JP2008086327A - ヒト化グリーン蛍光タンパク質遺伝子および方法 - Google Patents

ヒト化グリーン蛍光タンパク質遺伝子および方法 Download PDF

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Abstract

【課題】哺乳動物における発現のために適合されたヒト化グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子を提供すること、およびヒト細胞における発現のために適合されたヒト化グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子を提供すること。
【解決手段】好ましいＤＮＡコドンを使用することにより、哺乳動物における発現のために適合されたグリーン蛍光タンパク質（ｇｆｐ）遺伝子、およびヒト細胞における発現のために適合されたヒト化グリーン蛍光タンパク質（ｇｆｐ）遺伝子、ならびにその構築物および使用方法。
【選択図】なし

Description

発明の背景
１．発明の分野
本発明は、一般に、レポーター遺伝子の分野に関し、特に改善されたグリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子、構築物、および使用方法を提供する。本明細書中に開示されるｇｆｐ遺伝子は、好ましいＤＮＡコドンを使用することにより、哺乳動物およびヒト細胞における発現のために適合されたヒト化ｇｆｐ遺伝子である。
２．関連技術の説明
レポーター分子は、遺伝子発現をモニターするために、生物学的な系において頻繁に使用される。一般的に使用されるレポーター遺伝子としては、β−ガラクトシダーゼ、ホタルルシフェラーゼ、アルカリホスファターゼ、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ（ＣＡＴ）およびβ−グルクロニダーゼ（ＧＵＳ）が挙げられる。しかし、利用可能なレポーター遺伝子は、それらの使用を制限する特定の欠点を有する。頻繁に遭遇する制限は、マトリックスの導入が必要とされることである。他の欠点としては、例えば、特定のタンパク質の大きさが挙げられ、これはレポーター−融合タンパク質の発現が困難であり得ることを意味する。
別の有用なストラテジーは、タンパク質を蛍光タグで標識して、インタクトな細胞におけるその後の検出および局在化を可能にすることである。蛍光標識は、免疫蛍光法および蛍光アナログ細胞化学とともに使用され、ここで、タンパク質の生化学およびトラフィッキングが、生存細胞中へのマイクロインジェクションの後にモニターされる。
蛍光標識は一般に、タンパク質を精製し、そしてそれを有機性発蛍光団の反応性誘導体に共有結合することにより達成されている。これらの方法において、色素付着の化学量論および位置はしばしば制御することが困難であり、そしてタンパク質の注意深い再精製が通常必要である。さらなる問題は、標識タンパク質を細胞中へ導入することである。これは、タンパク質を原形質膜を通して導入するために、マイクロインジェクション技術または可逆性透過化の方法を含む。
蛍光タグ化タンパク質に対する分子生物学的代替物は、最近の進歩およびグリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）のクローニングにより可能となった。クラゲＡｅｑｕｏｒｅａ ｖｉｃｔｏｒｉａ由来のｇｆｐ １０遺伝子によりコードされるグリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）は、青色光（３９５ ｎｍで主要ピーク）を吸収し、そして緑色光（５０９ ｎｍで主要ピーク）を発する、２３８アミノ酸のタンパク質である（ＭｏｒｉｎおよびＨａｓｔｉｎｇｓ，１９７１；Ｗａｒｄら、１９８０；Ｐｒａｓｈｅｒら、１９９２）。ＧＦＰヘキサペプチド発色団はアミノ酸６４において始まり、そして、このヘキサペプチド内のセリン−デヒドロチロシン−グリシンの環化を介して一次アミノ酸配列から誘導される（Ｓｈｉｍｏｍｕｒａ，１９７９；Ｃｏｄｙら、１９９３）。
光刺激性ＧＦＰ蛍光は、種依存性であり、そしていかなる補因子も、マトリックスも、Ａ． ｖｉｃｔｏｒｉａ由来のさらなる遺伝子産物も必要としない（Ｃｈａｌｆｉｅら、１９９４）。このことは、有意義な遺伝子発現が達成され得る限り、Ａ． ｖｉｃｔｏｒｉａ以外の生存細胞におけるＧＦＰの検出を可能にする。従って、ｇｆｐ １０の小さな大きさおよび産物の「リアルタイムの」検出は、ＧＦＰをレポーター遺伝子としての使用のための有望な候補にする。
改善されたスペクトル特性を有する特定のＧＦＰ改変体が、最近報告されている。例えば、Ｈｅｉｍら（１９９４）は、青色蛍光を発し、そしてＴｙｒ６６のかわりにヒスチジンを含む改変体を記載した。Ｈｅｉｍら（１９９５）は後に、Ｒｅｎｉｌｌａ ｒｅｎｉｆｏｒｍｉｓのスペクトルにずっとより近いスペクトルを有するＳｅｒ６５→Ｔｈｒ ＧＦＰ改変体を記載した。これは、Ａｅｑｕｏｒｅａ ＧＦＰの、より長波長のピークの１モノマー当たりの吸光係数の１０倍より大きな１モノマー当たりの吸光係数を有する。
しかし、特定の開発にもかかわらず（例えば、上記の改変体）、ＧＦＰの現在の有用性は、哺乳動物細胞における変動する、よくても低い発現レベルにより、なお制限されている。それゆえ、ＧＦＰ技術における新たな開発が、このタンパク質の完全な能力が理解され得る前に、特に、哺乳動物細胞における発現を必要とする適用（遺伝子治療ストラテジーを含む）において、必要であることは明らかである。
発明の要旨
本発明は、従来技術に固有のこれらおよびその他の欠点を、哺乳動物およびヒト細胞における発現のために適合されたヒト化グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子を提供することにより、克服しようとする。本発明のヒト化ｇｆｐ遺伝子は、ヒト遺伝子における使用のために好ましいコドンをＤＮＡ配列中に組み込むことにより調製される。ヒト化ｇｆｐ発現構築物ならびにヒト化遺伝子およびベクターの種々の使用方法もまた提供される。
従って、本発明は、ヒト化グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子ならびにそのような遺伝子の作製および使用の方法を提供する。本明細書中で使用される用語「ヒト化グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子」は、少なくとも１つ、そして好ましくは１つを越える、そして最も好ましくは有意な数のクラゲｇｆｐのコドンを、ヒト遺伝子においてより頻繁に使用される１つ以上のコドンで置換することにより、哺乳動物またはヒト細胞における発現のために適合された遺伝子を意味する。
本発明のヒト化遺伝子は好ましくはｃＤＮＡであるが、ゲノムコピーは決して除外されない。ヒト化遺伝子はまた、好ましくは、Ａ． ｖｉｃｔｏｒｉａ ｇｆｐ遺伝子から適合されたヒト化型であるが、他のｇｆｐ遺伝子供給源もまた、除外されない。
特定の実施態様において、本発明は、配列番号２のアミノ酸配列を有するグリーン蛍光タンパク質をコードするヒト化ｇｆｐ遺伝子を提供する。
他の実施態様において、ヒト化ｇｆｐ遺伝子は、おおむね前記の配列に基づくが、特定の変更を有するＧＦＰ改変体をコードする。特定の例は、６５位のセリンがスレオニンで置換された配列番号２のアミノ酸配列を有するＧＦＰをコードするヒト化遺伝子である。
さらなる例は、６６位のチロシンがヒスチジンで置換された配列番号２のアミノ酸配列を有するグリーン蛍光タンパク質をコードするヒト化ｇｆｐ遺伝子である。
別の例は、６４位と６９位との間の発色団配列Ｐｈｅ Ｓｅｒ Ｔｙｒ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ｇｌｎ（配列番号４）が配列Ｍｅｔ Ｇｌｙ Ｔｙｒ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ｌｅｕ（配列番号５）で置換された配列番号２のアミノ酸配列を有するＧＦＰをコードするヒト化ｇｆｐ遺伝子である。
ヒト化ｇｆｐ遺伝子の構造的等価物もまた、本発明内に含まれる。しかし、アミノ末端における１つ以上のアミノ酸残基、またはカルボキシル末端からの約１０もしくは１５アミノ酸残基で短縮化された改変体は、蛍光タンパク質の産生に関しては一般に有用であるとは考えられない。それゆえ、コードされるＧＦＰは、最小で約２２２アミノ酸長であるべきであり、約２３８アミノ酸長のタンパク質が一般に好ましい。
本発明のヒト化遺伝子はまた、少なくとも約１０％のそのコドン位置がヒト化コドンを含む遺伝子により定義され得る。すなわち、それらは、ヒト遺伝子において頻繁には使用されないコドンのかわりに、ヒト遺伝子において優先的に使用されるコドンを含む。
他の実施態様において、ヒト化遺伝子は、少なくとも約１５％、約２０％、約２５％、約３０％または約３５％の、ヒト化コドンの存在により定義されるコドン位置を有する。
少なくとも約５０％またはそれより多くのコドン位置がヒト化コドンを含むヒト化ｇｆｐ遺伝子もまた意図される。
本発明の好ましいヒト化ｇｆｐ遺伝子は、特定の重要な変化（ｋｅｙ ｃｈａｎｇｅ）を含む遺伝子である。例は、クラゲｇｆｐ配列のコドン位置１８、５３、９３、１２５、１５０、１７８、１９５、２０８、２３６、および２２４に位置する１０のコドンからの少なくとも７つのヒト化コドンを含む遺伝子である。
好ましくは、ヒト化ｇｆｐ遺伝子は、クラゲｇｆｐ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、９３、１２５、１５０、１７８、１９５、２０８、２３６、および２２４に位置する１０のコドンから、少なくとも８、少なくとも９、または１０のヒト化コドンを含む。
そのような構築物は、ヒト化ロイシンコドンＣＴＧ、ＣＴＣ、またはＴＴＧのいずれか１つを、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、１２５、１７８、１９５、および２３６において含むヒト化遺伝子により例証される。さらなる例は、ヒト化バリンコドンＧＴＧを、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置９３、１５０、および２２４において含むヒト化ｇｆｐ遺伝子である。他の例は、ヒト化セリンコドンＴＣＴを、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置２０８において含むヒト化遺伝子である。
本発明により包含されるヒト化ｇｆｐ遺伝子はまた、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して増加した数のＧＣＣまたはＧＣＴアラニンコードコドンを含む遺伝子を含む。
用語「配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して増加した数のコドン」は、ヒト化配列が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列のコード領域内に存在する同じアミノ酸をコードするコドンに比較して、配列番号２のアミノ酸配列、または本明細書中に記載の改変体もしくはその他の等価物の１つをコードするＧＦＰコード領域内の特定のアミノ酸をコードする、増加した数のコドンを含むことを意味する。従って、用語「増加した」が、この関連で使用される場合、コード領域の末端部分への１つ以上のコドンの付加を意味するのではなく、むしろコード領域内の好ましくないコドンのヒトまたは哺乳動物細胞における翻訳のためにより好ましいコドンでの置換を意味することが理解される。
上記の定義に照らして、本発明のヒト化ｇｆｐ遺伝子はまた、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＴＧＣシステインコードコドン；増加した数のＧＡＣアスパラギン酸コードコドン；増加した数のＧＡＧグルタミン酸コードコドン；増加した数のＴＴＣフェニルアラニンコードコドン；増加した数のＧＧＣグリシンコードコドン；増加した数のＣＡＣヒスチジンコードコドン；増加した数のＡＴＣイソロイシンコードコドン；増加した数のＡＡＧリジンコードコドン；増加した数のＣＴＧもしくはＣＴＣロイシンコードコドン；増加した数のＡＡＣアスパラギンコードコドン；増加した数のＣＣＣもしくはＣＣＴプロリンコードコドン；増加した数のＣＡＧグルタミンコードコドン；増加した数のＣＧＣ、ＡＧＧもしくはＣＧＧアルギニンコードコドン；増加した数のＡＧＣもしくはＴＣＣセリンコードコドン；増加した数のＡＣＣスレオニンコードコドン；増加した数のＧＴＧもしくはＧＴＣバリンコードコドン；および／または増加した数のＴＡＣチロシンコードコドンを含む遺伝子として定義され得る。
特定の実施態様において、ヒト化ｇｆｐ遺伝子はまた、ＴＧＡ終止コドンを含み得る。
ヒト化ｇｆｐ遺伝子はまた、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、減少した数の特定のコドンを含むことにより定義され得る。この関連での「減少した」もまた、ヒト化配列が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列のコード領域内に存在する同じアミノ酸をコードするコドンに比較して、配列番号２のアミノ酸配列、またはその改変体もしくは等価物をコードするＧＦＰコード領域内の特定のアミノ酸をコードする、減少した数のコドンを含むことを意味する。従って、「減少した」が、いかようにも、コード領域の任意の部分からのコドンの単純な欠失を反映するのではなく、再びクラゲコドンのヒト遺伝子においてより頻繁に生じるコドンでの置換をいうことが理解される。
従って、本発明のヒト化ｇｆｐ遺伝子はまた、減少した数のＧＣＡアラニンコードコドン；減少した数のＧＧＵグリシンコードコドン；減少した数のＣＴＴ、ＣＴＡもしくはＴＴＡロイシンコードコドン；減少した数のＡＧＡアルギニンコードコドン；減少した数のＡＧＴ、ＴＣＡもしくはＴＣＧセリンコードコドン；または減少した数のＧＴＴもしくはＧＴＡバリンコードコドンを含む遺伝子として定義される。
必要とされるとは考えられてはいないが、ヒト化ｇｆｐ遺伝子が、ヒト化遺伝子配列の上流に作動可能に配置されたＫｏｚａｋコンセンサス配列を含む（すなわち、遺伝子がＫｏｚａｋコンセンサス配列の下流に配置される）ことが現在好ましい。
特定の好ましいヒト化ｇｆｐ遺伝子は、配列番号３の核酸配列を含む。しかし、これは決して限定ではなく、そして本発明のまさに１つの例示的な実施態様である。多くの他のそのようなヒト化ｇｆｐ遺伝子をいかにして作製および使用するかについての詳細な指図は、本明細書中に含まれている。例えば、多数の適切なヒト化ｇｆｐ遺伝子のいずれか１つを作製するにあたり、表２、表３、および表４中の情報が言及され得る。
本発明の様式においてヒト化された遺伝子はまた、他のタンパク質コード核酸配列に作動可能に連結され得る。これは一般に、そのような核酸構築物の発現後に、融合タンパク質の産生を生じる。Ｎ末端およびＣ末端の両方の融合タンパク質が意図される。
実質的に任意のタンパク質もしくはペプチドコードＤＮＡ配列、またはその組み合わせが、融合タンパク質をコードするためにヒト化ｇｆｐ配列に融合され得る。これは、標的化ペプチド、治療的タンパク質、組換え発現のためのタンパク質、１つ以上の標的化ペプチドが付着されたタンパク質、タンパク質サブユニットなどをコードするＤＮＡ配列を含む。
組換えベクターおよびプラスミドは、本発明の別の重要な局面を形成する。そのようなベクターにおいて、ヒト化ｇｆｐ遺伝子は、プロモーター（一般に、哺乳動物またはヒト細胞において作動可能であるプロモーター）の転写制御下に配置される。「転写制御下に配置される」は、ヒト化ｇｆｐ配列が、プロモーターの下流にそして転写制御下に配置され、その結果、そのプロモーターが、哺乳動物またはヒト宿主細胞におけるコードされるＧＦＰタンパク質の発現を、ベクターのそのような細胞中への導入に際して、指向させ得ることを意味する。
従って、本発明の組換えベクターは一般に、プロモーターの下流に作動可能に配置されたヒト化ｇｆｐレポーター遺伝子を含む。ここで、プロモーターは、哺乳動物またはヒト細胞におけるヒト化ＧＦＰ遺伝子の発現を指向させ得る。好ましくは、プロモーターは、細胞におけるＧＦＰの発現後にグリーン蛍光を検出することによるＧＦＰの検出を可能にするに十分な量のＧＦＰの発現を指向させる。従って、そのようなプロモーターは、哺乳動物およびヒト細胞において「作動可能」である。
本発明による発現ベクターおよびプラスミドは、１つ以上の構成性プロモーター（例えば、転写を促進することにおいて一般に活性である、ウイルスプロモーターまたは哺乳動物遺伝子由来のプロモーター）を含み得る。構成性ウイルスプロモーターの例としては、ＨＳＶ、ＴＫ、ＲＳＶ、ＳＶ４０、およびＣＭＶプロモーターが挙げられる。この中で、ＣＭＶプロモーターが現在好ましい例である。構成性哺乳動物プロモーターの例としては、βアクチンプロモーターにより例証されるような種々のハウスキーピング遺伝子プロモーターが挙げられる。
誘導性プロモーターおよび／または調節エレメントもまた、本発明の発現ベクターとの使用のために意図される。適切な誘導性プロモーターの例としては、例えば、チトクロムＰ４５０遺伝子、熱ショックタンパク質遺伝子、メタロチオネイン遺伝子、ホルモン誘導性遺伝子（例えば、エストロゲン遺伝子プロモーター）などの遺伝子由来のプロモーターが挙げられる。電離放射線への曝露に応答して活性化されるプロモーター（例えば、ｆｏｓ、ｊｕｎ、およびｅｇｒ−１）もまた意図される。テトラサイクリンに応答性であるｔｅｔＶＰ１６プロモーターが現在好ましい例である。
組織特異的プロモーターおよび／または調節エレメントは、特定の実施態様において有用である。本発明の発現ベクターと使用され得るそのようなプロモーターの例としては、肝臓脂肪酸結合（ＦＡＢ）タンパク質遺伝子（結腸上皮に特異的）；インスリン遺伝子（膵臓細胞に特異的）；トランスフィレチン（ｔｒａｎｓｐｈｙｒｅｔｉｎ）、α１−アンチトリプシン、プラスミノーゲン活性化因子インヒビター１型（ＰＡＩ−１）、アポリポプロテインＡＩおよびＬＤＬレセプター遺伝子（肝臓細胞に特異的）；ミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ）遺伝子（乏突起神経膠細胞に特異的）；グリア繊維酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）遺伝子（神経膠細胞に特異的）；ＯＰＳＩＮ（眼への標的化に特異的）；ならびに神経細胞に特異的である神経特異的エノラーゼ（ＮＳＥ）プロモーターが挙げられる。
発現ベクターおよびプラスミドの構築および使用は、当業者に周知である。従って、実質的に任意の哺乳動物細胞発現ベクターが、本明細書に開示されるヒト化遺伝子に関連して使用され得る。
好ましいベクターおよびプラスミドは、少なくとも１つのマルチクローニング部位を有して構築される。特定の実施態様において、発現ベクターは、プロモーターとヒト化ｇｆｐ遺伝子配列との間に作動可能に配置されたマルチクローニング部位を含む。そのようなベクターは、他の実施態様におけるそれらの使用に加えて、第２のタンパク質コードＤＮＡセグメントを、それがヒト化ｇｆｐ配列と連続的かつインフレームであるように、マルチクローニング部位中にクローン化することにより、Ｎ末端融合タンパク質を作製するために使用され得る。
他の実施態様において、発現ベクターは、発現可能ヒト化ｇｆｐ遺伝子配列の下流に作動可能に配置されたマルチクローニング部位を含み得る。これらのベクターは、それらの使用に加えて、第２のタンパク質コードＤＮＡセグメントを、それがヒト化ｇｆｐ配列と連続的かつインフレームであるように、マルチクローニング部位中にクローン化することにより、Ｃ末端融合タンパク質を作製することにおいて有用である。
その中に第２のタンパク質またはＲＮＡコード核酸セグメントもまた存在するベクターおよびプラスミドはまた、もちろん、核酸セグメントそれ自体の性質にかかわらず、本発明により包含される。
第２のレポーター遺伝子が、本発明の発現ベクター内に含まれ得る。第２のレポーター遺伝子は、第２の転写単位内に含まれ得る。適切な第２のレポーター遺伝子としては、ネオマイシン、ハイグロマイシン、ピューロマイシン、ゼオシン（ｚｅｏｃｉｎ）、ミコフェノール酸、ヒスチジノールおよびメトトレキセートのような薬剤に対する耐性を与える遺伝子が挙げられる。
発現ベクターはまた、ＩＲＥＳエレメント、ポリアデニル化シグナル、スプライスドナー／スプライスアクセプターシグナルなどのような他の核酸配列を含み得る。
適切な発現ベクターの特定の例は、組換えアデノウイルス、組換えアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、または組換えレトロウイルス系を使用する発現に適合されたベクターである。とりわけ、ワクシニアウイルス、単純ヘルペスウイルス、サイトメガロウイルス、および欠陥Ｂ型肝炎ウイルスもまた使用され得る。
特定の実施態様において、発現ベクターまたはプラスミドは、配列番号３の核酸配列を有するヒト化ＧＦＰレポーター遺伝子を含み得る。
レポーター遺伝子発現キットもまた提供される。このキットは一般に、適切な容器手段中に、ヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む少なくとも１つの発現ベクターまたはプラスミドを含む。ベクターまたはプラスミドは一般に、哺乳動物またはヒト細胞における発現後のグリーン蛍光によるＧＦＰの検出を可能にするに十分な量のＧＦＰを発現し得るベクターまたはプラスミドである。
組換え宿主細胞は、本発明の別の局面を形成する。そのような宿主細胞は一般に、少なくとも１コピーのヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む。発現目的のために好ましい細胞は、哺乳動物およびヒト細胞である。しかし、他の細胞型が本発明の細胞型から除外されないことが理解される。従って、細菌細胞、酵母細胞、真菌細胞、昆虫細胞、線虫細胞、および植物細胞のような細胞もまた可能であるが、そのような細胞は発現目的のためには好ましくない。
特定の実施態様において、組換え宿主細胞は好ましくは、細胞がＧＦＰを、最も好ましくはＧＦＰのその蛍光による検出を可能にするに十分な量で、発現する、または発現するように刺激されることを可能にするに有効な様式で、ヒト化ＧＦＰ遺伝子を組み込む。従って、組換え宿主細胞は好ましくは、組換えベクターにより細胞中に導入されたヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む。
特定の実施態様において、組換え宿主細胞は、ヒト化ＧＦＰ遺伝子を発現して、コードされるＧＦＰタンパク質を、好ましくはＧＦＰのその蛍光による検出を可能にするに十分な量で、産生する。約２０コピーほど少しのヒト化ｇｆｐ遺伝子含む細胞が、しばしば、ＧＦＰのそのグリーン蛍光による検出を可能にするに十分な量で、ＧＦＰタンパク質を発現することが意図される。特定の実施態様において、約１０コピー、約５コピー、またはたった約１もしくは２コピーほど少しのヒト化ｇｆｐ遺伝子を含む細胞もまた、特にヒト化ｇｆｐ遺伝子が改変体遺伝子である場合、所望される発現基準を満たしそうである。他の実施態様において、組換え宿主細胞は、約１０時間の時間枠内、そして好ましくは約８時間以内、そして最も好ましくは約６時間以内またはより短い時間以内で検出可能なＧＦＰタンパク質を産生するために、ヒト化遺伝子を発現し得る。
適切な組換え宿主細胞の例としては、ＶＥＲＯ細胞、ＨｅＬａ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞株の細胞、ＣＯＳ細胞（例えば、ＣＯＳ−７）、ならびにＷ１３８、ＢＨＫ、ＨｅｐＧ２、３Ｔ３、ＲＩＮ、ＭＤＣＫ、Ａ５４９、ＰＣ１２、Ｋ５６２、および２９３細胞が挙げられる。
哺乳動物から細胞を取り出し、そして細胞を限定された期間培養した後に樹立された初代細胞株の細胞もまた、本発明の細胞内に含まれる。これらの細胞は、人の手により加工され、そしてそれがもともと回収された同じ宿主動物に戻され得る。ヒト化ｇｆｐ遺伝子を含むそのような細胞は、その位置にかかわらず、本発明の範囲内に入る。
当然、組換え細胞はまた、遺伝子治療により標的化され得たような、動物またはヒト被験体の身体内に位置する細胞を含む。これらの細胞としては、遺伝子が獲得された様式（例えば、トランスフェクション、感染などによる）にかかわらず、少なくとも１コピーのヒト化ｇｆｐ遺伝子またはベクターを含む全ての細胞が挙げられる。
特定の実施態様において、配列番号３の核酸配列を含むヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む組換え宿主細胞が意図される。
ヒト化ｇｆｐ遺伝子を使用する多数の方法が、本発明により提供される。哺乳動物またはヒト細胞を、細胞内で少なくとも一つのヒト化ＧＦＰ遺伝子を発現することにより標識またはタグ化する方法は、各方法の中心である。ヒト化ｇｆｐ遺伝子は、好ましくは、ＧＦＰ蛍光を検出することによる細胞内のＧＦＰの容易な検出を可能にするのに十分な量のＧＦＰを産生するはずである。
細胞の集団内で哺乳動物またはヒト細胞を同定する方法もまた提供される。このような方法はまず、一般に、蛍光によるＧＦＰ検出を可能にするために十分な量のＧＦＰを産生するために有効な様式で、細胞内で少なくとも一つのヒト化ＧＦＰ遺伝子を発現する工程を包含する。次いで、細胞はＧＦＰを発現しない細胞の集団と混合されるか、または自然に混合させ、続いてこの細胞が、ＧＦＰ蛍光細胞を同定する手段により同定される。
本明細書中で使用される用語「ＧＦＰ蛍光細胞」は、細胞中のＧＦＰからのグリーン蛍光を検出することによる細胞の結果的な検出を可能にするために十分な量のＧＦＰ産物の生産を生じるために有効な様式でヒト化ＧＦＰ遺伝子を発現する細胞を意味する。
本発明はさらに、外因性ＤＮＡセグメントを含む哺乳動物またはヒト細胞を同定するための方法を提供する。この方法はまず、一般に、外因性ＤＮＡセグメントに作動可能に連結されたヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを哺乳動物またはヒト細胞に導入する工程を包含する。次いで、細胞は、グリーン蛍光によるＧＦＰ検出を可能にするために十分な量のＧＦＰを産生するために、好ましくは、ヒト化ｇｆｐ遺伝子の発現を可能にするのに有効な条件下および期間で培養される。引き続いて、外因性ＤＮＡセグメントを含む細胞を結果的に同定することは、ＧＦＰ蛍光細胞を同定することにより達成される。
これらの方法は、未翻訳産物（たとえば、アンチセンス核酸分子、リボゾーム、または他のＲＮＡ種）をコードする外因性ＤＮＡセグメントを同定するために、および翻訳産物（例えば、選択されるタンパク質またはペプチド）をコードする外因性ＤＮＡセグメントを同定するためにもまた適切である。
特定のこのような実施態様において、このような方法での使用のための発現ベクターは、ＧＦＰをコードするヒト化ｇｆｐ遺伝子として規定される第１のコード領域を含み、そしてまた外因性ＤＮＡセグメントを含む第２のコード領域を含む。これらのベクターは、一般に、少なくとも２つの転写ユニットまたは翻訳ユニットを含むベクターとして公知である。２つの転写ユニットは、それらのそれぞれの下流遺伝子の発現を指向する２つのプロモーターを天然に含む。
外因性ＤＮＡセグメントを含む哺乳動物またはヒト細胞を同定する方法はまた、選択されるタンパク質またはペプチドに作動可能に連結されたＧＦＰを含む融合タンパク質をコードする第１のコード領域を含む発現ベクターを用いる使用に適切である。このベクターは、選択されるタンパク質またはペプチドに作動可能に連結されたＧＦＰを含む融合タンパク質を発現する。本発明のこれらの局面は、一般に、必ずしも排他的ではないが、翻訳産物をコードする外因性ＤＮＡセグメントの検出を確証する。
このような様式で発現される融合タンパク質は、細胞下の（ｓｕｂ−ｃｅｌｌｕｌａｒ）局在化シグナル（例えば、核標的化ペプチドまたはミトコンドリア標的化ペプチド）を含むペプチドに作動可能に連結されたＧＦＰを含み得る。融合タンパク質はまた、細胞下の局在化シグナルを含む選択されるタンパク質およびペプチドの両方に作動可能に連結されたＧＦＰを含み得る。
このような同定方法は、以下に記載されるような考慮において種々の目的でインビトロで実施され得る。これらの同定方法はまた、インビボで実施され得、ここで細胞は、哺乳動物またはヒト被験体内に位置される。
２つ以上のヒト化ｇｆｐ遺伝子（各々が異なるスペクトル特性を有するＧＦＰタンパク質を発現する）が、上記の様式で細胞内で検出され得る。１つ、２つ、またはそれ以上のいずれかのヒト化ｇｆｐ遺伝子を発現するＧＦＰ蛍光細胞は、種々の方法により同定され得、この方法は、顕微鏡観察および蛍光活性化セルソーティング（ＦＡＣＳ）を含む。
本発明の方法のさらなる例は、哺乳動物細胞またはヒト細胞内での選択されるタンパク質の位置を決定するための方法である。これらの方法はまず、一般に、選択されるタンパク質をコードする遺伝子に作動可能に連結されたヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む連続するＤＮＡ配列を含む発現ベクターを細胞に導入する工程を包含する。このベクターは、一般に、選択されるタンパク質に作動可能に連結されたＧＦＰを含む融合タンパク質を発現する。ここで、この融合タンパク質は、ＧＦＰのグリーン蛍光を検出することによる細胞の検出を可能にするために十分な量で産生される。次いで、ＧＦＰからのグリーン蛍光の位置を同定することにより、細胞内の選択されるタンパク質の位置が同定され得る。
これらの方法は、細胞内での選択されるタンパク質の位置を決定するために適切であり、ここで、この位置は、外部刺激（例えば、熱、低温、塩、またはホルモン、サイトカイン、神経伝達物質などのような種々のアゴニストの存在）に依存すると知られるかまたは考えられる。これらの方法はまた、細胞内の選択されるタンパク質の位置を決定するために適切であり、ここで、この位置は、細胞周期における変化の間、細胞の老化の間、およびアポトーシスなどの間に存在するような内部シグナルに依存すると知られるかまたは考えられる。
本発明の方法のなおさらなる例は、タンパク質を哺乳動物またはヒト細胞内の選択される位置へ標的化するための方法である。これらの方法はまず、一般に、ヒト化ＧＦＰ遺伝子のＤＮＡ配列エレメントに作動可能に連結されそしてそれに連続する標的化ペプチド（これはまた、タンパク質をコードするＤＮＡ配列エレメントに作動可能に連結されそしてそれに連続する）をコードするＤＮＡ配列エレメントを含むＤＮＡ配列を含む発現ベクターを細胞内に導入する工程を包含する。このようなベクターは、ＧＦＰおよびタンパク質に作動可能に連結された標的化ペプチドを含む融合タンパク質を発現する。ここで、この融合タンパク質は、ＧＦＰ蛍光を検出することによって細胞の検出を可能にするために十分な量で細胞内で産生される。次いで、タンパク質は、細胞内の選択される位置に標的化され、そしてその位置が、グリーン蛍光の位置を検出することにより確証される。
本発明に関連する方法のなおさらなる例は、哺乳動物またはヒト細胞内の候補プロモーターを試験するための方法である。
これらの方法は、一般に、候補プロモーターの制御下でヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを細胞に導入する工程および候補プロモーターによるヒト化ＧＦＰ遺伝子の発現を可能にするために有効な条件下および十分な期間で細胞を維持する工程を包含する。「有効な条件」および「十分な期間」は、既知の操作的なプロモーターを使用する場合に、グリーン蛍光によるＧＦＰ検出を可能にするために十分な量で産生されるＧＦＰを通常生じるそれらの条件および時間として定義される。
適切な条件下で細胞を維持した後、ついで、任意のＧＦＰ蛍光細胞が同定される。ここで、ＧＦＰ蛍光細胞の存在は、同定される細胞内での発現構築物における活性プロモーターを示す。
これらの方法は、候補組織特異的プロモーターを分析するため（ここで、このプロモーターは、哺乳動物またはヒト細胞の範囲内で試験され得る）；および候補の誘導性プロモーターを分析するため（ここで、このプロモーターは、一般に、条件の範囲下で試験される）に適切である。本明細書中で使用される用語「組織特異的プロモーター」は、特定の組織中で排他的に遺伝子発現を指向するプロモーターおよび所定の組織中で遺伝子発現を優先的に指向するプロモーター（これはまた、「組織優先的」プロモーターと名付けられる）をいうために使用される。候補プロモーターはまた、哺乳動物またはヒト細胞内での発現のために試験される候補遺伝子と天然に会合するプロモーターであり得る。
これらの方法はさらに、インビトロおよびインビボでプロモーターを分析するために適切である。ここで、後者の場合、細胞は、哺乳動物またはヒト被験体内に位置される。
プロモーターの文脈において、ヒト化ｇｆｐを使用するための方法のさらなる例は、哺乳動物またはヒト細胞内の選択されるプロモーターからの転写を刺激する物質を検出するそれらの方法である。さらに、一般に、所定のプロモーターの制御下でヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターが、哺乳動物またはヒト細胞に導入される。次いで、細胞が、所定のプロモーターからの転写を刺激し得ることが知られるかまたは疑わしい物質を含むことが疑われる組成物に曝される。次いで、細胞は、活性プロモーターが、ＧＦＰ由来グリーン蛍光を検出することによって細胞検出を可能にするために十分な量でＧＦＰ融合タンパク質産生を刺激することを通常可能にする期間、培養または維持される。次いで、引き続くＧＦＰ蛍光細胞の同定は、所定のプロモーターからの転写を刺激する物質の元の存在を示す。
これらの方法はまた、インビトロおよびインビボでの使用に適切である。インビトロでの使用は、毒素および汚染物質のような物質が、ヒト化ｇｆｐ遺伝子構築物内での適切なプロモーターを使用することにより検出されることを可能にする。
遺伝子治療の部分として、処置される哺乳動物またはヒト被験体内の遺伝子発現レベルを決定することがしばしば必要とされる。本発明はまた、このような発現レベルを決定するための方法を提供する。これらの方法は、一般に、選択される遺伝子に作動可能に連結されるヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを動物の細胞内で発現させる工程を包含する。発現ベクターは、好ましくは、ＧＦＰ融合タンパク質を発現するベクター、またはヒト化ｇｆｐ遺伝子および選択されるタンパク質遺伝子がそれぞれ同一または等価のプロモーターを使用するベクターのいずれかである。プロモーターは、好ましくは、インビトロでの検出を可能にするために十分なＧＦＰ発現を生じることが示されている。次いで、動物の細胞内のＧＦＰ蛍光が決定され、ここで、ＧＦＰ蛍光のレベルは動物内における選択される遺伝子の発現レベルを示す。
これらの方法は、哺乳動物またはヒト被験体の異なる組織内の選択される遺伝子の発現を分析するための方法を提供するように適合され得る。このような方法は、一般に、天然の遺伝子プロモーターの制御下で選択される遺伝子（ここで、この遺伝子は、ヒト化ＧＦＰ遺伝子に作動可能に連結される）を含む発現ベクターを哺乳動物の細胞内に導入する工程を包含する。ベクターは、好ましくは、ＧＦＰに作動可能に連結されたコード遺伝子産物を含む融合タンパク質を発現し、この融合タンパク質は、ＧＦＰのグリーン蛍光を検出することによる細胞検出を可能にするために十分な量で産生される。遺伝子の発現を可能にするために有効な条件下および十分な期間で哺乳動物を維持した後、次いで、哺乳動物の組織の細胞が、ＧＦＰ蛍光細胞を検出するために分析され、ここで、所定の組織内のＧＦＰ蛍光細胞の存在は、組織内の遺伝子発現を示す。
ヒト化ｇｆｐ遺伝子が使用され得るさらなる例は、ＧＦＰ自身の組換え産生である。ヒト化ＧＦＰ遺伝子を使用するこのような方法は、単に、哺乳動物またはヒト宿主細胞内でヒト化遺伝子を発現する工程およびその細胞により発現されるＧＦＰを回収する工程を包含する。
これらの方法は、以下の工程を包含するように、より完全に記載され得る：
（ａ）ヒト化ＧＦＰ遺伝子が哺乳動物またはヒト細胞内で操作的なプロモーターの制御下で位置される、組換えベクターを調製する工程；
（ｂ）組み換えベクターを哺乳動物またはヒト宿主細胞に導入する工程；
（ｃ）コード化グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）の発現を可能にするために有効な条件下および十分な期間で宿主細胞を培養する工程；および
（ｄ）その発現されたＧＦＰを回収する工程、および、好ましくは、他の細胞性タンパク質の十分な量を有さないＧＦＰを精製する工程。
このような方法の適合化は、ヒト化ＧＦＰ遺伝子が、公知の分子量のタンパク質またはペプチドをコードするＤＮＡ配列と融合されることを含む。従って、宿主細胞による発現は、蛍光分子量マーカーとして使用され得るＧＦＰ融合タンパク質を生じる。このような蛍光分子量マーカーの範囲は、分子量決定キットを作製するためにこのように産生される。
・本発明はさらに、以下を提供する：
・（項目１）ヒト化グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子。
・（項目２）上記遺伝子が、配列番号２のアミノ酸配列を有するグリーン蛍光タンパク質をコードする、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３）上記遺伝子が、配列番号２のアミノ酸配列を有するグリーン蛍光タンパク質をコードし、６５位のセリンをトレオニンに置換した、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４）上記遺伝子が、配列番号２のアミノ酸配列を有するグリーン蛍光タンパク質をコードする遺伝子であって、６６位のチロシンをヒスチジンに置換した、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目５）上記遺伝子が、配列番号２のアミノ酸配列を有するグリーン蛍光タンパク質をコードする遺伝子であって、６４位と６９位との間の発色団配列Ｐｈｅ Ｓｅｒ Ｔｙｒ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ｇｌｎ（配列番号４）を配列Ｍｅｔ Ｇｌｙ Ｔｙｒ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ｌｅｕ（配列番号５）に置換した、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目６）上記コドン位置の少なくとも約１０％がヒト化コドンを含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目７）上記コドン位置の少なくとも約１５％がヒト化コドンを含む、項目６に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目８）上記コドン位置の少なくとも約２０％がヒト化コドンを含む、項目７に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目９）上記コドン位置の少なくとも約２５％がヒト化コドンを含む、項目８に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１０）上記コドン位置の少なくとも約３０％がヒト化コドンを含む、項目９に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１１）上記コドン位置の少なくとも約３５％がヒト化コドンを含む、項目１０に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１２）上記コドン位置の少なくとも約５０％がヒト化コドンを含む、項目１１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１３）上記遺伝子が、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、９３、１２５、１５０、１７８、１９５、２０８、２３６、および２２４に位置する１０個のコドンからの少なくとも７個のヒト化コドンを含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１４）上記遺伝子が、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、９３、１２５、１５０、１７８、１９５、２０８、２３６、および２２４に位置する１０個のコドンからの少なくとも８個のヒト化コドンを含む、項目１３に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１５）上記遺伝子が、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、９３、１２５、１５０、１７８、１９５、２０８、２３６、および２２４に位置する１０個のコドンからの少なくとも９個のヒト化コドンを含む、項目１４に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１６）上記遺伝子が、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、９３、１２５、１５０、１７８、１９５、２０８、２３６、および２２４の各々で１個のヒト化コドンを含む、項目１５に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１７）上記遺伝子が、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、１２５、１７８、１９５、および２３６でヒト化ロイシンコドンＣＴＧ、ＣＴＣ、またはＴＴＧのいずれか１つを含む、項目１３に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１８）上記遺伝子が、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置９３、１５０、および２２４でヒト化バリンコドンＧＴＧを含む、項目１３に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１９）上記遺伝子が、ＧＦＰ遺伝子配列のコドン位置２０８でヒト化セリンコドンＴＣＴを含む、項目１３に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２０）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数の増加した数のＧＣＣまたはＧＣＴアラニンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２１）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＴＧＣシステインコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２２）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＧＡＣアスパラギン酸コードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２３）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＧＡＧグルタミン酸コードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２４）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＴＴＣフェニルアラニンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２５）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＧＧＣグリシンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２６）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＣＡＣヒスチジンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２７）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＡＴＣイソロイシンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２８）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＡＡＧリジンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目２９）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＣＴＧまたはＣＴＣロイシンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３０）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＡＡＣアスパラギンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３１）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＣＣＣまたはＣＣＴプロリンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３２）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＣＡＧグルタミンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３３）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＣＧＣ、ＡＧＧ、またはＣＧＧアルギニンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３４）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＡＧＣまたはＴＣＣセリンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３５）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＡＣＣトレオニンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３６）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＧＴＧまたはＧＴＣバリンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３７）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、増加した数のＴＡＣチロシンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３８）上記遺伝子が、ＴＧＡ終止コドンを含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目３９）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、減少した数のＧＣＡアラニンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４０）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、減少した数のＧＧＵグリシンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４１）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、減少した数のＣＴＴ、ＣＴＡ、またはＴＴＡロイシンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４２）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、減少した数のＡＧＡアルギニンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４３）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、減少した数のＡＧＴ、ＴＣＡ、またはＴＣＧセリンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４４）上記遺伝子が、配列番号１の野生型クラゲ遺伝子配列に比較して、減少した数のＧＴＴまたはＧＴＡバリンコードコドンをコード領域内に含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４５）上記遺伝子が、Ｋｏｚａｋコンセンサス配列の下流に作動可能に位置する、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４６）上記遺伝子が、配列番号３の核酸配列を含む、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４７）上記遺伝子が、タンパク質コード核酸配列に作動可能に連結する、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４８）上記遺伝子が、哺乳動物細胞において操作的なプロモーターの転写制御下に位置する、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目４９）組換えベクターとしてさらに規定される、項目４８に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目５０）プロモーターの下流に作動可能に位置するヒト化ＧＦＰレポーター遺伝子を包含し、上記プロモーターが哺乳動物細胞においてヒト化ＧＦＰ遺伝子の発現を指向する、発現ベクター。
・（項目５１）上記プロモーターが構成プロモーターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目５２）上記プロモーターがウイルスプロモーターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目５３）上記プロモーターが、ＨＳＶ、ＴＫ、ＲＳＶ、ＳＶ４０、ＣＭＶ、またはβアクチンプロモーターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目５４）上記プロモーターがＣＭＶプロモーターである、項目５３に記載の発現ベクター。
・（項目５５）上記プロモーターが、誘導プロモーターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目５６）上記プロモーターが、チトクロムＰ４５０、熱ショックタンパク質、メタロチオネインまたはエストロゲン遺伝子プロモーター、放射線誘導（ｒａｄｉａｔｉｏｎ−ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ）プロモーター、またはｔｅｔＶＰ１６プロモーターである、項目５５に記載の発現ベクター。
・（項目５７）上記プロモーターが、組織特異的プロモーターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目５８）上記プロモーターが、ＦＡＢ、インスリン、トランスフィレチン、α１−抗トリプシン、ＰＡＩ−１、アポリポタンパク質ＡＩ、ＬＤＬレセプター、ＭＢＰ、ＧＦＡＰ、ＯＰＳＩＮ、またはＮＳＥ遺伝子プロモーターである、項目５７に記載の発現ベクター。
・（項目５９）上記発現ベクターが、複数のクローニング部位をさらに含む、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目６０）上記発現ベクターが、上記プロモーターと上記ヒト化ＧＦＰ遺伝子との間に作動可能に位置された複数のクローニング部位を含む、項目５９に記載の発現ベクター。
・（項目６１）上記発現ベクターが、上記ヒト化ＧＦＰ遺伝子の下流に作動可能に位置された複数のクローニング部位を含む、項目５９に記載の発現ベクター。
・（項目６２）上記発現ベクターが、ＩＲＥＳエレメントをさらに含む、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目６３）上記発現ベクターが、第２レポーター遺伝子をさらに含む、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目６４）上記第２レポーター遺伝子が、第２転写単位内に含まれる、項目６３に記載の発現ベクター。
・（項目６５）上記第２レポーター遺伝子が、ネオマイシン、ヒグロマイシン、ピューロマイシン、ゼオシン、ミコフェノール酸、ヒスチジノール、またはメトトレキセートに対する耐性を付与する、項目６３に記載の発現ベクター。
・（項目６６）上記発現ベクターが、ポリアデニル化シグナルをさらに含む、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目６７）上記発現ベクターが、組換えアデノウイルスベクターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目６８）上記発現ベクターが、組換えアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目６９）上記発現ベクターが、組換えレトロウイルスベクターである、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目７０）上記発現ベクターが、配列番号３の核酸配列を有するヒト化ＧＦＰレポーター遺伝子を含む、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目７１）上記発現ベクターが、増強されたグリーンまたは増強されたブルー蛍光タンパク質を発現する、項目５０に記載の発現ベクター。
・（項目７２）ヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む、組換え宿主細胞。
・（項目７３）上記ヒト化ＧＦＰ遺伝子が、組換えベクターを用いて上記細胞に導入される、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目７４）上記細胞が、上記ヒト化ＧＦＰ遺伝子を発現し、コード化ＧＦＰタンパク質を産生する、項目７３に記載の組換え宿主細胞。
・（項目７５）上記細胞が、哺乳動物細胞である、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目７６）上記細胞が、ヒト細胞である、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目７７）上記細胞が、ＶＥＲＯ、ＨｅＬａ、ＣＨＯ、ＣＯＳ、Ｗ１３８、ＢＨＫ、ＨｅｐＧ２、３Ｔ３、ＲＩＮ、ＭＤＣＫ、Ａ５４９、ＰＣ１２、Ｋ５６２、または２９３細胞である、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目７８）上記細胞が、一次細胞株の細胞である、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目７９）上記細胞が、哺乳動物内に位置される、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目８０）上記細胞が、配列番号３の核酸配列を含むヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目８１）上記細胞が、所望のタンパク質を発現する組換え遺伝子をさらに含む、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
・（項目８２）適切な容器手段中に、ヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを含む、レポーター遺伝子発現キット。
・（項目８３）哺乳動物細胞を標識するための方法であって、ヒト化ＧＦＰ遺伝子を上記細胞において発現する工程を包含する、方法。
・（項目８４）細胞の集団内の哺乳動物細胞を同定するための方法であって、以下の工程：
（ａ）上記細胞において、ヒト化ＧＦＰ遺伝子を発現する工程；
（ｂ）ＧＦＰを発現しない細胞の集団と上記細胞を混合する工程；および
（ｃ）ＧＦＰ蛍光細胞を同定することによって上記細胞を同定する工程、
を包含する、方法。
・（項目８５）外因性ＤＮＡセグメントを含む哺乳動物細胞を同定する方法であって、以下の工程：
（ａ）外因性ＤＮＡセグメントに作動可能に連結されるヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを、上記細胞に導入する工程；および
（ｂ）ＧＦＰ蛍光細胞を同定することによって、上記外因性ＤＮＡセグメントを含む細胞を同定する工程、
を包含する、方法。
・（項目８６）上記発現ベクターが、ＧＦＰをコードする第１コード領域および上記外因性ＤＮＡセグメントを含む第２コード領域を含む、項目８５に記載の方法。
・（項目８７）上記外因性ＤＮＡセグメントが、非翻訳産物をコードする、項目８５に記載の方法。
・（項目８８）上記外因性ＤＮＡセグメントが、選択されたタンパク質またはペプチドをコードする、項目８５に記載の方法。
・（項目８９）上記発現ベクターが、上記選択されたタンパク質またはペプチドに作動可能に連結されたＧＦＰを含む融合タンパク質をコードする第１コード領域を含む、項目８８に記載の方法。
・（項目９０）上記融合タンパク質が、細胞下の局在化シグナルを含むペプチドに作動可能に連結されたＧＦＰを含む、項目８９に記載の方法。
・（項目９１）上記融合タンパク質が、細胞下の局在化シグナルを含む選択されたタンパク質およびペプチドに作動可能に連結されたＧＦＰを含む、項目９０に記載の方法。
・（項目９２）上記融合タンパク質が、核標的化ペプチドに連結されたＧＦＰを含む、項目９０に記載の方法。
・（項目９３）上記融合タンパク質が、ミトコンドリア標的化ペプチドに連結されたＧＦＰを含む、項目９０に記載の方法。
・（項目９４）上記細胞が、異なるスペクトル特性を有するＧＦＰタンパク質を各々発現する、第１および第２ヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む、項目８５に記載の方法。
・（項目９５）上記細胞が、ヒト細胞である、項目８５に記載の方法。
・（項目９６）上記ＧＦＰ蛍光細胞が、蛍光活性化セルソーティングによって同定される、項目８５に記載の方法。
・（項目９７）上記細胞が、哺乳動物内に位置する、項目８５に記載の方法。
・（項目９８）哺乳動物細胞内の選択されたタンパク質の位置を測定するための方法であって、以下の工程：
（ａ）上記選択されたタンパク質をコードする遺伝子に作動可能に連結されたヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む連続したＤＮＡ配列を含む発現ベクターを、上記細胞に導入する工程；および
（ｂ）ＧＦＰ蛍光の位置を同定することにより上記細胞内の上記選択されたタンパク質の位置を同定する工程、
を包含する、方法。
・（項目９９）上記細胞内の上記選択されたタンパク質の上記位置が、外部刺激に依存する、項目９８に記載の方法。
・（項目１００）上記細胞内の上記選択されたタンパク質の上記位置が、細胞周期に依存する、項目９８に記載の方法。
・（項目１０１）哺乳動物細胞内の選択された位置にタンパク質を標的化する方法であって、以下の工程：
（ａ）ヒト化ＧＦＰ遺伝子およびタンパク質コード遺伝子に作動可能に連結された標的化ペプチドをコードする配列を含む連続したＤＮＡ配列を含む発現ベクターを、上記細胞に導入する工程；および
（ｂ）ＧＦＰ蛍光の位置を同定することにより、上記細胞内の上記タンパク質の上記選択された位置を確認する工程、
を包含する、方法。
・（項目１０２）哺乳動物細胞における候補プロモーターを試験する方法であって、以下の工程：
（ａ）上記候補プロモーターの制御下でヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを、上記細胞に導入する工程；
（ｂ）上記候補プロモーターによって上記ヒト化ＧＦＰ遺伝子の発現を可能にするのに効果的な条件下および十分な期間、上記細胞を維持する工程；および
（ｃ）ＧＦＰ蛍光細胞を同定する工程であって、ＧＦＰ蛍光細胞の存在が、活性プロモーターを示す、工程、
を包含する、方法。
・（項目１０３）上記候補プロモーターが、候補的組織特異的プロモーターである、項目１０２に記載の方法。
・（項目１０４）上記候補プロモーターが、候補的誘導プロモーターである、項目１０２に記載の方法。
・（項目１０５）上記候補プロモーターが、哺乳動物細胞における発現について試験される候補的遺伝子と天然に会合する、項目１０２に記載の方法。
・（項目１０６）上記細胞が、哺乳動物内に位置する、項目１０２に記載の方法。
・（項目１０７）哺乳動物細胞において、選択されたプロモーターからの転写を刺激する物質を検出する方法であって、以下の工程：
（ａ）上記選択されたプロモーターの制御下で、ヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを、哺乳動物細胞に導入する工程；
（ｂ）上記物質を含むと思われる組成物を、上記細胞に曝露する工程；および
（ｃ）ＧＦＰ蛍光細胞を同定する工程であって、ＧＦＰ蛍光細胞の存在が、上記選択されたプロモーターからの転写を刺激する物質の存在を示す、工程、
を包含する、方法。
・（項目１０８）上記物質が、毒素または汚染物質である、項目１０７に記載の方法。
・（項目１０９）哺乳動物において、選択された遺伝子の発現レベルを測定するための方法であって、以下の工程：
（ａ）選択された遺伝子に作動可能に連結されたヒト化ＧＦＰ遺伝子を含む発現ベクターを、上記哺乳動物の細胞において発現する工程；および
（ｂ）上記哺乳動物の細胞においてＧＦＰ蛍光を測定する工程であって、ＧＦＰ蛍光のレベルが、上記選択された遺伝子の発現レベルを示す、工程、
を包含する、方法。
・（項目１１０）哺乳動物の異なる組織における選択された遺伝子の発現を分析するための方法であって、以下の工程：
（ａ）天然の遺伝子プロモーターの制御下で上記選択された遺伝子を含む発現ベクターを、上記哺乳動物の細胞に導入する工程であって、上記遺伝子は、ヒト化ＧＦＰ遺伝子に作動可能に連結した、工程；
（ｂ）上記遺伝子の発現を可能にするのに効果的な条件下および十分な期間、上記哺乳動物を維持する工程；および
（ｃ）上記哺乳動物の組織の細胞を分析する工程であって、所与の組織におけるＧＦＰ蛍光細胞の存在が、上記組織における遺伝子発現を示す、工程、
を包含する、方法。
・（項目１１１）ヒト化ＧＦＰ遺伝子を用いる方法であって、哺乳動物宿主細胞においてヒト化ＧＦＰ遺伝子を発現する工程、および上記細胞によって発現される上記ＧＦＰを回収する工程を包含する、方法。
・（項目１１２）上記ヒト化ＧＦＰ遺伝子が、既知の分子量のタンパク質またはペプチドをコードするＤＮＡ配列と融合し、そしてここで上記宿主細胞が、ＧＦＰ融合タンパク質を発現する、項目１１１に記載の方法。
・（項目１１３）上記遺伝子が、１４５位のチロシンがフェニルアラニンで置換された配列番号２のアミノ酸配列を有するブルー蛍光タンパク質をコードする、項目４に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１１４）配列番号２のアミノ酸配列の６６位のチロシンをコードするＴＡＴが、ＣＡＴで置換され、そして配列番号２のアミノ酸の１４５位のチロシンをコードするＴＡＴが、ＴＴＣで置換されている、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１１５）上記遺伝子が、６４位のフェニルアラニンがロイシンで置換され、そして６５位のセリンがトレオニンで置換された配列番号２のアミノ酸配列を有するグリーン蛍光タンパク質をコードする、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
・（項目１１６）配列番号２のアミノ酸配列の６４位のフェニルアラニンをコードするＴＴＣが、ＣＴＧで置換され、そして６５位のセリンをコードするＴＣＴが、ＡＣＣで置換されている、項目１に記載のヒト化ＧＦＰ遺伝子。
好ましい実施態様の詳細な説明
クラゲグリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）は、レポーター遺伝子としての使用のための有望な候補として提唱されている。しかし、ｇｆｐ遺伝子の顕著な限界は、それが哺乳動物細胞系で十分な発現を生じないことである。実際に、組換えアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）によりヒト細胞に送達されたクラゲＧＦＰレポーター遺伝子を発現するような本発明者らの最初の試みは、失敗した。
本発明者らは、ＧＦＰの低発現の重要な理由は、ヒト細胞環境におけるｍＲＮＡの乏しい翻訳効率であると仮定した。これは、クラゲにおいて使用されるものと異なるイソ受容ｔＲＮＡのセットにより特徴付けられる。発現の問題を解決することにおいて、それ故、本発明は、哺乳動物細胞（特に、ヒト起源の細胞）における高レベルの発現に適合されたクラゲグリーン蛍光タンパク質（ｇｆｐｈ）ｃＤＮＡの合成バージョンを提供する。本発明に従って、塩基置換が、ｇｆｐ１０コード配列内でのコドン使用頻度を変化させるために、ｇｆｐコドンにおいて作製され、それにより哺乳動物細胞中での発現により適切となる。哺乳動物およびヒト細胞における遺伝子の送達および発現のための、発現プラスミドならびに一連の汎用組換えＡＡＶおよびＡｄベクターもまた、提供される。
特定の好ましい局面において、本発明は、哺乳動物およびヒト細胞における高レベル発現に適合されたＡ．ｖｉｃｔｏｒｉａグリーン蛍光タンパク質ｃＤＮＡの特定の合成バージョンに関する。この模範的な構築物において、計９２塩基の置換が、ｇｆｐ１０コード配列内でのコドン使用頻度を変化させ、そして哺乳動物細胞における発現を劇的に改良するために、８８のコドンにおいて作製された。
蛍光顕微鏡については、本発明者らは、ＧＦＰレポーター遺伝子系の感受性を、ヒト化構築物について約２２倍。そして第２のヒト化構築物について少なくとも４５倍増加させた。ヒト化遺伝子構築物のＦＡＣＳ分析において、１つの構築物が、少なくとも３２倍、元のクラゲ遺伝子より感受性であって、そして、他の構築物は、１９０倍、元のクラゲ遺伝子より感受性であった。ヒト化ＧＦＰが、Ｇ４１８耐性細胞株においてｒＡＡＶプロウイルスのｇｆｐ−ｎｅｏカセットの一部分として安定的に取り込まれた場合、細胞のかなりの部分が、視覚的に検出可能なＧＦＰを発現する。
以前に公開されたデータによると、ｒＡＡＶは繰り返し反復として、１〜１０の範囲の細胞当たりのゲノムコピー数を取り込む（Ｃｈｅｕｎｇら、１９８０；Ｌａｕｇｈｌｉｎら、１９８６；ＭａｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８；Ｓａｍｕｌｓｋｉら、１９８９）。したがって、強力プロモーターの制御下で、細胞当たり１〜１０コピーのヒト化ＧＦＰの範囲は、本明細書に記載されるように、検出され得る。特定のＧＦＰ変異体については、この数は１と同じくらい低くあり得る。
ヒト化ＧＦＰを有する使用のための汎用ベクターの１つの例として、ｒＡＡＶベクターが提供される。ベクターのｐＴＲＢＳ−ＵＦ（使用者に優しい）シリーズの設計（図２Ａ）は、ｒＡＡＶベクターの構築物において、便宜と柔軟性を提供する。５Ｋｂｐの最大クローニング容量を使用するために、全レポーター遺伝子カセットがＢｇｌＩＩでの消化により欠損させられ得、したがって、ＡＡＶ ＤＮＡの複製およびパッケージングのために必要な配列のみであるＡＡＶの２つの末端反復のみが残る。
ｐＴＲＢＳ−ＵＦシリーズは、２つのレポーター遺伝子カセットであるＧＦＰおよびｎｅｏ （それぞれ自身のプロモーターおよびポリアデニル化シグナルを有する）を含む。これらの２つの転写単位は、独立に欠損され得（ＧＦＰに対してはＫｐｎＩ−ＮｏｔＩ消化、そしてｎｅｏに対してはＳａｌＩ消化）、これは目的の遺伝子のためのクローニングスペースを増大させる。このように使用される場合においてさえも、このベクターは、１．６Ｋｂｐまでの別の転写単位を適応させ得る。
さらに、与えられた細胞型または組織において特定のプロモーターの効率はまた、ベクターＤＮＡをＫｐｎＩおよびＸｂａＩで消化した後、ｇｆｐ遺伝子のＣＶＭプロモーター上流にこれを置換することにより試験され得る。 ｐＴＲＢＳ−ＵＦ３ベクターの設計はまた、ＩＲＥＳエレメントの使用により、レポーターｇｆｐ遺伝子および同じプロモーター由来の目的の遺伝子レポーターの協調発現を可能にさせる。
さらに、本発明者らは、ＩＲＥＳエレメントの制御下で、ヒト化ＧＦＰレポーター遺伝子を有するＡｄシャトルベクターの構築物を記述する。組換えＡｄを感染させた２９３細胞は、代表的なＣＰＥおよび明るい緑の蛍光を示した。ＧＦＰの発現は、迅速で簡便な真の組換えＡｄクローン選択を、偽のプラークと区別することを可能にする。
ヒト化ＧＦＰはまた、他のウイルスおよび非ウイルスベクターおよび発現系に取り込まれ得る。本発明のヒト化遺伝子およびベクターを使用して、哺乳動物およびヒト細胞株におけるｇｆｐ遺伝子配列の効率的な形質導入および発現が可能である。これは、本明細書に記載されるように、モルモット眼の神経感覚細胞内のインビボの遺伝子発現により、説明される。ヒト化ｇｆｐ遺伝子は、蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）による細胞選別、およびヒト遺伝子治療におけるような多くの使用を有する。
実際、本明細書に記載された系は、哺乳動物起源の細胞において、単純ＦＡＣＳ選別による検出を可能にするのに十分な感受性レベルの効率的な遺伝子の形質導入および発現を媒介することが示される。Ｇ４１８のような薬物で形質転換された細胞の選択、あるいはβガラクトシダーゼのような酵素活性の可視化のための細胞の操作は、このように、省略される。ＡＡＶおよびＡｄが、例のように、非常に広範な宿主範囲を有するため、記載されたベクターは、ヒト遺伝子治療を含む、多数の遺伝子送達技術において有用である。

１．グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子
グリーン蛍光タンパク質遺伝子および機能的なタンパク質は、表１に示されるように、種々の生物体において、存在していると考えられる。このような遺伝子を発現する任意の生物発光刺胞動物および有櫛動物由来のｇｆｐ遺伝子は、本発明に従って、ヒト化ｇｆｐ遺伝子を調製するための出発点として使用され得る。
Figure 2008086327
Figure 2008086327
＊インビボのグリーン蛍光から推測されるＧＦＰの存在。
現在、Ａ．ｖｉｃｔｏｒｉａ由来のｇｆｐ遺伝子配列が、容易に入手可能であるため、ヒト化ｇｆｐ遺伝子を作製するためのテンプレートとして使用されることが好ましい。
ｇｆｐ遺伝子配列の生物学的に機能的な同等物がもちろん、本発明に包含されるが、遺伝子を切断するための試みが、蛍光が消失する前に、たった１つの残基がアミノ酸末端、そして１０または１５以下残基がカルボキシ末端から犠牲にし得ることが示された（ＤｏｐｆおよびＨｏｒｉａｇｏｎ，１９９５）ことを言及すべきである。それゆえ、実質的に切断されたｇｆｐ遺伝子は、特に有用であることが企図されない。しかし、このようなタンパク質のための１つの使用は、それに続く抗体産生のための、哺乳動物細胞における高レベルのＧＦＰ産生であり得る。
２．グリーン蛍光タンパク質
ＡｅｑｕｏｒｅａＧＦＰは、２３８アミノ酸残基のタンパク質である。その最大の吸光ピークは、４７５ｎｍでのより小さなピークを有する３９５ｎｍである。これらのピークの増幅（すなわち、吸光係数）は、それぞれ２１〜３０および７〜１５ｍＭ−１ｃｍ−１と見積もられている（Ｍｏｒｉｓｅら、１９７４）。３９５ｎｍでの励起は、５０８ｎｍにおいて最大発光を生じる。量子収率または光子の再発光の確率は、一旦分子が励起されると、０．７２−０．８５（Ｍｏｒｉｓｅら１９７４）であり、そして励起状態の持続時間は３．２５ｎｓである（Ｐｅｒｏｚｚｏら、１９８８）。
ＧＦＰは、珍しく安定なタンパク質であるため、それらのスペクトル特性が変性溶液中で比較的影響を受けない。精製されたタンパク質はまた、数時間にわたって、ほとんどのプロテアーゼに耐性がある（ Ｗａｒｄ，１９８１，１９８２；ＷａｒｄおよびＢｏｋｍａｎ、１９８２；ＣｕｔｌｅｒおよびＷａｒｄ、１９９３）。しかし、変性の際に、ＧＦＰがその蛍光を失う（Ｗａｒｄら、１９８０）。中性水性緩衝溶液において、蛍光を半減させる温度は、ＡｅｑｕｏｒｅａＧＦＰ（Ｗａｒｄ，１９８１）の場合、７８℃であると見い出されている。Ａｕｑｅｏｒｅａ ＧＦＰは、６Ｍグアニジン−ＨＣｌ（９２℃で２分間）、ｐＨ２での酸性化またはｐＨ１３でのアルカリ化の処置を使用すれば、蛍光が全て欠失して変性され得るが、ＧＦＰを復元して蛍光を回復させることが可能である（ＷａｒｄおよびＢｏｋｍａｎ，１９８２）。この復元には、チオールが必要であるようである（ＳｕｒｐｉｎおよびＷａｒｄ，１９８９）。
Ｓｅｒ６５、Ｔｙｒ６６、およびＧｌｙ６７の環化ならびにチロシンの１，２脱水素化により形成される、ＧＦＰ発色団、ｐ−ヒドロキシジリデンイミダゾリンを形成するために、別のＡｅｑｕｏｒｅａ因子に対する絶対的な必要性はない。この独特の翻訳後修飾の機構は、ＧＦＰが、遺伝子発現の変化を報告し得るスピードにおける制約である。
変性タンパク質または発色団を含む単離ペプチドは、光を吸収するが、実質的に非蛍光である（Ｗａｒｄら、１９８０）、というのは、おそらく、むき出しの発色団が、厳密でもないか、溶媒分子による攻撃から保護されてもいないからである。発色団形成は、もちろん、いずれの有用なＧＦＰ変種または融合体において機能を保持したままでなければならない。
酵母およびＨｅＬａ細胞では、３７℃で発現されるＧＦＰは、１５℃で発現されるＧＦＰよりも数倍蛍光が弱い。熱が、主に、適切に成熟したＧＦＰの発現レベルまたは明るさを低減させることによるよりはむしろ不適当な成熟化を生じさせることにより作用する（Ｌｉｍら、１９９５）。
蛍光フィルターで励起した野生型Ａｅｑｕｏｒｅａ ＧＦＰは、同数の遊離蛍光分子よりも約一桁暗い。３９５ｎｍへの励起の変換は、役に立たない。というのは、このような波長は、迅速な光異性化を生じ、そしてまたバックグラウンド自己蛍光より励起するからである。
３．ＧＦＰ変異体および変種
本来Ａ．ｖｉｃｔｏｒｉａからクローン化されるＧＦＰは、上述のような低い明るさ、タンパク質合成と蛍光現像と複合体光異性化との間の顕著な遅滞を含むいくつかの最適ではない特性を有する。しかし、ＧＦＰは、これらの欠損を軽減するか克服するため、および励起および発光波長がシフトされ、異なる色および新しい適用を作製するための、第二世代の化合物を提供する目的のために再操作され得る。
ＧＦＰにおけるほとんどの変異体は、相対吸光度または発光ピークにおいて顕著な変化のない、蛍光の部分的または完全な欠損を生じる。これらの変異体は、おそらく、タンパク質の誤折り畳み、発色団の形成不全、または不充分な遮光による蛍光の消光（ｑｕｅｎｃｈ）を起こす。遺伝子を切断する試みは、蛍光が消失する前に、１つの残基のみアミノ末端から犠牲にされ得、そして１０または１５以下の残基がカルボキシ末端から犠牲にし得ることを示した（ＤｏｐｆおよびＨｏｒｉａｇｏｎ，１９９５）。主要なトランケーションに対するＧＦＰの非寛容は、おそらく、それほど驚くべきことではない。というのは、タンパク質骨格は、発色団を合成し、そして周囲の水から厳密に遮断されなければならない。
ＧＦＰポリペプチドにおけるアミノ酸置換は、異なるスペクトル特性を有するタンパク質を生じることがすでに報告されている。変異体のサブセットは、おそらく発色団の脱プロトン化を促進するか、または阻害する、３９５ｎｍおよび４７５ｎｍにおける吸光度ピークの相対度に影響する。例は、Ｔ２０３Ｉ（Ｔｈｒ→Ｉｌｅ）およびＥ２２２Ｇ（Ｇｌｕ２２２→Ｇｌｙ）であり、これらは、それぞれ、３９５ｎｍまたは４７５ｎｍのいずれかにおいて単一の吸光ピークに対するスペクトルを単純化する（Ｅｈｒｉｇら、１９９５）。変異体Ｉ１６７Ｔ（Ｉｌｅ→Ｔｈｒ）は、２つのピークの野生株の割合を、どちらかを完全に消去させることなく変換させる（Ｈｅｉｍら、１９９４）。
第二の変異体のサブセットは、実質上、有意に変換した特徴を有する新しい励起および発光スペクトルを生成する。この型の変異体の例は、発色団領域そのものの中に見い出される。
（ａ）Ｔｙｒ６６改変体
Ａｅｑｕｏｒｅａ由来のＧＦＰおよび海シイタケＲｅｎｉｌｌａ ｒｅｎｉｆｏｒｍｉｓのＧＦＰは、同一の発色団を共有し、さらにＡｅｑｕｏｒｅａ ＧＦＰは３９５ｎｍおよび４７５ｎｍに２つの吸収ピークを有するが、Ｒｅｎｉｌｌａ ＧＦＰは、４９８ｎｍにおける単一の吸収ピークのみを、Ａｅｑｕｏｒｅａタンパク質の主な３９５ｎｍピークよりも約５．５倍強いモノマー吸光係数で、有する。多数の実際の適用について、Ｒｅｎｉｌｌａ ＧＦＰのスペクトルは、ＡｅｑｕｏｒｅａのＧＦＰよりも好ましくあり得る。というのは、異なる蛍光と共鳴エネルギー移動の検出との間の波長の差異は、構成スペクトルが、低くかつ広いよりはむしろ高く低い場合、より簡単であるからである。
さらに、Ａｅｑｕｏｒｅａ ＧＦＰのより長い波長の励起ピーク（４７５ｎｍ）は、蛍光フィルターセット（ｓｅｔ）にとってほぼ理想的であり、そして光漂白に抵抗性であるが、光漂白により感受性であるより短い３９５ｎｍの波長ピークより、低い幅を有する（Ｃｈａｌｆｉｅら、１９９４）。前述の理由のため、Ａｅｑｕｏｒｅａ ＧＦＰ励起スペクトルの単一ピークへの変換は、このましくは、より長い波長が所望される。
このような変換は、ＧＦＰ変異誘発および変換されたスペクトルを有するＧＦＰ改変体を単離するスクリーニングを記載したＨｅｉｍら（１９９４）により達成された。中心チロシン（Ｙ６６）の他の芳香アミノ酸（Ｔｒｐ、ＨｉｓまたはＰｈｅ）による置換は、励起および発光スペクトルを進行的により短い波長にシフトさせる。
Ｈｅｉｍら（１９９４）は、ヒドロキシルアミン処理（ＳｉｋｏｒｓｋｉおよびＢｏｅｋｅ、１９９１）を用いて、そして０．１ｍＭ ＭｎＣｌ２、５０μＭ ｄＡＴＰ、および２００μＭのｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰ（Ｍｕｈｌｒａｄら、１９９２）を用いるＰＣＲＴＭの誤差率を増加させることによってｇｆｐ ｃＤＮＡのランダム変異誘発を実施した。寒天上のコロニーは、４７５ｎｍ対３９５ｎｍにおいて励起され、キセノンランプで供給され、そして出力ビームが全体の培養皿を照射するために拡張するためのモノクロメータで度合いを付ける場合、異なる発光色および明るさの割合について可視的にスクリーニングされる。
野生型タンパク質の緑と対称的にＵＶ光および蛍光灯のブルーにより励起可能な変異体は、Ｈｅｉｍらにより単離された（１９９４）。最大励起および発光は、野生型ＧＦＰの最大励起および発光から、それぞれ、１４および６０ｎｍの浅色団的にシフトされた。決定的なタンパク質の変異ＤＮＡは、発色団の中心にＴｙｒ６６→Ｈｉｓへの変換を含んだ。Ｔｙｒ６６Ｈｉｓの蛍光スペクトルは、タンパク質が、変性寸前までのｐＨ変化には敏感ではなく、このことが、発色団が溶媒に接近可能でないことのさらなる証拠を提供する。
トリプトファンおよびフェニルアラニンへのチロシンのさらなる部位特異的変異誘発が実施された（Ｈｅｉｍら、１９９４）。トリプトファンは、チロチンとヒスチジンとの間の中間の励起および発光波長を与えたが、わずかな蛍光のみであり、これは、おそらく、折り畳みまたは発色団形成が不充分である一方で、フェニルアラニンは検出可能な蛍光を与えなかったためである。
Ｔｙｒ６６→Ｈｉｓ変異体は、野生型ＧＦＰよりも蛍光が少ないが、これはおそらく、別のアミノ酸が、中心洞に良好に適合していないからであり、もちろん、これは重要な改変体である。異なる最大励起および発光を有するＧＦＰのいくつかの形態の利用可能性は、下記のように異なる遺伝子発現の２色評価、偽発達およびタンパク質輸送（ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ）が可能となる。
（ｂ）Ｓｅｒ６５改変体
ＲｅｎｉｌｌａのＧＦＰにはるかに近いスペクトルを有するＧＦＰ改変体を作製する所望はまた、Ｈｅｉｍら、（１９９５）の研究を動機づけた。ＡｅｑｕｏｒｅａＧＦＰのアミノ酸配列のセリン６５は、 ０ ｐ−ヒドロキシベンジリデンイミダゾリノン発色団の部分となる。Ｓｅｒ６５がビニル側鎖を形成するためのさらなる脱水素化を実施するという仮説を検証するために、Ｈｅｉｍら、（１９９５）この残基をＡｌａ、Ｌｅｕ、ＣｙｓまたはＴｈｒに変異させた。ビニル基がＨ２ＯまたはＨ２Ｓの除去により形成される場合、ＳｅｒおよびＣｙｓは、除去が不可能なＡｌａおよびＬｅｕとは非常に異なる同一のスペクトルを与えるはずである。
Ｈｅｉｍら（１９９５）は、その幅が、同じ分子数当たり野生型ＧＦＰのそれよりも４倍から６倍強力である、４７０〜４９０ｎｍに位置づけられる単一の励起ピークを示す４つの変異体を作製した。これらの結果は、ビニル形成を排除する。Ｓｅｒ６５→Ｔｈｒ変異体は、さらなる特徴付けのために選択された。というのは、これが励起および発光の最も長い波長（４９０ｎｍおよび５１０ｎｍ）であり、Ｒｅｎｉｌｌａ ＧＦＰ（４９８ｎｍおよび５０８ｎｍ）について報告される励起および発光波長に非常に類似しているからである。
新生のポリペプチド鎖から蛍光を産生するための決定的な翻訳後酸化は、野生型タンパク質（Ｈｅｉｍら、１９９５）におけるより、Ｓ６５Ｔにおいて約４倍迅速に進行した。この加速は、迅速な遺伝子誘導のためのレポータータンパク質としてのＧＦＰの使用における潜在的に重要な限定を改善する。
Ｓｅｒ６５のＡｒｇ、Ａｓｎ、Ａｓｐ、ＰｈｅおよびＴｒｐへの変異は、蛍光強度を野生型の強度よりはるかに低く与えた。
まとめると、Ｓｅｒ６５Ｔｈｒ ＧＦＰ変異体（Ｈｅｉｍら、１９９５）の有利な特性は、以下を含む：各々が、その最も長い波長ピークにおいて励起される場合野生型より約６倍より強い明度；野生型より４倍迅速な最終蛍光種への酸化；および光異性化がないことおよび非常に遅い光漂白のみ。前述の発見は、Ｓｅｒ６５Ｔｈｒが、空気飽和したｐＨ７．１の緩衝液中で、４８８ｎｍ照射における約７分の１の蛍光率で光漂白する。Ｓｅｒ６５Ｔｈｒの励起係数は、これらの条件下で約７分の４の蛍光であるので、Ｓｅｒ６５Ｔｈｒの光漂白の量子係数は、約４分の１の蛍光であると計算され得る。
これらの利点は、長波長ＵＶ励起または光異性化が必須である場合以外のほとんどの適用について、Ｓｅｒ６５Ｔｈｒを、野生型ＧＦＰより魅力的なものにする。これは、特に、一般に入手可能な蛍光イソシアネート（ＦＩＴＣ）フィルターセット（４５０−４９０ ｎｍ励起）を使用するより強度な感受性を提供する。
（ｃ）他の赤色シフト変異体
Ｄｅｌａｇｒａｖｅら、（１９９５）はまた、ＧＦＰ残基６４〜６９の拡張ランダム変異誘発を実施し、そしてスペクトルが上記のＳｅｒ６５変異体に質的に類似する６つの変異体を単離した。そのうち４つは、上記の列挙した６５位で同じ置換基（Ｌｅｕ、ＣｙｓまたはＡｌａ）を有した。
スペクトル的にシフトしたＧＦＰ変異体の構築のためにＤｅｌａｇｒａｖｅら（１９９５）によって使用された方法は、以前に最適化した組み合わせの変異誘発およびデジタル画像吸光分析器（ＤＩＳ）（ＧｏｌｄｍａｎおよびＹｏｕｖａｎ、１９９２；ＤｅｌａｇｒａｖｅおよびＹｏｕｖａｎ、１９９３）を使用してスペクトル的に異なる種々のバクテリオクロロフィル結合タンパク質を産生するために使用されている。
ＤＩＳは、空間的に解析したスペクトル情報を得ることにより、ペトリ皿上での数千のコロニーを直接的に同時スクリーニングを可能にする（Ｙｏｕｖａｎら、１９９５；Ｙｏｕｖａｎ、１９９４）。異なる波長で照射したペトリ皿の画像は、荷電共役デバイス（ＣＣＤ）カメラによりとらえられ、そして放射測定の校正を確立するソフトウェアによりさらに処理される。最適化された組み合わせの変異誘発およびＤＩＳを用いて、さらなるＧＦＰ変異が単離され得る。
Ｄｅｌａｇｒａｖｅら（１９９５）のコンビナトリアルライブラリースクリーニングにおいて、変異誘発のために標的化したＧＦＰ領域は、Ｐｈｅ６４とＧｌｕ６９（Ｐｈｅ Ｓｅｒ Ｔｙｒ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ｇｌｎ；配列番号４）との間の６つのアミノ酸配列であり、これは、発色団自身も含む。変異オリゴヌクレオチドは、６６位に芳香アミノ酸を取り込むことを好み、他の５つのコドンは完全にランダムになるようにように設計された。変異誘発のために使用されるオリゴヌクレオチドの配列は、ＣｙｂｅｒＤｏｐｅコンピュータープログラムを用いて得られた。
得られた約３×１０５の変異ＧＦＰ遺伝子のライブラリーは、ＢＬ２１（ＤＥ３）で発現された。ペトリ皿上の数千のコロニーを、ＤＩＳ（Ｄｅｌａｇｒａｖｅら、１９９５）を用いた蛍光によりスクリーニングした。スペクトル的にシフトした変異体は、最初に、４９０ｎｍ光で励起した場合に観察されるグリーン蛍光により同定される、これは４１０ｎｍで励起した場合に消失した。対称的に、野生型ＧＦＰ蛍光は、４１０ｎｍ照射よりはるかに明るい。ＤＩＳは、１０４コロニーにつき約１個が機能的蛍光タンパク質を発現することを明らかにした。
Ｄｅｌａｇｒａｖｅら（１９９５）は、いくつかの赤色シフトＧＦＰ（ＲＳＧＦＰ）クローンを拾い出し、そして配列決定した。Ｔｙｒ６６およびｇｌｙ６７は、保存されているように見られたが、他の４つの部位はより少なくストリンジェントであった；ｓｅｒ６５は、観察される表現型には必要ではなかった。ＲＳＧＦＰは、容易に野生型ＧＦＰから区別される。なぜなら、その最大励起は、野生型Ａｅｑｕｅｏｒｅａ ＧＦＰにおける３９０ｎｍからＲＳＧＦＰにおける４９０ｎｍと、約１００ｎｍ赤色シフトするからである。１つの特定なクローンはＲＳＧＦＰ４であり、これは、発色団配列Ｍｅｔ Ｇｌｙ Ｔｙｒ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ｌｅｕ（配列番号５）を有する。ＲＳＧＦＰ４の発光は、ほとんど野生型ＧＦＰの発光と同一であるが、励起スペクトルが非常に異なる。
Ｄｅｌａｇｒａｖｅら（１９９５）は、この配列情報が指数的アンサンブル変異誘発（Ｅｘｐｏｎｅｎｔｉａｌ Ｅｎｓｅｍｂｌｅ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）（ＥＥＭ）および再帰アンサンブル変異誘発（Ｒｅｃｕｒｓｉｖｅ Ｅｎｓｅｍｂｌｅ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）（ＲＥＭ）戦略（ＤｅｌａｇｒａｖｅおよびＹｏｕｖａｎ、１９９３；Ｄｅｌａｇｒａｖｅら、１９９３）によるさらなる操作に影響を受け、多スペクトルの蛍光タンパク質の「レインボー」を潜在的に産生することを報告した。ＲＥＭまたはＥＥＭにより最適化された新しいコンビナトリアルライブラリーを構築することにより、機能的変異体の頻度が、顕著な発光シフトを有する希有クローン（ｒａｒｅ ｃｌｏｎｅ）の単離を可能にするのに充分高くなることが予想される。
４．ヒト化ｇｆｐ遺伝子
野生型ＧＦＰの特性が変異体において、上記のように改善されるにも関わらず、野生型ＧＦＰは、各々のタンパク質分子が数千の発色団または蛍光分子を生成し得る真の酵素的レポーター系に組み入れられる増幅の１つの段階を欠損している。各々のＧＦＰが、ＧＦＰ発現の比較的高レベルな１つの蛍光団を表すため、細胞当たり１０６もの分子が、明るいシグナルを与えるのに必要であり得る（Ｒｉｚｚｕｔｏら、１９９５）。
上記は、本発明の重要性（哺乳動物およびヒト細胞における増加したＧＦＰ発現のために提供される本発明の焦点）を強調する。上記の変異体の各々または所望の変異体または変異体のパネルがまた、本発明で提供されるようにヒト化バックグラウンドにおいて調製され得る。これは、本発明のヒト化局面が、タンパク質のＤＮＡ配列を独立的に変換するからである。
哺乳動物細胞におけるＧＦＰを発現する以前の試みは、Ｋｏｚａｋ配列（Ａｄａｍｓら、１９９５）を使用してきた。このように改変したＧＦＰ遺伝子は、哺乳動物発現ベクターに挿入され、ＣＨＯ−Ｋ１細胞（Ａｄａｍｓら１９９５）において使用されてきた。Ｐｉｎｅｓ（１９９５）はまた、一過性のＧＦＰ発現ＣＯＳ−７、Ｈｅｌａ、およびＮＩＨ ３Ｔ３細胞を報告している；そしてＲｉｚｚｕｔｏら（１９９５）は、ＧＦＰのインタクトな細胞におけるミトコンドリアにおける発現を報告している。しかし、これらの研究は、比較的低レベルの発現を反映していると考えられており、さらに、多数の当業者により得られたネガティブな結果と対照されると考えれられる。これらの少ないポジティブな結果は、細胞に導入された高コピー数のｇｆｐ遺伝子の機能であると考えられる。
本発明者によりとられたアプローチは、Ａｄａｍｓら（１９９５）の方法に対称的であり、そして哺乳動物細胞における発現により適切であるようにコドン使用を変換するために、塩基置換を含むｃＤＮＡを使用することによってヒト細胞環境におけるＧＦＰ ｍＲＮＡの貧弱な翻訳効率に取り組む。このようなヒト化構築物を使用することにより、ヒト化ｇｆｐ遺伝子の低コピー数（例えば、１０以下の範囲で、そして特定のヒト化ｇｆｐ変異遺伝子を使用した場合には１または２でさえもあり得る）を有する細胞におけるグリーン蛍光を生じる。
ｔＲＮＡの豊富さと、タンパク質発現遺伝子における各々のコドンの出現との間の相関は、Ｅ．ｃｏｌｉ、酵母、および他の生物体（ＢｅｎｎｅｔｚｅｎおよびＨａｌｌ（１９８２）；Ｇｒａｎｔｈａｍら、（１９８０）；Ｇｒａｎｔｈａｍら（１９８１）；Ｉｋｅｍｕｒａ（１９８１ａ；１９８１ｂ；１９８２）；Ｗａｄａら（１９９０））について記載されている。しかし、コドン変換が実際に、任意の与えられた遺伝子で行われるまで、それらの翻訳効率および全体の発現レベルへの影響は確立され得ない。これは、Ｋｏｚａｋ配列に関連する状況に類似しており、これは、予測にも関わらず特にｇｆｐの哺乳動物細胞における発現増加に寄与するとは考えられていない。本発明者らがヒト化がｇｆｐ遺伝子発現について効果的であることを示した現在、ＧＦＰ技術の有用性が顕著に増強される。
クラゲｇｆｐを本発明に従ってヒト化するために、本発明者らは、まず、ｇｆｐ遺伝子のコドンの詳細な分析を行った。表２は、クラゲｇｆｐコドンとヒト遺伝子で共通に使われるコドンとの間の比較の結果である（Ｗａｄａら、１９９０）。これが、本発明者らが、ｇｆｐと一般的なヒト遺伝子配列との間の重要な差異を同定し、そしてされるべき変換を同定することを可能にした。
本発明による、ヒト化配列の例は、配列番号３によって示される。しかし、本発明のヒト化配列が配列番号３の代表的な配列には全く限定されないことが理解される。むしろ、以下の指示により、当事者が、多数の異なるヒト化ｇｆｐ配列を容易に調製し得る。
ほとんど使われないクラゲのコドンをヒト遺伝子でより頻繁に使用されるコドンで置換した変換は有用な変換であると考えられるが、特定のコドン変換は、もちろん、他よりも好まれる。この意味で、本発明者らは、ヒト遺伝子においてほとんどまたはほとんど全く使われない多数のｇｆｐコドンを同定した。下記のように、このようなコドンは、本発明によるヒト化遺伝子を産生するために変換される第一の候補である。
一般的なヒト化改変体を作製するにおいて、ヒト化されるべきコドンは、本明細書中の表２にならびに表３および表４において示される情報を調べることから当業者によって同定され得る。例えば、表２における情報を利用するにおいて、当業者は、ヒト遺伝子において通常に使用されるそれらのコドンの頻度に対してクラゲコドンの頻度を比較し、そして任意の適切な改変を行う。例示のためだけに、アミノ酸ロイシンを考える；コドンＣＵＵは、ｇｆｐ遺伝子中で１１回使用されるが、このコドンは、ヒト遺伝子において４番目に好ましいにすぎないコドンに対応する。ロイシンコドンＵＵＡはまた、クラゲ遺伝子において顕著な特徴を示し、そしてこのコドンはヒトゲノムにおいて使用するための最後の選択である。従って、ロイシンコドンを改変することは、ヒト化遺伝子を調製するために適切な開始点をなす。
表２の分析に従ってなされ得るさらなる改変は、アルギニンコドンのＡＧＡ（これはヒトゲノムにおいて４番目の選択にすぎない）をより好ましいコドン（例えば、ＣＧＣまたはＡＧＧ）に改変すること；セリンコドン（例えば、ＵＣＧまたはＵＣＡ）を、より好ましいコドン（例えば、ＵＣＣおよびＡＧＣ）に改変すること；スレオニンコドンをＡＣＣに最適化すること；プロリンコドンＧＣＣの使用を避けること；アラニンコドンＧＣＡを最も好ましいヒトコドンＣＧＧに改変すること；優性なグリシンコドンＧＧＡおよびＧＧＵの使用を避け、そしてそれらをヒト遺伝子において好ましいコドンＧＧＣおよびＧＧＧに置換すること；頻繁に出現するバリンコドンＧＵＵおよびＧＵＡを改変し、そしてその代わりにコドンＧＵＧ（これはヒトゲノムにおいて明らかに好ましい）を使用すること；およびイソロイシンコドンＡＵＡを避け、そしてこれを好ましいコドンＡＵＣに改変することである。
２つのコドンの選択しかないアミノ酸において、発明者らは、ヒトゲノムと比較した場合、野生型ｇｆｐ遺伝子は最も好ましくないコドンを通常用いることに気付いた。従って、適切な改変が以下のコドンにおいてなされる；リジンに対するＡＡＡ；グルタミンに対するＣＡＡ；ヒスチジンに対するＣＡＵ；グルタミンに対するＧＡＡ；アスパラギンに対するＧＡＵ；およびフェニルアラニンに対するＵＵＵ；そして、これらをＡＡＧ、ＣＡＧ、ＣＡＣ、ＧＡＧ、ＧＡＣおよびＵＵＣにそれぞれ置換する。
さらなる改変もまた、表３および表４における情報を考慮することからなされ得る。これらの表は、容易に使用される形式で、コドン優先度に関する重要な情報を提供する。表３は、本発明のヒト化ｇｆｐ構築物における使用について好ましいコドンの一覧を提供する。表４は、図１との相互参照を便利にするために、Ｔ（チミン）よりもＵ（ウリジン）を組み込んだ全く同一の情報である。
表３：ヒト使用について好ましいＤＮＡコドン
Figure 2008086327
 左のコドンは、ヒト遺伝子における使用のために最も好ましいコドンを示し、ヒト使用頻度は右に向かうほど減少する。
二重下線コドンは、ヒト遺伝子においてほとんど使用されないコドンを示す。
表４：ヒト使用のための好ましいＲＮＡコドン
Figure 2008086327
 左のコドンは、ヒト遺伝子における使用のために最も好ましいコドンを示し、ヒト使用頻度は右に向かうほど減少する
二重下線コドンは、ヒト遺伝子においてほとんど使用されないコドンを示す。
表３および表４における情報を調べることから、当業者は、クラゲｇｆｐコドンＣＴＡ、ＴＴＡ、ＴＣＧ、およびＴＣＡ（またはＣＵＡ、ＵＵＡ、ＵＣＧ、またはＧＵＡ）は、より好ましいコドンに改変されるべきであることを容易に認識する。一般的な指針では、５および６列目に挙げられるコドンは、ヒト化遺伝子を作製するにおいて、改変することが望まれるコドンを一般的に示す；４列目に挙げられるコドンもまた、ヒト化遺伝子を作製するにおいてしばしば改変されるべきである；３列目に挙げられるコドンは、全体において作製されることが望まれる改変の数に依存して、およびコードされる特定のアミノ酸に依存して改変されても改変されなくてもよい。１および２列目に挙げられるコドンは、野生型ｇｆｐ配列に存在する場合、二つのコドンの選択しか利用可能ではない場合ではない限り、一般に適切であり、そして改変を必要としない。しかし、２列目のコドンを１列目のコドンで置換することは、特に二つのコドンの選択しかない場合、間違いなく有用な選択である。この情報を考慮すると、ｇｆｐ配列に改変を導入する場合、可能な部位はどこでも１列目のコドンを導入することが一般に望まれる。
前記の議論を考慮して、配列番号３の例示的な配列は、本発明によって包含される多くの作動可能な種の一つであるにすぎないことは明白である。配列番号３において、８８コドンは一つ以上の塩基置換を含む。３２８アミノ酸をコードする配列からの８８コドンは、約３７％の改変を示す。しかし、コドンの約１０％を改変することは、発現レベルにおける有用な増大を生成し、従ってこのような遺伝子配列は本発明の範囲内にあることが意図される。クラゲｇｆｐ配列内のコドンの約１５％、約２０％、約２５％、または約３０％を改変することもまた有用であると考えられ、そして本発明のヒト化遺伝子は、上記範囲内にあるこれら遺伝子配列を包含する。
特定の実施態様において、導入したコドン改変の性質に依存して、ｇｆｐ遺伝子のコドン使用頻度における１０％改変をすることさえ必要ないかもしれない。例えば、１０の最も好ましくないコドンの各々が改変され、そしてヒト遺伝子における使用に最も好ましいコドンで置換される場合、得られる配列はヒト細胞および哺乳動物細胞において相応な発現を達成し得ることが意図される。３２８内から１０コドンを改変することは、約４％の改変パーセントを示す。従って、以下の条件−すなわち、限られた数の改変のみをなす場合、ｇｆｐ遺伝子配列のコドン位置１８、５３、９３、１２５、１５０、１７８、１９５、２０８、２３６、および２２４にある１０のコドンを改変することが一般に望まれることを考慮すると、いわゆる「４％ヒト化遺伝子」はまた、本発明の範囲内にある。多くの他の改変とともに、これらの主要な改変をなす場合、これらのコドンの少なくとも約７、８、または９を改変することは、改善された発現を伴うヒト化遺伝子を生じるに十分である。上記のように、ロイシンは、好ましくは、ＣＴＧ、ＣＴＣ、またはＴＴＧによってコードされ；バリンは、好ましくは、ＧＴＧによってコードされ；そして、セリンは、好ましくは、ＡＧＣによってコードされる。
約４〜５％、約１０％、約２０％、または約３０〜３５％のコドンが改変されたｇｆｐ遺伝子配列は一般に好ましいが、所望される場合、さらなる改変がなされるべきではないとういう理由はない。従って、本発明に従うヒト化遺伝子配列は、完全長コドン領域内の約４０％、約５０％、約６０％、約７０％、または約８０〜９０％のコドン位置でヒト化コドンを含む配列であり得る。なおさらなるヒト化改変を導入することを目的として配列番号３を検討すると、さらなる最適化改変が導入され得る多くの位置が同定され得る。これらは、例えば、配列番号３のコドン位置６、９、１４、１７、１９、２１、２３、２６、２７、３１、３３、３４、３５、３６、４０、４５、５０、５１、６２、７１、８３、９９、１０１、１０２、１１１、１１５、１１６、１２８、１３０、１３２、１３３、１３４、１３６、１４２、１５７、１７１、１７３、１７４、１８１、１８３、１８６、２０９、２１０、２１３、２２３、および２３０で見出されるコドンを包含する。
５．グリーン蛍光タンパク質の使用
レポーター分子としてのＧＦＰの可能性は、迅速な検出（グリーン蛍光タンパク質は、標準的な長波長ＵＶ光源を使用する照射で検出され得る）；インビボでのリアルタイム検出の可能性；マトリックスの導入を必要としない事実；および相対的に小さな大きさ（２６．９ｋＤ）および単量体の性質（これは、タンパク質融合を扱いやすくする）のような特性から生じる。
本発明のヒト化ＧＦＰは、これらの方法のいくつかに理論性よりも実行性を与える。従って、ヒト化ｇｆｐ遺伝子は形質転換された細胞を、例えば、蛍光活性化セルソーティング（ＦＡＣＳ）または蛍光顕微鏡によって同定するために；インビトロでおよびインビボで遺伝子発現を測定するために；多細胞生物における特定の細胞を標識するために、例えば、細胞系統を研究するために；融合タンパク質を標識し、そして位置づけるために；および細胞内輸送（ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ）などを研究するために、使用され得る。
ＧＦＰの標準的な生物学的な適用は、見過ごされるべきではない。例えば、タンパク質ゲルおよびウェスタンブロット上の分子量マーカーとしてのその使用、蛍光計およびＦＡＣＳ装置のキャリブレーションにおけるその使用、ならびに細胞および組織へのマイクロインジェクションにおけるその使用。
蛍光分子量マーカーを産生する方法において、一般に、ヒト化ｇｆｐ遺伝子配列は規定されたアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする一つ以上のＤＮＡ配列に融合され、そして融合タンパク質は発現ベクターから発現される。発現は、マーカーとして使用され得る規定された分子量（完全なアミノ酸の大きさの計算に従う）の蛍光タンパク質の産生を生じる。
好ましくは、精製蛍光タンパク質は、サイズ分画に（例えば、ゲルを使用することによって）供される。次いで、未知のタンパク質の分子量の測定は、蛍光標準からの検定曲線を作製し、そして曲線から未知の分子量を読みとることによって行われる。
（ａ） 異なる呈色化ＧＦＰ
上記のように、異なる呈色形態を生成するヒト化ＧＦＰにおけるアミノ酸置換は、複数のレポーター遺伝子の同時使用を可能にする。異なる呈色化ヒト化ＧＦＰは、混合細胞培養物において複数の細胞集団を同定するために、または複数の細胞型を追跡するために簡単に使用され得、これはさらなる試薬を添加するかまたは細胞を固定するかもしくは細胞を傷害する必要を伴わずにリアルタイムおいて可視化される細胞変動または細胞移動における差異を可能にする。
他の選択は、単一細胞、組織、または器官内の複数のタンパク質の最終的な位置の追跡および決定；同一の細胞、組織、または器官において２つの異なるプロモーターからの遺伝子発現を測定するディファレンシャルなプロモーター分析；および混合細胞集団のＦＡＣＳソーティングを含む。
細胞内でタンパク質を追跡するにおいて、ヒト化ＧＦＰタンパク質改変体は、フルオレセインおよびローダミンに類似した様式で使用され、そして相互作用タンパク質またはサブユニットをタグ化し、次いで、その関連性はインタクトな細胞において蛍光共鳴エネルギー転移によって力学的にモニターされ得る（Ａｄａｍｓら、１９９１；１９９３）。
スペクトルで分離可能なヒト化ＧＦＰ誘導体を用いて使用され得る技術は、共焦点顕微鏡、フローサイトメトリー、ならびにモジュラー流動および二重励起技術を使用する蛍光活性化セルソーティング（ＦＡＣＳ）によって例示される。
（ｂ）トランスフェクトされた細胞の同定
ヒト化ｇｆｐが使用され得る多くの技術は、特定の広い領域に分類され得る。まず細胞を簡単に同定すること。これらの方法において、ヒト化ｇｆｐは、細胞においてＧＦＰを発現するために単独で使用される。この方法についての一つの使用は、細胞を異なる細胞型の存在する環境に曝露する前の予め標識した単離細胞または類似の細胞の集団における使用である。元の細胞のみでのＧＦＰの検出によって、このような細胞の位置を決定し、そして全集団と比較することが可能になる。
第２の群の方法は、目的の外因性ＤＮＡでトランスフェクトされた細胞に同定に関係する。外因性ＤＮＡでトランスフェクトされた細胞を同定することは、多くのインビトロ実施態様において必要とされ、そしてまたインビボ遺伝子治療においても必要とされる。
この一般的な群の第一の例は、コードされたタンパク質をＧＦＰを用いて直接的に標識するために、選択したタンパク質をコードするＤＮＡ配列にヒト化ｇｆｐ配列が融合される場合である。細胞においてこのようなヒト化ＧＦＰ融合タンパク質を発現することにより、容易に検出され得る蛍光性タグ化タンパク質の生成を生じる。これは、タンパク質が選択した宿主細胞によって産生されていることを簡単に確認するにおいて有用である。それによってまた、選択したタンパク質の位置を（これが天然の位置を表しているのかまたはタンパク質が人の手によってオルガネラに標的化されたかどうかを）決定することが可能になる。
外因性ＤＮＡでトランスフェクトされた細胞はまた、融合タンパク質を作製することなく同定され得る。ここで、この方法は、少なくとも２つの転写または翻訳単位を含むプラスミドまたはベクターを受容した細胞の同定に依存する。第一の単位は、所望のタンパク質をコードし、そしてその発現を指向し、一方、第２の単位は、ヒト化ＧＦＰをコードし、そしてその発現を指向する。第２の転写または翻訳単位からのＧＦＰの同時発現は、ベクター含有細胞が検出され、そしてベクターを含有しない細胞から区別されることを確実にする。
（ｃ）プロモーターの解析
本発明のヒト化遺伝子はまた、哺乳動物細胞におけるプロモーターの解析に別の次元を提供する。ｇｆｐは今や、哺乳動物細胞およびヒト細胞において発現され得、そして容易に検出され得るので、ある範囲のプロモーターが、所定の遺伝子、細胞、または系を用いる使用のためのそれらの適合性について試験され得る。これは、インビトロ使用に（例えば、組換え発現および高レベルタンパク質産生における使用に適切なプロモーターを同定するにおいて）適合し、そしてインビボ使用に（例えば、前臨床試験においてまたはヒト被験体での遺伝子治療において）もまた適合する。
実際的な用語において、プロモーターを解析するために、コントロール細胞または系がまず樹立される。コントロールにおいて、陽性の結果は、公知でかつ効果的なプロモーター（例えば、本明細書中で記載される研究の特定の局面において好ましいＣＭＶプロモーター）を使用することによって確立され得る。候補プロモーターを試験するために、発現ベクターまたは遺伝子構築物において異なるプロモーターが存在することを除いては、全ての条件が同じである別の細胞または系が樹立される。コントロールと同じ期間および同じ条件下でのアッセイの実施後、最終的なＧＦＰ発現レベルが測定される。これにより、候補プロモーターと作製された標準プロモーターとの強度または適合性の比較が可能になる。所定の研究室において日常的に用られるＧＦＰ発現系を使用するにおいて、陽性コントロールは、試験プロモーターの特定の研究においては、省略してもよい。
この様式において試験され得るプロモーターはまた、候補組織特異的プロモーターおよび候補誘導性プロモーターを含む。組織特異的プロモーターを試験することによって、所定の細胞を用いる使用に好ましいかまたは最適なプロモーターをある範囲の可能性のあるプロモーターから同定し、特徴付けることが可能になる。さらに、これは、インビトロおよびインビボでの両方で有用である。組換え発現およびタンパク質産生において所定のプロモーターおよび所定の細胞型の組合せを最適化することは、最も高い可能なレベルが達成されることを確実にするためにしばしば必要とされ得る。
本発明のこれらの局面は、分泌細胞を用いるタンパク質産生における使用のための候補プロモーターを解析するために使用され得る。これらの実施態様において、プロモーターから発現されるＧＦＰは、細胞から細胞外環境（次いで、そこでＧＦＰは検出される）におそらく分泌される。
誘導性プロモーターの試験的かつ究極的使用は、本発明の別の局面を形成する。タンパク質産生の目的のための組換え発現において、細胞培養または細胞周期の特定の時期で発現を誘導することが所望され得る。細胞または所定の系内における所定のタンパク質の分布を解析するにおいて、特定の条件下（例えば、特定のサイトカインまたはホルモンの存在下）でのみスイッチが入れられるプロモーターを使用することはまた有用である。
誘導性プロモーターを用いるヒト化ｇｆｐ遺伝子の使用はまた、プロモーター自身の解析にまで及ぶ。本明細書での例は、進化を通して種々の生物において発現されることが公知であるプロモーターのある群（例えば、熱ショックタンパク質と関連するプロモーター）からの特定のプロモーターの解析である。この方法において、例えば、酵母で作動可能なプロモーターは、それが哺乳動物細胞においても作動可能かどうか決定するために、そして、それゆえ、哺乳動物細胞が、酵母プロモーターのホモログをおそらく含むかどうかを決定するために、取得され得、そして哺乳動物細胞系において発現され得る。
組織特異的プロモーターおよび誘導性プロモーターの使用は、インビボ実施態様において特に強力である。動物における治療用遺伝子を発現させる情況において使用される場合、このようなプロモーターの使用によって、所定の組織で、所定の部位および／または規定された条件下でのみの発現を可能にする。これは、遺伝子発現を、特定の標的器官、組織、または領域に限定することを可能にし、そして残りの身体を通して遺伝子発現を制限する重要な利点である。癌の治療においてしばしば用いられるので、組織特異的発現を達成することは、特定の遺伝子治療適用（例えば、細胞傷害性因子の発現）において特に重要である。有益な効果を有する他の治療用遺伝子を発現するにおいて、当然、組織特異的発現はまた、それが治療の効果を最適化する点において好ましい。
適切な組織特異的および誘導性プロモーターは当業者に公知である。例示のみのために、肝臓脂肪酸結合（ＦＡＢ）タンパク質遺伝子プロモーター（大腸上皮細胞に特異的）；インスリン遺伝子プロモーター（膵臓細胞に特異的）；トランスフィレチン（ｔｒａｎｓｐｈｙｒｅｔｉｎ）、α１−アンチトリプシン、プラスミノーゲンアクチベーターインヒビタータイプ１（ＰＡＩ−１）、アポリポタンパク質ＡＩおよびＬＤＬ受容体遺伝子プロモーター（各々、肝臓細胞おいて特異的または優先的な発現を指向する）が挙げられる。脳組織において活性なプロモーターとしては、ミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ）遺伝子プロモーター（希突起神経細膠細胞に特異的）；グリア繊維酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）遺伝子プロモーター（グリア細胞に特異的）；および神経細胞に特異的である神経特異的エノラーゼ（ＮＳＥ）プロモーターが挙げられる。
インビボ使用のための誘導性プロモーターは、好ましくは、生物学的に適合性な因子、好ましくは、通常、規定された動物組織において出会う因子に応答性であるプロモーターを含む。一例は、ヒトＰＡＩ−１プロモーターであり、これは腫瘍壊死因子によって誘導される。さらに適切な例は、チトクロームＰ４５０遺伝子プロモーター（種々の毒素および他の因子によって誘導される）；熱ショックタンパク質遺伝子（種々のストレスによって誘導される）；ホルモン誘導性遺伝子（例えば、エストロゲン遺伝子プロモーター）などである。
電離放射線によって誘導されるプロモーターはまた、特定の実施態様において、特にガンの遺伝子治療において使用され得、ここで遺伝子発現は電離放射線（例えば、ＵＶまたはＸ線）に曝露されることによってガン細胞において局所的に誘導される。電離放射線によって誘導性である適切なプロモーターとしては、ｅｇｒ−１、ｆｏｓ、およびｊｕｎが挙げられる。
（ｄ）スクリーニングプロトコル
本発明のヒト化ｇｆｐとともにプロモーターを使用することのさらなる開発は、スクリーニングプロトコルにおけるその使用である。これらの実施態様（これらは、一般的にインビトロで行われる）において、遺伝子操作された細胞は組成物おける特定の化合物または因子の存在を同定するために使用される。
スクリーニング実施態様において、ヒト化ｇｆｐ遺伝子は同定することが望まれる因子によって誘導されることが公知であるプロモーターの下流に位置づけられる。細胞におけるｇｆｐの発現は、正常にはサイレントであり、そして選択された因子を含む組成物に細胞を曝露することによってスイッチが入れられる。例えば、重金属、毒素、ホルモン、サイトカイン、または他の規定された分子に応答性であるプロモーターを使用するにおいて、重金属、毒素、ホルモン、サイトカインなどの存在は、容易に決定され得る。
前記の列挙から、本発明のスクリーニング局面は２つの基本的な群に分けられ、それは簡便に用語「生物学的」および「化学的」と呼ばれ得る。
生物学的アッセイにおいて、生物学的なエフェクター分子によって誘導性であるプロモーターの制御下のヒト化ｇｆｐ遺伝子を含む細胞は、種々の種類の生物学的サンプル（これは血液、血漿、精液、尿、唾液などを含む）中のこのような分子の存在を検出するために使用され得る。このような方法で検出可能であるこれらのエフェクター分子は、ホルモン、サイトカイン、神経伝達物質などの分子を含む。当然、本願を通して使用される場合、用語「プロモーター」は、任意の調節エレメントを言及するために使用されることが理解される。本明細書における特定の例は、所定の組成物中でのステロールを検出するためのヒト化ｇｆｐと併用するステロール調節エレメントの使用；血清応答エレメント（これは、ＵＶ、ＥＧＦ、ＰＤＧＦ、およびＴＰＡによって誘導される）の類似の使用である。
いわゆる化学アッセイにおいて、化学的因子によって誘導性であるプロモーターの制御下のヒト化ｇｆｐ遺伝子を含む細胞は、種々の組成物中の化学的因子の存在を検出するために使用される。これらのアッセイは、液体（例えば、飲料水など）中の毒素または混入物を検出するために使用され得る。この方法で検出され得る因子のタイプは、重金属、毒素、および他の種々の汚染物ならびに非所望の化学薬品を含む。
当然、任意のスクリーニングアッセイは、所定のプロモーターからの遺伝子発現を阻害するか、抑制するか、またはそうでなければ、ダウンレギュレートする因子を検出する情況において使用され得ることが理解される。このようなネガティブな効果は、遺伝子発現が阻害因子の存在に応答して「スイッチを切る」場合に生じる蛍光のレベルの減少および低減された蛍光によって検出可能である。
（ｅ）ＦＡＣＳ分析におけるＧＦＰ
多くの慣習的なＦＡＣＳ法は、精製抗体に結合した蛍光色素の使用を必要とする。蛍光標識でタグ化されたタンパク質は、ＦＡＣＳ適用における抗体に対して好ましい。なぜなら、細胞は蛍光タグ化試薬とインキュベートする必要がなく、そして抗体結合物の非特異的結合によるバックグランドがないからである。蛍光は安定であり、そして種非依存性であり、いかなるマトリックスも補因子も必要としないので、ＧＦＰはＦＡＣＳにおける使用に特に適切である。
他の発現実施態様において、所望のタンパク質は、ＧＦＰ融合タンパク質を調製し、そして細胞内で発現させることによって直接的にＧＦＰで標識され得る。ＧＦＰはまた、上記のように所望のタンパク質を発現する発現ベクター内で第２の転写または翻訳単位から同時発現され得る。次いで、ＧＦＰタグ化タンパク質を発現する細胞またはＧＦＰを同時発現する細胞は、ＦＡＣＳ分析によって検出され、そしてソートされる。ＦＡＣＳ分析は、レポーター遺伝子としてＧＦＰを使用する場合、遺伝子発現およびプロモーター活性をモニターする末端手段として使用され得る。
（ＧＦＰ自身もまた使用され得るが）赤方偏移ＧＦＰは、ＦＡＣＳを用いる使用に特に適切である。ほとんどのＦＡＣＳ装置で使用されるアルゴンイオンレーザーは、４８８ｎｍで放射し、したがって、赤方偏移ＧＦＰ改変体の励起（例えば、励起ピークは約４９０ｎｍ）は、野生型ＧＦＰの励起よりも効果的である。ＦＡＣＳ技術を用いるＧＦＰの首尾良い使用は、本明細書中に示される。
６．ＧＦＰ融合タンパク質
ヒト化ｇｆｐ遺伝子は、融合タンパク質の一部として使用され得、これはタンパク質の位置を同定することを可能にする。「外因性」タンパク質とのＧＦＰの融合物は、ＧＦＰの蛍光および宿主タンパク質の機能（例えば、生理学的機能および／または標的化機能）の両方を保持するべきである。
ＧＦＰのアミノ末端およびカルボキシル末端の両方は、任意の所望のタンパク質と実際に融合され得、同定可能なＧＦＰ−融合物を作製する。野生型遺伝子を使用して調製されたＮ−およびＣ−末端タンパク質の融合物の両方が報告されている（ＷａｎｇおよびＨａｚｅｌｒｉｇｇ、１９９４）。ＧＦＰのカルボキシル末端へのタンパク質の融合は、リンカー配列によって増強されるかもしれない。
（ａ）細胞下局在
局在化研究は、細胞下分画によっておよび免疫蛍光によって以前に行われてきた。しかし、これらの技術は、細胞周期におけるある瞬間でのタンパク質の位置の「スナップショット」のみを与え得る。さらに、人工産物が、細胞が免疫蛍光のために固定される場合、導入され得る。生存細胞においてタンパク質を可視化するためにＧＦＰを使用することは、個々の細胞中で細胞周期を通してタンパク質を追跡することを可能にし、従って重要な技術である。
ヒト化ＧＦＰは、種々の条件下で哺乳動物細胞およびヒト細胞における細胞内タンパク質輸送をリアルタイムで分析するために用いられ得る。細胞を固定することから生じるアーチファクトは回避される。これらの適用において、ヒト化ＧＦＰは、その細胞下の位置を異なる天然の条件下で調べるために、公知のタンパク質に融合される。
Ｐｉｎｅｓ（１９９５）は、一過性のトランスフェクションによって哺乳動物組織培養細胞中で発現された、ＧＦＰ−サイクリンキメラを作製するためのタグとしての野生型ＧＦＰの使用を記載した。予備的な実験において、ＧＦＰならびにＮ−およびＣ−末端ＧＦＰサイクリンキメラの両方が、生細胞において検出され、そして蛍光が、このような細胞において数時間追跡された。
Ｐｉｎｅｓ （１９９５）は、サイトメガロウイルス初期プロモーターを用いて、一過的にトランスフェクトされた細胞においてＧＦＰ発現を駆動させ、そしてＧＦＰをＣＯＳ−７、ＨｅＬａ、およびＮＩＨ ３Ｔ３細胞において発現させた。全ての場合において、キメラは１２時間後に免疫蛍光によって検出されたにもかかわらず、蛍光が検出される前にラグ期間（＞１５時間）が存在した。これは、細菌中で約４時間かかるＧＦＰが自己酸化するための要求に起因し得る（Ｈｅｉｍら、１９９４）。哺乳動物細胞におけるこれらの研究とは対照的に、本発明は、ＧＦＰ蛍光が約６時間で検出可能であったというはっきりとした利点を有する。
Ｐｉｎｅｓ（１９９５）および他者らの研究において、ＧＦＰはタンパク質の天然の細胞下局在化を妨害しなかった。Ｐｉｎｅｓ（１９９５）は、ＧＦＰ単独が細胞全体（核および細胞質の両方）に分布していることを示した。サイクリンＡにタグ化された場合、主に核に存在することが見出され、そしてサイクリンＢにタグ化された場合、それはＢ型サイクリンに依存して微小管または小胞区画と結合しながら、細胞質に存在することが見出された（Ｐｉｎｅｓ，１９９５）。
ヒト化ＧＦＰは、実質的に任意のタンパク質をタグ化し、そして異なる条件下でタンパク質の位置を追跡するために用いられ得る。例えば、所定のタンパク質の、減数分裂、有糸分裂、アポトーシス、または他の細胞プロセスを通した追跡において。所定のタンパク質の位置もまた、外的刺激の数に応答して決定され得る。このような刺激は、異なる物理的条件（例えば、漸増または漸減温度、およびさらに異なる化学的環境）を含む。用語「化学的環境」により、遭遇し得る天然の環境（例えば、塩または血清増殖因子などの異なるレベルを有する組成物）およびさらにエフェクター分子が添加されている組成物の両方を意味する。
エフェクター分子を有する組成物は、所定の細胞における応答を誘発するために用いられる。本発明のヒト化ｇｆｐは、所定のエフェクターまたはアゴニストに対する細胞の応答が決定されるアッセイにおいて用いられ得る。このような方法を用いることによって、ホルモン、サイトカイン、神経伝達物質、または他の因子に応答した所定のタンパク質の位置が決定され得る。タンパク質の位置が、変化する外部刺激によって変わること、およびタンパク質が、内部区画（例えば、外膜、サイトゾル、小胞体、および核区画）間を移動することは周知である。
（ｂ） ＧＦＰ駆動標的化
ＧＦＰ融合タンパク質の別の使用は、タンパク質の天然の行き先であるけれどもタンパク質が特定の細胞区画への輸送に適応された後の標的化タンパク質の特定の場所での検出においてである。これを達成するために、標的化配列（例えば、核またはミトコンドリア標的化配列）は、ＧＦＰ配列とともに所望のタンパク質に融合される。これは、タンパク質の天然の位置がＧＦＰを用いて決定される上記したばかりの方法とは対照的である。
核は、その独特の機能を媒介することを助ける多くのタンパク質を含む。これらのタンパク質は、それらが生成されるサイトゾルから移入される。これらは、核の内部（核内腔）に到達するためには、核の外膜および内膜の両方を通り抜けて通過しなければならない。この輸送プロセスは、選択的である：サイトゾルで生成された多くのタンパク質は、核から除外される。多くの核タンパク質は、孔チャンネルを拡大しながら核中へタンパク質を活発に輸送する、孔縁上に局在するレセプタータンパク質と相互作用する。
核輸送の選択性は、核移入シグナルに存在し、それは核タンパク質においてのみ存在する。核移入シグナルは、いくつかの核タンパク質において遺伝子操作技術を用いて正確に規定されている。タンパク質のどこにでも局在され得るシグナルは、正に荷電したアミノ酸リジンおよびアルギニンが豊富であり、そして通常プロリンを含む短いペプチド（代表的には４〜８アミノ酸残基）からなる。例えば、Ｔ抗原核移入シグナルは、Ｐｒｏ Ｐｒｏ Ｌｙｓ Ｌｙｓ Ｌｙｓ Ａｒｇ Ｌｙｓ Ｖａｌ （配列番号６）である。
ヒト化ＧＦＰは、構築物（この中で、問題のタンパク質が、ＧＦＰおよび核標的化配列に融合される）の発現の後に、選択されたタンパク質が核内に移入されたことを確認するために用いられ得る。これは、基礎科学におけるインビトロ研究の一部として、またはインビボ治療の一部として（例えば、癌細胞の核などへの薬剤の指向において）さえ用いられ得る。
核局在化シグナルのヒト化ｇｆｐ遺伝子への添加はまた、発現されたタンパク質の蛍光強度を、核のよりずっと小さい空間にタンパク質を限局することによって増強させるために用いられ得る。これは、本明細書中で実施例ＶＩＩにブルーＧＦＰ変異体の状況において記載される。
核タンパク質分子は、（例えば、有糸分裂後に）繰り返し移入される必要があるので、その核移入シグナルペプチドは、核への移入後に切断されない。対照的に、一旦タンパク質分子が、任意の他の膜有界オルガネラ（ｍｅｍｂｒａｎｅ−ｂｏｕｎｄｅｄ ｏｒｇａｎｅｌｌｅ）によって移入されると、それはその区画内で世代から世代へと受け継がれ、そして再びトランスロケーションされる必要がない。それゆえ、これらの分子上のシグナルペプチドは、タンパク質トランスロケーションの後にしばしば除去される。
ミトコンドリアは、二重膜有界オルガネラであり、電子輸送および酸化的リン酸化によるＡＴＰの合成に特殊化されている。それらのタンパク質のほとんどは、細胞核によってコードされ、そしてサイトゾルから移入される。さらに、各移入タンパク質は、それが機能する特定の小区画に到達しなければならない。ミトコンドリアには、４つの小区画がある：マトリックス空間；内膜；膜間空間；およびサイトゾルに面する外膜。これらの小区画のそれぞれは、異なるセットのタンパク質を含んでいる。
ミトコンドリアの生合成の研究は、酵母（融合タンパク質（組換えＤＮＡ技術によって産生される）をコードするハイブリッド遺伝子が効率的に導入され得る）の使用によって容易にされている。ミトコンドリアマトリックスへ移入されるタンパク質は、これらが遊離のポリリボソームから放出されてから１〜２分以内に、通常サイトゾルから取り込まれる。
移入されるタンパク質は、たいていいつもシグナルペプチド（２０〜８０残基長）をそのアミノ末端に有する。移入された後、シグナルペプチドはミトコンドリアマトリックス内の特定のプロテアーゼ（シグナルペプチダーゼ）によって迅速に除去され、次いでおそらくマトリックス内でアミノ酸に分解される。シグナルペプチドは、驚くほど簡単であり得る。シグナルペプチドの長さが連続的に減少される分子遺伝子実験は、１つのミトコンドリアタンパク質について、ミトコンドリア移入を合図するために、１２のアミノ酸のみがアミノ末端で必要とされることを示している。これらの１２残基は、任意の細胞質タンパク質に付着し得、そしてタンパク質をミトコンドリアマトリックスへ指向させる。
全長シグナルペプチドの物理的研究は、正に荷電した残基が全てヘリックスの側面に整列し、一方非荷電の疎水性残基が反対側に向かって整列する、両親媒性のαヘリックス構造を形成し得ることを示唆する。ミトコンドリア移入配列の例は、Ｍｅｔ Ｌｅｕ Ｓｅｒ Ｌｅｕ Ａｒｇ Ｇｌｎ Ｓｅｒ Ｉｌｅ Ａｒｇ Ｐｈｅ Ｐｈｅ Ｌｙｓ Ｐｒｏ Ａｌａ Ｔｈｒ Ａｒｇ Ｔｈｒ Ｌｅｕ （配列番号７）である。
ミトコンドリア膜間空間へのいくつかの前駆体タンパク質の輸送は、マトリックスへのそれらの最初の移送で開始される。ここで、非常に疎水的なアミノ酸配列は、戦略的に移入を惹起するアミノ酸シグナルペプチドの後ろに置かれる。一旦アミノ末端シグナルがマトリックスプロテアーゼによって切断されると、疎水性配列は、内膜にタンパク質を再挿入するためのシグナルペプチドとして機能する。マトリックスからのこの移送は、おそらくＥＲ膜へのタンパク質移入に用いられる機構に類似の機構によって起こり、そしてこれはミトコンドリア内でコードされるタンパク質を内膜中へ挿入するために用いられる機構でもある。サイトゾルからミトコンドリア内膜へのタンパク質の輸送もまた、疎水性シグナルペプチドを必要とする。
生細胞内でのミトコンドリアの動きを可視化するためのＧＦＰおよびミトコンドリア標的化配列の使用は、Ｒｉｚｚｕｔｏら（１９９５）によって報告されている。ローダミンのような色素とは対照的に、ＧＦＰを用いることは、オルガネラ膜電位を消失させる薬物によってミトコンドリア内で誘導された形態学的変化が明らかにした。
これらの研究において、Ｒｉｚｚｕｔｏら（１９９５）は、チトクロムＣオキシダーゼのサブユニットＶＩＩＩの前駆体のアミノ末端３１アミノ酸（これは、ミトコンドリア標的化配列を形成する）をコードするＤＮＡフラグメントを融合タンパク質コード配列の一部として用いた。キメラｃＤＮＡをアミノ末端からカルボキシル末端へ、以下をコードするように作製した：ミトコンドリアプレ配列および成熟チトクロームＣオキシダーゼタンパク質の６アミノ酸；いくつかのリンカーアミノ酸；およびＧＦＰ。この構築物は、ミトコンドリアへ移入されたＧＦＰを発現した。
ヒト化ＧＦＰの使用は、Ｒｉｚｚｕｔｏら（１９９５）によって記載されるタイプの研究（ここでは、単にミトコンドリアを全体として標識することが所望されている）の改良である。ヒト化ＧＦＰはまた、選択されたタンパク質が、構築物（この中で、所望のタンパク質がＧＦＰおよびミトコンドリア標的化配列に融合される）の発現の後にミトコンドリアへ移入されることを確認するために用いられ得る。ここで、ミトコンドリア標的化配列は、融合タンパク質のＮ末端に（コード核酸の３’末端に）位置されるべきである。
７．遺伝子治療適用
首尾良い遺伝子治療は、一般に、遺伝的障害を矯正し得る遺伝子の宿主ゲノムへの組込みを必要とする。宿主ゲノムにおいて、この遺伝子は、宿主ＤＮＡと共存し、そして複製し、そして欠損遺伝子を補償するレベルで発現される。理想的には、疾患は、１つまたはいくつかの処置によって重篤な副作用なしに治癒される。現在までに提唱された遺伝子治療に対するいくつかのアプローチがあった。これらの各々は、本発明のヒト化ｇｆｐとの組合せから恩恵を受け得る。
１つのアプローチは、目的の遺伝子を含むＤＮＡを、例えば、細胞膜を化学的にかまたは物理的にかのいずれかで透過化処理することによって、細胞中にトランスフェクトすることである。このアプローチは、一般に、一時的に身体から取り出され得、そして処置の細胞傷害性に対して耐性であり得る細胞（すなわち、リンパ球）に限定される。リン酸カルシウム沈澱（ＧｒａｈａｍおよびＶａｎ Ｄｅｒ Ｅｂ，１９７３；Ｒｉｐｐｅら、１９９０）、ＤＥＡＥデキストラン（Ｇｏｐａｌ，１９８５）、エレクトロポレーション（Ｔｕｒ−Ｋａｓｐａら、１９８６；Ｐｏｔｔｅｒら、１９８４）、および直接マイクロインジェクションが、このような方法の例である。
特定の脂質および両親媒性ペプチドで形成されたリポソームまたはタンパク質結合体が、インビボおよびインビトロトランスフェクションのために使用され得（Ｓｔｅｗａｒｔら、１９９２；Ｔｏｒｃｈｉｌｉｎら、１９９２；Ｚｈｕら、１９９３；Ｌｅｄｌｅｙら、１９８７；Ｎｉｃｏｌａｕら、１９８３；ＮｉｃｏｌａｕおよびＳｅｎｅ，１９８２）、そしてポリリジン−糖タンパク質キャリア複合体にカップリングしたＤＮＡもまた用いられ得る。
この様式での遺伝子組込みの効率は、一般に非常に低い。目的の遺伝子は、１，０００〜１００，０００のうち１つの細胞のみのゲノムに組み込まれることが予想される。組込みの非存在下では、トランスフェクトされた遺伝子の発現は、非組込みＤＮＡの分解に起因して、増殖細胞において数日または非増殖細胞において数週間に限定される。本発明は、所望のトランスフェクトされた遺伝子をより長い時間発現する細胞を容易に同定するために使用され得る。
Ｊｉａｏら（１９９３）は、脳組織における遺伝子の移送および発現のためのパーティクルボンバードメント媒介遺伝子移送プロトコル（ｐａｒｔｉｃｌｅ ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｐｒｏｔｏｃｏｌ）の成功を記載する。このことは、これがこのような組織への遺伝子移送のための効果的な方法として使用され得ることを示唆する。
プラスミドは、ヒト化ｇｆｐ遺伝子物質を細胞中に直接移送するために用いられ得る（Ｗｏｌｆｅら、１９９０）。それゆえ、ＤＮＡセグメントそれ自体は、送達因子として用いられ得る。ＤＮＡセグメントを用いるための技術は、最近開発され、そして一般に「ＤＮＡワクチン接種」と呼ばれる（Ｃｏｈｅｎ，１９９３）。現在、細胞が裸のＤＮＡを取込み得、そしてコードされたタンパク質を発現し得ることは公知である。
この技術、およびその改変（例えば、Ｕｌｍｅｒら、（１９９３）；Ｔａｎｇら、（１９９２），Ｃｏｘら、（１９９３），Ｆｙｎａｎら、（１９９３），Ｗａｎｇら、（１９９３）、およびＷｈｉｔｔｏｎら（１９９３）により記載され、各々本明細書中に参考として援用されるもの）の利用が、ＤＮＡを標的細胞に送達するために用いられ得る。非経口接種、粘膜接種、および遺伝子銃接種（Ｆｙｎａｎら、１９９３）が用いられ得る。
用いられ得る別のアプローチは、ウイルスが細胞に侵入し、それら自体の遺伝物質をそれらにもたらす天然の能力を利用する。レトロウイルスは、それらの遺伝子を宿主ゲノムに組み込み、大量の外来遺伝物質を移送し、広範な種および細胞型に感染し、そして特別の細胞株中でパッケージングされるそれらの能力に起因して、遺伝子送達ベクターとしての期待を有する（Ｍｉｌｌｅｒ，１９９２）。
種々のレトロウイルスベクター（例えば、単純ヘルペスウイルス（米国特許第５，２８８，６４１号、本明細書中に参考として援用される）、サイトメガロウイルスなど）がＭｉｌｌｅｒ（Ｍｉｌｌｅｒ，１９９２）に記載されるように用いられ得る。単純ヘルペスチミジンキナーゼ（ＨＳ−ｔＫ）遺伝子は、レトロウイルスベクター系を用いて脳腫瘍に送達されている（そこで、首尾良く抗ウイルス剤ガンシクロビルに対する感受性を誘導した）（Ｃｕｌｖｅｒら、１９９２）。
第二世代レトロウイルスベクターを用いた遺伝子送達もまた報告されている。Ｋａｓａｈａｒａら（１９９４）は、モロニーマウス白血病ウイルス（これは、通常マウス細胞のみを感染する）の操作された改変体を調製し、そしてこのウイルスが特異的にエリスロポエチン（ＥＰＯ）レセプターを保有するヒト細胞に結合し、そして感染するようにエンベロープタンパク質を改変した。これは、ＥＰＯ配列の一部をエンベロープタンパク質に挿入し、新たな結合特異性を有するキメラタンパク質を作製することによって達成された。
上記のような送達系は、本発明と関連して用いられ得る。レトロウイルス処置の状況において、本発明は、前臨床的開発段階において、そしてまた投与後の遺伝子発現をインビボでモニターするための両方で用いられる。
さらなる方法は、他のウイルス（例えば、ワクシニアウイルス（Ｒｉｄｇｅｗａｙ，１９８８；ＢａｉｃｈｗａｌおよびＳｕｇｄｅｎ，１９８６；Ｃｏｕｐａｒら、１９８８）；欠損Ｂ型肝炎ウイルス（Ｈｏｒｗｉｃｈら、１９９０；Ｃｈａｎｇら、１９９１）；アデノウイルスおよびアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ；Ｍｕｚｙｃｚｋａ，１９９２；以下を参照のこと）を用い、これらは遺伝子移送のためのベクターとして作用するように操作される。外来遺伝物質を受容し得るいくつかのウイルスは、それらが収容し得るヌクレオチドの数において、およびそれらが感染する細胞の範囲において限定されているが、これらのウイルスは、首尾良く遺伝子発現をもたらすことが実証されている。アデノウイルスは、それらの遺伝子物質を宿主ゲノム中に組み込まず、そしてそれゆえ遺伝子発現のための宿主複製を必要せず、それらを迅速な、効率的な、異種の遺伝子発現に対して適切にしている。アデノウイルスおよびＡＡＶ（米国特許第５，１３９，９４１号、本明細書中に参考として援用される）は、本明細書中以下に記載される。ここでもまた、本発明は、前臨床的開発において、および処置の間に用いられる。
本発明の発見は、生物学的分野において周知であり、そして以下の節でさらに記載される特定の技術とともに用いられ得る。
８．生物学的機能的等価物
先に述べたように、改変および変更がＧＦＰの構造においてなされ得、そしてなお同様のまたはそうでなければ所望の特徴を有する分子を得る。例えば、タンパク質構造における特定のアミノ酸が、感知し得るほどの機能の損失なしに他のアミノ酸で置換され得る。従って、種々の変更が、ヒト化ｇｆｐタンパク質の配列において、基礎となるＤＮＡを変更することによって、それらの生物学的有用性または活性の感知し得るほどの損失なしになされ得ることが意図される。
分子の規定された部分内でなされ得、かつなお等価な生物学的活性の受容可能なレベルを有する分子を生じ得る変更の数に制限があるという概念が、生物学的に機能的等価なタンパク質の定義において固有であることもまた、当業者によって十分に理解される。例えば、実質的に短縮されたｇｆｐ遺伝子が生物学的に機能的等価物でないことがすでに説明されている。
しかし、本発明の状況において、変異または変更が、蛍光の完全な欠損を有するＧＦＰタンパク質を生じない限り、生じるタンパク質は、本発明の目的のために生物学的機能的等価物であると考えられることもまた認識される。実際、異なるスペクトルの特性を有するタンパク質を生じるアミノ酸置換は、本発明の範囲内にある。これは、発色団領域内部および発色団領域外部の変異を含む。
９．部位特異的変異誘発
部位特異的変異誘発は、ヒト化ｇｆｐ遺伝子のさらなる改変体を調製するために用いられ得る。部位特異的変異誘発は、基礎となるＤＮＡの特定の変異誘発を通した、個々のペプチド、または生物学的に機能的等価なタンパク質もしくはペプチドの調製において有用な技術である。この技術は、１つ以上のヌクレオチド配列変更をＤＮＡに導入することによって変異体を調製し、そして配列決定する準備ができた能力をさらに提供する。
部位特異的変異誘発は、所望の変異のＤＮＡ配列をコードする特定のオリゴヌクレオチド配列、ならびに超えられた欠失連結部の両側に安定な二重鎖を形成するのに十分なサイズおよび配列複雑性を有するプライマー配列を提供するために十分な数の隣接ヌクレオチドの使用によって変異体の生成を可能にする。代表的には、変更される配列の連結部の両側に約５〜１０残基を有する約１７〜２５ヌクレオチド長のプライマーが好ましい。
部位特異的変異誘発の技術は、刊行物によって例示されているように（Ａｄｅｌｍａｎら、１９８３）、一般に当該分野で周知である。理解されるように、技術は、代表的には、一本鎖および二本鎖の形態の両方で存在するファージベクターを利用する。部位特異的変異誘発に有用な代表的なベクターは、Ｍ１３ファージ（Ｍｅｓｓｉｎｇら、１９８１）のようなベクターを含む。これらのファージは、容易に市販されていて、そしてそれらの使用は、当業者に一般に周知である。二本鎖プラスミドもまた、目的の遺伝子をプラスミドからファージへ移行する工程を排除した部位特異的変異誘発において日常的に利用される。
一般に、本明細書に従う部位特異的変異誘発は、まず一本鎖ベクターを得ること、またはその配列内にｇｆｐまたはヒト化ｇｆｐをコードするＤＮＡ配列を含む二本鎖ベクターの二本の鎖を融解分離することによって行われる。所望の変異配列を保有するオリゴヌクレオチドプライマーは、一般に合成的に、例えばＣｒｅａら（１９７８）の方法によって調製される。次いで、このプライマーを一本鎖ベクターとアニーリングさせ、そして変異保有鎖の合成を完了するためにＤＮＡ重合化酵素（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉポリメラーゼＩクレノウフラグメント）に供する。従って、ヘテロ二重鎖が形成され、ここで一方の鎖は、元の非変異配列をコードし、そして第二の鎖は、所望の変異を保有する。次いで、ヘテロ二重鎖ベクターを用いて、適切な細胞（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉ細胞）を形質転換し、そして変異された配列配置を保有する組換えベクターを含むクローンが選択される。
適切な技術はまた、本明細書中で参考として援用される米国特許第４，８８８，２８６号に記載されている。
部位特異的変異誘発を用いる選択されたヒト化ｇｆｐ遺伝子の配列改変体の調製は、潜在的に有用なＧＦＰ種を生成する手段として提供され、そして限定することを意味しない。なぜなら、ＧＦＰの配列改変体が得られ得る他の方法が存在するからである。例えば、所望のヒト化ｇｆｐ遺伝子をコードする組換えベクターは、変異原性の因子で処理され得、配列改変体を得る。（ヒドロキシルアミンを用いるプラスミドＤＮＡの変異誘発については、例えば、Ｅｉｃｈｅｎｌａｕｂ，１９７９によって記載される方法を参照のこと）。
前述の方法は、変異誘発における使用に適切であるが、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲＴＭ）の使用が、ここでは一般に好ましい。この技術は、所望の変異を所定のＤＮＡ配列中に導入するための迅速かつ効果的な方法を提供する。以下の文は、所定の配列によってコードされるアミノ酸を変更するために用いられ得るような、点変異を配列に導入するためのＰＣＲＴＭの使用を特に記載する。本方法の適応はまた、ＤＮＡ分子中に制限酵素部位を導入するためにも適切である。
この方法において、合成オリゴヌクレオチドは、増幅されたセグメントの一端に点変異を組み込むように設計される。ＰＣＲＴＭに続き、増幅されたフラグメントは、クレノウフラグメントで処理することによって平滑末端化され、次いで、この平滑末端化されたフラグメントは、配列分析を容易にするためにベクター中に連結され、そしてサブクローン化される。
変異誘発しようと所望するテンプレートＤＮＡを調製するために、ＤＮＡを高コピー数ベクター（例えば、ｐＵＣ１９）中に、変異される領域に隣接する制限部位を用いてサブクローン化する。次いで、テンプレートＤＮＡをプラスミドミニプレップを用いて調製する。親配列に基づくが、所望の点変異を含み、そして５’端で制限酵素部位が隣接する適切なオリゴヌクレオチドプライマーは、自動化合成機を用いて合成される。プライマーがテンプレートＤＮＡに対して約１５塩基程相同であることが、一般に必要とされる。プライマーは、変性ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって精製され得るが、これは、ＰＣＲＴＭにおける使用に絶対に必要なわけではない。次いで、オリゴヌクレオチドの５’末端がリン酸化される。
テンプレートＤＮＡは、所望の点変異を含むオリゴヌクレオチドプライマーを用いてＰＣＲＴＭによって増幅される。増幅緩衝液中のＭｇＣｌ２の濃度は、一般に約１５ｍＭである。一般に、約２０〜２５サイクルのＰＣＲＴＭが以下のように行われる：９５℃で３５秒の変性；５０℃で２分間のハイブリダイゼーション；そして７２℃で２分間の伸長。ＰＣＲＴＭは、一般に７２℃で約１０分間の最終サイクルの伸長を含む。最後の伸長工程後、約５単位のクレノウフラグメントが反応混合物に添加され、そして約３０℃でさらに１５分間インキュベートされる。クレノウフラグメントのエキソヌクレアーゼ活性は、平滑末端クローニングのために末端を平滑かつ適切にするために必要とされる。
得られる反応混合物は、増幅が予想された生成物を生じたことを確認するために、非変性アガロースゲル電気泳動またはアクリルアミドゲル電気泳動によって一般に分析される。次いで、反応混合物を、鉱油のほとんどを除去し、クロロホルムで抽出して残りの油を除去し、緩衝化フェノールで抽出し、次いで１００％エタノールで沈殿させることによって濃縮することによってプロセスする。次に、増幅されたフラグメントの約半分を、オリゴヌクレオチドにおいて使用された隣接配列で切断する制限酵素で消化する。消化されたフラグメントを低ゲル化／溶解（ｌｏｗ ｇｅｌｌｉｎｇ／ｍｅｌｔｉｎｇ）アガロースゲル上で精製する。
フラグメントをサブクローニングし、そして点変異をチェックするために、２つの増幅フラグメントを、平滑末端連結によって、適切に消化されたベクター中にサブクローニングする。これは、Ｅ．ｃｏｌｉを形質転換するために用いられ、続いてこのＥ．ｃｏｌｉから、プラスミドＤＮＡがミニプレップを用いて調製され得る。次いで、正確な点変異が生成されたことを確認するために、プラスミドＤＮＡの増幅された部分はＤＮＡ配列決定によって分析される。Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼがさらなる変異をＤＮＡフラグメントに導入し得るので、これは重要である。
点変異の導入はまた、連続的ＰＣＲＴＭ工程を用いてもたらされ得る。この手順において、変異を包含する２つのフラグメントが互いにアニーリングされ、そして相互にプライムされた合成によって伸長される。次いで、このフラグメントは、第二のＰＣＲＴＭ工程によって増幅され、それにより上記のプロトコルで必要とされる平滑末端連結を回避している。この方法において、テンプレートＤＮＡの調製、オリゴヌクレオチドプライマーの生成、および第一のＰＣＲＴＭ増幅は、上記のように行われる。しかし、このプロセスにおいて、選択されたオリゴヌクレオチドは、テンプレートＤＮＡに約１５〜約２０塩基のストレッチについて相同であり、そしてまた約１０塩基以上互いに重複しなければならない。
第二のＰＣＲＴＭ増幅において、各増幅されたフラグメントおよび各隣接配列プライマーを用い、そして約２０〜約２５サイクルのＰＣＲＴＭを、上記の条件を用いて行う。再び、フラグメントをサブクローニングし、そして点変異が正確であった−ことを先に概説した工程を用いてチェックする。
以下の方法のいずれかの使用において、可能な限り小さなフラグメントを増幅することにより変異を導入することが一般に好ましい。もちろん、オリゴヌクレオチドの融解温度のようなパラメーターはまた、一般にＧＣ量およびオリゴの長さにより影響されるため、注意深く考慮されるべきである。これらの方法の実行および必要な場合のこれらの最適化は、当業者に公知であり、そして種々の文献（例えば、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，１９９５（本明細書中に参考として援用される））にさらに記載される。
１０．発現プラスミドおよびベクター
広範な種々の組換えプラスミドおよびベクターがヒト化ｇｆｐ遺伝子を発現するために操作され、それにより細胞にＧＦＰを送達するために使用され得る。
本明細書中で使用される用語「発現ベクター」は、核酸配列が哺乳動物細胞またはヒト細胞において転写され得る、ヒト化ｇｆｐ遺伝子の核酸配列を含む任意のタイプの遺伝子構築物を含む。本発明の発現ベクターはまた、本発明自体により提供されるように、ＧＦＰタンパク質への翻訳を指向する。ヒト化ｇｆｐ配列に加えて、発現ベクターは一般に、通常その構築および使用を容易にするためにベクターにおいて用いられる制限酵素切断部位および他の開始、終結および介在ＤＮＡ配列を含む。
哺乳動物細胞において使用するための発現ベクターは、通常、複製起点（必要に応じて）および発現されるべき遺伝子の前に位置するプロモーターを含む。好ましくは、ポリアデニル化部位および翻訳終結配列が含まれる。リボソーム結合部位およびＲＮＡスプライス部位がまた含まれ得る。例は、ＳＶ４０後期遺伝子１６Ｓ／１９Ｓスプライスドナー／スプライスアクセプターシグナルである。
複製起点は、外因性起点を含むようなベクターの構築（例えば、ＳＶ４０または他のウイルス（例えば、ポリオーマ、アデノ、ＶＳＶ、ＢＰＶ）供給源由来であり得る）により提供され得る）か、または宿主細胞染色体複製機構により提供され得る。ベクターが宿主細胞染色体に組み込まれる場合、後者がしばしば十分である。プロモーターは、以下に議論される。
特定の開始シグナルがまた、効率的な翻訳のために必要とされ得る。これらのシグナルは、ＡＴＧ開始コドンおよび隣接配列を含む。ＡＴＧ開始コドンを含む外因性翻訳制御シグナルは、さらに提供されることが必要とされ得る。当業者は、容易にこれを決定し得、そして必要なシグナルを提供し得る。開始コドンが、挿入物全体の翻訳を確実にするために、所望のコード配列のリーディングフレーム内でインフレーム（または、インフェーズ）でなければならないことは周知である。これらの外因性翻訳制御シグナルおよび開始コドンは、天然および合成の両方の種々の起源であり得る。発現の効率は、適切な転写エレメントおよび転写ターミネーターを含むことにより増強され得る（Ｂｉｔｔｎｅｒら、１９８７）。
哺乳動物発現において、最初のクローニングされたセグメント内に含まれない場合、典型的には適切なポリアデニル化部位（例えば、５’−ＡＡＴＡＡＡ−３’）を転写単位に取り込むこともまた所望される。典型的には、ポリＡ付加部位は、タンパク質の転写終結の前に位置する終結部位の約３０〜２０００ヌクレオチド「下流」に位置される。ポリアデニル化シグナルの特性は、本発明の首尾よい実施に重要であるとは考えられず、そして任意のこのような配列が用いられ得る。ＳＶ４０、ウシ成長ホルモン遺伝子およびシグナルは便利で、よく機能することが知られている。
組換えタンパク質の長期、高収率産生のために、安定な発現がしばしば好ましい。ここで宿主細胞は、ウイルス複製起点を含む発現ベクターを用いるよりも、適切な発現制御エレメント（例えば、プロモーター、エンハンサー、配列、転写ターミネーター、ポリアデニル化部位など）および選択マーカーにより制御されるベクターを用いて形質転換され得る。従って、ヒト化ｇｆｐ配列および選択マーカーを組み合わせた使用がまた意図される。
外来ＤＮＡの導入に続く安定な発現において、操作細胞は、富化培地において１〜２日間増殖され得、次いで選択培地に切り替えられ得る。組換えプラスミドにおける選択マーカーは、選択に対する耐性を与え、そして細胞にその染色体中にプラスミドを安定に取り込ませ、そしてフォーカスから増殖され、次いでクローン化され得そして細胞株に拡大され得る。
多数の選択系が使用され得、ｔｋ細胞、ｈｇｐｔ細胞、またはａｐｒｔ細胞においてそれぞれ単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ（Ｗｉｇｌｅｒら、１９７７）、ヒポキサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ｓｚｙｂａｌｓｋａら、１９６２）、およびアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ遺伝子（Ｌｏｗｙら、１９８０）を含むが、これらに制限されない。また、抗代謝物耐性が、メトトレキセートに対する耐性を与えるｄｈｆｒ（Ｗｉｇｌｅｒら、１９８０；Ｏ’Ｈａｒｅら、１９８１）；マイコフェノール酸に対する耐性を与えるｇｐｔ（Ｍｕｌｌｉｇａｎら、１９８１）；アミノグリコシドＧ−４１８に対する耐性を与えるｎｅｏ（Ｃｏｌｂｅｒｒｅ−Ｇａｒａｐｉｎら、１９８１）；およびハイグロマイシンに対する耐性を与えるｈｙｇｒｏ（Ｓａｎｔｅｒｒｅら、１９８４）の選択のための基礎として用いられる。
好ましいベクターは、細菌において機能性の複製起点および典型的な抗生物質耐性遺伝子（これらはそれぞれ形質転換細菌細胞において増殖および選択を可能にする）ことがまた意図される。
好ましいベクターにおいて、ＧＦＰ融合タンパク質の作製を容易にするために、ＧＦＰコード配列の末端で複数のクローニング部位（ＭＣＳ）がまた提供される。ＭＣＳは、目的の遺伝子における便利な制限部位とともに、インフレーム融合物を作製させる３つの異なるリーディングフレーム内に存在するはずである。
組換えベクターにおける同じプロモーターからの異なる遺伝子の協調発現は、ＩＲＥＳエレメント（例えば、下記のようなｐＳＢＣ−１由来のポリオウイルス１型の内部リボソーム侵入部位（Ｄｉｒｋｓら、１９９３））を用いて達成され得る。
１１．プロモーター
発現ベクターは、１つ以上のプロモーターの制御下のタンパク質コード核酸セグメントを含む。コード配列をプロモーターの「制御下」におくために、一般に選択したプロモーターの約１と約５０ヌクレオチドとの間の「下流」（すなわち、３’）に転写リーディングフレームの転写開始部位の５’末端を位置させる。「上流」プロモーターは、ＤＮＡの転写を刺激し、そしてコードされた組換えタンパク質の発現を促進する。
「プロモーター」は、細胞の合成機構または導入された合成機構により認識される、特定の遺伝子の転写を開始するために必要なＤＮＡ配列をいう。本明細書中に使用されるプロモーターは、哺乳動物細胞およびヒト細胞において作動可能であるはずである。句「作動可能な」および「転写制御を発揮する」は、ヒト化ｇｆｐ核酸に関して正しい位置および方向にあり、ＲＮＡポリメラーゼの開始およびヒト化遺伝子の発現を制御することを意味する。
ヒト化ＧＦＰを発現するために使用されるプロモーターは、本発明には重要ではない。例として、ヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）即時初期遺伝子プロモーターが使用されており（Ｔｈｏｍｓｅｎら、１９８４）、これは外来遺伝子の構成的な高レベルの発現を生じる。しかし、当該分野に周知の他のウイルスまたは哺乳動物細胞性プロモーターの使用もまた、ヒト化ｇｆｐ遺伝子の発現を達成するために適切である。
多数のウイルスベースの発現系が利用され得る。例えば、通常使用されるプロモーターは、ポリオーマ、アデノウイルス２、およびシミアンウイルス４０（ＳＶ４０）由来である。ＳＶ４０ウイルスの初期および後期プロモーターは、その両方がＳＶ４０ウイルス複製起点をまた含むフラグメントとしてウイルスから容易に得られるので、特に有用である。より小さいまたはより大きいＳＶ４０フラグメントもまた使用され得、同様にラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）長末端反復（ＬＴＲ）も使用され得る。
周知の特性を有するプロモーターを用いることにより、ヒト化ＧＦＰの発現のレベルおよびパターンが最適化され得る。例えば、特定の細胞型において特異的に活性なプロモーターの選択は、組織特異的発現を可能にする。このようなプロモーターは、大腸上皮細胞に特異的な肝脂肪酸結合（ＦＡＢ）タンパク質遺伝子プロモーター；膵細胞に特異的なインスリン遺伝子プロモーター；それぞれ肝細胞において特異的または優先的な発現を指向するトランスフィレチン（ｔｒａｎｓｐｈｙｒｅｔｉｎ）、α１−抗トリプシン、プラスミノーゲンアクチベーターインヒビター１型（ＰＡＩ−１）、アポリポタンパク質ＡＩ、およびＬＤＬレセプター遺伝子プロモーターのようなプロモーターを含む。脳組織において活性なプロモーターは、オリゴデンドログリアに特異的なミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ）遺伝子プロモーター；グリア細胞に特異的なグリア原線維酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）遺伝子プロモーター；および神経細胞に特異的な神経特異的エノラーゼ（ＮＳＥ）プロモーターを含む。
さらに、特定の化学的または生理学的シグナルに応答して調節されるプロモーターの選択は、ヒト化ｇｆｐ遺伝子の誘導性発現を可能にし得る。適切な誘導性プロモーターの例は、ＰＡＩ−１、シトクロームＰ４５０遺伝子プロモーター、熱ショックタンパク質遺伝子プロモーターおよびホルモン誘導性遺伝子プロモーター、ならびに電離放射線により誘導可能なｆｏｓおよびｊｕｎプロモーターを含む。
上記のように、誘導性プロモーターは、インビボ（例えば、遺伝子療法）およびインビトロ（スクリーニングアッセイ）で有用である。組成物中の特定の化合物の存在についてのスクリーニングにおいて、誘導性プロモーターの有用な群は、２、３の例として、重金属により活性化されるプロモーター（Ｆｒｅｅｄｍａｎら、１９９３）；ある範囲の毒性化合物により活性化されるシトクロームＰ４５０遺伝子プロモーター；種々のストレスにより刺激されるｈｓｐ７０プロモーターのような熱ショックタンパク質遺伝子プロモーター（Ｓｔｒｉｎｇｈａｍら、１９９２；Ｗｅｌｃｈ，１９９３）である。
１２．ＩＲＥＳ
内部リボソーム結合部位（ＩＲＥＳ）エレメントは、複遺伝子性またはポリシストロン性メッセージを作製するために使用される。ＩＲＥＳエレメントは、５’メチル化Ｃａｐ依存翻訳のリボソームスキャニング機構をバイパスし得、そして内部部位で翻訳を開始し得る（ＰｅｌｌｅｔｉｅｒおよびＳｏｎｅｎｂｅｒｇ １９８８）。ピカノウイルス（ｐｉｃａｎｏｖｉｒｕｓ）ファミリー（ポリオおよび脳心筋炎）の２つのメンバー由来のＩＲＥＳエレメント（ＰｅｌｌｅｔｉｅｒおよびＳｏｎｅｎｂｅｒｇ，１９８８）、ならびに哺乳動物メッセージ由来のＩＲＥＳ（ＭａｃｅｊａｋおよびＳａｒｎｏｗ，１９９１）が記載されている。上記の任意のものが本発明に従うヒト化ｇｆｐベクターにおいて使用され得る。
ＩＲＥＳエレメントは、異種オープンリーディングフレームに連結され得る。複数のオープンリーディングフレームが一緒に転写され得、各々はＩＲＥＳにより分離され得、ポリシストロン性メッセージを作製し得る。ＩＲＥＳエレメントの長所により、各オープンリーディングフレームは効率的な翻訳のためにリボソームに接近し得る。この様式において、複数の遺伝子（その１つはヒト化ｇｆｐ遺伝子である）は、１つのメッセージを転写するための１つのプロモーター／エンハンサーを用いて効率的に発現され得る。
任意の異種オープンリーディングフレームがＩＲＥＳエレメントに連結され得る。本発明の状況において、これは発現を所望する任意の選択されるタンパク質および任意の第２レポーター遺伝子（または選択マーカー遺伝子）を意味する。複数のタンパク質の発現が達成され得ても、ＧＦＰ産生を通じての同時モニタリングを伴う。
１３．ＡＡＶベクター
アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）は、ヒトに対して非病原性で、高頻度の組込みを有し、そして非分裂細胞に感染し得るので、ヒト遺伝子療法のために魅力的なベクター系である。従って、ＡＡＶは、組織培養および動物全体の両方の哺乳動物細胞に遺伝子を送達するために有用である（Ｍｕｚｙｃｚｋａ，１９９２）。最近の研究は、ＡＡＶが遺伝子送達のために潜在的に良好なベクターであることを実証している（ＬａＦａｃｅら、ｍ １９８８；Ｚｈｏｕら、１９９３；Ｆｌｏｔｔｅら、１９９３；Ｗａｌｓｈら、１９９４）。組換えＡＡＶベクターは、マーカー遺伝子（Ｋａｐｌｉｔｔら、１９９４；Ｌｅｂｋｏｗｓｋｉら、１９８８；Ｓａｍｕｌｓｋｉら、１９８９；ＳｈｅｌｌｉｎｇおよびＳｍｉｔｈ，１９９４；Ｙｏｄｅｒら、１９９４；Ｚｈｏｕら、１９９４；ＨｅｒｍｏｎａｔおよびＭｕｚｙｃｚｋａ，１９８４；Ｔｒａｔｓｃｈｉｎら、１９８５；ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）およびヒト疾患に関与する遺伝子（Ｆｌｏｔｔｅら、１９９２；Ｌｕｏら、１９９４；Ｏｈｉら、１９９０；Ｗａｌｓｈら、１９９２；Ｗｅｉら、１９９４）のインビトロおよびインビボ形質導入のために首尾よく使用されている。最近、ＡＡＶベクターは嚢胞性線維症の処置のための第１相ヒト試験のために認可されている。
ＡＡＶは、培養細胞において生産的感染を行うために別のウイルス（アデノウイルスまたはヘルペスウイルスファミリーのメンバーのいずれか）との同時感染を必要とする、依存性パルボウイルスである（Ｍｕｚｙｃｚｋａ，１９９２）。ヘルパーウイルスとの同時感染の非存在下では、野生型ＡＡＶゲノムはその末端を通じてヒト第１９染色体へ組込み、ここでプロウイルスとして潜在的状態にある（Ｋｏｔｉｎら、１９９０；Ｓａｍｕｌｓｋｉら、１９９１）。しかし、ｒＡＡＶは、ＡＡＶ Ｒｅｐタンパク質もまた発現されなければ、第１９染色体への組込みに制限されない（ＳｈｅｌｌｉｎｇおよびＳｍｉｔｈ，１９９４）。ＡＡＶプロウイルスを有する細胞がヘルパーウイルスで重感染された場合、ＡＡＶゲノムは染色体からまたは組換えプラスミドから「救出」され、そして正常な生産的感染が確立される（Ｓａｍｕｌｓｋｉら、１９８３；ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８；Ｂｅｒｎｓ，１９９０；Ｋｏｔｉｎら、１９９０；Ｍｕｚｙｃｚｋａ，１９９２）。ＡＡＶは、感染のために広範な宿主範囲を有する（Ｔｒａｔｓｃｈｉｎら、１９８４；Ｌａｕｇｈｌｉｎら、１９８６；Ｌｅｂｋｏｗｓｋｉら、１９８８；ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）。
典型的には、組換えＡＡＶ（ｒＡＡＶ）ウイルスは、２つのＡＡＶ末端反復配列に隣接する目的の遺伝子を含むプラスミド（例えば、図２Ｂ、およびＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８；Ｓａｍｕｌｓｋｉら、１９８９を参照のこと）、ならびに末端反復を有さない野生型ＡＡＶコード配列を含む発現プラスミド（例えば、ｐＩＭ４５ （ＭｃＣａｒｔｙら、１９９１））を同時トランスフェクトすることにより作製される。細胞はまた、ＡＡＶヘルパー機能に必要なアデノウイルス遺伝子を有するアデノウイルスまたはプラスミドで感染もしくはトランスフェクトされる。このような様式で作製されたｒＡＡＶウイルスストックは、ｒＡＡＶ粒子から物理的に（例えば、塩化セシウム密度遠心分離により）分離されなくてはならないアデノウイルスにより混入される。あるいは、ＡＡＶコード領域を含むアデノウイルスベクターまたはＡＡＶコード領域を含む細胞株およびいくつかもしくは全てのアデノウイルスヘルパー遺伝子が使用され得る（Ｙａｎｇら、１９９４；Ｃｌａｒｋら、１９９５）。組込まれたプロウイルスとしてｒＡＡＶ ＤＮＡを有する細胞株がまた使用され得る（Ｆｌｏｔｔｅら、１９９５）。
ｒＡＡＶベクターは、米国特許第５，１３９，９４１号および同第４，７９７，３９８号に記載され、各々は参照として本明細書中に援用される。
１４．アデノウイルスベクター
アデノウイルスベクター、および好ましくは複製欠損ベクターは、本発明の情況において使用され得る。例えば、ウイルスが、細胞性ゲノムからアデノウイルス初期領域１遺伝子を発現する細胞（例えば、ヒト２９３細胞）においてのみ複製コンピテントであるようなウイルス初期領域１（Ｅ１Ａ）領域の欠失により達成される。従って、ウイルスは初期遺伝子産物を発現しない正常細胞を殺傷しないので、これは重要である。複製欠損アデノウイルスを調製するための技術は、Ｇｈｏｓｈ−ＣｈｏｕｄｈｕｒｙおよびＧｒａｈａｍ （１９８７）；ＭｃＧｒｏｒｙら、（１９８８）；ならびにＧｌｕｚｍａｎら、（１９８２）により例示されるように、当該分野で周知である。Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄら、（１９９１；１９９２）およびＳｔｒａｔｆｏｒｄ−Ｐｅｒｒｉｃａｕｄｅｔら、（１９９０；１９９２）はまたアデノウイルスの使用を記載する。
アデノウイルスベクターが複製欠損である必要条件以外には、アデノウイルスベクターの特性は重要ではないと考えられる。アデノウイルスは、４２の異なる公知の血清型または亜群Ａ〜Ｆの任意のものであり得る。本発明の方法における使用のための条件的複製欠損アデノウイルスベクターを得るためには、亜群Ｃのアデノウイルス５型が好ましい出発物質である。これは、アデノウイルス５型が、これについて大量の生化学的および遺伝的情報が知られており、歴史的にアデノウイルスをベクターとして用いるほとんどの構築物に使用されており、そして非発ガン性のヒトアデノウイルスであるからである。
これらの局面における使用のためのベクターは複製欠損という点で、これらは典型的にはアデノウイルスＥ１領域を有さない。従って、Ｅ１コード配列が除去されている位置にヒト化ｇｆｐ遺伝子を導入するのが最も便利である。しかし、アデノウイルス配列中のヒト化遺伝子の挿入の位置は、重要ではない。ヒト化転写単位はまた、Ｋａｒｌｓｓｏｎら、（１９８６）により以前に記載されたように、Ｅ３置換ベクターにおける欠失されたＥ３領域のかわりに挿入され得る。
１５．発現キット
ヒト化ｇｆｐ遺伝子を含む発現キットが、本発明の別の局面を形成する。このようなキットは一般に、適切な容器手段において、ヒト化ｇｆｐ遺伝子またはヒト化ｇｆｐ遺伝子を発現し得るベクターの処方物を含む。遺伝子またはベクターは、薬学的に受容可能な処方物において提供され得る。
キットの成分が１つ以上の液体溶液において提供される場合、液体溶液は水溶液であり、滅菌水溶液が特に好ましい。ヒト化ｇｆｐ遺伝子またはベクターはまた、注入可能な組成物中に処方され得る。この場合、容器手段自体はシリンジ、ピペット、点眼瓶、または他のこのような器具であり得、これらから処方物が細胞、または身体のある領域に適用され得るか、あるいは動物に注入され得るか、あるいは適用されてキットの他の成分と混合され得る。
しかし、キットの成分は、乾燥粉末として提供される。試薬または成分が乾燥粉末として提供される場合、粉末は、適切な溶媒の添加により再構築され得る。溶媒が別の容器手段で提供され得ることもまた意図される。
容器手段は、一般的に少なくとも１つのバイアル、試験管、フラスコ、瓶、シリンジ、または他の容器手段を含み、この中にヒト化ｇｆｐ遺伝子またはベクターが入れられ得、好ましくは適切に配分され得る。第２のヒト化ｇｆｐ遺伝子またはベクター構築物がまた提供され得、ここでキットはまた一般に、それが入れられる第２のバイアルもしくは他の容器を含む。キットはまた、滅菌した、薬学的に受容可能な緩衝液または他の希釈剤を含むための第２／第３の容器手段を含み得る。
本発明のキットはまた、典型的に、例えば、所望のバイアルが保持される注入または吹き込み形成されたプラスチック容器のような、バイアルを市販のための密閉制限に含むための手段を含む。
容器の数または型に関わりなく、本発明のキットはまた、１つ以上のさらなる分子生物学的試薬（例えば、制限酵素）を含むか、一緒にパックされ得る。
１６．組換え発現
所望のクローンは、組換え発現のためにヒト化ｇｆｐと発現系に取り込まれ得る。実質的に任意の真核生物発現系がこの様式において用いられ得ると考えられる。宿主細胞の選択されたタンパク質およびヒト化ｇｆｐをコードするＤＮＡセグメントでの形質転換は、発現をモニターする便利な手段を提供する。宿主細胞が一般にタンパク質への翻訳のための機能的ｍＲＮＡを得るためにゲノム転写物をプロセスするので、ｃＤＮＡおよびゲノム配列の両方が真核生物発現に適切である。
概していえば、組換え遺伝子として遺伝子のｃＤＮＡバージョンを用いるのがより便利であり得る。ｃＤＮＡバージョンの使用は、典型的にはｃＤＮＡ遺伝子よりも１桁の単位でより大きいゲノム遺伝子よりも、遺伝子のサイズが一般にかなり小さく、そして標的化細胞をトランスフェクトするために容易に用いられるという利点を提供すると考えられる。しかし、特定の遺伝子のゲノムバージョンが用いられる可能性は排除されない。
上記のように、異なる色のヒト化ＧＦＰを用いて、異なるタンパク質が同じ細胞において同時発現され得、そしてモニターされ得ることが提案される。これは、２つの異なる組換えベクター（各々が特定のタンパク質コードＤＮＡに連結したヒト化ｇｆｐのコピーを有する）で細胞を同時トランスフェクトすることにより達成され得る。あるいは、このようなコード領域の両方を含むように１つの組換えベクターが構築され得、次いで１つのベクターでトランスフェクトされた細胞において発現され得る。
１７．組換え宿主細胞
用語「操作」および「組換え」細胞は、ヒト化ｇｆｐ遺伝子配列を含む外因性ＤＮＡセグメントまたは遺伝子が導入されている細胞をいうことが意図される。従って、操作細胞は、組換え的に導入された外因性ＤＮＡセグメントまたは遺伝子を含まない天然に存在する細胞と区別され得る。従って、操作細胞は、人の手によって導入された遺伝子を有する細胞である。
培養において連続的に増殖する樹立された細胞株は、本発明の関連において使用され得る細胞の１群を形成する。特に使用のために意図されるこのような哺乳動物宿主細胞株の例は、ＶＥＲＯ細胞、ＨｅＬａ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞株、ＣＯＳ−７のようなＣＯＳ細胞、Ｗ１３８、ＢＨＫ、ＨｅｐＧ２、３Ｔ３、ＲＩＮ、ＭＤＣＫ、Ａ５４９、ＰＣ１２、Ｋ５６２、および２９３細胞である。
初代細胞株はまた、本発明での使用のために意図される。初代細胞株は、動物またはヒト被験体から取り出された細胞であり、そして制限された時間の間培養において生存し得る。このような細胞はしばしば操作され（例えば、有益な遺伝子を導入するために）、次いで細胞が本来得られた動物に再導入される。この技術は、しばしばエクスビボ遺伝子療法といわれる。
全ての脊椎動物種の初代細胞が、動物の身体に戻されても戻されなくても、本明細書中に開示されるヒト化ｇｆｐ遺伝子での使用のために考慮される。これらは例示のためにのみ、骨髄細胞、神経細胞、肺上皮細胞および肝細胞を含む。
発現、分泌または別の方法で治療薬または所望の因子を動物またはヒト被験体に送達するように事前に操作されている身体中のヒト化ｇｆｐ含有細胞はまた、本来その動物由来であってもなくても、本発明の細胞に包含される。最終的な宿主細胞からそのように得られない細胞は、免疫学的適合性動物からの細胞、免疫学的に改変または損傷された細胞、宿主動物における半透性デバイス中に保護された細胞、およびいっそう広義には、宿主動物中で一時的寿命を有するように意図される非改変細胞であり得る。
もちろん、本発明がより直接的な遺伝子療法における使用のためによく適応するように、本発明に記載されるような任意の身体の標的細胞がヒト化ｇｆｐ遺伝子を含み得ることが理解される。このような細胞の全てが、本明細書中に使用される「組換え宿主細胞」の記載の範囲に入ると考慮される。これは、細胞が遺伝子を獲得する様式（例えば、トランスフェクション、感染など）に関わらず、ヒト化ｇｆｐ遺伝子またはベクターの１つ以上のコピーを含む動物またはヒト被験体中の任意の細胞を含む。疾患細胞、欠損細胞および健常細胞が全てこの様式において本発明中に包含される。
１８．他のｇｆｐ遺伝子のクローニング
他の生物からのｇｆｐ遺伝子がクローン化され得ることがまた意図される。これらは、改善されまたはそうでなければ所望の実体のない特性を有し得、次いで本発明に従いヒト化され得る。
別の生物からのＧＦＰ様タンパク質をコードするＤＮＡ分子のクローニングは、単に、特異的ＤＮＡ分子を得、そしてＤＮＡの他の部分から区別して精製するためにＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることを必要とする。このようなクローニング手順の最初の工程は、適切なＤＮＡライブラリーのスクリーニングである。スクリーニング手順は、発現スクリーニングプロトコル（例えば、ＧＦＰタンパク質に対して指向された抗体を用いるか、または蛍光に基づく活性アッセイ）であり得る。
あるいは、スクリーニングは、公知のｇｆｐ ＤＮＡ配列の部分を考慮して設計されたオリゴヌクレオチドプローブのハイブリダイゼーションに基づき得る。このようなスクリーニングプロトコルの操作は当業者に周知であり、そして科学文献に詳細に記載される（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、（１９８９）（本明細書中に参照として援用される）。
以下の実施例は、本発明の好ましい実施態様の実証を含む。以下の実施例に開示される技術は、本発明の実施においてよく機能するとして本発明者らに見出された既存の技術を表し、従って、この実施のために好ましい様式を構成すると考えられることが当業者に理解されるはずである。しかし、当業者は、本開示に照らして、開示される特定の実施態様において多くの変更がなされ得、そして本発明の精神および範囲から逸脱することなくなお同様または類似の結果を得ることができることを理解するはずである。
実施例Ｉ
２９３細胞におけるクラゲＧＦＰの低発現
本実施例は、２９３細胞におけるトランスフェクションおよび発現においてクラゲｇｆｐ１０レポーター遺伝子を発現する組換えＡＡＶ（ｒＡＡＶ）を使用する試みを記載する。
野生型ｇｆｐを発現するＡＡＶベクターおよびｒＡＡＶの産生
アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）は、現在、異なる細胞型に遺伝子を送達するベクターとして広範に用いられている。ＡＡＶの使用には多くの利点が存在し、例えば、明白な病原性の非存在、ビリオンの高生存度、部位特異的組込み、送達遺伝子の長期発現、ならびに宿主染色体複製および細胞周期への比較的な非依存が挙げられる。
ＡＡＶの１つの欠点は、ウイルスＤＮＡの限定されたパッケージサイズであり、これは５，０００ヌクレオチドを超過し得ない。現在利用可能なほとんどのＡＡＶベクターは、あるレポーター遺伝子または別のレポーター遺伝子、すなわちＥ．ｃｏｌｉβ−ガラクトシダーゼおよびネオマイシンホスホトランスフェラーゼを保有する。これらのレポーター遺伝子は両方とも非常にかさ高く、ＡＡＶゲノムの限られたスペースのあまりに多くを占有する。これらの遺伝子産物に対する検出プロトコルは、扱いにくくかつ煩わしい。
本セクションは、組換えＡＡＶベクタープラスミド、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ（図２Ａ：これはクラゲｇｆｐ１０遺伝子およびｎｅｏＲ遺伝子の両方を保有する）の構築を記載する。プラスミドＴＵ＃６５（Ｗａｒｄら、１９９４）をｇｆｐ１０コード配列の供給源として用い、そしてこの遺伝子を即時型ＣＭＶプロモーターの制御下に配置した。ベクター産生の模式図を図２Ｂに示す。
手短には、親プラスミドＴＵ＃６５（Ｃｈａｌｆｉｅら、１９９４）をＡｇｅＩおよびＥｃｏＲＩで消化し、Ｋｌｅｎｏｗフラグメントで末端を埋め、そしてＮｏｔＩリンカーを添加した後に、ｇｆｐ１０配列をｐＣＭＶβ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）のＮｏｔＩ部位にサブクローン化した。次いで、得られたプラスミド（ｐＣＭＶｇｒｅｅｎと称する）をテンプレートとして用いて、ＣＭＶプロモーター、ＳＶ４０イントロン、ｇｆｐ１０ ｃＤＮＡおよびＳＶ４０ポリアデニル化シグナルを含有する転写カセットをＰＣＲ反応で増幅した。
ＣＭＶプロモーターに相補的な上流ＰＣＲプライマーはまた、ＢｇｌＩＩ、ＥｃｏＲＩ、およびＫｐｎＩ部位を含有する突出部を含んでいた。下流ＰＣＲプライマー（ポリアデニル化シグナルに相補的である）は、ＳａｌＩ部位突出部を含んでいた。ウシ成長ホルモン（ｂＧＨ）遺伝子のポリアデニル化シグナルを、テンプレートとしてプラスミドｐＲｃ／ＣＭＶ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いた別のＰＣＲ反応において増幅した。この反応における上流プライマーは、ＳａｌＩ部位配列突出部を含有し、そして下流プライマーはＢｇｌＩＩ部位を含有していた。
１％アガロースゲルにおけるＰＣＲ産物の精製の後、それぞれのフラグメントをＳａｌＩで消化し、そして曝露されたＳａｌＩ末端によって互いに連結させた。連結産物をゲル精製し、そしてＢｇｌＩＩで消化した。１６０ｂｐ ＢｇｌＩＩ−ＰｓｔＩフラグメント（ＡＡＶ末端反復を含有する）を、プラスミドｐＴＲＢＲ（＋）（Ｒｙａｎら、１９９５）からゲル精製によって単離した。このフラグメントを、以前に記載されたプラスミドｄｌ３−９４（ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）に由来するｐＴＲＢＲ（＋）にサブクローン化した。次いで、それをＢｇｌＩＩ消化カセット（ＣＭＶプロモーター、ＳＶ４０イントロン、ｇｆｐ１０ ｃＤＮＡ、ＳＶ４０ポリ（Ａ）およびｂＰＨポリ（Ａ）を含有する）の両末端に連結した。
次いで、連結産物をＰｓｔＩで切断し、そしてプラスミドｐＢＳ（＋）（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）にサブクローン化した。これは、ＰｓｔＩ−リンカーを添加し、そしてポリリンカー領域を含有する内部３８２ｂｐフラグメントを除去することによって７６６および１１４８のＰｖｕＩＩ部位をＰｓｔＩ部位に変換することにより改変されている。得られたプラスミドをｐＴＲｇｒｅｅｎと命名した。
ポリオーマウイルス由来のＨＳＶチミジンキナーゼ遺伝子プロモーターおよびエンハンサーによって駆動されるｎｅｏ耐性遺伝子カセットを、プラスミドｐＭＣ１ｎｅｏ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）をＸｈｏＩで切断し、Ｋｌｅｎｏｗで末端を埋め、ＳａｌＩ−リンカーを添加し、そしてＳａｌＩで消化することによってこのプラスミドから取得した。ｎｅｏカセットを含有するＤＮＡフラグメントをゲル精製し、ＳａｌＩで消化したｐＴＲｇｒｅｅｎのＳａｌＩ部位にサブクローン化した。得られた構築物、ｐＴＲＢＳ−ＵＦを図２Ａに示す。
組換えＡＡＶ（ｒＡＡＶ）ウイルスを産生するために、２９３細胞をＰＴＲＢＳ−ＵＦおよびヘルパープラスミドｐＩＭ４５（末端反復を有さないｗｔ ＡＡＶゲノムを保有する（ＭｃＣａｒｔｙら、１９９１））で同時トランスフェクトした。同じ細胞にまた、感染多重度（ｍ．ｏ．ｉ．）１０でアデノウイルスを感染させた。
細胞を３回凍結および解凍し、５６℃で３０分間Ａｄを熱不活化させ、細胞片を遠心沈殿させ、そして４８時間２００，０００ｇにてＳＷ４１ローターで形成されたＣｓＣｌグラジエント（１．４０ｇ／ｍｌ）を通してウイルスを精製することによって、組換えＡＡＶを６０時間後に収集する。グラジエントを分画し、そして密度を屈折計によって測定した。１．３８ｇ／ｃｍ３と１．４ｇ／ｃｍ３との間の密度を有する画分をプールし、そしてＤＭＥＭ培地に対して４時間透析した。ＡＡＶ力価を感染中心アッセイ（ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）によって決定した。
野生型ｇｆｐの低レベル発現
ｐＴＲＢＳ−ＵＦプラスミドＤＮＡを２９３細胞にトランスフェクトさせた場合、ＧＦＰを発現する細胞の平均数は通常５％未満であった（図３）。さらに、組換えＡＡＶを感染させた２９３細胞（同一のＧＦＰ発現カセットを保有する）を、ＧＦＰ陰性であると反復して評価した。これらの２つの研究間の唯一の差異は、外見上は、各細胞に送達されたＧＦＰ ｃＤＮＡの数であった。トランスフェクションの間、数百またはさらに数千のプラスミドコピーが送達され、一方、低ｍ．ｏ．ｉ．（１未満）の条件下での感染は、単一コピーのみの遺伝子を送達する。
従って、ｇｆｐ１０ ｃＤＮＡが、Ｃｈａｌｆｉｅら（１９９４）によって最初に記載されたように、霊長類およびヒト細胞で発現された場合に乏しいレポーターであることを本発明者らは見出した。明らかに、哺乳動物およびヒト細胞におけるｇｆｐ１０の発現が増強され得る新規技術が必要とされていた。
実施例ＩＩ
ヒト細胞においてＧＦＰ発現を増大させる試み
本実施例は、哺乳動物およびヒト細胞においてｇｐｆ１０の発現を増大させる試みに使用し得る種々の方法を記載する。
所定のプロモーターの制御下にある所望の遺伝子産物の量を増加するいくつかの可能性がある方法が存在する。このような方法の１つは、タンパク質／ＲＮＡ相互作用および輸送を通してプロセシング／スプライシング経路にプレ−ｍＲＮＡを配向するイントロン配列を導入させることによりｍＲＮＡの安定性を増大させるように試みることである。
本発明者らのＧＦＰ発現カセットは、ＳＶ４０後期遺伝子１６Ｓ／１９Ｓスプライスドナー／スプライスアクセプターシグナルを含有していた（図１Ｂ）。この配列は、文献中でしばしば用いられるが、その効果は可変的であり、そして遺伝子特異的であり得る。従って、本発明者らは、この技術単独ではヒト細胞におけるＧＦＰ発現を顕著には増大しないと考えた。
外来タンパク質を他のタンパク質またはポリペプチドドメインに融合することによってその外来タンパク質の安定性を増大させることもまた考えられ得る。これについては、第２のコード領域へのクラゲ配列の融合を可能にするベクターが利用可能である。しかし、本発明者らは、これがｇｆｐ配列の欠点を適切に置換するとは考えていなかった。
タンパク質収率を増大させる別の可能性のある方法は、真核ｍＲＮＡの翻訳の開始を容易にする配列を導入することによって翻訳効率を最大化させることである。このような配列の１つは、ＡＵＧ開始コドンを直前に先行するＫｏｚａｋコンセンサス配列（ＧＣＣ）ＧＣＣＡ／ＧＣＣＡＴＧ（配列番号８；Ｋｏｚａｋ，１９８７）である。さらに、ＡＵＧコドンの約１４ヌクレオチド下流に位置する最適に配置されたステム−ループヘアピン構造が用いられ得る（Ｋｏｚａｋ，１９９０）。
しかし、ｇｆｐ１０の上流に位置されたＫｏｚａｋ配列が発現効率を顕著に変化させなかった研究が知られている。従って、Ｋｏｚａｋ配列の一般的な有用性、およびｇｆｐと組み合わせてＫｏｚａｋ配列を使用する先行文献の明確な示唆にも関わらず（例えば、ＰＣＴ出願第ＷＯ ９５／０７４６３号を参照のこと）、ｇｆｐ１０のＫｏｚａｋ配列上流の導入は、取り立てて成功しなかったようである。
本発明者らは、翻訳が限定されたままであるので、Ｋｏｚａｋ配列によって授与され得る開始におけるいかなる増大もｇｆｐ１０発現において顕著な増大を産生しないと考えた。翻訳効率問題に取り組むことに関する別の方法とＫｏｚａｋ配列との組み合わせにより利点が生じ得ると考えられていたのにも関わらず、この欠点がＫｏｚａｋ配列単独の有用性を激しく限定すると考えられていた。
実施例ＩＩＩ
ヒト化ＧＦＰの設計
哺乳動物細胞におけるＧＦＰ発現を改善する前述のよく用いられる技術の失敗に照らしてみて、本発明者らは、このような細胞におけるＧＦＰの低発現の重要な理由の１つが細胞環境におけるｍＲＮＡの乏しい翻訳効率であると仮定した。本実施例は、哺乳動物およびヒト細胞における増大したＧＦＰ発現を得ることに使用するためのヒト化ＧＦＰの設計を記載する。
タンパク質の低発現は、所定の細胞におけるｍＲＮＡ種の乏しい翻訳効率から生じ得る。例えば、ヒト細胞環境は、特定のセットのイソ受容体ｔＲＮＡ（これは他の種と異なる）によって特徴づけられる。実際に、原核および真核遺伝子の両方における同義コドンの選択が強く偏っていることが一般に知られている。また、分類学的に遠い生物の遺伝子の機能または遺伝子間（同族タンパク質をコードする遺伝子間でさえ）の相違に関わらず、同一または分類学的に関連した生物の異なる遺伝子の間でコドン用法において明白な類似性が存在する（Ｇｒａｎｔｈａｍら、１９９１；Ｉｋｅｍｕｒａ，１９８０；Ｉｋｅｍｕｒａら、１９８１）。
生物間のコドン選択パターンにおける差異は、イソ受容体ｔＲＮＡの実際の集団における差異およびアンチコドンゆらぎ位置の改変ヌクレオチドにおける差異に起因する（Ｉｋｅｍｕｒａら、１９８１；Ｉｋｅｍｕｒａら、１９８２）。同義コドン選択は、合成されたタンパク質の特性に影響しないが、遺伝子の発現度に関連し得る（ＢｅｎｎｅｔｚｅｎおよびＨａｌｌ、１９８２；Ｉｋｅｍｕｒａら、１９８１；Ｉｋｅｍｕｒａら、１９８１；Ｉｋｅｍｕｒａら、１９８２）。コドン用法とｔＲＮＡ含量との間の相関の程度は、個々の遺伝子の産生レベルに関連することが見出されている。
従って、本発明者らは、クラゲｇｆｐ１０のコドン使用頻度を調査し、そして１４９０のヒト遺伝子の合計のコドン使用頻度の平均（Ｗａｄａら、１９９０）と比較した。ｇｆｐ１０ ｃＤＮＡの配列の分析により、このクラゲ遺伝子のコドン使用頻度がヒトゲノムにおいて広く用いられているものとは全く異なることを示した。例えば、クラゲＧＦＰ（配列番号２）の１８、５３、１２５、１７８、１９５および２３６位のＬｅｕアミノ酸残基；２０８位のＳｅｒ；ならびに９３、１５０および２２４位のＶａｌは、ヒト遺伝子（配列番号１におけるコドン）ではほとんど全く用いられないトリプレットによってコードされている。残りのアミノ酸もまた、劇的ではないがヒトとは異なる偏りを示す。
従って、本発明者らは、クラゲＧＦＰをコードするｍＲＮＡがヒト細胞系において低効率で翻訳され、蛍光の視覚的検出のためには不十分な量のタンパク質しか産生しないと考えたので、本発明者らは合成バージョンのクラゲｇｆｐ１０を設計した。この合成（またはヒト化）バージョンのｇｆｐ１０では、ヒトゲノムにおいて優先的に用いられるコドンを挿入し、本来のｇｆｐ１０に存在するまれなコドンまたはより少ない頻度で用いられるコドンを置換した。
実施例ＩＶ
ヒト化ＧＦＰ遺伝子およびベクターの構築
本実施例は、実施例ＩＩＩに記載される分析の結果を用いて、哺乳動物細胞およびヒト細胞での増大した発現において使用するためのヒト化ＧＦＰの生成を記載する。
全９２塩基置換を、８８コドンにおいて、アミノ酸配列（図１）を変更することなく作製した。さらに、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１中のＧＦＰタンパク質の開始コドンの直前の配列を改変して、Ｋｏｚａｋコンセンサス配列を生成した。また、コドン８０を、Ｃｈａｌｆｉｅら（１９９４）に記載のように、アルギニンと対照される、野生型グルタミン残基（Ｐｒａｓｈｅｒら、１９９２）に元に戻した。この構築物（ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１と称される）を、以下のように調製した。
ｇｆｐ ｃＤＮＡを、相互にプライミングする合成オリゴヌクレオチド（図１を参照のこと）をアセンブリすることにより合成した。ｇｆｐ１０遺伝子をほぼ等しい長さの８つのセグメントに分け、そして４つの対のオリゴヌクレオチドを合成した。各対は、短い範囲の重複（図３、下線部）を有する２つの重複オリゴからなり、一方はセンス鎖をコードし、他方はアンチセンス鎖をコードする。アニーリングおよびＳｅｑｕｅｎａｓｅによる伸長の後、対１および２をＥａｅＩで消化し、一方、対３および４をＢａｍＨＩで消化した。次いで、消化産物を、２つの別個の反応で連結した：オリゴ１を２へ、そしてオリゴ３を４へ。所望の長さの連結産物を、５％ポリアクリルアミドゲル上で、非変性条件下で精製した。次いで、両ＤＮＡフラグメントを、ＥｃｏＲＩＩで消化し、そして互いに連結した。
最終産物を、一対のオリゴヌクレオチドを使用して、ＰＣＲＴＭ反応において増幅した。このオリゴヌクレオチドは、ヒト化ｇｆｐ ｃＤＮＡに部分的に相補的であり（以下を参照のこと、太文字）、そしてクローニングのための制限部位ＮｏｔＩ、ＸｂａＩ、およびＨｉｎｄＩＩＩ（以下を参照のこと、下線部）を含む。上流プライマー（Ｋｏｚａｋコンセンサス配列（Ｋｏｚａｋ、１９８７）を含む）の配列および下流プライマーの配列を、それぞれ示す：
５’−ＴＧＣＴＣＴＡＧＡＧＣＧＧＣＣＧＣＣＧＣＣＡＣＣＡＴＧＡＧＣＡＡＧＧＧＣＧＡＧＧＡＡＣＴＧ−３’（配列番号９）
５’−ＣＧＧＡＡＧＣＴＴＧＣＧＧＣＣＧＣＴＣＡＣＴＴＧＴＡＣＡＧＣＴＣＧＴＣＣＡＴ−３’（配列番号１０）。
ＸｂａＩおよびＨｉｎｄＩＩＩでのＰＣＲ産物の消化後、ＤＮＡフラグメントをｐＢＳ（＋）（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）中にクローニングし、そして配列決定した。いくつかの独立クローンを単離し、そして配列決定した。これらのクローンは、コード配列中に、おそらくＰＣＲ増幅の間に生じたかまたはオリゴヌクレオチド中に存在したかのいずれかである変異を有した。次いで、これらのクローンの一部を一緒にスプライスして、野生型アミノ酸配列を含む最終ｇｆｐｈ遺伝子を生成した。得られた構築物をｐＢＳ−ＧＦＰＨ１と命名し、そしてそれは野生型ＧＦＰのコード配列を含んだ。
ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１を構築するために、本発明者らは、ｐＢＳ−ＧＦＰＨ１（野生型）のＮｏｔＩフラグメントでｐＴＲＢＳ−ＵＦのＮｏｔＩフラグメント（図２Ａ）を置換した。
組換えＡＡＶ（ｒＡＡＶ）ウイルスを生成するために、２９３細胞をｐＴＲＢＳ−ＵＦ１およびヘルパープラスミドｐＩＭ４５（末端反復を有さないｗｔ ＡＡＶゲノムを保有する（ＭｃＣａｒｔｙら、１９９１））で同時トランスフェクトした。また、同じ細胞を、アデノウイルスで、感染多重度（ｍ．ｏ．ｉ）１０で感染させた。
組換えＡＡＶを、６０時間後に、細胞を３回凍結および融解し、Ａｄを３０分間、５６℃で熱不活性化し、細胞残渣を遠心沈澱し、そしてウイルスを、ＳＷ４１ローターにおいて４８時間、２００，０００ｇで形成したＣｓＣｌ勾配（１．４０ｇ／ｍｌ）によって精製することにより、採取した。この勾配を分画し、そして密度を屈折率測定器により決定した。１．３８〜１．４ｇ／ｃｍ３の間の密度の画分をプールし、そしてＤＭＥＭ培地に対して４時間透析した。ＡＡＶ力価を、感染中心検定（ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）により決定した。
実施例Ｖ
ヒト化ＧＦＰ改変体およびｒＡＡＶベクターの構築
本実施例は、野生型タンパク質と異なる特性を有するＧＦＰタンパク質改変体をコードする、さらなるヒト化ＧＦＰ配列の生成を記載する。改変体はまた、哺乳動物細胞およびヒト細胞において発現が増大される。
２つの変異体を、ｐＢＳ−ＧＦＰｈバックグラウンド中に、部位特異的ＰＣＲＴＭ変異誘発により構築した。最初のヒト化変異体は、Ｓｅｒ６５からＴｈｒ６５への置換を記載したＨｅｉｍら（１９９５）により報告されるタンパク質配列を反映する。この置換は、元のクラゲのコドン配列の状況における蛍光の生成を増大した。この変異がヒト化ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１配列の状況においてよりいっそう有効であり得るという推論により、本発明者らはこの点変異をｐＴＲＢＳ−ＵＦ１バックグラウンド中に再生成して、プラスミドｐＴＲＢＳ−ＵＦ２を生成した。
増強された蛍光を提供するさらなる工程のように、さらなる変異がなされて「増強された」緑のバージョンのｈＧＦＰを生成した。Ｓｅｒ６５からＴｈｒ６５への置換に加えて、ＬｅｕでＰｈｅ６４を置換した。従って、増強されたｈＧＦＰは、ＰｈｅをコードするＴＴＣをＣＴＧに変換した場合、Ｐｈｅ６４の代わりにＬｅｕ６４により置換され、そしてまたＴＣＴによりコードされるＳｅｒ６５をＡＣＣによりコードされるＴｈｒに変換した場合、置換された。
また、ブルー蛍光を生じる別の点変異（Ｔｙｒ６６からＨｉｓ６６へ）（Ｈｅｉｍら、１９９４）をヒト化ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１のバックグラウンド中に構築して、ベクターｐＴＲＢＳ−ＵＦＢを生成した。
「増強された」青のバージョンを、Ｔｙｒ６６からＨｉｓ６６への変異に加えて、Ｔｙｒ１４５からＰｈｅ６６へのさらなる変換により作製した。塩基変換は、それぞれ、ＴＡＴからＴＴＣおよびＴＡＴからＣＡＴであった。
ｈＧＦＰの改変バージョンは広範に適用され、特に異なる色の増強されたバージョンで使用される。変異ＧＦＰおよびＢＦＰ（ブルー蛍光タンパク質）は、重複しない異なる励起スペクトルおよび発光スペクトルを有することにより、独立した検出を可能にする。２重タグ化は、２つ以上の蛍光標識タンパク質のいずれかを発現する細胞の迅速かつ特異的な同定を可能にする。このような方法は、例えば、薬物スクリーニング、または構造プロモーターの制御下に配置された標的遺伝子に影響を及ぼす薬剤の分析に適用可能である。適用はまた、種々の刺激の下での遺伝子発現、またはインヒビターにより影響を受けるような遺伝子発現の研究を含み得る。
変異体を作製するために、ＰＣＲＴＭ反応を、テンプレートとしてのｐＢＳ−ＧＦＰ１および一対のオリゴを使用して、以下に記載のように行った：
ＧＦＰ２について：
＃１：上流プライマー；実施例ＩＶに記載；
＃２：５’−ＧＣＴＴＣＡＴＡＴＧＧＴＣＴＧＧＧＴＡＴＣＴＧＧＡＡＡＡＧＣＡＣＴＧＣＡＣＧＣＣＡＴＡＣＣＡＧＡＡＧＧＴＡＧ−３’（配列番号１１）；
ＧＦＰＢについて：
＃１：上流プライマー；実施例ＩＶに記載；
＃２：５’−ＧＣＴＴＣＡＴＡＴＧＧＴＣＴＧＧＧＴＡＴＣＴＧＧＡＡＡＡＧＣＡＣＴＧＣＡＣＧＣＣＡＴＧＡＧＡＧＡＡＧＧＴＡＧ−３’（配列番号１２）。
変異体を作製するために、ＰＣＲＴＭ産物をＮｄｅＩおよびＸｂａＩで消化し、そしてｐＢＳ−ＧＦＰ１のそれぞれのフラグメントを置換した。配列を、ＮｏｔＩフラグメント（変異ＧＦＰ ｃＤＮＡを含む）を配列決定することにより確認した。この配列は、ｐＴＲ−ＵＦ１中のＮｏｔＩフラグメントが置換されたものである。
これは発現に影響を及ぼすと考えられていないが、ヒト化ＧＦＰの変異体において、本発明者らは、コドン８０を、Ｃｈａｌｆｉｅら（１９９４）により記載されるように、アルギニンと対照される野生型グルタミン残基（Ｐｒａｓｈｅｒら、１９９２）に再度戻した。
ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２またはｐＴＲＢＳ−ＵＦＢを構築するために、本発明者らは、ｐＢＳ−ＧＦＰＨ２（Ｔｈｒ６５）またはｐＢＳ−ＧＦＰＨＢ（Ｈｉｓ６６）のＮｏｔＩフラグメントのそれぞれでｐＴＲＢＳ−ＵＦ（図２Ａ）のＮｏｔＩフラグメントを置換した。ＰＣＲ増幅を行なった任意のＤＮＡフラグメントを配列決定して、元の配列との同一性を確認した。
ｐＴＲＢＳ−ＵＦ３を構築するために、プラスミドｐＳＢＣ−１（Ｄｉｒｋｓら、１９９３）のＥｃｏＲＩ部位を、ＥｃｏＲＩでの消化、５’突出のクレノウポリメラーゼによる充填、およびＮｏｔＩリンカーの連結後にＮｏｔＩ部位に変換した。次いで、６８０ｂｐのＮｏｔＩフラグメント（ポリリンカーおよび１型ポリオウイルスの内部リボソーム進入部位（ＩＲＥＳ）からなる）を、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２（図２Ａ）のＮｏｔＩ部位の１つにサブクローニングした。
組換えＡＡＶ（ｒＡＡＶ）ウイルスを生成するために、２９３細胞をｐＴＲＢＳ−ＵＦ２またはｐＴＲＢＳ−ＵＦ３でトランスフェクトし、そしてヘルパープラスミドｐＩＭ４５（末端反復を有さないｗｔ ＡＡＶゲノムを保有する（ＭｃＣａｒｔｙら、１９９１））で同時トランスフェクトした。また、同じ細胞を、アデノウイルスで、感染多重度（ｍ．ｏ．ｉ）１０で感染させた。
組換えＡＡＶを、６０時間後に、細胞を３回凍結および融解し、Ａｄを３０分間、５６℃で熱不活性化し、細胞残渣を遠心沈澱し、そしてウイルスを、ＳＷ４１ローターにおいて４８時間、２００，０００ｇで形成したＣｓＣｌ勾配（１．４０ｇ／ｍｌ）によって精製することにより、採取した。この勾配を分画し、そして密度を屈折率測定器により決定した。１．３８〜１．４ｇ／ｃｍ３の間の密度の画分をプールし、そしてＤＭＥＭ培地に対して４時間透析した。ＡＡＶ力価を、感染中心検定（ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）により決定した。
実施例ＶＩ
ヒト化ＧＦＰの増大した発現
この実施例は、２９３細胞におけるヒト化ＧＦＰの発現により生じた、ＧＦＰの増大した発現を記載する。
元のクラゲの配列とヒト化ｇｆｐ構築物の発現効率とを比較するために、本発明者らは、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１、またはｐＴＲＢＳ−ＵＦ２プラスミドＤＮＡを用いて、種々のＤＮＡ濃度で２９３細胞をトランスフェクトした。次いで、トランスフェクトした細胞を、トランスフェクションの３６時間後にＦＡＣＳによって分析した（図３）。
蛍光をモニターするために、ＣｓＣｌ−精製したｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２を用いて、１０のＭ．Ｏ．Ｉで２９３細胞を感染させた。感染後３６時間で、細胞を、ＣＨＲＯＭＡ Ｆｉｌｔｅｒ Ｃｕｂｅ ＃４１０１４ ＧＦＰ−ＨＱ（４５０＋／−２５ｎｍで励起）を使用して蛍光顕微鏡で写真を撮影した。あるいは、１のＭ．Ｏ．Ｉ．での感染および２週間のＧ４１８での選択後、３人の別々の観察者が、Ｇ４１８コロニー中のグリーン蛍光細胞の数を蛍光顕微鏡によりスコアした。３人の観察者により得られた頻度の平均を計算した。１５０個の別々のコロニー中の少なくとも１１，５００個の細胞を、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、およびｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２の各ウイルス調製物についてスコアした。
これらの研究による結果は、ヒト化ｇｆｐ配列を有するｐＴＲＢＳ−ＵＦ１が、クラゲの配列よりも、５〜１０倍多い数のグリーン蛍光について陽性とスコアした細胞を一貫して産生したことを明らかにした。ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２における点変異は、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１よりもさらに５〜１０倍、蛍光細胞の数を増大した。
比較的低いプラスミドＤＮＡ濃度では、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２とｐＴＲＢＳ−ＵＦとの間の差異は、７０倍よりも大きかった。トランスフェクトしたプラスミドＤＮＡのより高い濃度では、ＧＦＰを発現する細胞の数の差異は縮小した。この結果は、クラゲのｇｆｐ配列を翻訳する能力がないことが、遺伝子のコピー数の増大によって部分的に克服され得るという認識と一致した。
改変したｇｆｐ ｃＤＮＡが、低い遺伝子コピー数でマーカー遺伝子を検出するためにここで十分であるかどうかを決定するために、本発明者らは、３つのｇｆｐ構築物（ＵＦ、ＵＦ１、およびＵＦ２）をパッケージングし、そして使用することにより組換えＡＡＶウイルスを単離し、そしてｇｆｐマーカーをウイルス感染によって２９３細胞に形質導入するためにそれらを使用した。ｇｆｐ１０ ｃＤＮＡを有するウイルス（ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ）による検出可能なＧＦＰ発現はほとんど存在しなかったが、ヒト化ｇｆｐｈ遺伝子を有するウイルス（ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、またはｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２）に感染した細胞は、可視的（図４Ａおよび図４Ｂ）またはＦＡＣＳ分析のいずれによっても容易に検出された。ＦＡＣＳ分析を、トランスフェクトした２９３細胞を回収すること、およびＦＩＴＣ検出のために取り付けられたフローサイトメーター（Ｂｅｃｋｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）上で４８８ｎｍの励起波長で分析することによって行った。高いＭ．Ｏ．Ｉ．（約２０）では、蛍光陽性としてＦＡＣＳによってスコアした感染細胞の比は、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２について７０％に到達した。
異なるｇｆｐ構築物の相対的な効率をさらに正確に決定するために、最初に、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、またはｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２を用いて低い多重度（１のＭＯＩ）で感染した２９３細胞を、第２のレポーター遺伝子であるｎｅｏＲの発現について選択した。ＡＡＶ−ｎｅｏＲ組み換えウイルスにより形質導入されたＧ４１８耐性コロニーが、宿主ＤＮＡに組み込まれた平均２〜３コピーの組換えウイルスゲノムを含むことが、本発明者および他の研究者（Ｃｈｅｕｎｇら、１９８０；Ｌａｕｇｈｌｉｎら、１９８６；ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８；Ｓａｍｕｌｓｋｉら、１９８９）によって示されている。
２９３細胞を、ｒＡＡＶ−ＧＦＰウイルスを用いて安定に形質導入し、そして２週間Ｇ４１８耐性（２００ｍｇ／ｍｌ）について選択した。耐性コロニーをトリプシン処理し、プールし（ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、およびｒＡＡＶ−ｇｆｐｈ２のそれぞれについて少なくとも１０００コロニー）、ＯＰＴＩ−ＭＥＭ培地中に再懸濁し、そしてＦＡＣＳによって上記のように分析した。
非感染２９３細胞は、グリーン蛍光細胞を全く有さない。選択の２週間後、Ｇ４１８耐性であった、ＵＦ１形質導入細胞の約１１％およびＵＦ２形質導入細胞の２３％が、蛍光顕微鏡による判断の際にＧＦＰを発現することがまた見出された。ＧＦＰ発現の可視的なパターンは不規則であり、１％から約１００％までの範囲のコロニーあたりのグリーン細胞の数を有する（図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃ、および図５Ｄ）。対照的に、クラゲのＧＦＰ−コードｒＡＡＶ−ＧＦＰＪプロウイルスを含有するＧ４１８−耐性細胞の０．５％のみが蛍光であった。
従って、ｇｆｐ遺伝子内でのコドン使用の最適化は、低いコピー数での検出のレベルを約２２倍まで増大し、そしてＳｅｒ６５Ｔｈｒ置換はさらに２倍、合計で４５倍まで検出レベルを増大した。
発現のレベルに本質的により敏感であり得るＦＡＣＳによるＧ４１８耐性細胞の分析は、ＧＦＰＪ、ＧＦＰＨ１、およびＧＦＰＨ２間の検出レベルにおける類似の差異を明らかにした（図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ）。これらの研究において、非感染２９３細胞の０．０５％を、グリーン蛍光を示すとしてスコアした（すなわち、バックグラウンドの自己蛍光（ａｕｔｏｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ））。ＧＦＰＪと非感染親２９３細胞との間には、蛍光細胞の数における差異は検出されなかった。
ＧＦＰＪとは対照的に、約１．６％のＧＦＰＨ１および１０％のＧＦＰＨ２細胞を、グリーン蛍光について陽性とスコアした。ＧＦＰＪを用いて陽性細胞が全く検出されかったので、ＧＦＰＪとＧＦＰＨ２との間の検出頻度における差異を正確に判断することは困難であった。しかし、ヒト化集団におけるグリーン蛍光細胞の検出頻度の控えめな見積もりは、ＧＦＰＪおよび非感染親２９３細胞について見出されるバックグラウンドの頻度よりも少なくとも３２倍（ＧＦＰＨ１）および１９０倍（ＧＦＰＨ２）高かった（図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ）。
実施例ＶＩＩ
ヒト化ブルーＧＦＰ変異体の発現
この実施例は、２９３細胞内における、ヒト化ブルーＧＦＰ変異体であるｐＴＲＢＳ−ＵＦＢの発現を記載する。
ブルー変異体の蛍光をモニターするために、６ｃｍのプレート上の２９３細胞を、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（ＧＩＢＣＯ，Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を使用して、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２およびｐＴＲＢＳ−ＵＦＢプラスミドで同時トランスフェクトした。ＤＮＡ−リポソーム複合体を、各プラスミドについて別々に形成させ、そして同一のプレートの細胞に添加した。４日後、細胞を、Ｎｉｋｏｎ Ｆｉｌｔｅｒ Ｃｕｂｅ Ｖ−２Ｂを使用して蛍光顕微鏡中で写真を撮影した。
予想されたように、ヒト化されたバックグラウンドにおいて再現した場合、ブルーＧＦＰ変異体であるｐＴＲＢＳ−ＵＦＢは、２９３細胞に真の青色の蛍光を誘導した。しかし、蛍光の強度は、ＧＦＰＨ２と比較してかなり減少した。例えば、図７は、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２およびｐＴＲＢＳ−ＵＦＢで同時トランスフェクトされ、そしてブルー蛍光について好ましい条件下で見た２９３細胞を示す。本発明者らはまた、中性フィルター（ｎｅｕｔｒａｌ ｄｅｎｓｉｔｙ ｆｉｌｔｅｒ）を用いずに観察した場合の、ブルー蛍光のより速い（１０〜１５秒）漂白に注目した。これは、ＧＦＰＨ２についてはめったに生じなかった。
核のさらにより小さい空間にＧＦＰを局在させるために、ブルー変異遺伝子中に核局在化シグナルを付加することが、Ｒｉｚｚｕｔｏら（１９９５）のミトコンドリア標的と同様の様式で蛍光強度を増強することが予想される。ＧＦＰＢ−核局在化変異体を作製するために、以下のプライマーを生成した：
＃１：５’−ＴＧＣＴＣＴＡＧＡＧＣＧＧＣＣＧＣＣＧＣＣＡＣＣＡＴＧＧＴＧＣＣＣＡＡＧＡＡＧＡＡＧＡＧＧＡＡＧＧＴＧＡＴＧＡＧＣＡＡＧＧＧＣＧＡＧ−３’；（配列番号１３）；
＃２：プライマー＃２は先に記載したＧＦＰＢ ＰＣＲＴＭの通り。
実施例ＶＩＩＩ
ＩＲＥＳ−ＧＦＰカセットＡＡＶベクターの構築
この実施例は、ＩＲＥＳ−ＧＦＰカセットＡＡＶベクターの構築を記載し、ここで、ＧＦＰの翻訳は１型ポリオウイルス由来のＩＲＥＳエレメントによって制御される。
しばしば種々の技術的な理由のために、形質導入された目的の遺伝子の発現は追跡することが困難である。これらの場合において、同一のベクターにより送達されるマーカー遺伝子のモニターが、僅かに役に立つ。なぜなら、それは通常の別のプロモーターから転写されるからである。しかし、レポーター遺伝子と実験下の遺伝子の両方の同調的発現は、これらの遺伝子が１つのジシストロン性（ｄｉｃｉｓｔｒｏｎｉｃ）転写単位に配置される場合に達成され得る。この配置において第２のシストロンのキャップ非依存性転写開始は、内部リボソーム侵入部位として機能する翻訳されないＲＮＡ配列によって媒介される（Ｊａｃｋｓｏｎら、１９９０；Ｊａｎｇら、１９８８；ＭａｃｅｊａｋおよびＳａｒｎｏｗ、１９９１）。
この特徴を本発明者らのＡＡＶベクターに組込むために、本発明者らは、ＧＦＰの翻訳が１型ポリオウイルス由来のＩＲＥＳエレメント（Ｄｉｒｋｓら、１９９３）によって制御される、プラスミドｐＴＲＢＳ−ＵＦ３を構築した。制限部位ポリリンカー配列をまたＩＲＥＳエレメントの上流に挿入して、目的の遺伝子の挿入を容易にし、そしてジシストロン性メッセンジャーＲＮＡをＣＭＶプロモーターの制御下においた（図２Ｂおよび図２Ａ）。
蛍光強度により判断する場合、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ３ベクターを用いるＩＲＥＳ−駆動性ＧＦＰ発現のレベルは、親プラスミドであるｐＴＲＢＳ−ＵＦ２について見られるレベルよりも低く、そしてｐＴＲＢＳ−ＵＦ１ベクターに匹敵した。しかし、別のオープンリーディングフレーム（ヒトＢ−鎖インスリンｃＤＮＡ）をＩＲＥＳエレメントの上流に挿入した場合、ＧＦＰの発現が増大し、そして親ベクターｐＴＲＢＳ−ＵＦ２とは区別できなかった。
実施例ＩＸ
組換えＧＦＰアデノウイルスの構築および使用
この実施例は、組換えアデノウイルスシャトルプラスミドの構築、およびヒト化ｇｆｐ遺伝子を発現する組換えアデノウイルスの構築を記載する。ここでは、ヒト化ＧＦＰ発現における異なるベクター系の使用を例示する。
アデノウイルスシャトルベクターｐΔＥ１ＧＦＰ（図２Ｂ）を構築するために、親プラスミドｐＴＲ−ＵＦ３をＳａｌＩで部分的に消化し、次いでＢｇｌＩＩで完全に消化した。ＣＭＶプロモーター、イントロン、ＩＲＥＳエレメント、ＧＦＰＨ ｃＤＮＡ、およびポリ（Ａ）部位からなる転写カセットを、アガロースゲルから単離した。このフラグメントを、ＢａｍＨＩおよびＳａｌＩで消化したｐΔＥ１ｓｐ１Ａ（Ｂｅｔｔら、１９９４）にサブクローン化した。
組換えアデノウイルスを作製するために、シャトルベクターｐΔＥ１ＧＦＰ（Ｂｅｔｔら、１９９４）およびＡｄベクターｐＪＭ１７（ＭｃＧｒｏｒｙら、１９８８）を、供給者（Ｍｉｃｒｏｂｉｘ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ Ｉｎｃ）によって推奨される手順を使用して、２９３細胞に同時トランスフェクトした。組換えＡｄを含有するプラークを、典型的な細胞変性効果（ＣＰＥ）を示す鮮やかなグリーン細胞の群について、エピ蛍光（ｅｐｉｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ）下での視覚的選択によってスクリーニングした。組換えＡｄを、ＡｄΔＥ１ＧＦＰと名付け、そして標準的な技術を用いて増殖させた。
ｐΔＥ１ｇｆｐを、アデノウイルスゲノムｐＪＭ１７（Ｓｎｙｄｅｒら、１９９３）の残りを含有するプラスミドとインビボで組換える場合、ＧＦＰを有し、そしてそれを発現する組換えアデノウイルスが産生された（図８）。ＧＦＰレポーター遺伝子は、組換えＡｄプラークの容易な選択を可能にした。蛍光顕微鏡によって調べた場合、真の組換えプラークは、典型的なアデノウイルスＣＰＥを示す鮮やかなグリーン細胞の密集した（ｃｏｍｐａｃｔ）群から構成されたが、偽りの組換えプラークは、グリーン細胞を含まなかった。真のプラークに対する偽りのプラークの比は、ｐΔＥ１ｇｆｐシャトルプラスミドとｐＪＭ１７ドナープラスミドとの組合せを使用する場合、約１：２であった。従って、ＧＦＰ選択の使用は、スクリーニングプロセスを有意に単純化した。
実施例Ｘ
モルモットの光レセプター細胞の感染
この実施例は、ヒト化、ｇｆｐｈ、ｃＤＮＡの発現、および分化した哺乳動物細胞におけるレポーター遺伝子としてのその使用を記載する。
ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１を、モルモットの網膜を感染させるために使用した。モルモットを、ケタミン（３５ｍｇ／ｋｇ体重）およびキシラジン（８ｍｇ／ｋｇ）の混合物の筋肉内注射によって麻酔した。それぞれの眼を、２．５％のフェニレフリン（Ｎｅｏ−Ｓｙｎｅｐｈｒｉｎｅ）および０．５％のトロピカアミドで弛緩させ、そして局所麻酔（プロパラカインＨＣｌ）を角膜に投与した。前眼房の穿刺により、眼圧を下げた。３０ゲージ針を倒像検眼鏡の視覚的な誘導の下で硝子体中の毛様体輪に挿入し、そして２５ｍｌのｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２（２．５×１０７の感染性粒子）を送達した。眼を、蛍光および炎症部位について検眼鏡観察によって検査した。
注射後２８日で、動物を麻酔し、そしてケタミンＨＣｌの筋肉内注射し、続いて、ペントバルビタールナトリウムを腹腔内に過剰投与して安楽死させた。ついで、動物を、０．１ＭのＰＢＳ中の４％のパラホルムアルデヒドを使用して灌流した。眼を摘出し、そして水晶体および角膜を取り除いた。網膜および眼杯を、一晩４℃でさらに固定した。次いで、網膜を、７．５％、１５％、および３０％のスクロースに浸潤し、そして２０〜２５μｍの厚さで凍結切断した。組織標本を、フルオロセイン励起／放射フィルターを用いて、Ｂｒｏｒａｄの共焦点顕微鏡上で可視化した。
ＧＦＰＨ ｃＤＮＡの、インビボ系におけるレポーター遺伝子としての有用性を試験するために、本発明者らは、２系統の株の１３匹のモルモットの右眼の硝子体に、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２ウイルスを注射した。眼の組織切片は、神経節細胞層（硝子体注射に最も近い層）の細胞において優先的に、弱いＧＦＰＨ２蛍光を明らかにした。さらに、いくつかの水平細胞は、ＧＦＰＨ２蛍光を示した。ＧＦＰＨ２の最も強い強度は、網膜色素上皮（ＲＰＥ）の細胞において見られた（図９Ａ、図９Ｂ、図９Ｃ、および図９Ｄ）。
ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２について、試験した各組織切片は、蛍光を発するＲＰＥ細胞を有していた。ＲＰＥ細胞におけるＣＭＶプロモーター駆動性発現に対するこの優先は、既に注目されている（Ｂｅｎｎｅｔｔら、１９９４；Ｌｉら、１９９４）。コントロールの左眼による組織標本の試験は、ＲＰＥの色素顆粒中の自己蛍光を除いて、細胞特異的放出を明らかにしなかった。モルモット硝子体腔へのＡＡＶの接種がＲＰＥ細胞内でＧＦＰ発現を誘導するという事実は、ＡＡＶが１００〜２００μｍの厚さの神経網膜をトラバース（ｔｒａｖｅｒｓｅ）し得ることを示した。この特性は、ＡＡＶ粒子の小さい直径に関連し得る。
実施例ＸＩ
ｐＧＲＥＥＮＬＡＮＴＥＲＮＴＭベクター
この実施例は、ｐＧＲＥＥＮＬＡＮＴＥＲＮＴＭと呼ばれる特に有用なベクターの作製を記載する。
ｐＣＭＶＳＰＯＲＴ ２．１を作製するために、以下のプロトコルを使用した。ｐＳＰＯＲＴ２（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．，Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ，ＭＤから入手可能）を、ＰｖｕＩＩおよびＢｓｓＨＩで消化した。末端を、クレノーフラグメントの作用によって平滑にした。より大きなフラグメントをゲル精製した。
次いで、ｐＳＶＳＰＯＲＴ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．，Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ，ＭＤから入手可能）を、ＥａｒＩおよびＨａｅＩＩで消化した。末端を、Ｔ４ＤＮＡポリメラーゼの作用によって平滑にした。より小さなフラグメントをゲル精製した。２つのフラグメントを連結し、そして得られたプラスミドをｐＲＡＤ−ＴＥＭＰと称した。
ｐＲＡＤ−ＴＥＭＰを、ＢａｍＨＩで部分的に消化し、そしてクレノーで処理した。ＤＮＡを自己連結させ、そして得られたプラスミドは、マルチクローニング部位（ＭＣＳ）に１つのみのＢａｍＨＩ部位を有した。ＭＣＳを、ＸｂａＩおよびＭｌｕＩでＤＮＡを切断し、そして以下の制限部位（ＸｂａＩ−ＢａｍＨＩ−ＸｈｏＩ−ＡｐａＩ−ＨｉｎｄＩＩおよびＭｌｕＩ）を有する新しいオリゴを連結することで改変した。このプラスミドを、ｐＳＶＳＰＯＲＴ−Ｂ１と称した。
ｐＳＶＰＳＯＲＴ−Ｂ１を、ＣｌａＩおよびＳｔｕＩで消化し、クレノーフラグメントで処理した。ＣＭＶプロモーターはｐＣＭＶβｇａｌ由来であった。プロモーターは、クレノーフラグメントで平滑にしたＳｆｃＩ−ＸｂａＩフラグメント上にあった。ＤＮＡを連結し、そして得られたプラスミドをｐＣＭＶＳＰＯＲＴ ２．１と称した。
ｐＧＲＥＥＮＬＡＮＴＥＲＮを作製するために、ｐＣＭＶＳＰＯＲＴ ２．１を利用した。ｐＣＭＶＳＰＯＲＴ ２．１をＮｏｔＩで消化し、ウシ腸アルカリホスファターゼで処理した。ＤＮＡをヒト化ＵＦ２のＮｏｔＩフラグメントに連結した。方向を確認した。このベクターを、ｐＣＭＶＳＰＯＲＴ−ＵＦ２と称した。
Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ領域を、ＸｂａＩ−ＮｈｅＩでの消化、およびより大きなベクターフラグメントの自己連結によって欠失させた。このＤＮＡが、ｐＧＲＥＥＮＬＡＮＴＥＲＮ−１ベクター（図１０）である。ｐＧＲＥＥＮＬＡＮＴＥＲＮ−１の完全な配列を、配列番号１４に示す。
本明細書中で開示され、そして請求の範囲に記載される組成物および方法の全てが、本発明の開示を考慮して過度の実験を伴わずに行われ、そして達成され得る。本発明の組成物および方法は好ましい実施態様によって記載されているが、改変が、本発明の概念、意図、および範囲から逸脱することなく、本明細書中に記載される組成物、方法、および方法の工程または工程の順序に適用され得ることが当業者に明らかである。より詳細には、特定の薬剤（化学的および生理学的に関連する薬剤の両方）が、同一または類似の結果が達成される限りは、本明細書中に開示される薬剤と置換され得ることが明らかである。全てのこのような類似の置換および改変が、添付の請求の範囲によって規定される本発明の意図、範囲、および概念の中にあることが当業者には明らかである。
参考文献
本明細書中に示されるものに対して、例示の手順的なまたは他の詳細な補追を提供する程度まで、以下の参考文献が本明細書中に参考として詳細に援用される。
Figure 2008086327
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以下の図面は、本発明の明細書の部分を形成し、そして本発明の特定の局面をさらに示すために含まれる。本発明は、本明細書中に提示される特定の実施態様の詳細な説明と組み合わせた一つ以上のこれらの図面を参照してより良好に理解され得る。
図１。ｇｆｐ１０ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列。各コドンの上は、アミノ酸の一文字表記である。ｇｆｐｈ配列内に導入された変異は、下のｇｆｐ１０の置換ヌクレオチドに示される。横線は、ｇｆｐｈ ｃＤＮＡを合成するために使用されるオリゴヌクレオチドを相互にプライムする重複領域に下線を引く。オリゴヌクレオチドの伸長される対を組み立てるために使用される制限酵素の部位は、太字で示される。Ｓｅｒ６５Ｔｈｒ変異（より高い蛍光収量を産生する）およびＴｙｒ６５Ｈｉｓ変異（ブルー蛍光を産生する）を産生するために変異されるコドンは、太字で示される。図１において、クラゲｇｆｐ１０ヌクレオチド配列は、配列番号１である。推定アミノ酸配列は、配列番号２である。配列番号２において、６５位のＸａａは、ＳｅｒまたはＴｈｒであり得；そして６６位のＸａａは、ＴｙｒまたはＨｉｓであり得る。図１の下のｇｆｐ１０の置換ヌクレオチドに示される例示的なヒト化ｇｆｐ配列は、配列番号３である。配列番号３において、１９３、１９５、および１９６位のヌクレオチドが、上記のように、ＳｅｒまたはＴｈｒのいずれか；およびＴｙｒまたはＨｉｓのいずれかをコードするために変化され得る。 図１。ｇｆｐ１０ ｃＤＮＡのヌクレオチド配列および推定アミノ酸配列。各コドンの上は、アミノ酸の一文字表記である。ｇｆｐｈ配列内に導入された変異は、下のｇｆｐ１０の置換ヌクレオチドに示される。横線は、ｇｆｐｈ ｃＤＮＡを合成するために使用されるオリゴヌクレオチドを相互にプライムする重複領域に下線を引く。オリゴヌクレオチドの伸長される対を組み立てるために使用される制限酵素の部位は、太字で示される。Ｓｅｒ６５Ｔｈｒ変異（より高い蛍光収量を産生する）およびＴｙｒ６５Ｈｉｓ変異（ブルー蛍光を産生する）を産生するために変異されるコドンは、太字で示される。図１において、クラゲｇｆｐ１０ヌクレオチド配列は、配列番号１である。推定アミノ酸配列は、配列番号２である。配列番号２において、６５位のＸａａは、ＳｅｒまたはＴｈｒであり得；そして６６位のＸａａは、ＴｙｒまたはＨｉｓであり得る。図１の下のｇｆｐ１０の置換ヌクレオチドに示される例示的なヒト化ｇｆｐ配列は、配列番号３である。配列番号３において、１９３、１９５、および１９６位のヌクレオチドが、上記のように、ＳｅｒまたはＴｈｒのいずれか；およびＴｙｒまたはＨｉｓのいずれかをコードするために変化され得る。 図２Ａ。ＡＡＶおよびＡｄベクタープラスミドの制限地図。ｒＡＡｖプラスミドの構築物について関連するそれらの制限部位のみを示した。移動可能なエレメントおよびレポーター遺伝子カセットのサイズは、塩基対で示される。遺伝子および転写エレメントの系統学は、以下のようである：ＴＲは、ｄｌ３−９４（ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）由来のＰｓｔＩ−ＢｇｌＩＩ−フラグメント（１４５ｂｐ＋オリゴ（ｄＧ）．オリゴ（ｄＣ）、計１６０ｂｐ）である；ＰＣＭＶは、ＣＭＶの即時／初期のプロモーター／エンハンサーである；ＳＤ／ＳＡは、ＳＶ４０後期ウイルスタンパク質遺伝子１６ｓ／１９ｓスプライスドナーおよび受容体シグナルである；ｇｆｐは、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ内のＡ．ｖｉｃｔｏｒｉａグリーン蛍光タンパク質ｃＤＮＡ、またはｐＴＲＢＳ−ＵＦ１内の化学合成されたヒト化ｗｔ ｇｆｐｈｃＤＮＡ、またはｐＴＲＢＳ−ＵＦ２内のＴｈｒ６５ｇｆｐｈ、またはｐＴＲＢＳ−ＵＦＢ内のＨｉｓ６６ｇｆｐｈである；ｐＡ１は、ＳＶ４０ゲノム由来のＳＶ４０ポリアデニル化シグナルである；ＰＯｅｎｈは、ポリオーマウイルス変異体ＰＹＦ４４１由来のエンハンサーの縦列反復である；ＰＴＫは、ＨＳＶのＴＫプロモーターである；ｎｅｏｒは、Ｔｎ５由来のネオマイシン耐性遺伝子である；ｐＡ２は、ｐＲｃ／ＣＭＶ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）由来のウシ成長ホルモンポリアデニル化シグナルである；ＩＲＥＳは、ｐＳＢＣ−１由来の１型ポリオウイルスの内部リボソーム侵入部位である（Ｄｉｓｋｓら、１９９３）。 図２Ａ。ＡＡＶおよびＡｄベクタープラスミドの制限地図。ｒＡＡｖプラスミドの構築物について関連するそれらの制限部位のみを示した。移動可能なエレメントおよびレポーター遺伝子カセットのサイズは、塩基対で示される。遺伝子および転写エレメントの系統学は、以下のようである：ＴＲは、ｄｌ３−９４（ＭｃＬａｕｇｈｌｉｎら、１９８８）由来のＰｓｔＩ−ＢｇｌＩＩ−フラグメント（１４５ｂｐ＋オリゴ（ｄＧ）．オリゴ（ｄＣ）、計１６０ｂｐ）である；ＰＣＭＶは、ＣＭＶの即時／初期のプロモーター／エンハンサーである；ＳＤ／ＳＡは、ＳＶ４０後期ウイルスタンパク質遺伝子１６ｓ／１９ｓスプライスドナーおよび受容体シグナルである；ｇｆｐは、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ内のＡ．ｖｉｃｔｏｒｉａグリーン蛍光タンパク質ｃＤＮＡ、またはｐＴＲＢＳ−ＵＦ１内の化学合成されたヒト化ｗｔ ｇｆｐｈｃＤＮＡ、またはｐＴＲＢＳ−ＵＦ２内のＴｈｒ６５ｇｆｐｈ、またはｐＴＲＢＳ−ＵＦＢ内のＨｉｓ６６ｇｆｐｈである；ｐＡ１は、ＳＶ４０ゲノム由来のＳＶ４０ポリアデニル化シグナルである；ＰＯｅｎｈは、ポリオーマウイルス変異体ＰＹＦ４４１由来のエンハンサーの縦列反復である；ＰＴＫは、ＨＳＶのＴＫプロモーターである；ｎｅｏｒは、Ｔｎ５由来のネオマイシン耐性遺伝子である；ｐＡ２は、ｐＲｃ／ＣＭＶ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）由来のウシ成長ホルモンポリアデニル化シグナルである；ＩＲＥＳは、ｐＳＢＣ−１由来の１型ポリオウイルスの内部リボソーム侵入部位である（Ｄｉｓｋｓら、１９９３）。 図２Ｂ。ｐＴＲ−ＵＦ汎用性ベクターの構築。 図２Ｂ。ｐＴＲ−ＵＦ汎用性ベクターの構築。 図２Ｂ。ｐＴＲ−ＵＦ汎用性ベクターの構築。 図３。ｐＴＲＢＳ−ＵＦ系列の組換えプラスミドでトランスフェクトされた２９３細胞のＦＡＣＳ分析。２９３細胞（６ウェルディッシュ）が、従来のカルシウムリン酸トランスフェクションプロトコルを使用して、計２．８μｇのＤＮＡ（これは、異なる比のｇｆｐ含有プラスミドおよび超音波処理されたサケ精子キャリアＤＮＡからなる）でトランスフェクトされた。細胞は、トランスフェクションの３６時間後に回収され、そしてフローサイトメーターで分析された。陽性として記録された細胞は、トランスフェクトされたｇｆｐ保有プラスミドの量の関数としてグラフ上にプロットされた。透明のバーは、ｐＴＲＢＳ−ＵＦに対応し、影付きのバーは、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ１に対応し、そして黒いバーは、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２に対応する。 図４Ａおよび図４Ｂ。２９３細胞内でのｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２の発現。２９３細胞は、ＣｓＣｌ精製ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２に１０のＭ．Ｏ．Ｉ．で感染された。感染後３６時間の細胞が、ＣＨＲＯＭＡ Ｆｉｌｔｅｒ Ｃｕｂｅ ＃４１０１４ ＧＦＰ−ＨＱ（４５０＋／−２５ｎｍで励起）を使用して、蛍光顕微鏡で撮影された。図４Ａ、位相差の下での細胞、明視野（ｌｉｇｈｔ ｆｉｅｌｄ）；図４Ｂ、同じ視野、追加蛍光（ｅｐｉｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ）。 図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃ、および図５Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２プロウイルスを含むＧ４１８−耐性クローンの蛍光。２９３細胞は、ＣｓＣｌ精製ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２に１のＭ．Ｏ．Ｉ．で感染された。感染後４８時間の細胞は、分割され、そして低い（１０％未満）コンフルエンスでプレートされた。１８時間後、Ｇ４１８は、２００ｍｇ／ｍｌの最終濃度で添加された。培地は、４日毎に交換され、そしてＧ４１８耐性コロニーは、選択の１４日後に撮影された。図５Ａおよび図５Ｃ、位相差の下でのＧ４１８耐性コロニー、明視野；図５Ｂおよび図５Ｄ、図５Ａおよび図５Ｃと同じ視野、追加蛍光。 図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃ、および図５Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２プロウイルスを含むＧ４１８−耐性クローンの蛍光。２９３細胞は、ＣｓＣｌ精製ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２に１のＭ．Ｏ．Ｉ．で感染された。感染後４８時間の細胞は、分割され、そして低い（１０％未満）コンフルエンスでプレートされた。１８時間後、Ｇ４１８は、２００ｍｇ／ｍｌの最終濃度で添加された。培地は、４日毎に交換され、そしてＧ４１８耐性コロニーは、選択の１４日後に撮影された。図５Ａおよび図５Ｃ、位相差の下でのＧ４１８耐性コロニー、明視野；図５Ｂおよび図５Ｄ、図５Ａおよび図５Ｃと同じ視野、追加蛍光。 図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃ、および図５Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２プロウイルスを含むＧ４１８−耐性クローンの蛍光。２９３細胞は、ＣｓＣｌ精製ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２に１のＭ．Ｏ．Ｉ．で感染された。感染後４８時間の細胞は、分割され、そして低い（１０％未満）コンフルエンスでプレートされた。１８時間後、Ｇ４１８は、２００ｍｇ／ｍｌの最終濃度で添加された。培地は、４日毎に交換され、そしてＧ４１８耐性コロニーは、選択の１４日後に撮影された。図５Ａおよび図５Ｃ、位相差の下でのＧ４１８耐性コロニー、明視野；図５Ｂおよび図５Ｄ、図５Ａおよび図５Ｃと同じ視野、追加蛍光。 図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃ、および図５Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２プロウイルスを含むＧ４１８−耐性クローンの蛍光。２９３細胞は、ＣｓＣｌ精製ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２に１のＭ．Ｏ．Ｉ．で感染された。感染後４８時間の細胞は、分割され、そして低い（１０％未満）コンフルエンスでプレートされた。１８時間後、Ｇ４１８は、２００ｍｇ／ｍｌの最終濃度で添加された。培地は、４日毎に交換され、そしてＧ４１８耐性コロニーは、選択の１４日後に撮影された。図５Ａおよび図５Ｃ、位相差の下でのＧ４１８耐性コロニー、明視野；図５Ｂおよび図５Ｄ、図５Ａおよび図５Ｃと同じ視野、追加蛍光。 図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、またはｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で安定に形質導入され、そして２週間後Ｇ４１８で選択された２９３細胞のＦＡＣＳ分析。図６Ａ、親２９３細胞株のＦＡＣＳヒストグラムプロット；図６Ｂ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪで形質導入された２９３細胞；図６Ｃ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１；および図６Ｄ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２。各場合について、２０，０００の細胞が識別された。各細胞集団について陽性と記録された細胞の矯正されていない頻度は、未感染２９３細胞：０．０５％；ＧＦＰＪ：０．０５％；ＧＦＰＨ１：１．６７％、ＧＦＰＨ２：９．６％であった。 図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、またはｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で安定に形質導入され、そして２週間後Ｇ４１８で選択された２９３細胞のＦＡＣＳ分析。図６Ａ、親２９３細胞株のＦＡＣＳヒストグラムプロット；図６Ｂ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪで形質導入された２９３細胞；図６Ｃ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１；および図６Ｄ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２。各場合について、２０，０００の細胞が識別された。各細胞集団について陽性と記録された細胞の矯正されていない頻度は、未感染２９３細胞：０．０５％；ＧＦＰＪ：０．０５％；ＧＦＰＨ１：１．６７％、ＧＦＰＨ２：９．６％であった。 図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、またはｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で安定に形質導入され、そして２週間後Ｇ４１８で選択された２９３細胞のＦＡＣＳ分析。図６Ａ、親２９３細胞株のＦＡＣＳヒストグラムプロット；図６Ｂ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪで形質導入された２９３細胞；図６Ｃ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１；および図６Ｄ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２。各場合について、２０，０００の細胞が識別された。各細胞集団について陽性と記録された細胞の矯正されていない頻度は、未感染２９３細胞：０．０５％；ＧＦＰＪ：０．０５％；ＧＦＰＨ１：１．６７％、ＧＦＰＨ２：９．６％であった。 図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１、またはｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で安定に形質導入され、そして２週間後Ｇ４１８で選択された２９３細胞のＦＡＣＳ分析。図６Ａ、親２９３細胞株のＦＡＣＳヒストグラムプロット；図６Ｂ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＪで形質導入された２９３細胞；図６Ｃ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ１；および図６Ｄ、ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２。各場合について、２０，０００の細胞が識別された。各細胞集団について陽性と記録された細胞の矯正されていない頻度は、未感染２９３細胞：０．０５％；ＧＦＰＪ：０．０５％；ＧＦＰＨ１：１．６７％、ＧＦＰＨ２：９．６％であった。 図７。ヒト化ｇｆｐのブルーＨｉｓ６６変異体の蛍光。２９３細胞は、ｐＴＲＢＳ−ＵＦ２およびｐＴＲＢＳ−ＵＦＢで同時トランスフェクトされ、そしてトランスフェクションの４日後に、Ｎｉｋｏｎ Ｆｉｌｔｅｒ Ｃｕｂｅ Ｖ−２Ｂを使用して蛍光顕微鏡で撮影された。 図８。蛍光顕微鏡で見られる組換えＡｄΔＥ１ＧＦＰの単一のプラーク。プラークは、感染の４０時間後に撮影された。 図９Ａ、図９Ｂ、図９Ｃ、および図９Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で感染されたモルモットＲＰＥのセグメントにおけるＧＦＰ蛍光。図９Ａ、図９Ｂで見られる領域近くの感染した眼からの網膜の微分干渉対比画像（ｃｏｎｔｒａｓｔ ｉｍａｇｅ）。示される網膜の上端近くの暗く着色した細胞の層は、わずかに傾斜した切片中のＲＰＥ層である。光受容体細胞層および他の神経網膜層は、ＲＰＥの下に見られ得る。図９Ｂ、共焦点顕微鏡による短波長の励起および蛍光発光光学の下で見られる注入部位近くのｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２接種された眼由来のＲＰＥ層。図９Ｃ、注入部位から遠位の部位での図９Ｂと同じ眼からのＲＰＥ層の蛍光。図９Ｄ、図９Ａ、図９Ｂ、および図９Ｃと同じ動物の未注入の眼からのＲＰＥ層の蛍光。 図９Ａ、図９Ｂ、図９Ｃ、および図９Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で感染されたモルモットＲＰＥのセグメントにおけるＧＦＰ蛍光。図９Ａ、図９Ｂで見られる領域近くの感染した眼からの網膜の微分干渉対比画像（ｃｏｎｔｒａｓｔ ｉｍａｇｅ）。示される網膜の上端近くの暗く着色した細胞の層は、わずかに傾斜した切片中のＲＰＥ層である。光受容体細胞層および他の神経網膜層は、ＲＰＥの下に見られ得る。図９Ｂ、共焦点顕微鏡による短波長の励起および蛍光発光光学の下で見られる注入部位近くのｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２接種された眼由来のＲＰＥ層。図９Ｃ、注入部位から遠位の部位での図９Ｂと同じ眼からのＲＰＥ層の蛍光。図９Ｄ、図９Ａ、図９Ｂ、および図９Ｃと同じ動物の未注入の眼からのＲＰＥ層の蛍光。 図９Ａ、図９Ｂ、図９Ｃ、および図９Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で感染されたモルモットＲＰＥのセグメントにおけるＧＦＰ蛍光。図９Ａ、図９Ｂで見られる領域近くの感染した眼からの網膜の微分干渉対比画像（ｃｏｎｔｒａｓｔ ｉｍａｇｅ）。示される網膜の上端近くの暗く着色した細胞の層は、わずかに傾斜した切片中のＲＰＥ層である。光受容体細胞層および他の神経網膜層は、ＲＰＥの下に見られ得る。図９Ｂ、共焦点顕微鏡による短波長の励起および蛍光発光光学の下で見られる注入部位近くのｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２接種された眼由来のＲＰＥ層。図９Ｃ、注入部位から遠位の部位での図９Ｂと同じ眼からのＲＰＥ層の蛍光。図９Ｄ、図９Ａ、図９Ｂ、および図９Ｃと同じ動物の未注入の眼からのＲＰＥ層の蛍光。 図９Ａ、図９Ｂ、図９Ｃ、および図９Ｄ。ｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２で感染されたモルモットＲＰＥのセグメントにおけるＧＦＰ蛍光。図９Ａ、図９Ｂで見られる領域近くの感染した眼からの網膜の微分干渉対比画像（ｃｏｎｔｒａｓｔ ｉｍａｇｅ）。示される網膜の上端近くの暗く着色した細胞の層は、わずかに傾斜した切片中のＲＰＥ層である。光受容体細胞層および他の神経網膜層は、ＲＰＥの下に見られ得る。図９Ｂ、共焦点顕微鏡による短波長の励起および蛍光発光光学の下で見られる注入部位近くのｒＡＡＶ−ＧＦＰＨ２接種された眼由来のＲＰＥ層。図９Ｃ、注入部位から遠位の部位での図９Ｂと同じ眼からのＲＰＥ層の蛍光。図９Ｄ、図９Ａ、図９Ｂ、および図９Ｃと同じ動物の未注入の眼からのＲＰＥ層の蛍光。 図１０．ｐＧＲＥＥＮＬＡＮＴＥＲＮＴＭプラスミド。ＧＦＰは、本発明のヒト化ＧＦＰを示す。他の機能的エレメントおよび制限部位が示される。 （配列表）
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