CN113134070A

CN113134070A - 植物发酵液用于制备减脂的组合物的用途

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Publication number: CN113134070A
Application number: CN202110053308.2A
Authority: CN
Inventors: 林咏翔; 黄琡涵
Original assignee: TCI Co Ltd
Current assignee: TCI Co Ltd
Priority date: 2020-01-16
Filing date: 2021-01-15
Publication date: 2021-07-20
Also published as: TWI761032B; TW202128983A; TWI789686B; CN113136350A; TWI764520B; CN113134024A; TW202128206A; CN113134027A; TW202128205A; CN113134056A; TWI774195B; TW202128029A; TW202128202A

Abstract

本发明涉及一种植物发酵液用于制备减脂的组合物的用途，其中植物发酵液是由姜(Zingiber officinale)、辣椒(Capsicum annuum)、山楂(Crataegus pinnatifida)及甜菜(Beta vulgaris)根的浸提液经多种菌种发酵所制得。并且，多种菌种包括酵母菌、乳酸菌及醋酸菌。

Description

植物发酵液用于制备减脂的组合物的用途

技术领域

本发明关于一种发酵液，特别是关于一种植物发酵液的制备方法及其用途。

背景技术

自有机及天然的饮食概念兴起后，生技公司及食品业者积极投入关于天然植物的相关产品之研发。为使植物相关产品对身体健康帮助有科学验证的基础，植物的活性成分分析及功效评估成为产品开发的重点项目。

而产品开发的项目常与现今社会关注的议题有关，如减重、美白、肠胃保健、生酮饮食等。

发明内容

在一些实施例中，一种植物发酵液用于制备减脂的组合物的用途，其中植物发酵液是由姜、辣椒、山楂及甜菜根的浸提液经多种菌种发酵所制得。

在一些实施例中，多种菌种包括酵母菌、乳酸菌及醋酸菌。

在一些实施例中，植物发酵液的皂苷含量至少为7433ppm。

在一些实施例中，植物发酵液具有促进脂肪细胞分解的能力。

在一些实施例中，植物发酵液具有提升以下基因中至少一基因的表现量的能力：UCP1基因、UCP2基因、ATGL基因及LIPE基因。

在一些实施例中，植物发酵液具有改善受体的至少一体组成的能力：体重、腰围、全身体脂率及躯干体脂率。

在一些实施例中，浸提液是由甜菜根、山楂、辣椒、姜与溶剂在95℃下静置1小时所制得。

在一些实施例中，溶剂为水，甜菜根、山楂、辣椒、姜及水的重量比为 1:1:1～3:3～8:250～300，且植物发酵液是由浸提液与相对于植物发酵液体积百分比为8％-13％的葡萄糖经多种菌种发酵所制得。

综上所述，根据任一实施例的植物发酵液，其具有减脂的作用，并可用于制备减脂的组合物。根据任一实施例的植物发酵液，其具有促进脂肪细胞分解的能力、提升以下基因中至少一基因的表现量的能力：UCP1基因、 UCP2基因、ATGL基因及LIPE基因、以及改善受体的体组成(如，体重、腰围、全身体脂率、躯干体脂率或其组合)的能力，进而用于受体减脂。并且，根据任一实施例的植物发酵液，其具有至少7433ppm的皂苷含量。

附图说明

图1是总皂苷含量的实验数据图；

图2是去耦合蛋白质相关基因的实验数据图；

图3是脂肪细胞分解甘油量的实验数据图；

图4是脂肪分解相关基因的实验数据图；

图5是第0周及第4周的受试者的体重数据图；

图6是第0周及第4周的受试者的腰围数据图；

图7是第0周及第4周的受试者的全身体脂率数据图；以及

图8是第0周及第4周的受试者的躯干体脂率数据图。

具体实施方式

于下列实施方式的说明中，除非另有相关说明，则「％」及「wt％」符号是指重量百分比，「％(V/V)」及「vol％」符号是指体积百分比。

在一些实施例中，植物发酵液是由姜(Zingiber officinale)、辣椒 (Capsicumannuum)、山楂(Crataegus pinnatifida)及甜菜(Beta vulgaris)根的浸提液经多种菌种发酵所制得。其中，多种菌种包括酵母菌 (Yeast)、乳酸杆菌(Lactobacillus)及醋酸菌(Acetobacter aceti)。

在一些实施例中，姜、辣椒、山楂及甜菜根的浸提液是以姜原料、辣椒原料、山楂原料、甜菜根原料及溶剂制备而得之。举例来说，姜原料是指姜 (Zingiber officinale)的根茎、辣椒原料是指辣椒(Capsicum annuum)的新鲜果实、山楂原料是指经干燥处理后的山楂(Crataegus pinnatifida)的果实、甜菜根原料是指经干燥处理及磨粉后的甜菜(Betavulgaris)的根部 (如，甜菜根粉末)，以及溶剂为水。

在一些实施例中，将姜原料、辣椒原料、山楂原料及水混合后进行前处理以形成第一混合液。举例来说，前处理可以但不限于切碎、绞碎、碾碎、粗碎等。在一示范例中，姜原料、辣椒原料、山楂原料及水混合后进行粗碎，且粗碎后的各原料再以孔径为12毫米的筛网进行过筛。藉此，确保姜原料、辣椒原料及山楂原料经过前处理后的粒径可以小于或等于12毫米。

于此，甜菜根原料：山楂原料：辣椒原料：姜原料：水的重量比例为 1:1：1～3：3～8：250～300。在一些示范例中，甜菜根原料：山楂原料：辣椒原料：姜原料：水的重量比例可以为1：1：2.8：8：270、1：1：3：8：250 或1：1：2.8：8：300。

于姜原料、辣椒原料、山楂原料及水进行前处理后，以第一混合液与甜菜根原料进行浸提处理以得到浸提液。举例来说，甜菜根原料的添加时间点可以为浸提处理前或浸提处理期间。并且，浸提处理系指将溶液于95℃下静置1小时。于此，所述「溶液」是指第一混合液与甜菜根原料，或是者第一混合液与甜菜根原料混合而成的第二混合液。

在一些示范例中，于第一混合液中加入甜菜根原料，以得到第二混合液。接着，将第二混合液于95℃下静置1小时以得到浸提液。

在另一些示范例中，将第一混合液于95℃下静置1小时并于静置期间加入甜菜根原料。于此，待95℃静置第一混合液及甜菜根原料1小时后可得到浸提液。

待浸提液冷却至小于40℃后，加入葡萄糖至浸提液并与其均匀混合。并且，待葡萄糖完全溶解后可得到培养液。在一些实施例中，葡萄糖的添加量为8％-13％(V/V)。于此，培养液的糖度为8°Bx。并且，足够的糖度可以确保后续发酵的顺利进行，并使菌种有足够的养分生长。

接着，加入多种菌种至由浸提液及葡萄糖混合而成的培养液中，进行发酵7日以得到植物发酵液。其中，多种菌种包括0.1％的酵母菌、0.05％的乳酸菌及5％的醋酸菌(Acetobacter aceti)。在一些实施例中，于发酵前不滤除培养液中的固形物(即，进行浸提程序后的姜原料、辣椒原料、山楂原料及/或甜菜根原料)。换言之，是直接将菌种加入培养液进行发酵，藉以利用菌种进一步提取固形物中的活性成分。

在一些实施例中，酵母菌可以是市售的啤酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)。举例而言，向财团法人食品工作发展研究所所采购寄存编号 BCRC20271(国际寄存ATCC26602)菌株的啤酒酵母。

在一些实施例中，乳酸菌可以为市售的副干酪乳杆菌(Lactobacillusparacasei)。举例而言，采用向财团法人食品工作发展研究所所采购寄存编号BCRC910882菌株的副干酪乳杆菌TCI058。

在一些实施例中，醋酸菌可以为向美国菌种中心(American Type CultureCollection,ATCC)采购寄存编号ATCC15973(国内寄存编号 BCRC11688)的醋酸菌。

在一些实施例中，于培养液中加入0.1％的酵母菌后进行发酵24小时以形成第一初发酵液。接着，加入0.05％的乳酸菌至第一初发酵液进行发酵 24小时以形成第二初发酵液。然后，5％的醋酸菌至第二初发酵液行发酵 120小时以形成第三初发酵液。于此，第三初发酵液的pH值小于3.5± 0.5、其糖度为2.5±0.3°Bx，且其酸度0.5±0.3。

在一些实施例中，将第三初发酵液过滤并浓缩以得到植物发酵液。举例来说，第三初发酵液可以孔径200mesh的筛网过滤后，于55℃～65℃进行减压浓缩。

在一些实施例中，添加寡糖至植物发酵液以使其糖度达到40°Bx以形成植物发酵饮品。于此，寡糖系指由3个～10个单醣分子聚合而成的低聚糖。其中，寡糖可为果寡糖、半乳寡糖、木寡糖、异麦芽寡糖等。在一些实施例中，所添加的寡糖可为含60％异麦芽寡糖的寡糖溶液。

在一些实施例中，植物发酵液的皂苷(Saponin)含量至少为7433 ppm。并且，植物发酵液相较于浸提液或培养液具有较高的皂苷含量。换言之，透过多种菌种发酵所制备的植物发酵液可生成较多的皂苷含量，进而可减少受体对于食物中脂肪吸收的能力。

在一些实施例中，植物发酵液具有提升去耦合蛋白质(uncoupling protein，UCP)相关基因的能力。举例来说，植物发酵液具有提升UCP1基因或/及UCP2基因的表现量的能力。去耦合蛋白质作为棕色脂肪含有较多的的蛋白质之一，且UCP1蛋白质能加快细胞分解脂肪酸的速率，以产生热量。因此，当受体服用植物发酵液后，可提升UCP1基因或/及UCP2基因的表现量，进而促进去耦合蛋白质生成，并加快细胞分解脂肪酸。

在一些实施例中，植物发酵液具有促进脂肪细胞分解的能力。举例来说，植物发酵液可促进脂肪分解。脂肪分解(Lipolysis)是指脂肪细胞内所贮存的三酸甘油酯(triglyceride,TG)被逐步降解为脂肪酸(fatty acid,FA) 与甘油(Glycerol)，故而当脂肪分解时会生成甘油。因此，植物发酵液亦可提高脂肪细胞分解的甘油量。

在一些实施例中，植物发酵液具有提升脂肪分解相关基因的表现量的能力。举例来说，植物发酵液具有提升ATGL(Adipose triglyceride lipase)基因或/及LIPE(Lipase)基因的表现量的能力。因此，当受体服用植物发酵液后，可提升ATGL基因或/及LIPE基因的表现量，进而促进脂肪分解酶生成，并使脂肪分解。

在一些实施例中，植物发酵液具有改善一受体的至少一体组成的能力：体重、腰围、全身体脂率及躯干体脂率。举例来说，当受体服用植物发酵液后，可减少受体的体重、腰围、身体脂率、躯干体脂率或其组合，进而达成受体减脂之作用。

基此，植物发酵液可用以制备用以减脂的组合物。

在一些实施例中，组合物可以为液态(如，植物发酵饮品等)或固态 (如，植物发酵液粉末、植物发酵液锭等)。在一些实施例中，液态的组合物的使用剂量为5毫升/天。

在一些实施例中，组合物可以为液态(如，植物发酵饮品等)或固态 (如，植物发酵液粉末、植物发酵液锭等)。在一些实施例中，液态的组合物的使用剂量为6毫升/天，而固态组合物的使用量为0.65克/天。

例1：植物发酵液的制备

首先，混合1重量份的干燥后的山楂果实(产地：中国)、3重量份的新鲜辣椒果实(产地：中国台湾)、8重量份的姜的根茎(产地：中国台湾)及270重量份的水，并以均质机进行粗碎后再以孔径12毫米的筛网进行过筛使以形成第一混合液。然后，加入1重量份的甜菜根粉末(产地：印度)至第一混合液中以形成第二混合液，并将第二混合液于95℃下静置1小时，以形成浸提液。接着，加入11％(V/V)的葡萄糖至浸提液以形成培养液。于此，培养液亦可称为植物浸提液。

于静置后，待植物浸提液冷却后加入0.1％的BCRC20271菌株之啤酒酵母，并于30℃下进行发酵1天以形成第一初发酵液。再加入0.05％的 BCRC910882菌株之副干酪乳杆菌至第一初发酵液中，并于30℃下进行发酵1天以形成第二初发酵液。接着，加入5％的BCRC11688菌株之醋酸菌至第二初发酵液中，并于30℃下进行发酵5天以形成第三初发酵液。于此，第三初发酵液的pH值为3.5±0.5、其糖度为2.5±0.3°Bx，且其酸度 0.5±0.3。

接着，以200mesh过滤第三初发酵液后，于60℃下减压浓缩，以得到植物发酵液。

例2：总皂苷含量测试

于此，所使用作为标准品的溶液为1000ppm的齐墩果酸(Oleanolic acid，品牌：Sigma，编号：O5504-100MG)溶液，其系以甲醇 (Methanol，品牌：JT Baker)溶解配置，并以甲醇序列稀释为0ppm、 100ppm、200ppm、400ppm、600ppm、800ppm等浓度。

将各浓度的齐墩果酸溶液分别取100μL至微量离心管中，并于70℃～85℃烘箱中烘干各浓度的齐墩果酸溶液使其完全干燥。接着，于各微量离心管加入100μL的5％香草醛(vanillin，品牌：Sigma，编号：A11169)，并加入400μL的高氯酸(Perchloric acid，品牌：Sigma，编号：30755- 1L)混合均匀后，置于65℃水浴中反应15分钟，以形成混合溶液。于此，所使用的5％香草醛是以乙酸(Acetic acid，品牌：JT Baker，编号：9508- 03)配置。

接着，取40μL的混合溶液至96孔盘并于每孔加入200μL的乙酸混合均匀以形成测试溶液，并测量其在531nm下的吸光值。于此，依照所量测的吸光值对应齐墩果酸溶液的浓度绘制标准曲线。

于此，将例1得到的植物浸提液作为控制组的测试样品，且将例1所制备得到的植物发酵液作为实验组的测试样品。

取100μL的测试样品至微量离心管中，并于70℃～85℃烘箱中烘干测试样品使其完全干燥。接着，于各微量离心管加入100μL的5％香草醛，并加入400μL的高氯酸混合均匀后，置于65℃水浴中反应15分钟，以形成混合溶液。

取40μL的混合溶液至96孔盘并于每孔加入200μL的乙酸混合均匀以形成测试溶液，并测量其在531nm下的吸光值。接着将依据标准曲线以内插法的方式计算控制组及实验组的总皂苷含量，如图1所示。

请参阅图1。控制组的总皂苷含量为4080ppm，而实验组的总皂苷含量为7433ppm。换言之，实验组的总皂苷含量为控制组的总皂苷含量1.82 倍。由此可知，透过多种菌种发酵后可显著提高植物发酵液的总皂苷含量。因此，相较于服用植物浸提液，当受体服用植物发酵液或以其制备的组合物时，有助于抑制受体吸收食物中脂肪的能力。

例3：去耦合蛋白质相关基因表现测试

于此，去耦合蛋白质相关基因包括UCP1(gene ID 7350)基因及UCP2 (gene ID7351)基因。

于此，所使用的细胞培养基为添加有20％的胎牛血清(fetal bovine serum，FBS；Gibco公司，编号10438-026)、1％的抗生素-抗霉菌素 (Antibiotic-Antimycotic)(Gibco公司，编号15240-062)的α-最低限度必需培养基(α-Minimum essential medium，简称α-MEM)(Gibco公司，编号12000-022)。

首先，取1x10⁵个小鼠骨髓基质细胞OP9(购自BCRC，编号6566；以下称OP9细胞)至每孔含有2毫升细胞培养基的六孔细胞培养盘中，于 37℃下培养24小时。

将OP9细胞分为实验组、控制组及空白组。移除各组别的细胞培养基并更换为每孔2mL实验培养基，然后置于37℃下分别接续培养6小时。其中，实验组的实验培养基为含有0.25vol％的例1中所得到的植物发酵液的细胞培养基。控制组的实验培养基为含有0.25vol％的例1中所得到的植物浸提液的细胞培养基。空白组的实验培养基为单纯的细胞培养基(即不含植物发酵液及植物浸提液)。

收集各组的OP9细胞，并以RNA萃取试剂套组(购自Geneaid公司，中国台湾，LotNo.FC24015-G)萃取出各组的RNA。接着，各组取1000纳克(ng)的RNA作为模板，透过

III反转录酶(购自Invitrogene公司，美国，编号18080-051)将RNA反转录为相应之cDNA。再藉由ABI StepOnePlus^TM实时PCR系统(ABI StepOnePlus^TM Real-Time PCRsystem(Thermo Fisher Scientific公司，美国))、KAPA SYBR FAST (购自Sigma公司，美国，编号38220000000)及表1的引子(SEQ ID NO:1至SEQ ID NO:4)对各组的cDNA进行定量实时反转录聚合酶连锁反应(quantitative real-time reverse transcriptionpolymerase chain reaction)以观察OP9细胞内去耦合蛋白质相关基因的表现量。定量实时反转录聚合酶连锁反应的仪器设定条件为95℃反应20秒，接着95℃反应3秒，60℃反应30秒，并重复40个循环，并使用2-ΔCt方法进行基因定量，如图2所示。于此，藉由cDNA进行定量实时反转录聚合酶连锁反应可间接定量基因的 mRNA表现量，进而推断基因编码的蛋白质的表现量。

需要特别说明的是，图2中的基因表现是以相对表现倍率呈现，其中使用Excel软件之STDEV公式计算标准偏差，且各组之间的统计学显著差异是藉由学生t-试验来统计分析。在图2中，「*」代表在与空白组比较下其 p值小于0.05、「**」代表在与空白组比较下其p值小于0.01、「***」代表在与空白组比较下其p值小于0.001，以及「###」代表在与控制组比较下其p值小于0.001。

表1

于表1中，F为顺向引子(Forward primer)，而R为反向引子 (Reverse primer)。

请参阅图2。将空白组的各组去耦合蛋白质相关基因的相对表现量视为 1.00(即空白组的各组基因的表现量为100％)。相较于空白组，实验组的 UCP1基因的相对表现量为5.00，且实验组的UCP2基因的相对表现量为 6.44。并且，相较于空白组，控制组的UCP1基因的相对表现量为1.35，且控制组的UCP2基因的相对表现量为0.69。于此，实验组的UCP1基因及UCP2基因的表现量相较于空白组及控制组有显著的提升，代表植物发酵液能有效地提高去耦合蛋白质相关基因。换言之，当受体服用植物发酵液时，能提高去耦合蛋白质相关基因的表现量，进而能促进去耦合蛋白质的表现，并能加速受体脂肪酸的分解。

例4：脂肪细胞分解甘油量测试

于此，将脂肪细胞中甘油(Glycerol)的含量作为量化指标，以观察是否有产生脂肪分解作用。

首先，取8×10⁴个小鼠骨髓基质细胞OP9(购自美国典型培养物保存中心(American Type Culture Collection，

)，编号ATCC CRL- 2749；以下称OP9细胞)至每孔含有500μL细胞培养基的24孔培养盘中，于37℃下培养7天。于7天的细胞培养期间中，每隔3天更换细胞培养基。并于培养7天后，以显微镜(ZEISS；放大倍率400x)观察OP9细胞内的油滴形成，藉以确认OP9细胞已完全分化为脂肪细胞，供后续实验使用。

然后，将分化完成的脂肪细胞分为实验组、控制组及空白组。移除各组别的细胞培养基，并更换成每孔500μL实验培养基，然后置于37℃下接续培养7天。于7天的培养期间，每3天更换一次新鲜的500μL实验培养基。其中，实验组的实验培养基为含有0.125vol％之例1所制备的植物发酵液的细胞培养基。控制组的实验培养基为含有0.125vol％之例1所得到的植物浸提液的细胞培养基。空白组的实验培养基为单纯的细胞培养基(即不含植物发酵液或植物浸提液)。

接着，以细胞甘油基检测试剂套组(Glycerol cell-based assay kit，购自Cayman，美国，产品编号10011725)依据下列步骤测量甘油含量。收集各组的实验培养基(即已培养过脂肪细胞的实验培养基，但不包括脂肪细胞)，并各取其中的25μL转移到新的96孔培养盘中，并于各孔中加入100μL之重构游离甘油测定试剂(Reconstituted freeglycerol assay reagent)，再于室温下作用15分钟后，将96孔培养盘以ELISA读数器读取各组之OD_540nm的吸亮度，以量化各组脂肪细胞分解并释放至实验培养基中的甘油量。

请参阅图3。于此，将空白组的脂肪细胞分解甘油量视为100％。控制组的脂肪细胞分解甘油量为103.13％，而实验组的脂肪细胞分解甘油量为 109.53％。于此，相较于空白组及控制组，实验组的脂肪细胞内的脂肪细胞分解甘油量明显提升。由此可知，植物发酵液能有效地促进脂肪分解，具有提升受体的脂肪代谢的功能，进而达成减脂之功能。

例5：脂肪分解相关基因表现测试

于此，脂肪分解相关基因包括ATGL(gene ID 57104)基因及LIPE (gene ID 3991)基因。

收集各组的OP9细胞，并以RNA萃取试剂套组(购自Geneaid公司，中国台湾，LotNo.FC24015-G)萃取出各组的RNA。接着，各组取1000奈克(ng)的RNA作为模板，透过

III反转录酶(购自 Invitrogene公司，美国，编号18080-051)将RNA反转录为相应之cDNA。再藉由ABI StepOnePlus^TM实时PCR系统(ABI StepOnePlus^TM Real-Time PCRsystem(Thermo Fisher Scientific公司，美国))、KAPA SYBR FAST (购自Sigma公司，美国，编号38220000000)及表2的引子(SEQ ID NO:5至SEQ ID NO:8)对各组的cDNA进行定量实时反转录聚合酶连锁反应(quantitative real-time reverse transcriptionpolymerase chain reaction)以观察OP9细胞内的脂肪分解相关基因的表现量。定量实时反转录聚合酶连锁反应的仪器设定条件为95℃反应20秒，接着95℃反应3秒，60℃反应30秒，并重复40个循环，并使用2-ΔCt方法进行基因定量，如图4所示。于此，藉由cDNA进行定量实时反转录聚合酶连锁反应可间接定量基因的 mRNA表现量，进而推断基因编码的蛋白质的表现量。

需要特别说明的是，图4中的基因表现是以相对表现倍率呈现，其中使用Excel软件之STDEV公式计算标准偏差，且各组之间的统计学显著差异是藉由学生t-试验来统计分析。在图4中，「*」代表在与空白组比较下其 p值小于0.05、「***」代表在与空白组比较下其p值小于0.001、「#」代表在与控制组比较下其p值小于0.05，以及「###」代表在与控制组比较下其p值小于0.001。

表2

于表2中，F为顺向引子(Forward primer)，而R为反向引子 (Reverse primer)。

请参阅图4。将空白组的各组脂肪分解相关基因的相对表现量视为1.00 (即空白组的各组基因的表现量为100％)。相较于空白组，实验组的 ATGL基因的相对表现量为4.43，且实验组的LIPE基因的相对表现量为 5.29。并且，相较于空白组，控制组的ATGL基因的相对表现量为0.45，且控制组的LIPE基因的相对表现量为0.06。于此，实验组的ATGL基因及 LIPE基因的表现量相较于空白组及控制组有显著的提升，代表植物发酵液能有效地提高脂肪分解相关基因。换言之，当受体服用植物发酵液时，能提高ATGL基因及LIPE基因的表现量，进而能促进脂肪甘油三酯脂酶及脂肪酶的表现，并能促进受体的脂肪分解。

例6：人体试验

于此，将37.5wt％的例1所制备的植物发酵液与62.5wt％的异麦芽寡糖混合以形成植物发酵溶液，并将10mL的植物发酵溶液以水调配成50mL之植物发酵饮品。

受试者：10位受试者(年龄介于20-60岁的男性及女性)。其中，受试者的BMI大于或等于24并小于27，且男性受试者的体脂率大于25％、女性受试者的体脂率大于30％。

测试项目：体重、腰围、全身体脂率及躯干体脂率、腰围。

测试方式：令10位受试者每日饮用5mL植物发酵饮品，并连续饮用4 周。于饮用前(即第0周)及饮用4周后(即第4周)，以体重计(厂牌： TANITA，产品：四肢与躯干体组成计，型号BC-545F)测量此些受试者的体重、全身体脂率及躯干体脂率，并以布尺量测此些受试者的腰围。其中，量测腰围时，需去除受试者腰部覆盖的衣物，并于受试者轻松站立、双手自然下垂时，以受试者的肚脐为水平量测点量取受试者的腰围数值。

请参阅图5，10位受试者的平均体重从78.1公斤(第0周)下降至 77.5公斤(第4周)。请参阅图6，10位受试者的平均腰围从95.4公分 (第0周)下降至93.7公分(第4周)。请参阅图7，10位受试者的平均全身体脂率从33.5％(第0周)下降至33.0％(第4周)。请参阅图8，10 位受试者的躯干体脂率从35.2％(第0周)下降至34.6％(第4周)。

换言之，相比饮用前(第0周)，持续饮用4周含有植物发酵液的植物发酵饮品后可使此些受试者的平均体重下降0.6公斤、使此些受试者的平均腰围减少1.7公分、使此些受试者的平均全身体脂率下降0.5％以及使此些受试者的平均躯干体脂率下降0.6％。

由此可知，长期使用植物发酵液可改善受体的体重、腰围、全身体脂、躯干体脂，即植物发酵液具瘦身减肥之功效。

综上所述，根据本发明任一实施例的植物发酵液可用于制备减脂的组合物。换言之，前述组合物具有下列一种或多种功能：促进脂肪细胞分解、促进脂肪代谢、抑制脂肪吸收、提升以下基因中至少一基因的表现量：UCP1 基因、UCP2基因、ATGL基因及LIPE基因、改善受体的至少一体组成：体重、腰围、全身体脂率及躯干体脂率。并且，任一实施例的植物发酵液的皂苷含量至少为7433ppm。

当然，本发明还可有其它多种实施例，在不背离本发明精神及其实质的情况下，熟悉本领域的技术人员可根据本发明作出各种相应的改变和变形，但这些相应的改变和变形都应属于本发明权利要求的保护范围。

【序列表】

<110> 大江生医股份有限公司

<120> 植物发酵液用于制备减脂的组合物的用途

<130> NA

<150> US 62/961,742

<151> 2020-01-16

<160> 8

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 21

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<223> UCP1-F

<400> 1

aggcttccag taccattagg t 21

<210> 2

<211> 22

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<223> UCP1-R

<400> 2

ctgagtgagg caaagctgat tt 22

<210> 3

<211> 21

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<223> UCP2-F

<400> 3

atggttggtt tcaaggccac a 21

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<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<223> UCP2-R

<400> 4

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<212> DNA

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<212> DNA

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<223> ATGL-R

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<212> DNA

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<212> DNA

<213> Artificial Sequence

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<223> LIPE-R

<400> 8

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Claims

1.一种植物发酵液用于制备减脂的组合物的用途，其特征在于，植物发酵液是由姜(Zingiber officinale)、辣椒(Capsicum annuum)、山楂(Crataegus pinnatifida)及甜菜(Beta vulgaris)根的浸提液经多种菌种发酵所制得。

2.如权利要求1所述的用途，其中该多种菌种包括酵母菌、乳酸菌及醋酸菌。

3.如权利要求1所述的用途，其中该植物发酵液的皂苷含量至少为7433ppm。

4.如权利要求1所述的用途，其中该植物发酵液具有促进脂肪细胞分解的能力。

5.如权利要求1所述的用途，其中该植物发酵液具有提升以下基因中至少一基因的表现量的能力：UCP1基因、UCP2基因、ATGL基因及LIPE基因。

6.如权利要求1所述的用途，其中该植物发酵液具有改善一受体的至少一体组成的能力：体重、腰围、全身体脂率及躯干体脂率。

7.如权利要求1所述的用途，其中该浸提液是由该甜菜根、该山楂、该辣椒、该姜与溶剂在95℃下静置1小时所制得。

8.如权利要求7所述的用途，其中该溶剂为水，该甜菜根、该山楂、该辣椒、该姜及该水的重量比为1:1:1～3:3～8:250～300，且该植物发酵液是由该浸提液与相对于该植物发酵液体积百分比为8％-13％的葡萄糖经该多种菌种发酵所制得。