JP2002544488A - 半導体ナノクリスタルを用いて分析物を検出する方法 - Google Patents
半導体ナノクリスタルを用いて分析物を検出する方法Info
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Abstract
Description
導体ナノクリスタルを検出可能な標識として使用するアッセイに関する。本発明
はさらに、1つより多くの半導体ナノクリスタル(これらの各々は、異なる波長
を発する)を検出可能な標識としてすることによって複数の分析物が同時に検出
され得るアッセイに関する。
の目的の分析物を同定する。例えば、酵素結合イムノソルベント検定法(ELI
SA)のようなイムノアッセイが、多数の診断、研究およびスクリーニング適用
に使用される。その最も一般的な形態において、ELISAは、分析物を特異的
に認識する抗体を用いて、サンプル中の分析物の存在および/または濃度を検出
する。検出可能なシグナルを提供し得る酵素標識が、抗体に結合体化される。分
析物は、固体支持体上に直接固定化されるか(直接捕捉のELISA)、または
固体支持体上にそれ自身が固定化される異なる特異的抗体に結合されるかのいず
れかである。固定化された分析物の存在は、検出可能に標識された抗体をその分
析物に結合させることによって検出される。種々の異なるELISA形式が記載
される。例えば、米国特許第4,011,308号(Giaever)、同第4
,722,890号(Sandersら)、Re.032696号(Schuu
rsら)、同第4,016,043号(Schuursら)、同第3,876,
504号(Koffler)、同第3,770,380号(Smith)、およ
び同第4,372,745号(Mandleら)を参照のこと。
ゼーション(FISH)である。Swigerら(1996)Environ.
Mol.Mutagen.27:245−254;Raap(1998)Mut
.Res.400:287−298;Nathら(1997)Biotechn
ic.Histol.73:6−22。FISHは、細胞または組織調製物内の
予備決定された標的オリゴヌクレオチド(例えば、DNAまたはRNA)の検出
を、例えば顕微鏡可視化によって可能にする。従って、FISHは、例えば、臨
床および研究の実験室両方における、分子細胞遺伝学、病理学および免疫学の分
野で重要な手段である。
NAまたはRNA配列を検出する。具体的には、FISHは、標的オリゴヌクレ
オチドの少なくとも一部に相補的なオリゴヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチ
ドプローブを、標的オリゴヌクレオチドを含むかもしくは含むことが疑われる細
胞調製物または組織調製物とインキュベートする工程を包含する。検出可能な標
識(例えば、蛍光色素分子)は、オリゴヌクレオチドプローブに結合する。ハイ
ブリダイゼーション部位で生成された蛍光シグナルは、代表的には、エピ(ep
i)蛍光顕微鏡を用いて可視化される。代替の手段は、ビオチンまたはジゴキシ
ゲニンのような抗原と結合体化されたオリゴヌクレオチドプローブおよびその抗
原に配向する蛍光タグ化された抗体を使用して、そのDNA標的に対するプロー
ブのハイブリダイゼーションを可視化することである。種々のFISH形式が当
該分野で公知である。例えば、Dewaldら(1993)Bone Marr
ow Transplantation 12:149−154;Wardら(
1993)Am.J.Hum.Genet.52:854−865;Jalal
ら(1998)Mayo Clin.Proc.73:132−137;Zah
edら(1992)Prenat.Diagn.12:483−493;Kit
adaiら(1995)Clin.Cancer Res.1:1095−11
02;Neuhausら(1999)Human Pathol.30:81−
86;Hackら編(1980)Association of Cytoge
netic Technologists Cytogenetics Lab
oratory Manual.(Association of Cytog
enetic Technologists,San Francisco,C
A);Bunoら(1998)Blood 92:2315−2321;Pat
tersonら(1993)Science 260:976−979;Pat
tersonら(1998)Cytometry 31:265−274;Bo
rziら(1996)J.Immunol.Meth.193:167−176
;Wachtelら(1998)Prenat.Diagn.18:455−4
63;Bianchi(1998)J.Perinat.Med.26:175
−185;およびMunne(1998)Mol.Hum.Reprod.4:
863−870を参照のこと。
力な手段を提供する。FISHの他の適用としては、組織サンプルにおけるmR
NAのインサイチュ局在化およびテロメラーゼのよう非遺伝的DNA配列の局在
化が挙げられる。
に関するさらに別の方法である。標的核酸の直接的な検出は、標的に対して相補
鎖核酸をハイブリダイゼーションすることによって可能である。複合体の検出は
、多数の手段(例えば、標的/プローブ複合体に特異的に付着する標識されたプ
ローブまたは試薬色素)によって達成され得る。そのような「直接的」な検出系
は、しばしば、生物学的サンプル中の標的核酸を検出するに十分に敏感でない。
この制限を克服するための1つの方法は、シグナル増幅を用いることである。シ
グナル増幅は、例えば、複数シグナル生成分子を、(1)分析物に対して相補的
であり、かつ(2)複数シグナル生成分子の結合部位を含むある分子を介して分
析物に間接的に結合することによってなされ得る。そしてシグナル生成分子は、
(i)検出可能な標識を含むか、(ii)標識に結合するか、さもなくば標識を
活性化するか、または(iii)さらなる分子の層(この層が代わって検出可能
なシグナルの生成を容易にし得る)に結合するための部位を含む。従って、標的
分子と結合する単一シグナルを生成する標識よりも、シグナル増幅は、標的分子
と結合した複数のシグナルを生成する標識の会合を生じ、従って、アッセイの敏
感さを増強する。
97号(Urdeaら)、同第5,124,246号(Urdeaら)、同第4
,868,105号(Urdeaら)、および欧州特許公開第70,685号(
発明者Hellerら)に記載される。
れらの方法の各々は、一般的な特徴セットのいくつかまたは全てを共有する。こ
れらの特徴としては、以下が挙げられる:相補的オリゴヌクレオチドハイブリダ
イゼーションまたはアニーリングに由来する配列特異性;特異的結合するアッセ
イ試薬の分離を可能にする固体支持体または固相;および特異的で意図されたア
ッセイ相互作用の存在または非存在を検出するために使用される標識。DNAサ
ンプルの配列を検出するために設計されたアッセイの例は、米国特許第5,88
8,731号(Yagerら)、同第5,830,711号(Baranyら)
、同第5,800,994号(Martinelliら)、同第5,792,6
07(Backmanら)、同第5,716,784号(Di Cesare)
、同第5,578,458号(Caskeyら)、同第5,494,810号(
Baranyら)、同第4,925,785号(Wangら)、同第4,989
8,617号(Landegrenら)に見出され得る。
、タンパク質−タンパク質相互作用などに影響を与える能力をアッセイすること
によって、潜在的な治療有用性に対して評価される。種々の系における各個々の
候補化合物の効果の評価は、退屈でありそして時間を浪費し得る。従って、プロ
トコールは、特定の系で複数の候補化合物および/または多数の系で1つの候補
化合物を迅速に評価するように開発された。候補化合物を評価するためのそのよ
うなプロトコールは、高スループットスクリーニング(HTS)といわれている
。
レートのウェル(例えば、96ウェルまたはより高い形式のプレート、例えば、
384ウェル、864ウェルもしくは1536ウェルプレート)への候補化合物
の分散を含む。化合物の効果は、試験されている系に対して評価される。この技
術の「スループット」、すなわち、スクリーニングされ得る候補化合物の数とス
クリーニングされ得る候補化合物に対する系の数との組合せは、多くの因子によ
って制限される。この因子としては、以下が挙げられるがこれらに限定されない
:1つのウェルあたり1つのアッセイのみが実施され得る;従来の色素分子を使
用して候補化合物の効果をモニターする場合、複数の色素分子が使用される際は
、複数の励起源が必要である;そして、ウェルの大きさが小さくなる場合(例え
ば、1536ウェルプレートは、約5μlの総アッセイ体積を受け得る)、個々
の化合物のウェルへの一貫した調製は困難であり、そして各アッセイによって生
成されたシグナルの量は、アッセイの体積の率に応じて有意に減少される。
合物の、例えば、酵素活性、リガンド−レセプター結合などに対する阻害効果は
、 既知の濃度の候補物の存在下でのアッセイの終点を、候補物の非存在下および/
または既知の阻害化合物の存在下で実施された参照に対して比較することによっ
て測定され得る。従って、例えば、リガンドおよびそのレセプターの結合を阻害
するか、または酵素活性を阻害して酵素プロセスのターンオーバーを減少させる
候補物が同定され得る。このプロセス(阻害されたプロセス)が、臨床的に有意
である場合、候補物は特定の条件に対して強力な薬物であると同定される。
ッセイの物理的分離である。16回アッセイを96ウェルプレートの単一ウェル
に多重化することは有利である。これは、ウェル中での試薬の調製を非常に容易
にし、そしてウェルあたりの高いシグナルアウトプットを可能にする。さらに、
多重アッセイを単一ウェルで実施することは、多数の標的系に影響を与える候補
化合物の可能性の同時測定を可能にする。HTS戦略を用いて、単一候補化合物
は、単一アッセイ中で活性(例えば、プロテアーゼインヒビター、炎症インヒビ
ター、喘息鎮静など)に対してスクリーニングされ得る。
を利用する。放射性標識分子および化合物が頻繁に使用され、インビボおよびイ
ンビトロの両方で生物学的化合物を検出する。しかし、放射性同位体の使用と関
連する固有の問題に起因して、生物学的および化学化合物を検出する非放射性方
法がしばしば好ましい。
用される。蛍光は、1つの波長(励起)での照射の吸収から生じる放出光であり
、通常、ほぼ直後に異なる波長(発光)での照射が続く。有機蛍光色素が、代表
的に本文脈中で使用される。しかし、そのような色素の使用に対する化学的およ
び物理的制限が存在する。これらの制限のうちの1つは、異なる色の色素の励起
波長の変化である。結果として、異なる励起波長を有する2つ以上の蛍光タグの
同時使用は、複数の励起光源を必要とする。
露に対する蛍光強度の劣化である。この減衰(光退色と呼ばれる)は、励起光の
強度および照明の期間に依存する。さらに、非蛍光種へのこの色素の変換は、不
可逆である。さらに、色素の分解生成物は、試験される生物学的プロセスを干渉
し得る有機化合物である。
的に、有機色素の比較的に広い発光スペクトルおよびテーリング領域付近のスペ
クトルのオーバーラップに起因する。わずかな低分子量の色素は、大きなSto
kesシフトの組み合わせを有し、それは、吸収の最大値と発光の最大値の分離
、および高蛍光出力として規定される。さらに、低分子量の色素は、いくつかの
適用について実用的であり得ない。なぜなら、それらは蛍光シグナルに十分な明
るさを提供しないからである。
ッセイを実用的にしない。なぜなら、異なる化学反応は、蛍光標識の種々の適用
に使用される各色素に関連され得るからである。
て存在する:(i)高蛍光強度(少量での検出のために)、(ii)吸収頻度と
発光頻度の間の適切な分離、(iii)優れた可溶性、(iv)容易に他の分子
に結合される能力、(v)悪条件および高温に対する安定性、(vi)複数の色
の容易な逆重畳についての対称的な、ほぼガウス発光の線形(lineshap
e)、および(vii)自動化分析との適合性。現在、従来の蛍光標識のどれも
が、これらの要求のすべてを満たさない。
して、種々の生物学的フォーマットおよび化学的フォーマットに使用され得ると
いうの発見に基づく。半導体ナノクルスタル(量子点おおびQdotTMナノクリ
スタルとしても知られる)は、特徴的なスペクトル発光を有するように生産され
得る。これらのスペクトル発光は、異なる粒子サイズ、サイズ分配、および/ま
たは粒子の組成物によって所望のエネルギーに調整され得る。1以上の選択され
た生物学的または化学的標的への親和性を有する標的化合物は、半導体ナノクリ
スタルと結合される。従って、半導体ナノクリスタルは、標的への標的化合物の
親和性に起因して、標的と相互作用するか、または結合する。結合の位置および
/または特性は、例えば、エネルギー源(例えば、励起光源)を有するサンプル
の発光によって、決定され得る。半導体ナノクリスタルは、特徴的な発光スペク
トルを発光する。このスペクトルは、例えば、分光学的に観察され得るか、また
は測定され得る。
5〜30nmの細さの線の幅(linewidths)を有し、その幅は、サン
プル集団の異種遺伝子型のサイズ分布、および対称性、テーリング領域のないガ
ウスまたはほぼガウスである線形に依存する。従って、上記の技術は、単一の反
応における、1つまたはいくつかの異なる生物学的部分または化学的部分の検出
さえを可能にする。調整能、狭い線の幅、およびテーリング領域のない対称発光
スペクトルの組み合わせは、高分解能の複数のサイズのナノクリスタル(例えば
、システム内に複数の異なるサイズ分布を有する単分散の半導体ナノクリスタル
の集団)、および種々の生物学的部分の同時の検出を提供する。
の利用可能な半導体ナノクリスタルの発光波長よりもエネルギーが高くあり得る
。結果的に、これは、単一のエネルギー源(例えば、光、通常は、スペクトルの
紫外領域または青色領域)の使用を可能にし、別の発光スペクトルを有するシス
テムにおける半導体ナノクリスタルのすべての集団の同時の励起に影響する。半
導体ナノクリスタルはまた、従来の有機蛍光色素より強く、そして光脱色に対し
て有機色素より、より耐性である。ナノクリスタルのロバストネスはまた、試験
されるシステムにおける有機色素の分解産物の混入の問題を軽減する。従って、
本発明は、生物学的分子および化学的分子の検出に役立つタグを独自に提供する
。
物の検出方法に関する。このサンプルは、1以上の分析物を含むか、または含む
と考えられ、本発明の検出方法は、以下の工程を包含する: (a)固体支持体上にサンプルを提供する工程; (b)サンプルと半導体ナノクリスタル結合体とを組み合わせる工程であって
、ここで、存在する場合、結合体および分析物を含む複合体の形成を可能にする
条件下で、この組み合わせる工程が行われ; (c)非結合の結合体を除去する工程;および (d)存在する場合、複合体中の半導体ナノクリスタルによって媒介されるス
ペクトル発光のモニタリングによって複合体の存在を検出する工程であって、こ
こで発光は、サンプル内の1以上の標的分析物の存在を示す。
そして方法は以下の工程をさらに包含する: (a)各標的分析物に特異的な結合体を提供する工程であって、ここで各半導
体ナノクリスタル結合体は、他の半導体ナノクリスタルとは別の発光スペクトル
を有し;そして (b)サンプルのスペクトル発光のモニタリングによって標的分析物の存在を
検出する工程であって、ここで発光は、サンプル内の標的分析物の存在を示す。
検出方法に関する。このサンプルは、1以上の分析物を含むか、または含むと考
えられ、本発明の検出方法は、以下の工程を包含する: (a)固体支持体上に非標識の特異的に結合する分子を提供する工程; (b)サンプルと特異的に結合する分子とを組み合わせる工程であって、ここ
で存在する場合、特異的に結合する分子および分析物を含む第1の複合体の形成
を可能にする条件下で、組み合わせる工程が行われ; (c)非結合サンプルを除去する工程; (d)第1の複合体と半導体ナノクリスタル結合体とを組み合わせる工程であ
って、ここで存在する場合、結合体および分析物を含む第2の複合体の形成を可
能にする条件下で、組み合わせる工程は行われ; (e)非結合の結合体を除去する工程; (f)存在する場合、第2の複合体中の半導体ナノクリスタルによって媒介さ
れるスペクトル発光のモニタリングによって、第2の複合体の存在を検出する工
程であって、ここで発光は、サンプル中の1以上の標的分析物の存在を示す。
この方法は、以下の工程をさらに包含する: (a)各標的分析物に特異的な固体支持体上に非標識の特異的に結合する分子
を提供する工程、および各標的分析物に特異的な半導体ナノクリスタル結合体を
提供する工程であって、ここで各半導体ナノクリスタル結合体は、他の半導体ナ
ノクリスタル結合体とは異なる発光スペクトルを有し;そして (b)サンプルのスペクトル発光のモニタリングによって標的分析物の存在を
検出する工程であって、ここで発光は、サンプル中の標的分析物の存在を示す。
検出方法に関する。このサンプルは、1以上の分析物を含むか、または含むと考
えられ、本発明の検出方法は、以下の工程を包含する: (a)固体支持体上にサンプルを提供する工程; (b)サンプルを特異的に結合する分子と組み合わせる工程であって、ここで
(i)特異的に結合する分子は、第1のメンバーの結合対を含み、そして(ii
)存在する場合、特異的に結合する分子および分析物を含む第1の複合体の形成
を可能にする条件下で、組み合わせる工程が行われ; (c)非結合の特異的に結合する分子を除去する工程; (d)第1の複合体と第2のメンバーの結合対を組み合わせる工程であって、
ここで(i)第2のメンバーの結合対は、第1の半導体ナノクリスタルに結合さ
れ;そして(ii)結合対および1以上の分析物を含む第2の複合体の形成を可
能にする条件下で、組み合わせる工程が行われ; (e)存在する場合、第2の複合体中の第1の半導体ナノクリスタルによって
媒介されるスペクトル発光のモニタリングによって第2の複合体の存在を検出す
る工程であって、ここで発光は、サンプル中の1以上の標的分析物の存在を示す
。特定の実施形態において、第1のメンバーの結合対は一次抗体であり、そして
第2のメンバーの結合対は、第1抗体と反応性の第2抗体である;あるいは、第
1のメンバーの結合対はビオチンであり、そして第2のメンバーの結合対はスト
レプトアビジンである;あるいは、第1のメンバーの結合対はジゴキシゲニンで
あり、そして第2のメンバーの結合対は、ジゴキシゲニンに対する抗体である;
あるいは、第1のメンバーの結合対はフルオレセインであり、そして第2のメン
バーの結合対はフルオレセインに対する抗体である。
その方法は、以下の工程をさらに包含する: サンプルと第2の特異的に結合する分子とを組み合わせる工程であって、ここ
で(i)第2の特異的に結合する分子は、第1のメンバーの第2の結合対を含み
、そして(ii)存在する場合、第2の特異的に結合する分子および分析物を含
む第3の複合体の形成を可能にする条件下で、組み合わせる工程が行われ; 非結合の第2の特異的に結合する分子を除去する工程であって; 第3の複合体を第2のメンバーの第2の結合対と組み合わせる工程であって、
ここで(i)第2のメンバーの第2の結合対が、第2の半導体ナノクリスタル(
第1の半導体ナノクリスタルとは異なる発光スペクトルを有する)に連結され;
そして(ii)第2の結合対および分析物を含む第4の複合体の形成を可能にす
る条件下で、組み合わせる工程が行われ;そして 存在する場合、第4の複合体中の第3の半導体ナノクリスタルによって媒介さ
れる第2のスペクトル発光のモニタリングによって、第4の複合体の存在を検出
する工程であって、ここで第2の発光は、サンプル中の1以上の標的分析物の存
在を示す。
物の検出方法に関する。このサンプルは1以上の分析物を含むか、または含むと
考えられる。この方法は、以下の工程を包含する; (a)半導体ナノクリスタル結合体が結合する、少なくとも1つの特異的に結
合する分子を含む第1の複合体を検出する工程であって、ここで半導体ナノクリ
スタルは、特徴的なスペクトル発光を有し、そして結合体は、特異的に結合する
分子に特異的に結合し; (b)サンプルと第1の複合体とを組み合わせる工程であって、ここで存在す
る場合、特異的に結合する分子および分析物を含む第2の複合体の形成を可能に
する条件下で、組み合わせる工程は行われ; (c)存在する場合、半導体ナノクリスタルの特徴的なスペクトル発光のモニ
タリングによって第2の複合体の存在を検出する工程であって、ここで特徴的な
スペクトル発光における変化が、サンプル中の1以上の標的分析物の存在を示す
。
が異なる特異的に結合する分子を含み、各々が各特異的に結合する分子を特異的
に結合する結合体に結合され、そしてここで各特異的に結合する分子は、異なる
分析物を結合し、そしてここで異なる特異的に結合する分子に結合される各結合
体は、他の半導体ナノクリスタルとは異なる特徴的なスペクトル発光を有する半
導体ナノクリスタルを含み;そしてここで第一の複合体において特定の特異的に
結合する分子と結合された任意の選択された半導体ナノクリスタルのスペクトル
発光における変化は、特定の特異的に結合する分子を結合する分析物の存在を示
す。
結合体が特異的に結合する分子に結合される場合、実施例13で記載されるよう
に、半導体ナノクリスタルは光を放出する。さらに、本方法は、以下であり得る
。複数の第一の複合体が提供され、各々が異なる特異的に結合する分子を含み、
各々が各特異的に結合する分子を特異的に結合する結合体に結合され、そしてこ
こで各特異的に結合する分子は、異なる分析物を結合し、そしてここで異なる特
異的に結合する分子に結合される各結合体は、他の半導体ナノクリスタルとは異
なる特徴的なスペクトル発光を有する半導体ナノクリスタルを含み;そしてここ
で第一の複合体において特定の特異的に結合する分子と結合された任意の選択さ
れた半導体ナノクリスタルのスペクトル発光における変化は、特定の特異的に結
合する分子を結合する分析物の存在を示す。
は核酸配列であり得、同じかまたは異なるかのいずれかであり;核酸配列は、一
つ以上の染色体フラグメント上で存在し得;核酸配列は、DNAまたはRNAで
あり得;半導体ナノクリスタル結合体は、抗体、アプタマー、または少なくとも
1つのポリマー鎖反応プライマーを含み得;特異的に結合する分子は、核酸分子
(例えば、オリゴヌクレオチド、DNA、RNA、アプタマー、タンパク質、レ
セプター、抗体、多糖類または小分子)を含み得る。
て、当業者が容易に思いつくだろう。
学の従来の方法を使用する。このような技術は、文献で十分に説明される。
)」、「1つの(an)」および「その(the)」は、内容が他をはっきり指
示しない限り、複数の言及を含む。従って、例えば、「半導体ナノクリスタル」
に対する言及は、2つ以上のこのような半導体ナノクリスタルの混合物を含み、
「分析物」は、1つより多くのこのような分析物などを含む。
るように定義されることが意図される。
ル」は、本明細書中で交換可能に使用され、そして直径が約1nmと約1000
nmとの間あるいはその間の任意の整数または端数(fraction)、好ま
しくは約2nmと約50nmとの間、あるいはその間の任意の整数または端数、
より好ましくは約2nm〜約20nm(例えば、約2、3、4、5、6、7、8
、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、または
20nm)の無機クリスタライトをいう。半導体ナノクリスタルは、励起におい
て、電磁放射を放射可能であり(すなわち、半導体ナノクリスタルは、発光性で
ある)、そして1つ以上の第一半導体材料の「コア」を含み、そして第2の半導
体材料の「シェル」により囲まれ得る。半導体シェルにより囲まれた半導体ナノ
クリスタルコアは、「コア/シェル」半導体ナノクリスタルといわれる。囲む「
シェル」の材料は、好ましくは、コア材料のバンドギャプエネルギーより大きい
バンドギャプエネルギーを有し、そして「コア」基質のバンドギャプエネルギー
に近い原子空間を有するように選択され得る。コアおよび/またはシェルは、半
導体の材料であり得、以下を含むがこれらに限定されない:群II−VI(Zn
S、ZnSe、ZnTe、CdS、CdSe、CdTe、HgS、HgSe、H
gTe、MgS、MgSe、MgTe、CaS、CaSe、CaTe、SrS、
SrSe、SrTe、BaS、BaSe、BaTeなど)物質および群III−
V(GaN、GaP、GaAs、GaSb、InN、InP、InAs、InS
bなど)物質および群IV(Ge、Siなど)物質の半導体材料、ならびにアロ
イまたはその混合物。
より囲まれる。有機キャッピング剤は、任意の数の物質であり得るが、半導体ナ
ノクリスタル表面に対する親和性を有する。一般に、キャッピング剤は、単離さ
れた有機分子、ポリマー(または重合反応のためのモノマー)、無機複合体、お
よび伸展された結晶構造であり得る。コートは、溶解度(例えば、コートされた
半導体ナノクリスタルを、均質に選択された溶媒中に分散させる能力)、機能性
、結合特性などを伝えるために使用される。さらに、コートは、半導体ナノクリ
スタルの光学的特性を合わせるために使用される。キャップされた半導体ナノク
リスタルを産生する方法は、さらに以下で議論される。
クリスタル」は、本明細書中で使用される場合、コートされた半導体ナノクリス
タルコア、ならびにコア/シェル半導体ナノクリスタルを示す。
セスが意味される。ルミネセンスは、フォトンの形態で対応するエネルギーの放
出を伴って、励起状態からより低い状態に「緩和している(relaxing)
」系から生じる。これらの状態は、電子、振動、回転、またはこの3つの任意の
組み合わせであり得る。ルミネセンスの原因の遷移は、化学的に系に保存される
かまたは外部の源から系に添加されるエネルギーの放出を介して刺激され得る。
外部のエネルギー源は、基底状態より高い状態に励起される系を引き起こすこと
が可能な、化学的型、熱的型、電気的型、磁気的型、電磁気的型、物理的型また
は任意の他の型を含む種々の型であり得る。例えば、系は、光のフォトンを吸収
することによるか、電界に置かれることによるか、または化学的酸化還元反応を
介して、励起され得る。ルミネセンスの間に放出されるフォトンのエネルギーは
、低エネルギーのマイクロ波放射から高エネルギーX線放射までの範囲であり得
る。代表的に、ルミネセンスは、UVからIR放射までの範囲のフォトンをいう
。
%の粒子、より好ましくは集団において75%〜90%の粒子、またはこの範囲
の間の任意の整数が、特定された粒子の大きさの範囲内にあたる。単分散化さら
た粒子の集団は、直径10%rms(平方自乗平均)より少なく、そして好まし
くは5%rmsより少なく外れる。
の1つ以上の粒子サイズの分散」と同義に使用される。当業者は、半導体ナノク
リスタルの粒子サイズが、粒子サイズの分散として実際に得られることを認識す
る。
たは「狭いスペクトル準位幅」の使用により、100nmも帯域幅を伸展し得る
レッドテール(red tail)を有する代表的な色素分子についての約10
0nmの発光帯域幅と対照的に、約40nmを越えない発光の波長帯域、および
好ましくは幅において約20nmを越えず、そして中心について対称である発光
の波長帯域が意味される。言及される帯域幅は、ピークの半分の高さ(FWHM
)における、発光の全幅の測定から決定され、そして200nm〜2000nm
の範囲が適切である。
開始放射(onset radiation)の波長(開始放射は、半導体ナノ
クリスタルにより吸収されることが可能な最も長い波長(最も低いエネルギー)
の放射であると理解される)、と等しいか、またはこれより短い波長を有する放
射の吸収が意味される。この開始は、発光の「狭い波長帯域」に近いが、これよ
り少し高いエネルギーで起こる。これは、高いエネルギー側における発光のピー
クの近くで起きるが、その波長から離れるとすぐ落ちる色素分子の「狭い吸収帯
域」と対照的で、そしてしばしば、発光から100nm以外の波長においてごく
わずかである。
分子」は、リボヌクレオチドまたはデオキシリボヌクレオチドのいずれかの、任
意の長さのヌクレオチドのポリマー形態を含むように本明細書中で使用される。
この用語は、分子の一次構造のみをいう。従って、この用語は、三本鎖、二本鎖
および一本鎖のDNA、ならびに三本鎖、二本鎖および一本鎖のRNAを含む。
これはまた、メチル化および/またはキャッピングによるような改変、ならびに
ポリヌクレオチドの未改変形態を含む。より詳細には、用語「ポリヌクレオチド
」、「オリゴヌクレオチド」、「核酸」および「核酸分子」は、ポリデオキシリ
ボヌクレオチド(2−デオキシ−D−リボースを含む)、ポリリボヌクレオチド
(D−リボースを含む)、プリンまたはピリミジン塩基および非ヌクレオチド幹
を含む他のポリマー(例えば、ポリアミド(例えば、ペプチド核酸(PAN))
およびポリモルホリノ(Anti−Virals,Inc.,Corvalli
s,OregonからNeugeneとして市販)ポリマー)のN−またはC−
グリコシドである任意の他の型のポリヌクレオチド、ならびにDNAおよびRN
Aにおいて見出されるような塩基対形成および塩基スタッキングを可能にする配
置で核酸塩基を含むポリマーを提供する他の合成配列特異的核酸ポリマーを含む
。これらは、用語「ポリヌクレオチド」、「オリゴヌクレオチド」、「核酸」お
よび「核酸分子」の間の長さにおける区別は意図されず、そしてこれらの用語は
交換可能に使用される。これらの用語は、分子の一次構造のみをいう。従って、
これらの用語は、例えば3’−デオキシ−2’,5’−DNA、オリゴデオキシ
リボヌクレオチドN3’P5’ホスホルアミデート、2’−O−アルキル−置換
RNA、二本鎖および一本鎖DNA、ならびに二本鎖および一本鎖RNA、DN
A:RNAハイブリッド、ならびにPNAとDNAまたはRNAとの間のハイブ
リッドを含み、そしてまた公知の型の改変(例えば、当該分野で公知の標識、メ
チル化、「キャップ」、天然に存在する1つ以上のヌクレオチドのアナログでの
置換、例えば無電荷結合での改変(例えば、メチルホスホネート、ホスホトリエ
ステル、ホスホルアミデート、カルバメートなど)、陰電荷結合での改変(例え
ば、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエートなど)、および正電荷結合での
改変(例えば、アミノアルキルホルホルアミデート(aminoalklyph
osphoramidates)、アミノアルキルホスホトリエステル)、タン
パク質(ヌクレアーゼ、毒素、抗体、シグナルペプチド、ポリ−L−リジンなど
を含む)のようなペンダント部分を含む改変、インターカレーター(例えば、ア
クリジン、ソラレンなど)を用いる改変、キレーター(例えば、金属、放射活性
金属、ホウ素、酸化金属など)を含む改変、アルキル化剤(alkylator
)を含む改変、改変された結合(例えば、αアノマー核酸など)を用いる改変の
ようなヌクレオチド間の改変、ならびにポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオ
チドの未改変形態)も含む。詳細には、DNAはデオキシリボ核酸である。
れ、そして標的ヌクレオチド配列を含む一本鎖または二本鎖の核酸分子を含む。
分析物核酸は、種々の供給源の形態(例えば、生物学的流体または固体、染色体
、食料品、環境物質など)であり得、そして種々の手段(例えば、プロテイナー
ゼ K/SDS、カオトロピック塩など)によるハイブリダイゼーション分析の
ために調製され得る。
ド配列」は、標的分子中に含まれるプローブがハイブリダイズする領域を含む。
用語「標的核酸配列」は、所望の条件下でプローブが安定なハイブリッドを形成
する配列を含む。
存在する核酸配列に相補的な核酸配列を含む、上記で規定されたポリヌクレオチ
ドからなる構造に対する参照を含む。プローブのポリヌクレオチド領域は、DN
A、および/またはRNA、および/または合成ヌクレオチドアナログからなり
得る。
性を有する必要がないことが理解される。多くの状況において、安定なハイブリ
ッドは、約10%未満の塩基が4つ以上のヌクレオチドの不一致の無視したルー
プ(mismatches,ignoring loops)である部位で形成
する。従って、本明細書中で使用される場合、用語「相補的に」とは、アッセイ
条件下で、一般的には約90%以上の相同性の部位でその「相補体」と安定な二
重鎖を形成するオリゴヌクレオチドをいう。
的分子を認識し、そして結合する一本鎖または二本鎖DNAあるいは一本鎖RN
A分子をいうように本明細書中で使用される。例えば、PCT公開番号WO92
/14843、WO91/19813、およびWO92/05285を参照のこ
と。
、そしてペプチド結合を介して結合したアミノ酸の分子鎖を含む。この用語は、
特定の長さの産物については言及しない。従って、「ペプチド」、「オリゴペプ
チド」および「タンパク質」は、ポリペプチドの規定に含まれる。この用語は、
ポリペプチドの翻訳後の改変(例えば、グリコシル化、アセチル化、リン酸化な
ど)を含む。さらに、タンパク質フラグメント、アナログ、変異されたタンパク
質または改変体タンパク質、融合タンパク質などは、ポリペプチドの意味に含ま
れる。
1の分子および第2の分子をいう。サンプル中の結合対の第1メンバーの結合対
の第2メンバーへの「特異的結合」は、このサンプル中の他の成分よりも大きな
親和性および特異性を伴う第1メンバーの第2メンバーへの結合(逆も同様)に
よって証明される。この結合対のメンバー間の結合は、代表的には非共有結合的
である。文脈が明らかに逆を示さない限り、用語「親和性分子」および「標的分
析物」は、それぞれ結合対の第1メンバーおよび第2メンバーをいうように本明
細書中で使用される。
えば、ジゴキシゲニンおよび抗ジゴキシゲニン;フルオレセインおよび抗フルオ
レセイン;ジニトロフェノールおよび抗ジニトロフェノール;ブロモデオキシウ
リジンおよび抗ブロモデオキシウリジン;マウス免疫グロブリンおよびヤギ抗マ
ウス免疫グロブリン)、ならびに非免疫学的結合対(例えば、ビオチン−アビジ
ン、ビオチン−ストレプトアビジン、ホルモン[例えば、チロキシンおよびコル
チゾール]−ホルモン結合タンパク質、レセプター−レセプターアゴニストまた
はアンタゴニスト(例えば、アセチルコリンレセプター−アセチルコリンまたは
そのアナログ)IgG−プロテインA、レクチン−炭水化物、酵素−酵素補因子
、酵素−酵素−インヒビター、ならびに核酸二重鎖を形成し得る相補的ポリヌク
レオチド対)などと組み合わせた、任意のハプテン化合物または抗原性化合物を
含む。
能に使用され、そしてサンプル中に存在する検出可能な物質に、化学的または物
理的手段を介して選択的に結合する分子をいう。「選択的に結合」によって、分
子が目的の標的に優先的に結合するか、または他の分子よりも大きな親和性を伴
って標的に結合することが意味される。例えば、抗体はその抗体が惹起される抗
原に選択的に結合し;DNA分子は、実質的に相補的な配列に結合するが、関連
しない配列には結合しない。親和性分子は、半導体ナノクリスタルに結合され得
る任意の分子または任意の分子の部分を含み得、そしてこのように結合される場
合、検出可能な物質を特異的に認識し得る。このような親和性分子としては、例
示の目的で、以下に規定されるような抗体物質のクラス、モノマーまたはポリマ
ーの核酸、アプタマー、タンパク質、多糖類、糖など(例えば、Hauglan
d、「Handbook of Fluorescent Probes an
d Research Chemicals」(第6版)を参照のこと)、およ
び上記の結合対を形成し得る任意の分子が挙げられる。
結合されるか、または会合される半導体ナノクリスタルである。「半導体ナノク
リスタル結合体」は、例えば、サンプル(例えば、本明細書中で規定する生物学
的サンプル)中に存在する検出可能な物質に選択的に結合する「結合対」または
「特異的に結合する分子」のメンバーに、外被を介して結合するか、またはさも
なくば会合する半導体ナノクリスタルを含む。半導体ナノクリスタルに結合する
結合対の第1メンバーは、半導体ナノクリスタルに結合され得る任意の分子また
は任意の分子の部分を含み得、そしてこのように結合した場合、結合対の第2メ
ンバーを特異的に認識し得る。
モノクローナル調製物の両方から得られる抗体、ならびに以下を含む:ハイブリ
ッド(キメラ)抗体分子(例えば、Winterら(l991)Nature
349:293−299;および米国特許第4,816,567号を参照のこと
);F(ab’)2およびF(ab)フラグメント;Fv分子(非共有結合へテ
ロダイマー、例えば、Inbarら(1972)Proc Natl Acad
Sci USA 69:2659−2662;およびEhrlichら(19
80)Biochem 19:4091−4096を参照のこと);単鎖Fv分
子(sFv)(例えば、Hustonら(1988)Proc Natl Ac
ad Sci USA 85:5879−5883を参照のこと);ダイマーお
よびトリマーの抗体フラグメント構築物;ミニボディー(minibodies
)(例えば、Packら(1992)Biochem 31:1579−158
4;Cumberら(1992)J Immunology 149B:120
−126を参照のこと);ヒト化抗体分子(例えば、Riechmannら(1
988)Nature 332:323−327;Verhoeyanら(19
88)Science 239:1534−1536;および1994年9月2
1日公開の英国特許公開番号GB2,276,169を参照のこと);ならびに
このような分子から得られる任意の機能的フラグメントであって、ここでこのよ
うなフラグメントは親の抗体分子の特異的結合特性を保持する。
団を有する抗体組成物をいう。この用語は、抗体の種または供給源について限定
されず、これらが作製される様式によっても限定されるようには意図されない。
従って、この用語はマウスのハイブリドーマから得られる抗体、ならびにマウス
ハイブリドーマよりもむしろヒトを使用して得られるヒトモノクローナル抗体を
含む。例えば、Coteら、Monoclonal Antibodies a
nd Cancer Therapy,Alan R.Liss,1985,7
7頁を参照のこと。
学的に結合するか、または会合する場合に、特異的に結合する分子または結合対
のメンバーに「結合」または「接合」するか、あるいは「会合」する。従って、
これらの用語は、半導体ナノクリスタルが、特異的に結合する分子に直接結合さ
れ得るか、またはリンカー部分を介して(例えば、以下に記載の化学的リンカー
を介して)結合され得るかのいずれかであることを意図する。この用語は、例え
ば化学的共有結合、ファンデルワールス力または疎水性相互作用のような物理的
な力、カプセル化、包埋などによって物理的に結合される特徴を示す。本発明の
範囲を限定しない例として、ナノクリスタルは、細胞、タンパク質、核酸、細胞
下の細胞小器官および他の細胞下の構成成分のような生物学的化合物に物理的に
相互作用し得る分子に結合され得る。例えば、ナノクリスタルは、タンパク質、
アビジンおよびストレプトアビジンに結合し得るビオチンに会合し得る。また、
ナノクリスタルは、非特異的または配列特異的に核酸(DNA RNA)に結合
する分子に会合し得る。本発明の範囲を限定しない例として、このような分子と
しては以下が挙げられる:DNAの副溝に結合する小分子(総説として、Gei
erstangerおよびWemmer(1995)Ann.Rev.Biop
hys.Biomol.Struct.24:463−493;ならびにBag
uley(1982)Mol.Cell.Biochem 43:167−18
1を参照のこと)、DNAおよびRNAと付加物を形成する小分子(例えばCC
−1065、HendersonおよびHurley(1996)J.Mol.
Recognit.9:75−87を参照のこと;アフラトキシン、Garne
r(1998)Mutat.Res.402:67−75を参照のこと;シスプ
ラチン、LengおよびBrabec(1994)IARC Sci.Publ
.125:339−348を参照のこと)、DNAの塩基対間にインターカレー
トする分子(例えば、メチジウム、プロピジウム、エチジウム、ポルフィリンな
ど、総説として、Baillyら、J.Mol.Recognit.5:155
−171を参照のこと)、ブレオマイシン、ネオカルチノスタチンおよび他のエ
ンジイン(enediynes)のような放射線様のDNAに有害な薬剤(総説
として、Povirk(1996)Mutat.Res.355:71−89を
参照のこと)、ならびに酸化を通して核酸に結合し、かつ/または核酸を損傷す
る金属錯体(例えば、Cu−フェナントロリン、Perrinら(1996)P
rog.Nucleic Acid Res.Mol.Biol.52:123
−151を参照のこと;Ru(II)およびOs(II)錯体、Moucher
onら(1997)J.Photochem.Photobiol.B 40:
91−106を参照のこと;DNAの化学的または光化学的プローブ、Niel
sen(1990)J.Mol.Recognit.3:1−25を参照のこと
。
組織または流体のサンプル(例えば、血漿、血清、脊髄液、精液、リンパ液、(
皮膚、気道、腸管、および尿生殖器管の)外分泌物(section)、涙、唾
液、乳汁、血球、腫瘍、器官が挙げられるがこれらに限定されない)、ならびに
インビトロ細胞培養構築物(細胞培養培地中の細胞、推定のウイルス感染細胞、
組換え細胞および細胞成分の増殖から生じた馴化培地を含むが、これらに限定さ
れない)のサンプルをいう。
、有機化合物または無機化合物を含むと規定される。代表的には、低分子は、い
くつかの炭素−炭素結合を含み、そして1500g/Molの未満の分子量を有
することで特徴付けられる。
、脂質などのような、合成または天然に存在する分子である。
洗浄工程なしで行われるアッセイである。従って、例えば、均一HTSアッセイ
は、容器(例えば、試験管またはサンプルウェル)への試薬の添加、次いで特定
のウェルからの結果の検出を含む。均一HTSアッセイは、試験管もしくはウェ
ル中の溶液中で、試験管もしくはウェルの表面上で、試験管もしくはウェル内に
置かれたビーズもしくは細胞上などで行われ得る。代表的に使用される検出系は
、蛍光、化学発光、またはシンチレーションの検出系である。
的状態が、1つより多くの検出可能な標識を使用することにより、同時に検出さ
れ得る、アッセイまたは他の分析方法の実行を含むように、本明細書中で使用さ
れる。これらの検出可能な標識の各々は、別個の波長で、別個の強度を有し、別
個のFWHMを有し、別個の蛍光寿命を有し、またはこれらの任意の組合せで発
光する。好ましくは、検出可能な標識のそれぞれは、結合対の複数の第1のメン
バーのうち1つに連結され、これらの第1のメンバーの各々は、個別の対応する
第2の結合対のメンバーに結合し得る。個別の発光スペクトルを有する半導体ナ
ノクリスタルを使用する多重化法を使用して、2〜1,000,000種の範囲
、好ましくは2〜10,000種の範囲、より好ましくは2〜100種の範囲、
またはこれらの範囲の間、およびなおより好ましくは10〜20までの範囲の任
意の整数(例えば、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13
、14、15、16、17、18、19、もしくは20)種の分析物、生物学的
化合物または生物学的状態を、同時に検出し得る。多重化はまた、別個の発光ス
ペクトルを有する1つより多くの半導体ナノクリスタルの組合せが、単一の分析
物を検出するために使用され得るアッセイまたは方法を含む。
イズ分布、組成またはこれらの任意の組み合わせの半導体ナノクリスタルをいう
。各々のサイズ、サイズ分布および/または組成の半導体ナノクリスタルは、特
徴的な発光スペクトル(例えば、波長、強度、FWHM、および/または蛍光寿
命)を有する。特定の半導体ナノクリスタルのサイズを制御することによって発
光エネルギーを調整し得ることに加えて、特定の波長で観測される特定の発光の
強度はまた、変化され得、したがって半導体ナノクリスタルバーコード系により
提供される潜在的な情報密度を増加し得る。好ましい実施形態において、2〜1
5の異なる強度が所望の波長での特定の発光について達成され得るが、当業者は
、目的の特定の適用に依存して15より多くの異なる強度が達成され得るという
ことを理解する。本発明の目的のために、目的の品目、化合物または物質に結合
されるか、包埋されるか、または会合される特定のサイズの半導体ナノクリスタ
ルの濃度を変化させることにより、異なる強度が達成され得る。「バーコード」
は、目的の特定の品目、化合物または物質の配置またはアイデンティティの決定
を可能にする。例えば、以下にさらに記載されるように、半導体ナノクリスタル
を使用して、スペクトル的核型について、染色体ならびに染色体の部分をバーコ
ード化し得る。
される事象または状況が起こっても起こらなくてもよいということ、ならびにこ
の記載がその事象または状況が起こる例および起こらない例を含むということを
意味する。例えば、句「必要に応じてシェル材料でコーティングされる」は、本
発明の範囲内に含まれるために、コーティングが存在しても存在しなくてもよい
ということ、ならびにこの記載がこのようなコーティングの存在および非存在の
両方を含むということを意味する。
セイ形式、材料または試薬に限定されないということが理解される。本明細書中
で使用される用語は、本発明の特定の実施形態を記述する目的のみであり、かつ
限定を意図されないということもまた理解されるべきである。
本発明の実施において使用され得るが、好ましい材料および方法は、本明細書中
に記載される。
以上の分子の存在または量を検出し、ならびに生物学的相互作用、生物学的プロ
セス、生物学的プロセスにおける変化、または化学的または生物学的化合物の構
造の変化を検出する、化学的アッセイおよび生物学的アッセイを提供する。
導体ナノクリスタルが一次エネルギー源で照射される場合、半導体ナノクリスタ
ルで使用される半導体材料のバンドギャップに対応する周波数でエネルギーの二
次発光が起こる。量子閉じ込め粒子において、バンドギャップエネルギーは、ナ
ノクリスタルのサイズおよび/または組成の関数である。種々のサイズおよび/
または組成の半導体ナノクリスタルの混合集団は、単一の波長の光を使用して同
時に励起され得、そして検出可能な発光が、複数の波長で起こるように設計し得
る。発光放出は、その集団の構成半導体ナノクリスタルのサイズおよび/または
組成に関連する。
にカプセル化するシェル材料の使用により、高度に発光性に作製され得る。「コ
ア/シェル」半導体ナノクリスタルは、高い量子効率および有意に改善された光
化学的安定性を有する。「コア/シェル」半導体ナノクリスタルの表面は、以下
に記載される技術によって、種々の生物学的分子または物質に結合され得る半導
体ナノクリスタルを生成するために改変され得る:例えば、Bruchezら、
(1998)Science 281:2013−2016,Chanら、(1
998)Science 281:2016−2018,Bruchez「Lu
minescent Semiconductor Nanocrystals
:Intermittent Behavior and use as Fl
uorescent Biological Probes」(1998)博士
論文、University of California、Berkeley
,Mikulee「Semiconductor Nanocrystal C
olloids:Manganese Doped Cadmium Sele
nide、(Core)Shell Composites for Biol
ogical Labelling,and Highly Fluoresc
ent Cadmium Telluride」(1999)博士論文、Mas
sachusetts Institute of Technology,お
よび以下にさらに記載される技術。
ることは容易に明らかである。さらに、半導体ナノクリスタルの集団は、複数の
標的の同時検出、または(例えば、化合物のライブラリーにおける)目的の特定
の化合物および/または品目の検出のいずれかのために使用され得る。
導体ナノクリスタルの組成物は、目的の特定の品目の配置または供給源を追跡す
るため、または目的の特定の品目を同定するためのいずれかのためのアッセイに
おいて「バーコード」として使用され得る。このような「バーコード化」スキー
ムにおいて使用される半導体ナノクリスタルは、これらの半導体ナノクリスタル
の組成およびサイズまたはサイズ分布を変化させることにより、特徴的なスペク
トル発光を生成するために所望の波長に調整され得る。さらに、特定の特徴的な
波長における発光の強度は、変化され得、従って二元または高次のコード化スキ
ームの使用を可能にする。半導体ナノクリスタルによりコード化される情報は、
分光学的に解読され、従って目的の特定の品目または成分の配置および/または
アイデンティティを提供する。
特の特徴からもたらされる。半導体ナノクリスタルは、バルク励起子ボーア半径
より小さい半径を有し、そして分子と物質のバルク形態との間の中間のクラスの
物質を構成する。全ての3次元において、電子およびホールの両方の量子閉じ込
めは、クリスタリットのサイズを減少して、物質の有効バンドギャップの増大を
もたらす。結果として、半導体ナノクリスタルの光吸収および発光の両方は、ブ
ルーシフト(より高いエネルギー)する。最初の光源に暴露されると、各半導体
ナノクリスタル分布は、狭いスペクトル線幅(12nm〜60nmFWHMほど
の狭さ)で、そして対称的な、ほぼガウス線形状でエネルギーを放出し得、従っ
て、特定の半導体ナノクリスタルを同定する容易な方法を提供する。当業者が理
解するように、線幅は、各調製物中の半導体ナノクリスタルのサイズ不均一性(
すなわち、単分散性)に依存する。単一の半導体ナノクリスタル複合体は、12
nm〜15nmほど狭いFWHMを有することが観察されている。さらに、35
nm〜60nmの範囲より大きい線幅を有する半導体ナノクリスタル分布は、容
易に作製され得、そしてより狭い線幅を有する半導体ナノクリスタルと同じ物理
学的特徴を有する。
在および/または量;生物学的分子の構造、組成およびコンホメーション;ある
環境における生物学的部分(例えば、生物学的標的分析物)の局在性;生物学的
分子の相互作用;生物学的化合物の構造における変化;および/または生物学的
プロセスにおける変化を検出するために使用され得る。
に使用されてきた種々のアッセイにおける用途を提供する。これらのアッセイと
しては、蛍光顕微鏡法、組織学、細胞学、病理学、フローサイトメトリー、FI
SHおよび他の核酸ハイブリダイゼーションアッセイ、シグナル増幅アッセイ、
DNAおよびタンパク質配列決定法、イムノアッセイ(例えば、競合結合アッセ
イおよびELISA)、免疫組織化学分析、タンパク質および核酸分離、均一ア
ッセイ、多重化、ハイスループットスクリーニング、染色体核型などが限定せず
に挙げられる。
技術を使用して作製される。例えば、米国特許第6,048,616号;同第5
,990,479号;同第5,690,807号;同第5,505,928号;
同第5,262,357号;ならびにPCT出願公開番号99/26299(1
999年5月27日公開)を参照のこと。特に、本発明の生物学的および化学的
アッセイにおける半導体ナノクリスタルとしての、使用のための例示的な物質は
、以下を含むが、これらに限定されない:上記のようなもの(例えば、ZnS、
ZnSe、ZnTe、CdS、CdSe、CdTe、MgS、MgSe、MgT
e、CaS、CaSe、CaTe、SrS、SrSe、SrTe、BaS、Ba
Se、BaTe、GaN、GaP、GaAs、GaSb、InP、InAs、I
nSb、AIS、AIP、AlSb、PbS、PbSe、GeおよびSiのよう
なII−VI族、III−V族、およびIV族の半導体ならびにその三元混合物
および四元混合物)。半導体ナノクリスタルは、それらの均一なナノメートルサ
イズによって特徴付けられる。
タルのサイズの選択は、半導体ナノクリスタルの特性スペクトル発光波長に影響
を与える。従って、当業者が理解するように、上に列挙された半導体ナノクリス
タルの特定の組成は、モニターされるスペクトル領域に基づいて選択される。例
えば、可視領域のエネルギーを放出する半導体ナノクリスタルには、以下が挙げ
られるが、これらに限定されない:CdS、CdSe、CdTe、ZnSe、Z
nTe、GaP、およびGaAs。近IR領域のエネルギーを放出する半導体ナ
ノクリスタルには、以下が挙げられるが、これらに限定されない:InP、In
As、InSb、PbS、およびPbSe。最後に、青〜近紫外のエネルギーを
放出する半導体ナノクリスタルには、以下が挙げられるが、これらに限定されな
い:ZnSおよびGaN。
成物について、半導体ナノクリスタルの特定の組成物のサイズを制御することに
よって、所望の波長への発光を調節することが可能である。好ましい実施形態に
おいて、5〜20の個別の発光(互いに区別可能な5〜20の異なるサイズの集
団または分布)、より好ましくは10〜15の個別の発光は、任意の特定の組成
物に対して得られるが、当業者は、5より少ない発光および20より多い発光が
、半導体ナノクリスタル粒子の単分散性に依存して使用され得ることを理解する
。高い情報密度が必要とされる、従って、より多くの数の個別の発光が必要とさ
れる場合、ナノクリスタルは、上記のサイズ範囲内で、好ましくは、実質的に、
単分散である。
子が、実質的に同一のサイズおよび形状を有するコロイド系を意味する。好まし
い実施形態において、高い情報密度適用のための好ましい実施形態において、単
分散粒子は、直径において、10%未満のrms、好ましくは5%未満のずれを
有する。単分散半導体ナノクリスタルは、Murrayら(1993)J.Am
.Chem.Soc.115:8706およびMurray,「Synthes
is and Characterization of II−VI Qua
ntum Dots and Their Assembly into 3−
D Quantum Dot Superlattices」(1995)博士
論文,Massachusetts Institute of Techno
logyに詳細に記載されている。当業者はまた、所定の組成物に対して明確に
観察され得る個別の発光の数は、粒子の単分散性だけでなく、使用される逆重畳
積分(deconvolution)技術にも依存することを理解する。半導体
ナノクリスタルは、色素分子とは異なり、Gaussianとして容易にモデル
化され、そして従って、より容易にかつより正確に逆重畳積分される。
多分散の粒子を使用することは、より経済的に魅力的である。従って、高い情報
密度を必要としない適用に対して、発光の線幅は、40〜60nmの範囲にあり
得る。
ナノクリスタルにオーバーコーティング層を添加することによって、発光の効率
を高めるように改変され得る。このオーバーコーティング層は、特に好ましい。
なぜなら、半導体ナノクリスタル表面において、表面欠陥は、電子に対するトラ
ップまたは半導体ナノクリスタルの電気的および光学的特性を下げるホールを生
じ得るからである。半導体ナノクリスタルの表面の絶縁層は、界面での化学ポテ
ンシャルにおける原子的な急激なジャンプを提供し、このジャンプは、電子に対
するトラップおよびホールとして作用するエネルギー状態を除外する。このこと
は、ルミネセンスプロセスにおいてより高い効率を生じる。
りも高いバンドギャップエネルギーを有する半導体材料を含む。さらに、半導体
ナノクリスタルコアよりも高いバンドギャップエネルギーを有することに加えて
、 オーバーコーティング層のための適切な材料は、コア半導体ナノクリスタルに関
して、良好な伝導帯および価電子帯の差(offset)を有すべきである。従
って、その伝導帯は、コア半導体ナノクリスタルの伝導帯よりも好ましくは高く
、そして価電子帯は、コア半導体ナノクリスタルの価電子帯よりも好ましくは低
い。可視(例えば、CdS、CdSe、CdTe、ZnSe、ZnTe、GaP
、GaAs)または近IR(例えば、InP、InAs、InSb、PbS、P
bSe)のエネルギーを放出する半導体ナノクリスタルコアに対して、紫外線領
域にバンドギャップエネルギーを有する材料が使用され得る。例示的な材料には
、ZnS、GaN、およびマグネシウムカルコゲニド(例えば、MgS、MgS
e、およびMgTe)が挙げられる。近IRで発光する半導体ナノクリスタルコ
アに対して、可視にバンドギャップエネルギーを有する材料(例えば、CdSま
たはCdSe)がまた、使用され得る。コーティングされた半導体ナノクリスタ
ルの調製は、例えば、Dabbousiら(1997)J.Phys.Chem
.B 101:9463)およびKunoら(1997)J.Phys.Che
m.106:9869に見出され得る。
olvent)中で調製される。この配位溶媒には、トリオクチルホスフィンオ
キシド(TOPO)およびトリオクチルホスフィン(TOP)が挙げられ、有機
溶媒からなるナノクリスタル表面上に不動態化有機層に形成を生じる。この層は
、オーバーコーティングを含む半導体ナノクリスタルおよびオーバーコーティン
グを含まない半導体ナノクリスタル上に存在する。従って、不動態化半導体ナノ
クリスタルのこれらのクラスのいずれかは、有機溶媒(例えば、トルエン、クロ
ロホルムおよびヘキサン)に容易に溶解する。当業者が理解するように、これら
の機能性部分は、さらに以下に記載されるように、半導体ナノクリスタルを本発
明の検出可能な標識としての使用のために適切にする外部コーティングを提供す
るために、容易に置換され得るか、または改変され得る。さらに、所望の適用に
基づいて、半導体ナノクリスタル機能物(functionality)の一部
分、または半導体ナノクリスタル機能物の表面全体は、その所望の適用に基づい
て、置換反応によって改変され得る。
いての半導体ナノクリスタルの組成物の選択の後、スペクトル同定のための十分
な強度の個別および固有のスペクトル発光を観測するために必要とされる最小の
数の半導体ナノクリスタルを選択することもまた、所望され得る。十分な強度の
個別および固有のスペクトル発光を観測するために必要な最小数の半導体ナノク
リスタルを決定する際に重要な選択基準は、明るい十分な数の半導体ナノクリス
タル(すなわち、光を放出するナノクリスタル対暗いナノクリスタル)を提供す
ることおよび単一の半導体ナノクリスタル発光におけるブリンキング効果にわた
った平均するための十分な数の半導体ナノクリスタルを提供することを包含する
。Nirmalら,(1996)Nature 383:802。
提供され得る。例えば、所望の使用方法が、特定の組成の3つの異なる粒子サイ
ズ分布を利用する場合、半導体ナノクリスタルの3つの異なる粒子サイズ分布の
8つのそれぞれが、位置に関する信頼のおける情報または目的の特定の分析物の
同定を提供するための各々からの十分な強度のスペクトル発光を観測するために
、使用される。しかし、当業者は、8より少ない特定の組成および粒子サイズの
分布の半導体ナノクリスタルが、上記の選択基準によって決定されるように十分
な強度の固有のスペクトル発光が観測される場合、利用され得ることを理解する
。
得、ここで、各集団は、異なる特徴的な光ルミネセンススペクトルを示す。半導
体ナノクリスタルの複数の集団のそれぞれは、多重アッセイまたは分析方法にお
ける使用のための結合対の個別の第一のメンバーに結合体化され得、ここで、結
合対の複数の対応する第二のメンバーの各々が同じに検出され得る。
ペクトルについて観測された、テーリング(tailing)領域を欠く狭いス
ペクトル線幅およびほぼガウス対称の線形は、複数のナノクリスタルを有する系
における高いスペクトル分解能を可能にする。理論上は、1020以上までの異
なるサイズのナノクリスタルまたはナノクリスタルの異なる調製物とは異なる、
ナノクリスタルの単分散集団のサイズ分布(各サンプルは、異なる発光スペクト
ルを有する)が、1つの系で同時に使用され得る(すなわち、多重性、重なった
スペクトルが、当該分野で周知の技術(例えば、必要に応じて、逆重畳積分ソフ
トウェアを使用するか、または使用することなく)を使用して容易に分離され得
る)。
、個別の光学遷移を生成する半導体ナノクリスタルの能力は、汎用かつ高密度コ
ーディングスキームの開発を可能にする。特定の支持体、化合物または物質に取
り付けられたか、それらと会合したか、またはそれらの中に埋包された半導体ナ
ノクリスタルの1以上のサイズによって生成された特性発光は、目的の分析物お
よび/またはその位置の同定を可能にする。例えば、N個のサイズの半導体ナノ
クリスタル(各々は、個別の光学遷移を有する)を提供することによって(各々
は、半導体ナノクリスタルの不在または特定の個別の光学遷移から生じる異なる
強度から生じるから生じるM個の区別可能な状態を有する)、M”個の異なる状
態が、固有に規定され得る。Mが2であり、2つの状態が半導体ナノクリスタル
の存在または非存在である場合、コーディングスキームは、従って、ベース2つ
まりバイナリーコードによって規定される。Mが3であり、3つの状態が2つの
区別可能な強度での半導体ナノクリスタルの存在またはその非存在である場合、
コーディングスキームは、ベース3コードによって規定される。本明細書中で、
このようなベースMコード(ここで、Mは2より大きい)は、より高次のコード
を呼ばれる。バイナリーコードに対するより高次のコードの利点は、より少ない
識別子(identifier)が、同じ情報量をコード化するために必要とさ
れることである。
ード化システムに利用されるハードウェアおよびソフトウェアの両方によって検
出され得る異なる強度の数に依存する。特に好ましい実施形態において、各個の
発光または色は、2〜20の異なる強度で検出され得る。10個の異なる強度が
利用可能である特に好ましい実施形態において、半導体ナノクリスタルの非存在
、または10の異なる強度における半導体ナノクリスタルの検出を含む、ベース
11コードを用いることが可能である。
遷移を観察する能力は、様々な専門分野で用いられ得る強力かつ稠密なコード化
スキームを提供する。一般的に、1つ以上の半導体ナノクリスタルは、バーコー
ドとして作用し得、ここで、1つ以上の半導体ナノクリスタルの各々は、別個の
発光スペクトルを生成する。これらの特徴的な発光は、可視領域のスペクトルの
場合、色として観察され得るか、またはデコード化されて、別個の遷移が観測さ
れる特定の波長についての情報を提供し得る。同様に、赤外線領域または紫外線
領域の発光を生成する半導体ナノクリスタルに関して、別個の光学遷移が生じる
特徴的な波長は、特定の半導体ナノクリスタルの同一性について、故に、目的の
分析物の同一性または位置についての情報を提供する。
生成される光の色は、当業者に明らかである方法によって容易に計算または測定
され得る。これらの測定技術の例として、20Å〜115Åの範囲のサイズのC
dSeのナノクリスタルのバンドギャップは、Murrayら、(1993)、
J.Am.Chem.Soc.115:8706に示される。これらの技術によ
り、半導体ナノクリスタルの適切なサイズ、サイズ分布および/または組成の容
易な計算、ならびに任意の所望の波長の光デバイスを発光し得るナノクリスタル
を生成するための励起光源の選択が可能になる。
、励起源を含む画像化スキーム、モノクロメーター(または画像をスペクトル分
解し得る任意のデバイス、もしくは狭いバンドフィルターのセット)、および検
出器アレイが挙げられるが、これらに限定されない。一実施形態において、この
装置は、検出される発光の波長より短い波長の青色またはUV光源を備える。こ
れは、いくつか名前を挙げると、広帯域UV光源(例えば、前にフィルターを有
するジュウテリウムランプ);白色光源の出力(例えば、モノクロメーターを通
過した後所望の波長を抽出する、キセノンランプまたはジュウテリウムランプ)
;または任意の多数の持続波(cw)ガスレーザー(アルゴンイオンレーザー線
(457、488、514cmなど)が挙げられるが、これらに限定されない)
;HeCdレーザー;GaNおよびGaAs(二重)ベースのレーザー、または
YAGまたはYLFベースのレーザーの二重もしくは三重の出力のような、青色
の固体状態ダイオードレーザー;あるいは、青色の出力を有する任意のパルスレ
ーザーであり得る。
メーターから逆転した第2モノクロメーターを備える2つのシングルモノクロメ
ーター)を通過し得、このモノクロメーターは、例えば、2つの格子またはプリ
ズム、および2つの格子またはプリズム間のスリットからなる。モノクロメータ
ーまたは格子もしくはプリズムはまた、コンピューター制御されたカラーフィル
ターホイールで置き換えられ得、ここで各フィルターは、1つのドットの発光の
波長に集中する狭周波数帯フィルターである。モノクロメーターアセンブリは、
さらなる可撓性を有する。なぜなら、任意の色が、中心波長として選択され得る
からである。さらに、CCDカメラまたはいくつかの他の二次元検出器が、画像
を記録し、そしてソフトウェアカラーが、その画像を上で選択された波長にコー
ド化する。次いで、このシステムは格子を、新しい色まで移動し、そしてこのプ
ロセスを繰り返す。このプロセスの結果として、同じ空間領域の画像のセットが
得られ、そしてそれぞれは、データを迅速に分析するのに必要な特定の波長にカ
ラーコード化される。
キャンシステムである。スキャンスキームにおいて、分析されるサンプルは、顕
微鏡対物レンズに関してスキャンされる。発光は、色を特異的に分解するために
、シングルモノクロメーターまたは格子もしくはプリズムに通される。検出器は
、ダイオードアレイであり、これは次いで、特定の空間位置で発光される色を記
録する。次いで、ソフトウェアが、スキャンされた画像を最後に再生成し、そし
てそれをデコード化する。
スタルを含む組成物を使用し、その結果、この組成物は、生物学的化合物および
化学的化合物の存在および/または量を検出し得、生物系における相互作用を検
出し得、生物学的プロセスを検出し得、生物学的プロセスにおける変化を検出し
得、または生物学的化合物の構造における変化を検出し得る。制限されないが、
半導体ナノクリスタル結合体は、半導体ナノクリスタルに結合した任意の分子ま
たは分子複合体を含み、この分子または複合体は、生物学的標的と相互作用して
、生物学的プロセスまたは反応を検出し、そして生物学的分子またはプロセスを
変化させ得る。好ましくは、これらの分子または分子複合体もしくは結合体は、
生物学的化合物と物理的に相互作用する。好ましくは、この相互作用は特異的で
ある。この相互作用は、共有結合的、非共有結合的、疎水性、親水性、静電気的
、ファンデルワールス、または磁気的であり得るが、これらに限定されない。好
ましくは、これらの分子は、小分子、タンパク質、または核酸、あるいはそれら
の組み合わせであり得る。
る。例えば、半導体ナノクリスタルの生成において一般に使用されるTOPOお
よびTOPのような部分、ならびに他の部分は、一般に、他の官能性部分で容易
に置換および交換され得、この官能性部分には、いくつか名前を挙げると、カル
ボン酸、アミン、アルデヒド、およびスチレンが挙げられるが、これらに限定さ
れない。当業者は、特定の置換反応の成功に関する要因には、置換部分の濃度、
温度および反応性が挙げられることを理解する。従って、本発明の目的のために
、存在する官能性部分を置換して、特定の用途のための改変された官能性を有す
る半導体ナノクリスタルを提供し得る、任意の官能性部分が使用され得る。
変する能力は、特定の用途のための官能化を可能にする。例えば、生物学的化合
物の検出は、最も好ましくは、水性媒体中で実施されるため、本発明の好ましい
実施形態は、水に可溶化される半導体ナノクリスタルを使用する。水溶性半導体
ナノクリスタルの場合、外層は、粒子の表面に結合し、そして少なくとも1つの
親水性部分で終結する、少なくとも1つの結合部分を有する化合物を含む。この
結合部分および親水性部分は、領域を横切る電荷移動を防止するために十分に疎
水性の領域によって架橋される。この疎水性領域はまた、ナノクリスタルに「偽
疎水性(pseudo−hydrophobic)」環境を提供し、それにより
ナノクリスタルを水性環境から保護する。親水性部分は、極性基または荷電基(
陽性または陰性)であり得る。この基の極性または電荷は、水との必要な親水性
相互作用を提供して、半導体ナノクリスタルの安定な溶液または懸濁液を提供す
る。代表的な親水性基には、極性基(例えば、水酸化物(−OH))、アミン、
ポリエーテル(例えば、ポリエチレングリコール)など、ならびに荷電基(例え
ば、カルボキシレート(−CO2-)、スルホネート(SO3-)、ホスフェート(
−PO4 2-、および−PO3 2-)、ナイトレート、アンモニウム塩(−NH4 +))
などが挙げられる。水溶性の層は、オーバーコーティング層の外層で見出される
。半導体ナノクリスタルを水溶性にするための方法は、当該分野で公知であり、
そして例えば、国際公開番号WO00/17655(2000年3月30日公開
)に記載される。
部分の配位を促進し、そして水性媒体に対する親和性を有する部分は、半導体ナ
ノクリスタル懸濁液を安定化する。
改良するために用いられ得る。例えば、半導体ナノクリスタルを特定の溶媒また
は液体(例えば、ピリジン)と会合することが所望される場合、この表面は、溶
媒和を保証するために、ピリジンまたはピリジン様部分で特異的に改変され得る
。
ために、置換によって改変され得る。例えば、TOPO部分をカルボン酸部分を
含む基で置換することにより、改変された半導体ナノクリスタルとアミン含有部
分(一般に、固体支持ユニット上に見出される)との反応が可能になり、アミド
結合を提供する。さらなる改変がまた、この任意の半導体ナノクリスタルのほと
んどが固体支持体と会合し得るように行われ得る。固体支持体は、本発明の目的
のため、合成順序、スクリーニング、イムノアッセイなどの間に化合物が結合す
る不溶性材料として定義される。支持体に結合した反応生成物の単離は、支持体
に結合した材料から試薬を洗い流すことにより簡単に達成され得るため、固体支
持体の使用は、ライブラリの合成のため特に有利であり、従って、この反応は、
過剰の試薬の使用により引き起こされて、完了し得る。
し得る任意の材料であり得る。代表的な固体支持体には、ペレット、ディスク、
キャピラリー、中空繊維、ニードル、ピン、中実繊維、セルロースビーズ、多孔
性ガラスビーズ、シリカゲル、ジビニルベンゼンで必要に応じて架橋されたポリ
スチレンビーズ、グラフトコポリビーズ、ポリアクリルアミドビーズ、ラテック
スビーズ、N,N’−ビス−アクリロイルエチレンジアミンで必要に応じて架橋
されたジメチルアクリルアミドビーズ、および疎水性ポリマーで被覆されたガラ
ス粒子が挙げられるが、これらに限定されない。
たはアクリレート部分を形成し、従って、半導体ナノクリスタルを、ポリスチレ
ン、ポリアクリレート、または他のポリマー(例えば、ポリイミド、ポリアクリ
ルアミド、ポリエチレン、ポリビニル、ポリジアセチレン、ポリフェニレン−ビ
ニレン、ポリペプチド、ポリサッカリド、ポリスルホン、ポリピロール、ポリイ
ミダゾール、ポリチオフェン、ポリエーテル、エポキシ、石英ガラス、シリカゲ
ル、シロキサン、ポリホスフェート、ヒドロゲル、アガロース、セルロースなど
)に組み込み得る。
479号;Bruchezら(1998)Science、281:2013〜
2016,Chanら、(1998)Science 281:2016〜20
18,Bruchez「Luminescent Semiconductor
Nanocrystals:Intermittent Behavior
and use as Fluorescent Biological Pr
obes」(1998)博士論文、University of Califo
rnia,Berkeley、およびMikulec「Semiconduct
or Nanocrystal Collids;Manganesc Dop
ed Cadmium Selenide,(Core)Shell Comp
osites for Biological Labeling and H
ighly Fluorescent Cadmium Telluride」
(1999)博士論文、Massachusetts Institute o
f Technologyを参照のこと。
て使用される、免疫アッセイ(例えば、免疫吸着アッセイ)が、提供される。Q
dotTM免疫吸着アッセイ(QISA)は、同時マルチカラーが挙げられるが、
これに限定されない電流免疫吸着アッセイよりもいくつかの利点を有し、従って
、複数の分析物の検出は、酵素による展開を必要とせず、代替の発螢光団よりも
光安定性が増加し、これにより、長時間にわたる信号のモニターを可能にする長
所により増加した検出感度を可能にし、酵素ベース検出システムよりも感度が増
加する。
導体ナノクリスタルは、目的の分析物に特異的に結合する、特異的に結合する分
子に結合する。例えば、任意の特異的な抗分析物は、抗体、抗体の免疫反応性フ
ラグメントなどに使用され得る。好ましくは、抗分析物は、抗体である。特異的
結合試薬として存在する、半導体ナノクリスタル結合体は、免疫吸着アッセイに
使用され、任意の分析物を検出する。
ーナル抗体調製物から誘導され得、ヒト化抗体、変異抗体、F(ab’)2フラ
グメント、F(ab)フラグメント、Fvフラグメント、単一ドメイン抗体、二
量体抗体フラグメント構築物または三量体抗体フラグメント構築物、ミニボディ
ー、または目的の分析物に結合するその機能性フラグメントのようなハイブリッ
ド抗体もしくはキメラ抗体となり得る。抗体は、当業者に周知の技術ならびに例
えば、米国特許第4,011,308号;同第4,722,890号;同第4,
016,043号;同第3,876,504号;同第3,770,380号;お
よび同第4,372,745号に開示される技術を使用して提供される。
する適切な動物を免疫化することによって、ポリクローナル抗体は産生される。
免疫原性を増強するために、抗原は、免疫前にキャリアに結合され得る。このよ
うなキャリアは、当業者に周知である。一般に、免疫化は、生理食塩水、好まし
くは、フロイント完全アジュバントのようなアジュバンド中で抗原を混合するか
、またはエマルジョン化すること、および混合物またはエマルジョンを非経口的
(一般に、皮下または粘膜内)に注射することにより実施される。一般に、動物
を、2〜6週間後に、好ましくはフロイント完全アジュバントを使用して、抗原
(生理食塩水中)の1回以上の注射でブーストする。抗体をまた、当該分野で公
知の方法を使用して、インビトロ免疫化によって産生し得る。次いで、ポリクロ
ーナル抗血清を、免疫化動物から得る。
75)Nature256:497−497の方法またはその改良方法を使用し
て産生する。代表的に、マウスまたはラットは、上記のように免疫化される。し
かし、動物を抽出血清に出血させるのではなく、脾臓(および、必要に応じて種
々の大きなリンパ節)を取り除き、そして単一細胞に分離する。所望であれば、
この脾臓細胞は、抗原でコーティングされたプレートまたはウエルに、細胞懸濁
物を塗布することによって、(非特異的接着細胞の除去の後に)スクリーニング
され得る。抗原に対して特異的な膜結合イムノグロブリンを発現する、B細胞が
プレートに結合し、そして懸濁物の残りでリンスされない。次いで、得られたB
細胞または分離された脾臓細胞を、骨髄腫細胞と共に融合するように誘導し、ハ
イブリドーマを形成し、そして選択培地(例えば、ヒポキサンチン、アミノプテ
リン、チミジン培地、「HAT」)中で培養する。得られたハイブリドーマは、
制限的な希釈によってプレート化され、そして免疫抗原に特異的に結合する(そ
して無関係の抗原には結合しない)抗体の産生についてアッセイされる。次いで
、選択されたモノクローナル抗体分泌ハイブリドーマは、インビトロ(例えば、
組織培養ボウルまたは中空繊維リアクター)またはインビボ(例えば、マウスの
腹水)のいずれかにおいて、培養される。
ーマを使用することによって得られる。例えば、Coteら、Monclona
l Antibodies and Cancer Therapy,Alan
R.Liss,1985,77頁を参照のこと。
e246:1275−1281に一般に記載される方法に従って、p185に特
異的に結合する抗体をコードするDNA分子について、B細胞cDNAライブラ
リをまずスクリーニングすることによって同定し得る。次いで、このDNA分子
を、クローンし、そして増幅することによって、所望の特異性を有する抗体(ま
たは結合ドメイン)をコードする配列を得る。
ラグメントはまた、本発明の免疫アッセイでの用途を見出す。インタクトな抗体
分子の免疫学的結合特性を示し得る、抗原結合部位を有する、多数の抗体フラグ
メントが、当該分野で公知である。例えば、機能的抗体フラグメントは、抗体分
子の抗原結合に関係ない定常領域を切断することによって産生され得、例えば、
ペプシンを使用して、F(ab’)2フラグメントを産生する。これらのフラグ
メントは、2ヶ所の結合部位を有するが、重鎖の各々の定常領域の一部が欠けて
いる。同様に、所望であれば、単一抗原結合部位を有するFabフラグメントは
、例えば、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体をタンパク質で消化す
ることによって、産生され得る。重鎖および軽鎖の可変領域のみを有する機能性
フラグメントがまた、イムノグロブリン分子の優先的タンパク質分解または組換
え産生のような標準的な技術を使用して産生され得る。これらのフラグメントは
、Fvとして公知である。例えば、Inbarら(1972)Proc.Nat
.Acad.Sci.USA 69:2659−2662:Hochmanら(
1976)Biochem 15:2706−2710;およびEhrlich
ら(1980)Biochem 19:4091−4096を参照のこと。
するリンカーによって結合される、VHをコードする遺伝子およびVLをコードす
る遺伝子を含む遺伝子融合物から発現される、共有結合したVH−VLヘテロダイ
マーである。Hustonら(1988)Proc.Nat.Acad.Sci
.USA 85:5879−5883。天然において凝集しているが、化学的に
分離した抗体のv領域の軽鎖および重鎖ポリペプチドを、抗原結合部位の構造と
実質的に類似した3次元構造に折り畳まれるsFv分子に変換するための化学構
造(リンカー)が、多数の方法により、識別および開発されてきた。例えば、米
国特許第5,091,513号、同第5,132,405号、および同第4,9
46,778号を参照のこと。このsFv分子は、当該分野で記載される方法を
使用して、産生され得る。例えば、Hustonら(1988)Proc.Na
t.Acad.Sci.USA 85:5879:5883;米国特許第5,0
91,513号、同第5,132,405号および同第4,946,778号を
参照のこと。設計基準は、鎖の一方のC末端と他方のN末端との間の距離をつな
ぐ適切な長さを決定する工程を包含し、ここで、このリンカーは、2次構造をコ
イルまたは形成する傾向にない、小さな親水性アミノ酸残基から一般に形成され
る。このような方法は、当該分野で記載されている。例えば、米国特許第5,0
91,513号、同第5,132,405号、および同第4,946,778号
を参照のこと。適切なリンカーは、グリシン残基とセリン残基のセットを組み替
えたポリペプチドさを一般に含み、そして溶解性を増強するために、挿入された
グルタミン酸およびリジン残基を含む。
ibody)」がまた、本発明での用途が見出される。ミニボディーは、ヒンジ
領域によってsFvから分離される、C末端のオリゴマー形成ドメインを含むs
Fvポリペプチド鎖である。Packら(1992)Biochem 31:1
579−1584。オリゴマー形成ドメインは、さらなるジスルフィド結合によ
ってさらに安定化され得る、自己結合α−へリックス(例えば、ロイシンジッパ
ー)を含む。オリゴマー形成ドメインは、ポリペプチドを機能性結合タンパク質
にインビボで折り畳むのを容易にすると考えられるプロセスと、膜を通じた方向
性折り畳みとを両立するように設計される。一般に、ミニボディーは、当該分野
で周知の組換え方法を使用して産生される。例えば、Packら(1992)B
iochem 31:1579−1584;Cumberら(1992)J I
mmunology 149B:120−126を参照のこと。
疫アッセイに使用し得る。例えば、抗体は、半導体ナノクリスタルに結合され得
る。あるいは、半導体ナノクリスタルは、目的の分析物に結合する別の分子と特
異的に反応する、他の親和性分子(例えば、ストレパビジン(strepavi
din))と結合し得る。
な標準的な免疫アッセイを使用して検出され得る。このようなアッセイとしては
、ELISA様アッセイ(本明細書においてQISAと呼ばれる)およびビオチ
ン/アビジン型アッセイが挙げられるが、これらに限定されない。この反応は、
抗原と、抗体またはそれと共に反応した抗体との複合体の形成に関連する、半導
体ナノクリスタルを含む。
る固相支持体からの分離を一般に含む。本明細書における方法に使用され得る固
体支持体としては、ニトロセルロース(例えば、膜またはマイクロタイターウエ
ルフォーム);ポリビニルクロリド(例えば、シートまたはマイクロタイターウ
エル);ポリスチレンラテックス(例えば、ビーズまたはマイクロタイタープレ
ート);ポリビニリデンフルオリド;ジアゾ化紙;ナイロン膜;活性化ビーズ、
磁気応答性ビーズなどのような材料が挙げられる。
と結合する成分(例えば、抗原または抗体)と、適切な結合条件下でまず反応し
、その結果、この成分が支持体に対して十分免疫化される。時々、支持体への免
疫化は、良好な固相結合特性を有するタンパク質に抗体または抗原をまず結合さ
せることによって増強され得る。適切な結合タンパク質としては、ウシ血清アル
ブミン(BSA)を含む血清アルブミン、鍵穴吸着(keyhole limp
et)ヘモシアニン、イムノグロブリン分子、サイログロブリン、オボアルブミ
ン、および当業者に周知の他のタンパク質のような高分子が挙げられるが、これ
らに限定されない。支持体に分子を結合させるために使用され得る、他の試薬と
しては、ポリサッカリド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリマーアミノ酸、ア
ミノ酸コポリマーなどが挙げられる。これらの分子を抗原に結合させる、このよ
うな分子および方法は、当業者に周知である。例えば、Brinkley,M.
A.(1992)Bioconjugate Chem.3:2−13;Has
hidaら(1984)J.Appl.Biochem.6:56−63;およ
びAnjaneyuluおよびStaros(1987)Internatio
nal J.of Peptide and Protain Res.30:
124を参照のこと。
より支持体から取り除かれ、次いでこの支持体結合成分を、適切な結合条件にお
いて、リガンド部分を含むと疑われる生物学的試料(例えば、免疫化抗原に対す
る抗体、または免疫化抗体に対する抗原)と接触させる。任意の非結合リガンド
を除去するために洗浄した後、本明細書中に記載される半導体ナノクリスタルで
検出可能に標識した2次結合剤(binder)の部位を、適切な結合条件下で
添加した。ここで、この2次結合剤は、結合リガンドと選択的に結合し得る。次
いで、2次結合剤の存在は、上記の技術を使用して検出され得る。さらに、間接
的な標識技術が使用され得る。ここで、未標識の2次結合剤部分の存在は、検出
可能に標識した3次元結合剤部分に特異的に結合させることによって検出される
。
レートのウエルは、選択した抗原でコーティングされる。次いで、この抗原に対
する抗体を含むか、または含むと疑われる生物学的試料を、コーティングされた
ウエルに添加する。抗体を免疫化抗原に結合させるのに十分な期間のインキュベ
ーション後に、このプレートを、未結合部分を除去するために洗浄し、そして検
出可能に標識した2次結合分子を添加した。この2次結合分子を、任意の捕捉さ
れた試料抗体と反応させて、このプレートを洗浄し、そして2次結合分子の存在
を上記のようにして検出した。
ドの存在を、半導体ナノクリスタルに結合した抗体リガンドに対して指向される
抗体を含む2次結合剤を使用して、容易に検出し得る。複数のイムノグロブリン
(Ig)分子は、当該分野で公知であり、本明細書に記載されるように半導体ナ
ノクリスタルに容易に結合され得る。他の関連する実施形態において、競合型Q
ISA技術は、当業者に公知の方法を使用して調製され得る。
て特異的な抗原および抗体は、沈殿条件下で複合体を形成する。1つの特定の実
施形態において、抗原は、例えば、直接的な化学結合または間接的な化学結合に
より、当該分野で公知の結合技術を使用して、固相粒子(例えば、アガロースビ
ーズなど)に結合され得る。次いで、この抗原コーティング粒子を、この抗原に
対する抗体を含むと疑われる生物学的な試料を含む、適切な結合条件下で接触さ
れる。結合した抗体間の架橋により、粒子−抗原−抗体複合体凝集物を形成させ
、この凝集物を、沈殿させ、そして洗浄および/または遠心分離を使用して、試
料を分離させ得る。この反応混合物を、上記の免疫診断方法のような任意の複数
の標準方法を使用して、抗体−抗原複合体の存在または非存在を決定するために
分析し得る。
得、ここで特定の抗原を含むと疑われる生物学的サンプル由来のポリクローナル
抗体の集団が基材に固定化される。この点において、サンプルの最初のアフィニ
ティー精製は、固定化抗原を使用して実行され得る。従って、得られるサンプル
調製物は、アフィニティー支持体中の潜在的な非特異的結合特性を回避して、特
定の抗体のみを含有する。高収率かつ抗原結合活性を良好に保持する免疫グロブ
リン(インタクトまたは特異的フラグメントのいずれかで)を固定化するための
多数の方法が、当該分野で公知である。任意の特定の方法に限定されることなく
、固定化プロテインAまたは固定化プロテインGは、免疫グロブリンを固定化す
るために使用され得る。
クスを提供したならば、半導体ナノクリスタル標識タンパク質は、適切な結合条
件下で結合した抗体と接触される。すべての非特異的に結合した抗原が免疫アフ
ィニティー支持体から洗浄された後、結合した抗原の存在は、上記の方法を使用
して標識をアッセイすることによって決定され得る。
所定のサンプル中の目的のタンパク質の存在を検出するために上記のアッセイに
おいて使用され得る。これらのアッセイは、本質的に、上記のように実行され、
そして当業者に周知である。
た組織サンプルまたは固定した細胞集団を、特定のマーカーについてプローブす
るために使用され得る。この実施形態において、調製した細胞または組織は、半
導体ナノクリスタルと結合体化した抗体とともにインキュベートされる。半導体
ナノクリスタルは、細胞サンプルと組織サンプルの両方において、安定な、多色
検出を可能にする。
リスタルまたは複数の半導体ナノクリスタルのいずれか)は、染色手順において
、特異的な、感度のよい、光安定性の、抗原の検出を可能にする。これは、現在
利用可能な染色を超えて明確な利点を提供する。さらに、半導体ナノクリスタル
の固有の特性(すなわち、単一の励起源、狭いガウススペクトル、および調整可
能な発光波長)は、従来の蛍光色素よりもよりいっそう多くの色が分解されるこ
とを意味する。
もしくは細胞外マーカーの多重化分析を必要とする任意のサンプル上で実行され
得る。この手順は、2段階の反応で実行され得、それによって一次抗体に半導体
ナノクリスタル結合体化抗体が付随するか、または抗体(もしくは他の生体分子
)半導体ナノクリスタル結合体を使用することによりサンプルに直接的に標識す
る。例えば、40nm間隔で間隔をあけられた発光スペクトル(例えば、490
〜650nm)を有する5つの(またはそれ以上の増加したスペクトル的用途ま
たは減少したスペクトル的分離を有する)異なる半導体ナノクリスタルの集団が
合成され得る。各々半導体ナノクリスタルのスペクトル的に別個の集団は、目的
の生体分子(これは、分析されるサンプル中に存在していてもよいし、または存
在していなくともよい)を特異的に認識する異なる分子に結合体化される。標準
的な染色プロトコルに従って、サンプルは、半導体ナノクリスタルで標識され、
そして標的分子の位置および量について分析される。この分析は、従来の蛍光顕
微鏡技術によって実行され得るか、または上記のようなスペクトルスキャニング
デバイスの使用によって実行され得る。
異なる項目(例えば、次いで、(上記のような)細胞の化合物の位置および量を
測定するために使用され得る抗体もしくはcDNA)を標識することが可能であ
る。しかし、作製され得るスペクトル的に区別できる色の数によって、付随され
得る化合物の数は限られている。CdSe、半導体ナノクリスタルおよび現在の
合成技術を用いると、これは、およそ6〜7のスペクトル的に区別できる色であ
る。しかし、異なる化合物が細胞中で共存しない場合、よりいっそうの多くの半
導体ナノクリスタルの色が、分析される標的の既知の空間的分離の利点を利用す
ることによって使用され得る。例えば、核局在化標的と膜局在化標的との間には
重複が存在しない。従って、半導体ナノクリスタルのオルガネラ特異的グループ
を使用して、識別可能な標的の数を劇的に増大し得る(以下の実施例18を参照
のこと)。
えば、競合的ラテックスイムノアッセイ)において使用され得る。このようなア
ッセイは、例えば、Stave J.W.(1994)Immunoassay
for priority pollutants.Analytica 9
4 Conference Abstracts 379頁;およびBangs
,L.B.(1996)Immunological Application
s of Microsphere.The Latex Course 41
96において記載されている。伝統的には、このアッセイは、抗体結合体化ラテ
ックス粒子を使用して、土壌のサンプルまたは地下水のサンプル中の工業的な化
学物質をppb濃度で検出する。本願においては、抗体が、例えば、3μmのミ
クロスフェアに結合体化され、これは、1μmポアフィルターに捕捉される。サ
ンプルはフィルターを通過し、そして固定化された抗体は、存在する任意の抗原
を捕捉する。酵素/抗原結合体は、フィルターを通過する。サンプルが抗原を含
まないならば、酵素/抗原は、抗体上の遊離の部位に結合し、そして添加された
基質は、フィルターの色の変化を引き起こす。抗原濃度の上昇は、フィルターの
色の変化の対応する減少を生じる。
リスタルにコードされる固体結合体である。この結合体は、分析物を特異的に認
識する分子である。抗原結合体は、直接的な半導体ナノクリスタル−抗原結合体
であるか、またはフィルターのポアを通るのに十分に小さい、半導体ナノクリス
タル染色したミクロスフェア結合体である。このことは、半導体ナノクリスタル
の励起のための光源を使用する同時検出および発光の複数の同時検出を可能にす
る。この検出は、フィルター上または濾過液中で行われ;このアッセイは、高処
理能力マルチウェル環境において実行され得る。この様式におけるフィルターは
、励起光に対して不透明であり、そして洗浄またはサンプルの取り出しの必要な
しに、濾過物中の半導体ナノクリスタルの検出を可能にする。分析物濃度は、分
析物についての特定の結合剤が存在する実質的に任意の状況において、決定され
得る。従って、ほぼいかなる分析物でも(化学的または生物学的、有機または無
機)、この様式において検出され得る。
分析物または半導体ナノクリスタルコードされたミクロスフェア(これは、フィ
ルターのポアを通過するのに十分に小さい)に結合体化された分析物との間の競
合によって達成される。反応物はミクロポアフィルター(ここで、ポアはミクロ
スフェアの直径よりも小さい)を自由に通過できるので、分離が達成される。従
って、ミクロスフェアはフィルターを通過できない(図5を参照のこと)。半導
体ナノクリスタル結合体または半導体ナノクリスタルコードされたミクロスフェ
アは、フィルターを通過するのに十分に小さく、そしてミクロスフェアに結合し
ない限りはそのように十分に小さい。既知の量の半導体ナノクリスタルが上部の
レベルに適用された場合、分析物サンプルを用いて、所定の時間結合させ、次い
でフィルターを通過させ、下部のレベルに存在する蛍光のレベルを測定すること
によって分析物の濃度を決定する。上部のレベル中の蛍光は、上部のレベルの除
去によって、または膜が励起源に対して不透明であるからのいずれかによって検
出されない。
クリスタルスペクトルの分離は、バンド通過フィルターの使用またはスペクトル
にわたって光の発光を測定することによって、達成される。検出は、上記のよう
に、静的な検出デバイスまたはスキャニング検出器によって達成され得る。
) 半導体ナノクリスタルはまた、試験サンプル中の標的核酸配列の検出のための
プローブに基づくアッセイにおける感度の良い検出薬剤として使用され得る。こ
れらのアッセイにおける使用のためのプローブは、当該分野で周知の技術を用い
て、目的の標的ポリヌクレオチドの保存性領域または非保存性領域のいずれかか
ら設計される。一般的に、プローブは、最大の特異性が所望される場合、非保存
性領域または独特の領域から開発され、そして例えば、異なる多重遺伝子ファミ
リーの異なるメンバーに密接に関連するか、または関連する種における領域につ
いてアッセイする場合に、保存性領域から開発される。
る所望の標的核酸配列を増幅するための技術である。PCRにおいては、一対の
プライマーが過剰に使用されて、標的核酸の相補鎖にハイブリダイズする。この
プライマーは、標的核酸を鋳型として使用して、ポリメラーゼによって各々伸長
される。この伸長産物は、もともとの標的鎖からの解離後、それ自体が標的配列
となる。次いで、新しいプライマーがハイブリダイズし、そしてポリメラーゼに
よって伸長され、そしてこのサイクルが反復されて、幾何級数的に標的配列分子
の数を増加させる。PCRは、米国特許第4,683,195号および同第4,
683,202号に記載されている。
おいては、2つの一次プローブ(第1および第2)および2つの二次プローブ(
第3および第4)を含むプローブ対が使用され、これらのすべてが標的に対して
モル過剰で使用される。第1のプローブは、標的鎖の第1のセグメントにハイブ
リダイズし、そして第2のプローブは標的鎖の第2のセグメントにハイブリダイ
ズし、第1および第2のセグメントは連続しており、その結果、一次プローブは
、5’−リン酸−3’ヒドロキシの関係で互いに隣接する。従って、リガーゼは
、2つのプローブを、融合した生成物に、共有結合的に融合または連結させ得る
。さらに、第3の(二次)プローブは、第1のプローブの一部にハイブリダイズ
し得、そして第4の(二次)プローブは、同様の隣接様式で、第2のプローブの
一部にハイブリダイズし得る。標的が最初に二本鎖であった場合、二次プローブ
はまた、最初の例における標的相補体にハイブリダイズする。一旦一次プローブ
の連結された鎖が標的鎖から分離されたならば、これは、相補的な、二次的な連
結生成物を形成するために連結され得る第3および第4のプローブとハイブリダ
イズする。ハイブリダイゼーションおよび連結のサイクルの反復によって、標的
配列の増幅が達成される。この技術は、例えば、1989年6月16日に公開さ
れた欧州特許公開番号320,308、および1991年7月31日に公開され
た欧州特許公開番号439,182に記載される。
伸長され、そして/または連結されると、これらは、例えば、反応混合物を「融
解温度」(相補的な核酸鎖を解離する)に加熱することによって、標的核酸配列
から分離される。従って、標的配列に相補的な配列が形成される。次いで、新規
な増幅サイクルが行われ、任意の二本鎖配列を分離し、プライマーまたはプロー
ブをそれらのそれぞれの標的にハイブリダイズさせ、ハイブリダイズされたプラ
イマーまたはプローブを伸長および/または連結し、再び分離することによって
、標的配列の数をさらに増幅し得る。増幅サイクルによって生成される相補的な
配列は、プライマー伸長に対する鋳型として役立ち得るか、または標的配列の数
をさらに増幅するするために2つのプローブのギャップを満たし得る。典型的に
は、反応混合物は、20回と100回との間、より典型的には25回と50回と
の間でサイクルされる。この方法において、標的配列およびその相補的な配列の
複数のコピーが、産生される。従って、プライマーは、増幅条件下にある場合、
標的配列の増幅を開始する。
RT−PCR)を行うことによって増幅され得る。あるいは、単一の酵素を、米
国特許第5,322,770号に記載される両方の工程について使用し得る。m
RNAはまた、cDNAに逆転写され得、続いて、Marshallら、(19
94)PCR Meth.App.4:80−84によって記載される非対称ギ
ャップリガーゼ連鎖反応(RT−AGLCR)が行われ得る。
げられるが、これらに限定されない:「NASBA」または「3SR」(Gua
telliら、(1990)Proc.Natl.Acad.Sci.USA
87:1874−1878およびCompton,J.Nature 350:
91−92);Q−β増幅;鎖置換増幅(Walkerら、Clin,Chem
.42:9−13および欧州特許出願第684,315号);および標的媒介増
幅(国際公開番号WO93/22461)。
フォーマットを使用して実施され得る。異種検出フォーマットの例は、Snit
manら、米国特許第5,273,882号;Urdeaら、米国特許第5,1
24,246号;Ullmanら、米国特許第5,185,243号;およびK
ourilskyら、米国特許第4,581,333号に開示される。同種の検
出フォーマットの例は、Caskeyら、米国特許第5,582,989号;お
よびGelfandら、米国特許第5,210,015号に記載される。標的シ
グナルの感受性および増幅を改善するために、ハイブリダイゼーションアッセイ
における複数のプローブの使用がまた意図され、本発明の範囲内である。例えば
、Caskeyら、米国特許第5,582,989号;およびGelfandら
、米国特許第5,210,015号を参照のこと。
ド配列を含むと疑われる試験サンプルを、増幅プライマーを含む増幅反応試薬お
よびアンプリコン配列の内部領域とハイブリダイズし得る検出プローブと接触さ
せる工程を包含する。本明細書中に提供される方法に従って使用されるプローブ
およびプライマーは、捕捉標識および検出標識を用いて標識され、ここで、プロ
ーブは、1つのタイプの標識で標識され、プライマーは、別のタイプの標識で標
識される。さらに、プライマーおよびプローブは、プローブ配列がプライマー配
列よりも低い融解温度を有するように選択される。増幅試薬、検出試薬および試
験サンプルは、増幅条件下におかれ、これによって標的配列の存在下で、標的配
列(アンプリコン)のコピーが産生される。通常の場合において、アンプリコン
は、二本鎖である。なぜなら、プライマーが標的配列およびその相補的な鎖を増
幅するために提供されるからである。次いで、二本鎖アンプリコンは、熱的に変
性され、一本鎖アンプリコンメンバーを産生する。一本鎖アンプリコンメンバー
の形成時に、この混合物は冷却され、プローブと一本鎖アンプリコンメンバーと
の間に複合体を形成をする。
、優先的に一本鎖アンプリコンメンバーに結合する。プローブ/一本鎖アンプリ
コンメンバーハイブリッドが形成された後に、これらを検出する。標準的な異種
アッセイフォーマットは、プライマーおよびプローブに存在する検出標識および
捕捉標識を使用してハイブリッドを検出するのに適している。ハイブリッドは、
捕捉標識によって固相試薬に結合し得、そして検出標識によって検出され得る。
捕捉標識または検出標識のいずれかが、半導体ナノクリスタルを含む。検出標識
が直接検出可能である場合、固相上のハイブリッドの存在は、上記技術を使用し
て検出され得る。標識が直接検出可能でない場合、捕捉されたハイブリッドは、
結合体と接触され得、この結合体は、一般的に、半導体ナノクリスタル標識に接
続される結合メンバーを含む。結合体は、複合体に結合され、そして複合体上の
結合体の存在が、直接検出可能な半導体ナノクリスタル標識を用いて検出され得
る。従って、固相試薬上のハイブリッドの存在が決定され得る。洗浄工程は、典
型的に、上記反応の間に使用され、ハイブリダイズされていないアンプリコンま
たはプローブならびに結合されていない結合体を洗浄し除く。
実施され得る。このようなアレイは、以下にさらに詳細に記載される、高処理能
力および/または多重アッセイフォーマットに有用である。予め形成された核酸
分子からこのようなアレイを形成するための種々の方法、またはインサイチュ合
成技術を使用してアレイを生成するための方法は、一般的に当該分野において公
知である(例えば、Dattaguptaら、欧州公開第234,726号;S
outherの米国特許第5,700,637号;Pirrungらの米国特許
第5,143,854号;国際公開番号WO92/10092号;およびFod
orら(1991)Science 251:767−777を参照のこと)。
幅プライマー配列とのハイブリダイゼーションの前にその相補物から分離され得
る。さらに、増幅プライマーが標的配列の増幅を開始する間、検出(またはハイ
ブリダイゼーション)プローブは増幅に含まれない。検出プローブは、一般的に
、核酸配列または荷電していない核酸アナログであり、例えば、国際公開番号W
O92/20702号に開示されるペプチド核酸;米国特許第5,185,44
4号、同第5,034,506号および同第5,142,047号に記載される
モルホリノアナログなどが挙げられる。プローブによって保持される標識のタイ
プに依存して、プローブは、増幅反応によって生成されるアンプリコンを捕捉ま
たは検出するために使用される。
ライマー配列よりも低い融解温度を有するように選択される。従って、プライマ
ー配列は、一般的に、プローブ配列よりも長い。典型的に、プライマー配列は、
20と50の間のヌクレオチドの長さの範囲、より典型的には20と30との間
のヌクレオチドの長さの範囲である。典型的なプローブは、10と25の間のヌ
クレオチドの長さの範囲である。
認識しそして結合する一本鎖または二本鎖DNA分子あるいは一本鎖または二本
鎖RNA分子である。例えば、PCT公開番号WO92/14843号、WO9
1/19813号、およびWO92/05285号を参照のこと。Goldらの
米国特許第5,270,163号、Tuerkら(1990)Science
249:505−510、Szostakら(1990)Nature 346
:818−822およびJoyce(1989)Gene 82:83−87に
記載されるSELEX手順を使用して、標的特異的なRNAアプタマーまたはD
NAアプタマーを選択し得る。SELEX手順において、n−マー(好ましくは
、それによってオリゴヌクレオチドの「ランダムプール」を形成するヌクレオチ
ドのランダム化配列)が2つのポリメラーゼ連鎖反応(PCR)プライマーに隣
接するオリゴヌクレオチドが、構築される。次いで、この構築物は、オリゴヌク
レオチドの標的分子への結合を助ける条件下で標的分子と接触される。標的分子
に結合するオリゴヌクレオチドは、(a)従来の方法(例えば、濾過、遠心分離
、クロマトグラフィーなど)を使用して標的分子に結合しないオリゴヌクレオチ
ドから分離し;(b)標的分子から解離させ;そして(c)従来のPCR技術を
使用して増幅し、オリゴヌクレオチドのリガンド濃縮プールを形成する。結合、
分離、解離および増幅のさらなるラウンドは、所望の結合親和性、特異性または
その両方を有するアプタマーが達成されるまで、行われる。次いで、同定された
最後のアプタマー配列は、化学的に、またはインビトロ転写によって調製され得
る。半導体ナノクリスタルは、このようなアプタマーの検出において容易に使用
される。
。
ナノクリスタル) 本発明の別の実施形態において、検出可能な標識として半導体ナノクリスタル
を使用するFISHアッセイが開示される。種々のタイプのFISHアッセイを
行うための技術は、当該分野において周知であり、そして例えば、Raap,A
.K.(1998)Mutation Res.400:287−298;Sp
eelら(1998)Histochem.Cell.Biol.110:57
1−577;NathおよびJohnson(1997)Biotech.Hi
stochem.73:6−22;SwigerおよびTucker(1996
)Environ.Molec.Mutagen.27:245−254;Ki
tadaiら(1995)Clin.Cancer Res.1:1095−1
102;Heiskanenら(1995)Genomics 30:31−3
6;ならびにHeikanenら(1994)BioTechnique 17
:928−933に記載される。半導体ナノクリスタルは、これらの技術のそれ
ぞれにおいて通常使用される蛍光標識の代わりに使用され得る。半導体ナノクリ
スタルを用いて標識される核酸プローブの利点は、複数の集団の半導体ナノクリ
スタルが非重なり発光スペクトルを作りだし得、このスペクトルのそれぞれが単
一の光源および波長の光で励起され得るという事実によって、別個の標的オリゴ
ヌクレオチドに指向する複数のプローブが同時に使用され得るということである
。この方法における「多重」アッセイの能力は、分析される試料が限定された供
給源の細胞または組織(例えば、稀な細胞、母親の血液中の胎児の細胞、血液ま
たは尿サンプル中の癌細胞、芽細胞腫など)を含む場合、特に有用である。多重
化することによって、単一の細胞レベルでの複数のパラメーター情報が収集され
得る。例えば、Pattersonら(1998)Cytometry 31:
265−274;Boriziら(1996)J.Immunol.Meth.
193:167−176;Wachtelら(1998)Prenat.Dia
gn.18:455−463;Bianchi(1998)J.Perinat
.Med.26:175−185;およびMunne(1998)Mol.Hu
m.Reprod.4:863−870を参照のこと。
連結され得るか、または核酸に結合するストレプトアビジン/ビオチンに間接的
に連結され得る。半導体ナノクリスタルが連結したヌクレオチドを使用すること
により、半導体ナノクリスタルがDNAプライマーに結合するか、または核酸中
へ組み込まれる。PCRが、FISHプローブのための核酸フラグメントを作成
するために使用され得る。半導体ナノクリスタルはまた、目的の配列を含む核酸
に化学的に付着され得る。あるいは、ビオチン分子が、オリゴヌクレオチドプラ
イマーに付着され得るか、またはPCR中でビオチン化ヌクレオチドを使用する
ことにより目的の核酸中に組み込まれ得る。次いで、ストレプトアビジンに付着
された半導体ナノクリスタルは、核酸プローブ中のビオチンに連結され得る。こ
れらの半導体ナノクリスタル−FISHプローブは、DNA(実施例5を参照の
こと;Dewaldら(1993)Bone Marrow Trasplan
tation 12:149−154;Wardら(1993)Am.J.Hu
m.Genet.52:854−865;Jalalら(1998)Mayo
Clin.Proc.73:132−137;Zahedら(1992)Pre
nat.Diagn.12:483−493;Neuhausら(1999)H
uman Pathol.30:81−86:Bunoら(1998)Bloo
d 92:2315−2321;Munne(1998)Mol.Hum.Re
prod.4:863−870をもまた参照のこと)およびRNA(実施例6;
Kitadaiら(1995)Clin.Cancer Res.1:1095
−1102を参照のこと)についてのインサイチュハイブリダイゼーションのた
めに使用され得る。例えば、エピ蛍光顕微鏡下で、これらの結果が分析され得る
。半導体ナノクリスタル−FISHプローブ、またはDNAおよびRNAについ
てのプローブを共に(実施例7;Wachtelら(1998)Prenat.
Diagn.18:455−463を参照のこと)もしくはRNAおよび表面免
疫表現型についてのプローブを共に(実施例8;Pattersonら(199
8)Cytometry 31:265−274;Borziら(1996)J
.Immunol.Meth.193:167−176を参照のこと)を使用し
て、同時に希少細胞を同定し、分類しそして分析し得る。RNAまたはDNAに
ついての短いオリゴヌクレオチド半導体ナノクリスタル−FISHプローブ(順
方向プライマーおよび逆方向プライマー)が入手可能な場合、プローブの感受性
は、PCR/FISHまたはRT−PCR/FISHを介して増加され得る。こ
れは、インサイチュPCRまたはRT−PCR反応中へ半導体ナノクリスタル−
dNTPを組み込むことにより達成され得る(実施例9;Pattersonら
(1993)Science 260:976−979;Pttersonら(
1998)Cytometry 31:265−274を参照のこと)。検出シ
ステムは、顕微鏡もしくはフローサイトメトリー、または異なる半導体ナノクリ
スタルから放出される光の波長を測定し得る検出器であり得る。
究室において広く使用される。半導体ナノクリスタル−DNAプローブを使用し
て、核中のDNAの、増幅(例えば、HER2/neu、c myc遺伝子増幅
)、付加(例えば、トリソミー21、13、18)、欠失(例えば、45X、タ
ーナー症候群)、転座(例えば、CMIにおけるBCR/ABI)を検出し得る
。
A)を局在化し、そしてその発現をモニターし得る。これは、希少細胞(例えば
、母性血液中の胎児細胞、疾患再発をモニターするための癌細胞)を検出するた
めに特に有用である。
か伴わない)のみが入手可能である場合、PCR/FISHまたはPT−PCR
/FISHを使用して、標的DNAまたはRNAを増幅し、感受性を増強し得る
。これは、インサイチュPCRまたはRT−PCR反応へ半導体ナノクリスタル
−dNTPを組み込むことにより達成され得る。
に結合し、タンパク質発現を検出し、そして/または目的の細胞を分類し得る。
複数の半導体ナノクリスタル−抗体、RNAおよび/またはDNAについての半
導体ナノクリスタル−核酸プローブを使用して、同じ反応かまたは連続する反応
において細胞とハイブリダイズし得る。次いで、集団(希少細胞)中の目的の細
胞は、DNA(遺伝的組成物について)またはmRNA(遺伝子発現について)
について同時に同定し、そして分析し得る。
または良く針で吸引した液(fine needle aspirate)を含
む、懸濁液中かまたは顕微鏡スライドもしくは他の個体支持体に付着したかまた
はパラフィン固定した組織断片中の細胞(生細胞または埋包された細胞)または
核であり得る。FISHは、分裂中期または静止期の細胞に対してか、またはD
NA鎖上で直接行われ得る。
ら編(1980)、前出;Bunoら(1998)、前出;Patterson
ら(1993)、前出;Pattersonら(1998)、前出;Borzi
ら(1996)、前出);骨髄(Dewaldら(1993)、前出;Hack
ら編(1980)、前出);羊膜細胞(Wardら(1993)、前出;Jal
alら(1998、前出));CVS(Zahedら(1992)、前出);パ
ラフィン埋包組織断片(Kitadaiら(1995);前出;Neuhaus
ら(1999)、前出);胎児細胞(Wachtelら(1998)、前出;B
ianchi(1998)、前出)および割球(Munne(1998)、前出
))に依存して、周知の方法を使用して調製される。
セイの条件は、異なるプローブの性質(例えば、核酸配列が高度に反復性である
か否か)またはプローブの混合物の性質に依存して最適化され得る。このアッセ
イは、室温〜100℃にて行われ得るが、典型的には、37℃〜80℃の範囲で
行われる。
るため、および半導体ナノクリスタル結合体をシグナル増幅アッセイ形式におけ
る検出試薬として使用するための方法が開示される。このタイプのシグナル増幅
は、シグナル増幅アッセイにおけるシグナルの検出のために現在使用される方法
以上のいくつかの利点を提供する。とりわけ、利点は、高感度で同じサンプル中
の複数の分析物を同時に検出する能力である。
導体ナノクリスタル結合体」)。これは、サンプル中の分析物の存在に対する応
答において生成される増幅複合体を特異的に認識する。半導体ナノクリスタル結
合体は、例えば、1)DNAハイブリダイゼーションアッセイ(実施例10を参
照のこと)、または2)層状ビオチン/アビジン増幅アッセイ(実施例11を参
照のこと)における標識であり得る。検出システムは、1以上の色の半導体ナノ
クリスタルから放出される光の波長を測定し、そして識別し得るデバイスであり
得る。
て使用するHTSアッセイが提供される。特定の色の半導体ナノクリスタルは、
Bruchez(前出)、Bruchez(前出)、Chanら(前出)に記載
される1つの技術によるか、またはタンパク質、核酸などを付着するかまたは結
合体化するための当該分野で公知の任意の方法により結合体化される。例えば、
Flermanson(1996)Bioconjugate Techniq
ues(Academic Press)を参照のこと。
クリスタルの発光は、候補化合物のアッセイシステムに対する効果の指標として
モニターされる。この技術は、化学発光を除く従来の技術のいずれかに受け入れ
られる。例えば、ビーズ(bead)結合レセプターまたはリガンドへのそれら
の結合をモニターするために半導体ナノクリスタル結合体化リガンドまたはレセ
プターを使用する蛍光読み取りは、各々、ビーズと相互作用する半導体ナノクリ
スタルの発光を測定するための柔軟な形式として使用され得る。ビーズと相互作
用する半導体ナノクリスタルの発光の測定は、候補化合物の濃度の関数で有り得
、従って、このシステムに対する候補化合物の効果であり得る。さらに、半導体
ナノクリスタルは、多色発光物として使用され、各々、半導体ナノクリスタル結
合体化レセプターまたはリガンドとの放射性標識リガンドまたはレセプターの結
合を検出し得る。輝きの減少は、候補化合物によるリガンド−レセプター対の結
合の阻害の1つの結果である。
DNAフラグメント分析において使用され得る。これらの配列決定反応を簡潔に
記載すると、DNA配列内の4種類のヌクレオチド塩基の位置を決定するために
4種類の反応を行う。DNAサンプルを鋳型として使用して、4種類にデオキシ
ヌクレオチドおよび1種類のさらなるジデオキシヌクレオチドを含むヌクレオチ
ドのプールからDNAの鎖を合成する。例えば、アデニン配列決定反応では、D
NAは、4種類全てのデオキシヌクレオチド(dATP、dGTP、dCTP、
dTTP)およびジデオキシアデノシン三リン酸(ddATP)を含む混合物か
ら合成される。酵素DNAポリメラーゼは、dNTPを連結することによりDN
Aの新たな鎖を合成する。時折、DNAポリメラーゼは、dATPの代わりにd
dATPを取り込む。次いで、この新生の鎖中のddATPは、次のdNTPへ
の接続としてのd’水酸基の欠落に起因してDNAの鎖の合成を終結する。従っ
て、アデニン配列決定反応からのDNA産物は、アデニンに対応する位置で終結
した各鎖を有する、長さが変化したDNAの不均一混合物である。
分離する。各々放射性標識した(32Pまたは35S)DNAを用いて、4種類の反
応物を4つの各レーンにロードした。異なるサイズの分離された産物は、バンド
のパターンを生じ、これは、各ヌクレオチドの位置における塩基の正体を示す。
4つのレーンにわたるこのパターンは、DNA鋳型のヌクレオチド塩基配列に対
応する単純コードのように読み取られ得る。蛍光ジデオシキヌクレオチドを用い
て、4つのジデオキシヌクレオチド連鎖終結反応物を含むサンプルは、1つのレ
ーンにロードされ得る。4つのジデオシキヌクレオチド反応物の分離は、各サン
プルについて異なる蛍光標識に起因して可能である。例えば、ddATPは、グ
リーン蛍光標識と結合体化され得る。他の3つのddNTP(ジデオキシヌクレ
オチド三リン酸)は、3種類の異なる蛍光色で標識される。従って、各連鎖終結
ddNTPは、異なる色でコードされる。4つ全ての反応物がDNA配列決定ゲ
ル上の1つのレーンで分離される場合、結果は、4つの異なる色を有するバンド
の1つのはしごである。各蛍光色は、ヌクレオチド塩基の正体に対応し、そして
自動化システムにより容易に分析され得る。
ーカーの励起のために必要である。各ジデオキシヌクレオチド鎖終結反応のため
の蛍光タグとしての半導体ナノクリスタルの使用は、単一の光源のみが、4つ全
ての蛍光タグを励起するのに必要であるので、高処理量のDNA配列決定の自動
化を単純化する。さらに、半導体ナノクリスタルでの多重化は、複数の配列決定
反応を行いかつ同時に分析することを可能にし、それによってさらにこのアッセ
イの処理量を増大する。
て、ヒトゲノムにおける短い縦列繰り返し(STR)座が、蛍光タグで標識され
るプライマーを用いてPCRによって増幅される。これらの遺伝子座の大きさは
、個人間で異なり得るかまたは一致し得るか、あるいは個別の被験体間で異なり
得るかまたは一致し得る。そしてその集団における遺伝的な違いに依存する。通
常複数の遺伝子座が、試験される。別のサンプルとの大きさの違いを示す任意の
遺伝子座は、この2つのサンプルが、異なる2個体由来であることを決定的に示
す。しかし、2つのサンプルが、同一の個体由来であるという実証は、それほど
決定的ではない。異なるフィンガープリントパターン(STR座の大きさ)は、
2個体の間で一致し得る。しかし、2個体間の大きさの一致する複数の遺伝子座
の系統学的な確立は、試験された遺伝子座の数が、増えると減少する。従来の有
機蛍光色素を用いる、単一のレーン(従って、高処理量)において決定されたサ
ンプルの数は、利用可能な蛍光タグの数および発光スペクトルの解像度に制限さ
れる。従って、この蛍光タグの解像度を増大させることは、ゲルにおいて1レー
ンあたりの試験された遺伝子座の数の能力を上昇する。
DNA標的配列の存在/非存在を検出するためにその他のハイブリダイゼーショ
ン形式、配列特異的伸長およびオリゴライゲーションアッセイにおいて使用され
得る。
おける相補的な積み重ねの間の水素結合の効力によって互いに維持される。二本
鎖DNA(「dsDNA」)が、水素結合を崩壊する物理学的状態/科学的状態
に供される(すなわち、DNAを変性させる)場合、この鎖は、一本鎖(「ss
DNA」)分子に分離する。異なるdsDNA分子の混合物が、変性され、次い
で相補的な塩基間の水素結合が、再形成される状態に戻される場合、多くの相補
的なssDNA鎖が、互いに「見出され」そしてハイブリダイズし(再アニール
)、本来のdsDNA分子を形成する。核酸のハイブリダイゼーションの過程は
、無数の診断試験についての基礎である:例えば、ドットブロット、サザンブロ
ット、ノーザンブロット、およびFISH分析。
キングした塩基間で疎水性相互作用によって互いに維持される。これらの会合は
、温度を上昇することによって、塩濃度を減少することによって、アルカリ性を
上昇することによって、または種々の有機性試薬を添加することによって崩壊さ
れ得る(すなわち、DNAは変性され得る、すなわち「融解」され得る)。G−
C塩基対は、3つの水素結合を形成するが、一方A−T塩基対は、2つの水素結
合を形成するので、A/TリッチのDNAヘリックスは、G/Cリッチ配列より
も低い温度および/またはより高い塩濃度で融解(変性)する。変性される(一
本鎖のssDNA)を有するdsDNAの量は、種々の物理学的手段および化学
的手段によって決定され得る。溶液中のdsDNA分子内の全塩基対の50%が
崩壊する温度は、融点温度(Tm)と呼ばれる。
ドの安定性は、環境条件に依存される;これらの条件のうちの最も重要な2つは
、温度および塩濃度である。一般的には、DNA二重鎖は、より低い温度および
より高い塩濃度でより安定である。変性したDNAは冷却されるか、またはより
高い塩濃度に供されると、変性したDNAは、自然に再生される。理想的な再生
条件下でかつ十分な時間を考慮して、DNAの一本鎖フラグメントの混合物は、
それらの相補的な配列と再会合(ハイブリダイズ)する。核酸のこの特性は、本
明細書中に開示されたアッセイを設計する基本である。
ドを形成する場合、この2つの鎖の塩基配列の相補性は、完璧でなくてもよい。
不完全に一致したハイブリッド(すなわち、互いの鎖におけるヌクレオチドのい
ずれかのみが、水素結合を形成し得るようにそれらの相補的な塩基と整列される
、ハイブリッド)は、低い温度で形成し得るが、温度が上昇される場合、不完全
なハイブリッド内の相補的な塩基対領域は、新しい環境条件下で互いの2つの鎖
を維持するのに完全な二重鎖分子内の全ての水素結合形成が十分でないという事
実のために解離する。温度および/または塩濃度は、相補的な塩基対の一致の割
合の上昇が、インタクトなままであるハイブリッド二重鎖に必要である、条件を
作製するように漸次的に変化され得る。最終的には、完全なハイブリッドのみが
、二重鎖として存在し得る、条件のセットに達する。このストリンジェンシーレ
ベルを越えると、完全に一致した二重鎖でさえ、解離する。DNAの混合物にお
けるdsDNAの各独特のフラグメントについてのストリンジェンシーな条件は
、その独特の塩基対組成に依存する。ハイブリダイゼーション条件が、ハイブリ
ッド二重鎖を維持するための完全な塩基対相補性を必要とする程度は、「ハイブ
リダイゼーションのストリンジェンシー」という。低いストリンジェンシー条件
は、ある程度のミスマッチした塩基を有する二重鎖分子の形成を可能にする条件
である。高ストリンジェンシー条件は、ほぼ完全な塩基対一致二重鎖を持続する
ことを可能にする条件である。ストリンジェンシー条件の操作は、配列特異的ア
ッセイの最適化の鍵である。
スタルで標識した1つ以上の核酸フラグメントを有することが必要であり、その
結果、このプローブは、標的DNA配列に結合する場合、それらの存在が、容易
に検出され得る。プローブは、多くの核酸型からなり、検出方法および検出され
るべきサンプルの微妙な局面に依存する。これらのプローブは、一本鎖のDNA
またはRNAあるいは変性した二本鎖のDNAまたはRNAであり得る。12か
ら数百塩基長のプローブは、オリゴヌクレオチド合成機を用いて人工的に合成さ
れ得るか、またはこれらのプローブは、種々の型のDNAクローニング由来であ
り得る。このプローブが、検出されるべき標的配列に少なくとも部分的に相補的
である、核酸鎖を含まなければならないというのは、重大な特徴であり、そして
このプローブは、その存在が可視化され得るように本発明の半導体ナノクリスタ
ルで標識されなければならない。
ある。例えば、Schrockら、(1996)Science 273:49
4−497;およびMacvilleら、(1997)Histochem.C
ell.Biol.108:299−305を参照のこと。スペクトル核型決定
測定および蛍光インサイチュハイブリダイゼーション(FISH)測定において
、染色体は、異なる波長および異なる比での色素の組み合わせを用いて染色され
る。これは、異なる染色体を検出するための「バーコード」として作用する。例
えば、染色体分析は、代表的には染色(例えば、Giesma染色)によってな
される。類似の方法において、半導体ナノクリスタルは、上記の技術を用いて染
色体をバーコード化するために使用され得る。特に、上記に説明したように、バ
ーコードの観測(arbitrary)数は、このコード内の任意のスペクトル
のピークの強度を制御する必要性なしに生成され得る。この場合において、DN
Aプローブは、異なる染色体を「ペイント」するように異なる色を放つ、半導体
ナノクリスタルで標識される。この染色体は、スペクトル核型決定測定の間に空
間的に分離されるので、バーコードシステムを使用して、各染色体を標識し得る
。この染色体は、コードする半導体ナノクリスタルのために固体支持体として作
用する。コードシステムのこの型を使用することによって、スペクトル核型決定
の観測数(48より多い)の明白なコードを生成することが可能である。
することも可能である。この方法において、この技術は、伝統的な染色体染色に
取って代わり得る。
る色を使用して、異なる領域を染色する。半導体ナノクリスタルにおいて、各染
色体上の異なる部分は、異なるバーコードを用いてペイントされ得る。この場合
、染色体上の空間的な位置は、異なるコードの基質として作用する。これは、非
常に多数の領域が、同時に標識されることを可能にする。
野で周知の技術を用いて生成され得る。例えば、これらに限定されないが、顕微
解剖化PCR DNAまたはクローン化DNA(例えば、YACS、BACS、
PACなど由来)。
、例示の目的のみに提供され、そして決して本発明の範囲を限定することを意図
しない。
がなされたが、いくつかの実験誤差および偏差は、当然考慮されるべきである。
製造業者の指示に従って使用した。DNAフラグメントのクローニングにおいて
、ここで言及したものを除いて、全てのDNA操作は、標準的な手順に従ってな
される。例えば、Sambrookら、前出を参照のこと。制限酵素、T4DN
Aリガーゼ、E.coli、DNAポリメラーゼI、クレノーフラグメント、お
よびその他の生物学的試薬を、商業的供給者から購入し、そして製造業者の指示
に従って使用した。
ら(1998)Science 281:2013−2016に記載のように合
成される。アフィニティー分子は、当該分野で周知の化学技術を使用して直接的
または間接的に半導体ナノクリスタルに連結される。例えば、米国特許第5,9
90,479号(Alivisatosら);Bruchezら(1998)前
出;およびChanら(1998)Science 281:2016−201
8;Haugland、前出;およびHermanson「Bioconjug
ate Techniques」(Academic Press,NY)を参
照のこと。
抗体、または各々が別個の分析物を特異的に認識および結合し得る複数の異なる
分析物特異的な抗体を、固体支持体に固定化し、そしてこれらに結合する分析物
を、1つまたは複数の半導体ナノクリスタル/分析物特異的抗体の結合体を使用
して、検出する。
れるような種1)を、十分に確立された技術を使用して、固体支持体(例えば、
96ウェルプレートのウェル)に固定化する。支持体に結合した一次抗体の濃度
は、アッセイのために適切であるよう選択される(1ng/ml〜10mg/m
l)。必要に応じて、この支持体を洗浄して、結合していない抗体を除去する。
特異的結合を減少させる(例えば、リン酸緩衝化生理食塩水(PBS)中の1%
BSA+1%抗体種2抗血清(例えば、第一の捕捉抗体種とは別個の抗体))
。必要に応じて、この支持体を洗浄して、過剰のブロッキング剤を除去する。
持体に添加し、そしてこの分析物を一次抗体に結合するに十分な時間(30秒間
〜48時間)にわたってインキュベートする。必要に応じて、この支持体を再度
洗浄して、サンプル中の非特異的な分子および結合していない分析物分子を除去
する。
次抗体とは別個の種3)を、既知の濃度(1ng/ml〜10mg/ml)で添
加し、そして支持体に結合した分析物にこの二次抗体を結合するに十分な時間(
30秒間〜48時間)にわたって、インキュベートする。必要に応じて、この支
持体を洗浄して、結合していない半導体ナノクリスタルと結合体化した二次抗体
を除去する。
、この結合体の半導体ナノクリスタル成分に対応する波長で放出された光の強度
を測定することにより、決定する。
gGでコーティングすることにより、QISAを実施した。コーティングの後に
、このプレートを洗浄し、そして結合していない部位をBSAでブロックした。
これらのプレートを室温で1時間ブロックし、その後、洗浄し、そして0.1n
M〜100nM(PBS中)の範囲の種々の濃度のビオチニル化したヤギ抗ウサ
ギIgGを添加した、これをウェル内で室温で1時間インキュベートし、次いで
洗浄した。100nMのナノクリスタル結合体(ストレプトアビジン結合体)(
これは、580nmに発光ピークを有する)を添加した。このナノクリスタル結
合体をウェル内で室温で1時間インキュベートし、次いで洗浄した。このプレー
トを、Molecular Dynamics spectramax Gem
ini プレートリーダーで読み取った。
体の濃度とともに増加し、この観点での半導体ナノクリスタルの有用性を実証し
た。
て、1つより多い分析物の存在について単一のアッセイで同時に分析し得る。目
的の分析物の各々のうちの1つを認識し得、そして特異的に結合し得る、一次抗
体の種を、固体支持体に結合させ、この支持体を、必要に応じて、上記のように
洗浄し、ブロックし、そして再度洗浄する。次いで、サンプルをこの支持体に添
加し、そして各分析物がその対応する一次抗体に認識され、そしてそれに結合す
るに十分な時間にわたって、インキュベートする。この支持体を、必要に応じて
洗浄して、結合していないサンプルを除去する。各々が目的の分析物の各々の1
つを認識および結合し得る、複数の別個の二次抗体が、別個の種の半導体ナノク
リスタルと結合体化する。各別個の種の半導体ナノクリスタルは、別個に検出可
能な発光特性を有する。
に照射し、そして各種の半導体ナノクリスタルに対応する複数の発光波長を、適
切な装置を使用してモニタリングする。
複数の異なる目的の分析物を含むかまたは含むことが疑われるサンプルを、固体
支持体に吸着させ、そして吸着した分析物を、それぞれ1つまたは複数の半導体
ナノクリスタル/分析物特異的結合体を使用して、検出する。
わたって(30秒間〜48時間)、固体支持体に吸着させる。必要に応じて、こ
の支持体を洗浄して、結合していない分子を除去する。サンプルが吸着された固
体支持体を、適切なブロッキング剤(例えば、PBS中の1% BSA+1%血
清(一次抗体と同じ種))を用いて処理することにより、非特異的な結合を最小
化する。必要に応じて、この支持体を再度洗浄して、過剰のブロッキング剤を除
去する。
団に結合体化した分析物特異的な抗体を既知の濃度(1ng/ml〜10mg/
ml)で添加し、そしてサンプルを吸着した固体支持体とともに、抗体がその対
応する抗体を認識および結合するに十分な時間にわたって(30秒間〜48時間
)、インキュベートする。必要に応じて、この支持体を洗浄して、結合していな
い半導体ナノクリスタルと結合体化した抗体を除去する。
において放出する光の強度を測定することにより、決定する。
半導体ナノクリスタルと各々が結合体形成する、複数の一次抗体種を使用するこ
とにより、直接捕捉QISAを、単一のサンプルにおける複数の分析物を検出す
るために、適合させ得る。支持体に結合した半導体ナノクリスタル−抗体結合体
を、青色光で同時に照射し、そして各半導体ナノクリスタルに対応する複数の発
光波長を、適切な装置を使用して検出する。
数の異なる目的の分析物を含むかまたは含むことが疑われる、流体相サンプルを
、固相支持体に吸着させ、そして吸着された分析物を、1つまたは複数の半導体
ナノクリスタル/分析物特異的抗体の結合体を使用して、検出する。
クロスフィア(例えば、Bangs Laboratories,Inc.、T
echNote#25を参照のこと)に、このミクロスフィアをこのサンプルと
ともに適切な量の時間(30秒間〜48時間)にわたってインキュベートするこ
とにより、吸着させる。必要に応じて、このミクロスフィアを、例えば遠心分離
により洗浄して、結合していないサンプルを除去する。分析物が吸着されたミク
ロスフィアを、半導体ナノクリスタルに結合体化した分析物に特異的な抗体(1
ng/ml〜10mg/ml)とともに、吸着した分析物に抗体が結合すること
を可能にするに十分な時間(30秒間〜48時間)にわたってインキュベートす
る。必要に応じて、このミクロスフィアを洗浄して、結合していない半導体ナノ
クリスタルに結合体化した抗体を除去する。
リスタル結合体からの発光の異なるスペクトルを区別し得る、フローサイトメト
リーまたは静的蛍光光度計を使用して、検出し得る。
半導体ナノクリスタルと各々が結合体形成する、複数の一次抗体種を使用するこ
とにより、流体相QISAを、単一のサンプルにおける複数の分析物を検出する
ために、適合させ得る。支持体に結合した半導体ナノクリスタル−抗体結合体を
、青色光で照射し、そして各半導体ナノクリスタルに対応する複数の発光波長を
、上記のようなフローサイトメトリーまたは静的蛍光光度計を使用して検出する
。
数の異なる目的の分析物を含むかまたは含むことが疑われる流体相サンプルを、
分析物を特異的に認識および結合し得る1つの一次抗体または複数の一次抗体と
ともにインキュベートし、そしてその抗体に結合させる。この一次抗体を、ミク
ロスフィアに固定化する。結合した分析物(単数または複数)を、1つまたは複
数の半導体ナノクリスタル/分析物特異的抗体の結合体を使用して、検出する。
一次モノクローナル抗体(種1)を、十分に確立された技術を使用して、ミクロ
スフィアに固定化する。複数の抗体の濃度は、実施例1に記載したように、アッ
セイに適切であるべきである(1ng/ml〜10mg/ml)。必要に応じて
、このミクロスフィアを洗浄して、結合していない一次抗体を除去する。
が結合体化したミクロスフィアとともに、分析物のそのそれぞれの抗体への結合
を生じさせるに十分な時間にわたって(30秒間〜48時間)、インキュベート
する。必要に応じて、このミクロスフィアを洗浄して、結合していないサンプル
および/または分析物を除去する。
体を、半導体ナノクリスタル/分析物特異的二次抗体の結合体とともに、半導体
ナノクリスタル結合体のミクロスフィアに固定化した分析物への結合を生じるに
十分な濃度(1ng/ml〜10mg/ml)および時間(30秒間〜48時間
)で、インキュベートする。必要に応じて、このミクロスフィアを洗浄して、結
合していない半導体ナノクリスタルに結合体化した抗体を除去する。
スタル結合体からの異なるスペクトルの発光を識別し得る、フローサイトメトリ
ーまたは静的(static)蛍光計を使用して、検出し得る。
に結合した複数の一次抗体種(その各々は、所定の分析物に特異的である)およ
び複数の半導体ナノクリスタル/分析物特異的二次抗体結合体(各結合体は、別
個に検出可能な発光特性を有する半導体ナノクリスタルを含む)を使用すること
により単一のサンプル中の複数の分析物を検出するために適合し得る。支持体に
結合した半導体ナノクリスタル−抗体結合体に、青色光を照射し、そして各半導
体ナノクリスタルに対応する複数の発光波長を、上記のようなフローサイトメト
リーまたは静的蛍光計を使用して検出する。
々の公開された方法を使用して調製する。
にかまたは別々に、その一本鎖形態へと変性し得る。2次構造を有さない合成オ
リゴヌクレオチドからなる半導体ナノクリスタル−FISHプローブの変性は、
必要ない。一本鎖形態の標本およびプローブを、必要に応じてブロッキングDN
Aを含むハイブリダイゼーション緩衝液中でそれらの相補的配列にハイブリダイ
ズさせる(25〜70℃で5分〜一晩)。過剰な半導体ナノクリスタル−FIS
Hプローブを、一連のストリンジェントな洗浄(例えば、25〜72℃にて、ホ
ルムアミドを含むかまたは含まない、0.4〜2×SSC)を使用して除去する
。必要に応じて、その標本を風乾し、そして対比染色して核を位置決めする。
ルデヒド、10%硫酸デキストラン、1×SSC(クエン酸生理食塩水)3μg
のCot1 DNAを含む、ハイブリダイゼーション混合物に添加する。このプ
ローブ混合物をスライド上に堆積させ、そしてカバーガラスをそのプローブ上に
配置する。このスライドを72℃のホットプレート上に3分間配置して、標本お
よびプローブDNAを変性する。一本鎖形態の標本およびプローブを、25〜4
5℃で5分間〜一晩、その相補的配列にハイブリダイズさせる。そのスライドを
2×SSC、0.3% NP−40中にて2分間洗浄することによって、過剰な
半導体ナノクリスタル−FISHプローブを除去する。標本を風乾し、そして対
比染色して核を位置決めする。
微鏡下で可視化する。あるいは、シグナルをレーザー検出器を使用して測定する
。
.Genet.1:24〜28に記載されるように、各々微小切片化し、PCR
増幅し、そしてビオチン−dUTPで標識した。末梢血リンパ球由来の中期スプ
レットを含むスライドを、従来の細胞遺伝学技術を使用して調製し、そして70
%ホルムアミド、2×SSC(クエン酸生理食塩水)中で72℃で2分間変性し
た。次いで、このスライドを一連の70%エタノール、85%エタノールおよび
100%エタノールで各々1分間脱水し、そして風乾した。ハイブリダイゼーシ
ョン混合物(50%ホルムアミド、10%硫酸デキストラン、1×SSC、3μ
g Cot1 DNA中、10ng/μlの各全染色体プローブDNA)を、7
2℃で5分間変性し、そしてスライド上に配置した。カバーガラスを各スライド
上に配置し、そしてゴムのりで密封した。このスライドを加湿チャンバ中で37
℃で一晩インキュベートした。ハイブリダイゼーション後、42℃の2×SSC
、50%ホルムアミドで各3分間3回洗浄し、続いて室温で2×SSCで3分間
リンスした。次いでこのスライドを、4×SSC、0.1% Tween 20
、1% BSA(ウシ血清アルブミン)で30分間ブロックして、非特異的結合
を妨げた。最後に、このスライドを、PBS(リン酸緩衝化生理食塩水)中40
nMの630nm半導体ナノクリスタル−ストレプトアビジン、1% BSA、
10mM MgCl2とともに、室温で1時間インキュベートした。PBS中お
よび10nMのリン酸緩衝液中でこのスライドをリンスすることによって、過剰
な半導体ナノクリスタル−ストレプトアビジンおよび塩を除去した。このスライ
ドを風乾し、そして蛍光顕微鏡を用いて検査した。
このことは、この状況において半導体ナノクリスタルを使用することの有用性を
示した。
otecniques 17:928〜933;およびHeiskanenら(
1995)Genomics 30:31〜36により記載されるようなFib
er FISH形式で、使用した。詳細には、10kb DNAプローブを、ビ
オチン−11−dUTP(Sigma Chemical)を使用するニックト
ランスレーションによって標識した。Fiber FISHスライドを、Hei
skanenら(上記)に記載されるように調製した。72℃で4分間の70%
ホルムアミド、2×SSC中でこのスライドを変性し、続いて一連の70%エタ
ノール、85%エタノールおよび100%エタノールで脱水した。ビオチン標識
DNAプローブ2.5〜7.5ng/μlを、50%ホルムアミド、10%硫酸
デキストラン、2×SSC、0.2μg/μlニシン精子DNA、0.25μg
/μl Cot−1 DNAを含む、ハイブリダイゼーション混合物に添加した
。この混合物をスライド上に配置し、カバーガラスを各スライド上に配置し、そ
して加湿チャンバ中で37℃で一晩ハイブリダイズした。50%ホルムアミド、
2×SSCを各5分で3回、2×SSCを各5分間で2回、そして0.5×SS
Cで5分間の最終洗浄(すべて45℃)でこのスライドを洗浄することによって
、過剰なプローブを除去した。スライドを、5% BSA、4×SSC、0.0
5% Tween 20中で37℃で15分間インキュベートして、非特異的結
合をブロックした。PBS中40nMの半導体ナノクリスタル−ストレプトアビ
ジンン、1% PBSおよび10mM MgCl2中でインキュベートすること
、続いてビオチン化抗アビジン抗体および別の層の半導体ナノクリスタル−スト
レプトアビジン結合体中でインキュベートすることによって、ビオチン化プロー
ブを検出した。このスライドをPBS中でリンスし、5μg/μl DAPI(
Sigma Chemical)で染色し、そして蛍光顕微鏡中で検査した。
、物理的マッピングポジショナルクローニングのための半導体ナノクリスタルの
有用性を示した。
開された方法を使用して調製する。
本鎖形態にする。一本鎖形態の標本およびプローブを、必要に応じてブロッキン
グDNAを含むハイブリダイゼーション緩衝液中でそれらの相補的配列にハイブ
リダイズさせる(例えば、25〜70℃で5分間〜一晩)。
な洗浄(例えば、25〜72℃の、ホルムアミドを含むかまたは含まない、0.
4〜2×SSC)を使用して除去する。必要に応じて、標本を風乾し、そして対
比染色して核を位置決めする。
微鏡下で可視化する。あるいは、そのシグナルを、レーザー検出器を使用して測
定し得る。
末端または5’末端にて、半導体ナノクリスタルで標識する。50%ホルムアミ
ド、10%硫酸デキストラン、1%サルコシル、0.02Mリン酸ナトリウム、
4×SSC、1×デンハルト溶液、および10mg/ml ssDNAを含むハ
イブリダイゼーション混合物にこのプローブを添加する。このプローブ混合物を
標本に添加し、カバーガラスをプローブ上に配置し、そしてプローブとmRNA
を、加湿チャンバ中で42℃で16〜20時間ハイブリダイズさせる。ハイブリ
ダイゼーション後、55℃の1×SSC中で数回洗浄することによって、過剰の
プローブを除去し、そして風乾する。次いで、このスライドを、蛍光顕微鏡下で
検査する。
ッセイ) FISHアッセイについての標本を、上記のような、標本型に依存する種々の
公開された方法を使用して調製する。
かまたは別々に変性してその一本鎖形態にし得る。
スタル−FISHプローブを、必要に応じてブロッキングDNAを含むハイブリ
ダイゼーション緩衝液中でそれらの相補的配列にハイブリダイズさせる(25〜
70℃で5分〜一晩)。
ブを、一連のストリンジェントな洗浄(例えば、37〜72℃の、ホルムアミド
を含むかまたは含まない、0.4〜2×SSC)を使用して除去する。
して、半導体ナノクリスタルRNAプローブからの蛍光を検出し、そしてその細
胞のDNA蛍光シグナルを、同時に検出する。あるいは、まれな細胞を、顕微鏡
を使用するさらなるDNA分析のために他に選別する。
ーブを、50%ホルムアミド、10%硫酸デキストラン、1〜4×SSC(クエ
ン酸生理食塩水)、3μgのCot1 DNA、10mg/ml ssDNAを
含む、ハイブリダイゼーション混合物に添加する。このプローブ混合物をスライ
ド上に堆積させ、そしてカバーガラスをそのプローブ上に配置する。このスライ
ドを72℃のホットプレート上に3分間配置して、標本およびプローブDNAを
変性する。一本鎖形態の標本およびプローブを、25〜45℃で一晩、その相補
的配列にハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーション後、55℃の1×SS
C中で数回洗浄することによって、過剰なプローブを除去し、そして風乾する。
標本を対比染色して核を位置決めする。
微鏡下で可視化する。あるいは、そのシグナルを、レーザー検出器を使用して測
定し得る。
の細胞表面タンパク質に特異的な他の色素標識を含む抗体(例えば、抗CD4ま
たは抗CD14)で標識する。
Diagnostics))の添加によって固定および透過化処理する。インキ
ュベーション後、その細胞をペレットにし、そして洗浄する。
ノクリスタル−FISHプローブを含むハイブリダイゼーション緩衝液を用いて
、FISHアッセイのために再懸濁する。この混合物を、その相補的配列にハイ
ブリダイズさせる(25〜70℃で、5分間〜一晩)。
な洗浄(例えば、37〜72℃にて、ホルムアミドを含むかまたは含まない、0
.4〜2×SSC)を使用して除去する。
半導体ナノクリスタルRNAプローブからの表面免疫蛍光(immunoflu
orescence)および蛍光を同時にソートおよび/または検出し得る。
うな試薬の添加により、標品細胞を固定し、透過させる。インキュベーション後
、細胞を、沈殿させ、そして洗浄する。ハイブリダイゼーション緩衝液中のFI
SHアッセイのために細胞のペレットを再懸濁する。ハイブリダイゼーション混
合物は、DNAまたはRNAについての半導体ナノクリスタル−FISHプロー
ブ、50%ホルムアミド、10%硫酸デキストラン、14×SSC、3μg C
ot1DNA(DNAプローブ用)および10mg/ml ssDNA(RNA
プローブ用)を含む。この混合物を72℃で2分間変性させ、そして25℃から
45℃で一晩ハイブリダイゼーションさせる。1×SSC中で55℃で数回洗浄
して過剰なFISHプローブを除く。標準的免疫組織化学手順を用い、目的のタ
ンパク質に対するマウス由来のモノクローナル抗体を用いて、標品細胞に結合さ
せる。過剰な抗体を除去し、半導体ナノクリスタル標識抗マウスIgGとともに
標品をインキュベートする。過剰の半導体ナノクリスタル抗マウスIgGを除去
し、そして標品細胞を蛍光顕微鏡下で検査し得る。あるいは、フローサイトメー
ターまたは他の類似の検出器を用いて標品をスキャンし得るか、ならびに/また
は半導体ナノクリスタルFISHプローブおよび半導体ナノクリスタル標識抗体
からの蛍光を検出し得る。
添加により標品細胞を固定し、そして透過させた。インキュベーション後、細胞
をペレット化し、洗浄する。
タル順プライマーおよび半導体ナノクリスタル逆プライマー(目的のDNAまた
はRNAについて)、Taqポリメラーゼおよびゼラチンとともに、PCR反応
混合物を用いて、細胞のペレットを再懸濁する。
クラー中で増幅する。
る半導体ナノクリスタルオリゴヌクレオチドプローブとともに(そして必要に応
じてバックグラウンドのノイズを減じるため、ブロッキングDNAとともに)ハ
イブリダイゼーション混合物中でペレットを再懸濁する。
ーブとともにハイブリダイズ(25℃〜70℃で5分〜一晩)させる。
ともにまたはホルムアミドなしで、0.4×SSC〜2×SSC)を用いて、過
剰な半導体ナノクリスタルオリゴヌクレオチドプローブを除く。
いて、半導体ナノクリスタルオリゴヌクレオチドプローブからの蛍光シグナルを
検出する。
extender)オリゴヌクレオチド中の配列に相補的な配列を有するよう
に設計する。この配列は長さが10〜25ヌクレオチドの範囲であり得る。この
DNA捕捉プローブ配列を化学的に合成し、そして精製する。
捕捉プローブをマイクロタイタープレートの壁の表面に結合体化する。分析物を
1つ以上のオリゴヌクレオチド(捕捉伸長物)(第1相補配列および第2相補配
列を有する)によりマイクロタイター支持体上に固定する。第1の配列は、標的
分析物中の配列に相補的であり、そして第2の配列は、支持体−結合捕捉プロー
ブ中の配列に相補的である。この捕捉伸長物およびサンプルは、アッセイに対し
て同時に添加できる。あるいは、捕捉伸長物を添加し、サンプルの添加の前に、
支持体結合捕捉プローブ中の相補配列にハイブリダイズさせることができる。ハ
イブリダゼーションは、捕捉プローブに対する捕捉伸長物のハイブリダイゼーシ
ョンおよび捕捉伸長物に対する標的分析物のハイブリダイゼーションに作用する
のに十分な一定時間の好ましいハイブリダイゼーションの条件下で生じ得る。こ
のアッセイ様式は、2つの捕捉伸長物が標的にハイブリダイズする場合(ここで
は、その第1の相補配列は、標的分析物中の別個のセグメントに相補的である)
のみ、標的分析物が、固体支持体に固定されるように設計され得る。さらに、支
持体−結合捕捉プローブおよび捕捉伸長物は、捕捉伸長物中の第2の捕捉配列が
、捕捉プローブ中の別個のセグメントに相補的であるように設計され得る。従っ
て、標的を固体支持体に固定するために、2つの別個の捕捉伸長物の第2の相補
的配列を、捕捉プローブ中の別個の相補配列および標的分析物中の別個の配列に
ハイブリダイズした捕捉伸長物の第1の相補配列にハイブリダイズした。。
行い、固体支持体上に保持されない材料を分離する。
択する。これらの標的プローブオリゴヌクレオチドの各々は、増幅オリゴ内の核
酸配列に実質的に相補的な第2の配列セグメントを含む。ハイブリダイゼーショ
ンを行わせる。ハイブリダイゼーション後、適切なストリンジェントな条件下で
洗浄工程を実施する。
た複数の標識プローブ部位を含む。ハイブリダイゼーションを行う。ハイブリダ
イゼーション後、適切なストリンジェントな条件下で洗浄工程を実施する。
にハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーションを行う。ハイブリダイゼーシ
ョン後、適切なストリンジェントな条件下で洗浄工程を実施する。
波長で放射された光の量を測定する。検出波長での光放出は、存在する標的核酸
の量に比例する。
yered Amplification Assay)におけるシグナル増幅
) 確立された技術により、サンプルを固体支持体に固定する。未結合のサンプル
を固体支持体から洗浄する。
結合体化半導体ナノクリスタルをアビジン(またはストレプトアビジン)と、特
定の比で混合し、複合体を形成する。この複合体は、いくつかの遊離のまだ利用
可能なビオチン結合部位を有する、複数の内部結合アビジン半導体ナノクリスタ
ル複合体から構成される。この複合体のアリコートを、固定されたビオチン標識
抗体/抗原複合体に添加する。適切な条件を用いて、未結合複合体を洗浄する。
ことにより、アッセイの結果を決定する。
ースのアッセイ) 5×106の10μmポリスチレン−ジビニルベンゼン、ジアミノドデカンビ
ーズをエタノールでリンスし、次いで0.05%NaN3を含有するリン酸緩衝
化生理食塩水(PBS)で2回リンスする。次いでこれらを1mlのこの溶液に
再懸濁し、そして以下の試薬のそれぞれを連続的に用いて1時間インキュベート
する(各インキュベーションの間は2回の洗浄工程):50μg/ml BSA
−ビオチン(ウシ血清アルブミン−ビオチン化)を含有するPBS/NaN3、
50μg/mlストレプトアビジン(PBS/NaN3)、レセプターの非相互
作用領域に特異的に結合する50μg/mlのビオチン化モノクローナル抗体(
例えば、Mab179)、およびレセプター(9例えば、IL−5)の2μg/
mlの精製した細胞外ドメイン。
ンビーズをエタノールでリンスし、次いで0.05%NaN3を含有するPBS
で2回リンスする。次いでこれらを1mlのこの溶液中に再懸濁し、そして以下
の試薬のそれぞれを連続的に用いて1時間インキュベートする(各インキュベー
ションの間は2回の洗浄工程):50μg/ml BSA−ビオチンを含有する
PBS/NaN3、50μg/mlストレプトアビジンを含有するPBS/Na
N3、レセプターの非相互作用領域に特異的に結合する50μg/mlのビオチ
ン化モノクローナル抗体(例えば、Mab179)、およびレセプター(9例え
ば、IL−5)の2μg/mlの精製した細胞外ドメイン。
。この懸濁液を各5000ビーズを含む8つのウェル中に分配した。各レセプタ
ー(IL−1およびIL−5)の5000ビーズを、図3に示すように、8つの
ウェルの2つのさらなるセット中に配置する。
1レセプターアンタゴニストおよびIL−5レセプターアンタゴニストを結合体
化する。これらを、保存溶液中で16nMに調製し、次いで階段稀釈した(0.
1nM、10nM、100nM、1μM、10μM、100μM、1mM)競合
分子と等量で混合する。これらの溶液の50μlをそれぞれのウェルに添加する
。各ウェル1〜8は、特有の濃度のインヒビター(上記)を含み、列A−C(図
3)のそれぞれは、同一の条件で異なるビーズのみを含む。インキュベーション
後、各ウェルからのビーズを、フローサイトメトリー分析のためチューブに移す
が、他の分析技術が好ましくあり得る。細胞計数器でビーズを個々の事象に分け
、488nmレーザーで同時に励起する2つの波長の光(例えば、赤色および緑
色の半導体ナノクリスタルからの蛍光)の検出を可能にする。このアッセイにお
いて、リガンドは、リガンド−レセプター対の1つ、両方を阻害し得、またはど
ちらも阻害し得ない。インヒビターが両方のシステムに無効である場合、結果は
インヒビターの濃度にわたって均一であり、そしてコントロールウェルからほと
んど変わらないはずである。インヒビターがこれらのアッセイの1つでのみ効果
的である場合(例えばIL−1だけに対して)、次いで列A中のウェルは、より
高いインヒビター濃度のビーズに関連する赤色蛍光の減少がある。
プター−リガンド対の結合が50%阻害される濃度(これは、IC50として公
知)が明らかとなる。対照的に、C欄(図3)のウェルは、あらゆる濃度のイン
ヒビターの存在によっても影響を受けていない。中央のレーンでは、真の多重(
multiplex)アッセイを実施する。この結果は、より高い濃度では、よ
り低い強度の赤色の蛍光を発色するビーズ(結合の阻害に起因する)として、お
よび均一な強度の緑色の蛍光を発色するビーズ(IL−5相互作用の阻害の欠如
に起因する)として、観察される。均一に染色された緑色ビーズは、赤色発光ビ
ーズの各阻害系列全体を通して存在する。
セプターまたはリガンドに各々結合体化された、種々の異なる色(従って、異な
るサイズまたは組成)の半導体ナノクリスタルを使用して、個数が有意に2を超
えて拡大され得るという点で、色素分子を使用する標準的な様式を超えた利点を
有する。さらに、どのシンチレーション事象も、リガンド−レセプター対の形成
に起因する(低濃度限界において)という事実は、これを非常に高感度な技術に
する。高感度技術について標準的な多重化方法は、存在していない。
半導体ナノクリスタルは、その核の崩壊に際して光を放出するように作製され得
る。この核の崩壊は高エネルギー放射線を生成し、この高エネルギー放射線は、
溶媒によって散逸させられ、そして半導体ナノクリスタルを励起して、それらに
光を放出させ得る。効率的に半導体ナノクリスタルに光を放出させるために、核
を密接に近接させておくことが必要である。これは、リガンド−レセプター相互
作用を通して達成され得る。ここでは、一方を放射性標識し、そして他方を半導
体ナノクリスタルに結合体化する。この均一アッセイ様式は、溶液中で、すべて
のレセプター−リガンド対(この各々は、固有の領域のスペクトルにおいて閃光
を発するように調製され得る)の自由な会合を可能にするという点で有利である
。緑色領域、黄色領域、および赤色領域のスペクトルにおいて発光し、そしてス
ペクトル的に十分に分解される半導体クリスタルを、それぞれ、IL−1レセプ
ター、IL−5レセプター、およびIL−12レセプターに対する3つの異なる
リガンド(レセプターアンタゴニスト)に結合体化する。これらの各半導体ナノ
クリスタル−レセプターアンタゴニスト結合体において1nMである溶液を調製
する。アリコートを、目的のインヒビターの濃度系列と混合し、そしてRA−半
導体ナノクリスタルと同一の最終容量および濃度にする(各々0.75nM)。
放射性標識化(3H)IL−1、IL−5、およびIL−12レセプター細胞外
ドメインを、当該分野において公知のプロトン置換(proton excha
nge)によって調製する。リン酸緩衝化生理食塩水中で1nMの3つすべての
これらのトリチウム化タンパク質を含むストックを調製する。このストックを、
レセプターに対してリガンドを大過剰に、0.001nMの各レセプターの最終
濃度を生じるように添加する。シンチレーションは、候補インヒビターによって
阻害されないレセプターアンタゴニストに結合している半導体ナノクリスタルか
らのみ観察される。より低いシグナルは、阻害が有効である場合に、特徴的な色
で観察される。これらは、インヒビターを有さないコントロールウェルに対して
参照され得る。
プレート全体を画像化し得る。必要とされるのは、カメラが、長期間にわたって
収集された光を集積することのみである。なぜなら、シンチレーションは、低バ
ックグラウンド技術であるからである。さらに、複数のフィルターを使用して、
各リガンド−レセプター対から生じるシグナルを分離し得る。図4では、レーン
A、BおよびCは異なるインヒビターを含む(レーンAはIL−1のみ、レーン
BはIL−5およびIL−12、そしてレーンCはすべてのレセプター)。
であり得るかを決定する。このシステムの1つの主要な利点は、スペクトル的に
分解される半導体ナノクリスタルを生成し得る限り多くのリガンドを用いて、こ
れが実施され得るという点である。300nm〜1.5μmの範囲が、半導体ナ
ノクリスタルの製造に利用可能であるので、20色より多いウェルが、均一反応
様式における多重化について利用可能である。さらに、どのシンチレーション事
象も、リガンド−レセプター対形成に起因する(低濃度限界において)という事
実は、これを非常に高感度な技術にする。高感度技術について多重化し得る公知
技術は、これまで存在しない。
存在または不在を決定するための簡便な方法である。半導体ナノクリスタルを、
対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドプライマー対の5’末端標識に使用する。
これらのプライマーは、PCRまたは他のDNA増幅反応において使用され、そ
の結果、目的の標的配列は、数を増幅(すなわち、増加)される。配列特異的オ
リゴヌクレオチドプローブを合成し、そして表面上に固定して、捕捉プローブに
する。増幅された標的をこの表面に適用し、そして温度および塩濃度に関して十
分にストリンジェントな条件下でハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーショ
ン後、結合していない物質を洗い流す。表面上に固定された半導体ナノクリスタ
ルの存在は、許容される吸光波長で励起し、そして半導体ナノクリスタル発光波
長で測定することによって検出される。表面上での半導体ナノクリスタル発光の
存在は、存在する増幅された標的DNAの量に正比例する。
5ヌクレオチド長の範囲であり得る。このDNAプローブ配列は、化学的に合成
されるか、または精製される。種々の標準的な化学的結合のいずれか1つを使用
して、プローブを、マイクロタイタープレートのウェル表面に結合体化する。
列の部分を特異的に増幅するように選択する。2つのプライマーの各々の5’末
端を、525nmの発光ピークを有する半導体ナノクリスタルで標識する。これ
らの2つのプライマーを使用して、標準的なPCR反応において標的DNAの規
定された部分を増幅する。半導体ナノクリスタルをプライマーに結合体化し、そ
してこのプライマーを、増幅された標的となるように伸長させるので、この半導
体ナノクリスタルは、増幅された標的の5’末端に結合される。
性もしくは一本鎖にし得る。
ターウェルに、20μlの増幅標的および480μlの5×SSPE緩衝液を添
加すること、そして60分間37℃でインキュベートすることによって実施する
。ハイブリダイゼーション後、500μlの3×SSPEを添加すること、そし
て15分間37℃でインキュベートすることによって、ストリンジェント条件下
での洗浄工程を実施する。このウェルを、水で2回リンスする。
光を有する半導体ナノクリスタルを表面に結合させる。このウェルを、蛍光定量
計で走査する。UV光をウェルに放ち、そして525nmのリン光の量を測定す
る。525nm発光の存在は、固定されたプローブ捕捉半導体ナノクリスタル標
識化増幅標的を示し、そしてストリンジェントな洗浄工程および水リンス工程後
にハイブリダイズされたままであったことを示す。
れらの配列は、15〜25ヌクレオチド長の範囲であり得る。これらの3つのD
NAプローブ配列は、化学的に合成されるか、または精製される。
ずれか1つを使用して、これらのプローブを、マイクロタイタープレートのウェ
ル表面に結合体化する。
のプライマーは、各対が3つのDNAプローブに相補的な領域を含む標的DNA
配列の部分を特異的に増幅するように選択する。プライマーの第1対の各々の5
’末端を、525nmの発光ピークを有する半導体ナノクリスタルで標識する。
プライマーの第2対の各々の5’末端を、580nmの発光ピークを有する半導
体ナノクリスタルで標識する。プライマーの第3対の各々の5’末端を、650
nmの発光ピークを有する半導体ナノクリスタルで標識する。
において標的DNAの3つの規定された部分を同時に増幅する。3つの半導体ナ
ノクリスタル型の各々をそれらの個々のプライマーに結合体化し、そしてこのプ
ライマーを、増幅された標的となるように伸長させるので、3つの増幅標的配列
の各々は、半導体ナノクリスタル色で標識され、この色によって、それらの個々
のプライマーが標識される。
を変性もしくは一本鎖にし得る。
グしたマイクロタイターウェルに、20μlの増幅標的および480μlの5×
SSPE緩衝液を添加すること、そして60分間37℃でインキュベートするこ
とによって実施する。ハイブリダイゼーション後、500μlの3×SSPEを
添加すること、そして15分間37℃でインキュベートすることによって、スト
リンジェント条件下での洗浄工程を実施する。このウェルを、水で2回リンスす
る。
V光によりウェルに光を当て、そして525、580および650nm波長での
燐光の量を測定する。525nm発光の存在は、固定化されたプローブが、第1
の半導体ナノクリスタル標識された増幅された標的を捕捉し、そしてストリンジ
ェントな洗浄および水でのリンス工程の後にハイブリダイズしたままであったこ
とを示す。580nm発光の存在は、固定化されたプローブが第2の半導体ナノ
クリスタル標識された増幅された標的を捕捉したことを示す。650nm発光の
存在は、固定化されたプローブが第3の半導体ナノクリスタル標識された増幅さ
れた標的を捕捉したことを示す。
する。
在を決定するための簡便な方法である。2つのPCRプライマーを選択し、そし
て目的の領域(例えば、単一ヌクレオチド多型(SNP)の部位)をPCR増幅
する。いずれかのプライマーの3’末端がSNPの部位で直ぐ終わるか、または
SNPの5ヌクレオチド内にあるように、配列特異的伸長プライマーを選択する
。このプライマーは、マイクロタイタープレートウェルまたはビーズのような表
面に対してその5’末端で結合体化する。完全な配列相補性がない場合、塩基ミ
スマッチは、配列特異的伸長プライマーにより形成された二本鎖複合体およびP
CR増幅標的を破壊する。DNAポリメラーゼは、結合のための部位を有さない
。そのため、伸長は起こらない。プライマーおよび増幅標的配列が相補性である
場合、配列特異的伸長が生じる。伸長反応混合物が標識されたdNTP(例えば
、半導体ナノクリスタル標識dGTP)を含む場合、伸長の存在または非存在を
検出し得る。このことは、本来の標的配列の決定を可能にする。
るように、2つの異なるDNA配列特異的プライマー配列を選択する。これらの
配列は、15〜25ヌクレオチド長の範囲であり得る。第1の配列は、対立遺伝
子Aと完全に相補性であり、プライマーAとよばれる。第2の配列は、対立遺伝
子Bと完全に相補性であり、プライマーBとよばれる。
イマーAの5’末端を、種々の標準的な化学的結合のいずれか1つを用いてマイ
クロタイタープレートのウェル表面に結合体化する。
てマイクロタイタープレートの第2のウェル表面に結合体化する。半導体ナノク
リスタル−dGTP結合体を調製し、そして精製する。半導体ナノクリスタルを
525nm発光で選択する。2つのPCRプライマー配列が、評価されるSNP
を含む標的DNA配列の一部を特異的に増幅するように、この2つのプライマー
配列を選択する。これら2つのプライマーを用いて、標準的PCR反応(Amp
liTaqポリメラーゼ、dNTP、塩化マグネシウム、緩衝液および標的DN
A)において標的DNAの規定された部分を増幅する。
mM 塩化マグネシウム、緩衝液、200μM dATP、200μM dTT
P、200μM dCTP、20μM dGTP、および200μM 半導体ナ
ノクリスタル−dGTP結合体を組合わせることにより行う。この溶液の95μ
lを、配列特異的プライマーでコーティングしたマイクロタイターウェルに添加
する。
ことにより一本鎖にする。5μlの変性させた標的を、マイクロタイタープレー
トのウェルに含まれる95μlの反応溶液に添加する。伸長反応を60℃で5分
間行う。
ベートすることにより、変性条件下での洗浄工程を行う。ウェルを水で2回リン
スする。
所では、525nm発光を有する半導体ナノクリスタルが伸長配列に組み込まれ
、従って配列特異的ハイブリダイゼーションを介してプレートの表面に接続され
ている。このウェルを蛍光測定器でスキャンする。UV光によりウェルに光を当
て、そして525nmでの燐光の量を測定する。
識された増幅された標的を捕捉し、そしてストリンジェントな洗浄および水での
リンス工程の後にハイブリダイズしたままであったことを示す。
箇所をPCR増幅した標的DNAの隣接配列にハイブリダイズさせる。DNAリ
ガーゼは、2つのオリゴヌクレオチドプローブが好ましくはハイブリダイズする
(これは変異が存在しない場合に生じる)場合のみ、これら2つのオリゴヌクレ
オチドプローブを共有結合する。最初の研究は、一方のプローブをビオチンでタ
グ化し、そして他方をジゴキシゲニンのようなレセプター分子でタグ化した。ス
トレプトアビジンでコーティングしたマイクロタイタープレートへ移す際に、洗
浄工程は、連結が生じなければ、レポーター標識プローブを除去する。従って、
シグナル検出は、変異が存在しない場合にのみ生じる。この技術を、2つの異な
る呈色を生じ得るように、2つの対立遺伝子特異的プライマーの各々を異なる酵
素レポーター分子でマーキングすることによって、1つのマイクロタイターウェ
ル中のこれらの対立遺伝子を型決定(typing)する方法により改善した。
連結技術の進歩により、易動度改変テールおよび蛍光タグ(例えば、FAM、H
EXまたはTET)を有するジゴキシゲニンがビオチンに取って代わった(連結
産物を電気泳動し、そして自動化配列決定機で分析する)。これらの改変は、い
ずれか1つの時点でスクリーニングされ得る公知の点変異部位の数を増大するこ
とを可能にする。
リゴの3’末端は単一オリゴヌクレオチド多型(SNP)に対して最後のヌクレ
オチドで終わる。この配列は、15〜25ヌクレオチド長の範囲であり得る。
このオリゴの3’末端はまた、SNP部位に対して最後のオリゴヌクレオチドで
終わる。この配列は、15〜25ヌクレオチド長の範囲であり得る。
オリゴプローブを、種々の標準的な化学的結合のいずれか1つを用いて、マイク
ロタイタープレートのウェル表面にそれらの5’末端で別々に結合体化する。
したオリゴヌクレオチド配列の3’末端に直接隣接する。この配列は、15〜2
5ヌクレオチド長の範囲であり得る。
ブの3’末端を、525nmでの発光を有する半導体ナノクリスタルと結合体化
する。
において行う。この反応系は、水性溶液中の連結プローブ、変性または一本鎖標
的DNA、T7リガーゼ、塩化マグネシウム、および緩衝液からなる。
回熱サイクルさせて、標的の等差級数的増幅(arithmetic ampl
ification)を達成し得る。
用する。この配列特異的オリゴヌクレオチドおよび連結プローブの両方は、一本
鎖の標的DNAにアニールする。T7酵素は、配列特異的オリゴの3’末端を連
結プローブのリン酸化5’末端に連結する。
ルされた特異的オリゴの3’末端でのミスマッチは、連結反応を防ぐに十分であ
る。
クリスタルは、ウェルの底に固定される。このウェルを、蛍光計でスキャンする
。UV光を、ウェル上に放ち、そして525nmでの燐光の量を測定する。
連結反応を介してウェルの表面に固定され、そして水でのリンス工程後も残存し
たことを示す。
レイ) 組織マイクロアレイを、Kononenら(1998)Nat.Med.4:
844−847に記載されるように調製した。腫瘍マイクロアレイブロックを、
3〜8μmの切片に切断し、脱パラフィン化(deparafinize)し、
そして従来技術の使用によって免疫化学のために調製した。マウスからサイトケ
ラチン8/18へのモノクローナル抗体を使用して、細胞内部へサイトケラチン
を結合する。過剰な抗体を取り除き、試料をビオチン化抗マウスIgGとともに
インキュベートし、その後、40nMの半導体ナノクリスタル−ストレプトアビ
ジンとインキュベートした。過剰な半導体ナノクリスタル−ストレプトアビジン
を取り除き、そしてスライドを蛍光顕微鏡の下で検査した。
) 上記で説明したように、半導体ナノクリスタルを使用して、組織サンプルまた
は血液サンプル、あるいは細胞マーカーもしくは細胞外マーカーの多重分析を必
要とする任意のサンプル上で染色する多重分析を行い得る。手順を、二段階反応
において行い、それによって、一次抗体は、半導体ナノクリスタル結合体化抗体
に続くか、または抗体(もしくは他の生体分子)を使用して、半導体ナノクリス
タル結合体に続き、サンプルを直接標識する。例えば、5つ以上の異なる集団の
半導体ナノクリスタルが、490〜650nmの40nmの間隔の放射スペクト
ルとともに合成される。半導体ナノクリスタルの各々のスペクトルで異なる集団
は、異なる分子に結合体化され、この異なる分子は、分析されるべきサンプル中
に存在し得るかまたはしないかもしれない、目的の生体分子を特異的に認識する
。標準的な染色プロトコル後、サンプルを、半導体ナノクリスタルで標識し、そ
して標的分子の位置および量について分析する。
緩衝液は、PBS+0.1% BSA+NaN3(または類似の緩衝液)である
。活性群をブロックする。サンプルを洗浄し、そして半導体ナノクリスタル結合
体(数は、評価されるパラメータの数に依存する)とインキュベートする。次い
で、サンプルを洗浄し、マウントし、そして従来の蛍光顕微鏡技術または上記の
ようなスペクトルスキャニングデバイスを使用して分析する。
同じ6色で標識する。この場合、6つの異なる化合物を、細胞内の各々の異なる
位置において明白にモニターし得る。
する。ここで、各々のセットは、他と比例して、わずかな波長シフトを有する。
例えば、核に位置するタンパク質を、500nm、530nm、560nm、5
90nm、620nmおよび650nmで放射する半導体ナノクリスタルで標識
し、一方、細胞膜に位置するタンパク質を、505nm、535nm、565n
m、595nm、625nmおよび655nmで放射する半導体ナノクリスタル
で標識する。異なるセットの色を使用する利点は、化合物の位置が既知ではない
場合、異なる細胞性化合物のこの型の「バーコード付加(barcoding)
」を使用して、各々の位置を明白に決定し得ることである。問題は、スペクトル
の同じ半導体ナノクリスタル(例えば、550および555)が同時局在する(
colocalize)場合にのみ生じる。しかし、もしこれが生じると、情報
は、第二の実験において使用され得る。ここで、同時局在した化合物上の標識は
、スペクトルの重複を排除するように再配列される。例えば、同時局在する55
0nmおよび555nmを放射する半導体ナノクリスタルの例において、555
nmの標識は、590nmを放射する半導体ナノクリスタルを用いた第二の実験
に置換される。異なる細胞性化合物のバーコード付加により、CdSe半導体ナ
ノクリスタルが細胞内部の150の異なる化合物と同じ数の位置を探知すること
が可能であり得る。他の半導体ナノクリスタル材料(例えば、CdTe、InP
、InAs、CdSなど)の使用は、この数を劇的に増加し得る。
ターアッセイ(例えば、競合ラテックス免疫アッセイ)において使用され得る。
本出願において、検出剤は、半導体ナノクリスタルまたは半導体ナノクリスタル
をコードした固体結合体である。この結合体は、分析物を特異的に認識する分子
である。抗原結合体は、フィルター孔を通過するに十分小さな、直接的な半導体
ナノクリスタル抗原結合体または半導体ナノクリスタルで染色されたミクロスフ
ェア−結合体である。
た多重同時検出を可能にする。この検出は、フィルター上または濾液中で起こり
、そしてアッセイは、ハイスループットのマルチウェル環境において行われ得る
。この型式におけるフィルターは、励起光に不伝導であり、そして洗浄またはサ
ンプル除去の必要性を伴わずに、濾液において半導体ナノクリスタルの検出を可
能にする。
用して、フィルター孔の直径よりも大きな直径を有するミクロスフェア上に固定
する。抗体結合体を、上部のチャンバの適切な緩衝液(例えば、PBS)中に置
くか、または光非浸透性の多孔性フィルタ(例えば、BDフッ化ブロック(fl
uoblock)フィルタ)によって、プレートの底から分離された96ウェル
プレートに挿入する。分析物およびフィルター孔の直径よりも小さな直径を有す
る半導体ナノクリスタルで標識された標準的な量の分析物を、上部チャンバに添
加するか、または挿入する。適切なインキュベーション時間(例えば、30秒〜
24時間)後に、下部チャンバの蛍光の量を、上記のスペクトル分析システムに
よって定量化する。
する。これは、特に、診断型試験における複数の分析物の測定に有用であり、そ
してまた、環境調査適用または環境スクリーニング適用に有用であり得る。サン
プル中の分析物の濃度が高い程、下部チャンバにおいて検出される蛍光の量も多
くなる。従って、このシステムは、分析物濃度に関して、所望の増加曲線を提供
する。
セイの図である。
明の好ましい実施形態を、いくらか詳細に記載したが、明らかな変化が、添付の
特許請求の範囲によって規定されるような、本発明の趣旨および範囲から逸脱す
ることなくなされ得ることが理解される。
である。図1Aは、実施例1において記載されるようなサンドイッチQISAの
絵で表した表示である。図1Bは、実施例2において記載されるような、直接捕
捉(direct capture)QISAの絵で表した表示である。図1C
は、実施例3において記載されるような、液相QISAの絵で表した表示である
。
である。図1Aは、実施例1において記載されるようなサンドイッチQISAの
絵で表した表示である。図1Bは、実施例2において記載されるような、直接捕
捉(direct capture)QISAの絵で表した表示である。図1C
は、実施例3において記載されるような、液相QISAの絵で表した表示である
。
である。図1Aは、実施例1において記載されるようなサンドイッチQISAの
絵で表した表示である。図1Bは、実施例2において記載されるような、直接捕
捉(direct capture)QISAの絵で表した表示である。図1C
は、実施例3において記載されるような、液相QISAの絵で表した表示である
。
れるQISAの結果を示し、そして標準的な蛍光プレート読取り装置における読
出し(read)を示す。
る濃度を伴い、8個のウェルの3つの列(A、BおよびC)の中のビーズの分布
を示す。
チレーション阻害アッセイにおいて使用される場合に得られ得る結果の表示であ
る。図において、レーンA、BおよびCは、異なる阻害剤を含む。
セイの絵で表した表示である。
Claims (17)
- 【請求項1】 標的ポリヌクレオチド分析物を、該ポリヌクレオチド分析物
を含むか、または含むことが疑われるサンプルにおいて検出する方法であって、
該方法は、以下の工程: (a)固体支持体上に該サンプルを提供する工程; (b)該サンプルを、特異的に結合する分子と合わせる工程であって、ここで
、(i)該特異的に結合する分子は、結合対の第1のメンバーを含み、(ii)
該特異的に結合する分子は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)増幅産物であり、
該産物は、該結合対の該第1のメンバーを含み、そして(iii)該合わせる工
程は、該ポリヌクレオチド分析物が存在する場合に、該特異的に結合する分子お
よび該ポリヌクレオチド分析物を含む第1の複合体の形成を可能にする条件下で
実行される、工程; (c)任意の結合されていない特異的に結合する分子を除去する工程; (d)該第1の複合体を、該結合対の第2のメンバーと合わせる工程であって
、ここで、(i)該結合対の第2のメンバーは、第1の半導体ナノクリスタルに
連結されており;そして(ii)該合わせる工程は、該第1の複合体と該結合対
の第2のメンバーを含む第2の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、
工程;および (e)該第2の複合体の存在を、もし存在する場合に、検出する工程であって
、該工程は、第2の複合体における該第1の半導体ナノクリスタルによって媒介
されるスペクトル発光をモニターすることによるものであり、ここで、該発光は
、該サンプル中のポリヌクレオチド分析物の存在を示す、工程 を包含する、方法。 - 【請求項2】 第2の標的ポリヌクレオチド分析物が存在する、請求項1に
記載の方法であって、該方法はさらに、以下の工程: 前記サンプルを、第2の特異的結合分子と合わせる工程であって、ここで、(
i)該第2の特異的に結合する分子は、第2の結合対の第1のメンバーを含み、
(ii)該第2の特異的に結合する分子は、第2のポリメラーゼ連鎖反応(PC
R)増幅産物であり、該第2の増幅産物は、該第2の結合対の該第1のメンバー
を含み、そして(iii)該合わせる工程は、該第2の標的分析物が存在する場
合に、該第2の特異的に結合する分子と該第2のポリヌクレオチド分析物を含む
第3の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、工程; 任意の結合されていない第2の特異的に結合する分子を除去する工程; 該第3の複合体を、該第2の結合対の第2のメンバーと合わせる工程であって
、ここで、(i)該第2の結合対の該第2のメンバーは、第2の半導体ナノクリ
スタルに連結されており、該第2の半導体ナノクリスタルは、前記第1の半導体
ナノクリスタルの発光スペクトルとは異なる第2の発光スペクトルを有し;そし
て(ii)該合わせる工程は、該第3の複合体と該第2の結合対の該第2のメン
バーを含む第4の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、工程;および 該第4の複合体の存在を、もし存在する場合に、検出する工程であって、該工
程は、第4の複合体における該第2の半導体ナノクリスタルによって媒介される
、第2のスペクトル発光をモニターすることによるものであり、ここで、該第2
の発光は、該サンプル中の第2の標的ポリヌクレオチド分析物の存在を示す、工
程 を包含する、方法。 - 【請求項3】 前記結合対の第1のメンバーおよび第2のメンバーが、核酸
二重鎖を形成し得る、相補的ポリヌクレオチド分子である、請求項1に記載の方
法。 - 【請求項4】 第2の分析物が存在する、請求項1に記載の方法であって、
該方法はさらに、以下の工程: 前記サンプルを、第2の特異的に結合する分子と合わせる工程であって、ここ
で、(i)該第2の特異的に結合する分子は、第2の結合対の第1のメンバーを
含み、そして(ii)該合わせる工程は、該第2の分析物が存在する場合に、該
第2の特異的に結合する分子と該第2の分析物を含む第3の複合体の形成を可能
にする条件下で実行される、工程; 任意の結合されていない第2の特異的に結合する分子を除去する工程; 該第3の複合体を、該第2の結合対の第2のメンバーと合わせる工程であって
、ここで、(i)該第2の結合対の該第2のメンバーは、第2の半導体ナノクリ
スタルに連結されており、該第2の半導体ナノクリスタルは、前記第1の半導体
ナノクリスタルの発光スペクトルとは異なる第2の発光スペクトルを有し;そし
て(ii)該合わせる工程は、該第3の複合体と該第2の結合対の該第2のメン
バーを含む第4の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、工程;および 該第4の複合体の存在を、もし存在する場合に、検出する工程であって、該工
程は、該第4の複合体における該第2の半導体ナノクリスタルによって媒介され
る、第2のスペクトル発光をモニターすることによるものであり、ここで、該第
2の発光は、該サンプル中の第2の標的分析物の存在を示す、工程 を包含する、方法。 - 【請求項5】 前記特異的に結合する分子が、結合対の複数の第1のメンバ
ーを含み、該第1のメンバーは、同じであっても、異なってもよい、請求項1に
記載の方法。 - 【請求項6】 前記第2の結合対の前記第1のメンバーおよび第2のメンバ
ーが、核酸二重鎖を形成し得る、相補的ポリヌクレオチド分子である、請求項2
に記載の方法。 - 【請求項7】 各々の特異的に結合する分子が、結合対の複数の第1のメン
バーを含み、該第1のメンバーは、同じであっても、異なってもよい、請求項2
に記載の方法。 - 【請求項8】 各々の特異的に結合する分子が、結合対の複数の第1のメン
バーを含み、該第1のメンバーは、同じであっても、異なってもよい、請求項4
に記載の方法。 - 【請求項9】 1以上の標的分析物を、該1以上の分析物を含むか、または
含むことが疑われるサンプルにおいて検出する方法であって、該方法は、以下の
工程: (a)固体支持体上に、標識されていない特異的に結合する分子を提供する工
程; (b)該サンプルを、該特異的に結合する分子と合わせる工程であって、ここ
で、該合わせる工程は、該分析物が存在する場合に、該特異的に結合する分子お
よび該分析物を含む第1の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、工程
; (c)任意の結合されていないサンプルを除去する工程; (d)該第1の複合体を、半導体ナノクリスタル結合体と合わせる工程であっ
て、ここで、該合わせる工程は、該分析物が存在する場合に、該結合体と該分析
物を含む第2の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、工程; (e)任意の結合されていない結合体を除去する工程; (f)該第2の複合体の存在を、もし存在する場合に、検出する工程であって
、該工程は、第2の複合体における該半導体ナノクリスタルによって媒介される
スペクトル発光をモニターすることによるものであり、ここで、該発光は、該サ
ンプル中の1以上の標的分析物の存在を示す、工程 を包含する、方法。 - 【請求項10】 複数の標的分析物が存在する、請求項9に記載の方法であ
って、該方法はさらに、以下の工程: (a)固体支持体上に各標的分析物について特異的な標識されていない特異的
に結合する分子を提供する工程、および各標的分析物について特異的な半導体ナ
ノクリスタル結合体を提供する工程であって、各々の半導体ナノクリスタル結合
体は、他の半導体ナノクリスタル結合体とは異なる発光スペクトルを有する、工
程;および (b)該標的分析物の存在を検出する工程であって、該工程は、該サンプルの
スペクトル発光をモニターすることによるものであり、ここで、該発光は、該サ
ンプル中の標的分析物の存在を示す、工程 を包含する、方法。 - 【請求項11】 前記1以上の分析物が、核酸分子である、請求項9に記載
の方法。 - 【請求項12】 前記1以上の分析物が、ポリペプチドである、請求項9に
記載の方法。 - 【請求項13】 1以上の標的分析物を、該1以上の分析物を含むか、また
は含むことが疑われるサンプルにおいて検出する方法であって、該方法は、以下
の工程: (a)固体支持体上に該サンプルを提供する工程; (b)該サンプルを、特異的に結合する分子と合わせる工程であって、ここで
、(i)該特異的に結合する分子は、結合対の第1のメンバーを含み、そして(
ii)該合わせる工程は、該分析物が存在する場合に、該特異的に結合する分子
および該分析物を含む第1の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、工
程; (c)任意の結合されていない特異的に結合する分子を除去する工程; (d)該第1の複合体を、該結合対の第2のメンバーと結合させる工程であっ
て、ここで、(i)該結合対の第2のメンバーは、第1の半導体ナノクリスタル
に連結されており;そして(ii)該結合させる工程は、該結合対と該1以上の
分析物を含む第2の複合体の形成を可能にする条件下で実行される、工程;およ
び (e)該第2の複合体の存在を、もし存在する場合に、検出する工程であって
、該工程は、該第2の複合体における該第1の半導体ナノクリスタルによって媒
介されるスペクトル発光をモニターすることによるものであり、ここで、該発光
は、該サンプル中の1以上の標的分析物の存在を示す、工程 を包含する、方法。 - 【請求項14】 前記1以上の分析物が、核酸分子である、請求項13に記
載の方法。 - 【請求項15】 前記特異的に結合する分子が、ポリメラーゼ連鎖反応増幅
産物であり、そして前記結合対の前記第1のメンバーが、該増幅産物に組み込ま
れる、請求項13に記載の方法。 - 【請求項16】 前記1以上の分析物が、ポリペプチドである、請求項13
に記載の方法。 - 【請求項17】 1より多い分析物が存在する、請求項13に記載の方法で
あって、該方法はさらに、以下の工程: 前記サンプルを、第2の特異的結合分子と合わせる工程であって、ここで、(
i)該第2の特異的に結合する分子は、第2の結合対の第1のメンバーを含み、
そして(ii)該合わせる工程は、該分析物が存在する場合に、該第2の特異的
に結合する分子および該分析物を含む第3の複合体の形成を可能にする条件下で
実行される、工程; 任意の結合されていない第2の特異的に結合する分子を除去する工程; 該第3の複合体を、該第2の結合対の第2のメンバーと合わせる工程であって
、ここで、(i)該第2の結合対の該第2のメンバーは、第2の半導体ナノクリ
スタルに連結されており、該第2の半導体ナノクリスタルは、前記第1の半導体
ナノクリスタルの発光スペクトルとは異なる発光スペクトルを有し;そして(i
i)該合わせる工程は、該第2の結合対および分析物を含む第4の複合体の形成
を可能にする条件下で実行される、工程;および 該第4の複合体の存在を、もし存在する場合に、検出する工程であって、該工
程は、該第4の複合体における該第2の半導体ナノクリスタルによって媒介され
る、第2のスペクトル発光をモニターすることによるものであり、ここで、該第
2の発光は、該サンプル中の1より多い標的分析物の存在を示す、工程 を包含する、方法。
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