DE3402642C2 - - Google Patents
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
- C07D501/00—Heterocyclic compounds containing 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring systems, i.e. compounds containing a ring system of the formula:, e.g. cephalosporins; Such ring systems being further condensed, e.g. 2,3-condensed with an oxygen-, nitrogen- or sulfur-containing hetero ring
- C07D501/14—Compounds having a nitrogen atom directly attached in position 7
- C07D501/16—Compounds having a nitrogen atom directly attached in position 7 with a double bond between positions 2 and 3
- C07D501/20—7-Acylaminocephalosporanic or substituted 7-acylaminocephalosporanic acids in which the acyl radicals are derived from carboxylic acids
-
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- C07D501/22—7-Acylaminocephalosporanic or substituted 7-acylaminocephalosporanic acids in which the acyl radicals are derived from carboxylic acids with radicals containing only hydrogen and carbon atoms, attached in position 3
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- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Cephalosporin Compounds (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Description
Die Erfindung betrifft D-2-Aminoacyl-3-(Z)-propenylcephalosporin
verbindungen, Verfahren zu ihrer Herstellung und pharma
zeutische Mittel, die diese Verbindungen enthalten. Die
erfindungsgemäßen Verbindungen sind zur Bekämpfung bakte
rieller Infektionen brauchbar.
Eine Möglichkeit zur Herstellung der erfindungsgemäßen,
in 3-Stellung substituierten Vinylcephalosporine besteht
in der Verwendung von 3-Formylceph-3-em-Verbindungen
als Zwischenprodukte. Diese Zwischenprodukte können durch
Oxidation der entsprechenden 3-Hydroxymethylceph-3-eme,
die durch enzymatische Hydrolyse der entsprechenden
Cephalosporine erhältlich sind, hergestellt werden. Dieses
Verfahren ist in der US-PS 33 51 596, in der unter anderem
die Verbindungen II und III offenbart sind, beschrieben.
In dieser Patentschrift wurden auch Derivate der 3-CHO-
Gruppe mit Carbonylreagenzien, wie Semicarbazid und
Hydroxylamin, offenbart, eine Alkylierung des Kohlenstoffs
der 3-CHO-Gruppe ist jedoch nicht beschrieben.
Die entsprechenden Sulfoxide sind stabiler und können
in besserer Ausbeute hergestellt werden (GB-PS 13 41 712).
3-Alkenyl-substituierte Cephalosporine wurden zuerst in
der GB-PS 13 42 241 (entsprechend den US-PS 37 69 277
und 39 94 884) beschrieben. Die Verbindungen IV und V
finden sich auf den Seiten 25 und 29 der Britischen Pa
tentschrift.
Diese Verbindungen wurden durch Umsetzung der entspre
chenden 3-Triphenylphosphoniummethylcephalosporine mit
Formaldehyd oder Acetaldehyd hergestellt. Das inverse
Verfahren, nämlich die Umsetzung eines Phosphoranylidin
derivats der Formel
R₃P=CR³R⁴
mit einem 3-CHO-Cephalosporin ist ebenfalls in dieser
Patentschrift auf Seite 5 beschrieben. In der
US-PS 41 07 431 wird erwähnt, daß die Verbindung IV
nach oraler Verabreichung absorbiert wird.
Weiter wurden derartige Verbindungen von Webber et al.,
J. Med. Chem. 18 (10) 986-992, (1975), und in der
US-PS 40 65 620 beschrieben, welche in den Spalten 3,
4 und 5 die Art von Verbindungen angibt, der die erfin
dungsgemäßen Verbindungen angehören. Konkret offenbart
wurden die Verbindungen der Formel VI:
Weitere Abwandlungen dieses Typs sind in den US-PS
40 94 978 und 41 12 087 beschrieben, worin die Verbin
dungen VII und VIII aufgeführt sind.
US-PS 40 94 978, Spalte 44
US-PS 41 12 087, Spalte 31
Weitere 3-Alkenyl-substituierte Cephalosporine sind in
den folgenden Publikationen offenbart:
| US-PS 38 30 700: | |||
| 3-(Nitrostyryl)cephalexinanaloga | |||
| US-PS 39 83 113 @ | US-PS 40 40 806 @ | US-PS 41 39 618: | 3-(Heterocyclothio)propenylcephalosporine |
| US-PS 41 47 863: | 3-(1-Methyl-5-tetrazolyl)vinylcephalosporine | ||
| DE-OS 30 19 445: | 3-(Sulfonyloxy)vinylcephalosporine | ||
| FR-PS 24 60 302: | 3-(Dimethylamino)vinylcephalexinanaloga | ||
| EU-PS 30 630: | 7-[(3-Methansulfonamidophenyl)-α-aminoacetamido]-3-vinylceph-3-em-4-carbonsäure | ||
| US-PS 42 55 423 @ | US-PS 43 90 693: | 7-(2-Thienyl)acetamido-3-(3-acetoxy-1-propenyl) und -3-(Heterocyclovinyl)ceph-3-em-4-carbonsäuren und 7α-methoxyanaloga. |
Die wichtigsten handelsüblichen, oral wirksamen Cephalos
porine - die erfindungsgemäßen Verbindungen sind für
den gleichen Verwendungszweck vorgesehen - sind Cepha
lexin, Cefadroxil, Cephradin und Cefaclor. Diese Ver
bindungen entsprechen den Formeln IX, X, XI und XII.
Diese Verbindungen sind Gegenstand folgender Patente:
| Cephalexin | |
| - US-PS 35 07 861 | |
| Cefadroxil | - US-PS 34 89 752 (Re 29, 164) |
| Cefaclor | - US-PS 39 25 372 |
| Cephradin | - US-PS 34 85 819 |
Verbindungen mit ähnlicher Struktur sind 3-Chlorcefa
droxin und 3-Hydroxycefadroxil, die in der
US-PS 34 89 751 und in der GB-PS 14 72 174 beschrieben
sind.
Gegenstand der Erfindung sind substituierte Vinylcepha
losporine der allgemeinen Formeln I
worin
R¹ für ein Wasserstoffatom, OH, eine C₁-C₄-Alkoxy
gruppe oder ein Chloratom steht,
R² für ein Wasserstoffatom oder eine Hydroxygruppe steht,
R² für ein Wasserstoffatom oder eine Hydroxygruppe steht,
sowie die Derivate mit üblichen Schutzgruppen an den
Amino-, Carboxy- und/oder Hydroxygruppen und die pharma
zeutisch verträglichen Salze.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen sind als oral wirksame
Cephalosporinantibiotika mit starker Wirksamkeit gegen
Gram-positive Bakterien brauchbar. Sie besitzen darüber
hinaus im Vergleich zu Cephalexin, Cefadroxil, Cefaclor
und Cephradin ein verbessertes Aktivitätsspektrum gegen
Gram-negative Bakterien, schwierig zu bekämpfenden Bak
terien und Anaerobiern. Weiter führen sie nach oraler
Verabreichung zu einer länger anhaltenden Antibiotikum
konzentration im Blutkreislauf und sind zur Verabreichung
an Menschen auf der Basis von einer oder zweier Gaben
pro Tag geeignet. Als solche werden sie in Dosen von
100 bis 5000 mg pro Tag in Abhängigkeit von der Größe
des Patienten und dem Erkrankungszustand verabreicht.
Sie können ebenso parenteral in ähnlichen Dosierungen
verabreicht werden.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen
sind daher zur Behandlung
bakterieller Infektionen, die durch sensitive Organismen
verursacht wurden, bei Säugetieren, einschließlich des
Menschen, brauchbar. Zu diesem Zweck werden sie oral
oder parenteral in einer antibakteriell wirksamen, nicht
toxischen Dosis als solche oder in Form eines pharmazeu
tisch verträglichen Säureadditionssalzes, pharmazeutisch
verträglichen Metall- oder Aminsalzes oder eines phar
mazeutisch verträglichen Esters verabreicht.
Pharmazeutisch verträgliche Säureadditionssalze sind
solche, bei denen das Anion nicht wesentlich zur Toxizi
tät des Salzes beiträgt und die mit den üblichen pharma
zeutischen Trägern verträglich und zur oralen oder paren
teralen Verabreichung geeignet sind. Derartige Salze
umfassen die Salze von Verbindungen der Formel I
mit Mineralsäuren, wie Chlorwasserstoffsäure,
Bromwasserstoffsäure, Phosphorsäure und Schwefelsäure,
mit organischen Carbonsäuren oder organischen Sulfon
säuren, wie Essigsäure, Citronensäure, Maleinsäure, Bern
steinsäure, Benzoesäure, Weinsäure, Fumarsäure, Mandel
säure, Ascorbinsäure, Apfelsäure, Methansulfonsäure,
p-Toluolsulfonsäure, sowie mit weiteren, auf dem Peni
cillin- und Cephalosporingebiet bekannten und angewandten
Säuren. Die Herstellung derartiger Salze erfolgt anhand
üblicher Verfahren durch Umsetzung einer Verbindung
der Formel I
mit einer im wesentlichen
äquivalenten Menge der Säure.
Pharmazeutisch verträgliche Metall- und Aminsalze sind
diejenigen Salze der Verbindungen der Formel I,
die unter Umgebungsbedingungen stabil sind und
bei denen das Kation nicht wesentlich zur Toxizität oder
biologischen Aktivität des Salzes beiträgt. Geeignete
Metallsalze sind Natrium-, Kalium-, Barium-, Zink- und
Aluminiumsalze. Natrium- oder Kaliumsalze sind bevorzugt.
Aminsalze, die aus beispielsweise im Zusammenhang mit
Benzylpenicillin verwendeten Aminen hergestellt werden
und die in der Lage sind mit der sauren Carboxylgruppe
stabile Salze zu bilden, sind Trialkylamine, wie Tri
etylamin, Procain, Dibenzylamin, N-Benzyl-β-phenethyl
amin, 1-Ephenamin, N,N′-Dibenzylethylendiamin, Dehydro
abietylamin, N-Ethylpiperidin, Benzylamin und Dicyclo
hexylamin.
Pharmazeutisch verträgliche Ester sind diejenigen Ester,
die per se wirksam sind oder die pro-Drugs insofern dar
stellen als sie im Körper unter Bildung des Antibiotikums
per se hydrolysiert werden. Geeignete Ester der letzten
Art sind Phenacyl-, Acetoxymethyl-, Pivaloyloxymethyl-
α-Acetoxyethyl-, α-Acetoxybenzyl-, α-Pivaloyloxyethyl-,
3-Phthalidyl-, 5-Indanyl-, Methoxymethyl-, Benzoyloxy
methyl-, α-Ethylbutyryloxymethyl-, Propionyloxymethyl-,
Valeryloxymethyl-, Isobutyryloxymethyl-, Glycyloxymethyl
ester und weitere auf dem Penicillin- und Cephalosporin
gebiet bekannte Ester.
Die Verbindungen der Formel I
und ihre
wie oben definierten Salze können zur oralen oder parente
ralen Anwendung in üblicher Weise unter Verwendung bekann
ter pharmazeutischer Träger und Exzipienzien formuliert
werden. Sie können in Einheitsdosisform oder in Mehrfach
dosisbehältern dargeboten werden. Die pharmazeutischen
Mittel können in Form von Tabletten, Kapseln, Lösungen,
Suspensionen oder Emulsionen vorliegen. Die Verbindungen
können auch in Form von Suppositorien unter Verwendung
üblicher Suppositoriengrundlagen, wie Kakaobutter oder
anderen Fettmaterialien, formuliert werden. Falls ge
wünscht, können die Verbindungen in Kombination mit ande
ren Antibiotika, einschließlich Cephalosporinen, Peni
cillinen und Aminoglykosiden, verabreicht werden.
Die Tabelle 1 enthält eine Zusammenfassung der Struktur
merkmale der in den Beispielen beschriebenen
Verbindungen.
In Tabelle 2 sind in vitro-antibakterielle Aktivitäten
von erfindungsgemäßen Verbindungen zusammengestellt.
Die Aktivitäten sind in Form von minimalen Hemmkonzentra
tionen angegeben, die mit Hilfe der Agar-Verdünnungs
technik für drei, mit Gp-Ia, Gp-Ib und Gn-Ia bezeichneten
Gruppen von Organismen bestimmt wurden. Jede dieser Or
ganismusgruppen setzt sich aus fünf einzelnen Mikroorganis
menstämmen zusammen, die in der Fußnote zu der Tabelle
angegeben sind. Die Gp-Ia-Organismen sind Gram-positive
Staphylococci, die Penicillin-sensitiv sind. Die Gp-Ib-
Organismen sind Gram-positive Staphylococci, die Penicllin-
resistent sind und Penicillinase produzieren. Die
Gn-Ia-Organismen sind Gram-negative Bakterien, die Ampi
cillin- und Cephalothin-sensitiv sind. Die erfindungsge
mäßen Verbindungen haben im allgemeinen eine geringe
Aktivität gegenüber Ampicillin- und Cephalothin-resisten
ten Gram-negativen Bakterien. Aus der Tabelle 2 können
hinsichtlich der in vitro antibakteriellen Aktivität
dieser Verbindungen die nachfolgenden Schlüsse gezogen
werden.
Alle Verbindungen besitzen eine gute Aktivität gegenüber
Penicillin-sensitiven Staphylococci (Gp-Ia). Die Akti
vität gegenüber Penicillin-resistenten Staphylococci
(Gp-Ib) ist im allgemeinen um den Faktor drei oder mehr
geringer. In jedem Fall sind die Verbindungen jedoch
um ein Mehrfaches wirksamer als Cephalexin und Cefadroxil.
Die Verbindungen
besitzen auch gute Aktivität gegenüber Gram-negativen Bakterien
(Gn-Ia).
Eine Ringsub
stitution ist der antibakteriellen Aktivität in keiner
Weise abträglich, vgl. Verbindungen 8, 12, 17 und 27.
Verbindung Nr. 22 scheint hinsichtlich der obigen Schluß
folgerungen eine Ausnahme darzustellen, sie ist jedoch,
wie in Tabelle 3 gezeigt, eine stark wirksame Substanz
sowohl gegenüber Gram-positiven als auch gegenüber Gram-
negativen Bakterien.
Die Tabelle 3 enthält Vergleichsdaten für die in vitro-
antibakterielle Aktivität gegenüber den gleichen Organis
men, wie in Tabelle 2 angegeben, wobei zwei verschiedene
bakteriologische Kulturmedien verwendet wurden. Mueller-
Hinton-Agar ist das Standardmedium, das in den in Tabelle
2 beschriebenen Tests verwendet wurde. Tabelle 3 enthält
einen Vergleich der minimalen Hemmkonzentrationen von
drei der Testverbindungen, welche zuerst in Mueller-
Hinton-Medium und anschließend in Nährmittel-Agar bestimmt
wurden. Die Verbindung Nr. 8, die in 4-Stellung des
Phenylrings durch eine Hydroxygruppe substituiert ist,
und die Verbindung Nr. 27, die ein 3-Methoxy-4-hydroxy-
Substitutionsmuster am Phenylring aufweist, besitzen
einen nur mäßigen Mediumeffekt. Damit soll zum Ausdruck
gebracht werden, daß sich die MHK-Werte um weniger als
den Faktor 3 unterscheiden. Die 3,4-Dihydroxyphenyl-
substituierte Verbindung Nr. 22 ergibt eine um den Faktor
6 bis 12 verschiedene Aktivitätsdifferenz zwischen den
beiden Medien, wobei die in Nährmittelagar bestimmten
minimalen Hemmkonzentrationen weit niedriger liegen als
die in Mueller-Hinton-Agar bestimmten. Infolgedessen
ist die Verbindung Nr. 22 hinsichtlich ihres antibakteriel
len Effektes mit den anderen in Tabelle 2 angegebenen
Cephalosporinen vergleichbar, die in 3-Stellung eine
cis-Propenylgruppe aufweisen. Das Phenomen einer unter
schiedlichen antibiotischen Aktivität in verschiedenen
Nährmedien wurde bereits früher untersucht und ver
öffentlicht, vgl. T.A. Pursiano et al. Antimicrobial
Agents and Chemotherapy, Teil 3, Nr. 1, Seiten 33-39
(1973).
Die anhand der voranstehenden in vitro-Untersuchungen
abgeleiteten Struktur-Aktivitäts-Korrelationen werden
durch in vivo-Untersuchungen an Mäusen bestätigt. In
Tabelle 4 ist die jeweilige Schutzdosis für Mäuse zusam
mengestellt, die mit einem letalen Bakterieninoculum
infiziert wurden. Man verwendete dazu zwei verschiedene
Bakterienarten, nämlich einen Gram-positiven Organismus
und einen Gram-negativen Organismus. Die Schutzdosis
(PD₅₀) ist diejenige Dosis, die nach Verabreichen an
eine Gruppe von infizierten Mäusen nach fünf Tagen zu
einer Überlebensrate von 50% führt. Normalerweise ster
ben unbehandelte infizierte Mäuse innerhalb von drei
Tagen nach der Injektion des lethalen Inoculums.
Die Daten in Tabelle 4 wurden anhand mehrerer unterschied
licher Versuche erhalten. Dabei wurde Cephalexin als
Vergleichsverbindung verwendet, die PD₅₀-Werte für diese
Verbindung im gleichen Versuch sind in Klammern neben
den PD₅₀-Werten der zu testenden Verbindungen angegeben.
Es ist ersichtlich, daß alle Cephalosporine eine gute
Aktivität gegenüber Infektionen mit Gram-positiven
Staphylococcus aureus und
gegenüber Infektionen mit Gram-negativen E. coli Juhl
besitzen.
Die Tabelle 5 enthält vergleichende Blutspiegeldaten
für Mäuse, die oral und intramuskulär mit den in Tabelle
1 aufgeführten Verbindungen behandelt wurden. Es ist
ersichtlich, daß
alle Verbindungen gleichmäßig gut oral
absorbiert werden. Die Verbindung Nr. 22 ergibt nach
oraler Verabreichung außergewöhnlich hohe Blutspiegel
werte bei Mäusen. Es wurde gezeigt, daß diese Verbindung
bei Ratten in die Verbindung Nr. 27 metabolisiert wird,
vgl. Beispiel 28. Verbindung Nr. 22 ist die 3,4-Dihydroxy
phenylverbindung, während die Verbindung Nr. 27 die ent
sprechende 3-Methoxy-4-hydroxyphenylverbindung ist, die
eine starke in vitro und in vivo-Aktivität besitzt.
Die Tabelle 6 enthält weitere in vivo-Daten für die Ver
bindung Nr. 8 gegenüber vier weiteren Organismen im Ver
gleich zu Cephalexin, Cefachlor und Cefadroxil. Die Ta
bellen 7 und 8 enthalten in vitro Vergleichsdaten für
Verbindung Nr. 8 gegenüber Cephalexin, Cefadroxil und
Cefachlor bezüglich einer Reihe von Streptococci, Neisseria,
Haemophilis und verschiedener Anaerobier.
In Versuchen zur Rückgewinnung der Verbindungen aus
Rattenurin hat sich ergeben, daß der Wert für die Rück
gewinnung der Verbindung Nr. 8 aus dem Urin oral behan
delter Ratten nach 24 Stunden mit dem für Cephalexin und
Cefadroxil erhaltenen Wert vergleichbar und größer als
der für Cefachlor erhaltene Wert ist. Stabilitätsunter
suchungen, bei denen die Verbindung Nr. 8 mit Cephalexin
und Cefachlor in Lösung unter Verwendung von Phosphatpuf
fer bei pH 6,5 und pH 7,0, Menschenserum (pH 6,8), Pferde
serum (pH 7,6) und Kälberserum (pH 8,2) als Träger ver
glichen wurde, haben erbracht, daß die Stabilität der
Verbindung Nr. 8 größer ist als diejenige von Cefachlor
und vergleichbar der Stabilität von Cephalexin ist.
In den folgenden Tabellen IX und X sind die minimalen
Hemmkonzentrationen folgender Verbindungen zusammengestellt:
Alle Verbindungen besaßen D-Konfiguration.
Die Herstellung der erfindungsgemäßen Verbindungen erfolgt
auf den Synthesewegen, die in den eingangs im Zusammen
hang mit den geeigneten Ausgangsmaterialien erwähnten
GB-PS 13 42 241, US-PS 39 94 884 und 41 07 431 be
schrieben sind. Die Einführung der Propenyl
gruppe in 3-Stellung der erfindungsgemäßen Verbindungen
umfaßt im wesentlichen die Umsetzung einer Halogenid
verbindung mit einem Triarylphosphin zu einem Phosphonium
salz, das durch Behandeln mit einer Base in eine Phos
phoranylverbindung überführt wird. Diese wird dann mit
einer Carbonylverbindung zu den erfindungsgemäßen Ver
bindungen umgesetzt. Dabei enthält entweder die Halogenid
verbindung oder die Carbonylverbindung den Cephalosporin
kern. Der Reaktionsablauf wird durch die nachfolgenden
Reaktionsschemata erläutert.
In diesen Reaktionsschemata bedeutet R³ eine Methylgruppe
Q steht für den
7-Amino-3-cephem-3-yl-4-carbonsäurekern, wobei die Ami
no- und Carbonsäuregruppen Schutzgruppen aufweisen können,
wie Silylgruppen oder weitere, dem Fachmann auf dem Ge
biet der beta-lactam-Antibiotika bekannte Gruppen, oder
einen 7-Acylamino-3-cephem-3-yl-4-carbonsäurerest, wobei
die 7-Acylaminogruppe eine Gruppe darstellt, die üblicher
weise in Cephalosporinantibiotika vorliegt, einschließ
lich der erfindungsgemäß verwendeten, in der Formel I
definierten α-Amino-α-substituierten Phenyl
acetamidogruppe.
Im einzelnen bedeutet Q einen Rest
der folgenden Formeln:
worin
R¹ die oben angegebenen Bedeutungen besitzt,
n für 0 oder 1 steht und die Zahl der an den Schwefel gebundenen Sauerstoffatome betrifft,
Ac eine üblicherweise bei 7-Acylaminocephalosporinen vorliegende Acylgruppe bedeutet, wie Phenylacetyl oder Phenoxyacetyl, und
B eine von einem Aldehyd oder Keton abgeleitete Alky liden- oder Aralkylidenschutzgruppe bedeutet, wie die Benzylidengruppe, die in einer nachfolgenden Reak tionsstufe leicht, beispielsweise durch Hydrolyse unter Verwendung von Girard′s Reagens T, abgespalten wird, und
P¹, P² und P³ Wasserstoffatome oder üblicherweise in der Cephalosporinchemie verwendete Schutzgruppen für Amino-, Hydroxy- und Carboxylgruppen bedeuten.
n für 0 oder 1 steht und die Zahl der an den Schwefel gebundenen Sauerstoffatome betrifft,
Ac eine üblicherweise bei 7-Acylaminocephalosporinen vorliegende Acylgruppe bedeutet, wie Phenylacetyl oder Phenoxyacetyl, und
B eine von einem Aldehyd oder Keton abgeleitete Alky liden- oder Aralkylidenschutzgruppe bedeutet, wie die Benzylidengruppe, die in einer nachfolgenden Reak tionsstufe leicht, beispielsweise durch Hydrolyse unter Verwendung von Girard′s Reagens T, abgespalten wird, und
P¹, P² und P³ Wasserstoffatome oder üblicherweise in der Cephalosporinchemie verwendete Schutzgruppen für Amino-, Hydroxy- und Carboxylgruppen bedeuten.
Geeignete Carbonylschutzgruppen (P²) sind beispielsweise
Aralkylgruppen, wie eine Benzyl-, p-Methoxybenzyl-,
p-Nitrobenzyl- und Diphenylmethyl-(benzhydryl)alkyl-Gruppen;
Alkylgruppen, wie die t-Butylgruppe; Halogenalkylgruppen,
wie die 2,2,2-Trichlorethylgruppe und weitere in der
Literatur, beispielsweise in der GB-PS 13 99 086 beschrie
bene Carboxylschutzgruppen. Vorzugsweise verwendet man
Carboxylschutzgruppen, die sich leicht durch Behandlung
mit Säuren entfernen lassen, insbesondere die Benzhydryl-
oder t-Butylgruppe.
Amino- und Hydroxyschutzgruppen (P¹ und P³) sind dem
Fachmann bekannt und umfassen beispielsweise die Trityl-
und Acylgruppen, wie die Chloracetyl-, Formyl-, Trichlor
ethoxycarbonyl-, t-Butoxycarbonyl- oder Carbobenzyloxy
gruppe usw. Auch hier werden Aminoschutzgruppen bevorzugt,
die sich leicht durch Behandlung mit Säuren entfernen
lassen, insbesondere die t-Butoxycarbonylgruppe.
Wenn der Cephalosporinkern Q in den Reaktionsschemata
1 und 2 in Form des 1-Oxids (n=1) zur Anwendung kommt,
stellt man diese Oxide anhand bekannter Verfahren, wie
Oxidation des entsprechenden Cephalosporins (n=0) mit
m-Chlorperbenzoesäure oder Peressigsäure, her. In einer
späteren Synthesestufe wird das 1-Oxid mittels bekannter
Verfahren reduziert, beispielsweise mit Jodidionen in
wäßrigem Medium.
Die Umwandlung der Halogenidverbindung der Formel
QCH₂X gemäß dem Schema 1 in die Phosphoranylverbindung
wird vorzugsweise unter Verwendung eines Halogenids durch
geführt, in dem X ein Jodatom bedeutet. Wenn man als
Halogenidverbindung ein Chlorid oder Bromid verwendet,
kann man dieses zuerst durch Behandlung mit Natriumjodid
in Dimethylformamid oder Aceton in das entsprechende
Jodid überführen. Die Jodidverbindung reagiert leicht
mit einem Triarylphosphin, wie Triphenylphosphin, in
einem organischen flüssigen Träger, der gegenüber den
Reaktanten unter den Reaktionsbedingungen inert ist.
Geeignete Bedingungen sind Raumtemperatur und eine Reak
tionszeit, die kurz sein kann, die sich jedoch auch
über mehrere Stunden erstrecken kann. Neben Triphenyl
phosphin sind geeignete Triarylphosphine solche Verbin
dungen, die leicht verfügbar sind und reaktionsverträg
liche Arylgruppen besitzen, wie substituierte Phenyl
gruppen, z. B. Tolyl-, Naphthyl-, substituierte Naphthyl-
und heteroaromatische oder substituierte heteroaromatische
Gruppen. Die erste Reaktionsstufe umfaßt die Bildung
des Triarylphosphoniumsalzes, das üblicherweise aus der
Lösung ausfällt und abfiltriert wird. Das Triarylphospho
niumsalz wird dann in einem geeigneten flüssigen organi
schen Lösungsmittel gelöst, das mit Wasser nicht misch
bar und unter den Reaktionsbedingungen inert ist, bei
spielsweise in Chloroform, Trichlorethylen oder anderen
polychlorierten oder -bromierten Methan- oder Ethanver
bindungen. Die Phosphoranylverbindung wird anschließend
in situ durch Behandlung dieser Lösung mit wäßrigen Alkali
metallcarbonat, -bicarbonat oder -hydroxid bei Raumtempe
ratur hergestellt. Die organische Schicht, die die Phos
phoranylverbindung enthält, wird abgetrennt, mit Wasser
gewaschen und in üblicher Weise getrocknet. Anschließend
gibt man zu der trockenen Lösung der Phosphoranylverbin
dung die im Reaktionsschema aufgeführte Carbonylverbindung.
Der letzte Reaktionsschritt erfolgt dann bei Raumtempera
tur in relativ kurzer Zeit oder während ungefähr 2 bis
20 Stunden. Das gewünschte Produkt der Formel
QCH=CHR³ wird anhand bekannter Laborverfahren, wie Chro
matographie an einer Silikagelsäule gewonnen.
Die in Schema 1 angegebenen Halogenidverbindungen der
Formel QCH₂X werden aus den entsprechenden 7-Amino- oder
7-Acylamino-3-hydroxymethyl-ceph-3-em-4-carbonsäurederi
vaten anhand im Prinzip bekannter Verfahren gewonnen.
Die Umwandlung der Halogenidverbindung der Formel
R³CH₂X in die Phosphoranylverbindung gemäß Schema 2 kann
mit der entsprechenden Chlorid-, Bromid- oder Jodidver
bindung (X=Cl, Br oder J) erfolgen. Gewünschtenfalls
kann die Chlorid- oder Bromidverbindung wie oben beschrie
ben in die Jodidverbindung überführt werden, dieser
Schritt ist jedoch nicht wesentlich. Die Umsetzung mit
dem Triarylphosphin, wie Triphenylphosphin, wird entwe
der ohne Lösungsmittel oder in einem organischen flüssi
gen Träger, der unter den Reaktionsbedingungen inert
ist, durchgeführt. Die Reaktion kann bei Raumtemperatur
oder erhöhten Temperaturen während 1 bis 24 Stunden bei
20 bis 150°C erfolgen. Das Triarylphosphoniumsalz fällt
üblicherweise aus und wird abfiltriert. Es wird an
schließend in einem geeigneten flüssigen organischen
Lösungsmittel, wie Dimethylsulfoxid oder einem Lösungs
mittel, das mit Wasser nicht mischbar ist, wie Äther,
oder Tetrahydrofuran, gelöst und mit einer Base, wie
Butyllithium, Phenyllithium, Natriummethoxid oder Natrium
hydrid während eines Zeitraumes von einigen Minuten bis
zu einigen Stunden bei einer Temperatur im Bereich von
-40°C bis +50°C behandelt. Anschließend gibt man zu der
trockenen Reaktionslösung die Carbonylverbindung und
läßt bei -40°C bis +50°C eine bis mehrere Stunden rea
gieren. Das gewünschte Produkt der Formel
wird wie oben beschrieben, gewonnen.
Die Reaktionsfolge gemäß Schema 1 eignet sich besonders
zur Herstellung der erfindungsgemäßen Verbindungen.
In einer als Verfahren A bezeichneten
Variation der Reaktionsfolge gemäß Schema 1 wird
7β-[-[α(N-t-Butoxy-carbonylamino)α-(p-hydroxyphenyl)-
acetamido]-3-chlormethyl-3-cephem-4-carbonsäure als
Halogenidverbindung verwendet. Dieses Verfahren wird
anhand der Beispiele 4, 5 und 6 erläutert.
Eine weitere Variation der Reaktionsfolge gemäß Schema 1
wird als Verfahren B bezeichnet. Dabei stellt man, wie
oben beschrieben, den 7-Amino-3-chlormethyl-3-cephem-
4-carbonsäurebenzhydrylester her und schützt die 7-Amino
gruppe durch Umsetzung mit Benzaldehyd, wobei man die
Benzyliden-Schutzgruppe erhält.
Die letztere Verbindung wird dann durch Behandlung mit
Triphenylphosphin in das Phosphoniumsalz überführt, das
anschließend mit einer Base in die entsprechende Phospho
ranylverbindung umgewandelt wird. Diese behandelt man
mit Acetaldehyd, wobei man die 3-Propenyl-
7-aminocephalosporensäure erhält, die dann zur Einführung
der gewünschten Acylgruppe in 7-Stellung acyliert werden
kann.
Von der Reaktionsfolge gemäß Schema 2 werden 2 Variatio
nen vorgeschlagen. Gemäß der ersten, dem Verfahren C,
stellt man, wie oben beschrieben, die 3-Hydroxymethyl-
7-phenylacetamido-3-cephem-4-carbonsäure her, wobei die
Carbonsäure als Benzhydrylester geschützt wird und in
die entsprechende 3-Formylverbindung überführt wird.
Diese läßt man dann, gemäß Schema 2, mit der aus der
Halogenidverbindung der Formel R³CH₂X erhaltenen Phos
phoranylverbindung reagieren und führt die gewünschte
7-Acylaminogruppe mittels Acylaustausch ein.
Das Verfahren D ist eine weitere Variation des Reaktions
schemas 2, wobei die blockierte 7-p-Hydroxyphenylglycyl
amido-3-formyl-3-cephem-4-carbonsäure als Carbonylver
bindung verwendet wird.
Die 7-Phenylacetamidocephalosporansäure ist ein geeigne
tes Ausgangsmaterial, weil sie leicht verfügbar ist.
Die Acetoxygruppe kann leicht enzymatisch unter Verwen
dung von Weizenkleie als Enzymquelle zur 7-Phenyl
acetamido-3-hydroxymethyl-ceph-3-em-4-carbonsäure hydro
lysiert werden. Die Carbonsäuregruppe kann in Form des
Benzhydrylesters geschützt werden, den man durch Behand
lung der Säure mit Diphenyldiazomethan erhält. Der Ester
wird dann mit Phosphorpentachlorid unter bekannten Reak
tionsbedingungen behandelt, was zu einer Spaltung der
7-Phenylacetylgruppe und Umwandlung der 3-Hydroxmethyl
gruppe in eine 3-Chlormethylgruppe führt. Die Herstellung
des 7-Amino-3-chlormethyl-3-cephem-4-carbonsäurebenzhy
drylesters gemäß diesen Verfahren ist in den Beispielen
1 und 2 erläutert.
Alternativ kann die 7-Phenylacetamido-3-hydroxymethylceph-
3-em-4-carbonsäure in die 3-Halogenmethylverbindung und
anschließend in die Phosphoranylverbindung überführt
werden. Daran anschließend erfolgt die Umsetzung mit
Acetaldehyd zur Herstellung des
3-Propenylcephalosporins gemäß einer der Varianten des Reak
tionsschemas 1.
Der Cephalosporin-3-carboxaldehyd der Formel QCH=O, der
als Carbonylverbindung in Reaktionsschema 2 verwendet
wird, wird durch Oxidation eines 7-Acylamino-3-hydroxy
methyl-ceph-3-em-4-carbonsäureesters, wie in der erwähn
ten US-PS 33 51 596 beschrieben, hergestellt. Das Reak
tionsschema 2 beschreibt den weniger bevorzugten Synthe
seweg.
Zu einer Suspension von Weizenkleie (20 g, trocken) in
Phosphatpuffer (pH 7, 162,5 ml) gibt man unter Rühren
bei Raumtemperatur 7-Phenylacetamidocephalosporansäure
natriumsalz (5 g; 12,1 mMol) in einer Portion. Der Ver
lauf der Reaktion wird mittels HPLC bis zur vollständi
gen Hydrolyse verfolgt (5 h). Die Suspension wird zur
Entfernung der Weizenkleie filtriert und das Filtrat
auf 5 bis 10°C zur extraktiven Veresterung gekühlt. Zu
der gekühlten Lösung gibt man Methylenchlorid (32 ml)
und anschließend eine 0,5 M Lösung von Diphenyldiazo
methan in Methylenchlorid (24 ml). Der pH wird mit
28%iger Phosphorsäure dann auf 3,0 eingestellt. Nach 1 h
läßt man die Temperatur der Reaktionsmischung auf 20°C
steigen. Man gibt Heptan (56 ml) langsam zu und iso
liert die erhaltene, kristalline Titelverbindung durch
Filtration. Die Ausbeute beträgt 3,0 g (50%).
Zu einer Aufschlämmung von PCl₅ (8,3 g; 40 mMol) in
CH₂Cl₂ (1000 ml) gibt man Pyridin (32, g; 40 mMol) und
rührt die Mischung 20 min bei 20°C. Zu dieser Mischung
gibt man auf einmal unter Rühren bei -40°C Benzhydryl-
3-hydroxymethyl-7-phenylacetamido-3-cephem-4-carboxylat
(1) (5,1 g; 10 mMol). Die Mischung rührt man 15 min bei
-10°C und läßt sie dann 7 h bei -10 bis -15°C stehen.
Zu der gekühlten Lösung (1-20°C) gibt man Propan-1,3-
diol (10 ml) und läßt die Mischung 16 h bei -20°C und
anschließend 20 min bei Raumtemperatur unter Rühren ste
hen. Die erhaltene Lösung wird mit Eis-Wasser (2×20 ml)
und gesättigter, wäßriger NaCl (10 ml) gewaschen, über
MgSO₄ getrocknet und im Vakuum konzentriert. Den gummi
artigen Rückstand (12 g) löst man in einer Mischung von
CHCl₃ und n-Hexan (2 : 1) und chromatographiert ihn an
einer Kieselgelsäule (200 g), wobei man das gleiche Lö
sungsmittel als Eluierungsmittel verwendet. Diejenigen
Fraktionen, die die Titelverbindung enthalten, verdampft
man im Vakuum. Der Rückstand wird mit n-Hexan verrieben,
wobei man das Produkt 2 (2,1 g; 51%), Fp. 110°C (Zers.),
erhält.
IR: ν KBr 3400, 2800, 1785, 1725 cm-1;
UV: λ 265 nm 160);
NMR: δ DMSO-d₆ + CDCl₃ ppm 3,69 (2 H, s), 4,43 (2 H, s), 5,09 (1 H, d, J=4,5 Hz), 5,24 (1 H, d, J=4,5 Hz), 6,87 (1 H, s), 7,3 (10 H, m).
UV: λ 265 nm 160);
NMR: δ DMSO-d₆ + CDCl₃ ppm 3,69 (2 H, s), 4,43 (2 H, s), 5,09 (1 H, d, J=4,5 Hz), 5,24 (1 H, d, J=4,5 Hz), 6,87 (1 H, s), 7,3 (10 H, m).
Zu einer Mischung von 20,7 g (0,05 Mol) Benzhydryl-7-
amino-3-chlormethyl-3-cephem-4-carboxylat (2) und 20 g
(0,075 Mol) D-2-(t-Butoxycarbonylamino)-2-(p-hydroxy
phenyl)-essigsäure in 500 ml trockenem Tetrahydrofuran
(THF) gibt man 15,45 g (0,075 Mol) N,N′-Dicyclohexyl
carbodiimid (DCC) und rührt die Mischung 2 h bei Raum
temperatur und verdampft dann zur Trockene. Den Rück
stand löst man in 1 l Ethylacetat (AcOEt) und filtriert
den unlöslichen Dicyclohexylharnstoff ab. Das Filtrat
wird mit wäßriger Natriumbicarbonatlösung, Wasser und
gesättigter, wäßriger Kochsalzlösung gewaschen, über was
serfreiem Natriumsulfat getrocknet und die Lösung zur
Trockene eingedampft. Der ölige Rückstand wird an ei
ner Kieselgelsäule (Wako gel C-100, 500 g) chromatogra
phiert, wobei man mit 4 l Chloroform und 6 l 1%igem
Chloroform-Methanol eluiert. Die gewünschten Fraktionen
werden vereinigt und zur Trockene eingedampft. Der ölige
Rückstand wird mit Ether-Isopropylether verrieben, wo
bei man 30,6 g (92%) der Verbindung (3) erhält.
IR: ν cm-1 1790, 1710, 1670, 1500, 1360, 1230, 1150;
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,45 (9 H, s. C-CH₃), 3,4 (2 H, br. s, 2-H), 4,28 (2 H, s, CH₂Cl), 4,86 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,12 (1 H, d, 6 Hz, CH-CO), 5,68 (1 H, dd, 8 und 4,5 Hz, 7-H), 6,63 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 6,93 (1 H, s, CH-Ph₂), 7,08 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,0-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,45 (9 H, s. C-CH₃), 3,4 (2 H, br. s, 2-H), 4,28 (2 H, s, CH₂Cl), 4,86 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,12 (1 H, d, 6 Hz, CH-CO), 5,68 (1 H, dd, 8 und 4,5 Hz, 7-H), 6,63 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 6,93 (1 H, s, CH-Ph₂), 7,08 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,0-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
Der ölige Rückstand kann ohne weitere chromatographische
Reinigung in Beispiel 4 eingesetzt werden.
Eine Mischung von 26,6 g (0,04 Mol) 3 und 18 g (0,12 Mol)
Natriumjodid in 400 ml Aceton wird 2 h bei Raumtempera
tur gerührt und zur Trockene eingedampft. Den Rückstand
extrahiert man mit 400 ml Ethylacetat und wäscht den Ex
trakt mit wäßriger Na₂S₂O₃-Lösung, Wasser und gesättigter,
wäßriger NaCl-Lösung. Nach dem Verdampfen des Lösungs
mittels verreibt man den Rückstand mit Ether-Isopropyl
ether, wobei man 27 g (89%) der Titelverbindung erhält.
Falls gewünscht, kann die Ethylacetatlösung direkt in
der nächsten Stufe (Verbindung 5) ohne Isolierung der
Verbindung 4 eingesetzt werden.
IR: ν cm-1 1790, 1710, 1670, 1500, 1360, 1220, 1150;
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,47 (9 H, s, C-CH₃), 3,3-3,6 (2 H, m, 2-H), 4,20 (2 H, s, CH₂), 4,89 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,12 (1 H, d, 6 Hz, CH-CO), 5,68 (1 H, dd, 8 und 4,5 Hz, 7-H), 6,62 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 6,92 (1 H, s, CHPh₂), 7,08 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,47 (9 H, s, C-CH₃), 3,3-3,6 (2 H, m, 2-H), 4,20 (2 H, s, CH₂), 4,89 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,12 (1 H, d, 6 Hz, CH-CO), 5,68 (1 H, dd, 8 und 4,5 Hz, 7-H), 6,62 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 6,92 (1 H, s, CHPh₂), 7,08 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
Eine Mischung von 15,1 g (0,02 Mol) 4 und 15,7 g
(0,06 Mol) Triphenylphosphin in 200 ml Ethylacetat rührt
man 1 h bei Raumtemperatur. Der erhaltene Niederschlag
wird abfiltriert, wobei man 17,4 g (85,5%) 5 mit einem
Schmelzpunkt von 170 bis 180°C erhält. Das Filtrat wird
auf 100 ml eingeengt und das Konzentrat mit 500 ml Ether
verdünnt, wobei man einen zweite Fraktion (1,1 g) 5 er
hält. Die Gesamtausbeute beträgt 18,5 g (91%). Die Ge
samtausbeute an 5, ausgehend von Verbindung 2, beträgt
74,5%. Diese Ausbeute kann auf 87,5% gesteigert werden,
wenn man die Reinigungs- und Isolierungsstufen, wie
oben angegeben, wegläßt.
IR: ν cm-1 1780, 1670, 1490, 1420, 1350, 1240,
1150, 1090;
NMR: δ DMSO ppm 1,42 (9 H, s, C-CH₃), 3,45 (2 H, br. s, 2-H), 5-5,4 (3 H, m, 3-H und 6-H), 5,7 (1 H, m, 7-H), 6,63 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,1-7,45 (12 H, m, Phenyl-H), 7,5-7,9 (15 H, m, Phenyl-H).
NMR: δ DMSO ppm 1,42 (9 H, s, C-CH₃), 3,45 (2 H, br. s, 2-H), 5-5,4 (3 H, m, 3-H und 6-H), 5,7 (1 H, m, 7-H), 6,63 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,1-7,45 (12 H, m, Phenyl-H), 7,5-7,9 (15 H, m, Phenyl-H).
Elementaranalyse: für C₅₂H₄₉N₃O₇SPJ
berechnet: C 61,36%; H 4,85%; N 4,13%; S 3,15%;
gefunden: C 61,26%; H 4,82%; N 4,11%; S 3,92%.
berechnet: C 61,36%; H 4,85%; N 4,13%; S 3,15%;
gefunden: C 61,26%; H 4,82%; N 4,11%; S 3,92%.
Zu einer Lösung von 1,8 g (1,77 mMol) 5 in 100 ml Chlo
roform gibt man 100 ml Wasser, das 2 ml (2 mMol) N Natri
umhydroxid enthält, und schüttelt die Mischung 5 min. Die
organische Schicht wird abgetrennt, mit Wasser gewa
schen und über wasserfreiem Natriumsulfat getrocknet.
Die Chloroformlösung wird filtriert und das Filtrat
unter vermindertem Druck auf 50 ml eingeengt. Zu dem
Konzentrat gibt man 1 g Acetaldehyd und rührt die Mi
schung 2 h bei Raumtemperatur und verdampft anschließend
zur Trockene. Der ölige Rückstand wird an einer Silika
gelsäule (Wako-gel C-200, 50 g) chromatographiert, wobei
man mit Chloroform und Chloroform-Methanol (99 : 1) elu
iert. Die gewünschten Fraktionen werden vereinigt und
das Lösungsmittel verdampft, wobei man 318 mg (28%) der
Verbindung 6, Fp. 120 bis 130°C (Zers.), erhält.
IR: ν cm-1 1780, 1670, 1710, 1490, 1360, 1210, 1150;
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,3-1,5 (12 H, m, C-CH₃), 3,22 (2 H, br. s, 2-H), 4,90 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,15 (1 H, br. d, CH-CO), 5,5-6,1 (3 H, m, CH=CH und 7-H), 6,63 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 6,91 (1 H, s, CH-Ph), 7,09 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,2-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,3-1,5 (12 H, m, C-CH₃), 3,22 (2 H, br. s, 2-H), 4,90 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,15 (1 H, br. d, CH-CO), 5,5-6,1 (3 H, m, CH=CH und 7-H), 6,63 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 6,91 (1 H, s, CH-Ph), 7,09 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,2-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
Eine Mischung von 318 mg (0,48 mMol) 6 und 2,5 ml Tri
fluoressigsäure (TFA) wird 1 h bei Raumtemperatur ge
rührt und anschließend mit 50 ml Ether und 50 ml Iso
propylether verdünnt. Der abgeschiedene Niederschlag
wird abfiltriert und mit Ether gewaschen, wobei man
188 mg (77%) des Trifluoracetats von 7 erhält, das in
2 ml Methanol (MeOH) gelöst wird. Zu dieser Lösung gibt
man 2 ml (2 mMol) einer Lösung von Natrium-2-ethyl
hexanoat (SEH) in Ethylacetat und verdünnt die Mischung
mit 30 ml Ethylacetat, um den Niederschlag abzuscheiden.
Der Niederschlag wird abfiltriert, mit Ether gewaschen
und im Vakuum über P₂O₅ getrocknet, wobei man 144 mg
(73%, bezogen auf Verbindung 6) an roher Verbindung 7
erhält. Das Rohprodukt (135 mg) löst man in 10 ml Wasser
und chromatographiert die Lösung an einer Säule (25 mm×
100 mm) unter Verwendung von etwa 20 ml PrepPak-500/C₁₈
(Waters) als Füllmaterial. Die Säule wird mit Wasser elu
iert, das Eluat, das das gewünschte Produkt enthält,
wird auf 5 ml konzentriert und lyophilisiert, wobei man
93 mg (69%) der Verbindung 7, Fp. 200°C (allmähliche
Zers.), erhält. Die geschätzte Reinheit beträgt 60%
(mittels HPLC).
IR: ν cm-1 1760, 1660, 1590, 1400, 1360, 1250;
UV: λ nm (ε) 227 (11300), 280 (8200);
NMR: δ D₂O ppm 1,65 (3 H, d, 6 Hz, -C-CH₃), 3,21 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 3,52 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 5,12 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,68 (1 H, d, 4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, Vinyl-H), 5,95 (1 H, d, 11,5 Hz, Vinyl-H), 6,94 (2 H, d, 8 Hz, Phenyl-H), 7,36 (2 H, d, 8 H 7, Phenyl-H).
UV: λ nm (ε) 227 (11300), 280 (8200);
NMR: δ D₂O ppm 1,65 (3 H, d, 6 Hz, -C-CH₃), 3,21 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 3,52 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 5,12 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,68 (1 H, d, 4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, Vinyl-H), 5,95 (1 H, d, 11,5 Hz, Vinyl-H), 6,94 (2 H, d, 8 Hz, Phenyl-H), 7,36 (2 H, d, 8 H 7, Phenyl-H).
Man löst 11,9 g des oben hergestellten Roh
produktes 7 in dem Zustand, in dem es sich vor der chro
matographischen Reinigung befindet, in 50 ml 0,01 M
Phosphatpuffer (pH 7,2)-Methanol (85 : 15) und stellt mit
6 N Chlorwasserstoffsäure den pH der Lösung auf 6 ein.
Diese Lösung wird mittels Hochdruck-Flüssigkeitschro
matographie (HPLC) (prepPAK-500/C₁₈, System 500, Waters)
unter Verwendung eines 0,01 M Phosphatpuffers (pH 7,2),
der 15% Methanol enthält, behandelt. Das Eluat wird
mittels analytischer HPLC untersucht, wobei festgestellt
wird, daß die erste 4-l-Fraktion das cis-Isomer BMY-
28100 enthält. Die zweite 1-l-Fraktion enthält das trans-
Isomer und wird auf 500 ml eingeengt. Das Konzentrat
stellt man mittels verdünnter Chlorwasserstoffsäure auf
pH 3 ein und chromatographiert es an einer HP-20-Säule
(100 ml) und eluiert mit jeweils 1 l Wasser und 30%igem
Methanol. Das letztere Eluat mit einem Volumen von un
gefähr 300 ml wird auf 10 ml eingeengt und lyophili
siert, wobei man 290 mg des rohen trans-Isomeren (55%
Reinheit) erhält. Dieses Material wird in 100 ml 50%igem
Methanol gelöst und mit Aktivkohle behandelt. Das Fil
trat engt man auf ein Volumen von 20 ml ein und läßt
es über Nacht bei 5°C stehen. Das Produkt kristallisiert
in Form farbloser Prismen, die abfiltriert und im Va
kuum getrocknet werden. Man erhält 129 mg, Fp. 230°C
(Zers.). Es handelt sich um die E-Propenylverbindung.
Die erste 4-l-Fraktion, die gemäß dem oben be
schriebenen präparativen HPLC-Verfahren erhalten wurde
und die das cis-Isomer (BMY-28100) enthält, wird auf ein
Volumen von 2 l eingeengt. Den pH des Konzentrats stellt
man mit verdünnter Chlorwasserstoffsäure auf 3 ein. Die
Lösung gibt man auf eine HP-20 (1 l) enthaltende Säule
und wäscht die Säule mit 6 l Wasser, bis der pH der ab
laufenden Flüssigkeit 7 beträgt. Die Säule wird dann mit
4 l 30%igem wäßrigem Methanol eluiert. Das Eluat wird
mittels HPLC untersucht. Die entsprechenden Fraktionen
werden vereinigt (etwa 2,5 l) und bei einer Temperatur
von weniger als 40°C und bei verringertem Druck auf
50 ml eingeengt. Es bildet sich ein kristalliner Nieder
schlag. Das Konzentrat kühlt man 2 h auf 0°C und fil
triert den kristallinen Niederschlag ab, wäscht ihn mit
80%igem wäßrigem Aceton, anschließend mit 100%igem Aceton
und trocknet ihn dann im Vakuum über P₂O₅, wobei man
4,09 g der reinen, kristallinen, angestrebten Verbin
dung, Fp. 218 bis 220°C (Zers.), in Form farbloser
Prismen erhält, die gemäß HPLC-Untersuchung eine Rein
heit von 95% aufweisen.
IR: ν cm-1 1750, 1680, 1560, 1520, 1460, 1390, 1350,
1270, 1235;
UV: λ nm (ε) 228 (12300), 279 (9800);
NMR: δ D₂O+NaHCO₃ ppm 1,71 (3 H, d, 6 Hz, C-CH₃), 3,27 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 3,59 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 5,18 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,22 (1 H, s, CHCO), 5,73 (1 H, d, 4,5 Hz, 7-H), 5,5-6,0 (1 H, m, CH=C), 6,02 (1 H, d, 11 Hz, CH=C), 6,98 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,41 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H).
UV: λ nm (ε) 228 (12300), 279 (9800);
NMR: δ D₂O+NaHCO₃ ppm 1,71 (3 H, d, 6 Hz, C-CH₃), 3,27 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 3,59 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 5,18 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,22 (1 H, s, CHCO), 5,73 (1 H, d, 4,5 Hz, 7-H), 5,5-6,0 (1 H, m, CH=C), 6,02 (1 H, d, 11 Hz, CH=C), 6,98 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H), 7,41 (2 H, d, 9 Hz, Phenyl-H).
Elementaranalyse: für C₁₈H₁₉N₃O₅s · ½ H₂O
berechnet:
C 54,26%; H 5,06%; N 10,55%; S 8,05%;
gefunden:
C 54,15%; H 5,13%; N 10,30; S 8,38;
C 54,19%; H 5,08%; N 10,42; S 8,04.
berechnet:
C 54,26%; H 5,06%; N 10,55%; S 8,05%;
gefunden:
C 54,15%; H 5,13%; N 10,30; S 8,38;
C 54,19%; H 5,08%; N 10,42; S 8,04.
Die nach der Kristallisation erhaltene Mutterlauge wird
auf ein Volumen von 10 ml eingeengt und mit 20 ml Aceton
behandelt. Beim Aufbewahren der Lösung über Nacht im
Kühlschrank bildet sich ein kristalliner Niederschlag,
der abfiltriert und im Vakuum über P₂O₅ getrocknet wird;
die Menge beträgt 670 mg (Reinheit 90% gemäß HPLC).
560 mg dieses Materials löst man in 200 ml 50%igem wäßri
gem Methanol und behandelt die Lösung mit 0,5 g Aktiv
kohle und filtriert ab. Das Filtrat wird bei vermindertem
Druck und bei 40°C auf ein Volumen von 20 ml konzen
triert und anschließend 5 h bei 5°C gehalten. Das Pro
dukt kristallisiert, es wird abfiltriert, mit Aceton ge
waschen und im Vakuum über P₂O₅ getrocknet, wobei man
227 mg kristallines BMY-28100 (98% Reinheit, mittels
HPLC bestimmt) erhält. Lyophilisierung der Mutterlauge
ergibt 181 mg BMY-28100, das eine Reinheit von 95%
(HPLC) aufweist.
Eine Mischung von 14,5 g (0,0196 mMol) Benzhydryl-7-[D-
(-)-α-(t-butoxycarbonylamino)-α-phenylacetamido]-3-jod
methyl-3-cephemm-4-carboxylat und 5,24 g (0,02 Mol) Tri
phenylphosphin in 300 ml Ethylacetat wird 2 h bei Raum
temperatur gerührt. Zu der Reaktionsmischung gibt man
200 ml Ether, wobei sich ein Niederschlag bildet, der
abfiltriert und mit Ether gewaschen wird. Man erhält
14,3 g (73%) der Titelverbindung. Das Filtrat engt man
auf 50 ml ein und verdünnt das Konzentrat mit Ether, wo
bei man 2,4 g einer zweiten Fraktion des Produktes er
hält. Die Gesamtausbeute beträgt 16,7 g (85%).
IR: ν cm-1 1780, 1690, 1480, 1420, 1350, 1240, 1150.
Zu einer Lösung von 5 g (5 mMol) Verbindung 9 in 200 ml
Chloroform gibt man eine Mischung von 100 ml Wasser und
5 ml (5 mMol) N Natriumhydroxid und schüttelt die Mi
schung 3 min. Die organische Schicht wird abgetrennt,
mit Wasser und gesättigter NaCl-Lösung gewaschen und
über wasserfreiem Magnesiumsulfat getrocknet. Die Chloro
formlösung filtriert man, das Filtrat wird unter ver
mindertem Druck auf 100 ml eingeengt. Zum Konzentrat
gibt man 3 ml Acetaldehyd und rührt die Mischung 1,5 h
bei Raumtemperatur und verdampft zur Trockene. Der ölige
Rückstand wird an einer Silikalgelsäule (Kieselgel 60,
50 g) unter Eluierung mit Chloroform chromatographiert.
Die gewünschten Fraktionen werden vereinigt und zur
Trockene eingeengt. Der Rückstand wird mit n-Hexan ver
rieben, wobei man 990 mg (31%) der Titelverbindung (10)
erhält.
IR: ν cm-1 1780, 1710, 1660, 1510, 1490, 1360, 1240,
1210, 1150;
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,3-1,5 (12 H, m, -C-CH₃), 3,22 (2 H, s, 2-H), 4,93 (1 H, d, 4,5 H7, 6-H), 5,23 (1 H, d, 8 Hz, CH-CO), 5,5-6,2 (3 H, m, 7-H u. Vinyl-H), 6,94 (1 H, s, CHPh), 7,2-7,5 (15 H, m, Phenyl-H).
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,3-1,5 (12 H, m, -C-CH₃), 3,22 (2 H, s, 2-H), 4,93 (1 H, d, 4,5 H7, 6-H), 5,23 (1 H, d, 8 Hz, CH-CO), 5,5-6,2 (3 H, m, 7-H u. Vinyl-H), 6,94 (1 H, s, CHPh), 7,2-7,5 (15 H, m, Phenyl-H).
Eine Mischung aus 0,94 g (1,47 mMol) Verbindung 23 und
3 ml TFA wird 30 min bei Raumtemperatur gerührt, und
dann verdünnt man die Mischung mit 50 ml einer 1 : 1-Mi
schung von Ether-Isopropylether, wobei sich ca. 800 mg
eines Niederschlags abscheiden, der abfiltriert und in
3 ml Methanol gelöst wird. Zu der Lösung gibt man 4,5 ml
(4,5 mMol) 1 M Natrium-2-ethylhexanoat (SEH) in Ethyl
acetat und verdünnt die Mischung nacheinander mit 50 ml
Ether und 50 ml Isopropylether. Abfiltrieren des Nieder
schlages ergibt 710 mg Rohprodukt 24, das in 20 ml
Wasser gelöst und an einer Säule mit 50 ml PrepPAK/C₁₈
(Waters) chromatographiert wird. Die Säule wird mit Wasser
und 10%igem Methanol eluiert. Die Fraktionen, welche
das gewünschte Produkt enthalten, werden gesammelt, wo
bei man den Ablauf der Chromatographie mittels HPLC ver
folgt, und auf 5 ml eingeengt und lyophilisiert. Man er
hält 182 mg (31%) des gewünschten Produktes, Fp. 200°C,
mit einer mittels HPLC geschätzten Reinheit von 50%.
IR: ν cm-1 1760, 1660, 1600, 1400, 1180, 1100;
UV: λ nm (ε) 282 (5500);
NMR: δ D₂O ppm 1,60 (3 H, d, 6 Hz, -C-CH₃), 3,12 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 3,48 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 5,03 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,62 (1 H, d, 4,5 Hz, 7-H), 5,93 (1 H, d, 10 Hz, Vinyl-H), 5,2-5,8 (1 H, m, Vinyl-H), 7,41 (5 H, s, Phenyl-H).
IR: ν cm-1 1760, 1660, 1600, 1400, 1180, 1100;
UV: λ nm (ε) 282 (5500);
NMR: δ D₂O ppm 1,60 (3 H, d, 6 Hz, -C-CH₃), 3,12 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 3,48 (1 H, d, 18 Hz, 2-H), 5,03 (1 H, d, 4,5 Hz, 6-H), 5,62 (1 H, d, 4,5 Hz, 7-H), 5,93 (1 H, d, 10 Hz, Vinyl-H), 5,2-5,8 (1 H, m, Vinyl-H), 7,41 (5 H, s, Phenyl-H).
Diphenylmethyl-7β-[D-2-(t-butoxycarbonylamino)-2-phenyl
acetamido]-3-(1-propenyl)-3-cephem-4-carboxylat (Ver
bindung 10; 1,5 g; 2,34 mMol) behandelt man mit 3 ml Tri
fluoressigsäure und rührt die Mischung 20 min bei Raum
temperatur. Man verdünnt mit 100 ml Ether, wobei man
1,15 g (96%) des rohen Trifluoracetats von BB-S1065 er
hält.
IR: ν cm-1 1760, 1670, 1200, 1130;
UV: λ Phosphatpuffer (pH 7) nm (ε) 283 (8300).
UV: λ Phosphatpuffer (pH 7) nm (ε) 283 (8300).
Das Trifluoracetat (1,1 g; 2,25 mMol) löst man in
20 ml Wasser und chromatographiert die Lösung an einer
Säule unter Verwendung von 100 ml prepPAK/C₁₈-Füllung
(Waters). Die Säule wird mit Wasser, 10%igem Methanol
und 30%igem Methanol eluiert. Die Eluate mit 30%igem
Methanol werden auf 10 ml konzentriert. Das kristalline
Produkt scheidet sich ab, es wird isoliert und mit Aceton
gewaschen und im Vakuum über P₂O₅ getrocknet. Man erhält
505 mg (46%) an reinem BB-S1065 (in zwitterionischer
Form), Fp. 180 bis 183°C (Zers.), mit einer geschätzten
Reinheit von 95%.
IR: ν cm-1 1750, 1690, 1590, 1400, 1350;
UV: λ nm (ε) 282 (8800);
NMR: δ D₂O+NaHCO₃ ppm 1,58 (3 H, d, J=6 Hz, C-CH₃), 3,3 (2 H, d, 2-H), 5,03 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,20 (1 H, s, CH-CO), 5,1-5,8 (1 H, m, CH=C), 5,63 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,92 (1 H, d, J=12 Hz, CH=C), 7,4 (5 H, s, Phenyl-H).
UV: λ nm (ε) 282 (8800);
NMR: δ D₂O+NaHCO₃ ppm 1,58 (3 H, d, J=6 Hz, C-CH₃), 3,3 (2 H, d, 2-H), 5,03 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,20 (1 H, s, CH-CO), 5,1-5,8 (1 H, m, CH=C), 5,63 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,92 (1 H, d, J=12 Hz, CH=C), 7,4 (5 H, s, Phenyl-H).
Eine Mischung von 6 g (0,03 Mol) 3-Chlor-4-hydroxy
phenylglycin und 9,8 g (0,045 Mol) Di-t-butyldicarbo
nat, gelöst in 120 ml 50%igem wäßrigem Tetrahydrofuran
(THF), das 10 ml (0,071 Mol) Triamin enthält, wird 3 h
bei Raumtemperatur gelöst. Die Mischung wird auf 60 ml
eingeengt und das Konzentrat mit Ether gewaschen. Die
wäßrige Schicht wird mit 6 N Chlorwasserstoffsäure ange
säuert und mit 200 ml Ether extrahiert. Der Extrakt
wird mit Wasser und gesättigter NaCl-Lösung gewaschen,
über MgSO₄ getrocknet und zur Trockene verdampft, wobei
man 10 g eines öligen Rückstandes erhält, der auch beim
Verreiben mit Ether-n-Hexan nicht fest wird.
Zu einer Lösung von 6,2 g (0,015 Mol) Verbindung 2 und
5,4 g (0,018 Mol) Verbindung 13 in 150 ml trockenem THF
gibt man 3,7 g (0,018 Mol) DCC und rührt die Mischung
1 h bei Raumtemperatur. Der während des Rührens ausge
fallene Dicyclohexylharnstoff wird abfiltriert, das Fil
trat wird zur Trockene eingedampft. Den Rückstand ex
trahiert man mit 200 ml Ethylacetat, den Extrakt wäscht
man dann mit wäßriger NaHCO₃-Lösung, Wasser und gesät
tigter NaCl-Lösung und trocknet ihn über MgSO₄. Das
Filtrat wird zur Trockene verdampft und der erhaltene,
ölige Rückstand wird an einer Silikagelsäule (Wako gel
C-200; 140 g) unter Eluierung mit Toluol-Ethylacetat
(10 : 1) chromatographiert. Die gewünschten Fraktionen wer
den gesammelt und zur Trockene verdampft, wobei man 10 g
des Produkts 14 erhält.
IR: ν cm-1 1790, 1720, 1680, 1500, 1370, 1240, 1160.
Zu einer Lösung von 10 g (0,0143 Mol) Verbindung 14 in
100 ml Aceton gibt man 11,2 g (0,075 Mol) Natriumjodid
und rührt die Mischung 30 min bei Raumtemperatur. Die
Mischung wird auf 30 ml eingeengt. Zu dem Konzentrat
werden 200 ml Ethylacetat gegeben und die Mischung wird
mit wäßriger Na₂S₂O₃-Lösung, Wasser und gesättigter NaCl-
Lösung gewaschen und über MgSO₄ getrocknet. Die Ethyl
acetatlösung wird filtriert und das Filtrat auf die
Hälfte des Volumens eingeengt. Zu dem Konzentrat gibt
man 3,9 g (0,015 Mol) Triphenylphosphin und rührt die
Mischung 2 h bei Raumtemperatur. Zu der Lösung gibt man
300 ml Ether, wobei sich ein Niederschlag abscheidet,
der abfiltriert und getrocknet wird. Man erhält
9,2 g des Phosphoniumjodids 15.
IR: ν cm-1 1780, 1680, 1490, 1350, 1240, 1150.
IR: ν cm-1 1780, 1680, 1490, 1350, 1240, 1150.
Eine Lösung von 9,5 g (9 mMol) Verbindung 15 in 200 ml
Chloroform wird mit einer Mischung aus Wasser (100 ml)
und N NaOH (10 ml) überschichtet und die Mischung 3 min
geschüttelt. Die organische Schicht wird mit Wasser und
einer gesättigten NaCl-Lösung gewaschen, über MgSO₄
getrocknet und auf etwa die Hälfte des Volumens einge
engt. Zu dem Konzentrat gibt man 20 ml 90%igen Acet
aldehyd und rührt die Mischung 3 h bei Raumtemperatur,
behandelt sie mit wasserfreiem MgSO₄ und filtriert. Das
Filtrat wird zur Trockene verdampft und der Rückstand
wird an Kieselgel 60 (Merck, 120 g) unter Eluierung mit
Toluol-Ethylacetat (4 : 1) chromatographiert. Die ge
wünschten Fraktionen werden gesammelt und zur Trockene
verdampft. Der Rückstand wird mit einer Mischung aus
Ether, Isopropylether und n-Hexan verrieben, wobei man
1,33 g des blockierten Produktes 16 erhält.
IR: ν cm-1 1770, 1700, 1660, 1480, 1350, 1210, 1150.
Eine Mischung von 1,33 g (1,93 mMol) Verbindung 16 und
3 ml Trifluoressigsäure wird 30 min bei Raumtemperatur
gerührt. Die Mischung wird mit 50 ml Ether-Isopropyl
ether (1 : 1) verdünnt, wobei man 1,072 g des rohen Tri
fluoracetats von Verbindung 17 erhält, das an einer mit
prepPAK-C₁₈ (Waters) gefüllten Säule (80 ml) chromato
graphiert wird. Die Säule wird mit Wasser und 10%igem
Methanol eluiert. Das Eluat mit 10%igem Methanol wird
auf ein Volumen von 10 ml eingeengt, wobei sich ein kri
stalliner Niederschlag abscheidet, der abfiltriert und
mit Aceton gewaschen und im Vakuum über P₂O₅ getrocknet
wird. Man erhält 238 mg der Verbindung 17 (95% Reinheit),
Fp. 180-185°C (allmähl. Zers.). Das Filtrat wird auf
5 ml eingeengt und lyophilisiert, wobei man 154 g einer
zweiten Fraktion erhält, die, mittels HPLC bestimmt,
eine Reinheit von 80% aufweist.
IR: ν cm-1 1760, 1680, 1570, 1410, 1390, 1350,
1290, 1270;
UV: λ nm (ε) 232 (10 000), 280 (10 500);
NMR: δ D₂O+NaHCO₃ ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, C=C-CH₃), 3,25 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,57 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 4,90 (1 H, s, CH-CO), 5,18 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,72 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, CH=C), 5,97 (1 H, d, J=12 Hz, CH=C), 7,02 (1 H, d, J=8 Hz, Phenyl-H), 7,30 (1 H, dd, J=8 u. 1,5 Hz, Phenyl-H), 7,50 (1 H, d, J=1,5 Hz, Phenyl-H).
UV: λ nm (ε) 232 (10 000), 280 (10 500);
NMR: δ D₂O+NaHCO₃ ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, C=C-CH₃), 3,25 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,57 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 4,90 (1 H, s, CH-CO), 5,18 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,72 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, CH=C), 5,97 (1 H, d, J=12 Hz, CH=C), 7,02 (1 H, d, J=8 Hz, Phenyl-H), 7,30 (1 H, dd, J=8 u. 1,5 Hz, Phenyl-H), 7,50 (1 H, d, J=1,5 Hz, Phenyl-H).
Eine Mischung von 3,66 g (0,02 Mol) 3,4-Dihydroxyphenyl
glycin und 9,24 g (0,04 Mol) Di-t-butyldicarbonat, ge
löst in 120 ml 50%iger wäßriger THF-Lösung, enthaltend
10 ml (0,071 Mol) Triethylamin, wird 16 h bei Raumtempe
ratur gerührt. Man konzentriert die Mischung auf 60 ml
und wäscht das Konzentrat mit 100 ml Ether, säuert mit
N Chlorwasserstoffsäure an und extrahiert mit Ether
(100×2 ml). Die vereinigten Extrakte werden mit Wasser
und gesättigter NaCl-Lösung gewaschen, über MgSO₄ ge
trocknet und zur Trockene eingedampft, wobei man 8 g
eines öligen Rückstands erhält, der eine Mischung aus
dem gewünschten 3,4-Dihydroxyphenylderivat und den 3-
und 4-Mono-O-BOC-geschützten Derivaten darstellt (BOC
bedeutet t-Butoxycarbonyl).
Eine Mischung von 8 g (0,0193 Mol) Verbindung 2,8 g
der Mischung gemäß Beispiel 18 und 4,12 g (0,02 Mol) DCC
in 200 ml trockenem THF wird 1 h bei Raumtemperatur ge
rührt. Die Reaktionsmischung wird zur Trockene einge
dampft. Den Rückstand löst man in 200 ml Ethylacetat
und filtriert unlösliches Material (Dicyclohexylharn
stoff) ab. Das Filtrat wird mit wäßriger NaHCO₃-Lösung,
Wasser und gesättigter Kochsalzlösung gewaschen, über
MgSO₄ getrocknet und unter vermindertem Druck zur Trocke
ne eingedampft. Den öligen Rückstand chromatographiert
man an einer Silikagelsäule (Kieselgel 60, 130 g), wobei
man mit Toluol-Ethylacetat (5 : 1) und Toluol-Ethylacetat
(2 : 1) eluiert. Das Eluat mit Toluol-Ethylacetat (5 : 1)
wird gesammelt und zur Trockene eingedampft, wobei man
9,5 g einer Mischung der Mono-O-BOC-N-BOC-digeschütz
ten Derivate (19b) erhält. Das Eluat mit Toluol-Ethyl
acetat (2 : 1) wird gesammelt und zur Trockene eingedampft,
wobei man 3 g des 3,4-Dihydroxyphenylderivats (19a) er
hält.
IR: ν cm-1 1770, 1720, 1690, 1500, 1370, 1240, 1150;
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,42 (9 H, s. C-CH₃), 3,4 (2 H, br. s, 2-H), 4,30 (2 H, br. s, CH₂-Cl), 4,85 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,07 (1 H, d, J=6 Hz, CH-NH), 5,74 (1 H, dd, J=9 u. 4,5 Hz, 7-H), 6,6-6,9 (3 H, m, Phenyl-H), 6,93 (1 H, s, CHPh), 7,3 (10 H, s, Phenyl-H).
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,42 (9 H, s. C-CH₃), 3,4 (2 H, br. s, 2-H), 4,30 (2 H, br. s, CH₂-Cl), 4,85 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,07 (1 H, d, J=6 Hz, CH-NH), 5,74 (1 H, dd, J=9 u. 4,5 Hz, 7-H), 6,6-6,9 (3 H, m, Phenyl-H), 6,93 (1 H, s, CHPh), 7,3 (10 H, s, Phenyl-H).
IR: ν cm-1 1770, 1720, 1690, 1500, 1370, 1240, 1150;
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,42 (9 H, s, C-CH₃), 1,55 (9 H, s, C-CH₃), 3,4 (2 H, br. s, 2-H), 4,35 (2 H, br. s, CH₂-Cl), 6,9-7,1 (4 H, m, CHPh und Phenyl-H), 7,3 (10 H, s, Phenyl-H).
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,42 (9 H, s, C-CH₃), 1,55 (9 H, s, C-CH₃), 3,4 (2 H, br. s, 2-H), 4,35 (2 H, br. s, CH₂-Cl), 6,9-7,1 (4 H, m, CHPh und Phenyl-H), 7,3 (10 H, s, Phenyl-H).
Eine Mischung von 3 g (4,4 mMol) Verbindung 19a und 3,3 g
(22 mMol) Natriumjodid in 50 ml Aceton wird 30 min bei
Raumtemperatur gerührt. Die Mischung wird zur Trockene
eingeengt. Den Rückstand extrahiert man mit 100 ml Ethyl
acetat und wäscht den Extrakt mit wäßriger Na₂S₂O₃-Lö
sung, Wasser und gesättigter NaCl-Lösung. Nach dem Trock
nen über MgSO₄ wird der Extrakt auf 60 ml eingeengt. Zum
Konzentrat gibt man 1,4 g (5,3 mMol) Triphenylphosphin
und rührt die Mischung 1 h bei Raumtemperatur. Zu der
Mischung gibt man 100 ml Ether, wobei sich ein Nieder
schlag abscheidet, der abfiltriert und mit Ether gewa
schen wird. Man erhält 3,2 g (70%) des Phosphonium
jodids (20a).
IR: ν cm-1 1780, 1680, 1480, 1430, 1360, 1240, 1150.
In ähnlicher Weise läßt man 9,5 g (12 mMol) der Mischung
der Mono-O-BOC-geschützten Derivate (19b) mit Natrium
jodid und anschließend mit Triphenylphosphin reagieren,
wobei man 10,7 g (77%) einer Mischung der entsprechen
den Mono-O-BOC-N-BOC-triphenylphosphoniomethylderivate
(20b) erhält.
IR: ν cm-1 1770, 1720, 1680, 1480, 1360, 1240,
1140.
Zu einer gerührten Lösung von 3,15 g (3 mMol) Verbin
dung 20a und 10 ml Acetaldehyd in 50 ml Chloroform
tropft man unter Rühren während 10 min 8 ml (4 mMol)
0,5 N Natriumhydroxid und rührt die Mischung 1 h bei Raum
temperatur. Die Reaktionsmischung wird mit Wasser und
gesättigter NaCl-Lösung gewaschen, über MgSO₄ getrock
net und bei vermindertem Druck verdampft. Den öligen
Rückstand chromatographiert man an einer Silikagelsäule
(Wako gel C-200; 60 g), wobei man mit Chloroform (2 l)
und 2%igem Methanol in Chloroform unter Kontrolle mit
tels TLC (Chloroform/Methanol=10 : 1) eluiert. Die ge
wünschten Fraktionen des Eluats mit 2%igem Methanol
werden gesammelt und zur Trockene eingedampft, wobei
man 0,8 g (40%) des Propenylderivats 21a erhält.
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,28 (3 H, d, J=6 Hz, C-CH₃), 1,42 (9 H,
s, C-CH₃), 3,25 (2 H, s, 2-H), 4,92 (1 H, d, J=4,5
Hz, 6-H), 5,08 (1 H, d, J=6 Hz, CH-NH),
5,3-5,8 (1 H, m, CH=C), 5,80 (1 H, d, J=4,5 Hz,
7-H), 6,04 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C), 6,70 (2 H, s,
Phenyl-H), 6,82 (1 H, s, Phenyl-H), 6,92 (1 H, s,
CHPh), 7,3 (10 H, s, Phenyl-H).
Ähnlich dem oben beschriebenen Verfahren läßt man 10,5 g
(9,3 mMol) der Mischung aus 3- und 4-O-BOC-N-BOC-di-
geschützten Derivaten 20b mit Acetaldehyd reagieren, wo
bei man 3,3 g (46%) des entsprechenden 3-Propenylderi
vats 21b erhält.
IR: ν cm-1 1770, 1700, 1500, 1370, 1240, 1150;
NMR: w CDCl₃ ppm 1,4 (9 H, s, C-CH₃), 1,55 (9 H, s, C-CH₃), 3,25 (2 H, s, 2-H), 6,07 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C), 6,9-7,1 (4 H, m, CH-Ph und Phenyl-H), 7,3-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
NMR: w CDCl₃ ppm 1,4 (9 H, s, C-CH₃), 1,55 (9 H, s, C-CH₃), 3,25 (2 H, s, 2-H), 6,07 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C), 6,9-7,1 (4 H, m, CH-Ph und Phenyl-H), 7,3-7,5 (10 H, m, Phenyl-H).
Eine Mischung von 0,8 g (1,2 mMol) Verbindung 21a,
0,8 ml Anisol und 3 ml Trifluoressigsäure wird 5 min
bei Raumtemperatur gerührt und mit 25 ml Ether und 25 ml
Isopropylether verdünnt. Der erhaltene Niederschlag wird
abfiltriert und mit Isopropylether gewaschen, wobei man
557 mg des rohen Trifluoracetatsalzes der Verbindung 22
erhält. Eine Lösung des rohen Produktes in 10 ml Wasser
reinigt man mittels Säulenchromatographie unter Ver
wendung von 100 ml einer Füllung aus prepPAK-C₁₈ (Waters).
Die Säule wird nacheinander mit Wasser und 5%igem Me
thanol eluiert. Das Eluat mit 50%igem Methanol, das
das gewünschte Produkt enthält, wird auf 5 ml eingeengt
und lyophilisiert, wobei man 231 mg (47%) der Verbin
dung 22 (in zwitterionischer Form, 90%ige Reinheit),
Fp. 200°C (allmähl. Zers.), erhält,
IR: ν cm-1 1760, 1690, 1580, 1530, 1400, 1360,
1290, 1270;
UV: λ nm (ε) 233 (9200), 281 (11 000);
NMR: δ D₂O ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, C-CH₃), 3,26 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,58 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 5,18 (1 H, s, CHNH), 5,22 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,5-5,9 (2 H, m, CH=C u. 7-H), 5,97 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C), 7,05 (3 H, m, Phenyl-H).
UV: λ nm (ε) 233 (9200), 281 (11 000);
NMR: δ D₂O ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, C-CH₃), 3,26 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,58 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 5,18 (1 H, s, CHNH), 5,22 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,5-5,9 (2 H, m, CH=C u. 7-H), 5,97 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C), 7,05 (3 H, m, Phenyl-H).
In ähnlicher Weise ergeben 3,3 g (4,3 mMol) der N,O-Di-
t-BOC-geschützten Derivatmischung 21b 1,3 g (75%) der
Verbindung 22 in zwitterionischer Form (90% Reinheit),
deren Spektraldaten identisch mit den oben angegebenen
Daten sind.
Eine Mischung von 2,96 g (0,015 Mol) D(-)-2-Amino-2-
(4-hydroxy-3-methoxyphenyl)-essigsäure und 3,6 g
(0,0165 Mol) Di-t-butyldicarbonat in 100 ml 50%igem
wäßrigen THF, das 4,2 ml (0,03 Mol) Triethylamin enthält,
rührt man 16 h bei Raumtemperatur und engt die Reak
tionsmischung auf 50 ml ein. Das Konzentrat wird mit
50 ml Ether gewaschen, mit N Chlorwasserstoffsäure an
gesäuert und zweimal mit Ether (2×100 ml) extrahiert.
Die vereinigten Extrakte werden mit Wasser und gesät
tigter NaCl-Lösung gewaschen. Die getrockneten Extrakte
werden zur Trockene eingeengt, wobei man 4,38 g der Ver
bindung 23 als schaumigen Feststoff erhält.
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,4 (9 H, s, -C-CH₃), 3,8 (3 H, s, OCH₃),
5,15 (1 H, d, J=6 Hz, CH-NH), 6,85 (3 H, s,
Phenyl-H).
Eine Mischung von 4,3 g Verbindung 23, 5 g (0,012 Mol)
Verbindung 2 und 3 g (0,015 Mol) DCC in 150 ml trockenem
THF wird 2 h bei Raumtemperatur gerührt. Den ausgefalle
nen Harnstoff filtriert man ab, das Filtrat wird zur
Trockene eingeengt. Eine Lösung des Rückstandes in
200 ml Ethylacetat wird mit wäßriger NaHCO₃-Lösung, Was
ser und gesättigter NaCl-Lösung gewaschen, über MgSO₄
getrocknet und zur Trockene eingedampft. Den öligen
Rückstand chromatographiert man an einer Silikagelsäule
(Kieselgel 60; 100 g), wobei man mit Toluol-Ethylacetat
(4 : 1) unter Kontrolle der Chromatographie mittels TLC
[Toluol-Ethylacetat (1 : 1) oder Chloroform-Methanol (50 : 1)]
eluiert. Die gewünschten Fraktionen werden gesammelt
und zur Trockene eingeengt, wobei man 7 g der gewünsch
ten 3-Chlormethylcephem-Verbindung 24 als schaumigen
Feststoff erhält.
NMR: δ, ppm 1,4 (9 H, s, C-CH₃), 3,45 (2 H, br. s, 2-H),
3,83 (3 H, s, OCH₃), 4,32 (2 H, s, -CH₂Cl),
4,92 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,13 (1 H, d, J=6
Hz, CH-NH), 5,65 (1 H, d, J=6 Hz, NH), 5,80
(1 H, dd, J=8 u. 4,5 Hz, 7-H), 6,85 (3 H, s, Phe
nyl-H), 6,95 (1 H, s, CH-Ph), 7,2-7,5 (10 H, m,
Phenyl-H).
Eine Mischung von 7 g (0,01 Mol) Verbindung 24 und
7,5 g (0,05 Mol) Natriumjodid in 100 ml Aceton wird
30 min bei Raumtemperatur gerührt und zur Trockene ein
gedampft. Eine Lösung des Rückstands in 200 ml Ethyl
acetat wird mit wäßriger Na₂S₂O₃-Lösung, Wasser und ge
sättigter NaCl-Lösung gewaschen, über MgSO₄ getrocknet
und auf 100 ml eingeengt. Zum Konzentrat gibt man 3,1 g
(0,012 Mol) Triphenylphosphin und rührt die Mischung
1 h bei Raumtemperatur. Zu der Reaktionsmischung gibt
man dann 100 ml Ether und filtriert den ausgeschiede
nen Feststoff ab, wäscht ihn mit Ether und trocknet ihn,
wobei man 5,8 g des Triphenylphosphoniumderivats 23 er
hält. Das etherische Filtrat engt man auf 10 ml ein und
gibt zum Konzentrat 300 ml Ether, wobei man 0,9 g einer
zweiten Fraktion des Produktes erhält. Die Gesamtaus
beute beträgt 6,7 g.
Zu einer gerührten Mischung von 5,8 g (5,5 mMol) Ver
bindung 25 und 10 ml 90%igem Acetaldehyd in 100 ml Chlo
roform tropft man unter Rühren während 25 min 11 ml
(5,5 mMol) 0,5 N Natriumhydroxid. Die Mischung wird dann
2 h bei Raumtemperatur gerührt. Die Reaktionsmischung
wird mit Wasser, anschließend mit gesättigter NaCl-
Lösung gewaschen, über MgSO₄ getrocknet und zur Trockene
eingeengt. Den öligen Rückstand chromatographiert man an
einer Silikagelsäure (Kieselgel 60; 130 g), wobei man
mit einer Mischung aus Toluol und Ethylacetat [das Mi
schungsverhältnis wurde schrittweise geändert; 4 : 1 (1,3 l),
3 : 1 (1,1 l), 2 : 1 (1,0 l)] eluiert. Das Eluat wird in
20-ml-Fraktionen aufgefangen. Die Fraktionen Nr. 26 bis
59 werden vereinigt und zur Trockene eingeengt, wobei
man 830 mg des gewünschten 3-Propenylderivats 26 als
schaumigen Feststoff erhält.
NMR: δ CDCl₃ ppm 1,35 (3 H, d, =CH-CH₃), 1,4 (9 H, s,
C-CH₃), 3,85 (3 H, s, O-CH₃), 6,07 (1 H, d,
J=11 Hz, -CH=C).
Eine Mischung von 830 mg (1,2 mMol) Verbindung 26,
0,5 ml Anisol und 2 ml Trifluoressigsäure wird 5 min
bei Raumtemperatur gerührt. Die Mischung wird dann mit
30 ml Ether und 30 ml Isopropylether verdünnt. Der
erhaltene Niederschlag wird abfiltriert, mit Isopropyl
ether gewaschen und getrocknet, wobei man 437 mg des
rohen Trifluoracetats der Verbindung 27 erhält. Das Roh
produkt wird an einer mit 100 ml prepPAK-C₁₈ (Waters)
gefüllten Säule chromatographiert, wobei man mit Wasser
und 5%igem Methanol eluiert. Das Eluat mit 5%igem
Methanol wird auf 5 ml eingeengt und lyophilisiert, wo
bei man 225 mg der Verbindung 27 (in zwitterionischer
Form, 90% Reinheit), Fp. 176 bis 180°C (Zers.), erhält.
IR: ν max cm-1 1760, 1690, 1590, 1530, 1400, 1360, 1280;
UV: λ nm (ε) 235 (10 000), 280 (11 000);
NMR: δ D₂O ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, C-CH₃), 3,25 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,57 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 4,01 (3 H, s, OCH₃), 5,10 (1 H, s, CH-CO), 5,19 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,78 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, CH=C), 5,98 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C), 7,07 (2 H, s, Phenyl-H), 7,17 (1 H, br. s, Phenyl-H);
HPLC: Retentionszeit=9,3 min (0,02 M Acetatpuffer (pH 4), enthaltend 15% Acetonitril).
UV: λ nm (ε) 235 (10 000), 280 (11 000);
NMR: δ D₂O ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, C-CH₃), 3,25 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,57 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 4,01 (3 H, s, OCH₃), 5,10 (1 H, s, CH-CO), 5,19 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,78 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, CH=C), 5,98 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C), 7,07 (2 H, s, Phenyl-H), 7,17 (1 H, br. s, Phenyl-H);
HPLC: Retentionszeit=9,3 min (0,02 M Acetatpuffer (pH 4), enthaltend 15% Acetonitril).
6 männliche Wistar-Ratten (400-600 g) wurden nach oraler
Verabreichung der Verbindung 22 in einer Dosis von
100 mg/kg in Stoffwechselkäfige gebracht. Der Urin wur
de über einen Zeitraum von 14 Stunden aufgefangen. Die
Ratten wurden während des Versuchs, wie üblich, mit
Nahrung und Wasser versorgt. Die nachfolgende Tabelle
zeigt die in den verschiedenen Zeiträumen gesammelte
Urinmenge.
Der Urin (ca. 90 ml) wurde mit N Chlorwasserstoffsäure
auf pH 3 eingestellt und zur Entfernung eines Nieder
schlags filtriert. Das Filtrat wurde an einer mit 300 ml
HP-20 gefüllten Säule chromatographiert, wobei man mit
2 l Wasser und 2 l 30%igem Methanol unter Verfolgung
der Chromatographie mittels HPLC eluierte. Diejenigen
Fraktionen, welche die bioaktiven Bestandteile des
Eluats mit 30%igem Methanol enthielten, wurden gesam
melt, auf 10 ml eingeengt und lyophilisiert, wobei man
390 mg eines braunen Feststoffs erhielt. Eine Lösung
dieses Feststoffs in 20 ml Wasser wurde an einer Säule
chromatographiert, die mit 200 ml prepPAK-C₁₈ (Waters)
gefüllt war. Man eluierte nacheinander mit Wasser, 5%igem
Methanol und 10%igem Methanol. Die erste Hälfte des
Eluats mit 5%igem Methanol wurde auf 5 ml eingeengt und
lyophilisiert, wobei man 44 mg der Verbindung 22 (70%
Reinheit) erhielt, die vom Urin stammende Verunreini
gungen enthielt. Die zweite Hälfte des Eluats mit 5%igem
Methanol wurde auf 5 ml eingeengt und lyophilisiert,
wobei man 36 mg Produkt erhielt, das eine Mischung aus
den Verbindungen 22 und 27 und vom Urin stammenden
Verunreinigungen war. Das Eluat mit 10%igem Methanol
(ca. 600 ml) wurde auf 5 ml eingeengt und lyophilisiert,
wobei man 38 mg der Verbindung 27 (70% Reinheit, be
stimmt mittels HPLC) erhielt. Dieses Produkt wurde er
neut an einer Säule, die wie oben gefüllt war (40 ml),
unter Eluierung mit Wasser, 5%igem Methanol und 10%igem
Methanol chromatographiert. Die mit 10%igem Methanol
eluierten, gewünschten Fraktionen wurden vereinigt und
auf 5 ml eingeengt und lyophilisiert, wobei man 16 mg
der Verbindung 27 erhielt, die eine mittels HPLC be
stimmte Reinheit von 90% aufwies [0,02 M Acetatpuffer
(pH 4)-Acetonitril (85 : 15)]; Fp. 180°C (allmähl. Zers).
IR: ν cm-1 1760, 1690, 1590, 1530, 1400, 1360, 1280;
UV: λ nm (ε) 233 (8200), 280 (8800);
NMR: δ D₂O ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, -C-CH₃), 3,26 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,58 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 4,01 (3 H, s, OCH₃), 5,12 (1 H, s, CH-CO), 5,21 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,78 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, CH=C-), 5,98 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C-), 7,07 (2 H, s, Phenyl-H), 7,17 (1 H, br. s, Phenyl-H).
UV: λ nm (ε) 233 (8200), 280 (8800);
NMR: δ D₂O ppm 1,68 (3 H, d, J=6 Hz, -C-CH₃), 3,26 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 3,58 (1 H, d, J=18 Hz, 2-H), 4,01 (3 H, s, OCH₃), 5,12 (1 H, s, CH-CO), 5,21 (1 H, d, J=4,5 Hz, 6-H), 5,78 (1 H, d, J=4,5 Hz, 7-H), 5,5-5,9 (1 H, m, CH=C-), 5,98 (1 H, d, J=11 Hz, CH=C-), 7,07 (2 H, s, Phenyl-H), 7,17 (1 H, br. s, Phenyl-H).
Die Struktur des Metaboliten ergab sich aufgrund von
Vergleichen (NMR, IR, UV, HPLC) mit der gemäß den Bei
spielen 23 bis 27 hergestellten Verbindung 27 zu
7β-[D(-)-2-Amino-2-(4-hydroxy-3-methoxyphenyl)-acet
amido]-3-[(Z)-1-propen-1-yl]-3-cephem-4-carbonsäure.
Claims (4)
1. D-2-Aminoacyl-3-(Z)-propenyl-cephalosporinverbindungen
der allgemeinen Formel:
worin
R¹ für ein Wasserstoffatom, OH, eine C₁-C₄-Alkoxy gruppe oder ein Chloratom steht,
R² für ein Wasserstoffatom oder eine Hydroxygruppe steht,
sowie die Derivate mit üblichen Schutzgruppen an den Amino-, Carboxy- und/oder Hydroxygruppen und die pharma zeutisch verträglichen Salze.
R¹ für ein Wasserstoffatom, OH, eine C₁-C₄-Alkoxy gruppe oder ein Chloratom steht,
R² für ein Wasserstoffatom oder eine Hydroxygruppe steht,
sowie die Derivate mit üblichen Schutzgruppen an den Amino-, Carboxy- und/oder Hydroxygruppen und die pharma zeutisch verträglichen Salze.
2. Verbindungen nach Anspruch 1, nämlich
7β-(D-2-Amino-2-(4-hydroxyphenyl)acetamido]-3-((Z)-1- propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-phenylacetamido]-3-((Z)-1-propen- 1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-(3-chlor-4-hydroxyphenyl)acetamido)- 3-((Z)-1-propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-(3,4-dihydroxyphenyl)acetamido]- 3-((Z)-1-propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-(4-hydroxy-3-methoxyphenyl)acetamido]- 3-((Z)-1-propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure
und die Salze davon.
7β-(D-2-Amino-2-(4-hydroxyphenyl)acetamido]-3-((Z)-1- propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-phenylacetamido]-3-((Z)-1-propen- 1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-(3-chlor-4-hydroxyphenyl)acetamido)- 3-((Z)-1-propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-(3,4-dihydroxyphenyl)acetamido]- 3-((Z)-1-propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure,
7β-(D-2-Amino-2-(4-hydroxy-3-methoxyphenyl)acetamido]- 3-((Z)-1-propen-1-yl)-3-cephem-4-carbonsäure
und die Salze davon.
3. Verfahren zur Herstellung der Cephalosporin
verbindungen der Ansprüche 1 oder 2, dadurch gekenn
zeichnet, daß man jeweils in an sich bekannter Weise
- A) ein Halogenid der allgemeinen Formeln: QCH₂X oder CH₃CH₂Xworin X für Cl, Br oder J steht, mit einem Triaryl phosphin in einem reaktionsinerten, organischen flüs sigen Träger bei 20 bis 150°C zu einem Phosphonium salz umsetzt,
- B) das Phosphoniumsalz in einem mit Wasser nicht mischbaren, flüssigen, organischen Lösungsmit tel mit einer wäßrigen Base zu einer Phosphoranyl verbindung der allgemeinen Formeln: QCH=PAr₃ oder CH₃CH=PAr₃umsetzt.
- C) eine Verbindung der allgemeinen Formel:
QCH=PAr₃unter wasserfreien Bedingungen bei -40°C bis
+50°C in dem erwähnten, mit Wasser nicht misch
baren, flüssigen organischen Lösungsmittel mit
Acetaldehyd
oder
unter den gleichen Reaktionsbedingungen eine
Verbindung der allgemeinen Formel:CH₃CH=PAr₃mit einer Carbonylverbindung der allgemeinen Formel:QCHOzur Reaktion bringt,
wobei Q einen Rest der Formeln: bedeutet, worin
R¹ die in Anspruch 1 angegebenen Bedeutungen besitzt und P¹, P² und P³ übliche Schutzgruppen bedeuten und n für 0 oder 1 steht,
Ac eine bei Cephalosporinverbindungen üblicherweise vorhandene Acylgruppe bedeutet, und
B eine Alkyliden- oder Aralkylidenschutzgruppe be deutet, - D) in die so erhaltene 3-substituierte-7-Aminoceph- 3-em-Verbindung, erforderlichenfalls nach Abspal ten von einer oder mehrerer der Schutzgruppen P¹, P², P³, Ac und B oder nach Reduktion der S-Oxide, den 7-Acylrest der allgemeinen Formel: worin R¹ und R² die oben angegebenen Bedeutungen besitzen, einführt und
- E) die so erhaltene Verbindung gewünschtenfalls in ein Säureadditions- oder Metallsalz überführt.
4. Pharmazeutisches Mittel, enthaltend wenigstens eine
Verbindung nach einem der Ansprüche 1 bis 2, ge
gebenenfalls in Kombination mit pharmazeutisch ver
träglichen Trägern und Hilfsstoffen.
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| US06/564,604 US4520022A (en) | 1983-01-28 | 1983-12-28 | Substituted vinyl cephalosporins |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE3402642A1 DE3402642A1 (de) | 1984-08-02 |
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