ES2467678T3

ES2467678T3 - Modificación del ARN, que produce unas estabilidad de transcripción y eficiencia de traducción aumentadas

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Publication number: ES2467678T3
Application number: ES10014763.6T
Authority: ES
Inventors: Ugur Sahin; Silke Holtkamp; Özlem TÜRECI; Sebastian Kreiter
Original assignee: Biontech SE
Current assignee: Biontech SE
Priority date: 2005-09-28
Filing date: 2006-09-28
Publication date: 2014-06-12
Anticipated expiration: 2026-09-28
Also published as: WO2007036366A3; DK2357230T3; HK1155477A1; CY1113526T1; JP5435949B2; JP2016027811A; AU2006296702A1; ES2384113T3; EP1934345B9; SI2357230T1; JP2012235786A; HRP20120480T1; CA3023101C; ES2384113T9; DE102005046490A1; JP2009509516A; PT1934345E; PT2357230E; PL1934345T3; US20190062762A1

Abstract

Molécula de ácido nucleico, que comprende en el sentido 5' → 3' de transcripción: (a) un promotor, (b) una secuencia de ácido nucleico transcribible o una secuencia de ácido nucleico para la introducción de una secuencia de ácido nucleico transcribible, (c) una secuencia de ácido nucleico, que cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito, y (d) una secuencia de reconocimiento para una endonucleasa de restricción de tipo IIS, siendo la distancia entre la secuencia de ácido nucleico (c) y la secuencia de reconocimiento (d) seleccionada, de tal manera que el sitio de escisión de la endonucleasa de restricción de tipo IIS que se une a la secuencia de reconocimiento esté situado dentro de la secuencia de ácido nucleico (c).

Description

Modificación del ARN, que produce unas estabilidad de transcripción y eficiencia de traducción aumentadas.

Las vacunas convencionales, que incluyen los patógenos atenuados o inactivados, son eficaces en muchas áreas, pero no proporcionan una inmunidad protectora eficaz frente a algunos patógenos infecciosos y tumores. Esto hace necesarias vacunas que sean eficaces, versátiles, de producción sencilla y rentable y fáciles de almacenar.

Después de que se hubiera puesto de manifiesto que la inyección intramuscular directa de ADN plasmídico daba lugar a la expresión prolongada de los genes codificados en la superficie celular (Wolff et al, 1990), las vacunas a base de ADN se consideraron una estrategia nueva y prometedora de inmunización. Esto proporcionó un importante incentivo para el desarrollo de vacunas basadas en ácidos nucleicos. Inicialmente, se ensayaron vacunas a base de ADN contra patógenos infecciosos (Cox et al, 1993; Davis et al, 1993; Ulmer et al, 1993; Wang et al, 1993), pero pronto se investigaron más detenidamente también como terapia génica contra los tumores con el fin de inducir una inmunidad antitumoral específica (Conry et al, 1994; Conry et al, 1995a; Spooner et al, 1995; Wang et al, 1995). Esta estrategia de inmunización antitumoral tiene diversas ventajas importantes. Las vacunas de ácidos nucleicos son fáciles de preparar y relativamente económicas. Además, se pueden amplificar a partir de un número reducido de células.

El ADN es más estable que el ARN, pero conlleva algunos riesgos potenciales, tales como la inducción de anticuerpos anti-ADN (Gilkeson et al, 1995) y la integración del transgén en el genoma hospedador. Esto puede desactivar genes celulares y provocar una expresión a largo plazo incontrolable de dicho transgén u oncogénesis, y, por consiguiente, habitualmente no es aplicable a los antígenos asociados a tumores con potencial oncogénico, tal como, por ejemplo, erb-B2 (Bargmann et al, 1986) y p53 (Greenblatt et al, 1994). La utilización de ARN ofrece una alternativa atractiva para evitar estos riesgos potenciales.

Las ventajas de utilizar ARN como una especie de terapia génica reversible incluyen la expresión transitoria y su naturaleza no transformante. El ARN no necesita entrar en el núcleo para ser expresado transgénicamente y, además, no se puede integrar en el genoma hospedador, lo que elimina el riesgo de oncogénesis. Al igual que con el ADN (Condon et al, 1996; Tang et al, 1992), la inyección de ARN también puede inducir respuestas inmunitarias tanto celulares como humorales in vivo (Hoerr et al, 2000; Ying et al, 1999).

La inmunoterapia con ARN transcrito in vitro (IVT-RNA) aplica dos estrategias diferentes que han sido ensayadas con éxito en diversos modelos animales. O bien se inyecta directamente ARN a través de diferentes vías de inmunización (Hoerr et al, 2000), o se transfectan células dendríticas (CD) con ARN transcrito in vitro por lipofección

o electroporación y a continuación se administran (Heiser et al, 2000). Estudios publicados recientemente demuestran que la inmunización con CD transfectadas con ARN induce linfocitos T citotóxicos (CTL) específicos de antígeno in vitro e in vivo (Su et al, 2003; Heiser et al, 2002). Un factor de importancia central para la inducción óptima de las respuestas inmunitarias mediadas por linfocitos T es, entre otros, la dosis, es decir, la densidad de presentación de antígenos en las CD. Se ha intentado estabilizar el IVT-RNA mediante diversas modificaciones con el fin de alcanzar una expresión prolongada del IVT-RNA transferido, y, de este modo, aumentar la presentación de antígenos en las CD. Un requisito básico para la traducción es la presencia de una secuencia 3’ poli(A), estando la eficiencia de traducción correlacionada con la longitud de la poli(A) (Preiss y Hentze, 1998). El casquete 5’ y la secuencia 3’ poli(A) activan sinérgicamente la traducción in vivo (Gallie, 1991). Las regiones no traducidas (UTR) de los genes de globina son otros elementos conocidos que pueden contribuir a estabilizar el ARN y aumentar la eficiencia de traducción (Malone et al, 1989).

En la bibliografía se conocen algunos vectores IVT que se utilizan de un modo estandarizado como plantilla para la transcripción in vitro y que se han modificado genéticamente de tal modo que se producen transcritos de ARN. Los protocolos que se describen actualmente en la bibliografía (Conry et al, 1995b; Teufel et al, 2005; Strong et al, 1997; Carralot et al, 2004; Boczkowski et al, 2000) se basan en un vector plasmídico con la siguiente estructura: un promotor en 5’ de ARN polimerasa que permite la transcripción del ARN, seguido por un gen de interés flanqueado en 3’ y/o en 5’ por regiones no traducidas (UTR), y un casete de 3’ poliadenilo que contiene 50-70 nucleótidos A. Antes de la transcripción in vitro, el plásmido circular se linealiza aguas abajo con respecto al casete de poliadenilo con enzimas de restricción de tipo II (la secuencia de reconocimiento corresponde al sitio de escisión). De este modo, el casete de poliadenilo corresponde a la posterior secuencia poli(A) en el transcrito. Como resultado de este procedimiento, algunos nucleótidos permanecen como parte del sitio de escisión enzimática tras la linealización y se extienden o enmascaran la secuencia poli(A) en el extremo 3’. No está claro si este saliente no fisiológico afecta a la cantidad de proteína producida intracelularmente a partir de dicho constructo.

Por consiguiente, el ARN parece particularmente adecuado para aplicaciones clínicas. Sin embargo, la utilización de ARN en terapia génica está muy restringido, especialmente por la limitada vida media del mismo, particularmente en el citoplasma, lo que da lugar a una expresión proteínica reducida.

El objetivo de la presente invención consiste en dar a conocer ARN con una mayor estabilidad y una mayor eficiencia de traducción, así como medios para la obtención del mismo. Debería ser posible obtener grados elevados

de expresión mediante la utilización de dicho ARN en estrategias de terapia génica.

Este objetivo se alcanza, según la presente invención, mediante el objetivo de las reivindicaciones.

La presente invención se refiere a la estabilización de ARN, particularmente ARNm, y a un aumento de la traducción de ARNm. Particularmente, la presente invención se refiere a tres modificaciones de ARN, particularmente de ARN transcrito in vitro, que dan lugar a una mayor estabilidad de transcripción y a una mayor eficiencia de traducción.

Según la presente invención, se ha descubierto que el ARN que tiene una secuencia de poli(A) de extremo abierto se traduce de un modo más eficiente que el ARN que tiene una secuencia de poli(A) con un extremo enmascarado. Se ha puesto de manifiesto que una secuencia de poli(A) larga, particularmente de aproximadamente 120 pb, da lugar a una estabilidad de transcripción de ARN y una eficiencia de traducción óptimas. La invención también ha puesto de manifiesto que una doble región 3’ no traducida (UTR), particularmente del gen de la globina beta humana, en una molécula de ARN, mejora la eficiencia de traducción de un modo que supera claramente el efecto total que se espera utilizando dos UTR individuales. Según la presente invención, se ha puesto de manifiesto que una combinación de las modificaciones descritas anteriormente tienen un efecto sinérgico sobre la estabilización del ARN y el aumento de la traducción.

Utilizando RT-PCR cuantitativa y variantes de eGFP para medir las cantidades de transcripción y el rendimiento proteínico, la presente invención también ha puesto de manifiesto que las modificaciones de ARN según la presente invención mejoran independientemente la estabilidad del ARN y la eficiencia de traducción en la transfección de células dendríticas (CD). De este modo, ha sido posible aumentar la densidad de los complejos péptido/CMH específicos de antígeno en las células transfectadas y su capacidad para estimular y expandir los linfocitos T CD4+ y CD8+ específicos de antígeno. Por consiguiente, la presente invención se refiere a una estrategia para la optimización de vacunas de CD transfectadas con ARN utilizando ARN modificado mediante las modificaciones de ARN descritas en la presente invención.

Preferentemente, la modificación del ARN según la invención, y con ello la estabilización y/o aumento de la eficiencia de traducción del mismo, se alcanza mediante la modificación genética de vectores de expresión que actúan preferentemente como plantilla para la transcripción de ARN in vitro.

Los vectores de este tipo están destinados a permitir particularmente la transcripción de ARN con una secuencia de poli(A) que tiene preferentemente un extremo abierto en dicho ARN, es decir, que no hay nucleótidos que no sean nucleótidos A flanqueando dicha secuencia de poli(A) en su extremo 3’. Se puede obtener una secuencia de poli(A) de extremo abierto en el ARN mediante la introducción de un sitio de escisión de restricción de tipo IIS en un vector de expresión que permite que el ARN se transcriba bajo el control de un promotor en 5’ de la ARN polimerasa y que contiene un casete de poliadenilo (secuencia de poli(A)), donde la secuencia de reconocimiento está situada en 3’ de la secuencia de poli(A), mientras que el sitio de escisión se encuentra secuencia arriba y, por lo tanto, dentro de la secuencia de poli(A). La escisión de restricción en el sitio de escisión de restricción de tipo IIS permite linealizar un plásmido dentro de la secuencia de poli(A) (figura 2). A continuación, el plásmido linealizado se puede utilizar como plantilla para la transcripción in vitro, terminando el transcrito resultante en una secuencia de poli(A) sin enmascarar.

Además o alternativamente, se puede alcanzar una modificación del ARN según la invención, y con ello la estabilización y/o el aumento de la eficiencia de traducción del mismo, mediante la modificación genética de vectores de expresión, de tal modo que permitan la transcripción del ARN con dos o más regiones no traducidas en 3’ en su extremo 3’, y preferentemente entre la secuencia que codifica un péptido o proteína (marco de lectura abierto) y la secuencia de poli(A).

En un aspecto, la presente invención se refiere a una molécula de ácido nucleico que comprende, en el sentido 5’ 3’ de transcripción: (a) un promotor, (b) una secuencia de ácido nucleico transcribible o una secuencia de ácido nucleico para la introducción de una secuencia de ácido nucleico transcribible, (c-1) una primera secuencia de ácido nucleico, que corresponde a la región 3’ no traducida de un gen o se deriva de la misma; y (c-2) una segunda secuencia de ácido nucleico, que corresponde a la región 3’ no traducida de un gen o se deriva de la misma.

La molécula de ácido nucleico según la invención comprende en una forma de realización asimismo (c-3) por lo menos una secuencia de ácido nucleico adicional, que corresponde a la región 3’ no traducida de un gen o se deriva de la misma.

En la molécula de ácido nucleico según la invención, las secuencias de ácido nucleico (b), (c-1), (c-2), cuando proceda, (c-3), y (d), bajo el control del promotor (a), se pueden transcribir preferentemente para obtener un transcrito común, en el que las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de las secuencias de ácido nucleico (c-1) y/o (c-2) y/o, cuando proceda, (c-3), y/o (d) están preferentemente activas a fin de aumentar la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico transcribible (b).

Las secuencias de ácido nucleico (c-1), (c-2) y, cuando proceda, (c-3), pueden ser idénticas o distintas.

En una forma de realización, la molécula de ácido nucleico comprende, además, (d) una secuencia de ácido nucleico que, cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

Las secuencias de ácido nucleico (b), (c-1), (c-2), cuando proceda, (c-3), y (d), bajo el control del promotor (a), se pueden transcribir preferentemente para obtener un transcrito común, en el que las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de las secuencias de ácido nucleico (c-1) y/o (c-2) y/o, cuando proceda, (c-3), y/o (d) están preferentemente activas a fin de aumentar la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico transcribible (b).

En determinadas formas de realización, la secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito. La secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica preferentemente una secuencia de nucleótidos de hasta 500 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 400 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 300 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 200 nucleótidos A consecutivos y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

En una forma de realización, la molécula de ácido nucleico está caracterizada porque se puede escindir, preferentemente mediante enzimas u otra manera bioquímica, dentro de la secuencia de ácido nucleico (d), de tal modo que dicha escisión da lugar a una molécula de ácido nucleico que comprende, en el sentido 5’ - 3’ de transcripción, el promotor (a), la secuencia de ácido nucleico (b), las secuencias de ácido nucleico (c-1), (c-2) y, cuando proceda, (c-3) y por lo menos una parte de la secuencia de ácido nucleico (d), donde por lo menos una parte de la secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito, y donde el nucleótido 3’-terminal de dicho transcrito es un nucleótido A de dicha secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos.

Preferentemente, tras la escisión, dicha molécula de ácido nucleico, en el extremo de la cadena que sirve como plantilla para la secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, tiene un nucleótido T que es parte de la secuencia de nucleótidos que sirve como plantilla para dicha secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

En determinadas formas de realización, por lo menos una parte de la secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito. La secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica preferentemente una secuencia de nucleótidos de hasta 500 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 400 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 300 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 200 nucleótidos A consecutivos y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

La molécula de ácido nucleico según la invención es preferentemente una molécula circular cerrada antes de la escisión y una molécula lineal después de la misma.

Preferentemente, la escisión se lleva a cabo con ayuda de un sitio de escisión de restricción, que es preferentemente un sitio de escisión de restricción para una endonucleasa de restricción de tipo IIS.

La secuencia de reconocimiento para la endonucleasa de restricción de tipo IIS se encuentra 5-26 pares de bases, preferentemente 24-26 pares de bases, aguas abajo con respecto al extremo 3’ de la secuencia de ácido nucleico (d).

En una forma de realización preferida, las secuencias de ácido nucleico (c-1), (c-2) y, cuando proceda, (c-3), son derivadas independientemente una de otra de un gen, seleccionado de entre el grupo constituido por genes de globina, tales como gen de globina alfa 2, gen de globina alfa 1, gen de globina beta, y hormona del crecimiento, preferentemente globina beta humana, y corresponden en una forma de realización preferida a la secuencia de ácido nucleico según la SEC ID NO: 1 del protocolo de secuencias o de una secuencia de ácido nucleico derivada de la misma.

En otro aspecto, la presente invención se refiere a una molécula de ácido nucleico que comprende, en el sentido 5’

-: 3’ de transcripción: (a) un promotor, (b) una secuencia de ácido nucleico transcribible o una secuencia de ácido nucleico para la introducción de una secuencia de ácido nucleico transcribible; y (c) una secuencia de ácido nucleico, que cuando se transcribe bajo el control del promotor (a) codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

Las secuencias de ácido nucleico (b) y (c) bajo el control del promotor (a) son transcribibles preferentemente para proporcionar una transcrito común en el que la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico (c) está preferentemente activa para aumentar la eficacia de la traducción y/o la estabilidad del ácido nucleico transcrito a partir de la secuencia de ácido nucleico (b) transcribible.

En determinadas formas de realización, la secuencia de ácido nucleico (c), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito. Preferentemente, la secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica preferentemente una secuencia de nucleótidos de hasta 500 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 400 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 300 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 200 nucleótidos A consecutivos y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

La molécula de ácido nucleico en una forma de realización dentro de la secuencia de ácido nucleico (c) se puede escindir, de tal manera que la escisión da lugar a una molécula de ácido nucleico que comprende, en el sentido 5’ 3’ de transcripción, el promotor (a), la secuencia de ácido nucleico (b), y por lo menos una parte de la secuencia de ácido nucleico (d), donde por lo menos una parte de la secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito, y donde el nucleótido 3’-terminal de dicho transcrito es un nucleótido A de dicha secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos.

En determinadas formas de realización, por lo menos una parte de la secuencia de ácido nucleico (d), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito. La secuencia de ácido nucleico (c), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica preferentemente una secuencia de nucleótidos de hasta 500 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 400 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 300 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 200 nucleótidos A consecutivos y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

La molécula de ácido nucleico es preferentemente una molécula circular cerrada antes de la escisión y una molécula lineal después de la misma.

La secuencia de reconocimiento para la endonucleasa de restricción de tipo IIS en una forma de relaización se encuentra a una distancia 5-26 pares de bases, preferentemente de 24-26 pares de bases, aguas abajo con respecto al extremo 3’ de la secuencia de ácido nucleico (c).

En una molécula de ácido nucleico según la invención, la secuencia de ácido nucleico transcribible comprende preferentemente una secuencia de ácido nucleico que codifica un péptido o proteína y la secuencia de ácido nucleico para la introducción de una secuencia de ácido nucleico transcribible es preferentemente un sitio de clonación múltiple.

Una molécula de ácido nucleico según la presente invención puede comprender, además, uno o más miembros seleccionados entre el grupo formado por: (i) un gen indicador; (ii) un marcador seleccionable; y (iii) un origen de replicación.

En una forma de realización, una molécula de ácido nucleico según la invención se encuentra en una conformación circular cerrada y, preferentemente, adecuada para la transcripción in vitro del ARN, particularmente ARNm, particularmente tras la linealización.

En otros aspectos, la presente invención se refiere a una molécula de ácido nucleico que se puede obtener por linealización de una molécula de ácido nucleico descrita anteriormente, preferentemente por escisión dentro de la secuencia de ácido nucleico que codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, y a ARN que se puede obtener por transcripción, preferentemente transcripción in vitro, con las moléculas de ácido nucleico descritas anteriormente bajo el control del promotor (a).

En otro aspecto, la presente invención se refiere a un procedimiento de transcripción in vitro de una molécula de ARN seleccionada a fin de aumentar su estabilidad y/o eficiencia de traducción, que comprende: (i) acoplar una primera secuencia de ácido nucleico (b-1), que corresponde a la región 3’ no traducida de un gen o se deriva de la misma, en el extremo 3’ de una secuencia de ácido nucleico (a) que se puede transcribir para obtener dicha molécula de ARN, (ii) acoplar una segunda secuencia de ácido nucleico (b-2), que corresponde a la región 3’ no traducida de un gen o se deriva de la misma en el extremo 3’ de dicha primera secuencia de ácido nucleico (b-1), y,

(iii): la transcripción in vitro de los ácidos nucleicos obtenidos.

(iii): la traducción del ARNm, que se puede obtener mediante la transcripción de los ácidos nucleicos obtenidos. Preferentemente, la transcripción se produce in vitro.

Según la presente invención, el término “acoplamiento de una secuencia de ácido nucleico en el extremo 3’ de una secuencia de ácido nucleico” se refiere a un enlace covalente de las dos secuencias de ácido nucleico, de tal modo que la primera secuencia de ácido nucleico está situada en una posición aguas abajo con respecto a la segunda secuencia de ácido nucleico y puede estar separada de la misma por secuencias de ácido nucleico adicionales.

En una forma de realización, los procedimientos según la invención comprenden además un acoplamiento de por lo menos una secuencia adicional de ácido nucleico (b-3), que corresponde a la región 3’ no traducida de un gen o se deriva de la misma, en el extremo 3’ de la segunda secuencia de ácido nucleico (b-2).

Las secuencias de ácido nucleico (a), (b-1), (b-2) y, cuando proceda, (b-3), y (c), se pueden transcribir preferentemente a fin de obtener un transcrito común en el que las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de las secuencias de ácido nucleico (b-1) y/o (b-2) y/o, cuando proceda, (b-3), y/o (c), están preferentemente activas a fin de aumentar la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico transcrito (a).

En otra forma de realización, los procedimientos según la presente invención comprenden, además, acoplar una secuencia de ácido nucleico (c) que, cuando se transcribe, codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, en el extremo 3’ de la secuencia de ácido nucleico (b-2), o, cuando proceda, de la secuencia de ácido nucleico (b-3).

Las secuencias de ácido nucleico (a), (b-1), (b-2) y, cuando proceda, (b-3), y (c), se pueden transcribir preferentemente a fin de obtener un transcrito común en el que las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de las secuencias de ácido nucleico (b-1) y/o (b-2) y/o, cuando proceda, (b-3), y/o (c), están preferentemente activas a fin de aumentar la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico transcribible (a).

En determinadas formas de realización, la secuencia de ácido nucleico (c), cuando se transcribe, codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito. La secuencia de ácido nucleico (c), cuando se transcribe, codifica preferentemente una secuencia de nucleótidos de hasta 500 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 400 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 300 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 200 nucleótidos A consecutivos y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos.

En determinadas formas de realización, los procedimientos según la presente invención comprenden, además, antes de la transcripción del ácido nucleico obtenido, la escisión dentro de la secuencia de ácido nucleico (c) de tal modo que la transcripción del ácido nucleico obtenido de este modo genera un transcrito que tiene las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de las secuencias de ácido nucleico (a), (b-1), (b-2) y, cuando proceda, (b-3), y una secuencia de nucleótidos 3’-terminal de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, donde el nucleótido 3’-terminal de dicho transcrito es un nucleótido A de la secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos.

En determinadas formas de realización, el transcrito presenta, en su extremo 3’, una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos. El transcrito presenta preferentemente, en su extremo 3’, una secuencia de nucleótidos de hasta 500, preferentemente de hasta 400, preferentemente de hasta 300, preferentemente de hasta 200, y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos, en el transcrito.

En formas de realización preferidas, las secuencias de ácido nucleico (b-1), (b-2) y, cuando proceda, (b-3), derivan, independientemente, de manera ventajosa una de otra, preferentemente, de un gen seleccionado de entre el grupo constituido por genes de globina, tales como gen de globina alfa 2, gen de globina alfa 1, gen de globina beta y la hormona del crecimiento, preferentemente globina beta humana, y corresponden en una forma de realización preferida a la secuencia de ácido nucleico según la SEC ID NO: 1 de la lista de secuencias o de una secuencia de ácido nucleico derivada de la misma.

En otro aspecto, la presente invención se refiere a un procedimiento de transcripción in vitro de una molécula de ARN seleccionada a fin de aumentar su estabilidad y/o eficiencia de traducción, que comprende: (i) acoplar una secuencia de ácido nucleico (b), que, en caso de transcripción codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, en el extremo 3’ de una secuencia de ácido nucleico (a), que se puede transcribir para obtener la molécula de ARN y, (iii) la transcripción in vitro de los ácidos nucleicos obtenidos.

En otro aspecto, la presente invención se refiere a un procedimiento de traducción de una molécula de ARNm seleccionada con el fin de aumentar la expresión de la misma, que comprende: (i) acoplar una primera secuencia de ácido nucleico (b) que, en caso de transcripción codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el extremo 3’ de una secuencia de ácido nucleico (a) que se puede transcribir para obtener dicha molécula de ARN, y (ii) traducir el ARNm, que se obtiene mediante la transcripción del ácido nucleico obtenido. Preferentemente, la transcripción se produce in vitro.

Las secuencias de ácido nucleico (a) y (b), se pueden transcribir preferentemente a fin de obtener un transcrito común en el que la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de las secuencias de ácido nucleico (b) está preferentemente activa a fin de aumentar la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico transcribible (a).

En determinadas formas de realización, la secuencia de ácido nucleico (b), cuando se transcribe, codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito. Preferentemente, la secuencia de ácido nucleico (b), cuando se transcribe, codifica preferentemente una secuencia de nucleótidos de hasta 500 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 400 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 300 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta 200 nucleótidos A consecutivos y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.

En determinadas formas de realización, los procedimientos según la presente invención comprenden, además, antes de la transcripción del ácido nucleico obtenido, la escisión dentro de la secuencia de ácido nucleico (b) de tal modo que la transcripción del ácido nucleico obtenido de este modo genera un transcrito que tiene las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de las secuencias de ácido nucleico (a), y una secuencia de nucleótidos 3’-terminal de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, donde el nucleótido 3’-terminal de dicho transcrito es un nucleótido A de la secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos.

En determinadas formas de realización, el transcrito presenta, en su extremo 3’, una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 80 nucleótidos A consecutivos, preferentemente por lo menos 100 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito. El transcrito presenta preferentemente, en su extremo 3’, una secuencia de nucleótidos de hasta por lo menos 500 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta por lo menos 400 nucleótidos A consecutivos, preferentemente de hasta por lo menos 300 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 200 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos.

La escisión se lleva a cabo en el procedimiento según la invención de acuerdo con todos los aspectos preferentemente con ayuda de un sitio de escisión de restricción, que es preferentemente un sitio de escisión de restricción para una endonucleasa de restricción de tipo IIS.

En una forma de realización, la secuencia de reconocimiento para la endonucleasa de restricción de tipo IIS se encuentra a una distancia de 5-26 pares de bases, preferentemente de 24-26 pares de bases, aguas abajo con respecto al extremo 3’ de la secuencia de ácido nucleico, que en caso de una transcripción codifica una secuencia de nucléotidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos.

La presente invención también se refiere a ARN que se puede obtener por los procedimientos según la presente invención de transcripción in vitro de una molécula de ARN seleccionado. Preferentemente, la preparación de ARN que se puede obtener por los procedimientos según la presente invención de transcripción in vitro de una molécula de ARN seleccionada a partir de una molécula de ácido nucleico según la presente invención como plantilla es preferentemente homogénea o esencialmente homogénea con respecto a la longitud de la secuencia de poli(A) del ARN, es decir, que la longitud de la secuencia de poli(A) en más del 90%, preferentemente más del 95%,

preferentemente más del 98% o 99%, de las moléculas de ARN de la preparación difiere en no más de 10, preferentemente en no más de 5, 4, 3, 2 o 1, nucleótidos A.

La presente invención se puede utilizar, por ejemplo, para aumentar la expresión de proteínas recombinantes en la transcripción y expresión celulares. Más específicamente, es posible, cuando se producen proteínas recombinantes, introducir las modificaciones descritas según la presente invención y una combinación de las mismas en vectores de expresión, y utilizarlos con el propósito de aumentar la transcripción de ácidos nucleicos recombinantes y la expresión de proteínas recombinantes en sistemas basados en células. Esto incluye, por ejemplo, la preparación de anticuerpos, hormonas, citocinas, enzimas y similares recombinantes. Esto permite, entre otras cosas, reducir los costes de producción.

También es posible utilizar las modificaciones descritas en la presente invención y una combinación de las mismas en aplicaciones de terapia génica. Dichas modificaciones se pueden introducir en vectores de terapia génica y utilizarse para aumentar la expresión de un transgén. Con este fin, se puede utilizar cualquier sistema de vectores a base de ácidos nucleicos (ADN/ARN) (por ejemplo, plásmidos, adenovirus, vectores de poxvirus, vectores de virus de la gripe, vectores de alfavirus y similares). Las células se pueden transfectar con estos vectores in vitro, por ejemplo, en linfocitos o células dendríticas, o bien in vivo, por administración directa.

Mediante las modificaciones descritas según la invención y una combinación de las mismas es posible, además, aumentar la estabilidad y/o eficiencia de expresión de los ácidos ribonucleicos y, de este modo, la cantidad de péptidos o proteínas codificados por dichos ácidos ribonucleicos. Se pueden utilizar ácidos ribonucleicos codificantes, por ejemplo, para la expresión transitoria de genes, pudiéndose aplicar en campos como las vacunas a base de ARN que se transfectan en células in vitro o se administran directamente in vivo, para la expresión transitoria de proteínas funcionales recombinantes in vitro, por ejemplo, para iniciar procesos de diferenciación en células o para estudiar las funciones de las proteínas, y la expresión transitoria de proteínas funcionales recombinantes, tales como eritropoyetina, hormonas, inhibidores de la coagulación, etc., in vivo, particularmente como productos farmacéuticos.

El ARN, en particular el ARN transcrito in vitro, modificado según las modificaciones descritas en la presente invención, se puede utilizar, particularmente, para la transfección de células presentadoras de antígeno y, por consiguiente, como herramienta para suministrar el antígeno que se pretende presentar y para cargar células presentadoras de antígeno, correspondiendo dicho antígeno que se pretende presentar al péptido o proteína expresados a partir de dicho ARN o derivados del mismo, particularmente mediante un procesamiento intracelular, tal como escisión, es decir, que el antígeno que se pretende presentar es, por ejemplo, un fragmento del péptido o proteína expresados a partir del ARN. Dichas células presentadoras de antígeno se pueden utilizar para estimular los linfocitos T, particularmente los linfocitos T CD4+ y/o CD8+.

Descripción detallada de la invención

Según la presente invención, se pueden utilizar métodos estándares para preparar ácidos nucleicos recombinantes, cultivar células e introducir ácidos nucleicos, particularmente ARN, en las células, particularmente por electroporación y lipofección. Las reacciones enzimáticas se llevan a cabo según las instrucciones del fabricante o de un modo conocido.

Según la presente invención, una molécula de ácido nucleico o una secuencia de ácido nucleico se refiere a un ácido nucleico que es preferentemente ácido desoxirribonucleico (ADN) o ácido ribonucleico (ARN). Según la presente invención, los ácidos nucleicos comprenden ADN genómico, ADNc, ARNm, moléculas preparadas por recombinación y sintetizadas químicamente. Según la presente invención, un ácido nucleico se puede presentar en forma de molécula monocatenaria o bicatenaria, y lineal o circular cerrada covalentemente.

“ARNm” significa “ARN mensajero”, y se refiere a un “transcrito” producido utilizando ADN como plantilla y que, a su vez, codifica un péptido o proteína. Un ARNm comprende habitualmente una región 5’ no traducida, una región codificadora de proteína y una región 3’ no traducida. El ARNm tiene una vida media limitada, tanto en células como in vitro. Según la presente invención, el ARNm se puede preparar a partir de una plantilla de ADN por transcripción in vitro. Se puede modificar mediante modificaciones estabilizantes adicionales y bloqueo, además de las modificaciones según la presente invención.

Además, el término “ácido nucleico” comprende una derivatización química de un ácido nucleico en una base nucleotídica, en el sacárido o el fosfato, y ácidos nucleicos que contienen nucleótidos no naturales y análogos de nucleótidos.

Según la presente invención, la expresión “secuencia de ácido nucleico que deriva de una secuencia de ácido nucleico” se refiere a un ácido nucleico que contiene, en comparación con el ácido nucleico del cual deriva, simples

o múltiples sustituciones, eliminaciones y/o adiciones de nucleótidos, y que es preferentemente complementario con respecto al ácido nucleico del cual deriva, es decir, que existe cierto grado de homología entre dichos ácidos nucleicos, y las secuencias de nucleótidos de dichos ácidos nucleicos se corresponden significativamente de modo

directo o complementario. Según la presente invención, un ácido nucleico derivado de un ácido nucleico tiene propiedades funcionales del ácido nucleico del cual deriva. Dichas propiedades funcionales incluyen, particularmente, la capacidad de aumentar, en una unión funcional con un ácido nucleico que se puede transcribir en ARN (secuencia de ácido nucleico transcribible), la estabilidad y/o la eficiencia de traducción del ARN producido a partir de dicho ácido nucleico en la molécula completa de ARN.

Según la presente invención, las expresiones “vínculo funcional” o “vinculado funcionalmente” se refieren a una conexión dentro de una relación funcional. Un ácido nucleico está “vinculado funcionalmente” si está funcionalmente relacionado con otra secuencia de ácido nucleico. Por ejemplo, un promotor está vinculado funcionalmente a una secuencia codificadora si afecta a la transcripción de dicha secuencia codificadora. Los ácidos nucleicos funcionalmente vinculados son típicamente adyacentes entre sí, estando separados, si procede, por otras secuencias de ácido nucleico, y, en determinadas formas de realización, son transcritos por la ARN polimerasa a fin de obtener una sola molécula de ARN (transcrito común).

Los ácidos nucleicos descritos según la invención son preferentemente aislados. El término “ácido nucleico aislado” significa, según la presente invención, que el ácido nucleico ha sido (i) amplificado in vitro, por ejemplo, por reacción en cadena de la polimerasa (PCR); (ii) producido por recombinación mediante clonación; (iii) purificado, por ejemplo, mediante escisión y fraccionamiento en gel de electroforesis, o (iv) sintetizado, por ejemplo, por síntesis química. Un ácido nucleico aislado es un ácido nucleico disponible para la manipulación por técnicas de ADN recombinante.

Un ácido nucleico es “complementario” a otro ácido nucleico si las dos secuencias se pueden hibridar entre sí y formar un híbrido estable, llevándose a cabo dicha hibridación preferentemente en condiciones que permiten la hibridación específica entre polinucleótidos (condiciones estrictas). Dichas condiciones estrictas se describen, por ejemplo, en Molecular Cloning: A Laboratory Manual, J. Sambrook et al, eds., 2ª edición, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, Nueva York, 1989, o en Current Protocols in Molecular Biology, F.M. Ausubel et al, eds., John Wiley & Sons, Inc., Nueva York, y se refieren, por ejemplo, a una hibridación a 65ºC en tampón de hibridación (3,5 x SSC, Ficoll al 0,02%, polivinilpirrolidona al 0,02%, seroalbúmina bovina al 0,02%, NaH2PO4 2,5 mM (pH 7), SDS al 0,5%, EDTA 2 mM). SSC es cloruro de sodio 0,15 M/citrato de sodio 0,15 M, con un pH de 7.Tras la hibridación, la membrana a la que se ha transferido el ADN se lava, por ejemplo en 2 x SSC a temperatura ambiente y a continuación en 0,1-0,5 x SSC/0,1 x SDS a temperaturas de hasta 68ºC.

Según la presente invención, los ácidos nucleicos complementarios tienen nucleótidos que son idénticos en por lo menos un 60% por lo menos un 70% por lo menos un 80% por lo menos un 90%, y preferentemente por lo menos un 95% por lo menos un 98% o por lo menos un 99%.

El término “idéntico en un %” se refiere al porcentaje de nucleótidos que son idénticos en una alineación óptima entre dos secuencias que se comparan, siendo dicho porcentaje puramente estadístico, y las diferencias entre las dos secuencias pueden estar distribuidas aleatoriamente en toda la longitud de la secuencia, y la secuencia que se compara puede comprender adiciones o eliminaciones con respecto a la secuencia de referencia, a fin de obtener una alineación óptima entre las dos secuencias. Habitualmente, las comparaciones entre dos secuencias se llevan a cabo comparando dichas secuencias, tras una alineación óptima, con respecto a un segmento o “ventana de comparación”, a fin de identificar regiones locales de secuencias correspondientes. La alineación óptima para la comparación se puede llevar a cabo manualmente o utilizando el algoritmo de homología local de Smith y Waterman, 1981, Ads App. Math. 2, 482, utilizando el algoritmo de homología local de Neddleman y Wunsch, 1970,

J. Mol. Biol. 48, 443, y utilizando el algoritmo de búsqueda de similitudes de Pearson y Lipman, 1988, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 2444, o mediante programas informáticos que utilizan dichos algoritmos (GAP, BESTFIT, FASTA, BLAST P, BLAST N y TFASTA, en Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Drive, Madison, Wisconsin, Estados Unidos).

El porcentaje de identidad se obtiene determinando el número de posiciones idénticas en el que se corresponden las secuencias que se comparan, dividiendo este número por el número de posiciones comparadas y multiplicando el resultado por 100.

Por ejemplo, se puede utilizar el programa de BLAST “BLAST 2 sequences”, disponible en la página web http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/b12seq/wblast2.cgi.

La expresión “extremo 3’ de un ácido nucleico” se refiere, según la presente invención, al extremo que tiene un grupo hidroxilo libre. En la representación esquemática de los ácidos nucleicos bicatenarios, particularmente del ADN, el extremo 3’ está siempre en el lado derecho. La expresión “extremo 5’ de un ácido nucleico” se refiere, según la presente invención, al extremo que tiene un grupo fosfato libre. En la representación esquemática de los ácidos nucleicos bicatenarios, particularmente del ADN, el extremo 5’ está siempre en el lado izquierdo.

extremo 5’ 5’--P-NNNNNNN-OH-3’ extremo 3’ 3’-HO-NNNNNNN-P--5’

En determinadas formas de realización, un ácido nucleico está vinculado funcionalmente, según la invención, a

secuencias de control de la expresión que pueden ser homólogas o heterólogas con respecto al ácido nucleico.

Un ácido nucleico transcribible, particularmente un ácido nucleico que codifica un péptido o proteína, y una secuencia de control de la expresión están “funcionalmente” vinculados si están unidos covalentemente entre sí de tal modo que la transcripción o la expresión del ácido nucleico transcribible, y particularmente codificador, permanece bajo el control o bajo la influencia de la secuencia de control de la expresión. Si el ácido nucleico se debe traducir en un péptido o proteína funcional, la inducción de una secuencia de control de la expresión funcionalmente vinculada a la secuencia codificadora da lugar a la transcripción de dicha secuencia codificadora, sin provocar ningún desplazamiento de marco en la secuencia codificadora ni que la misma sea incapaz de traducirse en el péptido o la proteína deseados.

El término “secuencia de control de la expresión” comprende, de acuerdo con los promotores de la presente invención, secuencias de unión de ribosomas y otros elementos de control que controlan la transcripción de un gen o la traducción del ARN derivado. En formas de realización particulares de la presente invención, las secuencias de control de la expresión se pueden regular. La estructura exacta de las secuencias de control de la expresión puede variar en función de la especie o el tipo de células, pero habitualmente incluye secuencias no transcritas en 5’ y no traducidas en 5’ y 3’ que participan en la iniciación de la transcripción y traducción, respectivamente, tales como la caja TATA, una secuencia de bloqueo, la caja CAAT y similares. Más específicamente, las secuencias de control de la expresión no transcritas en 5’ incluyen una región promotora que comprende una secuencia promotora para el control de la transcripción del gen funcionalmente vinculado. Las secuencias de control de la expresión también pueden incluir secuencias activadoras o secuencias activadoras secuencia arriba.

Los ácidos nucleicos que se especifican en la presente memoria, particularmente los ácidos nucleicos transcribibles y codificadores, se pueden combinar con cualquier secuencia de control de la expresión, particularmente promotoras, que pueden ser homólogas o heterólogas con respecto a dichos ácidos nucleicos, refiriéndose el término “homólogo” al hecho de que un ácido nucleico está también funcionalmente vinculado de forma natural a la secuencia de control de la expresión, y refiriéndose el término “heterólogo” a que un ácido nucleico no está funcionalmente vinculado de forma natural a la secuencia de control de la expresión.

El término “promotor” o “región promotora” se refiere a una secuencia de ADN secuencia arriba (5’) de la secuencia codificadora de un gen, que controla la expresión de dicha secuencia codificadora proporcionándole un sitio de reconocimiento y unión para la ARN polimerasa. La región promotora puede incluir además sitios de reconocimiento

o unión para otros factores implicados en la regulación de la transcripción de dicho gen. Un promotor puede controlar la transcripción de un gen procariótico o eucariótico. Un promotor puede ser “inducible” e iniciar la transcripción en respuesta a un inductor, o puede ser “constitutivo” si la transcripción no está controlada por un inductor. Un promotor inducible se expresa únicamente en un grado muy pequeño o nulo si no está presente un inductor. En presencia del inductor, el gen es “activado” o aumenta el nivel de transcripción. Habitualmente, esto está mediado por la unión de un factor de transcripción específico.

Son ejemplos de promotores preferidos según la presente invención los promotores de la polimerasa SP6, T3 o T7.

Según la presente invención, el término “expresión” se utiliza en su sentido más general y comprende la producción de ARN o de ARN y proteína. También comprende la expresión parcial de ácidos nucleicos. Además, la expresión puede ser transitoria o estable. Con respecto al ARN, el término “expresión” o “traducción” se refiere particularmente a la producción de péptidos o proteínas.

El término “ácidos nucleicos que se pueden transcribir para obtener un transcrito común” se refiere a que dichos ácidos nucleicos están funcionalmente vinculados entre sí, de tal modo que, cuando proceda, después de la linealización, tal como por escisión con enzimas de restricción de la molécula de ácido nucleico que comprende dichos ácidos nucleicos, particularmente de una molécula de ácido nucleico circular cerrada, la transcripción bajo el control de un promotor da lugar a una molécula de ARN que comprende los transcritos de dichos ácidos nucleicos unidos covalentemente entre sí, y cuando sea adecuado separados por secuencias interpuestas.

Según la presente invención, el término “transcripción” comprende “transcripción in vitro”, refiriéndose el término “transcripción in vitro” a un método en el que se sintetiza ARN, particularmente ARNm, in vitro sin células, es decir, preferentemente utilizando extractos celulares adecuadamente preparados. La preparación de transcritos utiliza preferentemente vectores de clonación, que habitualmente se denominan vectores de transcripción y que, en la presente invención, se incluyen dentro del término “vector”.

El término “secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de una secuencia de ácido nucleico” se refiere a ARN, cuando proceda como parte de una molécula completa de ARN, que es un producto de transcripción de la primera secuencia de ácido nucleico.

El término “secuencia de ácido nucleico que está activa a fin de aumentar la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de una secuencia de ácido nucleico” significa que el primer ácido nucleico es capaz de modificar, en un transcrito común con el segundo ácido nucleico, la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de dicho segundo ácido

nucleico, de tal modo que dicha eficiencia de traducción y/o estabilidad aumentan en comparación con la eficiencia de traducción y/o la estabilidad de dicho segundo ácido nucleico sin dicho primer ácido nucleico. En este contexto, el término “eficiencia de traducción” se refiere a la cantidad de producto de traducción proporcionada por una molécula de ARN en un período determinado, y el término “estabilidad” se refiere a la vida media de una molécula de ARN.

La región 3’ no traducida se refiere a una región que se encuentra en el extremo 3’ de un gen, aguas abajo con respecto al codón de terminación de una región codificadora de proteína, y que se transcribe pero no se traduce en una secuencia de aminoácidos.

Según la presente invención, una primera región de polinucleótidos se considera localizada posteriormente o aguas abajo de una segunda región de polinucleótidos, si el extremo 5’ de dicha primera región de polinucleótidos es la parte de dicha primera región de polinucleótidos más próxima al extremo 3’ de dicha segunda región de polinucleótidos.

Habitualmente, la región 3’ no traducida se extiende desde el codón de terminación para un producto de traducción hasta la secuencia de poli(A) que generalmente se une tras el proceso de transcripción. Habitualmente, las regiones 3’ no traducidas de ARNm de mamíferos tienen una región de homología conocida como secuencia hexanucleotídica AAUAAA. Presumiblemente, esta secuencia es la señal de unión de poli(A), y a menudo se encuentra de 10 a 30 bases secuencia arriba del sitio de unión de poli(A).

Las regiones 3’ no traducidas pueden contener una o más repeticiones invertidas que se puedan plegar para dar lugar a estructuras de horquilla que actúan como barreras para las exorribonucleasas o interactúan con proteínas conocidas porque aumentan la estabilidad del ARN (por ejemplo, proteínas de unión a ARN).

Según la invención, las regiones 3’ y/o 5’ no traducidas pueden estar funcionalmente unidas a un ácido nucleico transcribible y particularmente codificador, de manera que dichas regiones están asociadas con el ácido nucleico de tal modo que aumentan la estabilidad y/o la eficiencia de traducción del ARN transcrito a partir de dicho ácido nucleico transcribible.

Las regiones 3’ no traducidas de los ARNm inmunoglobulínicos son relativamente cortas (menos de aproximadamente 300 nucleótidos), mientras que las regiones 3’ no traducidas de otros genes son relativamente largas. Por ejemplo, la región 3’ no traducida de tPA tiene aproximadamente 800 nucleótidos de longitud, la del factor VIII tiene aproximadamente 1.800 nucleótidos de longitud y la de la eritropoyetina tiene aproximadamente 560 nucleótidos de longitud.

Según la presente invención, se puede determinar si una región 3’ no traducida o una secuencia de ácido nucleico derivada de la misma aumenta la estabilidad y/o la eficiencia de traducción del ARN mediante la incorporación de la región 3’ no traducida o la secuencia de ácido nucleico derivada de la misma en la región 3’ no traducida de un gen y la determinación de si dicha incorporación aumenta la cantidad de proteína sintetizada.

Correspondientemente, esto se aplica al caso en el que, según la invención, un ácido nucleico comprende dos o más regiones 3’ no traducidas que están preferentemente acopladas secuencialmente, con o sin un conector entre ellas, preferentemente en una “relación de cabeza a cola” (es decir, las regiones 3’ no traducidas tienen la misma orientación, preferentemente la orientación natural en un ácido nucleico).

Según la presente invención, el término “gen” se refiere a una secuencia de ácido nucleico particular responsable de producir uno o más productos celulares y/o de alcanzar una o más funciones intercelulares o intracelular. Más concretamente, dicho término se refiere a una sección de ADN que comprende un ácido nucleico que codifica una proteína específica o una molécula de ARN funcional o estructural.

Los términos “casete de poliadenilo” o “secuencia de poli(A)” se refieren a una secuencia de residuos de adenilo que normalmente se encuentra en el extremo 3’ de una molécula de ARN. La presente invención posibilita que una secuencia de este tipo se una durante la transcripción del ARN mediante una plantilla de ADN a base de residuos repetidos de timidilo en la cadena complementaria a la cadena de codificación, no estando codificada normalmente dicha secuencia en el ADN, sino que está unida al extremo 3’ libre del ARN por una ARN polimerasa independiente de la plantilla tras la transcripción en el núcleo. Según la presente invención, un secuencia de poli(A) de este tipo se refiere a una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20, preferentemente por lo menos 40, preferentemente por lo menos 80, preferentemente por lo menos 100 y preferentemente de hasta 500, preferentemente hasta 400, preferentemente hasta 300, preferentemente hasta 200, y particularmente de hasta 150 nucleótidos A consecutivos, y particularmente de aproximadamente 120 nucleótidos A consecutivos, refiriéndose el término “nucleótidos A” a residuos de adenilo.

En una forma de realización preferida, una molécula de ácido nucleico según la presente invención es un vector. En la presente memoria, el término “vector” se utiliza en su sentido más amplio, y comprende cualquier vehículo intermedio para un ácido nucleico que, por ejemplo, permita que dicho ácido nucleico sea introducido en células hospedadoras procarióticas y/o eucarióticas y, según proceda, integrarse en un genoma. Preferentemente, dichos

vectores se replican y/o se expresan en la célula. Los vectores comprenden plásmidos, fagémidos o genomas víricos. El término “plásmido”, tal como se utiliza en la presente memoria, se refiere de forma general a un constructo de material genético extracromosómico, habitualmente un híbrido de ADN circular, que se puede replicar independientemente del ADN cromosómico.

Según la presente invención, el término “célula hospedadora” se refiere a cualquier célula que se puede transformar

o transfectar con un ácido nucleico exógeno. El término “célula hospedadora” comprende, según la invención, células procarióticas (por ejemplo, de E. coli) o eucarióticas (por ejemplo, células de levadura y células de insectos). Resultan particularmente preferidas las células de mamíferos, tales como células de seres humanos, ratones, hámsteres, cerdos, cabras o primates. Las células pueden derivar de múltiples tipos de tejido y comprenden células primarias y líneas celulares. Entre los ejemplos específicos se incluyen queratinocitos, leucocitos de sangre periférica, células madre de médula ósea y células madre embrionarias. En otras formas de realización, la célula hospedadora es una célula presentadora de antígeno, particularmente, una célula dendrítica, un monocito o un macrófago. Un ácido nucleico puede estar presente en la célula hospedadora en una sola o en varias copias y, en una forma de realización, se expresa en la célula hospedadora.

Según la presente invención, un péptido o proteína codificados por un ácido nucleico pueden ser un péptido o proteína que se encuentran en el citoplasma, en el núcleo, en la membrana o en orgánulos, o que se secretan. Los mismos incluyen proteínas estructurales, proteínas reguladoras, hormonas, neurotransmisores, factores reguladores del crecimiento, factores de diferenciación, factores reguladores de la expresión génica, proteínas asociadas a ADN, enzimas, proteínas séricas, receptores, medicamentos, inmunomoduladores, oncogenes, toxinas, antígenos tumorales o antígenos. Dichos péptidos o proteínas pueden tener una secuencia de origen natural o una secuencia mutada a fin de mejorar, inhibir, regular o eliminar su actividad biológica.

El término “péptido” se refiere a sustancias que comprenden dos o más, preferentemente 3 o más, preferentemente 4 o más, preferentemente 6 o más, preferentemente 8 o más, preferentemente 10 o más, preferentemente 13 o más, preferentemente 16 o más, preferentemente 20 o más, y hasta preferentemente 50, preferentemente 100 o preferentemente 150, aminoácidos consecutivos enlazados entre sí a través de enlaces peptídicos. El término “proteína” se refiere a péptidos grandes, preferentemente péptidos que tienen por lo menos 151 aminoácidos, pero los términos “péptido” y “proteína” se utilizan en el presente documento de forma general como sinónimos. Según la presente invención, los términos “péptido” y “proteína” comprenden sustancias que contienen no sólo componentes aminoácidos, sino también componentes no aminoácidos, tales como sacáridos y estructuras de fosfato, y también comprenden sustancias que contienen enlaces, por ejemplo, de tipo éster, tioéter o disulfuro.

La presente invención da a conocer ácidos nucleicos, particularmente ARN, para su administración a un paciente. En una forma de realización, los ácidos nucleicos se administran por métodos ex vivo, es decir, mediante la extracción de células de un paciente, la modificación genética de las mismas y la reintroducción de dichas células modificadas en el paciente. El experto en la materia conoce métodos de transfección y transducción. La presente invención también da a conocer ácidos nucleicos para su administración in vivo.

Según la presente invención, el término “transfección” se refiere a la introducción de uno o más ácidos nucleicos en un organismo o en una célula hospedadora. Se pueden utilizar diversos métodos para introducir in vitro o in vivo los ácidos nucleicos, según la invención, en las células. Entre dichos métodos se incluyen la transfección de precipitados de ácido nucleico-CaPO4, la transfección de ácidos nucleicos asociados con DEAE, la transfección o infección con virus que transportan los ácidos nucleicos de interés, la transfección mediada por liposomas y similares. En determinadas formas de realización, resulta preferido el direccionamiento del ácido nucleico hacia determinadas células. En dichas formas de realización, un portador utilizado para administrar un ácido nucleico a una célula (por ejemplo, un retrovirus o un liposoma) puede tener enlazada una molécula de direccionamiento. Por ejemplo, una molécula tal como un anticuerpo específico para una proteína de superficie de membrana presente en la célula diana, o se puede incorporar o enlazar al portador del ácido nucleico un ligando específico de un receptor presente en la célula diana. Si se desea llevar a cabo la administración de un ácido nucleico mediante liposomas, se pueden incorporar proteínas que se unen a una proteína de membrana de superficie asociada con la endocitosis en la formulación de liposomas a fin de facilitar el direccionamiento y/o la absorción. Entre dichas proteínas se incluyen proteínas de la cápside o fragmentos de las mismas, que son específicas para un tipo determinado de célula, anticuerpos frente a las proteínas internalizadas, proteínas dirigidas a un sitio intracelular y similares.

“Indicador” se refiere a una molécula, habitualmente un péptido o proteína, que está codificada por un gen indicador y se mide en un ensayo de indicador. Habitualmente, los sistemas convencionales utilizan un indicador enzimático y miden la actividad de dicho indicador.

El término “sitio de clonación múltiple” se refiere a una región de ácido nucleico que contiene sitios de enzimas de restricción que se pueden utilizar para la escisión, por ejemplo, de un vector y la inserción de un ácido nucleico.

Según la presente invención, dos elementos, tales como nucleótidos o aminoácidos, son consecutivos si son inmediatamente adyacentes entre sí, sin ninguna interrupción. Por ejemplo, una secuencia de x nucleótidos N consecutivos se indica como secuencia (N)x.

“Endonucleasa de restricción” o “enzima de restricción” se refiere a una clase de enzimas que escinden los enlaces fosfodiéster en las dos cadenas de una molécula de ADN en determinadas secuencias de bases. Dichas enzimas reconocen sitios de unión específicos, que se denominan secuencias de reconocimiento, en una molécula de ADN bicatenaria. Los sitios en los que dichas enzimas escinden dichos enlaces fosfodiéster del ADN se denominan sitios de escisión. En las enzimas de tipo IIS, el sitio de escisión se encuentra a una determinada distancia del sitio de unión al ADN. Según la presente invención, el término “endonucleasa de restricción” comprende, por ejemplo, las enzimas SapI, EciI, BpiI, AarI, AloI, BaeI, BbvCI, PpiI and PsrI, BsrD1, BtsI, EarI, BmrI, BsaI, BsmBI, FauI, BbsI, BciVI, BfuAI, BspMI, BseRI, EciI, BtgZI, BpuEI, BsgI, MmeI, CspCI, BaeI, BsaMI, Mva1269I, PctI, Bse3DI, BseMI, Bst6I, Eam1104I, Ksp632I, BfiI, Bso31I, BspTNI, Eco31I, Esp3I, BfuI, Acc36I, AarI, Eco57I, Eco57MI, GsuI, AloI, Hin4I, PpiI y PsrI.

“Vida media” se refiere al tiempo necesario para eliminar la mitad de la actividad, la cantidad o el número de moléculas.

La presente invención se describe en detalle a partir de las siguientes figuras y ejemplos, que deben considerarse meramente ilustrativos y no limitativos. A partir de la descripción y los ejemplos, resultarán evidentes para el experto en la materia otras formas de realización comprendidas asimismo en el alcance de la presente invención.

Figuras

Figura 1: vectores básicos utilizados según la invención para la clonación adicional

Los vectores permiten la transcripción del ARN bajo el control de un promotor en 5’ de la ARN polimerasa y contienen un casete de poliadenilo.

Figura 2: linealización de vectores mediante enzimas de restricción de tipo II (por ejemplo, SpeI) en comparación con enzimas de restricción de tipo IIS (por ejemplo, SapI)

Mediante la introducción de un sitio de escisión de restricción de tipo IIS, cuya secuencia de reconocimiento está situada en 3’ de la secuencia de poli(A), mientras que el sitio de escisión está 24-26 pares de bases secuencia arriba y, por consiguiente, está situado dentro de la secuencia de poli(A), es posible linealizar un plásmido dentro de la secuencia de poli(A).

Figura 3: vectores preparados según la presente invención como plantilla para la transcripción in vitro

Para estudiar los efectos de las modificaciones de ARN según la invención en su nivel y en la duración de la expresión, se prepararon diversos vectores que posteriormente sirvieron como plantilla para la transcripción in vitro.

a. Vectores con secuencia de poli(A) enmascarada frente a no enmascarada; b. Vectores con secuencias de poli(A) de diferente longitud; c. Vectores con la región 3’ sin traducir de la globina beta humana; d. Vectores SIINFEKL y pp65; bloqueo de caperuza-5’; gen indicador eGFP - GFP; región 3’�g - 3’ sin traducir de globina �; A(x) - x se refiere al número de nucleótidos A presentes en la secuencia de poli(A).

Figura 4: determinación del estado de maduración de las células dendríticas inmaduras frente a maduras mediante los marcadores de superficie indicados

El efecto de las modificaciones de ARN según la invención se analizó en células dendríticas humanas (CD), con un estímulo inmunógeno que desencadena un proceso de maduración de las CD. Las CD se tiñeron con anticuerpos anti-CD80, anti-CD83, anti-CD86 y anti-HLA-DR, que reconocen marcadores específicos de maduración de las CD, y se analizaron por citometría de flujo.

Figura 5: influencia de la secuencia de poli(A) libre frente a enmascarada sobre la eficiencia de traducción y la estabilidad del transcrito

a. Influencia de la secuencia de poli(A) libre frente a enmascarada sobre la eficiencia de traducción de ARN de eGFP en células K562 y células dendríticas mediante la determinación de la intensidad media de fluorescencia [IMF] en FACS-Kalibur; b. Influencia de la secuencia de poli(A) libre frente a enmascarada sobre la estabilidad del transcrito de ARN de eGFP en células dendríticas inmaduras tras 48 h. Tanto en la línea de células tumorales como en las CD inmaduras, el ARN con una secuencia de poli(A) de extremo abierto se traduce más eficientemente y durante un período más prolongado que el ARN con una secuencia de poli(A) de extremo enmascarado. La eficiencia de traducción de una secuencia de poli(A) de extremo no enmascarado en CD aumenta en un factor de 1,5 para secuencias de poli(A) de la misma longitud. Además, una secuencia de poli(A) de extremo abierto da lugar a una mayor estabilidad del ARN.

Figura 6: influencia de la longitud de la secuencia de poli(A) en la eficiencia de traducción y la estabilidad del transcrito

a. Influencia de la longitud de la secuencia de poli(A) en la eficiencia de traducción de ARN de eGFP en células K562 y células dendríticas; b. Influencia de la longitud de la secuencia de poli(A) en la eficiencia de traducción de ARN de d2eGFP en células K562 y células dendríticas; c. Influencia de la longitud de la secuencia de poli(A) sobre la estabilidad del transcrito de ARN de eGFP en células K562 48 h después de la electroporación. La prolongación de la secuencia de poli(A) hasta 120 nucleótidos A aumenta la estabilidad y la traducción del transcrito. Una prolongación excesiva no tiene ningún efecto positivo. La prolongación de la secuencia de poli(A) de 51 a 120 nucleótidos A da lugar a un aumento en un factor comprendido entre 1,5 y 2 de la eficiencia de traducción. Este efecto también se refleja en la estabilidad del ARN.

Figura 7: influencia de una región 3’ no traducida de la globina beta humana (BgUTR) sobre la eficiencia de traducción en CD inmaduras y maduras

La introducción de una región 3’ no traducida de globina beta humana da lugar a un aumento de la expresión del transcrito de ARN. Una región 3’ no traducida doble de globina beta humana aumenta el nivel de expresión tras 24 h, excediendo significativamente dicho nivel el efecto conjunto de dos regiones 3’ no traducidas individuales de la globina beta humana.

Figura 8: efecto de las modificaciones combinadas según la invención sobre la eficiencia de traducción en CD inmaduras y maduras

La eficiencia de traducción de eGFP en CD inmaduras y maduras se puede aumentar en un factor de más de cinco combinando las modificaciones del transcrito de ARN descritas en la presente invención.

Figura 9: efecto de las modificaciones combinadas según la presente invención sobre la presentación de péptidos por parte de moléculas del CMH en células EL4

La utilización de los constructos de ARN modificados según la presente invención da lugar a una mayor presentación de complejos péptido-CMH en la superficie celular debido a una mayor eficiencia de traducción. En los vectores IVT descritos, eGFP se sustituyó por el epítopo OVA257-264 (SIINFEKL) y las células EL4 (murinas, linfoma de linfocitos T) se utilizaron como células diana para la transfección.

Figura 10: aumento de los complejos péptido/CMH específicos de antígeno utilizando constructos IVT-RNA estabilizados según la presente invención

Las células se sometieron a electroporación con ARN Sec-SIINFEKL-A67-ACUAG o ARN Sec-SIINFEKL-2BgUTR-A120 (células EL4: 10 pmol, 50 pmol; BMDC inmaduras de C57B1/J6 por triplicado: 150 pmol). La electroporación con tampón se utilizó únicamente como control. Las células se tiñeron con anticuerpos 25D1.16 en vistas a los complejos SIINFEKL/Kb. Se calcularon las concentraciones peptídicas de SIINFEKL a partir de los valores medios de fluorescencia de las células vivas utilizando una valoración peptídica como curva estándar. Los datos de BMDC se indican como promedios de tres experimentos ± EEM.

Figura 11: efecto de constructos de IVT-RNA estabilizados según la presente invención sobre la estimulación de linfocitos T in vivo e in vitro

(A): Expansión in vivo mejorada de linfocitos T mediante la utilización de constructos estabilizados de IVT-RNA. Se transfirieron adoptivamente 1 x 105 linfocitos T OT-I CD8+ transgénicos para TCR en ratones C57B1/J6. Se transfectaron BMDC de ratones C57B1/J6 con 50 pmol de ARN (Sec-SIINFEKL-A67-ACUAG, Sec-SIINFEKL-2BgUTR-A120 o ARN de control), se maduraron con poli(I:C) (50 pg/ml) durante 16 h y se inyectaron por vía i.p. un día después de la transferencia de linfocitos T (n = 3). Se extrajo sangre periférica en el día 4 y se tiñó para detectar linfocitos T CD8+ positivos al tetrámero SIINFEKL. Las transferencias puntuales representan los linfocitos T CD8+, y los números indicados representan el porcentaje de linfocitos T CD8+ positivos al tetrámero.

(B): Expansión in vitro mejorada de linfocitos T humanos que contienen constructos de IVT-ARN estabilizados. Se cocultivaron linfocitos CD8+ y CD4+ procedentes de donantes sanos seropositivos para HCMV con CD autólogas transfectadas con ARN Sec-pp65-A67-ACUAG, ARN Sec-pp65-2BgUTR-A120, o ARN de control (datos no mostrados) o se cargaron con un grupo de péptidos pp65 (1,75 pg/ml) como control positivo. Tras una expansión de 7 días, se analizó cada población de células efectoras (4 x 104/pocillo) en un IFN-y-ELISpot con CD autólogas (3 x 104/pocillo) cargadas con un grupo de péptidos pp65 o con un grupo de péptidos irrelevante (1,75 Ig/ml). El gráfico representa el número promedio de puntos de mediciones por triplicado ± EEM.

Ejemplos

Ejemplo 1: Preparación de vectores y transcripción in vitro de ARN

5 A fin de estudiar los efectos de las modificaciones de ARN según la invención en su nivel y en la duración de la expresión, se prepararon diversos vectores IVT que sirvieron como plantilla para la transcripción in vitro (figura 3).

Los genes indicadores para eGFP y d2eGFP, dos moléculas con diferentes vidas medias (HL), se insertaron en los vectores, facilitándose el análisis de la influencia de las modificaciones de ARN según la presente invención. La

10 fluorescencia disminuye con una HL promedio de 17,3 h para eGFP y de 2 h para d2eGFP. Estos constructos se utilizaron para preparar ARN de eGFP y ARN de d2eGFP transcritos in vitro, respectivamente.

Ejemplo 2: transfección de células con el ARN transcrito in vitro modificado según la invención y efecto sobre la traducción y la estabilidad del ARN

15 El ARN de eGFP y el ARN de d2eGFP transcritos in vitro se utilizaron para transfectar células K562 (humanas, leucemia) mediante electroporación. La eficiencia de la transfección fue > 90% en las células K562.

A esto le siguió el análisis de la acción de las modificaciones de ARN descritas en las células dendríticas humanas

20 (CD), que son los moduladores más importantes del sistema inmunitario. Este enfoque es inmunológicamente relevante, ya que las CD transfectadas con ARN son susceptibles de ser utilizadas para vacunación. Las CD inmaduras se encuentran en la piel y en los órganos periféricos. Se encuentran en un estado inmaduro, que se caracteriza por marcadores de superficie bien estudiados y que se distingue funcionalmente por una elevada actividad endocitósica. Un estímulo inmunógeno, tal como, por ejemplo, una infección con patógenos, desencadena

25 un proceso de maduración de las CD. Al mismo tiempo, dicho estímulo inicia la migración de las CD a los ganglios linfáticos regionales, donde dichas CD son los inductores más eficaces de respuestas inmunitarias de linfocitos T y linfocitos B. El estado maduro de dichas CD también se caracteriza por la expresión de marcadores de superficie y citocinas estudiadas en detalle y por una morfología característica de las CD. Se han establecido sistemas de cultivos celulares para la diferenciación de las CD humanas inmaduras de los monocitos sanguíneos. Se puede

30 desencadenar la maduración de los mismos mediante diversos estímulos.

La eficiencia de transfección en las células dendríticas primarias fue del 70-80%. Las CD se tiñeron con anticuerpos anti-CD80, anti-CD83, anti-CD86 y anti-HLA-DR, que reconocen marcadores específicos de maduración de las CD, y se analizaron por citometría de flujo (figura 4).

35 El nivel y la duración de la expresión se determinaron con ayuda de FACS-Kalibur a través de la determinación de la intensidad de fluorescencia de eGFP. La cantidad de ARN presente en las células se determinó con ayuda de una RT-PCR cuantitativa.

40 a. Efecto de una secuencia de poli(A) de extremo abierto en la traducción y la estabilidad del ARN

Se puso de manifiesto que tanto la línea celular tumoral K562 como las CD inmaduras (CDi) traducen ARN con una secuencia de poli(A) de extremo abierto de manera más eficiente y durante un período más largo que ARN con una secuencia de poli(A) de extremo enmascarado (figura 5a). La eficiencia de traducción de una secuencia de poli(A)

45 de extremo no enmascarado en CD inmaduras aumenta en un factor de 1,5 con secuencias de poli(A) de la misma longitud. Además, dicha modificación da lugar a una mayor estabilidad del ARN (figura 5b). Se puede detectar una cantidad de 4 a 5 veces mayor de ARN en CD inmaduras transfectadas con ARN con una secuencia de poli(A) de extremo no enmascarado de 48 h después de la electroporación.

50 b. Efecto de la longitud de la secuencia de poli(A) en la traducción y la estabilidad del ARN

El análisis de ARN con secuencias de poli(A) de 16 pb, 42 pb, 51 pb, 67 pb, 120 pb, 200 pb, 300 pb y 600 pb de longitud puso de manifiesto que la prolongación de dicha secuencia de poli(A) hasta 120 nucleótidos A aumenta la estabilidad del transcrito y la traducción, y que una prolongación aún mayor no tiene ningún efecto positivo. Este

55 efecto se observa tanto en las células K562 como en las CD inmaduras (CDi) (figuras 6a y 6b). La prolongación de la secuencia de poli(A) de 51 a 120 nucleótidos A da lugar a un aumento en un factor comprendido entre 1,5 y 2 de la eficiencia de traducción. Este efecto también se refleja en la estabilidad del ARN (figura 6c).

c. Efecto de la presencia de una región 3’ no traducida en la traducción y la estabilidad del ARN

60 Un ciclo con células K562 y CD inmaduras confirmó que la introducción de una región 3’ no traducida (UTR) de globina beta humana da lugar a un aumento de la expresión del transcrito de ARN. Además, se puso de manifiesto que una región 3’ no traducida doble (UTR) de globina beta humana da lugar a un mayor nivel de expresión tras 24 h, lo que supera significativamente el efecto conjunto de dos UTR individuales (figura 7).

d. Efecto de una combinación de las modificaciones descritas anteriormente sobre la traducción y la estabilidad del ARN

Según la presente invención, se ha puesto de manifiesto que una combinación de las modificaciones descritas anteriormente en un transcrito de ARN aumenta la eficiencia de traducción de eGFP en CD inmaduras y también maduras en un factor mayor de cinco (figura 8).

Ejemplo 3: presentación de un péptido expresado a través de ARN transcrito in vitro con una mayor estabilidad y eficiencia de traducción por parte de moléculas del CMH

Según la presente invención, se ha puesto de manifiesto que la utilización de constructos de ARN modificados según la invención hace aumentar la presentación de complejos péptido-CMH sobre la superficie celular. Con este fin, se sustituyó la secuencia de ácido nucleico que codifica eGFP en los vectores IVT descritos por una secuencia de ácido nucleico que codificaba el epítopo OVA257-264 (SIINFEKL), y los constructos se compararon entre sí. Las células diana utilizadas para la transfección fueron células EL4 (murinas, linfoma de linfocitos T).

A fin de cuantificar los péptidos SIINFEKL presentados por las moléculas del CMH, las células se tiñeron con un anticuerpo anti-H2-Kb-OVA257-264 en diversos instantes tras la electroporación, y se determinó la intensidad de fluorescencia de un anticuerpo secundario con ayuda de FACS-Kalibur (figura 9).

Además, el péptido SIINFEKL se clonó en el vector que reflejaba todas las optimizaciones (pST1-Sec-SIINFEKL2BgUTR-A120-SapI) y en un vector con características estándares (pST1-Sec-SIINFEKL-A67-SpeI). El IVT-RNA procedente de ambos vectores se sometió a electroporación en células EL4 y BMDC. Se detectaron complejos OVApéptido/Kb en la superficie celular en una cantidad considerablemente mayor, y los mismos se mantuvieron durante un período más prolongado tras la electroporación del ARN modificado según la invención, Sec-SIINFEKL-2-BgUTR-A120 (figura 10).

Ejemplo 4: efecto de la transfección de células con ARN transcrito in vitro que codifica un péptido que se presenta en la expansión de linfocitos T específicos de antígeno

A fin de evaluar el efecto sobre la capacidad estimulante, se utilizó OT-I-TCR, muy utilizado en ratones C57BL/J6 (B6) para detectar la presentación en el CMH de clase I del péptido SIINFEKL. Los linfocitos T CD8+ OT-I, que son transgénicos con respecto al receptor de linfocitos T (TCR) y que reconocen el péptido SIINFEKL específico de Kb de ovoalbúmina de pollo (OVA257-264) fueron amablemente proporcionados por H. Schild (Institute of Immunology, University of Mainz, Alemania).

En el día 0, los animales se sometieron a transferencia adoptiva con linfocitos T OT-I-CD8+. Con este objetivo, se prepararon esplenocitos a partir de ratones TCR tg OT-I y se introdujeron en la vena de la cola de ratones receptores C57BL/J6. El número de células se ajustó a 1 x 105 linfocitos T TCR tg CD8+. Al día siguiente, se administraron a los ratones por vía i.p. 1 x 106 BMDC de ratones C57BL/J6 que habían sido sometidos a electroporación con 50 pmol de variantes de constructo de ARN que codificaba SIINFEKL y se habían dejado madurar por medio de poli(I:C) durante 16 horas. En el día 4, se midieron los linfocitos T OT-I-CD8+ en la sangre periférica con ayuda de la tecnología de tetrámero. Con este fin, se tomaron muestras de sangre retroorbital y se tiñeron con anticuerpos anti-CD8 (Caltag Laboratories, Burlingame, Estados Unidos) y tetrámero SIINFEKL (H-2Kb/SIINFEKL 257-264; Beckman Coulter, Fullerton, Estados Unidos).

Se puso de manifiesto que la expansión in vivo de linfocitos T CD8+ transgénicos para TCR específicos de antígeno mejora sustancialmente cuando se utiliza ARN Sec-SIINFEKL-2BgUTR-A120 para el suministro de antígeno en comparación con ARN Sec-SIINFEKL-A67-ACUAG (figura 11A).

A fin de evaluar si los constructos de IVT-RNA para el suministro de antígenos también mejoran la estimulación específica de antígeno de los linfocitos T humanos, se utilizó pp65 del HCMV, el antígeno inmunodominante del citomegalovirus humano que se utiliza a menudo para la validación de la estimulación autóloga de las reacciones de linfocitos T poliepitópicas. Se cocultivaron linfocitos T CD4+ y CD8+, purificados de donantes sanos seropositivos para HCMV por separación magnética celular por medio de microesferas recubiertas de anticuerpos (Miltenyi Biotec, Bergisch-Gladbach, Alemania), con 2 x 105 CD autólogas que se habían sometido a electroporación con las correspondientes variantes de IVT-RNA que codifican pp65. Una expansión de linfocitos T, medida en el día 7 en un IFN-y-ELISpot con CD autólogas cargadas con un grupo de péptidos solapados que abarcan toda la secuencia de la proteína pp65, o con una proteína de control, puso de manifiesto la superioridad del Sec-pp65-2BgUTR-A120, siendo los efectos más pronunciados los correspondientes a la expansión de los linfocitos T CD4+ (figura 11B).

Referencias

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5 Ulmer, J.B., Donnelly, J.J., Parker, S.E., Rhodes, G.H., Feigner, P.L., Dwarki, V.J., Gromskowski, S.H., Deck, R.R., DeWitt, C.M., Friedman, A. et al (1993). Heterologous protection against influenza by injection of DNA encoding a viral protein. Science 259, 1745-1749.

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Contenido de las secuencias

25 <110> BioNTech AG

<120> Modificación del ARN, que produce una estabilidad de transcripción y eficiencia de traducción aumentadas.

30 <130> 410-4 EPT2

<150> DE 10 2005 046 490.4

<151> 2005-09-28

35 <160> PatentIn versión 3.1

<210> 1

<211> 142

<212> ADN 40 <213> Homo Sapiens

<400> 1

Claims

REIVINDICACIONES

1. Molécula de ácido nucleico, que comprende en el sentido 5’ - 3’ de transcripción:

(a)

un promotor,

(b)

una secuencia de ácido nucleico transcribible o una secuencia de ácido nucleico para la introducción de una secuencia de ácido nucleico transcribible,

(c)

una secuencia de ácido nucleico, que cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito, y

(d)

una secuencia de reconocimiento para una endonucleasa de restricción de tipo IIS,

siendo la distancia entre la secuencia de ácido nucleico (c) y la secuencia de reconocimiento (d) seleccionada, de tal manera que el sitio de escisión de la endonucleasa de restricción de tipo IIS que se une a la secuencia de reconocimiento esté situado dentro de la secuencia de ácido nucleico (c).
2.

Molécula de ácido nucleico según la reivindicación 1, en la que las secuencias de ácido nucleico (b) y (c) bajo el control del promotor (a) son transcribibles en un transcrito común y en el transcrito común, la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico (c) es activa para aumentar la eficacia de la traducción y/o la estabilidad de la secuencia de ácido nucleico transcrita a partir de la secuencia de ácido nucleico transcribible (b).
3.

Molécula de ácido nucleico según la reivindicación 1 o 2, en la que la secuencia de ácido nucleico (c), cuando se transcribe bajo el control del promotor (a), codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 40, por lo menos 80, por lo menos 100, preferentemente de manera aproximada 120 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.
4.

Molécula de ácido nucleico según una de las reivindicaciones 1 a 3, en la que la molécula de ácido nucleico, tras la escisión en el extremo de la cadena, que sirve como plantilla para la secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, tiene un nucleótido T, que es parte de la secuencia de nucleótidos, que sirve como plantilla para la secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos en el transcrito.
5.

Molécula de ácido nucleico según una de las reivindicaciones 1 a 4, caracterizada porque es una molécula circular cerrada antes de la escisión y una molécula lineal después de la escisión.
6.

Molécula de ácido nucleico según una de las reivindicaciones 1 a 5, en la que la secuencia de reconocimiento para la endonucleasa de restricción de tipo IIS está situada a una distancia de 5-26, preferentemente de 24-26 pares de bases aguas abajo con respecto al extremo 3’ de la secuencia de ácido nucleico (c).
7.

Molécula de ácido nucleico, que se puede obtener por linealización de la molécula de ácido nucleico según una de las reivindicaciones 1 a 6.
8.

Procedimiento de transcripción in vitro de una molécula de ARN seleccionada con el fin de aumentar su estabilidad y/o eficiencia de traducción, que comprende:

(i) acoplar una secuencia de ácido nucleico (b), que cuando se transcribe, codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, en el extremo 3’ de una secuencia de ácido nucleico (a) que es transcribible en la molécula de ARN, y (ii) transcribir in vitro los ácidos nucleicos obtenidos,

caracterizado porque el procedimiento comprende, antes de la transcripción del ácido nucleico obtenido, una escisión dentro de la secuencia de ácido nucleico (b), de manera que con la transcripción del ácido nucleico obtenido de este modo se genera un transcrito, que presenta las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de la secuencia de ácido nucleico (a) y en su extremo 3’, presenta una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, presentando el transcrito a modo de nucleótido 3’-terminal un nucleótido A de la secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos y produciéndose la escisión con la ayuda de un sitio de escisión de restricción para una endonucleasa de restricción del tipo IIS.
9. Procedimiento de traducción de una molécula de ARNm seleccionada, con el fin de aumentar su expresión, que comprende:

(i)

acoplar una secuencia de ácido nucleico (b), que cuando se transcribe, codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, en el extremo 3’ de una secuencia de ácido nucleico (a) que es transcribible en la molécula de ARNm, y

(ii)

traducir el ARNm, que puede ser obtenido por transcripción, preferentemente por transcripción in vitro del

ácido nucleico obtenido,

caracterizado porque el procedimiento comprende, antes de la transcripción del ácido nucleico obtenido, una escisión dentro de la secuencia de ácido nucleico (b), de manera que con la transcripción del ácido nucleico

5 obtenido de este modo se genera un transcrito, que presenta las secuencias de ácido nucleico transcritas a partir de la secuencia de ácido nucleico (a) y en su extremo 3’, presenta una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos, presentando el transcrito a modo de nucleótido 3’-terminal un nucleótido A de la secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos y produciéndose la escisión con la ayuda de un sitio de escisión de restricción para una endonucleasa de restricción de tipo IIS.
10. Procedimiento según la reivindicación 8 o 9, en el que la secuencia de reconocimiento para la endonucleasa de restricción de tipo IIS está situada a una distancia de 5-26, preferentemente de 24-26 pares de bases aguas abajo con respecto al extremo 3’ de la secuencia de ácido nucleico, que cuando se transcribe codifica una secuencia de nucleótidos de por lo menos 20 nucleótidos A consecutivos.