JP7473285B2 - 相乗作用のある細菌組成物ならびにその製造及び使用方法 - Google Patents
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Description
rDNA配列と少なくとも95%同一の16S rDNA配列を含む細菌を含む。実施形態において、第1の種類、第2の種類、及び任意選択での第3の種類の組み合わせは、i)細胞傷害性、ii)細胞分裂抑制性、iii)病原菌の成長を低下させることが可能、iv)病原菌の成長を阻害することが可能、v)病原菌のコロニー形成を低下させることが可能、vi)病原菌のコロニー形成を阻害することが可能、またはvii)i)~vi)の任意の組み合わせである。実施形態において、組み合わせは、第1の種類、第2の種類、及び任意選択での第3の種類の組み合わせの濃度に少なくとも等しい濃度で存在する、病原菌の増殖を阻害することが可能である。実施形態において、組み合わせは、第1の種類、第2の種類、及び任意選択での第3の種類の組み合わせの濃度の少なくとも約2倍の濃度で存在する、病原菌の増殖を阻害することが可能である。実施形態において、組み合わせは、第1の種類、第2の種類、及び任意選択での第3の種類の組み合わせの濃度の少なくとも約10倍の濃度で存在する、病原菌の増殖を阻害することが可能である。実施形態において、組み合わせは、病原菌の存在下で増殖可能である。実施形態において、病原菌は、エルシニア、ビブリオ、トレポネーマ、レンサ球菌、ブドウ球菌、赤痢菌、サルモネラ、リケッチア、オリエンティア、シュードモナス、プロビデンシア、プロテウス、プロピオニバクテリウム、ナイセリア、マイコプラズマ、マイコバクテリウム、モーガネラ、リステリア、レプトスピラ、レジオネラ、クレブシエラ、ヘリコバクター、ヘモフィルス、フソバクテリウム、フランシセラ、エシェリキア、エーリキア、エンテロコッカス、コクシエラ、コリネバクテリウム、クロストリジウム、クラミジア、クラミドフィラ、カンピロバクター、ブルクホルデリア、ブルセラ、ボレリア、ボルデテラ、ビフィドバクテリウム、バチルス、多剤耐性菌、カルバペネム耐性腸内細菌科細菌(CRE)、基質特異性拡張型βラクタム(extended spectrum beta-lactam)耐性腸球菌(ESBL)、及びバンコマイシン耐性腸球菌(VRE)からなる群から選択される。実施形態において、第1の種類、第2の種類、及び任意選択での第3の種類は、相乗的に相互作用する。実施形態において、第1の種類、第2の種類、及び任意選択での第3の種類は、相乗的に相互作用して病原菌を阻害する。実施形態において、組成物は、表4aもしくは表4bの任意の行に記載される細菌の組み合わせ、または++++もしくは+++表記を有する、表4aの任意の行に記載される細菌の組み合わせ、または第75百分位表記を有する、表4aの任意の行に記載される細菌の組み合わせを含む。
表1は、属、種、及び系統クレードに対してなされた分類学的帰属による操作的分類単位(OTU)のリストである。細菌OTUのクレードの構成要素は、16S配列データに基づいている。クレードは、系統学の当業者が精通している最尤法を使用して、完全長16S配列から構築される系統樹のトポロジーに基づいて定義される。クレードは、所与のクレード内の全てのOTUが、(i)既定の数のブートストラップで互いに支持されたノード内にあること、及び(ii)5%以内の遺伝的類似性であることを確実にするように構築される。同じクレード内のOTUは、16S-V4配列データに基づいて、異なるクレード内のOTUとは遺伝的及び系統的に異なると識別することができる一方で、同じクレードに属するOTUは近縁関係にある。同じクレードに属するOTUは、進化的に近縁関係にあり、16S-V4配列データを使用して互いに識別され得るかまたはされ得ない。同じクレードのメンバーは、それらの進化上の関連性に起因して、微生物エコロジーにおいて、ヒトの腸に見られるように類似する機能的役割を果たす。同じクレードからの別の種がある種の代わりとなる組成物は、保存された生態学的機能を有する可能性が高く、したがって、本発明において有用である。全てのOTUは、それらが芽胞を形成する推定上の能力、及びそれらが病原体または病原性共生生物であるかどうかに関して表される(「病原性共生生物」の説明については定義を参照のこと)。NIAID(National Institute of Allergy及びInfectious Disease)の優先病原体は、「カテゴリーA」、「カテゴリーB」、または「カテゴリーC」で表され、また日和見病原体は、「OP」で表される。病原性ではない、またはそれらが病原体として存在する能力が知られていないOTUは、「N」で表される。「配列番号」は、配列表ファイル内のOTUの識別子を表し、「公開DB受入番号」は、公的な配列リポジトリ内のOTUの識別子を表す。
また、抗酸化剤は、他の分子の酸化を遅らせるかまたは防止することができる分子である。抗酸化剤の非限定例として、アスタキサンチン、カロテノイド、コエンザイムQ10(「CoQ10」)、フラボノイド、グルタチオン、ゴジ(ウルフベリー)、ヘスペリジン、ラクトウルフベリー、リグナン、ルテイン、リコペン、ポリフェノール、セレン、ビタミンA、ビタミンC、ビタミンE、ゼアキサンチン、またはこれらの組み合わせが挙げられる。
al.,2010.Comparison of two next-generation sequencing technologies for resolving highly complex microbiota composition using tandem variable 16S rRNA gene regions.Nucleic Acids Res 38: e200.Konstantinidis et al.,2006.The bacterial species definition in the genomic era. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci 361:1929–1940を参照のこと。完全ゲノム、MLST、16S以外の特定の遺伝子、または一連の遺伝子に関与する実施形態において、≧95%の平均ヌクレオチド同一性を共有するOTUが、同じOTUであると見なされる。例えば、Achtman and Wagner.2008.Microbial diversity and the genetic
nature of microbial species.Nat.Rev.Microbiol.6:431–440;Konstantinidis et al.,2006,supra.The bacterial species definition in the genomic era.Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci 361:1929–1940を参照のこと。OTUは、生物間で配列を比較することによって定義することができる。一般的に、95%未満の配列同一性を有する配列は、同じOTUの一部を形成するとは見なされない。OTUはまた、ヌクレオチドマーカーまたは遺伝子の任意の組み合わせ、具体的には高度に保存された遺伝子(例えば、「ハウスキーピング」遺伝子)、またはこれらの組み合わせによっても特徴づけられ得る。そのような特徴づけは、例えば、WGSデータまたは全ゲノム配列を利用する。本明細書で使用される場合、細菌の「種類」は、株、種、クレード、または科のレベルであり得るOTUを指す。
哺乳動物宿主に投与されたときに、健康な微生物叢の機能を提供するか、または常在マイクロバイオームへの増大を触媒する能力を有する、ヒト腸微生物叢の細菌及び組み合わせが提供される。具体的には、細菌叢異常に関連する疾患、障害、及び状態の症状を治療するか、予防するか、遅延させるか、または軽減する相乗的な組み合わせが提供される。本明細書に記載される組成物及び方法を用いた治療に好適な、細菌叢異常と潜在的に関連する代表的な疾患、障害、及び状態は、表3に提供される。特定の機序に限定されるものではないが、そのような組成物は、腸内菌共生バランス失調の微生物叢ニッチにおいて、1つまたは複数の病原菌の成長、増殖、及び/またはコロニー形成を阻害すると考えられるため、健康な、多様な、及び保護性の微生物叢は、腸管腔でコロニー形成及び集団形成し、病原体または潜在的な病原体に対する生態学的制御を確立または再確立する(例えば、腸内菌共生バランス失調ではない環境に存在する場合、いくつかの細菌は病原菌のみである)。病原体の阻害は、クロストリジウム・ディフィシル、サルモネラ種、腸管病原性大腸菌、多剤耐性菌、例えば、クレブシエラ、及び大腸菌、カルバペネム耐性腸内細菌科細菌(CRE)、基質特異性拡張型βラクタム(extended spectrum beta-lactam)耐性腸球菌 (ESBL)、及びバンコマイシン耐性腸球菌(VRE)等の病原体を含む。
いくつかの実施形態において、組成物は、その組成物中に含まれる種によって定義される。種を同定する方法は、当該技術分野において既知である。
OTUは、rDNA遺伝子の完全16Sシーケンシングによって、この遺伝子の特定の超可変領域(すなわち、V1、V2、V3、V4、V5、V6、V7、V8、またはV9)のシーケンシングによって、またはこの遺伝子からの超可変領域の任意の組み合わせ(例えば、V1-3またはV3-5)のシーケンシングによって定義され得る。細菌の16S rDNAは、約1500ヌクレオチド長であり、系統発的アプローチを用いてある細菌の分離株を別の細菌の分離株との進化的関係及び配列類似性を再構築する際に用いられる。16S配列は、概して高度に保存されるが、大半の微生物の属及び種を区別するのに十分なヌクレオチド多様性を有する特定の超可変領域を含有するため、これらは系統学的再構築に用いられる。周知の技術を使用して、完全16S配列、または16S配列の任意の超可変領域の配列を決定するために、細菌試料からゲノムDNAを抽出し、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いて16S rDNA(完全領域または特定の超可変領域)を増幅し、PCR産物を洗浄し、ヌクレオチド配列を明確にし、16S遺伝子または該遺伝子のサブドメインの遺伝子組成を決定する。完全16Sシーケンシングが行われる場合、使用されるシーケンシング方法は、限定されないが、サンガー・シーケンシングであってもよい。1つ以上の超可変領域、例えばV4領域が用いられる場合、シーケンシングは、限定されないが、サンガー法を用いて、または次世代シーケンシング法、例えば、多重反応を可能にするバーコード化プライマーを用いるイルミナ(合成によるシーケンシング)法等を用いて、行われてもよい。
一実施形態において、細菌組成物は、エンテロコッカス・フェカリス(以前は、ストレプトコッカス・フェカリスとして知られていた)、クロストリジウム・イノキューム、クロストリジウム・ラモスム、バクテロイデス・オバツス、バクテロイデス・ブルガタス、バクテロイデス・シータイオタオミクロン、大腸菌(1109及び1108-1)、クロストリジウム・ビフェルメンタンス、及びブラウティア・プロダクタ(以前は、ペプトストレプトコッカス・プロダクタスとして知られていた)のうちの少なくとも1つを含まない。
47FAA、クロストリジウム・アスパラギホルメ(asparagiforme)DSM 15981、クロストリジウム細菌JC13、クロストリジウム・ボルテアエATCC BAA 613、クロストリジウム・ハセワイ DSM 13479、クロストリジウム・インドリス CM971、クロストリジウム・ラモスムDSM 1402、クロストリジウム・サッカログミアSDG Mt85 3Db、クロストリジウム・シンデンス VP 12708、クロストリジウム種7 3 54FAA、ユウバクテリウム・コントルタムDSM 3982、ラクノスピラ細菌3 1 57FAA CT1、ラクノスピラ細菌7 1 58FAA、オシロスピラ科細菌NML 061048、及びルミノコッカス種ID8のうちの少なくとも1つを含まない。
細菌組成物は、1つ以上の対象となるGI病原体による感染に対する保護効果または治療効果を提供し、そのいくつかを表3に列挙する。
Soil DNA Isolation Kit(Mo Bio Laboratories、Carlsbad、CA)、Mo Bio Powersoil(登録商標)DNA Isolation Kit(Mo Bio Laboratories、Carlsbad、CA)、またはQIAamp DNA Stool Mini Kit(QIAGEN、Valencia、CA)等の市販のキットを使用して、製造者の指示に従って試料から抽出してもよい。qPCRは、HotMasterMix(5PRIME、Gaithersburg、MD)及び対象となる病原体に特異的なプライマーを使用して実施されてもよく、またMicroAmp(登録商標)Fast Optical 96-well Reaction Plate with Barcode(0.1mL)(Life Technologies、Grand Island、NY)上で実施されてもよく、FAM及びROXチャネルの蛍光測定値を用いてBioRad C1000(商標)Thermal Cycler equipped withCFX96(商標)Real-Time System(BioRad、Hercules、CA)上で行われてもよい。FAMチャネル上の各ウェルのCq値は、CFX Manager(商標)ソフトウェアバージョン2.1によって決定される。各実験試料のlog10(cfu/ml)は、標準曲線ウェルのCq値をこれらの試料の既知のlog10(cfu/ml)と比較した標準曲線から作成された線形回帰モデルに、所与の試料のCq値入力することによって算出される。当業者は、代替のqPCR様式を用いてもよい。
細菌組成物を生成する方法は、1つ以上の混合ステップと組み合わせた3つの主要処理ステップを含んでもよい。ステップは、生物バンキング、生物生産、及び保存である。
それを必要とするヒト及び他の対象に投与するための製剤が提供される。一般的に、細菌組成物は、単回投与単位または複数回投与形態であり得る最終生成物を生成するために、更なる活性材料及び/または不活性材料と組み合わされる。
いくつかの実施形態において本明細書に開示されるタンパク質及び組成物は、対象または使用者(時として、集合的に「対象」と称される)に投与される。本明細書で使用される場合、「投与する」及び「投与」は、ある人物が別の人物に特定の様式で及び/または特定の目的のために細菌組成物を摂取するよう指示する実施形態、ならびに、使用者が、第2の人物から受ける任意の指示とは無関係にまたはそれに反して、特定の様式で及び/または特定の目的のために細菌組成物を使用する状況も包含する。ある人物が別の人物に特定の様式で及び/または特定の目的のために細菌組成物を摂取するよう指示する実施形態の非限定例として、医師が対象に行動の方針及び/または治療を指示する場合、親が未成年の使用者(小児等)に細菌組成物を摂取するよう命令する場合、トレーナーが使用者(アスリート等)に特定の行動の方針及び/または治療に従うよう助言する場合、ならびに製造者、販売者、またはマーケティング担当者が、例えば、製品の販売またはマーケティングに関連して提供されるパッケージ上または他の材料の上の広告または標示を通して、末端消費者に使用条件を推奨する場合が挙げられる。
細菌組成物の投与の前に、対象は、任意選択で、細菌組成物を受容するように胃腸管を整えるための前処理プロトコルを有し得る。特定の実施形態において、例えば、対象が回復力の高い病原体による急性感染を有する場合等に、前処理プロトコルが得策である。他の実施形態において、例えば、感染を引き起こす病原体が回復力を有しない場合、または、対象の急性感染の治療は成功したが、感染が再発し得ると医師が懸念している場合等には、前処理プロトコルは完全に任意である。これらの場合、前処理プロトコルは、対象のマイクロバイオームに影響を及ぼす細菌組成物の能力を増大し得る。
本発明の細菌組成物は、それを必要とする哺乳動物及び非哺乳動物への投与に適している。特定の実施形態において、哺乳動物対象は、細菌叢異常の1つ以上の症状を有するヒト対象である。
いくつかの実施形態において、細菌及び細菌組成物は、剤形で提供される。いくつかの実施形態において、剤形は、本明細書に開示される少なくとも1つのOTUまたはこれら組合せの投与のために設計され、その場合、投与される細菌組成物の総量は、0.1ng~10g、10ng~1g、100ng~0.1g、0.1mg~500mg、1mg~100mg、または10~15mgから選択される。いくつかの実施形態において、細菌組成物は、1日0.1ng~10g、1日10ng~1g、1日100ng~0.1g、1日0.1mg~500mg、1日1mg~100mg、または1日10~15mg、またはそれ以上で消費される。
個々の対象のために、または特定のプロフィールを有する対象のために、特定の細菌組成物が選択され得る。例えば、16Sシーケンシングは、彼または彼女の微生物叢中に存在する細菌を同定するために、所定の対象のために行われてもよい。シーケンシングは、16Sシーケンシングを用いて対象の全マイクロバイオーム(科、属、または種のレベル)をプロファイルし得るか、16Sシーケンシングを用いて対象のマイクロバイオームの一部分をプロファイルし得るかのいずれかであるか、または、健康もしくは特定の疾患状態のバイオマーカー、例えば、多剤耐性生物もしくはエシェリキア等の対象となる具体的な属のマーカーである特定の候補細菌の存在もしくは非存在を検出するために用いられてもよい。健康を回復するため、または疾患を治療もしくは予防するために、バイオマーカーのデータに基づいて、対象への投与のため、または対象の微生物叢を補充もしくは捕捉するための特定の組成物が選択され得る。別の実施形態において、治療の成功の可能性を判定するために、対象の微生物叢の組成を決定するために対象がスクリーニングされてもよい。
細菌組成物は、併用療法様式において、抗微生物剤及びプレバイオティクスを含む他の薬剤とともに投与されてもよい。投与は、時間または日数の期間にわたって逐次的、または同時的であり得る。
特定の実施形態において、細菌組成物の特定の特徴を試験するための方法が提供される。例えば、所与の組成物、製剤、及び/または使用における特定の望ましい特徴について選択するために、例えば、特定の環境変数に対する細菌組成物の感受性が決定される。例えば、細菌組成物中の構成成分は、pH耐性、胆汁酸耐性、及び/または抗生物質感受性について、抗生物質ごとに独立して、または複数の細菌構成成分からなる細菌組成物として集合的に(本節では、集合的に細菌組成物として言及される)試験されてもよい。
細菌組成物が結腸または直腸意外に(すなわち、例えば、限定されないが経口経路を通して)投与される場合、任意選択で、pH耐性に関する試験は、GI管の異なる領域の様々なpH環境を通して考えられる最高収率で生き残るであろう細菌組成物の選択を強化する。細菌組成物がGI管のpHにどのように反応するかを理解することは、処方においても助けとなり、そのため、有益である場合には剤形中の細菌の数が増加する可能性があり、かつ/あるいは、組成物は、腸溶性カプセルもしくは錠剤中で、または緩衝組成物もしくは保護組成物とともに投与されてもよい。胃のpHは、高タンパク食の後、生理学的機序がそれを3~4のpHに調整するまで短時間の間1~2のpHに低下し、4~5の安静時pHに留まることが多く、また小腸のpHは6~7.4の範囲であり得るため、これらの様々なpH範囲で生き延びる細菌組成物が調製され得る(具体的には、少なくとも1%、5%、10%、15%、20%、25%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%、または100%もの細菌が、種々のpH範囲を通して腸通過時間を生き延びることができる)。これは、これらのpH範囲を通して予測される腸通過時間の間、様々なpH範囲に細菌組成物を曝露することによって試験されてもよい。したがって、単なる非限定例として、細菌組成物の18時間培養物は、標準培地、例えば腸微生物叢培地(「GMM」、Goodman et al.、Extensive
personal human gut microbiotaculture collections characterized and manipulated in gnotobiotic mice、PNAS 108(15):6252-6257(2011)を参照のこと)中で、または別の動物性生成物を含まない培地中で、1~2のpHでは30分間、3~4のpHでは1時間、4~5のpHでは1~2時間、6~7.4のpHでは2.5~3時間、pH調整剤を添加して成長させてもよい。酸に対する安定性を試験するための代替方法は、米国特許第4,839,281号に記載されている。細菌の生存は、細菌を培養して、適切な選択培地または非選択培地上のコロニーを計数することによって決定され得る。
更に、いくつかの実施形態において、胆汁酸耐性について試験することが、GI管を通って移動する間の胆汁酸への曝露を生き延びるであろう細菌組成物の選択を強化する。胆汁酸は、小腸に分泌され、pHのように、細菌組成物の生存に影響する。これは、予想される胆汁酸への腸曝露時間の間、胆汁酸に細菌組成物を曝露することによって試験されてもよい。例えば、0.05mMトリスをpH9で溶媒として使用して、所望の濃度の胆汁酸溶液を調製してもよい。胆汁酸が溶解した後、溶液のpHは、10%HClを用いて7.2に調整され得る。細菌組成物は、対象における胆汁酸の濃度及び種類を模倣する2.2mlの胆汁酸組成物、滅菌濾過した1.0mlの10%糞便培地、及び所与の細菌株の0.1mlの18時間培養物中で培養されてもよい。2.5~3時間またはそれよりも長くインキュベーションが実施されてもよい。胆汁酸に対する安定性を試験するための代替の方法は、米国特許第4,839,281号に記載されている。細菌の生存は、細菌を培養して、適切な選択培地または非選択培地上のコロニーを計数することによって決定され得る。
更なる任意選択の感受性試験として、細菌組成物は、抗生物質に対する感受性について試験されてもよい。一実施形態において、必要であれば、細菌組成物を標的とする少なくとも1つの抗生物質によって対象の胃腸管からそれらを排除するかまたは実質的に減少させることができるように細菌構成成分が抗生物質に対して感受性であるように、細菌組成物が選択され得る。
細菌組成物は、任意選択で胃腸細胞に付着する能力について試験されてもよい。胃腸細胞への付着性を試験するために方法は、米国特許第4,839,281号に記載されている。
細菌の対を使用して、クロストリジウム・ディフィシルの阻害のために有用な二元の対を特定した。二元の対の高スループットスクリーニングアッセイのためのプレートを調製するために、-80℃のグリセロール保存液による細菌バンクのバイアルを解凍し、1e8CFU/mLに希釈した。その後、96ウェルプレートのウェル内に、200uLのPBS+15%のグリセロール中、各細菌株を10倍に(各株1e7CFU/mLの最終濃度に)希釈した。その後、プレートを-80℃で凍結させた。必要な際に、クロストリジウム・ディフィシルによるCivSimアッセイにおける試験のために、プレートを-80℃から取り出し、嫌気条件下、室温で解凍した。
細菌の3つ組の組み合わせを使用して、クロストリジウム・ディフィシルの阻害のために有用な三元の組み合わせを特定した。三元の組み合わせの高スループットスクリーニングのためのプレートを調製するために、-80℃のグリセロール細菌による保存液バンクのバイアルを解凍し、1e8CFU/mLに希釈した。その後、96ウェルプレートのウェル内に、200uLのPBS+15%のグリセロール中、各細菌株を10倍に(各株の1e7CFU/mLの最終濃度に)希釈した。その後、プレートを-80℃で凍結させた。アッセイに必要な際に、クロストリジウム・ディフィシルによるCivSimアッセイにおける試験時、プレートを-80℃から取り出し、嫌気条件下、室温で解凍した。
競合アッセイ(CivSimアッセイ)を使用して、クロストリジウム・ディフィシルの増殖を阻害し得る組成物を特定した。簡潔に述べると、クロストリジウム・ディフィシルの増殖のために、クロストリジウム・ディフィシルの一晩の培養物を、SweetBFosIn中、嫌気条件下で増殖させた。場合によっては、他の好適な培地が使用され得る。SweetB-FosInは、BHI(Remel R452472)を以下のようないくつかの構成成分で補充したバージョンである:(1リットル当たりの構成成分)5gの酵母抽出物UF(Difco210929)、1gのシステイン-HCl(Spectrum C1473)、1gのセロビオース(Sigma C7252)、1gのマルトース(Spectrum MA155)、1.5mlのヘミン溶液、1gの可溶性デンプン(Sigma-Aldrich S9765)、1gのフラクトオイイゴ糖(fructooiigosaccharide)/イヌリン(Jarrow Formulas103025)、及び50mL、1MのMOPS/KOH、pH7を補助した、37gのBHI粉末(Remel R452472)。ヘミン溶液を調製するために、ヘミン(Sigma51280)を、0.1MのNaOH中に溶解させて、10mg/mL保存液を作製した。
クロストリジウム・ディフィシルを阻害する拡散性産生物を産生し得る細菌組成物を特定するために、修正CivSimアッセイを設計した。この実験において、上述のCivSimアッセイを、96ウェル形式の0.22uMのフィルタ挿入物(Millipore(商標)MultiScreen(商標)96Well Assay Plate品目MAGVS2210)を使用して、クロストリジウム・ディフィシルを細菌組成物から物理的に分離させることによって修正した。クロストリジウム・ディフィシルを96ウェルプレート内にアリコートした一方で、細菌組成物をフィルタオーバーレイ上の培地内にアリコートした。栄養素/増殖培地は、0.22uMのフィルタの両面に接触し、拡散による栄養素、小分子、及び多くの巨大分子(例えば、バクテリオシン、細胞表面タンパク質、または多糖)の交換を可能にする。この実施形態において、24時間のインキュベーション後、細菌組成物を含有するフィルタ挿入物を取り除いた。その後、クロストリジウム・ディフィシルを含有するプレートを、600nmでの光学密度(OD)の測定に好適な96ウェルプレートリーダーに移動させた。異なる細菌組成物お存在下でのクロストリジウム・ディフィシルの増殖を、OD測定に基づいて比較した。これらの実験の結果は、組成物中の細菌とクロストリジウム・ディフィシルとの接触を許容しない条件下、共有された培地内で増殖される際、クロストリジウム・ディフィシルを阻害し得る組成物が特定され得ることを実証した。そのような組成物は、クロストリジウム・ディフィシル感染症を治療するのに効果的であり、かつ、例えば、感染の治療における使用のためにそのような拡散性産生物を単離させるためのプロセスの一部としての役割を果たし得る拡散性産生物を産生するための候補である。
上述のCivSimアッセイを修正して、段階希釈し、CCFA(サイクロセリンセフォキシチンフルクトース寒天、Anaerobe Systems)、CDSA(サイクロセリンセフォキシチンマンニトール寒天であるクロストリジウム・ディフィシル選択的寒天、Becton Dickinson)などのクロストリジウム・ディフィシル選択的培地(Bloedt et al.2009)にプレートすることによって、最終クロストリジウム・ディフィシル力価を決定し得る。
A. 標準曲線調製
Technologies,Carlsbad,CA)に添加し、ピペッティングによって混合した。希釈された試料を有するプレートを、増幅前に加熱溶解ステップを含んだqPCRでの使用まで、-20℃で凍結させた。あるいは、ゲノムDNAは、製造者の指示書に従って、Mo Bio Powersoil(登録商標)-htp96Well Soil DNA Isolation Kit(Mo Bio Laboratories,Carlsbad,CA)、Mo Bio Powersoil(登録商標)DNA Isolation Kit(Mo Bio Laboratories,Carlsbad,CA)、またはQIAamp DNA Stool Mini Kit(QIAGEN,Valencia,CA)を使用して、単離されてもよかった。
本明細書に記載される方法を使用して、クロストリジウム・ディフィシルを阻害し得る二元の対を特定した(表4を参照)。989個の組み合わせのうちの622個が>80%の信頼区間について阻害を示し、989個のうちの545個が>90%のC.Iについて阻害を示し、989個のうちの507個が>95%のC.Iについて阻害を示し、989個のうちの430個が>99%のC.Iについて阻害を示した。非限定的ではあるが、例示的な二元の対としては、例えば、アリスティペスと対になったブラウティア・プロダクタ、クロストリジウム・ハセワイ、もしくはコリンゼラ・アエロファシエンス、またはクロストリジウム・マヨムベイと対になったクロストリジウム・イノキューム、クロストリジウム・テルチウム、コリンゼラ・アエロファシエンス、あるいは表4に示す他の424個の組み合わせのうちのいずれかなどの、0.366よりも大きい平均log低減を有するものが挙げられる。等しく重要なCivSimアッセイは、クロストリジウム・ディフィシルを効果的に阻害しない二元の対を説明する。989個の組み合わせのうちの188個は>80%の信頼で増殖を促進し、989個のうちの52個は>90%の信頼で阻害の欠如を示し、989個のうちの22個は>95%の信頼で阻害の欠如を示し、ブラウティア・プロダクタとコプロコッカス・カツスとの組み合わせ、アリスティペス・シャヒーとドレア・フォルミシゲネランスとの組み合わせ、及びユーバクテリウムレクタレとローセブリア・インテスチナリスとの組み合わせを含む、989個のうちの3個は>99%の信頼で阻害の欠如を示す。989個のうちの249個の組み合わせは、アッセイにおいて中性であリ、これは、それらが、測定の限界までクロストリジウム・ディフィシルの増殖の促進も阻害もしないことを意味する。
芽胞集団などであるが、これに限定されない細菌組成物の治療潜在性を試験するために、クロストリジウム・ディフィシル感染症の予防マウスモデルを使用した(モデルは、Chen et al..2008.A mouse model of Clostridium difficile-associated disease.Gastroenterology135:1984-1992に基づいた)。簡潔に述べると、各5匹のマウスがいる2つのケージを、実験の各群について試験した。全てのマウスは、その飲み水に、-14~-5日目を通して10%のグルコース、カナマイシン(0.5mg/ml)、ゲンタマイシン(0.044mg/ml)、コリスチン(1062.5U/ml)、メトロニダゾール(0.269mg/ml)、シプロフロキサシン(0.156mg/ml)、アンピシリン(0.1mg/ml)、及びバンコマイシン(0.056mg/ml)からなる抗生物質混合物を受け、強制経口投与によって、-3日目に10mg/kgの用量のクリンダマイシンを受けた。-1日目に、試験組成物を12,100rcfで5分間回転させ、それらの上清を取り出し、残りのペレットを無菌PBS中に再懸濁させ、細菌組成物が芽胞形状ではない場合、前還元し、強制経口投与を介して送達した。0日目に、強制経口投与を介して、マウスに約4.5のlog10cfuのクロストリジウム・ディフィシル(ATCC43255)または(未処置群に)無菌PBSの投与によって負荷を与えた。死亡率、体重、及び外観(標準、円背、立毛、または嗜眠に基づいて0~2点)、ならびに臨床的徴候(標準、湿潤した尾、触ると冷たい、または他の動物からの孤立)に基づいて0~2点)のスコアを組み合わせることによる、0~4の尺度に基づいた、クロストリジウム・ディフィシルの症状の臨床的スコア化を-2~6日目まで毎日評価し、死亡した場合4のスコアとした。-1日目と比較した平均最小体重、ならびに平均最大臨床的スコア及び平均累積死亡率を計算した。死亡を4のスコアに割り当てて、ビヒクル対照と比較して、低減した死亡率、-1日目と比較して増加した平均最小体重、及び低減した平均最大臨床的スコアを使用して、クロストリジウム・ディフィシルによる感染症を阻害する試験組成物の能力を評価した。
病原菌、例えば、バンコマイシン耐性エンテロコッカスと競合する組成物の能力を決定するために、競合アッセイを開発した。これらの実験において、エンテロコッカス・フェシウムのバンコマイシン耐性株の一晩の培養を、SweetB-FosIn中で、24時間嫌気増殖させた。細菌組成物のグリセロール保存液を-80℃から解凍し、96ウェルプレートの適切なウェル内のSweetB-FosIn中、1株当たり1e6CFU/mLに希釈した。プレートを37℃、嫌気で1時間インキュベートして、以前に凍結された細菌を生き返らせた。1時間の初期インキュベーションの後、1e2または1e3CFU/mLの標的濃度で、VREを適切なウェルに植え付けた。ウェルにはまた、細菌組成物なしで、VREのみを植え付けた。プレートを37℃、嫌気で24時間インキュベートした。15時間及び24時間でアリコートを取り出し、VRE力価を決定した。各時点で、ウェル内容物を、段階希釈し、VREに選択的な寒天プレート(エンテロコッコセル寒天+8ug/mLの塩酸バンコマイシン)(BBL212205からのエンテロコッコセル寒天、Sigma94747からの塩酸バンコマイシン)にプレートした。選択的プレートを、37℃、好気で24時間インキュベートしてから、コロニーを計数して、CivSimプレートの各ウェル内のVREの最終力価を決定した。VREのみを含有するウェルの最終力価から、競合ウェルの最終力価を減算することによって、VREのlog阻害を決定した。VREと細菌組成物との開始濃度の複数の比率を試験して、最大信号をもたらす条件に最適化した。15時間の競合時間、1e2CFU/mLでのVREの開始濃度、及び1e6CFU/mLでのN1962(S030及びN1952としても知られる)の開始濃度が、対照と比較して、増殖の最大阻害を示した。
病原菌、例えば、クレブシエラ・ニューモニエと競合する組成物の能力を決定するために、競合アッセイを開発した。これらの実験において、クレブシエラ・ニューモニエのバンコマイシン耐性株の一晩の培養を、SweetB-FosIn中で、24時間嫌気増殖させた。細菌組成物(N1962)のグリセロール保存液を-80℃から解凍し、96ウェルプレートの適切なウェル内のSweetB-FosIn中、1株当たり1e6CFU/mLに希釈した。プレートを37℃、嫌気で1時間インキュベートして、以前に凍結された細菌を生き返らせた。1時間の初期インキュベーション後、1e2または1e3CFU/mLの標的濃度で、クレブシエラ・ニューモニエを適切なウェルに植え付けた。ウェルにはまた、細菌組成物なしで、クレブシエラ・ニューモニエのみを植え付けた。プレートを37℃、嫌気で24時間インキュベートした。15時間及び24時間でアリコートを取り出して、競合の終了時にクレブシエラ・ニューモニエの最終濃度を滴定した。各時点で、ウェルを段階希釈し、クレブシエラ・ニューモニエに対して選択的な寒天プレート(MacConkey Lactose Agar,Teknova M0149)にプレートした。選択的プレートを、37℃、好気で24時間インキュベートしてから、コロニーを計数して、CivSimプレートの各ウェル内のクレブシエラ・ニューモニエの最終力価を決定した。クレブシエラ・ニューモニエのみを含有するウェルの最終力価から、競合ウェルの最終力価を減算することによって、クレブシエラ・ニューモニエのlog阻害を決定した。クレブシエラ・ニューモニエと細菌組成物との開始濃度の複数の比率を試験して、最大信号をもたらす条件に最適化した。このアッセイの結果を表7に示す。15時間の競合時間、1e2CFU/mLでのクレブシエラ・ニューモニエの開始濃度、及び1e6CFU/mLでのN1962(S030及びN1952としても知られる)の開始濃度が、対照と比較して、増殖の最大阻害を示した。15メンバー組成物であるN1962(S030及びN1952)は、試験された条件にわたって、0.1~4.2log10CFU/mLだけ、クレブシエラ・ニューモニエを阻害した。
病原菌、例えば、モーガネラ・モーガニイと競合する組成物の能力を決定するために、競合アッセイを開発した。この実験において、モーガネラ・モーガニイのバンコマイシン耐性株の一晩の培養を、SweetB-FosIn中で、24時間嫌気増殖させた。細菌組成物、N1962のグリセロール保存液を-80℃から解凍し、96ウェルプレートの適切なウェル内のSweetB-FosIn中、1株当たり1e6CFU/mLに希釈した。プレートを37℃、嫌気で1時間インキュベートして、以前に凍結された細菌を生き返らせた。1時間の初期インキュベーション後、1e2または1e3CFU/mLの標的濃度で、モーガネラ・モーガニイを適切なウェルに植え付けた。ウェルにはまた、細菌組成物なしで、モーガネラ・モーガニイのみを植え付けた。プレートを37℃、嫌気で24時間インキュベートした。15時間及び24時間でアリコートを取り出して、競合の終了時にモーガネラ・モーガニイの最終濃度を滴定した。各時点で、ウェルを段階希釈し、モーガネラ・モーガニイに対して選択的な寒天プレート(MacConkey Lactose Agar,Teknova M0149)にプレートした。選択的プレートを、37℃、好気で24時間インキュベートしてから、コロニーを計数して、CivSimプレートの各ウェル内のモーガネラ・モーガニイの最終力価を決定した。モーガネラ・モーガニイのみを含有するウェルの最終力価から、競合ウェルの最終力価を減算することによって、モーガネラ・モーガニイのlog阻害を決定した。モーガネラ・モーガニイと細菌組成物との開始濃度の複数の比率を試験して、最大信号を提供する条件に最適化した。15時間の競合時間、1e2CFU/mLでのモーガネラ・モーガニイの開始濃度、及び1e6CFU/mLでのN1962(S030及びN1952としても知られる)の開始濃度が、対照と比較して、増殖の最大阻害を示した。
16S rDNA遺伝子配列を決定するための方法
al.Nuclear ribosomal internal transcribed spacer(ITS)region as a universal DNA barcode marker for Fungi.PNAS USA109:6241-6246.2012)。18SrDNAは、典型的に系統発生再構築のために使用されるが、ITSは、それが一般に保存されるが、ほとんどの真菌の属及び種を鑑別するために十分なヌクレオチド多様性を持つ高頻度可変領域を含有するため、この機能を果たし得る。
ExoSap-IT(登録商標)(Affymetrix,Santa Clara,CA)を、5μlののPCR産物に添加し、その後、37℃で15分間インキュベートし、その後、80℃で15分間不活性化する。
Reaction Mix、1μLの5倍配列決定緩衝液、1.6pmolの当業者によって設計された適切な配列決定プライマー、及び10μLの最終体積での水を含有した。標準標準サイクル配列決定プロトコルは、96℃で10秒間、50℃で5秒間、60℃で4分間、及び4℃で保持のサイクルを27回である。BigDye XTerminator Purification Kitによって、製造者によって推奨されるように10μLの体積について、配列決定洗浄を実行する。サンガー配列決定法技術、またはIlluminaなどであるが、これに限定されない、次世代配列決定技術のいずれかを使用する、当業者に周知である方法を使用して、得られる18S及びITS配列の遺伝子配列を実行する。
Torrent、及びNanoporeなどであるが、これらに限定されない、ゲノム配列決定の当業者にとって標準的であるプロトコルを使用する他の配列決定技術が使用され得る。
一次読み取りアノテーション
FastTree:Comparing Two Methods for Large-Scale Maximum Likelihood Phylogeny Estimation.PLoS ONE6:e27731;McGuire et al.,2001.Models of sequence evolution for DNA sequences containing gaps.Mol.Biol.Evol18:481-490;Wróbel B.2008.Statistical
measures of uncertainty for branches in
phylogenetic trees inferred from molecular sequences by using model-based methods.J.Appl.Genet.49:49-67を参照)を含むが、これらに限定されない、当業者に既知である系統発生法を活用する。配列読み取り(例えば、16S、18S、またはITS)は、適切な参照配列で構成される参照系統発生に配置される。系統樹内の読み取りの配置に基づいて、アノテーションを行う。OTUアノテーションの確実性または有意性を、参照核酸配列に対するOTUの配列類似性、及び系統発生内の1つ以上の参照配列に対するOTU配列の近接性に基づいて定義する。一例として、分類学的割り当ての特異性は、科、属、種、または株のレベルで、信頼をもって定義され、この信頼は、調査されるOTU配列の配置に対する、参照系統樹内のブートストラップ支持分岐部の位置に基づいて決定される。上述の方法を使用して、核酸配列に、機能的アノテーションを割り当て得る。
Biology14:R2)、HUMAaN(Abubucker et al.2012.Metabolic Reconstruction for Metagenomic Data and Its Application to the Human Microbiome ed.J.A.Eisen.PLoS Computational Biology8:e1002358)、及び当業者にとって既知である他の方法などであるが、これらに限定されない、プラットフォームを使用して、ゲノム組み立て体のアノテーションをすること、のいずれかである。
複合画分から増殖する細菌種の同一性は、複数の方法で決定することができる。例えば、個々のコロニーを96ウェル形式の液体培地内に摘み入れ、増殖させ、-80℃で15%のグリセロール保存液として保存し得る。培養物のアリコートを細胞溶解緩衝液中に定置し、コロニーPCR法を使用して、16S rDNA遺伝子を増幅させ、それを配列決定し得る(実施例1)。あるいは、コロニーは、数継代、固体培地上で純粋になるまでストリークされ得る。よく分離されたコロニーを同一の種類の新しいプレート上にストリークし、37℃で48~72時間インキュベートする。このプロセスを複数回繰り返して、純粋性を確保する。純粋な培養物は、実施例1に記載するような、16S rDNA増幅及び配列決定を含む、表現型または配列に基づく方法によって分析され得る。純粋な単離菌または混合された共同体(例えば、プレート剥離物及び芽胞画分)の配列特性評価はまた、全ゲノムショットガン配列決定を含み得る。後者は、芽胞形成、抗生物質耐性、病原性、及び毒性に関連する遺伝子の存在を決定するのに貴重である。個々の16Sシグネチャーが複合混合物中で特定され得るように、コロニーはまた、プレートからまとめて剥離され、実施例1に記載するような大規模並列配列決定法を使用して配列決定され得る。任意選択で、試料を発芽前に配列決定(適切な場合、DNA単離手順を使用して、DNAを芽胞から溶解させ、遊離させる)して、発芽可能な種の多様性と芽胞試料中の種の総数とを比較し得る。16S分析に対する一代替的または相補的アプローチとして、MALDI-TOF質量分析がまた、種特定のために使用され得る(Barreau et al.,2013.Improving the identification of anaerobes in the clinical microbiology laboratory through MALDI-TOF mass spectrometry.Anaerobe22:123-125)。
純粋な細菌単離菌を、Wadsworth-KTL Anaerobic Microbiology Manual(Jouseimies-Somer et al.,2002.Wadsworth-KTL Anaerobic Bacteriology
Manual)、及びThe Manual of Clinical Microbiology(ASM Press,10th Edition)に記載されるものなどの微生物学的方法を使用して特定し得る。これらの方法は、株の表現型に依存し、細胞外被のグラム陽性または陰性染色挙動を確認するためのグラム染色と、固体培地上のコロニー形態の観察と、運動性と、内生芽胞及び鞭毛を含む、60倍または100倍拡大で顕微鏡観察される細胞形態と、を含む。適切な選択的かつ鑑別的寒天、ならびに/またはRapID試験(Remel)もしくはAPI試験(bioMerieux)などの、グラム陰性もしくはグラム陽性細菌及び酵母の特定用の、商業的に入手可能なキットを使用して、属と種とを判別する生化学試験を実行する。Vitek2システム(bioMerieux)などの計測手段を使用して、類似した特定試験もまた実行され得る。属及び種と、種及び株(例えば、様々な炭素及び窒素源を使用する能力)とを判別する表現型試験もまた、増殖及び代謝活性検出法、例えば、Biolog微生物特定マイクロプレートを使用して実行され得る。特定の炭素源の発酵中の短鎖脂肪酸産生のプロファイルもまた、種と種とを判別するための方法として使用され得る(Wadsworth-KTL Anaerobic Microbiology Manual,Jousimies-Somer,et al 2002)。MALDI-TOF質量分析法もまた、(Anaerobe 22:123に概説されるように)種の特定のために使用され得る。
本明細書に記載されるインビトロアッセイの修正を、大腸菌の増殖に対して阻害性である細菌の組み合わせをスクリーニングするために使用する。一般に、本アッセイは、病原体種菌の増殖のために好適な培地を使用することによって修正される。例えば、好適な培地としては、強化クロストリジウム培地(RCM)、ブレインハートインフュージョン培地(BHI)、またはLB培地(LB)(溶原培地としても知られる)が挙げられる。大腸菌に対して特異的な代替選択的培地を使用すること、またはその病原体に対して特異的なqPCRプローブを使用することによって大腸菌を定量する。例えば、MacConkeyラクトース培地上での好気増殖は、大腸菌を含む腸内グラム陰性細菌を選択する。病原性大腸菌の志賀毒素に対して特異的なプローブを使用して、qPCRを実行する。
インビトロアッセイは、病原体種菌の増殖に使用される培地を修正することによって、バンコマイシン耐性エンテロコッカス菌種(VRE)の増殖に対して阻害性である細菌の組み合わせをスクリーニングするために使用され得る。病原体の増殖のために、強化クロストリジウム培地(RCM)、ブレインハートインフュージョン培地(BHI)、またはLB培地(LB)などのいくつかの培地の選択を使用し得る。VREに対して特異的な代替選択的培地を使用すること、またはその病原体に対して特異的なqPCRプローブを使用することによってVREを定量する。例えば、アジ化ナトリウムを含有するm-エンテロコッカス寒天は、エンテロコッカス菌種、及び少数の他の種に対して選択的である。バンコマイシン耐性を与えるvan遺伝子に対して特異的である、当該技術分野において既知のプローブをqPCRにおいて使用するか、または当該技術分野において既知の方法を使用してそのようなプローブを設計してもよい。
病原体種菌の増殖に使用される培地を修正することによって、本明細書に記載されるインビトロアッセイを、サルモネラ菌種の増殖に対して阻害性である細菌の組み合わせをスクリーニングするために使用する。病原体の増殖のために、強化クロストリジウム培地(RCM)、ブレインハートインフュージョン培地(BHI)、またはLB培地(LB)などのいくつかの培地の選択を使用する。サルモネラ菌種に対して特異的な代替選択的培地を使用すること、またはその病原体に対して特異的なqPCRプローブを使用することによって、サルモネラ菌種定量する。例えば、MacConkey寒天を使用して、サルモネラ菌種を選択し、invA遺伝子をqPCRプローブで標的化する。この遺伝子は、多くの病原性サルモネラ菌種が保有する侵入性タンパク質をコードし、真核細胞に侵入することに使用される。
細菌組成物の治療潜在性を試験するために、クロストリジウム・ディフィシル感染症の予防マウスモデルを使用した(モデルは、Chen et al.,2008.A mouse model of Clostridium difficile-associated disease.Gastroenterology 135:1984-1992に基づいた)。各5匹のマウスがいる2つのケージを、実験の各群について試験した。全てのマウスは、その飲み水に、-14~-5日目を通して10%のグルコース、カナマイシン(0.5mg/ml)、ゲンタマイシン(0.044mg/ml)、コリスチン(1062.5U/ml)、メトロニダゾール(0.269mg/ml)、シプロフロキサシン(0.156mg/ml)、アンピシリン(0.1mg/ml)、及びバンコマイシン(0.056mg/ml)からなる抗生物質混合物を受け、強制経口投与によって、-3日目に10mg/kgの用量のクリンダマイシンを受けた。-1日目に、試験物品を12,100rcfで5分間回転させ、それらの上清を取り出し、残りのペレットを無菌PBS中に再懸濁させ、細菌組成物が芽胞形状ではない場合、前還元し、強制経口投与を介して送達した。0日目に、強制経口投与を介して、それらに約4.5のlog10cfuのクロストリジウム・ディフィシル(ATCC43255)または(未処置群に)無菌PBSの投与によって負荷を与えた。任意選択で、陽性対照群は、上に特定される抗生物質プロトコル及びクロストリジウム・ディフィシル負荷に加えて、-1日目から3日目までバンコマイシンを受けた。細菌保菌の分析のために、ケージから便を採取した。死亡率、体重、及び外観(標準、円背、立毛、または嗜眠に基づいて0~2点)、ならびに臨床的徴候(標準、湿潤した尾、触ると冷たい、または他の動物からの孤立)に基づいて0~2点)のスコアを組み合わせることによる、0~4の尺度に基づいた、クロストリジウム・ディフィシルの症状の臨床的スコア化を-2~6日目まで毎日評価する。-1日目と比較した平均最小体重、死亡には4の臨床的スコアを割り当てた平均最大臨床的スコア、及び平均累積死亡率を計算した。死亡を4のスコアに割り当てて、ビヒクル対照と比較して、低減した死亡率、-1日目と比較して増加した平均最小体重、及び低減した平均最大臨床的スコアを使用して、試験物品の成功を評価する。
クロストリジウム・ディフィシルの毒素産生及び非毒素産生株を使用する、ハムスターによる以前の研究は、抗生物質治療後の再発、及びクロストリジウム・ディフィシル感染症における(Wilson et al.,1981.Infect Immun 34:626-628)、Wilson et al.,1983.J Infect Dis 147:733、Borriello et al.,1985.J Med Microbiol 19:339-350)盲腸フローラでの予防治療の効果を検査することにおける、及びより広くは胃腸感染疾患における、ハムスターモデルの有用性を実証した。したがって、クロストリジウム・ディフィシル感染症を寛解させるための、特定の操作的分類単位を含む細菌組成物の予防的使用を実証するために、以下のハムスターモデルを使用した。-5日目にクリンダマイシン(10mg/kg皮下)を動物に投与し、-3日目に試験組成物または対照物を投与し、0日目にクロストリジウム・ディフィシル負荷を発生させた。その後、1~5日目に陽性対照群にバンコマイシンを投与した(-3日目にビヒクル対照を送達した)。-5、-4、-1、1、3、5、7、9日目に便を採取し、微生物学的方法によって病原体保菌及び低減について糞便試料を評価した。当業者は、16S配列決定アプローチまたは他の方法を利用してもよかった。死亡率を、クロストリジウム・ディフィシル負荷後、21日間通して1日当たり複数回評価した。生存パーセント曲線は、インビトロ阻害アッセイにおいてクロストリジウム・ディフィシルに対して阻害性であることが示されたOTU(上の実施例を参照)で構成された細菌組成物(N1962)が、バンコマイシン対照及びビヒクル対照と比較して、ハムスターをより良好に保護したことを示した(図5)。
細菌組成物を含む2つ以上の株を独立して培養し、投与する前に混合した。両方の株を、37℃、pH7、GMM培地または他の動物産生物を含まない培地内で独立して増殖させ、1g/LのシステインHClで前還元した。各株が十分な生物量に達した後、15%のグリセロールを添加することによって、それをバンキングのために保存し、その後、1mlのクライオチューブ中、-80℃で凍結させる。
一実施例において、対象は、クロストリジウム・ディフィシルの再発発作を患っている。この疾病の最近の急性期において、対象を、疾病の症状を寛解させるのに十分な抗生物質で治療する。クロストリジウム・ディフィシル感染症の別の再発を予防するために、本明細書に記載される細菌組成物を対照に投与する。例えば、1e107~1e1012の範囲内の用量で、例えば、10mgの凍結乾燥細菌及び安定化構成成分を含有する1つ以上のゼラチンカプセル(2、3、4、5、10、15以上のカプセル)中の凍結乾燥の形態で、本細菌組成物のうちの1つを対象に投与する。カプセルを経口投与し、対象は、4、8、12、または24時間後に通常の食事を再開する。別の実施形態において、対象は、食事前、食事中、または食事直後にカプセルを経口摂取し得る。更なる一実施形態において、対象は、特定の期間、用量を毎日摂取する。
芽胞組成物によって治療された患者における、微生物集団生着、増大、及び病原体保菌の低減
・芽胞調製物中のOTUの存在に対して40%の重み付け
○1~3個の芽胞調製物の存在に対して1本の増倍管
○4~8個の芽胞調製物の存在に対して2.5本の増倍管
○9個以上の芽胞調製物の存在に対して5本の増倍管
・患者内の生着に対して40%の重み付け
○1~4人の患者内の生着に対して1本の増倍管
○5~6人の患者内の生着に対して2.5本の増倍管
○7人以上の患者内の生着に対して5本の増倍管
・キーストーンOTUに対して20%の重み付け
○1つのキーストーンOTUに対して1本の増倍管
○1つの非キーストーンOTUに対して0本の増倍管
実施例23に記載する臨床試験は、更に15人の対象を登録した。試験において治療に応答する全ての対象からのデータを組み合わせる情報について、更なる分析を実行した(30人の対象のうち29人)。治療は、ヒトの便に由来する微生物の複合製剤によってであった。これらの結果の分析を、表14~21に提供する。表22は、便宜性のために提供され、特定の生物の代替的な名称を列挙する。典型的には、OTUの存在は、当該技術分野において既知である方法を使用して、例えば、当該技術分野において既知であり、本明細書に記載される条件下でqPCRを使用して作製される。
この試験において使用される用量のセットは、少なくとも1つの患者に対して提供された用量の集まりである。したがって、ある用量は暗黙のうちに用量のセットの一員である。結果的に、用量における全てのOTUののセットは、各OTUが少なくとも1つの用量に存在するように、OTUの特有のセットとして定義される。
本明細書に記載される場合、生着するOTUは、患者において、例えば、彼らの便中、治療前に検出可能ではないが、対象に送達される組成物中に存在し、対象からの少なくとも1つの治療後試料において、対象において(例えば、対象の便中に)検出されるOTUである。全ての生着するOTUのセットは、少なくとも1つの対象において見出される、生着するOTUの特有のセットとして定義される。増大するOTUは、対象において検出される、生着しないOTUであり、治療後のある時点において、治療前の存在量よりも10倍大きい存在量を有する。全ての増大するOTUのセットは、少なくとも1つの対象において見出される、増大するOTUの特有のセットである。全ての増大及び生着するOTUのセットは、少なくとも1つの対象において増大しているかまたは生着しているかのいずれかであるOTUの特有のセットとして定義される。
全ての特有の三元の組み合わせのセットは、1)三元の各OTUが異なる、かつ2)3つのOTUが以前にともに使用されてないように、OTUの全ての組み合わせを考慮することによって、実験的に導出されたOTUのセットから作成され得る。コンピュータプログラムを使用して、そのような組み合わせを作成することができる。
表14は、全ての増大及び生着するOTUのセットから作成され、少なくとも1つの対象において、彼らが本組成物によって治療された後に、生着しているかまたは増大しているかのいずれかであることが見出されたOTUを提供する。列挙された各三元の組み合わせは、対象に提供される全ての用量であるか、または治療後のある時点で、全ての患者においてともに検出されたかのいずれかである。典型的には、有用な組成物は、三元の組成物のうちの少なくとも1つを含む。いくつかの実施形態において、三元の組成物の全ての3つのメンバーは、少なくとも、例えば、対象のうちの68%、70%、71%、75%、79%、86%、89%、93%、または100%において生着しているかまたは増大しているかのいずれかである。分析された全ての対象が治療に応答したため、表に列挙された三元は、細菌叢異常の治療のための組成物において有用である。
表15は、用量のうち少なくとも95%(最近接の整数に丸める)に存在し、少なくとも1つの対象において生着したOTUの特有の三元の組み合わせの一覧を提供する。用量の100%に存在した三元の組み合わせが、表14に列挙されることに留意されたい。三元の組み合わせを含む組成物は、細菌叢異常を治療するための組成物において有用である。
表16は、各三元の組み合わせが、治療後のある時点で対象の少なくとも75%に検出されたような、増大するOTUの全ての特有の三元の組み合わせのセットを提供する。
表17は、用量のうち少なくとも75%に存在し、この三元の組み合わせを含有する用量を受ける対象が、生着または増大するOTUとして存在するクロストリジウム菌種SM4/1を有した、全ての特有の三元の組み合わせのセットを提供する。したがって、いくつかの実施形態において、表17から選択される三元の組み合わせからなる、それから本質的になる、またはそれを含む組成物は、対象におけるクロストリジウム菌種SM4/1を増加させるために有用である。
表18は、各三元が用量のうち少なくとも75%で存在するような、かつこの三元の組み合わせを含有する用量を受ける対象が、治療後に生着しているかまたは増大しているかのいずれかであるOTUとして存在するクロストリジウム菌種SSC/2を有した用量において、全てのOTUのセットから作成された、全ての特有の三元の組み合わせのセットを提供する。したがって、いくつかの実施形態において、表18から選択される三元の組み合わせからなる、それから本質的になる、またはそれを含む組成物は、対象におけるクロストリジウム菌種SSC/2を増加させるために有用である。
表19は、各三元が用量のうち少なくとも75%で存在するような、かつこの三元の組み合わせを含有する用量が投与される対象が、治療後に生着しているかまたは増大しているかのいずれかであるOTUとして存在するクロストリジウム菌種NML04A032を有した用量において、全てのOTUのセットから作成された、全ての特有の三元の組み合わせのセットを提供する。したがって、いくつかの実施形態において、表19から選択される三元の組み合わせからなる、それから本質的になる、またはそれを含む組成物は、対象におけるクロストリジウム菌種NML04A032を増加させるために有用である。
表20は、三元が用量のうち少なくとも75%で存在するような、かつこの三元を含有する用量が投与される対象が、生着しているかまたは増大しているかのいずれかであるOTUとして存在するクロストリジウム菌種NML04A032、ルミノコッカス・ラクタリス、及びルミノコッカス・トロクエスを有した用量において、全てのOTUのセットから作成された、全ての特有の三元の組み合わせのセットを提供する。したがって、いくつかの実施形態において、表20から選択される三元の組み合わせからなる、それから本質的になる、またはそれを含む組成物は、対象におけるクロストリジウム菌種NML04A032、ルミノコッカス・ラクタリス、及びルミノコッカス・トロクエスを増加させるために有用である。
表21は、各三元が用量のうち少なくとも75%で存在するような、かつこの三元の組み合わせを含有する用量が投与される対象が、生着しているかまたは増大しているかのいずれかであるOTUとして存在するユーバクテリウム・レクタレ、フィーカリバクテリウム・プラウスニィッチー、オシリバクター菌種G2、ルミノコッカス・ラクタリス、及びルミノコッカス・トロクエスを有した用量において、全てのOTUのセットから作成された、全ての特有の三元の組み合わせのセットを示す。したがって、いくつかの実施形態において、表21から選択される三元の組み合わせからなる、それから本質的になる、またはそれを含む組成物は、対象におけるユーバクテリウム・レクタレ、フィーカリバクテリウム・プラウスニィッチー、オシリバクター菌種G2、ルミノコッカス・ラクタリス、及びルミノコッカス・トロクエスを増加させるために有用である。
本出願は、2013年11月25日に出願された共有に係る米国特許出願第PCT/US13/71758号、表題「SYNERGISTIC BACTERIAL COMPOSITIONS AND METHODS OF PRODUCTION AND USE THEREOF」に関し、その両方が、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,518号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,519号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,520号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,521号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,522号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,524号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,515号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,517号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,525号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,526号、2012年11月23日に出願された米国仮特許出願第61/729,527号、2013年11月25日に出願された米国仮特許出願第61/908,698号、2013年11月25日に出願された米国仮特許出願第61/908,702号、及び2013年11月26日に出願された米国特許出願第14/091,201号に対する優先権を主張するものであり、参照により、それらの開示全体が全ての目的で本明細書に組み込まれる。
and Methods of Production and Use Thereof」、2013年11月25日に出願された米国仮特許出願第61/908,702号、表題「Defined Bacterial Compositions and Methods of Production and Use Thereof」、及び2014年5月28日に出願された米国仮特許出願第62/004,187号、表題「Synergistic Bacterial Compositions and Methods of Production and Use Thereof」の利益を主張するものであり、参照により、それらの開示全体が全ての目的で本明細書に組み込まれる。
本出願は、2014年11月24日に作成された28155PCT_sequencelisting.txtと題されたテキストファイル(サイズ:4,196,247バイト)として電子的に提出された配列表を含む。配列表は、参照により本明細書に組み込まれる。
Claims (10)
- 単離細菌の第1の種、単離細菌の第2の種及び単離細菌の第3の種を含む、それを必要とする対象において、クロストリジウム・ディフィシル感染の再発を治療又は低減させるための、組成物であって、
前記第1の種、前記第2の種及び前記第3の種は同一ではなく、
前記第1の種が、クロストリジウム・オルビスシンデンス(Clostridium orbiscindens)であり、
(a)前記第2の種が、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)又はブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)である、(b)前記第2の種が、コプロコッカス・コメス(Coprococcus comes)であり、前記第3の種が、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)、クロストリジウム・シンビオサム(Clostridium symbiosum)、クロストリジウム・ボルテアエ(Clostridium bolteae)又はブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)である、(c)前記第2の種が、ブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)である、又は(d)前記第2の種が、コリンゼラ・アエロファシエンス(Collinsella aerofaciens)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)、ブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)、フィーカリバクテリウム・プラウスニッツィイ(Faecalibacterium prausnitzii)、クロストリジウム・シンビオサム(Clostridium symbiosum)、クロストリジウム・ボルテアエ(Clostridium bolteae)又はコプロコッカス・コメス(Coprococcus comes)である、組成物。 - 単離細菌の第1の種、単離細菌の第2の種及び単離細菌の第3の種を含む、それを必要とする対象の胃腸管の細菌叢異常の予防、治療、症状の低減、又は1つ以上の徴候を低減するための、組成物であって、
前記第1の種、前記第2の種及び前記第3の種は同一ではなく、
前記第1の種が、クロストリジウム・オルビスシンデンス(Clostridium orbiscindens)であり、
(a)前記第2の種が、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)又はブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)である、(b)前記第2の種が、コプロコッカス・コメス(Coprococcus comes)であり、前記第3の種が、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)、クロストリジウム・シンビオサム(Clostridium symbiosum)、クロストリジウム・ボルテアエ(Clostridium bolteae)又はブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)である、(c)前記第2の種が、ブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)である、又は(d)前記第2の種が、コリンゼラ・アエロファシエンス(Collinsella aerofaciens)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)、ブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)、フィーカリバクテリウム・プラウスニッツィイ(Faecalibacterium prausnitzii)、クロストリジウム・シンビオサム(Clostridium symbiosum)、クロストリジウム・ボルテアエ(Clostridium bolteae)又はコプロコッカス・コメス(Coprococcus comes)である、組成物。 - 単離細菌の第1の種、単離細菌の第2の種及び単離細菌の第3の種を含む、それを必要とする対象の胃腸管におけるクロストリジウム・ディフィシルの存在量を低下させるための、組成物であって、
前記第1の種、前記第2の種及び前記第3の種は同一ではなく、
前記第1の種が、クロストリジウム・オルビスシンデンス(Clostridium orbiscindens)であり、
(a)前記第2の種が、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)又はブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)である、(b)前記第2の種が、コプロコッカス・コメス(Coprococcus comes)であり、前記第3の種が、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)、クロストリジウム・シンビオサム(Clostridium symbiosum)、クロストリジウム・ボルテアエ(Clostridium bolteae)又はブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)である、(c)前記第2の種が、ブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)である、又は(d)前記第2の種が、コリンゼラ・アエロファシエンス(Collinsella aerofaciens)であり、前記第3の種が、ユウバクテリウム・レクターレ(Eubacterium rectale)、ラクノスピラ菌 5 1 57FAA(Lachnospiraceae bacterium 5 1 57FAA)、ブラウティア・プロダクタ(Blautia producta)、フィーカリバクテリウム・プラウスニッツィイ(Faecalibacterium prausnitzii)、クロストリジウム・シンビオサム(Clostridium symbiosum)、クロストリジウム・ボルテアエ(Clostridium bolteae)又はコプロコッカス・コメス(Coprococcus comes)である、組成物。 - (a)クロストリジウム・オルビスシンデンスが配列番号609に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;
(b)クロストリジウム・シンビオサムが配列番号652に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;
(c)ブラウティア・プロダクタが配列番号379に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;
(d)クロストリジウム・ボルテアエが配列番号559に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;
(e)コリンゼラ・アエロファシエンスが配列番号659に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;
(f)コプロコッカス・コメスが配列番号674に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;
(g)ユウバクテリウム・レクターレが配列番号856に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;
(h)フィーカリバクテリウム・プラウスニッツィイが配列番号880に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含むか;又は
(i)ラクノスピラ菌 5 1 57FAAが配列番号1054に示される16S rDNA配列と少なくとも97%同一である16S rDNA配列を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。 - (a)クロストリジウム・オルビスシンデンスが配列番号609に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;
(b)クロストリジウム・シンビオサムが配列番号652に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;
(c)ブラウティア・プロダクタが配列番号379に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;
(d)クロストリジウム・ボルテアエが配列番号559に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;
(e)コリンゼラ・アエロファシエンスが配列番号659に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;
(f)コプロコッカス・コメスが配列番号674に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;
(g)ユウバクテリウム・レクターレが配列番号856に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;
(h)フィーカリバクテリウム・プラウスニッツィイが配列番号880に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含むか;又は
(i)ラクノスピラ菌 5 1 57FAAが配列番号1054に示される16S rDNA配列と少なくとも98%同一である16S rDNA配列を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。 - (a)クロストリジウム・オルビスシンデンスが配列番号609に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;
(b)クロストリジウム・シンビオサムが配列番号652に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;
(c)ブラウティア・プロダクタが配列番号379に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;
(d)クロストリジウム・ボルテアエが配列番号559に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;
(e)コリンゼラ・アエロファシエンスが配列番号659に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;
(f)コプロコッカス・コメスが配列番号674に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;
(g)ユウバクテリウム・レクターレが配列番号856に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;
(h)フィーカリバクテリウム・プラウスニッツィイが配列番号880に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含むか;又は
(i)ラクノスピラ菌 5 1 57FAAが配列番号1054に示される16S rDNA配列と少なくとも99%同一である16S rDNA配列を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。 - (a)クロストリジウム・オルビスシンデンスが配列番号609に示される16S rDNA配列を含むか;
(b)クロストリジウム・シンビオサムが配列番号652に示される16S rDNA配列を含むか;
(c)ブラウティア・プロダクタが配列番号379に示される16S rDNA配列を含むか;
(d)クロストリジウム・ボルテアエが配列番号559に示される16S rDNA配列を含むか;
(e)コリンゼラ・アエロファシエンスが配列番号659に示される16S rDNA配列を含むか;
(f)コプロコッカス・コメスが配列番号674に示される16S rDNA配列を含むか;
(g)ユウバクテリウム・レクターレが配列番号856に示される16S rDNA配列を含むか;
(h)フィーカリバクテリウム・プラウスニッツィイが配列番号880に示される16S rDNA配列を含むか;又は
(i)ラクノスピラ菌 5 1 57FAAが配列番号1054に示される16S rDNA配列を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。 - 経口投与に適している、請求項1~7のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記第1の種、前記第2の種又は前記第3の種が芽胞の形態である、請求項1~8のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記第1の種、前記第2の種及び前記第3の種が芽胞の形態である、請求項9に記載の組成物。
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