DE2840039C3 - Verfahren zur Erzeugung von Tumor-Antikörpern - Google Patents
Verfahren zur Erzeugung von Tumor-AntikörpernInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Erzeugung von Antikörpern
gegen maligne Tumoren, wobei man ein Tier mit Antigenen
immunisiert, fusionierte Zellhybride zwischen Antikörper
erzeugenden Zellen von dem Tier und Myelomazellen
bildet, die Hybriden klont und die Antikörper erzeugenden
Klone aussucht und diese züchtet.
Verfahren der eingangs genannten Art sind bekannt, z. B. aus
Nature 256 (1975) 495 bis 497, wobei Erythrocyten von Schafen
als Antigene dienen. Des weiteren sind fusionierte Zellhybriden
von Milzzellen und Myelomazellen in Eur. J. Immunol.
6 (1976) 511-519, Nature 266 (1977) 550-552 und Nature 266
(1977) 495 beschrieben.
Die Erfindung betrifft nun ein Verfahren zur Erzeugung von
Antikörpern gegen maligne Tumoren gemäß Patentanspruch 1.
Der Erfolg des genannten Verfahrens ist überraschend, weil
bei Tumoren, die spontan in Tieren auftreten, nur eine
schwache oder gar keine Immunantwort beobachtet wird. Es
bestand deshalb keine Veranlassung, Tumorzellen als Antigene
zu verwenden.
Erfindungsgemäß werden neue Zellinien erhalten, die
große Mengen an Antikörpern erzeugen, welche spezifisch für
maligne Tumoren von mehr als einem Typ sind. Die neuen Zellinien sind fusionierte
Zellhybriden aus (a) Myeloma-Zellen, d. h. malignen Zellen aus
primären Knochenmarktumoren, und (b) antikörpererzeugenden
Zellen, vorzugsweise Milzzellen oder Lymphknotenzellen von
Tieren, die mit Tumorzellen immunisiert wurden. Die fusionierten
oder verschmolzenen Zellen werden gezüchtet und geklont, und
Klone, die Antikörper erzeugen, welche Spezifität für Tumorzellen
von mehr als einem Tumortyp zeigen, werden selektiert. Aus dem gezüchteten Hybrid
können Antikörper gewonnen werden; manchmal wird jedoch die
gesamte Kultur verwendet, falls gewünscht.
Gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren können Antikörper
erhalten werden, die in Tieren oder beim Menschen Spezifität
für Tumorzellen zeigen. Es ist von Bedeutung, daß die Tumorzellen,
für die Antikörper erhalten werden können, menschliche
Krebszellen einschließen, z. B. von Melanom, Fibro-Sarkom,
Brustkrebs, Lungenkrebs, Kolon-Rektal-Karzinom, Uteruskarzinom,
usw. In manchen Fällen, z. B. im Fall von SV40-induzierten
Tumoren, reagieren die Antikörper mit einem Zellkern-Antigen
(z. B. dem T-Antigen). In anderen Fällen können die Antikörper
mit irgendeiner Komponente der Zellwand reagieren. Die genaue
Art des Mechanismus mag dahingestellt bleiben; es wurde
jedenfalls festgestellt, daß ein Tier mit Tumorzellen immunisiert
werden kann und Hybridomen, die von diesem Tier
stammen, Antikörper erzeugen, die Tumor-Spezifität aufweisen.
Es können Antikörper ausgewählt werden, die eine
Spezifität aufweisen, welche mehr als einen Tumortyp innerhalb
einer Spezies einschließt. Die Erzeugung von Antikörpern, die
mit Tumoren reagieren, ist von beträchtlicher Bedeutung sowohl
als analytisches Hilfsmittel als auch für die Diagnose. Es ist
ferner für die Immuno-Therapie und die medizinische Forschung
von Bedeutung.
Die erfindungsgemäßen somatischen Zellhybriden werden
durch Fusionieren oder Verschmelzen von Myeloma-Zellen mit
Antitumor-Antikörper erzeugenden Zellen erzeugt. Myeloma-Zellen
sind dadurch einzigartig, daß sie Antikörper erzeugen können,
obwohl die Spezifität dieser Antikörper bis jetzt im allgemeinen
noch unbekannt ist. Die Antitumor-Antikörper erzeugenden Zellen
sind vorzugsweise Milz- oder Lymphzellen von Tieren, die mit
Tumorzellen immunisiert wurden. Die spezielle Spezies des Tieres,
aus dem die Myeloma- und Milzzellen stammen, ist insoweit nicht
kritisch, als es möglich ist, die Zellen einer Spezies mit denen
einer anderen, z. B. Maus mit Ratte, Ratte mit Mensch oder Maus
mit Mensch, zu fusionieren. Vorzugsweise wird jedoch dieselbe
Tierspezies als Quelle sowohl für die Myeloma-Zellen als auch
für die Antitumor-Antikörper erzeugenden Zellen verwendet. Eine
bevorzugte Zellinie zur Durchführung der Erfindung ist ein fusionierter
Zellhybrid zwischen Tumorantigen-immunisierten Milzzellen der Maus und Myelomazellen der Maus. Ausgezeichnete
Ergebnisse wurden mit Soma-Zellhybriden zwischen den Antitumor-
Antikörper erzeugenden Milzzellen einer BALB/c-Maus, die vorher
mit Tumorzellen immunisiert worden war, und Myelomazellen einer
BALB/c-Maus erhalten. Besonders bevorzugte Myelomazellen sind
solche der MOPC-21-Linie, die Klon (P3×63 Ag8) genannt wird
und von Kohler et al in: Nature, 256, 495-497 (1975) offenbart
wurde.
Nachdem die Zellinien fusioniert wurden, werden
Klone, die für Tumor-Antigene spezifische Antikörper erzeugen,
zur Antikörpererzeugung ausgesucht oder selektiert.
Da nicht jede Hybridisierung zur Erzeugung desselben Antikörpers
führt, sind die aus den individuellen Klonen erzeugten Antikörper
unterschiedlich. Nicht alle Klone erzeugen Antikörper gegen
Tumor. Zum Beispiel erzeugten bei einer Untersuchung mit
SV40-Tumor-Antigen weniger als 10% der Klone Antitumor-
Antigen-Antikörper. Selbst unter den Klonen, die Antitumor-
Antigen-Antikörper erzeugten, wurden die Antikörper in Abhängigkeit
von verschiedenen Antigen-Determinanten erzeugt.
Einige der Hybride erzeugten Antikörper, die sowohl mit SV40-
Tumorantigen als auch mit dem verwandten BK-Virus-Tumor-Antigen
Kreuzungsreaktivität zeigten, während andere Hybride Antikörper
erzeugten, die auf SV40-Tumor-Antigen, nicht jedoch auf BK-
Tumor-Antigen ansprachen. Auf ähnliche Weise können Antitumor-
Antikörper erzeugende Klone ausgewählt werden, die Antikörper
erzeugen, welche verschiedene Grade der Selektivität für die
Tumorzellen aufweisen. Einige reagieren nur mit Zellen eines
spezifischen Tumors, während andere mit mehr als einem Tumortyp
reagieren. Eine solche Variationsbreite ist ein bedeutsames
Hilfsmittel für die medizinische Forschung sowie zur Bestimmung
von Kreuzungsreaktionsfähigkeiten zwischen verschiedenen Zelltypen.
Die Hybridzellen können in vitro gehalten werden oder
in vivo in einem gewebeverträglichen Tier oder in athymischen
nackten Mäusen gezüchtet werden, um große Mengen von Antikörpern
im Serum und der Aszitesflüssigkeit des Tieres anzusammeln. Die
Hybride können in den Wirt implantiert oder injiziert werden.
Die Antikörper können aus dem Kulturmedium oder aus dem Serum
bzw. der Aszitesflüssigkeit des Tieres auf bekannte Verfahren
gewonnen werden, vgl. z. B. Proc.Natl. Acad.Sci. USA, 75, 1510-
1514 (1978).
Im folgenden wird ein typisches Verfahren zur Erzeugung
einer Zellinie von Hybridzellen beschrieben. Jeder
Einzelschritt ist ein bekanntes Verfahren. Das hier beschriebene
Verfahren bezieht sich auf die Fusionierung von
Myelomazellen einer BALB/c-Maus mit den Milzzellen von
BALB/c-Mäusen, die mit Tumorzellen immunisiert wurden; es kann
jedoch auch mit anderen Myelomazellen und anderen Antitumor-
Antikörper erzeugenden Zellen angewandt werden. Ebenso wird
das Verfahren unter Verwendung eines speziellen Tumorstammes,
der durch Simianvirus 40 (SV40) induziert wurde, beschrieben;
es können aber auch andere Tumore verwendet werden. Tatsächlich
können irgendwelche Tumorzellen oder -Zellfragmente zur Immunisierung
verwendet werden. Die Zellsuspension oder die Zellfragmentsuspension
zur Injektion kann leicht nach bekannten
Verfahren hergestellt werden.
BALB/c-Mäuse werden durch intraperitoneale Injektionen
von wenigstens etwa 1×10⁶ Tumorzellen in Standardsuspension
oder in einem Gewebekulturmedium immunisiert. Nach einem Verfahren
werden die Tiere 4 bis 11mal in Abständen von etwa
einer Woche hyperimmunisiert. Nach einer anderen Methode werden
die Tiere einmal immunisiert und ein einziges Mal, zwei bis
vier Wochen nach der Immunisierung, einer Auffrischungsimmunisierung
unterzogen. Bei beiden Methoden werden die Tiere
zwei bis vier Tage nach der letzten Injektion getötet und ihre
Milz entnommen. Es wird eine Milzzellen-Suspension gemäß dem
Verfahren von Gerhard et al, Eur. J. Immunol., 5, 720-725 (1975),
hergestellt. Rote Blutkörperchen wurden durch 15minütige
Inkubation bei 4°C in NH₄Cl (0,83%) lysiert. Die erhaltene
Zellsuspension wurde durch einmaliges Zentrifugieren (800×g)
durch wärmeinaktiviertes Kalbsserum und einmaliges Zentrifugieren
in proteinfreiem Medium (RPMI 1640, mit 7,5 mM HEPES
gepuffert, pH 7,2) gewaschen. Der Tumor-Antigen Titer des von
den Milzspendern erhaltenen Serums liegt im allgemeinen oberhalb
etwa 1 : 10.
BALB/c (P3×63 Ag8) Myelomazellen, die von der MOPC-21
Linie abstammen und an Hypoxanthin-Phosphoribosyltransferase
(HPRT E.C.2.4.2.8) defizient waren, wie von Milstein in Nature,
256, 495-497 (1975) beschrieben, wurden im Kulturmedium, z. B.
Eagles minimal essentiellem Medium (MEM), das 10% fötales
Kalbs- und 10% Pferdeserum enthielt, gehalten. Das Wachstum von
P3×63 Ag8-Myelomazellen wird durch Hypoxanthin-Aminopterin-
Thymidin-Selektivmedium inhibiert.
Es werden Milzzellensuspensionen in Phosphatpuffersalzlösung
(PBS) hergestellt und die Erythrozyten durch
hypotonischen Schock entfernt. Die Milzzellen und die Myelomazellen
werden in Anwesenheit von Polyethylenglycol (PEG) 1000
fusioniert, wie von Koprowski et al in: Proc. Nat. Acad. Sci
USA, 74, 2985-2988, beschrieben. Nach der Fusionierung werden
die Zellen in Hypoxanthin-Aminopterin-Thymidin (HAT)-Selektivmedium
suspendiert, das von Littlefield in: Science, 145, 709-
710 (1964) beschrieben wird, und damit Kolben oder einzelne
Löcher von Gewebekulturschalen beimpft.
Antigenversuche sind dem Fachmann bekannt und können für die Zwecke der Erfindung in Bezug auf
Tumorzellen angewandt werden.
Die Ausscheidung von SV40-Tumorantigen wird z. B. durch
indirekte Immunofluoreszenz gemäß dem Verfahren von Pope et al
in: J. Exp. Med. 120, 121-128 (1964) festgestellt. Mit Aceton
fixierte Zellen werden mit Kontroll-Antitumor-Antigen-Antiserum
der Maus 30 Minuten lang behandelt, gewaschen, und dann mit
fluorescein-markiertem Anti-Maus-Immunoglobulin vom Kaninchen
umgesetzt. Ein erkennbares Muster von Kernfluoreszenz zeigt die
Anwesenheit von Tumorantigen an. Die Hybridzellen werden auf
die Erzeugung von Antitumor-Antigen-Antikörper getestet,
indem man das Kontroll-Antitumor-Antiserum bei Testzellen,
von denen bekannt ist, daß sie Tumor-Antigen-positiv sind,
durch Hybridoma-Kulturflüssigkeiten ersetzt. Der Antitumor-
Titer eines Serums oder einer Kulturflüssigkeit ist die
letzte Verdünnung, die 100%ige Anfärbung der Kerne von
SV40-umgeformten Zellen ergibt. Kulturflüssigkeiten aus
P3×63 Ag8-Myelomazellen der Maus enthalten keinerlei Anti-
SV40-Tumor-Antigen-Wirksamkeit. Ebenso sind Seren und Aszites
aus BALB/c-Mäusen, die P3×63 Ag8-Myeloma-Tumore haben, negativ
bezüglich der Anti-SV40-Antigen-Aktivität. BK-Virus-Tumor-
Antigen wird entsprechend dem oben beschriebenen Verfahren
festgestellt.
Das Vorliegen von Anti-Tumor-Antigenen kann durch
Radioimmuno-Versuch festgestellt werden. Kulturflüssigkeit
oder Serum oder Aszitesflüssigkeit von Mäusen, denen die
Hybriden injiziert sind, wird den Tumorzellen zugesetzt. Die
gebundenen Antikörper werden quantitativ durch ein Antiserum
gegen Maus-Immunoglobulin, das mit J¹²⁵ markiert ist, analysiert
(vgl. Cedurel und Croce, J. Immunol., 118, N. 6, 1951-
1956, Juni 1977).
Die folgenden Beispiele verdeutlichen die Erfindung.
An HPRT defiziente P3×63 Ag8-Myelomazellen der Maus
werden mit Milzzellen, die von BALB/c-Mäusen stammen, welche
mit C57SV-Zellen (Serie A17.2) hyperimmunisiert worden waren,
mit Milzzellen, die von C57BL/6J-Mäusen abstammen,
welche mit C57SV-Zellen (Serie A25.1) immunisiert worden waren,
und mit Milzzellen, die von BALB/c-Mäusen abstammen, die mit
MKSBu100 (Serie B16.1) immunisiert worden waren, fusioniert
(PEG-induzierte Fusion), wie in Tabelle I dargestellt. Bei
diesem Beispiel werden folgende Abkürzungen verwendet:
Abkürzung | |
Erklärung | |
LN-SV | |
SV40-transformierte Humanfibroblasten | |
HT1080-6TG | von humanem Fibrosarkom stammende Zellen |
HEK | Humanembryo-Nierenzellen |
F5-1 | SV40-transformierte Fibroblasten des syrischen Hamsters |
B1 | Fibroblasten vom syrischen Hamster |
C57SV | SV40-transformierte Fibroblasten der Maus, Stamm C57BL |
C57MEF | C57BL-Embryofibroblasten |
MKSBu100 | SV40-transformierte BALB/c-Nierenzellen |
BALB MEF | BALB/c-Embryofibroblasten |
BALB 3T3 | BALB/c-Embryofibroblasten |
HKBK-DNA-4 | Nierenzellen vom syrischen Hamster, transformiert durch BK-Virus DNA |
Zwei bis drei Wochen nach der Fusionierung erschienen
Hybridzellen, die in HAT-Selektivmedium gezüchtet waren, und
wurden wöchentlich in HAT-Selektivmedium in Tochterkultur
weitergezüchtet. 146 unabhängige Hybridzellen-Kulturen von
20 verschiedenen Fusionen wurden erhalten und dann auf die
Erzeugung von Antikörpern, die für SV40-Tumorantigen spezifisch
sind, getestet.
Es wurde festgestellt, daß nur 13 der 146 Hybridzell-
Kulturen, von denen 10 unabhängig aus demselben Fusionierungsversuch
(B16.1) stammten, Antikörper gegen SV40-Tumorantigen
erzeugten.Wie in Tabelle I dargestellt wird, reagierten die
Antikörper, die durch die Hybridomen erzeugt worden waren, und ein Kontroll-Antiserum
der Maus, das gegen SV40-Tumorantigen gezüchtet war,
mit SV40-transformierten Zellen vom Menschen, Hamster und
von der Maus, wie durch indirekte Immunofluoreszenz festgestellt
wurde, jedoch nicht mit normalen oder malignen Zellen, die
von denselben Spezies stammten.
Um festzustellen, ob die Antikörper, die durch die
Hybridome des Beispiels I erzeugt wurden, mit dem Tumor-
Antigen von BK-Virus Kreuzungsreaktivität aufzeigten, wurden
Kulturflüssigkeiten, die von 11 verschiedenen Hybridzellen
und dem Serum einer Maus, der eine zusätzliche Hybridzelle
injiziert worden war, auf Anwesenheit von Anti-SV40- und
BK-Virus-Tumor-Antigen-Antikörper unter Verwendung von SV40-
umgewandelten Humanzellen (LN-SV) und mit BK-Virus-DNA umgewandelten
Hamsternierenzellen (HKBK-DNA-4) als Testzellen getestet.
Wie in Tabelle II dargestellt, zeigten nur 4 der
Hybridoma-Antikörper Kreuzungsreaktivität mit BK-Virus-Tumor-
Antigen, obwohl, wie im Fall des Kontrollserums, die Intensität
der Fluoreszenz allgemein schwächer war. Die Hybridkulturen A25.1 Nr. 1B3, B16.1 Nr. A2, B16.1 Nr. C4 und
B16.1 Nr. D5 erläutern also das erfindungsgemäße Verfahren.
Die Tatsache, daß die Erzeugung von Antikörpern durch unterschiedliche antigenische
Determinanten ausgelöst werden, von denen nur einige
sowohl beim SV40-Tumor-Antigen als auch beim BK-Virus-Tumor-
Antigen vorhanden sind, ist für ihre immunologische und biochemische
Charakterisierung sehr nützlich.
Die Hybridomen (wenigstens etwa 10⁵ Zellen) wurden in
einen syngenischen Wirt (d. h. denselben Mäusestamm,
von dem die Milzzellen erhalten worden waren) injiziert. Nachdem man
die injizierten Zellen im Wirt etwa 4 bis 8 Wochen lang gezüchtet
hatte, wurde der Anti-SV40-Antigen-Antikörper-Titer
des Serums und der Aszites gemessen. Diese Titer sind ebenso
wie der Antikörper-Titer der Kulturflüssigkeit in Tabelle 3
wiedergegeben. Wie Tabelle 3 zeigt, wurden sehr hohe Antikörper-
Titer erhalten.
Von menschlichen Melanomen und menschlichen Kolon-
Rektalkarzinomen gewonnene Zellen, die in Gewebekultur gemäß
Cancer Research, 36, 4562-4569 (1976) gezüchtet waren,
sowie Hybridkulturen zwischen einem menschlichen Melanom
und Fibroblastenzellen (IT22) der Maus wurden zur Immunisierung
von Mäusen verwendet. Die Mäuse wurden mit einer ersten
intraperitonealen Injektion von 3×10⁷ lebenden Tumorzellen
und einer zweiten intravenösen Auffrischungsimpfung von 1×
10⁶ lebenden Tumorzellen etwa 2 Wochen später immunisiert.
Milzzellen von Mäusen, die etwa 3 Tage nach der zweiten Auffrischungsimpfung
getötet wurden, wurden zur Bildung von
Hybridkulturen gemäß dem oben beschriebenen typischen Verfahren
verwendet.
Von 29 Hybridkulturen, die nach der Fusionierung von
Milzzellen von Mäusen, die mit menschlichen Melanomzellen
immunisiert worden waren, erhalten worden waren, schieden
9 Antikörper aus, die im Radioimmunoversuch mit Humanmelanomen
reagierten. Nachdem die Mäuse mit Human-Kolon-Rektalkarzinomen
immunisiert worden waren, erzeugten 3 von 8 Kulturen Anti-
Kolon-Rektalkarzinom-Antikörper. Die Ergebnisse dieses Versuchs
und die Kreuzungsreaktionsfähigkeit der erzeugten Antikörper
werden in Tabelle 4 dargestellt. Die Zahlen und Buchstaben,
die im Kopf der Tabelle angeführt werden, beziehen sich
auf Individuen.
Wie man Tabelle 4 entnehmen kann, reagierte nur ein
Anti-Melanom-Antikörper erzeugendes Hybridoma (Nr. 13)
gegen Melanom, jedoch nicht gegen Kolon-Rektal-Karzinom
oder normale Humanzellen. Ein weiteres (Nr. 6) reagierte
gegen alle Melanome, jedoch nicht gegen normale Humanzellen.
Hybridoma Nr. 6 erläutert das erfindungsgemäße Verfahren. Zwei Melanom×IT22 Hybridome erzeugten Antikörper, die
gegen einige Melanome, nicht jedoch gegen Kolon-Rektal-
Karzinom oder normale Humanzellen reagierten.
Das Wachstum von Melanom-Tumoren bei nackten Mäusen
wurde durch vorherige Implantation von Hybridoma-erzeugenden
Anti-Melanom-Antikörpern unterdrückt, und Sera, die von
diesen Mäusen erhalten wurden, zeigten eine 500-1000fache
Erhöhung der Bindungskapazität an Melanomzellen gegenüber
Gewebekulturmedien.
Zwar waren Versuche, die antigenischen Determinanten
für Krebszellen zu identifizieren, bisher im allgemeinen
erfolglos; jedoch läßt die Erzeugung von Hybridkulturen, die
Antikörper gegen beliebige Human-Melanome oder Kolon-Rektal-
Karzinome ausscheiden, eine Prüfung von kreuzungsreaktiven
Spezifitäten zwischen menschlichen Tumorzellen und normalen
Zellen zu. So stellt die Erzeugung eines Spektrums von spezifischen
Antikörpern durch Antitumor-Antikörper erzeugende Hybridome
sowohl ein nützliches analytisches als auch ein nützliches
diagnostisches Hilfsmittel zur Verfügung.
Die Antikörper, die von den erfindungsgemäßen Hybridomen
erzeugt werden, können als diagnostische Hilfe verwendet
werden, indem man das Blut oder die Körperflüssigkeit eines
Patienten überprüft, um festzustellen, ob antigene Eigenschaften
eines malignen Tumors vorliegen. Wenn das Antigen anwesend
ist, kann dem Patienten ein Antikörper als Unterstützung zur
Reaktion mit dem Antigen injiziert werden.
Claims (10)
1. Verfahren zur Erzeugung von Antikörpern gegen maligne Tumoren,
wobei man ein Tier mit Antigenen immunisiert, fusionierte Zellhybride
zwischen Antikörper erzeugenden Zellen von dem Tier und Myelomazellen
bildet, die Hybriden klont und die Antikörper erzeugenden Klone
aussucht und diese züchtet, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Tier
mit Tumorzellen als Antigen immunisiert. und die erhaltenen Klone auf
Reaktivität gegenüber verschiedenen Tumorzellen und normalen Zellen
überprüft und nur solche Klone selektiert,
die Antikörper erzeugen, die
mit mehr als einem Tumortypus reagieren
und mit normalen Zellen nicht reagieren.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man
als Antikörper erzeugende Zellen des Tieres Milzzellen oder
Lymphknotenzellen verwendet.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet,
daß man als Tier Mäuse oder Ratten verwendet.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet,
daß man das Tier mit Human-Tumorzellen immunisiert.
5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß man
Tumorzellen eines Melanoms verwendet.
6. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß man
Tumorzellen eines Kolon-Rektalkarzinoms verwendet.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet,
daß man die Antikörper erzeugenden Klone in einem
Hypoxanthin-Aminopterin-Thymidin enthaltenden Medium züchtet.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet,
daß man Antikörper erzeugende Zellen und Myelomazellen
der Maus verwendet.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 6 oder 8, dadurch
gekennzeichnet, daß man die Antikörper erzeugenden Klone
in ein gewebeverträgliches Tier oder in athymische nackte
Mäuse einführt und in vivo züchtet.
10. Verfahren nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, daß man
BALB/c-Mäuse verwendet.
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