉｇ Ｆｃ領域を含まないようにＩｇ定常ドメインまたはＩｇ様定常ドメインのサルベージ受容体エピトープを修飾することによって改善できる。米国特許第６，１２１，０２２および同第６，１９４，５５１号参照。
インビボ半減期は、Ｆｃ領域内に突然変異を作製することによって、たとえば２５２位のロイシンをトレオニンに置換することによって、２５４位のセリンをトレオニンに置換することによって、または２５６位のフェニルアラニンをトレオニンに置換することによってさらに上昇させることができる。米国特許第６，２７７，３７５号参照。
さらに、抗体のエフェクター機能を変化させるために抗体のグリコシル化パターンを改変することができる。
たとえばＦｃ受容体に対するＦｃ領域の親和性を高めて、ＮＫ細胞の存在下で抗体のＡＤＣＣ上昇を生じさせるために、通常Ｆｃ領域の２９７位でＡｓｎに結合しているフコース単位を付加しないトランスフェクトーマにおいて抗体を発現させることができる。Ｓｈｉｅｌｄ ｅｔ ａｌ．（２００２）ＪＢＣ，２７７：２６７３３参照。
さらに、ＣＤＣを改変するためにガラクトシル化の修飾も実施できる。
あるいは、もう１つの実施形態では、飽和突然変異誘発などによって、抗ＣＬＤ１８抗体コード配列の全部または一部に沿ってランダムに突然変異を導入することができ、生じた改変抗ＣＬＤ１８抗体を結合活性に関してスクリーニングできる。
「組換え宿主細胞」（または単に「宿主細胞」）という用語は、ここで使用するとき、組換え発現ベクターが導入された細胞を指すことが意図されている。そのような用語は、特定被験者細胞だけでなくそのような細胞の子孫も表わすことが意図されていてもよい。
ある種の修飾が突然変異または環境影響のために後継世代で起こり得るので、そのような子孫は、事実上、親細胞と同一でないことがあるが、まだここで使用する「宿主細胞」という用語の範囲内に包含される。組換え宿主細胞は、たとえば、ＣＨＯ細胞、ＮＳ／０細胞およびリンパ球細胞などのトランスフェクトーマを含む。
ここで使用するとき、「被験者」という用語は、いかなるヒトまたは非ヒト動物も包含する。
「非ヒト動物」という用語は、すべての脊椎動物、たとえば、非ヒト霊長動物、ヒツジ、イヌ、ウシ、ニワトリ、両生動物、爬虫類などの、哺乳動物および非哺乳動物を包含する。
「トランスジェニック動物」という用語は、１またはそれ以上の導入遺伝子、好ましくは重鎖および／または軽鎖導入遺伝子、または導入染色体（動物の天然ゲノムＤＮＡに組み込まれているかまたは組み込まれていない）を含むゲノムを有し、好ましくは導入遺伝子を発現することができる動物を指す。
たとえばトランスジェニックマウスは、マウスが、ＣＬＤ１８抗原および／またはＣＬＤ１８を発現する細胞で免疫したときヒト抗ＣＬＤ１８抗体を産生するように、ヒト軽鎖導入遺伝子および、ヒト重鎖導入遺伝子またはヒト重鎖導入染色体のいずれかを有し得る。
ヒト重鎖導入遺伝子は、ＨＣｏ７またはＨＣｏｌ２マウスなどのトランスジェニックマウス、たとえばＨｕＭＡｂマウスの場合のように、マウスの染色体ＤＮＡに組み込むことができ、またはヒト重鎖導入遺伝子は、国際公開公報第ＷＯ０２／４３４７８号に記載されている染色体導入（たとえばＫＭ）マウスの場合のように、染色体外で維持され得る。
そのようなトランスジェニックおよび染色体導入マウスは、Ｖ−Ｄ−Ｊ組換えおよびアイソタイプスイッチを行うことによってＣＬＤ１８に対するヒトモノクローナル抗体の多数のアイソタイプ（たとえばＩｇＧ、ＩｇＡおよび／またはＩｇＥ）を産生することができると考えられる。
ｍＡｂの作用機構
以下は本発明の抗体の治療効果の基礎となる機構に関する考察であるが、いかなる意味においても本発明は限定されない。
ここで述べる抗体は、好ましくはＡＤＣＣまたはＣＤＣを通して、好ましくは免疫系の成分と相互作用する。
本発明の抗体はまた、腫瘍細胞を直接死滅させるためにペイロード（たとえば放射性同位体、薬剤または毒素）を標的するために使用でき、または伝統的な化学療法剤を相乗的に使用して、Ｔリンパ球への化学療法剤の細胞傷害副作用のために損なわれた可能性がある抗腫瘍免疫応答を含み得る相補的作用機構を介して腫瘍を攻撃することができる。
抗体依存性細胞媒介性細胞傷害。ＡＤＣＣは、好ましくは抗体によって標識された標的細胞を必要とする、ここで述べるエフェクター細胞、特にリンパ球の細胞死滅能力を表わす。
ＡＤＣＣは、好ましくは抗体が腫瘍細胞上の抗原に結合し、抗体Ｆｃドメインが免疫エフェクター細胞の表面のＦｃ受容体（ＦｃＲ）にかみ合う（ｅｎｇａｇｅ）ときに起こる。
Ｆｃ受容体のいくつかのファミリーが同定されており、特定細胞集団は、定義されたＦｃ受容体を発現することを特徴的とする。ＡＤＣＣは、抗原提示を導く様々な度合の即時腫瘍破壊および抗腫瘍Ｔ細胞応答の誘導を直接誘導する機構とみなすことができる。
好ましくは、ＡＤＣＣのインビボでの誘導は、抗腫瘍Ｔ細胞応答および宿主由来の抗体応答を導く。
補体依存性細胞傷害。ＣＤＣは、抗体によって指令され得るもう１つの細胞死滅方法である。ＩｇＭは補体活性化のために最も有効なアイソタイプである。
ＩｇＧ１およびＩｇＧ３も、古典的補体活性化経路を通してＣＤＣを指令する上で非常に有効である。好ましくは、このカスケードにおいて、抗原−抗体複合体の形成は、ＩｇＧ分子などの関与抗体分子のＣＨ２ドメイン上のごく近接する多数のＣ１ｑ結合部位の暴露を生じさせる（Ｃ１ｑは補体Ｃ１の３つのサブ成分の１つである）。
好ましくは、これらの暴露されたＣ１ｑ結合部位は、それまでの低親和性Ｃ１ｑ−ＩｇＧ相互作用を高いアビディティの相互作用へと変換し、それが、一連の他の補体タンパク質を含むイベント(events)のカスケードの引き金となり、エフェクター細胞化学走性／活性化物質Ｃ３ａおよびＣ５ａのタンパク質分解性放出を導く。
好ましくは、補体カスケードは、細胞内および細胞外への水と溶質の自由な通過を容易にする細胞膜の孔を作り出す、膜傷害性複合体を形成して終了する。
抗体の作製
本発明の抗体は、従来のモノクローナル抗体法、たとえばＫｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ ２５６：４９５（１９７５）の標準体細胞ハイブリダイゼーション手法を含む、様々な手法によって作製することができる。
体細胞ハイブリダイゼーション手法は、原則として好ましいが、モノクローナル抗体を作製するための他の手法、たとえばＢリンパ球のウイルス性または発癌性形質転換法または抗体遺伝子のライブラリーを使用したファージディスプレイ手法も使用できる。
モノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマを調製するための好ましい動物系は、マウスの系である。マウスにおけるハイブリドーマ産生は極めて広く確立された手順である。
免疫プロトコールおよび融合対象として免疫脾臓細胞を単離するための手法は当該技術において公知である。融合パートナー（たとえば、マウス骨髄腫細胞）および融合手順も公知である。
モノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマを調製するための他の好ましい動物系は、ラットおよびウサギの系である（たとえばＳｐｉｅｋｅｒ−Ｐｏｌｅｔ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．９２：９３４８（１９９５）に述べられている、Ｒｏｓｓｉ ｅｔ ａｌ．，Ａｍ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｐａｔｈｏｌ．１２４：２９５（２００５）も参照のこと）。
さらにもう１つの好ましい実施形態では、ＣＬＤ１８に対するヒトモノクローナル抗体は、マウス系ではなくヒト免疫系の部分を担持するトランスジェニックまたは染色体導入マウスを使用して作製できる。
これらのトランスジェニックおよび染色体導入マウスは、それぞれＨｕＭＡｂマウスおよびＫＭマウスとして知られるマウスを含み、ここでは合わせて「トランスジェニックマウス」と称する。
そのようなトランスジェニックマウスにおけるヒト抗体の産生は、国際公開公報第ＷＯ２００４ ０３５６０７号の中でＣＤ２０に関して詳述されているように実施できる。
モノクローナル抗体を作製するためのさらにもう１つの戦略は、確定した戦略の抗体を産生するリンパ球から抗体をコードする遺伝子を直接単離することであり、たとえばＢａｂｃｏｃｋ ｅｔ ａｌ．，１９９６；Ａ ｎｏｖｅｌ ｓｔｒａｔｅｇｙ ｆｏｒ ｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｒｏｍ ｓｉｎｇｌｅ，ｉｓｏｌａｔｅｄ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｏｆ ｄｅｆｉｎｅｄ ｓｔｒａｔｅｇｙ参照。
組換え抗体工学の詳細に関しては、Ｗｅｌｓｃｈｏｆ ａｎｄ Ｋｒａｕｓ，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ａｎｔｉｂｏｄｅｓ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔｈｅｒａｐｙ ＩＳＢＮ−０−８９６０３−９１８−８およびＢｅｎｎｙ Ｋ．Ｃ．Ｌｏ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ＩＳＢＮ １−５８８２９−０９２−１も参照できる。
免疫
ＣＬＤ１８に対する抗体を作製するため、上述したように、組換え発現されたＣＬＤ１８抗原またはそのフラグメントおよび／またはＣＬＤ１８を発現する細胞の濃縮製剤である、ＣＬＤ１８配列に由来する担体複合ペプチドでマウスを免疫することができる。
あるいは、完全長ヒトＣＬＤ１８（たとえば配列番号１）をコードするＤＮＡまたはそのフラグメント、特に配列番号１５、１７および１９のＤＮＡでマウスを免疫することができる。
ＣＬＤ１８抗原の精製または濃縮製剤を使用した免疫で抗体が生じない場合は、免疫応答を促進するためにＣＬＤ１８を発現する細胞、たとえば細胞系でマウスを免疫することもできる。
免疫応答は、尾静脈または後眼窩出血によって得られる血漿および血清試料で免疫プロトコール(protocol)の経過を観測できる。十分な力価の抗ＣＬＤ１８免疫グロブリンを有するマウスは融合のために使用できる。
特異的抗体分泌ハイブリドーマの割合を上昇させるために、犠死(sacrifice)および脾切除の３日前にＣＬＤ１８発現細胞により腹腔内または静脈内経路でマウスを追加免疫することができる。
モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの作製
ＣＬＤ１８に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを作製するため、免疫マウスから脾細胞およびリンパ節細胞を単離し、マウス骨髄腫細胞系などの適切な不死化細胞系に融合することができる。
生じたハイブリドーマを、次に、抗原特異的抗体の産生に関してスクリーニングできる。個々のウエルを、次に、ハイブリドーマを分泌する抗体に関してＥＬＩＳＡによってスクリーニングできる。
ＣＬＤ１８発現細胞を使用した免疫蛍光およびＦＡＣＳ分析により、ＣＬＤ１８に対して特異性を有する抗体を同定できる。抗体分泌ハイブリドーマを再びプレートし、再びスクリーニングして、抗ＣＬＤ１８モノクローナル抗体に関してまだ陽性であれば限界希釈によってサブクローニングすることができる。
その後、安定なサブクローンを、特性決定のための組織培養培地において抗体を作製するためにインビトロで培養することができる。
モノクローナル抗体を産生するトランスフェクトーマの作製
本発明の抗体はまた、たとえば当技術分野において周知である（Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，Ｓ．（１９８５）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２９：１２０２）組換えＤＮＡ手法と遺伝子トランスフェクション法の組合せを用いて、宿主細胞トランスフェクトーマにおいて産生することができる。
たとえば１つの実施形態では、対象とする遺伝子、たとえば抗体遺伝子を、国際公開公報第ＷＯ８７／０４４６２号、同第ＷＯ８９／０１０３６号および欧州特許第ＥＰ３３８ ８４１号に開示されているＧＳ遺伝子発現系または当技術分野で周知の他の発現系によって使用されるような、真核生物発現プラスミドなどの発現ベクターに連結することができる。
クローニングされた抗体遺伝子を含む精製プラスミドを真核宿主細胞、たとえばＣＨＯ細胞、ＮＳ／０細胞、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞またはＨＥＫ２９３細胞、あるいは植物由来細胞、真菌または酵母細胞のような他の真核細胞に導入できる。
これらの遺伝子を導入するために使用される方法は、電気穿孔、リポフェクチン、リポフェクタミンその他のような当技術分野で記述されている方法であり得る。宿主細胞へのこれらの抗体遺伝子の導入後、抗体を発現する細胞を同定し、選択することができる。
これらの細胞は、その後抗体を産生するための発現レベル上昇のために増幅できるトランスフェクトーマである。これらの培養上清および／または細胞から組換え抗体を単離し、精製することができる。
あるいは、クローニングした抗体遺伝子を、微生物、たとえば大腸菌などの原核細胞を含む、他の発現系において発現させることができる。
さらに、抗体は、トランスジェニック非ヒト動物において、たとえばヒツジおよびウサギからの乳においてまたは雌ニワトリからの卵において、またはトランスジェニック植物において産生することができる；たとえばＶｅｒｍａ，Ｒ．，ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．２１６：１６５−１８１；Ｐｏｌｌｏｃｋ，ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ． ２３１：１４７−１５７；およびＦｉｓｃｈｅｒ，Ｒ．，ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．３８０：８２５−８３９参照。
無傷抗体を発現するための部分抗体配列の使用（すなわちヒト化およびキメラ化）
ａ）キメラ化
マウスモノクローナル抗体は、毒素または放射性同位体で標識したときヒトにおける治療抗体として使用できる。
非標識マウス抗体はヒトにおいて高免疫原性であり、反復適用したとき治療効果の低下を導く。主たる免疫原性は重鎖定常領域によって媒介される。ヒトにおけるマウス抗体の免疫原性は、それぞれの抗体をキメラ化またはヒト化すれば低下させるまたは完全に回避することができる。
キメラ抗体は、マウス抗体に由来する可変領域とヒト免疫グロブリン定常領域を有するもののような、その異なる部分が異なる動物種に由来する抗体である。
抗体のキメラ化は、マウス抗体の重鎖および軽鎖の可変領域をヒト重鎖および軽鎖の定常領域と連結することによって達成される（たとえばＫｒａｕｓ ｅｔ ａｌ．，ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｓｅｒｉｅｓ，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔｈｅｒａｐｙ ＩＳＢＮ−０−８９６０３−９１８−８に記載されているように）。
好ましい実施形態では、キメラ抗体は、ヒトκ軽鎖定常領域をマウス軽鎖可変領域に連結することによって作製される。
同じく好ましい実施形態では、キメラ抗体は、ヒトλ軽鎖定常領域をマウス軽鎖可変領域に連結することによって作製される。キメラ抗体の作製のための好ましい重鎖定常領域は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ３およびＩｇＧ４である。
キメラ抗体の作製のための他の好ましい重鎖定常領域は、ＩｇＧ２、ＩｇＡ、ＩｇＤおよびＩｇＭである。
ｂ）ヒト化
抗体は、主として６つの重鎖および軽鎖相補性決定領域（ＣＤＲ）内に位置するアミノ酸残基を通して標的抗原と相互作用する。このため、ＣＤＲ内のアミノ酸配列はＣＤＲの外側の配列よりも個々の抗体の間で多様である。
ＣＤＲ配列は大部分の抗体−抗原相互作用に関与するので、異なる性質を有する異なる抗体からのフレームワーク配列に移植された特定の天然に生じる抗体からのＣＤＲ配列を含む発現ベクターを構築することにより、特定の天然に生じる抗体の性質を模倣する組換え抗体を発現することが可能である（たとえばＲｉｅｃｈｍａｎｎ，Ｌ．ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｎａｔｕｒｅ ３３２：３２３−３２７；Ｊｏｎｅｓ，Ｐ．ｅｔ ａｌ．（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２１：５２２−５２５；およびＱｕｅｅｎ，Ｃ．ｅｔ ａｌ．（１９８９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．８６：１００２９−１００３３参照）。
そのようなフレームワーク配列は、生殖細胞系抗体遺伝子配列を含む公的ＤＮＡデータベースから入手できる。これらの生殖細胞系配列は、Ｂ細胞成熟の間にＶ（Ｄ）Ｊ連結によって形成される、完全に構築された可変遺伝子を含まないので、成熟抗体遺伝子配列とは異なってもよい。
生殖細胞系遺伝子配列はまた、個体において均一に可変領域にわたって、高親和性二次レパートリー抗体の配列と異なってもよい。
たとえば体細胞突然変異は、フレームワーク領域１のアミノ末端部分およびフレームワーク領域４のカルボキシ末端部分では比較的頻度が低い。さらに、多くの体細胞突然変異は抗体の結合特性を有意に変化させない。
このため、もとの抗体と類似の結合特性を有する無傷組換え抗体を再現するために特定抗体の全ＤＮＡ配列を得る必要はない（国際公開公報第ＷＯ９９／４５９６２号参照）。ＣＤＲ領域にわたる重鎖および軽鎖部分配列は、典型的にはこの目的のために十分である。
部分配列は、いずれの生殖細胞系可変および連結遺伝子セグメントが組み換えられた抗体可変遺伝子に寄与したかを判定するために使用される。生殖細胞系配列は、次に、可変領域の欠けている部分を埋めるために使用される。
重鎖および軽鎖リーダー配列はタンパク質成熟の間に切断され、最終的な抗体の性質には寄与しない。欠けている配列を加えるために、クローニングされたｃＤＮＡ配列を連結またはＰＣＲ増幅によって合成オリゴヌクレオチドと結合することができる。
あるいは、全可変領域を、短いオーバーラップするオリゴヌクレオチドのセットとして合成し、完全な合成可変領域クローンを作製するためにＰＣＲ増幅によって結合することができる。この工程は、特定制限部位の排除または組み入れ、または特定コドンの最適化などのある種の利点を有する。
ハイブリドーマからの重鎖および軽鎖転写産物のヌクレオチド配列は、天然配列と同じアミノ酸コード能力を有する合成Ｖ配列を作製するための合成オリゴヌクレオチドのオーバーラップするセットを設計するために使用される。
合成重鎖およびκ鎖配列は３つの点で天然配列と異なり得る：反復ヌクレオチド塩基の一連の鎖がオリゴヌクレオチド合成およびＰＣＲ増幅を容易にするために中断される；最適翻訳開始部位がコザック規則に従って組み込まれる（Ｋｏｚａｋ，１９９１，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６６：１９８６７−１９８７０）；およびＨｉｎｄＩＩＩ部位が翻訳開始部位の上流に構築される。
重鎖および軽鎖可変領域の両方に関して、最適化コード鎖および対応する非コード鎖配列は、対応する非コードオリゴヌクレオチドのほぼ中点で３０〜５０ヌクレオチドに分解される。
そこで、各々の鎖について、オリゴヌクレオチドを、１５０〜４００ヌクレオチドのセグメントにわたるオーバーラップ二本鎖セットに構築することができる。
次に、そのプール(pool)を、１５０〜４００ヌクレオチドのＰＣＲ増幅産物を生成するための鋳型として使用する。典型的には１つの可変領域オリゴヌクレオチドセットを２つのプールに分解し、それらを別々に増幅して２つのオーバーラップするＰＣＲ産物を生成できる。
これらのオーバーラップ産物を、次に、完全な可変領域を形成するためにＰＣＲ増幅によって結合する。また、発現ベクター構築物に容易にクローニングできるフラグメントを生成するために重鎖または軽鎖定常領域のオーバーラップフラグメントをＰＣＲ増幅に含めることが望ましいと考えられる。
再構築されたキメラ化またはヒト化重鎖および軽鎖可変領域を、その後、発現ベクター構築物を形成するために、クローニングされたプロモーター、リーダー、翻訳開始、定常領域、３'非翻訳、ポリアデニル化、および転写終結配列と結合する。
重鎖および軽鎖発現構築物を、単一ベクターに結合する、宿主細胞にコトランスフェクトする、連続的にトランスフェクトする、または別々にトランスフェクトすることができ、その後それらに融合して、両方の鎖を発現する宿主細胞を形成することができる。
ヒトＩｇＧκについての発現ベクターの構築において使用するためのプラスミドを以下で述べる。プラスミドは、ＰＣＲ増幅したＶ重鎖およびＶκ軽鎖ｃＤＮＡ配列が完全な重鎖および軽鎖ミニ遺伝子を再構築するために使用できるように構築した。
これらのプラスミドは、完全なヒト、またはキメラＩｇＧ１κまたはＩｇＧ４κ抗体を発現するために使用できる。他の重鎖アイソタイプの発現のため、またはλ軽鎖を含む抗体の発現のために類似プラスミドを構築することができる。
そこで、本発明のもう１つの態様では、本発明の抗ＣＬＤ１８抗体の構造特徴は、ＣＬＤ１８への結合などの、本発明の抗体の少なくとも１つの機能的性質を保持する、構造的に関連するヒト化抗ＣＬＤ１８抗体を作製するために使用される。
より詳細には、マウスモノクローナル抗体の１またはそれ以上のＣＤＲ領域は、付加的な、組換えによって構築された本発明のヒト化抗ＣＬＤ１８抗体を作製するために、公知のヒトフレームワーク領域およびＣＤＲと組換えによって結合することができる。
抗原発現細胞への結合
抗体がＣＬＤ１８に結合する能力は、実施例で述べるような（たとえばＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロット法、免疫蛍光およびフローサイトメトリー分析）標準結合アッセイを用いて判定することができる。
抗体の結合の特性決定
抗ＣＬＤ１８抗体を精製するため、選択されたハイブリドーマをモノクローナル抗体精製用の２リットルスピナーフラスコに中で増殖させることができる。あるいは、抗ＣＬＤ１８抗体を透析バイオリアクターにおいて産生することができる。
上清をろ過し、プロテインＧ−セファロースまたはプロテインＡ−セファロースによるアフィニティークロマトグラフィの前に、必要に応じて濃縮することができる。溶出したＩｇＧを、純度を保証するためにゲル電気泳動および高速液体クロマトグラフィーによって検査することができる。
緩衝液をＰＢＳに交換し、１．４３の吸光係数を使用してＯＤ２８０によって濃度を測定できる。モノクローナル抗体をアリコートに分け、−８０℃で保存することができる。
選択された抗ＣＬＤ１８モノクローナル抗体がユニークエピトープに結合するかどうかを判定するため、部位指定または多部位指定突然変異誘発（ｍｕｌｔｉ−ｓｉｔｅ ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）が使用できる。
アイソタイプ決定
精製抗体のアイソタイプを決定するため、様々な市販のキット（たとえばＺｙｍｅｄ、Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ）によるアイソタイプＥＬＩＳＡを実施できる。マイクロタイタープレートのウエルを抗マウスＩｇで被覆することができる。
ブロッキング後、プレートを周囲温度で２時間、モノクローナル抗体または精製アイソタイプ対照と反応させる。ウエルを、次に、マウスＩｇＧ１，ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂまたはＩｇＧ３、ＩｇＡまたはマウスＩｇＭ−特異的ペルオキシダーゼ複合プローブのいずれかと反応させることができる。
洗浄後、プレートをＡＢＴＳ基質（１ｍｇ／ｍｌ）で展開し、４０５〜６５０のＯＤで分析することができる。あるいは、ＩｓｏＳｔｒｉｐ Ｍｏｕｓｅ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｉｓｏｔｙｐｉｎｇ Ｋｉｔ（Ｒｏｃｈｅ、カタログ番号１４９３０２７）を、製造者によって述べられているように使用し得る。
フローサイトメトリー分析
免疫したマウスの血清における抗ＣＬＤ１８抗体の存在またはＣＬＤ１８を発現する生細胞へのモノクローナル抗体の結合を明らかにするために、フローサイトメトリーが使用できる。
天然にまたはトランスフェクション後にＣＬＤ１８を発現する細胞系とＣＬＤ１８発現欠損陰性対照（標準増殖条件下で増殖させた）を、ハイブリドーマ上清中または１％ＦＢＳを含むＰＢＳ中の様々な濃度のモノクローナル抗体と混合し、４℃で３０分間インキュベートすることができる。
洗浄後、ＡＰＣまたはＡｌｅｘａ６４７標識抗ＩｇＧ抗体を、一次抗体染色と同じ条件下でＣＬＤ１８結合モノクローナル抗体に結合することができる。試料を、単一生細胞にゲートをかけるために光散乱および側方散乱特性を使用したＦＡＣＳ装置でのフローサイトメトリーによって分析することができる。
１つの測定においてＣＬＤ１８特異的モノクローナル抗体を非特異的結合抗体と区別するため、コトランスフェクションの方法が使用できる。
ＣＬＤ１８および蛍光マーカーをコードするプラスミドで一過性にトランスフェクトした細胞を上述したように染色することができる。トランスフェクトした細胞は、抗体染色細胞とは異なる蛍光チャネルで検出できる。
トランスフェクト細胞の大部分は両方の導入遺伝子を発現するが、ＣＬＤ１８特異的モノクローナル抗体は蛍光マーカー発現細胞に選択的に結合するのに対し、非特異的抗体は非トランスフェクト細胞に同等の比率で結合する。
蛍光顕微鏡を使用した選択的アッセイも、フローサイトメトリーアッセイに加えてまたはその代わりに使用し得る。細胞を上述したように正確に染色し、蛍光顕微鏡によって検査することができる。
密着結合タンパク質は、特に接着性細胞の近接細胞への細胞間接触が、たとえば細胞の分離によって失われた場合、インターナリゼーションされる傾向がある。
ＣＬＤ１８の細胞表面発現は、ａ）培養条件を調整することによって、たとえば標準化された方法でより高い細胞密度で培養すること、穏やかな分離（たとえば２ｍＭ ＥＤＴＡ／ＰＢＳまたはアキュターゼ）を使用すること、室温で処理すること、およびエンドサイトーシスの阻害剤（たとえばアジ化ナトリウム）またはＣＬＤ１８転写または翻訳の活性化因子を添加することによって、およびｂ）細胞表面でＣＬＤ１８を高レベルに維持する細胞の選択とクローニングによって、たとえばトランスフェクト細胞に関する抗生物質での選択によって、免疫磁気またはＦＡＣＳセルソーティングによって、および限界希釈クローニングによって、最適化できる。
免疫蛍光顕微鏡検査
免疫したマウスの血清における抗ＣＬＤ１８抗体の存在またはＣＬＤ１８を発現する生細胞へのモノクローナル抗体の結合を明らかにするために、免疫蛍光顕微鏡検査が使用できる。
たとえば自然にまたはトランスフェクション後のいずれかにＣＬＤ１８を発現する細胞系とＣＬＤ１８発現欠損陰性対照を、１０％ウシ胎仔血清（ＦＣＳ）、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、１００ＩＵ／ｍｌペニシリンおよび１００μｇ／ｍｌストレプトマイシンを添加したＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中、標準増殖条件下にてチェンバースライドで増殖させる。
次に、細胞をメタノールまたはパラホルムアルデヒドで固定するかまたは未処置のままにしておいてもよい。その後、細胞をＣＬＤ１８に対するモノクローナル抗体と２５℃で３０分間反応させることができる。
洗浄後、細胞を同じ条件下でＡｌｅｘａ５５５標識抗マウスＩｇＧ二次抗体（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）と反応させ得る。その後蛍光顕微鏡検査によって細胞を検査することができる。
細胞中の総ＣＬＤ１８レベルは、細胞をメタノール固定またはパラホルムアルデヒド固定し、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００で透過性を上げたときに観察できる。生細胞および不透過性パラホルムアルデヒド固定細胞においてＣＬＤ１８の表面局在化を検査することができる。
加えて、密着結合へのＣＬＤ１８のターゲティングを、ＺＯ−１などの密着結合マーカーでの共染色によって分析できる。さらに、抗体結合の作用および細胞膜内でのＣＬＤ１８局在化が検査できる。
ウエスタンブロット法
抗ＣＬＤ１８ ＩｇＧは、ウエスタンブロット法によってＣＬＤ１８抗原との反応性に関してさらに試験することができる。簡単に述べると、ＣＬＤ１８を発現する細胞からの細胞抽出物と適切な陰性対照を調製し、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）ポリアクリルアミドゲル電気泳動に供することができる。
電気泳動後、分離された抗原をニトロセルロース膜に移し、ブロックして、試験するモノクローナル抗体でプローブする。抗マウスＩｇＧペルオキシダーゼを用いてＥＣＬ基質で展開して、ＩｇＧ結合を検出することができる。
免疫組織化学
抗ＣＬＤ１８マウスＩｇＧは、当業者に周知の方法での免疫組織化学によって、たとえば、日常的外科手術の間に患者から得たあるいは自然に（たとえばＤＡＮ−Ｇ、ＳＮＵ−１６またはＫＡＴＯ−ＩＩＩ）またはトランスフェクション後に（たとえばＨＥＫ２９３細胞）ＣＬＤ１８を発現する細胞系を接種した異種移植腫瘍を担持するマウスから得た非癌組織または癌組織試料からの、パラホルムアルデヒドまたはアセトン固定した凍結切片またはパラホルムアルデヒドで固定したパラフィン包埋した組織切片を使用して、ＣＬＤ１８抗原との反応性に関してさらに試験することができる。
免疫染色のため、ＣＬＤ１８に対して反応性の抗体を、供給者の指示に従ってホースラディッシュペルオキシダーゼ複合ヤギ抗マウスまたはヤギ抗ウサギ抗体（ＤＡＫＯ）と共にインキュベートすることができる。
インビトロでの抗体の食作用および細胞死滅活性
ＣＬＤ１８に特異的に結合することに加えて、抗ＣＬＤ１８抗体は、食作用およびＣＬＤ１８を発現する細胞の死滅を媒介するそれらの能力に関して試験することができる。インビトロでのモノクローナル抗体活性の試験は、インビボモデルにおける試験に先立つ初期スクリーニングを提供できる。
抗体依存性細胞媒介性細胞傷害（ＡＤＣＣ）：
簡単に述べると、健常ドナーからの多形核細胞（ＰＭＮ）、ＮＫ細胞、単球、単核細胞または他のエフェクター細胞をＦｉｃｏｌｌ Ｈｙｐａｑｕｅ密度遠心、次いで夾雑赤血球の溶解によって精製することができる。
洗浄したエフェクター細胞を、１０％熱不活化ウシ胎仔血清あるいは５％熱不活化ヒト血清を添加したＲＰＭＩに懸濁し、ＣＬＤ１８を発現する５１Ｃｒ標識標的細胞と、標的細胞に対するエフェクター細胞を様々な比率で混合することができる。あるいは、標的細胞は蛍光増強リガンド（ＢＡＴＤＡ）で標識してもよい。
死細胞から放出される増強リガンドを有するユーロピウムの高度蛍光キレートを蛍光光度計によって測定できる。もう１つの選択手法は、ルシフェラーゼによる標的細胞のトランスフェクションを利用し得る。
添加されたルシファーイエローは生細胞によってのみ酸化され得る。次に精製抗ＣＬＤ１８ ＩｇＧを様々な濃度で添加することができる。無関係なヒトＩｇＧが陰性対照として使用できる。アッセイは、使用するエフェクター細胞型に依存して３７℃で４〜２０時間実施し得る。
試料を、培養上清中の５１Ｃｒ放出またＥｕＴＤＡキレートの存在を測定することにより、細胞溶解に関して検定することができる。あるいは、ルシファーイエローの酸化から生じるルミネセンスにより生細胞を測定できる。
抗ＣＬＤ１８モノクローナル抗体はまた、細胞溶解が複数のモノクローナル抗体で増強されるかどうかを調べるために様々な組合せで試験できる。
補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）
モノクローナル抗ＣＬＤ１８抗体は、様々な公知の手法を使用してＣＤＣを媒介するそれらの能力に関して試験することができる。たとえば補体のための血清は、当業者に公知の方法で血液から入手できる。
ｍＡｂのＣＤＣ活性を測定するために種々の方法が使用できる。たとえば５１Ｃｒ放出を測定する、またはヨウ化プロピジウム（ＰＩ）排除アッセイを使用して膜透過性上昇を評価することができる。簡単に述べると、標的細胞を洗浄し、５×１０５／ｍｌを様々な濃度のｍＡｂと共に室温でまたは３７℃で１０〜３０分間インキュベートすることができる。
次に血清または血漿を２０％（ｖ／ｖ）の最終濃度まで添加し、細胞を３７℃で２０〜３０分間インキュベートすることができる。各々の試料からのすべての細胞をＦＡＣＳチューブ中のＰＩ溶液に添加できる。この混合物は、その後ＦＡＣＳＡｒｒａｙを用いたフローサイトメトリー分析によって直ちに分析することができる。
選択的アッセイでは、ＣＤＣの誘導を接着細胞に関して測定できる。このアッセイの１つの実施形態では、アッセイの２４時間前に、細胞を組織培養平底マイクロタイタープレートに３×１０４／ウエルの密度で接種する。
その翌日増殖培地を取り出し、細胞を抗体と共に三重にインキュベートする。対照細胞は、それぞれバックグラウンド溶解および最大溶解の測定のために増殖培地または０．２％サポニンを含む増殖培地と共にインキュベートする。
室温で２０分間のインキュベーション後、上清を取り、ＤＭＥＭ中の２０％（ｖ／ｖ）ヒト血漿または血清（あらかじめ３７℃に加温した）を細胞に添加して、３７℃でさらに２０分間インキュベートする。各々の試料からのすべての細胞をヨウ化プロピジウム溶液（１０μｇ／ｍｌ）に添加する。
次に上清を、２．５μｇ／ｍｌ臭化エチジウムを含むＰＢＳに交換し、５２０ｎｍでの励起後の蛍光放出を、Ｔｅｃａｎ Ｓａｆｉｒｅを使用して６００ｎｍで測定する。特異的溶解パーセンテージを以下のように算定する：特異的溶解％＝（試料蛍光−バックグラウンド蛍光）／（最大溶解蛍光−バックグラウンド蛍光）×１００。
モノクローナル抗体による細胞増殖の阻害
アポトーシスを開始させる能力に関して試験するために、モノクローナル抗ＣＬＤ１８抗体を、たとえばＣＬＤ１８陽性腫瘍細胞、たとえばＳＮＵ−１６、ＤＡＮ−Ｇ、ＫＡＴＯ−ＩＩＩまたはＣＬＤ１８トランスフェクト腫瘍細胞と共に３７℃で約２０時間インキュベートすることができる。
細胞を採集し、Ａｎｎｅｘｉｎ−Ｖ結合緩衝液（ＢＤ ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）中で洗って、ＦＩＴＣまたはＡＰＣと複合したＡｎｎｅｘｉｎ−Ｖ（ＢＤ ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）と共に暗所で１５分間インキュベートすることができる。各々の試料からのすべての細胞をＦＡＣＳチューブ中のＰＩ溶液（ＰＢＳ中１０μｇ／ｍｌ）に添加し、フローサイトメトリーによって（上記のように）直ちに評価することができる。
あるいは、モノクローナル抗体による細胞増殖の一般的阻害は市販のキットで検出できる。ＤＥＬＦＩＡ Ｃｅｌｌ Ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ、カタログ番号ＡＤ０２００）は、マイクロプレートにおける増殖細胞のＤＮＡ合成の間の５−ブロモ−２'−デオキシウリジン（ＢｒｄＵ）の組込みの測定に基づく非同位体免疫測定法である。
組み込まれたＢｒｄＵは、ユーロピウム標識モノクローナル抗体を用いて検出される。抗体検出を可能にするために、Ｆｉｘ液を使用して細胞を固定し、ＤＮＡ変性する。非結合抗体を洗い流し、標識抗体からユーロピウムイオンを溶液中に解離するためにＤＥＬＦＩＡ誘導剤を添加し、溶液中で前記イオンはＤＥＬＦＩＡ誘導剤の成分と高度蛍光キレートを形成する。
検出において時間分解蛍光光度法を使用して測定した蛍光は、各々のウエルの細胞におけるＤＮＡ合成に比例する。
前臨床試験
ＣＬＤ１８に結合するモノクローナル抗体はまた、ＣＬＤ１８発現腫瘍細胞増殖を制御する上でのそれらの効果を測定するためにインビボモデルにおいて（たとえばＣＬＤ１８を発現する細胞系、たとえばＤＡＮ−Ｇ、ＳＮＵ−１６またはＫＡＴＯ−ＩＩＩ、またはトランスフェクション後にＣＬＤ１８を発現する細胞系、たとえばＨＥＫ２９３を接種した異種移植腫瘍を担持する免疫不全マウスにおいて）試験することができる。
ＣＬＤ１８発現腫瘍細胞を免疫無防備状態マウスまたは他の動物に異種移植した後のインビボ試験を、本発明の抗体を使用して実施できる。抗体を腫瘍フリーマウスに投与し、次いで腫瘍の形成または腫瘍関連症状を予防する抗体の作用を測定するために腫瘍細胞を注射することができる。
腫瘍成長、転移または腫瘍関連症状を低減するそれぞれの抗体の治療効果を測定するために抗体を腫瘍担持マウスに投与できる。抗体適用は、相乗効果および併用の潜在的毒性を測定するために細胞増殖抑制性薬剤、増殖因子阻害剤、細胞周期遮断剤、血管新生阻害剤または他の抗体などの他の物質の適用と組み合わせることができる。
本発明の抗体によって媒介される毒性副作用を分析するため、動物に抗体または対照試薬を接種し、ＣＬＤ１８抗体治療に関連する可能性がある症状に関して十分に検討することができる。ＣＬＤ１８抗体のインビボ適用の起こり得る副作用は、特に胃および肺を含むＣＬＤ１８発現組織での毒性を含む。
ヒトおよび他の種、たとえばマウスにおいてＣＬＤ１８を認識する抗体は、ヒトにおけるモノクローナルＣＬＤ１８抗体の適用によって媒介される潜在的副作用を予測するために特に有用である。
エピトープマッピング
本発明の抗体によって認識されるエピトープのマッピングは、"Ｅｐｉｔｏｐｅ Ｍａｐｐｉｎｇ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ）"ｂｙ Ｇｌｅｎｎ Ｅ．Ｍｏｒｒｉｓ ＩＳＢＮ−０８９６０３−３７５−９および"Ｅｐｉｔｏｐｅ Ｍａｐｐｉｎｇ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ" Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ Ｓｅｒｉｅｓ，２４８ ｂｙ Ｏｌｗｙｎ Ｍ． Ｒ．Ｗｅｓｔｗｏｏｄ，Ｆｒａｎｋ Ｃ．Ｈａｙの中で詳細に述べられているように実施できる。
Ｉ．ＣＬＤ１８に結合する二重特異性／多重特異性分子
本発明のさらにもう１つの実施形態では、ＣＬＤ１８に対する抗体は、多数の結合部位または標的エピトープに結合する二重特異性または多重特異性分子を生成するためにもう１つ別の機能的分子、たとえば別のペプチドまたはタンパク質（たとえばＦａｂ'フラグメント）に誘導体化するまたは連結することができる。
たとえば本発明の抗体は、もう１つ別の抗体、ペプチドまたは結合ミメティックなどの、１またはそれ以上の他の結合分子に機能的に連結できる（たとえば化学結合、遺伝子融合、非共有結合的会合等によって）。
従って、本発明は、ＣＬＤ１８に対する少なくとも１つの第一結合特異性と第二標的エピトープに対する第二結合特異性を含む二重特異性および多重特異性分子を包含する。本発明の特定実施形態では、第二標的エピトープは、Ｆｃ受容体、たとえばヒトＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）またはヒトＦｃα受容体（ＣＤ８９）、またはＴ細胞受容体、たとえばＣＤ３である。
それゆえ、本発明は、ＦｃγＲ、ヒトＦｃαＲまたはＦｃεＲを発現するエフェクター細胞（たとえば単球、マクロファージ（ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓｏｒ）多形核細胞（ＰＭＮ））とＣＬＤ１８を発現する標的細胞の両方に結合することができる二重特異性および多重特異性分子を包含する。
これらの二重特異性および多重特異性分子は、ＣＬＤ１８発現細胞をエフェクター細胞に標的し、Ｆｃ受容体を介したエフェクター細胞活性、たとえばＣＬＤ１８発現細胞の食作用、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）、サイトカイン放出、またはスーパーオキシドアニオンの生成の引き金を引き得る。
本発明の二重特異性および多重特異性分子はさらに、抗Ｆｃ結合特異性および抗ＣＬＤ１８結合特異性に加えて、第三の結合特異性を含むことができる。１つの実施形態では、第三結合特異性は、抗増強因子（ＥＦ）部分、たとえば細胞傷害活性に関与する表面タンパク質に結合し、それによって標的細胞に対する免疫応答を上昇させる分子である。
「抗増強因子部分」は、所与の分子、たとえば抗原または受容体に結合し、それによってＦｃ受容体または標的細胞抗原の結合決定基の作用の増強を生じさせる、抗体、機能的抗体フラグメントまたはリガンドであり得る。
「抗増強因子部分」は、Ｆｃ受容体または標的細胞抗原に結合できる。あるいは、抗増強因子部分は、第一および第二結合特異性が結合する実体とは異なる実体に結合できる。たとえば抗増強因子部分は細胞傷害性Ｔ細胞に結合できる（たとえば、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ８、ＣＤ２８、ＣＤ４、ＣＤ４０、ＩＣＡＭ−１、または標的細胞に対する免疫応答増強を生じさせる他の免疫細胞を通して）。
１つの実施形態では、本発明の二重特異性および多重特異性分子は、結合特異性として、たとえばＦａｂ、Ｆａｂ'、Ｆ（ａｂ'）２、Ｆｖまたは一本鎖Ｆｖを含む、少なくとも１つの抗体を含む。
本発明の抗体はまた、軽鎖または重鎖二量体であるか、あるいはＦｖまたはＬａｄｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，米国特許第４，９４６，７７８号に記載されている一本鎖構築物のようなその何らかの最小フラグメントであり得る。抗体はまた、米国特許願第ＵＳ２００３／０１１８５９２号および同第ＵＳ２００３／０１３３９３９号に開示されている結合ドメイン免疫グロブリン融合タンパク質であり得る。
１つの実施形態では、本発明の二重特異性および多重特異性分子は、エフェクター細胞の表面に存在するＦｃγＲまたはヒトＦｃαＲに対する結合特異性、および標的細胞抗原、たとえばＣＬＤ１８に対する第二結合特異性を含む。
１つの実施形態では、Ｆｃ受容体に対する結合特異性は、その結合がヒト免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）によってブロックされない、モノクローナル抗体によって提供される。ここで使用するとき、「ＩｇＧ受容体」という用語は、第１染色体上に位置する８個のγ鎖遺伝子のいずれかを指す。
これらの遺伝子は合計１２個の膜貫通型または可溶性受容体アイソフォームをコードし、それらは、３つのＦｃγ受容体クラス：ＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）、ＦｃγＲＩＩ（ＣＤ３２）およびＦｃγＲＩＩＩ（ＣＤ１６）に分類される。１つの好ましい実施形態では、Ｆｃγ受容体はヒト高親和性ＦｃγＲＩである。
これらの好ましいモノクローナル抗体の作製と特性決定は、国際公開公報第ＷＯ８８／０００５２号および米国特許第４，９５４，６１７号においてＦａｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．によって記述されている。
これらの抗体は、受容体のＦｃγ結合部位とは異なる部位でＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩまたはＦｃγＲＩＩＩのエピトープに結合し、それゆえ、それらの結合は生理的レベルのＩｇＧによっては実質的にブロックされない。
本発明において有用な特異的抗ＦｃγＲＩ抗体は、ｍＡｂ２２、ｍＡｂ３２、ｍＡｂ４４、ｍＡｂ６２およびｍＡｂ１９７である。他の実施形態では、抗Ｆｃγ受容体抗体は、モノクローナル抗体２２のヒト化形態（Ｈ２２）である。
Ｈ２２抗体の作製と特性決定は、Ｇｒａｚｉａｎｏ，Ｒ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５５（１０）：４９９６−５００２および国際公開公報第ＷＯ９４／１０３３２号に述べられている。Ｈ２２抗体産生細胞系は、１９９２年１１月４日にＨＡ０２２ＣＬ１の名称でＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎに寄託され、アクセッション番号ＣＲＬ１１１７７を有する。
さらなる他の好ましい実施形態では、Ｆｃ受容体に対する結合特異性は、その結合が、好ましくはヒト免疫グロブリンＡ（ＩｇＡ）によってブロックされない、ヒトＩｇＡ受容体、たとえばＦｃα受容体（ＦｃαＲＩ（ＣＤ８９））に結合する抗体によって提供される。
「ＩｇＡ受容体」という用語は、第１９染色体に位置する１個のα遺伝子（ＦｃαＲＩ）の遺伝子産物を含むことが意図されている。この遺伝子は、５５〜１１０ｋＤａの数個の選択的にスプライシングされた膜貫通型アイソフォームをコードすることが知られている。
ＦｃαＲＩ（ＣＤ８９）は、単球／マクロファージ、好酸性および好中球性顆粒球上で構成的に発現されるが、非エフェクター細胞集団では発現されない。
ＦｃαＲＩは、ＩｇＡ１およびＩｇＡ２の両方に対して中等度の親和性を有しており、前記親和性はＧ−ＣＳＦまたはＧＭ−ＣＳＦなどのサイトカインへの暴露後に上昇する（Ｍｏｒｔｏｎ，Ｈ．Ｃ．ｅｔ ａｌ．（１９９６）Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １６：４２３−４４０）。
ＩｇＡリガンド結合ドメインの外側でＦｃαＲＩに結合する、Ａ３、Ａ５９、Ａ６２およびＡ７７と同定された４個のＦｃαＲＩ特異的モノクローナル抗体が記述されている（Ｍｏｎｔｅｉｒｏ，Ｒ．Ｃ．ｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４８：１７６４）。
ＦｃαＲＩおよびＦｃγＲＩは本発明における使用のための好ましいトリガー受容体であり、その理由は、それらが、（１）主として免疫エフェクター細胞上で、たとえば単球、ＰＭＮ、マクロファージおよび樹状細胞上で発現される、（２）高レベル（たとえば５，０００〜１００，０００／細胞）で発現される、（３）細胞傷害活性（たとえばＡＤＣＣ、食作用）のメディエイタ(mediators)である、（４）それらに標的される、自己抗原を含む抗原の抗原提示増強を媒介するためである。
もう１つの実施形態では、二重特異性分子は、一方の抗体が主としてＣＤＣを誘導することによって働き、他方の抗体が主としてアポトーシスを誘導することによって働くような、相補的機能活性を有する本発明に従った２個のモノクローナル抗体から成る。
ここで使用する「エフェクター細胞特異的抗体」は、エフェクター細胞のＦｃ受容体に結合する抗体または機能的抗体フラグメントを指す。本発明における使用のための好ましい抗体は、内因性免疫グロブリンによって結合されない部位でエフェクター細胞のＦｃ受容体に結合する。
ここで使用するとき、「エフェクター細胞」という用語は、免疫応答の認識相及び活性化相に対して、免疫応答の作動相（ｅｆｆｅｃｔｏｒ ｐｈａｓｅ）に関与する免疫細胞を指す。免疫細胞の例は、骨髄系またはリンパ系起源の細胞、たとえばリンパ球（たとえばＢ細胞および細胞溶解性Ｔ細胞（ＣＴＬ）を含むＴ細胞）、キラー細胞、ナチュラルキラー細胞、マクロファージ、単球、好酸球、好中球、多形核細胞、顆粒球、マスト細胞、および好塩基球を含む。
一部のエフェクター細胞は、特異的Ｆｃ受容体を発現し、特異的免疫機能を実行する。好ましい実施形態では、エフェクター細胞は抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を誘導することができ、たとえば好中球はＡＤＣＣを誘導できる。
たとえば、ＦｃＲを発現する、単球、マクロファージは、標的細胞の特異的死滅および免疫系の他の成分への抗原の提示、または抗原を提示する細胞への結合に関与する。他の実施形態では、エフェクター細胞は、標的抗原、標的細胞または微生物を貪食することができる。
エフェクター細胞上の特定ＦｃＲの発現は、サイトカインなどの体液性因子によって調節され得る。たとえばＦｃγＲＩの発現はインターフェロンγ（ＩＦＮ−γ）によって上流調節されることが認めらている。
この発現増強は、標的に対するＦｃγＲＩ担持細胞の細胞傷害活性を上昇させる。エフェクター細胞は、標的抗原または標的細胞を貪食するまたは溶解することができる。
「標的細胞」は、本発明の抗体によって標的され得る、被験者（たとえばヒトまたは動物）における何らかの好ましくない細胞を意味する。好ましい実施形態では、標的細胞は、ＣＬＤ１８を発現するまたは過剰発現する細胞である。ＣＬＤ１８を発現する細胞は、典型的には腫瘍細胞を含む。
本発明の二重特異性および多重特異性分子は、化学的手法（たとえばＤ．Ｍ．Ｋｒａｎｚ ｅｔ ａｌ．（１９８１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７８：５８０７参照）、「ポリドーマ（ｐｏｌｙｄｏｍａ）」手法（たとえばＲｅａｄｉｎｇへの米国特許第４，４７４，８９３号参照）、または組換えＤＮＡ手法を用いて作製できる。
特に、本発明の二重特異性分子および多重特異性分子は、当技術分野で公知の方法を用いて、成分結合特異性、たとえば抗ＦｃＲおよび抗ＣＬＤ１８結合特異性に複合することによって調製できる。
たとえば二重特異性および多重特異性分子の各々の結合特異性は、別々に生成し、その後互いに複合することができる。結合特異性がタンパク質またはペプチドであるとき、様々なカップリング剤または架橋剤が共有結合のために使用できる。
架橋剤の例は、プロテインＡ、カルボジイミド、Ｎ−スクシンイミジル−Ｓ−アセチル−チオアセテート（ＳＡＴＡ）、５，５'−ジチオビス（２−ニトロ安息香酸）（ＤＴＮＢ）、ｏ−フェニレンジマレイミド（ｏＰＤＭ）、Ｎ−スクシンイミジル−３−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート（ＳＰＤＰ）、およびスルホスクシンイミジル−４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレート（スルホ−ＳＭＣＣ）（たとえばＫａｒｐｏｖｓｋｙ ｅｔ ａｌ．（１９８４）Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６０：１６８６；Ｌｉｕ， ＭＡ ｅｔ ａｌ．（１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：８６４８参照）を含む。
他の方法は、Ｐａｕｌｕｓ（Ｂｅｈｒｉｎｇ Ｉｎｓ．Ｍｉｔｔ．（１９８５）Ｎｏ．７８、１１８−１３２；Ｂｒｅｎｎａｎ ｅｔ ａｌ．（Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８５）２２９：８１−８３）、およびＧｌｅｎｎｉｅ ｅｔ ａｌ．（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９８７）１３９：２３６７−２３７５）によって述べられているものを含む。
好ましい複合剤は、ＳＡＴＡおよびスルホ−ＳＭＣＣであり、どちらもＰｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．（Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ）から入手可能である。
結合特異性が抗体として存在するとき、それらは、２本の重鎖のＣ末端ヒンジ領域のスルフヒドリル結合を通して複合され得る。特に好ましい実施形態では、ヒンジ領域は、複合の前に、奇数の、好ましくは１個のスルフヒドリル残基を含むように修飾される。
あるいは、両方の結合特異性が同じベクター内でコードされ、および同じ宿主細胞において発現され、構築され得る。この方法は、二重特異性および多重特異性分子がｍＡｂ×ｍＡｂ、ｍＡｂ×Ｆａｂ、Ｆａｂ×Ｆ（ａｂ'）２またはリガンド×Ｆａｂ融合タンパク質である場合、特に有用である。
本発明の二重特異性および多重特異性分子、たとえば二重特異性分子は、一本鎖二重特異性抗体のような一本鎖分子、１つの一本鎖抗体と１つの結合決定基を含む一本鎖二重特異性分子、または２つの結合決定基を含む一本鎖二重特異性分子であり得る。
二重特異性および多重特異性分子はまた、一本鎖分子であってもよく、または少なくとも２つの一本鎖分子を含んでもよい。
二重特異性および多重特異性分子を調製するための方法は、たとえば米国特許第５，２６０，２０３号；同第５，４５５，０３０号；同第４，８８１，１７５号；同第５，１３２，４０５号；同第５，０９１，５１３号；同第５，４７６，７８６号；同第５，０１３，６５３号；同第５，２５８，４９８号；および同第５，４８２，８５８号に述べられている。
二重特異性および多重特異性分子のそれらの特異的標的への結合は、酵素結合イムノソルベント検定法（ＥＬＩＳＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、ＦＡＣＳ分析、生物学的検定法（たとえば増殖阻害）、またはウエスタンブロット法によって確認できる。これらのアッセイの各々は、一般に、特定対象とするタンパク質−抗体複合体の存在を、対象複合体に特異的な標識試薬（たとえば抗体）を用いることによって検出する。
たとえばＦｃＲ抗体複合体は、たとえば酵素結合抗体または抗体−ＦｃＲ複合体を認識して特異的に結合する抗体フラグメントを用いて検出され得る。あるいは、複合体は、様々な他の免疫測定法のいずれかを用いて検出できる。
たとえば抗体を放射性標識し、放射免疫測定法（ＲＩＡ）において使用することができる（たとえばＷｅｉｎｔｒａｕｂ，Ｂ．，Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ｏｆ Ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙｓ，Ｓｅｖｅｎｔｈ Ｔｒａｉｎｉｎｇ Ｃｏｕｒｓｅ ｏｎ Ｒａｄｉｏｌｉｇａｎｄ Ａｓｓａｙ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ｔｈｅ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ，Ｍａｒｃｈ，１９８６参照）。
放射性同位体は、γ計数器またはシンチレーション計数器の使用のような手段によって、またはオートラジオグラフィーによって検出できる。
ＩＩ．免疫複合体
もう１つの態様では、本発明は、細胞毒、薬剤（たとえば免疫抑制剤）または放射性同位体などの治療成分または物質に複合した抗ＣＬＤ１８抗体を特徴とする。そのような複合体をここでは「免疫複合体」と称する。
１またはそれ以上の細胞毒を含む免疫複合体を「免疫毒素」と称する。細胞毒または細胞傷害性物質は、細胞に有害であり、特に細胞を死滅させるいかなる物質も包含する。
その例は、タキソール、サイトカラシンＢ、グラミシジンＤ、臭化エチジウム、エメチン、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ドキソルビシン、ダウノルビシン、ジヒドロキシアントラシンジオン、ミトキサントロン、ミトラマイシン、アクチノマイシンＤ、１−デヒドロテストステロン、グルココルチコイド、プロカイン、テトラカイン、リドカイン、プロプラノロールおよびピューロマイシンおよびそれらの類似体または同族体を含む。
本発明の免疫複合体を形成するための適切な治療物質は、代謝拮抗物質（たとえばメトトレキサート、６−メルカプトプリン、６−チオグアニン、シタラビン、フルダラビン、５−フルオロウラシルデカルバジン）、アルキル化剤（たとえばメクロレタミン、チオテパ、クロラムブシル、メルファラン、カルムスチン（ＢＳＮＵ）およびロムスチン（ＣＣＮＵ）、シクロホスファミド、ブスルファン、ジブロモマンニトール、ストレプトゾトシン、マイトマイシンＣ、およびｃｉｓ−ジクロロジアミン白金（ＩＩ）（ＤＤＰ）シスプラチン）、アントラサイクリン（たとえばダウノルビシン（以前はダウノマイシン）およびドキソルビシン）、抗生物質（たとえばダクチノマイシン（以前はアクチノマイシン）、ブレオマイシン、ミトラマイシンおよびアントラミシン（ＡＭＣ））、および抗有糸分裂薬（たとえばビンクリスチンおよびビンブラスチン）を含むが、これらに限定されない。
好ましい実施形態では、治療薬は、細胞傷害性物質または放射性毒性物質である。もう１つの実施形態では、治療薬は免疫抑制剤である。さらにもう１つの実施形態では、治療薬はＧＭ−ＣＳＦである。
好ましい実施形態では、治療薬は、ドキソルビシン、シスプラチン、硫酸ブレオマイシン、カルムスチン、クロラムブシル、シクロホスファミドまたはリシンＡである。
本発明の抗体はまた、癌などのＣＬＤ１８関連疾患を治療するための細胞傷害性放射性薬剤を生成するために、放射性同位体、たとえばヨウ素１３１、イットリウム９０またはインジウム１１１に複合できる。
本発明の抗体複合体は所与の生物学的応答を調節するために使用でき、薬剤成分は古典的化学治療薬に限定されると解釈されるべきではない。たとえば薬剤成分は、所望生物活性を有するタンパク質またはポリペプチドであり得る。
そのようなタンパク質は、たとえばアブリン、リシンＡ、シュードモナス外毒素またはジフテリア毒素などの酵素的に活性な毒素またはその活性フラグメント、腫瘍壊死因子またはインターフェロンγなどのタンパク質、または、たとえばリンホカイン、インターロイキン１（「ＩＬ−１」）、インターロイキン２（「ＩＬ−２」）、インターロイキン６（「ＩＬ−６」）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（「ＧＭ−ＣＳＦ」）、顆粒球コロニー刺激因子（「Ｇ−ＣＳＦ」）または他の増殖因子のような、生物学的応答調節剤を含み得る。
そのような治療成分を抗体に複合するための手法は周知であり、たとえばＡｒｎｏｎ ｅｔ ａｌ．，"Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｆｏｒ Ｉｍｍｕｎｏｔａｒｇｅｔｉｎｇ Ｏｆ Ｄｒｕｇｓ Ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ"，ｉｎ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，Ｒｅｉｓｆｅｌｄ ｅｔ ａｌ．（ｅｄｓ．），ｐｐ．２４３−５６（Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．１９８５）；Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ．，"Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｆｏｒ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ"，ｉｎ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ（２ｎｄ Ｅｄ．），Ｒｏｂｉｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ．（ｅｄｓ．），ｐｐ．６２３−５３（Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．１９８７）；Ｔｈｏｒｐｅ，"Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｃａｒｒｉｅｒｓ Ｏｆ Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ａｇｅｎｔｓ Ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ：Ａ Ｒｅｖｉｅｗ"，ｉｎ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ '８４：Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｎｄ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｐｉｎｃｈｅｒａ ｅｔ ａｌ．（ｅｄｓ．），ｐｐ．４７５−５０６（１９８５）；"Ａｎａｌｙｓｉｓ，Ｒｅｓｕｌｔｓ，Ａｎｄ Ｆｕｔｕｒｅ Ｐｒｏｓｐｅｃｔｉｖｅ Ｏｆ Ｔｈｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｕｓｅ Ｏｆ Ｒａｄｉｏｌａｂｅｌｅｄ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ"，ｉｎ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｆｏｒ Ｃａｎｃｅｒ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｙ，Ｂａｌｄｗｉｎ ｅｔ ａｌ．（ｅｄｓ．），ｐｐ．３０３−１６（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ １９８５）、およびＴｈｏｒｐｅ ｅｔ ａｌ．，"Ｔｈｅ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ Ａｎｄ Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ Ｏｆ Ａｎｔｉｂｏｄｙ−Ｔｏｘｉｎ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ"，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｖ．，６２：１１９−５８（１９８２）参照。
さらなる実施形態では、本発明に従った抗体は、抗体を放射性同位体に複合することを可能にする、リンカー−キレート化剤、たとえばチウキセタンに結合される。
ＩＩＩ．医薬組成物
もう１つの態様では、本発明は、本発明の抗体の１つまたは組合せを含有する組成物、たとえば医薬組成物を提供する。医薬組成物は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ，１９ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｇｅｎｎａｒｏ，Ｅｄ．，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ，１９９５に開示されているような従来の手法に従って、医薬的に許容される担体または希釈剤ならびに何らかの他の公知のアジュバントと共に製剤され得る。
１つの実施形態では、組成物は、異なる機構によって作用する本発明の複数の（たとえば２またはそれ以上の）単離抗体の組合せ、たとえば主としてＣＤＣを誘導することによって働く１つの抗体と主としてアポトーシスを誘導することによって働く別の抗体の組合せを含む。
本発明の医薬組成物はまた、併用療法において、すなわち他の物質と組み合わせて投与できる。たとえば併用療法は、少なくとも１つの抗炎症薬または少なくとも１つの免疫抑制剤と本発明の組成物を含み得る。
１つの実施形態では、そのような治療薬は、ステロイド系薬剤またはＮＳＡＩＤ（非ステロイド系抗炎症薬）などの、１またはそれ以上の抗炎症薬を含む。
好ましい薬剤は、たとえばアスピリンおよび他のサリチル酸塩、ロフェコキシブ（Ｖｉｏｘｘ）およびセレコキシブ（Ｃｅｌｅｂｒｅｘ）などのＣｏｘ−２阻害剤、 イブプロフェン（Ｍｏｔｒｉｎ、Ａｄｖｉｌ）、フェノプロフェン（Ｎａｌｆｏｎ）、ナプロキセン（Ｎａｐｒｏｓｙｎ）、スリンダック（Ｃｌｉｎｏｒｉｌ）、ジクロフェナク（Ｖｏｌｔａｒｅｎ）、ピロキシカム（Ｆｅｌｄｅｎｅ）、ケトプロフェン（Ｏｒｕｄｉｓ）、ジフルニサル（Ｄｏｌｏｂｉｄ）、ナブメトン（Ｒｅｌａｆｅｎ）、エトドラク（Ｌｏｄｉｎｅ）、オキサプロジン（Ｄａｙｐｒｏ）およびインドメタシン（Ｉｎｄｏｃｉｎ）などのＮＳＡＩＤを含む。
もう１つの実施形態では、そのような治療薬は、低用量シクロホスファミド、抗ＣＴＬＡ４抗体、抗ＩＬ２または抗ＩＬ２受容体抗体のような、制御性Ｔ細胞の枯渇または機能的不活性化を導く物質を含む。
さらにもう１つの実施形態では、そのような治療物質は、１またはそれ以上の化学療法剤、たとえばタキソール誘導体、タキソテール、ゲンシタビン、５−フルオロウラシル、ドキソルビシン（Ａｄｒｉａｍｙｃｉｎ）、シスプラチン（Ｐｌａｔｉｎｏｌ）、シクロホスファミド（Ｃｙｔｏｘａｎ、Ｐｒｏｃｙｔｏｘ、Ｎｅｏｓａｒ）を含む。
もう１つの実施形態では、本発明の抗体は、好ましくは胃癌、食道癌、膵癌および肺癌に罹患している患者において治療効果を示す、化学療法剤と組み合わせて投与し得る。
さらにもう１つの実施形態では、本発明の抗体は、放射線療法および／または自家末梢幹細胞または骨髄移植と組み合わせて投与し得る。
さらにもう１つの実施形態では、本発明の抗体は、抗ＣＤ２５抗体、抗ＥＰＣＡＭ抗体、抗ＥＧＦＲ、抗Ｈｅｒ２／ｎｅｕおよび抗ＣＤ４０抗体から選択される１またはそれ以上の抗体と組み合わせて投与し得る。
さらなる実施形態では、本発明の抗体は、補体活性化を増強するために抗Ｃ３ｂ（ｉ）抗体と組み合わせて投与し得る。
ここで使用するとき、「医薬的に許容される担体」は、生理的に適合性のありとあらゆる溶媒、分散媒質、被覆物、抗菌剤および抗真菌剤、等張化剤および吸収遅延剤等を包含する。好ましくは、担体は、静脈内、筋肉内、皮下、非経口、脊髄または表皮投与（たとえば注射または注入による）に適する。
投与経路に依存して、活性化合物、すなわち抗体、二重特異性および多重特異性分子は、酸の作用および化合物を不活性化し得る他の自然条件の作用から化合物を保護するために物質中に被覆され得る。
「医薬的に許容される塩」は、親化合物の所望生物活性を保持し、いかなる望ましくない毒性作用も及ぼさない塩を指す（たとえばＢｅｒｇｅ，Ｓ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．（１９７７）Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｓｃｉ．６６：１−１９参照）。
そのような塩の例は、酸付加塩および塩基付加塩を含む。酸付加塩は、塩酸、硝酸、リン酸、硫酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、亜リン酸等のような非毒性の無機酸から、ならびに脂肪族モノおよびジカルボン酸、フェニル置換アルカン酸、ヒドロキシアルカン酸、芳香族酸、脂肪族および芳香族スルホン酸等のような非毒性の有機酸から誘導されるものを含む。
塩基付加塩は、ナトリウム、カリウム、マグネシウム、カルシウム等のようなアルカリ土類金属から、ならびにＮ，Ｎ'−ジベンジルエチレンジアミン、Ｎ−メチルグルカミン、クロロプロカイン、コリン、ジエタノールアミン、エチレンジアミン、プロカイン等のような非毒性の有機アミンから誘導されるものを含む。
本発明の組成物は、当技術分野で公知の様々な方法によって投与できる。当業者に認識されるように、投与の経路および／または様式は所望結果に依存して異なってもよい。
活性化合物は、インプラント、経皮パッチおよびマイクロカプセル化送達システムを含む制御放出製剤のような、迅速な放出に対して化合物を保護する担体と共に調製され得る。
生分解性生体適合性ポリマー、たとえばエチレン酢酸ビニル、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオールトエステルおよびポリ乳酸が使用できる。そのような製剤の製造のための方法は一般に当業者に公知である。
たとえばＳｕｓｔａｉｎｅｄ ａｎｄ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｊ．Ｒ．Ｒｏｂｉｎｓｏｎ，ｅｄ．，Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９７８参照。
特定投与経路によって本発明の化合物を投与するためには、化合物の不活性化を防ぐために物質で化合物を被覆するか、または物質を化合物と同時投与する必要があり得る。たとえば化合物は、適切な担体、たとえばリポソーム、または希釈剤中で被験者に投与され得る。医薬的に許容される希釈剤は、生理食塩水および水性緩衝液を含む。
リポソームは、水中油中水型（ｗａｔｅｒ−ｉｎ−ｏｉｌ−ｉｎ−ｗａｔｅｒ）ＣＧＦ乳剤ならびに従来のリポソームを含む（Ｓｔｒｅｊａｎ ｅｔ ａｌ．（１９８４）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．７：２７）。
医薬的に許容される担体は、滅菌注射用溶液または分散の即時調製のための滅菌水溶液または分散および滅菌粉末を含む。医薬活性物質のためのそのような媒質および物質の使用は当技術分野において公知である。
従来の媒質または物質が活性化合物と不適合性である場合を除き、本発明の医薬組成物におけるそれらの使用は想定される。補足的活性化合物も組成物に組み込むことができる。
治療組成物は、典型的には無菌でなければならず、製造および保存条件下で安定でなければならない。組成物は、溶液、マイクロエマルジョン、リポソームまたは高薬剤濃度に適する他の秩序構造として製剤できる。
担体は、たとえば水、エタノール、ポリオール（たとえばグリセロール、プロピレングリコールおよび液体ポリエチレングリコール等）、およびそれらの適切な混合物を含む溶媒または分散媒質であり得る。
適切な流動性は、たとえば、レクチンなどの被覆剤の使用によって、分散の場合は必要とされる粒径の維持によって、および界面活性剤の使用によって維持できる。
多くの場合、等張剤、たとえば糖、マンニトールまたはソルビトールなどのポリアルコール、または塩化ナトリウムを組成物中に含むことは好ましい。注射用組成物の長期吸収は、吸収を遅延させる物質、たとえばモノステアリン酸塩およびゼラチンを組成物中に含めることによってもたらされ得る。
滅菌注射用溶液は、上記に列挙する成分の１つまたは組合せと共に適切な溶媒中に必要量の活性化合物を組み込み、必要に応じて、その後滅菌精密ろ過することによって製造できる。
一般に、分散は、活性化合物を、塩基性分散媒質および上記に列挙するものから必要な他の成分を含む滅菌ビヒクル(vehicle)に組み込むことによって調製される。
滅菌注射用溶液の調製のための滅菌粉末の場合、調製の好ましい方法は、あらかじめ滅菌ろ過したその溶液から有効成分プラス付加的な所望成分の粉末を生成する真空乾燥および凍結乾燥である。
投薬レジメンは、最適所望応答（たとえば治療応答）が与えられるように調整される。たとえば単回ボーラスを投与してもよく、数回の分割用量を、時間をかけて投与してもよく、または治療状況の緊急性によって指示されるのに比例して用量を減少または増加してもよい。
投与の容易さおよび用量の均一性のための非経口組成物を投与単位形態で製剤することは特に有益である。ここで使用する投与単位形態は、治療される被験者のための単一投薬量として適する物理的に分離した単位を指す：各々の単位は、所要医薬担体と共同して所望治療効果を生じさせるように算定された、あらかじめ定められた量の活性化合物を含有する。
本発明の投与単位形態の詳細は、（ａ）活性化合物の独自の特徴および達成されるべき特定治療効果、および（ｂ）個体における感受性の処置に関してそのような活性化合物を配合することの当技術分野に固有の制限によって決定され、それらに直接依存する。
医薬的に許容される抗酸化剤の例は：（１）水溶性抗酸化剤、たとえばアスコルビン酸、塩酸システイン、重硫酸ナトリウム、メタ重亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム等；（２）油溶性抗酸化剤、たとえばパルミチン酸アスコルビル、ブチル化ヒドロキシアニソール（ＢＨＡ）、ブチル化ヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）、レシチン、没食子酸プロピル、α−トコフェロール等；および（３）金属キレート化剤、たとえばクエン酸、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ソルビトール、酒石酸、リン酸等を含む。
治療組成物に関して、本発明の製剤は、経口、経鼻、局所（口腔および舌下を含む）、直腸、膣および／または非経口投与に適する製剤を含む。製剤は、好都合には単位投与形態で提供され、薬学の技術分野において公知の何らかの方法によって製造され得る。
単一投与形態を産生するために担体物質と組み合わせることができる有効成分の量は、治療される被験者および特定投与様式に依存して異なってもよい。単一投与形態を産生するために担体物質と組み合わせることができる有効成分の量は、一般に治療効果を生じさせる組成物の量とすることができる。
一般に、１００％中で、この量は約０．０１％〜約９９％の有効成分、好ましくは約０．１％〜約７０％、最も好ましくは約１％〜約３０％の有効成分の範囲である。
膣投与に適する本発明の製剤はまた、適切であることが当技術分野において公知の担体を含む、ペッサリー、タンポン、クリーム、ジェル、ペースト、泡またはスプレー製剤を含む。本発明の組成物の局所または経皮投与のために投与形態は、粉末、スプレー、軟膏、ペースト、クリーム、ローション、ジェル、溶液、パッチおよび吸入剤を含む。
活性化合物は、無菌条件下で、医薬的に許容される担体、および必要とされ得る何らかの防腐剤、緩衝剤または推進剤と混合され得る。
ここで使用する「非経口投与」および「非経口的に投与された」という語句は、通常は注射による、腸内および局所的投与以外の投与様式を意味し、限定を伴わずに、静脈内、筋肉内、動脈内、髄腔内、関節包内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、経気管、皮下、表皮下、関節内、被膜下、クモ膜下、脊髄内、硬膜外および胸骨内注射および注入を含む。
本発明の医薬組成物において使用し得る適切な水性および非水性担体の例は、水、エタノール、ポリオール（たとえばグリセロール、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール等）およびそれらの適切な混合物、オリーブ油などの植物油、およびオレイン酸エチルなどの注射用有機エステルを含む。
適切な流動性は、たとえばレシチンなどの被覆材料の使用によって、分散の場合は必要とされる粒径の維持によって、および界面活性剤の使用によって維持できる。
これらの組成物はまた、防腐剤、湿潤剤、乳化剤および分散剤などのアジュバントを含み得る。微生物の存在の予防は、無菌手順によって、および種々の抗菌剤および抗真菌剤、たとえばパラベン、クロロブタノール、フェノールソルビン酸等の含有によって確保し得る。
また、糖、塩化ナトリウム等のような等張剤を組成物に含めることも望ましいと考えられる。加えて、モノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチンなどの、吸収を遅延させる物質を含めることによって注射用医薬形態の長期的吸収をもたらし得る。
１つの実施形態では、本発明のモノクローナル抗体は、皮下注射によって結晶形態で投与される。Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ．（２００３）ＰＮＡＳ，１００（１２）：６９３４−６９３９参照。
本発明の化合物を薬剤としてヒトおよび動物に投与するとき、それらは、単独で、または医薬的に許容される担体と組み合わせて、たとえば０．０１〜９９．５％（より好ましくは０．１〜９０％）の有効成分を含有する医薬組成物として投与できる。
選択される投与経路に関わらず、適切な水和形態で使用し得る本発明の化合物および／または本発明の医薬組成物は、当業者に公知の従来の方法によって医薬的に許容される投与形態に製剤される。
本発明の医薬組成物における有効成分の実際の用量レベルは、患者への毒性を伴わずに、特定の患者、組成物および投与様式について所望治療応答を達成するために有効な有効成分の量が得られるように変化させ得る。
選択される用量レベルは、様々な薬物動態因子、たとえば使用する本発明の特定組成物の活性、投与経路、投与時間、使用する特定化合物の排泄速度、治療期間、使用する特定組成物と併用される他の薬剤、化合物および／または物質、治療を受ける患者の年齢、性別、体重、状態、全般的健康および過去の病歴、および医学技術分野において周知の同様の因子に依存する。
当技術分野における通常技術を有する医師または獣医は、必要とされる医薬組成物の有効量を容易に決定し、処方することができる。
たとえば医師または獣医は、医薬組成物中で使用される本発明の化合物の用量を、所望治療効果を達成するために必要とされるよりも低いレベルで開始し、所望効果が達成されるまで徐々にこの投与量を増加することができる。
一般に、本発明の組成物の適切な１日用量は、治療効果を生じさせるために有効な最も低い用量の化合物量である。そのような有効用量は、一般に上述した因子に依存する。投与は静脈内、筋肉内、腹腔内または皮下投与であること、好ましくは標的部位の近位に投与されることが好ましい。
所望する場合は、治療組成物の有効１日用量を、１日を通じて適切な間隔で別々に投与される２、３、４、５、６以上の副用量として、場合により単位投与形態で、投与し得る。本発明の化合物は単独で投与されることが可能であるが、医薬製剤（組成物）として本発明の化合物を投与することが好ましい。
１つの実施形態では、本発明の抗体は、毒性副作用を低減するために注入によって、好ましくは２４時間以上のような長期間にわたる緩徐持続注入によって投与し得る。投与はまた、２〜２４時間、たとえば２〜１２時間の期間にわたる持続注入によって実施し得る。
そのようなレジメンは、必要に応じて１回またはそれ以上、たとえば６ヵ月後または１２ヵ月後に反復し得る。投与量は、抗ＣＬＤ１８抗体を標的する抗イディオタイプ抗体を使用することにより、生物学的試料における投与後の循環モノクローナル抗ＣＬＤ１８抗体の量を測定することによって決定するまたは調整することができる。
さらにもう１つの実施形態では、本発明の抗体は、たとえば週に１回６ヶ月またはそれ以上の期間にわたるような、維持療法によって投与される。
さらにもう１つの実施形態では、本発明に従った抗体は、ＣＬＤ１８に対する抗体の１回の注入、次いで放射性同位体に複合したＣＬＤ１８に対する抗体の注入を含むレジメンによって投与され得る。レジメンは、たとえば７〜９日後に反復し得る。
治療組成物は、当技術分野で公知の医療装置を用いて投与できる。たとえば好ましい実施形態では、本発明の治療組成物は、米国特許第５，３９９，１６３号；同第５，３８３，８５１号；同第５，３１２，３３５号；同第５，０６４，４１３号；同第４，９４１，８８０号；同第４，７９０，８２４号；または同第４，５９６，５５６号に開示されている装置のような、無針皮下注射装置を使って投与できる。
本発明において有用な周知のインプラントおよびモジュールの例は、制御された速度で薬剤を調剤するための移植可能な微量注入ポンプを開示する、米国特許第４，４８７，６０３号；皮膚を通して薬剤を投与するための治療装置を開示する、米国特許第４，４８６，１９４号；正確な注入速度で薬剤を送達するための薬剤注入ポンプを開示する、米国特許第４，４４７，２３３号；持続的薬剤送達のための可変流量移植可能注入装置を開示する、米国特許第４，４４７，２２４号；マルチチェンバー画分を有する浸透圧薬剤送達システムを開示する、米国特許第４，４３９，１９６号；および浸透圧薬剤送達システムを開示する、米国特許第４，４７５，１９６号に記載されたものを含む。
多くの他のそのようなインプラント、送達システムおよびモジュールが当業者に公知である。ある実施形態では、本発明の抗体は、インビボでの適切な分布を確実にするように製剤できる。たとえば血液脳関門（ＢＢＢ）は、多くの高度親水性化合物を排除する。
本発明の治療化合物がＢＢＢを越える（所望する場合）ことを確実にするために、それらを、たとえばリポソーム中で製剤することができる。リポソームを製造するための方法については、たとえば米国特許第４，５２２，８１１号；同第５，３７４，５４８号；および同第５，３９９，３３１号参照。
リポソームは、特定細胞または器官内に選択的に輸送され、それゆえ標的薬剤送達を促進する１またはそれ以上の部分を含み得る（たとえばＶ．Ｖ．Ｒａｎａｄｅ（１９８９）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２９：６８５参照）。
例示的な標的部分は、葉酸塩またはビオチン（たとえばＬｏｗ ｅｔ ａｌ．への米国特許第５，４１６，０１６号参照）；マンノシド（Ｕｍｅｚａｗａ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ，Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１５３：１０３８）；抗体（Ｐ．Ｇ．Ｂｌｏｅｍａｎ ｅｔ ａｌ．（１９９５）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．３５７：１４０；Ｍ．Ｏｗａｉｓ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．３９：１８０）；および界面活性剤プロテインＡ受容体（Ｂｒｉｓｃｏｅ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．１２３３：１３４）を含む。
本発明の１つの実施形態では、本発明の治療化合物はリポソーム中で製剤される；より好ましい実施形態では、リポソームは標的部分を含む。最も好ましい実施形態では、リポソーム中の治療化合物は、所望領域に近位の部位、たとえば腫瘍の部位にボーラス注射によって送達される。
組成物は、容易に注射可能である程度に流動性でなければならない。組成物は、製造および保存条件下で安定でなければならず、細菌および真菌などの微生物の汚染作用に対して保護されねばならない。
さらなる実施形態では、本発明の抗体は、胎盤を横切る輸送を予防するまたは低減するように製剤できる。これは、当技術分野で公知の方法によって、たとえば抗体のＰＥＧ化によってまたはＦ（ａｂ'）２フラグメントの使用によって実施できる。
さらに、Ｃｕｎｎｉｎｇｈａｍ−Ｒｕｎｄｌｅｓ Ｃ，Ｚｈｕｏ Ｚ，Ｇｒｉｆｆｉｔｈ Ｂ，Ｋｅｅｎａｎ Ｊ．（１９９２）Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ−ｇｌｙｃｏｌ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ．Ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｅｎｚｙｍａｔｉｃ ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１５２：１７７−１９０；およびＬａｎｄｏｒ Ｍ．（１９９５）Ｍａｔｅｒｎａｌ−ｆｅｔａｌ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎｓ，Ａｎｎ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ａｓｔｈｍａ Ｉｍｍｕｎｏｌ．７４：２７９−２８３が参照できる。
腫瘍治療のための「治療有効用量」は、完全または部分的であり得る客観的腫瘍応答によって測定できる。完全応答（ＣＲ）は、疾患の臨床的、放射線医学的または他の証拠がないことと定義される。
部分的応答（ＰＲ）は、凝集腫瘍サイズの５０％以上の減少から生じる。進行までの平均時間は、客観的腫瘍応答の持続性を特徴づける測定値である。
腫瘍治療のための「治療有効用量」はまた、疾患の進行を安定化するその能力によっても測定できる。化合物が癌を抑制する能力は、ヒト腫瘍における効果を予測する動物モデル系で評価できる。
あるいは、組成物のこの性質は、当業者に公知のインビトロアッセイにより、細胞増殖またはアポトーシスを阻害する化合物の能力を検討することによって評価できる。治療化合物の治療有効量は、腫瘍サイズを減少させるまたはさもなければ被験者において症状を改善することができる。
当業者は、被験者の大きさ、被験者の症状の重症度、および選択される特定組成物または投与経路などの因子に基づいてそのような量を決定することができる。
組成物は無菌でなければならず、および組成物が注射器によって送達可能である程度に流動性でなければならない。水に加えて、担体は、等張緩衝塩類溶液、エタノール、ポリオール（たとえばグリセロール、プロピレングリコールおよび液体ポリエチレングリコール等）、およびそれらの適切な混合物であり得る。
適切な流動性は、たとえば、レクチンなどの被覆剤の使用によって、分散の場合は必要とされる粒径の維持によって、および界面活性剤の使用によって維持できる。多くの場合、等張剤、たとえば糖、マンニトールまたはソルビトールなどのポリアルコール、および塩化ナトリウムを組成物中に含むことは好ましい。
注射用組成物の長期吸収は、吸収を遅延させる物質、たとえばモノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチンを組成物中に含めることによってもたらされ得る。
活性化合物が適切に保護されるとき、上述したように、化合物は、たとえば不活性希釈剤または同化可能な食用担体と共に、経口的に投与し得る。
ＩＶ．本発明の用途および方法
本発明の抗体（ここで述べる免疫複合体、二重特異性／多重特異性分子、組成物および他の誘導体を含む）は、ＣＬＤ１８を発現する細胞に関わる疾患の治療を含む数多くの治療上の有用性を有する。
たとえば抗体は、ここで述べるような様々な疾患を治療するまたは予防するために、たとえばインビトロまたはエクスビボで、培養中の細胞に、またはたとえばインビボで、ヒト被験者に投与することができる。
ここで使用するとき、「被験者」という用語は、ＣＬＤ１８に対する抗体に応答するヒトおよび非ヒト動物を包含することが意図されている。好ましい被験者は、罹患細胞、特に正常細胞と比較してＣＬＤ１８の変化した発現パターンによって特徴づけられる細胞を死滅させることによって矯正または改善できる疾患を有するヒト患者を含む。
ここで論じる治療における治療効果は、好ましくは、たとえば補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）媒介性溶解、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）媒介性溶解、アポトーシス、同型接着、および／または食作用を誘導することによって、好ましくはＣＤＣ媒介性溶解および／またはＡＤＣＣ媒介性溶解を誘導することによって、細胞の死滅を媒介する本発明の抗体の機能的性質を通して達成される。
たとえば１つの実施形態では、本発明の抗体は、腫瘍形成性疾患、たとえばＣＬＤ１８を発現する腫瘍細胞の存在によって特徴づけられる疾患、たとえば胃癌を有する被験者を治療するために使用できる。
治療および／または予防できる腫瘍形成性疾患の例は、胃癌、食道癌、膵癌、肺癌、卵巣癌、乳癌、結腸直腸癌、肝癌、胆嚢の癌および頭頸部癌を含む、ＣＬＤ１８を発現するすべての癌および腫瘍実体を包含する。これらの癌は、早期、中期または進行した病期、たとえば転移であり得る。
本発明に従って述べた医薬組成物および治療方法はまた、ここで述べる疾患を予防するための免疫またはワクチン接種に使用し得る。
もう１つの実施形態では、本発明の抗体は、そのレベルを上述したようなある種の疾患または疾患症状に結びつけることができる、ＣＬＤ１８またはＣＬＤ１８の特定形態のレベル、または膜表面にＣＬＤ１８を含む細胞のレベルを検出するために使用できる。
あるいは、抗体を使用すると、ＣＬＤ１８発現細胞の機能を欠損させるかまたは相互作用するので、抗体は、これらの細胞を疾患の重要なメディエイタとして関与している。
これは、抗体とＣＬＤ１８の間の複合体の形成を許容する条件下で、試料と対照試料を抗ＣＬＤ１８抗体と接触させることによって達成できる。抗体とＣＬＤ１８の間で形成される複合体を検出し、試料と対照試料、すなわち標準試料において比較する。
本発明の抗体は、最初にインビトロでの治療または診断用途に関連するそれらの結合活性に関して試験することができる。たとえば抗体は、ここで述べるようなフローサイトメトリーアッセイを用いて試験できる。
さらに、ＣＬＤ１８を発現する細胞の増殖を阻害することおよび／または細胞を死滅させることを含む、少なくとも１つのエフェクター媒介性エフェクター細胞活性の引き金を引く上での抗体の活性を検定することができる。
たとえばＣＤＣおよび／またはアポトーシスの引き金を引く抗体の能力が検定できる。ＣＤＣ、同型接着、分子クラスター化またはアポトーシスを検定するためのプロトコールをここで述べる。
本発明の抗体は、以下の生物活性の１またはそれ以上をインビボまたはインビトロで誘発するために使用できる：ＣＬＤ１８を発現する細胞の増殖および／または分化を阻害すること；ＣＬＤ１８を発現する細胞を死滅させること；エフェクター細胞の存在下でＣＬＤ１８を発現する細胞の食作用またはＡＤＣＣを媒介すること；補体の存在下でＣＬＤ１８を発現する細胞のＣＤＣを媒介すること；ＣＬＤ１８を発現する細胞のアポトーシスを媒介すること；同型接着を誘導すること；および／またはＣＬＤ１８に結合したとき脂質ラフトへの移行を誘導すること。
特定実施形態では、抗体は、様々なＣＬＤ１８関連疾患を治療する、予防するまたは診断するためにインビボまたはインビトロで使用される。ＣＬＤ１８関連疾患の例は、中でも特に、胃癌、膵癌、食道癌、肺癌および上記で列挙した癌などの癌を含む。
ＣＬＤ１８Ａ２は、分化した正常胃細胞においても発現される。これらの細胞の死滅によって起こり得る抗体誘導の臨床副作用は、制酸薬などの胃保護薬、あるいはオメプラゾールまたは関連薬剤などの胃プロトンポンプの阻害剤の平行投与によって低減し得るかまたは回避し得る。
インビボおよびインビトロで本発明の抗体組成物を投与する適切な経路は当技術分野において周知であり、当業者によって選択され得る。
上述したように、本発明の抗ＣＬＤ１８抗体は１またはそれ以上の他の治療薬、たとえば細胞傷害性物質、放射性毒性物質、抗血管新生薬および／または本発明の抗体に対する免疫応答の誘導を低減するための免疫抑制剤と同時投与することができる。抗体は、治療薬と結合し得るか（免疫複合体として）または治療薬と別途に投与できる。
後者（別途投与）の場合、抗体は、薬剤の前、後または薬剤と同時に投与でき、あるいは他の公知の治療、たとえば抗癌治療、たとえば放射線と同時投与できる。そのような治療薬は、中でも特に、上記で列挙したような抗腫瘍薬を含む。
化学療法剤と本発明の抗ＣＬＤ１８抗体の同時投与は、腫瘍細胞に細胞傷害作用を生じさせる異なる機構によって働く２つの抗癌剤を提供する。そのような同時投与は、薬剤に対する耐性の発現または腫瘍細胞を抗体と非反応性にする腫瘍細胞の抗原性の変化に起因する問題を解決できる。
本発明のもう１つの特定実施形態では、抗体を投与される被験者は、ＶＥＧＦまたはＶＥＧＦＲを標的する抗体を含む抗血管新生薬および血管新生を阻害する１またはそれ以上の化合物で付加的に治療される。これらの薬剤による前処置または平行適用は、バルク腫瘍への抗体の浸透を改善し得る。
本発明のもう１つの特定実施形態では、抗体を投与される被験者は、ＥＧＦＲ受容体へのモノクローナル抗体結合を含む、増殖因子受容体シグナル伝達を阻害する化合物、ならびにＥＧＦＲ、Ｈｅｒ１またはＨｅｒ２／ｎｅｕ受容体によって開始されるシグナル伝達を阻害する化合物で付加的に治療される。
標的特異的エフェクター細胞、たとえば本発明の組成物（たとえば抗体、多重特異性および二重特異性分子）に連結されたエフェクター細胞も治療薬として使用できる。ターゲティングのためのエフェクター細胞は、マクロファージ、好中球または単球などのヒト白血球であり得る。
他の細胞は、好酸球、ナチュラルキラー細胞および他のＩｇＧまたはＩｇＡ受容体担持細胞を含む。所望する場合、エフェクター細胞は、治療される被験者から入手できる。標的特異的エフェクター細胞は、生理的に許容される溶液中の細胞の懸濁液として投与できる。
投与される細胞の数は約１０８〜１０９個であり得るが、治療目的に依存して異なる。一般に、その量は、標的細胞、たとえばＣＬＤ１８を発現する腫瘍細胞における局在化を得るため、および、たとえば食作用によって細胞死を生じさせるために十分な量である。投与経路も異なり得る。
標的特異的エフェクター細胞による治療は、標的細胞の除去のための他の手法と併用して実施できる。たとえば本発明の組成物および／またはこれらの組成物を有するエフェクター細胞を使用する抗腫瘍治療は、化学療法と共に使用できる。
加えて、併用免疫療法は、２つの異なる細胞傷害性エフェクター集団を腫瘍細胞拒絶へと向かわせるために使用し得る。たとえば抗ＦｃＲＩまたは抗ＣＤ３に連結された抗ＣＬＤ１８抗体は、ＩｇＧまたはＩｇＡ受容体特異的結合物質と共に使用し得る。
本発明の二重特異性および多重特異性分子はまた、細胞表面上の受容体をキャップするまたは受容体を排除することなどによって、エフェクター細胞上のＦｃγＲまたはＦｃαＲレベルを調節するために使用できる。抗Ｆｃ受容体の混合物もこのために使用できる。
補体結合部位を有する本発明の組成物（たとえば抗体、多重特異性および二重特異性分子および免疫複合体）、たとえば補体に結合するＩｇＧ１、ＩｇＧ２またはＩｇＧ３またはＩｇＭからの部分も、補体の存在下で使用できる。
１つの実施形態では、本発明の結合物質と適切なエフェクター細胞による、標的細胞を含む細胞の集団のエクスビボ治療は、補体または補体を含む血清の添加によって補足できる。本発明の結合物質で被覆された標的細胞の食作用は、補体タンパク質の結合によって改善され得る。
もう１つの実施形態では、本発明の組成物で被覆された標的細胞は、補体によっても溶解され得る。さらにもう１つの実施形態では、本発明の組成物は補体を活性化しない。
本発明の組成物はまた、補体と共に投与することができる。
従って、抗体、多重特異性または二重特異性分子および血清または補体を含む組成物は本発明の範囲内である。これらの組成物は、補体が抗体、多重特異性または二重特異性分子にごく近接して位置するという点で有利である。
あるいは、本発明の抗体、多重特異性または二重特異性分子および補体または血清は、別々に投与することができる。標的細胞への本発明の組成物の結合は、ＣＬＤ１８抗原−抗体複合体の、細胞膜の脂質ラフトへの移行を生じさせる。そのような移行は、ＣＤＣを効率的に活性化および／または増強し得る高密度の抗原−抗体複合体を形成する。
本発明の抗体組成物（たとえば抗体および免疫複合体）と使用のための指示書を含むキットも本発明の範囲内である。キットは、免疫抑制試薬、細胞傷害性物質または放射性毒性物質などの１またはそれ以上の付加的な試薬、または１またはそれ以上の付加的な本発明の抗体（たとえば相補的活性を有する抗体）をさらに含み得る。
従って、本発明の抗体組成物で治療される患者は、（本発明の抗体の投与前、抗体の投与と同時に、または投与後に）本発明の抗体の治療効果を増強するまたは上昇させる、細胞傷害性物質または放射性毒性物質などのもう１つ別の治療薬を付加的に投与され得る。
他の実施形態では、被験者は、たとえば被験者をサイトカインで治療することにより、ＦｃγまたはＦｃα受容体の発現または活性を調節する、たとえば増強するまたは阻害する物質で付加的に治療され得る。
好ましいサイトカインは、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、インターフェロンγ（ＩＦＮ−γ）、および腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）を含む。
ここで述べる抗体および医薬組成物の治療効果を上昇させるための他の重要な物質は、分枝グルコース残基のホモ多糖であり、様々な植物および微生物、たとえば細菌、藻類、真菌、酵母および穀物によって生産されるβ−グルカンである。生物によって生産されるβ−グルカンのフラグメントも使用し得る。
好ましくは、β−グルカンは、骨格グルコース単位の少なくとも一部、たとえば骨格グルコース単位の３−６％がβ（１，６）分枝などの分枝を有する、β（１，３）グルコースのポリマーである。
特定実施形態では、本発明は、被験試料および対照試料を、ＣＬＤ１８に特異的に結合する抗体と、抗体またはその部分とＣＬＤ１８の間での複合体の形成を許容する条件下で接触させることを含む、試料中のＣＬＤ１８抗原の存在を検出する、またはＣＬＤ１８抗原の量を測定するための方法を提供する。
その後、複合体の形成を検出し、対照試料と比較して被験試料との間での複合体形成の差が被験試料中のＣＬＤ１８抗原の存在を指示する。
さらにもう１つの実施形態では、本発明は、インビボまたはインビトロでＣＬＤ１８発現細胞の存在を検出するまたはＣＬＤ１８発現細胞の量を測定するための方法を提供する。
その方法は、（ｉ）検出マーカーに複合した本発明の組成物を被験者に投与すること；（ｉｉ）ＣＬＤ１８発現細胞を含む領域を同定するために、被験者を前記検出マーカーを検出するための手段に暴露することを含む。
上述した方法は、特に、癌疾患などのＣＬＤ１８関連疾患を診断するためおよび／またはＣＬＤ１８関連疾患の局在化のために有用である。好ましくは、対照試料中のＣＬＤ１８、好ましくはＣＬＤ１８−Ａ２の量を上回る被験試料中のＣＬＤ１８、好ましくはＣＬＤ１８−Ａ２の量は、試料が由来する被験者、特にヒトにおけるＣＬＤ１８関連疾患の存在を指示する。
さらにもう１つの実施形態では、本発明の免疫複合体は、化合物（たとえば治療薬、標識、細胞毒素、放射性毒素、免疫抑制剤等）を、そのような化合物を抗体に結合することによって、その表面にＣＬＤ１８を発現する細胞に標的するために使用できる。
それゆえ本発明はまた、循環腫瘍細胞などの、ＣＬＤ１８を発現する細胞をエクスビボまたはインビトロで局在化するための方法を提供する。
本発明は、以下の態様を含む。
１． ＣＬＤ１８に結合する能力を有し、およびＣＬＤ１８を発現する細胞の死を媒介する抗体。
２． ＣＬＤ１８Ａ１およびＣＬＤ１８Ａ２に結合する、前記１．に記載の抗体。
３． ＣＬＤ１８Ａ２に結合するが、ＣＬＤ１８Ａ１には結合しない、前記１．に記載の抗体。
４． 前記細胞死が、前記細胞によって発現されるＣＬＤ１８への前記抗体の結合によって誘導される、前記１．から３．のいずれかに記載の抗体。
５． 前記細胞死が、前記細胞によって発現されるＣＬＤ１８Ａ２への前記抗体の結合によって誘導される、前記１．から４．のいずれかに記載の抗体。
６． 前記細胞死が、前記細胞によって発現されるＣＬＤ１８Ａ１への前記抗体の結合によって誘導されない、前記１．から５．のいずれかに記載の抗体。
７． ＣＬＤ１８を発現する前記細胞が癌細胞である、前記１．から６．のいずれかに記載の抗体。
８． 癌細胞が、腫瘍形成性胃、食道、膵臓および肺癌細胞から成る群より選択される、前記７．に記載の抗体。
９． 補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）媒介性溶解、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）媒介性溶解、アポトーシス、同型接着、および／または食作用を誘導することによって前記細胞死を媒介する、前記１．から８．のいずれかに記載の抗体。
１０． ＣＤＣ媒介性溶解および／またはＡＤＣＣ媒介性溶解を誘導することによって前記細胞死を媒介する、前記１．から９．のいずれかに記載の抗体。
１１． 前記細胞のＣＤＣ媒介性溶解を誘導しない、前記１．から１０．のいずれかに記載の抗体。
１２． 前記ＡＤＣＣ媒介性溶解が、単球、単核細胞、ＮＫ細胞およびＰＭＮから成る群より選択されるエフェクター細胞の存在下で起こる、前記９．から１１．のいずれかに記載の抗体。
１３． 前記食作用がマクロファージによる、前記９．から１２．のいずれかに記載の抗体。
１４． モノクローナル、キメラまたはヒト化抗体、または抗体のフラグメントである、前記１．から１３．のいずれかに記載の抗体。
１５． ＩｇＧ１およびＩｇＧ２、好ましくはＩｇＧ２ａおよびＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＭ、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２、分泌性ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥ抗体から成る群より選択される、前記１．から１４．のいずれかに記載の抗体。
１６． ＣＬＤ１８Ａ２が配列番号２に従ったアミノ酸配列を有する、前記２．から１５．のいずれかに記載の抗体。
１７． ＣＬＤ１８Ａ１が配列番号８に従ったアミノ酸配列を有する、前記２．から１６．のいずれかに記載の抗体。
１８． 生細胞の表面に存在するＣＬＤ１８の天然エピトープに結合する、前記１．から１７．のいずれかに記載の抗体。
１９． 癌細胞、特に胃癌細胞に特異的である、前記１．から１８．のいずれかに記載の抗体。
２０． 前記ＣＬＤ１８が前記細胞の表面で発現される、前記１．から１９．のいずれかに記載の抗体。
２１． 配列番号２、４、６、１６、１８、２０〜２３および２６〜３１から成る群より選択されるアミノ酸配列を有するタンパク質またはペプチド、またはその免疫原性フラグメント、または前記タンパク質またはペプチド、またはその免疫原性フラグメントを発現する核酸または宿主細胞で動物を免疫する工程を含む方法によって得られる、前記１．から２０．のいずれかに記載の抗体。
２２． アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７３７、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３８、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３９、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４０、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４１、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４２、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４３、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４５、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４６、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４７、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４８、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０８、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０９またはＤＳＭ ＡＣＣ２８１０の下で寄託されたクローンによって産生される抗体。
２３． 前記１．から２２．のいずれかに記載の抗体を産生することができるハイブリドーマ。
２４． アクセッション番号ＤＳＭ ＡＣＣ２７３７、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３８、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３９、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４０、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４１、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４２、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４３、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４５、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４６、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４７、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４８、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０８、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０９またはＤＳＭ ＡＣＣ２８１０の下で寄託されたハイブリドーマ。
２５． 治療薬に結合した前記１．から２２．のいずれかに記載の抗体を含む複合体。
２６． 治療薬が毒素、放射性同位体、薬剤または細胞傷害性物質である、前記２５．に記載の複合体。
２７． 前記１．から２２．のいずれかに記載の抗体および／または前記２５．または２６．に記載の複合体、および医薬的に許容される担体を含有する医薬組成物。
２８． 細胞を前記１．から２２．のいずれかに記載の抗体および／または前記２５．または２６．に記載の複合体の有効量と接触させることを含む、ＣＬＤ１８を発現する細胞の増殖を阻害するおよび／または細胞を死滅させる方法。
２９． 前記１．から２２．のいずれかに記載の抗体、前記２５または２６に記載の複合体または前記２７．に記載の医薬組成物を被験者に投与することを含む、ＣＬＤ１８を発現する細胞に関わる疾患または障害を治療するまたは予防する方法。
３０． 疾患または障害が腫瘍関連疾患である、前記２９．に記載の方法。
３１． 腫瘍関連疾患が、胃癌、食道癌、膵癌、肺癌、卵巣癌、結腸癌、肝癌、頭頸部癌、および胆嚢の癌から成る群より選択される、前記３０．に記載の方法。
３２． 前記ＣＬＤ１８がＣＬＤ１８Ａ２である、前記２８．から３１．のいずれかに記載の方法。
３３． 前記ＣＬＤ１８が前記細胞の表面で発現される、前記２８．から３２．のいずれかに記載の方法。
本発明を以下の実施例によってさらに説明するが、これらの実施例は本発明の範囲を限定すると解釈されるべきではない。
１．ＣＬＤ１８に対するマウス抗体の作製
ａ．免疫：
Ｂａｌｂ／ｃまたはＣ５７／ＢＬ６マウスを、ヒトＣＬＤ１８フラグメント（配列番号１５、１６、１７、１８）をコードする真核生物発現ベクターで免疫した。プラスミドＤＮＡ５０μｇまたは２５μｇを、Ｓｅｔ１のモノクローナル抗体の作製のために１日目と１０日目に、あるいはアジュバント、たとえばＣｐＧの存在下でＳｅｔ２のモノクローナル抗体の作製のために１日目と９日目、１日目と１１日目、または１日目、１６日目および３６日目に四頭筋に（筋肉内、ｉ．ｍ．）注射した（詳細については表１ｂ参照）。
ＣｐＧならびにＣＬＤ１８Ａ２（配列番号１）単独でトランスフェクトしたまたは付加的にマウス可溶性ＣＤ４０ＬをコードするＲＮＡでコトランスフェクトした細胞を筋肉内に注射し、ＰＥＩ−Ｍａｎを筋肉内または腹腔内に注射した。
マウスの血清中のヒトＣＬＤ１８に対する抗体の存在を、使用した特定免疫プロトコールに依存して１６日目から４３日目の間に免疫蛍光顕微鏡検査によって観測した。免疫蛍光は、ヒトＣＬＤ１８Ａ２（配列番号１、２）と蛍光レポータータンパク質を含む融合構築物をコードする核酸で一過性にトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を使用して測定した。
検出可能な免疫応答を有するマウス（図１）を、Ｓｅｔ１のモノクローナル抗体の作製のために脾摘出術の３日前に追加免疫するか、あるいはＳｅｔ２のモノクローナル抗体の作製のために脾摘出術の３日前に、３日前と２日前に、または４日前、３日前および２日前に、ヒトＣＬＤ１８Ａ２（配列番号１、２）をコードする核酸で一過性にトランスフェクトした５×１０７または１×１０８ＨＥＫ２９３細胞の腹腔内注射によって追加免疫した（詳細については表１ｂ参照）。表１ａでは、それぞれのモノクローナル抗体に対して使用した免疫プロトコールを示している。
Figure 0006086894
Figure 0006086894
ｂ．ＣＬＤ１８に対するヒトモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの作製：
標準プロトコールに基づき、マウス脾細胞を単離して、ＰＥＧでマウス骨髄腫細胞系に融合した。生じたハイブリドーマを、次に、ヒトＣＬＤ１８をコードする核酸でトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を使用して、ＦＡＣＳ分析によってＣＬＤ１８特異性を有する免疫グロブリンの産生に関してスクリーニングした。
免疫マウスからの脾リンパ球の単一細胞懸濁液を、５０％ＰＥＧ（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ，ＣＲＬ ７３８６４１）を使用して２：１の比率でＰ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１非分泌性マウス骨髄腫細胞（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ １５９７）と融合した。
細胞を平底マイクロタイタープレートに約３×１０４細胞／ウエルで塗布し、その後、１０％ウシ胎仔血清、２％ハイブリドーマ融合物およびクローニング用添加剤（ＨＦＣＳ，Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ，ＣＲＬ １ ３６３ ７３５）プラス１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、０．０５５ｍＭ ２−メルカプトエタノール、５０μｇ／ｍｌゲンタマイシンおよび１×ＨＡＴ（Ｓｉｇｍａ，ＣＲＬ Ｈ０２６２）を含む選択培地において約２週間インキュベートした。
１０〜１４日後、個々のウエルをフローサイトメトリーによって抗ＣＬＤ１８モノクローナル抗体に関してスクリーニングした。抗体分泌ハイブリドーマを再びプレートし、スクリーニングして、抗ＣＬＤ１８モノクローナル抗体に関してまだ陽性である場合は、限界希釈によってサブクローニングした。
次に、特性決定のために組織培養培地中で少量の抗体を作製するため、安定なサブクローンをインビトロで培養した。親細胞の反応性を保持する（ＦＡＣＳによって）、各々のハイブリドーマから少なくとも１個のクローンを選択した。各クローンについて９バイアルの細胞バンクを生成し、液体窒素中で保存した。
ｃ．ＣＬＤ１８に結合するモノクローナル抗体の選択：
抗体のアイソタイプを決定するため、アイソタイプＥＬＩＳＡを実施した。同定したＣＬＤ１８反応性モノクローナル抗体のＩｇサブクラスを決定するためにｍｏｕｓｅ ｍｏｎｏＡＢ ＩＤ Ｋｉｔ（Ｚｙｍｅｄ，ＣＲＬ ９０−６５５０）あるいはＩｓｏＳｔｒｉｐ Ｍｏｕｓｅ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｉｓｏｔｙｐｉｎｇ Ｋｉｔ（Ｒｏｃｈｅ、カタログ番号１４９３０２７）を使用した。
Ｓｅｔ１と定義された、以下の抗体を発現する、１９のハイブリドーマ細胞系を作製し、６つはＣＬＤ１８Ａ２−ループＤ３（配列番号１７、１８）で免疫したＣ５７／ＢＬ６マウスからの細胞の融合物からであり、１３はＣＬＤ１８Ａ２−ループ１（配列番号１５、１６）で免疫したＢａｌｂ／ｃマウスからの細胞の融合物からであった：
２４Ｈ５、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２、６１Ｃ２、７５Ｂ８、８５Ａ３、９Ｅ８、１９Ｂ９
２４Ｈ５：マウスモノクローナルＩｇＧ２ｂκ抗体、１８２−Ｄ７５８−０３４
２６Ｂ５：マウスモノクローナルＩｇＧ２ａκ抗体、１８２−Ｄ７５８−０３５、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４５
２６Ｄ１２：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ７５８−０３６、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４６
２８Ｄ１０：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ７５８−０４０、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４７
３７Ｇ１１：マウスモノクローナルＩｇＧ２ａκ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０５５、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３７
３７Ｈ８：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０５６、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３８
３８Ｇ５：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０５７、ＤＳＭ ＡＣＣ２７３９
３８Ｈ３：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０５８、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４０
３９Ｆ１１：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０５９、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４１
４１Ｃ６：マウスモノクローナルＩｇＧ２ａκ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０６０
４２Ｅ１２：マウスモノクローナルＩｇＧ２ａκ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０６１、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４８
４３Ａ１１：マウスモノクローナルＩｇＧ２ａκ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０６２、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４２
４４Ｅ１０：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０６３
４７Ｄ１２：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０６４
６１Ｃ２：マウスモノクローナルＩｇＧ２ｂκ抗体、１８２−Ｄ１１０６−０６７、ＤＳＭ ＡＣＣ２７４３
７５Ｂ８：マウスモノクローナルＩｇＭκ抗体、１８２−Ｄ７５６−００１
８５Ａ３：マウスモノクローナルＩｇＭκ抗体、１８２−Ｄ７５６−００２
９Ｅ８：マウスモノクローナルＩｇＭκ抗体、１８２−Ｄ７５８−０１１
１９Ｂ９：マウスモノクローナルＩｇＭκ抗体、１８２−Ｄ７５８−０２４
Ｓｅｔ２と定義された、以下の抗体を発現する、５つのハイブリドーマ細胞系を作製し、１つはＣＬＤ１８Ａ２−ループＤ３（配列番号１７、１８）とＣＬＤ１８Ａ２−ループＤ１（配列番号１５、１６）で免疫したＢａｌｂ／ｃマウスからの細胞の融合物からであり、４つはＣＬＤ１８Ａ２−ループＤ１（配列番号１５、１６）で免疫したＢａｌｂ／ｃマウスからの細胞の融合物からであった：
４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２、１７５Ｄ１０
４５Ｃ１：マウスモノクローナルＩｇＧ２ａκ抗体、１８２−Ｄ７５８−１８７
１２５Ｅ１：マウスモノクローナルＩｇＧ２ａκ抗体、１８２−Ｄ１１０６−２７９、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０８
１６３Ｅ１２：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−２９４、ＤＳＭ ＡＣＣ２８０９
１６６Ｅ２：マウスモノクローナルＩｇＧ３κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−３０８
１７５Ｄ１０：マウスモノクローナルＩｇＧ１κ抗体、１８２−Ｄ１１０６−３６２、ＤＳＭ ＡＣＣ２８１０。
２．モノクローナル抗体の作製
ＣＬＤ１８に対して反応性のモノクローナル抗体の作製と精製：
機能的特性決定のためにｍｇ量の抗体を作製するため、ハイブリドーマ細胞を２×１０６細胞／ｍｌで透析バイオリアクター（ＣＥＬＬｉｎｅ ＣＬ１０００，Ｉｎｔｅｇｒａ，Ｃｈｕｒ，ＣＨ）に接種した。
抗体含有上清を週に１回採集した。マウスモノクローナル抗体を、Ｍｅｌｏｎ Ｇｅｌ（Ｐｉｅｒｃｅ，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＵＳＡ）を用いて精製し、硫酸アンモニウム沈殿によって濃縮するか、あるいはＦＰＬＣを用いてプロテインＡによって精製した。
抗体濃度および純度をＢＣＡアッセイによって測定し、ドデシル硫酸ナトリウムゲル電気泳動およびクマシー染色によって純度を確認した。
３．モノクローナル抗体の結合特性
ａ．ＷＢ、ＩＦにおけるトランスフェクタントの品質管理：
ＣＬＤ１８Ａ２発現細胞を生成するため、ＨＥＫ２９３細胞またはＣＨＯ細胞を、ＣＬＤ１８Ａ２（配列番号１、２）またはＣＬＤ１８Ａ２−ｍｙｃ（配列番号３、４）をコードする核酸でトランスフェクトした。
ＨＥＫ２９３細胞をＣＬＤＮ１８Ａ２−ｍｙｃ（配列番号３、４）でトランスフェクトするかまたはトランスフェクトしないままにした。トランスフェクションの２４時間後、細胞を採集し、溶解して、ドデシル硫酸ナトリウムゲル電気泳動に供した。
ゲルをブロットし、マウス抗ｍｙｃ抗体で染色した。ペルオキシダーゼ標識抗マウス抗体とのインキュベーション後、ブロットをＥＣＬ試薬で展開し、ＬＡＳ−３０００イメージャー（Ｆｕｊｉ）を使用して視覚化した。
トランスフェクトした細胞においてのみＣＬＤ１８−ｍｙｃの予想分子量のバンドが認められ、陰性対照では認められなかった（図２）。
ＣＨＯ細胞をＣＬＤ１８Ａ２（配列番号１、２）でトランスフェクトし、チェンバースライドで２４時間増殖させた。
細胞をメタノールで固定し、ＣＬＤ１８に対するウサギポリクローナル抗体１μｇ／ｍｌにて２５℃で６０分間染色した。洗浄後、細胞をＡｌｅｘａ４８８標識ヤギ抗ウサギＩｇＧ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）で染色し、蛍光顕微鏡検査によって評価した。
図３は、細胞膜上でＣＬＤ１８を発現するトランスフェクトＣＨＯ細胞ならびに非トランスフェクト細胞を示す。これらのＣＬＤ１８を異種性に発現する細胞を、抗体結合の特異性を試験する以下のアッセイのために使用した。
ｂ．ＣＬＤ１８に結合するモノクローナル抗体の選択／フローサイトメトリーによる一次スクリーニング：
ＨＥＫ２９３細胞を、アッセイの４０時間前にヒトＣＬＤ１８Ａ２（配列番号１、２）および蛍光レポータータンパク質をコードする発現ベクターでコトランスフェクトするか、あるいはヒトＣＬＤ１８Ａ２を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２）を使用して、ヨウ化プロピジウム（ＰＩ）で対比染色した。
２ｍＭ ＥＤＴＡ／ＰＢＳを使用して細胞を分離した後、細胞を完全増殖培地で洗い、Ｕ底マイクロタイタープレートに約１〜５×１０５細胞／ウエルで塗布した。細胞をハイブリドーマ上清と共に４℃で３０分間インキュベートし、次いで１％熱不活性化ＦＢＳ／ＰＢＳで２回の洗浄工程を実施して、最後にＡＰＣまたはＡｌｅｘａ６４７複合抗マウスＩｇＧ特異的二次抗体と共にインキュベートした。
２回の洗浄工程後、コトランスフェクトした細胞をＣｅｌｌＦＩＸ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）で固定した。ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙを使用してフローサイトメトリーによって結合を評価した。蛍光マーカー発現を横軸にプロットし、抗体結合を縦軸にプロットする。
モノクローナル抗体２４Ｈ５（図４Ａ、Ｑ２内の細胞）、８５Ａ３（図４Ｂ）、１７５Ｄ１０、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および４５Ｃ１（図４Ｃ、Ｑ１内の細胞）を含むハイブリドーマ上清に関して例示されるように、すべてのマウス抗体、２４Ｈ５、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２、６１Ｃ２、７５Ｂ８、８５Ａ３、９Ｅ８、１９Ｂ９、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０が、蛍光マーカー発現細胞（図４、Ｑ２内の細胞）の表面に特異的に結合することが検出された。
ｃ．ＭｙｃまたはＨＡ標識ＣＬＤ１８Ａ２に結合する抗体の比較：
同定されたＣＬＤ１８特異的モノクローナル抗体の結合特性をさらに規定した。それゆえ、エピトープタグの挿入によって作製したＣＬＤ１８Ａ２突然変異体へのモノクローナル抗体結合を分析した。
ＣＬＤ１８Ａ２−ＨＡ（配列番号６）はＣＬＤ１８Ａ２−ループ１内にＨＡエピトープタグを含み、一方ＣＬＤ１８Ａ２−Ｍｙｃ（配列番号４）はＣＬＤ１８Ａ２−ループ２に挿入されたＭｙｃエピトープタグを含む。
これらのタグの挿入はエピトープの破壊を引き起こすので、同定されたモノクローナル抗体を、突然変異体のいずれかへの結合の喪失によって分類することができる。蛍光マーカーとヒトＣＬＤ１８Ａ２で、または蛍光マーカーとＣＬＤ１８Ａ２−ＨＡで、または蛍光マーカーとＣＬＤ１８Ａ２−Ｍｙｃで一過性にコトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を、ＣＬＤ１８特異的モノクローナル抗体を含むハイブリドーマ上清と共に４℃で３０分間インキュベートし、次いでＡｌｅｘａ６４７複合抗マウスＩｇＧ二次抗体と共にインキュベートした。ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙでの分析の前に、ＣｅｌｌＦＩＸを用いて細胞を固定した。
図５において２４Ｈ５、９Ｅ８、２６Ｂ５および１９Ｂ９に関して例示されるように、モノクローナル抗体はそれらの結合特性に基づいて４つの異なる群に分けられる：（ｉ）非修飾ＣＬＤ１８Ａ２ならびにＣＬＤ１８Ａ２−ＨＡおよびＣＬＤ１８Ａ２−Ｍｙｃに結合する抗体、たとえば２４Ｈ５（図５Ａ）、または（ｉｉ）ＣＬＤ１８Ａ２−ＨＡに結合しない抗体、たとえば９Ｅ８（図５Ｂ）、または（ｉｉｉ）ＣＬＤ１８Ａ２−Ｍｙｃに結合しない抗体、たとえば２６Ｂ５（図５Ｃ）、または（ｉｖ）ＣＬＤ１８Ａ２−ＨＡにもＣＬＤ１８Ａ２−Ｍｙｃにも結合しない抗体、たとえば１９Ｂ９（図５Ｄ）。
ｄ．フローサイトメトリーによるヒトＣＬＤ１８Ａ１およびＣＬＤ１８Ａ２トランスフェクタントへの抗体結合の比較：
同定されたモノクローナル抗体のＣＬＤ１８Ａ２アイソフォームへの結合特異性をフローサイトメトリーによって分析した。
ヒトＣＬＤ１８Ａ２を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２）およびヒトＣＬＤ１８Ａ１（配列番号７、８）を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ１）を、モノクローナル抗体を含むハイブリドーマ上清と共に４℃で３０分間インキュベートし、次いでＡｌｅｘａ６４７複合抗マウスＩｇＧ二次抗体と共にインキュベートして、細胞を固定するかあるいは固定せずにＰＩ対比染色した。ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙを使用してフローサイトメトリーによって結合を評価した。
図６は、２４Ｈ５、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２、６１Ｃ２、７５Ｂ８、８５Ａ３、９Ｅ８、１９Ｂ９、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２、１７５Ｄ１０からなるパネル(panel)において同定された２つの群のモノクローナル抗体についての例を示す：（ｉ）モノクローナル抗体４３Ａ１１、４５Ｃ１および１６３Ｅ１２は、ヒトＣＬＤ１８Ａ２に特異的に結合するが、ヒトＣＬＤ１８Ａ１には結合せず（図６Ａ、Ｂ）、および（ｉｉ）モノクローナル抗体３７Ｈ８は、両方のヒトアイソフォームに結合する（図６Ａ）。
ｅ．免疫蛍光顕微鏡検査によるヒトＣＬＤ１８Ａ１およびＣＬＤ１８Ａ２トランスフェクタントへの抗体結合の比較：
ＨＥＫ２９３細胞を、蛍光レポーターとＣＬＤ１８Ａ１（配列番号８）またはＣＬＤ１８Ａ２（配列番号２）の融合タンパク質をコードする発現ベクターで一過性にトランスフェクトし、チェンバースライドで増殖させた。
細胞を、固定せずにまたはパラホルムアルデヒドで固定した後、モノクローナル抗体含有組織培養上清にて３７℃で３０分間染色した。洗浄後、細胞をＡｌｅｘａ５５５標識抗マウスＩｇＧ抗体（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ）で染色した。抗体の結合を蛍光顕微鏡検査によって評価した。
図７に示すように、抗体３７Ｇ１１はＣＬＤ１８Ａ２と特異的に反応したが（図７Ａ）、ＣＬＤ１８Ａ１（図７Ｂ）とは反応しなかった。これに対し、抗体２６Ｂ５は、ＣＬＤ１８Ａ２およびＣＬＤ１８Ａ１の両方と反応した（図８）。
抗体２４Ｈ５、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２、６１Ｃ２、７５Ｂ８、８５Ａ３、９Ｅ８、１９Ｂ９に関して、生細胞とパラホルムアルデヒド固定細胞の染色の間で明らかな相違が認められた。細胞が固定されていたとき、抗体は均一な膜染色を形成した（図７Ｃ、８Ｃ、８Ｄ）。
これに対し、これらの抗体と生細胞のインキュベーションは、斑点様の染色パターンとして目に見える、タンパク質クラスターの生成を導く（図７Ａ、８Ａ、８Ｂ）。これは、すべての抗体が、生細胞の表面で認められるように天然エピトープに結合することを示す。
ｆ．内因性発現細胞系の測定：
ＣＬＤ１８Ａ２の発現に関して細胞系をスクリーニングするため、ＣＬＤ１８Ａ２遺伝子特異的プライマー対（配列番号１１、１２）をＲＴ−ＰＣＲ分析において使用した。ヒト胃癌細胞系ＮＣＩ−ＳＮＵ−１６（ＡＴＣＣ ＣＲＬ−５９７４）、ＮＵＧＣ−４（ＪＣＲＢ０８３４）およびＫＡＴＯ−ＩＩＩ（ＡＴＣＣ ＨＴＢ−１０３）、およびヒト膵腺癌細胞系ＤＡＮ−Ｇ（ＤＳＭＺ ＡＣＣ２４９）は、ＣＬＤ１８の堅固な内因性発現を示すことが認められた（図９）。発現は、ＣＬＤ１８に対するウサギポリクローナル血清での染色によってタンパク質レベルで確認された。
ｇ．ＣＬＤ１８特異的抗体での内因性発現細胞系の染色および免疫蛍光分析：
ＤＡＮ−Ｇ、ＳＮＵ−１６、ＮＵＧＣ−４およびＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞をチェンバースライド上で標準条件下にて増殖させた。細胞を固定しないかあるいはメタノールで固定して、それぞれの抗体で染色した。
抗体２４Ｈ５、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２、６１Ｃ２、７５Ｂ８、８５Ａ３、９Ｅ８、１９Ｂ９に関して、図１０、１１および１２Ａに例示されるように細胞表面の染色が認められた。抗体４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０に関して、天然エピトープ認識を検定し、図１２Ｂに示すように非固定細胞で細胞表面染色が認められた。
抗体のサブグループは、主として細胞間接着面でまたは他の細胞に隣接しない膜の自由部分で、細胞膜の均一な染色を示した。他の抗体は細胞膜全体の分離したフォーカス(discrete foci)およびアグリゲート(aggregates)を染色したことから、それぞれの抗体は、ＣＬＤ１８の同型または異型結合によって隠されているエピトープならびにあらかじめ形成された密着結合内のアクセス可能なＣＬＤ１８エピトープを含む、異なるエピトープに結合することが明らかとなる。
ｈ．フローサイトメトリーによる内因性発現細胞系の染色：
ＫＡＴＯ−ＩＩＩおよびＮＵＧＣ−４生細胞上で構成的に発現されるＣＬＤ１８Ａ２の表面発現をフローサイトメトリーによって分析した。
これは、モノクローナル抗体６１Ｃ２または１６３Ｅ１２で染色し、次いでＡｌｅｘａ６４７複合抗マウスＩｇＧ二次抗体と共にインキュベートして、細胞を固定するかあるいは固定しないＫＡＴＯ−ＩＩＩおよびＮＵＧＣ−４細胞によって例示される。ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙを使用してフローサイトメトリーによって結合を評価した。
図１３は、ＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞の少なくとも７０．３％への６１Ｃ２の強力な結合およびＫＡＴＯ−ＩＩＩおよびＮＵＧＣ−４細胞上のＣＬＤ１８Ａ２への１６３Ｅ１２の強力な結合を示す。
ｉ．マウスとヒトのＣＬＤ１８Ａ１およびＣＬＤ１８Ａ２の配列アラインメント
配列比較においてヒトＣＬＤ１８Ａ２（ＮＰ＿００１００２０２６）とヒトＣＬＤ１８Ａ１（ＮＰ＿０５７４５３）はＮ末端が異なり、マウスＣＬＤ１８変異体（ＮＰ＿０６２７８９およびＡＡＬ１５６３６）は分子間で高い相同性と配列変異部位を示す（図１４参照）。
ｊ．フローサイトメトリーによって分析したマウスＣＬＤ１８Ａ１およびマウスＣＬＤ１８Ａ２と抗体の反応性：
同定されたモノクローナル抗体のマウスＣＬＤ１８Ａ２およびマウスＣＬＤ１８Ａ１への結合をフローサイトメトリーによって分析した。蛍光マーカーとマウスＣＬＤ１８Ａ２（配列番号３３、３５）で、または蛍光マーカーとマウスＣＬＤ１８Ａ１（配列番号３６、３７）で一過性にコトランスフェクトしたＨＥＫ２９３細胞を、ヒトＣＬＤ１８特異的モノクローナル抗体３８Ｇ５、３８Ｈ３、３７Ｇ１１、４５Ｃ１および１６３Ｅ１２をそれぞれ含むハイブリドーマ上清と共に４℃で３０分間インキュベートし、次いでＡｌｅｘａ６４７複合抗マウスＩｇＧ二次抗体とのインキュベーションおよび細胞の固定を実施した。ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙを使用してフローサイトメトリーによって結合を評価した。
図１５は３つの異なる結合プロフィールを示す：３８Ｇ５および４５Ｃ１はマウスＣＬＤ１８アイソフォームのいずれにも結合せず、３７Ｇ１１および１６３Ｅ１２はマウスＣＬＤ１８Ａ２に結合するがマウスＣＬＤ１８Ａ１には結合せず、および３８Ｈ３はマウスＣＬＤ１８Ａ１およびＣＬＤ１８Ａ２に結合する。これらの抗体は、前臨床試験においてＣＬＤ１８モノクローナル抗体の潜在的毒性を測定するための貴重なツールである。
全体としてこれらのデータは、ＣＬＤ１８に対して作製した本発明のモノクローナル抗体２４Ｈ５、２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２、６１Ｃ２、７５Ｂ８、８５Ａ３、９Ｅ８、１９Ｂ９、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０が、ヒトＣＬＤ１８の種々のエピトープおよびトポロジーに対して多様な結合特性を示すことを明らかにする。
実施例３ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｇ、ｈおよびｊで述べる種々の性質の組合せは、モノクローナル抗体をそのような種々のクラスに分類するために使用できる。
４．免疫組織化学（ＩＨＣ）
配列番号２１のペプチドでの免疫によって生成されるＣＬＤ１８Ａ２エピトープ特異的抗体を、ＣＬＤ１８Ａ２発現の免疫組織化学的特性決定のために使用した。正常および腫瘍組織の包括的パネル(comprehensive panel)に由来するパラフィン包埋組織切片をタンパク質発現および局在化分析のために使用した。
胃以外のいかなる他の正常器官組織においても有意の発現は検出されなかった（表２参照、図１６Ａ）。これに対し、ＣＬＤ１８Ａ２発現は、胃癌および肺癌を含む種々の癌において免疫組織化学によって確認された（図１６Ｂ）。
興味深いことに、胃粘膜におけるＣＬＤ１８Ａ２タンパク質の発現は、胃底と胃小窩領域の胃上皮の最終的に分化した細胞に限定された。これに対し、粘膜全体を補充する、胃粘膜の頸部領域の細胞、特に峡部の胃幹細胞はＣＬＤ１８Ａ２を発現しない（図１６Ｃ）。
Figure 0006086894
モノクローナル抗体３９Ｆ１１を免疫組織化学的ＣＬＤ１８Ａ２特異的試験のために使用した。図１７Ａに示すように、胃を除く試験したすべての正常組織で有意の反応性は検出されず（図１７Ａ）、一方胃癌および肺癌は強い陽性のままである（図１７Ｂ）。
本発明の抗体のもう１つの群は、胃癌への結合に関して特異的な癌染色パターンを示すが、正常胃組織との反応性を示さない。モノクローナル抗体２６Ｂ５によるそのような染色パターンを図１８Ａに示す。
免疫組織化学を、ＨＥＫ２９３腫瘍細胞系に由来する切片についての１７５Ｄ１０（図１８Ｂ）、４３Ａ１１（図１８Ｃ）、１６３Ｅ１２（図１８Ｄ）および４５Ｃ１（図１８Ｅ）の特異性分析のために使用した：ヒトＣＬＤ１８Ａ２（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２）またはＣＬＤ１８Ａ１（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ１）を安定に発現するＨＥＫ２９３腫瘍細胞系または選択のための抗生物質耐性遺伝子だけを含む発現対照プラスミドでトランスフェクトしたＨＥＫ２９３腫瘍細胞系（ＨＥＫ２９３−ｍｏｃｋ）を、固形腫瘍を形成するためにマウスに異種移植した。ｍｏｃｋでトランスフェクトしたＨＥＫ２９３異種移植腫瘍では発現を検出できなかった。これに対し、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２異種移植腫瘍および胃癌標本では強い均一な膜染色が認められた。
５．補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）
ａ．フローサイトメトリーによって測定したＳｅｔ１のモノクローナル抗体のＣＤＣ：
補体溶解のための血漿を、健常志願者からの血液をＳ−Ｍｏｎｏｖｅｔｔｅ−ＥＤＴＡ Ｖａｃｕｔａｉｎｅｒチューブ（Ｓａｒｓｔｅｄｔ，Ｎuｒｍｂｒｅｃｈｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）に採取し、それを６００ｇで２０分間遠心分離することによって調製した。血漿を採集し、−２０℃で保存した。
第一セットの実験では、ハイブリドーマ上清を、ヒトＣＬＤ１８Ａ２を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２）に対して補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）を誘導するそれらの能力に関して分析した。細胞を、モノクローナル抗体８５Ａ３、２８Ｄ１０、２４Ｈ５または２６Ｄ１２をそれぞれ含むハイブリドーマ上清と共に室温で２０分間インキュベートした。
遠心分離（４５０ｇで５分間）後、上清を除き、（あらかじめ３７℃に温めた）ＤＭＥＭ中の２０％ヒト血漿を細胞に添加して、３７℃でさらに２０分間インキュベートした。その後、ヨウ化プロピジウム（ＰＩ）染色法を用いてＦＡＣＳで細胞溶解を測定した。
ＰＩを２．５μｇ／ｍｌの最終濃度まで添加した。フローサイトメトリーのため、ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ，ＣＡ）を使用した。前方側方散乱（ＦＣＳ）閾値の調整によって細胞デブリを排除した状態での分析のために少なくとも１００００事象を収集した。溶解細胞（ＰＩ陽性細胞）のパーセンテージを図１９に示す。
モノクローナル抗体８５Ａ３、２８Ｄ１０および２６Ｄ１２は、それぞれＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞の３３．５％、３８．２％および３９．２％の溶解を誘導したが、２４Ｈ５によって媒介されたＣＤＣは１９．３％だけであった。
ｂ．Ｓｅｔ１のモノクローナル抗体のＣＤＣ
第二セットの実験では、ＣＬＤ１８Ａ２発現細胞へのＣＤＣを誘導するモノクローナル抗体の特異性を分析した。それゆえ、ヒトＣＬＤ１８Ａ２に特異的に結合するかまたはヒトＣＬＤ１８Ａ１にも結合する抗体のセットを、ヒトＣＬＤ１８Ａ２（ＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２）またはヒトＣＬＤ１８Ａ１（ＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ１）で安定にトランスフェクトしたＣＨＯ細胞に対するＣＤＣ誘導に関して試験した。
ＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２およびＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ１細胞をアッセイの２４時間前に、組織培養平底マイクロタイタープレートに３×１０４細胞／ウエルの密度で接種した。その翌日増殖培地を除き、細胞を、モノクローナル抗体２４Ｈ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０、４７Ｄ１２および６１Ｃ２をそれぞれ含む、１０μｇ／ｍｌの濃度に調整したハイブリドーマ上清と共に三重反復で（ｉｎ ｔｒｉｐｌｉｃａｔｅ）インキュベートした。
対照細胞は、それぞれバックグラウンド溶解と最大溶解の測定のために増殖培地または０．２％サポニンを含む増殖培地と共にインキュベートした。室温で２０分間のインキュベーション後、上清を除き、（あらかじめ３７℃に温めた）ＤＭＥＭ中の２０％ヒト血漿を細胞に添加して、３７℃でさらに２０分間インキュベートした。
次に、上清を、２．５μｇ／ｍｌ臭化エチジウムを含むＰＢＳに交換し、５２０ｎｍでの励起後の蛍光発光をＴｅｃａｎ Ｓａｆｉｒｅを用いて測定した。特異的溶解のパーセンテージを以下のように算定した：特異的溶解％＝（試料蛍光−バックグラウンド蛍光）／（最大溶解蛍光−バックグラウンド蛍光）×１００。
図２０は、モノクローナル抗体２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｈ８、３８Ｈ３および３９Ｆ１１がＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２細胞に対する高いＣＤＣを媒介し、モノクローナル抗体３８Ｇ５が中等度のＣＤＣを媒介し、モノクローナル抗体４１Ｃ６および６１Ｃ２が低いＣＤＣを媒介し、およびモノクローナル抗体２４Ｈ５、３７Ｇ１１、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、４４Ｅ１０および４７Ｄ１２はＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２細胞に対するＣＤＣを媒介しないことを示す。
これに対し、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｈ８、３８Ｈ３、３９Ｆ１１、４１Ｃ６、４７Ｄ１２および６１Ｃ２はフローサイトメトリーおよび免疫蛍光によって測定したときＣＬＤ１８Ａ１にも結合するが、いずれの抗体も、ＣＨＯ−ＣＬＤＡ１細胞に対するＣＤＣを誘導することはできない。
ｃ．モノクローナル抗体の滴定およびＳｅｔ１のモノクローナル抗体を使用したＣＤＣ
低濃度でＣＤＣを誘導する抗ＣＬＤ１８抗体の能力を測定するため、３つの異なる抗体を滴定する実験を実施した。マイクロタイタープレートで増殖するＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２細胞を、それぞれ７５Ｂ８（１００、３０、１０、３および１μｇ／ｍｌ）、３７Ｈ８（１０、３．３および１μｇ／ｍｌ）および２８Ｄ１０（１０、１および０．１μｇ／ｍｌ）の濃度範囲で室温にて２０分間インキュベートした。
上清を除き、（あらかじめ３７℃に温めた）ＤＭＥＭ中の２０％ヒト血漿を細胞に添加して、３７℃でさらに２０分間インキュベートした。Ｔｅｃａｎ Ｓａｆｉｒｅを使用した分析の前に、上清を、２．５μｇ／ｍｌ臭化エチジウムを含むＰＢＳに交換した。
図２１Ａ〜Ｃは、抗体濃度の関数としての特異的溶解のパーセンテージを示す。モノクローナル抗体７５Ｂ８は、１０μｇ／ｍｌで３１．０％のＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２細胞の溶解を誘導し、１μｇ／ｍｌでは６．２％に低下するが（図２１Ａ）、モノクローナル抗体２８Ｄ１０および３７Ｈ８は、１μｇ／ｍｌでまだそれぞれ３９％および２６．５％の特異的溶解を誘導する（図２１Ｂ、Ｃ）。
ｄ．フローサイトメトリーによって測定したＳｅｔ２のモノクローナル抗体のＣＤＣ：
補体溶解のための血清を、健常志願者からの血液をＳｅｒｕｍ−Ｍｏｎｏｖｅｔｔｅ Ｖａｃｕｔａｉｎｅｒチューブ（Ｓａｒｓｔｅｄｔ，Ｎuｒｍｂｒｅｃｈｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）に採取し、それを６００ｇで２０分間遠心分離することによって調製した。血清を採集し、−２０℃で保存した。対照血清は、５６℃で３０分間熱を加えて不活性化した後、保存した。
ハイブリドーマ上清を、ヒトＣＬＤ１８Ａ２を内因性発現するＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞に対して補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）を誘導するそれらの能力に関して分析した。細胞を、モノクローナル抗体４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０をそれぞれ含む粗または精製ハイブリドーマ上清と共に３７℃で３０分間インキュベートした。
ＲＰＭＩ中の２０％ヒト血清を細胞に添加し、３７℃でさらに３０分間インキュベートした。その後、ヨウ化プロピジウム（ＰＩ）染色法を用いてＦＡＣＳで細胞溶解を測定した。ＰＩを２．５μｇ／ｍｌの最終濃度まで添加した。
フローサイトメトリーに関して、ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ，ＣＡ）を使用した。前方側方散乱（ＦＳＣ／ＳＳＣ）閾値の調整によって細胞デブリを排除した状態での分析のために少なくとも１００００事象を収集した。
特異的溶解を以下の式によって算定した：特異的溶解＝（試料中のＰＩ陽性細胞％−熱不活性化血清を含む試料中のＰＩ陽性細胞％）。堅固なＣＤＣ媒介性溶解が、特に１６３Ｅ２に関して認められた。
６．抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）
ハイブリドーマ上清を、ヒトＣＬＤ１８Ａ２（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２）またはヒトＣＬＤ１８Ａ１（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ１）を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞に対して抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を誘導するそれらの能力に関して分析した。
ａ．ヒト末梢血単核細胞の富化：健常ドナーからのヒト血液をリン酸緩衝液（ＰＢＳ）中で２回希釈し、血球をフィコール（リンパ球分離媒質１０７７ｇ／ｍｌ、ＰＡＡ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、カタログ番号Ｊ１５−００４）に重層した。末梢血単核細胞（ＭＮＣ）を間期から収集し、洗浄して、１０％熱不活性化ウシ胎仔血清、２ｍＭ Ｌ−グルタミンを添加したＲＰＭＩ １６４０培地に再懸濁した。
ｂ．ＡＤＣＣの開始：標的細胞を蛍光増強リガンド（ＢＡＤＴＡ，Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ細胞傷害アッセイキットＤＥＬＦＩＡ ＥｕＴＤＡ細胞傷害試薬、カタログ番号ＡＤ０１１６）で３０分間標識した。
１０ｍＭプロベネシド（Ｓｉｇｍａ、カタログ番号Ｐ８７６１）、１０−２０ｍＭ ＨＥＰＥＳおよび１０％熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したＲＰＭＩ−１０で広汎に洗浄した後、細胞を１×１０５細胞／ｍｌに調整した。標識標的細胞、エフェクター細胞（ＭＮＣ）、および１０μｇ／ｍｌの濃度に調整したモノクローナル抗体を含む上清を丸底マイクロタイタープレートに添加した。
単離エフェクター細胞に関しては、１００：１のエフェクター対標的（Ｅ：Ｔ）比を使用した（５０：１および２５：１に関してはデータを示していない）。インキュベーション（２時間、３７℃）後、遠心分離によってアッセイを停止させ、二重試料からの蛍光リガンド放出を時間分解フルオロメーターにおけるユーロピウム計数で測定した。
細胞傷害のパーセンテージを以下の式：特異的溶解％＝（実験放出計数−自然放出計数）／（最大放出計数−自然放出計数）×１００を用いて算定し、最大蛍光リガンド放出はＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（最終濃度０．２５％）を標的細胞に添加することによって測定し、自然放出は抗体およびエフェクター細胞の不在下で測定した。
図２２は、モノクローナル抗体２６Ｂ５、３７Ｈ８、３８Ｇ５、４７Ｄ１２および６１Ｃ２がＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞に対するＡＤＣＣを媒介することを示す。これに対し、これらの抗体は、ＣＬＤ１８Ａ１標的には有意の細胞傷害を示さないかまたは低レベルの細胞傷害だけを示し、ＣＬＤ１８Ａ２特異的ＡＤＣＣを明らかにした（図２３）。
７．増殖阻害
精製マウスモノクローナル抗体を、ヒトＣＬＤ１８Ａ２を内因性に発現するＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞の増殖を阻害するそれらの能力に関して分析した。
ＣＬＤ１８Ａ２を内因性に発現する１×１０４個の標的細胞（ＫＡＴＯ−ＩＩＩ）をモノクローナル抗体約１０μｇの存在下で培養した。
ＤＥＬＦＩＡ Ｃｅｌｌ Ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ、カタログ番号ＡＤ０２００）は、マイクロプレートにおける増殖細胞のＤＮＡ合成の間の５−ブロモ−２'−デオキシウリジン（ＢｒｄＵ）の組込みの測定に基づく非同位体免疫測定法である。組み込まれたＢｒｄＵは、ユーロピウム標識モノクローナル抗体を用いて検出される。
抗体検出を可能にするために、Ｆｉｘ液を使用して細胞を固定し、ＤＮＡ変性する。非結合抗体を洗い流し、ＤＥＬＦＩＡ誘導剤を添加して標識抗体からユーロピウムイオンを溶液中に解離し、溶液中でユーロピウムイオンはＤＥＬＦＩＡ誘導剤の成分と高度蛍光キレートを形成する。検出において時間分解蛍光光度法を使用して測定した蛍光は、各々のウエルの細胞におけるＤＮＡ合成に比例する。
増殖の強力な阻害が、抗体１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、４５Ｃ１、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、２８Ｄ１０および１６６Ｅ２でそれぞれ認められた。増殖の中等度の阻害が、マウス抗体４３Ａ１１、１７５Ｄ１０、４２Ｅ１２、２６Ｄ１２、６１Ｃ２および３８Ｈ３でそれぞれ認められた。
８．治療的マウス異種移植モデルにおける成績
ＣＬＤ１８Ａ２に特異的に結合する同定されたモノクローナル抗体の治療上の潜在的可能性を治療的異種移植モデルにおいて検討した。
ａ．マウスにおけるＣＬＤ１８Ａ２高度発現腫瘍の早期治療
ＳＣＩＤマウスに、高レベルのヒトＣＬＤ１８Ａ２を安定に発現する１×１０７個のＨＥＫ２９３細胞（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２）を皮下的に接種した。ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞におけるヒトＣＬＤ１８Ａ２の発現レベルは、患者からの一次胃癌における発現レベルと同等であった。
各々の実験処置群は１０匹のマウスを含んだ（各群当たりのマウスの数ｎ＝１０）。腫瘍接種の３日後にマウスの治療を開始した。マウスモノクローナル抗体２６Ｂ５、２６Ｄ１２、２８Ｄ１０、３７Ｇ１１、３７Ｈ８、３８Ｇ５、３９Ｆ１１、４２Ｅ１２、４３Ａ１１、３８Ｈ３または６１Ｃ２に相当する精製ハイブリドーマ上清２００μｇを週に１回４週間にわたって静脈内注射した。
あるいはマウスモノクローナル抗体４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２または１７５Ｄ１０を含む精製ハイブリドーマ上清２００μｇを週に２回６週間にわたり、静脈内注射と腹腔内注射を交互に実施して投与した。治療したマウスの腫瘍増殖を週に２回観測した（腫瘍容積＝長さ×幅×幅を２で除してｍｍ３で表わす）。腫瘍が５００ｍｍ３の容積に達するかまたは重症疾病の場合はマウスを死亡させた。
図２４は、本発明の抗体によるＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２腫瘍細胞増殖の堅固な阻害を例示する。図２５Ａおよび２５Ｂは、ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞を使用した早期治療異種移植モデルにおける、本発明の抗体での治療による生存延長を示す。
ｂ．マウスにおける進行したＣＬＤ１８Ａ２高度発現腫瘍の後期開始治療
ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２細胞に基づく同じ腫瘍異種移植モデルを、上述した早期治療ではなく後期治療開始プロトコールとして設計した。腫瘍細胞接種後２７日目にマウスを、各々５〜６匹のマウスを含む試験群に無作為化し、マウスモノクローナル抗体４３Ａ１１、１６３Ｅ１２および１７５Ｄ１０をそれぞれ含む精製ハイブリドーマ上清２００μｇで治療を開始した。
抗体を、週に２回６週間にわたり、静脈内注射と腹腔内注射を交互に実施して投与した。このモデルにおいても、本発明の抗体は腫瘍増殖を阻害することが示された。いくつかの抗体に関しては、これは生存の延長を生じさせた（図２６）。
ｃ．低レベルのＣＬＤ１８Ａ２を発現する腫瘍の早期治療
ＳＣＩＤマウスに、ＣＬＤ１８Ａ２タンパク質を低レベルで構成的に発現する浸潤性ヒト膵腺癌細胞系である、ＤＡＮ−Ｇ腫瘍細胞系の２×１０５細胞を皮下的に接種した。腫瘍移植の３日後にマウス（群当たり１０匹）の治療を開始した：マウスモノクローナル抗体４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２または１７５Ｄ１０を含む精製ハイブリドーマ上清２００μｇを週に２回６週間にわたり、静脈内注射と腹腔内注射を交互に実施して投与した。
インビボでの膵ＤＡＮ−Ｇ腫瘍細胞系の攻撃的で急速な腫瘍増殖のために、マウスは腫瘍性悪液質を発症し、数日以内に死亡した。結果として、治療効果を測定するためのウインドウは狭いが、本発明の抗体によって媒介される腫瘍増殖阻害および生存延長はこのモデルにおいても認められた（図２７Ａおよび２７Ｂ）。
ｄ．本発明の抗体はマウスにおいて副作用を惹起しない
マウスＣＬＤ１８Ａ２特異的プライマー対（センス：ＣＴＡ ＣＣＡ ＡＧＧ ＧＣＴ ＡＴＧ ＧＣＧ ＴＴＣ、アンチセンス：ＧＣＡ ＣＣＧ ＡＡＧ ＧＴＧ ＴＡＣ ＣＴＧ ＧＴＣ）を、正常マウス組織の包括的パネルに由来するｃＤＮＡを増幅するためにＲＴ−ＰＣＲ分析において使用した（図２８参照）。
マウスＣＬＤ１８Ａ２の発現は、胃を除き、試験したいずれの正常組織でも検出できなかった（図２８参照）。さらに、ヒトおよびマウスＣＬＤ１８Ａ２と交差反応するＣＬＤ１８Ａ２特異的抗体を、正常マウス組織の大きなパネルにおけるＣＬＤ１８Ａ２発現の免疫組織化学的分析のために使用した（表３参照）。
正常胃組織を除き、試験したすべての正常組織がＣＬＤ１８Ａ２発現を示さない。ヒトＣＬＤ１８Ａ２に関して認められたように、本発明者らはまた、表面上皮およびより深部の陰窩細胞はそれらの細胞表面でＣＬＤ１８Ａ２を発現するが、中央頸部領域はＣＬＤ１８Ａ２陰性であることをマウス対応物に関しても発現した（図２９Ａ〜Ｃ参照）。要約すると、ＣＬＤ１８Ａ２の組織分布はヒトとマウスにおいて同じであると考えられる。
Figure 0006086894
本発明者らは、マウスにおいて抗体１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０によって媒介される潜在的副作用をさらに検討した。これらの抗体はすべて、先にＦＡＣＳ分析によってマウスＣＬＤ１８Ａ２ならびにそのヒトタンパク質と反応することが示されている。
これらの抗体による治療中および治療後にマウスにおいて目に見える副作用は認められず、また未処置（ＰＢＳ処置）マウスと比較して抗体処置マウスの胃粘膜において毒性の組織形態学的相関は認められなかった（図３０参照）。
９．抗体のキメラ化
ａ．マウス／ヒトキメラモノクローナル抗体の作製
全ＲＮＡおよびその後一本鎖ｃＤＮＡをヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）からおよびヒト脾組織から当業者に公知の標準的方法によって、たとえばＲＮｅａｓｙ Ｍｉｄｉ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）およびＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ ＩＩ逆転写酵素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用することによって調製した。
ヒトκ軽鎖の定常領域をＰＣＲによってＰＢＭＣ ｃＤＮＡから増幅した。センスオリゴマー（配列番号３８）は、定常領域の５'末端にＢａｍＨＩ制限部位を付加し、定常領域の最初の２個のアミノ酸（Ａｒｇ−Ｔｈｒ）をコードするもとの核酸配列５'−ＣＧＡＡＣＴ−３'を５'−ＣＧＴＡＣＧ−３'に変更して、アミノ酸配列を変化させずにＢｓｉＷＩ制限部位を作製した。
アンチセンスオリゴマー（配列番号３９）は、終結コドンを含み、増幅した定常領域の３'末端にＮｏｔＩ制限部位を付加した。ＰＣＲ産物ならびに標準発現ベクター（たとえばｐｃＤＮＡ３．１（＋），Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）をＢａｍＨＩおよびＮｏｔＩ制限酵素と共に順次インキュベートした。ベクターを、付加的に、再循環を防ぐために仔ウシ腸アルカリホスファターゼで処理した。
最後に定常領域をベクターに連結して、今や、定常領域の前での可変領域のその後の融合が、残存するベクターのマルチクローニングサイトからのＨｉｎｄＩＩＩ制限部位（５'−ＡＡＧＣＴＴ−３'） によっておよびＰＣＲ産物で生成されたＢｓｉＷＩ制限部位（５'−ＣＧＴＡＣＧ−３'）によって可能となる。ベクターに挿入したヒトκ軽鎖定常領域の配列を配列番号４０に列挙し、ヒトκ軽鎖定常領域のアミノ酸配列を配列番号４１に列挙する。
ヒトγ１重鎖の定常領域を脾ｃＤＮＡからＰＣＲによって増幅した。５'リン酸化センスオリゴマー（配列番号４２）は、定常領域の開始点の１１ヌクレオチド下流に位置する天然に生じるＡｐａＩ制限部位上に位置づけられ、定常領域の増幅部分の５'末端にＨｉｎｄＩＩＩ制限部位を付加した。
５'リン酸化アンチセンスオリゴマー（配列番号４３）は、終結コドンを含み、増幅した定常領域の３'末端にＮｏｔＩ制限部位を付加した。このようにして生成したＰＣＲ産物は、平滑末端を有し、５'リン酸化されていた。
識別アンチセンスオリゴマー（配列番号４４）でのＰＣＲおよび塩基配列決定により、増幅したγ定常領域がＩｇＧ１サブクラスであることを確認した。軽鎖の発現のために使用したベクターの抗生物質耐性（たとえばネオマイシン）とは異なる抗生物質耐性（たとえばハイグロマイシン）を有する標準発現ベクター（たとえばｐｃＤＮＡ３．１（＋）／Ｈｙｇｒｏ，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を、平滑末端を残しつつマルチクローニングサイトを完全に除去するためにＰｍｅＩ制限酵素と共にインキュベートした。
ベクターを、付加的に、再循環を防ぐために仔ウシ腸アルカリホスファターゼで処理した。最後に定常領域をベクターに連結して、今や、定常領域の前での可変領域のその後の融合が、どちらもＰＣＲ産物で生成されたＨｉｎｄＩＩＩ制限部位（５'−ＡＡＧＣＴＴ−３'）およびＡｐａＩ制限部位（５'−ＧＧＧＣＣＣ−３'）によって可能となる。
ベクター内の定常領域の正しい方向、すなわちベクターのプロモーターが先行するのに適した方向を配列決定によって確認した。ＡｐａＩ制限部位の位置のゆえに、このための可変領域の増幅は、ＡｐａＩ部位の配列に加えてヒトγ１定常領域の配列の最初の１１ヌクレオチドを含まなければならない。
ベクターに挿入した、このようにして増幅したヒトγ１重鎖定常領域の配列を配列番号４５に列挙し、発現されたヒトγ１定常領域のアミノ酸配列を配列番号４６に列挙する。
Figure 0006086894
そのマウス対応物に対応するように、キメラモノクローナル抗体には「ｃｈ」の接頭語を付して、たとえばｃｈ−４３Ａ１１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１２５Ｅ１、ｃｈ−１６６Ｅ２、ｃｈ−１７５Ｄ１０、ｃｈ−４５Ｃ１と命名した。
軽鎖および重鎖のマウス可変領域の増幅は、Ｍａｔｚ ｅｔ ａｌ．（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９９，Ｖｏｌ．２７，Ｎｏ．６）に述べられている「ステップアウトＰＣＲ」法に従って実施した。
このために、全ＲＮＡを、当業者に公知の標準的方法によって、たとえばＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して、モノクローナルハイブリドーマ細胞系（表４参照）から調製した。
一本鎖ｃＤＮＡは、同じくＭａｔｚ ｅｔ ａｌ．（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９９，Ｖｏｌ．２７，Ｎｏ．６，１５５８）に述べられている「鋳型スイッチ」法に従って調製した。（ｄＴ）３０オリゴマー（配列番号４７）に加えて、一本鎖ｃＤＮＡは、ｃＤＮＡ鎖の重合の間の鋳型スイッチ作用のための５'アダプターとして働くＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドオリゴマー（配列番号４８）を含んだ。
このアダプターオリゴマーでは、最後の３個のヌクレオチドがデオキシリボヌクレオチドではなくリボヌクレオチドであった。その後の「ステップアウトＰＣＲ」は、マウスκ鎖の定常領域またはγ鎖のサブクラス１、２ａまたは３の定常領域（それぞれ配列番号４９〜５２）を標的とするアンチセンスオリゴマーを使用した。
ハイブリドーマ細胞系によって産生されるマウスモノクローナル抗体のＩｇＧサブクラスは、事前にＩｓｏＳｔｒｉｐで免疫学的に分析され（実施例１参照）、それに従って適切なアンチセンスオリゴマーを選択した（表４参照）。
配列番号５３および５４に列挙する２個のオリゴマーを含むプライマー混合物は、「ステップアウトＰＣＲ」におけるセンスオリゴマーとしての機能を果たした。一部のハイブリドーマ細胞系は２以上の重鎖または軽鎖を発現した（ハイブリドーマの作製のために使用した骨髄腫細胞系によって発現される鎖に加えて）。
表４は、クローニングして配列決定したマウス抗体鎖の可変領域の配列番号（配列番号５５〜６９および配列番号１３２〜１４６）およびクローニングして配列決定した完全長キメラ抗体鎖の配列番号（配列番号１００〜１２９）をまとめたものである。
同定されたマウス可変領域を、次に、５'ＵＴＲおよび３'マウス定常領域を除いたＰＣＲによって増幅し、ヒト定常領域を担持する作製した発現ベクターへのサブクローニングを可能にする制限部位を末端に付加した。
加えて、センスオリゴマーはコンセンサスコザック配列（５'−ＧＣＣＧＣＣＡＣＣ−３'または５'−ＡＧＣＣＡＣＣ−３'）を提供し、重鎖可変領域のためのアンチセンスオリゴマーに、ＡｐａＩ制限部位に加えてヒトγ１定常領域の配列の最初の１１ヌクレオチドを含ませた（表４参照、配列番号７０〜９９）。
κ軽鎖可変領域はＨｉｎｄＩＩＩおよびＢｓｉＷＩ制限酵素を使用してクローニングし、γ重鎖可変領域はＨｉｎｄＩＩＩおよびＡｐａＩ制限酵素を必要とした。モノクローナル抗体４５Ｃ１のγ重鎖可変領域は内部ＨｉｎｄＩＩＩ制限部位を含み、ここでは代わりに互換性のあるＢｓａＩ酵素を使用した（配列番号８０）。
配列番号１００〜１１４は、生じたキメラ化抗体の核酸配列を示す（表４参照）。配列番号１１５〜１２９は、それに応じて発現されたキメラ抗体のアミノ酸配列を示す（表４参照）。
ｂ．ＣＬＤ１８に対するキメラ抗体の作製と産生
ＣＬＤ１８特異性を有するキメラ抗体を産生する哺乳動物細胞系を作製した。細胞系はＨＥＫ２９３Ｔ細胞に由来した（ＡＴＣＣ ＣＲＬ−１１２６８）。トランスフェクションの１日前、２．５×１０７細胞を１４．５ｃｍ組織培養皿にプレートし、完全培地２０ｍｌ中で培養するか、あるいは１×１０７細胞を１０ｃｍ組織培養皿にプレートし、完全培地１０ｍｌ中で培養するか、あるいは０．６×１０６細胞を１２ウエル組織プレートのウエルに塗布し、完全培地２〜３ｍｌ中で培養した（完全培地：抗生物質を含まない、１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭ：Ｆ１２培地）。
トランスフェクションの時点での推奨される細胞密度は９０％の集密度である。トランスフェクションの直前に、培地を新鮮培地に交換した。ＨＥＫ２９３Ｔ細胞をトランスフェクション試薬、たとえばリポフェクタミン２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，１１６６８−０１９）あるいはポリエチレンイミン（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ，４０８７２７）でトランスフェクトした。
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞のトランスフェクションについて例示したように、１１０μｇまたは２９６μｇの総ＤＮＡ量を１４．５ｃｍ組織皿に用い、トランスフェクション試薬対ＤＮＡの比率は、リポフェクタミン２０００およびＰＥＩについてそれぞれ１：２．５および１：１２であった。
トランスフェクションの２４時間後、培地をＧＭＰ適合培地、たとえばＸ−Ｖｉｖｏ １５（Ｃａｍｂｒｅｘ）または血清を含まないＰｒｏ２９３ａ（Ｃａｍｂｒｅｘ）のような既知組成培地と交換した。ＣＬＤ１８に対するキメラモノクローナル抗体を産生するトランスフェクトしたＨＥＫ２９３Ｔ細胞をさらに９６時間培養した。
粗上清を採集し、滅菌ろ過して、プロテインＡ−セファロースによって精製した。抗体濃度をＢＣＡアッセイによって測定し、純度をドデシル硫酸ナトリウムゲル電気泳動およびクマシー染色によって検査した。
ｃ．キメラモノクローナル抗体の結合特性
クローニングして作製したキメラモノクローナル抗体のＣＬＤ１８Ａ２に対する結合特異性を、実施例３で述べたようにフローサイトメトリーによって分析した。ヒトＣＬＤ１８Ａ２を安定に発現するＨＥＫ２９３生細胞（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ２）およびヒトＣＬＤ１８Ａ１（配列番号７、８）を安定に発現するＨＥＫ２９３細胞（ＨＥＫ２９３−ＣＬＤ１８Ａ１）を、キメラモノクローナル抗体を含む精製ＨＥＫ２９３Ｔ細胞培養上清と共に４℃で３０分間インキュベートし、次いでＡＰＣ複合Ｆ（ａｂ'）２フラグメントヤギ抗ヒトＩｇＧ Ｆｃγ二次抗体と共にインキュベートして、ＰＩで対比染色した。ＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙを使用してフローサイトメトリーによって結合を評価した。
同様に、内因性にＣＬＤ１８Ａ２を発現するヒト腫瘍細胞系、たとえばＫＡＴＯ−ＩＩＩおよびＮＵＧＣ−４細胞をフローサイトメトリーによって分析した。
図３１ＡおよびＢは、キメラ抗体ｃｈ−４３Ａ１ｌ、ｃｈ−１２５Ｅ１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１６６Ｅ２およびｃｈ−１７５Ｄ１０のフローサイトメトリー分析を示す。それらすべてが天然エピトープ認識を示し、ＣＬＤ１８Ａ２への特異的で強い結合を示すが、ＣＬＤ１８Ａ１発現細胞への結合を示さない。
ｄ．補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）
補体溶解のための血清を、健常志願者からの血液をＳｅｒｕｍ−Ｍｏｎｏｖｅｔｔｅ Ｖａｃｕｔａｉｎｅｒチューブ（Ｓａｒｓｔｅｄｔ，Ｎuｒｍｂｒｅｃｈｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）に採取し、それを６００ｇで２０分間遠心分離することによって調製した。血清を採集し、−２０℃で保存した。対照血清は、５６℃で３０分間熱を加えて不活性化した後、保存した。
プロテインＡ−セファロース精製した本発明のキメラ抗体を、ヒトＣＬＤ１８Ａ２を内因性発現するＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞ならびに安定にトランスフェクトしたＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２細胞に対して補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）を誘導するそれらの能力に関して分析した。細胞を、それぞれ２．５μｇ／ｍｌ〜３５μｇ／ｍｌの最終濃度のモノクローナル抗体ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１６６Ｅ２およびｃｈ−１７５Ｄ１０と共に３７℃で３０分間インキュベートした。
ＲＰＭＩ中の２０％ヒト血清を細胞に添加し、３７℃でさらに３０分間インキュベートした。その後、死細胞と生細胞を２．５μｇ／ｍｌの最終濃度でのＰＩ染色法によって識別し、抗体媒介性細胞溶解のパーセンテージをフローサイトメトリーによって測定した。フローサイトメトリー分析のためにＢＤ ＦＡＣＳＡｒｒａｙフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ，ＣＡ）を使用した。
前方側方散乱（ＦＳＣ／ＳＳＣ）閾値の調整によって細胞デブリを排除した状態での分析のために少なくとも１００００事象を収集した。特異的溶解を以下の式によって算定した：特異的溶解＝（試料中のＰＩ陽性細胞％−熱不活性化血清を含む試料中のＰＩ陽性細胞％）。ＣＤＣによって媒介される特異的溶解がいくつかの抗体に関して示された。
３つの抗体すべてがＣＨＯ−ＣＬＤ１８Ａ２細胞への堅固なＣＤＣを媒介した（図３２）。ＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞に関しては、抗体ｃｈ−１６３Ｅ１２およびｃｈ−１７５Ｄ１０が堅固なＣＤＣの誘導物質であった。
ｅ．抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）
ＦＰＬＣ精製した本発明のキメラ抗体を、ヒトＣＬＤ１８Ａ２を内因性発現するＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞に対して抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）を誘導するそれらの能力に関して分析した。
健常ドナーからのヒト血液をリン酸緩衝液（ＰＢＳ）中で２回希釈し、血球をフィコール（１０７７ｇ／ｍｌ、Ｐｈａｒｍａｃｉａ）に重層した。遠心分離後、末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を間期から収集し、洗浄して、５％熱不活性化ヒト血清を添加したＸ−Ｖｉｖｏ−１５培地に再懸濁した。
アッセイの１５時間前に、ＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞をルシフェラーゼでトランスフェクトし、白色マイクロプレートに５×１０４細胞／ウエルで塗布した。
アッセイのために、２０：１のエフェクター対標的（Ｅ：Ｔ）比のエフェクター細胞（ＰＢＭＣ、上述したように調製した）およびＦＰＬＣ精製キメラ抗体を添加し、３７℃、５％ＣＯ２で２〜３時間インキュベートした。
ウエル中の抗体の最終濃度は５０μｇ／ｍｌであった。２〜３時間のプレインキュベーション後、ルシファーイエロー（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ ＵＳＡ）を１ｍｇ／ｍｌで添加した。生細胞のルシフェラーゼによるルシファーイエローの酸化から生じるルミネセンスを、マイクロプレートリーダー（Ｉｎｆｉｎｉｔｅ２００，Ｔｅｃａｎ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を使用して６時間まで継続的に測定した。
細胞傷害のパーセンテージを以下の式：特異的溶解％＝１００−（（試料発光計数−自然発光計数）／（最大発光計数−自然発光計数）×１００）を用いて算定し、自然発光はＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（最終濃度０．２％）を添加することによって測定し、最大シグナルは抗体の不在下で測定した。
このアッセイを使用して、モノクローナル抗体ｃｈ−１６３Ｅ１２およびｃｈ−１７５Ｄ１０がＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞への強力なＡＤＣＣを媒介することが示された（図３３）。
ｆ．増殖阻害
ＦＰＬＣ精製した本発明のキメラ抗体を、ヒトＣＬＤ１８Ａ２を内因性発現するＫＡＴＯ−ＩＩＩ細胞の増殖を阻害するそれらの能力に関して分析した。
標的細胞（ＫＡＴＯ−ＩＩＩ）をそれぞれのキメラ抗体の存在下で培養した（マウス抗体の増殖阻害、実施例７参照）。ＦＰＬＣ精製キメラ抗体ｃｈ−１６３Ｅ１２およびｃｈ−１６６Ｅ２は細胞増殖を阻害することが示された。
１０．臨床有力候補物質としての抗体の選択
理想的な臨床有力物質は、広い範囲の治療および診断適用をカバーし得る（第ＩＶ章−本発明の使用と方法も参照のこと）。
本発明によれば、ＣＬＤ１８Ａ２に対する抗体が提供される。本発明に従って提供される抗体は、特異性、ＣＬＤ１８を発現する細胞、特に腫瘍細胞のＣＤＣおよびＡＤＣＣを誘導し、増殖を阻害する能力に関して広いスペクトルの特性を提供することが示された。さらに、抗体のキメラ化は、親マウス分子には存在しない付加的なＦｃ依存性エフェクター機能の獲得を導き得ることが明らかにされた。
たとえば、マウスＩｇＧ１を有する抗体１７５Ｄ１０は補体依存性細胞傷害を誘導しないが（実施例５参照）、ヒトＩｇＧ１を有するｃｈ−１７５Ｄ１０は、ＣＬＤ１８を構成的に発現する腫瘍細胞の特異的溶解を誘導することがここで示されている（表５および表６参照）。
本発明に従って提供される抗体は、それらの結合特性およびＣＬＤ１８を発現する細胞へのエフェクター機能を媒介するそれらの能力に従って異なるクラスに分類され得る。
本発明に従って提供される抗体から、それらの機能的特徴に基づいて臨床有力候補物質を選択し得る。選択した本発明のマウスおよびキメラ抗体についての性質の概要をそれぞれ表５および表６に示す。
本発明の臨床先導候補物質は以下の性質の１またはそれ以上を有し得る：
ａ）ヒトＣＬＤ１８Ａ２に結合するがヒトＣＬＤ１８Ａ１に結合しない（たとえば４３Ａ１１、４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０、およびｃｈ−４３Ａ１ｌ、ｃｈ−４５Ｃ１、ｃｈ−１２５Ｅ１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１６６Ｅ２およびｃｈ−１７５Ｄ１０）。たとえば図６Ａおよび６Ｂ参照。
ｂ）マウスＣＬＤ１８Ａ２に結合するがマウスＣＬＤ１８Ａ１に結合しない（たとえば１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０）。たとえば図１５Ａおよび１５Ｂ参照。
ｃ）腫瘍細胞によって天然に発現されるＣＬＤ１８に結合する（たとえば４５Ｃ１、４３Ａ１１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０、およびｃｈ−４５Ｃ１、ｃｈ−４３Ａ１ｌ、ｃｈ−１２５Ｅ１、ｃｈ−１６３Ｅ１２、ｃｈ−１６６Ｅ２およびｃｈ−１７５Ｄ１０）。たとえば図１３参照。
ｄ）細胞間接触帯でＣＬＤ１８に結合する（たとえば４５Ｃ１、４３Ａ１１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０）。たとえば図１２Ａおよび１２Ｂ参照。
ｅ）ＣＬＤ１８を発現する細胞のＣＤＣ誘導性死滅を媒介する（たとえば４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０、およびｃｈ−１６３Ｅ１２およびｃｈ−１７５Ｄ１０）。たとえば図３２参照。
ｆ）ＣＬＤ１８を発現する細胞のＡＤＣＣ誘導性死滅を媒介する（たとえばｃｈ−１６３Ｅ１２およびｃｈ−１７５Ｄ１０）。たとえば図３３参照。
ｇ）ＣＬＤ１８を発現する細胞の増殖を阻害する（たとえば４５Ｃ１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０、およびｃｈ−１６３Ｅ１２およびｃｈ−１６６Ｅ２）。
ｈ）ＣＬＤ１８を発現する細胞による異種移植モデルにおいて腫瘍増殖を阻害する（たとえば４３Ａ１１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０）。たとえば図２４参照。
ｉ）ＣＬＤ１８を発現する細胞による異種移植モデルにおいて生存を延長する（たとえば４３Ａ１１、１２５Ｅ１、１６３Ｅ１２、１６６Ｅ２および１７５Ｄ１０）。たとえば図２５Ｂ参照。
有力候補物質選択のための性質の例示的概要
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Claims (16)

  1. ＣＬＤ１８Ａ２に結合するがＣＬＤ１８Ａ１には結合せず、およびＣＬＤ１８Ａ２を発現する細胞の死を媒介する、ＣＬＤ１８Ａ２に結合する抗体またはその抗原結合フラグメントを生産する方法であって、
    （ａ）前記抗体またはその抗原結合フラグメントをコードする１またはそれ以上の発現ベクターで形質転換された宿主細胞を、前記宿主細胞が前記抗体またはその抗原結合フラグメントを発現する条件下で、培養する工程と、
    （ｂ）前記細胞によって発現される前記抗体またはその抗原結合フラグメントの製剤を採取する工程と、を含み、
    前記１またはそれ以上の発現ベクターが以下を含む、方法：
    （ｉ）配列番号１１５の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２５位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、および配列番号１２２の４９−５３位、７１−７３位および１１０−１１８位を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、
    （ｉｉ）配列番号１１６の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２６位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、および配列番号１２１の４７−５８位、７６−７８位および１１５−１２３位を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、
    （ｉｉｉ）配列番号１１７の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２４位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、および配列番号１２３の４７−５２位、７０−７２位および１０９−１１７位を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、
    （ｉｖ）配列番号１１９の４４−５１位、６９−７６位および１１５−１２５位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、および配列番号１２６の４７−５８位、７６−７８位および１１５−１２２位を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、または
    （ｖ）配列番号１１８の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２６位を各々有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列、および配列番号１２５の４７−５８位、７６−７８位および１１５−１２３位を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域をコードする核酸配列。
  2. 前記宿主細胞が、ＣＨＯ細胞、ＮＳ／０細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞、植物細胞、真菌細胞、樹状細胞、Ｂ細胞および酵母細胞から成る群より選択される、請求項１に記載の方法。
  3. 前記宿主細胞がＣＨＯ細胞である、請求項１または２に記載の方法。
  4. 前記発現ベクターが、プロモーター配列、リーダー配列、翻訳開始配列、軽鎖定常領域、重鎖定常領域、３'非翻訳配列、ポリアデニル化配列または転写終結配列を含む、請求項１から３のいずれか一項に記載の方法。
  5. 以下から成る群から選択される核酸配列を含む、組換え核酸：
    （ｉ）配列番号１１５の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２５位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の重鎖をコードする核酸配列、
    （ｉｉ）配列番号１１６の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２６位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の重鎖をコードする核酸配列、
    （ｉｉｉ）配列番号１１７の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２４位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の重鎖をコードする核酸配列、
    （ｉｖ）配列番号１１９の４４−５１位、６９−７６位および１１５−１２５位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の重鎖をコードする核酸配列、および
    （ｖ）配列番号１１８の４５−５２位、７０−７７位および１１６−１２６位を各々含有する重鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の重鎖をコードする核酸配列
    であって、前記抗体が、ＣＬＤＮ１８Ａ２に結合する抗体である、組換え核酸。
  6. 前記核酸配列が、配列番号１３２、１３３、１３４、１３５、１３７および１３６から成る群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域をコードする、請求項５に記載の組換え核酸。
  7. 前記組換え核酸が、ヒトまたはマウスの重鎖定常領域を含む、請求項５または６に記載の組換え核酸。
  8. 前記核酸配列が、配列番号１００、１０１、１０２、１０４、１０３および１０５から成る群から選択される、または配列番号１１５、１１６、１１７、１１９、１１８および１２０から成る群から選択されるアミノ酸配列を含む重鎖をコードする、請求項５から７のいずれか一項に記載の組換え核酸。
  9. 以下から成る群から選択される核酸配列を含む、組換え核酸：
    （ｉ）配列番号１２２の４９−５３位、７１−７３位および１１０−１１８位のアミノ酸配列を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の軽鎖をコードする核酸配列、
    （ｉｉ）配列番号１２１の４７−５８位、７６−７８位および１１５−１２３位のアミノ酸配列を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の軽鎖をコードする核酸配列、
    （ｉｉｉ）配列番号１２３の４７−５２位、７０−７２位および１０９−１１７位のアミノ酸配列を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の軽鎖をコードする核酸配列、
    （ｉｖ）配列番号１２６の４７−５８位、７６−７８位および１１５−１２２位のアミノ酸配列を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の軽鎖をコードする核酸配列、および
    （ｖ）配列番号１２５の４７−５８位、７６−７８位および１１５−１２３位のアミノ酸配列を各々含有する軽鎖ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３領域を含む抗体の軽鎖をコードする核酸配列
    であって、前記抗体が、ＣＬＤＮ１８Ａ２に結合する抗体である、組換え核酸。
  10. 前記核酸配列が、配列番号１３９、１３８、１４０、１４３、１４２、１４１、１４４、１４５および１４６から成る群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域をコードする、請求項９に記載の組換え核酸。
  11. 前記組換え核酸が、ヒトまたはマウスの軽鎖定常領域を含む、請求項９または１０に記載の組換え核酸。
  12. 前記核酸配列が、配列番号１０７、１０６、１０８、１１１、１１０、１０９、１１２、１１３および１１４を含む群から選択される、または配列番号１２２、１２１、１２３、１２６、１２５、１２４、１２７、１２８および１２９から成る群から選択されるアミノ酸配列を含む軽鎖をコードする、請求項９から１１のいずれか一項に記載の組換え核酸。
  13. 前記核酸配列が、発現制御配列に作動可能に連結される、請求項５から１２のいずれか一項に記載の組換え核酸。
  14. 請求項５から１３のいずれか一項に記載の前記組換え核酸を含む、形質転換細胞。
  15. 前記細胞が、ＣＨＯ細胞、ＮＳ／０細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞、植物細胞、真菌細胞、樹状細胞、Ｂ細胞および酵母細胞から成る群より選択される、請求項１４に記載の形質転換細胞。
  16. 抗体を生産する細胞を生産する方法であって、
    （ａ）請求項５から１３のいずれか一項に記載の前記組換え核酸を含む発現ベクターで細胞を形質転換する工程と、
    （ｂ）該形質転換細胞を得る工程と、を含み、前記形質転換細胞は、抗体の重鎖をコードする前記核酸配列および／または前記抗体の軽鎖をコードする前記核酸配列を含む、方法。
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