CH672886A5 - - Google Patents

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CH672886A5
CH672886A5 CH1340/86A CH134086A CH672886A5 CH 672886 A5 CH672886 A5 CH 672886A5 CH 1340/86 A CH1340/86 A CH 1340/86A CH 134086 A CH134086 A CH 134086A CH 672886 A5 CH672886 A5 CH 672886A5
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CH
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hyaluronic acid
salt
molecular weight
solution
acid
Prior art date
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CH1340/86A
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Valle Francesco Della
Aurelio Romeo
Silvana Lorenzi
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Fidia Spa
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Description

DESCRIPTION
La présente invention a pour objet de nouveaux médicaments à usage topique et elle concerne, plus précisément, des médicaments contenant:
1. une substance pharmacologiquement active ou un mélange de substances pharmacologiques actives, convenant à une administration topique, et
2. un véhicule qui comprend l'acide hyaluronique ou une fraction moléculaire d'acide hyaluronique ou un de ses sels avec un métal alcalin, un métal alcalino-terreux, le magnésium, l'aluminium, l'ammonium ou une substance pharmacologique, éventuellement en même temps que des excipients supplémentaires classiquement employés pour l'obtention de préparations pharmaceutiques à usage topique.
L'utilisation d'un médicament à activité topique peut être un avantage et même servir de remède, notamment dans les traitements dermatologiques ainsi que dans le traitement des membranes muqueuses en général et, notamment, des membranes des cavités orales et nasales, de l'oreille externe et, notamment, le traitement de la surface externe de l'œil.
L'application de ces médicaments topiques est particulièrement recommandable en pédiatrie et dans le domaine vétérinaire.
Les avantages d'une thérapie qui utilise les médicaments selon la présente invention résultent de ce que ces médicaments comportent un véhicule plus efficace des médicaments qui est à base de Polysaccharide acide de l'acide hyaluronique et conduisent par conséquent à une meilleure disponibilité biologique de la substance active par comparaison à ce que l'on peut obtenir avec les formulations pharmaceutiques connues. Les nouveaux médicaments selon la présente invention prennent en outre une importance particulière lorsqu'ils sont employés dans le domaine ophtalmique, du fait que les qualités mentionnées ci-dessus conduisent à une compatibilité spécifique supplémentaire avec l'épithélium cornéen et, de ce fait, à un degré de tolérance très élevé sans donner d'effets de sensibilisation. Lorsque les médicaments sont administrés sous forme de solutions concentrées présentant des caractéristiques viscoélastiques ou sous forme solide, il est possible d'obtenir sur l'épithélium cornéen des films qui soient homogènes, stables, parfaitement transparents et qui adhèrent bien, ce qui garantit une disponibilité biologique prolongée du médicament et forme ainsi d'excellentes préparations à effet retard.
Ces médicaments ophtalmiques présentent une valeur exceptionnelle, notamment dans le domaine vétérinaire, du fait qu'il n'existe actuellement pas de spécialités vétérinaires à usage oculaire qui contiennent des agents chimiothêrapeutiques. En fait, on utilise en général des préparations destinées à l'usage humain; ces préparations ne correspondent cependant pas toujours à un intervalle d'activité spécifique ni ne répondent toujours aux conditions particulières du traitement vétérinaire.
Cela est, par exemple, le cas dans la thérapie des kératoconjonc-tivites infectieuses, l'œil rose ou IBK, infection qui affecte principalement le bétail, les moutons et les chèvres. On présume que ces trois espèces présentent, en commun, des facteurs étiologiques spécifiques. En particulier, pour le bétail, le principal micro-organisme impliqué semble être Moraxella bovis (quoiqu'il ne faille pas exclure d'autres agents ou une origine virale, par exemple le Rhinotracheitis virus, Micoplasma, Rickettsia et Chlamydia dans le cas des moutons et Rickettsia dans le cas des chèvres). La maladie se manifeste sous une forme aiguë et tend à se répandre rapidement. Dans les stades initiaux, la Symptomatologie se caractérise par un blépharospasme et une coulée de larmes excessive suivis d'un exsudât purulent, d'une conjonctivite et d'une kératite, souvent accompagnés de fièvre, d'une diminution de l'appétit et de la production de lait. Les lésions de la cornée sont particulièrement sérieuses et, dans les étapes finales, elles peuvent même occasionner des perforations de la cornée elle-même. L'évolution clinique varie de quelques jours à plusieurs semaines. Une gamme importante d'agents chimiothêrapeutiques est utilisée pour le traitement et ces agents sont administrés aussi bien par voie s topique (souvent en association avec des stéroïdes anti-inflammatoires) que par voie systémique. Parmi ceux-ci, on citera les suivants: les tétracyclines, par exemple l'oxytétracycline, les pénicillines, par exemple la cloxacilline et la benzylpénicilline; les sulfamides, la polymyxine B (associée avec le miconazole et la prednisolone), le chlor-jo amphénicol, la tylosine et la chloromycétine. Le traitement topique de la maladie, en dépit de sa simplicité apparente, représente encore un problème non résolu, puisque, pour une raison ou une autre, il s'est avéré impossible jusqu'à maintenant d'obtenir des préparations oculaires présentant des concentrations d'antibiotiques ou de sulf-15 amides qui soient thêrapeutiquement efficaces pour la sécrétion des larmes. Cela est tout à fait compréhensible dans le cas des solutions, si l'on a présente à l'esprit la position en général inclinée de la tête des animaux. Mais cela est également vrai pour les médicaments semi-solides, puisque les excipients que l'on utilise normalement pour 20 eux ne présentent pas les qualités nécessaires leur permettant d'adhérer à la surface de la cornée, du fait qu'ils ne présentent habituellement pas une concentration suffisamment élevée en substances actives et ne peuvent pas donner lieu à une distribution parfaite (c'est-à-dire que se produit un gradient de distribution). Ces défauts 25 des collyres conventionnels en utilisation ophtalmique ont été décrits par Slatter et coll. dans «Austr. vet. J.», 1982, 59 (3), pages 69-72.
Un des avantages de la présente invention est de proposer de nouveaux types perfectionnés de collyres dans lesquels on a remédié aux défauts ci-dessus. L'usage d'acide hyaluronique comme véhicule de médicaments ophtalmiques permet la formulation d'excellentes préparations exemptes de gradients de concentrations de substances actives et, de ce fait, parfaitement homogènes, transparentes et adhérentes à l'épithélium cornéen, sans présenter d'effet de sensibilisation, donnant lieu à un excellent véhiculage de la substance active et à la possible obtention d'un effet retard.
Les propriétés mentionnées ci-dessus des nouveaux médicaments peuvent, naturellement, être également utilisées dans d'autres domaines en dehors de l'ophtalmologie. Comme on l'a déjà mentionné, on peut les appliquer en dermatologie et pour les maladies qui affectent les membranes muqueuses, par exemple de la bouche, par exemple en odontologie. On peut également les utiliser pour obtenir un effet systémique de la réabsorption transcutanée, par exemple dans les suppositoires. Toutes ces applications sont possibles à la fois en médecine humaine et en médecine vétérinaire. En médecine humaine, les nouveaux médicaments selon l'invention conviennent particulièrement à un usage en pédiatrie. La présente invention couvre également, bien entendu, n'importe quelle application thérapeutique des médicaments précités.
La présente invention est donc, dans son aspect essentiel, fondée 50 sur l'utilisation de l'acide hyaluronique comme véhicule en association avec une substance pharmaceutique, pour procurer un système amélioré de fournitures d'un médicament. Les nouveaux médicaments, selon la présente invention, contiennent, fondamentalement, deux composants:
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Composant 1
Formé d'une substance pharmaceutiquement active ou formé, comme on l'a décrit ci-dessus, de mélanges de plusieurs de ces subs-60 tances.
Composant 2
Acide hyaluronique, ainsi que, comme on l'a décrit ci-dessus, des fractions de la molécule d'acide hyaluronique et divers sels d'acide 65 hyaluronique ou de ces fractions de molécules.
La présente invention peut, en outre, être caractérisée comme comprenant des mélanges physiques de composant (1) et de composant (2), des complexes de la substance active du composant (1) avec
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l'acide hyaluronique du composant (2) ou diverses combinaisons ou divers mélanges.
Composant (1) - substance pharmaceutique:
Le composant (1), peut, tout d'abord, être classé en fonction de son utilisation dans les divers domaines de la thérapeutique, selon qu'il s'agit de médecine humaine ou de médecine vétérinaire et, ensuite, par analyse des divers secteurs d'application en fonction des organes ou des tissus à traiter, par exemple en ophtalmologie, dermatologie, obstétrique, oto-rhino-laryngologie, angiologie, neurologie ou n'importe quel type de pathologie des organes internes que l'on peut traiter par voie topique, par exemple pour les applications rectales. Selon un aspect particulier de la présente invention, la substance (1) pharmacologiquement active est en premier lieu destinée surtout à un usage ophtalmique. Selon un autre critère, la substance pharmacologiquement active (1) doit différer en ce qui concerne son effet et elle peut donc être, par exemple, utilisée comme agent anesthésique, analgésique, vasoconstricteur, antibactérien, antivirus ou anti-inflammatoire. Dans le domaine ophtalmique, elle peut être indiquée particulièrement, par exemple, pour ses effets myotiques, anti-inflammatoires, cicatrisants et antimicrobiens.
Le composant (1) peut également être, selon la présente invention, un mélange de deux ou de plus de deux substances actives. Par exemple, en ophtalmologie, un antibiotique peut être associé à un antiphlogistique et à un vasoconstricteur ou bien plusieurs antibiotiques peuvent être associés à un ou plusieurs antiphlogistiques ou bien un ou plusieurs antibiotiques peuvent être associés à un agent mydiatrique, un agent myotique, un agent cicatrisant ou un agent antiallergique. Il est, par exemple, possible d'utiliser les associations suivantes de médicaments ophtalmiques:
(a) kanamycine + phénylêphrine + phosphate dexaméthasone;
(b) kanamycine + phosphate bêtaméthasone + phénylêphrine, ou des associations semblables avec d'autres antibiotiques utilisés en ophtalmologie, par exemple la rolitétracycline, la néomycine, la gentamycine et la tétracycline.
En dermatologie, il est possible d'utiliser comme agent actif le composant (1) ou des mélanges de divers antibiotiques, par exemple l'érythromycine, la gentamycine, la néomycine, la gramicidine, la polymyxine B ou des mélanges de ces antibiotiques avec des agents anti-inflammatoires, par exemple des corticostéroïdes. Par exemple, des mélanges comprenant:
(a) hydrocortisone + néomycine;
(b) hydrocortisone + néomycine + polymyxine B + gramicidine;
(c) dexaméthasone + néomycine;
(d) fluorométholon + néomycine;
(e) prednisolone + néomycine;
(f) triamcinolone + néomycine + gramicidine + nistatine, ou tout autre mélange utilisé dans des préparations classiques en dermatologie.
Les mélanges de diverses substances actives ne sont naturellement pas limités à ce domaine mais, dans chacun des domaines de la médecine mentionnés ci-dessus, il est possible d'utiliser des mélanges semblables à ceux déjà en usage pour les préparations pharmaceutiques connues. On citera, comme exemple de substance (1) pharmacologiquement active à utiliser dans des médicaments ophtalmiques selon la présente invention: les antibiotiques basiques et non basiques, par exemple les aminoglucosidiques, les macroliques, tétracycline et peptides tels que, par exemple, la gentamycine, la néomycine, la streptomycine, la dihydrostreptomycine, la kanamycine, l'amikacine, la tobramycine, la spectinomycine, l'érythromycine, l'oléandomycine, la carbomycine, la spiramycine, l'oxytétracycline, la rolitétracycline, la bacitracine, la polymyxine B, la gramicidine, la Colistine, le chloramphénicol, la lincomycine, la vancomycine, la no-vobiocine, la ristocétine, la clindamycine, l'amphotéricine B, la gri-séofulvine, la nystatine et éventuellement leurs sels, par exemple des sulfates ou des nitrates ou leurs mélanges ou avec d'autres principes actifs, par exemple ceux mentionnés ci-après.
D'autres médicaments ophtalmiques à utiliser avantageusement selon la présente invention consistent, par exemple en d'autres agents anti-infectieux, tels par exemple la diéthylcarbamazine, le mêbendazole, les sulfamides tels que sulfacétamide, sulfadiazine, sulfisoxazole; des agents antiviraux et antitumoraux tels que l'iodo-déoxyuridine, adénine arabinoside, trifluorothtmidine, aciclovire, éthyldéoxyuridine, bromovinyldêoxyuridine, 5-iodo-5'-amino-2',5'-didéoxyuridine; des agents stêroïdes anti-inflammatoires tels que, par exemple, dexaméthasone, hydrocortisone, prednisolone, fluorométholon, médrysone et éventuellement leurs esters, par exemple des esters d'acide phosphorique, des agents anti-inflammatoires non stêroïdes, par exemple indométhacine, oxyphenbutazone, flurbipro-fène; des agents cicatrisants tels que, par exemple, le facteur de croissance épidermique EGF ; des anesthésiques locaux tels que, par exemple, bénoxinate, proparacaïne et éventuellement leurs sels; des médicaments (promoteurs) agonistes cholinergiques tels que, par exemple, pilocarpine, métacholine, carbaylocholine, acéclidine, phy-siostigmine, nêostigmine, démécarium et éventuellement leurs sels; des médicaments antagonistes cholinergiques tels que, par exemple, l'atropine et ses sels; les médicaments (promoteurs) agonistes adré-nergiques tels que, par exemple, la noradrénaline, l'adrénaline, la na-phozoline, la méthoxamine et éventuellement leurs sels; et des médicaments antagonistes adrénergiques, par exemple propanolol, timolol, pindolol, bupranolol, aténolol, métoprolol, oxprénolol, practolol, butoxamine, Sotalol, budarine, labétalol et éventuellement leurs sels.
Comme noté ci-dessus, le composant (1) actif peut prendre la forme d'un mélange de deux ou de plus de deux substances actives. Des substances actives à utiliser seules ou en mélange entre elles ou avec d'autres principes actifs en dermatologie sont, par exemple: des agents thérapeutiques tels que des agents anti-infectieux, antibiotiques, antimicrobiens, anti-inflammatoires, cytostatiques, cytotoxi-ques, antiviraux, anesthésiques, et des agents propylactiques tels que, par exemple, des écrans solaires, déodorants, antiseptiques et désinfectants. Parmi les antibiotiques, il faut noter les suivants: érythromicine, bacitracine, gentamycine, néomycine, auréomycine, gramicidine et leurs mélanges; parmi les antibactêriens et désinfectants, la nitrofurazone, le mafénide, la Chlorhexidine et les dérivés de 8-hydroxyquinoline et éventuellement leurs sels; parmi les agents anti-inflammatoires, surtout les corticostéroïdes tels que prednisolone, dexaméthasone, flumêthasone, clobétasol, triamcinolone, acétonide, bêtaméthasone ou leurs esters, par exemple les valérianates, benzoa-tes, dipropionates; parmi les cytotoxiques, fluoro-uracile, métho-trexate, podophylline; et parmi les anesthésiques, la dibucaïne, lido-caïne, benzocaïne.
Cette liste n'est naturellement donnée qu'à des fins illustratives et l'on peut utiliser tout autre agent décrit dans la littérature.
Parmi les exemples mentionnés pour l'ophtalmologie et la dermatologie, il est possible de conclure par analogie quels sont les médicaments selon la présente invention à utiliser dans les domaines de la médecine mentionnés ci-dessus, par exemple en oto-rhino-laryn-gologie, en odontologie, en médecine interne, par exemple en endocrinologie, où il est possible d'effectuer des traitements avec des préparations par absorption intradermique ou absorption intradermique ou absorption à travers les muqueuses, par exemple rectale, ou absorption intranasale, par exemple sous forme de pulvérisations nasales ou inhalations dans la cavité orale et dans le pharynx.
Ces préparations peuvent donc être, par exemple, anti-inflammatoire ou vasoconstrictrices ou vasosuppressives telles que celles déjà mentionnées en ophtalmologie, des vitamines, des antibiotiques, tels que ceux mentionnés ci-dessus, des hormones, des agents chimiothêrapeutiques, antibactériens, etc., y compris ceux mentionnés ci-dessus à utiliser en dermatologie.
Composant (2) - véhicule d'acide hyaluronique
Comme noté ci-dessus, les médicaments selon l'invention comprennent, comme composant (2), l'acide hyaluronique, des fractions de la molécule de cet acide ou divers sels de celui-ci. L'acide hyaluro-
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nique (ci-après quelquefois dénommé «HY ») est un hétéropolysac-charide naturel composé de restes alternés d'acide D-glucuronique et de N-acétyl-D-glucosamine. Le HY est présent dans les gels péricel-lulaires, dans la substance extracellulaire fondamentale des tissus conjonctifs, dans les organismes vertébrés, dans le fluide Synovien des articulations, dans l'humeur vitrée, dans le tissu ombilical humain, dans les crêtes de coqs et dans quelques bactéries. Son poids moléculaire est d'environ 8 à 13 millions.
La première recherche effectuée sur le HY a été effectuée par Balazs (voir le brevet US N° 4141 973) qui a isolé une fraction de HY susceptible de se substituer à des fluides endobulbaires et convenant à d'autres applications thérapeutiques. L'acide hyaluronique et ses fractions de poids moléculaires plus faibles se sont, en fait, avérés extrêmement utiles en médecine, et une utilisation cosmétique a également été envisagée (voir, par exemple, Balazs et coll., Cosmetics & Toiletries, Italian Edition N° 5/84). On l'a spécialement utilisé comme agent thérapeutique dans la thérapeutique des arthropathies, par exemple dans le domaine vétérinaire pour guérir l'arthrite des chevaux [Acta Vet. Scand. 167, 379 (1976)].
L'acide hyaluronique et ses fractions moléculaires ont été utilisés en chirurgie ophtalmique comme agents thérapeutiques auxiliaires et de substitution pour des organes naturels et des tissus [voir, par exemple, E.A. Balazs et coll., Modern Problems in Ophthalmology, 10, 3 (1970), E.B. Strieff, S. Karger, éd. Basel et Balazs et coll., Vis-cosurgery and the Use of Sodium Hyaìuronate Düring Intraocular Lens Implantation, article présenté à l'International Congress and Frist Film Festival on Intraocular Implantation, Cannes, 1979].
Dans la demande de brevet européen publiée N° 0138572 déposée le 10 octobre 1984 est décrite une fraction moléculaire d'acide hyaluronique que l'on peut utiliser pour des injections intra-oculaires et intra-articulaires respectivement, et qui est susceptible de se substituer au fluide endobulbaire et peut être utilisée pour la thérapeutique des arthropathies.
Au contraire de cette utilisation thérapeutique ou de cette utilisation comme auxiliaire plastique en chirurgie ou en cosmétique,
l'acide hyaluronique ou ses fractions moléculaires sont utilisés dans la présente invention comme véhicules pour l'administration de substances pharmacologiquement actives à usage topique.
A titre de véhicule utilisé comme composant (2) selon la présente invention, on peut utiliser un acide hyaluronique de n'importe quelle origine, par exemple les acides extraits des matières premières naturelles mentionnées ci-dessus, y compris les crêtes de coqs. La préparation d'extraits bruts de ces acides est décrite dans la littérature technique. On doit, de préférence, utiliser des acides hyaluroniques purifiés. Selon la présente invention, à la place des acides hyaluroniques obtenus directement par extraction des matières organiques, il est possible d'utiliser des fractions de celui-ci présentant des poids moléculaires qui peuvent varier énormément, par exemple d'environ 90 à 80% (PM = 11,7 à 10,4 millions) à 0,23% (PM = 30 000)
d'une fraction moléculaire d'un acide hyaluronique présentant un poids moléculaire de 13 millions, de préférence entre 5 et 0,23%. Ces fractions peuvent s'obtenir par divers modes opératoires, par exemple par hydrolyse, oxydation ou à l'aide d'agents chimiques en-zymatiques, par des modes opératoires physiques, par exemple par traitement mécanique ou par irradiation, et, de ce fait, ils sont souvent formés dans les mêmes modes opératoires de purification des extraits primaires (voir, par exemple Balazs et coll., Cosmetics and Toiletries, cité ci-dessus). La séparation et la purification des fractions obtenues se réalisent, par exemple, par filtration moléculaire.
Il est particulièrement important d'utiliser comme véhicule (2) selon la présente invention deux fractions purifiées que l'on peut obtenir à partir de l'acide hyaluronique, par exemple à partir de crêtes de coqs et qui sont connues sous le nom de hyalastine et hya-lectine. La fraction connue sous le nom de hyalastine possède un poids moléculaire moyen entre environ 50 000 et 100 000. La hyalec-tine possède un poids moléculaire moyen d'environ 500 000 à 730000. Une fraction combinée de ces deux fractions a également
été isolée et elle est caractérisée par son poids moléculaire moyen d'environ 250 000 à environ 350 000. Cette fraction combinée peut s'obtenir avec un rendement de 80% en acide hyaluronique total disponible à partir de la matière première particulière, tandis que la s fraction hyalectine peut s'obtenir avec un rendement de 30% et la fraction hyalastine avec un rendement de 50% par rapport au HY de départ. La préparation de ces fractions est décrite dans les exemples 20 à 22 ci-après. Ainsi, l'acide hyaluronique que l'on préfère utiliser est une fraction dont le poids moléculaire moyen est en gros io compris entre environ 300 000 et environ 13 millions et, de préférence, entre environ 30000 et environ 730000. Les fractions hyaluroniques que l'on préfère particulièrement ont un poids moléculaire d'environ 50 000 à environ 100 000 ou d'environ 500 000 à environ 730000, ou consistent en une fraction combinée ayant un poids mois léculaire de 250 000 à environ 350 000. Il est important que ces fractions préférées soient sensiblement exemptes d'acide hyaluronique de faible poids moléculaire, dont le poids moléculaire soit inférieur à 30 000 et, de ce fait, soient exemptes de réactions secondaires inflammatoires lors de leur administration. Les références ultérieures ci-20 après à l'acide hyaluronique ou HY doivent comprendre, en cohérence avec le contexte particulier, à la fois l'acide hyaluronique et ses fractions de divers poids moléculaires.
Selon l'invention, au lieu des acides hyaluroniques et de ses fractions de divers poids moléculaires, il est possible d'utiliser comme 25 composant (2) des médicaments leurs sels avec des bases minérales, par exemple de métal alcalin (sodium, potassium, lithium), de métal alcalino-terreux (calcium, baryum, strontium), magnésium ou aluminium. Ces sels peuvent être stœchiométriquement neutres en ce sens que toutes leurs fonctions acides sont salifiées ou peuvent être des 30 sels ou des acides partiels dans lesquels seul un certain nombre de ces fonctions acides sont salifiées par les métaux mentionnés ci-dessus. Ces sels s'obtiennent facilement par exemple en faisant réagir HY ou les fractions mentionnées ci-dessus avec la quantité de base calculée et il est également possible d'utiliser des sels mixtes prove-35 nant de différentes bases.
Outre les sels ci-dessus, il est également possible d'utiliser des sels de HY avec des composés que l'on peut largement considérer comme de l'ammonium ou de l'ammonium substitué (des aminés), par exemple des sels de mono-, di-, tri- et tétraalkylammonium ou 40 les groupes alkyles possèdent, de préférence, entre 1 et 18 atomes de carbone ou des arlyalkyles comportant le même nombre d'atomes de carbone dans la portion aliphatique et où le radical aryle signifie un reste benzénique, éventuellement substitué par un nombre compris entre 1 et 3 groupes méthyle, halogène ou hydroxy. Ces sels d'am-45 monium ou d'ammonium substitué de HY se forment par réaction chimique entre l'acide hyaluronique et des radicaux d'amines primaire, secondaire ou tertiaire ou des radicaux d'hydroxyde d'ammonium, de composés ou de médicaments présentant une activité pharmaceutique, c'est-à-dire avec ses parties des composés qui compren-50 nent le composant actif (1). Comme avec les sels décrits ci-dessus, ces sels peuvent également être stœchiométriquement neutres, toutes leurs fonctions acides étant salifiées ou ils peuvent être des sels ou des acides partiels et peuvent comprendre des sels mixtes provenant de différentes bases.
55 L'acide hyaluronique ou ses fractions moléculaires en tant que composant (2) peuvent donc être remplacés par les sels avec des bases minérales, par exemple de métaux alcalins (sodium, potassium, lithium), de métaux alcalino-terreux (calcium, baryum, strontium), de magnésium, d'aluminium, d'ammonium ou d'ammonium 60 substitué. Ce principe est également valable pour les sels d'acide partiels mentionnés ci-dessus dans lesquels tous les groupes acides présents peuvent être partiellement ou totalement neutralisés par les métaux mentionnés ci-dessus ou avec de l'ammonium ou avec des aminés, les sels d'ammonium étant formés par réaction chimique 65 entre l'acide hyaluronique et des radicaux primaire, secondaire ou tertiaire ou des radicaux d'hydroxyde d'ammonium ou de composés ou médicaments présentant une activité pharmaceutique, c'est-à-dire le composant (1).
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6
Préparations de médicaments réunissant les composants ( 1) et (2)
Il existe différentes possibilités de fabrication des médicaments selon la présente invention, et ces moyens comprennent:
a. l'utilisation d'un dérivé actif, neutre ou acide, du composant (1) mélangé avec de l'acide hyaluronique ou avec une de ses fractions ou leurs sels métalliques;
b. L'utilisation de sels partiels de HY avec un dérivé actif basique du composant (1), laissant les groupes acides résïduaires du HY libres ou neutralisés par les métaux ou bases mentionnés ci-dessus;
c. l'utilisation de sels de HY stœchiométriquement neutres avec un dérivé basique du composant (1), éventuellement additionné de HY ou d'un de ses sels de métaux partiel ou total (neutre);
d. l'utilisation de sels stœchiométriquement neutres de HY avec un dérivé basique du composant (1), additionné d'autres quantités de composant (1), et e. l'utilisation à volonté de mélanges de sels ou des mélanges décrits ci-dessus.
Une forme particulière de médicaments selon la présente invention est représentée par des mélanges du dérivé ou de la substance pharmacologiquement active à base du composant (1), avec des acides hyaluroniques ou ses fractions moléculaires lorsque cette substance active (1) est de nature basique, par exemple dans le cas des antibiotiques basiques. Dans ce cas, l'acide hyaluronique, le composant (2) et le dérivé actif (1) forment, ensemble, des sels stœchiométriquement partiels ou des sels d'acide dans lequel une partie aliquote de tous les acides groupes du composant (2) HY sont salifiés par les groupes basiques du composant actif (1); ou des sels stœchiométriquement neutres dans lesquels tous les groupes du HY, composant (2), sont salifiés, ou des mélanges de ses sels neutres avec une quantité supplémentaire de substance basique (1).
Donc, aux fins de la présente invention, si l'on utilise une substance active basique (1), il est possible de remplacer les mélanges des composants (1) et (2) avec les sels des acides mentionnés ci-dessus ou ceux qui sont stœchiométriquement neutres, ou naturellement de mélanges de ses sels à la fois avec le composant (1) et avec le composant (2).
Des mélanges de médicaments entre eux et, éventuellement, avec d'autres principes peuvent également être utilisés comme composant (1) actif selon l'invention. Si, à la place d'une seule substance. active (1), on utilise des mélanges de substances actives telles que, par exemple, celles mentionnées ci-dessus, les sels des subtances actives basiques et d'acide hyaluronique et de ses fractions moléculaires peuvent être des sels mixtes d'une ou plusieurs de ces subtances basiques ou, éventuellement, des sels mixtes de ce type avec un certain nombre d'autres groupes acides du HY Polysaccharide salifié par les métaux ou bases mentionnés ci-dessus. Il est, par exemple, possible de préparer des sels d'acide hyaluronique ou d'une de ses fractions moléculaires hyalastine ou hyalectine, avec un certain pourcentage de groupes acides salifiés ave l'antibiotique kanamycine, un autre pourcentage salifié avec le vasoconstricteur phényl-éphrine, tandis qu'un pourcentage restant des groupes acides sont libres ou salifiés par exemple avec du sodium ou un autre des métaux mentionnés ci-dessus. Il est également possible de mélanger ce type de sels mixtes avec d'autres quantités d'acide hyaluronique ou de ses fractions ou de sels métalliques comme indiqué pour le médicament contenant des sels d'une seule substance active avec les Polysaccharides acides mentionnés ci-dessus.
Il est possible, selon un aspect particulier de la présente invention, d'utiliser les sels mentionnés ci-dessus, isolés et éventuellement purifiés, à l'état anhydre solide sous forme de poudre amorphe. Lorsque la poudre vient au contact du tissu à traiter, la poudre forme une solution aqueuse concentrée de caractère gélatineux ou de consistance visqueuse présentant des propriétés élastiques. Ces qualités se préservent également pour des dilutions plus fortes et on peut donc utiliser, au lieu des sels anhydres mentionnés ci-dessus, des solutions aqueuses à divers degrés de concentration ou en solution saline, éventuellement avec addition d'autres excipients ou additifs pharmaceutiquement acceptables, par exemple d'autres sels minéraux pour la régulation du pH et de la pression osmotique. Naturellement, il est également possible d'utiliser les sels pour préparer des gels, des inserts, des crèmes ou des onguents dans lesquels on utilise d'autres excipients ou ingrédients de formulation conventionnelle de ces préparations pharmaceutiques. Selon un aspect particulier de l'invention, il y a une préférence pour les médicaments contenant de l'acide hyaluronique, ses fractions de divers poids moléculaires ou leurs sels minéraux ou leurs sels partiels ou neutres avec la substance active (1) comme seul véhicule (à la possible exception d'un solvant aqueux).
Les rapports quantitatifs en poids des deux composants (1) et (2) selon l'invention peuvent varier dans de larges limites, et cela dépend, naturellement, également de la nature des deux composants et, dans le premier cas, de celui de la substance active. Ces limites sont, par exemple, des rapports de 0,01/1 et 100/1 entre les deux composants (1) et (2). L'intervalle de variation est cependant compris entre les limites de 0,01/1 et 10/1 pour les deux composants et, notamment, entre 0,1/1 et 2/1.
Les médicaments selon l'invention peuvent se trouver sous forme solide, par exemple de poudre lyophilisée contenant seulement les deux composants en mélange ou emballés séparément.
Sous leur forme solide, ces médicaments forment, au contact de l'épithélium à traiter, des solutions plus ou moins concentrées selon la nature de l'épithélium traité et présentent les mêmes caractéristiques que les solutions employées jusqu'à présent, in vitro, ce qui représente un autre aspect particulièrement important de la présente invention. Ces solutions se préparent, de préférence, avec de l'eau distillée ou une solution saline stérile et ne contiennent, de préférence, pas d'autres véhicules pharmaceutiques en dehors de l'acide hyaluronique ou de l'un de ses sels. Les concentrations de ces solutions peuvent aussi varier dans de larges limites, par exemple, entre 0,01 et 75% pour chacun des deux composants pris séparément et pour leurs mélanges ou leurs sels. Il existe une préférence particulière pour des solutions dont le caractère viscoélastique soit prononcé, dont la teneur soit par exemple comprise entre 10 et 90% du médicament ou de chacun de ses composants. Les médicaments de ce type sont particulièrement importants, à la fois sous leur forme anhydre (poudres lyophilisées), ou sous forme de solutions concentrées ou diluées dans l'eau ou une solution saline, éventuellement avec addition d'un additif ou de substances auxiliaires, par exemple de substances désinfectantes particulières ou de sels minéraux agissant comme tampons ou autres à usage ophtalmique.
Parmi les médicaments selon la présente invention, on doit choisir, en particulier en tant que de besoin, ceux dont le degré d'acidité convient au lieu auquel on doit les appliquer, c'est-à-dire présentant un pH physiologiquement tolérable. L'ajustement du pH, par exemple des sels mentionnés ci-dessus d'acide hyaluronique avec une substance active basique, peut s'effectuer par régulation de façon convenable des quantités de Polysaccharides ou de ses sels et de la substance basique elle-même. Ainsi, par exemple, si l'acidité d'un sel d'acide hyaluronique ave une substance basique devait être trop élevée, l'excès de groupe acide libre avec les bases mentionnées ci-dessus est neutralisé, par exemple, avec de l'hydrate de sodium ou de potassium ou d'ammonium.
Les formulations suivantes représentent des exemples de préparation selon la présente invention et comprennent une association d'un composant (1) (pharmaceutiquement actif) et du composant véhicule (2) comprenant de l'acide hyaluronique.
Formulation 1 - gel contenant EGF
dont 100 g contiennent:
— sel de sodium de HY (fraction hyalastine) 55 g
— sel de sodium de HY (fraction hyalectine) 30 g
— EGF 0,5 g
— eau deux fois distillée 23,5 g s
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Formulation 2 - insert de 100 mg avec du nitrate de pilocarpine contenant:
— sel de sodium de HY (fraction haylastine) 100 mg
— nitrate de pilocarpine 2 mg
Formulation 3 -forme poudre contenant de la streptomycine pour application topique
100 g de poudre contiennent:
— sel de sodium de HY (fraction hyalastine) 70 g
— sel de sodium de HY (fraction hyalectine) 28,5 g
— streptomycine 1,5 g
Formulation 4 - insert de 100 mg en présence de pilocarpine contenant:
— sel mixte d'acide hyaluronique avec la pilocarpine et avec le sodium (voir préparation dans l'exemple 18) 100 mg
Formulation 5 - collyre contenant de la gentamycine et de la naphazo-line dont 100 ml contiennent:
— sel mixte d'acide hyaluronique avec la gentamycine,
avec la naphazoline et avec le sodium (voir préparation dans l'exemple 16) 2,910 g
— oxybenzoate de propyle 0,50 g
— phosphate de sodium 1,500 g
— eau distillée q.s. pour 100 ml
Formulation 6 - collyre contenant chloramphénicol, néomycine, phényléphrine, nitrofurazone dont 100 ml contiennent:
— sel mixte d'acide hyaluronique avec la néomycine,
avec la phényléphrine et avec le sodium (voir préparation dans l'exemple 17) 2,890 g
— chloramphénicol 0,500 g
— nitrofurazone 0,02 g
— eau distillée q.s. pour 100 ml
Formulation 7 - collyre contenant phosphate de dexaméthasone, kanamycine E, phényléphrine dont 100 ml contiennent:
— sel mixte d'acide hyaluronique avec la kanamycine et la phényléphrine (voir préparation dans l'exemple 15) 3,060 g
— sel dexaméthasone phosphate de sodium 0,100 g
— p-hydroxybenzoate de méthyle 0,060 g
— eau distillée q.s. pour 100 ml
Méthodes de préparation
Méthode A
La préparation des sels selon la présente invention peut se faire de façon connue en soi par mélange de solutions des suspensions dans l'eau ou dans des solvants organiques des deux composants (1) et (2) et, éventuellement, de bases ou de sels basiques des métaux alcalins, métaux alcalino-terreux, magnésium, aluminium ou ammonium mentionnés ci-dessus en quantités calculées et en isolant les sels sous une forme anhydre amorphe selon les techniques connues. Il est possible, par exemple, de préparer tout d'abord une solution aqueuse des deux composants (1) et (2), de débarrasser ces composants des solutions aqueuses de leurs sels avec des acides des sels métalliques respectivement, par exemple sulfates dans le cas du composant (1) et ses sels de sodium dans le cas du composant (2), de traiter avec des échangeurs ioniques relatifs et de réunir les deux solutions à basse température, par exemple entre 0 et 20° C. Si le sel ainsi obtenu est facilement soluble dans l'eau, on doit le lyophiliser,
tandis que les sels qui ne sont pas facilement solubles peuvent être séparés par centrifugation, filtration ou décantation et, éventuellement, être ensuite soumis à une dessiccation. Les exemples suivants sont donnés simplement à titre d'illustration de la méthode A selon la présente invention et ne doivent pas être considérés comme limitatifs.
Exemple 1
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la streptomycine
2,43 g de sulfate de streptomycine (10 mEq) sont solubilisés dans 25 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1 x 8) sous sa forme OH-. L'éluat exempt de sulfate est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C. 4,0 g du sel de sodium de l'acide hyaluronique présentant un poids moléculaire de 225 000 (correspondant à 10 mEq d'une unité monomère) sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfo-nique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli sous agitation dans la solution de streptomycine base. La solution qui en résulte est congelée et instantanément lyophilisée. Dans le sel ainsi obtenu, tous les groupes acides de l'acide hyaluronique sont salifiés par les fonctions basiques de la streptomycine. Rendement 5,5 g.
Un dosage microbiologique du Bacillus subtilis ATCC 6633 comparé à une streptomycine standard montre une teneur de 33,8% en poids de streptomycine base, ce qui correspond au poids théorique calculé.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. (Anal. Biochem. 4, 330, 1962), montre une teneur en poids d'acide HY de 66,2% (pourcentage théorique 66,0%).
Exemple 2
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec l'érythromycine
4,0 g du sel de sodium de l'acide hyaluronique dont le poids moléculaire est de 77 000 (correspondant à 10 mEq d'une unité monomère) sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatée à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat,
exempt de sodium, est maintenu à une température de 5° C. 7,34 g d'érythromycine base (10 mEq) sont ajoutés à la solution de HY, sous agitation à 5° C, jusqu'à ce que l'on obtienne une solubilisation complète. La solution qui en résulte est congelée et lyophilisée. Dans le sel ainsi obtenu, tous les groupes acides de l'acide hyaluronique sont salifiés par l'éryhtromycine. Rendement 10,8 g.
Un dosage microbiologique sur Staphylococcus aureus ATCC 6538p, par comparaison avec l'érythromycine standard, montre une teneur de 66,0% en poids d'érythromycine base, ce qui correspond à la valeur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 34,0%, ce qui correspond au pourcentage théorique calculé.
Exemple 3
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la kanamycine
1,46 g de sulfate de dikanamycine (10 mEq) est solubilisé dans 25 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa forme OH-. L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C. 4,0 g du sel de sodium de HY, dont le poids moléculaire moyen est de 165 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H,0 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8), sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli sous agitation due à un vortex dans la solution
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de kanamycine base. La solution qui en résulte est instantanément congelée et lyophilisée. Rendement 4,8 g.
Dans le sel obtenu, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la kanamycine. Un dosage microbiologique sur B. subtilis ATCC 6633, par comparaison avec la kanamycine standard, montre une teneur de 24,2% en poids de kanamycine base, ce qui correspond au pourcentage théorique calculé.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 75,8%, ce qui correspond également à la teneur théorique.
Exemple 4
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la néomycine
1,52 g de sulfate de néomycine (10 mEq) est solubilisé dans 20 ml d'H20 distillée et élué dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8)
sous sa forme OH~. L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C. 4,0 g du sel de sodium de HY, dont le poids moléculaire moyen est de 170 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée et élués dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8), sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli sous agitation dans la solution de néomycine base. Le précipité viscoélastique qui se forme est séparé par décantation et lyophilisé. Rendement 4,76 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la néomycine. Un dosage microbiologique quantitatif effectué sur S. aureus ATCC 6538p, par comparaison avec la néomycine standard, montre une teneur de 21,2% en poids de néomycine base, ce qui correspond à la valeur théorique calculée.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 78,8% en poids.
Exemple 5
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la gentamycine
1,45 g de sulfate de gentamycine (10 mEq) est solubilisé dans 25 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa forme OH". L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C. 4,0 g du sel de sodium de HY, dont le poids moléculaire est de 170 000, correspondant àlO mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8), sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli sous agitation dans un vortex dans la solution de gentamycine base. Le précipité épais et très visqueux qui se forme est séparé par décantation et lyophilisé. Rendement 4,65 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la gentamycine. Un dosage microbiologique quantitatif effectué sur 5. épidermidus ATCC 12228, par comparaison avec la gentamycine standard, montre une teneur en poids de 20,0% de gentamycine base, ce qui correspond à la teneur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 80,0% en poids.
Exemple 6
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec l'amikacine
1,47 g d'amikacine base (10 mEq) est solubilisé dans 100 ml d'H20 distillée à 5° C. 4,0 g du sel de sodium de HY, dont le poids moléculaire est de 170 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'HzO distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8), sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli sous agitation dans un vortex dans la solution d'amikacine base. Le précipité épais et extrêmement visqueux qui se forme est séparé par décantation et lyophilisé. Rendement 5,16 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par l'amikacine. Un dosage microbiologique quantitatif effectué sur S. aureus ATCC 29737, par comparaison avec l'amikacine standard, montre une teneur en poids de 27,7% en amikacine base, ce qui correspond à la teneur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 72,3% en poids.
Exemple 7
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la rolitétracycline
4,0 g de sel de sodium de HY, dont le poids moléculaire moyen est de 170000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8), sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est maintenu à une température de 5° C. 5,3 g de rolitétracycline base (10 mEq) sont ajoutés à la solution d'acier HY sous agitation à 5° C à l'écart de la lumière jusqu'à ce que l'on obtienne une solubilisation complète. La solution ainsi obtenue est instantanément congelée et lyophilisée. Rendement 8,9 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la rolitétracycline. Un dosage microbiologique quantitatif effectué sur S.pumilus ATCC 14884, par comparaison avec la rolitétracycline standard, montre une teneur en poids de 52,0% de rolitétracycline base, ce qui correspond à la teneur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 41,8% en poids.
Exemple 8
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la polymyxine B
2,4 g de polymyxine B base (10 mEq) sont mis en suspension dans 100 ml d'H20 distillée à 5° C. 4,0 g du sel de sodium du HY, dont le poids moléculaire moyen est de 170 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8), sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli sous agitation vigoureuse dans la solution de polymyxine base à 5° C. Après une phase initiale pendant laquelle la solution devient claire, il y a formation progressive d'un produit difficilement soluble qui précipite complètement par addition de 5 volumes d'acétone. Le précipité est filtré, lavé à l'acétone et ensuite séché sous vide. Rendement 6,05 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la polymyxine B. Un dosage microbiologique quantitatif effectué sur S. bronchiseptica ATCC 4617, par comparaison avec la polymyxine B standard, montre une teneur en poids de 38,7% de polymyxine B base, ce qui correspond à la valeur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 61,3% en poids.
Exemple 9
Préparation du sel d'acide hyaluronique (HY) avec la gramicidine S
6,7 g de chloorhydrate de gramicidine S (10 mEq) sont mis en suspension dans 200 ml d'un mélange éthanol/H20 (80/20). La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5e C contenant 15 ml de résine quaternaire (Dowex 50 x 8), sous sa forme H+. 4,0 g de sel de sodium de H Y, ayant un poids moléculaire moyen de 165 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors
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éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+.
200 ml de diméthylsulfoxyde (DMSO) sont ajoutés à l'éluat, exempt de sodium, et on maintient le mélange sous agitation à 5° C. La solution de gramicidine base est alors lentement ajoutée. La solution qui en résulte est précipitée à l'aide de 10 volumes d'acétone. On filtre le précipité, on lave à l'acétone et on sèche sous vide. Rendement 9,55 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la gramicidine S. Un dosage microbiologique quantitatif effectué sur S.faecium ATCC 10541, par comparaison avec une gramicidine S standard, montre une teneur en poids de 60,0% de gramicidine S base, ce qui correspond à la valeur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 40,0% en poids.
Exemple 10
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la naphazoline
De la naphazoline base pure est préparée de la façon suivante: 4,94 g de naphazoline-HCl (20 mmoles) sont solubilisés dans 100 ml d'H20 distillée à 5°C. 20 ml de NH4OH (5 moles) sont ajoutés et on extrait, deux fois, avec 100 ml d'acétate d'éthyle. Les couches organiques sont extraites deux fois avec 50 ml d'H20, on les remélange et on déshydrate avec Na2S04 anhydre. La solution est concentrée à environ 50 ml et on la place, ensuite, dans un congélateur pour la faire cristalliser. Le produit cristallisé est filtré, lavé à l'acétate d'éthyle et séché sous vide. Rendement 4,0 g de naphazoline base pure.
4,0 g du sel de sodium de HY, d'un poids moléculaire moyen de 625 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée et élués dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 5x8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est maintenu à une température de 5° C. On ajoute 2,1 g de naphazoline base (10 mEq) à la solution d'acide d'HY et on agite le mélange à 5° C jusqu'à ce que l'on obtienne une solubilisation complète. Le mélange qui en résulte est instantanément congelé et lyophilisé. Rendement 5,72 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la naphazoline. Un dosage spectrophotométrique quantitatif effectué par comparaison avec une naphazoline standard (USP) montre une teneur de 35,7% en poids de naphazoline base, ce qui correspond à la valeur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 64,3% en poids.
Exemple 11
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la phénylêphrine
2,04 g de L-phényléphrine-HCl (10 mEq) sont solubilisés dans 25 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5" C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa forme OH-. L'éluat, exempt de chlorure, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C.
4,0 g du sel de sodium de HY, d'un poids moléculaire de 820 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli sous agitation dans la solution de phényléphrine base, le mélange qui en résulte est instantanément congelé et lyophilisé. Rendement 5,25 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont salifiés par la phényléphrine. Un dosage spectrophotométrique U.V. utilisant la méthode d'addition standard (USP) montre une teneur de 30,6% en poids de phényléphrine base, ce qui correspond à la valeur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une 5 teneur en poids d'acide HY de 69,4% en poids.
Exemple 12
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec l'atropine
4,0 g du sel de sodium de HY, d'un poids moléculaire moyen de 10 1 300 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est maintenu à une température de 5° C, 2,89 g d'atropine 15 base (10 mEq) sont ajoutés à la solution de HY et le mélange est agité à 5° C. Le mélange qui en résulte est congelé et lyophylisé. Rendement 6,5 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes de l'acide hyaluronique sont salifiés par l'atropine. Une détermination pendant un 20 dosage par Chromatographie en phase gazeuse (USP) effectué par comparaison avec une atropine standard montre une teneur de 43,3% en poids d'atropine base, ce qui correspond à la valeur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans 25 le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 56,7% en poids.
Exemple 13
^ Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la pilocarpine
2,45 g de chlorhydrate de pilocarpine (10 mEq) sont solubilisés dans 50 ml d'H20 distillée: La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1 x 8), dans sa forme OH-. L'éluat, exempt de 35 chlorure, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C. 4,0 g de sel de sodium de HY d'un poids moléculaire de 170000, correspondant àlO mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 40 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli, sous agitation, dans la solution de pilocarpine base. La solution ainsi obtenue est instantanément congelée et lyophilisée. Rendement 5,25 g.
Dans le sel qui en résulte, tous les groupes acides du HY sont 4J salifiés par la pilocarpine. Un dosage spectrométrique selon la méthode USP et effectué en comparaison avec une pilocarpine standard indique une teneur de 35,1 % en poids de pilocarpine base, ce qui correspond à la valeur théorique.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans 5Q le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 64,6% en poids.
Exemple 14
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la néomycine et 55 avec la polymyxine
4,0 g de sel de sodium H Y, d'un poids moléculaire de 170 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 60 50 x 8) sous sa forme H + . L'éluat, exempt de sodium, est recueilli, dans un récipient thermostatique à 5" C. 0,150 g de polymyxine B base (0,63 mEq) est ajouté sous agitation vigoureuse. 1,425 g de sulfate de néomycine (9,37 mEq) est solubilisé dans 25 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 65 5'* C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1 x 8) sous sa forme OH-. L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli sous agitation vigoureuse dans la solution d'acide HY et de polymyxine B. Le précipité qui se forme est séparé par centrifugation et
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séché sous vide; il n'y a pas de perte du produit dans la solution rési-duaire. Rendement 4,85 g.
17,25 mg de ce produit contiennent:
— néomycine égale à 5,0 mg de sulfate de néomycine;
— polymyxine égale à 0,63 mg (5000 UI) de sulfate de polymyxine.
Ces dosages sont effectués après séparation par HPLC (Chromatographie en phase liquide à haute pression) des deux principes actifs.
Exemple 15
Préparation du sel mixte d'acide hyaluronique (HY) avec la kanamycine et avec la phényléphrine
4,0 g de sel de sodium H Y, d'un poids moléculaire de 65 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C. 0,85 g de sulfate de kanamycine (5,82 mEq) sont solubilisés dans 10 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5 " C contenant 10 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa forme OH-.
L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli dans un récipient maintenu à une température de 5 ' C. La base phényléphrine est préparée par dissolution de chlorhydrate de phényléphrine dans H20 distillée à 5° C à 100 mg/ml et l'on ajoute du NH4OH (6N) jusqu'à ce que l'on obtienne une précipitation complète. Le précipité est séparé par filtration, lavé avec H20 distillée jusqu'à disparition des chlorures de l'eau de lavage et on sèche ensuite sous vide. Les solutions d'acide HY et de kanamycine base sont mélangées et maintenues à une température de 5° C. 699 mg de phényléphrine base (4,18 mEq) sont ajoutés sous agitation jusqu'à ce que la dissolution soit complète. La solution qui en résulte est congelée et lyophilisée. Rendement 5,1 g.
Un dosage microbiologique sur B. subtilis ATCC 6633, par comparaison avec une kanamycine standard, indique une teneur de 13,55% en poids de kanamycine base. Un dosage spectrophotométrique U.V., utilisant la méthode d'addition standard USP, indique une teneur de 13,45% en poids de phényléphrine base.
Un dosage colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 73,0% en poids.
Exemple 16
Préparation d'un sel mixte d'acide hyaluronique (HY) avec la gentamycine, avec la naphazoline et avec le sodium
4,0 g de sel de sodium HY, d'un poids moléculaire de 50 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli, dans un récipient thermostatique à 5° C. 1,245 g de sulfate de gentamycine (8,59 mEq) est solubilisé dans 25 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 12 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa forme OH-.
L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli dans un récipient maintenu à une température de 5° C. La naphazoline base pure est préparée en présence de chlorhydrate de naphazoline dissous dans H20 distillée à 5° C à une concentration de 50 mg/ml, on ajoute du NH4OH (5 moles) jusqu'à ce que l'on arrive à pH 12 et l'on extrait la solution deux fois avec de l'acétate d'éthyle. Les couches organiques sont lavées avec HzO et on déshydrate sur Na2S04 anhydre. Le produit est placé dans un congélateur pour le faite cristalliser et l'on filtre le précipité, on lave à l'acétate d'éthyle et on le sèche sous vide. 2,5 g de sels de sodium HY et 0,297 g de naphazoline base sont ajoutés à l'acide HY (1,41 mEq) et on agite jusqu'à ce qu'il y ait so-lubilisation complète. On ajoute alors la solution de gentamycine base, on homogénéise et ensuite on congèle et on lyophilise. Rendement 7,35 g.
Un dosage microbiologique quantitatif sur B. epidermidus ATCC 12228, par comparaison avec une gentamycine standard, indique 5 une teneur de 11,1 % en poids de gentamycine base. Une détermination spectrophotométrique quantitative, effectuée par comparaison avec une naphazoline standard (USP), indique une teneur de 4,0 % en poids de naphazoline base.
Une détermination colorimétrique de l'acide glucuronique io combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 83,0% en poids.
Exemple 17
Préparation du sel mixte de l'acide hyaluronique (HY) avec la néomy-15 cine, avec la phényléphrine et avec le sodium
4,0 g de sel de sodium HY, d'un poids moléculaire de 65 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 15 ml de résine sulfonique 20 (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C. 1,28 g de sulfate de néomycine (8,42 mEq) est solubilisé dans 25 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5: C contenant 12 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa 25 forme OH-.
L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli dans un récipient maintenu à une température de 5° C. La phényléphrine base est préparée par dissolution de chlorhydrate de phényléphrine dans H20 distillée à 100 mg/ml et addition de NH4OH (6N) jusqu'à ce que l'on ob-30 tienne une précipitation complète. Le précipité est séparé par filtration, on lave avec H20 distillée jusqu'à ce qu'il y ait disparition des chlorures dans l'eau de lavage et, ensuite, on sèche sous vide.
2,5 g de sels de sodium de HY et 0,266 g de phényléphrine base (1,58 mEq) sont ajoutés à une solution d'acide H Y et on agite 35 jusqu'à ce qu'il y ait solubilisation complète. On ajoute alors la solution de néomycine base et, après homogénéisation, on congèle et lyophilise. Rendement 7,35 g.
Une détermination spectrophotométrique par U.V., utilisant la méthode d'addition standard (USP), indique une teneur de 3,57% 40 en poids de phényléphrine base. Une détermination microbiologique quantitative sur B. aureus ATCC 6538p, par comparaison avec une néomycine standard, indique une teneur de 11,64% en poids de néomycine base.
Une détermination colorimétrique de l'acide glucuronique 45 combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et coll. montre une teneur en poids d'acide HY de 82,8% en poids.
Exemple 18
Préparation du sel d'acide hyaluronique (HY) avec la pilocarpine et avec le sodium
98,31 g de sel de sodium HY, d'un poids moléculaire de 170 000, correspondant à 245 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 8,51 d'H20 distillée.
La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 300 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli dans un récipient thermostatique à 5° C.
2,34 g de chlorhydrate de pilocarpine (9,6 mEq) sont solubilisés dans 50 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5" C contenant 15 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa forme OH-.
L'éluat, exempt de chlorures, est recueilli sous agitation dans la solution d'acide HY. On ajoute, lentement, 235,4 ml d'une solution d'hydroxyde de sodium (1M) sous agitation. La solution ainsi obtenue est instantanément congelée et lyophilisée. Rendement 99,8 g.
100 mg de produit contiennent 2 mg de pilocarpine sous sa forme de base.
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Exemple 19
Préparation du sel de l'acide hyaluronique (HY) avec la streptomycine et avec le sodium
98,68 g de sel de sodium HY, d'un poids moléculaire de 255 000, correspondant à 246 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 8,5 1 d'H20 distillée. La solution est alors éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 300 ml de résine sulfonique (Dowex 50 x 8) sous sa forme H+. L'éluat, exempt de sodium, est recueilli, dans un récipient thermostatique à 5° C.
1,88 g de sulfate de streptomycine (7,74 mEq) sont solubilisés dans 20 ml d'H20 distillée. La solution est éluée dans une colonne thermostatique à 5° C contenant 12 ml de résine d'ammonium quaternaire (Dowex 1x8) sous sa forme OH~.
L'éluat, exempt de sulfates, est recueilli sous agitation dans la solution d'acide HY. 238,3 ml d'une solution de NaOH (1M) sont ajoutés, lentement, sous agitation, et la solution qui en résulte est instantanément congelée et lyophilisée. Rendement 99,8 g.
100 g du produit contiennent 1,5 g de streptomycine sous sa forme de base.
Exemple 20
Méthode d'obtention d'un mélange des fractions hyalastine et hyalectine ne présentant pas d'activité inflammatoire
Des crêtes de coqs, fraîches ou congelées (3000 g), sont émincées dans un hachoir à viande et on les homogénéise ensuite, soigneusement, dans un homogénéiseur mécanique. La pâte ainsi obtenue est alors traitée dans un récipient en acier inoxydable (AISI 316) ou en verre, par 10 volumes d'acétone anhydre. On agite alors l'ensemble pendant six heures à une vitesse de 50 tr/min. On laisse la séparation s'opérer pendant douze heures, après quoi on élimine l'acétone par siphonnage. On répète l'extraction à l'acétone jusqu'à ce que l'acétone éliminée atteigne le degré souhaité d'humidité (méthode de Karl-Fischer). L'ensemble est alors centrifugé et séché sous vide à une température convenable pendant cinq à huit heures. On obtient ainsi 500 à 600 g de poudre sèche de crêtes de coqs.
300 g de poudre sèche sont exposés à une digestion enzymatique par la papaïne (0,2 g) dans des conditions aqueuses et on tamponne, avec un tampon à base de phosphate, en présence d'une quantité convenable de chlorhydrate de cystéine.
Le mélange qui en résulte est agité pendant vingt-quatre heures à 60 tr/min, la température étant maintenue à 60 à 65° C. On refroidit alors à 25° C et on ajoute de la Célite® (60 g) en maintenant l'agitation pendant encore une heure. Le mélange ainsi obtenu est filtré jusqu'à ce que l'on obtienne un liquide clair. On fait alors subir au liquide clair une ultrafiltration moléculaire en utilisant des membranes dont la limite d'exclusion de poids moléculaire est de 30000 en vue de retenir, sur la membrane, les molécules dont le poids moléculaire est supérieur à 30 000.
Le produit est ultrafiltré à partir de 5 à 6 volumes initiaux en ajoutant, continuellement, de l'eau distillée au produit pendant le processus d'ultrafiltration. On cesse l'addition d'eau et l'on poursuit l'ultrafiltration jusqu'à ce que le volume soit réduit au tiers du volume initial. Le liquide résiduaire est rendu 0,1M par addition de chlorure de sodium et l'on porte la température à 50° C. Sous agitation à 60 tr/min, on ajoute 45 g de chlorure de cétylpyridine. La solution est agitée pendant soixante minutes et l'on ajoute, ensuite, 50 g de Célite®. Sous agitation, on porte la température de l'ensemble à 25° C et l'on recueille le précipité qui s'est formé par centrifuga-tion. Le précipité obtenu est mis en suspension dans une solution 0,01 M dans du chlorure de sodium (51) contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridinium. La suspension qui en résulte est agitée pendant soixante minutes à 50° C. La température est alors portée à 25° C et l'on centrifuge le précipité. On repète l'opération de lavage trois fois, après quoi on recueille le précipité dans un récipient où se trouvent 3 litres d'une solution 0,05M de chlorure de sodium contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridine. On agite à 60 tr/min pendant soixante minutes et l'on maintient la température constante
à 25° C pendant deux heures. Ce qui surnage est éliminé par centri-fugation. On répète le mode opératoire plusieurs fois avec des solutions de chlorure de sodium 0,1 M contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridinium. On centrifuge le mélange et on rejette ce qui surnage. On disperse le précipité dans une solution de chlorure de sodium 0,30M contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridinium (3 litres). On agite le mélange et l'on recueille, à la fois, le précipité et le liquide clair. On répète l'extraction encore trois fois sur le précipité en utilisant, chaque fois, 0,5 litre de la même solution aqueuse.
Finalement, le résidu qui s'est précipité est éliminé et les liquides clairs sont tous placés ensemble dans un seul récipient. La température du liquide est amenée à 50° C tandis que l'on maintient une agitation constante. On amène le liquide alors à 0,23M avec du chlorure de sodium. On ajoute 1 g de chlorure de cétylpyridinium et le liquide est maintenu sous agitation pendant douze heures. On refroidit le mélange à 25° C et on le filtre ensuite, tout d'abord sur un garnissage de Célite® et ensuite à travers un filtre. On lui fait alors subir une ultrafiltration moléculaire sur une membrane dont la limite d'exclusion de poids moléculaire est de 30 000, en ultrafiltrant 3 volumes initiaux avec addition d'une solution de chlorure de sodium 0,33M. On interrompt l'addition de la solution de chlorure de sodium et le volume est réduit au quart du volume initial. La solution ainsi concentrée est précipitée sous agitation (60 tr/min) à 25° C avec trois volumes d'éthanol (95%). On recueille le précipité par centrifugation et on rejette ce qui surnage. Le précipité est dissous dans un litre d'une solution 0,1M de chlorure de sodium et l'on répète la précipitation avec 3 volumes d'éthanol à 95%. Le précipité est recueilli et on lave tout d'abord avec de l'éthanol (75%) trois fois et, ensuite, avec de l'éthanol absolu (trois fois) et finalement avec de l'acétone absolue (trois fois). Le produit ainsi obtenu (fraction de hyalastine + hyalectine) présente un poids moléculaire moyen compris entre 250000 et 350000. Le rendement en HY est égal à 0,6% en poids du tissu original frais.
Exemple 21
Méthode d'obtention de la fraction hyalastine à partir du mélange obtenu par la méthode décrite dans l'exemple 20
Le mélange obtenu par la méthode décrite dans l'exemple 20 est dissous dans de l'eau bidistillée apyrogène au taux de 10 mg de produit par millilitre d'eau. La solution obtenue est exposée à une filtration moléculaire à travers des membranes filtrantes dont la limite d'exclusion de poids moléculaire est de 200000, ce que l'on fait suivre d'une technique de concentration sur la membrane sans addition d'eau. Pendant le processus d'ultrafiltration à travers les membranes dont la limite d'exclusion de poids moléculaire est de 200 000, les molécules dont le poids moléculaire est supérieur à 200 000 ne passent pas tandis que les molécules plus petites traversent la membrane en même temps que l'eau. Pendant le processus de filtration, on n'ajoute pas d'eau, de telle sorte que le volume diminue et qu'il y a donc une augmentation de la concentration des molécules dont le poids moléculaire est supérieur à 200000. Le produit est ultrafiltré jusqu'à ce que le volume au-dessus de la membrane soit réduit à 10% du volume initial. Deux volumes d'eau apyrogène bidistillée sont ajoutés et la solution est alors ultrafiltrée à nouveau jusqu'à ce que le volume soit réduit au tiers. On répète l'opération encore deux fois supplémentaires. La solution qui a traversé la membrane est portée à 0,1 M avec du chlorure de sodium et on précipite, ensuite, avec 4 volumes d'éthanol à 95%. On lave le précipité trois fois avec de l'éthanol (75%) et on sèche ensuite sous vide.
Le produit ainsi obtenu (fraction hyalastine) a un poids moléculaire entre 50000 et 100000. Le rendement en HY est égal à 0,4% en poids des tissus frais initiaux.
Exemple 22
Méthode d'obtention de la fraction hyalectine
La solution concentrée recueillie dans le récipient au-dessus de la membrane d'ultrafiltration dont le poids d'exclusion moléculaire est de 200 000, comme dans l'exemple 21, est diluée avec de l'eau jusqu'à ce que l'on obtienne une solution contenant 5 mg/ml d'acide
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hyaluronique, comme cela est déterminé par des analyses quantitatives fondées sur le dosage de l'acide glucuronique. On amène la solution à 0,1 M dans une solution de chlorure de sodium aqueux et on précipite ensuite avec 4 volumes d'éthanol à 95%. Le précipité est lavé trois fois avec de l'éthanol à 75% et on sèche ensuite sous vide.
Le produit ainsi obtenu (fraction hyalectine) a un poids moléculaire entre 500 000 et 730 000. Cela correspond à une fraction spécifique d'acide hyaluronique ayant une longueur définie de chaîne moléculaire d'environ 2500 à 3500 motifs saccharides avec un degré de pureté élevé.
Le rendement en HY est égal à 0,2% en poids du tissu frais initial.
Méthode B
L'invention concerne également un nouveau mode opératoire de préparation des sels d'acide hyaluronique en partant du sel de baryum de l'acide hyaluronique. Ce nouveau mode opératoire concerne les seis qui sont solubles dans l'eau et, en particulier, les sels d'acide hyaluronique avec des substances actives dans lesquelles tous les groupes carboxyliques de l'acide hyaluronique peuvent être salifiés ou seulement une partie de ces groupes sont salifiés. Dans les sels partiels, les groupes carboxyliques restants de l'acide hyaluronique peuvent être libres ou salifiés avec d'autres substances actives ou avec des métaux alcalins, du magnésium, de l'aluminium, de l'ammonium ou de l'ammonium substitué.
Le nouveau mode opératoire consiste à préparer une solution aqueuse du sel de baryum d'un acide hyaluronique et à ajouter une solution aqueuse contenant un certain nombre d'équivalents d'acide sulfurique, totalement ou partiellement salifiés par une ou plusieurs bases organiques ou minérales; dans lequel le nombre d'équivalents sulfuriques correspond au nombre d'équivalents acide hyaluronique présents dans la solution aqueuse de sels de baryum. La solution aqueuse de sels d'acide hyaluronique s'obtient par filtration du sulfate de baryum séparé. C'est-à-dire que, par filtration du sulfate de baryum séparé, il est possible d'obtenir la solution aqueuse du sel d'acide hyaluronique à partir duquel le sel, sous sa forme sèche, peut s'obtenir par concentration.
Le sel de baryum de l'acide hyaluronique n'est pas décrit dans la littérature et il s'est avéré, de façon surprenante, être soluble dans l'eau. On peut facilement préparer en traitant le hyaluronate de cétylpyridinium qui n'est pas très soluble avec une solution aqueuse de chlorure de baryum et en précipitant de la solution le hyaluronate de baryum par de l'éthanol ou par un autre solvant convenable. Le hyaluronate de cétylpyridinium est un intermédiaire communément utilisé dans les modes opératoires de préparation d'acide hyaluronique pour séparer et purifier l'acide hyaluronique extrait de divers produits organiques.
La solution aqueuse contenant un certain nombre d'équivalents d'acide sulfurique, totalement ou partiellement salifiés par une ou plusieurs bases organiques, est préparée par dissolution dans l'eau des sulfates neutres ou des bases et, éventuellement, par addition d'acide sulfurique. Si l'on a une solution formée de sulfates neutres d'une ou de plusieurs bases organiques ou minérales, contenant un nombre d'équivalents sulfuriques correspondant au nombre d'équivalents d'acide hyaluronique présents dans la solution aqueuse de sels de baryum, le résultat final sera un sel stœchiométriquement neutre d'acide hyaluronique avec les bases présentes dans la solution aqueuse correspondante (sulfates). Si l'on souhaite un sel stœchiométriquement partiel ou un sel d'acide hyaluronique, il faut ajouter de l'acide sulfurique à la solution aqueuse de sulfates ou l'on doit utiliser des sulfates acides basiques.
La méthode B, selon l'invention, est illustrée par les exemples suivantes:
Exemple 23
Méthode d'obtention d'un mélange de fractions de hyalastine et hyalectine sous forme de sels de baryum et ne présentant aucune activité inflammatoire
Des crêtes de coqs, fraîches ou congelées (3000 g), sont émincées dans un hachoir à viande et on les homogénéise ensuite, soigneusement, dans un homogénéiseur mécanique, La pâte ainsi obtenue est alors traitée dans un récipient en acier inoxydable (AISI 316) ou en verre, par 10 volumes d'acétone anhydre. On agite alors l'ensemble pendant six heures à une vitesse de 50 tr/min. On laisse la séparation s'opérer pendant onze heures, après quoi on élimine l'acétone par siphonnage. On répète l'extraction à l'acétone jusqu'à ce que l'acétone éliminée atteigne le degré souhaité d'humidité (méthode de Karl-Fischer). L'ensemble est alors centrifugé et séché sous vide à une température convenable pendant cinq à huit heures. On obtient ainsi 500 à 600 g de poudre sèche de crêtes de coqs.
300 g de poudre sèche sont exposés à une digestion enzymatique par la papaïne (0,2 g) dans des conditions aqueuses et on tamponne, avec un tampon à base de phosphate, en présence d'une quantité convenable de chlorhydrate de cystéine. On agite pendant vingt-quatre heures le produit qui en résulte à une vitesse de 60 tr/min, la température étant maintenue à 60 à 65° C. On refroidit alors à 25° C et on ajoute de la Célite - (60 g) en maintenant l'agitation pendant encore une heure. Le mélange ainsi obtenu est filtré jusqu'à ce que l'on obtienne un liquide clair. On fait alors subir au liquide clair une ultrafiltration moléculaire en utilisant des membranes dont la limite d'exclusion de poids moléculaire est de 30 000. Entre 5 et 6 volumes initiaux du produit sont ultrafiltrés en ajoutant, continuellement, de l'eau distillée au produit pendant le processus d'ultra-filtration jusqu'à ce que le volume ait été réduit au tiers du volume initial.
Le liquide résiduaire est rendu 0,1 M par addition de chlorure de baryum et l'on porte la température à 50° C. Sous agitation à 60 tr/min, on ajoute 45 g de chlorure de cétylpyridinium. La solution est agitée pendant soixante minutes et l'on ajoute, ensuite, 50 g de Célite®. Sous agitation, on porte la température de l'ensemble à 25° C et l'on recueille le précipité qui s'est formé par centrifugation. Le précipité obtenu est mis en suspension dans une solution 0,01 M dans du chlorure de baryum (5 1) contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridinium. La suspension qui en résulte est agitée pendant soixante minutes à 50° C. La température est alors portée à 25° C et l'on centrifuge le précipité. On répète l'opération de lavage trois fois, après quoi on recueille le précipité dans un récipient où se trouvent 3 litres d'une solution 0,05M de chlorure de baryum contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridinium. La suspension qui en résulte est agitée à 60 tr/min pendant soixante minutes et l'on maintient la température constante à 25° C pendant deux heures. Ce qui surnage en clair est éliminé par centrifugation.
On répète le mode opératoire plusieurs fois avec une solution de chlorure de baryum 0,1 M contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridinium. On centrifuge le mélange et on rejette ce qui surnage. On disperse le précipité dans une solution de chlorure de baryum 0,30M contenant 0,05% de chlorure de cétylpyridinium (3 litres). On agite le mélange et l'on recueille, à la fois, le précipité et le liquide clair. On répète l'extraction encore trois fois sur le précipité en utilisant, chaque fois, 0,5 litre de la même solution aqueuse. Finalement, le résidu précipité est éliminé et les liquides clairs sont rassemblés dans un récipient. La température du liquide est portée à 50° C tandis que l'on maintient une agitation constante. On porte alors le liquide à 0,23M avec du chlorure de baryum. On ajoute 1 g de chlorure de cétylpyridinium et le liquide est maintenu sous agitation pendant douze heures. On refroidit le mélange à 25° C et on le filtre, tout d'abord en présence de Célite ® et ensuite à travers un filtre. On lui fait alors subir une ultrafiltration moléculaire une fois de plus sur les membranes dont la limite d'exclusion de poids moléculaire est de 30 000, en ultrafiltrant 3 volumes initiaux avec addition d'une solution de chlorure de baryum 0,33M. On interrompt l'addition de la solution de chlorure de baryum et le volume est réduit au quart du volume initial. La solution ainsi concentrée est précipitée sous agitation (60 tr/min) à 25" C avec trois volumes d'éthanol (95%). On recueille le précipité par centrifugation et on rejette ce qui surnage. Le précipité est dissous dans un litre d'une solution 0,1 M de chlorure de baryum et l'on répète la précipitation avec 3 volumes d'éthanol à 95%.
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Le précipité est recueilli et on lave tout d'abord avec de l'éthanol (75%) trois fois, ensuite avec de l'éthanol absolu (trois fois) et finalement avec de l'acétone absolue (trois fois). Le produit ainsi obtenu (fraction de hyalastine + hyalectine) présente un poids moléculaire moyen compris entre 250 000 et 350 000. Le rendement en H Y est égal à 0,6% en poids du tissu original frais.
Exemple 24
Méthode d'obtention de la fraction hyalastine sous la forme de sel de baryum du mélange obtenu par la méthode décrite dans l'exemple 30 Le mélange obtenu par la méthode décrite dans l'exemple 23 est dissous dans de l'eau distillée apyrogène, à concurrence de 10 mg de produit pour 1 ml d'eau. La solution ainsi obtenue est soumise à une filtration moléculaire à travers une membrane dont la ligne d'exclusion moléculaire est de 200 000, et on met ensuite en œuvre une technique de concentration sans addition d'eau au-dessus de la membrane. Pendant le processus d'ultrafiltration à travers des membranes dont la limite d'exclusion moléculaire est de 200 000, les molécules avec un poids moléculaire de plus de 200 000 sont retenues tandis que les plus petites molécules traversent la membrane en même temps que l'eau. Pendant le processus de filtration, on n'ajoute pas d'eau au-dessus de la membrane de telle sorte que le volume diminue; par conséquent, il y a augmentation de la concentration des molécules dont le poids moléculaire est supérieur à 200 000. On maintient l'ultrafiltration jusqu'à ce que le volume au-dessus de la membrane soit réduit à 10% du volume initial. On ajoute deux volumes d'eau distillée apyrogène et l'ensemble est ultrafiltré jusqu'à ce que le volume soit réduit au tiers. On répète l'opération deux fois de plus. La solution qui traverse la membrane est portée à 0,1 M avec du chlorure de baryum et on la précipite ensuite avec quatre volumes d'éthanol à 95%. Le précipité est lavé trois fois avec de l'éthanol à 75% et on le sèche ensuite sous vide. Le produit ainsi obtenu (fraction hyalastine) présente un poids moléculaire moyen entre 50 000 et 100 000. Le rendement en H Y est égal à 0,4% du tissu de départ frais.
Exemple 25
Méthode d'obtention de la fraction hyalectine sous forme de sel de baryum
La solution concentrée est recueillie dans le réceptacle au-dessus de la membrane de filtration dont la limite d'exclusion est de 200 000 comme dans l'exemple 24 et diluée avec de l'eau jusqu'à ce que l'on obtienne une solution contenant 5 mg/ml d'acide hyaluronique, cela étant déterminé par une analyse quantitative fondée sur le dosage de l'acide glucuronique. La solution est amenée à 0,1M dans du chlorure de baryum et on précipite ensuite avec 4 volumes d'éthanol à 95%. On lave le précipité trois fois avec de l'éthanol à 75% et on sèche ensuite sous vide. Le produit ainsi obtenu (fraction hyalastine) présente un poids moléculaire moyen entre 500 000 et 730 000. Le rendement en HY est égal à 0,2% du tissu de départ frais.
Exemple 26
Préparation du sel d'un acide hyaluronique (HY) avec la streptomycine
4,47 g du sel de baryum (10 mEq) sont solubilisés dans 300 ml d'H20 distillée.
2,43 g de sulfate de streptomycine (10 mEq) sont solubilisés dans 100 ml d'H20 distillée et on les ajoute ensuite, goutte à goutte, sous agitation, à la solution du sel de HY. On centrifuge le mélange pendant trente minutes à 6000 tr/min. On sépare la solution, on lave le précipité deux fois avec 25 ml d'H20 distillée. La solution et les eaux de lavage sont rassemblées et ensuite congelées. Dans le sel ainsi obtenu, tous les groupes acides de l'acide hyaluronique sont salifiés par les fonctions basiques de la streptomycine. Rendement 5,5 g.
Une détermination microbiologique sur B. subtilis ATCC 6633, par comparaison avec une streptomycine standard, indique une teneur de 33,8% en poids de streptomycine basique, ce qui correspond au poids théorique calculé. Une détermination de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et al. (Anal. Biochem., 4, 330, 1962) indique une teneur de 66,2% en poids d'acide HY (pourcentage théorique 66,0%).
Exemple 27
Préparation du sel d'un acide hyaluronique (HY) avec la naphazoline
4,47 g du sel de baryum de HY, dont le poids moléculaire est de 625 000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée.
2,6 g de sulfate neutre de naphazoline (10 mEq de sulfate) sont solubilisés dans 50 ml d'eau distillée et ajoutés à la solution de sel de baryum du H Y. On agite le mélange à 5° C jusqu'à ce que le sulfate de baryum soit complètement précipité. Après centrifugation, la solution qui en résulte est congelée et instantanément lyophilisée. Rendement 5,72 g.
Dans le sel ainsi obtenu, tous les groupes acides de l'acide hyaluronique sont salifiés par la naphazoline. Une détermination spectrophotométrique comparative, par comparaison avec une naphazoline standard (USP), indique une teneur de 35,7% en poids de naphazoline basique, ce qui correspond à la valeur théorique calculée.
Une détermination colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et al. (Anal. Biochem., 4, 330, 1962) indique une teneur de 64,3% en poids d'acide HY.
Exemple 28
Préparation du sel partiel d'un acide hyaluronique ( HY) avec la naphazoline
4,47 g du sel de baryum de HY, dont le poids moléculaire est de 625000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée.
1,54 g de sulfate acide de naphazoline (10 mEq de sulfate) sont solubilisés dans 500 ml d'eau bidistillêe et ajoutés à la solution de sel de baryum du H Y. On agite le mélange à 5° C jusqu'à ce que le sulfate de baryum soit complètement précipité. Après centrifugation, la solution qui en résulte est instantanément congelée et lyophilisée. Rendement 4,5 g.
Dans le sel ainsi obtenu, 50% des groupes acides de l'acide hyaluronique sont salifiés par la naphazoline et 50% sont libres. Une détermination spectrophotométrique, par comparaison avec une naphazoline standard (USP), indique une teneur en poids de naphazoline basique qui correspond à la valeur théorique calculée.
Exemple 29
Préparation du sel d'un acide hyaluronique (HY) avec la phényléphrine
2,16 g de sulfate neutre de L-phényléphrine (10 mEq) sont solubilisés dans 25 ml d'H20 distillée.
4,47 g du sel de baryum de HY, dont le poids moléculaire est de 820000, correspondant à 10 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée et ajoutés à la solution de sulfate de phényléphrine. On agite le mélange jusqu'à précipitation complète du sulfate de baryum. Après centrifugation, la solution qui en résulte est congelée et lyophilisée. Dans le sel ainsi obtenu, tous les groupes acides de l'acide hyaluronique sont salifiés par la phényléphrine.
Une détermination spectrophotométrique U.V., effectuée par la méthode d'addition standard (USP), indique une teneur de 30,6% de phényléphrine basique, ce qui correspond à la valeur théorique calculée.
Une détermination colorimétrique de l'acide glucuronique combiné dans le Polysaccharide selon la méthode de Bitter et al. (Anal. Biochem., 4, 330, 1962) indique une teneur de 69,4% en poids d'acide HY.
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Exemple 30
Préparation du sei mixte d'un acide hyaluronique (HY) avec la néomycine, avec la phényléphrine et le sodium
7,15 g de sel de baryum de H Y, dont le poids moléculaire est de 65 000, correspondant à 16 mEq d'une unité monomère, sont solubilisés dans 400 ml d'H20 distillée.
1,28 g de sulfate de néomycine (8,42 mEq) est solubilisé dans 150 ml d'HzO distillée. 0,34 g de sulfate neutre de phényléphrine (1,58 mEq) et 0,43 g de Na2S04 (6 mEq) sont ajoutés à la solution. La solution qui en résulte est ajoutée à la solution de sel de baryum deHY et, après précipitation complète du sulfate de baryum, on centrifuge le mélange. Le sulfate de baryum est séparé et la solution est congelée et lyophilisée. Rendement 7,35 g.
Etudes pharmacologiques
L'effet technique des nouveaux médicaments selon la présente invention peut se démontrer, in vivo, par des expériences sur l'œil de lapin; ces expériences démontrent la supériorité du médicament selon l'invention par rapport à l'utilisation du composant (1) administré de façon classique. A titre d'exemple, sont rapportées ci-après les expériences effectuées avec des sels d'acide hyaluronique des antibiotiques suivants: streptomycine, éryhtromycine, néomycine, gentamycine. Il s'agit des sels totaux dans lesquels tous les groupes acides de l'acide hyaluronique sont salifiés par un groupe basique de l'antibiotique et qui sont décrits dans les exemples 1, 2, 4 et 5. On utilise des solutions de ces sels dans l'eau distillée dont les concentrations conviennent à la teneur en antibiotique de la façon suivante:
— acide hyaluronique + streptomycine (HYA1) 33,8%
— acide hyaluronique + érythromycine (HYA2) 66,0%
Les valeurs sont exprimées en pourcentage (nombre d'yeux dont les inflammations ont été soulagées par rapport au nombre total d'yeux traités). Est indiqué entre parenthèses le nombre d'yeux traités.
* injection de Pseudomonas aeruginosa ** injection de Staphylococcus aureus *** injection de Salmonella typhi
L'effet technique des médicaments selon la présente invention est encore démontré par les autres expériences suivantes qui concernent l'action myotique, anti-inflammatoire, cicatrisante et antimicrobienne.
I. Activité myotique du nitrate de pilocarpine véhiculé par l'acide hyaluronique
Matériaux
On utilise les matériaux suivants comme excipients de la pilocarpine dans les diverses formulations de nitrate de pilocarpine:
— acide hyaluronique + néomycine (HYA4) 21,2%
— acide hyaluronique + gentamycine (HYA5) 20,0% L'activité de ces antibiotiques est comparée à celles données par les mêmes antibiotiques dissous dans un tampon à base de phos-5 phate et présentant les mêmes concentrations en antibiotiques. L'activité des deux groupes de produits est mesurée sur la base du temps nécessaire pour supprimer une inflammation sèche de l'œil de lapin induite par un agent bactérien. Plus précisément, l'inflammation sèche est provoquée dans les deux yeux de vingt-quatre lapins par io injection intra-oculaire d'une suspension titrée de l'un des groupes bactériens suivants: Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Salmonella typhi (0,1 ml).
Les divers dérivés salins des antibiotiques sont administrés (3 gouttes toutes les six heures) dans l'œil droit (RE) des lapins, 15 tandis que dans l'œil gauche (LE) on instille les quantités correspondantes des antibiotiques dissous dans le tampon à base de phosphate. On commence le traitement immédiatement après injection de la suspension bactérienne et on la poursuit jusqu'à ce que l'inflammation disparaisse. On observe les deux yeux de chaque lapin avec 20 une lampe à fente. On examine, en particulier, ce qui suit: l'état de la conjonctive et de l'épithélium cornéen, de la chambre antérieure (présence de l'effet Tyndall) et l'état de l'iris du segment postérieur de l'œil. L'état de l'arrière de l'œil est examiné avec une lentille de Goldman. La présence de signes d'inflammation (hypérémie, exsu-25 dats, troubles des liquides, etc.) est enregistrée. Le pourcentage des yeux qui ne présentent aucun signe d'inflammation est alors calculé. Les résultats des expériences sont reportés dans le tableau 1 grâce auquel on peut observer que l'administration de dérivés salins selon la présente invention est suivie d'une guérison plus rapide de l'in-30 flammation par comparaison avec le cas de l'administration des antibiotiques correspondants non salifiés par l'acide hyaluronique.
— sel de sodium d'acide hyaluronique, fraction hyalastine (poids moléculaire d'environ 100000), à des concentrations de 10 mg/ml et 20 mg/ml;
— sel de sodium d'acide hyaluronique, fraction hyalectine 55 (poids moléculaire 500 000 à 730 000), à des concentrations de
10 mg/ml et 20 mg/ml;
— alcool polyvinylique à 5% comme excipient ophtalmique témoin.
Diverses formulations à 2% (collyre ou gel) de nitrate de pilocar-60 pine sont préparées et véhiculées par addition des deux différentes fractions de sel de sodium de H Y à des concentrations de 10 et 20 mg/ml. On prépare les solutions suivantes:
Formulation 1: solution saline avec nitrate de pilocarpine (PîN03) (2%) utilisée comme référence.
65 Formulation 2: solution de (PiN03) (2%) véhiculée dans de l'alcool polyvinylique à 5% et utilisée comme référence.
Formulation 3: solution de (PiNOs) (2%) véhiculée dans des fractions de sel de sodium de hyalastine (10 mg/ml).
Tableau 1
Effets de l'administration des dérivés HYA sur la guérison de l'inflammation sèche de l'œil du lapin
Traitement
Nombre de jours à partir de l'inflammation
1
2
3
4
5
6
7
8
streptomycine (6)*
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
16,6
50,0
100,0
HYA1 (6)*
0,0
0,0
16,6
16,6
50,0
100,0
100,0
100,0
érythromycine (6)**
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
16,6
33,3
HYA2 (6)**
0,0
0,0
0,0
0,0
16,6
16,6
33,3
50,0
néomycine (6)***
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
16,6
33,3
H Y A4 (6)***
0,0
0,0
0,0
0,0
16,6
16,6
33,3
50,0
gentamycine (6)*
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
33,3
50,0
100,0
HYA5 (6)*
0,0
0,0
0,0
16,6
33,3
50,0
100,0
100,0
15
672 886
Formulation 4: solution de (PiN03) (2%) véhiculée dans le sel de sodium de la fraction hyalastine (20 mg/ml).
Formulation 5: solution de (PiN03) (2%) véhiculée dans le sel de sodium de la fraction hyalectine (10 mg/ml).
Formulation 6: solution de (PiN03) (2%) véhiculée dans le sel de 5 sodium de la fraction hyalectine (20 mg/ml).
Méthode
Des lapins albinos de Nouvelle-Zélande sont utilisés (2 à 2,5 kg). La formulation à tester est instillée dans un œil de chaque lapin avec 10 une microseringue (10 mcl). L'autre œil est utilisé à titre de référence. On mesure le diamètre de la pupille dans tous les cas à des intervalles de temps convenables. On teste chaque solution sur au moins huit lapins. Chaque œii n'est pas traité plus de trois fois et l'on observe une période de repos d'au moins une semaine entre 15 chaque traitement.
Paramètres
On relève les mesures des diamètres des pupilles à divers intervalles de temps pour mesurer la courbe d'activité myotique en fonction du temps. Les paramètres d'activité suivants sont alors calculés par des courbes myosis/temps:
— I max = différence maximum de diamètre de la pupille entre l'œil traité et l'œil de référence;
— temps du pic maximum = temps nécessaire pour atteindre Je 25 I max;
— durée = temps nécessaire pour revenir aux conditions de base;
— plateau = période d'activité myotique absolue;
— AUC = surface en dessous de la courbe myosis/temps.
Résultats
Les résultats de l'étude sont reportés sur le tableau 2. Il est possible de voir, à partir de données des différents paramètres déterminés par la courbe de temps de l'activité myotique pour toutes les solutions étudiées, que l'addition d'acide hyaluronique à 2% de solutions de nitrate de pilocarpine occasionne une augmentation de l'activité myotique du médicament. Il est certain que la disponibilité biologique du médicament peut être 2,7 fois plus importante que celle de la solution aqueuse contenant du nitrate de pilocarpine à 2% (formulation 1).
Il est également important de noter qu'il y a une augmentation statistique significative de l'activité lorsque la fraction hyalectine de l'acide hyaluronique est utilisée comme véhicule à la fois des formulations à 10 et 20 mg/ml (formulations 5, 6) par comparaison aux solutions de nitrate de pilocarpine véhiculées dans l'alcool polyvinylique (formulation 2). L'utilisation d'acide hyaluronique comme véhicule est particulièrement intéressante parce que l'activité myotique du nitrate de pilocarpine dure plus longtemps lorsqu'elle est véhiculée avec cette substance. C'est-à-dire que pour les formulations contenant de l'acide hyaluronique, le temps nécessaire pour que le diamètre de la pupille revienne aux conditions de base est de plus de 190 minutes (formulation 6) par comparaison avec les 110 minutes nécessaires pour la pilocarpine en solution saline seule (formulation 1).
Tableau 2
Activité biologique des formulations ophtalmiques contenant 2% de nitrate de pilocarpine véhiculées par de l'acide hyaluronique
Formulation N°
Véhicule
Imax, mm
(+LF 95%)
Temps de pic maximum en min
Durée en min
Plateau en min
AUC, cm2 (±LF95%)
AUC relative
1
solution saline
1,93 ±0,35
20
110
—
117+28
1
2
alcool polyvin. à 5%
2,33+0,28
20
140
—
192 + 32
1,64
3
hyalastine (10 mg/ml)
2,50 + 0,42
20
120
—
240+40
2,05
4
hyalastine (20 mg/ml)
2,58+0,38
30
150
208 ±41
1,78
5
hyalectine (10 mg/ml)
2,50+0,38
15
170
—
242 + 48
2,06
6
hyalectine (20 mg/ml)
2,70+0,38
20
190
45
320 ±45
2,73
Les valeurs reportées représentent la valeur moyenne de huit essais.
II. Activité myotique de la pilocarpine salifiée par l'acide hyaluronique Matériaux
Pour les diverses formulations de pilocarpine salifiée, on utilise les produits suivants:
— acide hyaluronique de faible poids moléculaire (hyalastine poids moléculaire 100000) (HYj);
— sel de sodium d'acide hyaluronique de poids moléculaire élevé (hyalectine poids moléculaire entre 500 000 et 730 000) (HY2-Na) à des concentrations de 10 mg/ml et 20 mg/ml;
— alcool polyvinylique à 5% comme véhicule ophtalmique pour obtenir des formulations comparatives.
Les diverses formulations préparées sont les suivantes:
1. solution saline avec 2% de nitrate de pilocarpine (PiN03) (utilisée comme référence);
2. solution à 2% de PiN03 véhiculée par de l'alcool polyvinylique à 5% (utilisée comme référence);
3. solution pilocarpine base/acide HYj en solution aqueuse. La teneur en pilocarpine base correspond à 2%;
4. solution contenant sel de pilocarpine/acide HYi, véhiculée par HY2-Na, 10 mg/ml. La teneur en pilocarpine base correspond à 2%;
5. solution contenant du sel de pilocarpine/acide HYj, véhiculée par HY2-Na, 20 mg/ml. La teneur en pilocarpine base correspond à
so 2%;
6. inserts de HY2-Na contenant du sel de pilocarpine base avec l'acide hyaluronique (HYt). La pilocarpine base correspond à 6,25%.
55 Méthode
Des lapins albinos de Nouvelle-Zélande sont utilisés (2 à 2,5 kg). La solution à tester est instillée dans un œil de chaque lapin avec une microseringue (10 jj.1). L'autre œil est utilisé à titre de référence. L'insert est placé dans le sac conjonctif au moyen de pinces convena-
60 bles. Dans tous les cas, on mesure le diamètre de la pupille à des intervalles de temps convenables. On teste chaque solution sur au moins huit lapins. Chaque œil n'est pas traité plus de 3 fois et l'on observe une période de repos d'au moins une semaine entre chaque traitement.
65
Paramètres
On relève des mesures des diamètres des pupilles à divers intervalles de temps pour mesurer la courbe d'activité myotique en fonc
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16
tion du temps et l'on effectue les calculs suivants à partir des courbes myosis/temps des paramètres d'activité suivants:
— I max = différence maximum de diamètre de la pupille entre l'œil traité et l'œil de référence;
— temps de pic = temps nécessaire pour atteindre le I max;
— durée = temps nécessaire pour revenir aux conditions de base;
— plateau = période d'activité myotique absolue;
— AUC = surface en dessous de la courbe myosis/temps.
Résultats
Comme on peut le voir d'après le tableau 3, sur lequel sont reportées, pour chaque solution testée, les valeurs des divers paramètres enregistrés à partir de l'activité myotique en fonction du temps, il est possible de montrer comment la salification par l'acide hyalu-
III. Stabilité desfilms cornéens de l'acide hyaluronique et des dérivés de pilocarpine
Le but des expériences est d'évaluer les propriétés adhésives et filmogènes des dérivés de salification entre la pilocarpine et l'acide hyaluronique à la suite de l'application sur la cornée des animaux.
Méthode
Le test consiste à évaluer, visuellement, la formation, la stabilité et la durée du film formé par les formulations sur la cornée. A cette fin, on ajoute de la fluorescëine de sodium aux préparations ophtalmiques (0,1 %) et on examine l'œil après instillation à la lumière U.V. de 366 nm.
On utilise douze lapins albinos dans chacun des deux sexes (Nouvelle-Zélande, 2 à 2,5 kg). Une goutte (50 (il) de chaque véhicule est instillée dans un œil de chaque lapin et on garde l'autre œil à titre de contrôle.
Solutions utilisées
1. Solution saline avec 2% de nitrate de pilocarpine (PiN03);
2. solution à 2% de PiN03 épaissie avec de l'alcool polyvinylique à 5% (Wacker Chemie, PVA W 48/20);
3. solution contenant du sel de pilocarpine base/acide HYj. La teneur en pilocarpine base correspond à 2% ;
4. solution contenant du sel de pilocarpine base/acide H Y l5 véhiculée par HY2-Na, 10 mg/ml. La teneur en pilocarpine base correspond à 2% ;
5. solution contenant du sel de pilocarpine/acide HY,, véhiculée par HY2-Na, 20 mg/ml. La teneur en pilocarpine base correspond à 2%.
Toutes ces solutions contiennent 0,1% de fluorescéine de Na. Dans tous les cas, le pH de ces solutions est voisin de 5,8.
Résultats
Les paramètres relatifs à la fluorescence:
(a) durée du film cornéen intégral;
(b) durée de la fluorescence (temps nécessaire à ce que la fluorescence disparaisse totalement de l'œil);
ronique de la pilocarpine à 2% occasionne une augmentation d'activité myotique du médicament dont l'activité peut atteindre environ 2 fois celle présentée par une solution aqueuse à 2% de nitrate de pilocarpine (formule 1).
s Une augmentation statistique significative d'activité doit également être notée lorsque l'on utilise de l'acide hyaluronique à poids moléculaire élevé comme véhicule, à la fois pour des formulations à 10 et à 20 mg/ml (formulations 4 et 5).
La salification avec l'acide hyaluronique est particulièrement in-J0 téressante également en relation avec la durée plus importante d'activité myotique de la pilocarpine lorsqu'on la véhicule dans ces formulations: le temps pris pour revenir au diamètre normal de la pupille, dans des conditions de base, atteint des valeurs de 160 minutes (formulation 3) par comparaison avec les 110 minutes iî pour la pilocarpine (formulation 1).
(c) présence de fluorescence dans le nez (temps pris par la solution après son application pour apparaître au niveau du nez);
sont indiqués sur le tableau 4.
35 Les dérivés d'acide hyaluronique avec la pilocarpine produisent un film cornéen stable pendant des périodes de plus de deux heures. La pénétration transcornéenne de la pilocarpine semble donc dépendre de la capacité de l'acide hyaluronique à véhiculer le médicament formant un film stable et homogène sur la cornée.
40
Tableau 4
45
50
IV. Activité anti-inflammatoire de la triamcinolone véhiculée par l'acide hyaluronique 55 Matériaux
On utilise ce qui suit:
— solution de sel de sodium d'acide hyaluronique/hyalectine (poids moléculaire entre 500 000 et 730000, 10 mg/ml dans une solu-
60 tion saline);
— solution de phosphate de triamcinolone (10% dans une solution saline).
Méthode
65 On effectue les expériences sur des lapins mâles de Nouvelle-Zélande (poids moyen 1,6 kg). Après une période d'adaptation de cinq jours, on provoque une inflammation intra-oculaire chez les animaux par injection de dextrane (10%, 0,1 ml) dans la chambre
Tableau 3
Paramètres d'activité biologique des véhicules ophtalmiques de l'acide hyaluronique
Formulation N°
Imax, mm (±LF 95%)
Temps de pic en min
Durée en min
Plateau en min
AUC, cm2 (± LF 95%)
AUC relative
1
1,93 ±0,35
20
110
—
117±28
1,00
2
2,33 ±0,28
20
140
—
192±32
1,64
3
2,25 ±0,28
20
160
20
212+32
1,81
4
2,70 ±0,43
30
180
40
280 ±48
2,39
5
2,80 ±0,20
15
200
45
361 ±40
3,08
6
3,70±0,30
40
230
—
442 ±70
3,78
Durée du film
Durée de la
Apparition de la
Solution intégral fluorescence fluorescence dans
en min en min le nez en min
1
30
100
2-3
2
80
150
10-15
3
100
150
5
4
120
180
15-20
5
140
210
50
17
672 886
antérieure. L'administration est effectuée à la fois dans deux yeux,
dans des conditions d'anesthésie locale par de la Novésine à 4%, en insérant l'aiguille de la seringue au bord de la cornée dans la chambre antérieure à une distance de 2 mm.
On effectue le test sur dix animaux. s
Traitement
Le traitement est effectué sur chaque animal à la fois dans l'œil droit et dans l'œil gauche par instillation de trois gouttes, 3 fois par jour, pendant un total de six jours, de respectivement: 10
— une solution de phosphate de triamcinolone (10% dans une solution saline) dans l'œil gauche (LE);
— une solution du sel de sodium d'acide hyaluronique fraction hyalectine (10 mg/ml) + phosphate de triamcinolone (10%) dans I5 l'œil droit (RE).
Paramètres
L'effet anti-inflammatoire sur la réaction provoquée par le dextrane est évaluée par observation de l'œil à travers une lampe à fente dans les intervalles suivants: 0 h, 1 h, 3 h, 24 h, 48 h, 3 jours, 4 jours, 5 jours, 6 jours.
A ces intervalles, on observe ce qui suit:
— état de la conjonctive et de la cornée, présence possible d'hy-pérémie, d'œdème, et en particulier dans l'iris, normalement sensible 25 à des processus inflammatoires après injection d'agents inflammatoires dans la chambre antérieure;
— effet Tyndall, dans lequel, la présence d'une opacité d'intensité variable («nubècola») est indicative de la présence d'éléments corpusculaires (inflammatoires) dans la chambre antérieure.
Les résultats des observations sont reportés, selon une estimation subjective, entre 0 et 3, en relation avec l'effet observé.
Résultats
Comme on peut le voir d'après le tableau 5, il s'avère que l'administration de triamcinolone présente un effet anti-inflammatoire sur l'iris et occasionne la disparition de l'opacité (effet Tyndall) dans la chambre antérieure. Le processus inflammatoire, évident de la première à la troisième heure, jusque trois à quatre jours, disparaît progressivement et on revient à des valeurs presque normales avec une clarté parfaite de l'œil vers le sixième jour. D'autre part, l'administration de la fraction hyalectine du sel de sodium d'acide hyaluronique, associée à celle de phosphate de triamcinolone, réduit l'inflammation intra-oculaire observée aux moments mentionnés ci-dessus, par comparaison avec l'administration de phosphate de triamcinolone seule. C'est-à-dire que le processus inflammatoire dans l'iris et l'opacité dans la chambre antérieure s'avèrent être plus faibles juste vingt-quatre heures après, avec une réduction progressive à quaran-te-huit heures et une absence totale de réaction inflammatoire à partir du quatrième jour.
Dans la conjonctive et la cornée, on n'observe fondamentalement pas de réaction inflammatoire notable à la suite de l'injection de dextrane dans la chambre antérieure. Ainsi, l'administration de phosphate de triamcinolone en même temps que d'une fraction d'acide hyaluronique conduit à une augmentation de l'activité du médicament que démontre la décongestion plus rapide de l'œil du lapin.
Tableau 5
Effet de l'association de l'acide hyaluronique et du phosphate de triamcinolone sur l'inflammation intra-oculaire provoquée par le dextrane
Moments d'observation
Oh lh
3 h
24 h
48 h
3 j
4j
5j
6j conjonctive:
.LE
.RE
O o o o
0,2 0,0
O O
O o
© © © ©
© © © ©
© © © ©
© © © ©
© © © ©
© © © O
cornée:
.LE
.RE
0,0 0,0
1,0 0,2
0,0 0,7
© © ©
© © © ©
© © O ©
© © © ©
° © O
p p © ©
effet Tyndall:
.LE
.RE
O o o ©
1,0 0,2
y3
o ©
3.0
2.1
3,0 1,2
3,0 0,2
2,2 0,0
1,2 0,0
0,4 0,0
ins:
.LE
.RE
|p o o o
0,5 0,7
2,7 2,7
3,0 2,5
3,0 1,2
3,0 0,4
2,4 0,0
1,5 0,0
0,5 0,0
LE = œil gauche traité au phosphate de triamcinolone
RE = œil droit traité au phosphate de triamcinolone et par la hyalectine
(Chaque valeur est la moyenne de sept observations sur un total de sept animaux et on l'exprime en termes de notation subjective de 0 à 3, en relation avec la progressivité de l'effet observé.)
V. Activité de guérison de l'EGF véhiculé par l'acide hyaluronique Matériaux
On utilise les matériaux suivants:
formulation A : EGF (facteur de croissance épidermique) dissous dans une solution saline (0,5 mg/5 ml);
formulation B: sel de sodium d'acide hyaluronique fraction hyalastine (poids moléculaire 100000) dissous dans une solution saline (10 mg/ml).
Méthode
Les expériences sont effectuées sur des lapins albinos mâles de Nouvelle- Zélande (poids moyen 1,8 kg). Les animaux, après une période d'adaptation d'environ cinq jours, subissent une lésion de l'épithélium de la cornée dans les conditions convenables d'anesthésie locale par la Novésine (4%).
La lésion est constituée d'une scarification monoculaire d'une surface circulaire dans la zone optique, effectuée en utilisant un cylindre de verre concave (0,3 mm) à bord aiguisé.
672 886
18
Traitement
Les animaux sont subdivisés en groupes, chaque groupe contenant cinq animaux, et ils subissent, ensuite, un traitement pharma-cologique par instillation conjonctive comme indiqué ci-dessous:
Paramètres
La guérison de l'épithélium cornéen est évaluée par observation de l'œil et documentation photographique avec une lampe à fente, à divers intervalles, après scarification: 0 h, 8 h, 16 h, 24 h, 32 h, 40 h, 5 48 h.
Résultats
L'examen ophtalmique 1, indiqué sur le tableau 4, montre que, dans les groupes de contrôle (groupe 1), il y a guérison complète (5/5 animaux) quarante-huit heures après la lésion. Chez les animaux traités à l'EGF (groupe 2), le processus est apparent déjà vingt-quatre heures après scarification avec une efficacité notable (4/5 animaux). Chez les animaux traités avec une formulation C composée de sels de sodium d'acide hyaluronique, fraction hyalastine + EGF (groupe 3), le processus de guérison est complet chez tous les animaux déjà seize heures après scarification.
Ces résultats montrent que l'utilisation de la fraction hyalastine de l'acide hyaluronique comme véhicule pour l'EGF favorise le processus de guérison, et encourage une guérison plus rapide et plus efficace des lésions cornéennes.
Tableau 6
Guérison des lésions de l'épithélium cornéen
Groupe
Traitement
. groupe 1 (contrôle) .
solution saline
. groupe 2
solution EGF (formulation A)
. groupe 3
solution de sel de sodium fraction hya
lastine + solution de EGF — combi
naison de formulation A + formula
tion B dans lerapport 1/1 pourpréparer
la formulation C.
Le traitement est effectué dans l'œil droit par instillation conjonctive de deux gouttes toutes les huit heures pendant un total de trois administrations. 20
Groupe
Traitement
Temps après scarification (en h)
0
8
16
24
48
1
solution saline
+
+
+
+
—
+
+
+
+
-
+
+
+
+
-
+
+
+
+
-
+
+
+
+
-
2
EGF
+
+
+
—
—
(formulation A)
+
+
+
-
-
+
+
+
—
—
+
+
+
+
-
+
+
+
-
—
3
sel de sodium d'acide
+
+
—
—
—
hyaluronique
+
+
-
-
-
+ EGF
+
+
—
—
—
(formulation C)
+
+
-
-
-
+
+
-
-
—
+ = œil non guéri — = œil guéri
VI. Activité antimicrobienne de la gentamycine véhiculée par l'acide hyaluronique Matériaux
On utilise les matériaux suivants:
— gentamycine dissoute dans une solution saline (50 mg/ml);
— sel de sodium d'acide hyaluronique, fraction hyalectine (2 mg/ml).
Méthode
On provoque une inflammation septique, dans les deux yeux de onze lapins, par injection intra-oculaire d'une suspension titrée de Pseudomonas aeruginosa (0,1 ml). A ces lapins présentant une inflammation septique, on administre une fraction hyalectine d'acide hyaluronique en association avec de la gentamycine par instillation dans l'œil droit, et, dans l'œil gauche, on administre de la gentamycine dans un véhicule à base de solution saline phosphatée. Le traitement (trois groupes toutes les six heures) commence immédiatement après injection de l'agent infectieux et on le poursuit jusqu'à disparition de l'infection. On observe, chaque jour, avec une lampe à fente les yeux des lapins.
Résultats so Le traitement avec une association de gentamycine et d'acide hyaluronique conduit à une disparition plus rapide de l'infection septique par comparaison avec l'administration de l'antibiotique seul. Cette conclusion est claire d'après les données du tableau 7.
55
(Tableau en page suivante)
«o Les valeurs sont exprimées en pourcentage du nombre d'yeux guéris de leur inflammation par comparaison avec le nombre d'yeux traités. + = différence significative vis-à-vis du véhicule phosphaté (—di 0,05, T test B Fischer).
L'invention étant ainsi décrite, il est évident qu'on peut en pro-65 poser de nombreuses variantes. Ces variantes ne doivent pas être considérées comme se départissant de l'esprit de la portée de l'invention, et toutes les modifications qui sont évidentes à l'homme de l'art doivent être comprises dans la portée des revendications.
19
672 886
Tableau 7
Effet de la gentamycine véhiculée par l'acide hyaluronique fraction hyalectine sur l'inflammation intra-oculaire septique
Traitement
Jours à partir du début de l'inflammation
1
2
3
4
5
6
7
gentamycine + solution saline comme véhicule
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
36,3
100
gentamycine + HY fraction hyalectine
0,0
0,0
9,0+
72,7 +
72,7+
100
100

Claims (26)

  1. 672 886
    REVENDICATIONS
    1. Médicament à usage topique comprenant:
    a) une substance pharmaceutiquement active ou un mélange de substances pharmaceutiquement actives convenant à l'administration topique, et b) de l'acide hyaluronique ou l'une de ses fractions moléculaires ou un sel d'acide hyaluronique ou de ces fractions d'acide hyaluronique avec un métal alcalin ou alcalino-terreux, l'aluminium ou l'ammonium, ou un sel d'acide hyaluronique ou de cette fraction d'acide hyaluronique avec ces substances actives ou leurs mélanges, ou bien un sel complexe formé des composants a) et b).
  2. 2. Médicament selon la revendication 1, comprenant un sel complexe formé des composants a) et b).
  3. 3. Médicament selon la revendication 2, dans lequel l'acide hyaluronique est, en outre, salifié avec un métal alcalin ou alcalino-terreux, l'aluminium ou l'ammonium.
  4. 4. Médicament selon l'une des revendications 1 à 3, dans lequel la substance active présente une activité ophtalmologique ou dermatologique.
  5. 5. Médicament selon l'une des revendications 1 à 4, comprenant au moins un agent antibiotique, anti-infectieux, antimicrobien, antiviral, cytostatique, antitumoral, anti-inflammatoire, cicatrisant, anesthésique, promoteur cholinergique, antagoniste cholinergique, promoteur adrénergique ou antagoniste adrénergique.
  6. 6. Médicament selon la revendication 5, contenant, au moins, une substance active choisie dans le groupe constitué par les corps suivants: érythromycine, gentamycine, néomycine, streptomycine, dihydrostreptomycine, kanamycine, amikacyne, tobramycine, auréo-mycine, spectinomycine, oléandomycine, carbomycine, spiramycine, oxytétracycline, rolitétracycline, bacitracine, polymyxine B, gramicidine, Colistine, chloramphénicol, lincomycine, amphotéricine B, gri-séofulvine, nystatine, diéthylcarbamazine, mêbendazole, sulfacét-amide, sulfadiazine, sulfisoxazole, iodéoxyuridine, adénine arabino-side, tricarpine, métacholine, carbamylcholine, acéclidine, fisostig-mine, néostigmine, démacarium, stropina, propanolol, timolol, pin-dolol, bupranolol, aténolol, métoprolol, oxprénolol, practolol, but-oxamine, Sotalol, butadrine, labétalol, dexaméthasone, triamcino-lone, prednisolone, fluorométholone, médrison, fluorocil, métho-trexate et podophylline.
  7. 7. Médicament selon l'une des revendications 1 à 6, contenant, en outre, comme agent anti-inflammatoire la prednisolone, la dexaméthasone, la fluméthasone, la triamcinolone, l'acétonide, la bêta-méthasone, le clobétasol ou leurs esters, ou contenant comme agent anesthésique la dibucaïne, la lidocaïne ou la benzocaïne.
  8. 8. Médicament selon l'une des revendications 1 à 7, dans lequel la fraction d'acide hyaluronique utilisée présente un poids moléculaire entre 90 à 80% et 0,23% du poids moléculaire de l'acide hyaluronique intégral présentant un poids moléculaire de 13 millions.
  9. 9. Médicament selon l'une des revendications 1 à 8, dans lequel l'acide hyaluronique comprend une fraction moléculaire purifiée d'acide hyaluronique sensiblement exempte d'acide hyaluronique dont le poids moléculaire serait inférieur à 30 000.
  10. 10. Médicament selon la revendication 9, dans lequel la fraction moléculaire d'acide hyaluronique présente un poids moléculaire moyen d'environ 50000 à environ 100000, d'environ 500000 à environ 730 000 ou d'environ 250 000 à environ 350 000.
  11. 11. Médicament selon l'une des revendications 1 à 10, dans lequel le sel d'acide hyaluronique est un sel d'acide partiel de l'acide hyaluronique ou d'une de ses fractions moléculaires avec une substance pharmaceutiquement active de caractère basique.
  12. 12. Médicament selon l'une des revendications 1 à 10, dans lequel le sel d'acide hyaluronique est un sel stœchiométriquement neutre d'acide hyaluronique ou d'une de ses fractions moléculaires avec une substance pharmaceutiquement active de caractère basique.
  13. 13. Médicament selon l'une des revendications 1 à 10, contenant un mélange d'un sel d'acide partiel de l'acide hyaluronique ou d'une de ses fractions moléculaires et un sel stœchiométriquement neutre d'acide hyaluronique ou d'une de ses fractions moléculaires.
  14. 14. Médicament à usage topique selon l'une des revendications 1 à 13, comprenant un excipient pharmaceutiquement acceptable supplémentaire.
  15. 15. Médicament selon l'une des revendications 1 à 14 en tant que médicament à usage topique pour le traitement thérapeutique ou propylactique de désordres ophtalmiques ou dermatologiques, de maladies de la muqueuse des cavités orales et nasales ou de l'oreille externe, le traitement de maladies des organes internes par des substances qui peuvent être absorbées par voie intradermique ou par la muqueuse nasale ou rectale.
  16. 16. Procédé de préparation d'un sel complexe d'acide hyaluronique avec une substance pharmaceutiquement active, pour le médicament selon la revendication 2, qui consiste:
    a) à combiner un sel de baryum d'acide hyaluronique avec un sulfate d'une substance pharmaceutiquement active, en solution aqueuse, et b) à séparer le sulfate de baryum précipité pour obtenir le sel d'acide hyaluronique en solution aqueuse.
  17. 17. Procédé selon la revendication 16, dans lequel ce sulfate est ajouté en quantité telle que le nombre d'équivalents de sulfate est égal au nombre d'équivalents d'acide hyaluronique, pour produire ainsi un sel stœchiométriquement neutre d'acide hyaluronique.
  18. 18. Procédé selon la revendication 16, dans lequel ce sulfate est ajouté en quantité telle que le nombre d'équivalents de sulfate est inférieur au nombre d'équivalents d'acide hyaluronique, pour produire ainsi un sel d'acide hyaluronique partiellement salifié.
  19. 19. Procédé selon la revendication 16, dans lequel ce sel de baryum d'acide hyaluronique est, en outre, combiné avec un sulfate d'au moins un élément choisi dans le groupe constitué par un métal alcalin ou alcalino-terreux, l'aluminium ou l'ammonium.
  20. 20. Procédé selon la revendication 19, dans lequel ces sulfates sont ajoutés en quantité telle que le nombre d'équivalents de sulfate est égal au nombre d'équivalents d'acide hyaluronique.
  21. 21. Procédé selon la revendication 19, dans lequel ces sulfates sont ajoutés en quantité telle que le nombre d'équivalents de sulfate est inférieur au nombre d'équivalents d'acide hyaluronique.
  22. 22. Procédé selon l'une des revendications 16 à 21, dans lequel cette substance active est au moins l'une des suivantes: érythromycine, gentamycine, néomycine, streptomycine, dihydrostreptomycine, kanamycine, amikacyne, tobramycine, auréomycine, spectinomycine, oléandomycine, carbomycine, spiramycine, oxytétracycline, rolitétracycline, bacitracine, polymyxine B, gramicidine, Colistine, chloramphénicol, lincomycine, amphotéricine B, griséofulvine, nystatine, diéthylcarbamazine, mêbendazole, sulfacétamide, sulfadiazine, sulfisoxazole, iodéoxyuridine, adénine arabinoside, tricarpine, métacholine, carbamylcholine, acéclidine, physostigmine, néostigmine, démacarium, stropina, propanolol, timolol, pindolol, bupranolol, aténolol, mêtiprolol, oxprénolol, practolol, butoxamine, Sotalol, butadrine, labétalol, dexaméthasone, triamcinolone, prednisolone, fluorométholone et médrison.
  23. 23. Procédé selon l'une des revendications 16 à 22, dans lequel l'acide hyaluronique est une fraction moléculaire dont le poids moléculaire est compris entre environ 90 à 80% et 0,23% en poids moléculaire de l'acide hyaluronique intégral dont le poids moléculaire est de 13 millions.
  24. 24. Procédé selon la revendication 23, dans lequel la fraction d'acide hyaluronique est sensiblement exempte d'acide hyaluronique dont le poids moléculaire serait inférieur à environ 30 000.
  25. 25. Procédé selon la revendication 24, dans lequel la fraction moléculaire présente un poids moléculaire moyen d'environ 50 000 à environ 100000, environ 500000 à environ 730000 ou environ
    250 000 à environ 350 000.
  26. 26. Sel de baryum d'une fraction hyaluronique non inflammatoire sensiblement pure, dont le poids moléculaire moyen est compris entre 250 000 et 350 000, 50 000 et 100 000 ou 500 000 et 730 000 et étant sensiblement exempt d'acide hyaluronique dont le
    2
    5
    10
    15
    20
    25
    30
    35
    40
    45
    50
    55
    60
    65
    3
    672 886
    poids moléculaire serait inférieur à 30 000, à titre de moyen pour la mise en œuvre du procédé selon la revendication 16.
CH1340/86A 1985-04-05 1986-04-04 CH672886A5 (fr)

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CN85102921A CN85102921B (zh) 1985-04-05 1985-04-09 制备具有药物作用的透明质酸组份及含该组份的药物的方法
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