JPH11100328A - 抗ストレス剤及び機能性食品 - Google Patents
抗ストレス剤及び機能性食品Info
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- JPH11100328A JPH11100328A JP9262422A JP26242297A JPH11100328A JP H11100328 A JPH11100328 A JP H11100328A JP 9262422 A JP9262422 A JP 9262422A JP 26242297 A JP26242297 A JP 26242297A JP H11100328 A JPH11100328 A JP H11100328A
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Abstract
い、ストレスにより生じる精神的・身体的症状を軽減及
び予防できる抗ストレス剤及び機能性食品を提供する。 【解決手段】アンジオテンシン変換酵素阻害活性を有す
るトリペプチド(特にIle−Pro−Pro及び/又
はVal−Pro−Pro)及び/又はその塩を有効成
分として含有する抗ストレス剤、並びに前記抗ストレス
剤を含む機能性食品。
Description
じる精神的・身体的症状を予防及び軽減する効果を有す
る抗ストレス剤及び機能性食品に関する。
し、社会情勢も激動する環境下になっており、人々は様
々なストレスにさらされている。特に、国際化された社
会においては、複雑な人間関係が形成されており、精神
的ストレスが起因となって引き起こされる様々な症状に
ついて報告がなされている。
きな影響を及ぼすとされている。しかし、ストレスの科
学的概念及び定義は未だ明確でない点もあり、更に方法
論的困難性も相俟って、ストレスの評価に関しては多く
の問題が残されているが、近年、医学的見地からの検討
がなされている。
シンII等が増加し、ナトリウム再吸収による体内ナト
リウムが過剰となり、血圧の上昇を引き起こすことが報
告されている(茂原治ら:代謝,28,2,323,1
991)。さらに、このような知見を基に、高血圧治療
薬として使用されているアンジオテンシン変換酵素阻害
剤であるエナラプリル及びアラセプリルのストレスによ
る高血圧に対する効果が研究されている(The American
Journal of Cardiology; 68, 15, 1362(1991),Internal
Medicine; 32, 9, 691 (1993))。しかし、ストレスの
負荷は血圧の上昇を引き起こすのみではなく、様々な因
子に影響を与え、高血圧の他に消化性潰瘍、虚血性心疾
患、脳血管障害、高脂血症等の要因ともなると考えられ
ている。従って、ストレスは高血圧の原因因子の一つで
あるとは考えられているが、逆に単に血圧の上昇を抑制
させることによって抗ストレス効果が得られるとは考え
られていない。
症状の軽減及び予防剤としては、精神安定剤、抗不安剤
及び睡眠薬等の化学合成薬剤が使用されている。しか
し、これらの薬剤は、習慣性や副作用の問題があり、ス
トレスにより生じる精神的、身体的症状予防の目的で日
常的に使用するのは好ましくない。そこで、日常的に連
用可能で、安全性の問題を含まない、ストレスにより生
じる精神的・身体的症状の軽減及び予防効果を示す抗ス
トレス剤が求められ、開発が進められている。例えば、
茶葉に含まれるL−テアニンを含む抗ストレス剤(特開
平6−100442号公報)、アンセリン、バレニン、
n−メチルヒスチジン、τ−メチルヒスチジン等のイミ
ダゾール化合物を含む抗ストレス組成物(特開平9−2
0660号公報)、及びグルタチオンと抗酸化物質との
組成物を含むストレス改善食品(特開平8−27575
2号公報)等が提案されている。また、香りによるスト
レス解消効果についての報告(FRAGRANCE J
OURNAL:1991−11,p44−49)もなさ
れている。しかし、トリペプチドを用いることによる、
ストレスにより生じる精神的・身体的症状軽減及び予防
効果を有するという報告は、これまで認められていな
い。
の社会的要請に対応し得る日常的に連用可能で、安全性
の問題を含まない、ストレスにより生じる精神的・身体
的症状を軽減及び予防できる抗ストレス剤及び機能性食
品を提供することにある。
オテンシン変換酵素阻害活性を有するトリペプチド及び
/又はその塩を有効成分として含有する抗ストレス剤が
提供される。
が、Ile−Pro−Pro及び/又はVal−Pro
−Proであることを特徴とする前記抗ストレス剤が提
供される。
剤を含む機能性食品が提供される。
オテンシン変換酵素阻害活性を有するトリペプチド及び
/又はその塩を有効成分として含有する。
シン変換酵素阻害活性を有するトリペプチドであるIl
e−Pro−Pro、Val−Pro−Pro(以下こ
れらのトリペプチドをそれぞれIPP、VPPと略
す)、及びこれらの混合物を好ましく挙げることができ
る。
許容される塩類、例えば塩酸塩、硫酸塩、リン酸塩等の
無機酸塩、及びクエン酸塩、マレイン酸塩、フマル酸
塩、酒石酸塩、乳酸塩等の有機酸塩等を挙げることがで
きる。
生物による発酵法、酵素加水分解法又は化学的合成法等
を用いることができる。
チドに対応するアミノ酸配列、例えば配列Ile−Pr
o−Pro、Val−Pro−Pro等を含むペプチド
及び/又は蛋白質を含む培地中で乳酸菌を培養すること
により行うことができる。
応するアミノ酸配列を含むペプチド及び/又は蛋白質を
含む食品素材を含むものを挙げることができる。前記食
品素材としては、乳及び/又は乳カゼイン、とうもろこ
し、コーンタンパク、小麦、小麦タンパク、大豆、脱脂
大豆、大豆蛋白等を挙げることができる。さらに、前記
培地は必要に応じて酵母エキス、ビタミン類、ミネラル
類等の他の成分を含むことができる。
乳酸菌を用いることができる。例えば、ラクトバチルス
・ヘルベチカス(Lactobacillus helveticus)、ラクトバ
チルス・デルブルキィ・サブスピーシーズ・ブルガリカ
ス(Lactobacillus delbruekii subsp. bulgaricus)、ラ
クトバチルス・アシドフィラス(Lactobacillus acidoph
ilus)、ラクトバチルス・ファーメンタム(Lactobacillu
s fermentum)、ラクトバチルス・カゼイ・サブスピーシ
ーズ・カゼイ(Lactobacillus casei subsp. casei)等の
乳酸菌を挙げることができる。具体的には、ラクトバチ
ルス・ヘルベチカス ATCC55796、ラクトバチ
ルス・デルブルキィ・サブスピーシーズ・ブルガリカス
ATCC11842、ラクトバチルス・アシドフィラ
ス ATCC4356、ラクトバチルス・ファーメンタ
ム ATCC14931、ラクトバチルス・カゼイ・サ
ブスピーシーズ・カゼイ ATCC393等の菌株を挙
げることができる。
培養温度まで冷却後に、予め前培養しておいた乳酸菌ス
ターターを添加することにより行うことができる。乳酸
菌スターターの接種量は、培地1g当り乳酸菌数105
−107個とするのが好ましい。培養温度は20−50
℃、好ましくは30−45℃、培養時間は3−48時
間、好ましくは6−24時間の範囲で行うことができ
る。乳酸菌数が108個/g以上及び乳酸酸度が1以上
となった時点で、培養を終了することができる。得られ
た培養液中には、培地原料及び組成によるが、通常、I
PP及び/又はVPPが約100−3000μg/kg
含まれる。
いる状態で本発明の抗ストレス剤として使用することが
できる。また、前記培養液を80℃達温等の条件にて加
熱殺菌することにより、殺菌された状態で用いることも
できる。さらに、凍結乾燥、噴霧乾燥、ドラムドライヤ
ー乾燥等により粉末化した状態で使用することもでき
る。
濃縮し精製してから本発明の抗ストレス剤として使用す
ることができる。前記濃縮及び精製の方法としては、遠
心された前記培養液の上清を取る方法が挙げられる。ま
た取られた上清を、さらに電気透析、イオン交換樹脂処
理、中空糸膜透析、逆浸透圧処理、疎水性カラムクロマ
トグラフィー等、又はこれらの組み合わせた処理に供す
ることにより、さらに濃縮し精製された前記トリペプチ
ドを得ることができる。
水分解法は、Ile−Pro−Pro、Val−Pro
−Pro等の前記トリペプチドに対応するアミノ酸配列
を含むペプチド及び/又は蛋白質を含む食品素材を、プ
ロテイナーゼで処理し、さらにカルボキシペプチダーゼ
で処理することにより行うことができる。前記プロテイ
ナーゼとしては、微生物由来のプロテイナーゼ、植物由
来のプロテイナーゼ、動物由来のプロテイナーゼ等の各
種のものを使用することができる。これらのプロテイナ
ーゼは、公知の方法で調製することができる。また、前
記カルボキシペプチダーゼとしては、微生物由来のカル
ボキシペプチダーゼ、植物由来のカルボキシペプチダー
ゼ、動物由来のカルボキシペプチダーゼ等の各種のもの
を使用することができる。これらのカルボキシペプチダ
ーゼは、公知の方法で調製することができる。
法は、公知の有機化学合成法により行うことができる。
例えば、トリペプチドを構成するアミノ酸のアミノ基を
フルオレニルメトキシカルボニル基で保護した後に、順
次アミノ酸配列に従ってフルオレニルメトキシカルボニ
ル基で保護したアミノ酸を常法に従い反応させてトリペ
プチド結合樹脂を得、さらに常法に従い樹脂を切り離し
てトリペプチドを精製することにより、前記トリペプチ
ドを得ることができる。
ドの含有割合は、後述する有効投与量のトリペプチドを
投与しうる含有割合である限りにおいて特に限定されな
いが、0.001〜1重量%とすることができる。
ドの他に、糖類、蛋白質、脂質、ビタミン、ミネラル、
香料、色素等の他の添加剤を含むことができる。
投与することができる。投与経路は、経口、静注等を挙
げることができるが、経口投与が好ましい。
トにおいてストレス軽減、予防等の本発明の効果を得る
ためには、前記トリペプチドとして、例えば経口投与の
場合は通常0.1−40mg/体重kg・日の範囲とす
ることができるが、これを超える量を投与してもよい。
場合、ストレスの負荷に応答して発生する血圧上昇、免
疫機能の低下等の様々な生理的な指標の変化が、非投与
時に比べて小さくなり、これらの指標がストレスが負荷
されない場合の値に近いものとなる。このことより、本
発明の抗ストレス剤は、被検者のストレスを低減する効
果があると考えられる。
を含む。
の含有割合は、特に限定されないが、0.001〜0.
1重量%とすることができる。
トリペプチドとして0.1−40mg/体重kg・日の
範囲とすることにより、好ましい本発明の効果を得るこ
とができるが、これを超える量を摂取してもよい。
乳酸菌飲料、チーズ、酸乳配合の加工飲食品、健康食
品、粉末及び顆粒状食品、錠剤等の形態とすることがで
きる。
効成分である前記トリペプチドは、長年にわたり飲食さ
れ、食経験されているものであり、既に安全性は証明さ
れていると考えてよい。
は、前記トリペプチドを含むので、安全性が高く、毎日
連続摂取することにより各種のストレスにより生じる精
神的・身体的症状を軽減及び予防できる抗ストレス剤及
び機能性食品として有用である。
本発明はこれらに限定されるものではない。
5℃、20分間殺菌した後、室温まで冷却してラクトバ
チルス・ヘルベティカスATCC−8205を1白金耳
接種し、37℃で24時間培養を行って、1次スタータ
ー(乳酸菌数5×108個/ml、pH3.5)を調製
した。次いで、90℃達温殺菌した脱脂乳(固形分9重
量%)2kgに、1次スターターを80g接種した後
に、37℃、24時間培養を行い、これを2次スタータ
ーとした。次に、脱脂粉乳4.5kgを水50kgに溶
解し、90℃達温殺菌した後室温まで冷却して、前記2
次スターターを2kg接種し、37℃で24時間培養を
行い、発酵乳56kgを得た。得られた発酵乳中には、
全量中の含有量としてIPPが5.4mg、VPPが
9.5mgの割合で含有されていた。
N水酸化ナトリウム水溶液を用いてpH7.3に調整し
た後、イオン交換樹脂(商品名Amberlite XAD-2、オル
ガノ社製)1リットルを加え、更に蒸留水を加えて全量
を20kgとした。撹拌器にて90分間撹拌後、吸引濾
過器により樹脂を濾別し、濾過器フィルター上の樹脂を
蒸留水20kgにて洗浄した後に樹脂を回収した。この
回収樹脂にメタノール0.8kgを加えて撹拌器にて3
0分間撹拌した。次にナイロンウール(200メッシ
ュ)を用いて濾過し、さらに硬質濾紙で吸引濾過後、濾
液をエバポレーターにて55℃、減圧濃縮し精製濃縮液
200gを得た。この精製濃縮液にイオン交換樹脂(商
品名Amberlite IRA-400(OH型)、オルガノ社製)250
mlを加え、10分間撹拌した後に、硬質濾紙にて吸引
濾過して得られた濾液を1N塩酸溶液にてpH7に調整
後、真空凍結乾燥した。得られた精製乾燥物を5mlの
蒸留水にて均一に溶解し、カラム(商品名Sephadex G-2
5、ファルマシア社製)に供し、蒸留水にて溶出し、ト
リペプチド溶出画分を回収し、真空凍結乾燥してトリペ
プチド精製画分粉末50mgを得た。この精製画分粉末
50mg中には、IPPが0.6mg、VPPが1.0
mg含有されていた。
法により合成した。合成は島津製作所製のペプチド自動
合成装置(PSSM−8型)を用いた固相法によって行
った。固相担体としてベンジルオキシベンジルアルコー
ルタイプのポリスチレン樹脂であって、アミノ基をフル
オレニルメトキシカルボニル基(以下Fmocと略す)
で保護されたプロリンが結合した樹脂20μmolを使
用した。前記アミノ酸配列に従って、アミノ基がFmo
c基で保護されたFmoc−Ile、Fmoc−Pro
及びFmoc−Valを100μmolづつ、常法に従
い、ペプチド配列通り順次反応させてペプチド結合樹脂
を得た。次にこのペプチド結合樹脂を1mlの反応液
(1重量%エタンジチオール、5重量%アニソール、9
4重量%トリフルオロ酢酸)に懸濁し、室温で2時間反
応させてペプチドを樹脂から切離し、同時に側鎖保護基
を外した。次に反応混合液をガラスフィルターで濾過し
た後、無水エーテル10mlを加えて精製したペプチド
を沈殿させて、3000回転、5分間遠心して分離し
た。その沈殿を無水エーテルにて数回洗浄した後、窒素
ガスを吹き付けて乾燥した。このようにして得られた未
精製の合成ペプチド全量を、0.1N塩酸水溶液2ml
に溶解した後に、全量を、以下の条件に従いC18の逆層
カラムを用いたHPLCで、以下の条件に従って精製し
た。
ポンプ(日立製作所) 検出機:形式L4000UV検出器(日立製作所)にて
215nmの紫外部吸収を検出 カラム:マイクロボンダスフェアー5μC18(ウォータ
ーズ社製) 溶出液:A液;0.1重量%TFA水溶液、B液;0.
1重量%TFA入りアセトニトリル (B/A+B)×100(%):0→40%(60分) 流速:1ml/分 最大吸収を示した溶出画分を分取し、これを凍結乾燥す
ることにより目的とする合成ペプチドIPP及びVPP
をそれぞれ2.1g、0.9mg得た。精製ペプチドを
全自動タンパク質一次構造分析装置(形式PPSQ−1
0、島津製作所製)により、ペプチドのN末端から分析
し、さらにアミノ酸分析装置(形式800シリーズ、日
本分光社製)にて分析した結果、設計通りであることが
確認できた。
度)24匹を、1週間予備飼育した。予備飼育期間中及
び実験期間中は、固形飼料(商品名CE−2、日本クレ
ア製)を制限食として与え、水は自由摂取とした。
無負荷−生理食塩水投与群、(2)ストレス負荷−生理
食塩水投与群、(3)ストレス負荷−VPP、IPP投
与群の3群に分け(各群8匹)、(2)群及び(3)群
の動物に、低温室(4℃)に1日につき4時間入れる寒
冷ストレスを9日間負荷した。
(2)群のラットには生理食塩水1mlを、(3)群に
は実施例3の方法により合成したIPP及びVPPを各
3mg/kg体重の濃度になるように溶解した生理食塩
水1mlを、経口ゾンデにて胃内に強制投与した。投与
後、(2)群及び(3)群のラットに4時間の寒冷スト
レスを負荷し、ストレス負荷終了の2時間後に、無加
温、非観血値的ラット血圧計(形式:PE−300型、
シーエスアイ社製)を用いてtail-cuff法にて、各群の
ラットの血圧を測定した。
ように、ストレスを負荷した(2)群では、ストレスを
負荷していない(1)群に比べ、収縮期血圧、拡張期血
圧共に高くなっていた。VPP及びIPPを投与した
(3)群では、生理食塩水を投与した(2)群に比べ、
収縮期血圧、拡張期血圧共に低くなっており、血圧の値
がストレスを負荷していない(1)群に近くなってい
た。
に示す。表2に示すように、ストレスを負荷した(2)
群では、ストレスを負荷していない(1)群に比べ、収
縮期血圧、拡張期血圧共に有意に上昇していた。VPP
及びIPPを投与した(3)群では、生理食塩水を投与
した(2)群に比べ、収縮期血圧、拡張期血圧共に上昇
が抑制されており、収縮期血圧では有意差が認められ
た。以上の結果から、IPP及びVPPを投与すること
により、ストレス負荷後における血圧上昇を抑制する効
果が得られることが確認された。
度)24匹を1週間予備飼育した。予備飼育期間中及び
実験期間中においては、固形試料(CE−2、日本クレ
ア製)を制限食にて与え、水は自由摂取とした。
水投与群、(2)VPP投与群及び(3)IPP投与群
の3群に分けた(各群8匹)。(1)群−(3)群のラ
ットを、実施例4と同様に低温室(4℃)に1日につき
4時間入れ、9日間寒冷ストレスを負荷した。
食塩水1mlを、並びに(2)群及び(3)群にはそれ
ぞれ実施例3の方法により合成したVPP 3mg/k
g体重又はIPP 3mg/kg体重となるよう溶解し
た生理食塩水1mlを、経口ゾンデにて胃内に強制投与
した。投与後、(1)群−(3)群のラットについて、
実施例4と同様に4時間の寒冷ストレスを負荷し、血圧
を測定した。
ように、トリペプチドを投与した(2)及び(3)群で
は、生理食塩水を投与した(1)群に比べ、収縮期血
圧、拡張期血圧共に有意に低くなっており、トリペプチ
ドを投与することによりストレス負荷後における血圧上
昇を抑制する効果が得られることが認められた。
を、並びに(2)群及び(3)群にはそれぞれ実施例1
で得た発酵乳5ml/kg体重又は実施例2で得たトリ
ペプチド精製画分粉末150mg/kgを生理食塩水に
溶解し2mlとしたものを用いた他は実施例5と同様に
試験を行い、試料投与、ストレス負荷後に血圧を測定し
た。
通り、発酵乳を投与した(2)群及びトリペプチド精製
画分粉末を投与した(3)群と、生理食塩水を投与した
(1)群とを比べると、収縮期血圧、拡張期血圧ともに
(1)群より(2)群及び(3)群の方が低くなってお
り、発酵乳及びトリペプチド精製画分を投与することに
より、ストレス負荷後における血圧上昇を抑制する効果
が得られることが認められた。
度)24匹を1週間予備飼育した。予備飼育期間中は、
固形飼料(商品名CE−2、日本クレア製)を制限食と
して与え、水は自由摂取とした。
無負荷−生理食塩水投与群、(2)ストレス負荷−生理
食塩水投与群、(3)ストレス負荷−VPP、IPP投
与群の3群に分け(各群8匹)、(2)群及び(3)群
の動物に、金網拘束ケージに入れ呼吸ができるように頭
部が水面から出るようにして頭部より下を25℃の水槽
に浸すことにより、水浸拘束ストレスを1日について6
時間、5日間連続して負荷した。ストレス負荷期間中
は、固形飼料(商品名CE−2、日本クレア製)及び水
を自由摂取させた。
荷終了日まで5日間連続して試料を投与した。試料とし
ては、(1)及び(2)群には生理食塩水1mlを、
(3)群には実施例3の方法により合成したIPP及び
VPPを各3mg/kg体重の濃度になるように溶解し
た生理食塩水1mlを、経口ゾンデにて胃内に強制投与
した。
謝ケージにて尿を採取し、尿中のカテコールアミン、イ
ンドールアミンをHPLCを用いて分析した。カラムは
日本分光社製シリカ逆層カラム(商品名「カテコールパ
ック」)を、検出装置はesa社製電気化学検出器(商
品名「クーロケム」)を使用した。
後、断頭によりマウスを屠殺し血液を採取し、胸腺及び
脾臓を摘出した。血清については、アミノ酸分析装置
(形式800シリーズ、日本分光社製)にてアミノ酸組
成を測定し、Fischer比(分枝鎖アミノ酸/芳香族アミ
ノ酸のモル比)を算出した。胸腺及び肝臓は重量を測定
し、脾臓については以下の方法により脾臓細胞を調製
し、脾臓細胞のインターロイキン2産生能及びマイトジ
ェン反応性を測定した。
ェナイザーで細かく破砕し、低張処理することによって
赤血球を除去し、2%牛胎児血清(FCS)含有MEM
で洗浄後、10%FCS含有RPM1640培地に細胞
数が1×107となるように浮遊させ、遊離浮遊細胞液
を作成した。
した前記脾臓細胞2.5×106個、コンカナバリンA
(ConA)5μg/ml、及び10%FCSを含むR
PM1640培地を調製し、24時間培養し、その上清
中のインターロイキン2量を測定した。インターロイキ
ン2量はインターロイキン2反応性細胞株の増殖を指標
としたバイオアッセイにより測定した。
クウィートマイトジェン(PWM)をマイトジェンと
し、これらのいずれか一方の5μg/ml、調製した前
記脾臓細胞5×106個、及び10%FCSを含むRP
M1640培地を調製し、24時間培養し、24時間後
の細胞数をMTT(3-(4,5-dimethylthiazoil-2-yl)-2,
5-diphenyltetrazoliumbromide)の取り込みを指標とし
た吸光度により測定し、マイトジェンを含まない時の細
胞数に対する比率で表した。
中ノルアドレナリン、ドーパミンの排泄量を示す。表5
に示すように、ストレスを負荷した(2)群ではストレ
スを負荷していない(1)群に比べ、尿中ノルアドレナ
リン、ドーパミンの排泄量が有意に低下していた。トリ
ペプチドを投与した(3)群では、生理食塩水を投与し
た(2)群に比べ、尿中ノルアドレナリン、ドーパミン
排泄量共に低下が抑えられる傾向にあった。従って、I
PP、VPPはストレス負荷した後の尿中ノルアドレナ
リン、ドーパミン排泄量の低下を抑制する効果を有する
ことが認められた。
を示す。表6に示すように、ストレスを負荷した(2)
群ではストレスを負荷していない(1)群に比べ、Fisc
her比が有意に低くなっていたが、トリペプチドを投与
した(3)群では、生理食塩水を投与した(2)群に比
べ、Fischer比が有意に高くなっていた。
た。ストレスを負荷した(2)群ではストレスを負荷し
ていない(1)群に比べ、胸腺、脾臓共に重量が大きく
低下していた。トリペプチドを投与した(3)群では、
若干ではあるが胸腺重量及び脾臓重量が生理食塩水を投
与した(2)群に比べ高い傾向を示した。
表9に脾臓細胞のインターロイキン2産生能を示す。ス
トレスを負荷した(2)群ではストレスを負荷していな
い(1)群に比べ、マイトジェン反応性の低下とインタ
ーロイキン2産生能の低下傾向が認められたが、トリペ
プチドを投与した(3)群では、生理食塩水を投与した
(2)群に比べ、マイトジェン反応性の上昇とインター
ロイキン産生能が上昇傾向が認められた。
は、ストレスの負荷による血中アミノ酸のバランス(Fis
cher比)の変化、胸腺や脾臓の萎縮、脾臓細胞反応性の
低下等の免疫機能指標の低下に対し抑制効果を有するこ
とが認められた。
5℃、20分間殺菌した後、室温まで冷却してラクトバ
チルス・ヘルベティカスATCC−8205を1白金耳
接種し、37℃で24時間培養を行って、1次スタータ
ー(乳酸菌数5×108個/ml、pH3.5)を調製
した。次いで、90℃達温殺菌した脱脂乳(固形分9重
量%)2kgに、1次スターターを80g接種した後
に、37℃、24時間培養を行い、これを2次スタータ
ーとした。次に、脱脂粉乳4.5kgを水50kgに溶
解し、90℃達温殺菌した後室温まで冷却して、前記2
次スターターを2kg接種し、37℃で24時間培養を
行い、発酵乳56kgを得た。得られた発酵乳中には、
1kg中の含有量としてIPPが5.4mg、VPPが
9.5mgの割合で含有されていた。 ─────────────────────────────────────────────────────
培養温度まで冷却後に、予め前培養しておいた乳酸菌ス
ターターを添加することにより行うことができる。乳酸
菌スターターの接種量は、培地1g当り乳酸菌数105
−107個とするのが好ましい。培養温度は20−50
℃、好ましくは30−45℃、培養時間は3−48時
間、好ましくは6−24時間の範囲で行うことができ
る。乳酸菌数が108個/g以上及び乳酸酸度が1以上
となった時点で、培養を終了することができる。
Claims (3)
- 【請求項1】 アンジオテンシン変換酵素阻害活性を有
するトリペプチド及び/又はその塩を有効成分として含
有する抗ストレス剤。 - 【請求項2】 前記トリペプチドが、Ile−Pro−
Pro及び/又はVal−Pro−Proであることを
特徴とする請求項1記載の抗ストレス剤。 - 【請求項3】 請求項1又は2記載の抗ストレス剤を含
む機能性食品。
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