WO2005038011A1 - 人工細胞組織の作成方法、及びそのための基材 - Google Patents

人工細胞組織の作成方法、及びそのための基材 Download PDF

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cell
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cells
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Ikuo Morita
Makoto Nakamura
Hideyuki Miyake
Hideshi Hattori
Hironori Kobayashi
Masaaki Kurihara
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Dai Nippon Printing Co., Ltd.
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    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
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    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M3/00Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00Supports or coatings for cell culture, characterised by material

Definitions

  • the present invention relates to a method for culturing cells in a patterned state, a cell tissue prepared by the method, and a substrate to which cells are adhered in a patterned state.
  • the cultured cell tissue is obtained by culturing and culturing the cells of the subject, and thus has no fear of rejection, and is preferable for transplantation.
  • Such a cultured cell tissue is created by collecting cells from a person and culturing the cells.
  • a culture dish in which a polymer material such as modified polystyrene having improved cell adhesion by surface treatment, or a cell adhesion protein such as collagen-fibronectin is uniformly applied to glass or a polymer material is used. It has been used as a carrier. Cells adhered to such progenitors in a planar manner have good cultivation properties, but are usually difficult to organize, so that the original function of the cells cannot be obtained. For example, there is a research report that the albumin-producing ability of unorganized cultured hepatocytes is reduced to a fraction of that of organized hepatocytes (liver spheroids).
  • a method for arranging cultured cells is to use a substrate whose surface has a pattern that makes it easier to adhere to the cells, and that the cells are cultured on this surface so that the cells adhere.
  • a method has been adopted in which cells are arranged by adhering the cells only to the surface that has been processed in the manner described above.
  • a charge holding medium having an electrostatic charge pattern is applied to cell culture for the purpose of, for example, growing nerve cells in a circuit.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 3-77576 an attempt is made to arrange cultured cells on a surface obtained by patterning a non-cell-adhesive or cell-adhesive photosensitive hydrophilic polymer by photolithography.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. Hei 5-17753 discloses a cell culture substrate in which a substance such as collagen that affects the cell adhesion rate and morphology is patterned, and a photolithography method using the substrate. Discloses a method of making the same. By culturing cells on such a substrate, more cells are adhered to the surface where collagen and the like are patterned, and cell patterning is realized.
  • the cells cultured by puttering as described above are recovered by treating them with proteolytic enzymes such as trypsin or chemicals, which complicates the processing steps and the possibility of contamination.
  • proteolytic enzymes such as trypsin or chemicals
  • the cell density may increase, the cells may be degenerated or damaged, and the original function of the cells may be impaired. Therefore, in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2003-3817b, a cell culture support in which a pattern made of a temperature-responsive polymer is formed on a substrate is prepared, and cells are cultured on the cell culture support.
  • a method has been disclosed in which a cell sheet is manufactured by exfoliating cells together with the polymer film without damaging the cells by changing the temperature by bringing this into close contact with the polymer film.
  • the steps are complicated because of the necessity. It is also difficult to pattern directly on biomaterials such as S storage. -
  • JP-A-2003-24351 a method of constructing an artificial organ by a specific cell culture method is also known (JP-A-2003-24351). This is to form an artificial blood vessel by adhering vascular endothelial cells and the like to a tubular cell culture substrate.
  • JP-A-2003-24351 a method of constructing an artificial organ by a specific cell culture method. This is to form an artificial blood vessel by adhering vascular endothelial cells and the like to a tubular cell culture substrate.
  • JP-A-2003-24351 a method of constructing an artificial organ by a specific cell culture method
  • an object of the present invention is to arrange and culture cells in a fine pattern by a simple method without damaging the cells, thereby promoting organization of the cultured cells.
  • the present inventors have conducted intensive studies to solve the above problems, and as a result, seeded cells on a cell array substrate in which a region having cell adhesion was patterned, and allowed the cells to adhere in a pattern.
  • the present inventors have found that cells can be cultured in an arrayed state by arranging cells and transferring the arrayed cells to a cell culture substrate, thereby completing the present invention.
  • cells are adhered to the surface of a cell array substrate having a cell adhesion change pattern in which a cell adhesion good region and a cell adhesion inhibition region are buttered on a substrate.
  • the present invention relates to a cell culture method including a step of transferring cells in a patterned state to a cell culture substrate, and a step of culturing the transferred cells.
  • the water contact angle of the region having good cell adhesion in the cell adhesion change pattern is 10 to 40 °.
  • the cell adhesion change pattern is formed by a cell adhesion change layer containing a cell adhesion change material whose cell adhesion is changed by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation. Formed.
  • the cell adhesion change layer is a photocatalyst-containing cell adhesion change layer containing a photocatalyst and a cell adhesion change material.
  • the cell adhesion change layer contains a photocatalyst. And a cell adhesion changing material layer containing the cell adhesion changing material formed on the photocatalyst treatment layer.
  • the cell adhesion change pattern is obtained by arranging a cell adhesion change layer containing a cell adhesion change material and a photocatalyst containing layer containing a photocatalyst, It is formed by irradiating energy.
  • the cell culture substrate is a biomaterial.
  • the cell adhesion change pattern is a pattern in which a linear cell adhesion good region is arranged in a cell adhesion inhibition region.
  • the cell adhesion change pattern is a pattern in which linear cell adhesion good regions and cell adhesion inhibition regions are alternately arranged.
  • the line width of the favorable region is 20 to 200 ⁇ m, the space width of the line is 300 to 100 m, and the cells are vascular endothelial cells.
  • the present invention also relates to a cell tissue formed by the above-described cell culture method.
  • the present invention also provides a cell array substrate having a cell adhesion change pattern in which a cell adhesion good region and a cell adhesion inhibition region are patterned on a substrate, wherein the cell of the cell adhesion change pattern is
  • the present invention relates to a cell adhesion substrate in which cells are adhered to a region having good adhesion.
  • the water contact angle of the cell adhesion good region in the cell adhesion change pattern is 10 to 40 °.
  • the cell adhesion change pattern is formed by a cell adhesion change layer containing a cell adhesion change material whose cell adhesion is changed by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation. Is done.
  • the cell adhesion change layer is a photocatalyst-containing cell adhesion change layer containing a photocatalyst and a cell adhesion change material.
  • the cell adhesion change layer comprises: a photocatalyst treatment layer containing a photocatalyst; and a cell adhesion change material layer containing a cell adhesion change material formed on the photocatalyst treatment.
  • a cell adhesion change layer containing a cell adhesion change material and a photocatalyst containing layer containing a photocatalyst are arranged so as to face each other. Later, it is formed by energy irradiation.
  • the present invention also provides a cell derived from a subject adhered on the cell adhesion substrate, The present invention relates to a method for regenerating a tissue of a subject by transferring cells in a patterned state to a living tissue to proliferate the cells.
  • cells can be arranged in a fine pattern and cultured by a simple method without damaging the cells.
  • the cell culture method of the present invention comprises adhering cells to the surface of a cell array substrate, transferring the adhered cells in a patterned state to a cell culture substrate, and culturing the transferred cells.
  • the following describes the cell array substrate, the method for producing the same, the cell adhesive substrate in which cells are adhered to the cell adhesion region of the cell array substrate, and the transfer to the cell culture substrate and post-transfer culture. I do.
  • the substrate for cell alignment of the present invention is characterized by having a cell adhesion change pattern in which a region having good cell adhesion and a region having cell adhesion inhibition are patterned on the substrate.
  • Cell adhesion means the strength of cell adhesion, that is, the ease of cell adhesion.
  • the region having good cell adhesion means a region having good cell adhesion, and the region having cell adhesion inhibition means a region having poor cell adhesion. Therefore, when cells are seeded on a cell array substrate having a cell adhesion change pattern, the cells adhere to the cell adhesion good region, but do not adhere to the cell adhesion inhibition region.
  • the cells are arranged in a pattern on the surface of the arrangement base material.
  • cell adhesion may vary depending on the cells to be adhered, good cell adhesion means good cell adhesion to certain types of cells. Therefore, a plurality of regions having good cell adhesion to a plurality of types of cells may be present on the substrate for cell arrangement, that is, there may be two or more levels of regions having good cell adhesion having different cell adhesion. .
  • the cell adhesion change pattern is as follows: A cell adhesion change layer containing a cell adhesion change material, whose cell adhesion changes with energy irradiation, is formed on a substrate, and energy is irradiated to a specific area. In this case, the cell adhesion is changed to form regions having different cell adhesion in a pattern.
  • Materials that change cell adhesion include both materials that gain or increase cell adhesion upon irradiation with energy and materials that decrease or eliminate cell adhesion.
  • the substrate used for the cell array substrate of the present invention is not particularly limited as long as the substrate is formed of a material capable of forming a cell adhesion changing pattern on its surface.
  • inorganic materials such as metal, glass, and silicon
  • plastics for example, polyester resin, polyethylene resin, polypropylene resin, ABS resin, nylon, acrylic resin, fluororesin, polycarbonate resin, polyurethane resin, methyl resin
  • the shape is not limited, and may be, for example, a flat plate, a flat film, a film, a porous film. When a film is used, its thickness is not particularly limited, but is usually 0.1 to 1 Q00 ⁇ ⁇ preferably:! ⁇ 500 m, more preferably 20 m. ⁇ 200 m.
  • the cell adhesion changing material and the cell adhesion changing layer will be described in an embodiment using a photocatalyst.
  • the cell adhesion change pattern includes a cell non-adhesion layer containing a cell non-adhesion material having no cell adhesion and a cell adhesion layer containing a cell adhesion material having cell adhesion formed thereon. This also includes the case where the cell adhesive layer is decomposed and disappears due to energy irradiation, thereby exposing the cell non-adhesive layer to form regions having different cell adhesive properties. Similarly, the cell adhesion layer is formed from a cell adhesion layer and a cell non-adhesion layer formed thereon, and the cell adhesion layer is exposed and decomposed by energy irradiation, exposing the cell adhesion layer, In which different regions are formed.
  • Cell adhesion materials include various types of collagen, fibronectin, lamun, vitronectin, extracellular matrix such as cadherin, RGD peptide, and other treatments such as corona treatment, ion beam irradiation, and electron beam irradiation to impart cell adhesion.
  • the non-cell-adhesive material include fluorine-based materials such as polytetrafluoroethylene (PTFE), polyimides, and phospholipids.
  • a layer containing an affinity changing material whose affinity for the cell-adhering material changes with irradiation of energy is formed on the substrate,
  • a layer containing an affinity changing material whose affinity for the cell-adhering material changes with irradiation of energy is formed on the substrate,
  • a pattern including a region having an affinity for the cell adhesive material and a region having no affinity for the cell adhesive material By irradiating the cell adhesive material with a pattern including a region having an affinity for the cell adhesive material and a region having no affinity for the cell adhesive material, introducing a solution containing the cell adhesive material into the pattern, and then washing the cell adhesive material.
  • a cell adhesiveness change pattern having a region in which a cell adhesion material exists (a region having good cell adhesion) and a region in which a cell adhesion material does not exist (a cell adhesion inhibition region).
  • the pattern cannot be formed directly on the substrate, but the pattern can be formed by the cell adhesive material.
  • a pattern including a region (20) having a layer containing a water-repellent material and a region not having the layer is formed on a hydrophilic substrate (1) such as glass.
  • a hydrophilic cell adhesive material (21) that is not easily adsorbed by the water repellent material is introduced, and then washed.
  • a region in which a hydrophilic cell adhesive material is present (a region having good cell adhesion) and a region in which a water repellent material is present (a cell adhesion inhibiting region) are formed in a pattern.
  • an extracellular matrix such as collagen can be used as the hydrophilic cell adhesive material.
  • the cells arranged in a pattern on the cell array substrate are transferred to the cell culture substrate.
  • the adhesive strength By setting the adhesive strength to an appropriate value, cells can be adhered only to a specific area to form a cell pattern, but this can be easily transferred to a cell culture substrate. Therefore, the cell adhesive strength of the region having good cell adhesiveness in the cell array substrate is stronger than the cell adhesive force of the cell adhesive inhibition region, but weaker than the cell adhesive force of the cell culture substrate surface. Is preferred.
  • Such cell adhesion can be evaluated by the water contact angle of the surface.
  • the water contact angle in the cell adhesion good region of the cell adhesion change pattern in the present invention is preferably 10 to 40 °.
  • the contact angle means the angle between the liquid surface and the solid surface where the free surface of the static liquid comes into contact with the solid wall (takes the angle at the bottom of the liquid).
  • the above-mentioned water contact angle is defined as the angle between the gas-liquid interface at the end of the water droplet and the solid surface, usually with a magnifying glass, etc. View It means the value measured by the static contact angle measurement method.
  • Means for forming a cell adhesion change pattern in which the above-described good cell adhesion region and cell adhesion inhibition region are arranged in a pattern are not particularly limited, but include, for example, a gravure printing method and a screen printing method. , Offset printing, flexo printing, contact printing, etc., various printing methods, various lithography methods, inkjet methods, and other three-dimensional shaping methods such as engraving fine grooves. No.
  • a lithography method using a photocatalyst that is, a cell adhesion changing material in which the adhesion of cells is changed by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation, and a photocatalyst, are used in accordance with a required pattern.
  • a method of forming a cell adhesion change pattern by irradiating energy is preferred.
  • a high-definition pattern can be formed by a simple step without using a treatment solution that adversely affects cells.
  • the pattern to be formed is not particularly limited as long as it is a two-dimensional pattern, and can be selected depending on the type of cells to be arranged on the cell array substrate and cultured after transfer, the tissue to be formed, and the like. For example, lines, trees (trees), meshes, lattices, circles, square patterns, circles, squares, and other figures are all good cell adhesion areas or cell adhesion inhibition areas. A pattern or the like can be formed. When a tissue is formed by culturing vascular endothelial cells or nerve cells, it is preferable to form a pattern in which cells adhere in a line-shaped, tree-shaped ( ⁇ -shaped), mesh-shaped or lattice-shaped pattern.
  • vascular endothelial cells are arranged in a line, tree (dendritic), mesh or lattice shape to promote organization, and vascular Formation is promoted.
  • the line width of the pattern is usually 20 to 200 m, preferably 50 to 100 m.
  • capillary blood vessels are formed by arranging and culturing vascular cells in a line, cell adhesion in which the space between the line-shaped good cell adhesion area and the cell adhesion inhibition area is alternately arranged
  • a sex change pattern and adhere vascular endothelial cells in a line.
  • the line width of the area with good cell adhesion is usually 20 to 20 °!
  • space width of the cell adhesion inhibitory region falls between the line and the line is usually 3 0 0 ⁇ 1 0 0 0 ⁇ ⁇ , preferably 4 ⁇ 0 ⁇ 8 0 0 m.
  • the width of the space between the lines to which the cells are adhered is set to a certain value or more as described above, so that cells can be organized.
  • the space between the linear cell-adhesion good regions and the cell-adhesion inhibition regions is alternately arranged.
  • the line width of the lines intersecting each other is the same as above.
  • the width of the space between further lines is usually between 0.03 and 5 cm, preferably between 0.04 and 3 cm.
  • Examples of the substrate for cell array prepared by one lithography method using the photocatalyst include the following three embodiments. Each of these will be explained.
  • a first embodiment of the cell array substrate according to the present invention is a cell adhesion change material comprising a cell adhesion change material formed on a substrate and having a cell adhesion property changed by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation.
  • the cell adhesion change layer is formed by a photocatalyst and the above-mentioned cell contact. Since it is a photocatalyst-containing cell adhesion changing layer having a cell adhesion changing material, when energy is irradiated, the cell adhesion of the cell adhesion changing material due to the action of the photocatalyst in the photocatalyst-containing cell adhesion change layer Thus, it is possible to form a cell adhesiveness change pattern in which the adhesiveness to the cell differs between a portion irradiated with energy and a portion not irradiated with energy.
  • the cell array substrate of this embodiment will be described separately for each of the members used.
  • the present embodiment is characterized in that a photocatalyst-containing cell adhesion change layer is formed on a substrate.
  • the photocatalyst-containing cell adhesion changing layer has at least a photocatalyst and a cell adhesion changing material.
  • the cell adhesion changing material used in the present embodiment is not particularly limited as long as it is a material whose cell adhesion changes by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation.
  • the term “change in cell adhesion” includes both a material that acquires or increases cell adhesion by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation and a material that decreases or disappears cell adhesion.
  • Such a cell-adhesion-change material includes a physicochemical cell-adhesion-change material that adheres to cells by physicochemical properties and a biological substance that adheres to cells by biological properties in a manner that controls adhesion to cells.
  • a biological cell adhesion changing material There are mainly two embodiments with the biological cell adhesion changing material.
  • Physicochemical factors for adhering cells to the surface include factors relating to surface free energy and factors due to hydrophobic interactions.
  • a physicochemical cell adhesive material having physicochemical cell adhesion due to such factors has a high binding energy such that the main skeleton is not decomposed by the action of a photocatalyst, and is decomposed by the action of a photocatalyst.
  • Those having such organic substituents are preferable.
  • Y represents an alkyl group, a fluoroalkyl group, a vinyl group, an amino group, a phenyl group or an epoxy group
  • X represents an alkoxyl group, an acetyl group or a halogen.
  • is an integer of 0 to 3.
  • the organopolysiloxane is preferably one or more hydrolyzed condensates or co-hydrolyzed condensates of the silicon compound represented by).
  • the group represented by ⁇ preferably has 1 to 20 carbon atoms ⁇ ⁇ ⁇ ⁇
  • the alkoxy group represented by X is a methoxy group, an ethoxy group, a propoxy group, or a butoxy group.
  • a polysiloxane containing a fluoroalkyl group can be particularly preferably used.
  • one or more hydrofluorocondensates of the following fluoroalkylsilanes can be used.
  • Hydrolysis condensates can be used, and those generally known as fluorine-based silane coupling agents can be used.
  • cell-adhesion can be achieved due to the presence of a fluorine-containing part on the surface of the photocatalyst-containing cell-adhesion-change layer, which has not been irradiated with energy.
  • the surface does not have the property, the portion irradiated with energy is removed from fluorine and the like, and the surface having the OH group or the like is present on the surface, so that the surface has cell adhesion. Therefore, regions having different cell adhesiveness can be formed in a pattern in the energy-irradiated portion and the energy-unirradiated portion.
  • is an integer of 2 or more
  • RR 2 is a substituted or unsubstituted alkyl, alkenyl, or aryl group having 1 to 10 carbon atoms, and examples of the substituent include halogen, cyano, and the like.
  • RR 2 include methyl, ethyl, propyl, vinyl, phenol, halogenated phenol, cyanomethyl, and cyano. Notyl, cyanopropyl, etc. are listed. It is preferable that the molar ratio of vinyl, phenol and phenyl phenol is not more than 40% of the whole.
  • RR 2 is a methyl group since the surface energy is minimized, and it is preferable that the methyl group is 60% or more in a molar ratio.
  • the chain terminal or the side chain has at least one or more reactive group such as a hydroxyl group in the molecular chain.
  • a stable organosilicon compound that does not undergo a cross-linking reaction such as dimethylpolysiloxane may be separately mixed with the above-mentioned organopolysiloxane.
  • examples of the decomposable substance-type physicochemical cell adhesive material include surfactants having a function of decomposing by the action of a photocatalyst and changing the polarity of the surface of the photocatalyst-containing polarity changing layer by being decomposed. .
  • hydrocarbons such as NIKKOL BL, BC, BO, and BB series manufactured by Nikko Chemicals Co., Ltd .; ZONYL FSN and FSO manufactured by DuPont; Surflon S—141, 1 manufactured by Asahi Glass Co., Ltd. 45, Megafac F-141, 144, manufactured by Dainippon Ink & Chemicals, Inc., Fusant F-200, F251, manufactured by Neos Co., Ltd., Dudyne DS-401, 402, manufactured by Daikin Industries, Ltd. Fluoro- or Silicone-based nonionic surfactants such as FC-170, 176 manufactured by KK Corporation, and cationic surfactants, anionic surfactants, and amphoteric surfactants. Can also be used.
  • the physicochemical cell adhesive material is used as the decomposed substance type, it is usually preferable to separately use a binder component.
  • the binder component used at this time is not particularly limited as long as it has a high binding energy such that the main skeleton is not decomposed by the action of the photocatalyst.
  • Specific examples include polysiloxanes having no organic substituents or having some organic substituents, which can be obtained by hydrolyzing or polycondensing tetramethoxysilane, tetraethoxysilane, or the like. it can.
  • such a physicochemical cell-adhesive material of a binder type and a physicochemical cell-adhesive material of a decomposed substance type may be used in combination.
  • Biological factors that cause cells to adhere to the surface include materials that can adhere to many cell types and materials that adhere only to specific cell types.
  • the former is, for example, collagen type I
  • the latter is, for example, poly (N-p-vinylbenzyl- [O-j3-D-galactoviranosyl- (1 ⁇ 4) -D -Dalconamide]) (hereinafter referred to as PVLA).
  • PVLA poly (N-p-vinylbenzyl- [O-j3-D-galactoviranosyl- (1 4) -D -Dalconamide])
  • PVLA poly (N-p-vinylbenzyl- [O-j3-D-galactoviranosyl- (1 ⁇ 4) -D -Dalconamide])
  • PVLA poly (N-p-vinylbenzyl- [O-j3-D-galactoviranosyl- (1 ⁇ 4) -D -Dalconamide
  • the photocatalyst used in the present embodiment for example, diacid titanium (T i 0 2) is known as an optical semiconductor, a zinc oxide (Z nO>, tin oxide (S n0 2), strontium titanate (S r T i 0 3), tungsten oxide (W_ ⁇ 3), bismuth oxide
  • titanium dioxide is particularly preferably used because it has a high band gap energy, is chemically stable and has no toxicity, and is easily available. Titanium dioxide includes anatase type and rutile type, and any of them can be used in this embodiment. Anatase type titanium dioxide is preferable. The anatase type titanium dioxide has an excitation wavelength of less than 380 nm.
  • anatase-type titanium dioxide examples include, for example, an anatase-type titania sol of peptized hydrochloride type (STS-02 (average particle size: 7 nm) manufactured by Ishihara Sangyo Co., Ltd.), and ST- K 0 1) nitrate peptized anatase titania sol (TA-15 (average 3 ⁇ 4 ⁇ 2 nm) manufactured by Nissan Chemical Co., Ltd.) and the like.
  • STS-02 average particle size: 7 nm
  • ST- K 0 nitrate peptized anatase titania sol
  • TA-15 average 3 ⁇ 4 ⁇ 2 nm
  • the particle size of the photocatalyst is, the more effective the photocatalytic reaction takes place. It is preferable that the average particle size is 50 nm or less, and it is particularly preferable to use a photocatalyst of 20 nm or less.
  • the content of the photocatalyst in the photocatalyst-containing cell adhesion change layer used in the present embodiment can be set in the range of 5 to 60% by weight, preferably 20 to 40% by weight.
  • the substrate used for the cell array substrate of the present invention is not particularly limited as long as it is formed of a material capable of forming a photocatalyst-containing cell adhesion change layer on the surface. Any form is possible as long as surface treatment by exposure treatment is possible. Specific examples include inorganic materials such as metal, glass, and silicon, and organic materials represented by plastics. The shape is not limited, and examples thereof include a flat plate, a flat membrane, a film, a porous membrane, and the like.
  • the above-mentioned photocatalyst-containing cell adhesion changing layer is formed on the above-mentioned base material, and the cell adhesion is changed by irradiating energy in a pattern form. A raw change pattern is formed.
  • Such a cell adhesion change pattern is usually formed from a cell adhesion good region with good cell adhesion and a cell adhesion inhibition region with poor cell adhesion. Then, by bringing the cells into contact with the area having good cell adhesion, the cells can be adhered in a high-definition pattern. -Such a cell adhesion good region and a cell adhesion inhibition region are determined according to the type of the cell adhesion changing material to be used. For example, when the cell adhesion changing material is a physicochemical cell adhesion changing material that changes the surface free energy to change the cell adhesion, the cell adhesion is determined to be the surface free energy within a predetermined range.
  • the cell adhesion change pattern is a pattern including the above-described cell adhesion good region and cell adhesion inhibition region, but depending on the application, the cell adhesion change pattern may be a cell adhesion surface pattern. This also includes the case where the cell adhesion pattern has a region having at least three levels of different sexes.
  • the three or more levels include a state in which the adhesiveness of the cells is continuously changed, and the level to be determined is appropriately selected and determined according to the situation. You.
  • the regions can be formed by changing the irradiation amount of energy to the photocatalyst-containing cell adhesiveness changing layer. Specifically, a method using a halftone photomask having different transmittances can be used.
  • a cell adhesion change pattern utilizing a difference in photocatalytic activity between a portion irradiated with energy and a portion not irradiated with energy can be used. That is, for example, when a biologic cell adhesion changing material introduced into a photocatalyst-containing cell adhesion changing layer is used as a decomposition substance, when the photocatalyst-containing cell adhesion changing layer surface is irradiated with energy in a pattern, The bioadhesion-change material exuded on the surface of the irradiated part is degraded, and the non-irradiated part of the bioadhesion-change material remains. '.
  • the non-irradiated portion has a cell adhesion area of 1 ".
  • the area irradiated with energy not only is there no biological cell adhesion changing material with good adhesion to cells, but also the exposed photocatalyst, which is activated by energy irradiation, is exposed. Therefore, in the case where the energy-irradiated portion becomes the cell adhesion-inhibited region, a problem such as a thickened pattern occurs particularly when the cells are cultured for a predetermined period using the cell array substrate of the present embodiment. This has the advantage that there is no such thing.
  • Second EmbodimentA second embodiment of the cell array substrate of the present invention is a cell array substrate formed on the above-mentioned substrate, wherein the cell adhesion is changed by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation.
  • a cell-adhesion-change layer having a cell-adhesion-change material, wherein the cell-adhesion-change layer is a cell array substrate in which a cell-adhesion-change pattern in which cell adhesion is changed is formed.
  • the cell adhesion change layer has a photocatalyst treatment layer having a photocatalyst, and a cell adhesion change material layer formed on the photocatalyst treatment layer and containing the cell adhesion change material. Things.
  • the cell adhesion change layer has a photocatalyst treatment layer formed on a substrate and a cell adhesion change material layer formed on the photocatalyst treatment layer. Therefore, when the energy is irradiated, the cell adhesion of the cell adhesion changing material in the cell adhesion changing material layer changes due to the action of the photocatalyst in the photocatalyst treatment layer, and the part where the energy is irradiated and the part where the energy is not irradiated Thus, it is possible to form a cell adhesion change pattern having different adhesion to cells.
  • the cell array substrate of this embodiment will be described separately for each of the members used.
  • a cell adhesion changing material layer is formed on a photocatalyst treatment layer formed on the substrate.
  • the cell adhesion changing material layer a layer formed by using the cell adhesion changing material described in the first embodiment can be used.
  • the cell adhesion changing material layer using the physicochemical cell adhesion changing material and the cell adhesion changing material layer using the biological cell adhesion changing material will be separately described.
  • the cell adhesion changing material layer formed of the physicochemical cell adhesion changing material can be a layer using the same material as the material described in the first embodiment. . When such a material is used, it is the same as described above except for the presence or absence of a photocatalyst. In this embodiment, in principle, there is no need to contain a photocatalyst in the cell adhesion changing material layer, but a small amount may be contained due to sensitivity and the like.
  • the cell adhesion changing material layer is formed on the photocatalyst treatment layer as a decomposition removal layer which is decomposed and removed by the action of the photocatalyst, and the cell adhesion change material layer is formed by the action of the photocatalyst accompanying energy irradiation.
  • a degraded region that is, a region where the photocatalyst treatment layer is exposed, and a region where the cell adhesion changing material layer remains, thereby forming a cell adhesion changing pattern of a type that forms a cell adhesion changing pattern. Can be used.
  • a pattern of the presence or absence of the cell adhesiveness changing material layer is formed by forming a layer of the adhesiveness changing material and then irradiating the pattern with energy, thereby forming a cell adhesiveness changing pattern.
  • Examples of the physicochemical cell adhesion changing material layer as such a decomposition removal layer, which can be used when the cell adhesion is controlled by surface free energy, include, for example, regenerated cellulose, nylon 1 1 and the like.
  • a positively charged physicochemical cell adhesion changing material is used, and the cell adhesion changing pattern is formed by the same method as described above. it can.
  • the material serving as such a decomposition-removal layer is a chemical cell adhesion changing material layer, and a material that can be used when controlling cell adhesion by static interaction is polyamine graft poly ( 2—Hydroxymethyl methacrylate) (HA).
  • resins can be dissolved in a solvent and formed by a general film forming method such as a spin coating method. Further, in the present invention, a functional thin film, In other words, it is possible to form a defect-free film by using a self-assembled monolayer, a Langmuir-Projet film, and an alternately adsorbed film. Is more preferable.
  • the photocatalyst treatment layer which will be described later, is exposed in the region decomposed and removed, and thus the cell culture is performed. Is a region that is greatly inhibited. Therefore, the cell array substrate obtained by such a method has an advantage that a high-definition pattern can be maintained even when cells are retained for a long period of time.
  • the same layer as that described in the first embodiment can be used as the cell adhesion changing material layer formed by the biological cell adhesion changing material. Can be mentioned.
  • the photocatalyst-treated layer used in the present invention is not particularly limited as long as the photocatalyst in the photocatalyst-treated layer changes the cell adhesion property of the cell adhesion-modifying material layer formed thereon. Instead, it may be composed of a photocatalyst and a binder, or may be a film formed of a single photocatalyst.
  • the surface properties may be particularly lyophilic or lyophobic, but are lyophilic for convenience of forming a cell adhesion changing material layer on this photocatalyst treatment layer. Is preferred.
  • a photocatalyst represented by titanium oxide as described later in the photocatalyst treatment layer is not necessarily clear, but the carrier generated by light irradiation may be a direct reaction with a nearby compound, or It is thought that the active oxygen species generated in the presence of oxygen and water change the chemical structure of organic matter. In the present invention, it is considered that this carrier acts on the compound in the cell adhesion changing material layer formed on the photocatalyst> treatment layer.
  • Such a photocatalyst is the same as that described in detail in the first embodiment.
  • the photocatalyst treatment in this embodiment may be formed by using the photocatalyst alone as described above, or may be formed by mixing with the binder.
  • a photocatalyst treatment layer consisting of only a photocatalyst
  • the cell adhesion of the cell adhesion change material layer Efficiency against changes in characteristics is improved, and this is advantageous in terms of cost such as shortening of processing time.
  • a photocatalyst treatment layer comprising a photocatalyst and a binder has an advantage that the formation of the photocatalyst treatment layer is easy.
  • Examples of a method for forming the photocatalyst treatment layer composed of only the photocatalyst include a method using a vacuum film forming method such as a sputtering method, a CVD method, and a vacuum evaporation method.
  • a vacuum film forming method such as a sputtering method, a CVD method, and a vacuum evaporation method.
  • Another example of a method for forming a photocatalyst treatment layer composed of only a photocatalyst is, for example, a method in which, when the photocatalyst is titanium dioxide, amorphous titania is formed on a substrate, and then the phase is changed to crystalline titania by firing. And the like.
  • Examples of the amorphous titaure used herein include, for example, hydrolysis, dehydration condensation of inorganic salts of titanium such as titanium tetrachloride and titanium sulfate, tetraethoxytitanium, tetraisopropoxytitanium, tetra-n-propoxytitanium, tetrabutoxytitanium, An organic titanium compound such as tetramethoxytitanium can be obtained by hydrolysis and dehydration condensation in the presence of an acid. Next, it can be denatured to anatase type titania by baking at 400 ° C. to 500 ° C., and can be denatured to rutile type titania by baking at 600 ° C. to 700 ° C.
  • the binder When a binder is used, the binder preferably has a high binding energy such that the main skeleton of the binder is not decomposed by the action of the photocatalyst.
  • a binder examples include the above-mentioned organopolysiloxane and the like. That's a thing.
  • the photocatalyst treatment layer disperses a photocatalyst and an organopolysiloxane as a binder together with other additives, if necessary, in a solvent. It can be formed by preparing a coating solution and applying the coating solution on a transparent substrate.
  • a solvent to be used an alcoholic organic solvent such as ethanol or isopropanol is preferable.
  • Application is well-known such as spin coat, spray coat, dip coat, roll coat, bead coat, etc. Can be performed by a coating method.
  • the photocatalyst-treated layer can be formed by irradiating ultraviolet rays to perform a curing treatment.
  • an amorphous silica precursor can be used as the binder.
  • This amorphous silica precursor is represented by formula S i X 4, X is halogen, main butoxy group, Etoki sheet group, or Kei-containing compound is a Asechiru group, silanol Lumpur is a hydrolyzate thereof Or a polysiloxane having an average molecular weight of 3000 or less is preferred.
  • the precursor of the amorphous silica and the particles of the photocatalyst are uniformly dispersed in a non-aqueous solvent, and hydrolyzed with water in the air to form a silanol on a transparent substrate.
  • the photocatalyst-treated layer can be formed by dehydration-condensation polymerization at room temperature. If the dehydration-condensation polymerization of silanol is performed at 10 ° C. or more, the degree of polymerization of silanol increases, and the strength of the film surface can be improved.
  • These binders can be used alone or in combination of two or more.
  • the content of the photocatalyst in the photocatalyst treatment layer is 5 to 60% by weight, preferably 20 to 40% by weight. Can be set in the range of / 0 . Further, the thickness of the photocatalyst treatment layer is preferably in the range of 0.05 to 10 ⁇ .
  • the photocatalyst treatment layer may contain a surfactant in addition to the photocatalyst and the binder.
  • a surfactant such as NIKKOL BL, BC, BO, and BB series manufactured by Nikko Chemicals Co., Ltd .; ZONYL FS N, FSO manufactured by DuPont; Surflon S-141, 145 manufactured by Asahi Glass Co., Ltd. Dainippon Ink and Chemicals Co., Ltd. Megafac F-141, 144, Neos Co., Ltd. Cover Agent F-200, F251, Daikin Industries Co., Ltd. U-Dyne DS-401, 402, Threeem Co., Ltd. ) Fluorinated or silicone-based nonionic surfactants such as Florad F-170 and e76, and cationic surfactants, anionic surfactants, and amphoteric surfactants can be used. You can also.
  • the photocatalyst treatment layer may also contain polyvinyl alcohol, unsaturated polyester, acrylic resin, polyethylene, diaryl phthalate, ethylene propylene gen monomer, epoxy resin, phenol resin, and polyurethane.
  • Melamine resin Polycarbonate, polyvinyl chloride, polyamide, polyimide, styrene butadiene rubber, chloroprene rubber, polypropylene, polybutylene, polystyrene, polyacetate butyl, polyester, polybutadiene, polybenzimidazole, polyataryl-tolyl, epichlorohydrin, Oligomers and polymers such as polysulfide and polyisoprene can be contained.
  • the substrate used in the present embodiment is not particularly limited as long as the photocatalyst treatment layer can be formed, and the same substrate as described in the first embodiment can be used. .
  • the photocatalyst in the photocatalyst treatment layer causes the cell adhesion change material layer surface to adhere to cells.
  • a cell adhesion change pattern which is a pattern in which the property has changed, is formed.
  • the cell array substrate includes a substrate and a cell adhesion changing material formed on the substrate and having a cell adhesion changing material in which the cell adhesion changes due to the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation.
  • the cell adhesion change layer is a cell adhesion change material layer
  • the adhesion change pattern is such that the photocatalyst-containing layer containing a photocatalyst and the cell adhesion change material layer face each other. It is formed by irradiating energy from a predetermined direction after arranging it in such a way that when it is irradiated with energy, the photocatalyst in the photocatalyst containing layer acts on the inside of the cell adhesion change material layer when the energy is irradiated.
  • Cell adhesion change of the material The cell adhesion of the material is changed, and a cell adhesion change pattern in which the adhesion to the cell differs between the portion irradiated with energy and the portion not irradiated.
  • the cell array substrate of this embodiment will be described separately for each of the members used.
  • a cell adhesion changing material layer is formed on the substrate.
  • This cell adhesion changing material layer is the same as the layer formed by using the material described in the second embodiment.
  • a cell adhesion changing material layer may be formed on a substrate as a decomposition removal layer which is decomposed and removed by the action of a photocatalyst.
  • the cell adhesion changing material layer is irradiated with energy using the photocatalyst-containing layer-side substrate, and the region where the cell adhesion changing material layer is decomposed by the action of the photocatalyst accompanying energy irradiation, that is, the substrate An area in which the cell adhesion is changed and an area in which the cell adhesion changing material layer remains are formed, thereby using a cell adhesion changing pattern.
  • the substrate used in the present embodiment is not particularly limited as long as the above-mentioned cell adhesion changing material layer can be formed, and the same substrate as described in the first embodiment is used. It is possible.
  • the photocatalyst-containing layer used in the present embodiment is a layer containing a photocatalyst, and is usually formed on a substrate such as glass and used.
  • a photocatalyst-containing layer is disposed so as to face the above-described cell adhesion change material layer, and is irradiated with energy, whereby the action of the photocatalyst contained in the photocatalyst-containing layer is achieved. It is possible to change the cell adhesion of the cell adhesion changing material layer.
  • the photocatalyst-containing layer is arranged at a predetermined position during energy irradiation, and is capable of forming a cell adhesion change pattern.
  • a photocatalyst containing layer is the same as the layer described for the photocatalyst treatment layer in the second embodiment.
  • the above-mentioned photocatalyst-containing layer is irradiated with energy in a pattern by using the photocatalyst-containing layer, whereby the action of the photocatalyst in the photocatalyst-containing layer causes A cell adhesion change pattern, which is a pattern in which the adhesion to cells on the layer surface has changed, is formed.
  • the method for producing a cell array substrate of the present invention includes, for example, the three embodiments described above.
  • the substrate and the substrate are formed on the substrate, And forming a substrate for a pattern forming body having a layer in which cell adhesion changes due to the action of the photocatalyst accompanying the energy irradiation, and irradiating the substrate for the pattern forming body with energy to cause the photocatalyst to act. It is characterized by forming a cell adhesion change pattern in which cell adhesion is changed.
  • a layer in which the cell adhesion changes due to the action of the photocatalyst accompanying the above-mentioned energy irradiation is formed.
  • irradiating the energy it becomes possible to easily produce a cell array substrate having a cell adhesion change pattern in which the cell adhesion changes in a high-definition pattern. Therefore, it is possible to manufacture the cell array grave material by a simple process without using a treatment solution that adversely affects the cells with a high-definition pattern.
  • the change material can be used without any problem.
  • the first embodiment of the cell array substrate according to the present invention is a cell adhesion formed on the substrate, wherein the cell adhesion is changed by the action of a photocatalyst and a photocatalyst accompanying irradiation of energy.
  • the method for producing a cell array substrate includes a pattern comprising a substrate 1 and a photocatalyst-containing cell adhesion change layer 2 formed on the substrate 1.
  • Forming substrate 3 for forming body Step of forming substrate for pattern forming body (FIG. 1 (a))
  • the photocatalyst-containing cell adhesion changing layer 2 is applied with an energy 5 (Fig. 1 (b)) to form a cell adhesion change pattern 6 in which the cell adhesion of the photocatalyst-containing cell adhesion change layer 2 has changed (Fig. 1 (c)).
  • the formation step is performed.
  • the photocatalyst-containing cell adhesion changing layer having the photocatalyst and the above-mentioned cell adhesion changing material is formed, the photocatalyst is irradiated by energy in the cell adhesion changing pattern forming step.
  • the cell adhesion of the cell adhesion changing material changes due to the action of the photocatalyst in the cell adhesion changing layer containing, and the cell adhesion differs between the part irradiated with energy and the part not irradiated.
  • a change pattern can be formed.
  • the substrate forming step for a pattern forming body in the present embodiment includes a cell adhesion change in which a cell is formed on the substrate, and the cell adhesion is changed by the action of a photocatalyst and a photocatalyst accompanying energy irradiation.
  • This is a step of forming a substrate for a pattern forming body having a photocatalyst-containing cell adhesion change layer containing a material.
  • a coating solution containing a photocatalyst and a cell adhesion changing material is coated on a substrate by a known coating method such as spin coating, spray coating, dip coating, rono coating, or bead coating. And forming a photocatalyst-containing cell adhesion change layer.
  • a photocatalyst-containing layer is formed by irradiating ultraviolet rays and performing curing treatment. can do.
  • the step of forming a cell adhesion change pattern in this embodiment will be described.
  • the photocatalyst-containing cell adhesion change layer is irradiated with energy, and the cell adhesion of the photocatalyst-containing cell adhesion change layer is changed. This is a step of forming a sex change pattern.
  • the cell adhesion of the photocatalyst-containing cell adhesion changing layer in only the area irradiated with energy can be changed. It is possible to form a cell adhesion change pattern, which is a pattern of a region having good adhesion and a region having bad V.
  • the term “energy irradiation (exposure)” in the present embodiment is a concept including irradiation of any energy ray capable of changing the cell adhesion on the surface of the photocatalyst-containing cell adhesion changing layer, and includes visible light. It is not limited to the irradiation of.
  • the wavelength of light used for such energy irradiation is set in a range of 400 nm or less, preferably in a range of 380 nm or less.
  • a preferable photocatalyst used for the photocatalyst-containing cell adhesion change layer is titanium dioxide, and light having the above-described wavelength is preferable as the energy for activating the photocatalysis by the titanium dioxide. It is.
  • Light sources that can be used for such energy irradiation include mercury lamps, metal halide lamps, xenon lamps, excimer lamps, and various other light sources.
  • the amount of irradiation of energy at the time of energy irradiation is necessary for changing the adhesiveness of the cells on the surface of the photocatalyst-containing cell adhesion change layer by the action of the photocatalyst in the photocatalyst-containing cell adhesion change layer.
  • the irradiation amount is necessary for changing the adhesiveness of the cells on the surface of the photocatalyst-containing cell adhesion change layer by the action of the photocatalyst in the photocatalyst-containing cell adhesion change layer.
  • the adhesiveness can be adjusted by adjusting the energy irradiation time, for example. By doing so, it has moderate adhesion Can be surface.
  • Cell adhesion can be evaluated by the water contact angle of the surface as described above, so by adjusting the energy irradiation time to obtain a surface with an appropriate water contact angle, appropriate adhesion can be obtained.
  • fluoralkylsilane when fluoralkylsilane is used as a cell adhesion changing material and 365 ultraviolet rays are irradiated at an intensity of 25.0 mW / sec, an example in which quartz is used as a base material of a photomask is usually 1 ⁇ m. Irradiation for 20 to 600 seconds, preferably 240 to 480 seconds can provide a surface having suitable adhesiveness. The energy irradiation intensity and irradiation intensity can be appropriately adjusted depending on the material of the substrate used, the material for changing the cell adhesion, and the like.
  • the energy irradiation direction is pattern energy irradiation or laser drawing irradiation via a photomask from either direction of the base material side or the photocatalyst-containing cell adhesion change layer side. You can go.
  • the substrate is opaque, it is necessary to irradiate energy from the photocatalyst-containing cell adhesion change layer side.
  • a second embodiment of the cell array substrate according to the present invention includes a substrate, a photocatalyst treatment layer containing a photocatalyst formed on the substrate, and an energy irradiation formed on the photocatalyst treatment layer.
  • the method for producing the cell array substrate according to the present embodiment includes firstly a substrate 1, a photocatalyst treatment layer 7 formed on the substrate 1, and a photocatalyst treatment layer 7 on the substrate.
  • the above-mentioned cell adhesion changing material layer 8 is irradiated with energy 5 using, for example, a mask 4 (see FIG. 2). 2 (b)) to form a cell adhesion change pattern 6 in which the cell adhesion of the cell adhesion change material layer 8 is changed (FIG. 2 (c)).
  • the photocatalyst contained in the photocatalyst treatment layer is irradiated by irradiating energy in the cell adhesion change pattern forming step. Changes the cell adhesion in the material layer, and forms a cell adhesion change pattern in which the adhesiveness to cells differs between the part irradiated with energy and the part not irradiated. It is.
  • each step of the present embodiment will be described.
  • the substrate forming step for a pattern forming body in the present embodiment includes: a photocatalyst treatment layer containing a photocatalyst formed on the base material; and a photocatalyst formed on the photocatalyst treatment layer and associated with energy irradiation.
  • This is a step of forming a substrate for a pattern forming body having a cell adhesion changing material layer containing a cell adhesion changing material whose cell adhesion changes by an action.
  • the photocatalyst treatment layer formed in this step may be composed only of a photocatalyst, or may be formed by mixing with a binder.
  • Examples of a method for forming a photocatalyst treatment layer composed of only a photocatalyst include a vacuum manufacturing method such as a sputtering method, a CVD method, and a vacuum evaporation method, and, for example, when the photocatalyst is titanium dioxide, an amorphous titanium And then a phase change to crystalline titaure by firing.
  • the photocatalyst treatment layer By forming the photocatalyst treatment layer by the vacuum film formation method, it is possible to obtain a uniform film and a photocatalyst treatment layer containing the photocatalyst, and thereby the cell adhesion on the cell adhesion change material layer It is possible to change the cell adhesion on the cell adhesion change material layer more efficiently than when using a binder because it is possible to uniformly change the cell adhesion and it consists only of a photocatalyst.
  • the photocatalyst treatment layer is a mixture of photocatalyst and pinda
  • It can be formed by dispersing a photocatalyst and a binder together with other additives as necessary in a solvent to prepare a coating solution, and applying this coating solution on a transparent substrate.
  • a solvent to be used an alcohol-based organic solvent such as ethanol or isopropanol is preferable.
  • Coating can be performed by a known coating method such as spin coating, spray coating, dip coating, roll coating, or bead coating.
  • an ultraviolet-curable component is contained as a binder
  • the photocatalyst-treated layer can be formed by performing a curing treatment by irradiating ultraviolet rays.
  • a coating solution containing the above-mentioned cell adhesion changing material is applied by a known application method such as spin coating, spray coating, dip coating, lonole coating, or bead coating, A cell adhesion changing material layer can be formed.
  • a coating solution containing the above-mentioned cell adhesion changing material is applied by a known application method such as spin coating, spray coating, dip coating, lonole coating, or bead coating, A cell adhesion changing material layer can be formed.
  • an ultraviolet curable component is contained as a binder
  • the photocatalyst treatment layer can be formed by performing a curing treatment by irradiating ultraviolet rays.
  • the substrate, the photocatalyst treatment layer, and the cell adhesion changing material layer used in this step are the same as those described in the section of the second embodiment of “1. It is.
  • the step of forming a cell adhesion change pattern in this embodiment will be described.
  • the cell adhesion change material layer is irradiated with energy, and the cell adhesion change pattern of the cell adhesion change material layer in which the cell adhesion is changed is obtained. This is the step of forming.
  • the energy irradiation method, irradiation energy, and energy irradiation amount in this step are the same as those in the first embodiment described above.
  • a third embodiment of the cell array substrate according to the present invention comprises: a substrate; A substrate forming step for forming a pattern forming substrate having a cell adhesion changing material layer containing a cell adhesion changing material, wherein the cell adhesion changes by the action of a photocatalyst accompanying irradiation, and a-
  • the substrate for a pattern forming body, and a photocatalyst-containing layer-side substrate having a photocatalyst-containing layer and a substrate containing a photocatalyst are arranged such that the cell adhesion changing material layer and the photocatalyst-containing layer face each other.
  • the method for producing a cell array substrate includes a pattern including a substrate 1 and a cell adhesion changing material layer 8 formed on the substrate 1.
  • Forming substrate 3 pattern forming substrate forming step (FIG. 3 (a))
  • the substrate 11 and the photocatalyst containing layer 12 formed on the substrate 11 are combined.
  • a photocatalyst-containing layer-side substrate 13 is prepared having the photocatalyst-containing layer 12 of the photocatalyst-containing layer-side substrate 13 and the cell adhesion changing material layer 8 facing each other. Irradiation with energy 5 (Fig. 3 (b)) to form a cell adhesion change pattern 6 in which the cell adhesion of the cell adhesion change material layer 8 has changed (Fig. 3 (c)) A change pattern forming step is performed.
  • the layer is contained in the photocatalyst containing layer by irradiating energy using the photocatalyst containing layer side substrate.
  • the action of the photocatalyst changes the cell adhesiveness in the cell adhesiveness change material layer, and forms a cell adhesiveness change pattern in which the adhesiveness to the cell differs between the part irradiated with energy and the part not irradiated. You can do it.
  • each step of the present embodiment will be described.
  • the substrate forming step for a pattern forming body according to the present invention includes a substrate and a cell adhesion changing material formed on the substrate and changing the cell adhesion by the action of a photocatalyst accompanying energy irradiation. This is a step of forming a substrate for a pattern forming body having a cell adhesion changing material layer. .
  • a coating solution containing a cell adhesion changing material is coated on a substrate, for example, by spin coating, spray coating, dip coating, lonole coating, bead coating, etc. It can be carried out by coating by a known coating method to form a cell adhesion changing material layer.
  • a photocatalyst-containing layer can be formed by performing a curing treatment by irradiating ultraviolet rays.
  • the base material and the cell adhesion changing material used in this step the same materials as those described in the section of the first embodiment of the above-mentioned “I. Cell array base material” should be used. Can be.
  • the adhesiveness change pattern forming step in the present embodiment comprises the step of: forming the substrate for a pattern forming body; a photocatalyst-containing layer containing a photocatalyst; and a photocatalyst-containing layer-side substrate having a substrate; After arranging the layer and the photocatalyst containing layer so as to face each other, irradiating energy from a predetermined direction to form a cell adhesion change pattern in which the cell adhesion of the cell adhesion change material layer is changed. is there.
  • the photocatalyst-containing layer and the cell adhesion-modifying material layer on the photocatalyst-containing layer-side substrate are arranged so as to face each other, and energy is irradiated in a target pattern, so that only the area irradiated with the energy is exposed. It is possible to change the cell adhesion of the cell adhesion changing material layer, and to form a cell adhesion changing pattern, which is a pattern of a high-definition area with good cell adhesion and a poor area. .
  • the photocatalyst-containing layer-side substrate and the energy irradiation used in this step will be described.
  • the photocatalyst-containing layer-side substrate used in the present embodiment has at least a photocatalyst-containing layer and a base, and usually has a thin-film-shaped photocatalyst-containing layer formed on a substrate by a predetermined method. ⁇ ⁇ . Further, as the substrate on the photocatalyst-containing layer side, a substrate on which a light-shielding portion on the photocatalyst-containing layer side formed in a pattern and a primer layer can be used.
  • the cell adhesion changing material layer and the photocatalyst-containing layer on the photocatalyst-containing layer-side substrate are opposed to each other with a predetermined gap therebetween. Due to the action of the photocatalyst-containing layer, a material that changes cell adhesion The cell adhesion of the layer 'is changed, and after irradiation with energy, the photocatalyst-containing layer-side substrate is removed to form a cell adhesion change pattern.
  • each configuration of the photocatalyst-containing layer-side substrate will be described.
  • the photocatalyst containing layer used in the present embodiment contains at least a photocatalyst and may or may not have a binder, and is the same as the photocatalyst treatment layer of the second embodiment described above. .
  • the photocatalyst-containing layer used in the present embodiment may be formed on the entire surface of the substrate 11 as shown in FIG. 3, for example, but may be formed on the substrate 1 as shown in FIG.
  • the photocatalyst containing layer 12 may be formed in a pattern on 1. .
  • a cell adhesion change pattern can be formed on the layer.
  • the method for patterning the photocatalyst-containing layer is not particularly limited, but can be performed by, for example, a photolithography method or the like.
  • the irradiation direction may be any direction as long as the energy is applied to the portion where the photocatalyst-containing layer and the cell adhesion changing material layer oppose each other.
  • the energy to be applied is particularly parallel light. There is an advantage that it is not limited to parallel ones.
  • the photocatalyst-containing layer-side substrate 13 has at least a substrate 11 and a photocatalyst-containing layer 12 formed on the substrate 11. is there.
  • the material constituting the substrate to be used is appropriately selected depending on, for example, the direction of irradiation of energy described later, whether the obtained substrate for cell array needs transparency, and the like.
  • the substrate used in the present embodiment is a flexible substrate, for example, a resin Or a non-flexible material such as a glass substrate.
  • an optical waveguide such as an optical fiber can be used as another form of the base. These are appropriately selected depending on the energy irradiation method.
  • an anchor layer may be formed on the substrate in order to improve the adhesion between the substrate surface and the photocatalyst-containing layer. Examples of such an anchor layer include silane-based and titanium-based coupling agents.
  • the photocatalyst-containing layer-side substrate used in the present embodiment may be one having a photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion formed in a pattern.
  • the photocatalyst-containing layer-side substrate having such a photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion can be in the following two modes depending on the position where the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion is formed.
  • a photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion 14 is formed on a substrate 11, and a photocatalyst-containing layer 12 is formed on the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion 14.
  • This is an embodiment in which the catalyst-containing layer-side substrate is used.
  • the other is an embodiment in which a photocatalyst-containing layer 12 is formed on a substrate 11 and a photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion 14 is formed on the photocatalyst-containing layer-side substrate as shown in FIG. 6, for example. It is.
  • the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion is disposed closer to the portion where the photocatalyst-containing layer and the cell adhesion changing material layer are disposed, as compared to the case where a photomask is used. Since the influence of energy scattering in the substrate or the like can be reduced, it is possible to perform pattern irradiation of the energy remarkably accurately.
  • the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion is formed on the photocatalyst-containing layer
  • the photocatalyst-containing layer and the cell adhesion changing material layer are arranged at predetermined positions.
  • the light-shielding portion on the photocatalyst-containing layer side can be used as a spacer for making the gap constant. It has the advantage that it can be.
  • a spacer may be separately provided in the light shielding portion.
  • the photocatalyst-containing layer and the cell adhesion changing material layer are arranged facing each other with a predetermined gap, the light-shielding portion on the photocatalyst-containing layer side and the cell adhesion changing material layer are brought into close contact with each other.
  • the predetermined gap By arranging it in a state in which it is positioned, it is possible to make the predetermined gap accurate, and in this state, by irradiating energy from the substrate on the photocatalyst containing layer side, the cell adhesion on the cell adhesion change material layer This makes it possible to accurately form the gender change pattern.
  • the method of forming such a photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion is not particularly limited, and may be appropriately selected according to the characteristics of the formation surface of the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion, the shielding property against required energy, and the like. Used.
  • it may be formed by forming a metal thin film of chromium or the like having a thickness of about 1000 to 2000 A by a sputtering method, a vacuum evaporation method, or the like, and patterning the thin film.
  • a sputtering method a normal patterning method such as sputtering can be used.
  • a method in which a layer in which light-shielding particles such as carbon fine particles, metal oxides, inorganic pigments, and organic pigments are contained in a resin binder may be formed in a pattern.
  • the resin binder to be used include one or a mixture of two or more resins such as polyimide resin, acrylic resin, epoxy resin, polyacryloamide, polyvinyl alcohol resin, gelatin, casein, and cellulose.
  • a photosensitive resin, and an O / W emulsion type resin composition for example, an emulsion of reactive silicone can be used.
  • the thickness of such a resin light shielding portion is 0.5 to 1
  • a method of patterning the resin light-shielding portion a commonly used method such as a photolithography method and a printing method can be used. >
  • the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion is formed in two cases, ie, the position of the substrate and the photocatalyst-containing layer, and the surface of the photocatalyst-containing layer. It is also possible to adopt a mode in which a light-shielding portion on the photocatalyst-containing layer side is formed on the surface on the non-coated side. In this embodiment, for example, a case where a photomask is brought into close contact with the surface to such an extent that it can be detached and the like is considered. It can be suitably used when changing the ⁇ pattern in small units. d. Primer layer
  • a primer layer used for the photocatalyst-containing layer-side substrate of the present embodiment will be described.
  • a primer layer may be formed between the layer-side light-shielding portion and the photocatalyst-containing layer.
  • this primer layer has a cell adhesive property due to the action of the photocatalyst.
  • the primer layer prevents impurities present not only in the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion but also in the opening formed between the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portions from affecting the action of the photocatalyst. Therefore, it is preferable that the primer layer be formed over the entire light-shielding portion on the photocatalyst-containing layer side including the opening.
  • the primer layer in this embodiment is not particularly limited as long as it has a structure in which the primer layer is formed so that the photocatalyst-containing layer-side light-shielding portion of the photocatalyst-containing layer-side substrate does not come into contact with the photocatalyst-containing layer.
  • the material constituting the primer layer is not particularly limited, but an inorganic material that is not easily decomposed by the action of a photocatalyst is preferable.
  • Specific examples include amorphous silicon.
  • the precursor of the Mujo type silica is represented by the general formula S i X 4, X is halogen, main butoxy group, E butoxy group, or Asechiru group
  • Preference is given to silanols, which are certain silicon compounds and their hydrolysates, or polysiloxanes having an average molecular weight of not more than 1000.
  • the thickness of the primer layer is preferably in the range of 0.001 ⁇ to 1, and particularly preferably in the range of 0.001 ⁇ m to 0.1 ⁇ .
  • the cell adhesion-changing material layer and the photocatalyst-containing layer of the photocatalyst-containing layer-side substrate are arranged so as to face each other, and are irradiated with energy from a predetermined direction to achieve cell adhesion. It is possible to form a pattern in which the cell adhesion of the property change material layer has changed.
  • the above arrangement means a state in which the action of the photocatalyst substantially extends to the surface of the cell adhesion changing material layer.
  • the photocatalyst containing layer and the cell adhesion changing material layer are arranged at intervals. This gap is preferably 200 ⁇ or less.
  • the gap is particularly preferably 0.2: m in consideration of the fact that the pattern precision is extremely good, the sensitivity of the photocatalyst is high, and the efficiency of the cell adhesion change of the cell adhesion change material layer is good.
  • l 0; m, preferably 1 m to 5.
  • Such a range of the gap is particularly effective for a small-area cell-adhesion-change material layer in which the gap can be controlled with high accuracy.
  • the contact layer does not contact and the fine gap as described above is formed in the photocatalyst-containing layer. It is extremely difficult to form between the side substrate and the cell adhesion changing material layer. Therefore, when the cell adhesion changing material layer has a relatively large area, the gap is preferably in the range of 10 to 100 in, particularly in the range of 10 to 20 m. By setting the gap within such a range, problems such as a reduction in pattern accuracy such as blurring of the pattern and a problem such as deterioration in sensitivity of the photocatalyst and deterioration in the efficiency of cell adhesion change do not occur. Further, it has an advantageous effect that unevenness in cell adhesion change on the cell adhesion change material layer does not occur.
  • the gap in the positioning device between the photocatalyst-containing layer-side substrate and the cell adhesion changing material layer in the energy irradiation device must be set. , 1 Q! ⁇ 200, especially 10 ⁇ m ⁇
  • the photocatalytic sensitivity may be significantly deteriorated. This is because it is possible to arrange the photocatalyst-containing layer-side substrate and the cell adhesion / change property material layer without contact.
  • such an arrangement state need only be maintained at least during energy irradiation.
  • the type of energy to be irradiated the irradiation method, the irradiation amount, and the like are the same as those described in the first embodiment.
  • the cell adhesion substrate in which cells are adhered in a pattern to the cell array substrate, is adhered to the cell array substrate by closely adhering to the cell culture substrate. Transferring the cells in a patterned state onto a cell culture substrate.
  • FIG. 7 An outline of one embodiment is shown in FIG. 7.
  • the cell array substrate (15) in which the cell adhesion favorable region (17) and the cell adhesion inhibition region (18) are formed in a pattern is shown.
  • the cells are seeded and the cells are adhered in a pattern to form a cell adhesion substrate.
  • the cell adhesion substrate is brought into close contact with the cell culture substrate (16) to transfer and culture the cells. Then, if necessary, the cells are stimulated with the cell stimulating factor (22).
  • the cell adhesion substrate of the present invention is a cell in which regions having different cell adhesion, which are composed of a cell adhesion good region and a cell adhesion inhibition region, are patterned on the substrate. The cell is adhered to the region having good cell adhesion of the above-mentioned substrate for cell array having an adhesion change pattern.
  • FIG. 12 shows the procedure of the method for producing the cell adhesive substrate according to the present invention
  • FIG. 13 shows the state of the cell adhesive substrate for each step of this procedure.
  • the cell array substrate of the present invention has a cell adhesion change pattern composed of a cell adhesion good region and a cell adhesion inhibition region as described above, as shown in FIG. 13 (a).
  • the cells are uniformly seeded on the surface of the cell array substrate (step 1), and the cells are cultured for a certain period of time (step 2) as shown in Fig. 13 (b).
  • step 3 After washing to remove extra cells (step 3), the force of the cells adhering to the area with good cell adhesion, as shown in Fig. 13 (c), A cell-adhesive substrate on which a non-adhered cell pattern is formed is obtained.
  • the pattern on the cell adhesion substrate of the present invention is not particularly limited, but is determined according to the purpose of use and the target of use.
  • a capillary network or a neural network may be an artificially designed pattern or a pattern actually designed based on a pattern existing in a living body.
  • a pattern that is arbitrarily designed according to the size and shape of the recipient is acceptable.
  • a simple pattern having a cell-adhesion-inhibited region all around or a part of a region having good cell-adhesiveness is also a preferable example from the viewpoint of ease of use for a practitioner. If an area where cells are not adhered exists in an appropriate area, the area can be plucked with a medical instrument or the like, which is advantageous when performing a treatment or moving to the next step.
  • the cells to be seeded on the cell array substrate are not particularly limited, but the present invention is suitably used for cells having adhesive properties.
  • Such cells include, for example, liver Endothelial cells such as hepatocytes, vascular endothelial cells and corneal endothelial cells, epidermal cells such as fibroblasts and epidermal keratinocytes, epithelial cells such as tracheal epithelial cells, gastrointestinal epithelial cells and cervical epithelial cells
  • Muscle cells such as cells, breast cells, smooth muscle cells and cardiomyocytes, kidney cells, knee islets of Langerhans, nerve cells such as peripheral nerve cells and optic nerve cells, chondrocytes and bone cells.
  • the present invention is particularly preferably used for vascular endothelial cells.
  • the vascular endothelial cells may be cells isolated and cultured from existing blood vessels, or may be cells differentiated into vascular endothelial cells in culture.
  • Existing blood vessels include large blood vessels such as arterioles, umbilical veins, and blood vessels in the body network to microvessels.
  • the cells that differentiate into endothelial cells in culture include bone marrow, umbilical cord blood, and peripheral blood.
  • Existing endothelial cell progenitor cells, adipocytes, and ES cells are exemplified.
  • Appropriate cells can be selected according to the purpose of functioning by transferring these cells to a cell culture substrate and culturing them. These cells can be primary cells taken directly from a tissue or organ, or they can be passaged several times.
  • the cells to be cultured in the present invention may be any of ES cells, which are undifferentiated cells, pluripotent stem cells having pluripotency, unipotent stem cells having unipotency, and cells that have undergone differentiation. Good.
  • the culture sample containing the target cells is dispersed in advance by disintegrating the living tissue into small pieces and dispersing it in a liquid, and separation treatment to remove cells other than the target cells and other impurities such as cell debris in the living tissue. It is preferable to perform the following.
  • a culture sample containing the target cells Prior to seeding the cells on the cell array substrate, it is preferable to increase the number of target cells by preliminarily culturing a culture sample containing the target cells by various culturing methods.
  • Normal culture methods such as monolayer culture, coated dish culture, and culture on gel can be used for the preliminary culture.
  • one of the methods for culturing cells by adhering them to the surface of a support is a method already known as a so-called monolayer culture method. Specifically, for example, by storing a culture sample and a nutrient solution in a culture vessel and maintaining it under a certain environmental condition, only specific living cells adhere to the surface of a support such as a culture vessel. Proliferate in a state.
  • Apparatus and processing conditions to be used are according to the usual monolayer culture method.
  • materials such as polylysine, polyethyleneimine, collagen and gelatin can be selected so that the cells can adhere and proliferate well, glass dishes, plastic dishes, slide glass, Power
  • a chemical substance capable of satisfactorily adhering and growing cells that is, a so-called cell adhesion factor, is also applied.
  • the cells pre-cultured as described above are seeded on a cell array substrate in a culture solution as shown in FIG. 13 (a).
  • a culture solution as shown in FIG. 13 (a).
  • the method and amount of cells to be seeded There is no particular limitation on the method and amount of cells to be seeded. For example, it is described in “Analysis of tissue culture by the Japan Society for Tissue Culture (1991)” published by Asakura Shoten, pp. 26-270. Can be used.
  • the cells are seeded in a sufficient amount so that they do not need to be grown on the cell array substrate so that the cells adhere in a monolayer.
  • the cells are seeded so as to contain the cells. This is because when cells aggregate, the organization of the cells is inhibited, and even if they are transferred to a cell culture substrate and cultured, their functions are reduced. Specifically, seeding is performed at about 2 ⁇ 10 5 per 400 mm 2 .
  • the cells are seeded in a region having good cell adhesion by culturing the cell array substrate in which the cells are seeded in a culture solution.
  • a culture medium a medium commonly used in the art can be used.For example, depending on the type of cells used, MEM medium, BME medium, DME medium, ⁇ medium, IMEM medium, ES medium , DM-160 medium, Fisher medium, F12 medium, WE medium, RPMI medium, etc. Published by Breakfast Bookstore “The 3rd edition of tissue culture technology edited by the Japanese Society of Tissue Culture” The basics described on page 81 A medium can be used. Furthermore, a serum component (such as fetal bovine serum) or the like added to these media, or a commercially available serum-free medium such as kGibco serum-free medium (Invitrogen) can be used.
  • a serum component such as fetal bovine serum
  • a commercially available serum-free medium such as kGibco serum-free medium (Invitrogen)
  • the step of culturing the cells aims at adhering the cells to the region having good cell adhesion of the cell array substrate.
  • Culture time is usually 18 ⁇
  • the cells in the cell adhesion-inhibited region of the cell array substrate are washed away when the cells are washed away. In both cases, the cells in the area with good cell adhesion remain on the cell array substrate with an appropriate adhesive force, so that the remaining cells can be easily transferred to the cell culture substrate.
  • the temperature for culturing is usually 37 ° C. Utilizing such C 0 2 cell culture system, preferably cultured under C o 2 atmosphere. After culturing, by washing the cell array base forest, the non-adhered cells are washed away, and the cell adhesion substrate of the present invention in which the cells are arranged in a pattern can be produced.
  • a cell adhesion substrate with a cell adhesion change pattern in which regions having optimal cell adhesion are formed for each cell to be arranged in a pattern By using a cell adhesion substrate with a cell adhesion change pattern in which regions having optimal cell adhesion are formed for each cell to be arranged in a pattern, multiple types of cells can be used for the same cell arrangement. It can also be bonded in the desired pattern on the substrate.
  • FIG. 14 shows the procedure of the cell transfer and culture method according to the present invention
  • FIG. 15 shows the state of the cell adhesion substrate and the cell culture substrate for each step of this procedure.
  • the cell adhesion substrate in which the cells are adhered to the cell adhesion good region of the cell array substrate is brought into close contact with the cell culture layer of the cell culture substrate (step 1)
  • the cells are cultured so that the cells adhere to the cell culture layer of the cell culture substrate (step 5).
  • the adhesive force of the cells to the area with good cell adhesion is larger than the adhesive force to the cell culture layer.
  • the cells are transferred to the cell culture substrate (step 6).
  • the cells are functionalized as shown in Fig. 15 (d), and if they are vascular endothelial cells, the ring structure is reproduced (step 7).
  • the substrate for cell culture to which the cells are transferred is not particularly limited as long as the cells can be adhered and cultivated. Those having a cell culture layer having strong adhesion to cells are preferred. For example, the following reference shows that it is desirable that the surface of the cell culture substrate is soft and the cell adhesion is not too high in order to stably organize cells. .
  • Mechanochemical switching between growth and differentiation during fibroblast growth factor-stimulated angiogenesis in vitro Role of extracellular matrix. Donald E. Ingber et al., J. of cell biol. (1989) P. 317.
  • a collagen sheet or the like can be used as a cell culture substrate to which cells can be adhered and that can be cultured.
  • any material may be used as long as it does not inhibit the culture of cells on the cell culture layer.
  • glass, polystyrene, polyethylene terephthalate, polytetracarbonate, polyimide, or the like is used.
  • the substrates exemplified for the substrate used for the cell array can also be used.
  • the cell culture layer contains a chemical substance or a cell adhesion factor that allows cells to adhere and grow well on the surface.
  • a chemical substance or a cell adhesion factor that allows cells to adhere and grow well on the surface.
  • specific examples include various types of extracellular matrices such as collagen, fibronectin, laminin, vitronectin, cadherin, gelatin, peptides and integrins, and these may be used alone or in combination of two or more. You may. From the viewpoint of high cell adhesion, it is more preferable to use various collagens, and among the various collagens, it is particularly preferable to use type I collagen and type IV collagen.
  • a cell culture layer can also be formed by culturing extracellular matrix-producing cells such as osteoblasts to generate extracellular matrix.
  • the shape of the cell culture substrate is not particularly limited, as long as it has a surface to which cells can be transferred.
  • a culture dish such as a Petri dish or a multi-dish can be used.
  • a culture plate made of glass or the above-mentioned plastic can be used.
  • the transfer of cells from the cell adhesion substrate to the cell culture substrate can be performed by contacting the cell adhesion surface of the cell adhesion substrate with the surface of the cell culture substrate, for example, a cell culture layer. By culturing the cell adhesion substrate and the cell culture substrate in contact with each other, the cells can be transferred. Usually, the cultivation is 0_Rei 2 concentration of 5% in at 37, carried out 3-9 6 hours.
  • the cell culture is performed in a culture solution.
  • the cell culture may be performed in a state where the cell adhesion substrate and the cell culture substrate are in contact with each other, or the cell adhesion substrate may be removed to remove the cell adhesion substrate.
  • Cell culture may be performed using only the material. After culturing the cells for a certain period of time with the cell adhesion substrate and the cell culture substrate in contact with each other, it is preferable to remove the cell adhesion substrate and further perform cell culture.
  • the culture conditions are not particularly limited, and the cells to be cultured Can be selected by species. As the culture solution, the same one as described above can be used. ' ⁇ --'
  • the cell-adhesive substrate of the present invention can easily transfer cells adhered in a pattern to a cell culture substrate in a patterned state, and after the transfer, wash the cells again. Since it can be used as a substrate for cell array to be seeded, a cell pattern can be formed again, transferred and cultured. Therefore, it is not necessary to prepare a patterned culture substrate for culturing cells in a pattern as in the prior art every time of culturing. The cells can be arranged in a pattern just by doing so. Therefore, a cell pattern can be created inexpensively and efficiently. In addition, since it is not necessary to form a special pattern on the cell culture substrate, it is possible to use a material that is usually used for cell culture. It is not affected by harmful substances.
  • the substrate for cell culture of the present invention also includes a biomaterial.
  • the biomaterial means a material derived from a living body, and includes, for example, tissues and organs derived from a living body. Specific examples include organs such as lung, heart, liver, kidney, brain, stomach, small intestine, and large intestine, and tissues such as bone, cartilage, skin, muscle, eyeball, tongue, and peritoneum.
  • Cell aggregates such as cell sheets and spheroids can also be used as cell culture substrates.
  • the cells constituting the cell aggregate include cells that produce extracellular matrix, such as stromal cells, epithelial cells, and parenchymal cells. Specifically, aggregates such as osteoblasts, fibroblasts, hepatic parenchymal cells, and feeder cells can be preferably used.
  • the cells can be cultured in a pattern directly on tissues and organs.
  • a combination of a biomaterial to which cells are transferred and cells to be transferred and cultured on the biomaterial include liver and vascular endothelial cells, dermis and intravascular cells, osteoblast layer and vascular endothelial cells, fibroblasts Cell layer and hepatocyte; endothelial cell layer and hepatocyte; feeder cell layer and corneal epithelial cell.
  • tissue is damaged when a blood vessel previously formed with a culture substrate or the like is peeled off from the substrate and transferred to the organ surface.
  • transplantation can be performed without waiting for the complete formation of capillaries, so that rapid transplantation is possible. Becomes possible. Since vascular endothelial cells transferred linearly or in a network to the organ surface are easily organized, the formation of capillaries in the body is promoted. Furthermore, according to the present invention, when transferring the cells, the treatment for peeling the cells from the cell array substrate is unnecessary, so that tissue damage may not be a problem.
  • the present invention also provides a method for adhering cells derived from a subject to the cell array substrate of the present invention in a pattern, and then attaching the cells to a living tissue of the subject, such as the above organs, skin, and bone.
  • the present invention relates to a method for reproducing a subject's fibrous tissue by transferring the cells in a state of being patterned on the surface and growing the cells.
  • the subject is not particularly limited, but includes, for example, mammals, and preferably humans.
  • skin tissue can be regenerated in a subject by directly transferring dermal fibroblasts or epithelial cells to a damaged skin part in a living body by the method of the present invention to proliferate the cells. It is also possible to promote the regeneration of the skin by transferring vascular endothelial cells in a pattern-like manner and proliferating them in the damaged area of the subject to form capillaries. Furthermore, by arranging and culturing nerve cells in a pattern, it becomes possible to create neural circuits and neural cell computers.
  • a cell stimulating factor in the culture of the transcribed cells, the addition of a cell stimulating factor, if necessary, can enhance the cell activity or express the functions inherent to the cells to promote organization.
  • the cell stimulating factor any substance having an activity of promoting cell organization can be used.
  • vascular endothelial cell growth factor (DEGF) vascular endothelial cell growth factor
  • FGF fibroblast growth factor
  • NGF nerve growth Factor
  • EGF epidermal growth factor
  • IGF insulin-like growth factor
  • FIG. 1 is a process chart showing an example of the method for producing a cell array substrate of the present invention.
  • FIG. 2 is a process chart showing another example of the method for producing a cell array substrate of the present invention.
  • FIG. 3 is a process chart showing another example of the method for producing a cell array substrate of the present invention.
  • FIG. 4 is a schematic sectional view showing an example of the photocatalyst-containing layer-side substrate according to the present invention.
  • c 6 is a schematic sectional view showing another example of the photocatalyst-containing layer side substrate in the present invention, c illustrations that are schematic cross-sectional view showing another example of the photocatalyst-containing layer side substrate in the present invention
  • FIG. 7 is a schematic diagram showing an example of the method of the present invention. '
  • FIG. 8 is a schematic diagram showing an example of the method of the present invention.
  • FIG. 9 is a photograph showing cells arranged on a cell array substrate.
  • FIG. 10 is a photograph showing a cell tissue formed by the present invention.
  • FIG. 11 is a photograph showing a cell tissue formed by the present invention.
  • FIG. 12 shows the procedure of the method for producing a cell adhesion substrate according to the present invention.
  • FIG. 13 shows the state of the cell adhesion substrate at each step of the procedure shown in FIG.
  • FIG. 14 shows the procedure of the cell transcription and culture method according to the present invention.
  • FIG. 15 shows the state of the cell adhesion substrate and the cell culture substrate in each step of the procedure shown in FIG. '
  • Fluoroalkylsilane TSL8233 (GE Toshiba Silicone) 1.5 g, tetramethoxysilane TSL8114 (GE Toshiba Silicone) 5.0 g, 5.0 X 10 3 N HC 12.4 g were mixed for 12 hours. This was diluted 10-fold with isopropyl alcohol.
  • this solution 2.Og was applied to a 10 cm x 10 cm soda glass substrate by a spin coater at 1000 rpm for 5 seconds, and the substrate was dried at a temperature of 150 ° C for 10 minutes.
  • a spin coater 1000 rpm for 5 seconds, and the substrate was dried at a temperature of 150 ° C for 10 minutes.
  • composition for a photocatalyst-containing layer is spin-coated on a pattern surface of a line-and-space negative photomask (quartz) in which line portions having a width of 60 m and space portions having a width of 300 m are alternately arranged.
  • a line-and-space negative photomask quartz
  • line portions having a width of 60 m and space portions having a width of 300 m were alternately arranged.
  • Figure 9 shows the results of a photograph taken from above the cell array substrate (with an exposure time of 360 seconds).
  • Table 1 shows the evaluation results of the water contact angle and the cell adhesiveness of the exposed portion at each exposure time.
  • Cultured cells include carotid artery-derived vascular endothelial cells (Onodera M, Morita I, Mano Y, Murota S: Differential effects of nitric oxide on tne activity of prostaglandin endoperoxide h synthase-1 and-2 in vascular endothelial cells, Prostag, Leukotress 62: 161-167, 2000) l-algebra teens to 17s Was used.
  • Vascular carotid artery-derived vascular endothelial cells which became confluent with a 10 cm dish, were treated with 0.05% trypsin-EDTA and detached. Coulter examined cell number in one counter TM ZM (Coulter Counter), and a 1 0 6 Zm I.
  • the cell array substrate (having an exposure time of 360 seconds) prepared in Example 1 was sterilized with an auto crepe. Plated on culture dishes this cell array for substrate are placed (Heraeus Quadriprem TM 76 X 26 mm , 1 97 6 mm 2) of the endothelial cells in 1 Weru per 0 6/5 m l, 24 h CO 2 cells Incubation was performed in a culture device.
  • a substrate for cell culture was prepared.
  • the substrate for cell array was placed on the substrate for cell culture such that the cell adhering surface of the substrate for cell array to which the vascular endothelial cells were adhered was in contact with the above matritas. Placed in a CO 2 cell culture device for 10 minutes. Subsequently, the culture dish was taken out, and 5 ml of a culture solution (MEM medium containing 5% fetal bovine serum) was added and cultured for 24 hours. In this state, the cell array substrate was removed with tweezers, and the cells were further cultured for 1 to 3 days.
  • MEM medium containing 5% fetal bovine serum
  • FIG. 10 is a photograph of the cell tissue on the cell culture substrate taken from above.
  • Fig. 11 shows a cross-sectional view of the formed vascular tissue tube, and the white part at the center of the tube is the "lumen".
  • the line part (opening) with a width of 60 ⁇ and the space part with a width of 300 Aim (shading) Parts are alternately arranged, and the width is orthogonal to the line and space pattern.
  • Negative photomask (quartz) with 60 m line sections (openings) -2.5 cm apart was coated with a photocatalyst layer in the same manner as in Example 1, and the photocatalyst used in this example was used. A photomask was created.
  • a photocatalytic photomask was placed on the coated surface of the coated film so that the photocatalytic surface was opposite to the coated surface of the film. From the substrate side of the photo mask, ultraviolet rays exiting from the exposure apparatus 1 2 J ⁇ cm one 2 was irradiated, to form a film made of a cell array substrate for. The exposure time was 7 minutes, and the water contact angle of the obtained cell array container agent in the region having good cell adhesion was 36.8 °.
  • Human umbilical vein endothelial cells were collected from the umbilical cord and cultured (separated and cultured using 0.25% trypsin). In this example, cultured human umbilical vein endothelial cells up to the fifth generation were used.
  • the cell array substrate for placed in a culture dish (Heraeus Quadriprem TM 7 6 X 2 6 mm), seeded the endothelial cells 1 0 6 Z 5 m 1 per Uweru, 2 4 ⁇ CO 2 cell culture Incubated with the device.
  • a culture dish Heraeus Quadriprem TM 7 6 X 2 6 mm
  • Growth Factor Reduced Matrigel TM Matrix 1 (BD bioscience) was added dropwise to another culture dish at a temperature of 4 ° C at 200 ° C and left at room temperature for several minutes to prepare a substrate for cell culture. .
  • the cell array substrate was allowed to stand on the cell culture substrate such that the matrix adhered to the cell adhesion surface of the cell array substrate to which the human umbilical vein endothelial cells had been adhered the previous day.
  • the mixture was allowed to stand in a clean bench for 2 minutes, and 2 ml of a culture solution (RPI, medium containing 20% fetal calf serum) was added and cultured for 24 hours.
  • RPI fetal calf serum
  • a cell array substrate was prepared in the same procedure as in Example 3 except that a 25-m-thick polyester film 25-T60 (Lumirror, Toray) was used.
  • Example 2 Using the same vein endothelial cells derived from the genus Pepsis artery as in Example 2, the cells were cultured on the substrate for cell arrangement in the same manner as in Example 2.
  • vascular endothelial cells derived from Pectid artery were cultured in the same manner as in Example 2.
  • Mouse osteoblast-like cells (MC3T3E1) were seeded on a new culture dish, and after confirming that they had become confluent, the cells were further incubated for 2 days or more to promote extracellular matrix production.
  • the cell array substrate was placed on the osteoblasts so that the cell adhesion surface of the cell array substrate to which the vascular endothelial cells were adhered and the osteoblasts were adhered.
  • the mixture was allowed to stand in a clean bench for 5 minutes, and 5 ml of a culture solution (MEM medium containing 5% fetal calf serum) was added, followed by culturing for 48 hours. In this state, the cell array substrate was removed with tweezers, and the cells were further cultured for 1 to 3 days.
  • cells can be arranged in a fine pattern and cultured by a simple method without damaging the cells.

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Abstract

 本発明は、基材上に細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域がパターン化された細胞接着性変化パターンを有する細胞配列用基材表面に細胞を接着させる工程、接着した細胞を細胞培養用基材にパターン化された状態で転写する工程、及び転写された細胞を培養する工程を含む細胞培養方法に関する。

Description

明 細 書 人工細胞組織の作成方法、 及びそのための基材 技術分野
本発明は、 細胞をパターン化した状態で培養する方法、 該方法によって作成さ れる細胞組織、 並びに細胞がパタ一ン化した状態で接着された基材に関する。 背景技術
近年、 人工代替物や細胞を培養して組織化させたものをそのまま移植しようと いう技術が注目されている。 その代表的な例として、 人工皮膚、 人工血管及び培 養細胞組織等が挙げられる。 合成高分子を用いた人工皮膚等は拒絶反応等が生じ る可能性があり、 移植用として好ましくない。 一方、 培養細胞組織は本人の細胞 を培養して組織化したものであるため拒絶反応の心配がなく、 移植用として好ま しい。 このような培養細胞組織は、 本人から細胞を採取し、 これを培養すること により作成される。
多くの動物細胞は、 何かに接着して生育する接着依存性を有しており、 生体外 の浮遊状態では長時間生存することができないため、 上記のような細胞組織を作 成するための細胞培養においては、 例えば表面処理により細胞接着性を高めた改 質ポリスチレン等の高分子材料や、 又はコラーゲンゃフイブロネクチンなどの細 胞接着性タンパク質をガラスや高分子材料に均一に塗布した培養皿が担体として 用いられてきた。 このような祖体に平面状に接着した細胞は、 培養性は良好であ るが、 通常組織化しにくいため、 細胞本来の機能が'得られない。 例えば組織化し ていない培養肝細胞のアルブミン産生能は組織化肝細胞(肝スフェロイ ド)の数分 の一に低下するという研究報告があ 。
これに対し、 細胞の組織化を促進するため、 培養細胞を基材上の微小な部分に のみ接着させ、 配列させる技術が報告されている。 培養細胞を配列させる方法と しては、 細胞に対して接着の容易さが異なるような表面がパターンをなしている ような基材を用い、 この表面で細胞を培養し、 細胞が接着するように加工した表 面だけに細胞を接着させることによって細胞を配列させる方法がとられている。 えば、 特開平 2— 2 4 5 1 8 1号公報には、 回路状に神経細胞を増殖させる などの目的で、 静電荷パターン-を形成させた電荷保持媒体を細胞培養に応用して いる。 また、 特開平 3— 7 5 7 6号公報では、 細胞非接着性あるいは細胞接着性 の光感受性親水性高分子をフォトリソグラフィ法によりパターニングした表面上 への培養細胞の配列を試みている。
さらに、 特開平 5— 1 7 6 7 5· 3号公報では、 細胞の接着率や形態に影響を与 えるコラーゲンなどの物質がパターニングされた細胞培養用基材と、 この基材を フォトリソグラフィ法によって作成する方法について開示している。 このような 基材の上で細胞を培養することによって、 コラーゲンなどがパターニングされた 表面により多くの細胞を接着させ、 細胞のパター ングを実現している。
しかしながら、 このような細胞培養部位のパターニングは、 用途によっては髙 精細であることが要求される場合がある。 上述したような感光性材料を用いたフ ォトリソグラフィ法等によるパターニングを行う場合は、 高精細なパターンを得 ることはできるが、 細胞接着性材料が感光性を有する必要があり、 例えば生体髙 分子等にこのような感光性を付与するための化学的修飾を行うことが困難な場合 が多く、 細胞接着性材料の選択性の幅を極めて狭くするといつた問題があった。 フォトレジストを用いたフォトリソグラフィ法では、 現像液等を用いる必要性が あり、 これらが細胞培養に際して悪影響を及ぼす場合があった。 また、 細胞の培 養能が高い生体材料等は一般的にプラズマにより分解しにくいため、 プラズマェ ツチング法を用いたパターニングも工業生産"生が低く実用的ではない。
さらに、 上記のようにパターユングして培養された細胞は、 トリプシンのよう なタンパク質分解酵素や化学薬品で処理することにより回収されるため、 処理工 程が煩雑になり、 コンタミネーシヨンの可能性が高くなること、 細胞が変性若し くは損傷し、 細胞本来の機能が損なわれる可能性がある等の問題があった。 そこで、 特開 2 0 0 3— 3 8 1 7 b号公報では、 基材上に温度応答性ポリマー によるパターンを形成した細胞培養支持体を作成し、 該細胞培養支持体上で細胞 を培養し、 これを高分子膜に密着させて温度を変化させることにより細胞を損傷 させることなく高分子膜とともに鉀胞を剥離して細胞シートを製造する方法を開 示している。 し力 し、 ここで開示される方法では微細なパターンを効率的に形成 することは困難であり、 また細胞を支持体から剥離するときに温度を変化させる 必窭があるため工程が煩雑である。 また、 S蔵器等の生体材料上に直接パターニン グすることも困難である。 - .… .
一方、 特定の細胞培養法により人工臓器を構築する方法も知られている (特開 2 0 0 3 - 2 4 3 5 1号公報) 。 これは、 管状の細胞培養基材に血管内皮細胞等 を接着することにより人工血管を形成させるものである。 しかし、 この方法で多 数の人工血管を作成する為には、 微細加工された細胞培養基材を多数用意する必 要があり、 組織の形成に時間を要することからその工業生産性は低い。 発明の開示
本発明は、 上記のような従来技術の問題点を解決することを意図してなされた ものである。 すなわち、 本発明の課題は、 細胞に損傷を与えることなく簡便な方 法によって細胞を微細なパターン状に配列して培養すること、 これにより培養細 胞の組織化を促進することである。
本発明者らは、 上記課題を解決すべく鋭意研究を行った結果、 細胞接着性を有 する領域がパターン化された細胞配列用基材に対し細胞を播き、 細胞をパターン 状に接着をさせる事で細胞を配列し、 その配列化された細胞を細胞培養用基材に 転写する事により細胞を配列状態で培養できることを見出し、 本発明を完成させ るに至った。
本発明は、 基材上に細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域がバタ一ン化さ れた細胞接着性変化パターンを有する細胞配列用基材表面に細胞を接着させるェ 程、 接着した細胞を細胞培養用基材にパターン化された状態で転写する工程、 及 び転写された細胞を培養する工程を含む細胞培養方法に関する。
本発明の細胞培養方法の一態様において、 細胞接着性変化パターンにおける細 胞接着性良好領域の水接触角は 1 0〜4 0 ° である。
本発明の細胞培養方法の一態様に いて、 細胞接着性変化パターンは、 ェネル ギー照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性変化材料 を含有する細胞接着性変化層によつて形成される。
本発明の細胞培養方法の一態様 おいて、 細胞接着性変化層は、 光触媒及び細 胞接着性変化材料を含有する光触媒含有細胞接着性変化層である。
本発明の細胞培養方法の一態様において、 細胞接着性変化層は、 光触媒を含有 する光触媒処理層と、 該光触媒処理層上に形成された細胞接着性変化材料を含有 する細胞接着性変化材料層とを有する。 ·
本発明の細胞培養方法の一態様において、 細胞接着性変化パターンは、 細胞接 着性変化材料を含有する細胞接着性変化層と光触媒を含有する光触媒含有層とを 対向するように配置した後、 エネルギー照射することにより形成される。
本発明の細胞培養方法の一態様において、 細胞培養用基材は生体材料である。 本発明の細胞培養方法の一態様において、 細胞接着性変化パターンは、 細胞接着 性阻害領域にライン状の細胞接着性良好領域が配置されたパターンである。 本発 明の細胞培養方法の一態様において、 細胞接着性変化パターンは、 ライン状の細 胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域のスペースとが交互に配置されたパター ンであり、 細胞接着性良好領域のライン幅が 2 0〜 2 0 0 μ mであり、 ライン閬 のスペース幅が 3 0 0〜1 0 0 0 mであり、 細胞が血管内皮細胞である。 本発 明はまた、 上記の細胞培養方法によって形成される細胞組織に関する。 本発明は また、 基材上に細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域がパターン化された細 胞接着性変化パターンを有する細胞配列用基材において、 該細胞接着性変化パタ ーンの細胞接着性良好領域に細胞が接着された細胞接着基材に関する。
本発明の細胞接着基材のー態様において、 細胞接着性変化パターンにおける細 胞接着性良好領域の水接触角は 1 0〜 4 0 ° である。
本発明の細胞接着基材のー態様において、 細胞接着性変化パターンは、 ェネル ギー照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性変化材料 を含有する細胞接着性変化層によって形成される。
本発明の細胞接着基材のー態様において、 細胞接着性変化層は、 光触媒及び細 胞接着性変化材料を含有する光触媒含有細胞接着性変化層である。
本発明の細胞接着基材のー態様において、 細胞接着性変化層は、 光触媒を含有 する光触媒処理層と、 該光触媒処理 上に形成された細胞接着性変化材料を含有 する細胞接着性変化材料層とを有する。
本発明の細胞接着基材のー態様において、 前記細胞接着性変化パターンは、 細 胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化層と光触媒を含有する光触媒含有層 とを対向するように配置した後、 エネルギー照射することにより形成される。 本発明はまた、 前記細胞接着基材上に接着された被検体由来の細胞を、 被検体 の生体組織にパターン化された状態で転写して細胞を増殖させることにより、 被 検体の組織を再生する方法に関する。
本発明により、 細胞に損傷を与えることなく簡便な方法によって細胞を微細な パターン状に配列して培養することができる。
本発明の細胞培養方法は、 細胞配列用基材表面に細胞を接着させ、 接着した細 胞を細胞培養用基材にパターン化された状態で転写し、 転写された細胞を培養す ることを特徴とする。 以下、 細胞配列用基材、 その製造方法、 細胞配列用基材の 細胞接着性良好領域に細胞が接着した細胞接着基材、 並びに細胞培養用基材への 転写及び転写後の培養についてそれぞれ説明する。
I. 細胞配列用基材
まず、 本発明の細胞配列用基材について詳細に説明する。 本発明の細胞配列用 基材は、 基材上に細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域がパターン化された 細胞接着性変化パターンを有することを特徴とするものである。
細胞接着性とは、 細胞を接着する強度、 すなわち細胞の接着しやすさを意味す る。 細胞接着性良好領域とは、 細胞接着性が良好な領域を意味し、 細胞接着性阻 害領域とは、 細胞の接着性が悪い領域を意味する。 従って、 細胞接着性変化パタ —ンを有する細胞配列用基材上に細胞を播くと、 細胞接着性良好領域には細胞が 接着するが、 細胞接着性阻害領域には細胞が接着しないため、 細胞配列用基材表 面には細胞がパターン状に配列されることになる。
細胞接着性は、 接着しょうとする細胞によって異なる場合もあるため、 細胞接 着性が良好とは、 ある種の細胞に対する細胞接着性が良好であることを意味する。 従って、 細胞配列用基材上には、 複数種の細胞に対する複数の細胞接着性良好領 域が存在する場合、 すなわち細胞接着性が異なる細胞接着性良好領域が 2水準以 上存在する場合もある。
細胞接着性変化パターンとしては: エネルギーの照射に伴い細胞の接着性が変 化する細胞接着性変化材料を含む細胞接着性変化層を基材上に形成し、 特定の領 域にエネルギー照射することによって細胞接着性を変化させて、 細胞接着性の異 なる镔域をパターン状に形成させたものが挙げられる。 細胞の接着性が変化する 材料には、 エネルギーの照射に伴い細胞接着性を獲得又は増加する材料及び細胞 接着性が減少又は消失する材料の双方が含まれる。 '本発明の細胞配列用基材に用いられる基材としては、 その表面に細胞接着性変 化パターンを形成することが可能な材料で形成されたものであれば特に限定され るものではない。 具体的には、 金属、 ガラス、 及びシリコン等の無機材料、 ブラ スチック (例えば、 ポリエステル樹脂、 ポリエチレン榭脂、 ポリプロピレン樹脂、 A B S樹脂、 ナイロン、 アクリル樹脂、 フッ素樹脂、 ポリカーボネート樹脂、 ポ リウレタン樹脂、 メチルペンテン樹脂、 フエノ ル樹脂、 メラミン樹脂、 ェポキ シ樹脂、 塩化ビュル樹脂〉 で代表される有機材料を挙げることができる。 その形 状も限定されず、 例えば、 平板、 平膜、 フィルム、 多孔質膜等の形状が挙げられ る。 フィルムを使用する場合、 その厚さは特に制限されないが、 通常 0 . 1〜1 Q 0 0 μ η ^ 好ましくは:!〜 5 0 0 m、 より好ましくは 2 0〜 2 0 0 mであ る。
細胞接着性変化材料、 細胞接着性変化層については、 光触媒を用いる実施態様 において説明する。
また、 細胞接着性変化パターンには、 細胞接着性を有しない細胞非接着材料を 含む細胞非接着層とその上に形成された細胞接着性を有する細胞接着材料を含む 細胞接着層から形成され、 エネルギーの照射に伴い細胞接着層が分解されて消失 することにより細胞非接着層が露出して、 細胞接着性の異なる領域が形成される 場合も含まれる。 同様に、 細胞接着層とその上に形成される細胞非接着層から形 成され、 エネルギー照射に伴い細胞非接着層が分解されて消失することにより細 胞接着層が露出して、 細胞接着性の異なる領域が形成される場合も含まれる。 細胞接着材料としては、 各種タイプのコラーゲン、 フイブロネクチン、 ラミュ ン、 ビトロネクチン、 カドヘリンなどの細胞外基質、 R G Dペプチド、 他に細胞 接着性付与の為にコロナ処理、 イオンビーム照射処理、 電子線照射処理等の手法 により力ルポ二ル墓ゃ力ルボキシル基を導入したポリオレフィン樹脂が挙げられ、 細胞非接着材料としては、 ポリテト 7フルォロエチレン (P T F E ) 等のフッ素 系材料、 ポリイミ ド、 リン脂質等が挙げられる。 また、 インクジェット法などの 方法を用いることにより、 細胞非接着層の上に細胞接着材料をパターン状に付着 形成する場合、 及ぴ細胞接着層の上に細胞非接着材料をパターン状に付着形成す る場合も含まれる。 あるいは付加的に、 基材上にエネルギーの照射に伴い細胞接 着材料に対する親和性が変化する親和性変化材料を含有する層を形成し、 ェネル ギーを照射することによつて細胞接着材料に対する親和性を有する領域と有しな い領域からなるパターンを形成し、 ここに細胞接着材料を含む溶液を導入した後 洗浄することにより、 細胞接着材料が存在する領域 (細胞接着性良好領域) と細 胞接着材料が存在しない領域 (細胞接着性阻害領域) を有する細胞接着性変化パ ターンを形成することもできる。 このような態様においては、 基材上で直接パタ 一ン形成できなレ、細胞接着材料によってパタ一ンを形成することができる。 例え ば、 図 8に示すように、 ガラス等の親水性を有する基材 ( 1 ) に、 撥水性材料を 含む層を有する領域 (2 0 ) と有しない領域からなるパターンを形成する。 ここ に撥水性材料に吸着しにくい親水性の細胞接着材料 (2 1 ) を導入し、 その後洗 浄する。 これにより親水性の細胞接着材料が存在する領域 (細胞接着性良好領 域) と撥水性材料が存在する領域 (細胞接着性阻害領域) がパターン状に形成さ れる。 この場合の親水性の細胞接着材料としては、 コラーゲン等の細胞外基質を 用いることができる。
本発明においては、 細胞配列用基材上にパターン状に配列された細胞を細胞培 養用基材に転写することから、 上記の細胞接着性良好領域の細胞接着力は適度な 強度であることが好ましい。 適度な接着強度とすることによって、 細胞を特定の 領域のみに接着して細胞パターンを形成できるが、 これを細胞培養用基材に容易 に転写することが可能になるからである。 従って、 細胞配列用基材における細胞 接着性良好領域の細胞接着力は、 細胞接着性阻害領域の細胞接着力よりも強いが、 細胞培養用基材表面の細胞接着力よりも弱いものであることが好ましい。
このような細胞接着力は、 表面の水接触角によって評価することができる。 本 発明における細胞接着性変化パターンの細胞接着性良好領域における水接触角は、 1 0〜4 0 ° であることが好ましい。 水接触角をこのような範囲とすることによ り、 細胞を細胞配列用基材に接着させ、 更に細胞培養用基材に転写する場合、 細 胞を細胞配列用基材に単層状に接着^きるとともに、 細胞配列用基材への接着が 弱いことから細胞培養用基材にも容易に転写することができる。 接触角とは、 静 止液体の自由表面が個体壁に接する場所で液面と固体面とのなす角 (液の內部に ある角をとる) を意味する。 ,
上記の水接触角とは、 通常大気圧下で材料表面にシリンジ等の器具を用いて微 小な水滴を滴下し、 水滴端部の気液界面と固体面との成す角度を拡大鏡などで観 察する、 静止接触角測定法で測定した値を意味する。
上記のような細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域がパターン状に配置さ れた細胞接着性変化パターンを形成する手段としては、 特に制限されないが、 例 えば、 グラビア印刷法、 スクリーン印刷法、 オフセット印刷法、 フレキソ印刷法 及びコンタクトプリンティング法などの各種印刷法による方法、 各種リソグラフ ィ一法を用いる方法、 並びにインクジェット法による方法、 他に微細な溝を彫刻 等する立体整形の手法などが挙げられる。 本発明においては、 光触媒を用いたリ ソグラフィ一法、 すなわち、 エネルギー照射に伴う光触媒の作用により細胞の接 着性が変化する細胞接着性変化材料及び光触媒を用い、 必要とされるパターンに 沿ってエネルギーを照射することによって細胞接着性変化パターンを形成する方 法が好ましい。 このような態様においては、 高精細なパターンを細胞に対して悪 影響を及ぼすような処理液を用いることなく、 簡便な工程により形成することが できる。 また、 細胞接着性変化材料の変性の必要性がないことから、 材料選択の 幅を広げることが可能であり、 後述するような特異的な接着性を発現するような 生物学的細胞接着性変化材料をも問題なく用いることができる。
形成させるパターンは、 二次元のパターンであれば特に制限されず、 細胞配列 用基材上に配列して転写後培養する細胞の種類、 形成させる組織等によって選択 することができる。 例えば、 ライン状、 ツリー状 (樹状) 、 網目状、 格子状、 円 形、 四角形のパターン、 円形及び四角形等の図形の内部がすべて細胞接着性良好 領域又は細胞接着性阻害領域となっているパターンなどを形成することができる。 血管内皮細胞又は神経細胞を培養して組織を形成する場合は、 ライン状、 ツリー 状 (榭状) 、 網目状又は格子状のパターンで細胞が接着するようなパターンを形 成することが好ましい。 これを細胞培養用基材に転写して培養すると、 血管内皮 細胞の場合は、 ライン状、 ツリー状 (樹状) 、 網目状又は格子状に配列されるこ とにより組織化が促進され、 血管め形成が促される。 ライン状、 ツリー状 (榭 状) 、 網目状又は格子状のパターンを形成する場合、 パターンにおける線幅は、 通常 2 0〜2 0 0 m、 好ましくは 5 0〜1 0 0 mである。 特に、 血管內皮細 胞をライン状に配置して培養することにより毛細血管を形成する場合は、 ライン 状の細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域のスペースが交互に配置された細 胞接着性変化パターンを形成し、 血管内皮細胞をライン状に接着させることが好 ましい。 このような態様においては、 細胞が 1〜 1 0個、 好ましくは 1〜 5個収 まる程度のライン幅で細胞が接着されるようなパターンを形成するのが好ましい。 具体的には、 細胞接着性良好領域のライン幅は、 通常 2 0〜2 0◦ !、 好まし くは 5 0〜8 0 μ ιηであり、 ラインとラインの間にあたる細胞接着性阻害領域の スペース幅は通常 3 0 0〜1 0 0 0 μ πι、 好ましくは 4◦ 0〜 8 0 0 mである。 ライン幅を上記の数値範囲とすることにより、 血管内皮細胞が効率的に管組織化 することができる。 このような細胞接着性変化パターンを形成することにより、 ライン状に接着され転写された血管内皮細胞は、 組織化してライン状の毛細血管 を効率的に形成する。 複数のラインが交わることなく並ぶような細胞パターンを 形成したい場合は、 細胞が接着したラインとラインの間のスペース幅を上記のよ うに一定の値以上とすることにより、 細胞が組織化する際にラインとライン間で 細胞から擬足が伸びてラインにゆがみが生じるのを防ぐことができる。
また、 血管内皮細胞を格子状に配置して培養することにより毛細血管を形成す る場合は、 上記のようにライン状の細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域の スペースが交互に配置されるとともに、 該ラインと交わるライン状の細胞接着性 良好領域がさらに配置された細胞接着性変化パターンを形成し、 血管内皮細胞を 格子状に接着させることが好ましい。 この場合、 互いに交わるラインのライン幅 は上記と同様である。 さらなるライン間のスペース幅は、 通常 0 . 0 3〜5 c m、 好ましくは 0 . 0 4〜3 c mである。
上記の光触媒を用いたリソグラフィ一法によって作成される細胞配列用基材と して、 例えば以下の 3つの実施態様が挙げられる。 これらについて、 それぞれ説 明する。
A. 第 1実施態様
本発明の細胞配列用基材の第 1実施態様は、 基材上に形成され、 エネルギーの 照射に伴う光触媒の作用により細胞わ接着性が変化する細胞接着性変化材料を有 する細胞接着性変化層を基板上に有し、 上記細胞接着性変化層には、 細胞の接着 性が変化した細胞接着性変化パターンが形成されている細胞配列用基材であって、 上記細胞接着性変化層が、 光触媒と.上記細胞接着性変化材料とを有する光触媒含 有細胞接着性変化層である点に特徴を有するものである。
本実施態様においては、 このように細胞接着性変化層が、 光触媒と上記細胞接 着性変化材料とを有する光触媒含有細胞接着性変化層であるので、 エネルギーが 照射された際に、..光触媒含有細胞接着性変化層内の光触媒の作用により細胞接着 性変化材料の細胞接着性が変化し、 エネルギーが照射された部分と照射されない 部分とで細胞との接着性が異なる細胞接着性変化パターンを形成することができ る。
このような本実施態様の細胞配列用基材を、 用いられる部材に分けてそれぞれ 説明する。
1 . 光触媒含有細胞接着性変化層'
本実施態様は、 基材上に光触媒含有細胞接着性変化層が形成されている点に特 徴を有する。 この光触媒含有細胞接着性変化層は、 少なくとも光触媒と細胞接着 性変化材料とを有するものである。
( 1 ) 細胞接着性変化材料
本実施態様に用いられる細胞接着性変化材料は、 エネルギーの照射に伴う光触 媒の作用により細胞の接着性が変化する材料であれば特に限定されるものではな い。 細胞の接着性が変化するとは、 エネルギーの照射に伴う光触媒の作用により 細胞接着性を獲得又は増加する材料及ぴ細胞接着性が減少又消失する材料の双方 が含まれる。
このような細胞接着性変化材料には、 細胞との接着性を制御する態様により、 物理化学的特性により細胞と接着する物理化学的細胞接着性変化材料と生物学的 特性により細胞と接着する生物学的細胞接着性変化材料との主に二つの態様があ る。
a . 物理化学的細胞接着性変化材料
細胞をその表面に接着させるための物理化学的な因子としては、 表面自由エネ ルギ一に関する因子と、 疎水性相互作用等による因子等が拳げられる。
このような因子により物理化学的細胞接着性を有する物理化学的細胞接着材料 としては、 主骨格が光触媒の作用により分解されないような高い結合エネルギー を有するものであって、 光触媒の作用により分解されるような有機置換基を有す るものが好ましく、 例えば、 (1 ) ゾルゲル反応等によりクロ口又はアルコキシ シラン等を加水分解、 重縮合して大きな強度を発揮するオルガノポリシ口キサン、 ( 2 ) 反応性シリコーンを架橋したオルガノポリシロキサン等を挙げることがで ぎる。
上記の (1) の場合、 一般式.:
^ b S 1 X (4-n)
(ここで、 Yはアルキル基、 フルォロアルキル基、 ビニル基、 アミノ基、 フエ二 ル基又はエポキシ基を示し、 Xはアルコキシル基、 ァセチル基又はハロゲンを示 す。 ηは 0〜 3までの整数である。 ) で示されるケィ素化合物の 1種又は 2種以 上の加水分解縮合物若しくは共加水分解縮合物であるオルガノポリシロキサンで あることが好ましい。 なお、 ·ここで Υで示される基の炭素数は 1〜 20の範囲內 であることが好ましく、 また、 Xで示されるアルコキシ基は、 メ トキシ基、 エト キシ基、 プロポキシ基、 ブトキシ基であることが好ましい。
また、 有機基として、 特にフルォロアルキル基を含有するポリシロキサンを好 ましく用いることができ、 具体的には、 下記のフルォロアルキルンランの 1種又 は 2種以上の加水分解縮合物、 共加水分解縮合物が挙げられ、 一般にフッ素系シ ランカツプリング剤として知られたものを使用することができる。
CF3 (CF2) 3CH2CH2S i (OCH3) 3
CF3 (C F2) 5CH2CH2S i (OCH3) 3
CF3 (C F2) 7CH2 CH2 S i (OCH3) 3 ;
CF3 (C F2) 9CH2 CH2 S i (OCH3) 3
(CF3) 2C F (C F2) 4CH2CH2S i (OCH3) 3
(CF3) 2CF (C F 2) 6CH2CH2S i (OCH3) 3
(CF 3) 2CF (CF 2) 8CH2CH2S i (OCH3) 3
CF a (C6H4) C2H4S i (OCH3) 3 ;
CF3 (CF2) 3 (C6H4) C2H4S i (OCH3) 3 ;
CF3 (CF2) 5 (C6H4) C2H4S i (OCH3) 3 ;
CF3 (CF2) 7 (C6H4)
Figure imgf000013_0001
i (OCH3) 3
CF3 (C F2) 3CH2 CH2 S i CH3 (OCH3) 2
CF3 (CF2) 5 CH2 CH2 S i CH3 (OCH3) 2
CF3 (C F2) 7CH2 CH2 S i CH3 (OCH3) 2
CF3 (C F2) 9CH2 CH2-S i CH3 (OCH3) 2
(CF3) 2CF (C F 2) 4CH2CH2S i CH3 (OCH3) 2 ; (CF3) 2CF (CF2) 6CH2CH2S i CH3 (OCH3) 2
(CF3) 2CF (CF2) 8CH-2-CH2S i CH3 (OCH3) 2
CF3 (C6H4) C2H4S i CH3 (OCH3) 2 ;
CF3 (CF2) 3 (C6H4) C2H4S i CH3 (OCH3) 2
CF3 (CF2) 5 (C6H4) C2H4S i CH3 (OCH3) 2
CF3 (CF2) 7 (C6H4) C2H4S i CH3 (OCH3)
CF3 (C F2) g CH2 CH2 S i (OCH2CH3) 3
CF3 (C F2) 5CH2CH2S i (OCH2CH3) 3
CF3 (CF2) 7CH2CH2S i (OCH2CH3) 3
C F 3 (C F 2) 9CH2CH2S i (OCH2CH3) 3
CF3 (CF2) 7 S 02N (C2H5) C2H4CH2 S i (OCH3) 3
上記のようなフルォロアルキル基を含有するポリシロキサンを物理化学的細胞 接着材料として用いることにより、 光触媒含有細胞接着性変化層のエネルギー未 照射部においては、 表面にフッ素を有する部分が存在するため細胞接着性を有し ない面となるが、 エネルギー照射された部分においては、 フッ素等が除去されて、 表面に O H基等を有する部分が存在するため細胞接着性を有する面となる。 従つ て、 エネルギー照射部とエネルギー未照射部とにおいて、 細胞の接着性の異なる 領域をパターン状に形成することができる。
また、 上記の (2) の反応性シリコーンとしては、 下記一般式で表される骨格 をもつ化合物を举げることができる。
Figure imgf000014_0001
ただし、 ηは 2以上の整数であり、 R R 2はそれぞれ炭素数 1〜1 0の置 換若しくは非置換のアルキル、 アルケニル、 ァリール基であり、 置換基としては、 ハロゲン、 シァノ、 等が挙げ-られる。 R R 2の具体例としては、 メチル、 ェ チル、 プロピル、 ビニル、 フ: ル、 ハロゲン化フエ-ル、 シァノメチル、 シァ ノ チル、 シァノプロピル等が举げられる。 ビニル、 フエ-ル、 ノヽロゲン化フエ ニルは、 モル比で全体の 40%以下であることが好ましい。 また、 R R2が メチル基のものが表面エネルギーが最も小さくなるので好ましく、 モル比でメチ ル基が 60%以上であることが好ましい。 また、 鎖末端若しくは側鎖には、 分子 鎖中に少なくとも 1個以上の水酸基等の反応性基を有する。
また、 上記のオルガノポリシロキサンとともに、 ジメチルポリシロキサンのよ うな架橋反応をしない安定なオルガノシリコン化合物を別途混合してもよい。 一方、 分解物質タイプの物理化学的細胞接着材料としては光触媒の作用により 分解し、 かつ分解されることにより光触媒含有極性変化層表面の極性を変化させ る機能を有する界面活性剤を挙げることができる。 具体的には、 日光ケミカルズ (株) 製 N I KKOL B L、 BC、 BO、 B Bの各シリーズ等の炭化水素系、 デュポン社製 ZONYL F SN、 FSO、 旭硝子 (株) 製サーフロン S— 14 1、 1 45、 大日本インキ化学工業 (株) 製メガファック F— 141、 144、 ネオス (株) 製フタージ ント F— 200、 F 251、 ダイキン工業 (株) 製ュ 二ダイン DS— 401、 402、 スリーェム (株) 製フロラ一ド F C— 1 70、 1 76等のフッ素系あるいはシリコーン系の非イオン界面活性剤を挙げることが でき、 また、 カチオン系界面活性剤、 ァニオン系界面活性剤、 両性界面活性剤を 用いることもできる。
なお、 このように物理化学的細胞接着材料を分解物質タイプとして用いた場合 には、 通常別途バインダ成分を用いることが好ましい。 この際用いられるバイン ダ成分としては、 主骨格が上記光触媒の作用により分解されないような高い結合 エネルギーを有するものであれば特に限定されるものではない。 具体的には、 有 機置換基を有しない、 若しくは多少有機置換基を有するポリシロキサンを挙げる ことができ、 これらはテトラメトキシシラン、 テトラエトキシシラン等を加水分 解、 重縮合することにより得ること できる。
なお、 本実施態様においては、 このようなバインダタィプの物理化学的細胞接 着材料と分解物質タイプの物理化学的細胞接着材料とを併用するようにしてもよ レ、。
また、 静電的相互作用の制御により、 細胞との接着性を変化させる物理化学的 細胞接着性変化材料もある。 このような材料の場合、 エネルギー照射に伴う光蝕 媒め作用により、 材料が含有する、 正電荷を有する官能基が分解された結果、 表 面に存在する正電荷量が変化し、 これにより細胞との接着性を変化させ、 細胞接 着性変化パターンを形成するものである。 例えば、 このような材料としてポリ L リシン等が挙げられる。
b. 生物学的細胞接着性変化材料
細胞をその表面に接着させる為の生物学的な因子としては、 多くの細胞種に対 して被接着性を有することができる材料、 特定の細胞種にのみ被接着性を有する 材料がある。 前者は例えばコラーゲン I型であり、 後者は例えば肝実質細胞を選 択的に接着するポリ (N- p-ビニルベンジル- [O- j3- D-ガラクトビラノシル- (1→4) -D -ダルコンアミ ド] ) (以下、 PVLA)等がある。 PVLAの場合、 肝実質細胞が特異認識をするガラクトース基を構造中に有する事により、 材料一 細胞間の選択的かつ特異的な接着が行われるものと推測される。
このような材料と光触媒を混合し、 光触媒含有細胞接着性変化層として用いる 場合は以下の使用形態が考えられる。 コラーゲン I型を酵素処理により可溶化し た可溶化コラーゲン Iと予め焼成処理、 粉砕処理をした T i 02粒子等の光触媒 を混合し、 光触媒含有細胞接着性変化層用材料とする。 次に、 基材上に光触媒含 有細胞接着性変化層用材料を塗布して光触媒含有細胞接着性変化層を形成する。 この光触媒含有細胞接着性変化層に、 少量のエネルギーを照射した場合には、"コ ラーゲンの側鎖にある細胞接着性ぺプチド構造の一部が破壊され、 細胞接着性を 減少させることができる。 また、 エネルギー照射量を増やす事により細胞接着性 ぺプチド構造を徐々に失わせることができ、 細胞接着性を更に減少させることが できる。
またさらに、 過大なエネルギー照射を行う事によりコラ一ゲンの主鎖構造を破 壊することができ、 その細胞接着性を完全に失わせることができる。
(2) 光触媒 、
本実施態様に用いられる光触媒としては、 光半導体として知られる例えば二酸 化チタン (T i 02) 、 酸化亜鉛 (Z nO〉 、 酸化スズ (S n02) 、 チタン酸 ストロンチウム (S r T i 03) 、 酸化タングステン (W〇3) 、 酸化ビスマス
(B i 203) 、 及び酸化鉄 (-F e 23) を挙げることができ、 これらから選択 して 1種又は 2種以上を混合して用いることができる。 本実施態様においては、 特に二酸化チタンが、 バンドギャップエネルギーが高 く、 化学的に安定で毒性もなぐ、. .入手も容易であることから好適に使用される。 二酸化チタンには、 アナターゼ型とルチル型があり本態様ではいずれも使用する ことができるが、 アナターゼ型の二酸化チタンが好ましい。 アナターゼ型ニ酸化 チタンは励起波長が 3 8 0 n m以下にある。
このようなアナターゼ型ニ酸化チタンとしては、 例えば、 塩酸解膠型のアナタ 一ゼ型チタニアゾル (石原産業 (株) 製 S T S— 0 2 (平均粒径 7 n m) 、 石原 産業 (株) 製 S T— K 0 1 ) 硝酸解膠型のアナターゼ型チタニアゾル (日産化 学 (株) 製 T A— 1 5 (平均 ¾^ l 2 n m) ) 等を挙げることができる。
光触媒の粒径は小さいほど光触媒反応が効果的に起こるので好ましく、 平均粒 径が 5 0 n m以下であることが好ましく、 2 0 n m以下の光触媒を使用するのが 特に好ましい。
本実施態様に用いられる光触媒含有細胞接着性変化層中の光触媒の含有量は、 5〜6 0重量%、 好ましくは 2 0〜4 0重量%の範囲で設定することができる。
2 . 基材
本発明の細胞配列用基材に用いられる基材としては、 表面に光触媒含有細胞接 着性変化層を形成することが可能な材料で形成されたものであれば特に限定され るものではなく、 露光処理による表面処理が可能であればその形態は問わない。 具体的には、 金属、 ガラス、 及びシリコン等の無機材料、 プラスチックで代表さ れる有機材料を挙げることができる。 その形状も限定されず、 例えば、 平板、 平 膜、 フィルム、 多孔質膜等の形状が挙げられる。
3 . 細胞接着性変化パターン
本実施態様においては、 上記基材上に上述した光触媒含有細胞接着性変化層を 形成し、 さらにエネルギーをパターン状に照射することにより、 細胞との接着性 が変化したパターンである細胞接着 'ϊ生変化パターンが形成されている。
このような細胞接着性変化パターンは、 通常は細胞接着性の良好な細胞接着性 良好領域と細胞接着性の悪い細胞接着性阻害領域とから形成される。 そして、 こ の細胞接着性良好領域に細胞が接 されることにより、 高精細なパターン状に細 胞を接着させることができる。 - このような細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害 領域とは、 用いる細胞接着性変化材料の種類に応じて決定されるものである。 例えば、 細胞接着性変化材料が表面自由エネルギーを変化させて細胞の接着性 を変化させる物理化学的細胞接着性変化材料である場合、 細胞の接着性は所定の 範囲内の表面自由エネルギーであると良好であり、 その範囲を外れると細胞との 接着性が低下する傾向にある。 このような表面自由エネルギーによる細胞の接着 性の変化としては例えば、 CMC出版バイオマテリアルの最先端 筏 義人(監修) p. 109下部に示されるような実験結果が知られている。
また、 上記材料の表面自由エネルギーだけでなく、 どのような細胞種をどのよ うな材料種に接触させるか等によっても、 細胞の接着性を決定することができる。 ここで、 この細胞接着性変化パターンは、 上述したような細胞接着性良好領域 と細胞接着性阻害領域を含むパターンであるが、 用途によ όては細胞接着性変化 パターンが、 表面の細胞接着性が少なくとも 3水準以上異なる領域を有する細胞 接着性変化パターンである場合も含まれる。
例えば、 生物学的細胞接着性変化材料を用レ、た光触媒含有細胞接着性変化層を 用いている場合であって、 細胞の接着性の良好な状態が未確定である場合等にお いては、 連続的に光触媒含有細胞接着性変化層の表面状態を変化させることによ り、 接着性に最適な状態を見出すことができる等の利点を有する場合があるから である。
このように、 本発明においては、 3水準以上とは連続的に細胞の接着性が変化 した状態を含むものであり、 どの程度の水準とするかは、 状況に応じて適宜選択 されて決定される。
このような多水準の接着性の異なる領域を形成する場合は、 光触媒含有細胞接 着性変化層に対するエネルギーの照射量を変化させることにより行うことができ る。 具体的には、 透過率の異なるハーフトーンのフォトマスクを用いる等の方法 を挙げることができる。
さらに、 本実施態様においては、 >エネルギーの照射された部分と未照射の部分 との光触媒活性の差を利用した、 細胞接着性変化パターンを用いることができる。 すなわち、 例えば分解物質として光触媒含有細胞接着性変化層内に導入された生 物学的細胞接着性変化材料を用いた場合、 光触媒含有細胞接着性変化層表面にェ ネルギーをパターン状に照射すると、 照射部分の表面に滲出した生物学的細胞接 着性変化材料は分解され、 未照射の部分の生物学的細胞接着性変化材料は残存す る'。 したがって、 この生物学的細胞接着性変化材料が特定の細胞と接着性が良好 な材料、 若しくは多くの細胞と接着性が良好な細胞である場合、 未照射部分が細 胞接着 1"生良好領域となるが、 エネルギーが照射された部分は、 細胞との接着性が 良好な生物学的細胞接着性変化材料が存在しないばかりでなく、 エネルギー照 射により活性化された滅菌性を有する光触媒が露出した領域となる。 したがって、 エネルギー照射部分が細胞接着性阻害領域となる場合は、 特に本実施態様の細胞 配列用基材を用いて所定の期間培養した場合、 パターンが太くなる等の不具合が 生じることが無いという利点を有するものである。
B . 第 2実施態様 · 本発明の細胞配列用基材の第 2実施態様は、 基材と、 上記基材上に形成され、 エネルギーの照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性 変化材料を有する細胞接着性変化層とを有し、 上記細胞接着性変化層には、 細胞 の接着性が変化した細胞接着性変化パターンが形成されている細胞配列用基材で あって、 上記細胞接着性変化層が、 光触媒を有する光触媒処理層と、 上記光触媒 処理層上に形成され、 上記細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化材料層 とを有することを特徴とするものである。
本実施態様においては、 このように細胞接着性変化層が、 基材上に形成された 光触媒処理層と、 この光触媒処理層上に形成された細胞接着性変化材料層とを有 するものであるので、 エネルギーが照射された際に、 光触媒処理層内の光触媒の 作用により細胞接着性変化材料層内の細胞接着性変化材料の細胞接着性が変化し、 エネルギーが照射された部分と照射されない部分とで細胞との接着性が異なる細 胞接着性変化パターンを形成することができる。
このような本実施態様の細胞配列用基材を、 用いられる部材に分けてそれぞれ 説明する。
1 . 細胞接着性変化材料層
本実施態様の細胞配列用基材は、 基材上に形成された光触媒処理層上に細胞接 着性変化材料層が形成される。 この細胞接着性変化材料層は、 上記第 1実施態様 で説明した細胞接着性変化材料を用いることにより形成される層を用いることが できる。 以下、 物理化学的細胞接着性変化材料を用いた細胞接着性変化材料層と 生物学的細胞接着性変化材料を用いた細胞接着性変化材料層とに分けて説明する。 ( 1 ) 物理化学的細胞接着性変化材料を用いた場合
本実施態様において、 物理化学的細胞接着性変化材料に.より形成される細胞接 着性変化材料層は、 上記第 1実施態様で説明した材料と同様の材料を用いた層と することができる。 このような材料を用いた場合は、 光触媒の有無を除き上述し たものと同様である。 なお、 本実施態様においては、 原則的には細胞接着性変化 材料層内に光触媒を含有する必要性は無いが、 感度等の関係で少量含有されたも のであってもよい。
また、 本実施態様においては、 光触媒処理層上に光触媒の作用により分解除去 される分解除去層として細胞接着性変化材料層を形成し、 エネルギー照射に伴う 光触媒の作用により細胞接着性変化材料層が分解された領域、 すなわち光触媒処 理層が露出した領域と、 細胞接着性変化材料層が残存する領域とを形成し、 これ により細胞接着性変化パターンとするようなタイプの細胞接着性変化材料層を用 いることができる。
具体的には、 表面自由エネルギーにより細胞の接着性を制御する場合は、 表面 自由エネルギーが細胞接着性に適当である物理化学的細胞接着性変化材料を用い、 この材料を全面に塗布して細胞接着性変化材料層を形成し、 その後エネルギーを パターン照射して細胞接着性変化材料層の有無のパターンを形成し、 これにより 細胞接着性変化パターンとするものである。
このような分解除去層としての物理化学的細胞接着性変化材料層であって、 表 面自由エネルギーにより細胞の接着性を制御する場合に用いることができる材料 としては、 例えば、 再生セルロース、 ナイロン 1 1等が挙げられる。
また、 静電的相互作用により細胞の接着性を制御する場合は、 正電荷を有する 物理化学的細胞接着性変化材料を用い、 上記と同様の方法により細胞接着性変化 パタ一ンとすることができる。
このような分解除去層としての物 ¾化学的細胞接着性変化材料層であって、 静 霉的相互作用により細胞の接着性を制御する場合に用いることができる材料とし ては、 ポリアミングラフトポリ (2—ヒ ドロキシメチルメタクリレート) (HA
x ) 等を挙げることができる。
これらの樹脂は、 溶媒に溶解させ、 例としてスピンコート法等の一般的な成膜 方法により形成することが可能である。 また、 本発明においては、 機能性薄膜、 すなわち、 自己組織化単分子膜、 ラングミュア一プロジェット膜、 及び交互吸着 膜等を用いることにより、 欠陥の-ない膜を形成することが可能であることから、 このような成膜方法を用いることがより好ましいといえる。
このような分解除去層としての細胞接着性変化材料層を用いて細胞接着性変化 パターンを形成した場合は、 分解除去された領域は後述する光触媒処理層が露出 していることから、 細胞の培養が大きく阻害される領域となる。 したがって、 こ のような方法により得られる細胞配列用基材は、 長期間細胞を保持しても高精細 なパターンを維持することができるといった利点を有するものである。
( 2 ) 生物学的細胞接着性変化材料を用いた場合
本実施態様において、 生物学的細胞接着性変化材料により形成される細胞接着 性変化材料層は、 第 1実施態様で説明したものと同様のものを使用することがで き、 例えばコラーゲン I型等を挙げることができる。
2 . 光触媒処理層
次に、 本発明に用いられる光触媒処理層について説明する。 本発明に用いられ る光触媒処理層は、 光触媒処理層中の光触媒がその上に形成された細胞接着性変 化材料層の細胞接着特性を変化させるような構成であれば、 特に限定されるもの ではなく、 光触媒とバインダとから構成されているものであってもよいし、 光触 媒単体で製膜されたものであってもよい。 また、 その表面の特性は特に親液性で あっても撥液性であってもよいが、 この光触媒処理層上に、 細胞接着性変化材料 層等を形成する都合上、 親液性であることが好ましい。
この光触媒処理層における、 後述するような酸化チタンに代表される光触媒の 作用機構は、 必ずしも明確なものではないが、 光の照射によって生成したキヤリ ァが、 近傍の化合物との直接反応、 あるいは、 酸素、 水の存在下で生じた活性酸 素種によって、 有機物の化学構造に変化を及ぼすものと考えられている。 本発明 においては、 このキヤリァが光触媒 >処理層上に形成された細胞接着性変化材料層 中の化合物に作用を及ぼすものであると思われる。 このような光触媒としては、 第 1実施態様で詳述したものと同様である。
本実施態様における光触媒処理脣は、 上述したように光触媒単独で形成された ものであってもよく、 またバインダと混合して形成されたものであってもよい。 光触媒のみからなる光触媒処理層の場合は、 細胞接着性変化材料層の細胞接着 特性の変化に対する効率が向上し、 処理時間の短縮化等のコスト面で有利である。 一方、 光触媒とバインダとからなる光触媒処理層の場合は、 光触媒処理層の形成 が容易であるという利点を有する。
光触媒のみからなる光触媒処理層の形成方法としては、 例えば、 スパッタリン グ法、 C V D法、 真空蒸着法等の真空製膜法を用いる方法を挙げることができる。 真空製膜法により光触媒処理層を形成することにより、 均一な膜でかつ光触媒の みを含有する光触媒処理層とすることが可能であり、 これにより細胞接着性変化 材料層の特性を均一に変化さ^:ることが可能であり、 かつ光触媒のみからなるこ とから、 バインダを用いる場合と比較して効率的に細胞接着性変化層の細胞接着 性を変化させることが可能となる。
また、 光触媒のみからなる光触媒処理層の形成方法の他の例としては、 例えば 光触媒が二酸化チタンの場合は、 基材上に無定形チタニアを形成し、 次いで焼成 により結晶性チタニアに相変化させる方法等が挙げられる。 ここで用いられる無 定形チタユアとしては、 例えば四塩化チタン、 硫酸チタン等のチタンの無機塩の 加水分解、 脱水縮合、 テトラエトキシチタン、 テトライソプロポキシチタン、 テ トラー n—プロポキシチタン、 テトラブトキシチタン、 テトラメ トキシチタン等 の有機チタン化合物を酸存在下において加水分解、 脱水縮合によって得ることが できる。 次いで、 4 0 0 °C〜5 0 0 °Cにおける焼成によってアナターゼ型チタ二 ァに変性し、 6 0 0 °C〜 7 0 0 °Cの焼成によってルチル型チタニアに変性するこ とができる。
また、 バインダを用いる場合は、 パインダの主骨格が上記の光触媒の作用によ り分解されないような高い結合エネルギーを有するものが好ましく、 例えばこの ようなバインダとしては、 上述したオルガノポリシロキサン等を挙げることがで さる。
このようにオルガノポリシ口キ^ンをパインダとして用いた場合は、 上記光触 媒処理層は、 光触媒とバインダであるオルガノポリシロキサンとを必要に応じて 他の添加剤とともに溶剤中に分散して塗布液を調製し、 この塗布液を透明基材上 に塗布することにより形成することができる。 使用する溶剤としては、 エタノー ノレ、 イソプロパノール等のアルコール系の有機溶剤が好ましい。 塗布はスピンコ ート、 スプレーコート、 ディップコート、 ロールコート、 ビードコート等の公知 の塗布方法により行うことができる。 バインダとして紫外線硬化型の成分を含有 している場合、 紫外線を照射して硬化処理を行うことにより光触媒処理層を形成 することかできる。
また、 パインダとして無定形シリカ前駆体を用いることができる。 この無定形 シリカ前駆体は、 一般式 S i X4で表され、 Xはハロゲン、 メ トキシ基、 ェトキ シ基、 又はァセチル基等であるケィ素化合物、 それらの加水分解物であるシラノ ール、 又は平均分子量 3000以下のポリシロキサンが好ましい。
具体的には、 テトラエトキ'シシラン、 テトライソプロボキシシラン、 テトラー n—プロボキシシラン、 テトラブトキシシラン、 テトラメトキシシラン等が挙げ られる。 また、 この場合には、 無定形シリカの前駆体と光触媒の粒子とを非水性 溶媒中に均一に分散させ、 透明基材上に空気中の水分により加水分解させてシラ ノールを形成させた後、 常温で脱水縮重合することにより光触媒処理層を形成で きる。 シラノールの脱水縮重合を 1 0 o°c以上で行えば、 シラノールの重合度が 増し、 膜表面の強度を向上できる。 また、 これらの結着剤は、 単独あるいは 2種 以上を混合して用いることができる。
バインダを用いた場合の光触媒処理層中の光触媒の含有量は、 5〜60重量%、 好ましくは 20〜40重量。 /0の範囲で設定することができる。 また、 光触媒処理 層の厚みは、 0. 05〜 10 μιηの範囲内が好ましい。
また、 光触媒処理層には上記の光触媒、 バインダの他に、 界面活性剤を含有さ せることができる。 具体的には、 日光ケミカルズ (株) 製 N I KKOL BL、 BC、 BO、 BBの各シリーズ等の炭化水素系、 デュポン社製 ZONYL FS N、 FSO、 旭硝子 (株) 製サーフロン S— 141、 145、 大日本インキ化学 工業 (株) 製メガファック F— 141、 144、 ネオス (株) 製フタ一ジェント F— 200、 F 251、 ダイキン工業 (株) 製ュ-ダイン DS— 401、 402、 スリーェム (株) 製フロラード F 一 1 70、 ェ 76等のフッ素系あるいはシリ コーン系の非イオン界面活性剤を挙げることかでき、 また、 カチオン系界面活性 剤、 ァニオン系界面活性剤、 両性界面活性剤を用いることもできる。
さらに、 光触媒処理層には上記の界面活性剤の他にも、 ポリビエルアルコール、 不飽和ポリエステル、 ァクリフレ樹脂、 ポリエチレン、 ジァリルフタレート、 ェチ レンプロピレンジェンモノマ"、 エポキシ樹脂、 フエノール樹脂、 ポリウレタン、 メ'ラミン樹脂、 ポリカーボネート、 ポリ塩化ビ ル、 ポリアミド、 ポリイミ ド、 スチレンブタジエンゴム、 クロロプレンゴム、 ポリプロピレン、 ポリプチレン、 ポリスチレン、 ポリ酢酸ビュル、 ポリエステル、 ポリブタジエン、 ポリべンズィ ミダゾール、 ポリアタリル-トリル、 ェピクロルヒ ドリン、 ポリサルフアイ ド、 ポリイソプレン等のオリゴマー、 ポリマー等を含有させることができる。
3 . 基材
本実施態様に用いられる基材は、 上記光触媒処理層を形成可能であれば、 特に 限定されるものではなく、 第 ·1実施態様で説明したものと同様のものを用いるこ とが可能である。
4 . 細胞接着性変化パターン '
本実施態様においては、 上述した細胞接着性変化材料層に、 パターン状にエネ ルギーを照射することにより、 光触媒処理層中の光触媒の作用によって、 細胞接 着性変化材料層表面の細胞との接着性が変化したパターンである細胞接着性変化 パターンが形成されている。
C . 第 3実施態様
本実施態様の細胞配列用基材は、 基材と、 上記基材上に形成され、 エネルギー の照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性変化材料を 有する細胞接着性変化層とを有し、 上記細胞接着性変化層には、 細胞の接着性が 変化した細胞接着性変化パターンが形成されている細胞配列用基材であつて、 上 記細胞接着性変化層が、 上記細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化材料 層であり、 上記接着性変化パターンが、 光触媒を含有する光触媒含有層と上記細 胞接着性変化材料層とが対向するように配置した後、 所定の方向からエネルギー を照射することにより形成されたものであることを特徴とするものである。
本実施態様においては、 このように細胞接着性変化層が、 細胞接着性変化材料 層であり、 上記接着性変化パターン 、 光触媒を含有する光触媒含有層と上記細 胞接着性変化材料層とが対向するように配置した後、 所定の方向からエネルギー を照射することにより形成されたものであるので、 エネルギーが照射された際に、 光触媒含有層内の光触媒の作用に り細胞接着性変化材料層内の細胞接着性変化 材料の細胞接着性が変化し、 エネルギーが照射された部分と照射されない部分と で細胞との接着性が異なる細胞接着性変化パターンを形成することができる。 このような本実施態様の細胞配列用基材を、 用いられる部材に分けてそれぞれ 説明する。
1 . 細胞接着性変化林料層
本実施態様の細胞配列用基材は、 基材上に細胞接着性変化材料層が形成される。 この細胞接着性変化材科層は、 上記第 2実施態様で説明した材料を用いることに より形成される層と同様である。 なお、 本実施態様においては、 原則的には細胞 接着性変化材料層内に光触媒を含有する必要性は無いが、 感度等の関係で少量含 有されたものであってもよい。
また、 本実施態様においては、 上述した第 2実施態様と同様に、 基材上に光触 媒の作用により分解除去される分解除去層として細胞接着性変化材料層を形成し てもよい。 この場合、 細胞接着性変化材料層は、 光触媒含有層側基板を用いてェ ネルギー照射することにより、 エネルギー照射に伴う光触媒の作用により細胞接 着性変化材料層が分解された領域、 すなわち基材が露出した領域と、 細胞接着性 変化材料層が残存する領域とを形成し、 これにより細胞接着性変化パターンとす るようなタイプのものが用いられる。
2 . 基材
本実施態様に用いられる基材は、 上述した細胞接着性変化材料層が形成可能な ものであれば、 特に限定されるものではなく、 第 1実施態様で説明したものと同 様のものを用いることが可能である。
3 . 光触媒含有層
次に、 本実施態様に用いられる光触媒含有層について説明する。 本実施態様に 用いられる光触媒含有層は、 光触媒を含有する層であり、 通常はガラス等の基体 上に形成されて用いられる。 本実施態様においては、 このような光触媒含有層を、 上述した細胞接着性変化材料層と対向させて配置し、 エネルギー照射を行うこと により、 光触媒含有層中に含有され >る光触媒の作用により、 細胞接着性変化材料 層の細胞接着性を変化させることができるのである。 本実施態様においては、 こ の光触媒含有層を、 エネルギー照射の際に所定の位置に配置し、 細胞接着性変化 パターンを形成することが可能であること力 ら、 上記細胞接着性変化材料層中に 光触媒を含有させる必要がなく、 細胞接着性変化材料層が、 経時的に光触媒の作 用を受けることのないものとすることができる、 という利点を有する。 このような光触媒含有層としては、 上記第 2実施態様で光触媒処理層について 説明した層と同様である。
4 . 細胞接着性変化パターン
本実施態様においては、 上述した細胞接着性変化材料層に、 上記光触媒含有層 を用いて、 パターン状にエネルギーを照射することにより、 光触媒含有層中の光 触媒の作用によって、 細胞接着性変化材料層表面の細胞との接着性が変化したパ ターンである細胞接着性変化パターンが形成されている。
II. 細胞配列用基材の製造方法
次に、 本発明の細胞配列用基材の製造方法について説明する。 本発明の細胞配 列用基材の製造方法には、 例えば、 上記のような 3つの実施態様があるが、 いず れの実施態様においても、 基材と、 その基材上に形成され、 かつエネルギー照射 に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する層とを有するパターン形成体 用基材を形成し、 このパターン形成体用基材にエネルギーを照射することにより、 光触媒を作用させて、 細胞の接着性が変化した細胞接着性変化パターンを形成す ることを特徴とするものである。
本発明の細胞配列用基材の製造方法によれば、 上記エネルギー照射に伴う光触 媒の作用により細胞の接着性が変化する層を形成することから、 この層に必要と されるパターン上にエネルギーを照射することにより、 容易に高精細なパターン 状に細胞の接着性が変化した細胞接着性変化パターンが形成された細胞配列用基 材を製造することが可能となる。 したがって、 高精細なパターンを細胞に対して 悪影響を及ぼすような処理液を用いることなく、 簡便な工程により細胞配列用墓 材を製造することができる。 また、 細胞接着性変化材料の変性の必要性がないこ とから、 材料選択の幅を広げることが可能であり、 後述するような特異的な接着 性を発現するような生物学的細胞接着性変化材料をも問題なく用いることができ るのである。
以下、 本発明の細胞配列用基材を上記の 1〜 3の実施態様ごとに説明する。
A. 第 1実施態様
まず、 本発明の細胞配列用基材の第 1実施態様について説明する。 本発明の細 胞配列用基材の第 1実施態様は、 基材と、 上記基材上に形成され、 かつ光触媒及 びエネルギーの照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着 性'変化材料を含有する光触媒含有細胞接着性変化層とを有するパターン形成体用 基材を形成するパターン形成体用基材形成工程と、 上記光触媒含有細胞接着性変 化層にエネルギーを照射し、 上記光触媒含有細胞接着性変化層の、 細胞の接着性 が変化した細胞接着性変化パターンを形成する細胞接着性変化パターン形成工程 とを有するものである。
本実施態様の細胞配列用基材の製造方法は、 例えば図 1に示すように、 まず、 基材 1と、 その基材 1上に形成された光触媒含有細胞接着性変化層 2とを有する パターン形成体用基材 3を形成する (パターン形成体用基材形成工程 (図 1 ( a ) ) 。 次に、 上記光触媒含有細胞接着性変化層 2に、 例えぼフォトマスク 4 を用いてエネルギー 5を照射し (図 1 ( b ) ) 、 光触媒含有細胞接着性変化層 2 の細胞の接着性が変化した細胞接着性変化パターン 6を形成する (図 1 ( c ) ) 細胞接着性変化パタ一ン形成工程を行うものである。
本実施態様においては、 光触媒と上記細胞接着性変化材料とを有する光触媒含 有細胞接着性変化層を形成することから、 細胞接着性変化パターン形成工程にお いて、 エネルギーを照射することにより、 光触媒含有細胞接着性変化層内の光触 媒の作用により細胞接着性変化材料の細胞接着性が変化し、 エネルギーが照射さ れた部分と照射されない部分とで細胞との接着性が異なる細胞接着性変化パタ一 ンを形成することができるのである。 以下、 本実施態様の各工程について説明す る。
1 . パターン形成体用基材形成工程
まず、 本実施態様におけるパターン形成体用基材形成工程について説明する。 本実施態様におけるパターン形成体用基材形成工程は、 基材と、 上記基材上に形 成され、 かつ光触媒及びエネルギーの照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着 性が変化する細胞接着性変化材料を含有する光触媒含有細胞接着性変化層とを有 するパターン形成体用基材を形成す 工程である。
本工程は、 基材上に、 光触媒及ぴ細胞接着性変化材料を含有する塗工液を、 例 えば、 スピンコー ト、 スプレーコー ト、 ディップコー ト、 ローノレコー ト、 ビード コート等の公知の塗布方法により簿布し、 光触媒含有細胞接着性変化層を形成す ることにより行うことができる。 またバインダとして紫外線硬化型の成分を含有 している場合、 紫外線を照射して硬化処理を行うことにより光触媒含有層を形成 することができる。
2 . 細胞接着性変化パターン形成工程 +
次に、 本実施態様における細胞接着性変化パターン形成工程について説明する。 本実施態様における細胞接着性変化パタ一ン形成工程は、 上記光触媒含有細胞接 着性変化層にエネルギ一を照射し、 上記光触媒含有細胞接着性変化層の、 細胞の 接着性が変化した細胞接着性変化パターンを形成する工程である。
本工程により、 目的とするパターン状にエネルギーを照射することにより、 ェ ネルギ一照射された領域のみの光触媒含有細胞接着性変化層の細胞の接着性を変 化させることができ、 髙精細な細胞接着性の良好な領域と悪 V、領域とのパターン である、 細胞接着性変化パターンを形成することができるのである。
ここで、 本実施態様でいうエネルギー照射 (露光) とは、 光触媒含有細胞接着 性変化層表面の細胞接着性を変化させることが可能ないかなるエネルギー線の照 射をも含む概念であり、 可視光の照射に限定されるものではない。
通常このようなエネルギー照射に用いる光の波長は、 4 0 0 n m以下の範囲、 好ましくは 3 8 0 n m以下の範囲から設定される。 これは、 上述したように光触 媒含有細胞接着性変化層に用いられる好ましい光触媒が二酸化チタンであり、 こ の二酸化チタンにより光触媒作用を活性化させるエネルギーとして、 上述した波 長の光が好ましいからである。
このようなエネルギー照射に用いることができる光源としては、 水銀ランプ、 メタルハライ ドランプ、 キセノンランプ、 エキシマランプ、 その他種々の光源を 挙げることができる。
上述したような光源を用い、 フォトマスクを介したパターン照射により行う方 法の他、 エキシマ、 Y A G等のレーザを用いてパターン状に描画照射する方法を 用いることも可能である。
また、 エネルギー照射に際しての ネルギ一の照射量は、 光触媒含有細胞接着 性変化層中の光触媒の作用により、 光触媒含有細胞接着性変化層表面の細胞の接 着性の変化が行われるのに必要な照射量とする。
光触媒含有細胞接着性変化層表 ®の細胞の接着性の変化は、 エネルギーの照射 量に依存して変化するため、 例えばエネルギー照射時間を調節することによって 接着性を調整することができる。 そうすることによって、 適度な接着性を有する 表面とすることができる。 細胞接着性については、 既に述べたとおり表面の水接 触角で評価することができるので、 適した水接触角を有する表面が得られるよう エネルギー照射時間を調節することにより、 適度な接着性を有する表面とするこ とができる。 例えば、 細胞接着性変化材料としてフルォロアルキルシランを用い、 3 6 5 の紫外線を強度 2 5 . 0 mW/秒で照射する場合、 フォトマスクの基 材に石英を用いた例では、 通常 1 2 0〜 6 0 0秒、 好ましくは 2 4 0〜4 8 0秒 照射することにより好適な接着性を有する表面とすることができる。 エネルギー 照射時聞及び照射強度等については、 使用する基材の材料や細胞接着性変化材料 等によって適宜調節することができる。
この際、 光触媒含有細胞接着性変化層を加熱しながらエネルギー照射すること により、 感度を上昇させることが可能となり、 効率的な細胞の接着性の変化を行 うことができる点で好ましい。 具体的には 3 0 °C〜8 0 °Cの範囲内で加熱するこ とが好ましい。
本実施態様におけるエネルギー照射方向は、 上述した基材が透明である場合は、 基材側及び光触媒含有細胞接着性変化層側のいずれの方向からフォトマスクを介 したパターンエネルギー照射若しくはレーザの描画照射を行ってもよレ、。 一方、 基材が不透明な場合は、 光触媒含有細胞接着性変化層側からエネルギー照射を行 う必要がある。
B . 第 2実施態様
次に、 本発明の細胞配列用基材の第 2実施態様について説明する。 本発明の細 胞配列用基材の第 2実施態様は、 基材と、 上記基材上に形成された光触媒を含有 する光触媒処理層と、 上記光触媒処理層上に形成され、 かつエネルギーの照射に 伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性変化材料を含有する 細胞接着性変化材料層とを有するパターン形成体用基材を形成するパターン形成 体用基材形成工程と、 上記細胞接着' 変化材料層にエネルギーを照射し、 上記細 胞接着性変化材料層の、 細胞の接着性が変化した細胞接着性変化パターンを形成 する細胞接着性変化パターン形成工程とを有するものである。
本実施態様の細胞配列用基材の 造方法は、 例えば図 2に示すように、 まず、 基材 1と、 その基材 1上に形成された光触媒処理層 7と、 その光触媒処理層 7上 に形成された細胞接着性変化材料層 8とを有するパターン形成体用基材 3を形成 する (パターン形成体用基材形成工程 (図 2 ( a ) ) 。 次に、 上記細胞接着性変 化材料層 8に、..例えばフ才卜マスク 4を用いてエネルギー 5を照射し (図 2 ( b ) ) 、 細胞接着性変化材料層 8の細胞の接着性が変化した細胞接着性変化パ ターン 6を形成する (図 2 ( c ) ) 細胞接着性変化パターン形成工程を行うもの である。
本実施態様においては、 光触媒処理層と、 上記細胞接着性変化材料層を形成す ることから、 細胞接着性変化パターン形成工程において、 エネルギーを照射する ことにより、 光触媒処理層中に含有される光触媒の作用により、 細胞接着性変化 材料層内の細胞接着性が変化し、 エネルギーが照射された部分と照射されない部 分とで細胞との接着性が異なる細胞接着性変化パターンを形成することができる のである。 以下、 本実施態様の各工程について説明する。
1 . パターン形成体用基材形成工程
まず、 本実施態様におけるパターン形成体用基材形成工程について説明する。 本実施態様におけるパターン形成体用基材形成工程は、 上記基材上に形成された 光触媒を含有する光触媒処理層と、 上記光触媒処理層上に形成され、 かつェネル ギ一の照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性変化材 料を含有する細胞接着性変化材料層とを有するパターン形成体用基材を形成する 工程である。
本工程で形成される光触媒処理層は、 光触媒のみからなるものであってもよく、 また'パインダと混合して形成されるものであってもよい。
光触媒のみからなる光触媒処理層の形成方法としては、 例えば、 スパッタリン グ法、 C V D法、 真空蒸着法等の真空製腠法や、 例えば光触媒が二酸化チタンの 場合は、 基材上に無定形チタユアを形成し、 次いで焼成により結晶性チタユアに 相変化させる方法等が挙げられる。 真空製膜法により光触媒処理層を形成するこ とにより、 均一な膜でかつ光触媒の >みを含有する光触媒処理層とすることが可能 であり、 これにより細胞接着性変化材料層上の細胞接着性を均一に変化させるこ とが可能であり、 かつ光触媒のみからなることから、 バインダを用いる場合と比 較して効率的に細胞接着性変化材 層上の細胞接着性を変化させることが可能と なる。 - また、 光触媒処理層が、 光触媒とパインダとを混合させたものである場合には、 光'触媒とバインダとを、 必要に応じて他の添加剤とともに溶剤中に分散して塗布 液を調製し、 この塗布液を透明基材上に塗布することにより形成することができ る。 使用する溶剤としては、 エタノール、 イソプロパノール等のアルコ ル系の 有機溶剤が好ましい。 塗布はスピンコート、 スプレーコート、 ディップコート、 ロールコート、 ビードコート等の公知の塗布方法により行うことができる。 バイ ンダとして紫外線硬化型の成分を含有している場合、 紫外線を照射して硬化処理 を行うことにより光触媒処理層を形成することができる。
続いて、 上記光触媒処理層上に、 上述した細胞接着性変化材料を含有する塗工 液を、 例えば、 スピンコート、 スプレーコート、 ディップコート、 ローノレコート、 ビードコート等の公知の塗布方法により塗布し、 細胞接着性変化材料層を形成す ることができる。 またバインダとして紫外線硬化型の成分を含有している場合、 紫外線を照射して硬化処理を行うことにより光触媒処理層を形成することができ る。
ここで、 本工程に用いられる基材ゃ光触媒処理層、 及び細胞接着性変化材料層 については、 上述した 「1 . 細胞配列用基材」 の第 2実施態様の項で説明したも のと同様である。
2 . 細胞接着性変化パターン形成工程
次に、 本実施態様における細胞接着性変化パターン形成工程について説明する。 本実施態様における細胞接着性変化パタ ン形成工程は、 上記細胞接着性変化材 料層にエネルギーを照射し、 上記細胞接着性変化材料層の、 細胞の接着性が変化 した細胞接着性変化パターンを形成する工程である。
本工程により、 目的とするパターン状にエネルギーを照射することにより、 ェ ネルギ一照射された領域のみの細胞接着性変化材料層の細胞の接着性を変化させ ることができ、 高精細な細胞接着性の良好な領域と悪 、領域とのパターンである、 細胞接着性変化パターンを形成する とができるのである。
本工程におけるエネルギー照射方法や、 照射するエネルギー、 エネルギー照射 量については、 上述した第 1実施態様と同様である。
C . 第 3実施態様 .
次に、 本発明の細胞配列用基材の第 3実施態様について説明する。 本発明の細 胞配列用基材の第 3実施態様は、 基材と、 上記基材上に形成され、 エネルギーの 照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性変化材料を含 有する細胞接着性変化材料層と-を有するパターン形成体用基材を形成するパター ン形成体用基材形成工程と、 上記パターン形成体用基材と、 光触媒を含有する光 触媒含有層及び基体を有する光触媒含有層側基板とを、 上記細胞接着性変化材料 層と上記光触媒含有層とが対向するように配置した後、 所定の方向からエネルギ 一照射し、 上記細胞接着性変化材料層の、 細胞の接着性が変化した細胞接着性変 化パターンを形成する細胞接着性変化パターン形成工程とを有するものである。 本実施態様の細胞配列用基材の製造方法は、 例えば図 3に示すように、 まず、 基材 1と、 その基材 1上に形成された細胞接着性変化材料層 8とを有するパター ン形成体用基材 3を形成する (パターン形成体用基材形成工程 (図 3 ( a ) ) 。 次に、 基体 1 1と、 その基体 1 1上に形成された光触媒含有層 1 2とを有する光 触媒含有層側基板 1 3を用意する。 この光触媒含有層側基板 1 3における光触媒 含有層 1 2と上記細胞接着性変化材料層 8とが対向するように配置し、 例えばフ オトマスク 4を用いてエネルギー 5を照射し (図 3 ( b ) ) 、 細胞接着性変化材 料層 8の細胞の接着性が変化した細胞接着性変化パターン 6を形成する (図 3 ( c ) ) 細胞接着性変化パターン形成工程を行うものである。
本実施態様においては、 上記細胞接着性変化材料層を形成することから、 細胞 接着性変化パターン形成工程において、 光触媒含有層側基板を用いてエネルギー を照射することにより、 光触媒含有層中に含有される光触媒の作用により、 細胞 接着性変化材料層内の細胞接着性が変化し、 エネルギーが照射された部分と照射 されない部分とで細胞との接着性が異なる細胞接着性変化パターンを形成するこ とができるのである。 以下、 本実施態様の各工程について説明する。
1 . パターン形成体用基材形成工程
まず、 本発明におけるパターン形成体用基材形成工程について説明する。 本発 明におけるパターン形成体用基材形 工程は、 基材と、 上記基材上に形成され、 エネルギーの照射に伴う光触媒の作用により細胞の接着性が変化する細胞接着性 変化材料を含有する細胞接着性変化材料層とを有するパターン形成体用基材を形 成する工程である。 .
本工程は、 基材上に、 細胞接着性変化材料を含有する塗工液を、 例えば、 スピ ンコート、 スプレーコート、 ディップコート、 ローノレコート、 ビードコート等の 公知の塗布方法により塗布し、 細胞接着性変化材料層を形成することにより行う ことができる。 またバインダと-して紫外線硬化型の成分を含有している場合、 紫 外線を照射して硬化処理を行うことにより光触媒含有層を形成することができる。 ここで、 本工程に用いられる基材及び細胞接着性変化材料については、 上述し た 「 I . 細胞配列用基材」 の第 1実施態様の項で説明したものと同様のものを用 いることができる。
2 . 細胞接着性変化パターン形成工程
次に、 本実施態様における細胞接着性変化パターン形成工程について説明する。 本実施態様における接着性変化パタ一ン形成工程は、 上記パタ一ン形成体用基材 と、 光触媒を含有する光触媒含有層及び基体を有する光触媒含有層側基板とを、 上記細胞接着性変化材料層と上記光触媒含有層とが対向するように配置した後、 所定の方向からエネルギー照射し、 上記細胞接着性変化材料層の、 細胞の接着性 が変化した細胞接着性変化パターンを形成する工程である。
本工程において、 光触媒含有層側基板における光触媒含有層及び細胞接着性変 化材料層を対向するように配置し、 目的とするパターン状にエネルギーを照射す ることにより、 エネルギー照射された領域のみの細胞接着性変化材料層の細胞の 接着性を変化させることができ、 高精細な細胞接着性の良好な領域と悪い領域と のパターンである、 細胞接着性変化パターンを形成することができるのである。 以下、 本工程に用いられる光触媒含有層側基板、 及びエネルギー照射について それぞれ説明する。
( 1 ) 光触媒含有層側基板
まず、 本実施態様に用いられる光触媒含有層側基板について説明する。
本実施態様に用いられる光触媒含有層側基板は、 少なくとも光触媒含有層と基 体とを有するものであり、 通常は基体上に所定の方法で形成された薄膜状の光触 媒含有層が形成されてなるものであ ¾。 また、 この光触媒含有層側基板には、 パ ターン状に形成された光触媒含有層側遮光部やプライマー層が形成されたものも 用いることができる。
本実施態様においては、 エネルギーを照射する際に、 上記細胞接着性変化材料 層と、 上記光触媒含有層側基板における光触媒含有層とを所定の間隙をおいて対 向させ、 光触媒含有層側基板の光触媒含有層の作用により、 細胞接着性変化材料 層'の細胞接着性を変化させ、 エネルギー照射後、 光触媒含有層側基板を取り外す ことにより細胞接着性変化パターンが形成されるのである。 以下、 この光触媒含 有層側基板の各構成について説明する。
a . 光触媒含有層
本実施態様に用いられる光触媒含有層は、 少なくとも光触媒を含有するもので あり、 バインダを有していても、 有していなくてもよく、 上述した第 2実施態様 の光触媒処理層と同様である。
ここで、 本実施態様において用いられる光触媒含有層は、 例えば図 3に示すよ うに、 基体 1 1上に全面に形成されたものであってもよいが、 例えば図 4に示す ように、 基体 1 1上に光触媒含有層 1 2がパターン状に形成されたものであって もよい。 .
このように光触媒含有層をパターン状に形成することにより、 エネルギーを照 射する際に、 フォトマスク等を用いてパターン照射をする必要がなく、 全面に照 射することにより、 細胞接着性変化材料層上に細胞接着性変化パターンを形成す ることができる。
この光触媒含有層のパター-ング方法は、 特に限定されるものではないが、 例 えばフォトリソグラフィ一法等により行うことが可能である。
また、 光触媒含有層と細胞接着性変化材料層とを例えば密着させてエネルギー 照射を行う場合には、 実際に光触媒含有層の形成された部分のみの特性が変化す るものであるので、 エネルギーの照射方向は上記光触媒含有層と細胞接着性変化 材料層とが対向する部分にエネルギーが照射されるものであれば、 いかなる方向 から照射されてもよく、 さらには、 照射されるエネルギーも特に平行光等の平行 なものに限定されないという利点を有するものとなる。
b . 基体
本実施態様においては、 図 3に示 >すように、 光触媒含有層側基板 1 3は、 少な くとも基体 1 1とこの基体 1 1上に形成された光触媒含有層 1 2とを有するもの である。 この際、 用いられる基体を構成する材料は、 後述するエネルギーの照射 方向や、 得られる細胞配列用基材 透明性を必要とするか等により適宜選択され る。 ·
また本実施態様に用いられる基体は、 可撓性を有するもの、 例えば樹脂製フィ ルム等であってもよいし、 可撓性を有しないもの、 例えばガラス基材等であって もよレ、。 さらには、 別の形態の基体として、 光ファイバ等の光導波路を用いるこ ともできる。 これらは、 エネルギー照射方法により適宜選択されるものである。 なお、 基体表面と光触媒含有層との密着性を向上させるために、 基体上にアン カー層を形成するようにしてもよい。.このようなアンカー層としては、 例えば、 シラン系、 チタン系のカツプリング剤等を挙げることができる。
c 光触媒含有層側遮光部
本実施態様に用いられる光触媒含有層側基板には、 パターン状に形成された光 触媒含有層側遮光部が形成されたものを用いてもよい。 このように光触媒含有層 側遮光部を有する光触媒含有層側基板を用いることにより、 エネルギー照射に際 して、 フォトマスクを用いたり、 レーザ光による描画照射を行う必要がない。 し たがって、 光触媒含有層側基板とフォトマスクとの位置合わせが不要であること から、 簡便な工程とすることが可能であり、 また描画照射に必要な高価な装置も 不必要であることから、 コスト的に有利となるという利点を有する。
このような光触媒含有層側遮光部を有する光触媒含有層側基板は、 光触媒含有 層側遮光部の形成位置により、 下記の二つの態様とすることができる。
一つが、 例えば図 5に示すように、 基体 1 1上に光触媒含有層側遮光部 1 4を 形成し、 この光触媒含有層側遮光部 1 4上に光触媒含有層 1 2を形成して、 光触 媒含有層側基板とする態様である。 もう一つは、 例えば図 6に示すように、 基体 1 1上に光触媒含有層 1 2を形成し、 その上に光触媒含有層側遮光部 1 4を形成 して光触媒含有層側基板とする態様である。
いずれの態様においても、 フォトマスクを用いる場合と比較すると、 光触媒含 有層側遮光部が、 上記光触媒含有層と細胞接着性変化材料層との配置部分の近傍 に配置されることになるので、 基体内等におけるエネルギーの散乱の影響を少な くすることができることから、 エネレギ一のパターン照射を極めて正確に行うこ とが可能となる。
さらに、 上記光触媒含有層上に光触媒含有層側遮光部を形成する態様において は、 光触媒含有層と細胞接着性変化材料層とを所定の位置に配置する際に、 この 光触媒含有層側遮光部の膜厚をこの間隙の幅と一致させておくことにより、 上記 光触媒含有層側遮光部を上記間隙を一定のものとするためのスぺーサとしても用 い'ることができるという利点を有する。 また、 スぺーサとしての高さが不足する 場合、 遮光部に別途スぺーサを設けてもよい。
すなわち、 所定の間隙をおいて上記光触媒含有層と細胞接着性変化材料層とを 対向させた状態で配置する際に、 上記光触媒含有層側遮光部と細胞接着性変化材 料層とを密着させた状態で配置することにより、 上記所定の間隙を正確とするこ とが可能となり、 そしてこの状態で光触媒含有層側基板からエネルギーを照射す ることにより、 細胞接着性変化材料層上に細胞接着性変化パターンを精度良く形 成することが可能となるのである。
このような光触媒含有層側遮光部の形成方法は、 特に限定されるものではなく、 光触媒含有層側遮光部の形成面の特性や、 必要とするエネルギーに対する遮蔽性 等に応じて適宜選択されて用いられる。
例えば、 スパッタリング法、 真空蒸着法等により厚み 1 0 0 0〜 2 0 0 0 A程 度のクロム等の金属薄膜を形成し、 この薄膜をパターニングすることにより形成 されてもよい。 このパター-ングの方法としては、 スパッタ等の通常のパター二 ング方法を用いることができる。
また、 樹脂バインダ中にカーボン微粒子、 金属酸化物、 無機顔料、 有機顔料等 の遮光性粒子を含有させた層をパターン状に形成する方法であってもよい。 用い られる樹脂バインダとしては、 ポリイミ ド榭脂、 アクリル樹脂、 エポキシ樹脂、 ポリアクリノレアミ ド、 ポリ ビ-ノレアノレコーノレ、 ゼラチン、 カゼイン、 セルロース 等の樹脂を 1種又は 2種以上混合したものや、 感光性樹脂、 さらには O /Wエマ ルジョン型の樹脂組成物、 例えば、 反応性シリコーンをェマルジヨン化したもの 等を用いることができる。 このような樹脂製遮光部の厚みとしては、 0 . 5〜1
0 mの範囲内で設定することができる。 このよう樹脂製遮光部のパターユング の方法は、 フォトリソ法、 印刷法等一般的に用いられている方法を用いることが できる。 >
なお、 上記説明においては、 光触媒含有層側遮光部の形成位置として、 基体と 光触媒含有層との閒、 及び光触媒含有層表面の二つの場合について説明したが、 その他、 基体の光触媒含有層が形瑪されていない側の表面に光触媒含有層側遮光 部を形成する態様も採ることが可能である。 この態様においては、 例えばフォト マスクをこの表面に着脱可能な程度に密着させる場合等が考えられ、 細胞接着性 ^化パターンを小口ットで変更するような場合に好適に用いることができる。 d . プライマー層
次に、 本実施態様の光触媒含有層側基板に用いられるプライマー層について説 明する。 本実施態様において、 上述したように基体上に光触媒含有層側遮光部を パターン状に形成して、 その上に光触媒含有層を形成して光触媒含有層側基板と する場合においては、 上記光触媒含有層側遮光部と光触媒含有層との間にプライ マー層を形成してもよい。
このプライマー層の作用 · '機能は必ずしも明確なものではないが、 光触媒含有 層側遮光部と光触媒含有層との間にブライマ一層を形成することにより、 プライ マー層は光触媒の作用による細胞接着性変化材料層の細胞接着性変化を阻害する 要因となる光触媒含有層側遮光部及び光触媒含有層側遮光部間に存在する開口部 からの不純物、 特に、 光触媒含有層側遮光部をパターニングする際に生じる残渣 や、 金属、 金属イオン等の不純物の拡散を防止する機能を示すものと考えられる。 したがって、 プライマー層を形成することにより、 高感度で細胞接着性変化の処 理が進行し、 その結果、 高解像度のパターンを得ることが可能となるのである。 なお、 本実施態様においてプライマー層は、 光触媒含有層側遮光部のみならず 光触媒含有層側遮光部間に形成された開口部に存在する不純物が光触媒の作用に 影響することを防止するものであるので、 プライマー層は開口部を含めた光触媒 含有層側遮光部全面にわたって形成されていることが好ましい。
本実施態様におけるプライマー層は、 光触媒含有層側基板の光触媒含有層側遮 光部と光触媒含有層とが接触しないようにプライマー層が形成された構造であれ ば特に限定されるものではない。
このプライマー層を構成する材料としては、 特に限定されるものではないが、 光触媒の作用により分解されにくい無機材料が好ましい。 具体的には無定形シリ 力を挙げることができる。 このよう'な無定形シリカを用いる場合には、 この無定 形シリカの前駆体は、 一般式 S i X 4で示され、 Xはハロゲン、 メ トキシ基、 ェ トキシ基、 又はァセチル基等であるケィ素化合物であり、 それらの加水分解物で あるシラノ一ル、 又は平均分子量 0 0 0以下のポリシロキサンが好ましい。 また、 プライマー層の膜厚は、 0 . 0 0 1 μ πιから 1 の範囲内であること が好ましく、 特に 0 . O O l ju mから 0 . 1 μ παの範囲内であることが好ましい。 ' ( 2 ) エネルギー照射
次に、 本工程におけるエネルギー照射について説明する。 本実施態様において は、 上記細胞接着性変化材料層と、 上記光触媒含有層側基板における光触媒含有 層とを、 対向するように配置し、 所定の方向からヱネルギーを照射することによ り、 細胞接着性変化材料層の細胞接着性が変化したパターンを形成することがで さる。
上記の配置とは、 実質的に光触媒の作用が細胞接着性変化材料層表面に及ぶよ うな状態で配置された状態をいうこととし、 実際に物理的に接触している状態の 他、 所定の間隔を隔てて上記光触媒含有層と細胞接着性変化材料層とが配置され た状態とする。 この間隙は、 2 0 0 μ πι以下であることが好ましい。
本実施態様において上記間隙は、 パターン精度が極めて良好であり、 光触媒の 感度も高く、 したがって細胞接着性変化材料層の細胞接着性変化の効率が良好で ある点を考慮すると特に 0 . 2 : m〜l 0 ; mの範囲内、 好ましくは 1 m〜5 の範囲内とすることが好ましい。 このような間隙の範囲は、 特に間隙を高い 精度で制御することが可能である小面積の細胞接着性変化材料層に対して特に有 効である。
一方、 例えば 3 0 O mm X 3 0 0 mm以上といった大面積の細胞接着性変化材 料層に対して処理を行う場合は、 接触することなく、 かつ上述したような微細な 間隙を光触媒含有層側基板と細胞接着性変化材料層との間に形成することは極め て困難である。 したがって、 細胞接着性変化材料層が比較的大面積である場合は、 上記間隙は、 1 0〜1 0 0 inの範囲内、 特に 1 0〜2 0 mの範囲內とするこ とが好ましい。 間隙をこのような範囲内とすることにより、 パターンがぼやける 等のパターン精度の低下の問題や、 光触媒の感度が悪化して細胞接着性変化の効 率が悪化する等の問題が生じることなく、 さらに細胞接着性変化材料層上の細胞 接着性変化にムラが発生しないとい >つた効果を有するからである。
このように比較的大面積の細胞接着性変化材料層をエネルギー照射する際には、 エネルギー照射装置内の光触媒含有層側基板と細胞接着性変化材料層との位置決 め装置における間隙の設定を、 1 Q !〜 2 0 0 の範囲内、 特に 1 0 μ m〜
2 0 mの範囲内に設定することが好ましい。 設定値をこのような範囲内とする ことにより、 パターン精度の大幅な低下や光触媒の感度の大幅な悪化を招くこと ¾く、 かつ光触媒含有層側基板と細胞接着.性変化材料層とが接触することなく配 置することが可能となるからである。
このように光触媒含有層と細胞接着性変化材料層表面とを所定の間隔で離して 配置することにより、 酸素と水及び光触媒作用により生じた活性酸素種が脱着し やすくなる。 すなわち、 上記範囲より光触媒含有層と細胞接着性変化材料層との 間隔を狭くした場合は、 上記活性酸素種の脱着がしにく くなり、 結果的に細胞接 着性変化速度を遅くしてしまう可能性があることから好ましくない。 また、 上記 範囲より間隔を離して配置じた場合は、 生じた活性酸素種が細胞接着性変化材料 層に届き難くなり、 この場合も細胞接着性変化の速度を遅くしてしまう可能性が あることから好ましくなレ、。
このような極めて狭い間隙を均一に形成して光触媒含有層と細胞接着性変化材 料層とを配置する方法としては、 例えばスぺーサを用いる方法を挙げることがで きる。 そして、 このようにスぺーサを用いることにより、 均一な間隙を形成する ことができると共に、 このスぺーサが接触する部分は、 光触媒の作用が細胞接着 性変化材料層表面に及ばないことから、 このスぺーサを上述した細胞接着性変化 パターンと同様のパターンを有するものとすることにより、 細胞接着性変化材料 層上に所定の細胞接着性変化パターンを形成することが可能となる。
本実施態様においては、 このような配置状態は、 少なくともエネルギー照射の 間だけ維持されればよい。
ここで、 照射されるエネルギーの種類や、 照射方法、 照射量等については、 上 述した第 1実施態様で説明したものと同様である。
なお、 本発明は、 上記実施形態に限定されるものではない。 上記実施形態は例 示であり、 本発明の特許請求の範囲に記載された技術的思想と実質的に同一な構 成を有し、 同様な作用効果を奏するものは、 いかなるものであっても本発明の技 術的範囲に包含される。
III. 細胞接着基材
本発明の細胞培養方法は、 細胞配列用基材に細胞がパターン状に接着されてな る細胞接着基材を、 細胞培養用基材と密着させて、 細胞配列用基材に接着してい る細胞を細胞培養用基材上に、 パターン化された状態で転写する工程を含む。 以 下に細胞接着萆材からの細胞転写工程及び培養工程について説明する。 例えば、 一態様として概要を図 7に示すと、 細胞接着性良好領域 (1 7 ) と細 胞接着性阻害領域 (1 8 ) がパターン状に形成された細胞配列用基材 (1 5 ) に 細胞を播種して細胞をパターン状に接着させることにより細胞接着基材とする。 続いてこの細胞接着基材を細胞培養用基材 (1 6 ) に密着させて細胞を転写し培 養する。 そして必要により細胞刺激因子 (2 2 ) で細胞を刺激する。
次に、 本発明の細胞接着基材について説明する。 本発明の細胞接着基材は、 図 1 3 ( c ) に示すように、 基材上に細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域と からなる細胞接着性の異なる領域がパターン化された細胞接着性変化パターンを 有する上記の細胞配列用基材の細胞接着性良好領域に細胞が接着されているもの である。
本発明による細胞接着基材の作成方法の手順を図 1 2に、 この手順の各ステツ プごとの細胞接着基材の状態を図 1 3に示す。 本発明の細胞配列用基材は、 上記 のとおり細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域からなる細胞接着性変化パタ ーンを有するものであるから、 図 1 3 ( a ) に示すように、 細胞配列用基材の表 面に細胞を均一に播き (ステップ 1 ) 、 図 1 3 ( b ) に示すように、 一定時間細 胞を培養し (ステップ 2 ) 、 細胞接着性阻害領域にある余分な細胞を除去するた めに洗浄する (ステップ 3 ) と、 図 1 3 ( c ) に示すように細胞接着性良好領域 には細胞が接着している力 細胞接着性阻害領域には細胞が接着していない細胞 パターンが形成された細胞接着基材が得られる。
本発明の細胞接着基材上のパターンは特に限定されないが、 使用目的や使用対 象に応じて決められる。 例えば、 毛細血管網や神経網については人工的に設計さ れたパタ一ンでもよいし実際に生体內にあるパターンを元に設計されたパターン でもよい。 例えば被移植対象の大きさや形に応じて任意に設計されたパターンで もよレ、。 細胞接着性良好領域の周囲全体や一部に細胞接着性阻害領域を有するよ うな単純なパターンも、 施術者の使い勝手の良さの観点から好ましい例として挙 げられる。 細胞が接着していない領域が適当な面積で存在すれば、 当該領域を医 療器具などで摘むことができるので、 施術したり次の工程に移したりする際に有 利である。
細胞配列用基材に播種する細胞は、 特に制限されないが、 本発明は、 接着性を 有する細胞に対して好適に使用される。 そのような細胞としては、 例えば、 肝臓 の実質細胞である肝細胞、 血管内皮細胞や角膜内皮細胞などの内皮細胞、 繊維芽 細胞、 表皮角化細胞などの表皮細胞、 気管上皮細胞、 消化管上皮細胞及び子宫頸 部上皮細胞などの上皮細胞、 乳腺細胞、 平滑筋細胞及び心筋細胞などの筋細胞、 腎細胞、 膝ランゲルハンス島細胞、 末梢神経細胞及び視神経細胞などの神経細胞、 軟骨細胞、 骨細胞などが挙げられる。 本発明は、 血管内皮細胞について特に好適 に用いられる。 血管内皮細胞は、 既存の血管から単離 '培養した細胞でもよいし、 培養下で血管内皮細胞に分化させたものでもよい。 既存の血管とは具体的には類 動脈、 臍帯静脈、 体網中の血管など大血管から微小血管までを含み、 培養下で内 皮細胞に分化させる細胞としては骨髄および臍帯血や末梢血に存在する血管内皮 細胞前駆細胞や脂肪細胞、 E S細胞などが挙げられる。
これらの細胞を細胞培養用基材に転写して培養することにより機能化する目的 に合わせて、 適当な細胞を選択することができる。 これらの細胞は、 組織や器官 から直接採取した初代細胞でもよく、 あるいは、 それらを何代か継代させたもの でもよい。 また、 本発明において培養する細胞は、 未分化細胞である E S細胞、 多分化能を有する多能性幹細胞、 単分化能を有する単能性幹細胞、 分化が終了し た細胞の何れであってもよい。
目的の細胞を含む培養試料は、 予め、 生体組織を細かくして液体中に分散させ る分散処理や、 生体組織中の目的の細胞以外の細胞その他細胞破片等の不純物質 を除去する分離処理などを行っておくことが好ましい。
細胞配列用基材への細胞の播種に先だって、 目的とする細胞を含む培養試料を、 予め、 各種の培養方法で予備培養して、 目的とする細胞を増やすことが好ましい。 予備培養には、 単層培養、 コートデイシュ培養、 ゲル上培養などの通常の培養方 法が採用できる。 予備培養において、 細胞を支持体表面に接着させて培養する方 法の一つに、 いわゆる単層培養法として既に知られている手段がある。 具体的に は、 例えば、 培養容器に培養試料と ¾養液を収容して一定の環境条件に維持して おくことにより、 特定の生細胞のみが、 培養容器などの支持体表面に接着した状 態で増殖する。 使用する装置や処理条件などは、 通常の単層培養法などに準じて 行う。 細胞が接着して増殖する支持体表面の材料として、 ポリリシン、 ポリェチ レンィミン、 コラーゲン及びゼラチン等の細胞の接着や増殖が良好に行われる材 料を選択したり, ガラスシャーレ、 プラスチックシャーレ、 スライ ドガラス、 力 バーガラス、 プラスチックシート及びプラスチックフィルム等の支持体表面に、 細胞の接着や増殖が良好に行われる化学物質、 いわゆる細胞接着因子を塗布して おくことも行われる。
培養後に、 培養容器中の培養液を除去することで、 培養試料中の支持体表面に 接着しない塊状や線維状の不純物等の不要成分が除去され、 支持体表面に接着し た生細胞のみを回収できる。 支持体表面に接着した生細胞の回収には、 E G T A 一トリプシン処理などの手段が適用できる。
上記のように予備培養した細胞を、 図 1 3 ( a ) に示すように、 培養液中の細 胞配列用基材上に播種する。 細胞の播種方法や播種量については特に制限はなく、 例えば、 朝倉書店発行 「日本組織培養学会編組織培養の技術 (1 9 9 9年) 」 2 6 6〜2 7 0頁等に記載されている方法が使用できる。 細胞を細胞配列用基材上 で増殖させる必要がない程度に十分な量で、 細胞が単層で接着するように播種す ることが好ましい。 通常、 培養液 l m 1当り 1 0 4〜1 0 6個のオーダーで細胞 が含まれるように播種するのが好ましく、 また、 基材 1 c m 2当り 1 0 4〜1 0 6 個のオーダ一で細胞が含まれるように播種するのが好ましい。 細胞が凝集すると 細胞の組織化が阻害され、 細胞培養用基材に転写して培養しても機能が低下する からである。 具体的には、 4 0 0 mm2あたり 2 X 1 0 5個程度で播種する。
細胞を播種した細胞配列用基材を培養液中で培養することにより、 細胞を細胞 接着性良好領域に接着させることが好ましレ、。 培養液としては、 当技術分野で通 常用いられる培地を使用することができ、 例えば、 用いる細胞の種類に応じて、 MEM培地、 BME培地、 DME培地、 α ΜΕΜ培地、 I MEM培地、 E S培地、 DM— 1 6 0培地、 F i s h e r培地、 F 1 2培地、 WE培地及び R P M I培地 等、 朝食書店発行 「日本組織培養学会編 組織培養の技術第三版」 5 8 1頁に記 載の基礎培地を用いることができる。 さらに、 これらの培地に血清成分 (ゥシ胎 児血清等) 等を添加したもの、 並び kG i b c o無血清培地 (インビトロジェン 社) 等の市販の無血清培地等を用いることができる。
図 1 3 ( b ) に示すように、 細胞を培養する工程は、 細胞配列用基材の細胞接 着性良好領域に細胞を接着することを目的とする。 培養する時間は、 通常 1 8〜
3 0時間、 好ましくは 2 0〜- 2 4時間である。 適度な時間で培養することによつ て、 洗い流したときに細胞配列用基材の細胞接着性阻害領域の細胞が流されると ともに、 細胞接着性良好領域の細胞は適切な接着力で細胞配列用基材上に残るた め、 残った細胞を細胞培養用基材に容易に転写することが可能になる。
培養する温度は、 通常 3 7 °Cである。 C 0 2細胞培養装置などを利用して、 C o 2雰囲気下で培養するのが好ましい。 培養した後、 細胞配列用基林を洗浄する ことにより、 接着していない細胞が洗い流され、 細胞がパターン状に配列された 本発明の細胞接着基材を作成することができる。
細胞配列用基材において、 パターン状に配列しょうとする細胞ごとに最適な細 胞接着性を有する領域が形成された細胞接着性変化パターンとすることにより、 複数種の細胞を同一の細胞配列用基材上で目的のパターンで接着させることもで きる。
IV. 細胞の転写及ぴ培養
本発明による細胞の転写及び培養方法の手順を図 1 4に、 この手順の各ステツ プごとの細胞接着基材及び細胞培養用基材の状態を図 1 5に示す。
図 1 5 ( a ) に示すように、 細胞配列用基材の細胞接着性良好領域に細胞が接 着している細胞接着基材を細胞培養用基材の細胞培養層に密着させる (ステップ
4 ) 。 次いで、 図 1 5 ( b ) に示すように、 細胞を培養することで細胞培養用基 材の細胞培養層に細胞を接着させる (ステップ 5 ) 。 さらに、 細胞の細胞接着性 良好領域への接着力は、 細胞培養層への接着力に比べて大きいことから、 図 1 5
( c ) に示すように、 細胞配列用基材を細胞培養用基材から剥離すると、 細胞培 養用基材に細胞が転写される (ステップ 6 ) 。 この転写された細胞をさらに培養 すると、 図 1 5 ( d ) に示すように細胞が機能化され、 血管内皮細胞であれば環 状構造が再現される (ステップ 7 ) 。
細胞が転写される細胞培養用基材としては、 細胞を接着可能かつ培養可能なも のであれば特に制限されないが、 細胞配列用基材において細胞が接着している細 胞接着性良好領域よりも細胞に対す 接着性が強い細胞培養層を有するものが好 ましい。 例えば、 細胞の組織化を安定的に行う為には細胞培養用基材の表面が柔 らかく、 また細胞被接着性が高すぎないものが望ましいことが次の参考文献に示 されてレヽる。 Mechanochemical switching between growth and differentiation during fibroblast growth factor-stimulated angiogenesis in vitro: Role of extracellular matrix. Donald E. Ingber 他、 J. of cell biol. (1989) P. 317。
細胞が接着可能かつ培養可能な細胞培養用基材としては、 コラーゲンシートな どを用いることができる。 また、 後述する細胞培養層を設ける場合は、 細胞培養 層上の細胞の培養を阻害しない材料であればよく、 例えば、 ガラス、 ポリスチレ ン、 ポリエチレンテレフタレート、 ポリ力 ^"ボネート、 ポリイミ ドなどを用いる ことができる。 細胞配列用基材に用いられる基材について例示したものを使用す ることもできる。
細胞培養層は、 その表面に細胞の接着や増殖が良好に行われる化学物質や細胞 接着因子を含むことが好ましい。 具体的には、 各種タイプのコラーゲン、 フイブ ロネクチン、 ラミニン、 ビトロネクチン、 カドヘリン、 ゼラチン、 ペプチド及び インテグリン等の細胞外基質を挙げることができ、 これらは 1種のみを用いても、 2種以上併用してもよい。 細胞接着性が高いという点で、 各種コラーゲンを用い ることがより好ましく、 各種コラーゲンの中でも、 タイプ Iコラーゲンやタイプ IVコラーゲンを用いることが特に好ましい。 骨芽細胞などの細胞外基質産生細胞 を培養して細胞外基質を生成させることにより細胞培養層を形成することもでき る。
細胞培養用基材の形状は、 特に限定されるわけではなく、 細胞を転写できる表 面を備えていればよい。 例えば、 ペトリ皿やマルチデッシュなどの培養皿を用い ることができる。 また、 ガラスや上述のプラスチックからなる培養プレートを用 いることもできる。
細胞接着基材から細胞培養用基材への細胞の転写は、 細胞接着基材の細胞接着 面と細胞培養用基材の表面、 例えば細胞培養層とを接触させることにより実施で きる。 このように細胞接着基材と細胞培養用基材とを接触させた状態で、 培養す ることにより細胞を転写することができる。 培養は、 通常、 0〇2濃度5 %、 3 7でで、 3〜 9 6時間行う。
その後、 培養液中で細胞培養を行うが、 細胞接着基材と細胞培養用基材とを接 触させた状態で細胞培養を行ってもよいし、 細胞接着基材を取り除いて細胞培養 用基材のみで細胞培養を行ってもよい。 細胞接着基材と細胞培養用基材とを接触 させた状態で一定時間細胞培養を行った後、 細胞接着基材を取り除いてさらに細 胞培養を行うの 好ましい。 培養条件としては、 特に制限はなく、 培養する細胞 種によって選択することができる。 培養液としては、 上記と同様のものを使用す ることができる。 '· - - '
本発明の細胞接着基材は、 パターン状に接着している細胞を細胞培養用基材に パターン化された状態で容易に転写することができるとともに、 転写した後は洗 浄して再び細胞を播種する細胞配列用基材とすることができるため、 再度細胞パ ターンを形成し、 これを転写して培養することができる。 従って、 従来技術のよ うに細胞をパタ一ン状に培養するためのパターン形成された培養基材を培養のた びごとに作成する必要がなく、' パターンを有しない通常の培養基材に転写するだ けで細胞をパターン状に配列させることができる。 従って、 細胞パターンを安価 かつ効率的に作成することができる。 また、 細胞培養用基材には、 特別のパター ンを形成させる必要がないので、 細胞培養のために通常用いられるものを使用で き、 材料選択の幅も広がるとともに、 現像液などの細胞にとつて有害な物質の影 響を受けることもない。
本発明の細胞培養用基材には、 生体材料も含まれる。 生体材料とは生体由来の 材料を意味し、 例えば生体由来の組織及び器官等が含まれる。 具体的には、 肺、 心臓、 肝臓、 腎臓、 脳、 胃、 小腸、 大腸等の臓器、 骨、 軟骨、 皮膚、 筋肉、 眼球、 舌、 腹膜等の組織などが挙げられる。 また、 細胞シートやスフエロイドなどの細 胞集合体もまた細胞培養基材として使用することができる。 細胞集合体を構成す る細胞としては、 細胞外基質を産生する細胞、 例えば、 間質系細胞、 上皮細胞、 実質細胞などが挙げられる。 具体的には、 骨芽細胞、 線維芽細胞、 肝実質細胞、 フィーダ一細胞等の集合体を好ましく使用できる。
細胞配列用基材上の細胞をこれらの生体材料に直接転写することにより、 組織 及び器官上で直接細胞をパターン状に培養することができる。 細胞が転写される 生体材料と該生体材料に転写されて培養される細胞との組合せとしては、 例えば、 肝臓と血管内皮細胞、 真皮と血管内 細胞、 骨芽細胞層と血管内皮細胞、 線維芽 細胞層と肝実質細胞、 内皮細胞層と肝実質細胞、 フィーダ一細胞層と角膜上皮細 胞が挙げられる。
このような態様においては、 器官等の生体材料に直接細胞を転写して培養でき ることから、 従来技術のように細胞培養用の担体から細胞を酵素処理等により剥 がして回収する^要がなく、 細胞の損傷を防ぐことができる。 このように生体組 織'及び器官上に形成された細胞組織もまた ^発明の範囲に包含される。 臓器移植においては、 移植後、 当該臓器の表面に毛細血管が形成されるが、 こ の毛細血管を移植する臓器の表面に予め形成させてから移植することにより、 移 植を効果的に行う技術が知られている。 しかし、 移植前に毛細血管を形成しこれ を臓器表面に付着させる従来技術の方法では、 毛細血管の作成に時間がかかり迅 速な移植が不可能である。 さらに、 培養用基材等で予め形成した血管を基材から 剥がして臓器表面に移す際に組織が損傷する。 本発明の方法では、 細胞接着基材 にパターン状に配置された細胞を臓器表面に転写した後、 毛細血管が完全に形成 されるのを待たずに移植を行うことができるので、 迅速な移植が可能になる。 臓 器表面に線状又は網目状に転写された血管内皮細胞は組織化されやすいので、 体 内における毛細血管の形成が促進される。 さらに、 本発明では、 細胞を移す際に、 細胞配列用基材から細胞を剥がすための処理が不要であるため、 組織の損傷が問 題となることもなレ、。
本発明はまた、 被検体由来の細胞を本発明の細胞配列用基材にパタ一ン状に接 着した後、 これを被検体の生体組織、 例えば上記のような臓器、 皮膚及び骨等の 表面にパターン化された状態で転写し、 該細胞を増殖させることにより被検体の 糸且織を再生する方法に関する。
被検体としては、 特に限定されないが、 例えば哺乳動物が挙げられ、 好ましく はヒトが挙げられる。 例えば、 本発明の方法により真皮繊維芽細胞や上皮細胞を 生体における皮膚損傷部分に直接転写して細胞を増殖させることにより、 被検体 において皮膚組織を再生することができる。 また、 被検体において皮膚が損傷し た部分に、 血管内皮細胞をパターン状に転写して増殖させることにより毛細血管 を形成させて、 皮膚の再生を促すことも可能である。 さらに、 神経細胞をパター ン状に配列して培養することにより、 神経回路や神経細胞コンピューターを作成 することも可能になる。
転写した細胞の培養においては、 '必要に応じて、 細胞刺激因子を添加すること により、 細胞活性を高めたり、 細胞が本来有する機能を発現させ組織化を促進す ることができる。 細胞刺激因子とレては、 細胞の組織化を促進する活性を有する 物質であればいずれも使用でき、 例えば、 血管内皮細胞増殖因子 (D E G F ) 、 線維芽細胞増殖.因子 (F G F ) 、 神経成長因子 (N G F ) 、 上皮細胞増殖因子 (E G F ) 、 インスリン様増殖因子 (I G F ) 等が挙げられる, 図面の簡単な説明
図 1は、 本発明の細胞配列用基材の製造方法の一例を示す工程図である。
図 2は、 本発明の細胞配列用基材の製造方法の他の例を示す工程図である。 図 3は、 本発明の細胞配列用基材の製造方法の他の例を示す工程図である。 図 4は、 本発明における光触媒含有層側基板の一例を示す概略断面図である。 ' 図 5は、 本発明における光触媒含有層側基板の他の例を示す概略断面図である c 図 6は、 本発明における光触媒含有層側基板の他の例を示す概略断面図である c 図 7は、 本発明の方法の一例を示す概略図である。 '
図 8は、 本発明の方法の一例を示す概略図である。
図 9は、 細胞配列用基材に配列された細胞を表す写真である。
図 1 0は、 本発明によって形成された細胞組織を表す写真である。
図 1 1は、 本発明によって形成された細胞組織を表す写真である。
図 1 2は、 本発明による細胞接着基材の作成方法の手順を示す。
図 1 3は、 図 1 2に示す手順の各ステップごとの細胞接着基材の状態を示す。 図 1 4は、 本発明による細胞の転写及び培養方法の手順を示す。
図 1 5は、 図 1 4に示す手順の各ステップごとの細胞接着基材及び細胞培養用 基材の状態を示す。 '
符号の説明
1 · - 基材
2 - -- 光触媒含有細胞接着性変化層
3 · - パターン形成体用基材
4 - · · フォトマスク
5 · - · エネルギー
6 · ·· 細胞接着性変化パターン
1 5 … 細胞配列用基材
1 6 "- 細胞培養用基材 .
1 7 … 細胞接着性良好領域
1 8 … 細胞接着性阻害領域 1 9 … 細胞
20 ··· 撥水性材料
21 … 細胞接着材料 本明細書は、 本願の優先権の基礎である特願 2003— 358397号の明細 書及び図面に記載された内容を包含する。 発明を実施するための最良の形態
以下、 実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明するが、 本発明はこの実施例に 限定されるものではない。 '
実施例 1
フルォロアルキルシラン TSL8233 (GE 東芝シリコーン) 1. 5 g、 テトラメ トキシシラン TSL8114 (GE 東芝シリ コーン) 5. 0 g、 5. 0 X 1 0 3N HC 1 2. 4 gを 1 2時間混合し、 これをイソプロピルアルコールで 1 0倍希 釈した。
次に、 この溶液 2. O gを 1000 r pm、 5秒でスピンコーターにより 1 0 cmX 1 0 cmのソーダガラス基材に塗布し、 その基材を 1 50°Cの温度で 10 分間乾燥させた。
次に、 イソプロピルアルコールで 3倍希釈した酸化チタンゾル液 (石原産業 STK-03) 3. 0 gを光触媒含有層用糸且成物とした。
前記光触媒含有層用組成物を、 幅 60 mのライン部及び幅 300 mのスぺ ース部が交互に配置されたライン &スペースのネガ型フォトマスク (石英) のパ ターン面上にスピンコーターにより 700 r pm、 3秒で塗布し、 1 50 で1 0分間の乾燥処理を行うことにより、 透明な光触媒含有層を有するフォトマスク を形成した。
前記フォトマスクの光触媒含有層面と前記基材の細胞接着性変化材料層面とを
10 μιηの間隙で配置し、 フォトマスク側から水銀ランプ (波長 365 nm) に より 25. 0 mW/ c m2の照度で所定の時間紫外線露光を行い、 幅 60 μ mの ライン状の細胞接着性良好領域及び幅 300 mの細胞接着性阻害領域のスぺー スが交互に配置された細胞接着性変化パターンを有する細胞配列用基材を得た。 続いて、 この細胞配列用基材の露光部分の水接触角を接触角計 (協和界面科 学) で測定した ·
また、 予め培養したゥシ大動脈血管内皮細胞を細胞配列用基材に播種し、 細胞 接着性良好領域への細胞接着性を観察した。 細胞配列用基材上部から写真撮影し た結果 (露光時間 3 6 0秒のもの) を図 9に示す。
各露光時間における、 水接触角及ぴ露光部分の細胞接着性の評価結果を以下の 表 1に表す。
Figure imgf000049_0001
X 細胞は接着しない
△ 細胞は単層接着するが接着密度は低い
〇 細胞が単層かつ高密度に接着する
X X 細胞は接着するが単層ではなく粒状に接着する、 また非露光部への細胞接 着も多い
※水接触角が極めて小さいため測定不可
以上の結果から、 細胞接着領域における水接触角が 1 0〜4 0 ° の場合に好適 な細胞接着性が得られることがわかった。
実施例 2
培養細胞として、 ゥシ頸動脈由来血管内皮細胞 (Onodera M, Morita I, Mano Y, Murota S : Differential effects of nitric oxide on tne activity of prostaglandin endoperoxide h synthase - 1 and - 2 in vascular endothelial cells, Prostag, Leukotress 62: 161-167, 2000) で l代数 10代から 17代のもの を用いた。
10 c mデイツシュでコンフ _レント状態になったゥシ頸動脈由来血管内皮細胞 を 0. 05 %トリプシン一 EDTA処理して剥がした。 コールタ一カウンター™ ZM (Coulter Counter) で細胞数を調べ、 1 06個 Zm I とした。 実施例 1で作 成した細胞配列用基材 (露光時間 360秒のもの) をォートクレープにて滅菌し た。 この細胞配列用基材がのせてある培養ディッシュ (Heraeus Quadriprem™ 76 X 26 mm, 1 97 6 mm2) に上記内皮細胞を 1ゥェル当たり 1 06個/ 5m lで播き、 24時間 CO 2細胞培養装置でインキュベートした。
新しレヽ培養ディッシュに Growth Factor Reduced Matrigel™ マ 卜リ ックス (BD Biosciences) (常温で硬化) を摂氏 4度の状態で 0 · ' 5〜 0. 8 m 1滴下 し、 室温で数分放置し、 細胞培養用基材を作成した。 血管内皮細胞を接着させた 細胞配列用基材の細胞接着面と上記マトリッタスが接する様に、 細胞配列用基材 を細胞培養用基材上にのせた。 1 0分間 CO 2細胞培養装置の中に入れた。 続い て、 培養デイツシュを取り出し、 5mlの培養液 ( 5 %ゥシ胎児血清含有 M E M 培地) を入れ 24時間培養した。 この状態のまま、 ピンセットで細胞配列用基材 を取り除き、 さらに 1〜 3日間培養した。
顕微鏡で観察を行うと、 細胞がパターン状に配置された後、 管腔が形成されて いたことが確認できた。 写真撮影を行った結果を図 10及び図 1 1に示す。 図 1 0は、 細胞培養用基材上の細胞組織を上部から撮影したものである。 図 1 1は、 形成された血管組織の管の断面図を撮影したものであり、 管中央の白い部分が 「管腔」 である。
実施例 3
フッ素系コーティング剤 XC98- B2742 (GE東芝シリコーン) 10 gをイソプロ ピルアルコールで 1 0倍希釈し、 さらに高沸点溶剤として 1 , 3—ブタンジォ一 ルを 5 g加え 5分攪拌した。
この溶液を A4サイズにカツトした厚さ 1 50 imのポリエステルフィルム
150-T60 (ルミラー、 東レ) にスピンコーティングし、 その後、 クリーンオーブ ンで 1 30°C、 1 0分間の加熱処理をした。 その後、 水洗し、 90°Cで 3分間乾 燥させた。 —
—方、 幅 60 πιのライン部 (開口部) 及ぴ幅 300 Aimのスペース部 (遮光 部 が交互に配置され、 且つ、 このラインアンドスペースパターンと直交する幅
6 0 mのライン部 (開口部) -が ·2 . 5 c m間隔で形成されたネガ型フォトマス ク (石英) に実施例 1と同様に光触媒層をコーティングし、 本実施例で用いる光 触媒フォトマスクを作成した。
光触媒フォトマスクを、 上記コーティング済みフィルムのコーティング面上に、 その光触媒面がフィルムのコーティング面と相対するよぅ静置した。 フォトマス クの基材側から、 露光機から出る紫外線を 1 2 J · c m一2照射し、 フィルム製 の細胞配列用基材を作成した。 露光時間は 7分とし、 得られた細胞配列容器剤の 細胞接着性良好領域における水接触角は、 3 6 . 8 ° であった。
実施例 4
ヒ ト臍帯静脈内皮細胞を臍帯より採取し培養した (0 . 2 5 %トリプシンを用 いて分離し培養した) 。 本実施例では継代数 5代までの培養ヒ ト臍帯静脈内皮細 胞を用いた。
1 0 c mディッシュでコンフルェント状態になったヒ ト臍帯静脈内皮細胞を 0 . 0 5 %トリプシン一 E D T A処理して剥がした。 コールターカウンター™ ZM (Coulter Counter) で細胞数を調べ 1 0 6個/ m 1 とした。 実施例 3で作成し たフィルム製細胞配列用基材をォ一トクレープで滅菌し、 滅菌済みのハサミで 1 . 5 c m X 2 . 5 c m角に切り培養基材の小片を得た。 この際、 各小片に細胞接着 性部位のラインパターンのクロス部が入るように切った。 この細胞配列用基材を 培養ディッシュ (Heraeus Quadriprem™ 7 6 X 2 6 m m) に配置し、 上記内皮 細胞を 1ゥヱルあたり 1 0 6個 Z 5 m 1で播き、 2 4畤間 C O 2細胞培養装置で ィ.ンキュベートした。
別の培養ディッシュに Growth Factor Reduced Matrigel™ マ 卜 1リ クス (BD bioscience) を摂氏 4 °Cの状態で 2 0 0 1滴下し、 室温で数分放置し、 細胞培 養用基材を作成した。 前日にヒト臍帯静脈内皮細胞を接着させておいた細胞配列 用基材の細胞接着面と上記マトリクスが相対するように、 細胞配列用基材を細胞 培養用基材の上に静置した。 2分間クリーンベンチ内で放置し、 2 m lの培養液 ( 2 0 %ゥシ胎児血清含有 R P M I,培地) を入れて 2 4時間培養した。 この状態 のまま、 ピンセッ トで細胞配列用基材のみを剥がし、 残った細胞をさらに 1 〜 3 日培養した。 '顕微鏡で観察を行うと、 細胞がパターン状に配置された後、 管腔が形成された ことが確認でき-た。 また、 タロス部の細胞パターンも維持'されていた。 蛍光色素 溶液をィンジエタシヨンしたところ、 管内を色素溶液が流れることを確認できた。 実施例 5
厚さ 2 5 mのポリエステルフィルム 25 - T60 (ルミラー、 東レ) を用いたこと 以外は実施例 3と同じ手順にて、 細胞配列用基材を作成した。
実施例 2と同様のゥシ類動脈由来血管内皮細胞を用い、 実施例 2と同様にして '細胞配列用基材上で培養した。
滅菌処理下でヌードマウス (日齢 5、 ) より、 背部の皮膚、 腹膜及び肝臓を それぞれ摘出し、 3 5 mm培養ディッシュに入れ、 皮膚は皮下組織、 肝臓は漿膜 を剥離した。 これらの摘出組織に血管内皮細胞を接着させた細胞配列用基材を乗 せた。 その培養ディッシュに 3 m 1の培養液 ( 5 %ゥシ胎児血清含有 M E M培 地) をいれ、 4 8時間培養した。 その後ピンセットで細胞配列用基材を除去した ところ、 内皮細胞は全ての実験において摘出組織上に保持された。 顕微鏡観察し たところ、 摘出組織上にパターン状に管腔が形成されていることが確認、できた。 実施例 6
実施例 1と同じ細胞配列用基材を用い、 実施例 2と同様にしてゥシ類動脈由来 血管内皮細胞を培養した。
新しい培養ディシュにマウス骨芽細胞様細胞(MC3T3E1)を播種し、 コンフルェ ントになったのを確認した後さらに 2日以上インキュベートし、 細胞外基質産生 を促した。 血管内皮細胞を接着させた細胞配列用基材の細胞接着面と上記骨芽細 胞が接着するように、 細胞配列用基材を骨芽細胞上に乗せた。 5分間クリーンべ ンチ内で放置し、 5 m lの培養液 (5 %ゥシ胎児血清含有 M E M培地) を入れて 4 8時間培養した。 この状態のまま、 ピンセットで細胞配列用基材を取り除き、 さらに 1〜3日間培養した。
顕微鏡で観察を行うと、 骨芽細胞様細胞層上に内皮細胞がパターン状に配置さ れ且つ管腔状になっていることが確認できた。 本明細書中で引用した全ての刊行物、 特許及び特許出願をそのまま参考として 本明細書中にと.り入れるものとする。 ' 産業上の利用の可能性
本発明により、 細胞に損傷を与えることなく簡便な方法によって細胞を微細な パターン状に配列して培養することができる。

Claims

請 求 の 範 囲
1 . 基材上に細胞接着性良好領域と細胞接着性阻害領域がパターン化された細胞 接着性変化パターンを有する細胞配列用基材表面に細胞を接着させる工程、 接着 した細胞を細胞培養用基材にパターン化された状態で転写する工程、 及び転写さ れた細胞を培養する工程を含む細胞培養方法。
2 . 細胞接着性変化パターンにおける細胞接着性良好領域の水接触角が 1 0〜 4 0 ° である請求の範囲第 1項記載の方法。
3 . 細胞接着性変化パターンが、 エネルギー照射に伴う光触媒の作用により細胞 の接着性が変化する細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化層によつて形 成される請求の範囲第 1項又は第 2項記載の方法。
4 . 細胞接着性変化層が、 光触媒及び細胞接着性変化材料を含有する光触媒含有 細胞接着性変化層である、 請求の範囲第 3項記載の方法。
5 . 細胞接着性変化層が、 光触媒を含有する光触媒処理層と、 該光触媒処理層上 に形成ざれた細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化材料層とを有する、 請求の範囲第 3項記載の方法。
6 . 細胞接着性変化パターンが、 細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化 層と光触媒を含有する光触媒含有層とを対向するように配置した後、 エネルギー 照射することにより形成される、 請求の範囲第 3項記載の方法。
7 . 細胞培養用基材が生体材料である請求の範囲第 1項〜第 6項のいずれか 1項 記載の方法。
8 . 細胞接着性変化パターンが、 細胞接着性阻害領域にライン状の細胞接着性良 好領域が配置されたパターンである、 請求の範囲第 1項〜第 7項のいずれか 1項 記載の方法。
9 . 細胞接着性変化パターンが、 ライン状の細胞接着性良好領域と細胞接着性阻 害領域のスペースとが交互に配置されたパターンであり、 細胞接着性良好領域の ライン幅が 2 0〜2 0 0 μ πιであり、 ライン間のスペース幅が 3 0 0〜1 0 0 0 mであり、 細胞が血管内皮細胞である、 請求の範囲第 1項〜第 8項のいずれか
1項記載の方法。 ·
1 0 . 請求の範囲第 1項〜第 S項のいずれか 1項記載の方法によって形成される 細胞組織。
1 1 . 基材上に細胞接着性良-好領域と細胞接着性阻害領域がパターン化された細 胞接着性変化パターンを有する細胞配列用基材において、 該細胞接着性変化パタ ーンの細胞接着性良好領域に細胞が接着された細胞接着基材。
1 2 . 細胞接着性変化パターンにおける細胞接着性良好領域の水接触角が 1 0〜 4 0 ° である請求の範囲第 1 1項記載の細胞接着基材。
1 3 . 細胞接着性変化パターンが、 エネルギー照射に伴う光触媒の作用により細 ^の接着性が変化する細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化層によって 形成される請求の範囲第 1 1項又は第 1 2項記載の細胞接着基材。
1 4 . 細胞接着性変化層が、 光触媒及び細胞接着性変化材料を含有する光触媒含 有細胞接着性変化層である、 請求の範囲第 1 3項記載の細胞接着基材。
1 5 . 細胞接着性変化層が、 光触媒を含有する光触媒処理層と、 該光触媒処理層 上に形成された細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変化材料層とを有する、 請求の範囲第 1 3項記載の細胞接着基材。
1 6 . 細胞接着性変化パターンが、 細胞接着性変化材料を含有する細胞接着性変 化層と光触媒を含有する光触媒含有層とを対向するように配置した後、 エネルギ 一照射することにより形成される、 請求の範囲第 1 3項記載の細胞接着基材。
1 7 . 請求の範囲第 1 1項〜第 1 6項のいずれか 1項記載の細胞接着基材上に接 着された被検体由来の細胞を、 被検体の生体組織にパターン化された状態で転写 して細胞を増殖させることにより、 被検体の組織を再生する方法。
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