JP2535080B2 - マクロライド化合物 - Google Patents
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Description
ロライド化合物に関するものである。
ダニ薬に対してその耐性を急速に増しているので、新規
な殺虫薬および殺ダニ薬の必要性が大きくなっている。
節足動物の殺虫薬に対する耐性は広がっており、少なく
とも400種が1またはそれ以上の殺虫薬に対して耐性を
有している。DDT、カルバメート類および有機リン酸エ
ステル類などの比較的古い殺虫薬に対する耐性の増加は
よく知られている。しかし、比較的新しいピレスロイド
系殺虫薬および殺ダニ薬のいくつかに対しても耐性は現
れてきている。従って、新規な殺虫薬および殺ダニ薬が
必要とされている。
寄生生物の抑制は、畜産における重要な問題として長い
間認識されて来た。従来の家畜の処置法は、よく知られ
たヒツジ用浸洗液のように殺虫薬を局所適用することで
ある。実際にこのような処置法は今なお広く用いられて
いる。しかし、最近の研究目標は、特に経口によって動
物に投与することができ、そしてこの処置された動物の
血液を寄生生物が摂取したときに寄生生物に毒性を及ぼ
すことによって外部寄生生物を抑制するであろう化合物
を見つけることにある。
提供するものであり、この産物は個々の成分A83543A、A
83543B、A83543C、A83543D、A83543E、A83543F、A83543
G、A83543HおよびA83543Jからなっている。A83543およ
び個々のA83543成分は、昆虫、特に鱗翅目(Lepidopter
a)の種、例えば南部アワヨトウの幼虫(Southern army
worm)、ならびに双翅目(Diptera)の種、例えばクロ
バエ(blow fly)、サシバエ(stable fly)および蚊の
の抑制に有用であり、したがって、A83543化合物を用い
る殺虫組成物および昆虫またはダニの数を減少させる方
法に有用である。
または(d): から選択される基であり、 R2は、下記式: で示される基であり、 R1、R3、R5およびR6は水素原子またはメチル基であ
り、 R4はメチル基またはエチル基である] で示される化合物、またはRが水素原子以外である該化
合物の酸付加塩である。
R、R1、R3、R4、R5およびR6が以下の組み合わせのいず
れかである上記式1の化合物、またはRが水素原子以外
である該化合物の酸付加塩である: A83543Aのアミノ糖は、β−D−ホロスアミン(foros
amine)であることがわかっており、A83543Aの中性の糖
はα−2,3,4−トリ−O−メチルラムノースである。
らの成分は、RがH以外である式1の化合物である。こ
れらは、以下の構造を有する: アミノ糖をA83543成分から除去し、偽アグリコン(R
がHである式1の化合物)を得ることができる。成分
A、B、CおよびGは、共通の偽アグリゴン(pseudoag
lycone)(A83543A偽アグリコンまたは偽−A)を有す
る。後に、A83543A偽アグリコンは、A83543成分として
天然に産生されることがわかった。成分D、E、F、H
およびJは、各々、特有の偽アグリゴンを有している。
A83543偽アグリゴン類は、以下の構造を有する。
有用である。
特性およびスペクトル特性を示す。以下の記述において
は次の略語を用いる。
66NO10)=732.4687(第8図参照) EI−MS:測定値=731.4612、理論値=731.4608(第10図
参照) UV(EtOH)λmax:243nm(ε8,920) IR(CHCl3):ν(ラクトン)1713cm-1、(共役ケト
ン)1657cm-1、2940cm-1付近にC−H振動および1060cm
-1付近にC−O振動の多重ピーク(第1図参照) ▲[α]529 D▼:−121.8゜(c1.03、CHCl3) ▲[α]365 D▼:+6.8゜(c1.03、CHCl3) A83543Aについて観察された1Hおよび13C NMRデータを
第1表に示す(アセトン−d6中)。
ン)1658cm-1、2940cm-1付近にC−H振動および1070cm
-1付近にC−O振動の多重ピーク(第2図参照) ▲[α]389 D▼:−141.9゜(c1.02、CHCl3) ▲[α]365 D▼:−29.9゜(c1.02、CHCl3) FD−MS:第6図参照 A83543Dについて観察された1Hおよび13C NMRデータを
第2表に示す(アセトン−d6中)。
64NO10)=718.4530 UV(EtOH)λmax=244nm(ε8,600) IR(KBr)(第13図参照) A83543Eについて観察された1Hおよび13C NMRデータを第
3表に示す(アセトン−d6中)。
64NO10)=718.4530 UV(EtOH)λmax=243nm(ε10,500)および282nm(ε1
09) IR(KBr):(第14図参照) A83543Fについて観察された1Hおよび13C NMRデータを
第4表に示す(アセトン−d6中)。
66NO10)=732.4687 UV(EtOH)λmax=243nm(ε8,970) IR(KBr):(第15図参照) A83543Gについて観察された1Hおよび13C NMRデータを
第5表に示す(アセトン−d6中)。
2)として分離され、以下に説明する分析用高速液体ク
ロマトグラフィー(HPLC)によって分離することができ
る。A83543HおよびLの構造は、アセトン−d6中におけ
るA83543H:J混合物の1Hおよび13C NMRの測定に基づく。
NMRスペクトルは類似しており、A83543Aのものと比較し
た。HおよびJスペクトルの主要な変化は、ラムノース
糖付近に集中する。成分HおよびJは、その糖に2つの
OCH3だけを有する。成分Hにおいて、H−1′は1H NMR
スペクトルで約0.1δシフトしており、13C NMRスペクト
ルで3δシフトしている(各々、4.81および99.68)。
これらのシフトは、2位のメトキシにメチルがないため
である。成分Jにおけるシフトは、同様に、3位のメト
キシにメチルがないことに対応している。
ン)1652cm-1、3017cm-1付近にC−H振動の多重ピー
ク、1140cm-1付近にC−O振動の多重ピーク(第3図参
照)。
いて互いに分離することができる。
テッド(YMC,Inc.,Mt.Freedom,NJ)] 溶媒:CH3OH:CH3CN:0.05%NH4OAc(H2O) (A)35:35:30−pH7.8 (B)45:45:10−pH6.7 流速:2.0ml/分 操作時間:35分 検出:UV、250nm 勾配:20分間に10%Bから25Bまで、30分間に50%Bまで成 分 保持時間(分) A 22.62 A−偽アグリコン 7.27 B 12.65 C 10.62 D 25.47 E 19.22 F 16.30 G 18.92 H 16.30 J 17.50 システムIII カラム:4.6×100mm、ODS (AQ−301、S−5、ワイ・エム・シー・インコーポレ
イテッド) 溶媒:CH3OH:CH3CN:0.05%NH4OAc(H2O) 35:35:30−pH6.0 流速:2.0ml/分 操作時間:10分 検出:UV、250nm成分 保持時間(分) F 4.32 H 3.42 J 3.42 A83543成分は、水に溶解しないが、メタノール、エタ
ノール、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシ
ド、アセトニトリル、アセトンなどの溶媒に溶解する。
3D、A83543E、A83543F、A83543G、A83543HおよびA83543
Jなどの個々の成分を反応させて種々の塩を形成させる
ことができる。これらの化合物のこのような形態の全て
が本発明の一部である。A83543の塩は、例えばA83543の
分離および精製に有用である。また、いくつかの塩は改
良された水への溶解性を有する。
る。例えば、A83543を適切な酸で中和して酸付加塩を形
成させることができる。
ては、例えば、硫酸、塩酸、リン酸、酢酸、コハク酸、
クエン酸、乳酸、マレイン酸、フマル酸、コール酸、パ
モ酸(pamoic acid)、ムチン酸、グルタミン酸、樟脳
酸、グルタル酸、グリコール酸、フタル酸、酒石酸、ギ
酸、ラウリン酸、ステアリン酸、サリチル酸、メタンス
ルホン酸、ベンゼンスルホン酸、ソルビン酸、ピクリン
酸、安息香酸、桂皮酸のような有機酸おそび無機酸との
通常の反応によって形成される塩が挙げられる。
いう用語は、好ましくは、A83543、個々の成分A83543
A、A83543B、A83543C、A83543D、A83543E、A83543F、A8
3543G、A83543H、およびA83543Jならびにこれらの酸付
加塩からなる群から選択されたものを指す。
8538およびNRRL 18539、またはA83543を産生する突然変
異体から選択された新規な微生物サッカロポリスポラ・
スピノサ(Saccharopolyspora spinosa)の菌株を、適
切な培養培地中、水中の好気性条件下で、回収可能な量
のA83543が産生されるまで培養することによって製造さ
れる。発酵法に詳しい者なら認識しているであろうが、
A83543の成分比は産生に用いた発酵条件によって変化す
るであろう。通常、A83543はA83543Aを約85〜90%、A83
543Dを約10〜15%および少量のA83543B、C、E、F、
G、HおよびJならびにA83543A偽アグリコンを含有す
る。後記のようにして、A83543A、A83543B、A83543C、A
83543D、A83543E、A83543F、A83543G、A83543HおよびA8
3543JならびにA83543A偽アグリコンのような個々の成分
を分離し、単離することができる。
18538、もしくはNRRL 18539、またはA83543を産生する
その突然変異体から選択されるサッカロスポラ・スピノ
サ株を、同化可能な炭素、窒素および無機塩の供給源を
含む培養培地中、水中の好気性発酵条件下で、回収可能
な量のA83543が産生されるまで培養することからなるA8
3543化合物の製造方法を提供するものでもある。次い
で、当技術分野で自体既知の方法によって、個々の成分
を単離することができる。
くはNRRL 18539またはA83543を産生するその突然変異体
から選択された微生物サッカロポリスポラ・スピノサ
の、生物学的に精製された培養物をも提供するものであ
る。これらの微生物は、A83543を産生するが故に有用で
ある。
うに表示する:A83543.1、A83543.3、A83543.4およびA83
543.5。バージン・アイランズ(Virgin Islands)から
入手した土壌試料から単離した培養物(A83543)の化学
的突然変異によって培養物A83543.1を得た。培養物A835
43.3、A83543.4およびA83543.5は、化学的突然変異によ
るA83543.1培養物の誘導体から得た。
はミッドウエスト・エリア・ノーザーン・リージョナル
・リサーチ・センター(NRRL)[Midwest Area Norther
n Regional Research Center,Agricultural Research S
ervice,United States Department of Agriculture,181
5 North University Street,Peoria,Illinois,61604]
に寄託され、その貯蔵培養物コレクションの一部となっ
ており、ここから下記受託番号の下にだれでも利用でき
る。NRRL番号 菌株番号 18395 A83543.1 18537 A83543.3 18538 A83543.4 18539 A83543.5 リリー・リサーチ・ラボラトリーズ(Lilly Research
Laboratories)のメルツ(Frederick P.Mertz)によっ
て、培養物A83543.1の分類学的研究が行われた。これら
の研究によると、微生物A83543.1、A83543.3、A83543.4
およびA83543.5は、サッカロポリスポラ属の新規な種の
一員として分類され、Saccharopolyspora spinosa sp.n
ov.と命名される。この分類は、直接の研究室比較およ
び類似の種の公表された記載の検討に基づいている。
種の特徴付けのためのインターナショナル・ストレプト
マイセス・プロジェクト(ISP)推奨の方法[シャーリ
ング(E.B.Shirling)およびゴットリーブ(D.Gottlie
b)、「ストレプトマイセス種の特徴付けのための方
法」、Int.J.Syst.Bacteriol.16:313−340(1966)]、
およびノカルジア(Nocardia)種の特徴付けのための推
奨の方法[ゴードン(R.E.Gordon)、バーネット(D.A.
Barnett)、ハンダーハン(J.E.Handerhan)およびパン
グ(C.H.Pang)、「ノカルジア・コエリアカ(Nocardia
coeliaca)、ノカルジア・オートトロフィカ(Nocardi
a autotrophica)、およびノカルジン・ストレイン(No
cardin Strain)」、Int.J.Syst.Bacteriol.24(1),5
4−63(1974)」である。
ンプルNo.2106(National Bureau of Standards,1958,
U.S.Department of Commerce,Washington, D.C.)を用
い、裏側および気中菌糸それぞれの色の名前を付与し
た。
形態を調べた。
リン酸(DAP)の異性体を、ベッカー等[ベッカー(B.B
ecker)、レチェバリアー(M.P.Lechevalier)、ゴード
ン(R.E.Gordon)およびレチェバリアー(H.E.Lecheval
ier)、「全細胞加水分解物のペーパークロマトグラフ
ィーによるノカルジアおよびストレプトマイセスの迅速
な識別」、Appl.Microbiol.12,421−423(1964)]およ
びレチェバリアー等[レチェバリアー(M.P.Lechevalie
r)およびレチェバリアー(H.Lechevalia)、好気性放
線菌の分類における基準としての化学組成」、Int.J.Sy
st.Bacteriol.20,435−443(1970)]のクロマトグラフ
ィー法で調べた。
ier and H.Lechevalia,in A University Labolatory Ap
proach,Dietz and Thayer(eds.),Society for Indust
rial Microbiology Special Publication No.6,Arlingt
on,VA,pp.227−233(1980)]によって測定した。
Kroppenstedt,in Chemical Methods in Bacterial Syst
ematics,M.Goodfellow and D.E.Minnikin(eds.),198
5,pp.173−196]およびコリンズの方法[M.D.Collins、
同書、pp267−285]に従って測定した。
レートの表面に抗生物質感受性ディスクを当てて測定し
た。
寒天プレートでヨウ素を用いてデンプンの存在について
の試験を行うことによって測定した。
ティフィケーション・システム(Microbial Identifica
tion system)[ミラー(L.Miller)およびバーガー
(T.Berger)、「全細胞脂肪酸のガスクロマトグラフィ
ーによる細菌の同定」、Hewlett−Packard Application
Note 228−41,8pp.(1985)]を用いて行った。
肪酸メチルエステルを得た。
処理した。主要な成分のプロットの測定値の単位(第12
図参照)は標準偏差値である。
[ミンニキン(D.E.Minnikin)、ハッチンソン(I.G.Hu
tchinson)およびカルディコット(A.B.Caldicott)、
「ミコール酸含有細菌のメタノール分解物の薄層クロマ
トグラフィー」、J.Chromatography 188,221−233(198
0)]によって測定した。
く増殖した。培養物は、用いた培地全てに気中菌糸体を
産生した。気中胞子の集合体は主に淡い黄味がかったピ
ンク色であったが、多くの培地上では白色であった。
た。いくつかの培地中に可溶性の褐色色素が放出されて
いた。
底菌糸体を産生する。培養物を寒天培地で増殖させ場合
は、崩壊は観察されなかった。
上がっており、裏側が黄褐色である、直径8〜10mmの白
色円形コロニーが観察された。
した。気中菌糸は、かぎ状および開いた環のように配列
した胞子の長い鎖に分れた。螺旋体も観察されたが、そ
れらは短くかつ不完全であった。
ズ様の外観を有していた。この特徴は、胞子の鞘(shea
th)が胞子鎖を包んでいることを示した。この胞子の鞘
は極めて特有なとげで覆われていた。このとげは長さが
約1μmであり、端部が丸くなっていた。
μmであった。胞子鎖の長さは胞子50個をゆうに越えて
いた。ジグザグ形の特徴、硬化(sclerotia)、胞子嚢
または運動型細胞は観察されなかった。
ドニトール、D−アラビノース、エリスリトール、フル
クトース、グルコース、グリセロール、マンニトール、
マンノース、リボースおよびトレハロース。
アラビノース、セロビオース、セルロース、デキストリ
ン、ダルシトール、エタノール、ガラクトース、グリコ
ーゲン、イノシトール、イヌリン、ラクトース、マルト
ース、メリシトース、メレビオース、α−メチル−D−
グルコシド、ラフィノース、L−ラムノース、サリシ
ン、ソルビトール、L−ソルボース、スイクロース、キ
シリトースまたはキシロース。
て増殖が観察されたが、これらの炭水化物から酸は生成
されなかった。
た:酢酸塩、酪酸塩、クエン酸塩、ギ酸塩、乳酸塩、リ
ンゴ酸塩、プロピオン酸塩、ピルビン酸塩およびコハク
酸塩。この培養物は安息香酸塩、ムチン酸塩、シュウ酸
塩または酒石酸塩を利用しなかった。
ゼイン、エラスチン、馬尿酸塩、ヒポキサンチン、テス
トステロン、L−チロシンおよび尿素を分解した。アデ
ニン、エスクリン、グアニン、デンプンまたはキサンチ
ンを分解することができなかった。
ゼおよびH2Sを生成した。ゼラチンを液化し、硝酸塩を
減少させた。リゾチームに対して耐性ではなく、メラニ
ン色素類を生成しなかった。スキムミルクをペプトン化
および加水分解しなかった。A83543.1は、11%以下のNa
Clに対して耐性があった。50℃、8時間では生存するこ
とができず、15℃〜37℃の温度で増殖した。
(10単位)およびファンピン(5μg)に耐性であっ
た。パシトラシン(10単位)、ゲンタマイシン(10μ
g)、リンコマイシン(2μg)、ネオマイシン(30μ
g)、オレアンドマイシン(15μg)、ストレプトマイ
シン(10μg)、テトラサイクリン(30μg)、トブラ
マイシン(10μg)およびバンコマイシン(30μg)に
感受性であった。
メリン酸を含有していた。全細胞抽出物における診断用
糖類はガラクトースおよびアラビノースであった。すな
わち、A83543.1は、IV型細胞壁パターンおよびA型糖パ
ターン(レチェバリアー等、前出)を有する。この細胞
は、ミコール酸を含有していない。
ンおよびカルジオリピンの存在が示された。ホスファチ
ジルエタノールアミンは検出されなかった。すなわち、
A83543.1はP III型リン脂質パターン[レチェバリアー
(M.P.Lechevalier)、スターン(A.E.Stern)およびレ
チェバリアー(H.A.Lechevalier)、「放線菌(Actinom
ycetes)の分類学におけるリン脂質」、Actinomycetes,
Zbl.Bakt.Suppl.11,K.P.Schaal and G.Pulverer(ed
s),Gustav Fischer Verlag,New York,1981]を有して
いる。
た。微量のMK−9(H6)が観察された。
カロポリスポラ(Saccharopolyspora)およびアミコラ
トプシス(Amycolatopsis)ファージをA83543.1にプレ
ートした。プラークは観察されなかった。
およびA型全細胞糖パターンを有する。以下の13種の属
は、この細胞化学的パターンを有する:ノカルジア属
(Nocardia)、ロドコッカス属(Rhodococcus)、コリ
ネバクテリウム属(Corynebacterium)、カゼオバクタ
ー属(Caseobacter)、マイコバクテリウム属(Mycobac
terium)、ファエニア属(Faenia)[ミクロポリスポラ
属(Micropolyspora)]、シュードノカルジア属(Pseu
donocardia)、サッカロモノスポラ属(Saccharomonosp
ora)、サッカロポリスポラ(Saccharopolyspora)、ア
クチノポリスポラ属(Actinopolyspora)、アミコラー
タ属(Amycolata)、アミコラトプシス属(Amycolatops
is)およびキブデロスポランギウム属(Kibdelosporang
ium)。これらの属は、ミコール酸の存在または非存
在、脂肪酸組成、ならびにリン脂質およびメナキノンタ
イプによって識別される。ファエニア、シュードノカル
ジアおよびサッカロポリスポラは、A83543.1と同一の化
学分類学特性を有するが、これらの属は、形態学的特徴
および培養特性においてA83543.1と異なる。
よび基底菌糸の両方に生じる滑らかな胞子および短い胞
子鎖を有している。その気中菌糸はまばらで、白色であ
る。この属は好熱性であり、60℃で増殖する。A83543.1
は、これらの性質のいずれも有しておらず、従ってファ
エニア属とは異なる。
両方に胞子を有する。球頂性の発芽および分芽胞子によ
って識別される。特徴的な菌糸のジクザグ形態を有す
る。菌糸は区画されておらず関節で接合されていると記
されている[ヘンセン(A.Henssen)およびシャファー
(D.Schafer)、「シュードノカルジア属の訂正解説」
(ヘンセン)および「新規な種シュードノカルジア・ス
ピノサ(Pseudonocardia spinosa)の解説」(シャフナ
ー)、Int.J.Syst.Bacteriol.21:29−34(1971)参
照]。この属は非常にゆっくり増殖する。無糸分裂はな
いかまたはまれに観察される。A83543.1はこれらの性質
のいずれも有していない。
のビーズ様外観によって特徴付けられる。この特徴はA8
3543.1において非常に顕著である。サッカロポリスポラ
属についても、無糸分裂が観察された。このタイプの種
S.Hisutaを、さとうきびバガス(sugar−cane bagass
e)から単離した。A83543.1が得られた親培養物は糖粉
から単離した、A83543.1はこの属の多くの特性を有して
いるので、サッカロポリスポラ属の菌株であると思われ
る。
は、S.erythraeaおよびS.hirsutaである。既知の亜種
は、S.hirsuta subsp.taberiおよびS.hirsuta subsp.ko
bensisである。A83543.1は、気中および裏側の色または
可溶性色素の生成においてこれらの菌株と異なる。
に基づいて類似係数の表を作成することによって調べ
た。ジャッカード(Jaccard)の係数はSjおよび普通の
適合係数Ssmを用いた[クリロヴィッツ(W.Kurylowic
z)、パスキーヴィッツ(A.Paszkiewicz)、ヴォツニッ
カ(W.Woznicka)、クルツァトゥコヴスキー(W.Kurzat
kowski)およびスツルガ(T.Szulga)、「ストレプトマ
イセスの数値分類学」、Polish Medcal Publishers,War
saw,1975,p.37]。
分析によって、各々、飽和脂肪酸および分枝鎖状脂肪酸
の両方を有することがわかった。A83543.1の脂肪酸組成
は、他の種のものと類似しているが、同一ではない。第
8表で、A83543.1および既知のサッカロポリスポラ種の
脂肪酸組成を比較する。
ばらつきを示しており、培養物が同一属内の全く異なっ
た種であることを示唆している。第8表のデータの主成
分のプロットを第12図に示す。
ラ種および亜種との理学的特性を比較する。
ポラの種とは充分に異なっており、サッカロポリスポラ
の新規な種であることがわかり、サッカロポリスポラ・
スピノサ(Saccharopolyspora spinosa)という名称が
選ばれた。スピノサ(Spinosa)という名称は、この種
のとげがある胞子装飾を反映している。
見るとA83543.1菌株と充分に類似しており、サッカロポ
リスポラ・スピノサの菌株として分類される。この4種
の菌株は、産生するA83543の量が異なる。A83543.3菌株
は、A83543.1菌株に比べ約4倍のA83543を産生し、A835
43.4およびA83543.5菌株は、A83543.1菌株の約8〜9倍
産生する。
培養物、サッカロポリスポラ・スピノサNRRL 18395、NR
RL 18537、NRRL 18538およびNRRL 18539の性質は変異の
対象となる。即ち、当技術分野において知られている物
理的および化学的方法によってこれらの菌株の突然変異
体を得ることができる。例えば、N−メチル−N′−ニ
トロ−N−ニトロソグアニジンのような化学物質による
処理によって、他の菌株を得ることができる。回収可能
な量のA83543を産生するという性質を保持しているサッ
カロポリスポラ・スピノサNRRL 18395、NRRL 18537、NR
RL 18538およびNRRL 18539菌株の天然の、および誘発さ
れた突然変異体は、本発明の一部を構成する。
培養培地は、多数の培地のいずれであってもよい。しか
し、製造の経済性、最高収量、および生成物単離の容易
性の面から、ある種の培養培地が好ましい。すなわち、
例えば、大規模発酵において好ましい炭素供給源は、グ
ルコースおよびマルトースであるが、リボース、キシロ
ース、フルクトース、ガラクトース、マンノース、マン
ニトール、水溶性デンプン、ポテトデキストリン、オレ
イン酸メチル、大豆油のような油などを用いることもで
きる。
ルクおよび温浸大豆のあらびき粉であるが、魚のあらび
き粉、コーン浸漬リカー、イースト抽出物、発酵−加水
分解したカゼイン、ビーフ抽出物などを用いることもで
きる。
鉛、ナトリウム、マグネシウム、カルシウム、アンモニ
ウム、塩素、炭酸、硫酸、硝酸などのイオンを生成しう
る通常の水溶性塩類である。
培地中に入れるべきである。通常、このような微量元素
は、他の培地成分中の不純物として、微生物増殖の際の
要求を満たすに充分な量で見いだされる。
0.2ml/)の消泡剤(ポリプロピレングリコールなど)
を大規模発酵の培地に加えてもよい。しかし、A83543を
製造する培養物の場合、慣用の消泡剤はA83543の産生を
抑制する。培地に大豆油またはプルロニックL−101(B
ASF)を含有させる(1〜3%)ことによって、泡立ち
を制御することができる。泡立ちが増大する場合にはさ
らに油を添加してもよい。
によって変化しうる。例えば、バリン、イソ酪酸または
プロピオン酸の添加によって、産生されるA83543Dの割
合(%)が増大する。
クターでの水中好気性発酵が好ましい。少量のA83543は
振盪フラスコ培養で得てもよい。胞子形の微生物を大き
いバイオリアクターに接種すると通常産生の時間的ずれ
が生じるので、栄養成長接種物を用いるのが好ましい。
この栄養成長接種物は、少量の培養培地に胞子形の微生
物または微生物の菌糸体フラグメントを接種し、新鮮
な、活発に増殖している微生物培養物を得ることによっ
て調製される。次いで、この栄養成長接種物を大きいバ
イオリアクターに移す。栄養成長接種物の培地は大規模
発酵に用いるものと同じであってよいが、他の培地も適
している。
生物によってA83543が産生される。A83543産生の最適温
度は約28〜30℃である。
ン羽根ポンプで攪拌しながら、容器の底から滅菌空気を
吹き込む。通常、曝気速度および攪拌速度は、0.34気圧
の内部容器圧での空気飽和が35%あるいはそれ以上、好
ましくは50%あるいはそれ以上である溶解酸素のレベル
を維持するのに充分なものであるべきである。
によって発酵中に追跡することができる。実施例1に記
載するようなシステムを用いるHPLCは、このための有用
な検定法である。
で用いられる方法により発酵培地からA83543成分を回収
することができる。A83543産生微生物の発酵中に産生さ
れるA83543は、菌糸体およびブロスの両方で生じる。A8
3543は親油性である。したがって、発酵で相当量の油を
用いると、全ブロスの抽出がより効果的になる。極く少
量の油を用いた場合、A83543の大部分が菌糸体中にあ
る。その場合、培地を始めに濾過して菌糸体の集合体
(バイオマス)とブロスを分離することによってA83543
の回収をさらに効果的に行う。
ことができる。好ましい方法としては、分離したバイオ
マスを水で洗浄して残存するブロスを除去し、A83543が
可溶である極性溶媒(例えば、メタノールまたはアセト
ン)とバイオマスとを混合し、溶媒を分離および濃縮
し、この濃縮物を非極性溶媒で抽出し、そして/または
逆相シリカゲル吸着剤(例えば、RP−C8またはRP−C1
8)もしくは多孔性ポリマー(例えば、HP−20)などに
吸着させる方法が挙げられる。
トリル:メタノール混合液)を用いて活性物質を吸着剤
から溶離する。
B、A83543C、A83543D、A83543E、A83543F、A83543G、A8
3543HおよびA83543J、ならびにA83543A偽アグリコンに
分離することができる。好ましい分離法としては、逆相
シリカゲル(C18またはC8)クロマトグラフィー法が挙
げられる。
抽出または分離をすることなく、好ましくは水を除去し
た後に、A83543の供給源として用いることができる。例
えば、A83543の産生の後、凍結乾燥、ドラム乾燥、また
は共沸蒸留と乾燥によって、全発酵ブロスを乾燥しても
よい。次いで、この乾燥ブロスを直接、例えば飼料プレ
ミックスに直接混合して、用いることができる。
る。したがって、本発明は、昆虫またはダニを抑制する
量のA83543化合物を昆虫またはダニの生息場所に適用す
ることからなる昆虫またはダニを抑制する方法を提供す
るものである。
示す。さらに具体的には、本発明化合物は、鱗翅目(Le
pidoptera)の昆虫の1種である南部アワヨトウの幼虫
(Southern armyworm)に対して活性を示す。この目に
属する他の代表的な種類としては、ヒメハマキ(codlin
g moth)、ネキリムシ(cutworms)、イガ(clothes mo
ths)、インディアンミールモス(Indianmeal moth)、
ハマキムシ(leaf rollers)、オオタバコガの幼虫(co
rnearworm)、コットンボウルウォーム(cotton boll w
orm)、アワノメイガ(European corn borer)、アオム
シ(impoted cabbageworm)、イラクサキンウワバ(cab
bbag looper)、ピンクボウルウォーム)pink bollwor
m)、ミノムシ(bagworm)、東部テンマクケムシ(East
ern tent caterpillar)、サドウェブウォーム(sod we
bworm)およびフォールアーミーウォーム(fall armywo
rm)が挙げられる。
であるコットンアリマキ(cotton aphid)に対しても活
性を示す。同翅目の他の種類としては、ヨコバイ(leaf
hoppers)、プラントホッパー(planthoppers)、ヨー
ロッパナシキジラミ(pear psylla)、アップルサッカ
ー(apple sucker)、カイガラムシ(scale insect
s)、コナジラミ(whiteflies)、アワフキ(spittle b
ugs)、ならびにその他多数の宿主特異的なアリマキ種
が挙げられる。
であるサシバエ類(stable flies)、クロバエ類(blow
flies)および蚊に対して活性を示す。この目の他の種
類としては、普通のイエバエ(house fly)が挙げられ
る。
に有用であり、昆虫またはダニを不活性化させる有効量
のA83543化合物を生息場所に適用することからなる昆虫
またはダニの生息数を制御する方法に用いられる。
ニが生息しているかまたはそれらの卵が存在している環
境を指し、それらを取り巻く空間、それらが食べた食
物、またはそれらが接触した物を包含する。例えば、植
物を摂取する昆虫またはダニは、これらの昆虫またはダ
ニが食べるかまたは存在する植物の部分(特に葉)に活
性化合物を適用することにより抑制することができる。
性化合物を適用することによって、これらの物質を保護
するのにも有用である。
しくはダニの生存数の減少かまたは昆虫もしくはダニの
卵の生存数の減少を意味する。ある化合物によって達成
される減少の程度は、もちろん、化合物の適用量、使用
した実際の化合物、および標的となる昆虫またはダニの
種類による。少なくとも、昆虫を不活性化させる量また
はダニを不活化させる量を用いるべきである。
せる量」という用語は、処置される昆虫またはダニの数
の測定可能な減少を生じるのに充分な量を表すために用
いる。一般に、活性化合物約1〜約1000ppm(または0.0
1〜1kg/ha)の範囲の量が用いられる。
させる有効量の本発明のA83543化合物を植物に適用する
ことからなる。感受性の鱗翅目の昆虫を抑制する方法に
関する。
制する有効量のA83543化合物を経口的または非経口的に
動物に投与することからなる、動物において双翅目のサ
シバエ(biting flies)を抑制する方法に関する。
よって殺ダニ活性および殺昆虫活性について調べた。
塩/非イオン系界面活性剤混合物)23gおよび「Toximul
S」(スルホン酸塩/非イオン系界面活性剤混合物)13
gを1リットル当たりに含有するアセトン/アルコール
(1:1)混液に溶解して、製剤化した。次いで、これら
の混合物を水で希釈し、標示した濃縮物を得た。
トンまたはメロンアリマキ[Aphis gossypii Glover]
をカボチャ子葉に導入し、二葉の表面に定着させた。同
じ処理ポットの他の植物は寄生されない状態においた。
次いで、デビルバイス噴霧スプレー(DeVilbiss atomiz
ing sprayer)を用いて10psiで葉に被験溶液5mlをスプ
レーした。流れ落ちるまでの葉の両表面を被覆し、次い
で、1時間乾燥させた。次に、2つの寄生していない葉
を切除し、南部アワヨトウの幼虫[Spodoptera eridani
a Cramer]を入れたペトリ皿中に入れた。
いて、他の昆虫についても評価した。
た。結果を以下の表に示す。各表では、以下の略語を使
用している。
の幼虫に対するA83543A処置の効果および持続性をメソ
ミル(methomyl)のものと比較するものである。
験昆虫またはダニを50%抑制する致死化合物濃度を、既
知の殺虫剤メソミルによって示される値と比較するもの
である。
て、A83543の各成分は、ネッタイシマカ(yellow fever
mosquito)[Aedes aegypti]幼虫に対して活性であ
る。第17表および第18表に、これらの試験における各成
分の活性を示す。
おいて、A83543Aは、ブロッコリー上のアオムシ(impor
ted cabbage worm)およびイラクサキンウワバ(cabbag
e looper)、ならびに大豆上のビーンルーパー(soybea
n looper)(75%)およびフォールアーミーウォーム
(fall armyworm)(25%)の混合虫に対して活性を示
した。
は本発明の一部分でもある。これらの組成物は、昆虫ま
たはダニを不活性化する量のA83543化合物および植物学
的に許容される不活性担体からなる。活性成分、すなわ
ちA83543化合物は、1)単一のA83543成分、2)2また
はそれ以上の成分の混合物、3)分離したA83543混合
物、または4)A83543が産生される発酵培地の乾燥部分
と一緒のA83543、すなわち粗製の乾燥発酵ブロスとして
存在してもよい。
であるか、または追加の処理を必要とせずに適用される
ダスト製剤もしくは顆粒製剤である。
処方に従って製造されるが、本発明化合物が1またはそ
れ以上存在するので新規かつ重要な製剤である。
は、本化合物または粗乾燥物の濃縮製剤から調製された
水性懸濁液またはエマルジョンである。このような水溶
性、水懸濁性または乳化性製剤とは、水和剤(Wettable
powder)として通常知られている固形物、または乳剤
(emulsifiable concentrates)もしくは水性懸濁剤と
して通常知られている液状物のいずれかである。
和剤は、活性化合物、不活性担体および界面活性剤の緊
密な混合物からなる。活性化合物の濃度は、通常、約1
重量%から、好ましくは10重量%から、約90重量%まで
ある。不活性担体は、通常、アタパルジャイト・クレ
イ、モンモリナイト、クレイ、珪藻土および精製シリケ
ート類の中から選択する。
する)は、硫酸化リグニン、縮合ナフタレンスルホネー
ト類、ナフタレンスルホネート類、アルキルベンゼンス
ルホネート類、硫酸アルキル類、ならびにアルキルフェ
ノール類のエチレンオキサイド付加物などの非イオン性
界面活性剤などから選ばれる。
有機溶媒と乳化剤との混合物のいずれかである不活性担
体中に溶解された都合の良い濃度、例えば液体1に対
し約50〜約500g(約10%〜約50%に等しい)の化合物を
含有している。
れ、特にキシレン類、および石油留分、特に重芳香族ナ
フサなどの石油の高沸点ナフタレン分溜およびオレフィ
ン分溜などが含まれる。他の有機溶媒としては、テルペ
ン系溶媒、例えばロジン誘導体、シクロヘキサノンなど
の脂肪族ケトン類、および2−エトキシエタノールなど
の複合アルコール類を使用してもよい。
系界面活性剤から選ばれる。
50重量%の範囲で分散させた本発明の水不溶性化合物の
懸濁液からなる。この懸濁液は、本発明化合物を細かく
粉砕し、水および既述の界面活性剤の中から選ばれる界
面活性剤からなるビヒクルに入れ、激しく混合すること
によって調製する。水性ビヒクルの密度および粘性を増
加させるために、無機塩および合成または天然ゴムなど
の不活性成分を加えることもできる。水性混合物を調製
し、それをサンド・ミル、ボール・ミルまたはピストン
型ホモジナイザーなどの装置でホモジナイズすることに
よって、化合物の粉砕と混合を同時に行うのが最も効率
的であることが多い。
できるが、これは土壌への適用に特に有用である。この
顆粒剤は、通常、化合物を約0.5重量%〜約10重量%含
有し、クレイまたは同等の安価な物質のみからなる不活
性担体、またはそれらが大部分を占める不活性担体に分
散されている。
に溶解し、それを、前もって約0.5〜3mmの範囲の適当な
粒径に調製しておいた顆粒担体に適用することによって
製造される。このような製剤は、担体および化合物の生
地またはペーストを製造し、次いで、粉砕および乾燥し
て所望の顆粒粒径とすることによって製剤化することが
できる。
合物を適当なダスト状農業用担体、例えばカオリン・ク
レイ、粉砕火山岩などと緊密に混合することによって簡
単に製造できる。ダスト製剤は、本発明化合物を約1%
〜約10%含有するのが適当である。
機溶媒、通常は農業化学において広く用いられているス
プレー油のような非刺激性の石油を用いて、溶液の形で
本発明化合物を散布することも実用的である。
分を分散させた形で適用される。通常、適用割合は担体
中の活性成分の濃度を参考にする。最も広く用いられて
いる担体は水である。
もできる。このような製剤では、圧力を発生するプロペ
ラントの混合物である不活性担体に活性化合物を溶解す
るかまたは分散する。エアロゾル製剤を容器に充填し、
これから混合物が噴霧弁を通って噴霧される。プロペラ
ント混合物は、有機溶媒と混合されていることもある低
沸点ハロゲン化炭素、または不活性ガスもしくはガス状
炭化水素で加圧された水性懸濁液のいずれかからなる。
際の量は限定されるものではなく、本明細書に挙げた例
に基づいて、当業者が容易に決定することができる。普
通は、化合物濃度が10ppm〜5000ppmであれば良好な抑制
が得られるものと予想される。本発明化合物の多くは、
100〜1000ppmの濃度で充分である。大豆および綿のよう
な農作物については、化合物の適切な適用量は約0.01〜
1kg/haであり、通常は噴霧製剤5〜50gal/Aである。
している全ての生息場所、例えば、栽培野菜、果物およ
び実のなる木、ブドウの木および鑑賞用植物などであっ
てよい。
の公知の殺ダニ剤のように繰り返し適用して新しく発生
する幼虫を抑制するのが好ましい。
ロ試験の結果を示す。
よびヒツジにおいて、明確な毒性の徴候を伴わずにクロ
バエ幼虫およびサシバエ成虫に対して全身性の殺虫活性
を示した。代表的な化合物A83543AおよびA83543Dを、研
究室において標的動物で試験し、活性範囲を測定した。
以下に、この試験を説明する。
物をポリビニルピロリドン水溶液またはポリエチレング
リコール200に溶解し、この溶液の適切な量を経口的
に、または腹腔内注射によって投与する。以下の表に示
すように種々の投与量の化合物を用いる。
液を採取し、血液飼料を遠心分離した。歯科用ガーゼ芯
(デンタル・ウィックス)に血清をしみ込ませ、次い
で、ペトリ皿中でサシバエの成虫に暴露した。クロバエ
の幼虫は、試験官中で暴露した。24および48時間後、こ
の昆虫を調べ、死に至った数を数えた。この試験の結果
を死んだ昆虫の割合(%)で記録する。
を用いてヒツジを試験する。試験化合物を復興内もしく
は静脈内注射によって、または第一胃内に投与し、これ
らの試験の24時間目に血液試料を採取した。
ジの全身系試験の結果を第22表〜第25表に示す。
与したとき、腸線虫Nematospiroides dubiusに実験的に
感染させたマウスにおいて、または体重1kg当たり50mg
を腹腔内もしくは第一胃内に1回で投与して処置したヒ
ツジにおいて駆虫活性を示さなかった。
トロ試験において、A83543Aは100ppmの濃度で虫の30%
を殺した。
ることからなる、宿主細胞の血液を消費する昆虫外部寄
生生物の数を抑制する方法を提供するものでもある。昆
虫外部寄生生物には、昆虫およびダニ目寄生生物が含ま
れる。動物への投与は、皮膚、経口または非経口経路で
あってよい。
性の種、ならびに生存期間の全てまたはその一部(例え
ば、幼虫段階だけもしくは成虫段階だけ)においてのみ
寄生する種が挙げられる。代表的な種としては、以下の
ものが挙げられる。
s asini メインジ・マイト(mange mite) Sarcoptes scabiei スキャブ・マイト(scab mite) Psoroptes equi ツノサシバエ(horn fly) Haematobia irritans ウシハジラミ(cattle biting louse) Bovicola bovi
s ウシジラミ(shortnosed cattle louse) Haematopinu
s eurysternus ロングノウズド・キャトル・ラウス(longnosed cattle
louse) Linognathus vituli ツェツェバエ(tsetse fly) Glossina spp. ウシニキビダニ(cattle follicle mite) Demodex bo
vis ウシダニ(cattle tick) Boophilus microplus and
B.decoloratus ガルフ・コースト・ティック(Gulf Coast tick) Amb
lyomma maculatum ロウン・スター・ティック(Lone Star tick) Amblyo
mma americanum イアー・ティック(ear tick) Otobius megnini ロッキー山森林ダニ(Rocky Mountain wood tick) De
rmacentor andersoni ラセンウシバエ(screwworm fly) Cochliomyia homin
ivorax サシガメ(assassin bug) Reduvius spp. 蚊(mosquito) Culiseta inornata ブラウン・イアー・ティック(brown ear tick) Rhip
icephalus appendiculatus アフリカン・レッド・ティック(African red tick)
Rhipicephalus evertsi ボント・ティック(bont tick) Amblyomma sp. ボント・レッグド・ティック(bont legged tick) Hy
alomma sp. ブタシラミ(hog louse) Haematopinus suis スナノミ(chigoe) Tunga penetrans ヒトジラミ(body louse) Haematopinus ovillus フット・ラウス(foot louse) Linognathus pedalis ヒツジシラミバエ(sheep ked) Melopagus ovinus シープ・スキャブ・マイト(sheep scab mite) Psoro
ptes ovis グリーンボトル・フライ(greenbottle fly) Phaenic
ia sericata ブラック・ブロウ・フライ(black blow fly) Phormi
a regina セカンダリー・スクリュー・ウォーム(secondary scre
w−worm) Cochlimyia macellaris シープ・ブロウ・フライ(sheep blow fly) Phaenici
a cuprina ベグ・バグ(beg bug) Cimex lectularius サザーン・チキン・フリー(Southern chicken flea)
Echidnohaga gallinacea ファウル・ティック(fowl tick) Argas persicus チキン・マイト(chicken mite) Dermanyssus gallin
ae スケイリィレグ・マイト(scalyleg mite) Knemidoko
ptes mutans デプルーミング・マイト(depluming mite) Knemidok
optes gallinae イヌニキビダニ(dog follicle mite) Demodex canis ドッグ・フリー(dog flea) Ctenocephalis canis アメリカン・ドッグ・ティック(American dog tick)
Dermacentor variabilis ブラウン・ドッグ・ティック(brown dog tick) Rhip
icephalus sanguineus 本発明方法は、外部寄生生物から家畜動物および愛玩
動物を保護するために用いてもよい。例えば、本発明化
合物を、ウマ、ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、イヌ、ネコ
など、ならびにラクタ、ラマ、シカのような外来の動
物、および通常野生動物と称されている他の種に投与す
るのも有用である。また、本発明化合物を、七面鳥、ニ
ワトリ、アヒルなどのような家禽およびその他の鳥類に
投与するのも有用である。本発明方法は、好ましくは家
畜動物に、最も好ましくはウシおよびヒツジに適用され
る。
生物の種類、寄生生物撲滅薬適用の程度、およびその他
の因子によって広範に変化するであろう。適用は、宿主
の生存期間の全体にわたって定期的に、または寄生生物
が攻撃するピークの季節にだけ行うことができる。一般
に、本発明化合物約0.00005〜95.0%、好ましくは5%
まで、最も好ましくは約1%までの化合物を含有する液
体製剤の局所適用によって、外部寄生生物の抑制が得ら
れる。約5〜100mg/kgの投与割合で効果的な寄生生物の
抑制が達成される。
胞に適用される。通常、本発明化合物は、化合物および
生理学的に許容される担体からなる外部寄生生物撲滅組
成物に製剤化される。例えば、液体組成物を、外部寄生
生物の抑制が望まれる動物に単にスプレイしてもよい。
また、布に毒性化合物を含ませたバック・ラバーのよう
な装置によって動物自体を処置してもよい(例えば、こ
れに対して動物を歩かせ、接触させる)。また、宿主動
物に活性薬物を投与するために浸液タンクも用いられ
る。
する。本発明化合物は、該化合物の1つを投与した宿主
細胞の組織に浸透する能力を有する。宿主細胞の血液ま
たはその他の生組織を摂取する昆虫寄生生物はそれによ
って殺される。本発明化合物は、皮膚、経口または経皮
経路によって投与される。
よびA83543化合物を含有する外部寄生生物撲滅組成物を
提供するものもある。これらの組成物は、当該技術分野
で知られている方法によって、例えば多数の生理学的に
許容される補助薬または希釈剤のうちの1つに本発明化
合物を溶解することによって製造することができる。経
口投与は、動物を飼料または飲料水に本化合物を混合す
ることによって、または錠剤、カプセル、ボーラス、ま
たはインプラント剤のような投薬形態で投与することに
よって行うことができる。経皮投与は、注射可能な製剤
を皮下、腹腔内および静脈内注射することによって好都
合に行われる。
通常の形態で経口投与用に製剤化することができる。も
ちろん、このような組成物は、経口的に許容される不活
性担体を必要とする。本化合物は、皮下、皮膚、第一胃
内、腹腔内、筋肉内、または静脈内注射のための注射溶
液または懸濁液として製剤化することもできる。ある種
の適用において、本化合物は、普通の動物飼料の一成分
として好都合に製剤化される。具体的には、まず、液体
または微粒子の固体担体に本化合物を分散されたプレミ
ックスとして本化合物を製剤化するのが普通である。プ
レミックスは、1ポンド当たり化合物約2〜250gを含有
することができる。次に、このプレミックスは、慣用の
混合によって、最終の試料中に配合される。
相当な期間にわたって起こるので、一定の期間にわたっ
て放出を持続する形態で本発明化合物を投与するのが好
ましい。慣用的な方法としては、物理学的に溶解を抑制
するマトリックスの使用が挙げられる。ここで、マトリ
ックスは、植物ろうまたは高分子量のポリエチレングリ
コールのようなワックス状の半固体である。本発明化合
物を投与するための良い方法は、レイビィ(米国特許第
4,251,506号)およびシンプソン(英国特許第2,059,767
号)が開示しているような持続性のボーラスを用いるこ
とである。このようなボーラス用には、本発明化合物
は、ネビィン(米国特許第4,273,920号)が開示してい
るような高分子マトリックスのカプセルに入れられる。
シリコーン含有ゴムからのように移植物の使用によっ
て、本発明化合物の持続放出を達成することもできる。
る。
析HPLC法が有用である。
除去した。バイオマスに充分量のメタノールを添加し、
試料を初めの容量に戻し、混合し、この混合物を最低15
分間放置した。遠心し、0.45μのフィルターで上清を濾
過した。
ス:溶媒=1:4)またはアセトンで抽出することができ
る。
18[ノバ(Nova)C18、ウォーターズ(Waters)]。
eOH/H2O(45/45/10)。
濁液としての、培養サッカロポリスポラ・スピノサ(sa
ccharopolyspora spinosa)NRRL 18395を、組成Aまた
はBの栄養培地に接種した(培地Bは、大規模産生用と
して好ましい)。
しない。* バルティモア・バイオロジカル・ラボラトリーズ(Ba
ltimore Biological Laboratories) 栄養培地B 成 分 使用量(%) 酸素加水分解したカゼイン* 3.0 イースト抽出物 0.3 MgSO4・7H2O 0.2 グルコース 1.0 脱イオン水を適量加えて全量を1にする。
[Sheffield Products,P.O.Box 638 Norwich,NY 1381
5]。
(スラント)または平板(プレート)を調製することが
できる。接種したスラントを30℃で約10〜14日間インキ
ュベートした。充分に成長したスラント培養物を滅菌器
具でこすって胞子をほぐし、菌糸体のマットを取って柔
らかくした。このようにしてほぐした胞子および培養増
殖物を得、その約1/4を第1段階の栄養種培地50mlに接
種した。別の方法として、液体窒素アンプルから第1段
階の培地に接種してもよい。
物(48〜72時間インキュベーション、30℃)および懸濁
培地を用いてアンプルを調製した。懸濁培地は、ラクト
ース(100g)、グリセロール(200ml)を含んでおり、
これに脱イオン水を適量加えて全量を1にした。
ーフラスコに栄養培地100ml(または250mlのフラスコに
培地50ml)を接種した。培養物を、2インチ(5.08cm)
の円を250rpmで旋回する振盪器を用い、30℃で48時間イ
ンキュベートした。
用いて、以下の組成を有する製造培地100mlに接種し
た: 製造培地I 成 分 使用量(%) グルコース 4 部分的に酵素加水分解した 植物タンパク* 1.5〜3 綿実粉末** 1.0 CaCO3(試薬級または工業用) 0.3 大豆油 1.0 水道水を適量加えて全量を1にする。(滅菌前に、
NaOHでpH7.0に調製した)* シェフトン(Sheftone)H、シェフィールド・プロダ
クツ(Sheffield Products)** プロフロ(Proflo)、トレイダーズ・プロテイン
(Traders Protein,P.O.Box 8407,Memphis,TN 38108) 接種した製造培地を、500mlのエルレンマイヤーフラ
スコ中、2インチの円を250rpmで旋回する振盪器を用
い、28〜30℃で6〜8日間インキュベートした。
段階の培地を上記Aのようにして調製し、その10mlを用
いて、第1段階の栄養培地と同一の組成を有する第2段
階栄養培地400mlに接種した。この第2段階の培地を2
の広口エルレンマイヤーフラスコ中、2インチの円を
250rpmで旋回する振盪器を用い、30℃で48時間インキュ
ベートした。
の栄養培地(2)を用いて、上記Aの記載に従って調
製した滅菌製造培地80〜115に接種した。必要に応じ
て、起泡を抑制するために、さらに大豆油を加えた。
中、28℃の温度で5〜8日間発酵させた。この攪拌容器
中への空気の吹き込み速度および攪拌速度は、空気飽和
の50%またはそれ以上の溶解酸素レベルを維持するよう
にコンピューターで調節した。
)を濾過助剤[1%ハイフロ(Hyflo)]を用いて濾
過し、分離したバイオマスを水(〜50)で洗浄した。
次いで、バイオマスをメタノール(〜100)と一緒に
約1時間攪拌し、濾過した。
エチルエーテル(各1)で3回抽出した。エーテル抽
出物を合わせて、約200mlの量に濃縮した。
ラフィーにかけた[RP−8ロバー(Lober)、サイズ
B、イー・エム・サイエンス(E.M.Science,a Division
of E.M.Industries,Inc.)]。
(Autoprep)」モードの調製用クロマトグラフィー処理
を行うための装置および実施方法は以下のとおりであっ
た: 完全な「オートプレプ」HPLCシステムは、3つのレイ
ニン・ラビット(Rainin Rabit)HPXポンプ、1つの圧
力モジュール、1つのギルソン・モデル(Gilson Mode
l)20 1B HPLC分画コレクター、1つのISCO−V4吸収検
出器および1つのアップル・マッキントッシュ・プラス
(Apple Macintosh Plus)コンピューターからなってい
た。完全なシステムは、レイニン・インストゥルメント
・カンパニー・インコーポレイテッド(Rainin Instrum
ent Company,Inc.)によるダイナマックス・HPLC・メソ
ッド・マネージャー(Dynamax HPLC Method Manager)
マニュアルの説明に従って配置した。「オートプレプ」
HPLC配置は、実質的に同一の結果が得られる実質的に同
一の条件下で、繰り返し調製用分離を行うために、シス
テムオートメーションを利用した。多数の操作によって
得られた対応する分画の回収および貯留によって、大き
いカラムを必要とせずにクロマトグラフィーの容量が得
られた。
媒混合液(A)および(B)を用いた。
していた。
分間に得られた溶出液は廃棄した。これに続く溶出液を
各々2分ずつ(16ml)6回−分画中に回収した。
最終分画が得られた(クロマトグラフィーによるカッ
ト)。
って、および分析用HPLCによって、活性A83543化合物の
存在を測定した。
ィールに従って合わせ、同一の「オートプレプ」HPLCお
よび溶媒系を用いて、ただし高分解能を有する8μC−
18逆相シリカゲルを充填した21.4mm×25cm調製用カラム
[レイニン・ダイナマックス(Rainin Dynamax)]を用
いて、さらに精製し、A83543成分A、B、CおよびDを
得た。因子AおよびDをCH3OH/H2Oから結晶化した。
を第9図に示す。
豆油を製造培地から除外し、そして3)インキュベーシ
ョンを30℃で4〜6日間行う以外は、実施例2のAの記
載に従って、発酵ブロス(10)を調製した。このブロ
スを濾過した。A83543Aを4mcg/ml含有し、1ml当たりのA
83543B、CまたはDの量が検出不能である濾液を廃棄し
た。
た。抽出系(7)は、A83543Aを72mcg/mlおよびA8354
3Dを7mcg/ml含有していた。
中で、HP−20樹脂[150ml、ミツビシ・ケミカル・イン
ダストリーズ・リミテッド(Mitsubishi Chemical Indu
stries,Ltd.,Japan)]に加えた。この混合物を1時間
攪拌した。
最初の流出液およびメタノール:水(1:1、1)によ
る溶出液は活性ではなかった。メタノール:水(7:3、
1)による第2の溶出液は、痕跡量のA83543Aを含有
していた。次のメタノール(1)を用いた溶出液は、
A83543AおよびA83543D活性を含んでいた。
つの類似した分画と混合し、濃縮乾固した。残留物をメ
タノール:THF(4:1)75mlに溶解し、10容量倍のアセト
ニトリル添加して沈澱させた。混合物を濾過し、濾液を
濃縮乾固した。
で調製したLH−20セファデックス(Sephadex)[ファル
マシア・エル・ケイ・ビー・バイオテクノロジー・イン
コーポレイテッド(Pharmacia LKB Biotechnology In
c.,U.S.A.)]の5.5×90cmカラムに入れ、実施例1に記
載のHPLC法を用いて125の25ml分画を集め、分析した。
残留物をエタノール(10ml)に溶解し、8μC−18逆相
シリカゲル(レイニン・ダイナマックス)を予め充填し
た41.1mm×25cm調製用カラムに入れた。
7.5:37.5:25)中で調整した。試料を入れた後、このカ
ラムを下記溶媒の180分直線勾配液を用いて展開させ
た。
集めた。
H(5ml)に溶解し、凍結乾燥してA83543Aの純品778mgを
得た。
A83543AのFD−MSスペクトルを第4図に示し、A83543Aの
FAB−MSスペクトルを第8図に示し[FAB分散剤−ジチオ
トレイトール:ジチオエリスリトール(5:1)]、そし
てA83543AのEI−MSスペクトルを第10図に示す。
得たD含有分画と混合し、濃縮し、溶媒は異なるが同一
のカラムを用いて上記に従ってクロマトグラフィー処理
した。このカラムをメタノール:アセトニトリル:水
(40:40:20)中で調整した。180分の直線勾配操作でカ
ラムを展開するのに用いた溶媒系は、以下のものであっ
た。
留物をt−BuOH(5ml)に溶解し、凍結乾燥して、A8354
3D 212mgを得た。
A83543DのFD−MSスペクトルを第6図に示す。
の偽アグリコンの単離 実施例2に記載した方法と同様の方法を用いて調製し
た発酵ブロス(8)を実施例4の記載に従って処理し
た。目的の化合物を含有するLH−20セファデックスカラ
ムからの分画を同様の発酵によって得た対応の分画と混
合した。成分E、F、G、H、JおよびAの偽アグリコ
ンは非常に少量しか製造されないので、後の精製用に充
分な量を得るためには多数の発酵が必要である。
微量の因子の貯留物を、実施例4の記載に従って、8μ
C−18逆相シリカゲル(ODS)を充填したHPLCカラム
(レイニン・ダイナマックス)に入れた。このカラムを
CH3OH:CH3CN:H2O(75:75:50)中で調整し、以下の溶媒
系を用いて勾配を溶媒(A)100%から溶媒(B)50%
まで変え、20ml分画を集めた。
濃縮し、残留物をメタノール(1ml)に溶解し、21.4mm
×250mm HPLCカラム(レイニン・ダイナマックス)に入
れた。このカラムを、以下の溶媒系の溶媒系(A)を用
いて調整し、100%溶媒(A)から50%溶媒(B)まで
の120分の直線勾配液を用いて展開し、7.5ml/分で15ml
づつ分画を集めた。
溜めた。
マトグラフィー操作によって得た貯留物と混合した。混
合した貯留物を、上記に従いカラムクロマトグラフィー
でさらに精製し、常法によりHP−20樹脂上で脱塩し、濃
縮し、凍結乾燥し、以下の成分を得た。
ルを、各々第7図および第11図に示す。
の方法と同様の方法を用いて、培養サッカロポリスポラ
・スピノサ(Saccharopolyspora spinosa)NRRL 18537
を振盪フラスコ中で培養した。
窒素アンプルを調製した。1つのアンプルを第1段階の
栄養培養物(250mlのフラスコ中、培地C 50ml)に接種
し、これを約48〜72時間インキュベートした。インキュ
ベートした第1段階培養物を第2段階培養物(2のフ
ラスコ中、培地C 400ml)に接種し(接種物10ml)、こ
れを約48時間インキュベートした。インキュベートした
第2段階培養物(5)を以下の組成を有する製造培地
(115)に接種した。
中、30℃の温度で約8〜10日間またはそれ以上発酵させ
た。溶解酵素(DO)は、実施例2のBの記載に従って、
空気飽和の50%以上のレベルのDOを維持するようにセッ
トしたコンピューターシステムで調節した。
て、培養サッカロポリスポラスピノサNRRL 18539を振盪
フラスコ中で培養した。
窒素アンプルを調製した。1つのアンプルを第1段階栄
養培養物(250mlのフラスコ中、培地B 50ml)に接種
し、これを48〜72時間インキュベートした。インキュベ
ートした第1段階培養物を第2段階培養物(2のフラ
スコ中、培地B 400ml)に接種し(接種物10ml)、これ
を約48時間インキュベートした。このインキュベートし
た第2段階の培養物(2)を以下の組成のいずれかの
製造培地(115)に接種した。
中、30℃の温度で約8〜10日間またはそれ以上発酵させ
た。実施例6の記載に従ってDOレベルを調節した。
実施例2および7の方法と同様の方法を用いて、培養サ
ッカロポリスポラ・スピノサNRRL 18538を培養した。
下のようにブロスからA83543を分離した。
ターまたは濾過助剤とフィルタープレスを用いて濾過し
た。
って酢酸エチル抽出物を回収し、真空下、酢酸エチル抽
出物の容量を1/2に濃縮した。
量)で抽出し、相を分離した。
%)を除去した。逆浸透操作を用いて水溶液を濃縮し
た。
した。
して、A83543を得た。
をメタノール(50ml)、水(2ml)および濃HCl(3ml)
に溶解した。この溶液を50℃で濃縮乾固した。残留物を
ジエチルエーテル(各200ml)で2回処理し、不溶性物
質を廃棄した。粗製の為アグリコンを含有するエーテル
溶液を合わせて、これを濃縮乾固した。残留物をメタノ
ール(20ml)に溶解し、実施例3に記載のAUTOPREP−HP
LCシステムを用いて精製し、A83543A偽アグリコンの純
品20mgを得た。
DからA83543D偽アグリコンを調製した。
成物の代表的なものである。
活性剤) 1.0% “ゼオシル(Zeosyl)200"(シリカ) 1.0% “AF−100"(シリコン系の消泡剤) 0.2% キサンタン溶液(2%) 10.0% “マコン(Makon)10"(10モルエチレンオキサイド・ノ
ニルフェノール界面活性剤) 9.0% 水道水 66.3% B.乳剤 A83543D 12.4% “エキソン(Exxon)200"(ナフタレン溶媒) 83.6% “トキシムル(Toximul)H"(非イオン系/陰イオン系
界面活性剤配合物) 2.0% “トキシムルD"(非イオン系/陰イオン系界面活性剤配
合物) 2.0% 実施例13 以下に組成物を例示し、本発明の方法を実施するのに
用いる製剤の種類を説明する。
グラフであり、 第2図は、A83543Dの赤外スペクトルを示すグラフであ
り、 第3図は、A83543Aの偽アグリコンの赤外スペクトルを
示すグラフであり、 第4図は、A83543Aのフィールド・ディソープション質
量スペクトルを示すグラフであり、 第5図は、A83543Cのフィールド・ディソープション質
量スペクトルを示すグラフであり、 第6図は、A83543Dのフィールド・ディソープション質
量スペクトルを示すグラフであり、 第7図は、A83543Aの偽アグリコンのフィールド・ディ
ソープション質量スペクトルを示すグラフであり、 第8図は、A83543Aのフィールド・ディソープション質
量スペクトルを示すグラフであり、 第9図は、A83543Bの高速原子衝撃質量スペクトルを示
すグラフであり、 第10図は、A83543Aの電子衝撃質量スペクトルを示すグ
ラフであり、 第11図は、A83543Aの偽アグリコンの電子衝撃質量スペ
クトルを示すグラフであり、 第12図は、A83543.1の主成分の分布を示すグラフであ
り、 第13図は、A83543Eの赤外スペクトルを示すグラフであ
り、 第14図は、A83543Fの赤外スペクトルを示すグラフであ
り、 第15図は、A83543Gの赤外スペクトルを示すグラフであ
り、 第16図は、A83543H、Jの赤外スペクトルを示すグラフ
である。
Claims (8)
- 【請求項1】式1: [式中、Rは、Hまたは下記式(a)、(b)、(c)
または(d): から選択される基であり、 R2は、下記式: で示される基であり、 R1、R3、R5およびR6は水素原子またはメチル基であり、 R4はメチル基またはエチル基である] で示されるA83543化合物、またはRが水素原子以外であ
る該化合物の酸付加塩。 - 【請求項2】R、R1、R3、R4、R5およびR6が以下の組み
合わせのいずれかである請求項1に記載のA83543化合
物、またはRが水素原子以外である該化合物の酸付加
塩: - 【請求項3】Rが(a)の基であり、R1、R5およびR6が
CH3であり、R3がHであり、R4がエチルである請求項2
に記載の化合物A83543A、またはその酸付加塩。 - 【請求項4】Rが(a)の基であり、R1、R3、R5および
R6がCH3であり、R4がエチルである請求項2に記載の化
合物A83543D、またはその酸付加塩。 - 【請求項5】請求項1〜4のいずれかに記載のA83543化
合物および植物学的に許容される担体を含有する殺虫ま
たは殺ダニ組成物。 - 【請求項6】同化可能な炭素、窒素、および無機塩の供
給源を含む培養培地中、水中の好気性醗酵条件下で、NR
RL 18395、NRRL 18537、NRRL 18538若しくはNRRL 1853
9、またはそれらのA 83543生産性突然変異体よりなる群
から選択されるサッカロポリスポラ・スピノサを、回収
可能な量のA 83543化合物が産生されるまで培養するこ
とを含んでなる請求項1〜4のいずれかに記載のA 8354
3化合物の製造方法。 - 【請求項7】NRRL 18395、NRRL 18537、NRRL 18538若し
くはNRRL 18539またはそれらのA 83543生産性変異体か
ら選択されるA 83543化合物生産性サッカロポリスポラ
・スピノサ。 - 【請求項8】1以上の生理学的に許容し得る不活性な担
体と共に、活性成分としてA 83543化合物を含んでなる
殺外部寄生生物組成物。
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