JP2021087454A - Crisprにより可能にされる多重ゲノムエンジニアリング - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、米国特許法§119の下、2014年2月11日に出願された米国仮出願第61/938,608号の利益を請求し、その全体の教示は、参照によって本明細書中に組み込まれる。
(c)(b)において生成された生細胞を得るステップ、ならびに(d)細胞の第2の集団の少なくとも1つの細胞のベクターの編集オリゴヌクレオチドを配列決定することにより、少なくとも1つのコドンの変異を同定するステップを含む、追跡可能なCRISPR濃縮リコンビニアリングによるゲノムエンジニアリングの方法である。
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターも記載される。
(i)細胞中の核酸の標的領域に相同であり、標的領域に対する少なくとも1つのコドンにおける少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む領域、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む、編集カセット、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターである。
(i)(a)核酸の標的領域に相同であり、標的領域に対する少なくとも1つのヌクレオチドの変異を含む領域、および(b)プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む少なくとも1つの編集カセット、
(ii)少なくとも1つのプロモーター、ならびに
(iii)(a)標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターである。
(i)(a)核酸の標的領域に相同であり、標的領域に対する少なくとも1つのコドンにおける少なくとも1つのヌクレオチドの変異を含む領域、および(b)プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む少なくとも1つの編集カセット、
(ii)少なくとも1つのプロモーター、ならびに
(iii)(a)標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターである。
(i)細胞中の核酸の標的領域に相同であり、標的領域に対する少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む領域、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む編集カセット、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターを含み得る。
(i)細胞中の核酸の標的領域に相同であり、標的領域に対する少なくとも1つのコドンにおける少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む領域、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む編集カセット、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターを含み得る。
(a)(i)プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)に隣接する遺伝子(隣接遺伝子)における少なくとも1つのコドンの変異を有する第1の単一のPAMの欠失と結合する、合理的に設計されたオリゴヌクレオチドなどの、1つまたは複数の編集オリゴヌクレオチド、および(b)染色体のオープンリーディングフレームの5’にあるヌクレオチド配列を標的にするガイドRNA(gRNA)を、第1の細胞の集団に導入することにより(例えば、共形質転換により)、プラスミド中に組換え染色体または組換えDNAなどの、組換えDNAを含む、ドナーライブラリーを構築し、これにより、標的コドン変異を有する組換え染色体を含む第1の細胞の集団を含むドナーライブラリーを生成するステップ、
(b)編集オリゴヌクレオチド由来の合成特性を使用し、遺伝子の3’末端の第2のPAM欠失(最終PAM欠失)を同時に取り込む、組換え染色体の、例えば、PCR増幅により、(a)において構築されたドナーライブラリーを増幅し、これにより、標的コドン変異を最終PAM欠失に直接結合、例えば、共有結合させ、最終PAM欠失および標的コドン変異を有する回収されたドナーライブラリーを生成するステップ、ならびに
(c)最終PAM欠失および標的コドン変異を有するドナーライブラリー、ならびに最終gRNAプラスミドを、典型的には、ナイーブ細胞の集団である、第2の細胞の集団に導入し(例えば、共形質転換し)、これにより、標的コドン変異を含む最終ライブラリーを生成するステップ
を含む、CRISPRに支援される合理的なタンパク質エンジニアリング(コンビナトリアルゲノムエンジニアリング)の方法である。
(b)目的の遺伝子の3’末端に隣接するプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)(最終PAM)を欠失する、オリゴヌクレオチドを有するドナーライブラリーを増幅し、これにより、最終PAMが欠失された(3’PAM欠失を有する)dsDNA編集カセット、合理的なコドン変異、およびP1部位を含む増幅されたドナーライブラリーを生成するステップ、
(c)増幅されたドナーライブラリーを、制限酵素(例えば、BsaI)などの酵素で処理して、P1部位を取り除くステップ、ならびに
(d)(c)において処理された増幅されたドナーライブラリーおよび最終gRNAで、ナイーブ細胞の集団を共形質転換し、これにより、最終PAMが欠失された(3’PAM欠失を有する)dsDNA編集カセット、合理的なコドン変異、および最終gRNAを含む、共形質転換された細胞の集団を生成するステップ
を含む、CRISPRに支援される合理的なタンパク質エンジニアリングの方法も記載される。
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
(項目1)
(a)(i)細胞中の核酸の標的領域に相同であり、前記標的領域に対する少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む領域、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む編集カセット、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および
(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)
を含む、少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
をコードするベクターを細胞に導入して、これにより、ベクターを含む細胞を生成するステップ、
(b)Cas9が発現される条件下で前記ベクターを含む細胞を維持するステップであって、Cas9ヌクレアーゼが、前記ベクター上にコードされるか、第2のベクター上にコードされるか、または前記細胞のゲノム上にコードされ、前記ベクターを含み前記PAM変異を含まない細胞ならびに前記ベクターおよび前記PAM変異を含む細胞の生成をもたらす、ステップ、
(c)(b)の生成物を細胞生存に適した条件下で培養し、これにより、生細胞を生成するステップ、
(d)(c)において生成された生細胞を得るステップ、ならびに
(e)(d)において得られた少なくとも1つの生細胞の前記ベクターの編集オリゴヌクレオチドを配列決定し、少なくとも1つのコドンの前記変異を同定するステップ
を含む、ゲノムエンジニアリングの方法。
(項目2)
(a)(i)(a)核酸の標的領域に相同であり、前記標的領域に対する変異を含む領域、および(b)プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む少なくとも1つの編集カセット、
(ii)少なくとも1つのプロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
をコードするベクターを細胞の第1の集団に導入して、これにより、ベクターを含む細胞の第2の集団を生成するステップ、
(b)Cas9ヌクレアーゼが発現される条件下で細胞の前記第2の集団を維持するステップであって、前記Cas9ヌクレアーゼが、前記ベクター、第2のベクター、または細胞の前記第2の集団の細胞のゲノム上にコードされ、前記PAM変異を含まない細胞におけるDNA切断およびかかる細胞の死をもたらす、ステップ、
(c)(b)において生成された生細胞を得るステップ、ならびに
(d)細胞の前記第2の集団の少なくとも1つの細胞の前記ベクターの編集オリゴヌクレオチドを配列決定することにより、少なくとも1つのコドンの前記変異を同定するステップ
を含む、追跡可能なCRISPR濃縮リコンビニアリングによるゲノムエンジニアリングの方法。
(項目3)
編集オリゴヌクレオチドの集団を合成するおよび/または得るステップをさらに含む、項目1または項目2に記載の方法。
(項目4)
編集オリゴヌクレオチドの前記集団を増幅するステップをさらに含む、項目1〜3のいずれか一項に記載の方法。
(項目5)
前記ベクターが、スペーサーおよび/または少なくとも2つのプライミング部位をさらに含む、項目1〜4のいずれか一項に記載の方法。
(項目6)
前記編集カセットが、前記PAM変異の100ヌクレオチド以内の少なくとも1つのコドンの変異を含む標的領域を含む、項目1〜5のいずれか一項に記載の方法。
(項目7)
(a)(i)プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)に隣接する遺伝子(隣接遺伝子)における少なくとも1つのコドンの変異を有する第1の単一のPAMの欠失と結合する、合理的に設計されたオリゴヌクレオチドなどの、1つまたは複数の編集オリゴヌクレオチド、および(b)染色体のオープンリーディングフレームの5’にあるヌクレオチド配列を標的にするガイドRNA(gRNA)を、第1の細胞の集団に導入すること(それらにより第1の細胞の集団を共形質転換すること)により、プラスミド中に組換え染色体または組換えDNAなどの組換えDNAを含む、ドナーライブラリーを構築し、これにより、標的化されたコドン変異を有する組換え染色体を含む第1の細胞の集団を含むドナーライブラリーを生成するステップ、
(b)前記編集オリゴ由来の合成特性を使用し、前記遺伝子の3’末端の第2のPAM欠失(最終PAM欠失)を同時に取り込む組換えDNA(組換え染色体など)の増幅(PCR増幅など)により、(a)において構築された前記ドナーライブラリーを回収し、これにより、標的化されたコドン変異を前記最終PAM欠失に直接共有結合させ、前記最終PAM欠失および標的化されたコドン変異を有する回収されたドナーライブラリーを生成するステップ、ならびに
(c)前記最終PAM欠失および標的化されたコドン変異を有する前記回収されたドナーライブラリー、ならびに最終gRNAプラスミドを、ナイーブ細胞の集団に共形質転換し、これにより、標的化されたコドン変異を含む最終ライブラリーを生成するステップ
を含む、CRISPRに支援される合理的なタンパク質エンジニアリング(コンビナトリアルゲノムエンジニアリング)の方法。
(項目8)
タンパク質が生成される条件下で前記最終ライブラリーを維持するステップをさらに含む、項目7に記載の方法。
(項目9)
細胞の前記第1の集団が、Cas9ヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを発現する、項目7または項目8に記載の方法。
(項目10)
Cas9ヌクレアーゼ活性を有する前記ポリペプチドが、誘導可能なプロモーターの制御下で発現される、項目9に記載の方法。
(項目11)
前記編集オリゴヌクレオチドが、前記第1の細胞に存在する標的核酸に相補的である、項目10に記載の方法。
(項目12)
前記編集オリゴヌクレオチドが、前記第1の細胞における1つより多くの標的部位または遺伝子座を標的にする、項目11に記載の方法。
(項目13)
前記編集オリゴヌクレオチドの核酸配列が、前記標的核酸に対する1つまたは複数の置換、欠失、挿入を含む、項目7〜12のいずれか一項に記載の方法。
(項目14)
前記編集オリゴヌクレオチドが合理的に設計される、項目7〜13のいずれか一項に記載の方法。
(項目15)
前記編集オリゴヌクレオチドが、縮重プライマーオリゴヌクレオチドを使用して生成される、項目7〜14のいずれか一項に記載の方法。
(項目16)
前記編集オリゴヌクレオチドが、核酸の収集物(ライブラリー)に由来する、項目7に記載の方法。
(項目17)
前記gRNAがプラスミド上にコードされる、項目7に記載の方法。
(項目18)
前記編集オリゴヌクレオチドおよび前記gRNAが、形質転換により前記第1の細胞に導入される、項目7に記載の方法。
(項目19)
前記編集オリゴヌクレオチドおよび前記gRNAが、前記第1の細胞に順次導入される、項目7に記載の方法。
(項目20)
前記編集オリゴヌクレオチドおよび前記gRNAが、前記第1の細胞に同時に導入される、項目7に記載の方法。
(項目21)
前記ドナーライブラリーを回収するステップが、(a)前記編集オリゴヌクレオチドの取り込みについて細胞をスクリーニングするステップ、および(b)前記編集オリゴヌクレオチドを取り込んだことが確認された細胞を選択するステップをさらに含む、項目7に記載の方法。
(項目22)
前記ドナーライブラリーを回収するステップが、前記回収されたドナーライブラリーを処理するステップをさらに含む、項目7に記載の方法。
(項目23)
前記最終細胞/ナイーブ細胞が、Cas9ヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを発現する、項目7に記載の方法。
(項目24)
Cas9ヌクレアーゼ活性を有する前記ポリペプチドが、誘導可能なプロモーターの制御下で発現される、項目23に記載の方法。
(項目25)
(a)(i)編集オリゴヌクレオチドを含む合成dsDNA編集カセット、および(ii)目的の遺伝子のすぐ上流のゲノム配列を標的にするガイドRNA(gRNA)を発現するベクターを、第1の細胞の集団に、前記編集オリゴヌクレオチドのgRNAによる多重リコンビニアリングおよび選択的濃縮が生じる条件下で導入し(共形質転換し)、これにより、ドナーライブラリーを生成するステップ、
(b)目的の前記遺伝子の3’末端に隣接するプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)(最終PAM)を欠失する、オリゴヌクレオチドを有する前記ドナーライブラリーを増幅し、これにより、3’PAM欠失を有するdsDNA編集カセット、合理的なコドン変異、およびP1部位を含む増幅されたドナーライブラリーを生成するステップ、
(c)前記増幅されたドナーライブラリーを、BsaIで処理して、前記P1部位を取り除くステップ、ならびに
(d)(c)において生成された前記増幅されたドナーライブラリーおよび最終gRNAで、ナイーブ細胞の集団を共形質転換し、これにより、3’PAM欠失を有するdsDNA編集カセット、合理的なコドン変異、および最終gRNAを含む、共形質転換された細胞の集団を生成するステップ
を含む、CRISPRに支援される合理的なタンパク質エンジニアリングの方法。
(項目26)
(d)において生成された共形質転換された細胞の前記集団を、タンパク質発現が生じる条件下で維持するステップをさらに含む、項目25に記載の方法。
(項目27)
前記第1の細胞が、Cas9ヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを発現する、項目25または26に記載の方法。
(項目28)
Cas9ヌクレアーゼ活性を有する前記ポリペプチドが、誘導可能なプロモーターの制御下で発現される、項目27に記載の方法。
(項目29)
前記編集オリゴヌクレオチドが、前記第1の細胞に存在する標的核酸に相補的である、項目25に記載の方法。
(項目30)
前記編集オリゴヌクレオチドが、前記第1の細胞における1つより多くの標的部位または遺伝子座を標的にする、項目29に記載の方法。
(項目31)
前記編集オリゴヌクレオチドの核酸配列が、前記標的核酸に対する1つまたは複数の置換、欠失、挿入を含む、項目25〜30のいずれか一項に記載の方法。
(項目32)
前記編集オリゴヌクレオチドが合理的に設計される、項目25〜31のいずれか一項に記載の方法。
(項目33)
前記編集オリゴヌクレオチドが、縮重プライマーオリゴヌクレオチドを使用して生成される、項目25〜31のいずれか一項に記載の方法。
(項目34)
前記編集オリゴヌクレオチドが、核酸の収集物(ライブラリー)に由来する、項目25に記載の方法。
(項目35)
前記gRNAがプラスミド上にコードされる、項目25に記載の方法。
(項目36)
前記編集オリゴヌクレオチドおよび前記gRNAが、形質転換により前記第1の細胞に導入される、項目25に記載の方法。
(項目37)
前記編集オリゴヌクレオチドおよび前記gRNAが、第1の細胞の前記集団に順次導入される、項目25に記載の方法。
(項目38)
前記編集オリゴヌクレオチドおよび前記gRNAが、前記第1の細胞に同時に導入される、項目25に記載の方法。
(項目39)
前記ドナーライブラリーを回収するステップが、(a)前記編集オリゴヌクレオチドの取り込みについて細胞をスクリーニングするステップ、および(b)前記編集オリゴヌクレオチドを取り込んだことが確認された細胞を選択するステップをさらに含む、項目25に記載の方法。
(項目40)
前記ドナーライブラリーを回収するステップが、前記回収されたドナーライブラリーを処理するステップをさらに含む、項目25に記載の方法。
(項目41)
前記最終細胞/ナイーブ細胞が、Cas9ヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを発現する、項目25に記載の方法。
(項目42)
Cas9ヌクレアーゼ活性を有する前記ポリペプチドが、誘導可能なプロモーターの制御下で発現される、項目38に記載の方法。
(項目43)
(i)細胞中の核酸の標的領域に相同である領域を含み、前記標的領域に対する少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む編集カセット、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および
(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)
を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含む、ベクター。
(項目44)
(i)細胞中の核酸の標的領域に相同である領域を含み、前記標的領域に対する少なくとも1つのコドンにおける少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む編集カセット、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および
(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含む、ベクター。
(項目45)
(i)(a)核酸の標的領域に相同であり、前記標的領域に対する少なくとも1つのヌクレオチドの変異を含む領域、および(b)プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む少なくとも1つの編集カセット、
(ii)少なくとも1つのプロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含む、ベクター。
(項目46)
(i)(a)核酸の標的領域に相同であり、前記標的領域に対する少なくとも1つのコドンにおける少なくとも1つのヌクレオチドの変異を含む領域、および(b)プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む少なくとも1つの編集カセット、
(ii)少なくとも1つのプロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)および(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)を含む、ベクター。
(項目47)
スペーサー、少なくとも2つのプライミング部位、またはスペーサーおよび少なくとも2つのプライミング部位をさらに含む、項目43〜46のいずれか一項に記載のベクター。
(項目48)
前記編集カセットが、前記PAM変異の100ヌクレオチド以内に少なくとも1つのコドンの変異を含む標的領域を含む、項目44、46、または47のいずれか一項に記載のベクター。
(項目49)
項目1〜48のいずれか一項に記載の方法により生成される細胞の集団を含む、ライブラリー。
(項目50)
項目43〜48のいずれか一項に記載のベクターを含む細胞の集団を含む、ライブラリー。
(項目51)
(i)細胞中の核酸の標的領域に相同であり、前記標的領域に対する少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む領域、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む編集カセット、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および
(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)
を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターを含む、細胞の集団。
(項目52)
(i)細胞中の核酸の標的領域に相同であり、前記標的領域に対する少なくとも1つのコドンにおける少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む領域、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む編集カセット、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および
(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)
を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
を含むベクターを含む、細胞の集団。
(項目53)
(a)(i)細胞中の核酸の標的領域に相同であり、前記標的領域に対する少なくとも1つのコドンにおける少なくとも1つのヌクレオチドの変異(所望の変異と称される)を含む領域、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)変異を含む編集カセット、
(ii)プロモーター、ならびに
(iii)(a)前記標的領域の部分に相補的な領域(RNA)、および
(b)Cas9ヌクレアーゼを動員する領域(RNA)
を含む少なくとも1つのガイドRNA(gRNA)
をコードするベクターを細胞に導入して、これにより、前記ベクターを含む細胞を生成するステップ、
(b)Cas9が発現される条件下で前記ベクターを含む細胞を維持するステップであって、Cas9ヌクレアーゼが、前記ベクター上にコードされるか、第2のベクター上にコードされるか、または前記細胞のゲノム上にコードされ、前記ベクターを含み前記PAM変異を含まない細胞ならびに前記ベクターおよび前記PAM変異を含む細胞の生成をもたらす、ステップ、
(c)(b)の生成物を細胞生存に適した条件下で培養し、これにより、生細胞を生成するステップ、
(d)(c)において生成された生細胞を得るステップ、ならびに
(e)(d)において得られた少なくとも1つの生細胞の前記ベクターの編集オリゴヌクレオチドを配列決定し、少なくとも1つのコドンの前記変異を同定するステップ
を含む、ゲノムエンジニアリングの方法。
細菌および古細菌CRISPRシステムは、正確なゲノム編集のための強力な新規ツールとして現れた。Streptococcus pyogenes(S.pyogenes)由来のII型CRISPRシステムは、in vitroで特に十分に特徴付けられ、単純な設計規則が、その2本鎖DNA(dsDNA)結合活性をリプログラミングするために確立された(Jinekら、Science(2012年)、337巻(6096号):816〜821頁)。CRISPRにより媒介されるゲノム編集法の使用は、細菌(Congら、Science(2013年)、339巻(6121号):819〜823頁)、Sacchar
omyces cerevisiae(DiCarloら、Nucleic Acids Res.(2013年
)41巻:4336〜4343頁)、Caenorhabditis elegans(Waaijersら、Genetics(2013年)、195巻:1187〜1191頁)、および種々の哺乳動物細胞株(Congら、Science(2013年)、339巻(6121号):819
〜823頁、Wangら、Cell(2013年)、153巻:910〜918頁)を含む、広範な生物における文献において急速に蓄積されている。ジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZFN)、ホーミングヌクレアーゼ、およびTALENSのなどの、他のエンドヌクレアーゼベースのゲノム編集技術同様、CRISPRシステムの正確なゲノム編集を媒介する能力は、標的認識の高度に特異的な性質から生じる。例えば、Escherichia coliおよびS.pyogenesシステム由来のI型CRISPRシステムは、CRISPR RNA(crRNA)と14〜15塩基対認識標的の間の完全な相補性を要求し、これは、CRISPRシステムの免疫機能が、自然に利用されることを示唆している(Jinekら、Science(2012年)、337巻(6096号):816〜821頁、Brounsら、Science(2008年)、321巻:960〜964頁、Semenovaら、PNAS(2
011年)、108巻:10098〜10103頁)。
cas9遺伝子は、アラビノースの添加により切断活性の制御を可能にするpBADプロモーターの制御下でpBTBX−2骨格にクローニングされた。合成dsDNAカセット(127bp)を選択的に取り込む能力の評価は、縮重プライマーから、および/またはマイクロアレイ技術を介して27,000個のメンバーライブラリーの一部として合成された合理的に設計されたオリゴヌクレオチド(オリゴ)から構築された、NNKライブラリー由来のdsDNAカセットを使用して行われた。両方の場合において、オリゴヌクレオチドは、galK遺伝子産物の活性部位残基に変異導入されるよう設計された。ドナー株ライブラリーの高度に効率的なリカバリーは、galK遺伝子座において指向されたプライマーで得られる増幅産物サイズの変化に基づき検証された。NRRライブラリー由来のこれらのコロニーPCR産物の配列決定は、dsDNAカセット由来の合成プライミング部位(P1)が、効率約90〜100%で取り込まれたことを示した。これは、これらのライブラリーが、他のリコンビニアリングベースの編集アプローチにおいて典型的に使用されているエラープローンmutSノックアウト株に依存することなく、高い効率で作製され得ることを示した(Costantinoら、PNAS(2003年)、100巻:15748〜15753頁、Wangら、Nature(2009年)、460巻:894〜898頁)。コドン変異の効率の下降(約20%)が存在し、それは、対立遺伝子置換中のmutS補正に起因し得る。最終ライブラリーにおけるクローンの予備的評価は、最終コドン編集効率が、構築の両方の相が、mutS+バックグラウンドにおいて行われるとき、約10%であったことを示した。
591〜593頁)。これらの非共有結合的実験において、上と同一の編集オリゴが使用され、同一のドナー/最終PAM部位を標的にするssDNAオリゴを使用して、それらの挿入について同時選択するための努力がなされた。得られた変異体のコロニースクリーニングは、PAM変異体のリカバリーにおける高い効率を明らかにする。しかしながら、これらは、dsDNA編集カセットの挿入についての強力な同時選択でないように思われる。これは、PAM欠失オリゴヌクレオチドの相対的リコンビニアリング効率の大きな差、およびかなり多い染色体欠失を生み出す編集カセットに起因し得る。
galKを編集するためのCARPE法の使用
CARPEアプローチを、E.coliゲノムにおけるガラクトキナーゼ遺伝子galK上で行った。遺伝子産物の活性を評価するために多くの利用可能なアッセイが存在する。E.coli BW23115親株、およびリコンビニアリングを媒介するpSIM5ベクター(Dattaら、Gene(2008年)、379巻:109〜115頁)を使用して、
実験を行った。アラビノースの培養培地への添加による、Cas9切断活性の制御を可能にするためのpBADプロモーターの制御下で、pBTBX−2骨格にCas9をコードする遺伝子をクローニングした。
、100巻:15748〜15753頁、Wangら、Nature(2009年)、460巻:894〜898頁)において典型的に使用されているエラープローンmutS欠損株に依存することなく、高い効率でライブラリーが作製され得ることを示唆する。しかしながら、コドン変異の効率の下降(約20%)が存在し、それは、対立遺伝子置換中のMutSによる補正に起因し得る。この研究において、構築の両方の相を、mutS+バックグラウンドにおいて行うとき、最終コドン編集効率は約10%であった。
必須の遺伝子を標的にするためのCARPE法の使用
CARPEアプローチの一般性を試験するために、上で記載した通り、dxs、metA、およびfolAを含む、いくつかの必須遺伝子において、方法を使用した。gRNA設計ストラテジーを使用して、必須遺伝子を標的化することができる(図3)。
イソペンテノールの生成を調節するためのCARPE法の使用
細菌生成を介した産業上の製造のための良好なバイオ燃料の捜索は、当該技術分野の水準のゲノム設計、エンジニアリング、および所望の生成物についてのスクリーニングを行う能力を要求する。これまでに、本発明者らは、E.coliゲノムにおける全ての遺伝子の発現レベルを個々に修飾する能力を示した(Warnerら、Nat. Biotechnol(2010年)、28巻:856〜862頁)。追跡可能な多重リコンビニアリング(TRMR)と呼ばれるこの方法は、約8000個のゲノム的に修飾した細胞(約4000個の過剰発現した遺伝子、および約4000個のノックダウンした遺伝子)のライブラリーを生成した。このライブラリーは、異なる条件下で後にスクリーニングされ、それは、遺伝子産物の活性のより深い理解を可能にし、これらの選択下で良好に遂行する株をもたらした。TRMRは、2つのレベル(過剰発現およびノックダウン)のタンパク質発現の修飾を可能にするが、オープンリーディングフレーム(ORF)の修飾を可能にしなかった。ここで、本発明者らは、バイオ燃料の最適な生成のための、ORF修飾および全代謝経路をエンジニアリングする、巨大なライブラリーを生成することを目的とする。
巻:273〜297頁)。このシステムは、2つのプラスミド、CRISPR関連ヌクレアーゼCas9をコードする1つのプラスミド、およびCas9をその固有の位置にガイドする配列特異的ガイドRNA(gRNA)をコードする第2のプラスミドを使用して、配列指向性2本鎖切断を可能にする、広範なエンジニアリングを起こした(Qiら、Cell(2013年)、45巻:273〜297頁)。CARPE法は、配列に依存した態様でDNA切断およびその結果として細胞死を誘導するCRISPRシステムの能力を利用する。本発明者らは、ORF内の所望の変異に加えて、CRISPR機構により標的にされる遺伝子のオープンリーディングフレームの外側の共通の位置の変異を含む、DNAリコンビニアリングカセットを生成した。PAM変異/欠失に起因する、CRISPRにより媒介される死の回避を伴い、所望の変異を連結/結合するこのアプローチは、細胞の総集団内の操作された細胞の劇的な濃縮を可能にする。
:57頁)。DXSおよびIspBをコードする遺伝子における変異を、コロニー色素定量のために開発された新規画像分析ツールで、リコペン生成の増大についてスクリーニングする。NudF活性を、GC/MSによりイソペンテノールレベルを測定することにより直接的に、およびバイオセンサーとして機能するイソペンテノール栄養要求性細胞により間接的にアッセイする。この方法は、高い正確さおよび効率でE.coliゲノムへの巨大変異ライブラリーを合理的に操作する能力、および高収量のイソペンテノールを生成する株をもたらす。
galKを編集するためのGEn−TraCER法の使用
GEn−TraCER法を使用して、galK遺伝子を編集し、それは、E.coliにおけるリコンビニアリングのためのモデルシステムとして働いた(Yuら、2000年)。構築した第1のGEn−TraCERカセットを、galK_Q24と称される、galKのコドン24におけるインフレームPAMの位置に終結コドンを導入するよう設計した(図12)。構築物およびベクターを、高処理で必要な変異を生成する、カスタムパイソンスクリプトを使用して、設計した。
ATCACGAGGCAGAATTTCAGATAAAAAAAATCCTTAGCTTTCGCTAAGGATGATTTCTGG(配列番号31)、
ACTTTTTCAAGTTGATAACGGACTAGCCTTATTTTAACTTGCTATTTCTAGCTCTAAAAC(配列番号32)
を使用して増幅した。
ィングして、CRISPRにより編集された株について選択的に濃縮した。galK遺伝子についての編集効率を、ガラクトースを添加したMacConkey寒天上での赤色/白色スクリーニングを使用して、計算した。
変異を再構築するためのGEn−TraCER法の使用
簡単なユーザーインプット定義でゲノム周囲の部位の標的化を可能にする、カスタム自動設計ソフトウエアを使用して、GEn−TraCERアプローチをゲノムスケールまで拡大させた。E.coliにおける温度適応の最近報告された研究(Tenaillonら、20
12年)から、非同義の点変異の全てを再構築することにより、アプローチを試験した。この研究は、独立して増殖させた株由来の115種の単離物において生じた変異の完全なセットを特徴付けた。このデータセットは変異の多様な供給源をもたらし、その個々の適合効果がこの複雑な表現型の機構的支持をさらに明らかにする。コドン使用およびΔPAMの2倍の多重度で、これらの変異のそれぞれを再構築し、可能であれば、下流の適合解析におけるPAMおよび標的コドン変異の両方についての統計的補正を可能にした。
遺伝子相互作用を調節するためのGEn−TraCER法の使用
E.coliゲノムにおけるそれぞれの遺伝子の上流の環境要因(酸素レベル、炭素供給源、ストレス)により著しく調節されるプロモーターを組み込むことにより、ライブラリーを作り直すプロモーターを作製する。GEn−TraCER法を使用して、例えば、生成のため目的の化学物質に対する耐性について有益であり得る、作り直された遺伝子型を有する株を作製する。
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