HU211228A9 - Vaccine against lyme disease - Google Patents

Vaccine against lyme disease Download PDF

Info

Publication number
HU211228A9
HU211228A9 HU95P/P00108P HU9500108P HU211228A9 HU 211228 A9 HU211228 A9 HU 211228A9 HU 9500108 P HU9500108 P HU 9500108P HU 211228 A9 HU211228 A9 HU 211228A9
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
burgdorferi
antigen
ospa
antibody
mice
Prior art date
Application number
HU95P/P00108P
Other languages
English (en)
Inventor
Markus M Simon
Ulrich E Schaible
Klaus Eichmann
Michael Kramer
Wallich Reinhard
Original Assignee
Deutsches Krebsforsch
Max Planck Gesellschaft
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=25885304&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=HU211228(A9) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Deutsches Krebsforsch, Max Planck Gesellschaft filed Critical Deutsches Krebsforsch
Publication of HU211228A9 publication Critical patent/HU211228A9/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/20Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Spirochaetales (O), e.g. Treponema, Leptospira
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1203Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
    • C07K16/1207Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Spirochaetales (O), e.g. Treponema, Leptospira
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

A Lyme-borreliózis a leggyakoribb, kullancsok által terjesztett mérsékelt égövi fertőző betegség. Ezt a Spirochaeták családjához tartozó Borrelia burgdorferi okozza, és főleg az Ixodes törzshöz tartozó kullancs viszi át az emberre. A betegség egy krónikus, progresszív fertőző megbetegedés, amely több szervet támad meg, így a bőrt, a központi és perifériás idegrendszert, a szívet, a májat, a vesét és az izom-csont rendszert. Mivel a betegség megbízható kezelése antibiotikum terápiával nehézkes, jelenleg nagy erőfeszítéssel kutatják magát a kórokozót és az immunválaszt, amelyet a gazdaszervezet ad a B. burgdorferi fertőzésre. Megállapították, hogy bár a Lyme-kórban szenvedő egyénekben a B. burgdorferi elleni antitestek titere magas, ez azonban semmilyen védelmet nem nyújt a fertőzéssel szemben. Feltehető, hogy a kórokozó a vérpályából igen gyorsan átlép a szövetekbe, ahol az immunrendszer számára már többé közvetlenül nem érhető el. Ez azt jelenti, hogy az antitestek nyújtotta védelem csak közvetlenül a fertőzés kezdete után, azaz addig, amíg a kórokozó az érpályában tartózkodik, hatásos.
Az a tény, hogy a B. burgdorferi-vei való természetes fertőzöttség különböző állatfajtákban megtalálható, olyan próbálkozáshoz vezetett, hogy laboratóriumi modelleket dolgozzanak ki a Lyme-kór részére. Ezek azonban csak korlátozott eredménnyel jártak. Olyan kísérletekben, amelyeknek az volt a céljuk, hogy egérben a B. burgdorferi-re specifikus immunválaszt váltsanak ki, azt találták, hogy beltenyésztett egér törzsekben egy már hosszú ideje tenyésztett izolált B. burgdorferi-vel való fertőzés enyhe, de szignifikáns olyan patomorfológiai elváltozásokhoz vezet a különböző szervekben, így az agyban, szívben, tüdőben és a vesékben, amelyekhez hasonlókat a Lyme-kóros betegekben lehetett megfigyelni [Schaible és munkatársai, Infect. Immun., 7., 41. (1988)]. A komolyabb kórkép kialakulását az állatoknál valószínűleg vagy a gazdaszervezet védekező immunrendszere akadályozta meg, vagy az, hogy a hosszabb ideig in vitro tenyésztett spirochaeták virulenciája lecsökkent [Johnson és munkatársai, J. Clin. Microbiol 20., 747. (1984); Schwan és munkatársai, Infect. Immun., 56., 1837. (1988)].
A találmány alapjául szolgáló feladat egy Lyme-kór elleni hatékony oltóanyag előállítása. Ehhez mindenekelőtt alkalmas laboratóriumi állat-modell kifejlesztésére van szükség. Ezért javasoljuk egy funkcióképes T és B sejt hiányos egér törzs, az úgynevezett Scid-egér [Bosma és munkatársai, Natúré, 70., 52. (1983)] kísérleti állatként való alkalmazását, ugyanis izolált patogén B. burgdorferi törzzsel fertőzött Scid-egereknél sokszisztémás betegség alakul ki, mégpedig főként polyarthritis és carditis. Ezzel az állatmodellel vált először lehetővé a Lyme-kór elleni oltóanyagok hatásának a kipróbálása.
A találmány tárgyát egy olyan Lyme-kór elleni passzív oltóanyag képezi, amely egy vagy több, a B.
burgdorferi 31 kD antigénjére (OspA) vagy/és 34 kD antigénjére (OspB), különösen a B. burgdorferi B31 (ATCC 35 210) vagy/és ZS7 (DSM 5527) törzsének
OspA vagy/és OspB antigénjére specifikus monoklonális antigént tartalmaz. Egy olyan oltóanyag az előnyös, amely egy IgG osztályba tartozó, találmány szerinti antitestet, különösen az IgG2b vagy IgGl alosztálybeli antitestet tartalmaz. Élő patogén B. burgdorferi sejtekkel, előnyösen B. burgdorferi ZS7 sejtekkel megfertőzött kísérleti állatoknál, előnyösen Scid-egereknél a találmány szerinti antitest adása - ellentétben egy más antitest adásával, például a B. burgdorferi 41 kD antigénje (flagellin) elleni antitest adásával - az arthritis, carditis és hepatitis kifejlődését meglepő módon teljesen vagy legalábbis nagymértékben gátolja.
A találmány szerinti oltóanyag adott esetben a hatóanyag antitest mellett még a szokásos vivő- töltő- és segédanyagokat is tartalmazhatja.
A találmány tárgyát képezi továbbá egy eljárás Lyme-kór elleni passzív oltóanyag előállítására B. burgdorferi sejtekkel vagy részeivel, előnyösen teljes B. burgdorferi B31 és/vagy ZS7 sejtekkel immunizált kísérleti állat, előnyösen egér limfociták vagy lépsejtek felhasználása révén, amikor is az immunizált állat limfocitáiból vagy lépsejtjeiből sejtfúzióval olyan hibridomát állítunk elő, amely egy találmány szerinti monoklonális antitestet termel.
A találmány további tárgyát képezi egy olyan hibridoma sejtvonal (ECACC 89 091 302) is, amely a találmány szerinti AspA elleni LA-2 antitestet (IgG2b) termeli. A találmány az OspA elleni LA-26.1 antitest (IgGl) termelő hibridoma sejtvonalra (ECACC 90 050 406), valamint az OspB elleni LA-25.1, illetve LA-27.1 antitest (IgG2b, illetve IgGl) termelő ECACC 90 050 405, illetve ECACC 90 050 407 hibridoma sejtvonalakra is vonatkozik.
A találmány tárgyát képezi a patogén B. burgdorferi ZS7 törzs is (DSM 5527).
A találmány továbbá egy olyan antigénre vonatkozik, amely egy találmány szerinti monoklonális antitesttel immunológiai reakcióba lép. Ezalatt egy olyan antigén értendő, amely az OspA, illetve az OspB teljes aminosav szekvenciáját vagy az OspA-ból, illetve az OspB-ből csak egy immunogénként ható rész-szekvenciát (immunogén epitóp) tartalmaz. Egy szakember nehézség nélkül meg tudja határozni ezen proteinek immunogén epitópjait az OspA-protein szerkezetének analízise (ilyen például a Chou-Fassmann analízis) révén, majd kísérletileg meghatározhatja a hatásosságukat.
A találmány tárgya különösen egy olyan rekombináns antigén is, amely a találmány szerinti antitesttel immunológiailag reagál, és az antigént kódoló DNS szekvenciát egy rekombináns vektor, előnyösen egy olyan prokarióta vektor tartalmazza, amely alkalmas proteinek expressziójára.
A találmány különösen a B. burgdorferi ZS7-ből származó antigénre vonatkozik, amely a találmány szerinti antitesttel immunológiai reakcióba lép és amely az 1. ábrán bemutatott aminosav szekvenciát vagy ebből a szekvenciából egy immunogén epitópot tartalmaz. Eszerint a találmány egy olyan rekombináns DNS-re is vonatkozik, amely (1) az 1. ábrán bemutatott szekven2
HU 211 228 A9 ciát tartalmazza, (2) a genetikai kód degenerációja keretén belül egy ennek megfelelő nukleinsav szekvenciát vagy (3) az (l)-ből és/vagy (2)-ből származó egy szekvenciával szigorúan meghatározott feltételek között hibridizáló szekvenciát tartalmaz, amely a B. burgdorferi ZS7 31 kD antigénjét, vagy ennek egy immunogén epitópját kódolja. A „szigorúan meghatározott hibridizáló feltételek” fogalmának meghatározását lásd Maniatis és munkatársai .Molecular Cloning” c. munkájában [A Laboratory Manual: Cold Spring Harbor Laboratory, New York, (1982)].
Külünösen előnyös találmány szerinti antigén a rekombináns nem fúziós protein vagy a β-galaktozidázfúziós protein.
A találmány tárgyát képezi továbbá egy olyan rekombináns vektor is, amely a találmány szerinti rekombináns DNS egy vagy több másolatát tartalmazza. A találmány szerinti vektor egy prokarióta vagy/és eukarióta vektor lehet, előnyösen prokarióta vektor. A rekombináns vektor a gazdasejtben extrakromoszómálisan helyezkedhet el (például egy plazmid) vagy a gazdasejt genomjába integrálódhat (például a lambda bakteriofág). A találmány szerinti vektor előnyösen egy plazmid. Különösen előnyös a pZS-7/31-2 vektor (DSM 5528).
A találmány tárgya egy eljárás is a találmány szerinti antigének előállítására olyan módon, hogy egy B. burgdorferi génbankot egy vagy több találmány szerinti antitesttel átvizsgálunk és ezután azokat a kiónokat izoláljuk, amelyek az alkalmazott antitestekkel pozitív immunreakciót adnak.
Minthogy egy találmány szerinti antigén maga is felhasználható aktív immunizálásra, azaz antitest képzés indukálására a szervezetben, így a találmány magában foglal egy olyan Lyme-kór elleni aktív oltóanyagot is, amely hatóanyagként egy találmány szerinti antigént tartalmaz, adott esetben a szokásos vivő-, töltő- és segédanyagokkal. Egy előnyös kiviteli mód szerint a találmány szerinti antigént géntechnológiai úton állítjuk elő.
Valóban igazoltuk, hogy a normál egereknek adott natív, illetve rekombináns OspA olyan protektív antitestek képződését indukálja, amelyek Scid-egerekbe való passzív átvitel után a Lyme-borreliózis ellen védnek. Megállapítottuk mindenekelőtt, hogy a rekombináns OspA a natív OspA-hoz hasonlóan protektív immunválaszt indukál, s így az emberek Lyme-borreliózisa elleni vakcinához sokatígérő jelöltként jön számításba.
A találmány további tárgyát képezi egy Lyme-kór elleni passzív oltóanyag előállítására szolgáló eljárás, amikor is kísérleti állatokat, előnyösen egereket immunizálunk egy találmány szerinti antigénnel és az immunizált kísérleti állatból a szokásos módon, protektív poliklonális vagy monoklonális antitesteket izolálunk.
Végül a találmány oltalmi körébe tartozik még egy eljárás patogén B. burgdorferi mikroorganizmusok izolálására és kitenyésztésére, amelyet az jellemez, hogy a kórokozóval előzőleg megfertőzött immunhiányos kísérleti állatokból, előnyösen egerekből, a kórokozót izoláljuk és a kórokozó patogenitása megmarad. Különösen előnyös egy olyan eljárás, amikor a fertőzött
Scid-egerek véréből és/vagy ízületeiből tenyésztjük ki a patogén B. burgdorferi ZS7 (DSM 5527) mikroorganizmust.
A találmányt a kővetkező példákon keresztül és az 1. és 2. ábra segítségével ismertetjük. Az 1. ábra a B. burgdorferi ZS7 31 kD antigénjének (OspA) DNS és aminosav szekvenciáját mutatja be, a 2. ábrán az ZS7/31-2 rekombináns protein immunológiai jellemzése látható.
/. példa
Arthritis, canditis és hepatitis előidézése Scid-egerekben B. burgdorferi ZS7 törzzsel való fertőzéssel Az egerek kezelése B. burgdorferivel C.B-17 Scid törzsből (Scid mutáció szempontjából homozigóta) és C.B-17 törzsből származó kifejlett egereket lxlO5, 5xlO5, lxlO6 vagy lxlO8 élő vagy elölt (UV-besugárzás) B. burgdorferi sejttel oltunk be szubkután a farok tövénél.
B. burgdorferi izolálása kullancsból és egerekből
A kísérleteket a már hosszú ideje tenyésztett B. burgdorferi B31 törzzsel (ATCC 35 210) és a frissen izolált - nőstény Ixodes ricinus kullancsból izolált - B. burgdorferi ZS7 (DSM 5527) törzzsel végeztük. Mindegyik B. burgdorferi törzset módosított Kelly táptalajban tenyésztettük [Barbour és munkatársai, Curr. Microbiol., 8, 123. (1983) Svájc]. Az etanollal sterilizált kullancs vékonybeléből vagy a befertőzött egerek véréből izolált B. burgdorferi sejteket kezdetben 8 pg/ml kanamicinnel és 230 pg/ml fluor-uracillal kiegészített Kelly táptalajban tenyésztettük [Johnson és munkatársai, J. Clin. Microbiol., /., 81. (1984)].
Szerológiai vizsgálatok
A B. burgdorferi specifikus antitestek kimutatását hagyományos ELISA eljárással végezzük [Justus és munkatársai, Wehrmed. Mschr., 32., 263. (1988)]. Az immunglobulin (lg) tartalom standard görbéjét úgy kapjuk meg, hogy a csészét anti-egér Ig-vel [Passel féle szérum (Frankfurt, NSZK)] 1:500 hígítással töltünk meg és titráljuk a teljes egér IgG vagy IgM tartalmat (Calbiochem., La Jolla, USA). Az össz-szérum IgM és IgG-mérése hasonlóan történik. AB. burgdorferi specifikus IgM vagy IgG antitest koncentrációt lg pg/szérum ml-ben adjuk meg.
Immunfluoreszcencia és Giemsa festés pl vért pipettázunk egy hematokrit csövecskébe (Becton és Dickinson, Heidelberg, NSZK) és 5,000 g mellett hematokrit centrifugában (ECCO, NSZK) lecentrifugáljuk. A csövecskéket a szérum és vörösvérsejt határrétegénél átvágjuk és a szérumból 5 pl-t tárgylemezre visszük (Superior, Bad Mergentheim, NSZK). A szérum mintákat tartalmazó tárgylemezeket levegőn megszárítjuk és 100%-os etanolban 1 percig -20 °C-on fixáljuk. A tárgylemezeket ezután 1 órán át nyúl anti-B burgdorferi hiperimmunszérummal (1:100
HU 211 228 A9 hígítás) inkubáljuk szobahőmérsékleten, majd ötször mossuk PBS-ben és ezután FITC-el konjugált kecske anti-nyúl antiszérummal (1:20 hígítás: Jackon Láb., West Grove, USA) festjük 1 órán át. A tárgylemezeket mossuk, Kaiser féle glicerin-zselatinba (Merck, Darmstadt, NSZK) beágyazzuk, majd rögtön fluoreszcens mikroszkóp alatt vizsgáljuk. A kezeletlen vércseppeket levegőn megszárítjuk, metanolban fixáljuk, Giemsa oldattal (0,1%; Merck, Darmstadt, NSZK) megfestjük, PBS-sel kimossuk és entellanba (Merck, Darmstadt, NSZK) beágyazzuk.
Szövettani preparátumok készítése és festési eljárások
Előzőleg B. burgdorferi-vel fertőzött egerekből a fertőzés után különböző időpontokban különböző szerveket (agy, szív, tüdő, máj, vese, lép és ízületek) távolítunk el és vagy folyékony nitrogénben - fagyasztott metszetek készítéséhez - vagy 5%-os formaldehidben (PBS-ben) - paraffinba vagy metakrilátba való beágyazáshoz - tároljuk. 4—7 pm-es metszeteket készítünk, hematoxilin-eozinnal megfestjük őket és entellanba (Merck, Darmstadt, NSZK) beágyazzuk. Az immunhisztológiai vizsgálatokat sztreptavidin-biotin-peroxidáz rendszerben végezzük [Kramer és munkatársai, Eur. J. Immunoi., 79., 151. (1989)].
Az 1. táblázat mutatja, hogy az izolált ZS7 és B31 B. burgdorferi mikroorganizmusokat a kísérlet egész időtartama alatt ki lehetett mutatni azoknak a Scid-egereknek a vérében, amelyeket előzőleg élő mikroorganizmusokkal oltottunk. Azonban csak aZS7 spirochaeta törzset lehetett in vitro újból kitenyészteni, a B31 törzset nem. Az újból tenyésztésbe vont mikroorganizmusoknak a primer izolált B. burgdorferi ZS7 sejtekkel való összehasonlításakor nem lehetett megállapítani semmilyen változást a protein tartalomban vagy a plazmid-profilban. A B. burgdorferi-vel fertőzött Scid-egerekben a megfigyelés egész időtartama alatt vagy semmilyen, vagy csak rendkívül alacsony irreleváns antitest titer volt kimutatható. Ezekben az állatokban B. burgdorferi specifikus IgM vagy IgG antitesteket nem találtunk (1. táblázat). Ezzel szemben mindegyik B. burgdorferivel fertőzött C.B-17 kontroll egér nagymennyiségű össz-Ig-t és magas titerű B. burgdorferi specifikus IgM és IgG antitestet termelt.
A B. burgdorferi ZS7-teI való fertőzés után a 7. és
20. nap között mutatták a Scid-egerek az arthritis első klinikai tüneteit (mindkét tibiotarzális ízület piros és duzzadt lett), amik idővel erősödtek. Ezzel szemben azokban a Scid-egerekben, amelyeket UV-besugárzott B. burgdorferi B31 sejtekkel fertőztünk meg és a C.B17 kontroll egerekben, amelyeket élő B. burgdorferi ZS7 sejtekkel fertőztünk meg, nem találtunk arthritises tüneteket.
Az élő B. burgdorferi ZS7-tel megfertőzött Scid-egerekben kórszövettanilag is ki lehetett mutatni az arthritises ízületi elváltozásokat (1. táblázat). Súlyos ízületi károsodásokat állapítottunk meg, amelyeket a hiperpláziával járó gyulladásos szinoviális bélés-sejtek jelenléte jelzett, és ezeket a jegyeket erózió (hám-hiány) és a porcszövetek és/vagy csontok roncsolódása kísérte. Ezenkívül pancarditist állapítottunk meg, mononukleáris sejtek infíltrációjával az endocardiumban (szívbelhártyában), myocardiumban (szívizomban) és pericardiumban (szívburokban). A máj progresszív gyulladását is észleltük, amelynél a mononukleáris sejtek infiltrációja a kapuér (véna portáé) területére és a központi gyűjtóérre korlátozódott, továbbá granulóma képződéssel járó reakciókat és végül máj fibrózist észleltünk. Ezenkívül a vesékben, tüdőben, agyban és a harántcsíkolt izomzatban kisebb károsodásokat észleltünk.
1. táblázat
C.B-17 Scid-egerek és C.B-17 kontroll egerek fertőzése B. burgdorferi-vel; Spirochaeták kitenyésztése szövetekből: Antitest titer és arthritis kialakulása
Egér törzs Törzs B. burgdorferi B. burgdorferi
fertőzés- hez használt sejtszám fertőzés után eltelt napok észlelése vérben* izolálá- sa**
C.B-17 scid (n=l) ZS7 5xl05 7 36 49 59 + + + + +B +B +B
ZS7 lxlO8 7 23 + + +B
ZS7 lxlO8 22 29 87 + + +G +B/G
ZS7 lxlO5 lxlO6 lxlO8 16 n. b. n. b. + n. b. n. b. +
ZS7uv lxlO8 16 - -
B31 lxlO8 22 29 + + -
- 22 - -
- 29 - -
C.B-17 (n = 7) ZS7 lxlO8 16 24 - -
- - - - -
- - - - -
* Giemsa festéssel vagy immunfluoreszcenciával ** izolálás vérből (B = Blut), ízületekből (G = Gelenken) o+ tibiotarzális ízületek pirossága és duzzanata oo- <7,5 pg/ml szérum
n. b. meghatározás nem történt
HU 211 228 A9
1. táblázat (folytatás)
C.B—17 Scid-egerek és C.B-17 kontroll egerek fertőzése E. burgdorferivel; Spirochaeták kitenyésztése szövetekből: Antitest titer és arthritis kialakulása
Egér törzs Törzs Arthritis Antitest (gg/ml)°°
klini- kai kór- szö- vetta- ni ősz szes μ IG τ speci- fikus μ lg τ
- - 20 -
ZS7 + + - 21 - -
+ + 26 -
+ + - 396 - -
ZS7 + + - 108 - -
+ + 54 -
C.B-17 ZS7 + + - 41 - -
+ +
Scid
(n = 1)
+ n. b. n. b. n. b. n. b. n. b.
ZS7 + n. b. n. b. n. b. n. b. n. b.
+ + - - - -
ZS7uv - - - - - -
- - 26 37 - -
B31 - - - -
- - - 47 - -
- 54 364 - -
2515 5963 438 56
C.B-17 ZS7 - - 2145 63747 506 94
(n = 7) 304 216 3804 -
1952
* Giemsa festéssel vagy immunfluoreszcenciával ** izolálás vérből (B = Blut), ízületekből (G = Gelenken) 04 tibiotarzális ízületek pirossága és duzzanata <7,5 pg/ml szérum n. b. meghatározás nem történt
2. példa
A B. burgdorferi 31 kD antigénre specifikus monoklonális antitest hatása Lyme-borreliózisra Scidegerekben
A monoklonális antitest előállítása
Ha intakt immunrendszerrel rendelkező egeret B. burgdorferi mikroorganizmusokkal immunizálunk, az B. burgdorferi-re specifikus poliklonális antitesteket fog termelni (lásd az 1. táblázatot).
Tíz-hetes beltenyésztett BALB/c nőstény egereket ultrahanggal homogenizált Borrelia mikroorganizmussal (E. buigdorferi B31 törzs; ATCC 35 210) immunizálunk.
Immunizálási séma;
0. nap: 200 gg Borelia antigén komplett Freund adjuvánsban, szubkután,
21., 35., 49., 63. nap: ráoltás 100 gg Borrelia antigénnel foszfáttal pufferolt konyhasó oldatban (PBS), intraperitoneálisan,
66. nap: lép kivétel és egysejt szuszpenzió előállítása.
Az immun lépsejteket az Ag8-PAI myeloma sejtvonallal fuzionáljuk standard módszerek szerint, polietilén-glikol alkalmazásával (J. H. Peters, H. Baumgarten, M. Schulze, „Monoklonale Antikörper” SpringerVerlag, Heidelberg, Német Szövetségi Köztársaság).
A fúziós terméket 96-tartályos szövettenyésztő lemezekre oltjuk. Nyolc nap múlva a sejttenyészetek feliilúszóit B. burgdorferi-re specifikus monoklonális antitestek jelenlétére vizsgáljuk, szilárdfázisú ELISA segítségével (J. H. Peters és munkatársai, lásd fentebb). Az antitest termelő tenyészetek hibridoma sejtjeit határhígításos módszerrel klónozzuk. Az egyedi kiónok tenyészetének felülúszóját ezután újból szilárdfázisú ELIS A-val, valamint Westem-Blot analízissel és immunfluoreszcens vizsgálatokkal jellemezzük. Az IgG2b alosztályba tartozó LA-2 monoklonális antitestet egy monoklonális hibridoma vonal termeli és választja ki, a Westem-Blot vizsgálatban minden vizsgált B. burgdorferi törzs (ilyen a ZS7 izolált törzs és a B31 törzs) 31 kD-struktúrájával (OspA) reagál, amikor SDS-gélben elektroforézissel elválasztott és WestemBlot segítségével membránra átvitt B. burgdorferi proteinekkel érintkezik. A LA-26.10 (anti-OspA IgGl), a LA-25.1 (anti-OspB, 34 kD antigén, IgG2b) és a LA27.1 (anti-OspB, 34 kD antigén: IgGl) monoklonális antitesteket azonos módon állítottuk elő és vizsgáltuk.
Egerek fertőzése B. burgdorferi ZS7-tel
C.B-17 Scid-egereket lxlO8 élő B. burgdorferi ZS7 mikroorganizmussal fertőzünk meg a farok-tőbe való szubkután oltással.
Az egerek kezelése antiszérumokkal
A megfertőzött Scid-egereket hetenként kétszer különböző antiszérumokkal kezeltük. Az egyik csoportot normál egér szérummal (NMS = normál Mausserum), a második csoportot egér immunszérummal (IMS = immunes Mausserum) és egy harmadik csoportot a LA-2 monoklonális antitesttel (a B. burgdorferi 31 kD antigénje elleni antitest) kezeltük. Az adagolt antiszérumok mennyisége az első héten 100 gl, illetve LA-2 esetén 100 gg volt, a második héten 200 gl, illetve LA-2 200 gg és a harmadik héten 300 gl, illetve LA-2 esetén 300 gg volt.
A 2. táblázatban bemutatjuk, hogy a kezeletlen vagy az NMS-sel kezelt Scid-egereknél 12 nap múlva az arthritis, carditis és hepatitis klinikai és kórszövettani jelei mutatkoztak. Ezzel szemben a LA-2 monoklonális antitest adása Scid-egereknél a kórtünetek jelentős csökkenését idézte elő. Klinikailag csak az ízületek enyhe pirossága mutatkozott és kőrszövettanilag csak csekély elváltozások voltak megállapíthatók. Az IMSsel kezelt egereknél klinikai arthritis-re utaló leletet nem találtunk.
A B. burgdorferi kórokozó kimutatása in vitro kitenyésztéssel csak azoknál az egereknél járt sikerrel, amelyek vagy kezeletlenek voltak, vagy NMS-sel voltak kezelve. A LA-2-vel vagy IMS-sel kezelt egereknél B. burgdorferit nem lehetett kimutatni (2. táblázat).
HU 211 228 A9
2. táblázat
C. B-17 Scid-egerek kezelése B. burgdorferi-vel és antiszérumokkal
C.B-17 Scid- egér- törzs Kezelés antiszé- rummal Arthritis (12 nap után) klinikai kórszövettani Carditis/hepatitis kórszövettani B. burgdorferi kimutatása (tenyésztéssel)
n = 3 - + + + +
n = 3 NMS + + + +
n = 2 IMS - - - -
n = 3 LA-2 _0 _OO - -
° az ízületek enyhe pirossága 00 Csak csekély elváltozások
5. példa
A B. burgdorferi ZS7 31 kD antigénjének (OspA) expressziós klónozása DNS izolálás
AB. burgdorferi ZS7 törzsből módosított Kelly féle táptalajon való tenyésztés után nagymolekulájú DNS-t tisztítunk. A spirochaetákat 10.000 g mellett centrifugálva ülepítjük és háromszor mossuk PBS-pufferben. A száraz üledéket 10 ml TE-pufferben (10 mmol/1 trisz, 1 mmol/1 EDTA, pH = 7,4) reszuszpendáljuk, lizozimmel (5 mg/ml) kezeljük 15 percig 30 ’C-on és a DNS-t 1 ml 20%-os SDS hozzáadásával felszabadítjuk. Ezután hozzáadunk 1,5 ml NaCl oldatot (5 mol/1), ezt az oldatot azonos térfogatú fenollal extraháljuk, majd kloroformos extrahálás következik. A DNS-t kétszeres térfogat abszolút etanol hozzáadásával és egy éjszakán ál -20 °C-on való inkubálással csapjuk ki. Centrifugálás után az üledéket 0,5 ml TS-pufferben oldjuk fel, majd DNáz mentes RNáz A-val (20 pg/ml) inkubáljuk 45 percig 55 °C-on és ezután egy órán át proteináz K-val (0,1 pg/ml) kezeljük 37 ’C-on. Az oldathoz nátrium-acetátot adunk 0,3 mol/l-ig és fenol-kloroformmal extraháljuk a fent leírtak szerint. Etanollal való kicsapás után a DNS-t újból TE-pufferben vesszük fel.
Génbank előállítása
A nagymolekulájú DNS-t három másodpercig tartó ultrahang kezeléssel statisztikusan feldaraboljuk. A kapott DNS fragmentumok végeit T4-DNS polimeráz (37 ’C, 30 perc) és Klenow enzim (20 ”C, 5 perc) segítségével kiegyenlítjük. A tompa végű DNS-t a pUEXL expressziós vektor BamHI helyére ligáljuk egy adapterklónozó stratégia alkalmazásával [Bresan és Stanley, Nucl. Acid. Rés., 1056. (1987)]. Egy nagyság szerinti szelekciós lépés után, amelyet molekulaszűrő kromatografálással végzünk Sephacryl S-1000 alkalmazásával, E. coli (MC 1061) gazdasejteket transzformálunk, és a rekombináns, plakk képző egységet (pfu) mutató sejteket a következőképpen mutatjuk ki: a véletlenszerűen kiválasztott telepeket kiszúrjuk és 2 ml szelektív táptalajban (LB táptalaj 25 pg/ml ampicillinnel kiegészítve) tenyésztjük telítésig. A plazmid-DNS-t a szokásos alkalikus lizáló módszerrel izoláljuk, és ezután BamHI-gyel hasítjuk. Az analizált plazmidok több, mint 50%-a átlag Jl,5 kb hosszú DNS inszertumot tartalmazott.
A. B. burgdorferi ZS7 génbank lemezre vitele és szűrése
A sejteket 24x24 cm-es lemezekre öntjük lemezenként 7000 pfu sűrűségben és egy éjszakán át 30 °C-on inkubáljuk. A telepeket ezután nitro-cellulóz (NC) szűrőkre visszük át, majd a β-galaktozidáz-fúziós proteinek expresszióját 42 °C-on való két órás inkubálással indukáljuk. A szűrőket előzőleg 5%-os SDS-sel kezelt Whatman 3MM papíiTa visszük át és körülbelül 25 percig 95 °C-on inkubáljuk. Ezután a proteineket elektroblot révén megfelelő készülék alkalmazásával - Western biot eljárással (félszáraz) analizáljuk. Az NC-szűrőket DNáz-zal kezeljük, majd az immunreaktív kiónokat expresszióra való szűréssel - monoklonális antitestek használatával azonosítjuk. Az NC-szűrőn az aspecifikus kötőhelyeket 0,2% (tömeg/térf) zselatin és 3 mmol/1 NaN3 tartalmú PBS-ben 4 órás inkubálással - szobahőmérsékleten - telítjük. Ezután a szűrőket a LA-2 anti-31 kD monoklonális antitest klón tenyészetének felülúszójával inkubáljuk 18 órán át folyamatos rázás mellett. Alapos mosás [PBS +1% (térf/térf) triton X-100; PBS+0,5 mol/1 NaCl; PBS + 1 mol/1 NaCl; mindegyik lépés 10 percig tart] után a szűrőket 1:10 000 hígítású peroxidázzal jelzett nyúl antiegér lg G F(ab)2 készítménnyel inkubáljuk 1,5 órán át szobahőmérsékleten, folyamatos rázás közben. A szűrőket újból mossuk, mint fent leírtuk, majd ezután diaminobenzidinnel (a peroxidáz szubsztrátuma) inkubáljuk. 104 rekombináns pfu-ból 20 klón reagált a LA-2 monoklonális antitesttel.
A 31 kD antigén (OspA) szekvenciális analízise
Egy rekombináns E. coli kiónból - amely pozitív reakciót adott LA-2 antitesttel - a DNS inszertumot a szokásos módon izoláljuk. Ennek a kiónnak a DNS inszertuma a B. burgdorferi 31 kD antigénjét kódoló teljes hosszúságú OspA-gént tartalmazza. Az inszertumot tartalmazó plazmid pZS-7/31-2 elnevezést kapott és a Budapesti Egyezmény alapján letétbe helyeztük a DSM intézménynél (DSM 5528 letéti szám alatt).
Ezen immunpozitív klón által termelt rekombináns proteint rZS7/31-2-vel jelöltük. Az OspA gént kódoló DNS szekvenciát meghatároztuk. Ezt az OspA protein innen levezetett aminosav szekvenciájával együtt az 1. ábrán mutatjuk be.
Az 1. ábrából kitűnik, hogy a B. burgdorferi 31 kD antigénje egy 273 aminosavból álló proteinnek felel meg.
A nem-fuziós proteinek előállítása (a) A kiónt, amely az rZS7/31-2 immunreaktív proteint fejezi ki, egy éjszakán át 30 °C-on ampicillinnel kiegészített 10 ml LB táptalajban tenyésztjük. A tenyészetből 1 ml-t 100 ml szelekciós táptalajba mérünk és 30 'C-on jó levegőztetéssel 8xl07 sejt/ml sűrűségig (Aóoo = θ’2) tenyésztjük. A rekombináns protein expresszióját a gazdasejtek 42 ’C-ra való melegítésével
HU 211 228 A9 érjük el. Lehűtés és centrifugálás után a sejteket STEpufferben (10 mmol/1 trisz, 100 mmol/1 NaCl, 1 mmol/1 EDTA; pH = 8,0) mossuk és az üledéket 0,6 ml lizáló pufferben (25% szacharóz, 50 mmol/1 trisz; pH = 8,0) reszuszpendáljuk. 150 pl lizozin (10 mg/ml) hozzáadása után az elegyet 15 percig jégen inkubáljuk, majd tovább inkubáljuk (15 percig jégen) 18 pl DNáz 1-gyel (10 mg/ml) 5 pl 1 mólos MgCl2 jelenlétében. A reakcióelegyhez végül 250 pl 4x detergens-mix-et (1% triton X-100, 0,5% dezoxikolát, 0,1 mol/1 NaCl, 10 mmol/1 trisz; pH = 7,4) adunk és 5 percig jégen inkubáljuk. Centrifugálás után az üledéket kétszer mossuk puffer A-val (50 mmol/1 trisz, 50 mmol/1 NaCl, 1 mmol/1 EDTA; pH-8,0); majd 9 térfogatnyi 8 mól karbamid tartalmú puffer A-ban reszuszpendáljuk és 1 órán át szobahőmérsékleten inkubáljuk. A mintát 9 rész puffer-E-vel (50 mmol/1 KHjPOyKjHPÖ,, 50 mmol/1 NaCl, 1 mmol/1 EDTA; pH = 10,7) hígítjuk és 30 percig szobahőmérsékleten keverjük, miközben a pH-t KOH adagolással 10,7-en tartjuk. Az oldat pH-ját ezután HCl hozzáadásával 7,0-re állítjuk be, majd egy éjszakán át puffer A-val szemben dializáljuk (4 ’C-on) és 10 percig 4 ’C-on 10 000 ford/perc mellett SS34-rotorban centrifugáljuk. A felülúszót, amely a rekombináns proteint tartalmazza, -20 ’C-on tároljuk.
(b) Minthogy a klón az rZS7/31-2 immunreaktív proteint a tápoldatba is kiválasztja, a tisztítást (affinitáskromatográfiával) a tenyészet felülúszójából is el lehet végezni.
Rekombináns OspA protein (nem-fúziós) előállítása és tisztítása affinitáskromatográfiával A rekombináns proteineket végezetül affinitáskromatográfiával tisztítjuk.
Erre a célra a tisztított LA-2 monoklonális antitestet aktivált Sepharose CL 4B-hez kötjük kovalens kötéssel. A rekombináns proteint tartalmazó dializált karbamidextraktumot egér IgG-Sepharose CL 4B-re adszorbeáljuk és ezután a LA-2-Sepharose CL 4B oszlopra visszük. Intenzív mosás után a megkötött rekombináns proteint 0,1 mol/1 glicin/HCl - 0,1 mol/1 NaCl oldattal (pH = 2,5) eluáljuk. Az összegyűjtött frakciók pH-ját semlegesre állítjuk be 1/10 térfogat 0,5 mol/1 K2HPO4 azonnali hozzáadásával. A proteint tartalmazó frakciókat koncentráljuk és dializáljuk. SDS poliakrilamid gél elektroforézis segítségével határozzuk meg a tisztítás fokát.
A rZS7/31-2 rekombináns protein immunológiai jellemzése
Elvégeztük az rZS7/31-2 rekombináns protein immunológiai vizsgálatát. Összehasonlításul az rB31/419 rekombináns proteint (B. burgdorferi 41 kD felületi antigén) használtuk fel.
Laposfenekű mikrotitráló lemezeket az rZS7/31-2 és rB31/41-9 rekombináns proteinek karbamid-extraktumával, illetve a génexpresszióhoz használt E. coli MC 1061 törzs karbamidos kivonatával fedünk. Az aspecifikus kötőhelyeket 0,2% zselatint tartalmazó foszfáttal pufferolt konyhasó oldattal (PRS) blokkoljuk. Az így előkészített mikrotitráló lemezek tartályaiba bemérjük a megadott LA-2 (anti-31 kD, OspA),
LA-1 (anti-41 kD, flagellin), illetve ACHT-2 (anti-a,antikimotripszin) monoklonális antitesteket.
A megkötött monoklonális antitesteket peroxidázzal jelzett fajspecifikus anti-egér immunglobulinnal reagáltatjuk. A megkötött, peroxidázzal jelzett antitestek mennyiségét orto-fenilén-diamin (a peroxidáz szubsztrátuma) segítségével határozzuk meg. Az abszorpciót 492 nm-en (A4922) közvetlenül a mikrotitráló lemezen - automata lemezfotométer segítségével - határozzuk meg. Az abszorpció erőssége a megkötött monoklonális antitest mennyiségére jellemző mérték.
A LA-2 monoklonális antitest specifikusan reagál az rZS7/31-2-vel, de nem reagál az MC 1061-el, illetve rB31/41-9-el. A LA-1 monoklonális antitest kontroli-reakció az rB31/41-9-re specifikus. Az ACHT-2 kontroll antitest (negatív kontroll) egyik proteinnel sem ad szignifikáns reakciót.
A 2. ábrán bemutatjuk, hogy a LA-2 monoklonális antitest által specifikusan felismert antigén-epitópot, amely az rZS7/31-2 rekombináns proteinen fejeződik ki, a B. burgdorferi ZS7 genomjából klónoztuk.
4. példa
A 31 kD (OspA) antigénre, illetve a 34 kD (OspE) antigénre specifikus antitestek összehasonlítása azokkal az antitestekkel, amelyek a 41 kD antigénre (flagellin) specifikusak
A LA-2 és LA-26.1 monoklonális antitestek felismerik a 31 kD OspA antigént és az IgG2b, illetve IgGl izotípushoz tartoznak. ALA-25.1 és aLA-27.1 monoklonális antitestek a 34 kD OspB antigént ismerik fel és az IgG2b, illetve IgGl izotípushoz tartoznak. A LA-10 és LA-21 monoklonális antitestek a B. burgdorfei flagellinjével kapcsolatos 41 kD periplazmatikus proteinre specifikusak és IgG2a, illetve IgGl izotfpusúak. Mindegyik fent említett antitestet a 2. példában leírt eljárással állítottuk elő. Ebben a kísérletben azt kell megállapítanunk, hogy más B. burgdorferi antigénnel szembeni monoklonális antitestek védőhatást gyakorolnak-e Scid-egerekben a Lyme-borreliózis klinikai tüneteivel szemben.
A poliklonális anti-B31 immunszérumot (IMS) C57BL/6 egerekből vettük le. Az egereket lxlO8 B. burgdorferi B31 sejttel oltottuk szubkután és a szérum levétele az oltás után 91 nappal történt A poliklonális anti-ZS7 IMS-t az lxlO8 B. burgdorferi ZS7-tel szubkután oldott 057BL/6 egerekből oltás után 68 nappal vettük le. Mindkét szérum 60 pg/ml specifikus antitestet tartalmazott ELISA rendszerben való meghatározás szerint [Schaible és munkatársai, J. Exp. Med., 170, 1427-1432. (1989)]. Normál egér szérumot (NMS) nem oltott CS7BL/6 egerekből vettünk.
Az oltás időpontjában és ezután 4 napos időközönként az adott antitesteket, az IMS-t, az NMS-t vagy a PBS-t passzív intraperitoneális oltással Scid-egereknek adtuk be a következő séma szerint:
0. nap és 3. nap 100 pl
7. nap és 10. nap 200 pl
13. nap és 17. nap 300 pl
HU 211 228 A9
Azokon a Scid-egereken, amelyeket akár az antiZS7 IMS-el, az anti-B31 IMS-sel vagy a LA-2 monoklonális antitesttel kezeltünk, a 21 napos megfigyelési idő alatt nem mutatkoztak az arhtritis klinikai tünetei, azaz a tibiotarzális ízületeknél nem lépett fel pirosság 5 és duzzanat. Nem lehetett megállapítani carditisre és hepatitisre utaló tüneteket sem.
Kórszövettani vizsgálatok nem mutattak ki elváltozásokat azoknak a Scid-egereknek az ízületeiben, szívében és májában, amelyeket akár anti-ZS7 IMS-sel, anti-B31 IMS-sel vagy akár a LA-2 monoklonális antitesttel kezeltünk.
A többi OspA specifikus monoklonális antitest, így az IgGl izotípusú LA-26.1, valamint az OspB specifikus LA-25.1 és LA-27.1 szintén képesek voltak az arthritis, carditis és hepatitis klinikai tüneteit enyhíteni.
Itt enyhe kóros elváltozások mutatkoztak a vizsgált szervekben.
Ezzel szemben azok a Scid-egerek, amelyek vagy PBS puffért vagy NMS-t vagy flagellin ellenes monoklonális antitestet (LA-10 vagy LA-21) kaptak, arthritises klinikai tüneteket mutattak, hasonlókat a kezeletlen Scidegereknél tipikus kóros elváltozásokhoz (3. táblázat). A tünetek súlyossága ez utóbbi állatoknál az oltás után eltelt idővel növekedett és nem gyengült a megfigyelés egész időtartama alatt. Az előzőleg anti-ZS7 IMS-sel vagy a LA-2 antitesttel kezelt Scid-egerekből nem lehetett spirochaetákat izolálni. Ezzel szemben a PBS pufferrel, NMS-sel vagy a LA-25.1, LA-26.1, LA-27.1 LA-10 és LA-21 monoklonális antitestekkel kezelt Scid-egerekből ki lehetett mutatni a spirochaetákat immunfluoreszcenciával és vérből való kitenyésztéssel.
3. táblázat
C.B-17 Scidtörzs (az egerek száma) Mivel történt a kezelés IgG szubíipus Klinikai arthritis Kórszövettani B. burgdorferi kimutatása (tenyésztéssel és immun fluoreszcenciával)
periarthritis/arth- ritis carditis
n = 8 PBS (negatív kontrollok) + + + +
n = 3 NMS (negatív kontrollok) + + + +
n = 3 anti-B 31 IMS - - —* _0
n = 2 anti-ZS7 IMS - - _* -
n = 6 LA-2 (OspA) 2b - _* _* -
n = 3 LA-10 (flagellin) 2a + + +
n = 3 LA-21 (flagellin) 1 + + +/- +
n = 3 LA-26.1 (OspA) 1 + + ±
n = 3 LA-25.1 (OspB) 2b + + + +
n = 3 LA-27.1 (OspB) 1 ± + +
A kórszövettani elváltozások fokának jele: - nincs; -* szubklinikai; +/- enyhe; + súlyos; 0 A B. burgdorferi-t nem lehetett kimutatni immunfluoreszcenciával minden vizsgált egyedben.
5. példa
OspA-val immunizált egerekből nyert antiszérum hatása a Lyme-borreliózis lefolyására Scid-egerekben Ebben a kísérletben ki tudtuk mutatni, hogy a natív
OspA (B. burgdorferi ZS7-ből izolálva) vagy a rekombináns OspA [rekombináns pZS7/31-2 plazmiddal (DSM 5528) transzformált E. coli baktériumokból izolálva] adása normál egerekben (C57BL/6 egér törzs) protektív poliklonális antitestek képződését indukálja. Ha ezeket az antitesteket Scid-egereknek adjuk be, védő hatást gyakorolnak a Lyme-borreliózissal szemben. Emellett megállapítottuk, hogy a rekombináns OspA a natív OspA-hoz hasonlóan protektív immunválaszt indukál. E kísérlet eredményét és a kísérlet végrehajtásának részleteit a 4. táblázat tartalmazza.
A rekombináns OspA előállítását a 3. példa tartalmazza. A natív OspA előállítása és az egerek immunizálása OspA-val a következőképpen történik.
A natív 31 kD OspA feldúsítása
3x2x10'° spirochaetát 2 órán át 4 ’C-on 5 ml
PB 8/7,5 ml n-butanol oldatban proteináz inhibitorok (5 mmol/1 EDTA, 5 mmol/1 benzamidin, 5 mmol/1 PMSF) jelenlétében mágneses keverővei kevertetünk. Ezután a keveréket 90 percig 10 000 ford/perc mellett 4 ’C-on Sorvall centrifugában (Fix-szögü rotorban) cent50 rifugáljuk. A vizes fázist, ami a felületi proteineket tartalmazza, levesszük és háromszor mossuk kloroformmal.
A protein tartalmat 280 nm-en mért extinkció révén, illetve a BCA-teszt segítségével határozzuk meg.
Az ezüstgélben, illetve az anti-B. burgdorferi nyúl55 szérummal végzett Western biot vizsgálatban a ZS7 törzsnél egy fő sáv jelenik meg a 31 kD molekulatömeget jelentő területen és gyenge sávok láthatók a 20, 34 és 65-68 kD területén. A B. burgdorferi B31 törzsből előállított butanol/víz készítmény egy fő sávot ad
31 kD-nál és gyenge sávokat ad 20 és 34 kD-nál.
HU 211 228 A9
Egerek immunizálása natív és rekombináns OspA* val
C57BL/6, illetve C.B-17 egereket háromszor 7-10 napos időközönként 5 gg (natív OspA a B31 törzsből), illetve 10 gg (natív OspA a ZS7 törzsből, rekombináns OspA ZS7-ből) OspA-t adunk be 100 gl adjuvánsban (ABM3; Sebak cég, Aidenbach, NSZK) szubkután a farok-tőbe. Az utolsó immunizáló oltás után legkorábban 3 hét múlva lehet szérumot levenni 3-4 hónapig. A specifikus antitest tartalmat ELISA rendszerben határozzuk meg.
4. táblázat
A B. burgdorferi specifikus monoklonális és poliklonális antitestek hatása a spirochaetózisra és az arhtritis kialakulására B. burgdorferivel megfertőzött
Scid-egereken
C.B-17 Scid-egér törzs (az egerek száma) Mivel történt a kezelés Arthritis kialakulása B. burg- dorferi kimuta- tása
1 2 3
hét múlva
n = 6 PBS (negatív kontrollok) ± + + 6/
n = 6 LA-2 - - - 0/3
n = 2 anti-OspA (natív) IMS - - - 0/2
n = 3 anti-OspA (rekomb.) IMS - - - 0/3
Az első antitest beadást (100 gl) i. p. végeztük a 0. napon (a 0. napon oltjuk az egereket lxlO8 B. burgdorferi ZS7 sejttel, s. c. a faroktőbe)
A további antitest adást a 4. napon (100 gl), a 7. napon (200 gl), all. napon (200 gl), a 14. napon (300 gl) és a
18. napon (300 gl) végezzük (i. p.)

Claims (26)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Lyme-kór elleni oltóanyag, azzal jellemezve, hogy egy vagy több olyan monoklonális antitestet tartalmaz, amelyek a B. burgdorferi 31 kD antigénjére (OspA) vagy 34 kD antigénjére specifikusak.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti oltóanyag, azzal jellemezve, hogy az antitest a B. burgdorferi ZS7 törzs (DSM 5527) vagy/és a B31 törzs (ATCC 35 210) 31 kD antigénjére (OspA) vagy 34 kD antigénjére specifikus.
  3. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti oltóanyag, azzal jellemezve, hogy IgG osztályba tartozó, előnyösen az IgG2b vagy az IgGl alosztályba tartozó monoklonális antitestet tartalmaz hatóanyagként.
  4. 4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti oltóanyag, azzal jellemezve, hogy olyan immunhiányos kísérleti állatokban, amelyeket élő, patogén B. burgdorferi mikroorganizmusokkal fertőztünk meg, az arthritis, carditis és hepatitis kialakulását meggátolja.
  5. 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti oltóanyag, azzal jellemezve, hogy olyan immunhiányos Scid-egerekben, amelyeket élő B. burgdorferi ZS7 törzzsel fertőztünk meg, az arthritis, carditis és hepatitis kialakulását messzemenően gátolja.
  6. 6. Eljárás Lyme-kór elleni oltóanyag előállítására B. burgdorferi mikroorganizmusokkal vagy ezek részeivel immunizált kísérleti állat, előnyösen egér limfocitáiból vagy lépsejtjeiből, azzal jellemezve, hogy a limfociták vagy a lépsejtek sejtfúziójából olyan hibridomát nyerünk ki, amely az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti monoklonális antitestet termeli.
  7. 7. A 6. igényponti szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az immunizáláshoz teljes B. burgdorferi B31 vagy/és ZS7 mikroorganizmusokat alkalmazunk.
  8. 8. OspA elleni LA-2 monoklonális antitest, amelyet az ECACC 89 091 302 sejtvonal szekretál.
  9. 9. OspA elleni LA-26.1 monoklonális antitest, amelyet az ECACC 90 050 406 sejtvonal szekretál.
  10. 10. OspB elleni LA-25.1 monoklonális antitest, amelyet az ECACC 90 050 405 sejtvonal szekretál.
  11. 11. OspB elleni LA-27.1 monoklonális antitest, amelyet az ECACC 90 050 407 sejtvonal szekretál.
  12. 12. Patogén B. burgdorferi ZS7 törzs, DSM 5527.
  13. 13. Antigén, azzal jellemezve, hogy valamely, 1-5. igénypontok bármelyike szerinti, OspA elleni antitesttel immunológiai reakciót ad és az alábbi aminosav szekvenciát vagy e szekvenciából egy immunogén epitópot tartalmaz
    M K K Y L L GIGLILALIACKQN V S S L D E KNSVSVDLPGEMNV L V S K Ε K NKDGKYDLIATVDK L E L K G T SDKNNGSGVLEGVK A D K S K V KLTISDDLGQTTLE V F K E D G KTLV.SKKVTSKDKS S T Ε Ε K F NEKGEVSEKI ITRA D G T R L E YTEIKSDGSGKAKE V L K S Y V LEGTLTAEKTTLVV K E G T V T LSKNISKSGEVSVE L N D T D S SAATKKTAAWNSGT S T L T I T VNSKKTKDLVFTKE N T I T V Q QYDSNGTKLEGSAV E ITKLDEIKNALK* 14. Antigén, azzal jellemezve, hogy valamely, 1-5
    igénypontok bármelyike szerinti, OspB elleni antitesttel immunológiai reakciót ad.
  14. 15. A 13. vagy 14. igénypont szerinti antigén, azzal jellemezve, hogy az antigént kódoló DNS szekvenciát egy olyan vektor, előnyösen egy prokarióta vektor tartalmazza, amely protein expressziójára alkalmas.
  15. 16. A 13-15. igénypontok szerinti antigén, azzal jellemezve, hogy az egy β-galaktozidáz-fúziós protein vagy egy nem fuzionált protein.
  16. 17. Rekombináns DNS, azzal jellemezve, hogy egy 13. vagy 14. igénypont szerinti antigént kódol és az alábbi nukleinsav szekvenciát tartalmazza atgaaaaaatatttattgggaataggtctaatattagccttaatagcatgtaagcaaaat
    HU 211 228 A9 gttagcagccttgacgagaaaaacagcgtttcag tagat ttgcctggtgaaatgaaogtt cttgtaagcaaagaaaaaaacaaagacggcaagtacgatctaattgcaacagtagacaag cttgagcttaaaggaacttctgataaaaacaatggatctggagtacttgaaggcgtaaaa gctgacaaaagtaaagtaaaattaacaatttctgacgatctaggtcaaaccacacttgaa gttttcaaagaagacggcaaaacactagtatcaaaaaaagtaacttccaaagacaagtca tcaacagaagaaaaattcaatgaaaaaggtgaagtatctgaaaaaataataacaagagca gacggaaccagacctgaatacacagaaattaaaagcgatggatctggaaaagctaaagag gttttaaaaagctatgttcttgaaggaactttaactgctgaaaaaacaacattggtggtt aaagaaggaactgttactttaagcaaaaatatttcaaaatctgggaagtttcagttgaa cttaatgacactgacagtagtgctgctactaaaaaaactgcagcttggaattcaggcact tcaactttaacaattactgtaaacagtaaaaaaactaaagaccttgtgtttacaaaagaa aacacaattacagtacaacaatacgactcaaatggcaccaaattagaggggtcagcagtt gaaattacaaaacttgatgaaattaaaaacgctttaaaataa
  17. 18. Rekombináns vektor, azzal jellemezve, hogy egy 17. igénypont szerinti rekombináns DNS egy vagy több másolatát tartalmazza.
  18. 19. A 18. igénypont szerinti rekombináns vektor, azzal jellemezve, hogy az egy prokarióta vektor.
  19. 20. A 19. igénypont szerinti rekombináns vektor, azzal jellemezve, hogy az egy plazmid.
  20. 21. ApZS7/31-2 rekombináns vektor (DSM 5528).
  21. 22. Eljárás a 13-16. igénypontok bármelyike szerinti antigének kinyerésére, azzal jellemezve, hogy egy B. burgdorferi génbankot egy vagy több, az 1-5. igénypontok valamelyike szerinti antitesttel átvizsgálunk és azt a kiónt izoláljuk, amelyik az antitesttel vagy antitestekkel pozitív immunológiai reakciót ad.
  22. 23. Lyme-kór elleni aktív oltóanyag, azzal jellemezve, hogy egy vagy több antigént tartalmaz és az említett antigének egy, az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti, OspA vagy OspB elleni antitesttel immunológiai reakciót adnak.
  23. 24. A 23. igénypont szerinti oltóanyag, azzal jellemezve, hogy az antigént géntechnológiai eljárással állítjuk elő.
  24. 25. Eljárás Lyme-kór elleni oltóanyag előállítására, azzal jellemezve, hogy kísérleti állatokat, előnyösen egereket valamely, a 13-16. igénypontok bármelyike szerinti antigénnel immunizálunk és az immunizált állatból a szokásos módon OspA vagy/és OspB elleni protektív poliklonális vagy monoklonális antitesteket veszünk le.
  25. 26. Eljárás patogén B. burgdorferi mikroorganizmusok izolálására és kitenyésztésére, azzal jellemezve, hogy az immunhiányos kísérleti állatokból, előnyösen egerekből, amelyeket előzőleg a kórokozóval megfertőztünk, a kórokozót úgy izoláljuk, hogy a kórokozó patogenitása megmaradjon.
  26. 27. A 26. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy patogén B. burgdorferi ZS7 mikroorganizmusokat tenyésztünk ki megfertőzött Scid-egerek véréből vagy/és ízületeiből.
HU95P/P00108P 1989-09-19 1995-04-24 Vaccine against lyme disease HU211228A9 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE3931236 1989-09-19
DE4015911A DE4015911A1 (de) 1989-09-19 1990-05-17 Impfstoff gegen die lyme-krankheit

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HU211228A9 true HU211228A9 (en) 1995-11-28

Family

ID=25885304

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU905816A HU212716B (en) 1989-09-19 1990-09-07 Method for the preparation of vaccine against lyme disease
HU95P/P00108P HU211228A9 (en) 1989-09-19 1995-04-24 Vaccine against lyme disease

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU905816A HU212716B (en) 1989-09-19 1990-09-07 Method for the preparation of vaccine against lyme disease

Country Status (24)

Country Link
US (6) US5178859A (hu)
EP (5) EP0633028B1 (hu)
JP (3) JP3205932B2 (hu)
KR (2) KR100205462B1 (hu)
AT (4) ATE186646T1 (hu)
AU (1) AU651560B2 (hu)
CA (1) CA2025597C (hu)
CZ (2) CZ284616B6 (hu)
DE (5) DE4015911A1 (hu)
DK (4) DK0418827T3 (hu)
ES (4) ES2145077T3 (hu)
FI (1) FI102248B (hu)
GR (3) GR3018995T3 (hu)
HK (2) HK1002405A1 (hu)
HR (1) HRP940545B1 (hu)
HU (2) HU212716B (hu)
IE (1) IE903377A1 (hu)
NO (2) NO311767B1 (hu)
NZ (1) NZ235260A (hu)
PL (2) PL170229B1 (hu)
PT (1) PT95349B (hu)
SI (1) SI9011773B (hu)
SK (3) SK283088B6 (hu)
YU (2) YU48250B (hu)

Families Citing this family (45)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK590288D0 (da) * 1988-10-24 1988-10-24 Symbicom Ab Kemiske forbindelser
US7094391B1 (en) * 1988-10-24 2006-08-22 The University Of Texas System Compositions and methods for administering Borrelia burgdorferi antigens
US5777095A (en) * 1988-10-24 1998-07-07 Symbicom Aktiebolag Osp A and B Sequence of Borrelia burgdonferi strains ACA1 and IP90
US6143872A (en) * 1988-10-24 2000-11-07 Symbicom Aktiebolag Borrelia burdorferi Osp A and B proteins and immunogenic peptides
DE4015911A1 (de) * 1989-09-19 1991-03-28 Max Planck Gesellschaft Impfstoff gegen die lyme-krankheit
US5582829A (en) * 1990-04-05 1996-12-10 Rx Technologies, Inc. Sonicated borrelia burgdorferi vaccine
JPH06501382A (ja) 1990-06-15 1994-02-17 エール ユニバーシティ ライム病の予防および診断に用いる組成物および方法
EP0465204B1 (en) * 1990-07-06 2000-09-20 American Home Products Corporation Vaccine against Lyme disease
CA2057536C (en) * 1990-12-21 1999-10-26 John J. Dunn Cloning and expression of borrelia lipoproteins
US6221363B1 (en) * 1991-07-11 2001-04-24 Baxter Aktiengesellschaft Vaccine for the prevention of lyme disease
US6872550B1 (en) 1991-07-11 2005-03-29 Baxter Vaccine Ag Immunogenic formulation of OspC antigen vaccines for the prevention and treatment of lyme disease and recombinant methods for the preparation of such antigens
US6676942B1 (en) 1991-08-15 2004-01-13 Smithkline Beecham Biologicals (S.A.) Osp a proteins of Borrelia burgdorferi subgroups, encoding genes and vaccines
EP0878545A3 (en) * 1991-08-15 1998-12-16 SMITHKLINE BEECHAM BIOLOGICALS s.a. OSP a protein of borrelia burgdorferi subgroups, encoding genes and vaccines
EP0620860A4 (en) * 1991-10-18 1997-05-02 Connaught Lab Preparation of recombinant borrelia proteins.
AU2903892A (en) * 1991-10-22 1993-05-21 Symbicom Aktiebolag Improvement in (borrelia burgdorferi) diagnosis and prophylaxis
US6303129B1 (en) * 1992-07-28 2001-10-16 Rx Technologies Production of borrelia burgdorferi vaccine, product produced thereby and method of use
US5656451A (en) * 1993-07-30 1997-08-12 Yale University OspE, OspF, and S1 polypeptides in borrelia burgdorferi
US6716591B1 (en) 1993-07-30 2004-04-06 Yale University B. burgdorferi polypeptides
US7008625B2 (en) 1993-11-01 2006-03-07 Research Foundation Of The State University Of New York Recombinant constructs of Borrelia burgdorferi
US5558993A (en) * 1994-06-17 1996-09-24 The Regents Of The University Of California Cloned Borrelia burgdorferi virulence protein
GB9511909D0 (en) * 1995-06-12 1995-08-09 Microbiological Res Authority Vaccine
ATE301716T1 (de) * 1996-02-21 2005-08-15 Univ Texas Vmp-ähnliche sequenzen von pathogener borrelia
DE19632862B4 (de) * 1996-08-14 2006-08-03 Mikrogen Molekularbiologische Entwicklungs-Gmbh Immunologisch aktive Proteine von Borrelia burgdorferi, dafür kodierende Nukleinsäuren sowie deren Verwendung in Testkits und als Impfstoffe
US6458555B1 (en) * 1996-08-21 2002-10-01 Gerd Bach Cytologic method of examining mucous membranes
US6060082A (en) * 1997-04-18 2000-05-09 Massachusetts Institute Of Technology Polymerized liposomes targeted to M cells and useful for oral or mucosal drug delivery
DE19740735A1 (de) * 1997-09-16 1999-03-18 Max Planck Gesellschaft Arzneimittel zur Therapie einer manifesten Lyme-Borreliose
US6306623B1 (en) 1998-02-24 2001-10-23 The University Of California Leptospiral major outer membrane protein LipL32
ATE386805T1 (de) 1998-07-31 2008-03-15 Gundersen Lutheran Medical Fou Verwendungen eines borreliaziden epitops des aussermembranproteins c von borrelia burgdorferi (ospc) als impstoff
WO2000056298A2 (en) * 1999-03-19 2000-09-28 Luitpold Pharmaceuticals, Inc. Treatment of lyme disease with polysulfated glycosaminoglycan formulations
US6592875B1 (en) 1999-06-21 2003-07-15 Milkhaus Laboratory, Inc. Method for treatment of lyme disease
WO2002016421A2 (en) 2000-08-18 2002-02-28 Research Foundation Of The State University Of New York Altered ospa of borrelia burgdorferi
EP1572714A4 (en) 2002-12-20 2006-08-09 Univ Texas SEQUENCES OF SPECIES AND STRAINS OF I BORRELIA / I PATHOGENIC VMP TYPE
KR101192127B1 (ko) 2006-11-03 2012-10-17 쉐링-프라우 리미티드 개 라임병 백신
WO2008116468A2 (en) 2007-03-26 2008-10-02 Dako Denmark A/S Mhc peptide complexes and uses thereof in infectious diseases
EP3023436A1 (en) 2007-07-03 2016-05-25 Dako Denmark A/S Improved methods for generation, labeling and use of mhc multimers
EP2197908A2 (en) 2007-09-27 2010-06-23 Dako Denmark A/S Mhc multimers in tuberculosis diagnostics, vaccine and therapeutics
US10968269B1 (en) 2008-02-28 2021-04-06 Agilent Technologies, Inc. MHC multimers in borrelia diagnostics and disease
WO2010009735A2 (en) 2008-07-23 2010-01-28 Dako Denmark A/S Combinatorial analysis and repair
GB0817244D0 (en) 2008-09-20 2008-10-29 Univ Cardiff Use of a protein kinase inhibitor to detect immune cells, such as T cells
US10369204B2 (en) 2008-10-02 2019-08-06 Dako Denmark A/S Molecular vaccines for infectious disease
US11992518B2 (en) 2008-10-02 2024-05-28 Agilent Technologies, Inc. Molecular vaccines for infectious disease
EP2501719B1 (en) * 2009-11-17 2015-11-04 Abaxis, Inc. Peptides and methods for the detection of lyme disease antibodies
US8758772B2 (en) 2011-11-04 2014-06-24 Abaxis, Inc. Peptides and methods for the detection of lyme disease antibodies
PL223175B1 (pl) 2012-10-22 2016-10-31 Inst Chemii Bioorganicznej Polskiej Akademii Nauk Szczepionka przeciw boreliozie, konstrukt genetyczny, rekombinowane białko, sposób otrzymywania konstruktu genetycznego, sposób otrzymywania szczepionki, sposób otrzymywania rekombinowanych białek, zastosowanie rekombinowanych białek do wytwarzania szczepionki przeciwko boreliozie
US9610336B1 (en) * 2014-07-16 2017-04-04 Amiram Katz Immunotherapy for lyme disease

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK590288D0 (da) * 1988-10-24 1988-10-24 Symbicom Ab Kemiske forbindelser
US4772464A (en) 1985-08-01 1988-09-20 Miles Laboratories, Inc. Protective antibodies to serotypic determinants of flagellar antigens
US4888276A (en) * 1986-06-26 1989-12-19 Minnesota Mining And Manufacturing Company Method and composition for the diagnosis of Lyme disease
US4721617A (en) 1986-08-14 1988-01-26 Regents Of The University Of Minnesota Vaccine against lyme disease
US5034515A (en) * 1987-09-22 1991-07-23 Wisconsin Alumni Research Foundation Staphylococcal fibronectin receptor, monoclonal antibodies thereto and methods of use
DE4015911A1 (de) * 1989-09-19 1991-03-28 Max Planck Gesellschaft Impfstoff gegen die lyme-krankheit
DE59010422D1 (de) * 1989-12-22 1996-08-22 Mikrogen Molekularbiol Entw Immunologisch aktive proteine von borrelia burgdorferi, zusammenhängende testkits und impfstoff
JPH06501382A (ja) * 1990-06-15 1994-02-17 エール ユニバーシティ ライム病の予防および診断に用いる組成物および方法
EP0465204B1 (en) * 1990-07-06 2000-09-20 American Home Products Corporation Vaccine against Lyme disease
CA2057536C (en) * 1990-12-21 1999-10-26 John J. Dunn Cloning and expression of borrelia lipoproteins
EP0878545A3 (en) * 1991-08-15 1998-12-16 SMITHKLINE BEECHAM BIOLOGICALS s.a. OSP a protein of borrelia burgdorferi subgroups, encoding genes and vaccines
JP3246603B2 (ja) * 1991-08-27 2002-01-15 ノボザイムス アクティーゼルスカブ 洗 剤
EP0620860A4 (en) * 1991-10-18 1997-05-02 Connaught Lab Preparation of recombinant borrelia proteins.
AU681572B2 (en) * 1991-10-21 1997-09-04 Med Immune, Inc. Bacterial expression vectors containing DNA encoding secretion signals of lipoproteins

Also Published As

Publication number Publication date
EP0643974B1 (de) 1999-01-13
AU651560B2 (en) 1994-07-28
US5434077A (en) 1995-07-18
JPH03209400A (ja) 1991-09-12
US5178859A (en) 1993-01-12
CA2025597A1 (en) 1991-03-20
ES2082812T3 (es) 1996-04-01
NO904062L (no) 1991-03-20
KR910005889A (ko) 1991-04-27
CZ284616B6 (cs) 1999-01-13
KR100205462B1 (ko) 1999-07-01
US5856447A (en) 1999-01-05
DE59009978D1 (de) 1996-02-01
US5780030A (en) 1998-07-14
ES2145077T3 (es) 2000-07-01
CZ456090A3 (cs) 1998-08-12
SK283088B6 (sk) 2003-02-04
CZ284538B6 (cs) 1998-12-16
GR3032010T3 (en) 2000-03-31
JP3205932B2 (ja) 2001-09-04
SK456090A3 (en) 1999-11-08
NO20014624L (no) 1991-03-20
JP3328644B2 (ja) 2002-09-30
NO315905B1 (no) 2003-11-10
EP0643974A1 (de) 1995-03-22
CA2025597C (en) 2004-02-03
PL170229B1 (pl) 1996-11-29
EP0633028A1 (de) 1995-01-11
DE59010888D1 (de) 1999-12-23
EP0861664A3 (de) 1999-02-24
ES2129551T3 (es) 1999-06-16
SK283089B6 (sk) 2003-02-04
EP0418827A1 (de) 1991-03-27
IE990173A1 (en) 2000-11-01
JP2001204467A (ja) 2001-07-31
YU177390A (sh) 1993-05-28
NO311767B1 (no) 2002-01-21
KR100202128B1 (en) 1999-06-15
HU212716B (en) 1996-10-28
EP0633028B1 (de) 1999-11-17
FI904597A0 (fi) 1990-09-18
ATE186646T1 (de) 1999-12-15
NZ235260A (en) 1993-04-28
SK151098A3 (en) 1999-04-13
YU9097A (sh) 1999-06-15
PL169804B1 (pl) 1996-09-30
DK0633313T3 (da) 2000-07-24
EP0861664A2 (de) 1998-09-02
SK280285B6 (sk) 1999-11-08
HRP940545A2 (en) 1997-04-30
ATE191499T1 (de) 2000-04-15
ATE175576T1 (de) 1999-01-15
DE59010863D1 (de) 1999-02-25
HU905816D0 (en) 1991-03-28
JP3418171B2 (ja) 2003-06-16
AU6244490A (en) 1991-03-28
GR3033675T3 (en) 2000-10-31
EP0633313B1 (de) 2000-04-05
PT95349A (pt) 1991-05-22
YU48250B (sh) 1997-09-30
DK0633028T3 (da) 2000-04-10
NO20014624D0 (no) 2001-09-24
US5686267A (en) 1997-11-11
FI102248B1 (fi) 1998-11-13
FI102248B (fi) 1998-11-13
ATE131732T1 (de) 1996-01-15
SK151198A3 (en) 1999-04-13
HRP940545B1 (en) 2000-06-30
SI9011773B (en) 2001-12-31
YU49370B (sh) 2005-09-19
PT95349B (pt) 1997-06-30
DE59010903D1 (de) 2000-05-11
NO904062D0 (no) 1990-09-18
HK1002405A1 (en) 1998-08-21
JP2001069969A (ja) 2001-03-21
CZ97095A3 (en) 1995-09-13
SI9011773A (sl) 1998-04-30
ES2141182T3 (es) 2000-03-16
IE903377A1 (en) 1991-04-10
EP0418827B1 (de) 1995-12-20
HK1013620A1 (en) 1999-09-03
GR3018995T3 (en) 1996-05-31
DK0643974T3 (da) 1999-09-06
US6613331B1 (en) 2003-09-02
EP0633313A1 (de) 1995-01-11
HUT59613A (en) 1992-06-29
DE4015911A1 (de) 1991-03-28
DK0418827T3 (da) 1996-05-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU211228A9 (en) Vaccine against lyme disease
US5747294A (en) Compositions and methods for the prevention and diagnosis of lyme disease
IE83320B1 (en) Vaccine against lyme disease
US5656451A (en) OspE, OspF, and S1 polypeptides in borrelia burgdorferi
US5324630A (en) Methods and compositions for diagnosing lyme disease
US5879952A (en) 43 Kd protein vaccine and method for the production thereof
US5885589A (en) Pasteurella vaccine
US6716591B1 (en) B. burgdorferi polypeptides
AU673912B2 (en) Vaccine against lyme disease
CA2324981A1 (en) Peptides
EP0492525A2 (en) Babesial protease antigen
IE83340B1 (en) Vaccine against lyme disease