DE3632824C2 - - Google Patents
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Description
Die Erfindung betrifft bicyclische Brenzcatechinderivate,
ein Verfahren zu ihrer Herstellung und dieselben enthaltende
therapeutische Zusammensetzungen.
Aus der britischen Patentschrift 14 28 110 sind strukturell
ähnliche Benzothiepin- bzw. Benzothiopyran-Derivate bekannt,
die cardiovasculäre Eigenschaften aufweisen sollen. Überraschenderweise
besitzen die erfindungsgemäßen Verbindungen
diese Eigenschaften nicht, sondern wirken u. a. entzündungshemmend
und antiallergisch.
Die Erfindung stellt bicyclische Brenzcatechinderivate mit
den allgemeinen Formeln I und II bereit
worin R1 und R2 jeweils unabhängig voneinander ein Wasserstoffatom
oder eine Methylgruppe darstellen;
R3 ein aromatisches Radikal, gegebenenfalls substituiert durch ein oder mehrere Halogenatome oder Trifluormethylgruppen, darstellt und
Z eine Carbonyl-, Hydroxymethylen-, Methylen-, Carbonylmethylen-, Hydroxyethylen- oder Ethylengruppe darstellt, wobei die Sauerstoff-Kohlenstoff-Bindung im Falle von Carbonylmethylen und Hydroxyethylen das Kohlenstoffatom betrifft, welches benachbart zu dem in die Ringverbindung eingebundenen ist.
R3 ein aromatisches Radikal, gegebenenfalls substituiert durch ein oder mehrere Halogenatome oder Trifluormethylgruppen, darstellt und
Z eine Carbonyl-, Hydroxymethylen-, Methylen-, Carbonylmethylen-, Hydroxyethylen- oder Ethylengruppe darstellt, wobei die Sauerstoff-Kohlenstoff-Bindung im Falle von Carbonylmethylen und Hydroxyethylen das Kohlenstoffatom betrifft, welches benachbart zu dem in die Ringverbindung eingebundenen ist.
Die Verbindungen der allgemeinen Formeln I und II, wie sie
oben definiert sind, sind Inhibitoren von Lipoxygenase und
Cyclogenase. Sie können in der Humantherapie als nichtsteroide,
entzündungshemmende, antithrombotische, antiallergische
antiischämische und antianaphylaktische Mittel
verwandt werden.
Die Erfindung stellt ferner ein Verfahren zur Herstellung
der Verbindungen der allgemeinen Formeln I und II bereit,
wobei das Verfahren die Reaktion einer Verbindung der Formel
III
worin R1 und R2 die oben angegebenen Bedeutungen haben
(diese Verbindung wird durch Sulfochlorierung des aromatischen
Rings nach einem von dem von Jusius, Liebigs Ann. Chem
1929, 468, 162 abgeleiteten Verfahren, gefolgt von der
Reduktion durch naszierenden Wasserstoff - Clemmensen-
Reaktion - hergestellt), mit einer geeignet substituierten
Propion- oder Buttersäure (oder einem Ester oder einem Salz
derselben) der Formel IV
worin R3 die oben angegebene Bedeutung hat, umfaßt.
Unter alkalischen Bedingungen gibt dies eine Verbindung der
Formel V
welche mit dehydratisierenden Mitteln, wie Phosphorsäureanhydrid,
Polyphosphorsäuren oder -estern, Schwefelsäure,
Chlorsulfonsäure und anderen Lewis-Säuren cyclisiert wird.
Für die Verbindungen der Formel II umfaßt das Verfahren die
Reaktion der Verbindung der Formel VI mit einem R3-substituierten
γ-Butyrolacton VII
Gemäß einem Verfahren, das sich von dem von K. W. Bentley
und W. I. Rushvoeth, Britisches Patent 1 428 110, herleitet,
unter Bildung der Verbindung der Formel VIII
welche, nach der Cyclisierung einer Carboxylgruppe, zu der
erwünschten Verbindung II führt.
Die Verbindungen I und II, worin Z Methylen, Ethylen,
Hydroxymethylen oder Hydroxyethylen ist, kann nach herkömmlichen
Reduktionsverfahren erhalten werden.
Die Carbonylgruppe kann entweder durch Behandlung mit
stöchiometrischen Mengen an Aluminiumtrichlorid und Lithiumaluminiumhydrid
nach einem sich von dem von H. Nakazumi, T.
Veyama und T. Kitao, J. of Heterocyclic Chemistry 1984, 21,
193 herleitenden Verfahren oder nach dem Verfahren von
Wolf-Kishner-Huang Minlon unter Verwendung von Hydrazin in
eine Methylengruppe umgewandelt werden oder durch Natriumborhydridreduktion
in Hydroxymethylen nach V. J. Traynelis
und R. F. Love, J. Org. Chem. 1961, 26, 2728.
Schließlich betrifft die Erfindung pharmazeutische Zusammensetzungen
in welchen als aktiver Bestandteil wenigstens
eine der oben definierten Verbindungen verwandt wird.
Die nachstehenden Beispiele erläutern die Erfindung.
5 g (0,017 Mol) β-(3,4-Dihydroxyphenylthio)zimtsäure wurde
in einem mit einem Magnetrührer ausgestatteten 50-ml-Zweihalskolben
portionsweise in 10,5 ml konz. Schwefelsäure gegeben.
Die Reaktionsmischung wurde mit Eis gekühlt und die
erhaltene Suspension getrocknet und dann mit Benzol gewaschen.
Umkristallisation aus warmem Ethanol ergab ein organgefarbenes
Pulver (Ausbeute 13%). Diese Verbindung hatte einen
Schmelzpunkt oberhalb 250°C (Tottoli). Ihre Identität und
Struktur wurde durch 1H-NMR-Spektroskopie und elementare
Mikroanalyse bestätigt.
berechnet: C 66,65%; H 3,73%
gefunden: C 66,71%; H 3,81%
gefunden: C 66,71%; H 3,81%
1 g (0,028 Mol) o-Trifluormethyl-β-(3,4-dihydroxyphenylthio)-
zimtsäure wurde in einem mit einem Magnetrührer ausgestatteten
50-ml-Dreihalskolben unter einem leichten Stickstoffstrom
in 15 ml wasserfreiem Chloroform gelöst. Eine
Lösung von 3,25 g (0,0075 Mol) Ethylpolyphosphat in 1 ml
wasserfreiem Chloroform wurde bei 20°C hinzugefügt. Die
Mischung wurde über 2 h refluxiert. Die Reaktionsmischung
wurde mit Eis gekühlt und dann mit Ammoniak alkalisch
gemacht. Nach der Extraktion wurde die organische Phase mit
Wasser gewaschen. Verdampfen des organischen Lösungsmittels
ergab ein orangefarbenes Gummi, welches mittels Chromatographie
an Kieselgel durch Elution mit Dichlormethan gereinigt
wurde (Ausbeute 12%). Diese Verbindung ist ein bei
131°C (Tottoli) schmelzender Feststoff. Ihre Identität und
Struktur wurde durch 13C-NMR-Spektroskopie und elementare
Mikroanalyse bestätigt.
berechnet: C 56,80%; H 2,70%
gefunden: C 56,64%; H 2,69%
gefunden: C 56,64%; H 2,69%
Es wurde verfahren wie in Beispiel 2, jedoch unter Verwendung
von β-(3,4-Dimethoxyphenylthio)zimtsäure anstelle von
o-Trifluormethyl-β-(3,4-dihydroxyphenylthio)zimtsäure. Die
Titelverbindung wurde in 15%iger Ausbeute erhalten. Sie ist
ein bei 212°C (Tottoli) schmelzender Feststoff. Ihre Identität
und Struktur wurde durch 13C-NMR-Spektroskopie und
elementare Mikroanalyse bestätigt.
berechnet: C 68,44%; H 4,73%
gefunden: C 68,44%; H 4,74%
gefunden: C 68,44%; H 4,74%
Es wurde verfahren wie in Beispiel 2, jedoch unter Verwendung
von o-Trifluormethyl-β-3,4-(dimethoxyphenylthio)zimtsäure
anstelle von o-Trifluormethyl-β-3,4-(dihydroxyphenylthio)
zimtsäure. Die Titelverbindung wurde in 50%iger Ausbeute
erhalten. Sie ist ein bei 194°C schmelzender weißer
Feststoff. Ihre Identität und Struktur wurde durch 13C-NMR-
Spektroskopie und elementare Mikroanalyse bestätigt.
berechnet: C 59,01%; H 3,57%
gefunden: C 58,84%; H 3,56%
gefunden: C 58,84%; H 3,56%
Es wurde verfahren wie in Beispiel 2, jedoch unter Verwendung
von 4-Phenyl-4-(3,4-dimethyloxyphenylthio)buttersäure
anstelle von o-Trifluormethyl-β-(3,4-dihydroxyphenylthio)
zimtsäure. Die Titelverbindung wurde in 27%iger Ausbeute
erhalten. Reinigung wurde durch Dekantieren vom Diethylether
bewirkt. Diese Verbindung ist ein bei 135°C (Tottoli)
schmelzender weißer Feststoff. Ihre Identität und Struktur
wurde durch 13C-NMR-Spektroskopie und elementare Mikroanalyse
bestätigt.
berechnet: C 68,76%; H 5,77%
gefunden: C 68,63%; H 5,84%
gefunden: C 68,63%; H 5,84%
204,9 mg (5,4 mMol) Lithiumaluminiumhydrid und 720 mg (5,6
mMol) Aluminiumchlorid wurden bei Raumtemperatur in 32 ml
wasserfreiem Tetrahydrofuran in einem mit einem Magnetrührer
ausgestatteten 100-ml-Dreihalskolben unter einem
leichten Stickstoffstrom gelöst. Eine Lösung von 1 g
(2,7 mMol) 6,7-Dimethoxy-2-(o-trifluormethylphenyl)-4-
oxobenzothiopyran, hergestellt wie in Beispiel 4 beschrieben,
in 9 ml wasserfreiem Tetrahydrofuran wurde bei 25°C hinzugegeben.
Das Reaktionsmedium wurde über 2 h bei 20 bis
25°C gerührt und dann mit 0,54 g Wasser und 1,35 ml konz.
Schwefelsäure hydrolysiert. Die erhaltene Mischung wurde
filtriert und dann mit Diethylether extrahiert. Abdampfen
des organischen Lösungsmittels ergab (Ausbeute 20%) ein bei
94°C (Toltoli) schmelzendes rotes Pulver. Die Identität und
Struktur dieser Verbindung wurde durch 13C-NMR-Spektroskopie
und elementare Mikroanalyse bestätigt.
berechnet: C 61,36%; H 4,29%
gefunden: C 61,52%; H 4,35%
gefunden: C 61,52%; H 4,35%
Lipoxygenasen (LOs) wandeln Arachidonsäure (AA) in Hydroxyderivate
und Leukotriene um. Diese Produkte sind wirksame
pharmakologische Mittel, die möglicherweise wirksame Rollen
in entzündlichen und Überempfindlichkeitsstörungen spielen.
Mehrere LOs reagieren auf AA, wobei grundsätzlich
5 LO zu Leukotrienen führt,
12 LO zu 12-Hydroperoxyeicosatetraensäure (12 HPETE) und anderen 12-Hydroxyverbindungen führt,
15 LO zu 15 HPETE und anderen 15 Hydroxyverbidungen führt,
und (in geringerem Ausmaß) 8 LO und 11 LO.
12 LO zu 12-Hydroperoxyeicosatetraensäure (12 HPETE) und anderen 12-Hydroxyverbindungen führt,
15 LO zu 15 HPETE und anderen 15 Hydroxyverbidungen führt,
und (in geringerem Ausmaß) 8 LO und 11 LO.
Die wichtigsten Produkte der LO-Reaktionswege sind 5-LO
gebildete Leukotriene. Die angenommene Bedeutung von SRS-A
in Asthma- und anaphylaktischen Reaktionen und der Befund,
daß SRS-A zu den Leukotrienen gehört, regte das Interesse
an Studien hinsichtlich der biologischen Funktion dieser
Verbindungen an. LTC 4 und LTD 4 (0,1 bis 1,0 nM) verursachten
konzentrationsabhängige Kontraktionen des Meerschweinchendarms,
als es zur Bestimmung der biologischen
Aktivität der SRS-A-Relation zu Histamin verwandt wurde. Es
wurde gefunden, daß auf molarer Basis Histamin 200mal
weniger aktiv war als LTC 4, woraus sich ergibt, daß eine
SRS-A-Einheit (6 ng Hist, HCl) ungefähr 0,2 pMol LTC 4 entspricht.
LTC 4 und LTD 4 erhöhten auch die Gefäßdurchlässigkeit in
Meerschweinchenhaut und hatten hinsichtlich glatter Muskeln
stimulierende Eigenschaften, welche identisch mit den zuvor
für SRS-A beobachteten sind. LTC 4 und LTD 4 spielen eine
kritische Rolle in der Herz- oder Lungen-Mikrozirkulation.
LTB 4 beeinflußt die Leukozytenwanderung dadurch, daß es
die Leukozytenadhäsion an das Endothelium in post-kapillaren
Äderchen bewirkt sowie durch potente chemotaktische Effekte.
Deshalb sind Leukotriene wirksame Mittler in Wirt-Verteidigungsmechanismen,
wie unmittelbaren Überempfindlichkeitsreaktionen
und akuten Entzündungsreaktionen. Weiterhin sind
die Wirkungen einiger Cyclooxygenase-(CO)-Produkte und der
Leukotriene komplementär. Folglich kann Synergismus zwischen
Plasmaverlust bewirkenden Leukotrienen und den Vasodilatoren
PGE 2 und PGI 2 wichtig bei der Bildung von Ödemen sein.
Weiterhin muß synergistischen Effekten von Leukotrienen mit
Thromboxan (TxA2) bei Bronchokonstriktion Wichtigkeit zuerkannt
werden. LTC 4 und LTD 4 bewirken die Freisetzung von
TxA2 in Meerschweinchenlungen-AS. TxA2 ist ein wirksamer
Luftwegsverenger, und seine Freisetzung kann zum Bronchospasmus
bei allergischen Erscheinungen beitragen. Weiterhin
scheinen einige Ergebnisse zu zeigen, daß einige Wirkungen
von PAF-Acether durch LTB 4 vermittelt werden konnten.
Nicht-steroide entzündungshemmende Drogen (AINS) verhindern
die Anaphylaxe nicht. Dagegen erhöhen sie Überempfindlichkeitsreaktionen,
da sie AA für LO-Reaktionswege mobilisieren.
Corticosteroide (CS) verhindern die Freisetzung des
Vorläufers und wirken durch Anregung der Synthese von Lipomodulin,
einem Peptid-Inhibitor von Phospholipase A2. Durch
Inhibierung der Freisetzung von AA verhindert CS nicht nur
die Bildung von CO-Produkten, sondern auch von LO-Produkten
und danach die Leukotrienbildung.
Die vermehrte Kenntnis über das LO-System scheint neue
Möglichkeit für die Entwicklung von neuen und therapeutisch
besser wirkenden Mitteln aufzuzeigen, insbesondere bei
Krankheiten, die mit unmittelbaren Überempfindlichkeitsreaktionen
wie Asthma, Allergie, kardialer Anaphylaxe,
Gehirnischaemie und Entzündung verbunden sind. Solche Mittel
können auf dem Antagonismus von Endprodukten oder der
Inhibierung von mit der Bildung und weiteren Umwandlung des
Schlüssel-Zwischenprodukts LTA 4 verbundenen Enzymen
basieren. Ein dualer Effekt des Leukotrien-Reaktionswegs und
des Cyclooxygenase-Reaktionswegs kann ebenfalls von Wert
sein.
Monohydroxyeicosatetraensäuren (HETEs) sind in quantitativer
Hinsicht bedeutende Metabolite von Arachidonsäure
(AA) in einer Vielzahl von Säugetierzellen und -geweben.
Beispielsweise wurde 12-L-HETE in Blutplättchen; 5-D-HETE
in Kaninchen-PMN; 12-L-HETE, 11-HETE und 15-HETE in Meerschweinchenlungen-
und Rattenmastzellen sowie 5-HETE,
8-HETE, 9-HETE, 11-HETE und 12-HETE in menschlichen
Neutrophilen identifiziert. Die HETE-Verteilung ist
abhängig von der Spezies und repräsentativ für den von
Lipoxygenasen enzymatisch katalysierten AA-Metabolismus.
Die möglichen biologischen Rollen dieser Produkte sind
bisher noch nicht vollständig aufgeklärt. Gleichwohl
zeigte aus menschlichen Blutkörperchen erhaltenes 12-HETE
chemotaktische Aktivität auf menschliche polymorphonukleare
Leukozyten (M./I. Siegel et al, Proc. Natl.
Acad. Sci. 77, 308-312; 1980). 5-HPETE (Hydroperoxysäure)
ist der Vorläufer der Slow Reacting Substance, einem sehr
wirkungsvollen Kontraktionsmittel für die glatte Muskulatur,
welches die Symptome augenblicklicher Überempfindlichkeit
mildert. Deshalb scheint es, daß die Inhibierung
von Lipoxygenase insbesondere nur bei der Sichtung antiallergischer
oder entzündungshemmender Mittel nützlich
sein könnte. Lipoxygenase von Säugetieren und Pflanzen
(Sojabohne) haben viele biochemische Eigenschaften
gemeinsam, und es ist gezeigt worden, daß die meisten
Inhibitoren von Pflanzenenzymen auch von Blutplättchen
oder Leukozyten abgeleitete Lipoxygenasen inhibieren
(J. Baumann et al, Prostaglandins 20, 627-639, 1980).
Sojabohnen-Lipoxygenase induziert die ausschließliche
Bildung von 15-HPETE (C. P. A. Van Os et al, Biochim. et
Biophys. Acta 663, 177-193, 1981), und es wurde gezeigt,
daß sie zehnmal empfindlicher ist als Blutplättchen-
Lipoxygenase (D. P. Wallach et al, Biochim. and Biophys.
Acta 663, 361-372, 1981). Zusätzlich ist 15-HETE ein
wirksamer und spezifischer Inhibitor von Blutplättchen-
Lipoxygenase (12-HETE), welche indirekt die Bildung von
Thromboxan A2 anregt (J. Vanderhoek et al, J. Biolog.
Chem. 225, 5996-5998; 1980). Vom 15-Hydroperoxyanalogen wurde
auch berichtet, daß es die Aktivität aortischer Prostacyclin-
Synthetase in Schweinen unterdrückt (R. J.
Gryglewski et al, Prostaglandins 12, 685-713, 1976).
Diese Hemmwirkung wird durch die Produktion einer destruktiven
oxidativen Spezies ausgeübt, wahrscheinlich
eines OH-Radikals oder einer Spezies ähnlicher Aktivität
(S. J. Weiss et al, Blood, 53, 1191, 1979).
Eine spektrophotometrische Methode wurde gemäß E. J.
Corey et al zur Bestimmung der Enzymaktivität entwickelt
(J. Amer. Chem. Soc, 104, 1750-1752, 1982). In einem Endvolumen
von 1,8 ml waren 0,2 M luftgesättigter Borax-
Puffer von pH 9,00 mit 500 Einheiten Sojabohnen-Lipoxygenase
gemischt. Beim Test von Inhibitoren wurden diese
in 0,6 ml gegeben bei Endkonzentrationen im Bereich von
10-13 M bis 10-8 M, gefolgt von einer Vorinkubation über
10 min bei Raumtemperatur. Die Reaktion wurde durch 10-4 M
Arachidonsäure eingeleitet. Nach der Inkubation über
90 min bei Raumtemperatur wurde 15-HPETE durch Absorptionsmessung
bei 236 nm bestimmt.
Diese Methode wurde mit bekannten Lipoxygenase-Inhibitoren
in Wert gesetzt. Für jede Testsubstanz wurde eine
Vergleichsmessung mit abgekochter Lipoxygenase vorgenommen,
um jegliche Absorption der Verbindung bei der verwandten
Wellenlänge berücksichtigen zu können. Die prozentuale
enzymatische Aktivität wurde für jede Konzentration
berechnet und die zur Inhibierung von 50% der
Enzymaktivität benötigte Substanzmenge durch lineare
Regession eines Satzes von den LOG der Konzentration
(M)/% Inhibierung beschreibenden Datenpunkten berechnet.
c. Ergebnisse | |
Verbindungen | |
IC50 (Konzentration bei 50% Inhibierung | |
Beispiel 1|7.25 · 10-5 | |
Beispiel 2 | 8.23 · 10-5 |
Beispiel 3 | 1.21 · 10-6 |
Beispiel 4 | 1.35 · 10-6 |
Beispiel 5 | 2.29 · 10-6 |
Beispiel 6 | 1.42 · 10-6 |
Diphenylthiocarbazon | 1.61 · 10-6 M |
Der Entzündungsprozeß ist durch eine verminderte Integrität
der endothelialen Zellbarriere, eine Änderung der
Gefäßpermeabilität und eine Aktivierung von phagozytischen
Zellen wie polymorphonuklearen Leukozyten (PMN)
mit der nachfolgenden Freigabe und Generierung in den
extrazellularen Raum einer Gruppe von aktiven Verbindungen,
von denen einige freie Radikale sind, gekennzeichnet.
Das Verhältnis dieser Radikalspezies zu anderen Erscheinungen
der Entzündung ist nicht vollständig verstanden.
Eine wesentliche Komponente des Atmungsausbruchs von
aktivierten Entzündungszellen, wie PMN ist die einwertige
enzymatische Reduktion von O2 zum Superoxidradikalanion
O2 -. Ein großer Anteil des generierten O2 - wird in den
extrazellularen Raum entlassen, wo spontane Dismutation
mit begleitender Bildung von H2O2 und O2 auftreten kann.
Die gleichzeitige Anwesenheit von O2 -, H2O2 und chelierten
Metallkatalysatoren im extrazellularen Raum kann zur
weiteren Bildung von aktiveren, von Sauerstoff abgeleiteten
Molekülen, wie dem Hydroxylradial (OH.) und
Singletsauerstoff (1O2) führen. Superoxiddismutase (SOD)
fungiert als enzymatischer O2 --Fänger (McCord et al, J.
Biol. Chem. 224, 6049-6055, 1969), wohingegen 1-Methionin
und DMSO beide OH.-Fänger sind.
Das Substrat-Xanthinoxidase-Modell für die Bildung freier
Radikale ist eingehend studiert (I. Fridowich, J. Biol.
Chem. 215, 4053-4057, 1970) und zur Generierung freier
Radikale sowohl "in vitro" als auch "in vivo" (H. Chmori
et al, Biochem. Pharmacol. 27, 1397-1400, 1978) verwandt
worden.
Eine bequeme und empfindliche spektrophotometrische
Probe, um O2 - spezifisch nachzuweisen und zu verfolgen,
beruht auf der Eigenschaft dieses Radikals, Ferricytochrom
C (Cyt c3++) zu reduzieren. Die Gegenwart von
Xanthinoxidase zusammen mit Hypoxanthin und Cyt c3++ in
Bicarbonatpuffer generiert O2 -, welches anfänglich
Cyt c3+ zu Cyt c2+ reduziert (R. F. Del Maestro, Microvascular
Res. 22, 255-270, 1981), gefolgt von der Rückoxidation
von einigem Cyt c2+ durch OH· (K. Fong et al,
Chem. Biol. Interact. 15, 77-89, 1976).
Wasserstoffperoxid wird durch die Zwei-Elektronenreduktion
von molekularem Sauerstoff oder durch die Dismutation
von O2 - gebildet. Catalase (CAT) reduziert H2O2 zu
H2O.
Das angewandte Verfahren war mit dem von R. F. Del
Maestro, J. Bjork und K. E. Arfors (Microvascular Res.
22, 239-254, 1981) beschriebenen identisch. Die Reduktion
von Cytochrom c3+ (Cyt c3+) wurde in einem System verfolgt,
das aus 0,96 mM Hypoxanthin, 5 · 10-5 M Cyt c3+ in
Bicarbonatpuffer von pH 7,35 (0,132 M NaCl, 4,7 · 10-3 M KCl,
2 · 10-3 M CaCl2, 1,2 · 10-3 M MgSO4, 0,018 M NaHCO3) zuammengesetzt war.
Die Reaktion wurde durch die Zugabe von
Xanthinoxidase in einer Konzentration von 0,07 U/ml gestartet.
Die Adsorptionszunahme bei 550 nm wurde bei 37°C
jede min über 4 min in einer thermostatisierten spektrophotometrischen
Zelle verfolgt.
Jede Testverbindung wurde vor der Xanthinoxidase zugegeben.
Eine Aktivitätseinheit wurde definiert als eine Änderung
von 0,001 Einheiten/min. Die prozentuale enzymatische
Aktivität wurde für jede Konzentration der getesteten
Verbindungen berechnet und die zur Inhibierung von
50% des Enzyms (IC50) benötigte Substanzmenge durch
lineare Regression eines Satzes von den LOG der Konzentration
M/% Inhibierung beschreibenden Datenpunkten
berechnet.
c. Ergebnisse | |||
Verbindungen | |||
O2 --Fänger-IC50 | |||
(Konzentration für | |||
50% Inhibierung) | Beispiel 1 | 6.64 · 10-6 | |
Beispiel 2 | 6.33 · 10-6 | ||
Beispiel 3 | 2.22 · 10-5 | ||
Beispiel 4 | 3.67 · 10-5 | ||
Beispiel 5 | 5.81 · 10-6 | ||
Beispiel 6 | 4.12 · 10-6 | ||
Campherol | 9.05 · 10-6 M | ||
3,4-Dihydroxyphenylessigsäure | 3.87 · 10-5 M |
Die enzymatische Untersuchung wurde in silanisiertem
Glasgerät nach dem Verfahren von P. Ho, P. Walters und H.
Sullivan (Prostaglandins 12, 951, 1976) durchgeführt. Die
50 mM Tris-HCl-Puffer, pH 7,9, 5 mM 2-Tryptophan, 2 M
Methemoglobin, 0,2 mg Mikrosompulver und die Testverbindung
in einem Gesamtvolumen von 0,2 ml enthaltende Reaktionsmischung
wurde bei 37°C über 5 min inkubiert, bevor
10 µl 20 µM 14C-Arachidonsäure (0,09 µCi) zugegeben
wurden. Nach 5 min Inkubation wurde die Reaktion durch
Zugabe von 10 µl 1 M Zitronensäure beendet.
Die Mischung wurde viermal mit 0,5 ml wasserfreiem
Diethylether extrahiert und über Natriumsulfat getrocknet.
Der Rückstand wurde erneut in ungefähr 40 µl Ether
suspendiert und der Chromatographie an Kieselgelplatten
unterworfen. Das Elu-tionssystem bestand aus Diethylether/
Methanol/Essigsäure (90 : 1 : 2). Die RF-Werte wurden
realtiv zu Arachidonsäure gemessen. Die Dünnschichtchromatographieplatten
(TLC) wurden über etwa 24 h auf
LKB-Ultrafilm belichtet. Partielle Identifizierung der
Flecken wurde durch mitlaufende Standards (PGA2, PGB2,
PGE2, PGF2c, PXB2, Arachidonsäure) im gleichen Lösungsmittelsystem
durchgeführt. Quantitative Ergebnisse wurden
durch Abfahren des entwickelten Films mit einem Transmissions-
Densitometer mit zwischengeschalteten
Integrator erhalten. Imidazol
und Indomethacin waren als positive Standards zur jeweiligen
spezifischen Inhibierung von Thromboxansynthetase
und Cyclooxygenase eingeschlossen.
b. Cyclooxygenaseinhibierung in menschlichen Plättchenmikrosomen | |
Verbindungen | |
IC50 (Konzentration für 50% Inhibierung) | |
Beispiel 1|1.51 · 10-4 | |
Beispiel 2 | 1.68 · 10-4 |
Beispiel 3 | 9.37 · 10-4 |
Beispiel 4 | 1.33 · 10-5 |
Beispiel 5 | 3.56 · 10-6 |
Beispiel 6 | 7.39 · 10-6 |
Indomethacin | 1.12 · 10-5 M |
Phenylbutazon | 2.74 · 10-4 M |
Die Aktivität der Substanzen auf die Cyclooxygenase wird
durch die zwei Flecken quantifiziert, die PGE2 und TxB2
entsprechen (Verhältnis PGE2/TxB2).
Es wurde eine verbesserte Analyse auf Basis der von
Baumann et al (Naunyn-Schmiedeberg′s Arch. Pharm. 307,
73, 1979) und C. Takeguchi et al (Biochem. 10, 2372,
1971) veröffentlichten Methoden entwickelt. Die enzymatische
Radioanalyse wurde in silanisiertem Glasgerät
durchgeführt. Die Reaktionsmischung, die 50 mM Tris-HCl-
Puffer von pH 8,3 in Gegenwart von 1 mM reduzierten
Glutathion (GSH) wie 0,55 mM Hydrochinon, die Testverbindung
und 50 µg Mikrosomenpulver von Widdersamenbläschen
in einem Gesamtvolumen von 0,2 ml enthielt,
wurde über 5 min bei 37°C inkubiert, bevor 10 µl 10-6 M
14C-Arachidonsäure (0,08 µCi) zugegeben wurden. Nach
30 min Inkubation unter gelegentlichem Schütteln wurde
die Reaktion durch die Zugabe von 10 µl 1 M Zitronensäure
beendet.
Die Mischung wurde viermal mit 0,5 ml wasserfreiem
Diethylether extrahiert und mit Natriumsulfat getrocknet.
Der Rückstand wurde erneut in ungefähr 40 µl
Ether suspendiert und der Chromatographie an Kieselgelplatten
unterworfen. Das Elutionssystem bestand aus
Diethylether/Methanol/Essigsäure (45 : 1 : 2). Die RF-Werte
wurden im Vergleich zu Arachidonsäure gemessen. Die
Dünnschichtchromatographieplatten wurden für etwa 20 h
auf LKB-Ultrafilm belichtet. Die versuchsweise Identifizierung
der Flecken wurde durch mitlaufende Standards
(PGE1, PGE2, PGF1a, PGF2a, PGA1, PGA2, PGB1, PGB2) im
gleichen Lösungsmittelsystem durchgeführt. Quantitative
Ergebnisse wurden durch Densitometrie erhalten.
Die Aktivität von Xanthinoxidase wurde nach der Methode
von H. M. Kalckar (J. Biol. Chem. 167, 429-443, 1947),
welche die Bildung von Harnsäure spektrophotometrisch
mißt, bestimmt.
In einer spektrophotometrischen Küvette wurde Xanthinoxidase
für eine Endkonzentration von 0,01 Einheiten/ml
gegeben, gefolgt von 0,05 M Phosphatpuffer von pH 7,4 oder
dem Inhibitor. Die Reaktion wurde durch Zugabe von
Xanthin für eine Endkonzentration von 5 · 10-5 M gestartet.
Die Freisetzung von Harnsäure wurde alle 30 s für 2 min
(lineare Phase) bei 295 nm verfolgt. Eine Aktivitätseinheit
wurde definiert als eine Änderung von 0,001 Einheiten/
min. Die prozentuale enzymatische Aktivität wurde für
jede Konzentration der getesteten Verbindungen berechnet
und die zur Inhibierung von 50% des Enzyms (IC50) benötigte
Substanzmenge durch lineare Regression eines Satzes
von den LOG der Konzentration M als Funktion von %
Inhibierung beschreibenden Datenpunkten errechnet.
b. Resultate | |
Verbindungen | |
IC50 (Konzentration für 50% Inhibierung | |
Beispiel 1|5.20 · 10-5 | |
Beispiel 2 | 5.39 · 10-5 |
Beispiel 3 | 1.13 · 10-5 |
Beispiel 4 | 9.04 · 10-4 |
Beispiel 5 | 3.37 · 10-5 |
Beispiel 6 | 1.03 · 10-6 |
Folsäure | 6.76 · 10-7 M |
Campherol | 7.89 · 10-6 M |
Protokoll zum Experiment Nr. 1:
1. Inkubierung von 15×106 menschlichen Leukozyten/ml mit 2 mM Ca2+, 0,5 mM Mg2+ in Gegenwart des Inhibitors bei 37°C über 20 min.
2. Stimulierung mit 1 µg Ionophor (A23187)/ml über 4 min.
3. Stoppen der Inkubation mit 1 Vol Methanol.
4. Analyse durch RP-HPLC, Säule C18, 5 µm.
5. Messung der Peakhöhe und Vergleich mit dem internen Standard (PGB2).
1. Inkubierung von 15×106 menschlichen Leukozyten/ml mit 2 mM Ca2+, 0,5 mM Mg2+ in Gegenwart des Inhibitors bei 37°C über 20 min.
2. Stimulierung mit 1 µg Ionophor (A23187)/ml über 4 min.
3. Stoppen der Inkubation mit 1 Vol Methanol.
4. Analyse durch RP-HPLC, Säule C18, 5 µm.
5. Messung der Peakhöhe und Vergleich mit dem internen Standard (PGB2).
Protokoll zum Experiment Nr. 2:
1. Inkubation von 11×106 menschlichen Leukozyten/ml mit den Inhibitoren über 20 min (2 mM Ca2+ und 0,5 mM Mg2+) bei 37°C.
2. Stimulierung mit 10 µg Arachidonsäure und 1 µg Ionophor (A23187)/ml über 4 min
3. Stoppen der Inkubation mit 1 Vol Methanol und Analyse durch RP-HPLC.
4. Messung der Peakhöhen und Vergleich mit dem internen Standard (PGB2).
1. Inkubation von 11×106 menschlichen Leukozyten/ml mit den Inhibitoren über 20 min (2 mM Ca2+ und 0,5 mM Mg2+) bei 37°C.
2. Stimulierung mit 10 µg Arachidonsäure und 1 µg Ionophor (A23187)/ml über 4 min
3. Stoppen der Inkubation mit 1 Vol Methanol und Analyse durch RP-HPLC.
4. Messung der Peakhöhen und Vergleich mit dem internen Standard (PGB2).
Es ist festzustellen, daß die vorstehenden drei Verbindungen
bei Konzentrationen von 10-6 M bis 3×10-6 M 15-Lipoxygenase
stimulieren, während 5-Lipoxygenase bei diesen Konzentrationen
inhibiert wird.
Es ist festzustellen, daß in Experiment Nr. 1 die Leukozyten
durch das Ionophor allein stimuliert wurden, wohingegen in
Experiment Nr. 2 die Zellen mit Ionophor und Arachidonsäure
stimuliert worden sind. Die Gegenwart des Arachidonsäureexogens
verstärkt den ID50 der Inhibitoren um das 10fache;
andererseits erlaubt die Zugabe der Arachidonsäure eine
Messung der 15-Lipoxygenase-Aktivität, welche normalerweise
in durch Ionophor allein stimulierten Leukozyten nicht nachweisbar
ist.
Claims (3)
1. Bicyclische Brenzcatechinderivate mit den allgemeinen
Formeln I und II
worin R1 und R2 jeweils unabhängig voneinander ein
Wasserstoffatom oder eine Methylgruppe darstellen,
R3 ein aromatisches Radikal, gegebenenfalls substituiert durch ein oder mehrere Halogenatome oder Trifluormethylgruppen, darstellt und
Z eine Carbonyl-, Hydroxymethylen-, Methylen-, Carbonylmethylen-, Hydroxyethylen- oder Ethylengruppe darstellt, wobei die Sauerstoff-Kohlenstoff-Bindung im Falle von Carbonylmethylen und Hydroxyethylen das Kohlenstoffatom betrifft, welches benachbart zu dem in die Ringverbindung eingebundenen ist.
R3 ein aromatisches Radikal, gegebenenfalls substituiert durch ein oder mehrere Halogenatome oder Trifluormethylgruppen, darstellt und
Z eine Carbonyl-, Hydroxymethylen-, Methylen-, Carbonylmethylen-, Hydroxyethylen- oder Ethylengruppe darstellt, wobei die Sauerstoff-Kohlenstoff-Bindung im Falle von Carbonylmethylen und Hydroxyethylen das Kohlenstoffatom betrifft, welches benachbart zu dem in die Ringverbindung eingebundenen ist.
2. Verfahren zur Herstellung der Benzcatechinderivate
nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man in
an sich bekannter Weise eine Verbindung der Formel III
worin R1 und R2 die oben angegebenen Bedeutungen haben,
mit einer geeignet substituierten Propion- oder Buttersäure
(oder einem Ester oder einem Salz derselben) der
Formel IV
worin R3 die oben angegebene Bedeutung hat, reagieren
läßt.
3. Therapeutische Zusammensetzungen, dadurch gekennzeichnet,
daß als aktiver Bestandteil eine hinreichende Menge
wenigstens einer der Verbindungen nach Anspruch 1 in Verbindung
mit einem geeigneten Verdünnungsmittel oder
Träger vorhanden ist.
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