RO114469B1 - Compus oligoribonucleotidic, procedeu de preparare si metoda de inactivare - Google Patents

Compus oligoribonucleotidic, procedeu de preparare si metoda de inactivare Download PDF

Info

Publication number
RO114469B1
RO114469B1 RO145344A RO14534488A RO114469B1 RO 114469 B1 RO114469 B1 RO 114469B1 RO 145344 A RO145344 A RO 145344A RO 14534488 A RO14534488 A RO 14534488A RO 114469 B1 RO114469 B1 RO 114469B1
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
rna
sequence
compound
ribozyme
target rna
Prior art date
Application number
RO145344A
Other languages
English (en)
Inventor
James Phillip Haseloff
Wayne Lyle Gerlach
Philip Anthony Jennings
Fiona Helen Cameron
Original Assignee
Gene Shears Pty Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=27507391&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=RO114469(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Gene Shears Pty Ltd filed Critical Gene Shears Pty Ltd
Publication of RO114469B1 publication Critical patent/RO114469B1/ro

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N57/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic phosphorus compounds
    • A01N57/10Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic phosphorus compounds having phosphorus-to-oxygen bonds or phosphorus-to-sulfur bonds
    • A01N57/16Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic phosphorus compounds having phosphorus-to-oxygen bonds or phosphorus-to-sulfur bonds containing heterocyclic radicals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • A01N63/60Isolated nucleic acids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8216Methods for controlling, regulating or enhancing expression of transgenes in plant cells
    • C12N15/8218Antisense, co-suppression, viral induced gene silencing [VIGS], post-transcriptional induced gene silencing [PTGS]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/12Type of nucleic acid catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/12Type of nucleic acid catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes
    • C12N2310/121Hammerhead
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/12Type of nucleic acid catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes
    • C12N2310/124Type of nucleic acid catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes based on group I or II introns

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Prezenta invenție se referă la un compus oligoribonucleotidic care posedă o înaltă activitate specifică ribonucleazică, la un procedeu de preparare a acestui compus, precum și la o metodă de inactivare a ARN țintă într-o celulă, prin utilizarea acestui compus.
Este cunoscut un număr de molecule ARN existente în natură, ca de exemplu, virusul de avocadro pătat (ASBV), ARN-urile satelite din virusul cu spoturi inelare a tutunului (STObRV) și din virusul tranzitoriu striat al lucernei (sLTSV), care suferă o scindare autocatalizată. Astfel de scindări apar ca o parte esențială și unică a duratei ciclului acestor tipuri de ARN sau a altora.
Toate reacțiile de scindare autocatalitice ale ARN-ului necesită prezența unor ioni de metale bivalente și un pH neutru sau alcalin și aceste duc la obținerea de ARN cu grupări terminale 5'-hidroxi și 2',3'-fosfat ciclic (așa cum este cunoscut din literatura de specialitate). Reacțiile sunt catalizate chiar de ARN-uri, probabil ca rezultat al conformației care aduce grupări reactive în imediata apropiere. Pozițiile scindării auto-catalitice a ARN-urilor de proveniență naturală sunt localizate în interiorul regiunilor celor mai bine conservate ale structurii secundare a ARN-ului (de asemneâ cunoscut din literatura de specialitate).
Experimentele făcute pe ARN-urile satelite din virusul cu spoturi inelare ale tutunului (sTobRV) au dus la desemnarea unor noi endoribonucleaze (pe care le vom denumi în cele ce urmează “ribozime”), acestea fiind enzime conținute în ARN, care catalizează scindarea catalitică a moleculelor țintă de ARN.
Termenul de ribozime, așa cum se specifică că este utilizat în descriere, se referă la moleculele cuprinzând în întregime ARN-ul sau derivații acestuia.
Ribozimele, din prezenta invenție, sunt diferite de ARN endoribonuclează care se găsește în mod normal în Tetrahymena Thermophila (cunoscută ca IVS, sau L-19 IVS ARN) și care a fost descrisă pe larg de Thomas Cech și colaboratori. Endoribonuclează Cech are un oc tet de baze perechi într-un situs activ care hibridizează într-o secvență de ARN țintă, după care are loc scindarea țintei ARN, cu o cerință pentru guanozină sau derivați de guanozină liberi. Fragmentele rezultate din scindare conțin grupări terminale 5-fosfat și 3'-hidroxil. Numărul limitat de nucleotide disponibile pentru hibridizarea la un substrat ARN limitează eficacitatea și eficiența endoribonucleazei Cech ca și în general, oligonucleotidele conținând mai puțin de douăsprezece nucleotide care hibridizează în mică măsură la secvențele țintă. De asemenea, reiese că situsul activ a endoribonucleazei Cech este necesar să fie conservat cu un număr de nucleotide pentru eficiența activității endoribonucleazei. Acest lucru restrânge numărul permutărilor secvențelor de situs activ care pot fi îndreptate spre efectuarea hibridizării la secvențele țintă, astfel restrângând seria secvențelor de ARN țintă scindabile de către endoribonuclează Cech. Endoribonucleaza Cech modifică, de asemenea ARN-ul, prin adăugarea unei guanozin nucleotide libere la poziția finală 5' a ARN-ului scindat.
Compusul oligoribonucleotidic din prezenta invenție are formula generală I: 3' (X>n A. X (X)' 5' \
I \ AU
G
X . x (X)b(I) în care: fiecare X reprezintă o ribonucleotidă care poate fi aceeași sau diferită; în care fiecare (X)n și (X)n. reprezintă o oligoribonucleotidă (a) aptă de hibridizare cu o secvență de scindare ARNțintă și (b) definită printr-o secvență predeterminată, care nu se leagă covalentîn mod firesc la secvențele A-A-A-G-C și, respec
RO 114469 Bl tiv, X-C-U-G-A-, o astfel de secvență ARN țintă nefiind prezentă în compus; în care fiecare dintre n și n’ reprezintă un număr întreg care definește numărul de ribonucleotide în oligonucleotidă cu condiția ca suma n+n'să fie suficientă pentru a permite compusului să interacționeze stabil cu secvența de ARN țintă prin împerecherea de baze; în care fiecare * reprezintă împerecherea de baze dintre ribonucleotidele localizate de fiecare parte a acestuia; în fiecare linie continuă reprezintă o legătură chimică ce realizează legături covalente între ribonucleotidele localizate pe oricare parte a acestuia; în care a reprezintă un număr întreg ce definește un număr de ribonucleotidele cu condiția că a poate fi O sau 1 și dacă este O, atunci A în poziția 5' față de (X]a este legat de G în poziția 3' față de (X)a; în care fiecare dintre m și m’ reprezintă un număr întreg care este mai mare sau egal cu 1; în care fiecare dintre liniile punctate reprezintă independent, fie o legătură chimică realizând legături covalente între ribonucleotidele dispuse de fiecare parte a acestuia, fie lipsa unei astfel de legături chimice; și în care (X)b reprezintă o oligoribonucleotidă ,care poate fi prezentă sau absentă, cu condiția că b reprezintă un număr întreg mai mare sau egal cu 2 dacă (X]b este prezent.
Compusul oligoribonucleotidic din prezenta invenție poate avea și formula generală II;
3 <X)nT~CA\ x— (X)n· 5
A c
A \
r\ U\
G 1 G\ 1 1
C 1 g ^4 i *
X
1 X I X |
(X)m * 'l m (*>m·
X X
(X)b (li)
în care: fiecare X reprezintă o ribonu-
cleotidă care poate fi aceeași sau dife-
rită; în care fiecare (Xk, și (X)n., repre
zintă o oligoribonucleotidă (a) aptă de hibridizare cu o secvență de scindare ARN țintă și (b] definită printr-o secvență predeterminată, care secvență nu poate forma firesc o legătură covalentă la secvențele C-A-A-A-G-C și, respectiv, X-C-UG-A-, o astfel de secvență ARN țintă nefiind prezentă în compus; în care fiecare dintre n și n’ reprezintă un număr întreg care definește numărul de ribonucleotide în oligonucleotidă cu condiția ca suma n+n' să fie suficientă pentru a permite compusului să interacționeze stabil cu secvența de ARN țintă prin împerecherea de baze; în care fiecare * reprezintă împerecherea de baze dintre ribonucleotidele localizate de fiecare parte a acestuia; în care fiecare linie continuă reprezintă o legătură chimică ce realizează legături covalente între ribonucleotidele localizate pe oricare parte a acestuia; în care a reprezintă un număr întreg ce definește un număr de ribonucleotidele cu condiția că a poate fi O sau 1 și dacă este O, atunci A în poziția 5' față de (X)a este legat de G în poziția 3' față de (X)a; în care fiecare dintre m și m’ reprezintă un număr întreg care este mai mare sau egal cu 1; în care fiecare dintre liniile punctate reprezintă independent, fie o legătură chimică, care realizează legături covalente între ribonucleotidele dispuse de oricare parte a acestuia, fie lipsa unei astfel de legături chimice; și în care [X]to reprezintă o oligoribonucleotidă, care poate fi prezentă sau absentă, cu condiția că, b reprezintă un număr întreg mai mare sau egal cu 2 dacă (X]b este prezent.
De asemenea, compusul oligoribonucleotidic din prezenta invenție poate avea și formula generală III:
3 <X>n~CA\ A I x— \ c \ - (X)n·
1 A \ G.
G 1 A. \ μ
1 /
c G
1 1 X
X
1 X i X
(X)^ * \ 'm <>%
l X X
<x>b (III)
RO 114469 Bl în care: fiecare X reprezintă o ribonucleotidă care poate fi aceeași sau diferită; în care fiecare (X]n_7 și (X)n. .reprezintă o oligoribonucleotidă (a) aptă de hibridizare cu o secvență de scindare ARN țintă și (b) definită printr-o secvență predeterminată care secvență nu poate forma, în mod firesc, o legătură covalentă la secvențele C-A-A-A-G-C și, respectiv, X-C-U-g-A-, o astfel de secvență țintă ARN nefiind prezentă în compus; în care fiecare dintre n și n’ reprezintă un număr întreg, care definește numărul de ribonucleotide în oligonucleotidă cu condiția ca suma n+n'să fie suficientă pentru a permite compusului să interacționeze stabil cu secvența de ARN țintă prin împerecherea de baze; în care fiecare * reprezintă împerecherea de baze dintre ribonucleotidele localizate de fiecare parte a acestuia; în fiecare linie continuă reprezintă o legătură chimică ce realizează legături covalente între ribonucleotidele localizate pe oricare parte a acestuia; în care fiecare dintre m și m’ reprezintă un număr întreg, care este mai mare sau egal cu 1; în care fiecare dintre liniile punctate reprezintă independent, fie o legătură chimică realizând legături covalente între ribonucleotidele dispuse de fiecare parte a acestuia, fie lipsa unei astfel de legături chimice; și în care (X)fa reprezintă o oligoribonucleotidă, care poate fi prezentă sau absentă, cu condiția că b reprezintă un număr întreg ,mai mare sau egal cu 2, dacă (X]fa este prezent.
Suma n+n’ este mai mare sau egală cu 14 și fiecare n și n’ este mai mare decât 6. Secvența țintă ARN de scindare este o secvență virală.
Procedeul de obținere a compusului oligoribonucleotidic, conform invenției, cuprinde următoarele etape: a] legare într-un vector de transfer cuprins în ADN, ARN sau o combinație a acestora, a unei secvențe nucleotidice corespunzând compusului respectiv; b] transcripția secvenței nucleotidice din etapa (a) cu o ARN polimerază; și c) recuperarea compusului.
Metoda de inactivare a ARN țintă într-o celulă, în conformitate cu prezenta invenție, cuprinde contactarea ARN țintă din celulă cu compusul prezentat mai sus, compusul fiind capabil să interacționeze prin împerechere de baze cu secvența ARN țintă în astfel de condiții încât compusul interacționează stabil prin împerechere de baze cu ARN țintă este scindat.
ARN țintă este o transcripție a unei gene care este endogenă față de celulă sau este exogenă față de celulă. Celula este procariotă sau eucariotă și este o celulă vegetală sau animală. Celula vegetală este o componentă a unei plante și compusul este format în interiorul celulei sau în exteriorul celulei.
Prin contrast, ribozimele din prezenta invenție hibridizează eficient într-o mare varietate de secvențe ARN țintă, și nu modifică ținta ARN scindată.
Ribozimele din prezenta invenție conțin o porțiune de hibridizare care este complementară cu secvența nucleotidică, cu cel puțin o porțiune din ținta ARN și o zonă catalitică, care este adaptată pentru a scinda ținta ARN. Zona de hibridizare conține 9 sau mai multe nucleotide.
De preferință, ribozimele din prezenta invenție au o regiune de hibridizare cuprinzând unul sau mai multe brațe formate dintr-un unic fascicol de ARN și având o secvență complementară la cel puțin o parte a țintei ARN, respectivul braț sau respectivele brațe fiind asociate cu o zonă catalitică capabilă să scindeze respectiva țintă, și acolo unde regiunea de hibridizare cuprinde un singur braț de ARN, respectivul braț conține cel puțin 9 nucleotide, iar acolo unde regiunea de hibridizare cuprinde două sau mai multe brațe de ARN, totalul nucleotidelor în respectivele brațe este mai mare de 9 nucleotide.
Ribozimele, din prezenta invenție, pot fi preparate prin metode bine cunoscute în tehnica sintezei moleculelor ARN. în particular, ribozimele din această invenție pot fi preparate dintr-o secvență corespunzătoare de ARN (ADN care prin transcriere duce la obținerea unei ribo
RO 114469 Bl zime, și care poate fi sintetizată, conform metodelor bine cunoscute, în tehnica sintezei ADN) legat chimic de ARN polimerază, ca de exemplu, un promotor pentru T7 ARN polimerază sau SP6 ARN polimerază. O secvență ADN, corespunzând unei ribozime, din prezenta invenție, poate fi ligată dintr-un vector de transfer ADN, ca ADN plasmide sau ADN bacteriofag. Acolo unde vectorul de transfer conține un promotor ARN polimerază legat la ADN-ul corespunzător unei ribozime, ribozima poate fi obținută, în mod convenabil, prin incubare cu o ARN polimerază. Ribozimele pot fi prin urmare obținute, in vitro, prin incubarea ARN polimerazei cu un promotor ARN polimerază legat la ADN-ul corespunzător unei ribozime, în prezență de ribonucleotide. In vivo, celulele procariotice sau eucariotice (incluzând celulele mamifere și celulele de plante) pot fi transfectate cu un vector de transfer adecvat conținând material genetic corespunzând unei ribozime în concordanță cu prezenta invenție, legat la un promotor ARN polimerază astfel că, ribozima este transcrisă în celula gazdă. Vectorii de transfer pot fi: plasmide bacteriale sau ARN sau ADN viral. Secvențele nucleotidice corespunzând ribozimelor sunt, în general, plasate sub controlul unor promotori puternici ca, de exemplu, impur, SV40 întârziat, SV40 timpuriu, metalotionină, sau promotor λ. Ribozimele pot fi direct transcrise in vivo, de la un vector de transfer, sau la alegere pot fi transcrise ca parte a unei molecule ARN mai mari. De exemplu, ADN corespunzând secvenței de ribozimă poate fi legată la capătul 3' al unei gene purtătoare cum ar fi, de exemplu, după o translație stop-signal și moleculele ARN mai mari pot ajuta la stabilizarea moleculelor de ribozimă împotriva digestiei de nuclează în interiorul celulelor. La translație, gene purtătoare pot face să crească o proteină a cărei prezență poate fi direct analizată, de exemplu, prin reacția enzimatică. Gena purtătoare poate, de exemplu, codifica o enzimă.
Suplimentar, invenția prevede un vector de transfer ADN, care conține o secvență ADN corespunzând unei ribozime legate de un promotor pentru a preveni transcrierea ribozimei.
într-o metodă preferențială, pentru a produce o ribozimă, două oligonucleotide sintetice ale secvenței complementare sunt preparate prin procedee standard (care sunt cunoscute din literatura de specialitate), și hibridizează împreună. Una dintre oligonucleotide codifică o ribozimă dorită. Respectivele capete ale oligonucleotidelor hibridizate corespund la diferite situsuri restrictive enzimatice, fie EcoR1, la un cap, și Pst1, la celălalt capăt. După scindare cu enzimele restrictive potrivite (EcoR1 și Pst1 în exemplul de mai sus), fragmentul ADN dublu catenar poate fi donat într-un vector de transfer. Acolo unde vectorul plasmidic conține un promotor ARN polimerază, provenit din secvența ADN corespunzând unei ribozime din prezenta invenție, ARN-ul transcris corespunzând unei ribozime poate fi convenabil fie in vitro, fie in vivo. Acolo unde ribozima conține două jumătăți reținute împreună de împerecherea bazelor nucleotidelor complementare, fiecare jumătate a ribozimei poate fi obținută, conform metodelor de mai sus, și jumătățile incubate împreună formează ribozima.
Ribozimele preferate ale prezentei invenții scindează ținta ARN, care conține secvența X°UY unde X° este orice ribonucleotidă, U este uracil și Y este adenină, citozină sau uracil. X°U formează o parte dintr-o pereche bază a zonei de flancare, iar Y nu este împerecheat cu bază. De preferință, dar în nici un caz exclusiv, X° este guanidină și X°UY este GUC sau GUA. Orice moleculă ARN conținând aceste secvențe poate fi scindată cu ribozimele din prezenta invenție. 0 dată secvența unui ARN transcris conținând secvența X°UY fiind determinată, brațele secvenței de ribozimă pot fi sintetizate, astfel, încât să-i fie complementare, și astfel să-i producă hibridizarea, ARN-ul din secvența țintă flancând secvența X°UY. La hibridizarea brațelor ribozimei, cu secvența de ARN țintă flan
RO 114469 Bl când X°UY, regiunea catalitică a ribozimei scindează ARN-ul țintă în interiorul secvenței X°UY. Scindarea ARN-ului este facilitată în prezență de magneziu sau alt cation bivalent, la pH aproximativ 8,0.
în felul acesta, ribozimele preferențiale ale prezentei invenții pot fi proiectate pentru a scinda orice ARN a cărui secvență este cunoscută. înalta frecvență a reziduurilor scindate de ribozime în ARN (1:64 pentru GUC într-un ARN ,cu coincidență și frecvență egală a distribuției de bază) înseamnă că un număr potențial de situsuri pentru scindări cu ribozime poate fi prezis cu siguranță în orice ARN țintă dat.
Potrivit unui alt aspect al prezentei invenții este asigurată o metodă pentru inactivarea unei secvențe de ARN țintă care include reacția respectivei ținte ARN cu o ribozimă din prezenta invenție.
In vivo, adică în interiorul unei celule sau a unor celule ale unui organism, un vector de transfer, cum ar fi o plasmidă vectorială sau un ARN viral, codificând unul sau mai multe ribozime, poate fi transferat în celule de exemplu (fenomen care este cunoscut din literatura de specialitate). Odată aflat în interiorul celulei, vectorul de transfer poate replica, și să fie transcris de polimerazele celulare pentru a produce ARN-uri ribozimice care apoi, inactivează un ARN țintă dorit.
La alegere, un vector de transfer conținând, una sau mai multe secvențe de ribozimă, poate fi transferat în celule sau introdus în celule prin intermediul micromanipulării tehnice, cum ar fi, microinjecția, astfel ca vectorul de transfer sau o parte a acestuia să se integreze în genomul celulei gazdă. Transcrierea materialului genetic integrat duce la apariția ribozimelor, care acționează inactivând o anumită țintă ARN.
Ribozimerle din prezenta invenție au aplicații terapeutice și biologice extinse. De exemplu, virusurile cauzând bolile la om și animale pot fi inactivate prin administrarea la un subiect infectat cu un virus, a unei ribozime, conform prezentei invenții, adaptat să hibridizeze și să scindeze ARN-ul transcris al unui virus. Astfel de ribozime pot fi hibridizate prin administrarea parenterală sau alte mijloace de administrare. Unui subiect infectat cu un virus cauzând boală, i se poate adminsitra, la alegere, un virus non-virulent ca vaccinul sau un adenovirus, care a fost preparat, astfel, încât să conțină ADN corespunzător la o ribozimă legată de un promotor ARN, astfel, încât ribozimă este transcrisă în celulele animalului gazdă, transfectată cu virusul preparat, pentru a efectua scindarea și/sau inactivarea ARN-ului țintă transcris al virusului cauzând boala. Ribozimele din prezenta invenție au aplicație, în particular, la bolile virale cauzate de exemplu, de virusul Herpes simplex (HSV) sau virusul SIDA (HIV).
Ribozimele prezentei invenții au, de asemenea ,o importanță deoasebită la inactivarea ARN-ului transcris în bacterii și alte celule procariotice, plante și animale. în bacterii, ARN-ul transcris de exemplu, bacteriofagul, care cauzează moartea celulelor bacteriale, poate fi incativat prin transfectarea unei celule cu un vector de transfer al ADN, care este capabil să producă o ribozimă, conform prezentei invenții, și care inactivează ADN-fagul. în altă variantă, ribozimă însăși poate fi adăugată și absorbită de celula bacterială pentru a efectua scindarea ARN-ofagului.
ARN-ul transcris în plante poate fi inactivat utilizând ribozime codificate de către un vector ca Ti plasmida din Agrobacterium tumefaciens. Când astfel de vectori sunt transfectați, într-o celulă de plantă, ribozimele sunt produse sub acțiunea ARN polimerazei și poate duce la scindarea unei secvențe ARN țintă specifice. Asemănător virusurile de plante ale căror secvențe ARN sunt cunoscute, sau ARN-ul transcris al genelor de plante, pot fi inactivate utilizând ribozime.
Genele endogene transcrise în plante, animale sau alte tipuri de celule pot fi inactivate folosind ribozimele din prezenta invenție. Asemănător, fenotipurile nedorite sau caracteristice pot fi mo
RO 114469 Bl dulate. Poate fi posibil, de exemplu, utilizând ribozimele din prezenta invenție să se îndepărteze sâmburii din fructe sau se pot trata bolile ereditare umane cauzate de producția unei proteine pernicioase, sau supraproducția unei proteine particulare.
Se dau, în continuare, 5 exemple de realizare a invenției, în legătură cu fig. 1...17, care reprezintă:
-Fig. 1, prezintă situsurile autoscindabile ale ARN-ului de tip sălbatic și ale ARN-urilor de mutație și o reprezentare a unui profil electroforetic a produselor de scindare auto-catalitică a ARN-ului:
(a) . Cuprinde structurile conservate asociate cu situsurile de scindare ale ARN natural în ASBV, ADN satelit transcris din triton și ARN-uri satelite ale sTobRV, LTSV, virusul pestriț de Solanum nodiflorum, virusul pestriț de tutun și virusul pestriț de trifoi subteran. Sunt reprezentate secvențele nucleotidice care sunt conservate între aceste structuri, pe când, altele sunt reprezentate cu X. împerecherea pe baze este reprezentată prin și situsul pentru scindarea ARN este indicat cu săgeată.
(b) . Reprezintă secvențele de nucleotide conservate asociate cu scindarea catenei (+) a sTobRV ARN. Situsul de scindare este indicat cu săgeată.
(c) . Este prezentat un mutant in vitro al sTobRV conținând o inserție de opt nucleotide (reprezentată încercuit] împreună cu o duplicație pe flanc de trei nucleotide (UGU cu resturi de la 7 și 9], (d) . Fragmente sub-clonate de Haelll de tip sălbatic sTobRV și mutantul D-51 in vitro au fost fiecare transcrise în ambele orientări (+) și (-) și fracționate prin transcriere radiomarcată și electroforeză pe gel de poliacrilamidă. Pozițiile bazelor 159 și 170 nescindate transcrise din secvențele de tip sălbatic (WT) și de mutant (D-51) sunt indicate cu săgeată și se evidențiază cantitățile de produse scindate.
-Fig. 2, reprezintă secvența de nucleotidă a unei ribozime și produsele de scindare ale ribozimei separate prin electroforeză pe gel:
(a) . Nucleotidele inserate în mutantul D-51 (fig. 1c) conțin un situs al endonucleazei de restricție BamHI. BamHI a fost utilizat pentru a scinda ADN-ul mutant și cele două secvențe au fost subclonate și transcrise separat in vitro, ARN-ul transcris este reprezentat schematic cu bazele potențial împerechiabile între ARN-urile indicate, cu Fragmentul conținând situsul pentru scindare arătat cu săgeată este desemnat ,ca SARN, fragmente conținând ribozima este desemnată, ca Rz-ARN.
(b) . (32P)-Rz-ARN (101 baze] a fost incubat singur (coloana 1), și cu SARN nemarcat (coloana 2). (32P)-S-ARN a fost incubat singur (coloana 3), și cu Rz-ARN-uri nemarcate sau marcate, cu 32P (coloanele 4 și, respectiv, 5).
-Fig. 3 , reprezintă schematic un model de ribozimă, conform unuia dintre obiectele prezentei invenții. Zona A reprezintă secvența de scindare din interiorul ARN țintă. Zona B reprezintă zona catalitică, iar zona C reprezintă brațele ribozimei.
-Fig. 4, prezintă schema ribozimelor ațintite împotriva genei transcrise CAT (cloramfenicol acetil transferază). Ribozimele, denumite RzCAT-1,2 și 3, au fost ațintite către trei situsuri ale genei CAT, dintr-o bază 835 transcrisă in vitro. Localizările relative ale situsurilor de scindare pe transcris sunt reprezentate schematic cu bazele numerotate de pe flancuri (a). Cele trei secvențe de ribozime sunt reprezentate (de la (b) la (d)) cu secvențele lor țintă. Secvențele de aminoacid ale genei CAT sunt numerotate și situsurile prezise pentru scindarea ARN sunt indicate cu săgeată. RzCAT-1 și 3 conțin 24 de secvențe de baze derivate din catena (+) a sTobRV (regiunea B, fig. 3), pe când RzCAT-2 conține o singură schimbare U-A în această zonă.
-Fig. 5, prezintă rezultatul scindării CAT ARN cu ribozime RzCAT-1 la 3.
(a). ARN-urile [32P]-CAT au fost fracționate pe gel după incubare, numai (-) sau cu una dintre cele trei ribozime,
RO 114469 Bl
RzCAT-1 la 3 (coloanele 1,2 și respectiv 3). Localizarea întregului transcris este indicat cu săgeată.
(b). Analiza bazei terminale 5'. Fragmentele 3' produse prin scindarea cu ribozimă a CAT mARN au fost [5'-32P]kinazate, purificate pe gel, supuse la digestie completă de nuclează, iar reziduurile terminale eliberate au fost fracționate prin electroforeză pe gel de poliacrilamidă, la pH=3,5. Nucleotidele terminale 5', determinate prin referire la markeri (coloana M), unde A, U și G sunt din fragmentele produse de RzCAT, de la 1 la 3 (coloanele 1, 2 și, respectiv, 3).
-Fig. 6, este reprezentată curba activității catalitice a ribozimei RzCAT-1 asupra CAT ARN. Cantitățile de produse de scindare ale nucleotidei 139 au fost stabilite cantitativ și reprezentate grafic. Reprezentarea suplimentară arată acumularea de fragment de bază 139 în timp, după electroforeză pe gel de poliacrilamidă.
-Fig. 7, prezintă viteza relativă de scindare a CAT ARN în diferite condiții de temperatură. Substratul ARN este reprezentat prin linie continuă. în fiecare caz, produsul de scindare este reprezentat printr-o linie punctată.
-Fig. 8, reprezintă trei ribozime (corespund pentru RzCAT-2) având brațe sau secvențe de flanc de diferite mărimi.
-Fig. 9, prezintă schema de obținere a unei ribozime cuprinzând ARN antisens catalitic, conținând în fiecare domeniu de scindare RzCAT, de la 1 la 3.
-Fig. 10, arată hibridizarea ribozimelor la secvențe tintă conținând motive GUA (10a) și GUU(10b) în CAT mARN.
-Fig. 11, arată situsurile pentru scindarea autocatalitică a ARN-ului din virusul Citrus exocortis (CEV] ARN și complementul acestuia.
-Fig. 12, este reprezentată ribozima RzCEV25x (+) hibridizată la ținta CEV ARN(a), și o imagine a electroforezei pe gel a (+)CEV ARN și (-)CEV ARN complementar, incubat cu RzCEV25x(+) (b, coloanele 1 și, respectiv, 2. Produsul de scindare este indicat cu săgeată).
-Fig. 13, prezintă ribozimă RzCAT hibridizând la secvența sa țintă (a) și ribozima RzSCMoV (b). Domeniul catalitic al fiecărei ribozime este încercuit. Sunt marcate și diferențele între zonele catalitice ale RzSCMoV,comparativ cu RzCAT-2.
-Fig. 14, prezintă ribozimă RzCEV2 hibridizând la o secvență țintă din ARN-ul virusului Citrus exocortis (CEV). Situsul de scindare corespunde nucleotidei-336 în secvența CEV ARN. Alterarea la secvența nucleotidică în domeniul catalitic al sTobRV este încercuită (a). Fig. 14(b) prezintă o imagine electroforetică a unui ARN de control (catena (-) a CEV) ARN, coloana 7 și catena (+) a CEV ARN coloana 8, după incubare cu RzCEV2.
-Fig. 15, prezintă ribozimă RzCAT2 (a) comparată cu ribozimă RzCAT-2B (b). Domeniile catalitice sunt încercuite. Schimbările în domeniul catalitic al RzCAT-2B comparativ cu RzCAT-2 sunt, de asemenea, încercuite.
-Fig. 16, reprezintă o schemă a plasmidei pJ35SN.
-Fig. 17, este o prezentare grafică a unei medii a patru experimente asupra inhibiției expresiei CAT la plante (protoplaste de tutun).
în exemplele de realizare care urmează, reacțiile și manipulările împlicând ADN,ca ligări, reducerea digestiei enzimei, transformări bacteriale, secvențierea ADN, etc, au fost conduse după tehnici standard, ca cele descrise în literatura de specilaitate (de exemplu, de Maniatis și al.). Manipulările de ARN au fost, de asemenea, conduse conform tehnicilor standard ca cele descrise de Uhlenbeck.
Exemplul 1. Scindarea auto-catalitică a sTobRV ARN de mutație
Un consens al domeniilor asociate cu scindarea situsurilor ARN-ului produs natural în ASBV, ADN datelit de triton transcris, și ARN-urile satelite ale sTobRV, LTSV, virusul pestriț al tabacului catifelat (VMoV) virusul pestriț din Solanum nodiflorum (SNMV) și virusul pestriț de trifoi subteran (SCMoV) este așa cum este reprezentat în fig. 1a. Sunt prezentate secvențele de nucleo
RO 114469 Bl tide, care sunt conservate între aceste structuri, pe când secvențele non-conservate sunt reprezentate cu X. Un U suplimentar este poziționat după reziduul 1Aîn catena LTSV(+).
Domeniul asociat cu scindarea auto-catalizată a catenei (+) a sTobRV a fost studiat pentru a evidenția activitatea enzimatică a substratului în acest domeniu. Mai întâi, sTobRV cADN-urile donate au fost supuse mutagenezei utilizând o oligonucleotidă linker de redactare a inserției (BamH1).
Construirea unui vector pentru exprimarea sTobRV in vitro
Un fragment 160 Taq 1-Spe 1 de sTobRV cADN a fost izolat din pSP653 (după metodele cunoscute din literatura de specialitate) și ligat la restul Acc 1Spe 1 ,pGEM 4 tratat cu fosfatază pentru a reforma situsul Acc 1. Un clon rezultat a fost linearizat cu Acc 1 tratat cu fosfatază și un fragment 359 bp Taq 1, din sTobRV cADN a fost linearizat. Clonele rezultate au fost protejate de prezența unei secvențe 520 bp sTobRV cADN permutată circular, conținând reziduuri terminale excesive, de la 277 la 81 (pTTS). Secvența sTobRV este flancată de promotori pentru T7 și SP6 ARN polimeraze, și transcrierea, dă o creștere de ARN de orientare (+) sau (-) care conține două situsuri pentru autoscindare.
Mutageneza in vitro
Plasmida pTTS (50 pg) a fost linearizată cu BamH1, tratată cu nuclează S1 și religată pentru a îndepărta un unic situs BamH1. Compusul rezultat, pTTSB, a fost tratat cu 2 x 1O4 unități de DNază 1, în 20 mM Tris-HCI, pH= 7 și 0,15 mM MgCI2, pe o perioadă de 10 min și la temperatura, de 37°C. ADNurile lineare rezultate au fost orientate și/sau blocate la capăt, utilizând T4 ADN polimerază și au fost purificate prin electroforeză cu gel 0,7% de LGT agaroză și extracție. Secvențele de linker kinază BamHI (CGGATCCG) au fost ligate, pentru a lineariza plasmida, peste noapte la temperatura camerei, în prezență de polietilenglicol 5%. Apoi, reacțiile au fost asimilate de BamHI, și ADN urile plasmidice lineare au fost repurificate prin electroforeză pe gel 0,7% de LGT agaroză (acest lucru s-a găsit că este necesar pentru a îndepărta ultimele urme de plasmidă circulară împreună cu linkerii nelegați). Plasmidele au fost recirculate utilizând T4 ADN ligază și transformate în E.coli DH-1. Colonii (mai mari de 1000) au fost răzuite de pe plăcile de agar, crescute în cultură lichidă până la saturare și s-au preparat populații mixte de ADN-uri plasmidice. Amestecul de inserții sTobRV cADN a fost excizat prin restricția enzimei de asimilare la EcoR1 flancator și la situsurile Pst1, purificat prin electroforeză pe gel 1% de LGT agaroză și sub-clonat la capătul EcoR1Pst1 ,pGEM-4 tratat cu fosfat. Rezultantele au fost din nou comasate, crescute în cultură lichidă și s-a preparat ADN plasmidic. ADN-urile plasmidice au fost tratate cu BamHI, pentru a scinda numai acele plasmide conținând o secvență linker BamHI și formele liniare au fost din nou purificate prin electroforeză în două rânduri pe gel 0,7% de AGT agaroză, recirculare cu T4ADN ligază și transformare în E.coli DH-1. Transformanții individuali au fost protejați pentru poziția aproximativă a linkerului BamHI inserat în secvența sTobRV, prin restricția enzimei de asimilare, sub-clonați la M13 mp 19 și secvențiați prin tehnica lanțului terminal dideoxinucleotidic.
A rezultat o multitudine de mutanți sTobRV și analiza secvenței de nucleotide a arătat că fiecare mutant a conținut o secvență linker (CGGATCCG] de BamHI inserată împreună cu duplicarea flancurilor sau eliminarea secvențelor sTobRV. Mutanții au fost transcriși in vitro și ARN-urile au fost testate în privința capacității de a suferi scindarea. Din acest experiment a fost identificată o secvență 52-nucleotidă conținând, atât porțiuni de substrat, cât și de scindare a sTobRV ARN. Această secvență 52nucleotidă, reprezentată în fig. 1b, a conținut domeniul de secvență conservată cerut pentru auto-scindarea altor ARN-uri (fig. 1a). Un mutant, desemnat D-51, a conținut o secvență opt-nucleoti
RO 114469 Bl dică de linker BamH1 inserată între trei nucleotide sTobRV duplicate numerotate de la 7 la 9. Acest mutant a suferit scindare auto-catalitică a ARN-ului.
Perechile de baze 97 și 108 din fragmentele Haelll conținând secvența de scindare 52-nucleotidă de tipul sălbatic și ARN-urile D-51 (așa cum sunt prezentate în fig. 1b și 1c) au fost excizate din clonele plasmidice secvențiate. Fragmentele au fost ligate la situsul Smal al pGEM4 și protejate pentru a obține ambele orientări ale inserției. Plasmidele au fost linearizate utilizând EcoR1 și catena (+) și (-) a ARN-urilor cu bucăți de baze 159 și 170 au fost transcrise utilizând 200 unități/ml de T7 ARN polimerază la pH=7,5, în 50 mM Tris-HCI, 10 mM NaCI, 6 mM MgCI2, 2mM spermidină, 1000 unități/ml RNazină, 500 pM ATP, CTP și GTPcu 200 pM (a32P)UTP. ARN-urile au fost fracționate prin electroforeză pe poliacrilamidă 10%, uree 7 molar, gel de formamidă 25% și autoradiografiată.
Așa cum s-a prezentat în fig. 1 d, nu s-a observat scindarea catenei (-) a ARN transcris. Acest lucru era de așteptat întrucât catena (-) nu conține un situs de scindare auto-catalitică. La catenele (+) atât ale tipului sălbatic cât și ale secvențelor D-51, a avut loc scindarea, iar scindarea D-51 ARN-ului fiind întrucâtva mai puțin eficientă decât cea a tipului sălbatic (fig. 1d). Acest experiment indică că regiunea cu o buclă unicatenară, pe partea dreaptă a secvenței 52nucleotidice, la scindarea auto-catalitică a ARN-ului, nu este esențială.
Separarea activităților enzimatice și de substrat
Utilizând situsul endonucleazei BamH1 de restricție inserat în D-51, au fost obținute fragmente de flanc HaelllBamH1 și BamH1 -Haelll și fiecare a fost sub-clonat într-o palsmidă de E. coli convenabilă pentru transcrierea in vitro. Acest lucru a condus la eliminarea buclei unicatenare mutate din domeniul de auto-scindare, scindând regiunea în două segmente de ARN (fig. 2a). Fragmentul mai mic Haelll-BamH1 conținea nucleo tide de la 321 la 9, incluzând actualul situs de scindare și a fost denumit fragmentul S. Fragmentul BamH1 -Haelll conținând nucleotide de la 7 la 48 din sTobRV a fost denumit ribozimă sau fragment Rz. Plasmidele E.coli folosite pentru transcrierea in vivo au fost pGEM4 și pGEM3 (așa cum este cunoscut din literatura de specialitate). Aceste plasmide de expresie conțin:
(a) , o origine a replicării;
(b) . gena selectabilă la rezistența la medicamente (Ampr);
(c) . un situs de donare multiplă flancat de promotori ARN polimerază care pot fi utilizați pentru obținerea transcrierii in vitro.
T7 ADN polimeraza tratată, RzpGEM3 digerată cu Kpn1 și S-pGEM4 digerat cu Xbal au fost transcrise utilizând SP6 ARN polimerază în aceleași condiții cu cele descrise mai sus. Așa cum se prezintă în fig. 2, atât S.cât și Rz-ARNurile nu au prezentat degradare semnificativă când au fost incubate singure (fig. 2b, coloanele 1 și 3) în condiții potrivite pentru auto-scindare de înaltă eficiență (50°C, 20 mM MgCI2, pH=8,0). Rz-ARN marcat apare.de asemenea, nealterat după incubare cu S-ARN (fig. 2b, coloanele 2 și 5). Totuși, când S-ARN a fost amestecat cu Rz-ARN, a avut loc scindarea eficientă a S-ARN (fig. 2b, coloanele 4 și 5) rezultând două fragmente. Dimensiunile produsului au fost coordonate cu scinadrea S-ARN-ului (84 de baze) la situsul normal între nucleotidele #359 și #1, pentru a da fragmente învecinate pozițiilor 5' și 3' ale nucleotidelor 67 și, respectiv, 17. Acest lucru arată că SARN-ul acționează ca un substrat pentru scindarea ribonucleotidică cu Rz-ARN, care acționează de o manieră catalitică.
Un model al unei ribozime bazat pe regiunea catalitică a sTobRV ARN este prezentat în fig. 3. Ribozimă are două brațe sau secvențe pe flancuri, de ARN unicatenar, prezentat la C, hibridizând la secvențele complementare pe un substrat ARN, iar ARN-ul este scindat. Fiecare secvență de flanc prezentată la C, conține 8 ribonucleotide. Numărul ri
RO 114469 Bl bonucleotidelor conținut în regiunea C nu este critic. Totuși este necesar să fie prezente suficiente nucleotide pentru a permite ribozimei să hibridizeze la o țintă ARN. Reiese că patru nucleotide în fiecare regiune C este necesar să fie prezente, cel puțin, pentru hibridizare.
Regiunea catalitică B conține secvențe care sunt foarte bine în domeniile în care are loc scinadrea pe cale naturală (în mod spontan) (de văzut fig. 1a). Din compararea domeniilor de scindare ale secvențelor cunoscute, reiese că porțiunea de pereche bază din II, nu este importantă, ca și prezența unei bucle asociate la unul din capetele acesteia.
Situsul de scindare din interiorul țintei ARN este reprezentat la A (în fig. 3) ca GUC. Pe baza experimentelor noastre (neprezentate), și a altora din domeniul de specialitate, asupra situsurilor de scindare în ARN-urile de proveniență naturală, a rezultat că și secvențele GUA, GUC, CUC, AUC și UUC acționează ca situsuri de scindare, în interiorul ARN.
Exemplul 2. Demonstrarea designului, sintezei și activității ribo-zimelor, cu o nouă și înaltă activitate de endoribonuclează
Ca o ilustrare a acestei invenții au fost proiectate trei ribozime, care sunt ațintite împotriva transcrisului unei gene folosite în mod obișnuit ca indicator, derivate din bacterii, Tn9 Cloramfenicol Acetil Transferază (CAT), care poate dezvolta rezistență la bacterii, plante și animale și poate fi testată cu ușurință. Aceste ribozime, desemnate Rz-CAT de la 1 la 3 corespund la scindări potențiale de situsuri GUC în CAT ARN la pozițiile 139-140, 494-495 și 662-663, respectiv. Secvențele acestor ribozime sunt reprezentate în fig. 4. în fiecare caz, secvențele de pe flanc care hibridizează ARN-ul CAT țintă au conținut 8 nucleotide. Zona catalitică a fost astfel aleasă, încât să corespundă aceleia a sTobRV ARN, prezentate în fig. 3.
Gena CAT care a fost obținută din pCM4, a fost sub-clonată ca un frag ment BamH1 în pGEM-32. Acest plasmid a fost linearizat cu Hindlll și transcrisurile genei CAT au fost obținute utilizând T7 ARN polimerază cu 220 μΜ (a32P) UTP. Au fost sintetizate secvențe de ribozime ca oligodezoxinucleotide, Rz CAT1,2 și,respectiv, 3. Acestea au fost kinazate, ligate cu o porțiune EcoRI-Pstl de pGEM4 tratat cu fosfatază și a fost incubat cu fragmentul Klenow al ADN polimerazei 1, înainte de transformare bacterială. Plasmidele EcoRI linearizate au fost transcrise cu T7 ARN polimerază pentru a produce ARN-uri ribozimice. Ribozimele au fost incubate cu transcris CAT,în mM Tris-HCI, pH= 8,0, 20 mM MgCI2, la temperatura de 50°C, timp de 60 min, iar produsele au fost fracționate prin electroforeză pe gel conținând 5% poliacrilamidă, 7 M uree, formamidă 25% înainte de autoradiografie.
Când transcrisul CAT 840-nucleotidic a fost incubat cu oricare dintre cele trei ribozime, a avut loc o scindare eficientă și de înaltă specificitate a secvenței (fig. 5] rezultând două fragmente de ARN,din fiecare reacție. Mărimile fragmentelor au fost compatibile cu situsurile prezise pentru scindare (fragmentele de baze 139 și 696, 494 și 341, 662 și 173 au fost produsele scindării catalitice 5' și 3' din RzCAT-1,2 și, respectiv, 3). Condițiile cerute pentru scindări catalitice cu ribozime au fost similare acelora observate pentru reacțiile de scindare, care au loc pe cale naturală (așa cum este cunoscut din literatura de specialitate), scindarea mai eficientă având loc, la pH-uri ridicate, temperatură și concentrații de cation bivalent (nu sunt prezentate date). Când sunt prezente în exces molar, cele trei ribozime catalizează scindarea aproape completă a CAT ARN substrat, după 60 min, în 50 mM Tris-HCI, pH=8,0, 20 mM MgCI2,la temperatura de 50°C. în condiții similare, cu 0,1 pM substrat și 3 μΜ ribozime, T1/2 al substratului CAT mARN au fost 3,5 și 2,5 min, în prezența RzCAT1,2 și, respectiv, 3. Secvențele de ribozime au fost inactive față de complementul substratului ARN (catena (+)), și în
RO 114469 Bl forma oligodeoxiribonucleotidelor (nu sunt prezentate date). Fragmentele terminale 3' de scindare ale fiecărei reacții catalizate cu ribozimă au fost izolate și poziția 5' kinazată-32P (50 mM Tris-HCI, pH=9, 10 mM MgCI2,10 mM DTT, cu uCi γ32-Ρ ATP și 5 unități T4 polinucleotid kinază, timp de 30 min, la temperatura,de 37°C). Prin kinazarea eficientă a fragmentelor, se indică că ele posedă grupări 5' terminale, similar celor rezultate în urma scindării, care are loc în mod natural.
Au fost determinate nucleotidele fragmentelor obținute prin scindarea secvențelor CAT, de către RzCAT, de la 1 la 3. Pe scurt, fragmentele radiomarcate au fost purificate pe un gel de poliacrilamidă 5% și supuse digestiei,cu un volum egal de 500 unități/ml RNază T1, 25 unități/ml RNază T2 și 0,125 mg/ml RNază, în 50 mM acetat de amoniu pH=4,5, timp de 120 min, la temperatura de 37°C. Produsele au fost fracționate pe un gel de poliacrilamidă 20% conținând 25 mM citrat de sodiu, pH=3,5 și uree 7 molar. Fig. 5b arată că scindarea secvențelor CAT de către RzCAT-1 la 3 are loc cu precizie în fața nucleotidelor A, U și respectiv G.
Secvențele terminale a fragmentelor de genă CAT au fost determinate direct utilizând tehnica asimilării parțiale enzimatice (așa cum este cunoscut din literatura de specialitate), utilizând scindarea specifică pe bază,parțial, nucleotidică. Secvența de fragment confirmă că scindarea are loc la localizările așteptate din interiorul CAT ARN (nu sunt arătate).
Cataliza enzimatică
Pentru a demonstra că ribozimele provoacă scindarea substratului CAT mARN într-o manieră catalitică, fiecare a fost incubat cu un exces molar de substrat, în condiții care ar favoriza, atât scindarea, cât și disocierea de produs.
Fig. 6 arată rezultatele unui experiment, în care, după 75 min, la temperatura de 50°C, pH=8,0, în 20 mM MgCI2, 10 pmol de RzCAT-1 au catalizat scindarea specifică a unui substrat trunchiat de 163 pmol CAT mARN (173 baze) pentru a da fragmente 5' și 3' a bazelor 139 și, respectiv, 34. în medie, fiecare ribozimă a participat la mai mult de zece reacții de scindare. După 75 min, la temperatura de 50°C a fost remarcată o proporție de scindare nespecifică a ARN-ului datorită condițiilor extreme, dar 70% din ARN-urile rămase intacte (163 mol) s-a acumulat ca fragment de bază 139. Rezultatele similare s-au obținut pentru RzCAT-2 și 3 (nu sunt prezentate date), și,astfel, rezultă că fiecare acționează ca o enzimă ARN.
Exemplul 3. Efectul temperaturii asupra activității ribozimei
A fost examinat efectul temperaturii asupra vitezei activității ribozimei in vitro.
A fost urmărit mersul reacțiilor pentru ribozimele RzCAT-1, 2 și,respectiv, 3, substraturi, la 37°C și 50°C.
în acest experiment, reacțiile pentru fiecare ribozimă au fost făcute în dublu exemplar, utilizând condițiile de reacție din exemplul 2. O probă a fost incubată la temperatura de 37°C, celaltă la temperatura de 50°C. Probele la timpul de reacție, până la 90 min și desfășurarea reacției a fost analizată prin electroforeză pe gel de poliacrilamidă denaturată. Fig. 7 prezintă mersul reacției pentru fiecare dintre ribozimele, de la 1 la 3, la temperatura de 37°C și temperatura de 50°C. Viteza de reacție a fiecărei ribozime crește cu creșterea temperaturii de reacție.
Timpul de reacție necesar pentru scindare a 50% (t1/2) din CAT ARN este prezentat în tabelul 1:
RO 114469 Bl
Tabelul 1
Temperatura, °C RzCAT-1 RzCAT-2 RzCAT-3 /P(minute)
50 3,5 3,5 2,5
37 55,0 70,0 65,0
Așa cum se arată în tabelul 1, vi- io teza de reacție a ribozimelor la temperatura de 37°C este de aproximativ 20 de ori mai mică, decât viteza de reacție la temperatura de 50°C.
Exemplul 4. Efectul variației lungi- 15 mii brațelor ribozimelor (sau a secvenței de flanc) asupra activității catalitice a ribozimei
Brațele sau secvențele de flanc ale unei ribozime hibridizează ribozima la 20 o țintă ARN, după care are loc scindarea ARN. în acest experiment a fost investigat efectul asupra vitezei de scindare a unei secvențe țintă, obținut prin alterarea dimensiunilor complementarității 25 și, prin urmare, a lungimii bazelor care înperechează, ale brațelor ribozimei, la secvența țintă.
Ribozimele au fost produse cu 4, 8 și 12 baze complementare a secvenței 3 o țintă RzCAT-2, pe fiecare braț (fig. 8a). Ribozimele au fost preparate, conform metodelor din exemplul 2. Activitatea ribozimei a fost determinată prin incubarea ribozimei ARN,cu CAT ARN, așa 35 cum a fost descris mai înainte.
Ribozima având o compelmentaritate de 4 baze, pe fiecare braț, nu scindează substratul ARN. Ribozima având o compelmentaritate de 8 baze pe 40 fiecare braț a scindat substratul CAT, ca și ribozima având o compelmentaritate de 12 baze. Ribozimele cu o compelmentaritate de 12 baze au scindat mai eficient ținta ARN, așa cum se poate ju- 45 deca după viteza de reacție in vitro, decât ribozimele având un număr mai mic de baze complmentare. Prin urmare, apare necesar să existe o compelmentaritate mai mare de patru baze, mărind 50 dimensiunile zonei de hibridizare a ribozimelor când crește viteza lor de reacție.
într-un experiment secund, a fost investigată eficiența reacției unei ribozime având compelmentaritate (a) la întreaga lungime a țintei transcrise CAT ARN și domenii catalitice multiple (b).
Patru situsuri țintă GUC, în secvențele CAT ARN, au fost alese. Domeniile catalitice ale ribozimei împotriva acestor situsuri au fost “inserate” într-o secvență completă anti-sens (-] pentru transcrisul CAT și a fost testată activitatea catalitică.
Cele patru situsuri alese au fost cele trei desemnate prin RzCAT-1, 2 și 3, descrise mai înainte și un situs suplimentar, care poate fi descris după cum urmează:
Situs CAT nou #192
His His Ala Val C y s Asp Gly
5' 3’
CAU CAU GCC GUC UGU GAU GGC în care: “192 se referă la aminoacidul 192 din polipeptida CAT și se referă la situsul de clivaj.
Oligodeoxiribonucleotidele conținând domenii catalitice ale ribozimei și rotirile fiecărui dintre aceste situsuri de scindare, au fost folosite pentru experimente în mutageneză M13, pentru a produce o secvență conținând întregul complement al secvenței CAT, dar cu cele patru domenii catalitice ale ribozimei, înserat în acesta. Mutageneza M13 a fost executată prin legarea oligonucleotidelor conținând inserții de ribozimă la ADN-urile unicatenare, conținând uracil, urmată de sinteza ADNurilor complementare, conținând inserția. ADN-urile complementare au fost recuperate ca urmare a donării într-o specie potrivită de E. coli (așa cum este cunoscut din literatura de specilitate].
RO 114469 Bl
CADN-ul rezultant dublu catenar a fost donat într-un vector de expresie in vitro pentru a produce ribozima ARN, utilizând sistemul de transcripție T7. Activitatea ribozimei a fost determinată prin incubarea ARN ribozimei cu transcripția SAT urmată de electroforeza pe gel a amestecului de reacție, după tratare cu glicoxal pentru a denatura acizii nucleici.
Scindarea autolitică a avut loc la toate situsurile așteptate pe transcrisul CAT. în consecință, secvențele de flancuri ale brațelor sau a ribozimei se pot extinde, de-a lungul întregii lungimi a transcrisului ARN, care trebuie scindat.
Fig. 9, prezintă schematic un ARN anti-sens catalitic conținând fiecare dintre cele patru ribozime. ARN-ul antisens catalitic conține aproximativ 9OO de baze.
în condițiile de mai sus, ribozima și secvențele țintă formează complecși înalt moleculari probabil prin împerechere de baze extensive. Pentru a resolubiliza produsele de reacție este necesar un tratament puternic denaturizant, ca, de exemplu, tratament cu glioxal, în timpul electroforezei.
Exemplul 5. Secvențe țintă pentru scindarea ribozimelor
Motivul GUA din mARN a fost testat pentru a vedea dacă o ribozimă va afecta scindarea ARN la această secvență.
A fost ales un situs specific din CAT mARN, incluzând motivul GUA (fig. 1Oa) și a fost preparată o secvență ribozimică potrivită și testată, din punct de vedere al activității. Ribozima conținea brațele a 8 ribonucleotide.
□ligonucleotidele sintetice corespunzând ribozimei din fig. 10, au fost preparate conform exemplului 2 și cADN-ul dublu catenar a fost donat întrun vector de expresie in vitro din E.coli, cu scopul de a produce ribozimă ARN utilizând sistemul de transcriere T7 polimeraza. Activitatea ribozimei a fost determinată prin incubarea ribozimei ARN,cu CAT mARN, urmată de electroforeza pe gel a amestecului de reacție cum a fost descris.
Ribozima efectuează scindarea la situsul țintă GUA (nu este arătat). în consecință, motivul GUA în ARN este un substrat pentru ribozimele din prezenta invenție. Acest lucru nu este complet neașteptat, întrucât un situs de proveniență naturală din ARN-ul satelit al virusului tranzitoriu striat al lucernei necesită recunoașterea unui situs GUA.
în mod similar, un motiv GUU din secvența țintă CAT ARN a fost testat cu o ribozimă potrivită (vezi fig. 10b) și a fost efectuată scindarea.
Exemplul 6. Scindarea ribozimei ARN-ului viral
ARN-ul viroid, în formă de ARN viroid din Citrus exocortis, a fost scindat utilizând o ribozimă din prezenta invenție, în ARN viroid din Citrus exocortis (CEV) au fost alese două situsuri GUC țintă. A fost ales, de asemenea,un situs în secvența catenară complementară. Au fost preparate ribozime împotriva tuturor acestor situsuri și li s-a testat activitatea. Ribozimele au fost denumite CEV9x(+), CEV9x(-) și CEV25x(+). Fig. 11 prezintă cele trei situsuri de scindare în CEV ARN pentru fiecare din aceste ribozime.
Ribozimele au fost preparate conform metodelor precedente. Ribozima RzCEV25x(+] este prezentată în fig. 12. Această ribozimă scindează motivul GUC la nucleotida 116a CEV ARN.
Fig. 12b prezintă scindarea CEV ARN cu ribozima RzCEV9x(+). Cu ribozima RzCEV9x[-) nu s-a observat scindare.
Acest experiment indică că ribozimele sunt active împotriva secvențelor țintă ARN din diverse surse. Acest lucru este de așteptat, întrucât toate ARNurile sunt formate din cărămizile de bază ribonucleotidice conținând adenină, guanină, citozină și uracil, indiferent de originea lor, din animale, din plante sau din microbi.
Exemplul 7. Exemple de ribozime având domenii catalitice variabile
O ribozimă ațintită împotriva unui situs CAT-2 a fost preparată utilizând secvența de domeniu catalitic din ARN
RO 114469 Bl satelit al virusului de trifoi pestriț subteran (SCMoV). 0 complementaritate de douăsprezece baze ale secvenței de flanc a brațului ribozimei a fost încorporată în proiectul ribozimei RzSCMoV. Ribozimele RzCAT-2 și RzSCMoV sunt prezentate în fig. 13a și, respectiv, 13b. Regiunea de buclă a RzSCMoV conține 5 nucleotide conținând secvența AAAUC. Aceasta este în contrast cu regiunea de buclă a RzCAT-2, care conține 4 nucleotide cuprinzând secvența AGAG. în plus, RzSCMoV conține un C, în zona catalitică în loc de U* în RzCAT-2. Sunt marcate secvențele diferite din RzSCMoV comparativ cu RzCAT-2.
RzSCMoV a fost produs conform exemplului 2. RzSCMoV s-a dovedit a fi activ ducând la obținerea a două produse de scindare, așa cum se aștepta.
într-un alt experiment, situsul țintă de Citrus exocortis viroid (CEV) la nucleotida -336 în ARN-ul său complementar a fost scindat utilizând o ribozimă (RzCEV-2] având secvența redată în fig. 14a. Regiunea de buclă desemnată cu litera “L” în fig. 14 cuprinde șase nucleotide având secvența 3'-CCTATA-5'. Aceasta este distinctă de regiunea de buclă a sTobRV care cuprinde patru nucleotide cu secvența 3'-AGAG-5'. Această ribozimă scindează ținta CEV complementară a ARN la poziția -336, așa cum se prezintă în profilul electroforetic din fig. 14b.
Acest experiment indică că numărul de nucleotide și secvențe de nucleotidă din zona de buclă nu este important în activitatea ribozimei. în aceste experimente, ribozimă a fost produsă conform metodelor descrise mai înainte în invenție.
în alt experiment, a fost investigat efectul împerecherii de baze în domeniul catalitic (regiunea trunchiului).
A fost preparată și testată o ribozimă modificată conținând patru perechi de baze suplimentare. In fig. 15a, este prezentată secvența de ribozimă RzCAT-2 hibridizată la CAT ARN țintă. Ribozimă test este prezentată în fig. 15b, cu perechile de baze adiționale încer cuite. Ribozimă test are activitate comparabilă cu aceea a RzCAT-2. Aceasta indică că zona împerecherii de baze a domeniului catalitic a ribozimei poate fi de lungime variabilă fără a afecta activitatea catalitică.
S-a observat (nu sunt prezentate date) că forma stabilă in vivo a transcriselor sTobRV ARN exprimate în plantele transgenice este la început circulară, probabil datorită ligării grupelor 5' și 3' terminale. Prin urmare, utilizarea a două situsuri de scindare autolitică flancând o secvență de interes într-un ARN transcris in vivo este probabil să conducă la un produs circularizat care poate avea o stabilitate mai mare, decât transcrisul linear. Acest lucru pare să proiecteze o nouă metodă pentru stabilizarea in vivo a secvențelor de ribozime. Această operație este denumită circularizare.
Exemplul 8. Activitatea in vivo a ribozimelor în acest exemplu este investigată activitatea in vivo a ribozimelor din celulele de plante.
Protocol experimental
Plasmide conținând gene de construcție anti-CAT (CAT = cloramfenicol acetil transferază) sau anti-CAT/ribozimă combinate (vezi mai jos) au fost introduse în protoplaste de tutun, în aceiași cantitate și proporție una față de cealaltă, împreună cu altă plasmidă, care conținea o genă funcțională CAT de construcție. Activitățile CAT au fost măsurate și comparate cu nivelul de bază a activității genei.
Materiale și metode [a], Electroporări și teste CAT
Acestea au fost executate așa cum este descris în literatura de specialitate. Pe scurt, protoplastele de Nicotiana plumbaginifolia linia T5 au fost preparate dintr-o suspensie de două zile după subcultură, suspendate în 10 mM HEPES, pH=7,2, 150 mM NaCI, 0,2 M manitol și ajustate la o densitate de 3 x 106/ml. Electroporarea a fost condusă utilizând un singur puls de 50 ms la 250 V. Protoplastele au fost diluate de 10 ori și cultivate, timp de 20 h, la tempera
RO 114469 Bl tura de 26°C și în întuneric. Acestea au fost scindate prin sonicare și s-au obținut extractele. Extractele normalizate pentru conținutul de proteină, au fost testate din punct de vedere a activității CAT in vitro utilizând 14C-cloramfenicol și acetil CoA. Produsele de reacție au fost separate, prin cromatografie pe strat subțire și autoradiografie. Gradul de desfășurare a reacției a fost calculat prin obținerea de derivați radioactivi a produsului din modelul 14C-cloramfenicol.
(b). Gene de construcție
Genele de construcție au fost introduse în 0,1 ml suspensii de protoplaste ca ADN-uri plasmidice, care au fost purificate din bacterii, prin extracțieșicentrifugare la echilibru de gradient de densitate în două cicluri (CsCI echilibru). Acestea au fost resuspendate în 10 mM Tris/1 mM EDTA/, pH=7,5 pentru utilizare.
Gene de construcție CAT activă s-a născut pe plasmida desemnată pCAT7+. Ea a derivat prin fuziunea unei secvențe de genă CAT (din plasmida pCM4, așa cum este cunoscut din literatura de specialitate) în plasmida pJ35SN (derivată din p35SN, de asemenea, cunoscută din literatura de specialitate), astfel, încât, genele de construcție au fost:
5' 3' în interiorul plasmidelor cu următoarele denumiri:
pJ35SN = Acest vector plasmidic, a cărui schiță este prezentată în fig. 16, conține un promotor 355 CaMV și un semnal de nopalin sintetază 3' adenilare din plantă, care poate fi reprezentat după cum urmează:
5' 3'
35S SN0
pCAT7- = Aceasta conține secvența de genă CAT inserată în pJ35 SN, astfel, încât transcripția va duce la obținerea CAT ARN antisens, care poate fi reprezentat după cum urmează:
5' 3'
35S 'cat NOS
pCAT19- = Aceasta conține gena CAT cu patru domenii catalitice ribozimice incluse în ea, (vezi exemplul 4 și fig. 9), inserată în pJ35SN, astfel, încât transcripția va duce la producerea de CAT ARN antisens, care poate fi reprezentată după cum urmează:
5' 3’
35S CAT * NOS
35S CAT NOS
35S se referă la CaMV 35S (virusul de conopidă mozaicat) promotor, NOS la semnalul de nopalin sintetază poliadenilare, T/C la transcris.
împreună cu 0,2 pg de pCAT7+ au fost adăugate diverse gene de construcție în exces, așa cum este descris mai jos. Genele de construcție s-au găsit inserțiile domeniului catalitic
Rezultate
Următorul tabel prezintă activitățile relative ale CAT în celule, după 20 h, de la electroporare. Activitatea este exprimată ca o conversie procentuală a substratului de cloramfenicol într-un test de o oră.
RO 114469 Bl
Tratament pg de plasmidă electroporată Conversie %
pCAT7+ pJ35SN pCAT7- pCAT19-
1A - - - - 0
1B - - - - 0
2A 0,2 18 - - 21
2B 0,2 18 - - 46
3A 0,2 9 9 - 28
3B 0,2 9 9 - 32
4A 0,2 - 18 - 26
4B 0,2 - 18 - 19
5A 0,2 9 - 9 19
5B 0,2 - - 9 22
6A 0,2 - - 18 14
6B 0,2 - - 18 16
(pentru fiecare tratament A” și “B, sunt duplicate).
Următoarele concluzii pot fi trase 25 din aceste rezultate:
(a) . Introducerea genei CAT de construcție conduce la o activitate CAT nesemnificativă - de comparat 2A,B cu 1A,B. între duplicate există o variație. 30 Din tendințele observate în celelalte probe (vezi “b” și “c” mai jos) este probabil că 2A prezintă o activitate anormal de scăzută.
(b) . Introducerea concomitentă a 35 unei gene de construcție antisens duce la o descreștere a nivelului activității - de comparat 3A,B și 4A,B. Mărimea descreșterii este în directă relație cu nivelul genei antisens adăugate ca plasmidă - de 4 o comparat 3A,B și 4A,B.
(c) .Introducerea concomitentă a genei de construcție combinate antisens/ribozimă conduce la o descreștere a activității genei - de comparat 5A,B și 45 6A,B. în afară de aceasta, descreșterea este mai marcată decât pentru nivelurile corespunzătoare ale genei de construcție antisens - de comparat 5A,B cu 3A,B și 6A,B cu 4A,B. 50
Rezultatele medii pentru patru experimente in vivo sunt prezentate în fig. 17. în această figură, “control” înseamnă tratament 2. Antisens” semnifică tratament 4. Catalitic” reprezintă tratament 6 și “fundament” reprezintă tratament 1.
Ribozima catalitică inhibă activitatea CAT într-o proporție de 47%, comparativ cu o proporție de 34% pentru o ribozimă antisens.
Introducerea genelor purtătoare de ribozime în celulele de plantă inhibă activitatea genelor împotriva cărora au fost ațintite. în plus, inhibarea este mai mare pentru moleculele ARN antisens corespunzătoare.
Aceste rezultate arată că ribozimele vor fi active în celule, la animale, la plante sau microbi împotriva unui șir de molecule ARN țintă.
Mecanismul acțiunii ribozimelor în acest exemplu este neclar. De exemplu, ribozima antisens poate hibridiza ireversibil la o țintă ARN și cataliza scindarea legăturii fosfodiester la unul sau mai multe situsuri țintă selectate de-a lungul
RO 114469 Bl țintei ARN. Alternativ, enzimele celulare pot desface ARN antisens de secvența sa țintă, astfel, încât ținta ARN este scindată în două sau mai multe fragmente. 5
Exemplul 9. Activitatea ribozimelor in vivo În celulele animale în acest exemplu este demonstrată activitatea ribozimelor în inactivarea unei ținte ARN din celulele mamifere, io
Materiale și metode
Genele active de construcție codificând ribozime au fost transfectate întro linie de celule din rinichi de maimuță larg accesibile. în această metodă, au 15 fost contactate 3 x 1OB/ml celule COS1 suspendate într-o soluție tampon salină cu 10% ser de vițel fetal, cu diferite gene de construcție. Pentru a efectua electroporarea ADN-ului din celule a fost 20 aplicată o descărcare electrică. Celulele transfectate au fost incubate la temperatura de 37°C, timp de 48 h, în mediu de cultură și înainte de testare pentru activitatea CAT și a luciferazei. 25
Genele CAT de construcție au apărut în plasmida desemnată pTK CAT (așa cum este cunoscut din literatura de specialitate). Această plasmidă este derivată prin introducerea unei secvențe de genă CAT, în plasmida pSV2, astfel, încât este sub controlul promotorului timidinchinază al virusului Herpes simplex.
Gena de construcție codificând a apărut în plasmida pSV232A (cunoscut din literatura de specialitate) conținând gena luciferază fuzionată cu promotorul timpuriu SV40. ADN-ul codificând ribozimele a fost ligat în situsul Xbal la capătul 3' al genei luciferază, conform metodelor standard, care sunt cunoscute din literatura de specialitate (Maniatis si al.).
Următoarele constructe au fost preparate utilizând tehnicile standard cunoscute (Maniatis și al.):
PFC58 = Acest vector plasmidic conține ADN codificând ribozima RzCAT1 fuzionată la capătul 3' al genei luciferază într-o orientare nefuncțională.
Acesta poate fi descris după cum urmează:
unde: 232A se referă la secvența 35 pSV232A, SV40 timpuriu se referă la promotorul timpuriu SV40 și T mic este ADN, codificând secvența T mic de intervenție a SV4D. Acest construct rezultă în producerea unei molecule codificând 40 luciferază și ribozima RzCAT-1, ultima fiind într-o astfel de orientare încât, nu se așteaptă să fie catalitică.
pFC4 = Acest plasmid este același ca pFC58, cu excepția că RzCAT-1 45 este înlocuit cu RzCAT-3.
pFC1-6 = Acest plasmid este același ca pFC58,cu excepția că RzCAT-1 este înlocuit cu RzCAT-3, în sensul orientării (5'-3'). 50 pFC2D = Acest plasmid este același ca pFC1-6 cu excepția că,RzCAT-3 este înlocuit cu RzCAT-2 secvențe de flanc de opt nucleotide.
pFC12 = Acest plasmid este același ca și pFC2D,cu excepția că ribozima RzCAT-2 conține secvențe de flanc de douăsprezece nucleotide.
pFC5D = Acest plasmid conține gena CAT cu patru domenii catalitice de ribozimă incluse în el (vezi exemplul 4 și fig. 9) în sensul orientării (5'-3'J, care pe transcris dă naștere unei ribozime inactive. Acest plasmid poate fi descris cum urmează:
SV40 timpuriu Genă CAT conținând domenii de ribozimă Poli A+
ARN necatalitic
RO 114469 Bl pFC54 = Acest plasmid este același ca și pFC5O, cu excepția că gena CAT și domeniile ribozimei sunt în orientarea antisens(3'-5').
pFC64 = Acest plasmid împarte 5 promotorul SV40 și semnalele poliadenilării cu pFC5O și conține gena CAT de tip sălbatic cu domenii de ribozimă neinserate. Această genă este într-o orientare antisens si astfel, nu produce proteină io CAT.
pFC65 = Acest plasmid este același ca și pFC64, cu excepția că gena CAT de tip sălbatic este în sensul (5’-3') de orientare și, astfel, este producă- 15 toare de proteină CAT.
Teste
Activitatea luciferazei a fost testată conform metodelor cunoscute din literatura de specialitate. Pe scurt, ce- 20 lulele COS au fost lizate, la 48 h, după transfectare și lizatul de celulă a fost incubat cu luciferină, substratul liciferazei, și liminiscența detectată utilizând un contor de scintilație. 25
Activitatea CAT a fost măsurată, de asemenea, utilizând lizate de celule COS (lizatele de celule au fost divizate în două, și fiecare porțiune testată pentru activitatea luciferazei sau a CAT], conform metodei care este cunoscută din literatura de specialitate.
în testele in vivo, pFC58 și pFC4 nu a efectuat activitatea CAT în celulele transfectate. Această activitate a fost desemnată ca, activitate CAT 100% și 0% supresie CAT. Activitatea CAT în celulele transfectate cu alte plasmide a fost măsurată relativ la pFC58. Procentul de supresie CAT a fost măsurat ca:
(. test — x 100 catz control normalizat la producția de lucîferază. CATtest-CAT testează rezultatul pentru constructe test. CATcontrO|-CAT testează pentru controlul constructelor (pFC4 si pFC58).
Producția de luciferează este un control intern pentru electroporare și dă o măsură a producției de ribozimă în interiorul fiecărei plăci de cultură de țesut electroporată individual.
Rezultate
Experimentul (i) pg plasmid electroporat/1,5 x 1CT celule
Tratament pTKCAT pFC58 pFC20 pFC1-6 pFC12 Supresia % CAT
1 5 2 56
2 5 1 1 53
3 5 2 40
4 5 2 - - 0
Toate tratamentele experimentale au fost conduse în dublu exemplar și s-a dat o valoare medie.
Experimentul (ii)
pg plasmid electroporat/' ’,5 x 1CP celule
Tratament pTKCAT pFC1-6 pFC20 pFC12 pFC4 Supresia % CAT
5 5 2 75
6 5 - 2 - 75
7 5 4 62
8 5 1 1 70
9 5 4 51
10 5 - - 2 0
RO 114469 Bl
Tratamentele de la 5 la 10 au fost efectuate în dublu exemplar, și s-a dat o valoare medie.
Experimentul [iii] pg plasmid electroporat/1,5 x 1CP celule
Tratament pTKCAT pFC1-6 pFC4 Supresia % CAT
11 5 2 66
12 5 2 0
Tratamentele au fost efectuate în dublu exemplar și s-a dat o valoare medie. Experimentul [iv] pg plasmid electroporat
Tratament pTKCAT pFC50 pFC54 pFC64 pFC65 Supresia % CAT
13 5 2 0
14 5 2 - 26
15 5 2 2
16 0 2 NA
Fiecare din tratamentele de la 13 la 16 20 au fost efectuate în patru exemplare.
Constructul de sens CAT (tratamentul 16) a produs niveluri înalte ale activității CAT. Prin urmare, % de supresie nu este aplicabil (NA). 25
Un număr de experimente au fost conduse înlocuind promotorul TK al pTKCAT cu promotor metalotionein uman. Când acest construct a fost cotransfectat în celule C0S1 cu plasmide 30 codificând una sau mai multe ribozime, s-a observat o marcată descreștere a activității CAT.
Rezultatele de mai sus demonstrează clar inactivitatea activității in vivo 35 a ribozimelor în celulele umane.
Pe când eficiența ribozimelor in vivo se crede că ar fi cauzată de una sau mai multe regiuni catalitice, care sunt capabile de scindarea unei ținte ARN, 40 prezența de astfel de regiuni în ribozimele de tip ARN “Antisens” poate să nu conducă, de fapt,la scindarea in vivo dacă întreaga moleculă ARN/ARN-antisens nu se prăbușește. Totuși, indiferent 45 dacă molecula se prăbușește sau nu, exemplele precedente demonstrează eficacitatea ribozimei în inactivarea țintei ARN. Astfel, invenția este aplicabilă pentru toate ribozimele având o zonă catali- 5o tică capabilă să producă scindarea și o zonă de hibridizare, indiferent unde are de fapt loc scindarea în ținta ARN. Zona de hibridizare poate fi, atât de largă, încât să facă ca, combinația ARN/ribozimă să stea împreună și să prevină scindarea țintei ARN în componente separate, chiar dacă zona catalitică, ea însăși, este capabilă să producă scindare.

Claims (15)

  1. Revendicări
    1. Compus oligoribonucleotidic, caracterizat prin aceea că are formula
    generală: 3' (X)n \ X----(X)n. 5' A 1 c I \ A u \ G G T-A i >3 | C 1 ? X ( X 1 X 1 X 1 (xr ‘ \ ;m (X)m· 1 X X (X)b (1)
    în care: fiecare X reprezintă o ribonucleotidă care poate fi aceeași sau diferită; în care fiecare (X]n și (X)n. reprezintă o oligoribonucleotidă (a) aptă de hibridizare cu o secvență de scindare ARN
    RO 114469 Bl țintă și (b) definită printr-o secvență predeterminată, care nu se leagă covalent în mod firesc la secvențele A-A-A-G-C și, respectiv, X-C-U-G-A-, o astfel de secvență ARN țintă nefiind prezentă în compus; în care fiecare dintre n și n‘ reprezintă un număr întreg care definește numărul de ribonucleotide în oligonucleotidă cu condiția ca suma n+n’să fie suficientă pentru a permite compusului să interacționeze stabil cu secvența de ARN țintă prin împerecherea de baze; în care fiecare * reprezintă împerecherea de baze dintre ribonucleotidele localizate de fiecare parte a acestuia; în care fiecare linie continuă reprezintă o legătură chimică ce realizează legături covalente între ribonucleotidele localizate pe oricare parte a acestuia; în care a, reprezintă un număr întreg ce definește un număr de ribonucleotidele cu condiția că a poate fi □ sau 1 și dacă este O, atunci A în poziția 5' față de (X)a este legat de G, în poziția 3',față de (X)a; în care fiecare dintre m și m’ reprezintă un număr întreg, care este mai mare sau egal cu 1; în care fiecare dintre liniile punctate reprezintă independent, fie o legătură chimică realizând legături covalente între ribonucleotidele dispuse de fiecare parte a acestuia, fie lipsa unei astfel de legături chimice; și în care (X]b reprezintă o oligoribonucleotidă.care poate fi prezentă sau absentă, cu condiția că b reprezintă un număr întreg, mai mare sau egal cu 2, dacă (X]b este prezent.
  2. 2. Compus oligoribonucleotidic, caracterizat prin aceea că are formula generală:
  3. 3 X-Mn 5
    A C
    I . \
    A U, * <k· X . X (X)b (II) în care: fiecare X reprezintă o ribonucleotidă, care poate fi aceeași sau diferită; în care fiecare (X)n_, și (X)n, reprezintă o
    40 oligoribonucleotidă (a) aptă de hibridizare cu o secvență de scindare ARN țintă și (b) definită printr-o secvență predeterminată, care secvență nu poate forma firesc o legătură covalentă la secvențele C-A-A-A-G-C și, respectiv, X-C-U-G-A-, o astfel de secvență ARN țintă nefiind prezentă în compus; în care fiecare dintre n și n’reprezintă un număr întreg, care definește numărul de ribonucleotide în oligonucleotidă cu condiția ca suma n+n'să fie suficientă pentru a permite compusului să interacționeze stabil cu secvența de ARN țintă prin împerecherea de baze; în care fiecare * reprezintă împerecherea de baze dintre ribonucleoti-dele localizate de fiecare parte a acestuia; în care fiecare linie continuă reprezintă o legătură chimică ce realizează legături covalente între ribonucleotidele localizate pe oricare parte a acestuia; în care a,reprezintă un număr întreg ce definește un număr de ribonucleotidele cu condiția că a poate fi O sau 1 și dacă este O, atunci A în poziția 5' față de (X)a este legat de G în poziția 3' față de (X)a; în care fiecare dintre m și m' reprezintă un număr întreg, care este mai mare sau egal cu 1; în care fiecare dintre liniile punctate reprezintă independent, fie o legătură chimică care realizează legături covalente între ribonucleotidele dispuse de oricare parte a acestuia, fie lipsa unei astfel de legături chimice; și în care (X)b reprezintă o oligoribonucleotidă, care poate fi prezentă sau absentă, cu condiția că b repre-zintă un număr întreg,mai mare sau egal cu 2, dacă (X)b este prezent.
    3. Compus oligoribonucleotidic, caracterizat prin aceea că are formula generală:
    A U (X)b (III)
    X
    RO 114469 Bl
    41 42 în care: fiecare X reprezintă o ribonucleotidă care poate fi aceeași sau diferită; în care fiecare (X]n_7 și (X)n-, reprezintă o oligoribonucleotidă (a) aptă de hibridizare cu o secvență de scindare ARN țintă și 5 (b) definită printr-o secvență predeterminată, care secvență, nu poate forma, în mod firesc, o legătură covalentă la secvențele C-A-A-A-G-C și, respectiv, X-C-U-G-Â-, o astfel de secvență io țintă ARN nefiind prezentă în compus; în care, fiecare dintre n și n reprezintă un număr întreg, care definește numărul de ribonucleotide în oligonucleotidă cu condiția ca, suma n+n’să fie suficientă pentru 15 a permite compusului să interacționeze stabil cu secvența de ARN țintă prin împerecherea de baze; în care fiecare * reprezintă împerecherea de baze dintre ribonucleotidele localizate de fiecare parte 20 a acestuia; în care fiecare linie continuă reprezintă o legătură chimică ce realizează legături covalente între ribonucleotidele localizate pe oricare parte a acestuia; în care fiecare dintre m și m’repre- 25 zintă un număr întreg, care este mai mare sau egal cu 1; în care fiecare dintre liniile punctate reprezintă independent, fie o legătură chimică realizând legături covalente între ribonucleotidele dis- 30 puse de fiecare parte a acestuia, fie lipsa unei astfel de legături chimice; și în care (X)b reprezintă o oligoribonucleotidă, care poate fi prezentă sau absentă, cu condiția că b reprezintă un număr întreg, mai 35 mare sau egal cu 2, dacă (X)fc este prezent.
  4. 4. Compus oligoribonucleotidic, conform cu oricare dintre revendicările 1,
    2 sau 3, caracterizat prin aceea că 40 suma n+n’ este mai mare sau egală cu 14.
  5. 5. Compus oligoribonucleotidic, conform cu oricare dintre revendicările 1,
    2, 3 sau 4, caracterizat prin aceea că 45 fiecare n și n'este mai mare decât 6.
  6. 6. Compus oligoribonucleotidic, conform cu oricare dintre revendicările 1, 2, 3, 4 sau 5, caracterizat prin aceea că secvența tintă ARN de scindare este 50 o secvență virală.
  7. 7. Procedeu de obținere a compusului, conform cu oricare dintre revendicările 1, 2, 3, 4, 5 sau 6, caracterizat prin aceea că .cuprinde etapele de: a) legare într-un vector de transfer cuprins în ADN, ARN sau o combinație a acestora, a unei secvențe nucleotidice corespunzând compusului respectiv; b] transcripția secvenței nucleotidice din etapa (a) cu o ARN polimerază; și c) recuperarea compusului.
  8. 8. Metodă de inactivare a ARN țintă într-o celulă, caracterizată prin aceea că, cuprinde contactarea ARN țintă din celulă cu compusul conform cu oricare dintre revendicările 1, 2, 3, 4, 5 sau 6, compusul fiind capabil să interacționeze prin împerechere de baze cu secvența ARN țintă în astfel de condiții, încât compusul interacționează stabil prin împerechere de baze cu ARN țintă, iar ARN țintă este scindat.
  9. 9. Metodă, conform revendicării 8, caracterizată prin aceea că ARN țintă este o transcripție a unei gene care este endogenă față de celulă.
  10. 10. Metodă, conform revendicării 8, caracterizată prin aceea că ARN țintă este o transcripție a unei gene care este exogenă față de celulă.
  11. 11. Metodă, conform cu oricare dintre revendicările 8, 9 sau 10, caracterizată prin aceea că,celula este procariotă sau eucariotă .
  12. 12. Metodă, conform revendicării
    11, caracterizată prin aceea că celula este o celulă vegetală sau animală.
  13. 13. Metodă, conform revendicării
    12, caracterizată prin aceea că.celula vegetală este o componentă a unei plante.
  14. 14. Metodă, conform revendicării 8, caracterizată prin aceea că .compusul este format în interiorul celulei.
  15. 15. Metodă, conform revendicării 8, caracterizată prin aceea că .compusul este format în exteriorul celulei.
RO145344A 1987-12-15 1988-12-14 Compus oligoribonucleotidic, procedeu de preparare si metoda de inactivare RO114469B1 (ro)

Applications Claiming Priority (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AUPI591187 1987-12-15
AUPI995088 1988-08-19
AUPJ035388 1988-09-09
AUPJ130488 1988-11-04
AUPJ133388 1988-11-07
PCT/AU1988/000478 WO1989005852A1 (en) 1987-12-15 1988-12-14 Ribozymes

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RO114469B1 true RO114469B1 (ro) 1999-04-30

Family

ID=27507391

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RO145344A RO114469B1 (ro) 1987-12-15 1988-12-14 Compus oligoribonucleotidic, procedeu de preparare si metoda de inactivare

Country Status (19)

Country Link
EP (2) EP0321201B2 (ro)
JP (1) JP3046318B2 (ro)
KR (1) KR970010758B1 (ro)
CN (1) CN1102174C (ro)
AR (1) AR243935A1 (ro)
AT (1) ATE115999T1 (ro)
AU (1) AU632993B2 (ro)
CA (1) CA1340831C (ro)
DE (1) DE3852539T3 (ro)
DK (1) DK175956B1 (ro)
ES (1) ES2065919T5 (ro)
FI (1) FI104562B (ro)
GR (1) GR3015374T3 (ro)
HU (2) HUT54407A (ro)
MC (1) MC2115A1 (ro)
NO (2) NO308610B1 (ro)
NZ (1) NZ227332A (ro)
RO (1) RO114469B1 (ro)
WO (1) WO1989005852A1 (ro)

Families Citing this family (200)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5019556A (en) * 1987-04-14 1991-05-28 President And Fellows Of Harvard College Inhibitors of angiogenin
CA1340323C (en) * 1988-09-20 1999-01-19 Arnold E. Hampel Rna catalyst for cleaving specific rna sequences
US5866701A (en) * 1988-09-20 1999-02-02 The Board Of Regents For Northern Illinois University Of Dekalb HIV targeted hairpin ribozymes
US5624824A (en) * 1989-03-24 1997-04-29 Yale University Targeted cleavage of RNA using eukaryotic ribonuclease P and external guide sequence
US5168053A (en) * 1989-03-24 1992-12-01 Yale University Cleavage of targeted RNA by RNAase P
DE4091533T (ro) * 1989-08-31 1992-01-30
US5225347A (en) * 1989-09-25 1993-07-06 Innovir Laboratories, Inc. Therapeutic ribozyme compositions and expression vectors
US5225337A (en) * 1989-09-25 1993-07-06 Innovir Laboratories, Inc. Ribozyme compositions and methods for use
DE3933384A1 (de) * 1989-10-06 1991-04-18 Hoechst Ag Multifunktionelle rna mit selbstprozessierungsaktivitaet, ihre herstellung und ihre verwendung
DE3935473A1 (de) * 1989-10-25 1991-05-02 Hoechst Ag Rna mit endonuclease- und antisense-aktivitaet, ihre herstellung und ihre verwendung
AU651569B2 (en) * 1990-01-11 1994-07-28 Isis Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for detecting and modulating RNA activity and gene expression
DE4002885A1 (de) * 1990-02-01 1991-08-08 Hoechst Ag Expression einer multigen rna mit self-splicing aktivitaet
US5519164A (en) * 1990-02-01 1996-05-21 Hoechst Aktiengesellschaft Expression of a multigene RNA having self-splicing activity
US5180818A (en) * 1990-03-21 1993-01-19 The University Of Colorado Foundation, Inc. Site specific cleavage of single-stranded dna
WO1991018913A1 (en) * 1990-06-07 1991-12-12 City Of Hope Ribozyme mediated reversal of transformation by cleavage of the hras oncogene rna
WO1991018625A1 (en) * 1990-06-07 1991-12-12 City Of Hope Ribozyme mediated reversal of transformation by cleavage of the hras oncogene rna
WO1991019789A1 (en) * 1990-06-19 1991-12-26 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Endonucleases
US6008343A (en) * 1990-06-19 1999-12-28 Gene Shears Pty. Ltd. Nucleotide based endonucleases
US5246921A (en) * 1990-06-26 1993-09-21 The Wistar Institute Of Anatomy And Biology Method for treating leukemias
EP0639226A1 (en) * 1990-06-26 1995-02-22 The Wistar Institute Rna molecule for use in treating leukemias
CA2088154A1 (en) * 1990-07-26 1992-01-27 Martin Tabler Portable ribozyme cassettes, dna sequences containing them, ribozyme encoded by these dna sequences, and compositions containing these ribozymes
JP3257675B2 (ja) 1990-10-12 2002-02-18 マックス−プランク−ゲゼルシャフト ツール フェルデルング デル ビッセンシャフテン エー.ファウ. 修飾リボザイム
NZ314630A (en) * 1991-01-17 2000-11-24 Harvard College Use of trans-splicing ribozymes for genetic modification and cell ablation in a host cell
NZ314629A (en) * 1991-01-17 2000-08-25 Gen Hospital Corp Use trans-splicing ribozymes to prepare medicaments for gene therapies
FR2675803B1 (fr) 1991-04-25 1996-09-06 Genset Sa Oligonucleotides fermes, antisens et sens et leurs applications.
FI913197A0 (fi) 1991-07-01 1991-07-01 Xyrofin Oy Nya jaeststammar med reducerad foermaoga att metabolisera xylitol, foerfarande foer bildande av dessa och deras anvaendning vid framstaellning av xylitol.
WO1993014218A1 (en) * 1992-01-13 1993-07-22 Duke University Enzymatic rna molecules
KR100260483B1 (ko) * 1992-04-17 2000-07-01 마나배 게이사꾸 Rna 비루스에 대하여 저항성을 갖는 식물 제조방법
ES2255703T3 (es) * 1992-06-29 2006-07-01 Gene Shears Pty Limited Acidos nucleicos y procedimientos para la utilizacion de los mismos para el control de patogenos viricos.
DE69332856D1 (de) * 1992-07-02 2003-05-15 Sankyo Co Haarnadelförmiges ribozym
US5409823A (en) * 1992-09-24 1995-04-25 Ciba-Geigy Corporation Methods for the production of hybrid seed
US5864028A (en) * 1992-11-03 1999-01-26 Gene Shears Pty. Limited Degradation resistant mRNA derivatives linked to TNF-α ribozymes
IL107480A0 (en) * 1992-11-03 1994-02-27 Gene Shears Pty Ltd Tnf-x ribozymes and degradation resistant mrna derivatives linked to tnf-x ribozymes
JPH08507203A (ja) * 1992-12-04 1996-08-06 イノーバー ラボラトリーズ,インコーポレイテッド 調節可能な核酸治療およびそれらの使用方法
JPH08506724A (ja) * 1992-12-04 1996-07-23 アポロン・インコーポレーテッド 白血病治療のための化合物および方法
ATE217347T1 (de) * 1992-12-04 2002-05-15 Univ Yale Diagnose mittels signalverstärkung durch ein ribozym
FR2701960B1 (fr) * 1993-02-26 2002-09-13 Gene Shears Pty Ltd Polyribozyme apte à conférer, aux plantes, une résistance aux virus et plantes résistantes produisant ce polyribozyme.
US5817635A (en) * 1993-08-09 1998-10-06 Max-Planck-Gesellschaft Zur Forderung Der Wissenschaften E.V. Modified ribozymes
AU5334294A (en) * 1993-10-15 1995-05-04 Dkfz Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung Des Offentlichen Rechts Asymmetric hammerhead ribozymes and nucleotide sequences for their construction
US5869248A (en) * 1994-03-07 1999-02-09 Yale University Targeted cleavage of RNA using ribonuclease P targeting and cleavage sequences
US5998193A (en) * 1994-06-24 1999-12-07 Gene Shears Pty., Ltd. Ribozymes with optimized hybridizing arms, stems, and loops, tRNA embedded ribozymes and compositions thereof
US6350934B1 (en) 1994-09-02 2002-02-26 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid encoding delta-9 desaturase
US5683873A (en) * 1995-01-13 1997-11-04 Innovir Laboratories, Inc. EGS-mediated inactivation of target RNA
US6057153A (en) * 1995-01-13 2000-05-02 Yale University Stabilized external guide sequences
FR2730637B1 (fr) 1995-02-17 1997-03-28 Rhone Poulenc Rorer Sa Composition pharmaceutique contenant des acides nucleiques, et ses utilisations
IL122428A0 (en) 1995-06-07 1998-06-15 Commw Scient Ind Res Org Minizymes and minribozymes and uses thereof
US6010904A (en) * 1995-06-07 2000-01-04 The General Hospital Corporation Cell ablation using trans-splicing ribozymes
US6004806A (en) * 1995-06-07 1999-12-21 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organization Optimized minizymes and miniribozymes and uses thereof
BR9610402A (pt) * 1995-07-13 2000-01-11 Ribozyme Pharm Inc Composições e método para a modulação da expressão do gen em plantas.
US5824519A (en) * 1995-11-08 1998-10-20 Medical University Of South Carolina Tissue-specific and target RNA-specific ribozymes
US6620805B1 (en) 1996-03-14 2003-09-16 Yale University Delivery of nucleic acids by porphyrins
US5877162A (en) * 1996-03-14 1999-03-02 Innovir Laboratories, Inc. Short external guide sequences
US5976874A (en) * 1996-08-16 1999-11-02 Yale University Phenotypic conversion of drug-resistant bacteria to drug-sensitivity
US6610478B1 (en) 1996-08-16 2003-08-26 Yale University Phenotypic conversion of cells mediated by external guide sequences
US6884430B1 (en) 1997-02-10 2005-04-26 Aventis Pharma S.A. Formulation of stabilized cationic transfection agent(s) /nucleic acid particles
US6969601B2 (en) 1997-04-03 2005-11-29 Jensenius Jens Chr MASP-2, a complement-fixing enzyme, and uses for it
EA004568B1 (ru) 1997-04-15 2004-06-24 Коммонвелт Сайентифик Энд Индастриал Рисерч Организейшн Полипептиды монооксигеназы со смешанными функциями, способные катализировать эпоксигенизацию углеродной связи в молекуле жирной кислоты, кодирующие их нуклеиновые кислоты, способы применения полипептидов и нуклеиновых кислот и трансгенные растения
US7589253B2 (en) 1997-04-15 2009-09-15 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Fatty acid epoxygenase genes from plants and uses therefor in modifying fatty acid metabolism
HUP0004589A3 (en) 1997-06-30 2003-08-28 Centre Nat Rech Scient Improved method for transferring nucleic acid into the striped muscle and combination therefor
CA2303759A1 (en) 1997-09-16 1999-03-25 Cropdesign N.V. Cyclin-dependent kinase inhibitors and uses thereof
DE19741375C2 (de) * 1997-09-19 1999-10-21 Max Planck Gesellschaft Transgene Pflanzen, deren oberirdische Teile früher reifen und vollständig absterben
DE69821011T3 (de) 1997-10-02 2009-01-08 MAX-PLANCK-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Verfahren zur Modulierung der Neovaskularisierung und/oder des Wachstums kollateraler Arterien und/oder anderer Arterien aus bestehenden arteriolären Verbindungen
ATE509947T1 (de) 1997-11-18 2011-06-15 Max Planck Gesellschaft Nukleinsäure involviert im responder phenotyp und deren verwendung
US6013447A (en) * 1997-11-21 2000-01-11 Innovir Laboratories, Inc. Random intracellular method for obtaining optimally active nucleic acid molecules
AUPP249298A0 (en) 1998-03-20 1998-04-23 Ag-Gene Australia Limited Synthetic genes and genetic constructs comprising same I
KR20010042069A (ko) 1998-03-20 2001-05-25 베니텍 오스트레일리아 리미티드 유전자 발현 조절방법
US6248525B1 (en) 1998-03-30 2001-06-19 Yale University Method for identifying essential or functional genes
WO1999067400A1 (en) 1998-06-24 1999-12-29 Musc Foundation For Research Development Tissue-specific and target rna-specific ribozymes
DE19836098A1 (de) 1998-07-31 2000-02-03 Hoechst Schering Agrevo Gmbh Pflanzen, die eine modifizierte Stärke synthetisieren, Verfahren zur Herstellung der Pflanzen, ihre Verwendung sowie die modifizierte Stärke
ATE386804T1 (de) 1998-10-15 2008-03-15 Novartis Vaccines & Diagnostic Gene mit veränderter expression in metastatischen brust- oder dickdarm- krebszellen
CA2348366C (en) 1998-11-09 2012-05-15 Bayer Cropscience Aktiengesellschaft Nucleic acid molecules from rice and their use for the production of modified starch
US8013138B1 (en) 1998-11-12 2011-09-06 Max-Planck-Gesellschaft Zur Foerderung Der Wissenschaften E.V. Chimeric promoters capable of mediating gene expression in plants upon pathogen infection and uses thereof
JP2003524389A (ja) 1998-12-16 2003-08-19 カイロン コーポレイション ヒトサイクリン依存的キナーゼ(hPNQALRE)
US6271359B1 (en) 1999-04-14 2001-08-07 Musc Foundation For Research Development Tissue-specific and pathogen-specific toxic agents and ribozymes
JP2002541822A (ja) 1999-04-14 2002-12-10 エム ユー エス シー ファンデーション フォー リサーチ ディベロップメント 組織特異的および病原体特異的毒性物質ならびにリボザイム
AUPQ005299A0 (en) 1999-04-29 1999-05-27 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Novel genes encoding wheat starch synthases and uses therefor
DK1196024T3 (da) 1999-07-20 2006-02-13 Gvs Ges F R Erwerb Und Verwert Hidtil ukendt Fremgangsmåde til generering og selektion af transgene horfro/horplanter
US6423885B1 (en) 1999-08-13 2002-07-23 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organization (Csiro) Methods for obtaining modified phenotypes in plant cells
EP2364734B1 (en) 2000-07-21 2017-09-06 ReVance Therapeutics, Inc. Multi-component biological transport systems
DK1331845T3 (da) 2000-11-09 2012-04-23 Commw Scient Ind Res Org Byg med reduceret SSII-aktivitet og stivelsesholdige produkter med et reduceret indhold af amylopectin
ITMI20011364A1 (it) * 2001-06-28 2002-12-28 Metapontum Agrobios S C R L Robozima hammerhead specifico per la stearoyl-acp desaturesi di piante oleaginose differenti
ES2358187T3 (es) 2001-07-10 2011-05-06 JOHNSON &amp; JOHNSON RESEARCH PTY LIMITED Procedimientos para la modificación genética de las células progenitoras hematopoyéticas y utilizaciones de las células modificadas.
DK1414996T3 (da) 2001-07-10 2011-03-21 Johnson & Johnson Res Pty Ltd Fremgangsmåder til genetisk modifikation af hæmatopoetiske progenitorceller og anvendelser af modificerede celler
US8022272B2 (en) 2001-07-13 2011-09-20 Sungene Gmbh & Co. Kgaa Expression cassettes for transgenic expression of nucleic acids
FR2829136B1 (fr) 2001-08-29 2006-11-17 Aventis Pharma Sa Derives lipidiques d'aminoglycosides
US7456335B2 (en) 2001-09-03 2008-11-25 Basf Plant Science Gmbh Nucleic acid sequences and their use in methods for achieving pathogen resistance in plants
EP1427856B1 (en) 2001-09-18 2011-05-11 Carnegie Institution Of Washington Fusion proteins useful for detecting analytes
AU2002359761A1 (en) 2001-12-18 2003-06-30 Invenux, Inc. Antibiotic compounds
WO2003067286A2 (en) 2002-02-07 2003-08-14 Covalent Partners, Llc Nanofilm and membrane compositions
US20040005546A1 (en) 2002-02-28 2004-01-08 Oncolytics Biotech Inc. Use of ribozymes in the detection of adventitious agents
DE10212892A1 (de) 2002-03-20 2003-10-09 Basf Plant Science Gmbh Konstrukte und Verfahren zur Regulation der Genexpression
EP1365034A3 (en) 2002-05-21 2004-02-18 Bayer HealthCare AG Methods and compositions for the prediction, diagnosis, prognosis, prevention and treatment of malignant neoplasia
CA2542171C (en) 2002-06-26 2015-12-15 Abbott Gmbh & Co. Kg Modulators and modulation of the interaction between rgm and neogenin
ATE405658T1 (de) 2002-07-26 2008-09-15 Basf Plant Science Gmbh Neue selektionsverfahren
DE60334246D1 (de) 2002-11-21 2010-10-28 Celltech R & D Inc Modulieren von immunantworten
US7714186B2 (en) 2002-12-19 2010-05-11 Bayer Cropscience Ag Plant cells and plants which synthesize a starch with an increased final viscosity
ES2541134T3 (es) 2003-05-12 2015-07-16 Helion Biotech Aps Anticuerpos de MASP-2
NZ544439A (en) 2003-06-30 2009-11-27 Limagrain Cereales Ingredients Wheat with altered branching enzyme activity and starch and starch containing products derived therefrom
EP1892306A3 (en) 2003-10-06 2008-06-11 Bayer HealthCare AG Methods and kits for investigating cancer
EP1602926A1 (en) 2004-06-04 2005-12-07 University of Geneva Novel means and methods for the treatment of hearing loss and phantom hearing
US7604947B2 (en) 2004-06-09 2009-10-20 Cornell Research Foundation, Inc. Detection and modulation of cancer stem cells
US8840893B2 (en) 2004-06-10 2014-09-23 Omeros Corporation Methods for treating conditions associated with MASP-2 dependent complement activation
PL2465534T3 (pl) 2004-06-10 2017-08-31 Omeros Corporation Sposoby leczenia stanów związanych z aktywacją dopełniacza zależną od masp-2
US7919094B2 (en) 2004-06-10 2011-04-05 Omeros Corporation Methods for treating conditions associated with MASP-2 dependent complement activation
US8951522B2 (en) 2011-04-08 2015-02-10 University Of Leicester Methods for treating conditions associated with MASP-2 dependent complement activation
AU2005261871B2 (en) 2004-07-08 2011-05-26 Dlf Seeds A/S Means and methods for controlling flowering in plants
AU2005268917B2 (en) 2004-08-02 2010-05-20 Basf Plant Science Gmbh Method for isolation of transcription termination sequences
CA2579927A1 (en) 2004-09-24 2006-03-30 Basf Plant Science Gmbh Plant cells and plants with increased tolerance to environmental stress
JP5638736B2 (ja) 2004-12-30 2014-12-10 コモンウェルス サイエンティフィック アンド インダストリアル リサーチ オーガナイゼーション 腸の健康を改善する方法および手段
EP1707632A1 (de) 2005-04-01 2006-10-04 Bayer CropScience GmbH Phosphorylierte waxy-Kartoffelstärke
US8906864B2 (en) 2005-09-30 2014-12-09 AbbVie Deutschland GmbH & Co. KG Binding domains of proteins of the repulsive guidance molecule (RGM) protein family and functional fragments thereof, and their use
US8362323B2 (en) 2005-11-08 2013-01-29 Basf Plant Science Gmbh Use of armadillo repeat (ARM1) polynucleotides for obtaining pathogen resistance in plants
EP1979484B1 (en) 2006-01-12 2014-03-19 BASF Plant Science GmbH Use of stomatin (stm1) polynucleotides for achieving a pathogen resistance in plants
CA2644273A1 (en) 2006-04-05 2008-03-27 Metanomics Gmbh Process for the production of a fine chemical
EP2030021B1 (en) 2006-05-18 2012-11-21 Andreas Reichert Method for diagnosing mitochondrial dysfunction
US8383597B2 (en) 2006-05-25 2013-02-26 Cornell Research Foundation, Inc. G proteins in tumor growth and angiogenesis
EP2066817B1 (en) 2006-10-06 2014-07-30 SpeeDx Pty Ltd Molecular switches and methods for their use
EP2202314B1 (en) 2007-01-15 2014-03-12 BASF Plant Science GmbH Use of subtilisin (RNR9) polynucleotides for achieving a pathogen resistance in plants
CN101631868B (zh) 2007-02-16 2016-02-10 巴斯福植物科学有限公司 用于在单子叶植物中调节胚特异性表达的核酸序列
WO2008119057A2 (en) 2007-03-27 2008-10-02 Omeros Corporation The use of pde7 inhibitors for the treatment of movement disorders
BRPI0811843A2 (pt) 2007-05-22 2014-10-07 Basf Plant Science Gmbh Métodos para a produção de uma planta transgênica, e para seleção de antagonistas, molécula, iniciador, mutante dominante negativo de um polipeptídeo, construto de ácido nucleico, vetor, célula de planta transgênica, planta ou uma parte da mesma, polipeptídeo isolado, anticorpo, tecido de planta, planta, material de planta colhido ou material de propagação de uma planta, processos para a produção de um polipeptídeo, e para a identificação de um composto, composição, e, uso da molécula de ácido nucleico, do construto de ácido nucleico e do vetor
CL2008002775A1 (es) 2007-09-17 2008-11-07 Amgen Inc Uso de un agente de unión a esclerostina para inhibir la resorción ósea.
EP2040075A1 (en) 2007-09-24 2009-03-25 Julius-Maximilians-Universität Würzburg Compounds and markers for surface-enhanced raman scattering
EP2628486A3 (en) 2007-12-14 2013-10-30 Amgen, Inc. Method for treating bone fracture with anti-sclerostin antibodies
DE112008003433T5 (de) 2007-12-21 2010-11-04 Basf Plant Science Gmbh Pflanzen mit erhöhtem Ertrag (KO NUE)
US8962803B2 (en) 2008-02-29 2015-02-24 AbbVie Deutschland GmbH & Co. KG Antibodies against the RGM A protein and uses thereof
EP2100962A1 (en) 2008-03-12 2009-09-16 Biogemma Plants having improved resistance to pathogens
US10517839B2 (en) 2008-06-09 2019-12-31 Cornell University Mast cell inhibition in diseases of the retina and vitreous
US8790664B2 (en) 2008-09-05 2014-07-29 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Inserm) Multimodular assembly useful for intracellular delivery
EP2184351A1 (en) 2008-10-30 2010-05-12 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Polynucleotides encoding caryophyllene synthase and uses thereof
ES2363358B1 (es) 2009-04-03 2012-06-21 FUNDACIÓ INSTITUT DE RECERCA HOSPITAL UNIVERSITARI VALL D'HEBRON (Titular al Agentes terapéuticos para el tratamiento de enfermedades asociadas con una proliferación celular indeseable.
DE112010003162T5 (de) 2009-04-22 2012-08-16 Basf Plant Science Company Gmbh Gesamtsamen-spezifischer Promotor
US20130012709A1 (en) 2009-09-10 2013-01-10 Centre National De La Recherche Scientifique NOVEL INHIBITORS OF STEAROYL-CoA-DESATURASE-1 AND THEIR USES
EP2305285A1 (en) 2009-09-29 2011-04-06 Julius-Maximilians-Universität Würzburg Means and methods for treating ischemic conditions
AU2010306581B2 (en) 2009-10-16 2015-03-19 Omeros Corporation Methods for treating disseminated intravascular coagulation by inhibiting MASP-2 dependent complement activation
DK2493871T3 (da) 2009-10-30 2014-11-10 Prestwick Chemical Sas Nye oximderivater samt deres anvendelse som allosteriske modulatorer af metabotropiske glutamatreceptorer
EP2322149A1 (en) 2009-11-03 2011-05-18 Universidad del Pais Vasco Methods and compositions for the treatment of ischemia
MX2012006560A (es) 2009-12-08 2012-10-05 Abbott Gmbh & Co Kg Anticuerpos monoclonales contra la proteina rgm a para utilizarse en el tratamiento de degeneracion de capa de fibra de nervio retinal.
EP2338492A1 (en) 2009-12-24 2011-06-29 Universidad del Pais Vasco Methods and compositions for the treatment of alzheimer
US8476485B2 (en) 2010-06-24 2013-07-02 Academia Sinica Non-human animal model for amyotrophic lateral sclerosis (ALS) with loss-of-TDP-43 function
US9220715B2 (en) 2010-11-08 2015-12-29 Omeros Corporation Treatment of addiction and impulse-control disorders using PDE7 inhibitors
KR20160105948A (ko) 2010-11-08 2016-09-07 오메로스 코포레이션 Pde7 억제제를 사용한 중독 및 충동-조절 장애의 치료
US9644035B2 (en) 2011-04-08 2017-05-09 Omeros Corporation Methods for treating conditions associated with MASP-2 dependent complement activation
EP2734621B1 (en) 2011-07-22 2019-09-04 President and Fellows of Harvard College Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity
US20150017091A1 (en) 2011-08-18 2015-01-15 Cornell University Detection and treatment of metastatic disease
WO2013039880A1 (en) 2011-09-12 2013-03-21 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Biomarkers and therapeutic targets of hepatocellular cancer
WO2013090814A2 (en) 2011-12-16 2013-06-20 Board Of Trustees Of Michigan State University p-Coumaroyl-CoA:Monolignol Transferase
PE20190907A1 (es) 2012-01-27 2019-06-26 AbbVie Deutschland GmbH and Co KG Composicion y metodo para el diagnostico y el tratamiento de las enfermedades asociadas a la degeneracion de las neuritas
WO2013138456A1 (en) 2012-03-14 2013-09-19 University Of Central Florida Research Foundation, Inc. Lim kinasemodulating agents for neurofibromatoses therapy and methods for screening for same
EP2666775A1 (en) 2012-05-21 2013-11-27 Domain Therapeutics Substituted pyrazoloquinazolinones and pyrroloquinazolinones as allosteric modulators of group II metabotropic glutamate receptors
WO2014127835A1 (en) 2013-02-22 2014-08-28 Christian-Albrechts-Universität Zu Kiel Plant-derived resistance gene
US9163284B2 (en) 2013-08-09 2015-10-20 President And Fellows Of Harvard College Methods for identifying a target site of a Cas9 nuclease
US9340800B2 (en) 2013-09-06 2016-05-17 President And Fellows Of Harvard College Extended DNA-sensing GRNAS
US9322037B2 (en) 2013-09-06 2016-04-26 President And Fellows Of Harvard College Cas9-FokI fusion proteins and uses thereof
LT3057993T (lt) 2013-10-17 2020-11-25 Omeros Corporation Gydymo būdai būklių, susijusių su nuo masp-2 priklausomu komplemento aktyvinimu
US20150165054A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 President And Fellows Of Harvard College Methods for correcting caspase-9 point mutations
CA2933909C (en) 2013-12-18 2024-07-02 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Lipid comprising long chain polyunsaturated fatty acids
EP3160482A4 (en) 2014-06-27 2018-02-14 Commonwealth Scientific and Industrial Research Organisation Lipid comprising docosapentaenoic acid
CA2956224A1 (en) 2014-07-30 2016-02-11 President And Fellows Of Harvard College Cas9 proteins including ligand-dependent inteins
EP3000814A1 (en) 2014-09-26 2016-03-30 Domain Therapeutics Substituted pyrazoloquinazolinones and pyrroloquinazolinones as allosteric modulators of group II metabotropic glutamate receptors
EP4434589A3 (en) 2015-10-23 2025-05-14 President and Fellows of Harvard College Evolved cas9 proteins for gene editing
US20170137537A1 (en) 2015-11-09 2017-05-18 Omeros Corporation Methods for Treating Conditions Associated with MASP-2 Dependent Complement Activation
CA3010593C (en) 2016-01-05 2024-02-13 University Of Leicester Methods for inhibiting fibrosis in a subject in need thereof
CN109152834A (zh) 2016-03-31 2019-01-04 奥默罗斯公司 抑制有需要的受试者的血管发生的方法
EA201892624A1 (ru) 2016-05-26 2019-06-28 Нунхемс Б.В. Растения, дающие бессемянные плоды
JP7231935B2 (ja) 2016-08-03 2023-03-08 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ アデノシン核酸塩基編集因子およびそれらの使用
US11661590B2 (en) 2016-08-09 2023-05-30 President And Fellows Of Harvard College Programmable CAS9-recombinase fusion proteins and uses thereof
WO2018039438A1 (en) 2016-08-24 2018-03-01 President And Fellows Of Harvard College Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing
WO2018119359A1 (en) 2016-12-23 2018-06-28 President And Fellows Of Harvard College Editing of ccr5 receptor gene to protect against hiv infection
FI3565891T3 (fi) 2017-01-09 2023-07-04 Whitehead Inst Biomedical Res Menetelmiä geeniekspression muuttamiseksi häiritsemällä säätelysilmukoita muodostavia transkriptiotekijämultimeerejä
US11898179B2 (en) 2017-03-09 2024-02-13 President And Fellows Of Harvard College Suppression of pain by gene editing
CN110662556A (zh) 2017-03-09 2020-01-07 哈佛大学的校长及成员们 癌症疫苗
JP2020510439A (ja) 2017-03-10 2020-04-09 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ シトシンからグアニンへの塩基編集因子
US10883089B2 (en) 2017-04-04 2021-01-05 Wisconsin Alumni Research Foundation Feruloyl-CoA:monolignol transferases
US10883090B2 (en) 2017-04-18 2021-01-05 Wisconsin Alumni Research Foundation P-coumaroyl-CoA:monolignol transferases
EP3655015B1 (en) 2017-07-17 2024-02-21 The Regents of the University of Colorado Compositions and methods for preventing and treating radiation-induced bystander effects caused by radiation or radiotherapy
US11732274B2 (en) 2017-07-28 2023-08-22 President And Fellows Of Harvard College Methods and compositions for evolving base editors using phage-assisted continuous evolution (PACE)
TWI818919B (zh) 2017-08-15 2023-10-21 美商歐米諾斯公司 用於治療和/ 或預防與造血幹細胞移植有關的移植物抗宿主病和/ 或瀰漫性肺泡出血和/ 或靜脈閉塞性病的方法
WO2019139645A2 (en) 2017-08-30 2019-07-18 President And Fellows Of Harvard College High efficiency base editors comprising gam
KR20200121782A (ko) 2017-10-16 2020-10-26 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 아데노신 염기 편집제의 용도
US12406749B2 (en) 2017-12-15 2025-09-02 The Broad Institute, Inc. Systems and methods for predicting repair outcomes in genetic engineering
US12157760B2 (en) 2018-05-23 2024-12-03 The Broad Institute, Inc. Base editors and uses thereof
KR20210016545A (ko) 2018-05-29 2021-02-16 오메로스 코포레이션 Masp-2 억제제 및 사용 방법
US11584714B2 (en) 2018-05-29 2023-02-21 Omeros Corporation MASP-2 inhibitors and methods of use
EP3806619A1 (en) 2018-06-15 2021-04-21 Nunhems B.V. Seedless watermelon plants comprising modifications in an abc transporter gene
US12522807B2 (en) 2018-07-09 2026-01-13 The Broad Institute, Inc. RNA programmable epigenetic RNA modifiers and uses thereof
WO2020092453A1 (en) 2018-10-29 2020-05-07 The Broad Institute, Inc. Nucleobase editors comprising geocas9 and uses thereof
US11981904B2 (en) 2018-11-09 2024-05-14 Wisconsin Alumni Research Foundation BAHD acyltransferases
WO2020154500A1 (en) 2019-01-23 2020-07-30 The Broad Institute, Inc. Supernegatively charged proteins and uses thereof
MX2021011426A (es) 2019-03-19 2022-03-11 Broad Inst Inc Metodos y composiciones para editar secuencias de nucleótidos.
WO2020214842A1 (en) 2019-04-17 2020-10-22 The Broad Institute, Inc. Adenine base editors with reduced off-target effects
US12435330B2 (en) 2019-10-10 2025-10-07 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for prime editing RNA
WO2021113686A1 (en) 2019-12-04 2021-06-10 Omeros Corporation Masp-2 inhibitors and methods of use
EP4069676A1 (en) 2019-12-04 2022-10-12 Omeros Corporation Masp-2 inhibitors and methods of use
WO2021113682A1 (en) 2019-12-04 2021-06-10 Omeros Corporation Masp-2 inhibitors and methods of use
TWI867422B (zh) 2020-03-06 2024-12-21 美商奥默羅斯公司 用於治療和/或預防流感病毒誘導的急性呼吸窘迫症候群、肺炎或者流感病毒感染的一些其它肺部表現的抑制masp-2的方法
WO2021226558A1 (en) 2020-05-08 2021-11-11 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for simultaneous editing of both strands of a target double-stranded nucleotide sequence
US20240011030A1 (en) 2020-08-10 2024-01-11 Novartis Ag Treatments for retinal degenerative diseases
CN119768172A (zh) 2022-08-18 2025-04-04 米托迪治愈有限责任公司 具有磷酸二酯酶-7抑制活性的治疗剂在治疗和预防与慢性疲劳、衰竭和/或劳累不耐受有关的疾病中的用途
WO2024042160A1 (en) 2022-08-26 2024-02-29 Mitodicure Gmbh Use of a therapeutic agent with sodium-hydrogen antiporter 1 inhibitory activity for the treatment and prevention of diseases associated with chronic fatigue, exhaustion and/or exertional intolerance

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4987071A (en) * 1986-12-03 1991-01-22 University Patents, Inc. RNA ribozyme polymerases, dephosphorylases, restriction endoribonucleases and methods
US5116742A (en) * 1986-12-03 1992-05-26 University Patents, Inc. RNA ribozyme restriction endoribonucleases and methods
DE3642623A1 (de) * 1986-12-13 1988-06-23 Burbach & Bender Ohg Gasspuelstein fuer metallurgische gefaesse
DE3939771A1 (de) * 1989-12-01 1991-06-06 Behringwerke Ag Verfahren zur biologischen inaktivierung von nukleinsaeuren

Also Published As

Publication number Publication date
ES2065919T3 (es) 1995-03-01
HU211891A9 (en) 1995-12-28
NZ227332A (en) 1991-08-27
EP0321201A2 (en) 1989-06-21
EP0321201B2 (en) 2004-11-24
CN1033838A (zh) 1989-07-12
EP0640688A1 (en) 1995-03-01
NO312105B1 (no) 2002-03-18
DK175956B1 (da) 2005-08-22
AR243935A1 (es) 1993-09-30
CN1102174C (zh) 2003-02-26
NO902661L (no) 1990-08-14
JP3046318B2 (ja) 2000-05-29
AU632993B2 (en) 1993-01-21
FI902923A0 (fi) 1990-06-12
ATE115999T1 (de) 1995-01-15
CA1340831C (en) 1999-11-30
EP0321201B1 (en) 1994-12-21
EP0321201A3 (en) 1990-01-10
DE3852539T3 (de) 2005-08-04
KR900700603A (ko) 1990-08-16
NO308610B1 (no) 2000-10-02
DK143390D0 (da) 1990-06-12
DK143390A (da) 1990-08-14
JPH03502638A (ja) 1991-06-20
WO1989005852A1 (en) 1989-06-29
MC2115A1 (fr) 1991-07-05
AU2800789A (en) 1989-07-19
KR970010758B1 (ko) 1997-06-30
ES2065919T5 (es) 2005-06-16
NO20000369D0 (no) 2000-01-25
DE3852539D1 (de) 1995-02-02
HUT54407A (en) 1991-02-28
DE3852539T2 (de) 1995-05-04
NO902661D0 (no) 1990-06-14
FI104562B (fi) 2000-02-29
GR3015374T3 (en) 1995-06-30
NO20000369L (no) 1990-08-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RO114469B1 (ro) Compus oligoribonucleotidic, procedeu de preparare si metoda de inactivare
US6127114A (en) Ribozymes
US5543508A (en) Ribozymes
JP7074827B2 (ja) 遺伝子操作CRISPR-Cas9ヌクレアーゼ
JP7306696B2 (ja) Rna誘導型核酸修飾酵素及びその使用方法
US5998193A (en) Ribozymes with optimized hybridizing arms, stems, and loops, tRNA embedded ribozymes and compositions thereof
AU2017335890B2 (en) RNA-guided nucleic acid modifying enzymes and methods of use thereof
Steinecke et al. Expression of a chimeric ribozyme gene results in endonucleolytic cleavage of target mRNA and a concomitant reduction of gene expression in vivo.
AU2016359629A1 (en) Tracking and manipulating cellular RNA via nuclear delivery of CRISPR/Cas9
JPH1052264A (ja) N‐ras発現阻害剤およびその方法
RU2144080C1 (ru) Рибозим, способ инактивации рнк-мишени, способ получения рибозима
Tewari Replication of plant organelle DNA
IL88683A (en) Ribozymes their production and pharmaceutical compositions containing them
BG51160A3 (bg) Метод за получаване на рибозоми
WO1997043404A2 (en) Ribozyme variants with improved catalytic activity under low magnesium conditions
US20020155454A1 (en) Miniribozymes active at low magnesium ion concentrations
KR20010074634A (ko) 외인성 디엔에이에 텔로미어 반복단위의 생체내 부가에의한 진균류 페스탈로티옵시스에서의 염색체외 디엔에이의생성 방법
KR20010083085A (ko) 진균류 페스탈로티옵시스에서의 염색체외 디엔에이의생성에 의한 탁솔 생산방법