DE102005046490A1

DE102005046490A1 - Modifikationen von RNA, die zu einer erhöhten Transkriptstabilität und Translationseffizienz führen

Info

Publication number: DE102005046490A1
Application number: DE102005046490A
Authority: DE
Inventors: Ugur Dr. Sahin; Silke Holtkamp; Özlem Dr. Türeci; Sebastian Dr. Kreiter
Original assignee: Johannes Gutenberg Universitaet Mainz
Current assignee: Biontech SE
Priority date: 2005-09-28
Filing date: 2005-09-28
Publication date: 2007-03-29
Also published as: JP6058928B2; ES2467678T3; JP2009509516A; JP5435949B2; SI1934345T1; EP1934345A2; US20190062762A1; US20230193296A1; DK2357230T3; HK1155477A1; HRP20120480T1; AU2006296702A1; ES2384113T9; CA2621444C; EP2357230B1; WO2007036366A8; RS52353B; EP2357230A1; PL2357230T3; RS53351B

Abstract

Die vorliegende Erfindung betrifft eine Stabilisierung von RNA, insbesondere mRNA, und eine Steigerung der Translation von mRNA. Insbesondere betrifft die vorliegende Erfindung drei Modifikationen von RNA, insbesondere in vitro transkribierter RNA, die zu einer erhöhten Transkriptstabilität und Translationseffizienz führen.

Description

Konventionelle Impfstoffe, einschließlich der attenuierten oder inaktivierten Pathogene, sind in vielen Bereichen wirksam, vermitteln aber dennoch gegen einige infektiöse Pathogene und Tumore keine wirksam schützende Immunität. Es sind Impfstoffe erforderlich, die wirksam, vielseitig, schnell und günstig in der Herstellung und einfach zu lagern sind.

Nachdem gezeigt werden konnte, dass die direkte intramuskuläre Injektion von Plasmid-DNA zu langanhaltender Expression der kodierten Gene auf der Zelloberfläche führt (Wolff et al., 1990), wurden auf DNA basierte Impfstoffe als neue, vielversprechende Immunisierungsstrategie angesehen. Dies war ein bedeutender Ansporn, um auf Nukleinsäuren basierte Impfstoffe zu entwickeln. Zunächst wurden auf DNA basierte Impfstoffe gegen infektiöse Pathogene erprobt (Cox et al., 1993; Davis et al., 1993; Ulmer et al., 1993; Wang et al., 1993), bald aber auch in der Gentherapie gegen Tumore weiter erforscht, um eine spezifische Antitumor-Immunität zu induzieren (Conry et al., 1994; Conry et al., 1995a; Spooner et al., 1995; Wang et al., 1995). Diese Strategie der Tumorimmunisierung hat eine Reihe von entscheidenden Vorteilen. Auf Nukleinsäure basierte Impfstoffe sind einfach in der Herstellung und relativ kostengünstig. Sie können außerdem aus einer geringen Zellzahl amplifiziert werden.

DNA ist stabiler als RNA, birgt aber einige potentielle Sicherheitsrisiken wie die Induktion von anti-DNA-Antikörpern (Gilkeson et al., 1995) und die Integration des Transgens ins Wirtsgenom. Dies kann zur Inaktivierung zellulärer Gene, einer unkontrollierbaren Langzeit-Expression des Transgens oder Onkogenese führen und ist daher für tumorassoziierte Antigene mit onkogenem Potential wie z.B. erb-B2 (Bargmann et al., 1986) und p53 (Greenblatt et al., 1994) im Allgemeinen nicht anwendbar. Um diese potentiellen Gefahren zu umgehen, bietet der Gebrauch von RNA eine attraktive Alternative.

Zu den Vorteilen der Verwendung von RNA als einer Art reversiblen Gentherapie zählt die vorübergehende Expression und der nicht transformierende Charakter. Die RNA muss nicht in den Kern gelangen, um transgen exprimiert zu werden und kann außerdem nicht ins Wirtsgenom integrieren, wodurch das Risiko einer Onkogenese eliminiert ist. Wie mit DNA (Condon et al., 1996; Tang et al., 1992) können auch durch die Injektion von RNA sowohl die zelluläre als auch die humorale Immunantwort in vivo induziert werden (Hoerr et al., 2000; Ying et al., 1999).

Für die Immuntherapie mit in vitro transkribierter RNA (IVT-RNA) werden zwei unterschiedliche Strategien verfolgt, die beide in verschiedenen Tiermodellen erfolgreich getestet werden konnten. Entweder wird die RNA über unterschiedliche Immunisierungsrouten direkt injiziert (Hoerr et al., 2000) oder Dendritische Zellen (DCs) werden durch Lipofektion oder Elektroporation mit in vitro transkribierter RNA transfiziert und dann appliziert (Heiser et al., 2000). In kürzlich erschienenen Studien konnte gezeigt werden, dass die Immunisierung mit RNA-transfizierten DCs antigenspezifische cytotoxische 7-Lymphozyten (CTL) in vitro und in vivo induziert (Su et al., 2003; Heiser et al., 2002). Für die optimale Induktion der T-Zell-vermittelten Immunantworten ist unter anderem die Dosis, d.h. die Dichte der Antigen-Präsentation auf den DCs von zentraler Bedeutung.

Mit dem Ziel, eine verlängerte Expression von transferierter IVT-RNA und damit eine erhöhte Antigenpräsentation auf DCs zu erreichen, wurde versucht, IVT-RNA durch verschiedene Modifikationen zu stabilisieren. Eine Grundvoraussetzung für die Translation ist das Vorhandensein einer 3'-Poly(A)-Sequenz, wobei die Translationseffizienz mit der Poly(A)-länge korreliert (Preis and Hentze, 1998). Durch das 5'-Cap und die 3'-Poly(A)-Sequenz wird die Translation in vivo synergistisch aktiviert (Gallie, 1991). Nicht-translatierte Regionen (UTR) von Globin-Genen sind weitere bekannte Elemente, die zur Stabilisierung von RNA und zu einer Erhöhung der Translationseffizienz beitragen können (Malone et al., 1989).

Aus der Literatur sind einige IVT-Vektoren bekannt, die standardisiert als Matrize für die in vitro-Transkription genutzt werden und gentechnisch so modifiziert worden sind, dass stabilisierte RNA-Transkripte resultieren. Aktuell in der Literatur beschriebene Protokolle (Conry et al.,1995b; Teufel et al., 2005; Strong et al., 1997; Carralot et al., 2004; Boczkowski et al., 2000) basieren auf einem Plasmid-Vektor mit folgender Struktur: ein 5'-gelegener RNA-Polymerase-Promoter, der die Transkription von RNA ermöglicht, gefolgt vom einem interessierenden Gen („gene of interest"), das entweder 3' und/oder 5' von nicht-translatierten Regionen (UTR) flankiert wird und 3' eine Polyadenylkassette mit 50–70 A-Nukleotiden.

Vor der in vitro Transkription wird das zirkuläre Plasmid durch Restriktionsenzyme vom Typ II (Erkennungssequenz entspricht der Schnittstelle) hinter der Polyadenylkassette linearisiert. Die Polyadenylkassette entspricht damit der späteren Poly(A)-Sequenz im Transkript. Als Folge dieses Vorgehens bleiben einige Nukleotide als Teil der Enzymschnittstelle nach der Linearisierung zurück und verlängern bzw. verdecken die Poly(A)-Sequenz am 3' Ende. Unklar ist, ob dieser unphysiologische Überhang einen Einfluss auf die Menge des Proteins hat, welches intrazellulär von einem solchen Konstrukt gebildet wird.

Somit scheint RNA besonders gut für klinische Anwendungen geeignet zu sein. Der Gebrauch von RNA in der Gentherapie wird aber vor allem durch die kurze Halbwertszeit von RNA insbesondere im Zytoplasma stark eingeschränkt, was eine geringe Proteinexpression zur Folge hat.

Es war die Aufgabe der vorliegenden Erfindung, RNA mit erhöhter Stabilität und Translationseffizienz und Mittel für eine Gewinnung derartiger RNA bereitzustellen. Durch Verwendung dieser RNA bei gentherapeutischen Ansätzen sollen gesteigerte Expressionsraten erzielbar sein.

Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß durch den Gegenstand der Patentansprüche gelöst.

Erfindungsgemäß wurde festgestellt, dass RNA mit einer offen endenden Poly(A)-Sequenz effizienter translatiert wird als RNA mit einer verdeckt endenden Poly(A)-Sequenz. Ferner wurde festgestellt, das eine lange Poly(A)-Sequenz, insbesondere von etwa 120 bp, zu einer optimalen Transkriptstabilität und Translationseffizienz von RNA führt. Auch konnte erfindungsgemäß gezeigt werden, dass eine doppelte 3'-nicht translatierte Region (UTR), insbesondere des humanen Beta-Globin-Gens, in einem RNA-Molekül zu einer Verbesserung der Translationseffizienz führt, die über den Summationseffekt, der mit zwei einzelnen UTR zu erwarten ist, deutlich hinaus geht. Erfindungsgemäß stellte sich heraus, dass eine Kombination der vorstehend beschriebenen Modifikationen einen synergistischen Einfluss auf die Stabilisierung der RNA und die Erhöhung der Translation hat.

Vorzugsweise wird erfindungsgemäß eine Modifizierung und dadurch Stabilisierung und/oder Steigerung der Translationseffizienz von RNA dadurch erreicht, dass Expressionsvektoren gentechnisch modifiziert werden, die vorzugsweise als Matrize für die in vitro-Transkription von RNA dienen.

Solche Vektoren sollen insbesondere die Transkription von RNA mit einer Poly(A)-Sequenz erlauben, wobei die Poly(A)-Sequenz vorzugsweise in der RNA ein offenes Ende aufweist, d.h. keine von A-Nukleotiden verschiedene Nukleotide die Poly(A)-Sequenz an ihrem 3'-Ende flankieren. Eine offen endende Poly(A)-Sequenz in der RNA kann dadurch erreicht werden, dass in einen Expressionsvektor, welcher die Transkription von RNA unter der Kontrolle eines 5' gelegenen RNA-Polymerase-Promotors erlaubt und eine Polyadenylkassette (Poly(A)-Sequenz) enthält, eine Restriktionsschnittstelle vom Typ IIs eingebracht wird, wobei die Erkennungssequenz 3' von der Poly(A)-Sequenz liegt, während die Schnittstelle stromaufwärts und damit innerhalb der Poly(A)-Sequenz liegt. Durch Restriktionsspaltung an der Restriktionsschnittstelle vom Typ IIS wird bei einem Plasmid eine Linearisierung des Plasmids innerhalb der Poly(A)-Sequenz möglich (2). Das linearisierte Plasmid kann dann als Matrize für eine in vitro-Transkription verwendet werden, wobei das resultierende Transkript mit einer unverdeckten Poly(A)-Sequenz endet.

Weiterhin oder alternativ kann erfindungsgemäß eine Modifizierung und dadurch Stabilisierung und/oder Steigerung der Translationseffizienz von RNA dadurch erreicht werden, dass Expressionsvektoren gentechnisch derart modifiziert werden, dass sie die Transkription von RNA mit zwei oder mehreren 3'-nicht translatierten Regionen an ihrem 3'-Ende und vorzugsweise zwischen der für ein Peptid oder Protein kodierenden Sequenz (offenes Leseraster) und der Poly(A)-Sequenz erlauben.

In einem Aspekt betrifft die Erfindung ein Nukleinsäuremolekül, umfassend in 5'→3'-Richtung der Transkription: (a) einen Promotor; (b) eine transkribierbare Nukleinsäuresequenz oder eine Nukleinsäuresequenz für ein Einbringen einer transkribierbaren Nukleinsäuresequenz; (c-1) eine erste Nukleinsäuresequenz, die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist; und (c-2) eine zweite Nukleinsäuresequenz, die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist.

Das erfindungsgemäße Nukleinsäuremolekül umfasst in einer Ausführungsform ferner (c-3) mindestens eine weitere Nukleinsäuresequenz, die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist.

In dem erfindungsgemäßen Nukleinsäuremolekül sind die Nukleinsäuresequenzen (b), (c-1), (c-2) und gegebenenfalls (c-3) unter Kontrolle des Promotors (a) vorzugsweise in ein gemeinsames Transkript transkribierbar und in dem gemeinsamen Transkript sind die von den Nukleinsäuresequenzen (c-1) und/oder (c-2) und/oder gegebenenfalls (c-3) transkribierten Nukleinsäuresequenzen vorzugsweise wirksam, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der transkribierbaren Nukleinsäuresequenz (b) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.

Die Nukleinsäuresequenzen (c-1), (c-2) und gegebenenfalls (c-3) können gleich oder verschieden sein.

In einer Ausführungsform umfasst das Nukleinsäuremolekül ferner (d) eine Nukleinsäuresequenz, die bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.

Die Nukleinsäuresequenzen (b), (c-1), (c-2), gegebenenfalls (c-3), und (d) sind unter Kontrolle des Promotors (a) vorzugsweise in ein gemeinsames Transkript transkribierbar und in dem gemeinsamen Transkript sind die von den Nukleinsäuresequenzen (c-1) und/oder (c-2) und/oder gegebenfalls (c-3) und/oder (d) transkribierten Nukleinsäuresequenzen vorzugsweise wirksam, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der transkribierbaren Nukleinsäuresequenz (b) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.

In bestimmten Ausführungsformen kodiert die Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript. Vorzugsweise kodiert die Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript.

In einer Ausführungsform ist das Nukleinsäuremolekül dadurch gekennzeichnet, dass es innerhalb der Nukleinsäuresequenz (d) vorzugsweise enzymatisch oder anderweitig biochemisch derart spaltbar ist, dass durch die Spaltung ein Nukleinsäuremolekül entsteht, das in 5'→3'-Richtung der Transkription den Promotor (a), die Nukleinsäuresequenz (b), die Nukleinsäuresequenzen (c-1), (c-2) und gegegenenfalls (c-3), und zumindest einen Teil der Nukleinsäuresequenz (d) umfasst, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert und das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.

Vorzugsweise weist das Nukleinsäuremolekül nach der Spaltung am Ende des Stranges, der als Matrize für die Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden dient, ein T-Nukleotid auf, das Teil der Nukleotidsequenz ist, die als Matrize für die Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript dient.

In bestimmten Ausführungsformen kodiert der zumindest Teil der Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript. Vorzugsweise kodiert die Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript.

Das erfindungsgemäße Nukleinsäuremolekül liegt vor der Spaltung vorzugsweise als kreisförmig geschlossenes Molekül und nach der Spaltung als lineares Molekül vor.

Vorzugsweise erfolgt die Spaltung mit Hilfe einer Restriktionsschnittstelle, wobei die Restriktionsschnittstelle vorzugsweise eine Restriktionsschnittstelle für eine Restriktions-Endonuklease des Typs IIS ist.

Die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS liegt in einer Ausführungsform stromabwärts und 5–26 Basenpaare, vorzugsweise 24–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz (d).

In bevorzugten Ausführungsformen sind die Nukleinsäuresequenzen (c-1), (c-2) und gegebenenfalls (c-3) unabhängig voneinander von einem Gen abgeleitet, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus Globin-Genen wie alpha2-Globin, alpha1-Globin, beta-Globin, und Wachstumshormon, vorzugsweise humanem beta-Globin, und entsprechen in einer besonders bevorzugten Ausführungsform der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 des Sequenzprotokolls oder einer davon abgeleiteten Nukleinsäuresequenz.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Nukleinsäuremolekül, umfassend in 5'→3'-Richtung der Transkription: (a) einen Promotor; (b) eine transkribierbare Nukleinsäuresequenz oder eine Nukleinsäuresequenz für ein Einbringen einer transkribierbaren Nukleinsäuresequenz; und (c) eine Nukleinsäuresequenz, die bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.

Die Nukleinsäuresequenzen (b) und (c) sind unter Kontrolle des Promotors (a) vorzugsweise in ein gemeinsames Transkript transkribierbar und in dem gemeinsamen Transkript ist die von der Nukleinsäuresequenz (c) transkribierte Nukleinsäuresequenz vorzugsweise wirksam, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der transkribierbaren Nukleinsäuresequenz (b) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.

In bestimmten Ausführungsformen kodiert die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript. Vorzugsweise kodiert die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript.

Das Nukleinsäuremolekül ist in einer Ausführungsform innerhalb der Nukleinsäuresequenz (c) vorzugsweise enzymatisch oder anderweitig biochemisch derart spaltbar, dass durch die Spaltung ein Nukleinsäuremolekül entsteht, das in 5'→3'-Richtung der Transkription den Promotor (a), die Nukleinsäuresequenz (b) und zumindest einen Teil der Nukleinsäuresequenz (c) umfasst, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert und das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.

In bestimmten Ausführungsformen kodiert der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript. Vorzugsweise kodiert die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript.

Das Nukleinsäuremolekül liegt vor der Spaltung vorzugsweise als kreisförmig geschlossenes Molekül und nach der Spaltung als lineares Molekül vor.

Die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS liegt in einer Ausführungsform stromabwärts und 5–26 Basenpaare, vorzugsweise 24–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz (c).

In einem erfindungsgemäßen Nukleinsäuremolekül umfasst die transkribierbare Nukleinsäuresequenz vorzugsweise eine für ein Peptid oder Protein kodierende Nukleinsäuresequenz und die Nukleinsäuresequenz für ein Einbringen einer transkribierbaren Nukleinsäuresequenz ist vorzugsweise eine multiple Klonierungsstelle.

Ferner kann ein erfindungsgemäßes Nukleinsäuremolekül ein oder mehrere Mitglieder umfassen, ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus: (i) einem Reportergen; (ii) einem selektierbaren Marker; und (iii) einem Replikationsursprung.

Ein erfindungsgemäßes Nukleinsäuremolekül liegt in einer Ausführungsform in einer kreisförmig geschlossenen Konformation vor und ist vorzugsweise insbesondere nach einer Linerarisierung für die in vitro-Transkription von RNA, insbesondere mRNA, geeignet.

In weiteren Aspekten betrifft die Erfindung ein Nukleinsäuremolekül, das durch Linearisierung eines vorstehend beschriebenen Nukleinsäuremoleküls, vorzugsweise durch Spaltung innerhalb der Nukleinsäuresequenz, die für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, erhältlich ist, und RNA, die durch Transktription, vorzugsweise in vitro-Transkription, mit vorstehend beschriebenen Nukleinsäuremolekülen unter Kontrolle des Promotors (a) erhältlich ist.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur in vitro-Transkription eines ausgewählten RNA-Moleküls, um dessen Stabilität und/oder Translationseffizienz zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz (a), die in das RNA-Molekül transkribierbar ist, (ii) Koppeln einer zweiten Nukleinsäuresequenz (b-2), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende der ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), und (iii) in vitro-Transkription der erhaltenen Nukleinsäure.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Translation eines ausgewählten mRNA-Moleküls, um dessen Expression zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz (a), die in das mRNA-Molekül transkribierbar ist, (ii) Koppeln einer zweiten Nukleinsäuresequenz (b-2), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende der ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), und (iii) Translatieren der mRNA, die durch Transkription der erhaltenen Nukleinsäure erhältlich ist. Vorzugsweise erfolgt die Transkription in vitro.

Erfindungsgemäß betrifft der Begriff „Koppeln einer Nukleinsäuresequenz an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz" eine kovalente Verbindung der zwei Nukleinsäuresequenzen, so dass die erste Nukleinsäuresequenz stromabwärts zu der zweiten Nukleinsäuresequenz liegt und von dieser durch zusätzliche Nukleinsäuresequenzen getrennt sein kann.

In einer Ausführungsform umfassen die erfindungsgemäßen Verfahren ferner ein Koppeln mindestens einer weiteren Nukleinsäuresequenz (b-3), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende der zweiten Nukleinsäuresequenz (b-2).

Die Nukleinsäuresequenzen (a), (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3) sind vorzugsweise in ein gemeinsames Transkript transkribierbar und in dem gemeinsamen Transkript sind die von den Nukleinsäuresequenzen (b-1) und/oder (b-2) und/oder gegebenenfalls (b-3) transkribierten Nukleinsäuresequenzen vorzugsweise wirksam, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.

In einer weiteren Ausführungsform umfassen die erfindungsgemäßen Verfahren ferner ein Koppeln einer Nukleinsäuresequenz (c), die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, an dem 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz (b-2) oder gegebenenfalls der Nukleinsäuresequenz (b-3).

Die Nukleinsäuresequenzen (a), (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3), und (c) sind vorzugsweise in ein gemeinsames Transkript transkribierbar und in dem gemeinsamen Transkript sind die von den Nukleinsäuresequenzen (b-1) und/oder (b-2) und/oder gegebenenfalls (b-3) und/oder (c) transkribierten Nukleinsäuresequenzen vorzugsweise wirksam, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.

In bestimmten Ausführungsformen kodiert die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript. Vorzugsweise kodiert die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript.

In bestimmten Ausführungsformen umfassen die erfindungsgemäßen Verfahren ferner vor einer Transkription der erhaltenen Nukleinsäure eine Spaltung innerhalb der Nukleinsäuresequenz (c), so dass bei einer Transkription der so erhaltenen Nukleinsäure ein Transkript erzeugt wird, das die von den Nukleinsäuresequenzen (a), (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3) transkribierten Nukleinsäuresequenzen und an seinem 3'-Ende eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist, wobei das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.

In bestimmten Ausführungsformen weist das Transkript an seinem 3'-Ende eine Nukleotidsequenz von mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden auf. Vorzugsweise weist das Transkript an seinem 3'-Ende eine Nukleotidsequenz von bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden auf.

In bevorzugten Ausführungsformen sind die Nukleinsäuresequenzen (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3) unabhängig voneinander vorzugsweise von einem Gen abgeleitet, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus Globin-Genen wie alpha2-Globin, alpha1-Globin, beta-Globin, und Wachstumshormon, vorzugsweise humanem beta-Globin, und entsprechen in einer besonders bevorzugten Ausführungsform der Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ ID NO: 1 des Sequenzprotokolls oder einer davon abgeleiteten Nukleinsäuresequenz.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur in vitro-Transkription eines ausgewählten RNA-Moleküls, um dessen Stabilität und/oder Translationseffizienz zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer Nukleinsäuresequenz (b), die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz (a), die in das RNA-Molekül transkribierbar ist, und (ii) in vitro-Transkription der erhaltenen Nukleinsäure.

In einem weiteren Aspekt betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Translation eines ausgewählten mRNA-Moleküls, um dessen Expression zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer Nukleinsäuresequenz (b), die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von midestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz (a), die in das mRNA-Molekül transkribierbar ist, und (ii) Translatieren der mRNA, die durch Transkription der erhaltenen Nukleinsäure erhältlich ist. Die Transkription erfolgt vorzugsweise in vitro.

Die Nukleinsäuresequenzen (a) und (b) sind vorzugsweise in ein gemeinsames Transkript transkribierbar und in dem gemeinsamen Transkript ist die von der Nukleinsäuresequenz (b) transkribierte Nukleinsäuresequenz vorzugsweise wirksam, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.

In bestimmten Ausführungsformen kodiert die Nukleinsäuresequenz (b) bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript. Vorzugsweise kodiert die Nukleinsäuresequenz (b) bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript.

In bestimmten Ausführungsformen umfassen die erfindungsgemäßen Verfahren ferner vor einer Transkription der erhaltenen Nukleinsäure eine Spaltung innerhalb der Nukleinsäuresequenz (b), so dass bei einer Transkription der so erhaltenen Nukleinsäure ein Transkript erzeugt wird, das die von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierte Nukleinsäuresequenzen und an seinem 3'-Ende eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist, wobei das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.

Die Spaltung erfolgt in den erfindungsgemäßen Verfahren gemäß aller Aspekte vorzugsweise mit Hilfe einer Restriktionsschnittstelle, die vorzugsweise eine Restriktionsschnittstelle für eine Restriktions-Endonuklease des Typs IIS ist.

In einer Ausführungsform liegt die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS stromabwärts und 5–26 Basenpaare, vorzugsweise 24–26 Basenpaare, entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz, die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert.

Die Erfindung betrifft auch RNA, die duech die erfindungsgemäßen Verfahren zur in vitro-Transkription eines ausgewählten RNA-Moleküls erhältlich ist.

Die Erfindung kann beispielsweise zur Erhöhung der Expression rekombinanter Proteine bei einer zellulären Transkription und Expression genutzt werden. Insbesondere können bei einer Produktion von rekombinanten Proteinen die erfindungsgemäß beschriebenen Modifikationen sowie eine Kombination davon in Expressionsvektoren eingebracht werden und dazu genutzt werden, die Transkription von rekombinanten Nukleinsäuren und Expression von rekombinanten Proteinen in zellbasierten Systemen zu erhöhen. Hierzu zählt z.B. die Herstellung von rekombinanten Antikörpern, Hormonen, Zytokinen, Enzymen u.a. Dies erlaubt unter anderem die Senkung von Produktionskosten.

Ferner können die erfindungsgemäß beschriebenen Modifikationen sowie eine Kombination davon für gentherapeutische Anwendungen genutzt werden. Die Modifikationen können in Gentherapievektoren eingebracht werden und somit für eine Erhöhung der Expression eines Transgens genutzt werden. Hierfür können jegliche auf Nukleinsäuren (DNA/RNA) basierende Vektorsysteme (z.B. Plasmide, Adenoviren, Poxvirusvektoren, Influenzavirusvektoren, Alphavirusvektoren u.a.) verwendet werden. Die Transfektion von Zellen mit diesen Vektoren kann in vitro, z.B. in Lymphozyten oder Dendritische Zellen, oder auch in vivo durch direkte Applikation erfolgen.

Ferner kann durch die erfindungsgemäß beschriebenen Modifikationen sowie eine Kombination davon die Stabilität und/oder Expressionseffizienz von Ribonukleinsäuren und somit die Menge der von diesen Ribonukleinsäuren kodierten Peptide oder Proteine gesteigert werden. Kodierende Ribonukleinsäuren können beispielsweise zur transienten Expression von Genen eingesetzt werden, wobei mögliche Anwendungsgebiete auf RNA basierende Impfstoffe, die in vitro in Zellen transfiziert bzw. direkt in vivo appliziert werden, eine transiente Expression von funktionellen rekombinanten Proteinen in vitro, z.B. um Differenzierungsvergänge in Zellen zu initiieren oder Funktionen von Proteinen zu untersuchen, und eine transiente Expression von funktionellen rekombinanten Proteinen wie Erythropoietin, Hormone, Gerinnungshemmer etc., in vivo, insbesondere als Pharmazeutika, sind.

Detaillierte Beschreibung der Erfindung

Erfindungsgemäß können Standardverfahren für eine Herstellung von rekombinanten Nukleinsäuren, Kultivierung von Zellen und Einbringen von Nukleinsäuren, insbesondere RNA, in Zellen, insbesondere Elektroporation und Lipofektion, verwendet werden. Enzymatische Reaktionen erfolgen gemäß Herstellerangaben oder in an sich bekannter Weise.

Ein Nukleinsäuremolekül oder eine Nukleinsäuresequenz betrifft erfindungsgemäß eine Nukleinsäure, die vorzugsweise Desoxyribonukleinsäure (DNA) oder Ribonukleinsäure (RNA) ist. Nukleinsäuren umfassen erfindungsgemäß genomische DNA, cDNA, mRNA, rekombinant hergestellte und chemisch synthetisierte Moleküle. Eine Nukleinsäure kann erfindungsgemäß als einzelsträngiges oder doppelsträngiges und lineares oder kovalent kreisförmig geschlossenes Molekül vorliegen.

"mRNA" bedeutet "messenger-RNA" und betrifft ein "Transkript", das unter Verwendung von DNA als Matrize produziert wird und selbst für ein Peptid oder Protein kodiert. Eine mRNA umfasst typischerweise eine 5'-nicht-translatierte Region, eine Protein-kodierende Region und eine 3'-nicht-translatierte Region. mRNA hat eine begrenzte Halbwertszeit in Zellen und in vitro. Erfindungsgemäß kann mRNA durch in vitro-Transkription von einer DNA-Matrize hergestellt werden. Zusätzlich zu den erfindungsgemäßen Modifikationen kann sie durch weitere stabilisierende Modifikationen und Capping modifiziert sein.

Weiterhin umfasst der Begriff „Nukleinsäure" auch eine chemische Derivatisierung einer Nukleinsäure an einer Nukleotidbase, am Zucker oder am Phosphat und Nukleinsäuren, die nicht in der Natur vorkommende Nukleotide und Nukleotidanaloga enthalten.

Erfindungsgemäß betrifft eine „Nukleinsäuresequenz, die von einer Nukleinsäuresequenz abgeleitet ist" eine Nukleinsäure, in der im Vergleich zu der Nukleinsäure, von der sie abgeleitet ist, einzelne oder multiple Nukleotidsubstitutionen, -deletionen und/oder -additionen vorliegen und die zu der Nukleinsäure, von der sie abgeleitet ist, vorzugsweise komplementär ist, d.h. zwischen den Nukleinsäuren ist ein gewisser Grad an Homologie vorhanden und die Nukleinsäuren weisen in der Abfolge ihrer Nukleotide signifikante direkte oder komplementäre Übereinstimmungen auf. Eine von einer Nukleinsäure abgeleitete Nukleinsäure weist erfindungsgemäß eine funktionelle Eigenschaft der Nukleinsäure auf, von der sie abgeleitet ist. Solche funktionellen Eigenschaften umfassen insbesondere die Fähigkeit, bei einer funktionellen Verbindung mit einer Nukleinsäure, die in RNA transkribierbar ist (transkribierbare Nukleinsäuresequenz), die Stabilität und/oder die Translationseffizienz der von dieser Nukleinsäure gebildeten RNA in dem Gesamt-RNA-Molekül zu erhöhen.

"Funktionelle Verbindung" oder "funktionell verbunden" betrifft erfindungsgemäß eine Verbindung in einer funktionellen Beziehung. Eine Nukleinsäure ist "funktionell verbunden", wenn sie in eine funktionelle Beziehung mit einer anderen Nukleinsäuresequenz gesetzt wird. Zum Beispiel ist ein Promotor mit einer kodierenden Sequenz funktionell verbunden, falls er die Transkription der kodierenden Sequenz beeinflusst. Funktionell verbundene Nukleinsäuren sind typischerweise benachbart zueinander, gegebenenfalls getrennt durch weitere Nukleinsäuresequenzen, und werden in bestimmten Ausführungsformen in ein einzelnes RNA-Molekül (gemeinsames Transkript) durch RNA-Polymerase transkribiert.

Die erfindungsgemäß beschriebenen Nukleinsäuren sind vorzugsweise isoliert. Der Begriff "isolierte Nukleinsäure" bedeutet erfindungsgemäß, dass die Nukleinsäure (i) in vitro amplifiziert wurde, zum Beispiel durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR), (ii) rekombinant durch Klonierung produziert wurde, (iii) gereinigt wurde, zum Beispiel durch Spaltung und gelelektrophoretische Auftrennung, oder (iv) synthetisiert wurde, zum Beispiel durch chemische Synthese. Eine isolierte Nukleinsäure ist eine Nukleinsäure, die für eine Manipulierung durch rekombinante DNA-Techniken zur Verfügung steht.

Eine Nukleinsäure ist dann zu einer anderen Nukleinsäure „komplementär", wenn die beiden Sequenzen miteinander hybridisieren und ein stabiles Duplex eingehen können, wobei die Hybridisierung vorzugsweise unter Bedingungen erfolgt, die eine spezifische Hybridisierung zwischen Polynukleotiden erlauben (stringente Bedingungen). Stringente Bedingungen sind beispielsweise in Molecular Cloning: A Laboratory Manual, J. Sambrook et al., Hrsg., 2. Auflage, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989 oder Current Protocols in Molecular Biology, F.M. Ausubel et al., Hrsg., John Wiley & Sons, Inc., New York beschrieben und betreffen beispielsweise die Hybridisierung bei 65°C in Hybridisierungspuffer (3,5 × SSC, 0,02% Ficoll, 0,02% Polyvinylpyrrolidon, 0,02% Rinderserumalbumin, 2,5 mM NaH₂PO₄ (pH7), 0,5% SDS, 2 mM EDTA). SSC ist 0,15 M Natriumchlorid/0,15 M Natriumcitrat, pH 7. Nach der Hybridisierung wird die Membran, auf die die DNA übertragen wurde beispielsweise in 2 × SSC bei Raumtemperatur und sodann in 0,1–0,5 × SSC/0,1 × SDS bei Temperaturen bis 68°C gewaschen.

Komplementäre Nukleinsäuren weisen erfindungsgemäß mindestens 60%, mindestens 70%, mindestens 80%, mindestens 90% und vorzugsweise mindestens 95%, mindestens 98% oder mindestens 99% Identität der Nukleotide auf.

Der Begriff "% Identität" soll einen Prozentwert an Nukleotiden bezeichnen, die zwischen zwei zu vergleichenden Sequenzen bei einem optimalen Alignment identisch sind, wobei dieser Prozentwert rein statistisch ist, die Unterschiede zwischen den zwei Sequenzen zufällig und über die gesamte Sequenzlänge verteilt sein können und die zu vergleichende Sequenz Additionen oder Deletionen im Vergleich zu der Referenzsequenz umfassen kann, um ein optimales Alignment zwischen zwei Sequenzen zu erreichen. Sequenzvergleiche zwischen zwei Sequenzen werden im Allgemeinen durch Vergleich dieser Sequenzen nach einem optimalen Alignment in Bezug auf ein Segment oder "Vergleichsfenster" durchgeführt, um lokale Bereiche einer Sequenzübereinstimmung zu identifizieren. Das optimale Alignment für einen Vergleich kann manuell oder mit Hilfe des lokalen Homologiealgorithmus von Smith and Waterman, 1981, Ads App. Math. 2, 482, mit Hilfe des lokalen Homologiealgorithmus von Neddleman and Wunsch, 1970, J. Mol. Biol. 48, 443, und mit Hilfe des Ähnlichkeitssuchalgorithmus von Pearson and Lipman, 1988, Proc. Natl Acad. Sci. USA 85, 2444, oder mit Hilfe von Computerprogrammen, die diese Algorithmen verwenden, (GAP, BESTFIT, FASTA, BLAST P, BLAST N and TFASTA in Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Drive, Madison, Wis.) durchgeführt werden.

Die prozentuale Identität wird durch Bestimmung der Anzahl an identischen Positionen, in denen die zu vergleichenden Sequenzen übereinstimmen, Teilung dieser Anzahl durch die verglichenen Positionen und Multiplikation dieses Ergebnisses mit 100 erhalten.

Beispielsweise kann das Programm BLAST "BLAST 2 sequences", das von der Website http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/bl2seq/wblast2.cgi erhältlich ist, verwendet werden.

„3'-Ende einer Nukleinsäure" betrifft erfindungsgemäß dasjenige Ende, an dem sich eine freie Hydroxy-Gruppe befindet. In schematischer Darstellung von doppelsträngigen Nukleinsäuren, insbesondere DNA, befindet sich das 3'-Ende immer rechts. „5'-Ende einer Nukleinsäure" betrifft erfindungsgemäß dasjenige Ende, an dem sich eine freie Phosphat-Gruppe befindet. In schematischer Darstellung von doppelsträngigen Nukleinsäuren, insbesondere DNA, befindet sich das 5'-Ende immer links.

In bestimmten Ausführungsformen liegt eine Nukleinsäure erfindungsgemäß funktionell in Verbindung mit Expressionskontrollsequenzen vor, die in Bezug zu der Nukleinsäure homolog oder heterolog sein können.

Eine transkribierbare Nukleinsäure, insbesondere eine für ein Peptid oder Protein kodierende Nukleinsäure, und eine Expressionskontrollsequenz sind dann "funktionell" miteinander verbunden, falls sie derart kovalent miteinander verknüpft sind, dass die Transkription oder Expression der transkribierbaren und insbesondere kodierenden Nukleinsäure unter der Kontrolle oder unter dem Einfluss der Expressionskontrollsequenz steht. Falls die Nukleinsäure in ein funktionelles Peptid oder Protein translatiert werden soll, führt bei einer funktionellen Verbindung einer Expressionskontrollsequenz mit der kodierenden Sequenz eine Induktion der Expressionskontrollsequenz zu einer Transkription der kodierenden Sequenz, ohne dass es zu einer Leserasterverschiebung in der kodierenden Sequenz oder zu einem Unvermögen der kodierenden Sequenz kommt, in das gewünschte Peptid oder Protein translatiert zu werden.

Der Begriff „Expressionskontrollsequenz" umfasst erfindungsgemäß Promotoren, ribosombindende Sequenzen und andere Kontrollelemente, welche die Transkription eines Gens oder die Translation der abgeleiteten RNA steuern. In bestimmten erfindungsgemäßen Ausführungsformen sind die Expressionskontrollsequenzen regulierbar. Die genaue Struktur von Expressionskontrollsequenzen kann speziesabhängig oder zelltypusabhängig variieren, umfasst jedoch im allgemeinen 5'-nicht-transkribierte und 5'- und 3'-nicht-translatierte Sequenzen, die an der Initiation der Transkription bzw. Translation beteiligt sind wie TATA-Box, Capping-Sequenz, CAAT-Sequenz und ähnliches. Insbesondere umfassen 5'-nicht-transkribierte-Expressionskontrollsequenzen eine Promotorregion, die eine Promotorsequenz für eine transkriptionelle Kontrolle des funktionell verbundenen Gens einschließt. Expressionskontrollsequenzen können auch Enhancer-Sequenzen oder stromaufwärts gelegene Aktivatorsequenzen umfassen.

Die hier dargestellten Nukleinsäuren, insbesondere transkribierbaren und kodierenden Nukleinsäuren, können mit beliebigen Expressionskontrollsequenzen, insbesondere Promotoren, kombiniert werden, die zu den Nukleinsäuren homolog oder heterolog sein können, wobei der Begriff „homolog" bezeichnet, dass eine Nukleinsäure auch natürlicherweise mit der Expressionskontrollsequenz funktionell verbunden ist und der Begriff „heterolog" bezeichnet, dass eine Nukleinsäure nicht natürlicherweise mit der Expressionskontrollsequenz funktionell verbunden ist.

Der Begriff "Promotor" oder "Promotorregion" betrifft eine DNA-Sequenz, die stromaufwärts (5') zu der kodierenden Sequenz eines Gens liegt und die Expression der kodierenden Sequenz durch Bereitstellen einer Erkennungs- und Bindungsstelle für RNA-Polymerase steuert. Die Promotorregion kann weitere Erkennungs- oder Bindungsstellen für weitere Faktoren beinhalten, die an der Regulation der Transkription des Gens beteiligt sind. Ein Promotor kann die Transkription eines prokaryontischen oder eukaryontischen Gens steuern. Ein Promotor kann "induzierbar" sein und die Transkription in Reaktion auf ein Induktionsmittel initiieren oder er kann "konstitutiv" sein, falls die Transkription nicht durch ein Induktionsmittel gesteuert wird. Ein induzierbarer Promotor wird nicht exprimiert oder nur in einem sehr geringen Maß exprimiert, wenn ein Induktionsmittel fehlt. In Gegenwart des Induktionsmittels wird das Gen "angeschalten" oder das Transkriptionsniveau erhöht. Dies wird herkömmlicherweise durch die Bindung eines spezifischen Transkriptionsfaktors vermittelt.

Erfindungsgemäß bevorzugte Promotoren sind beispielsweise Promotoren für SP6-, T3- oder T7-Polymerase.

Der Begriff "Expression" wird erfindungsgemäß in seiner allgemeinsten Bedeutung verwendet und umfasst die Produktion von RNA oder von RNA und Protein. Er umfasst auch eine teilweise Expression von Nukleinsäuren. Des weiteren kann die Expression transient oder stabil erfolgen. In Bezug auf RNA betrifft der Begriff „Expression" oder „Translation" insbesondere die Produktion von Peptiden oder Proteinen.

Der Begriff „Nukleinsäuren, die in ein gemeinsames Transkript transkribierbar sind" bedeutet, dass die Nukleinsäuren derart funktionell miteinander verbunden sind, dass eine Transkription unter Kontrolle eines Promotors in einem RNA-Molekül resultiert, das die Transkripte der Nukleinsäuren in kovalenter Bindung zueinander, gegebenenfalls durch dazwischenliegende Sequenzen getrennt, umfasst.

Der Begriff „Transkription" umfasst erfindungsgemäß „in vitro-Transkription", wobei der Begriff „in vitro-Transkription" ein Verfahren betrifft, bei dem RNA, insbesondere mRNA, zellfrei, d.h. vorzugsweise unter Verwendung entsprechend aufbereiteter Zellextrakte, in vitro synthetisiert wird. Vorzugsweise werden für die Herstellung von Transkripten Klonierungsvektoren eingesetzt, die im Allgemeinen als Transkriptionsvektoren bezeichnet werden und erfindungsgemäß von dem Begriff „Vektor" umfasst sind.

Der Begriff „von einer Nukleinsäuresequenz transkribierte Nukleinsäuresequenz" betrifft RNA, gegebenenfalls als Teil eines Gesamt-RNA-Moleküls, die ein Transkriptionsprodukt der ersten Nukleinsäuresequenz ist.

Der Begriff „Nukleinsäuresequenz, die wirksam ist, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität einer Nukleinsäuresequenz zu erhöhen" bedeutet, dass die erste Nukleinsäure in der Lage ist, in einem gemeinsamen Transkript mit der zweiten Nukleinsäure die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der zweiten Nukleinsäure derart zu modifizieren, dass diese im Vergleich zu der Translationseffizienz und/oder der Stabilität der zweiten Nukleinsäure ohne die erste Nukleinsäure gesteigert ist. Der Begriff „Translationseffizienz" betrifft in diesem Zusammenhang die in einem bestimmten Zeitraum von einem RNA-Molekül bereitgestellte Menge an Translationsprodukt und der Begriff „Stabilität" betrifft die Halbwertszeit eines RNA-Moleküls.

Die 3'-nicht-translatierte Region betrifft eine Region, die am 3'-Ende eines Gens stromabwärts zu dem Terminations-Codon einer Protein-kodierenden Region liegt, transkribiert wird, jedoch nicht in eine Aminosäuresequenz translatiert wird.

Erfindungsgemäß wird eine erste Polynukleotid-Region als zu einer zweiten Polynukleotid-Region stromabwärts gelegen betrachtet, wenn das 5'-Ende der ersten Polynukleotid-Region der zu dem 3'-Ende der zweiten Polynukleotid-Region nächstgelegene Teil der ersten Polynukleotid-Region ist.

Die 3'-nicht-translatierte Region erstreckt sich typischerweise von dem Terminations-Codon für ein Translationsprodukt bis zu der Poly(A)-Sequenz, die herkömmlicherweise nach dem Transkriptionsprozess angefügt wird. Die 3'-nicht-translatierten Regionen von Säuger-mRNA weisen typischerweise einen Homologiebereich auf, der als die AAUAAA-Hexanukleotidsequenz bekannt ist. Diese Sequenz ist vermutlich das Poly(A)-Anfügungssignal. Häufig liegt es 10 bis 30 Basen vor der Poly(A)-Anfügungsstelle.

3'-nicht-translatierte Regionen können eine oder mehrere invertierte Wiederholungen enthalten, die sich in Stamm-Schleife-Strukturen falten können, die als Barriere für Exoribonukleasen fungieren oder mit Proteinen interagieren, von denen bekannt ist, dass sie die RNA-Stabilität erhöhen (z.B. RNA-bindende Proteine).

5'- und/oder 3'-nicht-translatierte Regionen können erfindungsgemäß mit einer transkribierbaren und insbesondere kodierenden Nukleinsäure funktionell verbunden sein, so dass diese Regionen derart mit der Nukleinsäure in Beziehung steht, dass sie die Stabilität und/oder Translationseffizienz der von der transkribierbaren Nukleinsäure transkribierten RNA erhöht.

Die 3'-nicht-translatierten Regionen von Immunglobulin-mRNAs sind relativ kurz (weniger als etwa 300 Nukleotide), während die 3'-nicht-translatierten Regionen anderer Gene relativ lang sind. Zum Beispiel ist die 3'-nicht-translatierte Region von tPA etwa 800 Nukleotide lang, die von Faktor VIII ist etwa 1800 Nukleotide lang und die von Erythropoietin ist etwa 560 Nukleotide lang.

Erfindungsgemäß kann ermittelt werden, ob eine 3'-nicht-translatierte Region oder eine davon abgeleitete Nukleinsäuresequenz die Stabilität und/oder Translationseffizienz von RNA erhöht, indem die 3'-nicht-translatierte Region oder die davon abgeleitete Nukleinsäuresequenz in die 3'-nicht-translatierte Region eines Gens eingebaut wird und gemessen wird, ob dieser Einbau die Menge des synthetisierten Proteins erhöht.

Der Begriff „Gen" betrifft erfindungsgemäß eine bestimmte Nukleinsäuresequenz, die für die Produktion eines oder mehrerer zellulärer Produkte und/oder für das Erreichen einer oder mehrerer interzellulärer oder intrazellulärer Funktionen verantwortlich ist. Insbesondere betrifft der Begriff einen DNA-Abschnitt, welcher eine Nukleinsäure umfasst, die für ein spezifisches Protein oder ein funktionelles bzw. strukturelles RNA-Molekül kodiert.

Die Begriffe „Polyadenylkassette" oder „Poly(A)-Sequenz" betreffen eine Sequenz von Adenyl-Resten, die typischerweise am 3'-Ende eines RNA-Moleküls liegt. Erfindungsgemäß ist vorgesehen, dass eine solche Sequenz durch eine DNA-Matrize anhand von sich wiederholenden Thymidyl-Resten in dem zu dem kodierenden Strang komplementären Strang bei einer Transkription von RNA angefügt wird, wohingegen normalerweise sie nicht in der DNA kodiert ist, sondern durch eine matrizenunabhängige RNA-Polymerase nach der Transkription im Zellkern an das freie 3'-Ende der RNA angeheftet wird. Erfindungsgemäß ist eine Nukleotidsequenz von mindestens 20, vorzugsweise mindestens 40, vorzugsweise mindestens 80, vorzugsweise mindestens 100 und vorzugsweise bis zu 500, vorzugsweise bis zu 400, vorzugsweise bis zu 300, vorzugsweise bis zu 200 und insbesondere bis zu 150 aufeinander folgenden A-Nukleotiden, und insbesondere etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden als eine derartige Poly(A)-Sequenz zu verstehen, wobei der Begriff „A-Nukleotide" Adenyl-Reste bezeichnet.

In einer bevorzugten Ausführungsform ist ein Nukleinsäuremolekül erfindungsgemäß ein Vektor. Der Begriff "Vektor" wird dabei in seiner allgemeinsten Bedeutung verwendet und umfasst jegliche intermediären Vehikel für eine Nukleinsäure, die es z.B. ermöglichen, die Nukleinsäure in prokaryotische und/oder in eukaryotische Wirtszellen einzubringen und gegebenenfalls in ein Genom zu integrieren. Solche Vektoren werden vorzugsweise in der Zelle repliziert und/oder exprimiert. Vektoren umfassen Plasmide, Phagemide oder Virusgenome. Der Begriff "Plasmid", wie hierin verwendet, betrifft allgemein ein Konstrukt von extrachromosomalem genetischen Material, gewöhnlich ein zirkuläres DNA-Duplex, das unabhängig von chromosomaler DNA replizieren kann.

Der Begriff „Wirtszelle" betrifft erfindungsgemäß jede Zelle, die mit einer exogenen Nukleinsäure transformierbar oder transfizierbar ist. Der Begriff „Wirtszelle" umfasst erfindungsgemäß prokaryontische (z.B. E. coli) oder eukaryontische Zellen (z.B. Hefezellen und Insektenzellen). Besonders bevorzugt sind Säugerzellen wie Zellen aus Mensch, Maus, Hamster, Schwein, Ziege, Primaten. Die Zellen können aus einer Vielzahl von Gewebetypen abgeleitet sein und umfassen primäre Zellen und Zelllinien. Spezifische Beispiele umfassen Keratinozyten, periphere Blutleukozyten, Stammzellen des Knochenmarks und embryonale Stammzellen. In weiteren Ausführungsformen ist die Wirtszelle eine Antigen-präsentierende Zelle, insbesondere eine dendritische Zelle, ein Monozyt oder ein Makrophage. Eine Nukleinsäure kann in der Wirtszelle in einer einzigen oder in mehreren Kopien vorliegen und wird in einer Ausführungsform in der Wirtszelle exprimiert.

Erfindungsgemäß kann ein durch eine Nukleinsäure kodiertes Peptid oder Protein ein Peptid oder Protein sein, das im Cytoplasma, im Zellkern, in der Membran, in Organellen lokalisiert ist oder sekretiert wird. Sie beinhalten Strukturproteine, regulatorische Proteine, Hormone, Neurotransmitter, Wachstums-regulierende Faktoren, Differenzierungsfaktoren, Genexpressions-regulierende Faktoren, DNA-assoziierte Proteine, Enzyme, Serumproteine, Rezeptoren, Arzneimittel, Immunmodulatoren, Onkogene, Toxine, Tumorantigene oder Antigene. Diese Peptide oder Proteine können eine natürlich auftretende Sequenz oder eine mutierte Sequenz aufweisen, um ihre biologische Aktivität zu verstärken, inhibieren, regulieren oder zu beseitigen.

Der Begriff "Peptid" betrifft Substanzen, die zwei oder mehr, vorzugsweise 3 oder mehr, vorzugsweise 4 oder mehr, vorzugsweise 6 oder mehr, vorzugsweise 8 oder mehr, vorzugsweise 10 oder mehr, vorzugsweise 13 oder mehr, vorzugsweise 16 oder mehr, vorzugsweise 20 oder mehr and bis zu vorzugsweise 50, vorzugsweise 100 oder vorzugsweise 150 aufeinander folgende Aminosäuren umfassen, die durch Peptidbindungen miteinander verbunden sind. Der Begriff "Protein" betrifft große Peptide, vorzugsweise Peptide mit mindestens 151 Aminosäuren, jedoch werden die Begriffe „Peptid" und „Protein" hierin im Allgemeinen als Synonyme verwendet. Die Begriffe „Peptid" und „Protein" umfassen erfindungsgemäß Substanzen, die nicht nur Aminosäure-Bestandteile, sondern auch nicht-Aminosäure-Bestandteile wie Zucker und Phosphatstrukturen enthalten und umfassen auch Substanzen die Bindungen wie Ester-, Thioether- oder Disulfidbindungen enthalten.

Erfindungsgemäß vorgesehen ist eine Verabreichung von Nukleinsäuren, insbesondere RNA, an einen Patienten. In einer Ausführungsform erfolgt die Verabreichung von Nukleinsäuren durch ex vivo-Verfahren, d.h. durch Entfernung von Zellen aus einem Patienten, genetische Veränderung der Zellen, und Wiedereinbringung der veränderten Zellen in den Patienten. Transfektions- und Transduktionsverfahren sind dem Fachmann bekannt. Erfindungsgemäß vorgesehen ist auch eine Verabreichung von Nukleinsäuren in vivo.

Der Begriff „Transfektion" betrifft erfindungsgemäß das Einbringen einer oder mehrerer Nukleinsäuren in einen Organismus oder in eine Wirtszelle. Verschiedene Verfahren können eingesetzt werden, um erfindungsgemäß Nukleinsäuren in Zellen in vitro oder in vivo einzubringen. Solche Verfahren umfassen die Transfektion von Nukleinsäure-CaPO₄-Präzipitaten, die Transfektion von Nukleinsäuren, die mit DEAE assoziiert sind, die Transfektion oder Infektion mit Viren, die die interessierenden Nukleinsäuren tragen, die Liposomen-vermittelte Transfektion und ähnliches. In bestimmten Ausführungsformen ist eine Steuerung der Nukleinsäure an bestimmte Zellen bevorzugt. In solchen Ausführungsformen kann ein Träger, der für die Verabreichung einer Nukleinsäure an eine Zelle (z.B. ein Retrovirus oder ein Liposom) eingesetzt wird, ein gebundenes Zielsteuerungsmolekül aufweisen. Zum Beispiel kann ein Molekül wie ein Antikörper, der für ein Oberflächenmembran-Protein auf der Zielzelle spezifisch ist, oder ein Ligand für einen Rezeptor auf der Zielzelle in den Nukleinsäureträger eingebaut oder daran gebunden werden. Falls eine Verabreichung einer Nukleinsäure durch Liposomen erwünscht ist, können Proteine, die an ein Oberflächenmembran-Protein binden, das mit der Endozytose assoziiert ist, in die Liposomenformulierung eingebaut werden, um eine Zielsteuerung und/oder Aufnahme zu ermöglichen. Solche Proteine umfassen Kapsid-Proteine oder Fragmente davon, die für einen bestimmten Zelltyp spezifisch sind, Antikörper gegen Proteine, die internalisiert werden, Proteine, die eine intrazelluläre Stelle ansteuern, und ähnliches.

"Reporter" betrifft ein Molekül, typischerweise ein Peptid oder Protein, das durch ein Reporter-Gen kodiert wird und in einem Reportertest gemessen wird. Herkömmliche Systeme verwenden im Allgemeinen einen enzymatischen Reporter und messen die Aktivität des Reporters.

Der Begriff "multiple Klonierungsstelle" betrifft eine Nukleinsäureregion, die Restriktionsenzymstellen enthält, von denen irgendeine für eine Spaltung beispielsweise eines Vektors und die Insertion einer Nukleinsäure verwendet werden kann.

Zwei Elemente wie Nukleotide oder Aminosäuren sind erfindungsgemäß aufeinander folgend, falls sie ohne eine Unterbrechung unmittelbar zueinander benachbart sind. Beispielsweise betrifft eine Sequenz von x aufeinander folgenden Nukleotiden N die Sequenz (N)_x.

Eine „Restriktions-Endonuklease" oder „Restriktionsenzym" bezeichnet eine Klasse von Enzymen, die in beiden Strängen eines DNA-Moleküls innerhalb spezifischer Basensequenzen Phosphodiester-Bindungen spalten. Sie erkennen auf einem doppelsträngigen DNA-Molekül spezifische Bindungsstellen, die als Erkennungsssequenzen bezeichnet werden. Die Stellen, an denen die Phosphodiester-Bindungen in der DNA durch die Enzyme gespalten werden, werden als Spaltstellen bezeichnet. Bei Typ IIS-Enzymen, liegt die Schnittstelle in einem definierten Abstand von der DNA-Bindungsstelle entfernt. Der Begriff „Restriktions-Endonuklease" umfasst erfindungsgemäß beispielsweise die Enzyme SapI, EciI, BpiI, AarI, AloI, BaeI, BbvCI, PpiI und PsrI, BsrD1, BtsI, EarI, BmrI, BsaI, BsmBI, FauI, BbsI, BciVI, BfuAI, BspMI, BseRI, EciI, BtgZI, BpuEI, BsgI, MmeI, CspCI, BaeI, BsaMI, Mva1269I, PctI, Bse3DI, BseMI, Bst6I, Eam1104I, Ksp632I, BfiI, Bso31I, BspTNI, Eco31I, Esp3I, BfuI, Acc36I, AarI, Eco57I, Eco57MI, GsuI, AloI, Hin4I, PpiI, und PsrI.

"Halbwertszeit" betrifft die Zeitspanne, die für eine Beseitigung der Hälfte der Aktivität, Menge oder Anzahl an Molekülen benötigt wird.

Die vorliegende Erfindung wird durch die nachstehenden Abbildungen und Beispiele ausführlich beschrieben, die ausschließlich der Erläuterung dienen und nicht begrenzend zu verstehen sind. Dem Fachmann sind aufgrund der Beschreibung und der Beispiele weitere Ausführungsformen zugänglich, die ebenfalls erfindungsgemäß umfasst sind.

Abbildungen:

1: Erfindungsgemäß für die weitere Klonierung verwendete Basisvektoren
Die Vektoren erlauben eine Transkription von RNA unter der Kontrolle eines 5'-gelegenen RNA-Polymerase-Promoters und enthalten eine Polyadenylkassette.

2: Linearisierung von Vektoren mit Restriktionsenzymen vom Typ II (z.B SpeI) im Vergleich mit Restriktionsenzymen vom Typ IIS (z.B. SapI)
Durch die Einführung einer Restriktionsschnittstelle vom Typ IIS, deren Erkennungssequenz 3' von der Poly(A)-Sequenz liegt, während die Schnittstelle 24–26bp stromaufwärts und damit innerhalb der Poly(A)-Sequenz liegt, ist eine Linearisierung eines Plasmids innerhalb der Poly(A)-Sequenz möglich.

3: Vektoren, die erfindungsgemäß als Matrize für die in vitro Transkription hergestellt wurden
Um die Auswirkungen der erfindungsgemäßen RNA-Modifikationen auf Expressionshöhe und -dauer zu untersuchen, wurde eine Reihe von Vektoren hergestellt, die anschließend als Matrize für die in vitro-Transkription dienten. a. Vektoren mit verdeckter versus unverdeckter Poly(A)-Sequenz; b. Vektoren mit unterschiedlich langer Poly(A)-Sequenz; c. Vektoren mit 3'-nicht translatierter Region aus humanem Beta-Globin; d. SIINFEKL-Vektoren; Cap – 5'-Capping; eGFP – GFP-Reportergen; 3'βg–3'-nicht translatierte Region von β-Globin; A(x)–x bezeichnet die Anzahle der A-Nukleotide in der Poly(A)-Sequenz.

4: Bestimmung des Reifungsstatus von unreifen versus reifen Dendritischen Zellen über die angegebenen Oberflächenmarker
Die Wirkung der erfindungsgemäßen RNA-Modifikationen wurde in humanen Dendritischen Zellen (DC) gestestet, wobei bei einem immunogenen Reiz ein Reifungsprozess der DCs ausgelöst wird. Die DCs wurden mit anti-CD80-, anti-CD83-, anti-CD86- und anti-HLA-DR-Antikörpern, die spezifische DC-Reifungsmarker erkennen, gefärbt und durchflußzytometrisch analysiert.

5: Einfluss von freier versus verdeckter Poly(A)-Sequenz auf die Translationseffizienz und Transkriptstabilität
a. Einfluss von freier versus verdeckter Poly(A)-Sequenz auf die Translationseffizienz von eGFP-RNA in K562- und Dendritischen Zellen durch die Ermittelung der mittleren Fluoreszenzintensität [MFI] im FACS-Kalibur; b. Einfluss von freier versus verdeckter Poly(A)-Sequenz auf die Transkriptstabilität von eGFP-RNA in unreifen Dendritischen Zellen nach 48h. Sowohl in der Tumorzellline als auch in unreifen DCs wird RNA mit offen endender Poly(A)-Sequenz effizienter und über einen längeren Zeitraum translatiert als RNA mit verdeckt endender Poly(A)-Sequenz. Bei gleicher Länge der Poly(A)-Sequenz ist die Translationseffizienz bei einer unverdeckt endenden Poly(A)-Sequenz in DCs um das 1,5-fache gesteigert. Eine offen endende Poly(A)-Sequenz führt außerdem zu einer höheren Stabilität der RNA.

6: Einfluss der Länge der Poly(A)-Sequenz auf die Translationseffizienz und Transkriptstabilität
a. Einfluss der Länge der Poly(A)-Sequenz auf die Translationseffizienz von eGFP-RNA in K562- und Dendritischen Zellen; b. Einfluss der Länge der Poly(A)-Sequenz auf die Translationseffizienz von d2eGFP-RNA in K562- und Dendritischen Zellen; c. Einfluss der Länge der Poly(A)-Sequenz auf die Transkriptstabilität von eGFP-RNA in K562-Zellen 48h nach der Elektroporation. Eine Verlängerung der Poly(A)-Sequenz auf bis zu 120 A-Nukleotide führt zu einer Steigerung der Stabilität und Translation des Transkripts. Eine darüber hinausgehende Verlängerung hat keinen positiven Effekt. Durch die Verlängerung der Poly(A)-Sequenz von 51 auf 120 A-Nukleotide wird eine 1,5- bis 2-fache Zunahme der Translationseffizienz erreicht. Dieser Effekt spiegelt sich auch in der Stabilität der RNA.

7: Einfluss einer 3'-nicht translatierten Region von humanem Beta-Globin (BgUTR) auf die Translationseffizienz in unreifen und reifen DCs
Ein Einfügen einer 3'-nicht translatierten Region von humanem Beta-Globin führt zu einer ansteigenden Expression des RNA-Transkripts. Eine doppelte 3'-nicht translatierten Region von humanem Beta-Globin führt nach 24h zu einer Verbesserung der Expressionshöhe, die über den Summationseffekt von zwei einzelnen 3'-nicht translatierten Region von humanem Beta-Globin deutlich hinausgeht.

8: Wirkung der erfindungsgemäßen Modifikationen in Kombination auf die Translationseffizienz in unreifen und reifen DCs
Durch die Kombination der erfindungsgemäß beschriebenen Modifikationen eines RNA-Transkripts kann die Translationseffizienz von eGFP in unreifen und reifen DCs um mehr als das fünffache gesteigert werden.

9: Wirkung der erfindungsgemäßen Modifikationen in Kombination auf die Präsentation von Peptiden durch MHC-Moleküle auf EL4-Zellen
Eine Verwendung der erfindungsgemäß modifizieren RNA-Konstrukte führt durch die gesteigerte Translationseffizienz zu einer verstärkten Präsentation von Peptid-MHC-Komplexen auf der Zelloberfläche. eGFP wurde in den beschriebenen IVT-Vektoren durch das OVA257-264-Epitop (SIINFEKL) ersetzt und als Zielzellen für die Transfektion EL4-Zellen (murin, T-Zell Lymphom) eingesetzt.

Beispiel 1: Herstellung von Vektoren und in vitro-Transkription von RNA
Um die Auswirkungen der erfindungsgemäßen RNA-Modifikationen auf Expressionshöhe und -dauer zu untersuchen, wurde eine Reihe von IVT-Vektoren hergestellt, die als Matrize für die in vitro-Transkription dienten (3).
In die Vektoren wurden die Reportergene für eGFP bzw. d2eGFP, zwei Moleküle mit unterschiedlicher Halbwertszeit (HWZ), eingebracht, wodurch es möglich ist, den Einfluss der erfindungsgemäßen RNA-Modifikationen zu analysieren. Die Fluoreszenz fällt mit einer durchschnittlichen HWZ von 17,3 h bei eGFP und 2 h bei d2eGFP ab. Mit Hilfe dieser Konstrukte wurde in vitro-transkribierte eGFP-RNA bzw. d2eGFP-RNA hergestellt.
Beispiel 2: Transfektion von Zellen mit der erfindungsgemäß modifizierten in vitro-transkribierten RNA und Wirkung auf die Translation und Stabilität der RNA
In vitro-transkribierte eGFP-RNA bzw. d2eGFP-RNA wurde dazu verwendet, K562-Zellen (human, Leukämie) mittels Elektroporation zu transfizieren. Die Transfektionseffizienz betrugt in K562 Zellen > 90%.
Sodann wurde die Wirkung der beschriebenen RNA-Modifikationen in humanen Dendritischen Zellen (DC) gestestet, die die wichtigsten Modulatoren des Immunsystems darstellen. Dieser Ansatz ist von immunologischer Relevanz, da mit RNA transfizierte DCs für eine Vakzinierung in Betracht zu ziehen sind. Unreife DCs sind in der Haut und in peripheren Organen lokalisiert. Sie liegen hier in einem unreifen Zustand vor, der durch gut untersuchte Oberflächenmarker charakterisiert ist und sich funktionell durch eine starke Endozytoseaktivität auszeichnet. Bei einem immunogenen Reiz, wie z.B. einer Infektion mit Pathogenen, wird ein Reifungsprozess der DCs ausgelöst. Gleichzeitig wird ihre Wanderung in die regionalen Lymphknoten initiiert, wo sie die wirksamsten Induktoren von 7-Zell- und B-Zell-Immunantworten sind. Auch der reife Zustand der DCs ist durch die Expression von detailliert untersuchten Oberflächenmarkern und Zytokinen sowie durch eine charakteristische Morphologie der DCs gekennzeichnet. Es gibt etablierte Zellkultursysteme zur Differenzierung von unreifen humanen DCs aus Blutmonozyten. Diese können durch verschiedene Stimuli zur Reifung gebracht werden.
In primären Dendritischen Zellen lag die Transfektionseffizienz bei 70–80%. Die DCs wurden mit anti-CD80-, anti-CD83-, anti-CD86- und anti-HLA-DR-Antikörpern, die spezifische DC-Reifungsmarker erkennen, gefärbt und durchflußzytometrisch analysiert (4).
Die Bestimmung der Expressionshöhe und Dauer erfolgte mit Hilfe des FACS-Kalibur über die Ermittelung der Fluoreszenzintensität des eGFP. Die Ermittelung der RNA-Menge in den Zellen erfolgte mit Hilfe einer quantitativen RT-PCR.
a. Wirkung einer offen endenden Poly(A)-Sequenz auf die Translation und Stabilität von RNA
Es konnte gezeigt werden, dass sowohl in der Tumorzellline K562 als auch in unreifen DCs (iDC) RNA mit offen endender Poly(A)-Sequenz effizienter und über einen längeren Zeitraum translatiert wird als RNA mit verdeckt endender Poly(A)-Sequenz (5a). Bei gleicher Länge der Poly(A)-Sequenz ist die Translationseffizienz mit einer unverdeckt endenden Poly(A)-Sequenz in unreifen DCs um das 1,5-fache gesteigert. Die Modifikation führt außerdem zu einer höheren Stabilität der RNA (5b). 48h nach der Elektroporation ist in unreifen DCs, die mit RNA mit einer unverdeckten poly(A)-Sequenz transifiziert worden waren, die 4- bis 5-fache Menge an RNA nachweisbar.
b. Wirkung der Länge der Poly(A)-Sequenz auf die Translation und Stabilität von RNA
Durch Analyse von RNA mit Längen der Poly(A)-Sequenz von 16bp, 42bp, 51bp, 67bp, 120bp, 200bp, 300bp und 600bp zeigte sich, dass die Verlängerung der Poly(A)-Sequenz auf bis zu 120 A-Nukleotide zu einer Steigerung der Transkriptstabilität und Translation führt und das eine darüber hinausgehende Verlängerung keinen positiven Effekt hat. Dieser Effekt zeigt sich sowohl in K562-Zellen als auch in unreifen DCs (iDC) (6a und 6b). Durch die Verlängerung der Poly(A)-Sequenz von 51 auf 120 A-Nukleotide wird eine 1,5- bis 2-fache Zunahme der Translationseffizienz erreicht. Dieser Effekt spiegelt sich auch in der RNA-Stabilität (6c).
c. Wirkung des Auftretens einer 3'-nicht translatierten Region auf die Translation und Stabilität von RNA
In einer Zeitkinetik konnte mit K562-Zellen und unreifen DCs bestätigt werden, dass das Einfügen einer 3'-nicht translatierten Region (UTR) aus humanem Beta-Globin zu einer ansteigenden Expression eines RNA-Transkript führt. Darüber hinaus konnte gezeigt werden, dass eine doppelte 3'-nicht translatierten Region (UTR) aus humanem Beta-Globin nach 24h zu einer Verbesserung der Expressionshöhe führt, die über den Summationseffekt von zwei einzelnen UTRs deutlich hinausgeht (7).
d. Wirkung einer Kombination der vorstehend beschriebenen Modifikationen auf die Translation und Stabilität von RNA
Erfindungsgemäß konnte gezeigt werden, dass durch eine Kombination der vorstehend beschriebenen Modifikationen in einem RNA-Transkript die Translationseffizienz von eGFP in unreifen als auch reifen DCs um mehr als das fünffache gesteigert wird (8).
Beispiel 3: Präsentation eines durch in vitro-transkribierte RNA mit erhöhter Stabilität und Translationseffizienz exprimierten Peptids durch MHC-Moleküle
Es konnte erfindungsgemäß gezeigt werden, dass die Verwendung von erfindungsgemäß modifizierten RNA-Konstrukten zu einer erhöhten Peptid-MHC-Präsentation auf der Zelloberfläche führt. Hierfür wurde die für das eGFP kodierende Nukleinsäuresequenz in den beschriebenen IVT-Vektoren durch eine für das OVA257-264-Epitop (SIINFEKL) kodierende Nukleinsäuresequenz ersetzt und die Konstrukte miteinander verglichen. Als Zielzellen für die Transfektion wurden EL4-Zellen (murin, T-Zell Lymphom) eingesetzt.
Um durch MHC-Moleküle präsentierte SIINFEKL-Peptide zu quantifizieren, wurden die Zellen zu verschiedenen Zeitpunkten nach der Elektroporation mit einem anti-H2-K^b-OVA257-264-Antikörper gefärbt und die Fluoreszenzintensität eines sekundären Antikörpers mit Hilfe des FACS-Kalibur bestimmt (9).

Claims

Nukleinsäuremolekül, umfassend in 5'→3'-Richtung der Transkription: (a) einen Promotor; (b) eine transkribierbare Nukleinsäuresequenz oder eine Nukleinsäuresequenz für ein Einbringen einer transkribierbaren Nukleinsäuresequenz; (c-1) eine erste Nukleinsäuresequenz, die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist; und (c-2) eine zweite Nukleinsäuresequenz, die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 1, das ferner (c-3) mindestens eine weitere Nukleinsäuresequenz umfasst, die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 1 oder 2, wobei die Nukleinsäuresequenzen (b), (c-1), (c-2) und gegebenenfalls (c-3) unter Kontrolle des Promotors (a) in ein gemeinsames Transkript transkribierbar sind und in dem gemeinsamen Transkript die von den Nukleinsäuresequenzen (c-1) und/oder (c-2) und/oder gegebenenfalls (c-3) transkribierten Nukleinsäuresequenzen wirksam sind, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der transkribierbaren Nukleinsäuresequenz (b) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei die Nukleinsäuresequenzen (c-1), (c-2) und gegebenenfalls (c-3) gleich oder verschieden sein können.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 4, das ferner (d) eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 5, wobei die Nukleinsäuresequenzen (b), (c-1), (c-2), gegebenenfalls (c-3), und (d) unter Kontrolle des Promotors (a) in ein gemeinsames Transkript transkribierbar sind und in dem gemeinsamen Transkript die von den Nukleinsäuresequenzen (c-1) und/oder (c-2) und/oder gegebenfalls (c-3) und/oder (d) transkribierten Nukleinsäuresequenzen wirksam sind, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der transkribierbaren Nukleinsäuresequenz (b) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 5 oder 6, wobei die Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 7, wobei die Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 80 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 8, wobei die Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 100 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 9, wobei die Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 5 bis 10, dadurch gekennzeichnet, dass es innerhalb der Nukleinsäuresequenz (d) vorzugsweise enzymatisch oder anderweitig biochemisch derart spaltbar ist, dass durch die Spaltung ein Nukleinsäuremolekül entsteht, das in 5'→3'-Richtung der Transkription den Promotor (a), die Nukleinsäuresequenz (b), die Nukleinsäuresequenzen (c-1), (c-2) und gegegenenfalls (c-3), und zumindest einen Teil der Nukleinsäuresequenz (d) umfasst, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert und das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 11, wobei das Nukleinsäuremolekül nach der Spaltung am Ende des Stranges, der als Matrize für die Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden dient, ein T-Nukleotid aufweist, das Teil der Nukleotidsequenz ist, die als Matrize für die Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript dient.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 11 oder 12, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 13, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 80 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 14, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 100 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 15, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (d) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 11 bis 16, dadurch gekennzeichnet, dass es vor der Spaltung als kreisförmig geschlossenes Molekül und nach der Spaltung als lineares Molekül vorliegt.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 11 bis 17, wobei die Spaltung mit Hilfe einer Restriktionsschnittstelle erfolgt.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 18, wobei die Restriktionsschnittstelle eine Restriktionsschnittstelle für eine Restriktions-Endonuklease des Typs IIS ist.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 19, wobei die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS stromabwärts und 5–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz (d) liegt.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 20, wobei die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS stromabwärts und 24–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz (d) liegt
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 21, wobei die Nukleinsäuresequenzen (c-1), (c-2) und gegebenenfalls (c-3) unabhängig voneinander von einem Gen abgeleitet sind, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus alpha2-Globin, alpha1-Globin, beta-Globin und Wachstumshormon, vorzugsweise humanem beta-Globin.
Nukleinsäuremolekül, umfassend in 5'→3'-Richtung der Transkription: (a) einen Promotor; (b) eine transkribierbare Nukleinsäuresequenz oder eine Nukleinsäuresequenz für ein Einbringen einer transkribierbaren Nukleinsäuresequenz; und (c) eine Nukleinsäuresequenz, die bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 23, wobei die Nukleinsäuresequenzen (b) und (c) unter Kontrolle des Promotors (a) in ein gemeinsames Transkript transkribierbar sind und in dem gemeinsamen Transkript die von der Nukleinsäuresequenz (c) transkribierte Nukleinsäuresequenz wirksam ist, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der transkribierbaren Nukleinsäuresequenz (b) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 23 oder 24, wobei die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 25, wobei die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 80 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 26, wobei die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 100 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 27, wobei die Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 23 bis 28, dadurch gekennzeichnet, dass es innerhalb der Nukleinsäuresequenz (c) vorzugsweise enzymatisch oder anderweitig biochemisch derart spaltbar ist, dass durch die Spaltung ein Nukleinsäuremolekül entsteht, das in 5'→3'-Richtung der Transkription den Promotor (a), die Nukleinsäuresequenz (b) und zumindest einen Teil der Nukleinsäuresequenz (c) umfasst, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert und das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 29, wobei das Nukleinsäuremolekül nach der Spaltung am Ende des Stranges, der als Matrize für die Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden dient, ein T-Nukleotid aufweist, das Teil der Nukleotidsequenz ist, die als Matrize für die Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript dient.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 29 oder 30, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 40 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 31, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 80 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 32, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von mindestens 100 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 33, wobei der zumindest eine Teil der Nukleinsäuresequenz (c) bei einer Transkription unter Kontrolle des Promotors (a) für eine Nukleotidsequenz von etwa 120 aufeinander folgenden A-Nukleotiden in dem Transkript kodiert.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 29 bis 34, dadurch gekennzeichnet, dass es vor der Spaltung als kreisförmig geschlossenes Molekül und nach der Spaltung als lineares Molekül vorliegt.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 29 bis 35, wobei die Spaltung mit Hilfe einer Restriktionsschnittstelle erfolgt.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 36, wobei die Restriktionsschnittstelle eine Restriktionsschnittstelle für eine Restriktions-Endonuklease des Typs IIS ist.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 37, wobei die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS stromabwärts und 5–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz (c) liegt.
Nukleinsäuremolekül nach Anspruch 38, wobei die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS stromabwärts und 24–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleotidsequenz (c) liegt.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 39, wobei die transkribierbare Nukleinsäuresequenz eine für ein Peptid oder Protein kodierende Nukleinsäuresequenz umfasst und die Nukleinsäuresequenz für ein Einbringen einer transkribierbaren Nukleinsäuresequenz eine multiple Klonierungsstelle ist.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 40, ferner umfassend ein oder mehrere Mitglieder ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus: (i) einem Reportergen; (ii) einem selektierbaren Marker; und (iii) einem Replikationsursprung.
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 41, wobei das Nukleinsäuremolekül in einer kreisförmig geschlossenen Konformation vorliegt
Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 42, das insbesondere nach einer Linerarisierung für die in vitro-Transkription von RNA, insbesondere mRNA, geeignet ist.
Nukleinsäuremolekül, das durch Linearisierung des Nukleinsäuremoleküls nach einem der Ansprüche 1 bis 43 erhältlich ist.
RNA, die durch Transktription, vorzugsweise in vitro-Transkription, mit einem Nukleinsäuremolekül nach einem der Ansprüche 1 bis 44 unter Kontrolle des Promotors (a) erhältlich ist.
Verfahren zur in vitro-Transkription eines ausgewählten RNA-Moleküls, um dessen Stabilität und/oder Translationseffizienz zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz (a), die in das RNA-Molekül transkribierbar ist, (ii) Koppeln einer zweiten Nukleinsäuresequenz (b-2), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende der ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), und (iii) in vitro-Transkription der erhaltenen Nukleinsäure.
Verfahren zur Translation eines ausgewählten mRNA-Moleküls, um dessen Expression zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz (a), die in das mRNA-Molekül transkribierbar ist, (ii) Koppeln einer zweiten Nukleinsäuresequenz (b-2), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende der ersten Nukleinsäuresequenz (b-1), und (iii) Translatieren der mRNA, die durch Transkription der erhaltenen Nukleinsäure erhältlich ist.
Verfahren nach Anspruch 47, wobei die Transkription in vitro erfolgt.
Verfahren nach einem der Ansprüche 46 bis 48, das ferner ein Koppeln mindestens einer weiteren Nukleinsäuresequenz (b-3), die der 3'-nicht-translatierten Region eines Gens entspricht oder davon abgeleitet ist, an dem 3'-Ende der zweiten Nukleinsäuresequenz (b-2) umfasst.
Verfahren nach einem der Ansprüche 46 bis 49, wobei die Nukleinsäuresequenzen (a), (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3) in ein gemeinsames Transkript transkribierbar sind und in dem gemeinsamen Transkript die von den Nukleinsäuresequenzen (b-1) und/oder (b-2) und/oder gegebenenfalls (b-3) transkribierten Nukleinsäuresequenzen wirksam sind, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.
Verfahren nach einem der Ansprüche 46 bis 50, das ferner ein Koppeln einer Nukleinsäuresequenz (c), die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, an dem 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz (b-2) oder gegebenenfalls der Nukleinsäuresequenz (b-3) umfasst.
Verfahren nach Anspruch 51, wobei die Nukleinsäuresequenzen (a), (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3), und (c) in ein gemeinsames Transkript transkribierbar sind und in dem gemeinsamen Transkript die von den Nukleinsäuresequenzen (b-1) und/oder (b-2) und/oder gegebenenfalls (b-3) und/oder (c) transkribierten Nukleinsäuresequenzen wirksam sind, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.
Verfahren nach Anspruch 51 oder 52, dadurch gekennzeichnet, dass es ferner vor einer Transkription der erhaltenen Nukleinsäure eine Spaltung innerhalb der Nukleinsäuresequenz (c) umfasst, so dass bei einer Transkription der so erhaltenen Nukleinsäure ein Transkript erzeugt wird, das die von den Nukleinsäuresequenzen (a), (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3) transkribierten Nukleinsäuresequenzen und an seinem 3'-Ende eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist, wobei das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.
Verfahren nach einem der Ansprüche 46 bis 53, wobei die Nukleinsäuresequenzen (b-1), (b-2) und gegebenenfalls (b-3) unabhängig voneinander von einem Gen abgeleitet sind, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus alpha2-Globin, alpha1-Globin, beta-Globin, und Wachstumshormon, vorzugsweise humanem beta-Globin.
Verfahren zur in vitro-Transkription eines ausgewählten RNA-Moleküls, um dessen Stabilität und/oder Translationseffizienz zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer Nukleinsäuresequenz (b), die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, an dem 3'-Ende einer Nukleinsäuresequenz (a), die in das RNA-Molekül transkribierbar ist, und (ii) in vitro-Transkription der erhaltenen Nukleinsäure.
Verfahren zur Translation eines ausgewählten mRNA-Moleküls, um dessen Expression zu erhöhen, umfassend: (i) Koppeln einer Nukleinsäuresequenz (b), die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von midestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, an dem 3'-Ende einerNukleinsäuresequenz (a), die in das mRNA-Molekül transkribierbar ist, und (ii) Translatieren der mRNA, die durch Transkription der erhaltenen Nukleinsäure erhältlich ist.
Verfahren nach Anspruch 56, wobei die Transkription in vitro erfolgt.
Verfahren nach einem der Ansprüche 55 bis 57, wobei die Nukleinsäuresequenzen (a) und (b) in ein gemeinsames Transkript transkribierbar sind und in dem gemeinsamen Transkript die von der Nukleinsäuresequenz (b) transkribierte Nukleinsäuresequenz wirksam ist, die Translationseffizienz und/oder die Stabilität der von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierten Nukleinsäuresequenz zu erhöhen.
Verfahren nach einem der Ansprüche 55 bis 58, dadurch gekennzeichnet, dass es ferner vor einer Transkription der erhaltenen Nukleinsäure eine Spaltung innerhalb der Nukleinsäuresequenz (b) umfasst, so dass bei einer Transkription der so erhaltenen Nukleinsäure ein Transkript erzeugt wird, das die von der Nukleinsäuresequenz (a) transkribierte Nukleinsäuresequenzen und an seinem 3'-Ende eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist, wobei das Transkript als 3'-terminales Nukleotid ein A-Nukleotid aus der Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden aufweist.
Verfahren nach Anspruch 53 oder 59, wobei die Spaltung mit Hilfe einer Restriktionsschnittstelle erfolgt.
Verfahren nach Anspruch 60, wobei die Restriktionsschnittstelle eine Restriktionsschnittstelle für eine Restriktions-Endonuklease des Typs IIS ist.
Verfahren nach Anspruch 61, wobei die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS stromabwärts und 5–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz, die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, liegt.
Verfahren nach Anspruch 62, wobei die Erkennungssequenz für die Restriktions-Endonuklease des Typs IIS stromabwärts und 24–26 Basenpaare entfernt vom 3'-Ende der Nukleinsäuresequenz, die bei einer Transkription für eine Nukleotidsequenz von mindestens 20 aufeinander folgenden A-Nukleotiden kodiert, liegt.
RNA, die durch ein Verfahren zur in vitro-Transkription eines ausgewählten RNA-Moleküls nach einem der Ansprüche 46, 49–55 und 58–63 erhältlich ist.