JP2013056146A - 抗血栓コーティング剤及び医療用具 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 特定組成からなるブロック共重合体、具体的には、(メタ)アクリレート系モノマー重合体(A)と、(メタ)アクリルアミド系モノマー重合体(B)または共重合体(B*)から構成されるブロック共重合体からなる抗血栓コーティング剤により、上記課題を解決する。
【選択図】なし
Description
しかし、ヘパリンを用いる場合には、ヘパリンの溶出に起因する抗血栓性の低下や、ヘパリンが一般的に動物由来のため感染症が生じたりする問題が知られている。従って、最も望ましいのは、ヘパリンフリーで優れた抗血栓性を示す材料を開発することである。しかし、医療用具としては各種素材自体の特性を生かすことが必要なため、これらの素材を用いた製品または部品の表面に抗血栓性を与える優れた抗血栓コーティング剤の開発が最も望まれている。
(式(2)〜(7)中、R1は水素原子またはメチル基、R2は炭素原子数2〜3のアルキレン基、R3、R4、R5、R6はそれぞれ独立に水素原子または炭素原子数1または2のアルキル基である。)
2.前記一般式(1)で表されるモノマー(a)の重合体(A)と、モノマー(a)と前記式(2)〜(7)で表されるモノマー(b)との共重合体(B*)から構成される1.に記載のブロック共重合体からなる抗血栓コーティング剤、
3.前記ブロック共重合体において、重合体(A)が水に不溶性で、重合体(B)または共重合体(B*)が水溶性である1.または2.に記載の抗血栓コーティング剤、
4.モノマー(b)/モノマー(a)の共重合比率が99/1〜10/90モル比である2.に記載の抗血栓コーティング剤、
5.前記ブロック共重合体における重合体(A)と重合体(B)のモル比(A:B)もしくは重合体(A)と共重合体(B*)のモル比(A:B*)が1:50〜50:1である1.または2.に記載の抗血栓コーティング剤、
6.前記ブロック共重合体がトリブロック型共重合体、ジブロック型共重合体、多分岐型ブロック共重合体のいずれかで表される1.〜5.のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤、
7.前記トリブロック型共重合体がA−B−A又はA−B*−A、多分岐型ブロック共重合体が[B−A]pまたは[B*−A]p(pはBまたはB*の分岐数で、3〜10の整数である)で表されるブロック共重合体である6.に記載の抗血栓コーティング剤、
8.前記ブロック共重合体において、共重合体(A)の重合度が30〜3000、共重合体(B)または共重合体(B*)の重合度が20〜20000である1.〜7.のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤、
9.前記ブロック共重合体0.05〜10質量部、エタノール、メタノール、イソプロピルアルコールのいずれかを主成分とする溶媒99.95〜90質量部からなる1.〜7.のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤、
10.1.〜9.のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤がコーティングされた医療用具。
前記一般式(1)で表されるモノマー(a)の中でも、抗血栓性および基材接着性の点から、2−メトキシエチルアクリレート、2−エトキシエチルアクリレート、2−メトキシエチルメタクリレート、2−エトキシエチルメタクリレートがより好ましく、2−メトキシエチルアクリレート、2−エトキシエチルアクリレートが特に好ましい。
本発明において、ブロック共重合体中のA成分とB成分のモル比(A/B)は、1:50〜50:1の範囲が好ましく、1:30〜30:1の範囲がより好ましく、1:20〜1:1の範囲が最も好ましい。AとBのモル比がこの範囲であると、得られるブロック共重合体のエタノールなど、高揮発性で基材への低侵襲性を有する有機溶媒への溶解性が高くなる。結果として、得られるブロック共重合体からなるコーティング剤は優れたコーティング性能(高い均一性、平滑性)、および優れた抗血栓性を示すことになる。
[RAFT剤の合成]
非特許文献「Macromolecules、35、6754(2002)」に従い、下記の手順でRAFT剤「2−(1−Carboxy−1−methylethylsulfanylthiocarbonylsulfanyl)−2−methylpropionic acid」を合成した。
モノマー(a)として2−メトキシエチルアクリレート(東亞合成株式会社製)2.92g、RAFT剤として上記合成した「2−(1−Carboxy−1−methylethylsulfanylthiocarbonylsulfanyl) −2−methylpropionic acid」0.0127g、2,2’−アゾビスイソブチロニトリル0.0007g、1,4−ジオキサン10mLを窒素バブリングした後、70℃、13時間攪拌した。次いで、モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミド(株式会社興人製)6.66g、1,4−ジオキサン10mLを添加し、更に70℃、24時間攪拌した。なお、(a):(b)=500:1500(モル比)。反応終了後、反応液をジエチルエーテルに投入し、更にジエチルエーテルで3回洗浄した後、真空乾燥させ、A−B−A型ブロック共重合体を合成した。
上記反応液を重クロロホルムに入れ、1H−NMR(日本電子(株)製JNM−LA300)測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は99.5%であった。また、ブロック共重合体の構造は下記式(9)のように同定された。
上記の得られたブロック共重合体0.1gを、10gのエタノールに入れ、撹拌することにより、無色透明なポリマー溶液を得た。次いで、直径3/8インチのポリ塩化ビニル製チューブ(メラエクセライン:泉工医科工業株式会社製)30cmの内部に該ポリマー溶液を適量注入し、5分間保持して、チューブ内部のコーティングを行った。その後、該ポリマー溶液をチューブから除去し、50℃熱風乾燥器中で15分間乾燥させた。次いで、コーティングを行ったチューブを50℃の滅菌水に浸漬して、50℃で保持することにより洗浄を行った。洗浄後に再度50℃熱風乾燥器に入れて、30分間乾燥することにより、コーティングチューブを得た。このコーティングチューブを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブを用いて、血液中タンパク質吸着測定試験を行った。オス成ウシより静脈血を5mL、注射器を用いて採血した。これに直ちにヘパリンナトリウム注射液(ヘパリンナトリウム注1万単位「タナベ」:田辺三菱製薬製)を100μL加えて、抗凝固処理を行った。コーティングチューブを3cmの長さに切断し、この抗凝固処理血液を1mL充填して、両端を密封した。次いで、37℃恒温器内で振とうしながら、30分間保持した。その後、コーティングチューブ内の血液を捨てて、生理食塩水で軽く洗浄した。次いで、洗浄後のコーティングチューブを2%グルタルアルデヒド水溶液に浸漬し、室温にて1時間保持した。その後、コーティングチューブを取り出して、1cmの長さに切断した。この切断したコーティングチューブ1内面のタンパク質吸着量を、Micro BCA Protein Assay Kit(Thermo SCIENTIFIC製)を用いて測定したところ、7.5μg/cm2であり、非常に吸着量が少なかった。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、ウシ新鮮血灌流試験を行った。オス成ウシより静脈血を5mL、注射器を用いて採血した。これを直ちにコーティングチューブに充填し、上記コーティングコネクターを用いて、ループ状のチューブになるように両端を接続した。得られたループ状チューブを37℃恒温水槽に浸漬し、100rpmの回転速度で血液をチューブ内に灌流させた。15分後、装置の回転を止め、チューブを恒温水槽から取り出した。次いで、ループ状のチューブの両端からコネクターを取り外し、内部に充填してあったウシ血液を回収した。回収したウシ血液は、凝固しておらず流動性を有していた。血液を除去した後の、コーティングチューブおよびコーティングコネクター表面を生理食塩水で軽く洗浄し、その内面を目視および顕微鏡にて観察したところ、血栓の生成は見られなかった。
上記血液灌流試験にて採血を行ったのと同じオス成ウシより、静脈血を上記と同様の方法により1mL採血した。次いで、この血液を血球測定装置(Laser Cite:IDEXX Laboratories製)にかけることにより、血小板数を測定したところ、535×103個/μLであった。また、上記血液灌流試験で回収したウシ血液についても同様の方法で、血球測定装置にて血液灌流試験後の血液中の血小板数を測定したところ、550×103個/μLであり、血液灌流試験前の血液とほぼ同じであった。
全血凝固線溶分析装置トロンボエラストメトリー(ROTEM:フィガルリンク)を用いて、血液の凝固による弾性変化を測定した。ROTEM測定用カップとピンの外面それぞれに、上記ブロック共重合体を、「基材へのコーティング」で記載と同様の方法でコーティングした。このコーティングカップにボランティアにて提供されたヒト新鮮血及び所定の血液凝固促進試薬を加え、装置にセットすることにより、コーティングカップ及びピンを使用したときの、血液凝固挙動を測定した。測定開始3分後くらいから凝固開始の凝固堅さを示すピークが現れ始めたが、そのピークは非常に小さく(得られたピークのMCFは7mm)、またその後2分くらいから凝固を示すピークが小さくなっていき、さらに数分後にはピークが全く見られなくなった。30分後に測定を終え、該カップ内部を確認したところ、内部の血液は凝固しており、測定は正しく行われたことが確認された。このことから、このブロック共重合体コーティングにより、凝固促進試薬によって開始された血液凝固が促進することはなく、また血液凝固によるカップ及びピンへの血栓の付着は大きく抑制された。また、この結果から、カップおよびピンには、上記ブロック共重合体が確実にコーティングされており、測定中もそれが基材表面に付着した状態で、剥離することなく、抗血栓性の効果を示したことから、上記ブロック共重合体のポリプロピレン基材への良好な接着性が確認された。
インピーダンス法による血小板の凝集能を、血小板凝集測定装置(Multiplate:Verum)を用いて測定した。Multiplate用の金属電極を含むポリプロピレン製測定カップの内面、および撹拌用ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)撹拌子に上記ブロック共重合体を、「基材へのコーティング」で記載と同様の方法でコーティングした。このコーティングカップおよびコーティング撹拌子に、ボランティアにて提供されたヒト新鮮血及び所定の血小板活性化試薬を加え、装置にセットすることにより、血小板凝集によるインピーダンスの変化を測定した。測定開始からインピーダンスの変化はほとんど見られず、測定15分間の面積は20Uであり、血小板活性化及び凝集が大きく抑制されていることがわかった。また、この結果から、金属電極を含むポリプロピレン製カップおよびPTFE撹拌子には、上記ブロック共重合体が確実にコーティングされており、測定中もそれが基材表面に付着した状態で、剥離することなく、抗血栓性の効果を示したことから、上記ブロック共重合体の金属電極を含むポリプロピレン、およびPTFE基材への良好な接着性が確認された。
[ブロック共重合体の合成]
モノマー(a)として2−メトキシエチルアクリレートの量が5.83g、モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミドの量が22.21gであり((a):(b)=1000:5000(モル比))、(b)を添加後の重合時間を48時間とすること、及び、溶媒の1,4−ジオキサンを計60mL(20mL+40mL)使用したこと以外は実施例1と同様にしてA−B−A型のブロック共重合体を合成した。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は97.0%であった。また、ブロック共重合体の構造は式(9)のように同定された。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
「抗血栓性評価」
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[ブロック共重合体の合成]
モノマー(b)の替わりにモノマー(a)3.50gとモノマー(b)4.00gの混合物((a):(b)=40:60(モル比))を用いたこと以外は全て実施例2と同様にして、A−B*−A型ブロック共重合体を合成した。反応終了後、反応液をジエチルエーテルに投入し、更にジエチルエーテルで3回洗浄した後、真空乾燥させ、A−B*−A型ブロック共重合体を得た。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は99.1%であった。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[ブロック共重合体の合成]
モノマー(a)の重合時間を5時間としたこと以外は全て実施例1と同様にして、A−B*−A型のブロック共重合体を合成した。モノマー(a)の重合時間5時間の時点でのモノマー(a)の転化率を1H−NMRにて測定したところ、81%であった。従って、重合体(B*)部分には、モノマー(b)に加えて、5時間の重合時間で反応しなかったモノマー(a)が含まれている。反応終了後、反応液をジエチルエーテルに投入し、更にジエチルエーテルで3回洗浄した後、真空乾燥させ、A−B*−A型ブロック共重合体を得た。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は99%であった。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[RAFT剤の合成]
非特許文献「Macromolecules、36、1505(2003)」に従い、下記の手順でRAFT剤「テトラキス(3−1S−(1−メトキシカルボニル)エチルトリチオカルボニルプロピオン酸)ペンタエリスリトール」を合成した。
モノマー(a)として2−メトキシエチルアクリレートの量が2.92g、モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミド6.66g、((a):(b)=250:750(モル比))、RAFT剤として式(11)の化合物を0.0255g使用すること以外は実施例1と同様にして、[B−A]4多分岐型ブロック共重合体を合成した。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は99.0%であった。また、ブロック共重合体の構造は式(12)のように同定された。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[多分岐型ブロック共重合体の合成]
モノマー(a)の重合時間を4時間とすること以外は実施例5と同様にして、[B*−A]4多分岐型ブロック共重合体を合成した。モノマー(a)の重合時間4時間の時点でのモノマー(a)の転化率を1H−NMRにて測定したところ、75%であった。従って、共重合体(B*)部分には、モノマー(b)に加えて、4時間の重合時間で反応しなかったモノマー(a)が含まれる。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は97.2%であった。
上記転化率、前記式(10)、及びモノマー(a)の転化率(75%)を用いて、重合体(A)、共重合体(B*)及びブロック共重合体の理論分子量を算出した。その結果、[B*−A]4多分岐型ブロック共重合体における、重合体(A)の理論分子量Mnは約24400(190mol)、共重合体(B*)の理論分子量Mnは約80100(790mol)、ブロック共重合体の理論分子量Mnは約418000であった。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[ブロック共重合体の合成]
モノマー(a)として2−メトキシエチルアクリレート(東亞合成株式会社製)1.46g、RAFT剤として2−(Dodecylthiocarbonothioylthio)−2−methylpropionic acid(シグマ−アルドリッチ社)0.0163g、2,2’−アゾビスイソブチロニトリル0.0007g、1,4−ジオキサン10mLを窒素バブリングした後、70℃、13時間攪拌した。次いで、モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミド(株式会社興人製)6.66g、((a):(b)=250:1500(モル比))、1,4−ジオキサン10mLを添加し、更に70℃、24時間攪拌した。反応終了後、反応液をジエチルエーテルに投入し、更にジエチルエーテルで3回洗浄した後、真空乾燥させ、A−B型ブロック共重合体を合成した。
上記反応液を重クロロホルムに入れ、1H−NMR(日本電子(株)製JNM−LA300)測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は96%であった。また、ブロック共重合体の構造は下記式(13)のように同定された。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[ブロック共重合体の合成]
モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミドの代わりに、アクリロイルモルホリンを9.49g使用する((a):(b)=500:1500(モル比))こと以外は実施例1と同様にして、A−B−A型のブロック共重合体を合成した。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は98.5%であった。また、ブロック共重合体の構造は式(14)のように同定された。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[ブロック共重合体の合成]
モノマー(a)として2−メトキシエチルアクリレートの量が2.92g、モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミドの量が66.62gであり((a):(b)=250:15000(モル比))、モノマー(b)添加後の重合時間を72時間とすること、及び、1,4−ジオキサンを計100mL(20mL+80mL)使用したこと以外は実施例1と同様にして、A−B−A型ブロック共重合体を合成した。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は約100%、モノマー(b)の転化率は約93%であった。また、ブロック共重合体の構造は式(9)のように同定された。
上記で得られたブロック共重合体を用いて、実施例1と同様の方法でコーティングチューブおよびコーティングコネクターを作製した。得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡にて観察したところ、塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記の得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ブロック共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。結果をまとめて表1に示す。
[RAFT剤原料の合成]
非特許文献「Polymer、46、8458(2005)」に従い、下記の手順でRAFT剤原料「Sodium S−dodecyltrithiocarbonate」を合成した。
1,4−ビスブロモメチルベンゼン226mgをトルエン10mLに溶解し、上記RAFT剤原料662mgを数回に分けて入れた。室温で4時間攪拌し、一晩放置後、ヘキサン5mLを加えた後、炭酸水素ナトリウム飽和水溶液で洗浄した。更に水洗の後、飽和食塩水で乾燥した。硫酸マグネシウム処理後、エバポレーターを用いてトルエンとヘキサンを除いた。得られた黄色粉末をヘキサンから再結晶して、RAFT剤「1,4−Bis(dodecylsulfanylthiocarbonylsulfanylmethyl) benzene」を黄色結晶として得た(式15)。
モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミド0.22g、RAFT剤として上記合成した「1,4−Bis(dodecylsulfanylthiocarbonylsulfanylmethyl)benzene」0.0295g、2,2’−アゾビスイソブチロニトリル0.0007g、1,4−ジオキサン10mLを窒素バブリングした後、70℃、13時間攪拌した。次いで、モノマー(a)として2−メトキシエチルアクリレート2.92g、((a):(b)=500:50(モル比))、1,4−ジオキサン10mLを添加し、更に70℃、24時間攪拌した。反応終了後、反応液をジエチルエーテルに投入し、更にジエチルエーテルで3回洗浄した後、真空乾燥させ、A−B−A型ブロック共重合体を合成した。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は97.0%であった。また、ブロック共重合体の構造は式(16)のように同定された。
[ランダム共重合体の合成]
モノマー(a)として2−メトキシエチルアクリレート(東亞合成株式会社製)2.92g、モノマー(b)としてN,N−ジメチルアクリルアミド(株式会社興人製)6.66g、2,2’−アゾビスイソブチロニトリル0.0007g、1,4−ジオキサン10mLを窒素バブリングした後、70℃、24時間攪拌し、モノマー(a)と(b)のランダム重合体を得た。なお、(a):(b)=500:1500(モル比)。反応終了後、反応液をジエチルエーテルに投入し、更にジエチルエーテルで3回洗浄した後、真空乾燥させ、ABランダム共重合体を合成した。
実施例1と同様にして、1H−NMR測定を行った。その結果、モノマー(a)の転化率は100%、モノマー(b)の転化率は99.5%で、モノマー組成((a):(b)=500:1500)に対応したABランダム共重合体が得られたことが確認された。
上記の得られたランダム共重合体を用いて、実施例1と同様の方法で、コーティングチューブおよびコーティングコネクターを得た。このコーティングチューブおよびコーティングコネクターを目視および顕微鏡で観察したところ、いずれも塗膜は均一であり、高い透明性を有していることが確認された。
上記で得られたコーティングチューブおよびコーティングコネクターを用いて、実施例1と同様の方法で、「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流実験」および「血球数測定」の各評価を行った。また、「血液凝固弾性測定」および「白血球活性化測定」についても、実施例1と同様の方法で、各測定容器に上記ランダム共重合体を使用してコーティングを行い、測定を実施した。なお、「血液灌流実験」では、灌流後の血液が凝固してしまい、「血球数測定」の評価を行うことは不可能であった。結果をまとめて表1に示す。
「抗血栓性評価」
直径3/8インチの塩化ビニル製チューブ(メラエクセライン:泉工医科工業株式会社製)を処理せずにそのまま使用して、上記「血液中タンパク質吸着測定試験」、「血液灌流試験」、及び「血球数測定」の試験を行った。なお、「血液灌流実験」では、灌流後の血液が凝固してしまい、「血球数測定」の評価を行うことは不可能であった。結果を表1に示す。
Claims (10)
- 前記一般式(1)で表されるモノマー(a)の重合体(A)と、モノマー(a)と前記式(2)〜(7)で表されるモノマー(b)との共重合体(B*)から構成される請求項1に記載のブロック共重合体からなる抗血栓コーティング剤。
- 前記ブロック共重合体において、重合体(A)が水に不溶性で、重合体(B)または共重合体(B*)が水溶性である請求項1または2に記載の抗血栓コーティング剤
- モノマー(b)/モノマー(a)の共重合比率が99/1〜10/90モル比である請求項2に記載の抗血栓コーティング剤。
- 前記ブロック共重合体における重合体(A)と重合体(B)のモル比(A:B)もしくは重合体(A)と共重合体(B*)のモル比(A:B*)が1:50〜50:1である請求項1または2に記載の抗血栓コーティング剤。
- 前記ブロック共重合体がトリブロック型共重合体、ジブロック型共重合体、多分岐型ブロック共重合体のいずれかで表される請求項1〜5のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤。
- 前記トリブロック型共重合体がA−B−A又はA−B*−A、多分岐型ブロック共重合体が[B−A]pまたは[B*−A]p(pはBまたはB*の分岐数で、3〜10の整数である)で表されるブロック共重合体である請求項6に記載の抗血栓コーティング剤。
- 前記ブロック共重合体において、共重合体(A)の重合度が30〜3000、共重合体(B)または共重合体(B*)の重合度が20〜20000である請求項1〜7のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤。
- 前記ブロック共重合体0.05〜10質量部、エタノール、メタノール、イソプロピルアルコールのいずれかを主成分とする溶媒99.95〜90質量部からなる請求項1〜7のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤。
- 請求項1〜9のいずれかに記載の抗血栓コーティング剤がコーティングされた医療用具。
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