JP7369123B2 - 肺炎球菌多糖類-タンパク質コンジュゲートを含む組成物およびその使用方法 - Google Patents
肺炎球菌多糖類-タンパク質コンジュゲートを含む組成物およびその使用方法 Download PDFInfo
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Description
a)15A、16F、23A、23B、24F、31および35B;
b)15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20;および
c)3、7F、19A、22F、33F、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20
からなる群から選択される血清型のセットを含む。
a)15A、16F、23A、23B、24F、31および35B;
b)15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A;および
c)3、7F、19A、22F、33F、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A
からなる群から選択される血清型のセットを含む。
a)15A、16F、23A、23B、24F、31および35B;
b)15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20B;および
c)3、7F、19A、22F、33F、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20B
からなる群から選択される血清型のセットを含む。
本明細書および添付の特許請求の範囲を通して使用される場合、以下の略語が適用される:
APA リン酸アルミニウムアジュバント
APC 抗原提示細胞
CI 信頼区間
DMSO ジメチルスルホキシド
DS 多糖類-タンパク質製剤原料
GMC 幾何平均濃度
GMT 幾何平均抗体価
HPSEC 高速サイズ排除クロマトグラフィー
IM 筋肉内のまたは筋肉内に
LOS リポオリゴ糖
LPS リポ多糖
MALS 多角度光散乱
MBC 一価バルクコンジュゲート
MOPA 多重オプソニン食細胞アッセイ
MW 分子量
NMWCO 公称分子量カットオフ
NZWR ニュージーランドホワイト種ウサギ
OPA オプソニン食作用アッセイ
PCV 肺炎球菌コンジュゲートワクチン
PD1 投与1後
PD2 投与2後
PnPs 肺炎球菌多糖類
Ps 多糖類
PS-20 ポリソルベート-20
RI 屈折率
UV 紫外線
w/v 体積当たり重量。
本発明は、複数の肺炎球菌(S.pneumoniae)多糖類タンパク質コンジュゲートを含む多価免疫原性組成物であって、ここで、コンジュゲートの各々は担体タンパク質にコンジュゲートされた肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型の多糖類を含む組成物を提供する。本発明の多価免疫原性組成物の異なる態様および実施形態を以下に記載する。
(1)15A、
(2)16F、
(3)(a)23Aおよび23B、(b)23Aおよび23F、(c)23Bおよび23F、(d)23A、(e)23B、および(f)23Fから選択される1以上の血清群23の血清型、
(4)24F、
(5)31、および
(6)35B
を含む、からなる、またはから本質的になる組成物を提供する。
(1)8、
(2)9N、
(3)11A
(4)12F、
(5)15Bまたは15C、
(6)17F、および
(7)20Aおよび/または20B
をさらに含む組成物を提供する。
(1)15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(2)15A、16F、23F、23B、24F、31および35B、
(3)15A、16F、23A、23F、24F、31および35B、
(4)15A、16F、23A、24F、31および35B、
(5)15A、16F、23B、24F、31および35B、
(6)15A、16F、23F、24F、31および35B、
(7)6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(8)6C、15A、16F、23F、23B、24F、31および35B、
(9)6C、15A、16F、23A、23F、24F、31および35B、
(10)6C、15A、16F、23A、24F、31および35B、
(11)6C、15A、16F、23B、24F、31および35B、
(12)6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(13)6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(14)6A、15A、16F、23F、23B、24F、31および35B、
(15)6A、15A、16F、23A、23F、24F、31および35B、
(16)6A、15A、16F、23A、24F、31および35B、
(17)6A、15A、16F、23B、24F、31および35B、
(18)6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(19)6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(20)6A、6B、15A、16F、23F、23B、24F、31および35B、
(21)6A、6B、15A、16F、23A、23F、24F、31および35B、
(22)6A、6B、15A、16F、23A、24F、31、および35B、
(23)6A、6B、15A、16F、23B、24F、31、および35B、および
(24)6A、6B、15A、16F、23F、24F、31、および35B
からなる群から選択される肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型のセットを含む、からなる、またはから本質的になる組成物を提供する。
(1)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(2)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(3)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(4)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(5)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(6)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(7)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(8)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(9)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(10)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(11)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(12)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(13)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(14)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(15)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(16)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(17)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(18)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(19)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(20)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(21)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(22)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(23)8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(24)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(25)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(26)8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(27)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(28)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(29)8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(30)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(31)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、および
(32)8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B
からなる群から選択される肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型のセットを含む、からなる、またはから本質的になる組成物を提供する。
(1)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(2)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(3)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(4)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(5)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(6)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(7)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(8)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(9)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(10)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(11)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(12)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(13)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(14)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(15)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(16)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
(17)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(18)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(19)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(20)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6C、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(21)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(22)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(23)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(24)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(25)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(26)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15C、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(27)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(28)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(29)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、10A、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(30)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(31)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、6B、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(32)3、7F、19A、22F、33F、8、9N、39、11A、12F、15B、17F、20A、6A、15A、16F、23F、24F、31および35B、
(33)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20B、
(34)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A、
(35)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20B、
(36)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20B、
(37)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A、
(38)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20B、
(39)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20
(40)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20
(41)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20
(42)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20
(43)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20、および
(44)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24B、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20
からなる群から選択される肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型のセットを含む、からなる、またはから本質的になる組成物を提供する。
i.6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、
ii.6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A、および
iii.3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A
からなる群から選択される血清型のセットを含む組成物を提供する。
一実施形態では、本発明は、肺炎球菌(S.pneumoniae)多糖類タンパク質コンジュゲートを含む多価免疫原性組成物であって、ここで、コンジュゲートの各々は、担体タンパク質にコンジュゲートされた血清型6Cを含む肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型の多糖類を含み、ここで、肺炎球菌(S.pneumoniae)の血清型6Cは、肺炎球菌(S.pneumoniae)の血清型6Aおよび6Bに対する交差防御を提供する組成物を提供する。
本発明の特定の実施形態では、CRM197が担体タンパク質として使用される。CRM197は、以下のアミノ酸配列:
GADDVVDSSK SFVMENFSSY HGTKPGYVDS IQKGIQKPKS GTQGNYDDDW KEFYSTDNKY DAAGYSVDNE NPLSGKAGGV VKVTYPGLTK VLALKVDNAE TIKKELGLSL TEPLMEQVGT EEFIKRFGDG ASRVVLSLPF AEGSSSVEYI NNWEQAKALS VELEINFETR GKRGQDAMYE YMAQACAGNR VRRSVGSSLS CINLDWDVIR DKTKTKIESL KEHGPIKNKM SESPNKTVSE EKAKQYLEEF HQTALEHPEL SELKTVTGTN PVFAGANYAA WAVNVAQVID SETADNLEKT TAALSILPGI GSVMGIADGA VHHNTEEIVA QSIALSSLMV AQAIPLVGEL VDIGFAAYNF VESIINLFQV VHNSYNRPAY SPGHKTQPFL HDGYAVSWNT VEDSIIRTGF QGESGHDIKI TAENTPLPIA GVLLPTIPGK LDVNKSKTHI SVNGRKIRMR CRAIDGDVTF CRPKSPVYVG NGVHANLHVA FHRSSSEKIH SNEISSDSIG VLGYQKTVDH TKVNSKLSLF FEIKS(配列番号1)
を有するジフテリア毒素の非毒性変異体(すなわち、トキソイド)である。
(1)アルミニウム塩(ミョウバン)、例えば水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウム等;
(2)水中油型エマルジョン配合物(他の特定の免疫賦活剤、例えばムラミルペプチド(以下に定義される)または細菌細胞壁成分を含むまたは含まない)、例えば(a)Model 110Yマイクロフリューダイザ(Microfluidics、Newton、MA)などのマイクロフリューダイザを使用してサブミクロン粒子に製剤化される、5%スクアレン、0.5%Tween 80、および0.5%Span 85(種々の量のMTP-PEを含んでもよい)を含むMF59(国際特許出願公開番号、国際公開第90/14837号)、(b)サブミクロンエマルジョンに微小流動化されるまたはボルテックスされてより大きな粒径のエマルジョンを生成する、10%スクアレン、0.4%Tween 80、5%プルロニックブロックポリマーL121およびthr-MDPを含むSAF、(c)2%スクアレン、0.2%Tween 80、ならびに米国特許第4,912,094号明細書に記載される3-O-脱アシル化モノリン脂質A(MPL(商標))、トレハロースジミコレート(TDM)および細胞壁骨格(CWS)、好ましくはMPL+CWS(Detox(商標)からなる群の1以上の細菌細胞壁成分を含むRibi(商標)アジュバントシステム(RAS)(Corixa、Hamilton、MT);および(d)Montanide ISA;
(3)サポニンアジュバント、例えばQuil AまたはSTIMULON(商標)QS-21(Antigenics、Framingham、MA)(米国特許第5,057,540号明細書参照)を使用してもよく、またはそこから作製された粒子、例えばISCOM(コレステロール、サポニン、リン脂質および両親媒性タンパク質の組み合わせによって形成される免疫賦活複合体)およびIscomatrix(登録商標)(ISCOMと本質的に同じ構造を有するが、タンパク質を含まない);
(4)細菌のリポ多糖、合成脂質A類似体、例えばCorixaから入手可能であり、米国特許第6,113,918号明細書に記載されているアミノアルキルグルコサミンホスフェート化合物(AGP)またはその誘導体もしくは類似体;1つのこのようなAGPは、水性形態または安定なエマルジョンとして配合される、529(以前はRC529として知られていた)としても知られている2-[(R)-3-テトラデカノイルオキシテトラデカノイルアミノ]エチル2-デオキシ-4-O-ホスホノ-3-O-[(R)-3-テトラデカノイルオキシテトラデカノイル]-2-[(R)-3-テトラデカノイルオキシテトラデカノイルアミノ]-b-D-グルコピラノシド、
(5)合成ポリヌクレオチド、例えば(1以上の)CpGモチーフを含むオリゴヌクレオチド(米国特許第6,207,646号明細書);および
(6)サイトカイン、例えばインターロイキン(例えば、IL-1、IL-2、IL-4、IL-5、IL-6、IL-7、IL-12、IL-15、IL-18等)、インターフェロン(例えば、γインターフェロン)、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)、腫瘍壊死因子(TNF)、共刺激分子B7-1およびB7-2等;および
(7)補体、例えば補体成分C3dの三量体。
本発明の組成物は、単回投与バイアル、複数回投与バイアル、またはプレフィルドガラスもしくはプラスチックシリンジとして製剤化され得る。
肺炎球菌(Streptococcus pneumoniae)の莢膜多糖類は、当業者に知られている標準的な技術によって調製することができる。例えば、多糖類は細菌から単離することができ、既知の方法によって(例えば、欧州特許第497524号明細書および欧州特許第497525号明細書参照)、好ましくはホモジナイザーを使用して達成される微小流動化(microfluidisation)または化学的加水分解によってある程度の大きさにすることができる。一実施形態では、各肺炎球菌多糖類血清型は、大豆系培地で増殖される。次いで、遠心分離、沈殿および限外濾過を含む標準的なステップを通して、個々の多糖類が精製される。例えば、米国特許出願公開第2008/0286838号明細書および米国特許第5,847,112号明細書を参照されたい。多糖類試料の粘度を低下させるため、および/または機械的もしくは化学的サイジングのような技術を使用してコンジュゲートされた生成物の濾過性を改善するために、多糖類をサイジングすることができる。化学的加水分解は、酢酸を使用して実施され得る。機械的サイジングは、高圧均質化剪断を使用して実施され得る。
本発明の実施形態はまた、(a)治療(例えば、ヒトの体の);(b)医薬;(c)肺炎球菌(Streptococcus pneumoniae)による感染の阻害;(d)肺炎球菌(S.pneumoniae)に対する免疫応答または防御免疫応答の誘導;(e)肺炎球菌(S.pneumoniae)による感染の予防;(f)肺炎球菌(S.pneumoniae)感染の再発の予防;(g)脳損傷、難聴および発作などの関連する合併症の予防を含む肺炎球菌(S.pneumoniae)感染に関連する病理学的症状の進行、発症または重症度の減少;(h)肺炎球菌(S.pneumoniae)感染の可能性の減少;または(i)限定されるものではないが、肺炎球菌性肺炎、肺炎球菌性菌血症、肺炎球菌性髄膜炎、中耳炎および副鼻腔炎を含む、(1以上の)肺炎球菌疾患の発症、重症度または進行の処置、予防または遅延の;(i)使用するため、(ii)医薬または組成物として使用するため、または(iii)医薬品の調製に使用するため、の本明細書に記載される多価免疫原性組成物の1以上も含む。これらの使用では、本発明の多価肺炎球菌多糖類-コンジュゲート組成物は、1以上のアジュバントと組み合わせて、またはアジュバントなしで使用してもよい。
I-a)3、7F、19A、22F、33F、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
I-b)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
I-c)3、7F、19A、22F、33F、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A;および
I-d)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A
からなる群から選択される血清型のセットを含む。
II-a)15A、16F、23A、23B、24F、31および35B;
II-b)6A、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B;
II-c)6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B;
II-d)6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B;
II-e)15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
II-f)6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17F、および20A;
II-g)6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A;および
II-h)6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20A
からなる群から選択される血清型のセットを含む。
III-a)3、7F、19A、22F、33F、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
III-b)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
III-c)3、7F、19A、22F、33F、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
III-d)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
III-e)15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
III-f)6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A;
III-g)6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A;および
III-h)6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、39、11A、12F、15C、17Fおよび20A
からなる群から選択される血清型のセットを含む。
IV-a)3、7F、19A、22F、33F、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A;
IV-b)3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A;
IV-c)3、7F、19A、22F、33F、6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A;
IV-d)3、7F、19A、22F、33F、6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A;
IV-e)15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A;
IV-f)6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A;
IV-g)6A、6B、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A;および
IV-h)6C、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20A
からなる群から選択される血清型のセットを含む。
a)4、6B、9V、14、18C、19Fおよび23F;
b)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、6A、7Fおよび19A;
c)1、4、5、6B、7F、9V、14、18C、19Fおよび23F;
d)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、6A、7F、19A、22Fおよび33F;
e)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、7F、19A、22F、33F、2、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20;および
f)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、6A、7F、19A、22F、33F、8、10A、11A、12Fおよび15B
からなる群から選択される肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型によって引き起こされる肺炎球菌疾患を予防するために必要とされる多価肺炎球菌ワクチンで処置された。
a)4、6B、9V、14、18C、19Fおよび23F;
b)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、6A、7Fおよび19A;
c)1、4、5、6B、7F、9V、14、18C、19Fおよび23F;
d)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、6A、7F、19A、22Fおよび33F;
e)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、7F、19A、22F、33F、2、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20;および
f)4、6B、9V、14、18C、19F、23F、1、3、5、6A、7F、19A、22F、33F、8、10A、11A、12Fおよび15B
からなる群から選択される肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型によって引き起こされる肺炎球菌疾患を予防するために必要とされる本発明の多価免疫原性組成物および多価肺炎球菌ワクチンで処置される。
(1)多価免疫原性組成物を患者に投与し、該組成物は複数の肺炎球菌(S.pneumoniae)多糖類タンパク質コンジュゲートを含み、ここで、多糖類タンパク質コンジュゲートの各々は、担体タンパク質にコンジュゲートされた肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型の莢膜多糖類を含むステップと、
(2)所定の量の時間が経過するのを待つステップと、
(3)多価肺炎球菌ワクチンを患者に投与するステップと
を含む方法も提供される。
(1)多価肺炎球菌ワクチンを患者に投与するステップと、
(2)所定の量の時間が経過するのを待つステップと、
(3)多価免疫原性組成物を患者に投与し、組成物は複数の肺炎球菌(S.pneumoniae)多糖類タンパク質コンジュゲートを含み、多糖類タンパク質コンジュゲートの各々は担体タンパク質にコンジュゲートされた肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型の莢膜多糖類を含むステップと、
を含む方法も本発明によって提供される。
肺炎球菌(S.Pneumoniae)莢膜多糖類の調製
肺炎球菌を培養する方法は、当技術分野で周知である。例えば、Chase,1967,Methods of Immunology and Immunochemistry 1:52を参照されたい。肺炎球菌莢膜多糖類を調製する方法も当該分野で周知である。例えば、欧州特許第0 497 524号明細書を参照されたい。以下に記載される方法は、一般に、欧州特許第0 497 524号明細書に記載される方法に従い、一般に、全ての肺炎球菌血清型に適用可能である。
肺炎球菌多糖類の精製
肺炎球菌多糖類の精製方法は、いくつかの遠心分離、デプス濾過、濃縮/ダイアフィルトレーション操作および沈殿ステップからなっていた。特に指定のない限り、全ての手順を室温で実施した。
NMR試験による一定の肺炎球菌血清型の構造同一性分析
0.01%ジメチルスルホキシド(DMSO)および0.01%2,2-ジメチル-2-シラペンタン-5-スルホネート-d6ナトリウム塩(DSS-d6)を含む重水(D2O)に、5mg粉末/mL溶液で多糖類粉末を溶解することによって、NMR分析用の試料を調製した。DMSOは定量分析に使用した内部標準であり、DSS-d6は化学シフトスケールを0ppmに設定するために使用した。一次元プロトンNMRデータセットを50℃で取得し、次いで、アノマー共鳴を含むスペクトルの一部を、Microsoft Excelワークブックを使用して分析するために、ASCIIファイルにx、y座標として選択的に書き込んだ。次いで、Y座標(すなわち、スペクトルプロファイル)を、参照データベース内の莢膜細菌多糖類のスペクトルプロファイルと比較した。参照プロファイルは、その後、参照ロットとして指定される各血清型の選択された調製物について同様に作成した。試料スペクトルと参照スペクトルからのy値を対比較して、スペクトル間の類似性の尺度として相関係数(ρxy)を作成した。参照スペクトルのいずれかで0.95以上のρ値を、多糖類構造の正の同定と見なした。
ニュージーランドホワイト種ウサギでPCV21を使用して免疫原性試験を行った(下記の実施例43参照)。これらの試験では、血清型15Cの代わりに脱O-アセチル化多糖類血清型15Bを多価組成物に使用した。NMR試験を行って、脱O-アセチル化15B多糖類が血清型15C多糖類と同等であることを確認した。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型3コンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM 197を個別に凍結乾燥し、ジメチルスルホキシド(DMSO)に再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、380bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1.6時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用したコンジュゲート多価試験用の血清型6Cの調製
多糖類を溶解し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。濾過し溶解した多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で3時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型6Cコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。濾過し溶解した多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で3時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
多糖類を溶解し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過に制御した。サイズが減少した多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で3時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型7Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、150bar/7通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で3時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型8コンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、600bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型9Nコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、250bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型10Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過、引き続いて600bar/5通過に制御して、標的分子質量を達成した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型10Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、600bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型11Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を、酢酸を200mMに添加して酸加水分解によってサイズを減少させ、92℃で75分間インキュベートし、次いで、冷リン酸カリウムpH7緩衝液を400mMに添加して中和した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型12Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を、酢酸を200mMに添加して酸加水分解によってサイズを減少させ、90℃で45分間インキュベートし、次いで、冷リン酸カリウムpH7緩衝液を400mMに添加して中和した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で3時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型15Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
水性コンジュゲーションを使用した15A/B/C交差防御試験用の血清型15Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、サイズを減少させ、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。次いで、精製したCRM197を、水性反応混合物中の塩化ニッケルを利用して活性化多糖類にコンジュゲートさせ、得られたコンジュゲートを最終0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜多糖類粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過に制御して、標的分子質量を達成した。次いで、サイズが減少した多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
酸化多糖類溶液を水および1.5Mリン酸カリウムpH6.0と混合した。選択した緩衝液pHは、コンジュゲーション反応中の活性化多糖類の安定性を向上させるためのものであった。以前記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通して得られた精製CRM197を、0.2ミクロン濾過し、多糖類とCRM197の質量比0.6で、緩衝多糖類溶液と合わせた。質量比は、得られるコンジュゲートの多糖類とCRM197の比を制御するように選択した。多糖類濃度およびリン酸塩濃度は、それぞれ9.75g/Lおよび100mMであった。多糖類濃度は、得られるコンジュゲートのサイズを制御するように選択した。100mM塩化ニッケル溶液を使用して、塩化ニッケルをおよそ2mMまで添加した。シアノ水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)を添加した。多糖類およびタンパク質の消費を最大化するために10℃で148時間コンジュゲーションを進めた。
コンジュゲーション反応後、バッチをおよそ3.0g/Lの多糖類濃度に希釈し、2~8℃に冷却し、1.2ミクロン濾過した。バッチを、100kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、2~8℃で、100mMリン酸カリウム、pH7.0に対してダイアフィルトレーションした。次いで、保持液に回収されたバッチをおよそ2.0g多糖類/Lに希釈し、1.2M重炭酸ナトリウム、pH9.4を添加してpHを調整した。水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり1モル)を添加した。1.5Mリン酸カリウム、pH6.0を後で添加した。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mM L-ヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。ポリソルベート20を保持液バッチに0.05%(w/v)の濃度まで添加し、次いで、バッチを0.2ミクロン濾過した(0.5ミクロンプレフィルタを使用)。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型15Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した15A/B/C交差防御試験用の血清型15Bコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、300bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験および15A/B/C交差防御試験用の血清型15Cコンジュゲートの調製
肺炎球菌(Streptococcus pneumoniae)血清型15Bに由来する多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、温和な塩基加水分解に供してO-アセチル基を放出し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された血清型15B肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、300bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型15Cコンジュゲートの調製
肺炎球菌(Streptococcus pneumoniae)血清型15Bに由来する多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、温和な塩基加水分解に供してO-アセチル基を放出し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された血清型15B肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、300bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
水性コンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型16Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、サイズを減少させ、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。次いで、精製したCRM197を、水性反応混合物中の塩化ニッケルを利用して活性化多糖類にコンジュゲートさせ、得られたコンジュゲートを最終0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜多糖類粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過、引き続いて500bar/5通過に制御して、標的分子質量を達成した。次いで、サイズが減少した多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
酸化多糖類溶液を水および1.5Mリン酸カリウムpH7.0と混合した。選択した緩衝液pHは、コンジュゲーション反応中の活性化多糖類の安定性を向上させるためのものであった。以前記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通して得られた精製CRM197を、0.2ミクロン濾過し、多糖類とCRM197の質量比0.7で、緩衝多糖類溶液と合わせた。質量比は、得られるコンジュゲートの多糖類とCRM197の比を制御するように選択した。多糖類濃度およびリン酸塩濃度は、それぞれ7.5g/Lおよび100mMであった。多糖類濃度は、得られるコンジュゲートのサイズを制御するように選択した。次いで、溶液を0.2ミクロン濾過した。100mM塩化ニッケル溶液を使用して、塩化ニッケルをおよそ2mMまで添加した。シアノ水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)を添加した。多糖類およびタンパク質の消費を最大化するために22℃で122時間コンジュゲーションを進めた。
コンジュゲーション反応後、バッチをおよそ3.0g/Lの多糖類濃度に希釈し、2~8℃に冷却し、1.2ミクロン濾過した。バッチを、100kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、2~8℃で、100mMリン酸カリウム、pH7.0に対してダイアフィルトレーションした。次いで、保持液に回収されたバッチをおよそ2.0g多糖類/Lに希釈し、1.2M重炭酸ナトリウム、pH9.4を添加してpHを調整した。水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり1モル)を添加した。1.5Mリン酸カリウム、pH6.0を後で添加した。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mM L-ヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。ポリソルベート20を保持液バッチに0.05%(w/v)の濃度まで添加し、次いで、バッチを0.2ミクロン濾過した(0.5ミクロンプレフィルタを使用)。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型16Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、1000bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型17Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型17Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型19Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で3時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型20Aコンジュゲートの調製
以前に血清型20Aであると決定された多糖類(Calix et al.,Biochemical,Genetic,and Serological Characterization of Two Capsule Subtypes among Streptococcus pneumoniae Serotype 20 Strains,J.Biol.Chem.287(33):27885-27894,(2012))を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、200bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型20Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、220bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型22Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、400bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型23Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を、酢酸を200mMに添加して酸加水分解によってサイズを減少させ、90℃で1.5時間インキュベートし、次いで、冷リン酸カリウムpH7緩衝液を400mMに添加して中和した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で3時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型23Aコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を、酢酸を200mMに添加して酸加水分解によってサイズを減少させ、90℃で1.5時間インキュベートし、次いで、冷リン酸カリウムpH7緩衝液を400mMに添加して中和した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型23Bコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、400bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型23Bコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、400bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価および多価試験用の血清型24Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を、酢酸を200mMに添加して酸加水分解によってサイズを減少させ、92℃で50分間インキュベートし、次いで、冷リン酸カリウムpH7緩衝液を400mMに添加して中和した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型31コンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を、酢酸を200mMに添加して酸加水分解によってサイズを減少させ、90℃で30分間インキュベートし、次いで、冷リン酸カリウムpH7緩衝液を400mMに添加して中和した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型31コンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、400bar/5通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型33Fコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、標的分子質量にサイジングし、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を均質化して、Psの分子質量を減少させた。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する回数を、350bar/4通過に制御した。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した一価試験用の血清型35Bコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、22℃で1.5時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
DMSOコンジュゲーションを使用した多価試験用の血清型35Bコンジュゲートの調製
多糖類を溶解し、化学的に活性化し、限外濾過によって緩衝液交換した。活性化された多糖類および精製されたCRM197を個別に凍結乾燥し、DMSOに再溶解した。次いで、再溶解した多糖類溶液およびCRM197溶液を合わせ、下記のようにコンジュゲートさせた。得られたコンジュゲートを、最後の0.2ミクロン濾過の前に限外濾過によって精製した。pH、温度、濃度および時間のような各ステップ内のいくつかのプロセスパラメータを制御して、所望の属性を有するコンジュゲートを得た。
精製された肺炎球菌莢膜Ps粉末を水に溶解し、0.45ミクロン濾過した。溶解した多糖類を濃縮し、10kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して水に対してダイアフィルトレーションした。
以前に記載されたように(国際公開第2012/173876号)、蛍光菌(Pseudomonas fluorescens)での発現を通じて得られた精製CRM197を、5kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して2mMリン酸塩、pH7.2緩衝液に対してダイアフィルトレーションし、0.2ミクロン濾過した。
水素化ホウ素ナトリウム(多糖類反復単位1モル当たり2モル)をコンジュゲーション反応後に添加し、34℃で1時間インキュベートした。バッチをおよそ4℃で、およそ0.025%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウムに希釈した。次いで、リン酸カリウム緩衝液を添加してpHを中和した。バッチを濃縮し、30kD NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、150mM塩化ナトリウム、25mMリン酸カリウムpH7に対しておよそ4℃でダイアフィルトレーションした。
次いで、バッチを濃縮し、300kDa NMWCOタンジェント流限外濾過膜を使用して、4℃で、0.015%(w/v)ポリソルベート20を含む150mM塩化ナトリウム、pH7.0中10mMヒスチジンに対してダイアフィルトレーションした。
肺炎球菌コンジュゲートワクチンの製剤化
上記の実施例に記載される異なる化学を利用して調製された個々の肺炎球菌多糖類-タンパク質コンジュゲートを、それぞれPCV1、PCV7、PCV8、PCV14、PCV15、PCV16、PCV21およびPCV31と呼ばれる1価、7価、8価、14価、15価、16価、21価および31価肺炎球菌コンジュゲートワクチンの製剤化に使用した。
肺炎球菌コンジュゲートワクチンの安定性評価
PCV16(128μg/mL PnP)または2つのPCV21肺炎球菌コンジュゲートワクチン製剤(84μg/mLまたは168μg/mL PnP)をシリンジまたはバイアルに充填した。多糖類タンパク質コンジュゲートを、非プロトン性溶媒(例えば、DMSO)中での還元的アミノ化によって作製し、20mM L-ヒスチジン、pH5.8、150mM NaClおよび0.2%(w/v)PS-20に製剤化した。これらの製剤を、25℃または37℃で最大4週間および4℃で最大12週間置いた。場合によっては、シリンジを水平回転プラットフォームに置き、4℃、25℃または37℃で1週間貯蔵した後、最大18時間振盪した。製剤製造および流通に伴う可能性のある輸送および取り扱いのストレスをシミュレートするためにこれを行った。PCV16またはPCV21製剤の安定性を評価するために、HPSEC UV/MALS/RIを使用した。2つのShodexカラム(803および806)を使用した高速サイズ排除クロマトグラフィー(HPSEC)を紫外線(UV)多角度光散乱(MALS)および屈折率(RI)検出と直列に組み合わせて、貯蔵中のPCV製剤の濃度およびモル質量を測定した。濃度を、ピーク全体にわたって各時間間隔で計算し、次いで、全ての間隔で積分して最終的な濃度値を達成する。光散乱は、分析物の分子質量と濃度の積に比例する。各間隔での分子質量または分子量を、検出器シグナルから計算する。加重平均(Mw)または数平均(Mn)分子質量を、ピークの全ての間隔にわたって計算し、平均分子量として報告する。
肺炎球菌コンジュゲートワクチンの安定性に対するコンジュゲーション化学の影響
上記の実施例に記載されるように異なる化学を利用して調製された個々の肺炎球菌多糖類-タンパク質複合体を、64μg/mLのPCV15およびPCV16と呼ばれる15価および16価肺炎球菌コンジュゲートワクチンの製剤化に使用した。PCV15ワクチン製剤は、プロトン性溶媒(全て水性)中での還元的アミノ化を使用してコンジュゲートされ、20mM L-ヒスチジンpH5.8、150mM NaClおよび0.2%w/v PS-20に製剤化された血清型1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、14、18C、19A、19F、22F、23Fおよび33Fを含んでいた(実施例38参照)。PCV16製剤は、非プロトン性溶媒(例えば、全てDMSO)中での還元的アミノ化を使用してコンジュゲートされ、20mM L-ヒスチジンpH5.8、150mM NaClおよび0.2%(w/v)PS-20に製剤化された血清型6C、8、9N、10A、11A、12F、15A、15C、16F、17F、20A、23A、23B、24F、31および35Bを含んでいた(実施例38参照)。各多糖類-タンパク質コンジュゲートを、各ワクチン中64μg/mL PnPsの最終濃度で、8μg/mLで製剤化したPCV15の6Bを除いて、4μg/mL(w/v)肺炎球菌多糖類(PnPs)で製剤化した。
選択された血清型に関する収集された一価ウサギ免疫原性試験
成体ニュージーランドホワイト種ウサギ(NZWR、n=3/群)を、0日目と14日目(交互の側)に、0.25mlまたは0.5mL(15Cのみ)のそれぞれの一価コンジュゲートワクチンで筋肉内(IM)免疫した。20mM L-ヒスチジン、pH5.8、150mM NaClおよび0.2%(w/v)PS-20ならびに実施例38に記載される製剤化方法で製剤化された一価肺炎球菌ワクチンを、以下のように投与した:(1)1免疫当たり62.5μgのリン酸アルミニウムアジュバント(APA)を含む、1μg PnPs(6C、10A、15A、16F、17F、20A、23A、23B、24F、31または35B、各々がCRM197にコンジュゲート)、または(2)2μg PnPs(15C-CRM197、1免疫あたり125μgのAPAを含む)。血清を、試験開始前(免疫前)および14日目(投与1後、PD1)および28日目(投与2後、PD2)に回収した。病気または苦痛の徴候について、訓練を受けた動物管理スタッフが少なくとも毎日、NZWRを観察した。NZWRにおけるワクチン製剤は、ワクチン関連の有害事象が認められなかったため、安全で忍容性が高いと見なされた。全ての動物実験は、国立衛生研究所の実験動物の管理と使用に関するガイドの推奨事項に厳密に従って実施した。NZWR実験プロトコルは、Merck&Co.,Inc.(ケニルワース、NJ)とCovance(デンバー、PA)の両方の施設内動物管理および使用委員会によって承認された。
血清型15A、15B、15Cの交差防御の評価
ウサギを15A-CRM197/APA、15B-CRM197/APAまたは15C-CRM197/APAで免疫して、各血清型間の交差反応性を評価した。
ニュージーランドホワイト種ウサギにおけるPCV21の免疫原性
成体ニュージーランドホワイト種ウサギ(NZWR、n=5/群)を、0日目と14日目(交互の側)に、0.1~0.5mLの肺炎球菌コンジュゲートワクチンで筋肉内(IM)免疫した。20mM L-ヒスチジン、pH5.8、150mM NaClおよび0.2%(w/v)PS-20ならびに実施例38に記載される製剤化方法で製剤化されたPCV21肺炎球菌ワクチンを、1免疫当たり4、2、1、0.4、0.08または0.016μg PnPs(各々CRM197にコンジュゲートされた3、6C、7F、8、9N、10A、11A、12F、15A、15C、16F、17F、19A、20A、22F、23A、23B、24F、31、33Fまたは35B)で投与した。血清を、試験開始前(免疫前)および14日目(投与1後、PD1)および28日目(投与2後、PD2)に回収した。病気または苦痛の徴候について、訓練を受けた動物管理スタッフが少なくとも毎日、NZWRを観察した。NZWRにおけるワクチン製剤は、ワクチン関連の有害事象が認められなかったため、安全で忍容性が高いと見なされた。全ての動物実験は、国立衛生研究所の実験動物の管理と使用に関するガイドの推奨事項に厳密に従って実施した。NZWR実験プロトコルは、Merck&Co.,IncとCovance(デンバー、PA)の両方の施設内動物管理および使用委員会によって承認された。
材料および方法
遊離多糖類試験
コンジュゲート試料中の遊離多糖類(CRM197とコンジュゲートしていない多糖類)を、最初に遊離タンパク質およびコンジュゲートをデオキシコール酸(DOC)および塩酸で沈殿させることによって測定する。次いで、沈殿を濾別し、濾液をHPSEC/UV/MALS/RIによって遊離多糖類濃度について分析する。遊離多糖類を、HPSEC/UV/MALS/RIによって測定される総多糖類の割合として計算する。
コンジュゲート試料中の遊離多糖類、多糖類-CRM197コンジュゲートおよび遊離CRM197を、ミセル動電クロマトグラフィー(micellar electrokinetic chromatography)(MEKC)モードのキャピラリー電気泳動によって分離する。手短に言えば、試料を、25mMホウ酸塩、100mM SDSを含むMEKC泳動緩衝液、pH9.3と混合し、事前調整された裸の溶融シリカキャピラリーで分離する。分離を200nmで監視し、遊離CRM197をCRM197標準曲線で定量化する。遊離タンパク質の結果を、HPSEC/UV/MALS/RI手順によって決定される総タンパク質含有量の割合として報告する。
コンジュゲート試料を注入し、高速サイズ排除クロマトグラフィー(HPSEC)によって分離した。直列の紫外線(UV)、多角度光散乱(MALS)および屈折率(RI)検出器で検出を達成した。タンパク質濃度を、吸光係数を使用してUV280から計算した。mL/gで報告される溶質濃度の変化を伴う溶液の屈折率の変化であるdn/dc係数を使用して、多糖類濃度をRIシグナル(タンパク質と多糖類の両方が寄与する)からデコンボリューションした。試料の平均分子量を、試料ピーク全体にわたる測定された濃度および光散乱情報を使用して、Astraソフトウェア(Wyatt Technology Corporation、サンタバーバラ、CA)によって計算した。多分散分子の分子量の平均値には複数の形式がある。例えば、数平均分子量Mn、重量平均分子量Mwおよびz平均分子量Mzがある(Molecules,2015,20,10313-10341)。特に明記しない限り、分子量は重量平均分子量である。
Waters AccQ-Tagアミノ酸分析(AAA)を使用して、コンジュゲート試料中のコンジュゲーションの程度を測定した。Eldexワークステーションで気相酸加水分解を使用して試料を加水分解して、担体タンパク質を構成アミノ酸に分解した。遊離アミノ酸を、6-アミノキノリル-N-ヒドロキシスクシンイミジルカルバメート(AQC)を使用して誘導体化した。次いで、誘導体化された試料を、C18カラムでUV検出を備えたUPLCを使用して分析した。リジン以外の代表的なアミノ酸を使用して平均タンパク質濃度を得た。コンジュゲーション中のリジン消費(すなわち、リジン損失)を、コンジュゲート中のリジンの測定された平均量と、開始タンパク質中のリジンの予想量との間の差によって決定した。
肺炎球菌コンジュゲートワクチンの安定性に対するコンジュゲーション方法の影響
上記の実施例に記載される異なる還元的アミノ化溶媒(水性またはDMSO)を利用して調製された個々の肺炎球菌多糖類-タンパク質コンジュゲートを、84μg/mLで、PCV1、PCV7、PCV14およびPCV21と呼ばれる1価、7価、14価および21価肺炎球菌コンジュゲートワクチン製剤の製剤化に使用した。
マウスでの曝露からのPCV21防御
若い雌のSwiss Websterマウス(6~8週齢、n=10/群)を、0日目、14日目および28日目に0.1~0.5mLの21価肺炎球菌コンジュゲートワクチン(PCV21)で腹腔内(IP)免疫した。PCV21肺炎球菌ワクチンを、1免疫当たり4、2、0.4、0.08または0.016μgのPnPs(各々がCRM197にコンジュゲートされた3、6C、7F、8、9N、10A、11A、12F、15A、15C、16F、17F、19A、20A、22F、23A、23B、24F、31、33Fおよび35B)で投与した。病気または苦痛の徴候について、訓練を受けた動物管理スタッフが少なくとも毎日、マウスを観察した。マウスにおけるワクチン製剤は、ワクチン関連の有害事象が認められなかったため、安全で忍容性が高いと見なされた。52日目に、マウスに肺炎球菌(Streptococcus pneumoniae)血清型24Fを気管内曝露した。肺炎球菌(S.pneumoniae)の対数期培養物を遠心分離し、洗浄し、滅菌PBSに懸濁した。曝露前にイソフルランでマウスを麻酔した。0.1mLのPBS中105cfuの肺炎球菌(S.pneumoniae)を、切歯によって直立につるされたマウスの喉に入れた。舌を外側にそっと引き、鼻孔を覆うことによって細菌の吸引を誘導した。マウスの体重を毎日測定し、体重減少が開始時体重の20%を超えたら安楽死させた。血液を24時間、48時間および72時間で採取して菌血症を評価した。病気または苦痛の徴候について、訓練を受けた動物管理スタッフが少なくとも毎日2回、マウスを観察した。全ての動物実験は、国立衛生研究所の実験動物の管理と使用に関するガイドの推奨事項に厳密に従って実施した。マウス実験プロトコルは、Merck&Co.,Inc.の施設内動物管理および使用委員会によって承認された。
ウサギにおけるPCV免疫原性および機能的抗体
成体ニュージーランドホワイト種ウサギ(NZWR、n=5/群)を、0日目と14日目(交互の側)に、0.1mLのPCVで筋肉内(IM)免疫した。PCVを、リン酸アルミニウムアジュバント(APA)の形態で25μg[Al]を含む1免疫当たり1血清型当たり0.4μg PnPsで投与した。PCV31の場合、血清型6Bの投与濃度を、1免疫当たり0.8μg PnPsに倍増した。PCV21(実施例38に記載される)は、各々がCRM197にコンジュゲートされた血清型3、6C、7F、8、9N、10A、11A、12F、15A、15C、16F、17F、19A、20A、22F、23A、23B、24F、31、33Fおよび35Bの精製多糖類を含んでいた。各多糖類-タンパク質コンジュゲートを、非アジュバント化またはリン酸アルミニウムもしくはAPAの形態で250μg[Al]/mLで製剤化して、アジュバントの効果を評価した(PCV21/APA)。低価PCVも(実施例38に記載されるように)、8つの新規ST(PCV8:各々がCRM197にコンジュゲートされた6C、15A、16F、23A、23B、24F、31および35B、非アジュバント化)を含むように製剤化し、16STをいずれのライセンス化PCV(PCV16:各々がCRM197にコンジュゲートされた6C、8、9N、10A、11A、12F、15A、15C、16F、17F、20、23A、23B、24F、31および35B、非アジュバント化)にもPCV31(各々がCRM197にコンジュゲートされた1、3、4、5、6A、6B、6C、7F、8、9N、9V、10A、11A、12F、14、15A、15C、16F、17F、18C、19A、19F、20A、22F、23A、23B、23F、24F、33Fおよび35B、リン酸アルミニウムの形態の250μg[Al]/mLを用いて製剤化)にも含めず、ワクチン価の増加に伴う担体抑制を評価した(PCV31/APA)。各ワクチンは、PCV31またはPCV31/APAで8μg/mL(w/v)肺炎球菌多糖類(PnPs)で製剤化された6Bを除いて、4μg/mL(w/v)肺炎球菌多糖類(PnPs)で製剤化された多糖類タンパク質コンジュゲートを使用した。各ワクチン中の肺炎球菌多糖類(PnPs)の最終濃度は、PCV31で128μg/mL PnPs、PCV21で84μg/mL PnPs、PCV16で64μg/mLおよびPCV8で32μg/mLであった。
成体アカゲザルにおけるPCV21免疫原性
PCV21を、成体アカゲザル免疫原性モデルでも評価した。アカゲザルを、0日目、28日目および56日目にPCV21で筋肉内免疫した。PCV21を、1免疫当たり0.25mL体積中1μgのPnPs(各々がCRM197にコンジュゲートされた3、6C、7F、8、9N、10A、11A、12F、15A、15C、16F、17F、19A、20A、22F、23A、23B、24F、31、33Fおよび35B)で投与した。血清を、試験開始前(免疫前、0日目)および14日目(PD1)、28日目、42日目(PD2)、56日目、70日目(PD3)および84日目に回収した。
成体アカゲザルにおけるPCV21免疫原性-アジュバントおよび担体抑制の評価
別のサルの試験は、APAを用いたおよび用いないPCV21の評価、ならびに担体抑制を評価するための共有血清型免疫原性の比較を含んでいた。試験の0日目に、成体アカゲザル(n=5/群)を、ヒトの半分の用量のワクチンで筋肉内免疫した。PCV21を、1免疫当たり0.25mL体積中1μgのPnPs(各々がCRM197にコンジュゲートされた3、6C、7F、8、9N、10A、11A、12F、15A、15C、16F、17F、19A、20、22F、23A、23B、24F、31、33Fおよび35B)で投与した。ある群は、リン酸アルミニウムの形態で62.5μg[Al]をアジュバント化されたPCV21を含んでいた。別の群は、1免疫当たり0.25mL体積中1μgのPnPs(各々がCRM197にコンジュゲートされた1、3、4、5、6A、7F、9V、14、18C、19A、19F、22F、23Fおよび33F、6Bを2μgで投与)で投与され、リン酸アルミニウムの形態で62.5μg[Al]でアジュバント化されたPCV15を含んでいた。別の群は、1免疫当たり0.25mL体積中1.1μgのPnPs(各々がCRM197にコンジュゲートされた1、3、4、5、6A、7F、9V、14、18C、19A、19Fおよび23F、6Bを2.2μgで投与)で投与されるPrevnar13(登録商標)(PCV13)を含んでいた。血清を、試験開始前(免疫前、0日目)および28日目に回収した。
血清型6A、6Bおよび6Cの交差反応性-一価試験
一価製剤を、肺炎球菌多糖類6A-CRM197コンジュゲートまたは肺炎球菌多糖類6B-CRM197コンジュゲートを使用して調製し、4.0μg/mLのいずれかの血清型の標的総多糖類濃度で、20mMヒスチジンpH5.8および150mM塩化ナトリウムおよび0.1%w/vポリソルベート-20(PS-20)に製剤化した。CRM197タンパク質を肺炎球菌多糖類(PnPs)型(-6Aまたは-6Bのいずれか)に個別にコンジュゲートさせることによってコンジュゲートを調製した。個々の血清型の標的濃度を得るために必要なバルクコンジュゲートの必要体積を、個々のバルク多糖類濃度のバッチ体積および濃度に基づいて計算した。個々のコンジュゲートを、ヒスチジン、塩化ナトリウム、PS-20の溶液に添加して、2Xコンジュゲートブレンドを作成した。2Xコンジュゲートブレンドを含む製剤容器を、磁気攪拌棒を使用して混合し、別の容器に滅菌濾過した。次いで、滅菌濾過した2Xブレンドを生理食塩水で希釈して、所望の標的総多糖類および賦形剤濃度を達成した。次いで、製剤をバイアルに充填し、2~8℃で貯蔵した。
血清型20Aおよび20Bの交差反応性-一価試験
一価製剤を、肺炎球菌多糖類20A-CRM197コンジュゲートを使用して調製し、4.0μg/mLで、20mMヒスチジンpH5.8および150mM塩化ナトリウムおよび0.2%w/vポリソルベート-20(PS-20)に製剤化した。アジュバントとしてリン酸アルミニウムの形態で250.0μg[Al]/mLで製剤を調製した(20A-CRM197/APA)。CRM197タンパク質を肺炎球菌多糖類(PnPs)型20に個別にコンジュゲートさせることによってコンジュゲートを調製した。個々の血清型の標的濃度を得るために必要なバルクコンジュゲートの必要体積を、個々のバルク多糖類濃度のバッチ体積および濃度に基づいて計算した。単一コンジュゲートを、16.0μg/mLで、ヒスチジン、塩化ナトリウムおよびPS-20の溶液に添加して、4Xコンジュゲートブレンドを生成した。コンジュゲートブレンドを含む製剤容器を、磁気攪拌棒を使用して混合し、別の容器に滅菌濾過した。次いで、滅菌濾過した4Xブレンドを、リン酸アルミニウムアジュバントを含む別の容器に添加して、所望の標的総多糖類、賦形剤およびアジュバント濃度を達成した。次いで、製剤をガラスバイアルに充填し、2~8℃で貯蔵した。
Claims (4)
- 肺炎球菌(S.pneumoniae)多糖類担体タンパク質コンジュゲートを含む多価免疫原性組成物であって、ここで、前記コンジュゲートの各々は担体タンパク質にコンジュゲートされた特定の肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型の多糖類を含み、ここで、肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型は、3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、脱O-アセチル化15B、17Fおよび20からなり、そして、前記担体タンパク質はCRM197である、組成物。
- 脱O-アセチル化15B多糖類が、5%未満の反復単位当たりのO-アセチル含有量を有する、請求項1に記載の多価免疫原性組成物。
- 肺炎球菌(S.pneumoniae)多糖類担体タンパク質コンジュゲートを含む多価免疫原性組成物であって、ここで、前記コンジュゲートの各々は担体タンパク質にコンジュゲートされた特定の肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型の多糖類を含み、ここで、肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型は、3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15C、17Fおよび20からなり、そして、前記担体タンパク質はCRM197である、組成物。
- 肺炎球菌(S.pneumoniae)多糖類担体タンパク質コンジュゲートを含む多価免疫原性組成物であって、ここで、前記コンジュゲートの各々は担体タンパク質にコンジュゲートされた特定の肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型の多糖類を含み、ここで、肺炎球菌(S.pneumoniae)血清型は、3、7F、19A、22F、33F、6A、15A、16F、23A、23B、24F、31、35B、8、9N、10A、11A、12F、15B、17Fおよび20からなり、そして、前記担体タンパク質はCRM197である、組成物。
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