JP2001509371A - キメラのインターロイキン−6可溶性受容体/リガンドタンパク質、その類似体およびその使用 - Google Patents
キメラのインターロイキン−6可溶性受容体/リガンドタンパク質、その類似体およびその使用Info
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Abstract
Description
6の融合から構築される新規キメラのsIL-6R/IL-6タンパク質、およびその生物学
的に活性な類似体に関する。そのようなキメラタンパク質および類似体は、がん
性細胞の増殖を阻害することによるがんの治療に、骨髄移植の強化に、肝臓障害
の治療およびIL-6関連症状の治療に特に有用である。
p130と呼ばれる2つの異なるタンパク質からなる膜受容体システムによって媒介 されている(ヒラノら(Hirano et al)による総説、1994年)。gp80の細胞外ド
メインに対応する可溶形態のIL-6R(sIL-6R)は、血液および尿において糖タン パク質として見出されるヒト身体の天然産物である(ノビックら(Novick et al
)、1990年、1992年)。sIL-6R分子の優れた性質は、sIL-6Rが、ヒト細胞を含む
多くの細胞タイプでIL-6の強力なアゴニストとして作用することである(タガら
(Taga et al)、1989年;ノビックら(Novick et al)、1992年)。これは、gp
80の細胞質内ドメインがない場合でも、sIL-6Rは、依然として、IL-6に応答して
gp130の二量化を誘発させることができ、次いで、その後のIL-6特異的なシグナ ル伝達および生物学的作用を媒介するという事実によるものである(ムラカミら
(Murakami et al)、1993年)。活性なIL-6受容体複合体は、実際には、2個のg
p130鎖、2個のIL-6Rおよび2個のIL-6リガンドによって形成される六量体構造で あり(ワードら(Ward et al)、1994年;パオネッサら(Paonessa et al)、19
95年)sIL-6Rはgp130と2通りの相互作用を有し、その相互作用はともに、IL-6に
特異的な生物学的活性に必須である(ハリミら(Halimi et al)、1995年)。
増強される。その一例は、sIL-6Rを加えた場合に、その増殖がIL-6によって大き
く阻害される腫瘍細胞である:例えば、マウス骨髄球性白血病性M1細胞(タガ ら(Taga et al)、1989年)、ヒト乳がんT47D細胞(ノビックら(Novick et al
)、1992年)またはヒトの非小細胞肺がん細胞(ガナパシら(Ganapathi et al )、1996年)など。IL-6は、インビボで抗転移活性を有し(カッツら(Katz et
al)、1995年)、sIL-6Rはまた、IL-6のそのようなインビボでの抗腫瘍作用を増
強することができる(マッキーヴィクズら(Mackiewicz et al)、1995年)。sI
L-6Rの添加により増強されるIL-6の別の活性は、造血幹細胞を刺激して多系統の
コロニーを産生することである(スイら(Sui et al)、1995年)。本発明者ら はまた、脳の稀突起膠細胞の初代培養物の生存がsIL-6RおよびIL-6の組合せによ
って維持されること(オー(Oh)、1997年)を見出したが、IL-6単独では、その
ような培養物において乏しい活性である(カーン(Kahn)および(デ ベリス(D
e Vellis)、1994年)。この発見は、IL-6は、sIL-6Rと組み合わせたときに、gp
130を介して同様に作用する毛様体神経栄養因子(CNTF)または白血病阻害因子 (LIF)などの他の神経栄養性サイトカインの活性を模倣し得ることを示してお り、これは、IL-11およびオンコスタチンMの場合にも見られる(ヒラノら(Hir
ano et al)、1994年)。
、グリシン−リッチリンカーによって連結されたヒトIL-6R配列の短縮セグメン トとIL-6との融合タンパク質の組換え酵母細胞における産生が最近報告された(
フィッシャーら(Fischer et al)、1997年)。この融合タンパク質は、本質的 には、IL-6Rのサイトカイン受容体Nドメインおよびサイトカイン受容体Cドメイ ンのみを含み、従って、本質的には、IL-6Rの免疫グロブリン(Ig)様ドメイン 、および受容体前膜領域(Cドメインと膜貫通ドメインとの間の領域)を欠いて いる。このように、この融合タンパク質は、sIL-6Rの短縮型形態であり、この融
合タンパク質におけるこの短縮型のsIL-6Rは、上記のグリシン−リッチリンカー
を介して、本質的に完全な成熟型形態のIL-6に連結されている。天然のsIL-6Rの
欠失部に加えて、酵母細胞により産生されることによるこの融合タンパク質は、
哺乳類細胞、特に、例えば、ヒト細胞において産生された場合にそのような融合
タンパク質が有するグリコシル化パターンを有していない。実際、酵母によって
産生されたこの融合タンパク質は、約57kDaのみの分子量を有し、これに対して 、本質的にすべての天然のsIL-6RおよびIL-6のアミノ酸残基を含有し、哺乳類(
例えば、ヒト)細胞において完全にグルコシル化された融合産物は、約85kDaの 推定分子量を有する(本明細書中下記の実施例2を参照のこと)。
的な実験により、抗体および非天然の組換え産物で認められる他の副作用の誘発
を避けるために、それらがヒト身体で見出されるような天然の形態のタンパク質
にできる限り近づけることが重要であることが示されてきた。このために、組換
え哺乳類物細胞システムを使用して、天然のヒト産物にできる限り類似したキメ
ラ形態で、インターフェロン−βまたは顆粒球コロニー刺激因子(チェルナジョ
ブスキーら(Chernajovsky et al)、1984年;ホロウェイ(Holloway)、1994年
)などのグリコシル化タンパク質を産生することは有利である。例えば、適切に
グリコシル化されない酵母などの細菌または微生物はまた、タンパク質鎖の誤っ
た折り畳みをもたらし、免疫反応を導く。このことは、N−グリコシル化およびO
−グリコシル化ならびにリン酸化による著しい翻訳後修飾を受けるIL-6(総説、
リーベルら(Revel et al)、1989年)に関して、ならびにヒトの血液および尿 から得られた糖タンパク質であり、そのN端およびC端のアミノ酸が一定しており
、決定された天然のsIL-6R(ノビックら(Novick et al)、1990年および本発明
者らによる共有特許の米国特許第5,216,128号明細書およびその対応ヨーロッパ 特許出願公開第EP413908B1号公報)に関して特に重要である。
ためにそれを使用することに関して多数の欠点が生じ得ると考えられる。これは
、sIL-6Rの一部を欠いているという事実、ならびにタンパク質を正しくグリコシ
ル化し得ない酵母における産生のためである。
ヒトまたは他の哺乳類細胞で産生される融合分子は報告されていない。
らなり、哺乳類細胞で産生されるような融合分子を提供することである。
大きなメラノーマ細胞の増殖を阻害することである。
の移植のためにそのような融合タンパク質(sIL-6R/IL-6キメラ)を使用するこ とである。
学的症状においてそのような融合タンパク質を使用することである。
IL-6関連障害、例えば、肝症状および神経学的症状のための、上記の天然sIL-6R
-天然IL-6融合タンパク質(sIL-6R/IL-6キメラ)を含有する医薬組成物を提供す
ることである。
明の下記の開示から明らかである。
質的にすべて、ならびに天然に存在するヒトIL-6の成熟形態の本質的にすべてか
らなり、それぞれが、長さが3アミノ酸残基もの短さであり得るか、またはそれ よりも長い、例えば、長さが13アミノ酸残基の短いリンカーペプチドによって連
結されてなる多数の融合タンパク質(キメラ)が産生される(下記ならびに実施
例1および2を参照のこと)。しかし、このような融合タンパク質においては、リ
ンカーペプチドを省略することができ、sIL-6R部分をIL-6部分に直接連結するこ
とができることに留意しなければならない。非天然性アミノ酸配列を示すリンカ
ーは、患者において抗体を誘発する免疫原性エピトープであり得るので、所望の
生物学的活性を有する直接融合したsIL-6R/IL-6キメラであることが好ましく、 その一方で、同時に、そのようなキメラ体が投与されたときに、このような混在
的に有害な抗体の形成を誘導する危険性が最小限度化される。
6R配列の保存、ならびに上記のキメラ体がヒト細胞または哺乳類細胞において産
生されたときにそのような細胞によって導入される正しいグリコシル化および他
の翻訳後修飾もまた、キメラタンパク質産物の免疫原性の可能性を低下させるた
めに重要である。
R部分とIL-6部分の接続点で使用することができる。そのような短いリンカーは 免疫原性エピトープではない。当然、2つの部分を分離するために約30個までの アミノ酸のより長いリンカーを使用することもまた可能であるが、この場合、注
意しなければならず、生物学的効能および安全性の実験を行って、そのようなリ
ンカーを有するキメラ分子が免疫原性でないことを保証しなければならない。
ラタンパク質の活性に必須でないことが明らかにされた。このことは、特に、sI
L-6RおよびIL-6部分の天然に存在する本質的にすべての配列がキメラ分子に取り
込まれたとき、該キメラの正しい折り畳みには、より長いリンカーは必要でない
ことを示している(きわめて短い(3アミノ酸)リンカーを有するsIL-6R/IL-6キ
メラと30アミノ酸の長いリンカーを有する類似のキメラとの比較にも関連する実
施例3および図5を参照のこと)。
して通常は非応答性の腫瘍細胞に対して強力な活性を有し、ヒトの骨髄が移植さ
れた細胞の移植の成功を確実にすることにおいて非常に効果的であったグルコシ
ル化産物が得られる(下記および実施例1〜4を参照のこと)。実際、そのような
骨髄移植において、sIL-6R/IL-6キメラは、移植された非拘束の多分化能性造血 幹細胞の生存および増殖に必須であった。さらに、本明細書中下記に示す実験結
果から、そして他の分析からも、理解されるように、本発明のsIL-6R/IL-6キメ ラタンパク質の様々な類似体を調製することができ、sIL-6R/IL-6キメラの本質 的に同じ生物学的活性を有し、そのような類似体は、1個または複数のアミノ酸 残基の欠失、付加、または他のアミノ酸による置換が行われたsIL-6R/IL-6キメ ラであり、そしてそのような類似体に対する唯一の限定は、それらが天然に存在
するsIL-6RおよびIL-6配列の大部分を保持することである。例えば、天然に存在
するsIL-6R配列およびIL-6配列に対するアミノ酸の付加は、約20アミノ酸までに
限定されることが好ましく、好ましくは、このような付加は、sIL-6RとIL-6との
接合部位にあり、すなわち、リンカー分子である。同様に、sIL-6RおよびIL-6配
列からの欠失は、好ましくは、約20〜30アミノ酸までに限定され;sIL-6Rおよび
IL-6配列におけるアミノ酸残基の他のアミノ酸残基による置換もまた、好ましく
は、約20〜30アミノ酸までに限定される。上記の欠失、付加および置換のすべて
は、得られたそのような改変類似体が、天然に存在する配列から本質的に構成さ
れるsIL-6R/IL-6キメラの生物学的活性を本質的に保持し、そして哺乳類細胞で 発現されたとき、天然に存在する配列から本質的に構成されるキメラと同じグリ
コシル化パターンを本質的に保持する場合に本発明により許容される。
およびその生物学的に活性な類似体を提供する。これらは、sIL-6Rの本質的にす
べての天然に存在する形態とsIL-6の本質的にすべての天然に存在する形態との 融合タンパク質産物からなる。該sIL-6R/IL-6およびその類似体は、天然に存在 するsIL-6RおよびIL-6のグリコシル化と類似する様式でグリコシル化される。
R/IL-6タンパク質およびその生物学的な活性な類似体。
ある上記(i)のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的な活性な類似
体。
-Leu-Val-Leu-Gly-Gly-Gln-Phe-Met)(配列番号1)の13アミノ酸残基のペプチ ドである上記(i)のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的な活性な
類似体。
リペプチドリンカーを有し、本明細書中においてsIL-6RδVal/IL-6と呼ばれ、該
キメラタンパク質は図3に示す配列を有するキメラsIL-6R/IL-6タンパク質。
-L-V-L-G-G-Q-F-Mの13アミノ酸ペプチドリンカーを有し、本明細書中においてsI
L-6RδVal/L/IL-6と呼ばれ、該キメラタンパク質は図3に示す配列を有し、図3の
357〜359位の配列E-F-Mのトリペプチドは、前記の13アミノ酸ペプチドリンカー によって置換されるキメラsIL-6R/IL-6タンパク質。
記のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的に活性な類似体。
6R/IL-6タンパク質およびその生物学的に活性な類似体。
哺乳類細胞における前記キメラタンパク質の発現に適するDNAベクターを提供す る。
セシングを可能にし、細胞から前記細胞が増殖する培養培地への完全にプロセシ
ングされたキメラタンパク質の分泌を可能にする配列を有する。
L-6タンパク質がコードされるDNA配列を含有するpcDNA3ベクターからなり、本明
細書中においてプラスミドpcDNAsIL-6R/IL-6と呼ばれる上記DNAベクター。
R/IL-6タンパク質をコードするDNA配列を含有するpcDNA3ベクターからなり、本 明細書中においてプラスミドpcDNAsIL-6R/L/IL-6と呼ばれ、前記キメラsIL-6R/I
L-6タンパク質をコードする前記DNA配列において、リンカーペプチドをコードす
るリンカー配列が、前記タンパク質のsIL-6R部をコードする配列とIL-6部をコー
ドする配列との間に配置されたEcoRI部位に挿入されている上記DNAベクター。
ができ、そして前記細胞が増殖する培地に発現タンパク質を分泌し得る哺乳類細
胞を提供する。
ションされた本明細書中に記載されるヒト胚性腎臓細胞293(HEK293)である。 この細胞は、sIL-6R/IL-6キメラタンパク質を発現することができ、このタンパ ク質を完全にプロセシングすることができ、この細胞が増殖する培地にこのタン
パク質を約85kDaの糖タンパク質の形態で分泌することができる。
ンされた本明細書中に記載されるCHO(チャイニーズハムスター卵巣)細胞であ る。この細胞は、sIL-6R/IL-6キメラタンパク質を発現することができ、このタ ンパク質を完全にプロセシングすることができ、そしてこの細胞が増殖する培地
にこのタンパク質を約85kDaの糖タンパク質の形態で分泌することができる。
生するための方法を提供する。この方法は、上記形質転換された細胞を、前記タ
ンパク質または類似体の発現、プロセシングおよび前記細胞が増殖する培地への
分泌に適する条件下で増殖させ;前記タンパク質または類似体を、sIL-6Rに特異
的なモノクローナル抗体を使用するイムノアフィニティークロマトグラフィーに
よって前記培養培地から精製することからなる。
そのいずれか1つの塩、およびその混合物の使用。
その混合物の使用。
-6Rが使用される他の適用のための有効成分としてのキメラsIL-6R/IL-6タンパク
質または類似体、そのいずれか1つの塩、およびその混合物の使用。
なわちキメラsIL-6R/IL-6タンパク質または類似体、そのいずれか1つの塩、およ
びその混合物を調製するために使用でき、がん細胞を阻害することによってがん
を治療処置するための医薬の調製において、または骨髄移植におけるヒト造血細
胞の移植を誘発させることによって骨髄移植を強化するための医薬の調製におい
て、または造血を増大させるための医薬の調製において、または神経学的障害を
治療するための医薬の調製において、またはIL-6もしくはsIL-6Rが使用される他
の適用のための医薬の調製において使用される。
医薬組成物を提供する。
め、または肝臓および神経障害を治療するため、または造血を増大するため、ま
たはIL-6もしくはsIL-6Rが使用される他の適用のための方法を提供する。この方
法は、患者に、上記の医薬組成物を、適切な投薬形態で、適切な投与経路によっ
て投与することからなる。
する。すなわち、N端およびC端部分は逆にすることができ、従って、そのキメ ラは、IL-6-sIL-6Rタンパク質である。しかし、キメラ体は、本明細書中におい ては、一貫してsIL-6R/IL-6タンパク質として示される。
、またはあるいは本発明の下記の詳細な開示から直接的に現われる。
の本質的にすべての天然に存在する形態が一緒に融合し、そしてその融合部位は
、リンカーペプチド(3個もの短いアミノ酸)によるものであってもよく、そし てそのようなキメラsIL-6R/IL-6タンパク質または類似体は、天然に存在するsIL
-6RおよびIL-6のグルコシル化量およびグリコシル化パターンと類似するグルコ シル化量およびグリコシル化パターンを有する。哺乳類細胞、特にヒト細胞(下
記の実施例1〜4を参照のこと)またはCHO細胞(下記の実施例6を参照のこと)に
おいて、本発明により産生されるそのようなキメラsIL-6R/IL-6タンパク質は、 そのような細胞で効率的に発現され、高度にグルコシル化され、IL-6またはsIL-
6R単独に対して全く応答性を示さない腫瘍細胞に対して強力な活性を有すること
が見出された。
低い濃度でF10.9メラノーマ細胞などのきわめて悪性の哺乳類細胞の増殖を停止 させることが認められた(下記の実施例1〜3を参照のこと)。そのようなF10.9 メラノーマ細胞が、IL-6単独またはsIL-6R単独で個々に処置されたときに正常に
増殖し続け、非融合のIL-6およびsIL-6Rの組合せの比較的高い用量に曝したとき
にだけ増殖が停止されるという事実を考慮すれば、これは、特に有意義な結果で
ある。従って、本発明のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質は、驚くべきことに、そ の別々の部分の混合物、すなわち、非融合のIL-6およびsIL-6Rの混合物よりも、
これらのきわめて悪性のメラノーマ細胞の強力な阻害剤である。従って、本発明
のキメラタンパク質は、様々な種類のがんを治療するための有効成分として特に
有用である。
、非融合のIL-6およびsIL-6Rの混合物の親和性よりも高いことによって説明され
る(実施例7)。
れているプロトコルにおいて、幹細胞因子(SCF)およびFlt-3リガンドが、レシ
ピエントの骨髄への長期間の移植を可能にする最も原始的な多分化性造血幹細胞
の生存および増殖を可能にするために使用されるが、そのようなプロトコルを使
用して、これらの2つの因子、SCFおよびFlt3リガンドは、ヒト細胞をレシピエン
トマウス骨髄への移植を促進するには不十分であり、キメラsIL-6R/IL-6タンパ ク質をも加えられたときにだけ、移植が成功したことが見出された。この発見は
、キメラタンパク質がそのような移植プロトコルにおいて必須であり得ることを
示している。同じ実験において、非融合のIL-6およびsIL-6Rは、別々に加えられ
たとき、十分な骨髄移植を促進するには不十分であり、一緒に加えられたときに
は、キメラsIL-6R/IL-6タンパク質よりも活性がはるかに低かった、すなわち、1
00ng/mlの有効濃度で、sIL-6R/IL-6キメラタンパク質は十分な骨髄移植を促進し
たが、2つの別々の非融合のsIL-6RおよびIL-6は、より高い濃度(125〜1250ng/m
lのsIL-6R、50〜200ng/mlのIL-6)でさえも一緒に加えられた場合、そのような 移植を促進することにおいて活性ははるかに低かった。
、そしてヒト細胞がするのと同じ翻訳後修飾を導入するハムスターCHO細胞など の任意の他の適切な哺乳類細胞発現システムにおいて産生された組換えグルコシ
ル化sIL-6R/IL-6キメラである。重要な特徴は、そのように産生されたキメラ糖 タンパク質が、短縮されることなく、非常に短いトリペプチドまたはより長いリ
ンカーペプチドがキメラタンパク質のsIL-6RおよびIL-6部分との間に取り込まれ
ている場合を除いて、余分な非天然のポリペプチド配列が付加されることなく、
ヒト身体において見出される天然のsIL-6RおよびIL-6の親分子のようにプロセシ
ングされ、修飾されることである。
sIL-6RおよびIL-6の下記の特徴が考慮された。すなわち、ヒトの細胞膜に存在す
るIL-6Rは、シグナルペプチド、免疫グロブリン(Ig)様ドメイン、サイトカイ ン結合ドメイン、膜貫通領域、および細胞質ドメインからなる468アミノ酸をコ ードするcDNAによって産生されることが知られている(ヤマサキら(Yamasaki e
t al)、1988年)。可溶型形態のsIL-6Rは体液中に見出されており、これは、膜
から得られた成熟のIL-6Rと同様に、Leu-20に対応するN末端(ノビックら(Novi
ck et al)、1990年)およびIL-6Rの膜貫通領域の直前のVal-356に対応するC末
端を有する(共有の米国特許第5,216,128号明細書およびヨーロッパ特許出願公 開第413.908B1号公報を参照のこと)。このsIL-6R配列をIL-6に融合するために 、EcoRI制限部位を、Val-356の後に導入した。IL-6cDNAのPro-29で始まり、Met-
212で終わる成熟IL-6の配列(ジルバースラインら(Zilberstein et al)、1986
年;ヒラノら(Hirano et al)、1986年)を、このEcoRI部位の後に導入した。 このEcoRI部位において、キメラタンパク質で互いからのsIL-6RおよびIL-6部分 の距離までの所望の長さのリンカーペプチドをも導入することができるが、必ず
しもそのようなリンカーペプチドは導入されない。下記の実施例において示され
ているように、2つの異なるキメラタンパク質をそのような可能なキメラタンパ ク質の例として産生し、このEcoRI部位において、1つはトリペプチドリンカー を有し、他方は13アミノ酸残基のリンカーを有し、両方とも本質的に等しく生物
学的に活性であった。
キメラタンパク質と本質的に同じ生物学的活性を保持する。そのような類似体は
、キメラタンパク質のsIL-6R部分およびIL-6部分において、約30個までのアミノ
酸残基が欠失、付加、または他のアミノ酸により置換されているこの種の改変は
キメラタンパク質類似体の生物学的活性を、キメラタンパク質自身に関して実質
的に変化させず、そのような類似体のsIL-6R部分は、シグナルペプチド、Ig様ド
メイン、サイトカイン受容体のNドメイン、サイトカイン受容体のCドメイン、お
よび受容体の前膜ドメインの天然に存在する構造(プロセシング前−図3を参照 のこと)を保持する。同様に、そのようなキメラタンパク質類似体は、IL-6部分
の天然に存在する成熟型形態を本質的に保持しうる。様々な類似体は、互いに、
そしてキメラタンパク質においてsIL-6RおよびIL-6部分を連結するリンカーペプ
チドの部位において(天然に存在するsIL-6RおよびIL-6配列のみを本質的に有す
る)基本的なキメラタンパク質分子と多くの場合異なり得る。そのようなリンカ
ーは、長さが約30個までのアミノ酸残基であり得、そのようなリンカーは、キメ
ラタンパク質において、sIL-6R部分およびIL-6部分を互いに隔てるのに役立つ。
そのようなリンカーに関して、例えば、そのようなリンカーによって、キメラタ
ンパク質を不活性にし得るキメラタンパク質の誤った折り畳みが生じないように
、あるいはキメラタンパク質類似体が、それにより治療される患者においてその
抗体を誘発する免疫原性タンパク質にし、その結果として、そのような類似体は
少なくとも中長期の医薬として効果的でないことが生じないように、その配列を
選択するように注意しなければならない(従って、適切な標準アッセイにおいて
、そのような各類似体の生物学的試験もまた行うようにしなければならない)。
明の基本的なキメラタンパク質の1つ以上のアミノ酸残基および約30個までのア ミノ酸残基が、異なるアミノ酸残基によって置換され、あるいは欠失され、ある
いは1つ以上のアミノ酸残基が、本発明の基本的なキメラタンパク質と比較して 得られた産物の活性を著しく変化させることなく、本発明のキメラタンパク質の
最初の配列(天然に存在するsIL-6R配列およびIL-6配列のみを本質的に有する配
列)に付加される類似体である。そのような類似体は、既知の合成法および/ま
たは部位特異的変異誘発技術によって、あるいはそれに適する任意の他の既知の
技術によって調製される。
るような基本的なsIL-6R/IL-6キメラを十分に複製し得るアミノ酸の配列を有す る。従って、任意の所定の類似体が、本発明の基本的キメラタンパク質と実質的
に同じ活性を有するかどうかを、下記の実施例2〜4に示す生物学的活性試験にそ
のような類似体を供することからなる常套な実験によって測定することができる
。
る核酸には、本明細書中に示される教示および指針に基づいて、過度な実験を行
うことなく、当業者によって日常的に得ることができる置換ペプチドまたは置換
ポリヌクレオチドとして実質的に対応する配列の有限の集合が含まれる。タンパ
ク質化学および構造の詳しい説明に関しては、参照文献によって本明細書に組み
こまれるシュルツ ジー イーら(Schulz,G.E. et al)、「タンパク質構造の原 理」(Principles of Protein Structure)、スプリンガ−ベルラグ(Springer-
Verlag)、ニューヨーク、1978年;およびクライトン ティー イー(Creighton,
T.E.)、「タンパク質:構造と分子学的性質」(Proteins:Structure and Molec
ular Properties)、ダブリュ エイチ フリーマン&株式会社(W.H.Freeman&Co.
)、サンフランシスコ、1983年を参照。コドンの好みなどのヌクレオチド配列の
置換の説明に関しては、オースベルら(Ausubel et al)、前出、A.1.1〜A.1.24
頁;およびサムブロックら(Sambrook et al)、「分子生物学における最新プロ
トコル」(Current Protocols in Molecular Biology)、インターサイエンス(
Interscience)、ニューヨーク、6.3および6.4頁(1987年、1992年)、補遺Cお よびDを参照のこと。
のである。天然に存在するsIL-6RおよびIL-6配列を本質的に有するキメラタンパ
ク質における変化の保存的なアミノ酸の置換には、グループのメンバー間の置換
は分子の生物学的機能を保っているという十分に類似する物理化学的特性を有す
るグループ内の同義のアミノ酸が含まれ得る:グランサム(Grantham)、サイエ
ンス、185巻、862〜864頁(1974年)。アミノ酸の挿入および欠失もまた、特に 、挿入または欠失に、少数のアミノ酸が、例えば、30個未満、好ましくは10個未
満が含まれるだけである場合にその機能を変化させることなく上記の配列におい
て行うことができ、そしてそのような挿入または欠失により機能的な配置に重要
なアミノ酸、例えば、システイン残基が除去または脱離されないことは明らかで
ある。アンフィンセン(Anfinsen)、「タンパク質鎖の折り畳みを支配する原理
」、サイエンス、181巻、223頁〜230頁(1973年)。そのような欠失および/ま たは挿入により産生される類似体は、本発明の範囲に含まれる。
である。より好ましくは、同義のアミノ酸グループは、表IIに規定されるアミノ
酸グループである。最も好ましくは、同義のアミノ酸グループは、表IIIに規定 されるアミノ酸グループである。
るタンパク質におけるアミノ酸置換体を製造する例には、任意の知られている方
法工程が含まれる。それらは、マークら(Mark et al)の米国再発行特許第33,6
53号、米国特許第4,959,314号、同第4,588,585号、および同第4,737,462号;コ スら(Koths et al)の米国特許第5,116,943号、ネーメンら(Namen et al)の 同第4,965,195号;チョングら(Chong et al)の米国特許第4,879,111号;およ びリーら(Lee et al)の米国特許第5,017,691号などに示されている。リシン置
換タンパク質は、シャウら(Shaw et al)の米国特許第4,904,584号に記されて いる。
ク質の任意の類似体は、本発明の上記の基本的なキメラタンパク質の配列に本質
的に対応するアミノ酸配列を有する。用語「本質的に対応する」は、特に、がん
細胞の増殖を阻害するか、または骨髄移植を促進させるその能力が、例えば、関
係する限りにおいて、基本的なキメラタンパク質の配列に対して、その基本的な
特性に影響を及ぼさない小さな変化を有する類似体を包含するものとする。「本
質的に対応する」という言葉に含まれると一般に見なされる変化のタイプは、い
くつかの小さな改変が生じる本発明のキメラタンパク質をコードするDNAの従来 の変異誘発技術、および上記の方法において所望の活性についてスクリーニング
することから得られる。
リダイゼーションし、そしてsIL-6RおよびIL-6をコードする天然に存在する本質
的にすべての配列からなる本発明によるキメラタンパク質をコードするDNAまた はRNAなどの核酸によってコードされる類似体が含まれる。例えば、そのような ハイブリダイゼーションするDNAまたはRNAは、例えば、図3に示す配列を有する 本発明の同じタンパク質をコードするDNAまたはRNAであり得る。しかし、そのよ
うなDNAまたはRNAは、そのヌクレオチド配列において、遺伝コードの縮重のため
に天然に由来するヌクレオチド配列と異なる:すなわち、いくらか異なるヌクレ
オチド配列は、この縮重のために、依然として同じアミノ酸をコードし得る。さ
らに、上記にも記されているように、アミノ酸変化(欠失、付加、置換)の量は
、約30個までのアミノ酸に限定される。そうすることによって、変化が最大量で
ある場合でも、本発明による類似体は、sIL-6R部分において(プロセシング前の
)リーダー配列、Ig様ドメイン、サイトカイン受容体のN-およびC-ドメイン、な
らびに受容体の前膜領域(C-ドメインと膜貫通ドメインとの間の領域)を本質的
に保持し、そしてIL-6部分の本質的にすべてを保持する類似体である。そのよう
な核酸は、それが本発明のキメラタンパク質の機能的活性を保持するポリペプチ
ドをコードするかどうかを調べるための第1の候補である。用語「ストリンジェ ントな条件」は、当業者が従来的に「ストリンジェント」と呼ぶハイブリダイゼ
ーションおよびその後の洗浄条件を示す。オースベルら(Ausubel et al)、「 分子生物学の最新プロトコル」(Current Protocols in Molecular Biology)、
前出、インターサイエンス(Interscience)、ニューヨーク、6.3および6.4パラ
グラフ(1987年、1992年);およびサムブロックら(Sambrook et al)、前出を
参照のこと。限定ではないが、ストリンジェントな条件の例には、研究されたハ
イブリッドの計算されたTmよりも12℃〜20℃低く、例えば、2×SSCおよび0.5%S
DSで5分間、2×SSCおよび0.1%SDSで15分間の洗浄条件;37℃で30分間〜60分間 の0.1×SSCおよび0.5%SDS、次いで68℃で30分間〜60分間の0.1×SSCおよび0.5
%SDSでの洗浄条件が含まれる。当業者は、ストリンジェントな条件はまた、DNA
配列の長さ、オリゴヌクレオチドプローブの長さ(10塩基〜40塩基など)、また
は混合したオリゴヌクレオチドプローブに依存することを理解している。混合し
たプローブが使用される場合、SSCの代わりに、塩化テトラメチルアンモニウム (TMAC)を使用することが好ましい(前出のオースベル(Ausubel)を参照のこ と)。
ルボキシル基の塩およびアミノ基の酸付加塩の両方を示す。カルボキシル基の塩
は、この分野で知られている手段によって形成させることができ、無機塩、例え
ば、ナトリウム塩、カルシウム塩、アンモニウム塩、鉄塩または亜鉛塩など、お
よび例えば、トリエタノールアミン、アルギニンまたはリシン、ピペリジン、プ
ロカインなどのアミンを用いて形成されるような有機塩基との塩を包含する。酸
付加塩には、例えば、塩酸または硫酸などの鉱酸との塩、および例えば、酢酸ま
たはシュウ酸などの有機酸との塩が含まれる。当然、任意のそのような塩は、本
発明のキメラタンパク質または類似体に実質的に類似する活性を有しなければな
らない。
るDNA配列、ならびに適切な哺乳類、好ましくは、ヒトの細胞における発現を行 うためにそのようなDNA配列を担持するDNAベクターに関する。本発明のベクター
の態様は、プラスミドpcDNAsIL-6R/IL-6であり、サイトメガロウイルス(CMV) プロモーターの制御下にsIL-6R/IL-6融合配列を含有するpcDNA3ベクター(イン ビトロゲン社(Invitrogen))からなる。
、好ましくはヒトの細胞に関する。そのような形質転換細胞の態様は、pcDNAsIL
-6R/IL-6によってトランスフェクションされ、融合sIL-6R/IL-6キメラを85kDaの
糖タンパク質として分泌するヒトの胚性腎臓細胞293(HEK293、ATCC CRL1573) である。
らにコードする短いリンカーのEcoRI部位での挿入によって、上記のpcDNAsIL-6R
/IL-6と異なる。多数の様々な長さの異なる配列を、sIL-6RとIL-6との間の距離 を最適にするために導入することができる。
ラタンパク質を含む。
を行うための方法に関し、上記の形質転換細胞を、キメラタンパク質産物の発現
および培養培地へのその分泌に適する条件下で増殖させること、次いで、下記の
実施例2および実施例5において記載されているように抗sIL-6Rモノクローナル抗
体34.4を使用するイムノアフィニィティークロマトグラフィーによって、分泌さ
れたタンパク質を精製することからなる。
医薬組成物に関する。本発明の薬学的組成物の態様には、強化されたIL-6型の作
用のため、がんの治療のため、骨髄移植のため、造血の強化、特に、血小板新生
のため、神経学的症状の治療のため、肝臓障害の治療のため、およびIL-6または
関連サイトカインの他の適用のための医薬組成物が含まれる。
容しうる担体および/または安定化剤および/または賦形剤と混合することによ
って投与するために調製され、そして例えば、投薬バイアルで凍結乾燥すること
による投薬形態で調製される。投与方法は、類似する薬剤の受容可能な投与様式
のいずれかによって行うことができ、処置され得る症状に依存し、例えば、静脈
内に、筋肉内に、皮下に、局所的注射または局所的適用によって、あるいは注入
により連続的に行われる。投与され得る活性化合物の量は、投与経路、治療され
得る疾患、および患者の状態に依存する。例えば、局所注射には、体重基準で、
静脈内注入よりも少ない量のタンパク質が必要である。
学的症状の治療、化学薬品(例えば、四塩化炭素、アルコール、パラセタモール
)または他の原因(例えば、ウイルス、手術)による壊死性疾患の患者における
肝臓組織の保護、そしてIL-6または関連サイトカインの他の適用のための本発明
のキメラタンパク質またはその類似体またはその混合物の使用に関する。同様に
、本発明はまた、上記の疾患を治療するための医薬、あるいは上記の適用症にお
いて使用される医薬を調製する際に使用されるキメラタンパク質またはその類似
体またはその混合物に関する。
するDNAによるエクスビボ手順および遺伝子治療もまた意図される。
詳しく説明する。
出発ベクターと中間ベクター、様々な試薬および反応段階を含めて示す。この構
築法では、基本的に、当技術分野でよく知られている、所望の発現ベクターを構
築するための技術を使った(例えばサムブルックら(Sambrook et al)(1989年
)を参照されたい)。その方法は、簡単に述べると次のとおりである。
テリオファージにクローニングし、ヤマサキら(Yamasaki et al)(1988年)の
IL-6R配列に由来するオリゴヌクレオチドプローブでスクリーニングした。全ヒ トIL-6Rコード配列を持つ一つのλgt11 cDNAクローンを単離した。そのインサー
トをEcoRIでλgt11から切り出し、大腸菌ファージミドBlue Script pBS/SK(ス トラタジーン クローニング システム社(Stratagene Cloning Systems)・カリ
フォルニア州ラホーヤ)のマルチプルクローニングサイト(MCS)にクローニン グした。このプラスミドpBS/SK-IL-6R(図1)をEcoRIで切断し、次にそれを平滑
末端化し、EcoRVで再切断することにより、IL-6RのEcoRV部位(位置1203)で終 わる959塩基対(bp)のIL-6Rの5'断片を単離した。アガロースゲル電気泳動から
抽出したこの断片を、MCSのEcoRVで開環した新しいpBS/SKベクターにクローニン
グした(図1のpBS/SK-sIL-6R-RV)。
vick et al)、1990年;オーら(Oh et al)、1996年;同所有権者の米国特許第
5,216,128号および欧州特許EP413908B1)、逆方向プライマーは、このバリン残 基のコドンの直後にEcoRI部位を持つように合成した(図1参照)。そのPCR産物 をEcoRVとEcoRIで切断し、pBS/SK-sIL-6R-RV中、IL-6RのEcoRV部位とMCSのEcoRI
部位の間に連結した(図1)。次に、MCSのHindIII部位をIL-6Rの塩基対410にあ るNcoI部位と連結(どちらの部位もまず平滑末端化する)することによって、5'
非翻訳配列が取り除かれるようにプラスミドpBS-sIL-6R-δVal--RIを短縮して、
pBS-sIL-6R-δVal-RI-NcoIを得た(図1)。
ているように(チェンら(Chen et al)、1988年)、EcoRI部位を持ち、その後 ろにメチオニンコドンとIL-6のプロリン-29のコドンが続き、BstNI(EcoRII)部
位で終わっている合成オリゴヌクレオチドを用いて、大腸菌発現ベクターpKK223
-3(ファルマシア社(Pharmacia)・スウェーデン国ウプサラ)にBstNI切断IFN-
β2/IL-6 cDNA(ジルベルステインら(Zilberstein et al)、1986年)を挿入す
ることによって構築された。pKKβ2-7のIL-6 cDNAインサートはNlaIV部位中の終
止コドンの7塩基対後ろで終わり、その11bp後ろにpKK223-3ベクターのHindIII部
位が続いている(図1)。そのpKKβ2-7 DNAをHindIIIで切断し、平滑末端化し、
EcoRIで再切断し、そのIL-6 cDNAを、IL-6の成熟配列(プロリン-29から始まる )がIL-6Rのバリン-356の直後に3コドン(Glu-Phe-Met)分だけ離れて融合され るように、pBS-sIL-6R-δVal-RI-NcoIに挿入した。次に、得られたプラスミドpB
S/SK-sIL-6R/IL-6(図1)をそのMCSのSalI部位とNotI部位で再切断し、そのイン
サートをpcDNA3(インビトロゲン社(Invitrogen)・カリフォルニア州サンディ
エゴ)にクローニングした。得られたプラスミドpCDNA3-sIL-6R/IL-6(図1)は 、強力なサイトメガロウイルス(CMV)プロモーターの下流にあって、sIL-6RδV
al/IL-6キメラの効率のよい転写を保証するポリアデニル化部位が続いているイ ンサートを含有する。このキメラにおけるsIL-6Rの5'末端の変換により、哺乳類
細胞での発現時に、そのキメラタンパク質のN末端のシグナルペプチド機能とプ ロセッシングが天然sIL-6Rの場合と同じになることが保証される。
ヒトの体内に存在する通りの天然のsIL-6Rと天然のIL-6の融合物であって、余分
なポリペプチド配列を持たないことである。しかし、sIL-6RδVal/IL-6構築物(
図1)におけるEcoRI部位の変換によって、sIL-6R部分とIL-6部分の間にリンカー
ポリペプチドセグメントを挿入することが容易になる。sIL-6RのVal-356とIL-6 のPro-29の間に導入された13アミノ酸リンカー配列Glu-Phe-Gly-Ala-Gly-Leu-Va
l-Leu-Gly-Gly-Gln-Phe-Metを持つそのような構築物の一つも構築した(sIL-6R δVal/L/IL-6)。
現させるべく新たに導入したDNA配列の発現に関するトランスフェクト細胞の分 析法を用いて(方法については、例えばサムブルックら(Sambrook et al)(19
89年)を参照されたい)、上記プラスミド構築物(実施例1)をヒト細胞にトラ ンスフェクトし、そこでのその発現を評価した。簡単に述べると、次の方法を使
用した。
構築物pCDNA3-sIL-6R/IL-6 DNA(上記実施例1に記載)をトランスフェクトした 。HEK293の対数期培養物をトリプシン処理し、9cmのナンク(Nunc)製プレート に播種した(2.5×106細胞/プレート)。一日後に、10μgのpCDNA3-sIL-6R/IL-6
DNAを使ってCaPO4沈殿法(サムブルックら(Sambrook et al)、1989年)によ るトランスフェクションを行ない、その1時間後に培地をDMEM-10%FCSに換え、培
養をさらに16時間続けた。培地をDMEM-2%FCSに換えた後、分泌タンパク質をそれ
ぞれ48時間にわたって2回継続して集めた。細胞片を1,000rpmで1分間の遠心分離
によって除去し、その上清をポリクローナルウサギ抗sIL-6RとマウスMcAB17.6(
ノビックら(Novick et al)、1991年)を用いるsIL-6R用エライザ(ELISA)に よって試験した。濃度1.2μg/mlのsIL-6R相当物質が見出され、トランスフェク トされたヒト細胞におけるキメラsIL-6R/IL-6タンパク質の極めて効率のよい発 現が示唆された。
et al)、1991年;ハリミら(Halimi et al)、1995年)を使って行なった。34
.4ハイブリドーマ細胞をマウスの腹腔で増殖させ、その腹水から硫酸アンモニウ
ム沈殿によって免疫グロブリン(Ig)画分を得た。Affigel-10(バイオ−ラド ラブズ社(Bio-Rad Labs)・カリフォルニア州リッチモンド)を使ってMcAB34.4
を固定化した(1mlのAffigel-10に15mgのIgを結合)。pCDNA3-sIL-6R/IL-6をト ランスフェクトしたHEK293細胞からの分泌タンパク質を含有する上清をMcAB34.4
のカラムに吸着させた(上清15mlにつきカラム0.3ml)。PBSで洗浄した後、結合
したタンパク質を25mMクエン酸(pH2.5)で溶出させ、1Mヘペス緩衝液(pH8.5)
で直ちに中和し、PBSに対して一晩(約8〜12時間)透析した。
ノ酸または約58kDaのタンパク質が予想される(図3)。ヒト細胞中で組換えDNA から産生されるsIL-6R/IL-6キメラのサイズがこれよりはるかに大きいことは、 糖鎖付加がこの分子のかなりの部分を占めることを示している。
瘍を形成し、2〜3カ月以内に肺転移でその動物を死亡させる(カッツら(Katz e
t al)、1995年)。F10.9細胞へのsIL-6R/IL-6キメラタンパク質の添加は、それ
らの細胞の著しい形態変化と、それらの増殖の停止をもたらす(図4)。このキ メラで処理したF10.9細胞は細長くなり、樹状の伸長部分を突き出し、胚性メラ ノサイトまたは膠細胞の紡錘型(spindloid)分化に似る。
、3×103個の細胞を播種した4日後に、それらの細胞の増殖を定量した。細胞を1
2.5%グルタルアルデヒド中で30分間固定し、水中で洗浄し、0.1%クリスタルバイ
オレットで30分間染色した。十分な洗浄と乾燥の後、染色剤を10%酢酸で抽出し 、その光学密度を540nmで測定した。本キメラは増殖の用量依存的阻害を引き起 こし、10ng/ml程度の低い本キメラ(p85)タンパク質濃度で完全な増殖阻害を起
こした(図5)。キメラタンパク質sIL-6RδVal/IL-6とsIL-6RδVal/L/IL-6(sIL
-6R部分とIL-6部分の間に、より長いリンカーを持つキメラ;実施例1参照)はど
ちらも同様に活性だった。上記sIL-6RδVal/IL-6キメラは極めて短い3アミノ酸 リンカーしか持たず、一方、上記sIL-6RδVal/L/IL-6はより長い13アミノ酸リン
カーペプチドを持つが、どちらも本質的に同じ活性で転移性細胞の増殖を阻害す
ることから、この結果は、キメラ中のsIL-6R部分とIL-6部分の間にあるリンカー
ペプチドが、このキメラの活性にとって必須でないことを示すことにもなる。こ
れに対しIL-6とsIL-6RδValはどちらも単独ではこれらメラノーマ細胞の増殖を 阻害しない(図6)ことから、sIL-6R/IL-6(p85)キメラタンパク質のユニーク な活性が証明される。同様の効果を得るには、200〜400ng/mlのIL-6と125ng/ml のsIL-6RδValが必要である(図6)。モル濃度で計算すると、F10.9細胞の最大 阻害には、7.5nMのIL-6と2nMのsIL-6RδValが必要であるのに対し、sIL-6R/IL-6
キメラは0.12nMしか必要でない。
の移植後に調べることができる(ボーモールら(Vormoor et al)、1994年)。S
CID-NODマウスに亜致死照射を行ない、尾静脈に3×105個のヒトCD34+骨髄細胞を
注射した。注射に先立って、精製したCD34+細胞を様々な組み合わせのサイトカ インと共に3日間液体培養中に維持した。1カ月後に、それらのマウスを屠殺し、
骨を摘出して、骨髄細胞を集めた。SCID-NOD受容マウスにおけるヒト細胞の生着
を、ヒトの反復DNAへのサザンブロットハイブリダイゼーションによって評価し た。
2チロシンキナーゼ受容体リガンド)は、受容者骨髄中で長期生着できる最も原 始的な多能性造血幹細胞の生存と増殖にとって重要であることがわかっている(
マックケンナら(McKenna et al)、1995年)。図7に示すように、SCID-NOD受容
マウスの骨髄におけるヒト細胞の生着を促進するには、これら2つの因子だけで は不十分だった。生着が有意なレベルで検出されるためには、sIL-6R/IL-6キメ ラタンパク質の添加が必要だった。100ng/mlの濃度で、sIL-6R/IL-6キメラは、 単離されたIL-6(50〜200ng/ml)とsIL-6R(125〜1250ng/ml)よりも、はるかに
活性だった(図7)。sIL-6R/IL-6キメラを必要とすることは、このタンパク質が
、骨髄環境に定着しそこで再増殖できる非拘束(non-committed)多能性造血幹 細胞の生存と増殖に不可欠であることを示し、このタンパク質が骨髄移植医療に
役立ちうることを示している。
ると、それらの生存と増殖を促進し、 (ii)免疫不全マウスにおけるヒト骨髄移植のインビボモデルで活性である(ま
た、不可欠であるらしい) という、少なくとも2つの新たに見出された活性を持つことを初めて立証するも のである。
バイオテク社(Pharmacia Biotech)・スウェーデン国ウプサラ)での低密度単 核細胞(NMC)の分画にかけた後、ミニMACSキット(ミルトネイ バイオテク社(
Miltney Biotec)・ドイツ連邦共和国ベルギッシュグラトバハ)を使用して、純
度80%のCD34+細胞集団を調製した。次に、これらの細胞を固定化抗CD38モノク ローナル抗体に通すか、蛍光標示式細胞分取法によって分取して、元の細胞の約
0.1%に相当するCD34+CD38-集団を回収した。これらの精製幹細胞(20,000細胞)
を、50ng/mlの幹細胞因子(SCF)と100ng/mlのflt3リガンド(FL)(共にアール
アンドディー システムズ社(R&D Systems)(ミネソタ州ミネアポリス)製)を
含む0.5mlのRPMI培地、10%ウシ胎仔血清(FCS)、1%ウシ血清アルブミンでの懸 濁培養にした。それらの培養の半分に100ng/mlのsIL-6R/IL-6キメラを加え、そ の他はキメラなしで培養した。培養は5%CO2中37℃で6日間行なった。これらイン
ビトロ培養物から得られる細胞全てを亜致死照射NOD-SCIDマウスに注射(静脈内
)することによって、骨髄再増殖細胞の数を評価した。それらのマウスを無菌状
態に維持した。6週間後にそれらのマウスを屠殺し、その長骨の骨髄を回収した 。それらの骨髄(BM)細胞を、30%FCS、50μMβ-メルカプトエタノール、50ng/m
l SCF、5ng/ml IL-3、5ng/ml GM-CSF、6単位/mlエリスロポエチン(全てアール アンドディー システムズ社(R&D Systems))を含む半流動性0.9%メチルセルロ
ースプレートに播種した。これらの培養はヒト血清も含有した(マウスコロニー
の増殖を防ぐ条件)。その結果(表IV)は、上記懸濁培養にsIL-6R/IL-6キメラ を添加すると、SCFおよびFLだけの場合と比較して、被移植マウスから回収され るヒトコロニー形成細胞(CFU)の数が30〜50倍増加することを示した。これは 、第6日に懸濁培養中に存在するSCID再増殖幹細胞の数が第0日と比較して著しく
増加したことを表す。sIL-6R/IL-6キメラが存在しない場合、SCFとFLは、6日間 の懸濁培養中に幹細胞数の増加をもたらさなかった。被移植NOD/SCIDマウスから
回収されるBM細胞のDNAを実施例4と同様にサザンブロットによって分析した。キ
メラと共に培養した細胞をマウスに与えた場合、回収されるヒトDNAの量はキメ ラなしの場合と比較して10倍高かった。
38-幹細胞に対するその効果と比較する実験を行なった。高純度細胞のインビト ロ増殖は、sIL-6R/IL-6によって、低純度細胞のインビトロ増殖よりも、はるか に強く増強された(表V)。これは、最も原始的な幹細胞が細胞増殖に対するsIL
-6R/IL-6効果の優先的標的であることを示している。
純度CD34+CD38-幹細胞の懸濁培養期間を延長することによって測定した。生着は
、培養細胞を静脈内注射した6週間後の受容マウスの骨髄におけるヒトDNAの割合
によって評価した。培養中にsIL-6R/IL-6をSCFとFLに加えた場合は、2週間の培 養後でもなお高い生着性(>1%ヒトDNA)が観察され、その生着性は非培養細胞 の場合より高かった。これに対し、SCF、FL、GM-CSF、IL-3を含む培養物を使っ た実験では、1週間の培養後にはSCID再増殖細胞は残存しないことが示されてい る(バータ、エムら(Bhata,M. et al)、ジェイ エクス メド(J.Exp.Med.)18
6,619-624,1997)。
分化状態で活性を保つ。sIL-6R/IL-6キメラは、生着性造血細胞を培養するため の新しい手段になる。これにより、遺伝子治療のプロトコルでレトロウイルスベ
クターを使って生着性幹細胞に遺伝子を導入することが可能になる。今までこれ
はヒト幹細胞では可能でなかった。なぜなら、これらの原始細胞は、レトロウイ
ルスDNAの組込みに必要とされるような細胞周期進行状態ではインビトロで維持 することができなかったからである。sIL-6R/IL-6キメラはこの問題を解決する 。
巣(CHO)細胞に、モリーら(Mory et al)(DNA 5,181-193,1986)に記述され ているようなプラスミドpDHFRのDNAと共に同時トランスフェクトした。50nMメト
トレキセート中で増殖するトランスフェクタントのうち、クローンL12-[IL-6R/I
L-6]を分離した。このクローンは継代培養を数多く繰返しても安定であることが
わかり、半集密的培養物は通例、培養培地に2.5μg/ml量のIL-6R/IL-6キメラを 分泌する。
gel-10ビーズに結合した抗ヒトsIL-6Rモノクローナル抗体34.4の18mlカラムに吸
着させ、溶出した。25mMクエン酸溶出液を1 ヘペス緩衝液(pH8.6)で直ちに中 和した。それらのタンパク質を10kDaカットオフアミコン(Amicon)製メンブレ ンで1mg/mlの最終濃度まで濃縮した。SDS-PAGEを行なうと、IL-6R/IL-6キメラに
相当する85kDaの単一バンドが観察された。糖鎖付加はグリコシダーゼ(ベーリ ンガーマンハイム社(Boehringer-Mannheim))による処理後のサイズ減少によ って証明された。CHO産生IL-6R/IL-6キメラの生物学的活性は、4℃で少なくとも
5ヶ月間は安定であることがわかった。通例、保存は-70℃で行なう。
))を抗ヒトgp130モノクローナル抗体でコーティングし、50ng/mlのsgp130を加
えた(どちらの試薬もアール アンド ディー システムズ社(R&D Systems)(ミ
ネアポリス)製)。リン酸緩衝食塩水中で洗浄した後、IL-6R/IL-6キメラを異な
るウェルに0.1〜50ng/mlの範囲の様々な濃度で添加した。別のウェルに、rhuIL-
6(アレス-セロ社(Ares-Serono)・ジュネーブ)を500ng/mlの濃度で、濃度2〜
500ng/mlのヒトsIL-6RδValと共に加えた。4℃で一晩インキュベートした後、ウ
サギポリクローナル抗IL-6R(オーら(Oh et al)、サイトカイン(Cytokine),
8,401-409,1996)を加え、さらにセイヨウワサビペルオキシダーゼと結合したヤ
ギ抗ウサギIgを加えて、それを着色反応(シグマ社(Sigma)・セントルイス)で 検出した。図8は、その結果のスキャッチャードプロット(Scatchard plot)を 示す。gp130に対するIL-6R/IL-6キメラの親和力は、別々に加えたその分子の2つ
の部分よりも4倍以上高い(6.3×10-11M対2.6×10-10M)ことがわかった。この 結果は、メラノーマと造血細胞に対するこのキメラの活性がIL-6+sIL-6Rの組み
合わせより高いことと一致しており、またその説明になっている(図9と実施例4
)。
壊死をもたらす(スラター ティー エフら(Slater T.F. et al)、フィロス ト
ランス アール ソク バイオル(Philos.Trans.R.Soc.Biol.)311,633-645,1985 )。IL-6が遺伝的に欠損したマウス(IL-6-/-)に比較的低用量のCCl4(2〜3ml/
kg体重)を腹腔内注射によって与えた場合、24時間時点の致死率は70%前後であ る(図10)。CCl4の1時間前とCCl4の4時間後にCHO産生IL-6R/IL-6キメラを注射 すると、それらの動物が保護され、24時間時点で死亡は認められない。これに対
し、同様に注射した遊離のrhuIL-6には効果がない(図10)。IL-6R/IL-6キメラ は注射1回あたり2〜3μgの用量で有効であり、これは、無効であったIL-6の用量
よりモル比で10倍低い。より高用量のCCl4(例えば図10の3.5ml/kg)でもキメラ
は保護的であって、死亡率はIL-6の場合またはサイトカインなしの場合よりも低
い。どちらも同じCCl4投与を受けたキメラ処置マウスと無処置マウスの間の死亡
率の相違はp<0.01のレベルで有意だった。ヘマトキシリン-エオシン染色した肝
切片の組織学的所見から、CCl4が肝組織壊死をもたらし、IL-6R/IL-6キメラがそ
の化学的毒性から肝細胞を保護することが確認された(非掲載)。
ル)または他の原因(例えばウイルス性肝炎)による壊死性疾患を持つ患者の肝
組織の保護が考えられる。
スミドpBS-sIL-6RδValをSau3a(bp 1086)とVal-356の後ろにある停止コドンに
続くHindIIIで切断した(実施例1参照)。3つの制限部位、SpeI、SmaIおよびBam
HIを含むリンカーを次のように合成した。
ライマー(開始コドンは下線部)を用いてpKKβ2-7 DNAからPCRによって増幅し た。
した。
IL-6RのNcoIの間に導入した。得られたキメラDNAを配列決定し、ヒトHEK293細胞
で発現させるためにpCDNA3に再クローニングした。このIL-6-IL-6Rキメラ3eのア
ミノ酸配列を図11に示す(リンカーは下線部)。キメラ3eを抗IL-6モノクローナ
ル抗体でのアフィニティークロマトグラフィーで精製した(ノビックら(Novick
et al)、ハイブリドーマ(Hybridoma)8,561-567,1989と同様に実施)。SDS-P
AGEでは75kDaバンドが観察された。
s-280とAsp-281(図3)をPCR突然変異誘発法でそれぞれSerとValに変えたもの(
突然変異体39またはHD)と、さらにAsn-230をAspに変えたもの(突然変異体NHD )とを作製した。図12からわかるように、これら2つの突然変異体はIL-6R/IL-6 およびIL-6-IL-6Rキメラと比較してほとんど活性を持たない。分子モデリングに
よって示されているように(ハリミら(Halimi et al)、1995年)、IL-6Rでは これらのアミノ酸がgp130と相互作用するので、これはsIL-6R/IL-6キメラがこの
不可欠な相互作用部位を保存することを証明している。
eの結合はもう一つのIL-6R/IL-6キメラの約30%だった(非掲載)。この低い結合
性はメラノーマ細胞増殖に対する活性が低いことと一致している。
の遮断が、このような新規キメラで良好な生物学的活性を保存することを証明し
ている。
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セシングされた形態のIL-6の配列を伴うVal356残基で終わるsIL-6Rの天然の形態
の構造が保存されているキメラタンパク質をコードするキメラDNA分子の構築に おいて使用される様々なベクター、試薬および処理工程を図示する。
ァイル(B)によってsIL-6RδVal/IL-6 p68キメラを同定するために行った分析 から得られた結果を示す。図2Aには、クーマシー染色したゲルの複製を示す:キ
メラタンパク質をコードするベクターでトランスフェクションした細胞の培養物
から得た分泌タンパク質サンプルを負荷したアフィニティクロマトグラフィーカ
ラムから溶出される免疫精製画分を電気泳動した。図2Bには、アフィニティクロ
マトグラフィーカラムから溶出される上記の各画分の生物学的活性(F10.9メラ ノーマ細胞の増殖阻害)を図示する。これらは、実施例2および実施例3において
詳しく記載されている。
は分子の様々なドメインが示され、これには、実施例1および実施例2に記載され
ているように、N末端のシグナルペプチド(配列の上部に線を付す)、免疫グロ ブリン様(Ig様)ドメイン、サイトカイン受容体Nドメイン(下線部)、サイト
カインCドメイン(配列の上部に線を付す)、および受容体の前膜領域(Cドメイ
ンと膜貫通ドメインとの間の領域)(これらはすべて、キメラのsIL-6R部分であ
る);ならびにキメラの成熟型IL-6部分(下線部)を含む。
R/IL-6キメラを用いた処置によってそのような転移性メラノーマ細胞(F10.9細 胞)において誘導された形態学的変化が明らかである。
L-6キメラタンパク質によるF10.9メラノーマ細胞の増殖阻害を示す結果を図示す
る。実施例3に記載されているように、わずかに3アミノ酸のリンカーを有するキ
メラ体IL-6RIL-6が、13アミノ酸の長いリンカーを有するキメラ体(IL-6RLIL-6 )と比較される。
-6濃度が0である縦軸でのすべての曲線の集束点)、ならびにIL-6およびsIL-6R が様々な濃度、IL-6の濃度は10ng/ml〜40ng/mlの範囲であり、sIL-6Rは、それぞ
れのIL-6濃度に対して、100ng/ml、200ng/mlおよび400ng/mlの3つの濃度で加え られるが、ともに加えられたときに認められる増殖阻害作用、3つの下部の曲線 (空き三角および空き丸を付けた2つの点線ならびに黒四角を付けた実線)を図 示する。
のヒト造血幹細胞の十分な移植にsIL-6R/IL-6キメラタンパク質が必要であるこ とを示すサザンブロットのオートラジオグラフの複製である(右側の2つのレー ンは、他の必要な因子(SCF、FLT-3)に加えて、sIL-6R/IL-6キメラタンパク質 が投与されたマウスを示し、これに対して、左側の3つのレーンは、SCFおよびFL
T-3のみ、そしてSCF、FLT-3ならびに単離した、すなわち、非融合のIL-6およびI
L-6Rが投与されたマウスを示す)。
性のスキャチャード プロット(Scatchard plot)である。キメラ体の値は黒四 角で示され、混合物の値は黒菱形で示される。傾きの比は4:1である。
と比較して、F10.9メラノーマ細胞に対するsIL-6R/IL-6キメラの大きな活性を示
す。
を示す。黒四角はIL-6-/−マウスを示し、黒菱形はIL-6が投与されたIL-6-/−
マウスを示し、黒星はキメラ体が投与されたIL-6-/−マウスを示す。
び2つの変異型(Mutt39(HD)−黒菱形、およびMutt(NHD)−明灰色星)と比較
して、キメラ3e(暗灰色星)の図9のメラノーマ細胞に対する生物学的活性を示 す。
Claims (37)
- 【請求項1】 本質的にsIL-6Rの天然に存在する形態のすべてと、本質的に
IL-6の天然に存在する形態のすべてとの間の融合タンパク質産物からなり、該sI
L-6R/IL-6およびその類似体が天然に存在するsIL-6RおよびIL-6のグリコシル化 に類似の様式でグリコシル化されているキメラのグリコシル化可溶性インターロ
イキン−6受容体(sIL-6R)−インターロイキン−6(IL-6)タンパク質(sIL-6R
/IL-6)およびその生物学的に活性な類似体。 - 【請求項2】 前記sIL-6Rがペプチドリンカー分子を介してIL-6と融合され
てなる請求の範囲第1項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的
に活性な類似体。 - 【請求項3】 前記リンカーがきわめて短く、約3個のアミノ酸残基の非免 疫原性リンカーである請求の範囲第2項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およ
びその生物学的に活性な類似体。 - 【請求項4】 前記リンカーが配列E-F-M(Glu-Phe-Met)のトリペプチドであ
る請求の範囲第3項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的に活
性な類似体。 - 【請求項5】 前記リンカーが配列E-F-G-A-G-L-V-L-G-G-Q-F-M(Glu-Phe-Gl
y-Ala-Gly-Leu-Val-Leu-Gly-Gly-Gln-Phe-Met)の13アミノ酸残基のペプチドであ
る請求の範囲第2項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的に活
性な類似体。 - 【請求項6】 sIL-6RのC末端Val-356およびIL-6RのN末端Pro-29との間にお
ける配列E-F-Mのトリペプチドリンカーを有する本文中で命名されたsIL-6RδVal
/IL-6であり、かつ図3に示される配列を有する請求の範囲第1項、第2項、第3項 または第4項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質。 - 【請求項7】 sIL-6RのC末端Val-356およびIL-6RのN末端Pro-29との間にお
ける配列E-F-G-A-G-L-V-L-G-G-Q-F-Mの13アミノ酸ペプチドリンカーを有する本 文中で命名されたsIL-6RδVal/L/IL-6であり、該キメラタンパク質が図3に示さ れる配列を有し、図3の357〜359位間の配列E-F-Mのトリペプチドが13アミノ酸ペ
プチド配列によって置換されている請求の範囲第1項、第2項または第5項記載の キメラsIL-6R/IL-6タンパク質。 - 【請求項8】 IL-6のC末端MET-212とsIL-6RのVAL-112との間における配列G
-G-G-G-D-P-G-G-G-G-G-G-P-G(配列番号6)の14アミノ酸ペプチドリンカーをも つsIL-6R配列の前にIL-6の全配列を有する本文中で命名されたIL-6/sIL-6Rであ り、該キメラタンパク質が図11に示される配列を有する請求の範囲第1項記載の キメラsIL-6R/IL-6タンパク質。 - 【請求項9】 前記タンパク質が充分にプロセシングされた形態で哺乳類細
胞で産生される請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、第7項 または第8項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質。 - 【請求項10】 前記タンパク質がヒト細胞で産生される請求の範囲第9項 記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質。
- 【請求項11】 前記タンパク質がCHO細胞で産生される請求の範囲第9項記
載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質。 - 【請求項12】 前記キメラタンパク質および類似体がきわめて悪性のがん
細胞の増殖を阻害できることを特徴とする請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4
項、第5項、第6項、第7項、第8項、第9項、第10項または第11項記載のキメラsIL
-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的に活性な類似体。 - 【請求項13】 前記キメラタンパク質および類似体がきわめて悪性のメラ
ノーマ細胞の増殖を阻害できることを特徴とする請求の範囲第12項記載のキメラ
sIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的に活性な類似体。 - 【請求項14】 前記キメラタンパク質および類似体が骨髄移植におけるヒ
ト造血細胞のインビボでの生着(engraftment)を誘発できることを特徴とする 請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、第7項、第8項、第9項 、第10項または第11項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質およびその生物学的 に活性な類似体。 - 【請求項15】 前記キメラタンパク質および類似体が肝毒性因子から肝臓
を保護できることを特徴とする請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項 、第6項、第7項、第8項、第9項、第10項または第11項記載のキメラsIL-6R/IL-6 タンパク質およびその生物学的に活性な類似体。 - 【請求項16】 請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、
第7項、第8項、第9項、第10項または第11項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質
およびその生物学的に活性な類似体をコードするDNA配列。 - 【請求項17】 請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、
第7項、第8項、第9項、第10項または第11項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質
およびその生物学的に活性な類似体をコードするDNA配列からなるDNAベクターで
あって、哺乳類細胞における該キメラタンパク質の発現に適したDNAベクター。 - 【請求項18】 前記ベクターがヒト細胞における該キメラタンパク質の発
現に適した請求の範囲第17項記載のDNAベクター。 - 【請求項19】 前記ベクターがCHO細胞における該キメラタンパク質の発 現に適した請求の範囲第17項記載のDNAベクター。
- 【請求項20】 前記ベクターが哺乳類またはヒト細胞で発現され、発現さ
れたキメラタンパク質は哺乳類またはヒト細胞により該キメラタンパク質を完全
にプロセシングさせ、かつ完全にプロセシングされたキメラタンパク質を該細胞
から該細胞が増殖する培地へ分泌させる配列を有してなる請求の範囲第17項、第
18項または第19項記載のDNAベクター。 - 【請求項21】 前記ベクターがサイトメガロウイルス(CMV)プロモータ ーの制御下でキメラsIL-6R/IL-6タンパク質をコードするDNA配列を含むpcDNA3ベ
クターからなる本文中で命名されたプラスミドpcDNAsIL-6R/IL-6である請求の範
囲第17項、第18項、第19項または第20項記載のDNAベクター。 - 【請求項22】 前記ベクターがサイトメガロウイルス(CMV)プロモータ ーの制御下でキメラsIL-6R/IL-6タンパク質をコードするDNA配列を含むpcDNA3ベ
クターからなる本文中で命名されたプラスミドpcDNAsIL-6R/L/IL-6であり、該キ
メラsIL-6R/IL-6タンパク質をコードする該DNA配列においてsIL-6Rをコードする
配列および該タンパク質のIL-6部分をコードする配列間に位置するEcoRI部位で ペプチドリンカーをコードするリンカー配列が挿入されている請求の範囲第17項
、第18項、第19項または第20項記載のDNAベクター。 - 【請求項23】 前記ベクターによって担持されるsIL-6R/IL-6キメラタン パク質を発現でき、発現された該タンパク質を完全にプロセシングでき、該細胞
が増殖する培地へと分泌できる請求の範囲第17項、第18項、第19項、第20項、第
21項または第22項記載のDNAベクターを含む形質転換された哺乳類細胞。 - 【請求項24】 前記pcDNA sIL-6R/Il-6ベクターによってトランスフェク ションされた本文中に記載のヒト胚腎細胞293(HEK293)である前記細胞におい て、前記細胞がsIL-6R/IL-6キメラタンパク質を発現でき、該タンパク質を完全 にプロセシングでき、約85kDaの糖タンパク質の形態で該タンパク質を該細胞が 増殖する培地へ分泌できる請求の範囲第23項記載の形質転換細胞。
- 【請求項25】 発現に適切な条件下で請求の範囲第23項または第24項記載
の形質転換細胞を増殖させ、該タンパク質または類似体を該細胞が増殖する培地
へ分泌させ、該培地から該タンパク質または類似体を精製することからなる請求
の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、第7項、第8項、第9項、第1
0項、第11項、第12項、第13項または第14項記載のキメラタンパク質またはその 生物学的に活性な類似体を産生するための方法。 - 【請求項26】 前記精製がsIL-6Rに特異的なモノクローナル抗体を用いた
イムノアフィニティークロマトグラフィーにより行なわれる請求の範囲第25項記
載の方法。 - 【請求項27】 がん細胞の阻害剤としての請求の範囲第1項、第2項、第3 項、第4項、第5項、第6項、第7項、第8項、第9項、第10項または第11項記載のキ
メラsIL-6R/IL-6タンパク質または類似体、そのいずれかの塩、およびその混合 物の用途。 - 【請求項28】 きわめて悪性のメラノーマ細胞の阻害剤としての請求の範
囲第27項記載のキメラタンパク質または類似体の用途。 - 【請求項29】 骨髄移植におけるヒト造血細胞の植えつけを誘発するため
の有効成分としての請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、第
7項、第8項、第9項、第10項または第11項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質ま
たは類似体、そのいずれかの塩、およびその混合物の用途。 - 【請求項30】 肝毒性因子から肝臓を保護するための有効成分としての請
求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、第7項、第8項、第9項、 第10項または第11項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質または類似体、そのい ずれかの塩、およびその混合物の用途。 - 【請求項31】 造血を増大させるための、肝臓または神経学的症状を治療
するための、またはIL-6もしくはsIL-6Rが使用される他の適用のための有効成分
としての請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、第7項、第8項
、第9項、第10項または第11項記載のキメラsIL-6R/IL-6タンパク質または類似体
、そのいずれかの塩、およびその混合物の用途。 - 【請求項32】 哺乳類がん細胞の阻害により哺乳類のがんを治療するため
の医薬の調製、または骨髄移植におけるヒト造血細胞の植えつけを誘発すること
により骨髄移植を強化するための医薬の調製、または造血を増大するための医薬
の調製、または肝臓もしくは神経学的障害を治療するための医薬の調製、または
IL-6もしくはsIL-6Rが使用される他の応用のための医薬の調整における用途のた
めの請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項、第5項、第6項、第7項、第8項、第
9項、第10項または第11項記載のsIL-6R/IL-6タンパク質または類似体、そのいず
れかの塩およびその混合物。 - 【請求項33】 有効成分としての請求の範囲第1項、第2項、第3項、第4項
、第5項、第6項、第7項、第8項、第9項、第10項または第11項記載のキメラsIL-6
R/IL-6タンパク質またはその類似体、および薬学的に許容しうる担体、希釈剤ま
たは賦形剤からなる医薬組成物。 - 【請求項34】 がんの治療のための請求の範囲第33項記載の医薬組成物。
- 【請求項35】 骨髄移植の強化のための請求の範囲第33項記載の医薬組成
物。 - 【請求項36】 肝臓もしくは神経学的障害の治療のための、または造血を
増大するための、またはIL-6もしくはsIL-6Rが使用される他の適用のための請求
の範囲第33項記載の医薬組成物。 - 【請求項37】 哺乳類におけるがんを治療するための、または骨髄移植を
強化するための、または肝臓もしくは神経学的障害を治療するための、または造
血を増大するための、またはIL-6もしくはsIL-6Rが使用される他の適用のための
方法であって、適切な投薬形態で適切な投与経路により請求の範囲第33項、第34
項、第35項または第36項記載の医薬組成物を患者に投与することからなる方法。
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